(57)【要約】【課題】簡便でより正確に腹膜播種転移を予測することができる腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法、及び、腹膜播種転移の可能性を判定するための検査キットを提供する【解決手段】（Ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞に対してパパニコロウ染色を行う工程、及び／又は、（Ｂ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定する工程を含む、癌患者の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
（Ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞に対してパパニコロウ染色を行う工程、及び／又は、
（Ｂ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定する工程
を含む、癌患者の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法。
【請求項２】
前記内臓器官が、消化器系、生殖系、又は泌尿器系の器官である、請求項１に記載の検査方法。
【請求項３】
前記内臓器官が、胃である、請求項１又は２に記載の検査方法。
【請求項４】
前記（Ａ）工程が、癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞に対してパパニコロウ染色し、染色された細胞を観察して異型細胞又は異常細胞の存在の程度を確認する工程である、請求項１〜３のいずれかに記載の検査方法。
【請求項５】
前記（Ｂ）工程が、癌が認められる内臓器官の漿膜面から擦過して採取された細胞からＲＮＡを抽出し、ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量を測定する工程である、請求項１〜４のいずれかに記載の検査方法。
【請求項６】
前記ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量をＲＴ−ＰＣＲで測定する、請求項５に記載の検査方法。
【請求項７】
（ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞をパパニコロウ染色するための試薬、
及び／又は、
（ｂ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定するための試薬
を含むことを特徴とする、癌患者の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査キット。
【請求項８】
前記ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定するための試薬が、ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量を測定するために使用されるプライマーを含む、請求項７に記載の検査キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、癌患者の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法、及び、癌患者の腹膜播種転移の可能性を判定するために使用する検査キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
腹膜播種は、胃癌を含めた消化器癌等の高頻度な再発形式である。腹膜播種とは、ある腹腔内臓器で発生した癌細胞が増殖を続け、腹膜へ癌細胞が播き散ることであり、播き散った癌細胞は、腹膜に覆われた腹腔内を介して離れた別位の腹膜へ移動し、別の臓器で増殖を続ける。腹膜播種転移患者の予後は極めて不良である。従って、腹膜播種転移の可能性を早期に予測することは、腹膜播種転移患者の予後・ＱＯＬを改善する上で非常に有用である。
【０００３】
癌患者の腹膜播種転移のリスクを手術中評価する方法として、従来、腹腔内洗浄細胞診が行われている（非特許文献１）。腹腔内洗浄細胞診は、手術中に腹腔内を生理食塩水にて洗浄し、その洗浄液中に癌細胞が存在するか否かを判定する方法である。具体的には、手術時に腹腔内を生理食塩水１００ｍｌにて洗浄し、その洗浄液を遠心分離してペレット細胞を得て、これをパパニコロウ染色にて染色した後に、癌細胞の存在を検索する方法である。
【０００４】
しかしながら、腹腔内洗浄細胞診では、偽陰性が多い。例えば、胃癌の腹膜転移再発症例の約半数は、腹腔内洗浄細胞診において陰性である。また、腹腔内洗浄細胞診で陰性であったＳｔａｇｅＩＩ−ＩＩＩの胃癌症例の１５−２０％が腹膜播種を再発しているというデータがある（非特許文献２）。このように、従来の腹腔内洗浄細胞診のみでは、腹膜播種再発の予測診断は不充分であった。
【０００５】
腹膜播種再発に関連した知見は、いくつか知られている。例えば、非特許文献３では、胃癌患者の腹腔内洗浄で採取された細胞由来ＲＮＡに対し逆転写（ＲＴ）−ＰＣＲによりＣＥＡ及びＣＫ２０の発現解析を行った結果、これらのマーカーはいずれも感度が高く、腹膜播種による再発との相関性があることが示唆されている。また、非特許文献４では、胃癌患者の腹腔内洗浄で採取された細胞由来ＲＮＡに対しＲＴ−ＰＣＲにより、サイトケラチン２０（ＣＫ２０）、及びヒト胎児性抗原（ＣＥＡ）の発現解析を行い、いずれかの発現が陽性であれば術後に腹膜再発し易いことが開示されている。
【０００６】
しかしながら、これらの方法は、未だ腹膜播種転移の早期予測が不充分であり、簡便でより確実に予測できる方法の開発が望まれている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Bando E, Yonemura Y, Takeshita Y, et al.,Intraoperative lavage for cytological examination in 1,297 patients with gastric carcinoma.American journal ofsurgery, Sep 1999;178(3):256-262.
【非特許文献２】Sasako M, Sakuramoto S, Katai H et al., Five-year outcomes of a randomized phase III trial comparing adjuvant chemotherapy with S-1 versus surgery alone in stage II or III gastric cancer., J Clin Oncol. Nov 20, 2011;29(33):4387-4393.
【非特許文献３】Lee SR, et al., Prognostic significance ofquantitative carcinoembryonic antigen and cytokeratin 20mRNA detection in peritoneal washes of gastric cancer patients., Hepatogastroenterology, 2013 Jul-Aug, 60(125),1237-44.
【非特許文献４】Takata A, Prognostic value of CEA and CK20 mRNA in the peritoneal lavage fluid of patients underfoing curative surgery for gastric cancer, World J Surg.2014, May; 38(5):1107-11.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、前記現状に鑑みて、簡便でより正確に腹膜播種転移を予測することができる腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法、及び、腹膜播種転移の可能性を判定するための検査キットを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者は、上記課題を解決するために鋭意検討を行った。その結果、本発明者は、特に癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞に対してパパニコロウ染色を行い、細胞を観察して評価することで陽性と判断される場合に、腹膜播種転移の可能性が高くなることを見出した。また、本発明者は、癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ（ヒト胎児性抗原）及び／又はＣＫ２０（サイトケラチン２０）の発現量を測定し、その値を評価することで陽性と判断される場合に、腹膜播種転移の可能性が高くなることを見出した。癌は内臓器官の粘膜上皮で発生し漿膜面に向かって浸潤する。漿膜面に浸潤露出した癌細胞が腹腔内に撒き散って腹膜に定着し腫瘍形成する現象が腹膜播種転移である。従って、漿膜面に癌細胞が露出している状況は腹膜播種転移形成のまさに直前の状態である。早期癌は漿膜面に癌細胞が存在しないが、進行癌の中には漿膜面に癌細胞が露出しているものがあり、本発明では、本来は癌細胞が存在しない漿膜に着目することで、漿膜面に癌細胞が露出しているタイプの癌を評価判定することで腹膜播種転移をより正確に予測できることを見出したものである。また、これらの２つの評価を組み合わせることで腹膜播種転移の予測の精度が更に高くなることを見出した。本発明は、これらの知見に基づいて更に研究を重ねた結果、完成されたものである。
【００１０】
即ち、本発明は、下記に掲げる態様の発明を提供する。
項１．  （Ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞に対してパパニコロウ染色を行う工程、及び／又は、  （Ｂ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定する工程を含む、癌患者の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法。
項２．  前記内臓器官が、消化器系、生殖系、又は泌尿器系の器官である、項１に記載の検査方法。
項３．  前記内臓器官が、胃である、項１又は２に記載の検査方法。
項４．  前記（Ａ）工程が、癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞に対してパパニコロウ染色し、染色された細胞を観察して異型細胞又は異常細胞の存在の程度を確認する工程である、項１〜３のいずれかに記載の検査方法。
項５．  前記（Ｂ）工程が、癌が認められる内臓器官の漿膜面から擦過して採取された細胞からＲＮＡを抽出し、ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量を測定する工程である、項１〜４のいずれかに記載の検査方法。
項６．  前記ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量をＲＴ−ＰＣＲで測定する、項５に記載の検査方法。
項７．  （ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞をパパニコロウ染色するための試薬、及び／又は、（ｂ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定するための試薬を含むことを特徴とする、癌患者の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査キット。
項８．  前記ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定するための試薬が、ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量を測定するために使用されるプライマーを含む、項７に記載の検査キット。
【発明の効果】
【００１１】
本発明によれば、簡便でより正確に腹膜播種転移の可能性を判定することのできる検査方法を適用することができる。本発明の検査方法を用いれば、腹膜播種転移の高リスク患者を術中に選定することができ、術中でしかできない治療法および、術後治療法や予後を早期に決定することができ、患者の予後・ＱＯＬを改善することができる。更に、本発明によれば、簡便でより正確に腹膜播種転移の可能性を判定することができる検査キットを提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】パパニコロウ染色された胃癌組織の漿膜の細胞で、陽性と判定された場合の代表的な細胞の画像である（倍率（ａ）２００倍、（ｂ）４００倍）。
【図２】腹腔洗浄細胞診の評価と、ＣＥＡ又はＣＫ２０のｍＲＮＡ発現量との関係を示すグラフである。
【図３】捺印細胞診とＲＴ−ＰＣＲによる評価においてそれぞれ陽性又は陰性と評価された場合の、術後経過時間に対する無再発生存率を示すグラフである。
【図４】捺印細胞診とＲＴ−ＰＣＲによる評価においてそれぞれ陽性又は陰性と評価された場合の、術後経過時間に対する無再発生存率を示すグラフを各症例の病期毎に示したものである。
【図５】捺印細胞診と従来の腹腔内洗浄細胞診において陰性及び／又は陽性と評価された場合の術後経過時間に対する無再発生存率を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
１．腹膜播種転移の検査方法
本発明の癌患者の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法は、
（Ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞に対してパパニコロウ染色を行う工程、及び／又は、
（Ｂ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定する工程
を含むことを特徴とする。
本発明の検査方法は、工程（Ａ）、工程（Ｂ）の少なくとも一方で「陽性」と判断される場合、癌患者の腹膜播種転移の可能性が高いとして判定される。
【００１４】
本発明の検査方法は、癌が認められる内臓器官の漿膜の細胞を用いて、後述する工程（Ａ）及び／又は工程（Ｂ）を行う。本発明の検査方法において、癌が認められる内臓器官とは、一般に公知の評価基準により癌が発生していると認定される内臓器官をいう。本発明の検査方法における内臓器官としては、漿膜を有する内臓器官であれば、特に限定されないが、好ましくは消化器系、生殖系、又は泌尿器系の器官である。消化器系器官としては、食道、胃、小腸、大腸、膵臓、胆嚢、胆管、肝臓等が挙げられる。生殖系器官としては、卵巣、子宮、精巣等が挙げられる。泌尿器系器官としては、腎臓、膀胱等が挙げられる。なかでも、本発明の検査方法における内臓器官としては、好ましくは消化器系器官、より好ましくは胃が挙げられる。
【００１５】
工程（Ａ）
本発明の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法は、（Ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞に対してパパニコロウ染色を行う工程、を含む。
【００１６】
前記（Ａ）工程は、好ましくは、癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞に対してパパニコロウ染色し、染色された細胞を観察して異型細胞又は異常細胞の存在の程度を確認する工程である。
【００１７】
本発明の検査方法においては、被験体として、癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞を適用する。癌が認められる内臓器官の漿膜面とは、内臓器官の担癌部位の漿膜の表面であり、漿膜とは、胃等の内臓器官の表面を覆う薄い半透明の膜である。漿膜の表面は、漿液を分泌する細胞で構成される。漿膜の細胞を適用することにより、従来の、例えば腹腔内洗浄により得られる細胞を適用する場合と比べて、より正確に腹膜播種転移の可能性を判定することができる。
【００１８】
本発明において、癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞とは、癌が認められる内臓器官の漿膜の表面をスライドガラスに捺印するように押し付けることにより、漿膜表面の細胞がスライドガラスに張り付くことによって採取された漿膜の細胞である。こうして採取された細胞を標本とする。なお、このように、対象組織の表面をスライドガラスに捺印するように押し付けて張り付いた細胞の標本を作製し、当該細胞を染色して観察して評価する手法は、一般に、捺印細胞診と称され、公知の手法である。
【００１９】
パパニコロウ染色は、細胞診の基本染色として一般に公知の方法であり、細胞の核をヘマトキシリンで青藍色に染色し、細胞質をオレンジＧ、エオジンＹ、又はライトグリーンＳＦの色素でそれぞれ橙色、朱色、緑色に染め分け、悪性腫瘍細胞を色の違いで同定する方法である。そして、細胞の形態（細胞の形状、細胞の集塊の様子）を顕微鏡等で観察することにより腫瘍の悪性度を判断する。判断基準としては、パパニコロウ分類として公知の基準を用いればよく、具体的には、下記に示すとおりである。
（判定基準）
ＣｌａｓｓＩ：異型細胞あるいは異常細胞の認められない場合
ＣｌａｓｓＩＩ：異型細胞を認めるが悪性の疑いのない場合
ＣｌａｓｓＩＩＩ：悪性の疑いのある異型細胞を認めるが悪性の断定のできない場合
ＣｌａｓｓＩＶ：悪性の疑いきわめて濃厚な異型細胞を少数認める場合
ＣｌａｓｓＶ：悪性と断定できる高度の異型細胞を認める場合
【００２０】
なお、本明細書で、「異型細胞」とは、形態が正常から隔たっている細胞をいい、「異常細胞」とは、分裂増殖などにおいて異常を示す細胞をいう。
【００２１】
このように、本発明の検査方法においては、染色された細胞を観察して異型細胞又は異常細胞の存在を確認する。観察方法としては、細胞の形態を観察できる方法であれば特に限定されないが、顕微鏡を用いて観察するのが好ましい。
【００２２】
本発明においては、染色された細胞を観察した結果、ＣｌａｓｓＩ、ＣｌａｓｓＩＩ、又はＣｌａｓｓＩＩＩのいずれかに該当する場合を「陰性」と判断し、ＣｌａｓｓＩＶ、又はＣｌａｓｓＶに該当する場合を「陽性」と判断する。
【００２３】
工程（Ｂ）
本発明の腹膜播種転移の可能性を判定するための検査方法はまた、癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定する工程、を含む。
【００２４】
癌が認められる内臓器官の漿膜面から細胞を採取する方法としては、特に限定されないが、例えば、綿棒等で、癌が認められる内臓器官の漿膜の表面を擦過することにより細胞を採取する方法等が挙げられる。
【００２５】
採取された漿膜の細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定する方法としては、特に限定されず、公知の方法を用いればよく、ＤＮＡを測定してもよいし、タンパク質を測定してもよいし、ｍＲＮＡを測定してもよいが、簡便で精度が高い点でｍＲＮＡを測定するのが好ましい。
【００２６】
ｍＲＮＡを測定する方法としては、特に限定されず、従来公知の方法を用いればよく、例えば、マイクロアレイ、ノーザンブロッティング、ＱｕａｎｔｉＧｅｎｅ  Ｐｌｅｅｘ２．０等を用いて細胞からＲＮＡを抽出せずに直接ｍＲＮＡの発現量を測定するアッセイ、あるいは、細胞からＲＮＡを抽出して、これを鋳型としてプライマーにより増幅反応を行うか、得られたポリヌクレオチドにプローブを用いてハイブリダイゼーション反応を行うことで、ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０を検出し、その発現量を測定する方法が挙げられる。なかでも、細胞からＲＮＡを抽出して、プライマーやプローブを用いてＣＥＡ及び／又はＣＫ２０を検出し、そのｍＲＮＡの発現量を測定する方法が好ましい。
【００２７】
細胞からＲＮＡを抽出する方法としては、公知の方法を適宜使用して実施すればよく、例えば、フェノール抽出及びエタノール沈殿による方法等が挙げられる。
【００２８】
ＣＥＡ又はＣＫ２０の検出は、従来公知の方法から適宜選択して行うことができるが、通常、その発現量の測定や増幅を行うためにプローブとなるポリヌクレオチド又はプライマーとなるオリゴヌクレオチドを使用するのが好ましい。プライマーとしては、標的の遺伝子の少なくとも一部に特異的にハイブリダイズして当該遺伝子を増幅することが可能な特有の配列を有するオリゴヌクレオチドが挙げられる。また、プローブとしては、標的の遺伝子の少なくとも一部に特異的にハイブリダイズする特有の配列を有するポリヌクレオチドが挙げられる。これらのプライマー又はプローブは、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡ等のプログラム及びデータベースを利用して標的とする遺伝子の配列情報を取得し、これに基づいて従来公知の方法に従って設計、合成することができる。
【００２９】
ＣＥＡ、ＣＫ２０の検出に使用するプライマーとしては、例えば、ＣＥＡのフォワードプライマーとして、５’−ＣＡＡＴＡＧＧＡＣＣＡＣＡＧＴＣＡＣＧＡＣＧＡＴ−３’（配列番号１）、リバースプライマーとして、５’−ＧＧＴＴＧＧＡＧＴＴＧＴＴＧＣＴＧＧＴＧＡＴ−３’（配列番号２）、ＣＫ２０のフォワードプライマーとして、５’−ＣＴＣＴＣＣＴＣＡＡＡＡＡＧＧＡＧＣＡＴＣＡＧ−３’（配列番号３）、リバースプライマーとして５’−ＣＡＡＣＣＴＣＣＡＣＡＴＴＧＡＣＡＧＴＧＴＴＧ−３’（配列番号４）が好ましく挙げられる。また、プローブとしては、好ましくは、ＣＥＡとして、ＦＡＭ−５’−ＡＣＡＧＴＣＴＡＴＧＣＡＧＡＧＣＣＡＣＣＣＡＡＡＣＣＣＴＴ−３’−ＴＡＭＲＡ（配列番号５）、ＣＫ２０として、ＦＡＭ−５’−ＣＡＧＡＴＧＣＴＴＧＴＧＴＡＧＧＣＣＡＴＣＧＡＣＴＴＣＣＴ−３’−ＴＡＭＲＡ（配列番号６）が挙げられる。
【００３０】
ＣＥＡ、ＣＫ２０の検出は、前述のようなプライマーを用いた遺伝子の増幅反応によって得られる増幅産物、又はプローブを用いたハイブリダイゼーション反応により得られるハイブリッド産物に基づいて行うことができる。
【００３１】
ＣＥＡ、ＣＫ２０の増幅については、特に限定されず、従来公知の方法を用いればよく、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によるＲＮＡの増幅が挙げられ、より具体的には、ＲＴ−ＰＣＲ、ネスティッドＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、競合ＰＣＲ、ＴａｑＭａｎ  ＰＣＲ、Ｄｉｒｅｃｔ  ＰＣＲ等が挙げられる。また、ＬＡＭＰ（Ｌｏｏｐ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ  Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）法、ＯＳＮＡ（ｏｎｅ−ｓｔｅｐ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ）法等のＰＣＲの変法を利用してもよい。なかでも、ＣＥＡ、ＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の測定は、リアルタイムＰＣＲ、好ましくはリアルタイムＲＴ−ＰＣＲ、より好ましくはＴａｑ  Ｍａｎプローブを用いたリアルタイムＲＴ−ＰＣＲで行われる。
【００３２】
工程（Ｂ）においては、癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量が、所定の境界値（カットオフ値）以上の場合に「陽性」と判断され、前記境界値未満の場合に「陰性」と判断される。例えば、ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量をｍＲＮＡで評価する場合、ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量が、所定の境界値（カットオフ値）以上の場合に「陽性」と判断され、前記境界値未満の場合に「陰性」と判断される。ＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量をｍＲＮＡで評価する場合の境界値としては、健常人のＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を基準とした値が挙げられる。
【００３３】
健常人のＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を基準とした境界値としては、好ましくは、複数の健常人の正常漿膜から採取した検体におけるＧＡＰＤＨに対するＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の比の（平均＋標準偏差）の値が挙げられる。前記境界値は、具体的には、後述する実験例に示すように、ＧＡＰＤＨに対するＣＥＡのｍＲＮＡの発現量の比については０．１５、ＧＡＰＤＨに対するＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の比については１．３７である。すなわち、ＧＡＰＤＨに対するＣＥＡのｍＲＮＡの発現量の比が０．１５以上の場合に「陽性」と判断され、０．１５未満の場合に「陰性」と判断される。また、ＧＡＰＤＨに対するＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の比が１．３７以上の場合に「陽性」と判断され、１．３７未満の場合に「陰性」と判断される。
【００３４】
また、境界値を、複数の健常人の正常漿膜から採取した検体におけるＧＡＰＤＨに対するＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の比の（平均＋２×標準偏差）の値とし、その値以上の場合に「強陽性」と判断することができる。「強陽性」と判断される場合は、「陽性」症例の中でも予後不良であり、腹膜播種転移の可能性がより一層高いと予測することができる。「強陽性」の境界値は、具体的には、ＧＡＰＤＨに対するＣＥＡのｍＲＮＡの発現量の比については、後述する実験例に示すように、正常検体の平均が０．０３６、標準偏差が０．１１４であるので、０．２６４となる。ＧＡＰＤＨに対するＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の比については、正常検体の平均が０．５７、標準偏差が０．８０であるので、「強陽性」の境界値は２．１７となる。
【００３５】
前記ＧＡＰＤＨのｍＲＮＡの発現量を測定する方法は、特に限定されず、公知の方法を適宜用いればよいが、例えばＣＥＡ及び／又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量を測定する方法と同様の方法を適用すればよい。ＧＡＰＤＨのｍＲＮＡの発現量を、プローブとなるポリヌクレオチド又はプライマーとなるオリゴヌクレオチドを使用して測定する場合、例えば、ＧＡＰＤＨのフォワードプライマーとして、５’−ＣＣＡＴＣＴＴＣＣＡＧＧＡＧＣＧＡＧＡＴＣ−３’（配列番号７）、リバースプライマーとして、５’−ＧＧＣＡＧＡＧＡＴＧＡＴＧＡＣＣＣＴＴＴＴＧ−３’（配列番号８）、プローブとして、ＶＩＣ−５’−ＣＣＣＣＴＧＣＡＡＡＴＧＡＧＣＣＣＣＡＧＣＣＴＴＣ−３’−ＴＡＭＲＡ（配列番号９）が好ましく挙げられる。
【００３６】
腹膜播種転移の可能性の判断
本発明の検査方法では、工程（Ａ）又は工程（Ｂ）の少なくとも一方で「陽性」と判断される場合、術後の予後が悪く、腹膜播種転移の可能性が高いと予測される。また、工程（Ｂ）で「強陽性」と判断される場合、術後の予後がより悪く、腹膜播種転移の可能性がより高いと予測される。本発明の検査方法では、工程（Ａ）か工程（Ｂ）のいずれかを有することで、腹膜播種転移の可能性を判断することができるが、診断精度がより高い点では、工程（Ａ）及び工程（Ｂ）の両方を行うことが好ましい。工程（Ａ）及び工程（Ｂ）で「陽性」と判断される場合、術後の予後は悪く、腹膜播種転移の可能性が非常に高いと予測される。
また、工程（Ａ）又は工程（Ｂ）のいずれか一方を行って「陰性」と判断される場合、もう一方の工程（Ｂ）又は（Ａ）を更に行うことが好ましい。両工程を行うことで、偽陰性をより高い確率で排除することができる。工程（Ａ）及び工程（Ｂ）においていずれも「陰性」と評価される場合、術後の予後は良好であると判断され、腹膜播種転移の可能性が低いと予測される。
【００３７】
このような本発明の検査方法は、術中でも判断でき、「陽性」と判断された場合には、腹腔内洗浄を行う等の予後に対する処置を医療現場で適切に行うことができる。このように、本発明の検査方法は、腹膜播種転移の高リスク症例の同定に有効であり、かつ腹膜播種転移の予防を目的とした治療・処置の選択においても有用である。
【００３８】
本発明の検査方法において、対象となる患者の癌の種類については、特に限定されないが、具体的には、食道癌、胃癌、小腸癌、大腸癌、膵癌、胆管癌、胆嚢癌、肝癌等の消化器系の癌；卵巣癌、子宮癌、精巣癌等の生殖器系の癌；膀胱癌、尿管癌、腎癌等の泌尿器系の癌が挙げられる。これらの中でも、本発明の検査方法の検査対象の好適な例として、消化器系の癌が挙げられる。
【００３９】
２．検査キット
本発明の検査キットは、（ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞をパパニコロウ染色するための試薬、及び／又は、（ｂ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定するための試薬、を含むことを特徴とする。
【００４０】
本発明の検査キットは、（ａ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞をパパニコロウ染色するための試薬を含む。癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞、パパニコロウ染色については、前述の「１．検査方法」の欄に記載の通りである。パパニコロウ染色するための試薬は、パパニコロウ染色に使用される一般に公知の試薬が挙げられる。
【００４１】
本発明の検査キットはまた、（ｂ）癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定するための試薬を含む。癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞、当該細胞におけるＣＥＡ及びＣＫ２０の発現量の測定については、前述の「１．検査方法」の欄に記載の通りである。
【００４２】
ＣＥＡ及びＣＫ２０の発現量を測定するための試薬としては、好ましくはＣＥＡ及びＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量を測定するための試薬が挙げられる。ＣＥＡ及びＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量を測定するための試薬としては、例えば、ＣＥＡ又はＣＫ２０をコードするｍＲＮＡを定量的に検出することができる試薬であれば任意のものを用いることができるが、例えば、ＣＥＡ又はＣＫ２０をコードするｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な（又は特異的にハイブリダイズ可能な）１組のプライマーを含んでいても良い。好ましいプライマーとしては、前述の「１．検査方法」の欄に記載のプライマーが挙げられる。
【００４３】
本発明の検査キットを使用した検査の方法としては、前述の「１．検査方法」の欄に記載の通りである。
すなわち、（ａ）の試薬を用いて、癌が認められる内臓器官の漿膜面から捺印された細胞をパパニコロウ染色し、染色された細胞を顕微鏡下で観察し、前述の「１．検査方法」の欄に記載の評価基準にて評価し、Ｃｌａｓｓ  ＩＶ又はＣｌａｓｓＶに該当する場合は、「陽性」と判断し、腹膜播種転移の可能性が高いと予測することができる。
【００４４】
また、（ｂ）の試薬を用いて、癌が認められる内臓器官の漿膜面から採取された細胞におけるＣＥＡ及び／又はＣＫ２０の発現量を測定し、それぞれ所定の境界値（カットオフ値）以上である場合は「陽性」と判断し、腹膜播種転移の可能性が高いと予測することができる。
【実施例】
【００４５】
以下、実験例を挙げて、本発明を説明するが、本発明はこれらの実験例に制限されるものではない。
【００４６】
＜実験例＞
胃癌患者について、下記に記載の方法で、捺印細胞診、ＲＴ−ＰＣＲによるＣＥＡ又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の測定、腹腔洗浄細胞診を行い、それぞれの方法において「陽性」又は「陰性」を判定した。
【００４７】
捺印細胞診
切除胃の腫瘍部における漿膜面に滅菌したスライドガラスを捺印した後、ポリエチレングリコールおよびエタノール（Ｗｈｉｔｅ  Ｆｉｘ，  ユーアイ化成）にて細胞をスライドガラスに固定した。次いで、固定したスライドガラス上の細胞をパパニコロウ染色により染色した。パパニコロウ染色は、具体的には、下記の手順で行った。
【００４８】
（パパニコロウ染色）
まず、スライドガラス上に固定された細胞を、５０％エタノールで１分間処理して親水化した後、水洗し、ギル・ヘマトキシリンＶ（２倍希釈、武藤化学社製）で２分間処理して核染色した。次いで、水洗し、７０％エタノールで洗浄し、９５％エタノールで脱水した後、ＯＧ−６で１分間処理して細胞質染色を行った。そして、９５％エタノールで分別し、次いで、ＥＡ−５０で２分間処理して細胞質染色を行った。その後、１００％エタノールで脱水し、キシレンで透徹して、封入剤（マリノール、武藤化学社製）で細胞標本を封入した。得られた細胞標本を顕微鏡（倍率２００倍、又は４００倍）で観察し、パパニコロウ分類（Ｐａｐａｎｉｃｏｌａｏｕ  ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ、１９５４年分類）に従って評価した。具体的な評価基準を下記に示す。なお、これらのうちＣｌａｓｓ  Ｉ、Ｃｌａｓｓ  ＩＩ、Ｃｌａｓｓ  ＩＩＩに該当したものを陰性と判定し、Ｃｌａｓｓ  ＩＶ、Ｃｌａｓｓ  Ｖに該当したものを陽性と判定した。
【００４９】
（評価基準）
Ｃｌａｓｓ  Ｉ：異型細胞または異常細胞の認められない場合
Ｃｌａｓｓ  ＩＩ：異型細胞を認めるが悪性の疑いのない場合
Ｃｌａｓｓ  ＩＩＩ：悪性の疑いのある異型細胞を認めるが悪性の断定のできない場合
Ｃｌａｓｓ  ＩＶ：悪性の疑いがきわめて濃厚な異型細胞を少数認める場合
Ｃｌａｓｓ  Ｖ：悪性と断定できる高度の異型細胞を認める場合
【００５０】
なお、図１に、パパニコロウ染色された胃癌組織の漿膜の細胞で、陽性と判断されたものの代表的な細胞の画像を示す。図１に示すように、核の大小不同が目立ち立体的不整形集塊を示す異型細胞が認められる。
【００５１】
ＲＴ−ＰＣＲによるＣＥＡ、ＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の評価
（ＲＴ−ＰＣＲによるＣＥＡ、ＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の測定）
胃癌漿膜面を、滅菌した綿棒で擦過し、得られた擦過検体を、トリアゾール又はＲＮＡ  ｌａｔｅｒ（Ｌｉｆｅ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）に溶解した。溶解した検体からＲＮＡを抽出し、ＲｅｖｅｒＴｒａ  Ａｃｅ  ｑＲＴ  Ｍａｓｔｅｒ  Ｍｉｘ  （Ｔｏｙｏｂｏ  ｌｉｆｅ  ｓｃｉｅｎｃｅ，  Ｏｓａｋａ，  Ｊａｐａｎ）を用いて、ＲＴ−ＰＣＲ（ＡＢＩ  Ｐｒｉｓｍ  ７００００、Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，  Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ，  ＣＡ）により、ＣＥＡ及びＣＫ２０のｍＲＮＡ発現量を測定した。用いたプライマーとプローブは、表１の通りである。また、内部標準として、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）を用い、同様にしてその発現量を測定した。ＧＡＰＤＨの発現量を測定するのに用いたプライマーとプローブは、表１の通りである。
【００５２】
【表１】
2018044933.tif 000002
【００５３】
（カットオフ値）
カットオフ値を以下のようにして求めた。すなわち、正常な胃の漿膜から同様に採取した検体（ｎ＝１０）におけるＣＫ２０、ＣＥＡ、ＧＡＰＤＨのｍＲＮＡの発現量を前記と同様にＲＴ−ＰＣＲにより測定した。そして、ＧＡＰＤＨに対するＣＥＡのｍＲＮＡの発現量の比と、ＧＡＰＤＨに対するＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の比について平均値と標準偏差を求め、（平均＋標準偏差）の値を境界値として設定した。具体的には、ＧＡＰＤＨに対するＣＥＡのｍＲＮＡの発現量の比については平均が０．０３６、標準偏差が０．１１４であり、カットオフ値を０．１５とした。また、ＧＡＰＤＨに対するＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の比については平均が０．５７、標準偏差が０．８０であり、カットオフ値を１．３７とした。
【００５４】
そして、胃癌患者について、ＧＡＰＤＨに対するＣＥＡのｍＲＮＡの発現量の比、又はＧＡＰＤＨに対するＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量の比が、カットオフ値以上の場合は「陽性」、カットオフ値未満の場合は「陰性」と判定した。
【００５５】
腹腔洗浄細胞診
胃癌患者の腹腔内を生理食塩水１００ｍｌにて洗浄し、洗浄した後の液を回収して遠心分離（２００×ｇ）し、上清を除去してペレット細胞を得た。得られたペレット細胞を前述の方法でパパニコロウ染色して「陽性」又は「陰性」を判定した。
【００５６】
図２は、腹腔洗浄捺印細胞診の評価と、ＣＥＡ又はＣＫ２０のｍＲＮＡ発現量との関係を示すグラフである。図２中のＴ１、Ｔ２、Ｔ３、Ｔ４は、それぞれ各症例における腫瘍の深達度を示す（Ｔ１は粘膜、粘膜下層、Ｔ２は固有筋層、Ｔ３は漿膜下層、Ｔ４は漿膜外、多臓器浸潤）。
【００５７】
図３は、捺印細胞診とＲＴ−ＰＣＲによる評価においてそれぞれ陽性又は陰性と評価された場合の、術後経過時間に対する無再発生存率を示すグラフである。図中の（＋）は「陽性」、（−）は「陰性」を示す。図３（ａ）〜（ｄ）は、前述の捺印細胞診において陽性又は陰性と判定されたものと、ＲＴ−ＰＣＴにおけるＣＥＡ又はＣＫ２０のｍＲＮＡの発現量に基づいて陽性又は陰性と判定されたもの、及び両者のいずれか一方について陽性又は陰性と判定されたもの（図３（ｄ））をそれぞれ比較した場合の、術後経過年数に対する無再発生存率を示したグラフである。
【００５８】
図４は、捺印細胞診の評価基準によるＳｔａｇｅ毎の、捺印細胞診又はＲＴ−ＰＣＲによる評価においていずれか一方が陽性又は陰性と判定された場合の、術後経過時間に対する無再発生存率を示すグラフである。図５は、捺印細胞診とＲＴ−ＰＣＲによる評価において、いずれか一方が陽性と評価された場合、及び、捺印細胞診とＲＴ−ＰＣＲによる評価の両方が陽性又は陰性と判定された場合の術後経過時間に対する無再発生存率を示すグラフである。いずれも図中の（＋）は「陽性」、（−）は「陰性」を示す。
【００５９】
表２に、図２〜４の結果をまとめた表を示す。表中のＰ値は統計的処理により求めた。感度及び特異度は、検査の有用性を評価する指標であり、特定の疾患について、その検査が疾患の有無をどの程度正確に判定できるかを示す定量的な指標であり、一般に公知の方法で求めることができる。
【００６０】
【表２】
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【００６１】
表２から、漿膜を用いた捺印細胞診又はＲＴ−ＰＣＲによる評価で陽性と判断された場合の再発症率と、陰性と判断された場合の無再発症率が、いずれも従来の腹腔洗浄細胞診による評価で判断された場合と同等又は高くなることが示された。また、漿膜を用いた捺印細胞診とＲＴ−ＰＣＲによる評価の両方が陰性である場合、無再発症率が非常に高くなることが示された。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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