(57)【要約】【課題】速く効果が現れる抗生物質を提供する。【解決手段】本発明は、抗生物質にかかる発明である。この抗生物質は、グネチンＣと、レスベラトロールと、ビタミンＥと、流動化物質とを含む。グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上４．１１重量％以下である。レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上１．３３重量％以下である。ビタミンＥの重量％が０．２８重量％以上２．２２重量％以下である。グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上１．３７重量％以下であることが好ましい。この場合、レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．４４重量％以下であることが好ましい。グネチンＣの重量％とレスベラトロールの重量％との和が０．２３重量％以上１．８１重量％以下であることがより好ましい。【選択図】図４
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
グネチンＣと、
レスベラトロールと、
ビタミンＥと、
流動化物質とを含む抗生物質であって、
前記グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上４．１１重量％以下であり、
前記レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上１．３３重量％以下であり、
前記ビタミンＥの重量％が０．２８重量％以上２．２２重量％以下であることを特徴とする抗生物質。
【請求項２】
前記グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上１．３７重量％以下であり、
前記レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．４４重量％以下であることを特徴とする請求項１に記載の抗生物質。
【請求項３】
前記グネチンＣの重量％と前記レスベラトロールの重量％との和が０．２３重量％以上１．８１重量％以下であることを特徴とする請求項２に記載の抗生物質。
【請求項４】
前記グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上０．６９重量％以下であり、
前記レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．２２重量％以下であることを特徴とする請求項１に記載の抗生物質。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、抗生物質に関する。
【背景技術】
【０００２】
特許文献１は、インフルエンザウィルス感染予防剤を開示する。特許文献１に開示されたインフルエンザウィルス感染予防剤は、チャノキの葉を有効成分とする。特許文献１に開示されたインフルエンザウィルス感染予防剤は、抗原性に依存せずウィルスの感染を有効に防ぐことができ、かつ、人体に対して有害な副作用を持たない。
【０００３】
特許文献２は、医薬組成物を開示する。特許文献２に開示された医薬組成物は修飾カテキンを含む。特許文献２に開示された医薬組成物は抗菌活性を上昇させることができる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開平３−１０１６２３号公報
【特許文献２】特表２００７−５２１２３９号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
しかしながら、特許文献１に開示されたインフルエンザウィルス感染予防剤と特許文献２に開示された医薬組成物には、その効果の発現が遅いという問題点がある。
【０００６】
本発明は、速く効果が現れる抗生物質の提供を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者は、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、メリンジョエキスとビタミンＥとを含む抗生物質が細菌およびウィルスの活動を迅速に抑えることを見出し、本発明を完成させた。
【０００８】
すなわち、本発明は、抗生物質にかかる発明である。この抗生物質は、グネチンＣと、レスベラトロールと、ビタミンＥと、流動化物質とを含む。グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上４．１１重量％以下である。レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上１．３３重量％以下である。ビタミンＥの重量％が０．２８重量％以上２．２２重量％以下である。
【０００９】
また、上述したグネチンＣの重量％が０．１７重量％以上１．３７重量％以下であることが好ましい。この場合、レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．４４重量％以下であることが好ましい。
【００１０】
もしくは、上述したグネチンＣの重量％とレスベラトロールの重量％との和が０．２３重量％以上１．８１重量％以下であることが好ましい。
【００１１】
また、上述したグネチンＣの重量％が０．１７重量％以上０．６９重量％以下であることが好ましい。この場合、レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．２２重量％以下であることが好ましい。
【発明の効果】
【００１２】
本発明の抗生物質は、速く効果が現れる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから３０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図２】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから７０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図３】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１００分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図４】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１２０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図５】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１５０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図６】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真を時系列に沿って示した図である。
【図７】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから３０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図８】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから７０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図９】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１２０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図１０】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１８０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図１１】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真を時系列に沿って示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
［成分の説明］
本発明について以下詳細に説明する。本発明の抗生物質は、グネチンＣと、レスベラトロールと、ビタミンＥと、流動化物質とを含む。
【００１５】
（グネチンＣの説明）
グネチンＣは、レスベラトロールの二量体である。グネチンＣの構造式は周知なのでここでは繰り返されない。グネチンＣは、例えばメリンジョ（学名：Ｇｎｅｔｕｍ ｇｎｅｍｏｎ）の果実に含まれる。本発明においては、グネチンＣの重量％は０．１７重量％以上４．１１重量％以下である。好ましくは、グネチンＣの重量％は０．１７重量％以上１．３７重量％以下である。より好ましくは、グネチンＣの重量％は０．１７重量％以上０．６９重量％以下である。
【００１６】
（レスベラトロールの説明）
レスベラトロールはスチルベン誘導体の一種である。レスベラトロールの構造式は周知なのでここでは繰り返されない。レスベラトロールは、赤ワイン、赤ブドウの果皮、ピーナッツの皮、イタドリ、メリンジョなどに含まれる。本発明においては、レスベラトロールの重量％は０．０６重量％以上１．３３重量％以下である。好ましくは、レスベラトロールの重量％は０．０６重量％以上０．４４重量％以下である。より好ましくは、レスベラトロールの重量％は０．０６重量％以上０．２２重量％以下である。
【００１７】
なお、グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上１．３７重量％以下であり、かつ、レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．４４重量％以下であるとき、グネチンＣの重量％とレスベラトロールの重量％との和が０．２３重量％以上１．８１重量％以下であることが好ましい。
【００１８】
（ビタミンＥの説明）
ビタミンＥの構造は周知なのでここではその説明が繰り返されない。本発明においては、ビタミンＥの重量％は０．２８重量％以上２．２２重量％以下である。好ましくは、ビタミンＥの重量％は０．２８重量％以上１．１１重量％以下である。
【００１９】
（流動化物質の説明）
流動化物質は、本発明の抗生物質を流動しやすくする物質である。流動化物質の具体的な成分は、グネチンＣ、レスベラトロール、および、ビタミンＥの相乗効果を完全に失わせるものでない限り、特に限定されない。ただし、流動化物質は、グネチンＣ、レスベラトロール、および、ビタミンＥの相乗効果を損なわない物質であることが好ましい。流動化物質は、グネチンＣ、レスベラトロール、および、ビタミンＥの相乗効果を高める物質であることがより好ましい。流動化物質の例には、ジメチルスルホキシド、精製水がある。
【００２０】
（その他の成分の説明）
本発明の抗生物質は、グネチンＣ、レスベラトロール、ビタミンＥ、および、流動化物質以外の成分を含んでもよい。そのような成分の例には、グネチンＣの配糖体がある。グネチンＣの配糖体の例には、グネモノシドＡと、グネモノシドＣと、グネモノシドＤとがある。そのような成分の具体的な内容は、グネチンＣ、レスベラトロール、および、ビタミンＥの相乗効果を完全に失わせるものでない限り、特に限定されない。もちろん、本発明の抗生物質は、グネチンＣ、レスベラトロール、ビタミンＥ、および、流動化物質のみからなっていてもよい。
【００２１】
［製造方法の説明］
本発明の抗生物質の製造方法は特に限定されない。その一例は、エキス抽出工程と、果実粉砕工程と、ビタミンＥ添加工程と、流動化工程とを備える。エキス抽出工程は、メリンジョの果実からメリンジョエキスを抽出する工程である。メリンジョエキスは、メリンジョの果実のエキスである。メリンジョエキスがグネチンＣとレスベラトロールとを含む。果実粉砕工程は、メリンジョの果実を粉砕する工程である。メリンジョの果実が粉砕されるのは、エキス抽出工程においてメリンジョの果実からメリンジョエキスが抽出される前である。ビタミンＥ添加工程は、エキス抽出工程の後にメリンジョエキスにビタミンＥを添加する工程である。流動化工程は、メリンジョエキスに流動性を付与する工程である。
【００２２】
［用途及び使用方法の説明］
本発明にかかる抗生物質は、次に述べられる様々な用途に利用できる。その用途は、細菌およびウィルスの駆除、それらの殺菌、ならびに、それらの増殖抑制である。本発明にかかる抗生物質が対象とする細菌およびウィルスの範囲は特に限定されない。本発明にかかる抗生物質は、様々な細菌および様々なウィルスを駆除できる。本発明にかかる抗生物質は、様々な方法で使用できる。その例には、内服薬、塗り薬、湿布、および、スプレーがある。
【実施例】
【００２３】
以下に、実施例を示して本発明を具体的に説明する。ただし、本発明はこれらに限定されない。
【００２４】
[実施例１]
（１）  試験手順
（Ａ）  メリンジョエキスチューブの調製
作業者は、メリンジョエキスチューブを調製した。「メリンジョエキスチューブ」とは、後述される精製メリンジョエキス溶液が後述される所定のチューブに収容されたものである。作業者は、以下の手順に従って本実施例にかかるメリンジョエキスチューブを調製した。まず、作業者は、メリンジョ（学名：Ｇｎｅｔｕｍ ｇｎｅｍｏｎ）の果実を摂氏１１０度で１０分間焙煎した。メリンジョエキスチューブ１本分のメリンジョの果実の質量は５０グラムであった。焙煎により、そのメリンジョの含水率は８重量％となった。そのメリンジョは、果皮と果実と種子とが丸ごと粉砕されたものであった。焙煎が終了すると、作業者は、焙煎されたメリンジョを密封されたビンの中で５５重量％のエチルアルコールに２４時間漬けた。メリンジョエキスチューブ１本分のエチルアルコールの体積は５００ミリリットルであった。そのメリンジョが漬けられている間、そのエチルアルコールの温度は摂氏９０度に維持された。そのメリンジョが漬けられている間、そのエチルアルコールはスターラによって撹拌され続けられていた。２４時間メリンジョがエチルアルコールに漬けられた後、作業者は、そのエチルアルコールの上澄から未精製メリンジョエキスを抽出した。未精製メリンジョエキスの抽出には遠心エバポレータ（株式会社佐久間製作所製ＥＣ−５７Ｃ）が用いられた。抽出時間は１２時間であった。遠心エバポレータによって抽出された未精製メリンジョエキスは乾燥した粉末状であった。未精製メリンジョエキスが抽出されると、作業者は、その未精製メリンジョエキスにジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加え撹拌した。ジメチルスルホキシド水溶液の添加量は、未精製メリンジョエキスが抽出されたエチルアルコールの上澄５ミリリットルに対し、３ミリリットルであった。ジメチルスルホキシド水溶液が加えられ撹拌された未精製メリンジョエキスが、本実施例における未精製メリンジョエキス溶液である。撹拌が終了すると、作業者は、遠心分離機（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ社  Ｍｏｄｅｌ  ５４１５Ｒ）を用いることにより、その未精製メリンジョエキス溶液から不純物を除去した。この遠心分離機の回転速度は１５４００ｒｐｍであった。この遠心分離機の使用時間は１０分間であった。不純物が除去されたことにより、未精製メリンジョエキス溶液は精製メリンジョエキス溶液となった。作業者は、この精製メリンジョエキス溶液２グラム（３０ミリリットル）を所定のチューブに収容した。これが、メリンジョエキスチューブである。１本のメリンジョエキスチューブに入っている精製メリンジョエキス溶液の成分は、グネチンＣが０．４６重量％、レスベラトロールが０．１５重量％、ジメチルスルホキシドが６２．６２重量％、水分が３６．７７重量％である。
【００２５】
（Ｂ）  ビタミンチューブの調製
作業者は、ビタミンＥ （山口化研株式会社製）の粉末５０グラムをビンに入れた。次に、作業者は、そのビンにエチルアルコール（濃度は５５％重量）５００ミリリットルを入れた。これにより、ビタミンＥの粉末はそのエチルアルコールに漬けられたこととなる。その粉末はそのビンに密封された状態のままそのエチルアルコールに１２時間漬けられた。その間、エチルアルコールの温度は摂氏８０〜摂氏９０度であった。その間、その粉末とそのエチルアルコールとはスターラで攪拌された。その後、作業者は、その混合物を１２時間放置した。１２時間経過後、その混合物表面に薄い油膜が形成された。その油膜が精製されたビタミンＥ（以下「精製ビタミンＥ」と称される）である。作業者は、この精製ビタミンＥ１０ミリグラム（２０ミリリットル）を所定のチューブに収容した。このチューブは、メリンジョエキスチューブの調製に用いられるものと同じ種類のチューブである。精製ビタミンＥ１０ミリグラムが収容されたそのチューブが、ビタミンチューブである。
【００２６】
（Ｂ）  試料の調製
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液（質量は６グラム）と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）とを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６０．４６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３５．５１重量％である。
【００２７】
（Ｃ）  液体培地の調製
まず、作業者は、１リットルの滅菌精製水（アズワン株式会社製）に次の７種類の物質を加えた。１つ目の物質は、１０グラムの粉末培地（和光純薬工業株式会社製，Ｅ−ＭＥＭ  Ｐｏｗｄｅｒ，品番０５４−０９００１）である。２つ目の物質は、生後１０日以内の新生児仔牛の血清 （コスモ・バイオ株式会社製，品番０４−１０２−１Ａ）である。作業者は、この血清を１００ミリリットル前述された滅菌精製水に加えた。３つ目の物質はペニシリン・ストレプトマイシン（和光純薬工業株式会社製，品番１６８−２３１９１）である。このペニシリン・ストレプトマイシンの添加量は１０ミリリットルであった。４つ目の物質は、ビタミン液（和光純薬工業株式会社製，ＭＥＭビタミン溶液，品番１３０−１７１４１）である。このビタミン液の添加量は１０ミリリットルであった。５つ目の物質は、非必須アミノ酸液（和光純薬工業株式会社製，ＭＥＭ非必須アミノ酸溶液，品番１３９−１５６５１）である。この非必須アミノ酸液の添加量は１０ミリリットルであった。６つ目の物質は、ピルビン酸ナトリウム溶液（和光純薬工業株式会社製，ピルビン酸ナトリウム溶液，品番１９０−１４８８１）である。このピルビン酸ナトリウム溶液の添加量は１０ミリリットルであった。７つ目の物質は、１３．４グラムの炭酸水素ナトリウム（和光純薬工業株式会社製，品番１９８−０１３１５）である。これら７種類の物質が前述された滅菌精製水に加えられると、作業者は、それらの物質が加えられた滅菌精製水を撹拌した。撹拌された滅菌精製水が本実施例にかかる液体培地である。以下の説明では、この液体培地を「液培地」と称する。
【００２８】
（Ｄ）  コラーゲンゲルコートのプレパラート作製
まず、作業者は、くぼみのあるプレパラートに、５０マイクロリットルのコラーゲン培地（株式会社ニッピ製，コラーゲンゲル細胞培養キット，品番８９１５０３）を塗り広げた。コラーゲン培地が塗り広げられると、作業者は、そのプレパラートをインキュベータに収容した。インキュベータの内部の気温は摂氏３７度であった。インキュベータ内部で、そのプレパラートには波長３６５ナノメートルの紫外線が照射されていた。これにより、その培地は乾燥した。紫外線が２時間照射されると、作業者はそのプレパラートをインキュベータから取り出した。これが、細胞の観察に用いられるコラーゲンゲルコートのプレパラートである。
【００２９】
（Ｅ）  細胞の観察
まず、作業者は、コラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに２０マイクロリットルの液培地で培養されているＭＤＣＫ．２細胞（ＡＴＣＣ番号ＣＲＬ-２９３６）をその液培地ごと入れた。ＭＤＣＫ．２細胞がそのプレパラートに入れられてから６０分が経過した後、作業者は、そのＭＤＣＫ．２細胞に次に述べられる液体２０マイクロリットルをかけた。その液体はインフルエンザウィルスであるＨ３Ｎ２（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−１６８０）を含んでいた。これにより、そのＭＤＣＫ．２細胞はＨ３Ｎ２に感染した。感染から５０分が経過した後、作業者は、Ｈ３Ｎ２に感染したＭＤＣＫ．２細胞へ本実施例にかかる試料２０マイクロリットルをかけた。これらの作業は、光学顕微鏡で観察可能な環境で実施された。これらの作業が完了した後、作業者は、引続きＭＤＣＫ．２細胞を光学顕微鏡で観察した。
【００３０】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。試料がかけられてから１０分後、一部のＭＤＣＫ．２細胞が死滅したものの、大部分のＭＤＣＫ．２細胞はプレパラート底面に接着し正常な形態に戻り始めた。試料がかけられてから約５０分後にはＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂が開始された。試料がかけられてから５０分後にＭＤＣＫ．２細胞が正常に戻り分裂を開始することから、Ｈ３Ｎ２が死滅したものと考えられる。
【００３１】
[実施例２]
（１）  試験手順
作業者は、９本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが４．１１重量％、レスベラトロールが１．３３重量％、ジメチルスルホキシドが５８．１７重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３４．１７重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００３２】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、ほぼすべてのＭＤＣＫ．２細胞は正常に戻った。試料がかけられてから約５０分後に細胞分裂が開始された。
【００３３】
[実施例３]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は２倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは２分の１に希釈された。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．６９重量％、レスベラトロールが０．２２重量％、ジメチルスルホキシドが６１．７２重量％、ビタミンＥが１．１１重量％、水分が３６．２６重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００３４】
（２）  観察結果
観察結果は実施例２と同様であった。
【００３５】
[実施例４]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は４倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは４分の１に希釈された 。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．３４重量％、レスベラトロールが０．１１重量％、ジメチルスルホキシドが６２．３６重量％、ビタミンＥが０．５６重量％、水分が３６．６３重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００３６】
（２）  観察結果
観察結果は実施例２と同様であった。
【００３７】
[実施例５]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は８倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは８分の１に希釈された 。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．１７重量％、レスベラトロールが０．０６重量％、ジメチルスルホキシドが６２．６８重量％、ビタミンＥが０．２８重量％、水分が３６．８１重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００３８】
（２）  観察結果
観察結果は実施例２と同様であった。
【００３９】
[実施例６]
（１）  試験手順
作業者は、試料の調製にあたり、メリンジョエキスチューブ９本（精製メリンジョエキス溶液１８グラム）と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）とを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが４．１１重量％、レスベラトロールが１．３３重量％、ジメチルスルホキシドが５８．１７重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３４．１７重量％である。また、作業者は、細胞の観察にあたり、コラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみにＭＤＣＫ．２細胞を入れた。このＭＤＣＫ．２細胞は２０マイクロリットルの液培地で培養されていた。このＭＤＣＫ．２細胞はその液培地ごとそのくぼみに入れられた。ＭＤＣＫ．２細胞がそのプレパラートに入れられてから６０分が経過した後、作業者は、そのＭＤＣＫ．２細胞に次に述べられる液体２０マイクロリットルをかけた。その液体はＲＳウィルス（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−１５８０）を含んでいた。これにより、そのＭＤＣＫ．２細胞はＲＳウィルスに感染した。その他の点は実施例１と同様である。
【００４０】
（２）  観察結果
図１は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから３０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図２は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから７０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから１０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図３は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１００分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから４０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図４は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１２０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから６０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図５は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１５０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから９０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図６は、図１乃至図５すなわち実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真を時系列に沿って示した図である。図１乃至図６特に図１と図２とに示されているように、ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、一部のＭＤＣＫ．２細胞が死滅したものの、大部分のＭＤＣＫ．２細胞は正常に戻った。試料がかけられてから約１０分後に細胞分裂が開始された。また、図５にも示されているように、試料がかけられてから約４０分経過した時点で、膨張していた細胞がプレパラートの底に接着し、細胞の形態が正常に戻った。細胞数は減っていない。試料がかけられた後１０分後にＭＤＣＫ．２細胞が分裂を開始し、６０分経過するまでに正常な形態に戻ることから、ＲＳウィルスが死滅したものと考えられる。
【００４１】
[実施例７]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６０．４６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３５．５１重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００４２】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、ほぼすべてのＭＤＣＫ．２細胞は正常に戻った。試料がかけられてから約１０分後に細胞分裂が開始された。試料がかけられてから約６０分後に細胞数が増え、形態が正常にもどることから、ＲＳウィルスが死滅したと考えられる。
【００４３】
[実施例８]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は２倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは２分の１に希釈された。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．６９重量％、レスベラトロールが０．２２重量％、ジメチルスルホキシドが６１．７２重量％、ビタミンＥが１．１１重量％、水分が３６．２６重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００４４】
（２）  観察結果
観察結果は実施例７と同様であった。
【００４５】
[実施例９]
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は４倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは４分の１に希釈された。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．３４重量％、レスベラトロールが０．１１重量％、ジメチルスルホキシドが６２．３６重量％、ビタミンＥが０．５６重量％、水分が３６．６３重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００４６】
（２）  観察結果
観察結果は実施例７と同様であった。
【００４７】
[実施例１０]
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は８倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは８分の１に希釈された。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．１７重量％、レスベラトロールが０．０６重量％、ジメチルスルホキシドが６２．６８重量％、ビタミンＥが０．２８重量％、水分が３６．８１重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００４８】
（２）  観察結果
観察結果は実施例７と同様であった。
【００４９】
[実施例１１]
（１）  試験手順
（Ａ）  メリンジョエキスチューブの調製
作業者は、以下の手順に従って本実施例にかかるメリンジョエキスチューブを調製した。まず、作業者は、メリンジョの果実を密封されたビンの中で５５重量％のエチルアルコールに１２時間漬けた。そのメリンジョは、果皮と果実と種子とが丸ごと粉砕されたものであった。そのメリンジョは乾燥品ではない生のメリンジョであった。メリンジョエキスチューブ１本分のメリンジョの果実の質量は５０グラムであった。メリンジョエキスチューブ１本分のエチルアルコールの体積は５００ミリリットルであった。そのメリンジョが漬けられている間、そのエチルアルコールの温度は摂氏９０度に維持された。そのメリンジョが漬けられている間、そのエチルアルコールはスターラによって撹拌され続けられていた。１２時間メリンジョがエチルアルコールに漬けられた後、作業者は、そのエチルアルコールからメリンジョの固形成分を除去した。そのエチルアルコールから固形成分が除去されると、作業者は、そのエチルアルコールを密封されたビンに入れた。作業者は、ポンプにそのビンの中の気体をビンの外へ排出させた。その際、そのビンの内部の温度は摂氏４０度であった。気体の排気に伴い、そのビンの内部のエチルアルコールは蒸発した。作業者は、ビンの中に残った固形分３０ミリリットルを所定のチューブに入れた。この固形分が収容されたチューブが本実施例におけるメリンジョエキスチューブである。
【００５０】
（Ｂ）  試料の調製
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６０．４６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３５．５１重量％である。
【００５１】
（Ｃ）  細菌の培養
まず、作業者は、米飯を素手で握ることによってその米飯の塊を形成した。米飯の塊が形成されると、作業者はその米飯の塊を１日放置した。米飯の塊が一日放置された後、作業者は、その米飯の塊を５ｇ取り、ｐＨ７．４かつ７．５重量％塩化ナトリウム含有のリン酸緩衝生理食塩水ＰＢＳ（希釈液）に混ぜ、すり潰した。作業者はそのすり潰された希釈液を卵黄添加マンニット食塩培地に塗りつけた。すり潰された米飯が卵黄添加マンニット食塩培地に塗りつけられると、作業者はその卵黄添加マンニット食塩培地を摂氏３６度で４８時間放置した。これにより、細菌のコロニーが形成された。卵黄添加マンニット食塩培地が４８時間放置された後、作業者は、その卵黄添加マンニット食塩培地に形成された細菌のコロニーをリン酸緩衝生理食塩水１００マイクロリットルに溶かした。この細菌のコロニーが溶けたリン酸緩衝生理食塩水が本実施例にかかる細菌試料である。
【００５２】
（Ｅ）  細菌の観察
まず、作業者は、プレパラートのくぼみにリン酸緩衝生理食塩水を２０マイクロリットル入れた。そのくぼみにリン酸緩衝生理食塩水が２０マイクロリットル入ると、作業者は、そのくぼみに２０マイクロリットルの細菌試料を入れた。次に、作業者は、その細菌試料に本実施例にかかる試料をかけた。その後、作業者は、そのくぼみの中の細菌を光学顕微鏡で観察した。
【００５３】
（２）  観察結果
細菌試料には、黄色ブドウ球菌および棹菌が含まれた。これらの細菌は、本実施例にかかる試料がかけられてから１時間経過した時点で、プレパラートのくぼみの底に沈んでいた。試料がかけられてから１時間後にすべての細菌が死滅した。
【００５４】
[実施例１２]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、９本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが４．１１重量％、レスベラトロールが１．３３重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５８．１７重量％、水分が３４．１７重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００５５】
（２）  観察結果
観察結果は実施例１１と同様であった。
【００５６】
[比較例１]
（１）  試験手順
作業者は、３０本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液（質量は６０グラム）と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）とを試験管内で４５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６０ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１３．７重量％、レスベラトロールが４．４重量％、ジメチルスルホキシドが５０．２０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が２９．４８重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００５７】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は止まった。試料がかけられた後、ＭＤＣＫ．２細胞が次第に減少した。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は観察されなかった。
【００５８】
[比較例２]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は１６倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは１６分の１に希釈された。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．０９重量％、レスベラトロールが０．０６重量％、ジメチルスルホキシドが６２．８１重量％、ビタミンＥが０．１４重量％、水分が３６．９０重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００５９】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、ＭＤＣＫ．２細胞の形態に変化は見当たらなかった。ＭＤＣＫ．２細胞の分裂は見られず６０分後に細胞数が減った。膨張した感染細胞も見られた。
【００６０】
[比較例３]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６１．８６重量％、水分が３６．３３重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００６１】
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００６２】
[比較例４]
（１）  試験手順
作業者は、１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが６１．６０重量％、水分が３６．１８重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００６３】
[比較例５]
（１）  試験手順
（Ａ）  カテキンエキスチューブの調製
作業者は、カテキンエキスチューブを調製した。「カテキンエキスチューブ」とは、後述される精製カテキンエキス溶液が後述される所定のチューブに収容されたものである。作業者は、以下の手順に従って本実施例にかかるカテキンエキスチューブを調製した。まず、作業者は、チャノキ（学名：Ｃａｍｅｌｌｉａ  ｓｉｎｅｎｓｉｓ  （Ｌ．）  Ｋｕｎｔｚｅ）の葉を摂氏１１０度で１０分間焙煎した。カテキンエキスチューブ１本分のチャノキの葉の質量は５０グラムであった。焙煎が終了すると、作業者は、焙煎されたチャノキの葉を密封されたビンの中で５５重量％のエチルアルコールに２４時間漬けた。カテキンエキスチューブ１本分のエチルアルコールの体積は５００ミリリットルであった。そのチャノキの葉が漬けられている間、そのエチルアルコールの温度は摂氏９０度に維持された。そのチャノキの葉が漬けられている間、そのエチルアルコールはスターラによって撹拌され続けられていた。２４時間チャノキの葉がエチルアルコールに漬けられた後、作業者は、そのエチルアルコールの上清から未精製カテキンエキスを抽出した。未精製カテキンエキスの抽出には遠心エバポレータ（株式会社佐久間製作所製ＥＣ−５７Ｃ）が用いられた。抽出時間は１２時間であった。遠心エバポレータによって抽出された未精製カテキンエキスは乾燥した粉末状であった。未精製カテキンエキスが抽出されると、作業者は、その未精製カテキンエキスにジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加え撹拌した。ジメチルスルホキシド水溶液の添加量は、未精製メリンジョエキスが抽出されたエチルアルコールの上澄５ミリリットルに対し、３ミリリットルであった。ジメチルスルホキシド水溶液が加えられ撹拌された未精製キテキンエキスが、本実施例における未精製カテキンエキス溶液である。撹拌が終了すると、作業者は、遠心分離機（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ社  Ｍｏｄｅｌ  ５４１５Ｒ）を用いることにより、その未精製カテキンエキス溶液から不純物を除去した。この遠心分離機の回転速度は１５４００ｒｐｍであった。この遠心分離機の使用時間は１０分間であった。不純物が除去されたことにより、未精製キテキンエキス溶液は精製カテキンエキス溶液となった。作業者は、この精製カテキンエキス溶液２グラム（３０ミリリットル）を所定のチューブに収容した。これが、カテキンエキスチューブである。
【００６４】
（Ｂ）  試料の調製
本比較例においては、作業者は、９本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが１６．８０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５１．０２％、水分が２９．９６重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００６５】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後もＭＤＣＫ．２細胞の状態に改善は見られず、６０分後にＭＤＣＫ．２細胞は順次死滅した。ＭＤＣＫ．２細胞に細胞分裂は観察されず、膨張した感染細胞も見られた。
【００６６】
[比較例６]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、３本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが５．６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５８．１７重量％、水分が３４．１１重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００６７】
（２）  観察結果
観察結果は比較例５と同様であった。
【００６８】
[比較例７]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシド６１．６重量％、水分が３６．１８重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００６９】
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００７０】
[比較例８]
（１）  試験手順
作業者は、試料の調製にあたり、メリンジョエキスチューブ３０本（精製メリンジョエキス溶液６０グラム）と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）とを試験管内で４５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６０ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１３．７重量％、レスベラトロールが４．４重量％、ジメチルスルホキシドが５０．２０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が２９．４８重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００７１】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は止まった。試料がかけられた後、ＭＤＣＫ．２細胞が次第に減少した。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は観察されなかった。
【００７２】
[比較例９]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は１６倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは１６分の１に希釈された。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．０９重量％、レスベラトロールが０．０６重量％、ジメチルスルホキシドが６２．８１重量％、ビタミンＥが０．１４重量％、水分が３６．９０重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００７３】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、ＭＤＣＫ．２細胞の形態に変化は見当たらなかった。膨張した感染細胞も見られた。
【００７４】
[比較例１０]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２９ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１０ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。その他の点は実施例６と同様である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６１．８６重量％、水分が３６．３３重量％である。
【００７５】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は止まった。試料がかけられた後、比較的な多くのＭＤＣＫ．２細胞は正常に戻ったが、一部のＭＤＣＫ．２細胞ＭＤＣＫ．２細胞は膨張したままだった。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は生じなかった。
【００７６】
[比較例１１]
（１）  試験手順
作業者は、３本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが５．６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５８．０７重量％、水分が３４．１１重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００７７】
（２）  観察結果
観察結果は比較例９と同様であった。
【００７８】
[比較例１２]
（１）  試験手順
作業者は、９本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが１６．８０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５１．０２重量％、水分が２９．９６重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００７９】
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００８０】
[比較例１３]
（１）  試験手順
本比較例の試料は比較例７のものと同一である。その他の点は実施例６と同様である。
【００８１】
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００８２】
[比較例１４]
（１）  試験手順
本比較例では、実施例１と同様の手順でＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートに入れた。ＭＤＣＫ．２細胞をそのプレパラートに入れてから６０分が経過した後、作業者は、そのＭＤＣＫ．２細胞に次に述べられる液体２０マイクロリットルをかけた。その液体はＲＳウィルス（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−１５８０）を含んでいた。これにより、そのＭＤＣＫ．２細胞はＲＳウィルスに感染した。その後、そのＭＤＣＫ．２細胞へは何もかけられなかった。ＲＳウィルスを含む液体がかけられた後、作業者は、引続きＭＤＣＫ．２細胞を光学顕微鏡で観察した。
【００８３】
（２）  観察結果
図７は本比較例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから３０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図８は本比較例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから７０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから１０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図９は本比較例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１２０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから６０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図１０は本比較例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１８０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから１２０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図１１は、図７乃至図１０すなわち比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真を時系列に沿って示した図である。図７乃至図１１に示されているように、ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は止まった。
【００８４】
[比較例１５]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、９本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが１６．８０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５１．０２重量％、水分が２９．９６重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００８５】
（２）  観察結果
細菌は、試料がかけられてから２時間が経過した後も生存し、全滅しなかった。黄色ブドウ球菌の大部分は弱り死滅した。棹菌は死滅せず生き残っていた。
【００８６】
[比較例１６]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、３本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが５．６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５８．０７重量％、水分が３４．１１重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００８７】
（２）  観察結果
観察結果は比較例１５と同様であった。
【００８８】
[比較例１７]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが６１．６重量％、水分が３６．１８重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００８９】
（２）  観察結果
細菌は、試料がかけられてから２時間経過した時点において、黄色ブドウ球菌の形態にもその数にも何ら変化は見当たらなかった 。
【００９０】
[比較例１８]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、３本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが５．６重量％、ジメチルスルホキシドが５８．０７重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３４．１１重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００９１】
（２）  観察結果
観察結果は比較例１５と同様であった。
【００９２】
[比較例１９]
本比較例では、実施例１１で培養された細菌試料が用いられた。作業者は、細菌試料へ実施例１１の説明にて記述されたリン酸緩衝生理食塩水２０マイクロリットルのみをかけた。その後、作業者は、細菌試料の観察を行った。リン酸緩衝生理食塩水がかけられてから２時間経過した時点において、黄色ブドウ球菌の形態にもその数にも何ら変化は見当たらなかった。
【図１】
2018024592.tif 000003
【図２】
2018024592.tif 000004
【図３】
2018024592.tif 000005
【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
2018024592.tif 000009
【図８】
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【図９】
2018024592.tif 000011
【図１０】
2018024592.tif 000012
【図１１】
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【手続補正書】
【提出日】平成29年7月13日(2017.7.13)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、抗生物質含有組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
特許文献１は、インフルエンザウィルス感染予防剤を開示する。特許文献１に開示されたインフルエンザウィルス感染予防剤は、チャノキの葉を有効成分とする。特許文献１に開示されたインフルエンザウィルス感染予防剤は、抗原性に依存せずウィルスの感染を有効に防ぐことができ、かつ、人体に対して有害な副作用を持たない。
【０００３】
特許文献２は、医薬組成物を開示する。特許文献２に開示された医薬組成物は修飾カテキンを含む。特許文献２に開示された医薬組成物は抗菌活性を上昇させることができる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開平３−１０１６２３号公報
【特許文献２】特表２００７−５２１２３９号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
しかしながら、特許文献１に開示されたインフルエンザウィルス感染予防剤と特許文献２に開示された医薬組成物には、その効果の発現が遅いという問題点がある。
【０００６】
本発明は、速く効果が現れる抗生物質含有組成物の提供を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者は、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、メリンジョエキスとビタミンＥとを含む抗生物質含有組成物が細菌およびウィルスの活動を迅速に抑えることを見出し、本発明を完成させた。
【０００８】
すなわち、本発明は、抗生物質含有組成物にかかる発明である。この抗生物質含有組成物は、グネチンＣと、レスベラトロールと、ビタミンＥと、流動化物質とを含む。グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上４．１１重量％以下である。レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上１．３３重量％以下である。ビタミンＥの重量％が０．２８重量％以上２．２２重量％以下である。
【０００９】
また、上述したグネチンＣの重量％が０．１７重量％以上１．３７重量％以下であることが好ましい。この場合、レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．４４重量％以下であることが好ましい。
【００１０】
もしくは、上述したグネチンＣの重量％とレスベラトロールの重量％との和が０．２３重量％以上１．８１重量％以下であることが好ましい。
【００１１】
また、上述したグネチンＣの重量％が０．１７重量％以上０．６９重量％以下であることが好ましい。この場合、レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．２２重量％以下であることが好ましい。
【発明の効果】
【００１２】
本発明の抗生物質含有組成物は、速く効果が現れる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから３０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図２】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから７０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図３】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１００分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図４】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１２０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図５】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１５０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図６】実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真を時系列に沿って示した図である。
【図７】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから３０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図８】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから７０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図９】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１２０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図１０】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１８０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真である。
【図１１】比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真を時系列に沿って示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
［成分の説明］
本発明について以下詳細に説明する。本発明の抗生物質含有組成物は、グネチンＣと、レスベラトロールと、ビタミンＥと、流動化物質とを含む。
【００１５】
（グネチンＣの説明）
グネチンＣは、レスベラトロールの二量体である。グネチンＣの構造式は周知なのでここでは繰り返されない。グネチンＣは、例えばメリンジョ（学名：Ｇｎｅｔｕｍ ｇｎｅｍｏｎ）の果実に含まれる。本発明においては、グネチンＣの重量％は０．１７重量％以上４．１１重量％以下である。好ましくは、グネチンＣの重量％は０．１７重量％以上１．３７重量％以下である。より好ましくは、グネチンＣの重量％は０．１７重量％以上０．６９重量％以下である。
【００１６】
（レスベラトロールの説明）
レスベラトロールはスチルベン誘導体の一種である。レスベラトロールの構造式は周知なのでここでは繰り返されない。レスベラトロールは、赤ワイン、赤ブドウの果皮、ピーナッツの皮、イタドリ、メリンジョなどに含まれる。本発明においては、レスベラトロールの重量％は０．０６重量％以上１．３３重量％以下である。好ましくは、レスベラトロールの重量％は０．０６重量％以上０．４４重量％以下である。より好ましくは、レスベラトロールの重量％は０．０６重量％以上０．２２重量％以下である。
【００１７】
なお、グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上１．３７重量％以下であり、かつ、レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．４４重量％以下であるとき、グネチンＣの重量％とレスベラトロールの重量％との和が０．２３重量％以上１．８１重量％以下であることが好ましい。
【００１８】
（ビタミンＥの説明）
ビタミンＥの構造は周知なのでここではその説明が繰り返されない。本発明においては、ビタミンＥの重量％は０．２８重量％以上２．２２重量％以下である。好ましくは、ビタミンＥの重量％は０．２８重量％以上１．１１重量％以下である。
【００１９】
（流動化物質の説明）
流動化物質は、本発明の抗生物質含有組成物を流動しやすくする物質である。流動化物質の具体的な成分は、グネチンＣ、レスベラトロール、および、ビタミンＥの相乗効果を完全に失わせるものでない限り、特に限定されない。ただし、流動化物質は、グネチンＣ、レスベラトロール、および、ビタミンＥの相乗効果を損なわない物質であることが好ましい。流動化物質は、グネチンＣ、レスベラトロール、および、ビタミンＥの相乗効果を高める物質であることがより好ましい。流動化物質の例には、ジメチルスルホキシド、精製水がある。
【００２０】
（その他の成分の説明）
本発明の抗生物質含有組成物は、グネチンＣ、レスベラトロール、ビタミンＥ、および、流動化物質以外の成分を含んでもよい。そのような成分の例には、グネチンＣの配糖体がある。グネチンＣの配糖体の例には、グネモノシドＡと、グネモノシドＣと、グネモノシドＤとがある。そのような成分の具体的な内容は、グネチンＣ、レスベラトロール、および、ビタミンＥの相乗効果を完全に失わせるものでない限り、特に限定されない。もちろん、本発明の抗生物質含有組成物は、グネチンＣ、レスベラトロール、ビタミンＥ、および、流動化物質のみからなっていてもよい。
【００２１】
［製造方法の説明］
本発明の抗生物質含有組成物の製造方法は特に限定されない。その一例は、エキス抽出工程と、果実粉砕工程と、ビタミンＥ添加工程と、流動化工程とを備える。エキス抽出工程は、メリンジョの果実からメリンジョエキスを抽出する工程である。メリンジョエキスは、メリンジョの果実のエキスである。メリンジョエキスがグネチンＣとレスベラトロールとを含む。果実粉砕工程は、メリンジョの果実を粉砕する工程である。メリンジョの果実が粉砕されるのは、エキス抽出工程においてメリンジョの果実からメリンジョエキスが抽出される前である。ビタミンＥ添加工程は、エキス抽出工程の後にメリンジョエキスにビタミンＥを添加する工程である。流動化工程は、メリンジョエキスに流動性を付与する工程である。
【００２２】
［用途及び使用方法の説明］
本発明にかかる抗生物質含有組成物は、次に述べられる様々な用途に利用できる。その用途は、細菌およびウィルスの駆除、それらの殺菌、ならびに、それらの増殖抑制である。本発明にかかる抗生物質含有組成物が対象とする細菌およびウィルスの範囲は特に限定されない。本発明にかかる抗生物質含有組成物は、様々な細菌および様々なウィルスを駆除できる。本発明にかかる抗生物質含有組成物は、様々な方法で使用できる。その例には、内服薬、塗り薬、湿布、および、スプレーがある。
【実施例】
【００２３】
以下に、実施例を示して本発明を具体的に説明する。ただし、本発明はこれらに限定されない。
【００２４】
[実施例１]
（１）  試験手順
（Ａ）  メリンジョエキスチューブの調製
作業者は、メリンジョエキスチューブを調製した。「メリンジョエキスチューブ」とは、後述される精製メリンジョエキス溶液が後述される所定のチューブに収容されたものである。作業者は、以下の手順に従って本実施例にかかるメリンジョエキスチューブを調製した。まず、作業者は、メリンジョ（学名：Ｇｎｅｔｕｍ ｇｎｅｍｏｎ）の果実を摂氏１１０度で１０分間焙煎した。メリンジョエキスチューブ１本分のメリンジョの果実の質量は５０グラムであった。焙煎により、そのメリンジョの含水率は８重量％となった。そのメリンジョは、果皮と果実と種子とが丸ごと粉砕されたものであった。焙煎が終了すると、作業者は、焙煎されたメリンジョを密封されたビンの中で５５重量％のエチルアルコールに２４時間漬けた。メリンジョエキスチューブ１本分のエチルアルコールの体積は５００ミリリットルであった。そのメリンジョが漬けられている間、そのエチルアルコールの温度は摂氏９０度に維持された。そのメリンジョが漬けられている間、そのエチルアルコールはスターラによって撹拌され続けられていた。２４時間メリンジョがエチルアルコールに漬けられた後、作業者は、そのエチルアルコールの上澄から未精製メリンジョエキスを抽出した。未精製メリンジョエキスの抽出には遠心エバポレータ（株式会社佐久間製作所製ＥＣ−５７Ｃ）が用いられた。抽出時間は１２時間であった。遠心エバポレータによって抽出された未精製メリンジョエキスは乾燥した粉末状であった。未精製メリンジョエキスが抽出されると、作業者は、その未精製メリンジョエキスにジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加え撹拌した。ジメチルスルホキシド水溶液の添加量は、未精製メリンジョエキスが抽出されたエチルアルコールの上澄５ミリリットルに対し、３ミリリットルであった。ジメチルスルホキシド水溶液が加えられ撹拌された未精製メリンジョエキスが、本実施例における未精製メリンジョエキス溶液である。撹拌が終了すると、作業者は、遠心分離機（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ社  Ｍｏｄｅｌ  ５４１５Ｒ）を用いることにより、その未精製メリンジョエキス溶液から不純物を除去した。この遠心分離機の回転速度は１５４００ｒｐｍであった。この遠心分離機の使用時間は１０分間であった。不純物が除去されたことにより、未精製メリンジョエキス溶液は精製メリンジョエキス溶液となった。作業者は、この精製メリンジョエキス溶液２グラム（３０ミリリットル）を所定のチューブに収容した。これが、メリンジョエキスチューブである。１本のメリンジョエキスチューブに入っている精製メリンジョエキス溶液の成分は、グネチンＣが０．４６重量％、レスベラトロールが０．１５重量％、ジメチルスルホキシドが６２．６２重量％、水分が３６．７７重量％である。
【００２５】
（Ｂ）  ビタミンチューブの調製
作業者は、ビタミンＥ （山口化研株式会社製）の粉末５０グラムをビンに入れた。次に、作業者は、そのビンにエチルアルコール（濃度は５５％重量）５００ミリリットルを入れた。これにより、ビタミンＥの粉末はそのエチルアルコールに漬けられたこととなる。その粉末はそのビンに密封された状態のままそのエチルアルコールに１２時間漬けられた。その間、エチルアルコールの温度は摂氏８０〜摂氏９０度であった。その間、その粉末とそのエチルアルコールとはスターラで攪拌された。その後、作業者は、その混合物を１２時間放置した。１２時間経過後、その混合物表面に薄い油膜が形成された。その油膜が精製されたビタミンＥ（以下「精製ビタミンＥ」と称される）である。作業者は、この精製ビタミンＥ１０ミリグラム（２０ミリリットル）を所定のチューブに収容した。このチューブは、メリンジョエキスチューブの調製に用いられるものと同じ種類のチューブである。精製ビタミンＥ１０ミリグラムが収容されたそのチューブが、ビタミンチューブである。
【００２６】
（Ｂ）  試料の調製
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液（質量は６グラム）と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）とを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６０．４６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３５．５１重量％である。
【００２７】
（Ｃ）  液体培地の調製
まず、作業者は、１リットルの滅菌精製水（アズワン株式会社製）に次の７種類の物質を加えた。１つ目の物質は、１０グラムの粉末培地（和光純薬工業株式会社製，Ｅ−ＭＥＭ  Ｐｏｗｄｅｒ，品番０５４−０９００１）である。２つ目の物質は、生後１０日以内の新生児仔牛の血清 （コスモ・バイオ株式会社製，品番０４−１０２−１Ａ）である。作業者は、この血清を１００ミリリットル前述された滅菌精製水に加えた。３つ目の物質はペニシリン・ストレプトマイシン（和光純薬工業株式会社製，品番１６８−２３１９１）である。このペニシリン・ストレプトマイシンの添加量は１０ミリリットルであった。４つ目の物質は、ビタミン液（和光純薬工業株式会社製，ＭＥＭビタミン溶液，品番１３０−１７１４１）である。このビタミン液の添加量は１０ミリリットルであった。５つ目の物質は、非必須アミノ酸液（和光純薬工業株式会社製，ＭＥＭ非必須アミノ酸溶液，品番１３９−１５６５１）である。この非必須アミノ酸液の添加量は１０ミリリットルであった。６つ目の物質は、ピルビン酸ナトリウム溶液（和光純薬工業株式会社製，ピルビン酸ナトリウム溶液，品番１９０−１４８８１）である。このピルビン酸ナトリウム溶液の添加量は１０ミリリットルであった。７つ目の物質は、１３．４グラムの炭酸水素ナトリウム（和光純薬工業株式会社製，品番１９８−０１３１５）である。これら７種類の物質が前述された滅菌精製水に加えられると、作業者は、それらの物質が加えられた滅菌精製水を撹拌した。撹拌された滅菌精製水が本実施例にかかる液体培地である。以下の説明では、この液体培地を「液培地」と称する。
【００２８】
（Ｄ）  コラーゲンゲルコートのプレパラート作製
まず、作業者は、くぼみのあるプレパラートに、５０マイクロリットルのコラーゲン培地（株式会社ニッピ製，コラーゲンゲル細胞培養キット，品番８９１５０３）を塗り広げた。コラーゲン培地が塗り広げられると、作業者は、そのプレパラートをインキュベータに収容した。インキュベータの内部の気温は摂氏３７度であった。インキュベータ内部で、そのプレパラートには波長３６５ナノメートルの紫外線が照射されていた。これにより、その培地は乾燥した。紫外線が２時間照射されると、作業者はそのプレパラートをインキュベータから取り出した。これが、細胞の観察に用いられるコラーゲンゲルコートのプレパラートである。
【００２９】
（Ｅ）  細胞の観察
まず、作業者は、コラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに２０マイクロリットルの液培地で培養されているＭＤＣＫ．２細胞（ＡＴＣＣ番号ＣＲＬ-２９３６）をその液培地ごと入れた。ＭＤＣＫ．２細胞がそのプレパラートに入れられてから６０分が経過した後、作業者は、そのＭＤＣＫ．２細胞に次に述べられる液体２０マイクロリットルをかけた。その液体はインフルエンザウィルスであるＨ３Ｎ２（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−１６８０）を含んでいた。これにより、そのＭＤＣＫ．２細胞はＨ３Ｎ２に感染した。感染から５０分が経過した後、作業者は、Ｈ３Ｎ２に感染したＭＤＣＫ．２細胞へ本実施例にかかる試料２０マイクロリットルをかけた。これらの作業は、光学顕微鏡で観察可能な環境で実施された。これらの作業が完了した後、作業者は、引続きＭＤＣＫ．２細胞を光学顕微鏡で観察した。
【００３０】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。試料がかけられてから１０分後、一部のＭＤＣＫ．２細胞が死滅したものの、大部分のＭＤＣＫ．２細胞はプレパラート底面に接着し正常な形態に戻り始めた。試料がかけられてから約５０分後にはＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂が開始された。試料がかけられてから５０分後にＭＤＣＫ．２細胞が正常に戻り分裂を開始することから、Ｈ３Ｎ２が死滅したものと考えられる。
【００３１】
[実施例２]
（１）  試験手順
作業者は、９本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが４．１１重量％、レスベラトロールが１．３３重量％、ジメチルスルホキシドが５８．１７重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３４．１７重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００３２】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、ほぼすべてのＭＤＣＫ．２細胞は正常に戻った。試料がかけられてから約５０分後に細胞分裂が開始された。
【００３３】
[実施例３]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は２倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは２分の１に希釈された。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．６９重量％、レスベラトロールが０．２２重量％、ジメチルスルホキシドが６１．７２重量％、ビタミンＥが１．１１重量％、水分が３６．２６重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００３４】
（２）  観察結果
観察結果は実施例２と同様であった。
【００３５】
[実施例４]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は４倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは４分の１に希釈された 。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．３４重量％、レスベラトロールが０．１１重量％、ジメチルスルホキシドが６２．３６重量％、ビタミンＥが０．５６重量％、水分が３６．６３重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００３６】
（２）  観察結果
観察結果は実施例２と同様であった。
【００３７】
[実施例５]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は８倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは８分の１に希釈された 。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．１７重量％、レスベラトロールが０．０６重量％、ジメチルスルホキシドが６２．６８重量％、ビタミンＥが０．２８重量％、水分が３６．８１重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００３８】
（２）  観察結果
観察結果は実施例２と同様であった。
【００３９】
[実施例６]
（１）  試験手順
作業者は、試料の調製にあたり、メリンジョエキスチューブ９本（精製メリンジョエキス溶液１８グラム）と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）とを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが４．１１重量％、レスベラトロールが１．３３重量％、ジメチルスルホキシドが５８．１７重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３４．１７重量％である。また、作業者は、細胞の観察にあたり、コラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみにＭＤＣＫ．２細胞を入れた。このＭＤＣＫ．２細胞は２０マイクロリットルの液培地で培養されていた。このＭＤＣＫ．２細胞はその液培地ごとそのくぼみに入れられた。ＭＤＣＫ．２細胞がそのプレパラートに入れられてから６０分が経過した後、作業者は、そのＭＤＣＫ．２細胞に次に述べられる液体２０マイクロリットルをかけた。その液体はＲＳウィルス（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−１５８０）を含んでいた。これにより、そのＭＤＣＫ．２細胞はＲＳウィルスに感染した。その他の点は実施例１と同様である。
【００４０】
（２）  観察結果
図１は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから３０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図２は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから７０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから１０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図３は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１００分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから４０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図４は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１２０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから６０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図５は本実施例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１５０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから９０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図６は、図１乃至図５すなわち実施例６にかかるＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真を時系列に沿って示した図である。図１乃至図６特に図１と図２とに示されているように、ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、一部のＭＤＣＫ．２細胞が死滅したものの、大部分のＭＤＣＫ．２細胞は正常に戻った。試料がかけられてから約１０分後に細胞分裂が開始された。また、図５にも示されているように、試料がかけられてから約４０分経過した時点で、膨張していた細胞がプレパラートの底に接着し、細胞の形態が正常に戻った。細胞数は減っていない。試料がかけられた後１０分後にＭＤＣＫ．２細胞が分裂を開始し、６０分経過するまでに正常な形態に戻ることから、ＲＳウィルスが死滅したものと考えられる。
【００４１】
[実施例７]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６０．４６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３５．５１重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００４２】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、ほぼすべてのＭＤＣＫ．２細胞は正常に戻った。試料がかけられてから約１０分後に細胞分裂が開始された。試料がかけられてから約６０分後に細胞数が増え、形態が正常にもどることから、ＲＳウィルスが死滅したと考えられる。
【００４３】
[実施例８]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は２倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは２分の１に希釈された。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．６９重量％、レスベラトロールが０．２２重量％、ジメチルスルホキシドが６１．７２重量％、ビタミンＥが１．１１重量％、水分が３６．２６重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００４４】
（２）  観察結果
観察結果は実施例７と同様であった。
【００４５】
[実施例９]
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は４倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは４分の１に希釈された。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．３４重量％、レスベラトロールが０．１１重量％、ジメチルスルホキシドが６２．３６重量％、ビタミンＥが０．５６重量％、水分が３６．６３重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００４６】
（２）  観察結果
観察結果は実施例７と同様であった。
【００４７】
[実施例１０]
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は８倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは８分の１に希釈された。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．１７重量％、レスベラトロールが０．０６重量％、ジメチルスルホキシドが６２．６８重量％、ビタミンＥが０．２８重量％、水分が３６．８１重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００４８】
（２）  観察結果
観察結果は実施例７と同様であった。
【００４９】
[実施例１１]
（１）  試験手順
（Ａ）  メリンジョエキスチューブの調製
作業者は、以下の手順に従って本実施例にかかるメリンジョエキスチューブを調製した。まず、作業者は、メリンジョの果実を密封されたビンの中で５５重量％のエチルアルコールに１２時間漬けた。そのメリンジョは、果皮と果実と種子とが丸ごと粉砕されたものであった。そのメリンジョは乾燥品ではない生のメリンジョであった。メリンジョエキスチューブ１本分のメリンジョの果実の質量は５０グラムであった。メリンジョエキスチューブ１本分のエチルアルコールの体積は５００ミリリットルであった。そのメリンジョが漬けられている間、そのエチルアルコールの温度は摂氏９０度に維持された。そのメリンジョが漬けられている間、そのエチルアルコールはスターラによって撹拌され続けられていた。１２時間メリンジョがエチルアルコールに漬けられた後、作業者は、そのエチルアルコールからメリンジョの固形成分を除去した。そのエチルアルコールから固形成分が除去されると、作業者は、そのエチルアルコールを密封されたビンに入れた。作業者は、ポンプにそのビンの中の気体をビンの外へ排出させた。その際、そのビンの内部の温度は摂氏４０度であった。気体の排気に伴い、そのビンの内部のエチルアルコールは蒸発した。作業者は、ビンの中に残った固形分３０ミリリットルを所定のチューブに入れた。この固形分が収容されたチューブが本実施例におけるメリンジョエキスチューブである。
【００５０】
（Ｂ）  試料の調製
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６０．４６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３５．５１重量％である。
【００５１】
（Ｃ）  細菌の培養
まず、作業者は、米飯を素手で握ることによってその米飯の塊を形成した。米飯の塊が形成されると、作業者はその米飯の塊を１日放置した。米飯の塊が一日放置された後、作業者は、その米飯の塊を５ｇ取り、ｐＨ７．４かつ７．５重量％塩化ナトリウム含有のリン酸緩衝生理食塩水ＰＢＳ（希釈液）に混ぜ、すり潰した。作業者はそのすり潰された希釈液を卵黄添加マンニット食塩培地に塗りつけた。すり潰された米飯が卵黄添加マンニット食塩培地に塗りつけられると、作業者はその卵黄添加マンニット食塩培地を摂氏３６度で４８時間放置した。これにより、細菌のコロニーが形成された。卵黄添加マンニット食塩培地が４８時間放置された後、作業者は、その卵黄添加マンニット食塩培地に形成された細菌のコロニーをリン酸緩衝生理食塩水１００マイクロリットルに溶かした。この細菌のコロニーが溶けたリン酸緩衝生理食塩水が本実施例にかかる細菌試料である。
【００５２】
（Ｅ）  細菌の観察
まず、作業者は、プレパラートのくぼみにリン酸緩衝生理食塩水を２０マイクロリットル入れた。そのくぼみにリン酸緩衝生理食塩水が２０マイクロリットル入ると、作業者は、そのくぼみに２０マイクロリットルの細菌試料を入れた。次に、作業者は、その細菌試料に本実施例にかかる試料をかけた。その後、作業者は、そのくぼみの中の細菌を光学顕微鏡で観察した。
【００５３】
（２）  観察結果
細菌試料には、黄色ブドウ球菌および棹菌が含まれた。これらの細菌は、本実施例にかかる試料がかけられてから１時間経過した時点で、プレパラートのくぼみの底に沈んでいた。試料がかけられてから１時間後にすべての細菌が死滅した。
【００５４】
[実施例１２]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、９本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本実施例にかかる試料である。したがって、本実施例にかかる試料の成分は、グネチンＣが４．１１重量％、レスベラトロールが１．３３重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５８．１７重量％、水分が３４．１７重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００５５】
（２）  観察結果
観察結果は実施例１１と同様であった。
【００５６】
[比較例１]
（１）  試験手順
作業者は、３０本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液（質量は６０グラム）と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）とを試験管内で４５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６０ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１３．７重量％、レスベラトロールが４．４重量％、ジメチルスルホキシドが５０．２０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が２９．４８重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００５７】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は止まった。試料がかけられた後、ＭＤＣＫ．２細胞が次第に減少した。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は観察されなかった。
【００５８】
[比較例２]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は１６倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは１６分の１に希釈された。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．０９重量％、レスベラトロールが０．０６重量％、ジメチルスルホキシドが６２．８１重量％、ビタミンＥが０．１４重量％、水分が３６．９０重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００５９】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、ＭＤＣＫ．２細胞の形態に変化は見当たらなかった。ＭＤＣＫ．２細胞の分裂は見られず６０分後に細胞数が減った。膨張した感染細胞も見られた。
【００６０】
[比較例３]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６１．８６重量％、水分が３６．３３重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００６１】
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００６２】
[比較例４]
（１）  試験手順
作業者は、１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが６１．６０重量％、水分が３６．１８重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００６３】
[比較例５]
（１）  試験手順
（Ａ）  カテキンエキスチューブの調製
作業者は、カテキンエキスチューブを調製した。「カテキンエキスチューブ」とは、後述される精製カテキンエキス溶液が後述される所定のチューブに収容されたものである。作業者は、以下の手順に従って本実施例にかかるカテキンエキスチューブを調製した。まず、作業者は、チャノキ（学名：Ｃａｍｅｌｌｉａ  ｓｉｎｅｎｓｉｓ  （Ｌ．）  Ｋｕｎｔｚｅ）の葉を摂氏１１０度で１０分間焙煎した。カテキンエキスチューブ１本分のチャノキの葉の質量は５０グラムであった。焙煎が終了すると、作業者は、焙煎されたチャノキの葉を密封されたビンの中で５５重量％のエチルアルコールに２４時間漬けた。カテキンエキスチューブ１本分のエチルアルコールの体積は５００ミリリットルであった。そのチャノキの葉が漬けられている間、そのエチルアルコールの温度は摂氏９０度に維持された。そのチャノキの葉が漬けられている間、そのエチルアルコールはスターラによって撹拌され続けられていた。２４時間チャノキの葉がエチルアルコールに漬けられた後、作業者は、そのエチルアルコールの上清から未精製カテキンエキスを抽出した。未精製カテキンエキスの抽出には遠心エバポレータ（株式会社佐久間製作所製ＥＣ−５７Ｃ）が用いられた。抽出時間は１２時間であった。遠心エバポレータによって抽出された未精製カテキンエキスは乾燥した粉末状であった。未精製カテキンエキスが抽出されると、作業者は、その未精製カテキンエキスにジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加え撹拌した。ジメチルスルホキシド水溶液の添加量は、未精製メリンジョエキスが抽出されたエチルアルコールの上澄５ミリリットルに対し、３ミリリットルであった。ジメチルスルホキシド水溶液が加えられ撹拌された未精製キテキンエキスが、本実施例における未精製カテキンエキス溶液である。撹拌が終了すると、作業者は、遠心分離機（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ社  Ｍｏｄｅｌ  ５４１５Ｒ）を用いることにより、その未精製カテキンエキス溶液から不純物を除去した。この遠心分離機の回転速度は１５４００ｒｐｍであった。この遠心分離機の使用時間は１０分間であった。不純物が除去されたことにより、未精製キテキンエキス溶液は精製カテキンエキス溶液となった。作業者は、この精製カテキンエキス溶液２グラム（３０ミリリットル）を所定のチューブに収容した。これが、カテキンエキスチューブである。
【００６４】
（Ｂ）  試料の調製
本比較例においては、作業者は、９本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが１６．８０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５１．０２％、水分が２９．９６重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００６５】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、Ｈ３Ｎ２に感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後もＭＤＣＫ．２細胞の状態に改善は見られず、６０分後にＭＤＣＫ．２細胞は順次死滅した。ＭＤＣＫ．２細胞に細胞分裂は観察されず、膨張した感染細胞も見られた。
【００６６】
[比較例６]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、３本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが５．６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５８．１７重量％、水分が３４．１１重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００６７】
（２）  観察結果
観察結果は比較例５と同様であった。
【００６８】
[比較例７]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシド６１．６重量％、水分が３６．１８重量％である。その他の点は実施例１と同様である。
【００６９】
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００７０】
[比較例８]
（１）  試験手順
作業者は、試料の調製にあたり、メリンジョエキスチューブ３０本（精製メリンジョエキス溶液６０グラム）と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）とを試験管内で４５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６０ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１３．７重量％、レスベラトロールが４．４重量％、ジメチルスルホキシドが５０．２０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が２９．４８重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００７１】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は止まった。試料がかけられた後、ＭＤＣＫ．２細胞が次第に減少した。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は観察されなかった。
【００７２】
[比較例９]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。次に、作業者は、その混合液にジメチルスルホキシド水溶液（ジメチルスルホキシドの濃度は６３重量％）を加えた。これにより、その混合液の体積は１６倍となった。グネチンＣの濃度とレスベラトロールの濃度とビタミンＥの濃度とは１６分の１に希釈された。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが０．０９重量％、レスベラトロールが０．０６重量％、ジメチルスルホキシドが６２．８１重量％、ビタミンＥが０．１４重量％、水分が３６．９０重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００７３】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。試料がかけられた後、ＭＤＣＫ．２細胞の形態に変化は見当たらなかった。膨張した感染細胞も見られた。
【００７４】
[比較例１０]
（１）  試験手順
作業者は、３本のメリンジョエキスチューブに収容されていた精製メリンジョエキス溶液を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２９ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１０ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。その他の点は実施例６と同様である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、グネチンＣが１．３７重量％、レスベラトロールが０．４４重量％、ジメチルスルホキシドが６１．８６重量％、水分が３６．３３重量％である。
【００７５】
（２）  観察結果
ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は止まった。試料がかけられた後、比較的な多くのＭＤＣＫ．２細胞は正常に戻ったが、一部のＭＤＣＫ．２細胞ＭＤＣＫ．２細胞は膨張したままだった。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は生じなかった。
【００７６】
[比較例１１]
（１）  試験手順
作業者は、３本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが５．６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５８．０７重量％、水分が３４．１１重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００７７】
（２）  観察結果
観察結果は比較例９と同様であった。
【００７８】
[比較例１２]
（１）  試験手順
作業者は、９本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが１６．８０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５１．０２重量％、水分が２９．９６重量％である。その他の点は実施例６と同様である。
【００７９】
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００８０】
[比較例１３]
（１）  試験手順
本比較例の試料は比較例７のものと同一である。その他の点は実施例６と同様である。
【００８１】
（２）  観察結果
観察結果は比較例２と同様であった。
【００８２】
[比較例１４]
（１）  試験手順
本比較例では、実施例１と同様の手順でＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートに入れた。ＭＤＣＫ．２細胞をそのプレパラートに入れてから６０分が経過した後、作業者は、そのＭＤＣＫ．２細胞に次に述べられる液体２０マイクロリットルをかけた。その液体はＲＳウィルス（ＡＴＣＣ番号ＶＲ−１５８０）を含んでいた。これにより、そのＭＤＣＫ．２細胞はＲＳウィルスに感染した。その後、そのＭＤＣＫ．２細胞へは何もかけられなかった。ＲＳウィルスを含む液体がかけられた後、作業者は、引続きＭＤＣＫ．２細胞を光学顕微鏡で観察した。
【００８３】
（２）  観察結果
図７は本比較例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから３０分経過した時点のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図８は本比較例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから７０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから１０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図９は本比較例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１２０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから６０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図１０は本比較例にかかるＭＤＣＫ．２細胞をコラーゲンゲルコートのプレパラートのくぼみに入れてから１８０分経過した時点（ＲＳウィルスに感染してから１２０分経過した時点）のそのＭＤＣＫ．２細胞の光学顕微鏡写真である。図１１は、図７乃至図１０すなわち比較例１４にかかるＭＤＣＫ．２細胞の顕微鏡写真を時系列に沿って示した図である。図７乃至図１１に示されているように、ＭＤＣＫ．２細胞は、ＲＳウィルスに感染した後、膨張し始めた。ＭＤＣＫ．２細胞の細胞分裂は止まった。
【００８４】
[比較例１５]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、９本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で１３．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は１８ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが１６．８０重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５１．０２重量％、水分が２９．９６重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００８５】
（２）  観察結果
細菌は、試料がかけられてから２時間が経過した後も生存し、全滅しなかった。黄色ブドウ球菌の大部分は弱り死滅した。棹菌は死滅せず生き残っていた。
【００８６】
[比較例１６]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、３本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液と１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥとを試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが５．６重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが５８．０７重量％、水分が３４．１１重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００８７】
（２）  観察結果
観察結果は比較例１５と同様であった。
【００８８】
[比較例１７]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、１本のビタミンチューブに収容されていた精製ビタミンＥ（１０ミリグラム）を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、ビタミンＥが２．２２重量％、ジメチルスルホキシドが６１．６重量％、水分が３６．１８重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００８９】
（２）  観察結果
細菌は、試料がかけられてから２時間経過した時点において、黄色ブドウ球菌の形態にもその数にも何ら変化は見当たらなかった 。
【００９０】
[比較例１８]
（１）  試験手順
本比較例においては、作業者は、３本のカテキンエキスチューブに収容されていた精製カテキンエキス溶液を試験管内で４．５ミリリットルのジメチルスルホキシド原液に溶解させた。その後、作業者は、それらの混合液に精製水を添加した。精製水が添加された混合液の体積は６ミリリットルであった。作業者は、その混合液に、４５ミリリットルのジメチルスルホキシド水溶液をさらに添加した。このジメチルスルホキシド水溶液のうちジメチルスルホキシドの体積は２８ミリリットルであった。このジメチルスルホキシド水溶液のうち精製水の体積は１７ミリリットルであった。この混合液が、本比較例にかかる試料である。したがって、本比較例にかかる試料の成分は、カテキンが５．６重量％、ジメチルスルホキシドが５８．０７重量％、ビタミンＥが２．２２重量％、水分が３４．１１重量％である。試料の調製におけるその他の点と、細菌の培養の手順と、細菌の観察の手順とは実施例１１と同様である。
【００９１】
（２）  観察結果
観察結果は比較例１５と同様であった。
【００９２】
[比較例１９]
本比較例では、実施例１１で培養された細菌試料が用いられた。作業者は、細菌試料へ実施例１１の説明にて記述されたリン酸緩衝生理食塩水２０マイクロリットルのみをかけた。その後、作業者は、細菌試料の観察を行った。リン酸緩衝生理食塩水がかけられてから２時間経過した時点において、黄色ブドウ球菌の形態にもその数にも何ら変化は見当たらなかった。
【手続補正２】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
グネチンＣと、
レスベラトロールと、
ビタミンＥと、
流動化物質とを含む抗生物質含有組成物であって、
前記グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上４．１１重量％以下であり、
前記レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上１．３３重量％以下であり、
前記ビタミンＥの重量％が０．２８重量％以上２．２２重量％以下であることを特徴とする抗生物質含有組成物。
【請求項２】
前記グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上１．３７重量％以下であり、
前記レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．４４重量％以下であることを特徴とする請求項１に記載の抗生物質含有組成物。
【請求項３】
前記グネチンＣの重量％と前記レスベラトロールの重量％との和が０．２３重量％以上１．８１重量％以下であることを特徴とする請求項２に記載の抗生物質含有組成物。
【請求項４】
前記グネチンＣの重量％が０．１７重量％以上０．６９重量％以下であり、
前記レスベラトロールの重量％が０．０６重量％以上０．２２重量％以下であることを特徴とする請求項１に記載の抗生物質含有組成物。