(57)【要約】【課題】  ａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）活性化作用を呈する環状フェニルグルカン誘導体を提供する。【解決手段】  目的とする環状フェニルグルカン誘導体はＮアセチルグルコサミン、グルコサミン及びフェニルエステル体からなる環状体である。この誘導体はＡＰＥ−１活性化作用を呈し、かつ、ビタミンＥやアスタキサンチンの結合体を形成する。製造方法はアエロピラム  ペルニクスと大豆により発酵させた発酵液に分岐シクロデキストリンを添加してプロテアーゼ処理する工程からなる。この環状フェニルグルカン誘導体を健康食品、化粧料、医薬品、医薬部外品や植物活性化剤に利用する。【選択図】      なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記の式（１）に示されるａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）活性化作用を呈する環状フェニルグルカン誘導体。
【化１】
2018193499.tif 000005
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
この発明はａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）活性化作用を呈する環状フェニルグルカン誘導体に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
遺伝子は種々の刺激により障害を受けている。たとえば、紫外線により皮膚細胞の遺伝子は活性酸素により酸化される。また、消化器の粘膜細胞は消化酵素や酸により障害を受け、遺伝子に変異を生じる。遺伝子の酸化物質としてはグアニンの８位が酸化された８−ＯＨｄＧ（８−Ｈｙｄｒｏｘｙｄｅｏｘｙｇｕａｎｏｓｉｎｅ）や６−ＯＨｄＡ（６−Ｈｙｄｒｏｘｙｄｅｏｘｙａｄｅｎｏｓｉｎｅ）などが知られている。８−ＯＨｄＧはＤＮＡ上に生じることにより遺伝子の転写や複製に障害をもたらす。そのため、この８−ＯＨｄＧは遺伝子の酸化マーカーとして利用されている。
【０００３】
遺伝子の損傷による疾患として糖尿病、癌、アトピー性皮膚炎、腎炎、慢性肝疾患などである。この遺伝子の酸化を除去して遺伝子を修復するシステムが生体には存在している。たとえば、ＤＮＡ修復酵素によるＤＮＡの修復がある。ＤＮＡ修復酵素としてはＤＮＡポリメラーゼ、ａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）、ＤＮＡリガーゼなどがある。このうち、ＤＮＡの塩基部分の除去と修復に働くＤＮＡ修復酵素はＡＰＥ−１であり、ヒトを含めすべての生物に含有されている。
【０００４】
このＡＰＥ−１を活性化することにより遺伝子の障害を修復するという遺伝子修復機能が亢進して遺伝子障害による疾患の発生を予防し、また、疾患の治療に利用することが可能である。そのため、ＡＰＥ−１の活性化作用を含めて遺伝子修復を行う物質や方法が研究され、開発されている。
【０００５】
遺伝子修復に関する発明として、たとえば、オリゴヌクレオチド仲介型遺伝子修復を使用した標的遺伝子修飾の発明があるものの、その働きは限定されている。（例えば、特許文献１参照。）
【０００６】
また、オリゴヌクレオチドを用いたＤＮＡの標的改変の発明があるものの、その働きは実用的ではない（例えば、特許文献２参照。）
【０００７】
さらに、標的ＤＮＡのインビボ除去による遺伝子修復の発明があるものの、その働きと安全性は不明瞭であり、利用は限られている。（例えば、特許文献３参照。）
【０００８】
このように遺伝子修復のためにＡＰＥ−１活性化作用を発揮し、副作用の少ない天然物は望まれているものの、有用な物質に関する発明はない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００９】
【特許文献１】特願２０１６−５０３１６９
【特許文献２】特願２０１３−５４１９４５
【特許文献３】特願２０００−５９７４４４
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
上記したように既存の天然物によるａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）活性化作用は軽度であることから産業上への利用が限定されるという課題があり、また、化学合成された物質では安全性に問題があり、利用が限られている。
【００１１】
そのため、副作用が弱く優れたａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）活性化作用を呈する天然物や物質が望まれている。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
上記の目的を達成するために、請求項１に記載の発明は下記の式（１）に示されるａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）活性化作用を呈する環状フェニルグルカン誘導体に関するものである。
【００１３】
【化１】
2018193499.tif 000002
【発明の効果】
【００１４】
この発明は、以上のように構成されているため、次のような効果を奏する。
【００１５】
請求項１に記載の誘導体によれば、優れたａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）活性化作用を発揮することができる。
【発明を実施するための形態】
【００１６】
以下、この発明を具体化した実施形態について詳細に説明する。
【００１７】
まず、下記の式（１）に示されるａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ  ｅｎｄｏｎｕｃｌｅｓｅ−１（ＡＰＥ−１）活性化作用を呈する環状フェニルグルカン誘導体は炭素元素７２個、水素元素９６個、酸素元素３０個及び窒素元素６個から構成されている。
【００１８】
【化２】
2018193499.tif 000003
【００１９】
すなわち、Ｃ７２Ｈ９６Ｏ３０Ｎ６の化学式である。また、環状に結合したフェニルグルカン類である。
【００２０】
この環状フェニルグルカン誘導体は６分子のグルカンと３分子のフェニル基より構成されている。グルカンはＮアセチルグルコサミンとグルコサミンであり、３分子のＮアセチルグルコサミンと３分子のグルコサミンである。グルカンの間の結合はエーテル結合であり、糖質の間の通常の結合形式である。Ｎアセチルグルコサミンとグルコサミンは交互に配列している。すなわち、Ｎアセチルグルコサミンの１位とグルコサミンの４位が結合し、このグルコサミンの１位と次のＮアセチルグルコサミンの４位が結合している。これとは別にグルコサミンの１位とＮアセチルグルコサミンの４位が結合し、このＮアセチルグルコサミンの１位と別のグルコサミンの４位が結合している。この２種類のトリグルカン同志はＮアセチルグルコサミンの４位とグルコサミンの４位が結合し、さらに、Ｎアセチルグルコサミンの１位とグルコサミンの１位が結合している。このように６つの糖により環状構造が形成されている。
【００２１】
この環状フェニルグルカン誘導体をＮアセチルグルコサミン、グルコサミン及びフェニルエステル体を原料として有機化学的に合成することができる。この有機合成された誘導体は標準物質として解析や分析に利用される。しかし、化学的な製造にはコストがかかり、かつ、有機合成反応には触媒として有機溶媒と重金属を使用することから、化粧品や食品分野には利用しにくいという安全性上の欠点がある。
【００２２】
この環状フェニルグルカン誘導体の構造についてはこの誘導体の重水素化クロロホルム中の５００ＭＨｚのＨ−ＮＭＲ（１Ｈ−ＮＭＲ）解析（ブルカー製）により、ピークの位置は１．１１、１．１２、１．１７、１．２４、１．２６、１．２９、１．３０、２．１９、２．２１、２．４６、２．５５、３．６１、３．７２、３．７９、３．８１、３．９５、４．０６、４．１３、４．２９、４．４０、４．５２、４．５８、４．９３、５．００、５．１１、５．１２、５．１３、５．２４、５．５５、５．５７、７．３７、７．７８及び７．９７ｐｐｍに認められる。
【００２３】
また、この誘導体について重水素化クロロホルム中のＣ−ＮＭＲ（１３Ｃ−ＮＭＲ）解析ではピークの位置は６．７、１４．９、１７．０、１７．１、１７．２、１８．０、１８．２、２４．１、２４．８、２５．０、２５．７、２８．９、２９．６、３０．１、３１．０、３３．３、３３．９、３４．７、４３．６、４３．７、６１．９、６２．０、６６．２、６７．１、６７．５、６７．８、６８．７、６８．９、６９．３、７１．１、７１．５、７１．７、７２．４、７４．７、７４．９、７６．３、８４．４、９８．３、９９．５、９９．８、１００．３、１０１．２、１１２．７、１１３．０、１１７．１、１２０．７、１２５．８、１３４．７、１３７．７、１３８．２、１３９．５、１５８．５、１５９．０、１６４．０、１８７．６、１９２．５、１９３．６及び２１２．９ｐｐｍに認められる。
【００２４】
仮にヒトがこの誘導体を過剰摂取した場合、体内酵素により分解され、Ｎアセチルグルコサミンやグルコサミンに分解され、これらの物質は生体内に存在する物質であることからこの誘導体の安全性も高い。また、生体内に貯留することもないことから安全性が高い。
【００２５】
この誘導体はＡＰＥ−１活性化作用を呈して障害された遺伝子を修復する。すなわち、この誘導体がＡＰＥ−１を拮抗型タイプとして活性化する。つまり、この誘導体は障害された遺伝子を基質とし、この基質とＡＰＥ−１との結合反応を高める働きを示す。その場合、障害された遺伝子との間のｋｍ値を低下させる。このｋｍ値の低下はＡＰＥ−１の活性中心の反応性を高めることにより生じる。この誘導体はＡＰＥ−１の活性中心に働き、障害された遺伝子との結合性を高める。この誘導体は低濃度の遺伝子障害に対してもＡＰＥ−１が働きやすくする。
【００２６】
この反応メカニズムはこの誘導体の環状構造の内部に障害された遺伝子の塩基部分をとらえて固定することにより、障害遺伝子部位とＡＰＥ−１との反応を高めることである。すなわち、この誘導体のＮアセチルグルコサミンのＮ位のアセチル基はマイナス電位を帯び、一方、グルコサミンのＮ位はプラス電子を帯びることにより、障害遺伝子の水酸基とアセチル基を結合することができる。たとえば、８−ＯＨｄＧ（８−ヒドロキシデオキシグアノシン）のヒドロキシル基部分とＡＰＥ−１との反応を高める。ＡＰＥ−１は８−ＯＨｄＧをＤＮＡから切断して分離させ、酸化されていないデオキシグアノシンを組込み、遺伝子を修復させる。
【００２７】
一方、この誘導体は反応の最大速度Ｖｍａｘには影響しない。つまり、障害された遺伝子を大量に修復する作用はない。最大速度に影響しない点からこの誘導体が過剰に遺伝子と結合して遺伝子の複製と転写には影響しない点により安全性が高いことから好ましい。
【００２８】
さらに、この誘導体はビタミンＡ、ビタミンＥ、ビタミンＤなどの脂溶性ビタミン類、アスタキサンチン、レスベラトロールなどの脂溶性の高い有用な成分を環状構造の内部に結合することができる。つまり、この誘導体は有用な疎水性エキス、脂溶性物質、脂溶性エキス、ＥＰＡやＤＨＡなどのオメガ３脂肪酸や脂溶性ビタミンと結合する。脂溶性エキスの結合性は高く、数個から１０個程度のエキス成分と結合することが可能である。
【００２９】
この誘導体と脂溶性エキスの結合体は乾燥にも耐え、また、１００℃の沸騰にも安定である。さらに、マイナス２００℃程度の液体窒素の中でも安定である。
【００３０】
また、この得られた誘導体と脂溶性エキスの結合体は親水性の溶媒の中で安定である。たとえば、水溶液中で１００℃程度の加熱にも安定である。
【００３１】
さらに、この誘導体と脂溶性エキスの結合体は酸及びアルカリに対して耐性を示し、安定的に維持される。たとえば、胃酸の中でも室温で２４時間以上安定である。一方、強アルカリ、たとえば、水酸化ナトリウム溶液の中でも安定である。
【００３２】
この誘導体と脂溶性エキスとの結合体はリパーゼやヒドロキシラーゼに対して防御作用を呈して有用エキスを安定に維持して水溶性を高めて血液中を輸送する。一方、細胞内にはエステラーゼが存在していることから細胞膜を通過した後に、分解されて脂溶性エキスを細胞内に放出する。
【００３３】
この誘導体は粉末にして水溶液と反応する際に水素ガスを発生する。発生する水素ガスは活性酸素を除去する働きがあるため、紫外線や酸化物質によって発生した活性酸素を除去して生体を安定に維持できることから好ましい。また、水素ガスはヒドロキシルラジカルを消去し、遺伝子の障害を減少させ、かつ、抗酸化作用を発揮して遺伝子を保護することから好ましい。
【００３４】
また、この誘導体は紫外線により遺伝子障害を受けた皮膚表皮細胞に働き、皮膚細胞を増殖させ、また、ケラチンを増加させる。この環状フェニルグルカン誘導体は障害された遺伝子を修復することによりケラチン合成酵素を活性化してケラチン量を増加させる。ケラチンの増加作用は皮膚や毛髪を強固にすることから好ましい。
【００３５】
さらに、この誘導体はアレルギー物質であるヒスタミンと結合してヒスタミンによるアレルギー反応を抑制する。つまり、この誘導体は抗アレルギー薬としても利用される。また、炎症物質であるプロスタグランジンやキニン類も吸着して排泄する働きもあることから抗炎症作用にも優れている。
【００３６】
この環状フェニルグルカン誘導体の抽出方法または製造方法としては発酵法、酵素反応法や化学合成法などがある。たとえば、この環状フェニルグルカン誘導体の製造方法としては古細菌であるアエロピラム  ペルニクス（Ａｅｒｏｐｙｒｕｍ  ｐｅｒｎｉｘ）から抽出することができる。つまり、このアエロピラム  ペルニクスには特有の細胞壁が存在し、この誘導体を産生しやすく、また、遺伝子の障害を修復する働きを有している。
【００３７】
特に、アエロピラム  ペルニクスを大豆とともに培養して発酵させる方法はこの誘導体の製造工程として優れている。すなわち、増殖したアエロピラム  ペルニクスからこの誘導体を抽出する工程はこの誘導体の製造には適している。
【００３８】
アエロピラム  ペルニクスや大豆の安全性が確認されている。この発酵技術は日本では知識が豊富であり、食用としての実績も多く、かつ、安全性も高いことから好ましい。
【００３９】
アエロピラム  ペルニクスは市販されていないため、独立行政法人製品評価技術基盤機構  バイオテクノロジーセンターや東北大学、北里大学などの研究機関から譲渡されることが好ましい。
【００４０】
さらに、高純度の誘導体を得る目的で精製されることは好ましい。精製の方法としては、分離用の樹脂を用いて分離用溶媒で抽出する精製操作を利用することは好ましい。
【００４１】
例えば、分離用担体または樹脂により分離され、分取されることは好ましい。分離用担体または樹脂としては、表面が後述のようにコーティングされた、多孔性の環状フェニルグルカン、酸化珪素化合物、ポリアクリルアミド、ポリスチレン、ポリプロピレン、スチレン−ビニルベンゼン共重合体等が用いられる。０．１〜３００μｍの粒度を有するものが好ましく、粒度が細かい程、精度の高い分離が行なわれるが、分離時間が長い欠点がある。
【００４２】
例えば、逆相担体または樹脂として表面が疎水性化合物でコーティングされたものは、疎水性の高い物質の分離に利用される。陽イオン物質でコーティングされたものは陰イオン性に荷電した物質の分離に適している。また、陰イオン物質でコーティングされたものは陽イオン性に荷電した物質の分離に適している。特異的な抗体をコーティングした場合には、特異的な物質のみを分離するアフィニティ担体または樹脂として利用される。
【００４３】
アフィニティ担体または樹脂は、抗原抗体反応を利用して抗原の特異的な調製に利用される。分配性担体または樹脂は、シリカゲル（メルク社製）等のように、物質と分離用溶媒の間の分配係数に差異がある場合、それらの物質の単離に利用される。
【００４４】
これらのうち、製造コストを低減することができる点から、吸着性担体または樹脂、分配性担体または樹脂、分子篩用担体または樹脂及びイオン交換担体または樹脂が好ましい。さらに、分離用溶媒に対して分配係数の差異が大きい点から、逆相担体または樹脂及び分配性担体または樹脂はより好ましい。
【００４５】
分離用溶媒として有機溶媒を用いる場合には、有機溶媒に耐性を有する担体または樹脂が用いられる。また、医薬品製造または食品製造に利用される担体または樹脂は好ましい。これらの点から吸着性担体としてダイヤイオン（三菱化学（株）社製、ＨＰ−２０及びＨＰ−２１）及びＸＡＤ−２またはＸＡＤ−４（ロームアンドハース社製）、分子篩用担体としてセファデックスＬＨ−２０（アマシャムファルマシア社製）、分配用担体としてシリカゲル、イオン交換担体としてＩＲＡ−４１０（ロームアンドハース社製）、逆相担体としてＤＭ１０２０Ｔ（富士シリシア社製）がより好ましい。
【００４６】
これらのうち、ダイヤイオンＨＰ−２０、セファデックスＬＨ−２０及びＤＭ１０２０Ｔはさらに好ましい。
【００４７】
得られた抽出物は、分離前に分離用担体または樹脂を膨潤化させるための溶媒に溶解される。その量は、分離効率の点から抽出物の重量に対して１〜４０倍量が好ましく、４〜２０倍量がより好ましい。分離の温度としては物質の安定性の点から４〜３０℃が好ましく、１０〜２５℃がより好ましい。
【００４８】
分離用溶媒には、水、または、水を含有する低級アルコール、親水性溶媒、親油性溶媒が用いられる。低級アルコールとしては、メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノールが用いられるが、食用として利用されているエタノールが好ましい。
【００４９】
セファデックスＬＨ−２０を用いる場合、分離用溶媒には低級アルコールが好ましい。シリカゲルを用いる場合、分離用溶媒にはクロロホルム、メタノール、酢酸またはこれらの混合液が好ましい。
【００５０】
ダイヤイオンＨＰ−２０及びＤＭ１０２０Ｔを用いる場合、分離用溶媒はメタノール、エタノール等の低級アルコールまたは低級アルコールと水の混合液が好ましい。また、活性を含む画分を採取して乾燥または真空乾燥により溶媒を除去し、粉末または濃縮液として得ることは溶媒による影響を除外できることから、好ましい。
【００５１】
この環状フェニルグルカン誘導体の優れたＡＰＥ−１活性化作用を利用して遺伝子修復作用を期待した化粧料に用いられることは好ましい。また、皮膚細胞のケラチン増加作用を呈することから、化粧料、シャンプー、まつ毛増殖剤、育毛剤、毛髪用化粧料としても利用できる。さらに、抗アレルギー作用を利用してアトピー性皮膚炎にも利用される。また、脂溶性エキス、疎水性アミノ酸やフェニルグルカン類も結合できることから、これらのエキスのキャリアーとして利用される。
【００５２】
この環状フェニルグルカン誘導体にエキスを添加した後、油脂に分散することは、得られる活性部分が油脂の中で安定に維持することから好ましい。例えば、大豆油、米ぬか油、グレープシード油、オリーブ油、ホホバ油で抽出することは好ましい。この誘導体は水溶性と油溶性の両方の溶媒に溶解する。この両親媒性の性質はこの誘導体の利用を広げることから好ましい。
【００５３】
医薬品として注射剤または経口剤または塗布剤などの非経口剤として利用され、医薬部外品としては、錠剤、カプセル剤、ドリンク剤、石鹸、塗布剤、ゲル剤、歯磨き粉等に配合されて利用される。特に、胃酸に対して耐性を示すことから、内容物が胃酸に対して保護されることから、腸溶性の製剤に利用される。
【００５４】
経口剤としては錠剤、カプセル剤、散剤、シロップ剤、ドリンク剤等が挙げられる。上記の錠剤及びカプセル剤に混和される場合には、結合剤、賦形剤、膨化剤、滑沢剤、甘味剤、香味剤等とともに用いることができる。上記の錠剤は、シェラックまたは砂糖で被覆することもできる。
【００５５】
また、上記のカプセル剤の場合には、上記の材料にさらに液体エキス担体を含有させることができる。上記のシロップ剤及びドリンク剤の場合には、甘味剤、防腐剤、色素香味剤等を添加することができる。
【００５６】
非経口剤としては、軟膏剤、クリーム剤、水剤等の外用剤の他に、注射剤が挙げられる。外用剤の基材としては、ワセリン、パラフィン、油脂類、ラノリン、マクロゴールド等が用いられ、通常の方法によってエキスを導入するための軟膏剤やクリーム剤等とすることができる。
【００５７】
注射剤には、液剤があり、その他、凍結乾燥剤がある。これは使用時、注射用蒸留水や生理食塩液等に無菌的に溶解して用いられる。
【００５８】
食品製剤としてＡＰＥ−１活性化作用を目的とした食品、ＡＰＥ−１活性化作用を目的とした健康食品、さらには、遺伝子や皮膚保護のための食品などに利用される。また、保健機能食品として栄養機能食品や特定保健用食品に利用することは好ましい。
【００５９】
得られた食品製剤をイヌやネコなどのペットや家畜動物に利用する場合、刺激による遺伝子障害の修復作用や有用なエキスやビタミンなどの栄養素の導入を目的として飼料やペット用サプリメントとして利用される。
【００６０】
化粧料として常法に従って界面活性化剤、溶剤、増粘剤、賦形剤等とともに用いることができる。例えば、クリーム、毛髪用ジェル、洗顔剤、美容液、化粧水等の形態とすることができ、ＡＰＥ−１活性化作用及びケラチンの産生を呈する化粧料となる。化粧料の形態は任意であり、溶液状、クリーム状、ペースト状、ゲル状、ジェル状、固形状または粉末状として用いることができる。この誘導体は水溶性と油溶性の両方の溶媒に溶解する。この両親媒性の性質はこの誘導体の利用を広げることから好ましい。
【００６１】
また、この誘導体はＡＰＥ−１活性化作用を利用した遺伝子修復を目的とした植物活性化剤としても利用される。さらに、この誘導体に結合した有用なエキスを植物細胞内に導入することにより植物の生育を活性化し、開花、結実、収穫量の増加をもたらすことは好ましい。たとえば、この誘導体にＨＢ−１０１（株式会社フローラ製）の植物活力剤を結合することにより植物の成長を促進する働きが増強され、維持され、安定化されることから好ましい。
【００６２】
以下に、アエロピラム  ペルニクスと大豆を発酵する製造工程について説明する。この製造工程はアエロピラム  ペルニクスと大豆を発酵させた発酵液に分岐シクロデキストリンを添加してプロテアーゼ処理を行う工程からなる。
【００６３】
すなわち、原料はアエロピラム  ペルニクス、大豆、分岐シクロデキストリン及びプロテアーゼである。
【００６４】
原料となる大豆は国産、アメリカ産などいずれの産地でも良いが遺伝子組み換え体ではないものが好ましい。
【００６５】
これらの原料は使用に際して株式会社奈良機械製作所製の自由ミル、スーパー自由ミル、サンプルミル、ゴブリン、スーパークリーンミル、マイクロス、減圧乾燥機として東洋理工製の小型減圧乾燥機、株式会社マツイ製の小型減圧伝熱式乾燥機ＤＰＴＨ−４０、エーキューエム九州テクノス株式会社製のクリーンドライＶＤ−７、ＶＤ−２０、中山技術研究所製ＤＭ−６などの粉砕機で乾燥され、粉砕される。これにより発酵の工程が効率的に進行されやすい。
【００６６】
用いるアエロピラム  ペルニクスは食経験が豊富で有用な食用菌である。地球上で太古から生息して、食品中、大気中や土壌にも認められる。
【００６７】
上記の発酵に関するそれぞれの添加量は大豆は１重量に対してアエロピラム  ペルニクスは０．００１〜０．０７重量が好ましい。アエロピラム  ペルニクスは発酵される前に、前培養することは、発酵の初発時間を短縮し、発酵時間が短縮されることから好ましい。
【００６８】
上記の発酵は清浄な培養用タンクで実施され、滅菌された水道水により上記の材料を混合することは好ましい。さらに、発酵物は以下の工程により実施され、製造される。
【００６９】
分岐シクロデキストリンは環状ブドウ糖の一つであり、内腔に疎水性部分を有することから疎水性の高い物質を吸着しやすい。塩水港精糖社製の分岐シクロデキストリンは品質が高いことから好ましい。
【００７０】
用いるプロテアーゼとしては天野エンザイム社製の食品加工用プロテアーゼであるプロテアーゼＡ「アマノ」ＳＤ、プロテアーゼＭ「アマノ」ＳＤまたはプロテアーゼＰ「アマノ」３ＳＤの品質が安定し、使用実績が豊富なことから好ましい。
【００７１】
このアエロピラム  ペルニクスによる発酵によりＮアセチルグルコサミン、グルコサミン及びフェニルが結合して立体的にねじれが生まれて環状化が生じる。この発酵の工程は静置法または撹拌法のいずれでも良いが、発酵を短時間で実施できる点から撹拌法が好ましい。発酵は３９〜４６℃で２４時間から７２時間行われることが好ましい。
【００７２】
温度が低く、時間が短い場合には発酵が進まず、温度が高く、時間が長い場合には産生された環状フェニルグルカン誘導体が分解されてしまうおそれがある。
【００７３】
次に、発酵した後、濾過され、そのろ液に分岐シクロデキストリンが添加される。これはフェニルグルカンの吸着を行い、目的とする環状フェニルグルカンが安定に維持されることから好ましい。
【００７４】
添加される分岐シクロデキストリンは上記の発酵液１００ｇに対して分岐シクロデキストリンの１００ｇから３００ｇが好ましい。この分岐シクロデキストリンにより目的とする環状フェニルグルカン誘導体が内部に包接されて安定に維持される。この分岐シクロデキストリンとの懸濁液は攪拌されることが好ましい。一方、余分なタンパク質や菌体成分は分岐シクロデキストリンに包接されないことから以下のプロテアーゼ処理により分解される。
【００７５】
この懸濁液にプロテアーゼが添加され、過剰なタンパク質は分解される。添加されるプロテアーゼは上記の発酵液１００ｇに対して０．００１ｇから０．８ｇが好ましい。このプロテアーゼは精製水に懸濁して添加されることは酵素反応が進みやすいことから好ましい。
【００７６】
この懸濁液は反応を促進するために加温され、攪拌されることは好ましい。加温としては３８〜４５℃が好ましい。また、攪拌は１分間当り１０〜２５回が好ましい。時間は１時間から６時間が好ましい。
【００７７】
このプロテアーゼ反応液は濾過される。濾紙やメンブランフィルターを用いることにより効率良くろ過される。ろ過してろ液を得ることにより反応していない余分な成分や原料を排除できることから好ましい。
【００７８】
得られた反応物は煮沸滅菌され、これによりプロテアーゼを失活させることは好ましい。さらに、得られた反応物は、凍結乾燥することにより粉末化され、用いられる。
【００７９】
上記の反応物から、目的とする環状フェニルグルカン誘導体を上記に記載した精製方法により分離し、精製することは純度の高い物質として摂取量を減少させることができる点から好ましい。
【００８０】
環状フェニルグルカン誘導体を含む画分を採取して乾燥または真空乾燥により溶媒を除去し、目的とする環状フェニルグルカン誘導体を粉末または濃縮液として得ることは溶媒による影響を除外できることから、好ましい。
【００８１】
また、この環状フェニルグルカン誘導体を粉末化することは防腐の目的から好ましい。
【００８２】
以下、上記実施形態を実施例及び試験例を用いて具体的に説明する。なお、これらは一例であり、素材、原料や検体の違いに応じて常識の範囲内で条件を変更させることが可能である。
【実施例１】
【００８３】
アエロピラム  ペルニクス（Ａｅｒｏｐｙｒｕｍ  ｐｅｒｎｉｘ）ＮＢＲＣ１００１３８Ｔ株を独立行政法人製品評価技術基盤機構  バイオテクノロジーセンターから分与され、これを保存して必要に応じて培養して用いた。このアエロピラム  ペルニクスを大豆含有栄養源とした培養液に分散し、好気下で培養して用いた。
【００８４】
みやもと山農園より千葉県産の大豆を購入して用いた。洗浄後、粉砕して約１ｋｇを発酵に利用した。
【００８５】
これらを清浄な発酵タンク（滅菌された発酵用丸形４０リットルタンク）に入れ、滅菌された水道水１０ｋｇを添加し、攪拌した。攪拌後、４０〜４２℃の温度範囲で加温し、発酵させた。
【００８６】
発酵過程では、通気によりバブリングと攪拌を行いつつ、発酵液のサンプリングを行った。発酵の状態は溶解したタンパク質の定量（ビューレット法）によりモニタリングした。発酵後、得られた発酵液の上清を濾過布により粗濾過してろ液を得た。
【００８７】
発酵後、発酵液をろ過してろ液を採取した。このろ液に塩水港精糖社製の分岐シクロデキストリン（イソエリート）５０ｇを添加して十分に攪拌した。
【００８８】
さらに、天野エンザイム製のプロテアーゼＭ「アマノ」ＳＤの４ｇを添加し、３７℃に加温して攪拌した。
【００８９】
攪拌は攪拌装置を用いて室温で１２時間実施した。この反応液を短時間煮沸滅菌し、酵素を失活させ、また、滅菌させた。得られた液を冷却後、東洋濾紙の濾紙（Ｎｏ．２）により吸引ろ過してろ液を得た。
【００９０】
この溶液を凍結乾燥機（タイテック社製のフリーズトラップＶＡ−１４０Ｓ）により凍結乾燥させて目的とする粉末３２．８ｇを得た。これを検体１とした。
【００９１】
得られた検体１の粉末１０ｇを精製水１００ｍＬに懸濁して５％エタノールで膨潤させたダイヤイオンＨＰ−２０（三菱化学製）７００ｇに供した。５％エタノール８００ｍＬで洗浄後、１５％エタノール１０００ｍＬでさらに洗浄した。
【００９２】
これに６０％エタノール７００ｍＬを添加し、目的とする環状フェニルグルカン誘導体を分画した。この精製操作を４回実施して最終精製物とした。得られた最終分画を減圧乾燥器により乾燥して粉末７．１ｇを得た。これを検体２とした。
【００９３】
以下に、環状フェニルグルカン誘導体の構造解析に関する試験方法及び結果について説明する。
（試験例１）
【００９４】
上記のように得られた検体２を精製水に溶解し、濾過後、質量分析器付き高速液体クロマトグラフィ（ＨＰＬＣ、島津製作所）で分析した。
【００９５】
さらに、重水素化クロロホルム中、５００ＭＨｚの核磁気共鳴装置（ＮＭＲ、ブルカー製）で解析した。構造解析の結果、検体２及び検体１から環状フェニルグルカンを同定した。すなわち、Ｎアセチルグルコサミン、グルコサミン及びフェニルエステル体が結合した目的とする誘導体が検出された。
【００９６】
５００ＭＨｚのＨ−ＮＨＲ分析結果では、１．１１、１．１２、１．１７、１．２４、１．２６、１．２９、１．３０、２．１９、２．２１、２．４６、２．５５、３．６１、３．７２、３．７９、３．８１、３．９５、４．０６、４．１３、４．２９、４．４０、４．５２、４．５８、４．９３、５．００、５．１１、５．１２、５．１３、５．２４、５．５５、５．５７、７．３７、７．７８及び７．９７ｐｐｍにピークが認められた。
【００９７】
さらに、Ｃ−ＮＭＲ分析結果では６．７、１４．９、１７．０、１７．１、１７．２、１８．０、１８．２、２４．１、２４．８、２５．０、２５．７、２８．９、２９．６、３０．１、３１．０、３３．３、３３．９、３４．７、４３．６、４３．７、６１．９、６２．０、６６．２、６７．１、６７．５、６７．８、６８．７、６８．９、６９．３、７１．１、７１．５、７１．７、７２．４、７４．７、７４．９、７６．３、８４．４、９８．３、９９．５、９９．８、１００．３、１０１．２、１１２．７、１１３．０、１１７．１、１２０．７、１２５．８、１３４．７、１３７．７、１３８．２、１３９．５、１５８．５、１５９．０、１６４．０、１８７．６、１９２．５、１９３．６及び２１２．９ｐｐｍにピークが認められた。
【００９８】
以下に、Ｃ−ＮＭＲの解析結果のチャートを示した。（横軸単位はｐｐｍ、縦軸単位はピーク強度を示す。）
2018193499.tif 000004
【００９９】
上記の分析値は有機化学合成された環状フェニルグルカン誘導体のピークと同一であり、目的とする環状フェニルグルカン誘導体として同定された。検体２に含まれるこの誘導体は９８．３％、すなわち、純度９８．３％であり、一方、検体１の純度は７９．４％であった。
【０１００】
また、得られた誘導体の粉末０．１ｇを精製水１０ｍＬに溶解した場合、水素ガスの発生が認められた。ガスクロマトグラフィー（島津製作所製、ＰＤＤ高感度分析システム）で定量した結果、１．６ｐｐｍの水素ガス濃度を検出した。
【０１０１】
以下に、環状フェニルグルカン誘導体によるＡＰＥ−１活性化作用に関する確認試験について述べる。
（試験例２）
【０１０２】
ＡＰＥ−１はＮｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  ＢｉｏＬａｂｓより購入した。ヒト由来ＡＰＥ−１遺伝子を有する大腸菌から得られたＡＰＥ−１（製品コードＭ０２７２Ｓ）を用いた。
【０１０３】
まず、ＡＰ部位含有ＤＮＡはウラシル残基を１塩基を含有する２０ｐｍｏｌの３４ｍｅｒ２本鎖オリゴヌクレオチドを１単位のウラシル−ＤＮＡグリコシラーゼ（ＵＤＧ）で３７℃下、２分間処理して作製した。
【０１０４】
ＡＰＥ−１活性の１ｕｎｉｔを３７℃下、全反応溶液０．１ｍＬ中１時間の反応により、1個のＡＰ部位を有する２０ｐｍｏｌの３４ｍｅｒの２本鎖オリゴヌクレオチドを切断するために必要な酵素量と定義した。
【０１０５】
また、ＡＰ部位の切断についてはコメットアッセイにより定量した。なお、このＡＰＥ−１酵素反応の測定方法は生化学的な手法として確立されており、実験例も豊富である。
【０１０６】
ＮＥ緩衝液中ＡＰ部位含有ＤＮＡと１ユニットのＡＰＥ−１酵素と上記の検体１及び検体２を添加して３７℃で反応させた。常法に従い、基質濃度と検体濃度を変動させてこの反応のｋｍ値とＶｍａｘを定量した。なお、溶媒対照として精製水を用いた。
【０１０７】
その結果、溶媒対照のｋｍ値は１８．９ｐｍｏｌ及びＶｍａｘは１．３ｕｎｉｔであった。検体１添加によるｋｍ値は１１．３ｐｍｏｌ及びＶｍａｘは１．４ｕｎｉｔであった。さらに、検体２添加によるｋｍ値は１０．３ｐｍｏｌ及びＶｍａｘは１．４ｕｎｉｔであった。この結果から、検体１及び検体２はいずれもｋｍ値を低下させるものの、Ｖｍａｘには影響しないと結論された。
【０１０８】
また、ＡＰ部位含有ＤＮＡの修復率は溶媒対照に比して検体１で１４５％及び検体２の添加により３３６％に活性化した。つまり、検体１及び検体２はＤＮＡ修復に有効であった。一方、基質であるＡＰ部位含有ＤＮＡを２倍に増加させることにより、検体１及び検体２の活性化率は低下した。
【０１０９】
これらの結果、検体１及び検体２はＡＰＥ−１のｋｍ値を低下させ、ＡＰＥ−１を活性化することが判明した。検体１及び検体２の添加によるＡＰＥ−１の活性化は拮抗型であると結論された。
【０１１０】
以下にヒト皮膚表皮細胞を用いたヒト皮膚への作用試験について述べる。なお、この試験方法は生化学的に成分の効果を検証できる再現性のある常法である。
（試験例３）
【０１１１】
クラボウより購入したヒト由来表皮細胞（表皮由来、エピーダーセル）を用いた。培養液として５％牛胎児血清含有ＭＥＭ培地（Ｓｉｇｍａ製）を用いて培養した１０００個の細胞を３５ｍｍ培養シャーレ（ＦＡＬＣＯＮ製）に播種し、５％炭酸ガス下、３７℃で培養した。ここに紫外線照射装置（クオークテクノロジー製）により２８０ｎｍの紫外線を１時間照射した。ここに、前記の検体１、検体２及び陽性対照としてＥＧＦ（フナコシ製、表皮成長因子）をいずれも０．１ｍｇ／ｍｌの最終濃度で添加した。これを４８時間培養して試験した。
【０１１２】
培養液を採取後、表皮細胞の生存率をトリパンブルー法により計数した。その後、表皮細胞の懸濁液を調製した。１０００個当たりの細胞懸濁液に含まれるＡＰＥ−１活性を上記のＡＰＥ−１活性測定法により測定した。同時に、細胞懸濁液中の８−ＯＨｄＧ量をキット（日本老化制御研究所製）にて定量した。８−ＯＨｄＧに特異的なモノクローナル抗体を使用したＥＬＩＳＡキットである。
【０１１３】
なお、シャーレは５枚を用いてその平均値を算出した。溶媒を添加した溶媒対照群と比較した。
【０１１４】
その結果、検体１の０．１ｍｇ／ｍｌの添加によりヒト由来表皮細胞数は溶媒対照群に比して平均値として１７８％に増加した。また、検体２では２５５％に増加した。一方、ＥＧＦでは１５５％となった。この結果、検体１及び検体２の方がＥＧＦよりも優れた細胞活性化作用を呈した。
【０１１５】
上記の細胞懸濁液中のＡＰＥ−１活性値は溶媒対照群に比して平均値として１９９％に活性化した。また、検体２では３３８％に活性化した。一方、ＥＧＦでは１０１％となった。この結果、検体１及び検体２はＡＰＥ−１活性化作用を示した。
【０１１６】
上記の細胞中の８ＯＨｄＧ量は溶媒対照群では５９０ｎｇ、検体１処理群では４９ｎｇ、検体２処理群では３０ｎｇ、ＥＧＦ処理群では５５１ｎｇであった。
【０１１７】
８ＯＨｄＧは遺伝子が活性酸素により修飾された変異した状態であり、遺伝子の障害をあらわしている。検体１及び検体２でこの値が低く、ＥＧＦの働きより優っていた。これは検体１及び検体２による遺伝子修復の活性化作用を示していた。
【０１１８】
一方、安全性試験の一環として人工皮膚であるＥｐｉＳｋｉｎ（ＳｋｉｎＥｔｈｉｃ社製）を用いた皮膚刺激性実験では、検体１及び検体２の添加により刺激性は認められず、安全性が確認された。なお、この方法は細胞を用いる皮膚刺激性試験評価法として動物を使用しない方法として確立されている。
【０１１９】
以下にヒト神経細胞の障害モデルを用いた障害に対する試験について述べる。なお、この試験方法は生化学的に成分の働きを検証できる再現性のある常法である。
（試験例４）
【０１２０】
コスモバイオから購入したヒト神経細胞（Ｈｕｍａｎ  Ｎｅｕｒｏｎｓ（ＨＮ））を用いた。培養液として専用の培養液（神経細胞増殖培地）を用いて培養した１０００個の細胞を３５ｍｍ培養シャーレに播種し、５％炭酸ガス下、３７℃で培養した。これに１％の神経毒であるアクリルアミド水溶液を添加して神経細胞を障害させた。
【０１２１】
ここに、前記の実施例１で得られた検体１及び検体２、陽性対照としてＮＧＦ（フナコシ(株)、ヒトタイプ）をいずれも０．１ｍｇ／ｍｌの最終濃度で添加した。これを４８時間培養した。なお、シャーレは５枚を用いてその平均値を算出した。溶媒を添加した溶媒対照群と比較した。
【０１２２】
培養終了後、細胞数を顕微鏡下で計数した。さらに、上記と同様の方法により、遺伝子修復の働きを検証した。上記の方法によりＡＰＥ−１酵素活性及び細胞懸濁液中の８−ＯＨｄＧ量をキット（日本老化制御研究所製）にて定量した。８−ＯＨｄＧに特異的なモノクローナル抗体を使用したＥＬＩＳＡキットである。
【０１２３】
その結果、検体１の０．１ｍｇ／ｍｌの添加により神経細胞数は溶媒対照群に比して平均値として１４９％に増加した。また、検体２では２１０％に増加した。一方、ＮＧＦでは１３９％となった。この結果、検体１及び検体２の方がＮＧＦよりも優れた細胞活性化作用を呈した。
【０１２４】
上記の細胞懸濁液中のＡＰＥ−１活性値は溶媒対照群に比して平均値として１７７％に活性化した。また、検体２では２６０％に活性化した。一方、ＮＧＦでは１０９％となった。この結果、検体１及び検体２はいずれもＡＰＥ−１活性化作用を示した。
【０１２５】
上記の細胞中の８ＯＨｄＧ量は溶媒対照群では２２０ｎｇ、検体１処理群では３９ｎｇ、検体２処理群では２０ｎｇ、ＮＧＦ処理群では２０１ｎｇであった。
【０１２６】
もともと８ＯＨｄＧは遺伝子が活性酸素により修飾された変異した状態であり、遺伝子の障害をあらわしている。検体１及び検体２で８ＯＨｄＧ量が低く、これらの働きはＮＧＦより優れていた。これは検体１及び検体２による遺伝子修復の活性化作用を示していた。
【０１２７】
以下に、ビタミンＥ結合環状フェニルグルカン誘導体の結合性及び安定性に関する確認試験について述べる。
（試験例５）
【０１２８】
ビタミンＥと上記の検体２を結合させた場合とリン脂質によりリポソーム化したビタミンＥを製造し、ビタミンＥの結合性及び安定性について試験した。なお、この結合性及び安定性に関する試験方法は分析法の常法であり、試験例が豊富である。
【０１２９】
まず、検体２の粉末０．１ｍｇを精製水１０ｍＬに懸濁した。ここにビタミンＥ（トコフェロール、和光純薬製）０．１ｍｇを添加して撹拌しながら１時間３１℃〜３３℃に加温した。これを濾紙（アドバンテック東洋ろ紙製、Ｎｏ．２）により濾過して濾液を採取した。このろ液をゲル濾過（ＧＥヘルスケア・ジャパン製）カラムに供して分子量１０００〜１５００の分画を採取した。ここには、ビタミンＥを結合した環状フェニルグルカン誘導体が採取される分画である。
【０１３０】
これとは別に常法によりリン脂質によりビタミンＥ含有リポソームを製造した。つまり、日油株式会社製のＰＥＧ化リン脂質（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ  ＤＳＰＥ−０２０ＣＮ）を用いて加温下、ビタミンＥをリポソーム化した。これを対照とした。
【０１３１】
検体２を用いたビタミンＥ結合環状フェニルグルカン誘導体とリポソーム化ビタミンＥの安定性を検討した。すなわち、両者を１％ｗ／ｖの水溶液状態にして１００℃に６時間加温した後、両者に含有されるビタミンＥ量をＨＰＬＣ（島津製作所製）により定量した。測定条件はＳｈｉｍｐａｃｋＳＣＲを用い、移動相として０．１％酢酸含有３０％アセトニトリルを用いてカラム温度４０℃で３５４ｎｍの波長で測定した。標準物質として上記のビタミンＥを用いた。なお、実験は５回実施し、その平均値を算出した。
【０１３２】
その結果、検体２の結合環状フェニルグルカン誘導体に結合したビタミンＥ量は１３３μｇであった。一方、リポソーム化ビタミンＥのビタミンＥ含量は３０μｇであった。この結果、検体２の方が４倍以上、安定性に優れ、より多くのビタミンＥを含有すると結論された。
【０１３３】
以下に、アスタキサンチン結合環状フェニルグルカン誘導体の結合性及び安定性に関する確認試験について述べる。
（試験例６）
【０１３４】
精製されたアスタキサンチンを武田紙器株式会社より購入して用いた。アスタキサンチンと上記の検体２を結合させた場合とリン脂質によりリポソーム化したアスタキサンチンを製造し、アスタキサンチンの結合性及び安定性について試験した。なお、この結合性及び安定性に関する試験方法は常法であり、試験例が豊富である。
【０１３５】
まず、検体２の粉末０．１ｍｇを精製水１０ｍＬに懸濁した。ここに上記のアスタキサンチン１０ｍＬを添加して撹拌しながら１時間で３８℃〜４０℃に加温した。これを濾紙（アドバンテック東洋ろ紙製、Ｎｏ．２）により濾過して濾液を採取した。このろ液をゲル濾過（ＧＥヘルスケア・ジャパン製）カラムに供して分子量１５００〜２０００の分画を採取した。ここには、アスタキサンチンを結合した環状フェニルグルカン誘導体が採取される分画である。
【０１３６】
これとは別に常法によりリン脂質によりアスタキサンチン含有リポソームを製造した。つまり、日油株式会社製のＰＥＧ化リン脂質（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ  ＤＳＰＥ−０２０ＣＮ）を用いて加温下、アスタキサンチンをリポソーム化した。これを対照とした。
【０１３７】
検体２を用いたアスタキサンチン結合環状フェニルグルカン誘導体とリポソーム化アスタキサンチンの安定性を比較した。つまり、これらの試験溶液を９８℃に６時間加温した後、両者に含有されるアスタキサンチン量をＨＰＬＣ（島津製作所製）により定量した。測定条件にはＳｈｉｍｐａｃｋＸＲ−ＯＤＳ（粒子径２．２μｍ）カラムを用いた。移動相として０．１％ＳＤＳ含有２０％アセトニトリル（関東化学製）を用いて４７０ｎｍの波長で測定した。なお、実験は５回実施し、その平均値を算出した。
【０１３８】
その結果、検体２のアスタキサンチン結合環状フェニルグルカン誘導体のアスタキサンチン量は２２７μｇであった。一方、リポソーム化アスタキサンチンのアスタキサンチン量は３７μｇであった。この結果、検体２の方が６倍以上、安定性に優れ、より多くのアスタキサンチンを結合して含有すると結論された。
【０１３９】
以下に、ヒト由来皮膚細胞を用いたケラチン産生の確認試験について述べる。
（試験例７）
【０１４０】
コスモ・バイオ株式会社より購入したヒト皮膚由来の初代表皮培養細胞を用いた。細胞を専用の培養液に懸濁し、前培養して細胞を増殖させた。３７℃、５％炭酸ガス下、炭酸ガス培養器内で培養した。その後、増殖期にある細胞をトリプシン含有培地にて剥離して実験に供した。生細胞数をトリパンブルー色素排除法により顕微鏡下で計数した。細胞数を１ｍＬあたり１０００個に調整して５ｍＬずつ培養シャーレに播種してさらに、３７℃、５％炭酸ガス下で培養した。これを紫外線照射装置（ロックタイト、出力８８ＭＨ）により紫外線を照射して細胞にダメージを与えた。照射はシャーレの蓋を外して１時間実施した。
【０１４１】
この紫外線照射により皮膚細胞が障害を受け、この障害に対する回復を試験した。なお、この方法は皮膚に対する試験物質の評価に実施される方法である。
【０１４２】
試験物質として検体２及び対照としてリポソーム化アスタキサンチンを用いた。いずれも生理食塩液に懸濁し、希釈して最終濃度で１ｍｇ／ｍＬになるように添加した。なお、溶媒対照として生理食塩液を用いた。これを３７℃で３日間培養して生細胞数を顕微鏡下で計数した。さらに、細胞を精製水に分散して超音波破砕機により細胞分散液を得た。この細胞分散液中に含まれるケラチン量をＥＬＩＳＡ法（コスモ・バイオ株式会社）により定量した。なお、実験には５枚のシャーレを用い、その平均値を算出した。
【０１４３】
その結果、溶媒対照の細胞数を１００％として検体２の添加による比率を求めた結果、検体２の添加により細胞数は２５８％に増加した。一方、リポソーム化アスタキサンチンの添加により１４４％に増加した。ケラチン量については溶媒対照の値を１００％として検体２の添加により５０７％に増加した。一方、リポソーム化アスタキサンチンの添加により１９０％に増加した。また、この誘導体はヒト由来皮膚細胞に対して障害を与えず、安全性は高いと結論された。
【０１４４】
以下に、ヒト由来マスト細胞（肥満細胞）を用いたヒスタミン抑制及び吸着性の確認試験について述べる。
（試験例８）
【０１４５】
スギ花粉アレルギーのあるヒト（男性５名及び女性５名、年齢２９歳〜６７歳）より採取した白血球よりマスト細胞を採取し、培養液に培養して９６孔マイクロプレートに播種した。これを培養し、アレルゲンとなるスギ花粉（コスモ・バイオ株式会社）を０．１ｍｇ添加した。同時に、試験物質として検体２及び対照物質として塩酸ジフェンヒドラミンをいずれも生理食塩液に懸濁し、希釈して最終濃度で１ｍｇ／ｍＬになるように添加した。なお、溶媒対照として生理食塩液を用いた。これを３７℃で１日間培養して培養上清に遊離されたヒスタミン量をＥＬＩＳＡ法（高感度ヒスタミンＥＬＩＳＡキット、コスモ・バイオ株式会社）により定量した。なお、実験は５回実施し、その平均値を算出した。
【０１４６】
その結果、ヒスタミン量は溶媒対照の値を１００％として検体２の添加により４４％に減少した。一方、塩酸ジフェンヒドラミンでは５７％となり、検体２の方がヒスタミン抑制作用に優れていた。
【０１４７】
また、検体２に結合されたヒスタミン量をＥＬＩＳＡ法により定量した結果、上記の検体２には７８μｇのヒスタミンが結合していた。すなわち、この検体２にはヒスタミンを吸着して生体に反応させないという吸着効果が期待される。この結果から、検体２はヒスタミン遊離を抑制し、かつ、ヒスタミンを吸着して抗アレルギー作用を発揮する。
【産業上の利用可能性】
【０１４８】
本発明で得られる環状フェニルグルカン誘導体はＡＰＥ−１活性化作用を呈し、かつ、副作用が少ないことから癌や糖尿病などの遺伝子変異に関係する疾患、アレルギーの治療や予防に利用され、国民のＱＯＬを改善できる。
【０１４９】
本発明で得られる環状フェニルグルカン誘導体はケラチンを増加させ、皮膚改善を目的とする化粧料に利用され、化粧品業界の発展に寄与する。