(57)【要約】【課題】  青色光受容体タンパク質であるクリプトクロムの機能を抑制することを可能とする低分子化合物、また該抑制によって、青色光を含む光の照射下で植物の生長を促進することを可能とする低分子化合物を提供すること。【解決手段】  ２個の窒素原子を含有し、水素原子又はハロゲン原子とニトロ基とが付加されている９員含窒素縮合芳香族複素環式化合物は、クリプトクロムに結合し、該タンパク質の機能を抑制することを明らかにした。また、当該化合物は、青色光照射下で植物の生長を促進することも見出した。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記一般式（Ｉ）で表される含窒素縮合芳香族複素環式化合物を有効成分として含有する、クリプトクロムの機能を抑制するための組成物
【化１】
2018065766.tif 000007
［前記式（Ｉ）中、Ａ環とＢ環とは一緒になって、２個の窒素原子を含有する、９員含窒素縮合芳香族複素環式化合物であり、Ａ環は６員芳香族炭化水素環又は６員芳香族複素環を示し、Ｂ環は５員芳香族炭化水素環又は５員芳香族複素環を示す。また、Ｘは水素原子又はハロゲン原子を示す］。
【請求項２】
前記含窒素縮合芳香族複素環式化合物が３−ブロモ−７−ニトロインダゾールである、請求項１に記載の組成物。
【請求項３】
青色光を含む光の照射下で植物の生長を促進するための組成物である、請求項１又は２に記載の組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、９員含窒素縮合芳香族複素環式化合物を有効成分として含有する、クリプトクロムの機能を抑制するための組成物に関する。また本発明は、該化合物を有効成分として含有する、青色光を含む光の照射下で植物の生長を促進するための組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
植物の生長にとって、光は非常に重要な環境刺激であり、その様々な波長の光に応じ、発芽、避陰反応、気孔開口、屈光性、脱黄化（緑化）、概日時計の調整及び開花期等の制御（光形態形成）がなされている。
【０００３】
また、植物は、様々な波長の光を感知するため、異なるグループに属する光受容体、すなわち、青色光を感知する光受容体タンパク質であるクリプトクロムと赤色光を感知する光受容体タンパク質であるフィトクロムとを有している。クリプトクロム（ＣＲＹｓ：ＣＲＹ１及びＣＲＹ２）は、波長３５０〜５００ｎｍにおける青色光及びＵＶ−Ａに反応し、フィトクロム（ｐｈｙＡ〜ｐｈｙＥ）は、波長６５０〜７５０ｎｍにおける赤色光及び遠赤色光を吸収するために機能する。
【０００４】
そして、これら受容体は、光子を吸収することにより活性化され、下流のタンパク質等の発現及びそれらの相互作用を引き起こし、周囲の光環境に適応した生育及び生理学的反応に至る代謝を制御する機能を担っている。
【０００５】
例えば、苗の初期発達において、シロイヌナズナにおける脱黄化等の光形態形成と、光受容体  クリプトクロム及びフィトクロムとは、密接に関連していることは知られている（非特許文献１）。
【０００６】
また、青色光照射下ではシロイヌナズナ等の植物の胚軸伸長は抑制されることが知られているが、ＣＲＹ１の機能欠損は、青色光によるこの抑制を解消し、胚軸の伸長（植物の生長）を促すことが明らかになっている（非特許文献１）。さらに、胚軸伸長の他、クリプトクロムは気孔開口、色素（アントシアニン）合成、及び開花期の制御を含む、生長発達過程におけるかなりの現象に関与することも報告されている（非特許文献２及び３）。
【０００７】
また、青色光シグナル伝達の分子機構に関し、開花期の制御においては、クリプトクロム結合ベーシックへリックスループへリックス１（ＣＩＢ１）依存的なＣＲＹ２による制御が関与しており、ＣＩＢ１がフラワリングローカスＴ（ＦＴ）遺伝子のプロモーター領域に結合することによって、その発現を活性化することが明らかになっている（非特許文献４、図１  参照）。
【０００８】
さらに、苗の発達段階を決定する上で、クリプトクロムはＳｕｐｐｒｅｓｓｏｒ  Ｏｆ  ＰｈｙＡ  １（ＳＰＡ１）／Ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅ  Ｏｆ  Ｐｈｏｔｏｍｏｒｐｈｏｇｅｎｉｃ  １（ＣＯＰ１）を制御することも明らかになっている。より具体的には、図１に示す通り、クリプトクロムは、ＳＰＡ１／ＣＯＰ１による様々な転写因子（ＨＹ５、ＨＹＨ、ＣＯ）の分解を抑制することによって、青色光制御遺伝子の発現プロファイルに変化をもたらし、苗の発達段階を決定することが明らかになっている(非特許文献５〜８)。
【０００９】
このように、クリプトクロムが関与する青色光シグナル伝達は、植物の生長に大きく関与しているため、そのシグナル伝達を制御することにより、植物のサイズを大きくすることが期待できる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【００１０】
【非特許文献１】Ａｈｍａｄ，Ｍ、Ｃａｓｈｍｏｒｅ，Ａ．Ｒ．、Ｐｌａｎｔ  Ｊ．、１９９７年、１１巻、４２１〜４２７ページ
【非特許文献２】Ｌｉｎ，Ｃ．、Ｔｈｅ  Ｐｌａｎｔ  Ｃｅｌｌ、２００２年、５：Ｓ２０７−Ｓ２２５
【非特許文献３】Ｇｉｌｉｂｅｒｔｏ，Ｌ．ら、Ｐｌａｎｔ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．、２００５年、１３７巻、１９９〜２０８ページ
【非特許文献４】Ｌｉｕ，Ｙ．ＰＬＯＳ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓ．、２０１３年、９：ｅ１００３８６１．
【非特許文献５】Ｆａｎｋｈａｕｓｅｒ，Ｃ．、Ｕｌｍ，Ｒ．、Ｇｅｎｅ  Ｄｅｖ．、２０１１年、２５巻、１００４〜１００９ページ
【非特許文献６】Ｈｏｎｇ，Ｓ．Ｈ．ら、Ｐｌａｎｔ  Ｊ．、２００８年、５５巻、３６１〜３７１ページ
【非特許文献７】Ｌｉ，Ｑ．Ｈ、Ｙａｎｇ，Ｈ．Ｑ．、Ｐｈｏｔｏｃｈｅｍ  Ｐｈｏｔｏｂｉｏｌ．、２００７年、８３巻、９４〜１０１ページ
【非特許文献８】Ｌｉｕ，Ｈ．，ら、Ｔｒｅｎｄｓ  Ｐｌａｎｔ  Ｓｃｉ．、２０１１年、１６巻、６８４〜６９１ページ
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
本発明は、前記従来技術の有する課題に鑑みてなされたものであり、その目的は、クリプトクロムが関与する青色光シグナル伝達を抑制することを可能とする低分子化合物を提供することにある。特に、本発明は、青色光を含む光の照射下で植物の生長を促進することを可能とする低分子化合物を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明者らは、まず、植物の生長を促進するための低分子化合物をスクリーニングするため、化学物質（３６８０種）にて各々処理したシロイヌナズナ（野生型）の苗を、青色光照射下で生長させた。その結果、青色光照射下における胚軸伸長の阻害を解消し、植物の生長を促進することができる化合物として、３−ブロモ−７−ニトロインダゾール（３Ｂ７Ｎ）を選抜することができた。さらに、バイオマスの原料として注目されているソルガムを、３Ｂ７Ｎにより処理し、青色光照射下にて生長させても、シロイヌナズナ同様に、該生長は促進されることを確認した。
【００１３】
次に、本発明者らは、３Ｂ７Ｎのアナログを用い、それら低分子化合物の構造と前記植物の生長促進との関係を分析した。その結果、２個の窒素原子を含有する９員含窒素縮合芳香族複素環をコア構造とし、このコア構造に、水素原子又はハロゲン原子とニトロ基とが任意の位置に付加されていれば、青色光による胚軸伸長の阻害に対して抑制効果を発揮できることを見出した。
【００１４】
青色光照射下にて育てた野生型の苗は、双葉のサイズが大きくなること（拡張）も知られている。そこで、本発明者らは、さらに３Ｂ７Ｎによる双葉のサイズへの影響を分析した。その結果、当該化合物は、青色光が調節する胚軸伸長の阻害のみならず、双葉の拡張をも抑制できることが明らかになった。
【００１５】
次いで、本発明者らは、３Ｂ７Ｎによる胚軸伸長等に関与する光受容体を同定するため、様々なシロイヌナズナ光受容体変異体株を３Ｂ７Ｎにて処理して青色光照射下で生長させた。その結果、ＣＲＹ１及び／又はＣＲＹ２の機能欠損株においては、３Ｂ７Ｎによる植物の生長促進が抑制されたことから、クリプトクロム（ＣＲＹ１、ＣＲＹ２）が調節する青色光シグナル伝達に３Ｂ７Ｎが関与していることも明らかになった。さらに、マイクロアレイによる分析の結果、ｃｒｙ１ｃｒｙ２二重変異体（ＣＲＹ１及びＣＲＹ２の機能欠損株）と、３Ｂ７Ｎにて処理した野生型とは、同じクラスターに分類され、それらの遺伝子発現プロファイルは近似していることが明らかになった。さらにまた、ＣＲＹによって制御される遺伝子発現の約半分が、３Ｂ７Ｎ処理によって阻害されこと、及び青色光制御遺伝子の多くは、３Ｂ７Ｎ処理によって青色光による制御とは逆にそれらの発現が制御されることが明らかになった。
【００１６】
次に、本発明者らは、３Ｂ７Ｎの標的分子がクリプトクロム自体であると想定し、それらの相互作用について分析した。その結果、３Ｂ７Ｎは、実際に、ＣＲＹ１と結合することが明らかになった。
【００１７】
以上から、本発明者らは、３Ｂ７Ｎがクリプトクロムに結合してその機能を抑制することにより、当該光受容体タンパク質が調節する青色光シグナル伝達を抑制し、上述の植物の生長を促進していることを見出し、本発明を完成するに至った。
【００１８】
したがって、本発明は以下を提供するものである。
＜１＞  下記一般式（Ｉ）で表される含窒素縮合芳香族複素環式化合物を有効成分として含有する、クリプトクロムの機能を抑制するための組成物
【００１９】
【化１】
2018065766.tif 000002
【００２０】
［前記式（Ｉ）中、Ａ環とＢ環とは一緒になって、２個の窒素原子を含有する、９員含窒素縮合芳香族複素環式化合物であり、Ａ環は６員芳香族炭化水素環又は６員芳香族複素環を示し、Ｂ環は５員芳香族炭化水素環又は５員芳香族複素環を示す。また、Ｘは水素原子又はハロゲン原子を示す］。
＜２＞  前記含窒素縮合芳香族複素環式化合物が３−ブロモ−７−ニトロインダゾールである、＜１＞に記載の組成物。
＜３＞  青色光を含む光の照射下で植物の生長を促進するための組成物である、＜１＞又は＜２＞に記載の組成物。
【発明の効果】
【００２１】
本発明によれば、クリプトクロムの機能を抑制することができる。また当該機能抑制により、青色光を含む光の照射下で植物の生長を促進させることが可能となる。特に、近年、化石エネルギー資源の枯渇が刻々と進行すると共に、地球温暖化が深刻な問題となっている。そのため、植物の生長を促進することのできる本発明は、石油等の化石燃料に代替するバイオマス植物の増産にも貢献するものである。また、本発明によれば、青色ＬＥＤ等の人工環境下でも植物の生長を促進することができるため、不安定な自然環境の影響を受けない安定した増産も可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】クリプトクロム（ＣＲＹ）が調節する青色光シグナル伝達の概要を示す図である。青色光を受けるとＣＲＹはリン酸化され、ＣＯＰ１ユビキチンリガーゼ及びＳＰＡ１からなる複合体に結合する。この結合により、該複合体は不活化されるため、ＨＹ５等の転写因子が安定化される。そして、安定化したこれら転写因子によって光形態形成に関与する遺伝子の発現が活性化され、胚軸伸長の阻害、脱黄化等の光形態形成が促進されることになる。一方、暗所では、前記複合体はＣＲＹと結合することなく活性化状態にあるため、ＨＹ５等の光形態形成を正に制御する転写因子は分解されることになる。また、青色光に応答して、ＣＲＹ２がＣＩＢ１と結合し、ＣＩＢ１がＦＴ遺伝子のプロモーターに結合することによって該遺伝子の発現が誘導され、これが開花につながる。
【図２】３Ｂ７Ｎにて処理した野生型苗の胚軸における単色光照射に対する反応を解析した結果を、示す図である。図中Ａは、３Ｂ７Ｎ添加又は非添加にて、１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１青色光を照射して生長させた６日目の苗を観察した結果を示す写真である。図中Ｂは、１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１青色光、１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１赤色光若しくは１μｍｏＬｍ−２ｓ−１遠赤色光を連続的に照射して生長させた、又は暗所にて生長させた、６日目の野生型の苗の胚軸の長さを示すグラフである。データは、各バッチにおける平均値±標準偏差を示す（ｎ数は２５以上，＊Ｐ＜０．０５）。スケールバーは１ｍｍを表す。
【図３】３Ｂ７Ｎ添加及び連続的な青色光照射下における野生型苗の胚軸の長さを示すグラフである。測定値は、６日目の苗の平均値±標準偏差（ｎ数は２５以上）を示す。
【図４】３Ｂ７Ｎ又はその他のＮＯ消去剤（Ｌ−ＮＡＭＥ、Ｃ−ＰＴＩＯ，ＤＥＡ−ＮＯＮＯａｔｅ）にて処理し、連続的な青色光照射下で生長させた野生型苗の胚軸の長さを示すグラフである。測定値は、６日目の苗の平均値±標準偏差（ｎ数は２５以上）を示す。
【図５】３Ｂ７Ｎ及びそのアナログによる、連続的な青色光照射下における苗の胚軸伸長の制御について解析した結果を示すグラフである。図中、３Ｂ７Ｎは３−ブロモ−７−ニトロインダゾールを示し、Ａ１は３−ブロモインダゾールを示し、Ａ２は７−ニトロインダゾールを示し、Ａ３：１−［２−（トリフルオロメチル）フェニル］イミダゾールを示し、Ａ４は３−ブロモー１Ｈ−インダゾール−７−カルボニトリルを示し、Ａ５は３−ヨード−７−ニトロインダゾールを示し、Ａ６は３−ブロモ−６−ニトロイミダゾ［１，２−ａ］ピリジンを示す。また、６日目の苗の胚軸の長さは平均値±標準偏差（ｎ数は２５以上，＊Ｐ＜０．０５）にて示す。スケールバーは１ｍｍを表す。
【図６】１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１青色光照射下にて生長させた光受容体変異体（ｐｈｙＡｐｈｙＢ、ｃｒｙ１ｃｒｙ２、ｃｒｙ１、ｃｒｙ２）及び過剰発現体（ＣＲＹ１−ＯＸ、ＣＲＹ２−ＯＸ）の胚軸の長さを示すグラフである。測定値は、３Ｂ７Ｎで処理した苗及びコントロールとしてジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）にて処理したそれの平均値±標準偏差（ｎ数は２５以上，＊Ｐ＜０．０５）を示す。
【図７】１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１青色光照射下にて生長させたクリプトクロムシグナル伝達関連変異体（ｃｏｐ１−４、ｃｏｐ１−６、ｈｙ５、ｈｙ５ｈｙｈ）の胚軸の長さを示すグラフである。測定値は、３Ｂ７Ｎで処理した苗及びコントロールとしてＤＭＳＯにて処理したそれの平均値±標準偏差（ｎ数は２５以上，＊Ｐ＜０．０５）を示す。
【図８】１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１青色光照射下にて生長させた既知の光シグナル伝達転写因子変異体の胚軸の長さを示すグラフである。測定値は、３Ｂ７Ｎで処理した苗及びコントロールとしてＤＭＳＯにて処理したそれの平均値±標準偏差（ｎ数は２５以上，＊Ｐ＜０．０５）を示す。なお、ｈｆｒ１（Ｉｎｔ）は、ＨＦＲ１（ＬＯＮＧ  ＨＹＰＯＣＯＴＹＬ  ｉｎ  ＦＡＲ−ＲＥＤ）のイントロン部分が欠損している変異体であり、ｈｆｒ１（Ｐｒｏ）は、ＨＦＲ１のプロモーター領域が欠損している変異体であり、ｌａｆ１は、ＬＡＦ１（ＬＯＮＧ  ＡＦＴＥＲ  ＦＡＲ−ＲＥＤ  ＬＩＧＨＴ  １）の変異体である。
【図９】３Ｂ７Ｎ又はそのコントロールとしてＤＭＳＯにて処理した６日目の野生型苗の双葉を示す写真である。図中Ａにおいては、１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１の青色光を連続的に照射して生長させた苗を示し、Ｂにおいては、５μｍｏＬｍ−２ｓ−１の青色光を連続的に照射して生長させた苗を示す。各パネル左上の数値は、各プレートへの３Ｂ７Ｎの最終添加濃度を示す。各パネル左下には、モニターした苗の子葉形態の代表的な例を示す。また、スケールバーは１ｍｍを表す。
【図１０】野生型（ＤＭＳＯ処理、コントロール）、Ａ１（３−ブロモインダゾール）処理、Ａ２（７−ニトロインダゾール）処理及び３Ｂ７Ｎ（３−ブロモ−７−ニトロインダゾール）処理における遺伝子発現プロファイルをクラスタリングした結果を示す、図である。なお、遺伝子発現プロファイルは、青色光（１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１）照射下、最終濃度が２．５μＭになるように各化学物質を添加した寒天培地にて４日間生長させた苗に関する。また、各遺伝子発現レベルはヒートマップにて示す。
【図１１】遺伝子発現プロファイルにおいて、野生型（ＤＭＳＯ処理）とＡ１処理とを比較した結果を示す、ボルカノプロットである。横軸の−１及び１に直交する２本のラインは、倍変化のカットオフ（ｌｏｇ２＝１）を示す。
【図１２】遺伝子発現プロファイルにおいて、野生型（ＤＭＳＯ処理）とＡ２処理とを比較した結果を示す、ボルカノプロットである。楕円で囲んだ黒のドットは、倍の変化を示した有意な発現を示す。縦軸の１．０〜１．５の間にあるラインは、ｐ＝０．０５を示すラインである。横軸の−２〜０及び０〜２にある２本のラインは、倍変化のカットオフ（ｌｏｇ２＝１）を示す。
【図１３】遺伝子発現プロファイルにおいて、野生型（ＤＭＳＯ処理）と３Ｂ７Ｎ処理とを比較した結果を示す、ボルカノプロットである。楕円で囲んだ黒のドットは、倍の変化を示した有意な発現を示す。縦軸の１．０〜１．５の間にあるラインは、ｐ＝０．０５を示すラインである。横軸の−２〜０及び０〜２にある２本のラインは、倍変化のカットオフ（ｌｏｇ２＝１）を示す。
【図１４】１５μＭ  ３Ｂ７Ｎ処理及び５μｍｏＬｍ−２ｓ−１青色光照射下にて生長させた野生型苗とｃｒｙ１ｃｒｙ２変異体苗とにおける、遺伝子発現プロファイルをクラスタリングした結果を示す、図である。各遺伝子の発現はヒートマップで示す。
【図１５】ＤＭＳＯにて処理した野生型及び３Ｂ７Ｎにて処理した野生型において、有意に発現が異なった遺伝子の分布を示すグラフである。グラフの縦軸及びその数値は、遺伝子数を示す。横軸は２つの植物間での倍の変化を示す。
【図１６】ＤＭＳＯにて処理したｃｒｙ１ｃｒｙ２変異体及び３Ｂ７Ｎにて処理したｃｒｙ１ｃｒｙ２変異体において、有意に発現が異なった遺伝子の分布を示すグラフである。グラフの縦軸及びその数値は、遺伝子数を示す。横軸は２つの植物間での倍の変化を示す。
【図１７】ＤＭＳＯにて処理した野生型及びＤＭＳＯにて処理したｃｒｙ１ｃｒｙ２変異体において、有意に発現が異なった遺伝子の分布を示すグラフである。グラフの縦軸及びその数値は、遺伝子数を示す。横軸は２つの植物間での倍の変化を示す。
【図１８】３Ｂ７Ｎにて処理した野生型及びＤＭＳＯにて処理したｃｒｙ１ｃｒｙ２変異体において、有意に発現が異なった遺伝子の分布を示すグラフである。グラフの縦軸及びその数値は、遺伝子数を示す。横軸は２つの植物間での倍の変化を示す。
【図１９】３Ｂ７Ｎ（０μＭ又は２．５μＭ）処理及び１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１青色光照射下にて生長させたソルガムの子葉鞘の長さ（平均値）を各々示すグラフである。
【図２０】３Ｂ７とＣＲＹ１との結合をビーズ結合実験及びウェスタンブロティングにて解析した結果を示す写真である。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
後述の実施例において示す通り、本発明において、水素原子又はハロゲン原子とニトロ基とが任意の位置に付加されている、２個の窒素原子を含有する９員含窒素縮合芳香族複素環式化合物は、青色光受容体タンパク質であるクリプトクロム（ＣＲＹ１、ＣＲＹ２）に結合し、それらの機能を抑制することが明らかになった。
【００２４】
したがって、本発明は、下記一般式（Ｉ）で表される含窒素縮合芳香族複素環式化合物を有効成分として含有する、クリプトクロムの機能を抑制するための組成物を提供する。
【００２５】
【化２】
2018065766.tif 000003
【００２６】
本発明の組成物において有効成分として含有される、前記「含窒素縮合芳香族複素環式化合物」は、前記式（Ｉ）中、Ａ環とＢ環とは一緒になって、２個の窒素原子を含有する、９員含窒素縮合芳香族複素環式化合物である。なお、Ａ環は６員芳香族炭化水素環又は６員芳香族複素環を示し、Ｂ環は５員芳香族炭化水素環又は５員芳香族複素環を示す。
【００２７】
前記式（Ｉ）において、２個の窒素原子の９員環上の位置としては特に制限はないが、クリプトクロムの機能をより強く抑制するという観点から、好ましくはａ位とｂ位又はｄ位とであり、より好ましくはａ位とｂ位とである。また、ニトロ基が付加される９員環上の原子としては特に制限はないが、同観点から、好ましくはｆ位又はｈ位の原子であり、より好ましくはｈ位の原子である。さらに、前記式（Ｉ）においては、水素原子又はハロゲン原子（塩素原子、フッ素原子、臭素原子又はヨウ素原子）が付加されるが、同観点から、好ましくはハロゲン原子であり、より好ましくは臭素原子又はヨウ素原子であり、さらに好ましくは臭素原子である。また、前記式（Ｉ）において、水素原子又はハロゲン原子が付加される９員環上の原子としては特に制限はないが、同観点から、好ましくはｂ位又はｃ位の原子であり、より好ましくはｃ位である。
【００２８】
本発明の組成物において有効成分として含有される「含窒素縮合芳香族複素環式化合物」は、より具体的に、クリプトクロムの機能をより強く抑制するという観点から、好ましくは、３−ブロモ−７−ニトロインダゾール、３−ヨード−７−ニトロインダゾール、３−ブロモ−６−ニトロイミダゾ［１，２−ａ］ピリジン、７−ニトロインダゾールであり、より好ましくは、３−ブロモ−７−ニトロインダゾール、３−ヨード−７−ニトロインダゾールであり、さらに好ましくは、３−ブロモ−７−ニトロインダゾールである。
【００２９】
また、本発明にかかる「含窒素縮合芳香族複素環式化合物」には、薬理学上許容される塩、水和物又は溶媒和物も含まれる。このような薬理学上許容される塩としては、特に制限はなく、当該化合物の構造等に応じて適宜選択することができ、例えば、酸付加塩（塩酸塩、硫酸塩、臭化水素塩、硝酸塩、硫酸水素酸塩、リン酸塩、酢酸塩等）、塩基付加塩（ナトリウム塩、カリウム塩、亜鉛塩、カルシウム塩等）が挙げられる。また、水和物又は溶媒和物としては、特に制限はなく、例えば、含窒素縮合芳香族複素環式化合物又はその塩１分子に対し、０．１〜１０分子の水又は溶媒が付加したものが挙げられる。
【００３０】
さらに、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物には、互変異性体、幾何異性体、不斉炭素に基づく光学異性体、立体異性体等の総ての異性体及び異性体混合物が含まれる。さらに、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物が生体内で酸化、還元、加水分解、アミノ化、脱アミノ化、水酸化、リン酸化、脱水酸化、アルキル化、脱アルキル化、抱合等の代謝を受けてなお所望の活性を示す化合物をも包含し、また本発明は生体内で酸化、還元、加水分解等の代謝を受けて本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物を生成する化合物をも包含する。
【００３１】
上述の通り、本発明において好適に用いられる含窒素縮合芳香族複素環式化合物（３−ブロモ−７−ニトロインダゾール等）は、いずれもそれら自体既知であり、市販されている。これらの化合物以外の本発明で用いられる化合物は、既知化合物として存在する場合は、それらを入手し、またそうでない場合には、それらが類似する既知化合物に準じて、当業者であれば適宜製造することができる。
【００３２】
本発明において、「クリプトクロム」とは、青色光を吸収する青色光受容体タンパク質を意味し、例えば、ＣＲＹ１タンパク質、ＣＲＹ２タンパク質が挙げられる。また、その由来としては特に制限はないが、植物由来のものが好適に用いられ、典型的に、シロイヌナズナＣＲＹ１タンパク質は、ＮＣＢＩ  Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＮＰ＿５６７３４１で特定されるアミノ酸配列からなるタンパク質（ＮＣＢＩ  Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＮＭ＿１１６９６１で特定されるヌクレオチド酸配列がコードするタンパク質）であり、またシロイヌナズナＣＲＹ２タンパク質は、ＮＣＢＩ  Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＮＰ＿１７１９３５で特定されるアミノ酸配列からなるタンパク質（ＮＣＢＩ  Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＮＭ＿１００３２０で特定されるヌクレオチド酸配列がコードするタンパク質）である。
【００３３】
本発明における「クリプトクロムの機能の抑制」には、機能の完全な抑制（阻害）及び部分的な抑制の双方が含まれる。また、本発明において抑制される「クリプトクロムの機能」としては、例えば、クリプトクロムが関与する青色光シグナル伝達、及び、植物においては、該シグナル伝達によって誘導される光形態形成が挙げられる。クリプトクロムが関与する青色光シグナル伝達としては、例えば、クリプトクロムにおける青色光の受光、該受光によって生じるクリプトクロムのリン酸化、該リン酸化によって誘導されるクリプトクロムの核から細胞質への移行、該リン酸化によって誘導されるクリプトクロムと、ＳＰＡ１及びＣＯＰ１からなる複合体、ＣＩＢ１又はＭＹＢＬとの結合、前記他のタンパク質とクリプトクロムとの結合によって生じる転写因子（ＨＹ５、ＣＯ等）の発現安定化、青色光制御遺伝子の発現制御（例えば、後記表１に示す遺伝子の発現制御）が挙げられる。また、植物における光形態形成としては、例えば、胚軸伸長阻害、双葉の拡張（展開）、双葉（子葉）の開閉、気孔開口、色素（アントシアニン）合成、脱黄化、開花期の制御、及び、単子葉植物における子葉鞘等の実生の伸長阻害が挙げられる。
【００３４】
＜農業用組成物、植物の生長促進方法＞
上述の本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物は、後述の実施例において示す通り、青色光による胚軸伸長阻害を抑制し、該伸長を促進し、ひいては植物の生長を促進する作用を有する。
【００３５】
したがって、本発明は、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物を有効成分として含有する、青色光を含む光の照射下で植物の生長を促進するための組成物（農業用組成物）、並びに植物の生長を促進させるための方法であって、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物によって植物を処理し、青色光を含む光の照射下で該植物を生育させる方法（植物生長促進方法）を提供するものである。
【００３６】
本発明において生長促進の対象となる「植物」は特に制限はなく、例えば、双子葉植物（シロイヌナズナ、ダイズ等）及び単子葉植物（ソルガム、イネ、トウモロコシ、コムギ等）を含む被子植物、裸子植物、コケ植物、シダ植物、草本植物、並びに木本植物が挙げられる。これら植物の遺伝子組み換え体やゲノム編集体（例えば、除草剤耐性作物、害虫耐性作物、病害耐性作物、食味向上作物、保存性向上作物、収量向上作物）であっても良い。
【００３７】
また、本発明で利用される「青色光」の波長は、３５０ｎｍ〜５００ｎｍ、好ましくは４５０ｎｍ〜５００ｎｍである。また本発明で利用される「青色光」の光量子束密度（フルエンスレート）は特に制限はなく、照射する植物の種類や状態などによって適宜調整し得るが、好ましくは、１〜５００μｍｏＬｍ−２ｓ−１であり、より好ましくは１〜１００μｍｏＬｍ−２ｓ−１、さらに好ましくは１〜５０μｍｏＬｍ−２ｓ−１であり、より好ましくは１〜１５μｍｏＬｍ−２ｓ−１であり、さらに好ましくは５〜１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１である。
【００３８】
また、本発明において「青色光を含む光」とは青色光のみであってもよいが、青色光に加えて、さらに波長が６５０ｎｍ〜７００ｎｍの赤色光、波長が７００ｎｍ〜７７０ｎｍの遠赤色光等が混合した光であってもよく、いわゆる白色光であってもよい。
【００３９】
本発明において、前記光の照射を行うために用いる光源としては、特に制限はなく、発光ダイオード（ＬＥＤ）、レーザー光源、蛍光ランプ（直管形、コンパクト形）、電球形蛍光ランプ、高圧放電ランプ、メタルハライドランプ等が利用できる。また、かかる人工光源に限らず、本発明においては太陽光も利用することができる。さらに、所望により所定波長域の光を選択的に利用するために光フィルタを、これら光源に組み合わせて植物に照射することもできる。また、本発明にかかる光源としては、波長選択が容易で、有効波長域の光エネルギーの占める割合が大きく、またコスト、長寿命性等の観点からから、ＬＥＤを利用することが好ましい。
【００４０】
本発明の農業用組成物には、上述の含窒素縮合芳香族複素環式化合物以外にも、農薬等において通常用いられている担体、乳化剤、分散剤、展着剤、湿展剤、固着剤、崩壊剤等の補助剤を含有させることができる。
【００４１】
担体としては、例えば、水、エタノール、メタノール、イソプロパノール、ブタノール、エチレングリコール、プロピレングリコール等のアルコール類、アセトン、メチルエチルケトン、シクロヘキサノン等のケトン類、酢酸エチル等のエステル類、並びに、固体担体、例えば、タルク、ベントナイト、クレー、カオリン、ケイソウ土、ホワイトカーボン、バーミキュライト、消石灰、ケイ砂、硫安、尿素等が例示される。
【００４２】
担体以外の補助剤としては、通常、界面活性剤が用いられ、例えば、陰イオン系界面活性剤、陽イオン系界面活性剤、非イオン系界面活性剤又は両性イオン系界面活性剤が挙げられ、これらは単独又は２種以上を混合して使用することができる。
【００４３】
本発明の農業用組成物の剤形は特に限定されず、乳剤、懸濁剤、粉剤、水和剤、水溶剤、粒剤、ペースト剤、エアゾール剤等が挙げられる。
【００４４】
本発明の農業用組成物中の含窒素縮合芳香族複素環式化合物の含有量は、対象植物の種類、対象植物の生育状況、天候、環境条件、剤形、使用方法（散布処理、土壌処理、種子処理、水耕処理等）、使用場所、使用時期等によって異なるが、当業者であればこれらの条件に合わせて適宜調整することができる。
【００４５】
また、本発明の植物生長促進方法においては、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物をそのまま、又は水等で適宜希釈し、若しくは懸濁させた形で植物生長促進効果発現に有効な量を対象植物に散布（茎葉散布等）、塗布又は注入処理、対象植物の周辺土壌への散布又は灌注処理、対象植物の種子に種子処理（粉衣又は浸漬処理等）等を行うことにより、所望の植物の生長を促進させることができる。
【００４６】
なお、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物にて植物を処理する時期（使用時期）としては特に制限はなく、対象の植物に合わせて適宜調整すればよいが、好ましくは、種子、苗の段階である。また、種又は苗を浸漬処理する際の含窒素縮合芳香族複素環式化合物の濃度としても特に制限なく、対象の植物に合わせて適宜調整すればよいが、好ましくは０．１〜１０μＭであり、より好ましくは０．２５〜７．５μＭであり、さらに好ましくは２．５〜５μＭである。
【００４７】
さらに、本発明の植物生長促進方法における、青色光を含む光の照射時間は特に制限はなく、対象植物の種類、対象植物の生育状況等に合わせて適宜調整することができるが、好ましくは１２〜２４時間／日であり、より好ましくは２４時間／日である。
【００４８】
本発明の農業用組成物の使用においては、病害虫及び雑草等の防除、効果の増強、植物の薬害軽減等の目的で、農園芸用殺菌剤、農園芸用殺虫剤、農園芸用除草剤、共力剤及び薬害軽減剤等を同時に使用することができる。
【００４９】
＜オプトジェネティクス用組成物＞
本発明の組成物は、上記農業目的に限らず、研究目的（例えば、インビトロやインビボの実験）に用いられる試薬等の形態でもあり得、例えば、オプトジェネティクス（光遺伝学）においても好適に用いることができる。
【００５０】
オプトジェネティクスとは、クリプトクロム等の特定波長の光によって活性化されるタンパク質（光活性化タンパク質）を標的細胞に導入し又は発現させ、当該細胞の機能を前記特定波長の光を照射することによって制御する技術である。その一方、後述の実施例において示す通り、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物は、クリプトクロムに結合し、該光活性化タンパク質の青色光照射による活性化を抑制する作用を有する。したがって、クリプトクロムを用いたオプトジェネティクスにおいて制御される標的細胞の機能を、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物によって更に制御することが可能となる。
【００５１】
すなわち、本発明は、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物を有効成分として含有する、青色光を含む光の照射によって活性化される細胞の機能を抑制するための組成物であって、前記細胞は、クリプトクロム又は該タンパク質を含む融合タンパク質を含む細胞であり、かつ前記機能は、青色光を含む光の照射による前記タンパク質の活性化に伴って活性化される機能である、組成物を提供するものである。
【００５２】
また、本発明は、青色光を含む光の照射によって活性化される細胞の機能を抑制するための方法であって、本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物を前記細胞に導入する工程を含み、前記細胞は、クリプトクロム又は該タンパク質を含む融合タンパク質を含む細胞であり、かつ前記機能は、青色光を含む光の照射による前記タンパク質の活性化に伴って活性化される機能である、方法を提供するものである。
【００５３】
上記細胞の機能を抑制するための組成物、並びに方法において、「本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物」、「クリプトクロム」及び「青色光を含む光の照射」については上記の通りである。
【００５４】
本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物によって、青色光を含む光の照射によって活性化される機能が抑制される「細胞」としては、その種類（例えば、神経細胞）、その由来（例えば、ヒト由来、非ヒト哺乳動物由来）については特に制限はなく、また細胞のみならず、その集合体（例えば、組織、臓器、個体）も本発明にかかる「細胞」には含まれる。
【００５５】
前記「機能」としては特に制限はなく、例えば、転写開始、遺伝子組み換え、ゲノム編集、ヒストンのアセチル化、ヌクレオチドの生合成、遺伝子発現、シグナル伝達、アクチンの重合促進、タンパク質分解、タンパク質輸送、タンパク質分泌、神経の活性化又は抑制が挙げられる。また、当業者であれば公知のオプトジェネティクス（例えば、Ｋｅｎｎｅｄｙ  ＭＪ．ら、Ｎａｔ  Ｍｅｔｈｏｄｓ．、２０１０年１２月、７巻、１２号、９７３〜９７５ページ、Ｋｏｎｅｒｍａｎｎ  Ｓ．ら、Ｎａｔｕｒｅ、２０１３年８月２２日、５００巻、７４６３号、４７２〜４７６ページ、Ｎｉｈｏｎｇａｋｉ  Ｙ．ら、Ｃｈｅｍ  Ｂｉｏｌ．、２０１５年２月１９日、２２巻、２号、１６９〜１７４ページ、Ｋｙｕｎｇ  Ｔ．ら、Ｎａｔ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．、２０１５年１０月、３３巻、１０号、１０９２〜１０９６ページ、特開２０１１−１４２８２８号公報、Ｇａｕｔｉｅｒ  Ａ．ら、Ｎａｔ  Ｃｈｅｍ  Ｂｉｏｌ．、２０１４年７月、１０巻、７号、５３３〜５４１ページ）を適宜参照して、所望の機能が、前記細胞において青色光を含む光の照射によって活性化されるよう調製することができる。
【００５６】
青色光を含む光の照射によって前記機能が活性化されるために、前記細胞に含まれるタンパク質としては、クリプトクロム自体であってもよく、クリプトクロムを含む融合タンパク質であってもよい。なお、かかるタンパク質を含む細胞の調製としては、特に制限はなく、前記タンパク質をコードするＤＮＡ（例えば、ウィルスベクター）を前記細胞に導入することにより調製してもよく、また前記タンパク質を直接細胞内に導入（例えば、マイクロインジェクション、エレクトロポレーション）することにより調製することができる。
【００５７】
「クリプトクロムを含む融合タンパク質」としては、クリプトクロムの全部を含む融合タンパク質であってもよく、またその一部（例えば、光感受性領域）を含む融合タンパク質であってもよい。さらに融合タンパク質に含まれるクリプトクロム以外のペプチドとしては特に制限はなく、上記所望の機能に応じて適宜選択されるものであり、例えば、ＤＮＡ結合ドメイン（例えば、ＴＡＬＥ、Ｚｉｎｃフィンガードメイン、ＣＲＩＳＰＥＲ−Ｃａｓ、Ｇａｌ４結合ドメイン）、ＤＮＡ組換え酵素（例えば、Ｃｒｅ、ＦｏｋＩ）、転写活性化因子（例えば、ＶＰ１６、ＶＰ６４）、転写抑制因子（例えば、ＫＲＡＢ）、ヒストン修飾酵素、チャネルタンパク質、チャネル制御因子（例えば、ＳＴＩＭ１）、ＧＴＰａｓｅ（例えば、ＲａｃＩ）が挙げられる。
【００５８】
本発明にかかる含窒素縮合芳香族複素環式化合物の細胞への導入は、通常、当該化合物の溶液（溶媒としては、水、生理食塩水、又は該細胞の培地）を前記細胞に接触（塗布、浸漬）することによって達成することができるが、マイクロインジェクション、エレクトロポレーション等を用いて、前記細胞に強制的に導入することもできる。
【実施例】
【００５９】
以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。また、本実施例は、以下に示す材料及び方法を用いて行った。
【００６０】
＜植物材料及び生長条件＞
シロイヌナズナの変異体は、Ｃｏｌｕｍｂｉａ（Ｃｏｌ−０）又はＷａｓｓｉｌｅｗｓｋｉｊａ（Ｗｓ）をバックグランドとするものを用いた。シロイヌナズナの光形態形成変異体の種のストック（ｐｈｙＡｐｈｙＢ、ｃｒｙ１ｃｒｙ２、ｃｒｙ１、ｃｒｙ２、ｈｙ５、ｃｏｐ１−４、ｃｏｐ１−６、ｈｆｒ１及びｌａｆ１）は、シロイヌナズナバイオリソースセンター（オハイオ州立大学、コロンバス）より入手した。過剰発現株ＣＲＹ１−ＯＸ及びＣＲＹ２−ＯＸの種（Ｌｉｎ，Ｃ．ら、Ｐｌａｎｔ  Ｊ．、１９９６年、１０巻、８９３〜９０２ページ、Ｌｉｎ，Ｃ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．、１９９８年、９５巻、２６８６〜２６９０ページ）は、Ｄｒ．Ｃｈｅｎｔａｏ  Ｌｉｎより譲り受けた。また、ｈｙ５ｈｙｈの種は、Ｄｒ．Ｘｉｎｇ−Ｗａｎｇ  Ｄｅｎｇより譲り受けた（Ｈｏｌｍ，Ｍ．ら、Ｇｅｎｅ  Ｄｅｖ．、２００２年、１６巻、１２４７〜１２５９ページ）。
【００６１】
そして、このようにして調製した種は、消毒し、１／２ｘムラシゲスクーグ培地、ガンボーグビタミン培地（ＭＳ；ＪＲＨ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｌｅｎｅｘａ，ＫＳ）及び２−モルホリノエタンスルホン酸（ＭＥＳ）、ｐＨ５．７を組成とする液体培養アッセイ又は１％アガーの寒天培地に植えた。そして、プレートは４℃の暗室にて、発芽する迄の３日間維持した。
【００６２】
＜光源及び強度＞
シロイヌナズナの苗には、単色光ＬＥＤにて、青色光、赤色光又は遠赤色光を照射した。胚軸伸長における異なる青色光の強度の影響を試験するため、光量子密度１、５、１０又は１５μｍｏＬｍ−２ｓ−１の青色光（波長：４５０ｎｍ）を用いた。赤色光（波長：６６０ｎｍ）及び遠赤色光（波長：７３０ｎｍ）に関しては、光量子密度を各々１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１及び１μｍｏＬｍ−２ｓ−１にして用いた。
【００６３】
＜化合物ライブラリー、及び液体培養アッセイによるスクリーニング＞
スクリーニングには、計３７６０の化学物質からなるライブラリー（Ｔｈｅ  Ｌｉｂｒａｒｙ  ｏｆ  Ａｃｔｉｖｅ  Ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ  ｏｎ  Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ（ＬＡＴＣＡ））を用いた。このライブラリーには、シロイヌナズナの形態を指標とするスクリーニングにおいて活性が認められた化合物、酵母における生長阻害活性が認められた化合物、除草剤、一般的な阻害剤、植物ホルモン、及びその他の生理活性化号物が含まれている。
【００６４】
そして、１／２ｘムラシゲスクーグ培地、ガンボーグビタミン培地（ＭＳ；ＪＲＨ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｌｅｎｅｘａ，ＫＳ）及びＭＥＳ、ｐＨ５．７を組成とする液体培地５０μＬにて、野生型Ｃｏｌ−０の種を４〜６個生長させ、ＬＡＣＴＡ化学物質を対象とする大規模スクリーニングを行った。
【００６５】
より具体的には、全ての化学物質を対象とする第一スクリーニングは、液体培地を添加した９６ウェルプレートを用いて行った。また、各プレートにおいて、第１カラムは１：１００になるよう希釈したジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）にて処理した。さらに、化学物質を最終濃度２．５μＭになるよう、種を種いた培地に添加し、プレートに青色光を連続的に６日間照射した。そして、苗の画像は、オリンパス社製ＩＸ−９１カメラにて取得した。
【００６６】
＜胚軸の長さを指標とする化学物質の評価＞
３Ｂ７Ｎ及びそのアナログ、並びにＮＯ消去剤をＤＭＳＯにて溶解し、５０℃以下の温度の寒天培地に添加し、混合して４℃にて保持した上で、苗の生長に供した。
【００６７】
＜胚軸の長さの測定＞
胚軸の画像は、各単色光を６日間照射した後に、ＡＦ−Ｓ  ＤＸ  Ｚｏｏｍ−Ｎｉｋｋｏｒ  １８−７０ｍｍ  ｆ／３．５−４．５Ｇ  ＩＦ−ＥＤレンズを備えたニコン社製のカメラにて取得した。全ての測定値は、ＩｍａｇｅＪソフトウェアを用いて算出した。定量的データは、少なくとも２５の苗に対して、各条件を計３回繰り返して処理した結果の平均値として示す。
【００６８】
異なる光源間の胚軸測定を同期させるため、苗は赤色光（１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１）に３時間曝露させた後に、６時間暗下に置き、その後異なる光源下にて６日間、連続的な光に曝露させた。
【００６９】
統計解析は、胚軸測定結果についてはｏｎｅ−ｗａｙ  ＡＮＯＶＡを用いて行った。また、３Ｂ７Ｎ化合物処理とＤＭＳＯ処理とにおける、胚軸の長さの変化の有意性についてはスチューデントｔ検定（Ｐ＜０．０５）にて判定した。
【００７０】
＜遺伝子発現プロファイリング＞
青色光（１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１）照射下、最終濃度が２．５μＭになるように化学物質を添加した寒天培地にて４日間生長させた苗を回収して用いた。なお、野生型Ｃｏｌ−０バックグランド及びｃｒｙ１ｃｒｙ２変異体について、化学物質処理又は非処理を３回繰り返して（生物学的反復）、発現プロファイリングを行った。
【００７１】
回収した苗から、トータルＲＮＡは、ＲＮｅａｓｙ  Ｐｌａｎｔ  Ｍｉｎｉ  ＲＮＡキット（Ｑｉａｇｅｎ社製）を用い、その添付の説明書に従って抽出した。トータルＲＮＡの純度及び完全性については、ＮａｎｏｄｒｏｐＮＤ−１０００スペクトロメーターｖｅｒｓｉｏｎ  ３．１．０（ＮａｎｏＤｒｏｐ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）及びＲＮＡ  ６０００  Ｎａｎｏ  Ｃｈｉｐ  ｏｎ  ａ  Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ（Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用い、モニターした。
【００７２】
次いで、約１μｇのトータルＲＮＡを、Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｑｕｉｃｋ  Ａｍｐラベリングキットを用いてＣｙ３にて標識し、各６００ｎｇをマイクロアレイハイブリダイゼーションに供した。そして、Ａｇｉｌｅｎｔ  スキャナーＧ２５０５Ｃ  ＵＳ４５１０３０７７を用いてイメージをスキャンし、得られたスキャンイメージからＦｅａｔｕｒｅ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎソフトウェアを用いて全てのデータを取得した。
【００７３】
ｒａｗファイルは、ＧｅｎｅＳｐｒｉｎｇ  ｖｅｒｓｉｏｎ  １２．１−ＧＸ（Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用い、７５パーセンタイルにてシグナル強度を正規化し、シグナルをｌｏｇ２変換することにより、精査した。
【００７４】
統計解析においては、Ｂｅｎｊａｍｉｎｉ  ａｎｄ  Ｈｏｃｈｂｅｒｇ  ＦＤＲにて補正したｔ検定のＰ値が０．０５以下となるエンティティを、有意な発現変化が生じているものとして更に同定した。
【００７５】
２倍以上の発現変化を示した遺伝子を、野生型バックグランドにおいて同定し、またｃｒｙ１ｃｒｙ２変異体における発現にフィルタをかけるため、更に比較した。
【００７６】
なお、この研究のマイクロアレイデータは、ＮＣＢＩの遺伝子発現オムニバスに提出してある。
【００７７】
＜遺伝子アノテーション＞
用いた主な化学物質の性質は、ヒト及びマウスにおいて知られた機能を有する。そのため、進化上関連するタンパク質のファミリー及び同じ機能を有するタンパク質のサブファミリーに基づきハイスループット解析を促進するため、タンパク質（遺伝子）を分類するように設計されているＰＡＮＴＨＥＲ  Ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎシステムを用いて、遺伝子を注釈付けした。
【００７８】
（実施例１）
＜シロイヌナズナの生長を促進するための低分子化合物のスクリーニング＞
シロイヌナズナの苗の早期発育を促進するための低分子化合物を同定するため、ケミカルライブラリー中の各化学物質（３６８０種）の存在下、野生型（ＷＴ）（Ｃｏｌ−０）の苗を生長させた。すなわち、各化学物質２．５μＭの濃度にて苗を処理し、連続的な青色光照射下、９６ウェルマイクロタイタープレートに添加した液体培地の中で生長させた。そして、化学物質処理してから６日後の苗を、ＤＭＳＯ処理したコントロールの苗と比較し、８２種の化合物を胚軸伸長を引き起こす化合物として選抜した。
【００７９】
次に、２回目のスクリーニングにおいては、更に様々な波長の光（青色光、赤色光、又は遠赤色光）の照射下にて、野生型の種を候補化合物と共に培養した。そして、異なる光照射における苗の形状を比較した結果、青色光照射下でのみ胚軸伸長を促進させる特異的な化合物として、３−ブロモ−７−ニトロインダゾール（３Ｂ７Ｎ、下記化学式で表される化合物）を同定した（図２のＡ参照のこと）。
【００８０】
【化３】
2018065766.tif 000004
【００８１】
また、上記液体培養アッセイにおける結果を確認するため、野生型の種を２．５μＭ  ３Ｂ７Ｎ含有寒天培地にて育てた。得られた結果を図２のＢに示す。
【００８２】
図２に示した結果から明らかな通り、３Ｂ７Ｎは青色光照射下のみにおいて胚軸生長を促進させ、暗、赤色光、遠赤色光では促進させることはできなかった。
【００８３】
したがって、これらの結果から、３Ｂ７Ｎによる胚軸伸長の制御は、青色光特異的な事象であることが示された。
【００８４】
（実施例２）
＜苗の発育阻害における、化合物の濃度及び光強度の依存性についての検証＞
３Ｂ７Ｎを異なる量、苗の培地に添加することによって、当該苗の生理学的変化の程度も異なる可能性がある。そこで、シロイヌナズナの野生型の苗を、３Ｂ７Ｎの濃度希釈系列にて処理し、連続的な青色光照射下（光量子密度：１〜１５μｍｏＬｍ−２ｓ−１）にて育てた。得られた結果を図３に示す。
【００８５】
図３に示した結果から明らかな通り、照射する青色光の光強度増大に応じて胚軸伸長は比例的に阻害された。すなわち、３Ｂ７Ｎで処理しなかった苗（ＤＭＳＯで処理したコントロール）において、１μｍｏＬｍ−２ｓ−１の青色光照射下における胚軸が最長であり、青色光の光強度の増大に伴って短くなっていった。また、０．５μＭ  ３Ｂ７Ｎで処理した苗は、いずれの光強度の条件下においても、コントロールより胚軸は長くなった。この結果から、３Ｂ７Ｎは少なくとも０．５μＭあれば、胚軸の伸長を促進できることが、示された。
【００８６】
さらに、光強度の増大に応じて胚軸伸長は低減する傾向にあるにも関わらず、図３に示す通り、２．５μＭ以上の濃度の３Ｂ７Ｎにて処理した苗の長さは、様々な光強度の青色光照射下で大概同じであった。これらの結果から、青色光照射下、胚軸伸長に阻害的効果を示す３Ｂ７Ｎの飽和濃度は、２．５μＭであることが示された。
【００８７】
（実施例３）
＜３Ｂ７Ｎアナログによる胚軸伸長への影響についての検証＞
３Ｂ７Ｎは、哺乳類における神経型一酸化窒素（ＮＯ）合成酵素の阻害剤として知られている（Ｂｅｄｒｏｓｉａｎ，Ｔ．Ａ．ら、ＨｏｒｍＢｅｈａｖ．、２０１２年、６１巻、１７６〜１８０ページ）。そこで、青色光照射への胚軸の反応における、ＮＯ阻害効果について調べた。
【００８８】
すなわち、３Ｂ７Ｎの代わりに、ＮＯ消去剤として知られる、Ｎω−ｎｉｔｒｏ−ｌ−ａｒｇｉｎｉｎｅ  ｍｅｔｈｙｌ  ｅｓｔｅｒ  ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ（Ｌ−ＮＡＭＥ）、ｄｉｅｔｈｙｌａｍｉｎｅ  ＮＯＮＯａｔｅ  ｓｏｄｉｕｍ（ＤＥＡ−ＮＯＮＯａｔｅ）又は２−（４−ｃａｒｂｏｘｙｐｈｅｎｙｌ）−４，４，５，５−ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌｉｍｉｄａｚｏｌｉｎｅ−１−ｏｘｙｌ−３−ｏｘｉｄｅ（Ｃ−ＰＴＩＯ）にて、シロイヌナズナの種を処理し、上記同様に青色光照射下にて生長させた。得られた結果を図４に示す。
【００８９】
図４に示した結果から明らかなように、添加濃度を５μＭとする３Ｂ７Ｎで処理した苗のみにおいて、青色光照射下、胚軸伸長が認められた。一方、Ｌ−ＮＡＭＥ，Ｃ−ＰＴＩＯ又はＤＥＡ−ＮＯＮＯａｔｅで処理した苗の胚軸の長さが、コントロールとしてＤＭＳＯで処理したそれと同様であった。したがって、ＮＯ制御は、３Ｂ７Ｎによるシロイヌナズナ野生型苗における表現型の変化に寄与するものでないことが示唆される。
【００９０】
次に、３Ｂ７Ｎの構造とそれによって誘導される表現型との関係を分析するため、３Ｂ７Ｎの６つのアナログを、ナカライテスク、和光純薬工業株式会社及びシグマアルドリッチから購入した。なお、下記化学式にて示す通り、それらアナログは全て、２つの主たるコア構造としてジアゾールとベンゼンとを有する。しかし、これらコア構造に付加する官能基の有無、又は位置において異なる。
【００９１】
【化４】
2018065766.tif 000005
【００９２】
そして、最終濃度２．５μＭにて調整したこれらアナログにてシロイヌナズナの種を処理し、上記同様、青色光照射下にて生長させた。得られた結果を図５に示す。
【００９３】
図５に示した結果から明らかなように、３種のアナログ（Ａ２、Ａ５、Ａ６）は、ＤＭＳＯにて処理したコントロールと比較して、青色光による胚軸伸長の阻害に対して効果を発揮することで、胚軸をより長くした。特に、３Ｂ７ＮのＢｒ基がＩ基に置換されているＡ６が、それら陽性アナログの中において、青色光による胚軸伸長の阻害に対して最も強い効果を発揮した。一方、ＮＯ２基を除去したもの（Ａ１）又はＮＯ２基を二トリル部分に置換したもの（Ａ４）においては、ベンゼンとジアゾールとを組み合わせたもの（Ａ３）同様に、完全に前記効果が消失した。
【００９４】
したがって、ジアゾール部分はハロゲン原子又は水素原子によって置換されており、さらにベンゼン部分においてはＮＯ２基によって置換されていることが、青色光による胚軸伸長の阻害に対して効果を発揮する上で必要であることが明らかになった。
【００９５】
なお、図には示していないが、前記３種の陽性アナログは、赤色光又は遠赤色光の照射下における胚軸反応において、わずかな変化しか生じさせず、これら陽性アナログにおいて、コントロールよりも胚軸の長さが長くなるものはなかった。
【００９６】
また、図５に示す通り、これら３種のアナログは、青色光シグナル伝達において異なるレベルの阻害効果を発揮する。かかるレベルを、３Ｂ７Ｎ処理における生長を基準として評価した。その結果、Ａ５のスコアは０．７であり、次いで、Ａ６のスコアは０．３であり、Ａ２のスコアは０．２３であった。
【００９７】
（実施例４）
＜クリプトクロムが調節する青色光シグナル伝達と３Ｂ７Ｎによる胚軸伸長促進との関連性についての検証＞
３Ｂ７Ｎによる胚軸変化に関与する光受容体を同定するため、光受容体の変異体の種を３Ｂ７Ｎに処理し、上記同様に青色光照射下にて生長させた。得られた結果を図６に示す。
【００９８】
図６に示す通り、２重変異体ｐｈｙＡｐｈｙＢ及びｃｒｙ１ｃｒｙ２は、それら各コントロール処理と比較して、３Ｂ７Ｎに対する胚軸の反応において異なるものであった。すなわち、３Ｂ７Ｎ処理によって、ｐｈｙＡｐｈｙＢは、連続的な青色光照射下で、胚軸の長さが長くなった。一方、ｃｒｙ１ｃｒｙ２に関しては、胚軸伸長において有意な変化が認められなかった。したがって、クリプトクロム（ＣＲＹ１、ＣＲＹ２）が調節する青色光シグナル伝達が、３Ｂ７Ｎによる胚軸伸長の促進において必要であることが示唆された。
【００９９】
そこで、３Ｂ７Ｎ処理における胚軸伸長の制御において、各クリプトクロムの役割を更に理解するため、単独変異体、ＣＲＹ１遺伝子又はＣＲＹ２遺伝子の過剰発現体（ＣＲＹ１−ＯＸ及びＣＲＹ２−ＯＸ）について評価した。得られた結果を図６に示す。
【０１００】
図６に示した結果から明らかなように、ｃｒｙ２変異体は３Ｂ７Ｎ添加により胚軸の長さが２倍になった一方で、ｃｒｙ１変異体においては有意な変化は認められなかった。また、過剰発現体ＣＲＹ１−ＯＸ及びＣＲＹ２−ＯＸにおいては、胚軸の長さにおいていくらかの変化が認められ、コントロールと比較した場合、ＣＲＹ２−ＯＸは、ＣＲＹ１−ＯＸよりも、３Ｂ７Ｎ処理によって胚軸の長さがより長くなった。
【０１０１】
したがって、ＣＲＹ１及びＣＲＹ２が共に調節する青色光シグナル伝達に３Ｂ７Ｎは関与すること、並びに３Ｂ７Ｎによって影響を受ける主な光受容体はＣＲＹ１であることが示された。
【０１０２】
（実施例５）
＜３Ｂ７Ｎによるクリプトクロムシグナル伝達の阻害機構についての解析＞
クリプトクロム（ＣＲＹｓ）等の光受容体は光を受ける。そして、活性型の光受容体は、他の構成分子と相互作用し、結果として転写因子（ＴＦｓ）の安定又は分解が生じ、光調節遺伝子の発現における組織的な変化が引き起こされることになる（Ｚｈａｎｇ，Ｈ．、Ｐｌａｎｔ  Ｊ．、２０１１年、６５巻、３４６〜３５８ページ）。例えば、図１に示す通り、クリプトクロムシグナル伝達を介した光形態形成の引き金となる、Ｅｌｏｎｇａｔｅｄ  Ｈｙｐｏｃｏｔｙｌ  ５（ＨＹ５）タンパク質の安定性を決定することに、ＣＲＹｓとＣＯＰ１との相互作用が関与することが知られている（Ｌｉ，Ｑ．Ｈ  ａｎｄ  Ｙａｎｇ，Ｈ．Ｑ．、Ｐｈｏｔｏｃｈｅｍ  Ｐｈｏｔｏｂｉｏｌ．、２００７年、８３巻、９４〜１０１ページ）。
【０１０３】
そこで、クリプトクロムが関与するシグナル伝達における３Ｂ７Ｎによる阻害機構を解析するため、ＣＯＰ１の劣性対立遺伝子を有する２種のシロイヌナズナを用いて、上記同様３Ｂ７Ｎの胚軸伸長への影響を評価した。得られた結果を図７に示す。
【０１０４】
図７に示した結果から明らかなように、３Ｂ７Ｎ処理後、青色光照射下、ｃｏｐ１−４及びｃｏｐ１−６においては共に、胚軸伸長における有意な変化が認められなかった。しかしながら、ｈｙ５変異体においては、３Ｂ７Ｎ処理によって胚軸の伸長が認められた。これらの結果から、３Ｂ７Ｎによるクリプトクロムシグナル伝達の阻害は、ＣＯＰ１の上流において生じていることが示唆される。
【０１０５】
ＨＹ５のホモログ（ＨＹＨ）タンパク質は、部分的にＨＹ５と重複する機能を有しているということが報告されている（Ｈｏｌｍ，Ｍ．ら、Ｇｅｎｅ  Ｄｅｖ．、２００２年、１６巻、１２４７〜１２５９ページ）。そこで、２重変異体ｈｙ５ｈｙｈを用いて更なる解析を行った結果、３Ｂ７Ｎ処理による胚軸伸長において、僅かな増加が認められた。
【０１０６】
また、ＨＹ５及びＨＹＨの他にも、ＨＦＲ１及びＬＡＦ１は、シロイヌナズナの光形態形成に関与することが報告されている（Ｙａｎｇ，Ｊ．ら、Ｐｌａｎｔ  Ｃｅｌｌ．、２００５年、１７巻、８０４〜８２１ページ、Ｊａｎｇ，Ｉ−Ｃ．ら、Ｇｅｎｅｓ  Ｄｅｖ．、２００７年、２１巻、２１００〜２１１１ページ）。そこで、これらタンパク質についても上記同様に分析した。得られた結果を図８に示す。
【０１０７】
以上の結果から、これら下流の制御因子は、３Ｂ７Ｎ処理によるｈｙ５ｈｙｈの胚軸の長さを僅かに増加させることに貢献していることが想定される。
【０１０８】
（実施例６）
＜３Ｂ７Ｎによる双葉の拡張への影響についての解析＞
黄化したシロイヌナズナの苗の形態として、胚軸の伸長と、頂端フック（ａｐｉｃａｌ  ｈｏｏｋ）の屈曲の強まり（茎の頂端分裂組織がフックを形成し、双葉が小さく閉じたままの状態にあること）とが挙げられる（Ｊｏｓｓｅ，Ｅ−Ｍ．  ａｎｄ  Ｈａｌｌｉｄａｙ，Ｋ．Ｊ．、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｂｉｏｌｏｇｙ、２００８年、１８：Ｒ１１４４―１１４６）。
【０１０９】
そこで、上述の胚軸伸長に加え、３Ｂ７Ｎの濃度及び青色光の強度という２つの異なるパラメーター下において、双葉の拡張について観察した。得られた結果を図９に示す。
【０１１０】
図９に示した結果から明らかなように、２．５μＭ  ３Ｂ７Ｎにて処理し、連続的な青色光（１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１）照射下にて６日育てた苗において、双葉は小さくまた開いたものであった。
【０１１１】
また、３Ｂ７Ｎにて処理せず、青色光（５μｍｏＬｍ−２ｓ−１）照射下にて育てた野生型の苗において、双葉は拡張され、また開いたものであったが、２．５μＭ又は１５μＭ３Ｂ７Ｎにて処理した苗は小さい双葉を有していた。また１５μＭの３Ｂ７Ｎにて処理した苗においては、しばし閉じた双葉が観察された。
【０１１２】
以上の結果から、青色光が調節する胚軸伸長の抑制のみならず、双葉の拡張をも、３Ｂ７Ｎは阻害することが示された。
【０１１３】
（実施例７）
＜３Ｂ７Ｎによって制御された胚軸伸長における、転写プロファイル＞
青色光による胚軸伸長の抑制及び双葉の拡張に対する、３Ｂ７Ｎの阻害効果について理解すべく、２つの独立したマイクロアレイ実験を行った。
【０１１４】
第一に、青色光（１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１）照射下における苗の発現プロファイルに関し、３Ｂ７Ｎにて処理したものと、その派生物（Ａ１又はＡ２）にて処理したものとで比較した。なお、生物学的反復として、各化合物による処理は３回ずつ行った。また、各一対比較（Ａ１／ＤＭＳＯ，Ａ２／ＤＭＳＯ及び３Ｂ７Ｎ／ＤＭＳＯ）においては、全ての遺伝子の発現をモデレートスチューデントｔ検定（ｍｏｄｅｒａｔｅｄ  Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓ  ｔ−ｔｅｓｔ）を用いて算出し、さらに有意性はＰ値として定量化した。また、Ｐ値が偽陽性率０．０５より低い遺伝子については更なる評価を行った。それらの発現は、各遺伝子の発現誘導又は発現抑制における平均フォールドチェンジ（ｍｅａｎ  ｆｏｌｄ  ｃｈａｎｇｅ）にて定量化した。そして、フォールドチェンジが２倍以上であったもの全てを候補として考慮した。得られた結果を図１０〜１３に示す。
【０１１５】
図１０に示す通り、３化合物又はＤＭＳＯにて処理したサンプルのクラスタリングに関する総合的な結果として、Ａ１、Ａ２及びＤＭＳＯは同一のクラスターに属する一方で、３Ｂ７Ｎは別のクラスターに属した。
【０１１６】
また、Ａ１とＤＭＳＯとの間における発現変化を比較した結果を示すボルカノプロットから明らかな通り、スクリーニングした４４Ｋプローブにおいて、遺伝子発現の有意な変化は認められなかった（図１１  参照のこと）。
【０１１７】
しかしながら、図１２に示す通り、Ａ２とＤＭＳＯとを比較した結果、発現が抑制されている少数の遺伝子が検出された（図１２において楕円にて囲った箇所  参照のこと）。また、それら変化のあった全ての遺伝子については、分子機能の点において、結合、触媒活性及び酵素制御活性というオントロジーカテゴリーに分類されるものと注釈が付けられていた。
【０１１８】
一方、図１３に示す通り、２．５μＭ  ３Ｂ７Ｎ処理した野生型の苗に関しては、青色光照射下で発現が亢進する遺伝子又は抑制される遺伝子は、計１４０６遺伝子あった（図１３において楕円にて囲った箇所  参照のこと）。また、３Ｂ７Ｎによって有意に発現が制御された遺伝子のうちの４９％（１０５６の遺伝子）は、遺伝子オントロジー（ＧＯ）において、生物学的プロセスのカテゴリーに分類された。さらに、８０６遺伝子は分子機能のカテゴリーに分類された一方で、１３％パーセントの遺伝子（２７０の遺伝子）は細胞の構成要素のカテゴリーに分類された。
【０１１９】
また、３Ｂ７Ｎによって発現制御される遺伝子は、約９５０のタンパク質をコードしており、それらタンパク質は主に２５のクラスに分類された。図には示さないが、属するタンパク質の数が多いクラスは、酸化還元酵素、トランスフェラーゼ、加水分解酵素、核酸結合及びトランスポーターであった。さらに有意に発現制御されている少数の遺伝子において、カルシウム結合又はシグナル伝達に関与する転写因子又はタンパク質をコードするものもあった。
【０１２０】
次に、第２のマイクロアレイの実験においては、１５μＭ  ３Ｎ７Ｎにて処理し、４日間連続的に青色光照射（５μｍｏＬｍ−２ｓ−１）下で生長させた苗に関する、野生型とｃｒｙ１ｃｒｙ２変異体との発現変化を評価した。得られた結果を図１４〜１８に示す。
【０１２１】
図１４に示した結果から明らかなように、３Ｂ７Ｎによる処理又は非処理（ＤＭＳＯによる処理）の、野生型とｃｒｙ１ｃｒｙ２とにおいて、遺伝子発現のクラスタリングは、苗の形態的プロファイルに応じたものになった。すなわち、ＤＭＳＯにて処理したｃｒｙ１ｃｒｙ２と３Ｂ７Ｎにて処理したｃｒｙ１ｃｒｙ２とは同じクラスターに分類された。また、３Ｂ７Ｎにて処理した野生型は、ＤＭＳＯにて処理した野生型よりも、ｃｒｙ１ｃｒｙ２が属するクラスターに近い関係に分類された。この結果は、図５に示した、３Ｂ７Ｎによる胚軸伸長への影響は野生型と比較してｃｒｙ１ｃｒｙ２においては殆ど認められなかったという結果と一致している。
【０１２２】
また、２．５μＭ  ３Ｂ７Ｎにて処理した野生型の苗において１４０６遺伝子の発現制御が認められた（図１３  参照のこと）。また、１５μＭ  ３Ｂ７Ｎにて処理した野生型の苗において２５３７遺伝子の有意な発現が認められた（図１５  参照のこと）。
【０１２３】
しかしながら、３Ｂ７Ｎにて処理したｃｒｙ１ｃｒｙ２の苗において、有意な発現の変化が検出された遺伝子は４８７個であった（図１６  参照のこと）。前記野生型の苗における２５３７遺伝子に比べれば、ｃｒｙ１ｃｒｙ２の苗におけるそれは極一部に過ぎず、３Ｂ７Ｎによる遺伝子発現への影響は、ｃｒｙ１ｃｒｙ２変異によって解消されたことが示唆される。一方、ｃｒｙ１ｃｒｙ２において３Ｂ７Ｎによって影響を受ける遺伝子のサブセットが検出されたことは、当該化合物のクリプトクロム又は青色光シグナルとは関連性のない機能を示唆しているかもしれない。
【０１２４】
次に、３Ｂ７Ｎによるクリプトクロム機能への生理的な阻害効果についてより評価するため、ＤＭＳＯ又は３Ｂ７Ｎによって処理した野生型の発現プロファイルと、ＤＭＳＯにて処理したｃｒｙ１ｃｒｙ２のそれとを比較した。その結果、ＣＲＹによって発現制御される遺伝子の約半分のサブセットが、３Ｂ７Ｎ処理によって阻害されることが明らかになった。
【０１２５】
（実施例８）
＜３Ｂ７Ｎによる、既知の青色光制御遺伝子の発現への影響＞
３Ｂ７Ｎによって制御される生理学的変化を理解するため、青色光によって発現が制御される遺伝子（Ｍａ，Ｌ．、Ｐｌａｎｔ  Ｃｅｌｌ．、２００１年、１３巻、２５８９〜２６０７ページ、Ｊｉａｏ，Ｙ．、Ｐｌａｎｔ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．、２００３年、１３３巻、１４８０〜１４９３ページ）について更に評価した。その結果、下記表１に示す通り、青色光制御遺伝子の多くは、３Ｂ７Ｎ処理によって青色光による制御とは逆に制御されることが明らかになった。
【０１２６】
【表１】
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【０１２７】
なお、表１において、「青色光」の項目は、青色光照射下にて６日間生長させた苗の発現プロファイルを、暗所にて生長させたそれと比較した結果を示す。すなわち、「ＵＰ」は暗所で生長させた苗よりも発現が亢進した遺伝子であることを示し、「ＤＯＷＮ」は暗所で生長させた苗よりも発現が低減した遺伝子であることを示す。また、発現制御は、Ｍａ，Ｌ．、Ｐｌａｎｔ  Ｃｅｌｌ．、２００１年、１３巻、２５８９〜２６０７ページ、Ｊｉａｏ，Ｙ．、Ｐｌａｎｔ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．、２００３年、１３３巻、１４８０〜１４９３ページの記載を参照にした。「３Ｂ７Ｎ」の項目は、３Ｂ７Ｎにて処理して１０μｍｏＬｍ−２ｓ−１青色光照射下にて４日間生長させた苗の発現プロファイルを、３Ｂ７Ｎの代わりにＤＭＳＯにて処理したそれと比較した結果を示す。すなわち、「ＵＰ」はＤＭＳＯにて処理した苗よりも発現が亢進した遺伝子であることを示し、「ＤＯＷＮ」はＤＭＳＯにて処理した苗よりも発現が低減した遺伝子であることを示す。
【０１２８】
（実施例９）
＜３Ｂ７Ｎによる、ソルガムの発育への影響＞
上述の通り、３Ｂ７Ｎによって、青色光照射下におけるシロイヌナズナの生長は促進される。これが他の植物でも同じであるということを確認すべく、３Ｂ７Ｎによって処理したソルガムを青色光照射下で生長させ、その影響を分析した。なお、ソルガム（別名：モロコシ）はバイオマスの原料として注目されているイネ科の植物である。
【０１２９】
より具体的には、ソルガム（Ｂｔｘ６２３）の苗を、３Ｂ７Ｎを２．５μＭ加えた又は加えないＭＳ培地（スクロースを含まない）にて、１０μｍｏｌｍ−２ｓ−１青色光照射下にて、生長させ、青色光の照射を開始してから６日目の子葉鞘の長さを記録した。得られた結果を図１９に示す。
【０１３０】
図１９に示した結果から明らかなように、上述のシロイヌナズナ同様に、ソルガムも、３Ｂ７Ｎにて処理することにより、青色光照射下でその生長は促進されることが確認された。
【０１３１】
（実施例１０）
＜３Ｂ７Ｎの標的タンパク質の同定＞
クリプトクロムシグナル伝達における３Ｂ７Ｎの標的を同定すべく、上述のマイクロアレイ等の実験結果に基づき、３Ｂ７Ｎの標的分子をＣＲＹ１と想定して、以下に示すビーズ結合実験を行った。また、コントロールとして、ＣＲＹ１の代わりにＦＬＢ２を用いて、同様の結合実験を行った。なお、ＦＬＢ２は、ｃｒｙ１同様に変異によって、青色光特異的に胚軸の伸長を促進させる遺伝子がコードするタンパク質（ＦＯＸ  ｌｏｎｇ  ｕｎｄｅｒ  Ｂｌｕｅ  ｌｉｇｈｔ  ２、別名ＢＩＣ２）である。
【０１３２】
ビーズ結合実験に際して先ず、セルフリーアッセイシステムを用いて、Ｈｉｓタグを融合させた標的候補タンパク質（ＣＲＹ１−ＨＡｔａｇ、ＦＬＢ２−ＨＡｔａｇ）を調製した。調製したタンパク質は下記バッファー２にて置換し、ほぼタンパク質濃度が１５０ｍｇ／ｍＬになるように調整した（ＣＲＹ１−ＨＡｔａｇ：１４３ｍｇ／ｍＬ、ＦＬＢ２−ＨＡｔａｇ：１５２ｍｇ／ｍＬ）。また、３Ｂ７Ｎ又はＡ１（３−ブロモインダゾール）を常法に従って、セファロースビーズに結合させ、化合物結合ビーズ（ｂｅａｄｓ（３Ｂ７Ｎ）、ｂｅａｄｓ（Ａ１））を調製した。またネガティブコントロールとして化合物を結合させていないセファロースビーズ（ｂｅａｄｓ（−））も以下の実験に供した。
【０１３３】
次に、化合物結合ビーズ２０μＬをチューブに分注し、下記バッファー１を１ｍＬ加えて洗浄した。洗浄後、上清を除去し、下記バッファー１を２５０μＬ加え、上記置換したタンパク質を１０００倍希釈したもの０．２μＬ加え、４℃にて一晩振盪させた。そのインキュベーション後、バッファー１を１ｍＬ加えてボルテックスミキサーにて攪拌した。上清を除去して、新しいバッファー１を加えた、新しいチューブに移し、更にボルテックスミキサーにて攪拌した。この攪拌作業を４回繰り返した後、上清を除去し、１ｍＬのバッファー２を加え、手で転倒混和した後、上清を除去した。このバッファー２による洗浄作業をもう一度繰り返した後、上清を完全に除去し、ビーズに等量のサンプルバッファーを加えて９５度で５分煮沸し、その５μＬをＳＤＳ−ＰＡＧＥ（１０〜２０％アクリルアミドゲル）に供した。次いで、検出抗体としてＨＲＰ標識抗ＨＡ抗体を用いたウエスタンブロッティングを行った。得られた結果を図２０に示す。
【０１３４】
バッファー１の組成…１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ７．５、５０ｍＭ  ＫＣｌ、５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１ｍＭ  ＥＤＴＡ
バッファー２の組成…バッファー１に１０％グリセロールを最終濃度１０％になるよう、ＴｒｉｔｏｎＸ１００を最終濃度０．０２５％になるよう加えた。
【０１３５】
図２０に示す通り、３Ｂ７ＮはＣＲＹ１と結合することが明らかになった。なお、Ａ１も僅かではあるがＣＲＹ１との結合性が認められた。このことから、３Ｂ７Ｎがクリプトクロムの機能を抑制するには、ＣＲＹ１との強い結合が必要であることが示唆される。
【産業上の利用可能性】
【０１３６】
以上説明したように、本発明によれば、クリプトクロムの機能を抑制することができる。また当該機能抑制により、青色光を含む光の照射下で植物の生長を促進させること等が可能となる。
【０１３７】
したがって、本発明は、農業分野（例えば、バイオマスの製造）における植物生長促進剤、研究開発分野におけるクリプトクロムを用いたオプトジェネティクスにおける細胞機能を制御するための試薬等として有用である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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