(57)【要約】【課題】嗅覚受容体を発現かつ機能させることができる組換え細胞の探索。【解決手段】嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定方法であって、外来嗅覚受容体ポリペプチドを発現するように遺伝的に改変された組換えＬＮＣａＰ細胞上に発現された該外来嗅覚受容体ポリペプチドの応答を測定することを含む、方法。外来嗅覚受容体ポリペプチドを発現する組換えＬＮＣａＰ細胞。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定方法であって、
外来嗅覚受容体ポリペプチドを発現するように遺伝的に改変された組換えＬＮＣａＰ細胞上に発現された該外来嗅覚受容体ポリペプチドの応答を測定することを含む、
方法。
【請求項２】
前記外来嗅覚受容体ポリペプチドが、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ＯＲ５１Ｔ１であるか、又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列からなる、請求項１記載の方法。
【請求項３】
前記外来嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定が、ＥＬＩＳＡもしくはレポータージーンアッセイによる細胞内ｃＡＭＰ量測定、又はカルシウムイメージングによって行われる、請求項１又は２のいずれか１項記載の方法。
【請求項４】
外来嗅覚受容体ポリペプチドを発現する組換えＬＮＣａＰ細胞。
【請求項５】
前記外来嗅覚受容体ポリペプチドが、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ＯＲ５１Ｔ１であるか、又は当該配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列からなる、請求項４記載の組換えＬＮＣａＰ細胞。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は嗅覚受容体の応答を測定する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
候補物質に対する嗅覚受容体の応答を指標にした香料物質又は臭い抑制剤の探索方法が開発されている（例えば特許文献１、２）。当該方法においては、嗅覚受容体の応答の測定の際、嗅覚受容体を発現させた組換え細胞を用いることがしばしば行われる。前述の特許文献１、２では、組換えＨＥＫ（Ｈｕｍａｎ  Ｅｍｂｒｙｏ  Ｋｉｄｎｅｙ）２９３細胞が用いられている。
【０００３】
嗅覚受容体には多くの種類があり、ヒトの場合約４００種類が存在する。各嗅覚受容体の活性化又はそれらの組み合わせが、個別の匂いの認識を生じさせ、様々な匂いを識別可能にしていると考えられている。その一方で、リガンドが解明されている嗅覚受容体の数は多くない。実際、これまでに前述のような嗅覚受容体を発現させた組換えＨＥＫ２９３細胞を用いた方法で何らかの匂い応答性が見つかっているヒト嗅覚受容体の種類は、５０種類程度に過ぎない。
【０００４】
ＬＮＣａＰ（Ｌｙｍｐｈ  Ｎｏｄｅ  Ｃａｒｃｉｎｏｍａ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｐｒｏｓｔａｔｅ）細胞は、ヒト前立腺癌由来細胞株である。ＬＮＣａＰ細胞が生来的にいくつかの嗅覚受容体を発現し得ることが報告されている（特許文献３、非特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】国際公開公報第２０１５／０２０１５８号
【特許文献２】国際公開公報第２０１２／０２９９２２号
【特許文献３】国際公開公報第０１／０２５４３４号
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】J Bio Chem, 2009, 284(24):16218-16225
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
多くの嗅覚受容体のリガンドは未だ解明されていない。それらの嗅覚受容体のリガンド又は匂い応答性の解明が求められている。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、組換えＨＥＫ２９３細胞を用いた従来の研究で未だ多くの嗅覚受容体の匂い応答性が見つかっていない理由として、それらの嗅覚受容体タンパク質がＨＥＫ２９３細胞上で充分に発現していないか又は受容体として充分に機能していないためであるという仮説を立てた。そしてこの仮説に基づいて、本発明者らは、従来匂い応答性が解明されていない嗅覚受容体を発現かつ機能させることができる実験系の構築を試みた。
【０００９】
その結果、本発明者は、ＬＮＣａＰ細胞が、これまでＨＥＫ２９３細胞で応答性がみられなかった嗅覚受容体を発現かつ機能させることができることを見出した。
【００１０】
したがって、本発明は、嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定方法であって、
該嗅覚受容体ポリペプチドを発現するように遺伝的に改変された組換えＬＮＣａＰ細胞上に発現された該嗅覚受容体ポリペプチドの応答を測定することを含む、
方法を提供する。
また本発明は、外来嗅覚受容体ポリペプチドを発現する組換えＬＮＣａＰ細胞を提供する。
【発明の効果】
【００１１】
本発明は、嗅覚受容体を高度に発現かつ機能させることができる組換え細胞を提供する。本発明によれば、これまでにリガンド又は匂い応答性が確認されていない嗅覚受容体の機能や性質を調べることができる。本発明は、嗅覚受容体に関する、又はそれを用いた研究開発にとって有用である。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】ＯＲ１Ａ１遺伝子又はＯＲ５１Ｔ１遺伝子を導入した組換えＨＥＫ２９３細胞及び組換えＬＮＣａＰ細胞の受容体リガンド（香料ｍｉｘｔｕｒｅ）に対する応答。Ａ：ＯＲ１Ａ１遺伝子を導入した組換え細胞の応答、Ｂ：ＯＲ５１Ｔ１遺伝子を導入した組換え細胞の応答。ｎ＝３、エラーバー＝標準誤差。
【図２】ＯＲ５１Ｔ１遺伝子を導入した組換えＨＥＫ２９３細胞及び組換えＬＮＣａＰ細胞のｌ−ｃａｒｖｏｎｅに対する応答。ｎ＝３、エラーバー＝標準誤差。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
本明細書において、「嗅覚受容体ポリペプチド」とは、嗅覚受容体又はそれと同等の機能を有するポリペプチドをいい、嗅覚受容体と同等の機能を有するポリペプチドとは、嗅覚受容体と同様に、細胞膜上に発現することができ、匂い分子の結合によって活性化し、かつ活性化されると、細胞内のＧｓ系Ｇタンパク質（Stimulatory G-protein、例えばＧαｓ、Ｇαｏｌｆ等）と共役してアデニル酸シクラーゼを活性化することで細胞内ｃＡＭＰ量を増加させる機能を有するポリペプチドをいう（Ｎａｔ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，２００４，５：２６３−２７８）。
【００１４】
本明細書において、細胞で嗅覚受容体ポリペプチドが「機能的に発現する」とは、発現された該嗅覚受容体ポリペプチドが、該細胞において匂い物質受容体として機能することをいう。
【００１５】
本明細書において、ヌクレオチド配列及びアミノ酸配列の同一性は、リップマン−パーソン法（Ｌｉｐｍａｎ−Ｐｅａｒｓｏｎ法；Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９８５，２２７：１４３５−４１）によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアＧｅｎｅｔｙｘ−Ｗｉｎ（Ｖｅｒ．５．１．１；ソフトウェア開発）のホモロジー解析（Ｓｅａｒｃｈ  ｈｏｍｏｌｏｇｙ）プログラムを用いて、Ｕｎｉｔ  ｓｉｚｅ  ｔｏ  ｃｏｍｐａｒｅ（ｋｔｕｐ）を２として解析を行うことにより算出される。
【００１６】
本明細書において、アミノ酸配列又はヌクレオチド配列の同一性に関する「少なくとも８０％」とは、８０％以上、好ましくは８５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、さらに好ましくは９６％以上、さらに好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９８％以上、さらに好ましくは９９％以上、なお好ましくは１００％をいう。
【００１７】
本明細書において、宿主細胞の構造、機能、性状又は形質に対して使用する用語「生来」とは、当該構造、機能、性状又は形質が当該宿主細胞に存在していることを表すために使用される。対照的に、用語「外来」とは、当該宿主細胞に元から存在するのではなく、外部から導入された構造、機能、性状又は形質を表すために使用される。例えば、「外来」遺伝子又はポリヌクレオチドとは、宿主細胞に外部から導入された遺伝子又はポリヌクレオチドである。外来遺伝子又はポリヌクレオチドは、それが導入された宿主細胞と同種の生物由来であっても、異種の生物由来（すなわち異種遺伝子又はポリヌクレオチド）であってもよい。
【００１８】
本明細書において、制御領域と遺伝子との「作動可能な連結」とは、遺伝子と制御領域とが、該遺伝子が該制御領域の制御の下で発現し得るように連結されていることをいう。遺伝子と制御領域との「作動可能な連結」の手順は当業者に周知である。
【００１９】
本発明は、新規な嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定方法を提供する。当該方法は、特定の嗅覚受容体ポリペプチドを発現するように遺伝的に改変された組換えＬＮＣａＰ細胞上に発現された該特定の嗅覚受容体ポリペプチドの応答を測定することを含む。当該本発明の方法は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ又はｅｘ  ｖｉｖｏで行われ得る。
【００２０】
本発明の方法において使用される嗅覚受容体ポリペプチドの種類、又はそれが由来する生物種は、特に限定されない。好ましくは、本発明の方法において使用される嗅覚受容体ポリペプチドは、哺乳動物由来の嗅覚受容体ポリペプチドである。哺乳動物由来の嗅覚受容体ポリペプチドの好ましい例としては、ヒト、チンパンジー、サルなどの霊長類の嗅覚受容体、マウス、ラットなどのげっ歯類の嗅覚受容体、ならびにそれらと同等の嗅覚受容体ポリペプチドが挙げられる。より好ましい例としては、ヒト、マウス及びラットの嗅覚受容体、ならびにそれらと同等の嗅覚受容体ポリペプチドが挙げられる。
【００２１】
ある嗅覚受容体と「同等の嗅覚受容体ポリペプチド」としては、当該嗅覚受容体とアミノ酸配列において少なくとも８０％同一な嗅覚受容体ポリペプチドが挙げられる。
【００２２】
したがって、本発明の方法において使用される嗅覚受容体ポリペプチドは、好ましくは、ヒト、マウス又はラットの嗅覚受容体、あるいはそれとアミノ酸配列において少なくとも８０％同一な嗅覚受容体ポリペプチドである。より好ましくは、ヒト嗅覚受容体、又はそれとアミノ酸配列において少なくとも８０％同一な嗅覚受容体ポリペプチドである。ヒト、マウス及びラットの嗅覚受容体の情報は、ＧｅｎＢａｎｋ［ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ］より取得することができる。例えば、ヒト嗅覚受容体ＯＲ５１Ｔ１は、ＧｅｎＢａｎｋにＧＩ：５２３１７２７２として、ヒト嗅覚受容体ＯＲ１Ａ１は、ＧｅｎＢａｎｋにＧＩ：２８９５４７６２２として登録されている。ＯＲ５１Ｔ１は、配列番号１で示されるヌクレオチド配列を有する遺伝子にコードされる、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質である。ＯＲ１Ａ１は、配列番号３で示されるヌクレオチド配列を有する遺伝子にコードされる、配列番号４で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質である。よって本発明の方法において使用される嗅覚受容体ポリペプチドの好ましい例として、配列番号２又は配列番号４で示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ポリペプチドが挙げられる。
【００２３】
本発明の方法において使用される嗅覚受容体ポリペプチドは、該嗅覚受容体ポリペプチドを発現するように遺伝的に改変された組換えＬＮＣａＰ細胞上に発現されている。当該組換えＬＮＣａＰ細胞は、該嗅覚受容体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド（以下、嗅覚受容体遺伝子ともいう）を含有するＤＮＡ断片又はベクターを宿主ＬＮＣａＰ細胞内に導入することによって作製することができる。宿主となるＬＮＣａＰ細胞は、ＡＴＣＣ（Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）などから入手することができる。
【００２４】
好ましくは、当該組換えＬＮＣａＰ細胞は、該嗅覚受容体遺伝子を含有するベクターを宿主ＬＮＣａＰ細胞内に導入することによって作製される。好ましくは、当該ベクターは発現ベクターである。また好ましくは、該ベクターは、嗅覚受容体遺伝子を宿主に導入することができ、かつ宿主内で該遺伝子を発現することができる発現ベクターである。好ましくは、該ベクターは、プラスミド等の染色体外で自立増殖及び複製可能なベクターであってもよく、又は染色体内に組み込まれるベクターであってもよい。具体的なベクターの例としては、ｐＭＥ１８Ｓが挙げられるが、これに限定されない。
【００２５】
該ベクターは、好ましくは、該嗅覚受容体遺伝子、及びこれと作動可能に連結された制御領域を含む。該制御領域は、該ベクターが導入された宿主内で、導入された嗅覚受容体遺伝子を発現させるための配列であり、例えば、プロモーターやターミネーター等の発現調節領域、転写開始点などが挙げられる。該制御領域の種類は、ベクターの種類に応じて適宜選択することができる。必要に応じて、該ベクター又はＤＮＡ断片はさらに、アンピシリン等の薬剤耐性遺伝子を選択マーカーとして有していてもよい。該制御領域及び選択マーカー遺伝子は、該ベクターに元々含まれているものを使用してもよく、又は該嗅覚受容体遺伝子と一緒に又は別々に該ベクターに組み込まれてもよい。
【００２６】
嗅覚受容体遺伝子を含有するＤＮＡ断片の例としては、ＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片及び制限酵素切断ＤＮＡ断片が挙げられる。好ましくは、該ＤＮＡ断片は、該遺伝子、及びこれと作動可能に連結された制御領域を含む発現カセットであり得る。使用できる制御領域の例は、ベクターの場合と同様である。
【００２７】
好適には、嗅覚受容体ポリペプチドの細胞膜発現を促進するために、嗅覚受容体遺伝子とともに、ＲＴＰ（ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｔｒａｎｓｐｏｒｔｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎ）をコードするポリヌクレオチド（本明細書において、ＲＴＰ遺伝子ともいう）を細胞に導入する。例えば、ＲＴＰ遺伝子と嗅覚受容体遺伝子とを含むベクターを構築し、それを宿主細胞に導入してもよく、又はＲＴＰ遺伝子を含むベクターと嗅覚受容体遺伝子を含むベクターをそれぞれ宿主細胞に導入してもよい。ＲＴＰの例としてはＲＴＰ１Ｓが挙げられ、ＲＴＰ１Ｓの例としては、ヒトＲＴＰ１Ｓが挙げられる。ヒトＲＴＰ１Ｓは、ＧｅｎＢａｎｋにＧＩ：５０２３４９１７として登録されているタンパク質である。
【００２８】
また好適には、組換え細胞における嗅覚受容体ポリペプチドの応答を増強するために、嗅覚受容体遺伝子とともに、Ｇタンパク質をコードするポリヌクレオチド（本明細書において、Ｇタンパク質遺伝子ともいう）を細胞に導入する。例えば、Ｇタンパク質遺伝子と嗅覚受容体遺伝子とを含むベクターを構築し、それを宿主細胞に導入してもよく、又はＧタンパク質遺伝子を含むベクターと嗅覚受容体遺伝子を含むベクターをそれぞれ宿主細胞に導入してもよい。該Ｇタンパク質の例としては、Ｇｓ系Ｇタンパク質（例えば、Ｇαｓ、Ｇαｏｌｆ等）、Ｇｑ系Ｇタンパク質（例えば、Ｇα15等）などが挙げられ、好ましくはＧαｓ、Ｇαｏｌｆ及びＧα15が、より好ましくはＧαｏｌｆが挙げられる。該Ｇαｓ、Ｇαｏｌｆ及びＧα15は、好ましくはヒトＧαｓ、Ｇαｏｌｆ及びＧα15である。ヒトＧαｏｌｆとしては、ＧｅｎＢａｎｋにＧＩ：３８７５９８０５７として登録されているタンパク質が挙げられる。ヒトＧαｓとしては、ＧｅｎＢａｎｋにＧＩ：８３４４００５１９として登録されているタンパク質が挙げられる。ヒトＧα15としては、ＧｅｎＢａｎｋにＧＩ：５９７７０９７７０として登録されているタンパク質が挙げられる。細胞内で活性化された嗅覚受容体ポリペプチドは、該Ｇｓ系Ｇタンパク質と共役してアデニル酸シクラーゼを活性化し、細胞内ｃＡＭＰ量を増加させる。あるいは、細胞内で活性化された嗅覚受容体ポリペプチドは、該Ｇｑ系Ｇタンパク質と共役して、ホスホリパーゼＣを活性化し、細胞内にカルシウムイオンを放出する。
【００２９】
より好適には、上述したＲＴＰ遺伝子とＧタンパク質遺伝子の両方を、嗅覚受容体遺伝子とともに細胞に導入する。嗅覚受容体遺伝子と、ヒトＲＴＰ１Ｓをコードする遺伝子と、ヒトＧαｏｌｆ、Ｇαｓ、又はＧα15をコードする遺伝子とを細胞に導入することがさらに好ましい。好ましくは、該ＲＴＰ遺伝子と、該Ｇタンパク質遺伝子と、該嗅覚受容体遺伝子は、それらのいずれか１つ以上を含有する１つ以上のベクターを用いて細胞に導入することができる。例えば、ＲＴＰ遺伝子と、Ｇタンパク質遺伝子と、嗅覚受容体遺伝子とを含むベクターを構築し、それを宿主細胞に導入してもよく、又は、ＲＴＰ遺伝子を含むベクターと、Ｇタンパク質遺伝子を含むベクターと、嗅覚受容体遺伝子を含むベクターを、それぞれ宿主細胞に導入してもよい。
【００３０】
宿主細胞へのベクター又はＤＮＡ断片の導入には、哺乳動物細胞に関して一般的な形質転換法、例えばエレクトロポレーション法、リポフェクション法、パーティクル・ガン法などを用いることができる。目的のベクター又はＤＮＡ断片が導入された組換え細胞は、選択マーカーを利用して選択することができる。あるいは、細胞のＤＮＡの配列を調べることで目的のベクター又はＤＮＡ断片の導入を確認することもできる。
【００３１】
以上の手順で得られた組換えＬＮＣａＰ細胞は、導入された遺伝子にコードされる外来嗅覚受容体ポリペプチドを機能的に発現する。すなわち、該組換えＬＮＣａＰ細胞に発現される外来嗅覚受容体ポリペプチドは、匂い物質に対する応答性を維持している。後述する実施例に示すとおり、該組換えＬＮＣａＰ細胞においては、従来組換えＨＥＫ２９３細胞で応答を検出できなかった受容体が応答性を示した。したがって、該組換えＬＮＣａＰ細胞を用いた本発明の嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定方法は、ＨＥＫ２９３細胞を用いた従来の手法では応答が測定できなかった嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定を可能にする。
【００３２】
本発明の方法において、嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定には、嗅覚受容体の応答を測定する方法として当該分野で知られている任意の方法を用いることができる。そのような方法としては、例えば、細胞内ｃＡＭＰ量測定が挙げられる。嗅覚受容体は、匂い物質によって活性化されると、細胞内のＧｓ系Ｇタンパク質と共役してアデニル酸シクラーゼを活性化することで細胞内ｃＡＭＰ量を増加させる（Ｎａｔ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，２００４，５：２６３−２７８）。したがって、細胞内ｃＡＭＰ量を指標にすることで、嗅覚受容体ポリペプチドの応答を測定することができる。ｃＡＭＰ量を測定する方法としては、例えば、ＥＬＩＳＡ、レポータージーンアッセイなどが挙げられる。一方で、細胞内で活性化された嗅覚受容体ポリペプチドは、該Ｇｑ系Ｇタンパク質と共役して、ホスホリパーゼＣを活性化し、細胞内にカルシウムイオンを放出する。したがって、細胞内カルシウムイオン濃度変化を指標にすることで、嗅覚受容体ポリペプチドの応答を測定することもできる。細胞内カルシウムイオン濃度変化を測定する方法としては、カルシウムイメージング法が挙げられる。
【００３３】
本発明の一応用例として、目的の匂いを有する物質の探索方法が挙げられる。当該方法は、基本的には、試験物質存在下で嗅覚受容体ポリペプチドの応答を測定することを含み、該嗅覚受容体ポリペプチドは、該嗅覚受容体ポリペプチドを発現するように遺伝的に改変された組換えＬＮＣａＰ細胞上に発現されている。該嗅覚受容体ポリペプチドには、該目的の匂いに対して応答性を有することが確認されている嗅覚受容体ポリペプチドが用いられる。したがって、該嗅覚受容体ポリペプチドが応答した試験物質は、該目的の匂いを有する物質の候補として選択される。
【００３４】
本発明の例示的実施形態として、さらに以下の物質、製造方法、用途、方法等を本明細書に開示する。ただし、本発明はこれらの実施形態に限定されない。
【００３５】
〔１〕嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定方法であって、
外来嗅覚受容体ポリペプチドを発現するように遺伝的に改変された組換えＬＮＣａＰ細胞上に発現された該外来嗅覚受容体ポリペプチドの応答を測定することを含む、
方法。
〔２〕前記外来嗅覚受容体ポリペプチドが
好ましくは、ヒト嗅覚受容体、マウス嗅覚受容体、ラット嗅覚受容体、又はそれとアミノ酸配列において少なくとも８０％同一な嗅覚受容体ポリペプチドであり、
より好ましくは、配列番号２又は配列番号４で示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ポリペプチドであり、
さらに好ましくは、配列番号２で示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ポリペプチドである、
〔１〕記載の方法。
〔３〕好ましくは、前記外来嗅覚受容体ポリペプチドが、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ＯＲ５１Ｔ１である、〔１〕又は〔２〕記載の方法。
〔４〕好ましくは、前記外来嗅覚受容体ポリペプチドの応答の測定が、ＥＬＩＳＡもしくはレポータージーンアッセイによる細胞内ｃＡＭＰ量測定、又はカルシウムイメージングによって行われる、〔１〕〜〔３〕のいずれか１項記載の方法。
〔５〕好ましくは、前記組換えＬＮＣａＰ細胞が、前記外来嗅覚受容体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含有するＤＮＡ断片又はベクターを導入されたＬＮＣａＰ細胞である、〔１〕〜〔４〕のいずれか１項記載の方法。
〔６〕前記組換えＬＮＣａＰ細胞が、
好ましくは、ＲＴＰをコードするポリヌクレオチド又はＧタンパク質をコードするポリヌクレオチドをさらに導入されたＬＮＣａＰ細胞であり、
より好ましくは、ＲＴＰをコードするポリヌクレオチドとＧタンパク質をコードするポリヌクレオチドをさらに導入されたＬＮＣａＰ細胞である、
〔５〕記載の方法。
〔７〕好ましくは、前記組換えＬＮＣａＰ細胞が、前記外来嗅覚受容体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、前記ＲＴＰをコードするポリヌクレオチドと、前記Ｇタンパク質をコードするポリヌクレオチドのいずれか１つ以上を含有する１つ以上のベクターを導入されたＬＮＣａＰ細胞である、〔６〕記載の方法。
〔８〕前記Ｇタンパク質が、
好ましくは、Ｇｓ系Ｇタンパク質又はＧｑ系Ｇタンパク質であり、
より好ましくはＧαｓ、Ｇαｏｌｆ又はＧα15であり、
さらに好ましくはヒトＧαｓ、Ｇαｏｌｆ又はＧα15である、
〔６〕又は〔７〕記載の方法。
【００３６】
〔８〕外来嗅覚受容体ポリペプチドを発現する組換えＬＮＣａＰ細胞。
〔９〕前記外来嗅覚受容体ポリペプチドが、
好ましくは、ヒト嗅覚受容体、マウス嗅覚受容体、ラット嗅覚受容体、又はそれとアミノ酸配列において少なくとも８０％同一な嗅覚受容体ポリペプチドであり、
より好ましくは、配列番号２又は配列番号４で示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ポリペプチドであり、
さらに好ましくは、配列番号２で示されるアミノ酸配列と少なくとも８０％の同一性を有するアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ポリペプチドである、
〔８〕記載の組換えＬＮＣａＰ細胞。
〔１０〕好ましくは、前記外来嗅覚受容体ポリペプチドが、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなる嗅覚受容体ＯＲ５１Ｔ１である、〔８〕又は〔９〕記載の組換えＬＮＣａＰ細胞。
〔１１〕好ましくは、前記外来嗅覚受容体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含有する外来ＤＮＡ断片又はベクターを含む、〔８〕〜〔１０〕のいずれか１項記載の組換えＬＮＣａＰ細胞。
〔１２〕好ましくは、外来のＲＴＰをコードするポリヌクレオチド又は外来のＧタンパク質をコードするポリヌクレオチドをさらに導入されたＬＮＣａＰ細胞であり、
より好ましくは、外来のＲＴＰをコードするポリヌクレオチドと、外来のＧタンパク質をコードするポリヌクレオチドをさらに導入されたＬＮＣａＰ細胞である、
〔１１〕記載の組換えＬＮＣａＰ細胞。
〔１３〕好ましくは、前記外来嗅覚受容体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、前記外来のＲＴＰをコードするポリヌクレオチドと、前記外来のＧタンパク質をコードするポリヌクレオチドのいずれか１つ以上を含有する１つ以上のベクターを含む、〔１２〕記載の組換えＬＮＣａＰ細胞。
〔１４〕前記Ｇタンパク質が、
好ましくは、Ｇｓ系Ｇタンパク質又はＧｑ系Ｇタンパク質であり、
より好ましくはＧαｓ、Ｇαｏｌｆ又はＧα15であり、
さらに好ましくはヒトＧαｓ、Ｇαｏｌｆ又はＧα15である、
〔１２〕又は〔１３〕記載の組換えＬＮＣａＰ細胞。
【実施例】
【００３７】
以下、実施例を示し、本発明をより具体的に説明する。
【００３８】
参考例１  遺伝子導入用ベクターの作製
１）ｐＭＥ１８Ｓ−ヒト受容体ベクターの作製
ＧｅｎＢａｎｋに登録されている配列情報を基に、ヒト嗅覚受容体をコードする遺伝子をクローニングした。嗅覚受容体遺伝子は、ｈｕｍａｎ  ｇｅｎｏｍｉｃ  ＤＮＡ  ｆｅｍａｌｅ（Ｇ１５２１：Ｐｒｏｍｅｇａ）を鋳型としたＰＣＲ法によりクローニングした。ＰＣＲ法により増幅した遺伝子をｐＭＥ１８Ｓベクター上のＦｌａｇ−Ｒｈｏタグ配列の下流に組換えた。
２）ｐＭＥ１８Ｓ−ヒトＲＴＰ１Ｓベクターの作製
ヒトＲＴＰ１Ｓをコードする遺伝子をｐＭＥ１８ＳベクターのＥｃｏＲＩ、ＸｈｏＩサイトへ組み込み、ｐＭＥ１８Ｓ−ヒトＲＴＰ１Ｓベクターを作製した。
３）ｐＭＥ１８Ｓ−ヒトＧαｏｌｆベクターの作製
ヒトＧαｏｌｆをコードする遺伝子を、Ｆｌａｇ−Ｒｈｏタグ配列が組み込まれていないｐＭＥ１８ＳベクターのＥｃｏＲＶ、ＸｈｏＩサイトへ組み込み、ｐＭＥ１８Ｓ−ヒトＧαｏｌｆベクターを作製した。
【００３９】
実施例１  組換えＬＮＣａＰ細胞と組換えＨＥＫ２９３細胞の作製
１）組換えＬＮＣａＰ細胞の作製
宿主細胞としては、ＬＮＣａＰ細胞（ＡＴＣＣより入手）を用いた。細胞に導入するヒト嗅覚受容体遺伝子には、ＯＲ１Ａ１遺伝子（配列番号３）又はＯＲ５１Ｔ１遺伝子（配列番号１）を用いた。表１に示す組成の反応液を調製し、クリーンベンチ内で１５分静置した。マルチウェルプレート（９６ウェルプレート、ＢｉｏＣｏａｔ）の各ウェルに、反応液１０μＬを添加し、次いでＬＮＣａＰ細胞の溶液９０μＬを添加し、細胞を播種した（２×１０5細胞／ｃｍ2）。細胞を３７℃、５％ＣＯ2を保持したインキュベータ内で２４時間培養することで、ＯＲ１Ａ１遺伝子又はＯＲ５１Ｔ１遺伝子を導入した組換えＬＮＣａＰ細胞を作製した。対照として、嗅覚受容体を導入していない細胞（ｍｏｃｋ）を用意した。
【００４０】
【表１】
2019039711.tif 000002
【００４１】
２）組換えＨＥＫ２９３細胞の作製
宿主細胞としては、ＨＥＫ２９３細胞を用いた。表２に示す組成の反応液を用いて、１）と同様の手順で、ＯＲ１Ａ１遺伝子又はＯＲ５１Ｔ１遺伝子を導入した組換えＨＥＫ２９３細胞を作製した。対照として、嗅覚受容体を導入していない細胞（ｍｏｃｋ）を用意した。
【００４２】
【表２】
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【００４３】
実施例２  組換えＬＮＣａＰ細胞と組換えＨＥＫ２９３細胞の嗅覚受容体応答の対比
ＯＲ１Ａ１遺伝子又はＯＲ５１Ｔ１遺伝子を導入した組換えＬＮＣａＰ細胞及び組換えＨＥＫ２９３細胞について、嗅覚受容体応答のリガンド濃度依存性を調べた。
１）リガンド溶液の調製
ストック溶液として、１Ｍの香料ｍｉｘｔｕｒｅ（ｌ−ｃａｒｖｏｎｅ、ｄ−ｃａｒｖｏｎｅ、ｃｉｓ−３−ｈｅｘｅｎｏｌ、及びｍｅｔｈｙｌ−β−ｎａｐｈｔｈｙｌ  ｋｅｔｏｎｅを各１００ｍＭ、ならびにａｎｉｓ  ａｌｄｅｈｙｄｅ及びｌｉｎａｌｏｏｌを各３００ｍＭ含む）のエタノール溶液を調製した。この１Ｍ香料ｍｉｘｔｕｒｅのストック溶液を希釈して、０．１、０．３、１、及び３ｍＭのリガンド溶液を調製した。希釈には、組換えＬＮＣａＰ細胞用には培地（ＲＰＭＩ１６４０；ＧＩＢＣＯ）を、組換えＨＥＫ２９３細胞用にはリンガー液（１４０ｍＭ  ＮａＣｌ、５ｍＭ  ＫＣｌ、１ｍＭ  ＭｇＣｌ2、２ｍＭ  ＣａＣｌ2、１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ、５ｍＭ  Ｇｌｕｃｏｓｅ、ｐＨ７．４（ＮａＯＨ））を用いた。
【００４４】
２）嗅覚受容体応答の測定
実施例１で作製した組換えＬＮＣａＰ細胞と組換えＨＥＫ２９３細胞における嗅覚受容体のリガンド応答を、ルシフェラーゼアッセイを用いて測定した。嗅覚受容体は、細胞内在性のＧｓ系Ｇタンパク質もしくは強制発現させたＧαｏｌｆと共役しアデニル酸シクラーゼを活性化することで、細胞内ｃＡＭＰ量を増加させる。本実施例では、細胞内ｃＡＭＰ量の増加を、細胞に導入したホタルルシフェラーゼ遺伝子（ｆｌｕｃ２Ｐ−ＣＲＥ−ｈｙｇｒｏ）由来の発光値としてモニターすることで、細胞の応答を測定した。共に細胞に導入したＣＭＶプロモーター下流に融合したウミシイタケルシフェラーゼ遺伝子（ｈＲｌｕｃ−ＣＭＶ）由来の発光値を内部標準として、遺伝子導入効率又は細胞数の誤差を補正した。ルシフェラーゼ活性の測定は、Ｄｕａｌ−ＧｌｏTMｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ  ａｓｓａｙ  ｓｙｓｔｅｍ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を用いて、操作マニュアルに従って行った。
【００４５】
実施例１で得られた組換え細胞の培養物を含むウェルから培地を取り除き、各ウェルにリガンド溶液又はリガンドを含まない溶液を７５μＬずつ添加した。添加の４時間後にルシフェラーゼ活性の測定を行った。ホタルルシフェラーゼ由来の発光値をウミシイタケルシフェラーゼ由来の発光値で除した値ｆＬｕｃ／ｈＲｌｕｃを算出した。下記式に従って、リガンド刺激に対する嗅覚受容体の応答性の指標としてＦｏｌｄ  ｉｎｃｒｅａｓｅを算出した。
Ｆｏｌｄ  ｉｎｃｒｅａｓｅ＝Ｘ／Ｙ
Ｘ：リガンド刺激により誘導されたｆＬｕｃ／ｈＲｌｕｃ
Ｙ：リガンド刺激なしの場合のｆＬｕｃ／ｈＲｌｕｃ
【００４６】
３）結果
リガンドに対する嗅覚受容体応答の測定結果を図１に示す。ＯＲ１Ａ１については、ＨＥＫ２９３細胞及びＬＮＣａＰ細胞のいずれにおいてもリガンド濃度依存的な応答が観察された（図１Ａ）。一方、ＯＲ５１Ｔ１においては、ＨＥＫ２９３細胞では応答が観察されなかったが、ＬＮＣａＰ細胞ではリガンド濃度依存的な応答が観察された（図１Ｂ）。以上の結果から、ＬＮＣａＰ細胞は、従来ＨＥＫ２９３細胞で機能的に発現可能であった嗅覚受容体だけでなく、これまでＨＥＫ２９３細胞では機能的な発現が観察されていなかった嗅覚受容体に対しても、機能的に発現させる能力を持つことが示された。したがって、嗅覚受容体をＬＮＣａＰ細胞に導入することにより、ＨＥＫ２９３細胞を用いた従来の手法と同様に受容体応答を測定することができるとともに、ＨＥＫ２９３細胞上では応答が検出できなかった受容体の応答が測定可能になることが示された。
【００４７】
実施例３  組換えＬＮＣａＰ細胞及び組換えＨＥＫ２９３細胞を用いたｌ−ｃａｒｖｏｎｅに対する嗅覚受容体応答性の解析
実施例１で作製したＯＲ５１Ｔ１遺伝子を導入した組換えＬＮＣａＰ細胞及び組換えＨＥＫ２９３細胞を用いて、ＯＲ５１Ｔ１のｌ−ｃａｒｖｏｎｅに対する応答性を調べた。ｌ−ｃａｒｖｏｎｅは、１Ｍのエタノール溶液を調製した後、実施例２と同様の手順でＲＰＭＩ１６４０又はリンガー液で希釈して０．１、０．３、１、及び３ｍＭの溶液に調製した。嗅覚受容体の応答測定は、実施例２と同様の手順で行った。
【００４８】
結果を図２に示す。ＯＲ５１Ｔ１は従来リガンドが未知であったが、組換えＬＮＣａＰ細胞を用いた測定においてｌ−ｃａｒｖｏｎｅに対して濃度依存的な応答を示した（図２）。よって、この香料物質がＯＲ５１Ｔ１のリガンドであることが示された。一方、組換えＨＥＫ２９３細胞を用いた測定では、ｌ−ｃａｒｖｏｎｅに対する明確な濃度依存的応答はみられなかった。以上の結果から、組換えＬＮＣａＰ細胞を用いたアッセイを行うことにより、従来リガンドが未知である受容体の応答性解析が可能になることが示された。
【図１】
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【図２】
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【配列表】
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