(57)【要約】  本発明は次のとおり要約することができる。Ｗｎｔシグナル伝達経路を調節することによる、幹細胞の増殖及び／または系列決定を調節する方法及び組成物を提供する。Ｗｎｔシグナル伝達経路のモジュレーター及びモジュレーター同定のためのスクリーニング方法も提供する。本発明の方法は、幹細胞増殖及び／または系列決定を誘導または抑制するため、インビトロまたはインビボで行ってよく、組織の常在幹細胞の増殖及び／または系列決定のインビボでの刺激に特に有用である。【特許請求の範囲】
【請求項１】
対象に１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターもしくはインヒビターを含む組成物を投与することを含む、対象のＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋幹細胞群の増殖、分化、または増殖及び分化の両方の調節方法。
【請求項２】
前記調節が前記幹細胞の増殖、分化、または増殖及び分化の両方を促進し、前記化合物が１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターが、１つ以上のｗｎｔポリペプチドを含む、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記一つ以上のｗｎｔポリペプチドがヒトｗｎｔポリペプチドである、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記ヒトｗｎｔポリペプチドが、Ｗｎｔ１、Ｗｎｔ２、Ｗｎｔ３、Ｗｎｔ４、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ａ、Ｗｎｔ７ｂ、Ｗｎｔ１０ａ、Ｗｎｔ１０ｂ、またはそれらの組合せを含む、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
前記ｗｎｔポリペプチドがＷｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ及び７ｂを含む、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
前記１つ以上のｗｎｔシグナルアクティベーターが、１つ以上の可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰｓ）に結合しその活性を抑制する１つ以上の化合物を含む、請求項２に記載の方法。 
【請求項８】
前記一つ以上の化合物が、一つ以上のポリペプチドを含む、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記一つ以上のポリペプチドが、一つ以上の抗体または抗体フラグメントを含む、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
前記可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰ）が、ヒトｓＦＲＰ１、ｓＦＲＰ２、ｓＦＲＰ３、ｓＦＲＰ４、またはそれらの組合せを含む、請求項７に記載の方法。
【請求項１１】
前記調節が前記幹細胞の増殖、分化、または増殖及び分化の両方を抑制し、前記組成物が一つ以上のｗｎｔシグナル伝達インヒビターを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
前記一つ以上のｗｎｔシグナル伝達インヒビターが、一つ以上の可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰ）を含む、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記一つ以上の可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパクが、ｓＦＲＰ１、ｓＦＲＰ２、ｓＦＲＰ３、ｓＦＲＰ４、またはそれらの組合せを含む、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
前記一つ以上の可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパクが、ｓＦＲＰ２及びｓＦＲＰ３を含む、請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
前記一つ以上の可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパクが、ヒトＦｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパクである、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
前記対象が哺乳類対象である、請求項１に記載の方法。
【請求項１７】
前記対象がヒト対象である、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】
前記ヒト対象が、筋変性または筋萎縮を示すあるいは有することを特徴とする、請求項１７に記載の方法。
【請求項１９】
前記筋変性または筋萎縮が疾患によるものである、請求項１８に記載の方法。
【請求項２０】
前記疾患が筋変性疾患である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２１】
前記筋変性疾患が、デュシェンヌ型筋ジストロフィー（ＤＭＤ）、ベッカー型筋ジストロフィー（ＢＭＤ）、筋緊張性ジストロフィー（スタイナート病）、肢帯型筋ジストロフィー、顔面肩甲上腕筋ジストロフィー（ＦＳＨ）、先天性筋ジストロフィー、眼咽頭型筋ジストロフィー（ＯＰＭＤ）、遠位型筋ジストロフィー、またはエメリー・ドレイフス型筋ジストロフィーである、請求項２０に記載の方法。
【請求項２２】
前記疾患がエイズ、がん、ＩＩ型糖尿病、またはそれらの組合せである、請求項１９に記載の方法。
【請求項２３】
前記組成物がさらに幹細胞の生存を高める化合物を含む、請求項２に記載の方法。 
【請求項２４】
前記化合物がソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）タンパクを含む、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】
対象の一つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターまたはインヒビターと、薬学的に許容可能な担体または希釈剤とを含む、対象の幹細胞の増殖、分化、または増殖及び分化の両方の調節に使用するための組成物。
【請求項２６】
前記組成物が前記対象の幹細胞の増殖、分化、または増殖及び分化の両方の促進に使用するためのものであり、前記一つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターが一つ以上のｗｎｔポリペプチドを含む、請求項２５に記載の組成物。
【請求項２７】
前記一つ以上のｗｎｔポリペプチドが、Ｗｎｔ１、Ｗｎｔ２、Ｗｎｔ３、Ｗｎｔ４、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ａ、Ｗｎｔ７ｂ、Ｗｎｔ１０ａ、Ｗｎｔ１０ｂ、またはそれらの組合せを含む、請求項２６に記載の組成物。
【請求項２８】
前記ｗｎｔポリペプチドが、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ａ及びＷｎｔ７ｂを含む、請求項２７に記載の組成物。
【請求項２９】
前記組成物が前記対象の幹細胞の増殖、分化、または増殖及び分化の両方の促進に使用するためのものであり、前記一つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターが、一つ以上の可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰｓ）に結合してその活性を抑制する一つ以上の化合物を含む、請求項２５に記載の組成物。
【請求項３０】
前記一つ以上の化合物が一つ以上のポリペプチドを含む、請求項２９に記載の組成物。
【請求項３１】
前記一つ以上のポリペプチドが一つ以上の抗体または抗体フラグメントを含む、請求項３０に記載の組成物。
【請求項３２】
前記可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｓ関係タンパク（ｓＦＲＰ）が、ヒトｓＦＲＰ１、ｓＦＲＰ２、ｓＦＲＰ３、ｓＦＲＰ４、またはそれらの組合せを含む、請求項２９に記載の組成物。 
【請求項３３】
前記可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰ）が、ｓＦＲＰ２及びｓＦＲＰ３を含む、請求項３２に記載の組成物。
【請求項３４】
前記組成物が、一つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターを含み、さらに前記幹細胞の生存を高める化合物を含む、請求項２５に記載の組成物。
【請求項３５】
前記化合物がソニックヘッジホッグタンパクを含む、請求項３４に記載の組成物。
【請求項３６】
さらに一つ以上の幹細胞を含む、請求項２５に記載の組成物。
【請求項３７】
前記幹細胞がＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋幹細胞を含む、請求項３６に記載の組成物。 
【請求項３８】
前記幹細胞が出生後の対象に由来する、請求項３７に記載の組成物。
【請求項３９】
前記幹細胞が成体幹細胞である、請求項３８に記載の組成物。
【請求項４０】
成体幹細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路モジュレーターと接触させることを含む、成体幹細胞群の増殖調節方法。
【請求項４１】
前記モジュレーターがＷｎｔシグナル伝達経路を活性化し、前記幹細胞群の増殖を誘導する、請求項４０に記載の方法。
【請求項４２】
成体幹細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路モジュレーターと接触させることを含む、成体幹細胞群の前駆細胞への系列決定（lineage commitment）を誘導する方法。
【請求項４３】
成体幹細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路アクティベーターと接触させることを含む、成体幹細胞群の生存を増加させる方法。
【請求項４４】
筋原前駆細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路アクティベーターと接触させることを含む、筋原前駆細胞群の最終分化の誘導方法。
【請求項４５】
成体組織の常在幹細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路アクティベーターと接触させることを含む、成体組織常在幹細胞群の増殖及び／または系列決定の誘導方法。
【請求項４６】
前記成体幹細胞がＣＤ４５＋幹細胞である、請求項４０に記載の方法。
【請求項４７】
前記幹細胞が筋幹細胞である、請求項４０に記載の方法。
【請求項４８】
インビトロで行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項４９】
インビボで行われる、請求項１に記載の方法。
【請求項５０】
可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパクに結合してその活性を抑制し、成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を誘導する能力を有する化合物。
【請求項５１】
Ｆｒｉｚｚｌｅｄ受容体へ結合してその活性を抑制し、成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を抑制する能力を有する化合物。
【請求項５２】
化合物が抗体である、請求項５０に記載の化合物。
【請求項５３】
化合物がＷｎｔポリペプチドのペプチド模倣体、またはそのフラグメントである、請求項５０に記載の化合物。
【請求項５４】
次のステップを含む、Ｗｎｔシグナル伝達経路を調節する化合物のスクリーニング方法：
（ｅ）成体幹細胞試験群を用意する；
（ｆ）前記試験群を候補化合物と接触させる；
（ｇ）前記試験群の増殖をモニターする；
（ｈ）前記試験群の増殖を前記候補化合物と接触させなかったコントロール群の増殖と比較し、前記試験群と前記コントロール群の増殖の差をＷｎｔシグナル伝達経路調節化合物の指標とする。
【請求項５５】
前記一つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターが、塩化リチウムを含む、請求項２に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は幹細胞治療分野、特に幹細胞の増殖もしくは系列決定を誘導もしくは抑制する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
Ｗｎｔ遺伝子ファミリーは、標的細胞上でＦｒｉｚｚｌｅｄ（Ｆｚｄ）受容体に結合することにより作用するシステイン豊富な分泌性糖タンパクを２０以上エンコードする。ＷｎｔのＦｚｄへの結合は、１つもしくはいくつかの経路によるシグナル伝達を起すことができる。標準伝達路と称される経路においては、Ｄｉｓｈｅｖｅｌｅｄの活性化が、細胞質のセリン−トレオニンキナーゼであるグリコーゲン合成酵素キナーゼ−３β（ＧＳＫ−３β）の不活化を導く。それにより、ＧＳＫ−３βの標的であるβ−カテニンが安定化され、核へ転移し、そこで特定プロモーターのＴＣＦ（Ｔ細胞因子）依存性転写を活性化する（Ｗｏｄａｒｚ，  １９９８；  Ｄｉｅｒｉｃｋ，  １９９９）。非標準伝達路もしくは平面内組織極性経路においては、ＷｎｔのＦｚｄへの結合はまた、Ｄｉｓｈｅｖｅｌｅｄを活性化し（Ｋｒａｓｎｏｗ  ｅｔ  ａｌ．，  （１９９５）．  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  １２１，  ４０９５−４１０２）、この場合低分子量ｇタンパクであるＲｈｏＡを活性化する（Ｓｔｒｕｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，  （１９９７）．  Ｎａｔｕｒｅ  ３８７，  ２９２−２９５）。そして、ＲｈｏＡは、ＪＮＫ（Ｊｕｎ  Ｎ−末端キナーゼ）及びＲｏｃｋ（Ｒｈｏ関連キナーゼ）を通じてシグナルを送り、原腸形成の間の細胞骨格の動態を調節する（Ｂｏｕｔｒｏｓ  ｅｔ  ａｌ．，  （１９９８）．  Ｃｅｌｌ  ９４，  １０９−１１８）。Ｗｎｔタンパクは、細胞内カルシウムの調節を通じてシグナルを送ることも知られている。これはプロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）を活性化すると考えられ（Ｓｈｅｌｄａｈｌ  ｅｔ  ａｌ．，  （１９９９）．  Ｃｕｒｒ．  Ｂｉｏｌ．  ９，  ６９５−６９８）、転写因子ＮＦＡＴの核転移を導く。
【０００３】
近年、Ｗｎｔシグナル伝達経路が様々な組織中で細胞運命を決定し得ることがわかってきており、例えば、腎臓（Ｌａｂｕｓ，  １９９８；  Ｖａｉｎｉｏ，  ２０００）、ＣＮＳ（Ｐａｔａｐｏｕｔｉａｎ，  ２０００）、造血系（Ｖａｎ  Ｄｅｎ  Ｂｅｒｇ，  １９９８）、及び骨格筋（Ｃｏｓｓｕ，  １９９９）などでわかっている。また、Ｗｎｔシグナル伝達は、ゼブラフィッシュ及びヒドラの出生後の創傷治癒及び組織再生に関与している（Ｈｏｂｍａｙｅｒ，  ２０００；  Ｌａｂｕｓ，  １９９８；  Ｐｏｓｓ，  ２０００）。
【０００４】
胎性組織もしくは骨髄由来の造血幹細胞の増殖もしくは分化におけるＷｎｔシグナル伝達の関与もまた開示されているる。例えば、米国特許第５，８５１，９８４号及び６，１５９，４６２には、造血幹細胞もしくは前駆細胞の増殖、分化及び／または維持を高めるためのＷｎｔポリペプチドの使用が記載され、米国特許第６，４６５，２４９号には、前駆細胞もしくは幹細胞、特に造血幹細胞のインビトロでの拡張のためのβ−カテニンの使用が記載されている。米国特許第６，１６５，７４８号には、Ｗｎｔシグナル伝達路に関連する新規タンパクであるＦｌａｚｚｌｅｄタンパクが記載され、また組織及び器官の分化における因子の発現を誘導するための該タンパクの使用についても記載されている。カナダ特許出願第２，３５３，８０４号には、Ｐ１９胚性がん細胞における筋形成を刺激するためのＷｎｔ３ａの使用が記載され、筋形成がＷｎｔ活性の調節によって制御されること、特にＷｎｔポリペプチドの抑制により筋形成が抑制されることが示唆されている。
【０００５】
米国特許出願第２００３００４００５１号には、脊椎動物のＦｒｉｚｚｌｅｄ遺伝子ファミリーの新規なセット、及びこれらの遺伝子にエンコードされたポリペプチドへのＷｎｔの結合に影響を及ぼす化合物のスクリーニング方法が記載されている。
【０００６】
幹細胞は様々な医療面で利益をもたらす可能性をもつが、可能性を秘めた多くの応用に対する数々の制限があり、例えば、十分な数の標的細胞を得ること、これら幹細胞の成熟した組織特異的細胞への最終分化を刺激することなどが挙げられる。
【０００７】
幹細胞の成長、分化、または成長と分化の両方を調節可能とする方法、ならびに組成物が当該分野において必要とされている。
【０００８】
このような背景情報は、出願人が本発明と関連の可能性があると考える公知情報を作成することを目的として提供するものである。いかなる前記情報も本発明に対して従来技術を構成すると自認することを必ずしも意図するものではなく、また、解釈されるべきではない。
【０００９】
本発明の目的は、従来技術の欠点を克服することである。
メインクレームの特徴の組み合わせは上記目的に合致し、サブクレームは本発明のさらに有利な実施形態を開示する。
【発明の開示】
【００１０】
本発明の実施形態は、いかなる方法でも限定することを意味するものではないが、幹細胞分化の調節のためのＷｎｔシグナル伝達経路の使用を提供するものである。本発明の一つの態様に従い、成体幹細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路のモジュレーターと接触させることを含む、成体幹細胞群の増殖調節方法が提供される。
【００１１】
本発明の別の態様に従い、成体幹細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路のアクティベーターと接触させることを含む、成体幹細胞群の前駆細胞への系列決定を誘導する方法が提供される。
【００１２】
本発明の別の態様に従い、成体幹細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路のアクティベーターと接触させることを含む、成体幹細胞群の生存を増加させる方法が提供される。
【００１３】
本発明の別の態様に従い、筋原前駆細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路のアクティベーターと接触させることを含む、筋原前駆細胞群の最終分化の誘導方法が提供される。
【００１４】
本発明の別の態様に従い、成体組織中の常在幹細胞群を一つ以上のＷｎｔシグナル伝達経路のアクティベーターと接触させることを含む、成体組織中常在幹細胞群の増殖及び／または系列決定を誘導する方法が提供される。
【００１５】
本発明の別の態様に従い、可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパクに結合してその活性を抑制し、成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を誘導する能力をもつ化合物が提供される。
【００１６】
本発明の別の態様に従い、Ｆｒｉｚｚｌｅｄ受容体に結合してその活性を抑制し、成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を抑制する能力をもつ化合物が提供される。
【００１７】
本発明の別の態様に従い、次のステップを含む、Ｗｎｔシグナル伝達経路調節化合物のスクリーニング方法が提供される：
（ａ）成体幹細胞試験群を用意する；
（ｂ）前記試験群を候補化合物と接触させる；
（ｃ）前記試験群の増殖をモニターする；
（ｄ）前記試験群の増殖を前記候補化合物と接触させなかったコントロール群の増殖と比較し、前記試験群の増殖と前記コントロール群の増殖との差をＷｎｔシグナル伝達経路調節化合物の指標とする。
【００１８】
また、本発明により、対象への１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターもしくはインヒビターを含む組成物を投与することを含む、対象のＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋幹細胞群の増殖、分化、もしくは増殖と分化の両方の調節方法が提供される。
【００１９】
好ましい実施形態においては、調節が幹細胞の増殖、分化、もしくは増殖と分化の両方を促進し、組成物は１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターを含み、例えば、これに限定されるものではないが、一つ以上のｗｎｔポリペプチド、好ましくはヒトｗｎｔポリペプチドであり、Ｗｎｔ１、Ｗｎｔ２、Ｗｎｔ３、Ｗｎｔ４、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ａ、Ｗｎｔ７ｂ、Ｗｎｔ１０ａ、Ｗｎｔ１０ｂ、もしくはそのあらゆる組合せが挙げられるが、これに限定されるものではない。いかなる方法でも限定することを意味しない一つの実施形態において、ｗｎｔポリペプチドはＷｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ、及び７ｂを含む。限定することを意味しない別の実施形態において、ｗｎｔポリペプチドはＷｎｔ５ａ、５ｂ、７ｂ、１０ａ、及び１０ｂを含む。 
【００２０】
本発明の別の実施形態においては、１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターが小分子、例えば、これに限定されるものではないが、塩化リチウムを含んでよい。
【００２１】
また、本発明は１つ以上のｗｎｔシグナルアクティベーターが、１つ以上の可溶性Ｆｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰｓ）へ結合し、その活性を抑制する１つ以上の化合物を含む前記方法も意図する。本化合物は、１つ以上の小分子、ポリペプチド、タンパク、高分子、もしくはその組合せであってよい。一つの実施形態においては、１つ以上のポリペプチドは、ｓＦＲＰ１、ｓＦＲＰ２、ｓＦＲＰ３、ｓＦＲＰ４、もしくはその組合せに結合する１つ以上の抗体あるいは抗体フラグメントを含む。
【００２２】
また、前記方法によって意図されるように、調節は、幹細胞の増殖、分化、もしくは増殖と分化の両方を抑制してよく、組成物は１つ以上のｗｎｔシグナル伝達インヒビター、例えば、これに限定されるものではないが、１つ以上の可溶性Ｆｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰｓ）、好ましくは１つ以上のｓＦＲＰ１、ｓＦＲＰ２、ｓＦＲＰ３、ｓＦＲＰ４、もしくはその組合せを含んでもよい。本発明の一つの実施形態においては、いかなる方法でも限定することを意味するものではないが、１つ以上の可溶性Ｆｉｚｚｌｅｄ関連タンパクは、ｓＦＲＰ２及びｓＦＲＰ３を含んでよい。さらなる実施形態においては、可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパクはヒトＦｉｚｚｌｅｄ関連タンパクである。
【００２３】
前記本発明の方法で記載された対象は、哺乳類である対象であってよく、例えば、これに限定されるものではないが、マウス、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ブタ、イヌ、ネコ、ラット、ウサギ、霊長類、もしくはヒトが挙げられる。一つの実施形態においては、これに限定されるものではないが、対象はヒトである。
【００２４】
前記方法は、ヒト対象が筋変性もしくは筋萎縮を示すか、または有することも意図するものである。筋変性もしくは筋萎縮は、疾患によりその全体もしくは一部に生じていてよく、例えば、エイズ、がん、筋変性疾患、もしくはその組合せが挙げられる。筋変性疾患の例としては、これに限定されるものではないが、デュシェンヌ型筋ジストロフィー（ＤＭＤ）、ベッカー型筋ジストロフィー（ＢＭＤ）、筋緊張性ジストロフィー（スタイナート病）、肢帯型筋ジストロフィー、顔面肩甲上腕筋ジストロフィー（ＦＳＨ）、先天性筋ジストロフィー、眼咽頭型筋ジストロフィー（ＯＰＭＤ）、遠位型筋ジストロフィー、もしくはエメリー・ドレイフス型筋ジストロフィーなどが挙げられる。
【００２５】
また、本発明は、対象が骨格筋障害を示すか、もしくは有する前記方法も意図するものでもある。骨格筋障害は、疾患性もしくは非疾患性であってよい。例えば、いかなる方法でも限定することを望むものではないが、本方法は例えば手術などの後の不活性化に起因する筋萎縮の治療に使用してよいが、これに限定されるものではない。一方、本発明の方法は、対象の筋細胞数増加のために用いてもよく、及び／または対象の１つ以上の筋肉の大きさ、強度もしくは量の増加のために用いてもよい。
【００２６】
前記方法によって意図されるように、組成物は、幹細胞の生存を高める化合物をさらに含んでもよく、例えば、これに限定されるものではないが、ソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）タンパクが挙げられる。
【００２７】
本発明は、対象の１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターもしくはインヒビター、及び薬学的に許容可能な担体もしくは希釈剤を含む、対象物の幹細胞の増殖、分化、もしくは増殖と分化の両方の調節に使用するための組成物も提供する。
【００２８】
一つの好適な実施形態において、本組成物は、対象の幹細胞の増殖、分化、もしくは増殖と分化の両方の促進に使用され、１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターは、１つ以上のｗｎｔポリペプチド、例えば、これに限定されるものではないが、Ｗｎｔ１，Ｗｎｔ２、Ｗｎｔ３、Ｗｎｔ４、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ａ、Ｗｎｔ７ｂ、１０ａ、１０ｂ、もしくはそれらの組合せを含む。具体的な実施形態においては、限定することを意味するものではないが、ｗｎｔポリペプチドは、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ａ、及びＷｎｔ７ｂを含む。また、別の実施形態においては、ｗｎｔポリペプチドは、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ｂ、Ｗｎｔ１０ａ、及びＷｎｔ１０ｂを含む。また、本発明は、ｗｎｔポリペプチドとして、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ｂ、Ｗｎｔ１０ａ、及びＷｎｔ１０ｂのあらゆる組合せを使用する方法及び組成物も意図するものである。
【００２９】
また、本発明は前記組成物を対象の幹細胞の増殖、分化、もしくは増殖と分化の両方の促進に使用することを意図し、その場合、１つ以上のｗｎｔシグナル伝達アクティベーターは、１つ以上の可溶性Ｆｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰｓ）へ結合し、その活性を抑制する１つ以上の化合物を含む。１つ以上の化合物は１つ以上の小分子、例えば、これに限定されるものではないが、化学合成分子を含んでもよく、あるいは、１つ以上の化合物は、１つ以上のポリペプチド、例えばこれに限定されるものではないが、１つ以上の抗体もしくは抗体フラグメントを含んでもよい。
【００３０】
一つの実施形態においては、１つ以上の化合物は、可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰ）であるｓＦＲＰ１、ｓＦＲＰ２、ｓＦＲＰ３、ｓＦＲＰ４、もしくはその組合せに結合し、抑制する。別の実施形態では、１つ以上の化合物は、可溶性Ｆｉｚｚｌｅｄ関連タンパクｓＦＲＰ２及びｓＦＲＰ３へ結合し、活性を抑制する。ｓＦＲＰｓは、これに限定されるものではないが、野生型ｓＦＲＰと実質的に同等の活性を示すヒトｓＦＲＰｓ、その変異体もしくは誘導体であってもよい。
【００３１】
さらに、前記本発明の組成物は、例えば、ソニックヘッジホッグタンパクのような幹細胞の生存を高める化合物をさらに含んでもよい。また、本組成物は１つ以上の幹細胞、例えば、これに限定されるものではないが、ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋幹細胞を含んでよい。ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋幹細胞は、新生児期であってよく、例えば出生後のどの時点の対象に由来してもよい。
【００３２】
この本発明の要約は必ずしも本発明の全ての必要な特徴を記載しておらず、本発明は記載された特徴のサブコンビネーションに存在してもよい。
これら及び他の本発明の特徴は、添付図面を参照した下記の記載からより明らかになるだろう。
【好ましい実施形態の開示】
【００３３】
以下の記載は実施例による好適な実施形態の一例に過ぎず、本発明の効果を発揮するために必要な特徴の組合せを限定するものではない。
【００３４】
本発明はＷｎｔシグナル伝達経路を調節することにより、成体幹細胞の増殖及び系列決定を調節する方法を提供する。さらに、本発明はＷｎｔシグナル伝達経路のモジュレーター、及び成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を誘導もしくは抑制するためのそれらの使用を提供する。Ｗｎｔシグナル伝達経路のモジュレーターはアクティベーター及びインヒビターの両方を含む。モジュレーターはＷｎｔシグナル伝達経路の抑制に使用することができ、これにより、幹細胞の増殖及び／または系列決定を抑制することができる。あるいは、モジュレーターはＷｎｔシグナル伝達経路の活性化に使用することができ、これにより、幹細胞の増殖及び／または系列決定を誘導することができる。本発明の一つの実施形態に従い、モジュレーターの作用により誘導もしくは抑制された幹細胞の系列決定は、筋原前駆細胞の発生への決定である。さらに、Ｗｎｔ経路の活性化は、成体幹細胞及び／または系列決定された前駆細胞の生存を増加させるのに使用することができる。Ｗｎｔ調節は、系列決定された前駆細胞の最終分化の調節に使用することができる。
【００３５】
従って、本発明は、成体幹細胞を、Ｗｎｔ経路の一つ以上のモジュレーターと接触させることを含む、成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を抑制もしくは誘導する方法を提供するものである。モジュレーターは、ポリペプチド、ペプチド、核酸分子、抗体または抗体フラグメント、もしくは有機小分子または無機小分子の形態であってよい。あるいは、モジュレーターはポリペプチド、ペプチド、抗体もしくは小分子を発現する細胞の形態であってもよい。本発明の方法は、インビトロもしくはインビボで実施してよく、組織中の常在幹細胞の増殖及び／または系列決定のインビボ刺激に特に有用である。さらに、本発明は、組織中の系列決定された前駆細胞をＷｎｔ経路の一つ以上のアクティベーターと接触させることを含む、前記前駆細胞の数を増加し、組織の再生を増進する方法も提供し、また、系列決定された前駆細胞をＷｎｔ経路の一つ以上のアクティベーターと接触させることを含む、前記前駆細胞の最終分化を誘導する方法も提供する。
【００３６】
本発明の治療的応用は、常在幹細胞もしくは系列決定された前駆細胞の数を増加させることが必要である疾病及び疾患、例えば、障害または欠陥のある組織の交換あるいは筋萎縮や筋量減少の防止が必要である疾病及び疾患に関し、特に、筋ジストロフィー、神経筋疾患、神経変性疾患、循環器病、脳卒中、心不全、心筋梗塞、がん、ＨＩＶ感染、エイズ、ＩＩ型糖尿病などの疾病及び疾患に関係する。
【００３７】
定義
他に定義されていない限り、ここで用いる全ての技術的、科学的用語は、本発明が関係する分野の通常の技術者により一般に理解されるのと同じ意味を有する。
【００３８】
ここで使用される「Ｗｎｔポリペプチド」という用語は、野生型配列に相当するポリペプチド配列をもつＷｎｔタンパク、ならびに野生型Ｗｎｔポリペプチドの活性をもつ変異型ポリペプチド配列、ポリペプチドフラグメント、及びキメラポリペプチドも包含する。Ｗｎｔタンパクは当該分野において知られており、例えば、ヒトＷｎｔｓ：Ｗｎｔ１、Ｗｎｔ２、Ｗｎｔ３、Ｗｎｔ４、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ａ及びＷｎｔ７ｂ、及びマウスＷｎｔｓ：Ｗｎｔ１、Ｗｎｔ２、Ｗｎｔ３ａ、Ｗｎｔ３ｂ、Ｗｎｔ４、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ６、Ｗｎｔ７ａ、Ｗｎｔ７ｂ、Ｗｎｔ８ａ、Ｗｎｔ８ｂ、Ｗｎｔ１０ａ、Ｗｎｔ１０ｂ、Ｗｎｔ１１及びＷｎｔ１２が挙げられる。多様な種に由来する様々なｗｎｔポリペプチドは、http://www.stanford.edu/~rnusse/wntwindow.htmlで見つけることができる（参照することによりここに組み込まれる）。 
【００３９】
ここで使用される「Ｗｎｔシグナル伝達経路」という用語は、幹細胞の分化に関わるＷｎｔタンパクが介在する細胞のシグナル伝達経路をいう。
【００４０】
ここで使用される「モジュレーター」という用語は、Ｗｎｔシグナル伝達経路のアクティベーターとインヒビターの両方をいう。従って、Ｗｎｔシグナル伝達経路の「モジュレーター」は、Ｗｎｔタンパクもしくは遺伝子へ作用することにより直接的に、もしくはシグナル伝達経路においてＷｎｔタンパクの上流（アクティベーター）もしくは下流（エフェクター）で働く一つ以上のタンパクあるいはタンパクをエンコードする遺伝子に作用することにより間接的に、Ｗｎｔポリペプチド活性を刺激もしくは抑制する化合物あるいは分子である。いくつかの種からのｗｎｔタンパクをエンコードするヌクレオチド配列のリストが、http://www.stanford.edu/~rnusse/wntwindow.htmlで提供されるが、これは参照することによりここに組み込まれる。
【００４１】
ここで使用される「幹細胞」という用語は、多くの最終的な分化した細胞型へ分化する能力を持つ細胞をいう。幹細胞は、全能性のもしくは多能性の細胞であってよい。全能性幹細胞は、典型的には、どのような細胞型にも発展する能力をもつ。全能性幹細胞は通常、胚に由来する。多能性細胞は、典型的には、いくつかの異なる最終的に分化した細胞型へ分化する能力を有する幹細胞系の細胞である。単能性及び多能性幹細胞は、様々な組織もしくは器官系に由来することができ、これに限定されるものではないが、血液、神経、筋肉、皮膚、腸、骨、腎臓、肝臓、すい臓、胸腺などが挙げられる。本発明に従って、幹細胞は成体もしくは新生児の組織もしくは器官に由来する。
【００４２】
ここで使用される「前駆細胞」という用語は、特定の細胞系列に決定された細胞であって、一連の細胞分裂によってこの系列の細胞を生じる細胞をいう。前駆細胞の例として筋芽細胞が挙げられ、これは、ただ一つの細胞型に分化する能力をもつが、それ自身は完全に成熟しておらず、あるいは完全に分化していない。 
【００４３】
ここで細胞に関して同義的に使用される「増殖」及び「拡張」という用語は、分裂による同型細胞の数の増加をいう。
【００４４】
ここで使用される「分化」という用語は、それによって細胞が特定機能に特殊化する発展過程をいい、例えば、細胞が最初の細胞型とは異なった一つ以上の形態学的特徴及び／または機能を獲得する過程をいう。「分化」という用語は、系列決定及び最終分化の両方のプロセスを含む。分化は、例えば、免疫組織化学もしくは当該分野の技術者に知られた他の手法を用いて、系列マーカーの有無をモニターすることにより評価することができる。前駆細胞に由来する分化した子孫細胞は、必ずしもそうである必要はないが、幹細胞の起源組織と同じ胚葉もしくは組織に関係していてよい。例えば、神経前駆細胞及び筋肉前駆細胞は、造血細胞系列へ分化することができる。 
【００４５】
ここで同義的に使用されている「系列決定」及び「特殊化」という用語は、幹細胞が経験するプロセスであり、幹細胞が、分化細胞型の特に制限された範囲を形成するよう決められた前駆細胞を生じるプロセスをいう。決定された前駆細胞は、しばしば自己再生もしくは細胞分裂する能力がある。
【００４６】
ここで使用される「最終分化」という用語は、成熟した完全に分化した細胞への細胞の最後の分化をいう。例えば、神経前駆細胞及び筋肉前駆細胞は、造血細胞系列へ分化することができ、その最終分化は特定の細胞型の成熟した血液細胞を導く。通常、最終分化は、細胞周期及び増殖休止からの離脱に関係する。
【００４７】
ある対象に関してここで使用する「自然発生」という用語は、その対象が自然界に見られるものであることを示している。例えば、自然発生ポリペプチドもしくはポリヌクレオチド配列は、生物に存在し、生物から分離することができるものであって、実験室でヒトにより故意に修飾されたことのないものである。
【００４８】
ここで使用される「約」という用語は、名目値から＋／−５％の変動をいう。このような変動は、特記するしないに関わらず、ここで提供される何れの値にも常に含まれると理解されるべきである。
【００４９】
ここで使用されるその他の化学用語は、Ｔｈｅ  ＭｃＧｒａｗ−Ｈｉｌｌ  Ｄｉｃｔｉｏｎａｒｉｙ  ｏｆ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｔｅｒｍｓ（ｅｄ．  Ｐａｒｋｅｒ，  Ｓ，  １９８５），ＭｃＧｒａｗ−Ｈｉｌｌ，  Ｓａｎ  Ｆｒａｎｃｉｓｃｏに例示されるような、当該分野における慣例的用法に従って使用される。
【００５０】
Ｗｎｔシグナル伝達経路の候補モジュレーター
本発明に従って、Ｗｎｔシグナル伝達経路の候補モジュレーターは、Ｗｎｔポリペプチドの活性を直接的または間接的に刺激または抑制する化合物及び分子である。直接的モジュレーターは、ＷｎｔポリペプチドもしくはＷｎｔポリペプチドをエンコードする遺伝子に作用し、一方、間接的モジュレーターは、Ｗｎｔシグナル伝達経路においてＷｎｔポリペプチドの上流（「アクティベーター」）もしくは下流（「エフェクター」）で働く一つ以上のタンパク、もしくはタンパクをエンコードする遺伝子に作用する。従って、モジュレーターは、遺伝子レベルで作用して、例えば、ＷｎｔポリペプチドもしくはＷｎｔポリペプチドのアクティベーターまたはエフェクターをエンコードする遺伝子の発現を上方調節もしくは下方調節することができ、あるいはタンパクレベルで作用して、ＷｎｔポリペプチドまたはＷｎｔポリペプチドアクティベータータンパクまたはエフェクタータンパクの活性に影響を与えることができる。それ自身がＷｎｔポリペプチド、もしくはその活性フラグメントまたは変異体であり、細胞中のＷｎｔレベルを増大させることができるモジュレーターもまた、意図されている。モジュレーターは、例えば、ポリペプチド、ペプチド、ポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、抗体または抗体フラグメント、もしくは小分子のアクティベーターまたはインヒビターであることができる。小分子のモジュレーターは、有機物または無機物であることができる。本発明の範囲において、Ｗｎｔポリペプチドの活性は、幹細胞の分化及び／または増殖を導く活性をいう。
【００５１】
本発明の一つの実施形態において、モジュレーターは、遺伝子レベルで作用して、Ｗｎｔポリペプチドをエンコードする遺伝子の発現を上方制御作用する。別の実施形態においては、モジュレーターが細胞中のＷｎｔの総量を増加させるＷｎｔポリペプチドをエンコードする遺伝子を含み、従って、シグナル伝達経路におけるＷｎｔ活性を増大させる。別の実施形態においては、モジュレーターはタンパクレベルで作用して、Ｗｎｔポリペプチドの活性を高める、あるいは細胞中のＷｎｔポリペプチドレベルを増大させる。さらに別の実施形態においては、モジュレーターはタンパクレベルで作用して、Ｗｎｔポリペプチドの活性を抑制する。
【００５２】
（ｉ）ポリペプチド及びペプチド 
ここで使用される「ポリペプチド」及び「ペプチド」という用語は、ペプチド結合もしくは修飾ペプチド結合によって互いに結合したアミノ酸残基の配列をいう。通常、ポリペプチドは少なくとも６つのアミノ酸長さであり、ペプチドは少なくとも３つのアミノ酸長さである。ポリペプチドもしくはペプチドは、自然発生、組換え、合成、もしくはこれらの組合せであることができる。ポリペプチドもしくはペプチドは、自然発生タンパクもしくはポリペプチドのフラグメントであることができる。ポリペプチド及びペプチドという用語は、ペプチド類似体、ペプチド誘導体、及びペプチド模倣化合物も包含する。このような化合物は当該分野においてよく知られており、自然発生ペプチドよりもに大きな利点を有していてよく、例えば、より高い化学安定性や、増強されたタンパク分解抵抗性、強化された薬理学的特性（例えば半減期、吸収、作用強度、有効性など）、変化した特異性（例えば、生物学的活性の広域性）、及び／または減少した抗原性などが挙げられる。
【００５３】
「ペプチド誘導体」は、通常は自然発生ペプチドの一部ではない化学的または生化学な追加部分を含むペプチドである。ペプチド誘導体は、一つ以上のアミノ酸側鎖及び／またはアミノ末端及び／またはカルボキシ末端が、適当な化学的置換基で誘導体化されているペプチドを含み、また、環状ペプチド、二重ペプチド、ペプチド多量体、他のタンパクまたは担体と融合したペプチド、グリコシル化ペプチド、リン酸化ペプチド、親油性部分（例えば、カプロイル、ラウリル、ステアロイル部分など）と結合したペプチド、及び抗体または他の生物学的リガンドと結合したペプチドも含む。
【００５４】
ペプチドを誘導体化するのに用いることができる化学的置換基の例としては、これに限定されるものではないが、アルキル基、シクロアルキル基、及びアリール基；アルカノイル基やアロイル基などのアシル基；エステル；アミド；ハロゲン；ヒドロキシル；カルバミルなどがある。置換基は、Ｆｍｏｃ（フルオレニルメチル−Ｏ−ＣＯ−）、カルボベンゾキシ（ベンジル−Ｏ−ＣＯ−）、モノメトキシスクシニル、ナフチル−ＮＨ−ＣＯ−、アセチルアミノ−カプロイル、及びアダマンチル−ＮＨ−ＣＯ−などの保護基であってもよい。他の誘導体としては、Ｃ−末端ヒドロキシメチル誘導体、Ｏ−修飾誘導体（例えば、Ｃ−末端ヒドロキシメチルベンジルエーテル）、及びアルキルアミドやヒドラジドのような置換アミドなどのＮ−末端修飾誘導体が挙げられる。
【００５５】
ここで使用される「環状ペプチド」という用語は、例えば、環化に適当な２つ以上の追加アミノ酸残基が付加したペプチドの環状の誘導体をいう。これらの追加アミノ酸は、カルボキシル末端及びアミノ末端に付加してよく、あるいは、内部の位置にあってもよい。あるいは、環状ペプチドは、アミノ酸配列中に自然に生じるシステイン残基を利用して、ジスルィド結合を形成し、これによりペプチドを環化してもよい。環状ペプチドは、分子内ジスルフィド結合、すなわち、−Ｓ−Ｓ−；２つの付加残基間の分子内アミド結合、すなわち、−ＣＯＮＨ−または−ＮＨＣＯ−；もしくは分子内Ｓ−アルキル結合、すなわち、−Ｓ−（ＣＨ２）−ＣＯＮＨ−または−ＮＨ−ＣＯ（ＣＨ２）ｎ−Ｓ−、ｎは１、２もしくはそれ以上、のいずれかを含むことができる。 
【００５６】
分子内ジスルフィド結合を含む環状ペプチドは、従来の固相合成法により、環化のために選択された位置で適当なＳ−保護システインあるいはホモシステイン残基を合体させながら調製してもよい（例えば、Ｓａｈｍ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．４８：１９７参照）。鎖組み立て完了後、遊離の相当するＳＨ−官能基の支持体上の酸化を結果として生じるＳ−保護基の選択的な除去によりＳ−Ｓ結合を形成し、次いで支持体から生成物を従来通り離し、適当な方法で精製することにより環化を行うことができ、あるいは完全な側鎖脱保護と共にペプチドを支持体から離し、次いで遊離のＳＨ−官能基を高希釈水溶液中で酸化することにより、環化を行うことができる。同様に、分子内アミド結合を有する環状誘導体は、従来の固相合成法により、環化のために選択された位置で適当なアミノ側鎖及びカルボキシル側鎖保護アミノ酸誘導体を合体させながら調製してよく、また、分子内−Ｓ−アルキル結合を有する環状ペプチドは、従来の固相合成法により、環化のために選択された位置でアミノ酸残基を適当なアミノ保護側鎖及び適当なＳ−保護システインあるいはホモシステイン残基と合体させながら調製することができる。
【００５７】
２重ペプチドは、直接的に、あるいはアラニン残基やタンパク分解の推定部位の短い範囲のようなスペーサーを介して、互いに共有結合した２つの同じあるいは２つの異なるペプチドからなる（例えば、米国特許第５，１２６，２４９号及び欧州特許第４９５，０４９号参照）。多量体は、多くの同じあるいは異なるペプチドあるいはその誘導体から形成された高分子である。重合は、０．１％グルタルアルデヒドのような適当な重合試薬で行われる（例えば、Ａｕｄｉｂｅｒｔ  ｅｔ  ａｌ．，  １９８１，  Ｎａｔｕｒｅ  ２８９：５９３参照）。
【００５８】
「ペプチド類似体」は、一つ以上の非自然発生のアミノ酸を含むペプチドである。非自然発生アミノ酸の例としては、これに限定されるものではないが、Ｄ−アミノ酸（すなわち、自然発生型と鏡像異性のアミノ酸）、Ｎ−α−メチルアミノ酸、Ｃ−α−メチルアミノ酸、β−メチルアミノ酸、β−アラニン（β−Ａｌａ）、ノルバリン（Ｎｖａ）、ノルロイシン（Ｎｌｅ）、４−アミノ酪酸（γ−Ａｂｕ）、２−アミノイソ酪酸（Ａｉｂ）、６−アミノヘキサン酸（ε−Ａｈｘ）、オルニチン（ｏｒｎ）、ヒドロキシプロリン（Ｈｙｐ）、サルコシン、シトルリン、システイン酸、シクロヘキシルアラニン、α−アミノイソ酪酸、ｔ−ブチルグリシン、ｔ−ブチルアラニン、３−アミノプロピオン酸、２，３−ジアミノプロピオン酸（２，３−ｄｉａＰ）、Ｄ−またはＬ−フェニルグリシン、Ｄ−またはＬ−２−ナフチルアラニン（２−Ｎａｌ）、１，２，３，４−テトラヒドロイソキノリン−３−カルボン酸（Ｔｉｃ）、Ｄ−又はＬ−２−チエニルアラニン（Ｔｈｉ）、Ｄ−又はＬ−３−チエニルアラニン、Ｄ−またはＬ−１−，２−，３−または４−ピレニルアラニン、Ｄ−またはＬ−（２−ピリジニル）−アラニン、Ｄ−またはＬ−（３−ピリジニル）−アラニン、Ｄ−またはＬ−（２−ピラジニル）−アラニン、Ｄ−またはＬ−（４−イソプロピル）−フェニルグリシン、Ｄ−（トリフルオロメチル）−フェニルグリシン、Ｄ−（トリフルオロメチル）−フェニルアラニン、Ｄ−ｐ−フルオロフェニルアラニン、Ｄ−またはＬ−ｐ−ビフェニルアラニン、Ｄ−またはＬ−ｐ−メトキシビフェニルアラニン、メチオニンスルホキシド（ＭＳＯ）、及びホモアルギニン（Ｈａｒ）が挙げられる。他の例としては、Ｄ−またはＬ−２−インドール（アルキル）アラニン及びＤ−またはＬ−アルキルアラニンが挙げられ、アルキルは置換または非置換のメチル、エチル、プロピル、ヘキシル、ブチル、ペンチル、イソプロピル、イソブチル、またはイソペンチルであり、またホスホノ−または硫酸化（例えば−ＳＯ３Ｈ）非カルボキシル化アミノ酸も挙げられる。
【００５９】
当該分野において知られているように、ペプチド内の全てのＬ−アミノ酸を全てＤ−アミノ酸に置換することにより、「インベルソ」（ｉｎｖｅｒｓｏ）ペプチドあるいは「レトロインベルソ」（ｒｅｔｒｏ−ｉｎｖｅｒｓｏ）ペプチドとすることができ（Ｇｏｏｄｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．  “Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ  ｉｎ  Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ”  ｐｐ．  ２８３−２９４  （１９８１）；米国特許第４，５２２，７５２号参照）、これらは両方とも本発明との関係において類似体と見なされる。「インベルソ」ペプチドは、配列のＬ−アミノ酸全てがＤ−アミノ酸で置換されたものであり、「レトロインベルソ」ペプチドは、アミノ酸の配列が逆転し（「レトロ」）、且つ全てのＬ−アミノ酸がＤ−アミノ酸で置換されたものである。例えば、親ペプチドがＴｈｒ−Ａｌａ−Ｔｙｒであれば、そのレトロ体はＴｙｒ−Ａｌａ−Ｔｈｒであり、インベルソ体はｔｈｒ−ａｌａ−ｔｙｒであり、レトロインベルソ体はｔｙｒ−ａｌａ−ｔｈｒである（小文字はＤ−アミノ酸を示す）。親ペプチドに対して、レトロインベルソペプチドは側鎖の実質的にオリジナルな空間的配置を保持しながら逆転した主鎖を持つので、親ペプチドに非常に似たトポロジーのイソマーである。
【００６０】
ペプチド模倣体は、ペプチドと構造的に同じで、かつ本発明のポリペプチドあるいはペプチドの機能を模倣した化学的部位を含む化合物である。例えば、ポリペプチドが機能的活性を有する２つの帯電した化学的部位を有する場合、模倣体は、帯電した化学的機能が３次元空間内に維持されるように、空間的定位及び強制的構造内に２つの帯電した化学的部位を持つ。従って、ペプチド模倣体との用語は、アイソスターを含むことを意図する。ここで用いる「アイソスター」との用語は、化学構造の立体配置がペプチドあるいはポリペプチドと同じであるために、そのポリペプチドあるいはペプチドと置換可能な化学構造を言い、例えば、その構造はポリペプチドあるいはペプチドに特異的な結合部位に適合する。ペプチド模倣体の例としては、一つ以上の主鎖修飾を含むペプチド(すなわち、アミド結合模倣体)があり、これは当該分野においてよく知られている。アミド結合模倣体の例としては、これに限定されるものではないが、−ＣＨ２ＮＨ−、−ＣＨ２Ｓ−、−ＣＨ２ＣＨ２−、−ＣＨ＝ＣＨ−（シス及びトランス）、−ＣＯＣＨ２−、−ＣＨ（ＯＨ）ＣＨ２−、及び−ＣＨ２ＳＯ−が挙げられる（例えば、Ｓｐａｔｏｌａ，  Ｖｅｇａ  Ｄａｔａ  Ｖｏｌ．  １，  Ｉｓｓｕｅ  ３，  （１９８３）；  Ｓｐａｔｏｌａ，  ｉｎ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ｏｆ  Ａｍｉｎｏ  Ａｃｉｄｓ  Ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，  Ｗｅｉｎｓｔｅｉｎ，  ｅｄ．，  Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，  ｐ．  ２６７  （１９８３）；  Ｍｏｒｌｅｙ，  Ｊ．  Ｓ．，  Ｔｒｅｎｄｓ  Ｐｈａｒｍ．  Ｓｃｉ．  ｐｐ．  ４６３−４６８  （１９８０）；  Ｈｕｄｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｉｎｔ．  Ｊ．  Ｐｅｐｔ．  Ｐｒｏｔ．  Ｒｅｓ．  １４：１７７−１８５  （１９７９）；  Ｓｐａｔｏｌａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉ．  ３８：１２４３−１２４９  （１９８６）；  Ｈａｎｎ，  Ｊ．  Ｃｈｅｍ．  Ｓｏｃ．  Ｐｅｒｋｉｎ  Ｔｒａｎｓ．  Ｉ  ３０７−３１４  （１９８２）；  Ａｌｍｑｕｉｓｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｅｄ．  Ｃｈｅｍ．  ２３：１３９２−１３９８  （１９８０）；  Ｊｅｎｎｉｎｇｓ−Ｗｈｉｔｅ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ  Ｌｅｔｔ．  ２３：２５３３  （１９８２）；  Ｓｚｅｌｋｅ  ｅｔ  ａｌ．，  ＥＰ  ４５６６５  （１９８２）；  Ｈｏｌｌａｄａｙ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ  Ｌｅｔｔ．  ２４：４４０１−４４０４  （１９８３）；及びＨｒｕｂｙ，  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉ．  ３１：１８９−１９９  （１９８２）を参照）。ペプチド模倣体の他の例としては、一つ以上のベンゾジアゼピン分子で置換されたペプチド（例えば、Ｊａｍｅｓ，  Ｇ．  Ｌ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９９３）  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２６０：１９３７−１９４２参照）、及び架橋してラクタムあるいは他の環状構造を形成した主鎖を含むペプチドが挙げられる。
【００６１】
当該分野の技術者は、ペプチドあるいはポリペプチドの全てのアミノ酸が修飾される必要はないということを理解するであろう。同様に、全てのアミノ酸が同じ方法で修飾される必要はない。このように本発明のペプチド誘導体、類似体及びペプチド模倣体は、２つ以上の化学的に別個の領域を有するキメラ分子を含み、それぞれの領域は少なくとも一つのアミノ酸あるいはその修飾体を含む。
【００６２】
Ｗｎｔシグナル伝達経路のポリペプチド及びペプチドアクティベーターとしては、Ｗｎｔタンパクに相当するものを含み、例えば、ヒトＷｎｔ１、Ｗｎｔ２、Ｗｎｔ３、Ｗｎｔ４、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ７ａ及びＷｎｔ７ｂ、及びマウスＷｎｔ１、Ｗｎｔ２、Ｗｎｔ３ａ、Ｗｎｔ３ｂ、Ｗｎｔ４、Ｗｎｔ５ａ、Ｗｎｔ５ｂ、Ｗｎｔ６、Ｗｎｔ７ａ、Ｗｎｔ７ｂ、Ｗｎｔ８ａ、Ｗｎｔ８ｂ、Ｗｎｔ１０ａ、Ｗｎｔ１０ｂ、Ｗｎｔ１１及びＷｎｔ１２、またはそれらの活性フラグメントや変異体が挙げられる。また、Ｗｎｔタンパクのアクティベーター及びエフェクタータンパクに相当するポリペプチドとして、例えば、Ｄｉｓｈｅｖｅｌｅｄ（Ｄｖｌ）；β−カテニン；Ｆｚｄ１，２，３，又は４；Ｔｃｆ／ＬＥＦ及びＡｘｉｎ、またはそれらの活性フラグメントや変異体も含まれる。他のシグナル伝達経路、例えば、カドヘリン介在性経路が、Ｗｎｔシグナル伝達経路に影響を与えることが知られている。従って、カドヘリンはＷｎｔ伝達経路のエフェクターであると考えられる。また、Ｗｎｔシグナル伝達経路のポリペプチド及びペプチドアクティベーターは、例えば、グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３α及び３β（ＧＳＫ−３α及び３β）のような、Ｗｎｔシグナル伝達経路を抑制または下方制御するタンパクの活性を抑制するものも包含する。
【００６３】
本発明の一つの実施形態において、アクティベーターはＷｎｔタンパクまたはその活性フラグメントあるいは変異体である。別の実施形態においては、アクティベーターがヒトＷｎｔ５ａ、５ｂ、７ａまたは７ｂタンパク、またはその活性フラグメントあるいは変異体である。また別の実施形態においては、いかなる方法でも限定することを意味するものではないが、アクティベーターはヒトＷｎｔ５ａ、５ｂ、７ｂ、１０ａ、１０ｂタンパク、またはその活性フラグメントあるいは変異体である。さらに、アクティベーターはｗｎｔタンパクの組合せを含んでもよい。
【００６４】
活性フラグメントは、野生型タンパクと実質的に同じ活性を保持する、自然発生の（または野生型の）タンパクのフラグメントである。候補フラグメントは、野生型タンパクから生じたランダムフラグメントから選択することができ、あるいは特に設計することもできる。フラグメントの活性を試験して、野生型タンパクと比較し、野生型タンパクと実質的に同じ活性を持つフラグメントを選択する。ポリペプチドフラグメントの作成方法は、当該分野でよく知られており、野生型タンパクまたはその組換え体の酵素的、化学的、または機械的な切断、当該フラグメントをエンコードする核酸の発現、化学合成等がある。
【００６５】
変異体のタンパク、ポリペプチドあるいはフラグメントは、一つ以上のアミノ酸残基が削除され、付加され、あるいは野生型タンパクのアミノ酸配列にあるアミノ酸残基が置換されたものである。本発明に関連して、変異体はまた、野生型タンパクと実質的に同じ活性を保持している。通常、変異体が一つ以上のアミノ酸置換を有する場合、それらは「同類」置換である。同類置換は、一つのアミノ酸残基を同様の側鎖特性を有する別の残基で置き換えることを伴う。当該分野において知られているように、２０の自然発生アミノ酸はその側鎖の物理化学的性質によって分類することができる。適当な分類としては、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、メチオニン、フェニルアラニン及びトリプトファン（疎水性側鎖）；グリシン、セリン、スレオニン、システイン、チロシン、アスパラギン、及びグルタミン（極性非帯電側鎖）；アスパラギン酸及びグルタミン酸（酸性側鎖）及びロイシン、アルギニン及びヒスチジン（塩基性側鎖）がある。アミノ酸の別の分類はフェニルアラニン、トリプトファン、及びチロシン（芳香族側鎖）である。同類置換は、アミノ酸を同じグループの別のアミノ酸で置換することを含む。
【００６６】
本発明に関連して、フラグメントまたは変異体が野生型タンパクの活性の約５０％を示せば、それは野生型タンパクと実質的に同じ活性をもつとみなされる。一つの実施形態においては、変異体タンパクまたはフラグメントは、野生型タンパクの活性の約６０％を示す。別の実施形態においては、変異体タンパクまたはフラグメントは、野生型タンパクの活性の約７５％を示す。さまた別の実施形態においては、変異体タンパクまたはフラグメントは、野生型タンパクの活性の約９０％を示す。
【００６７】
本発明によって意図されるその他のポリペプチドアクティベーターとしては、Ｗｎｔポリペプチドの活性を通常抑制するタンパクと結合し、抑制するポリペプチドまたはペプチドが挙げられる。そのようなタンパクの例としては、可溶性Ｆｒｉｚｚｌｅｄ関連タンパク（ｓＦＲＰ）ファミリーのメンバーがある。このファミリーのいくつかのメンバーはヒトに存在することが知られており、例えば、ｓＦＲＰ１、ｓＦＲＰ２、ｓＦＲＰ３及びｓＦＲＰ４などがある。
【００６８】
本発明の一つの実施形態において、モジュレーターは、ｓＦＲＰへ結合してＷｎｔポリペプチドのｓＦＦＰへの結合を妨げるペプチド誘導体、類似体またはペプチド模倣体である。別の実施形態においては、モジュレーターはｓＦＲＰ２またはｓＦＲＰ３へ結合するペプチド誘導体、類似体またはペプチド模倣体である。標的タンパクへ結合し抑制するポリペプチドまたはペプチドを同定する方法は、当該分野において知られている。そのようなペプチドを同定する典型的な方法の一つに、ファージディスプレイ法によるものがある。ランダムな短ペプチドのファージディスプレイライブラリーは、例えば、Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ，  Ｉｎｃ．より市販されており、「パニング」として知られるインビトロ選択プロセスにより利用することができる。その最も簡単な形式において、パニングは、初めにファージディスプレイぺプチドのライブラリーを、標的分子でコートしたプレートまたはビーズと培養し、次に非結合性のファージ粒子を洗い流し、最後に特異的に結合したファージを溶離することを含む。その後、特異的に結合したファージにより示されたペプチドを、標準的な技術によって分離、配列決定する。場合によっては、分離されたペプチドの結合活性も、標準的な技術を用いて試験することができる。
【００６９】
本発明によって意図されるタンパク、ポリペプチド及びペプチドインヒビターは、Ｗｎｔシグナル伝達経路において、Ｗｎｔポリペプチドを通常抑制するタンパク、及びその活性フラグメントならびに変異体を含む。そのようなタンパクの例としては、上記ｓＦＲＰファミリーのメンバー、及びＧＳＫ−３α及び３βが挙げられる。インヒビターの他の例として、ＷｎｔＦｉｚｚｌｅｄ受容体へ結合し、それによってＷｎｔの結合及びその後のシグナル伝達経路下流のタンパクの活性化を妨げるペプチド誘導体、類似体またはペプチド模倣体が挙げられる。また、本発明のポリペプチド及びペプチドインヒビターは、Ｗｎｔ伝達経路のエフェクターの活性を抑制するもの、例えばＤｖｌ、β−カテニン、Ｔｃｆ及びＡｘｉｎなども含む。
【００７０】
本発明は、野生型タンパクの作用を妨げてタンパク活性のインヒビターとして働く、生物学的に不活性なタンパクまたはタンパクフラグメントの使用も意図するものである。例としては、優性抑制型変異体が挙げられる。本発明によって意図される生物学的に不活性なタンパクまたはフラグメントは、野生型タンパクよりも実質的に活性の低いものである。候補抑制フラグメントは、野生型タンパクから生成したランダムフラグメントから選択することができる。候補ポリペプチドフラグメントを生成する方法は、当該分野の技術者によく知られており、前記のものが挙げられる。生物学的に不活性なタンパクも、例えば、タンパクをエンコードする核酸の部位特異的変異導入法またはランダム変異導入法、あるいは、化学的または物理的手段によるタンパクの不活性化によって作成することができる。 
【００７１】
本発明に関連して、生物学的に不活性なタンパク、フラグメントまたは変異体が野生型タンパクの活性の約７５％以下を示すとき、それは野生型タンパクよりも実質的に低い活性をもつとみなされる。別の実施形態においては、変異体タンパクまたはフラグメントは、野生型タンパクの活性の約６０％以下を示す。さらなる実施形態においては、生物学的に不活性な変異体タンパクまたはフラグメントは、野生型タンパクの活性の約５０％以下、例えば、野生型タンパクの活性の約１％〜約４０％を示す。 
【００７２】
本発明のポリペプチド及びペプチドは、細胞抽出物からの精製または組換え技術の使用のような、当該分野で公知の方法により調製することができる。Ｗｎｔシグナル伝達経路に含まれる多数のＷｎｔポリペプチド及び他のタンパクのアミノ酸配列は、当該分野において知られている。Ｗｎｔシグナル伝達経路における既知タンパクの代表的なＧｅｎＢａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．を表１に示す。これらの配列の一つに由来するポリペプチドまたはそのフラグメントも、当該分野で公知の方法により化学的に合成でき、これに限定されるものではないが、排他的固相合成法、部分的固相合成法、フラグメント縮合、または古典的液相合成法などがある（Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ  （１９６３）  Ｊ．  Ａｍ  Ｃｈｅｍ．  Ｓｏｃ．  ８５：２１４９；  Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ  （１９８６）  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２３２：３４１）。ポリペプチド及びペプチドは、クロマトグラフィー（例えば、イオン交換、アフィニティ、及びサイジングカラムクロマトグラフィーまたは高速液体クロマトグラフィー）、遠心分離、溶解度差のような標準的な技術を用いて精製でき、あるいは当該分野の技術者によく知られた他の技術により精製することができる。Ｗｎｔタンパクの精製プロトコルは、報告されている（Ｗｉｌｌｅｒｔ，  ｅｔ  ａｌ．，  （２００３）  Ｎａｔｕｒｅ，  ４２３：４４８−４５２）。さらに、Ｗｎｔ伝達経路におけるいくつかのタンパクは市販されており、例えば、ｓＦＲＰ２及びｓＦＲＰ３がある（Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ）。
【００７３】
【表１−１】
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【００７４】
【表１−２】
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【００７５】
【表１−３】
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【００７６】
【表１−４】
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【００７７】
【表１−５】
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【００７８】
【表１−６】
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【００７９】
核酸配列
本発明の一つの実施形態において、ポリペプチド及びペプチドは組換え技術により生成される。一般的には、これは、ポリペプチドまたはペプチドをエンコードするＤＮＡの全てまたは一部を含む発現ベクターでの、適当な宿主細胞の形質転換（形質移入、形質導入、または感染を含む）を含む。Ｗｎｔシグナル伝達経路に含まれるタンパクの多くの遺伝子配列が 、当該分野において知られている。Ｗｎｔシグナル伝達経路における既知タンパクをエンコードする遺伝子の代表的なＧｅｎＢａｎｋ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．を表２に示す。
【００８０】
【表２−１】
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【００８１】
【表２−２】
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【００８２】
【表２−３】
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【００８３】
【表２−４】
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【００８４】
【表２−５】
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【００８５】
【表２−６】
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【００８６】
【表２−７】
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【００８７】
本発明にかかるポリペプチドまたはペプチドモジュレーターをエンコードする核酸配列は、標準的な技術によって適当な原料から容易に精製することができ、あるいは、化学的に合成することもできる。核酸は、分離したｍＲＮＡから調製されたゲノムＤＮＡ、ＲＮＡ、ｃＤＮＡ、または標準的な技術によって自然発生核酸配列から増幅したＤＮＡであることができる。核酸を得るための適当な原料は、Ｗｎｔシグナル伝達カスケードのＷｎｔタンパク及び他のタンパクを発現することが知られている細胞である。そのような細胞の例として、一次筋芽細胞がある。
【００８８】
野生型タンパクのフラグメントまたは変異体をエンコードする核酸配列は、部位特異的突然変異誘発技術などの標準的な技術を用いた、コード配列内での一つ以上のヌクレオチドの削除、付加、及び／または置換によって構築することができる。
【００８９】
本発明のポリペプチド及びペプチドは、融合タンパクとして製造することもできる。そのような融合タンパクの用途の一つは、ポリペプチドまたはペプチドの精製または検出を改善することである。例えば、ポリペプチドまたはペプチドを免疫グロブリンのＦｃドメインに融合させることができ、得られた融合タンパクは、タンパクＡカラムを用いて容易に精製することができる。融合タンパクの他の例として、ヒスチジンタグに融合したポリペプチドまたはペプチド（Ｎｉ２＋樹脂カラムで精製可能）、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼに融合したポリペプチドまたはペプチド（グルタチオンカラムで精製可能）、ビオチンに融合したポリペプチドまたはペプチド（ストレプトアビジンカラムまたはストレプトアビジン標識マグネティックビーズで精製可能）が挙げられる。
【００９０】
特定の開始シグナルが、クローニングされた核酸配列の効率的な翻訳に要求されるかもしれない。これらのシグナルは、ＡＴＧ開始コドン及び隣接配列を含む。それ自体の開始コドン及び隣接配列を含む完全な野生型遺伝子またはｃＤＮＡを適当な発現ベクターに挿入する場合には、追加の翻訳コントロールシグナルは必要でないかもしれない。別のケースでは、おそらくＡＴＧ開始コドンを含む外因性のコントロールシグナルが与えられなければならない。さらに、開始コドンは挿入部分の完全な翻訳を確実にするために、目的とするコード配列の読み取り枠に一致している必要がある。外因性の翻訳コントロールシグナル及び開始コドンは、天然または合成であることができる。発現の効率を、適当な転写促進要素及び／または転写終結区の含有によって高めてもよい（Ｂｉｔｔｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．  （１９８７）  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．  １５３，  ５１６）。
【００９１】
本発明の核酸配列と使用する適当な発現ベクターは、これに限定されるものではないが、プラスミド、ファージミド、ウィルス粒子及びベクター、ファージ等が挙げられる。昆虫細胞としては、バキュロウィルス発現ベクターが適当である。植物細胞としては、ウィルス発現ベクター（例えば、カリフラワーモザイクウィルス及びタバコモザイクウィルス等）及びプラスミド発現ベクター（例えば、Ｔｉプラスミド等）が適当である。完全な発現ベクターまたはその一部は、宿主細胞ゲノムへ組み込むことができる。ある状況下では、例えば、ＬＡＣＳＷＩＴＣＨＴＭ  Ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，  ＬａＪｏｌｌａ，  ＣＡ）のような誘導性発現ベクターを使用するのが望ましい。 
【００９２】
分子生物学分野の技術者は、組換えポリペプチドまたはペプチドを得るために、広範で様々な発現システムを用いることができるということを理解するであろう。使用される厳密な宿主細胞は、本発明に重要ではない。ポリペプチドまたはペプチドは、原核宿主中（例えば、Ｅ．  ｃｏｉｌまたはＢ．  ｓｕｂｔｉｌｉｓ）または真核宿主中（例えば、ＳａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓまたはＰｉｃｈｉａ、ＣＯＳ、ＮＩＨ  ３Ｔ３、ＣＨＯ、ＢＨＫ、２９３、２９３−Ｔ、ＡＴｔ−２０またはＨｅＬａ細胞などの哺乳類細胞；昆虫細胞；または植物細胞）で生成できる。形質転換または形質移入の方法及び発現ベクターの選択は、選択した宿主系に依存し、当該分野の技術者により容易に決定することができる。形質転換及び形質移入の方法は、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ  ｅｔ  ａｌ．  （１９９４）  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，  Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋに記載されている；また、様々な発現ベクターは、例えばＣｌｏｎｉｎｇ  Ｖｅｃｔｏｒｓ：  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ  （Ｐｏｕｗｅｌｓ  ｅｔ  ａｌ．，  １９８５，  Ｓｕｐｐ．  １９８７）に提示されているものから選ぶことができる。
【００９３】
また、宿主細胞は、挿入された配列の発現を調節するもの、または特定の所望のやり方で遺伝子産物を修飾及び処理するものを選択してよい。そのようなタンパク産物の修飾（例えばグリコシル化）及び処理（例えば切断）は、タンパクの活性にとって重要であるかもしれない。種々の宿主細胞は、タンパク及び遺伝子産物の翻訳後処理及び修飾のための特徴的な特定のメカニズムを有する。発現した異種タンパクの正確な修飾及び処理を確実にするために、適当な細胞系または宿主系を当該分野の技術者により選択することができる。 
【００９４】
発現ビヒクルを抱いた宿主細胞は、選択された遺伝子の活性化、選択された遺伝子の抑制、形質転換体の選択、または選択された遺伝子の増幅の必要性に応じて、従来の栄養培地中で培養することができる。
【００９５】
（iii）オリゴヌクレオチド
本発明は、Ｗｎｔ遺伝子、あるいはＷｎｔタンパクまたは遺伝子のアクティベーターまたはエフェクターをエンコードする遺伝子を標的とするオリゴヌクレオチドインヒビター及びアクティベーターも意図するものである。本発明に関連して、「オリゴヌクレオチドインヒビター」及び「オリゴヌクレオチドアクティベーター」という用語は、アンチセンスオリゴヌクレオチド、短分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、リボザイム及び三重らせん形成性オリゴヌクレオチドを包含する。
【００９６】
ここで用いる「オリゴヌクレオチド」という用語は、リボ核酸（ＲＮＡ）、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）またはその修飾体、あるいはＲＮＡまたはＤＮＡ模倣体のオリゴマーまたはポリマーをいう。従って、この用語は、自然発生核酸塩基、糖及び共有結合性ヌクレオシド間（主鎖）結合からなるオリゴヌクレオチドを含み、また、機能が類似した非自然発生部分をもつオリゴヌクレオチドも含む。そのような修飾または置換されたオリゴヌクレオチドは、例えば、細胞取り込みの促進、核酸標的に対する親和性の増強、ヌクレアーゼ存在下における安定性の向上などの望ましい特性のために、しばしば天然型よりも好ましい。また、本用語はキメラオリゴヌクレオチドも含む。キメラオリゴヌクレオチドは、２つ以上の化学的に異なる領域を含み、各領域が少なくとも一つのモノマー単位を含むオリゴヌクレオチドである。本発明にかかるオリゴヌクレオチドは、一本鎖でも二本鎖でもよい。
【００９７】
本発明に有用なオリゴヌクレオチドの例としては、修飾された主鎖あるいは非天然ヌクレオシド間結合を有するものが挙げられ、例えば、ホスホロチオエート、キラルなホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホトリエステル、アミノアルキルホスホトリエステル、３’−アルキレンホスホネートやキラルなホスホネートなどのメチル及びその他のアルキルホスホネート、ホスフィネート、３’−アミノホスホラミデートやアミノアルキルホスホラミデートなどのホスホラミデート、チオノホスホラミデート、チオノアルキルホスホネート、チオノアルキルホスホトリエステル、及びこれらの通常の３’−５’結合、２’−５’結合類似体を有するボラノフォスフェート、及びヌクレオシド単位の隣接した対が３’−５’は５’−３’へ結合し、２’−５’は５’−２’へ結合した逆極性をもつ類似体などがある。様々な塩、混合塩、及び遊離酸も含まれる。 
【００９８】
本発明により意図される修飾された主鎖の他の例としては、短鎖アルキルまたはシクロアルキルヌクレオシド間結合、混合へテロ原子及びアルキルまたはシクロアルキルヌクレオシド間結合、または一つ以上の短鎖ヘテロ原子または複素環ヌクレオシド間結合によって形成されるものが挙げられる。そのような主鎖としては、モルフォリノ結合（ヌクレオシドの糖部分から部分的に形成される）；シロキサン主鎖；スルフィド、スルホキシド及びスルホン主鎖；ホルムアセチル及びチオホルムアセチル主鎖；メチレンホルムアセチル及びチオホルムアセチル主鎖；アルケン含有主鎖；スルファミメート主鎖；メチレンイミノ及びメチレンヒドラジド主鎖；スルホネート及びスルホンアミド主鎖；アミド主鎖；及びＮ、Ｏ、Ｓ、ＣＨ２構成部分が混合した他の主鎖が挙げられる。
【００９９】
ここで使用する「アルキル」という用語は、１〜２０の炭素原子をもつ一価のアルキル基をいう。適当なアルキル基の例としては、これに限定されるものではないが、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｎ−ヘキシル等が挙げられる。
【０１００】
「シクロアルキル」という用語は、一つの環または複数の縮合した環を有する、炭素原子が３〜２０の環状アルキル基をいう。適当なシクロアルキル基の例としては、これに限定されるものではないが、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロオクチル等のような単環構造、またはアダマンタニル等のような多環構造が挙げられる。
【０１０１】
本発明は、ヌクレオチド単位の糖及びヌクレオシド間結合の両方が、新しい基で置換されたオリゴヌクレオチド模倣体も意図するものである。塩基単位は、適当な核酸標的とのハイブリダイゼーションのために維持される。優れたハイブリダイゼーション特性を示すそのようなオリゴヌクレオチド模倣体の例としては、ペプチド核酸（ＰＮＡ）［Ｎｉｅｌｓｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２５４：１４９７−１５００  （１９９１）］がある。ＰＮＡ化合物において、オリゴヌクレオチドの糖主鎖は、アミド含有主鎖、特にアミノエチルグリシン主鎖で置換される。核酸塩基は保持され、主鎖のアミド部分のアザ窒素原子へ直接的または間接的に結合する。 
【０１０２】
また、本発明は、「ロックド核酸」（ＬＮＡｓ）を含むオリゴヌクレオチドも意図し、これは、リボースの２’−Ｏを４’−Ｃと結合するメチレン架橋を有する、配座固定された新しいオリゴヌクレオチド類似体である（Ｓｉｎｇｈ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｈｅｍ．  Ｃｏｍｍｕｎ．，  １９９８，  ４：４５５−４５６参照）。ＬＮＡ及びＬＮＡ類似体は、相補的ＤＮＡ及びＲＮＡとの高い二本鎖熱安定性、３’−エキソヌクレアーゼ分解に対する安定性、及び良好な溶解特性を示す。アデニン、シトシン、グアニン、５−メチルシトシン、チミン及びウラシルのＬＮＡ類似体の合成、それらのオリゴマー化、及び核酸認識特性については、すでに記載されている（Ｋｏｓｈｋｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ，  １９９８，  ５４：３６０７−３６３０参照）。不一致配列の調査は、ＬＮＡが、相当する非修飾の対照鎖と比較して一般的に改善された選択性でワトソン−クリック塩基対合則に従うことを示す。
【０１０３】
ＬＮＡを含むアンチセンスオリゴヌクレオチドが記載され（Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  Ｕ．  Ｓ．  Ａ．，  ２０００．  ９７：５６３３−５６３８）、これらは有効かつ無毒であった。さらに、ＬＮＡ／ＤＮＡコポリマーは、血清及び細胞抽出物中において容易に分解されなかった。ＬＮＡは高い熱親和性によって、相補的ＤＮＡまたはＲＮＡ、あるいは相補的ＬＮＡと二本鎖を形成する。ＬＮＡ介在性ハイブリダイゼーションの普遍性は、非常に安定なＬＮＡ：ＬＮＡ二本鎖の形成によって高められている（Ｋｏｓｈｋｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．Ａｍ．  Ｃｈｅｍ．  Ｓｏｃ．，  １９９８，  １２０：１３２５２−１３２５３）。ＬＮＡ：ＬＮＡハイブリダイゼーションは最も熱安定的な核酸型二本鎖システムであることが示され、ＬＮＡのＲＮＡ様特性は二本鎖レベルで確立された。三つのＬＮＡモノマー（ＴまたはＡ）の導入は、ＤＮＡ補体に対して融点を著しく上昇させた。 
【０１０４】
２’−アミノ−ＬＮＡの合成（Ｓｉｎｇｈ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｏｒｇ．  Ｃｈｅｍ．，  １９９８，  ６３，  １００３５−１００３９）及び２’−メチルアミノ−ＬＮＡの合成はすでに記載されており、相補的ＲＮＡ及びＤＮＡ鎖との二本鎖の熱安定性についても報告されている。また、ホスホロチオエート−ＬＮＡ及び２’−チオ−ＬＮＡの調製も記載されている（Ｋｕｍａｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｏｒｇ．  Ｍｅｄ．  Ｃｈｅｍ．  Ｌｅｔｔ．，  １９９８，  ８：２２１９−２２２２）
【０１０５】
本発明にかかる修飾オリゴヌクレオチドは、一つ以上の置換された糖部分を含んでもよい。例えば、オリゴヌクレオチドは、その２’位に次の置換基の一つをもつ糖を含んでよい：ＯＨ；Ｆ；Ｏ−、Ｓ−、またはＮ−アルキル；Ｏ−、Ｓ−、またはＮ−アルケニル；Ｏ−、Ｓ−、またはＮ−アルキニル；またはＯ−アルキル−Ｏ−アルキル。なお、これらアルキル、アルケニル、及びアルキニルは、置換または非置換のＣ１〜Ｃ１０アルキル、またはＣ２〜Ｃ１０アルケニル及びアルキニルであることができる。そのような基の例としては、Ｏ［（ＣＨ２）ｎＯ］ｍＣＨ３、Ｏ（ＣＨ２）ｎＯＣＨ３、Ｏ（ＣＨ２）ｎＮＨ２、Ｏ（ＣＨ２）ｎＣＨ３、Ｏ（ＣＨ２）ｎＯＮＨ２、及びＯ（ＣＨ２）ｎＯＮ［（ＣＨ２）ｎＣＨ３］２が挙げられ、ｎ及びｍは１〜約１０である。あるいは、オリゴヌクレオチドは、その２’位に次の置換基の一つを含んでよい：Ｃ１〜Ｃ１０低級アルキル、置換低級アルキル、アルカリル、アラルキル、Ｏ−アルカリルまたはＯ−アラルキル、ＳＨ、ＳＣＨ３、ＯＣＮ、Ｃｌ、Ｂｒ、ＣＮ、ＣＦ３、ＯＣＦ３、ＳＯＣＨ３、ＳＯ２ＣＨ３、ＯＮＯ２、ＮＯ２、Ｎ３、ＮＨ２、ヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルカリル、アミノアルキルアミノ、ポリアルキルアミノ、置換シリル、ＲＮＡ切断基、レポーター基、インターカレーター、オリゴヌクレオチドの薬物動態学的特性を改善する基、またはオリゴヌクレオチドの薬力学的特性を改善する基、及び同様の特性をもつ他の置換基。具体例としては、２’−Ｏ−メチル（２’−Ｏ−ＣＨ３）、２’−メトキシエトキシ（２’−Ｏ−ＣＨ２ＣＨ２ＯＣＨ３、これは２’−Ｏ−（２−メトキシエチル）または２’−ＭＯＥとしても知られている）［Ｍａｒｔｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｈｅｌｖ．  Ｃｈｉｍ．  Ａｃｔａ，  ７８：４８６−５０４（１９９５）］、２’−ジメチルアミノオキシエトキシ（２’−Ｏ（ＣＨ２）２ＯＮ（ＣＨ３）２基、これは、２’−ＤＭＡＯＥとしても知られている）、２’−アミノプロポキシ（２’−ＯＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２ＮＨ２）及び２’−フルオロ（２’−Ｆ）が挙げられる。
【０１０６】
また、同様の修飾が、オリゴヌクレオチドの他の位置、特に３’末端ヌクレオチドまたは２’−５’結合オリゴヌクレオチドの糖の３’位、及び５’末端ヌクレオチドの５’位になされていてもよい。オリゴヌクレオチドは、ペントフラノシル糖の代わりにシクロブチル部分のような糖模倣体を含んでもよい。 
【０１０７】
本発明にかかるいうオリゴヌクレオチドは、核酸塩基の修飾または置換も含んでよい。ここで使用する「非修飾」または「天然」核酸塩基は、プリン塩基であるアデニン（Ａ）及びグアニン（Ｇ）、及びピリミジン塩基であるチミン（Ｔ）、シトシン（Ｃ）及びウラシル（Ｕ）を含む。修飾核酸塩基としては、他の合成及び天然の核酸塩基が含まれ、５−メチルシトシン（５−ｍｅ−Ｃ）；イノシン；５−ヒドロキシメチルシトシン；キサンチン；ヒポキサンチン；２−アミノアデニン；アデニン及びグアニンの６−メチル及び他のアルキル誘導体；アデニン及びグアニンの２−プロピル及び他のアルキル誘導体；２−チオウラシル、２−チオチミン及び２−チオシトシン；５−ハロウラシル及びシトシン；５−プロピルウラシル及びシトシン；６−アゾウラシル、シトシン及びチミン；５−ウラシル（擬ウラシル）；４−チオウラシル；８−ハロ、８−アミノ、８−チオール、８−チオアルキル、８−ヒドロキシル及び他の８−置換アデニン及びグアニン；５−ハロ、特に５−ブロモ、５−トリフルオロメチル及び他の５−置換ウラシル及びシトシン；７−メチルグアニン及び７−メチルアデニン；８−アザグアニン及び８−アザアデニン；７−デアザグアニン及び７−デアザアデニン；３−デアザグアニン及び３−デアザアデニンなどが挙げられる。さらに、核酸塩基としては、米国特許第３，６８７，８０８号；  Ｔｈｅ  Ｃｏｎｃｉｓｅ  Ｅｎｃｙｃｌｏｐａｅｄｉａ  Ｏｆ  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ａｎｄ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，（１９９０）ｐｐ  ８５８−８５９，Ｋｒｏｓｃｈｗｉｔｚ，  Ｊ．  Ｉ．，  ｅｄ．  Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ；  Ｅｎｇｌｉｓｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ  Ｃｈｅｍｉｅ，  Ｉｎｔ．  Ｅｄ．，  ３０：６１３  （１９９１）；及びＳａｎｇｈｖｉ，  Ｙ．  Ｓ．，  （１９９３）  Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，  ｐｐ  ２８９−３０２，  Ｃｒｏｏｋｅ，  Ｓ．  Ｔ．  ａｎｄ  Ｌｅｂｌｅｕ，  Ｂ．，  ｅｄ．，  ＣＲＣ  Ｐｒｅｓｓに記載のものも挙げられる。これらの核酸塩基のいくつかは、本発明のオリゴマー化合物の結合親和性向上に特に有用である。このようなものとしては、５−置換ピリミジン、６−アザピリミジン、及びＮ−２、Ｎ−６及びＯ−６置換プリンが挙げられ、２−アミノプロピルアデニン、５−プロピニルウラシル及び５−プロピニルシトシンなどがある。５−メチルシトシン置換については、０．６−１．２℃で核酸の二本鎖の安定性が向上することが示されている［Ｓａｎｇｈｖｉ，  Ｙ．  Ｓ．，  (１９９３)  Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ａｎｄ  応用ｓ，  ｐｐ  ２７６−２７８，  Ｃｒｏｏｋｅ，  Ｓ．  Ｔ．  ａｎｄ  Ｌｅｂｌｅｕ，  Ｂ．，  ｅｄ．，  ＣＲＣ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｂｏｃａ  Ｒａｔｏｎ］。本発明に含まれる別のオリゴヌクレオチド修飾は、オリゴヌクレオチドの活性、細胞分布または細胞取り込みを高める一つ以上の部分または結合体のオリゴヌクレオチドへの化学結合である。そのような部分としては、これに限定されるものではないが、コレステロール部分［Ｌｅｔｓｉｎｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．  ＵＳＡ���  ８６：６５５３−６５５６  （１９８９）］、コール酸［Ｍａｎｏｈａｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｏｒｇ．  Ｍｅｄ．  Ｃｈｅｍ．  Ｌｅｔ．，  ４：１０５３−１０６０  （１９９４）］、チオエーテル、例えばヘキシル−Ｓ−トリチオチオール［Ｍａｎｏｈａｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｎｎ．  Ｎ．  Ｙ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．，  ６６０：３０６−３０９  （１９９２）；  Ｍａｎｏｈａｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｏｒｇ．  Ｍｅｄ．  Ｃｈｅｍ．  Ｌｅｔｔ．，  ３：２７６５−２７７０  （１９９３）］、チオコレステロール［Ｏｂｅｒｈａｕｓｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，  ２０：５３３−５３８  （１９９２）］、脂肪族鎖、例えばドデカンジオールまたはウンデシル残基［Ｓａｉｓｏｎ−Ｂｅｈｍｏａｒａｓ  ｅｔ  ａｌ．，  ＥＭＢＯ  Ｊ．，  １０：１１１１−１１１８  （１９９１）；  Ｋａｂａｎｏｖ  ｅｔ  ａｌ．，  ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ．，  ２５９：３２７−３３０  （１９９０）；  Ｓｖｉｎａｒｃｈｕｋ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｉｍｉｅ，  ７５：４９−５４（１９９３）］、リン脂質、例えばジ−ヘキサデシル−ｒａｃ−グリセロールやトリエチルアンモニウム  １，２−ジ−Ｏ−ヘキサデシル−ｒａｃ−グリセロ−３−Ｈ−ホスホネート［Ｍａｎｏｈａｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ  Ｌｅｔｔ．，  ３６：３６５１−３６５４  （１９９５）；  Ｓｈｅａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎｕｃｌ．  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，  １８：３７７７−３７８３  （１９９０）］、ポリアミンまたはポリエチレングリコール鎖［Ｍａｎｏｈａｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎｕｃｌｅｓｉｄｅｓ  ＆  Ｎｕｃｌｅｔｉｄｅｓ，  １４：９６９−９７３  （１９９５）］またはアダマンタン酢酸［Ｍａｎｏｈａｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ  Ｌｅｔｔ．，  ３６：３６５１−３６５４  （１９９５）］、パルミチル部分［Ｍｉｓｈｒａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｉｍ．  Ｂｉｏｐｈｙｓ．  Ａｃｔａ，  １２６４：２２９−２３７  （１９９５）］、または、オクタデシルアミンまたはヘキシルアミノ−カルボニル−オキシコレステロール部分［Ｃｒｏｏｋｅ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．  Ｅｘｐ．  Ｔｈｅｒ．，  ２７７：９２３−９３７  （１９９６）］などが挙げられる。
【０１０８】
当該分野の技術者には、与えられたオリゴヌクレオチド中の全ての位置が、均一に修飾されることが必ずしも必要でないことが認識されるであろう。従って、本発明は、一つのオリゴヌクレオチド、またはオリゴヌクレオチド内のただ一つのヌクレオシドにでも、前記修飾の一つ以上を導入することを意図する。 
【０１０９】
前記の通り、キメラ化合物であるオリゴヌクレオチドは、本発明の範囲に含まれる。キメラヌクレオチドは、通常、オリゴヌクレオチドに向上したヌクレアーゼ分解抵抗性、向上した細胞取り込み、及び／または標的核酸に対する向上した結合親和力を与えるために、オリゴヌクレオチドが修飾された少なくとも一つの領域を含む。オリゴヌクレオチドの付加的な領域は、ＲＮＡ：ＤＮＡまたはＲＮＡ：ＲＮＡハイブリッドの切断能をもつ酵素の基質として働いてよい。 
【０１１０】
本発明に関連して、オリゴヌクレオチドがＤＮＡ及びＲＮＡヌクレアーゼによって容易に分解されないように修飾されているか、または、それ自身がＤＮＡまたはＲＮＡヌクレアーゼから保護する送達ビヒクル中に配置されている場合、そのオリゴヌクレオチドは「ヌクレアーゼ抵抗性」である。ヌクレアーゼ抵抗性オリゴヌクレオチドとしては、例えば、メチルホスホネート、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホトリエステル、及びモルホリノオリゴマーなどがある。ヌクレアーゼ抵抗性を付与する適当な送達ビヒクルには、例えばリポソームが挙げられる。 
【０１１１】
さらに、本発明は、オリゴヌクレオチドの薬物動態学的及び／または薬力学的特性を改善する基を含むオリゴヌクレオチドも意図するものである。
【０１１２】
ここで使用される「アンチセンスオリゴヌクレオチド」という用語は、目的遺伝子から転写されたｍＲＮＡの一部と相補的なヌクレオチド配列をもつオリゴヌクレオチドを指す。本発明に関連して、目的遺伝子とは、目的タンパク、すなわちＷｎｔシグナル伝達経路のタンパクをエンコードする遺伝子であり、アンチセンスオリゴヌクレオチドはその遺伝子を標的とする。標的プロセスは、所望の効果、すなわち遺伝子によってエンコードされたタンパクの発現調節が結果として起こるようなアンチセンス相互作用のための部位を、この核酸配列内部で決定することを含む。標的部位が同定されれば、所望の結果を与えるために、標的と十分に相補的な（すなわち、十分な強度と特異性をもってハイブリッド形成する）オリゴヌクレオチドが選択される。
【０１１３】
一般的に、遺伝子またはそれから転写されたｍＲＮＡには５つの領域があり、これらはアンチセンス調節ための標的としてよい：５’非翻訳領域（５’−ＵＴＲ）、翻訳開始（またはスタート）コドン領域、読み取り枠（ＯＲＦ）、翻訳終止（またはストップ）コドン領域、及び３’非翻訳領域（３’−ＵＴＲ）。 
【０１１４】
当該分野で知られているように、いくつかの真核生物転写物は直接的に翻訳されるが、大部分の哺乳類遺伝子または読み取り枠（ＯＲＦｓ）は、「イントロン」として知られる、翻訳される前に転写物から切除される一つ以上の配列を含む。ＯＲＦの発現（非切除）部分は「エクソン」と呼ばれ、これがつなぎ合わされてｍＲＮＡ転写物が形成される（Ａｌｂｅｒｔｓ  ｅｔ  ａｌ．，  （１９８３）  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃｅｌｌ．  Ｇａｒｌａｎｄ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｉｎｃ．，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，  ｐｐ．  ４１１−４１５）。本発明に関連して、イントロンとエクソンの両方が、イントロン／エクソンスプライス部位と同様に、アンチセンスの標的として働いてもよい。さらに、ｍＲＮＡ分子は５’キャップ領域を有し、これもアンチセンスの標的として働いてよい。ｍＲＮＡの５’キャップは、５’−５’トリホスフェート結合を介してｍＲＮＡの５’末端残基と結合したＮ７−メチル化グアノシン残基を含む。ｍＲＮＡの５’キャップ領域は、５’キャップ構造自体を含み、またキャップに隣接した初めの５０ヌクレオチドも含むと考えられる。
【０１１５】
本発明にかかるアンチセンスオリゴヌクレオチドは、その配列が二本鎖、ヘアピン構造を形成する、またはホモオリゴマー／配列反復を含む最小の可能性を示すように、目的遺伝子に相補的な配列から選択される。さらに、オリゴヌクレオチドはＧＣクランプを含んでもよい。これらの特性が様々なコンピューターモデル化プログラム、例えば、ＯＬＩＧＯＴＭ  Ｐｒｉｍｅｒ  Ａｎａｌｙｓｉｓ  Ｓｏｆｔｗａｒｅ、Ｖｅｒｓｉｏｎ５．０（Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｂｉｌｓｃｉｅｎｃｅｓ，  Ｉｎｃ．，  Ｐｌｙｍｏｕｔｈ，  ＭＮ）を用いて定性的に決定可能であることは、当該分野の技術者の認識するところであろう。 
【０１１６】
アンチセンスオリゴヌクレオチドが、有効であるために、その標的配列の補体と１００％の同一性を有する必要はないことは、当該分野において理解されている。従って、本発明にかかるアンチセンスオリゴヌクレオチドは、標的配列の補体と少なくとも約７０％同一の配列を有する。本発明の一つの実施形態において、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、標的配列の補体と少なくとも約８０％同一の配列を有する。他の実施形態においては、標的配列の補体と少なくとも約９０％または約９５％同一の配列を有し、いくつかの塩基のギャップまたはミスマッチは許容される。同一性は、例えば、ｔｈｅ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ  Ｃｏｍｐｕｔｅｒ  Ｇｒｏｕｐ  （ＧＣＧ）ソフトウエアのＢＬＡＳＴＮプログラムを用いて決定することができる。
【０１１７】
本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドが目的遺伝子の発現抑制において機能するために、アンチセンスオリゴヌクレオチドが標的配列に十分な特異性を示し、細胞内の他の核酸配列に結合しないことが必要である。従って、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、標的配列の補体と適当なレベルの配列同一性を有するだけでなく、他の既知配列に酷似しているべきではない。従って、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、他の何れの哺乳類核酸配列とも５０％未満の同一性であるべきである。 
【０１１８】
本発明にかかるアンチセンスオリゴヌクレオチドは、通常、７〜１００のヌクレオチド長さである。一つの実施形態において、アンチセンスオリゴヌクレオチドは約７〜約５０のヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体を含む。別の実施形態においては、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、約７〜約３５のヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体を含む。他の実施形態においては、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、約１２〜約３５のヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体を含み、また、約１５〜約２５のヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体を含む。
【０１１９】
本発明は、短分子干渉二本鎖ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡｓ）であるオリゴヌクレオチドモジュレーターも意図している。ｓｉＲＮＡｓが介在するＲＮＡ干渉は、転写後の遺伝子サイレンシングにおいて重要な役割を果たすことが、当該分野において知られている［Ｚａｍｏｒｅ，  Ｎａｔｕｒｅ  Ｓｔｒｕｃ．  Ｂｉｏｌ．，  ８：７４６−７５０  （２００１）］。自然界では、ｓｉＲＮＡ分子は、通常２１〜２２塩基対長さで、長い二本鎖ＲＮＡ分子が内因性リボヌクレアーゼの作用によって切断されるときに生じる。最近、標的遺伝子の一部と同一の配列をもつ合成ｓｉＲＮＡ分子による哺乳類細胞の形質移入が、標的遺伝子のｍＲＮＡレベルを低下させることが示された［Ｅｌｂａｓｈｉｒ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔｕｒｅ，  ４１１：４９４−４９８  （２００１）］。
【０１２０】
本発明にかかるオリゴヌクレオチドインヒビターは、ｓｉＲＮＡの配列が目的遺伝子の一部に相当するように、目的遺伝子を標的とするｓｉＲＮＡ分子であることができる。当該分野で知られているように、有効なｓｉＲＮＡ分子は、通常３０塩基対長さよりも小さく、インターフェロン応答を介した細胞中の非特異的ＲＮＡ干渉経路の引き金となるのを妨げるのを助ける。従って、本発明の一つの実施形態において、ｓｉＲＮＡ分子は約１５〜約２５の塩基対長さである。別の実施形態においては、約１９〜約２２の塩基対長さである。 
【０１２１】
さらに、二本鎖ｓｉＲＮＡ分子は、分子のリボヌクレアーゼ介在性分解を最小限にするため、３’及び５’末端にｐｏｌｙ−Ｔまたはｐｏｌｙ−Ｕ突出部を含むことができる。通常、３’及び５’末端の突出部には、２つのチミジンまたは２つのウリジン残基を含む。ｓｉＲＮＡ分子の設計及び構築については、当該分野において知られている［例えば、Ｅｌｂａｓｈｉｒ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔｕｒｅ，  ４１１：４９４−４９８  （２００１）；  Ｂｉｔｋｏ  ａｎｄ  Ｂａｒｉｋ，  ＢＭＣ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，  １：３４  （２００１）参照］。さらに、インビトロ転写によるｓｉＲＮＡ分子構築の、迅速且つ効率的な手段を備えたキットも市販されており（Ａｍｂｉｏｎ，  Ａｕｓｔｉｎ，  ＴＸ；  Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ，  Ｂｅｖｅｒｌｙ，  ＭＡ）、本発明のｓｉＲＮＡ分子の構築に用いてもよい。
【０１２２】
さらに、本発明は、目的タンパクをエンコードするｍＲＮＡを特異的に標的とするリボザイムオリゴヌクレオチドモジュレーターも意図している。当該分野で知られているように、リボザイムは、他の分離ＲＮＡ分子をヌクレオチド配列に特異的な方法で繰り返し切断できるようにする酵素活性をもつＲＮＡ分子である。そのような酵素活性をもつＲＮＡ分子は、実質的にどのようなｍＲＮＡ転写物も標的とすることができ、インビトロで効率的な切断を行うことができる［Ｋｉｍ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ，  ８４：８７８８，  （１９８７）；  Ｈａｓｅｌｏｆｆ  ａｎｄ  Ｇｅｒｌａｃｈ，  Ｎａｔｕｒｅ，  ３３４：５８５，  （１９８８）；  Ｃｅｃｈ，  ＪＡＭＡ，  ２６０：３０３０，  （１９８８）；  Ｊｅｆｆｅｒｉｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，  １７：１３７１，  （１９８９）］。
【０１２３】
通常、リボザイムは非常に近接した２つの部分を含む：すなわち、標的ｍＲＮＡ配列と相補的な配列をもつｍＲＮＡ結合部位、及び標的ｍＲＮＡを切断するよう作用する触媒部位である。リボザイムは、リボザイムの標的ｍＲＮＡ結合部位による相補的塩基対形成により、標的ｍＲＮＡをまず認識、結合することによって作用する。標的へ特異的に結合すると、リボザイムは標的ｍＲＮＡの切断を触媒する。そのような戦略的切断は、エンコードされたタンパクの合成を指示する標的ｍＲＮＡの能力を無効にする。標的とするｍＲＮＡと結合し、切断を行うと、リボザイムは放出され、繰り返し新たな標的ｍＲＮＡ分子へ結合し、切断を行うことができる。
【０１２４】
最も特徴的なリボザイム分子の一つは、「ハンマーヘッドリボザイム」である。ハンマーヘッドリボザイムは、ヌクレオチド配列において、標的ｍＲＮＡの少なくとも一部に相補的なハイブリッド形成領域、及び、標的ｍＲＮＡに結合して切断する触媒領域を含む。一般的に、ハイブリッド形成領域は、少なくとも９のヌクレオチドを含む。従って、本発明は、目的タンパクをエンコードする遺伝子に相補的な少なくとも９のヌクレオチドを含み、適当な触媒ドメインに結合するハイブリッド形成領域をもつハンマーヘッドリボザイムであるオリゴヌクレオチドインヒビターを意図している。そのようなリボザイムの構築と作製については、当該分野でよく知られている［例えば、Ｈａｓｅｌｏｆｆ  ａｎｄ  Ｇｅｒｌａｃｈ，  Ｎａｔｕｒｅ，  ３３４：５８５−５９１  （１９９８）］。
【０１２５】
本発明にかかるリボザイムには、Ｔｅｔｒａｈｙｍｅｎａ  ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌａ（ＩＶＳ、またはＬ−１９  ＩＶＳ  ＲＮＡとして知られる）において自然発生するもののような、ＲＮＡエンドリボヌクレアーゼ（以下、「Ｃｅｃｈタイプリボザイム」という）も含まれ、これは広く文献に記載されている［Ｚａｕｇ， ｅｔ ａｌ．，  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２２４：５７４−５７８  (１９８４)；  Ｚａｕｇ  ａｎｄ  Ｃｅｃｈ，  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２３１：４７０−４７５  （１９８６）；Ｚａｕｇ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔｕｒｅ，  ３２４：４２９−４３３  （１９８６）；米国特許第４，９８７，０７１号；Ｂｅｅｎ  ａｎｄ  Ｃｅｃｈ，  Ｃｅｌｌ，  ４７：２０７−２１６  （１９８６）］。Ｃｅｃｈタイプリボザイムは、８ヌクレオチド活性部位を有し、これが標的ｍＲＮＡ配列とハイブリッド形成し、次いでリボザイムにより標的ｍＲＮＡが切断される。
【０１２６】
リボザイムと、最大のリボザイム活性を生み出すその基質との間に、幅の狭い結合自由エネルギーがあることは、当該分野の技術者は理解しているであろう。そのような結合エネルギーは、ｍＲＮＡ結合部位において、ＧがＩ（イノシン）へ、またＵがＢｒＵ（ブロモウラシル）へ置換（または、当該分野で知られた同等の置換）したリボザイムを作成することによって最適化できる。そのような置換は、標的認識配列や、ｍＲＮＡ結合部位の長さ、またはリボザイムの酵素部位を変えることなく、結合自由エネルギーの操作を可能にする。自由エネルギー対リボザイム活性の曲線の形は、リボザイム／基質相互作用の規模を変える複雑さなしに、各塩基（または、いくつかの塩基）が修飾または非修飾である、当該分野で公知の標準的実験データを用いて容易に決定することができる。
【０１２７】
必要ならば、そのような実験を用いて、最も活性なリボザイム構造を示すことができる。従って、修飾塩基の使用は、最大のリボザイム活性を確保するために、結合自由エネルギーの「微調整」を可能とし、また、これは本発明の範囲内であるとみなされる。さらに、非標的ＲＮＡの切断が問題となる場合は、前記塩基の置換、例えば、Ｇに代えてＩとすることで、基質特異性レベルをより高めてもよい。 
【０１２８】
さらに、本発明は、標的遺伝子の５’末端でハイブリット形成及び三重らせん構造を形成し、転写の遮断に用いることができるオリゴヌクレオチドモジュレーターも意図している。三重らせん形成性オリゴヌクレオチドは、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての前記記載のように設計及び作製することができる。 
【０１２９】
本発明のオリゴヌクレオチドモジュレーターは、当該分野の技術者によく知られた従来技術によって調製することができる。例えば、オリゴヌクレオチドは、市販の装置を使用した固相合成法を用いて調製することができ、例えば、Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  Ｃａｎａｄａ  Ｉｎｃ．（Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，  Ｃａｎａｄａ）から入手可能な装置がある。当該分野においてよく知られているように、ホスホロチオエートやアルキル化誘導体のような修飾オリゴヌクレオチドも、同様の方法によって容易に調製することができる。
【０１３０】
あるいは、オリゴヌクレオチドモジュレーターは、当該分野において公知の標準的な技術を用いて、自然発生標的遺伝子またはｍＲＮＡの酵素消化及び／または増幅、あるいは、ｍＲＮＡから合成したｃＤＮＡの酵素消化及び／または増幅によって調製することができる。オリゴヌクレオチドインヒビターがＲＮＡを含む場合は、当該分野において公知のインビトロ転写方法によって調製することができる。また、前記のように、ｓｉＲＮＡ分子も、市販のインビトロ転写キットを用いて、簡便に調製することができる。
【０１３１】
オリゴヌクレオチドも組換えＤＮＡ技術を用いて調製することができる。従って、本発明は、オリゴヌクレオチドインヒビターをエンコードする核酸配列を含む発現ベクター、及び、それに続くエンコードされたオリゴヌクレオチドの適当な宿主細胞中での発現も包含する。そのような発現ベクターは、当該分野で公知の方法を用いて、容易に構築することができる［例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，  Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，  Ｉｎｃ，  ＮＹ．  （１９８９  ａｎｄ  ｕｐｄａｔｅｓ）参照］。 
【０１３２】
（ｉｖ）抗体
本発明は、Ｗｎｔシグナル伝達経路の標的タンパクに対して産生され、タンパクへ結合して抑制することができる抗体及び抗体フラグメントの使用も意図している。本発明に関連して、標的タンパクはＷｎｔタンパク、またはＷｎｔタンパクのアクティベーターまたはエフェクターである。 
【０１３３】
本発明の一つの実施形態において、モジュレーターは、ｓＦＲＰ１、２、３または４などのｓＦＲＰに特異的に結合して、ｓＦＲＰがＷｎｔポリペプチドと結合するのを妨げる抗体または抗体フラグメントである。この実施形態において、抗体または抗体フラグメントは、Ｗｎｔ伝達経路のアクティベーターとして作用する。別の実施形態においては、モジュレーターは、Ｆｚｄ１、４または７などのＦｚｄ受容体タンパクへ結合して、ＦｚｄタンパクがＷｎｔポリペプチドと結合するのを妨げる抗体または抗体フラグメントである。この実施形態において、抗体または抗体フラグメントは、Ｗｎｔ伝達経路のインヒビターとして作用する。
【０１３４】
抗体の生成のため、様々な宿主、例えば、ヤギ、ウサギ、ラット、マウス、及びヒトなどを、標的タンパクまたは免疫原性をもつそのフラグメントまたはペプチドで免疫することができる。宿主種に応じて、免疫反応を高めるのに様々なアジュバントを用いてよい。そのようなアジュバントとしては、これに限定されるものではないが、フロイントアジュバント、水酸化アルミニウムなどの鉱物ゲル、及びリゾレチチン、プルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、オイルエマルジョン、キーホールリンペットヘモリシン（ＫＬＨ）、ジニトロフェノールなどの界面活性物質が挙げられる。ヒトに使用されるアジュバントの例としては、例えば、ＢＣＧ（ｂａｃｉｌｌｉ  Ｃａｌｍｅｔｔｅ−Ｇｕｅｒｉｎ）及びＣｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｐａｒｖｕｍが挙げられる。 
【０１３５】
抗体の誘導に使用されるペプチドまたはタンパクフラグメントは、約５アミノ酸程度からなる小さなアミノ酸配列を有することができる。これらのペプチドまたはタンパクフラグメントは、野生型タンパクのアミノ酸配列の一部と同一であることができ、あるいは自然発生の小分子のアミノ酸配列全体を含むことができる。必要であれば、標的タンパクのアミノ酸の短ストレッチを、ＫＬＨのような別のタンパクのそれと融合し、キメラ分子に対する抗体を作ることができる。 
【０１３６】
標的タンパクに対するモノクローナル抗体は、連続培養細胞系により抗体分子産生のための技術を用いて調製することができる。このような技術として、これに限定されるものではないが、ハイブリドーマ法、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ法、ＥＢＶ−ハイブリドーマ法などが挙げられる（例えば、Ｋｏｈｌｅｒ，  Ｇ．  ｅｔ  ａｌ．（１９７５）  Ｎａｔｕｒｅ  ２５６：４９５−４９７；Ｋｏｚｂｏｒ，  Ｄ．  ｅｔ  ａｌ．（１９８５）  Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ８１：３１−４２；Ｃｏｔｅ，  Ｒ．  Ｊ．  ｅｔ  ａｌ．（１９８３）  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ，  ８０：２０２６−２０３０；及びＣｏｌｅ，  Ｓ．  Ｐ．  ｅｔ  ａｌ．（１９８４）  Ｍｏｌ．  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．  ６２：１０９−１２０参照）。例えば、本発明にかかるモノクローナル抗体は、マウスまたはラットなどの動物を精製タンパクで免疫することにより得ることができる。その後、免疫動物から分離した脾臓細胞を、標準的な技術を用いて不死化する。 
【０１３７】
免疫動物由来の脾臓細胞の不死化は、例えば、Ｊ．  Ｉｍｍ．  Ｍｅｔｈ．  ３９：２８５−３０８（１９８０）に記載されている方法に従って、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ  ８．６５３（ＡＴＣＣ ＣＲＬ １５８０）のような骨髄腫細胞系とこれら細胞を融合することによって行うことができる。当該分野において公知の他の方法を用いて脾臓細胞を不死化することもできる。標的タンパクに対する所望の抗体を産生する不死化細胞を検出するために、培養上清のサンプルの反応性を、例えば、酵素免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）などを用いて試験する。標的タンパクの活性を抑制するそれらの抗体を得るために、タンパクに結合する抗体を産生するクローンの培養上清を、適当な分析法を用いて、タンパク活性の抑制をさらに試験する。その後、培養上清が標的タンパクの活性を抑制し、約１００ｎｇ／ｍｌ以下のＩＣ５０をもつ抗体を含む分離不死化細胞を選択し、当該分野の技術者に公知の技術を用いてクローニングする。そして、これらのクローンによって産生されたモノクローナル抗体を、標準的なプロトコルに従って分離する。
【０１３８】
さらに、適当な抗原特異性及び生物学的活性をもつ分子を得るために、マウス抗体遺伝子をヒト抗体遺伝子へスプライシングするような、「キメラ抗体」産生のための技術を用いることができる（Ｍｏｒｒｉｓｏｎ，  Ｓ．  Ｌ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９８４）  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ８１：６８５１−６８５５；  Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒ，  Ｍ．  Ｓ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９８４）  Ｎａｔｕｒｅ  ３１２：６０４−６０８；  ａｎｄ  Ｔａｋｅｄａ，  Ｓ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９８５）  Ｎａｔｕｒｅ  ３１４：４５２−４５４）。また、一本鎖抗体産生技術も、当該分野において公知の方法を用いて、標的タンパクに特異的な一本鎖抗体を得るのに用いることができる。関連した特異性をもつが、異なるイディオタイプ組成の抗体は、ランダムコンビナトリアル免疫グロブリンライブラリーからのチェーンシャッフリングにより得ることができる（例えば、Ｂｕｒｔｏｎ  Ｄ．  Ｒ．  （１９９１）  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ，  ８８：１０１３４−１０１３７参照）。
【０１３９】
抗体は、リンパ球細胞群におけるインビボ生成誘導により、または免疫グロブリンライブラリーまたは文献に記載されているような高特異的な結合試薬のパネルをスクリーニングすることにより、得ることもできる（Ｏｒｌａｎｄｉ，  Ｒ．  ｅｔ  ａｌ．（１９８９）  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ８６：  ３８３３−３８３７；  Ｗｉｎｔｅｒ，  Ｇ．  ｅｔ  ａｌ．（１９９１）  Ｎａｔｕｒｅ  ３４９：２９３−２９９）。 
【０１４０】
また、標的タンパクへの特異的な結合部位を含む抗体フラグメントを生成することもできる。例えば、Ｆ（ａｂ’）２フラグメントは、抗体分子のペプシン消化によって生成でき、また、次いでＦ（ａｂ’）２フラグメントのジスルフィド架橋を還元することによりＦａｂフラグメントが生成できる。あるいは、所望の特異性をもつモノクローナルＦａｂフラグメントが迅速且つ容易に同定できるように、Ｆａｂ発現ライブラリーを構築することができる（例えば、Ｈｕｓｅ，  Ｗ．  Ｄ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９８９）  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２４６：１２７５−１２８１参照）。 
【０１４１】
（ｖ）小分子モジュレーター
本発明は、ペプチド、オリゴヌクレオチド、合成及び自然発生の有機及び無機分子などのＷｎｔシグナル伝達経路の小分子モジュレーターも提供する。例として、塩化リチウム（ＬｉＣｌ）は幹細胞におけるＷｎｔシグナル伝達経路の既知の刺激剤であり、それはＧＳＫ−３βの抑制を通じてβ−カテニンを安定化するように働く（Ｈｅｄｇｅｐｅｔｈ，  ｅｔ  ａｌ．，（１９９７）  Ｄｅｖ．  Ｂｉｏｌ．，  １８５：８２−９１）。
【０１４２】
幹細胞においてＷｎｔシグナル伝達経路のモジュレーターとして作用する能力についてスクリーニング可能な候補化合物は、ランダムに選択することができ、また、合理的に選択または設計することもできる。ここで使用するように、その化合物が、幹細胞、または共培養を行う場合には他の細胞の分子成分との潜在的関連性を含めた特異的相互作用を考慮することなく、ランダムに選択される場合、その候補化合物はランダムに選択されたという。候補化合物のランダム選択の例としては、化学ライブラリーまたはペプチドコンビナトリアルライブラリー、または生物の成長培養液の使用がある。ここで使用されるように、その化合物が、標的部位の配列及び／又は構造、あるいはその化合物の作用に関連したプロセスを考慮するような非ランダムな基準に基づき選択された場合、その候補化合物は合理的に選択または設計されたと言う。候補化合物は、例えば、標的部位を構成するヌクレオチドまたはペプチド配列を用いることによって、合理的に選択または設計することができる。例えば、合理的に選択されたペプチドは、そのアミノ酸配列が機能的コンセンサス部位と一致する、またはその誘導体であるペプチドであることができる。 
【０１４３】
候補化合物は、分離あるいは非分離の、純粋なあるいは部分的に精製されたものでもよく、または粗混合物の形態でもよい。例えば、候補化合物は細胞、細胞由来の溶解物または抽出物、または細胞由来の分子の形態でもよい。候補化合物が、一つ以上の分子の存在を含む組成物中にある場合、組成物をそのまま試験してもよく、及び／または任意に適当な手段によって分画し、その分画サンプルを、本発明の方法または別の方法を用いて試験し、Ｗｎｔシグナル伝達経路のモジュレーターとして働く組成物の特定のフラクションまたは成分を同定してもよいことが意図される。 さらに、Ｗｎｔシグナル伝達経路のモジュレーターとして同定されたサブコンビネーションから不活性成分を除外するという最終目的で、試験組成物のサブフラクションを再分画し、本発明の方法を用いて繰り返し分析してもよいことも意図される。化合物の分離、精製及び／または特徴決定の中間ステップを、必要に応じてあるいは適当に含んでもよい。
【０１４４】
候補化合物は、合成または天然の化合物の巨大ライブラリーの形で得ることができる。多数の方法が、現在、糖類、ペプチド、及び核酸塩基化合物のランダム及び方向性合成に使われており、当該分野においてよく知られている。合成化合物ライブラリーは、Ｍａｙｂｒｉｄｇｅ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ． （Ｔｒｅｖｉｌｌｅｔ，  Ｃｏｒｎｗａｌｌ，  ＵＫ）、Ｃｏｍｇｅｎｅｘ（Ｐｒｉｎｃｅｔｏｎ，  Ｎ．Ｊ．）、Ｂｒａｎｄｏｎ  Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ（Ｍｅｒｒｉｍａｃｋ，  Ｎ．Ｈ．）、及びＭｉｃｒｏｓｏｕｒｃｅ（Ｎｅｗ  Ｍｉｌｆｏｒｄ，  Ｃｏｎｎ．）など、多くの会社から市販されている。希少な化学ライブラリーは、Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ，  Ｗｉｓ．）から入手することができる。コンビナトリアルライブラリーも入手可能であるか、または標準的な方法に従って調製することができる。あるいは、細菌、真菌、植物及び動物抽出物の形の天然化合物のライブラリーが、例えば、Ｐａｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｂｏｔｈｅｌｌ，  Ｗａｓｈ．）またはＭｙｃｏＳｅａｒｃｈ（Ｎｏｒｔｈ  Ｃａｒｏｌｉｎａ）などから入手することができ、また、容易に調製することもできる。さらに、天然及び合成のライブラリー及び化合物は、従来の化学的、物理的、及び生物学的手段により容易に修飾される。 
【０１４５】
Ｗｎｔシグナル伝達経路のモジュレーターの選択
さらに、本発明は候補化合物の、Ｗｎｔシグナル伝達経路の調節による成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を調節する能力をスクリーニングする方法も提供する。一般に、そのような方法は、成体幹細胞群を候補化合物と接触させるステップ、及び、細胞中の増殖及び／または系列決定の一つ以上の指標をモニターするステップを含む。
【０１４６】
必要であれば、候補モジュレーターを、標的タンパクまたは遺伝子を抑制または活性化する能力でまず選別してよい。例えば、Ｗｎｔシグナル伝達経路の特異的なタンパクと結合するポリペプチドまたはペプチド（またはその誘導体、類似体またはペプチド模倣体）に対し、当該分野において公知の様々な結合分析の一つを用いて、その結合能を決定することができる（例えば、Ｃｏｌｉｇａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  （ｅｄｓ．）  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  Ｊ．  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，  ＮＹ参照）。オリゴヌクレオチドモジュレーターに対し、標的遺伝子の上方制御または下方制御を、例えば、ノーザンブロット分析、定量ＲＴ−ＰＣＲ、またはマイクロアレイ解析によって処理細胞中でモニターできる。あるいは、相当するタンパクの増加または減少を、例えば、ウェスタンブロット分析によってモニターすることができる。
【０１４７】
様々な免疫学的検定法を、所望の特異性をもつ抗体を同定するためのスクリーニングに用いることができる。確立された特異性をもつポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体の何れかを用いた、競合結合分析または免疫放射定量測定法の多数のプロトコルが、当該分野においてよく知られている。前記免疫学的検定法は、通常、標的タンパクとその特異的な抗体との複合体形成を測定することを含む。そのような技術の例としては、ＥＬＩＳＡｓ、放射線免疫検定法（ＲＩＡｓ）、及び蛍光活性化細胞分類（ＦＡＣＳ）などが挙げられる。あるいは、２つの非干渉エピトープに反応性をもつモノクローナル抗体を利用したツーサイトモノクローナルベース免疫学的検定法、または競合結合分析を用いることもできる（Ｍａｄｄｏｘ，  Ｄ．  Ｅ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９８３）  Ｊ．  Ｅｘｐ．  Ｍｅｄ．  １５８：１２１１−１２１６参照）。これら及び他の分析法が、当該分野においてよく知られている（例えば、Ｈａｍｐｔｏｎ，  Ｒ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９９０）  Ｓｅｒｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ：  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，  ＡＰＳ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｓｔ  Ｐａｕｌ， Ｍｉｎｎ．，  Ｓｅｃｔｉｏｎ  ＩＶ；  Ｃｏｌｉｇａｎ，  Ｊ．  Ｅ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９９７，  ａｎｄ  ｐｅｒｉｏｄｉｃ  ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｓ） Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ， Ｎ．Ｙ．；  Ｍａｄｄｏｘ，  Ｄ．  Ｅ．  ｅｔ  ａｌ．  （１９８３） Ｊ．  Ｅｘｐ．  Ｍｅｄ．  １５８：１２１１−１２１６参照）。
【０１４８】
Ｗｎｔシグナル伝達経路の候補モジュレーターは、成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を促進または抑制する能力をさらに試験する。通常、幹細胞は、候補モジュレーターの存在下及び非存在下で培養され、次いで増殖及び／または系列決定の少なくとも一つの指標を細胞中モニターし、モジュレーターに暴露した細胞培養において増殖及び／または系列決定が調節されたかどうかを決定する。あるいは、幹細胞群をエデュケーター細胞と共培養することができ、幹細胞またはエデュケーター細胞を候補モジュレーターに暴露し、増殖及び／または系列決定の少なくとも一つの指標をモニターする。様々な組織に由来する成体幹細胞または前駆細胞を、候補モジュレーターの増殖及び／または系列決定を増加または減少させる能力を選別するのに用いることができる。例としては、これに限定されるものではないが、心筋、骨格筋、脂肪、皮膚、膵臓、神経及び肝臓組織由来の幹細胞、骨髄由来の幹細胞、造血細胞、筋芽細胞、肝細胞、胸腺細胞、心筋細胞などが挙げられる。 
【０１４９】
様々な細胞表面マーカーが、ｃ−ｋｉｔ、Ｓｃａ１、ＣＤ３４、及び ＣＤ４５などの成体幹細胞群を同定するのに使用された。従って、候補モジュレーターを試験するために用いられる幹細胞は、ｃ−ｋｉｔ＋、Ｓｃａ１＋、ＣＤ３４＋ またはＣＤ４５＋ 細胞であることができ、また、 これらのマーカーの２つ以上の組み合わせを発現してもよい。さらに、幹細胞は、ＡＣ１３３、ＣＤ３１、ＦＬＴ１、ＦＬＫ１、ＢＲＣＰ１及びＦｚｄ１、２、３または４の一つ以上と組み合わせて上記マーカーの一つ以上を発現してもい。サイドポピュレーション（またはＳＰ）細胞は、骨格筋及び心筋において同定されている成体幹細胞の一種であるが、これは、当該分野において公知のように、ヘキスト染料染色に基づき同定することができる（例えば、Ｇｕｓｓｏｎｉ，  Ｅ．，  ｅｔ  ａｌ．，  （１９９９）  Ｎａｔｕｒｅ ４０１，  ３９０−３９４；  Ｊａｃｋｓｏｎ，  Ｋ．  Ａ．，  ｅｔ  ａｌ．， （１９９９）  Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ  ９６，  １４４８２−１４４８６； Ｈｉｅｒｌｉｈｙ，  Ａ．Ｍ．，  ｅｔ  ａｌ．， （２００２）  ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ．  ５３０，  ２３９−２４３参照）。  
【０１５０】
本発明の一つの実施形態において、幹細胞は成体の骨格筋組織に由来する。別の実施形態においては、幹細胞は成体の筋肉由来のＣＤ４５＋細胞である。さらなる実施形態においては、幹細胞は成体の筋肉由来のＣＤ４５＋／Ｓｃａ＋細胞である。
【０１５１】
幹細胞を培養中維持する方法は、当該分野において公知である（例えば、Ｍａｄｌａｍｂａｙａｎ，  Ｇ．Ｊ．，  ｅｔ  ａｌ．， （２００１） Ｊ．    Ｈｅｍａｔｏｔｈｅｒ．  Ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  Ｒｅｓ．  １０，  ４８１−４９２；  Ｈｉｅｒｌｉｈｙ，  Ａ．Ｍ．，  ｅｔ  ａｌ．，  （２００２）  ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ． ５３０，  ２３９−２４３；  Ａｓａｋｕｒａ，  Ａ．，  ｅｔ  ａｌ．，  （２００２）  Ｊ．  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．  １５９，  １２３−１３４参照）。幹細胞は単独で培養することができ（単培養）、または他の（エデュケーター）細胞と共培養することができる。例として、共培養には、分離培養中の維持相でのまたは非維持相での分離後に混合された筋肉由来幹細胞（または他の幹細胞）及び筋芽細胞（エデュケーター細胞）の細胞群を含むことができる。あるいは、２つの細胞群をその起源組織から分離することなしに、外植片（例えば、マウス後肢筋外植片）として共培養することができる。幹細胞及び／またはエデュケーター細胞群が完全に純粋ではない場合、幹細胞培養は他の細胞群を含むかもしれないことが理解及び予想される。
【０１５２】
培養期間の前、間、または後に、追加のステップがスクリーニング方法に含まれてもよく、細胞群を同定または分離するステップ、または分析の成功に寄与する他のステップが挙げられる。例えば、成長因子または他の化合物を、幹細胞群の分離及び拡張に用いてもよい。ＥＧＦ及びＦＧＦは、Ｇｒｉｔｔｉ  ｅｔ  ａｌ  （Ｊ．  Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．  （１９９９）  １９：３２８７−３２９７）に記載のように、神経幹細胞にこの目的のために使用されており、また、Ｂｃｌ−２は「筋幹細胞」群の分離に用いられている（米国特許第６，３３７，１８４号参照）。幹細胞培養の分離及び／または維持に有用な他の化合物には、Ｓｈｈ、Ｉｈｈ、ＢＭＰ、ＢＭＰアンタゴニスト、ＳＣＦ、及び様々なサイトカインが含まれる。
【０１５３】
スクリーニング試験に用いられる幹細胞は、正常な成体哺乳類から分離または由来した一次細胞または培養幹細胞系であることができる。あるいは、幹細胞は、Ｗｎｔシグナル伝達経路のタンパクをエンコードする一つ以上の遺伝子に突然変異を保有する哺乳類、または、組織特異的遺伝子座においてレポーター遺伝子を発現する哺乳類から分離または由来することができる。例えば、本発明のモジュレーターに応答した常在筋幹細胞の筋細胞への分化は、ヘテロ接合性 Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺノックインマウスから分離した細胞を用いて決定することができる。これらのレポーターマウスにおいて、ＬａｃＺの発現は内在性Ｍｙｆ５遺伝子の発現パターンを正確に繰り返し、これは、筋原性決定の後速やかに誘導されるものである（Ｔａｊｂａｋｈｓｈ  ａｎｄ  Ｂｕｃｋｉｎｇｈａｍ，  １９９５，  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，  １２２：３７６５−３７７３）。従って、これらの細胞におけるＭｙｆ５ｎＬａｃＺの発現は、候補モジュレーターに応答した筋原性決定を示す。
【０１５４】
一般に、候補モジュレーターは、通常約１０００倍に及ぶ濃度範囲にわたって試験され、適当な暴露プロトコルは当該分野の技術者によって容易に確立することができる。共培養を用いる場合、エデュケーター細胞への幹細胞の最初の暴露の前、間、及び／または後に、幹細胞を候補モジュレーターへ暴露することができる。あるいは、候補モジュレーターが核酸分子、または核酸分子によってエンコードされたポリペプチドまたはペプチドである場合、候補モジュレーターが内因的に生成されるように、ここで記載のあるいは他の標準的な方法を用いて、幹細胞を核酸分子または核酸分子を含む発現ベクターで形質移入することができる。
【０１５５】
さらに、幹細胞を候補モジュレーターに直接的に暴露しなくてもよいことも意図する。例えば、エデュケーター細胞群または第３の細胞型をモジュレーターに直接的に暴露し、次いで幹細胞と共培養することができる。あるいは、エデュケーター細胞群または第３の細胞型を、候補モジュレーターを発現する核酸分子または核酸分子を含む発現ベクターで形質移入し、次いでその細胞を幹細胞と共培養することができる。それ自身は共培養に含まれないが、モジュレーターに暴露した細胞群によって調整された培地の添加によって、幹細胞を間接的に暴露することもできる。さらに、非液体培地中、例えば、寒天、高分子足場、マトリックス、またはその他の構成物のような固体、ゲル状、または半固体の成長支持体中に候補モジュレーターを取り込むことにより、試験細胞または外植片を候補モジュレーターに暴露してもよいことも意図される。
【０１５６】
幹細胞の増殖及び／または系列決定を表す終末点は、試験幹細胞群及びコントロール幹細胞群において定性的または定量的にモニターすることができる。例えば、全体の形態学、組織学、免疫組織化学、総細胞数、分化細胞数、または他の終末点における変化の定性的または定量的観察を、試験細胞及びコントロール細胞または外植片、またはその切片について行うことができる。あるいは、特異的な細胞マーカーの存在または非存在をモニターすることができる。細胞マーカーは、通常、その系統特異的タンパクであり、その存在、非存在、または相対レベルを、例えば、組織化学的技術、免疫学的技術、電気泳動法、ウェスタンブロット分析、ＦＡＣＳ分析、フローサイトメトリーなどの多くの標準的技術を用いて分析することができる。あるいは、細胞マーカータンパクをエンコードするｍＲＮＡの存在、非存在、または相対レベルを、例えばＰＣＲ技術、マイクロアレイ技術、ノーザンブロット分析、適当なオリゴヌクレオチドプローブの使用等を用いて決定することができる。 
【０１５７】
モニター可能な適当な系統特異的細胞マーカーは、当該分野において公知である。例えば、筋由来幹細胞の系列決定は、細胞のミオシン重鎖、次リン酸化ＭｙｏＤ、ミオゲニン、Ｍｙｆ５、Ｐａｘ７、及びトロポニンＴなどの一つ以上の筋細胞マーカータンパクの発現を試験することによって測定できる。成体の心臓に存在する心臓サイドポピュレーション（ＳＰ）細胞（Ｈｉｅｒｌｉｈｙ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ａ．Ｍ．，  ｅｔ  ａｌ．，  （２００２） ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ． ５３０，  ２３９−２４３）のような心筋幹細胞の系列決定は、コネキシン−４３、ＭＥＦ２Ｃ、及び／またはミオシン重鎖のような心筋細胞特異的マーカーの出現をモニターすることによって決定できる。ニューロスフェアまたはＳＰ細胞フラクションとして誘導された神経幹細胞の系列決定は、ＧＦＡＰ、ＭＡＰ２及び／またはβ−ＩＩＩチューブリンの発現をモニターすることによって決定でき（例えばＨｉｔｏｓｈｉ，  Ｓ．，  ｅｔ  ａｌ．，  （２００２） Ｇｅｎｅｓ  ＆  Ｄｅｖ．  １６，  ８４６−８５８）、また、膵臓幹細胞の系列決定はＰＤＸ−１及び／またはインスリンの発現をモニターすることによって決定できる。決定された前駆細胞の最終分化も、前記のような系統特異的マーカーをモニターすることによって決定できる。 
【０１５８】
応用
さらに、本発明は、細胞をＷｎｔシグナル伝達経路の一つ以上のモジュレーターと直接的または間接的に接触させることによって、成体幹細胞の増殖及び／または系列決定を誘導または抑制する方法を提供する。本発明で提供されるモジュレーターは、幹細胞または系列決定された前駆細胞の生存を高め、また、決定された前駆細胞の最終分化を誘導するのに用いることもできる。本発明により提供されるＷｎｔシグナル伝達経路の方法及びモジュレーターには、多くの応用がある。例えば、本方法及びモジュレーターは、さらにインビトロで使用するため、例えば研究目的で使用するために、成体幹細胞の増殖を促進するのに、及び／または、細胞の運命が決定づけられる幹細胞の系列決定を促進または抑制するのに、インビトロにおいて使用することができる。幹細胞の増殖を促進する、及び／または系列決定を促進または抑制する化合物及び方法は、薬物試験のための新しいインビトロモデルの開発における応用の可能性もある。幹細胞または前駆細胞の生存を高める本発明のモジュレーターは、これらの細胞のインビトロ培養及び維持の促進に特に有用である。
【０１５９】
あるいは、本方法及びモジュレーターは、幹細胞のエクスビボ増殖の促進に、及び／または、これらの細胞の系列決定の促進または抑制に用いることができ、これにより、移植に適した細胞群を提供することができる。幹細胞のＥｘ  ｖｉｖｏ拡張は、多くの疾病状態の治療のために、治療的に明らかに必要なものである。 
【０１６０】
本発明の方法及びモジュレーターは、成体組織中の常在幹細胞の増殖、及び任意的に系列決定を促進するのに、インビボにおいて特に有用であり、これにより、損傷組織の置換または修復を助ける。例えば、成体筋組織の常在幹細胞群は、筋肉損傷後１０倍に増大する。従って、本方法及びモジュレーターは、これらの常在幹細胞の増殖及び系列決定を促進し、それにより損傷組織の修復を促進するために、障害組織に適用することができる。あるいは、本方法及びモジュレーターは、休止状態の常在幹細胞の増殖、及び任意的にその系列決定を刺激し、それにより疾患または疾病の結果として損傷した組織を置換することによって変性疾患または疾病の緩和を助けるのに用いることができる。
【０１６１】
Ｗｎｔｓ５ａ、５ｂ、７ａ、７ｂ及びｓＦＲＰ２及び３などのＷｎｔシグナル伝達経路モジュレーターは、成体筋組織中の常在幹細胞群の増殖及び系列決定の調節に有効であることが示された。常在幹細胞群は、例えば、ヘキスト染色（ＳＰ細胞に対して）、ＣＤ４５＋及び／またはＳｃａ１＋の発現によって同定することができる。ＣＤ４５及びＳｃａｌは、様々な成体組織における常在幹細胞群の同定を助けるのに使用できる汎全造血マーカーである。 
【０１６２】
本発明の一つの実施形態において、本方法及びモジュレーターは、成体筋幹細胞における増殖及び／または系列決定の誘導に用いられる。別の実施形態においては、本方法及びモジュレーターは、成体骨格筋幹細胞の増殖及び／または系列決定の誘導に用いられる。さらに別の実施形態においては、本方法及びモジュレーターは、ＣＤ４５＋である幹細胞の増殖及び／または系列決定の誘導に用いられる。また別の実施形態において、本方法及びモジュレーターは、ＣＤ４５＋筋幹細胞の増殖及び／または系列決定の誘導に用いられる。またさらに別の実施形態においては、本方法は、モジュレーターとして、Ｗｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ、７ｂポリペプチド、その活性フラグメントまたは変異体、またはその組み合わせの使用を含む。 また、別の実施形態においては、本方法は、モジュレーターとして、Ｗｎｔの一つ以上ペプチド模倣体、または一つ以上のｓＦＲＰへ結合し抑制する一つ以上の抗体または抗体フラグメントの使用を含む。
【０１６３】
本発明のモジュレーター及び方法は、他の細胞処置または治療に追加してあるいは同時に用いてよい。特に、本発明は、インビトロまたはインビボの何れかで、幹細胞群を、増殖を刺激して細胞群の拡張を可能にする作用物質及び増殖及び／または系列決定を誘導する本発明のモジュレーターとまず接触させる方法を意図する。作用物質及びモジュレーターは、同時にまたは順次細胞に与えてもよく、例えば、細胞を初めに増殖を誘導する作用物質と接触させ、次いで系列決定を誘導して細胞の生存を高めるために本発明の一つ以上のモジュレーターと接触させてよい。本発明のモジュレーターとともに用いられる作用物質の例としては、これに限定されるものではないが、カルジオトロフィン−１（ＣＴ−１）、Ｓｈｈ、Ｉｈｈ、ＢＭＰ、ＢＭＰアンタゴニスト、ＳＣＦ、及び様々なサイトカインが挙げられる。
【０１６４】
本発明の一つの実施形態において、幹細胞の増殖及び／または系列決定を誘導する方法は、一つ以上のＷｎｔ伝達経路モジュレーター及びＣＴ−１に細胞を接触させることを含む。別の実施形態においては、幹細胞の増殖及びそれに続く系列決定を誘導する方法は、細胞をＣＴ−１と接触させ、次いで一つ以上のＷｎｔ伝達経路モジュレーターと接触させることを含む。
【０１６５】
従って、本発明の方法及びモジュレーターの治療的応用は、典型的には、失われたまたは損傷した組織を交換する必要がある状況に関連し、例えば、化学療法または放射線療法後、筋損傷後の筋萎縮または筋量の減少を予防するのに関連し、あるいは、変性筋障害、がん（白血病を含む）、肝硬変や肝炎などの変性肝疾患、糖尿病、パーキンソン病やアルツハイマー病などの神経変性疾患、変性または虚血性心疾患、ＨＩＶ感染及び関連の合併症、及び神経筋疾患のような疾患及び疾病の治療中または管理中に関連する。
【０１６６】
治療的応用のために、本発明は、さらに、Ｗｎｔシグナル伝達経路の一つ以上のモジュレーターと、薬学的に許容可能な希釈剤または賦形剤とを含む医薬品組成物を提供する。医薬品組成物及び医薬品組成物の調製方法は、当該分野において公知であり、例えば、「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：  Ｔｈｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｐｒａｃｔｉｃｅ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｙ」（以前は「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ」）；  Ｇｅｎｎａｒｏ，  Ａ．，  Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ，  Ｗｉｌｌｉａｍｓ  ＆  Ｗｉｌｋｉｎｓ，  Ｐｈｉｌｉｄｅｌｐｈｉａ，  ＰＡ  （２０００）に記載されている。
【０１６７】
モジュレーターまたはモジュレーターを含む医薬品組成物の投与は、局所的または全身的治療のどちらを望むかによって、ならびに治療する領域によって、多くのルートにより行ってよい。通常、モジュレーターは治療すべき領域へ局所投与される。投与は、局所的（眼投与ならびに膣送達及び直腸送達などの粘膜投与を含む）、経肺的（例えば、ネブライザーによるものなど粉末またはエアロゾルの吸入または吹送による）、気管内、鼻腔内、表皮的、経皮的、経口的、非経口的であってよい。非経口投与としては、静脈内、動脈内、皮下、腹腔内、あるいは筋肉内への注射あるいは注入、または例えばくも膜下腔内または脳室内などの頭蓋内投与が挙げられる。
【０１６８】
本発明のモジュレーターは、薬学的に許容可能なビヒクルと組み合わせて送達されてよい。理想的には、そのようなビヒクルは安定性及び／または送達性を高める。本発明は、リポソーム、微粒子、またはマイクロカプセルなどの適当なビヒクルを用いたモジュレーターの投与も提供する。本発明の様々な実施形態において、そのようなビヒクルの使用は、活性成分の徐放性を達成するのに有利であるかもしれない。
【０１６９】
注射剤として製剤化する場合、モジュレーターは、他の溶質、例えば、溶液を等張にするために十分な生理食塩水またはグルコースなどを含む滅菌溶液の形態で使用される。
【０１７０】
吸入または吹送による投与のために、モジュレーターを水性または部分的に水性の溶液に製剤化することができ、これはその後エアゾールの形態で利用することができる。局所使用のために、モジュレーターを、薬学的に許容可能なビヒクル中の粉剤、クリーム、またはローションとして製剤化でき、これは皮膚の疾患部分に適用される。
【０１７１】
本発明のモジュレーターの必要用量は、採用した特定の組成物、投与経路及び特定の治療対象により変化する。必要用量は、当該分野の技術者に公知の標準的な臨床的技術によって決定できる。治療は、一般に、化合物の適量よりも少ない投与量で開始される。その後、その状況下で最適な効果に到達するまで、用量が増量される。一般に、モジュレーターまたはモジュレーターを含む医薬品組成物は、いかなる有害な悪影響のある副作用も引き起こすことなく有効な結果を与える濃度で投与される。投与は、１回ユニット投与量とすることができ、また、望まれれば、一日を通して適当な時に投与するのに便利なサブユニットに分けることができる。
【０１７２】
遺伝子治療
本発明は、当該分野において公知の様々な「遺伝子治療」法による、オリゴヌクレオチドモジュレーター、またはモジュレーターをエンコードする核酸分子（これは、その後エンコードされた産生物をインビボで発現する）の投与も意図している。遺伝子治療には、エクスビボ及びインビボの両方の技術が含まれる。従って、宿主細胞は、オリゴヌクレオチドモジュレーター、またはモジュレーターをエンコードする核酸分子で、エクスビボにおいて遺伝的に設計することができ、設計された細胞は、その後治療すべき患者に投与される。細胞培養は、例えば、細胞を解離（例えば機械的な解離）し、細胞を薬学的に許容可能な担体（例えばリン酸緩衝生理食塩水）と混合することにより、患者へ投与するために製剤化することができる。あるいは、細胞を適当な生体適合性支持体上で培養し、患者へ移植してもよい。設計された細胞は、通常、異種間またはアロタイプの拒絶反応を避けるため自家系である。そのようなエクスビボでの方法は、当該分野においてよく知られている。 
【０１７３】
あるいは、当該分野において知られている技術を用いてオリゴヌクレオチドまたは核酸分子を投与することにより、インビボで細胞を設計することができる。例えば、「裸の」核酸分子（Ｆｅｉｇｎｅｒ及びＲｈｏｄｅｓ、（１９９１）  Ｎａｔｕｒｅ  ３４９：３５１−３５２；米国特許第５，６７９，６４７号）や、細胞の核酸分子の取り込みを容易にする一つ以上の他の作用物質、例えばサポニン（例えば、米国特許第５，７３９，１１８号参照）あるいはカチオン性ポリアミン（例えば、米国特許第５，８３７，５３３号参照）などを含む組成物中で処方された核酸分子を直接注射することにより；微粒子の爆撃により(例えば、「遺伝子銃」； Ｂｉｏｌｉｓｔｉｃ，  Ｄｕｐｏｎｔの使用により)；脂質、細胞表面受容体あるいはトランスフェクト剤で核酸分子をコーティングすることにより；リポソーム、微粒子、あるいはマイクロカプセル中に核酸分子を内包させることにより；核に入りこむことが知られているペプチドと結合した核酸分子を投与することにより；あるいは受容体介在性エンドサイトーシスを受けやすいリガンドと結合した核酸分子を投与することにより（例えば、Ｗｕ  ａｎｄ  Ｗｕ， （１９８７） Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２６２：４４２９−４４３２参照）、オリゴヌクレオチド及び他の核酸分子を投与することができ、これらは受容体を特異的に発現する標的細胞型に用いることができる。
【０１７４】
あるいは、リガンドがエンドソームを混乱させる融合ウィルスペプチドを含み、核酸がリソソーム分解を避けるのを可能にする核酸−リガンド複合体；あるいは、その核酸分子が、特定の受容体を標的とすることによってインビボで細胞特異的な取り込み及び発現の標的となり得る核酸−リガンド複合体が形成できる（例えば、国際特許出願ＷＯ９２／０６１８０、ＷＯ９２／２２６３５、ＷＯ９２／２０３１６、ＷＯ９３／１４１８８及びＷＯ９３／２０２２１参照）。さらに、細胞核におけるアンチセンスオリゴヌクレオチドの導入、発現及び蓄積の効率的な方法が、米国特許第６，２６５，１６７号に記載されており、これは、核においてアンチセンスオリゴヌクレオチドがセンスｍＲＮＡとハイブリッド形成することを可能とし、それによりアンチセンスオリゴヌクレオチドが処理または細胞質内に輸送されるのを阻止する。また、本発明は、核酸分子の細胞内導入、及び続く相同的組み換えによる発現用宿主細胞ＤＮＡ内への組み込みも意図する（例えば、Ｋｏｌｌｅｒ  ａｎｄ  Ｓｍｉｔｈｉｅｓ（１９８９）  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８６：８９３２−８９３５；  Ｚｉｊｌｓｔｒａ  ｅｔ  ａｌ．（１９８９）  Ｎａｔｕｒｅ  ３４２：４３５−４３８参照）。
【０１７５】
ポリヌクレオチドは、適当な発現ベクターに組む込むこともできる。遺伝子治療の応用に適当な多くのベクターが当該分野において知られている（例えば、Ｖｉｒａｌ  Ｖｅｃｔｏｒｓ：  Ｂａｓｉｃ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ，  Ｅａｔｏｎ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．  （２０００）参照）。
【０１７６】
発現ベクターは、プラスミドベクターでもあってよい。プラスミドＤＮＡを生成及び精製する方法は、迅速かつ簡単である。さらに、プラスミドＤＮＡは、通常宿主細胞のゲノムに統合せず、染色体組み込みを高めるかもしれないという遺伝毒性の問題を除去する別個の存在としてエピソーム部位に維持される。
【０１７７】
様々なプラスミドが現在は容易に市販品を入手でき、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ及びＢａｃｉｌｌｕｓ  ｓｕｂｔｉｌｉｓに由来し、哺乳類系での使用のために特に設計されたものがある。本発明で使用できるプラスミドの例としては、これに限定されるものではないが、真核発現ベクターｐＲｃ／ＣＭＶ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ｐＣＲ２．１（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ｐＡｄ／ＣＭＶ及びｐＡｄ／ＴＲ５／ＧＦＰｑ（Ｍａｓｓｉｅ  ｅｔ  ａｌ．，  （１９９８）  Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２８：５３−６４）が挙げられる。代表的な実施形態において、プラスミドはｐＲｃ／ＣＭＶ、ｐＲｃ／ＣＭＶ２（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ｐＡｄＣＭＶ５（ＩＲＢ−ＮＲＣ）、ｐｃＤＮＡ３（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ｐＡｄＭＬＰ５（ＩＲＢ−ＮＲＣ）、あるいはｐＶＡＸ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）である。
【０１７８】
あるいは、発現ベクターは、ウィルスベースのベクターであることができる。ウィルスベースのベクターとしては、これに限定されるものではないが、複製欠損性レトロウィルス、レンチウィルス、アデノウィルス及びアデノ随伴ウィルス由来のものが挙げられる。レトロウィルスベクター及びアデノ随伴ウィルスベクターは、現在、インビボで外因性オリゴヌクレオチドまたは遺伝子を特にヒトへトランスファーするための好ましい組み換え遺伝子送達システムである。これらのベクターは、細胞に遺伝子を効果的に送達し、トランスファーされた核酸は、宿主の染色体ＤＮＡに安定に組み込まれる。レトロウィルスを使用する主要な必要条件は、特に細胞群中の野生型ウィルスの拡散の可能性に関して、それらの使用の安全性を確保することである。レトロウィルスベクターが由来するレトロウィルスとしては、これに限定されるものではないが、モロニーマウス白血病ウィルス、脾臓壊死ウィルス、ラウス肉腫ウィルスのようなレトロウィルス、ハーベイ肉腫ウィルス、トリ白血病ウィルス、テナガザル白血病ウィルス、ヒト免疫不全ウィルス、アデノウィルス、骨髄増殖性肉腫ウィルス、及び乳癌ウィルスなどが挙げられる。具体的なレトロウィルスとしては、ｐＬＪ、ｐＺＩＰ、ｐＷＥ及びｐＥＭが挙げられ、これらは当該分野の技術者によく知られている。
【０１７９】
モジュレーターをエンコードするオリゴヌクレオチドまたは核酸配列は、通常、インビボでそのオリゴヌクレオチドまたは核酸の発現を可能にする適当なプロモーターのコントロール下で、ベクターに組み込まれる。採用することができる適当なプロモーターとしては、これに限定されるものではないが、アデノウィルスプロモーター、例えばアデノウィルス主要後期プロモーター、Ｅ１Ａプロモーター、主要後期プロモーター（ＭＬＰ）及び関連リーダー配列あるいはＥ３プロモーターなど；サイトメガロウィルス（ＣＭＶ）プロモーター；呼吸器合胞体ウィルス（ＲＳＶ）プロモーター；誘発性プロモーター、例えばＭＭＴプロモーター、メタロチオネインプロモーターなど；ヒートショックプロモーター；アルブミンプロモーター；ＡｐｏＡＩプロモーター；ヒトグロブリンプロモーター；ウィルスチミジンキナーゼプロモーター、例えば単純ヘルペスチミジンキナーゼプロモーターなど；レトロウィルスＬＴＲ；ヒストン、ｐｏｌ  ＩＩＩ、及びβ−アクチンプロモーター；Ｂ１９パルボウィルスプロモーター；ＳＶ４０プロモーター；及びヒト成長ホルモンプロモーターが挙げられる。また、プロモーターは、目的遺伝子の天然プロモーターであってもよい。適当なプロモーターの選択は、ベクター、宿主細胞及びエンコードされたタンパクに依存し、当該分野の通常の技術範囲内とみなされる。
【０１８０】
複製欠損レトロウィルスのみを産生する特殊化した細胞系（「パッケージング細胞」という）の開発は、遺伝子治療へのレトロウィルスの利用を増加させ、欠損レトロウィルスは遺伝子治療を目的とする遺伝子トランスファーにおける使用を特徴とする（参考として、Ｍｉｌｌｅｒ，  Ａ．  Ｄ．  （１９９０）  Ｂｌｏｏｄ  ７６：２７１参照）。従って、組み換えレトロウィルスは、レトロウィルスコード配列（ｇａｇ、ｐｏｌ、ｅｎｖ）の一部を本発明の核酸分子により置換し、レトロウィルスを複製欠損にするように構築することができる。複製欠損レトロウィルスは、その後、標準的技術によって、ヘルパーウィルスの使用により、標的細胞に感染させるのに使用可能なウィルス粒子中にパッケージされる。組み換えレトロウィルスを得るためのプロトコル及び細胞にインビトロあるいはインビボでそのようなウィルスを感染させるプロトコルは、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，  Ａｕｓｕｂｅｌ，  Ｆ．  Ｍ．  ｅｔ  ａｌ．  （ｅｄｓ．），  Ｊ．  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，  （１９８９），  Ｓｅｃｔｉｏｎｓ  ９．１０−９．１４及び他の標準的な実験マニュアル中に認められる。環境栄養性及び両栄養性レトロウィルス系の両方を調製するための適当なパッケージングウィルス系の例としては、Ｃｒｉｐ、Ｃｒｅ、２及びＡｍが挙げられる。他のパッケージング細胞の例としては、これに限定されるものではないが、ＰＥ５０１、ＰＡ３１７、Ψ−２、Ψ−ＡＭ、ＰＡ１２、Ｔ１９−１４Ｘ、ＶＴ−１９−１７−Ｈ２、ΨＣＲＥ、ΨＣＲＩＰ、ＧＰ＋Ｅ−８６、ＧＰ＋ｅｎｖＡｍｌ２、及びＭｉｌｌｅｒ，  Ｈｕｍａｎ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ，  Ｖｏｌ．  １，  ｐｇｓ．  ５−１４（１９９０）に記載されたＤＡＮ細胞系が挙げられる。
【０１８１】
さらに、ウィルス粒子の表面でウイルスパッケージングタンパクを修飾することにより、レトロウィルス及び結果としてのレトロウィルスベースベクターの感染スペクトルを、制限することができることが示されている（例えば、ＰＣＴ公開公報ＷＯ９３／２５２３４及びＷＯ９４／０６９２０参照）。例えば、レトロウィルスベクターの感染スペクトルの修飾方法としては次のようなものが挙げられる：細胞表面抗原に特異的な抗体をウィルス性ｅｎｖタンパクにカップリングする（Ｒｏｕｘ  ｅｔ  ａｌ．（１９８９）  ＰＮＡＳ  ８６：９０７９−９０８３；Ｊｕｌａｎ  ｅｔ  ａｌ．（１９９２）  Ｊ．  Ｇｅｎ  Ｖｉｒｏｌ  ７３：３２５１−３２５５；及びＧｏｕｄ  ｅｔ  ａｌ．（１９８３）  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  １６３：２５１−２５４）；あるいは細胞表面受容体リガンドをウィルス性ｅｎｖタンパクにカップリングする  （Ｎｅｄａ  ｅｔ  ａｌ．（１９９１）  Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２６６：１４１４３−１４１４６）。カップリングは、タンパクあるいは他の種類（例えば、ｅｎｖタンパクをアシアログリコプロテインに変換するための乳糖）と化学的に架橋した形態とすることができ、また、融合タンパクの生成によることもできる（例えば、単鎖抗体／ｅｎｖ融合タンパク）。この技術は、感染をある組織型に制限するあるいは指示するのに有用であり、また、環境栄養性ベクターを両栄養性ベクターに変換するのに用いることもできる。
【０１８２】
加えて、レトロウィルス遺伝子送達の使用は、ベクター中に含まれる本発明の核酸分子の発現をコントロールする組織特異的なあるいは細胞特異的な転写調節配列の使用によりさらに高めることができる。
【０１８３】
遺伝子治療技術に有用な別のウィルスベクターは、アデノウィルス由来のベクターである。アデノウィルスのゲノムは、目的遺伝子産物をエンコード及び発現するが、通常の溶菌ウィルスライフサイクルにおけるその複製能力は不活化されるよう操作することができる。例えば、Ｂｅｒｋｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．（１９８８）  ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ６：６１６；Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄ  ｅｔ  ａｌ．（１９９１）  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２５２：４３１−４３４；及びＲｏｓｅｎｆｅｌｄ  ｅｔ  ａｌ．（１９９２）  Ｃｅｌｌ  ６８：１４３−１５５参照。アデノウィルス株Ａｄ  ｔｙｐｅ  ５  ｄ１３２４あるいは他のアデノウィルス株（例えば、Ａｄ２、Ａｄ３、Ａｄｚなど）に由来する適当なアデノウィルスベクターは、当該分野の技術者によく知られている。組み換えアデノウィルスは、広い多様な細胞型、例えば末梢神経細胞などへの感染に使用できるようなある種の条件において有利であり得る。さらに、ウィルス粒子は比較的安定で、精製及び濃縮でき、前記のように感染スペクトルに影響を及ぼすように修飾することができる。さらに、導入されたアデノウィルスＤＮＡ（及びそこに含まれる外来ＤＮＡ）は、宿主細胞のゲノムに組み込まれるのではなくエピソームにとどまり、これにより、導入されたＤＮＡが宿主ゲノム（例えば、レトロウィルスＤＮＡ）に組み込まれるようになるような状況において挿入突然変異の結果として生じ得る潜在的な問題を回避する。さらに、外来ＤＮＡに対するアデノウィルスゲノムの運搬量（８キロベースまで）は他の遺伝子送達ベクターに比べて大きい（Ｂｅｒｋｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．  ｃｉｔｅｄ  ｓｕｐｒａ；Ｈａｊ−Ａｈｍａｎｄ  ａｎｄ  Ｇｒａｈａｍ（１９８６）  Ｊ．  Ｖｉｒｏｌ．  ５７：２６７）。現在使用され、また本発明により意図されるほとんどの複製欠損アデノウィルスベクターは、ウィルス性Ｅ２及びＥ３遺伝子の全てあるいは一部が削除されているが、アデノウィルスの遺伝物質の８０％程度を維持している（例えば、Ｊｏｎｅｓ  ｅｔ  ａｌ．（１９７９）  Ｃｅｌｌ  １６：６８３；前記Ｂｅｒｋｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．；及びＧｒａｈａｍ  ｅｔ  ａｌ．  ｉｎ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，  Ｅ．  Ｊ．  Ｍｕｒｒａｙ，  Ｅｄ．（Ｈｕｍａｎａ，  Ｃｌｉｆｔｏｎ，  Ｎ．Ｊ．，  １９９１）  ｖｏｌ．７．  ｐｐ．１０９−１２７参照）。
【０１８４】
複製欠損ヒトアデノウィルスベクターの作製及び増殖には、特有のヘルパー細胞系が要求される。ヘルパー細胞系は、ヒト胚腎臓細胞、筋細胞、造血細胞あるいは他のヒト胚間葉細胞あるいは上皮細胞などのヒト細胞由来であってよい。あるいは、ヘルパー細胞は、ヒトアデノウィルスに許容される、すなわち、代わりに、複製欠損性ウィルスの複製を可能にするのに必要な配列を与える他の哺乳動物種の細胞に由来してもよい。そのような細胞としては、例えば、２９３細胞、ベロ細胞あるいは他のサル胚間葉細胞あるいは上皮細胞が挙げられる。また、ブタあるいはウシアデノウィルスベクターのような非ヒトアデノウィルスベクターの使用も意図される。適当なウィルスベクター及びヘルパー細胞系の選択は、当該分野の一般的な技術範囲内である。
【０１８５】
本発明の一つの実施形態において、遺伝子治療ベクターはアデノウィルス由来ベクターである。別の実施形態においては、遺伝子治療ベクターは、一つ以上のＷｎｔタンパクをエンコードする核酸配列を含むアデノウィルス由来ベクターである。
【０１８６】
キット
さらに、本発明は、Ｗｎｔシグナル伝達経路の一つ以上のモジュレーターを医薬組成物中に含む治療キットも提供する。キットの個々の成分は別々の容器に包装され、そのような容器とともに、医薬品あるいは生物学的製品の製造、使用又は販売を規制する行政機関指定の様式の通知を有することがあり、通知はヒト投与のために製造、使用あるいは販売する機関による認可を反映する。
【０１８７】
キットの成分が一つ以上の液体溶液で与えられる場合、液体溶液は水溶液、例えば、滅菌水溶液であることができる。この場合、容器手段はそれ自体が吸入器、注射器、ピペット、点眼ビン、あるいは組成物を患者にそこから投与してもよい他のそのような器具であってよい。
【０１８８】
キットの成分は、乾燥状態あるいは凍結乾燥状態で提供されてもよく、また、キットはさらに凍結乾燥された成分の再溶解のために適当な溶媒を含むことができる。容器の数あるいはタイプに関係なく、本発明のキットは、患者への組成物の投与を補助するための器具を含んでいてもよい。そのような器具は、吸入器、注射器、ピペット、ピンセット、計量スプーン、点眼ビンあるいは医療的に認められているそのようないかなる送達ビヒクルでもよい。
【０１８９】
ここでいう幹細胞は、成長中、例えば、これに限定されるものではないが、新生児から成体、またはその中間のあらゆる時期の成長中の対象に存在してよい。一つの実施形態において、いかなる方法でも限定することを意味するものではないが、幹細胞は出生直後、または約１日、２日、５日、１週、５週、１０週、２５週、１年、２年、５年、１０年、２０年、４０年、５０年、６０年、９０年、またはその間のあらゆる時期の対象に存在することができる。従来の技術分野で知られたあらゆる方法によって適当な対象から幹細胞を分離及び／または精製することもできる。そのような分離及び／または精製の方法は、本発明によって包含されることを意味する。幹細胞が対象から分離される場合、対象が生存していることが好ましい。しかしながら、死亡したばかりの対象から幹細胞を得ることもできる。
【０１９０】
本発明は、また、ａ）対象の一つ以上の筋肉の筋細胞の数、ｂ）対象の一つ以上の筋肉の筋肉量、ｃ）対象の一つ以上の筋肉の強度を増大させるため、対象の幹細胞の増殖、分化、または増殖と分化の両方を増加させる方法も意図している。好ましい実施形態において、対象はヒトである。しかしながら、幹細胞を他の対象の筋肉量の増加のために用いてよいことも意図している。      
【０１９１】
ここに記載の本願の方法は、インビボまたはインビトロで実施することができる。例えば、いかなる方法でも限定することを望むものではないが、本発明は、対象から幹細胞を分離すること、幹細胞を精製すること、幹細胞を培養すること、増殖、分化、または増殖と分化の両方のアクティベーターまたはインヒビターの一つ以上で幹細胞を処理すること、一つ以上のヌクレオチド構築物、例えば、増殖、分化、または増殖と分化の両方の一つ以上のアクティベーターまたはインヒビターで幹細胞を形質転換すること、あるいはこれらの組合せの一つ以上のステップを意図している。
【０１９２】
本発明は、一つ以上の小分子を含む方法及び組成物も意図し、例えば、これに限定されるものではないが、対象の幹細胞の増殖、分化、または増殖と分化の両方を増加させるために用いることができる塩化リチウムが挙げられる。例えば、いかなる方法でも限定することを望むものではないが、対象に塩化リチウムを含む組成物を投与することを含む、対象の筋肉幹細胞の増殖、分化、または増殖と分化の両方を増加する方法が提供される。 
【０１９３】
本組成物は、一日以上にわたって一回以上の用量で投与することができ、例えば、約１日から３０日、約１日から約１４日、または他の適当な必要期間投与することができる。治療的用量は、当該分野の技術者によって容易に決めることができる。例えば、いかなる方法でも限定することを望むものではないが、塩化リチウムは、約０．００１ｍｇ／ｋｇ（対象の体重基準で）から約２００ｍｇ／ｋｇ、好ましくは約０．０１ｍｇ／ｋｇから約２０ｍｇ／ｋｇ、さらに好ましくは約１ｍｇ／ｋｇから約１０ｍｇ／ｋｇ、さらに好ましくは約２ｍｇ／ｋｇの量で、組成物中に存在することができる。投与量は、当該分野の技術者には明らかなように、意図された投与法、特定の対象、対象の健康状態などによって変化してよい。 
【０１９４】
塩化リチウムを含む組成物は、他の化合物、例えば、これに限定されるものではないが、ここで定義されるｗｎｔシグナル伝達の一つ以上のモジュレーターなどを含んでよいことも意図される。 
【０１９５】
一つの実施形態において、本組成物は、筋変性または筋萎縮を示す対象へ投与され、例えば、これに限定されるものではないが、疾患または非疾患の結果によるものが挙げられる。具体例において、いかなる方法でも限定することを意味するものではないが、がんやエイズなどの疾患をもつまたは示す対象に本組成物を投与することができる。また別の実施形態においては、本組成物は、対象の筋細胞の数を増加させるため、及び／または対象の一つ以上の筋肉の強度、サイズまたはその両方を増大させるために、対象へ投与することができる。その際、制限することまたは理論に束縛されることを望むものではないが、ここで全体にわたって定義される方法及び組成物は、がん、エイズ、例えばＩＩ型糖尿病のような糖尿病、筋変性疾患等の一つ以上の疾患に付随する筋変性や萎縮などを予防及び／または治療するために用いることができる。さらに、ここで全体にわたって定義される方法及び組成物は、一つ以上の非疾患プロセスの結果である筋変性または筋萎縮を予防及び／または治療するために用いることができ、例えば、これに限定されるものではないが、一つ以上の筋肉の不使用の結果である筋萎縮が挙げられる。本方法は、失禁を予防及び／または治療するために用いることもできる。また、ここで全体にわたって定義される方法及び組成物は、対象の筋細胞の数を増加させるため、対象の一つ以上の筋肉のサイズを大きくするため、対象の一つ以上の筋肉の強度を高めるため、またはそれらの組合せのために用いることもできる。
【０１９６】
ここで定義される組成物は、当該分野において公知のあらゆる方法によって投与することができ、例えば、これに限定されるものではないが、経口的にあるいは注射により投与でき、例えば、静脈内、腹腔内（ＩＰ）、筋肉内、皮下等への注射が挙げられるが、これに限定されるものではない。組成物中にリチウムが含まれる実施形態においては、好ましくは腹腔内（ＩＰ）または筋肉内注射により、さらに好ましくはＩＰ注射によって投与する。しかしながら、組成物を投与する他のルートも意図される。
【０１９７】
ここで全体にわたって定義される組成物は、あらゆる適当な剤形に製剤化することができ、例えば、当該分野において知られているように、錠剤、液剤、懸濁剤、エマルジョン、マイクロエマルジョンなどが挙げられる。
【０１９８】
ここで図８を参照すると、インビボでのリチウム処理に応答して、筋形成を決定付けられた細胞の増加を示す実験の実験計画及び結果が示されている。図８Ａは、Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺマウスをＬｉＣｌ（２ｍｇ／Ｋｇ／ｄａｙ）を１４日間毎日ＩＰ注射して処理するという実験計画のフローチャートを示すものである。１０日目に、カルジオトキシンの注射によってＴＡ筋の筋肉の再生を誘導する。４日後に動物を屠殺し、全単核細胞をＴＡから分離、プレーティングし、２４時間後にΒ−ガラクトシダーゼを染色する。図８Ｂは、ＰＢＳ注射のコントロール動物に対して、ＬｉＣｌ処理の動物のΒ−Ｇａｌ陽性細胞（筋原細胞）の比率が、ほとんど倍であることを示す結果を示している。
【０１９９】
ここに記載された本発明の理解を深めるために、以下に実施例を記載する。これらの実施例は、説明目的のみのものと理解されるべきである。従って、これらは、いかなる方法によっても本発明の範囲を限定すべきでない。
【０２００】
上記説明は、いかなる方法でもクレームされた発明を限定することを意図せず、さらには、検討された特徴の組合せは、本発明の問題解決に絶対的に必要ではないかもしれない。
【実施例】
【０２０１】
実施例１：ＷＮＴシグナル伝達が、筋肉再生の間、ＣＤ４５＋成体幹細胞の筋原動員を活性化する
（材料及び方法）
細胞選別
単核細胞は、β−アクチン−ＥＧＦＰトランスジェニックマウス（Ｈａｄｊａｎｔｏｎａｋｉｓ，  １９９８，  Ｍｅｃｈ  Ｄｅｖ  ７６，  ７９−９０）、またはＭｙｆ５ｎＬａｃＺトランスジェニックマウス（Ｔａｊｂａｋｈｓｈ，  １９９５，  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  １２５，  ４１５５−４１６２）の後肢筋から得た。筋細胞は以前記載されたように回収した（Ｍｅｇｅｎｅｙ，  １９９６， Ｇｅｎｅｓ  Ｄｅｖ  １０，  １１７３−１１８３）。単核細胞を、５％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭで二回洗浄し、２〜３×１０６ｃｅｌｌ／ｍｌの濃度で懸濁した。染色は抗体：ＣＤ４５−ＡＰＣ、クローン３０−Ｆ１１またはＣＤ４５．２−ＦＩＴＣ（クローン１０４）、Ｓｃａ１−ＰＥ、クローンＤ７（ＢＤ  Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）を用いて、氷上で３０〜４５分間行った。あるいは、ＣＤ４５−ビオチン、クローン３０−Ｆ１１を、ストレプトアビジンＴｒｉ−Ｃｏｌｏｒ  Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ（Ｃａｌｔａｇ  Ｌａｂｓ）と１０分インキュベーション後使用した。一次抗体は、１：２００で希釈し、ストレプトアビジンＴｒｉ−Ｃｏｌｏｒ  Ｃｏｎｊｕｇａｔｅは１：１０００で希釈した。４℃のＤＭＥＭで二回洗浄後、細胞を３つのレーザーを備えたＭｏＦｌｏ  ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ（ＤａｋｏＣｙｔｏｍａｔｉｏｎ）で分離した。選別ゲートは、アイソタイプコントロール染色細胞及び単一抗体染色に基づいて、正確に決定した。死細胞及び残骸は、前方及び側方散乱分析結果で開閉することによって排除した。選別は、できるだけ高純度を達成するため、単細胞モードを用いて行った。選別された群の純度は、常に＞９８％であった。
【０２０２】
選別した細胞群の直接分析のため、細胞をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）中で洗浄及び懸濁し、シラン処理されたスライドグラス上にサイトスピンした（ＤＡＫＯ）。Ｘ−ｇａｌ染色は以前記載されたように行った（Ｋａｂｌａｒ，  １９９７，  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  １２４，  ４７２９−４７３８）。
【０２０３】
細胞培養及び安定細胞系
３週齢のＢａｌｂ／ｃマウスの後肢筋から一次筋芽細胞を分離し、２０％ＦＢＳ及び２．５ｎｇ／ｍｌ  ｂＦＧＦ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を追加したＨＡＭ’ｓ  Ｆ−１０培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中で維持した。単一筋線維は、以前記載されたように長指伸筋から調製した（Ｒｏｓｅｎｂｌａｔｔ，  １９９５）。ＡｔＴ−２０、ＢＯＳＣ  ２３、Ｃ３Ｈ１０Ｔ１／２、及びＣｏｓ１細胞はＡＴＣＣから入手し、１０％ＦＢＳを追加したＤＭＥＭ中で維持した。ＨＡ−Ｗｎｔタンパクを発現する安定細胞系を、以前記載されたようにして得た（Ｓｈｉｍｉｚｕ，  １９９７，  Ｃｅｌｌ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｄｉｆｆｅｒ  ８，  １３４９−１３５８）。ＨＡ−Ｗｎｔの発現は、抗ＨＡ抗体（ＨＡ−７，  Ｓｉｇｍａ）を用いたウェスタンブロット分析によって確認した。 
【０２０４】
共培養実験及び免疫組織化学
共培養実験のため、一次筋芽細胞またはＷｎｔ発現細胞を、精製したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞と１：１の割合で混合し、コラーゲンコートした２穴Ｐｅｒｍａｎｏｘ  Ｃｈａｍｂｅｒ  Ｓｌｉｄｅｓ（Ｌａｂ−Ｔｅｋ）上に撒いた。密度は、増殖条件の共培養では２×１０４ｃｅｌｌｓ／ｃｈａｍｂｅｒ、分化実験では４×１０４ｃｅｌｌｓ／ｃｈａｍｂｅｒであった。共培養は、２０％ＦＢＳを追加したＨＡＭ’ｓ  Ｆ−１０培地中で３日間維持し、分化実験のためにＤＭＥＭ／５％ウマ血清に切り替えた。Ｌｉ２＋またはＳｈｈ転換実験のため、１０ｍＭのＬｉＣｌ（Ｓｉｇｍａ）、あるいは１０または１００ｎｇ／ｍＬのＳｈｈ−Ｎ（Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ）を分化培地に添加した。免疫組織化学的分析のため、細胞を、２％ＰＦＡを用いて室温で１５分間固定し、０．０５％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を用いて１５分間透過処理し、ＰＢＳ中で１％ＢＳＡ／５％ＨＳによってブロックし、抗体を用いて室温で２時間染色した：染色に用いた抗体は、ＭｙｏＤ、クローン５．８Ａ（ＢＤ  Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）；ミオシン重鎖、クローンＭＦ−２０（Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  Ｓｔｕｄｉｅｓ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  Ｂａｎｋ  （ＤＳＨＢ））；Ｐａｘ７（ＤＳＨＢ）；またはβ−カテニン（ＢＤ  Ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ)である。フルオレセインまたはローダミン結合抗体（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ）を、二次検出に使用した。カバースライドを載せ、Ｚｅｉｓｓ  Ａｘｉｏｓｃｏｐ蛍光顕微鏡を使用して分析した。
【０２０５】
ＲＴ−ＰＣＲ、クローニング、及び配列決定
メーカーの使用説明書に従ってＲＮＡｅａｓｙ  ｋｉｔｓ（Ｑｉａｇｅｎ）を使用し、全てのＲＮＡを抽出した。Ｆｒｉｚｚｌｅｄ遺伝子発現の分析のため、保存ｆｒｉｚｚｌｅｄ配列であるＹＰＥＲＰＩＩＦ及びＷＷＶＩＬＳＬＴＷに対応する完全縮合プライマーを用いて、以前記載されたようにＲＴ−ＰＣＲを行った（Ｍａｌｉｋ，  ２０００，  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｊ  ３４９  Ｐｔ  ３，  ８２９−８３４）。その生成物を、ＴＯＰＯ−ＰＣＲＩＩベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中にクローニングし、配列決定した。Ｗｎｔ  ｍＲＮＡｓのＲＴ−ＰＣＲ分析は、ＧｅｎｅＡｍｐ  ＰＣＲ  Ｃｏｒｅ  ｋｉｔ（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ）を使用して行った。次のプライマーを使用した。
Wnt1 (5’-acgtacagtggccgcctg-3’; 5’-acgcgcgtgtgcgtgcagtt-3’; 203 bp); 
Wnt3a (5’-ggagatggtggtagagaaa-3’; 5’atagacacgtgtgcactc- 3’; 322 bp); 
Wnt4 (5’-agcccccgttcgtgcctgcggtcc-3’; 5’-actccacccgcatgtgtgtca-3’; 607 bp); 
Wnt5a (5’-aatggctttggccacgttttt-3’; 5’- tggattcgttcccttt-3’; 541 bp); 
Wnt5b (5’-agtgcagagaccggagatgttc-3’; 5’- ggcaaagttcttctcacgc-3’; 459 bp); 
Wnt7a (5’-agcgcggcgctgcctgggcc-3’; 5’-cttcagaaaggtgggccgcttgttt- 3’; 752 bp); 
Wnt7b (5’-ccgcacctcgccgggggccgac-3’; 5’-gtcggcccccggcgaggtgcgg-3’; 180 bp); 
Wnt10a (5'-aaagtcccctacgagagccc-3', 5'-cagcttccgacggaaagctt-3'), 
Wnt10b (5'-cggctgccgcaccacagcgc-3', 5'-cagcttggctctaagccggt-3') 
sFRP1 (5'-cgcccgtctgtctggaccg-3'; 5'-ctcgcttgcacagagatgt-3', 257 bp); 
sFRP2 (5'- ttcggccagcccgacttctcc- 3'; 5'- taggtcgtcgagacagacagggg- 3', 234 bp); 
sFRP3 (5'- attttcctatggattcaagtactg-3'; 5'-ttgactttcttaccaagccgatcctt- 3'; 396 bp); 
sFRP4 (5’- tggatagacatcacaccagatat-3'; 5'- cctgaagcctctcttccca-3', 423 bp).
【０２０６】
カルジオトキシン誘導性再生 
５〜８週齢マウスをハロタンガスを用いて麻酔した。１０μＭカルジオトキシン（Ｌａｔｏｘａｎ）２５μｌを、２９  Ｇ  １／２インスリン用シリンジを使用してＴＡ筋内へ直接注射した。細胞増殖試験のため、動物を屠殺する９０分前に５−ブロモ−デオキシウリジン（ＢｒｄＵ，  Ｓｉｇｍａ）０．３ｍｇ／ｋｇを、腹腔内に注射した。ＢｒｄＵを取り込んだ細胞を、ＦＩＴＣ結合抗ＢｒｄＵ 抗体（ＢＤ  Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）を用いたフローサイトメトリーにより検出した。ｓＦＲＰ試験のため、組換えＳＦＲＰ２及び３（Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ）１００ｎｇを、再生ＴＡ筋へ注射した。コントロール動物へは、同量のＰＢＳを注射した。全ＴＡ細胞群の分析のため、１×１０４の単核細胞を、コラーゲンコートしたチャンバースライド上に一晩プレーティングし、その後、１：２００の抗デスミン抗体（ＤＡＫＯ）で染色した。二次検出には、１：５００のロバ抗マウスＦＩＴＣ（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ）を用いた。
【０２０７】
ウェスタンブロット分析
損傷を受けていない再生ＴＡ筋を、液体窒素中で急速冷凍し、粉砕し、抽出緩衝液中（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ  ７．４、０．１％  Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００、５  ｍＭ  ＥＤＴＡ、２５０ｍＭ  ＮａＣｌ、５０ｍＭ  ＮａＦ、プロテアーゼインヒビター（Ｃｏｍｐｌｅｔ，  Ｒｏｃｈｅ））に溶解した。抽出物を、バイオラッド染料を使用してタンパク内容を正規化した。５０μｇの溶解物を、ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）によって分離し、ニトロセルロースフィルター上に転写した。フィルターを、Ｗｎｔ５ａ，１：２００（ＡＦ６４５，  Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ）；β−カテニン，１：２５０（ＢＤ  Ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）、α−チューブリン，１：２０００（Ｔ  ９０２６，  Ｓｉｇｍａ）に対する抗体で探索した。二次検出は、ホースラディッシュペルオキシダーゼ結合抗体（ＢｉｏＲａｄ）を用いて行った。タンパク発現を、ＥＣＬ  Ｐｌｕｓ  ｋｉｔ（Ａｍｅｒｓｈａｍ）を使用して可視化した。 
【０２０８】
再生筋肉のアフィメトリクス発現プロファイリング
再生マウス腓腹筋の遺伝子発現プロファイリング及びデータ分析は、すでに記載されている（Ｚｈａｏ，  ２００２，  Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ  ２７７，  ３００９１−３０１０１）ように、ＣＮＭＣ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｅｎｔｅｒで行われた。簡単に言うと、腓腹筋に１０ｍＭカルジオトキシン（ｃｔｘ）（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）１００μｌを注射した。ＲＮＡを、ｃｔｘ注射後０（注射なし）、１２時間、１日、２日、及び１０日に、４つの別々の筋肉から調製した。ビオチン標識ｃＲＮＡを、それぞれの複製のために得て、断片化し、Ｍｕｒｉｎｅ  Ｇｅｎｏｍｅ  Ｕ７４Ａ  ｖｅｒｓｉｏｎ  １  ｃｈｉｐｓ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ）とハイブリッド形成した。一次データ及び比較分析は、以前に記載されている（Ｃｈｅｎ，  ２０００，  Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ  １５１，  １３２１−１３３６）ように、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ  Ｍｉｃｒｏａｒｒａｙ Ｓｕｉｔｅ  ４．０を使用して行った。 
【０２０９】
（結果）
筋肉再生の間のＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原性決定
汎造血性マーカーＣＤ４５、及び幹細胞マーカーＳｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ａｎｔｉｇｅｎ−１（Ｓｃａ１）を発現する細胞は、損傷を受けていない前脛骨（ＴＡ）筋から精製し、カルジオトキシン（ｃｔｘ）投与後の様々な時点で再生を誘導した（図１Ａ）。ＣＤ４５及びＳｃａ１発現細胞の比率は、再生の間に平均１０倍まで増加した（ｎ＝６）（図１Ａ）。興味深いことに、ｃｔｘ注射後４日目のＣＤ４５−：Ｓｃａ１＋細胞（ＢｒｄＵ＋細胞の６０％）及びＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋ 細胞（ＢｒｄＵ＋細胞の１８％）内へのＢｒｄＵの選択的な取り込みは、これらの細胞が再生の間に大規模な増殖を起こしていることを示唆した（図１Ｂ）。これらの知見は、ＣＤ４５及びＳｃａ１を発現する筋細胞が、筋損傷に反応して活性化され、増殖することを示している。 
【０２１０】
筋原性プログラムに入った細胞を特異的に同定するために、細菌性ＬａｃＺ遺伝子がＭｙｆ５遺伝子座から発現されるヘテロ接合性Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺノックイン動物において、筋肉再生を誘導した。これらのレポーターマウスにおいて、ＬａｃＺの発現は内因性Ｍｙｆ５遺伝子の発現パターンを正確に繰り返し、この発現は、筋原性決定後速やかに誘導される（Ｔａｊｂａｋｈｓｈ，  １９９５，  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  １２１，  ４０７７−４０８３）。ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞は、ｃｔｘ注射後４日に損傷を受けていない再生筋肉から分画し、直ちにサイトスピンの調製に使用した。
【０２１１】
重要なことに、損傷を受けていない筋肉から精製されたＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋  及びＣＤ４５−：Ｓｃａ１＋細胞は、常にＭｙｆ５ｎＬａｃＺ 陰性であり、インビトロで決定された筋細胞を全く生じない（ｎ＝６）（図示せず）。しかしながら、損傷後４日の再生筋肉からのＣＤ４５＋：Ｓｃａ１ｈｉｇｈ 細胞の７．２＋／−２．６％（ｎ＝６）（図１Ａ参照）、及びＣＤ４５−：Ｓｃａ１＋細胞の３．８＋／−１．８％（ｎ＝３）が Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺ を共に発現した（図１Ｃ）。再生筋肉（損傷後４日）から精製された同様の比率のＣＤ４５＋：Ｓｃａ１ｈｉｇｈ細胞は、ＭｙｏＤ（図１Ｄ）、筋特異的中間フィラメントタンパク、デスミン（図１Ｄ）、及び衛星細胞特異的Ｐａｘ７タンパク（データ表示なし）を発現した。 さらに、再生筋肉から分画したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞は、分化培地中で培養後、ミオシン重鎖（ＭＨＣ）発現筋細胞に分化した（図１Ｄ）。再生中分離したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１−細胞におけるＭｙｆ５ｎＬａｃＺ発現の完全な欠如は、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋及びＣＤ４５−：Ｓｃａ１＋細胞における筋形成の特異的活性化を示した。選別を二回行った細胞を用いた実験においても同様の結果が得られた。 
【０２１２】
損傷筋肉中に存在する筋原前駆体の数に対するｃｔｘの影響も検討された（Ａｓａｋｕｒａ，  ２００２  ，  Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ  １５９，  １２３−１３４参照）。興味深いことに、ｃｔｘ注射後１８時間に、Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺ＋細胞数は、損傷を受けていない筋肉と比較して約３０倍まで減少した（４．１×１０４±１．６×１０４と比較して、１．１８×１０３±１×１０３Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺ＋  細胞／ｇ組織）（図１Ｅ）。全筋細胞のコロニー形成検定において、ｃｔｘ注射後１８時間のＭｙｏＤ＋及びデスミン＋筋原細胞が同様の減少を示したため、この知見はｃｔｘ誘導Ｍｙｆ５プロモーターサイレンシングによるものではなかった。
【０２１３】
再生中のＣＤ４５＋及びＳｃａ−１＋細胞の相対的な筋原性の寄与を決定するため、様々な筋肉画分に由来するＭｙｆ５ｎＬａｃＺ発現細胞の数を算出した。その分析（各時点につきｎ＞３）により、ｃｔｘ注射後４日に、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１ｈｉｇｈ；ＣＤ４５−：Ｓｃａ１＋；及びＣＤ４５＋：Ｓｃａ１−が、各々平均１．５４×１０５、３．９×１０５及び２×１０３Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺ＋細胞／ｇ組織を生じたことが明らかとなった（図１Ｆ）。これらの数は、Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺ筋由来の分画された群を用いてサイトスピンを調製した独立した実験から収集した平均値を表す。特に、決定された筋原前駆体（ＣＤ４５−：Ｓｃａ１−）は、損傷後４日間までに、６．０×１０６Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺ＋細胞／ｇ組織を占めた。従って、衛星細胞におけるｃｔｘの明らかな毒性は、常在衛星細胞群が、ｃｔｘ誘導性の筋肉損傷後、筋原前駆体の唯一の起源を実際に表すのか否かという疑問を引き起こす。
【０２１４】
総合すれば、これらの実験は、筋肉由来のＣＤ４５＋及びＳｃａ１＋細胞が、筋肉損傷に反応して筋原特異化を受ける能力を実証している。重要なことに、この知見は、非衛星細胞由来の前駆体が、正常な修復プロセスに関与することを示唆している。
【０２１５】
筋芽細胞との共培養またはリチウムへの曝露によって誘導されたＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原性決定
前記のように、損傷を受けていない骨格筋から精製されたＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞は、筋原細胞を自発的には形成しない（Ａｓａｋｕｒａ，  ２００２，  Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ  １５９，  １２３−１３４；  ＭｃＫｉｎｎｅｙ−Ｆｒｅｅｍａｎ，  ２００２，  Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  Ｕ  Ｓ  Ａ  ９９，  １３４１−１３４６も参照）。しかしながら、一次筋芽細胞との共培養において、投入されたＥＧＦＰトランスジェニックマウス由来のＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋筋細胞の０．５±０．０３％は、単核のＭＨＣ発現筋細胞を形成した（図２Ａ、コントロール）。前記トランスジェニックマウス由来の筋細胞の５０％までしかＥＧＦＰが検出できず、また、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞のプレーティング効率は低いので、この筋原分化の頻度は、実際の効率よりも過小評価である。単独培養したＣＤ４５＋：Ｓｃａ−１＋フラクション（ｎ＝６）において、筋原細胞は全く観察されなかったことから、選別に起因した筋芽細胞との共培養におけるいかなる汚染の可能性も排除された。
【０２１６】
Ｗｎｔシグナル伝達経路は、処理細胞のＧＳＫ−３βの抑制及びβ−カテニンの安定化を介してリチウムによって活性化される（Ｈｅｄｇｅｐｅｔｈ，  １９９７，  Ｄｅｖ  Ｂｉｏｌ  １８５，  ８２−９１）。従って、Ｗｎｔシグナル伝達経路がこの現象に包まれているのか否かを検討するために、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋筋細胞及び一次筋芽細胞の共培養を１０ｍＭ  ＬｉＣｌへ曝露した。１０ｍＭ  ＬｉＣｌとの共培養処理によって、ＧＦＰ＋、ミオシン重鎖（ＭＨＣ）発現筋細胞の頻度が、投入細胞の７．５％（ｎ＝３）へ１５倍に著しく増加した（図２Ａ）。さらに、ＬｉＣｌ含有分化培地中で筋芽細胞なしで培養したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞は、ＭＨＣ発現からも明らかなように筋原分化を受けた（図２Ｂ）。しかしながら、増殖条件においては、、ＬｉＣｌは４８時間以内に筋原細胞の急速な死を誘導し、これら培養のさらなる分析は不可能となった。要約すれば、これらの結果は、Ｗｎｔシグナル伝達経路の活性化が成体骨格筋から分離したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原特異化を誘導することを示唆した。
【０２１７】
ソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）のＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋筋細胞における筋形成刺激能力も試験した。１０または１００ｎｇ／ｍｌの組換えＳｈｈをＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞単独またはそれと筋芽細胞との共培養に添加したが、筋原分化効率へは影響しなかった。しかしながら、１００ｎｇ／ｍｌ  Ｓｈｈへの曝露後に、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞生存率に３−４倍の増加が観察された。 
【０２１８】
再生筋肉におけるＷｎｔ及びｓＦＲＰ発現の誘導
骨格筋再生中のＷｎｔシグナル伝達カスケードにおける遺伝子の発現動態の分析のため、半定量ＲＴ−ＰＣＲ分析を用いた。再生筋肉（損傷後４日）において、Ｗｎｔｓ５ａ、５ｂ、７ａ及び７ｂのｍＲＮＡが誘導され、一方、Ｗｎｔ４は強く下方制御された（図３Ａ）。リアルタイムＰＣＲを用いた第２の実験において、Ｗｎｔシグナル伝達カスケードにおける遺伝子の発現は、さらに下記表３の記載の結果を与えた。
【０２１９】
【表３】
2007524611.tif 000015
【０２２０】
ｍＲＮＡレベルでのＷｎｔｓの上方制御がタンパク発現の増加に対応するか否かを決定するため、Ｗｎｔ５ａタンパクのウェスタンブロット分析を行った。２つの独立した実験において、Ｗｎｔ５ａは再生２日から１０日に強く発現することが認められた。Ｗｎｔ１及びＷｎｔ３ａは、分析したどのサンプルにおいても発現されなかった。ｓＦＲＰ１、２及び３には強いけれども遅い誘導が観察されたが、ｓＦＲＰ４には見られなかった（図３Ａ）。Ｆｚｄｓの発現は全ての筋肉において高くなく、再生中の誘導はなかった。
【０２２１】
さらに、ＣＮＭＣ  Ｍｉｃｒｏａｒｒａｙ  Ｃｅｎｔｅｒで行われた再生マウス腓腹筋におけるアフィメトリクス配列試験を分析した。遺伝子発現は、損傷を受けていない筋肉（コントロール）、及びｃｔｘ注射後１２時間、１日、４日、１０日の各時点で４つの独立した複製を用いて検定された（http://microarray.cnmcresearch.org で入手可能）。４つの可能なペアワイズ比較の後、コントロール及び実験サンプル（再生）の間で＞２倍の発現変化を示した遺伝子のみ、さらに試験された。これらのデータの分析から、Ｗｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ及び７ｂが早くも損傷後２４時間で上方制御され、１０日の再生期間を通じて高い発現レベルが維持されたことが確認された。これに対して、ｓＦＲＰｓは損傷後４日から１０日の再生末期に上方制御された。特に、ｓＦＲＰ１、２及び４は、再生１０日の時点で、損傷を受けていない筋肉に対して各々７．３＋／−１．２、４．９＋／−０．３及び７．４＋／−４．１倍に上方制御された（４つのペアワイズ比較の平均）。要約すれば、本遺伝子発現試験は、Ｗｎｔｓ５ａ、５ｂ、７ａ、７ｂ、１０ａ及び１０ｂを含むｗｎｔポリペプチドが筋肉再生において果たす役割があり得ることを示唆している。
【０２２２】
筋芽細胞、筋管、及び分離された筋線維におけるＷｎｔ及びｓＦＲＰ発現
ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞が一次筋芽細胞との共培養において筋原性変化を起こす能力（図２）に鑑み、筋芽細胞、筋管、及び筋原線維をＷｎｔｓ及びｓＦＲＰｓの発現について試験した。重要なことに、Ｗｎｔ５ａ及び５ｂは、増殖中の筋芽細胞においては発現されたが、分化した筋管では発現されなかった。これに対して、Ｗｎｔ７ａは筋管においては発現されたが、筋芽細胞では発現されなかった（図３Ｂ）。興味深いことに、３つのＷｎｔｓ全てが、分離された単一筋線維において発現された。しかしながら、Ｗｎｔ７ｂのｍＲＮＡは、どのサンプルにおいても検出されなかった。最後に、ｓＦＲＰ１−４も筋芽細胞、筋管、及び筋線維において発現された（図３Ｂ）。従って、これらの結果は、筋芽細胞におけるＷｎｔ５ａ及びＷｎｔ５ｂの発現が、我々の共培養実験におけるＣＤ４５＋成体幹細胞の筋原性決定を誘導するという仮説を示唆するものである。さらに、これらのデータは、再生筋肉における筋原線維及び筋芽細胞によって分泌されたＷｎｔ５ａ、５ｂ、及び７ａによる組み合わされたシグナル伝達が、成体筋肉由来幹細胞の筋原性決定の原因であることを示唆するものである。
【０２２３】
ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞はＦｒｉｚｚｌｅｄ−１、４及び７を発現する
筋肉再生の間、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞がＷｎｔｓの推定標的を表すならば、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞はＷｎｔ受容体Ｆｒｉｚｚｌｅｄ（Ｆｚｄ）を発現することが予想される。従って、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞を休止中及び再生中のＴＡ筋から分離し、Ｆｚｄｓの発現を試験した。Ｆｚｄｓに対するＲＴ−ＰＣＲを完全縮重プライマーを用いて行い、続いてＰＣＲ産物のクローニング及び配列決定を行った。休止筋肉からのＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞では、Ｆｚｄ１及び４の発現が観察された。ｃｔｘ注射後４日までに、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞は、全体的にＦｚｄ発現を上方制御し、さらにＦｚｄ７も発現した（図３Ｃ）。重要なことに、休止中及び再生中の全てのＴＡ筋から分離されたＲＮＡで、Ｆｚｄ  ｍＲＮＡ発現に全く変化は見られなかったので、Ｆｚｄ  ｍＲＮＡｓの発現で観察されたこの上方制御はＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋群に特異的であった。
【０２２４】
筋肉再生の間、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞はβ−カテニンを上方制御する
再生筋肉において、Ｗｎｔシグナル伝達が活性化されるかどうかを決定するため、ウェスタンブロット分析を用いてβ−カテニンを検出した。β−カテニンの安定化及び核内蓄積は、応答細胞の標準Ｗｎｔ経路の活性化の証である（Ｐａｎｄｕｒ，  ２００２，  Ｂｉｏｅｓｓａｙｓ  ２４，  ８８１−８８４）。β−カテニンは、全ての再生ＴＡ筋からの抽出物において損傷を受けていない筋肉に比べて強く上方制御された（図４Ａ）。重要なことに、β−カテニンタンパクの発現は、筋肉損傷後ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞で高レベルに誘導された（図４Ｂ）。これに対して、ＣＤ４５−：Ｓｃａ１＋細胞は、β−カテニンを検出可能なレベルまで発現しなかった。再生筋肉においては、ＣＤ４５−：Ｓｃａ１−群、これはほぼ独占的に筋芽細胞からなる（未発表の知見）、はβ−カテニンを高レベルに発現した。これらのデータは、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞が、再生ＴＡ筋の標準Ｗｎｔシグナル伝達経路を経てＷｎｔシグナル伝達に応答するという仮説を支持するものである。 
【０２２５】
異所性ＷｎｔがＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原性決定を誘導する
ＷｎｔがＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原性変化を誘導するのに十分であるかどうかを検討するため、組換えＨＡ標識Ｗｎｔタンパクを発現する安定細胞系パネルを確立した。異所性Ｗｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ、及び７ｂ（Ｗｎｔ混合）を発現するＡｔＴ−２０細胞と共培養後、ＥＧＦＰ発現ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞は、これらの細胞のＷｎｔシグナル伝達の活性化に一致するβ−カテニン（矢印）の細胞質及び／または核局在化を示した（図５Ａ）。これに対して、空のベクターを安定に形質移入したＡｔＴ−２０細胞と共培養したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞は、細胞質内または核内にβ−カテニンを蓄積しなかった（図５A）。 
【０２２６】
増殖条件においては、Ｗｎｔ系と共培養したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞が、筋原性決定タンパクＭｙｏＤ、及び衛星細胞マーカーＰａｘ７の発現を開始した（図５Ｂ）。さらに、培養を４８時間の分化条件に切り替えた後には、ＭＨＣ陽性筋細胞が観察された（図５Ｂ）。これに対し、コントロールである非Ｗｎｔ発現ＡｔＴ−２０細胞と共培養したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞は、どの筋原性マーカーも発現しなかった（図５Ｃ）。従って、Ｗｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ及び７ｂの混合物によるシグナル伝達は、ｉｎｖｉｔｒｏでＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原性決定を導いた。個々のＷｎｔ発現細胞系はＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原性決定を誘導したが、低率であった。 
【０２２７】
ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞のプレーティング効率は、投入細胞の２−４％が再生可能であり、新しく分離した一次筋芽細胞で観察されたプレーティング効率とほぼ同じであった。３日間培養後には、ＥＧＦＰ＋  ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の投入数の２−４％が、Ｗｎｔ発現ＡｔＴ−２０細胞と共培養後に存在していた。重要なことに、生存しているＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の９０％以上が筋原性系列へ変化した。まとめると、これらの実験は、Ｗｎｔシグナル伝達が、損傷を受けていない筋肉から分離したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原特異化を活性化することを示すものである。
【０２２８】
注射されたｓＦＲＰが、再生の間、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原性動員を大幅に減少させる
インビボにおける筋肉再生のエフェクターとしてのＷｎｔシグナル伝達の関連性を評価するため、組換えＷｎｔアンタゴニストｓＦＲＰ２及び３（各１００ｎｇ）を、Ｍｙｆ５ｎｌａｃＺマウスの再生筋肉内へ毎日注射した。３つのコントロール動物群を、可能性のある外来性の効果を評価するために用いた。第一群（損傷を受けていないコントロール）はｃｔｘを注射せず、その後ｓＦＲＰ注射もしなかった。第二群は初めにｃｔｘではなくＰＢＳの注射し、次いでｓＦＲＰを毎日注射した。最後の群は、再生を誘導するためにｃｔｘを注射し、次いでｓＦＲＰｓの代わりにＰＢＳを毎日注射した。 
【０２２９】
筋肉細胞のフローサイトメトリー分析は、損傷後４日に観察されたＣＤ４５＋：Ｓｃａ１ｈｉｇｈ画分における増加（図６Ｂ）が、ｓＦＲＰｓ２及び３の毎日の注射によって、約４倍減少したことを示した（図６C）。さらに、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１ｈｉｇｈ細胞数の減少は、同時に起こる全単核細胞数の減少によるものではなかった。重要なことに、損傷を受けていない筋肉へのｓＦＲＰｓ注射はＴＡ筋再生を誘導せず、あるいは、いかなる形態学的変化も起こさなかった（図６Ａ）。
【０２３０】
Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺを発現するＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の比率を、毎日のｓＦＲＰ注射後５日目に試験した。前記（図１）のとおり、損傷後４日の再生筋肉から直接的に得たＣＤ４５＋：Ｓｃａ１ｈｉｇｈ細胞の６．７１±１．４４％が、Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺを発現した（ｎ＝３）（図６Ｂ）。重要なことに、Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺは、損傷を受けていない筋肉から分離したＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞では発現されなかった（図６Ｄ）。再生筋肉への毎日のｓＦＲＰ２及び３の注射は、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋画分におけるＭｙｆ５ｎＬａｃＺ＋細胞数を約６倍と著しく減少させた（図６Ｄ）。従って、Ｗｎｔシグナル伝達の抑制は、インビボにおけるＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋細胞の筋原特異化を著しく減少させた。
【０２３１】
筋肉再生に対するｓＦＲＰの効果をさらに特徴づけるため、損傷後４日の筋肉からの全単核細胞プールにおける筋原細胞の回複を分析した。３つの実験群から得た１×１０４の細胞を各ウェルにプレーティングし、２４時間後に骨格筋細胞に特異的なマーカーであるデスミンの発現を分析した（図６Ｅ）。毎日のｓＦＲＰｓ注射によって、再生４日目のＴＡ筋の単核のデスミン発現筋芽細胞の数は、ＰＢＳ注射の再生筋肉に比べて約７倍減少した（６．０３×１０４＋／−３．０３×１０４に対して４．４７×１０５＋／−１×１０５ｃｅｌｌｓ／ｇｒａｍ  ｔｉｓｓｕｅ）（図６Ｅ）。
【０２３２】
Ｉｎ  ｖｉｖｏでの動物のＬｉＣｌ処理
８−１０週齢の雄Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺマウスを、２つの群に分けた。第一群（ｎ＝３）は、塩化リチウムの腹腔内注射（２ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙ、約１００μＬ量）（Ｓｉｇｍａ）、第二群は（ｎ＝３）は生理食塩水注射（１００μＬ／ｄａｙ）を１４日間行った。処理開始後１０日目に、カルジオトキシン注射により再生を誘導した（１０μＭカルジオトキシン（Ｌａｘｏｔａｎ）２５μｌを２９Ｇ１／２インスリン用シリンジを用いてＴＡ筋へ直接注射した）。
【０２３３】
既に記載されているように、全単核細胞群の分析のために、ＴＡを回収し、機械的に解離し、コラゲナーゼ−ディスパーゼで消化した（Ｍｅｇｅｎｅｙ，  Ｌ．  Ａ．，  Ｋａｂｌａｒ，  Ｂ．，  Ｇａｒｒｅｔｔ，  Ｋ．，  Ａｎｄｅｒｓｏｎ，  Ｊ．  Ｅ．，  Ｒｕｄｎｉｃｋｉ，  Ｍ．  Ａ  （１９９６）， ＭｙｏＤ  ｉｓ  ｒｅｑｕｉｒｅｄ  ｆｏｒ  ｍｙｏｇｅｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｉｎ  ａｄｕｌｔ  ｓｋｅｌｅｔａｌ  ｍｕｓｃｌｅ．  Ｇｅｎｅｓ  Ｄｅｖ  １０，  １１７３−１１８３、これは参照することによりここに組み込まれる）。２×１０５の細胞を、コラゲーゲンコートしたチャンバースライドに一晩プレーティングし、その後４％パラホルムアルデヒドで１０分間固定し、Ｘ−ｇａｌ含有液で一晩染色した。結果を図８に示す。
【０２３４】
一次筋芽細胞に対するＷｎｔタンパク発現の影響
別の実験において、Ｗｎｔ−５ａ、−５ｂ、−７ｂ、β−カテニン及びβ−カテニン−ＩＲＥＳ−ｌｅｆ１のｃＤＮＡフラグメントを、レトロウィルスベクターｐＨＡＮ（ｐｕｒｏ）にサブクローニングした。環境栄養性レトロウィルスを調製するため、Ｐｈｏｅｎｉｘ−ｅｃｏパッケージング細胞に、ｌｉｐｏｆｅｃｔｏＡＭＩＮＥ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いてレトロウィルスベクターを形質移入した。形質移入後３０時間でウィルス上清を回収し、ポリブレン（Ｓｉｇｍａ、８ｍｇ／ｍｌ）の存在下で一次筋芽細胞に感染させるために使用した。感染させた細胞を、感染後２４時間にピューロマイシン（Ｓｉｇｍａ、１ｍｇ／ｍｌ）で選択した。選択した一次筋芽細胞を、１００ｍｍの皿中で増殖させ、ＰＢＳで２回洗浄し、プロテアーゼインヒビター混合物（Ｒｏｃｈｅ）を含む放射性免疫沈降検定（ＲＩＰＡ）緩衝液（５０ｍＭＴｒｉｓＨＣｌ、ｐＨ  ７．５；  １５０ｍＭＮａＣｌ；  ０．５％  Ｎｏｎｉｄｅｔ  Ｐ−４０；  ０．１％デオキシコール酸塩）１００ｍｌ中に溶解した。細胞抽出物を回収し、微量遠心機にて１３，０００ｒｐｍで５分間遠心した。全タンパク（５μｇ）は、１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分離し、Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｐ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）に移した。そのメンブレンを、一次抗体、次いで１：５，０００のＨＲＰ結合二次抗体（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）をプローブとし、ＥＣＬＴＭ  Ｐｌｕｓ  （Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用して発現させた。メンブレンはＢＩＯＭＡＸ  ｆｉｌｍ（Ｋｏｄａｋ）へ焼き付けた。この作業で使用した一次抗体は、抗ＰＡＸ７（１：２）、β−カテニン（ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、１：２，０００）、抗ＨＡ（Ｓｉｇｍａ、１：５，０００）、及び抗α−ｔｕｂｌｉｎ（Ｓｉｇｍａ、１：４，０００）であった。結果を図９に示す。
【０２３５】
記載された本発明は、同じことが多くの方法において変更されてよいことは明らかである。そのような変更は、本発明の精神及び範囲を逸脱するものと見なされるべきでなく、当該分野の技術者に明白であるような全てのそのような修飾は、請求項の範囲内に含まれることを意図する。
全ての引用は、参照することによりここに組み込まれる。
本発明は、好ましい実施形態について記載した。しかしながら、多くの変更及び修飾がここに記載の発明の範囲を逸脱することなく為すことが可能であるということは、当該分野の技術者に明らかであろう。
【０２３６】
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【図面の簡単な説明】
【０２４８】
【図１】図１は、再生筋肉のＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞の筋原性動員を表す。（Ａ）骨格筋由来細胞のフローサイトメトリー分析は、造血性マーカーであるＣＤ４５及びＳｃａ1を発現する細胞の比率が、再生筋肉（カルジオトキシン（ｃｔｘ）注射後４日及び７日）において激的に増加したことを示した。ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞の選別は４日目に示される。（Ｂ）インビボ細胞増殖試験は、損傷後４日に、ＢｒｄＵ＋細胞の６０％及び１８％が、それぞれＣＤ４５−：Ｓｃａ−１＋及びＣＤ４５＋：Ｓｃａ１＋であったことを示した（赤＝ＢｒｄＵ＋；青＝全細胞）。（Ｃ）Ｘ−ｇａｌ反応により検出されたように、損傷を受けていないもの以外の再生中のＭｙｆ５ｎＬａｃｚ骨格筋から精製したＣＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞の〜７−１０％が、ＣＤ４５＋、Ｓｃａｌ及びＭｙｆ５ｎＬａｃｚを共に発現した。（Ｄ）分画されたＣＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞は、培養においてＭｙｏＤ及びデスミン発現骨格筋細胞を生じた。さらに、同比率のＣＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞が、ミオシン重鎖（ＭＨＣ）発現筋管へ分化した。（Ｅ）Ｍｙｆ５ｎＬａｃｚ＋衛星細胞の数は、カルジオトキシン注射後１８時間で、損傷を受けていない筋肉に比べ〜３０倍低かった。（Ｆ）定量分析は、ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ（赤）及びＣＤ４５−：Ｓｃａ−１＋（青）画分が、それぞれ平均１．５４×１０５及び３．９×１０５個の筋原細胞を生じ、一方、ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ−（黒）画分の筋原性活動はごく僅かであったことを示した。
【０２４９】
【図２】図２は、筋芽細胞との共培養もしくはリチウムへの曝露により誘導されたＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞の筋原性決定を表す。（Ａ）一次筋芽細胞と共培養したＥＧＦＰ発現ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞は、０．５％の頻度で、単核のミオシン重鎖（ＭＨＣ）発現筋細胞を生じた。１０ｍM  ＬｉＣｌを添加した共培養において、ＥＧＦＰ＋：ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞の７．５％がＭＨＣ＋筋細胞（矢印）を形成した。矢印はＥＧＦＰ＋の非筋原細胞を示す。（Ｂ）１０ｍＭ  ＬｉＣｌを添加した分化培地で単培養したＣＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞は、単核のＭＨＣ発現筋細胞（矢印）を形成した。
【０２５０】
【図３】図３は、再生筋肉におけるＷｎｔ及びｓＦＲＰの上方制御を表す。（Ａ）ＲＴ−ＰＣＲ法は、再生ＴＡ筋におけるＷｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ、７ｂの発現増加を示した。一方、Ｗｎｔ４の発現は損傷後下方制御された。ｓＦＲＰ４以外のｓＦＲＰ１、２、３の発現の増加が、再生筋肉において認められた。（Ｂ）ＲＴ−ＰＣＲ試験は、Ｗｎｔ５ａ及び５ｂが筋線維（ｆｉｂｅｒ）及び増殖性筋芽細胞（ｍｂ）において発現し、Ｗｎｔ７ａは主に筋線維及び培養筋管（ｍｔ）（分化培養３日）において発現したことを示した。（Ｃ）Ｗｎｔ受容体であるＦｚｄ１、４及びＦｚｄ１、４、７が、損傷を受けていない筋肉及び再生筋肉（損傷後４日）からそれぞれ精製されたＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞において発現した。
【０２５１】
【図４】図４は、ＣＤ４５＋：Ｓｃａ−ｌ＋細胞が、再生の間β−カテニンを上方制御することを表す。（Ａ）ウエスタンブロット分析から、再生筋肉の抽出物におけるβ−カテニンタンパクのレベル増加が明らかになった。（Ｂ）高レベルのβ−カテニンタンパクが、損傷を受けていない骨格筋を除く再生骨格筋（損傷後４日）から分画されたＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞及びＣＤ４５−：Ｓｃａｌ−細胞において認められた。
【０２５２】
【図５】図５は、異所性ＷｎｔｓがＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞の筋原性決定を誘導することを表す。（Ａ）損傷を受けていない筋肉からのＥＧＦＰ発現ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞は、Ｗｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ、及び７ｂ（Ｗｎｔ混合物）を発現する細胞系と３日間共培養後に、β−カテニンタンパク（矢印）の核及び／または細胞質蓄積を示した。これに対して、空のｐＬＮＣＸベクターを形質移入した細胞と共培養したＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞（コントロール）においては、β−カテニンの発現は細胞膜に制限された。（Ｂ）ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞は、Ｗｎｔ５ａ、５ｂ、７ａ、及び７ｂ発現細胞と３日間共培養後に、ＭｙｏＤ及びＰａｘ７を発現した。共培養を低分裂促進因子環境へ曝露後は、ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞はミオシン重鎖（ＭＨＣ）発現筋細胞として分化した。（Ｃ）コントロールである空のベクター（ｐＬＮＣＸ）を安定に形質移入した細胞系との共培養においては、ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞は、ＭｙｏＤ、Ｐａｘ７もしくはＭＨＣの発現を開始しなかった。
【０２５３】
【図６】図６は、ｓＦＲＰｓ注射が、再生の間ＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞の動員を顕著に低下させることを表す。（Ａ−Ｃ）ＣＤ４５及びＳｃａｌのフローサイトメトリー分析は、ｓＦＲＰ２及び３で毎日処理した再生筋肉（Ｃ）のＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞比率が、ＰＢＳ注射の再生筋肉（Ｂ）に比べ減少したことを示した。損傷を受けていない筋肉へのｓＦＲＰｓ注射（Ａ）は、再生を誘導しない、あるいはＣＤ４５＋：Ｓｃａｌ＋細胞比率への影響がなかった。（Ｄ）Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺを共発現したＤ４５＋：Ｓｃａｌｈｉｇｈ細胞の比率は、ｓＦＲＰ２及び３で再生筋肉処理後、６倍まで減少した。（Ｅ）デスミン発現筋芽細胞の数における７倍の減少が、ｓＦＲＰｓ処理再生筋肉から回復した。
【０２５４】
【図７】図７は、Ｗｎｔシグナル伝達の成体幹細胞にとっての筋原動員における役割を表す。本実験は、損傷した筋原線維、常在筋芽細胞、及び損傷した筋肉内の可能性のある他の細胞型から分泌されたＷｎｔシグナルが、筋原性転写因子の活性化、及び幹細胞の筋前駆体への決定を誘導するという仮説を示唆する。Ｗｎｔシグナル伝達は筋原特異化を誘導するＰａｘ７遺伝子の活性化に向けられる。修復後、ＷｎｔアンタゴニストであるｓＦＲＰ２及び３の分泌がＷｎｔシグナル伝達を遮断し、それにより幹細胞の筋原動員が阻害される。
【０２５５】
【図８Ａ】図８は、インビボでのリチウム処理に応答して筋形成を決定づけられた細胞が増加すること示す実験の実験計画法及び結果を表す。図８Ａは、実験計画フローチャートである。Ｍｙｆ５ｎＬａｃＺマウスにＬｉＣｌ（２ｍｇ／Ｋｇ／ｄａｙ）のＩＰ注射を１４日間毎日行う。１０日目に、カルジオトキシン注射によりＴＡ筋に筋肉の再生を誘導する。４日後、マウスを屠殺して全ての単核細胞をＴＡ筋より分離し、プレーティングし、２４時間後にΒ−ガラクトシダーゼを染色する。
【０２５６】
【図８Ｂ】図８Ｂは、ＬｉＣｌ処理群におけるΒ−Ｇａｌ陽性細胞（筋原細胞）の比率が、ＰＢＳ注射のコントロール群に対して、ほぼ２倍以上であることを示す結果である。
【０２５７】
【図９】図９は、ｗｎｔポリペプチドが、一次筋芽細胞のＰａｘ７の発現を調節することを示すウエスタンブロット結果を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図９】
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【国際調査報告】
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