(57)【要約】【課題】多能性幹細胞を培養することを含む三胚葉のいずれかの製造方法であって、分化誘導因子の使用量を低減しつつ効率的な分化誘導を可能とする方法を提供すること。【解決手段】培地と分化誘導因子とを含む第一領域と、培地成分の少なくとも一部を含む第二領域とを有し、前記第一領域と前記第二領域とが膜で隔離されている培養装置を用いて前記第一領域において多能性幹細胞を培養することを含む、三胚葉のいずれかの製造方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
培地と分化誘導因子とを含む第一領域と、培地成分の少なくとも一部を含む第二領域とを有し、前記第一領域と前記第二領域とが膜で隔離されている培養装置を用いて前記第一領域において多能性幹細胞を培養することを含む、三胚葉のいずれかの製造方法。
【請求項２】
前記三胚葉のいずれかが、内胚葉系細胞である請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記培地成分の少なくとも一部が、グルコースである、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
膜の分画分子量が５００〜１７，０００である、請求項１から３の何れか一項に記載の方法。
【請求項５】
前記第一領域と前記第二領域とが膜を隣接して配置され、前記膜を介して前記第一領域と前記第二領域との間で物質交換がなされる、請求項１から４の何れか一項に記載の方法。
【請求項６】
第一領域の培地におけるグルコース濃度が培養中において１．０ｇ／Ｌ以上に維持される、請求項１から５の何れか一項に記載の方法。
【請求項７】
第一領域の培地における乳酸濃度が培養中において７ｍＭ以下に維持される、請求項１から６の何れか一項に記載の方法。
【請求項８】
前記分化誘導因子が、少なくともＴＧＦβスーパーファミリーシグナル活性化剤を含む、請求項１から７の何れか一項に記載の方法。
【請求項９】
前記ＴＧＦβスーパーファミリーシグナル活性化剤が、アクチビンＡ、ＦＧＦ２及びＢＭＰ４からなる群から選択される少なくとも１種類である、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
第一領域におけるアクチビンＡの添加初期濃度が、１ｎｇ／ｍＬ〜１,０００ｎｇ／ｍＬである、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
第一領域におけるＦＧＦ２の添加初期濃度が、１ｎｇ／ｍＬ〜１,０００ｎｇ／ｍＬである、請求項９又は１０に記載の方法。
【請求項１２】
第一領域におけるＢＭＰ４の添加初期濃度が、１ｎｇ／ｍＬ〜１,０００ｎｇ／ｍＬである、請求項９から１１の何れか一項に記載の方法。
【請求項１３】
前記分化誘導因子が、さらにＷＮＴシグナル活性化剤を含む、請求項１から１２の何れか一項に記載の方法。
【請求項１４】
多能性幹細胞が、ｉＰＳ細胞である、請求項１から１３の何れか一項に記載の方法。
【請求項１５】
前記第一領域と前記第二領域が培地を含み、第一領域の培地量と第二領域の培地量の体積比が、１：１００から１：１である、請求項１から１４の何れか一項に記載の方法。
【請求項１６】
前記第一領域における細胞の密度が、１０の５乗〜１０の７乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬである、請求項１から１５の何れか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、多能性幹細胞を培養することを含む三胚葉（中胚葉、内胚葉、外胚葉）のいずれかの製造方法に関する。さらに詳細には、本発明は、膜を用いて多能性幹細胞を培養することを含む三胚葉のいずれかの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
再生医療は、ドナー不足を課題とする臓器移植の代替法やこれまで治療法のなかった難病の新たな治療法開発など大きな期待が寄せられている。胚性幹細胞（ＥＳ細胞）や人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）は多能性及び無限増殖性を有しているため、再生医療に必要とされる細胞を調製するための細胞ソースとして期待されている。これらの多能性幹細胞を用いた再生医療の実用化に際しては、多能性幹細胞を効率よく目的細胞に分化誘導させる技術の確立が必要である。
【０００３】
一般的には、各種の分化誘導因子（サイトカイン、成長因子、液性因子又は増殖因子と言う場合もある）を添加した液体培地中において多能性幹細胞を培養することによって、多能性幹細胞の分化誘導が行われている。例えば、特許文献１には、多能性幹細胞を内胚葉系細胞へ分化させるためにアクチビンＡを含む分化培地において多能性幹細胞を培養するステップと、前記内胚葉系細胞にｐｄｘ−１  ｍＲＮＡをトランスフェクトして、さらに分化した細胞を生じさせるステップと、ニコチンアミド、エキセンディン４、及びＧＬＰ−１からなる群から選択される成熟因子を含む培地において前記さらに分化した細胞を培養し、それにより、多能性幹細胞から膵島細胞を作製するステップとを含む、多能性幹細胞から膵島細胞を作製する方法が記載されている。
【０００４】
細胞の培養中に、分化誘導シグナルを細胞に継続的に送るためには培地交換のたびに分化誘導因子を添加することが必要である。しかし、これらの分化誘導因子は一般に高価であり、コストがかかるという問題がある。
【０００５】
一方、膜を用いた細胞培養装置及び細胞培養方法が知られている。特許文献２には、装置ハウジングと、半透膜から構成される基礎培地区画と、細胞培養区画と、基礎培地区画アクセスポートと、細胞培養区画アクセスポートとを備え、前記基礎培地区画は、前記細胞培養区画の全長よりも短くされている仕切装置が記載されている。
【０００６】
特許文献３には、幹細胞の分化が可能な環境下で幹細胞を培養すること、及び上記細胞により産生される微粒子を回収することを含む幹細胞微粒子の製造方法が記載されており、幹細胞の分化が可能な環境が、多区画のバイオリアクタ中の培養であり、例えば、バイオリアクタが細胞を含有する区画をガス及び／又は培養培地を含有する１つ以上の区画から分離する１つ以上の膜又は障壁で分離されている少なくとも２つの区画を含有する方法が記載されている。
【０００７】
非特許文献１には、多能性幹細胞の未分化維持培養に関する透析培養の利用が報告されている。非特許文献２には、透析膜を用いた培養装置においてｉＰＳ細胞を高密度で懸濁培養することが報告されている。また、非特許文献３には、ＥＳ細胞を利用した神経細胞への分化誘導において透析システムを利用することが報告されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】特開２０１５−１６５７８３号公報
【特許文献２】特表２００７−５１０４３３号公報
【特許文献３】特表２０１５−５２９４５０号公報
【非特許文献】
【０００９】
【非特許文献１】Nath SC, et al., Culture medium refinement by dialysis for the expansion of human induced pluripotent stem cells in suspension culture. Bioprocess Biosyst Eng. 2016 Sep 16.
【非特許文献２】化学工学会  第４８回秋季大会、講演番号ＬＱ２８６、Small-scale high-cell-density iPS cell suspension culture device using dialysis membranes for optimization of operations conditions
【非特許文献３】Come J, et al., Improvement of culture conditions of human embryoid bodies using a controlled perfused and dialyzed bioreactor system. Tissue Eng Part C Methods. 2008 Dec;14(4):289-98.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
まず、分化誘導効率の向上を図ることは、分化誘導された細胞の機能性向上という観点だけでなく、細胞の高品質化という観点からも重要である。
【００１１】
また、多能性幹細胞の分化誘導において、高価な分化誘導因子を使用することによりコストが高くなるという問題がある。多能性幹細胞から三胚葉のいずれか（例えば、内胚葉系細胞）へ分化誘導する培養は、その後に膵臓や肝臓の細胞へと分化させる上で分化効率に大きく影響するステップであるとともに、アクチビン等の高価な分化誘導因子を使用するステップでもあり、分化誘導因子の使用量を低減することによりコストを低減することが求められている。従来の分化誘導方法では、多能性幹細胞から目的細胞への分化誘導の効率が十分に高いとは言えない場合もあり、更なる改善が求められている。
【００１２】
本発明は、多能性幹細胞を培養することを含む三胚葉のいずかの製造方法であって、分化誘導因子の使用量を低減し、且つ、効率的な分化誘導を可能とする方法を提供することを解決すべき課題とした。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、膜を用いて多能性幹細胞を培養することにより、分化誘導時の律速となりうる栄養素（グルコース等）の安定供給と老廃物（乳酸）の除去をしながら分化を行なうことができ、これにより、三胚葉への分化誘導効率を向上させることが可能となり、分化誘導された細胞の品質の向上と培養コストの低減に寄与できることを見出した。本発明は、これらの知見に基づいて完成したものである。
【００１４】
すなわち、本明細書によれば、以下の発明が提供される。
（１）  培地と分化誘導因子とを含む第一領域と、培地成分の少なくとも一部を含む第二領域とを有し、前記第一領域と前記第二領域とが膜で隔離されている培養装置を用いて前記第一領域において多能性幹細胞を培養することを含む、三胚葉のいずれかの製造方法。
（２）  前記三胚葉のいずれかが、内胚葉系細胞である（１）に記載の方法。
（３）  前記培地成分の少なくとも一部が、グルコースである、（１）又は（２）に記載の方法。
（４）  膜の分画分子量が５００〜１７，０００である、（１）から（３）の何れか一に記載の方法。
（５）  前記第一領域と前記第二領域とが膜を隣接して配置され、前記膜を介して前記第一領域と前記第二領域との間で物質交換がなされる、（１）から（４）の何れか一に記載の方法。
（６）  第一領域の培地におけるグルコース濃度が培養中において１．０ｇ／Ｌ以上に維持される、（１）から（５）の何れか一に記載の方法。
（７）  第一領域の培地における乳酸濃度が培養中において７ｍＭ以下に維持される、（１）から（６）の何れか一に記載の方法。
（８）  前記分化誘導因子が、少なくともＴＧＦβスーパーファミリーシグナル活性化剤を含む、（１）から（７）の何れか一に記載の方法。
（９）  前記ＴＧＦβスーパーファミリーシグナル活性化剤が、アクチビンＡ、ＦＧＦ２及びＢＭＰ４からなる群から選択される少なくとも１種類である、（８）に記載の方法。
（１０）  第一領域におけるアクチビンＡの添加初期濃度が、１ｎｇ／ｍＬ〜１,０００ｎｇ／ｍＬである、（９）に記載の方法。
（１１）  第一領域におけるＦＧＦ２の添加初期濃度が、１ｎｇ／ｍＬ〜１,０００ｎｇ／ｍＬである、（９）又は（１０）に記載の方法。
（１２）  第一領域におけるＢＭＰ４の添加初期濃度が、１ｎｇ／ｍＬ〜１,０００ｎｇ／ｍＬである、（９）から（１１）の何れか一に記載の方法。
（１３）  前記分化誘導因子が、さらにＷＮＴシグナル活性化剤を含む、（１）から（１２）の何れか一に記載の方法。
（１４）  多能性幹細胞が、ｉＰＳ細胞である、（１）から（１３）の何れか一に記載の方法。
（１５）  前記第一領域と前記第二領域が培地を含み、第一領域の培地量と第二領域の培地量の体積比が、１：１００から１：１である、（１）から（１４）の何れか一に記載の方法。
（１６）  前記第一領域における細胞の密度が、１０の５乗〜１０の７乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬである、（１）から（１５）の何れか一に記載の方法。
【発明の効果】
【００１５】
本発明の製造方法によれば、分化誘導因子の使用量を低減し、且つ、多能性幹細胞から三胚葉のいずれかへの効率的な分化誘導ができ、分化誘導された細胞の品質の向上と培養コストの低減に寄与することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】図１は、本発明で用いる培養装置の一例を示す。
【図２】図２は、透析膜を底面に貼付けた培養容器を示す。
【図３】図３は、未分化マーカー遺伝子の発現解析（残存量）の結果を示す。
【図４】図４は、内胚葉分化マーカー遺伝子の発現解析（発現量）の結果を示す。
【図５】図５は、培養上清中のグルコース濃度の推移を示す。
【図６】図６は、培養上清中の乳酸濃度の推移を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
以下、本発明の実施形態について具体的に説明するが、下記の説明は本発明の理解を容易にするためのものであり、本発明の範囲は、下記の実施形態に限られるものではなく、当業者が下記の実施形態の構成を適宜置換した他の実施形態も本発明の範囲に含まれる。
【００１８】
［１］多能性幹細胞
本発明の方法においては、多能性幹細胞を培養することによって三胚葉のいずれか（内胚葉系細胞、中胚葉系細胞、又は外胚葉系細胞）の細胞集団を製造する。
多能性幹細胞とは、生体を構成する全ての種類の細胞に分化することができる多分化能（多能性）を有する細胞であって、適切な条件下のインビトロ（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）での培養において多能性を維持したまま無限に増殖を続けることができる細胞をいう。具体的には胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、胎児の始原生殖細胞由来の多能性幹細胞（ＥＧ細胞：Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  Ｕ  Ｓ  Ａ．１９９８，９５：１３７２６−３１）、精巣由来の多能性幹細胞（ＧＳ細胞：Ｎａｔｕｒｅ．２００８，４５６：３４４−９）、人工多能性幹細胞（ｉｎｄｕｃｅｄ  ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ；ｉＰＳ細胞）、ヒトの体性幹細胞（組織幹細胞）などが挙げられる。多能性幹細胞は、好ましくは、ｉＰＳ細胞又はＥＳ細胞であり、より好ましくはｉＰＳ細胞である。
【００１９】
ＥＳ細胞としては、任意の温血動物、好ましくは哺乳動物に由来する細胞を使用できる。哺乳動物としては、例えば、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ウマ、ヤギ、サル、又はヒトが挙げられる。好ましくはヒトに由来する細胞を使用できる。
【００２０】
ＥＳ細胞の具体例としては、着床以前の初期胚を培養することによって樹立した哺乳動物等のＥＳ細胞、体細胞の核を核移植することによって作製された初期胚を培養することによって樹立したＥＳ細胞、及びこれらのＥＳ細胞の染色体上の遺伝子を遺伝子工学の手法を用いて改変したＥＳ細胞が挙げられる。各ＥＳ細胞は当分野で通常実施されている方法や、公知文献に従って調製することができる。 マウスのＥＳ細胞は、１９８１年にエバンスら（Ｅｖａｎｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９８１，Ｎａｔｕｒｅ  ２９２：１５４−６）や、マーチンら（Ｍａｒｔｉｎ  ＧＲ．ｅｔ  ａｌ．，１９８１，Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ７８：７６３４−８）によって樹立されている。 ヒトのＥＳ細胞は、１９９８年にトムソンら（Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９８，２８２：１１４５−７）によって樹立されており、ＷｉＣｅｌｌ研究施設（ＷｉＣｅｌｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ、ウェブサイト：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｗｉｃｅｌｌ．ｏｒｇ／、マジソン、ウイスコンシン州、米国）、米国国立衛生研究所（Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ）、京都大学などから入手可能であり、例えばＣｅｌｌａｒｔｉｓ社（ウェブサイト：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｅｌｌａｒｔｉｓ．ｃｏｍ／、スウェーデン）から購入可能である。
【００２１】
人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）は、体細胞を初期化することによって得られる多能性を有する細胞である。ｉＰＳ細胞の作製は、京都大学の山中伸弥教授らのグループ、マサチューセッツ工科大学のルドルフ・ヤニッシュ(Ｒｕｄｏｌｆ Ｊａｅｎｉｓｃｈ)らのグループ、ウイスコンシン大学のジェームス・トムソン（Ｊａｍｅｓ Ｔｈｏｍｓｏｎ）らのグループ、ハーバード大学のコンラッド・ホッケドリンガー（Ｋｏｎｒａｄ Ｈｏｃｈｅｄｌｉｎｇｅｒ）らのグループなどを含む複数のグループが成功している。例えば、国際公開ＷＯ２００７／０６９６６６号公報には、Ｏｃｔファミリー遺伝子、Ｋｌｆファミリー遺伝子及びＭｙｃファミリー遺伝子の遺伝子産物を含む体細胞の核初期化因子、並びにＯｃｔファミリー遺伝子、Ｋｌｆファミリー遺伝子、Ｓｏｘファミリー遺伝子及びＭｙｃファミリー遺伝子の遺伝子産物を含む体細胞の核初期化因子が記載されており、さらに体細胞に上記核初期化因子を接触させる工程を含む、体細胞の核初期化により誘導多能性幹細胞を製造する方法が記載されている。
【００２２】
ｉＰＳ細胞の製造に用いる体細胞の種類は特に限定されず、任意の体細胞を用いることができる。即ち、体細胞とは、生体を構成する細胞の内生殖細胞以外の全ての細胞を包含し、分化した体細胞でもよいし、未分化の幹細胞でもよい。体細胞の由来は、哺乳動物、鳥類、魚類、爬虫類、両生類の何れでもよく特に限定されないが、好ましくは哺乳動物（例えば、マウスなどのげっ歯類、又はヒトなどの霊長類）であり、特に好ましくはマウス又はヒトである。また、ヒトの体細胞を用いる場合、胎児、新生児又は成人の何れの体細胞を用いてもよい。体細胞の具体例としては、例えば、線維芽細胞（例えば、皮膚線維芽細胞）、上皮細胞（例えば、胃上皮細胞、肝上皮細胞、肺胞上皮細胞）、内皮細胞（例えば血管、リンパ管）、神経細胞（例えば、ニューロン、グリア細胞）、膵臓細胞、白血球細胞（Ｂ細胞、Ｔ細胞等）、骨髄細胞、筋肉細胞（例えば、骨格筋細胞、平滑筋細胞、心筋細胞）、肝実質細胞、非肝実質細胞、脂肪細胞、骨芽細胞、歯周組織を構成する細胞（例えば、歯根膜細胞、セメント芽細胞、歯肉線維芽細胞、骨芽細胞）、腎臓・眼・耳を構成する細胞などが挙げられる。
【００２３】
ｉＰＳ細胞は、所定の培養条件下（例えば、ＥＳ細胞を培養する条件下）において長期にわたって自己複製能を有し、また所定の分化誘導条件下において外胚葉、中胚葉又は内胚葉への多分化能を有する幹細胞である。また、ｉＰＳ細胞はマウスなどの試験動物に移植した場合にテラトーマを形成する能力を有する幹細胞でもよい。
【００２４】
体細胞からｉＰＳ細胞を製造するためには、まず、少なくとも１種類以上の初期化遺伝子を体細胞に導入する。初期化遺伝子とは、体細胞を初期化してｉＰＳ細胞とする作用を有する初期化因子をコードする遺伝子である。初期化遺伝子の組み合わせの具体例としては、以下の組み合わせをあげることができるが、これらに限定されるものではない。
（ｉ）Ｏｃｔ遺伝子、Ｋｌｆ遺伝子、Ｓｏｘ遺伝子、Ｍｙｃ遺伝子
（ｉｉ）Ｏｃｔ遺伝子、Ｓｏｘ遺伝子、ＮＡＮＯＧ遺伝子、ＬＩＮ２８遺伝子
（ｉｉｉ）Ｏｃｔ遺伝子、Ｋｌｆ遺伝子、Ｓｏｘ遺伝子、Ｍｙｃ遺伝子、ｈＴＥＲＴ遺伝子、ＳＶ４０  ｌａｒｇｅＴ遺伝子
（ｉｖ）Ｏｃｔ遺伝子、Ｋｌｆ遺伝子、Ｓｏｘ遺伝子
【００２５】
上記以外にも、導入遺伝子をさらに減らした方法（Ｎａｔｕｒｅ．２００８  Ｊｕｌ  ３１；４５４（７２０４）：６４６−５０）、低分子化合物を利用した方法（Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ．２００９  Ｊａｎ  ９；４（１）：１６−９、Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ．２００９  Ｎｏｖ  ６；５（５）：４９１−５０３）、遺伝子の代わりに転写因子タンパク質を利用した方法（Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ．２００９  Ｍａｙ  ８；４（５）：３８１−４）などが報告されており、いずれの方法で製造されたｉＰＳ細胞でもよい。
【００２６】
［２］三胚葉
本発明の方法によれば、多能性幹細胞から三胚葉のいずれかを製造できる。
三胚葉としては、内胚葉系細胞、中胚葉系細胞、又は外胚葉系細胞のいずれでもよい。
内胚葉系細胞は、消化管、肺、甲状腺、膵臓、肝臓などの器官の組織、消化管に開口する分泌腺の細胞、腹膜、胸膜、喉頭、耳管、気管、気管支、尿路（膀胱、尿道の大部分、尿管の一部）などへと分化する。多能性幹細胞から内胚葉系細胞への分化は、内胚葉系細胞に特異的な遺伝子の発現量を測定することにより確認することができる。内胚葉系細胞に特異的な遺伝子としては、例えば、ＳＯＸ１７、ＦＯＸＡ２、ＣＸＣＲ４、ＡＦＰ、ＧＡＴＡ４、ＥＯＭＥＳ等を挙げることができる。
【００２７】
中胚葉系細胞は、体腔及びそれを裏打ちする中皮、筋肉、骨格、皮膚真皮、結合組織、心臓、血管（血管内皮も含む）、血液（血液細胞も含む）、リンパ管、脾臓、腎臓、尿管、性腺（精巣、子宮、性腺上皮）などへと分化する。中胚葉系細胞に特異的な遺伝子としては、例えば、ＭＥＳＰ１、ＭＥＳＰ２、ＦＯＸＦ１、ＢＲＡＣＨＹＵＲＹ、ＨＡＮＤ１、ＥＶＸ１、ＩＲＸ３、ＣＤＸ２、ＴＢＸ６、ＭＩＸＬ１、ＩＳＬ１、ＳＮＡＩ２、ＦＯＸＣ１及びＰＤＧＦＲα等を挙げることができる。
【００２８】
外胚葉系細胞は、皮膚の表皮や男性の尿道末端部の上皮、毛髪、爪、皮膚腺（乳腺、汗腺を含む）、感覚器（口腔、咽頭、鼻、直腸の末端部の上皮を含む、唾液腺）水晶体などを形成する。外胚葉の一部は発生過程で溝状に陥入して神経管を形成し、脳や脊髄などの中枢神経系のニューロンやメラノサイトなどの元にもなる。また末梢神経系も形成する。外胚葉系細胞に特異的な遺伝子としては、例えば、ＦＧＦ５、ＯＴＸ２、ＳＯＸ１、ＰＡＸ６等を挙げることができる。
【００２９】
本発明の方法で製造される三胚葉のいずれか（即ち、三胚葉のいずれかの細胞集団）は、内胚葉系細胞集団、中胚葉系細胞集団又は外胚葉系細胞集団のいずれでもよいが、特に好ましくは内胚葉系細胞集団である。
【００３０】
本発明の方法によれば、多能性幹細胞から分化誘導された内胚葉系細胞集団を用いて、例えば、膵臓、肝臓、胃、腸などの消化器系の治療用細胞を得ることができる。
腸系では、クリプト細胞などの腸前駆細胞を得た場合には、これをカテーテルなどで移植することにより、潰瘍性大腸炎、クローン病、短腸症などの治療へ利用できる。
【００３１】
膵臓系では、例えばインスリン産生細胞（β細胞）を得た場合には、これをカテーテルなどであるいは免疫隔離デバイス等に封入して移植することにより、糖尿病の治療へ利用できる。
肝臓系では、例えばアルブミン産生細胞を得た場合には、これをカテーテルなどであるいは免疫遮断デバイスに封入して移植することにより、大量出血を伴う外傷治療などへ利用できる。
【００３２】
また、膵臓、肝臓、胃、腸などの消化器系における治療用組織を、高分子支持担体などを利用して培養することにより得ることもできる。例えば、肝臓組織を誘導して得た場合は、肝癌、肝硬変、急性肝不全や、ヘモクロマトーシスなどの肝代謝障害の治療へ利用できる。肺細胞組織を得た場合、これを患部へ移植することにより嚢胞性線維症や喘息などの肺呼吸器疾患治療へ利用できる。腎臓系では、メサンギウム細胞や尿細管上皮細胞、糸球体細胞など含む組織を得た場合、これを直接移植することにより、腎不全や腎炎の治療や透析治療などへ利用できる。肝臓系の、物質代謝が可能な細胞を得ることにより、アルブミン産生細胞、血液凝固因子産生細胞、α１アンチトリプシンなどの代謝酵素産生細胞を作製し、産生した代謝酵素を直接注射するか点滴投与することにより、これらのタンパク質の欠乏症の治療に用いることができる。例えばβ細胞などの、物質代謝が可能な膵臓系の細胞を得ることにより、インスリン産生細胞を作製し、産生したインスリンを直接注射することにより、Ｉ型糖尿病の治療に用いることもできる。
【００３３】
さらに、本発明の方法で得られる三胚葉ならびにそこから得られる体細胞は、被検物質の薬効／毒性評価や作用メカニズムの解明、あるいは生物現象メカニズムの解析に用いることも可能である。
【００３４】
［３］培養装置
本発明においては、培地と分化誘導因子とを含む第一領域と、培地成分の少なくとも一部を含む第二領域とを有し、前記第一領域と前記第二領域とが膜で隔離されている培養装置を用いて前記第一領域において多能性幹細胞を培養する。
【００３５】
第一領域は、培地と分化誘導因子とを含む領域であり、多能性幹細胞が培養される領域である。第二領域は、培地成分の少なくとも一部を含む領域である。第一領域と前記第二領域とは膜で隔離されており、膜を介して、第一領域と第二領域との間では物質交換が行われる。
【００３６】
好ましくは、第一領域と第二領域とは膜を隣接して配置され、膜を介して第一領域と第二領域との間で物質交換がなされる。上記の態様の一例として、本発明で用いることができる培養装置の構成の一例の模式図を図１に示す。図１において、第一領域１には培地２が含まれており、培地２には、分化誘導因子が添加されている。第二領域３には、培地成分の少なくとも一部４が含まれている。そして、第一領域１と第二領域３とは、膜５で隔離されている。
【００３７】
本発明においては、第二領域に含まれている培地成分の少なくとも一部が、グルコースであることが好ましい。図１では、培地成分の少なくとも一部４としてグルコースが第二領域に含まれている場合を示す。第一領域１において、多能性幹細胞を培養すると、多能性幹細胞の代謝により、第一領域の培地に含まれる乳酸濃度は増大するが、乳酸濃度の増大に伴って、第一領域１の培地に含まれる乳酸は膜５を介して第二領域３に移動し、第一領域の培地に含まれる乳酸濃度の増大は抑制される。また、多能性幹細胞を培養すると、多能性幹細胞の代謝により、第一領域の培地に含まれるグルコース濃度は減少するが、グルコース濃度の減少に伴って、第二領域３の培地に含まれるグルコースは膜５を介して第一領域１に移動し、第一領域の培地に含まれるグルコース濃度の減少は抑制される。
上記したメカニズムにより、第一領域１において多能性幹細胞の分化誘導を効率的に行うことが可能になる。
【００３８】
なお、図１に示した培養装置の構成は、培養装置の一例を示したものであり、上記以外の構成の培養装置を使用することも可能である。例えば、国際公開ＷＯ２０１３／１６１８８５号公報に記載されている細胞培養システムに準じた構成を採用することも可能である。国際公開ＷＯ２０１３／１６１８８５号公報に記載されている細胞培養システムは、細胞を培養するための細胞培養槽と、成分調整液貯留槽と、細胞培養液及び／又は成分調整液の入口と出口とを有し、半透膜を備える培養液成分調整手段と、前記細胞培養槽及び／又は前記成分調整液貯留槽から前記培養液成分調整手段の入口に接続された入口接続送液回路と、前記細胞培養槽及び／又は前記成分調整液貯留槽から前記培養液成分調整手段の出口に接続された出口接続送液回路と、前記入口接続送液回路から前記培養液成分調整手段を経て前記出口接続送液回路に前記細胞培養液及び／又は前記成分調整液を灌流する手段と、前記細胞培養槽の液量を調整する手段とを備える細胞培養システムである。本発明においては、上記のように、細胞培養槽（本発明で言う第一領域）と成分調整液貯留槽（本発明で言う第二領域）とを送液回路で連結し、送液回路中に設けた送液手段により細胞培養槽中の培養液を循環させ、その循環の途中において培養液成分調整手段（本発明で言う膜）を介して、培養液と成分調整液貯留槽中の液体との間で物質交換を行うというシステムを採用することも可能である。
【００３９】
本発明においては、グルコース及び乳酸は膜を介して第一領域と第二領域との間を移動できることが好ましい。また、本発明においては、第一領域に含まれる分化誘導因子は、膜を通過して第二領域に移動しないことが好ましい。
【００４０】
本発明で用いる膜としては、例えば、透析膜を使用することができる。透析膜とは、分子量に応じて分画できる半透膜であり、好ましくは、膜中に実質的に同一形状の連通孔を多数有し、膜の両側の濃度差によって分子を分離できるものである。
【００４１】
透析膜等の膜の分画分子量は目的に応じて適宜変更可能であるが、下限は５００以上、６００以上、７００以上、８００以上、９００以上、１０００以上、１２００以上、１４００以上、１６００以上、１６００以上、２０００以上、２２００以上、２４００以上、２６００以上、２８００以上、３０００以上、又は３２００以上が好ましい。膜の分画分子量の上限は、５０，０００以下、４５，０００以下、４０，０００以下、３５，０００以下、３０，０００以下、２５，０００以下、２０，０００以下、１９，０００以下、１８，０００以下、１７，０００以下、１６，０００以下、１５，０００以下、１４，０００以下、１３，０００以下、１２，０００以下、１１，０００以下、１０，０００以下、９，０００以下、８，０００以下、７，０００以下、６，０００以下、又は５，０００以下が好ましい。膜の分画分子量は、例えば、３，０００、４，０００、５，０００、６，０００、７，０００、８，０００、９，０００、１０，０００、１１，０００、１２，０００、１３，０００、１４，０００、１５，０００、１６，０００、１７，０００、１８，０００、１９，０００、２０，０００、２５，０００、３０，０００、３５，０００、４０，０００、４５，０００又は５０，０００であるが、特に限定しない。
【００４２】
膜の材料は特に限定されず、例えば、再生セルロース、アセチルセルロース、ポリアクリロニトリル、ポリメチルメタクリレート、エチレンビニルアルコール、テフロン（登録商標）、ポリエステル系ポリマーアロイ、ポリスルホン、ポリアミドなどを挙げることができる。
【００４３】
［４］多能性幹細胞の維持培養
上記した膜を有する培養装置を用いて多能性幹細胞の分化誘導を行う前の多能性幹細胞は、未分化維持培地を用いて未分化性を維持したものとすることが好ましい。非分化誘導化培地を用いて多能性幹細胞の未分化性を維持する培養のことを、多能性幹細胞の維持培養ともいう。
【００４４】
未分化維持培地は、多能性幹細胞の未分化性を維持できる地であれば特に限定されないが、例えば、マウス胚性幹細胞及びマウス人工多能性幹細胞の未分化性を維持する性質を有していることが知られているｌｅｕｋｅｍｉａ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ  ｆａｃｔｏｒを含む培地や、ヒトｉＰＳの未分化性を維持する性質を有していることが知られているｂａｓｉｃ  ＦＧＦ（Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）を含む培地等が挙げられる。例えば、Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ８培地（ライフテクノロジーズジャパン株式会社）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）、ＳＴＥＭＰＲＯ（登録商標）ｈＥＳＣ  ＳＦＭ（ライフテクノロジーズジャパン株式会社）、ｍＴｅＳＲ１（Ｖｅｒｉｔａｓ社）、ＴｅＳＲ２（Ｖｅｒｉｔａｓ社）、ＳｔｅｍＦｉｔ（登録商標）等を使用することができるが、特に限定されない。また、未分化維持培地には、ペニシリン、ストレプトマイシン及びアンフォテリシンBなどの抗生物質、及びＣｕｌｔｕｒｅ  ｓｕｒｅ  Ｙ−２７６３２（和光純薬工業）等のＲＯＣＫ阻害剤を添加してもよい。
【００４５】
多能性幹細胞の維持培養は、ビトロネクチン、フィブロネクチン、ラミニン、又はマトリゲル等の細胞接着タンパク質をコートした細胞培養用ディッシュ上において上記した未分化維持培地を用いて行うことができる。
多能性幹細胞の維持培養は継代しながら所望の期間行うことができ、例えば、維持培養後の継代数１〜１００、好ましくは継代数１０〜５０、より好ましくは継代数２５〜４０の多能性幹細胞を用いることが好ましい。
【００４６】
［６］透析培養による三胚葉のいずれかへの分化誘導
本発明において、膜を用いた培養によって多能性幹細胞を三胚葉のいずれかに分化誘導する際には、分化誘導培地を使用して多能性幹細胞の培養を行う。分化誘導培地としては、多能性幹細胞を分化誘導させる培地であれば特に限定されるものではないが、例えば、血清含有培地や、血清代替成分を含有した無血清培地等が挙げられる。
【００４７】
用いる細胞の種類に応じて、霊長類ＥＳ／ｉＰＳ細胞用培地（リプロセル培地）、ＢＭＥ培地、ＢＧＪｂ培地、ＣＭＲＬ  １０６６培地、Ｇｌａｓｇｏｗ  ＭＥＭ培地、Ｉｍｐｒｏｖｅｄ  ＭＥＭ  Ｚｉｎｃ  Ｏｐｔｉｏｎ培地、ＩＭＤＭ培地、Ｍｅｄｉｕｍ  １９９培地、Ｅａｇｌｅ  ＭＥＭ培地、αＭＥＭ培地、ＤＭＥＭ培地、ハム培地、ＲＰＭＩ １６４０培地、Ｆｉｓｃｈｅｒ’ｓ培地、ＭＣＤＢ１３１培地及びこれらの培地から任意に選択した２種以上の培地を混合した培地などが使用できる。ただし、動物細胞の培養に用いることのできる培地であれば特に限定されない。
【００４８】
分化誘導培地は、血清成分又は血清代替成分を含んでいてもよい。血清代替成分としては、例えば、アルブミン、トランスフェリン、脂肪酸、コラーゲン前駆体、微量元素（例えば亜鉛、セレン）並びにこれらの均等物が挙げられる。
【００４９】
分化誘導培地には、各種の添加物、抗生物質などを加えてもよい。例えば、０．１ｍＭ〜５ｍＭのピルビン酸ナトリウム、０．１〜２％（体積／体積）の非必須アミノ酸、０．１〜２％（体積／体積）のペニシリン、０．１〜２％（体積／体積）のストレプトマイシン、０．１〜２％（体積／体積）のアンフォテリシンBなどを添加してもよい。
分化誘導培地にはさらに分化誘導因子を添加する。分化誘導因子については後記する。
【００５０】
本発明においては、培養装置の第一領域において、分化誘導因子を含む分化誘導培地中において多能性幹細胞を培養することにより、多能性幹細胞から三胚葉を製造する。その際、膜を介して、培養装置の第一領域と第二領域との間で物質交換を行う。
【００５１】
本発明においては、第一領域と第二領域が培地を含む。第一領域の培地量と第二領域の培地量との体積比は、特に限定しないが、例えば１：１０，０００から１：１とすることができる。
【００５２】
第一領域における細胞の密度は、特に限定されないが、１×１０の５乗〜１×１０の７乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬであることが好ましい。第一領域における細胞の密度は、２×１０の５乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以上、３×１０の５乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以上、４×１０の５乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以上、又は５×１０の５乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以上が好ましく、９×１０の６乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下、８×１０の６乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下、７×１０の６乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下、６×１０の６乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下、５×１０の６乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下、４×１０の６乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下、３×１０の６乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下、又は２×１０の６乗ｃｅｌｌｓ／ｍＬ以下が好ましい。
【００５３】
培養温度は、使用する多能性幹細胞の培養に適した培養温度であれば、特に限定されないが、一般的には３０℃〜４０℃であり、好ましくは約３７℃である。
ＣＯ2インキュベーターなどを利用して、約１〜１０％、好ましくは５％のＣＯ2濃度雰囲気下で培養を行うことが好ましい。
【００５４】
多能性幹細胞の膜を使用した培養の培養期間は、好ましくは１日以上、より好ましくは２日以上、さらに好ましくは３日以上であり、特に好ましくは４日以上であり、上限は特に限定されないが、一般的には２０日以下である。
【００５５】
好ましい態様においては、第一領域の培地におけるグルコース濃度は培養中において１．０ｇ／Ｌ以上に維持され、より好ましくは１．１ｇ／Ｌ以上に維持され、さらに好ましくは１．２ｇ／Ｌ以上に維持され、さらに一層好ましくは１．３ｇ／Ｌ以上に維持され、特に好ましくは１．４ｇ／Ｌ以上に維持される。
【００５６】
グルコース濃度の測定は、当業者に公知の方法により行うことができる。例えば、バイオアナライザー（王子計測機器株式会社BF-5iD）等の市販の分析装置を用いて測定することができる。
【００５７】
好ましい態様においては、第一領域の培地における乳酸濃度は培養中において１５ｍＭ以下に維持され、より好ましくは１０ｍＭ以下に維持され、より好ましくは９ｍＭ以下に維持され、より好ましくは８ｍＭ以下に維持され、より好ましくは７ｍＭ以下に維持され、より好ましくは６ｍＭ以下に維持される。
【００５８】
乳酸濃度の測定は、当業者に公知の方法により行うことができる。例えば、バイオアナライザー（王子計測機器株式会社BF-5iD）等の市販の分析装置を用いて測定することができる。
【００５９】
［７］分化誘導因子
第一領域の培地に添加する分化誘導因子は、分化誘導の目的に応じて、当業者であれば適宜することができる。即ち、多能性幹細胞から内胚葉系細胞を製造することを意図する場合には内胚葉への分化を誘導する分化誘導因子を添加すればよく、多能性幹細胞から中胚葉系細胞を製造することを意図する場合には、中胚葉への分化を誘導する分化誘導因子を添加すればよく、多能性幹細胞から外胚葉系細胞を製造することを意図する場合には、外胚葉への分化を誘導する分化誘導因子を添加すればよい。
【００６０】
多能性幹細胞を内胚葉系細胞に分化誘導させることを意図する場合には、分化誘導因子として、ＴＧＦβ（Transforming growth factor-β）スーパーファミリーシグナル活性化剤を使用することが好ましい。
ＴＧＦβスーパーファミリーシグナル活性化剤としては、アクチビンＡ、ＧＤＦ８（Growth differentiation factor 8）及びＢＭＰ４（Bone morphogenetic protein 4）からなる群から選択される少なくとも１種類を使用することが好ましい。
【００６１】
アクチビンＡを使用する場合、第一領域におけるアクチビンＡの添加初期濃度は、好ましくは１ｎｇ／ｍＬ以上、２ｎｇ／ｍＬ以上、３ｎｇ／ｍＬ以上、５ｎｇ／ｍＬ以上、１０ｎｇ／ｍＬ以上、２０ｎｇ／ｍＬ以上、３０ｎｇ／ｍＬ以上、４０ｎｇ／ｍＬ以上、又は５０ｎｇ／ｍＬ以上であり、好ましくは１,０００ｎｇ／ｍＬ以下、９００ｎｇ／ｍＬ以下、８００ｎｇ／ｍＬ以下、７００ｎｇ／ｍＬ以下、６００ｎｇ／ｍＬ以下、５００ｎｇ／ｍＬ以下、４００ｎｇ／ｍＬ以下、３００ｎｇ／ｍＬ以下、２００ｎｇ／ｍＬ以下、１５０ｎｇ／ｍＬ以下又は１００ｎｇ／ｍＬ以下である。
【００６２】
ＦＧＦ２を使用する場合、第一領域におけるＦＧＦ２の添加初期濃度は、好ましくは１ｎｇ／ｍＬ以上、２ｎｇ／ｍＬ以上、３ｎｇ／ｍＬ以上、５ｎｇ／ｍＬ以上、１０ｎｇ／ｍＬ以上、２０ｎｇ／ｍＬ以上、３０ｎｇ／ｍＬ以上、又は４０ｎｇ／ｍＬ以上であり、好ましくは１,０００ｎｇ／ｍＬ以下、９００ｎｇ／ｍＬ以下、８００ｎｇ／ｍＬ以下、７００ｎｇ／ｍＬ以下、６００ｎｇ／ｍＬ以下、５００ｎｇ／ｍＬ以下、４００ｎｇ／ｍＬ以下、３００ｎｇ／ｍＬ以下、２００ｎｇ／ｍＬ以下、１５０ｎｇ／ｍＬ、１００ｎｇ／ｍＬ以下、９０ｎｇ／ｍＬ以下、８０ｎｇ／ｍＬ以下、又は７０ｎｇ／ｍＬ以下である。
【００６３】
ＢＭＰ４を使用する場合、第一領域におけるＢＭＰ４の添加初期濃度は、好ましくは１ｎｇ／ｍＬ以上、２ｎｇ／ｍＬ以上、３ｎｇ／ｍＬ以上、５ｎｇ／ｍＬ以上、６ｎｇ／ｍＬ以上、７ｎｇ／ｍＬ以上、８ｎｇ／ｍＬ以上、９ｎｇ／ｍＬ以上、１０ｎｇ／ｍＬ以上、１１ｎｇ／ｍＬ以上、１２ｎｇ／ｍＬ以上、１３ｎｇ／ｍＬ以上、１４ｎｇ／ｍＬ以上、又は１５ｎｇ／ｍＬ以上であり、好ましくは１,０００ｎｇ／ｍＬ以下、９００ｎｇ／ｍＬ以下、８００ｎｇ／ｍＬ以下、７００ｎｇ／ｍＬ以下、６００ｎｇ／ｍＬ以下、５００ｎｇ／ｍＬ以下、４００ｎｇ／ｍＬ以下、３００ｎｇ／ｍＬ以下、２００ｎｇ／ｍＬ以下、１５０ｎｇ／ｍＬ、１００ｎｇ／ｍＬ以下、９０ｎｇ／ｍＬ以下、８０ｎｇ／ｍＬ以下、７０ｎｇ／ｍＬ以下、６０ｎｇ／ｍＬ以下、５０ｎｇ／ｍＬ以下、４０ｎｇ／ｍＬ以下、又は３０ｎｇ／ｍＬ以下である。
【００６４】
多能性幹細胞を内胚葉系細胞に分化誘導させることを意図する場合には、分化誘導因子として、ＴＧＦβスーパーファミリーシグナル活性化剤に加えてさらにＷＮＴシグナル活性化剤を使用することが好ましい。
【００６５】
ＷＮＴシグナルとは、β−カテニンの核移行を促し、転写因子としての機能を発揮する一連の作用をいう。ＷＮＴシグナルは細胞間相互作用に起因し、例えば、ある細胞から分泌されたＷＮＴ３Ａというタンパクがさらに別の細胞に作用し、細胞内のβ−カテニンが核移行し、転写因子として作用する一連の流れが含まれる。一連の流れは上皮間葉相互作用を例とする器官構築の最初の現象を引き起こす。ＷＮＴシグナルはβ−カテニン経路、ＰＣＰ経路、Ｃａ2+経路の三つの経路を活性化することにより、細胞の増殖や分化、器官形成や初期発生時の細胞運動など各種細胞機能を制御することで知られる。
【００６６】
ＷＮＴシグナル活性化剤としては、特に限定されないが、グリコーゲンシンターゼキナーゼ−３（ＧＳＫ−３）の阻害活性を示すものであればいかなるものでもよく、例えばビス−インドロ（インジルビン）化合物（ＢＩＯ）（（２’Ｚ，３’Ｅ）−６−ブロモインジルビン−３’−オキシム）、そのアセトキシム類似体ＢＩＯ−アセトキシム（２’Ｚ，３’Ｅ）−６−ブロモインジルビン−３’−アセトキシム）、チアジアゾリジン（ＴＤＺＤ）類似体（４−ベンジル−２−メチル−１，２，４−チアジアゾリジン−３，５−ジオン）、オキソチアジアゾリジン―３−チオン類似体（２，４−ジベンジル−５−オキソチアジアゾリジン−３−チオン）、チエニルα−クロロメチルケトン化合物（２−クロロ−１−（４，４−ジブロモ−チオフェン−２−イル）−エタノン）、フェニルαブロモメチルケトン化合物（α−４−ジブロモアセトフェノン）、チアゾール含有尿素化合物（Ｎ−（４−メトキシベンジル）−Ｎ’−（５−ニトロ−１，３−チアゾール−２−イル）ユレア）やＧＳＫ−３βペプチド阻害剤、例えばＨ−ＫＥＡＰＰＡＰＰＱＳｐＰ−ＮＨ2、などを使用することができ、特に好ましくは、ＣＨＩＲ９９０２１（ＣＡＳ：２５２９１７−０６−９）を使用することができる。
【００６７】
ＣＨＩＲ９９０２１を使用する場合、第一領域におよび第二領域おけるＣＨＩＲ９９０２１の添加初期濃度は、好ましくは０．０１μＭ以上、０．０２μＭ以上、０．０３μＭ以上、０．０４μＭ以上、０．０５μＭ以上、０．１μＭ以上、０．２μＭ以上、０．３μＭ以上、０．４μＭ以上、０．５μＭ以上、０．６μＭ以上、０．７μＭ以上、０．８μＭ以上、０．９μＭ以上、１μＭ以上、２μＭ以上、又は３μＭ以上であり、好ましくは１００μＭ以下、９０μＭ以下、８０μＭ以下、７０μＭ以下、６０μＭ以下、５０μＭ以下、４５μＭ以下、４０μＭ以下、３５μＭ以下、３０μＭ以下、２５μＭ以下、２０μＭ以下、１５μＭ以下、又は１０μＭ以下である。より好ましくは３μＭから４μＭである。
【００６８】
多能性幹細胞を内胚葉系細胞に分化誘導させることを意図する場合には、例えば、Ｄ‘Ａｍｏｕｒ et al．  Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｈｏｒｍｏｎｅ−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ ｃｅｌｌｓ ｆｒｏｍ ｈｕｍａｎ ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ． Ｎａｔ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ． ２００６ Ｎｏｖ；２４(１１)：１３９２−４０１に記載されている方法を使用することができ、ヒトＥＳ細胞をＷＮＴ３ａとアクチビンＡを含む培地中で培養することで内胚葉系細胞に分化誘導できることが示されている。
【００６９】
多能性幹細胞を中胚葉系細胞に分化誘導させることを意図する場合には、例えば、特表２０１３−５３０６８０号公報に記載されている方法を使用することができる。特表２０１３−５３０６８０号公報には、（ｉ）アクチビンＡおよびＷｎｔを含む培地中でヒト多能性幹細胞を培養する工程、および（ｉｉ）ＢＭＰおよびＷｎｔもしくはＷｎｔの機能等価物を含む培地中で、工程（ｉ）で得られた細胞を培養する工程を含む、ヒト多能性幹細胞から中間中胚葉系細胞の製造方法が記載されている。また、Ａｌｂｅｒｔ  Ｑ  Ｌａｍ  ｅｔ  ａｌ，  Ｊ  Ａｍ  Ｓｏｃ  Ｎｅｐｈｒｏｌ  ２５：１２１１−１２２２５，２０１５には、ヒト多能性幹細胞を、ＧＳＫ３β阻害剤であるＣＨＩＲ９９０２１で処理した後に、ＦＧＦ２及びレチノイン酸で処理することにより効率的に中胚葉系細胞に分化誘導できることが記載されている。本発明においても、上記文献に記載されている分化誘導因子を用いて、多能性幹細胞を中胚葉系細胞に分化誘導させることができる。
【００７０】
多能性幹細胞を外胚葉系細胞に分化誘導させることを意図する場合には、例えば、ＢＭＰ阻害剤（Ｎｏｇｇｉｎ等）及びＴＧＦβ／アクチビン阻害剤を含む培地中で多能性幹細胞を培養する方法（Ｃｈａｍｂｅｒｓ  ＳＭ．ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  ２７，２７５−２８０（２００９））、ＢＭＰ阻害剤（Ｎｏｇｇｉｎ等）及びＮｏｄａｌ／アクチビン阻害剤を含む培地中で多能性幹細胞を培養する方法（Ｂｅａｔａ  Ｓｕｒｎａｃｚ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ，２０１２；３０：１８７５−１８８４）を採用することができる。
【００７１】
以下の実施例にて本発明を具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
【実施例】
【００７２】
実施例１：透析培養を用いた内胚葉分化誘導
（１）透析膜を底面にもつ透析培養容器の作製
気液界面培養に汎用的に使用されるカルチャーインサート膜（コーニングインターナショナル株式会社  ３５３０９１）の底面に、分画分子量が３．５  ｋＤの透析膜（素材：再生セルロース、メーカー：スペクトラムラボラトリーズ）をアロンアルファＡ（第一三共株式会社）で接着し、風乾させた。使用前にカップを滅菌バッグに入れ、ＥＯＧ滅菌器（ＳＥＭＭＥＬ−３８０Ｂ）で滅菌した。
【００７３】
（２）ヒト多能性幹細胞の維持培養
ヒト多能性幹細胞はＴｋＤＮ４−Ｍ株（東京大学で樹立）を使用した。Ｖｉｔｒｏｎｅｃｔｉｎ（ライフテクノロジーズジャパン株式会社）をコートした細胞培養用ディッシュ上にヒト多能性幹細胞を播種し、培地はＥｓｓｅｎｔｉａｌ  ８TM（ライフテクノロジーズジャパン株式会社）に抗生剤として最終濃度１％（体積／体積）のペニシリンストレプトマイシンアンフォテリシンＢ懸濁溶液（和光純薬工業株式会社）を添加して維持培養した。継代時の細胞剥離剤としては、Ａｃｃｕｔａｓｅ（ライフテクノロジーズジャパン株式会社）を用いた。また、細胞播種時のみ、Ｃｕｌｔｕｒｅ  ｓｕｒｅ  Ｙ−２７６３２（和光純薬工業株式会社）を１０μＭとなるように添加した。培地交換は毎日実施した。実験には、継代数２７−３０のものを用いた。
【００７４】
（３）透析培養によるヒト多能性幹細胞の内胚葉分化誘導
ヒトｉＰＳ細胞を１ｍＬあたり５×１０5個となるように分化誘導培地１（組成は後述する）で２．５ｍＬの細胞懸濁液を調製し、透析培養容器に入れ、ディープウェル（コーニングインターナショナル株式会社３５５４６７）に組み込み一晩培養した。ディープウェル側には、分化誘導培地１のうち分化誘導因子を除いた培地を１５ｍＬ入れた。分化誘導培地１には、ＲＰＭＩ１６４０、ペニシリンストレプトマイシンアンフォテリシンＢ懸濁液、ＦＧＦ−２（リプロセル）、ＢＭＰ４（ミルテニーバイオテク）、ＣＨＩＲ９９０２１（和光純薬工業株式会社）、Ａｃｔｉｖｉｎ  Ａ（Ｒ＆Ｄシステムズ）を含有する。ディープウェル側の培地組成はＲＰＭＩ１６４０、ＣＨＩＲ９９０２１、ペニシリンストレプトマイシンアンフォテリシンＢ懸濁液を含有する。
【００７５】
分化誘導２日目から４日目までは、ディープウェル側に分化誘導培地２（組成は後述する）のうちＡｃｔｉｖｉｎを除いた培地を１５ｍＬ入れた。細胞が存在する透析培養容器には分化誘導培地２で培地交換を行った。分化誘導培地２には、ＲＰＭＩ１６４０、ペニシリンストレプトマイシンアンフォテリシンＢ懸濁液、Ａｃｔｉｖｉｎ  Ａ（Ｒ＆Ｄシステムズ）を含有し、ディープウェル側の培地にはＲＰＭＩ１６４０、ペニシリンストレプトマイシンアンフォテリシンＢ懸濁液を含有する。
【００７６】
（４）透析培養によるヒト多能性幹細胞の内胚葉分化誘導における未分化マーカーおよび内胚葉分化マーカー遺伝子の発現解析
透析培養によるヒト多能性幹細胞の内胚葉分化誘導５日目に細胞を一部回収し、自然沈降させたあと、上清除去した。ＴＲＩＺＯＬ試薬（Ｇｉｂｃｏ）を使用して、凝集塊からＲＮＡを抽出した。逆転写（ＲＴ）反応には、逆転写酵素（Ｔｏｙｏｂｏ）を用いて５００  ｎｇのＲＮＡから逆転写を行なった（ＡＳＴＥＣ  ＰＣ３２０）。１μｌの５倍希釈ｃＤＮＡ（逆転写産物の１／１００に  相当）についてオリゴｄＴプライマー（ユーロフィンジェノミクス株式会社）およびＫＯＤ  ｓｙｂｒ  ｑＰＣＲ  ｍａｓｔｅｒ  ｍｉｘ（東洋紡ライフサイエンス事業部）を用いて、リアルタイムＰＣＲ解析（Ｓｔｅｐ  Ｏｎｅ  Ｐｌｕｓ）を行なった。リアルタイムＰＣＲに用いたプライマーの塩基配列を表１に示す。
【００７７】
【表１】
2018117593.tif 000002
【００７８】
なお、ＯＣＴ４（ｏｃｔａｍｅｒ−ｂｉｎｄｉｎｇ  ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  ｆａｃｔｏｒ  ４）遺伝子はＮａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースに登録されているＩＤ：５４６０を参照し、ＳＯＸ２（ＳＲＹ(ｓｅｘ  ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎ  Ｙ)−ｂｏｘ  ２）遺伝子はＮａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースに登録されているＩＤ：６６５７を参照し、ＳＯＸ１７（ＳＲＹ(ｓｅｘ  ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎ  Ｙ)−ｂｏｘ  １７）遺伝子はＮａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースに登録されているＩＤ：６４３２１を参照し、ＦＯＸＡ２（ｆｏｒｋｈｅａｄ  ｂｏｘ  ｐｒｏｔｅｉｎ  Ａ２）遺伝子はＮａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースに登録されているＩＤ：３１７０を参照し、βＡＣＴＩＮ（ｂｅｔａ  ｃｙｔｏｓｋｅｌｅｔａｌ  ａｃｔｉｎ）遺伝子はＮａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースに登録されているＩＤ：６０を参照し、上記表１に記載のプライマーをそれぞれ設計した。
【００７９】
ＰＣＲ条件：
９８℃（変性）で６０秒、９８℃（変性）で１５秒、及び６８℃（アニーリングと伸長）で３０秒を５サイクル、９８℃（変性）で１５秒、６０℃（アニーリング）で１０秒、及び６８℃（伸長）で３０秒を４０サイクル、その後９５℃、６０℃、９８℃で順に融解曲線。
【００８０】
未分化マーカー遺伝子の発現解析（残存量）の結果を図３に示し、内胚葉分化マーカー遺伝子の発現解析（発現量）の結果を図４に示す。なお、図３及び図４における発現量は、βＡＣＴＩＮの発現量に対する各遺伝子の相対発現量を示す。
リアルタイムＰＣＲの結果より、透析を行なうことで、未分化マーカーの遺伝子発現が低減し、内胚葉分化マーカーの遺伝子発現が向上した。すなわち、透析により、低分子量の栄養素の補充と老廃物の除去が効果的におこなわれたことによる分化誘導向上の可能性が示唆された。
【００８１】
（５）透析培養によるヒト多能性幹細胞の内胚葉分化誘導における培養上清のグルコース濃度および乳酸濃度推移
培地交換の際に、培養上清を回収し、バイオアナライザー（王子計測機器株式会社ＢＦ−５ｉＤ）により培地中のグルコース濃度及び乳酸濃度を測定した。
【００８２】
培養上清中のグルコース濃度の推移を図５に示し、培養上清中の乳酸濃度の推移を図６に示す。透析培養を行なうことで、通常の分化誘導に比べてグルコース残存量が増加、乳酸濃度が低減した。これより、透析培養によって、分化誘導中のグルコースの補充と乳酸の除去が効率良く行なわれていることが示された。
【符号の説明】
【００８３】
１  第一領域
２  培地
３  第二領域
４  培地成分の少なくとも一部
５  膜
【図１】
2018117593.tif 000003
【図２】
2018117593.tif 000004
【図３】
2018117593.tif 000005
【図４】
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【図５】
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【図６】
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【配列表】
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