(57)【要約】      （修正有）【課題】従来のＩＲＥＳ（外来遺伝子発現要素）よりもポリシストロニックな翻訳効率が高く、有用物質の生産等の工業的な利用が可能な外来遺伝子発現要素の提供。【解決手段】ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のタンパク質読み枠の間に挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有している外来遺伝子発現要素１であって、特定の配列で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さの配列を含むポリヌクレオチドである、外来遺伝子発現要素。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のタンパク質読み枠の間に挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有している外来遺伝子発現要素であって、
配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さの配列を含むポリヌクレオチドである、外来遺伝子発現要素。
【請求項２】
配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第２２７位を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項３】
配列番号２で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項４】
配列番号３で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項５】
配列番号４で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項６】
配列番号５で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項７】
配列番号６で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項８】
配列番号７で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項９】
配列番号８で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項１０】
配列番号９で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項１１】
配列番号１０で表される塩基配列を有するポリヌクレオチドである、請求項１に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項１２】
ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のタンパク質読み枠の間に挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有している外来遺伝子発現要素であって、
配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さを有するポリヌクレオチドである、第１の塩基配列部分と、
配列番号１１で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチド、又は、配列番号１２で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチドである、第２の塩基配列部分と、を少なくとも含む外来遺伝子発現要素。
【請求項１３】
前記第１の塩基配列部分は、（１）配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第２２７位からなる塩基配列、（２）配列番号２で表される塩基配列、（３）配列番号３で表される塩基配列、（４）配列番号４で表される塩基配列、（５）配列番号５で表される塩基配列、（６）配列番号６で表される塩基配列、（７）配列番号７で表される塩基配列、（８）配列番号８で表される塩基配列、（９）配列番号９で表される塩基配列、又は（１０）配列番号１０で表される塩基配列のいずれか１つ又は２つ以上を有するポリヌクレオチドである、請求項１２に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項１４】
前記第２の塩基配列部分は、（ａ）配列番号１１で表される塩基配列のうち、第１３位〜第３４位の塩基配列、（ｂ）配列番号１２で表される塩基配列のうち、第１３位〜第６５位の塩基配列のいずれか一方を有するポリヌクレオチドである、請求項１２又は１３に記載の外来遺伝子発現要素。
【請求項１５】
ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のタンパク質読み枠の間に、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現要素が挿入された多重遺伝子発現構造体。
【請求項１６】
真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された請求項１〜１４のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現要素とを含む外来遺伝子発現ベクター。
【請求項１７】
真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された請求項１〜１４のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子とを含む外来遺伝子発現ベクター。
【請求項１８】
真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された請求項１５に記載の多重遺伝子発現構造体とを含む請求項１７に記載の外来遺伝子発現ベクター。
【請求項１９】
プラスミドベクターである、請求項１６〜１８のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現ベクター。
【請求項２０】
植物細胞用ベクターである、請求項１６〜１９のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現ベクター。
【請求項２１】
真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された請求項１〜１４のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子とを保持する形質転換体。
【請求項２２】
真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された請求項１５に記載の多重遺伝子発現構造体とを保持する請求項２１に記載の形質転換体。
【請求項２３】
植物細胞である、請求項２１又は２２に記載の形質転換体。
【請求項２４】
植物体である、請求項２１又は２２に記載の形質転換体。
【請求項２５】
真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された請求項１〜１４のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子とを植物細胞又は植物体に導入して形質転換体を作製する形質転換体の製造方法。
【請求項２６】
真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された請求項１５に記載の多重遺伝子発現構造体とを植物細胞又は植物体に導入して形質転換体を作製する請求項２５に記載の形質転換体の製造方法。
【請求項２７】
植物細胞である形質転換体を作製する、請求項２５又は２６に記載の形質転換体の製造方法。
【請求項２８】
植物体である形質転換体を作製する、請求項２５又は２６に記載の形質転換体の製造方法。
【請求項２９】
請求項２５〜２８のいずれか１項に記載の形質転換体の製造方法によって作製された形質転換体によって、前記外来遺伝子にコードされたペプチド又はタンパク質を発現させる工程を備える外来遺伝子発現方法。
【請求項３０】
請求項２５〜２８のいずれか１項に記載の形質転換体の製造方法によって作製された形質転換体を増殖又は生育させて、前記外来遺伝子にコードされたペプチド又はタンパク質である外来遺伝子産物を製造する工程を備える外来遺伝子産物の製造方法。
【請求項３１】
ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のタンパク質読み枠の間に、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現要素を挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させる、外来遺伝子高効率発現方法。
【請求項３２】
上流側に配置されたタンパク質読み枠と、これに連結するタンパク質読み枠との間に、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の外来遺伝子発現要素を挿入することにより、上流側に配置されたタンパク質読み枠の翻訳効率を向上させる、請求項３１に記載の外来遺伝子高効率発現方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ポリシストロニックな翻訳効率が高く、有用物質の生産等の工業的な利用が可能な外来遺伝子発現要素、該要素を有する多重遺伝子発現構造体、該要素を有する外来遺伝子発現ベクター、該要素を有する形質転換体とその製造方法、該形質転換体を用いた外来遺伝子発現方法、該形質転換体を用いた外来遺伝子産物の製造方法、前記外来遺伝子発現要素を用いた外来遺伝子高効率発現方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
植物細胞などの真核細胞においては、核酸から転写されたｍＲＮＡの翻訳はその５’末端側のキャップ構造にリボソームが結合することにより開始されるいわゆるキャップ依存性のｍＲＮＡの翻訳が主体となっている。一方、ある種のレトロウイルスにおいては、キャップ構造以外にリボソームが結合する内部リボソーム導入部位（Internal Ribosomal Entry Site，以下単にＩＲＥＳともいう。）を有しており、キャップ非依存性のｍＲＮＡ翻訳が行われることが知られている。
【０００３】
動物ピコルナウイルスの１種であるencephalomyocarditis virus（ＥＭＣＶ）のゲノムはプラス鎖１本鎖ＲＮＡであり、全長８３４塩基からなる５’ＵＴＲを持っている。この５’ＵＴＲのうち２６０〜８３６の約５７４塩基にＩＲＥＳ配列が存在し、この配列にリボソームが直接結合して翻訳を開始することが証明されている（Jackson et al., 1990; Hellen and Sarnow, 2001）。このＥＭＣＶ−ＩＲＥＳを使用したバイシストロニック（bicistronic）なタンパク質発現系は動物細胞においてはほぼ確立されており、市販品として入手可能である。ＥＭＣＶ−ＩＲＥＳは試験管内翻訳系においてもキャップ非依存的翻訳を促進する働きを示し、ウサギ網状赤血球の系では有効に機能することが明らかとなっている。しかし、コムギ胚芽の系ではＥＭＣＶ−ＩＲＥＳは全く機能せず、むしろ翻訳抑制的に働いた。これらのことから、当初はＥＭＣＶ−ＩＲＥＳは植物細胞においては機能しないと推定されていた。しかし、一過的発現系や形質転換植物を用いたｉｎ  ｖｉｖｏ実験系においてＥＭＣＶ−ＩＲＥＳの挿入による翻訳効率上昇が観察され、植物細胞内でＥＭＣＶ−ＩＲＥＳが機能することが判明した（非特許文献１）。
【０００４】
また、植物ウイルスの１種であるアブラナ感染性トバモウイルス（crucifer-infecting tobamovirus（ｃｒＴＭＶ））は１分節のプラス鎖１本鎖ＲＮＡである。ゲノムＲＮＡの５’側から複製酵素、移動タンパク質（movement protein（ＭＰ））、コートタンパク質（coat protein（ＣＰ））をコードするタンパク質読み枠（Open reading frame；以下、ＯＲＦと記す。）を持っており、各ＯＲＦはそれぞれ数塩基ずつ重なっている。そのため、最も上流に存在する複製酵素はゲノムＲＮＡから翻訳されるが、その際ＭＰおよびＣＰ遺伝子は翻訳されないメカニズムとなっている。このｃｒＴＭＶについては、ｃｒＴＭＶゲノムＲＮＡから生じたサブゲノムＲＮＡの５’ＵＴＲ部分を２種類の遺伝子のＯＲＦ間に挿入したバイシストロニックベクターを用いた実験が行われ、ｓｇＲＮＡＩ２とｍｏｎｏｃｉｓｔｒｏｎｉｃ  ｓｇＲＮＡの５’ＵＴＲがｉｎ  ｖｉｔｒｏ翻訳実験およびタバコプロトプラストにおける一過的遺伝子発現実験において下流遺伝子を翻訳すること、すなわち各サブゲノムの５’ＵＴＲにＩＲＥＳ配列が存在することが証明された（非特許文献２および非特許文献３）。
【０００５】
さらに、ｃｒＴＭＶ以外の植物ウイルスでは、tobacco etch virus（ＴＥＶ）のゲノムＲＮＡ（非特許文献４）やhibiscus chlorotic ringspot virus（ＨＣＲＳＶ）のサブゲノムＲＮＡの５’ＵＴＲ（非特許文献５）などにおいてもＩＲＥＳ配列が存在するという報告がある。また、植物ウイルス由来ＩＲＥＳの長さは１００塩基前後であり、ピコルナウイルス由来のＩＲＥＳよりも非常にサイズが小さいのが特徴的である。
【０００６】
また、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能なポリリボヌクレオチドであり、該ポリリボヌクレオチドの近傍に接続されるＩＲＥＳを介してキャップ非依存性ＲＮＡの翻訳効率を向上させる翻訳効率制御要素についても知られている（例えば、特許文献１，非特許文献６）。
さらに、Blackcurrant reversion nepovirus（ＢＲＶ）のゲノムＲＮＡの非翻訳領域についても翻訳効率を向上させる可能性が示されている（非特許文献７）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Urwin, P., Yi, L., Martin, H., Atkinson, H., and Gilmartin, P.M. (2000). Functional characterization of the EMCV IRES in plants. Plnat J. 24, 583-589.
【非特許文献２】Ivanov, P.A., Karpova, O.V., Skulachev, M.V., Tomashevskaya, O.L., Rodionova, N.P., Dorokhov, Y.L., and Atabekov, J.G. (1997). A tobamovirus genome that contains an internal ribosome entry site functional in vitro. Virology 232, 32-43.
【非特許文献３】Skulachev, M.V., Ivanov, P.A., Karpova, O.V., Korpela, T., Rodionova, N.P., Dorokhov, Y.L., and Atabekov, J.G. (1999). Internal initiation of translation directed by the 5’-untranslated region of the tobamovirus subgenomic RNA I2. Virology 263, 139-154.
【非特許文献４】Niepel, M., and Gallie, D.R. (1999). Identfiation and characterization of the functional elements within the tobacco etch virus 5’leader required for cap-independent translation. J. Virol. 73, 9080-9088.
【非特許文献５】Koh, D.C.-Y., Wong, S.-M., and Liu, D.X. (2003). Synergism of the 3’-untranslated region and an internal ribosome entry site differentially enhances the translation of a plant virus coat protein. J. Biol. Chem. 278, 20565-20573.
【非特許文献６】松尾直子，橋本千種，市橋茜，平塚和之，“ウイルス由来配列を利用した多重遺伝子発現に関する研究”，ウイルス病理研究会レポート，７，６３−７２，２００４
【非特許文献７】A. Karetnikov, K. Lehto / Virology 371 (2008), 292-308
【非特許文献８】Matsuo, N., Gilmartin, P.M., and Hiratsuka, K. Characterization of the EMCV-IRES mediated bicistronic translation in plant cells. Plant Biotechnol. 21, 119-126. 2004
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】特開２００６−５５０９１号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
前述したように、ＩＲＥＳが植物細胞内において機能し、ｍＲＮＡにおける多重的な翻訳領域を翻訳することは既に明らかとなっている。そして、有用物質の高効率・高生産が可能な遺伝子組換え植物を創成するために、複数の外来遺伝子を植物細胞や植物体に計画的に導入する多重遺伝子導入技術において、複数の外来遺伝子の間にＩＲＥＳを介在させた配列を構築することで、単一の転写単位に複数のＯＲＦが挿入された多重遺伝子発現系を構築できる。この複数の外来遺伝子の間にＩＲＥＳを介在させた配列を有する多重遺伝子発現系は、外来遺伝子のポリシストロニックな遺伝子発現が可能であり、複数の外来遺伝子を確実に発現させる方法として極めて有用である。
【００１０】
しかしながら、既知のＩＲＥＳを用いて前記多重遺伝子発現系を構築した場合、翻訳効率が低く、有用物質の生産等の工業的な利用のためには不向きであった。
【００１１】
本発明は前記事情に鑑みてなされ、従来のＩＲＥＳよりもポリシストロニックな翻訳効率が高く、有用物質の生産等の工業的な利用が可能な外来遺伝子発現要素、該要素を有する多重遺伝子発現構造体、該要素を有する外来遺伝子発現ベクター、該要素を有する形質転換体とその製造方法、該形質転換体を用いた外来遺伝子発現方法、該形質転換体を用いた外来遺伝子産物の製造方法、前記外来遺伝子発現要素を用いた外来遺伝子高効率発現方法の提供を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
前記目的を達成するため、本発明は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有している外来遺伝子発現要素であって、
配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さの配列を含むポリヌクレオチドである、外来遺伝子発現要素を提供する。
前記外来遺伝子発現要素は、（１）配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第２２７位からなる塩基配列、（２）配列番号２で表される塩基配列、（３）配列番号３で表される塩基配列、（４）配列番号４で表される塩基配列、（５）配列番号５で表される塩基配列、（６）配列番号６で表される塩基配列、（７）配列番号７で表される塩基配列、（８）配列番号８で表される塩基配列、（９）配列番号９で表される塩基配列、又は（１０）配列番号１０で表される塩基配列のいずれか１つ又は２つ以上を有するポリヌクレオチドであることが好ましい。
【００１３】
また本発明は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有している外来遺伝子発現要素であって、
配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さを有するポリヌクレオチドである、第１の塩基配列部分と、
配列番号１１で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチド、又は、配列番号１２で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチドである、第２の塩基配列部分と、を少なくとも含む外来遺伝子発現要素を提供する。
前記外来遺伝子発現要素において、前記第１の塩基配列部分は、（１）配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第２２７位からなる塩基配列、（２）配列番号２で表される塩基配列、（３）配列番号３で表される塩基配列、（４）配列番号４で表される塩基配列、（５）配列番号５で表される塩基配列、（６）配列番号６で表される塩基配列、（７）配列番号７で表される塩基配列、（８）配列番号８で表される塩基配列、（９）配列番号９で表される塩基配列、又は（１０）配列番号１０で表される塩基配列のいずれか１つ又は２つ以上を有するポリヌクレオチドであることが好ましい。
前記外来遺伝子発現要素において、前記第２の塩基配列部分は、（ａ）配列番号１１で表される塩基配列のうち、第１３位〜第３４位の塩基配列、（ｂ）配列番号１２で表される塩基配列のうち、第１３位〜第６５位の塩基配列のいずれか一方を有するポリヌクレオチドであることが好ましい。
【００１４】
また本発明は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素が挿入された多重遺伝子発現構造体を提供する。
【００１５】
また本発明は、真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記外来遺伝子発現要素とを含む外来遺伝子発現ベクターを提供する。
また本発明は、真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子とを含む外来遺伝子発現ベクターを提供する。
前記外来遺伝子発現ベクターは、真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記多重遺伝子発現構造体とを含むことが好ましい。
前記外来遺伝子発現ベクターは、プラスミドベクターであることが好ましい。
前記外来遺伝子発現ベクターは、植物細胞用ベクターであることが好ましい。
【００１６】
また本発明は、真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子とを保持する形質転換体を提供する。
前記形質転換体は、真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記多重遺伝子発現構造体とを保持することが好ましい。
前記形質転換体は、植物細胞であることが好ましい。
前記形質転換体は、植物体であることが好ましい。
【００１７】
また本発明は、真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子とを植物細胞又は植物体に導入して形質転換体を作製する形質転換体の製造方法を提供する。
前記形質転換体の製造方法において、真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記多重遺伝子発現構造体とを植物細胞又は植物体に導入して形質転換体を作製することが好ましい。
前記形質転換体の製造方法は、植物細胞である形質転換体を作製するために用いることが好ましい。
前記形質転換体の製造方法は、植物体である形質転換体を作製するために用いることが好ましい。
【００１８】
また本発明は、前記形質転換体の製造方法によって作製された形質転換体によって、前記外来遺伝子にコードされたペプチド又はタンパク質を発現させる工程を備える外来遺伝子発現方法を提供する。
【００１９】
また本発明は、前記形質転換体の製造方法によって作製された形質転換体を増殖又は生育させて、前記外来遺伝子にコードされたペプチド又はタンパク質である外来遺伝子産物を製造する工程を備える外来遺伝子産物の製造方法を提供する。
【００２０】
また本発明は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素を挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させる、外来遺伝子高効率発現方法を提供する。
前記外来遺伝子高効率発現方法において、上流側に配置されたＯＲＦと、これに連結するＯＲＦとの間に、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素を挿入することにより、上流側に配置されたＯＲＦの翻訳効率を向上させることが好ましい。
【発明の効果】
【００２１】
本発明の外来遺伝子発現要素は、配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さの配列を含むポリヌクレオチドであり、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間にこれを挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有しており、異なるＯＲＦ間に本発明に係る外来遺伝子発現要素を挿入することにより、外来遺伝子でコードされたペプチド又はタンパク質の翻訳効率を飛躍的に向上させることが可能である。
特に、既知のＩＲＥＳ配列と比較して、上流側のＯＲＦの発現効率を著しく向上させることが可能となる。
また、既知のＩＲＥＳとは相同性を有しない新規な配列であるため、既知ＩＲＥＳと同時に使用しても遺伝子発現の共抑制等の問題が起こらない。
【００２２】
本発明の外来遺伝子発現要素は、配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さを有するポリヌクレオチドである、第１の塩基配列部分と、配列番号１１で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチド、又は、配列番号１２で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチドである、第２の塩基配列部分と、を少なくとも含む構成とすることが好ましい。前記第１の塩基配列部分と前記第２の塩基配列部分とを組み合わせることによって、外来遺伝子でコードされたペプチド又はタンパク質の翻訳効率をより一層向上させることが可能である。
【００２３】
本発明の多重遺伝子発現構造体は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に、前記外来遺伝子発現要素が挿入された構造なので、該多重遺伝子発現構造体は、遺伝子組換え植物体あるいは植物細胞を利用して、複数の外来遺伝子を効率よく発現させるための導入遺伝子作製時に好適に用いることができる。この多重遺伝子発現構造体を植物細胞や植物体などに導入して作製された形質転換体は、高効率多重遺伝子発現が可能となり、有用物質の生産等の工業的な利用が可能となる。
【００２４】
本発明の外来遺伝子発現ベクターは、前記外来遺伝子発現要素又は前記多重遺伝子発現構造体を含むものなので、この外来遺伝子発現ベクターを植物体や植物細胞に導入して、複数の外来遺伝子を効率よく発現させることが可能な形質転換体を効率よく作製することができる。この外来遺伝子発現ベクターを植物細胞や植物体などに導入して作製された形質転換体は、高効率多重遺伝子発現が可能となり、有用物質の生産等の工業的な利用が可能となる。
【００２５】
本発明の形質転換体は、前記外来遺伝子発現要素又は前記多重遺伝子発現構造体を含むものなので、高効率多重遺伝子発現が可能となり、有用物質の生産等の工業的な利用が可能となる。
【００２６】
本発明の形質転換体の製造方法は、真核細胞で動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子とを植物細胞又は植物体に導入して形質転換体を作製することによって、高効率多重遺伝子発現が可能となり、有用物質の生産等の工業的な利用が可能となる形質転換体を効率よく生産することができる。
【００２７】
本発明の外来遺伝子発現方法は、本発明の形質転換体の製造方法により得られ、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素を含む形質転換体によって外来遺伝子を発現させることによって、既知のＩＲＥＳ配列と比較して、上流側のＯＲＦの発現効率を著しく向上させることが可能となる。
【００２８】
本発明の外来遺伝子産物の製造方法は、本発明の形質転換体の製造方法により得られ、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素を含む形質転換体を増殖又は生育させて、外来遺伝子にコードされたペプチド又はタンパク質である外来遺伝子産物を製造する工程を備えたものなので、高効率多重遺伝子発現が可能となり、有用物質の生産等の工業的な利用が可能となる。
【００２９】
本発明の外来遺伝子高効率発現方法は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素を挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるものなので、高効率多重遺伝子発現が可能となり、有用物質の生産等の工業的な利用が可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００３０】
【図１】複数のＯＲＦの間にＩＲＥＳを挿入した多重遺伝子発現構造体を示す概略構成図である。
【図２】本発明に係る実施例において使用したＩＲＥＳ活性の測定方法を説明するための概略構成図である。
【図３】本発明に係る実施例１〜３及び比較例１，２のＩＲＥＳ活性測定結果を示すグラフである。
【図４】実施例１，４〜６及び比較例１のＩＲＥＳ活性測定結果を示すグラフである。
【図５】実施例１，７〜１０及び比較例１のＩＲＥＳ活性測定結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００３１】
本発明の外来遺伝子発現要素の第１の形態は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有している外来遺伝子発現要素であって、配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さの配列を含むポリヌクレオチドである。すなわち、本発明の外来遺伝子発現要素は、いわゆるＩＲＥＳの一種であり、既知のＩＲＥＳよりも前記ＩＲＥＳ活性が高い新規なＩＲＥＳである。なお、ＩＲＥＳは、ＲＮＡあるいはｍＲＮＡ上において内部リボソーム導入部位として機能するものであるため、ＩＲＥＳとして機能する状態のポリヌクレオチドのタイプはＲＮＡであり、ＩＲＥＳは、本来的にＲＮＡ分子の一部分あるいはＲＮＡ配列である。本発明の外来遺伝子発現要素、多重遺伝子発現構造体、外来遺伝子発現ベクター、形質転換体等において、この語を用いるときには、ＩＲＥＳとして機能するＲＮＡ分子の一部分あるいはＲＮＡ配列を意味する他、これらをコードするポリヌクレオチドとして表現するものとする。したがって、ＩＲＥＳはＤＮＡであってもＲＮＡであっても使用することができ、配列番号１〜１０において表す塩基配列は、ＤＮＡとして表記している。
【００３２】
本発明の外来遺伝子発現要素の第２の形態は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有している外来遺伝子発現要素であって、配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上の長さを有するポリヌクレオチドである、第１の塩基配列部分と、配列番号１１で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチド、又は、配列番号１２で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチドである、第２の塩基配列部分と、を少なくとも含む外来遺伝子発現要素を提供する。
【００３３】
これらの本発明に係る外来遺伝子発現要素は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間にこれを挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有しており、異なるＯＲＦ間に本発明に係る外来遺伝子発現要素を挿入することにより、外来遺伝子でコードされたペプチド又はタンパク質の翻訳効率を飛躍的に向上させることが可能である。
特に、既知のＩＲＥＳ配列と比較して、上流側のＯＲＦの発現効率を著しく向上させることが可能となる。
また、既知のＩＲＥＳとは相同性を有しない新規な配列であるため、既知ＩＲＥＳと同時に使用しても遺伝子発現の共抑制等の問題が起こらない。
【００３４】
以下、本発明の最良の実施形態として、外来遺伝子発現要素の２つの形態（外来遺伝子発現要素−１、外来遺伝子発現要素−２）について説明するとともに、該外来遺伝子発現要素を利用した多重遺伝子発現構造体、該要素を有する外来遺伝子発現ベクター、該要素を有する形質転換体とその製造方法について併せて説明する。
【００３５】
（外来遺伝子発現要素−１）
本発明に係る外来遺伝子発現要素の第１の形態は、配列番号１で表される塩基配列のうち、少なくとも３０塩基対以上、好ましくは４０塩基対以上、より好ましくは５０塩基対以上の長さの配列ならびにそのホモログを含むポリヌクレオチドである。ここで、ホモログとは、本来の配列とは異なるが類似のＩＲＥＳ活性を有する変異体を指すものとする。通常、ホモログは、本来の配列と少なくとも７０％以上の相同性を有し、好ましくは、８０％以上、より好ましくは９０％以上、一層好ましくは９５％以上の相同性を有している。また、ホモログは、本来の配列に対して１あるいは２以上の塩基の置換、欠失および／または挿入を有している。なお、本明細書において、ＤＮＡなどの核酸のホモロジーは、遺伝子解析プログラムＢＬＡＳＴ（http://blast.genome.ad.jp），ＦＡＳＴＡ（http://fasta.genome.ad.jp/SIT/FASTA.html）などによって決定することができる。
【００３６】
本発明の好適な実施形態において、前記外来遺伝子発現要素は、
（１）配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第２２７位からなる塩基配列
（２）配列番号２で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第１１３位からなる塩基配列）
（３）配列番号３で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１１４位〜第２２７位からなる塩基配列）
（４）配列番号４で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第１７０位からなる塩基配列）
（５）配列番号５で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第５８位〜第２２７位からなる塩基配列）
（６）配列番号６で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第５８位〜第１７０位からなる塩基配列）
（７）配列番号７で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第５７位からなる塩基配列）
（８）配列番号８で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第５８位〜第１１３位からなる塩基配列）
（９）配列番号９で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１１４位〜第１７０位からなる塩基配列）
（１０）配列番号１０で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１７１位〜第２２７位からなる塩基配列）
のいずれか１つ又は２つ以上を有するポリヌクレオチドあるいはそのホモログであることが好ましい。
【００３７】
この外来遺伝子発現要素は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に挿入することにより、前記外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させるＩＲＥＳ活性を有している、新規なＩＲＥＳ配列である。ここで、本発明において用いている「ＩＲＥＳ活性」の用語の意味について、図１を参照して説明する。
【００３８】
図１は、複数のＯＲＦ２，３，４の間にＩＲＥＳ１，１を挿入した多重遺伝子発現構造体５を示す概略構成図である。
本図において、プロモーター６が接続される上流側のＯＲＦ２は、第１のペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である第１の外来遺伝子Ａを有している。
前記ＯＲＦ２の下流側には、第１のＩＲＥＳ１が接続され、該第１のＩＲＥＳ１の下流側には、第２のペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である第２の外来遺伝子Ｂを有しているＯＲＦ３（中間のＯＲＦ）が接続されている。
さらに、前記中間のＯＲＦ３の下流側には、第２のＩＲＥＳ１が接続され、該第２のＩＲＥＳ１の下流側には、第３のペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である第３の外来遺伝子Ｃを有しているＯＲＦ４（下流側のＯＲＦ）が接続されている。そして、該下流側のＯＲＦ４の下流側には、ターミネーター７が接続されている。前記第１のＩＲＥＳと第２のＩＲＥＳは、同じであってもよいし、異なっていてもよい。また、前記第１のＩＲＥＳと第２のＩＲＥＳとが異なるものである場合、上流側に配置される第１のＩＲＥＳを本発明に係る外来遺伝子発現要素とすればよく、下流側の第２のＩＲＥＳは、本発明に係る外来遺伝子発現要素であってもよいし、或いは既知のＩＲＥＳであってもよい。
【００３９】
図１に示す多重遺伝子発現構造体５において、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子Ａ，Ｂ，Ｃを導入した複数のＯＲＦ２，３，４の間に、ＩＲＥＳ活性を有する本発明の外来遺伝子発現要素（図１中のＩＲＥＳ１，１）を挿入することにより、この多重遺伝子発現構造体５の翻訳における外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を大幅に向上させることができる。各ＯＲＦ２，３，４間にＩＲＥＳを挿入しない構造体、すなわち、外来遺伝子Ａ，Ｂ，Ｃを導入した複数のＯＲＦ２，３，４を直接接続した構造では、上流側のＯＲＦ２の翻訳終了とともに、終始コドンでリボソームが解離し翻訳が終了し、２番目以降のＯＲＦ３，４が翻訳されない。一方、図１に示すように異なるＯＲＦ２，３，４間に本発明に係る外来遺伝子発現要素をＩＲＥＳとして挿入することにより、外来遺伝子Ａ，Ｂ，Ｃでコードされた複数のタンパク質のポリシストロニックな翻訳効率を大幅に向上させることが可能である。特に、本発明に係る外来遺伝子発現要素は、既知のＩＲＥＳ配列と比較して上流側のＯＲＦの発現効率を著しく向上させることが可能となることで、既知のＩＲＥＳを用いた場合と比較して複数のタンパク質のポリシストロニックな翻訳効率を飛躍的に向上させることが可能であり、その「ポリシストロニックな翻訳効率の向上効果」のことを、本発明では「ＩＲＥＳ活性」と称している。
つまり、本発明において「ＩＲＥＳ活性」とは、ＩＲＥＳを含まない一つのＯＲＦの翻訳において発現するペプチド又はタンパク質の発現量（Ｐ１）に対し、前述したように複数のＯＲＦ間にＩＲＥＳ（外来遺伝子発現要素）を挿入した構造体の翻訳において、それぞれの外来遺伝子でコードされたペプチド又はタンパク質の発現量（Ｐ２，Ｐ３）の割合（Ｐ２／Ｐ１，Ｐ３／Ｐ１）のことを言う。
【００４０】
（外来遺伝子発現要素−２）
本発明に係る外来遺伝子発現要素の第２の形態は、外来遺伝子発現要素−１で記載した通りの塩基配列部分である第１の塩基配列部分と、配列番号１１で表される塩基配列又は配列番号１２で表される塩基配列のうち、少なくとも１つのステム−ループ構造を形成可能であり、且つ前記ステム−ループ構造のステムは６塩基対以上３０塩基対以下の二重鎖又は部分二重鎖を形成するポリヌクレオチドまたはそのホモログである第２の塩基配列部分と、を少なくとも含む。ここで、ホモログとは、外来遺伝子発現要素−１で記載したホモログと同様に、本来の配列とは異なるが類似のＩＲＥＳ活性を有する変異体を指すものとする。通常、ホモログは、本来の配列と少なくとも７０％以上の相同性を有し、好ましくは、８０％以上、より好ましくは９０％以上、一層好ましくは９５％以上の相同性を有している。また、ホモログは、本来の配列に対して１あるいは２以上の塩基の置換、欠失および／または挿入を有している。
【００４１】
前記ステム−ループ構造は、相補的塩基対からなる二重鎖のポリヌクレオチドからなるステムと、ステムを結合する端部であるループを有していればよい。なお、ループは、互いに塩基対を形成しない配列を有する一重鎖からなるループのみならず実質的にループを形成しない端部であってもよい。したがって、本発明におけるステム−ループ構造は、ヘヤピン構造を含んでいる。この外来遺伝子発現要素−２におけるステム−ループ構造の形成は、この外来遺伝子発現要素−２のポリヌクレオチド鎖が自己相補性を有することにより、該自己相補性を有する鎖部分が塩基対を形成することによりステムが形成される。したがって、この外来遺伝子発現要素−２は、少なくともステムを形成可能な一対の自己相補性鎖部位を有していればよく、さらに、該自己相補性鎖部位に加え、該部位間に介在されるループを形成可能な自己相補性を有しない（あるいは自己相補性がほとんどない）非自己相補性鎖部位を有していてもよい。
【００４２】
ステムを形成可能な自己相補性鎖部位は、自己相補的塩基間で結合するのに十分な長さを有していることが好ましいが、例えば、合わせて合計で５０ヌクレオチド残基以上１００ヌクレオチド残基以下の範囲とすることができる。また、自己相補性部位が自己塩基対合してステムを形成したときには、５塩基対以上３５塩基対以下の二重鎖または部分二重鎖を形成可能とすることができる。形成する塩基対が少なすぎるとステムの安定性が低く、安定したステム−ループ構造を形成しにくく、塩基対が多すぎるキャップ依存性翻訳やキャップ非依存性翻訳の双方を阻害するおそれがあるからである。好ましくは、一対の自己相補性部位は６塩基対以上３０塩基対以下の塩基対合が形成可能である。塩基対合は、より好ましくは、７塩基対以上２５塩基対以下であり、さらに好ましくは８塩基対以上２２塩基対以下である。
【００４３】
また、自己相補性鎖部位を構成するヌクレオチド鎖の構成塩基は、本発明に係る外来遺伝子発現要素がＤＮＡとしたとき、グアニン（Ｇ）およびシトシン（Ｃ）の比率がアデニン（Ａ）およびチミン（Ｔ）より多いことが好ましく、より好ましくはＧＣ含量が５４％以上である。
【００４４】
ループを形成可能な非自己相補性鎖部位は、ステムの二重鎖の安定性を阻害しないことが好ましく、２ヌクレオチド残基以上であることが好ましく、より好ましくは４ヌクレオチド残基以上である。また、上限は、好ましくは２０ヌクレオチド残基程度であり、より好ましくは１０ヌクレオチド残基程度である。
【００４５】
少なくとも自己相補性部位を備えるステム−ループ構造部分は、全体として２０以上６０以下のヌクレオチド残基からなることが好ましい。また、この外来遺伝子発現要素−２は、ステム−ループ構造部分以外の部分、すなわち、ステムのループに連続しない３’末端および５’末端の部分を有することができる。この両テール部分は、この第２の塩基配列部分の上流あるいは下流に結合される、ＩＲＥＳ活性を有する前記第１の塩基配列部分やＯＲＦとの介在配列となり、前記第１の塩基配列部分やＯＲＦとの間で適切な距離や位置関係を形成するのに寄与することができる。このような介在配列としては、３’側には２０残基以上２３残基程度有することが好ましく、５’側には１０残基以上１５残基以下程度有することが好ましい。
【００４６】
本発明の好適な実施形態において、前記第２の塩基配列部分は、
（ａ）配列番号１１で表される塩基配列のうち、第１３位〜第３４位の塩基配列、
（ｂ）配列番号１２で表される塩基配列のうち、第１３位〜第６５位の塩基配列、
のいずれか一方を有するポリヌクレオチドあるいはそのホモログであることが好ましい。
【００４７】
前記第２の塩基配列部分は、ＩＲＥＳ活性を有する前記第１の塩基配列部分を介してのキャップ非依存性翻訳効率を向上させ、その結果として外来遺伝子発現要素−２のポリシストロニックな翻訳効率をより一層向上させることができる。前記第２の塩基配列部分は、ＩＲＥＳ活性を有する前記第１の塩基配列部分に対して好ましくはその上流に位置される。好ましくは、前記第１の塩基配列部分の直前に第２の塩基配列部分を結合することが好ましい。第１の塩基配列部分と第２の塩基配列部分との間にヌクレオチド残基が多いと、この第２の塩基配列部分によるキャップ非依存性翻訳効率の向上効果が低下するおそれがある。
【００４８】
（多重遺伝子発現構造体）
本発明に係る多重遺伝子発現構造体は、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子を導入した複数のＯＲＦの間に、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素が挿入された構造になっている。
図１は、本発明に係る多重遺伝子発現構造体の一例を示す概略構成図であり、本例の多重遺伝子発現構造体５は、３つのＯＲＦ２，３，４の間に、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素（ＩＲＥＳ１，１）を挿入した構成になっている。なお、図１の例示は一例に過ぎず、ＯＲＦ及びＩＲＥＳの個数は本例示に限定されるものではなく複数のＯＲＦがＩＲＥＳを介して連結された構造であればよく、本例示よりも少ない個数のＯＲＦ及びＩＲＥＳ（ＯＲＦが２つ、ＩＲＥＳが１つ）又は多い個数のＯＲＦ及びＩＲＥＳ（ＯＲＦが４つ以上、ＩＲＥＳが３つ以上）を連結した多重遺伝子発現構造体を構成してもよい。
【００４９】
本発明に係る多重遺伝子発現構造体において、複数のＯＲＦ２，３，４に導入される外来遺伝子は、宿主、特に植物細胞又は植物体に当該多重遺伝子発現構造体を導入して得られた形質転換体を増殖又は生育させた際に、該外来遺伝子でコードされたペプチド又はタンパク質が発現されるものであればよく、複数のＯＲＦ毎に異なるものであることが好ましい。
【００５０】
本発明において用いる外来遺伝子によりコードされるペプチド又はタンパク質としては、前述した通り、宿主、特に植物細胞又は植物体において発現可能なペプチド又はタンパク質であればよく、例えば、医薬用途のあるペプチドあるいはタンパク質；栄養価が高められたタンパク質；殺虫性ペプチドあるいはタンパク質；植物病原体等に対する抗菌性ペプチドあるいはタンパク質；プロテアーゼ、アミラーゼ、あるいは植物細胞内における糖合成経路、タンパク質合成経路における酵素タンパク質；ある種の酵素阻害剤であるペプチドあるいはタンパク質；などが挙げられる。
【００５１】
前記医薬用途のあるペプチドあるいはタンパク質としては、例えば、抗体、抗原、受容体アンタゴニスト、神経ペプチド、酵素、血液因子、第ＶＩＩＩ因子、第ＩＸ因子、インスリン、プロインスリン、ソマトスタチン、血液アルブミン、組織型プラスミノーゲンアクチベーター、組織型プラスミノーゲンアクチベーター、造血因子、絨毛性性腺刺激ホルモン、卵胞刺激ホルモン、ルトロピン−絨毛性性腺刺激ホルモン、甲状腺刺激ホルモン、ヒト成長ホルモン、インターフェロン、ケラチン細胞成長因子、グリア細胞由来神経栄養因子、これらの断片、可溶性型、機能性誘導体、融合タンパク質などが挙げられる。
【００５２】
また、前記外来遺伝子として、宿主である植物体に対して、特定の薬剤に対する耐性を付与する遺伝子、例えば、除草剤であるラウンドアップ耐性遺伝子、ビアラホス耐性遺伝子、ブロモキシニル耐性遺伝子、スルホニルウレア耐性遺伝子、２，４−Ｄ耐性遺伝子などを使用してもよいし、ＢＴ（Bacillus thuringiensis）毒素産生遺伝子などの従来より遺伝子組換え作物の生産において知られている各種の有用な遺伝子を使用してもよい。
【００５３】
さらに、前記外来遺伝子は、前述したペプチド又はタンパク質とともに発現され、適切なアッセイによって検出された場合にこれらペプチド又はタンパク質の発現の間接的な証拠となる選択マーカーを発現可能なマーカー遺伝子を含んでいてもよい。このような選択マーカーとしては、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ウミシイタケルシフェラーゼ（Ｒｌｕｃ）、ホタルルシフェラーゼ（Ｆｌｕｃ）、ヒカリコメツキ（Click beetle）由来の緑色発光タンパク質（ＣＢＧ）及び赤色発光タンパク質（ＣＢＲ）など細胞に識別可能な色を付与する選択マーカーの他、薬剤抵抗性遺伝子、栄養要求性遺伝子などを始めとする公知の各種選択マーカー遺伝子を利用できる。
なお、後述する実施例においては、外来遺伝子として、ウミシイタケルシフェラーゼ（Ｒｌｕｃ）、ヒカリコメツキ（Click beetle）由来の緑色発光タンパク質（ＣＢＧ）及び赤色発光タンパク質（ＣＢＲ）を発現するレポーター遺伝子を用いて多重遺伝子発現構造体を構築しているが、あくまでもこれはＩＲＥＳ活性の測定を３レポーター同時定量法によって容易に行うためのものであり、本発明に係る多重遺伝子発現構造体、外来遺伝子発現ベクター及び形質転換体を外来遺伝子産物の工業的生産に利用する場合には、レポーター遺伝子ではなく、前述した有用なペプチド又はタンパク質を発現可能な遺伝子配列が用いられる。
【００５４】
本発明に係る多重遺伝子発現構造体において、ＩＲＥＳが複数存在する場合、その全てが本発明に係る前記外来遺伝子発現要素であってもよいし、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素と他のＩＲＥＳとを組み合わせて使用してもよい。後者の場合、本発明に係る前記外来遺伝子発現要素は、上流側に配置することが望ましい。
【００５５】
本発明に係る多重遺伝子発現構造体において、他のＩＲＥＳとしては、ＲＮＡウイルスゲノムにコードされる該ウイルスゲノム由来のＩＲＥＳであることが好ましい。こうしたＩＲＥＳは、本制御要素によってキャップ非依存性翻訳効率を向上させやすいからである。なかでも植物ＲＮＡウイルスであり、例えば、アブラナ感染性トバモウイルス（crucifer-infecting tobamovirus（ｃｒＴＭＶ））、タバコエッチウイルス（tobacco etch virus（ＴＥＶ））、ハイビスカスクロロティックリングスポットウイルス（hibiscus chlorotic ring spot virus（ＨＣＲＳＶ））が有するＩＲＥＳが好ましいものとして挙げられる。特に、アブラナ感染性トバモウイルス（ｃｒＴＭＶ）の移動タンパク質をコードする遺伝子またはコートタンパク質をコードする遺伝子のＩＲＥＳを用いることが好ましい。
【００５６】
本発明に係る外来遺伝子発現要素及び多重遺伝子発現構造体は、化学合成法、ＰＣＲ法等の当業者に周知の如何なる方法によっても製造することができる。これらの方法によって得られる外来遺伝子発現要素及び多重遺伝子発現構造体は、塩基配列決定用ゲルを用いたゲル濾過等の当業者に周知の方法により精製されることが好ましい。
【００５７】
なお、好ましい外来遺伝子発現要素及び多重遺伝子発現構造体として挙げた配列は、いずれもＤＮＡ配列であるが、これらの各ＤＮＡ配列に対応するＲＮＡ配列（これらのＤＮＡ配列によってコードされるＲＮＡ配列）を有するポリヌクレオチドも本発明において好ましいポリヌクレオチドである。
【００５８】
（外来遺伝子発現ベクター）
本発明に係る外来遺伝子発現要素及び多重遺伝子発現構造体は、所望のペプチド又はタンパク質を宿主細胞内で発現させるための外来遺伝子発現ベクターの構成部分としての形態で使用することができる。本発明に係る外来遺伝子発現ベクターは、真核細胞において動作可能なプロモーターと、この下流側に結合された少なくとも１つの前記外来遺伝子発現要素、又は多重遺伝子発現構造体を備えることができる。こうした外来遺伝子発現ベクターに少なくとも前記外来遺伝子発現要素によって翻訳開始可能に所望の外来遺伝子を含む複数のＯＲＦを連結し、この外来遺伝子発現ベクターを宿主細胞に導入することで、複数のペプチド又はタンパク質をポリシストロニックに産生させることができる。
【００５９】
本発明に係る外来遺伝子発現ベクターにおいて、図１に示すようにプロモーター６により作動可能に第１のペプチド又はタンパク質のコード領域を含む上流側のＯＲＦ２を結合し、この上流側のＯＲＦ２の下流側に第１のＩＲＥＳ１を接続し、該第１のＩＲＥＳ１の下流側に、第２のペプチド又はタンパク質のコード領域を含む中間のＯＲＦ３を接続し、この中間のＯＲＦ３の下流側に、第２のＩＲＥＳ１を接続し、該第２のＩＲＥＳ１の下流側に、第３のペプチド又はタンパク質のコード領域を含む下流側のＯＲＦ４を接続して構成した多重遺伝子発現構造体５を保持させた場合、この外来遺伝子発現ベクターを宿主真核細胞に導入することで、第１のペプチド又はタンパク質、第２のペプチド又はタンパク質及び第３のペプチド又はタンパク質のポリシストロニックな翻訳効率を向上させることができる。各ＯＲＦ２，３，４がコードするタンパク質は同一であってもよいし異なっていてもよい。すなわち、本発明の外来遺伝子発現ベクターによれば、一つのｍＲＮＡから複数のタンパク質が発現可能となっている。したがって、例えば、第１〜第３のペプチド又はタンパク質を同じくすれば、結果として一つのプロモーターの制御下でより多くのペプチド又はタンパク質を発現可能となり、第１〜第３のペプチド又はタンパク質がそれぞれ異なるものであれば、異種のタンパク質を一つのプロモーターで発現可能となる。こうした外来遺伝子発現ベクターは、特に、一つの好ましい表現型を構成するのに複数種類のタンパク質が必要なときに好ましい。さらに、例えば、第１のタンパク質を目的のタンパク質とし、第２のタンパク質を選択マーカーとするなど、選択マーカーを同一プロモーターの作動下で好ましくはキャップ非依存的に翻訳開始することで、目的遺伝子を発現するクローンを容易に選択できるようになる。
【００６０】
本発明に係る外来遺伝子発現ベクターによれば、本発明に係る外来遺伝子発現要素の種類や個数を適宜変更することで、従来、ＩＲＥＳ単独ではキャップ非依存性翻訳効率が十分に得られなかった真核細胞においてもキャップ非依存性翻訳効率を向上させることができる。特に、ＩＲＥＳとして本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いることで、上流側のＯＲＦの翻訳効率が高められることから、外来遺伝子のポリシストロニックな発現効率を飛躍的に向上させることができる。本発明に係る外来遺伝子発現ベクターによれば、ＩＲＥＳによってキャップ非依存性翻訳が可能な真核細胞、特に植物細胞の種類を拡張でき、また、これらの細胞におけるＩＲＥＳによる複数の外来遺伝子のポリシストロニックな翻訳効率を向上させることができる。
【００６１】
本発明に係る外来遺伝子発現ベクターにおける真核細胞において動作可能なプロモーターは、特に限定されるものではなく、必要に応じ宿主真核細胞において構成的、誘導的、時期特異的あるいは組織特異的なプロモーターを用いることができる。植物細胞に用いる外来遺伝子発現ベクターとしては、例えば、ＣａＭＶ３５Ｓプロモーター、エロンゲーションファクター１α遺伝子のプロモーター（ＥＦ１αプロモーター）などの植物における構成プロモーター、光誘導プロモーターなどの誘導的プロモーターを用いることができる。また、本発明に係る外来遺伝子発現ベクターにおいては、最も３’側に位置された最後のＯＲＦ（図１におけるＯＲＦ４）の３’側には、ターミネーターを備えることが好ましい。ターミネーターとしては、ＮＯＳターミネーターなどを使用できる。宿主細胞で使用するプロモーターやターミネーターは、当業者であれば公知物を適宜選択して使用し、あるいは公知物を改変して使用することができる。
【００６２】
本発明に係る外来遺伝子発現ベクターには、必要に応じて、エンハンサーなどのシスエレメント、人工イントロン、シグナルペプチドなどを連結することができる。また、本発明に係る外来遺伝子発現ベクターにおいて使用する選択マーカーは、特に限定しないが、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ウミシイタケルシフェラーゼ（Ｒｌｕｃ）、ホタルルシフェラーゼ（Ｆｌｕｃ）など細胞に識別可能な色を付与する選択マーカーの他、薬剤抵抗性遺伝子、栄養要求性遺伝子などを始めとする公知の各種選択マーカー遺伝子を利用できる。これらの選択マーカーは、予め、いずれかのＯＲＦ、好ましくは、前記外来遺伝子発現要素によって翻訳可能に備えられていることが好ましく、例えば、最も下流側に位置されるＯＲＦにコードされていることが好ましい。また、本発明に係る外来遺伝子発現ベクターには、前記プロモーターや各開始要素の下流に各コード領域を含むポリヌクレオチド鎖を挿入可能なマルチクローニングサイトを備えることもできる。このマルチクローニングサイトを備えたベクターを用いる場合には、いずれかのクローニングサイトに本発明に係る多重遺伝子発現構造体を挿入し、且つ他のクローニングサイトに別の外来遺伝子を挿入して外来遺伝子発現ベクターを構成することもできる。
【００６３】
本発明に係る外来遺伝子発現ベクターは、染色体外で自律複製できるものの他、染色体組込み型ベクターとして構築されていてもよい。また、形態としては、線状の断片、プラスミド、コスミド、ファージ、ウイルス、トランスポゾン、酵母人工染色体（ＹＡＣ）や植物人工染色体（ＰＡＣ）、哺乳類人工染色体（ＭＡＣ）等を採ることができる。これらの中でも、プラスミドベクターが好ましく、さらに植物細胞用又は植物体用のベクターが好ましい。
【００６４】
（形質転換体およびその作製）
前記外来遺伝子発現ベクターは、植物細胞、植物体、動物細胞、昆虫細胞、酵母、真菌などの真核細胞に導入することによって、複数の外来遺伝子のポリシストロニックな発現が可能な形質転換体を作製するために用いられる。本発明に係る形質転換体において、好ましい宿主細胞は、植物細胞又は植物体である。前記外来遺伝子発現ベクターの導入方法は、トランスフェクション法、接合法、プロトプラスト融合、エレクトロポレーション法、リポフェクション法、酢酸リチウム法、パーティクルガン法、リン酸カルシウム沈殿法、アグロバクテリウム法、ＰＥＧ法、直接マイクロインジェクション法等の遺伝子組換え技術で従来より知られている各種の適切な手段のいずれかを採用して行うことができる。
【００６５】
前記外来遺伝子発現ベクターの導入後、その宿主細胞を培養又は生育させることで、真核細胞において動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子とを保持する形質転換体を得ることができる。
【００６６】
前記外来遺伝子発現ベクターが宿主細胞に導入されたか否か、あるいは染色体上に保持されているか否かの確認は、ＰＣＲ法やサザンハイブリダイゼーション法により行うことができる。例えば、形質転換体からＤＮＡを調製し、導入部位特異的プライマーによりＰＣＲを行い、ＰＣＲ産物について、電気泳動において予期されるバンドを検出することによって確認できる。あるいは蛍光色素などで標識したプライマーでＰＣＲを行うことでも確認できる。これらの方法は、当業者において周知である。
さらに、外来遺伝子発現ベクターに外来遺伝子として、ウミシイタケルシフェラーゼ（Ｒｌｕｃ）、ヒカリコメツキ（Click beetle）由来の緑色発光タンパク質（ＣＢＧ）及び赤色発光タンパク質（ＣＢＲ）を発現するレポーター遺伝子を組み込んでおくことで、培養した宿主細胞について簡単な発光検出法を行うことで、前記外来遺伝子発現ベクターが宿主細胞に導入されたか否かを簡易に確認することができる。
【００６７】
植物細胞の形質転換体を得る場合、前記外来遺伝子発現ベクターが導入される細胞としては、植物体に再生可能なあらゆる種類の形態の植物細胞を含めることができる。例えば、培養細胞、プロトプラスト、苗条原基、多芽体、毛状根、カルス等が挙げられる。また、形質転換される植物種としては、特に限定されるものではなく、単子葉植物でも双子葉植物でもよいが、農作物あるいは園芸用作物であることが好ましい。たとえば、イネ、オオムギ、コムギ、ライムギ、トウモロコシ、サトウキビなどの穀類、じゃがいも、さつまいもなどの根茎又は塊根を形成する作物、インゲンマメ、ソラマメ、エンドウなどのマメ科植物、ピーナッツ、ごま、ナタネ、綿実、ヒマワリ、サフラワーなどの種子作物、リンゴ、メロン、ブドウなどの果実を有する作物、トマト、ナスなどの作物、各種花卉植物であることが好ましい。植物の形質転体は、所定の再生工程を実施することで細胞を植物体に変換することができる。再生の方法は、植物の種類によって異なるが、各種公知の方法を使用できる。
【００６８】
こうして得られる形質転換体は、真核細胞において動作可能なプロモーターと、該プロモーターの下流側に結合された本発明に係る前記外来遺伝子発現要素と、前記プロモーターによって作動可能に結合されるとともに、前記外来遺伝子発現要素によってポリシストロニックな翻訳が可能に結合された、ペプチド又はタンパク質のコード領域を有するポリヌクレオチド鎖である外来遺伝子と、からなるポリシストロンを、染色体内あるいは染色体外で保持していてもよい。また、形質の発現は、一時的であっても安定的であってもよい。
【００６９】
また、形質転換体としては、特に限定しないで全ての種類、形態の細胞を包含し、各種細胞の他、動植物個体、その動植物個体を構成しうる真核細胞、およびその一部である組織や器官ならびに生殖細胞を含む。また、ウイルス粒子も包含する。さらに、また植物個体の一部であるその繁殖媒体（種子、根茎、果実、切穂等）も包含する。
【００７０】
本発明に係る形質転換体は、宿主生物の増殖又は生育に適切な条件下で培養又は生育し、増殖させることにより、形質転換体の細胞内、細胞表面、あるいは細胞外に生産すべき有用なペプチド又はタンパク質を製造する。形質転換体により生産されたペプチド又はタンパク質は、植物体の生育にとって有利な条件（例えば、除草剤耐性、ＢＴ毒素生産、成長促進、多収穫など）となって植物体やその産物の増産をもたらしたり、或いは、植物体やその産物中に含まれる栄養成分の増大又は新生をもたらすことが可能である。さらに、培養した植物細胞又は生育した植物体から、有用なペプチド又はタンパク質を抽出、分離、精製することによって、医療用等に有用なペプチド又はタンパク質を工業的な規模で安定して生産することが可能となる。このように、本発明の形質転換体は、前記外来遺伝子発現要素又は前記多重遺伝子発現構造体を含むものなので、高効率多重遺伝子発現が可能となり、有用物質の生産等の工業的な利用が可能となる。
【実施例】
【００７１】
以下、実施例により本発明の具体例と効果を説明するが、これらの実施例は単なる例示であり、本発明を限定するものではない。
以下の各実施例及び比較例においては、ＩＲＥＳ活性を測定するために、外来遺伝子として、ウミシイタケルシフェラーゼ（Ｒｌｕｃ）、ヒカリコメツキ（Click beetle）由来の緑色発光タンパク質（ＣＢＧ）及び赤色発光タンパク質（ＣＢＲ）を発現するレポーター遺伝子を用い、図２に示す３レポーター同時定量法によって、前記Ｒｌｕｃ、ＣＢＧ及びＣＢＲの発現量を定量分析している。
【００７２】
＜３レポーター同時定量法＞
（１）３レポーター同時定量用ベクターの作製
カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）３５Ｓプロモーター・ＮＯＳターミネーターカセット内に、上流側遺伝子として、ヒカリコメツキ（Click beetle）由来の赤色発光タンパク質（ＣＢＲ）を発現するレポーター遺伝子（以下、ＣＢＲ遺伝子と記す。）、ＩＲＥＳ活性測定するＩＲＥＳ、その下流側にヒカリコメツキ（Click beetle）由来の緑色発光タンパク質（ＣＢＧ）を発現するレポーター遺伝子（以下、ＣＢＧ遺伝子と記す）を順に連結して挿入し、さらに下流側のカセット内にウミシイタケルシフェラーゼ（Ｒｌｕｃ）を発現するレポーター遺伝子（以下、Ｒｌｕｃ遺伝子と記す）を挿入し、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
【００７３】
（２）植物細胞への遺伝子導入
作製した前記３レポーター同時定量用ベクターを植物細胞に導入するのにあたり、遺伝子銃（model PDS-1000/He Biolistic Particle Delivery System（Bio-Rad社））を用い、付属のプロトコールにしたがって実験を行った。ヘリウムガスの圧力は１１００ｐｓｉで、１サンプルに対して１回ずつ打ち込んだ。金粒子（直径１．６μｍ）へのＤＮＡの吸着方法は次に示す。まず、金粒子は５０％グリセロールで６０ｍｇ／ｍｌに調製し、３回の遺伝子導入実験用サンプル当たり金粒子懸濁液２５μＬを用いた。金粒子懸濁液２５μＬをチューブに分注し、ＤＮＡを２μｇ、２．５Ｍ塩化カルシウム２５μＬ、０．１ｍＭスペルミジン１０μＬを順次加えて穏やかに撹拌した。１分間静置した後、１２０００ｒｐｍで３秒間遠心し上清を除去した。金粒子を７０％エタノール２００μＬ及び１００％エタノール２００μＬで１回ずつ洗浄し、最後に３０μＬの１００％エタノールで懸濁した。そして、この溶液７．５μＬを１回の遺伝子導入実験に使用した。導入細胞は、タバコＢＹ−２細胞を用い、培養５日目の該細胞２ｍｌを３％アガープレートの上に１層になるように拡げ、余分な液体を除去した後、十分に乾燥させた上で用いた。遺伝子導入後は２７℃で２４時間静置した。なお、各ベクターについて３回ずつ遺伝子導入を行った。
【００７４】
（３）細胞抽出液の調製
遺伝子導入から２４時間経過後、プレート当たり２ｍｌのＰａｓｓｉｖｅ  Ｌｙｓｉｓ  Ｂｕｆｆｅｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を加えて細胞を回収し、このうち１ｍｌを１．５ｍＬチューブに分注し、１５０００ｒｐｍで１分間遠心して上清を除去した。回収した細胞にＰａｓｓｉｖｅ  Ｌｙｓｉｓ  Ｂｕｆｆｅｒを２５０μＬ加え、電動ホモジェナイザーを用いて１０秒間破砕した。これを１５０００ｒｐｍで１分間遠心し、上清を活性測定に使用した。
【００７５】
（４）ＩＲＥＳ活性測定
本実施例において、ＩＲＥＳ活性の測定に用いた３レポーター同時定量法の原理を図２に示す。
前述した通り調製した細胞抽出液１１を測定容器に入れ、該測定容器を超高感度受光素子とフィルター１２とを備えた発光検出装置にセットした。前記フィルター１２は、前記測定容器と前記超高感度受光素子との間に設けられ、赤色光透過フィルターと緑色光透過フィルターと全光透過部（又は青色光透過フィルター）とを切り替え可能に備えている。ＣＢＲ遺伝子発現量を測定する場合には、フィルター１２を赤色光透過フィルターに切り替えて赤色発光を検出し、ＣＢＧ遺伝子発現量を測定する場合には、フィルター１２を緑色光透過フィルターに切り替えて緑色発光を検出し、またＲｌｕｃ遺伝子の発現量を測定する場合には、フィルター１２を全光透過部に切り替えて前記測定容器から発する光量を前記超高感度受光素子によって検出する。
この３レポーター同時定量法では、まず、細胞抽出液１１を入れた測定容器に、第１の基質としてＤ−ルシフェリンを添加し、ＣＢＲとＣＢＧを発光させ、前記フィルター１２を赤色光透過フィルターに切り替えて、ＣＢＲによる赤色発光量を超高感度受光素子によって検出する。続いて、前記フィルター１２を緑色光透過フィルターに切り替えて、ＣＢＧによる緑色発光量を超高感度受光素子によって検出する。
次に、第２の基質としてセレンテラジンを添加して、ルシフェリン反応を停止させるとともに、Ｒｌｕｃを発光させ、Ｒｌｕｃによる発光量を超高感度受光素子によって検出する。
【００７６】
（５）ＩＲＥＳ活性の数値化
前述した通り、サンプルとした細胞抽出液１１について、ＣＢＲによる発光量、ＣＢＧによる発光量、ならびにＲｌｕｃによる発光量をそれぞれ測定後、以下の計算式によって、測定対象のＩＲＥＳについてのＩＲＥＳ活性を求めた。
・上流側遺伝子のＩＲＥＳ活性（ＣＢＲ）＝（ＣＢＲによる発光量）／（Ｒｌｕｃによる発光量）
・下流側遺伝子のＩＲＥＳ活性（ＣＢＧ）＝（ＣＢＧによる発光量）／（Ｒｌｕｃによる発光量）
【００７７】
［比較例１］
pBI221（Clontech社）の35Sプロモーター・NOSターミネーター間に多色発光レポーター遺伝子であるCBRとCBG68を並列に挿入したＩＲＥＳを含まないベクターは、以下（１）から（３）の手順でプラスミドの構築を行った。
（１）pCBR-LUC+Nde/XN（Hf/Nf）
pCBR-Basic vector（Promega社）50ngを鋳型に、NheI-4CBRFW（配列番号１３）とBglII-8CBRREV（配列番号１４）プライマー15pmolesとKOD DNA Polymerase（TOYOBO）を用いて50mlの反応系でPCRを行い、NheI及びBglIIサイトを付加したCBR断片を増幅した。 
反応は94℃：2分変性後、94℃：15秒-53℃：30秒-68℃：2分を25サイクル行い、続けて68℃：5分行った。
増幅したCBR断片を1％ゲルで回収後、NheI/BglIIで処理し、pRluc-LUC+Nde/XN（Hf/Nf）（非特許文献８）のNheI及びBglII切断部位にクローニングした。 
（２）pCBR- CBG68+Nde/XN（Hf/Nf）
pCBG68-Basic vector（Promega）を鋳型に、BglIIAvrIICBG68FW（配列番号１５）とXbaI-1CBG68REV（配列番号１６）プライマーを用いて上記（１）と同様の条件でPCRを行い、BglII及びXbaIサイトを付加したCBG68断片を増幅した。
CBG68断片を1％ゲルで回収後、BglII / XbaIで処理し、pCBR-LUC+Nde/XN（Hf/Nf）のBglII及びXbaI切断部位にクローニングし、pCBR- CBG68+Nde/XN（Hf/Nf）を得た。
（３）35S::CBR- CBG68
pCBR- CBG68+Nde/XN（Hf/Nf）をXbaI（平滑末端化）/ NheI処理し、得られた断片をpBI221のSacI（平滑末端化）/XbaI切断部位にクローニングし、比較例１のプラスミドベクター（３レポーター同時定量用ベクター）を得た。 
前述した通り作製した比較例１の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、比較例１で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００７８】
［比較例２］
比較例１で作製した35S::CBR-CBG68のＯＲＦ間にcrucifer-infecting tobamovirus （crTMV）のmonocistronic subgenomic RNAの5’UTRに存在するCP-IRESにStem-Loop（SL）を付加したSLCP-IRES（特許文献１参照）を挿入した３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、前記35S::CBR-CBG68をBgIII（平滑末端化）/AvrII処理し、得られた断片をpR-SLCP-F（特許文献１）のNheI（平滑末端化）/AvrII切断部位にクローニングし、比較例２のプラスミドベクター（３レポーター同時定量用ベクター）を得た。
前述した通り作製した比較例２の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、比較例２で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００７９】
［実施例１］
ＩＲＥＳとして、配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第２２７位からなる塩基配列からなる第１の塩基配列部分の上流側に、配列番号１１の塩基配列のうち、第１３位〜第３４位の塩基配列からなる第２の塩基配列部分（以下、ＳＬ構造部と記する。）を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用い、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、アラビスモザイクウイルス（ArMV） NM株RNA1の5’UTRを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ BglII/Fw（配列番号２１）およびArMV/R1/ XbaI/Rv（配列番号２２）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例１の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例１の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例１で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８０】
［実施例２］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号２で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第１１３位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの5’末端から113塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ BglII/Fw（配列番号２１）およびArMV/R1/ upstream+XbaI/Rv（配列番号２３）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例２の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例２の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例２で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８１】
［実施例３］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号３で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１１４位〜第２２７位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの114塩基から227塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw （配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ downstream+BglII/Fw（配列番号２４）およびArMV/R1/ XbaI/Rv（配列番号２２）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例３の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例３の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例３で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８２】
［実施例４］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号４で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第１７０位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの5’末端から170塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ BglII/Fw（配列番号２１）およびArMV/R1/ three-quarter+XbaI/Rv（配列番号２５）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例４の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例４の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例４で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８３】
［実施例５］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号５で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第５８位〜第２２７位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの58塩基から227塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ quarter+BglII/Fw（配列番号２６）およびArMV/R1/ XbaI/Rv（配列番号２２）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例５の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例５の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例５で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８４】
［実施例６］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号６で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第５８位〜第１７０位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの58塩基から170塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ quarter+BglII/Fw（配列番号２６）およびArMV/R1/ three-quarter+XbaI/Rv（配列番号２５）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例６の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例６の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例６で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８５】
［実施例７］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号７で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１位〜第５７位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの5’末端から57塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ BglII/Fw（配列番号２１）およびArMV/R1/ quarter+XbaI/Rv（配列番号２７）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。  この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例７の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例７の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例７で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８６】
［実施例８］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号８で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第５８位〜第１１３位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの58塩基から113塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ quarter+BglII/Fw（配列番号２６）およびArMV/R1/ upstream+XbaI/Rv（配列番号２３）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例８の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例８の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例８で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８７】
［実施例９］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号９で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１１４位〜第１７０位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの114塩基から170塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ downstream+BglII/Fw（配列番号２４）およびArMV/R1/ three-quarter+XbaI/Rv（配列番号２５）を20pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例９の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例９の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例９で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８８】
［実施例１０］
実施例１において、第１の塩基配列部分を、配列番号１０で表される塩基配列（配列番号１で表される塩基配列の第１７１位〜第２２７位からなる塩基配列）に替え、その上流側に前記ＳＬ構造部を接続した本発明に係る外来遺伝子発現要素を用いたこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例２のプラスミドをBglII/BlnI処理してCP-IRESの配列を切り出し、ArMV NM株RNA1の5’UTRの171塩基から227塩基までを挿入した。
挿入したDNA断片は、以下の合成オリゴヌクレオチドを用いてPCR反応により作製した。
PCR反応はTOYOBOのKOD-plus ver.2を用いて行った。ArMV/R1/11-50/Fw（配列番号１７）、ArMV/R1/31-110/Fw（配列番号１８）、ArMV/R1/91-170/Rv（配列番号１９）、ArMV/R1/151-230/Rv（配列番号２０）を100pmolずつ加えた全量50μLの反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、45℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
次に、得られた反応物を1μL用いて、ArMV/R1/ three-quarter+BglII/Fw（配列番号２８）およびArMV/R1/ XbaI/Rv（配列番号２２）を20pmolずつ加えた全量50の反応液を94℃で２分間変性させたのち、98℃で30秒、55℃で30秒、68℃で40秒を25サイクル反応させた。
この反応液をアガロースゲル電気泳動で分離し、予想される長さのバンドを回収し、BglIIとXbaIで処理し、比較例２のプラスミドのBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例１０の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例１０の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例１０で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
【００８９】
本発明に係る実施例１〜３及び比較例１，２のＩＲＥＳ活性測定結果を図３に示す。
また、実施例１，４〜６及び比較例１のＩＲＥＳ活性測定結果を図４に示す。
さらに、実施例１，７〜１０及び比較例１のＩＲＥＳ活性測定結果を図５に示す。
なお、これらの図中、「ＣＢＲ」は上流側のＣＢＲ遺伝子を発現させるＩＲＥＳ活性を示し、「ＣＢＧ」は下流側のＣＢＧ遺伝子を発現させるＩＲＥＳ活性を示す。
また、図３〜図５に示す測定結果は、それぞれの組み合わせによる３回の独立した遺伝子導入細胞から得られた値の平均値を用い、図３〜図５中に示す誤差棒は標準偏差を表している。
【００９０】
図３〜図５に示す通り、本発明に係る実施例１〜１０で用いた外来遺伝子発現要素はＩＲＥＳ活性を有しており、該外来遺伝子発現要素を複数のＯＲＦの間に挿入した構造体を保持させた形質転換体を培養することで、複数の遺伝子でコードされた複数種のタンパク質をポリシストロニックに発現可能であることが実証された。
一方、ＩＲＥＳとなる配列を含まない比較例１では、上流側のＣＢＲが発現したものの、下流側のＣＢＧは発現しなかった。
【００９１】
また、強力なＩＲＥＳとして既知であるｃｒＴＭＶ由来のＩＲＥＳを用いた比較例２は、上流側のＣＢＲと下流側のＣＢＧとが両方発現したものの、上流側のＣＢＲの発現量が低い傾向であったが、これに対し本発明に係る実施例１，３，５，６，８〜１０では、上流側のＣＢＲの発現量が下流側のＣＢＧよりも高くなる傾向を示し、さらに実施例１，２，４，５，７では、トータルのＩＲＥＳ活性が比較例２よりも高くなった。
【００９２】
［実施例１１］
実施例１において、ＳＬ構造部を接続しなかったこと以外は実施例１と同様にして、３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
具体的には、比較例１のプラスミドをBglII/BlnI処理してリンカー配列を切り出し、実施例１〜１０で用いたプライマーセットとPCR反応条件で作製してBglIIとXbaIで処理したDNA断片を、同様にBglII/BlnI切断部位に挿入し、実施例１１の３レポーター同時定量用ベクターを作製した。
前述した通り作製した実施例１１の３レポーター同時定量用ベクターを用い、前述した（２）植物細胞への遺伝子導入〜（５）ＩＲＥＳ活性の数値化を実施し、実施例１１で作製した外来遺伝子発現要素のＩＲＥＳ活性を調べた。
その結果、トータルのＩＲＥＳ活性は実施例１よりも低かったものの、上流側遺伝子のＩＲＥＳ活性（ＣＢＲ）と下流側遺伝子のＩＲＥＳ活性（ＣＢＧ）とが両方観測された。
【産業上の利用可能性】
【００９３】
本発明は、遺伝子組換え植物を利用して、複数の外来遺伝子を効率よく発現させるための導入遺伝子作製時に用いる。具体的には、異なるＯＲＦ間に本発明に係る外来遺伝子発現要素を挿入することにより、タンパク質の翻訳量を飛躍的に向上させることが可能である。現在、植物工場等の閉鎖系システムにより、高付加価値な医薬品等の生産に遺伝子組換え植物を用いる研究が盛んに行われているが、本発明はそれらの生産効率を向上させる基盤技術として汎用性も高いと思われる。
【符号の説明】
【００９４】
１…ＩＲＥＳ（外来遺伝子発現要素）
２…ＯＲＦ（タンパク質読み枠）
３…ＯＲＦ（タンパク質読み枠）
４…ＯＲＦ（タンパク質読み枠）
５…多重遺伝子発現構造体
６…プロモーター
７…ターミネーター
１１…細胞抽出液
１２…フィルター
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
2011167123.tif 000006
【図５】
2011167123.tif 000007
【配列表】
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