(57)【要約】  本発明は、該生物学的材料に静水圧を適用し；該生物学的材料を静水圧に予め定めた時間維持し；静水圧を解放し；そしてこれに適用しうるいずれかのプロトコールを使用して該生物学的材料を凍結することを含む凍結保存生物学的材料の解凍後生存性を改善するための方法に関係する。この発明はまた凍結保存すべき生物学的材料を前処理するための加圧装置の使用、並びに凍結保存すべき生物学的材料を前処理するための加圧装置に関係し、該装置は生物学的材料を入れる加圧チャンバー、該圧を発生する手段、及び該チャンバー中に該圧力を維持する手段を含んでいる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）任意に予め定めた圧力−時間プロフィールに従って生物学的材料に静水圧を適用し、
（ｂ）該生物学的材料を、予め定めた時間静水圧に保持し、
（ｃ）静水圧を解放し、
（ｄ）それに適用可能な任意のプロトコールを使用して該生物学的材料を凍結する、凍結保存生物学的材料の解凍後生存性を改善する方法。
【請求項２】
前記静水圧が、１から２５０ＭＰａ、好ましくは１０から１００ＭＰａ、より好ましくは２０から７５ＭＰａ、さらにより好ましくは３０から６０ＭＰａの範囲にある、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記静水圧が、１秒と３００分の間、好ましくは１秒と１５０分の間、より好ましくは１秒と９０分の間、さらにより好ましくは１秒と６０分の間の時間適用される、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記圧力が、１秒と４時間の間の時間をかけて徐々に解放される、請求項１から３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
前記生物学的材料が、脊椎動物の卵母細胞、精子、接合子、桑実胚、胚盤胞、胚、幹細胞、細胞又は組織からなる群から選択される、請求項１から４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
前記脊椎動物が、魚類、鳥類又は哺乳類、好ましくはウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、ブタその他の家畜、ペット、ヒトを含む霊長類である、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
生物学的材料を入れるための加圧チャンバーと、
１から２５０ＭＰａ、好ましくは１０から１００ＭＰａ、より好ましくは２０から７５ＭＰａ、さらにより好ましくは３０から６０ＭＰａの範囲の圧力を発生させる手段と、
１秒と３００分の間、好ましくは１秒と１５０分の間、より好ましいくは１秒と９０分の間、さらにより好ましくは１秒と６０分の間の時間、該チャンバーの中の該圧力を維持する手段と
を備える生物学的材料を加圧処理するための加圧装置。
【請求項８】
前記圧力を発生させる手段がピストンであり、前記加圧チャンバーが前記ピストンを入れるシリンダー状チャンバーであり、
該チャンバーと該ピストンの間に高圧をシールする手段が施されており、
該ピストンに力を加えるための手動及び／又は自動の作動手段が設けられている、請求項７に記載の装置。
【請求項９】
前記ピストンに力を加える手段が、前記ピストンに接する表面を持つ板状部品であり、前記チャンバー内の該ピストンの位置を調節する手段がある、請求項８に記載の装置。
【請求項１０】
１秒と４時間の間の時間に亘って加圧チャンバーの減圧を調節するシステムを含む、請求項７から９のいずれかに記載の装置。
【請求項１１】
前記チャンバーの前記圧力を示すための圧力ゲージをさらに含む、請求項７から１０のいずれかに記載の装置。
【請求項１２】
前記加圧チャンバーが液状媒体を含む、請求項７から１１のいずれかに記載の装置。
【請求項１３】
前記加圧チャンバーが、厚さ約１０から２５ｍｍ、好ましくは厚さ２０ｍｍ未満の壁を有し、該チャンバーが、好ましくは１００ｍｍ未満、より好ましくは５０ｍｍ未満、特に好ましくは約２０ｍｍの内径を有し、且つ好ましくは２５０ｍｍ未満、より好ましくは１００ｍｍ未満、特に好ましくは約２００ｍｍの内側の高さを有する、請求項７から９のいずれかに記載の装置。
【請求項１４】
前記生物学的材料が脊椎動物の卵母細胞、精子、接合子、桑実胚、胚盤胞、胚、幹細胞、細胞又は組織からなる群から選択される請求項７から１３のいずれかに記載の装置。
【請求項１５】
前記生物学的材料を圧縮するための加圧装置の使用。
【請求項１６】
前記該生物学的材料の凍結保存のための前処理として加圧が使用される、請求項１５に記載の使用。
【請求項１７】
請求項１から６のいずれかに記載の凍結保存のための請求項１６に記載の使用。
【請求項１８】
前記加圧装置が、生物学的材料を入れるのに適した加圧チャンバーと、１から２５０ＭＰａ、好ましくは１０から１００ＭＰａ、より好ましくは２０から７５ＭＰａ、さらにより好ましくは３０から６０ＭＰａの範囲の調節された圧力を供給する手段とを備える、請求項１５又は１７に記載の使用。
【請求項１９】
前記加圧装置が、１秒と３００分の間、好ましくは１秒と１５０分の間、より好ましいくは１秒と９０分の間、さらにより好ましくは１秒と６０分の間の時間、前記チャンバー内の前記圧力を維持する手段を備える、請求項１８に記載の使用。
【請求項２０】
１秒と４時間の間の時間に亘って加圧チャンバーの減圧を調節するための制御システムを備える、請求項１５から１９のいずれかに記載の使用。
【請求項２１】
静水圧が前記加圧装置内で達成される、請求項１５から２０のいずれかに記載の使用。
【請求項２２】
前記生物学的材料が、脊椎動物の卵母細胞、精子、接合子、桑実胚、胚盤胞、胚、幹細胞、細胞又は組織からなる群から選択される、請求項１５から２１のいずれかに記載の使用。
【請求項２３】
生物学的材料の圧縮のための請求項７から１４のいずれかに記載の加圧装置の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
技術分野
本発明は、凍結保存生物学的材料の解凍後生存性を改善する方法に関係し、その方法は該生物学的材料に静水圧を適用し、該生物学的材料を予め定めた時間その静水圧に保ち；静水圧を解放し；それに適用可能ないずれかのプロトコールを使用して該生物学的材料を凍結することからなる。また、本発明は、凍結保存される生物学的材料の前処理用の加圧装置の使用、並びに凍結保存される生物学的材料の前処理用の加圧装置に関係し、該装置は生物学的材料を入れる加圧チャンバー、該圧力を発生する手段、及び該チャンバー中に該圧力を維持する手段からなる。
【０００２】
背景技術
凍結保存の操作は、近年の生物学及びバイオテクノロジーの種々の分野において広範囲の目的で生物学的材料を保存するために十分に確立されている。
これらの方法は、極めて類似する基本的ステップをたどる：
１．生物学的材料を凍結保護剤（ｃｒｙｏｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ  ａｇｅｎｔｓ）含有溶液で処理する。
２．次のステップは生物学的材料を氷点下の温度に凍結することである。
３．そのように処理した生物学的材料を−非常に長期間であっても−低温において、例えば液体窒素中において保存する。
４．使用する前に、生物学的材料を温めて戻す。
５．生物学的材料から凍結保護剤を除去する。さらに、生物学的材料はその元来の生存能力を取り戻すためのステップを必要とするであろう。
【０００３】
凍結保存の操作は生物学的材料にとって有害であるので、上記の基本的プロトコールを改良するためにいくつかの方法が試みられてきた。超急速冷却及び加温速度により氷を形成させない方法、又は−８０℃に冷却する間に平衡凝固点を徐々に低下することによる方法は、低温生物学のあらゆる分野に対して適する解決にはならなかった。凍結後の生存率改善の試みがなされた：凍結保護剤の高濃度水溶液が極めて低い温度に過冷却するガラス化において、細胞内ガラス化を可能にする（Ｒａｌｌ及びＦａｈｙ，１９８５）。Ｆａｈｙら（１９８４）は、ガラス化を促進する可能性がある他の因子としてかなりの高い静水圧を使用する可能性について言及しているが、生殖生物学において殆ど実用的な成果が得られなかったとしている。他の研究は、相互に結合せずに（ｎｏｎ−ｃｏｌｌｉｇａｔｉｖｅｌｙ）水溶液の凍結温度を低下させ、膜のイオンチャネルを阻害し、これにより冷却の際にある程度防御に寄与する、抗凍結タンパク質（ＡＦＰ）の使用を報告している（Ｂａｇｕｉｓｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７）。記述されているいずれの方法においても、凍結保護剤の毒作用及び浸透圧変化の有害な結果は無視できない。
【０００４】
今のところ、これらの方法の種々の適用分野における有効性の程度はまちまちである。例えば、胚を保存する場合に、凍結保存の効率は種、凍結方法、胚の発生段階によって０〜８０パーセントの範囲にある（Ｉｓｈｗａｒ，１９９６；Ｖａｎ  Ｗａｇｔｅｎｄｏｎｋ−Ｄｅ  Ｌｅｅｕｗ，１９９５，１９９７；Ｍｅｄｅｉｒｏ，２００２；Ｒｅｕｂｉｎｏｆｆ，２００１；Ｈａｍｍｉｔｔａ，２００３；Ａｒｃｈｅｒ，２００３；Ｓｔａｃｈｅｃｋｉ，２００２，Ｌｅｉｂｏ  ａｎｄ  Ｓｏｎｇｓａｓｅｎ，２００２）。現在では通俗的問題であるヒト卵の凍結保存の成功率も充分満足するには程遠い。
【０００５】
１９１２年以来、水は、種々の温度において静水圧を受けたときに異なる相へ移行することが知られている（Ｂｒｉｄｇｍａｎ，１９１１）（図７）。一定の圧力を溶液に適用することにより、溶液を零度以下の低温においても凍結させずに維持することができる（Ｂｒｉｄｇｅｍａｎ，１９７０）。既に、Ｎａｋａｈａｓｈｉら（２０００，２００１）により、高い静水圧（ＨＨＰ）が低温障害を減少させる目的で移植用のラット肝臓の零度以下の保存に使用された。この方法は、培地の氷点を実質的に低下させるために、ＨＨＰを使用して、低温保存の悪影響を伴わずに零度以下の温度において生物学的材料を保存する。この方法は、後記実施例２及び３に示されるように、本発明者らによりマウス胚の保存において信頼性に欠けることが見出されている。
【０００６】
３０〜５０ＭＰａの範囲の静水圧は、種々の生物の生長を通常阻害する：ＤＮＡ複製の開始は、最も圧力に対する感受性が高い細胞内過程の一つである（Ａｂｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９）。その影響の程度は、圧縮の大きさと持続時間によりまちまちである（Ｍｕｒａｋａｍｉ  ａｎｄ  Ｚｉｍｍｅｒｍａｎ，１９７３）。細胞膜は、圧力の障害を受ける主な部位であると記されている（Ｐａｌｏｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）。高静水圧処理は、能動輸送又は受動的透過性のような膜の機能を変化させるので、細胞の物理化学的バランスを乱す（Ｙａｇｅｒ  ａｎｄ  Ｃｈａｎｇ，１９８３；  Ａｌｄｒｉｄｇｅ  ａｎｄ  Ｂｒｕｎｅｒ，１９８５；Ｍａｃｄｏｎａｌｄ，１９８７；  Ｓｃｈｕｓｔｅｒ  ａｎｄ  Ｓｌｅｙｔｒ，２００２）。Ｒｏｕｔｒａｙ  ｅｔ  ａｌ．（２００２）による最近の研究は、メダカ（Ｏｒｙｚｉａｓ  ｌａｔｉｐｅｓ）の卵と胚を使用して行った実験において静水圧（５ＭＰａ）はＤＭＳＯの取り込みを促進するが、生存能力は急速に失われることを示した。変化した圧力条件における物理的又は生化学的過程は、Ｌｅ  Ｃｈａｔｅｌｉｅｒの原理に従う：容積の減少を伴う反応は全てかなり加速される（Ｍｕｒａｋａｍｉ  ａｎｄ  Ｚｉｍｍｅｒｍａｎ，１９７３；Ｗｅｌｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３；Ｐａｌｏｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）。圧力の適用は、部分的に又は完全にほどけたコンフォメーションを含むタンパク質の配座異性体の集団を生じることがある。圧力は、タンパク質内（ｉｎｔｒａｐｒｏｔｅｉｎ）の相互作用の破壊、キャビティーの開放と続く水の結合の複合作用によるタンパク質の変性を生じることができる（Ｓｃｈｍｉｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９７５；Ｗｅｂｅｒ  ａｎｄ  Ｄｒｉｃｋａｍｅｒ，１９８３；Ｊａｅｎｉｃｋｅ，１９９１；Ｇｒｏｓｓ  ａｎｄ  Ｊａｅｎｉｃｋｅ，１９９４；Ｓｉｌｖａ  ｅｔ  ａｌ．，２００１）。
【０００７】
最近の報告は、静水圧がショックタンパク質の生産を増強することを述べている（Ｗｅｌｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３；Ｗｅｍｅｋａｍｐ−Ｋａｍｐｈｕｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００２）。ある研究では、細菌における亜致死のコールドショックにより生じる正常タンパク質合成の不安定がいわゆるコールドショックタンパク質（ＣＳＰ，ＨＳＰ）の合成により克服されていると記述している（Ｐｈａｄｔａｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９）。ＣＳＰ，ＨＳＰはＲＮＡシャペロン（Ｇｒａｕｍａｎｎ  ａｎｄ  Ｍａｒａｈｉｅｌ，１９９９）或いは転写活性化物質（ＬａＴｅｎａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１）のような多くの機能を持つのではないかと考えられている；また、それらは凍結に対する防御の役割も果たしていると推定されている（Ｗｏｕｔｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９）。他の研究では、ＣＳＰ及びＨＳＰの生産はコールドショックによって誘導されるだけでなく、他の環境のストレスによっても誘導されることが発見されている。例えば、Ｅ．ｃｏｌｉにおいて一種のＣＳＰが栄養ストレスにより生産される（Ｙａｍａｎａｋａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８）。他の試験では、高静水圧処理はある冷却誘発タンパク質及びヒートショックタンパク質の生産を引き起こすことが示された（Ｗｅｌｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３）。他の最近の報告には、静水圧はショックタンパク質の生産を増強することが述べられている（Ｗｅｍｅｋａｍｐ−Ｋａｍｐｈｕｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００２）。コールドショック及び高圧処理はいずれもＣＳＰ及びＨＳＰレベルを増加させるので、交差防御の可能性に関する試験が行われた。Ｗｅｍｅｋａｍｐ−Ｋａｍｐｈｕｉｓ  ｅｔ  ａｌ．（２００２）は、コールドショックを受けたＬｉｓｔｅｒｉａ  ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓに圧力をかけた後の生存能力のレベルが、３７℃で増殖した細胞のレベルよりも１００倍高いことを発見した。
【０００８】
食品微生物学者は、有害微生物を殺すために上記方法を研究したが（Ｂｕｔｚ  ａｎｄ  Ｌｕｄｗｉｇ，１９８６；Ｗｅｍｅｋａｍｐ−Ｋａｍｐｈｕｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００２；  Ｓｐｉｌｉｍｂｅｒｇｏ  ｅｔ  ａｌ．，２００２）、本発明の目的は、凍結保存した生物学的材料の生存性の増強である。
【０００９】
最近、凍結保存におけるショックタンパク質の役割の研究がますます注目されている。Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．（１９９９）は、ショックタンパク質、ＨＳＰ９０のかなりの減少はブタ精子の冷却の間の精子運動能の低下に関係する可能性があることを公表した。Ｗｅｎ−Ｌｅｉ  ｅｔ  ａｌ．（２００３）は、ヒト精子中のＨＳＰ９０は凍結保存後にかなり減少し、これはタンパク質分解により生じている可能性があることを報告した。
【００１０】
まとめると、高静水圧により誘導されるＨＳＰ９０は以下の通りである。
・  細胞質タンパク質である。
・  ストレス耐性、タンパク質折りたたみ、シグナル伝達などに本質的役割を演ずる分子シャペロンである。
・  ｉｎ  ｖｉｖｏ  において真のクライアントタンパク質（ａｎｔｈｅｎｔｉｃ  ｃｌｉｅｎｔ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ）の活性化に必須である固有のＡＴＰアーゼを有することが知られている（Ｐｅａｒｌａｎｄ  Ｐｒｏｄｒｏｍｏｕ，２０００）。
・以下のように精液運動能に関係する。
・一酸化窒素合成酵素（ＮＯＳ）を活性化する（Ｇａｒｃｉａ−Ｇａｒｄｅｎａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８）。
・冷却過程の間に有意に増加し、精子運動能を大きく害する活性酸素種（ＲＯＳ）から細胞を保護する（Ｆｕｋｕｄａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６）。
・ＡＴＰ代謝に関与する（Ｐｒｏｄｒｏｍｏｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）。ＡＴＰレベルはコールドショックの後に低下し、その後回復しないであろう（Ｗａｔｓｏｎ，１９８１）。
・  ブタ精液を冷却した後に精子運動能の低下と共にＨＳＰ  ９０は実質的に減少する。ＨＳＰ  ９０はブタ精子運動能の調節に決定的な役割を演じている可能性があると結論されている（Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９）。
・  特異的ＨＳＰ  ９０阻害物質であるゲルダナマイシンは、用量と時間に依存する様式でブタ精液の精子運動能を有意に減少させる（Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，２０００）。
【００１１】
ヒト精子中のＨＳＰ  ９０は凍結保存後、精子運動能と共に実質的に減少する；その減少は漏出によるものではなく、タンパク質分解の結果である（Ｗｅｎ−Ｌｅｉ  ＣＡＯ  ｅｔ  ａｌ．，２００３）。
【００１２】
一定のレベルを超えて圧力の効果が蓄積すると致死的となる：高圧においては一部の生物分子の不可逆的変化が起こるが、３００ＭＰａにおいては大部分の細菌及び多細胞生物は死ぬ。緩歩類は、活動状態では１００から２００ＭＰａにおいて死ぬが、水を抜いた「たる」の状態（ｔｕｎ  ｓｔａｔｅ）では６００ＭＰａまで生存することができる（Ｓｅｋｉ  ａｎｄ  Ｔｏｙｏｓｈｉｍａ，１９９８）。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明者らは驚くことに、静水圧の適用、次いで後記の技術態様による凍結保存プロトコールを適用することにより生物学的材料の生存性を有意に改善することができることを見出した。本発明の文脈において、生存性という語は、特に、（胚の場合には）インビトロ及びインビボにおいて継続する発育の改善、高い孵化率又は着床率及び出生率；（精子の場合には）解凍後の高い運動能及び／又は授精能力の改善；（卵母細胞の場合には）インビトロ及びインビボにおける継続した発育の改善、受精能力の改善、高い孵化率又は着床率及び出生率を意味する。この生存性という語は、扱われるほかの生物学的材料のタイプにより、他の種々の機能特性を包含できると、理解される。
【００１４】
この目的のために、一定のタイプの生物学的材料の耐圧性が確立され（実施例１，５及び６、参照）、次いで加圧される生物学的材料の生存性を改善する目的を達成するためにいくつかの技術態様コンセプトを検討した（実施例２及び３、参照）。次いで、本発明者らは、さらに種々のタイプの生物学的材料の圧力処理に対する影響を検討し、その目的を充たす革新的圧力適用方法を予期せず見出した。
【００１５】
この文脈において、われわれは、本発明のコンセプトは種々多数の凍結保存プロトコールに等しく適用され、その選択は本発明を制限しないことを強調しなければならない。改良プロトコールに含まれることが必要な唯一のステップは静水圧の適用のステップである；そのパラメーターは本明細書の教示に従って当業者により容易に最適化することができる
【００１６】
発明の要約
本発明は、凍結保存生物学的材料の解凍後生存性を改善する方法であって、
【００１７】
（ａ）予め定めた圧−時間プロフィールに任意に従い、該生物学的材料に静水圧を適用し；
【００１８】
（ｂ）予め定めた時間該生物学的材料をその静水圧に保持し；
【００１９】
（ｃ）静水圧を解放し；
【００２０】
（ｄ）適用可能ないずれかのプロトコールを使用して該生物学的材料を凍結する、方法に関する。
【００２１】
一態様において、本発明による方法に使用される圧力は１から２５０ＭＰａの範囲にある。好ましい態様において、圧力は好ましくは１０から１００ＭＰａの範囲にあり、より好ましくは２０から７５ＭＰａの範囲にあり、さらに好ましくは３０から６０ＭＰａの範囲にある。
【００２２】
その他の態様において、本発明による方法において使用される静水圧は、１秒から３００分の間の時間適用される。好ましい態様において、圧力は好ましくは１秒から１５０分の間の時間適用され、より好ましくは１秒から９０分の間の時間適用され、さらに好ましくは１秒から６０分の間の時間適用される。
【００２３】
他の態様において、本発明による方法は、１秒から４時間の間の時間をかけて徐々に圧力を解放することを含む。他の態様において、圧力を解放するための時間は、１０秒から２時間の間であるか、又は１分から１時間の間であり、他の場合には１０分から３０分の間である。圧力の解放は瞬間的であっても良い。
【００２４】
好ましい態様において、本発明による方法は、脊椎動物の卵母細胞、精子、接合子、桑実胚、胚盤胞、胚、幹細胞、細胞又は組織からなる群から選択される生物学的材料に関して使用される。
【００２５】
他の好ましい態様は、該脊椎動物が魚類、鳥類又は哺乳類、好ましくはウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、ブタその他の家畜、ペット、ヒトを含む霊長類である、方法に関係する。
【００２６】
本発明はまた、生物学的材料の加圧処理をするためであって、
・  生物学的材料を入れるための加圧チャンバーと、
・  １から２５０ＭＰａの範囲、好ましくは１０から１００ＭＰａ、より好ましいのは２０から７５ＭＰａ、さらに好ましいのは３０から６０ＭＰａの範囲の圧力を発生させる手段と、
・  １秒から３００分の間、好ましくは１秒から１５０分の間、より好ましくは１秒から９０分の間、さらに好ましくは１秒から６０分の間の時間該チャンバーに該圧力を維持するための手段と
を備える加圧装置に関する。
【００２７】
好ましい態様において、本発明は、
・  圧力を発生させる該手段がピストンであり、該加圧チャンバーは該ピストンが挿入される筒状チャンバーであり、
・  チャンバーとピストンの間に高圧密封手段が施され、
・  該ピストンに力を加えるための手動及び／又は自動で作動する手段が設けられている、
装置に関する。
【００２８】
他の好ましい態様において、本発明は、該ピストンに力を加えるための該手段が該ピストンに接する表面を持つプレート状の部品であり、そして該チャンバー内の該ピストンの位置を調節するための手段がある装置に関する。
【００２９】
他の好ましい態様において、この装置は、１秒から４時間の間の時間をかけて加圧チャンバーの減圧を調節するシステムを備える。
【００３０】
他の好ましい態様において、この装置は、チャンバーの圧力を示す圧力ゲージをさらに備える。
【００３１】
他の好ましい態様において、該加圧チャンバーは液状の媒体を含む。
【００３２】
特別の態様において、該加圧チャンバーは約１０から２５ｍｍの厚さ、好ましくは２０ｍｍ未満の厚さの壁を有し、該チャンバーは好ましくは１００ｍｍ未満、より好ましくは５０ｍｍ未満、特に好ましくは約２０ｍｍの内径、及び好ましくは２５０ｍｍ未満、より好ましくは１００ｍｍ未満、特に好ましくは約２００ｍｍの内部の高さを有する。
【００３３】
他の好ましい態様において、本発明は、該生物学的材料が脊椎動物の卵母細胞、精子、接合子、桑実胚、胚盤胞、胚、幹細胞、細胞又は組織からなる群から選択される装置に関係する。
【００３４】
また、本発明は生物学的材料を圧縮するための加圧装置の使用に関する。
【００３５】
好ましい態様において、本発明は、該生物学的材料の凍結保存のための前処理として圧力が使用される加圧装置の使用に関する。
【００３６】
好ましい態様において、加圧装置の使用は、本発明の凍結保存方法のいずれも取り入れることができる。
【００３７】
好ましい態様において、本発明の使用は、生物学的材料を入れるのに適した加圧チャンバーと１から２５０ＭＰａの範囲、好ましくは１０から１００ＭＰａ、より好ましくは２０から７５ＭＰａ、さらに好ましくは３０から６０ＭＰａの範囲の制御された圧力を供給するための手段とを備える加圧装置を必要とする。
【００３８】
他の好ましい態様において、本発明の使用は、１秒から３００分の間、好ましくは１秒から１５０分の間、より好ましくは１秒から９０分の間、さらに好ましくは１秒から６０分の間の時間該圧力を維持するための手段を備える加圧装置を必要とする。
【００３９】
好ましい態様において、本発明の使用は、１秒から４時間の間の時間をかけて加圧チャンバーの減圧を調節するために加圧装置と連結した制御システムの使用を包含する。
【００４０】
特別な態様において、本発明はまた、静水圧が加圧装置の中で発生される加圧装置の使用に関する。
【００４１】
他の好ましい態様において、本発明は、該生物学的材料が脊椎動物の卵母細胞、精子、接合子、桑実胚、胚盤胞、胚、幹細胞、細胞又は組織からなる群から選択される加圧装置の使用に関する。
【００４２】
本発明はさらに、生物学的材料の圧縮のための本発明による加圧装置の使用に関する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００４３】
発明の詳細な説明
本発明のコンセプトを明らかにするために、マウス胚を使用することにより本発明をさらに詳細に記述する。開示される方法は、この分野で日常的に凍結保存されている種々の生物学的材料の全ての種類に同等に適用されることは明白である。入手及び操作が容易であるために、詳細な検討の対象としてマウス胚が選択された。胚の凍結保存がその産業的及び医療上の利用価値のために凍結保存研究の最前線にあることは言うまでもないことである。しかし、本発明による方法において、そして同様にこの説明において、用語「マウス胚」は用語「生物学的材料」と互換的に使用することができる。本明細書においては、ウシＩＶＦ胚及びウシ精子についても実験データが提供され、これらは予期せざる解凍後生存性向上を示した。代表的生物学的材料としては、例えば、種々の哺乳動物種の着床前および着床後の胚、脊椎動物及びヒトの卵母細胞、精子、幹細胞、組織、器官、又は全身であっても良い。脊椎動物はいずれの種、例えば魚類、鳥類又は哺乳類、好ましくは、ウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、ブタその他の家畜、ペット、ヒトを含む霊長類でも良い。
【００４４】
高度に発育した真核生物であるマウス胚は緩歩類及び細菌よりも静水圧の影響を受けやすい。したがって、最初の目的は、圧力下におけるマウス胚の形態及び生存率に関する基本的な特徴を把握することである。
【００４５】
本発明の方法を充分に検討するために、プロトタイプの装置を作製した。図８に示した加圧装置１を、下記実施例において考察される実験を実施するために使用した。
【００４６】
加圧装置１は、一つは上端に一つは下端にある２つの開口３，４を有し、そして上端開口３に圧力ケージ５を接続し、そしてピストン６が下端開口４から挿入されている筒状の加圧チャンバー２を備えている。圧力ゲージ５は、目的の圧力領域、すなわち１から２５０ＭＰａの範囲、好ましくは１０から１００ＭＰａ、より好ましくは２０から７５ＭＰａ、さらに好ましくは３０から６０ＭＰａの範囲の圧力を測定できれば、いずれかの適切なゲージでよい。加圧チャンバー２は内部の高さ約６０ｍｍと幅約２０ｍｍを有する。チャンバー２の壁７は、２５０ＭＰａ、好ましくは少なくとも７５ＭＰａ、さらに好ましくは６０ＭＰａまでの圧力に耐えるように調節されている。チャンバー２の壁７は、好ましくは耐腐食性材料で作られており、それは好ましくはプラスチック又はステンレススチールである。下端の開口４での壁７の内側及びピストン６間の密封を増強するために、ピストンの周囲には、例えばテフロン（登録商標）リングシールのような圧力シール８が備えられている。そのような又は別の種類の圧力シール８は、圧力ゲージ５が取り付けられている上端の開口３にも使用されることが望ましい。下端開口を取り囲む壁７の部分は周囲に突き出て、フランジ９を形成する。加圧チャンバー２は、ピストン６を保持し、そしてチャンバー２の中へさらに押し込むためにさらに厚いキャップ１０を装着している。キャップ１０は、スクリュー１１のような固定手段によりフランジ９に接着し得る。各スクリューの抗張力は、チャンバー２内の高圧による張力に耐えるために適切な高い値でなければならない。加圧チャンバー２は、加圧チャンバー２のさらに内側にピストンを押すことにより達成される比較的少しの圧縮の間に高圧を生じるのに適した媒体１２で充たされている。該媒体は、高圧テクノロジーの分野に適用できる既知のタイプの非固体媒体１２のいずれでも良い（液状又はゼラチン状の媒体１２が好ましい）が、この研究には一般的な水が使用された。圧縮の間の媒体１２の発熱を防ぐために、加圧チャンバー２の壁７は熱伝導性の材料で造られることが望ましい。
【００４７】
上記の加圧装置１は、本発明の改良冷凍保存方法を実施するための可搬手段を提供するような大きさで製造できることは、理解されるであろう。下記のサイズは例としてのみ役立つものであり、当業者は容易により大きい又はより小さいものを想像できることは理解される。加圧チャンバー２は、内側の高さＨｉが６０ｍｍであり、内側の直径Ｄｉが２０ｍｍであり、これはピストン６の直径にも相当する。ピストン６の高さＨｐはＨｉに合わせて選択することができ、例えば、短い試験的装置では２０ｍｍであった。チャンバー２の壁７は約１０ｍｍの厚さＤｗを持っている。ピストン６を取り巻く圧力シール８は５ｍｍの高さＨｓ及び２ｍｍの厚さＤｓを持っている。フランジ９にキャップ１０を固定するためのスクリュー１１は８ｍｍの直径Ｄを持つことができる。この大きさの市販のスクリュー１１は８００ＭＰａの抗張力を持つことができ、これは２００ＭＰａまでの圧力を保証するのに充分である。装置の実際の大きさは、処理される生物学的材料及び装置の中へ生物学的材料を適用するために使用しうる手段に応じて設計することができる。
【００４８】
凍結保存するマウス胚の前処理の間、（胚を保持する適当な溶液を充たしたプラスチックストローの中に入れた）胚を加圧チャンバー２の中の液状媒体１２の中に入れた（この媒体は通常の水である）；ピストン６を下端開口４の中に余分の力を加えずに挿入し、ピストン６に接する位置でキャップ１０をチャンバー２のフランジ９にスクリュー１１により取り付けた。そしてそのピストンは媒体１２を圧縮しない状態ではチャンバー２から部分的につき出ている。次いで、特別な実験を行うのに必要な圧力条件を達成するための速度と程度でスクリューを締め付けることにより（手動によるか又は自動的に締め付けて）、キャップを下端開口４の方向に締め付けて、ピストン６をさらに圧力チャンバー２の内側へ押しこんだ。チャンバー２の内部に発生した圧力は圧力ゲージ５により監視された。必要な時間が経過した後、チャンバーの減圧はスクリュー１１を徐々に緩めることによるか、或いは上端開口から圧力ゲージ５を外して、半瞬間的に液状媒体１２を膨張させることにより行われた。
【００４９】
チャンバーの中に胚を入れる方法はプラスチックストローに限定されない。特別な応用及び生物学的材料に応じて、処理する検体を種々の保持構造物に入れることができる。例えば、胚又は細胞をクリオループ（ｃｒｙｏｌｏｏｐ）又は電子顕微鏡の格子の中に入れることができる。別の態様において、生物学的材料の入った保持溶液の液滴を単純に液状媒体１２としての鉱物油で覆うこともできる。この場合に、容易に回収できるように立体顕微鏡下で操作できるように、加圧装置全体を小型化することができるであろう。肉眼で見える生物学的材料の場合には、特別な入れ物は必要でなく、検体はチャンバーの中に入れられ、そして液状媒体１２自体が保持溶液になりうる。生物学的材料に高い静水圧の影響を及ぼすことができるチャンバーの中に生物学的材料を入れそして／又は保持する方法は、いずれも本発明の範囲内にある。
【００５０】
加圧装置１はプログラム化可能な制御システムを装着することにより完全に自動化することができる。該制御システムは、入力パラメーターとして以下を含むことができる：加圧速度、最大圧力での必要時間及び圧力解放速度。加圧チャンバー２の壁７に高い熱伝導性の材料を使用することにより有害な熱変動を充分に防ぎ得るかもしれないが、温度制御方法も使用することができる。温度制御方法は、凍結保存操作のワンステップ解決策となる一体型加圧−凍結装置として構想することもできる。その筋書きにおいて、加圧及び凍結の両者は自動化することができ、種々の生物学的材料の要求にしたがって加圧処理及び凍結をプログラムするための手段が装着される。
【００５１】
上記の試作機に極めて類似しそして生物学的材料を処理するための容易で簡単な方法を提供することができる携帯型装置も想像することができ、このステップを経て、該生物学的材料を保存するための容易に利用可能な技術に到ると思われる。そのようなアプローチは、遠隔地の開業医の助けとなり、また野生生物保存のような種々の目的に使用できるであろう。
【００５２】
種々の生物学的材料の耐圧性を調べるために、注意深く計画された実験が実施された。後の実用上の応用のために、使用された圧力及び時間の選択は最も幅広い範囲になるように設定された。例えば、図７に示されるように、水の相変化温度は０．１ＭＰａにおける０℃から２１０ＭＰａにおける−２１℃まで加圧に伴って低下し、この圧力レベルを超えると逆の効果が観察される。したがって、本発明の方法に使用するための圧力は１ＭＰａから２５０ＭＰａの、或いは装置を運転する温度において媒体が凍結する点までの範囲が選択される。特に、拡大した胚盤胞期の胚に適用できる静水圧は、１，５，１０，１５，２０，２５，３０，４０，５０，６０，７０，８０，９０，１００，１１０，１２０，１３０，１４０，１５０，２００又は２５０ＭＰａ、又はこの範囲内の中間のいずれかの値である。
【００５３】
静水圧は、予め定めた圧力−時間プロフィールに従って該生物学的材料に適用することができる。処理される生物学的材料によっては、材料に適用される圧力を時間をかけて徐々に増加させることができることは、当業者には理解されるであろう。所与の生物学的材料に適したプロフィールは経験的に決定することができ、それは直線的、段階的又はその他通常使用されている時間プロフィールでよい。
【００５４】
同様に、高い静水圧に維持される生物学的材料に対して幅広い時間間隔を選択することができる。より具体的には、マウス胚は、選択された圧力の下に、１秒から６時間の間、特に１秒、５秒、１０秒、２０秒、３０秒、４０秒、５０秒、１分、２分、３分、４分、５分、６分、８分、１０分、１５分、２０分、３０分、４０分、５０分、６０分、７０分、８０分、９０分、１２０分、１５０分、１８０分、２１０分、２４０分、３００分、又は３６０分の間維持される。圧力の下で胚が生存する時間は、圧力の増加に伴って減少する。
【００５５】
圧力前処理の終了と凍結保存の開始の間の時間は、特定の態様においてかなり異なることは、当業者によって理解される。所与のプロトコールにより、この時間枠内において、生物学的材料の状態は変化する可能性がある。充分に長い場合には、この時間内に細胞の物理的回復が可能になり、逆に、細胞内過程が始まり、例えばショックタンパク質の合成及び蓄積を生じることができるであろう。種々の環境において、この効果が有益であるか或いは有害であるかを証明することができる；したがって、これに関して実験によりプロトコールの最適化を行う必要があるであろう。
【００５６】
図１は、かなりの圧力（例えば、９０ＭＰａで１秒、又は３０ＭＰａで２時間）の下で、胚がその形態学上の外観的変化を生じることなく生存し得ることを示している。適用した圧力の大きさ及び時間により胚は圧縮した。理論により本発明の範囲を限定するものではないが、圧力は胚盤胞から水を搾り出す直接の原因になっていないことが想定される。引用した文献によると、胚の圧縮は、種々のタンパク質（コールドショックタンパク質、ＣＳＰ）の圧力誘発生産、タンパク質構造及び代謝過程の可逆的変化の結果によるものであった。圧縮された胚（例えば、９０ＭＰａで３０ｍｉｎ又は３０ＭＰａで３ｈにより処理した胚）は、インビトロの培養の４〜５時間後に正常な形態を取り戻し、対照と同様な発育を再開できた。
【００５７】
理論により本発明の範囲を限定するものではないが、圧縮が最適の圧力前処理の条件ではないことを、ＩＶＦウシ胚を使用した試験により示すことができる。圧縮は、圧力により変化した膜透過性、細胞膜を介する拡散及び能動輸送の変化の結果であり得る。この形態の可逆的変化は、胚が「亜致死的」影響を受けたことを示す形態的「兆候」と考えることができる。文献によると、「亜致死的」ショックは、いわゆる「ショックタンパク質」の生産を誘発する影響であり、このショックタンパク質は凍結保存の成功率を改善する役割を担っていると考えられている。
【００５８】
しかし、一部の応用において、圧縮された胚は凍結保存のために好んで選択されることがある。加圧後、拡大した胚盤胞は圧縮された形となり、そして３〜４時間はこの形に止まり、その後再び拡大する。この現象に基づいて、凍結操作の前に圧力で処理された胚を選択することができる。圧力前処理による胚の形態的変化及び有益な効果は、タンパク質構造の変化及び／又は特性及び／又は種々の圧力誘発タンパク質の生産促進による可能性があるので、これらのタンパク質の検査は、凍結保存の前に生物学的材料に適用した高い静水圧の指標となりうる。
【００５９】
圧力前処理は、凍結保存後に胚が正常な発育を再開する時間ともある程度相関する。高い静水圧を使用することにより再生に必要な時間をかなり短くすることができるので、この過程を観察することにより前処理の性質を示すことができる。
【００６０】
圧力が高いほど、胚の生存時間は短い。一定の大きさと時間を超えた圧力の影響は不可逆的な変化を生じる：胚はインビトロ培養の２時間後に分解するか又は減圧後に既に分解している（例えば、９０ＭＰａで２時間又は３０ＭＰａで５時間により処理した胚）。当業者は使用した特別な生物学的材料に関して定型的実験によってこの限界圧力及び限界時間を決定できるはずである。
【００６１】
加圧した胚の生存性は徐々に減圧することにより高めることができることは理解されるであろう。ゆっくりと回復させられた場合には、加圧された胚の生存性は著しく増加することが試験により示された。９０ＭＰａにおいて６０分では全ての胚に対して致死的であったが、１２０分をかけて徐々に減圧された場合には８０％が生存した。減圧時間も本発明の特徴であり、それは特別な応用の観点から当業者により決定される。特に、選択された圧力の下に保たれたマウス胚は、１秒から４時間の間、特に１秒、５秒、１０秒、２０秒、３０秒、４０秒、５０秒、１分、２分、３分、４分、５分、６分、８分、１０分、１５分、２０分、３０分、４０分、５０分、６０分、７０分、８０分、９０分、１２０分、１５０分、１８０分、２１０分又は２４０分で減圧される。圧力の適用と同様に、予め定めた圧力−時間プロフィールに従って減圧を行うことができるであろう。
【００６２】
再度、理論により限定するものではないが、圧力の下でかなりの量のＣＯ２が発生することはこの特徴の説明となる可能性がある（Ａｂｅ  ａｎｄ  Ｈｏｒｉｋｏｓｈｉ，１９９５）。ＣＯ２の水和とイオン化（ＨＣＯ３−及びＨ＋）の反応は適用した圧力の大きさに依存して体積の減少（＃０．２６ｍｌ／ｍｏｌ）を伴うので、この反応は上昇した圧力により促進される（Ｐａｌｏｕ  ｅｔ  ａｌ．１９９７，Ｗｅｌｃｈ  ｅｔ  ａｌ．１９９３）。細胞内で生産された二酸化炭素は直ちに溶解し、次いで解離してＨＣＯ３−及びＨ＋を生じるので、細胞内ｐＨも低下する（Ａｂｅ  ａｎｄ  Ｈｏｒｉｋｏｓｈｉ  １９９５，１９９７，１９９８，Ａｂｅ  ｅｔ  ａｌ．１９９９）。上昇した圧力により維持される平衡は大気圧においては胚に対して致死的であると考えることができる。圧力の瞬間的な低下は、細胞質内で水和及びイオン化した形からＣＯ２の急激な放出を生じるので、胚の死亡を直ちに生じると、仮説することもできる。形質膜タンパク質（Ｈ＋−ＡＴＰａｓｅ）は上昇した静水圧により可逆的に不活性化され
2007505100.tif 000002
、一定の減圧時間の条件において、再び機能し始め（受動的拡散と共に）平衡を徐々に生理的状態の方向に移動させる。
【００６３】
高静水圧（ＨＨＰ）は、既にＮａｋａｈａｓｈｉ  ｅｔ  ａｌ．（２０００，２００１）により、冷凍障害を減少させるために移植用のラット肝臓の零度以下の保存に使用されている。この方法は培地の凝固点を実質的に低下させるためにＨＨＰを使用し、凍結保存の負の影響を受けずに零度以下の温度で生物学的材料を保存する。マウス胚の場合におけるこの凍結保存の方法を調べるために、０℃において胚に圧をかける試験が計画された。胚の生存率は有意に減少した。胚は室温（ＲＴ）においては３０ＭＰａで４５分間において９０％の平均生存率であったが、０℃における同じ衝撃は胚を全く生存させなかった。０℃において１０分又は５分後に、６０ＭＰａ及び９０ＭＰａのいずれにおいても、胚生存率は０％であった。これに対して、室温において、いずれの場合にも生存率は約９０％であった。０℃において胚に圧力をかけ、そして徐々に減圧した。低温において徐々に減圧することは、胚生存性に対して有益な効果をもたらさなかった。これらの結果に基づくと、圧力及び低温は共に胚に対して致死性であることが示されたので、これらの現象の利用はこの形態においては適用できない。
【００６４】
本発明は、静水圧を適用することにより凍結保存マウス胚盤胞の解凍後の生存性を改善することに関係する。これは、圧力を加えた胚を、いずれかの凍結保存プロトコールにより処理し、解凍した後に、培地及び／又は偽妊娠レシピエントに移すことにより、評価することができる。インビトロにおける発育、着床及びさらに子宮内発育及び健康な子供の出産は、その生物学的及び遺伝子的能力の明らかな証明である。
【００６５】
前記で詳細に開示したように、凍結保存した拡大したマウス胚盤胞の生存率は、凍結操作の前の一定の圧力処理により改善することができる。６０ＭＰａで３０分間の圧力衝撃が胚盤胞に適用され、それにより約８０％から９０％の胚は圧縮され、生存性は非処理対照と相違はなかった。インビトロ評価の結果によると、適用した圧力処理は凍結後の胚のインビトロ発育を著しく改善する。インビトロ試験は、静水圧適用は処理された胚盤胞の生存率を改善するのみならず、本来の状態に回復するために胚が必要とする回復時間も改善することを示した。われわれの代表的試験において、６時間後圧力処理した胚盤胞の９８％は形態的に（直径、構造的完全さ、及び一般的形態）対照胚と正確に一致し、胚盤胞の９５％は対照と共に２０時間以内に完全に孵化した。圧力処理をせずに凍結した胚は、解凍後２０時間にやっと再拡大したのみであった。再拡大した胚盤胞の率は圧力処理を受けたものに対して有意に劣った（４６％ｖｓ．９８％）。さらに、この群では孵化した胚はなかった。したがって、本発明の方法は高い生存能力のあるマウス胚を得るのに適していることは明らかである。
【実施例】
【００６６】
［実施例１〜４で用いる材料と方法］
実験動物及び胚の作製
【００６７】
ＣＢ６Ｆ１（Ｃｈａｒｌｅｓ  Ｒｉｖｅｒ，Ｇｅｒｍａｎｙ）マウスを標準的条件下（２２＋／−２℃；１２時間暗／１２時間明；水と餌は自由摂取）で飼育した。
【００６８】
１０  ＩＵのＰＭＳＧ（Ｓｉｇｍａ，ＵＳＡ）及びその４６時間後に１０  ＩＵのｈＣＧ（Ｓｉｇｍａ，ＵＳＡ）を雌に腹腔内注射して過排卵させた。ｈＣＧ投与の６時間後に、雌を繁殖力のある雄と一雌一雄で交配した。卵管にＦｅｒｔｉＣｕｌｔ  Ｆｌｕｓｈｉｎｇ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＦｅｒｔｉＰｒｏ  Ｎ．Ｖ．，Ｂｅｌｇｉｕｍ）を流して１から２細胞期の胚（０日目及び１日目）を採取した。５％ＣＯ２を最大湿度の空気中、３７℃の恒温器中で胚を培養した。一細胞から緊密化した桑実胚段階の間、胚を鉱物油、Ｏｖｏｉｌ（Ｖｉｔｒｏｌｉｆｅ，Ｓｗｅｄｅｎ）の下のＧ１．２培地（Ｖｉｔｒｏｌｉｆｅ，Ｓｗｅｄｅｎ）中で培養した。次いで、胚を移し、拡大した胚盤胞になるまでＯｖｏｉｌ下のＧ２．２（Ｖｉｔｒｏｌｉｆｅ，Ｓｗｅｄｅｎ）中で培養した。
【００６９】
加圧
【００７０】
胚盤胞をＭ２（Ｓｉｇｍａ，ＵＳＡ）と共に気泡を入れずにプラスチックストロー（７〜９個の胚／ストロー）に入れ、ストローをヒートシールした。ストローを、加圧媒体として水を充たした加圧チャンバーに入れた。１から１５０ＭＰａの範囲で正確に圧力を調節できる特製の加圧装置は、内径２ｃｍのステンレススチール製であり、圧力ゲージが装着されていた。手動でスクリューを調節して、加圧チャンバーの中にピストンを押し込むことにより静水圧を発生させた。必要とする圧力に達するまでに２０秒から５分間を要した（それぞれ１０ＭＰａから１５０ＭＰａ）；圧力解放の所要時間は３秒であった。緩徐な減圧の影響を調べる実験では、解放時間は３０〜２１０分の間であった。０℃において行った実験では、加圧チャンバーをＢｉｏ−ｃｏｏｌ（ＦＴＳ−Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＮＹ，ＵＳＡ）の冷却浴中に浸した（ｓｉｍｍｅｒｅｄ）。
【００７１】
予め加圧を行った凍結保存
【００７２】
胚を無作為に３グループに配分した。グループＩの胚盤胞は、Ｎｏｗｓｈａｒｉ  ａｎｄ  Ｂｒｅｍ（１９９８）にしたがって７Ｍエチレングリコール（ＥＧ）を含有するガラス化溶液中で、下記のように凍結保存した。グループＩＩの胚は、６０ＭＰａ加圧３０分間で処理した後、同様に凍結した。グループＩＩＩは無処置対照とした。解凍後、胚をインビトロで２４時間培養した。
【００７３】
凍結保存
【００７４】
Ｍ２（Ｓｉｇｍａ，ＵＳＡ）中１．５Ｍエチレングリコール（ＥＧ）（Ｓｉｇｍａ，ＵＳＡ）及び０．２５Ｍスクロースを含む溶液に１０％ウシ胎児血清（ＦＣＳ）（Ｓｉｇｍａ，ＵＳＡ）を添加した溶液中で胚を５分間平衡させ、次いで胚を０．２５ｍｌプラスチックストローに予め充填したガラス化溶液（１０％ＦＣＳ添加Ｍ２中７Ｍ  ＥＧ，０．５Ｍスクロース）中に移した（７〜９個の胚／ストロー）。最後に、ストローをヒートシールした。ガラス化溶液に暴露して１分後、ストローをゆっくりと液体窒素に浸した。ストローを３０℃の水に３０秒間移して解凍し、次いで胚を回収し、再水化培地（１０％ＦＣＳ添加Ｍ２中０．５Ｍスクロース）中に５分間置いた。次いで胚を、上記のように、Ｇ２．２培地中で培養した（Ｎｏｗｓｈａｒｉ  ａｎｄ  Ｂｒｅｍ，１９９８）。
【００７５】
胚の移植
【００７６】
胚を上記のようにＧ２．２中で２時間培養した。次いで、各実験グループ毎に「死亡」及び「生存」に分け、擬妊娠３日目のレシピエントに別々に移植した（動物当たり７〜１２個の胚）。非処理の胚盤胞は、対照として移植した。
【００７７】
評価及び統計解析
【００７８】
圧力解放又は解凍の直後並びに２，３，４，６，１２，２０及び２４時間後に胚の質を検査した。胚の生存は、形態的外観によって評価した：割球の完全さ、胞胚腔の再拡大、透明帯からの孵化は生存の徴候であった。非処理胚盤胞を対照として使用した。
【００７９】
インビボ評価のために、加圧した胚をＧ２．２中で上記のように２時間培養した。次いで、動物当たり７〜１２個の胚を擬妊娠３日目のレシピエントに移植した。非処理胚を対照として移植した。健康な子供の出産を胚のインビボにおける生存の証明とした。
【００８０】
生存率は、カイ二乗検定により対照と比較した。
【００８１】
［実施例１］
室温における種々の圧力におけるマウス胚の生存率
本実験では、室温において１秒から３００分までの種々の時間、１０から１５０ＭＰａ（１０ＭＰａ間隔で）の種々の静水圧に、胚を暴露した。
【００８２】
一定の圧力及び時間を超えた処理は可逆的な形態変化を生じた（図１）。拡大した胚盤胞は透明帯の内側に圧縮され、胞胚腔は消失し、割球の大きさは減少したが、その構造上の状態は不変であった。インビトロ培養の４〜５時間後、これらの胚盤胞は再拡大し、２４時間で透明帯から孵化した（ａ）。より少ない衝撃を受けた胚は形態的変化を示さず、インビトロ培養の２４時間以内に孵化した（ｂ）が、一方より大きな衝撃を受けた胚は圧縮された状態から再拡大せず、２時間以内に分解したか、又は減圧後に既に分解していた（ｃ）（図１）。
【００８３】
インビボ評価のために、加圧した胚は、減圧後のインビトロ培養の２時間後に、「生存」（ａ＋ｂ）及び「死亡」（ｃ）を判定し、レシピエントに別々に移植した。移植した「ａ」及び「ｂ」の胚１７０個のうち健康な１４５匹（８５％）の新生児が生まれたが、４９個の「ｃ」胚からの新生児はなかった（０％）。
【００８４】
孵化率（インビトロ）及び出生率（インビボ）について、非加圧対照と加圧による圧縮胚「ａ」及び非圧縮胚「ｂ」との間に有意差はなかった（ｐ＜０．０５）。
【００８５】
圧力が高くなるほど、胚の生存する時間は短くなるが、胚はかなりの圧力の下で生存率を変化させずに生存できることをこの結果は示している（図１）。インビトロ培養において２時間以内に分解しない胚は、非処理対照と同じインビトロ及びインビボ生存率を示す。
【００８６】
［実施例２］
種々の減圧プロフィールを使用した後のマウス胚の生存率
本実験において、われわれは、加圧した胚の生存率を緩徐な減圧により改善することができるか否かを検討した。
【００８７】
拡大した胚盤胞を９０ＭＰａに３０，６０及び１２０分間維持し（この条件において、室温における瞬間的減圧の生存率はそれぞれ５０％，０％及び０％であった）、次いで圧力を３０，６０，９０，１２０及び１５０分間に９ステップで徐々に解放した。その結果は、徐々に減圧することにより生存率は有意に改善することができること、その最適範囲は胚が圧力下に存在した時間に依存することを示している。最適の復帰時間は、胚が圧力下に存在した時間が長くなるほど長くなった。減圧によって達成された最大生存率は、加圧時間の増加にしたがって減少した（図２）。
【００８８】
インビトロ評価における「生存」胚５４個及び「死亡」胚３５個をレシピエント９匹に移植した。１８日目の検査で、「生存」胚５４個のうち４７個が着床した（８７％）が、「死亡」胚３５個のうち着床した胚はなかった。「生存」グループの着床率は対照の率と差がなかった（ｐ＜０．０５）。
【００８９】
［実施例３］
低温における種々の圧力によるマウス胚の生存率
この実験において、加圧した胚の生存能力に関する温度の役割を検討した。
【００９０】
低温（０℃）において、３０，６０及び９０ＭＰａの圧力を１秒、５，１０，１５，３０及び６０分間胚に適用した。非加圧胚は、０℃においてその生存率に有意な変化なしに、かなりの時間生存することができるが、同時に３０，６０，９０ＭＰａで圧力処理した場合には、４５，１０，５分間後にそれぞれ１００％の胚致死率であった。室温で処理した群に比較して、低温において加圧した胚において有意に低下した生存率が観察された（ｐ＜０．０１）（図３ａ，３ｂ）。
【００９１】
インビトロ評価における「生存」胚４０個及び「死亡」胚２８個をレシピエント７匹に移植し、１８日目の検査において「生存」胚４０個のうち３４個（８５％）が着床し、「死亡」胚２８個では着床したものはなかった。「生存」グループの着床率は対照の率と差がなかった（ｐ＜０．０５）。
【００９２】
０℃において９０ＭＰａの圧力下に３０分維持された胚も徐々に減圧した。われわれが使用した回収時間のいずれにおいても（３０，６０，９０，１２０，１５０，１８０分）、生存した胚はなかった。各群８から１２個の胚を使用し、実験を３回繰り返した。
【００９３】
［実施例４］
加圧処理、凍結及び解凍後のマウス胚の生存率
本実験において、われわれは、凍結操作の前に加圧処理を行うことにより拡大したマウス胚盤胞の凍結保存後の生存率を改善できるか否かを探求した。結果を表１に示す。
【００９４】
表１．予め加圧処理して／しないで凍結保存した胚の解凍後の生存性
【表１】
2007505100.tif 000003
異なる上付き文字のついた値は相互に有意差がある（ｐ＜０．０１）。
【００９５】
加圧グループと非加圧グループの生存率間に有意差が観察された（ｐ＜０．０１）。凍結保存前に加圧処理を受けた胚において、再拡大はより早く（４〜６時間対２０時間）そして生存率はより高かった（９８％対４６％）（表１）。対照グループと加圧処理グループの間に生存率及び孵化率の有意差はなかった。
【００９６】
［実施例５］
加圧処理、凍結及び解凍後のウシ胚の生存性
（材料と方法）
【００９７】
卵母細胞採取及びインビトロ成熟（ＩＶＭ）
【００９８】
化学薬品は、特記しない限り、ＥＭＢＲＡＰＡ（Ｂｒａｓｉｌｉａ，Ｂｒａｚｉｌ）から購入した。卵巣を屠殺場から集め、生理食塩水の中に３５〜３７℃に保った。１８Ｇ針を付けた２０ｍｌシリンジを使用して２〜１０ｍｍの小胞を吸引して卵丘卵母細胞複合体（Ｃｕｍｕｌｕｓ−ｏｃｃｙｔｅ  ｃａｐｋｘｓ）（ＣＯＣ）を採取し、５０ｍｌ遠心分離用試験管に集めた。１０分間沈降後ＣＯＣを吸い取り、ウシ胎児血清（ＦＣＳ）、ペニシリン、ストレプトマイシン及びヘパリン（Ｓｉｇｍａ，Ｈ３１４９）を添加したＴＣＭ−１９９Ｈａｎｋ’ｓ（Ｇｉｂｃｏ）の入ったペトリ皿に移した。採取後、ＣＯＣを熟成培地（ＦＣＳ，ＬＨ（Ｓｉｇｍａ），ＦＳＨ（Ｓｇｍａ）、Ｌ−グルタミン、ペニシリン及びストレプトマイシンを添加したＴＣＭ−１９９  Ｅａｒｌ’ｓ）中で３回洗い、２ｍｌの熟成培地に移し（ペトリ皿当たり約１００個のＣＯＣ）、鉱物油で覆った。５％ＣＯ２及び最高湿度、３８℃で２２時間卵母細胞を成熟させた。
【００９９】
精子の調製、試験管内受精（ＩＶＦ）及びインビトロ培養（ＩＶＣ）
【０１００】
ＩＶＦのために、ＣＯＣを受精培地で３回洗った後、４滴の２００μｌの受精培地（ＢＳＡ、ペニシリン−Ｓｉｇｍａ  Ｐ４８７５，ヒポタウリン−Ｓｉｇｍａ  Ｈ１３８４，エピネフリン−Ｓｉｇｍａ  Ｅ４２５０及びヘパリン−Ｓｉｇｍａ  Ｈ３１４９を添加したＴＡＬＰ）を入れたペトリ皿に２０〜２５個のグループとして移し、鉱物油で覆った。自発運動能を有する精子は、Ｐｅｒｃｏｌｌ不連続密度勾配（２ｍｌの９０％Ｐｅｒｃｏｌｌ上２ｍｌの４５％Ｐｅｒｃｏｌｌ）上、室温において７００ｇ２０分間凍結解凍精子（Ｇｅｎｔｏｎ，Ｃｕｉａｂａ，Ｂｒａｚｉｌ）を遠心分離して得た。９０％フラクションの底に集められた精子のペレットを、ＨＥＰＥＳ−緩衝Ｔｙｒｏｄｅ液で洗い、７００ｇ５分間遠心分離してペレットにした。精子数を血球計数装置で測定し、適当な容量のＴＡＬＰで希釈して、精子濃度を２ｘ１０６／ｍｌとした：この懸濁の２００μｌを各受精滴に加えた。プレートを１９時間、５％ＣＯ２を加えた加湿した空気中、３９℃でインキュベートした。次いで推定接合体を鉱物油下のＳＯＦ滴中で５％ＣＯ２の加湿空気中において、３９℃で培養した。
【０１０１】
加圧
【０１０２】
拡大した胚盤胞を胚保持媒体（Ｅｍｃａｒｅ  Ｈｏｌｄｉｎｇ，Ｅｍｃａｒｅ，Ｎｅｗ  Ｚｅａｌｎｄ）と共に、気泡が入らないようにして０．２５ｍｌプラスチックストローに入れ（７〜９個の胚／ストロー）、次いでＰＶＣでストローをシールした。圧力媒体として水を充たした加圧チャンバーにストローを入れた。上記のように、室温において、６０から９０ＭＰａ（１０ＭＰａ間隔で）の種々の静水圧に種々の時間（１５，３０，４５，５０，６０，９０，１００分間）胚を暴露した。
【０１０３】
予め加圧した凍結保存
【０１０４】
胚を無作為に３グループに分配した。グループＩの胚盤胞は、１．５Ｍエチレングリコール（ＥＧ）を含有する凍結溶液中で、下記のように凍結保存した。グループＩＩの胚は８０ＭＰａの圧力で５０分間処理して同様に凍結した。凍結開始と加圧処理の間の時間は４〜５分であった。グループＩＩＩは非処理対照とした。解凍後、胚を２４時間インビトロで培養した。
【０１０５】
凍結保存
【０１０６】
０．２５ｍｌプラスチックストローに予め充填した１．５Ｍエチレングリコールからなる凍結溶液（Ｅｍｃａｒｅ，Ｎｅｗ  Ｚｅａｌｎｄ）中で８分間胚盤胞を平衡させた（７〜９個の胚／ストロー）。ストローをＰＶＣでシールした。ストローを、−５．２℃に予め冷却したプログラム可能なフリーザー（Ｂｉｏ−ｃｏｏｌ，ＦＴＳ−Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＵＳＡ，ＮＹ）に入れた。３分後、植氷（ｓｅｅｄｉｎｇ）を誘導した。その１０分後ストローを−０．５℃／ｍｉｎで−３２℃に冷却し、次いでそれを液体窒素中に浸漬した。ストローを空気中で１０秒間ゆっくりと動かし、次いでストロー内の氷が解けるまで３５℃の水中にストローをおいて解凍した。胚盤胞をストローから回収し、３回ＳＯＦで洗い、鉱物油下のＳＯＦに移し、２４時間インキュベーターに戻した。
【０１０７】
評価及び統計解析
【０１０８】
胚の質は、圧力の解放又は解凍の直後並びにその２，３，４，６，１２及び２４時間後に検査した。胚の生存は、形態的外観及びインビトロ発育の継続により評価した；胚盤胞の完全さ、胞胚腔の再拡大、及び透明帯からの孵化は生存の徴候であった。非処理胚盤胞を対照として使用した。
【０１０９】
生存率をカイ二乗検定により対照と比較した。確率値ｐ＜０．０５を統計的に有意とした。
【０１１０】
（結果）
【０１１１】
種々の加圧処理後の胚の生存性及び継続成長
【０１１２】
最初の実験のセットにおいて、胚は種々の静水圧に種々の時間暴露された。結果を下記表２に示す。
【０１１３】
表２．予め加圧処理して／せずに凍結保存したウシ胚の凍結解凍後の生存性
【表２】
2007505100.tif 000004
Ｉ−ＩＩ：完全に又は２／３再拡大した第一又は第二のクラスの胚；ＩＩＩ−ＩＶ：第三クラス又は死亡の胚
【０１１４】
加圧前処理を行って或いは行わずにガラス化した胚盤胞の継続的インビトロ発育
【０１１５】
二番目の試験において、われわれは、インビトロで成熟し／受精し／培養され拡大した後凍結保存されたウシ胚盤胞の継続的インビトロ発育が、凍結操作前に加圧処理することにより改善されるか否かを探求した。８〜１２個の胚を各実験グループに使用し、実験を６回繰り返した。結果を表３に示す。
【０１１６】
加圧グループと非加圧グループの間に、インビトロ生存率の有意差が認められた（ｐ＜０．０１）。凍結保存前に加圧処理を受けた胚において、再拡大は早く（１〜２時間対４〜６時間）そして生存率は高かった（８１％対４１％）（表３）。生存率及び孵化率について、対照と加圧処理グループの間に有意差はなかった。
【０１１７】
表３．加圧前処理をして／せずに凍結、解凍をした後のＩＶＭＦＣウシ胚盤胞のインビトロ発育の継続
【表３】
2007505100.tif 000005
Ｉ−ＩＩ：完全に又は２／３再拡大した第一又は第二のクラスの胚；ＩＶ：死亡の胚
【０１１８】
（結論）
【０１１９】
われわれの結果は、凍結に先立って加圧処理を施すことにより、ＩＶＭＦＣ（卵母細胞のインビトロ成熟、インビトロ受精、胚のインビトロ培養）ウシ胚のインビトロ発育の速度、生存率及び孵化率を改善できることを示した。この試験は、圧力の刺激が凍結保存の成功に大いに貢献できることを示すさらなる証拠を提供する。上記実験に示された方法は、全範囲の生物学的材料、特に種々の起源の胚、例えばウマ、ヒツジ、ブタ又はヒトを含む霊長類に容易に適用できることは理解される。
【０１２０】
［実施例６］
加圧処理、凍結及び解凍後の精子の生存性
本実験の最初の部分において、新鮮ウシ精液中の自発運動能力のある細胞の比率にＨＨＰがいかに影響するかを記述することを意図した。実験の第二の部分では、われわれは、作成された圧力−時間−精子運動能力チャートから４パラメーター対を選択し、選択した圧−時間パラメーターで前処理した凍結ウシ精液の解凍後運動能力を加圧前処理を行わずに凍結した精液と比較した。
【０１２１】
精液の検体はＫｌｅｓｓｈｅｉｍ，Ａｕｓｔｒｉａの人工授精センターで入手した。処方にしたがって、検体をＡｎｄｒｏＭｅｄ  ｅｘｔｅｎｄｅｒ（ＭｉｎｉＴｕｂ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で希釈して８ｘ１０７／ｍｌの精子濃度にした。希釈した精子を０．２５ｍｌストローに充填し、室温に保った。加圧処理の前に、精子検体の入ったストローを切って二分した。半分の一方はヒートシールして、特定の圧力／時間パラメーターで加圧し、他の一方は加圧後の運動能力を比較するために使用した。各圧力／時間パラメーターにおける実験は７回繰り返し、二人のアシスタントにより別々に光学顕微鏡検査により運動能の変化を個別に評価した。処理グループには次のようなパラメーターを適用した：１０ＭＰａで３０，６０，９０及び１２０分間；３０ＭＰａで３０，６０，９０，１２０及び５１０分間；５０ＭＰａで３０，６０及び９０分間；７０ＭＰａで３０，６０及び９０分間；９０ＭＰａで３０，６０，９０，１２０及び５１０分間。加圧装置は特注のステンレススチール製であり、圧力媒体として水を使用する加圧チャンバー、当局承認圧力ゲージからなっていた。必要な圧力に達するまでの時間は１から５分であり、減圧には２から３秒を要した。
【０１２２】
対照検体の平均運動能力は７５から９０％の範囲であり、一方加圧検体の平均運動能力は５５％（９０ＭＰａ／１２０分間）から８４％（１０ＭＰａ／３０分間）の範囲であった。３０ＭＰａ／５１０分間及び９０ＭＰａ／５１０分間のグループの運動能は他の加圧グループに比較して有意に低下した（それぞれ２７％及び３３％；ｐ＜０．０５）。図４参照。
【０１２３】
この試験の第二部において、精液検体は二頭の雄牛から得た（１頭は非常に低い凍結能の経歴（ａ  ｈｉｓｔｏｒｙ  ｏｆ  ｖｅｒｙ  ｐｏｏｒ  ｆｒｅｅｚａｂｉｌｉｔｙ）があった）。検体は上記のように希釈し、４つの処理グループに分けた。処理グループは次のように分けた：半分はヒートシールし、そして、凍結の前にＩ：９０ＭＰａ／３０分間；ＩＩ：９０ＭＰａ／９０分間；ＩＩＩ：３０ＭＰａ／３０分間；ＩＶ：３０ＭＰａ／９０分間の条件で加圧し、他の半分は前処理せずに同じ凍結プロトコールで凍結した（５℃で６０分間平衡し、次いで−１１０℃に１０分間、次いで液体窒素に浸漬した）。解凍は３５℃の水浴中３０秒で行った。各グループについて、加圧を行った場合と行わなかった場合の最初の運動能力についても検査した。各試験は８回繰り返した。
【０１２４】
両雄牛の精子の最初の平均運動能力は６５から８０％であったが、加圧後には４５から７５％に減少した。両雄牛の精子の解凍後の平均運動能力は、予め加圧処理せずに凍結した検体に比較して予め加圧処理をして凍結した検体において有意に優れていた（ｐ＜０．００１）（雄牛Ｉ：加圧処理なし２〜３％対加圧処理１７〜３３％−図５；雄牛ＩＩ：加圧処理なし０％対加圧前処理２１〜３５％−図６）。使用したパラメーターの中では、３０ＭＰａ／９０分間が有意に優れることが立証された（３３及び３５％，ｐ＜０．０５）。
【０１２５】
本試験は、われわれの実験において凍結保存した雄牛の精子の解凍後運動能力に対する加圧前処理の有益な影響を明らかに示している。この試験は、圧力の刺激が凍結保存の成功に大いに貢献できることを示す更なる証拠を提供する。上記実験に示された方法は、全範囲の生物学的材料、特に種々の起源の精子、例えばウマ、ヤギ、ブタ又はヒトを含む霊長類に容易に適用できることは理解される。
【産業上の利用可能性】
【０１２６】
産業への応用
上記の実施例に示された結果は、凍結保存の前に適用した加圧処理が、胚のインビトロ成長速度、生存率及び孵化率を明らかに改善することを示している。したがって、そのような努力の全ての最終目的、即ちより多くの子孫の発生を達成することができる。また、ウシ胚及び雄牛精子に関して示したデータは、生物学的材料の凍結保存に関する発明概念の幅広い応用を示している。本発明による方法の応用は、他の哺乳類動物種（ヒトも除外しない）、並びに卵母細胞、胚性幹細胞、組織などを含めたあらゆる種類の胚の凍結保存及び胚−操作の成功率の改善に有用である。本方法は、生物学的材料の凍結保存の適用が見られるほかの分野にも幅広く適用可能である。
【０１２７】
引用文献
2007505100.tif 000006
2007505100.tif 000007
2007505100.tif 000008
2007505100.tif 000009
【図面の簡単な説明】
【０１２８】
【図１】図１は、室温において、１０ＭＰａから１５０ＭＰａの間（１０ＭＰａ間隔）の種々の圧力における種々の時間（１秒、５分、１５分及び３０分から３００分まで３０分間隔）の胚の生存率を示す。各群１４〜１６個の胚が使用された；各実験は３回繰り返した。「ａ」及び「ｂ」と表示した部分の中の胚の生存率は未処理の対照と差がなかった（ｐ＜０．０５）。
【図２】図２は、９０ＭＰａで３０、６０、１２０分間加圧し、そして３０〜１８０分間で減圧した胚の生存率を示す（３０、６０及び１２０分における瞬間減圧による生存率は、それぞれ５０％、０％、０％であった）。種々の上付きの文字が付けられた生存率は互いに有意差があった（ｐ＜０．０５）。
【図３ａ】図３ａは、室温において、３０、６０及び９０ＭＰａで１秒から４５分間加圧された胚の生存性を示す。
【図３ｂ】図３ｂは、０℃において、３０、６０及び９０ＭＰａで１秒から４５分間加圧された胚の生存性を示す。各群１２〜１５個の胚が使用された；各実験は３回反復した。室温において加圧された群と０℃において加圧された群の間に有意差が認められた（ｐ＜０．０１）。
【図４】図４は、精子運動能の平均値（加圧及び対照）を示す。
【図５】図５は、雄牛Ｉの精子の加圧及び凍結−解凍後の平均運動能を示す。
【図６】図６は、雄牛ＩＩの精子の加圧及び凍結−解凍後の平均運動能を示す。
【図７】図７は、種々の圧力における水の凝固点を示す。
【図８】図８は、本発明による加圧装置の一例の断面図を示す。
【図８】
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【図１】
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【図２】
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【図３ａ】
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【図３ｂ】
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【図４】
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【図５】
2007505100.tif 000016
【図６】
2007505100.tif 000017
【図７】
2007505100.tif 000018
【手続補正書】
【提出日】平成17年5月31日(2005.5.31)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０００３
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０００３】
凍結保存の操作は生物学的材料にとって有害であるので、上記の基本的プロトコールを改良するためにいくつかの方法が試みられてきた。超急速冷却及び加温速度により氷を形成させない方法、又は−８０℃に冷却する間に平衡凝固点を徐々に低下することによる方法は、低温生物学のあらゆる分野に対して適する解決にはならなかった。凍結後の生存率改善の試みがなされた：凍結保護剤の高濃度水溶液が極めて低い温度に過冷却するガラス化において、細胞内ガラス化を可能にする（Ｒａｌｌ及びＦａｈｙ，１９８５）。Ｆａｈｙら（１９８４）は、ガラス化を促進する可能性がある他の因子としてかなりの高い静水圧を使用する可能性について言及しているが、生殖生物学において実用的な成果は殆ど得られなかったと考えた。他の研究は、相互に結合せずに水溶液の凍結温度を低下させ、膜のイオンチャネルを阻害するので、冷却の際にある程度防御に寄与する抗凍結タンパク質（ＡＦＰ）の使用を報告している（Ｂａｇｕｉｓｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）。記述されているいずれの方法においても、凍結保護剤の毒作用及び浸透圧変化の有害な結果は無視できない。
【手続補正２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０００５
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０００５】
１９１２年以来、水は、種々の温度において静水圧を受けたときに異なる相へ移行することが知られている（Ｂｒｉｄｇｍａｎ，１９１１）（図７）。一定の圧力を溶液に適用することにより、溶液を零度以下の低温においても凍結させずに維持することができる（Ｂｒｉｄｇｅｍａｎ，１９７０）。既に、Ｔａｋａｈａｓｈｉら（２０００，２００１）により、高い静水圧（ＨＨＰ）が低温障害を減少させる目的で移植用のラット肝臓の零度以下の保存に使用された。この方法は、培地の氷点を実質的に低下させるために、ＨＨＰを使用して、低温保存の負の影響を伴わずに零度以下の温度において生物学的材料を保存する。この方法は、後記実施例２及び３に示されるように、本発明者らによりマウス胚の保存において信頼できないことが発見された。
【手続補正３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１２７
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１２７】
2007505100.tif 000019
2007505100.tif 000020
2007505100.tif 000021
2007505100.tif 000022
【手続補正４】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）任意に予め定めた圧力−時間プロフィールに従って生（ｖｉａｂｌｅ）生物学的材料に静水圧を適用し、
（ｂ）該生（ｖｉａｂｌｅ）生物学的材料を、予め定めた時間静水圧に保持し、
（ｃ）静水圧を解放し、
（ｄ）それに適用可能ないずれかのプロトコールを使用して該生（ｖｉａｂｌｅ）生物学的材料を凍結する凍結保存生（ｖｉａｂｌｅ）生物学的材料の解凍後生存性を改善する方法。
【請求項２】
前記静水圧が、１から２００ＭＰａ、好ましくは１０から１００ＭＰａ、より好ましくは２０から７５ＭＰａ、そして最も好ましくは３０から６０ＭＰａの範囲にある、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記静水圧が、１秒と３００分の間、好ましくは１秒と１５０分の間、より好ましくは１秒と９０分の間、最も好ましくは１秒と６０分の間の時間適用される、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記圧力が、１秒と４時間の間の時間をかけて徐々に又は即座に解放される請求項１から３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
前記生（ｖｉａｂｌｅ）生物学的材料が脊椎動物の卵母細胞、精子、接合子、桑実胚、胚盤胞、幹細胞、細胞又は組織からなる群から選択される請求項１から４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
前記脊椎動物が、魚類、鳥類又は哺乳類、好ましくはウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、ブタその他の家畜、ペット、ヒトを含む霊長類である請求項１から５のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
前記請求項１から６のいずれかに記載の凍結保存のための加圧装置の使用。
【請求項８】
前記加圧装置が生物学的材料を入れるのに適した加圧チャンバー及び１から２００ＭＰａ、好ましくは１０から１００ＭＰａ、より好ましくは２０から７５ＭＰａ、最も好ましくは３０から６０ＭＰａの範囲に調節された圧力を供給する手段を備える、請求項７に記載の使用。
【請求項９】
前記加圧装置が、１秒と３００分の間、好ましくは１秒と１５０分の間、より好ましいくは１秒と９０分の間、最も好ましくは１秒と６０分の間の時間、前記圧力を維持する手段を備える、請求項７又は８に記載の使用。
【請求項１０】
１秒と４時間の間の時間に亘って又は即座に加圧チャンバーの減圧を調節するための制御システムを備える、請求項１５７から９のいずれかに記載の使用。
【請求項１１】
静水圧が前記加圧装置内で達成される、請求項７から１０のいずれかに記載の使用。
【請求項１２】
前記生（ｖｉａｂｌｅ）生物学的材料が、脊椎動物の卵母細胞、精子、接合子、桑実胚、胚盤胞、幹細胞、細胞又は組織からなる群から選択される請求項７から１１のいずれかに記載の使用。
【国際調査報告】
2007505100.tif 000023
2007505100.tif 000024