(57)【要約】【課題】  天然由来の新規な血糖値上昇抑制剤を提供すること。【解決手段】  本発明の血糖値上昇抑制剤は、Ｐａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌から選択される少なくとも１つを有効成分とする。Ｐａｎｔｏｅａ菌の具体例としては、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０１として寄託されているＰ−３６菌株が挙げられる。Ｋｏｓａｋｏｎｉａ菌の具体例としては、同センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０２として寄託されているＰ−３７菌株が挙げられる。【選択図】  図２
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｐａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌から選択される少なくとも１つを有効成分とする血糖値上昇抑制剤。
【請求項２】
Ｐａｎｔｏｅａ菌が独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０１として寄託されているＰ−３６菌株であって、Ｋｏｓａｋｏｎｉａ菌が同センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０２として寄託されているＰ−３７菌株である請求項２記載の血糖値上昇抑制剤。
【請求項３】
ソバモヤシに付着しているＰａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌から選択される少なくとも１つを分離することによる血糖値上昇抑制剤の製造方法。
【請求項４】
独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０１として寄託されているＰａｎｔｏｅａ菌のＰ−３６菌株。
【請求項５】
独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０２として寄託されているＫｏｓａｋｏｎｉａ菌のＰ−３７菌株。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、天然由来の血糖値上昇抑制剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
肥満による血糖値の上昇が、糖尿病などの疾患の一因であることはよく知られており、近年、その上昇を抑制することができる、安全性が高い天然由来の成分についての探索が精力的に行われている。例えば特許文献１では、スダチの精油成分を有効成分とする血糖値上昇抑制剤が提案されているが、優れた血糖値上昇抑制作用を有する天然由来の成分の探索は、今なお意義深い状況にある。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特許第５３６０９２５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
そこで本発明は、天然由来の新規な血糖値上昇抑制剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明者らは上記の点に鑑みて鋭意検討を行った結果、血糖値上昇抑制作用を有するＰａｎｔｏｅａ（パントエア）菌とＫｏｓａｋｏｎｉａ（コサコニア）菌が、ソバの若芽であるソバモヤシに付着していることを見出した。
【０００６】
上記の知見に基づいてなされた本発明の血糖値上昇抑制剤は、請求項１記載の通り、Ｐａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌から選択される少なくとも１つを有効成分とする。
また、請求項２記載の血糖値上昇抑制剤は、請求項１記載の血糖値上昇抑制剤において、Ｐａｎｔｏｅａ菌が独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０１として寄託されているＰ−３６菌株であって、Ｋｏｓａｋｏｎｉａ菌が同センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０２として寄託されているＰ−３７菌株である。
また、本発明の血糖値上昇抑制剤の製造方法は、請求項３記載の通り、ソバモヤシに付着しているＰａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌から選択される少なくとも１つを分離することによる。
また、本発明は、請求項４記載の通り、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０１として寄託されているＰａｎｔｏｅａ菌のＰ−３６菌株である。
また、本発明は、請求項５記載の通り、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０２として寄託されているＫｏｓａｋｏｎｉａ菌のＰ−３７菌株である。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、天然由来の新規な血糖値上昇抑制剤を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】Ｐ−３６菌株とＰ−３７菌株を含む分子系統樹（ＮＪ  Ｔｒｅｅ）である。
【図２】実験２におけるＰ−３６菌株投与群とＰ−３７菌株投与群の血糖値上昇抑制作用を示すグラフである。
【図３】実験３におけるＰ−３６菌株投与群とＰ−３７菌株投与群の血糖値上昇抑制作用を示すグラフである。
【図４】同、Ｐ−３７菌株投与群のグルコースの投与前０分におけるＨＯＭＡ−ＩＲの算出結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
本発明の血糖値上昇抑制剤は、Ｐａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌から選択される少なくとも１つを有効成分とするものである。
【００１０】
本発明において有効成分とするＰａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌は、例えば、これらが付着しているソバモヤシ（光を遮って栽培したものでもよいし光を当てて栽培したものでもよい）から分離することができる。Ｐａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌は、高度に純化された状態のものであってもよいし、他の細菌との混合状態のものであってもよい。また、ソバモヤシに付着している状態のものであってもよい。Ｐａｎｔｏｅａ菌の具体例としては、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０１として寄託されている新規なＰ−３６菌株が挙げられる。Ｋｏｓａｋｏｎｉａ菌の具体例としては、同センターに受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０２として寄託されている新規なＰ−３７菌株が挙げられる。Ｐａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌は、例えばＨＩ（Ｈｅａｒｔ  Ｉｎｆｕｓｉｏｎ）培地を用いて好気条件下において３０〜３７℃で培養することができる。また、Ｐａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌は、生菌であっても死菌であってもよい。
【００１１】
本発明において有効成分とするＰａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌は、各種の製剤形態に製剤化することでそれ自体を医薬品や健康食品として服用や摂取することができることに加え、各種の飲食品に配合して飲食することで、血糖値上昇抑制作用を発揮し、糖尿病などの疾患の予防や治療に資する。その適用量は、適用者の年齢や体重、症状の程度、適用形態などによって異なるが、特に制限されるものではない。
【実施例】
【００１２】
以下、本発明を実施例によって詳細に説明するが、本発明は以下の記載に限定して解釈されるものではない。
【００１３】
実験１：Ｐａｎｔｏｅａ菌およびＫｏｓａｋｏｎｉａ菌のソバモヤシからの分離と同定
１．菌の分離
（実験方法）
（１．１）ソバモヤシ生菌数算定および同定
食品衛生検査指針に準じ、青森県津軽地方産の光を遮って栽培した市販のソバモヤシ２５ｇ（あすなろ理研株式会社）に生理食塩水２２５ｍｌを加え、１分間揉み出しを行い、１０倍希釈原液を作製した。この希釈原液から１０１〜１０６倍希釈液を作製し、各希釈液を標準寒天培地に２０μｌ塗抹後、３５℃で４８時間好気培養を行い、生菌数をカウントした（二重測定）。
【００１４】
（１．２）菌種同定（ＡＰＩ  ２０Ｅ）
１．１にて各培地上に発育した５０コロニー前後を対象に、腸内細菌同定用キットＡＰＩ  ２０Ｅ（シスメックス・ビオメリュー株式会社）を用いて、添付書に従ってコードを作成し、菌種の同定を行った。
【００１５】
（実験結果）
ソバモヤシの表面細菌は、８．９×１０６ＣＦＵ／ｍｌであった。そのうち、Ｐａｎｔｏｅａ  ｓｐｐ．様性状を示す菌株の含有率は７５．５％であった。Ｐａｎｔｏｅａ  ｓｐｐ．様菌叢の中で多くを占めたＰ−３６菌株とＰ−３７菌株の菌性状を表１〜３に示す。
【００１６】
【表１】
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【００１７】
【表２】
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【００１８】
【表３】
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【００１９】
２．Ｐ−３６菌株とＰ−３７菌株の遺伝子解析
（実験方法）
ＤＮＡ抽出はアクロモペプチダーゼ（富士フイルム和光純薬株式会社）により実施した。ＰＣＲ遺伝子増幅はＰｒｉｍｅＳＴＡＲ  ＨＳ  ＤＮＡ  Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（タカラバイオ株式会社）により実施し、ＰＣＲ  Ｐｒｉｍｅｒには９Ｆおよび１５１０Ｒを用いた。シークエンス反応はＢｉｇＤｙｅ  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  ｖ３．１  Ｃｙｃｌｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  Ｋｉｔ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，ＵＳＡ）により実施し、Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  ３１３０ｘｌ  Ｇｅｎｅｔｉｃ  Ａｎａｌｙｚｅｒ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，ＵＳＡ）にて解読した。解読にはＰｒｉｍｅｒ：９Ｆ、７８５Ｆ、５３６Ｒ、８０２Ｒ、１２４２Ｒおよび１５１０Ｒを用いた。塩基配列決定にはＣｈｒｏｍａｓＰｒｏ  ２．１（Ｔｅｃｈｎｅｌｙｓｉｕｍ，ＡＵＳ）ソフトを用いた。得られた配列情報はＤＢ−ＢＡ１２．０（株式会社テクノスルガ・ラボ）および国際塩基配列データベース（ＤＤＢＪ／ＥＮＡ（ＥＭＢＬ）／ＧｅｎＢａｎｋ）にてＢＬＡＳＴ検索を行った。分子系統樹解析ではＣＬＵＳＴＡＬ  Ｗにて多重アライメントを実施し、アライメントの編集にはＢｉｏＥｄｉｔ  ｖｅｒ  ７．２を用いた。分子系統樹推定にはＭＥＧＡ  ｖｅｒ  ７．０を用い、近隣結合法によりブートストラップ１０００反復により信頼性の評価を行った。  
【００２０】
（実験結果）
Ｐ−３６菌株の１６Ｓ  ｒＤＮＡ塩基配列は、Ｐａｎｔｏｅａ  ａｎａｎａｔｉｓの基準株ＪＣＭ  ６９８６ｔ（Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  ｎｕｍｂｅｒ：ＡＢ００４７５８）およびＰａｎｔｏｅａ  ａｎｔｈｏｐｈｉｌａ  ＬＭＧ  ２５５８Ｔ（ＥＦ６８８０１０）に対し相同率９９．２％の最も高い相同性を示した。また、検索された上位塩基配列は、Ｐａｎｔｏｅａ属の種に由来した。Ｐ−３７菌株の１６Ｓ  ｒＤＮＡ塩基配列は、Ｋｏｓａｋｏｎｉａ  ｃｏｗａｎｉｉ  ８８−７６Ｔ（ＣＰ０１９４４５）に対し、９９．３％の最も高い相同率を示した。また、検索された塩基配列は、Ｋｏｓａｋｏｎｉａ、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ、Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ、Ｙｏｋｅｎｅｌｌａなどに由来した。分子系統樹解析では、Ｐ−３６菌株とＰ−３７菌株は異なるクラスターに分類された。菌性状解析および遺伝子解析から、Ｐ−３６菌株はＰａｎｔｏｅａ属の種が形成するクラスターに含まれるが、既知種とは異なる分子系統学的位置を示したことから新規な菌株としてＰａｎｔｏｅａ  ｓｐ．とした。Ｐ−３７菌株はＫｏｓａｋｏｎｉａ  ｃｏｗａｎｉｉ  ８８８−７６Ｔ（ＣＰ０１９４４７）の７個のコピーで形成されるクラスターに含まれ、Ｋｏｓａｋｏｎｉａ  ｃｏｗａｎｉｉ  ８８８−７６Ｔ（ＣＰ０１９４４７＿６）と同一の分子系統学的位置を示した。しかしながら、Ｐ−３７菌株とＫｏｓａｋｏｎｉａ  ｃｏｗａｎｉｉ  ８８８−７６Ｔ（ＣＰ０１９４４５＿６）の１６Ｓ  ｒＤＮＡ部分塩基配列間には１塩基の明確な相違点があったため、両者の分子系統学的位置は一致しなかった。そのため、Ｐ−３７菌株は同一の分子系統学的位置を示す配列はないものの、Ｋｏｓａｋｏｎｉａ  ｃｏｗａｎｉｉのクラスターに含まれることから、種レベルでＫｏｓａｋｏｎｉａ  ｃｏｗａｎｉｉである新規な菌株と判断した。Ｐ−３６菌株とＰ−３７菌株を含む分子系統樹（ＮＪ  Ｔｒｅｅ）を図１に示す。なお、Ｐ−３６菌株とＰ−３７菌株は、それぞれ、独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに、受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０１と受託番号ＮＩＴＥ  Ｐ−０２７０２として寄託されている。
【００２１】
実験２：Ｐ−３６菌株とＰ−３７菌株の血糖値上昇抑制作用（その１）
（実験方法）
１．投与菌液の調製
ＨＩ寒天培地上において３０℃で一晩好気培養したＰ−３６菌株とＰ−３７菌株を、１００ｍｌのＨＩ液体培地に移植し、３０℃で１６時間好気攪拌培養した。培養後、４℃で６，０００ｒｐｍで３０分間遠心し、沈渣を回収した。回収した沈渣をｐＨ７．２  Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｓａｌｉｎｅ（ＰＢＳ（−））で２度洗浄した後、２ｍｌのＰＢＳ（−）に懸濁し、投与菌液とした。
【００２２】
２．投与サンプル菌数の算定
投与菌液の調製後、マウスへの投与毎に菌数算定を実施した。調製した菌液を１０７〜１０１０まで希釈し、各希釈液を標準寒天培地に２０μｌ塗抹後、３０℃で２４時間好気培養を行い、生菌数をカウントした（二重測定）。
【００２３】
３．マウスへの菌液の投与
重度の肥満・高血糖を発現する２型糖尿病モデルマウスであるＫＫＡｙ／ＴａＪｃｌマウス（雌７週令）を日本クレア株式会社から入手した。入手後１週間の順化時間を置き、随時血糖値の測定と検体の経口投与を開始した。随時血糖値は週に１度、早朝９時に測定し、検体の投与は週に１度、計６回実施した。血糖値測定は、尾静脈穿刺により採血し、グルコカードＧブラック（アークレイ株式会社）を用いて行った。マウス実験群はｎ＝６とし、ＰＢＳ投与群（コントロール）、Ｐ−３６菌株投与群、Ｐ−３７菌株投与群の３群に分類した。検体は、Ｐ−３６菌株については２．５×１０１０±３．２×１０９ＣＦＵ／２００μｌ／ｍｏｕｓｅで、Ｐ−３７菌株については２．８×１０１０±５．１×１０９ＣＦＵ／２００μｌ／ｍｏｕｓｅで投与した。また、週に１度、体重測定を実施した。実験動物の飼育は、室温２３．９±０．５℃、湿度２６．６±４．６％の飼養室で行い、標準飼料と水道水を自由摂取させた。
【００２４】
４．統計解析
各投与群間の統計解析にはそれぞれＡＮＯＶＡとＴｕｒｋｙを用い、Ｐ＜０．０５の時に有意差ありとした。統計解析ソフトはＯｒｉｇｉｎ  Ｖｅｒ．８．１を用いた。
【００２５】
（実験結果）
図２に示す。図２から明らかなように、検体の投与開始３週目以降にＰ−３６菌株投与群とＰ−３７菌株投与群において空腹時血糖値の抑制傾向が認められた。Ｐ−３７菌株投与群の血糖値上昇抑制作用は５週目でほぼ消失したが、Ｐ−３６菌株投与群は６週目でも血糖値上昇抑制作用を示し、4週目にはＰ＜０．０５の有意差を確認した。なお、Ｐ−３６菌株投与群とＰ−３７菌株投与群のマウスの体重変動は、ＰＢＳ投与群のマウスの体重変動と変わりがなく、いずれの群のマウスにも外見的変化や行動異常などは認められなかった。
【００２６】
実験３：Ｐ−３６菌株とＰ−３７菌株の血糖値上昇抑制作用（その２）
（実験方法）
１．投与菌液（生菌と死菌）の調製
生菌の調製は、実験２の１．に準じた。死菌の調製は、生菌を１００℃で１０分間煮沸して行った（標準寒天培地上において３０℃で４８時間好気培養することで発育のないことを確認）。
【００２７】
２．投与サンプル菌数の算定
実験２の２．に準じた。
【００２８】
３．マウスへの菌液への投与
Ｃ５７ＢＬ／６ＮＪｃｌ（雌５週令）を日本クレア株式会社から入手した。入手後３週間の順化時間を置き、飼料投与を開始した。飼料は１０ｋｃａｌ％脂肪食（コントロール）と６０％脂肪食（ＥＳＰ益新株式会社）を用い、経時的に体重と飼料摂取量を測定した。４週間の飼料投与後のマウスを６時間絶食させ、体重測定後、２ｇ／ｋｇグルコース糖負荷試験を実施した。６０％脂肪食摂取群において、１０ｋｃａｌ％脂肪食摂取群に比べて有意な血糖値の上昇を確認し、これを肥満モデルマウスとして実験に用いた。マウス実験群はｎ＝６とし、ＰＢＳ投与コントロールマウス群、ＰＢＳ投与肥満マウス群、Ｐ−３６菌株生菌投与肥満マウス群、Ｐ−３６菌株死菌投与肥満マウス群、Ｐ−３７菌株生菌投与肥満マウス群、Ｐ−３７菌株死菌投与肥満マウス群の６群に分類した。高血糖症状を示した飼料投与５週目より検体の投与を開始した。検体の投与は隔日で１０回行い、その間、飼料（コントロールマウス群には１０ｋｃａｌ％脂肪食、その他のマウス群には６０％脂肪食）と水道水を自由摂取させ、最終投与後２日間の間隔をあけ、６時間絶食後、２ｇ／ｋｇグルコース糖負荷試験を実施した。検体は、Ｐ−３６菌株生菌については２．１×１０１０±５．０×１０９ＣＦＵ／２００μｌ／ｍｏｕｓｅで、Ｐ−３７菌株生菌については、２．４×１０１０±３．８×１０９ＣＦＵ／２００μｌ／ｍｏｕｓｅで投与した。それぞれの死菌については、それぞれの生菌と同数を投与した。実験動物の飼育は、室温２３．９±０．３℃、湿度２６．６±４．２％の飼養室で行った。
【００２９】
４．２ｇ／ｋｇグルコース糖負荷試験
Ｄ（＋）−グルコース（富士フイルム和光純薬株式会社）５gを生理食塩水に懸濁し、メスシリンダーの２５ｍｌまで生理食塩水でフィルアップした。マウスへの投与は、６時間絶食後、２ｇ／ｋｇになるように経口ゾンデを用いて行った。血糖値測定は、尾静脈穿刺により採血し、グルコカードＧブラック（アークレイ株式会社）を用いて行った。測定時間は、グルコースの投与前０分、投与後１５分、３０分、６０分、１２０分とした。
【００３０】
５．統計解析
各投与群間の統計解析にはそれぞれＡＮＯＶＡとＴｕｒｋｙを用い、Ｐ＜０．０５の時に有意差ありとした。統計解析ソフトはＯｒｉｇｉｎ  Ｖｅｒ．８．１を用いた。
【００３１】
（実験結果）
図３に示す。図３から明らかなように、グルコースの投与前０分と投与後１５分において、ＰＢＳ投与肥満マウス群（Ｂ）の血糖値は、ＰＢＳ投与コントロールマウス群（Ａ）の血糖値よりも有意に高かったが、Ｐ−３６菌株とＰ−３７菌株を投与すると、生菌を投与した場合でも死菌を投与した場合でも、血糖値は低下した（Ｃ〜Ｆ：ＨＴは死菌を意味する）。とりわけグルコースの投与前０分と投与後１５分におけるＰ−３７菌株生菌投与肥満マウス群（Ｆ）の血糖値は、ＰＢＳ投与肥満マウス群（Ｂ）の血糖値よりも有意に低かった。Ｐ−３７菌株生菌投与肥満マウス群とＰ−３７菌株死菌投与肥満マウス群についての、グルコースの投与前０分におけるｈｏｍｅｏｓｔａｓｉｓ  ｍｏｄｅｌ  ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ  ｏｆ  ｉｎｓｕｌｉｎ  ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ（ＨＯＭＡ−ＩＲ）の算出結果を図４に示す（算出式：ＨＯＭＡ−ＩＲ＝（ｆａｓｔｉｎｇ ｇｌｕｃｏｓｅ  ｌｅｖｅｌ×ｆａｓｔｉｎｇ  ｉｎｓｕｌｉｎ  ｅｖｅｌ）／２２．４。インスリンの測定は採血した血清を用いて超高感度マウスインスリン測定キット（株式会社森永生科学研究所）を用いて行った）。図４から明らかなように、両群においてインスリン抵抗性の改善が認められたことから、Ｐ−３７菌株の血糖値上昇抑制作用の機序の一つとして、インスリン抵抗性の改善が示唆された。なお、Ｐ−３６菌株投与肥満マウス群とＰ−３７菌株投与肥満マウス群の体重変動は、ＰＢＳ投与肥満マウス群の体重変動と変わりがなく、いずれの群のマウスにも外見的変化や行動異常などは認められなかった。
【００３２】
製造例１：錠剤
以下の成分組成からなる血糖値上昇抑制作用を有する錠剤を自体公知の方法で製造した。
Ｐａｎｔｏｅａ菌のＰ−３６菌株（生菌）        １
乳糖                                        ８０
ステアリン酸マグネシウム                    １９  （単位：重量％）
【００３３】
製造例２：ビスケット
以下の成分組成からなる血糖値上昇抑制作用を有するビスケットを自体公知の方法で製造した。
Ｋｏｓａｋｏｎｉａ菌のＰ−３７菌株（死菌）    １
薄力粉                                      ３２
全卵                                        １６
バター                                      １６
砂糖                                        ２４
水                                          １０
ベーキングパウダー                            １  （単位：重量％）
【００３４】
製造例３：粉末緑茶
市販の粉末緑茶とＰａｎｔｏｅａ菌のＰ−３６菌株（生菌）を９５：５の割合（重量比）で混合し、血糖値上昇抑制作用を有する粉末緑茶を製造した。
【００３５】
製造例４：ブルーベリー葉茶
優れた抗酸化力を持つプロアントシアニジンを含む市販のブルーベリー葉を煮出して調製したブルーベリー葉茶に、Ｋｏｓａｋｏｎｉａ菌のＰ−３７菌株（生菌）を約１４００億個／ｌの割合で配合し、ペットボトルに充填することで、抗酸化作用と血糖値上昇抑制作用を有するブルーベリー葉茶を製造した。
【産業上の利用可能性】
【００３６】
本発明は、天然由来の新規な血糖値上昇抑制剤を提供することができる点において、産業上の利用可能性を有する。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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