(57)【要約】【課題】フィード時に糖が溶解、固結することなく殺菌可能となる条件下、培養器に前記糖粉末をフィードし、それを用いた目的物質の製造法を提供する。【解決手段】目的物質生産能を有する微生物を培養器中の液体培地で培養し、同培地から目的物質を回収する、目的物質の製造方法において、前記培養器にはグルコース及びスクロースを含むフィード糖粉末を、フィード管を通して連続的又は間歇的にフィードし、高生産性を可能とする発酵プロセス法。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
目的物質生産能を有する微生物を培養器中の液体培地で培養し、同培地から目的物質を回収する、目的物質の製造方法であって、
前記培養器にはスクロース、又はスクロース及びグルコースを含む糖の粉末を連続的又は間歇的にフィードすることを特徴とする方法。
【請求項２】
前記糖が、９０重量％以上のスクロースと、１０重量％以下のグルコースからなる混合物であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記糖が、１４０℃以上、かつ、１７５℃以下で乾熱殺菌されたものである、請求項１又は２に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、微生物を用いた目的物質の製造方法に関し、特に、培養器に糖粉末をフィードしながら培養を行う方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
Ｌ−アミノ酸や核酸などの物質は、微生物を用いた発酵法により製造されている。発酵法においては、目的物質の収量はグルコースやスクロース等の炭素源の量に依存するが、培地中の糖濃度が高すぎると微生物の生育が悪くなったり、目的物質の生産性が低くなるため、培地中の糖の消費に応じて糖液をフィードしながら培養を行われることが多い。
糖液は通常、糖液を発酵槽に送液するためのフィード管を通してフィードされるが、糖濃度が高いとフィード管中で糖が固結することがあるため、従来、糖濃度は高くても750g/L程度である。しかしながら、糖液をフィードすることによって発酵槽中の培地の液量が増加するため、フィードできる糖液の量に限界があり、培地成分が希釈されるなどの問題がある。
【０００３】
また、発酵に用いる培地の炭素源として、複数の糖の混合物、例えばグルコースとフルクトースの混合物（特許文献１）、グルコースとスクロースの混合物（特許文献２）が開示されている。
【０００４】
しかしながら、フィード糖として、糖の物理的形態や組成について検討を行ったとの報告は知られていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】欧州特許出願公開第１２２５２３０号
【特許文献２】特開２００６−２０４１３２
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、フィード培養において、糖液をフィードすると発酵槽等の培養器中の培地の液量が増加すること、及び、糖液の濃度を高くするとフィード管中で糖が固結するといった問題を回避するための技術を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を行った結果、粉末状の糖を培養器にフィードすることによって、上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち本発明は、以下のとおりである
（１）目的物質生産能を有する微生物を培養器中の液体培地で培養し、同培地から目的物質を回収する、目的物質の製造方法であって、
前記培養器にはスクロース、又はスクロース及びグルコースを含む糖の粉末を連続的又は間歇的にフィードすることを特徴とする方法。
（２）前記糖が、９５重量％以上のスクロースと、５重量％以下のグルコースからなる混合物であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
（３）前記糖が、１４０℃以上、かつ、１７５℃以下で乾熱殺菌されたものである、請求項１又は２に記載の方法。
【発明の効果】
【０００８】
本発明により、フィード培養において、従来よりも培養器中の培地の液量の増加を低減することができる。また、本発明の方法では、フィード液中での糖の固結及び結晶化という従来技術の問題点を克服することができる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】本発明の方法に用いる発酵装置の一形態を示す図。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明は、目的物質生産能を有する微生物を培養器中の液体培地で培養し、同培地から目的物質を回収する、目的物質の製造方法であって、前記培養器にはスクロース、又はスクロース及びグルコースを含む糖の粉末を連続的又は間歇的にフィードすることを特徴とする方法である。以下、このようにフィード糖のフィードを伴う培養を、「フィード培養（fed-batch culture）」ということがある。また、フィードされる糖の粉末を「フィード糖」ということがある。
【００１１】
本発明においては、フィード糖は、スクロース、又はスクロース及びグルコースを含む。スクロース、又はスクロース及びグルコースを「含む」とは、スクロース、又はスクロース及びグルコースのみを含んでいてもよく、スクロース及びグルコース以外の糖を、微量含んでいてもよいことも意味する。スクロース及びグルコース以外の糖としては、フルクトースが挙げられる。このようなスクロース及びグルコース以外の糖は、フィード糖全量に対して、５０重量％以下、好ましくは１０重量％以下、より好ましくは２重量％以下であることが好ましい。
【００１２】
フィード糖中のスクロースとグルコースの量比は、フィード糖の各成分が融解及び潮解せず、かつ、微生物の生育又は目的物質産生のための炭素源として利用され得る限り特に制限されない。スクロースの融点は186℃であり、α−Ｄ−グルコースの融点は146℃、β−Ｄ−グルコースの融点は150℃であるので、スクロースとグルコースの量比は、殺菌温度に応じて適宜設定することができる。あるいは、スクロースとグルコースの量比に応じて殺菌温度を設定してもよい。殺菌温度に応じたスクロースとグルコースの好適な量比は、実施例に記載した方法に準じて適宜設定することができる。例えば、殺菌温度が175℃の場合は、スクロースはスクロースとグルコースの合計量に対して９５重量％以上であることが好ましく、99重量％以上であることがより好ましい。また、グルコースはスクロースとグルコースの合計量に対して５重量％以下であることが好ましく、1重量％以下であることがより好ましい。殺菌温度がこれよりも低い場合は、グルコースの量は上記範囲を超えてもよい。
【００１３】
フィード糖は、スクロース粉末及びグルコース粉末を所定量混合することによって調製することができる。フィード糖が、スクロースのみからなる場合は、スクロース粉末をそのまま使用することができる。また、フィード糖がスクロース及びグルコース以外の糖を含む場合は、当該糖の粉末を、スクロース粉末、又はスクロース粉末及びグルコース粉末と混合すればよい。粉末の大きさ（粒径）は特に制限されないが、好ましくは0.01mm〜2mm、より好ましくは0.01mm〜0.5mm、さらに好ましくは0.01mm〜0.05mmである。尚、固体状の各々の糖を混合した後、粉砕し、必要に応じて整粒してもよい。
【００１４】
フィード糖は、培養器に投入される前に殺菌される。フィード糖を調製した後に殺菌してもよく、殺菌した各々の成分を混合してフィード糖を調製してもよい。好ましくは、各々の成分を混合してから殺菌される。
殺菌の方法は、フィード糖の各成分が融解及び潮解せず、かつ、微生物の生育又は目的
物質産生のための炭素源としての性質が維持されるものであれば特に制限されないが、乾熱処理（dry heat）、赤外線照射、紫外線又はエックス線もしくはガンマ線等の放射線照射等が挙げられる。
【００１５】
尚、殺菌処理等によって、フィード糖中のスクロースがグルコースとフルクトースに分解し、糖組成が変化することがある。このように糖組成が変化しても、フィード糖が微生物の生育又は目的物質産生のための炭素源として利用され得る限り、そのようなフィード糖は本発明の範囲に含まれる。
【００１６】
これまで、スクロースやグルコース等の糖、特に固体状の糖を高温に置いたときに、物性がどのように変化するのか詳細は知られていなかった。また、変化が生じた場合に、糖微生物による資化性にどのような影響があるのかも知られていなかった。本発明により、好適な条件で殺菌した糖粉末は、微生物の生育又は有用物質産生のための炭素源として好適であることが示された。
【００１７】
フィード糖の殺菌温度は、140℃以上、かつ、スクロースの融点である186℃よりも低いことが好ましい。また、175℃以下であることがより好ましい。フィード糖におけるグルコースの割合によっては、より低い温度が好ましい。
【００１８】
殺菌時間は、温度によっても異なり得るが、通常15分以上、又は30分以上で目的を達成することができる。また、殺菌時間は90分以下であることが好ましいが、本発明の目的を達成し得る限り、それより長くてもよい。殺菌方法によっては、フィード糖自体の温度上昇に時間がかかる場合があるが、そのような場合は、フィード糖の温度が140℃に達してから、前記時間殺菌することが好ましい。
【００１９】
本発明において、グルコース及びスクロースは、精製されたものであっても、粗精製物であってもよい。グルコースとしてはタピオカ糖、精製グルコース等が挙げられ、スクロースとしては粗糖（サトウキビ由来）、精製スクロース等が挙げられる。
【００２０】
本発明においてフィード糖は、本発明の効果を損わない限り、スクロース、又はスクロース及びグルコース、並びに許容範囲内で含まれ得るこれらの分解物の他に、他の成分を含んでいてもよい。そのような成分としては、リン酸、リン酸カリウム、硫安、消泡剤、マグネシウム、要求性アミノ酸、培地成分が挙げられる。また、本発明のフィード糖の他に、必要に応じて、培地成分等を含む他のフィード液をフィードしてもよい。
【００２１】
糖のフィードの方法は特に制限されず、粉体を供給する種々の手段を採用することができる。例えばフィード糖を、フィード糖を収容する貯槽と培養器を連通する管に投入し、空気等の気体によってフィード糖を培養器に圧送する方法が挙げられる。管と培養器との間には、ホッパー、スクリューフィーダー等の粉体供給装置を介在させてもよい。また、糖のフィード量は、センサー、弁等を用いて調節することができる。
【００２２】
殺菌装置は特に制限されず、例えば電気オーブンや放射線発生装置等が挙げられる。培養装置において殺菌装置を設ける位置は特に制限されず、例えば、フィード糖を収容するフィード糖貯槽と培養器の間に設けることができる。
【００２３】
微生物の培養は、所定のフィード糖粉末を、培養器に連続的又は間歇的にフィードする以外は、通常の発酵と同様にして行うことができる。培養器としては、発酵槽又はファーメンター等の、通常の培養器を用いることができる。本発明に用いられる培養装置の一例については後述する。
【００２４】
本発明において生産される目的物質は、グルコース及びスクロースを炭素源として微生物により製造され得るものであれば特に制限されず、アミノ酸、核酸、ビタミン、抗生物質、成長因子、生理活性物質、タンパク質などが挙げられる。これらの目的物質は、塩であってもよい。
【００２５】
アミノ酸としては、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−グルタミン、Ｌ−リジン、Ｌ−ロイシン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−バリン、Ｌ−トリプトファン、Ｌ−フェニルアラニン、Ｌ−チロシン、Ｌ−スレオニン、Ｌ−メチオニン、Ｌ−システイン、Ｌ−シスチン、Ｌ−アルギニン、Ｌ−セリン、Ｌ−プロリン、Ｌ−アスパラギン酸、Ｌ−アスパラギン、Ｌ−ヒスチジン、グリシン、及びＬ−アラニン等が挙げられる。アミノ酸は、フリー体のアミノ酸であってもよく、硫酸塩、塩酸塩、炭酸塩、アンモニウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩等の塩であってもよい。
【００２６】
核酸としては、イノシン、グアノシン、キサントシン、アデノシン、イノシン酸、グアニル酸、キサンチル酸、アデニル酸等が挙げられる。核酸は、フリー体の核酸であってもよく、ナトリウム塩、カリウム塩等の塩であってもよい。
【００２７】
本発明に用いる微生物としては、スクロース、又はスクロース及びグルコースを炭素源として目的物質を生産し得るものであれば特に制限されず、エシェリヒア（Escherichia）属、エンテロバクター（Enterobacter）属、パントエア（Pantoea）、クレブシエラ（Klebsiella）属、ラウルテラ（Raoultella）属、セラチア（Serratia）属、エルビニア（Erwinia）属、サルモネラ（Salmonella）属、モルガネラ（Morganella）属などのγ−プロテオバクテリアに属する腸内細菌や、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、ミクロバクテリウム属に属するいわゆるコリネ型細菌、アリサイクロバチルス（Alicyclobacillus）属、バチルス（Bacillus）属などの細菌、サッカロマイセス（Saccharomyces）属やキャンディダ（Candida）等に属する酵母などが挙げられる。
Ｌ−アミノ酸生産菌もしくは核酸生産菌又はその育種に用いられる微生物、及びＬ−アミノ酸生産能及び核酸生産能の付与及び増強の方法については、WO2007/125954、WO2005/095627、米国特許公開公報2004-0166575号等に詳述されている。
【００２８】
培地は、通常の微生物を用いた目的物質の製造に用いる培地、具体的には炭素源、窒素源、無機塩類、その他必要に応じてアミノ酸、ビタミン等の有機微量栄養素を含有する培地を用いることができる。合成培地または天然培地のいずれも使用可能である。
【００２９】
初発培地に含まれる炭素源は、スクロース及び／又はグルコースであってもよく、他の炭素源、又はそれらの混合物であってもよい。他の炭素源としては、グリセロール、フルクトース、マルトース、マンノース、ガラクトース、澱粉加水分解物、糖蜜等の糖類、及び、酢酸、クエン酸等の有機酸、エタノール等のアルコール類が挙げられる。
【００３０】
窒素源としては、アンモニア、硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、酢酸アンモニウム等のアンモニウム塩または硝酸塩等が使用することができる。
【００３１】
有機微量栄養素としては、アミノ酸、ビタミン、脂肪酸、核酸、更にこれらのものを含有するペプトン、カザミノ酸、酵母エキス、大豆たん白分解物等が使用でき、生育にアミノ酸などを要求する栄養要求性変異株を使用する場合には要求される栄養素を補添することが好ましい。
【００３２】
無機塩類としてはリン酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩等が使用できる。
【００３３】
培養条件は、使用する微生物に応じて、適宜設定すればよい。
【００３４】
フィード培養を行う培地には、寒天培地等の固体培地で斜面培養した微生物を直接接種してもよいが、微生物を予め液体培地で培養（種培養又は前培養）したものを接種するのが好ましい。種培養又は前培養は、通常の方法で行うことができる。
【００３５】
フィード糖のフィード量、及びフィードのタイミングは、従来の糖液を用いたフィード培養に準じて、微生物による培地中の糖消費等に応じて適宜設定することができる。例えば、培地中の糖濃度を測定し、糖が枯渇した時点、又は糖濃度が所定値以下になったときにフィードする方法が挙げられる。また、フィードは、連続的に行ってもよく、間歇的に行ってもよい。
【００３６】
培養終了後の培養液から目的物質を採取する方法は、目的物質の種類に応じて公知の回収方法に従って行えばよい。例えば、目的物質がアミノ酸であれば、培養液から菌体を除去した後に濃縮晶析する方法あるいはイオン交換クロマトグラフィー等によって採取される。培養終了後の培地液からの目的物質の採取は、本願発明において特別な方法は必要ない。本発明において採取される目的物質は、目的物質以外に微生物菌体、培地成分、水分、及び微生物の代謝副産物を含んでいてもよい。
【００３７】
以下に、本発明を実施するための培養装置の一例を、図１に基づいて説明するが、本発明はこの培養装置の使用に限定されない。
培養装置は、培養器１と、この培養器１にフィードされるフィード糖を収容するフィード糖貯槽１８と、フィード糖貯槽からフィード糖を培養器１に供給するためのフィード糖移送管１７を供えている。培養器１は、培地を攪拌する攪拌翼５と、この攪拌翼５を回転させるための撹拌モーター６を備えている。フィード糖貯槽１８に収容されたフィード糖は、フィード糖移送管１７に送り込まれる。フィード糖の量は、第１のフィード量調節弁１９で調節される。フィード糖移送管１７に投入されたフィード糖は、フィード糖移送管１７に供給される空気によって、定量フィーダー１３に圧送される。定量フィーダー１３でフィード量を調節されながらフィード糖は、コンベア２１によって殺菌室２２に移送され、加熱器１２で殺菌される。殺菌されたフィード糖は、ホッパー１０によって、ホッパ１０の排出口に垂設されたスクリューフィーダー９に流下され、培養器１にフィードされる。ホッパー１０にはレベル計１１が設置され、所定量を超えるフィード糖がホッパー１０に供給されないように、フィード糖添加コントローラー１５及び第２のフィード量調節弁１４によって調節される。培養器１にフィードされるフィード糖は、スクリューフィーダー９と培養器１の間に設けられた第３のフィード量調節弁によっても調節される。培養器１には、図示されない糖濃度測定装置を設け、培地中の糖濃度を測定し、測定値に応じてフィード量を調節してもよい。また、培養器１に投入されるフィード糖の量を、経時的に又は累積的に計量、記録する手段を培養装置に設けてもよい。計量値は、例えば定量フィーダー１３及びフィード糖添加コントローラー１５の動作の指標として用いられる。
【００３８】
フィード糖移送管１７の、フィード糖貯槽１８との連結部の上流には、空気調節弁２０が設けられている。定量フィーダー１３は、バグフィルター１６を介して外部と連通しており、定量フィーダー１３に送られたフィード糖のうち微粉末はこのバグフィルター１６により回収される。
【００３９】
殺菌室内でのフィード糖の殺菌は、加熱温度及び加熱時間により調節することができる。また、殺菌室２２へのフィード糖の移送と殺菌は、連続的に行ってもよく、バッチ式で行ってもよい。さらに、殺菌室２２と加熱器１２は、例えば電気オーブンとして一体化されてもよい。その他、殺菌室及び加熱室の構成は、殺菌方法によって種々変更が可能であ
る。
【００４０】
培養器１には、微生物の生育又は目的物質の産生を促進するために、気体供給管２より空気、又は酸素もしくは二酸化炭素等を含む気体を供給してもよい。培養器１には、気体を排出するための排気管が設けられており、供給された気体、及び発酵により生じた気体又はその一部は泡沫３となり、その後排気管４より外へ放出される。
【実施例】
【００４１】
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
【００４２】
〔実施例１〕スクロース粉末の殺菌条件の検討（１）
試験管に、粗糖粉末（サトウキビ由来。粉末の大きさ 平均1.5mm、スクロースを99重量％含む。以下、「スクロース」と記載することがある。）を１ｇずつ入れ、乾熱滅菌器を用いて50℃、80℃、110℃、又は140℃で30分、60分、又は90分間、乾熱処理した。これらのスクロース粉末をLB培地(50mL)に投入し、24時間、48時間、又は72時間、振とう培養（37℃、115rpm）を行った。各々の培養液を適宜希釈し、0.5mLトリプトソーヤ寒天培地に植菌し、37℃で培養した。24時間後に、培地上のコロニーの有無を目視により判定した。結果を表１に示す。この結果から、スクロース粉末は、140℃、30分の乾熱処理により殺菌が可能であることが示された。
【００４３】
【表１】
2011072191.tif 000003
【００４４】
〔実施例２〕スクロース粉末の殺菌条件の検討（２）
スクロース（粉末の大きさ 平均1.5mm）１ｇを薄くアルミニウム箔の上に敷き、140℃の乾熱滅菌装置内に置いた。その後、1〜30分の各々の時間に試料を取り出し、フラスコ中の50mlのLB培地に各々加えて溶解させ、37℃で培養した。24時間、48時間、及び72時間後に、培地中の雑菌の繁殖の有無を目視により評価した。ポジティブコントロールとして、乾熱殺菌を施さないスクロースを用いて同様に培養を行ったところ、雑菌数は１×107個/mlであった。結果を表２に示す。いずれの培養時間でも同じ結果であった。140℃では15分の乾熱処理でも殺菌が可能であることが示された。
【００４５】
【表２】
2011072191.tif 000004
【００４６】
〔実施例３〕スクロース及びグルコースの混合糖粉末の殺菌条件の検討
スクロース粉末（粉末の大きさ 平均0.5mm）、及びグルコース粉末（粉末の大きさ 平均0.5mm）の混合物（量比は表３に示す）を、175℃で、30分乾熱処理し、融解の有無を目視により判定した。結果を表３に示す。グルコースの割合が少なくとも5重量%以下であると、175℃の乾熱処理でも融解しないことが示された。
【００４７】
【表３】
2011072191.tif 000005
【００４８】
〔実施例４〕乾熱殺菌スクロース粉末を用いたエシェリヒア・コリの培養
エシェリヒア・コリK12株から誘導されたＬ−フェニルアラニン生産菌を、１Ｌ培養器中の下記組成の培地300mlに接種し、３５℃で振盪培養した（1000rpm）。培養J1では、スクロースは培地に溶解してからオートクレーブ殺菌した。培養J2では、乾熱殺菌（乾熱滅菌器中、140℃、30分）したスクロース粉末（粉末の大きさ 平均1.5mm）をオートクレーブした培地に溶解し、滅菌水で所定の液量（300ml）となるようにフィルアップした。培養21時間後の培養液中のＬ−フェニルアラニン濃度をアミノ酸アナライザーにより定量した。結果を表４に示す。Ｌ−フェニルアラニン濃度は、J1における値を１とする相対値で示した。また、培養２１時間後の生育を濁度計にて測定した。結果を表４に示す。生育は、Ｊ１における値を１とする相対値で示した。
【００４９】
〔培地組成〕
スクロース              30g/L
MgSO4・7H2O             1g/L
大豆加水分解液          300mg/L（総窒素量として）
H3PO4                   0.7g/L
(NH4)2SO4               1g/L
ビタミンB6              0.7mg/L
ビタミンB12             0.0１mg/L
FeSO4・7H2O             10mg/L
MnSO4・5H2O             8mg/L
KOH                     1.7g/L
消泡剤                  0.05ml/L
pH6.5
【００５０】
【表４】
2011072191.tif 000006
【００５１】
エシェリヒア・コリの生育はJ1及びJ2で同等であり、微生物に対する炭素源として、乾熱殺菌したスクロースはオートクレーブ殺菌したスクロースと同等であることが示された。また、乾熱殺菌したスクロースは、Ｌ−フェニルアラニン生産の炭素源として好適に使用できることが示された。
【００５２】
〔実施例５〕乾熱殺菌スクロース粉末を用いたＬ−フェニルアラニン生産培養
エシェリヒア・コリK12株から誘導されたＬ−フェニルアラニン生産菌を、実施例４と同様にして（スクロースはオートクレーブ殺菌）培養し、その培養液を5.0V/V%となるように、１Ｌ培養器中の下記組成の主発酵培地250mlに接種し、36℃で振盪培養した（1000rpm）。尚、前記培地において、スクロースとMgSO4・7H2Oは他の成分とは別にオートクレーブし、各成分を混合した後、最終的に滅菌水で所定の液量（250ml）となるようにフィルアップした。
【００５３】
〔主発酵培地〕
スクロース              40g/L
MgSO4・7H2O             2g/L
大豆加水分解液          100mg/L（総窒素量として）
H3PO4                   0.8g/L
(NH4)2SO4               2g/L
ビタミンB6              0.7mg/L
ビタミンB12             0.004mg/L
FeSO4・7H2O             20mg/L
MnSO4・5H2O             20mg/L
KOH                     0.7g/L
消泡剤                  0.02ml/L
pH 7
【００５４】
培養中、スクロースを表５に示すタイミング及び量でフィードした。糖は、培地中に残糖がないことを確認しながらフィードした。表５に記載されたスクロースの量は、累積量である。
【００５５】
培養J-1では、フィード糖として、オートクレーブ殺菌したスクロース溶液（600g/L）を用いた。
培養J-2では、140℃で乾熱殺菌（乾熱滅菌器中、30分）したスクロース粉末（粉末の大きさ 平均1.5mm）を用いた。
培養J-3では、200℃で乾熱殺菌（乾熱滅菌器中、30分）したスクロース粉末（粉末の大きさ 平均1.5mm）を用いた。この200℃で殺菌したスクロースは、全溶解しており、室温にて無菌的に固体化させた後、ハンマーにて細かく破砕し用いた（粉末の大きさ 平均1.5mm）。
【００５６】
【表５】
2011072191.tif 000007
【００５７】
培養３５時間後、培地中のＬ−フェニルアラニン濃度を定量した。結果を表６に示す。Ｌ−フェニルアラニンの対糖収率、生産性（生産速度：単位時間当りの生産量）、収量（最終的な培地中のＬ−フェニルアラニン濃度）、及び最終液量は、各々J-1における値を１とする相対値で示した。
【００５８】
【表６】
2011072191.tif 000008
【００５９】
従来法（J-1）に比べて、本発明の方法（J-2）では、生産性及び収量が向上した。また、過剰殺菌したスクロースを用いた培養（J-3）では、対糖収率、生産性、及び収量のいずれも他の培養に比べて低かった。エシェリヒア・コリの生育は、J-1及びJ-2では同等で
あったが、J3では糖フィード後の生育がJ-1及びJ-2に比べて劣っていた。
【符号の説明】
【００６０】
１  培養器
２  気体供給管
３  泡沫
４  排気管
５  攪拌翼
６  攪拌モーター
７  フィード量調節弁
８  フィード糖添加コントローラー
９  スクリューフィーダー
１０  ホッパー
１１  レベル計（粉面計）
１２  加熱器
１３  定量フィーダー
１４  フィード量調節弁
１５  フィード糖添加コントローラー
１６  バグフィルター
１７  フィード糖移送管
１８  フィード糖貯槽
１９  フィード量調節弁
２０  空気調節弁
２１  コンベア
２２  殺菌室
【図１】
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