【事件の表示】
　特許第３２２９２８７号「きのこの人工栽培方法」の請求項１及び２に係る特許に対する特許異議の申立てについて、次のとおり決定する。
【結　論】
　訂正を認める。
　特許第３２２９２８７号の請求項１及び２に係る特許を取り消す。
【理　由】
１．手続の経緯
　特許出願　　　　　　　平成１１年４月５日
　　（特願平４−２３１６３４号（優先権主張平成３年１１月１９日）の分　　　割出願）
　特許権設定登録　　　　平成１３年９月７日
　特許異議の申立て　　　平成１４年４月２２日
　取消理由通知　　　　　平成１４年１２月３日（平成１４年１２月１３日　　　　　　　　　　　　発送）
　訂正請求書　　　　　　平成１５年２月１２日
　特許異議意見書　　　　平成１５年２月１２日
　回答書（異議申立人）　平成１５年４月１８日
　回答書（特許権者）　　平成１６年３月１９日
　取消理由通知　　　　　平成１６年４月１３日（平成１６年４月２３日発　　　　　　　　　　　　送）
　特許異議意見書　　　　平成１６年６月２２日
　
２．訂正請求について
２-1．訂正の内容
　特許権者が求めている訂正の内容は、以下訂正事項ａないしｄのとおりである（下線部分が訂正個所である）。
（１）訂正事項ａ
　願書に添付した明細書（以下、「特許明細書」という。）の特許請求の範囲に記載された「【請求項１】綿実殻を含有することを特徴とするきのこの人工栽培用培地。
【請求項２】綿実殻を含有する人工栽培用培地を使用することを特徴とするきのこの人工栽培方法。」を、
「【請求項１】綿実殻を含有することを特徴とする
リオフィラム属
　【請求項２】綿実殻を含有する人工栽培用培地を使用することを特徴とする
リオフィラム属
（２）訂正事項ｂ
　特許明細書の段落【０００３】（本件特許公報２頁左欄１１行）に記載された「きのこ」を「
リオフィラム属
（３）訂正事項ｃ
　特許明細書の段落【０００４】（本件特許公報２頁左欄１３〜１８行）に記載された「本発明を概説すれば、本発明の第１の発明はきのこ人工栽培用培地に関する発明であって、綿実殻を含有することを特徴とする。また、本発明の第２の発明はきのこの人工栽培方法に関する発明であって、綿実殻を含有する人工栽培用培地を使用することを特徴とする。」を、
　「本発明を概説すれば、本発明の第１の発明は
リオフィラム属
　また、本発明の第２の発明は
リオフィラム属
（４）訂正事項ｄ
　特許明細書の段落【００７１】（本件特許公報２０頁右欄１０〜１３行）に記載された「以上説明したように、本発明によれば、従来廃棄されてきた綿実殻をきのこの人工栽培の培地に使用することで、高収量、高品質かつ美味なきのこを得ることが可能となった。」を「以上説明したように、本発明によれば、従来廃棄されてきた綿実殻を
リオフィラム属
リオフィラム属
　
２-2．訂正の適否
（１）訂正事項ａについて
　上記訂正事項ａは、訂正前の特許請求の範囲の請求項１及び２において、「きのこ」がリオフィラム属きのこであることに限定するものであるから、特許請求の範囲の減縮を目的とするものである。
　そして、本件出願時の明細書の段落【０００６】に「リオフィラムウルマリウム菌株として、特開昭６３−２７３４６７号公報に記載のリオフィラムウルマリウムＬｕ１−２（ＦＥＲＭＰ−１２５８４）、リオフィラムウルマリウムＬｕ１−８（ＦＥＲＭＢＰ−１４１６）、リオフィラムウルマリウムＬｕ１−１７（ＦＥＲＭＢＰ−１４１７）、リオフィラムウルマリウムＭ−８１７１（ＦＥＲＭＢＰ−１４１５）を使用し、該公報に記載の方法により、各菌株の人工栽培を行い、収穫適期の子実体を収穫し、子実体の官能検査を行った。」と記載されているので、訂正事項ａは、願書に添付した明細書又は図面に記載した事項の範囲内において訂正するものであって、実質上特許請求の範囲を拡張し、又は変更するものでもない。
（２）訂正事項ｂないしｄについて
　上記訂正事項ｂないしｄは、発明の詳細な説明の記載を訂正後の特許請求の範囲の記載と整合させるためのものであるから、明りょうでない記載の釈明を目的とする訂正であり、願書に添付した明細書又は図面に記載した事項の範囲内の訂正であって、実質上特許請求の範囲を拡張し、又は変更するものでもない。
　
２-3．むすび
　以上のとおりであるから、上記訂正は、特許法等の一部を改正する法律（平成６年法律第１１６号）附則第６条第１項の規定によりなお従前の例によるとされる、特許法第１２０条の４第３項において準用する平成６年法律第１１６号による改正前の特許法第１２６条第１項ただし書及び第２項の規定に適合するので、当該訂正を認める。
　
３．特許異議の申立てについて
３-1．本件発明
　上記「２．訂正請求について」で示したように上記訂正が認められるから、本件請求項１及び２に係る発明（以下、「本件請求項１の発明」、「本件請求項２の発明」という。）は、上記訂正請求書に添付した訂正明細書の特許請求の範囲の請求項１及び２に記載された次のとおりのものである。
　「【請求項１】綿実殻を含有することを特徴とするリオフィラム属きのこの人工栽培用培地。
【請求項２】綿実殻を含有する人工栽培用培地を使用することを特徴とするリオフィラム属きのこの人工栽培方法。」
　
３-2．引用刊行物記載の発明
（１）平成１６年４月１３日付け取消理由に引用した、本件特許の出願（優先権主張　平成３年１１月１９日）前に頒布された刊行物である「平成元年度　試験成績書（菌茸）　長野県野菜花き試験場」（奈良県林業試験場　平成２年９月３日受付）目次、４２〜４８頁（以下、「引用刊行物１」という。）には、次の事項が記載されている。
（１-a）「（２）新栽培基材の検討
　ア　エノキタケ培地有機基材の検討
　目的：ワタ実粕等有機基材のオガクズに対する代替比率を検討する。」（４３頁１〜３行）、
（１-b）４３頁の表には、試験区として、「スギ　100％（標準）」、「ワタ実粕　15％、30％」、「パイナップル粕　15％、30％」、「ミカンジュース粕　15％、30％」、「ビートパルプ　15％、30％」、「コーンコブ　15％、30％」と記載されている。
（１-c）「イ　やまびこほんしめじ培地有機基材の検討
　目的：ワタ実粕、パイナップル粕等についてオガクズとの混合比率を検討する。
　方法：
　〔供試品種〕宝２号」（４６頁１７〜２０行）、
（１-d）４６頁の表には、試験区として、「スギ・ブナ　100％（標準）」、「ワタ実粕　30％、20％、10％」、「ミカンジュース粕　30％、20％、10％」、「パイナップル粕　30％、20％、10％」、「ビートパルプ　30％、20％、10％」、「ルーサン　25％、15％、5％」と記載されている。
（１-e）〔試験区〕の「ワタ実粕　30％」には、培地基材（乾物）として、スギ　73.9ｇ　供試有機基材31.7ｇが記載されており、コメヌカ（乾物）80ｇと記載されている。（４６頁の表）、
（１-f）「(３)収量は・・・ワタ実粕30％区は標準区より15％増収した。・・・
 (５)以上の結果から、ワタ実粕・・・はブナの代替として使用できる可能性があると考えられる。」（４８頁下から７行〜下から１行）。
　上記記載によると、引用刊行物１には、オガクズとワタ実粕を混合したやまびこほんしめじ（宝２号）の培地、及び、オガクズとワタ実粕を混合した培地を使用するやまびこほんしめじ（宝２号）の栽培方法（以下、「引用刊行物１の発明」という。）が記載されていると認められる。
（２）同じく取消理由に引用した、本件特許の出願前に頒布された刊行物である長野県農業総合試験場企画調整部編「平成３年度　農業関係試験場試験研究計画概要」長野県農業総合試験場、平成３年３月３０日発行　１０９頁（以下、「引用刊行物２」という。）には、次の事項が記載されている。
（２-a）試験研究課題が「きのこ類の培養基及び栽培技術改善」の項において、細目課題の欄に「１．エノキタケの栽培法確立
　(１)有機資材（ワタ実がら）の検討」、
　試験研究の目的及び設計の欄に「ワタ実がらのオガクズに対する代替比率を検討する。」、
　試験研究の経過と成果の概要の欄に「スギオガクズの３０％をワタ実がらで置き換えることにより増収効果が得られた。」と記載されている。
（２-b）同じく試験研究課題が「きのこ類の培養基及び栽培技術改善」の項において、細目課題の欄に「２．やまびこほんしめじの栽培法確立と品質向上　
　(１)エノキタケ廃オガクズの利用
　(２)培地栄養源の使用量と水分率」、
　試験研究の目的及び設計の欄に「エノキタケの廃オガクズをやまびこほんしめじの培地に利用できるか検討する。
　培地栄養源の使用量と水分率との関係を知る。」、
　試験研究の経過と成果の概要の欄に「有機資材を用いた場合、培養温度は２２℃、培養熟成日数は７０日で良好な結果が得られた。
　タカラクリーンを使用することにより、栄養源の使用量をある程度減量できることがわかった。」と記載されている。
（３）同じく取消理由に引用した、本件特許の出願前に頒布された刊行物である「信州のそ菜　１９９１年９月号（通巻４３４号）」長野県経済連発行　４３頁（以下、「引用刊行物３」という。）には、「今回は，最盛期に向けてのエノキタケ栽培技術の再チェックの意味でそのポイントを述べることとする。
　培地材料のチェック
　オガコはすでに本誌７月号において触れたが，キノコづくりの土台とも言えるものなので今からしっかりチェックしておきたい。まず，樹種，加水堆積期間，粒度などは，最低限，頭に入れておく必要がある。問題がありそうな場合，今からでも対応可能なこともある。たとえば，粒度の調整はフスマ，ワタ実ガラ，コーンコブ，チップダストなどの利用が可能である。樹種，加水堆積期間に問題がある場合，ワタ実ガラ，コーンコブの利用により，その悪影響を軽減させることも可能である。」（３頁右欄１〜１５行）と記載されている。
　
３-3．対比、判断
（１）本件請求項１の発明について
　本件請求項１の発明と引用刊行物１の発明とを対比すると、引用刊行物１の発明の「やまびこほんしめじ（宝２号）」は「リオフィラム属きのこ」であり、引用刊行物１の発明の「培地」は人工栽培用培地といえるから、両者は、リオフィラム属きのこの人工栽培用培地で一致し、
　人工栽培用培地に含有するのが、本件請求項１の発明では、「綿実殻」であるのに対し、引用刊行物１の発明では、ワタ実粕（綿実粕）である点で構成が相違する。
　前記相違点について検討する。
　刊行物２又は３には、エノキタケではあるが、オガクズにワタ実ガラを混合させること、すなわち、きのこの栽培用培地に綿実殻を含有させることが記載されている。
　また、引用刊行物１には、エノキタケ培地有機基材及びやまびこほんしめじ（宝２号）培地有機基材の検討を行うために、オガクズに、「ワタ実粕」、「ミカンジュース粕」、「パイナップル粕」又は「ビートパルプ」の有機基材を混合して調整した培地でエノキタケとやまびこほんしめじ（宝２号）とをそれぞれ栽培したことが記載されており、引用刊行物２には、エノキタケの廃オガクズをやまびこほんしめじの培地に利用できるか検討することが記載されている。
　すなわち、引用刊行物１には、エノキタケとやまびこほんしめじ（宝２号）とを類似した栽培用培地で栽培することが開示されており、引用刊行物２には、エノキタケで使用した培地をやまびこほんしめじの培地に利用することが開示されている。
　そうすると、エノキタケの栽培用培地をやまびこほんしめじ（リオフィラム属きのこ）の栽培用培地に適用しようとすることは当業者が容易に想到できることであり、引用刊行物１の発明において、綿実殻を栽培用培地に含有して、本件請求項１の発明のように構成することは当業者が容易に想到できることである。
　この点に関し、特許権者は、参考資料３（「きのこ栽培指標」（平成元年１月　長野県、長野県農業共同組合中央会、長野県経済事業農業共同組合連合会、長野県森林組合連合会　編集発行）２１頁、１１９頁、１２５頁、１３６〜１３７頁）、参考資料４（「最新バイオテクノロジー全書７、きのこの増殖と育種」（１９９２年９月１４日、農業図書株式会社発行）２４９頁）を提示し、「エノキタケとリオフィラム属きのことは栽培用培地に関する栄養特性が全く異なることから、エノキタケの栽培で得られた知見を直ちにリオフィラム属きのこの栽培に当てはめることはできない。」（平成１６年６月２２日付け特許異議意見書　６頁２９行〜７頁２行）と主張するが、上記したとおり引用刊行物１の記載では、エノキタケとやまびこほんしめじ（リオフィラム属きのこ）とを類似した栽培用培地で栽培しているから、参考資料３及び４に、エノキタケの栽培用培地とリオフィラム属きのことの栽培用培地とでは栄養特性が異なることが記載されているとしても、引用刊行物１の発明に、引用刊行物２に記載されたエノキタケの技術を適用することが困難であるとすることはできないので、特許権者の主張は採用できない。
　そして、エノキタケではあるが、引用刊行物２には、「スギオガクズの３０％をワタ実がらで置き換えることにより増収効果が得られた。」と、また、引用刊行物３には、「樹種，加水堆積期間に問題がある場合，ワタ実ガラ・・・の利用により，その悪影響を軽減させることも可能である。」と記載されており、オガクズにワタ実ガラを混合することにより増収効果があることが示唆されている。
　特許権者は、「綿実殻のリオフィラム属きのこに対する効果は、収量増加が下限で既に１２０％を超え、１６０％にまで達していることから、他の態様とは明らかに異なる格別顕著なものであ」り、「綿実殻をリオフィラム属きのこに対して用いた場合、そのような予想をはるかに超えて高い収量増加が得られた訳であるから、刊行物１及び２に対し、単にエノキタケの培地材料へのワタ実ガラの利用可能性について記載されただけの刊行物３を加えたとしても、それらの刊行物から本件発明の効果を当然に予測できるとは到底言えない。」（平成１６年６月２２日付け特許異議意見書　１１頁８〜２３行）と主張する。
　しかしながら、特許権者が主張する収量増加は、人工栽培用培地に綿実殻を２５％混合した場合に得られるのであり、それ以外の割合で綿実殻を混合した場合における収量増加は明らかでなく、本件請求項１の発明は、人工栽培用培地に綿実殻を含ませる割合が２５％であることに限定していないから、特許権者が主張する収量増加を本件請求項１の発明の効果とみることはできない。
　よって、本件請求項１の発明が奏する効果は、引用刊行物１ないし３に記載された発明から当業者が予測できる程度のことであって格別顕著なものとはいえない。
　したがって、本件請求項１の発明は、引用刊行物１ないし３に記載された発明に基づいて当業者が容易に発明をすることができたものである。
（２）本件請求項２の発明について
　本件請求項２の発明と引用刊行物１の発明とを対比すると、両者は、
　人工栽培用培地を使用するリオフィラム属きのこの人工栽培方法で一致し、
　人工栽培用培地に含有するのが、本件請求項２の発明では、「綿実殻」であるのに対し、引用刊行物１の発明では、綿実粕である点で構成が相違する。
　そして、前記相違点は「（１）本件請求項１の発明について」に記載した理由により当業者が容易に想到することができたものである。
　したがって、本件請求項２の発明は、刊行物１ないし３に記載された発明に基づいて当業者が容易に発明をすることができたものである。
　
３-4．むすび
　以上のとおりであるから、本件請求項１及び２に係る発明は、特許法第２９条第２項の規定により特許を受けることができない。
　したがって、本件請求項１及び２に係る発明についての特許は拒絶の査定をしなければならない特許出願に対してされたものと認める。
　よって、特許法等の一部を改正する法律（平成６年法律第１１６号）附則第１４条の規定に基づく、特許法等の一部を改正する法律の施行に伴う経過措置を定める政令（平成７年政令第２０５号）第４条第２項の規定により、結論のとおり決定する。
【異議決定日】
平成１６年８月１６日（２００４．８．１６）
【訂正の要旨】
審決（決定）の【理由】欄参照。
（５４）【発明の名称】
きのこの人工栽培方法
（５７）【特許請求の範囲】
　【請求項１】　綿実殻を含有することを特徴とする
リオフィラム属
　【請求項２】　綿実殻を含有する人工栽培用培地を使用することを特徴とする
リオフィラム属
【発明の詳細な説明】
　【０００１】
　【発明の属する技術分野】
　本発明は、改良されたきのこの人工栽培用培地、及びこれを用いてきのこを人工栽培する方法に関する。
　【０００２】
　【従来の技術】
　従来のきのこ栽培はコナラ、クヌギ、ブナ等の原木を利用したほだ木栽培がほとんどであり、そのため気象条件により収穫が左右されることが多く、また最近ではほだ木に使用する原木の不足や、原木切り出しのための労働力が不足していること等によって原木の入手が困難であった。更にほだ木栽培は栽培期間が長く、例えば種菌の接種からきのこの収穫までに１年半〜２年も要すること等により、生産コストが相当高額になることが避けられなかった。
　このため、近年エノキダケ、ヒラタケ、シロタモギタケ、ナメコ等の栽培においてオガクズに米糠を配合した培養基を用いて、ビン又は箱で栽培を行う菌床人工栽培法が確立され、１年を通じて安定してきのこを収穫できるようになってきた。その結果、ほだ木を使用した従来の農家での副業的きのこの生産が、現在では企業が工業的規模で大量に栽培可能で、原料の確保もし易い菌床人工栽培法が、主流になっている。
　従来きのこの人工栽培においては、培地基材としてオガクズが、栄養源としてはコメヌカ、フスマ等が使用されている。しかしながら、これらの栄養源は必ずしも安価とはいえず、また、例えば針葉樹オガクズ５０ｇ、広葉樹オガクズ５０ｇ、コメヌカ７０ｇ、フスマ３０ｇを８５０ｍｌ容の培養ビンに詰めてリオフィラム　ウルマリウム（Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ）を培養した場合の収量は１１０〜１３０ｇであり、その収量は満足できるものではない。
　【０００３】
　【発明が解決しようとする課題】
　したがって本発明の目的は、比較的安価な材料を培地基材又は栄養源として使用して、従来の方法よりも多くの収量を得ることができる、
リオフィラム属
　【０００４】
　【課題を解決するための手段】
　本発明を概説すれば、本発明の第１の発明は
リオフィラム属
　また、本発明の第２の発明は
リオフィラム属
　【０００５】
　本発明者らは、前記の目的を達成するために種々の材料を培地に使用した結果、安価に入手でき、しかもきのこの収量を著しく増加させる材料として、綿実殻を見出し本発明を完成した。
　【０００６】
　【発明の実施の形態】
　以下、本発明を具体的に説明する。
　リオフィラム　ウルマリウム菌株として、特開昭６３−２７３４６７号公報に記載のリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−２（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２５８４）、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−８（ＦＥＲＭ　ＢＰ−１４１６）、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１７（ＦＥＲＭ　ＢＰ−１４１７）、リオフィラム　ウルマリウム　Ｍ−８１７１（ＦＥＲＭ　ＢＰ−１４１５）を使用し、該公報に記載の方法により、各菌株の人工栽培を行い、収穫適期の子実体を収穫し、子実体の官能検査を行った。人工栽培の培地としては、該公報に記載の針葉樹オガクズ５０ｇ、広葉樹オガクズ５０ｇ、米糠９０ｇをよく混合し、水道水にて水分含有率６５％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向い直径１ｃｍの穴をあけた後、キャップで打栓したオガクズ固型培養基を１２０℃、６０分間高圧蒸気滅菌したものをＡ培地とした。また該培地調製方法に準じ、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して同様に作成したものをＢ培地、針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して同様に作成したものをＣ培地、針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して同様に作成したものをＤ培地とし、それぞれ用いた。
　各使用培地で得られた子実体の収量（ｇ／ビン）、官能検査の結果を表１に示す。
　【０００７】
　【表１】
　【０００８】
　官能検査は、リオフィラム　ウルマリウム子実体を油炒めし、硫酸キニーネを、苦味の標準物質として、パネラーが判定する。油炒めは次の様に行う。すなわち、得られたリオフィラム　ウルマリウムの子実体の柄の基部を除去し、１本ずつにわけ、軽く水洗いして、よく水をきる。次いで、フライパンにサラダ油５ｍｌを加え、全体にのばし、中火で油を充分に熱する。前述リオフィラム　ウルマリウム子実体１００ｇ（湿重）を加え、箸でかきまぜながら、２分間以上、全体に火を通し、フライパンに水気が無くなれば、火を止める。該子実体を常温になるまで冷まし、パネラーに苦くない、苦い、かなり苦い、著しく苦いの四段階で評価させる。なお、以下、各表中の−は苦くない、＋は苦い、＋＋はかなり苦い、＋＋＋は著しく苦いを意味する。この＋、−の中間がリオフィラム　ウルマリウム子実体の苦味の硫酸キニーネを標準物質とした苦味の閾値、すなわち、ほとんど苦味を感じない苦味であり、標準物質の硫酸キニーネの閾値、０．０００００８Ｍ（太田静行著、「食品調味の知識」第２版第１刷、昭和６０年１０月１日、幸書房発行、第３８頁）の苦味に相当する。
　前述の供試菌株中、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−２が最も低苦味菌株であるが、Ｂ、Ｃ、Ｄ培地を用いた場合は、収量は増加するものの得られる子実体は苦味のあるものとなる。
　【０００９】
　本発明において高苦味化培地とは、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−２の人工栽培を行った際に得られる子実体の苦味が官能検査により＋以上の培地を意味し、例えば上記Ｂ、Ｃ、Ｄ培地である。また本発明の新菌株とは、該菌株を高苦味化培地で栽培して得られる子実体の苦味が、少なくとも一種の高苦味化培地について、苦味をほとんど感じない程度以下の菌株をいう。
　【００１０】
　次に、本発明の新菌株の育種について述べる。
１．選抜育種
　自然界に発生しているリオフィラム　ウルマリウム１１２個の子実体より組織分離を行い、純粋分離した菌糸体９０菌株を得た。次にこの９０菌株を前記Ｂ培地を用い栽培試験を行った。栽培試験により、子実体を形成した菌株４８株の子実体を官能検査に供した。子実体の形状に優れ、収量も多く、苦味の低い菌株１０株を選抜した。更にこの１０株をＢ、Ｃ、Ｄ培地で栽培試験し、工業的栽培に適し、最も低苦味な菌株として、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３を選抜した。
　【００１１】
　以下、このリオフィラム　ウルマリウムについて説明する。
　リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３株は、福島県裏磐梯にて枯れ木に叢生していた子実体より本発明者らが組織分離したもので子実体及び胞子の特徴は次のようである。子実体は叢生、カサは径５〜１．５ｃｍ、円形又は不正形で丸山形、表面は平滑、湿潤、白色〜帯褐クリーム色を呈しており、往々やや濃色の斑紋を現し、老時中央にき裂を生じることがある。肉は白色、幅広く柄に上生する。柄は偏心性で湾曲し、３〜７×１〜２ｃｍ、カサとほぼ同色、頂部は白色で綿毛状ないし粉状である。胞子はほぼ球形、平滑、無色、４．５〜５．５×３．５〜４．５μｍ、紋は白色であった。
　以上の特徴を伊藤誠哉著「日本菌類誌」第二巻第五号（１９５９年、養賢堂出版）の記載と比較すると、本菌はリオフィラム　ウルマリウムであることが明りょうである。
　【００１２】
　次にリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　７日目：旺盛な生育。コロニー径は４０ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。１７日目：表面全体に密な気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　７日目：旺盛な生育。コロニー径は３６ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。１７日目：表面全体に密な気菌糸を生じる。コロニー中央部は薄い黄色、他は白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　７日目：小程度の生育。コロニー径は２６ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。１７日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。菌糸は樹状で希薄、白色。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　７日目：旺盛な生育。コロニー径は４２ｍｍ。白色で綿状の密な菌糸、気菌糸やや多い。１０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を極めて多量に生じ、菌糸は綿状で白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　７日目：旺盛な生育。コロニー径は３６ｍｍ。菌糸はよく分枝して伸び、気菌糸は少ない。１０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状の気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　７日目：小程度の生育。コロニー径は２１ｍｍ。菌糸は白色で直線的に伸長し、放射状のコロニーを形成する。１７日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　７日目：旺盛な生育。コロニー径は４０ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。マット状。１０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色だが、培地は黄色に変化する。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　７日目：小程度の生育。コロニー径は１８ｍｍ。菌糸は白色で短くマット状に生育、気菌糸は少ない。培地は褐変、褐変半径は４０ｍｍ。１７日目：中程度の生育。コロニー径は３７ｍｍ。褐変半径は４２ｍｍ。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは７〜８であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００１３】
　次に、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３株と他のリオフィラム　ウルマリウムとの異同判定として、両菌糸が持つ性因子が異なっていれば、その菌糸は互いに異なる菌糸であるという菌類分類学的事実に基づき、性因子の異同を寒天培地上における対峙培養によって調べた。
　供試したリオフィラム　ウルマリウムとしてはリオフィラム　ウルマリウム　ＩＦＯ　９６３７、リオフィラム　ウルマリウム　ＩＦＯ　３０５２５、リオフィラム　ウルマリウム　ＩＦＯ　３０７７５、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−２、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−８、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｍ−８１７１、リオフィラム　ウルマリウム　ＳＡである。なおリオフィラム　ウルマリウム　ＳＡは、市販のリオフィラム　ウルマリウム子実体よりの分離株である。
　上記それぞれのリオフィラム　ウルマリウムの二核菌糸を保存スラントより３×３×３ｍｍのブロックとして切り出し、それぞれをＰＧＹ寒天培地の中央部に、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３の二核菌糸と対峙して植菌し（２ｃｍ間隔）、２５℃、１４日間培養後、両菌株のコロニー間に帯線が生じるか否かを判定した。結果を表２に示す。（帯線を生じた場合＋、生じなかった場合−）。
　【００１４】
　【表２】
　【００１５】
　表２よりわかるように、前記各菌株は、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３との対峙培養ですべて帯線を生じ、このことからリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３は新しい菌株であることは明白である。
　以上説明したように本発明の選抜育種による新菌株として、例えばリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３が挙げられるが、前記菌株と同様に高苦味化培地で栽培して得られる子実体の苦味が、少なくとも一種の高苦味化培地について、苦味をほとんど感じない程度以下であるという特性を示す菌株は、すべて本発明に属するものである。
　【００１６】
２．交配育種
　本発明の新菌株を交配育種により得た。
　特開昭６３−２７３４６７号公報に記載のように、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−８とリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１７の交配により、収量、生育速度、子実体形態に優れたリオフィラム　ウルマリウム　Ｍ−８１７１が得られている。栽培特性に優れ、かつ子実体の苦味が低減された菌株を交配育種するために、このリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−８、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１７の両菌株を親株として用いた。
　リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−８とリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１７をＡ培地にそれぞれ生育させ、通常の操作により子実体を発生させた。該子実体よりそれぞれ胞子を回収し、発芽させた一核菌糸を単離して、５７株ずつを総当り交配して１６５３株を得た。この１６５３株をＢ培地を用いて栽培試験を行い、官能検査により低苦味な菌株８０株を選択し、次にＢ、Ｃ、Ｄ培地で栽培試験を行い、栽培特性に優れ、苦味が、少なくとも一種の高苦味化培地について、苦味をほとんど感じない程度以下である８菌株を選抜し、それぞれリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６とそれぞれ命名した。
　【００１７】
　次にこのリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　５日目：コロニー径は１８ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１０日目：コロニー径は４７ｍｍ。２０日目：コロニー径は８３ｍｍ。放射状に生育して表面全体に密な気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：中程度の生育。コロニー径は４０ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１５日目：コロニー径は５５ｍｍ。２０日目：コロニー径は６６ｍｍ。表面全体に密な気菌糸を生じる。綿状のコロニーで、菌糸は白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：小程度の生育。コロニー径は２８ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。２０日目：コロニー径は５２ｍｍ。菌糸は樹状で希薄、白色。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は５０ｍｍ。白色で綿状の密な菌糸、気菌糸やや多い。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。放射状に生育して表面全体に気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は５１ｍｍ。綿状のコロニーで、気菌糸を生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状のコロニーで、気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：小程度の生育。コロニー径は２７ｍｍ。菌糸は白色で、樹枝状のコロニーを形成する。２０日目：コロニー径は４８ｍｍ。気菌糸を生じる。樹枝状のコロニーで、菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は４９ｍｍ。綿状のコロニーで白色な菌糸、気菌糸を生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　５日目：小程度の生育。コロニー径は１８ｍｍ。菌糸は白色で気菌糸を多量に生じる。培地は褐変して、褐変半径は３４ｍｍ。１５日目：旺盛な生育。コロニー径は６４ｍｍ。培地全面が褐変。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは７〜８であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００１８】
　次にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６１ｍｍ。白色で放射状のコロニー、気菌糸を少量生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸は少ない。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は５３ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。表面全体に密な気菌糸を生じる。コロニーは綿状で白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　７日目：旺盛な生育。コロニー径は５１ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。１５日目：コロニー径は７５ｍｍ。菌糸は樹状で希薄、白色。２０日目：コロニー径は７７ｍｍ。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：とても旺盛な生育。コロニー径は５８ｍｍ。白色で放射状の密な菌糸、気菌糸やや多い。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を生じ、菌糸は放射状で白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：極めて旺盛な生育。コロニー径は６６ｍｍ。コロニーは綿状で、気菌糸を生じる。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状のコロニーで気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：中程度の生育。コロニー径は３３ｍｍ。菌糸は白色でやや薄く、樹枝状に伸長し、気菌糸を伴う。２０日目：コロニー径は７４ｍｍ。コロニーは希薄で樹枝状、菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：極めて旺盛な生育。コロニー径は６５ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６３ｍｍ。菌糸は白色で、気菌糸を多量に生じる。培地は褐変、褐変半径は６５ｍｍ。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を多量に生じ、培地全面が褐変する。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは７〜８であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００１９】
　次にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６０ｍｍ。白色で放射状のコロニー、気菌糸を少量生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸は少ない。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は５９ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。表面全体に密な気菌糸を生じる。コロニーは綿状で白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　５日目：旺盛な生育。コロニー径は１６ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。１５日目：コロニー径は６２ｍｍ。菌糸は樹状で希薄、白色。
２０日目：コロニー径は７７ｍｍ。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：とても旺盛な生育。コロニー径は６６ｍｍ。白色で放射状の密な菌糸、気菌糸やや多い。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を生じ、菌糸は放射状で白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：極めて旺盛な生育。コロニー径は６８ｍｍ。コロニーは綿状で、気菌糸を生じる。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状のコロニーで気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：中程度の生育。コロニー径は３３ｍｍ。菌糸は白色でやや薄く、樹枝状に伸長し、気菌糸を伴う。２０日目：コロニー径は６２ｍｍ。コロニーは希薄で樹枝状、菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：極めて旺盛な生育。コロニー径は６８ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６１ｍｍ。菌糸は白色で、気菌糸を多量に生じる。培地は褐変。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を多量に生じ、培地全面が褐変する。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは７〜８．５であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００２０】
　次にこのリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　５日目：コロニー径は２４ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量生じる。１０日目：コロニー径は６４ｍｍ。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。放射状に生育して表面全体に密な気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：中程度の生育。コロニー径は６１ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１５日目：コロニー径は８５ｍｍ。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。表面全体に密な気菌糸を生じる。綿状のコロニーで、菌糸は白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：小程度の生育。コロニー径は４８ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。２０日目：コロニー径は７５ｍｍ。菌糸は樹状で希薄、白色。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６５ｍｍ。白色で綿状の密な菌糸、気菌糸やや多い。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。放射状に生育して表面全体に気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６７ｍｍ。綿状のコロニーで、気菌糸を生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状のコロニーで、気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：小程度の生育。コロニー径は３９ｍｍ。菌糸は白色で、樹枝状のコロニーを形成する。２０日目：コロニー径は６６ｍｍ。気菌糸を生じる。樹枝状のコロニーで、菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６３ｍｍ。綿状のコロニーで白色な菌糸、気菌糸を生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　５日目：小程度の生育。コロニー径は２９ｍｍ。菌糸は白色で気菌糸を多量に生じる。培地は褐変。１５日目：旺盛な生育。コロニー径は８８ｍｍ。培地全面が褐変。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは６〜８であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００２１】
　次にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６４ｍｍ。白色で放射状のコロニー、気菌糸を少量生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸は少ない。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６４ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。表面全体に密な気菌糸を生じる。コロニーは綿状で白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　５日目：旺盛な生育。コロニー径は１４ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。１５日目：コロニー径は６０ｍｍ。菌糸は樹状で希薄、白色。２０日目：コロニー径は７５ｍｍ。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：とても旺盛な生育。コロニー径は８３ｍｍ。白色で放射状の密な菌糸、気菌糸やや多い。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を生じ、菌糸は放射状で白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：極めて旺盛な生育。コロニー径は８１ｍｍ。コロニーは綿状で、多量の気菌糸を生じる。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状のコロニーで気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：中程度の生育。コロニー径は２３ｍｍ。菌糸は白色でやや薄く、樹枝状に伸張し、気菌糸を伴う。２０日目：コロニー径は４５ｍｍ。コロニーは希薄で樹枝状。菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：極めて旺盛な生育。コロニー径は８０ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６８ｍｍ。菌糸は白色で、気菌糸を多量に生じる。培地は褐変。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を多量に生じ、培地全面が褐変する。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは６〜７であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００２２】
　次にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は７１ｍｍ。白色で放射状のコロニー、気菌糸を少量生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸は少ない。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６６ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。表面全体に密な気菌糸を生じる。コロニーは綿状で白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　５日目：旺盛な生育。コロニー径は２６ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。１５日目：コロニー径は７１ｍｍ。菌糸は樹状で希薄、白色。２０日目：コロニー径は８１ｍｍ。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：とても旺盛な生育。コロニー径は７９ｍｍ。白色で放射状の密な菌糸、気菌糸やや多い。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を生じ、菌糸は放射状で白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：極めて旺盛な生育。コロニー径は７９ｍｍ。コロニーは綿状で、多量の気菌糸を生じる。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状のコロニーで気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：中程度の生育。コロニー径は３７ｍｍ。菌糸は白色でやや薄く、樹枝状に伸長し、気菌糸を伴う。２０日目：コロニー径は６８ｍｍ。コロニーは希薄で樹枝状。菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：極めて旺盛な生育。コロニー径は６４ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は７０ｍｍ。菌糸は白色で、気菌糸を多量に生じる。培地は褐変。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。気菌糸を多量に生じ、培地全面が褐変する。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは６〜８であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００２３】
　次にこのリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　５日目：コロニー径は２５ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１０日目：コロニー径は６１ｍｍ。１５日目：コロニー径は８３ｍｍ。放射状に生育して表面全体に密な気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：中程度の生育。コロニー径は６１ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１５日目：コロニー径は８６ｍｍ。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。表面全体に密な気菌糸を生じる。綿状のコロニーで、菌糸は白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：小程度の生育。コロニー径は４９ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。２０日目：コロニー径は７６ｍｍ。菌糸は樹状で希薄、白色。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は７０ｍｍ。白色で綿状の密な菌糸、気菌糸やや多い。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。放射状に生育して表面全体に気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は７４ｍｍ。綿状のコロニーで、気菌糸を生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状のコロニーで、気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：小程度の生育。コロニー径は２９ｍｍ。菌糸は白色で、樹枝状のコロニーを形成する。２０日目：コロニー径は５３ｍｍ。気菌糸を生じる。樹枝状のコロニーで、菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は７２ｍｍ。綿状のコロニーで白色な菌糸、気菌糸を生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　５日目：小程度の生育。コロニー径は２８ｍｍ。菌糸は白色で気菌糸を多量に生じる。培地は褐変。１５日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。培地全面が褐変。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは６〜８であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００２４】
　次にこのリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６株の菌学的諸性質を示す。
（１）麦芽エキス寒天培地（２５℃培養）
　５日目：コロニー径は１９ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量生じる。１０日目：コロニー径は５９ｍｍ。１５日目：コロニー径は８１ｍｍ。放射状に生育して表面全体に密な気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（２）バレイショ・ブドウ糖寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：中程度の生育。コロニー径は５５ｍｍ。白色で密な菌糸、気菌糸を多量に生じる。１５日目：コロニー径は８０ｍｍ。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。表面全体に密な気菌糸を生じる。綿状のコロニーで、菌糸は白色。
（３）ツァペック・ドックス寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：小程度の生育。コロニー径は３８ｍｍ。樹状に伸長し極めて希薄な菌糸、気菌糸は少ない。２０日目：コロニー径は６６ｍｍ。菌糸は樹状で希薄、白色。
（４）サブロー寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は６６ｍｍ。白色で綿状の密な菌糸、気菌糸やや多い。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。放射状に生育し表面全体に気菌糸を生じる。菌糸は白色。
（５）オートミール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は７１ｍｍ。綿状のコロニーで、気菌糸を生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。綿状のコロニーで、気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（６）合成ムコール寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：小程度の生育。コロニー径は３１ｍｍ。菌糸は白色で、樹枝状のコロニーを形成する。２０日目：コロニー径は６１ｍｍ。気菌糸を生じる。樹枝状のコロニーで、菌糸は白色。
（７）ＹｐＳｓ寒天培地（２５℃培養）
　１０日目：旺盛な生育。コロニー径は７０ｍｍ。綿状のコロニーで白色な菌糸、気菌糸を生じる。２０日目：シャーレ全体に菌糸が生育する。密な気菌糸を多量に生じる。菌糸は白色。
（８）フェノールオキシダーゼ検定用培地（２５℃培養）
　５日目：小程度の生育。コロニー径は２８ｍｍ。菌糸は白色で気菌糸を多量に生じる。培地は褐変。１５日目：旺盛な生育。コロニー径は８６ｍｍ。培地全面が褐変。種菌の新旧により著しく生育速度に差が生じる。
（９）最適生育温度
　ＰＧＹ寒天培地に直径５ｍｍの円盤状種菌を接種し、各温度で１２日間培養した後、コロニー径を測定した。その結果、最適な成育温度は２５℃付近であった。また、５℃、３５℃ではほとんど生育しなかった。
（１０）最適生育ｐＨ
　ＰＧＹ液体培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）６０ｍｌずつを１００ｍｌ容三角フラスコに分注して殺菌し、酸又はアルカリで各ｐＨに調整後に種菌を接種して、２５℃、１５日間静置培養した後、菌体の乾燥重量を測定した。その結果、最適生育ｐＨは６〜８であった。また、生育可能なｐＨ範囲は、ｐＨ３．５〜１０であった。
　【００２５】
　次に、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４株及びリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６株と他のリオフィラム　ウルマリウムとの異同判定として、両菌糸が持つ性因子が異なっていれば、その菌糸は互いに異なる菌糸であるという菌類分類学的事実に基づき、性因子の異同を寒天培地上における対峙培養によって調べた。
　供試したリオフィラム　ウルマリウムとしてはリオフィラム　ウルマリウムＩＦＯ　９６３７、リオフィラム　ウルマリウム　ＩＦＯ　３０５２５、リオフィラム　ウルマリウム　ＩＦＯ　３０７７５、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−２、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−８、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｍ−８１７１、リオフィラム　ウルマリウム　ＳＡ、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３である。
　【００２６】
　上記それぞれのリオフィラム　ウルマリウムの二核菌糸を保存スラントより３×３×３ｍｍのブロックとして切り出し、それぞれをＰＧＹ寒天培地の中央部に、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７株、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４株、又はリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６株の二核菌糸と対峙して植菌し（２ｃｍ間隔）、２５℃、１４日間培養後、両菌株のコロニー間に帯線が生じるか否かを判定した。結果を表３、表４に示す。（帯線を生じた場合＋、生じなかった場合−）。
　【００２７】
　【表３】
　【００２８】
　【表４】
　【００２９】
　表３、表４よりわかるようにリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４、及びリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６はそれぞれ他の菌株との対峙培養ですべて帯線を生じ、このことから両菌株は新しい菌株であることは明白である。
　【００３０】
　以上説明したように本発明の交配により育種した新菌株として、例えばリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６等が挙げられるが、前記菌株と同様に高苦味化培地で栽培して得られる子実体の苦味が、少なくとも一種の高苦味化培地について、苦味をほとんど感じない程度以下であるという特性を示す菌株はすべて本発明に属するものである。
　【００３１】
　本発明による新菌株は、前述のとおり人工栽培時において高苦味化培地で栽培しても子実体の苦味が、少なくとも一種の高苦味化培地について、苦味をほとんど感じない程度以下であるという特性をもち、培地の種類に影響されず安定して子実体の苦味が少ない。本発明の新菌株のＡ、Ｂ、Ｃ、Ｄ培地を用い人工栽培を行い得た収穫適期の子実体の苦味、及び収量を表５、表６に示す。なお、前出リオフィラム　ウルマリウム　ＳＡの結果も合せ表６中に示す。
　【００３２】
　【表５】
　【００３３】
　【表６】
　【００３４】
　表５、表６に示すようにリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６の各菌株は、従来の人工栽培可能な菌株において、収穫適期の子実体が苦味を呈する培地を使用しても苦味を示さず、子実体収量を増加させるが苦味も増加させるので従来使用することが困難であった高苦味化培地を用いても、苦味の無い子実体を高収率で安定して得ることができる。
　【００３５】
　また、上記菌株を培地に接種して生成する菌糸体も苦味を呈さず、該菌糸体を食品に使用するにも好適である。なお、リオフィラム　ウルマリウム菌糸体は食物繊維も多く、制ガン作用も知られており、該菌糸体を利用した食品は、健康維持のために特に有用である。
　【００３６】
　本発明において育種した新菌株のリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９、リオフィラム　ウルマリウムＫ−０２０７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６はそれぞれＬｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｌｕ　１−１３、Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｋ−０４２９、Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｋ−０２０７、Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｋ−０２０２、Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｋ−０２５９、Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｋ−１００４、Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｋ−１２５７、Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｋ−６８０４、Ｌｙｏｐｈｙｌｌｕｍ　ｕｌｍａｒｉｕｍ　Ｋ−６８０６と表示され、工業技術院微生物工業技術研究所にそれぞれ微工研菌寄第１２５７１号（ＦＥＲＭＰ−１２５７１）、微工研菌寄第１２５７０号（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２５７０）、微工研菌寄第１２５６９号（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２５６９）、微工研菌寄第１２９８０号（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８０）、微工研菌寄第１２９８１号（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８１）、微工研菌寄第１２９８２号（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８２）、微工研菌寄第１２９８３号（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８３）、微工研菌寄第１２９８４号（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８４）、微工研菌寄第１２９８５号（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８５）として寄託されている。
　【００３７】
　なお、リオフィラム　ウルマリウム子実体中の苦味成分は次のように定量することもできる。
　リオフィラム　ウルマリウム子実体中の可食部分（カサ部、柄部）を凍結乾燥し、これを粉砕して子実体凍乾粉末を得る。この凍乾粉末０．５ｇ（乾重）を３５ｍｌの酢酸エチルで２５℃、２４時間振とう抽出し、ろ過、減圧濃縮後１ｍｌのメタノールに加温しながら溶解し、抽出サンプルとする。
　前述のサンプル２００μｌより、ＦＰＬＣ〔ファルマシア　ファイン　ケミカルス（Ｐｈａｒｍａｃｉａ　Ｆｉｎｅ　Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）製〕を用いて、次の様に苦味成分画分を分取する。カラムは、Ｌｏｂｅｒ　ＲＰ−８〔メルク（Ｍｅｒｃｋ）製、φ１．０×２４ｃｍ〕を使用して、溶媒８５％メタノール（関東化学；液クロ用）、１．０ｍｌ／分、常温、検出波長２１０ｎｍの条件下で、溶出時間１０〜４５分の画分を分取する。
　分取画分は再び減圧濃縮し、メタノール：エタノー：水＝３：４：４の溶媒１．０ｍｌに溶解して、その５０μｌをＨＰＬＣ〔（株）島津製作所製ＬＣ−６Ａシステム〕にて苦味成分画分を分取する。カラムは、μ　Ｂｏｎｄａｐａｋ　Ｃ１８〔ウォータース（Ｗａｔｅｒｓ）製、φ０．３９×３０ｃｍ〕を使用して、メタノール：エタノール：水＝３：４：４の溶媒（関東化学；液クロ用メタノール、ナカライテスク；特級エタノール）、０．７ｍｌ／分、温度４０℃、検出波長ＵＶ２１０ｎｍの条件下で、溶出時間３２．５〜４４．０分の画分の乾燥重量を測定する。この画分に溶出する成分（以下画分Ａと略す）は、官能検査において強い苦味を呈し、リオフィラム　ウルマリウム子実体の苦味は、この画分Ａに起因する。
　【００３８】
　また、本発明で培地に使用した綿実殻は、安価に入手でき、しかもきのこの収量を著しく増加させる、きのこの人工栽培に有用な基材として、本発明者らが見出したものである。この綿実殻を培地に使用する際は、他の培地基材と混合して使用しても良いし、単独で使用しても良い。綿実殻は培地の乾燥重量に対して１５〜６０％で使用した場合が最も増収効果が良いが、使用量はこれに限定されるものではない。この綿実殻を培地に使用し、収量よく栽培できるきのことしては、例えばリオフィラム　ウルマリウムのほか、シイタケ、ヒラタケ、エノキタケ、マイタケ等があり、例えばこれらのきのこの菌株を使用し、通常の人工栽培を行えば良い。
　【００３９】
　【実施例】
　以下に本発明によるリオフィラム　ウルマリウム新菌株の人工栽培実施例を示すが、本発明は以下の実施例の範囲にのみ限定されるものではない。
　【００４０】
実施例１（参考例）
　液体ＰＧＹ培地（寒天を含まないＰＧＹ寒天培地）１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２５７１）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３５日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４０日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６８ｇで、官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００４１】
　なお、子実体の官能検査は、次の様に行った。上記ビン栽培で得られた子実体の柄の基部を除去し、１本ずつに分け、軽く水洗いして、よく水を切った。一方、フライパンにサラダ油５ｍｌを加え、全体にのばし、中火で油を充分に熱した後、子実体１００ｇ（湿重）を加え、箸でかきまぜながら２分間以上、全体に火を通し、フライパンに水気が無くなるまで炒め、火を止めた。油炒めした子実体は常温になるまで冷まし、硫酸キニーネを標準物質とし、１０名のパネラーで苦味を判定した。
　【００４２】
実施例２
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３５日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１４３ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００４３】
実施例３（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−１３の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３７日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１５７ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００４４】
実施例４（参考例）
　液体ＰＧＹ培地１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２５７０）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３２日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４３日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１８４ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００４５】
実施例５
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を２８日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３７日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１５７ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００４６】
実施例６（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０４２９の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を２８日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３７日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６４ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００４７】
実施例７（参考例）
　液体ＰＧＹ培地１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２５６９）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を４０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３５日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１０日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１４日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１８８ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００４８】
実施例８
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３４日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３１日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１４日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６１ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００４９】
実施例９（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０７の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３３日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３２日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１１日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１７８ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５０】
実施例１０（参考例）
　液体ＰＧＹ培地１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８０）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を４５日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３５日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で８日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１８７ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５１】
実施例１１
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を４０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４０日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で８日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１２日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１５４ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５２】
実施例１２（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２０２の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３６日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４４日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で８日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６２ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５３】
実施例１３（参考例）
　液体ＰＧＹ培地１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８１）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を４５日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３５日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で８日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１２日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１９２ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５４】
実施例１４
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３５日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４５日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で８日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６２ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５５】
実施例１５（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−０２５９の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３７日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４３日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で８日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６５ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５６】
実施例１６（参考例）
　液体ＰＧＹ培地１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８２）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で５０日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１１日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１５日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１８８ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５７】
実施例１７
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３２日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４８日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１０日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１５日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１５８ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５８】
実施例１８（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１００４の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を２８日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で５２日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１１日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１６日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６１ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００５９】
実施例１９（参考例）
　液体ＰＧＹ培地１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８３）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で５０日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１１日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１５日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１８６ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６０】
実施例２０
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３２日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４８日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１６日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６０ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６１】
実施例２１（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−１２５７の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を２８日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で５２日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１０日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１４日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１５７ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６２】
実施例２２（参考例）
　液体ＰＧＹ培地１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８４）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３０日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１０日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１６日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１９５ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６３】
実施例２３
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を２８日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３２日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１０日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１５日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６３ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６４】
実施例２４（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０４の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を２８日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３２日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１６日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１７１ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６５】
実施例２５（参考例）
　液体ＰＧＹ培地１００ｍｌに、リオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６（ＦＥＲＭ　Ｐ−１２９８５）を接種し、２５℃で１０日間培養して液体種菌を得た。一方、コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後に前記液体種菌２０ｍｌを接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３２日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３８日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１５日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１９１ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６６】
実施例２６
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で４０日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１５日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６２ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６７】
実施例２７（参考例）
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｋ−６８０６の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３１日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で３９日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１４日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１６５ｇで、子実体の官能検査において苦味は感じられなかった。
　【００６８】
対照例１
　コーンコブミール１３０ｇ、マメカワ６０ｇ、フスマ３０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６２％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−２の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３５日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で５０日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１７８ｇで、子実体の官能検査において苦味が感じられた。
　【００６９】
実施例２８
　針葉樹オガクズ５０ｇ、綿実殻粉砕物５０ｇ、米糠１００ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−２の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で５５日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で９日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１４日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１４０ｇで、子実体の官能検査において苦味が感じられた。
　【００７０】
対照例２
　針葉樹オガクズ１００ｇ、マメカワ７０ｇをよく混合して水道水により水分含有率を６３％に調製したものを、ポリプロピレン製８５０ｍｌ容広口ビンに圧詰めして、ビン口部中央より下方に向かい直径１ｃｍの穴を開けた後、該培養基を１２０℃で６０分間高圧蒸気滅菌して、常温まで冷却後にリオフィラム　ウルマリウム　Ｌｕ　１−２の固体種菌を接種した。
　暗所、２５℃、湿度５０〜６０％の条件下で該培養基を３０日間培養すると、ビン全体に菌糸がまん延した。更に、同条件下で５５日間培養を続けて子実体発生基を得た。該子実体発生基の上部菌糸層１ｃｍを除去し、水道水２０ｍｌを加え充分に給水させた後に余剰の水道水を捨て、１５℃、湿度９０〜９５％、照度２０ルックスの条件下で１０日間培養を続けて子実体原基を得て、更に照度を２００ルックスに上げて１３日間培養を続けて子実体を得た。
　得られた子実体の収量は１５３ｇで、子実体の官能検査において苦味が感じられた。
　【００７１】
　【発明の効果】
　以上説明したように、本発明によれば、従来廃棄されてきた綿実殻を
リオフィラム属
リオフィラム属