(57)【要約】【課題】劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療に有効な手段を提供すること。【解決手段】ＣＤ１１ｂアンタゴニスト、例えばＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体（抗ＣＤ１１ｂ抗体）を含む、劇症型急性肺炎を予防及び／又は治療するために使用される薬剤又は医薬組成物、ＣＤ１１ｂアンタゴニスト、例えばＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体（抗ＣＤ１１ｂ抗体）を含む、肺胞内の好中球凝集抑制剤、ＣＤ１１ｂアンタゴニスト、例えばＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体（抗ＣＤ１１ｂ抗体）を含む、肺の好中球浸潤抑制剤、並びに、ＣＤ１１ｂアンタゴニスト、例えばＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体（抗ＣＤ１１ｂ抗体）を投与することを含む、劇症型急性肺炎を予防及び／又は治療する方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療用医薬組成物。
【請求項２】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストがＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体である請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項３】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む、肺胞内の好中球凝集抑制剤。
【請求項４】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストがＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体である請求項３に記載の肺胞内の好中球凝集抑制剤。
【請求項５】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む、肺の好中球浸潤抑制剤。
【請求項６】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストがＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体である請求項５に記載の肺の好中球浸潤抑制剤。
【請求項７】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防剤及び／又は治療剤。
【請求項８】
ＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体を含む劇症型急性肺炎の予防剤及び／又は治療剤。
【請求項９】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストを、劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療が必要であると診断されている被験体に、該肺炎を予防及び／又は治療するのに効果的な量で投与することを含む、劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療方法。
【請求項１０】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストがＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体である請求項９に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む組成物であって、劇症型急性肺炎を予防及び／又は治療するために使用される薬剤又は医薬組成物に関する。また、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む肺胞内の好中球凝集抑制剤に関する。さらに、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む肺の好中球浸潤抑制剤に関する。加えて、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防剤及び／又は治療剤に関する。また、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを投与することを含む劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
劇症型急性肺炎は、急性呼吸促拍症候群（ａｃｕｔｅ  ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  ｄｉｓｔｒｅｓｓ  ｓｙｎｄｒｏｍｅ；以下、ＡＲＤＳと略称することがある）と比較してより重篤な症状を示す呼吸促拍症候群をいう。急性肺炎は、一般的に、急激に症状が発生し、そして、症状が急速に悪化し、短い症状改善期間の後、急速に治癒するが、劇症型急性肺炎は、急激に症状が発生し、肺炎の進行が急激であり予後が不良、すなわち重症化しやすく死亡リスクも高い。
【０００３】
ＡＲＤＳは、体内への何らかの侵襲が引き金となって発症する肺胞領域の非特異的炎症による非心原性肺水腫で、重篤な低酸素血症と肺コンプライアンスの低下が特徴である。また、激しい好中球浸潤と肺胞の広範な傷害（ｄｉｆｆｕｓｅ  ａｌｖｅｏｌａｒ  ｄａｍａｇｅ；ＤＡＤ）を呈する病理像が特徴である。侵襲から発症までの期間は通常数日以内で、発症後の死亡率は４０％を越えている。集中治療室等で人工呼吸を受けている患者の約２０％に発症する等、臨床現場で大きな問題となっている疾患である。ＡＲＤＳの発症にともない肺の毛細血管の内皮細胞や肺胞上皮細胞が傷害され、肺の浮腫や繊維化が誘導されて呼吸困難により死に至る。現在その治療は機械的人工換気の他、ステロイド剤や好中球エステラーゼ阻害薬等の薬物療法が試みられているが、有効な治療法となり得ていない。また、これまでの研究からＡＲＤＳの発症には浸潤した活性化好中球が産生する脂質メディエーターやインターフェロン−γ（ＩＦＮγ）等のサイトカインが関与していること等が報告されているが、その詳細な発症メカニズムは明らかになっていない。
【０００４】
最近、鳥インフルエンザ（Ｈ７Ｎ９、Ｈ５Ｎ１等）のヒトへの感染と世界的な流行の兆候がみられ、３０〜６０％に達する高い感染致死率を示しているが、主な死因はウイルスの増殖による直接的な影響よりも宿主側の過剰な免疫応答の結果として起こる劇症型のＡＲＤＳ（Ｆｕｌｍｉｎａｎｔ  ＡＲＤＳ；以下、ＦＡＲＤＳと略称する）、すなわち劇症型急性肺炎であることがわかってきた。そのため、将来的なパンデミックに備えた治療法の確立が急務の課題となっている。
【０００５】
ＡＲＤＳ及びＦＡＲＤＳの識別は、吸入酸素濃度に対する動脈血中の酸素分圧の比率（Ｐ／Ｆ比）に基づいて行われる。健常人のＰ／Ｆ比は４００〜５００程度である。Ｐ／Ｆ比が３００以下である場合は急性肺損傷（ａｃｕｔｅ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ；ＡＬＩ）、２００以下の場合はＡＲＤＳ、１００以下である場合はＦＡＲＤＳと判定される。ＡＬＩは、敗血症、肺炎、外傷、誤嚥等の原因により引き起こされる急性・進行性の呼吸疾患であり、重症化するとＡＲＤＳやＦＡＲＤＳに至る。
【０００６】
ＣＤ１１ｂ分子（以下、単にＣＤ１１ｂと称することがある）は、ｃ型レクチンファミリー（ｃ−ｔｙｐｅ  ｌｅｃｔｉｎ  ｆａｍｉｌｙ）に属するＩ型の膜貫通型糖結合タンパク質で、インテグリンαＭ鎖ともよばれる。ＣＤ１１ｂ分子は、ＣＤ１８分子と複合体を形成してＭａｃ−１抗原を形成し細胞表面に発現している。また、ＣＤ１１ｂ分子は、単球／マクロファージ、好中球、ＮＫ細胞などに強く発現している。機能としては、補体やフィブリノーゲンとの結合や血管内皮細胞との接着に関与することが知られているが、炎症誘導における具体的な役割については不明な点が多い。
【０００７】
本発明者らはこれまでにＣＤ６９ノックアウトマウスを作製し、その解析を行って好中球上のＣＤ６９分子が関節炎の発症に重要であること（非特許文献１）、ＣＤ６９ノックアウトマウスではアレルギー性喘息や腸炎が起きないこと（非特許文献２、３）等を明らかにしてきた。そして、ＣＤ６９分子をターゲットとするアレルギー性喘息治療薬（特許文献１、２）、腸炎治療薬（特許文献３、４）、及び肝炎治療薬（特許文献３、５−７）を開示してきた。また、ＣＤ６９ノックアウトマウスでは、ブレオマイシン気管内投与により誘導された肺の炎症及び線維化が野生マウスと比較して軽減されたことが報告されている（非特許文献４）。しかしながら、劇症型急性肺炎の発症や増悪におけるＣＤ１１ｂの役割は知られていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】特開2007-022993号公報
【特許文献２】国際公開第2013/161814号パンフレット
【特許文献３】米国特許出願公開第2012/0121503号明細書
【特許文献４】米国特許第US 8,440,195号明細書
【特許文献５】米国特許出願公開第2013/0224111号明細書
【特許文献６】特開2012-102100号公報
【特許文献７】特許第5938876号明細書
【非特許文献】
【０００９】
【非特許文献１】Murata, K., et al.: CD69-null mice protectedfrom arthritis inducedwith anti-type II collagen antibodies. Int. Immunol. 15:987-992 (2003).
【非特許文献２】Hasegawa, A., et al.: CD69 controls thepathogenesis of allergicairway inflammation. J. Immunol. 183:8203-8215 (2009).
【非特許文献３】Hasegawa, A., et al.: Crucial role for CD69 inthe pathogenesis ofdextran sulphate sodium-induced colitis. PLoS ONE8(6):e65494 (2013).
【非特許文献４】Yamauchi, K., et al.: Attenuation of lunginflammation and fibrosisin CD69-deficient mice after intratracheal bleomycin.Respiratory Research12:131 (2011).
【非特許文献５】Kohler, G. and Milstein, C.: Continuouscultures of fused cellssecreting antibody of predefined specificity. Nature256(5517):495-497 (1975).
【非特許文献６】Eppstein, D. A., et al.: Biological activityofliposome-encapsulated murine interferon gamma is mediated by a cellmembranereceptor. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82(11):3688-3692 (1985).
【非特許文献７】Hwang, K. J., et al.: Hepatic uptake anddegradation of unilamellarsphingomyelin/cholesterol liposomes: a kinetic study.Proc. Natl. Acad. Sci.USA 77(7):4030-4034 (1980).
【非特許文献８】Martin, F. J., et al.: Irreversible couplingof immunoglobulinfragments to preformed vesicles. An improved method forliposome targeting. J.Biol. Chem. 257(1):286-288 (1982).
【非特許文献９】Gabizon, A., et al.: Pharmacokinetics andTissue Distribution ofDoxorubicin Encapsulated in Stable Liposomes With LongCirculation Times. J.National Cancer Inst. 81(19):1484-1488 (1989).
【非特許文献１０】Hermann, T. and Patel, D. J.: AdaptiveRecognition by Nucleic AcidAptamers. Science 287(5454):820-825 (2000).
【非特許文献１１】Burgstaller, P. et al.:Aptamers andaptazymes: accelerating smallmolecule drug discovery. Curr. Opin. Drug Discov.Devel. 5(5):690-700 (2002).
【非特許文献１２】Hoppe-Seyler, F., et al.: Peptide Aptamers:Specific Inhibitors ofProtein Function. Curr. Mol. Med. 4(5):529-538 (2004).
【非特許文献１３】Aagaard, L., et al.: A facile lentiviralvector system forexpression of doxycycline-inducible shRNAs: knockdown of thepre-miRNAprocessing enzyme Drosha. Mol. Ther. l5(5):938-45 (2007).
【非特許文献１４】Aoyagi, T., et al.: Activation of pulmonaryinvariant NKT cellsleads to exacerbation of acute lung injury caused by LPSthrough localproduction of IFN-gamma and TNF-alpha by Gr-1+monocytes. Int.Immunol. 23(2):97-108 (2010).
【非特許文献１５】Landgraf M.A., et al.: LeptinDownregulatesLPS-Induced Lung Injury: Role of Corticosterone and Insulin.Cell. Physiol.Biochem. 33:835-846 (2014).
【非特許文献１６】Huo M., et al.: Anti-inflammatoryeffects oflinalool in RAW 264.7 macrophages and lipopolysaccharide-inducedlung injurymodel. J. Surg. Res. 180(1):e47-54 (2013)
【非特許文献１７】Weiser J. N., et al.: MacrophageMigrationInhibitory Factor Is Detrimental in Pneumococcal Pneumonia and aTarget forTherapeutic Immunomodulation. J. Infect. Dis. 212:1677-1682 (2015).
【非特許文献１８】Wilson, R., et al.: ProtectionagainstStreptococcus pneumoniae lung infection after nasopharyngealcolonizationrequires both humoral and cellular immune responses. MucosalImmunol.8(3):627-623 (2015).
【非特許文献１９】Kamata, T., et al.: src homology 2domain-containingtyrosine phosphatase SHP-1 controls the development ofallergic airwayinflammation. J. Clin. Invest. 111(1):109-119 (2003).
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
本発明の目的は、劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療に有効な手段を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明者らは上記目的を達成すべく、ＦＡＲＤＳの発症及び劇症化メカニズムの解析を行い、新規治療法を開発することを目的に治療ターゲット分子の探索を鋭意行ってきた。そして、マウスＦＡＲＤＳモデルにおけるＦＡＲＤＳの症状、例えば高い死亡率や肺への好中球の著しい浸潤が、ＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体（以下、抗ＣＤ１１ｂ抗体と称する）を投与することにより軽減されること、及び、マウスＦＡＲＤＳモデルにおいてＣＤ１１ｂノックアウトマウス由来の好中球の肺への浸潤が少ないことを見出した。そして、ＣＤ１１ｂ分子がＦＡＲＤＳに対する新規治療法のターゲット分子になり得ることを明らにし、本発明を完成した。
【００１２】
すなわち、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療用医薬組成物に関する。
【００１３】
また、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストが抗ＣＤ１１ｂ抗体である上記医薬組成物に関する。
【００１４】
加えて、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防剤及び／又は治療剤に関する。
【００１５】
また、本発明は、ＣＤ１１ｂを特異的に認識する抗体を含む劇症型急性肺炎の予防剤及び／又は治療剤に関する。
【００１６】
さらに、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを、劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療が必要であると診断されている被験体に、該肺炎を予防及び／又は治療するのに効果的な量で投与することを含む、劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療方法に関する。
【００１７】
加えて、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストが抗ＣＤ１１ｂ抗体である上記方法に関する。
【発明の効果】
【００１８】
本発明により、ＣＤ１１ｂアンタゴニスト、例えば抗ＣＤ１１ｂ抗体を含む、劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療用医薬組成物、並びにＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防剤及び／又は治療剤を提供することができる。
【００１９】
また、本発明により、ＣＤ１１ｂアンタゴニスト、例えば抗ＣＤ１１ｂ抗体を投与することを含む、劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療方法を提供することができる。
【００２０】
集中治療室等で人工呼吸を受けている患者や高病原性鳥インフルエンザが感染した際に発症する劇症型急性肺炎は、急激な発症とそれに続く急激な病状の進行を特徴とし、予後が不良で死亡リスクも極めて高い。有効な治療方法が現在のところ開発されていない劇症型急性肺炎の治療において、本発明は新規で画期的な治療を提供し得る。
【００２１】
本発明に係る医薬組成物は、劇症型急性肺炎の発症前投与及び発症後投与のいずれにおいても有効な治療効果を示したことから、劇症型急性肺炎の予防及び治療の両方の用途に使用することができ、鳥インフルエンザ等の将来的なパンデミックに備えた治療法として医薬分野に高く貢献するものである。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１Ａ】マウスＦＡＲＤＳモデルの作製方法を説明する図である。マウスＦＡＲＤＳモデルは、野生型マウス（以下、ＷＴ）にα−ガラクトシルセラミド（以下、αＧａｌＣｅｌと略称する）を経鼻投与し（Ｄａｙ  −１）、その２４時間後にリポポリサッカライド（以下、ＬＰＳと略称する）を経鼻投与する（Ｄａｙ  ０）ことにより作製した。（実施例１）
【図１Ｂ】マウスＦＡＲＤＳモデル（図１Ａ参照）のＬＰＳ投与後の生存率を経時的に検討した結果を示す図である。図の縦軸は生存率（Ｓｕｒｖｉｖａｌ（％））を、横軸は、ＬＰＳ投与後の時間（Ｔｉｍｅ  ａｆｔｅｒ  ＬＰＳ  ｃｈａｌｌｅｎｇｅ（ｈ））を示す。（実施例１）
【図１Ｃ】マウスＦＡＲＤＳモデルでは、リン酸緩衝生理食塩水（以下、ＰＢＳと略称する）のみ投与のＦＡＲＤＳを発症しないマウスと比較して、肺への著しい好中球浸潤が認められたことを説明する図である。図中、Ｎｏ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔはＰＢＳのみ投与のＦＡＲＤＳを発症しないマウスを示し、ｔｒｅａｔｍｅｎｔはマウスＦＡＲＤＳモデルを示す。（実施例１）
【図１Ｄ】マウスＦＡＲＤＳモデルでは、ＰＢＳのみ投与のＦＡＲＤＳを発症しないマウスと比較して、Ｐ／Ｆ比（Ｐ／Ｆ  ｒａｔｉｏ）が有意に低かったことを説明する図である。図中、Ｎｏ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔはＰＢＳのみ投与のＦＡＲＤＳを発症しないマウスを示し、ｔｒｅａｔｍｅｎｔはマウスＦＡＲＤＳモデルを示す。（実施例１）
【図２Ａ】マウスＦＡＲＤＳモデルにおける肺への好中球浸潤を検討するために使用したイメージング技術を説明する図である。緑色蛍光タンパク質遺伝子を組み込んだトランスジェニックマウス（以下、ＧＦＰ  Ｔｇと称する）をドナーとして使用し、好中球（Ｎｅｕｔｏｒｐｈｉｌｓ）及びＣＤ４  Ｔ細胞（ＣＤ４  Ｔ  ｃｅｌｌｓ）を採取した。そして、野生型マウスをレシピエント（ｒｅｃｉｐｉｅｎｔ）として使用し、前記好中球及びＣＤ４  Ｔ細胞を静脈経由で移入した（ｉｖ）。その４８時間後、αＧａｌＣｅｌを投与し、さらにその２４時間後にＬＰＳを投与した。ＬＰＳ投与６時間、１２時間、２４時間、及び４８時間後に、肺（Ｌｕｎｇ）への好中球浸潤を観察した。（実施例２）
【図２Ｂ】マウスＦＡＲＤＳモデルにおいて、ＬＰＳ投与４８時間後に肺への好中球浸潤を測定した結果を示す図である。αＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与したマウスでは、ＰＢＳのみを投与したマウス、αＧａｌＣｅｌ及びＰＢＳを投与したマウス、並びにＰＢＳ及びＬＰＳを投与したマウスと比較して、肺への著しいＧＦＰ陽性好中球（ＧＦＰ＋  ｎｅｕｔｒｏｐｈｉｌｓ）の浸潤が認められた。（実施例２）
【図２Ｃ】マウスＦＡＲＤＳモデルにおいて、肺への好中球浸潤を経時的に測定した結果を示す図である。ＬＰＳ投与後、６時間程度でＧＦＰ陽性好中球（ＧＦＰ＋  ｎｅｕｔｒｏｐｈｉｌｓ）の肺への著しい浸潤が認められた。（実施例２）
【図２Ｄ】マウスＦＡＲＤＳモデルにおいて、肺へのＣＤ４  Ｔ細胞浸潤を経時的に測定した結果を示す図である。ＬＰＳ投与後、２４時間程度でＧＦＰ陽性ＣＤ４  Ｔ細胞（ＧＦＰ＋  ＣＤ４  Ｔ  ｃｅｌｌｓ）の肺への浸潤が認められた。（実施例２）
【図３】マウスＦＡＲＤＳモデルにおいて、肺胞洗浄液中の免疫炎症細胞の種類及び数を測定した結果を示す図である。マウスＦＡＲＤＳモデル（黒色バー）では、ＰＢＳのみ投与のＦＡＲＤＳを発症しないマウス（白色バー）と比較して、肺への免疫炎症細胞浸潤の増加が認められた。図の縦軸は肺当たりの各細胞の数（Ｃｅｌｌ  ｎｕｍｂｅｒ  （×１０７）／ｌｕｎｇ）を示す。図中、Ｔ  ｌｙｍｐｈｏ．はＴリンパ球、Ｂ  ｌｙｍｐｈｏ．はＢリンパ球、Ｍａｃ．はマクロファージ、Ｎｅｕｔｏｒ．は好中球、ｔｏｔａｌは全ての細胞を意味する。（実施例３）
【図４】マウスＦＡＲＤＳモデルにおいてＦＡＲＤＳ誘導後に認められた肺へのＧＦＰ陽性好中球（ＧＦＰ＋  ｎｅｕｔｒｏｐｈｉｌｓ）の著しい浸潤が、抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ）を前投与することにより抑制されたことを示す図である。図中、ＰＢＳ／ＰＢＳはＦＡＲＤＳを誘導していないマウスを示し、αＧａｌＣｅｒ／ＬＰＳはＦＡＲＤＳを誘導したマウスを示し、Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂは抗ＣＤ１１ｂ抗体投与後にＦＡＲＤＳを誘導したマウスを示す。（実施例４）
【図５Ａ】マウスＦＡＲＤＳモデルにおける抗ＣＤ１１ｂ抗体前投与の効果を検討するための薬剤投与手順を説明する図である。野生型マウスに抗ＣＤ１１ｂ抗体を投与し（Ｄａｙ  −２）、その２４時間後にαＧａｌＣｅｌを経鼻投与し（Ｄａｙ  −１）、さらにその２４時間後にＬＰＳを経鼻投与した（Ｄａｙ  ０）。図中、Ａｂは抗体を意味する。（実施例５）
【図５Ｂ】マウスＦＡＲＤＳモデルのＬＰＳ投与後の生存率に及ぼす抗ＣＤ１１ｂ抗体前投与の効果を経時的に検討した結果を示す図である。抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  Ａｂ）をαＧａｌＣｅｒの投与前に投与した結果、コントロール抗体（Ｃｏｎｔｒｏｌ  Ａｂ）を投与した時と比較して、著しく生存率が増加した。図の縦軸は生存率（Ｓｕｒｖｉｖａｌ（％））を、横軸は、ＬＰＳ投与後の時間（Ｔｉｍｅ  ａｆｔｅｒ  ＬＰＳ  ｃｈａｌｌｅｎｇｅ（ｈ））を示す。（実施例５）
【図５Ｃ】マウスＦＡＲＤＳモデルで認められた肺への著しい好中球浸潤が、抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ）をαＧａｌＣｅｒの投与前に投与することにより低下したことを示す図である。図中、Ｎｏ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔはＰＢＳのみ投与のＦＡＲＤＳを発症しないマウスの肺組織像を示し、Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂはマウスＦＡＲＤＳモデルに抗ＣＤ１１ｂ抗体をαＧａｌＣｅｒの投与前に投与したときの肺組織像を示す。また、Ｃｏｎｔｒｏｌ  ｍＡｂはマウスＦＡＲＤＳモデルにＬＰＳの投与後にコントロール抗体を投与したときの肺組織像を示す。（実施例５）
【図５Ｄ】マウスＦＡＲＤＳモデルで認められた低いＰ／Ｆ比（Ｐ／Ｆ  ｒａｔｉｏ）が、抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ）をαＧａｌＣｅｒの投与前に投与することにより有意に改善されたことを示す図である。図中、（−）はＰＢＳのみ投与の野生型マウスを示し、αＧＣ＋ＬＰＳはα−ＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与することによりＦＡＲＤＳを発症したマウスを示し、Ｃｏｎｔｒｏｌ  ｍＡｂはコントロール抗体を投与したマウスを示す。（実施例５）
【図６Ａ】マウスＦＡＲＤＳモデルにおけるＦＡＲＤＳ誘導後の抗ＣＤ１１ｂ抗体投与の効果を検討するための薬剤投与手順を説明する図である。野生型マウスにαＧａｌＣｅｌを経鼻投与し（Ｄａｙ  −１）、その２４時間後後にＬＰＳを経鼻投与して（Ｄａｙ  ０）ＦＡＲＤＳを誘導し、ＬＰＳ投与２４時間後に抗ＣＤ１１ｂ抗体を投与した（Ｄａｙ  １）。図中、Ａｂは抗体を意味する。（実施例６）
【図６Ｂ】マウスＦＡＲＤＳモデルの生存率に及ぼすＬＰＳの投与後の抗ＣＤ１１ｂ抗体投与の効果を経時的に検討した結果を示す図である。抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  Ａｂ）をＬＰＳの投与後に投与した結果、コントロール抗体（Ｃｏｎｔｒｏｌ  Ａｂ）を投与した時と比較して、著しく生存率が増加した。図の縦軸は生存率（Ｓｕｒｖｉｖａｌ（％））を、横軸は、ＬＰＳ投与後の時間（Ｔｉｍｅ  ａｆｔｅｒ  ＬＰＳ  ｃｈａｌｌｅｎｇｅ（ｈ））を示す。（実施例６）
【図６Ｃ】マウスＦＡＲＤＳモデルで認められた肺への著しい好中球浸潤が、抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ）をＬＰＳの投与後に投与することにより低下したことを示す図である。図中、Ｎｏ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔはＰＢＳのみ投与のＦＡＲＤＳを発症しないマウスの肺組織像を示し、Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂはマウスＦＡＲＤＳモデルにＬＰＳの投与後に抗ＣＤ１１ｂ抗体を投与したときの肺組織像を示す。また、Ｃｏｎｔｒｏｌ  ｍＡｂはマウスＦＡＲＤＳモデルにＬＰＳの投与後にコントロール抗体を投与したときの肺組織像を示す。（実施例６）
【図７Ａ】マウスＦＡＲＤＳモデルのＬＰＳ投与後の生存率に及ぼす抗ＣＤ１１ｂ抗体前投与の効果を経時的に検討した結果を示す図である。抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ）をαＧａｌＣｅｒの投与前に投与した結果、コントロール抗体（Ｃｏｎｔｒｏｌ  ｍＡｂ）を投与した時と比較して、著しく生存率が増加した。図の縦軸は生存率（Ｓｕｒｖｉｖａｌ（％））を、横軸は、ＬＰＳ投与後の時間（Ｔｉｍｅ  ａｆｔｅｒ  ＬＰＳ  ｃｈａｌｌｅｎｇｅ（ｈ））を示す。（実施例７）
【図７Ｂ】マウスＦＡＲＤＳモデルで認められた肺への著しい好中球浸潤が、抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ）をαＧａｌＣｅｒの投与前に投与することにより低下したことを示す図である。図中、Ｎｏ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔはＰＢＳのみ投与のＦＡＲＤＳを発症しないマウスの肺組織像を示し、Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂはマウスＦＡＲＤＳモデルに抗ＣＤ１１ｂ抗体をαＧａｌＣｅｒの投与前に投与したときの肺組織像を示す。また、Ｃｏｎｔｒｏｌ  ｍＡｂはマウスＦＡＲＤＳモデルにＬＰＳの投与後にコントロール抗体を投与したときの肺組織像を示す。（実施例７）
【図８】マウスＦＡＲＤＳモデルで認められた低いＰ／Ｆ比（Ｐ／Ｆ  ｒａｔｉｏ）が、抗ＣＤ１１ｂ抗体（Ａｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ）をＬＰＳの投与後に投与することにより有意に改善されたことを示す図である。図中、（−）はＰＢＳのみ投与の野生型マウスを示し、αＧＣ＋ＬＰＳはα−ＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与することによりＦＡＲＤＳを発症したマウスを示し、Ｃｏｎｔｒｏｌ  ｍＡｂはコントロール抗体を投与したマウスを示す。（実施例８）
【発明を実施するための形態】
【００２３】
本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療用医薬組成物に関する。また、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む肺胞内の好中球凝集抑制剤に関する。さらに本発明は、肺の好中球浸潤抑制剤に関する。加えて本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防剤及び／又は治療剤に関する。また、本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを、劇症型急性肺炎を発症する可能性があると診断されている対象及び劇症型急性肺炎であると診断されている対象に、劇症型急性肺炎を予防する及び／又は治療するのに効果的な量で投与することを含む劇症型急性肺炎を予防する及び／又は治療する方法に関する。
【００２４】
本明細書において、用語「劇症型急性肺炎」は用語「劇症型急性呼吸促拍症候群（ＦＡＲＤＳ）」と置換可能に使用される。
【００２５】
「劇症型急性呼吸促拍症候群（ＦＡＲＤＳ）」は、急性呼吸促拍症候群（ＡＲＤＳ）と比較してより重篤な症状を示す呼吸促拍症候群をいう。ＡＲＤＳは、呼吸による酸素の体内への取り込みの障害に基づく急性呼吸不全を特徴とする病態をいう。呼吸とは、空気中の酸素を体内に取り込み、体内で産生された二酸化炭素を吸気中に排出する作業をいう。酸素の体内への取り込みは、空気を口及び鼻腔から気道を通って肺胞まで届ける工程（工程１）、肺内におけるガス交換の工程、すなわち、酸素が肺胞内の空気中から肺胞上皮細胞に取り込まれ、続いて組織間質、次いで血管内皮細胞を通って血液中の赤血球が有するヘモグロビンに結合する工程（工程２）、並びに、血液循環を利用し心臓から全身へと輸送される工程（工程３）により行われる。何らかの理由でこれら工程のいずれかが障害を受け、全身に十分に酸素を運搬できない状態を呼吸不全という。ＡＲＤＳは、酸素の体内への取り込み過程における主に肺内におけるガス交換の工程（上記工程２）の障害に基づき４８時間以内に生じてきた急性呼吸不全を特徴とする病態をいう。
【００２６】
ＡＲＤＳは、米国胸部疾患学会及び欧州集中治療医学会との合同検討会（Ａｍｅｒｉｃａｎ−Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ：ＡＥＣＣ）では、「先行する基礎疾患を持ち、急性に発症した低酸素血症で、胸部エックス線画像上では両側性の肺浸潤影を認め、かつ心原性の肺水腫が否定できるもの」と定義されている。すなわち、ＡＲＤＳは特定の疾患を指すものではなく、急な発症、明らかな低酸素血症、胸部エックス線画像における全体に渡る異常な影の存在、及び非心原性肺水腫を特徴とする症状を示す症候群をいう。ＡＲＤＳの病態は、活性化した好中球の肺への集積、好中球等の細胞による活性酸素やタンパク質分解酵素の産生、産生された物質による肺胞壁にある毛細血管や肺の上皮細胞の傷害、毛細血管からの液体成分の漏出及びそれによる浮腫の惹起であり、顕微鏡的には広範な肺胞領域の障害の所見が認められる。ＡＲＤＳ発症後の死亡率は４３％を越える。先行する基礎疾患として、重症肺炎や誤嚥性肺炎等の直接障害や、敗血症等の間接障害を挙げることができる。ＡＲＤＳ及びＡＬＩの約８０％は敗血症を伴っていると認識されている。
【００２７】
ＡＥＣＣにより１９９４年に示された定義（ＡＥＣＣ定義）では、Ｐ／Ｆ比が３００以下である場合は急性肺損傷（ＡＬＩ）、２００以下の場合はＡＲＤＳと判定された。しかし、２０１２年に示された新しい定義（ベルリン定義）では、Ｐ／Ｆ比が３００以下である場合は軽度ＡＲＤＳ（ｍｉｌｄ  ＡＲＤＳ）、２００以下の場合はＡＲＤＳ、１００以下である場合は重症ＡＲＤＳ（ｓｅｖｅｒｅ  ＡＲＤＳ）と判定される。用語「軽度ＡＲＤＳ」と用語「ＡＬＩ」は本明細書において置換可能に使用される。また、用語「重症ＡＲＤＳ」と用語「ＦＡＲＤＳ」は本明細書において置換可能に使用される。なお、健常人のＰ／Ｆ比は４００〜５００程度である（動脈血酸素分圧（ＰａＯ２）：８０〜１００Ｔｏｒｒ（ｍｍＨｇ））。
【００２８】
ＦＡＲＤＳでは、ＡＲＤＳと比較してより急激に症状が発生し、肺炎の進行が急激であり予後がさらに不良、すなわち重症化しやすく死亡リスクも高い。近年、鳥インフルエンザ（Ｈ７Ｎ９、Ｈ５Ｎ１等）等のインフルエンザウイルスの感染によりＦＡＲＤＳが引き起こされ、３０〜６０％に達する高い感染致死率を示していることが報告されている。ＦＡＲＤＳにおける病状の劇症化や高い致死率は、ウイルスの増殖による直接的な影響よりもむしろ宿主側のウイルスに対する過剰な免疫応答の結果として起こることがわかってきた。肺炎等の炎症では、生体に作用する各種の傷害因子に対する全体的又は部分的な一連の生体防御反応、例えば、免疫系細胞の数の変化、該細胞の移動速度の変化、及び該細胞の活性の変化により組織的障害又は病理学的状態が生じる。生体防御反応に関わる免疫系細胞としては、例えば、Ｔ細胞、Ｂ細胞、単球若しくはマクロファージ、抗原提示細胞（ＡＰＣ）、樹状細胞、小膠細胞、ＮＫ細胞、ＮＫＴ細胞、好中球、好酸球、肥満細胞、又は免疫に特異的に関連する他のあらゆる細胞、例えば、サイトカイン産生内皮細胞若しくはサイトカイン産生上皮細胞を挙げることができる。インフルエンザウイルス感染によるＦＡＲＤＳでは、具体的には、感染によって誘発されるサイトカインの過剰産生が好中球や肺胞マクロファージの肺への浸潤をさらに誘発し、その結果、浸潤を受けた肺胞上皮細胞が産生する分子によって組織傷害が引き起こされると考えられる。
【００２９】
本発明に係る医薬組成物及び方法は「劇症型急性肺炎」を適用対象とする。本発明の好ましい一実施態様として、インフルエンザウイルスの感染による劇症型急性肺炎、より好ましくはインフルエンザウイルスの感染によるＦＡＲＤＳを例示できる。当該実施態様において、劇症型急性肺炎を引き起こすインフルエンザウイルスとして、Ａ香港型・Ａソ連型・Ｂ型等の、いわゆる季節性インフルエンザや、高病原性であるトリインフルエンザウイルスを挙げることができる。トリインフルエンザウイルスとして、Ｈ５Ｎ１型及びＨ１Ｎ１型を好ましく例示できる。高病原性のトリインフルエンザウイルスの感染症例や、他の型のウイルスの感染後に重症化した症例では、急性呼吸障害が誘発されて短時間で劇症化することがあり、時には多臓器不全へと移行し、死に至る可能性もあることが報告されている。
【００３０】
「劇症型急性肺炎を予防する」とは、劇症型急性肺炎が発生する前に何らかの処置をすることにより、劇症型急性肺炎を発生させないか、及び少なくとも発生後の症状を軽減させることをいう。
【００３１】
「劇症型急性肺炎を治療する」とは、何らか処置をすることにより、劇症型急性肺炎の症状を消失させるか、軽減させるか、あるいはその進行を止めることをいう。
【００３２】
「ＣＤ１１ｂアンタゴニスト」は、ＣＤ１１ｂ分子にＣＤ１１ｂのリガンドが結合することによって生じるＣＤ１１ｂ分子を介した細胞内の情報伝達系の機能を抑制して、該リガンドによる細胞の活性発現を妨げる物質をいう。「アンタゴニスト」は、拮抗薬、括抗剤、遮断薬とも呼ばれる。
【００３３】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストは、ＣＤ１１ｂに結合するが、ＣＤ１１ｂに結合する生体物質であるリガンドと異なり生体反応を起こさず、またその結合によってリガンドとＣＤ１１ｂとの結合を阻害して、リガンドによるＣＤ１１ｂを介した細胞内の情報伝達系の機能を抑制して該リガンドによる細胞の活性発現を妨げる物質であり得る。このような物質として、抗ＣＤ１１ｂ抗体、ＣＤ１１ｂアプタマー、及び低分子量医薬品等を挙げることができる。
【００３４】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストはまた、ＣＤ１１ｂ発現の減少を引き起こすことができる物質であり得る。このような物質は、ＣＤ１１ｂ遺伝子の転写及び／又は翻訳を阻害して、該遺伝子の発現を抑制するものであれば、何れの物質であってもよい。このような物質として、ＣＤ１１ｂ  ｍＲＮＡアンタゴニスト、ＣＤ１１ｂアプタマー、低分子二本鎖ＲＮＡ、及び低分子量医薬品等を挙げることができる。
【００３５】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストとして、抗ＣＤ１１ｂ抗体を好ましく例示できる。かかる抗ＣＤ１１ｂ抗体は、ＣＤ１１ｂを特異的に認識して結合する抗体であることが好ましい。ＣＤ１１ｂを特異的に認識して結合するとは、ＣＤ１１ｂを認識して結合するが、ＣＤ１１ｂ以外のタンパク質は認識しないか、弱く認識することを意味する。ＣＤ１１ｂアンタゴニストとして作用する抗ＣＤ１１ｂ抗体は、ＣＤ１１ｂに結合する生体物質であるリガンドと異なり生体反応を起こさず、またその結合によってリガンドとＣＤ１１ｂの結合を阻害して、リガンドによるＣＤ１１ｂを介した細胞内の情報伝達系の機能を抑制して該リガンドによる細胞の活性発現を妨げる作用を有する抗体である。
【００３６】
抗ＣＤ１１ｂ抗体は、モノクローナル抗体及びポリクローナル抗体のいずれであっても良く、また、キメラ抗体、及び／又はヒト化抗体であり得る。非ヒト抗体は、抗体の製造に係る技術分野で自体公知の方法を用いてヒト化することができる。例えば、ヒト化抗体は、免疫系が部分的又は完全にヒト化されたトランスジェニック動物を用いて作製できる。本発明に係る任意の抗体又はその断片は、部分的又は完全にヒト化できる。キメラ抗体は抗体の製造に係る技術分野で自体公知の方法を用いて作製することができる。
【００３７】
抗ＣＤ１１ｂ抗体は、ＣＤ１１ｂポリペプチド又はそのエピトープを含む断片ペプチドを抗原として使用し、抗体の製造に係る技術分野で自体公知の方法によって作製することができる。抗ＣＤ１１ｂ抗体の作製において、ＣＤ１１ｂポリペプチドのアミノ酸配列の例として、アクセッション番号ＮＰ＿００１１３９２８０、ＮＰ＿０００６２３、ＸＰ＿０１６８７８７０５、ＸＰ＿０１１５４４１５３、ＸＰ＿０１１５４４１５２、ＸＰ＿００６７２１１０８を有する配列、その変種（ｖｅｒｓｉｏｎｓ）、その一部又はそれらの組み合わせを挙げることができる。
【００３８】
抗ＣＤ１１ｂ抗体の製造において使用する抗原であるＣＤ１１ｂポリペプチド又はそのエピトープを含む断片ペプチドは、抗ＣＤ１１ｂ抗体を投与する対象の種に応じたものであることが好ましい。抗ＣＤ１１ｂ抗体を投与する対象がヒトである場合、抗ＣＤ１１ｂ抗体はヒトＣＤ１１ｂポリペプチド又はその抗原結合断片を含有する断片ポリペプチドに対する抗体であることが好ましい。この様な抗体として、各種の市販の抗体｛Ｎｏｖｕｓ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社のＮＢ１１０−８９４７４、アブカム社のＡｎｔｉ−ＣＤ１１ｂ  ａｎｔｉｂｏｄｙ、ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製のＡＰＣ  ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ  ＣＤ１１ｂ  （ａｃｔｉｖａｔｅｄ）  Ａｎｔｉｂｏｄｙ等｝を使用することができる。
【００３９】
抗体の製造は、具体的には、ポリクローナル抗体の製造の場合は、動物において、フロインドアジュバント（完全又は不完全）等のアジュバントと組み合わせた抗原の頻回皮下（ｓｃ）又は腹腔内（ｉ．ｐ．）注射によって抗体を生じさせることにより実施できる。免疫原性を向上させるためには、最初に標的アミノ酸配列を含有するポリペプチド又は断片を、免疫化する種において免疫原性のあるタンパク質、例えばキーホールリンペットヘモシアニン、血清アルブミン、ウシサイログロブリン又は大豆トリプシン抑制因子と、二官能性薬剤又は誘導体化剤、例えばマレイミドベンゾイルスルホスクシンイミドエステル（システイン残基を介して複合）、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（リシン残基を介する）、グルタルアルデヒド、無水コハク酸、ＳＯＣｌ２等を用いて複合体とするのが有用である。代替的には、免疫原性複合体は、組み換え技術によって融合タンパク質として作製することができる。
【００４０】
モノクローナル抗体の製造は、抗体の製造に係る技術分野で自体公知の方法、例えば既報に記載のハイブリドーマ法を用いて実施することができる（非特許文献５）。ハイブリドーマ法では、マウス、ハムスター又は他の適切な宿主動物を、典型的には免疫剤を用いて免疫化して、特異的に免疫剤に結合する抗体を産生するか又は産生することが可能なリンパ球を誘導する。代替的には、リンパ球をインビトロ（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）で免疫化することができる。モノクローナル抗体は、免疫化した動物から脾臓細胞を回収すること、及び細胞を従来の方式で、例えば骨髄腫細胞との融合により不死化することによって調製することができる。調製したクローンを次いで所望の抗体を発現するものについてスクリーニングする。モノクローナル抗体はＣＤ１１ｂ以外のタンパク質と交差反応しないものであることが好ましい。所望のハイブリドーマ細胞を同定した後、クローンを限界希釈手順によってサブクローニングし、標準方法によって増殖させることができる。サブクローンによって分泌されたモノクローナル抗体を、培養培地又は腹水から、従来の免疫グロブリン精製手順、例えばプロテインＡ−セファロース、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析又は親和性クロマトグラフィー等によって単離又は精製することができる。
【００４１】
また、本発明において、抗ＣＤ１１ｂ抗体の断片（以下、抗体断片と称する）であって、抗ＣＤ１１ｂ抗体の抗原結合断片を含有する抗体断片を抗ＣＤ１１ｂ抗体と同様に使用することができる。当該抗体断片は、上記抗ＣＤ１１ｂ抗体の作用と同様の作用を有するものであれば、その構造は特に限定されない。抗体断片は、無傷抗体（ｉｎｔａｃｔ  ａｎｔｉｂｏｄｙ）の一部、例えば無傷抗体の抗原結合領域又は可変領域等を含む。抗体断片の例としては、Ｆａｂ断片、Ｆａｂ１断片、Ｆ（ａｂ’）２断片及びＦｖ断片；ダイアボディ；線状抗体；一本鎖抗体分子；並びに抗体断片から形成される多重特異性抗体が挙げられる。
【００４２】
抗体断片は、抗体の製造に係る技術分野で自体公知の方法により作製することができる。例えば、Ｆａｂ断片は、抗体のパパイン処理により得られ、Ｆ（ａｂ’）２断片はペプシン処理により得られる。また、一本鎖Ｆｖ又はｓＦｖ抗体断片は、抗体のＶＨドメイン及びＶＬドメインを含むが、この場合これらのドメインは単一のポリペプチド鎖中に存在する。ＦｖポリペプチドはＶＨドメインとＶＬドメインとの間に、ｓＦｖが抗原結合のための所望の構造を形成するのを可能にするポリペプチドリンカーをさらに含有することができる。ダイアボディは、２つの抗原結合部位を有する小さな抗体断片であり、この断片は同じポリペプチド鎖（ＶＨ−ＶＬ）で軽鎖可変ドメイン（ＶＬ）に連結した重鎖可変ドメイン（ＶＨ）を含む。同じ鎖上の２つのドメイン間での対合を可能にするには短いリンカーを用いることで、ドメインを別の鎖の相補的ドメインと対合させ、２つの抗原結合部位を生じさせることができる。
【００４３】
抗体は、イムノリポソーム（Ｉｍｍｕｎｏｌｉｐｏｓｏｍｅｓ）として処方することができる。抗体を含有するリポソームは、自体公知の方法により作製することができる（非特許文献６及び７）。特に有用なリポソームは、ホスファチジルコリン、コレステロール及びポリエチレングリコール誘導体化ホスファチジルエタノールアミン（ＰＥＧ−ＰＥ）を含有する脂質組成物を用いた逆相蒸発法によって生成することができる。本発明に係る抗体のＦａｂ断片はリポソームと、ジスルフィド交換反応を介して複合させることができる（非特許文献８）。任意の治療薬をさらにリポソーム内に含有することができる（非特許文献９）。
【００４４】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストとして、ＣＤ１１ｂを特異的に認識して結合し、ＣＤ１１ｂとそのリガンドとの結合を阻害するアプタマーを例示できる。アプタマーは、核酸アプタマー及びペプチドアプタマーのいずれであってもよく、具体的には、ＲＮＡ、ＤＮＡ及びアミノ酸の１つ又は複数を含有し得る。アプタマーは、公知の方法を用いて取得できる（非特許文献１０−１２）。例えば、１８ヌクレオチド〜５０ヌクレオチドの範囲の長さの可変領域を有するオリゴヌクレオチドライブラリを、ＲＮＡアプタマーのランダムプールを生成するラン−オフ転写反応の鋳型として使用する。このアプタマープールを、次いで非特異的相互作用の種を除去するために非複合基質（ｕｎｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ  ｍａｔｒｉｘ）に曝露する。次いで、残存するプールを固定化した標的と共にインキュベーションする。このプール中のアプタマー種の大部分は標的に対して低親和性である、洗浄により、少量のより特異的な基質に結合したプールが残り得る。このプールを次いで溶出させ、沈殿させ、逆転写し、ラン−オフ転写の鋳型として使用する。このような選択を５回実施後、一定分量を取り出し、クローニング及びシークエンシングする。同様の配列が再現性良く回収されるまで選択を継続することができる。あるいは、アプタマー産生はビーズベースの選択系を用いて行うことができる。このプロセスでは、各々のビーズが天然及び修飾ヌクレオチドから構成された同一の配列を有するアプタマー集団でコーティングされた、ビーズのライブラリが生成される。１×１０８個を超えるユニーク配列を含有し得るこのビーズライブラリを、蛍光色素等のタグと複合させた、ＣＤ１１ｂ又はその一部、例えば細胞外ドメインに相当するペプチドと共にインキュベーションする。洗浄後、最も高い結合親和性を示すビーズを単離し、続く合成のためにアプタマー配列を決定し、所望の機能を有するアプタマーを得る。
【００４５】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストとしてまた、ＣＤ１１ｂ  ｍＲＮＡアンタゴニストを例示できる。ｍＲＮＡアンタゴニストの例としては、少なくとも１つの低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）又は少なくとも１つのリボザイムを挙げることができる。本発明によると、ＣＤ１１ｂアンタゴニストはｓｉＲＮＡ等の治療用核酸であり、ＣＤ１１ｂヌクレオチド配列、その相補体、又はそれらの任意の組み合わせを標的とすることができる。任意の好適なＣＤ１１ｂ配列を利用することができる。合成ｓｉＲＮＡのＣＤ１１ｂ標的配列は、アクセッション番号ＡＡ４３６３１２、ＡＫ０５７８５６、ＡＫ１２７６３７、ＡＹ１８７２４７、ＡＹ１８７２４８、ＢＣ０９６３４６、ＢＣ０９６３４７、ＢＣ０９６３４８、ＢＣ０９９６６０を有するヒトＣＤ１１ｂヌクレオチド配列、又はその任意の一部若しくは組み合わせに対して設計されているか、又はＣＤ１１ｂ転写変異体（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ  ｖａｒｉａｎｔｓ）の全部若しくは一部サブセットを認識することができる。
【００４６】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストは、ＣＤ１１ｂ又はその相補体をコードする標的核酸に特異的に結合し、それに相補的な少なくとも１０ヌクレオチドの長さの核酸であり得る。この場合、ＣＤ１１ｂアンタゴニストの投与は、核酸を対象の細胞に導入することを含む。ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）を利用することができ、ＣＤ１１ｂアンタゴニストはｓｉＲＮＡであってもよい。ＣＤ１１ｂアンタゴニストの投与は対象の細胞に導入することを含み、この場合、細胞はＣＤ１１ｂを、ＣＤ１１ｂの発現を干渉するのに十分な条件下で、有効量のｓｉＲＮＡ核酸として一時的に発現することが可能である。ｓｉＲＮＡ核酸は突出を含み得る。すなわち、全てのヌクレオチドが標的配列への結合を必要とするとは限らない。ｓｉＲＮＡ核酸はＲＮＡを含有し得る。ｓｉＲＮＡ核酸はまた、ＤＮＡ、すなわちデオキシリボ核酸ヌクレオチドを含有し得る。任意の種類の好適な低分子干渉ＲＮＡを利用することができる。内在性マイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）を利用してもよい。本発明に従って使用することができる他のＲＮＡ干渉剤としては、低分子ヘアピン型ＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、トランス作動性ｓｉＲＮＡ（ｔａｓｉＲＮＡ）、反復配列関連ｓｉＲＮＡ（（ｒｅｐｅａｔ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｓｉＲＮＡ（ｒａｓｉＲＮＡ））、低分子スキャンＲＮＡ（ｓｍａｌｌ−ｓｃａｎ  ＲＮＡ（ｓｃｎＲＮＡ））及びＰｉｗｉ相互作用（ｐｉ）ＲＮＡ（ｐｉＲＮＡ）が挙げられる。利用されるＲＮＡ干渉核酸は、少なくとも１０ヌクレオチド、少なくとも１５ヌクレオチド、１６ヌクレオチド、１７ヌクレオチド、１８ヌクレオチド、１９ヌクレオチド、２０ヌクレオチド、２１ヌクレオチド、２２ヌクレオチド、２３ヌクレオチド、２４ヌクレオチド、２５ヌクレオチド、２６ヌクレオチド、２７ヌクレオチド、２８ヌクレオチド、２９ヌクレオチド、３０ヌクレオチド、３１ヌクレオチド、３２ヌクレオチド、３３ヌクレオチド、３４ヌクレオチド、少なくとも３５、及び／又は４０ヌクレオチド〜５０ヌクレオチドの長さであり得る。ＲＮＡｉ剤は１つ又は複数のデオキシリボヌクレオチドも含み得る。ＲＮＡｉ剤、例えばｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡは、適切なベクター系等のより大きな核酸構築物のカセットとして含まれ得る。かかるベクター系の例としては、レンチウイルスベクター系及びアデノウイルスベクター系が挙げられる。好適な系の一例は、Ａａｇａａｒｄらの報告に記載されている（非特許文献１３）。より大きな核酸構築物の一部として存在する場合、得られる核酸は含まれるＲＮＡｉ核酸より長い、例えば５０ヌクレオチドを超える長さであり得る。利用されるＲＮＡｉ剤は標的ｍＲＮＡを切断しても、又は切断しなくてもよい。
【００４７】
ＲＮＡ干渉に加えて又はＲＮＡ干渉の代替として、他の核酸アンタゴニストを利用することができる。ＣＤ１１ｂアンタゴニストは、ＣＤ１１ｂをコードする遺伝子から転写されたＲＮＡ分子を特異的に切断するリボザイムであり得るが、ここでリボザイムは、標的基質結合部位、基質結合部位中の触媒配列（基質結合部位はＣＤ１１ｂ遺伝子から転写されたＲＮＡ分子の一部に相補的である）を含有する。ＣＤ１１ｂアンタゴニストは、ＣＤ１１ｂをコードする核酸又はその相補体の少なくとも８ヌクレオチドに相補的であるヌクレオチド配列を含有するアンチセンス核酸であり得る。アンチセンス核酸は、アンチセンス核酸が非ＣＤ１１ｂヌクレオチド配列と交差反応しないよう、十分な長さ及び配列含量のＣＤ１１ｂ配列に相補的であり得る。交差反応が起こっても、実質的な有害な副作用を引き起こさない場合もある。
【００４８】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストは、低分子医薬品であり得る。例えば、ＣＤ１１ｂ無効化（ｄｉｓａｂｌｉｎｇ）小ペプチド模倣薬を利用することができる。かかる模倣薬は、標的タンパク質ＣＤ１１ｂの二次構造的特徴に類似するように構成され得る。
【００４９】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストは、１種類を単独で、あるいは任意の種類を複数組み合わせて使用することができる。また、ＣＤ１１ｂアンタゴニストは、劇症型急性肺炎を予防する及び／又は治療する他の薬剤と組み合わせて利用することができる。１つ又は複数のＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む２つ以上の治療薬は、同時に、順次に、又は併用して投与することができる。したがって、２つ以上の治療薬を投与する場合、同時に又は同じ方法で又は同じ用量で投与する必要はない。同時に投与する場合、２つ以上の治療薬は同じ組成物中又は異なる組成物中で投与することができる。２つ以上の治療薬は、同じ投与経路又は異なる投与経路を用いて投与することができる。異なる時間で投与する場合、治療薬は互いに前後して投与され得る。２つ以上の治療薬の投与順序は代替的であり得る。１つ又は複数の治療薬のそれぞれの用量は、時間とともに変化させてもよい。１つ又は複数の治療薬の種類は、時間とともに変化させてもよい。別々の時間で投与する場合、２回以上の投与の間隔は任意の期間であってもよい。複数回投与する場合、期間の長さを変化させることができる。２つ以上の治療薬の投与の間隔は、０秒間、１秒間、５秒間、１０秒間、３０秒間、１分間、５分間、１０分間、１５分間、２０分間、３０分間、４５分間、１時間、１．５時間、２時間、２．５時間、３時間、４時間、５時間、７．５時間、１０時間、１２時間、１５時間、１８時間、２１時間、２４時間、１．５日間、２日間、３日間、４日間、５日間、６日間、７日間、１０日間、又はそれ以上であり得る。
【００５０】
本発明の実施に関してＣＤ１１ｂアンタゴニストを全身投与及び局所投与に好適な投与量に処方するための薬学的に許容可能な担体の使用は、本発明の範囲内である。担体の適切な選択及び実際の製造に好適となるように、本発明に関連する組成物、特に溶液として処方される組成物は、非経口的に、例えば静脈内注射によって投与することができる。化合物は、当該技術分野で既知の薬学的に許容可能な担体を用いて、経口投与に好適な投与量に容易に処方することができる。
【００５１】
医薬用担体は、製剤の使用形態に応じて通常使用される、充填剤、増量剤、結合剤、付湿剤、崩壊剤、滑沢剤、希釈剤及び賦形剤を例示できる。これらは得られる製剤の投与形態に応じて適宜選択して使用される。より具体的には、水、医薬的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、ゼラチン、寒天、グリセリン、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトースを例示できる。これらは、目的とする薬剤の剤形に応じて適宜１種類及び２種類以上を組み合わせて使用される。その他、安定化剤、殺菌剤、緩衝剤、等張化剤、キレート剤、界面活性剤、及びｐＨ調整剤等を適宜使用することもできる。安定化剤は、例えばヒト血清アルブミンや通常のＬ−アミノ酸、糖類、セルロース誘導体を例示できる。Ｌ−アミノ酸は、特に限定はなく、例えばグリシン、システイン、グルタミン酸等のいずれでもよい。糖類も特に限定はなく、例えばグルコース、マンノース、ガラクトース、果糖等の単糖類、マンニトール、イノシトール、キシリトール等の糖アルコール、ショ糖、マルトース、乳糖等の二糖類、デキストラン、ヒドロキシプロピルスターチ、コンドロイチン硫酸、ヒアルロン酸等の多糖類等及びそれらの誘導体等のいずれでもよい。セルロース誘導体も特に限定はなく、メチルセルロース、エチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム等のいずれでもよい。界面活性剤も特に限定はなく、イオン性界面活性剤及び非イオン性界面活性剤のいずれも使用できる。界面活性剤には、例えばポリオキシエチレングリコールソルビタンアルキルエステル系、ポリオキシエチレンアルキルエーテル系、ソルビタンモノアシルエステル系、脂肪酸グリセリド系等が包含される。緩衝剤は、ホウ酸、リン酸、酢酸、クエン酸、ε−アミノカプロン酸、グルタミン酸及び／及びそれらに対応する塩（例えばそれらのナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩等のアルカリ金属塩やアルカリ土類金属塩）を例示できる。等張化剤は、塩化ナトリウム、塩化カリウム、糖類、グリセリンを例示できる。キレート剤は、例えばエデト酸ナトリウム、クエン酸を例示できる。
【００５２】
本発明に係る医薬組成物の用量範囲は特に限定されず、投与形態、投与経路、疾患の種類、対象の性質（体重、年齢、病状及び他の医薬の使用の有無等）、及び担当医師の判断等に応じて適宜選択される。適当な用量は、当該分野においてよく知られた最適化のための一般的な常套的実験を用いて決定することができるが、一般的には例えば対象の体重１ｋｇあたり０．０１μｇ乃至１０００ｍｇ程度、好ましくは約０．１μｇ乃至１００ｍｇ程度の範囲である。上記投与量は１日１回乃至数回に分けて投与することができる。
【００５３】
本発明に係る医薬組成物や薬剤に含まれるＣＤ１１ｂアンタゴニストの用量は、ＣＤ１１ｂアンタゴニストの種類によって好ましい用量が異なるが、劇症急性肺炎モデル動物等を使用して簡単な繰り返し実験を実施することにより容易に決定することができる。例えば、抗ＣＤ１１ｂ抗体の好ましい用量は、マウス劇症急性肺炎モデルにおける効果が２００μｇ／日投与で認められている（後述する実施例４−６参照）ことを基準にし、該抗体の中和抗体価等を考慮すると、１日に０．５ｍｇ／ｋｇ乃至１００ｍｇ／ｋｇ、好ましくは０．５ｍｇ／ｋｇ乃至５０ｍｇ／ｋｇ、より好ましくは０．５ｍｇ／ｋｇ乃至２０ｍｇ／ｋｇ、さらに好ましくは０．５ｍｇ／ｋｇ乃至１０ｍｇ／ｋｇ、さらにより好ましくは０．５ｍｇ／ｋｇ乃至１０ｍｇ／ｋｇ、なお好ましくは０．５ｍｇ／ｋｇ乃至２．５ｍｇ／ｋｇである。
【００５４】
本発明に係る医薬組成物や薬剤に含まれる有効成分の量は、広範囲から適宜選択される。通常約０．００００１−７０重量％、好ましくは０．０００１−５重量％程度の範囲である。
【００５５】
投与経路は、全身投与及び局所投与のいずれも選択することができる。この場合、疾患、症状等に応じた適当な投与経路を選択する。本発明に係る薬剤は、経口経路及び非経口経路のいずれによっても投与できる。非経口経路としては、通常の静脈内投与、動脈内投与の他、皮下、皮内、筋肉内等への投与を挙げることができる。
【００５６】
剤形は、特に限定されず、種々の剤形とすることができる。例えば、溶液製剤として使用できる他に、これを凍結乾燥化し保存し得る状態にした後、用時、水や生理的食塩水等を含む緩衝液等で溶解して適当な濃度に調製した後に使用することもできる。また持続性剤形及び徐放性剤形であってもよい。
【００５７】
具体的には、経口投与のためには、錠剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤、丸剤、液剤、乳剤、懸濁液、溶液剤、酒精剤、シロップ剤、エキス剤、エリキシル剤とすることができる。非経口剤としては、例えば、皮下注射剤、静脈内注射剤、筋肉内注射剤、腹腔内注射剤等の注射剤、経皮投与及び貼付剤、軟膏及びローション、口腔内投与のための舌下剤、口腔貼付剤、ならびに経鼻投与のためのエアゾール剤、坐剤とすることができるが、これらには限定されない。これらの製剤は、製剤工程において通常用いられる公知の方法により製造することができる。
【００５８】
経口用固形製剤を調製する場合は、上記有効成分に賦形剤、必要に応じて結合剤、崩壊剤、滑沢剤、着色剤、矯味剤、矯臭剤等を加えた後、常法により錠剤、被覆錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤等を製造することができる。そのような添加剤としては、当該分野で一般的に使用されるものでよく、例えば、賦形剤としては、乳糖、白糖、塩化ナトリウム、ブドウ糖、デンプン、炭酸カルシウム、カオリン、微結晶セルロース、珪酸等を、結合剤としては、水、エタノール、プロパノール、単シロップ、ブドウ糖液、デンプン液、ゼラチン液、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、メチルセルロース、エチルセルロース、シェラック、リン酸カルシウム、ポリビニルピロリドン等を、崩壊剤としては乾燥デンプン、アルギン酸ナトリウム、カンテン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、乳糖等を、滑沢剤としては精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ砂、ポリエチレングリコール等を、矯味剤としては白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等を例示できる。
【００５９】
経口用液体製剤を調製する場合は、上記化合物に矯味剤、緩衝剤、安定化剤、矯臭剤等を加えて常法により内服液剤、シロップ剤、エリキシル剤等を製造することができる。この場合矯味剤としては上記に挙げられたもので良く、緩衝剤としてはクエン酸ナトリウム等が、安定化剤としてはトラガント、アラビアゴム、ゼラチン等を挙げることができる。
【００６０】
注射剤を調製する場合は、上記化合物にｐＨ調節剤、緩衝剤、安定化剤、等張化剤、局所麻酔剤等を添加し、常法により皮下、筋肉内及び静脈内用注射剤を製造することができる。この場合のｐＨ調節剤及び緩衝剤としてはクエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウム等を挙げることができる。安定化剤としてはピロ亜硫酸ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、チオグリコール酸、チオ乳酸等を挙げることができる。局所麻酔剤としては塩酸プロカイン、塩酸リドカイン等を挙げることができる。等張化剤としては、塩化ナトリウム、ブドウ糖等を例示できる。
【００６１】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストは、肺胞内の好中球凝集抑制剤又は肺の好中球浸潤抑制剤として提供することができる。
【００６２】
「肺胞内の好中球凝集抑制」とは、肺胞内で生じる好中球の凝集や集積、例えば、ＦＡＲＤＳなどの疾患において認められる肺胞内の好中球の凝集や集積を低減することをいう。
【００６３】
「肺の好中球浸潤抑制」とは、肺への好中球の侵入、例えば、ＦＡＲＤＳなどの疾患において認められる肺への好中球の侵入を阻害することをいう。
【００６４】
ＣＤ１１ｂアンタゴニストはまた、ＣＤ１１ｂアンタゴニストを含む劇症型急性肺炎の予防剤及び／又は治療剤として提供することができる。
【００６５】
以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらに限定されない。
【実施例１】
【００６６】
野生型マウスに劇症型急性肺炎を誘導して（マウスＦＡＲＤＳモデル）、死亡率、肺所見、及びＰ／Ｆ比を検討した。マウスは、野生型のＣ５７ＢＬ／６マウスを使用した。全ての動物の飼育は山口大学のガイドラインに従って行った。
【００６７】
マウスＦＡＲＤＳモデルは、ＮＫＴ細胞の活性化剤であるαＧａｌＣｅｌ（ＫＩＲＩＮ社製）をパイロジェンフリーのリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に溶解して調製した溶液を１μｇ／５０μｌ  ＰＢＳ／マウスの用量で、野生型マウス（Ｃ５７ＢＬ／６）に経鼻投与して感作し（Ｄａｙ  −１）、その２４時間後、リポポリサッカライド（ＬＰＳ）をパイロジェンフリーのＰＢＳに溶解して調製した溶液を５０μｇ／５０μｌ  ＰＢＳ／マウスの用量で、経鼻投与して（Ｄａｙ  ０）、劇症型急性肺炎を誘導することにより作製した（図１Ａ）。野生型マウスにαＧａｌＣｅｌの投与に続いてＬＰＳを投与することにより、劇症型急性肺炎が誘発されることは既に報告されている（非特許文献１４）。
【００６８】
ＬＰＳ投与後、１２時間ごとにマウスの生死を確認し、生存率を算出した。ＬＰＳ投与４８時間後に個々のマウスから動脈血を採取し、動脈血酸素分圧を自動分析器（ＡＢＳ５５５、ＲＡＤＩＯＭＥＴＥＲ  ＣＯＰＥＮＨＡＧＥＮ社、デンマーク）を用いて測定し、Ｐ／Ｆ比を算出した。組織学的分析については、ＬＰＳ投与７２時間後に個々のマウスから得た肺を４％パラホルムアルデヒド中で固定し、パラフィン包埋し、切片にし、組織学検査のためにヘマトキシリン・エオジン（Ｈ＆Ｅ）染色した。標本を光学顕微鏡下で検査した。
【００６９】
１．マウスＦＡＲＤＳモデルの死亡率
８匹のマウスＦＡＲＤＳモデルを用いて検討を行ったところ、ＬＰＳ投与後２〜３日で８０％以上が死亡した（図１Ｂ）。
【００７０】
２．マウスＦＡＲＤＳモデルの肺所見
マウスＦＡＲＤＳモデルでは、ＬＰＳ投与７２時間後に、ヒトでのＡＲＤＳ／ＦＡＲＤＳの病理組織像と同様に、肺組織における非常に激しい好中球浸潤が認められた（図１Ｃ）。
【００７１】
３．マウスＦＡＲＤＳモデルのＰ／Ｆ比
マウスＦＡＲＤＳモデルのＰ／Ｆ比は９１．８±３４．６であった。一方、無処理の野生型マウス（以下、定常状態の野生型マウスと称する）のＰ／Ｆ比は５０７．１±３１．９であった。この結果から、定常状態の野生型マウスのＰ／Ｆ比はヒトと同程度乃至やや高く、一方、マウスＦＡＲＤＳモデルのＰ／Ｆ比はヒトのＦＡＲＤＳに相当する値であることが明らかになった（図１Ｄ）。
【実施例２】
【００７２】
マウスＦＡＲＤＳモデルの肺への好中球及びＣＤ４  Ｔ細胞の浸潤を、イメージング技術を用いて免疫細胞を可視化することにより定量的に測定した。
【００７３】
マウスＦＡＲＤＳモデルは、次に示すように作製した（図２Ａ）。緑色蛍光タンパク質遺伝子を組み込んだトランスジェニックマウス（以下、ＧＦＰ  Ｔｇと称する）をドナーとして使用し、その大腿骨骨髄からＡｕｔｏＭＡＣＳソーター（ミルテニーバイオテク（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ  Ｂｉｏｔｅｃ）社）を用いて好中球及びＣＤ４  Ｔ細胞を精製し、それぞれ９８％の純度とした。ＧＦＰ  Ｔｇ（Ｃ５７ＢＬ／６−Ｔｇ（ＣＡＧ−ＥＧＦＰ）Ｃ１４−Ｙ０１−ＦＭ１３１Ｏｓｂ  ｍｉｃｅ）は理研バイオリソースセンターより購入した。単離した２００万個の好中球又はＣＤ４  Ｔ細胞を野生型Ｃ５７ＢＬ／６マウス中に静注（ｉｖ）投与した（Ｄａｙ  −３）。そして、同系統の野生型マウスであるＣ５７ＢＬ／６マウスをレシピエントとして使用し、前記好中球又はＣＤ４  Ｔ細胞を静脈経由で移入した。細胞移入４８時間後（Ｄａｙ  −１）にαＧａｌＣｅｌを１μｇ／５０μｌ  ＰＢＳ／マウスの用量で野生型マウスに経鼻投与し、その２４時間後（Ｄａｙ  ０）にＬＰＳを５０μｇ／５０μｌ  ＰＢＳ／マウスの用量で経鼻投与して劇症型急性肺炎を誘導した。
【００７４】
ＬＰＳ投与６時間、１２時間、２４時間、及び４８時間後にマウスの肺を取り出し、蛍光顕微鏡（Ｍ２５０ＦＡ、ニコン社製）を用いてＧＦＰ陽性の好中球を観察した。
【００７５】
１．マウスＦＡＲＤＳモデルの肺への好中球集積
αＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与したマウスでは、ＬＰＳ投与４８時間後に肺組織における非常に激しいＧＦＰ陽性好中球の浸潤が認められた（図２Ｂ）。ＬＰＳのみを投与したマウスでも肺への好中球の浸潤が認められたが、αＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与したマウスと比較して浸潤した好中球の数は少なかった。この結果から、ＬＰＳにより誘導される肺への好中球浸潤が、αＧａｌＣｅｌの前投与により劇的に増加することが明らかになった。また、浸潤した好中球には、好中球同士が互いに接するほど凝集している状態が認められた。劇症型急性肺炎以外の肺炎では、肺胞内に好中球が散在する程度にしか含まれていない（非特許文献１５−１８）。肺に浸潤した好中球による凝集体の形成が、劇症型急性肺炎の特徴の１つである。なお、αＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与したマウスでは、移入したＧＦＰ陽性好中球の他にも、レシピエントに本来存在しているＧＦＰ非標識好中球が数多く浸潤しており、好中球の集塊を形成している。この結果は、αＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳの投与により肺への好中球浸潤が劇的に増加し、凝集体を形成することにより、肺炎が劇症化することを示唆する。
【００７６】
２．ＬＰＳ投与後の肺への好中球集積の経時変化
αＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与したマウスでは、ＬＰＳの投与後６時間程度でＧＦＰ陽性好中球の肺への著しい浸潤が認められた（図２Ｃ）。
【００７７】
３．ＬＰＳ投与後の肺へのＣＤ４  Ｔ細胞集積の経時変化
αＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与したマウスでは、ＬＰＳの投与後２４時間位からＧＦＰ陽性ＣＤ４  Ｔ細胞の肺への集積が認められた（図２Ｄ）。ＣＤ４  Ｔ細胞の肺への集積は、好中球の肺への集積よりも遅れて認められることが判明した。
【実施例３】
【００７８】
マウスＦＡＲＤＳモデルの肺への免疫炎症細胞の浸潤を検討した。実施例１と同じ方法で作製したマウスＦＡＲＤＳモデルを使用した。
【００７９】
ＬＰＳ投与３日後に、既報に従い肺胞洗浄（ＢＡＬ）を行った（非特許文献１９）。全ての肺胞洗浄液を採集し、１５０μｌ分取液中の細胞を計数した。総細胞数とフローサイトメトリーによる各細胞種の百分率からマウス１匹の肺中の各細胞種の数を計算した。
【００８０】
マウスＦＡＲＤＳモデルの肺への免疫炎症細胞浸潤は、ＬＰＳ投与後に劇的に増加し、特に、好中球の集積が特徴的に認められた（図３）。
【実施例４】
【００８１】
実施例３の検討結果から、マウスＦＡＲＤＳモデルの肺への免疫炎症細胞浸潤は、ＬＰＳ投与後に劇的に増加し、特に、好中球の集積が特徴的に認められた。そこで、マウスＦＡＲＤＳモデルにおける肺への好中球浸潤に対する抗ＣＤ１１ｂ抗体投与の効果を検討した。
【００８２】
実施例２と同じ方法で作製したマウスＦＡＲＤＳモデルを使用した。細胞移入２４時間後（Ｄａｙ  −２）に、抗ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製のラット（ｒａｔ）  ＩｇＧＭ１／７０）を２００μｇ／マウスの用量で腹腔内（ｉ．ｐ．）注射し、その２４時間後（Ｄａｙ  −１）にαＧａｌＣｅｌを経鼻投与し、さらに２４時間後（Ｄａｙ  ０）にＬＰＳを経鼻投与して劇症型急性肺炎を誘導した。ＬＰ投与２４時間後にマウスの肺を取り出し、蛍光顕微鏡（Ｍ２０５ＦＡＡ、ニコン社製）を用いてＧＦＰ陽性の好中球を観察した。
【００８３】
αＧａｌＣｅｌ及びＬＰＳを投与したマウスではＧＦＰ陽性好中球の肺への著しい浸潤が認められたが、抗ＣＤ１１ｂ抗体の発症前投与により、肺への好中球浸潤が抑制された（図４）。また、肺に浸潤した好中球による凝集体の形成が、抗ＣＤ１１ｂ抗体の発症前投与により抑制された。
【００８４】
上記結果から、抗ＣＤ１１ｂ抗体を肺への好中球浸潤及び浸潤した好中球の凝集体形成を抑制する用途に使用できる。
【実施例５】
【００８５】
ＦＡＲＤＳ発症前の抗ＣＤ１１ｂ抗体投与による劇症型急性肺炎の抑制効果を検討した。実施例１と同じ方法で作製したマウスＦＡＲＤＳモデルを使用した。αＧａｌＣｅｌ投与の２４時間前（Ｄａｙ  −２）に、抗ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製のｒａｔ  ＩｇＧＭ１／７０）を２００μｇの用量で腹腔内（ｉ．ｐ．）投与した（図５Ａ）。陰性対象として、コントロール抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製のｒａｔ  ＩｇＧ２ｂ，κアイソタイプコントロール抗体）を用いて同様の処理を行った。
【００８６】
ＬＰＳ投与後、１２時間ごとにマウスの生死を確認し、生存率を算出した。ＬＰＳ投与４８時間後に個々のマウスから動脈血を採取し、動脈血酸素分圧を自動分析器（ＡＢＳ５５５、ＲＡＤＩＯＭＥＴＥＲ  ＣＯＰＥＮＨＡＧＥＮ社、デンマーク）を用いて測定し、Ｐ／Ｆ比を算出した。組織学的分析については、ＬＰＳ投与７２時間後に個々のマウスから得た肺を４％パラホルムアルデヒド中で固定し、パラフィン包埋し、切片にし、組織学検査のためにＨ＆Ｅ染色した。標本を光学顕微鏡下で検査した。
【００８７】
１．マウスＦＡＲＤＳモデルの死亡率
８匹のマウスＦＡＲＤＳモデルを用いて検討を行ったところ、ＦＡＲＤＳ発症前の抗ＣＤ１１ｂ抗体の投与により、死亡率の著しい低下が認められた（図５Ｂ）。具体的には、８０％以上のマウスの致死が回避され生存した。
【００８８】
２．マウスＦＡＲＤＳモデルの肺所見
ＬＰＳの投与７２時間後の病理組織像では、コントロール抗体を投与したマウスの肺組織には激しい炎症細胞浸潤が観察されたが、抗ＣＤ１１ｂ抗体をＦＡＲＤＳ発症前に投与したマウスの肺組織では、炎症細胞の浸潤は抑制され、炎症の程度が軽減されていた（図５Ｃ）。
【００８９】
３．マウスＦＡＲＤＳモデルのＰ／Ｆ比
マウスＦＡＲＤＳモデルのＰ／Ｆ比は９８．４±３６．２であり、ＰＢＳのみ投与の野生型マウス（以下、定常状態の野生型マウスと称する）のＰ／Ｆ比は５７５．２±３２．１であった。抗ＣＤ１１ｂ抗体をＦＡＲＤＳ発症前に投与したマウスでは、Ｐ／Ｆ比が４８０．８±４９．５に改善された。一方、コントロール抗体を投与したマウスでは、Ｐ／Ｆ比が１０９．９±３７．２であり、改善は認められなかった。この結果から、マウスＦＡＲＤＳモデルにおいて認められたＰ／Ｆ比の低下は、抗ＣＤ１１ｂ抗体をＦＡＲＤＳ発症前に投与することにより、著しく改善されることが明らかになった（図５Ｄ）。
【００９０】
抗ＣＤ１１ｂ抗体は、ＦＡＲＤＳ誘導前に投与することにより、ＦＡＲＤＳ発症後のマウスの生存率を増加させ、炎症細胞の肺への浸潤を抑制し、Ｐ／Ｆ比を著しく改善することが明らかになった。
【実施例６】
【００９１】
ＦＡＲＤＳ発症後の抗ＣＤ１１ｂ抗体投与による劇症型急性肺炎の抑制効果を検討した。実施例１と同じ方法で作製したマウスＦＡＲＤＳモデルを使用した。ＬＰＳ投与の２４時間後に、抗ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製のｒａｔ  ＩｇＧＭ１／７０）を２００μｇの用量で腹腔内（ｉ．ｐ．）投与した（図６Ａ）。陰性対象として、コントロール抗体を用いて同様の処理を行った。
【００９２】
ＬＰＳ投与後、１２時間ごとにマウスの生死を確認し、生存率を算出した。組織学的分析については、ＬＰＳ投与７２時間後に個々のマウスから得た肺を４％パラホルムアルデヒド中で固定し、パラフィン包埋し、切片にし、組織学検査のためにＨ＆Ｅ染色した。標本を光学顕微鏡下で検査した。
【００９３】
１．マウスＦＡＲＤＳモデルの死亡率
１０匹のマウスＦＡＲＤＳモデルを用いて検討を行ったところ、ＦＡＲＤＳ発症後の抗ＣＤ１１ｂ抗体の投与により、死亡率の著しい低下が認められた（図６Ｂ）。具体的には、８０％以上のマウスの致死が回避され生存した。
【００９４】
２．マウスＦＡＲＤＳモデルの肺所見
ＬＰＳの投与７２時間後の病理組織像では、コントロール抗体を投与したマウスの肺組織には激しい炎症細胞浸潤が観察されたが、抗ＣＤ１１ｂ抗体をＦＡＲＤＳ発症後に投与したマウスの肺組織では、炎症細胞の浸潤は抑制された（図６Ｃ）。抗ＣＤ１１ｂ抗体をＦＡＲＤＳ発症前に投与したマウスの肺組織と比較して、細胞浸潤抑制の程度は少ないが、コントロール抗体投与群とは明らかに異なり、肺組織内にガス交換できる空間が残っていた。そのため、生存率が上昇した。
【００９５】
このように、抗ＣＤ１１ｂ抗体は、ＦＡＲＤＳ誘導後の投与でも誘導前の投与と同程度の生存率を与え、炎症細胞の肺への浸潤を抑制することが明らかになった。
【実施例７】
【００９６】
上記の実施例５とは別クローンの抗ＣＤ１１ｂ抗体を用いて、ＦＡＲＤＳ発症前の抗ＣＤ１１ｂ抗体投与による劇症型急性肺炎の抑制効果を検討した。
実施例１と同じ方法で作製したマウスＦＡＲＤＳモデルを使用した。実施例５と同様の投与手順でαＧａｌＣｅｌ投与の２４時間前（Ｄａｙ  −２）に、抗ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈ社製のｒａｔＩｇＧ  ３Ａ３３）を２００μｇの用量で腹腔内（ｉ．ｐ．）投与した。陰性対象として、コントロール抗体（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製のｒａｔ  ＩｇＧ２ｂ，κアイソタイプコントロール抗体）を用いて同様の処理を行った。
なお、本実施例で用いた抗ＣＤ１１ｂ抗体３Ａ３３及び実施例５で用いた抗ＣＤ１１ｂ抗体Ｍ１／７０は、いずれも蛍光標識してマウスの生細胞を直接染色するとフローサイトメーターでＣＤ１１ｂの発現が検出できることを確認している。生細胞の直接染色では抗体分子は細胞内には入り込めないため、フローサイトメーターでＣＤ１１ｂを検出できることは、用いた２種類の抗ＣＤ１１ｂ抗体が共にＣＤ１１ｂ分子の細胞外領域を認識して結合することを意味している。
【００９７】
ＬＰＳ投与後、１２時間ごとにマウスの生死を確認し、生存率を算出した。組織学的分析については、ＬＰＳ投与７２時間後に個々のマウスから得た肺を４％パラホルムアルデヒド中で固定し、パラフィン包埋し、切片にし、組織学検査のためにＨ＆Ｅ染色した。標本を光学顕微鏡下で検査した。
【００９８】
１．マウスＦＡＲＤＳモデルの死亡率
５匹のマウスＦＡＲＤＳモデルを用いて検討を行ったところ、ＦＡＲＤＳ発症前の抗ＣＤ１１ｂ抗体の投与により、死亡率の著しい低下が認められた（図７Ａ）。具体的には、８０％以上のマウスの致死が回避され生存した。
【００９９】
２．マウスＦＡＲＤＳモデルの肺所見
ＬＰＳの投与７２時間後の病理組織像では、コントロール抗体を投与したマウスの肺組織には激しい炎症細胞浸潤が観察されたが、抗ＣＤ１１ｂ抗体をＦＡＲＤＳ発症前に投与したマウスの肺組織では、炎症細胞の浸潤は抑制され、炎症の程度が軽減されていた（図７Ｂ）。
【０１００】
抗ＣＤ１１ｂ抗体は、実施例５とは別クローンの抗体においても、ＦＡＲＤＳ誘導前に投与することにより、ＦＡＲＤＳ発症後のマウスの生存率を増加させ、炎症細胞の肺への浸潤を抑制することを確認した。
【実施例８】
【０１０１】
ＦＡＲＤＳ発症後の抗ＣＤ１１ｂ抗体投与による劇症型急性肺炎の抑制効果を検討した。実施例１と同じ方法で作製したマウスＦＡＲＤＳモデルを使用した。実施例６と同様に、ＬＰＳ投与の２４時間後に、抗ＣＤ１１ｂ  ｍＡｂ（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社製のｒａｔ  ＩｇＧＭ１／７０）を２００μｇの用量で腹腔内（ｉ．ｐ．）投与した。陰性対象として、コントロール抗体を用いて同様の処理を行った。
【０１０２】
ＬＰＳ投与４８時間後に個々のマウスから動脈血を採取し、実施例５と同様に、Ｐ／Ｆ比を算出した。
【０１０３】
マウスＦＡＲＤＳモデルのＰ／Ｆ比は９４．９±３１．２であり、定常状態の野生型マウスのＰ／Ｆ比は６１６．６±２２．２であった。抗ＣＤ１１ｂ抗体をＦＡＲＤＳ発症後に投与したマウスでは、Ｐ／Ｆ比が２６９．５±４４．１に改善された。一方、コントロール抗体を投与したマウスでは、Ｐ／Ｆ比が１０５．６±３６．４であり、改善は認められなかった。この結果から、マウスＦＡＲＤＳモデルにおいて認められたＰ／Ｆ比の低下は、抗ＣＤ１１ｂ抗体をＦＡＲＤＳ発症後に投与した場合でも、有意に改善されることが明らかになった（図８）。
【０１０４】
（総論）
上記実施例の結果から、ＣＤ１１ｂ分子が難治性炎症疾患であるＦＡＲＤＳの良好な治療ターゲット分子になり得ることが示唆された。免疫炎症細胞、例えば好中球におけるＣＤ１１ｂの発現や機能を抑制することにより、ＦＡＲＤＳの治療が可能になる。
【産業上の利用可能性】
【０１０５】
本発明は、ＣＤ１１ｂアンタゴニスト、例えば抗ＣＤ１１ｂ抗体を含む、劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療用医薬組成物、並びに劇症型急性肺炎の予防及び／又は治療方法を提供するものであり、医薬分野における利用が可能である。
【図１Ａ】
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【図１Ｂ】
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【図１Ｃ】
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【図１Ｄ】
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【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図２Ｃ】
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【図２Ｄ】
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【図３】
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【図４】
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【図５Ａ】
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【図５Ｂ】
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【図５Ｃ】
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【図５Ｄ】
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【図６Ａ】
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【図６Ｂ】
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【図６Ｃ】
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【図７Ａ】
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【図７Ｂ】
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【図８】
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