(57)【要約】【課題】  核酸塩基を転移させるあらゆる方法と組み合わせて、ヒトおよび動物の治療に使用することができる新規な産生物を提供する。【解決手段】  ANTのアイソフォームの発現を選択的に抑制することができるiRNAであって、該iRNAは二本鎖RNAであり、二本鎖の内の１つはANTのアイソフォームをコードしているmRNAの断片と非常に相同性が高いことを特徴とするiRNA。【特許請求の範囲】
【請求項１】
ANTのアイソフォームの発現を選択的に抑制することができるiRNAであって、該iRNAは二本鎖RNAであり、二本鎖の内の１つはANTのアイソフォームをコードしているmRNAの断片と非常に相同性が高いことを特徴とするiRNA。
【請求項２】
18〜25、特には21ヌクレオチドのsiRNAであることを特徴とする請求項１記載のiRNA。
【請求項３】
SEQ IDNo.１、SEQ IDNo.２又はSEQ IDNo.３をもつことを特徴とする請求項２記載のiRNA。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれかに記載の少なくとも１つのiRNA、あるいは該iRNAの各鎖をコードするDNA配列を含む構造物。
【請求項５】
iRNAがペプチド、リポソーム、ナノ粒子（ナノスフィア、ナノチューブ）、又はウレアポリマーのような非天然オリゴマーからなるベクターと結合しており、該ベクターは、iRNAの導入、iRNAの膜、組織又は生物学的外皮、特に、細胞膜、ミトコンドリア膜、核膜、皮膚、粘膜、内皮細胞壁、血液脳関門の通過、iRNAのバイオアベイラビリティー、iRNAの安定性、及びiRNAの薬理学的分布を促進することを特徴とする請求項４記載の構造物。
【請求項６】
ベクターが、核酸を転移させるためのベクター、例えば、レトロウイルス、トランスポゾン、アデノウイルス又はプラスミドであることを特徴とする請求項４記載の構造物。
【請求項７】
薬剤学的に許容できる担体と組み合わせて、請求項１〜３のいずれか１項に記載した少なくとも１つのiRNA又は請求項４〜６のいずれか１項に記載した構造物の有効量を含んでいることを特徴とする薬剤組成物。
【請求項８】
注射剤として投与できる形態、又は経口、非経口、直腸又は局所的投与できる形態であることを特徴とする請求項７記載の薬剤組成物。
【請求項９】
ミトコンドリア膜の透過性及びアポトーシス、ネクローシス及び自己分解型及び関連した機構の細胞死を調節（誘導又は抑制）する能力を有していることを特徴とする請求項１〜３のいずれか１項に記載したiRNA、又は請求項１〜６のいずれか１項に記載した構造物、又は請求項７又は８に記載した薬剤組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ヒトANTのアイソフォームの発現の調節方法に関するものであり、特に二本鎖干渉RNA（iRNA）及び上記調節のためのその使用、及び該アイソフォームをコードするcDNAの使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
アデニンヌクレオチド輸送体（ANT）は、ミトコンドリアの内膜に最も豊富に存在するタンパク質である。ANTは、２つの異なる機能を有しており、１つは、ミトコンドリアの内膜を通過するアデニンヌクレオチドの輸送に関与していることである（酸化的リン酸化を目的とするADPの取り込み、一般的な代謝のためのATPの細胞質ゾルへの放出）。二つ目は、ミトコンドリアのアポトーシス過程で必須の役割を果たしていることである。これはANTが非特異的な細孔の立体配置を取ることができるからであり、これによりミトコンドリア膜の透過性及び細胞死を生じさせる（Kroemer ＆ Reed 2000）。
【０００３】
ANTをコードする遺伝子は、多くの種、たとえば、酵母、種々の植物、ウシ、ラット、マウス及びヒトにおいてクローン化されている。これら全ての種は、いくつかのアイソフォームをもっており、それらの遺伝子の構造は、多くは３イントロンで分離された４エキソンからなる構造となっている。ヒトANTは３つのアイソフォーム（ANT１、ANT２、ANT３）が存在し、それらは３つの異なる核酸遺伝子でコードされ、該遺伝子はクローン化されており、それらの配列は決定されている。ANT１（染色体４）は主として心臓及び骨格筋に発現する。ANT１の突然変異（アラニン114のプロリンへの置換）に関係したヒト遺伝病が知られている。この病気は進行性外眼筋麻痺（ミトコンドリアDNAの実質的欠損によって特徴付けられる稀な疾患）である。ANT２（X染色体）は成熟した組織では非常に弱く発現される。ANT２の最も高い発現レベルは、筋芽細胞及び腫瘍細胞のような増殖細胞で観察される。ANT２は、又、SV40ウイルスで形質転換した細胞、及びミトコンドリアDNAを欠損した系（rho°）で特異的に見出される。ANT３（Ｘ及びＹ染色体の擬似常染色体領域）は全ての分化した組織のいたるところで発現する。
【０００４】
アポトーシスは、３つのフェーズで起こる細胞の自殺の過程である。それらのフェーズとは、プレ−ミトコンドリアフェーズ（不均一性）、ミトコンドリアフェーズ（死の決定）、及び退化フェーズ（細胞の腐敗）である。ミトコンドリア内膜に挿入されているタンパク質であるANTは、ミトコンドリアの役割を大幅に変化させる細孔を形成する能力がある。ANTがオープン細孔状態にあるとき、ミトコンドリアは細胞破壊器官となる。
【０００５】
以下に述べる点は、今日では確立されている。
・ANTの細孔機能を誘導することにより、in vitroで細胞を死滅させることが可能である（Belzac、Jacototら、Cancer Res．2001 Feb 15．61（４）：1260−４）。
・ANTの細孔機能をブロックすることにより、ex vivoで心臓細胞（単離した虚血性心臓）を保護することが可能である（Di Lisaら、J Biol Chem．2000 Nov ９）。
・ANTを失活させることにより、in vivoで、虚血性脳疾患に続く神経の死から保護することが可能である（Caoら、J Cereb Blood Flow Metab．2001 Apr．21（４）：321−333）。
【０００６】
したがって、ANTはアポトーシスの主要なコントロールポイントであり、Bax（プロアポトーシス）腫瘍サプレッサー及びBcl−２（アンチアポトーシス）オンコプロテインのような内因性タンパク質によって調節される。また、ANTはVpr（HIV由来のプロアポトーシス）及びvMIA（CMV由来のアンチアポトーシス）のようなウイルス内因性タンパク質によって調節される。それゆえ、ANTはアポトーシスの病理学的脱調節に対抗するための理想的な標的である。
【０００７】
最近のデータにより、二本鎖RNA(dsRNA)は、それらを構成する二本鎖のいずれかの配列と非常に相同的な配列を有する遺伝子の発現の消失を誘導することが明らかになっている。この現象は、RNA干渉又はiRNAと呼ばれ、結局メッセンジャーRNAの分解をもたらす（Hammondら、2001、Sharp、2001）。Tuschlらは、21−ヌクレオチドの二本鎖（小さい干渉RNA、siRNA）の哺乳類細胞への導入によって、遺伝子の発現が特異的に抑制されることを証明した（Elbashirら、2001）。トランスフェクション後、siRNAは、標的遺伝子の発現を抑制するために、細胞成分（DICER酵素及びRISC複合体）と共に行動する。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明者は、選択された方法で、ヒトANTのアイソフォームの発現レベルに作用することにより、治療を目的として、アポトーシスを調節することが可能であることを見出した。
【０００９】
特に、各ANTのアイソフォームをコードする配列である、限定された21−ヌクレオチドの領域からデザインされたiRNAによって、トランスフェクション後、各アイソフォームの発現を選択的に抑制することができる二本鎖iRNAを得ることが可能であることを見出した。
【００１０】
したがって、本発明の目的は、核酸塩基を転移させるあらゆる方法と組み合わせて、ヒトおよび動物の治療に使用することができる新規な産生物を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明は、ANTのアイソフォームの発現を選択的に抑制することができるiRNAであって、該iRNAは二本鎖RNAであり、二本鎖の内の１つはANTのアイソフォームをコードしているmRNAの断片と非常に相同性が高いことを特徴とする。
【００１２】
好ましくは、本発明のiRNAは、18〜25、より好ましくは21ヌクレオチドのsiRNA（小さい干渉RNA）である。
【００１３】
好ましいiRNAは、SEQ IDNo.１及びSEQ IDNo.２、SEQ IDNo.３及びSEQ IDNo.４、SEQ IDNo.５及びSEQ IDNo.６の配列をもつ鎖からなる二本鎖より選択される。
SEQ IDNo.１：５’−acagaucagugcugagaagdTdT−３’
SEQ IDNo.２：５’−cuucucagcacugaucugudTdT−３’
SEQ IDNo.３：５’−gcagaucacugcagauaagdTdT−３’
SEQ IDNo.４：５’−cuuaccugcagugaucugcdTdT−３’
SEQ IDNo.５：５’−gggcaucguggacugcauudTdT−３’
SEQ IDNo.６：５’−aaugcaguccacgaugcccdTdT−３’
【００１４】
本発明は、また、上記した少なくとも１つのiRNA、あるいは該iRNAの各鎖をコードするDNA配列を含む構造物である。
【００１５】
本発明の１態様においては、上記構造物は、iRNAがペプチド、リポソーム、ナノ粒子（ナノスフィア、ナノチューブ）、又はウレアポリマーのような非天然オリゴマーからなるベクターと結合しており、該ベクターは、iRNAの導入、iRNAの膜、組織又は生物学的外皮、特に、細胞膜、ミトコンドリア膜、核膜、皮膚、粘膜、内皮細胞壁、血液脳関門の通過、iRNAのバイオアベイラビリティー、iRNAの安定性、及びiRNAの薬理学的分布を促進することを特徴とする。
【００１６】
他の態様においては、該構造物は、iRNAが核酸を転移させるためのベクター、例えば、レトロウイルス（Barton and Medzhitov、PNAS、2002、vol.99（23）：p14943−14945）、トランスポゾン、アデノウイルス（Xiaら、Nature Bidech、2002、vol.20、p1005−1010）又はプラスミド（Brummelkampら、Cancel Call、2002、p２４３−247）と結合していることを特徴とする。
【００１７】
本発明は、また、薬剤学的に許容できる担体と組み合わせて、上記した少なくとも１つのiRNA又は上記構造物の有効量を含んでいることを特徴とする薬剤組成物である。
【００１８】
好ましい薬剤組成物は、注射剤として投与できる形態のものである。
【００１９】
他の形態としては、経口、非経口、直腸又は局所的投与が適している（Levisら、Nature Genetics、2002、vol.32、p107−108）。
【００２０】
上記したiRNA、構造物及び薬剤組成物は、それらがミトコンドリア膜の透過性及びアポトーシス、ネクローシス及び自己分解型及び関連した機構の細胞死を調節（誘導又は抑制）する能力を有していることを特徴とする。
【００２１】
本発明の組成物は、ヒトANTのアイソフォームの発現を調節することができ、この点で、特にアポトーシスの脱調節及び他の関連した機構の細胞死に関係する病気治療に有益である。
【００２２】
したがって、本発明は、ミトコンドリア透過膜電位（ΔΨm）の低下及びアポトーシス、ネクローシスの脱調節及び他の関連した機構の細胞死を誘導／促進するための（siRNA−ANT２）、又は、逆に、抑制するための（siRNA−ANT及び／又はsiRNA−ANT３）、siRNA−ANT１、siRNA−ANT２及び／又はsiRNA−ANT３の使用に関する。
【００２３】
したがって、本発明は、また、ミトコンドリア透過膜電位（ΔΨm）の低下及びアポトーシスを誘導／促進するための（hANT１ cDNA及び／又はhANT３ cDNA）、又は、逆に、抑制するための（hANT２ cDNA）、 hANT１、hANT２及び／又はhANT３ cDNAの使用に関する。
【００２４】
特に、例えば、各種のガン、全身性エリテマトーデスや関節炎のような自己免疫疾患において、アポトーシスが起こらない状態を治療するために、上記使用がなされる。
【００２５】
他の使用としては、上記組成物を、過剰のアポトーシス、例えば、神経退化疾患（アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンティングトン病）及び虚血性脳疾患、虚血性心疾患を治療するために使用するというものである。
【００２６】
例えば、ANT１又はANT３ siRNA、あるいは代わりにANT２ cDNAを、虚血性疾患の状態又は神経退化病の状態において神経死を抑制するために、あるいは、虚血性疾患の状態において心筋の死、又は肝細胞の死（ウイルス感染、薬物関連中毒）を抑制するために使用することができる。例えば、h−ANT２ siRNA及び／又はh−ANT１又はh−ANT３ cDNAを、腫瘍細胞アポトーシス又は自己反応性リンパ球アポトーシスを誘導するために使用することができる。
【００２７】
上記薬剤組成物は、HIV感染症の治療に対しても非常に有益である。
【００２８】
本発明の他の特徴及び長所は、図１〜６を参照しつつ、後述される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２９】
トランスフェクション24時間後、細胞を溶解して、ANTのアイソフォームの発現を、抗V５モノクローナル抗体を使用するウエスタンブロッティング法で決定する。
【００３０】
共トランスフェクション
HeLa細胞を、ウシ胎児血清10％を加えたDMEM／Glutamax−Iを分注した６ウェルプレート中で培養する。24時間後、３μlのlipofectamine 2000（Invitrogen社製）、３μｇのsiRNA、血清フリーDMEM中の１μｇのベクターpcDNA3.1V５−hANT１又は２（最終容量500μl）を加えて、上記細胞をトランスフェクトする。トランスフェクション後６時間、該細胞を６時間リンスし、24、48又は72時間培養を行う。
【００３１】
細胞抽出物の調製及びウエスタンブロッティング
上記細胞を、100μlの溶解バッファー（25mM Tris−HCl、pH7.5、25mM NaCl、５mM EDTA、１％Triton X−100、プロテアーゼ阻害剤カクテル）に再懸濁し、４℃、13000rpmで10分間遠心する。10μlの上澄み液を集め、Bradfordテストを行う。その後、SDS−Laemmliバッファーの存在下、100℃で３分間変性させた後、該抽出物をSDS−PAGEゲルで解析する。移動後、タンパク質は、抗V５抗体（１／5000 Invitrogen社）を用いて検出する。
【００３２】
ヒトANTのアイソフォームのクローニング、及び発現ベクターの産生
293T細胞及びHeLa細胞の全RNAを単離し（Trizol protocol）、オリゴdTタイププライマーと共に、逆転写／増幅実験に使用した。ヒトANTのアイソフォーム（hANT１、hANT２及びhANT３）に特異的なプライマーは、各アイソフォームの完全なcDNAを特異的に増幅するため、GenBankにある配列に基づき合成した（表１）。これらの産物は、その後、dアデノシン残基を末端に付加した後、ベクターpGEM−Tでサブクローン化した。各挿入物の配列を確認した（図１）。３つのアイソフォームをコードするcDNAは、その後、発現ベクター：pcDNA3.1（version＋、Invitrogen社）及びpIRES−eGFP（Clontech）でクローン化した。３つのアイソフォームに相当するV５エピトープを有する融合タンパク質を産生するため、増幅アプローチ（表２）によって、３つのアイソフォームをコードするcDNAの末端を修飾（ストップコドンの変異及び制限酵素認識配列の付加）し、これらの産物をベクターpcDNA3.1−V５（versionA、Invitrogen社）でサブクローン化することが可能となった。最終構造物はシーケンシングで確認した。
【００３３】
ヒトANTのアイソフォームのアポトーシスの可能性
トランスフェクションの実験を、何も含まないベクターpIRES−２−GFPをコントロールとして、また、３つのヒトANTのアイソフォームをコードするcDNAの配列を含むベクターpIRES−２−eGFPを用いて、293T細胞で行った。トランスフェクション後のある時間において、フローサイトメトリで細胞を解析した。
【００３４】
その結果、hANT１及びhANT３のアイソフォームの発現により、ミトコンドリア膜の電位が消失し、それによりアポトーシスを起し、一方、hANT２のアイソフォームの発現は、ミトコンドリアの統合性に影響を与えなかった（図２）。
【００３５】
同様の実験アプローチを使用して、本発明者は、hANT１及びhANT３のアイソフォームの発現に関係するアポトーシスは、カスパーゼ阻害剤（ZVADとBoc D）で抑制されるが（図３Ａ）、シクロスポリンＡ（CsA）では抑制されないことを証明した（図３Ｂ）。
【００３６】
また、本発明者は、Bcl2タンパク質を過剰発現するHeLa細胞を用いて、Bcl2タンパク質がhANT１及びhANT２のアイソフォームで誘導されるアポトーシスを抑制することができることを証明した（図４）。
【００３７】
hANT１及びhANT２のアイソフォームの細胞内局在性
hANT１−V５及びhANT２−V５融合タンパク質をコードする構造物を用いたHeLa細胞のトランスフェクション後、本発明者は、hANT１及びhANT２のアイソフォームの細胞内局在性を決定するため、免疫標識を行った。抗V５抗体で得られたシグナル及びCOX（ミトコンドリアタンパク質）に対抗する抗体で得られたシグナルによる局在性の解析により、hANT１及びhANT２に対し、ミトコンドリアにおける局在性を証明した（図５）。
【００３８】
ヒトANTのアイソフォームの二本鎖iRNA
iRNAの調製
ヒトANT１（AAACAGATCAGTGCTGAGAAG、ヌクレオチド 127−147）、ヒトANT２（AAGCAGATCACTGCAGATAAG、ヌクレオチド 127−147）、４つの突然変異をもつヒトANT２（AAGCGGATCGCTACAAATAAG、ヌクレオチド 127−147）及びヒトANT３（AAGGGCATCGTGGACTGCATT、ヌクレオチド 127−147）のcDNA配列に相当する二本鎖iRNAを、Elbashirら（2001）の方法に基づき設計した。該二本鎖は、Proligo（フランス）により調製した。
hANT１（127−147）
DNA        ５’−aaacagatcagtgctgagaag−３’（SEQ ID No.７）
配列：       ５’−acagaucagugcugagaagdTdT−３’（SEQ ID No.８）
二本鎖iRNA：５’−cuucucagcacugaucugudTdT−３’（SEQ ID No.９）
hANT２（127−147）
DNA        ５’−aagcagatcactgcagataag−３’（SEQ ID No.10）
配列：       ５’−gcagaucacugcagauaagdTdT−３’（SEQ ID No.11）
二本鎖iRNA：５’−cuuaucugcagugaucugcdTdT−３’（SEQ ID No.12）
hANT２mut（127−147）
DNA配列    ５’−aagcggatcgctacaaataag−３’（SEQ ID No.13）
二本鎖iRNA：５’−gcggaucgcuacaaauaagdTdT−３’（SEQ ID No.14）
５’−cuuauuuguagcgauccgcdTdT−３’（SEQ ID No.15）
hANT３mut（154−174）
DNA配列    ５’−aagggcatcgtggactgcatt−３’（SEQ ID No.16）
二本鎖iRNA：５’−gggcaucguggacugcauudTdT−３’（SEQ ID No.17）
５’−aaugcaguccacgaugcccdTdT−３’（SEQ ID No.18）
【００３９】
各表は、使用されたプライマーの配列を示し、表１は、RT／PCR実験において、３つのヒトANTアイソフォームをコードするcDNAをクローンするためのもの、表２は、hANT−V５融合タンパク質をコードするcDNAを含む発現ベクターを作成するためのものである。
【００４０】
【表１】
2007527200.tif 000002
３つのヒトANTのアイソフォームをコードするcDNAをクローン化するためのRT／PCR実験
【００４１】
【表２】
2007527200.tif 000003
hANT−V５融合タンパク質をコードするcDNAを含む表現ベクターの作成
【００４２】
参照：
Hammond, S.M., Caudy, A.A. and Hannon, G.J. (2001). Post-transcriptional gene
silencing by double-stranded RNA. Nat Rev Genet, 2, 110-119.
Sharp, P.A. (2001). RNA interference-2001. Genes Dev. 15, 485-490.
Elbashir, S.M., Harborth, J., Lendeckel, W., Yalcin, A., Weber, K. and Tuschl, T. (2001). Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in cultured mammalian cells, Nature, 411, 494-498.
【図面の簡単な説明】
【００４３】
【図１】ヒトANTの３つのアイソフォームをコードする完全なcDNA配列。293T及びHeLa細胞由来のRNAを用いてRT／PCR後に単離。
【図２Ａ】図２Ａは、アポトーシスを誘導するhANT１アイソフォームとhANT３アイソフォームの発現。１μｇのベクターpIRES−２−eGFPと１μｇのベクターpcDNA3.1−hANTの共トランスフェクション24時間後における293T細胞のフローサイトメトリ解析。GFP陽性細胞のみのCMXRosレベルの強度を定性的に評価。
【図２Ｂ】図２Ｂは、１μｇのベクターpIRES−２−eGFP又は１μｇの各ベクターpIRES−eGFP−hANTのトランスフェクション24、48、72時間後における293T細胞のフローサイトメトリ解析。GFP陽性細胞のみのCMXRosレベルの強度を定性的に評価。
【図２Ｃ】図２Ｃは、１μｇのベクターpIRES−２−eGFP又は１μｇの各ベクターpIRES−eGFP−hANTのトランスフェクション24、48、72時間後における293T細胞の低倍数体の核の頻度についてのフローサイトメトリ解析。
【図３Ａ】hANT１とhANT３の発現によって誘導されるアポトーシスは、ZVAD及びBoc Dで抑制されるが、CsAでは抑制されない。図３Ａは、10μMのCsAの存在又は不存在下、１μｇのベクターpIRES−２−eGFP又は１μｇの各ベクターpIRES−eGFP−hANTのトランスフェクション48時間後における293T細胞のフローサイトメトリ解析。GFP陽性細胞のみのCMXRosレベルの強度を定性的に評価。
【図３Ｂ】hANT１とhANT３の発現によって誘導されるアポトーシスは、ZVAD及びBoc Dで抑制されるが、CsAでは抑制されない。図３Ｂは、100μMのZVAD−fmk又は100μMのBoc Dの存在又は不存在下、１μｇのpIRES−２−eGFP又は１μｇの各ベクターpIRES−eGFP−hANTのトランスフェクション48時間後における293T細胞のフローサイトメトリ解析。GFP陽性細胞のみのCMXRosレベルの強度を定性的に評価。
【図４】hANT１とhANT３のアイソフォームの発現によって誘導されるアポトーシスは、Bc12の発現で抑制される。HeLa Neo及びBc12細胞に１μｇのベクターpIRES−２−eGFP又は１μｇの各ベクターpIRES−eGFP−hANTをトランスフェクトし、72時間後、GFP陽性細胞のみのCMXRosレベルの強度を定性的に評価。
【図５Ａ】図５Ａは、hANT１とhANT２のアイソフォームの細胞内局在性。HeLa細胞に１μｇのベクターpcDNA3.1V５−hANT１（Ａ）又は１μｇのベクターpcDNA3.1v５−hANT１（Ｂ）をトランスフェクトし、パラホルムアルデヒドで固定化する。HANT− V５融合タンパク質とCOXミトコンドリアタンパク質の共在性は、V５エピトープ（緑色蛍光）及びCOXタンパク質（赤色蛍光）の免疫蛍光検出によって決定する。混合色のイメージは、共在性を示す緑色蛍光と赤色蛍光のスーパーインポジションを表す。
【図５Ｂ】図５Ｂは、hANT１とhANT２のアイソフォームの細胞内局在性。HeLa細胞に１μｇのベクターpcDNA3.1V５−hANT１（Ａ）又は１μｇのベクターpcDNA3.1v５−hANT１（Ｂ）をトランスフェクトし、パラホルムアルデヒドで固定化する。HANT− V５融合タンパク質とCOXミトコンドリアタンパク質の共在性は、V５エピトープ（緑色蛍光）及びCOXタンパク質（赤色蛍光）の免疫蛍光検出によって決定する。混合色のイメージは、共在性を示す緑色蛍光と赤色蛍光のスーパーインポジションを表す。
【図６】特異的なsiRNAを使用したヒトANTのアイソフォーム１及び２の発現の特異的抑制。（Ａ）HeLa細胞に、最初、発現ベクターpcDNA3.1V５−hANT１、次いでhANT１又はhANT２mutに対して特異的なsiRNAを共トランスフェクトする。（Ｂ）HeLa細胞に、最初、発現ベクターpcDNA3.1V５−hANT２、次いでhANT２又はhANT２mutに対して特異的なsiRNAを共トランスフェクトする。
【図１】
2007527200.tif 000004
2007527200.tif 000005
2007527200.tif 000006
2007527200.tif 000007
2007527200.tif 000008
2007527200.tif 000009
2007527200.tif 000010
【図４】
2007527200.tif 000011
2007527200.tif 000012
2007527200.tif 000013
【図６】
2007527200.tif 000014
【配列表】
2007527200000001.xml
【国際調査報告】
2007527200.tif 000034
2007527200.tif 000035
2007527200.tif 000036
2007527200.tif 000037
2007527200.tif 000038
2007527200.tif 000039
2007527200.tif 000040
2007527200.tif 000041
2007527200.tif 000042