(57)【要約】      （修正有）【課題】子宮機能に関与するHomeobox（HOXA 10）の発現等を増大させて、不妊の改善が期待できる、不妊症改善剤及び当該不妊改善剤を含む食品の提供。【解決手段】アグリコン型イソフラボン、グリスリン及びピクノジェノールを含み、好適には更にビタミンＤ３を含んで、HOXA 10等の発現を増大させる不妊改善剤。前記不妊改善剤をカプセルや錠剤等の形態による食品とする。不妊改善剤において、更にグリコデリン、インテグリン、αV、IL-11、MFG E8、LIF、TGF-βから選ばれる少なくとも1種の発現を増大させる、不妊改善剤。その形態が、飲料、乳製品、発酵乳、バー、顆粒、粉末、カプセル及び錠剤形態から選ばれるものである、食品。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
アグリコン型イソフラボン、グリスリン及びピクノジェノールを含むことを特徴とする、不妊改善剤。
【請求項２】
請求項１記載の不妊改善剤において、更にビタミンＤ３を含むことを特徴とする、不妊改善剤。
【請求項３】
請求項１又は２記載の不妊改善剤は、Homeobox（HOXA 10）の発現を増大させることを特徴とする、不妊改善剤。
【請求項４】
請求項３記載の不妊改善剤において、更にグリコデリン、インテグリン、αV、IL-11、MFG E8、LIF、TGF-βからなる群より選ばれる少なくとも1種の発現を増大させることを特徴とする、不妊改善剤。
【請求項５】
請求項１乃至４いずれかの項記載の不妊改善剤を有効成分として含むことを特徴とする、食品。
【請求項６】
請求項５記載の食品において、その形態が、飲料、乳製品、発酵乳、バー、顆粒、粉末、カプセル及び錠剤形態から成る群より選ばれるものであることを特徴とする、食品。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、不妊改善剤及び当該改善剤を用いた食品に関し、特に、女性の不妊改善に有効な、子宮機能に係るHomeobox（HOXA 10）等の発現を増加させることができる、不妊改善剤及び当該改善剤を用いた食品に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
一般に、不妊症の原因は、女性原因のものと男性原因のものとがあり、特に不妊症の女性原因としては、卵管障害、排卵障害、子宮着床障害、頸管粘液障害などがあり、不妊に対する治療の選択肢には、排卵誘発剤や体外授精、人工授精等がある。
【０００３】
体外授精の成功率は一般に20％程度とされ、未だ十分に高い確率とはなっていない。複数回の治療が必要となるケースも多く、患者は大きな経済的負担を強いられている。また、通院・治療のための患者の身体的・精神的負担も非常に大きい。
【０００４】
従って、不妊治療の第一の選択肢は、排卵誘発剤による治療となっており、排卵誘発剤には、主としてhMG（human menopausal gonadotropin: ヒト閉経期尿中ゴナドトロピン）やhCG（human chorionic gonadotropin: ヒト絨毛性性腺刺激ホルモン）、プロジェステロン（progesterone）などのホルモン製剤が使用され、クロミフェンやクロモクリプチン等の薬剤も用いられている。
しかし、排卵誘発剤による治療には、過排卵による多胎妊娠のリスクがあり、卵巣過剰刺激症等の副作用を引き起こす危険性もある。
【０００５】
不妊改善に関しては、例えば、特表２００９−５０３０９号公報（特許文献１）に、排卵誘発剤として、クロミフェン、シクロフェニル等の内服薬、ゴナトトロピン等の注射剤を用いることが記載されている。
【０００６】
また、特開２０１６−１４５１８２５号（特許文献２）に、第ヒシ科に属する植物の果皮及び果実の一方又は双方に含まれる１又は複数の化合物を有効成分として含むことを特徴とする不妊の改善剤組成物が開示されている。
【０００７】
エストロゲンは、子宮内膜のような女性生殖器の正常な性的発育および機能に必須であるステロイドホルモンであり、妊娠に関係するホルモンである。
そして、イソフラボン類の多くは、その構造がエストロゲンと類似していることから、エストロゲン受容体に結合することが予想され、実際にエストロゲン受容体ERβに選択性を持って結合（Endocrinology  １３９，４２５２（１９９８））することが報告されており、子宮組織に作用して子宮機能を調節する可能性がある。
【０００８】
大豆イソフラボンは、ゲニステイン、ダイゼイン、グリシテインなどの総称であり、ほとんどが配糖体として存在し、腸内でアグリコン化されて吸収されるものと考えられており、特に、アグリコン型イソフラボンは、ヒト子宮内膜ガン由来細胞(Ishikawa 細胞)及び初代子宮細胞膜上皮細胞で、血病阻害因子(LIF)やトランスフォーミング成長因子β（TGF-β)の発現を誘導し、分泌を刺激することが知られている。
【０００９】
エストロゲンの分泌に関しては、例えば特開２００９−１９１０１２号公報（特許文献３）に、排卵障害改善作用を有する不妊治療剤として、オレウロペイン、その誘導体又はヒドロキシチロソールから選択される成分を有効成分とする不妊治療剤が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】特表２００９−５０３０９６号公報
【特許文献２】特開２０１６−１４５１８２５号
【特許文献３】特開２００９−１９１０１２号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
本発明の目的は、子宮機能に関与する分子レベル因子の発現を増大させて、不妊を改善することが期待できる、不妊症改善剤及び当該不妊改善剤を含む食品を提供することである。
特に、子宮機能に係るHomeobox（HOXA 10）の発現を増加させて、不妊を改善することが期待できる、不妊症改善剤及び当該不妊改善剤を含む食品を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明者らは、上記課題解決のために鋭意検討した結果、アグリコン型イソフラボンに加えて特定の成分を含むことにより、ヒト子宮内膜上皮細胞におけるHomeobox  (HOXA 10）等の発現を有効に増加させることを見出し、本発明に到ったものである。
【００１３】
本発明は、アグリコン型イソフラボン、グリスリン及びピクノジェノールを含むことを特徴とする、不妊改善剤である。
好適には、本発明の不妊改善剤には、更にビタミンＤ３を含むことを特徴とする、不妊改善剤である。
【００１４】
さらに好適には、上記本発明の不妊改善剤は、ヒト子宮内膜上皮細胞におけるHomeobox（HOXA 10）の発現を増大させることを特徴とする、不妊治療剤であり、更には、前記Hoxa 10の発現に加えて、更にグリコデリン、インテグリン、αV、IL-11、MFG-E8、LIF、TGF-βからなる群より選ばれる少なくとも1種の分泌の発現を増大させることを特徴とする、不妊改善剤である。
【００１５】
また、本発明は、上記不妊改善剤を有効成分として含むことを特徴とする、食品であり、好適には、前記本発明の食品は、その形態が、飲料、乳製品、発酵乳、バー、顆粒、粉末、カプセル及び錠剤形態から成る群より選ばれるものであることを特徴とする、食品である。
【発明の効果】
【００１６】
本発明の不妊改善剤は、子宮機能に係る複数の遺伝子発現、特にHOXA 10の発現を増加させることができ、不妊を改善するための改善剤として有効であるという効果を奏することが期待できる。
また、特に、食品として種々の形態で適用することができるため、簡便に経口服用して不妊の改善を図ることが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１Ａ−Ｄ】図１Ａ〜Ｄは、Ishikawa細胞におけるグリコデリン、HOXA 10、IL-11及びインテグリンαVの遺伝子発現に対する改善剤の効果を示す図である。
【図１Ｅ−Ｇ】図１Ｅ〜Ｇは、Ishikawa細胞におけるLIF、MFG E8およびTGFβ1の遺伝子発現に対する改善剤の効果を示す図である。
【図２】図２Ａ〜Ｄは、ウェスタンブロット法によるHOXA 10、LIF及びTGF β1のタンパク質の発現の結果を示す図である。
【図３】図３は、Ishikawa細胞でのエストロゲン(est)とプロゲステロン(pro)による、LIF、グリコデリン（Gly）、IL-11、MFG E8、HOXA 10(Hoxa)、インテグリンαV(Integ)およびTGFβ1(TGF)遺伝子の発現に対する影響を示す図である。
【図４】図４は、エストロゲン(est)とプロゲステロン(pro)で誘導されたグリコデリン（Gly）、HOXA 10、インテグリンαV(Integ)およびTGFβ1(TGF)の遺伝子発現に対するIL-1βの影響の結果を示す図である。
【図５】図５は、IL-βで減少したプロゲステロン(Pro)とエストロゲン(Es)誘導した遺伝子発現に対する改善剤の効果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
本発明を、以下の実施の形態により説明するが、これらに限定されるものではない。
本発明の不妊改善剤は、アグリコン型イソフラボン、グリスリン及びピクノジェノールを含み、好適には、更に、ビタミンＤ３を含む改善剤である。
本発明の不妊改善剤は、ヒト子宮内膜上皮細胞におけるHOXA 10の発現を増大させるものである。
【００１９】
本発明の不妊改善剤に含まれるアグリコン型イソフラボンは、ゲニステイン、ダイゼイン、グリシテインなどの総称であり、任意のアグリコン型イソフラボンを用いることができ、好適には、ダイゼイン：ゲニスタイン：グリシタインが７：１：２の質量割合で配合されているものを用いることができる。
大豆胚芽由来のイソフラボンを麹菌で発酵させたアグリコン型イソフラボンは、糖が外れているため、経口服用した際には、腸内細菌の働きに関係なく、胃や小腸で吸収されるため、本発明の不妊改善剤を食品として用いた時には特に好適であり、市場で入手石し得る任意のアグリコン型イソフラボンを用いることができる。
【００２０】
また、本発明の不妊改善剤に含まれるグリスリンは、マイタケ抽出物であり、マイタケから抽出される分子量が約２万の糖タンパク質であり、市場で入手し得る任意のマイタケ抽出物（グリスリン）を用いることができる。
【００２１】
さらに、本発明の不妊改善剤に含まれるピクノジェノールは、通常、フランス南西部に生育するフランス海岸松の樹皮抽出物であり、プロアニジンと有機酸類の特有のフラボノイド系の有効成分を豊富に含有するものであり、市場で入手し得る任意のピクノジェノールを用いることができる。
【００２２】
好適には、更にビタミンＤ、特にビタミンＤ３を含むことが望ましく、市場で入手し得る任意のビタミンＤ３を用いることができる。
【００２３】
本発明の改善不妊剤中に含まれるアグリコン型イソフラボンとグリスリンとピクノジェノールとの配合割合は、アグリコン型イソフラボン：グリスリン：ピクノジェノール（質量比）＝２〜３：１０〜９０：２〜３０の範囲で配合されることが望ましいが、任意に配合比率を変化させることができ、限定されるものはない。
【００２４】
また、好適配合成分としてのビタミンＤ３の配合割合も、特に限定されず、任意に変化させて配合することが可能であるが、例えば、本発明の改善剤中、２０(IU)〜１００，０００（IU)の含有量で含むことが好ましい。
【００２５】
上記アグリコン型イソフラボンとグリスリンとピクノジェノールとを配合、好適にはビタミンＤ３を配合することにより、ヒト子宮内膜上皮細胞におけるHoxa 10等の発現が促され、不妊改善に効果があるものと期待することが可能となる。
さらに、Hoxa 10のみならず、子宮機能に係わるGlycodelin、Integrin αV、IL-11、MFG-E8、LIF、TGF-βの分泌も促し、不妊改善に有意に作用するものである。
【００２６】
ここで、ヒト子宮内膜上皮細胞に発現するHomeobox（HOX10）は、子宮内膜の胚発育胚発生と分化を導く必須の役割を担う転写制御因子であり、妊娠に関する子宮機能に係わる重要な因子である(Rev Endocr Metab Disord 2002 3:127-132; J Clin Invest 1998 1011379-1384)。
【００２７】
また、ヒト子宮内内膜上皮に発現する白血病阻害因子(LIF)は、ヒトおよび他の動物の着床に不可欠であり、また、トランスフォーミング成長因子β(TGF-β)は、ヒト子宮内膜で豊富に発現し、特に、ヒト子宮内膜ストローマの脱落膜化を促進する役割等の着床準備事象での役割がある（Reproduction  2005 130 131-145)。また、トランスフォーミング成長因子β（TGF-β）は、子宮内膜ストローマの脱落膜化を促進して、ヒト子宮内膜の胚の成熟の支援する因子である(Mol Endocr 1990 4 965-972; Endocr 130 3459-3466)。
【００２８】
更に、グリコデリンは、ヒト子宮内膜上皮の分化マーカーであり、生殖の初期事象の調整因子であり、これはプロゲステロンによって調整され、分泌性／脱落膜化子宮内膜腺によって、子宮卵胞腔へと分泌されるものであり(Endocri Rev 2002 23 401-430) (2)、インテグリンαVは、着床期の子宮内膜の胚受容能を示す指標となり (Cells Tissues Organs 2002 172 190-201; Mol Reprod Dev 2007 74 1379-85)、IL-11は、ヒト子宮内膜上皮細胞で胚の着床を調整し(Cytokine Growth Factor Rev 2009 20 319-28)、更に、子宮内膜上皮細胞のMFG-E8発現は、絨毛膜絨毛の場合と同様に、哺乳類における正常妊娠に関するイベントおよび子宮内膜再編成において受容的な役割を果たす可能性が示されている。
【００２９】
また、本発明の不妊改善剤を含む食品としては、不妊改善剤を食品としたもの又は食品に配合したもの、或いは、カプセル、錠剤等、食品又はサプリメントに通常用いられる任意の形態をとることができる。提供又は配合される食品の種類に特に制限はなく、例えば、コーヒー、果汁、清涼飲料水、ビール、牛乳、味噌汁、スープ、紅茶、茶、栄養剤、シロップ、マーガリン、ジャム等の液状（流動状）食品、米飯、パン、じゃがいも製品、もち、飴、チョコレート、ふりかけ、ハム、ソーセージ、キャンディーなどの固形形状食品等の主食、副食、菓子類ならびに調味料に配合することも可能である。用途に応じて、飲料、乳製品、発酵乳、バー、顆粒、粉末、カプセル及び錠剤形態に成形して用いることができる。
また、本発明の効果を阻害しない範囲において、必要に応じて、賦形剤、増量剤、結合剤、増粘剤、乳化剤、着色料、香料、食品添加物、調味料等と適宜混合してもよい。
これらの食品としては、例えば、健康食品、機能性食品、栄養補助食品等を挙げることができる。
【００３０】
本発明の不妊改善剤及び当該改善剤を含有する食品は、以下の実施例に示すように、ヒト子宮内上皮におけるHoxaの発現を促し、更にはHoxaの発現に加えて、上記他の子宮機能に係わる因子の発現を促すことが可能であり、不妊改善に効果を有するものである。
【実施例】
【００３１】
材料及び方法
ヒト子宮内膜上皮ガン由来細胞（Ishikawa細胞）は、（独）医薬基盤研究所（ＪＣＲＢ）より入手し、１０％  ＦＢＳを含むＤＭＥＭで培養した。細胞の継代は０．１％  トリプシン、０．０２％  ＥＤＴＡで処理して行った。
アグリコン型イソフラボンとしては、AglyMax-30（「AglyMax」、ニチモウ  商品名、「AglyMax」中アグリコン型イソフラボンを１/3質量含む）を用いた。
また、本発明の不妊症改善剤としては、以下の表１に記載する配合割合で配合された不妊改善剤（「Sup」）を用い、それぞれ１００ｍＭ溶液として−２０℃で保存して使用した。
【００３２】
【表１】
2018039740.tif 000002
【００３３】
また、Fulvestrant、PD98059及びH-7はシグマ（Sigma）社（米国ミズーリ州セントルイス）より、SB203580は和光純薬より入手し、また、インターロイキン1 (IL-1)はロッシュより入手した。
【００３４】
細胞培養
Ishikawa細胞は、シャーレ（直径１０ｃｍ、住友ベークライト）で８０％コンフルエントまで培養して増やした。
次いで、AglyMaxおよびSupを、それぞれ０、２、４、８時間（５０μＭ）、０、２、１０、３０、５０、１００μＭ（８時間）に変化させて添加して培養した。
【００３５】
ＲＮＡ抽出、ｃＤＮＡ合成およびＰＣＲ
上記細胞培養後、定法に従い、回収した細胞にトリゾル（インビトロジェン）を添加して、全ＲＮＡを抽出した。ｃＤＮＡの合成は、全ＲＮＡからｃＤＮＡ合成キット（スーパースクリプトＩＩＩ、インビトロジェン）を用い行った。ｃＤＮＡはあらかじめデザインした、Glycodelin、Integrin αV、IL-11、MFG-E8、LIF、TGF-β、Hoxa 10の複数のプライマーを用いて、標準的条件でＰＣＲ法を行い遺伝子の発現を解析した。
また、タンパク質の発現は、RIPAバッファーで抽出して、常法に従い２４時間処理して、ウェスタンブロット法で評価した（図２Ａ）。なお、コントロール用としてのβーアクチンは、Cell Signaling(1:1000,: ＃4967)から入手したものを使用した。
以下の表２にプライマーの塩基配列および増幅長等を示す。
【００３６】
【表２】
2018039740.tif 000003
【００３７】
具体的な方法は、以下のとおりである。
（ＲＮＡの抽出）
培養刺激したIshikawa細胞を、PBSで２回洗浄して、RNA抽出試薬TRIzol（登録商標）Reagent（ライフテクノロジーズ・ジャパン株式会社／InvitrogenTM）を1ml加えて細胞を十分溶解させた。
次いで、かかる細胞溶解液1mlに、クロロホルム0.2 mlを加えて振とう後、約３分間静置し、マイクロ冷却遠心機(3740、株式会社久保田製作所製)を用いて、4℃、12,000 xgの条件で15分間の遠心を行った。その後、上層を別のチューブに分取し、イソプロピルアルコール0.5 mlを加えてよく振り混ぜ、10分間静置し、さらに前記と同様の条件で遠心分離を行った。遠心分離後、上清を除去し、沈殿物を注射用蒸留水100 μlにて溶解し、0.1容量 (10μl)の3M酢酸ナトリウム及び2.2容量(242μl))の95%エタノール(和光純薬工業株式会社)を加え、-80℃で一昼夜保存した。翌日、前記と同様の条件で遠心分離を行った後、沈殿を70%エタノールで洗浄、乾燥させて、注射用蒸留水を加え、RNAを溶解し、分光光度計 (GeneQuant 100、GEヘルスケア バイオサイエンス株式会社)を用いて、吸光度260nmにおける値を測定しRNA量を算出した。
【００３８】
（ｃＤＮＡ合成）
cDNA合成にはSuperScript（登録商標）III(ライフテクノロジーズ・ジャパン株式会社/InvitrogenTM)を使用した。具体的には、総RNA 1μgは50μM Oligo(dT)20 1 μl、10 mM dNTP mix 1 μl、DEPC-処理水を加えて、全体で10μlにして、65℃ 5分 → 4 ℃→10X RT buffer 2 μl、25 mM MgCl2 4 μl、0.1 M DTT 2 μl、RNase OUTTM (40 U/μl) 1 μl、SuperScript（登録商標）III RT (200 u/μl) 1 μlを添加し、50 ℃ 50分 → 85 ℃ 5分 → 4 ℃の条件で逆転写反応を行った。最後にE. coli  RNase H 1 μlを加え、37 ℃ 20分 → 4 ℃の条件で再度反応を行った。反応産物は使用するまで保管した。
なお、この反応は、サーマルサークラー(GeneAmp（登録商標）PCR System 9700、アプライドバイオシステムズ 又LifeTouch、日本ジェネティクス株式会社)を用いて行った。
【００３９】
（ＰＣＲ）
PCRはGo taq PCRキット(プロメガ株式会社)を使用した。具体的には、Go taq PCRミクスチャーとcDNA 1 μlとを予め合成したプライマーとともに、次の条件でサーマルサークラーを用いて遺伝子を増幅した。
PCRの条件は95 ℃ 10分 → (94 ℃ 30秒 → 55 ℃ 30秒 → 72 ℃ 30秒) × 35サイクル → 4 ℃で行った。PCRミクスチャー25 μl、プライマー10 μM (+) 1 μl、プライマー10 μM (-) 1 μl、cDNA 1 μl、及びDW 22 μlを加えて、全体で50 μlとした。なお、プライマーは、上記表２に記載のものを使用して、上記各遺伝子にそれぞれ使用した。
【００４０】
更に確認のため、一部の遺伝子については、下記の文献に記載のTaqManプローブを用いたリアルタイムPCR法を用いて再度確認した(Yamagata ら)。
Yamagata K, Yamamoto M, Kawakami K, Ohara H, Nabika T. Arginine vasopressin regulated ASCT1 expression in astrocytes from stroke-prone spontaneously hypertensive rats and congenic SHRpch1_18 rats.  Neuroscience. 2014 267:277-285. 
【００４１】
（アガロース電気泳動法による増幅バンドの検出）
Agarose S (株式会社ニッポンジーン) 0.6 gに1 × TAE (株式会社ニッポンジーン) 30 mlを加えて電子レンジにより加熱し、泳動ゲルを作成した。PCR済みの反応液をゲルのウェルに各10 μlずつ加え、DNAマーカー 5 μlとともに電気泳動槽 Mupid（登録商標）(2plus、株式会社アドバンス)を用い、100 Vで約25分間電気泳動を行った。電気泳動後、0.01 %エチジウムブロマイド(和光純薬株式会社)に6分間染色させ、ミリQ水にて約30分間、振とう機 (In Vitro Shaker Wave-S1、タイテック株式会社)を用いて脱色した。振とう後、バンドの検出は2 UVトランスイルミネーター(Benchtop 2UV-Transilluminator、UVP)で確認し、ゲル撮影装置(AE-6905CF Printgraph 、アトー株式会社)を用いて画像を取り込み、パソコン上でゲル解析ソフトを用いて数値化した。
【００４２】
それぞれGlycodelin、Hoxa10、IL-11、Integrin αV、LIF、MFG-E8、TGF-βの発現の結果について、図１Ａ〜Ｇに示す。図中の遺伝子発現量は、１８srRNAの発現量によって補正を行った。
【００４３】
グリコデリンの発現は、比較例としてのAglyMaxと本発明の改善剤Supの添加により、無添加に比較して有意に増加した。
AglyMaxは１０μＭ；１０８％、５０μＭ；１２５％、１００μＭ；１１１％であった。一方、本発明の改善剤Supは、１０μＭ；１８８％、５０μＭ；１７７％、１００μＭ；１６５％で、AglyMaxに比べ優位に高レベルを示した（図１Ａ）。
【００４４】
HOXA 10の発現は、AglyMaxにより無添加に比べわずかに増加した。
具体的には、１０μＭ；１０６％、５０μＭ；１０７％、１００μＭ；１００％であった。一方、本発明の改善剤であるＳｕｐは、１０μＭ；１１９％、５０μＭ；１１１％、１００μＭ；１１５％であった（図１Ｂ）。
【００４５】
IL-11の遺伝子発現は、AglyMaxと本発明の改善剤Supで共に有意に増加した。
AglyMaxは、１０μＭ；１２０％、５０μＭ；１３０％、１００μＭ；１１６％であり、また本発明のＳｕｐは、１０μＭ；１１４％、５０μＭ；１１６％、１００μＭ；９２％であった。かかる発現の増加パターンは、一過的であることがわかった（図１Ｃ）。
【００４６】
一方、インテグリンαＶの発現は、AglyMaxで、５０μＭ；１１８％、１００μＭ；１１５％で僅かな増加を示した（図１Ｄ）。
【００４７】
ＬＩＦの発現は、AglyMaxと本発明の改善剤Supで有意に増加した。
AglyMaxでは１０μＭ；１２０％、５０μＭ；１３０％、１００μＭ；１１３％であった。
本発明の改善剤Supでは、１０μＭ；１１５％、５０μＭ；１２０％、１００μＭ；１１５％であった（図１Ｅ）。
【００４８】
MFG E8の遺伝子発現は、比較例としてのAglyMaxと本発明の改善剤Supで共に増加した。
AglyMaxは１０μＭ；１１４％、５０μＭ；１３３％、１００μＭ；１３４％であった。また、本発明の改善剤Supでは、１０μＭ；１２３％、５０μＭ；１１９％、１００μＭ；１２７％であった（図１Ｆ）。
【００４９】
TGF β1の遺伝子発現は、双方とも増加した。
AglyMaxでは１０μＭ；１４９％、５０μＭ；１７５％、１００μ；１６２％であった。本発明の改善剤のSupでは、１０μＭ；１４６％、５０μＭ；１３７％、１００μＭ；１６２％であった（図１Ｇ）。
【００５０】
これらの結果より、本発明の改善剤（Sup）は、上記着床に関わる複数の遺伝子発現を高め、特に、HOXA 10やグリコデン等の発現に優れていることが確認できた。
【００５１】
図２Ａ〜Ｄに、HOXA 10、LIF及びTGFβ1のタンパク質の発現の結果を示す。これらの結果より、本発明の改善剤によるタンパク質の発現が、有意に増加したことが明らかである。
【００５２】
タンパク質発現の検討では、低濃度（２、１０、３０μＭ）におけるAglyMaxおよび本発明の改善剤Supで、２４時間処理してウェスタンブロッド法（ＷＢ）で検討した。Ishikawa細胞において、HOXA 10は、AglyMaxで２μＭ；１０２％、１０μＭ；１１５％、３０μＭ；１１８％、本発明の改善剤のSupで、２μＭ；１００％、１０μＭ；１１０％、３０μＭ；１２４となった（図２Ｂ）。
【００５３】
また、LIFでは、AglyMaxで２μＭ；８７％、１０μＭ；１００％、３０μＭ；１５６％、本発明の改善剤のSupで、２μＭ；１４１％、１０μＭ；１５９％、３０μＭ；１６５％となった（図２Ｃ）。
【００５４】
TGFβでは、AglyMaxで、２μＭ；１０２％、１０μＭ；１２１％、３０μＭ；８８％で、本発明の改善剤のSupで、２μＭ；１０３％、１０μＭ；１５８％、３０μＭ；１２５％であった（図２Ｃ）。
【００５５】
上記結果より、本発明の不妊改善剤Supは、Ishikawa細胞で子宮内膜の機能に関わるHOXA 10をはじめ、上記因子の発現の増加させることが明らかとなった。
【００５６】
次いで、本発明の不妊改善剤Supに依存するこれらの発現調節に関連する細胞内情報内の伝達経路を特定するために、エストロジェン受容体抑制薬や、複数のキナーゼ阻害を使用して、本発明の不妊改善剤Supについての、子宮内膜機能に係る各遺伝子の下記各阻害剤の影響を評価した。具体的には、本発明の不妊改善剤SupによるHOXA 10をはじめ、glycodelin、IL-11、integrin αV、LIF、MFG E8、TGFβ1遺伝子発現に対する阻害剤の影響を以下のようにして検討した。
【００５７】
Ishikawa細胞を９０ｃｍ直径シャーレ(住友ベークライト)にコンフルエントまで増殖し、本発明の不妊改善剤Sup無添加、本発明の不妊改善剤Sup 50μM単特添加、更にはFulvestrant (エストロゲン受容体阻害剤, 10μM)、PD98059 (MAPK阻害剤, 20μM)、SB203580 (p38MAP阻害剤, 20μM)およびH-7(プロテインキナーゼ阻害剤,20μM)を本発明の不妊改善剤Sup  ５０μＭにそれぞれ追加添加して、８時間３７℃で５％ＣＯ２インキュベータで処理した。
反応培養後、それぞれの細胞をＰＢＳで２回洗浄した。これらの処理細胞は、上記と同様の方法で総ＲＮＡを抽出してｃＤＮＡ合成しＰＣＲ法にて遺伝子発現検討・評価した。
その結果を、表３に示す。
【００５８】
【表３】
2018039740.tif 000004
【００５９】
エストロジェン受容体（ＥＲ）拮抗剤fulvestrantは、HOXA 10、IL-11、インテグリンαV、LIFについての、本発明の改善剤のSupによる遺伝子発現を阻害した。
一方、グリコデリンおよびTGFβ1の遺伝子発現にはほとんど影響がなかった。
また、ＥＲＫ抑制薬PD98059は、HOXA 10、IL-11、インテグリンαVとLIＦの遺伝子発現を阻害した。特に、本発明の改善剤SupによるLIFの遺伝子発現は、PD98059によって強く減少した（６７．３％）。一方、p38MAPK抑制薬SB203580とプロテインキナーゼＡ（ＰＫＡ）抑制薬Ｈ７は、グリコデリン、IL-11、インテグリンαV、LIFの遺伝子発現を阻害した。
これらの結果より、本発明の改善による遺伝子発現に、これらキナーゼの作用の関与が推測される。
【００６０】
ヒトにおいて、エストロゲンとプロゲステロンの連続的な作用は、子宮内膜組織の受容性を高める（Young Reprod Biomed Online. 2013 27, 497-505）ことが知られている。
従って、Ishikawa細胞でエストロゲンとプロゲステロンによる上記遺伝子の発現に対する影響を以下に検討し、その結果を以下の表４及び図３に示す。
すなわち、Ishikawa 細胞を90 cm直径シャーレにコンフルエントまで増殖させた。まず無添加（Cont）、エストロゲン単独 (50nM)、プロゲステロン(1μM)単独、エストロゲン(50 nM)及びプロゲステロン(1μM)をそれぞれ添加して、８時間３７℃で５％ＣＯ２インキュベータで処理した。
反応培養後、それぞれの細胞をＰＢＳで２回洗浄した。次いで、これらの処理細胞は、上記と同様の方法で総ＲＮＡを抽出してｃＤＮＡ合成しＰＣＲ法にて遺伝子発現検討・評価した。
【００６１】
【表４】
2018039740.tif 000005
【００６２】
エストロゲンの８時間添加で、有意にグリコデリン-A、HOXA 10、IL-11とインテグリンαVの遺伝子発現を増加させることがわかった。また、プロゲステロンの刺激でグリコデリン-A(Glyco)、HOXA 10、インテグリンαV、LIFとTGFβ1の発現が増加した。
エストロゲンとプロゲステロンの組合せは、グリコデリン-A、HOXA 10、インテグリンαVとTGFβ1の発現を増加させた。
これら結果より、エストロゲンとプロゲステロンの子宮内膜組織における受容性の向上に、これら遺伝子の増加が関与していることが推測できる。
【００６３】
また、エストロゲンとプロゲステロンで誘導されたグリコデリン、HOXA 10、インテグリンαVおよびTGFβ1の遺伝子発現に対するIL-1βの影響の結果を、表５及び図４に示す。
IL-1βは、炎症を起こした脱落膜で増加して着床に悪い影響を与えることが知られている（Sarno らJ Clin Endocrinol Metab 2009 91 2366-2372）ことより、エストロゲンとプロゲステロンで誘導されるグリコデリン、HOXA 10、インテグリンαVとTGFβ1の遺伝子発現に対するIL-1βの影響を検討した。
【００６４】
具体的には、コンフルエントのIshikawa細胞に、無添加、エストロゲン(50 nM)及びプロゲステロン(1μM)、エストロゲン(50 nM)+プロゲステロン(1 μM)+IL-1β(40IU/ml)、エストロゲン(50 nM)+プロゲステロン(1 μM)+IL-1β(80IU/ml)の濃度でそれぞれ添加して、８時間３７℃で５％ＣＯ２インキュベータで処理した。
反応培養後、それぞれの細胞をＰＢＳで２回洗浄した。次いで、これらの処理細胞は、上記と同様の方法で総ＲＮＡを抽出してｃＤＮＡ合成しＰＣＲ法にて遺伝子発現検討・評価した。
【００６５】
【表５】
2018039740.tif 000006
【００６６】
IL-1β（80 IU/ml）の添加は有意にプロゲステロンとエストロゲンで誘導したグリコデリン-A、HOXA 10、インテグリンαVとTGFβ1の増加した遺伝子発現をそれぞれ減少させた。
かかる結果より、IL-1βが子宮内膜細胞で着床に関かかわる遺伝子発現の減少させることで着床に悪い影響を与える可能性を示すことが推測される。
【００６７】
更に、本発明の改善剤Supについての子宮内膜機能に関する遺伝子のIL-1βによる発現減少に対する影響を明らかにするため、30または50μMの本発明の改善剤Sup（Sup30、Sup50）、プロゲステロン、エストロゲン、IL-1β（80IU/ml）を、Ishikawa細胞に加えて発現を検討した結果を、図５に示す。
具体的には、本発明の不妊改善剤SupによるHOXA 10をはじめ、integrin αV、TGFβ1、LIF遺伝子発現に対する影響を以下のようにして検討した。
【００６８】
具体的には、コンフルエントのIshikawa細胞に、図５に示すように、本発明の改善剤Sup（Sup30、Sup50）、プロゲステロン(1μM)、エストロゲン(50 nM)、IL-1β（８０ＩＵ／ｍｌ）をそれぞれ添加して、８時間３７℃で５％ＣＯ２インキュベータで処理した。
反応培養後、それぞれの細胞をＰＢＳで２回洗浄した。次いで、これらの処理細胞は、上記と同様の方法で総ＲＮＡを抽出してｃＤＮＡ合成しＰＣＲ法にて遺伝子発現検討・評価した。
【００６９】
本発明の改善剤Supの添加により、IL-1βで減少したHOXA 10、インテグリンαVとTGFβ1の発現レベルが回復した（図５Ａ、Ｂ）ことがわかる。
【００７０】
上記これらの結果より、本発明の不妊改善剤は、子宮機能に係る複数の遺伝子発現を有意に誘導したことがわかる。特に、LIF、グリコデン、IL−１１の発現の有意な発現に加えて、HOXA 10の発現が増加した。また、増加したLIF、グリコデン、IL-11、HOXA 10発現は、フルベストラントやPD98059等の複数の阻害剤添加で阻止され、エストロゲンやプロゲストロン等で誘導した前記の発現の一部が、IL−１βで抑制され、IL−１βで抑制された遺伝子発現の一部に対して、本発明の不妊改善阻害剤は、阻止又は予防する作用を有することが明らかとなった。
【００７１】
本発明の不妊症改善剤は、エストロゲン受容体などに作用して、細胞内キナーゼの活性化を介して、上記子宮機能に係る遺伝発現を上昇調節することを可能とする。
更に、本発明の不妊改善剤は、IL−βによる上記発現の減弱作用に対して予防的に作用する可能があることが推測できる。
よって、不妊症に対する改善剤及び食品として有効に機能することが期待できる。
【産業上の利用可能性】
【００７２】
本発明の不妊改善剤は、子宮機能に係るHOXA 10等を有意に発現することができるため、不妊を改善することができ、サプリメント等の食品として好適に利用することが可能である。
【配列表フリーテキスト】
【００７３】
配列番号１：ＰＣＲ用プライマ−（１）である。
配列番号２：ＰＣＲ用プライマ−（２）である。
配列番号３：ＰＣＲ用プライマ−（３）である。
配列番号４：ＰＣＲ用プライマ−（４）である。
配列番号５：ＰＣＲ用プライマ−（５）である。-*
【００７４】
配列番号６：ＰＣＲ用プライマ−（６）である。
配列番号７：ＰＣＲ用プライマ−（７）である。
配列番号８：ＰＣＲ用プライマ−（８）である。
配列番号９：ＰＣＲ用プライマ−（９）である。
配列番号１０：ＰＣＲ用プライマ−（１０）である。
【００７５】
配列番号１１：ＰＣＲ用プライマ−（１１）である。
配列番号１２：ＰＣＲ用プライマ−（１２）である。
配列番号１３：ＰＣＲ用プライマ−（１３）である。
配列番号１４：ＰＣＲ用プライマ−（１４）である。
【図１Ａ−Ｄ】
2018039740.tif 000007
【図１Ｅ−Ｇ】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【配列表】
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