(57)【要約】【課題】抗癌剤の投与量を減少させて、副作用の軽減、及び患者の経済的負担を軽減することができる抗癌剤を提供することを目的とする。【解決手段】癌細胞増殖抑制活性を有し、下記式（１）で表されることを特徴とする抗癌剤作用増強物質。  【化１】2018002645.tif 000008【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
癌細胞増殖抑制活性を有し、下記式（１）で表されることを特徴とする抗癌剤作用増強物質。
【化１】
2018002645.tif 000006
【請求項２】
シソの抽出物であることを特徴とする請求項１に記載の抗癌剤作用増強物質。
【請求項３】
前記シソが赤シソであることを特徴とする請求項２に記載の抗癌剤作用増強物質。
【請求項４】
請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載の抗癌剤作用増強物質を含有する抗癌作用増強剤と抗癌剤とを備えることを特徴とする抗癌剤キット。
【請求項５】
前記抗癌剤の有効成分が、ドキソルビシン、ボスチニブ、及びポナチニブからなる郡より選ばれる１種であることを特徴とする請求項４に記載の抗癌剤キット。
【請求項６】
前記有効成分がドキソルビシンであり、前記抗癌剤における前記ドキソルビシンのモル濃度と前記抗癌作用増強剤における前記抗癌剤作用増強物質のモル濃度の比が１：１００〜１：１５０であることを特徴とする請求項４に記載の抗癌剤キット。
【請求項７】
前記抗癌剤がボスチニブであり、前記ボスチニブと前記抗癌剤作用増強物質とのモル濃度比が１：１０〜１：１００であることを特徴とする請求項４に記載の抗癌剤キット。
【請求項８】
前記抗癌剤がポナチニブであり、前記ポナチニブと前記抗癌剤作用増強物質とのモル濃度比が１：２０〜１：２００であることを特徴とする請求項４に記載の抗癌剤キット。
【請求項９】
下記式（２）で表される癌細胞増殖抑制物質を含有することを特徴とする飲食品。
【化２】
2018002645.tif 000007
【請求項１０】
前記癌細胞増殖抑制物質がシソの抽出物であることを特徴とする請求項９に記載の飲食品。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、抗癌剤作用増強物質およびそれを備えた抗癌剤キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
従来、癌の治療法として、癌細胞のＤＮＡに作用して、癌細胞の増殖を抑制することにより抗癌作用を示す抗癌剤を使用した薬物療法（化学療法）が用いられている。
【０００３】
この抗癌剤としては、例えば、ドキソルビシン等の抗癌性抗生物質を含有するもの、シスプラチン等を含有する白金製剤、チロシンキナーゼ阻害活性を有するポナチニブ等を含有する経口治療薬やボスチニブ等の癌細胞に対して集中的に作用する分子標的薬が使用されている（例えば、特許文献１参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特表２０１５−５２０１５７号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
ここで、上記従来の抗癌剤においては、優れた抗がん作用を有するものの、吐き気や嘔吐、脱毛等の副作用が強いものがあり、また、抗癌剤の投与量が増大すると、患者の経済的負担も増大するため、抗癌剤の継続使用ができない場合があるという問題があった。
【０００６】
そこで、本発明は、かかる点に鑑みてなされたものであり、抗癌剤の投与量を減少させて、副作用の軽減、及び患者の経済的負担を軽減することができる抗癌剤作用増強物質を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記目的を達成するために、本発明の抗癌剤作用増強物質は、癌細胞増殖抑制活性を有し、下記式（１）で表されることを特徴とする。
【０００８】
【化１】
2018002645.tif 000002
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、癌細胞の増殖を効果的に抑制することができ、抗癌剤の抗癌作用を増強することができる抗癌剤作用増強物質を提供することができる。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明の抗癌剤作用増強物質は、細胞増殖抑制活性を有し、下記式（２）で表されるフラバノン（シソフラバノン）である。
【００１１】
【化２】
2018002645.tif 000003
【００１２】
より具体的は、このフラバノンは、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノン（8-hyroxy-5,7dimethoxyflavanone）であり、フラボノイドの一種である。そして、本フラバノンは、癌細胞の増殖を効果的に抑制することができ、優れた癌細胞増殖抑制活性を有する。
【００１３】
本発明のフラバノンは、赤シソに含まれている成分である。なお、赤シソの種類は、特に限定されず、本発明においては、１種類の赤シソを使用してもよく、２種類以上の赤シソを組み合わせて使用することもできる。
【００１４】
また、シソ抽出物であるフラバノンを得るためのシソの部位は特に限定されないが、本発明においては、特に、葉の部分が好ましい。
【００１５】
また、使用されるシソの形態は、特に限定されず、例えば、原型、切断片、又は粉末等のいずれの形態でも良い。
【００１６】
なお、本発明のフラバノンは、本発明者によって見出されたヒスタミン遊離活性を有する抗アレルギー物質と同じ物質であり（特開２０１５−４４７５５号公報参照）、今回、この抗アレルギー性物質が、癌細胞増殖抑制活性を有することを新たに見出し、本発明を完成するに至った。
【００１７】
また、本発明のフラバノンは、赤シソの溶媒抽出物から得られ、赤シソを溶媒で抽出し、得られた溶媒抽出物をカラムクロマトグラフィーにより分画・精製することにより得ることができる。
【００１８】
＜赤シソの熱水抽出＞
赤シソから有効成分を抽出するための溶媒としては、水、メタノールやエタノール等のアルコール、及びアセトン等が考えられるが、本発明のフラバノンをシソから抽出するための溶媒としては、抽出効率の観点から、熱水を使用することが好ましい。
【００１９】
より具体的には、例えば、赤シソの粉末を沸騰水中に投入し、攪拌しながら有効成分であるフラバノンを溶出させる。次いで、熱水中にフラバノンを溶出させた後、ガーゼ等を使用して抽出残渣を搾取して取り除く。その後、得られた抽出液を濾過し、濾過した抽出液に対して常法により濃縮処理、及び乾燥処理を施すことにより、赤シソの熱水抽出物を得る。
【００２０】
＜カラムクロマトグラフィーによる赤シソ熱水抽出物の分画＞
本発明においては、上述の方法により得られた赤シソ熱水抽出物を逆相カラムクロマトグラフィーにより分画する。より具体的には、ポリマー系カラムを用いた逆相カラムクロマトグラフィーにおいて、メタノールで溶出することにより分画することができる。なお、メタノールで溶出後、濃縮処理を行い、その後、凍結乾燥を行う。
【００２１】
ポリマー系カラムとしては、例えば、スチレン−ジビニルベンゼン共重合体（ＳＴ／ＤＶＤ）をベースポリマーとして使用したカラム（例えば、三菱化学（株）製、商品名：ＭＣＬゲル  ＣＨＰ２０Ｐ）を使用することができる。
【００２２】
＜カラムクロマトグラフィーによる赤シソ分画物の精製＞
本発明においては、上述の方法により得られた赤シソ分画物（メタノール溶出物）を、逆相高速液体クロマトグラフィー（逆相ＨＰＬＣ）を使用して精製することにより、上記式（２）で表されるフラバノンを得ることができる。
【００２３】
より具体的には、粒子充填型カラムを用いた逆相高速液体クロマトグラフィーにおいて、アセトニトリルと水の混合溶媒（極性溶媒）を移動相として使用することにより精製（単離）することができる。
【００２４】
なお、アセトニトリルと水の混合比率は、特に限定されないが、移動相の極性を高めて、フラバノンの単離を容易にするとの観点から、アセトニトリル／水の混合比率をアセトニトリル：水＝３０：７０に設定することが好ましい。
【００２５】
また、粒子充填型カラムとしては、例えば、高純度シリカゲル（金属不純物が極めて少ないシリカゲル）が充填されたカラム（例えば、関東化学製、商品名：Ｍｉｇｈｔｙｓｉｌ  ＲＰ−１８  ＧＰ）を使用することができる。
【００２６】
また、本発明の抗癌剤キットは、上記式（２）で表されるフラバノンを含有する抗癌作用増強剤と抗癌剤とを備えている。
【００２７】
抗癌作用増強剤は、抗癌剤の作用経路そのものを増強する、もしくは抗がん剤の作用経路とは違う経路を介して、相乗的に作用することにより、抗癌剤の効果を増強するものである。
【００２８】
この抗癌作用増強剤としては、例えば、使用する抗癌剤と同じ緩衝液（例えば、リン酸緩衝液）や生理食塩水に、本発明のフラバノンを溶解させたものが挙げられる。
【００２９】
また、抗癌剤としては、特に限定されず、例えば、ドキソルビシン、ボスチニブ、ポナチニブ、シスプラチン、ピンクリスチン、パクリタキセル、ダサチニブ、ボサチニブ、及びニロテニブ等を有効成分として含有するものを使用することができる。
【００３０】
そして、本発明においては、細胞増殖抑制活性を有するフラバノンを抗癌剤と共投与することにより、抗癌剤による細胞増殖抑制効果を増大させることが可能になる。以下に、本発明の効果について詳しく説明する。
【００３１】
一般に、細胞の増殖は、ＤＮＡの複製および細胞分裂に必要なタンパク質が合成されるＳ期（Synthesis phase）、Ｓ期におけるＤＮＡの複製が正確に行われた否かを判断するＧ２期（Gap 2 phase）、有糸分裂と細胞質分裂が行われるＭ期（Mitotic phase）、及びＭ期における細胞分裂が正確に行われたか否かを判断するＧ１期（Gap 1 phase）の周期で行われる。
【００３２】
ここで、細胞のＤＮＡ複製や分裂に異常があると、Ｇ１期もしくはＧ２期において、細胞周期が停止して細胞死に至るが、癌細胞ではこれらＧ１期もしくはＧ２期におけるチェック機構が失われていることが多いため、無秩序な細胞増殖が続き、結果として、腫瘍化や癌化が生じる。従って、癌の細胞増殖を止めるためには、Ｇ１期及びＧ２期におけるチェック機構を活性化することにより、細胞周期をＧ１期及びＧ２期で停止させて、細胞死を誘導することが重要であると言える。
【００３３】
例えば、ピンクリスチンやパクリタキセルなどは、分裂期における微小管の重合や脱重合を阻害する物質であるため、Ｇ１期で細胞増殖を停止させる。一方、ドキソルビシンなどの抗腫瘍性抗生物質は、直接、ＤＮＡに作用するため、Ｓ期で細胞増殖を停止させることにより、抗腫瘍機能を発する。
【００３４】
このように、癌細胞の増殖の停止時期は、使用する抗癌剤の種類により異なるが、本発明のフラバノンは、例えば、ヒト肺胞基底上皮腺癌細胞（Ａ５４９細胞）に対しては、Ｇ２期において、細胞分裂を停止させる機能を有する。
【００３５】
従って、本発明のフラバノンを抗癌剤と共投与することにより、本発明のフラバノンが、例えば、Ｇ２期において細胞増殖を停止させる既存の抗癌剤と協調的に作用し、本発明のフラバノンが配合されていない既存の抗癌剤を単独で使用する場合に比し、癌細胞の増殖を効果的に抑制することが可能になる。
【００３６】
また、Ｓ期もしくはＧ１期で細胞増殖を停止させる既存の抗がん剤と共投与することにより、本来、Ｓ期もしくはＧ１期において停止すべきであった癌細胞の増殖を、Ｇ２期において停止させることが可能になるため、癌細胞の増殖を効果的に抑制することが可能になる。
【００３７】
その結果、抗癌剤の投与量を減少させることが可能になるため、副作用を軽減することができるとともに、患者の経済的負担を軽減することが可能になる。従って、患者が、安心して抗癌剤を継続使用することが可能になる。
【００３８】
また、癌細胞増殖抑制活性を向上させるとの観点から、抗癌剤における有効成分のモル濃度と抗癌作用増強剤におけるフラバノンのモル濃度の比が１：１０〜１：２０００であることが好ましい。
【００３９】
例えば、抗癌剤が、ドキソルビシンを含有する抗癌剤である場合、抗癌剤におけるドキソルビシンのモル濃度と抗癌作用増強剤におけるフラバノンのモル濃度の比が１：１００〜１：１５０であることが好ましい。
【００４０】
また、例えば、抗癌剤が、ボスチニブを含有する抗癌剤である場合、抗癌剤におけるボスチニブのモル濃度と抗癌作用増強剤におけるフラバノンのモル濃度の比が１：１０〜１：１００であることが好ましい。
【００４１】
また、例えば、抗癌剤が、ポナチニブを含有する抗癌剤である場合、抗癌剤におけるポナチニブのモル濃度と抗癌作用増強剤におけるフラバノンのモル濃度の比が１：２０〜１：２００であることが好ましい。
【００４２】
また、例えば、抗癌剤が、ダサチニブを含有する抗癌剤である場合、抗癌剤におけるダサチニブのモル濃度と抗癌作用増強剤におけるフラバノンのモル濃度の比が１：２００〜１：２０００であることが好ましい。
【００４３】
本発明のフラバノンの投与方法は特に限定されず、例えば、顆粒剤、錠剤、カプセル剤等の形態により経口投与することができる。また、点滴等の注射や皮下、経皮等の非経口投与であってもよい。
【００４４】
なお、上記実施形態は以下のように変更しても良い。
【００４５】
本発明のフラバノンは、単独で、癌細胞に対する細胞増殖抑制活性を有するため、癌細胞増殖抑制物質として、飲食品に配合して使用することができる。飲食品としては、例えば、茶、ジュース、コーヒー、紅茶等の飲料、うどん、そば等の麺類、飴、ガム、チョコレート等の菓子類、及びサプリメント等の健康食品等が挙げられ、これらの飲食品に上記式（２）で表されるフラバノンを配合することにより、例えば、抗癌剤投与後（即ち、抗癌剤による治療が終了した後）、再発防止を目的として摂取可能なフラバノン含有飲食品（癌細胞増殖抑制機能食品）を提供することが可能になる。
【００４６】
なお、本発明のフラバノンを飲食品に配合する場合の配合量としては、癌細胞の増殖を十分に抑制するとの観点から、飲食品におけるフラバノンの濃度が５０μｍ以上であることが好ましい。
【実施例】
【００４７】
以下に、本発明を実施例に基づいて説明する。なお、本発明は、これらの実施例に限定されるものではなく、これらの実施例を本発明の趣旨に基づいて変形、変更することが可能であり、それらを本発明の範囲から除外するものではない。
【００４８】
（実施例１）
（赤シソの熱水抽出）
赤シソ粉末（三島食品／天日干し）３００ｇを、２Ｌの沸騰水を使用して、１時間、攪拌抽出した。次いで、ガーゼを用いて抽出残渣を搾取した。そして、本抽出を２回繰り返した後、得られた抽出液を濾紙（アドバンテック製、商品名：FILTER PAPER 2）を使用して濾過し、濾過した抽出液に対して、エバポレーターによる濃縮処理、及び凍結乾燥処理を施すことにより、赤シソの熱水抽出物を得た。
【００４９】
（カラムクロマトグラフィーによる赤シソ熱水抽出物の分画）
次いで、得られた赤シソ熱水抽出物を逆相カラムクロマトグラフィーにより分画した。ポリマー系カラムとして、スチレン−ジビニルベンゼン共重合体（ＳＴ／ＤＶＢ）をベースポリマーとするカラム（三菱化学製、商品名：ＭＣＩゲル  ＣＨＰ２０Ｐ）を使用し、本担体を５０％メタノールにより、１時間以上膨潤させてクロマトカラム（ＳＩＢＡＴＡ製、商品名：ＳＰＣクロマトカラム）に２０ｃｍ／分（１４１ｍｌ）充填した後、これをカラム体積の５倍量（７０７ｍｌ）の超純水により洗浄した。
【００５０】
そして、上述の赤シソ熱水抽出サンプル３０gを、６００ｍｌの超純水で溶解したものをサンプルとし、このサンプルを本カラムに供してメタノール（カラム体積の４倍量：５６５ｍｌ）に溶出させた。
【００５１】
（カラムクロマトグラフィーによる赤シソ分画物（メタノール溶出画分）の精製）
次に、上述のメタノール溶出画分を、更に、メタノールで５０ｍｇ／ｍｌに調製したサンプルを準備し、このサンプルを０．２０μｍの親水性フィルター（アドバンテック製、商品名：DISMIC-13HP PTFE）を使用して濾過し、これを高純度シリカゲルが充填されたカラム（関東化学製、商品名：Ｍｉｇｈｔｙｓｉｌ  ＲＰ−１８  ＧＰ）とガードカラム（関東化学製、商品名：Ｍｉｇｈｔｙｓｉｌ  ＲＰ−１８  ＧＰ用ガードカラム）を使用して、逆相ＨＰＬＣにより精製することにより、１４０ｐｐｍ（１４ｍｇ／赤シソ１００ｇ）の８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを得た。
【００５２】
なお、移動相として、超純水で調製した４０％（即ち、アセトニトリル：水＝４０：６０）のアセトニトリル（ＳＩＧＭＡ製、商品名：０１−０６４５）にトリフルオロ酢酸（ＳＩＧＭＡ製、商品名：３０２０３１）を０.０１％加えた溶液を用いた。
【００５３】
（細胞培養）
ヒト肺胞基底上皮腺癌細胞（Ａ５４９細胞、アメリカ培養細胞系統保存機関）をDulbecc`s modified Eagle medium (DMEM, Life Technologies Japan, Ltd., Tokyo, Japan)培地を用いて３７℃、５％ＣＯ２環境下で培養した。なお、継代の際には、ｐＨ７．２のリン酸緩衝生理食塩水（Wako Pure Chemical Industries Ltd., Osaka, Japan）を使用して、１００×２０ｍｍの組織培養皿（Corning製）を洗浄後、Trypsin-EDTA（Gibco,Life Technologies Japan製）を使用して細胞を剥がし、再度、上述の培地に懸濁して、新しいプレートに播種した。
【００５４】
（細胞増殖抑制評価）
次に、９６Well平底プレート（Corning製）にて、ヒト肺胞基底上皮腺癌細胞を培養した培地１００μｌに、終濃度が１μＭになるようにドキソルビシン（Sigma-Aldrich Co., LLC.）を含有する抗癌剤５０μｌと、終濃度が１００μＭになるように８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを含有する抗癌作用増強剤５０μｌを添加し、２２時間培養した。
【００５５】
次に、この培地に、５−ブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）を、最終濃度が１００μＭとなるように添加し、更に、２時間培養した。培養終了後、細胞増殖ＥＬＩＳＡ，ＢｒｄＵ発色キットを使用して、細胞に取り込まれたＢｒｄＵ量を測定することにより、癌細胞の増殖量を定量した。より具体的には、癌細胞の増殖を、抗ＢｒｄＵ抗体の酵素基質反応を介して発色する色素の吸光度を指標として定量化し、評価した。以上の結果を表１に示す。
【００５６】
（実施例２）
細胞増殖抑制評価において、培地に添加する８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１２５μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００５７】
（実施例３）
細胞増殖抑制評価において、培地に添加する８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１５０μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００５８】
（実施例４）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンの代わりに１μＭのボスチニブを使用し、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１０μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００５９】
（実施例５）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンの代わりに１μＭのボスチニブを使用し、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を５０μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６０】
（実施例６）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンの代わりに１μＭのボスチニブを使用したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６１】
（実施例７）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンの代わりに０．５μＭのポナチニブを使用し、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１０μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６２】
（実施例８）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンの代わりに０．５μＭのポナチニブを使用し、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を５０μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６３】
（実施例９）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンの代わりに０．５μＭのボスチニブを使用したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６４】
（実施例１０）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンを使用せず、かつ、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を５０μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６５】
（実施例１１）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンを使用しなかったこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６６】
（実施例１２）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンを使用せず、かつ、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１２５μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６７】
（実施例１３）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンを使用せず、かつ、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１５０μＭに変更したこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６８】
（比較例１）
細胞増殖抑制評価において、１００μＭの８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを使用しなかったこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００６９】
（比較例２）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンの代わりに１μＭのボスチニブを使用し、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを使用しなかったこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００７０】
（比較例３）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシンの代わりに０．５μＭのポナチニブを使用し、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを使用しなかったこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００７１】
（比較例４）
細胞増殖抑制評価において、１μＭのドキソルビシン、及び８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを使用しなかったこと以外は、実施例１と同様に行った。以上の結果を表１に示す。
【００７２】
【表１】
2018002645.tif 000004
【００７３】
表１に示すように、１μＭのドキソルビシンと１００〜１５０μＭの８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを添加した実施例１〜３においては、１μＭのドキソルビシンのみを添加した比較例１に比し、癌細胞の増殖を顕著に抑制することができることが分かる。
【００７４】
また、１μＭのボスチニブと１０〜１００μＭの８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを添加した実施例４〜６においては、１μＭのボスチニブのみを添加した比較例２に比し、癌細胞の増殖を顕著に抑制することができることが分かる。
【００７５】
更に、０．５μＭのポナチニブと１０〜１００μＭの８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを添加した実施例７〜９においては、０．５μＭのボスチニブのみを添加した比較例３に比し、癌細胞の増殖を顕著に抑制することができることが分かる。
【００７６】
また、表１に示すように、抗癌剤を添加せず、５０〜１５０μＭの８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンのみを添加した実施例１０〜１３においては、抗癌剤及び８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを添加しなかった比較例４に比し、癌細胞の増殖を抑制することができ、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノン単独で、癌細胞の増殖を抑制することができることが分かる。
【００７７】
（実施例１４）
まず、上述の第１の実施形態と同様にして、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを精製し、細胞培養を行った。
【００７８】
（細胞増殖抑制評価）
ヒト肺胞基底上皮腺癌細胞を培養した培地１００μｌに、２μＭドキソルビシンを含有する抗癌剤を含む培地１００μｌのみを添加し、２４時間培養した。次に、この培地を除去し、細胞をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）にて洗浄した。その後、リン酸緩衝生理食塩水を除去し、１０μＭの８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを含有する抗癌作用増強剤を含む培地２００μｌを添加し、２２時間培養した。次に、上述の実施例１と同様に、この培地に、５−ブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）を、最終濃度が１００μＭとなるように添加し、更に、２時間培養した。培養終了後、細胞増殖ＥＬＩＳＡ，ＢｒｄＵ発色キットを使用して、細胞に取り込まれたＢｒｄＵ量を測定することにより、癌細胞の増殖を定量した。以上の結果を表２示す。
【００７９】
（実施例１５）
細胞増殖抑制評価において、培地に添加する８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１００μＭに変更したこと以外は、実施例１４と同様に行った。以上の結果を表２に示す。
【００８０】
（実施例１６）
細胞増殖抑制評価において、培地に添加する８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１２５μＭに変更したこと以外は、実施例１４と同様に行った。以上の結果を表２に示す。
【００８１】
（実施例１７）
細胞増殖抑制評価において、培地に添加する８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンの濃度を１５０μＭに変更したこと以外は、実施例１４と同様に行った。以上の結果を表２に示す。
【００８２】
（比較例５）
細胞増殖抑制評価において、１０μＭの８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを使用しなかったこと以外は、実施例１４と同様に行った。以上の結果を表２に示す。
【００８３】
【表２】
2018002645.tif 000005
【００８４】
表２に示すように、１μＭのドキソルビシンを添加した後、１０〜１５０μＭの８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを添加した実施例１４〜１７においては、１μＭのドキソルビシンのみを添加した比較例５に比し、癌細胞の増殖を抑制することができることが分かる。
【００８５】
即ち、本発明の８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンは、単独であっても、癌細胞に対する細胞増殖抑制活性を有し、抗癌剤投与後（即ち、抗癌剤による治療が終了した後）、再発防止を目的として、事後的に摂取可能であることが分かる。
【００８６】
（フラバノンによる細胞増殖抑制活性）
次に、フラバノンによる細胞増殖抑制活性の評価を行った。
【００８７】
まず、実施例１と同様にして、細胞の培養を行った。次に、９６Well平底プレート（Corning製）にて、ヒト肺胞基底上皮腺癌細胞を培養した培地１００μｌに、終濃度が２５０μＭになるように８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを含有する抗癌作用増強剤１００μｌを添加し、２２時間培養した。
【００８８】
次に、培養後細胞を回収しBD PharmingenTM社製、FITC-BrdU Flow Kit を使用して、FACS Calibur flow cytometer (BD Biosciences, San Jose, CA, USA)にて解析した。
【００８９】
なお、比較対象として、上述の培地に、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを含有する抗癌作用増強剤を添加していないものについても、同様に評価した。
【００９０】
その結果、比較対象のＧ２／Ｍ期における細胞の割合が７．６７％であったのに対し、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを含有する抗癌作用増強剤を添加した場合のＧ２／Ｍ期における細胞の割合が４６．４％であった。
【００９１】
以上より、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを含有する抗癌作用増強剤を添加することにより、Ｇ２期において細胞増殖が停止していると言えるため、８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンは、ヒト肺胞基底上皮腺癌細胞（Ａ５４９細胞）に対して、Ｇ２期において、細胞分裂を停止させる機能を有することが分かる。
【００９２】
（細胞増殖抑制評価）
次に、９６Well平底プレート（Corning製）にて、ヒト肺胞基底上皮腺癌細胞を培養した培地１００μlに、終濃度が１μＭになるようにドキソルビシン（Sigma-Aldrich Co., LLC.）を含有する抗癌剤５０μｌと、終濃度が１００μＭになるように８−ヒドロキシ−５，７−ジメトキシフラバノンを含有する抗癌作用増強剤５０μｌを添加し、２２時間培養した。
【００９３】
次に、この培地に、５−ブロモデオキシウリジン（ＢｒｄＵ）を、最終濃度が１００μＭとなるように添加し、更に、２時間培養した。培養終了後、細胞増殖ＥＬＩＳＡ，ＢｒｄＵ発色キットを使用して、細胞に取り込まれたＢｒｄＵ量を測定することにより、癌細胞の増殖量を定量した。より具体的には、癌細胞の増殖を、抗ＢｒｄＵ抗体の酵素基質反応を介して発色する色素の吸光度を指標として定量化し、評価した。以上の結果を表１に示す
【産業上の利用可能性】
【００９４】
本発明の活用例としては、抗癌剤作用増強物質と抗癌剤とを備える抗癌剤キットが挙げられる。