(57)【要約】【課題】  小スケールにも適用でき、かつ定量性にも優れる測定方法を提供する。【解決手段】  試料と溶離液との混合液に対して前記試料中の測定対象の全成分量を求め、次いで前記混合液と、前記測定対象中の特定成分と特異的に結合する乾燥状態の分離材とを接触させた後に上澄み液中の前記測定対象の成分量を求め、前記測定対象の全成分量から、上澄み液中の前記測定対象の成分量を減ずることにより前記特定成分の成分量を求め、前記測定対象の全成分量に対する、前記特定成分の成分量の比を求める方法。【選択図】    図４
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
試料と溶離液との混合液に対して前記試料中の測定対象の全成分量を求め、
次いで前記混合液と、前記測定対象中の特定成分と特異的に結合する乾燥状態の分離材とを接触させた後に上澄み液中の前記測定対象の成分量を求め、
前記測定対象の全成分量から、上澄み液中の前記測定対象の成分量を減ずることにより前記特定成分の成分量を求め、
前記測定対象の全成分量に対する、前記特定成分の成分量の比を求める方法。
【請求項２】
前記試料が血液であり、
前記測定対象がヘモグロビンであり、
前記特定成分がヘモグロビンＡ１ｃである、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記分離材が、ｍ−アミノフェニルボロン酸を固定化したアフィニティ分離材であり、
その粒径が１μｍから５００μｍである、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記溶離液が、前記分離材のボロネートアニオンとヘモグロビンＡ１ｃの１，２−シスジオールとが結合できる塩基性緩衝液である、請求項１から３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
成分量の測定方法が吸光度測定であることを特徴とする、請求項１から４のいずれかに記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は分離材を用いた測定方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
血液中のヘモグロビンは、α鎖Ｎ末端のアミノ酸のバリンのアミノ基とグルコースのアルデヒド基の間の非酵素的な反応によりグルコースと結合する。この結合の第一段階は、可逆的なシッフ塩基反応であるが、さらにアマドリ転移反応を経て不可逆的なケトアミンを形成する。このようにして生成するヘモグロビンとグルコースの結合物は、ヘモグロビンＡ１ｃ（以下、ＨｂＡ１ｃ又はＡ１ｃと記載する場合もある）として知られている。ヘモグロビンの血液中での寿命は約３ヵ月であり、その間グルコースと結合して生成するＨｂＡ１ｃが徐々に蓄積するが、その一方で寿命が尽きたＨｂＡ１ｃは逐次分解されていく。すなわち、ある時点で血液中に存在しているＨｂＡ１ｃの濃度は、その時点からヘモグロビンの寿命のおよそ半分の１〜２ヵ月程遡った過去の血液中のグルコース濃度、すなわち血糖濃度を平均的に反映するものである。このような特徴を有するＨｂＡ１ｃは、一般的な糖尿病の指標である血糖濃度等のように一時的な変動が無く過去の血糖状態を正確に把握できる。
【０００３】
ＨｂＡ１ｃの測定方法としては、高速液体クロマトグラフィ法、免疫学的方法、酵素法などが知られている。免疫学的方法は、ラテックスを用いた免疫反応を利用してＨｂＡ１ｃを測定する方法である。前処理が必要ではあるが、生化学自動分析装置で測定可能な試薬もあり、大量処理に向いている（特許文献１参照）。酵素法は、酵素により、ＨｂＡ１ｃの糖化ジペプチドを切り出し、それをオキシダーゼ、ペルオキシダーゼによる発色へ導き測定する方法である。生化学自動分析装置で測定可能であり、大量処理に向いている（特許文献２参照）。
【０００４】
高速液体クロマトグラフィ法はカラムによりＨｂＡ１ｃを分離してその面積比率から定量を行うものである。大量処理には向かないとされてきたが、近年分析時間が大幅に短縮され、現在のところ採用施設も多く実質的な標準的測定方法である。高速液体クロマトグラフィ法は、分離モードによりイオン交換モード法とアフィニティモード法に大別される。イオン交換モード法はＨｂＡ１ｃの電荷の違いにより分離する方法（特許文献３、４参照）、アフィニティモード法は、ホウ酸がＨｂＡ１ｃのシスジオール結合にアフィニティ結合する性質を利用した方法（特許文献５参照）である。
【０００５】
しかしながら、これらの方法は専用機器もしくは準専用機器が必要であり、他の分析と併用できる汎用機器に対応していないといった問題がある。それに対して、汎用機器である分光光度計にて測定可能な測定方法として、乾燥分離材と溶離液を用いてＨｂＡ１ｃを分離材に結合させ濾別した濾液の吸光度を測定してＨｂＡ０成分を求め、次いで異なる溶離液を用いてＨｂＡ１ｃを分離材から解離させることによりＨｂＡ１ｃを溶出させ濾別した濾液の吸光度を測定してＨｂＡ１ｃ成分を求める技術が開示されているが（特許文献６参照）、この方法では濾過操作が必須であることから操作が煩雑であり、さらに濾過材、複数のセル、複数の溶離液が必要であることから、より簡便な測定方法が求められていた。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２０１２−２５１７８９号公報
【特許文献２】特開２０１０−１８７６０４号公報
【特許文献３】特開２０１２−２１５４７０号公報
【特許文献４】特許３５０５９０６号公報
【特許文献５】特開２００２−１３９４８１号公報
【特許文献６】特開２０１５−１１４１９７号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、小スケールにも適用しうる測定方法であり、かつ定量性にも優れるため測定方法に適用でき、その結果、グリコヘモグロビン（Ａ１ｃ）の定量をも可能とすることを目的とするものである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは上記課題について鋭意検討した結果、本発明に到達した。即ち本発明は以下の通りである。
［１］試料と溶離液との混合液に対して前記試料中の測定対象の全成分量を求め、
次いで前記混合液と、前記測定対象中の特定成分と特異的に結合する乾燥状態の分離材とを接触させた後に上澄み液中の前記測定対象の成分量を求め、
前記測定対象の全成分量から、上澄み液中の前記測定対象の成分量を減ずることにより前記特定成分の成分量を求め、
前記測定対象の全成分量に対する、前記特定成分の成分量の比を求める方法。
［２］前記試料が血液であり、
前記測定対象がヘモグロビンであり、
前記特定成分がヘモグロビンＡ１ｃである、［１］に記載の方法。
［３］前記分離材が、ｍ−アミノフェニルボロン酸を固定化したアフィニティ分離材であり、その粒径が１μｍから２００μｍである、［１］又は［２］に記載の方法。
［４］前記溶離液が、前記分離材のボロネートアニオンとヘモグロビンＡ１ｃの１，２−シスジオールとが結合できる塩基性緩衝液である、［１］から［３］のいずれかに記載の方法。
［５］成分量の測定方法が吸光度測定であることを特徴とする、［１］から［４］のいずれかに記載の方法。
【発明の効果】
【０００９】
本発明の測定方法は、小スケールにも適用しうるものであり、かつ定量性にも優れるため、試料中の成分の量比を求める方法にも適用できる。その結果、試料中のグリコヘモグロビン（Ａ１ｃ）等の量比を測定することも可能である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
以下に本発明を更に詳細に説明する。
【００１１】
本発明は、試試料と溶離液との混合液に対して前記試料中の測定対象の全成分量を求め、次いで前記混合液と、前記測定対象中の特定成分と特異的に結合する乾燥状態の分離材とを接触させた後に上澄み液中の前記測定対象の成分量を求め、前記測定対象の全成分量から、上澄み液中の前記測定対象の成分量を減ずることにより前記特定成分の成分量を求め、前記測定対象の全成分量に対する、前記特定成分の成分量の比を求めることを特徴とする。
【００１２】
本発明の方法では、乾燥状態の分離材を使用することで、分離材を湿潤する溶液による濃度変動を抑制することが可能となる。これにより、分画された成分の定量分析を正確に行うことが可能となる。
【００１３】
本発明において、試料と溶離液との混合液に乾燥状態の分離材を接触させる際に、混合液を分散又は攪拌してもよい。効率よくできる方式であればよく、特に分散又は撹拌方式を限定するものではないが、例えばボルテックス、振盪、プロペラ、スターラー等を使用した方式を挙げることができる。
【００１４】
本発明において上澄み液中の測定対象の成分量を求める際に分離材の沈降を行ってもよい。沈降方式は、分離材を含む溶液を分離材と溶液に効率よく分離できる方式であれば良く、特に沈降方式を限定するものではないが、例えば自然沈降、凝集沈降、遠心沈降等を挙げることができる。
【００１５】
本発明において上澄み液中の測定対象の成分量を求める際に分離材の集磁を行ってもよい。集磁方式は、分離材を含む溶液を分離材と溶液に効率よく分離できる方式であれば良く、特に集磁方式を限定するものではない。
【００１６】
本発明で集磁にて分離材を集約する場合には、分離材として磁性微粒子を用いることができる。磁性微粒子は、ガラス、金属、セラミックス等の無機物であってもよく、また高分子ポリマー等の有機物であってもよい。それらの微粒子表面、微粒子内部もしくは微粒子表面と内部の両方に磁性体を含むものであるが、材質が金属製の微粒子の場合、それ自体が磁性体であってもよい。
【００１７】
本発明で集磁にて用いられる磁石は特に限定はなく、アルニコ磁石、ＫＳ鋼、ＭＫ鋼、フェライト磁石、サマリウムコバルト磁石、ネオジム磁石等の永久磁石でもよく、電磁石でもよい。
【００１８】
本発明で使用する分離材は、測定対象中の特定成分を溶離液により結合するものであれば特に限定はない。ここで結合とは、化学的結合でもよく、また吸着であってもよい。例えば特定成分がＡ１ｃの場合、分離材はｍ−アミノフェニルボロン酸を固定化したものが好ましい。
【００１９】
また本発明で用いられる分離材は、粒子状が好ましく、その粒径には特に限定はないが、沈降又は集磁が簡便な機構または用手法で容易に、また短時間で行えるよう、粒径が１μｍ〜５００μｍが好ましく、２μｍ〜２００μｍがさらに好ましい。
【００２０】
本発明に使用する分離材は、乾燥状態で用いることが必要である。そのため、例えば、事前に湿潤状態又はスラリー状態の分離材を吸引濾過し、分離材量の３倍程度の純水を用いて洗浄した後、可能な限り純水を除去する。このような分離材を、シリカゲル等の乾燥剤を入れたデシケータ中で、水分を除去した後、本発明の分離材として使用することができる。
【００２１】
図１は、本発明で使用される乾燥ゲルについて説明した図である。これは、その一例であるが、東ソー（株）製Ｂｏｒａｔｅ  ５ＰＷ、膨潤状態で２０ｍＬのスラリーゲルを前述の処理を実施した場合である。図の横軸が経過時間、縦軸がゲルの重量を示している。このように３０時間までは急激に水分量が減少し約５０時間で乾燥状態となる。本発明では前記状態になった乾燥ゲルを使用することが望ましい。乾燥が不十分な状態で使用すると、その水分量の変動により測定結果にばらつきをもたらす原因となる。
【００２２】
本発明において、試料には特に限定はないが、例えば血液等をあげることができ、このとき測定対象としてヘモグロビン、分離材に結合する特定成分としてＡ１ｃを挙げることができる。
【００２３】
本発明で使用する溶血液は、血球の細胞膜を破壊する組成であれば良く、組成、濃度、ｐＨ等を限定するものではない。
【００２４】
本発明で使用する溶離液については、測定対象中の特定成分を溶離液により分離材に結合するものであれば特に限定はない。ここで結合とは、化学的結合でもよく、また吸着であってもよい。例えば特定成分がＡ１ｃの場合、分離材として上述のｍ−アミノフェニルボロン酸を固定化したものを用いた場合は、溶離液は分離材のボロネートアニオンとＡ１ｃの１，２−シスジオールが結合できる塩基性緩衝液であればよく、組成、濃度、ｐＨ等を限定するものではない。溶離液の一例として、１００ｍｍｏｌ／Ｌ  グリシン＋１５０ｍｍｏｌ／Ｌ  硫酸ナトリウム（ｐＨ９．２）をあげることができる。
【００２５】
本発明では、このような方法で測定対象中の成分から特定成分を分離し、全成分の量の総和に対する、特定成分の量の比を求めることができる。このとき、成分量の測定法については特に限定はないが、例えば吸光度により測定することができる。
【００２６】
以下に、前記の方式を血液中に含まれるＡ１ｃを分離し測定に適応するプロトコールを説明する。プロトコールは一例として、以下の概ね６ステップから構成される。なお、図２は本発明の方法でのＡ１ｃ測定法の実際の手順を示したフロー図である。
（Ｉ）検体溶血工程（検体容量：Ｖｓ、溶血液容量：Ｖｄ）
（ＩＩ）溶離液添加工程（容量：Ｖ１１）
（ＩＩＩ）ヘモグロビン全成分の吸光度測定工程（Ａａ）
（ＩＶ）アフィニティ分離材との反応工程（分離材重量：Ｇ）
（Ｖ）アフィニティ分離材の沈降又は集磁工程
（ＶＩ）ヘモグロビン全成分−Ａ１ｃ成分の吸光度測定工程（Ａｂ）
【００２７】
事前に十分に乾燥させたアフィニティ分離材を秤量する（分離材重量：Ｇ）。
容器Ａに検体（容量：Ｖｓ）と溶血液（容量：Ｖｄ）を添加し、攪拌により検体を溶血させる（Ｉ）。
溶離液（容量：Ｖ１１）が入った容器Ｂに前記検体と溶血液の混合液を添加し攪拌する（ＩＩ）。
前記検体溶液（容量：Ｖ１２）をセルに投入し、溶液の吸光度（Ａａ）を測定する（ＩＩＩ）。
前記検体溶液の入ったセルに分離材を全量移送し、攪拌してＡ１ｃ相当成分を分離材に結合させる（ＩＶ）。
沈降又は集磁の少なくとも一つの操作を行う（Ｖ）。
以上の操作によりヘモグロビン全成分−Ａ１ｃ成分が上澄み液に分画される。上澄み液の吸光度（Ａｂ）を測定する（ＶＩ）。
【００２８】
ヘモグロビン全成分の吸光度（Ａａ）とヘモグロビン全成分−Ａ１ｃ成分の吸光度（Ａｂ）から、下記式１によりＡ１ｃ相当成分の比率を求めＡ１ｃ比率（％）を算出する。
【００２９】
Ａ１ｃ比率（％）＝［（Ａａ−Ａｂ）／Ａａ］×１００            （式１）
吸光度を測定する波長は、ヘモグロビン成分を特異的に検出できる波長であり、溶離液に対して吸収ができるだけ無い波長であれば良く、特に限定するものではない。一般的には４０５〜４２０ｎｍ程度が使用可能であるが、４１５ｎｍが好適である。
【００３０】
吸光度を測定する方法は、目的とする測定精度で決めれば良く特に限定するものではない。図３は吸光度測定方法の例を幾つか示したものである。図３ａは、シングルビームにより簡易測定を行う例である。測定精度を必要としない場合や、検体の濃度が比較的高く溶離液のバックグラウンドの影響が少ない場合などは、この方法で測定を行ってもよい。
【００３１】
図３ｂはデュアルビーム分光光度計により測定を行う例である。ヘモグロビン全成分の吸光度（Ａａ）、ヘモグロビン全成分−Ａ１ｃ成分の吸光度（Ａｂ）の吸光度を測定する波長（一例、４１５ｎｍ）であっても、溶離液の吸収が僅かに存在するため、この影響を補正することが可能な方法で、精度良く測定を行うことができる。ヘモグロビン全成分の吸光度（Ａａ）と、ヘモグロビン全成分−Ａ１ｃ成分の吸光度（Ａｂ）を測定する際はリファレンスとして溶離液（吸光度：Ａｒ）を使用することで、溶離液の吸光度を補正することができる。検体の濃度が低い場合などには適した方法である。
【００３２】
図３ｃは２つの波長により測定を行う例である。ヘモグロビン成分に対して吸収がある波長を第１波長とし、ヘモグロビン成分に対して吸収がなく、溶離液にのみ前記第１波長と同程度の吸収がある波長を第２波長とし、２つの波長で同時に測定を行い、第１波長の吸光度から第２波長の吸光度を差し引くことで、溶離液の吸収の影響を補正することが可能な方法である。一例として、第１波長として４１５ｎｍ、第２波長として４４０ｎｍ又は４５０ｎｍを使用することで、溶離液の吸収の影響を補正することができる。
【００３３】
図３ｄは、フローインジェクション法による測定を行う例である。この方法は、溶液の流れに測定試料を導入し、吸光度測定する方法であり、効率よく吸光度測定を行うことが可能な方法である。
【００３４】
何れの例でも、試料を測定するセルには、専用のセルを使用しても良いが、本発明の操作で使用するセルに直接光を照射して測定することも可能であり、操作をより簡便に行うことができる。この場合、セルには可視光透過石英ガラスもしくは可視光透過樹脂（ポリメチルメタクリレート、ポリスチレン樹脂等）のものを使用することができる。
【００３５】
溶血液および溶離液の使用容量は、処理する試料の量によって最適化すればよく、限定されるものではない。一例として、試料１．２５μＬとした場合、溶血液６６０μＬ、容器Ｂに添加する溶離液４５０μＬ（Ｖ１１）、容器Ｃに投入する検体溶液１．０ｍＬ（Ｖ１２）、乾燥アフィニティ分離材３０ｍｇ、で処理を行うことができる。
【図面の簡単な説明】
【００３６】
【図１】本発明で使用される乾燥ゲルについて示した図である。横軸が経過時間（Ｈ）、縦軸がゲルの重量（ｇ）を示している。
【図２】本発明の方法でのＡ１ｃ測定法の実際の手順を示したフロー図である。
【図３】吸光度測定法の一例を示した図である。図ａは簡易測定法、図ｂはデュアルビーム分光光度計による測定、図ｃは２波長測定法、図ｄはフローインジェクションによる測定方法を示している。
【図４】実施例１での、本発明の方法でのＡ１ｃ測定法の実際の手順を示した図である。
【図５】第２波長として４４０ｎｍとした本発明の方法で相関性試験の結果を示した図である。
【図６】第２波長として４５０ｎｍとした本発明の方法で相関性試験の結果を示した図である。
【実施例】
【００３７】
以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、これら実施例は本発明を限定するものではない。
【００３８】
（実施例１）
検体は全血、およびキャリブレータ（基準値：５．８６％、１０．９７％  東ソー（株）製）、溶血液は、グリコヘモグロビン分析計ＨＬＣ−７２３ＧＨｂＶ東ソー（株）製）専用溶血液をそれぞれ使用した。Ａ１ｃ分離の溶離液としては、下記の組成のものを調整し使用した。
溶離液：酢酸アンモニウム  １５０ｍｍｏｌ／Ｌ、塩化マグネシウム  ５０ｎｍｏＬ／Ｌ、０．５％アジ化ナトリウム、ｐＨ８．７
分離材は、メタクリレートポリマーを基材とし、ｍ−アミノフェニルボロン酸を固定化した充てん剤（ＴＳＫｇｅｌ  Ｂｏｒｏｎａｔｅ−５ＰＷ（東ソー（株）製）を使用した。前記分離材スラリーを吸引濾過して水分を除去した後、シリカゲル存在下のデシケータ中で乾燥させた後に、測定に使用した。
【００３９】
本発明の方法による測定法を説明する。図４は実際の測定手順を示した図である。処理のプロトコールは以下の通りである。薬包紙（１）に前記の十分に乾燥させた分離材（２）を３０ｍｇ秤量しておく。容器Ａ（３）に溶血液（４）８５８０μＬを分注し、全血検体（５）１６．２５μＬを添加し攪拌し溶血を行った。次に容器Ｂ（６）に溶離液（７）６０００μＬを分注し、溶血させた液８０００μＬを添加し攪拌した。この試料混合液（容器Ｂ（６））の１０００μＬを、セル（８）に分注し、分光光度計Ｕ−２０００（日立製作所（株）製）にてヘモグロビン全成分の吸光度（Ａａ）を測定した。続いて、前記検体溶液の入ったセル（８）に、事前に秤量しておいた分離材（２）を３０ｍｇ投入し、攪拌してＡ１ｃ相当成分を分離材に結合させた。３０分室温にて放置して分離材を沈殿させた後、分光光度計Ｕ−２０００（日立製作所（株）製）にて上澄み液のヘモグロビン全成分−Ａ１ｃ成分の吸光度（Ａｂ）を測定した。
【００４０】
前述の式１によりＡ１ｃ比率（％）を算出した。
さらに、本発明の方法の性能を確認するため、ラテックス免疫比濁法である共和メディック社製「グルコヘモグロビン分析計  Ａ１ｃ  ＧＥＡＲ  Ｋ」との相関性試験を実施した。検体は全血（７検体）を使用した。
【００４１】
図５は第２波長として４４０ｎｍとした本発明の方法で相関性試験の結果を示した図である。図６は第２波長として４５０ｎｍとした本発明の方法で相関性試験の結果を示した図である。横軸がラテックス免疫比濁法での測定値、縦軸が本発明の方法による測定値である。本発明の方法（図５）では相関係数が０．９５４７（Ｒ２：０．９１１４）、（図６）では相関係数が０．９６０３（Ｒ２：０．９２２２）と非常に良好な相関性が得られた。この結果からも、本発明は、簡易測定法でありながら、従来の測定法との相関性も良好で、Ａ１ｃを定量することが可能であることが明らかとなった。
【符号の説明】
【００４２】
１．薬包紙
２．分離材
３．容器Ａ
４．溶血液
５．全血検体
６．容器Ｂ
７．溶離液
８．セル
９．光源
１０．ハーフミラー
１１．全反射ミラー
１２．フォトセンサ（サンプル側）
１３．フォトセンサ（リファレンス側）
１４．フォトセンサ
１５．セル（サンプル側）
１６．セル（リファレンス側）
１７．測定容器
１８．フローセル
１９．測定試料
２０．試料導入機構
２１．送液機構
２２．溶液
２３．ダイクロイックミラー
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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