(57)【要約】【課題】本発明は、ＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有する、抗ＴＲＰＶ２抗体を提供することを課題とする。本発明はさらに、当該抗ＴＲＰＶ２抗体を有効成分として含む、ＴＲＰＶ２阻害剤を提供することを課題とする。【解決手段】ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインもしくはＴＲＰＶ２を発現する細胞を抗原として使用して作製した、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインを認識し、かつＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有する、抗ＴＲＰＶ２抗体による。【選択図】図３
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインをエピトープとして認識し、ＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有する、抗ＴＲＰＶ２抗体。
【請求項２】
ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインのうち、第５膜貫通領域と第６膜貫通領域との間のアミノ酸配列から選択される少なくとも５個以上のアミノ酸配列を含む領域をエピトープとして認識する、請求項１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
【請求項３】
ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインのうち、TTVTEKPTLGQEEEPVPYGGIL（配列番号１）のアミノ酸配列から選択される少なくとも５個以上のアミノ酸配列を含む領域、または前記領域のアミノ酸配列において、１〜２個のアミノ酸が置換、欠失、付加、挿入若しくは修飾されたいずれかのアミノ酸配列からなる領域を、エピトープとして認識する、請求項１または２に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
【請求項４】
ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインのうち、GQEEEPVPY（配列番号２）からなる領域を、エピトープとして認識する、請求項１〜３のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
【請求項５】
ポリクローナル抗体である、請求項１〜４のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
【請求項６】
モノクローナル抗体である、請求項１〜４のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体を含む、ＴＲＰＶ２阻害剤。
【請求項８】
請求項１〜６のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体を含む、筋細胞変性抑制剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、Ｃａ２＋チャネルであるＴＲＰＶ２(transient receptor potential cation channel, subfamily V, member 2)の、細胞外ドメインをエピトープとして認識し、ＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有する、抗ＴＲＰＶ２抗体に関する。さらには、当該抗ＴＲＰＶ２抗体を含むＴＲＰＶ２阻害剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
Trp (transient receptor potential)遺伝子産物スーパーファミリーは、ＴＲＰＣ（７種）、ＴＲＰＶ（６種）、ＴＲＰＭ（８種）の３ファミリーに分類され、いずれも形質膜を６回貫通するイオンチャネルであり、主としてＣａ２＋を通過させる。細胞膜に存在する多くのイオンチャネルはそれぞれに異なったチャネル特性を有し、これらに特異的に反応する薬物をスクリーニングするためには、それらに適合したアッセイ系を使用する必要がある。これは、細胞応答が比較的限定されるＧタンパク質共役型受容体（ＧＰＣＲ）とは大きく異なる点である。
【０００３】
ＴＲＰＶ２はストレッチ活性化Ｃａ２＋チャネルであり（非特許文献１−３）、正常組織では細胞内膜系に存在するが、筋ジストロフィー、心筋症などの筋変性疾患に伴って細胞膜に移行し、活性化されて細胞内への異常なＣａ２＋流入に寄与する（非特許文献２、４）。ＴＲＰＶ２を特異的に阻害する薬剤は変性を起こした筋肉のみに作用し、筋変性を軽減すると考えられ、筋変性疾患の治療・症状緩和効果がある可能性があり、開発が期待されている。
【０００４】
従来のストレッチ感受性Ｃａ２＋チャネルのブロッカーとして用いられているガドリニウムは、Ｃａ２＋チャネル全般に作用すると考えられ、ルテニウムレッドは、ＴＲＰＶファミリー（ＴＲＰＶ１〜ＴＲＰＶ６）全般に作用すると考えられ、いずれも非特異的な薬物である（非特許文献５、６）。ＴＲＰＶ２を特異的に阻害し得る低分子化合物が、特許文献１において開示されている。
【０００５】
ＴＲＰＶ２に反応性を有する抗体として抗ラットＴＲＰＶ２ポリクローナル抗体が市販されている（KM019、製造元：株式会社トランスジェニック）。かかる抗体は、ＴＲＰＶ２のＣ末端の部分ペプチドを免疫原としたものであり、その用途は、免疫組織化学的な解析であり、ＴＲＰＶ２の活性阻害については開示がない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２００９−１４９５３４号公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Circulation Research; 93: 829-838 (2003)
【非特許文献２】J. Cell Biology; 161(5): 957-967 (2003)
【非特許文献３】J. Endocrinology; 191: 515-523 (2006)
【非特許文献４】Hum Mol Genet.; 18(5): 824-834 (2009)
【非特許文献５】J. Neuroscience; 28(24): 6231-6238 (2008)
【非特許文献６】Diabetologia; 51: 2252-2262 (2008)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインをエピトープとして認識し、ＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有する、抗ＴＲＰＶ２抗体を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ね、ＴＲＰＶ２の特定の部分ペプチドまたはＴＲＰＶ２を発現する細胞を免疫原として抗体を作製したところ、当該抗体がＴＲＰＶ２を特異的に阻害し得ることを確認し、本発明を完成した。
【００１０】
すなわち、本発明は以下よりなる。
１．ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインをエピトープとして認識し、ＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有する、抗ＴＲＰＶ２抗体。
２．ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインのうち、第５膜貫通領域と第６膜貫通領域との間のアミノ酸配列から選択される少なくとも５個以上のアミノ酸配列を含む領域をエピトープとして認識する、前項１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
３．ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインのうち、TTVTEKPTLGQEEEPVPYGGIL（配列番号１）のアミノ酸配列から選択される少なくとも５個以上のアミノ酸配列を含む領域、または前記領域のアミノ酸配列において、１〜２個のアミノ酸が置換、欠失、付加、挿入若しくは修飾されたいずれかのアミノ酸配列からなる領域を、エピトープとして認識する、前項１または２に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
４．ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインのうち、GQEEEPVPY（配列番号２）からなる領域を、エピトープとして認識する、前項１〜３のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
５．ポリクローナル抗体である、前項１〜４のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
６．モノクローナル抗体である、前項１〜４のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体。
７．前項１〜６のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体を含む、ＴＲＰＶ２阻害剤。
８．前項１〜６のいずれか１に記載の抗ＴＲＰＶ２抗体を含む、筋細胞変性抑制剤。
【発明の効果】
【００１１】
本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、Trpの他のファミリーのタンパク質の活性には影響を及ぼさず、特異的にＴＲＰＶ２のＣａ２＋流入活性を阻害することが可能である。さらに本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインをエピトープとするため、生細胞の細胞膜上に存在するＴＲＰＶ２に反応することが可能である。また本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、筋細胞の変性を抑制する作用を有する。本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、病態時において細胞膜上のＴＲＰＶ２の活性を阻害することが可能と考えられ、移植しか治療手段がない拡張型心筋症に対する有力な治療薬候補となりうる。また、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、ＴＲＰＶ２の機能解析や筋細胞変性のメカニズム解析等における実験ツールとして用いることが期待される。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】本発明の抗ＴＲＰＶ２モノクローナル抗体の反応性を示す図である。（実施例１）
【図２】本発明の抗ＴＲＰＶ２ポリクローナル抗体の反応性を示す図である。（実施例２）
【図３】本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体のＴＲＰＶ２活性阻害作用を示す図である。（実験例１）
【図４】本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体の筋細胞におけるＴＲＰＶ２活性阻害作用を示す図である。（実験例２）
【図５】本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体の筋細胞変性に対する抑制作用を示す図である。（実験例３）
【図６】本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体のエピトープマッピングの解析結果を示す図である。（実験例４）
【発明を実施するための形態】
【００１３】
本発明は、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインをエピトープとして認識し、ＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有する抗体に関する。
【００１４】
ＴＲＰＶ２の遺伝子は、ヒトＴＲＰＶ２としてGenbank accession No.NM_016113、マウスＴＲＰＶ２としてGenbank accession No.NM_011706及びラットＴＲＰＶ２としてGenbank accession No. NM_017207が報告されている。ヒトＴＲＰＶ２のアミノ酸配列を配列表の配列番号３、マウスＴＲＰＶ２のアミノ酸配列を配列表の配列番号４、ラットＴＲＰＶ２のアミノ酸配列を、配列表の配列番号５に示す。ＴＲＰＶ２は、Trpファミリーの他のタンパク質と同様に、６回膜貫通領域を持つことが構造上の特徴として挙げられる。
【００１５】
本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、細胞外ドメインのアミノ酸配列から選択される、少なくとも５個以上のアミノ酸配列からなる領域をエピトープとして認識するものである。ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインとは、細胞膜上に存在するＴＲＰＶ２の細胞膜よりも実質的に外側に存在する部分である。ＴＲＰＶ２の細胞ドメインのアミノ酸配列は、例えばヒトＴＲＰＶ２では配列番号３の409〜434、496〜500、および／または554〜619位、マウスＴＲＰＶ２では配列番号４の406〜431、493〜497、および／または551〜616位、ラットＴＲＰＶ２では配列番号５の411〜436、498〜502、および／または556〜621位であるが、これらのアミノ酸配列において１〜２個のアミノ酸が置換、欠失、付加、挿入若しくは修飾されたアミノ酸配列であってもよい。
【００１６】
好ましくは、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインのうち、第５膜貫通領域と第６膜貫通領域との間のアミノ酸配列から選択される、少なくとも５個以上のアミノ酸配列からなる領域をエピトープとして認識するものである。第５膜貫通領域と第６膜貫通領域とは、形質膜を貫通する領域のうちＮ末端側から数えて５番目および６番目の領域を意味し、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体はこれらの領域に挟まれた親水性の高いアミノ酸配列から選択される領域をエピトープとして認識する。ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインのうち、第５膜貫通領域と第６膜貫通領域との間のアミノ酸配列とは具体的には、ヒトＴＲＰＶ２では配列番号３の554〜619位、マウスＴＲＰＶ２では配列番号４の551〜616位、ラットＴＲＰＶ２では配列番号５の556〜621位であるが、これらのアミノ酸配列において１〜２個のアミノ酸が置換、欠失、付加、挿入若しくは修飾されたアミノ酸配列であってもよい。
【００１７】
より好ましくは、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、マウスＴＲＰＶ２（配列番号４）の568〜589位のアミノ酸配列（TTVTEKPTLGQEEEPVPYGGIL：配列番号１）および当該アミノ酸配列において１〜２個のアミノ酸が置換、欠失、付加、挿入若しくは修飾されたアミノ酸配列から選択される、少なくとも５個以上のアミノ酸配列からなる領域をエピトープとして認識するものである。
【００１８】
さらに好ましくは、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、マウスＴＲＰＶ２（配列番号４）の577〜585位のアミノ酸配列（GQEEEPVPY：配列番号２）のアミノ酸配列からなる領域をエピトープとして認識するものである。
【００１９】
本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、ＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有するものである。ＴＲＰＶ２は、ストレッチ活性化Ｃａ２＋チャネルであり、正常組織では細胞内膜系に存在するが、筋ジストロフィー、心筋症などの筋変性疾患に伴って細胞膜に移行し、活性化され、細胞内への異常なＣａ２＋流入に寄与する。ＴＲＰＶ２の活性とは、細胞内へＣａ２＋を流入させることを意味し、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、細胞外ドメインをエピトープとして認識するため、生細胞の細胞膜上に存在するＴＲＰＶ２を認識して、ＴＲＰＶ２の活性を阻害することが可能であると考えられる。また本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、他のTrpファミリーのタンパク質の活性には実質的に影響を及ぼさず、ＴＲＰＶ２の活性を特異的に阻害する機能を有するものである。
【００２０】
本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、モノクローナル抗体であってもポリクローナル抗体であってもよい。本発明の抗体は、ヒトを含む哺乳動物由来であり、例えばヒト型、マウス型、ラット型、ハムスター型、ウサギ型、ヤギ型、又はウマ型のものが例示される。また本発明の抗体は、IgGに限定されるものではなく、IgMなどでもよい。
【００２１】
本発明の抗ＴＲＰＶ２モノクローナル抗体の製造方法は、自体公知の方法、又は今後開発されるあらゆる方法を採用することができる。また、特定の抗原に対してヒト型抗体を作製するためには種々の工夫が必要である。例えば、Sato, K. et al、Cancer Res., 53, 851-856, 1993や特開２００８−１６１１９８号公報を参照することができる。ヒト型抗体のタイプとしては、特に限定されないが、Fab型であってもインタクトタイプであってもよい。抗体活性を効果的に発揮させるためには、インタクトタイプの抗体が望ましい。インタクトタイプの抗体は、特に限定されないが、例えば抗体の相補鎖決定領域(complementarity determinig region：CDR)はもとの動物種に由来し、定常領域(C領域)は適当なヒトに由来するキメラ抗体とすることができる。CDR領域はアミノ酸置換が頻繁に起こるので、抗原性の観点からはヒト由来CDRをもつヒト抗体と免疫動物種由来CDRを有していてもよい。
【００２２】
本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体を作製するための抗原は、ＴＲＰＶ２の全長タンパク質またはペプチド断片であっても、ＴＲＰＶ２の全長タンパク質もしくはペプチド断片を発現する細胞であってもよく特に限定されない。抗ＴＲＰＶ２モノクローナル抗体の作製には、ＴＲＰＶ２を発現する細胞（ＴＲＰＶ２発現用細胞）を用いることが好ましい。前記ＴＲＰＶ２を発現する細胞は、ＴＲＰＶ２を細胞膜上に発現するものであればいかなるものであってもよいが、ＴＲＰＶ２を、哺乳動物細胞（例えば、ヒト、サル、ラット、マウス、ハムスターなどから採取した細胞）にて発現させたものである。当該哺乳動物細胞としては例えば、ＨＥＫ２９３、ＣＯＳ７、ＣＨＯ−Ｋ１、ＮＩＨ３Ｔ３、Ｂａｌｂ３Ｔ３，ＦＭ３Ａ、Ｌ９２９、ＳＰ２／０、Ｐ３Ｕ１、Ｂ１６、Ｐ３８８などが挙げられる。また、哺乳動物細胞にて発現させるＴＲＰＶ２は、全長タンパク質であることが好ましい。本発明においては、ＨＥＫ２９３細胞にてＴＲＰＶ２の全長タンパク質を発現させたＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞を用いることが好ましい。本発明の抗体は、抗原としてＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞を、好ましくはアジュバントと共に、哺乳動物に免疫し、免疫した動物の血清などを採取することにより得ることができる。また、モノクローナル抗体および該モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、免疫したヒト又は動物由来のＢリンパ球と各種骨髄腫細胞とを融合することにより、具体的には以下に記載する方法で作製することができる。
【００２３】
本発明のモノクローナル抗体産生において、前記抗原を、例えばリン酸緩衝液（PBS）などの適当な緩衝液中に溶解あるいは懸濁したものを抗原液として使用することができる。抗原液は、通常抗原物質を50〜500μg/mlもしくは1x106〜1x109cell/ml程度含む濃度に調製すればよい。また、ペプチド抗原など、それだけでは抗原性が低い場合は、アルブミンやキーホールリンペットヘモシアニン（KLH）などの適当なキャリアータンパク質に架橋して用いることができる。当該抗原で免疫感作する動物は、ヒト、マウス、ラット、ハムスター、ウマ、ヤギ、又はウサギなどの温血動物が例示される。
【００２４】
このとき、被免疫動物の抗原への応答性を高めるため、当該抗原溶液をアジュバントと混合して投与することができる。ここで使用可能なアジュバントは、フロイント完全アジュバント(FCA)、フロイント不完全アジュバント(FIA)、Ribi(MPL)、Ribi(TDM)、Ribi(MPL+TDM)、百日咳ワクチン(Boredetella pertussis vaccine)、ムラミルジペプチド(MDP)、アルミニウムアジュバント(ALUM)、およびこれらの組合せが例示されるが、初回免疫時にFCA、追加免疫時にFIAやRibiアジュバントを使用する組合せを用いてもよい。
【００２５】
免疫方法は、使用する抗原の種類やアジュバント混合の有無などにより、注射部位、スケジュールなどを適宜変化させることができるが、例えば、被免疫動物としてマウスを用いる場合は免疫疾患マウス（Balb/c nu-nuマウス）に、アジュバント混合抗原液0.05〜1 mL（抗原物質10〜200μg、もしくは1x106〜1x107cell）を腹腔内、皮下、筋肉内または（尾）静脈内に注射し、初回免疫から約４〜２１日毎に１〜４回追加免疫を行い、さらに約１〜４週間後に最終免疫を行う。抗原量を多くして腹腔内注射することで、当該抗原溶液をアジュバントを使用せずに投与することもできる。抗体価は追加免疫の約５〜１０日後に採血して調べる。抗体価の測定は、後述の抗体価アッセイに準じ、通常行われる方法で行うことができる。最終免疫より約３〜５日後、該免疫動物から脾細胞を分離して抗体産生細胞を得る。
【００２６】
本発明の抗ＴＲＰＶ２モノクローナル抗体は、例えばケーラーとミルシュタインの方法（Kohler and Milstein, Nature 256, 495-497, 1975）にしたがって作製することができる。骨髄腫細胞として、マウス、ラット、ヒトなど由来のものが使用され、例えばマウスミエローマP3X63-Ag8、P3X63-Ag8-U1、P3NS1-Ag4、SP2/o-Ag14、P3X63-Ag8・653などの株化骨髄腫細胞が例示される。骨髄腫細胞には免疫グロブリン軽鎖を産生しているものがあり、これを融合対象として用いると、抗体産生細胞が産生する免疫グロブリン重鎖とこの軽鎖とがランダムに結合することがあるので、特に免疫グロブリン軽鎖を産生しない骨髄腫細胞、例えばP3X63-Ag8・653やSP2/o-Ag14などを用いることが好ましい。抗体産生細胞と骨髄腫細胞とは、同種動物、特に同系統の動物由来であることが好ましい。骨髄腫細胞の保存方法は自体公知の手法に従って行えばよく、例えばウマ、ウサギもしくはウシ胎児血清を添加した一般的な培地で継代培養したものについて凍結により保存される。また細胞融合には対数増殖期の細胞を用いるのが好ましい。
【００２７】
抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを融合させてハイブリドーマを作製する方法は、ポリエチレングリコール（PEG）を用いる方法、センダイウイルスを用いる方法、電気融合装置を用いる方法などが例示される。例えば、約30〜60％のPEGを含む適当な培地または緩衝液中に脾細胞と骨髄腫細胞を1〜10：1、好ましくは5〜10：1の混合比で懸濁し、温度約25〜37℃、pH6〜8の条件下で、約30秒〜3分間程度反応させればよい。反応終了後、細胞を洗浄しPEG溶液を除いて培地に再懸濁し、マイクロタイタープレート中に播種して培養を続ける。
【００２８】
融合操作後の細胞は選択培地で培養して、ハイブリドーマの選択を行う。選択培地は、親細胞株を死滅させ、融合細胞のみが増殖しえる培地であり、通常ヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジン（HAT）培地が使用される。ハイブリドーマの選択は、通常融合操作の１〜７日後に、培地の一部、好ましくは約半量を選択培地と交換し、さらに２、３日毎に同様の培地交換を繰り返しながら培養することにより行う。顕微鏡観察によりハイブリドーマのコロニーが生育しているウェルを確認する。
【００２９】
本発明の抗ＴＲＰＶ２モノクローナル抗体は、より具体的には以下の方法により作製することができる。ＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞を、免疫疾患マウスに接種し、2〜4週間後に、脾臓を採取して脾臓に含まれる抗体産生細胞を骨髄腫細胞と融合させることにより、本発明の抗体を産生するハイブリドーマを作製することができる。
【００３０】
生育しているハイブリドーマが所望の抗体を産生しているかどうかを知るには、培養上清を採取して抗体価アッセイを自体公知の方法により行えばよい。具体的には、ＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞もしくはＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞由来のタンパク質を抗原とし、IC(免疫細胞化学), IF(免疫蛍光法), IHC(免疫組織化学) 染色法により、結合活性を有する抗体産生細胞を選別することができる。
【００３１】
得られた抗体が、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインを認識するかについては、例えば次のような手法により確認することができる。上記のハイブリドーマ培養上清を、ＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞集団と、ＴＲＰＶ２を発現していないＨＥＫ細胞集団と反応させた後、標識２次抗体と反応させて、フローサイトメータで測定する。抗体と反応させていないＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞の強度より高い強度で、かつ、ＴＲＰＶ２を発現していないＨＥＫ細胞集団より高い強度の蛍光域に含まれるものを、ＴＲＰＶ２細胞外ドメインに特異的に結合できる抗体を選別することが可能である。
【００３２】
また得られた抗体が、ＴＲＰＶ２の活性を阻害する機能を有するものかについては、特開２００７−２５９７４５号公報（特願２００６−０８８３２３号）に記載のＴＲＰＶ２特異的アッセイ方法を用いて、確認することができる。
【００３３】
さらに本発明の抗体が、ＴＲＰＶ２以外のTrpファミリーのタンパク質の活性に実質的に影響を及ぼさないものかについては、特開２００９−１４９５３４号公報（特願２００７−３２６６０６号）に記載のＴＲＰＶ２以外のTrpファミリーのタンパク質の活性測定方法を参照して確認することができる。
【００３４】
さらに限界希釈法、軟寒天法、蛍光励起セルソーターを用いた方法などにより本発明のモノクローナル抗体を産生する単一クローンを分離する。例えば限界希釈法の場合、ハイブリドーマのコロニーを１細胞／ウェル前後となるように培地で段階希釈して培養することにより目的とする抗体を産生するハイブリドーマクローンを単離することができる。得られた抗体産生ハイブリドーマクローンは、約10％（v/v）ジメチルスルホキシド（DMSO）あるいはグリセリンなどの凍結保護剤の共存下に凍結させて、-70〜-196℃で保存すると、約半年〜半永久的に保存可能である。細胞は用時37℃前後の恒温槽中で急速に融解して使用する。凍結保護剤の細胞毒性が残存しないようによく洗浄してから使用するのが望ましい。
【００３５】
ハイブリドーマからのモノクローナル抗体の取得方法は、必要量やハイブリドーマの性状などによって適宜選択することができる。例えば、該ハイブリドーマを移植したマウス腹水から取得する方法、細胞培養により培養上清から取得する方法などが例示される。マウス腹腔内で増殖可能なハイブリドーマであれば、腹水から数mg/mLの高濃度のモノクローナル抗体を得ることができる。インビボで増殖できないハイブリドーマは細胞培養の培養上清から取得する。細胞培養によるモノクローナル抗体の取得は、抗体産生量はインビボより低いが、マウス腹腔内に含まれる免疫グロブリンや他の夾雑物質の混入が少なく、精製が容易であるという利点がある。
【００３６】
モノクローナル抗体をハイブリドーマを移植したマウス腹腔内から取得する場合、例えば、予めプリスタン（2, 6, 10, 14-テトラメチルペンタデカン）などの免疫抑制作用を有する物質を投与したBALB/cマウスの腹腔内へハイブリドーマ（約106個以上）を移植し、約１〜３週間後に貯留した腹水を採取する。異種ハイブリドーマ（例えばマウスとラット）の場合には、ヌードマウス、放射線処理マウスを使用することが好ましい。
【００３７】
一方、細胞培養上清から抗体を取得する場合、例えば、細胞維持に用いられる静置培養法の他に、高密度培養方法あるいはスピンナーフラスコ培養方法などの培養法を用い、当該ハイブリドーマを培養し抗体を含有する培養上清を得る。培養液に含まれる血清は、他の抗体やアルブミンなどの夾雑物が含まれ、抗体精製が煩雑になることが多いので、培養液への添加は少なくすることが望ましい。さらに好ましくは、ハイブリドーマを常法により無血清培地に馴化させ、無血清培地を用いて培養することである。無血清培地で培養することにより、抗体精製が容易になる。
【００３８】
腹水や培養上清からのモノクローナル抗体の精製は、自体公知の方法により行うことができる。例えば、免疫グロブリンの精製法として従来既知の硫酸アンモニウムや硫酸ナトリウムを用いた塩析による分画法、ポリエチレングリコール(PEG)分画法、エタノール分画法、DEAEイオン交換クロマトグラフィー法、ゲル濾過法などを応用することで、容易に達成される。さらに、モノクローナル抗体が、IgGである場合には、プロテインＡ結合担体を用いたアフィニティークロマトグラフィー法により精製することが可能であり、簡便である。
【００３９】
他の製造方法として、例えば大腸菌ファージの表面に、抗体断片を提示した、いわゆるコンビナトリアル抗体ライブラリーを構築し、バイオパニングにより抗体をスクリーニングして所望の抗体を得ることができる。この場合は、動物への免疫作業を介さずに、所望の抗体をスクリーニングすることができる。
【００４０】
本発明のポリクローナル抗体は、自体公知またはそれに準じる方法に従って製造することができる。例えば、抗原自体、または抗原がペプチドの場合には当該ペプチドとキャリアータンパク質との複合体をつくり、上記のモノクローナル抗体の製造法と同様に温血動物に免疫を行ない、免疫動物から本発明の抗体含有物を採取して、抗体の分離精製を行なうことにより製造することができる。
【００４１】
本発明の抗ＴＲＰＶ２ポリクローナル抗体は、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインから選択された部分ペプチド、好ましくは第５膜貫通領域と第６膜貫通領域との間の領域から選択された部分ペプチド、より好ましくはマウスＴＲＰＶ２（配列番号４）の568〜589位のアミノ酸配列（TTVTEKPTLGQEEEPVPYGGIL：配列番号１）からなる部分ペプチドを抗原として用いることにより作製することができる。
【００４２】
本発明のポリクローナル抗体は、免疫された温血動物の血液、腹水など、好ましくは血液から採取することができる。抗血清中のポリクローナル抗体価の測定は、例えば上記で述べたハイブリドーマ培養上清の抗体価の測定と同様にして測定できる。ポリクローナル抗体の分離精製は、上記のモノクローナル抗体の分離精製と同様の免疫グロブリンの分離精製法に従って行なうことができる。
【００４３】
また、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインを認識するポリクローナル抗体の選択についても、ハイブリドーマ培養上清について測定したのと同様フローサイトメトリーを使用して、選択することができる。また、ＴＲＰＶ２の活性を阻害する機能を有するポリクローナル抗体の選択についても、特開２００７−２５９７４５号公報（特願２００６−０８８３２３号）に記載の手法を用いて実施することができる。
【００４４】
本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、筋細胞の変性を抑制する機能を有することが好ましい。筋細胞の変性は、種々の疾患において見られ、変性を抑制・緩和することにより、病態が改善されるものと考えられる。筋細胞の変性を抑制する機能は、シリコン膜上で培養した筋細胞に、変性を引き起こすために所定の時間のストレッチ刺激を施し、その後の培養上清のクレアチニンキナーゼ活性を測定することにより、確認することができる。
【００４５】
さらに本発明は、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体を有効成分として含む、ＴＲＰＶ２阻害剤もしくは筋細胞変性抑制剤にも及ぶ。ＴＲＰＶ２阻害剤もしくは筋細胞変性抑制剤は、上記医薬組成物として使用することもできるが、ＴＲＰＶ２を特異的に阻害する実験ツールとして、もしくは筋細胞の変性を抑制・緩和する実験ツールとして、in  vivoまたはin  vitroで使用することも可能である。
【００４６】
本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、組成物に有効成分として含まれた状態で使用することも可能である。また本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体を含む組成物を、医薬用途に用いる場合には、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体のうち、１種又は複数種を有効量含み、さらに薬学的に許容し得る担体を含んでいても良い。本発明において、薬学上許容される塩とは、例えばナトリウム塩、カリウム塩等のアルカリ金属塩やアルカリ土類金属塩等の塩基性付加塩、塩酸塩、硫酸塩、硝酸塩等の無機酸塩や酢酸塩、プロピオン酸塩等の有機酸塩等の酸付加塩等を挙げることができる。
【００４７】
かかる組成物は、医薬組成物として経口的又は非経口的に投与することができる。経口投与による場合、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は通常の製剤、例えば、錠剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤等の固形剤；水剤；油性懸濁剤；又はシロップ剤もしくはエリキシル剤等の液剤のいずれかの剤型としても用いることができる。非経口投与による場合、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、水性又は油性懸濁注射剤、点鼻液として用いることができる。その調製に際しては、慣用の賦形剤、結合剤、滑沢剤、水性溶剤、油性溶剤、乳化剤、懸濁化剤、保存剤、安定剤等を任意に用いることができる。
【００４８】
医薬組成物として使用する場合は、ＴＲＰＶ２の活性化に起因する疾患や、筋変性疾患に対して適用することが好ましい。ＴＲＰＶ２の活性化に起因する疾患は、高血圧、アレルギー、免疫系疾患、胃腸病、癌等が挙げられるが、必ずしもこれらに限定されるものではない。また、筋変性疾患は、例えば筋ジストロフィー、心筋症、心不全、心筋梗塞等が挙げられる。
【実施例】
【００４９】
以下、本発明の理解を深めるために、実施例及び実験例を示して本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではないことはいうまでもない。
【００５０】
（実施例１）抗ＴＲＰＶ２モノクローナル抗体の作製
（１）マウスＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞の作製
本実施例では、配列表の配列番号４に示されるアミノ酸配列の全長マウスＴＲＰＶ２を、特開２００７−２５９７４５号公報（特願２００６−０８８３２３号）に記載の手法に準じて、ＨＥＫ２９３細胞に導入・発現させることにより、マウスＴＲＰＶ２が細胞膜上に発現したマウスＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞を作製した。
【００５１】
（２）ハイブリドーマの作製
上記（１）で調製したマウスＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞を抗原として用い、1x106〜1x107cell/mLとなる様にＰＢＳで調製し、同量のフロイント完全アジュバント（freund's comlete adjubant:Difco社製）と混合して乳化した。この乳化状の抗原を、４週令の４匹の雌のBALB/c  nu-nuマウスの腹腔に１匹あたり100μL投与した。さらに２週間毎に、アジュバントにて500μg/mLとなるように調製した上記抗原をマウス当たり50μｇずつ２回投与して、追加免疫した後、マウスの抗体価を測定した。抗体価の高いマウスにさらに１週間後、抗原であるマウスＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞をＰＢＳで100μg/mLに調製し、マウス尾静脈より注射して最終免疫した。
【００５２】
最終免疫から３日後にBALB/cマウスの摘脾を行い、ＥＭＥＭ培養液中で脾細胞を浮遊させて、脾細胞の浮遊液を作製した。ついで、脾細胞をＥＭＥＭ培養液で３回洗浄した後、細胞数を算定し、5x107個の脾細胞を得た。細胞融合は、P3U1 myeloma培養細胞株を親細胞株として用いた。親細胞株は、非働化した牛胎児血清（fetal calf serum : ＦＣＳ）10％を含むRPMI-1640培養液で継代培養した。細胞融合の３日前より10％ＦＣＳ含有RPMI-1640培養液でさらに培養し、対数増殖期の細胞を用いた。親細胞株はRPMI-1640培養液で３回洗浄した後、細胞数を算定し、5x106〜107個の生細胞を得た。
【００５３】
RPMI-1640培養液で、ポリエチレングリコール-4000が50(W/V)％濃度となるように溶解し、上記の脾細胞と親細胞株との比が２：１となるように混合し、ケーラーおよびミルシュタイン共著：ネイチャー（Nature 第256巻，495-497 (1975)）およびヨーロピアン ジャーナル オブ イムノロジー（Eur. J.Immunol.第6巻，511-519, (1976)）の方法に準じて細胞融合を行った。
【００５４】
その後、10％ＦＣＳを添加したRPMI-1640培養液に、100 μM のヒポキサンチン、0.4 μMのアミノプテリンおよび16 μMのチミジン（ＨＡＴ）を含有するＨＡＴ選択培地に、脾細胞が1〜3x106個/mLとなるように浮遊させた。ついで、この細胞浮遊液を100μLずつ、96穴マイクロタイタープレートの各ウェルに分注した後、ＣＯ２無菌培養器において温度37℃、湿度95％、8％のＣＯ２雰囲気で培養を行なった。培養開始後、１日目と２日目にＨＡＴ選択培地を各ウェルに１滴ずつ、また培養開始後７日目と９日目にＨＡＴ選択培地を、各ウェルに２滴ずつ添加してさらに培養を行った。その後、ＨＡＴを含まない培養液で育成させ、約10日〜２週間後に、選択培地で増殖ハイブリドーマを確認した。
【００５５】
（３）スクリーニング
上記で得られたバイブリドーマのうち、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインを認識する抗体を産生する株を以下の方法により選択した。
【００５６】
ハイブリドーマ培養上清を、ＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞集団またはＴＲＰＶ２を発現していないＨＥＫ細胞集団と反応させた後、標識２次抗体（FITC標識ヤギ抗マウスIgG  Zymed社）と反応させた。反応後、各細胞集団についてフローサイトメータ（FACScan、Becton Dickinson社）を用いて測定し、ハイブリドーマ培養上清を用いずに測定したバックグラウンドの強度（抗体と反応していないＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞集団の強度）より高い強度で、かつＴＲＰＶ２を発現していないＨＥＫ細胞集団の強度より高い強度の蛍光域に含まれるハイブリドーマを、ＴＲＰＶ２細胞外ドメインに特異的に結合できる抗体を産生するものとして得た。
【００５７】
（４）抗体の精製
各ハイブリドーマ株は、培養液中の牛胎児血清含有量を10%から2%に減少させ、最終的に無血清の培養液中で培養した。無血清培養液で3〜7日間培養した各ハイブリドーマの培養上清100 mLを2,000rpm、10分遠心処理し、得られた上清を0.45μmフィルターで濾過して固形成分を除去し、Protein Gを固定化した6%アガロースゲル（HiTrapProtein G HP Columns-GEヘルスケアジャパン社製）1 mLにより精製した。
【００５８】
得られたモノクローナル抗体が、ＴＲＰＶ２細胞外ドメインに特異的に結合することを確認するために、イムノブロット、生細胞（抗原として用いたＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞）を用いた免疫染色を行った。イムノブロットでは、コントロールとしてマウスIgGを使用した。免疫染色では、ＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ２９３細胞と各抗体を室温で30分間培養した後、ＦＩＴＣ標識２次抗体を反応させＦＩＴＣの蛍光をコンフォーカルレーザー顕微鏡（FLUOVIEW FV1000、Olympus社）にて観察した。コントロールはマウスIgG（normal mouse IgG、Santa Cruz Biotechnology社）である。
【００５９】
図１ａはイムノブロットの結果を示し、図１ｂは免疫染色の結果を示す。図１ａにおいて、レーン１はＨＥＫ２９３細胞のタンパク質画分を、レーン２はマウスＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞のタンパク質画分を電気泳動して、それぞれ1μg/mlのマウスIgG、モノクローナル抗体11-6、88-2を用いてイムノブロットしたものである。図１ｂの上段は各抗体を反応させた写真である。モノクローナル抗体11-6、88-2がＴＲＰＶ２の細胞外ドメインに対して反応性を持つことがわかった。
【００６０】
（実施例２）抗ＴＲＰＶ２ポリクローナル抗体の作製
マウスＴＲＰＶ２の第５膜貫通領域と第６膜貫通領域との間にある親水性の高い領域である568〜589位のアミノ酸配列（配列番号１）を持つ部分ペプチドを固相法により合成し、この部分ペプチドを抗原としてポリクローナル抗体を作製した。具体的には、抗原である部分ペプチドを、アジュバント（完全フロイントアジュバント、Difco Laboratories社）とともにニュージーランドホワイト種のウサギに免疫して抗血清を得た。得られた抗血清を、常法どおりに精製してポリクローナル抗体を得た。
【００６１】
得られた抗血清のポリクローナル抗体がＴＲＰＶ２の細胞外ドメインを認識する抗体であることを確認するために、抗血清を用いて、イムノブロット、生細胞（ＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞）を用いた免疫染色を行った。イムノブロットでは、コントロールとして抗原で免疫する前に採取した抗血清を使用した。免疫染色では、実施例１の手法と同様に、ＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ２９３細胞と各抗血清を室温で30分間培養した後、ＦＩＴＣ標識２次抗体を反応させＦＩＴＣの蛍光をコンフォーカルレーザー顕微鏡にて観察した。コントロールとして抗原で免疫する前に採取した抗血清（免疫前血清）を使用し、ポジティブコントロールとして、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインにFlagタグを挿入し、各Flagタグを抗Flag抗体および、ローダミン標識２次抗体で観察を行った。
【００６２】
図２ａはイムノブロットの結果を示し、図２ｂは免疫染色の結果を示す。図２ａにおいて、レーン１はＨＥＫ２９３細胞のタンパク質画分を、レーン２はマウスＴＲＰＶ２発現用ＨＥＫ細胞のタンパク質画分を電気泳動して、それぞれ、免疫前血清、血清591、血清592を1000倍希釈したものを用いてイムノブロットしたものである。図２ｂの上段は各血清を反応させた写真であり、下段はポジティブコントロールである。血清591および血清592のポリクローナル抗体が、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインに対して反応性を持つことがわかった。
【００６３】
（実施例３）ＴＲＰＶ２活性阻害作用を持つ抗体の選択
マウスＴＲＰＶ２発現用細胞を用いたハイスループットスクリーニング法（特開２００７−２５９７４５号公報（特願２００６−０８８３２３号）に記載の方法）に準じて、得られた血清、モノクローナル抗体のＴＲＰＶ２活性の阻害作用を指標としてスクリーニングを行った。
【００６４】
受託番号FERM  P-20837またはFERM  P-20836で特定されるマウスＴＲＰＶ２を導入したＨＥＫ２９３細胞株（マウスＴＲＰＶ２発現用細胞）を９６穴のマイクロプレートに培養し、コンフルエントになったものを用いた。100μlのＢＳＳ(Balanced Salt solution)で細胞を２回洗浄したものについて、励起波長３４０ｎｍおよび３８０ｎｍにおける測定波長５１０ｎｍでの蛍光強度を計測した。
対照として、マウスＴＲＰＶ２を導入していないＨＥＫ２９３細胞株についても同様に培養し、同様に蛍光強度を測定した。
【００６５】
10mM ＨＥＰＥＳ−ＢＳＳで溶解した4μMのFura-2-AM(TM)（ドージンドー社）100μlを細胞に添加し、37℃で30分間接触させ、細胞内にカルシウム指示薬を負荷した。次に100μlの1mM ＨＥＰＥＳ−ＢＳＳで２回洗浄し、実施例１または２にて得られた抗体を含むＢＳＳ50μlを加え、37℃で30分間反応させた。カルシウム阻害剤を含まない1mM ＨＥＰＥＳ−ＢＳＳ（50μl）の系についても同様に行った。陽性コントロールとして、Ｃａ２＋カルシウムイオノフォア（イオノマイシン（ionomycin）10μM）を添加した10mM ＨＥＰＥＳ−ＢＳＳ（50μl）の系についても同様に行った。
【００６６】
２−ＡＰＢ(2-aminoethoxydiphenyl borate)溶液を各ウェルに50μl添加し、室温にて1分間反応させた。反応溶液は、２−ＡＰＢの終濃度0.5mM、ＣａＣｌ２の終濃度5.25mMで、ｐＨ６．３であった。
【００６７】
Ｃａ２＋は、蛍光／発光／吸光マルチプレートリーダー（ジェニオスプラス（TECAN社））を用いて測定した。測定は、励起波長３４０ｎｍおよび３８０ｎｍにおける測定波長５１０ｎｍでの蛍光強度を計測することにより行った。２−ＡＰＢ添加の系において認められる強いＣａ２＋の上昇が抗体の存在下で抑制された場合、当該抗体がＴＲＰＶ２阻害する作用を有するものとし、血清591、血清592、モノクローナル抗体11-6、88-2を選択した。
【００６８】
（実験例１）抗体のＴＲＰＶ２活性阻害効果の確認
【００６９】
（１）実施例３にて得られた抗体について、特開２００９−１４９５３４号公報（特願２００７−３２６６０６号）に記載のＴＲＰＶ２以外のTrpファミリーのタンパク質の活性測定方法を用いて、ＴＲＰＶ２以外のTrpファミリーのタンパク質に対する影響について確認した。
【００７０】
ＴＲＰＶ１発現用細胞としてマウスＴＲＰＶ１を導入したＨＥＫ２９３細胞を使用し、ＴＲＰＣ１発現用細胞としてマウスＴＲＰＣ１を導入したＨＥＫ細胞を使用した。ＴＲＰＶ２の活性測定と同様に細胞内に蛍光色素を導入して、ＴＰＰＶ１については２−ＡＰＢで刺激し、ＴＲＰＣ１についてはタプシガージンで刺激し、細胞内Ｃａ２＋上昇を測定した。
【００７１】
その結果、血清591、592、マウスモノクローナル抗体11-6、88-2は、ＴＲＰＶ１およびＴＲＰＣ１の活性には実質的に影響を及ぼさず、ＴＲＰＶ２活性を特異的に抑制することがわかった。
【００７２】
（２）マウスＴＲＰＶ２発現用細胞において、プレートリーダーを用いて細胞内カルシウムプローブでモニターすることにより、抗体のＴＲＰＶ２活性に対する阻害作用を確認した。モノクローナル抗体は10ng/ml、血清（ウサギポリクローナル抗体）は1000倍希釈でアゴニスト刺激の２時間前にそれぞれ室温で反応させた。細胞内Ｃａ２＋濃度指示薬ｆｕｒａ−２を負荷した細胞を、常法に従い、ＢＳＳ存在下で、２ＡＰＢ (2-aminoethoxydiphenyl borate)溶液（0.3mM、0.5mM）で刺激した。
【００７３】
顕微鏡下の実験では、細胞内Ｃａ２＋濃度指示薬ｆｕｒａ−２を負荷した細胞を、常法に従い、ＢＳＳ存在下で、２ＡＰＢ 溶液（0.3mM、0.5mM、および1mM）で刺激した後、ＢＳＳで洗浄して、2mMＣａ２＋を含む液に交換し、熱刺激（５２℃以上30秒）、最後にイオノマイシン10μMで刺激した。
【００７４】
結果を図３に示す。図３ａは、種々の抗体の存在下でＴＲＰＶ２のアゴニスト２−ＡＰＢ添加後の細胞内Ｃａ２＋濃度上昇をモニターした結果である。図３ｂは、細胞内Ｃａ２＋蛍光色素fura-2を用いて細胞内Ｃａ２＋濃度上昇を顕微鏡下で測定した結果であり、ＴＲＰＶ２発現用細胞１０個以上の平均と標準偏差である。黒色線はコントロールである免疫前血清、灰色線は591血清の結果であり、それぞれ1000倍希釈で2時間室温で反応させた後のＴＲＰＶ２アゴニストである２ＡＰＢに対する細胞内Ｃａ２＋反応を示した。その結果、591血清により、２ＡＰＢ刺激による細胞内Ｃａ２＋上昇が抑制された。なお図３ｃは、ＴＲＰＶ２を発現していないＨＥＫ２９３細胞の結果（抗体添加なし）である。ＴＲＰＶ２による細胞内Ｃａ２＋上昇（図３ｂ黒色）が、ＴＲＰＶ２発現のないレベルと同等まで抗体により抑制されることがわかった（図３ｂ灰色、図３ｃ）。
【００７５】
（実験例２）抗体の筋細胞ＴＲＰＶ２活性阻害効果の確認
ヒト心筋症のモデル動物である心筋症ハムスター（J2N-k）の培養骨格筋細胞を用いて、抗体が細胞内カルシウム代謝異常を抑制することを確認した。実験例１の手法と同様にして、細胞内Ｃａ２＋蛍光色素fura-2を用いて細胞内Ｃａ２＋濃度上昇を顕微鏡下で測定した。
【００７６】
結果を図４に示す。ＴＲＰＶ２発現用細胞１０個以上の平均と標準偏差を示した。黒色線はコントロール血清、灰色線は591血清の結果であり、それぞれ1000倍希釈で２時間室温で反応させた後のＴＲＰＶ２アゴニストである２ＡＰＢに対する筋細胞内Ｃａ２＋反応を示した。その結果、591血清により、２ＡＰＢ刺激による細胞内Ｃａ２＋上昇が抑制された。
【００７７】
（実験例３）抗体の筋細胞変性に対する抑制効果の確認
ヒト心筋症のモデル動物である心筋症ハムスター（J2N-k）の培養骨格細胞を用いて、抗体が筋変性を抑制することを確認した。シリコン膜上に培養した筋細胞に１時間、20％のストレッチ刺激を行った後、培養上清のクレアチニンキナーゼ活性を常法により測定した。コントロールである免疫前血清は500倍に希釈、591血清は500倍または250倍に希釈し、それぞれ１時間室温で反応させた後、ストレッチ刺激を与えた。
【００７８】
結果を図５に示す。免疫前血清と反応させた場合は、クレアチニンキナーゼ活性（ck  efflux）が高く、筋細胞の変性が誘導されているのに対し、591血清と反応させた場合は、いずれの希釈倍率であっても、ストレッチ刺激による筋細胞の変性が抑制された。
【００７９】
（実験例４）エピトープマッピング
本実験例では、ポリクローナル抗体591、ポリクローナル抗体592、モノクローナル抗体88-2について、エピトープ解析を行った。
568〜589位のアミノ酸配列（配列番号１）の２２残基のうち、８残基のアミノ酸からなるペプチドを、１残基ずつずらして１５個合成し、各ペプチドに対する抗体の反応性を確認した。各々ペプチド1mg/mlをニトロセルロース膜に１μｌずつドットブロットし、常法に従って膜をブロッキング後、各抗体と反応させ免疫抗体法にて検出した。
【００８０】
結果を図６に示す。
図６ａは、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインの中で第５膜貫通領域と第６膜貫通領域との間の領域から選択された部分ペプチド568〜589位（上段）および551〜566位（下段）をそれぞれニトロセルロース膜にドットしブロッキングした後、591血清、592血清及びコントロールIgGの1000倍希釈、マウスモノクローナル抗体88-2（10ng/ml）を用いて各々ペプチドに対する反応性を調べた結果である。いずれの抗体も568〜589位のペプチドに強い反応性を示すことがわかった。
図６ｂの写真は591血清またはコントロールIgGを用いた実際のドットブロットの結果を示す。図６ｂのグラフはドットブロットの染色強度をイメージングアナライザーを用いて定量化したものである。グラフは591血清、592血清及びモノクローナル抗体88-2の結果を併せて示すものであり、３回の実験の平均及び標準偏差を表す。いずれの抗体も、GQEEEPVP（配列番号６）とQEEEPVPY（配列番号７）に対して反応性を示した。また591血清と592血清は、QEEEPVPY（配列番号７）に対してより高い反応性を示した。モノクローナル抗体88-2は、GQEEEPVP（配列番号６）に対してより高い反応性を示した。従って、これらの抗体がGQEEEPVPY（配列番号２）付近を認識しているものと考えられた。
【産業上の利用可能性】
【００８１】
以上説明したように、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、ＴＲＰＶ２の細胞外ドメインを認識することができ、生細胞に発現するＴＲＰＶ２と反応することが可能である。また本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、ＴＲＰＶ２の活性を阻害する機能を有し、生きた筋細胞に発現するＴＲＰＶ２に対して阻害作用を発揮することができる。ＴＲＰＶ２の活性化は、心筋、骨格筋を問わず、筋肉細胞の変性・細胞死を伴う広範囲の疾患で起こることがわかっている。従って、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、拡張型心筋症のみならず、筋ジストロフィー又は心不全一般の治療薬、あるいは心筋保護薬として適用することも可能と考えられる。さらに、本発明の抗体は病態時においてＴＲＰＶ２の活性を細胞膜上で抑制可能と考えられ、従来移植しか治療手段がない拡張型心筋症に対する有力な治療薬候補となりうる。また、本発明の抗ＴＲＰＶ２抗体は、ＴＲＰＶ２を特異的に阻害する実験ツールとなるため、ＴＲＰＶ２活性化で起こる心筋病態解明に利用できるとともに、様々な心筋病態でのＴＲＰＶ２関与を確かめる手段としても利用できる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【配列表】
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