(57)【要約】      （修正有）【課題】ユーカリ属植物等の植物を挿し木増殖させる際に、発根の容易さを判定できる方法を提供する。【解決手段】特定の塩基配列からなる核酸等の核酸；特定のアミノ酸配列からなるタンパク質等のタンパク質；前記核酸の全部または一部に対して相補的な核酸プローブ、前記核酸に対するセンスプライマーおよびアンチセンスプライマーのセット、前記タンパク質に対する抗体；前記核酸の発現を抑制するアンチセンス核酸およびｓｉＲＮＡ；植物の組織片において、前記核酸に対応するｍＲＮＡの発現量、あるいは前記タンパク質の発現量を測定することを含む、植物の発根能の判定方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸：
（ａ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列からなる核酸；
（ｂ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列を含む核酸；
（ｃ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列において、塩基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個の塩基の変異を含む塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；
（ｄ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列と９０％以上の同一性を有する塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；ならびに
（ｅ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列に対して相補的な塩基配列を含む核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸。
【請求項２】
以下の（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸：
（ａ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列からなる核酸；
（ｂ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列を含む核酸；
（ｃ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列において、塩基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個の塩基の変異を含む塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；
（ｄ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列と９０％以上の同一性を有する塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；ならびに
（ｅ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列に対して相補的な塩基配列からなる核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸。
【請求項３】
以下の（Ａ１）〜（Ｅ１）からなる群より選ばれるタンパク質：
（Ａ１）配列番号２に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質；
（Ｂ１）配列番号２に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質；
（Ｃ１）配列番号２に示されるアミノ酸配列において、アミノ酸残基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個のアミノ酸残基の変異を含むアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；
（Ｄ１）配列番号２に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；ならびに
（Ｅ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）のいずれかの核酸によりコードされるタンパク質。
【請求項４】
以下の（Ａ２）〜（Ｅ２）からなる群より選ばれるタンパク質：
（Ａ２）配列番号４に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質；
（Ｂ２）配列番号４に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質；
（Ｃ２）配列番号４に示されるアミノ酸配列において、アミノ酸残基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個のアミノ酸残基の変異を含むアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；
（Ｄ２）配列番号４に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；ならびに
（Ｅ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）のいずれかの核酸によりコードされるタンパク質。
【請求項５】
以下の（ｆ１）〜（ｈ１）からなる群より選ばれる物質またはセット：
（ｆ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な核酸プローブ；
（ｇ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンスプライマー、および前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の一部に対して相補的なアンチセンスプライマーのセット；ならびに
（ｈ１）前記（Ａ１）〜（Ｅ１）からなる群より選ばれるタンパク質に対する抗体。
【請求項６】
以下の（ｆ２）〜（ｈ２）からなる群より選ばれる物質またはセット：
（ｆ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な核酸プローブ；
（ｇ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンスプライマー、および前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の一部に対して相補的なアンチセンスプライマーのセット；ならびに
（ｈ２）前記（Ａ２）〜（Ｅ２）からなる群より選ばれるタンパク質に対する抗体。
【請求項７】
以下の（ｉ１）または（ｊ１）の核酸：
（ｉ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な塩基配列からなる、アンチセンス核酸；または
（ｊ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンス鎖、および該センス鎖に相補的な核酸配列からなるアンチセンス鎖を含む、ｓｉＲＮＡ。
【請求項８】
以下の（ｉ２）または（ｊ２）の核酸：
（ｉ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な塩基配列からなる、アンチセンス核酸；または
（ｊ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンス鎖、および該センス鎖に相補的な核酸配列からなるアンチセンス鎖を含む、ｓｉＲＮＡ。
【請求項９】
植物の組織片において、請求項１または請求項２に記載の核酸に対応するｍＲＮＡの発現量、あるいは請求項３または請求項４に記載のタンパク質の発現量を測定することを含む、植物の発根能の判定方法。
【請求項１０】
前記植物の組織片が、木本植物の組織片である、請求項９に記載の植物の発根能の判定方法。
【請求項１１】
請求項１および／または請求項２に記載の核酸を含む発現ベクター。
【請求項１２】
請求項１および／または請求項２に記載の核酸、あるいは請求項１１に記載の発現ベクターが導入された形質転換体。
【請求項１３】
請求項７および／または請求項８に記載の核酸を含む発現ベクター。
【請求項１４】
請求項７および／または請求項８に記載の核酸、あるいは請求項１３に記載の発現ベクターが導入された形質転換体。
【請求項１５】
前記形質転換体が木本植物である、請求項１２または請求項１４に記載の形質転換体。
【請求項１６】
請求項７および／または請求項８に記載の核酸、あるいは請求項１３に記載の発現ベクターを植物に導入することを含む、植物の発根能を向上させる方法。
【請求項１７】
請求項７および／または請求項８に記載の核酸、あるいは請求項１３に記載の発現ベクターが導入された形質転換細胞から植物を生育させることを含む、植物の発根能を向上させた植物の作出方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、植物の不定根形成に関与する核酸およびタンパク質、並びにこれらの用途に関する。
【背景技術】
【０００２】
植物をクローン増殖させる場合、一般的に挿し木による方法が用いられる。挿し木とは、枝、根または葉を親株（母樹）から切り離し、挿し穂として苗床に挿して発根、発芽させて苗木を作る技術である。このような挿し木技術は、優良な植物から優良な苗木を大量に生産する技術として木本植物の繁殖において一般に行われている。挿し木技術において、対象とする木本性植物で発根が困難な場合は、発根促進剤としてナフタレン酢酸（ＮＡＡ）、インドール酢酸（ＩＡＡ）、インドール酪酸（ＩＢＡ）等の植物ホルモン系物質（オーキシン）を切断した枝基部に処理した後、挿し木増殖を行うなどの方法が行われている。
【０００３】
例えば、特許文献１には、クスノキの挿し穂をオーキシンで前処理することにより根の形成を促進する方法が記載されている。しかし、前記方法を用いても樹種および品種によっては発根が困難な樹種もある。これら発根が極めて困難な樹種においては、未だ実用的な発根促進剤の開発あるいは発根方法に至ってない。発明者らは、炭酸ガス濃度を通常の２−５倍に高めることによって発根率を上昇させる方法を開発した（特許文献２）。この方法と前記のオーキシンを添加した方法の組み合わせによって、難発根な樹種で知られるユーカリ・グロビュラス（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｇｌｏｂｕｌｕｓ）でも発根率の上昇が確認されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開平１０−１９１７７６号公報
【特許文献２】特許第３８６１５４２号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
しかしながら、特許文献１および特許文献２に記載の方法でも、発根率が充分とはいえない。
【０００６】
したがって、本発明の目的は、ユーカリ属植物等の植物を挿し木増殖させる場合などにおいて、発根率に優れた系統を選別するために、発根の容易さを判定できる方法を提供することである。
また、本発明の目的は、植物の発根能を向上させ、その発根率を向上させることにより、クローン苗、特に発根能が低い植物種に属するクローン苗の生産性を向上させることを目的する。さらに、クローン苗の大量かつ迅速な生産を可能として、その産業的利用に途を開くことを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記課題を解決するため鋭意研究を行った結果、不定根形成に関与すると考えられる新規遺伝子を同定することに成功した。本発明者らはまた、この遺伝子の発現レベルを測定することによって、発根率を予測できることなどを見出し、本発明を完成するに至った。
【０００８】
すなわち、本発明は、以下のとおりである。
〔１〕以下の（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸：
（ａ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列からなる核酸；
（ｂ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列を含む核酸；
（ｃ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列において、塩基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個の塩基の変異を含む塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；
（ｄ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列と９０％以上の同一性を有する塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；ならびに
（ｅ１）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列に対して相補的な塩基配列を含む核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸。
〔２〕以下の（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸：
（ａ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列からなる核酸；
（ｂ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列を含む核酸；
（ｃ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列において、塩基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個の塩基の変異を含む塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；
（ｄ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列と９０％以上の同一性を有する塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；ならびに
（ｅ２）配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列に対して相補的な塩基配列からなる核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸。
〔３〕以下の（Ａ１）〜（Ｅ１）からなる群より選ばれるタンパク質：
（Ａ１）配列番号２に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質；
（Ｂ１）配列番号２に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質；
（Ｃ１）配列番号２に示されるアミノ酸配列において、アミノ酸残基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個のアミノ酸残基の変異を含むアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；
（Ｄ１）配列番号２に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；ならびに
（Ｅ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）のいずれかの核酸によりコードされるタンパク質。
〔４〕以下の（Ａ２）〜（Ｅ２）からなる群より選ばれるタンパク質：
（Ａ２）配列番号４に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質；
（Ｂ２）配列番号４に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質；
（Ｃ２）配列番号４に示されるアミノ酸配列において、アミノ酸残基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個のアミノ酸残基の変異を含むアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；
（Ｄ２）配列番号４に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；ならびに
（Ｅ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）のいずれかの核酸によりコードされるタンパク質。
〔５〕以下の（ｆ１）〜（ｈ１）からなる群より選ばれる物質またはセット：
（ｆ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な核酸プローブ；
（ｇ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンスプライマー、および前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の一部に対して相補的なアンチセンスプライマーのセット；ならびに
（ｈ１）前記（Ａ１）〜（Ｅ１）からなる群より選ばれるタンパク質に対する抗体。
〔６〕以下の（ｆ２）〜（ｈ２）からなる群より選ばれる物質またはセット：
（ｆ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な核酸プローブ；
（ｇ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンスプライマー、および前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の一部に対して相補的なアンチセンスプライマーのセット；ならびに
（ｈ２）前記（Ａ２）〜（Ｅ２）からなる群より選ばれるタンパク質に対する抗体。
〔７〕以下の（ｉ１）または（ｊ１）の核酸：
（ｉ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な塩基配列からなる、アンチセンス核酸；または
（ｊ１）前記（ａ１）〜（ｅ１）からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンス鎖、および該センス鎖に相補的な核酸配列からなるアンチセンス鎖を含む、ｓｉＲＮＡ。
〔８〕以下の（ｉ２）または（ｊ２）の核酸：
（ｉ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な塩基配列からなる、アンチセンス核酸；または
（ｊ２）前記（ａ２）〜（ｅ２）からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンス鎖、および該センス鎖に相補的な核酸配列からなるアンチセンス鎖を含む、ｓｉＲＮＡ。
〔９〕植物の組織片において、上記〔１〕または〔２〕の核酸に対応するｍＲＮＡの発現量、あるいは上記〔３〕または〔４〕のタンパク質の発現量を測定することを含む、植物の発根能の判定方法。
〔１０〕前記植物の組織片が、木本植物の組織片である、上記〔９〕の植物の発根能の判定方法。
〔１１〕上記〔１〕および／または〔２〕の核酸を含む発現ベクター。
〔１２〕上記〔１〕および／または〔２〕の核酸、あるいは上記〔１１〕の発現ベクターが導入された形質転換体。
〔１３〕上記〔７〕および／または〔８〕の核酸を含む発現ベクター。
〔１４〕上記〔７〕および／または〔８〕の核酸、あるいは上記〔１３〕の発現ベクターが導入された形質転換体。
〔１５〕前記形質転換体が木本植物である、上記〔１２〕または上記〔１４〕の形質転換体。
〔１６〕上記〔７〕および／または〔８〕の核酸、あるいは上記〔１３〕の発現ベクターを植物に導入することを含む、植物の発根能を向上させる方法。
〔１７〕上記〔７〕および／または〔８〕の核酸、あるいは上記〔１３〕の発現ベクターが導入された形質転換細胞から植物を生育させることを含む、植物の発根能を向上させた植物の作出方法。
【発明の効果】
【０００９】
本発明の核酸およびタンパク質は、植物の不定根形成に関与しており、その発現量を測定することにより、植物の発根能を判定することが可能となる。これにより、実際に発根試験をすることなく、植物の発根能を迅速に予測することができる。
また、本発明の核酸およびタンパク質は、植物の不定根形成の抑制に関与しており、その発現量を抑制することにより、植物の発根能を向上することが可能となり、クローン苗の生産性を向上させることができる。従って、本発明は、植物の発根能が向上した植物を大量かつ迅速に得ることが可能となり、その産業的利用に途を開くものである。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】図１は、ユーカリ・グロビュラス易発根クローンＡおよびユーカリ・グロビュラス難発根クローンＢのそれぞれにおける、発根処理直後（０ｄ）および処理後４日後（４ｄ）のＥｇｌＰ４５０−１０１およびＥｇｌＰ４５０−１２１の発現量を示す図である。
【図２】図２は、ユーカリ・グロビュラス１０系統の発根率と、ＥｇｌＰ４５０−１０１遺伝子の発現量との相関を示す図である。
【図３】図３は、ユーカリ・グロビュラス１０系統の発根率と、ＥｇｌＰ４５０−１２１遺伝子の発現量との相関を示す図である。
【図４】図４は、ＥｇｌＰ４５０−１０１遺伝子の塩基配列（配列番号１における塩基番号４６〜８３２の塩基配列：上段）と、ＣＹＰ８３Ｂ１遺伝子の塩基配列（配列番号５における塩基番号１〜７６６の塩基配列：下段）とのアライメントを示す図である。配列番号１に示されるＰ４５０−１０１遺伝子の塩基配列は、既知の配列のうち、配列番号５に示されるＣＹＰ８３Ｂ１遺伝子の塩基配列に対して、高い同一性（５５％の同一性）を示す。
【図５】図５は、ＥｇｌＰ４５０−１０１遺伝子の塩基配列（配列番号１における塩基番号８３３〜１５３９の塩基配列：上段）と、ＣＹＰ８３Ｂ１遺伝子の塩基配列（配列番号５における塩基番号７６７〜１５００の塩基配列：下段）とのアライメントを示す図である。
【図６】図６は、ＥｇｌＰ４５０−１２１遺伝子の塩基配列（配列番号３における塩基番号３４６〜１１１１の塩基配列：上段）と、ＣＹＰ８３Ｂ１遺伝子の塩基配列（配列番号５における塩基番号１〜７４１の塩基配列：下段）とのアライメントを示す図である。配列番号３に示されるＥｇｌＰ４５０−１２１遺伝子の塩基配列は、既知の配列のうち、配列番号５に示されるＣＹＰ８３Ｂ１遺伝子の塩基配列に対して、高い同一性（５３％の同一性）を示す。
【図７】図７は、ＥｇｌＰ４５０−１２１遺伝子の塩基配列（配列番号３における塩基番号１１１２〜１８３９の塩基配列：上段）と、ＣＹＰ８３Ｂ１遺伝子の塩基配列（配列番号５における塩基番号７４２〜１５００の塩基配列：下段）とのアライメントを示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
１．植物の不定根形成に関与する核酸およびタンパク質、発現ベクターおよび形質転換体
本発明は、以下の（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸を提供する：
（ａ）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列、あるいは配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列からなる核酸；
（ｂ）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列、あるいは配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列を含む核酸；
（ｃ）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列、あるいは配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列において、塩基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個の塩基の変異を含む塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；
（ｄ）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列、あるいは配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列と９０％以上の同一性を有する塩基配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸；ならびに
（ｅ）配列番号１に示される塩基配列、または配列番号１における塩基番号４６〜１５４２の塩基配列、あるいは配列番号３に示される塩基配列、または配列番号３における塩基番号３４６〜１８４２の塩基配列に対して相補的な塩基配列からなる核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与する核酸。
【００１２】
本明細書中で用いられる場合、用語「核酸」とは、ＤＮＡまたはＲＮＡを意味する。
【００１３】
本発明の核酸は、Ｐ４５０酵素をコードする。Ｐ４５０遺伝子は、シトクロムＰ４５０と呼ばれる酵素をコードし、微生物から植物、動物まで生物界に広く分布する一群のヘムタンパク質であり、還元型で一酸化炭素と結合して４５０ｎｍに極大を持つ特徴的な吸収スペクトルを示す。Ｐ４５０酵素は、モノオキシゲナーゼ様式の酸素添加酵素活性を有し、触媒する反応の基質特異性が異なる極めて多数の分子種の存在が知られているが、タンパク質の一次構造と高次構造の比較からＰ４５０は一つの共通祖先遺伝子から生物進化の過程で分化し、多様化した遺伝子ファミリーであると考えられている。植物においてもＰ４５０遺伝子は存在し、ゲノムプロジェクトの終了したシロイヌナズナＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａで２７３個存在し、イネＯｒｙｚａ  ｓａｔｉｖａでも４５８個が認められ、線虫Ｃａｅｎｏｒｈａｂｄｉｔｉｓ  ｅｌｅｇａｎｓの８３個、ショウジョウバエＤｒｏｓｏｐｈｙｌａ  ｍｅｌａｎｏｇａｓｔｅｒの８９個、ヒトＨｏｍｏ  ｓａｐｉｅｎｓの５７個などと比較しても、高等植物のＰ４５０の数は際立って多い。Ｐ４５０遺伝子は、植物において、二次代謝、除草剤の代謝の他、成長分化の制御などの多くの機能に関与することが知られている。本発明の核酸は、不定根形成に関与し得るＰ４５０酵素をコードする。
【００１４】
一実施形態では、本発明の核酸は、上記（ａ）の塩基配列において、１または数個の塩基の変異を含む塩基配列を含み得る。１または数個の塩基の変異としては、１〜１５０個の塩基の変異が挙げられるが、１〜１００個の塩基の変異が好ましく、１〜５０個、１〜３０個、１〜２０個または１〜１０個の塩基の変異がより好ましい。
【００１５】
塩基の変異としては、欠失、置換、付加および挿入が挙げられる。塩基の変異としては、例えば、植物の科、属、種、品種などの違いによる個体差に基づく変異、人為的な変異が挙げられる。塩基の変異が置換である場合、後述するアミノ酸残基の保存的置換に対応する塩基の置換が好ましい。変異の導入は、Ｋｕｎｋｅｌ法、Ｇａｐｐｅｄ  ｄｕｐｌｅｘ法などの公知の手法またはこれに準ずる方法により、例えば部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット（例えばＭｕｔａｎｔ−Ｋ（ＴＡＫＡＲＡ社製）やＭｕｔａｎｔ−Ｇ（ＴＡＫＡＲＡ社製）など）を用いて、あるいは、ＴＡＫＡＲＡ社のＬＡ  ＰＣＲ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓキットを用いて行うことができる。変異の導入はまた、本発明の核酸における、相対的に重要ではないと推定される領域に導入されてもよい。このような領域は、例えば、本発明の核酸の間で、または本発明の核酸とＰ４５０をコードする既知の核酸との間で、塩基配列のアライメント情報を得ることにより決定することができる。
【００１６】
別の実施形態では、本発明の核酸は、上記（ａ）の塩基配列と９０％以上の同一性を有する塩基配列を含み得る。本発明の核酸は、上記（ａ）の塩基配列と、好ましくは約９２％以上、より好ましくは約９５％以上、さらにより好ましくは約９６％以上、最も好ましくは約９７％以上、約９８％以上又は約９９％以上の同一性を有する塩基配列からなる。塩基配列の同一性は、公知の方法により決定できるが、特に断らない場合、ＭｙｅｒｓおよびＭｉｌｌｅｒ（ＣＡＢＩＯＳ，４：１１−１７（１９８９））のアルゴリズムに従うＬＡＬＩＧＮを利用して、ａｌｉｇｎｍｅｎｔ  ｍｅｔｈｏｄ：ｇｌｏｂａｌ、Ｓｃｏｒｉｎｇ  ｍａｔｒｉｘ：ＢＬＯＳＵＭ６２、Ｏｐｅｎｉｎｇ  ｇａｐ  ｐｅｎａｌｔｙ：−１４、Ｅｘｔｅｎｄｉｎｇ  ｇａｐ  ｐｅｎａｌｔｙ：−４の設定により算出される。また、塩基配列の同一性は、上記によらずに、当該分野で慣用のプログラム（例えば、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡ等）を初期設定で用いて決定することもできる。別の局面では、同一性（％）は、当該分野で周知のＮｅｅｄｌｅｍａｎら（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，４８：４４４−４５３（１９７０））のアルゴリズムを使用して決定することができる。Ｎｅｅｄｌｅｍａｎらのアルゴリズムは、ＧＣＧソフトウェアパッケージのＧＡＰプログラムに組み込まれており、同一性（％）は、例えば、ＢＬＯＳＵＭ  ６２  ｍａｔｒｉｘ又はＰＡＭ２５０  ｍａｔｒｉｘ、並びにｇａｐ  ｗｅｉｇｈｔ：  １６、１４、１２、１０、８、６若しくは４、及びｌｅｎｇｔｈ  ｗｅｉｇｈｔ：  １、２、３、４、５若しくは６のいずれかを使用することによって決定することができる。塩基配列の同一性の算出については、上記の方法のなかで最も低い値を示す方法を採用してもよい。
【００１７】
さらに別の実施形態では、本発明の核酸は、上記（ａ）の塩基配列に対して相補的な塩基配列からなる核酸とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする塩基配列を含み得る。ストリンジェント条件下でのハイブリダイゼーションの条件は、既報の条件を参考に設定することができる（例、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，６．３．１−６．３．６（１９９９）参照）。例えば、このような条件としては、６×ＳＳＣ（ｓｏｄｉｕｍ  ｃｈｌｏｒｉｄｅ／ｓｏｄｉｕｍ  ｃｉｔｒａｔｅ）／４５℃でのハイブリダイゼーション、次いで０．２×ＳＳＣ／０．１％ＳＤＳ／５０〜６５℃での１回又は２回以上の洗浄が挙げられる。
【００１８】
本発明の核酸の起源は、特に限定されず、天然由来であってもよいし、または合成されたものであってもよい。したがって、本発明の核酸は、天然物から調製されたものであってもよく、あるいは遺伝子組換え手法により得られる組換え核酸であってもよく、または化学合成により得られる核酸であってもよい。
【００１９】
本発明の核酸はまた、植物に由来する遺伝子をコードし得る。本明細書中で用いられる場合、用語「植物」とは、草本植物、木本植物等の任意の植物をいうが、木本植物が好ましい。木本植物としては、例えば、ユーカリ属植物、マツ属植物、サクラ属植物、アボカド属植物、マンゴー属植物、アカシア属植物、ヤマモモ属植物、クヌギ属植物、ブドウ属植物、リンゴ属植物、バラ属植物、ツバキ属植物、ジャカランダ属植物、ワニナシ属植物などが挙げられるが、好ましくはユーカリ属植物である。ユーカリ属植物としては、例えば、ユーカリ・グロビュラス（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｇｌｏｂｕｌｕｓ）、ユーカリ・アーチェリ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ａｒｃｈｅｒｉ）、ユーカリ・アンプリフォリア（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ａｍｐｌｉｆｏｌｉａ）、ユーカリ・カマルドレンシス（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｃａｍａｌｕｄｕｌｅｎｓｉｓ）、ユーカリ・グンニ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｇｕｎｎｉ）、ユーカリ・グランディス（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｇｒａｎｄｉｓ）、ユーカリ・ニテンス（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｎｉｔｅｎｓ）、ユーカリ・バクステリ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｂａｘｔｅｒｉ）、ユーカリ・ビコスタータ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｂｉｃｏｓｔａｔａ）、ユーカリ・ブラッケリ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｂｌａｋｅｌｙｉ）、ユーカリ・ブリジェシアナ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｂｒｉｄｇｅｓｉａｎａ）、ユーカリ・ボツリオイデス（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｂｏｔｒｙｏｉｄｅｓ）、ユーカリ・ユーロフィラ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｕｒｏｐｈｙｌｌａ）、ユーカリ・ラジアータ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ｒａｄｉａｔａ）、またはこれらのハイブリッドなどが挙げられる。
【００２０】
本発明の核酸は、植物の不定根形成に関与し得る。具体的には、本発明の核酸は、不定根形成を抑制し得る。不定根の形成は、公知の方法により行なうことができる。例えば、不定根の形成は、植物のシュートを、発根床に挿し付けて、照度、温度、湿度および炭酸ガス濃度を適正に管理した条件下で生育することにより、行うことできる（例えば、実施例を参照）。発根率は、試験に供したシュート数と、不定根が形成したシュート数とから算出することができる。ここで、シュートとは、発根能を有する組織全般をいう。該組織としては、枝、茎、頂芽、腋芽、不定芽、葉、子葉、胚軸、不定胚、苗条原基等が例示される。シュートの由来は特に限定されず、温室や屋外に生育している植物個体から得られたものでもよいし、組織培養法により得られた培養組織であってもよいし、天然の植物体の一部の組織であってもよい。このようなシュートは、例えば、植林地に生育している対象木から枝を採取して、それを接木処理することにより入手することができる。また、伐採した切り株から萌芽してくる幼形葉を有するシュートを利用することもできる。本発明の核酸の発現量は、後述するように、公知の方法により測定できる。
【００２１】
本発明の核酸は、例えば、以下の方法で調製することができる。先ず、植物に由来する組織（例、茎、葉、根、根茎）からｔｏｔａｌ  ＲＮＡを抽出し、次いで、ｍＲＮＡを得る。逆転写酵素によって一本鎖ｃＤＮＡを合成した後、一本鎖ｃＤＮＡから二本鎖ｃＤＮＡを合成する。次いで、得られた二本鎖ｃＤＮＡに適切なアダプターを付加した後、プラスミドに組み込んで、ｃＤＮＡライブラリーを作製する。植物Ｐ４５０遺伝子の塩基配列上には、高度に保存されている領域が存在するため、その塩基配列情報に基づいてＰＣＲプライマーを化学合成し、ｃＤＮＡライブラリーからＰＣＲにより、植物Ｐ４５０遺伝子をコードする核酸を得る。次いで、得られた核酸の塩基配列を決定することにより、所望の塩基配列を有する核酸を得ることができる（詳細については実施例を参照）。また、後述する本発明の核酸プローブを用いて、植物に由来する組織から作製されたｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることにより、所望の塩基配列を有する核酸を得ることができる。また、核酸の塩基配列が判明している場合、本発明の核酸は、人工的に合成することもできる。
【００２２】
本発明はまた、以下の（Ａ）〜（Ｅ）からなる群より選ばれるタンパク質を提供する：
（Ａ）配列番号２または配列番号４に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質；
（Ｂ）配列番号２または配列番号４に示されるアミノ酸配列を含むタンパク質；
（Ｃ）配列番号２または配列番号４に示されるアミノ酸配列において、アミノ酸残基の欠失、置換、付加および挿入からなる群より選ばれる、１または数個のアミノ酸残基の変異を含むアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；
（Ｄ）配列番号２または配列番号４に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、植物の不定根形成の抑制に関与するタンパク質；ならびに
（Ｅ）上記（ａ）〜（ｅ）のいずれかの核酸によりコードされるタンパク質。
【００２３】
一実施形態では、本発明のタンパク質は、上記（Ａ）の塩基配列において、１または数個のアミノ酸残基の変異を含むアミノ酸配列を含み得る。１または数個のアミノ酸残基の変異としては、１〜５０個のアミノ酸残基の変異が挙げられるが、１〜３０個のアミノ酸残基の変異が好ましく、１〜２０個、１〜１５個、１〜１０個または１〜５個のアミノ酸残基の変異がより好ましい。
【００２４】
アミノ酸残基の変異としては、欠失、置換、付加および挿入が挙げられる。アミノ酸残基の変異としては、例えば、植物の科、属、種、品種などの違いによる個体差に基づく変異、人為的な変異が挙げられる。アミノ酸残基の変異が置換である場合、後述するアミノ酸残基の保存的置換が好ましい。本明細書中で用いられる場合、用語「保存的置換」とは、所定のアミノ酸残基を、類似の側鎖を有するアミノ酸残基で置換することをいう。類似の側鎖を有するアミノ酸残基のファミリーは、当該分野で周知である。例えば、このようなファミリーとしては、塩基性側鎖を有するアミノ酸（例、リジン、アルギニン、ヒスチジン）、酸性側鎖を有するアミノ酸（例、アスパラギン酸、グルタミン酸）、非荷電性極性側鎖を有するアミノ酸（例、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、システイン）、非極性側鎖を有するアミノ酸（例、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン）、β位分岐側鎖を有するアミノ酸（例、スレオニン、バリン、イソロイシン）、芳香族側鎖を有するアミノ酸（例、チロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン）、ヒドロキシル基（例、アルコール性、フェノール性）含有側鎖を有するアミノ酸（例、セリン、スレオニン、チロシン）、及び硫黄含有側鎖を有するアミノ酸（例、システイン、メチオニン）が挙げられる。好ましくは、アミノ酸の保存的置換は、アスパラギン酸とグルタミン酸との間での置換、アルギニンとリジンとヒスチジンとの間での置換、トリプトファンとフェニルアラニンとの間での置換、フェニルアラニンとバリンとの間での置換、ロイシンとイソロイシンとアラニンとの間での置換、及びグリシンとアラニンとの間での置換であり得る。
【００２５】
変異の導入はまた、本発明のタンパク質における、相対的に重要ではないと推定される領域に導入されてもよい。このような領域は、例えば、本発明のタンパク質の間で、または本発明のタンパク質とＰ４５０をコードする既知のタンパク質との間で、アミノ酸配列のアライメント情報を得ることにより決定することができる。
【００２６】
別の実施形態では、本発明のタンパク質は、上記（Ａ）のアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み得る。本発明のタンパク質は、上記（Ａ）のアミノ酸配列と、好ましくは約９２％以上、より好ましくは約９５％以上、さらにより好ましくは約９６％以上、最も好ましくは約９７％以上、約９８％以上又は約９９％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなる。アミノ酸配列の同一性は、上述した塩基配列の同一性の算定と同じ方法により行なわれるが、特に断らない場合、ＭｙｅｒｓおよびＭｉｌｌｅｒ（ＣＡＢＩＯＳ（１９８９）４：１１−１７）のアルゴリズムに従うＬＡＬＩＧＮを利用して、ａｌｉｇｎｍｅｎｔ  ｍｅｔｈｏｄ：ｇｌｏｂａｌ、Ｓｃｏｒｉｎｇ  ｍａｔｒｉｘ：ＢＬＯＳＵＭ６２、Ｏｐｅｎｉｎｇ  ｇａｐ  ｐｅｎａｌｔｙ：−１４、Ｅｘｔｅｎｄｉｎｇ  ｇａｐ  ｐｅｎａｌｔｙ：−４の設定により算出される。
【００２７】
本発明のタンパク質の起源は、本発明の核酸の起源と同様である。本発明のタンパク質はまた、上記木本植物に由来し得る。本発明のタンパク質が木本植物の不定根形成に関与し得るかどうかは、本発明の核酸で上述した方法と同様の方法により確認できる。
【００２８】
本発明のタンパク質は、本発明のタンパク質を発現する植物の組織から、あるいは本発明の発現ベクターが導入された本発明の形質転換体から得ることができる。本発明はまた、このような発現ベクターおよび形質転換体を提供する。本発明の形質転換体としては、形質転換細胞、形質転換植物が挙げられる。本発明のタンパク質の精製は、タンパク質の単離精製法として公知の方法、例えば、硫酸アンモニウム沈殿法、ゲルクロマトグラフィー法、イオン交換クロマトグラフィー法、アフィニティークロマトグラフィー法等を、単独で又は適宜組合せることにより行なうことができる。
【００２９】
本発明の発現ベクターは、本発明の核酸を適当な制限酵素にて切断した上で、この核酸を、本発明の目的達成のために必要とされる各種公知の核酸エレメント（例、ＤＮＡエレメント）、例えばプロモーター、エンハンサー等のシスエレメント、リボソーム結合配列（ＳＤ配列）、スプライシングシグナル、ポリＡ付加シグナル、ターミネーター、選抜マーカー遺伝子などと共に、これらを導入しようとする宿主細胞において複製可能な公知のベクターの制限酵素部位、又はマルチクローニングサイトに連結することにより、作製できる。
【００３０】
なお、プロモーターは、本発明の核酸を発現させることができるものであれば、どのようなものであってもよいが、大腸菌を宿主とする場合には、大腸菌やファージに由来するｔｒｐプロモーター、ｌａｃプロモーター、ＰＬプロモーター、ＰＲプロモーター等の他、これらのプロモーターを人為的に改変して得られた、ｔａｃプロモーター等のプロモーターを用いることが好ましい。酵母を宿主とする場合には、ｇａｌ１プロモーター、ｇａｌ１０プロモーター、ヒートショックタンパク質プロモーター、ＭＦα１プロモーター、ＰＨＯ５プロモーター、ＰＧＫプロモーター、ＧＡＰプロモーター、ＡＤＨプロモーター、ＡＯＸ１プロモーター等が好ましい。また、植物細胞を宿主とする場合は、カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）に由来する３５Ｓプロモーター、レンゲ萎縮ウイルスに由来するＭＣ８プロモーター、ｒｂｃＳプロモーター、ユビキチンプロモーター、ノパリン合成酵素（ＮＯＳ）遺伝子のプロモーター、オクトピン（ＯＣＴ）合成酵素遺伝子のプロモーター等が好ましい。さらに、動物細胞を宿主とする場合は、ＳＲαプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＬＴＲプロモーター、ＣＭＶプロモーター等が好ましい。動物細胞においては、ヒトサイトメガロウイルスの初期遺伝子プロモーター等を用いることもできる。
【００３１】
本発明の核酸、及び、上記プロモーター等の核酸エレメントを連結するための公知のベクターとしては、例えば、λファージ等のファージや、ｐＢＲ３２２、ｐＢＲ３２５、ｐＵＣ１１８、ｐＵＣ１１９等の大腸菌用プラスミド、ｐＵＢ１１０、ｐＴＰ５等の枯草菌用プラスミド、ＹＥｐ１３、ＹＥｐ２４、ＹＣｐ５０等の酵母用プラスミド、ｐＢＩ１０１、ｐＢＩ１２１、ｐＢＩ２１１３、ｐＢＩ２１１３Ｎｏｔ、ｐＢＩ２２１、ｐＢＩＧ、ｐＧＡ４８２、ｐＧＡＨ等のバイナリーベクター系の植物細胞用プラスミド、又はｐＬＧＶ２３Ｎｅｏ、ｐＭＯＮ２００、ｐＮＣＡＴ等の中間ベクター系の植物細胞用プラスミドなどを例示することができる。また、バキュロウイルス等の昆虫ウイルスベクター、レトロウイルス、ワクシニアウイルス等の動物ウイルスベクターも、本発明の核酸を連結するためのベクターとして用いることができる。なお、バイナリーベクター系の植物細胞用プラスミドをベクターとして植物細胞への遺伝子導入を行う場合は、その境界配列ＬＢ及びＲＢ間、即ちＴ−ＤＮＡ領域に本発明の核酸を連結する必要がある。
【００３２】
本発明の形質転換細胞は、本発明の発現ベクターを宿主細胞に導入することにより、取得できる。この場合において、典型的な宿主細胞としては、例えば、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ）Ｈｍｓ１７４（ＤＥ３）株、Ｋ１２株もしくはＤＨ１株、枯草菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｕｂｔｉｌｉｓ）ＭＩ  １１４株、２０７−２１株、シュードモナス・プチダ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｐｕｔｉｄａ）、アグロバクテリウム・チュメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ、以下、Ａ．チュメファシエンスと略記する）Ｃ５８株、ＬＢＡ４４０４株、ＥＨＡ１０１株、ＥＨＡ１０５株もしくはＣ５８Ｃ１ＲｉｆＲ株、アグロバクテリウム・リゾジェネス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｒｈｉｚｏｇｅｎｅｓ）又はリゾビウム・メリロティ（Ｒｈｉｚｏｂｉｕｍ  ｍｅｌｉｌｏｔｉ）等の細菌類、酵母（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ）又はピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ  ｐａｓｔｏｒｉｓ）等の酵母類、シロイヌナズナ、タバコ、トウモロコシ、イネ、ニンジン、ペチュニア、ポプラ、ユーカリ、アカシア、スギ又はマツ等の植物細胞、Ｓｆ９細胞又はＳｆ２１細胞等の昆虫細胞、あるいは、サル細胞ＣＯＳ−７もしくはＶｅｒｏ、チャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ細胞）、マウスＬ細胞、ラットＧＨ３細胞又はヒトＦＬ細胞等の動物細胞を挙げることができる。
【００３３】
また、本発明の核酸を上記宿主細胞に導入するには、上記したように、宿主細胞に応じて選択したプロモーター等の核酸エレメント及びベクターに本発明の核酸を連結して、本発明の遺伝子導入用ベクターを作製し、これを、公知の遺伝子導入法を用いて各宿主細胞に導入すればよい。遺伝子導入法としては、例えば、細菌を宿主細胞とする場合には、カルシウムイオン法（Ｃｏｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．、ＵＳＡ、６９：２１１０−２１１４、１９７２）、エレクトロポレーション法（Ｂｅｃｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｍｅｔｈｏｄｓ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．、１９４：１８２‐１８７、１９９０）、凍結融解法、三者接合法（Ｍ．Ｂｅｖａｎ、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ、１２：８７１１、１９８４）等を、酵母を宿主細胞とする場合には、エレクトロポレーション法、エレクトロインジェクション法、プロトプラスト法、スフェロプラスト法（Ｈｉｎｎｅｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．、ＵＳＡ、７５：１９２９‐１９３３、１９７８）、酢酸リチウム法（Ｉｔｏｈ、Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．、１５３：１６３−１６８、１９８３）等を、植物細胞を宿主細胞とする場合には、アグロバクテリウム法、エレクトロポレーション法、ポリエチレングリコール法（Ａｂｅｌ  ｅｔ  ａｌ．、Ｐｌａｎｔ  Ｊ．、５：４２１‐４２７、１９９４）、パーティクルガン法、リポソーム法、マイクロインジェクション法等を、動物細胞や昆虫細胞を宿主細胞とする場合には、エレクトロポレーション法、リン酸カルシウム法、リポフェクション法等を、用いることができる。
【００３４】
例えば、大腸菌や酵母等の微生物を宿主として得られた形質転換細胞を培養する場合は、炭素源、窒素源及び無機塩類等を含有する天然培地又は合成培地を用い、通常は好気的条件下、３７℃で６〜２４時間、振盪培養又は通気攪拌培養を行えばよい。
【００３５】
この場合において、例えば、炭素源としては、グルコース、フラクトース、スクロース、デンプン等の炭水化物、酢酸、プロピオン酸等の有機酸、エタノール、プロパノール等のアルコール類を、窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、その他の含窒素化合物、ペプトン、肉エキス、コーンスティープリカーを、無機塩類としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウムを、１種又は２種以上組合わせて用いることができる。また、植物細胞を宿主として得られた形質転換細胞を培養する場合は、チアミン、ピリドキシン等のビタミン類を、動物細胞を宿主として得られた形質転換細胞を培養する場合は、ＲＰＭＩ１６４０等の血清を、上記成分に加え、必要に応じ適宜添加すればよい。培地のｐＨは７．０〜７．５に調整・保持することが好ましい。培地のｐＨは、無機酸もしくは有機酸、及び／又はアルカリ溶液等を用いて調整することができる。また、ペニシリン、テトラサイクリン、アンピシリン、カナマイシン等の抗生物質を培地に添加してもよい。誘導性プロモーター（例、ｌａｃプロモーター）を有する発現ベクターを用いた場合、誘導物質（例、ＩＰＴＧ）を培地に添加してもよい。
【００３６】
本発明の形質転換植物は、植物細胞の染色体に本発明の核酸を導入して得た形質転換細胞を増殖、分化させることにより得ることができる。
【００３７】
植物細胞の染色体に本発明の核酸を導入するにあたっては、上記したように、植物細胞用に選択したプロモーター等の核酸エレメント及びベクターに本発明の核酸を連結して、本発明の遺伝子導入用ベクターを作製し、これを、公知の遺伝子導入法を用いて各宿主細胞に導入すればよい。
【００３８】
核酸エレメントについては、例えば、植物細胞用のプロモーターとして、上記３５ＳＲＮＡプロモーター、ＭＣ８プロモーター、ｒｂｃＳプロモーター、ユビキチンプロモーター、ノパリン合成酵素（ＮＯＳ）遺伝子のプロモーター、オクトピン（ＯＣＴ）合成酵素遺伝子のプロモーター等を用いることができる。また、ターミネーターとして、カリフラワーモザイクウイルス由来のターミネーターやノパリン合成酵素遺伝子由来のターミネーター等を、選抜マーカー遺伝子として、カナマイシン耐性遺伝子（ＮＰＴＩＩ遺伝子）、ハイグロマイシン耐性遺伝子（ｈｔｐ遺伝子）、ビアラホス（ｂｉａｌａｐｈｏｓ）に対する抵抗性を付与するホスフィノスリシンアセチルトランスフェラーゼ（ｂａｒ）遺伝子等から選ばれる１つ以上の遺伝子を使用することができる。
【００３９】
ベクター、宿主細胞、及び遺伝子導入法については、既に例示したように、ベクターとしては、ｐＢＩ１０１、ｐＢＩ１２１、ｐＢＩ２１１３、ｐＢＩ２１１３Ｎｏｔ、ｐＢＩ２２１、ｐＢＩＧ、ｐＧＡ４８２、ｐＧＡＨ、ｐＬＧＶ２３Ｎｅｏ、ｐＭＯＮ２００、ｐＮＣＡＴ等を、宿主細胞としては、上記木本植物由来の細胞を、遺伝子導入法としては、アグロバクテリウム法、エレクトロポレーション法、ポリエチレングリコール法、パーティクルガン法、リポソーム法、マイクロインジェクション法等を用いることができる。なお、上記宿主細胞は、植物のいずれの器官（例えば、葉、花弁、茎、根、根茎、種子等）又は組織（例えば、表皮、師部、柔組織、木部、維管束等）の細胞を用いてもよい。
【００４０】
もっとも、以上の核酸エレメント、ベクター、宿主細胞、遺伝子導入法以外でも、本発明の形質転換細胞を作製でき、更に、この形質転換細胞を増殖、分化させて本発明の形質転換植物を作製できるものであれば、本発明においては何であれ用いることができる。また、選抜マーカー遺伝子は、本発明の核酸と共に単一のベクターに組込んでもよいし、２つ以上のベクターにそれぞれ別個に組み込んでもよい。
【００４１】
遺伝子導入後の宿主細胞は、その植物細胞の増殖・分化に適した公知の培地及び環境条件で培養する。この過程で、本発明の核酸と共に導入した選抜マーカー遺伝子の発現を指標として、形質転換細胞を選抜し、これを増殖・分化させて植物を再分化させれば、本発明の形質転換植物を得ることができる。こうして得られた形質転換植物又はその後代への本発明の核酸の導入は、当該個体の細胞から定法に従って本発明の核酸を抽出し、ＰＣＲ法やサザンハイブリダイゼーション法等、公知の手法を用いて解析を行うことにより、確認できる。また、本発明の形質転換植物又はその後代の個体における本発明の核酸の発現は、ＲＴ−ＰＣＲ法、ノーザンハイブリダイゼーション法、ウエスタンブロッティング法等の公知の手法によって確認し、評価することができる。一般に、染色体に導入された遺伝子は、その導入位置によって発現レベルが異なるので、上記の手法により解析を行うことで、本発明の核酸がより強く発現している形質転換植物及びその後代を選抜できる。
【００４２】
２．植物の不定根形成に関与する核酸およびタンパク質の測定手段、および植物の発根能の判定方法
本発明はまた、本発明の核酸またはタンパク質の測定に有用であり得る、以下の（ｆ）〜（ｈ）からなる群より選ばれる物質またはセットを提供する：
（ｆ）上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な核酸プローブ；
（ｇ）上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンスプライマー、および上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の一部に対して相補的なアンチセンスプライマーのセット；ならびに
（ｈ）上記（Ａ）〜（Ｅ）からなる群より選ばれるタンパク質に対する抗体。
【００４３】
本発明の核酸プローブは、本発明の核酸の検出および定量に有用である。本発明の核酸プローブは、ＤＮＡであってもＲＮＡであってもよいし、あるいはＤＮＡ／ＲＮＡキメラであってもよい。核酸プローブは、天然型のリン酸ジエステル結合を有するものであっても、分解酵素に安定なチオリン酸型（リン酸結合のＰ＝ＯをＰ＝Ｓに置換）や２’−Ｏ−メチル型等の修飾ヌクレオチドであってもよい。核酸プローブの長さは、少なくとも１５個の塩基からなるものである限り特に限定されないが、例えば、１６個、１８個、２０個、２５個、３０個、３５個、４０個、４５個または５０個以上の長さであり得る。核酸プローブの長さはまた、上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の全長以下である限り特に限定されないが、例えば、３００個以下、２００個以下、１００個以下、８０個以下、６０個以下、５０個以下、４０個以下または３０個以下であってもよい。したがって、上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な核酸プローブにおける核酸の「一部」は、このような塩基の個数に対応し得る。本発明の核酸プローブは、サザンブロット、マイクロアレイ等の発現解析に有用である。したがって、本発明の核酸プローブは、基板上に貼り付けられて、マイクロアレイの形態で提供されてもよい。
【００４４】
本発明の核酸を特異的に検出および定量するという観点からは、本発明の核酸プローブとしては、本発明の核酸における特異的な領域にハイブリダイズするものが好ましいが、本発明の核酸の塩基配列は、既知の核酸の塩基配列に対して低い同一性しか示さないため（例えば、図４〜７を参照）、本発明の核酸に対する任意の核酸プローブが、本発明の核酸に対して特異的であり得る。また、本発明の核酸プローブは、配列番号１における塩基番号１〜１００、１０１〜２００、２０１〜３００、３０１〜４００、４０１〜５００、５０１〜６００、６０１〜７００、７０１〜８００、８０１〜９００、９０１〜１０００、１００１〜１１００、１１０１〜１２００、１２０１〜１３００、１３０１〜１４００、１４０１〜１５００、１５０１〜１６００、もしくは１６０１〜１７２９の塩基配列からなる部分領域、または複数の当該部分領域からなる領域の全部または一部、あるいは配列番号３における塩基番号１〜１００、１０１〜２００、２０１〜３００、３０１〜４００、４０１〜５００、５０１〜６００、６０１〜７００、７０１〜８００、８０１〜９００、９０１〜１０００、１００１〜１１００、１１０１〜１２００、１２０１〜１３００、１３０１〜１４００、１４０１〜１５００、１５０１〜１６００、１６０１〜１７００、１７０１〜１８００、１８０１〜１９００、もしくは１９０１〜２０２０の塩基配列からなる部分領域、または複数の当該部分領域からなる領域の全部または一部に対してハイブリダイズするものであってもよい。
【００４５】
本発明の核酸プローブは、必要に応じて、標識用物質で標識された形態で提供されてもよい。標識用物質としては、例えば、ＦＩＴＣ、ＦＡＭ等の蛍光物質、ルミノール、ルシフェリン、ルシゲニン等の発光物質、３Ｈ、１４Ｃ、３２Ｐ、３５Ｓ、１２３Ｉ等の放射性同位体、ビオチン、ストレプトアビジン等の親和性物質などが挙げられる。
【００４６】
本発明のセットは、本発明の核酸の検出および定量に有用である。例えば、このような検出および定量は、生体試料からの総ＲＮＡの調製後、ＰＣＲ（例、ＲＴ−ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、定量的ＰＣＲ）、ＬＡＭＰ（Ｌｏｏｐ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ  ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）（例、ＷＯ００／２８０８２参照）、ＩＣＡＮ（Ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ  ａｎｄ  Ｃｈｉｍｅｒｉｃ  ｐｒｉｍｅｒ−ｉｎｉｔｉａｔｅｄ  Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄｓ）（例、ＷＯ００／５６８７７参照）等の遺伝子増幅法を利用して行うことができる。本発明のセットは、少なくとも１個のセンスプライマー、および少なくとも１個のアンチセンスプライマーを含むが、遺伝子増幅法の種類に応じて必要とされるプライマー数が異なるため、遺伝子増幅法の種類に応じて、さらなるセンスプライマーおよびアンチセンスプライマーを含んでいてもよい。２以上のプライマーは、予め混合されていても、混合されていなくてもよい。センス及びアンチセンスプライマーはそれぞれ、標的領域を特異的に増幅し得るようなサイズである限り特に限定されないが、少なくとも１２個（例、少なくとも１５個、好ましくは少なくとも１８個、より好ましくは少なくとも２０個）の連続する塩基からなる。
【００４７】
本発明の核酸を特異的に検出および定量するという観点からは、本発明のセットとしては、センスプライマーおよびアンチセンスプライマーのうち少なくとも一方（好ましくは、両方）が、本発明の核酸における上述した特異的な領域にアニーリングするものが好ましい。
【００４８】
本発明の抗体は、本発明の核酸の検出および定量に有用である。例えば、このような検出および定量は、木本植物由来の組織からの抽出液の調製後、又は組織を用いて、免疫学的手法により行なうことができる。このような免疫学的手法としては、例えば、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）（例、直接競合ＥＬＩＳＡ、間接競合ＥＬＩＳＡ、サンドイッチＥＬＩＳＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、免疫クロマト法、ルミネッセンス免疫測定法、スピン免疫測定法、ウエスタンブロット法、免疫組織化学的染色法が挙げられる。
【００４９】
本発明の抗体は、ポリクローナル抗体（抗血清）、モノクローナル抗体のいずれであってもよく、周知の免疫学的手法により作製することができる。
【００５０】
例えば、ポリクローナル抗体は、上記抗原（必要に応じて、ウシ血清アルブミン、ＫＬＨ（Keyhole Limpet Hemocyanin）等のキャリア蛋白質に架橋した複合体とすることもできる）を、市販のアジュバント（例えば、完全又は不完全フロイントアジュバント）とともに、動物の皮下あるいは腹腔内に２〜３週間おきに２〜４回程度投与し（部分採血した血清の抗体価を公知の抗原抗体反応により測定し、その上昇を確認しておく）、最終免疫から約３〜１０日後に全血を採取して抗血清を精製することにより取得できる。抗原を投与する動物としては、ラット、マウス、ウサギ、ヤギ、モルモット、ハムスターなどの哺乳動物が挙げられる。
【００５１】
また、モノクローナル抗体は、細胞融合法により作成することができる。例えば、マウスに上記抗原を市販のアジュバントと共に２〜４回皮下あるいは腹腔内に投与し、最終投与の３日後に脾臓あるいはリンパ節を採取し、白血球を採取する。この白血球と骨髄腫細胞（例えば、ＮＳ−１，Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８）を細胞融合して該因子に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを得る。細胞融合はＰＥＧ法でも電圧パルス法であってもよい。所望のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、周知のＥＩＡ又はＲＩＡ法等を用いて抗原と特異的に結合する抗体を、培養上清中から検出することにより選択できる。モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの培養は、インビトロ、又はマウスもしくはラット、好ましくはマウス腹水中等のインビボで行うことができ、抗体はそれぞれハイブリドーマの培養上清及び動物の腹水から取得することができる。
【００５２】
本発明のタンパク質を特異的に検出および定量するという観点からは、本発明の抗体としては、本発明のタンパク質における特異的な領域に結合するものが好ましいが、本発明のタンパク質のアミノ酸配列は、既知のタンパク質のアミノ酸配列に対して低い同一性しか示し得ないため、本発明のタンパク質に対する任意の抗体が、本発明のタンパク質に対して特異的であり得る。また、本発明の抗体は、配列番号２または配列番号４におけるアミノ酸番号１〜３０、３１〜６０、６１〜９０、９１〜１２０、１２１〜１５０、１５１〜１８０、１８１〜２１０、２１１〜２４０、２４１〜２７０、２７１〜３００、３０１〜３３０、３３１〜３６０、３６１〜３９０、３９１〜４２０、４２１〜４５０、４５１〜４８０、もしくは４８１〜４８９のアミノ酸配列からなる部分領域中のエピトープ、または隣接する当該部分領域からなる領域中のエピトープに対して結合するものであってもよい。
【００５３】
本発明の抗体は、必要に応じて、標識用物質で標識された形態で提供されてもよい。標識用物質としては、上述したものが挙げられる。
【００５４】
本発明はまた、木本植物の発根能の判定方法を提供する。本発明の判定方法は、木本植物に由来する組織において、本発明の核酸に対応するｍＲＮＡの発現量、あるいは本発明のタンパク質の発現量を測定することを含む。
【００５５】
本発明の判定方法において、木本植物は、上述したものと同様である。
【００５６】
本発明の判定方法において用いられる木本植物の組織片としては、ｍＲＮＡまたはタンパク質の発現量を測定でき、かつ木本植物の繁殖のために発根可能な部位である限り特に限定されず、例えば、葉、茎、根、根茎、培養細胞、カルス、が挙げられる。
【００５７】
ｍＲＮＡまたはタンパク質の発現量の測定は、公知の方法により行なうことができる。ｍＲＮＡの発現量の測定は、例えば、ｍＲＮＡの抽出後、本発明の核酸プローブまたはセットを用いて、上述したようなノザンブロット、マイクロアレイまたは遺伝子増幅方法により行なうことができる。タンパク質の発現量の測定は、例えば、タンパク質の抽出後、本発明の抗体を用いて、上述したような免疫学的手法により、または質量分析等の他の周知の方法により行なうことができる。
【００５８】
測定の結果、ｍＲＮＡまたはタンパク質の発現量が、標準的な発現量に比し、相対的に低い場合、発根率が高いと判定され得る。一方、ｍＲＮＡまたはタンパク質の発現量が、標準的な発現量に比し、相対的に高い場合、発根率が低いと判定され得る。標準的な発現量としては、予め測定され、決定されていた発現量、または同時に測定された複数サンプルにおける発現量の平均値が採用され得る。本発明の判定方法は、実際に発根試験をすることなく、植物の発根能を迅速に予測することができるため、有用である。
【００５９】
３．本発明の核酸またはタンパク質の発現を抑制する物質、発現ベクターおよび形質転換体、ならびにそれらを用いる方法
本発明は、本発明の核酸またはタンパク質の発現を抑制する物質を提供する。具体的には、このような物質として、以下の（ｉ）または（ｊ）の核酸を提供する：
（ｉ）上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の全部または一部に対して相補的な塩基配列からなる、アンチセンス核酸；または
（ｊ）上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の一部であるセンス鎖、および該センス鎖に相補的な核酸配列からなるアンチセンス鎖を含む、ｓｉＲＮＡ。
【００６０】
本明細書中で用いられる場合、用語「アンチセンス核酸」とは、標的に対するハイブリダイゼーションにより、標的の発現を抑制する機能を有する核酸をいう。例えば、本発明のアンチセンス核酸は、標的遺伝子の転写産物とハイブリダイズして翻訳を阻害することにより、本発明のタンパク質の発現を抑制し得る。本発明のアンチセンス核酸はまた、転写産物とハイブリダイズして翻訳を阻害するだけでなく、二本鎖ＤＮＡと結合して三重鎖（トリプレックス）を形成し、ｍＲＮＡへの転写を阻害し得るものであってもよい。本発明のアンチセンス核酸は、このような作用により、木本植物における不定根形成を向上し得る。
【００６１】
本発明のアンチセンス核酸は、ＤＮＡであってもＲＮＡであってもよいし、あるいはＤＮＡ／ＲＮＡキメラであってもよい。アンチセンス核酸は、天然型のリン酸ジエステル結合を有するものであっても、分解酵素に安定なチオリン酸型（リン酸結合のＰ＝ＯをＰ＝Ｓに置換）や２’−Ｏ−メチル型等の修飾ヌクレオチドであってもよい。アンチセンス核酸の設計に重要な他の要素として、水溶性及び細胞膜透過性を高めること等が挙げられるが、これらはリポソームやマイクロスフェアを使用するなどの剤形の工夫によっても克服できる。アンチセンス核酸の長さは、上述した本発明の核酸プローブと同様であり得る。アンチセンス核酸は、転写産物とハイブリダイズして翻訳を阻害するだけでなく、二本鎖ＤＮＡと結合して三重鎖（トリプレックス）を形成し、ｍＲＮＡへの転写を阻害し得るものであってもよい。
【００６２】
本発明のタンパク質の発現を特異的に抑制するという観点からは、本発明のアンチセンス核酸としては、本発明の核酸における上述した特異的な領域にハイブリダイズするものが好ましい。
【００６３】
本明細書中で用いられる場合、用語「ｓｉＲＮＡ」とは、標的に対するＲＮＡ干渉により、標的の発現を抑制する機能を有するＲＮＡをいう。本発明のｓｉＲＮＡは、ＲＮＡ干渉を引き起こすものである限り特に限定されないが、例えば、上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の一部として、少なくとも１８以上の連続する標的ｍＲＮＡと同一の塩基配列を有するセンス鎖、および該センス鎖に相補的な核酸配列からなるアンチセンス鎖から構成される２本鎖構造のＲＮＡが用いられ得る。２本鎖構造は、異なるストランドで構成されていてもよいし、一つのＲＮＡ鎖のステムループ構造によって与えられる２本鎖であってもよい。本発明のｓｉＲＮＡの長さは、ＲＮＡｉを誘導できる限り特に制限されないが、例えば１８〜２７塩基、好ましくは１９〜２５塩基、より好ましくは２０〜２４塩基であり得る。本発明のｓｉＲＮＡはまた、センス鎖及びアンチセンス鎖の一方又は双方の５’末端及び／又は３’末端においてオーバーハングを有していてもよい。オーバーハングは、センス鎖及び／又はアンチセンス鎖の５’末端及び／又は３’末端における１〜数個（例、１、２又は３個）の塩基の付加により形成されたものであり得る。
【００６４】
本発明の核酸についてのＲＮＡ干渉を特異的に引き起こすという観点からは、本発明のｓｉＲＮＡとしては、上記（ａ）〜（ｅ）の核酸からなる群より選ばれる核酸の一部としての、本発明の核酸における上述した特異的な領域に対応するセンス鎖、および該センス鎖に相補的な核酸配列からなるアンチセンス鎖を含むものが好ましい。
【００６５】
アンチセンス核酸およびｓｉＲＮＡの発現ベクターとしては、公知の発現ベクター（例、種々の市販されている発現ベクター）が用いられるが、例えば、ＲＮＡ発現ベクターが用いられる。ＲＮＡ発現ベクターでは、ＲＮＡポリメラーゼIII（ＰｏｌIII）系によってＲＮＡが転写される。
【００６６】
また、ｓｉＲＮＡの発現系としては、一般的に、タンデムタイプとステムループタイプ（ヘアピンタイプ）の２種類が知られている。タンデムタイプは、２つのＵ６（またはＨ１）プロモーターを有し、センスＲＮＡとアンチセンスＲＮＡがそれぞれ独立に転写される。転写されたセンス及びアンチセンスＲＮＡは、細胞内でｄｓＲＮＡを形成し、ｓｉＲＮＡとして機能する。一方、ステムループタイプは、１つのプロモーターを有し、その下流にセンス鎖とアンチセンス鎖とをループでつないだ構造を有する。これより転写されたステムループＲＮＡ構造を有するＲＮＡ（ショートヘアピンＲＮＡ：ｓｈＲＮＡ）が所定のプロセシングを受けることにより、ｓｉＲＮＡとして機能する。
【００６７】
ＲＮＡ発現ベクターのプロモーターとしては、例えば、Ｕ６プロモーター、Ｈ１プロモーターが挙げられる。ｓｉＲＮＡ発現ベクターは、必要に応じて、さらなるエレメント、例えば、近位配列エレメント（ｐｒｏｘｉｍａｌ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ｅｌｅｍｅｎｔ）、Ｓｔａｆ−結合サイト、遠位配列エレメント（ＤＳＥ：ｄｉｓｔａｌ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ｅｌｅｍｅｎｔ）、及びＴＡＴＡボックスを有していてもよい。具体的には、ｓｉＲＮＡ発現ベクター等のＲＮＡ発現ベクターとしては、例えば、ｐＨ１、ｐＵ６、ｐＢＡｓｉ、ｐＳＩＮｓｉが挙げられる。
【００６８】
本発明はまた、植物の発根能を向上させる方法を提供する。このような方法は、本発明の核酸またはタンパク質の発現を抑制する物質、あるいはその発現ベクターを、細胞に導入することを含む。形質転換細胞の宿主細胞としては、本発明の核酸またはタンパク質を発現する、上述した植物に由来する細胞が挙げられる。このような物質またはその発現ベクターの細胞への導入は、上述した遺伝子導入法により行なうことができる。本方法により、本発明の核酸またはタンパク質の発現を抑制する物質、あるいはその発現ベクターが導入された形質転換体を得ることができる。
【００６９】
本発明はさらに、植物の発根能を向上させた植物の作出方法を提供する。このような方法は、本発明の核酸またはタンパク質の発現を抑制する物質、あるいはその発現ベクターが導入された形質転換細胞から植物を生育させることを含む。本発明はまた、本作出方法により得られる形質転換植物を提供する。本発明のこのような形質転換植物は、公知の方法、例えば、上述した本発明の形質転換植物と同様の方法により行なうことができる。
【実施例】
【００７０】
以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００７１】
〔実施例１〕
（１）ユーカリ・グロビュラスｍＲＮＡの単離および精製
種子発芽後、温室で約１ヵ月間生育させたユーカリ・グロビュラスの茎約１０ｇを、液体窒素存在下で粉砕し、Ｃｈｏｍｃｚｎｓｋｉらの方法（Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，Ｖｏｌ．１６２，ｐ．１５６−１５９）で全ＲＮＡを抽出した。この全ＲＮＡを二炭酸ジエチルで処理した滅菌水に溶解し、温度６５℃で５分間処理した後、当量の２倍のローディング緩衝液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．６，０．１Ｍ  ＮａＣｌ，１ｍＭ  ＥＤＴＡ，０．１％  ＳＤＳ）を加え、予め活性化させておいたオリゴｄＴセルロースカラムにアプライした。次に、カラム容量の５〜１０倍のローディング緩衝液で洗浄し、さらに、５倍量の洗浄緩衝液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．６，０．１Ｍ  ＮａＣｌ，１ｍＭ  ＥＤＴＡ，０．１％  ＳＤＳ）で洗浄した。さらに、２〜３倍量の溶出緩衝液（１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．６，１ｍＭ  ＥＤＴＡ，０．０５％  ＳＤＳ）でｍＲＮＡ  １０μｇを得た。
【００７２】
（２）ユーカリ・グロビュラスｃＤＮＡの合成
以上のようにして得られたｍＲＮＡから、ＺＡＰ  ２．１  ＸＲ  Ｖｅｃｔｏｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｋｉｔ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）を用いて、ｃＤＮＡを合成した。
【００７３】
以下の反応溶液をチューブ中に混合した。
【００７４】
5.0μl    10×1st Strand Buffer (逆転写反応用緩衝液)
3.0μl    10mM 1st Strand Methyl Nucleotide Mix (A, G, C, U混合物)
2.0μl    Linker-Primer (リンカー兼プライマー)
1.0μl    RNase inhibitor (RNase阻害剤)
H2O        (全体を50μlになるように調節する。)
【００７５】
上記の各成分はキットの内容物であり、Ｌｉｎｋｅｒ−ＰｒｉｍｅｒにはＸｈｏＩサイトが含まれている。尚、メチル化されたヌクレオチドを用いるのは、後の制限酵素反応でｃＤＮＡが切断されないようにするためである。
【００７６】
上記反応液をよく撹拌した後、ポリ（Ａ）＋  ｍＲＮＡ  ５．０μｇを加え、室温で１０分放置した。さらに２．５μｌ  Ｍ−ＭｕＬＶ  ＲＴａｓｅ（逆転写酵素）を加え（この時に全体が５０μｌになる）、緩やかに混合した後、軽く遠心して反応液をチューブの底部に落とし、３７℃で６０分反応させた。
【００７７】
次に、以下の溶液を、順序に従ってチューブ中で混合した。
【００７８】
45.0μl  cDNA一次鎖を含む反応液
40.0μl  10×2nd Strand Buffer (ポリメラーゼ反応用緩衝液）
6.0μl  2nd Strand Nucleotide Mixture (A, G, C, T混合物)
302.0μl  H2O
【００７９】
更に以下の溶液を添加したが、ＲＮａｓｅ  ＨとＤＮＡポリメラーゼＩが同時に働き出すようにチューブの壁に酵素液を付着させ、その後手早くボルテックスし、遠心して反応液をチューブの底部に落とし、１６℃で１５０分、ｃＤＮＡ二次鎖の合成反応を行った。
【００８０】
0.8μl  RNase H (RNA分解酵素)
7.5μl  DNAポリメラーゼI (10.0u/μl)
【００８１】
合成反応終了後の溶液に、４００μｌのフェノール：クロロホルム（１：１）混液を加え、よく撹拌した後、室温で２分遠心した。上清に再度４００μｌのフェノール：クロロホルムを加え、ボルテックスして室温で２分遠心し、その上清に以下の溶液を加えてｃＤＮＡを沈殿させた。
【００８２】
33.3μl  3M 酢酸ナトリウム溶液
867.0μl  100%エタノール
【００８３】
これを−２０℃で一晩放置し、室温で６０分遠心した後、８０％エタノールで緩やかに洗浄し、２分遠心した。上清を除き、ペレットを乾燥させ、４３．５μｌの滅菌水に溶解した。そのうち３９．０μｌに以下の溶液を添加し、ｃＤＮＡ末端を平滑化させた。
【００８４】
5.0μl  10×T4 DNA Polymerase Buffer (T4ポリメラーゼ反応用緩衝液)
2.5μl  2.5mM dNTP Mix (A, G, C, T混合物)
3.5μl  T4 DNAポリメラーゼ (2.9u/μl)
【００８５】
３７℃で３０分反応させ、５０μｌの滅菌水を加えた後１００μｌのフェノール：クロロホルムを加え、ボルテックスして２分遠心した。上清に１００μｌのクロロホルムを加え、ボルテックスして２分遠心し、上清に以下の溶液を加えてｃＤＮＡを沈殿させた。
【００８６】
7.0μl  3M 酢酸ナトリウム溶液
226μl  100%エタノール
【００８７】
この溶液を氷上に３０分以上放置し、４℃で６０分遠心した。沈殿を１５０μｌの８０％エタノールで洗浄し、２分遠心した後乾燥させた。このｃＤＮＡのペレットを７．０μｌのＥｃｏＲＩ  Ａｄａｐｔｏｒ（ＥｃｏＲＩアダプター）溶液に溶解し、更に、以下の溶液を添加して、ｃＤＮＡの両末端にＥｃｏＲＩアダプターを連結した。
【００８８】
1.0μl  10×Ligation Buffer (リガーゼ反応用緩衝液)
1.0μl  10mM ATP
1.0μl  T4 DNAリガーゼ
【００８９】
この反応液を軽く遠心し４℃に一晩以上放置した。この溶液を７０℃で３０分処理した後軽く遠心し、５分室温に放置し、以下の溶液を加えて、ＥｃｏＲＩアダプタの５’末端をリン酸化した。
【００９０】
1.0μl  10×Ligation Buffer (リガーゼ反応用緩衝液)
2.0μl  10mM ATP
6.0μl  H2O
1.0μl  T4核酸キナーゼ (10.0u/μl)
【００９１】
３７℃で３０分反応させ、７０℃で３０分処理した後、軽く遠心し室温に５分放置した。
【００９２】
さらに以下の溶液を加え、３７℃で９０分反応させてＸｈｏＩでＬｉｎｋｅｒ−Ｐｒｉｍｅｒによって導入されたＸｈｏＩサイトを切断したのち室温に放置した。
【００９３】
28.0μl  H Buffer
3.0μl  XhoI (45u/μl)
【００９４】
この反応液に５．０μｌの１０×ＳＴＥ（１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０），１００ｍＭ  ＮａＣｌ，１ｍＭ  ＥＤＴＡ）を加え、ショートフラグメント除去用遠心カラム（Ｓｅｐｈａｃｒｙｌ  Ｓｐｉｎ  Ｃｏｌｕｍｎ）に添加し、６００ｇで２分遠心した溶出液を、フラクション１とした。さらにこの操作を３回繰り返し、それぞれフラクション２、３および４とした。
【００９５】
フラクション３、４を合わせ、フェノール：クロロホルム（１：１）を加えよく撹拌し、室温で２分遠心した。上清に等量のクロロホルムを加えよく撹拌し、室温で２分遠心しさらにその上清に２倍の１００％エタノールを加え−２０℃に一晩放置した。これを４℃で６０分遠心した後等量の８０％エタノールで洗浄した。さらに４℃で６０分遠心し、得られたｃＤＮＡのペレットを１０μｌの滅菌水に懸濁した。
【００９６】
（３）ｃＤＮＡライブラリーの作製
上記で得られた二本鎖ｃＤＮＡをλファージ発現ベクターに連結し、組換えベクターを調製した。チューブに以下の溶液を混合し、１２℃で一晩反応させ、２時間室温で放置し、ｃＤＮＡをベクターに連結させた。
【００９７】
2.5μl  cDNA溶液
0.5μl  10×Ligation Buffer
0.5μl  10mM ATP
1.0μl  HybriZAP 2.1 XR VectorベクターDNA (1μg/μl)
0.5μl  T4 DNAリガーゼ (4 Weiss u/μl)
【００９８】
（４）ファージＤＮＡのファージ粒子へのパッケージング
ｃＤＮＡを挿入したファージベクターを、インビトロ・パッケージングキット（ＧｉｇａｐａｃｋＩＩ  Ｇｏｌｄ  ｐａｃｋａｇｉｎｇ  ｅｘｔｒａｃｔ；Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社製）を用いてファージ粒子にパッケージングした。溶解した直後の凍結−融解エキス（Ｆｒｅｅｚｅ／Ｔｈａｗ  ｅｘｔｒａｃｔ）に組換えファージ溶液を加え、氷上に置き、すぐに１５μｌの超音波処理エキス（Ｓｏｎｉｃ  ｅｘｔｒａｃｔ）を加え、ピペッティングしてよく混合した。これを軽く遠心して室温（２２℃）に２時間放置した。
【００９９】
上記反応液に５００μｌのファージ希釈緩衝液（Ｐｈａｇｅ  Ｄｉｌｕｔｉｏｎ  Ｂｕｆｆｅｒ）を加えさらに２０μｌのクロロホルムを加え、混合した。ライブラリーのタイターを測定するために、５００μｌの水相の内２μｌを１８μｌのＳＭ緩衝液（１Ｌ中、ＮａＣｌ  ５．８ｇ，ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  ２ｇ，１Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）５０ｍｌ，２％ゼラチン  ５ｍｌ）で１：１０に希釈した。１μｌの希釈液と１μｌのファージ原液をそれぞれ、ＯＤ６００が０．５になるまで培養した大腸菌ＰＬＫ−Ｆ’株の培養液２００μｌと共にプレーティングした。すなわち、大腸菌ＰＬＫ−Ｆ’株とファージ溶液を混合し、３７℃で１５分培養し、これを２〜３ｍｌのトップアガー（４８℃）に加え、直ちに３７℃に温めたＮＺＹアガープレートへ重層した。３７℃で一晩培養し、出現したプラークを数えてタイターを算出した。その結果、タイターは１．０×１０６ｐｆｕ／ｍｌであった。
【０１００】
（５）ライブラリーの増幅
遠心チューブに約５０，０００の組み換えバクテリオファージを含むパッケージング溶液と、ＯＤ６００が０．５になるまで培養した大腸菌ＰＬＫ−Ｆ’株の培養液６００μｌを加え、３７℃で１５分培養した。この培養液に、溶解後４８℃に保っておいた６．５ｍｌのトップアガーを加え、約３７℃に温めておいた１５０ｍｍ  ＮＺＹプレートに重層し、３７℃で５〜８時間培養した。各プレートに１０ｍｌのＳＭ緩衝液を加え、４℃で一晩ゆっくり振とうさせながら培養した。
【０１０１】
各プレート中のＳＭ緩衝液を滅菌したポリプロピレンチューブに集め、更に各プレートを２ｍｌのＳＭ緩衝液でリンスし、これも同チューブに集めた。全量の５％にあたるクロロホルムを加えて混合し、室温で１５分放置し、４，０００ｇで５分遠心して菌体を除いた。この上清に、全量の０．３％にあたるクロロホルムを加え、４℃で保存した。
【０１０２】
こうして増幅したライブラリーのタイターを前記と同様にして測定した結果、５．０×１０９ｐｆｕ／ｍｌであった。
【０１０３】
（６）ファージＤＮＡからのプラスミドの切り出し
組換えファージＤＮＡから、プラスミド部分のＩｎ  ｖｉｖｏ  Ｅｘｃｉｓｉｏｎを行った。５０ｍｌのコニカルチューブ中に以下のものを混合し、３７℃で１５分感染させた。
【０１０４】
大腸菌XL1-Blue培養液(OD600=0.1)  200μl
増幅後のファージ溶液            200μl (>;1×105ファージ粒子)
ヘルパーファージR408              1μl (>;1×106pfu/ml)
【０１０５】
上記混合液に５ｍｌの２×ＹＴ培地を加え、３７℃で３時間振とう培養して、７０℃で２０分熱処理した後４０００ｇで５分遠心した。上清をデカントし、滅菌チューブへ移した。これを遠心し、上清を１００倍希釈した溶液２０μｌとＯＤ６００が１．０になるまで培養した大腸菌ＸＬ１−Ｂｌｕｅの培養液２００μｌを混合し、３７℃で１５分感染させた。
【０１０６】
１〜１００μｌの培養液を、アンピシリンを含むＬＢプレートにプレーティングした後、３７℃で一晩培養した。出現したコロニーをランダムに選択して、グリセロールを加えて−８０℃で保存した。
【０１０７】
（７）プラスミドの調製
プラスミドの調製は、ＱＩＡｆｉｌｔｅｒ  Ｐｌａｓｍｉｄ  Ｋｉｔ  Ｍａｘｉ（Ｑｉａｇｅｎ社製）を用いて行った。−８０℃で保存しておいたプラスミドを保持する大腸菌の培養液を、５ｍｌの２×ＬＢ培地に植菌し、３７℃で一晩培養した。これを１００ｍｌのＬＢ培地を含む坂口フラスコで３７℃で一晩培養した。培養液を１５分間遠心（４，０００ｒｐｍ，４℃）して上清をデカントにより除去し、菌体ペレットにＴＥ緩衝液を１ｍｌ加えボルテックスした。菌体懸濁液をエッペンドルフチューブに移し、５分間遠心（５，０００ｒｐｍ，４℃）して上清をデカントにより除去した。
【０１０８】
菌体ペレットに１０ｍｌのＰ１溶液（細胞懸濁用溶液）を加えよく懸濁し、これを２分間ミキサーで撹拌し、１０ｍｌのＰ２溶液（細胞溶解用溶液）を加え透明になるまで撹拌した。さらに１０ｍｌのＰ３溶液（中和用溶液）を加え、手で振って撹拌した後、１０分間遠心（１５，０００ｒｐｍ）した。
【０１０９】
上記上清を予めＱＢＴ溶液（カラム活性化溶液）１０ｍｌで活性化したカラムＱＩＡＧＥＮ−ｔｉｐ  ５００にアプライした。このカラムに３０ｍｌのＱＣ溶液（カラム洗浄用溶液）を加え二度洗浄した。最後に１５ｍｌのＱＣ溶液（カラム溶出溶液）でプラスミドＤＮＡを溶出した。
【０１１０】
溶出液をプラスチックチューブに移し、イソプロパノールを１０．５ｍｌ加えた。これを遠心し（１５，０００ｒｐｍ，３０分）、上清を捨て、沈殿に７０％エタノールを１ｍｌ加え、再び遠心した（１５，０００ｒｐｍ，３分）。エタノールを完全に取り除き、チューブをデシケーター中でバキュームドライした。沈澱を２０μｌの滅菌水に良く溶かし、−２０℃で保存した。この溶液１μｌを取って、サイズマーカーと一緒に電気泳動してプラスミドＤＮＡを定量した。
【０１１１】
〔実施例２〕
（８）Ｐ４５０遺伝子のサブクローニング
（７）で調製したｃＤＮＡライブラリーを鋳型として、ＰＣＲ法でＤＮＡ断片を増幅させた。増幅には文献１（Ｍ．Ｍｉｚｕｔａｎｉら，ｃｙｔｏｃｈｒｏｍｅ  ｐ４５０  ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ  ｉｎ  Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ：ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃＤＮＡｓ，Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ，ａｎｄ  ＲＦＬＰ  ｍａｐｐｉｎｇ  ｏｆ  ｍｕｌｔｉｐｌｅ  ｃｙｔｏｃｈｒｏｍｅ  Ｐ４５０．Ｐｌａｎｔ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３７，３９−５２，１９９８）に記載の表１に示すフォワードプライマー２種類とリバースプライマー３種類を用いて、６種類の組合せでＰＣＲを行った。ＰＣＲは、ＡＢＩ社製ＧｅｎｅＡＭＰ、ＰＣＲｓｙｓｔｅｍ９７００で、タカラバイオ社製のＥｘＴａｑポリメラーゼを用い、９６℃３０秒、５５℃３０秒、７２℃１分のサイクルを３０回繰り返した。ＰＣＲにより増幅したＤＮＡ断片は、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製のＴＯＰＯ  ＴＡ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｋｉｔ  ｆｏｒ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇによってサブクローニングした。
【０１１２】
（９）ｃＤＮＡの塩基配列の決定
ｃＤＮＡの塩基配列解析は、ＤＮＡオートシーケンサー２０００ＸＬ（ベックマンコールター社製）を用いて行った。シーケンス反応はＳｅｑｕｅｎｃｉｎｇキット（ベックマンコールター社製）によりフォワード（Ｐ７）、リバース（Ｐ８）プライマーを用いて付属の説明書に従って行った。
【０１１３】
（１０）遺伝子データベースとのホモロジー検索
決定した塩基配列について、ＤＮＡ解析ソフトＧＥＮＥＴＹＸ‐ＷＩＮ（ソフトウェア開発株式会社製）のホモロジー検索機能を使って行った。データベースとしては、ＧｅｎＢａｎｋを選んだ。ホモロジー検索のアルゴリズムは、調べたい配列を、データベース中の配列に対して１塩基ずつずらしながら比較して行き、６塩基以上連続して塩基の一致している場合にホモロジースコアテーブルに従ってホモロジースコアを計算していくというものである。ホモロジースコアが１６０ポイント以上のものを候補として取り上げるように設定し、さらにギャップを入れることによってスコアが最大になるように最適化した。その結果、サブクローン化した１７種類のヌクレオチド配列はモデル植物であるシロイヌナズナやポプラの既知のＰ４５０遺伝子と高い相同性があった。
【０１１４】
〔実施例３〕
（１１）発現解析による不定根形成に関わるＰ４５０遺伝子の同定
次に、サブクローニングした１７種類のＰ４５０遺伝子を含むＤＮＡ断片のヌクレオチド配列の情報を元に、特異的なＰＣＲプライマーを作成した。特異的なＰＣＲプライマーはインターネットで一般に利用できるプライマーデザインのホームページ（ｈｔｔｐ：／／ｆｒｏｄｏ．ｗｉ．ｍｉｔ．ｅｄｕ／ｐｒｉｍｅｒ３／）を利用した。これによって、１７種類のフォワードとリバースプライマーを合成した。
【０１１５】
不定根形成の指標となるＰ４５０遺伝子を同定するために、発根率が９０％程度の易発根性クローンＡと発根率１０％程度の難発根性クローンＢの組織培養苗のシュートを材料として発根処理を行った。発根処理は赤色光の下で２５℃、湿度８０％、炭酸ガス濃度１０００ｐｐｍの条件下で行った。発根処理を施した直後（０日目）と処理後４日後の茎の基部から全ＲＮＡを抽出し、このＲＮＡを鋳型にオリゴｄＴプライマーによって逆転写反応を行った。さらに、特異的なプライマーで目的のＰ４５０遺伝子の発現量を定量的ＲＴ−ＰＣＲ法（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社製、ＭＪ  Ｏｐｔｉｃｏｎ２）で測定した。試薬としては、インターカレーターとしてサイバーグリーンを含む２ｘＳＹＢＲ  Ｇｒｅｅｎ  ＪｕｍｐＳｔａｒｔ  Ｔａｑ  Ｒｅａｄｙ  Ｍｉｘ（Ｓｉｇｍａ社製）を用いた。インターナルコントロールとしては、ユーカリのユビキチン遺伝子の構造遺伝子領域を用いて、以下の反応液で定量的ＲＴ−ＰＣＲ（９４℃  ２０秒，６０℃  ２０秒，７２℃  ３０秒，３５ｃｙｃｌｅ）を実施した。
【０１１６】
10μl  2×PCR試薬
0.5μl  100pmol フォワード＆リバースプライマー
3μl  逆転写を実施した一本鎖ＤＮＡ
4.5μl  滅菌水
【０１１７】
定量的ＲＴ−ＰＣＲで各Ｐ４５０遺伝子の発現量を測定し、内部標準として用いたユビキチンの発現量との相対比で表した。測定は、少なくとも１系統について３サンプルの発現量を見た。その結果、単離した１７種類のＰ４５０遺伝子のうち、ＥｇｌＰ４５０−１０１とＥｇｌＰ４５０−１２１の２種類が易発根系統Ａと難発根系統Ｂの間で顕著に変化が見られた（図１）。残りの１５種類のＰ４５０遺伝子においては、系統間の差は見られなかった。以上の結果から、ＥｇｌＰ４５０−１０１とＥｇｌＰ４５０−１２１の２種類の遺伝子発現と不定根形成との間に相関関係があると推測された。
【０１１８】
（１２）発根率の調査
発根率は、以下の方法で調査した。すなわち、ムラシゲ・スクーグ培地（和光純薬）、ＢＡＰ  ２０ｐｐｂ、ゲランガム０．２５％を含むシュート増殖培地に無菌的に腋芽をもつ茎片を挿し付けた。容器（６．５×６．５×１０５ｃｍ）内で、２５℃、湿度８０％、照度２００μｍｏｌ／ｍ２／ｓ（１６時間明所、８時間暗所）で４−５週間培養した。次に、約４−５ｃｍに増殖したシュートを発根に供した。発根は、５倍希釈したガンボーグ培地（和光純薬製）にインドール酪酸２ｐｐｍを含む発泡フェノール樹脂（Ｏａｓｉｓ、Ｓｍｉｔｈｅｒｓ−Ｏａｓｉｓ社製）に頂芽を含む３ｃｍ程度のシュートを挿しつけた。発根容器（９．２×９．２×１００ｃｍ）内で、温度２５℃、湿度８０％、照度２００μｍｏｌ／ｍ２／ｓ（１６時間明所、８時間暗所）、炭酸ガス濃度１０００ｐｐｍで３週間培養した。その後発根の有無を確認した。
【０１１９】
（１３）発根率と選抜したＰ４５０遺伝子発現との相関
発根率の異なるユーカリ・グロビュラス１０系統の発根率と、Ｐ４５０遺伝子ＥｇｌＰ４５０−１０１およびＥｇｌＰ４５０−１２１の遺伝子発現量との相関性を調査した。上記（１２）で１０系統のユーカリ・グロビュラスクローンの発根率を調査した。また、発根処理に供した茎の部分から全ＲＮＡを抽出して、前述の定量的ＲＴ−ＰＣＲによってＰ４５０遺伝子の発現量を測定した。図２、図３に示すように、発根率と２種類のＰ４５０遺伝子の発現には負の相関が見られた。従って、この遺伝子の発現量が低下していると発根率が高いことが予想された。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【配列表】
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