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　特願２０１１−２２２２７８「新規なグルコース脱水素酵素」拒絶査定不服審判事件〔平成２５年　５月　９日出願公開、特開２０１３−　８１３９９〕について、次のとおり審決する。
【結　論】
　本件審判の請求は、成り立たない。
【理　由】
１　手続の経緯
　本願は、平成２３年１０月６日の出願であって、平成２８年５月３０日付け拒絶理由通知に応答して平成２８年８月４日に意見書が提出されたが、平成２８年１１月２９日付けで拒絶査定がなされ、これに対して、平成２９年３月６日に拒絶査定不服審判請求がなされたものである。
２　本願発明
　本願の請求項１〜１０に係る発明は、出願当初の特許請求の範囲の請求項１〜１０に記載された事項により特定されるものであり、そのうち請求項１に係る発明は、次のとおりのものである。
「【請求項１】　以下の特性（１）及び（２）を備えるフラビン結合型グルコース脱水素酵素。
（１）分子量：　ＳＤＳ−ポリアクリルアミド電気泳動で測定した該酵素のポリペプチド部分の分子量が約８８ｋＤａである。
（２）基質特異性：　Ｄ−グルコースに対する反応性を１００％としたときのＤ−キシロースに対する反応性が１．３％以下である。」（以下、「本願発明」という。）
３　拒絶査定の理由
　拒絶査定の理由である、平成２８年５月３０日付け拒絶理由通知の理由１及び２は、概略、次のとおりのものである。
（１）理由１
　本願発明に係るフラビン結合型グルコース脱水素酵素は、任意の生物に由来するものを包含するところ、発明の詳細な説明に具体的に記載されているのは、Mucor guilliermondii由来のもののみである。
　同じ反応を触媒するポリペプチドであっても由来の違いによりその他の特性は異なるという本願出願時の技術常識に照らせば、発明の詳細な説明に記載された内容を本願発明全体にまで拡張ないし一般化することはできないから、本願発明は発明の詳細な説明に記載したものとはいえず、本願は、特許請求の範囲の記載が特許法第３６条第６項第１号に規定する要件を満たしていない。
（２）理由２
　発明の詳細な説明の記載及び本願出願時の技術常識を参酌しても、本願発明のうちMucor guilliermondii由来以外のものを取得することは、当業者に期待し得る程度を超える試行錯誤や複雑高度な実験等を必要とするものであるから、本願は、発明の詳細な説明の記載が特許法第３６条第４項第１号に規定する要件を満たしていない。
４　当審の判断
（１）発明の詳細な説明の記載内容
　発明の詳細な説明には、次の内容が記載されている。
　ア　発明が解決しようとする課題
　「本発明は、さらに優れた特性（例えば、Ｄ−キシロースに対する反応性が低い）を備えた新たなグルコース脱水素酵素及びそれを利用したセンサ等を提供することを課題とする。また、本発明者等は、より実用的なＳＭＢＧ用グルコースセンサの提供について日夜検討を重ねた結果、よりグルコースに対する親和性の高い酵素（即ち、Ｋｍ値の小さい酵素）を利用することにより、測定時間を短縮し、且つ、少量の酵素の使用で正確な血糖値測定が可能になるという課題を見出した。」（段落【０００８】）
　イ　課題を解決するための手段
　「このような課題を解決すべく本発明者等は鋭意研究を重ね、Ｍｕｃｏｒ  ｇｕｉｌｌｉｅｒｍｏｎｄｉｉに属する菌株から基質特異性及び基質との親和性に優れたＧＤＨを精製することに成功した。係る知見に基づき、本発明者等は更なる検討と改良を積み重ね、本発明を完成するに至った。」（段落【０００９】）
　ウ　発明の効果
　「本発明のフラビン結合型グルコース脱水素酵素（以下、「ＦＧＤＨ」とも称する。）は基質特異性に優れる。即ち、本発明のＦＧＤＨは、Ｄ−キシロース、Ｄ−ガラクトース及びマルトースに対する反応性が有意に低いため、試料中にＤ−グルコースと前記糖類の１種又は２種以上が共存する場合であってもグルコース量又は濃度を正確に測定することを可能にする。また、本発明のＦＧＤＨは、Ｄ−グルコースとの親和性が高い（即ち、Ｄ−グルコースに対するＫｍ値が有意に低い）ため、より少ない酵素量で試料中のＤ−グルコース濃度をより短時間で測定することを可能にする。」（段落【００１１】）
　エ　発明を実施するための形態
　「１−１．グルコースデヒドロゲナーゼ活性
　フラビン結合型グルコースデヒドロゲナーゼとは、電子受容体存在下でグルコースの水酸基を酸化してグルコノ−δ−ラクトンを生成する反応を触媒する理化学的性質を有する酵素である。本書においては、この酵素活性をグルコースデヒドロゲナーゼ活性といい、特に断りが無い限り、「酵素活性」又は「活性」とは、当該酵素活性を意味する。・・・より具体的には、下記の試薬及び測定条件を用いて活性を測定することができる。・・・」（段落【００１４】〜【００１５】）
　「１−２．分子量
　本発明のＦＧＤＨを構成するポリペプチド部分の分子量は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥで測定した場合に約８８ｋＤａである。「約８８ｋＤａ」とは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分子量を測定した際に、当業者が、通常８８ｋＤａの位置にバンドがあると判断する範囲を含むことを意味する。「ポリペプチド部分」とは、実質的に糖鎖が結合していない状態のＦＧＤＨを意味する。・・・
　ＳＤＳ−ＰＡＧＥでの分子量の測定は、一般的な手法及び装置を用い、市販される分子量マーカーを用いて行うことができる。」（段落【００２１】〜【００２３】）
　「１−３．基質特異性
  本発明のＦＧＤＨは、基質特異性に優れている。特に、本発明のＦＧＤＨは、Ｄ−グルコースに対する反応性を基準とした場合に、少なくともＤ−キシロース、Ｄ−ガラクトース及びマルトースに対する反応性が有意に低い。・・・
　ＦＧＤＨの各糖類に対する反応性は、上記１−１．に示すグルコースデヒドロゲナーゼ活性の測定方法において、Ｄ−グルコースを他の糖（例えば、Ｄ−キシロース、Ｄ−ガラクトース、又はマルトース）に置き換えて、Ｄ−グルコースの場合の活性を比較することにより求めることができる。但し、比較する場合の各糖類の濃度は５０ｍＭである。」（段落【００２４】〜【００２７】）
　「１−９．由来
  本発明のＦＧＤＨは、上述する特性を備える限り、その由来は特に制限されないが、例えば、ケカビ科に分類される微生物、より具体的にはムコール（Mucor）属、Absidia属、及びActinomucor属に分類される微生物に由来するものを例示することができる。更に具体的には、Mucor guilliermondii、Mucor prainii、Mucor javanicus、及びMucor circinelloidesに帰属する微生物に由来するものを例示することができる。より更に具体的には、Mucor guilliermondii  ＮＢＲＣ９４０３に由来するものを例示することができる。Mucor guilliermondii  NBRC9403を含む多くのMucor属に属する微生物は、ＮＢＲＣ（ＮＩＴＥ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｒｅｓｏｕｒｃｅ  Ｃｅｎｔｅｒ）（独立行政法人製品評価技術基盤機構  バイオテクノロジー本部  生物遺伝資源部門）に保管された菌株であり、所定の手続を経ることによってその分譲を受けることができる。また、土壌や河川・湖沼などの水系又は海洋に存在する微生物や各種動植物の表面または内部に常在する微生物などを単離源することができる。低温環境、火山などの高温環境、深海などの無酸素・高圧・無光環境、油田など特殊な環境に生育する微生物を単離源としてもよい。」（段落【００３５】）
　「２．ＦＧＤＨの製造方法
  本発明のＦＧＤＨの製造方法は、本発明のＦＧＤＨの取得が可能である限り特に制限されず、本発明のＦＧＤＨを産生する微生物を培養して、その培養上清又は菌体内から各種の精製を実施することにより製造することができる。本発明のＦＧＤＨの代表例は、後述する実施例に示す通り、ムコール（Mucor）属に分類される微生物から単離された。よって、本発明のＦＧＤＨは、例えば、ケカビ科に分類される微生物、より具体的には、Mucor属、Absidia属、Actinomucor属等）に属する微生物、更に具体的にはMucor guilliermondii、Mucor prainii、Mucor javanicus、Mucor circinelloides等に属する微生物、より更に具体的には、Mucor guilliermondii  NBRC9403から単離することにより製造することができる。・・・
　本発明のＦＧＤＨの微生物からの単離は、後述する実施例を参考に、常法に従って実施することができる。培養物中のＦＧＤＨを生産する菌体を含む培養液をそのまま採取し、それをＦＧＤＨとして利用することもできるが、一般には、常法に従って、ＦＧＤＨが培養液中に存在する場合はろ過、遠心分離などにより、ＦＧＤＨ含有溶液と微生物菌体とを分離した後に利用される。ＦＧＤＨが菌体内に存在する場合には、得られた培養物からろ過または遠心分離などの手段により菌体を採取し、次いで、この菌体を機械的方法またはリゾチームなどの酵素的方法で破壊し、また、必要に応じて、ＥＤＴＡ等のキレート剤及び界面活性剤を添加してＦＧＤＨを可溶化し、水溶液として分離採取することができる。
  上記のようにして得られたＦＧＤＨ含有溶液を、例えば減圧濃縮、膜濃縮、さらに硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウムなどの塩析処理、あるいは親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール、アセトンなどによる分別沈殿法により沈殿せしめればよい。また、加熱処理や等電点処理も有効な精製手段である。その後、吸着剤あるいはゲルろ過剤などによるゲルろ過、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティクロマトグラフィーを行うことにより、精製されたＦＧＤＨを得ることができる。
  例えば、セファデックス（Ｓｅｐｈａｄｅｘ）ゲル（ＧＥヘルスケア  バイオサイエンス社製）などによるゲルろ過、ＤＥＡＥセファロースＣＬ−６Ｂ  （ＧＥヘルスケア  バイオサイエンス社製）、オクチルセファロースＣＬ−６Ｂ  （ＧＥヘルスケア  バイオサイエンス社製）等のカラムクロマトグラフィーにより分離、精製し、精製酵素標品を得ることができる。該精製酵素標品は、電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）的に単一のバンドを示す程度に純化されていることが好ましい。
  なお、培養液からのＦＧＤＨ酵素活性を有するタンパク質の採取（抽出、精製など）にあたっては、ＦＧＤＨ酵素活性、マルトース反応性、熱安定性等上記１．に示した特性を指標に実施することができる。」（段落【００３６】〜【００４３】）
　オ　実施例
　「［実施例４］  Mucor guilliermondii  ＮＢＲＣ９４０３由来ＦＧＤＨの精製
  ５０ｍＬのＤＰ液体培地を５００ｍＬ容量の坂口フラスコに入れ、オートクレーブで滅菌し、前培養用の培地とした。そこに実施例１で復元したMucor guilliermondii  ＮＢＲＣ９４０３を一白金耳植菌し、２５℃、１８０ｒｐｍで３日間振とう培養し、種培養液を得た。次に、６．０Ｌの生産培地（イーストイクストラクト  ２．０％、グルコース  １％、ｐＨ６．０）を１０Ｌ容量のジャーファーメンターに入れ、オートクレーブで滅菌し、本培養培地を調整した。そこに５０ｍＬの種培養液を植菌し、培養温度２５℃、攪拌速度６００ｒｐｍ、通気量２．０Ｌ／分、管内圧０．２ＭＰａの条件で３日間培養した。その後、培養液をろ布でろ過し、菌体を回収した。得られた菌体を５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ６．０）に懸濁した。
　懸濁液をフレンチプレス（Ｎｉｒｏ  Ｓｏａｖｉ製）に流速１６０ｍＬ／分で送液し、１０００〜１３００ｂａｒで破砕した。続いて、破砕液に硫酸アンモニウム（住友化学（株）製）を０．４飽和になるように徐々に添加して、室温で３０分間攪拌した後、ろ過助剤（昭和化学工業(株)）を用いて懸濁物質を除去し、清澄な濾液を得た。次に分画分子量１０，０００のＵＦ膜（ミリポア（株）製）を用いて濃縮し、濃縮液をＳｅｐｈａｄｅｘ  Ｇ−２５  のゲルを用いて脱塩した。その後、脱塩液に０．５飽和になるように硫酸アンモニウムを徐々に添加し、予め０．５飽和の硫酸アンモニウムを含む５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ６．０）で平衡化した４００ｍＬのＳＰセファロースＦａｓｔＦｌｏｗ（ＧＥヘルスケア製）カラムにかけ、５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）のリニアグラジエントで溶出させた。そして、溶出されたＧＤＨ画分を分画分子量１０，０００の中空糸膜（スペクトラムラボラトリーズ製）で濃縮後、濃縮液をＳｅｐｈａｄｅｘ  Ｇ−２５  のゲルを用いて脱塩した。その後、ＤＥＡＥセファロースＦａｓｔ  Ｆｌｏｗ（ＧＥヘルスケア製）カラムにかけ、精製酵素を得た。」（段落【００５６】〜【００５７】）
　「［実施例６］酵素のペプチド部分の分子量
  実施例４で精製したＦＧＤＨ酵素を１００℃、１０分間、加熱処理して変性させた後、５ＵのＮ−グリコシダーゼＦ（ロシュ・ダイアグノスティクス製）で３７℃、６時間処理し、タンパク質に付加している糖鎖を分解した。その後、実施例５と同様にＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法で測定を行った。タンパク質分子量マーカーの移動度より分子量は約８８，０００ダルトンであった。」（段落【００６１】）
　「［実施例７］基質特異性
  実施例４で精製したＦＧＤＨ酵素について、上記１−１．に示すＧＤＨの活性測定法に従い、基質としてＤ−グルコースを用いたときの活性と、比較対象の糖を用いたときの見かけの活性とを比較することにより、基質特異性を調査した。比較対象の糖としてはマルトース、Ｄ−ガラクトース、Ｄ−キシロースをそれぞれ使用した。基質濃度５０ｍＭ、ｐＨ６．５、３７℃の条件で測定した。結果を表２に示す。
【表２】
  その結果、本発明のＦＧＤＨの基質特異性は、Ｄ−グルコースに対する活性値を１００％とした場合、マルトース、Ｄ−ガラクトース、Ｄ−キシロースに対する見かけの活性は、いずれも３％以下であることが示された。」（段落【００６２】〜【００６４】）
　「［実施例１３］フラビン結合型酵素であることの確認
  実施例４で精製した酵素を１０ｍＭ 酢酸緩衝液（ｐＨ５．０）で透析し、２５０−８００ｎｍにおける吸収スペクトルを分光光度計Ｕ−３２１０（日立ハイテクノロジーズ社製）により測定した。その結果、波長３４０〜３５０ｎｍ付近および波長４２０〜４３０ｎｍ付近に極大を示す２つのピークが確認された。このような吸収スペクトルの形状から、本発明のＧＤＨがフラビン結合型タンパク質であることが強く示唆された。」（段落【００７４】）
（２）理由１（特許法第３６条第６項第１号違反）について
　本願発明は、上記２のとおりのものであって、特定された分子量及び基質特異性を満たす限り、あらゆる生物に由来する野生型酵素、それらに基づく改変酵素や人工的に設計された酵素など多種多様な構造のフラビン結合型グルコース脱水素酵素を包含するものである。
　それに対して、発明の詳細な説明には、唯一の具体物として実施例のMucor guilliermondii NBRC9403由来グルコース脱水素酵素が記載されているものの（上記（１）オ）、それ以外については、例えばケカビ科（Mucor属、Absidia属、Actinomucor属等）に属する微生物から、実施例を参考に常法に従って単離できる旨が一般的に記載されるにとどまっている（上記（１）エ）。
　本願出願日当時、Aspergillus属、Penicillium属、Mucor属といった分類学的に多岐にわたる微生物がフラビン結合型グルコース脱水素酵素を有することが広く知られていたこと（例えば、国際公開第２０１０／１４０４３１号、国際公開第２０１１／０６８０５０号）に照らせば、由来が特定されていない本願発明には、少なくとも、多様な属の微生物に由来するフラビン結合型グルコース脱水素酵素やその変異体が包含されると考えられる。一方、同じ反応を触媒する酵素であっても、由来生物が異なれば化学構造が異なり、その結果、分子量や基質特異性、その他の特性が異なることが通常であって、近縁な微生物の間でさえ基質特異性まで類似しているとは限らないというのが本願出願日当時の技術常識であった。例えば、国際公開第２０１０／１４０４３１号（特に、表３）には、Mucor属の３つの種、M.prainii、M.javanicus、及びM.circinelloidesに由来するフラビン結合型グルコース脱水素酵素が基質特異性（キシロースに対する反応性等）の点で異なることが記載されているとおりである。また、アミノ酸残基の置換等の変異により特性が変化することも技術常識であり、例えば、国際公開第２０１１／０３４１０８号（特に、表５〜８、１０〜１７）に、アスペルギルス・オリゼ由来フラビン結合型グルコース脱水素酵素の１アミノ酸置換体が基の酵素とは異なる基質特異性（キシロースに対する反応性）を有することが記載されているとおりである。
　このような技術常識を参酌すると、たとえ実施例の単離源と近縁なMucor属微生物から実施例を参考に常法にしたがってフラビン結合型グルコース脱水素酵素を単離したり、実施例の酵素に変異を加えたとしても、必ずしも本願発明が特定する分子量及び基質特異性を兼ね備えた酵素を取得できるとはいえないと考えるべきである。実際、発明の詳細な説明には、本願発明に係るフラビン結合型グルコース脱水素酵素の単離源としてM.prainii、M.javanicus、及びM.circinelloidesが例示されているところ（上記（１）エの「１−９．由来」、「２．ＦＧＤＨの製造方法」）、国際公開第２０１０／１４０４３１号には、それら３種由来のフラビン結合型グルコース脱水素酵素は、ＳＤＳ−ポリアクリルアミド電気泳動で測定したポリペプチド部分の分子量がいずれも約８０ｋＤａであること、Ｄ−グルコースに対する反応性を１００％としたときのＤ−キシロースに対する反応性が、それぞれ１．５３％、１．４３％及び２．００％であることが記載されており、いずれの酵素も分子量及び基質特異性が本願発明で特定する範囲外であることから、発明の詳細な説明の記載にしたがって、例示されたMucor属微生物からフラビン結合型グルコース脱水素酵素を単離しても本願発明に至らない場合があるといえる。まして、実施例のMucor guilliermondii NBRC9403と分類学的にさらに遠い微生物を単離源とした場合にはなおさらである。
　以上によれば、本願出願日当時の技術常識に照らしても、発明の詳細な説明に開示されたMucor guilliermondii NBRC9403由来グルコース脱水素酵素に関する内容を、本願発明の範囲にまで拡張ないし一般化できるとは認めることができない。
（３）理由２（特許法第３６条第４項第１号違反）について
　上記（２）の判断をふまえれば、発明の詳細な説明は、本願発明のうちMucor guilliermondii NBRC9403に由来するもの以外について、当業者が作ることができる程度に記載したものとは認めることができない。
（４）請求人の主張について
　請求人は、平成２８年８月４日付け意見書及び平成２９年３月６日付け審判請求書において、次の点を主張する。
　ア　発明の詳細な説明には、Mucor guilliermondii NBRC9403から本願発明に係る酵素を取得したことが開示されており、この菌株は独立行政法人製品評価技術基盤機構　に寄託されているのだから、当業者であれば、当該菌株を入手し、本願発明の分子量及び基質特異性を満たすフラビン結合型グルコース脱水素酵素を容易に取得することができる。
　イ　当業者であれば、上述のようにして取得したフラビン結合型グルコース脱水素酵素のアミノ酸配列を同定し、それと他の公知のフラビン結合型グルコース脱水素酵素のアミノ酸配列とを比較等することにより、当該理化学的特性の維持に必要と考えられるアミノ酸配列を推測することが可能であり、それ以外のアミノ酸残基に変異を加えることにより、本願発明のうちMucor guilliermondi NBRC9403由来以外のものを取得することが可能である。
　まず、上記主張アは、実施例の再現性を説明するものにすぎないから、上記理由１及び２の判断を左右することはない。
　また、上記主張イについては、発明の詳細な説明には、実施例のMucor guilliermondi NBRC9403由来フラビン結合型グルコース脱水素酵素のアミノ酸配列についても、それ以外の公知のフラビン結合型グルコース脱水素酵素のアミノ酸配列についても何ら記載されていないうえ、それらを比較して得た情報に基づいて前者のアミノ酸残基に変異を加えて本願発明に係る酵素を取得するという技術思想さえ記載がない。異なる生物種由来の酵素のアミノ酸配列を比較して得た情報に基づいて所望の特性を有する酵素変異体を作成することは、通常、相当程度の創作能力を必要とすることであるから、上記主張イは、技術常識を考慮しても、発明の詳細な説明の開示を大きく逸脱するものといえ、採用の限りではない。
５　むすび
　以上のとおり、本願は、発明の詳細な説明の記載が特許法第３６条第４項第１号に規定する要件を満たしておらず、特許請求の範囲の記載が同法第３６条第６項第１号に規定する要件を満たしていないから、拒絶すべきものである。
　よって、結論のとおり審決する。