(57)【要約】【課題】本発明は、挿し木による苗生産の効率を高めた、植物の挿し木苗の生産方法の提供を目的とする。【解決手段】本発明は、挿し穂を発根培地に挿し付けて発根培養する発根培養工程、及び発根後の挿し穂を育苗培地にて育苗する育苗工程を含む植物の挿し木苗の生産方法において、発根培地中の電気伝導度を０．０１ｍＳ／ｃｍを超えて０．５ｍＳ／ｃｍ未満に制御し、育苗培地中の電気伝導度を０．５ｍＳ／ｃｍ以上に制御する方法を提供する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
挿し穂を発根培地に挿し付けて発根培養する発根培養工程、及び発根後の挿し穂を育苗培地にて育苗する育苗工程を含む、植物の挿し木苗の生産方法において、
発根培地中の電気伝導度を０．０１ｍＳ／ｃｍを超えて０．５ｍＳ／ｃｍ未満に制御し、
育苗培地中の電気伝導度を０．５ｍＳ／ｃｍ以上に制御する
方法。
【請求項２】
発根培地中の電気伝導度と育苗培地中の電気伝導度との差が、０．０５〜０．６ｍＳ／ｃｍである、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
植物が、スギ属植物、マツ属植物又はユーカリ属植物である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
発根培養工程において、発根促進剤を用いる、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、植物の挿し木苗の生産方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
挿し木は人為的に切断された植物組織を用いて発根床内で発根させ、独立した一つの植物体を作出する方法であり、遺伝的に均一な苗を大量増殖するのに優れた方法である。
【０００３】
挿し木による増殖は簡便で、一度に大量の苗を作出するのに適しており、優良な形質を持った個体を大量に増殖できることから商業的にも有利な方法とされている。しかし、挿し木では発根が困難な植物種も多くある。
【０００４】
非特許文献１には、挿し木における施肥のタイミングは芽の伸びが再開してからがよいことが記載されている。その理由は、挿し木床に肥料分が多いと浸透圧で挿し木の切り口から水分が逃げやすく、新根が濃度障害を受けやすくなるためであることも記載されている。
【０００５】
特許文献１には、有機質汚泥の好気発酵物である汚泥コンポストに施肥して成る挿し床を用いることにより、挿し付け時の施肥障害を抑制し、発根率が高まることが記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２０１０−１２４７４３号公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】小池  洋男  編「果樹の接ぎ木・さし木・とり木」社団法人農山漁村文化協会  ２０１０年２月２０日第７刷発行
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
しかし、特許文献１の方法でも、挿し付け時の適切な施肥量は肥料の種類、植物種、温度、湿度、ｐＨ等の栽培条件によって異なるため、施肥管理が困難であるという問題があった。本発明は、挿し木による苗生産の効率を高めることのできる、植物の挿し木苗の生産方法の提供を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明は、以下の〔１〕〜〔４〕を提供する。
〔１〕挿し穂を発根培地に挿し付けて発根培養する発根培養工程、及び発根後の挿し穂を育苗培地にて育苗する育苗工程を含む、植物の挿し木苗の生産方法において、
発根培地中の電気伝導度を０．０１ｍＳ／ｃｍを超えて０．５ｍＳ／ｃｍ未満に制御し、
育苗培地中の電気伝導度を０．５ｍＳ／ｃｍ以上に制御する
方法。
〔２〕発根培地中の電気伝導度と育苗培地中の電気伝導度との差が、０．０５〜０．６ｍＳ／ｃｍである、〔１〕の方法。
〔３〕植物が、スギ属植物、マツ属植物又はユーカリ属植物である、〔１〕又は〔２〕の方法。
〔４〕発根培養工程において、発根促進剤を用いる、〔１〕〜〔３〕のいずれかの方法。
【発明の効果】
【００１０】
本発明によれば、挿し木による苗生産の効率を高めることができる。具体的には、無施肥で発根培養して育苗時に追肥する場合よりも優れた得苗率で、挿し木による苗生産の効率を高めることができる。また、電気伝導度（「ＥＣ値」とも呼ぶ）を制御することにより、肥料の種類によらず、苗生産の効率を高めるための培地への施肥量を適正に管理することが可能となる。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明は、発根培養工程、及び育苗工程を含む植物の挿し木苗の生産方法を提供する。
【００１２】
〔発根培養工程〕
発根培養工程においては、挿し穂を発根培地に挿し付けて発根培養する。
【００１３】
（挿し穂）
挿し穂は、挿し木苗を得たい植物の挿し穂であればよい。植物の種類は特に限定されない。植物は木本植物と草本植物とに分類されうるが、本発はこれらのいずれにも適用可能であり、木本植物に適用されることが好ましく、草本植物よりも発根能が劣っている木本植物に適用されることがより好ましい。木本植物としては、ユーカリ属（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ）植物、マツ属（Ｐｉｎｕｓ）植物、スギ属（Ｃｒｙｐｔｏｍｅｒｉａ）植物（スギ（Ｃｒｙｐｔｏｍｅｒｉａ  ｊａｐｏｎｉｃａ）など）、サクラ属（Ｐｒｕｎｕｓ）植物（サクラ（Ｐｒｕｎｕｓ  ｓｐｐ．）、ウメ（Ｐｒｕｎｕｓ  ｍｕｍｅ）、ユスラウメ（Ｐｒｕｎｕｓ  ｔｏｍｅｎｔｏｓａ）など）、マンゴー属(Ｍａｎｇｉｆｅｒａ)植物（マンゴー（Ｍａｎｇｉｆｅｒａ  ｉｎｄｉｃａ）など）、アカシア属（Ａｃａｃｉａ）植物、ヤマモモ属（Ｍｙｒｉｃａ）植物、クヌギ属（Ｑｕｅｒｃｕｓ）植物（クヌギなど（Ｑｕｅｒｃｕｓ  ａｃｕｔｉｓｓｉｍａ））、ブドウ（Ｖｉｔｉｓ）属植物、リンゴ（Ｍａｌｕｓ）属植物、バラ属（Ｒｏｓａ）植物、ツバキ属（Ｃａｍｅｌｌｉａ）植物（チャ（Ｃａｍｅｌｌｉａ  ｓｉｎｅｎｓｉｓ）など）、ジャカランダ属（Ｊａｃａｒａｎｄａ）植物（ジャカランダ（Ｊａｃａｒａｎｄａ  ｍｉｍｏｓｉｆｏｌｉａ）など）、ワニナシ属（Ｐｅｒｓｅａ）植物（アボカド（Ｐｅｒｓｅａ  ａｍｅｒｉｃａｎａ）など）、ナシ属（Ｐｙｒｕｓ）植物（ナシ（Ｐｙｒｕｓ  ｓｅｒｏｔｉｎａ  Ｒｅｈｄｅｒ、Ｐｙｒｕｓ  ｐｙｒｉｆｏｌｉａ）など）、ビャクダン属（Ｓａｎｔａｌｕｍ）植物（ビャクダン（サンダルウッド；Ｓａｎｔａｌｕｍ  ａｌｂｕｍ）など）が例示される。このうち、ユーカリ、マツ、スギ、サクラ、マンゴー、アボカド、アカシア、ヤマモモ、クヌギ、ブドウ、リンゴ、バラ、ツバキ、チャ、ウメ、ユスラウメ、ジャカランタ等に適用した場合に、より本発明の効果を発揮しうる。中でもユーカリ属植物、マツ属植物、スギ属植物、ツバキ属植物、マンゴー属植物、ワニナシ属植物が好ましく、ユーカリ属植物、マツ属植物、スギ属植物がより好ましく、スギ属植物がさらに好ましい。
【００１４】
挿し穂は、植物の少なくとも一部であればよく、緑枝（当年枝）、熟枝（前年以前に伸びた枝）等の枝；頂芽、腋芽などの芽；葉、子葉；胚軸などが例示される。木本植物の場合の挿し穂は、通常は緑枝又は熟枝であり、草本植物の場合の挿し穂は、通常は葉又は芽であるが、これらには限定されない。
【００１５】
不定根を形成することが期待されるという観点から、挿し穂としてシュートを用いてもよい。シュートとは、発根能を有する組織全般をいう。該組織としては、枝、茎、頂芽、腋芽、不定芽、葉、子葉、胚軸、不定胚、苗条原基等が例示される。シュートの由来は特に限定されず、温室又は屋外に生育している植物個体から得られる組織でもよいし、組織培養法により得られた培養組織であってもよいし、天然の植物体の一部の組織であってもよい。シュートは、挿し穂の母本植物、又は多芽体から効率良く取得することができる。中でも、挿し穂（母本植物から得た挿し穂）、母本植物から採取した器官を無菌的に培養することにより得た多芽体、もしくは前記器官を無菌的に育成して得た茎葉であることが好ましい。
【００１６】
多芽体は、本発明を適用してクローン苗を生産しようとする植物から、頂芽、腋芽等の組織を切取って、これを組織培養して誘導することができる。多芽体を、母本植物から採取した器官を無菌的に培養して、形成させるには、特開平８−２２８６２１号公報に記載の方法、条件に従って行い得る。その方法、条件は概ね次の通りである。まず、材料とする植物から頂芽、腋芽等の組織を採取し、採取した組織について、有効塩素量約０．５％〜約４％の次亜塩素酸ナトリウム水溶液又は有効塩素量約５％〜約１５％の過酸化水素水溶液に約１０分〜約２０分間浸漬して表面殺菌を行う。次いで、これを滅菌水で洗浄し、固体培地に挿し付けて芽を開じょさせ、伸長してきた茎葉を同じ組成の培地で継代培養することにより、多芽体を形成させる。ユーカリ属又はアカシア属の組織（例えば腋芽）を用いる場合には、固体培地は、ショ糖１〜５重量％、植物ホルモンとしてベンジルアデニン（以下、ＢＡと略す。）約０．０２ｍｇ／Ｌ以上約１ｍｇ／Ｌ以下、ゲランガム約０．２重量％以上約０．３重量％若しくは寒天約０．５重量％以上約１重量％以下を含有するムラシゲスクーグ（以下、ＭＳと略す。）培地、又は、ＭＳ培地の硝酸アンモニウム成分と硝酸カリウム成分とを半減させた改変ＭＳ培地を用いるのが好ましい。こうして形成された多芽体からは活発にシュートが伸長してくる。多芽体自体は、適当に分割して多芽体形成に用いた培地と同一組成の培地で培養することにより維持し、増殖させることができる。
【００１７】
（発根培地のＥＣ値）
発根培養工程においては、発根培地中の電気伝導度（「ＥＣ値」とも呼ぶ）を０．５ｍＳ／ｃｍ未満、好ましくは０．４９ｍＳ／ｃｍ以下、より好ましくは０．４８ｍＳ／ｃｍ以下に制御する。これにより、無施肥で発根培養して育苗時に追肥する場合よりも優れた得苗率が得られ、また、発根培養中の施肥量を適切な範囲に調整できる。下限は０．０１ｍＳ／ｃｍを超えていればよく、好ましくは、０．０２ｍＳ／ｃｍ以上、０．０５ｍＳ／ｃｍ以上、０．１５ｍＳ／ｃｍ以上、又は０．２０ｍＳ／ｃｍ以上である。電気伝導度は、電荷の流れやすさを意味し、培地中のイオン濃度の指標となり得る。電気伝導度の測定方法は特に限定されないが、培地を直接的に又は間接的に（例えば、水等での希釈を経て）測定してもよい。測定機器は特に限定されず、例えば、ポータブル型ＥＣ測定装置が挙げられる。発根培地のＥＣ値は発根培養工程中定期的に測定して確認してもよいが、通常、発根培養期間の経過に伴い低下していくことから、発根培養開始時の発根培地のＥＣ値が０．５ｍＳ／ｃｍ未満であることを確認できれば、それ以降の確認作業を省略できる。発根培地中の電気伝導度の制御方法としては、例えば、肥料成分追加、温度調整、ｐＨ調整などが挙げられる。
【００１８】
（発根培地）
発根培地は特に限定されず、例えば、養液、水耕栽培水、植物組織培養用培地等の栽培用培地、前記栽培用培地の希釈培地、前記栽培用培地に適宜肥料成分を追加した培地が挙げられる。発根培養工程程は、例えば、水耕、又は土耕のいずれで実施してもよい。
【００１９】
肥料成分としては、例えば、無機成分、銀イオン、抗酸化剤、炭素源、ビタミン類、アミノ酸類、植物ホルモン類等の植物の栄養素の供給源となり得る成分が挙げられる。肥料成分の形態は特に限定されず、固形物（例、粉剤、粒剤）、又は液体（例、液肥）のいずれでもよい。
【００２０】
無機成分としては、窒素、リン、カリウム、硫黄、カルシウム、マグネシウム、鉄、マンガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、ヨウ素、コバルト等の元素や、これらを含む無機塩が例示される。該無機塩としては例えば、硝酸カリウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム、リン酸１水素カリウム、リン酸２水素ナトリウム、塩化カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸第１鉄、硫酸第２鉄、硫酸マンガン、硫酸亜鉛、硫酸銅、硫酸ナトリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム、ホウ酸、三酸化モリブデン、モリブデン酸ナトリウム、ヨウ化カリウム、塩化コバルト等やこれらの水和物が挙げられる。無機成分として、上記具体例の中から１種を選択して、或いは２種以上を組み合わせて用いうる。本発明で用いられる液体培地においては、窒素、リン、カリウムが必須元素として含まれることが好ましい。よって、これら無機成分の具体例のうち、窒素、リン、カリウム、窒素を含む無機塩、リンを含む無機塩、及びカリウムを含む無機塩が好ましく、窒素、リン、カリウム、窒素を含む無機塩がより好ましい。無機成分は、液体培地中の濃度が、１種の場合は約１μＭ〜約１００ｍＭとなるように添加することが好ましく、約０．１μＭ〜約１００ｍＭとなるように添加することがより好ましい。２種以上の組み合わせの場合はそれぞれ約０．１μＭ〜約１００ｍＭとなるよう添加することが好ましく、約１μＭ〜約１００ｍＭとなるように添加することがより好ましい。
【００２１】
銀イオンとしては、例えば、チオ硫酸銀（ＳＴＳ、ＡｇＳ4Ｏ6）、硝酸銀等の銀化合物（銀イオン源）が挙げられ、ＳＴＳが好ましい。ＳＴＳは培地中で、チオ硫酸銀イオンの形態を取り、マイナスに帯電していると推測され、これにより健全な根の発根及び伸長を促進に寄与することができる。培地中に添加する銀イオンの濃度は、銀イオン源の種類その他の培養条件などにもよるが、銀イオン源の濃度として約０．５μＭ以上約６μＭ以下が好ましく、約２μＭ以上約６μＭ以下がより好ましい。
【００２２】
抗酸化剤としては、例えば、アスコルビン酸、亜硫酸塩が挙げられ、アスコルビン酸が好ましい。アスコルビン酸は、培地への残留性が低いため、環境汚染を抑制できる。培地中に添加する抗酸化剤の濃度は、約５ｍｇ／ｌ以上約２００ｍｇ／ｌ以下が好ましく、約２０ｍｇ／ｌ以上約１００ｍｇ／ｌ以下がより好ましい。
【００２３】
炭素源としては、ショ糖等の炭水化物とその誘導体；脂肪酸等の有機酸；エタノール等の１級アルコール、などの化合物を使用することができる。炭素源として、上記具体例の中から１種を選択して、或いは２種以上を組み合わせて用いうる。炭素源は、液体培地中に約１ｇ／ｌ〜約１００ｇ／ｌとなるよう添加することが好ましく、約１０ｇ／ｌ〜約１００ｇ／ｌとなるように添加することがより好ましい。しかし、栽培を炭酸ガスを供給しながら行う場合には、培地は炭素源を含む必要は無く、含まないことが好ましい。ショ糖等の炭素源となりうる有機化合物は微生物の炭素源ともなるので、これらを添加した培地を用いる場合には、無菌環境下で栽培を行う必要があるが、炭素源を含まない培地を用いることにより、非無菌環境下での栽培が可能となる。
【００２４】
ビタミン類としては、例えば、ビオチン、チアミン（ビタミンＢ１）、ピリドキシン（ビタミンＢ４）、ピリドキサール、ピリドキサミン、パントテン酸カルシウム、イノシトール、ニコチン酸、ニコチン酸アミド及び／又はリボフラビン（ビタミンＢ２）等を使用することができる。ビタミン類として、上記具体例の中から１種を選択して、或いは２種以上を組み合わせて用いうる。ビタミン類は、液体培地中の濃度が、１種の場合は液体培地中に約０．０１ｍｇ／ｌ〜約２００ｍｇ／ｌとなるように添加することが好ましく、約０．０２ｍｇ／ｌ〜約１００ｍｇ／ｌとなるように添加することがより好ましい。２種以上の組み合わせの場合はそれぞれ、液体培地中に約０．０１ｍｇ／ｌ〜約１５０ｍｇ／ｌとなるよう添加することが好ましく、約０．０２ｍｇ／ｌ〜約１００ｍｇ／ｌとなるように添加することがより好ましい。
【００２５】
アミノ酸類としては、例えば、グリシン、アラニン、グルタミン酸、システイン、フェニルアラニン及び／又はリジン等を使用することができる。アミノ酸類として、上記具体例の中から１種を選択して、或いは２種以上を組み合わせて用いうる。アミノ酸類は、液体培地中の濃度が、１種の場合は液体培地中に約０．１ｍｇ／ｌ〜約１０００ｍｇ／ｌとなるように添加することが好ましく、２種以上の組み合わせの場合は、それぞれ液体培地中に約０．２ｍｇ／ｌ〜約１０００ｍｇ／ｌとなるよう添加することが好ましい。
植物ホルモンとしては、例えば、オーキシン及びサイトカイニン等の発根促進剤が挙げられる。オーキシンとしては、ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）、インドール酢酸（ＩＡＡ）、ｐ−クロロフェノキシ酢酸、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４Ｄ）、インドール酪酸（ＩＢＡ）及びこれらの誘導体等が例示され、これらから選択される１種以上又は２種以上を組み合わせて用い得る。また、サイトカイニンとしては、ベンジルアデニン（ＢＡ）、カイネチン、ゼアチン及びこれらの誘導体等が例示され、これらから選択される１種以上又は２種以上を組み合わせて用い得る。植物ホルモンは、オーキシン、又は、オーキシンとサイトカイニンの組み合わせが好ましい。
【００２６】
発根用培地中の植物ホルモンの濃度は、植物ホルモンを１種用いる場合には０．００１ｍｇ／ｌ〜１０ｍｇ／ｌであることが好ましく、０．０１ｍｇ／ｌ〜１０ｍｇ／ｌであることがより好ましい。植物ホルモンが２種以上の場合にはそれぞれ、０．００１ｍｇ／ｌ〜１０ｍｇ／ｌであることが好ましく、０．０１ｍｇ／ｌ〜１０ｍｇ／ｌであることがより好ましい。植物ホルモンの添加方法は特に限定されず、市販品の説明書に従って添加すればよく、例えば、粉末のまま挿し穂の基部に塗布する方法、培地に添加する方法が挙げられる。
【００２７】
養液、水耕栽培水、植物組織培養用培地は、公知のものから適宜選択し、必要に応じて希釈されていてもよい。植物組織培養用培地としては、例えば、ＭＳ（ムラシゲ−スクーグ）培地、リンスマイヤースクーグ培地、ホワイト培地、ガンボーグのＢ−５培地、ニッチニッチ培地等を挙げることができる。中でも、ＭＳ培地及びガンボーグのＢ−５培地が好ましい。
【００２８】
発根培地は、支持体を含んでもよい。これにより、挿し穂を発根培地中で支持し、発根培養を効率的に実施できる。支持体は、発根培養工程中、挿し穂を支持した状態で保持できれば特に限定されず、従来慣用の支持体を用いることができる。支持体としては例えば、砂、土（例、赤玉土）等の自然土壌（好ましくは、赤玉土）；籾殻燻炭、ココナッツ繊維、バーミキュライト、パーライト、ピートモス、ガラスビーズ等の人工土壌；発泡フェノール樹脂、ロックウール等の多孔性成形品；固化剤（例、寒天又はゲランガム）などが挙げられる。支持体は、挿し穂と培地との接触を妨げないものであればよく、支持体が培地の少なくとも一部を含んでいてもよい。
培地と支持体は、容器に載置されていてもよい。容器は特に限定されないが、複数の挿し穂を一株ずつ処理できるように区分けされた構造の容器であることが好ましい。挿し穂が枝の場合、密閉型の培養容器を用いることが好ましい。これにより挿し穂を高湿度下に置くことが容易となるので、枝についた葉の蒸散作用が抑制され、従来行われていた葉の一部切除処理を省略することができる。
容器への発根培地の載置方法は特に限定されず、例えば、支持体を容器に入れた後、培地を入れる方法、培地を容器に入れた後に支持体を入れる方法、支持体に容器内に入れ培地を保持させる方法、支持体を予め培地で膨潤させ、膨潤した支持体を容器に載置する方法が挙げられる。
【００２９】
発根工程においては、通常は１種類の発根培地を用いるが、期間を区切る等して２種以上の発根培地の組合せを用いてもよい。
【００３０】
発根培養工程において、発根培地への挿し穂の挿し付け方法は、培地の種類、培養条件等により適宜選択すればよい。また、発根用培地に挿し付ける時に挿し穂の基部に傷をつける等の物理的刺激を加えることも、発根率の向上のために好ましい。挿し穂の基部とは、挿し穂の一端であって根が形成される領域（葉の形成される端部に対し反対側）を意味する。挿し穂として多芽体を用いる場合の基部は、多芽体を分割する際の切断面を有する領域である。挿し穂の基部への傷のサイズ（大きさ、形状など）は特に限定されない。例えば、挿し穂として多芽体を用いる場合、挿し穂の基部（上述の切断面）を正面方向から見た際に十字型となるような傷を付けることが好ましい。傷を付ける際には、ハサミ、ナイフなどの器具を用いることができる。
【００３１】
（培養場所）
発根培養工程を実施する場所は、閉鎖空間（例、ビニールハウス内、炭酸ガス培養室内、屋内）又は解放空間（例、屋外）であってもよいが、閉鎖空間が好ましい。これにより、温度、湿度等の育苗条件の調整が容易となる。
【００３２】
発根培養工程の培養期間は、植物種によっても異なるが、通常は２週間〜３ヶ月であり、４週間〜２ヶ月であることが好ましい。発根培養工程は、挿し穂から発根が観察されるまで続ければよい。
【００３３】
〔育苗工程〕
育苗工程においては、発根後の挿し穂を育苗培地にて育苗する。
【００３４】
発根後の挿し穂は、発根培養工程を経て発根した挿し穂である。挿し穂が発根していることは、肉眼による観察にて根を確認できればよい。
【００３５】
（育苗培地のＥＣ値）
育苗工程においては、育苗培地中のＥＣ値を０．５ｍＳ／ｃｍ以上、好ましくは０．５３ｍＳ／ｃｍ以上、より好ましくは０．５５ｍＳ／ｃｍ以上、さらに好ましくは０．５８ｍＳ／ｃｍ以上に制御する。これにより、十分な量の施肥を行い、挿し穂の生育を効率よく促進できる。上限は特に限定されず、通常は１００ｍＳ／ｃｍ以下、５０ｍＳ／ｃｍ以下、１０ｍＳ／ｃｍ以下、又は５ｍＳ／ｃｍ以下である。ＥＣ値の測定方法、測定機器は、発根培地のＥＣ値の項目において説明したとおりである。育苗培地のＥＣ値の制御は、定期的に測定しながら、肥料成分追加、温度調整、ｐＨ調整等の方法により行えばよい。
【００３６】
発根培地中のＥＣ値と育苗培地中のＥＣ値との差は、０．０５ｍＳ／ｃｍ以上が好ましく、０．０７ｍＳ／ｃｍ以上がより好ましく、０．１ｍＳ／ｃｍ以上がさらに好ましい。上限は、０．６ｍＳ／ｃｍ以下が好ましく、０．５５ｍＳ／ｃｍ以下がより好ましく、０．５ｍＳ／ｃｍ以下が更により好ましい。これにより、挿し木苗を効率よく生産することができる。
【００３７】
（育苗培地）
育苗培地の例は、発根培地の項目において説明した発根培地の例と同様である。発根培地と育苗培地とは共通でも異なっていてもよいが、発根培地と共通であることが好ましく、発根培地をそのまま育苗培地として用いてもよい。すなわち、発根後の挿し穂を発根培地に挿し付けたまま、発根培地を育苗培地として育苗工程を継続して実施してもよい。一方、発根後の挿し穂を発根培地から別途調製された育苗培地に挿し替えて育苗工程を実施してもよい。育苗工程は、例えば、水耕、又は土耕のいずれで実施してもよい。
【００３８】
（育苗場所）
育苗工程を実施する場所は、閉鎖空間（例、ビニールハウス内、炭酸ガス培養室内、屋内）又は解放空間（例、屋外）であってもよいが、閉鎖空間が好ましい。これにより、温度、湿度等の育苗条件の調整が容易となる。発根培養工程と育苗工程を実施する場所は同じ場所であることが好ましい。
発根培養工程において発根後、すぐに育苗工程を実施してもよいが、発根培養工程終了後育苗工程の実施前に、順化工程を経てもよい。これにより、挿し穂が不定芽、苗条原基等の培養組織由来のシュートである場合には、育苗を効率よく行うことができる。
【００３９】
〔栽培条件〕
植物を栽培する際の栽培条件としては、植物から発根させ得る条件である限り特に限定されない。栽培条件は、植物の種類、部位、状態、発根用培地の種類などにより一概に規定することは難しいが、以下に一例を挙げて説明する。
【００４０】
（温度）
発根培地及び育苗培地の温度は、通常は２０℃〜３０℃であり、２２℃〜２６℃であることが好ましく、上記範囲でそれぞれ異なってもよいし同一でもよい。発根培養工程及び育苗工程における栽培環境の温度は、２０℃以上であるのが好ましく、２２℃以上であるのがより好ましく、２３℃以上であるのがさらに好ましい。発根培養工程及び育苗工程における栽培環境の温度の上限値は、３０℃以下が好ましく、２８℃以下であることがより好ましく、２６℃以下がさらに好ましい。発根培養工程及び育苗工程における栽培環境の温度は、異なってもよいし、同一でもよい。
【００４１】
（培地のｐＨ）
発根培地及び育苗培地のｐＨは、４〜８が好ましく、ｐＨ４程度（例えば、ｐＨ４〜６）がより好ましい。これにより、雑菌などの増殖を抑制することができる。発根培地及び育苗培地のｐＨは異なってもよいし、同一でもよい。
【００４２】
（光量）
光照射条件は、特に限定されず、太陽光を用いてもよいし、人工光を用いてもよい。光強度は特に限定されないが、光合成有効光量子束密度として表され、約１０μｍｏｌ／ｍ2／ｓ以上約１０００μｍｏｌ／ｍ2／ｓ以下であることが好ましく、約５０μｍｏｌ／ｍ2／ｓ以上約５００μｍｏｌ／ｍ2／ｓ以下であることがより好ましい。
【００４３】
光波長は特に限定されないが、約６５０ｎｍ以上約６７０ｎｍ以下の波長成分と約４５０ｎｍ以上約４７０ｎｍ以下の波長成分とを９：１〜７：３の割合で含む光の照射下で行うことが好ましく、これらの波長成分を９：１〜８：２の割合で含む光の照射下で行うことがより好ましい。かかる波長成分を含む光を照射して栽培を行うことで、植物からの発根がより促進され得る。
【００４４】
発根工程においては、遮光を行うことが好ましい。遮光率は、３０％以上７０％以下が好ましく、４０％以上６０％以下がより好ましい。
【００４５】
（炭酸ガス濃度）
栽培環境中の炭酸ガスは、通常は３００ｐｐｍ以上２０００ｐｐｍ以下、好ましくは８００ｐｐｍ以上１５００ｐｐｍ以下となるように供給することが好ましい。炭酸ガスの供給量の制御は、人工気象器等の設備や、二酸化炭素透過性の膜を開口部に有する培養容器などを利用して行われうる。
【００４６】
湿度は植物の種類等栽培条件に応じて調整することができるが、通常は、５０％以上、好ましくは６０％以上である。これにより、植物からの発根を促進し、育苗を効率よく行うことができる。上限については特に制限はない。
【実施例】
【００４７】
以下実施例により本発明を説明するが本発明はこれに限定されない。
【００４８】
（実施例１）
スギ（タノアカ；Ｃｒｙｐｔｏｍｅｒｉａ  ｊａｐｏｎｉｃａ）の越年枝より挿し穂となる２０ｃｍの頂芽枝を採取し、下部５ｃｍの範囲の葉をすべて切断して挿し穂を調製した。培養容器としてセルトレーを用い、赤玉小粒土（簗島商事（株）製）とピートモス（トーホー（株）製）を１対１に混合し、基肥として市販の化学肥料（粉剤：商品名「アミノハウス１号」（大塚アグリテクノ（株）製））を５ｇ／Ｌの割合で添加して混合し、これらに水を添加して培地とした。混合した用土を培養容器（セルトレー）に充填して挿し床を調製した。挿し床を調製後に土壌ダイレクトＥＣ／℃テスターＨＩ  ９８３３１Ｎ（ハンナ  インスツルメンツ・ジャパン（株））を用いて培地の電気伝導度（以下ＥＣ値）を測定した。上述のようにして調製した挿し穂の基部（切断部）にルートン（登録商標）（石原バイオサイエンス（株）製、植物ホルモンα−ナフチルアセトアミド（ＮＡＡ）を含む白色粉末、ＮＡＡの濃度は０．４％）の粉末を５〜１０ｍｇ塗布した後、該挿し穂を基部から４〜５ｃｍのところまで挿し床に挿しつけた。挿し穂を、ビニールハウス内に配置して２ヶ月間発根培養した。培養後の挿し穂を肉眼により観察し、根が確認されれば発根したと判断した。
発根培養後は、引き続きビニールハウス内で４ヶ月間育苗した。育苗中はＥＣ値で０．５〜１．０（ｍＳ／ｃｍ）となるように測定しながら希釈した化学肥料（液肥）（液剤：商品名「ハイポネックス原液」（ハイポネックスジャパン（株）製））を毎週１回散布し追肥とした。また、追肥直後のＥＣ値を測定した。育苗後の苗を肉眼により観察し、挿し付け時の穂よりも伸長して生存していれば得苗したと判断した。ＥＣ値、発根数、発根率（（発根数／挿し木本数）×１００）、得苗数、得苗率（（得苗数／発根数）×１００）、及び成長量（苗高）を表１に示した。なお、試験はビニールハウス内で行い、上述した条件以外は特に調整しなかったが、試験を通じて、培養中の培地ｐＨは約６であり、炭酸ガス濃度は自然界値（約４００ｐｐｍ）であり、光としては人工光を用いず太陽光を用い、温度は２５℃前後、湿度は６０％前後であった。
【００４９】
（実施例２）
基肥として市販の化学肥料（粉剤）を２．５ｇ／Ｌの割合で添加して混合した以外、実施例１と同様に実施した。
【００５０】
（比較例１）
基肥を添加しない以外、実施例１と同様に実施した。
【００５１】
（比較例２）
基肥として市販の化学肥料（粉剤）を１０ｇ／Ｌの割合で添加して混合した以外、実施例１と同様に実施した。
【００５２】
（比較例３）
発根培養後は、追肥しない以外、実施例２と同様に実施した。
【００５３】
【表１】
2018161116.tif 000002
【００５４】
表１に示すように、比較例２と比較して実施例１及び２の発根率（生存率）は高かった。この結果から、本発明によれば、ＥＣ値を０．０１（ｍＳ／ｃｍ）を超えて０．５（ｍＳ／ｃｍ）未満に制御することで、挿し穂を枯渇させないように発根培養できるということがわかった。
また、比較例１〜３と比較して実施例１及び２の得苗率（生存率）は高く、成長量が多かった。この結果から、発根培養時に培地のＥＣ値を０．０１（ｍＳ／ｃｍ）を超えて０．５（ｍＳ／ｃｍ）未満に制御し、かつ育苗時に培地のＥＣ値を０．５（ｍＳ／ｃｍ）以上に制御することで、ＥＣ値をこの範囲に制御しない場合と比べて得苗率（生存率）及び成長量（苗高）を向上させることが可能だとわかった。
【００５５】
（実施例３）
挿し穂としてスギに代えてクロマツ（Ｐｉｎｕｓ  ｔｈｕｎｂｅｒｇｉｉ）の越年枝より挿し穂となる２０ｃｍの頂芽枝を採取して下部５ｃｍの範囲の葉をすべて切断して挿し穂を調製したこと、基肥として市販の有機肥料（堆肥：商品名「ハイパワー堆肥」（朝日工業（株）製））を２５ｇ／Ｌの割合で添加して混合して用土（発根培地）を調製したこと、調製した挿し穂の基部（切断部）にオキシベロン（登録商標）液剤（バイエルクロップサイエンス（株）製、インドール−３−酪酸（ＩＢＡ）を含む植物ホルモン、植物ホルモンの濃度は０．４％）に１０秒浸漬したこと、ビニール温室に代えて炭酸ガス培養室（炭酸ガスを１０００ｐｐｍとなるように供給）内に挿し穂を配置して２ヶ月間発根培養したこと、順化（２５℃、湿度６０〜８０％、１４日間）を経たこと以外は実施例１と同様に実施した。ＥＣ値、発根数、発根率（発根数／挿し木本数）、得苗数、得苗率（得苗数／発根数）、及び成長量（苗高）を表２に示した。
【００５６】
（実施例４）
基肥として市販の有機肥料（堆肥）を１２．５ｇ／Ｌの割合で添加して混合した以外、実施例３と同様に実施した。
【００５７】
（比較例４）
基肥を添加しない以外、実施例３と同様に実施した。
【００５８】
（比較例５）
基肥として市販の有機肥料（堆肥）を５０ｇ／Ｌの割合で添加して混合した以外、実施例３と同様に実施した。
【００５９】
【表２】
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【００６０】
表２に示すように、比較例５と比較して実施例３及び４の発根率（生存率）は高かった。この結果から、本発明によれば、ＥＣ値を０．０１ｍ（Ｓ／ｃｍ）を超えて０．５（ｍＳ／ｃｍ）未満に制御することで、挿し穂を枯渇させないように発根培養できることがわかった。
また、比較例４と比較して実施例３及び４の得苗率（生存率）は高かった。この結果から、発根培養時に培地のＥＣ値を０．０１ｍ（Ｓ／ｃｍ）を超えて０．５（ｍＳ／ｃｍ）未満に制御し、かつ育苗時に培地のＥＣ値を０．５（ｍＳ／ｃｍ）以上に制御することで、ＥＣ値をこの範囲に制御しない場合と比べて得苗率（生存率）及び成長量（苗高）を向上させることが可能だとわかった。
【００６１】
（実施例５）
挿し穂としてクロマツに代えてユーカリ・アルビータ（Ｅｕｃａｌｙｐｔｕｓ  ａｌｂｉｄａ）の当年枝より挿し穂となる１０ｃｍの頂芽枝を採取し、下部２ｃｍの範囲の葉をすべて切断して挿し穂を調整したこと、基肥として市販の化学肥料（粉剤）を５ｇ／Ｌの割合で添加して混合して用土（発根培地）を調製したこと、該挿し穂を基部から１．５〜２ｃｍのところまで挿し床に挿しつけたこと、挿し穂を炭酸ガス培養室内に配置して１ヶ月間発根培養したこと以外は実施例３と同様に実施した。ＥＣ値、発根数、発根率（発根数／挿し木本数）、得苗数、得苗率（得苗数／発根数）、及び成長量（苗高）を表３に示した。
【００６２】
（実施例６）
基肥として市販の化学肥料（粉剤）を２．５ｇ／Ｌの割合で添加（×１／４量）して混合した以外、実施例５と同様に実施した。
【００６３】
（比較例６）
基肥を添加しない以外、実施例５と同様に実施した。
【００６４】
（比較例７）
基肥として市販の化学肥料（粉剤）を１０ｇ／Ｌの割合で添加（×１量）して混合した以外、実施例５と同様に実施した。
【００６５】
【表３】
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【００６６】
表３に示すように、比較例７と比較して実施例５及び６の発根率（生存率）は高かった。この結果から、本発明によれば、ＥＣ値を０．０１ｍ（Ｓ／ｃｍ）を超えて０．５（ｍＳ／ｃｍ）未満に制御することで、挿し穂を枯渇させないように発根培養できることがわかった。
また、比較例６と比較して実施例５及び６の得苗率（生存率）は高かった。この結果から、発根培養時に培地のＥＣ値を０．０１ｍ（Ｓ／ｃｍ）を超えて０．５（ｍＳ／ｃｍ）未満に制御し、かつ育苗時に培地のＥＣ値を０．５（ｍＳ／ｃｍ）以上に制御することで、ＥＣ値をこの範囲に制御しない場合と比べて得苗率（生存率）及び成長量（苗高）を向上させることが可能だとわかった。