(57)【要約】      （修正有）【課題】ＷＴ−１に特異的なＴ細胞免疫治療の提供。【解決手段】ＷＴ−１を過剰発現するがん細胞などの疾患または障害を処置する際の使用のための、ヒトウィルムス腫瘍タンパク質１（ＷＴ−１）エピトープに対して特異的な高親和性および増強された親和性のＴ細胞受容体。一局面において、（ａ）特定のアミノ酸配列からなるCDR1、CDR2ならびに特定のアミノ酸配列から選択される１つのCDR3を有するＴ細胞受容体（ＴＣＲ）α鎖可変（Ｖα）ドメイン、ならびにＴＣＲβ鎖可変（Ｖβ）ドメイン；または（ｂ）（ａ）のＶαドメイン、ならびに特定のアミノ酸配列からなるCDR1、CDR2およびCDR3を有するＶβドメインを含む、結合性タンパク質が提供される。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
明細書に記載の発明。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
政府の利益についての声明
この発明は、Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ／Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅによって付与された助成金第Ｐ０１  ＣＡ１８０２９号の下、政府の支援を受けてなされた。政府は、本発明に一定の権利を有する。
【０００２】
関連出願への相互参照
この出願は、米国特許法§１１９（ｅ）の下、２０１４年８月４日に出願された米国仮出願第６２／０３３，０４５号および２０１５年５月２１日に出願された米国仮出願第６２／１６４，７８３号、（これらは、それらの全体が参考として本明細書に援用される）に対する利益を主張する。
【０００３】
配列表に関する記述
本出願に関連する配列表は、紙複写物の代わりにテキストフォーマットで提供され、参照によって本明細書中に組み込まれる。配列表を含むテキストファイルの名称は、３６００５６＿４２７ＷＯ＿ＳＥＱＵＥＮＣＥ＿ＬＩＳＴＩＮＧ．ｔｘｔである。このテキストファイルは、１３８ＫＢであり、２０１５年７月２９日に作成され、ＥＦＳ−Ｗｅｂを介して電子的に提出されている。
【０００４】
本開示は、過剰増殖疾患と関連する抗原に対して特異的な高親和性または増強された親和性のＴ細胞受容体（ＴＣＲ）に一般に関する。より具体的には、本開示は、ヒトウィルムス腫瘍タンパク質１（ＷＴ−１）エピトープに対する高い親和性または増強された親和性を有するＴＣＲ、かかるＷＴ−１特異的ＴＣＲを発現するＴ細胞、それをコードする核酸、および細胞がＷＴ−１を過剰発現する疾患または障害、例えばがんを処置する際の使用のための組成物に関する。
【背景技術】
【０００５】
Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）遺伝子治療は、従来のＴ細胞養子免疫治療と関連する障壁、例えば、腫瘍抗原特異的Ｔ細胞を単離、特徴付けおよび拡大増殖（ｅｘｐａｎｄ）させるために必要とされる大規模な時間および労力を克服するために設計された、新興の処置アプローチである（Ｓｃｈｍｉｔｔら、Ｈｕｍ．  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．  ２０巻：１２４０頁、２００９年）。別のハードルは、従来のＴ細胞免疫治療によって標的化され得るほとんどの同定された腫瘍抗原が、過剰発現された自己タンパク質であり、したがって、これらの抗原に対して特異的な高親和性Ｔ細胞が、一般に、胸腺選択の間に排除され、末梢レパートリーにおいて稀であるかまたは存在しないことである。
【０００６】
ＴＣＲ遺伝子治療における使用のために意図されるＴＣＲの親和性を増強するための戦略が、開発されている（Ｕｄｙａｖａｒら、Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １８２巻：４４３９頁、２００９年；Ｚｈａｏら、Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １７９巻：５８４５頁、２００７年；ＲｉｃｈｍａｎおよびＫｒａｎｚ、Ｂｉｏｍｏｌ．  Ｅｎｇ．  ２４巻：３６１頁、２００７年）。これらのアプローチは、一般に、変異したＴＣＲ遺伝子のライブラリーを生成すること、および標的ペプチドと主要組織適合複合体（ＭＨＣ）リガンドとの複合体に対するより高い親和性を付与する変異について引き続いてスクリーニングすることを伴う。変異は、通常、ペプチド（ＣＤＲ３）および／またはＭＨＣ（ＣＤＲ１／２）と相互作用することが公知の相補性決定領域（ＣＤＲ）に標的化される（Ｗｕｃｈｅｒｐｆｅｎｎｉｇら、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂ．  Ｐｅｒｓｐｅｃｔ．  Ｂｉｏｌ．  ２巻：ａ００５１４０頁、２０１０年）。しかし、ＭＨＣ接触残基への変化は、ペプチドから独立してＭＨＣに対する親和性を増加させ得、または交差反応性（オフターゲット（ｏｆｆ−ｔａｒｇｅｔ）効果）の可能性を増加させ得るので、これは、臨床設定においてリスクを生じ得る。この見解は、ＣＤＲ２変異を含むＴＣＲを発現するＴ細胞が、患者に注入され、心臓において発現される異種類の自己抗原との予期しなかった交差反応性からの迅速かつ致死的な毒性を媒介したという、試験の結果によって強調されている（Ｃａｍｅｒｏｎら、Ｓｃｉ．  Ｔｒａｎｓｌ．  Ｍｅｄ．  ５巻：１９７ｒａ１０３、２０１３年；Ｌｉｎｅｔｔｅら、Ｂｌｏｏｄ  １２２巻：８６３頁、２０１３年）。アミノ酸置換のために特定のＣＤＲ残基を標的化するために使用される特定の利用可能な方法論は、生成されたライブラリーの多様性を制限するが、それは、これらが一般に、親ＣＤＲ配列の長さによって制約されるからである。対照的に、天然のプロセスは、一般に、胸腺においてより大きい多様性を生じ、この場所で、Ｔ細胞発達の間に活性なＶ（Ｄ）Ｊ組換え機構が、長さおよびアミノ酸組成の両方において変動する高度に多様なＣＤＲ、特にＣＤＲ３を生成するＴＣＲ遺伝子再編成を生じる。
最小の免疫学的毒性によって達成される最大の臨床効果を達成する、標的化されたＴ細胞治療のための戦略は、例えば、悪性細胞区画における高い発現および悪性細胞区画による提示を有するが、正常組織では顕著な発現を有さない疾患関連抗原を同定することを含む。例えば、いくつかの急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）関連抗原が記載されており、ウィルムス腫瘍タンパク質１（ＷＴ−１）は、生理学的造血幹細胞（ＨＳＣ）中よりも有意に高いレベルで、ＡＭＬ患者の大部分の白血病幹細胞（ＬＳＣ）区画において発現されることが示されている。ＷＴ−１は、養子Ｔ細胞移入およびペプチドワクチン接種を用いた両方の臨床試験において標的化されている（例えば、米国特許第７，３４２，０９２号；米国特許第７，６０８，６８５号；米国特許第７，６２２，１１９号を参照のこと）。さらに、形態学的寛解状態にあるＡＭＬを有する患者における転写物レベルの増加は、明白な臨床的再発を予測したことから、ＷＴ−１発現は、微小残存病変のマーカーであることが報告されている（Ｉｎｏｕｅら、Ｂｌｏｏｄ  ８４巻：３０７１頁、１９９４年；Ｏｇａｗａら、Ｂｌｏｏｄ  １０１巻：１６９８頁、２００３年）。
ＷＴ−１は細胞内（通常は核）タンパク質であるので、ＷＴ−１を標的化する免疫治療は、一般に、ＭＨＣクラスＩ分子によって細胞表面上に提示されるペプチドを認識するＷＴ−１特異的ＣＤ８＋細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）応答を生じさせることを目的とした細胞性アプローチを使用する。ＣＴＬ応答の誘導のために、細胞内タンパク質は、通常、プロテアソームまたはエンドソーム／リソソームによって分解され、生じたペプチド断片は、ＭＨＣクラスＩまたはクラスＩＩ分子に結合する。これらのペプチド−ＭＨＣ複合体は、細胞表面上に提示され、この場所で、それらは、ペプチド−ＭＨＣ−ＴＣＲ相互作用を介してＴ細胞によって結合される。ＷＴ−１タンパク質由来のペプチドは、腫瘍細胞を死滅させることが可能なヒト白血球抗原（ＨＬＡ）拘束性細胞傷害性ＣＤ８＋Ｔ細胞を誘導するために、ヒトにおけるワクチンにおいて使用され得る。しかし、ＷＴ−１は自己タンパク質であるので、かかる免疫化は、低親和性ＴＣＲを有するＴ細胞による応答のみを惹起し得る。さらに、ＷＴ−１に対する抗体は、造血悪性疾患および固形腫瘍を有する患者において検出可能であり、これは、ＷＴ−１が高度に免疫原性の抗原であり得ることを示している（Ｇａｉｇｅｒら、Ｃｌｉｎ．  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  ７巻（補遺３）：７６１頁、２００１年）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】米国特許第７，３４２，０９２号
【特許文献２】米国特許第７，６０８，６８５号
【特許文献３】米国特許第７，６２２，１１９号
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Ｓｃｈｍｉｔｔら、Ｈｕｍ．  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．  ２０巻：１２４０頁、２００９年
【非特許文献２】Ｕｄｙａｖａｒら、Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １８２巻：４４３９頁、２００９年
【非特許文献３】Ｚｈａｏら、Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １７９巻：５８４５頁、２００７年；ＲｉｃｈｍａｎおよびＫｒａｎｚ、Ｂｉｏｍｏｌ．  Ｅｎｇ．  ２４巻：３６１頁、２００７年
【非特許文献４】Ｗｕｃｈｅｒｐｆｅｎｎｉｇら、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂ．  Ｐｅｒｓｐｅｃｔ．  Ｂｉｏｌ．  ２巻：ａ００５１４０頁、２０１０年
【非特許文献５】Ｃａｍｅｒｏｎら、Ｓｃｉ．  Ｔｒａｎｓｌ．  Ｍｅｄ．  ５巻：１９７ｒａ１０３、２０１３年
【非特許文献６】Ｌｉｎｅｔｔｅら、Ｂｌｏｏｄ  １２２巻：８６３頁、２０１３年
【非特許文献７】Ｉｎｏｕｅら、Ｂｌｏｏｄ  ８４巻：３０７１頁、１９９４年
【非特許文献８】Ｏｇａｗａら、Ｂｌｏｏｄ  １０１巻：１６９８頁、２００３年
【非特許文献９】Ｇａｉｇｅｒら、Ｃｌｉｎ．  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  ７巻（補遺３）：７６１頁、２００１年
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【０００９】
種々のがん、例えば白血病および腫瘍に対して向けられた高度に特異的なＷＴ−１標的化免疫治療としての使用のための、代替的ＴＣＲ遺伝子治療が明らかに必要とされている。本明細書に開示される実施形態は、この要求に取り組み、他の関連の利点を提供する。
【００１０】
本開示は、ある特定の実施形態によれば、（ａ）配列番号２３に示されるＣＤＲ１アミノ酸配列、配列番号２４に示されるＣＤＲ２アミノ酸配列ならびに配列番号２５、２６、３２、３８、４４、５０および５１のいずれか１つに示されるＣＤＲ３アミノ酸配列を有するα鎖可変（Ｖα）ドメイン、ならびに／もしくはβ鎖可変（Ｖβ）ドメイン；または（ｂ）（ａ）のＶαドメイン、ならびに配列番号２７に示されるＣＤＲ１アミノ酸配列、配列番号２８に示されるＣＤＲ２アミノ酸配列および／または配列番号２９に示されるＣＤＲ３アミノ酸配列を有するＶβドメインを有する、結合性タンパク質（例えば、免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質、ＴＣＲなど）を提供し、この結合性タンパク質は、高い親和性でＷＴ１由来ペプチド：ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）複合体に、例えば、例えば約８ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）複合体に結合することが可能である。
【００１１】
ある特定の実施形態では、この免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質は、（ａ）配列番号１もしくは２のいずれか１つに示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するα鎖可変（Ｖα）ドメイン、および／またはβ鎖可変（Ｖβ）ドメイン；あるいは（ｂ）Ｖαドメイン、および配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＶβドメイン；あるいは（ｃ）（ａ）のＶαドメインおよび／または（ｂ）のＶβドメイン、を含み、この結合性タンパク質は、約５ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に結合することが可能である。
【００１２】
別の一態様では、α鎖およびβ鎖を含む、高親和性組換えＴ細胞受容体（ＴＣＲ）が提供され、このα鎖は、配列番号１または２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＶαドメインを含み、このＴＣＲは、ＣＤ８から独立して、またはＣＤ８の非存在下で、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に結合する。
【００１３】
さらなる一態様では、過剰増殖障害を処置するための方法であって、ヒトウィルムス腫瘍タンパク質１（ＷＴ−１）に対して特異的な上述の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲのいずれかを含む組成物を、それを必要とするヒト被験体に投与するステップを含む、方法が提供される。さらに別の態様では、過剰増殖障害を有する被験体の細胞におけるＷＴ−１過剰発現を特徴とする状態を処置するための養子免疫治療方法が提供され、この方法は、上述の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲのいずれかを発現する組換え宿主細胞の有効量を被験体に投与するステップを含む。
【００１４】
ある特定の実施形態では、提供される方法は、血液学的悪性疾患または固形がんである過剰増殖障害を処置するためのものである。例えば、処置される血液学的悪性疾患は、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性好酸球性白血病（ＣＥＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）または多発性骨髄腫（ＭＭ）であり得る。処置される例示的な固形がんは、胆道がん、膀胱がん、骨および軟部組織の癌腫、脳腫瘍、乳がん、子宮頚がん（ｃｅｒｖｉｃａｌ  ｃａｎｃｅｒ）、結腸がん、結腸直腸腺癌、結腸直腸がん、類腱腫、胚性がん、子宮内膜がん、食道がん、胃がん、胃腺癌、多形神経膠芽腫、婦人科腫瘍、頭頚部扁平上皮癌、肝がん、肺がん、悪性黒色腫、骨肉腫、卵巣がん、膵がん、膵管腺癌、原発性アストロサイト腫瘍（ｐｒｉｍａｒｙ  ａｓｔｒｏｃｙｔｉｃ  ｔｕｍｏｒ）、原発性甲状腺がん、前立腺がん、腎がん、腎細胞癌、横紋筋肉腫、皮膚がん、軟部組織肉腫、精巣胚細胞腫瘍（ｔｅｓｔｉｃｕｌａｒ  ｇｅｒｍ−ｃｅｌｌ  ｔｕｍｏｒ）、尿路上皮がん（ｕｒｏｔｈｅｌｉａｌ  ｃａｎｃｅｒ）、子宮肉腫または子宮がんであり得る。
【００１５】
本明細書に記載される発明のこれらおよび他の態様および実施形態は、以下の詳細な説明および添付の図面を参照して明らかになる。本明細書中で言及されるおよび／または出願データシート中に列挙される米国特許、米国特許出願公開、米国特許出願、外国特許、外国特許出願および非特許刊行物の全ては、あたかも各々が個々に取り込まれたかのように、それらの全体が参照によって本明細書に組み込まれる。本発明の態様および実施形態は、なおさらなる実施形態を提供するために、種々の特許、出願および刊行物の概念を用いるために、必要に応じて改変され得る。
本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
（項目１）
（ａ）配列番号２３に示されるＣＤＲ１アミノ酸配列、配列番号２４に示されるＣＤＲ２アミノ酸配列ならびに配列番号２５、２６、３２、３８、４４、５０および５１のいずれか１つに示されるＣＤＲ３アミノ酸配列を有するＴ細胞受容体（ＴＣＲ）α鎖可変（Ｖα）ドメイン、ならびにＴＣＲβ鎖可変（Ｖβ）ドメイン；または
（ｂ）（ａ）のＶαドメイン、ならびに配列番号２７に示されるＣＤＲ１アミノ酸配列、配列番号２８に示されるＣＤＲ２アミノ酸配列および配列番号２９に示されるＣＤＲ３アミノ酸配列を有するＶβドメイン
を含む、結合性タンパク質。
（項目２）
約８ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）複合体に結合することが可能である、項目１に記載の結合性タンパク質。
（項目３）
前記結合性タンパク質が、配列番号２１または２２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも約９０％同一なＶαドメインを含み、配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも約９０％同一なＶβドメインを含むが、ただし、（ａ）前記ＣＤＲのうち少なくとも３または４つが変異を有さないこと、および（ｂ）変異を有する前記ＣＤＲが、最大で２アミノ酸の置換、最大で連続５アミノ酸の欠失、またはそれらの組み合わせのみを有することを条件とする、項目１または２に記載の結合性タンパク質。
（項目４）
前記結合性タンパク質が、配列番号１または２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも約９５％同一なＶαドメインを含み、配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも約９５％同一なＶβドメインを含むが、ただし、前記結合性タンパク質が、約５ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に結合することが可能であることを条件とする、項目１または２に記載の結合性タンパク質。
（項目５）
ＣＤ８から独立して、またはＣＤ８の非存在下で、細胞表面上のＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に特異的に結合することが可能である、項目１から４のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目６）
ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に特異的に結合することが可能である、項目１から５のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目７）
約３ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、前記ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に結合することが可能である、項目６に記載の結合性タンパク質。
（項目８）
前記Ｖαドメインが、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる、項目１から７のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目９）
前記Ｖαドメインが、配列番号２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号２に示されるアミノ酸配列からなる、項目１から７のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目１０）
前記Ｖβドメインが、配列番号９に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号９に示されるアミノ酸配列からなる、項目１から９のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目１１）
前記Ｖαドメインが、配列番号３または４に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するα鎖定常ドメインを含む、項目１から１０のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目１２）
前記Ｖβドメインが、配列番号１０または１１に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するβ鎖定常ドメインを含む、項目１から１１のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目１３）
Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）、キメラ抗原受容体、またはＴＣＲの抗原結合性断片である、項目１から１３のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目１４）
前記ＴＣＲ、前記キメラ抗原受容体、または前記ＴＣＲの前記抗原結合性断片が、キメラのものであるか、ヒト化されているかまたはヒトのものである、項目１３に記載の結合性タンパク質。
（項目１５）
前記ＴＣＲの前記抗原結合性断片が、単鎖ＴＣＲ（ｓｃＴＣＲ）を含む、項目１３または１４に記載の結合性タンパク質。
（項目１６）
キメラ抗原受容体である、項目１３から１５のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目１７）
ＴＣＲである、項目１３から１５のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目１８）
配列番号５〜８のいずれか１つに示されるアミノ酸配列を有するＴＣＲα鎖および配列番号１２または１３に示されるアミノ酸配列を有するＴＣＲβ鎖を含む、項目１から１７のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目１９）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号５に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる、項目１８に記載の結合性タンパク質。
（項目２０）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号７に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号７に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる、項目１８に記載の結合性タンパク質。
（項目２１）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号６に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１３に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１３に示されるアミノ酸配列からなる、項目１８に記載の結合性タンパク質。
（項目２２）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号８に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号８に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１３に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１３に示されるアミノ酸配列からなる、項目１８に記載の結合性タンパク質。
（項目２３）
（ａ）配列番号１もしくは２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＴ細胞受容体（ＴＣＲ）α鎖可変（Ｖα）ドメイン、およびＴＣＲβ鎖可変（Ｖβ）ドメイン；または
（ｂ）Ｖαドメイン、および配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＶβドメイン；または
（ｃ）（ａ）のＶαドメインおよび（ｂ）のＶβドメイン
を含む、結合性タンパク質であって、
前記結合性タンパク質は、約５ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に結合することが可能である、結合性タンパク質。
（項目２４）
前記Ｖαドメインが、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる、項目２３に記載の結合性タンパク質。
（項目２５）
前記Ｖαドメインが、配列番号２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号２に示されるアミノ酸配列からなる、項目２３に記載の結合性タンパク質。
（項目２６）
前記Ｖβドメインが、配列番号９に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号９に示されるアミノ酸配列からなる、項目２３から２５のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目２７）
前記Ｖαドメインが、配列番号３または４に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するα鎖定常ドメインを含む、項目２３から２６のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目２８）
前記Ｖβドメインが、配列番号１０または１１に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するβ鎖定常ドメインを含む、項目２３から２７のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目２９）
Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）、キメラ抗原受容体、またはＴＣＲの抗原結合性断片である、項目２３から２８のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目３０）
前記ＴＣＲ、前記キメラ抗原受容体、または前記ＴＣＲの前記抗原結合性断片が、キメラのものであるか、ヒト化されているかまたはヒトのものである、項目２９に記載の結合性タンパク質。
（項目３１）
前記ＴＣＲの前記抗原結合性断片が、単鎖ＴＣＲ（ｓｃＴＣＲ）を含む、項目２９または３０に記載の結合性タンパク質。
（項目３２）
キメラ抗原受容体である、項目２９から３１のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目３３）
ＴＣＲである、項目２９から３１のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目３４）
配列番号５〜８のいずれか１つに示されるアミノ酸配列を有するＴＣＲα鎖および配列番号１２または１３に示されるアミノ酸配列を有するＴＣＲβ鎖を含む、項目２３から３３のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目３５）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号５に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる、項目３４に記載の結合性タンパク質。
（項目３６）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号７に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号７に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる、項目３４に記載の結合性タンパク質。
（項目３７）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号６に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１３に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１３に示されるアミノ酸配列からなる、項目３４に記載の結合性タンパク質。
（項目３８）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号８に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号８に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１３に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１３に示されるアミノ酸配列からなる、項目３４に記載の結合性タンパク質。
（項目３９）
前記結合性タンパク質が、ＣＤ８から独立して、またはＣＤ８の非存在下で、細胞表面上のＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に特異的に結合することが可能である、項目２３から２８のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目４０）
前記結合性タンパク質が、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に特異的に結合することが可能である、項目２３から３９のいずれか一項に記載の結合性タンパク質。
（項目４１）
前記結合性タンパク質が、約３ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に結合することが可能である、項目４０に記載の結合性タンパク質。
（項目４２）
α鎖およびβ鎖を含む、高親和性組換えＴ細胞受容体（ＴＣＲ）であって、前記α鎖が、配列番号１または２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＶαドメインを含み、前記ＴＣＲが、ＣＤ８から独立して、またはＣＤ８の非存在下で、細胞表面上のＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に結合する、高親和性組換えＴ細胞受容体。
（項目４３）
前記Ｖαドメインが、配列番号１に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１に示されるアミノ酸配列からなる、項目４２に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目４４）
前記Ｖαドメインが、配列番号２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号２に示されるアミノ酸配列からなる、項目４２に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目４５）
前記β鎖が、配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＶβドメインを含む、項目４２から４４のいずれか一項に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目４６）
前記Ｖβドメインが、配列番号９に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号９に示されるアミノ酸配列からなる、項目４５に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目４７）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号３または４に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するα鎖定常ドメインを含む、項目４２から４６のいずれか一項に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目４８）
前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１０または１１に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するβ鎖定常ドメインを含む、項目４２から４７のいずれか一項に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目４９）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号５〜８のいずれか１つに示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号５〜８のいずれか１つに示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１２もしくは１３に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１２もしくは１３に示されるアミノ酸配列からなる、項目４２から４８のいずれか一項に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目５０）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号５に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号５に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる、項目４９に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目５１）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号７に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号７に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなる、項目４９に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目５２）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号６に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号６に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１３に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１３に示されるアミノ酸配列からなる、項目４９に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目５３）
前記ＴＣＲα鎖が、配列番号８に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号８に示されるアミノ酸配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖が、配列番号１３に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１３に示されるアミノ酸配列からなる、項目４９に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目５４）
前記ＴＣＲが、３ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に結合する、項目４２から５３のいずれか一項に記載の高親和性組換えＴＣＲ。
（項目５５）
項目１から５４のいずれか一項に記載の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲと、薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤とを含む、組成物。
（項目５６）
項目１から５４のいずれか一項に記載の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲをコードする、単離されたポリヌクレオチド。
（項目５７）
結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲをコードする前記ポリヌクレオチドが、コドン最適化されている、項目５６に記載のポリヌクレオチド。
（項目５８）
発現制御配列に作動可能に連結した項目５６または５７に記載のポリヌクレオチドを含む、発現ベクター。
（項目５９）
前記ポリヌクレオチドを宿主細胞に送達することが可能である、項目５８に記載の発現ベクター。
（項目６０）
前記宿主細胞が、造血前駆細胞またはヒト免疫系細胞である、項目５９に記載の発現ベクター。
（項目６１）
前記免疫系細胞が、ＣＤ４＋Ｔ細胞、ＣＤ８＋Ｔ細胞、ＣＤ４−ＣＤ８−二重陰性Ｔ細胞、γδＴ細胞、ナチュラルキラー細胞、樹状細胞、またはそれらの任意の組み合わせである、項目６０に記載の発現ベクター。
（項目６２）
前記Ｔ細胞が、ナイーブＴ細胞、セントラルメモリーＴ細胞、エフェクターメモリーＴ細胞、またはそれらの任意の組み合わせである、項目６１に記載の発現ベクター。
（項目６３）
ウイルスベクターである、項目５８から６２のいずれか一項に記載の発現ベクター。
（項目６４）
前記ウイルスベクターが、レンチウイルスベクターまたはγ−レトロウイルスベクターである、項目６３に記載の発現ベクター。
（項目６５）
項目５６もしくは５７に記載のポリヌクレオチドまたは項目５８から６４のいずれか一項に記載の発現ベクターを含む組換え宿主細胞であって、その細胞表面上に、前記ポリヌクレオチドによってコードされた結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲを発現する、組換え宿主細胞。
（項目６６）
ポリヌクレオチドが、配列番号３２〜３５のいずれか１つに示されるヌクレオチド配列に対して少なくとも約８０％同一なＶαドメインをコードし、ポリヌクレオチドが、配列番号８８または８９に示されるヌクレオチド配列に対して少なくとも約８０％同一なＶβドメインをコードする、項目６５に記載の組換え宿主細胞。
（項目６７）
ポリヌクレオチドが、配列番号７７もしくは７８に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号７７もしくは７８に示されるヌクレオチド配列からなるＶαドメインをコードする、項目６５または６６に記載の組換え宿主細胞。
（項目６８）
ポリヌクレオチドが、配列番号７９もしくは８０に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号７９もしくは８０に示されるヌクレオチド配列からなるＶαドメインをコードする、項目６５から６７のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目６９）
ポリヌクレオチドが、配列番号８８もしくは８９に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号８８もしくは８９に示されるヌクレオチド配列からなるＶβドメインをコードする、項目６５から６８のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目７０）
Ｖαドメインをコードするポリヌクレオチドが、配列番号８１〜８４のいずれか１つに示されるヌクレオチド配列に対して少なくとも約８０％同一なα鎖定常ドメインをコードするヌクレオチド配列を含む、項目６５から６９のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目７１）
Ｖβドメインをコードするポリヌクレオチドが、配列番号９０〜９３のいずれか１つに示されるヌクレオチド配列に対して少なくとも約８０％同一なβ鎖定常ドメインをコードするヌクレオチド配列を含む、項目６５から７０のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目７２）
ＴＣＲα鎖をコードするポリヌクレオチドが、配列番号８５、８６または８７に示されるヌクレオチド配列を含み、ＴＣＲβ鎖をコードするポリヌクレオチドが、配列番号９４または９５に示されるヌクレオチド配列を含む、項目６５から７１のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目７３）
前記ＴＣＲα鎖をコードするポリヌクレオチドが、配列番号８５に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号８５に示されるヌクレオチド配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖をコードするポリヌクレオチドが、配列番号９４に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号９４に示されるヌクレオチド配列からなる、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
（項目７４）
前記ＴＣＲα鎖をコードするポリヌクレオチドが、配列番号８６に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号８６に示されるヌクレオチド配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖をコードするポリヌクレオチドが、配列番号９５に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号９５に示されるヌクレオチド配列からなる、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
（項目７５）
前記ＴＣＲα鎖をコードするポリヌクレオチドが、配列番号８７に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号８７に示されるヌクレオチド配列からなり、前記ＴＣＲβ鎖をコードするポリヌクレオチドが、配列番号９５に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号９５に示されるヌクレオチド配列からなる、項目７２に記載の組換え宿主細胞。
（項目７６）
ポリヌクレオチドが、ＴＣＲα鎖をコードするポリヌクレオチドとＴＣＲβ鎖をコードするポリヌクレオチドとの間に配置された自己切断性ペプチドをコードする、項目６５から７５のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目７７）
自己切断性ペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドが、配列番号９８〜１０１のいずれか１つに示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号９８〜１０１のいずれか１つに示されるヌクレオチド配列からなる、項目７６に記載の組換え宿主細胞。
（項目７８）
前記ポリヌクレオチドが、配列番号１７〜２０のいずれか１つに示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１７〜２０のいずれか１つに示されるアミノ酸配列からなる自己切断性ペプチドをコードする、項目７６に記載の組換え宿主細胞。
（項目７９）
ＴＣＲα鎖、自己切断性ペプチドおよびＴＣＲβ鎖をコードする前記ポリヌクレオチドが、配列番号９６もしくは９７に示されるヌクレオチド配列を含むかまたは配列番号９６もしくは９７に示されるヌクレオチド配列からなる、項目７６に記載の組換え宿主細胞。
（項目８０）
同種、同系または自家である、項目６５から７９のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目８１）
造血前駆細胞またはヒト免疫系細胞である、項目６５から８０のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目８２）
前記免疫系細胞が、ＣＤ４＋Ｔ細胞、ＣＤ８＋Ｔ細胞、ＣＤ４−ＣＤ８−二重陰性Ｔ細胞、γδＴ細胞、ナチュラルキラー細胞、樹状細胞、またはそれらの任意の組み合わせである、項目８１に記載の組換え宿主細胞。
（項目８３）
前記免疫系細胞がＴ細胞である、項目８１に記載の組換え宿主細胞。
（項目８４）
前記Ｔ細胞が、ナイーブＴ細胞、セントラルメモリーＴ細胞、エフェクターメモリーＴ細胞、またはそれらの任意の組み合わせである、項目８３に記載の組換え宿主細胞。
（項目８５）
前記Ｔ細胞によって発現される前記結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲが、内因性ＴＣＲと比較して、ＣＤ３タンパク質とより効率的に会合することが可能である、項目８３または８４に記載の組換え宿主細胞。
（項目８６）
前記結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲが、内因性ＴＣＲと比較して、より高いＴ細胞表面発現を有する、項目８３から８５のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目８７）
過剰増殖障害を処置するための方法であって、ヒトウィルムス腫瘍タンパク質１（ＷＴ−１）に対して特異的な項目１から５４のいずれか一項に記載の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲを含む組成物を、過剰増殖障害の処置を必要とするヒト被験体に投与するステップを含む、方法。
（項目８８）
前記過剰増殖障害が、血液学的悪性疾患または固形がんである、項目８７に記載の方法。
（項目８９）
前記血液学的悪性疾患が、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性好酸球性白血病（ＣＥＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）または多発性骨髄腫（ＭＭ）から選択される、項目８８に記載の方法。
（項目９０）
前記固形がんが、胆道がん、膀胱がん、骨および軟部組織の癌腫、脳腫瘍、乳がん、子宮頚がん、結腸がん、結腸直腸腺癌、結腸直腸がん、類腱腫、胚性がん、子宮内膜がん、食道がん、胃がん、胃腺癌、多形神経膠芽腫、婦人科腫瘍、頭頚部扁平上皮癌、肝がん、肺がん、悪性黒色腫、骨肉腫、卵巣がん、膵がん、膵管腺癌、原発性アストロサイト腫瘍、原発性甲状腺がん、前立腺がん、腎がん、腎細胞癌、横紋筋肉腫、皮膚がん、軟部組織肉腫、精巣胚細胞腫瘍、尿路上皮がん、子宮肉腫または子宮がんから選択される、項目８８に記載の方法。
（項目９１）
前記結合性タンパク質が、クラスＩ  ＨＬＡ拘束性の様式で、ヒトＷＴ−１に対する抗原特異的Ｔ細胞応答を促進することが可能である、項目８７から９０のいずれか一項に記載の方法。
（項目９２）
クラスＩ  ＨＬＡ拘束性の応答が、抗原プロセシング関連トランスポーター（ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｗｉｔｈ  ａｎｔｉｇｅｎ  ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ）（ＴＡＰ）非依存的である、項目９１に記載の方法。
（項目９３）
前記抗原特異的Ｔ細胞応答が、ＣＤ４＋ヘルパーＴリンパ球（Ｔｈ）応答およびＣＤ８＋細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）応答のうち少なくとも１つを含む、項目９１または９２に記載の方法。
（項目９４）
前記ＣＴＬ応答が、ＷＴ−１過剰発現細胞に対して向けられている、項目９３に記載の方法。
（項目９５）
前記組成物が、項目６５から８６のいずれか一項に記載の宿主細胞を含む、項目８７から９４のいずれか一項に記載の方法。
（項目９６）
過剰増殖障害を有する被験体の細胞におけるＷＴ−１過剰発現を特徴とする状態を処置するための養子免疫治療方法であって、項目６５から８６のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞の有効量を前記被験体に投与するステップを含む、方法。
（項目９７）
前記組換え宿主細胞がｅｘ  ｖｉｖｏで改変される、項目９６に記載の方法。
（項目９８）
前記宿主細胞が、同種細胞、同系細胞または自家細胞である、項目９６または９７に記載の方法。
（項目９９）
前記宿主細胞が、造血前駆細胞またはヒト免疫系細胞である、項目９６から９８のいずれか一項に記載の方法。
（項目１００）
前記免疫系細胞が、ＣＤ４＋Ｔ細胞、ＣＤ８＋Ｔ細胞、ＣＤ４−ＣＤ８−二重陰性Ｔ細胞、γδＴ細胞、ナチュラルキラー細胞、樹状細胞、またはそれらの任意の組み合わせである、項目９９に記載の方法。
（項目１０１）
前記Ｔ細胞が、ナイーブＴ細胞、セントラルメモリーＴ細胞、エフェクターメモリーＴ細胞、またはそれらの任意の組み合わせである、項目１００に記載の方法。
（項目１０２）
前記過剰増殖障害が、血液学的悪性疾患または固形がんである、項目９６から１０１のいずれか一項に記載の方法。
（項目１０３）
前記血液学的悪性疾患が、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性好酸球性白血病（ＣＥＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）または多発性骨髄腫（ＭＭ）から選択される、項目１０２に記載の方法。
（項目１０４）
前記固形がんが、胆道がん、膀胱がん、骨および軟部組織の癌腫、脳腫瘍、乳がん、子宮頚がん、結腸がん、結腸直腸腺癌、結腸直腸がん、類腱腫、胚性がん、子宮内膜がん、食道がん、胃がん、胃腺癌、多形神経膠芽腫、婦人科腫瘍、頭頚部扁平上皮癌、肝がん、肺がん、悪性黒色腫、骨肉腫、卵巣がん、膵がん、膵管腺癌、原発性アストロサイト腫瘍、原発性甲状腺がん、前立腺がん、腎がん、腎細胞癌、横紋筋肉腫、皮膚がん、軟部組織肉腫、精巣胚細胞腫瘍、尿路上皮がん、子宮肉腫または子宮がんから選択される、項目１０２に記載の方法。
（項目１０５）
前記組換え宿主細胞が非経口投与される、項目９６から１０４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１０６）
複数の用量の前記組換え宿主細胞を前記被験体に投与するステップを含む、項目９６から１０５のいずれか一項に記載の方法。
（項目１０７）
前記複数の用量が、投与の間の間隔が約２週間〜約４週間で投与される、項目１０６に記載の方法。
（項目１０８）
前記組換え宿主細胞が、約１０７細胞／ｍ２〜約１０１１細胞／ｍ２の用量で前記被験体に投与される、項目９６から１０７のいずれか一項に記載の方法。
（項目１０９）
サイトカインを投与するステップをさらに含む、項目９６から１０８のいずれか一項に記載の方法。
（項目１１０）
前記サイトカインが、ＩＬ−２、ＩＬ−１５、ＩＬ−２１またはそれらの任意の組み合わせである、項目１０９に記載の方法。
（項目１１１）
前記サイトカインがＩＬ−２であり、前記組換え宿主細胞と同時にまたは逐次的に投与される、項目１１０に記載の方法。
（項目１１２）
前記サイトカインが逐次的に投与されるが、ただし、前記被験体に、サイトカイン投与の前に少なくとも３または４回、前記組換え宿主細胞が投与されることを条件とする、項目１１１に記載の方法。
（項目１１３）
前記サイトカインがＩＬ−２であり、皮下投与される、項目１１０から１１２のいずれか一項に記載の方法。
（項目１１４）
前記被験体が、免疫抑制治療をさらに受けている、項目９６から１１３のいずれか一項に記載の方法。
（項目１１５）
前記免疫抑制治療が、カルシニューリン阻害剤、コルチコステロイド、微小管阻害剤、低用量のミコフェノール酸プロドラッグ、またはそれらの任意の組み合わせから選択される、項目１１４に記載の方法。
（項目１１６）
前記被験体が、非骨髄破壊的造血細胞移植または骨髄破壊的造血細胞移植を受けた、項目９６から１１５のいずれか一項に記載の方法。
（項目１１７）
前記被験体が、前記非骨髄破壊的造血細胞移植の少なくとも３ヶ月後に、前記組換え宿主細胞を投与される、項目１１６に記載の方法。
（項目１１８）
前記被験体が、前記骨髄破壊的造血細胞移植の少なくとも２ヶ月後に、前記組換え宿主細胞を投与される、項目１１６に記載の方法。
（項目１１９）
項目６５から８６のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞を含む、単位投薬形態。
（項目１２０）
前記組換え宿主細胞が、約１０７細胞／ｍ２〜約１０１１細胞／ｍ２の用量である、項目１１９に記載の単位投薬形態。
（項目１２１）
過剰増殖障害の処置における使用のための、項目１から５４のいずれか一項に記載の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲ。
（項目１２２）
前記過剰増殖障害が、血液学的悪性疾患または固形がんである、項目１２１に記載の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲ。
（項目１２３）
前記血液学的悪性疾患が、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性好酸球性白血病（ＣＥＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）または多発性骨髄腫（ＭＭ）から選択される、項目１２２に記載の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲ。
（項目１２４）
前記固形がんが、胆道がん、膀胱がん、骨および軟部組織の癌腫、脳腫瘍、乳がん、子宮頚がん、結腸がん、結腸直腸腺癌、結腸直腸がん、類腱腫、胚性がん、子宮内膜がん、食道がん、胃がん、胃腺癌、多形神経膠芽腫、婦人科腫瘍、頭頚部扁平上皮癌、肝がん、肺がん、悪性黒色腫、骨肉腫、卵巣がん、膵がん、膵管腺癌、原発性アストロサイト腫瘍、原発性甲状腺がん、前立腺がん、腎がん、腎細胞癌、横紋筋肉腫、皮膚がん、軟部組織肉腫、精巣胚細胞腫瘍、尿路上皮がん、子宮肉腫または子宮がんから選択される、項目１２２に記載の結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲ。
（項目１２５）
過剰増殖障害の養子免疫治療における使用のための、項目６５から８６のいずれか一項に記載の組換え宿主細胞。
（項目１２６）
前記過剰増殖障害が、血液学的悪性疾患または固形がんである、項目１２５に記載の組換え宿主細胞。
（項目１２７）
前記血液学的悪性疾患が、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性好酸球性白血病（ＣＥＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）または多発性骨髄腫（ＭＭ）から選択される、項目１２６に記載の組換え宿主細胞。
（項目１２８）
前記固形がんが、胆道がん、膀胱がん、骨および軟部組織の癌腫、脳腫瘍、乳がん、子宮頚がん、結腸がん、結腸直腸腺癌、結腸直腸がん、類腱腫、胚性がん、子宮内膜がん、食道がん、胃がん、胃腺癌、多形神経膠芽腫、婦人科腫瘍、頭頚部扁平上皮癌、肝がん、肺がん、悪性黒色腫、骨肉腫、卵巣がん、膵がん、膵管腺癌、原発性アストロサイト腫瘍、原発性甲状腺がん、前立腺がん、腎がん、腎細胞癌、横紋筋肉腫、皮膚がん、軟部組織肉腫、精巣胚細胞腫瘍、尿路上皮がん、子宮肉腫または子宮がんから選択される、項目１２６に記載の組換え宿主細胞。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】図１は、ＷＴ−１ペプチド：ＨＬＡ−Ａテトラマーに結合するＷＴ−１特異的ＴＣＲの力価決定（ｔｉｔｒａｔｉｏｎ）からの平衡結合曲線を示す。ＷＴ−１１２６−１３４（配列番号１６に示される、アミノ酸配列ＲＭＦＰＮＡＰＹＬを有する）に対して特異的なＴ細胞クローンを、５０超のドナーの末梢レパートリーから生成し、いくつかの候補高親和性Ｔ細胞クローンを分析して、それらの相対的親和性を決定した。各ＷＴ−１特異的Ｔ細胞クローンを、ＷＴ−１１２６−１３４ペプチド／ＭＨＣテトラマー（「ＷＴ１テトラマー」）で染色し、フローサイトメトリーによって分析し、テトラマー染色の平均蛍光強度を、ＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅｓｔａｒ）を使用して決定した。ＫＤ測定を、一定範囲の濃度（１〜３３ｎＭ）で、２倍希釈のＰＥコンジュゲート化テトラマーを使用して実施した。見かけのＫＤ値を、最大半量結合（Ｂｍａｘ）を生じたリガンドの濃度として、非線形回帰によって結合曲線から決定した。
【００１７】
【図２Ａ】図２Ａおよび２Ｂは、評価した高親和性ＴＣＲクローンが、内因性ＴＣＲ鎖を効率的に打ち負かし、ＣＤ８から独立してＷＴ−１１２６−１３４テトラマーに結合することができたことを示す。このＷＴ−１エピトープに対して最も高い親和性を有する末梢レパートリーから生成された３つのＴＣＲ（Ｃ４、Ｐ１、Ｐ２２）由来のＴＣＲα鎖およびＴＣＲβ鎖を含むコドン最適化されたＴＣＲα−Ｐ２Ａ−β構築物を生成した。（Ａ）これらの構築物を、ＰＢＭＣ中に形質導入し、形質導入された細胞集団内のＷＴ−１１２６−１３４テトラマー染色細胞の百分率を、フローサイトメトリーによって評価し、テトラマー染色はＹ軸上に示され、それぞれのトランスジェニックβ鎖染色はＸ軸上に示される。形質導入された集団を、トランスジェニックＴＣＲβ鎖を発現する細胞の総百分率−同じＰＢＭＣの形質導入されていない培養物中のそのＴＣＲβ鎖を内因的に発現するＴ細胞の百分率として計算した。（Ｂ）ＣＤ８の非存在下での異なるＴＣＲによるテトラマー結合を、形質導入されたＣＤ４＋細胞（ＣＤ８陰性、ＣＤ８−）対ＰＢＭＣの形質導入された集団内のＣＤ８＋細胞上のＷＴ−１テトラマー染色を測定することによって評価した。ＴＣＲクローンのうち１つ、Ｃ４は、ＣＤ４＋ＣＤ８−細胞上での最も高い程度のテトラマー結合を示した。
【図２Ｂ】図２Ａおよび２Ｂは、評価した高親和性ＴＣＲクローンが、内因性ＴＣＲ鎖を効率的に打ち負かし、ＣＤ８から独立してＷＴ−１１２６−１３４テトラマーに結合することができたことを示す。このＷＴ−１エピトープに対して最も高い親和性を有する末梢レパートリーから生成された３つのＴＣＲ（Ｃ４、Ｐ１、Ｐ２２）由来のＴＣＲα鎖およびＴＣＲβ鎖を含むコドン最適化されたＴＣＲα−Ｐ２Ａ−β構築物を生成した。（Ａ）これらの構築物を、ＰＢＭＣ中に形質導入し、形質導入された細胞集団内のＷＴ−１１２６−１３４テトラマー染色細胞の百分率を、フローサイトメトリーによって評価し、テトラマー染色はＹ軸上に示され、それぞれのトランスジェニックβ鎖染色はＸ軸上に示される。形質導入された集団を、トランスジェニックＴＣＲβ鎖を発現する細胞の総百分率−同じＰＢＭＣの形質導入されていない培養物中のそのＴＣＲβ鎖を内因的に発現するＴ細胞の百分率として計算した。（Ｂ）ＣＤ８の非存在下での異なるＴＣＲによるテトラマー結合を、形質導入されたＣＤ４＋細胞（ＣＤ８陰性、ＣＤ８−）対ＰＢＭＣの形質導入された集団内のＣＤ８＋細胞上のＷＴ−１テトラマー染色を測定することによって評価した。ＴＣＲクローンのうち１つ、Ｃ４は、ＣＤ４＋ＣＤ８−細胞上での最も高い程度のテトラマー結合を示した。
【００１８】
【図３Ａ】図３Ａ〜３Ｃは、種々の異なるＣ４由来ＴＣＲ構築物についてのＴＣＲ表面発現の比較を示す。α鎖およびβ鎖を連結するブタテッショウウイルス由来の２Ａエレメント（Ｐ２Ａ）を各々有する３つの異なるＣ４由来ＴＣＲ構築物は、以下の特色を有する：（１）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−β（Ｃ４αβＷＴ）、（２）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−βのコドン最適化バージョン（Ｃ４αβＣＯ）、および（３）Ｃ４αではなくＣ４βがＰ２Ａエレメントに先行する、コドン最適化ＴＣＲのバリアント（Ｃ４βαＣＯ）。（Ａ）表面発現を、ＷＴ−１：ＨＬＡ−Ａテトラマー結合の尺度として検出した。（Ｂ）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−β  ＣＯ構築物とＣ４β−Ｐ２Ａ−α  ＣＯ構築物との間のＴＣＲ発現における時間をわたっての差異を試験したところ、内因性ＴＣＲがより高いレベルで発現された場合、Ｔ細胞のサイクルの終わりに向かうことがより明らかに観察された。（Ｃ）Ｃ４  ＴＣＲβα構築物の模式図が示される。
【図３Ｂ】図３Ａ〜３Ｃは、種々の異なるＣ４由来ＴＣＲ構築物についてのＴＣＲ表面発現の比較を示す。α鎖およびβ鎖を連結するブタテッショウウイルス由来の２Ａエレメント（Ｐ２Ａ）を各々有する３つの異なるＣ４由来ＴＣＲ構築物は、以下の特色を有する：（１）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−β（Ｃ４αβＷＴ）、（２）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−βのコドン最適化バージョン（Ｃ４αβＣＯ）、および（３）Ｃ４αではなくＣ４βがＰ２Ａエレメントに先行する、コドン最適化ＴＣＲのバリアント（Ｃ４βαＣＯ）。（Ａ）表面発現を、ＷＴ−１：ＨＬＡ−Ａテトラマー結合の尺度として検出した。（Ｂ）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−β  ＣＯ構築物とＣ４β−Ｐ２Ａ−α  ＣＯ構築物との間のＴＣＲ発現における時間をわたっての差異を試験したところ、内因性ＴＣＲがより高いレベルで発現された場合、Ｔ細胞のサイクルの終わりに向かうことがより明らかに観察された。（Ｃ）Ｃ４  ＴＣＲβα構築物の模式図が示される。
【図３Ｃ】図３Ａ〜３Ｃは、種々の異なるＣ４由来ＴＣＲ構築物についてのＴＣＲ表面発現の比較を示す。α鎖およびβ鎖を連結するブタテッショウウイルス由来の２Ａエレメント（Ｐ２Ａ）を各々有する３つの異なるＣ４由来ＴＣＲ構築物は、以下の特色を有する：（１）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−β（Ｃ４αβＷＴ）、（２）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−βのコドン最適化バージョン（Ｃ４αβＣＯ）、および（３）Ｃ４αではなくＣ４βがＰ２Ａエレメントに先行する、コドン最適化ＴＣＲのバリアント（Ｃ４βαＣＯ）。（Ａ）表面発現を、ＷＴ−１：ＨＬＡ−Ａテトラマー結合の尺度として検出した。（Ｂ）Ｃ４α−Ｐ２Ａ−β  ＣＯ構築物とＣ４β−Ｐ２Ａ−α  ＣＯ構築物との間のＴＣＲ発現における時間をわたっての差異を試験したところ、内因性ＴＣＲがより高いレベルで発現された場合、Ｔ細胞のサイクルの終わりに向かうことがより明らかに観察された。（Ｃ）Ｃ４  ＴＣＲβα構築物の模式図が示される。
【００１９】
【図４Ａ】図４Ａ〜４Ｃは、飽和変異誘発によって同定されたＣ４  ＴＣＲの増強された親和性のバリアントの検出および分析を示す。（Ａ）ＰＢＭＣを、野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）構築物のいずれかを発現するように形質導入した；形質導入された細胞を、細胞選別によって単離し、拡大増殖させ、等価なレベルの導入されたＴＣＲ（Ｖβ１７染色によって測定される）を発現する細胞上の相対的ＷＴ−１１２６−１３４テトラマー染色について分析した。（Ｂ）野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）のいずれかを発現する選別されたＰＢＭＣを、ＷＴ−１ペプチド／ＭＨＣテトラマーで染色し、フローサイトメトリーによって分析し、テトラマー染色の平均蛍光強度を、ＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅｓｔａｒ）を使用して決定した。ＫＤ測定を、一定範囲の濃度で、２倍希釈のＰＥコンジュゲート化テトラマーを使用して実施した。見かけのＫＤ値を、最大半量結合を生じたリガンドの濃度として、非線形回帰によって結合曲線から決定した。（Ｃ）野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）のいずれかを発現する選別されたＰＢＭＣを、示されるような減少する濃度のＷＴ−１１２６−１３４ペプチドでパルスした５１クロム負荷標的細胞と共にインキュベートし、特異的Ｔ細胞媒介性死滅を、最大クロム放出のパーセントとして測定した。
【図４Ｂ】図４Ａ〜４Ｃは、飽和変異誘発によって同定されたＣ４  ＴＣＲの増強された親和性のバリアントの検出および分析を示す。（Ａ）ＰＢＭＣを、野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）構築物のいずれかを発現するように形質導入した；形質導入された細胞を、細胞選別によって単離し、拡大増殖させ、等価なレベルの導入されたＴＣＲ（Ｖβ１７染色によって測定される）を発現する細胞上の相対的ＷＴ−１１２６−１３４テトラマー染色について分析した。（Ｂ）野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）のいずれかを発現する選別されたＰＢＭＣを、ＷＴ−１ペプチド／ＭＨＣテトラマーで染色し、フローサイトメトリーによって分析し、テトラマー染色の平均蛍光強度を、ＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅｓｔａｒ）を使用して決定した。ＫＤ測定を、一定範囲の濃度で、２倍希釈のＰＥコンジュゲート化テトラマーを使用して実施した。見かけのＫＤ値を、最大半量結合を生じたリガンドの濃度として、非線形回帰によって結合曲線から決定した。（Ｃ）野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）のいずれかを発現する選別されたＰＢＭＣを、示されるような減少する濃度のＷＴ−１１２６−１３４ペプチドでパルスした５１クロム負荷標的細胞と共にインキュベートし、特異的Ｔ細胞媒介性死滅を、最大クロム放出のパーセントとして測定した。
【図４Ｃ】図４Ａ〜４Ｃは、飽和変異誘発によって同定されたＣ４  ＴＣＲの増強された親和性のバリアントの検出および分析を示す。（Ａ）ＰＢＭＣを、野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）構築物のいずれかを発現するように形質導入した；形質導入された細胞を、細胞選別によって単離し、拡大増殖させ、等価なレベルの導入されたＴＣＲ（Ｖβ１７染色によって測定される）を発現する細胞上の相対的ＷＴ−１１２６−１３４テトラマー染色について分析した。（Ｂ）野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）のいずれかを発現する選別されたＰＢＭＣを、ＷＴ−１ペプチド／ＭＨＣテトラマーで染色し、フローサイトメトリーによって分析し、テトラマー染色の平均蛍光強度を、ＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅｓｔａｒ）を使用して決定した。ＫＤ測定を、一定範囲の濃度で、２倍希釈のＰＥコンジュゲート化テトラマーを使用して実施した。見かけのＫＤ値を、最大半量結合を生じたリガンドの濃度として、非線形回帰によって結合曲線から決定した。（Ｃ）野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）のいずれかを発現する選別されたＰＢＭＣを、示されるような減少する濃度のＷＴ−１１２６−１３４ペプチドでパルスした５１クロム負荷標的細胞と共にインキュベートし、特異的Ｔ細胞媒介性死滅を、最大クロム放出のパーセントとして測定した。
【００２０】
【図５】図５は、Ｃ４αβ（ＤＬＴ）ＴＣＲで形質導入されたＰＢＭＣが、ＷＴ−１抗原を天然に提示する腫瘍細胞の増強された死滅を示すことを示す。ＨＬＡ−Ａ２陰性Ｋ５６２腫瘍細胞株またはＨＬＡ−Ａ２を発現するように形質導入されたＫ５６２細胞を、野生型Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物または増強された親和性のＣ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４−β（ＤＬＴ）ＴＣＲのいずれかを発現するＰＢＭＣのための標的細胞として使用した。腫瘍死滅を、フローサイトメトリーによって腫瘍細胞中の切断されたカスパーゼ−３を測定することによって決定した。
【００２１】
【図６Ａ】図６Ａ〜６Ｃは、ヒトアゴニストで選択されたＴＣＲβライブラリーの生成およびスクリーニングからの結果を示す。ＣＤ３４＋ＨＰＣを、臍帯血から精製し、Ｃ４α−ＩＲＥＳ−ＧＦＰまたはＣ４αβのいずれかでレンチウイルスにより形質導入し、１μｇ／ｍＬのＷＴ−１ペプチドの存在下で、ＯＰ９−Ａ２−ＤＬ１細胞株と共に共培養した。（Ａ）培養物を、ＣＤ３およびＣＤ２７の発現について３１日目に分析した。（Ｂ）３４日目に、培養物を、ＣＤ２７およびＶβ１７の発現について分析し、約２．５×１０５のＶβ１７＋ＣＤ２７＋細胞を、ＴＣＲβライブラリー生成のために選別した。（Ｃ）Ｖβ１７−Ｃβ１ライブラリーおよびＶβ１７−Ｃβ２ライブラリーを生成し、Ｈ９．ＣＤ８−Ｃ４α細胞株中に形質導入し、その後、形質導入されたＣ４α−ＧＦＰ＋Ｖβ１７＋細胞について選別した。次いで、細胞を、ＷＴ−１−テトラマーで２回選別し、フローサイトメトリーによって、テトラマーおよびＶβ１７染色について分析した。
【図６Ｂ】図６Ａ〜６Ｃは、ヒトアゴニストで選択されたＴＣＲβライブラリーの生成およびスクリーニングからの結果を示す。ＣＤ３４＋ＨＰＣを、臍帯血から精製し、Ｃ４α−ＩＲＥＳ−ＧＦＰまたはＣ４αβのいずれかでレンチウイルスにより形質導入し、１μｇ／ｍＬのＷＴ−１ペプチドの存在下で、ＯＰ９−Ａ２−ＤＬ１細胞株と共に共培養した。（Ａ）培養物を、ＣＤ３およびＣＤ２７の発現について３１日目に分析した。（Ｂ）３４日目に、培養物を、ＣＤ２７およびＶβ１７の発現について分析し、約２．５×１０５のＶβ１７＋ＣＤ２７＋細胞を、ＴＣＲβライブラリー生成のために選別した。（Ｃ）Ｖβ１７−Ｃβ１ライブラリーおよびＶβ１７−Ｃβ２ライブラリーを生成し、Ｈ９．ＣＤ８−Ｃ４α細胞株中に形質導入し、その後、形質導入されたＣ４α−ＧＦＰ＋Ｖβ１７＋細胞について選別した。次いで、細胞を、ＷＴ−１−テトラマーで２回選別し、フローサイトメトリーによって、テトラマーおよびＶβ１７染色について分析した。
【図６Ｃ】図６Ａ〜６Ｃは、ヒトアゴニストで選択されたＴＣＲβライブラリーの生成およびスクリーニングからの結果を示す。ＣＤ３４＋ＨＰＣを、臍帯血から精製し、Ｃ４α−ＩＲＥＳ−ＧＦＰまたはＣ４αβのいずれかでレンチウイルスにより形質導入し、１μｇ／ｍＬのＷＴ−１ペプチドの存在下で、ＯＰ９−Ａ２−ＤＬ１細胞株と共に共培養した。（Ａ）培養物を、ＣＤ３およびＣＤ２７の発現について３１日目に分析した。（Ｂ）３４日目に、培養物を、ＣＤ２７およびＶβ１７の発現について分析し、約２．５×１０５のＶβ１７＋ＣＤ２７＋細胞を、ＴＣＲβライブラリー生成のために選別した。（Ｃ）Ｖβ１７−Ｃβ１ライブラリーおよびＶβ１７−Ｃβ２ライブラリーを生成し、Ｈ９．ＣＤ８−Ｃ４α細胞株中に形質導入し、その後、形質導入されたＣ４α−ＧＦＰ＋Ｖβ１７＋細胞について選別した。次いで、細胞を、ＷＴ−１−テトラマーで２回選別し、フローサイトメトリーによって、テトラマーおよびＶβ１７染色について分析した。
【００２２】
【図７】図７は、Ｃ４βα  ＴＣＲ構築物を発現するように形質導入されたドナー由来ウイルス特異的ＣＤ８  Ｔ細胞の、９人の白血病患者における持続を示す。ドナーＴ細胞を、ＥＢＶまたはＣＭＶのいずれか由来のペプチドで刺激して、セントラルメモリー（ｃｅｎｔｒａｌ  ｍｅｍｏｒｙ）表現型を有するウイルス特異的Ｔ細胞の集団を特異的に活性化し、これらの活性化された、したがって迅速に分裂している細胞に、レンチウイルス形質導入を優先的に標的化した。細胞を、Ｃ４βα  ＴＣＲ構築物で形質導入し、フローサイトメトリーによる細胞選別によって、ＨＬＡ−Ａ２／ＷＴ−１およびＨＬＡ−Ａ２／ウイルスペプチド特異的テトラマーの両方について陽性染色されたＴ細胞について選別した。選別された細胞を拡大増殖させ、下向きの矢印で示される時点において、白血病患者中に注入した。
【００２３】
【図８Ａ】図８Ａ〜８Ｃは、機能的ＷＴ−１特異的ＴＣＲの細胞表面安定性を実証する結果を示す。（Ａ）ドナーＰＢＭＣを、ＥＢＶペプチドＧＬＣＴＬＶＡＭＬ（配列番号１２７）を提示する樹状細胞（ＤＣ）で刺激し、２４時間後にＣ４  ＴＣＲ構築物で形質導入し、示されたように、１２日目に、ＷＴ＿１テトラマー＋、ＥＢＶテトラマー＋または二重陽性集団について選別した。（Ｂ）選別された集団を、選別の直後に分析し、または１２日間のさらなるｉｎ  ｖｉｔｒｏ培養後に分析した。（Ｃ）ドナーＰＢＭＣを、ＥＢＶペプチドＧＬＣＴＬＶＡＭＬ（配列番号１２７）を提示するＤＣで刺激し、次いで、１２日間の培養後に、ＥＢＶテトラマー＋Ｔ細胞について選別した。次いで、選別された細胞を、刺激後１日目にＣ４  ＴＣＲ形質導入とともに、またはそれなしで再刺激し、６日目にフローサイトメトリーによって分析した。
【図８Ｂ】図８Ａ〜８Ｃは、機能的ＷＴ−１特異的ＴＣＲの細胞表面安定性を実証する結果を示す。（Ａ）ドナーＰＢＭＣを、ＥＢＶペプチドＧＬＣＴＬＶＡＭＬ（配列番号１２７）を提示する樹状細胞（ＤＣ）で刺激し、２４時間後にＣ４  ＴＣＲ構築物で形質導入し、示されたように、１２日目に、ＷＴ＿１テトラマー＋、ＥＢＶテトラマー＋または二重陽性集団について選別した。（Ｂ）選別された集団を、選別の直後に分析し、または１２日間のさらなるｉｎ  ｖｉｔｒｏ培養後に分析した。（Ｃ）ドナーＰＢＭＣを、ＥＢＶペプチドＧＬＣＴＬＶＡＭＬ（配列番号１２７）を提示するＤＣで刺激し、次いで、１２日間の培養後に、ＥＢＶテトラマー＋Ｔ細胞について選別した。次いで、選別された細胞を、刺激後１日目にＣ４  ＴＣＲ形質導入とともに、またはそれなしで再刺激し、６日目にフローサイトメトリーによって分析した。
【図８Ｃ】図８Ａ〜８Ｃは、機能的ＷＴ−１特異的ＴＣＲの細胞表面安定性を実証する結果を示す。（Ａ）ドナーＰＢＭＣを、ＥＢＶペプチドＧＬＣＴＬＶＡＭＬ（配列番号１２７）を提示する樹状細胞（ＤＣ）で刺激し、２４時間後にＣ４  ＴＣＲ構築物で形質導入し、示されたように、１２日目に、ＷＴ＿１テトラマー＋、ＥＢＶテトラマー＋または二重陽性集団について選別した。（Ｂ）選別された集団を、選別の直後に分析し、または１２日間のさらなるｉｎ  ｖｉｔｒｏ培養後に分析した。（Ｃ）ドナーＰＢＭＣを、ＥＢＶペプチドＧＬＣＴＬＶＡＭＬ（配列番号１２７）を提示するＤＣで刺激し、次いで、１２日間の培養後に、ＥＢＶテトラマー＋Ｔ細胞について選別した。次いで、選別された細胞を、刺激後１日目にＣ４  ＴＣＲ形質導入とともに、またはそれなしで再刺激し、６日目にフローサイトメトリーによって分析した。
【発明を実施するための形態】
【００２４】
一態様では、本開示は、例えば、がんを処置するための養子免疫治療における使用のための、主要組織適合複合体（ＭＨＣ）（例えば、ヒト白血球抗原、ＨＬＡ）と会合したＷＴ−１ペプチド抗原に対する高い親和性を有するＴ細胞受容体（ＴＣＲ）を提供する。背景として、腫瘍は、以前は正常であった組織から生じるので、Ｔ細胞ベースの免疫治療のためのほとんどの腫瘍標的は自己抗原である。例えば、かかる腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）は、がん細胞において高レベルで発現され得るが、他の細胞においては発現されない可能性がある、または最低限に発現され得る。胸腺におけるＴ細胞発達の間に、自己抗原に弱く結合するＴ細胞は、胸腺において生存が可能であり、外来侵入者に対する特異性を増加させるためにさらなる発達を受けることができるが、自己抗原に強く結合するＴ細胞は、望ましくない自己免疫応答を開始するので、かかる細胞は免疫系によって排除される。したがって、Ｔ細胞は、外来侵入者に対して応答するように免疫系を準備するために、抗原に結合するそれらの相対的能力（即ち、非自己抗原の認識）によって選別されるが、同時に、自己免疫応答（即ち、自己抗原の認識）を防止する。この寛容機序は、高い親和性で腫瘍（自己）抗原を認識できる天然に存在するＴ細胞を制限し、したがって、腫瘍細胞を有効に排除するＴ細胞を排除する。結果として、腫瘍抗原に対して特異的な高親和性ＴＣＲを有するＴ細胞を単離することは、かかる細胞が免疫系によって本質的に排除されるので、困難である。
【００２５】
本開示の利点は、ＷＴ−１ペプチドに対して特異的な高親和性または増強された親和性のＴＣＲを提供することであり、かかるＴＣＲを発現する細胞は、ＣＤ８から独立して、もしくはＣＤ８の非存在下で、ＷＴ−１：：ＨＬＡ複合体に結合することが可能であるか、内因性ＴＣＲと比較して、ＣＤ３タンパク質とより効率的に会合することが可能であるか、またはそれらの両方である。ある特定の実施形態では、ＷＴ−１ペプチドに対して特異的な増強された親和性のＴＣＲは、配列番号７または８に示されるＴ細胞受容体（ＴＣＲ）α鎖、および配列番号１２または１３に示されるＴＣＲβ鎖可変（Ｖβ）ドメインを含み、ここで、この増強された親和性のＴＣＲは、約３ｎＭもしくはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に結合することが可能であり、またはこの増強された親和性のＴＣＲは、配列番号５もしくは６のα鎖および配列番号１２もしくは１３のβ鎖から構成されるＴＣＲと比較して、低減されたｋｏｆｆ速度でＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体から解離する。
【００２６】
本明細書に記載される組成物および方法は、ある特定の実施形態では、ＷＴ−１過剰発現（例えば、正常または無疾患細胞において検出可能なＷＴ−１発現のレベルよりも、大きさがより大きいレベルで、統計的に有意な様式で検出可能なＷＴ−１発現）と関連する疾患および状態の処置のための治療的有用性を有する。かかる疾患には、種々の形態の過剰増殖障害、例えば、血液学的悪性疾患および固形がんが含まれる。これらおよび関連の使用の非限定的な例は、本明細書に記載されており、これには、例えば、ＷＴ−１ペプチド（例えば、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ、配列番号１６）に対して特異的な増強された親和性のＴＣＲを発現する組換えＴ細胞の使用による、ＷＴ−１抗原特異的Ｔ細胞応答のｉｎ  ｖｉｔｒｏ、ｅｘ  ｖｉｖｏおよびｉｎ  ｖｉｖｏ刺激が含まれる。
【００２７】
本開示をより詳細に示す前に、本明細書で使用される特定の用語の定義を提供することが、その理解に役立ち得る。さらなる定義は、本開示を通じて示される。
【００２８】
本説明では、任意の濃度範囲、百分率範囲、比率範囲または整数範囲は、特記しない限り、列挙された範囲内の任意の整数の値、および適切な場合にはそれらの分数（例えば、整数の１０分の１および１００分の１）を含むと理解すべきである。また、任意の物理的特色、例えば、ポリマーサブユニット、サイズまたは厚さに関して本明細書で列挙される任意の数値範囲は、特記しない限り、列挙された範囲内の任意の整数を含むと理解すべきである。本明細書で使用する場合、用語「約」とは、特記しない限り、示された範囲、値または構造の±２０％を意味する。用語「１つの（ａ）」および「１つの（ａｎ）」とは、本明細書で使用する場合、列挙された構成要素のうち「１または複数」を指すことを理解すべきである。選択肢（例えば、「または」）の使用は、それらの選択肢のうち１つ、両方、またはそれらの任意の組み合わせを意味すると理解すべきである。本明細書で使用する場合、用語「含む（ｉｎｃｌｕｄｅ）」、「有する」および「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」は、同義的に使用され、これらの用語およびその異形は、非限定的と解釈すべき意図である。
【００２９】
さらに、本明細書に記載される構造および置換基の種々の組み合わせから誘導される個々の化合物または化合物の群は、あたかも各化合物または化合物の群が個々に示されたのと同じ程度まで、本出願によって開示されると理解すべきである。したがって、特定の構造または特定の置換基の選択は、本開示の範囲内である。
【００３０】
用語「から本質的になる」は、特許請求の範囲を、特定された材料もしくはステップに限定し、または特許請求された発明の基本的特徴に実質的に影響を与えないものに限定する。例えば、タンパク質のドメイン、領域もしくはモジュール（例えば、結合ドメイン、ヒンジ領域、リンカーモジュール）またはタンパク質（これは、１または複数のドメイン、領域またはモジュールを有し得る）は、ドメイン、領域、モジュールまたはタンパク質のアミノ酸配列が、組み合わせて、ドメイン、領域、モジュールまたはタンパク質の長さの多くても２０％（例えば、多くても１５％、１０％、８％、６％、５％、４％、３％、２％または１％）に寄与し、ドメイン、領域、モジュールまたはタンパク質の活性（例えば、結合性タンパク質の標的結合親和性）に実質的に影響を与えない（即ち、５０％超、例えば、４０％、３０％、２５％、２０％、１５％、１０％、５％または１％以下、活性を低減させない）伸長、欠失、変異またはそれらの組み合わせ（例えば、アミノ末端もしくはカルボキシ末端にある、またはドメイン間にあるアミノ酸）を含む場合、特定のアミノ酸配列「から本質的になる」。
【００３１】
本明細書で使用する場合、「免疫系細胞」とは、２つの主要な系統、骨髄系前駆細胞（これは、骨髄系細胞、例えば、単球、マクロファージ、樹状細胞、巨核球および顆粒球を生じる）およびリンパ系前駆細胞（これは、リンパ系細胞、例えば、Ｔ細胞、Ｂ細胞およびナチュラルキラー（ＮＫ）細胞を生じる）を生じる、骨髄中の造血幹細胞に起源する免疫系の任意の細胞を意味する。例示的な免疫系細胞には、ＣＤ４＋Ｔ細胞、ＣＤ８＋Ｔ細胞、ＣＤ４−ＣＤ８−二重陰性Ｔ細胞、γδＴ細胞、調節性Ｔ細胞、ナチュラルキラー細胞および樹状細胞が含まれる。マクロファージおよび樹状細胞とは、ペプチドと複合体化したＡＰＣの表面上の主要組織適合複合体（ＭＨＣ）受容体がＴ細胞の表面上のＴＣＲと相互作用するときにＴ細胞を活性化できる特殊化した細胞である、「抗原提示細胞」または「ＡＰＣ」と呼ばれ得る。
【００３２】
「主要組織適合複合体」（ＭＨＣ）とは、ペプチド抗原を細胞表面に送達する糖タンパク質を指す。ＭＨＣクラスＩ分子は、膜通過α鎖（３つのαドメインを有する）および非共有結合的に会合したβ２ミクログロブリンを有するヘテロダイマーである。ＭＨＣクラスＩＩ分子は、２つの膜貫通糖タンパク質αおよびβから構成され、これらは共に、膜を通過する。各鎖は、２つのドメインを有する。ＭＨＣクラスＩ分子は、サイトゾルに起源するペプチドを細胞表面に送達し、この場所で、ペプチド：ＭＨＣ複合体は、ＣＤ８＋Ｔ細胞によって認識される。ＭＨＣクラスＩＩ分子は、小胞系に起源するペプチドを細胞表面に送達し、この場所で、これらは、ＣＤ４＋Ｔ細胞によって認識される。ヒトＭＨＣは、ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）と呼ばれる。
【００３３】
「Ｔ細胞」は、胸腺において成熟し、Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）を産生する免疫系細胞である。Ｔ細胞は、ナイーブ（抗原に曝露されていない；ＴＣＭと比較して、ＣＤ６２Ｌ、ＣＣＲ７、ＣＤ２８、ＣＤ３、ＣＤ１２７およびＣＤ４５ＲＡの増加した発現、ならびにＣＤ４５ＲＯの減少した発現）、メモリーＴ細胞（ＴＭ）（抗原を経験した、長寿命）およびエフェクター細胞（抗原を経験した、細胞傷害性）であり得る。ＴＭは、セントラルメモリーＴ細胞（ＴＣＭ、ナイーブＴ細胞と比較して、ＣＤ６２Ｌ、ＣＣＲ７、ＣＤ２８、ＣＤ１２７、ＣＤ４５ＲＯおよびＣＤ９５の増加した発現、ならびにＣＤ５４ＲＡの減少した発現）およびエフェクターメモリーＴ細胞（ＴＥＭ、ナイーブＴ細胞またはＴＣＭと比較して、ＣＤ６２Ｌ、ＣＣＲ７、ＣＤ２８、ＣＤ４５ＲＡの減少した発現、およびＣＤ１２７の増加した発現）のサブセットへとさらに分割され得る。エフェクターＴ細胞（ＴＥ）とは、ＴＣＭと比較して、ＣＤ６２Ｌ、ＣＣＲ７、ＣＤ２８の減少した発現を有し、グランザイムおよびパーフォリンについて陽性である、抗原を経験したＣＤ８＋細胞傷害性Ｔリンパ球を指す。他の例示的なＴ細胞には、調節性Ｔ細胞、例えば、ＣＤ４＋ＣＤ２５＋（Ｆｏｘｐ３＋）調節性Ｔ細胞およびＴｒｅｇ１７細胞、ならびにＴｒ１、Ｔｈ３、ＣＤ８＋ＣＤ２８−およびＱａ−１拘束性Ｔ細胞が含まれる。
【００３４】
「Ｔ細胞受容体」（ＴＣＲ）とは、ＭＨＣ受容体に結合した抗原ペプチドに特異的に結合することが可能な免疫グロブリンスーパーファミリーメンバー（可変結合ドメイン、定常ドメイン、膜貫通領域および短い細胞質尾部を有する；例えば、Ｊａｎｅｗａｙら、Ｉｍｍｕｎｏｂｉｏｌｏｇｙ：  Ｔｈｅ  Ｉｍｍｕｎｅ  Ｓｙｓｔｅｍ  ｉｎ  Ｈｅａｌｔｈ  ａｎｄ  Ｄｉｓｅａｓｅ、第３版、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ、４巻：３３頁、１９９７年を参照のこと）を指す。ＴＣＲは、細胞の表面上に、または可溶性形態で見出され得、一般に、α鎖およびβ鎖（それぞれ、ＴＣＲαおよびＴＣＲβとしても公知）、またはγ鎖およびδ鎖（それぞれ、ＴＣＲγおよびＴＣＲδとしても公知）を有するヘテロダイマーから構成される。免疫グロブリンと同様に、ＴＣＲ鎖（例えば、α鎖、β鎖）の細胞外部分は、２つの免疫グロブリンドメイン、Ｎ末端における１つの可変ドメイン（例えば、α鎖可変ドメインまたはＶα、β鎖可変ドメインまたはＶβ；典型的には、Ｋａｂａｔ番号付けに基づいてアミノ酸１〜１１６、Ｋａｂａｔら、「Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ  ｏｆ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、ＵＳ  Ｄｅｐｔ．  Ｈｅａｌｔｈ  ａｎｄ  Ｈｕｍａｎ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ、Ｐｕｂｌｉｃ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｓｅｒｖｉｃｅ  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ、１９９１年、第５版）、および細胞膜に隣接した１つの定常ドメイン（例えば、α鎖定常ドメインまたはＣα、典型的にはＫａｂａｔに基づいてアミノ酸１１７〜２５９、β鎖定常ドメインまたはＣβ、典型的にはＫａｂａｔに基づいてアミノ酸１１７〜２９５）を含む。また、免疫グロブリンと同様に、可変ドメインは、フレームワーク領域（ＦＲ）によって分離された相補性決定領域（ＣＤＲ）を含む（例えば、Ｊｏｒｅｓら、Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔ’ｌ  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  Ｕ．Ｓ．Ａ．  ８７巻：９１３８頁、１９９０年；Ｃｈｏｔｈｉａら、ＥＭＢＯ  Ｊ．  ７巻：３７４５頁、１９８８年を参照のこと；Ｌｅｆｒａｎｃら、Ｄｅｖ．  Ｃｏｍｐ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  ２７巻：５５頁、２００３年もまた参照のこと）。ある特定の実施形態では、ＴＣＲは、Ｔ細胞（またはＴリンパ球）の表面上で見出され、ＣＤ３複合体と会合する。本開示で使用されるＴＣＲの供給源は、種々の動物種、例えば、ヒト、マウス、ラット、ウサギまたは他の哺乳動物からであり得る。
【００３５】
「ＣＤ３」は、６つの鎖の多タンパク質複合体として当該分野で公知である（ＡｂｂａｓおよびＬｉｃｈｔｍａｎ、２００３年；Ｊａｎｅｗａｙら、１７２頁および１７８頁、１９９９年を参照のこと）。哺乳動物では、この複合体は、１つのＣＤ３γ鎖、１つのＣＤ３δ鎖、２つのＣＤ３ε鎖、およびＣＤ３ζ鎖の１つのホモダイマーを含む。ＣＤ３γ鎖、ＣＤ３δ鎖およびＣＤ３ε鎖は、単一の免疫グロブリンドメインを含む免疫グロブリンスーパーファミリーの高度に関連する細胞表面タンパク質である。ＣＤ３γ鎖、ＣＤ３δ鎖およびＣＤ３ε鎖の膜貫通領域は負に荷電し、これは、これらの鎖を正に荷電したＴ細胞受容体鎖と会合させる特徴である。ＣＤ３γ鎖、ＣＤ３δ鎖およびＣＤ３ε鎖の細胞内尾部は、各々、免疫受容活性化チロシンモチーフ（ｉｍｍｕｎｏｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｔｙｒｏｓｉｎｅ−ｂａｓｅｄ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｍｏｔｉｆ）またはＩＴＡＭとして公知の単一の保存されたモチーフを含み、各ＣＤ３ζ鎖はこのモチーフを３つ有する。理論に束縛されることは望まないが、ＩＴＡＭは、ＴＣＲ複合体のシグナル伝達能にとって重要であると考えられる。本開示で使用されるＣＤ３は、ヒト、マウス、ラットまたは他の哺乳動物を含む種々の動物種に由来し得る。
【００３６】
本明細書で使用する場合、「ＴＣＲ複合体」とは、ＣＤ３とＴＣＲとの会合によって形成される複合体を指す。例えば、ＴＣＲ複合体は、１つのＣＤ３γ鎖、１つのＣＤ３δ鎖、２つのＣＤ３ε鎖、ＣＤ３ζ鎖の１つのホモダイマー、１つのＴＣＲα鎖および１つのＴＣＲβ鎖から構成され得る。あるいは、ＴＣＲ複合体は、１つのＣＤ３γ鎖、１つのＣＤ３δ鎖、２つのＣＤ３ε鎖、ＣＤ３ζ鎖の１つのホモダイマー、１つのＴＣＲγ鎖および１つのＴＣＲδ鎖から構成され得る。
【００３７】
「ＴＣＲ複合体の構成要素」とは、本明細書で使用する場合、ＴＣＲ鎖（即ち、ＴＣＲα、ＴＣＲβ、ＴＣＲγまたはＴＣＲδ）、ＣＤ３鎖（即ち、ＣＤ３γ、ＣＤ３δ、ＣＤ３εまたはＣＤ３ζ）、または２つまたはそれ超のＴＣＲ鎖もしくはＣＤ３鎖によって形成される複合体（例えば、ＴＣＲαおよびＴＣＲβの複合体、ＴＣＲγおよびＴＣＲδの複合体、ＣＤ３εおよびＣＤ３δの複合体、ＣＤ３γおよびＣＤ３εの複合体、またはＴＣＲα、ＴＣＲβ、ＣＤ３γ、ＣＤ３δおよび２つのＣＤ３ε鎖のサブ−ＴＣＲ複合体）を指す。
【００３８】
「結合ドメイン」（「結合領域」または「結合部分」とも呼ばれる）とは、本明細書で使用する場合、標的（例えば、ＷＴ−１またはＷＴ−１ペプチド：ＭＨＣ複合体）と、特異的かつ非共有結合的に会合、一体化または結びつく能力を有する分子またはその部分（例えば、ペプチド、オリゴペプチド、ポリペプチド、タンパク質）を指す。結合ドメインには、生物学的分子、分子複合体（即ち、２つまたはそれ超の生物学的分子を含む複合体）または目的の他の標的に対する、任意の天然に存在する、合成の、半合成のまたは組換え産生された結合パートナーが含まれる。例示的な結合ドメインには、生物学的分子、分子複合体または目的の他の標的に結合するそれらの特異的能力について選択された、単鎖免疫グロブリン可変領域（例えば、ｓｃＴＣＲ、ｓｃＦｖ）、受容体外部ドメイン、リガンド（例えば、サイトカイン、ケモカイン）または合成ポリペプチドが含まれる。
【００３９】
本明細書で使用する場合、「特異的に結合する」または「に対して特異的」とは、試料中の任意の他の分子または構成要素と有意に会合も一体化もすることなく、１０５Ｍ−１（これは、この会合反応についての会合速度（ｏｎ−ｒａｔｅ）［ｋｏｎ］対解離速度（ｏｆｆ−ｒａｔｅ）［ｋｏｆｆ］の比率と等しい）またはそれ超の親和性またはＫａ（即ち、１／Ｍの単位を用いた、特定の結合相互作用の平衡会合定数）での、標的分子への結合性タンパク質（例えば、ＴＣＲ受容体）または結合ドメイン（またはその融合タンパク質）の会合または一体化を指す。結合性タンパク質または結合ドメイン（またはその融合タンパク質）は、「高親和性」結合性タンパク質もしくは結合ドメイン（またはその融合タンパク質）または「低親和性」結合性タンパク質もしくは結合ドメイン（またはその融合タンパク質）として分類され得る。「高親和性」結合性タンパク質または結合ドメインとは、少なくとも１０７Ｍ−１、少なくとも１０８Ｍ−１、少なくとも１０９Ｍ−１、少なくとも１０１０Ｍ−１、少なくとも１０１１Ｍ−１、少なくとも１０１２Ｍ−１または少なくとも１０１３Ｍ−１のＫａを有する、結合性タンパク質または結合ドメインを指す。「低親和性」結合性タンパク質または結合ドメインとは、最大で１０７Ｍ−１、最大で１０６Ｍ−１、最大で１０５Ｍ−１のＫａを有する、結合性タンパク質または結合ドメインを指す。あるいは、親和性は、Ｍ（例えば、１０−５Ｍ〜１０−１３Ｍ）の単位を用いた、特定の結合相互作用の平衡解離定数（Ｋｄ）として規定され得る。
【００４０】
ある特定の実施形態では、受容体または結合ドメインは、「増強された親和性」を有し得、これは、野生型（または親）結合ドメインよりも、標的抗原に対するより強い結合を有する、選択もしくは操作された受容体または結合ドメインを指す。例えば、増強された親和性は、野生型結合ドメインよりも高い標的抗原に対するＫａ（平衡会合定数）に起因し得るか、野生型結合ドメインのものよりも低い標的抗原に対するＫｄ（解離定数）に起因し得るか、野生型結合ドメインのものよりも低い標的抗原に対する解離速度（ｋｏｆｆ）に起因し得るか、またはそれらの組み合わせであり得る。ある特定の実施形態では、増強された親和性のＴＣＲは、特定の宿主細胞、例えばＴ細胞における発現を増強するために、コドン最適化され得る（Ｓｃｈｏｌｔｅｎら、Ｃｌｉｎ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １１９巻：１３５頁、２００６年）。
【００４１】
特定の標的に特異的に結合する本開示の結合ドメインを同定するため、ならびに結合ドメインまたは融合タンパク質の親和性を決定するための種々のアッセイ、例えば、ウエスタンブロット、ＥＬＩＳＡ、分析的超遠心分離、分光法および表面プラズモン共鳴（Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標））分析が公知である（例えば、Ｓｃａｔｃｈａｒｄら、Ａｎｎ．
Ｎ．Ｙ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ５１巻：６６０頁、１９４９年；Ｗｉｌｓｏｎ、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２９５巻：２１０３頁、２００２年；Ｗｏｌｆｆら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  ５３巻：２５６０頁、１９９３年；および米国特許第５，２８３，１７３号、米国特許第５，４６８，６１４号または等価物を参照のこと）。
【００４２】
用語「ＷＴ−１特異的結合性タンパク質」とは、ＷＴ−１またはそのペプチドに特異的に結合するタンパク質またはポリペプチドを指す。一部の実施形態では、タンパク質またはポリペプチドは、特定の親和性で、または少なくともほぼ特定の親和性で、例えば細胞表面上の、ＷＴ−１またはそのペプチド、例えば、ＭＨＣまたはＨＬＡ分子と複合体化したＷＴ−１ペプチドに結合する。ある特定の実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質は、約１０−８Ｍ未満、約１０−９Ｍ未満、約１０−１０Ｍ未満、約１０−１１Ｍ未満、約１０−１２Ｍ未満もしくは約１０−１３Ｍ未満のＫｄで、あるいは、例えば、同じアッセイによって測定される、本明細書で提供される例示的なＷＴ−１特異的結合性タンパク質、例えば、本明細書で提供されるＷＴ−１特異的ＴＣＲのいずれかによって示される親和性とほぼ同じ親和性で、少なくともほぼ同じ親和性で、またはそれよりも高いもしくはほぼその親和性で、ＷＴ−１由来ペプチド：ＨＬＡ複合体（またはＷＴ−１由来ペプチド：ＭＨＣ複合体）に結合する。親和性または見かけの親和性または相対的親和性を評価するためのアッセイは、公知である。ある特定の例では、ＴＣＲに対する見かけの親和性は、例えば、標識されたテトラマーを使用するフローサイトメトリーによって、種々の濃度のテトラマーへの結合を評価することによって測定される。一部の例では、ＴＣＲの見かけのＫＤは、一定範囲の濃度で２倍希釈の標識されたテトラマーを使用して測定され、その後、非線形回帰によって結合曲線が決定され、見かけのＫＤは、最大半量結合を生じたリガンドの濃度として決定される。ある特定の実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質は、ＷＴ−１特異的免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質またはその結合性部分を含む。
【００４３】
用語「ＷＴ−１結合ドメイン」または「ＷＴ−１結合性断片」とは、特異的ＷＴ−１結合を担うＷＴ−１特異的結合性タンパク質のドメインまたは部分を指す。ＷＴ−１特異的結合ドメイン単独（即ち、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質のいずれの他の部分も有さない）は、可溶性であり得、約１０−８Ｍ未満、約１０−９Ｍ未満、約１０−１０Ｍ未満、約１０−１１Ｍ未満、約１０−１２Ｍ未満または約１０−１３Ｍ未満のＫｄで、ＷＴ−１に結合し得る。例示的なＷＴ−１特異的結合ドメインは、抗ＷＴ−１  ＴＣＲまたは抗体から誘導され得る、本明細書に記載されるＷＴ−１特異的ｓｃＴＣＲ（例えば、単鎖αβＴＣＲタンパク質、例えば、Ｖα−Ｌ−Ｖβ、Ｖβ−Ｌ−Ｖα、Ｖα−Ｃα−Ｌ−ＶαまたはＶα−Ｌ−Ｖβ−Ｃβ、ここで、ＶαおよびＶβは、それぞれＴＣＲαおよびβ可変ドメインであり、ＣαおよびＣβは、それぞれＴＣＲαおよびβ定常ドメインであり、Ｌはリンカーである）およびｓｃＦｖ断片が含まれる。
【００４４】
「ＷＴ−１抗原」または「ＷＴ−１ペプチド抗原」とは、ＭＨＣ（例えば、ＨＬＡ）分子と複合体を形成し得る、約７アミノ酸〜約１５アミノ酸の範囲の長さの、ＷＴ−１タンパク質の天然にまたは合成により産生された部分を指し、かかる複合体は、ＷＴ−１ペプチド：ＭＨＣ（例えば、ＨＬＡ）複合体に対して特異的なＴＣＲと結合し得る。抗原提示細胞（ＡＰＣ）（例えば、樹状細胞、マクロファージ、リンパ球または他の細胞型）による抗原プロセシングの原理、および免疫適合性（例えば、抗原提示に関連するＭＨＣ遺伝子の少なくとも１つの対立遺伝子形態を共有する）ＡＰＣとＴ細胞との間の主要組織適合複合体（ＭＨＣ）拘束性の提示を含む、ＡＰＣによるＴ細胞への抗原提示の原理は、十分確立されている（例えば、Ｍｕｒｐｈｙ、Ｊａｎｅｗａｙ’ｓ  Ｉｍｍｕｎｏｂｉｏｌｏｇｙ（第８版）２０１１年  Ｇａｒｌａｎｄ  Ｓｃｉｅｎｃｅ、ＮＹ；第６章、９章および１６章を参照のこと）。例えば、サイトゾルに起源するプロセシングされた抗原ペプチド（例えば、腫瘍抗原、細胞内病原体）は、一般に、約７アミノ酸長〜約１１アミノ酸長であり、クラスＩ  ＭＨＣ分子と会合するが、小胞系においてプロセシングされるペプチド（例えば、細菌、ウイルス）は、長さが約１０アミノ酸から約２５アミノ酸まで変動し、クラスＩＩ  ＭＨＣ分子と会合する。ＷＴ−１は、内部宿主タンパク質であるので、ＷＴ−１抗原ペプチドは、クラスＩ  ＭＨＣと関連して提示される。特定の実施形態では、ＷＴ−１ペプチドは、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）であり、これは、ヒトクラスＩ  ＨＬＡと会合する（およびより具体的には、対立遺伝子ＨＬＡ−Ａ＊２０１と会合する）ことが公知である。
【００４５】
「リンカー」とは、２つのタンパク質、ポリペプチド、ペプチド、ドメイン、領域またはモチーフを接続するアミノ酸配列を指し、得られたポリペプチドが、標的分子に対する特異的結合親和性を保持する（例えば、ｓｃＴＣＲ）、またはシグナル伝達活性を保持する（例えば、ＴＣＲ複合体）ように、２つのサブ−結合ドメインの相互作用と適合性のスペーサー機能を提供し得る。ある特定の実施形態では、リンカーは、約２〜約３５アミノ酸、例えば、または約４〜約２０アミノ酸または約８〜約１５アミノ酸または約１５〜約２５アミノ酸から構成される。
【００４６】
「接合部アミノ酸」または「接合部アミノ酸残基」とは、ポリペプチドの２つの隣接するモチーフ、領域またはドメイン間、例えば、結合ドメインと隣接定常ドメインとの間、またはＴＣＲ鎖と隣接自己切断性ペプチドとの間の、１または複数（例えば、約２〜１０）のアミノ酸残基を指す。接合部アミノ酸は、融合タンパク質の構築物設計から生じ得る（例えば、融合タンパク質をコードする核酸分子の構築の間の制限酵素部位の使用から生じるアミノ酸残基）。
【００４７】
「変更されたドメイン」または「変更されたタンパク質」とは、少なくとも８５％（例えば、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、９９．１％、９９．２％、９９．３％、９９．４％、９９．５％、９９．６％、９９．７％、９９．８％、９９．９％）の、野生型のモチーフ、領域、ドメイン、ペプチド、ポリペプチドまたはタンパク質（例えば、野生型のＴＣＲα鎖、ＴＣＲβ鎖、ＴＣＲα定常ドメイン、ＴＣＲβ定常ドメイン）に対する同一でない配列同一性を有する、モチーフ、領域、ドメイン、ペプチド、ポリペプチドまたはタンパク質を指す。
【００４８】
本明細書で使用する場合、「核酸」または「核酸分子」とは、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）、リボ核酸（ＲＮＡ）、オリゴヌクレオチド、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）またはｉｎ  ｖｉｔｒｏ翻訳によって生成された断片、およびライゲーション、切断、エンドヌクレアーゼ作用またはエキソヌクレアーゼ作用のいずれかによって生成された断片のいずれかを指す。ある特定の実施形態では、本開示の核酸は、ＰＣＲによって産生される。核酸は、天然に存在するヌクレオチド（例えば、デオキシリボヌクレオチドおよびリボヌクレオチド）、天然に存在するヌクレオチドのアナログ（例えば、天然に存在するヌクレオチドのα−エナンチオマー形態）、または両方の組み合わせであるモノマーから構成され得る。改変されたヌクレオチドは、糖部分またはピリミジンもしくはプリン塩基部分における改変あるいはそれらの置き換えを有し得る。核酸モノマーは、ホスホジエステル結合またはかかる連結のアナログによって連結され得る。ホスホジエステル連結のアナログには、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホロセレノエート（ｐｈｏｓｐｈｏｒｏｓｅｌｅｎｏａｔｅ）、ホスホロジセレノエート（ｐｈｏｓｐｈｏｒｏｄｉｓｅｌｅｎｏａｔｅ）、ホスホロアニロチオエート（ｐｈｏｓｐｈｏｒｏａｎｉｌｏｔｈｉｏａｔｅ）、ホスホラニリデート（ｐｈｏｓｐｈｏｒａｎｉｌｉｄａｔｅ）、ホスホロアミダート（ｐｈｏｓｐｈｏｒａｍｉｄａｔｅ）などが含まれる。核酸分子は、一本鎖または二本鎖のいずれかであり得る。
【００４９】
用語「単離された」とは、材料がその元の環境（例えば、それが天然に存在する場合には天然の環境）から取り出されることを意味する。例えば、生きた動物中に存在する天然に存在する核酸またはポリペプチドは、単離されていないが、天然の系における共存する材料の一部または全てから分離された同じ核酸またはポリペプチドは、単離されている。かかる核酸は、ベクターの一部であり得、および／またはかかる核酸もしくはポリペプチドは、組成物（例えば、細胞溶解物）の一部であり得、かかるベクターもしくは組成物が、その核酸もしくはポリペプチドにとって天然の環境の一部ではない点において、なおも単離されているといえる。用語「遺伝子」とは、ポリペプチド鎖を産生することに関与するＤＮＡのセグメントを意味し；これは、コード領域の前および後の領域「リーダーおよびトレーラー（ｔｒａｉｌｅｒ）」ならびに個々のコードセグメント（エクソン）間の介在配列（イントロン）を含む。
【００５０】
本明細書で使用する場合、用語「組換え」とは、外因性核酸分子の導入によって改変された細胞、微生物、核酸分子もしくはベクターを指すか、または内因性核酸分子もしくは遺伝子の発現が制御される、調節解除されるまたは構成的であるように変更された細胞もしくは微生物を指し、かかる変更または改変は、遺伝子操作によって導入され得る。遺伝子変更には、例えば、１もしくは複数のタンパク質もしくは酵素をコードする核酸分子（これは、発現制御エレメント、例えばプロモーターを含み得る）を導入する改変、あるいは他の核酸分子の付加、欠失、置換、または細胞の遺伝物質の他の機能的破壊もしくはそれへの機能的付加が含まれ得る。例示的な改変には、参照または親分子由来の異種または相同ポリペプチドのコード領域またはその機能的断片中の改変が含まれる。
【００５１】
本明細書で使用する場合、「変異」とは、それぞれ、参照または野生型の核酸分子またはポリペプチド分子と比較した、核酸分子またはポリペプチド分子の配列における変化を指す。変異は、ヌクレオチドまたはアミノ酸の置換、挿入または欠失を含め、配列中にいくつかの異なる型の変化を生じ得る。ある特定の実施形態では、変異は、１つもしくは３つのコドンまたはアミノ酸の置換、１〜約５つのコドンもしくはアミノ酸の欠失、あるいはそれらの組み合わせである。
【００５２】
「保存的置換」は、１つのアミノ酸の、類似の特性を有する別のアミノ酸への置換として、当該分野で認識されている。例示的な保存的置換は、当該分野で周知である（例えば、ＷＯ９７／０９４３３、第１０頁；Ｌｅｈｎｉｎｇｅｒ、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、第２版；Ｗｏｒｔｈ  Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，  Ｉｎｃ．  ＮＹ、ＮＹ、７１〜７７頁、１９７５年；Ｌｅｗｉｎ、Ｇｅｎｅｓ  ＩＶ、Ｏｘｆｏｒｄ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ、ＮＹおよびＣｅｌｌ  Ｐｒｅｓｓ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡ、８頁、１９９０年を参照のこと）。
【００５３】
用語「構築物」とは、組換え核酸分子を含む任意のポリヌクレオチドを指す。構築物は、ベクター（例えば、細菌ベクター、ウイルスベクター）中に存在し得るか、またはゲノム中に組み込まれ得る。「ベクター」は、別の核酸分子を輸送することが可能な核酸分子である。ベクターは、例えば、染色体、非染色体、半合成または合成核酸分子を含み得る、プラスミド、コスミド、ウイルス、ＲＮＡベクターまたは線状もしくは環状のＤＮＡもしくはＲＮＡ分子であり得る。例示的なベクターは、自律的複製が可能なもの（エピソームベクター）、またはそれらが連結される核酸分子の発現が可能なもの（発現ベクター）である。
【００５４】
ウイルスベクターには、レトロウイルス、アデノウイルス、パルボウイルス（例えば、アデノ随伴ウイルス）、コロナウイルス、マイナス鎖ＲＮＡウイルス、例えば、オルトミクソウイルス（例えば、インフルエンザウイルス）、ラブドウイルス（例えば、狂犬病および水疱性口内炎ウイルス）、パラミクソウイルス（例えば、麻疹およびセンダイ）、プラス鎖ＲＮＡウイルス、例えば、ピコルナウイルスおよびアルファウイルス、ならびにアデノウイルス、ヘルペスウイルス（例えば、単純ヘルペスウイルス１型および２型、エプスタイン・バーウイルス、サイトメガロウイルス）およびポックスウイルス（例えば、ワクシニア、鶏痘およびカナリアポックス）を含む二本鎖ＤＮＡウイルスが含まれる。他のウイルスには、例えば、ノーウォークウイルス、トガウイルス、フラビウイルス、レオウイルス、パポバウイルス、ヘパドナウイルスおよび肝炎ウイルスが含まれる。レトロウイルスの例には、トリ白血病肉腫、哺乳動物Ｃ型、Ｂ型ウイルス、Ｄ型ウイルス、ＨＴＬＶ−ＢＬＶ群、レンチウイルス、スプーマウイルスが含まれる（Ｃｏｆｆｉｎ，  Ｊ．  Ｍ．、Ｒｅｔｒｏｖｉｒｉｄａｅ：  Ｔｈｅ  ｖｉｒｕｓｅｓ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ、Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、第３版、Ｂ．  Ｎ．
Ｆｉｅｌｄｓら編、Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ−Ｒａｖｅｎ  Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ、Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、１９９６年）。
【００５５】
「レンチウイルスベクター」とは、本明細書で使用する場合、遺伝子送達のためのＨＩＶベースのレンチウイルスベクターを意味し、これは、組込み的または非組込み的であり得、比較的大きいパッケージング能を有し、一定範囲の異なる細胞型を形質導入できる。レンチウイルスベクターは、通常、３つ（パッケージング、エンベロープおよび移入）またはそれ超のプラスミドの、産生細胞中への一過的トランスフェクション後に生成される。ＨＩＶと同様に、レンチウイルスベクターは、ウイルス表面糖タンパク質と細胞表面上の受容体との相互作用を介して、標的細胞に侵入する。侵入時に、ウイルスＲＮＡは、ウイルス逆転写酵素複合体によって媒介される逆転写を受ける。逆転写の産物は、二本鎖線状ウイルスＤＮＡであり、これは、感染細胞のＤＮＡ中へのウイルス組込みの基質である。
【００５６】
用語「作動可能に連結した」とは、一方の核酸分子の機能が他方の核酸分子によって影響を受けるような、単一の核酸断片上での２つまたはそれ超の核酸分子の会合を指す。例えば、プロモーターは、そのコード配列の発現に影響を与えることが可能である（即ち、コード配列がこのプロモーターの転写制御下にある）場合、コード配列と作動可能に連結している。「連結されていない」とは、関連する遺伝子エレメントが、互いに密には関連しておらず、一方のエレメントの機能が他方のエレメントに影響を与えないことを意味する。
【００５７】
本明細書で使用する場合、「発現ベクター」とは、適切な宿主における核酸分子の発現をもたらすことが可能な適切な制御配列に作動可能に連結した核酸分子を含むＤＮＡ構築物を指す。かかる制御配列には、転写をもたらすプロモーター、かかる転写を制御するための任意選択のオペレーター配列、適切なｍＲＮＡリボソーム結合部位をコードする配列、ならびに転写および翻訳の終結を制御する配列が含まれる。このベクターは、プラスミド、ファージ粒子、ウイルス、または単に潜在的ゲノム挿入物であり得る。一旦適切な宿主中に形質転換されると、このベクターは、宿主ゲノムから独立して複製および機能し得、または一部の場合には、それ自身をゲノム中に組み込み得る。本明細書では、「プラスミド」、「発現プラスミド」、「ウイルス」および「ベクター」は、しばしば相互交換可能に使用される。
【００５８】
用語「発現」とは、本明細書で使用する場合、ポリペプチドが、核酸分子のコード配列、例えば遺伝子に基づいて産生されるプロセスを指す。このプロセスには、転写、転写後制御、転写後修飾、翻訳、翻訳後制御、翻訳後修飾、またはそれらの任意の組み合わせが含まれ得る。
【００５９】
用語「導入された」とは、核酸分子を細胞中に挿入することに関して、「トランスフェクション」または「形質転換」または「形質導入」を意味し、真核生物細胞または原核生物細胞中への核酸分子の取込みに対する言及を含み、ここで、この核酸分子は、細胞のゲノム（例えば、染色体、プラスミド、色素体またはミトコンドリアＤＮＡ）中に取り込まれ得、自律的レプリコンへと変換され得、または一過的に発現され得る（例えば、トランスフェクトされたｍＲＮＡ）。
【００６０】
本明細書で使用する場合、「異種」または「外因性」の核酸分子、構築物または配列とは、宿主細胞にとってネイティブでないが、宿主細胞由来の核酸分子または核酸分子の部分に対して相同であり得る、核酸分子または核酸分子の部分を指す。異種または外因性の核酸分子、構築物または配列の供給源は、異なる属または種からであり得る。ある特定の実施形態では、異種または外因性の核酸分子は、例えば、コンジュゲーション、形質転換、トランスフェクション、エレクトロポレーションなどによって、宿主細胞または宿主ゲノムに添加され（即ち、内因性でもネイティブでもない）、ここで、添加された分子は、宿主ゲノム中に組み込まれ得、または染色体外遺伝物質として（例えば、プラスミドまたは他の形態の自己複製性ベクターとして）存在し得、複数コピーで存在し得る。さらに、「異種」とは、その宿主細胞が相同なタンパク質または活性をコードする場合であっても、宿主細胞中に導入された外因性核酸分子によってコードされる非ネイティブの酵素、タンパク質または他の活性を指す。
【００６１】
本明細書に記載するように、１超の異種または外因性核酸分子が、別々の核酸分子として、複数の個々に制御される遺伝子として、ポリシストロニック核酸分子として、融合タンパク質をコードする単一の核酸分子として、またはそれらの任意の組み合わせとして、宿主細胞中に導入され得る。例えば、本明細書に開示されるように、宿主細胞は、ＷＴ−１抗原ペプチドに対して特異的な所望のＴＣＲ（例えば、ＴＣＲαおよびＴＣＲβ）をコードする２つまたはそれ超の異種または外因性核酸分子を発現するように改変され得る。２つまたはそれ超の外因性核酸分子が宿主細胞中に導入される場合、これら２つまたはそれ超の外因性核酸分子は、単一の核酸分子として（例えば、単一のベクター上に）、別々のベクター上に、単一の部位もしくは複数の部位において宿主染色体中に組み込まれて、またはそれらの任意の組み合わせで導入され得ることが理解される。言及された異種核酸分子またはタンパク質活性の数は、コード核酸分子の数またはタンパク質活性の数を指すが、宿主細胞中に導入された別々の核酸分子の数を指すわけではない。
【００６２】
本明細書で使用する場合、用語「内因性」または「ネイティブ」とは、宿主細胞中には通常存在する遺伝子、タンパク質または活性を指す。さらに、親の遺伝子、タンパク質または活性と比較して、変異、過剰発現、シャッフル、重複または他の方法で変更された遺伝子、タンパク質または活性は、その特定の宿主細胞にとってなおも内因性またはネイティブであるとみなされる。例えば、第１の遺伝子由来の内因性制御配列（例えば、プロモーター、翻訳減弱配列）は、第２のネイティブ遺伝子または核酸分子の発現を変更または調節するために使用され得、この第２のネイティブ遺伝子または核酸分子の発現または調節は、親細胞における通常の発現または調節とは異なる。
【００６３】
用語「相同」または「ホモログ」とは、宿主細胞、種もしくは株中に見出されるまたはそれから誘導される、分子または活性を指す。例えば、異種または外因性核酸分子は、ネイティブ宿主細胞遺伝子と相同であり得、変更された発現レベル、異なる配列、変更された活性、またはそれらの任意の組み合わせを任意選択で有し得る。
【００６４】
「配列同一性」とは、本明細書で使用する場合、配列を整列させ、必要に応じて、最大のパーセント配列同一性を達成するためにギャップを導入した後の、別の参照ポリペプチド配列中のアミノ酸残基と同一な、１つの配列中のアミノ酸残基の百分率を指し、いずれの保存的置換も配列同一性の一部とはみなさない。百分率配列同一性値は、パラメーターをデフォルト値に設定して、Ａｌｔｓｃｈｕｌら（１９９７年）「Ｇａｐｐｅｄ  ＢＬＡＳＴ  ａｎｄ  ＰＳＩ−ＢＬＡＳＴ：  ａ  ｎｅｗ  ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｄａｔａｂａｓｅ  ｓｅａｒｃｈ  ｐｒｏｇｒａｍｓ」、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．  ２５巻：３３８９〜３４０２頁によって規定されたように、ＮＣＢＩ  ＢＬＡＳＴ２．０ソフトウェアを使用して生成され得る。
【００６５】
本明細書で使用する場合、「造血前駆細胞」は、造血幹細胞または胎児組織から誘導され得、成熟細胞型（例えば、免疫系細胞）へとさらに分化が可能な細胞である。例示的な造血前駆細胞には、ＣＤ２４ＬｏＬｉｎ−ＣＤ１１７＋表現型を有する細胞、または胸腺中で見出される細胞（前駆胸腺細胞と呼ばれる）が含まれる。
【００６６】
本明細書で使用する場合、用語「宿主」とは、目的のポリペプチド（例えば、高親和性または増強された親和性の抗ＷＴ−１  ＴＣＲ）を産生するために、異種または外因性核酸分子による遺伝子改変のために標的化される細胞（例えば、Ｔ細胞）または微生物を指す。ある特定の実施形態では、宿主細胞は、任意選択で、異種または外因性タンパク質の生合成と関連するまたは無関連の所望の特性を付与する他の遺伝子改変（例えば、検出可能なマーカーを含めること；欠失、変更または短縮された内因性ＴＣＲ；増加した共刺激因子発現）を既に保有し得るか、またはそれらを含むように改変され得る。ある特定の実施形態では、宿主細胞は、ＷＴ−１抗原ペプチドに対して特異的なＴＣＲα鎖をコードする異種または外因性核酸分子で形質導入されたヒト造血前駆細胞である。
【００６７】
本明細書で使用する場合、「過剰増殖障害」とは、正常または疾患に罹っていない細胞と比較したときの、過剰な成長または増殖を指す。例示的な過剰増殖障害には、腫瘍、がん、新生物性組織、癌腫、肉腫、悪性細胞、前悪性細胞、ならびに非新生物性または非悪性過剰増殖障害（例えば、腺腫、線維腫、脂肪腫、平滑筋腫、血管腫、線維症、再狭窄、ならびに自己免疫疾患、例えば、関節リウマチ、変形性関節症、乾癬、炎症性腸疾患など）が含まれる。
【００６８】
ＷＴ−１抗原ペプチドに対して特異的な結合性タンパク質
ある特定の態様では、本開示は、（ａ）配列番号２３に示されるＣＤＲ１アミノ酸配列、配列番号２４に示されるＣＤＲ２アミノ酸配列ならびに配列番号２５、２６、３２、３８、４４、５０および５１のいずれか１つに示されるＣＤＲ３アミノ酸配列を有するＴ細胞受容体（ＴＣＲ）α鎖可変（Ｖα）ドメイン、ならびにＴＣＲβ鎖可変（Ｖβ）ドメイン；または（ｂ）（ａ）のＶαドメイン、ならびに配列番号２７に示されるＣＤＲ１アミノ酸配列、配列番号２８に示されるＣＤＲ２アミノ酸配列および配列番号２９に示されるＣＤＲ３アミノ酸配列を有するＶβドメインを含む、結合性タンパク質（例えば、免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質またはその部分）を提供する。かかる結合性タンパク質は、ＷＴ１由来ペプチド：ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）複合体に、高い親和性で結合することが可能である。特定の実施形態では、この結合性タンパク質は、約８ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ヒト白血球抗原（ＨＬＡ）複合体に結合する。
【００６９】
ある特定の実施形態では、本明細書に記載される、ＷＴ−１に対して特異的な結合性タンパク質（例えば、免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質またはその部分）または高親和性組換えＴ細胞受容体（ＴＣＲ）は、本明細書に示される配列番号１〜１５、２１および２２の配列と比較して、アミノ酸配列中に１または複数のアミノ酸置換、挿入または欠失を有するバリアントポリペプチド種を含むが、ただし、結合性タンパク質がその特異的結合機能を保持するまたは特異的結合機能を実質的に保持することを条件とする。アミノ酸の保存的置換は、周知であり、天然に存在し得、または結合性タンパク質もしくはＴＣＲが組換え産生される場合には導入され得る。アミノ酸の置換、欠失および付加は、当該分野で公知の変異誘発方法を使用して、タンパク質中に導入され得る（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ、第３版、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ、ＮＹ、２００１年を参照のこと）。オリゴヌクレオチド指向性の部位特異的（またはセグメント特異的）変異誘発手順は、所望の置換、欠失または挿入に従って変更された特定のコドンを有する変更されたポリヌクレオチドを提供するために用いられ得る。あるいは、ランダムまたは飽和変異誘発技術、例えば、アラニンスキャニング変異誘発、エラープローンポリメラーゼ連鎖反応変異誘発およびオリゴヌクレオチド指向性変異誘発が、免疫原ポリペプチドバリアントを調製するために使用され得る（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、上記を参照のこと）。
【００７０】
ＷＴ−１に対して特異的な特定の免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質または高親和性組換えＴ細胞受容体（ＴＣＲ）の種（またはバリアント）は、本明細書に開示される例示的なアミノ酸配列（例えば、配列番号１〜１５、２１および２２）のいずれかに対して、少なくとも８５％、９０％、９５％または９９％のアミノ酸配列同一性を有するタンパク質を含み得るが、ただし、（ａ）ＣＤＲのうち少なくとも３または４つが変異を有さないこと、（ｂ）変異を有するＣＤＲが、最大で２アミノ酸の置換、最大で連続５アミノ酸の欠失、またはそれらの組み合わせのみを有すること、および（ｃ）結合性タンパク質が、約８ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に結合するその能力を保持することを条件とする。
【００７１】
他の態様では、本開示は、（ａ）配列番号１または２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＴ細胞受容体（ＴＣＲ）α鎖可変（Ｖα）ドメイン、およびＴＣＲβ鎖可変（Ｖβ）ドメイン；または（ｂ）Ｖαドメイン、および配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＶβドメイン；または（ｃ）（ａ）のＶαドメインおよび（ｂ）のＶβドメインを含む、免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質を提供し、この結合性タンパク質は、約５ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に結合することが可能である。ある特定の実施形態では、このＶαドメインは、配列番号１もしくは２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１もしくは２に示されるアミノ酸配列からなり、Ｖβドメインは、配列番号９に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号９に示されるアミノ酸配列からなり、あるいはそれらの組み合わせである。
【００７２】
さらなる態様では、本開示は、α鎖およびβ鎖を含む、高親和性組換えＴ細胞受容体（ＴＣＲ）を提供し、このα鎖は、配列番号１または２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するＶαドメインを含み、このＴＣＲは、ＣＤ８から独立して、またはＣＤ８の非存在下で、細胞表面上のＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に結合する。ある特定の実施形態では、このＶαドメインは、配列番号１もしくは２に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号１もしくは２に示されるアミノ酸配列からなり、Ｖβドメインは、配列番号９に示されるアミノ酸配列を含むかまたは配列番号９に示されるアミノ酸配列からなり、あるいはそれらの組み合わせである。ある特定の実施形態では、Ｖβ鎖はＶβ１７対立遺伝子である。
【００７３】
当業者に公知の種々の基準が、ペプチドまたはポリペプチド中の特定の位置において置換されているアミノ酸が保存的（または類似）であるかどうかを示している。例えば、類似のアミノ酸または保存的アミノ酸置換は、あるアミノ酸残基が類似の側鎖を有するアミノ酸残基で置き換えられる置換である。類似のアミノ酸は、以下のカテゴリー中に含まれ得る：塩基性側鎖を有するアミノ酸（例えば、リシン、アルギニン、ヒスチジン）；酸性側鎖を有するアミノ酸（例えば、アスパラギン酸、グルタミン酸）；非荷電極性側鎖を有するアミノ酸（例えば、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、システイン、ヒスチジン）；非極性側鎖を有するアミノ酸（例えば、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン）；ベータ−分岐側鎖を有するアミノ酸（例えば、スレオニン、バリン、イソロイシン）、および芳香族側鎖を有するアミノ酸（例えば、チロシン、フェニルアラニン、トリプトファン）。分類がより困難であるとみなされているプロリンは、脂肪族側鎖を有するアミノ酸（例えば、ロイシン、バリン、イソロイシンおよびアラニン）と特性を共有する。ある特定の状況では、グルタミン酸のグルタミンへの置換またはアスパラギン酸のアスパラギンへの置換は、グルタミンおよびアスパラギンがそれぞれグルタミン酸およびアスパラギン酸のアミド誘導体であるという点で、類似の置換とみなされ得る。当該分野で理解されるように、２つのポリペプチド間の「類似性」は、そのポリペプチドのアミノ酸配列およびそれに対する保存されたアミノ酸置換物を、第２のポリペプチドの配列と比較することによって決定される（例えば、ＧＥＮＥＷＯＲＫＳ、Ａｌｉｇｎ、ＢＬＡＳＴアルゴリズム、または本明細書に記載され当該分野で実施される他のアルゴリズムを使用する）。
【００７４】
ある特定の実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質またはＴＣＲは、配列番号２１または２２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも約９０％同一なＶαドメインを含み、配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも約９０％同一なＶβドメインを含むが、ただし、（ａ）ＣＤＲのうち少なくとも３または４つが変異を有さないこと、および（ｂ）変異を有するＣＤＲが、最大で２アミノ酸の置換、最大で連続５アミノ酸の欠失、またはそれらの組み合わせのみを有することを条件とする。さらなる実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質またはＴＣＲは、配列番号１または２に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも約９５％同一なＶαドメインを含み、配列番号９に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも約９５％同一なＶβドメインを含むが、ただし、この結合性タンパク質が、約５ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に結合することが可能であることを条件とする。
【００７５】
上述の実施形態のいずれかでは、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質またはＴＣＲは、（ａ）ＣＤ８から独立して、またはＣＤ８の非存在下で、細胞表面上のＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ複合体に特異的に結合することが可能である、（ｂ）ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に特異的に結合することが可能である、（ｃ）約３ｎＭまたはそれ未満のＫｄで、ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）：ＨＬＡ−Ａ＊２０１複合体に結合することが可能である、または（ｄ）それらの任意の組み合わせである。
【００７６】
ある特定の実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質またはＴＣＲのＶαドメインは、配列番号１もしくは２に示されるアミノ酸配列を含むまたは配列番号１もしくは２に示されるアミノ酸配列からなる。他の実施形態では、このＶβドメインは、配列番号９に示されるアミノ酸配列を含むまたは配列番号９に示されるアミノ酸配列からなる。
【００７７】
なおさらなる実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質またはＴＣＲは、配列番号３もしくは４に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するα鎖定常ドメインを含む、配列番号１０もしくは１１に示されるアミノ酸配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有するβ鎖定常ドメインを含む、またはそれらの任意の組み合わせである。ある特定の実施形態では、Ｖβ鎖はＶβ１７対立遺伝子である。
【００７８】
ある特定の実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質は、Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）、キメラ抗原受容体、またはＴＣＲの抗原結合性断片であり、それらのいずれかは、キメラのものであり得るか、ヒト化され得るかまたはヒトのものであり得る。さらなる実施形態では、ＴＣＲの抗原結合性断片は、単鎖ＴＣＲ（ｓｃＴＣＲ）またはキメラ抗原受容体（ＣＡＲ）を含む。ある特定の実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質はＴＣＲである。関連の実施形態では、ＷＴ−１特異的結合性タンパク質は、（ａ）配列番号５〜８のいずれか１つに示されるアミノ酸配列を有するＴＣＲα鎖を含み、そして配列番号１２もしくは１３に示されるアミノ酸配列を有するＴＣＲβ鎖を含む；（ｂ）配列番号５に示されるアミノ酸配列を含むもしくは配列番号５に示されるアミノ酸配列からなるＴＣＲα鎖、および配列番号１２に示されるアミノ酸配列を含むもしくは配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなるＴＣＲβ鎖を有する；（ｃ）配列番号７に示されるアミノ酸配列を含むもしくは配列番号７に示されるアミノ酸配列からなるＴＣＲα鎖、および配列番号１２に示されるアミノ酸配列を含むもしくは配列番号１２に示されるアミノ酸配列からなるＴＣＲβ鎖を有する；（ｄ）配列番号６に示されるアミノ酸配列を含むもしくは配列番号６に示されるアミノ酸配列からなるＴＣＲα鎖、および配列番号１３に示されるアミノ酸配列を含むもしくは配列番号１３に示されるアミノ酸配列からなるＴＣＲβ鎖を有する；または（ｅ）配列番号８に示されるアミノ酸配列を含むもしくは配列番号８に示されるアミノ酸配列からなるＴＣＲα鎖、および配列番号１３に示されるアミノ酸配列を含むもしくは配列番号１３に示されるアミノ酸配列からなるＴＣＲβ鎖を有する。
【００７９】
ある特定の実施形態では、上述の実施形態のいずれか１つに従うＷＴ特異的結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲと、薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤とを含む、組成物が提供される。
【００８０】
例として、組換え産生された可溶性ＴＣＲを単離および精製するために有用な方法は、組換え可溶性ＴＣＲを培養培地中に分泌する適切な宿主細胞／ベクター系から上清を取得し、次いで、この培地を、市販のフィルターを使用して濃縮することを含み得る。濃縮後、この濃縮物は、単一の適切な精製マトリックスまたは一連の適切なマトリックス、例えば、親和性マトリックスまたはイオン交換樹脂に適用され得る。１または複数の逆相ＨＰＬＣステップが、組換えポリペプチドをさらに精製するために用いられ得る。これらの精製方法は、免疫原をその天然の環境から単離する場合にも用いられ得る。本明細書に記載される単離された／組換え可溶性ＴＣＲのうち１または複数の大規模産生のための方法には、適切な培養条件を維持するためにモニタリングおよび制御されるバッチ細胞培養が含まれる。可溶性ＴＣＲの精製は、本明細書に記載され、当業者に公知であり、自国および外国の規制機関の法律およびガイドラインと適合する方法に従って実施され得る。
【００８１】
ある特定の実施形態では、ＷＴ−１に対して特異的な免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質または増強された親和性のＴＣＲをコードする核酸分子は、養子移入治療における使用のために、宿主細胞（例えば、Ｔ細胞）をトランスフェクト／形質導入するために使用される。ＴＣＲ配列決定における進歩は、記載されており（例えば、Ｒｏｂｉｎｓら、２００９年  Ｂｌｏｏｄ  １１４巻：４０９９頁；Ｒｏｂｉｎｓら、２０１０年  Ｓｃｉ．  Ｔｒａｎｓｌａｔ．  Ｍｅｄ．  ２巻：４７ｒａ６４、ＰＭＩＤ：  ２０８１１０４３；Ｒｏｂｉｎｓら  ２０１１年（９月１０日）Ｊ．  Ｉｍｍ．  Ｍｅｔｈ．  印刷前の電子出版、ＰＭＩＤ：  ２１９４５３９５；Ｗａｒｒｅｎら、２０１１年  Ｇｅｎｏｍｅ  Ｒｅｓ．  ２１巻：７９０頁）、本開示に従う実施形態を実施する過程において用いられ得る。同様に、所望の核酸でＴ細胞をトランスフェクト／形質導入するための方法は、本明細書に開示される実施形態へのこれらの方法論の適応が、ＨＬＡ受容体と複合体化したＷＴ−１ペプチド抗原ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）に対して特異的な増強された親和性のＴＣＲに対して向けられたものを含む本明細書の教示に基づいて企図されるように、所望の抗原特異性のＴ細胞を使用する養子移入手順を有するとして（例えば、Ｓｃｈｍｉｔｔら、Ｈｕｍ．  Ｇｅｎ．  ２０巻：１２４０頁、２００９年；Ｄｏｓｓｅｔｔら、Ｍｏｌ．  Ｔｈｅｒ．  １７巻：７４２頁、２００９年；Ｔｉｌｌら、Ｂｌｏｏｄ  １１２巻：２２６１頁、２００８年；Ｗａｎｇら、Ｈｕｍ．  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．  １８巻：７１２頁、２００７年；Ｋｕｂａｌｌら、Ｂｌｏｏｄ  １０９巻：２３３１頁、２００７年；米国特許出願公開第２０１１／０２４３９７２号；米国特許出願公開第２０１１／０１８９１４１号；Ｌｅｅｎら、Ａｎｎ．  Ｒｅｖ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  ２５巻：２４３頁、２００７年）、記載されている（例えば、米国特許出願公開第２００４／００８７０２５号）。
【００８２】
本明細書に記載されるＷＴ−１特異的結合性タンパク質またはドメイン（例えば、配列番号１〜１５および２１〜３１、ならびにそれらのバリアント）は、Ｔ細胞結合、活性化または誘導の決定を含み、抗原特異的であるＴ細胞応答の決定もまた含む、Ｔ細胞活性をアッセイするための当該分野で受容された多数の方法論のいずれかに従って、機能的に特徴付けられ得る。例には、Ｔ細胞増殖、Ｔ細胞サイトカイン放出、抗原特異的Ｔ細胞刺激、ＭＨＣ拘束性Ｔ細胞刺激、ＣＴＬ活性（例えば、予め負荷された標的細胞からの５１Ｃｒ放出を決定することによる）、Ｔ細胞表現型マーカー発現における変化、およびＴ細胞機能の他の尺度の決定が含まれる。これらおよび類似のアッセイを実施するための手順は、例えば、Ｌｅｆｋｏｖｉｔｓ（Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍａｎｕａｌ：  Ｔｈｅ  Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ  Ｓｏｕｒｃｅｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ、１９９８年）中に見出され得る。Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ
Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ；Ｗｅｉｒ、Ｈａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｂｏｓｔｏｎ、ＭＡ（１９８６年）；ＭｉｓｈｅｌｌおよびＳｈｉｇｉｉ（編）Ｓｅｌｅｃｔｅｄ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｆｒｅｅｍａｎ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ、Ｓａｎ  Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ、ＣＡ（１９７９年）；ＧｒｅｅｎおよびＲｅｅｄ、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８１巻：１３０９頁（１９９８年）ならびにそれらの中で引用された参考文献もまた参照のこと。
【００８３】
「ＭＨＣ−ペプチドテトラマー染色」とは、少なくとも１つの抗原（例えば、ＷＴ−１）と同族である（例えば、それと同一または関連する）アミノ酸配列を有する同一のペプチドを各々が含む、ＭＨＣ分子のテトラマーを特色とする、抗原特異的Ｔ細胞を検出するために使用されるアッセイを指し、ここで、この複合体は、同族抗原に対して特異的なＴ細胞受容体と結合することが可能である。ＭＨＣ分子の各々は、ビオチン分子でタグ付けされ得る。ビオチン化ＭＨＣ／ペプチドは、蛍光標識され得るストレプトアビジンの付加によってテトラマー化され得る。このテトラマーは、蛍光標識を介してフローサイトメトリーによって検出され得る。ある特定の実施形態では、ＭＨＣ−ペプチドテトラマーアッセイは、本開示の増強された親和性のＴＣＲを検出または選択するために使用される。
【００８４】
サイトカインのレベルは、例えば、ＥＬＩＳＡ、ＥＬＩＳＰＯＴ、細胞内サイトカイン染色およびフローサイトメトリーならびにそれらの組み合わせ（例えば、細胞内サイトカイン染色およびフローサイトメトリー）を含む、本明細書に記載され当該分野で実施される方法に従って決定され得る。免疫応答の抗原特異的惹起または刺激から生じる免疫細胞増殖およびクローン性の拡大増殖は、リンパ球、例えば、末梢血細胞またはリンパ節由来の細胞の試料中の循環リンパ球を単離し、これらの細胞を抗原で刺激し、サイトカイン産生、細胞増殖および／または細胞生存度を、例えば、トリチウム化チミジンの取込みまたは非放射性アッセイ、例えばＭＴＴアッセイなどによって測定することによって、決定され得る。Ｔｈ１免疫応答とＴｈ２免疫応答との間のバランスに対する本明細書に記載される免疫原の影響は、例えば、Ｔｈ１サイトカイン、例えば、ＩＦＮ−γ、ＩＬ−１２、ＩＬ−２およびＴＮＦ−β、ならびに２型サイトカイン、例えば、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−９、ＩＬ−１０およびＩＬ−１３のレベルを決定することによって、試験され得る。
【００８５】
ＷＴ−１抗原ペプチドに対して特異的な結合性タンパク質をコードするポリヌクレオチド
本明細書に記載されるＷＴ−１に対して特異的な免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質または高親和性組換えＴ細胞受容体（ＴＣＲ）をコードする単離されたまたは組換えの核酸分子は、分子生物学またはポリペプチド精製の分野の種々の方法および技術に従って、産生および調製され得る。目的のＷＴ−１に対して特異的な免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲを組換え産生するために使用される発現ベクターの構築は、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（１９８９年および２００１年の版；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ、ＮＹ）およびＡｕｓｕｂｅｌら（Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（２００３年））に記載されるような、制限エンドヌクレアーゼ消化、ライゲーション、形質転換、プラスミド精製およびＤＮＡ配列決定の使用を含む、当該分野で公知の任意の適切な分子生物学の操作技術を使用することによって達成され得る。効率的な転写および翻訳を得るために、各組換え発現構築物中のポリヌクレオチドは、免疫原をコードするヌクレオチド配列に作動可能に（即ち、動作可能に（ｏｐｅｒａｔｉｖｅｌｙ））連結した少なくとも１つの適切な発現制御配列（調節配列とも呼ばれる）、例えば、リーダー配列および特にプロモーターを含む。ある特定の実施形態では、ポリヌクレオチドは、標的宿主細胞における効率的な発現のためにコドン最適化される。
【００８６】
ある特定の実施形態は、本明細書で企図されるポリペプチド、例えば、ＷＴ−１に対して特異的な免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲをコードする核酸に関する。当業者が認識するように、核酸は、任意の形態の一本鎖または二本鎖ＤＮＡ、ｃＤＮＡまたはＲＮＡを指し得、アンチセンスＤＮＡ、ｃＤＮＡおよびＲＮＡを含む、互いに相補的な核酸のプラス鎖およびマイナス鎖を含み得る。ｓｉＲＮＡ、ｍｉｃｒｏＲＮＡ、ＲＮＡ−ＤＮＡハイブリッド、リボザイム、および他の種々の天然に存在するまたは合成形態のＤＮＡまたはＲＮＡもまた含まれる。
【００８７】
標準的な技術が、組換えＤＮＡ、ペプチドおよびオリゴヌクレオチド合成、イムノアッセイおよび組織培養および形質転換（例えば、エレクトロポレーション、リポフェクション）に使用され得る。酵素反応および精製技術は、製造業者の仕様書に従って実施され得、または当該分野もしくは本明細書に記載されるように一般に達成され得る。これらおよび関連の技術および手順は、一般に、当該分野で周知の、本明細書を通じて引用および議論される微生物学、分子生物学、生化学、分子遺伝学、細胞生物学、ウイルス学および免疫学の技術における種々の一般的なおよびより具体的な参考文献中に記載されるような、従来の方法に従って実施され得る。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ、第３版、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ
Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．；Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ａｎｄ  Ｓｏｎｓ、２００８年７月改訂）；Ｓｈｏｒｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：
Ａ  Ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ  ｏｆ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｒｏｍ  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｇｒｅｅｎｅ  Ｐｕｂ．
Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ  ａｎｄ  Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ；Ｇｌｏｖｅｒ、ＤＮＡ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：  Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ、Ｉ  ＆  ＩＩ巻（ＩＲＬ  Ｐｒｅｓｓ、Ｏｘｆｏｒｄ  Ｕｎｉｖ．  Ｐｒｅｓｓ  ＵＳＡ、１９８５年）；Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（編者：Ｊｏｈｎ  Ｅ．  Ｃｏｌｉｇａｎ、Ａｄａ  Ｍ．  Ｋｒｕｉｓｂｅｅｋ、Ｄａｖｉｄ  Ｈ．
Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ、Ｅｔｈａｎ  Ｍ．  Ｓｈｅｖａｃｈ、Ｗａｒｒｅｎ  Ｓｔｒｏｂｅｒ  ２００１年  Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ、ＮＹ、ＮＹ）；Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ  ＰＣＲ：  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、編者、Ｊｕｌｉｅ  Ｌｏｇａｎ、Ｋｉｒｓｔｉｎ  ＥｄｗａｒｄｓおよびＮｉｃｋ  Ｓａｕｎｄｅｒｓ、２００９年、Ｃａｉｓｔｅｒ  Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、Ｎｏｒｆｏｌｋ、ＵＫ；Ａｎａｎｄ、Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  Ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  Ｃｏｍｐｌｅｘ  Ｇｅｎｏｍｅｓ、（Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ、１９９２年）；ＧｕｔｈｒｉｅおよびＦｉｎｋ、Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ
Ｙｅａｓｔ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓ  ａｎｄ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ、１９９１年）；Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｎ．  Ｇａｉｔ編、１９８４年）；Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（Ｂ．  ＨａｍｅｓおよびＳ．  Ｈｉｇｇｉｎｓ編、１９８５年）；Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ（Ｂ．
ＨａｍｅｓおよびＳ．  Ｈｉｇｇｉｎｓ編、１９８４年）；Ａｎｉｍａｌ  Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ（Ｒ．  Ｆｒｅｓｈｎｅｙ編、１９８６年）；Ｐｅｒｂａｌ、Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ（１９８４年）；Ｎｅｘｔ−Ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ  Ｇｅｎｏｍｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ（Ｊａｎｉｔｚ、２００８年  Ｗｉｌｅｙ−ＶＣＨ）；ＰＣＲ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ）（Ｐａｒｋ編、第３版、２０１０年  Ｈｕｍａｎａ  Ｐｒｅｓｓ）；Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ  Ｃｅｌｌｓ  Ａｎｄ  Ｅｎｚｙｍｅｓ（ＩＲＬ  Ｐｒｅｓｓ、１９８６年）；論文、Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｉｎｃ．、Ｎ．Ｙ．）；Ｇｅｎｅ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  Ｖｅｃｔｏｒｓ  Ｆｏｒ  Ｍａｍｍａｌｉａｎ  Ｃｅｌｌｓ（Ｊ．  Ｈ．
ＭｉｌｌｅｒおよびＭ．  Ｐ．  Ｃａｌｏｓ編、１９８７年、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ
Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ）；ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．、１９９８年）；Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｉｎ  Ｃｅｌｌ  Ａｎｄ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（ＭａｙｅｒおよびＷａｌｋｅｒ編、Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、Ｌｏｎｄｏｎ、１９８７年）；Ｈａｎｄｂｏｏｋ  Ｏｆ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｉ−ＩＶ巻（Ｄ．  Ｍ．  ＷｅｉｒおよびＣＣ  Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ編、１９８６年）；Ｒｏｉｔｔ、Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、第６版、（Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ、Ｏｘｆｏｒｄ、１９８８年）；Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ：  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ａｎｄ
Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ）（Ｋｕｒｓｔａｄ  Ｔｕｒｋｓｅｎ編、２００２年）；Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ
Ｃｅｌｌ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：  Ｉ巻：  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ）（Ｋｕｒｓｔａｄ  Ｔｕｒｋｓｅｎ編、２００６年）；Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：  ＩＩ巻：  Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  Ｍｏｄｅｌｓ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ）（Ｋｕｒｓｔａｄ  Ｔｕｒｋｓｅｎ編、２００６年）；  Ｈｕｍａｎ  Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ）（Ｋｕｒｓａｄ  Ｔｕｒｋｓｅｎ編、２００６年）；Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ：  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ）（Ｄａｒｗｉｎ  Ｊ．  Ｐｒｏｃｋｏｐ、Ｄｏｎａｌｄ  Ｇ．  ＰｈｉｎｎｅｙおよびＢｒｕｃｅ  Ａ．  Ｂｕｎｎｅｌｌ編、２００８年）；Ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ）（Ｃｈｒｉｓｔｏｐｈｅｒ  Ａ．  ＫｌｕｇおよびＣｒａｉｇ  Ｔ．  Ｊｏｒｄａｎ編、２００１年）；Ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ）（Ｋｅｖｉｎ  Ｄ．  Ｂｕｎｔｉｎｇ編、２００８年）Ｎｅｕｒａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ：  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  （Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ）（Ｌｅｓｌｉｅ  Ｐ．  Ｗｅｉｎｅｒ編、２００８年）を参照のこと。
【００８８】
ある特定の実施形態は、ベクター中に含まれた核酸を含む。当業者は、本明細書に開示されるある特定の実施形態との使用のための適切なベクターを容易に確認できる。典型的なベクターは、それが連結した別の核酸を輸送することが可能である、または宿主生物において複製が可能である核酸分子を含み得る。ベクターの一部の例には、プラスミド、ウイルスベクター、コスミドなどが含まれる。一部のベクターは、それらが導入される宿主細胞において自律的複製が可能であり得（例えば、細菌複製起点を有する細菌ベクターおよびエピソーム哺乳動物ベクター）、一方他のベクターは、宿主細胞中への導入の際に宿主細胞のゲノム中に組み込まれ得、それによって、宿主ゲノムと一緒に複製し得る。さらに、一部のベクターは、それらが動作可能に連結した遺伝子の発現を指向させることが可能である（これらのベクターは、「発現ベクター」と呼ばれ得る）。関連の実施形態によれば、１または複数の薬剤（例えば、本明細書に記載される、ＷＴ−１に対して特異的な免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質もしくは高親和性組換えＴＣＲをコードするポリヌクレオチド、またはそれらのバリアント）が被験体に共投与される場合に、各薬剤が別々のベクターまたは同じベクター中に存在し得、複数のベクター（各々、異なる薬剤、同じ薬剤を含む）が、細胞もしくは細胞集団に導入され得、または被験体に投与され得ることが、さらに理解される。
【００８９】
ある特定の実施形態では、ＷＴ−１に対して特異的な免疫グロブリンスーパーファミリー結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲをコードする核酸は、ベクターの特定のエレメントに動作可能に連結し得る。例えば、それらがライゲーションされるコード配列の発現およびプロセシングをもたらすのに必要なポリヌクレオチド配列が、動作可能に連結し得る。発現制御配列には、適切な転写開始、終結、プロモーターおよびエンハンサー配列；効率的なＲＮＡプロセシングシグナル、例えば、スプライシングおよびポリアデニル化シグナル；細胞質ｍＲＮＡを安定化する配列；翻訳効率を増強する配列（即ち、Ｋｏｚａｋコンセンサス配列）；タンパク質安定性を増強する配列；ならびに場合によりタンパク質分泌を増強する配列が含まれ得る。発現制御配列は、それらが目的の遺伝子、および目的の遺伝子を制御するためにトランスでまたは距離を置いて作用する発現制御配列と連続する場合、動作可能に連結しているといえる。
【００９０】
特定の実施形態では、この組換え発現ベクターは、適切な細胞、例えば、Ｔ細胞または抗原提示細胞、即ち、その細胞表面上にペプチド／ＭＨＣ複合体を提示し（例えば、樹状細胞）、ＣＤ８を欠く細胞に、送達される。したがって、この組換え発現ベクターは、例えば、リンパ系組織特異的転写調節エレメント（ＴＲＥ）、例えば、Ｂリンパ球、Ｔリンパ球または樹状細胞特異的ＴＲＥもまた含み得る。リンパ系組織特異的ＴＲＥは、当該分野で公知である（例えば、Ｔｈｏｍｐｓｏｎら、Ｍｏｌ．  Ｃｅｌｌ．  Ｂｉｏｌ．  １２巻：１０４３頁、１９９２年）；Ｔｏｄｄら、Ｊ．  Ｅｘｐ．  Ｍｅｄ．  １７７巻：１６６３頁、１９９３年）；Ｐｅｎｉｘら、Ｊ．  Ｅｘｐ．  Ｍｅｄ．  １７８巻：１４８３頁、１９９３年を参照のこと）。
【００９１】
ベクターに加えて、ある特定の実施形態は、本明細書に開示されるベクターを含む宿主細胞に関する。当業者は、多くの適切な宿主細胞が当該分野で利用可能であることを容易に理解する。宿主細胞には、ベクター、または核酸および／もしくはタンパク質の取込みを受け得る任意の個々の細胞または細胞培養物、ならびに任意の子孫細胞が含まれ得る。この用語は、遺伝的にまたは表現型的に同じであっても異なっても、宿主細胞の子孫もまた包含する。適切な宿主細胞は、ベクターに依存し得、これには、哺乳動物細胞、動物細胞、ヒト細胞、サル細胞、昆虫細胞、酵母細胞および細菌細胞が含まれ得る。これらの細胞は、ウイルスベクター、リン酸カルシウム沈殿、ＤＥＡＥ−デキストラン、エレクトロポレーション、マイクロインジェクションまたは他の方法を介した形質転換の使用によって、ベクターまたは他の材料を取り込むように誘導され得る。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ
第２版（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、１９８９年）を参照のこと。
【００９２】
処置の方法
ある特定の態様では、本開示は、任意の上述の結合性タンパク質またはＴＣＲに従うヒトウィルムス腫瘍タンパク質１（ＷＴ−１）に対して特異的な結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲを含む組成物を、それを必要とするヒト被験体に投与することによって、ＷＴ−１過剰発現を特徴とする過剰増殖障害または状態を処置するための方法に向けられる。
【００９３】
被験体における過剰増殖障害または悪性状態の存在とは、例えば、新生物性、腫瘍、接触阻害されないまたは腫瘍形成的に形質転換された細胞など（例えば、固形がん；リンパ腫および白血病、例えば、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病を含む血液学的がんなど）を含む、被験体における形成異常、がん性および／または形質転換された細胞の存在を指し、これらは、当該分野で公知であり、これらについての診断および分類のための基準は確立されている（例えば、ＨａｎａｈａｎおよびＷｅｉｎｂｅｒｇ、２０１１年  Ｃｅｌｌ  １４４巻：６４６頁；ＨａｎａｈａｎおよびＷｅｉｎｂｅｒｇ  ２０００年  Ｃｅｌｌ  １００巻：５７頁；Ｃａｖａｌｌｏら、２０１１年  Ｃａｎｃ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．  ６０巻：３１９頁；Ｋｙｒｉｇｉｄｅｉｓら、２０１０年
Ｊ．  Ｃａｒｃｉｎｏｇ．  ９巻：３頁）。ある特定の実施形態では、かかるがん細胞は、これらの型のがんのいずれかを開始させ、逐次的に移植することが可能ながん幹細胞を含む、急性骨髄性白血病、Ｂ細胞リンパ芽球性白血病、Ｔ細胞リンパ芽球性白血病または骨髄腫の細胞であり得る（例えば、Ｐａｒｋら  ２００９年  Ｍｏｌｅｃ．  Ｔｈｅｒａｐ．  １７巻：２１９頁を参照のこと）。
【００９４】
ある特定の実施形態では、過剰増殖障害、例えば、血液学的悪性疾患または固形がんを処置するための方法が提供される。例示的な血液学的悪性疾患には、急性リンパ芽球性白血病（ＡＬＬ）、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）、慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）、慢性好酸球性白血病（ＣＥＬ）、骨髄異形成症候群（ＭＤＳ）、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）または多発性骨髄腫（ＭＭ）が含まれる。
【００９５】
さらなる実施形態では、過剰増殖障害、例えば、胆道がん、膀胱がん、骨および軟部組織の癌腫、脳腫瘍、乳がん、子宮頚がん、結腸がん、結腸直腸腺癌、結腸直腸がん、類腱腫、胚性がん、子宮内膜がん、食道がん、胃がん、胃腺癌、多形神経膠芽腫、婦人科腫瘍、頭頚部扁平上皮癌、肝がん、肺がん、悪性黒色腫、骨肉腫、卵巣がん、膵がん、膵管腺癌、原発性アストロサイト腫瘍、原発性甲状腺がん、前立腺がん、腎がん、腎細胞癌、横紋筋肉腫、皮膚がん、軟部組織肉腫、精巣胚細胞腫瘍、尿路上皮がん、子宮肉腫または子宮がんから選択される固形がんを処置するための方法が提供される。
【００９６】
医学分野の当業者に理解されるように、用語「処置する」および「処置」とは、被験体（即ち、ヒトまたは非ヒト動物であり得る、患者、宿主）の疾患、障害または状態の医学的管理を指す（例えば、Ｓｔｅｄｍａｎ’ｓ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｄｉｃｔｉｏｎａｒｙを参照のこと）。一般に、適切な用量および処置レジメンは、治療的または予防的利益を提供するのに十分な量で、ヒトＷＴ−１に対して特異的な結合性タンパク質もしくは高親和性組換えＴＣＲ（例えば、配列番号１〜１５および２１〜３１、ならびにそれらのバリアント）またはそれを発現する宿主細胞、および任意選択で、補助的治療（例えば、サイトカイン、例えば、ＩＬ−２、ＩＬ−１５、ＩＬ−２１またはそれらの任意の組み合わせ）のうち、１または複数を提供する。治療的処置または予防的もしくは防止的方法から生じる治療的または予防的利益には、例えば、改善された臨床成績が含まれ、ここで、その目的は、望ましくない生理学的変化もしくは障害を防止もしくは遅延もしくは他の方法で低減（例えば、未処置の対照と比較して、統計的に有意な様式で減少）させること、またはかかる疾患もしくは障害の拡大もしくは重症度を防止もしくは遅延もしくは他の方法で低減させることである。被験体を処置することから生じる有益なまたは所望の臨床結果には、処置される疾患もしくは障害から生じるまたはそれらと関連する症状の軽減、低下または緩和（ａｌｌｅｖｉａｔｉｏｎ）；症状の減少した発生；改善された生活の質；より長い無疾患状態（即ち、被験体が、疾患の診断がなされた基礎となった症状を呈する可能性または傾向を減少させる）；疾患の程度の減殺；疾患の安定化された（即ち、悪化していない）状態；疾患進行の遅れまたは減速；疾患状態の好転（ａｍｅｌｉｏｒａｔｉｏｎ）または緩和（ｐａｌｌｉａｔｉｏｎ）；および検出可能であれ検出不能であれ寛解（部分的であれ全体的であれ）、あるいは全生存期間が含まれる。
【００９７】
「処置」とは、被験体が処置を受けていない場合の予測された生存と比較したときに、生存を延長させることもまた意味し得る。本明細書に記載される方法および組成物を必要とする被験体には、疾患もしくは障害を既に有している被験体、ならびにその疾患もしくは障害を有する傾向があるまたはそれを発症するリスクがある被験体が含まれる。予防的処置を必要とする被験体には、疾患、状態または障害が防止される（即ち、その疾患または障害の発生または再発の可能性を減少させる）被験体が含まれる。本明細書に記載される組成物（および組成物を含む調製物）および方法によって提供される臨床的利点は、組成物の投与が有益となることが意図される被験体における、ｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイ、前臨床研究および臨床研究の設計および実行によって、実施例に記載されるように評価され得る。
【００９８】
本明細書に記載されるヒトＷＴ−１に対して特異的な結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲを発現する細胞は、薬学的にまたは生理学的に許容されるまたは適切な賦形剤または担体中で、被験体に投与され得る。薬学的に許容される賦形剤は、ヒトまたは他の非ヒト哺乳動物被験体への投与に適切な、本明細書でより詳細に記載される生物学的に適合性のビヒクル、例えば、生理学的食塩水である。
【００９９】
治療有効用量は、処置されたヒトまたは非ヒト哺乳動物における臨床的に望ましい結果を生じることが可能な、養子移入において使用される宿主細胞（ヒトＷＴ−１に対して特異的な結合性タンパク質または高親和性組換えＴＣＲを発現する）の量（即ち、統計的に有意な様式で、ＷＴ−１を過剰発現する細胞に対する特異的Ｔ細胞免疫応答（例えば、細胞傷害性Ｔ細胞応答）を誘導または増強するのに十分な量）である。医学分野で周知のように、任意の１人の患者についての投薬量は、患者のサイズ、体重、身体表面積、年齢、投与される特定の治療、性別、投与の時間および経路、全体的健康、ならびに同時発生的に投与されている他の薬物を含む多くの因子に依存する。用量は変動するが、本明細書に記載される組換え発現ベクターを含む宿主細胞の投与のために好ましい用量は、約１０７細胞／ｍ２、約５×１０７細胞／ｍ２、約１０８細胞／ｍ２、約５×１０８細胞／ｍ２、約１０９細胞／ｍ２、約５×１０９細胞／ｍ２、約１０１０細胞／ｍ２、約５×１０１０細胞／ｍ２または約１０１１細胞／ｍ２である。
【０１００】
医薬組成物は、医学分野の当業者によって決定されるように、処置（または防止）される疾患または状態にとって適切な様式で投与され得る。組成物の適切な用量ならびにその投与の適切な持続時間および頻度は、患者の健康状態、患者のサイズ（即ち、体重、大きさ（ｍａｓｓ）または身体面積）、患者の疾患の型および重症度、活性成分の特定の形態、ならびに投与の方法などの因子によって決定される。一般に、適切な用量および処置レジメンは、治療的および／または予防的利益（例えば、改善された臨床成績、例えば、より頻繁な完全なもしくは部分的寛解、またはより長い無病生存期間および／もしくは全生存期間、または症状重症度の低下を含む、本明細書に記載されるもの）を提供するのに十分な量で、組成物を提供する。予防的使用のために、用量は、疾患もしくは障害と関連する疾患を防止する、その発病を遅らせる、またはその重症度を減殺するのに十分でなければならない。本明細書に記載される方法に従って投与される免疫原性組成物の予防的利益は、前臨床研究（ｉｎ  ｖｉｔｒｏおよびｉｎ  ｖｉｖｏの動物研究を含む）および臨床研究を実施し、そこから得られたデータを適切な統計的、生物学的および臨床的な方法および技術によって分析することによって決定され得、これらは全て、当業者によって容易に実施され得る。
【０１０１】
ＷＴ−１過剰発現と関連する状態には、正常細胞と比較して罹患細胞（例えば、白血病細胞）において、ＷＴ−１の細胞的または分子的事象の過少活性（ｕｎｄｅｒａｃｔｉｖｉｔｙ）、過剰活性（ｏｖｅｒａｃｔｉｖｉｔｙ）または不適切な活性が存在する、異常に高い（統計的有意性を伴う）レベルのＷＴ−１発現から典型的には生じる、任意の障害または状態が含まれる。かかる障害または状態を有する被験体は、本明細書に記載される実施形態の組成物または方法による処置から利益を受ける。したがって、ＷＴ−１過剰発現と関連する一部の状態には、急性と慢性の障害および疾患、例えば、被験体を特定の障害に罹りやすくする病理学的状態が含まれ得る。
【０１０２】
ＷＴ−１過剰発現と関連する状態の一部の例には、腫瘍、新生物、がん、悪性疾患などを含む、被験体における活性化されたおよび／または増殖している細胞（これは、転写的に活性過剰でもあり得る）の状態を指す、過剰増殖障害が含まれる。活性化されたまたは増殖している細胞に加えて、この過剰増殖障害には、壊死によるものであれアポトーシスによるものであれ、細胞死プロセスの逸脱または調節不全もまた含まれ得る。細胞死プロセスのかかる逸脱は、がん（原発性、二次性悪性疾患ならびに転移を含む）または他の状態を含む種々の状態と関連し得る。
【０１０３】
ある特定の実施形態によれば、血液学的がん（例えば、急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）を含む白血病、ＴまたはＢ細胞リンパ腫、骨髄腫など）を含む、ＷＴ−１過剰発現を特徴とする事実上任意の型のがんは、本明細書に開示される組成物および方法の使用を介して処置され得る。さらに、「がん」とは、固形腫瘍、腹水腫瘍、血液もしくはリンパまたは他の悪性疾患；結合組織悪性疾患；転移性疾患；器官または幹細胞の移植後の微小残存病変；多剤耐性がん、原発性または二次性悪性疾患、悪性疾患と関連する血管新生、あるいは他の形態のがんを含む、細胞の任意の加速された増殖を指し得る。本明細書に開示された実施形態内では、上記型の疾患の１つだけが含まれる、または特定の状態が、それらがＷＴ−１過剰発現を特徴とするか否かに関わりなく排除され得る、具体的実施形態もまた企図される。
【０１０４】
本明細書で企図される処置または防止の特定の方法は、細胞の染色体中に安定に組み込まれた本明細書に記載される所望の核酸分子を含む宿主細胞（これは、自家、同種または同系であり得る）を投与するステップを含む。例えば、かかる細胞性組成物は、所望のＷＴ−１標的化Ｔ細胞組成物を養子免疫治療として被験体に投与するために、自家、同種または同系の免疫系細胞（例えば、Ｔ細胞、抗原提示細胞、ナチュラルキラー細胞）を使用してｅｘ  ｖｉｖｏで生成され得る。
【０１０５】
本明細書で使用する場合、組成物または治療の投与とは、送達の経路または様式に関わらず、被験体にそれを送達することを指す。投与は、持続的にまたは間欠的に、かつ非経口的にもたらされ得る。投与は、認識された状態、疾患もしくは疾患状態を有すると既に確認された被験体を処置するため、あるいはかかる状態、疾患もしくは疾患状態に感受性である、またはそれを発症するリスクがある被験体を処置するためのものであり得る。補助的治療との共投与は、任意の順序および任意の投薬スケジュールでの、複数の薬剤の同時および／または逐次的送達（例えば、ＷＴ−１特異的組換え宿主細胞と、１または複数のサイトカイン；免疫抑制治療、例えば、カルシニューリン阻害剤、コルチコステロイド、微小管阻害剤、低用量のミコフェノール酸プロドラッグ、またはそれらの任意の組み合わせ）を含み得る。
【０１０６】
ある特定の実施形態では、複数の用量の本明細書に記載される組換え宿主細胞が、被験体に投与され、これらは、投与の間の間隔が約２週間〜約４週間で投与され得る。さらなる実施形態では、サイトカインは、被験体に、サイトカイン投与の前に少なくとも３または４回、組換え宿主細胞が投与されたことを条件として、逐次的に投与される。ある特定の実施形態では、このサイトカインは、皮下投与される（例えば、ＩＬ−２、ＩＬ−１５、ＩＬ−２１）。なおさらなる実施形態では、処置されている被験体は、免疫抑制治療、例えば、カルシニューリン阻害剤、コルチコステロイド、微小管阻害剤、低用量のミコフェノール酸プロドラッグ、またはそれらの任意の組み合わせをさらに受けている。なおさらなる実施形態では、処置されている被験体は、非骨髄破壊的または骨髄破壊的造血細胞移植を受けたものであり、この処置は、非骨髄破壊的造血細胞移植の少なくとも２〜少なくとも３ヶ月後に投与され得る。
【０１０７】
治療組成物または医薬組成物の有効量とは、本明細書に記載されるような所望の臨床結果または有益な処置を達成するために必要な投薬量でかつ必要な期間にわたる、十分な量を指す。有効量は、１または複数回の投与で送達され得る。投与が、疾患もしくは疾患状態を有することが既に知られているかまたはそれを有することが確認された被験体に対してのものである場合、用語「治療的量」は、処置に言及して使用され得るが、「予防有効量」は、防止的過程として、疾患もしくは疾患状態（例えば、再発）に感受性である、またはそれを発症するリスクがある被験体に有効量を投与することを記述するために使用され得る。
【０１０８】
ＣＴＬ免疫応答のレベルは、本明細書に記載され、当該分野で慣用的に実施されている多数の免疫学的方法のいずれか１つによって決定され得る。ＣＴＬ免疫応答のレベルは、例えばＴ細胞によって発現される本明細書に記載されるＷＴ−１特異的結合性タンパク質のいずれか１つの投与の前およびその後に、決定され得る。ＣＴＬ活性を決定するための細胞傷害性アッセイは、当該分野で慣用的に実施されているいくつかの技術および方法のいずれか１つを使用して実施され得る（例えば、Ｈｅｎｋａｒｔら、「Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ  Ｔ−Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ」、Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｐａｕｌ（編）（２００３年  Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ  Ｗｉｌｌｉａｍｓ  ＆  Ｗｉｌｋｉｎｓ、Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ、ＰＡ）、１１２７〜５０頁、およびそこで引用された参考文献を参照のこと）。
【０１０９】
抗原特異的Ｔ細胞応答は、典型的には、適切な文脈における同族抗原（例えば、免疫適合性の抗原提示細胞によって提示される場合に、Ｔ細胞をプライムまたは活性化するために使用される抗原）に曝露されるＴ細胞と、その代わりに構造的に別個のまたは無関係な対照抗原に曝露される同じ供給源集団由来のＴ細胞との間で行われ得る、本明細書に記載されるＴ細胞の機能的パラメーター（例えば、増殖、サイトカイン放出、ＣＴＬ活性、変更された細胞表面マーカー表現型など）のいずれかに従う、観察されたＴ細胞応答の比較によって決定される。対照抗原に対する応答よりも、統計的有意性を伴ってより大きい、同族抗原に対する応答は、抗原特異性を示す。
【０１１０】
生物学的試料は、本明細書に記載されるＷＴ−１由来抗原ペプチドに対する免疫応答の存在およびレベルを決定するために、被験体から取得され得る。「生物学的試料」は、本明細書で使用する場合、血液試料（ここから、血清または血漿が調製され得る）、生検標本、体液（例えば、肺洗浄、腹水、粘膜洗液、滑液）、骨髄、リンパ節、組織外植片、器官培養物、または被験体もしくは生物学的供給源由来の任意の他の組織もしくは細胞調製物であり得る。生物学的試料は、任意の免疫原性組成物を受ける前にも被験体から取得され得、この生物学的試料は、ベースライン（即ち、免疫化前）データを確立するための対照として有用である。
【０１１１】
本明細書に記載される医薬組成物は、単位用量または多用量容器、例えば、密封アンプルまたはバイアル中に提供され得る。かかる容器は、製剤の安定性を保つために、凍結され得る。ある特定の実施形態では、単位用量は、約１０７細胞／ｍ２〜約１０１１細胞／ｍ２の用量で、本明細書に記載される組換え宿主細胞を含む。種々の処置レジメンにおける、本明細書に記載される特定の組成物を使用するための適切な投薬および処置レジメンの開発は、例えば、非経口もしくは静脈内の投与または製剤を含む。
【０１１２】
主題組成物が非経口投与される場合、この組成物には、無菌の水性または油性の溶液または懸濁物もまた含まれ得る。適切な非毒性の非経口的に許容される希釈剤または溶媒には、水、リンゲル溶液、等張塩溶液、水との混合物中の１，３−ブタンジオール、エタノール、プロピレングリコールまたはポリエチレングリコール（ｐｏｌｙｔｈｅｔｈｙｌｅｎｅ  ｇｌｙｃｏｌ）が含まれる。水性の溶液または懸濁物は、１または複数の緩衝剤、例えば、酢酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム、ホウ酸ナトリウムまたは酒石酸ナトリウムをさらに含み得る。もちろん、任意の投薬単位製剤を調製する際に使用される任意の材料は、薬学的に純粋であり、用いられる量において実質的に非毒性でなければならない。さらに、活性化合物は、徐放性の調製物および製剤中に取り込まれ得る。投薬単位形態とは、本明細書で使用する場合、処置される被験体にとって単位的な投薬量として適した、物理的に分離した単位を指す；各単位は、適切な薬学的担体と関連して、所望の治療効果を生じるように計算された、組換え細胞または活性化合物の所定の量を含み得る。
【０１１３】
一般に、適切な投薬量および処置レジメンは、治療的利益または予防的利益を提供するのに十分な量で、活性分子または細胞を提供する。かかる応答は、非処置被験体と比較して、処置された被験体において改善された臨床成績（例えば、より頻繁な寛解、完全もしくは部分的な、またはより長い無病生存期間）を確立することによって、モニタリングされ得る。腫瘍タンパク質に対する既存の免疫応答における増加は、一般に、改善された臨床成績と相関する。かかる免疫応答は、当該分野で慣用的であり、処置の前および後に被験体から取得された試料を使用して実施され得る、標準的な増殖、細胞傷害性またはサイトカインアッセイを使用して、一般に評価され得る。
【実施例】
【０１１４】
（実施例１）
方法
レンチウイルス構築物
ＨＬＡ受容体と複合体化したＷＴ−１ペプチドＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）に対して特異的な高親和性ＴＣＲをコードする、ＨＬＡ−Ａ２拘束性ＣＤ８＋Ｔ細胞クローン（Ｃ４）から誘導されたコドン最適化されたＴＣＲα遺伝子およびＴＣＲβ遺伝子を含む種々のＴＣＲ発現構築物を、生成した。ＴＣＲαコード核酸分子およびＴＣＲβコード核酸分子を、ブタテッショウウイルス由来の２Ａエレメント（Ｐ２Ａ）によって連結して、マウス幹細胞ウイルス（ＭＳＣＶ）Ｕ３プロモーターの制御下での協調された発現を確実にした。ある特定の実施形態では、Ｃ４  ＴＣＲαおよびＴＣＲβの定常ドメインをコードする核酸分子の部分を、Ｃ４  ＴＣＲ鎖の鎖間対合を促進し、外因性Ｃ４  ＴＣＲ鎖と内因性ＴＣＲ鎖との誤対合を最小化するために、それぞれ、４８位（ＴｈｒからＣｙｓ）および５７位（ＳｅｒからＣｙｓ）において、相補的システイン残基を発現するように改変した。
【０１１５】
ベクターｐＲＲＬＳＩＮ−Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４βは、ＡｓｃＩ制限エンドヌクレアーゼ部位とＳａｌＩ制限エンドヌクレアーゼ部位との間でｐＲＲＬＳＩＮ．ｃＰＰＴ．ＭＳＣＶ／ＧＦＰ．ＷＰＲＥレンチウイルスベクター中にライゲーションされてＧＦＰを置き換えた、ＴＣＲ発現構築物を含んだ。ｐＲＲＬＳＩＮ．ｃＰＰＴ．ＭＳＣＶ／ＧＦＰ．ＷＰＲＥプラスミドは、第３世代の自己不活性化レンチウイルスベクターである（Ｙａｎｇら、Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．  ３１巻：８３０頁、２００８年を参照のこと）。
【０１１６】
飽和変異誘発ライブラリー
２つの飽和変異誘発ライブラリーを構築して、ＨＬＡ−Ａ２／ＷＴ−１複合体に対するより高いまたは増強された親和性を生じたＣ４αＣＤＲ領域（特にＣＤＲ３）内の変異を生成および同定した。Ｃ４αのＣＤＲ３領域は、以下のアミノ酸から構成される：ＣＡＡＴＥＤＹＱＬＩＷ（配列番号２５）。残基ＡＴＥおよびＤＹＱを包含する２つのランダム化されたライブラリーを、レンチウイルスベクターｐＲＲＬＳＩＮ−Ｃ４α−Ｐ２Ａ−βを鋳型として使用して、Ｑｕｉｋｃｈａｎｇｅ  ＩＩ部位指向性変異誘発キット（Ａｇｉｌｅｎｔ）を使用して構築した。変異誘発プライマーを、Ｚｈｅｎｇら（Ｎｕｃｌｅｉｃ
Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．  ３２巻：ｅ１１５頁、２００４年）によって記載された改変型Ｑｕｉｋｃｈａｎｇｅプロトコールに従って設計し、ランダム化される各アミノ酸位置について、ランダム化されたヌクレオチドＮＮＫ（ここで、Ｎ＝Ａ、Ｃ、ＧまたはＴ、およびＫ＝ＧまたはＴ）を取り込んだ。これは、２０全てのアミノ酸をコードする３２の異なるコドン、および１つの停止コドンを生じた。高い形質転換効率（１×１０１０超）のＥｌｅｃｔｒｏｍａｘ  ＤＨ１０Ｂ  Ｔ１細胞を、変異誘発反応組成物で形質転換し、独立したクローンの数を、ＬＢ−アンピシリンプレート上で形質転換反応の一部を力価決定および培養することによって決定した。クローンの総数を決定した後、形質転換ミックスを、１プレート当たり約５，０００クローンでＬＢ−アンピシリンプレート上にプレートした。３７℃での１８時間の培養後、０．５〜１ｍＬのＬＢをライブラリープレートに添加し、全てのコロニーを一緒に回収し、遠心分離し、高品質のプラスミドライブラリーＤＮＡを、Ｅｎｄｏｆｒｅｅ  ｐｌａｓｍｉｄ  Ｍａｘｉキット（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して単離した。
【０１１７】
ライブラリーサイズは、約１００，０００の独立したクローンを含むと推定され、これは、約９５％完全なライブラリーを生じたと推定された。変異誘発反応の効率およびライブラリーの多様性を測定するために、合わせたライブラリープラスミドＤＮＡを配列決定したところ、ランダム化した位置の各々における各ヌクレオチドの割合は、配列決定クロマトグラム上の各ヌクレオチドについての相対的シグナルを比較することによって、等価であると決定された（データ示さず）。
【０１１８】
飽和変異誘発ライブラリーのスクリーニング
各ライブラリーについて、レンチウイルスを、３種のパッケージングベクターｐＭＤＬｇ／ｐＲＲＥ、ｐＭＤ２−ＧおよびｐＲＳＶ−ＲＥＶと併用して、３プレートの２９３Ｔ細胞（約７×１０６細胞／プレート）を高品質プラスミドライブラリーで形質導入することによって生成した。２日後、３つのプレートからの上清を合わせ、アリコートをさらなる使用のために凍結した。
【０１１９】
このレンチウイルス上清を力価決定して、１超のライブラリー由来ＴＣＲで標的細胞が形質導入される確率を最小化するために、形質導入に利用するのに最適な濃度を決定した。総形質導入効率を、トランスジェニックベータ鎖（Ｖβ１７）を発現する細胞の百分率を分析することによって決定した。約２０％の形質導入率を生じた希釈物を選択し、約２〜５×１０７のＪ．ＲＴ３細胞を形質導入するために使用した。ライブラリーで形質導入された細胞を、１μｇ／ｍｌの競合する抗ＭＨＣクラスＩ抗体の存在下または非存在下で、高レベルのＷＴ−１テトラマー染色についてのフローサイトメトリーによって選別し、培養物中で複数回拡大増殖させた。親Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４β構築物で形質導入されたＪ．ＲＴ３細胞よりも高いレベルでＷＴ−１テトラマーを結合した選別された集団を溶解させ、ゲノムＤＮＡを、ＤＮｅａｓｙキット（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して単離した。単離されたＤＮＡを、ＴＣＲ発現構築物に隣接し、対応するサイズの単一のバンドを生じたプライマーを使用したレンチウイルス挿入物のＰＣＲ増幅に使用した。ＰＣＲ産物を、ｐＥＮＴＲ−Ｄ−Ｔｏｐｏ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中にクローニングし、クローンを、ＤＮＡ配列分析によって特徴付けた。
【０１２０】
単離されたクローンの配列分析後、Ｃ４αＣＤＲ３領域を含む７５０ｂｐのＡｓｃＩ−ＢａｍＨＩ断片を、候補クローンから切り出し、親ｐＲＲＬＳＩＮ−Ｃ４α−Ｐ２Ａ−Ｃ４βベクター中にライゲーションした。次いで、候補変異体を、親Ｃ４構築物と並んでＪ．ＲＴ３細胞およびＰＢＭＣ中に形質導入し、変異体を、ＨＬＡ−Ａ２／ＷＴ−１１２６−１３４（ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ、配列番号１６）に対する結合親和性について評価した。
【０１２１】
テトラマー力価決定による相対的親和性
Ｔ細胞クローンを、２倍連続希釈のＷＴ−１テトラマーで染色し、フローサイトメトリーによって分析した。統計的分析を、Ｇｒａｐｈｐａｄ  Ｐｒｉｓｍにおいて実施した。ＫＤ値を、式Ｙ＝Ｂｍａｘ＊Ｘ／［ＫＤ＋Ｘ］を用いて飽和結合曲線に対して非線形回帰アルゴリズムを使用して外挿した。
【０１２２】
（実施例２）
高親和性ＷＴ−１特異的ＴＣＲの同定およびクローニング
高親和性のＨＬＡ−Ａ２拘束性ＷＴ−１１２６−１３４特異的Ｔ細胞クローンを同定するために、Ｔ細胞クローンを、５０超のドナーの末梢レパートリーから生成した。テトラマー染色によって最も高い見かけの親和性を示した上位１０個のクローンを、力価決定された濃度のＷＴ−１テトラマーで各クローンを染色し、得られた平均蛍光強度データを飽和結合曲線にフィットさせることによって、さらに評価した（図１）。ＴＣＲαおよびＴＣＲβの遺伝子配列を、ＲＡＣＥ  ＰＣＲによって同定し、最も高い相対的親和性を有する４つのクローンの配列決定を実施した（Ｃ４、Ｐ１、Ｐ２０およびＰ２２）。
【０１２３】
これらの候補Ｔ細胞クローン由来のＷＴ−１１２６−１３４特異的ＴＣＲをさらに特徴付けるために、コドン最適化した発現構築物を、各ＴＣＲα鎖およびＴＣＲβ鎖の対について生成した。各構築物について、α鎖およびβ鎖をＰ２Ａエレメントによって分離して、ＴＣＲα鎖およびＴＣＲβ鎖の協調された発現を促進した（例えば、Ｓｚｙｍｃｚａｋら、Ｎａｔ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  ２２巻：５８９頁、２００４年；Ｄｏｓｓｅｔｔら、Ｍｏｌ．  Ｔｈｅｒ．  １７巻：７４２頁、２００９年を参照のこと）。さらに、ＴＣＲαおよびＴＣＲβ定常ドメインの外部膜近位領域中にシステイン残基の２番目の対を創出するための点変異を導入して、導入されたＴＣＲ鎖の優先的な対合を促進した（Ｋｕｂａｌｌら、Ｂｌｏｏｄ  １０９巻：２３３１頁、２００７年）。最後に、これらのコドン最適化されたシステイン改変型構築物を、レンチウイルスベクターｐＲＲＬＳＩＮ．ｃＰＰＴ−ＭＳＣＶ．ＷＰＲＥ中にクローニングした（図３Ｃを参照のこと）。
【０１２４】
次に、導入されたＴＣＲαβ対の各々が、ＣＤ３構成要素との会合およびＴ細胞表面上での発現について内因性ＴＣＲ鎖を打ち負かす能力を、試験した（例えば、Ｈｅｅｍｓｋｅｒｋら、Ｂｌｏｏｄ  １０９巻：２３５頁、２００７年を参照のこと）。コドン最適化されたシステイン改変型のＴＣＲＣ４、ＴＣＲＰ２０およびＴＣＲＰ２２を、ＰＢＭＣ中に形質導入し、形質導入されたＣＤ８＋Ｔ細胞集団内のテトラマー陽性細胞の百分率を決定した（図２Ａ）。総形質導入集団を、形質導入された集団におけるＴＣＲ  Ｖβ特異的Ｔ細胞の百分率から、形質導入されていない対照における内因性Ｖβ鎖発現の百分率を差し引くことによって決定した（図２Ａ）。
【０１２５】
ペプチド／ＭＨＣに対して高親和性で会合するＣＤ８から独立してテトラマーに結合する各ＴＣＲの能力を決定するために、形質導入されたＰＢＭＣを、ＣＤ４＋Ｔ細胞についてゲートし、ＷＴ−１テトラマー染色を評価した（図２Ｂ）。ＴＣＲＣ４クローンおよびＴＣＲＰ１クローンは共に、ＣＤ８から独立してテトラマーに結合した。さらに、ＴＣＲＣ４は、最も高いレベルのＣＤ８非依存的テトラマー染色を示し、ＴＣＲＣ４構築物で形質導入されたＰＢＭＣは、最も高い百分率のＷＴ−１テトラマー陽性Ｔ細胞を示した。研究した全てのクローンの中で最も高い相対的親和性をこれもまた示したコドン最適化されたシステイン改変型ＴＣＲＣ４クローンを、改変および機能的研究のために選択した。
【０１２６】
（実施例３）
高親和性ＷＴ−１特異的ＴＣＲＣ４構築物を改善する
実施例２に記載されるように、野生型（ＷＴ）ＴＣＲＣ４発現構築物（Ｃ４αβＷＴ）を、ＴＣＲＣ４クローンから５’−ＲＡＣＥ  ＰＣＲによって産生された全長ＴＣＲαおよびＴＣＲβから生成した。この構築物は、５’位置におけるＣ４  ＴＣＲα鎖をコードする核酸、その後のＰ２Ａエレメント、および次いでＣ４  ＴＣＲβ鎖をコードする核酸を含んだ。この構築物を発現するＴ細胞は、細胞表面上に類似のレベルのトランスジェニックＶβ１７鎖を発現したが、ＷＴ−１テトラマー染色は本質的に検出不能であり、これは、システイン改変にもかかわらず、この構築物が内因性ＴＣＲを打ち負かすのに十分なＴＣＲ遺伝子発現を生じなかったことを示している。実施例２に記載されるように、次のステップは、テトラマー染色における実質的な増加を示した（図２Ａおよび３Ａを参照のこと）コドン最適化されたＴＣＲＣ４構築物を生成することであった（Ｓｃｈｏｌｔｅｎら、Ｃｌｉｎ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １１９巻：１３５頁、２００６年を参照のこと）。
【０１２７】
Ｃ４αβおよびＣ４βα構築物を試験して、可変鎖の位置効果がＴＣＲＣ４の表面発現に影響し得るかどうかを決定した（Ｌｅｉｓｅｇａｎｇら、Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｍｅｄ．  ８６巻：５７３頁、２００８年を参照のこと）。図３Ａおよび３Ｂは、Ｃ４  ＴＣＲβ鎖をＰ２Ａエレメントの５’に位置付けたときの、テトラマー染色における明確な増加を示し、この効果は、刺激後のより後の時点においてより顕著であり、このことは、Ｃ４αβ
ＴＣＲ構築物が、表面発現について内因性ＴＣＲと競合するにあたり、Ｃ４βα  ＴＣＲ構築物よりも比較的効率的でないことを示しており、この効果は、初回のＴ細胞刺激後に下方調節され、時間と共に徐々に増加する。
【０１２８】
これらのデータは、（１）Ｃ４βα  ＴＣＲ構築物が、表面発現について内因性ＴＣＲと競合するにあたり、Ｃ４αβ  ＴＣＲ構築物よりも効率的であったこと、および（２）２１のＰ２Ａアミノ酸が、Ｐ２Ａで連結されたＴＣＲＣ４構築物の５’位置に位置付けたときにＴＣＲβタンパク質以上にＴＣＲαタンパク質機能に影響を与えたこと、を示している。
【０１２９】
（実施例４）
機能的ＷＴ−１特異的ＴＣＲＣ４の細胞表面安定性
形質導入されたＴ細胞の表面上の機能的ＴＣＲＣ４発現の安定性を研究するために、Ａ２＋ドナー由来のＣＤ８＋Ｔ細胞をＥＢＶペプチドＧＬＣＴＬＶＡＭＬ（配列番号１２７）で刺激して、ＥＢＶ特異的Ｔ細胞の集団を生成し、これについて、内因性ＴＣＲ発現を、ＥＢＶテトラマー染色によってモニタリングできた。Ｔ細胞を、ＥＢＶペプチド刺激の２４時間後にＴＣＲＣ４発現構築物で形質導入して、ＥＢＶ特異的Ｔ細胞の優先的形質導入を生じた。このアプローチは、ＥＢＶ＋Ｔ細胞の集団、ＴＣＲＣ４で形質導入されたＷＴ−１テトラマー＋／ＥＢＶテトラマー＋二重陽性（ＤＰ）Ｔ細胞の容易に検出可能な集団、およびＥＢＶに対して反応性でないまたはＴＣＲＣ４との競合に起因してＥＢＶ  ＴＣＲ表面発現を喪失したかのいずれかである、ＴＣＲＣ４で形質導入されたＷＴ−１テトラマー＋かつＥＢＶテトラマー−Ｔ細胞の集団を生じた（図８Ａ）。
【０１３０】
次いで、これらの集団の各々を選別し、拡大増殖させて、ＥＢＶ反応性ＴＣＲを共発現する細胞上での機能的ＴＣＲＣ４発現の安定性を直接評価した（図８Ｂ）。１２日後、培養物を、ＷＴ−１およびＥＢＶテトラマー染色について分析した。テトラマーのうち１つのみに最初に結合したＴ細胞集団は、ほぼ排他的に単一陽性（ＳＰ）のままであった。しかし、細胞選別後に両方のテトラマーについて均一にＤＰであったＴ細胞は、１２日間のｉｎ  ｖｉｔｒｏ培養の後にＷＴ−１テトラマー発現について優先的に単一陽性になったが、ＷＴ−１−テトラマー染色を喪失してＥＢＶ  ＳＰになる細胞はほとんどなかった（図８Ｂ）。これらの結果は、ＴＣＲＣ４が表面発現について内因性ＴＣＲを容易に打ち負かすことができることを示している。
【０１３１】
ＷＴ−１テトラマーＳＰ集団が、表面発現について内因性ＴＣＲを打ち負かした細胞を主に含むかどうかを決定するために、ＥＢＶテトラマー＋Ｔ細胞を選別し、次いで、この精製された集団を、抗ＣＤ３／ＣＤ２８による再刺激後にＴＣＲＣ４構築物で形質導入し、またはさらなる操作なしに再刺激した（図８Ｃ）。ＴＣＲＣ４構築物で形質導入されたＥＢＶ特異的Ｔ細胞は、ＷＴ−１−テトラマーとほぼ排他的に結合し、このことは、ＴＣＲＣ４が、Ｔ細胞の表面上での発現についてほとんどの内因性ＴＣＲを打ち負かすことが可能であることを示している。
【０１３２】
（実施例５）
バリアント高親和性ＷＴ−１特異的ＴＣＲの生成
末梢Ｔ細胞レパートリーから同定された最も高い親和性のＷＴ−１特異的Ｔ細胞クローンでさえも、一般に、Ｔ細胞発達の間の陰性選択の影響に起因して、非自己抗原（例えば、ウイルス抗原）に対して特異的なＴ細胞と比較して、減弱された親和性を有し、このことが、自己寛容を促進し、自己免疫に対して防御する。したがって、飽和変異誘発技術を使用して、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで増強された親和性を有する高親和性ＴＣＲを生成および同定した。実施例１に記載されるように、Ｃ４  ＴＣＲα鎖のＣＤＲ３領域（ＣＡＡＴＥＤＹＱＬＩＷ、配列番号２５）にわたる２つの飽和変異誘発ライブラリーを生成した。両方のライブラリーを、Ｊ．ＲＴ３細胞中への形質導入後にＷＴ−１エピトープに対する増強された親和性を有したバリアントについてスクリーニングし、その後、ＨＬＡ−Ａ２／ＷＴ−１テトラマーの高レベル結合に基づいて細胞選別した。
【０１３３】
候補ＨＬＡ−Ａ２／ＷＴ−１テトラマー結合性バリアントを、両方のライブラリーから単離し、ＤＹＱからＤＬＴへの変異を有した１つのバリアント（Ｃ４−ＤＬＴ）は、変異していないＣ４  ＴＣＲ（Ｃ４−ＷＴ）と比較してより高いレベルのＨＬＡ−Ａ２／ＷＴ−１テトラマー結合を示し、増強されたＨＬＡ−Ａ２／ＷＴ−１テトラマー平衡結合動態を有することが見出された（図４Ａ）。ＴＣＲ−ペプチド／ＭＨＣ相互作用に顕著に寄与し、したがって、ＴＣＲ間での相対的親和性における見かけの差異を減少させ得るＣＤ８の存在下でこれらの実験を実施したことに留意すべきである。
【０１３４】
ＣＤ８＋Ｔ細胞中に移入し、減少する濃度のペプチドでパルスした標的細胞を死滅させる能力について評価した場合、Ｃ４−ＤＬＴは、Ｃ４−ＷＴと比較して抗原感度における５〜１０倍の増加を示し（図４Ｂ）、抗原感度における類似の増加が、限定的なペプチド濃度に応答したサイトカイン産生（ＩＦＮγ）をアッセイした場合に観察された（図４Ｃ）。同様に、ＷＴ−１を発現し、ＨＬＡ−Ａ２で形質導入された場合には、ＷＴ−１ペプチドＲＭＦＰＮＡＰＹＬ（配列番号１６）エピトープをプロセシングし得、それをＣ４−ＷＴおよびＣ４−ＤＬＴに提示し得る白血病細胞株Ｋ５６２のＨＬＡ−２発現バージョンを標的化した場合、Ｃ４−ＤＬＴを発現するＴ細胞は、Ｃ４−ＷＴを発現するＴ細胞と比較して増強された死滅（カスパーゼ−３活性化を介する）を示した（図５）。
【０１３５】
（実施例６）
野生型ＴＣＲ  Ｃ４と比較した、ＴＣＲ  Ｃ４α変異体の動態および細胞溶解活性
臍帯血由来ＣＤ３４＋ＨＰＣを、実施例７に記載した臨床試験において研究した高親和性のＨＬＡ−Ａ２拘束性ＷＴ−１特異的ＴＣＲ（ＴＣＲＣ４）のＴＣＲα鎖を発現するように形質導入した。形質導入された細胞を、ＷＴ１ペプチドの存在下で、ＨＬＡ−Ａ２を発現するＯＰ９−ＤＬ１細胞（ＯＰ９−Ａ２−ＤＬ１）上で培養した。陽性対照として、臍帯血ＨＳＣもまた、ＴＣＲＣ４のＴＣＲα鎖およびＴＣＲβ鎖の両方（Ｃ４αβ）で形質導入した。ヒトγδＴ細胞前駆体の大部分は、ＯＰ９−ＤＬ１上での発達の間にＣＤ４およびＣＤ８を発現する（Ｖａｎ  Ｃｏｐｐｅｒｎｏｌｌｅら、Ｌｅｕｋｅｍｉａ  ２６巻：１２７頁、２０１１年）が、表現型的に成熟したγδＴ細胞（マウスＤＮ  ＣＤ２４−細胞と類似）は、高レベルのＣＤ２７を発現する（Ｖａｎ  Ｃｏｐｐｅｒｎｏｌｌｅら、Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １８３巻：４８５９頁、２００９年）ので、ＣＤ２７および親Ｖβ１７  ＴＣＲβ鎖の発現を使用して、アゴニストで選択されたＴ細胞について富化した。ＣＤ３＋ＣＤ２７＋細胞の相対的割合を、３１日間のｉｎ  ｖｉｔｒｏ培養後に、形質導入されていない細胞、Ｃ４αで形質導入された細胞、およびＣ４αβで形質導入された細胞について分析した。Ｃ４αβで形質導入された培養物中の細胞の大部分は、ＣＤ３＋ＣＤ２７＋であった。Ｃ４αで形質導入された培養物は、形質導入されていない対照と比較してＣＤ３＋ＣＤ２７＋細胞の増加した百分率を有し、親Ｖβ１７を発現するＣＤ３＋細胞の百分率において、５倍の増加を有した（図６Ａ）。Ｖβ１７＋ＣＤ２７＋細胞のみを、培養の３４日目にＴＣＲβライブラリー構築のために収集した（図６Ｂ）。
【０１３６】
Ｖβ１７−Ｃβ１ライブラリーおよびＶβ１７−Ｃβ２ライブラリーを、Ｈ９．ＣＤ８−Ｃ４α細胞中に形質導入し、形質導入された集団内のＷＴ−１テトラマー＋細胞について選別した。単回のＷＴ−１  ＭＨＣテトラマーの選別後、Ｖβ１７−Ｃβ１ライブラリーで形質導入された細胞は、一定範囲のテトラマー反応性を示し、このことは、Ｖβ１７選別された集団中に存在する複数のＴＣＲβ鎖が、ＷＴ−１抗原特異性を付与できたことを示している。最も高いレベルのＷＴ−１  ＭＨＣテトラマー染色を示す細胞を、２回目のＷＴ−１  ＭＨＣテトラマーの選別によって単離し、親Ｃ４β鎖を発現するＨ９．ＣＤ８−Ｃ４α細胞と比較した。両方の形質導入された細胞集団が類似のレベルのＶβ１７を発現したが、実質的により高いテトラマー染色が、Ｖβ１７−Ｃβ１ライブラリーから富化されたテトラマーｈｉ細胞について観察された（図６Ｃ）。一部の実施形態では、これらの高親和性の、Ｃβ１ライブラリー由来のＴＣＲβ鎖は、ＴＣＲ遺伝子治療試験において第２世代ＷＴ−１特異的受容体としての有用性を有し得る。
【０１３７】
レトロウイルスパッケージング系列ＰｌａｔＥを、Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌａｂｓ（Ｓａｎ
Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）から取得した。ＯＰ９−ＫｂＤｂＤＬ１細胞株を、Ｄｌｌ−１遺伝子とその後のＩＲＥＳおよびＨ−２Ｄｂを含むレトロウイルス構築物でＯＰ９細胞株（Ｒｉｋｅｎ、Ｊａｐａｎ）を形質導入することによって生成し（ＯＰ９−ＫｂＤＬ１細胞を生成するため）、Ｈ−２Ｋｂで別々に形質導入した。ＯＰ９−ＫｂＤｂＤＬ１−ＷＴ１細胞株を、マウスＷＴ１を発現するようにさらに形質導入した。ＯＰ９−Ａ２−ＤＬ１細胞株を、ＨＬＡ−Ａ２−ＩＲＥＳ−ヒトβ２Ｍをコードするレトロウイルス構築物でＯＰ９−ＫｂＤＬ１細胞を形質導入することによって生成した。ＯＰ９細胞、およびＤｌｌ１遺伝子とその後のＩＲＥＳ−ＧＦＰを含むレトロウイルス構築物は、Ｊｕａｎ  Ｃａｒｌｏｓ  Ｚｕｎｉｇａ−Ｐｆｌｕｅｃｋｅｒの研究室から取得した。５８−／−３Ｄ−ＰＹＹα細胞株を、Ｍｉｇ２−３Ｄ−ＰＹＹαでＴＣＲα／ＴＣＲβ欠損細胞株５８−／−をレトロウイルスにより形質導入することによって生成した。Ｈ９．ＣＤ８−Ｃ４α細胞株を、ＣＤ８α−Ｐ２Ａ−β構築物でヒトＴ細胞株Ｈ９をレンチウイルスにより形質導入し、その後、Ｃ４α−ＩＲＥＳ−ＧＦＰを発現するようにレンチウイルスにより形質導入することによって生成した。
【０１３８】
（実施例７）
ＷＴ−１特異的Ｔ細胞受容体を発現するドナー由来ウイルス特異的ＣＤ８＋Ｔ細胞は、ＡＭＬ患者において抗白血病再発活性を提供する
再発は、血液学的悪性疾患に対する同種造血細胞移植（ＨＣＴ）後の死亡の主因である。証拠は、有益なドナーＴ細胞媒介性の移植片対白血病（ＧＶＬ）効果がＨＣＴ後の再発率を低減させ得ることを示唆しているが、この効果は、付随する移植片対宿主病（ＧＶＨＤ）に関連する罹患率および死亡率によって減じられる場合が多い。したがって、白血病関連抗原（ＬＡＡ）を選択的に標的化する抗原特異的Ｔ細胞を提供することは、ＧＶＨＤを誘導することなしにＧＶＬ活性を促進する明らかな機会を提供し得る。ウィルムス腫瘍タンパク質１（ＷＴ−１）は、細胞の成長および分化において重要な役割を果たす非多形性ジンクフィンガー転写因子である。ＷＴ−１は、正常成人組織において非常に限定的な発現を有し、正常ＣＤ３４＋細胞と比較して白血病細胞において１０〜１０００倍多く発現され、白血病誘発に寄与することが示されている。さらに、白血病細胞におけるＷＴ−１の発現の大きさは、予後および臨床の悪性度（ａｇｇｒｅｓｓｉｖｅｎｅｓｓ）と相関する。ＷＴ−１は免疫原性であり、したがって、誘導されたＣＤ８＋細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＴＬ）応答のための魅力的な候補免疫治療標的を構成する（Ｃｈｅｅｖｅｒら、Ｃｌｉｎ．  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  １５巻：５３２３頁、２００９年）。移入されたドナー由来ＷＴ−１反応性ＣＤ８＋ＣＴＬクローンは、移植後患者において持続し得、抗白血病活性を媒介し得る（Ｃｈａｐｕｉｓら、Ｓｃｉ．  Ｔｒａｎｓｌ．  Ｍｅｄ．  ５巻：１７４ｒａ２７、２０１３年）。
【０１３９】
この研究では、ＨＬＡ  Ａ＊０２：０１拘束性ＷＴ１１２６−１３４（ＲＭＦＰＮＡＰＹＬ、配列番号１６）エピトープに対して特異的な高親和性Ｔ細胞受容体を発現するように形質導入されたドナー由来ウイルス特異的ＣＤ８＋Ｔ細胞の上昇する用量を、同種ＨＣＴ後の高リスク急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）患者に投与し、以前の用量が＞３％の末梢血ＣＤ８＋Ｔ細胞の頻度において持続した場合には、用量を上昇させることを差し控えた。９人の患者が研究において処置され、合計２２回の注入を受けた１つの観察点で、３人の患者が、４回のＴ細胞注入を完了しており、最後の注入の後に２週間のクールのＩＬ−２が続いた。ＣＴＣグレード≧３の有害事象は、一過的な低血圧および発熱反応、ならびに一過的な白血球減少症、リンパ球減少症および血小板減少症であった。注入されたＴ細胞に帰せられる終末器官毒性は観察されなかった。１人の患者は、Ｔ細胞注入後に急性ＧＶＨＤの増悪を経験し、１人の患者は、慢性ＧＶＨＤを発症したが、いずれかの患者におけるＧＶＨＤが注入されたＴ細胞の活性を反映したという証拠は存在しなかった。
【０１４０】
再発したＡＭＬに対する２回目の同種ＨＣＴ後にＴ細胞で処置した３人の患者（そのうち２人は、２回目の移植の後に持続性／再発疾患を有した）は、研究処置の完了後のさらなる抗白血病治療なしに、Ｔ細胞注入の開始の１４、８および７ヶ月後（したがって、２回目の移植の１６、２６および９ヶ月後）に、疾患の証拠なしに生存した。２回目の完全寛解（ＣＲ２）状態にあるＡＭＬに対する同種ＨＣＴ後に予防的に処置された高リスクＡＭＬを有する１人の患者は、研究処置の開始の１３ヶ月後（移植の１５ヶ月後）に、生存し、疾患の証拠を有さなかった（表１）。
【０１４１】
ｉｎ  ｖｉｖｏでの形質導入されたＣＴＬの持続は、可変であることが観察され、移入されたＣＴＬは、Ｔ細胞注入後４日間〜少なくとも２９０日間の間、検出可能であった（表１、図７）。
【表１】
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【０１４２】
この研究のこれらの予備的結果は、提供された実施形態のＷＴ−１特異的Ｔ細胞受容体（それぞれ、α鎖、配列番号５または６、およびβ鎖、配列番号１２または１３）を発現するように形質導入されたドナー由来ウイルス特異的ＣＤ８＋Ｔ細胞の移入が、顕著な毒性なしに達成できたこと、およびかかる治療が抗白血病活性を提供できたことを示している。
【０１４３】
上記種々の実施形態は、さらなる実施形態を提供するために組み合わされ得る。本明細書中で言及されるおよび／または出願データシート中に列挙される米国特許、米国特許出願公開、米国特許出願、外国特許、外国特許出願および非特許刊行物の全ては、それらの全体が参照によって本明細書に組み込まれる。実施形態の態様は、なおさらなる実施形態を提供するために、種々の特許、出願および刊行物の概念を用いるために、必要に応じて改変され得る。
【０１４４】
これらおよび他の変化が、上に詳述した説明に照らして、これらの実施形態に対してなされ得る。一般に、以下の特許請求の範囲では、使用される用語は、明細書および特許請求の範囲において開示された具体的実施形態に、特許請求の範囲を限定すると解釈すべきではないが、かかる特許請求の範囲が権利を与えられる等価物の完全範囲と共に、全ての可能な実施形態を含むと解釈すべきである。したがって、特許請求の範囲は、本開示によって限定されない。
【図１】
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【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図３Ａ】
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【図３Ｂ】
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【図３Ｃ】
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【図４Ａ】
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【図４Ｂ】
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【図４Ｃ】
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【図５】
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【図６Ａ】
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【図６Ｂ】
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【図６Ｃ】
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【図７】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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【図８Ｃ】
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【配列表】
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【外国語明細書】
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