(57)【要約】【課題】肝実質細胞に特異的にＲＮＡを送達することができる遺伝子導入剤を提供すること。【解決手段】シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体であって、さらにラクトースで修飾されている上記結合体からなる、肝実質細胞に特異的なＲＮＡ導入剤。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体であって、さらにラクトースで修飾されている上記結合体からなる、肝実質細胞に特異的なＲＮＡ導入剤。
【請求項２】
シクロデキストリンが、α−シクロデキストリンである、請求項１に記載のＲＮＡ導入剤。
【請求項３】
デンドリマーが、ジェネレーション２のデンドリマー（Ｇ２）又はジェネレーション３のデンドリマー（Ｇ３）である、請求項１又は２に記載のＲＮＡ導入剤。
【請求項４】
ＲＮＡがｓｉＲＮＡである、請求項１から３の何れかに記載のＲＮＡ導入剤。
【請求項５】
導入すべきＲＮＡと、請求項１から４の何れかに記載のＲＮＡ導入剤の存在下で細胞をインキュベーションする工程を含む、肝実質細胞にＲＮＡを導入する方法。
【請求項６】
ＲＮＡがｓｉＲＮＡである、請求項５に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ラクトシル基で修飾したシクロデキストリン・デンドリマー結合体からなる肝実質細胞に特異的なＲＮＡ導入剤、及び該結合体を用いて細胞にＲＮＡを導入する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
現在、ｓｈＲＮＡ発現ＤＮＡベクター、ｓｉＲＮＡ、デコイ核酸、アンチセンス核酸などの機能性核酸医薬は様々な病気の革新的治療薬になり得ることから、医薬品分野での期待は大きい。しかし、これらを医薬品化するためには、ドラッグデリバリーシステム（ＤＤＳ）技術が不可欠である。本発明者らは、これまでに、シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体（ＣＤＥ結合体）が、ＤＮＡやＲＮＡのキャリアとして有用であることを明らかにしてきている（特許文献１及び２）。
【０００３】
これまで肝実質細胞特異的に薬物・DNA・RNAを送達するためのキャリアとして、ガラクトースを修飾したリポソーム、同高分子ミセル、同ポリエチレンイミン（JetPEI-hepatocyte）や肝炎ウイルスの表面抗原を修飾したバイオナノカプセルなどが知られているが、これらは調製が煩雑、キャリアの安定性が低い、細胞障害性を有する、エンドソーム透過促進効果を有さず、作用部位へのデリバリー効率が低い、抗体産生などの免疫原性を有するなどの欠点を有する。また、米国のME Davisらはシクロデキストリンを含有するポリマーとトランスフェリン修飾アダマンタン複合体を用いて肝臓胞選択的に、DNAやRNAをデリバリーできる技術を開発し、現在、米国にて臨床試験が進められているが、この複合体の構造は非常に複雑であり、体内環境が変化した場合に、その送達機能を維持できるか否か不明である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】ＷＯ２００６／０９３１０８号公報
【特許文献２】ＷＯ２００５／００７８５０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は、上記した従来技術の問題点を解消することを解決すべき課題とした。即ち、本発明は、肝実質細胞に特異的にＲＮＡを送達することができる遺伝子導入剤を提供することを解決すべき課題とした。さらに本発明は、調製が容易で、キャリアの安定性が高く、細胞障害性が低く、エンドソーム透過促進効果を示し、肝実質細胞へのデリバリー効率が高い遺伝子導入剤を提供することを解決すべき課題とした。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、肝実質細胞に特異的なデリバリーを目的として、シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体（ＣＤＥ結合体）にさらにラクトース（ラクトシル基）を修飾した結合体（Lac-α-CDE結合体）を調製した。Lac-α-CDE結合体は、ＲＮＡとの複合体を形成し、肝実質細胞に選択的かつ高効率でsiRNAなどの機能性RNA医薬を導入できることから、遺伝病、ウイルス性肝疾患などへの治療効果が期待できることを見出した。本発明はこれらの知見に基づいて完成したものである。
【０００７】
すなわち、本発明によれば、以下の発明が提供される。
（１）  シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体であって、さらにラクトースで修飾されている上記結合体からなる、肝実質細胞に特異的なＲＮＡ導入剤。
（２）  シクロデキストリンが、α−シクロデキストリンである、（１）に記載のＲＮＡ導入剤。
（３）  デンドリマーが、ジェネレーション２のデンドリマー（Ｇ２）又はジェネレーション３のデンドリマー（Ｇ３）である、（１）又は（２）に記載のＲＮＡ導入剤。
（４）  ＲＮＡがｓｉＲＮＡである、（１）から（３）の何れかに記載のＲＮＡ導入剤。
（５）  導入すべきＲＮＡと、（１）から（４）の何れかに記載のＲＮＡ導入剤の存在下で細胞をインキュベーションする工程を含む、肝実質細胞にＲＮＡを導入する方法。
（６）  ＲＮＡがｓｉＲＮＡである、（５）に記載の方法。
【発明の効果】
【０００８】
本発明により提供される、シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体であって、さらにラクトースで修飾されている上記結合体からなる肝実質細胞に特異的なＲＮＡ導入剤は、溶液中においてＲＮＡと攪拌するだけで容易に複合体を調製でき、その複合体は肝実質細胞特異性を有する。また、細胞内導入後、シクロデキストリンの働きにより、細胞内バリアーとして働くエンドソーム膜からＲＮＡの放出を促進し、ＲＮＡを効率よく細胞内の作用部位に送達させることができる特性を有する。さらに、本発明で用いる結合体は、従来のキャリアに比べて、細胞障害性や赤血球溶血作用が極めて低いことが特徴である。その上、デンドリマーの種類を変更することにより、細胞タイプに適合したキャリアを構築でき、遊離の環状オリゴ糖（シクロデキストリンなど）の添加により、ＲＮＡの徐放性を付与できるという利点を有する。また、本発明のＲＮＡ導入剤は、in vivo 遺伝子導入用キャリアとしても利用可能であり、静脈内投与が可能である。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】図１は、遺伝子安定発現細胞におけるCarrier/siRNA 複合体の遺伝子発現抑制効果を示す。
【図２】図２は、遺伝子安定発現細胞におけるCarrier/siRNA 複合体の遺伝子発現抑制効果を示す。
【図３】図３は、一過性遺伝子発現細胞におけるCarrier/siRNA 複合体の遺伝子発現抑制効果を示す。
【図４】図４は、一過性遺伝子発現細胞におけるCarrier/siRNA 複合体の遺伝子発現抑制効果を示す。
【図５】図５は、一過性遺伝子発現細胞におけるCarrier/siRNA 複合体の遺伝子発現抑制効果を示す。
【図６】図６は、Alexa Fluor(登録商標)Red Fluorescent Oligo(Invitrogen)を用いてCarrier（JET-PEI-Hepatocyte）による導入効率を確認した結果を示す。
【図７】図７は、Alexa Fluor(登録商標)Red Fluorescent Oligo(Invitrogen)を用いてCarrier（Lipofectamine2000）による導入効率を確認した結果を示す。
【図８】図８は、Alexa Fluor(登録商標)Red Fluorescent Oligo(Invitrogen)を用いてCarrier（α-CDE(G3)）による導入効率を確認した結果を示す。
【図９】図８は、Alexa Fluor(登録商標)Red Fluorescent Oligo(Invitrogen)を用いてCarrier（Lac-α-CDE(G3)）による導入効率を確認した結果を示す。
【図１０】図１０は、Alexa Fluor(登録商標)Red Fluorescent Oligo(Invitrogen)を用いてCarrierによる導入効率を確認した結果を示す。
【図１１】図１１は、Carrier/BLOCK-itTM Alexa Fluor（登録商標）Red Fluorescent Oligo (invitrogen製) Complex をトランスフェクションし、蛍光を有する細胞をフローサイトメーターにて測定し、Mean Fluorescence Intensity (MFI) 値を算出した結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明の実施の形態について詳細に説明する。
（１）シクロデキストリン・デンドリマー結合体
本発明の結合体は、シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体であって、さらにさらにラクトース（ラクトシル基）で修飾されていることを特徴とする。
シクロデキストリン・デンドリマー結合体は、デンドリマーとシクロデキストリンを溶媒中で加熱・混合することにより容易に製造することができる。
【００１１】
（シクロデキストリン）
シクロデキストリン・デンドリマー結合体を構成するシクロデキストリンは、α、β、またはγシクロデキストリンである。これらα、β、またはγシクロデキストリンは、化学修飾型または非修飾型のシクロデキストリンであることもできる。これらα、β、またはγシクロデキストリンは市販品を容易に入手できる。本発明ではこれらのうちα−シクロデキストリンを用いることが、その導入剤としての効果が最も優れているため、好ましい。
【００１２】
シクロデキストリンはその水酸基の一部もしくは全部がアセチル化されていてもよく、またはグルコース、マンノース、サッカロース等の糖で修飾されていてもよい。これらの修飾剤と、シクロデキストリンとの反応は、両者を例えば水溶液にし、加熱・攪拌することにより製造することができる。導入剤として用いる場合は、変性しない方が導入効率が高いため好ましい。
【００１３】
（デンドリマー）
本発明で用いられるシクロデキストリン・デンドリマー結合体のひとつの構成成分であるデンドリマー (Dendrimer)は、アンモニアあるいはエチレンジアミンをコア分子とし、その分子にマイケル付加反応でアクリル酸メチルおよびエチレンジアミンを付加し、この反応を繰り返すこと (Generation) により得られる高度に枝分かれした樹枝状構造を特徴とし、その末端に多数の一級アミノ基を有した新しいタイプの合成ポリマーである。本発明で用いるデンドリマーとしては、ポリアミドアミン型であることが好ましい。
【００１４】
ポリアミドアミン型デンドリマーは、アンモニアにアクリル酸メチルとエチレンジアミンとを反応させて（アンモニア：アクリル酸メチル：エチレンジアミン＝１：３：３（モル比））、ジェネレーション０（Ｇ０）と呼ばれる中心核を合成する。ジェネレーション０はアンモニアに由来する窒素の周りに、アクリル酸メチルとエチレンジアミンの縮合体（アミドアミン）が３つ結合した形を有する。ジェネレーション０（Ｇ０）のアミドアミンの末端にエチレンジアミンの一方のアミノ基が存在する。そこで、この中心核（ジェネレーション０（Ｇ０））にアクリル酸メチル：エチレンジアミン＝３：３（モル比）を反応させることで、上記アミドアミンの末端のアミノ基に２つのアクリル酸メチルとエチレンジアミンの縮合体（アミドアミン）が結合する。このようにＧ０のアミノ基由来の窒素に２つのアクリル酸メチルとエチレンジアミンの縮合体（アミドアミン）が結合したものは、ジェネレーション１（Ｇ１）と呼ばれる。このようにして順次、アクリル酸メチルとエチレンジアミンの縮合体を結合させていくことで、ジェネレーション２、３、４、５、６（Ｇ２、Ｇ３、Ｇ４、Ｇ５、Ｇ６）が得られる。この状態を下記の反応スキームに示す。
【００１５】
【化１】
2011103811.tif 000002
【００１６】
ポリアミドアミン型デンドリマーは、市販さており、市販品を容易に入手できる。本発明の結合体に用いるデンドリマーは、ポリアミドアミン型デンドリマーであれば特に制限はないが、例えば、G2又はG3に属するものであることができる。
【００１７】
デンドリマー・シクロデキストリン結合体は、デンドリマーとシクロデキストリンとを混合し、水性媒体の存在下で加熱攪拌するというわずか2段階の反応で合成できることから、市販のＲＮＡ導入剤に比べコスト的に有利であると考えられる。
【００１８】
本発明で用いるシクロデキストリン・デンドリマー結合体におけるシクロデキストリンとデンドリマーとのモル比は通常１：１〜１０：１、好ましくは１：１〜５：１程度であることが好ましい。
【００１９】
シクロデキストリン・デンドリマー結合体は、後述の実施例で示すように、トシル化シクロデキストリンとデンドリマーとを加温条件下で数時間反応させることで合成できる。トシル化（トルエンスルホニル化）シクロデキストリンは、ｐ−トルエンスルホニルクロライドとシクロデキストリンとをピリジン中で反応させることで得られる。
【００２０】
本発明で用いるラクトシル基で修飾したシクロデキストリン・デンドリマー結合体は、上記のようにして得られたシクロデキストリン・デンドリマー結合体を、さらに、ラクトース（ラクトシル基）で修飾することによって製造することができる。また、ラクトシル基で修飾したシクロデキストリン・デンドリマー結合体におけるデンドリマーとラクトシル基とのモル比はデンドリマーのジェネレーション数が高くなると上昇するため、一概に規定できないが、例えばＧ３の場合、通常１：１〜１０：１、好ましくは１：１〜１：５程度であることが好ましい。
【００２１】
シクロデキストリン・デンドリマー結合体を、ラクトース（ラクトシル基）で修飾するためには、シクロデキストリン・デンドリマー結合体とラクトース１水和物と水素化シアノほう素ナトリウムをホウ酸緩衝液（pH 7.5）に溶解後、室温で攪拌し、反応物をゲル濾過する。ラクトシル基で修飾したシクロデキストリン・デンドリマー結合体を含む画分を濃縮後、濃縮液を水に再溶解した後、エタノール沈殿を行い、最後にエタノールを留去後本品を得る。
【００２２】
本発明で用いるラクトシル基で修飾したシクロデキストリン・デンドリマー結合体の構造の一例を以下に示す。
【００２３】
【化２】
2011103811.tif 000003
【００２４】
（２）ＲＮＡ導入剤及びＲＮＡ導入方法
上記したシクロデキストリンとデンドリマーとの結合体であって、さらにラクトースで修飾されている上記結合体は、細胞にＲＮＡを効率的に導入するためのＲＮＡ導入剤として用いることができる。
【００２５】
本発明によるＲＮＡの導入方法は、導入すべきＲＮＡと、シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体であってさらにラクトースで修飾されている結合体とを、細胞とともにインキュベーションすることによって行うことができる。
【００２６】
本発明のＲＮＡ導入剤は、特に、肝実質細胞に対して、ＲＮＡを導入する働きを有する。本発明のＲＮＡ導入剤は、特にｓｉＲＮＡの導入剤として有効である。ｓｉＲＮＡ（small interfering RNA）とは、重合度が２０前後（例えば、１８〜２３塩基程度）の低重合度のＲＮＡで、そのＲＮＡを導入することによりＲＮＡの発現を阻害する働きを有するＲＮＡである。ｓｉＲＮＡは通常、二本鎖からなっている。なお、ｓｉＲＮＡは、哺乳動物細胞系でも細胞毒性を示さずにＲＮＡｉを誘導できることが実証されている(Elbashir SM et al：Nature(2001)411:494-498)。
【００２７】
本発明のＲＮＡ導入方法では、導入すべきＲＮＡと、シクロデキストリンとデンドリマーとの結合体であってさらにラクトースで修飾されている結合体の存在下で細胞をインキュベーションする。例えば、RNAを導入すべき細胞を含有する培地０．５〜１ｍｌ（細胞量約２×１０5個）に、導入すべきRNAを含有する溶液と上記結合体を含有する溶液を添加する。導入すべきRNAを含有する溶液は、例えば、siRNA濃度が５ｎＭ〜１０μＭ、好ましくは１０ｎＭ〜１μＭ、より好ましくは２０ｎＭ〜５００ｎＭとなるように添加し、上記結合体含有溶液は、例えば、上記結合体が１ｍＭとなるように添加することができる。添加後、約２４時間インキュベートすることにより、トランスフェクションすることができる。RNAを導入すべき細胞を含有する培地の種類や量は、使用する細胞に応じて適宜決定することができ、また、RNA、及びラクトースで修飾されているシクロデキストリン・デンドリマー結合体の添加量やインキュベーション時間も適宜変化させることができる。
【００２８】
以下に実施例を挙げて本発明につき更に詳しく説明するが、本発明はこれらの実施例になんら制約されるものではない。
【実施例】
【００２９】
（使用材料）
（１）pGL3はプロメガ（株）製を用いた。
【００３０】
（２）siRNA
ｓｉＧＬ２はB-Bridge International, Inc.製を使用した。
sense : 5'-CGUACGCGGAAUACUUCGA dTdT -3'(配列番号１)
antisense ：5'-dTdT GCAUGCGCCUUAUGAAGCU -3' (配列番号２)
ｓｉＧＬ３はB-Bridge International, Inc. 製を使用した。
sense : 5'-CUUACGCUGAGUACUUCGA dTdT -3' (配列番号３)
antisense ：5'-dTdT GAAUGCGACUCAUGAAGCU -3' (配列番号４)
【００３１】
（３）α-CDE (G2)の製造
α-シクロデキストリンは日本食品化工(株)から恵与されたものを使用した。デンドリマーはSigma-Aldrich Chemical, Inc. 製のStarburst（登録商標） (PAMAM)dendrimerを使用した。メタノールで水分を共沸除去した乾燥α−シクロデキストリン8 gを無水ピリジン500 mL に溶解後、冷却、攪拌しながらp−トルエンスルホニルクロライド12 gを加え、室温で2時間攪拌した。反応溶液に水を注ぎ込み反応を停止させた後、減圧濃縮し、アセトン1 L を添加して析出した沈殿物濾取し、吸着クロマトグラフィーを用いて分離、精製し、トシル化α-シクロデキストリンを得た。(多孔質ポリスチレン樹脂 (MITSUBISHI CHEMICAL 製 DIAION（登録商標）HP-20); 溶離液:メタノール/水＝0/100 → 100/0)。得られたトシル化α−シクロデキストリン 26 mg およびDMSO 0.5 mL を減圧下でメタノールを除去したデンドリマー 0.5 mL に添加し、窒素置換後、60℃で24時間攪拌した。反応物をTOYOPERL HW−55S を用いてゲルろ過した。α−CDE を含むフラクションを濃縮後、濃縮液を 0.5 mL の水に再溶解し、メタノール 3 mL を加えて十分に白濁するまで混和した。沈殿物を含む溶液を 10,000 rpm (9,840 x g) 、30 分間遠心後、上清のエタノールを取り除き、再びエタノール 10 mL を添加してよく混和した。同様に遠心分離し、上清を取り除いた後、水に再溶解させ、凍結乾燥し、α−CDE (G2)を得た。
【００３２】
（４）α-CDE (G3)の製造
α-シクロデキストリンは日本食品化工(株)から恵与されたものを使用した。デンドリマーはSigma-Aldrich Chemical, Inc. 製のStarburst（登録商標） (PAMAM)dendrimerを使用した。メタノールで水分を共沸除去した乾燥α−シクロデキストリン8 gを無水ピリジン500 mL に溶解後、冷却、攪拌しながらp−トルエンスルホニルクロライド6 gを加え、室温で2時間攪拌した。反応溶液に水を注ぎ込み反応を停止させた後、減圧濃縮し、アセトン1 L を添加して析出した沈殿物濾取し、吸着クロマトグラフィーを用いて分離、精製し、トシル化α-シクロデキストリンを得た。(多孔質ポリスチレン樹脂 (MITSUBISHI CHEMICAL 製 DIAION（登録商標）HP-20); 溶離液:メタノール/水＝0/100 → 100/0)。得られたトシル化α−シクロデキストリン 26 mg およびDMSO 0.5 mL を減圧下でメタノールを除去したデンドリマー 0.5 mL に添加し、窒素置換後、60℃で24時間攪拌した。反応物をTOYOPERL HW−55S を用いてゲルろ過した。α−CDE を含むフラクションを濃縮後、濃縮液を 0.5 mL の水に再溶解し、エタノール 10 mL を加えて十分に白濁するまで混和した。沈殿物を含む溶液を 10,000 rpm (9,840 x g) 、30 分間遠心後、上清のエタノールを取り除き、再びエタノール 10 mL を添加してよく混和した。同様に遠心分離し、上清を取り除いた後、水に再溶解させ、凍結乾燥し、α−CDE (G3) を得た。
【００３３】
（５）Lac-α-CDE (G2)の製造
α-CDE (G2) 22.1 mg を試験管に加えた後、lactose monohydrate 9 mg と sodium cyanotrihydroborate 15.7 mg を 0.2 M borate buffer (pH 7.5) に溶解後、室温で 3 時間攪拌した。反応物を TOSOH TskGel HW-40S (5.3 cm2 x 70 cm、溶出液: 0.1M ammonium hydroxycarbonate) を用いてゲルろ過した。Lac-a-CDE 結合体 (G2) を含むフラクションを濃縮後、濃縮液を 0.5 mL の水に再溶解し、エタノール 3 mL を加えて十分に白濁するまで混和した。沈殿物を含む溶液を 1,500 rpm、15 分間遠心分離後、上清のエタノールを取り除き、再びエタノール 3 mL を添加してよく混和した。同様に遠心分離し、上清を取り除いた後、残渣中のエタノールを試験管エバポレーターにより完全に留去し、Lac-α-CDE (G2) を得た。
【００３４】
（６）Lac-α-CDE (G3)の製造
α-CDE (G3) 20.6 mg を試験管に加えた後、lactose monohydrate 4 mg と sodium cyanotrihydroborate 7.1 mg を 0.2 M borate buffer (pH 7.5) に溶解後、室温で 3 時間攪拌した。反応物を TOSOH TskGel HW-40S (5.3 cm2 x 70 cm、溶出液: 0.1M ammonium hydroxycarbonate) を用いてゲルろ過した。Lac-a-CDE 結合体 (G3) を含むフラクションを濃縮後、濃縮液を 0.5 mL の水に再溶解し、エタノール 3 mL を加えて十分に白濁するまで混和した。沈殿物を含む溶液を 1,500 rpm、15 分間遠心分離後、上清のエタノールを取り除き、再びエタノール 3 mL を添加してよく混和した。同様に遠心分離し、上清を取り除いた後、残渣中のエタノールを試験管エバポレーターにより完全に留去し、Lac-α-CDE (G3) を得た。
【００３５】
実施例１：
細胞 : NIH3T3-luc
プレート : 24 well plate
検討キャリア : α-CDE(G2), α-CDE(G3), Lac-α-CDE(G3)
チャージ比 : 50
siRNA 量 : 400 ng, 800 ng
最終 siRNA 濃度 : 100 nM, 200 nM
【００３６】
（方法）
24 well plate に 1.0 x 105 cells/well で NIH3T3-luc 細胞を播種し、6時間インキュベーションした。
Carrier/siRNA Complex をトランスフェクション(チャージ比 50) (siRNA 400ng(最終siRNA濃度100nM)、又は800ng(最終siRNA濃度200nM))し、3時間インキュベーションした。その後、FCS 30 μL 添加し、21時間インキュベーションした。PBS(-) 300 μL で 洗浄し、5 倍希釈した細胞溶解剤（Reporter Lysis Buffer） 200 μLを添加し、15分間インキュベーション (室温)した。−80℃で凍結融解を３回行った、遠心 (10000 rpm, 5 min)し、上清100 μLを採取し、エッペンに添加し、Luciferase activityを 測定し、タンパク補正 (BCA protein assay)を行った。
【００３７】
（結果）
結果を図１及び図２に示す。図１の結果について、siGL2/carrier の RLU をそれぞれ 100% として計算し直した結果を図２に示す。図１及び図２の結果から分かるように、siGL2, siGL3 (各 800 ng)単独投与においても RLU の低下が観察されたが、本発明のキャリアを用いた系においてはより遺伝子抑制効果が観察された。
【００３８】
実施例２：
細胞 : HepG2
プレート : 24 well plate
検討キャリア : α-CDE(G2), Lac-α-CDE(G2), Lac-α-CDE(G3), Lipofectamine TM2000
チャージ比 : 50
siRNA 量 : 400 ng, 800 ng
最終 siRNA 濃度 : 100 nM, 200 nM
【００３９】
（方法）
24 well plate に 1.0 x 105 cells/well でHepG2細胞を播種し、6時間インキュベーションした。α-CDE (G2)/pGL3 Complex 200 μL をトランスフェクション (チャージ比 30, pGL3 2.0 μg/well)し、１時間インキュベーションした。無血清培地で洗浄し、１時間インキュベーションした。Carrier/siRNA Complex をトランスフェクション (siRNA 400ng(最終siRNA濃度100nM)、又は800ng(最終siRNA濃度200nM))し、3時間インキュベーションした。FCS 30 μL 添加し、21時間インキュベーションした。PBS(-) 300 μL で 洗浄し、5 倍希釈した細胞溶解剤（Reporter Lysis Buffer） 200 μLを添加し、15分間インキュベーション (室温)した。−80℃で凍結融解を３回行った、遠心 (10000 rpm, 5 min)し、上清100 μLを採取し、エッペンに添加し、Luciferase activityを 測定し、タンパク補正 (BCA protein assay)を行った。
【００４０】
（結果）
結果を図３及び図４に示す。図３及び図４の結果から分かるように、Lac-α-CDE(G2)、 Lac-α-CDE(G3)、及びLipofectamineTM2000において、 RNAi 効果が観察された。
【００４１】
実施例３：
細胞 : HepG2
プレート : 24 well plate
検討キャリア : α-CDE(G2), α-CDE(G3), Lac-α-CDE(G2), Lac-α-CDE(G3), Lipofectamine 
チャージ比 : 50
siRNA 量 : 80 ng, 400 ng, 800 ng
最終 siRNA 濃度 : 20 nM, 100 nM, 200 nM
【００４２】
検討キャリアとしてα-CDE(G2), α-CDE(G3), Lac-α-CDE(G2), Lac-α-CDE(G3), Lipofectamine TM2000 を使用し、siRNA 量を80 ng、400 ng及び800 ngとして、実施例２と同様の方法で実験を行った。結果を図５に示す。
【００４３】
実施例４：
（方法）
24 well plate に 1.0 x 105 cells/well でHepG2細胞を播種し、24時間インキュベーションした。無血清培地で洗浄し、Carrier/BLOCK-itTM Alexa Fluor（登録商標） Red Fluorescent Oligo (invitrogen製) Complex をトランスフェクション (siRNA 400 ng(最終siRNA濃度100nM)し、3時間インキュベーションした。FCS 30 μL 添加し、21時間インキュベーションした。その後、蛍光顕微鏡にて蛍光を観察した。Jet-PEI-Hepatocyte （PolyFect製）添加量は1.28μl, 2.56μl, 3.84μlを用いた。 Lipofectamine TM2000は1μl, 2μl, 3μlを用いた。a-CDE (G3)およびLac-a-CDE (G3) はチャージ比（carrier/siRNA）20, 50, 100を用いた。
【００４４】
（結果）
結果を図６から図１０に示す。
Jet-PEI-Hepatocyte/siRNA複合体では３種の添加量のいずれにおいてもsiRNAの細胞取込みは観察されなかった（図６）。Lipofectamine TM2000/siRNA複合体は添加量の増加につれて、siRNAの細胞内への取り込みが観察された（図７）。a-CDE (G3)/siRNA複合体（図８）およびLac-a-CDE (G3)/siRNA複合体（図９）はチャージ比50において、siRNAの高い細胞取り込みが認められた。これらの結果をまとめたものを図10に示す。
【００４５】
実施例５：
（方法）
24 well plate に 1.0 x 105 cells/well でHepG2細胞を播種し、24時間インキュベーションした。無血清培地で洗浄し、Carrier/BLOCK-itTM Alexa Fluor（登録商標）Red Fluorescent Oligo (invitrogen製) Complex をトランスフェクション (siRNA 400 ng(最終siRNA濃度100nM)し、3時間インキュベーションした。FCS 30 μL 添加し、21時間インキュベーションした。その後、蛍光を有する細胞をフローサイトメーターにて測定し、Mean Fluorescence Intensity (MFI) 値を算出した。Jet-PEI-Hepatocyte （PolyFect製）添加量は1.28 μl, 2.56 μl, 3.84μlを用いた。 Lipofectamine TM2000は1μl, 2μl, 3μlを用いた。a-CDE (G3)およびLac-a-CDE (G3) はチャージ比（carrier/siRNA）20, 50, 100を用いた。
【００４６】
（結果）
結果を図１１に示す。Jet-PEI-Hepatocyte/siRNA複合体では３種の添加量のいずれにおいても低いFMI値を示し、siRNAの細胞取込みは認められなかった。Lipofectamine TM2000/siRNA複合体は添加量の増加につれて、FMI値が増大し、siRNAの細胞内への取り込みが観察された。a-CDE (G3)/siRNA複合体（図８）およびLac-a-CDE (G3)/siRNA複合体（図９）はチャージ比50において、高いMFI値が得られ、siRNAの高い細胞取り込みが認められた。これらの結果は図６から図１０に示す蛍光顕微鏡での観察結果とよく一致した。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【配列表】
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