(57)【要約】【課題】  対象物の標的細胞における遺伝子生成物の量を変えることにより、望ましい生理学的な状態を誘発することができる。前記標的細胞は、ＲＮＡｉにより少なくとも１つの第一遺伝子の発現を減少させるように設計された少なくとも１つの化合物、及び少なくとも１つの第二遺伝子からの発現を増強させるように設計された少なくとも１つの化合物により処理される。前記標的脂肪における前記第一遺伝子の減少された発現、及び前記第二遺伝子からの増強された発現は、前記対象者における望ましい生理学的状態を誘発する。このような方法おいて標的細胞の遺伝子発現を変化することによって、血管新生、又は腫瘍増殖及び転移などの状況が阻害され得る。【選択図】      図２
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
対象物における望ましい生理的状態を含む方法であって、
（１）ＲＮＡｉによって少なくとも１つの第一遺伝子の発現を低減するために、少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物の有効量を用いて、前記対象物の標的細胞を治療する工程と、
（２）少なくとも１つの第二遺伝子の発現を増強する少なくとも１つの化合物の有効量を用いて、前記標的細胞を治療する工程と、を有し、
ここで、前記標的細胞において、前記少なくとも１つの第一遺伝子の低減された発現、及び前記少なくとも１つの第二遺伝子の増強された発現は、前記対象物における望ましい生理的状態を誘発するものである、方法。
【請求項２】
請求項１の方法において、前記望ましい生理的状態は、前記対象物における血管新生の阻害である。
【請求項３】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つの第一遺伝子は、血管新生促進遺伝子である。
【請求項４】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つの第二遺伝子は、血管新生抑制遺伝子である。
【請求項５】
請求項３の方法において、前記血管新生促進遺伝子は、ＶＥＧＦ、Ｆｌｔ−１、Ｆｌｋ−１／ＫＤＲ、ＨＩＦ−１  アルファ、ＩＣＡＭ−１、Ａｎｇ１、Ａｎｇ２、及びＴｉｅ−２遺伝子から成る群から選択されるものである。
【請求項６】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つの第一遺伝子は、ＶＥＧＦ及びＨＩＦ−１  アルファ；ＶＥＧＦ及びＡｎｇ２；ＶＥＧＦ及びＩＣＡＭ−１；又はＶＥＧＦ、ＨＩＦ−１  アルファ及びＡｎｇ２である。
【請求項７】
請求項４の方法において、前記血管新生抑制遺伝子は、Ａｎｇ２、アンジオスタチン、抗トロンビン−３、ＡＴＦ、カルレティキュリン、エンドスタチン、ＩＰ−１０、Ｋ１−５、クリングル−５ドメイン、マスピン、Ｍｉｇ／ＣＸＣＬ９、ＰＥＤＦ、ＰＥＸ、ＣＸＣＬ４、ＰＲＰ、ＴＩＭＰ−１、ＴＩＭＰ−２、ＴＩＭＰ−３、ＴＩＭＰ−４、トロポニンＩ−２、Ｔ２−ＴｒｐＲｓ、ＴＳＰ−１、及びタムスタチン遺伝子から成る群から選択されるものである。
【請求項８】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つの第一遺伝子はＶＥＧＦであり、さらに前記少なくとも１つの第二遺伝子はＰＥＤＦ、エンドスタチン、又はアンジオスタチンである。
【請求項９】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つの第一遺伝子はＨＩＦ−１  アルファであり、さらに前記少なくとも１つの第二遺伝子はＰＥＤＦ、エンドスタチン、又はアンジオスタチンである。
【請求項１０】
請求項１の方法において、前記標的細胞は、網膜色素上皮細胞である。
【請求項１１】
請求項１の方法において、前記望ましい生理的効果は、標的細胞のアポトーシスの誘導である。
【請求項１２】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つの第一遺伝子は、アポトーシス抑制遺伝子である。
【請求項１３】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つの第二遺伝子は、アポトーシス促進遺伝子である。
【請求項１４】
請求項１２の方法において、前記アポトーシス抑制遺伝子は、Ｂｃｌ−２及びＢｃｌ−ｘＬ遺伝子から成る群から選択されるものである。
【請求項１５】
請求項１３の方法において、前記アポトーシス促進遺伝子は、Ｂａｄ、Ｂａｋ、Ｂａｘ、ＢｃｌＸＳ、Ｂｉｋ、及びＣａｓｐ−３遺伝子から成る群から選択されるものである。
【請求項１６】
請求項１の方法において、前記標的細胞は癌細胞である。
【請求項１７】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、単離されたｓｉＲＮＡを含むものである。
【請求項１８】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、少なくとも１つのｓｉＲＮＡをエンコードした発現ベクターを含むものである。
【請求項１９】
請求項１の方法において、前記工程（２）の少なくとも１つの化合物は、少なくとも１つの第二遺伝子から生産された単離タンパク質を含むものである。
【請求項２０】
請求項１の方法において、前記工程（２）の少なくとも１つの化合物は、少なくとも１つの第二遺伝子をエンコードした発現ベクターを含むものである。
【請求項２１】
請求項１の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物、及び前記工程（２）の少なくとも１つの化合物は、共に、
（１）前記少なくとも１つの第一遺伝子を標的にしたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）前記少なくとも１つの第二遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する単一発現ベクターを含むものである。
【請求項２２】
対象物における血管新生の抑制方法であって、
（１）血管新生促進遺伝子のＲＮＡｉを誘導することによって少なくとも１つの血管新生促進遺伝子の発現を低減するために、少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物の有効量を用いて、前記対象物の標的細胞を治療する工程と、
（２）少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子から血管新生抑制因子の値を上げるために、少なくとも１つの血管新生抑制化合物の有効量を用いて、前記標的細胞を治療する工程と
を有する抑制方法。
【請求項２３】
請求項２２の方法において、前記血管新生促進遺伝子は、ＶＥＧＦ、Ｆｌｔ−１、Ｆｌｋ−１／ＫＤＲ、ＨＩＦ−１  アルファ、ＩＣＡＭ−１、Ａｎｇ１、Ａｎｇ２、及びＴｉｅ−２遺伝子から成る群から選択されるものである。
【請求項２４】
請求項２２の方法において、前記少なくとも１つの血管新生促進遺伝子は、ＶＥＧＦ及びＨＩＦ−１  アルファ；ＶＥＧＦ及びＡｎｇ２；ＶＥＧＦ及びＩＣＡＭ−１；又はＶＥＧＦ、ＨＩＦ−１  アルファ及びＡｎｇ２である。
【請求項２５】
請求項２２の方法において、前記血管新生抑制遺伝子は、Ａｎｇ２、アンジオスタチン、抗トロンビン−３、ＡＴＦ、カルレティキュリン、エンドスタチン、ＩＰ−１０、Ｋ１−５、クリングル−５ドメイン、マスピン、Ｍｉｇ／ＣＸＣＬ９、ＰＥＤＦ、ＰＥＸ、ＣＸＣＬ４、ＰＲＰ、ＴＩＭＰ−１、ＴＩＰＭ−２、ＴＩＭＰ−３、ＴＩＭＰ−４、トロポニンＩ−２、Ｔ２−ＴｒｐＲｓ、ＴＳＰ−１、及びタムスタチン遺伝子から成る群から選択されるものである。
【請求項２６】
請求項２２の方法において、前記少なくとも１つの血管新生促進遺伝子はＶＥＧＦであり、さらに前記少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子はＰＥＤＦ、エンドスタチン、又はアンジオスタチンである。
【請求項２７】
請求項２２の方法において、前記少なくとも１つの血管新生促進遺伝子はＨＩＦ−１  アルファであり、さらに前記少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子はＰＥＤＦ、エンドスタチン、又はアンジオスタチンである。
【請求項２８】
請求項２２の方法において、前記標的細胞は、網膜色素上皮細胞である。
【請求項２９】
請求項２２の方法において、前記血管新生は病原性である。
【請求項３０】
請求項２２の方法において、前記血管新生は非病原性である。
【請求項３１】
請求項２２の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、少なくとも１つの単離されたｓｉＲＮＡを含むものである。
【請求項３２】
請求項２２の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、少なくとも１つのｓｉＲＮＡをエンコードした発現ベクターを含むものである。
【請求項３３】
請求項２２の方法において、前記少なくとも１つの血管新生抑制化合物は、前記少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子から生産された血管新生阻害因子を含むものである。
【請求項３４】
請求項２２の方法において、前記少なくとも１つの血管新生抑制化合物は、前記少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子をエンコードした発現ベクターを含むものである。
【請求項３５】
請求項２２の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物、及び前記少なくとも１つの血管新生抑制化合物は、共に、
（１）前記少なくとも１つの血管新生促進遺伝子を標的にしたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）前記少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する単一発現ベクターを含むものである。
【請求項３６】
対象物において血管新生疾患を治療する方法であって、
（１）ＲＮＡｉによって少なくとも１つの血管新生促進遺伝子の発現を低減するために、少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物の有効量を用いて、前記対象者の標的細胞を治療する工程と、
（２）少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子からの血管新生抑制因子の値を増加するために、少なくとも１つの血管新生抑制化合物の有効量を用いて、標的細胞を治療する工程と、を有し、
ここで、前記標的細胞において、前記少なくとも１つの血管新生促進遺伝子の発現を低減させる発現、及び前記少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子からの血管新生抑制因子の値の増加は、前記対象者において血管新生を抑制するものである、血管新生疾患を治療する方法。
【請求項３７】
請求項３６の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、少なくとも１つの単離されたｓｉＲＮＡを含むものである。
【請求項３８】
請求項３６の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物、及び前記少なくとも１つの血管新生抑制化合物は、共に、
（１）前記少なくとも１つの血管新生促進遺伝子を標的としたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）前記少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する単一発現ベクターを有するものである。
【請求項３９】
請求項３６の方法において、前記血管新生疾患は、癌、ＡＭＤ、糖尿病性網膜症、乾癬、関節リウマチ、及び炎症性疾患から成る群から選択されるものである。
【請求項４０】
対象者の標的細胞においてアポトーシスを誘発する方法であって、
（１）ＲＮＡｉにより少なくとも１つのアポトーシス抑制遺伝子の発現を低減するために、少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物の有効量を用いて、標的細胞を治療する工程と、
（２）少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子からのアポトーシス促進因子の値の上げるために、少なくとも１つのアポトーシス化合物の有効量を用いて、前記標的細胞を治療する工程と、を有し、
ここで、前記標的細胞において、前記少なくとも１つのアポトーシス抑制遺伝子の低減させた発現、及び前記少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子からのアポトーシス促進因子の値の増加は、前記対象者の標的細胞におけるアポトーシスを誘導するものである、アポトーシスを誘発する方法。
【請求項４１】
請求項４０の方法において、前記アポトーシス抑制遺伝子は、Ｂｃｌ−２及びＢｃｌ−ｘＬ遺伝子から成る群から選択されるものである。
【請求項４２】
請求項４０の方法において、前記アポトーシス促進遺伝子は、Ｂａｄ、Ｂａｋ、Ｂａｘ、ＢｃｌＸＳ、Ｂｉｋ及びＣａｓｐ−３遺伝子から選択されるものである。
【請求項４３】
請求項４０の方法において、前記標的細胞は癌細胞である。
【請求項４４】
請求項４０の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、少なくとも１つの単離されたｓｉＲＮＡを含むものである。
【請求項４５】
請求項４０の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、少なくとも１つのｓｉＲＮＡをエンコードした発現ベクターを有するものである。
【請求項４６】
請求項４０の方法において、前記少なくとも１つのアポトーシス促進化合物は、前記少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子から生産された単離アポトーシス促進因子を有するものである。
【請求項４７】
請求項４０の方法において、前記少なくとも１つのアポトーシス促進化合物は、前記少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子をエンコードした発現ベクターを有するものである。
【請求項４８】
請求項４０の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物、前記少なくとも１つのアポトーシス促進化合物は、共に、
（１）前記少なくとも１つのアポトーシス抑制遺伝子を標的としたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）前記少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する単一発現ベクターを有するものである。
【請求項４９】
対象者における癌の治療方法であって、
（１）ＲＮＡｉによって少なくとも１つのアポトーシス抑制遺伝子の発現を低減するために、少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物の有効量を用いて、前記対象者の癌細胞を治療する工程と、
（２）少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子からのアポトーシス促進因子の値を上げるために、少なくとも１つのアポトーシス促進化合物の有効量を用いて、前記癌細胞を治療する工程と、を有し、
ここで、前記癌細胞において、前記少なくとも１つのアポトーシス抑制遺伝子の発現の低減と、前記少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子からのアポトーシス促進遺伝子の値の増加は、前記患者の癌増殖を抑制するものである癌の治療方法。
【請求項５０】
請求項４９の方法において、前記治療される癌は、乳癌、肺がん、頭部及び頸部癌、脳腫瘍、腹腔内癌、結腸癌、結腸直腸癌、食道癌、胃腸癌、神経こう種、肝臓癌、舌癌、神経芽神経種、骨肉種、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌、網膜芽種、ウイルム腫瘍、多発性骨髄腫、皮膚癌、リンパ腫及び血液癌から成る群から選択されるものである。
【請求項５１】
請求項４９の方法において、前記アポトーシス抑制遺伝子は、Ｂｃｌ−２及びＢｃｌ−ｘＬ遺伝子から選択されるものである。
【請求項５２】
請求項４９の方法において、前記アポトーシス促進遺伝子は、Ｂａｄ，Ｂａｋ、Ｂａｘ、ＢｃｌＸＳ、Ｂｉｋ及びＣａｓｐ−３遺伝子から選択されるものである。
【請求項５３】
請求項４９の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、少なくとも１つの単離ｓｉＲＮＡを有するものである。
【請求項５４】
請求項４９の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物は、少なくとも１つのｓｉＲＮＡをエンコードした発現ベクターを含むものである。
【請求項５５】
請求項４９の方法において、前記少なくとも１つのＲＮＡｉ化合物、及び前記少なくとも１つのアポトーシス促進化合物は、共に、
（１）前記少なくとも１つのアポトーシス抑制遺伝子を標的としたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）前記少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する単一発現ベクターを有するものである。
【請求項５６】
単一発現ベクターを有する薬学的組成物であって、
（１）少なくとも１つの第一遺伝子を標的としたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）少なくとも１つの第二遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する薬学的組成物。
【請求項５７】
単一発現ベクターを有する薬学的組成物であって、
（１）少なくとも１つの血管新生促進遺伝子を標的としたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する薬学的組成物。
【請求項５８】
単一発現ベクターを有する薬学的組成物であって、
（１）少なくとも１つのアポトーシス抑制遺伝子を標的としたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する薬学的組成物。
【請求項５９】
発現ベクターであって、
（１）少なくとも１つの血管新生促進遺伝子を標的としたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する発現ベクター。
【請求項６０】
請求項５９の発現ベクターにおいて、前記少なくとも１つの血管新生促進遺伝子は、ＶＥＧＦ又はＨＩＦ−１  アルファである。
【請求項６１】
請求項５９の発現ベクターにおいて、前記少なくとも１つの血管新生抑制遺伝子は、ＰＥＤＦ又はアンジオスタチンである。
【請求項６２】
発現ベクターであって、
（１）少なくとも１つのアポトーシス抑制遺伝子を標的としたｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列と、
（２）少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子を発現するための核酸配列と
を有する発現ベクター。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、２００３年１２月２３日に出願された米国同時係属仮出願第６０／５３２，０９９号に対して優先権を主張した出願であり、その内容はこの参照により本明細書に完全に組み込まれる。
【０００２】
本発明は、望ましい生理学的効果を達成するために、細胞内における少なくとも１つの遺伝子の発現を低減し、さらに別の遺伝子からの遺伝子生成物の量を増加させることによって、特に血管新生疾患などの疾患を治療するための組成物および方法に関連する。
【背景技術】
【０００３】
成熟したヒトの組織では、血管新生（「新血管形成」とも称する）を開始する能力は、通常、細胞中での血管新生の促進因子と抑制因子とのバランスを介した厳密な制御の下で保たれている。それゆえ血管新生は、創傷治癒あるいは月経周期の特定段階中等、成人においては制御された特定条件下でのみ起こる。成熟した生物体における非制御あるいは不適切な血管新生は、発病状態を引き起こしうる。
【０００４】
例えば、眼の脈絡膜の新血管形成は、加齢黄斑変性症（ＡＭＤ）を有する患者に重篤な視覚喪失をもたらす。糖尿病性網膜症（ＤＲ）、虹彩、網膜、および視神経は眼の新血管形成によって損傷され得る。ＡＭＤおよびＤＲは共に、世界的に回復不能な失明をわずらった患者の大部分を占める。ＡＭＤおよびＤＲの両者に見られる病原性の新血管形成は、眼の細胞中での血管新生促進因子と抑制因子とのバランスに関係していると考えられている。
【０００５】
多くの固形腫瘍も、適切な血液供給を確保するために、血管新生を開始する。新しい血管は腫瘍を成長させ、周辺の正常組織を損傷する。腫瘍の増加した血管分布はまた、転移性腫瘍細胞の体内での遠隔部位への定着能力を高める。腫瘍により開始された血管新生もまた、腫瘍細胞における血管新生の促進因子と抑制因子とのバランスの変化が関係しているとも考えられている。
【０００６】
多くの細胞内血管新生促進因子および抑制因子は同定されている。主な血管新生促進因子は、血管透過性因子（ＶＰＦ）とも呼ばれる、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）である。ヒトにおいては、ＶＥＧＦは少なくとも４つの異なる選択的スプライスフォーム（ＶＥＧＦ１２１，ＶＥＧＦ１６５，ＶＥＧＦ１８９、およびＶＥＧＦ２０６）で存在しており、これらの全ては同様な生物活性を示す。血管新生は、分泌されたＶＥＧＦが、内皮細胞表面で発現されたＦｌｔ−１やＦＬｋ−１／ＫＤＲ受容体（ＶＥＧＦ受容体１およびＶＥＧＦ受容体２とも称する）と結合すると惹起される。
【０００７】
Ｆｌｔ−１やＦｌｋ−１／ＫＤＲは、膜貫通タンパク質チロシンキナーゼであり、ＶＥＧＦと結合して、周辺組織での最終的な血管新生を起こす細胞シグナルのカスケードを惹起する。従って、Ｆｌｔ−１およびＦｌｋ−１／ＫＤＲもまた、血管新生促進因子である。
【０００８】
別の血管新生促進因子は、低酸素誘導因子１（ＨＩＦ−１）のアルファサブユニットである。ＨＩＦ−１は、ＨＩＦ−１アルファおよびＨＩＦ−１ベータサブユニットからなる、ヘテロ二量体性ｂａｓｉｃ−ｈｅｌｉｘ−ｌｏｏｐ−ｈｅｌｉｘ−ＰＡＳ転写因子である。ＨＩＦ−１アルファの発現とＨＩＦ−１の転写活性は、細胞内酸素濃度が減少するにつれて指数関数的に増加する。
【０００９】
また別の血管新生促進因子は、刺激の非存在下低値で限定数の細胞上に通常発現する、免疫グロブリンスーパーファミリーの１１０ｋＤａメンバーである、ＩＣＡＭ−１である。炎症メディエータで刺激すると、各種組織の様々な細胞型（例えば、内皮細胞、上皮細胞、繊維芽細胞、および造血細胞）が、それぞれの表面で高濃度のＩＣＡＭ−１を発現する。血管新生中の内皮細胞のＥＣＭとの相互作用は、ＩＣＡＭ−１の発現の増加によって部分的に起こる細胞−マトリックス間の接触の変化を要する。
【００１０】
さらに別の２つの血管新生促進因子は、アンジオポエチン−１（Ａｎｇ１）およびアンジオポエチン−２（Ａｎｇ２）である。Ａｎｇ１の抑制のみで血管新生を阻止できるように思われるが、Ａｎｇ１は、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）と協奏して血管新生を促進するように作用できる。Ａｎｇ２は、Ｔｉｅ２の状況依存性の競合的拮抗薬であるが、特定条件下ではＴｉｅ２を活性化できる。従って、Ａｎｇ２は、細胞内環境によって血管新生の促進因子にも抑制因子にもなり得る。Ｔｉｅ２受容体は、血管新生促進因子とも考えられている。
【００１１】
色素上皮由来因子或いは「ＰＥＤＦ」は、強力な血管新生抑制因子である。ＰＥＤＦは、網膜色素上皮細胞で初めて同定されたが、眼の他の細胞によっても産生される。眼の低酸素状態はＰＥＤＦ発現の下方制御へと導き、ＡＭＤ患者では硝子体中のＰＥＤＦが欠乏していることがよくある。
【００１２】
別の血管新生抑制因子は、プラスミノーゲンのタンパク質分解断片である、アンジオスタチンである。アンジオスタチンを発現するアデノ随伴ウイルスベクターは、眼の血管形成のラットおよびマウスモデルにおいて血管新生を阻害する。エンドスタチンもまた、エンドスタチンの血清中濃度が高濃度であることによってマウスにおけるレーザー誘導性の脈絡膜血管新生を減少させることで証明されているように、血管新生を抑制する性質を有する。未熟児網膜症のマウスモデルへのエンドスタチンの網膜下注射もまた、網膜の血管新生を阻害した。
【００１３】
「組織メタロプロテアーゼ−３阻害物質（ｔｉｓｓｕｅ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ  ｏｆ  ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ−３；ＴＩＭＰ−３）」あるいは「ＴＩＭＰ−３」遺伝子の変異型は、ソーズビー眼底ジストロフィー（Ｓｏｒｓｂｙ’ｓ  ｆｕｎｄｕｓ  ｄｙｓｔｒｏｐｈｙ）と呼ばれる血管新生黄斑変性症（ｍａｃｕｌａｒ  ｎｅｏｖａｓｃｕｌａｒ  ｄｉｓｅａｓｅ）に関連しており、野生型ＴＩＭＰ−３は血管新生を抑制する性質を有する。従って、ＴＩＭＰ−３は、血管新生抑制因子であると考えられる。ＴＩＭＰ−１、２、および４も血管新生抑制因子として知られている。
【００１４】
非血管新生性疾患あるいは生理学状態は、細胞内の特定遺伝子の産物の相対量の変化から生じる。例えば、Ｂｃｌ−２遺伝子ファミリーは、抗アポトーシス性（Ｂｃｌ−２、Ｂｃｌ−ｘＬ）およびアポトーシス促進性（Ｂｃｌ−ｘｓ、Ｂａｋ、Ｂａｘ）遺伝子を含む。Ｂｃｌ−２ファミリーのメンバーは、赤血球細胞の生存を左右する。アポトーシス促進性および抗アポトーシス性Ｂｃｌ−２遺伝子ファミリーメンバーから産生する遺伝子産物の量を変化させると、赤血球破壊の増加および貧血を導く。同様に、ＢａｘのＢｃｌｘＬに対する比が細胞中で上昇すると、その細胞はアポトーシスを起こす。特定の細胞型のアポトーシスの誘導は、癌等の疾患の直接治療と関わりがある。
【００１５】
ＲＮＡ干渉（「ＲＮＡｉ」）は、多くの真核生物で維持されている転写後の遺伝子制御法である。細胞中に存在する、低分子あるいは短鎖（即ち、３０ヌクレオチド未満）の二本鎖ＲＮＡ（「ｄｓＲＮＡ」）によってＲＮＡｉは誘導される。これらの短鎖ｄｓＲＮＡ分子は、「短鎖あるいは低分子量干渉ＲＮＡ」あるいは「ｓｉＲＮＡ」と呼ばれ、ｓｉＲＮＡと配列の相同性を共有するメッセンジャーＲＮＡ（「ｍＲＮＡ」）の破壊を引き起こす。ｓｉＲＮＡおよび標的ｍＲＮＡは、標的ｍＲＮＡを切断するＲＮＡ誘導サイレンシング複合体（「ＲＩＳＣ」）に結合する。ｓｉＲＮＡ誘導ＲＮＡｉは、ｍＲＮＡ約１０００分子の切断が誘導可能な１個のｓｉＲＮＡで、複数の代謝回転動態（ｍｕｌｔｉｐｌｅ  ｔｕｒｎｏｖｅｒ  ｋｉｎｅｔｉｃｓ）を示す。従ってｓｉＲＮＡ介在ＲＮＡｉは、１対１で標的ｍＲＮＡあるいはタンパク質と結合する標的遺伝子の発現を抑制するための現在可能な技術に比べより効果的である。しかしながら、ＲＮＡｉは所定の細胞中の細胞因子遺伝子発現の量を効率よく減少できるが、細胞中の血管新生抑制因子の量を増加させない。
【００１６】
ＰＥＤＦは、アデノウイルスおよびアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）発現ベクターによって網膜色素上皮細胞に供給されており、マウス中で実験的に誘導した血管新生の値を減少させている。眼に注入した、アンジオスタチンとエンドスタチンを発現するＡＡＶベクターもまた、眼の血管新生のマウスモデルを回復させるのにも使用されている。マウスにおける眼の血管新生は、エンドスタチンを発現するＡＡＶベクターを全身に注入することでも、阻害されている。全身注入されたＡＡＶベクターは、肝臓の細胞に形質導入し、エンドスタチンの血清濃度の上昇をもたらす。これらの研究報告は、血管新生抑制因子が、その因子が眼で産生されたか全身投与されたかに関わらず、眼の血管新生を阻害できることを示している。しかしながら、所定の細胞中の血管新生抑制因子の値の上昇は、細胞内にまだ存在している血管新生因子信号を排除しない。
【００１７】
従って、被検体の異なる生理学的状態をコントロールするためには、対象とする細胞中の特定の細胞因子の発現を減少させ、その他の細胞因子の値を上昇させる組成物および方法が必要である。対象とする細胞中で血管新生抑制因子を上流制御できると共に、効率的に血管新生因子を下流制御できる、組成物および方法が特に望まれる。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【００１８】
異なる生理学的状態は、特定の細胞因子の発現を細胞中のＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）により減少させ、同細胞中の他の細胞因子値を従来手段により上昇させて誘導できる。遺伝子発現を減少させるためにＲＮＡｉを使用することは、対象とする細胞因子の発現がほぼ完全に阻害できるので、このような状況では特に有利である。
【００１９】
従って本発明は、被検体の標的細胞の遺伝子産物の相対量を変化させて、所望の生理学的状態を誘導する方法を提供する。前出標的細胞は、少なくとも１個の第１番目の遺伝子の発現を減少させるＲＮＡｉ化合物少なくとも１種を有効量、該細胞内に存在する少なくとも１個の第２番目の遺伝子から発現を上昇させる化合物少なくとも１種を有効量で処理される。第１番目の遺伝子の標的細胞中での発現は、その第１番目の遺伝子のＲＮＡｉを誘導することで減少される。標的細胞中の第１番目の遺伝子の発現減少と第２番目の遺伝子からの発現増加は、その被検体で所望の生理学的状態を誘導する。
【００２０】
本発明はまた、被検体の標的細胞中の遺伝子産物の相対量を変化させて、被検体の血管新生疾患（ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ  ｄｅｓｅａｓｅ）を治療あるいは血管新生の抑制方法を提供する。標的細胞は、少なくとも１個の血管新生促進遺伝子の発現を減少させるＲＮＡｉ化合物少なくとも１種を有効量と、少なくとも１個の血管新生抑制遺伝子から血管新生抑制因子の値を上昇させる血管新生抑制化合物少なくとも１種を有効量とで処理される。標的細胞内の血管新生促進遺伝子の発現は、血管新生促進遺伝子のＲＮＡｉを誘導することで減少される。標的細胞中の血管新生促進遺伝子の発現減少、および少なくとも１個の血管新生抑制遺伝子からの血管新生抑制因子値の上昇は、該被検体の血管新生を阻害する。
【００２１】
本発明はまた、標的細胞中の遺伝子産物の相対量を変化させることで被検体の標的細胞中のアポトーシスを誘導する方法を提供する。これらの標的細胞は、少なくとも１個の抗アポトーシス遺伝子の発現を減少させるＲＮＡｉ化合物の少なくとも１種を有効量と、細胞内に存在する少なくとも１個のアポトーシス促進性遺伝子から少なくとも１個のアポトーシス因子の値を上昇させる少なくともアポトーシス促進性化合物の少なくとも１種を有効量とで処理される。標的細胞中の抗アポトーシス遺伝子の発現は、抗アポトーシス遺伝子のＲＮＡｉを誘導することで減少する。標的細胞中の抗アポトーシス遺伝子の発現減少と少なくとも１個のアポトーシス促進遺伝子からの少なくとも１個のアポトーシス促進因子値の上昇は、その標的細胞中のアポトーシスを誘導する。  
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
現時点での本願出願書類は、非常に長い配列リストを含み、このリストはプリントアウトした書類の代わりにＣＤ−Ｒにて提出されているが、その全内容を本願明細書にこの参照により組み込む。２００４年１２月２１日記録の前出ＣＤ−Ｒは、各々「コピ−１」、［コピー２］のラベル付けされており、各々は同一の１つの７２０ＫＢファイル（ＤＢＲ−０４−１３２４Ｒ．ｄｏｃ）のみを含む。
【００２３】
特に記載のない限り、本明細書中の核酸配列は全て５’→３’方向で記載する。また、核酸配列中のデオキシリボヌクレオチドは全てアルファベットの大文字（例：デオキシチミジンを「Ｔ」とする）、核酸配列中のリボヌクレオチドをアルファベットの小文字（例：ウリジンを「ｕ」とする）で表示する。
【００２４】
生物体中で生理状態を介在する多くの細胞プロセスは、逆効果あるいは拮抗的な効果を有する細胞因子の相互作用によりコントロールされている。細胞内でのこれらの因子の相対量の変化は、所定の生理状態を開始あるいは阻害することができる。特定の細胞因子の相対量が不適切に変化すると、病的生理状態が起こる。
【００２５】
例えば、低酸素状態にある細胞は血管新生促進因子を過剰産生し、血管新生促進因子の血管新生抑制因子に対する割合の増加を起こす。血管新生促進因子の抑制因子に対する割合の増加は、血管新生を刺激する。血管新生は、細胞内の血管新生促進因子の量を減じ、血管新生抑制因子の量を増加させることで阻害できる。細胞内の血管新生促進因子と血管新生抑制因子の相対量を変化させることで、細胞はアポトーシスを起こすように誘導することもできる。例えば、ＢａｘのＢｃｌｘＬ（あるいは他の抗アポトーシス因子）の比を上昇させることで細胞内のアポトーシスを誘導できる。特定の細胞のアポトーシスの誘導は、治療のために被検体からこれらの細胞を選択的に除去するのに適用できる。例えば、ガン治療として、腫瘍細胞は本方法でアポトーシスを引き起こすように誘導できる。
【００２６】
従って、本発明は、被検体の標的細胞内で特定の細胞因子をコードする遺伝子の発現を減らし、他の細胞因子をコードする遺伝子の発現を増加させることで、被検体で所望の生理状態を誘導する方法を提供する。本願明細書で使用されているように、「被検体」とはいかなるヒトあるいはヒト以外の動物を含み、例えば、魚、爬虫類、鳥、哺乳動物を含む。好ましい被検体は哺乳動物であり、具体的にはヒツジ、ウシ、ネコ、イヌ、あるいは霊長類の動物が好ましい。特に好ましい被検体は、霊長類動物であり、例えばヒトが挙げられる。
【００２７】
本発明を実施するにあたり、標的細胞内の特定の表現型を促進する細胞因子をコードする少なくとも１つの第１番目の遺伝子の発現を減らすように設計されたＲＮＡｉ化合物で処理される。さらにまた標的細胞は、その細胞内に存在する第２番目の遺伝子から細胞因子の量を増加させるように設計された化合物で処理する。第２番目の遺伝子からの細胞因子は、第１番目の細胞因子とは逆の表現型を誘導するか、第１番目の細胞因子に対して拮抗的になる。第２の遺伝子からの細胞因子の量は、従来法により細胞内で増加させることができる。例えば、既に細胞中に存在する遺伝子の発現は上方制御でき、その細胞因子をコードする発現ベクターは標的細胞に導入、あるいはその細胞因子は細胞に直接投与できる。従って、細胞因子の量を増加させるように設計された化合物は、特定の遺伝子の上方制御に効果を及ぼすどのような物質ででも構成することが出来る。例えば、細胞因子自身、その細胞因子を発現する発現ベクター、あるいはその細胞因子遺伝子の転写促進因子が挙げられる。標的細胞中での第１番目の遺伝子の発現減少および第２遺伝子からの細胞因子量の増加は、被検体で所望の生理状態を誘導する。
【００２８】
本願明細書で使用されるように、「生理状態」は、生物体のあらゆる正常あるいは疾病状態を含む。生理状態は、細胞値（例：細胞死）あるいは組織値（例：炎症、壊死、あるいは血管新生）で現れることが可能である。生理状態はまた、臨床的に観察可能な症状の産生あるいは寛解を通して、全身に現れることもある。
【００２９】
「正常な状態」とは、生物体に有害とは考えられない全ての状態である。例えば、不要な細胞（例：腫瘍細胞）中で誘導された死は、正常状態である。同様に、創傷部位や血管新生が有益なその他の部位での血管新生は、正常状態である。「疾病状態」とは、その生物体にとって有害な全ての状態である。例えば、腫瘍の増殖や転移、あるいは周辺組織を損傷する血管新生は、疾病状態である。
【００３０】
本方法により誘導される生理状態は、正常状態あるいは疾病状態の無い状態または阻害でもありうる。例えば、誘導された生理状態は、腫瘍の増殖や転移の阻害ともなりうる。誘導された状態はまた、血管新生の阻害あるいは除去ともなりうる。
【００３１】
本願明細書にて使用されるように、「標的細胞」として、特定の細胞因子の少なくとも１個の遺伝子の発現を減じる一方、少なくとも１個の遺伝子で発現するように処理することが出来るどのような細胞も含む。ＲＮＡ転写物が自身が（プロセス有りまたは無しで）機能性を有する細胞中、あるいは機能性タンパク質にその後翻訳される細胞中で産生されるとき、遺伝子は「標的細胞」中で「発現」される。標的細胞中での遺伝子の発現は直接的に検出できる。即ち、ＲＮＡ転写物あるいはその遺伝子から産生されたタンパク質の存在を検出することでできる。
【００３２】
その標的細胞中で遺伝子から産生されるＲＮＡ転写物の量が減少すると、標的細胞中でのその遺伝子の発現は「減少」する。本発明の実施において、遺伝子発現は標的細胞中でその遺伝子のＲＮＡｉを誘導することで減少する。標的細胞中での遺伝子発現の減少は、ＲＮＡｉ導入後のその遺伝子から産生されるＲＮＡ転写物あるいはタンパク質の量を処理前のその細胞中でのＲＮＡ転写物あるいはタンパク質の量と比較して測定することで決定できる。あるいは、標的細胞中で産生されるＲＮＡ転写物あるいはタンパク質の量は、非処理の標的細胞中での産生ＲＮＡ転写物の量と比較できる。標的細胞中で遺伝子のＲＮＡｉを誘導するのに適切な処理は、以下にさらに詳しく述べる。
【００３３】
標的細胞中の細胞因子の濃度は、その標的細胞中に存在する因子の量が処理前のその細胞中に存在する量よりも多ければ、処理後に「増加」する。あるいは、処理後のその標的細胞中に存在する細胞因子の量は、非処理の標的細胞中に存在する細胞因子の量と比較できる。標的細胞中の細胞因子の値を上昇させるのに適切な処理を以下にさらに詳しく述べる。
【００３４】
本願明細書中に使用されるように、「非処理の標的細胞」とは、標的細胞と同じ細胞型の細胞ではあるが、細胞内で細胞因子遺伝子の発現を減少、あるいは細胞因子の量を増加させる処理を受けていない細胞を意味する。例えば、標的細胞がＡＭＤを患う被検体の網膜色素上皮細胞でありうる場合、非処理細胞はＡＭＤを患っていない個人由来の網膜色素上皮細胞でもよい。この非処理細胞は、生体内でも生体外のものでもよい。好ましくは、この非処理細胞は標的細胞と同じ細胞型の培養細胞である。一実施形態においては、非処理細胞として網膜色素上皮細胞を使用できる。別の実施形態においては、非処理細胞として腫瘍細胞を使用できる。  
非処理細胞中での遺伝子発現レベルは、予め決定でき、標的細胞中での遺伝子発現レベルとの比較にその後使用できる。当業者は、標準的な分子生物学的手法により非処理の標的細胞中の細胞因子遺伝子の発現レベルを容易に決定できる。より簡易的には、標的細胞中での遺伝子発現減少は、その遺伝子の発現の減少時に起こるとされる細胞の表現型の変化から推測できる。
【００３５】
本願明細書中に使用されるように、「遺伝子」とは自身が機能剤（ｓｉＲＮＡまたはミクロＲＮＡ等）であり、ＲＮＡ転写物をコードする核酸配列、あるいはその後タンパク質に翻訳される核酸配列のすべてを含む。遺伝子は、ＲＮＡ転写物をコードする核酸配列に作動可能に結合している、少なくとも１つのプロモーターおよび終結シグナルを有することができる。ここで、「作動可能に結合している」とは、２つ以上の核酸配列が物理的あるいは機能的に相関していることを意味する。例えば、２つの配列がプロモーターがそのＤＮＡ配列の発現レベルに影響を与えるように位置していれば、プロモーターはＲＮＡについてコードするＤＮＡ配列に「作動可能に結合している」といえる。本発明の目的のためには、遺伝子は恒常的プロモータ（ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅ  ｐｒｏｍｏｔｅｒ）を有することが出来、あるいは標的がある特定の外部刺激にさらされる場合のみ転写を開始する誘導性のプロモータを有することができる。
【００３６】
遺伝子はｃＤＮＡ配列のようなＲＮＡ転写物をコードするための断続のない（ｕｎｉｎｔｅｒｒｕｐｔｅｄ）核酸配列を有することが出来ると理解できる。さらにまた遺伝子は、プロセスされたＲＮＡ転写物をコードする断続的な核酸配列を有することが出来る。例えば、遺伝子はイントロン配列およびエキソン配列を含む核酸配列を有することができる。遺伝子は細胞のゲノム中に存在、あるいは該細胞中に導入すことができ、例えばプラスミドあるいはコスミドのような発現ベクター上に導入できる。遺伝子は天然起源のものでもよいが、標的細胞中での発現に有用な組み換え型のものでもよい。
【００３７】
一実施形態においては、標的細胞は血管新生を促進する細胞因子をコードする少なくとも１つの遺伝子（以下、「血管新生促進遺伝子」と称する）の発現を減じるように設計された化合物で処理され、血管新生を阻害する少なくとも１つの遺伝子（以下、「血管新生抑制遺伝子」と称する）でコードされた細胞因子の濃度を上昇させるためにも処理する。血管新生促進遺伝子でコードされた細胞因子は、「血管新生促進因子」である。血管新生抑制遺伝子でコードされた細胞因子は、「血管新生抑制因子」である。
【００３８】
血管新生促進遺伝子として表１に列挙されるものがある。対応する血管新生促進因子をコードするメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）配列に対応する配列番号も表１にあわせて示す。
【００３９】
【表１】
2007515966.tif 000003
【００４０】
【表２】
2007515966.tif 000004
【００４１】
血管新生抑制因子として表２に列挙されるものが挙げられる。対応する血管新生抑制因子をコードする核酸配列およびこれらの因子のアミノ酸配列を、表２に記載の配列一覧中に示す。表２および各参考文献中に参照される核酸およびアミノ酸配列は、ＩｎｖｉｖｏＧｅｎ（米国カリフォルニア州Ｓａｎｄｉｅｇｏ、郵便番号９２１２１）により維持されるウェブサイト上で提供されている情報から翻案されている。
【００４２】
【表３】
2007515966.tif 000005
【００４３】
【表４】
2007515966.tif 000006
【００４４】
本発明によれば、血管新生促進遺伝子の発現は、１若しくはそれ以上の血管新生遺伝子から産生されたｍＲＮＡのＲＮＡｉ介在破壊を誘導することで、標的細胞中で減少される。例えば、ＶＥＧＦ遺伝子、あるいはＶＥＧＦ遺伝子とＨＩＦ−１アルファ遺伝子の発現は、ＲＮＡｉにより標的細胞中で減少させることができる。血管新生促進遺伝子のその他の組み合わせの発現も、ＲＮＡｉによって標的細胞中で減少させることができる。例えば、ＶＥＧＦ／Ａｎｇ２；ＶＥＧＦ／ＩＣＡＭ−１；あるいはＶＥＧＦ／ＨＩＦ−１アルファ／Ａｎｇ２のが発現を減少させることができる。
【００４５】
ＲＮＡｉは、血管新生促進遺伝子から産生されたｍＲＮＡの少なくとも一部で少なくとも９０％、例えば約９５％、約９８％、あるいは約１００％の配列相同性を有する、単離された二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）分子で細胞を処理することで、標的細胞中に誘導できる。ｄｓＲＮＡ分子は、標的細胞中で血管新生促進遺伝子のＲＮＡｉを誘導するならばどのような大きさのものでもよいが、好ましくは、約１５塩基対から約５００塩基対の長さのものがよい。特に好ましい実施形態では、ｄｓＲＮＡ分子は「短鎖あるいは低分子の干渉ＲＮＡ」（ｓｉＲＮＡ）である。
【００４６】
本明細書中で使用されるように、「単離された（ｉｓｏｌａｔｅｄ）」分子とは、合成あるいは人間の介入により、自然状態から変化させたあるいは取り出された分子である。例えば、生きた動物中に本来存在するｄｓＲＮＡあるいはタンパク質は単離されていないが、合成ｄｓＲＮＡあるいはタンパク質、あるいは天然状態で共存する材料から部分的あるいは完全に分離されているｄｓＲＮＡあるいはタンパク質は、「単離されている」といえる。単離されたｄｓＲＮＡあるいはタンパク質は、ほぼ精製された形あるいは本来とは異なる環境、例えばｄｓＲＮＡあるいはタンパク質が導入された細胞等で存在できる。天然のプロセスにより細胞内で産生されるが「単離された」前駆分子から産生された分子もまた、「単離された」分子であると考えられる。例えば、単離されたｄｓＲＮＡあるいはタンパク質は、標的細胞中に導入でき、そこでダイサーと呼ばれるタンパク質（あるいは同等物）によってｓｉＲＮＡにプロセスされる。最初の単離ｄｓＲＮＡから該細胞内で産生されるｓｉＲＮＡは、本発明の目的では単離された分子であると考えられる。細胞内で発現ベクターから産生したＲＮＡ転写物および／あるいはタンパク質も、単離された分子であると考えられる。
【００４７】
本願明細書で使用されるように、標的細胞は、ｄｓＲＮＡ分子が標的細胞中に導入される際、ｄｓＲＮＡ分子で「処理」される。ｄｓＲＮＡは、細胞への直接投与、核酸送達試薬を併用しての投与、あるいはｄｓＲＮＡ分子をコードする核酸配列を有する発現ベクターでその細胞に形質移入する等、どのような適切な分子生物学的技術ででも標的細胞中に導入できる。ｄｓＲＮＡ導入のための発現ベクターの作成および使用を含む、ｄｓＲＮＡの標的細胞への導入技術は、以下にさらに詳しく述べる。
【００４８】
本方法で有用なｓｉＲＮＡは、約１７ヌクレオチドから約２９ヌクレオチドの長さ、好ましくは約１９から約２５ヌクレオチドの長さ、特に好ましくは２１ヌクレオチドの長さの短鎖二本鎖ＲＮＡを含む。ｓｉＲＮＡは、血管新生促進遺伝子あるいは抗アポトーシス遺伝子等の細胞因子遺伝子から産生されたｍＲＮＡに標的にされる。このような細胞因子遺伝子から産生されたｍＲＮＡもまた、本明細書中では「標的ｍＲＮＡ」と称する。
【００４９】
ｓｉＲＮＡは、標準的なワトソン−クリック塩基対相互作用（以下、「塩基対をなす」とする）で共にアニールされた、センスＲＮＡ鎖および相補的なアンチセンスＲＮＡ鎖とを有する。センス鎖は、該標的ｍＲＮＡ内に含まれる標的配列に「ほぼ同一」の核酸配列を有する。
【００５０】
本願明細書中で使用されるように、標的ｍＲＮＡ内に含まれる標的配列に「ほぼ同一」なｓｉＲＮＡ中の核酸配列は、該標的配列に同一、あるいは該標的配列とは１つ、２つ、あるいはそれ以上のヌクレオチドで異なる核酸配列である。標的配列に「ほぼ同一」な核酸配列を有するセンス鎖を有するｓｉＲＮＡは、該標的配列を含むｍＲＮＡのＲＮＡｉ介在の分解を誘導することで特徴付けられる。例えば、本発明のｓｉＲＮＡは、ＲＮＡｉ介在の標的ｍＲＮＡの分解がｓｉＲＮＡに誘導されるという条件で、標的配列とは（例：１つあるいは２つのヌクレオチドが）異なる核酸配列を有するセンス鎖を有することが出来る。
【００５１】
ｓｉＲＮＡのセンス鎖およびアンチセンス鎖は、２つの相補的な一本鎖ＲＮＡ分子を有してよく、あるいは２つの相補的な部分が塩基対になっていて一本鎖「ヘアピン」領域で共有結合的に結合している単分子を有していてもよい。どのような理論とも結び付けられることを望まなくとも、ｓｉＲＮＡ分子の後者タイプの「ヘアピン」領域は、２つの独立した塩基対のＲＮＡ分子のｓｉＲＮＡを形成するのに、ダイサーと呼ばれるタンパク質により、細胞内で切断される。ｓｉＲＮＡは、１若しくはそれ以上のリボヌクレオチド塩基の変化、置換、修飾を含んで入れもよい。例えば、ｓｉＲＮＡは、１若しくはそれ以上のデオキシリボヌクレオチド塩基を含むように変化、置換、修飾されていてもよい。
【００５２】
本発明のｓｉＲＮＡは、天然に存在するＲＮＡとは、１若しくはそれ以上のヌクレオチドの付加、欠失、置換、および／あるいは変化により異なる変化ＲＮＡはもちろん、部分精製されたＲＮＡ、ほぼ精製されたＲＮＡ、合成ＲＮＡ、あるいは組換えにより作成されたＲＮＡも有することができる。このような変更は、該ｓｉＲＮＡの末端あるいはｓｉＲＮＡ内の１若しくはそれ以上のヌクレオチド等への非ヌクレオチド材料の付加、あるいはそのｓｉＲＮＡをヌクレアーゼ消化に対してより耐性のあるｓｉＲＮＡを作成する修飾であってもよい。本発明のｓｉＲＮＡのヌクレアーゼ耐性を高める適切な修飾として、２’−Ｏ−アルキル化（例：２’−Ｏ−メチル化）あるいは２’―ハロゲン化（例：Ｆ、Ｃｌ、Ｂｒ、あるいはＩ）リボヌクレオチド等の２’位の水酸基が置換されたリボヌクレオチド、糖リン酸骨格への修飾（例：ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、およびメチルホスホン酸結合）；あるいは、ｓｉＲＮＡ中の１若しくはそれ以上のヌクレオチドをデオキシリボヌクレオチドで置換することを含む。ヌクレアーゼ消化に対する耐性を持たせるようにする修飾は、当該技術分野では既知であり、例えばＭｏｒｉｓｓｅｙらの米国特許第２００３／０２０６８８７号があり、該特許の全内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。血清、涙液、あるいは他のヌクレアーゼに富む環境にさらされるか、あるいは（例えば、目薬により）局所的に送達される本発明のｓｉＲＮＡは、好ましくはヌクレアーゼ消化に対する耐性を高めるように修飾される。
【００５３】
本発明のｓｉＲＮＡの１本あるいは両方の鎖はまた、「３’オーバーハング」を有してもよい。本明細書で使用するように、「３’オーバーハング」とは、二本鎖ＲＮＡ鎖の３’末端から延びる少なくとも１つの不対のヌクレオチドを意味する。
【００５４】
従って、本実施形態では、ｓｉＲＮＡは１から約６ヌクレオチド（リボヌクレオチドあるいはデオキシリボヌクレオチドを含んでいてもよい）の長さ、好ましくは１から約５ヌクレオチドの長さ、特に好ましくは約２から約４ヌクレオチドの長さの少なくとも１つの３’オーバーハングを有する。
【００５５】
ｓｉＲＮＡ分子の両鎖が３’オーバーハングを有する実施形態では、オーバーハングの長さは各鎖に対して、同じであっても異なっていてもよい。最も好ましい実施形態においては、３’オーバーハングは、ｓｉＲＮＡの両鎖に存在しており、その長さは２ヌクレオチドである。例えば、ｓｉＲＮＡの各鎖は、ジチミジル酸（ＴＴ）あるいはジウリジル酸（ｕｕ）の３’オーバーハングを有することができる。
【００５６】
本発明のｓｉＲＮＡの安定性を高めるために、前出３’オーバーハングは分解に対して安定化させることもできる。一実施形態では、これらのオーバーハングは、アデノシンあるいはグアノシンヌクレオチド等のプリンヌクレオチドを含むことで安定化する。あるいは、例えば３’オーバーハング中のウリジンヌクレオチドを２’−デオキシチミジンで置換したもの等の修飾された類似体によるピリミジンヌクレオチドの置換体は、耐性を示し、ＲＮＡｉ分解の効率に影響を及ぼさない。特に２’デオキシチミジン中に２’位水酸基がないと、組織培地（培養液）中の３’オーバーハングのヌクレアーゼ耐性をかなり高める。
【００５７】
ある実施形態では、ｓｉＲＮＡは、ＡＡ（Ｎ１９）ＴＴ配列（配列番号：１７３８）あるいはＮＡ（Ｎ２１）（但し、Ｎは各種ヌクレオチド）を有する。これらのｓｉＲＮＡは、約３０−７０％Ｇ／Ｃ、好ましくは約５０％Ｇ／Ｃを有する。センスｓｉＲＮＡ鎖の配列は、（Ｎ１９）ＴＴあるいはＮ２１（例：３から２３位）に各々対応している。後者の場合、センスｓｉＲＮＡの３’末端が、ＴＴに変換される。この配列変換の原理は、センスおよびアンチセンス鎖３’オーバーハングの配列組成に関して対称な二重鎖（二本鎖）を作成することである。アンチセンス鎖はその後、前出センス鎖の１から２１位に対する補体として合成される。
【００５８】
これらの実施形態における２３ヌクレオチド（ｎｔ）のセンス鎖の１位は、配列特異的にアンチセンス鎖に認識されないので、アンチセンス鎖の３’位のヌクレオチド残基の大部分を慎重に選ぶことが出来る。しかし、アンチセンス鎖の末端から２番目のヌクレオチド（上記いずれの実施形態においても、２３ヌクレオチドのセンス鎖の２位に相補的なヌクレオチド）は、一般に標的配列に対して相補性を示す。
【００５９】
別の実施形態においては、ｓｉＲＮＡは、配列ＮＡＲ（Ｎ１７）ＹＮＮを有してよい。ここで、Ｒはプリン（例：ＡまたはＧ）、Ｙはピリミジン（例：ＣまたはＵ／Ｔ）とする。従って、本実施形態の２１ヌクレオチドのセンスおよびアンチセンス各鎖は、一般にプリンヌクレオチドで開始する。ｐｏｌＩＩＩプロモーターからのＲＮＡの発現は最初に転写されたヌクレオチドがプリンであるときに効率的であるとのみ信じられているので、このようなｓｉＲＮＡは、標的部位に変化無くｐｏｌＩＩＩ発現ベクターから発現される。
【００６０】
ｓｉＲＮＡは、いずれの標的ｍＲＮＡ配列（「標的配列」）中で約１９−２５の連続したヌクレオチドのいかなるストレッチも標的に出来る。ｓｉＲＮＡ  に対する標的配列を選ぶ手法は例えば、Ｔ．Ｔｕｓｃｈｌらの「ｓｉＲＮＡユーザーガイド（２００２年１０月１１日改訂）」に記載されており、その全開示内容をこの参照によりここに組み込む。「ｓｉＲＮＡユーザーガイド」は、ワールドワイドウェブで、マックスプランク生物物理化学研究所  ＡＧ１０５  細胞生物学部門（独国ゴッティンゲン３７０７７）のＴｈｏｍａｓ  Ｔｕｓｃｈｌ博士により維持されているウェブサイトでも利用でき、マックスプランク研究所のウェブサイトにアクセスしてキーワードを「ｓｉＲＮＡ」と入力して検索すると見つけることができる。以上より、本発明のｓｉＲＮＡのセンス鎖は、標的ｍＲＮＡ中の約１９から約２５ヌクレオチドのあらゆる連続的なストレッチに同一のヌクレオチド配列を有する。
【００６１】
一般に、標的ｍＲＮＡ上の標的配列は、その標的ｍＲＮＡに対応する所定のｃＤＮＡから選ぶことが出来、好ましくは開始コドンから５０から１００ヌクレオチド下流で始まる（すなわち３‘方向で）配列である。しかし、標的配列は、５’あるいは３‘位の非翻訳領域、あるいは開始コドン近辺の領域に位置することもできる。例えば、ヒトＶＥＧＦ１２１ｍＲＮＡ配列中の適切な標的配列は、（ｃＤＮＡで表すと）以下のとおりである。
【００６２】
【表５】
2007515966.tif 000007
【００６３】
従って、この配列を標的にし、各鎖に３’ｕｕオーバーハング（オーバーハングは太字で表示）を有するｓｉＲＮＡは、以下のとおりである。
【００６４】
【表６】
2007515966.tif 000008
【００６５】
この同じ配列を標的し、各鎖に３’ＴＴオーバーハング（オーバーハングは太字で表示）を有するｓｉＲＮＡは、以下のとおりである。
【００６６】
【表７】
2007515966.tif 000009
【００６７】
本発明のｓｉＲＮＡが誘導される、上記の血管新生促進遺伝子に対する代表的な標的配列は、配列一覧に記載している。例えば、ヒトＶＥＧＦに対する代表的な標的配列は、配列番号１１１〜１８３中にある。ヒトＨＩＦ−１アルファに対する代表的な標的配列は、配列番号１８４〜４５８中にある。ヒトＦｌｔ−１およびＦｌｋ−１／ＫＤＲに対する代表的な標的配列は、各々配列番号４５９〜８７２および８７３〜１２３２中にある。ヒトＩＣＡＭ−１に対する代表的な標的配列は配列番号１２３３〜１３０７中にある。ヒトＡｎｇ１に対する代表的な標的配列は、配列番号１３０８〜１５０３中にある。ヒトＡｎｇ２に対する代表的な標的配列は、配列番号１５０４〜１７０３中にある。これらの標的配列を有するｓｉＲＮＡの構築は当業者の技術範囲である。
【００６８】
本方法で使用するｄｓＲＮＡは、当業者の有する技術を駆使すれば得られる。例えば、ｄｓＲＮＡは、適切に保護されたリボヌクレオチドホスホラミダイトおよび従来使用されるＤＮＡ／ＲＮＡシンセサイザーを使用して、化学的に合成できる。ｄｓＲＮＡもまた、以下にさらに詳しく述べるように、発現ベクターから産生できる。ｓｉＲＮＡもまた、Ｔｕｓｃｈｌらによる米国特許出願第２００２／００８６３５６号に公開のショウジョウバエのインビトロシステム等、当該技術分野で公知の方法で、化学的に合成あるいは組換えにより産生できる。ここで、前出文献の全開示内容をこの参照により組み込む。ｄｓＲＮＡは、２つの分離した相補的なＲＮＡ分子、あるいは２つの相補的領域をもつ単一ＲＮＡ分子として合成できる。合成ＲＮＡ分子あるいは合成用試薬の供給業者として、Ｐｒｏｌｉｇｏ（独国ハンブルグ）、Ｄｈａｒｍａｃｏｎ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ（米国コロラド州Ｌａｆａｙｅｔｔｅ）、ＰｉｅｃｅＣｈｅｍｉｃａｌ（Ｐｅｒｂｉｏ  Ｓｃｉｅｎｃｅの一部、米国イリノイ州Ｒｏｃｋｆｏｒｄ）、ＧｌｅｎＲｅｓｅａｒｃｈ（米国バージニア州Ｓｔｅｒｉｎｇ）、ＣｈｅｍＧｅｎｅｓ（米国マサチューセッツ州Ａｓｈｌａｎｄ）およびＣｒｕａｃｈｅｍ（英国グラスゴー）がある。
【００６９】
好ましくは、ｄｓＲＮＡ（特にｓｉＲＮＡ）は、組換え型の環状あるいは直鎖状のＤＮＡ発現ベクターから発現する。本明細書で使用されるように、「発現ベクター」は、ｄｓＲＮＡの発現に適切な核酸配列を有するコンストラクト（作成物）である。好ましくは、この発現ベクターはプラスミドベクターを含む。しかし、発現ベクターは、当該技術分野で既知の原核細胞あるいは真核細胞への導入に適切などのようなコンストラクトでもよく、例えば、コスミド、人工染色体、あるいはウイルスベクターがある。
【００７０】
Ｊ．  Ｓａｍｂｒｏｏｋらの「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，  Ａ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（第２版、１９８９年）」（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ）に例示されるように、ｄｓＲＮＡを発現するための発現ベクターの作成は、当業者の技術範囲である。例えば、発現ベクターの様々な成分を有する核酸配列は、適切なベースベクターの制限酵素による切断およびそのベクターの制限部位への成分の挿入により連続的に導入することができる。発現ベクター形成のためにベースベクターに成分の連結（ｌｉｇａｔｉｏｎ）およびクローニング後、発現ベクターを適切な宿主細胞に複製し、別の用途に単離することができる。
【００７１】
特に好ましくは、大腸菌あるいはその他の細菌株に適合する調節システムを使用する細菌性のプラスミド発現ベクターである。例えば、Ｂｏｌｉｖａｒら（１９７７）Ｇｅｎｅ  ２：９５による大腸菌種由来のプラスミド、ｐＢＲ３２２の誘導体を用いて、大腸菌を形質転換できる。プラスミドｐＢＲ３２２は、アンピシリンおよびテトラサイクリン耐性に関する遺伝子を含むので、目的とするベクターの構築中に維持あるいは破壊できる多数の選択可能なマーカーを提供する。他の適切なプラスミドベクターとして、プラスミドｐＵＣ９−ＴＳＦ１１およびｐＵＣｄｅｌＨ３−ｐＴＳＦ−３が挙げられる。これらのプラスミドは、ｐＢＲ３２２の幾つかの部分を含む、ｐＵＣ９（ＭｅｓｓｉｎｇとＶｉｅｉｒａ（１９８２），Ｇｅｎｅ  １９：２５９〜２６８）から派生する。
【００７２】
プラスミドベクター構築に適した原核生物の制御配列で通常使用されるものとして、オペレーターおよびリボソーム結合部位配列を適宜有する、転写開始用の細菌性プロモーターがある。通常使用されるプロモーターとして、ラクタマーゼ（ペニシリナーゼ）およびラクトース（ｌａｃ）プロモーター系（Ｃｈａｎｇら（１９７７），Ｎａｔｕｒｅ  １９８：１０５６）；トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター系（Ｇｏｅｄｄｅｌら（１９８０），Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．８：４０５７）；ラムダファージ由来ＰＬプロモーター（Ｓｈｉｍａｔａｋｅら（１９８１），Ｎａｔｕｒｅ  ２９２：１２８）；  およびｔｒｐ−ｌａｃ（ｔｒｃ）プロモーター系（ＡｍａｎｎとＢｒｏｓｉｕｓ（１９８５），Ｇｅｎｅ  ４０：１８３）があり、これら文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００７３】
適切なプラスミドベクターを構築する他の成分も入手でき、これらは通常他のプラスミドに保持された形で入手できる。標準的な制限および連結反応を用いて、これらの成分をソースプラスミドから切除し、所望の核酸配列と連結させることができる。
【００７４】
市販されているプラスミドベクターは本発明への利用に適しており、例えば、プラスミドｐＢＬＡＳＴ（およびｐＢＬＡＳＴ４０、ｐＢＬＡＳＴ４５およびｐＢＬＡＳＴ４９等の派生物）；ｐＯＲＦおよびｐＯＲＦ９（図１Ａ〜１Ｃを参照）はＩｎｖｉｖｏＧｅｎ（米国カリフォルニア州Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ、郵便番号９２１２１）より入手できる。ｐＢＬＡＳＴプラスミドは、ＨＴＬＶあるいはｅＩＦ４Ｇ遺伝子の５’ＵＴＲに融合した伸長因子１アルファコアプロモーターより成る、ＥＦ−１ａ複合プロモーターを含む。ｐＢＬＡＳＴプラスミド中のこの複合プロモーターは、多様な細胞株で高レベルの遺伝子発現を起こす。ｐＯＲＦプラスミドは、Ｉ１１７と呼ばれるイントロン内で細菌プロモーターと共に、ＥＦ−１ａ／ＨＴＬＶ複合プロモーターを含む。ｐＯＲＦ９プラスミドは、ＥＦ−１ａ／ＨＴＬＶ複合プロモーターを含み、細菌プロモーターを含まない。発現される核酸配列（図中１Ａ〜１Ｃ中、「インサート」として表示）は、部位特異的な核酸の切断および連結等の通常の分子生物学的手法により、これらのベクターのマルチクローニング部位に挿入できる。
【００７５】
部位特異的な核酸切断あるいは制限は、一般に当該技術分野で既知の条件下で、適切な制限酵素で核酸配列を処理することで行われる。さらに、所定の制限酵素に関する適切な反応条件は、通常市販の制限酵素についてはその製造業者により指定されている。例えば、２００１年度版のＮｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ  Ｐｒｏｄｕｃｔ  Ｃａｔａｌｏｇを参照のこと。
【００７６】
一般に、プラスミドあるいは核酸配列の約１μｇは、約２０μｌの緩衝溶液中で１単位の制限酵素により切断される。核酸基質の完全消化を確実にするために、過剰の制限酵素がしばしば使用される。多少異なることもあるが、通常、約３７oＣで約１〜２時間のインキュベーションが行われ、ある種の制限酵素は、より高温／低温条件でのインキュベーションを必要とする。
【００７７】
各インキュベーション後、制限酵素を失活させ、フェノール／クロロホルム抽出および適宜エーテル抽出を行って核酸配列から除去し、核酸を２〜２．５倍体積のエタノールで沈殿させて水層から回収する。必要に応じて、切断した核酸の断片のサイズ分離を、ポリアクリルアミドまたはアガロースゲルを用いた電気泳動により、標準的技術により実施できる。サイズ分離技術に関する一般的な説明は、「Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８０），６５：４９９〜５６０」に記載されており、該文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００７８】
多くの制限酵素は、核酸配列切断後、一本鎖オーバーハングを残す。一本鎖オーバーハングを有する核酸断片は、相補的なオーバーハングを有する配列に連結（いわゆる付着末端連結（ｓｔｉｃｋｙ−ｅｎｄ  ｌｉｇａｔｉｏｎ））、あるいはその後の他の平滑末端核酸との連結のため平滑末端となりうる。
【００７９】
核酸断片は、例えば５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．６）、５０ｍＭ  ＮａＣｌ、６ｍＭ  ＭｇＣｌ２、６ｍＭ  ＤＴＴ、および０．１〜１．０ｍＭ  ｄＮＴＰｓ中、２０〜２５oＣで約１５〜２５分間、４種のデオキシリボヌクレオチド三リン酸（ｄＮＴＰ）の存在下、大腸菌ＤＮＡポリメラーゼＩ（クレノウ断片）の大きな断片でインキュベーションすると、平滑末端となりうる。クレノウ断片は、５’一本鎖オーバーハングに充填されるが、突出する３’一本鎖を切断（ｃｈｅｗ  ｂａｃｋ）する。クレノウ断片による処理後、平滑末端の核酸断片を含む反応混合物は、フェノール／クロロホルムにより抽出し、エタノールで沈殿させる。適切な条件下でのＳ１ヌクレアーゼまたはＢＡＬ−３１による処理により、残存するいずれの１本鎖部分も加水分解される。
【００８０】
核酸配列の連結は、以下の標準的な条件下において１５〜５０μｌ中で実施できる。例えば、２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１０ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１０ｍＭ  ＤＴＴ、３３μｇ／ｍｌ  ＢＳＡ、１０ｍＭ〜５０ｍＭ  ＮａＣｌ、および４０μＭ  ＡＴＰ、０．０１〜０．０２（Ｗｅｉｓｓ）ｕｎｉｔ  Ｔ４ＤＮＡリガーゼを０oＣ（付着末端の場合）で処理、あるいは１ｍＭ  ＡＴＰ０．３〜０．６（Ｗｅｉｓｓ）ｕｎｉｔ  Ｔ４ＤＮＡリガーゼを１４oＣで処理（平滑末端の場合）する。分子間「付着末端」連結は、通常３３〜１００μｇ／ｍｌ全ＤＮＡ濃度（５〜１００ｎＭ  全末端濃度）で通常行われる。分子間平滑末端連結は、通常全末端濃度が１μＭで行われる。
【００８１】
ベクターの不要な自己連結を防ぐため、ベクター構築に使用される核酸断片は通常、５’リン酸を除去するために細菌由来アルカリホスファターゼ（ＢＡＰ）あるいはウシ腸由来アルカリホスファターゼ（ＣＩＰ）で処理する。脱リン酸反応は通常、ｐＨ８で約１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１ｍＭ  ＥＤＴＡ中、約１単位のＢＡＰあるいはＣＩＰを使用して６０oＣで約１時間行う。脱リン酸化した核酸の断片は、上述のように、フェノール／クロロホルム抽出およびエタノール沈殿により回収できる。
【００８２】
プラスミドベクターの正しい構成を確認するためには、当該技術分野で既知のように、プラスミドを適切な宿主に形質移入・増幅・抽出し、配列毎および／または制限分析で分析する。例えば、各種の大腸菌株あるいはその他の宿主は、公知技術により完成品のプラスミド（ｆｉｎｉｓｈｅｄ  ｐｌａｓｍｉｄ）で形質移入してもよい。成功した形質移入体は、当該技術分野で理解されるように、アンピシリン、テトラサイクリン、あるいはその他の抗生物質耐性（あるいはその他適切なマーカーを使用して）により選ばれる。
【００８３】
発現ベクターは、公知方法により形質移入体から抽出でき、例えば、適宜クロラムフェニコール増幅（ｃｈｌｏｒａｍｐｈｅｎｉｃｏｌ  ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）（Ｃｌｅｗｅｌｌ  （１９７２），Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１１０：６６７を参照）後、Ｃｌｅｗｅｌｌら（１９６９），Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）６２：１１５９の方法により抽出できる。さらに、Ｈｏｌｍｅｓら（１９８１），Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１１４：１９３〜１９７およびＢｉｒｎｂｏｉｍら（１９７９），Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．７：１５１３〜１５２３を参照。これら文献の全開示内容をこの参照により組み込む。また、Ｑｉａｇｅｎ、Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ  Ｍａｎｎｈｅｉｍ、Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、その他の業者等から市販されている核酸「ミニプレップ」も使用できる。
【００８４】
単離した発現ベクターを、例えば、ドットブロット分析（例：Ｋａｆａｔｏｓ（１９７７），Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ  Ｒｅｓ．７：１５４１〜１５５２に記載）；制限酵素分析；あるいは核酸配列決定法（例：Ｓａｎｇｅｒらのジデオキシヌクレオチド法。（１９７７），Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）７４：５４６３。さらには、Ｍｉｓｓｉｎｇ  ら（１９８１），Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．９：３０９、あるいはＭａｘａｍら（１９８０），Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ  ６５：４９９にも記載。）これら文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００８５】
原核および真核系は共に、ｄｓＲＮＡをコードする核酸配列の発現に用いられる。原核宿主、例えば、大腸菌株が好ましい。しかし、他の細菌株もまた用いることが出来る。宿主に適合可能な種から派生した、複製部位、選択可能なマーカー、および制御配列を含むプラスミドベクターが好ましい。
【００８６】
細菌に加え、酵母菌等の真核微生物も宿主として用いることができる。この他にも数多くの菌株あるいは種が一般に入手可能ではあるが、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｓｅ（パン酵母菌）の実験室株が好ましい。例えば、Ｂｒｏａｃｈ（１９８３），Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚ．１０１：３０７に記載の２μ複製起点、あるいは他の酵母菌の適合する複製起点（例えば、Ｓｔｉｎｃｈｃｏｍｂら（１９７９），Ｎａｔｕｒｅ  ２８２：３９；Ｔｓｃｈｕｍｐｅｒら（１９８０），Ｇｅｎｅ  １０：１５７；およびＣｌａｒｋｅら（１９８３），Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚ．１０１：３００を参照）にしているベクターが使用できる。酵母ベクターの制御配列として、解糖酵素の合成のためのプロモーターを含む（Ｈｅｓｓら（１９６８），Ｊ．Ａｄｖ．Ｅｎｚｙｍｅ  Ｒｅｇ．７：１  ４９  およびＨｏｌｌａｎｄら（１９７８），Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １７：４９００を参照）。当該技術分野で公知のプロモーターとしてさらに、３−ホスホグリセリン酸キナーゼ（Ｈｉｔｚｍａｎら（１９８０），Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５５：２０７３）に対するプロモーターを含む。成長条件および／あるいは遺伝的背景によりコントロールされている翻訳の長所をさらに有する、その他の適切な酵母プロモーターとして、アルコール脱水素酵素２、イソシトクロームＣ、酸ホスファターゼ、窒素代謝に関連する分解酵素、α因子系およびマルトースおよびガラクトースの利用に関与する酵素に対するプロモーター領域を含む。酵母宿主については、ターミネーター配列がコード配列の３’末端に位置しているのが望ましい。このようなターミネーターは酵母由来の遺伝子中のコード配列の後の３’非翻訳領域中で観察される。本段落中の全引用文献の全開示内容をこの参照により本願明細書に組み込む。
【００８７】
多細胞生物由来の真核宿主細胞培養物中の核酸配列を発現することも可能である。例えば、Ａｘｅｌらの米国特許第４，３９９，２１６号を参照のこと。該特許の全開示内容をこの参照により本願明細書に組み込む。これらの系はイントロンをスプライシングで切り出す能力を有するので、ゲノム断片を直接的に発現させるのに使用できる。しかし、非ゲノム（例：ｃＤＮＡ）配列も発現しうる。
【００８８】
有用な哺乳類宿主細胞株として、ＶＥＲＯ、ＨｅＬａ、ヒト胎児腎臓（ＨＥＫ）、幼若ハムスター腎臓（ＢＨＫ）、ＣＶ−１、ＣＯＳ（例：ＣＯＳ−７）、ＭＤＣＫ、ＮＩＨ３Ｔ３、およびチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞株があげられる。このような細胞に対する発現ベクターは、好ましくは、ＳＶ４０初期プロモーターおよび後期プロモーター（Ｆｉｅｒｓら（１９７８），Ｎａｔｕｒｅ  ２７３：１１３）等の哺乳類細胞に適合可能なプロモーターおよび制御配列、またはポリローマ、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、ウシパピローマ、あるいはトリ肉腫ウイルス等のその他のウイルスプロモーターを有する。制御可能なプロモーターｈＭＴＩＩ（Ｋａｒｉｎら（１９８２）、Ｎａｔｕｒｅ  ２９９：７９７〜８０２）も使用できる。本段落中の全引用文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００８９】
使用する宿主細胞により、発現ベクターの形質移入はその細胞に適切な標準的技術により実施できる。Ｃｏｈｅｎ（１９７２），Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ６９：２１１０に記載のように塩化カルシウムを用いたカルシウム処理、あるいはＭａｎｉａｔｉｓらＭｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（１９８２），Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｐｒｅｓｓ，ｐ．２５４、およびＨａｎａｈａｎ（１９８３），Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１６６：５５７〜５８０に記載のＲｂＣｌ２法が、かなりの細胞壁障害（ｃｅｌｌ  ｗａｌｌ  ｂａｒｒｉｅｒｓ）を含む原核あるいはその他の細胞に使用できる。このような細胞壁のない細胞（即ち、例えば哺乳類細胞のような真核細胞）については、  Ｇｒａｈａｍとｖａｎ  ｄｅｒ  Ｅｂ（１９７８），Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  ５２：５４６のリン酸カルシウム沈殿法を、適宜Ｗｉｇｌｅｒら（１９７９），Ｃｅｌｌ  １６：７７７〜７８５の方法で変更させて利用できる。酵母菌への形質転換は、Ｂｅｇｇｓ（１９７８），Ｎａｔｕｒｅ  ２７５：１０４〜１０９に記載の方法に従って実施できる。本段落中の全引用文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００９０】
プラスミドベクターへの挿入に望ましい核酸コード配列は、入手可能なｃＤＮＡあるいはゲノムＤＮＡライブラリー、あるいは入手可能なプラスミドから検索することができる。あるいは、所望の核酸コード配列は、個々のヌクレオシド誘導体から開始して体外で合成できる。例えば、５００〜１００塩基対といったかなりの長さの核酸配列は、例えば個々の重複する相補的なオリゴヌクレオチドを合成し、ＤＮＡポリメラーゼでデオキシリボヌクレオチド三リン酸の存在下１本鎖の非重なり部分に充填することで調製できる。このアプローチは、公知配列を有する数種の遺伝子の作成で上手く利用されている。例えば、Ｅｄｇｅ（１９８１），Ｎａｔｕｒｅ  ２９２：７５６；Ｎａｍｂａｉｒら（１９８４），Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２２３：１２９９；およびＪａｙ（１９８４），Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５９：６３１１等で報告されている。本段落中の全引用文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。  
合成核酸配列は、例えば、Ｅｄｇｅらの上記文献中により記載されているように、ホスホトリエステル法、あるいはＢｅａｕｃａｇｅとＣａｒｕｔｈｅｒｓ（１９８１），Ｔｅｔ．Ｌｅｔｔｓ．２２：１８５９およびＭａｔｔｅｕｃｃｉとＣａｒｙｔｈｅｒｓ（１９８１），Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１０３：３１８５に記載のホスホラミダイト法により調製できる。核酸配列は、市販の自動オリゴヌクレオチド合成装置を用いても調製できる。本段落中の全引用文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００９１】
入手後、本発明の１若しくはそれ以上のｄｓＲＮＡをコードする発現ベクターを当業者の技術範囲の方法により標的細胞中に導入する。例えば、Ｔ．  Ｔｕｓｃｈｌ  （２００２），Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ，２０：４４６−４４８、ＴＲら（２００２），Ｓｃｉｅｎｅｃｅ  ２９６：５５０〜５５３；Ｍ．Ｍｉｙａｇｉｓｈｉら（２００２），Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０：４９７〜５００；ＰＪ  Ｐａｄｄｉｓｏｎら（２００２），Ｇｅｎｅｓ  Ｄｅｖ．１６：９４８〜９５８；ＮＳ  Ｌｅｅら（２００２），Ｎａｔ．Ｖｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０：５００〜５０５；およびＣＰ  Ｐａｕｌら（２００２），Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０：５０５〜５０８を参照。これら文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００９２】
一実施形態においては、表現ベクターは１若しくはそれ以上のｓｉＲＮＡをコードする組み換え型のプラスミド発現ベクターである。発現した各ｓｉＲＮＡについて、発現ベクターは、ヒトＵ６ＲＮＡプロモーターの制御下でｐｏｌｙＴ終結配列と作動可能に結合しているセンスＲＮＡ鎖のコード配列、およびヒトＵ６ＲＮＡプロモーターの制御下でｐｏｌｙＴ終結配列と作動可能に結合しているアンチセンスＲＮＡ鎖のコード配列とを有する。本願明細書中で使用されるように、「ｐｏｌｙＴ終結配列と作動可能に結合している」とは、センス鎖あるいはアンチセンス鎖をコードする核酸配列が５’方向でｐｏｌｙＴ終結シグナルのすぐ隣で隣接していることを意味する。センス鎖あるいはアンチセンス鎖のプラスミドからの転写中、ｐｏｌｙＴ終結シグナルは、転写を終結するように作用する。本願明細書中で使用されるように、プロモーターの「制御下」とは、センス鎖またはアンチセンス鎖をコードする核酸配列が、プロモーターの３’位に位置しており、そのためプロモーターが、センス鎖またはアンチセンス鎖のコード配列の転写を開始できることを意味する。ｓｉＲＮＡの発現に適したその他のプロモーターとして、Ｈ１  ＲＮＡ  ｐｏｌＩＩＩプロモーター配列、サイトメガロウイルスプロモーター、および特定の組織あるいは特定の細胞内環境でｓｉＲＮＡの発現に誘導／制御可能なプロモーターが挙げられる。
【００９３】
別の実施形態において、発現ベクターは、１若しくはそれ以上のｓｉＲＮＡをコードする配列、およびｄｓＲＮＡ配列の発現に適した各種プロモーターを有する、組換えウイルスベクターである。適切なプロモーターとして例えば、Ｕ６あるいはＨ１  ＲＮＡ  ｐｏｌ  ＩＩＩプロモーター配列およびサイトメガロウイルスプロモーターが挙げられる。その他の適切なプロモーターの選択は、当業者の技術範囲である。組換えウイルスベクターは、特定の組織あるいは特定の細胞内環境でｓｉＲＮＡの発現に対して誘導／制御可能なプロモーターも有する。
【００９４】
発現するｓｉＲＮＡ分子のコード配列を受け入れられるどのようなウイルスベクターも使用でき、例えばアデノウイルス（ＡＶ）；アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）；レトロウイルス（例：レンチウイルス、ラブドウイルス、マウス白血病ウイルス）、ヘルペスウイルス等由来のベクターが使用できる。ウイルスベクターの指向性は、他のウイルスからのエンベロープタンパク質あるいはその他の表面抗原でベクターを偽型化、あるいは適宜異なるウイルスカプシドタンパク質を置換することで変更できる。  
例えば、本発明のレンチウイルスは、水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ）、狂犬病ウイルス、エボラウイルス、モコラウイルス等由来の表面タンパク質で偽型化できる。本発明のＡＡＶベクターは、異なるカプシドタンパク質の血清型を発現するようにベクターを設計することで、標的の異なる細胞に作成できる。例えば、血清型２カプシドを血清型２ゲノム上で発現するＡＡＶベクターは、ＡＡＶ２／２と呼ばれる。ＡＡＶ２／２ベクター中のこの血清型２カプシド遺伝子は、ＡＡＶ２／５ベクターを産生するように血清型５カプシド遺伝子により置き換えることができる。異なるカプシドタンパク質血清型を発現するＡＡＶベクターを構築する技術は、当業者の技術範囲である。例えば、ＪＥ  Ｒａｂｉｎｏｗｉｔｚ（２００２），Ｊ．Ｖｉｒｏｌ  ７６：７９１〜８０１を参照のこと。ここで、該文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００９５】
本発明への使用に適した組換えウイルスベクター、ｓｉＲＮＡを発現するための核酸配列の該ベクターへの挿入法、およびウイルスベクターを所望の細胞に輸送する方法の選択は、当業者の技術範囲である。例えば、Ｒ．Ｄｏｒｎｂｕｒｇ（１９９５），Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐ．２：３０１〜３１０；ＭＡ  Ｅｇｌｉｔｉｓ（１９８８），Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ６：６０８〜６１４；ＡＤ  Ｍｉｌｌｅｒ（１９９０），Ｈｕｍ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐ．  １：５〜１４；およびＷＦ  Ａｎｄｅｒｓｏｎ（１９９８），Ｎａｔｕｒｅ  ３９２：２５〜３０を参照のこと。ここで、これらの文献の全開示内容をこの参照により本願明細書に組み込む。
【００９６】
好ましいウイルスベクターは、ＡＶおよびＡＡＶに由来するものである。特に好ましい実施形態において、本発明のｓｉＲＮＡは、例えば、Ｕ６またはＨ１  ＲＮＡプロモーター、あるいはサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターを有する、組換えＡＡＶベクター由来の、２つの分離した相補的な１本鎖ＲＮＡ分子として発現する。
【００９７】
本発明のｓｉＲＮＡの発現に適したＡＶベクター、組換えＡＶベクターの構築方法、およびそのベクターの標的細胞への送達方法は、Ｈ  Ｘｉａら（２００２），Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．２０：１００６〜１０１０に記載されており、この文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００９８】
本発明のｓｉＲＮＡの発現に適したＡＡＶベクター、組換えＡＡＶベクターの構築方法、およびそのベクターの標的細胞への送達方法は、Ｒ．Ｓａｍｕｌｓｋｉら（１９８７），Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６１：３０９６〜３１０１；ＫＪ  Ｆｉｓｈｅｒら（１９９６），Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，７０；５２０〜５３２；Ｒ．Ｓａｍｕｌｓｋｉら（１９８９），Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６１：３８２２〜３８２６；米国特許第５，２５２，４７９号、米国特許第５，１３９，９４１号；国際特許出願第ＷＯ９４／１３７８８号；および国際特許出願第ＷＯ９３／２４６４１号に記載されており、これら文献の全開示内容をこの参照により本願明細書中に組み込む。
【００９９】
本発明を実施するにあたり、標的細胞は、血管新生遺伝子等の細胞因子に対する標的配列を有する単離された１種以上のｄｓＲＮＡで処理する。標的細胞として、血管新生促進因子および抑制因子を産生するあらゆる細胞が挙げられ、特に血管新生部位あるいはそれに近辺部位の細胞が挙げられる。適切な標的細胞として、上皮細胞（例えば、子宮、血管および網膜色素上皮細胞）および腫瘍細胞が挙げられる。好ましい標的細胞は、網膜色素上皮細胞である。
【０１００】
本願明細書で使用されるように、標的細胞は、ｄｓＲＮＡが標的細胞中に導入されるように標的細胞をｄｓＲＮＡに接触させる各種適切な技術を用いてｄｓＲＮＡで処理する。例えば、標的細胞は、ｄｓＲＮＡを被検体に裸のＲＮＡとして、あるいは送達試薬と併用して、あるいはｄｓＲＮＡを発現する発現ベクターとしてＲＮＡに投与することで、ｄｓＲＮＡに接触させることができる。この発現ベクターは、単独で投与しても、送達試薬と併用して投与してもよい。ウイルスベクターを有する発現ベクターは、当業者の技術範囲の技術により、標的細胞を感染させて細胞中に送達できる。
【０１０１】
ｄｓＲＮＡあるいは発現ベクターの適した送達試薬として、Ｍｉｒｓｕ社のＴｒａｎｓｉｔ  ＴＫＯ  リポフィリック試薬；リポフェクチン；リポフェクタミン；セルフェクチン；またはポリカチオン（例：ポリリジン）、またはリポソームが挙げられる。以下では、本発明の単離されたｄｓＲＮＡ、あるいは本発明のｄｓＲＮＡを発現する発現ベクターを含む化合物を「ＲＮＡｉ化合物」と称する。
【０１０２】
ＲＮＡｉ化合物に好ましい送達試薬は、リポソームである。リポソームは、ＲＮＡｉ化合物の、例えば網膜または腫瘍組織等の特定組織への送達を補助し、ｄｓＲＮＡの血中半減期を上昇させることができる。本発明での使用に適したリポソームは、中性または負の電荷を帯びたリン脂質およびコレステロール等のステロールを一般に含む、標準的な小胞形成脂質から形成されている。脂質の選択は、一般にリポソームの所望の大きさおよび血流中での半減期等の因子を考慮して導かれる。例えば、Ｓｚｏｋａら（１９８０），Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｂｉｏｅｎｇ．９：４６７；および米国特許第４，２３５，８７１号、同第４，５０１，７２８号、同第４，８３７，０２８号および同第５，０１９，３６９号に記載のように、種々のリポソーム調製方法が知られている。ここで、これら文献の全開示内容をこの参照により本願明細書に組み込む。
【０１０３】
好ましくは、ＲＮＡｉ化合物を被包するリポソームは、リポソームを血管新生部位またはその近辺にある特定の細胞または組織に標的にできるリガンド分子を有する。腫瘍抗原または内皮細胞表面抗原に結合する単クローン抗体等の、腫瘍または血管内皮細胞に蔓延する受容体に結合するリガンドが好ましい。
【０１０４】
特に好ましくは、ＲＮＡｉ化合物を被包するリポソームは、例えば構造表面に結合したオプソニン化抑制部分を有することで、単核マクロファージおよび細網内皮系によるクリアランスを防ぐように変更される。一実施形態においては、本発明のリポソームはオプソニン化抑制部分とリガンドを共に含むことができる。
【０１０５】
ＲＮＡｉ化合物は、どのような適切な非経口あるいは経腸投与経路によっても被検体に投与できる。適切な経腸投与経路として、経口、直腸、鼻腔送達が挙げられる。適切な経腸投与として、血管内投与（例：静脈内ボーラス注射（ｉｎｔｒａｖｅｎｏｕｓ  ｂｏｌｕｓ  ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ）、静脈内注入（ｉｎｔｒａｖｅｎｏｕｓ  ｉｎｆｕｓｉｏｎ）、動脈内ボーラス注射、動脈内注入、および脈管構造中へのカテーテルによる滴下注入）；組織近傍または組織内投与（例：腫瘍近傍および腫瘍内注射、網膜内または網膜下注射）；皮下注入を含む皮下注射または沈着（浸透圧ポンプ等）；例えば、カテーテルまたはその他の配置装置（例：角膜ペレットまたは座薬、点眼剤、または多孔性、非多孔性、またはゼラチン質材料を含む移植片）により、直接（例：局所的に）血管新生部位またはその近傍領域に投与；および吸入が挙げられる。適切な配置装置として、米国特許第５、９０２，５９８号および同第６，３７５，９７２号に記載される人工眼、および米国特許第６，３３１，３１３号に記載の生分解性の人工眼が挙げられ、これら文献の全開示内容をこの参照により本願明細書に組み込む。このような人工眼は、Ｃｏｎｔｒｏｌ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｓｙｓｔｅｍ  Ｉｎｃ．（米国マサチューセッツ州Ｗａｔｅｒｔｏｗｎ）およびＯｃｕｌｅｘ  Ｐｈａｍａｃｅｉｕｔｉｃａｌ，Ｉｎｃ．（米国カリフォルニア州Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ）より入手できる。
【０１０６】
好適な実施形態において、ＲＮＡｉ化合物の注射或いは注入は血管新生の部位或いはその近辺で行われる。例えば、ＲＮＡｉ化合物は眼球の網膜色素上皮細胞に送られることができる。好ましくは、ＲＮＡｉ化合物は、当業者の技術の範囲内で、例えば液状或いはゲル状において眼瞼の下部或いは結膜の盲管に投与するなど、眼に局所的に投与される（例えば、Ａｃｈｅａｍｐｏｎｇ  ＡＡら、２００２、Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂｏｌ．ａｎｄ  Ｄｉｓｐｏｓｉｔｉｏｎ  ３０：４２１−４２９参照、これはこの参照により本願明細書に組み込まれる）。
【０１０７】
例えば、ＲＮＡｉ化合物は約５マイクロリットルから約７５マイクロリットル、例えば、約７マイクロリットルから約５０マイクロリットル、好ましくは約１０マイクロリットルから約３０マイクロリットルの体積で眼球に局所的に投与されることができる。７５マイクロリットルを超える体積でＲＮＡｉ化合物を眼に局所的点眼すると、眼からの流出および排水によって２本鎖ＲＮＡの減失がもたらされることがありえると理解される。ＲＮＡｉ化合物は水性溶液に非常に可溶性である。従って、約５マイクロリットルから約７５マイクロリットルの体積で眼に局所的に点眼することによる高濃度のＲＮＡｉ化合物の投与（例えば１００〜１０００ｎＭ）が好ましい。
【０１０８】
特に好適なＲＮＡｉ化合物の非経口投与経路は眼球内投与である。前記投与経路によって前記ＲＮＡｉ化合物を眼球に入れることができる限り、前記ＲＮＡｉ化合物の眼球内の投与が眼球に注射或いは直接（例えば、局所的）投与によってなしとげられることができると理解される。上述した眼球への局所的投与経路に加えて、適切な眼球内の投与経路は硝子体内、網膜内、網膜下、トノン下、眼窩周囲、眼窩後、トランス−角膜、トランス−強膜の投与を含む。そのような眼球内の投与経路は当業者の技術の範囲内であり、たとえば、Ａｃｈｅａｍｐｏｎｇ  ＡＡら、２００２、上述；及びＢｅｎｎｅｔｔら、１９９６、Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．７：１７６３〜１７６９、及びＡｍｂａｔｉ  Ｊら、２００２、Ｐｒｏｇｒｅｓｓ  ｉｎ  Ｒｅｔｉｎａｌ  ａｎｄ  Ｅｙｅ  Ｒｅｓ．２１：１４５〜１５１参照。
【０１０９】
この実施形態において、標的細胞は、細胞内における少なくとも１つの 抗血管新生因子の含量を増加させるために処理もされている。前記標的細胞内にある１若しくはそれ以上の抗血管新生遺伝子の発現を上方制御することによって、細胞内の抗血管新生因子の含量を増加することができる。例えば、すでに前記標的細胞ゲノムの部分である抗血管新生遺伝子は、ＲＮＡ転写物の生産を増加させるために或いはその遺伝子によって作り出される前記ＲＮＡ転写物の安定化によって刺激され得る。
【０１１０】
標的細胞内部の抗血管新生因子の値もまた、１若しくはそれ以上の分離した抗血管新生因子を直接標的細胞に導入することによって増加させることができ、例えば、前記標的細胞によって含まれる組織の中への抗血管新生因子の注射によって、或いは全身的に抗血管新生因子を被検者に投与することによって、その結果、それは送達されて前記標的細胞によって吸収される。
【０１１１】
前記標的細胞への前記抗血管新生因子の取込みを容易にするために前記抗血管新生因子を修飾することができる。例えば、被験者に投与する前にリポソームに前記抗血管新生因子を封入することができる。前記封入された化合物は細胞膜へのリポソームの融合によって標的細胞内に直接送られる。リポソームへの本化合物の封入のための試薬と技術は当業者に周知であり、上述のようにあるように、Ｉｍｇｅｎｅｘ社によるＰｒｏ  Ｖｅｃｔｉｎ（登録商標）  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅａｇｅｎｔを含む。
【０１１２】
「タンパク質形質導入ドメイン」或いは「ＰＴＤ」として知られるペプチドリーダー配列と前記化合物を結合させることによってもまた抗血管新生因子を修飾することができる。これらの配列は「タンパク質形質導入」として知られる工程によって、異常に増殖する細胞の中に前記化合物を直接移行する、Ｓｃｈｗａｒｚｅら、１９９９、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８５：１５６９を参照し、これはこの参照により本願明細書に組み込まれる。
【０１１３】
ＰＴＤｓは、当業者に周知であり、Ｇｕｉｓら、１９９９、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．５９：２５７７〜２５８０で述べられているように選択的に１〜２個のリジン或いはグルタミンと共に９〜１１個のアルギニン残基のペプチドといったアルギニンに富んだ配列を含むいくつかの周知のＰＴＤ配列から含み得るものであり、前記公開物はこの参照により本願明細書に組み込まれる。好適なＰＴＤｓは１１個のアルギニン残基或いはヒト免疫不全ウイルスＴＡＴタンパク質のアミノ末端１１アミノ酸たんぱく質形質導入ドメインの配列である。好ましくは、前記ＰＴＤは、それが前記細胞に移行すると即座に前記化合物から切断されるように設計される。ＰＴＤは前記抗血管新生因子の前記抗血管の性質を妨害しない前記抗血管新生因子上のどこにでも位置することができるが、前記アミノ末端の終末に位置することが好ましい。
【０１１４】
目的タンパク質（例えば抗血管新生因子）およびＰＴＤを含む融合タンパクをつくるキットおよび方法は従来技術において周知である。例えば、ＴｒａｎｓＶｅｃｔｏｒ（登録商標）システム（Ｑ−ＢＩＯｇｅｎｅ）は前記Ｄｒｏｓｏｐｈｉａ  アンテナペディアＤＮＡ結合ドメインに一致するＰｅｎｅｔｒａｔｉｎ（登録商標）と呼ばれる１６アミノ酸ペプチドを使用するものであり、前記Ｖｏｙａｇｅｒ  ｓｙｓｔｅｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ  Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）は単純ヘルペスウィルス１型由来前記３８ｋＤａＶＰ２２タンパク質を使用するものである。
【０１１５】
標的細胞内の抗血管新生因子の前記値は前記標的細胞内に１若しくはそれ以上の抗血管新生因子をエンコードする発現ベクターの導入によってもまた増加することができる。発現ベクターは上述される。表２において引用した前記抗血管新生因子をエンコードする核酸配列は、上述の標準的分子生物学的手法を使用してこれらの配列を発現する発現ベクターを構築するために用いることができる。好適な発現ベクターは上述のプラスミド及びウイルスベクターである。
【０１１６】
一実施形態において、１若しくはそれ以上の抗血管新生因子を発現する発現ベクターは、被験者の細胞内に導入され、その結果、それらの細胞は抗血管新生因子を産生して、前記血管系に分泌する。前記分泌された抗血管新生因子は（「分離」していると考えられる）その後輸送され、前記標的細胞に吸収される。例えば、前記ＡＶ或いはＡＶＶベクターを前記被験者の肝細胞に形質導入するように、抗血管新生因子を発現しているＡＶ或いはＡＶＶベクターは被験者の血流に投与され得る。前記形質導入された肝細胞は血流中に前記抗血管新生因子を産生する。前記分泌された抗血管新生因子はその後、例えばＲＰＥ細胞などに移動し、ＲＰＥ細胞によって吸収され得る。ＡＶ或いはＡＶＶベクターによる肝細胞の形質転換技術は当業者技術の範囲内であり、例えば、Ｆｅｒｒｙ  Ｎら、１９９８、Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．９：１９７５を参照し、これはこの参照により本願明細書に組み込まれる。
【０１１７】
本願明細書において用いられるように、標的細胞内の抗血管新生因子の前記値を増加させるために用いられるいかなる化合物も「抗血管新生化合物」と呼ぶ。抗血管新生化合物は、分離した抗血管新生因子を含む化合物、ＰＴＤを含む分離した抗血管新生因子、或いは抗血管新生因子を発現する発現ベクターを含む。本願明細書において用いられるように、抗血管新生化合物を細胞に入れることを可能にする技術である標的細胞を抗血管新生化合物にさらすことに適しているいかなる技術によっても、標的細胞は抗血管新生因子の値を増加させるために「処理」される。被験者へのＲＮＡｉ化合物の投与について上述したように、任意の適切な経腸或いは非経口的な経路による被験者への投与を介して、標的細胞が抗血管新生化合物にさらされ得る。
【０１１８】
一実施形態において、前記ＲＮＡｉ化合物のついて上述したように、単独或いはデリバリー試薬と組み合わせて被験者に発現ベクターを投与することによって、標的細胞は抗血管新生因子を発現する発現ベクターで処理されることができる。ウイルスベクターを含む発現ベクターは、当業者技術の範囲内における手法に従って、細胞感染によって標的細胞の中に送られ得る。
【０１１９】
本法の実行において、標的細胞は、ＲＮＡｉ化合物および抗血管新生化合物の特定の組み合わせによって処理されることができる。例えば、標的細胞はＶＥＧＥ遺伝子発現を抑制するＲＮＡｉ化合物、および前記標的細胞内のＰＥＤＦ、エンドスタチンおよび／またはアンジオスタチンの量を増加させる抗血管新生化合物によって処理されることができる。標的細胞は、ＨＩＦ−１アルファ遺伝子発現を抑制するＲＮＡｉ化合物、および標的細胞内のＰＥＤＦ，エンドスタチン、および／またはアンジオスタチンの量を増加させる抗血管新生化合物によって処理され得る。標的細胞を処理するための他のＲＮＡｉ化合物と抗血管新生化合物の組み合わせを熟考する。
【０１２０】
本法の実行において、ＲＮＡｉ化合物と抗血管新生化合物は好ましくは同じ経路によって被験者に投与される。しかしながら、ＲＮＡｉ化合物と抗血管新生化合物は異なる経路によって投与することができる。また、ＲＮＡ干渉化合物および抗血管新生化合物は、その両方が最終的に前記標的細胞に存在する限りは、同時に投与される必要はない。
【０１２１】
好適な実施形態において、標的細胞は「連結発現ベクター」で処理されることができ、これは少なくとも１つの低分子ｓｉＲＮＡと少なくとも１つの抗血管新生因子をエンコードする遺伝子を発現する１つの発現ベクターである。前記連結発現ベクターは、血管新生促進遺伝子を標的にする少なくとも１つのｓｉＲＮＡのセンス鎖及びアンチセンス鎖をエンコードする核酸配列、および少なくとも１つの抗血管新生因子をエンコードする核酸配列を含む。連結発現ベクターの構築は当業者技術の範囲内であり、例えば、上述の分子生物学的手法を使用したものである。典型的な連結発現ベクターの構築及び使用は下記の実施例において記載する。好都合なことに、連結発現ベクターは、図１Ａ〜１Ｃにおいて、プラスミドベクターの中に血管新生促進遺伝子を標的にするｓｉＲＮＡのセンス鎖とアンチセンス鎖をエンコードする核酸配列を挿入することによって構築することができる。前記連結発現ベクターは「ＲＮＡｉ化合物」及び「抗血管新生化合物」の両方であることが理解される。
【０１２２】
ｐＡＡＶｃｏｍｂｏと呼ばれている他の典型的な連結発現ベクターを図２に示す。前記ｐＡＡＶｃｏｍｂｏベクターは、１若しくはそれ以上の細胞内因子遺伝子（例えば１若しくはそれ以上の抗血管新生遺伝子）を発現する核酸配列と、１若しくはそれ以上の他の細胞内因子遺伝子の発現を減らす２本鎖ＲＮＡを発現する核酸配列とを含む。上記のようにいかなる適切なプロモーター配列であっても連結発現ベクターの構築に用いることができる。前記プラスミドｐＡＡＶｃｏｍｂｏもまたＡＡＶ由来の逆方向末端反復（ＩＴＲｓ）を含み、これは前記ベクターが本発明の組換え型ＡＡＶベクターを産生するために使用されることができることを示す。当業者の技術の範囲内で、組換え型レンチウイルスベクター、アデノウイルスベクターなどを産生することに適している構成成分を含む類似の連結発現ベクターを構築することができる。
【０１２３】
ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物がそれぞれ標的細胞内で血管新生促進遺伝子の発現の減少および前記抗血管新生因子の値の増加を引き起こす能力は、細胞内のＲＮＡ或いはタンパク質の値を測定する標準的な手法を用いて、細胞培養系において評価することができる。例えば、標的細胞内の血管新生促進因子メッセンジャーＲＮＡの値をノーザンブロット或いはドットブロッティング法或いは定量的ＲＴ−ＰＣＲによって測定することができる。前記培養細胞内の血管新生促進因子及び抗血管新生因子の値をＥＬＩＳＡ或いはウエスタンブロットといった手法によって測定することができる。適切な細胞培養系はマウスＮＩＨ３Ｔ３細胞、ヒト網膜色素上皮細胞、ＨｅＬａ細胞及びヒト胎児腎臓（ＨＥＫ）２９３細胞を含む。
【０１２４】
例えば、５０％の集密的な２９３ヒト腎臓細胞をＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物を含む培地で４８時間培養した後、適切な血管新生促進因子および抗血管新生因子のｍＲＮＡ或いはタンパク質のＥＬＩＳＡ或いはｍＲＮＡを定量する。前記標的配列と相同でないｄｓＲＮＡ及び非特異的タンパク質と培養した細胞を対照として用いることができる。
【０１２５】
例えば、自然に血管新生促進因子を発現している（或いは発現を誘導している）細胞は９６穴のマイクロタイタープレートで集密するまで増殖させる。ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物を細胞の１つのグループに与えることができる。非特異的低分子ｓｉＲＮＡ（あるいは非ｓｉＲＮＡ）と非特異的タンパク質を発現している発現ベクターを対照として細胞の第２グループに与えることができる。前記細胞は洗浄し、１〜２％パラホルムアルデヒドを用いて前記マイクロタイタープレートウェルに直接固定される。前記マイクロタイタープレート上の非特異的結合部位を２％牛血清アルブミンで遮断する。その後、前記細胞は任意の血管新生促進因子及び抗血管新生因子に特異性を示すモノクローナル抗体でインキュベートされ、各々は異なる検出試薬で標識することができる。
【０１２６】
例えば、血管新生促進因子に対する結合抗体はマウス由来であっても良く、ビオチン化したヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｂｅｔｈｅｓｄａ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｅｒｇ、Ｍｄ．）の１：１０００希釈溶液と共に１時間３７℃インキュベーションすることによって、およびベータガラクトシダーゼと接合したストレプトアビジン（Ｂｅｔｈｅｓｄａ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）の１：１０００希釈溶液と共に１時間３７℃でインキュベーションすることによって検出することができる。前記モノクローナル抗体に結合した前記ベータガラクトシダーゼの量は、例えば、前記マイクロタイタープレートを３．３ｍＭクロロフェノールレッド−ベータ−Ｄ−ガラクトピラノシド、５０ｍＭリン酸ナトリウム、１．５ｍＭＭｇＣｌ２のｐＨ７．２の溶液中、３７℃で２〜１５分間発育させて、ＥＬＩＳＡマイクロタイタープレートリーダーにおいて５７５ｎｍで結合抗体の前記濃度を測定することによって決定される。抗血管新生因子に結合した抗体はウサギ由来であり、蛍光標識したヤギ抗ウサギＩｇＧで検出することができる。
【０１２７】
ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物が各自標的細胞内で血管新生促進遺伝子の発現の減少および抗血管新生因子の前記含量の増加を引き起こす能力は、当業者の技術の範囲内の手法を用いて、ウシ網膜血管内皮細胞（ＢＲＥＣｓ）による管形成の測定によって試験管内で評価することもまたできる。管形成の抑制は標的細胞内で血管新生促進遺伝子の発現の減少及び前記抗血管新生因子の含量の増加を示す。
【０１２８】
適切なＢＲＥＣ管形成測定は５．５ｍＭグルコース、１０％ウマ血清由来血小板（ＰＤＨＳ；Ｗｈｅａｔｏｎ、Ｐｉｐｅｒｓｖｉｌｌｅ、ＰＡ）、５０ｍｇ／ｍＬヘパリン、及び５０Ｕ／ｍＬ血管内皮細胞成長因子（Ｒｏｃｈｅ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ）を有するダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）を含んだファイブロネクチン塗布シャーレ上に培養するＢＲＥＣを含む。前記管形成測定ために適切なＢＲＥＣは光学顕微鏡法によって確かめらようなこれらの条件下において、第ＶＩＩＩ因子抗原の免疫反応性による血管内皮細胞性均一を呈して、形態学的にこれらの条件下で不変のままである。
【０１２９】
前記管形成測定はＫｉｎｇ  ＧＬら、１９８５、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．７５：１０２８〜１０３６及びＯｔａｍｉ  Ａら、１９９８、Ｃｉｒｃ．Ｒｅｓ．８２：６１９〜６２８で述べられているように実行することができ、これはこの参照により本願明細書に組み込まれる。一時的に５マイクログラム／ｍＬファイブロネクチンおよび５マイクログラム／ｍＬラミニンを含んだ１０ＸＲＰＭＩ培地（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ、  Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、  ＭＤ）中のＶｉｔｒｏｇｅｎ  １００（Ｃｅｌｔｒｉｘ、  Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ、  ＣＡ）、０．２Ｎ水酸化ナトリウム及び２００ｍＭ  ＨＥＰＥＳの８：１：１混合物（４００マイクロリッター）を２４穴プレートに加える。前記ゲルの重合後、培養した１．０×１０５のＢＲＥＣを前記ウェルにまき、２０％ＰＤＨＳを含んだＤＭＥＭで２４時間３７℃培養する。前記細胞数は当業者に周知であるように（Ｋｉｎｇ  ＧＬら、１９８５、上述及びＯｔａｍｉ  Ａら、１９９８、上述）、前記形及び管の長さを最適化するために選択される。その後培地を除去し、追加のコラーゲンゲルを前記細胞層上に導入する。前記コラーゲンゲルを作る前に、ＢＲＥＣによって形成された任意の管様の構造物の表面積に対するの密度を測定するために、前記各ウェルの底の中央部分の位置にランダムに印をつけてもよい。その後、管形成を誘導するために低酸素条件の培地を前記ウェルに加える。その後、任意の適切な手法によって、ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物を特定のウェルのＢＲＥＣの中に導入する。ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物で処理を全くしていないウェルは陰性対照として用いることができ、非特異的なｄｓＲＮＡと非特異的なタンパク質で処理したウェルは陽性対照として用いることができる。ＲＮＡｉ化合物および抗血管新生化合物で処理したウェルにおける管形成の抑制は対照ウェルと比較して、血管新生促進遺伝子の発現が抑制され、前記細胞内の抗血管新生因子の含量が増加していることを示す。
【０１３０】
ＲＮＡｉ化合物および抗血管新生化合物による標的細胞の処理の前記効果もまた血管新生の動物モデルで評価することができる。適切な動物モデルは未熟児網膜症（ＲＯＰ）或いは脈絡膜血管新生（ＣＮＶ）のマウスモデル或いは霊長類のＣＮＶを含む。例えば、ＲＯＰ或いはＣＮＶマウスにおける血管新生の領域を本方法による標的細胞の処理の前後で測定することができる。ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物を投与された動物における血管新生領域の減少は血管新生促進遺伝子の発現の減少及び標的細胞内の抗血管新生因子の含量の増加を示す。
【０１３１】
被験者において、少なくとも１つの血管新生促進遺伝子の発現を減少するため、および少なくとも１つの抗血管新生因子の値を増加するため、標的細胞を処理することは血管新生を抑制する。被験者における血管新生の抑制は、直接病原性或いは非病原性の血管新生の進行度を測定することによって評価されうるものであり、例えば前記標的細胞の処理前後での血管新生領域の大きさを観察することによって評価することができる。血管新生の領域が同じ或いは縮小する場合血管新生の抑制が示される。被験者の血管新生領域の大きさの観察及び測定技術は当業者技術の範囲内であって、例えば脈絡膜血管新生は眼底検査によって観察することができる。
【０１３２】
被験者の血管新生の抑制もまた血管新生に関連する病原の状態において変化或いは反転を観察することによって推察することが可能である。例えば、ＡＭＤにおいて、視覚減失の徐脈化、停止或いは反転は前記脈絡膜の脈管形成の抑制を示す。腫瘍に関して、腫瘍成長の徐脈化、停止或いは反転、腫瘍転移の徐脈化或いは停止は前記腫瘍部位或いはその近くで血管形成の阻害を示す。腫瘍の大きさは直接視覚による観察或いはレントゲン、磁気共鳴映像法、超音波、シンチグラフィーといった画像診断法によって確認することができる。腫瘍の大きさの確認をするために用いられる画像診断法は当業者に周知の造影剤を用いて或いは用いずに行うことができる。組織塊の大きさは、前記組織塊の触診法或いはノギスのような計器を用いた前記組織塊の計測といった物理的手段によってもまた確認することができる。被験者における非病原性の血管新生の抑制は、例えば、前記標的細胞の処理による体重減少或いはコレステロール値の減少から推定することができる。
【０１３３】
当業者は、任意の被験者に投与するＲＮＡｉ化合物或いは抗血管新生化合物の有効量を前記被験者のサイズおよび体重；前記血管新生或いは疾患浸透の範囲；前記被験者の年齢、健康状態、性別；前記投与経路；及び前記投与が局所であるか全身であるどうかといった要素を考慮に入れて容易に決定することができる。
【０１３４】
前記ＲＮＡｉ化合物が分離したｄｓＲＮＡを含む場合、被験者に投与される有効量は、前記血管新生部位或いはその近辺において、約１ナノモーラー（ｎＭ）〜約１００ｎＭ、好ましくは約２ｎＭ〜約５０ｎＭ、より好ましくは約２．５ｎＭ〜約１０ｎＭの前記ｄｓＲＮＡの細胞間の濃度を提供する量を含んでも良い。前記ＲＮＡｉ化合物が発現ベクターを含む場合、被験者に投与される有効量は約１０〜約１０００ナノグラム（ｎｇ）、好ましくは約２０から約５００ｎｇ、特に好ましくは約５０から約１００ｎｇの発現ベクターを含んでも良い。
【０１３５】
より多い或いはより少ない量のＲＮＡｉ化合物が投与され得ることが予期される。
【０１３６】
抗血管新生化合物が分離した抗血管新生因子を含む場合、被験者に投与される有効量は約１０〜約３０００μｇ化合物／ｋｇ体重含むことができる。好ましくは、前記有効量は約５０〜約２０００μｇ化合物／ｋｇ体重含むことができ、より好ましくは約１００〜約１０００μｇ化合物／ｋｇ体重、特に好ましくは約１５０〜約７５０μｇ化合物／ｋｇ体重まで、もっとも好ましいのは約２００〜５００μｇ化合物／ｋｇ体重である。前記抗血管新生化合物が前記抗血管新生因子を発現する発現ベクターを含む場合、被験者に投与される有効量は約１０〜約１０００ナノグラム（ｎｇ）含むことができ、好ましくは約２０〜約５００ｎｇ、特に好ましくは約５０〜約１００ｎｇである。
【０１３７】
より多い或いはより少ない量の抗血管新生化合物が投与され得ることが予期される。
【０１３８】
前記ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物は、単回投与或いは反復投与において投与することができる。前記投与が注入の場合、前記注入は１回の持続投与であっても良く、反復注入により送達されても良い。組織の中への直接的な注射は、血管新生部位或いはその近くであるものが好ましい。血管新生部位或いはその近くにおける組織への反復注射が特に好ましい。
【０１３９】
当業者は、任意の被験者に対して前記ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物を投与するための適切な投与の処方計画を容易に決定することもできる。例えば、前記投与は、血管新生部位或いはその近くにおいて、単回注射或いは沈着であっても良い。或いは、前記投与は、例えば毎日或いは週に１回というように、複数回実行することでも良い。好ましくは、前記投与は約３〜約２８週間の期間で週１回、さらに好ましくは約７〜約２０週間の期間で週１回である。特に好ましい投与の処方計画において、投与は血管新生部位或いはその近くで（例えば硝子体内）不確定の期間の間１２週毎に１回注射することである。不定期間の間の周期性の投与は湿潤加齢横班変性症（ｗｅｔ  ＡＭＤ）或いは糖尿病性網膜症といった慢性血管新生疾患を患った被験者のために必要である可能性が理解される。
【０１４０】
処方計画が反復投与を含む場合、被験者に投与するＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物の前記有効量は、全投与の処方計画を通して投与される全量を含むことが理解される。
【０１４１】
本方法は非病原性の血管新生すなわち、被験者の正常な工程に起因する血管新生の抑制に使用されうる。非病原性の血管新生の例は、子宮内膜の血管新生及び脂肪組織或いはコレステロールの産生に関係する工程を含む。従って、本発明は例えば体重管理或いは脂肪減少の促進、コレステロール値の減少或いは堕胎薬など非病原性の血管新生を抑制するための方法を提供する。
【０１４２】
本方法は血管新生疾患、すなわち不適当或いは抑制できない血管新生に関連する病原性の病気と関連する血管新生もまた抑制することができる。例えば、ほとんどの癌性固形腫瘍は、前記腫瘍部位及びその周辺で血管新生を誘導することによって自分自身に充分な血液を供給することを引き起こす。この腫瘍誘導性血管新生は、腫瘍成長のために必要であることが多く、さらに転移細胞が血流に侵入することを可能にする。本方法で治療することができる他の血管新生疾患は、ＡＭＤ、糖尿病性網膜症、乾癬、慢性関節リウマチ及び他の炎症性疾患を含む。
【０１４３】
癌に関係する固形腫瘍の成長及び転移が抑制されることが好ましく、例えば、乳がん、肺がん、頭頸部がん、脳腫瘍、腹部がん、大腸がん、直腸結腸がん、食道がん、消化器がん、グリア細胞腫、肝臓がん、舌がん、神経芽細胞腫、骨肉腫、卵巣がん、膵がん、前立腺がん、 網膜芽細胞腫、）ウイルムス腫瘍、多発性骨髄腫、皮膚がん（実施例として 黒色腫）、 リンパ腫及び血液がんがある。さらに好ましくは、加齢黄斑変性症或いは糖尿病性網膜症における脈絡膜血管新生が抑制される。
【０１４４】
細胞に特定の表現型を示すために細胞に生じる遺伝子の別のグループは、抗アポトーシスおよびアポトーシス促進性の遺伝子であり、例として、それぞれ、表１０および１１に記載される。対応する前記抗アポトーシス性およびアポトーシス促進性因子をエンコードする核酸配列及びこれら因子のアミノ酸配列は、表１０および１１に示してあるように配列一覧が提供される。表１０および１１およびその中で参照する配列は、ＩｎｖｉｖｏＧｅｎ（カリフォルニア州、サンディエゴ、９２１２１）が維持管理するウェブサイトで提供される情報から出典される。
【０１４５】
【表８】
2007515966.tif 000010
【０１４６】
【表９】
2007515966.tif 000011
【０１４７】
従って、他の実施形態において、本発明は、例えば癌細胞などの標的細胞中において少なくとも１つの抗アポトーシス遺伝子の発現の減少及び少なくとも１つのアポトーシス促進因子の前記含量の増加による標的細胞におけるアポトーシスを誘導する方法を提供する。本方法による癌細胞におけるアポトーシスの誘導は、被験者における腫瘍成長或いは転移を抑制することができる。従って、適切な標的細胞は上述に一覧で示した腫瘍あるいは癌細胞を含む。
【０１４８】
標的細胞における抗アポトーシス遺伝子の発現の減少は少なくとも１つの抗アポトーシス遺伝子のＲＮＡｉを誘導する１若しくはそれ以上の分離したｄｓＲＮＡ（例えば１若しくはそれ以上のｓｉＲＮＡ）を用いて前記細胞を処理することによって成し遂げられる。例えば、Ｂｃｌ−２遺伝子或いはＢｃｌ−２及びＢｃｌ−ＸＬ遺伝子の発現は、ＲＮＡｉによって標的細胞において減らすことができる。抗アポトーシス遺伝子のＲＮＡｉを誘導するｄｓＲＮＡもまた、標的細胞内で発現ベクターから発現され得る。
【０１４９】
上述のように、分離したｄｓＲＮＡ或いはｄｓＲＮＡを発現する発現ベクターを含む化合物を「ＲＮＡｉ化合物」と呼ばれる。抗アポトーシス遺伝子のＲＮＡｉを誘導するＲＮＡｉ化合物は、表１０において参照した図からの核酸配列を用いて、上述したように当業者技術の範囲内の手法によって作り出すことができる。例えば、抗アポトーシス遺伝子を標的にするｓｉＲＮＡの産生するための標的配列はＴｕｓｃｈｌ  Ｔらの「Ｔｈｅ  ｓｉＲＮＡ  Ｕｓｅｒ  Ｇｕｉｄｅ」（上述）の概説のように選択されうるものであり、ｓｉＲＮＡを構築するために用いることができる。
【０１５０】
標的細胞もまた少なくとも１つのアポトーシス促進因子の前記含量を増加するために処理され、例えば１若しくはそれ以上のアポトーシス促進遺伝子を上方制御するように前記細胞に誘導することにより、或いは標的細胞内へ１若しくはそれ以上のアポトーシス促進因子をエンコードする１若しくはそれ以上の分離したアポトーシス促進因子或いは発現ベクターの導入によって処理される。アポトーシス促進因子をエンコードする発現ベクターは、上述の当業者技術の範囲内の手法を用い、表１１において参照した図からの核酸配列を用いて構築することができる。標的細胞においてアポトーシス促進因子の値を増加させるいかなる化合物も「アポトーシス促進化合物」である。
【０１５１】
上述のように、標的細胞は、これらの化合物を標的細胞中に適切に誘導するいかなる手法によって、ＲＮＡｉ化合物或いはアポトーシス促進化合物を用いて「処理」されるものであり、そのような技術は、前記細胞への直接投与、核酸送達試薬と共投与、或いは前記細胞への形質導入を含む。ＲＮＡｉ化合物或いはアポトーシス促進化合物を獲得させて標的細胞中に導入する手法は、上述のように、被験者における血管新生を抑制するために用いた前記ＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物である。
【０１５２】
好適な実施形態において、被験者の標的細胞は連結発現ベクターで処理することができ、それは１若しくはそれ以上の抗アポトーシス遺伝子を標的にする少なくとも１つのｓｉＲＮＡと少なくとも１つのアポトーシス促進遺伝子をエンコードする核酸配列をエンコードする核酸配列を含む。連結発現ベクターはＲＮＡｉ化合物及びアポトーシス促進化合物の両方であることが理解される。
【０１５３】
被験者に投与するＲＮＡｉ化合物或いはアポトーシス促進化合物の有効量は、被験者のサイズ、体重、年齢、性別、治療する病気の性質および段階、前記病気の攻撃性、前記投与経路、及び前記投与が局所であるか全身であるどうかを含む被験者個人の状況によって決定される。当業者であれば、これらの因子の評価をすること及び本化合物の適切な量を選択することができる。抗アポトーシス遺伝子のＲＮＡｉを誘導する前記ＲＮＡｉ化合物の有効量及びアポトーシス促進化合物の有効量は、上述したように、被験者において血管新生を抑制するために用いたＲＮＡｉ化合物及び抗血管新生化合物である。
【０１５４】
ＲＮＡｉ化合物およびアポトーシス促進化合物がそれぞれ、標的細胞内で抗アポトーシス遺伝子の発現の減少および前記アポトーシス促進因子の含量の増加を引き起こす能力は細胞培養系において評価することができる。例えば、培養細胞は１０日間の期間毎日生残性および前記アポトーシスの反応を検討することができる。細胞数および生存率はトリパンブルー排除によって決定し、細胞周期分布および処理グループにおける副二倍体細胞（ｓｕｂ−ｄｉｌｏｉｄ  ｃｅｌｌｓ）の存在は、フローサイトメトリー分析によって決定される。フローサイトメトリー分析のために、細胞は１％ＦＢＳを含んだ１％リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で２回洗浄し、洗浄した前記細胞は１時間８０％冷エタノールで固定し、小塊にし、５０μｇ／ｍｌ）ヨウ化プロピジウムおよび１ｍｇ／ｍｌ）ＲＮＡ分解酵素を含んだＰＢＳ／１％ＦＢＳで  再懸濁する。３７℃で３０分間インキュベートした後、前記細胞はＣｏｕｌｔｅｒ  Ｅｐｉｃ  Ｅｌｉｔｅ  Ｆｌｏｗ  Ｃｙｔｏｍｅｔｅｒで検討する。ＤＮＡは細胞から分離し、「ラダー」の様相を示すために１．８％アガロースゲルで電気泳動することができ、ラダーはアポトーシスが起きている細胞のＤＮＡの特徴である ヌクレオチド鎖切断の結果である。
【０１５５】
少なくとも１つの抗アポトーシス遺伝子の発現の減少および少なくとも１つのアポトーシス促進因子の前記含量を増加するために、被験者において標的細胞を処理することによって、被験者における腫瘍成長を抑制する。長期にわたり腫瘍の前記サイズが一定のままであるか或いは減少する場合、腫瘍成長の阻害であることが推定され得る。腫瘍の大きさは直接視覚による観察或いはレントゲン、磁気共鳴映像法、超音波、シンチグラフィーといった画像診断法によって確認することができる。腫瘍の大きさを確認するために用いられる画像診断法は、当業者に周知のように、造影剤を用いて或いは用いずに使用され得る。腫瘍の大きさを前記組織腫瘤の触診法或いはノギスのような計器での前記組織腫瘤の計測といった物理的手段によってもまた確認することができる。
【０１５６】
ＲＮＡｉ化合物および抗血管新生或いはアポトーシス促進化合物は、被験者への投与前に、当業者に周知の手法により、薬学的組成物として好ましく処方される。本発明の薬学的組成物は、少なくとも無菌で発熱物質がないものとして特徴付けられる。本願明細書において用いられるように、「薬学的組成物」はヒトおよび獣医の利用のための製剤を含む。本発明の薬学的組成物の調整法は当業者の技術の範囲内であり、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ‘ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅ、第１７版、１９８５、Ｍａｒｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｅａｓｔｏｎ、ＰＡに記述されていており、これはこの参照により本願明細書に組み込まれる。
【０１５７】
本発明の薬学的組成物は、例えば、生理学的に許容可能な担体媒体と混合したＲＮＡｉ化合物および抗血管新生或いはアポトーシス促進化合物（例えば０．１〜９０重量％）、或いは生理学的に許容可能なその塩類を含む。好ましい生理学的に許容可能な担体媒体は水、緩衝した水、食塩水（例えば普通生理食塩水或いはハンクス或いはアール平衡塩類溶液といった平衡塩類溶液）、０．４％生理食塩水、０．３％グリシン、ヒアルロン酸、および同類のものである。
【０１５８】
本発明の薬学的組成物は、通常の薬学的賦形剤および／または添加剤も含むことができる。適切な賦形剤は安定剤、抗酸化剤、浸透圧調整薬、緩衝液およびｐＨ調整薬を含む。適切な添加剤は生理学的に生体適合性の緩衝液（例えば、トロメタミン、塩酸塩）、キレート剤（ｃｈｅｌａｎｔｓ）の添加（例えば、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）、ＤＴＰＡ−ビスアミドなど）或いはカルシウムキレート錯体（例えば、カルシウムＤＴＰＡ、ＣａＮａＤＴＰＡ−ビスアミド）、或いは選択的に、カルシウム或いはナトリウム塩の添加（例えば、塩化カルシウム、アスコルビン酸カルシウム、グルコン酸カルシウム、乳酸カルシウム）を含む。本発明の薬学的組成物は液体形態における使用のために包装されるか或いは凍結乾燥されることができる。
【０１５９】
眼への局所的投与のために、通常の眼球内送達試薬が使用され得る。例えば、局所的眼球内送達のための本発明の薬学的組成物は、上述したように、生理食塩水、角膜浸透促進剤、不溶性粒子、ワセリン或いは他のゲルベースの軟膏剤、前記眼球の点眼で粘性を増加させる重合体、或いは粘膜付着性重合体を含むことができる。好ましくは、前記眼球内送達試薬は、角膜浸透を増加させるか、或いは粘性効果或いは前記角膜上皮を転換して前記ムチン層による物理化学的相互作用を安定させることによる前記ＲＮＡｉ化合物、抗血管新生或いはアポトーシス促進化合物の眼球前部での保持を長くする。
【０１６０】
局所的眼球内送達のための適切な不溶性粒子は、Ｂｅｌｌらの米国特許第６，３５５，２７１号公報に記述されている前記リン酸カルシウム粒子を含み、これはこの参照により本願明細書に組み込まれる。前記眼球の点眼で粘性を増加させる適切な重合体はポリキサマー４０７（例えば２５％の濃度で）、アセトフタル酸セルロース（例えば３０％の濃度で）、或いはＧｅｌｒｉｔｅ（商標）といった低アセチルジェランガム（ＣＰ  Ｋｅｌｃｏ、Ｗｉｌｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＤＥから入手可能）といったポリエチレンポリオキシプロピレン遮断共重合体を含む。適切な粘膜付着性重合体はカルボキシル基、水酸基、アミド基および／或いは硫酸基といった機能的親水基を伴う親水コロイドを含み、実施例として、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリアクリル酸、高分子量ポリエチレングリコール（例えば、平均分子量数>２００，０００）、デキストラン、ヒアルロン酸、ポリガラクツロン酸、キシロカンがある。適切な角膜浸透促進剤はシクロデキストリン、塩化ベンザルコニウム、ポリオキシエチレングリコールラウリルエーテル（例えば、Ｂｒｉｊ（商標）３５）、ポリオキシエチレングリコールステアリルエーテル（例えば、Ｂｒｉｊ（商標）７８）、ポリオキシエチレングリコール  オレイル  エーテル（例えば、Ｂｒｉｊ（商標）９８）、エチレンジアミン４酢酸（ＥＤＴＡ）、ジギトニン、タウロコール酸ナトリウム、サポニンおよびＣｒｅｍａｐｈｏｒ  ＥＬといったポリオキシエチル酸ヒマシ油を含む。
【０１６１】
固形組成物として、通常の非毒性の固形担体を用いることができ、例えば、製薬等級のマンニトール、ラクトース、デンプン、ステアリン酸マグネシウム、ナトリウムサッカリン、タルク、セルロース、グルコース、スクロース、炭酸マグネシウムなど前記同類のものがある。
【０１６２】
例えば、経口投与用の固形薬学的組成物はいかなる前記担体および上記一覧の賦形剤、および１０〜９５％、好ましくは２５％〜７５％の１若しくはそれ以上のＲＮＡＩ化合物、抗血管新生或いはアポトーシス促進化合物を含み得る。噴霧（吸入）投与用の薬学的組成物は、０．０１〜２０重量％、好ましくは１重量％〜１０重量の％の１若しくはそれ以上の上述のようにリポソームに封入された本発明のｓｉＲＮＡおよび噴霧剤を含み得る。担体もまた所望するなら、例えば鼻腔内送達用レシチンを含むことができる。
【０１６３】
本発明はここで以下の限定されない実施例用いて説明される。
【実施例１】
【０１６４】
ヒト細胞におけるＶＥＧＦを標的にするＰＥＤＦおよびｓｉＲＮＡの発現
ヒトＰＥＤＦおよびｈＶＥＧＦ＃５或いはｈＶＥＧＦ＃２のいずれかのｓｉＲＮＡ（それはヒトＶＥＧＦｍＲＮＡを標的とする）或いは陰性対照ｓｉＲＮＡを発現するプラスミドを次のように構築した。ｈＶＥＧＦ＃５或いはｈＶＥＧＦ＃２を発現する相補的オリゴヌクレオチドを合成し、アニールし、ｐＳｉｌｅｎｃｅｒ  ２．０‐Ｕ６ｓｉＲＮＡ発現ベクター（Ａｍｂｉｏｎ＃７２０９）に連結した。陰性対照ヘアピンｓｉＲＮＡを発現するオリゴヌクレオチド配列もまた合成し、アニールし、前記ｐＳｉｌｅｎｃｅｒベクターに連結した。前記陰性対照ｓｉＲＮＡはランダム標的配列から成る。発現する時、これらのオリゴヌクレオチドはヘアピン構造を形成する（前記ｈＶＥＧＦ＃５標的配列、ｈＶＥＧＦ＃５ヘアピンｓｉＲＮＡをエンコードしている前記アニール化したＤＮＡ挿入断片および前記ｈＶＥＧＦ＃５ヘアピンｓｉＲＮＡの概略図については、図３を参照のこと。）。
【０１６５】
ｈＶＥＧＦ＃５ヘアピンｓｉＲＮＡをエンコードしている前記２本鎖挿入断片に用いた前記相補的オリゴヌクレオチドは；
【表１０】
2007515966.tif 000012
【０１６６】
である。
【０１６７】
ｈＶＥＧＦ＃２ヘアピンｓｉＲＮＡをエンコードしている前記２本鎖挿入断片に用いた前記相補的オリゴヌクレオチドは；
【表１１】
2007515966.tif 000013
【０１６８】
である。
【０１６９】
前記ｓｉＲＮＡヘアピン構造物を産生するプラスミド由来のＤＮＡ断片およびｐＵ６プロモーターは、制限酵素ＰｕｖＩＩによる消化によって前記ｐＳｉｌｅｎｃｅｒベクターから除去した。そのベクターのＥＧＦＰ／ＰｖｕＩＩ断片の代わりに、前記ＰｕｖＩＩ断片を別に前記ｐＣＭＳ−ＥＧＦＰベクター（ＢＤ  ＃６１０１−１）に挿入した。生じたプラスミドをｐＣＭＳ−ｐＵ６−（ｓｉＲＮＡ）と名づけた。
【０１７０】
ヒトＰＥＤＦ相補的ＤＮＡ断片（配列ＩＤ番号１７２７）をその後ｐＣＭＶプロモーターの支配下の各ｐＣＭＳ−ｐＵ６−（ｓｉＲＮＡ）プラスミド上の前記マルチクローニング部位内のＭｕｌＩおよびＳａｌＩ部位の中に挿入した。生じた前記プラスミドをｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−（ｓｉＲＮＡ）と呼び、ｐＣＭＶプロモーターのもとでヒトＰＥＤＦ相補的ＤＮＡ読み取り枠およびｐＵ６プロモーターのもとでヒトＶＥＧＦを標的とするｓｉＲＮＡヘアピンをエンコードするヌクレオチド配列を含んだ。全部で３本のプラスミドを作成した。：ｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃５；ｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２；およびｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＮＣ（高感度緑色蛍光タンパク質或いは「ＥＧＦＰ」を標的とする陰性対照ｓｉＲＮＡを発現している）
ヒト胎児由来腎臓２９３細胞（ＨＥＫ）を１晩３７℃、５％二酸化炭素雰囲気下、２４穴プレートで培養した。翌日、細胞が７０％集密になったとき、リン酸カルシウム試薬（「ＣａＰｉ」）中のｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−（ｓｉＲＮＡ）プラスミドで形質移入を行った。前記細胞への形質移入に用いた前記プラスミドの量は各々のｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃５、ｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２およびｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＮＣに対して０．５μｇ、１．０μｇ、および２．０μｇであった。他の対照はプラスミドを欠いているＣａＰｉ、２５ｎＭｈＶＥＧＦ＃２ｓｉＲＮＡおよびｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２（前記ＰＥＤＦ配列を欠いている）での細胞の偽形質移入を含んだ。
【０１７１】
形質移入４時間後、最終濃度１３０μＭデスフェリオキサミンを用いて前記ＨＥＫ細胞に酸素圧低下を誘導した。形質移入２４および４８時間後、前記上清をすべての培養ディッシュウェルから除去し、製造業者の使用法に従ってヒトＶＥＧＦ  ＥＬＩＳＡ（Ｒ  &  Ｄ  ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ、ＭＮ）およびヒトＰＥＤＦ  ＥＬＩＳＡ（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ、Ｔｅｍｅｃｕｌａ、ＣＡ）を実行した。ＥＬＩＳＡの結果をＡＤ３４０プレートリーダー（Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｃｏｕｌｔｅｒ）で読みとり、図４において報告した。
【０１７２】
図４において示したように、ヒトＶＥＧＦは前記デスフェリオキサミン誘導酸素圧低下によって上方制御された。前記酸素圧低下で誘導されたヒトＶＥＧＦタンパク質含量の増加は用量依存的にプラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２の形質移入した細胞から非常に減少した。陽性対照である前記ｈＶＥＧＦ＃２ｓｉＲＮＡおよびｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２は前記ＨＥＫ２９３細胞においてｈＶＥＧＦ発現の抑制を示した。ところが一方、陰性対照プラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＮＣの形質移入或いはプラスミドなしの偽形質移入はｈＶＥＧＦ含量に関して影響がなかった。この実験において、プラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃５はＶＥＧＦ発現の穏やかな抑制を示した。
【０１７３】
ＨＥＫ２９３細胞において、プラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｓｉＲＮＡｓ（ｈＶＥＧＦ＃５およびｈＶＥＧＦ＃２ｓｉＲＮＡ）は用量および時間依存的にヒトＰＥＤＦタンパク質を発現していた（図５参照）。偽形質移入或いは対照プラスミドで形質移入した細胞由来の上清においてはヒトＰＥＤＦを検出しなかった。
【０１７４】
上述のように形質移入後の細胞由来の前記上清を除去した後、細胞毒性検定を以下のように実行した。１０％ＡｌａｍａｒＢｌｕｅ（Ｂｉｏｓｏｕｃｅ、Ｃａｍａｒｉｌｌｏ、ＣＡ）を含んだ完全成長培地を各ウェルに加え、細胞を３時間、３７℃、５％二酸化炭素雰囲気下で培養した。細胞増殖を細胞代謝活性の結果ＡｌａｍａｒＢｌｕｅを含んでいる培地の前記色変化を検出することによって測定した。細胞毒性検定結果はＡＤ３４０プレートリーダー（Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｃｏｕｌｔｅｒ）で読みとり、図６で報告した。図６において示したように、デスフェリオキサミン媒介酸素圧低下はＨＥＫ２９３細胞に軽度な細胞毒性を引き起こした。偽形質移入或いは陰性対照プラスミドで形質移入したＨＥＫ細胞と比較すると、前記機能的なプラスミドでの形質移入は明白な細胞毒性がないことを示した。
【０１７５】
細胞毒性検定の後、各ウェルにおける前記成長培地を完全に除去した。前記ＨＥＫ２９３細胞からのＲＮＡの抽出は製造業者の使用法に従ってＲＮＡｑｕｅｏｕｓ  ＲＮＡ分離キット（Ａｍｂｉｏｎ、Ａｕｓｔｉｎ、ＴＸ）を用いて実行した。ＨＥＫ２９３細胞におけるヒトＶＥＧＦおよびＰＥＤＦｍＲＮＡ含量を逆転写ポリメラーゼ連鎖反応法（ＲＴ−ＰＣＲ）によって測定した。ヒトグリセルアルデヒド３リン酸脱水素酵素（ＧＡＰＤＨ）ｍＲＮＡの発現を対照として用いた。
【０１７６】
ＨＥＫ２９３細胞におけるヒトＶＥＧＦの酸素圧低下で誘導された上方制御は転写レベルで用量依存的にｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２プラスミドによって非常に抑制され、そしてそれはＲＴ−ＰＣＲによって測定した（図７参照）。前記陰性対照ｓｉＲＮＡで形質移入したＨＥＫ２９３細胞、或いは偽形質移入における前記ＶＥＧＦｍＲＮＡ含量は影響がなかった。陰性対照プラスミドで形質移入した前記細胞は非常に弱いＰＥＤＦｍＲＮＡシグナルを示し、それは前記内在性ＰＥＤＦ遺伝子由来である。これらの結果はＨＥＫ２９３細胞におけるｈＶＥＧＦ＃２ｓｉＲＮＡの前記発現はＶＥＧＦｍＲＮＡ発現を抑制することを示し、この抑制は前記タンパク質含量でのＶＥＧＦの抑制と相関した。
【実施例２】
【０１７７】
ヒトの細胞におけるアンジオスタチンおよびＨＩＦ−１アルファを標的にするｓｉＲＮＡの発現
上述の実施例１と同様にヘアピンｓｉＲＮＡ或いはＥＧＦＰを標的にする陰性対照ｓｉＲＮＡのいずれかを発現するために、２つの相補的オリゴヌクレオチドを合成し、アニールし、ｐＳｉｌｅｎｃｅｒ  ２．０‐Ｕ６ｓｉＲＮＡ発現ベクター（Ａｍｂｉｏｎ＃７２０９）に連結した。前記相補的オリゴヌクレオチドは前記ＨＩＦ１−ａｌｐｈａ  ｓｉＲＮＡヘアピンをエンコードする前記２本鎖ＤＮＡ挿入断片を作成するために用いた。
【０１７８】
【表１２】
2007515966.tif 000014
【０１７９】
前記ｓｉＲＮＡヘアピン構造物をエンコードしている前記ＤＮＡ断片をＰｖｕＩＩを使用して前記ｐＵ６プロモーターとともに前記ｐＳｉｌｅｎｃｅｒベクターから切除して、前記ＥＧＦＰ／ＰｖｕＩＩ断片の代わりに前記ｐＣＭＳ−ＥＧＦＰベクターに挿入した。生じた前記プラスミドをｐＣＭＳ−ｐＵ６−（ｓｉＲＮＡ）と名づけた。ヒトアンジオスタチン相補的ＤＮＡ断片（前記アミノ末端断片のヒトプラスミノーゲンまでの３８４残基；ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ．１７２６）はそれから前記ｐＣＭＶプロモーターの支配下の前記ｐＣＭＳ−ｐＵ６−（ｓｉＲＮＡ）プラスミド上の前記マルチクローニング部位（ＭＣＳ）内の前記ＭｕｌＩおよびＳａｌＩ部位の中に挿入した。生じた前記プラスミドをｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−（ｓｉＲＮＡ）と呼び、ｐＣＭＶプロモーターのもとでヒトアンジオスタチン相補的ＤＮＡ読み取り枠およびｐＵ６プロモーターのもとでヒトＨＩＦ１アルファ或いはＥＧＦＰを標的とするｓｉＲＮＡヘアピンを含んだ。全部で２本のプラスミドを作成した。：ｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１およびｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣ（高感度ＥＧＦＰを標的とする陰性対照ｓｉＲＮＡを発現している）。
【０１８０】
ＨＮＫ２９３細胞を培養し、実施例１で述べたように０．５μｇ、１μｇ、および２μｇのｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１で形質移入した。前記形質移入対照は実施例１よりｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣ、ｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１（アンジオスタチンを発現していない）、ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１ｓｉＲＮＡ、プラスミドを含まないＣａＰｉ形質移入試薬での偽形質移入を用いた。ＨＩＦ１−ａｌｐｈａタンパク質およびｍＲＮＡ含量の測定および細胞毒性検定を実施例１のように行った。
【０１８１】
図８で示したように、ヒトＶＥＧＦを前記デスフェリオキサミン媒介酸素圧低下によって上方制御した。前記酸素圧低下で誘導されたｈＶＥＧＦタンパク質含量の増加は用量依存的にｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１プラスミドで形質移入した細胞から非常に減少した。前記陽性対照であるｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１ｓｉＲＮＡおよびプラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１はｈＶＥＧＦ発現の有意な抑制を示した。ところが一方、陰性対照プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣの形質移入或いはプラスミドなしの偽形質移入はｈＶＥＧＦ含量に関して影響がなかった。
【０１８２】
プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１或いはおよびｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣはヒトアンジオスタチンタンパク質を用量および時間依存的に発現していた（図９）。アンジオスタチンなしの陰性対照プラスミド（中間型プラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１或いはｐＣＭＳ−ｐＵ６−ＮＣ）で形質移入した細胞由来の上清でヒトアンジオスタチンタンパク質を検出しなかった。
【０１８３】
ｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１或いはｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣを形質移入したＨＥＫ２９３細胞におけるヒトアンジオスタチンｍＲＮＡ含量は前記プラスミドの量に応じて変化した（図１０）。ヒトアンジオスタチンｍＲＮＡをアンジオスタチンなしの陰性対照プラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１或いはｐＣＭＳ−ｐＵ６−ＮＣを形質移入したＨＥＫ２９３細胞において検出しなかった。
【０１８４】
デスフェリオキサミン媒介酸素圧低下はＨＥＫ２９３細胞に軽度な細胞毒性を引き起こした。（図１１）偽形質移入或いは陰性対照プラスミドで形質移入した細胞と比較すると、プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１およびｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣのＨＥＫ２９３細胞への形質移入は明白な細胞毒性がないことを示した。
【実施例３】
【０１８５】
ＲＮＡｉ化合物を発現するアデノ随伴ウイルスベクターの構築
前記抗血管新生化合物（ＰＥＤＦ或いはアンジオスタチン）および前記ｓｉＲＮＡをエンコードする前記ヌクレオチド配列をプラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＨＶＥＧＦ＃５；ｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２およびｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１−ａｌｐｈａ＃１１から切除して、市販のアデノ随伴ウイルスプラスミド（ＡＡＶ）のｉｎｖｅｒｔｅｄ  ｔｅｒｍｉｎａｌ  ｒｅｐｅａｔｓの間に挿入する。組換え型ＡＡＶベクターは例えば、Ｍａｔｓｕｓｈｉｔａ  Ｔ、１９９８、Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．５、９３８−９４５に記述されている前記３プラスミド同時形質移入システムを用いて調整し、これはこの参照により本願明細書に組み込まれる。一時的に前記ＡＡＶベクターを２つのヘルパープラスミド（Ａｖｉｇｅｎ、Ａｌａｍｅｄａ、ＣＡ）でＨＥＫ２９３細胞の中にＣａＰｉ誘発法によって同時形質移入する。１つのヘルパープラスミドｐＬａｄｅｎｏ５はＡＡＶベクターの複製を媒介する前記アデノウイルスのＶＡ、Ｅ２ＡおよびＥ４領域を含む。もう１つのヘルパープラスミドｐＨＬＰ１９は前記ＡＡＶレプリコン（ｒｅｐ）およびｃａｐ遺伝子を持つ。細胞溶解物を前記形質移入３日後３度の凍結融解の繰り返しによって作成する。組換え型ＡＡＶベクターは塩化セシウム遠心沈殿法によって精製し、ウイルス力価を前記ＤＮＡ含量のドットブロット法によって決定する。前記組換え型ＡＡＶベクターは標的細胞に感染し、前記ＰＥＤＦ或いはアンジオスタチンおよび前記ＰＥＤＦ或いはアンジオスタチンおよび前記適切なｓｉＲＮＡを発現すると思われる。前記標的細胞における前記血管新生促進遺伝子或いは抗血管新生遺伝子の前記タンパク質およびｍＲＮＡの含量は実施例１および２において前記ＨＥＫ２９３細胞に関する上述の報告のように増加或いは減少すると思われる。
【図面の簡単な説明】
【０１８６】
【図１Ａ】図１Ａ〜１Ｃは、ＲＮＡｉ化合物を発現する本発明のプラスミドを作成するのに使用できるベクターの例を示すマップである。図１Ａは、マルチクローニング部位（ＭＣＳ）をＳｇｒＡＩ、ＳａｌＩ、ＢａｍＨＩ、ＰｓｔＩ、ＮｃｏＩ、およびＮｈｅＩ制限部位と共に有するｐＢｌａｓｔベクターである。
【図１Ｂ】図１Ａ〜１Ｃは、ＲＮＡｉ化合物を発現する本発明のプラスミドを作成するのに使用できるベクターの例を示すマップである。図１Ｂは、ＭＣＳをＳｇｒＡＩ、ＳａｌＩ、ＢａｍＨＩ、ＰｓｔＩ、ＮｃｏＩ、およびＮｈｅＩ制限部位と共に有するｐＯＲＦベクターである。
【図１Ｃ】図１Ａ〜１Ｃは、ＲＮＡｉ化合物を発現する本発明のプラスミドを作成するのに使用できるベクターの例を示すマップである。図１Ｃは、ＭＣＳをＳｇｒＡＩ、ＳａｌＩ、ＢａｍＨＩ、Ｅｃｏ４７ＩＩＩ、ＰｓｔＩ、ＮｃｏＩ、およびＮｈｅＩ制限部位と共に有するｐＯＲＦ９ベクターである。各ベクターは、ＭＣＳに挿入される、発現される核酸配列（図中「インサート（ＩＮＳＥＲＴ）」で示す）と共に図示している。
【図２】図２は、「ｐＡＡＶｃｏｍｂｏ」と呼ばれる本発明の組み合わせ発現ベクター（ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｖｅｃｔｏｒ）の模式図である。２つのアデノ随伴ウイルスの末端逆位繰り返し配列を「ＡＡＶ  ＩＴＲ」として図示している。図中の太矢印は、下流カセットを有する遺伝子を発現するためのプロモーターを示す。「治療用ノックダウンカセット（ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ｋｎｏｃｋｄｏｗｎ  ｃａｓｓｅｔｔｅ）」は、発現される１個以上の遺伝子をコードするための核酸配列を示す。ＲＮＡｉノックダウンカセットは、発現される１個以上のｄｓＲＮＡ分子のセンス鎖およびアンチセンス鎖をコードする核酸配列を示す。
【図３】図３は、ＨＶＥＧＦ＃５  ｓｉＲＮＡ標的配列、ＨＶＥＧＦ＃５ヘアピンｓｉＲＮＡを発現するプラスミドを作成するために使用される二本鎖ＤＮＡ挿入断片、および二本鎖ＤＮＡ挿入断片から転写されるＨＶＥＧＦ＃５  ヘアピンｓｉＲＮＡの構造の模式図である。
【図４】図４は、プラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２が、２９３細胞中低酸素状態により誘導されたヒトＶＥＧＦの増加を用量依存的に抑制したことを示すヒストグラムである。プラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＨＶＥＧＦ＃５、ｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２，およびｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＮＣ（０．５μｇ、１μｇ、および２μｇ）あるいは対照試料（ｈＶＥＧＦ＃２  ｓｉＲＮＡ，プラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２、またはトランスフェクション試薬のみ）を連続投与で２９３細胞に形質移入した。ＶＥＧＦ濃度は、低酸素状態誘導後２４時間後に、ＥＬＩＳＡ法により細胞上清中で測定した。
【図５】図５は、プラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＨＶＥＧＦ＃５およびｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＨＶＥＧＦ＃２が、用量および時間依存的にヒトＰＥＤＦタンパク質をＨＥＫ２９３細胞中に発現したことを示すヒストグラムである。プラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ＨＶＥＧＦ＃５、およびｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｈＶＥＧＦ＃２（０．５μｇ、１μｇ、および２μｇ）、あるいは対照試料（プラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｓｉＲＮＡ）を連続投与でＨＥＫ２９３細胞に形質移入した。ヒトＰＥＤＦタンパク質濃度は、低酸素状態誘導２４時間および４８時間後、ＥＬＩＳＡ法にて細胞上清中で測定した。
【図６】図６は、図中に示すｓｉＲＮＡあるいはプラスミドで形質移入したＨＥＫ２９３細胞の毒性試験の結果を示すヒストグラムである。細胞毒性試験は、形質移入および低酸素状態誘導４８時間後に細胞増殖をアラマーブルー（ＡｌａｍａｒＢｌｕｅ）を用いて測定した。
【図７】図７は、プラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｓｉＲＮＡが、転写レベルで用量依存的にヒトＰＥＤＦを発現したことを示すアガロースゲルの写真である。異なる量のプラスミドｐＣＭＳ−ＰＥＤＦ−ｐＵ６−ｓｉＲＮＡ（０．５μｇ、１μｇ、および２μｇ）あるいは負の対照プラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｓｉＲＮＡで形質移入したＨＥＫ２９３細胞由来のＲＮＡを抽出し、ヒトＰＥＤＦおよび対照（ヒトＧＡＰＤＨ）ｍＲＮＡを検出するために、ＲＴ−ＰＣＲ法を実施した。
【図８】図８は、プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１アルファ＃１１が、用量依存的に、ＨＥＫ２９３細胞中で低酸素状態で誘導されたヒトＶＥＧＦの増加を抑制したことを示すヒストグラムである。プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１アルファ＃１１および負の対照プラスミドプラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣ（各０．５μｇ、１μｇ、および２μｇ）、あるいは対照試料（ｈＨＩＦアルファ＃１１、ｓｉＲＮＡ、プラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＨＩＦアルファ＃１１、あるいはトランスフェクション試薬のみ）を連続投与でＨＥＫ２９３細胞に形質移入した。ＶＥＧＦタンパク質濃度は、低酸素状態導入４８時間後ＥＬＩＳＡ法にて細胞上清中で測定した。
【図９】図９は、プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１アルファ＃１１および負の対照プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣが、用量および時間依存的に、ＨＥＫ２９３細胞中でタンパク質、ヒトアンジオスタチンを発現したことを示すヒストグラムである。プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１アルファ＃１１、およびｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣ（各０．５μｇ、１μｇ、および２μｇ）あるいは対照試料（プラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＨＩＦアルファ＃１１あるいはｐＣＭＳ−ｐＵ６−ＮＣ）を連続投与でＨＥＫ２９３細胞に形質移入した。タンパク質、ヒトアンギオスタチン濃度は、低酸素状態導入２４時間および４８時間後ＥＬＩＳＡ法にて細胞上清中で測定した。
【図１０】図１０は、プラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１アルファ＃１１と負の対照プラスミドプラスミドｐＣＭＳ−Ａｎｇｓｔ−ｐＵ６−ＮＣが転写レベルで用量依存的にヒトのアンギオスタチンを発現したことを示す、アガロースゲル電気泳動の写真である。これらのプラスミドあるいは負の対照プラスミドｐＣＭＳ−ｐＵ６−ｈＨＩＦ１アルファ＃１１あるいはｐＣＭＳ−ｐＵ６−ＮＣを０．５μｇ、１μｇ、および２μｇの異なる用量で形質移入されたＨＥＫ２９３細胞由来のＲＮＡを抽出し、ヒトアンギオスタチンｍＲＮＡを検出するためＲＴ−ＰＣＲ法を実施した。
【図１１】図１１は、図中に示すｓｉＲＮＡあるいはプラスミドで形質移入されたＨＥＫ２９３細胞の細胞毒性試験結果を示すヒストグラムである。細胞毒性試験は形質移入および低酸素状態誘導４８時間後細胞増殖をアラマーブルーを用いて測定して行った。
【図１Ａ】
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【図１Ｂ】
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【図１Ｃ】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【国際調査報告】
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