(57)【要約】遺伝的に修正された微生物と、プラスミドと媒質中の変更により統制された凝集の存在を持つ発酵方法で、この出願は遺伝子的に修正された微生物、生体を製造する及び生体を使用する方法に言及する。これらの微生物は発酵方法の最後で凝集し、発酵容器の底にすばやく落ち着き、このようにして、発酵中に獲得された最終製品から分離する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
媒質の化学的組成の特徴、pH、物理的刺激に応じて開始するプロモーターにより統制されるフロキュレーション遺伝子を所有することを特徴とする遺伝子組換えバクテリア。
【請求項２】
媒質の化学的組成の特徴、pH、物理的刺激に応じて開始するプロモーターにより統制されるフロキュレーション遺伝子を所有することを特徴とする遺伝子組換え菌類。
【請求項３】
媒質の化学的組成の特徴、pH、物理的刺激に応じて開始するプロモーターにより統制されるフロキュレーション遺伝子を所有することを特徴とする遺伝子組換えアルカエ。
【請求項４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制された一つ又は多くのフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11あるいはLg.FLO1の少なくとも一つを持っていることより特徴とする遺伝子組換えイースト。
【請求項５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする遺伝子組換えイースト。
【請求項６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lをの少なくとも一つ持っていることを特徴とする遺伝子組換えイースト、特にPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、あるいはKluyveromyces lactis。
【請求項７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする遺伝子組換えイースト特にPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、あるいはKluyveromyces lactis。
【請求項８】
以下に列挙するイーストSaccharomyces cerevisiae内の一つにおいて、
956. X2180-1A, ATCC 26786 a SUC2 mal gal2 CUP1 R.K.Mortimer
957. X2180-1B, ATCC 26787 alpha SUC2 mal gal2 CUP1 R.K.Mortimer
857. 158 a Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
858. 159 alpha Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
713. KIL-k2 From draught beer) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 M.Richards
738. KIL-k2 (brewery contaminant) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 A.P.Maule
761. KIL-k3 From palm wine), CBS 7903 J.Ferm.Technol., 1985, 63, 421-429 N.Okafor
1001. KIL-k2 (brewing yeast) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 
1561. A8209B his4-864 KIL-k1 G.Fink via T.Young
958. X2928-3D-1A a ade1 gal1 leu1 his2 ura3 trp1 met14 R.K.Mortimer
959. X2928-3D-1C alpha ade1 gal1 leu1 his2 ura3 trp1 met14 R.K.Mortimer
1786. STX 147-4C alpha ade1 his7 tyr1 gal1 cly8 ade5 aro2 met13 lys5 trp5 cyh2 arg4 lys1 ura4 gal2 ade2 rad56 L.Johnston
1620. STX77-6C alpha gal1 his4 trp1 hom3 ura3 CUP1 ilv3 ade3 rad52 rna1 L.Johnston
1618. X4119-19C a his7 tyr1 cdc9 trp4 aro1B hom2 rad2 thr1 lys11 gal2 ade2 L.Johnston
1661. X4120-19D alpha lys2 leu2 pet14 rad(?) rna3 ade8 aro1D met10 ade5 leu1 CUP1 L.Johnston
1619. STX66-4A a rad18 lys4 trp1 prt3 CUP1 gal2 ade2 met2 pha2 L.Johnston
1617. K396-22B alpha spo11 ura3 ade1 his1 leu2 lys7 met3 trp5 L.Johnston
1614. K381-9D alpha spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1613. K398-4D a spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1611. K382-23A a spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 L.Johnston
1612. K382-19D alpha spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 tyr1 L.Johnston
1616. K393-35C alpha spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1615. K399-7D a spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1383. DBY 747, ATCC 44774 a leu2-3 leu2-112 his3-DELTA1 trp4-289 ura3-52 Gene, 1979, 8, 17-24. J.F.Makins
1392. MC16 alpha leu2-3 his4-712FS) SUF2 ade2-1 lys2-1 Nature, 1981, 275, 104. J.F.Makins
1445. LL20 alpha his3-11 his3-15 leu2-3 leu2-112 J.Bacteriol., 1979, 140, 73-82 A.Coddington
1527. MD40/4C alpha leu2-3 leu2-112 his3-11 his3-15 ura2 trp1 CAN s B.Bowen
1528. AH22 a leu2-3 leu2-112 his4 canR B.Bowen
1627. D13-1A (YNN6) a trp1 his3-532 gal2 L.Johnston
1771. cdc9-1 (L89-6C) a cdc9-1 leu2 ade1 ade2 ura1 lys2 L.Johnston
804. D160 a ura3 his1 arg6 trp2 ade1 J.F.T.Spencer
805. A364A a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 J.Mol.Biol., 1976, 105, 427-443 J.F.T.Spencer
806. x112 alpha ade8-2 trp5-2 lys2-1 ura1-1 J.F.T.Spencer
808. GRH1 a trp1 ade1 his7 ura1 gal1 G.Stewart
1395. S1896D a met7 trp1 leu1 ade1 gal1 gal2 pet R.K.Mortimer
1396. F33 alpha met7 gal2 pet R.K.Mortimer
1623. X2181-1B a gal1 his2 trp1 ade1
1626. CG379 ade+ alpha his7-2 leu2-3 leu2-112 trp1-289 ura3-52 (ade5 rev)
1631. g440-7C alpha ade4 trp1 L.Johnston
1632. D273-11A alpha ade1 his1 trp2 L.Johnston
1662. alpha arg met L.Johnston
1663. a arg met L.Johnston
1664. alpha/alpha arg 2μ + L.Johnston
1719. A364A rho- a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 rho- L.Johnston
1720. B635 a cyc1-115 his1-1 lys2-1 trp2 L.Johnston
1772. L126-R9 a leu2 hom3-10 his1 L.Johnston
1790. a/a arg his 2μ+ L.Johnston
1812. L126-2B a leu2 hom3-10 his1 L.Johnston
1821. S13 a his4 ura1 trp5 gal2 L.Johnston
1822. S49 a his4 ura1 trp5 gal2 ade6 L.Johnston
1961. GRF18 alpha leu2-3 leu2-212 his3-11 his3-15 canR G.Fink via D.MacKenzie
1356. A 137 alpha pho80-2 J.Bacteriol., 1973, 113, 727-738 A.Coddington
1357. A 138 a pho80-2 J.Bacteriol., 1973, 113, 727-738 A.Coddington
828. a ade1 J.F.T.Spencer
829. alpha ade1 J.F.T.Spencer
1577. a ade1 leu1 B.Pearson
1652. a ade1 leu2 B.Pearson
830. a ade2 J.F.T.Spencer
802. alpha ade2 (lys) J.F.T.Spencer
832. a ade3 J.F.T.Spencer
833. alpha ade3 (ura) J.F.T.Spencer
834. a ade4 J.F.T.Spencer
835. alpha ade4 (ura) J.F.T.Spencer
836. a ade5 J.F.T.Spencer
837. alpha ade5 (ura) J.F.T.Spencer
838. a ade6 J.F.T.Spencer
839. alpha ade6 (trp) J.F.T.Spencer
840. a ade7 J.F.T.Spencer
841. alpha ade7 J.F.T.Spencer
842. a ade8 J.F.T.Spencer
843. alpha ade8 (lys trp) J.F.T.Spencer
1654. cdc3-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc3-1 L.Johnston
1642. cdc4-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc4-1 L.Johnston
1643. cdc5-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc5-1 L.Johnston
1723. cdc6-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc6-1 L.Johnston
1729. cdc7-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc7-1 L.Johnston
1730. cdc8-141 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc8-141 L.Johnston
1667. cdc8-198 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc8-198 L.Johnston
1771. cdc9-1 (L89-6C) a cdc9-1 leu2 ade1 ade2 ura1 lys2 L.Johnston
1788. cdc9-1 rev1 cdc9-1 rev1 L.Johnston
1672. cdc9-12 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-12 L.Johnston
1673. cdc9-13 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-13 L.Johnston
1791. cdc9-3 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-3 2μ+ L.Johnston
1731. cdc9-4 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-4 L.Johnston
1732. cdc9-6 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-6 L.Johnston
1807. cdc9-7 (L82-2B) a cdc9-7 trp1 lys2 his7 L.Johnston
1808. cdc9-7 (L94-4D) a cdc9-7 trp1 ura3 L.Johnston
1670. cdc9-7 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-7 L.Johnston
1633. cdc9-7 rho- cdc9-7 rho- L.Johnston
1671. cdc9-8 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-8 L.Johnston
1674. cdc10-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc10-1 L.Johnston
1655. cdc11-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc11-1 L.Johnston
1733. cdc12-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc12-1 L.Johnston
1734. cdc13-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc13-1 L.Johnston
1735. cdc14-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc14-1 L.Johnston
1736. cdc18-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc18-1 L.Johnston
1737. cdc19-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc19-1 L.Johnston
1738. cdc26-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc26-1 L.Johnston
1665. cdc28-4 L31-7a a cdc28-4 tyr1 L.Johnston
1675. cdc30-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc30-1 L.Johnston
1676. cdc31-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc31-1 L.Johnston
1722. cdc36-16 SR661-2 a cdc36-16 trp1-1 ura1 L.Johnston
1666. cdc37-1 SR672-1 a cdc37-1 ura1 cyh2 L.Johnston
1641. cdc39-1 SR665-1 alpha cdc39-1 met2 tyr1 cyh2 L.Johnston
1677. cdc41 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc41 L.Johnston
1753. cdc6 (MH18) cdc6/cdc6 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1754. cdc13 (MH20) cdc13/cdc13 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1752. cdc15-1 (MH15) cdc15-1/cdc15-1 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1755. cdc17 (MH21) cdc17/cdc17 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1756. cdc21 (MH21) cdc21/cdc21 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1718. JC2 (L31-9a [a]/L31-2c [alpha]) cdc9/cdc9 cdc28/cdc28 ade/+ tyr1/tyr/1 canR/+ +/his1 L.Johnston
1797. cdc36(MH30) alpha/a gal1/gal1 ade1/+ his1/+ trp2/+ +/trp1 +/ura1
961. 2C-4 alpha arg4-2/+ arg4-17/+ CUP1/+ thr1/+; rec5 leu1 trp5 trp1 his5 ade2 Radiation Res., 1972, 49, 133 & 148 R.K.Mortimer
960. 2C-8 alpha arg4-2/+ arg4-17/+ CUP1/+ thr1/+; rec4 leu1 trp5 trp1 his5 ade2 Radiation Res., 1972, 49, 133 & 148 R.K.Mortimer
1823. dbf1 (L123-8A) alpha trp1 ura3 dbf1 L.Johnston
1824. dbf2 (L119-7D) alpha trp? ura3 ade1 dbf2 L.Johnston
1750. dbf2-3 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf2-3 L.Johnston
1825. dbf3 (L124-11D) a ura3 dbf3 L.Johnston
1751. dbf3-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf3-1 L.Johnston
1747. dbf8-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf8-1 L.Johnston
1748. dbf9-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf9-1 L.Johnston
1813. dbf10-1 (D141) alpha ade1 his1 trp2 dbf10-1 L.Johnston
1814. dbf11-1 (D132) alpha ade1 his1 trp2 dbf11-1 L.Johnston
1815. dbf13-1 (D101) alpha ade1 his1 trp2 dbf13-1 L.Johnston
1816. dbf14-1 (D22) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-1 L.Johnston
1817. dbf14-2 (D25) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-2 L.Johnston
1818. dbf14-3 (D44) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-3 L.Johnston
1819. dbf15-1 (D22) alpha ade1 his1 trp2 dbf15-1 L.Johnston
1820. dbf20-1 (D175) alpha ade1 his1 trp2 dbf20-1 L.Johnston
1794. MH25 alpha/a dbf2/dbf2 gal1-D5/gal1-A ade1/+ his1/his1 trp2/trp2 +/ura1 +/tyr1 +/ade2 +/his L.Johnston
1795. MH26 alpha/a dbf3/dbf3 gal1-D5/gal1-a ade1/ade1 his1/+ trp2/+ +/lys2 +/ura1 +/tyr1 +/ade2 L.Johnston
1796. MH27 alpha/a dbf4/dbf4 gal1-D5/gal1-A ade1/ade1 his1/his1 trp2/+ +/lys2 +/tyr1 +/ade2 +/his7 L.Johnston 
1621. g716-5a ho a can1 hom3-10 his1-7 L.Johnston
1622. 309 alpha ade2-R8 metX can1-11 L.Johnston
1717. L39-8C alpha trp1 or trp2 lys2 canR. L.Johnston
1628. 320 a rme ade2 ura3 leu1 can1-11 cyh2-21 L.Johnston
1716. alpha131-20 alpha ade2-R8 cyh2 can1 leu1 ura3 L.Johnston
807. x 464-20C alpha trp1 ade1 his2 leu1 gal1 J.F.T.Spencer
859. 168 a ade1 gal1 lys2 tyr1 his7 ura1 ade2 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
1789. L58.3b gal1 ade1 or ade2 L.Johnston
1638. L57-15b gal1 his7 lys2 tyr1 L.Johnston
1625. Z65 a/alpha gal1-1/gal1-4 lys2-1/lys2-2 tyr1-1/tyr1-2 his7-2/his7-1 ade1/+ +/ade2 +/ura L.Johnston
1757. M1-2B (YNN 27) alpha trp1 ura3-52 gal2 L.Johnston
865. 205 alpha gal7 lys2 tyr1 his4 leu2 thr4 MAL2 trp1 ade6 arg4 ura4 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
866. 206 a gal7 lys2 tyr1 his4 MAL2 trp1 ade6 arg4 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
1624. 108-3A a gal80 ade6 thr4 trp1 his3 rho- L.Johnston
1636. L53-14C a gal80 gal1-A tyr1 lys2 his7 ade1(or ade2) ura1 L.Johnston
1635. L52-36 alpha gal80 gal1-D5 ade1 his1 (or his8) trp1(or trp8) L.Johnston
1787. 106-3D alpha gal80 ura1 his1 L.Johnston
1634. MH10 alpha/a gal80/gal80 gal1-D5/gal1-A trp2/+ +/ura1 +/tyr1 +/lys2 +/his2 +/ade1 or 2 L.Johnston
867. 207 a ade1 gal1 ura3 his2 trp5 leu1 lys7 met2 MAL3 SUC2 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
864. 194 a ade1 trp5 MAL6 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
862. 191 a ade2 MAL3 SUC3 MEL1 MGL2 MGL3 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
861. 190 a his4 leu2 MAL2 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
863. 192 a trp1 ura3 MAL4 MEL1 MGL3 suc- gal3 gal4 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
2252. a/alpha trp1/+ his2/+ ade1/+ STA2/STA2 Biochem.J., 1988, 249, 163 I.Evans
860. 169 alpha ilv2 his FLO1FLO4) G.Stewart
868. 209 a ilv2 FLO1FLO4) G.Stewart
869. 209 alpha FLO1FLO4) G.Stewart
870. 210 a ade1 gal1 trp1 ura3 his2 leu1 met14 FLO1FLO4) G.Stewart
1391. sigma 1278b wild type (parent) J.Bacteriol., 1970, 103, 770 R.Robbins
1390. 2512C a gap1 J.Bacteriol., 1970, 103, 770 R.Robbins
1454. MP1, ATCC 42131 a/alpha ade2/+ his8/+ trp5-12/trp5-21 R.Fahrig
916. JCK5-5A alpha his4-A15 ade2-1 can(R) kar1-1 J.Conde
917. ABq 21 alpha his4-A15 ade2-1 can(R) kar1-2 nys(R) J.Conde
2266. BC3 leu2-3.112 trp1.1 ura3-52 pgk::TRP1 Nucl.Acids Res, 1988,16, 1333-1348 P.Piper
1639. a rad1 rad18 1799. CM31/1d alpha rad1 leu his ade lys L.Johnston
1800. CM26/4c rad4-3 his leu L.Johnston
1763. CM4/1d alpha rad5 ura L.Johnston
1764. CM5/1b alpha rad7 leu L.Johnston
1805. CM21/9a a rad9 ade arg leu lys L.Johnston
1806. CM30/2C alpha rad11 ade arg his leu L.Johnston
1801. CM1/8a alpha rad18 ade2 leu2 his4 L.Johnston
1640. g739-2a a rad50-1 can1 his1 ade2(or adeX) L.Johnston
1721. g739-2d alpha rad50-1 hom3-10 his1 trp2 L.Johnston
1802. CM1/1C alpha rad51 lys2 leu2 his4 L.Johnston
1803. CM8/1a a rad54 ura his leu L.Johnston
1804. CM9/1a a rad55 leu his L.Johnston
1749. g725-12a alpha rad57-1 gal1-D5 hom3-10 his1-7 L.Johnston
1630. SK1 (L57.15b/L58.3b) gal1 het3 his7/+ lys2/+ tyr1/+ gal1-A/gal1-D5 +/ade1(or ade2) homothallic L.Johnston
1637. g761-10A [alpha]/g763-5c [a] rad51-3/rad51-3 gal1-A/gal1-5 his1-1/his1-7 +/his6 +/his7 tyr?/+ lys?/+ trp?/+ +/hom3-10 +/spo13-1 +/lys? +/tyr1 +/ura1 +/ade2 
1792. g650-4a [alpha]/g650-12a[a] rad52-1/rad52-1 CAN(s)/can(R) +/hom3-10 +/his1-7 +/trp ade4/+ ho/ho
1745. rna3-3 (D43) alpha ade1 his1 trp2 rna3-3 L.Johnston
1746. rna3-4 (D167) alpha ade1 his1 trp2 rna3-4 L.Johnston
1758. ts96 alpha ade1 his1 trp2 rna11-2 dds1-1 L.Johnston
1614. K381-9D alpha spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1612. K382-19D alpha spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 tyr1 L.Johnston
1611. K382-23A a spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 L.Johnston
1616. K393-35C alpha spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1617. K396-22B alpha spo11 ura3 ade1 his1 leu2 lys7 met3 trp5 L.Johnston
1613. K398-4D a spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1615. K399-7D a spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
227. Strain K, Manchester brewery strain, 1:5:4:2:1. 
228. Strain R, Sheffield brewery strain, 5:1:1:3:5.
229. Strain T, London brewery strain, 5:1:1:4:5.
230. Strain U, Birmingham brewery strain, 5:1:1:4:5.
231. Strain V, Burton-on-Trent brewery strain, 1:5:5:3:1. 
232. Strain S, American Yeast Foam, ATCC 60782, 1:1:3:5:1. 
205. Hybrid 1 (NCYC 227 x NCYC 228)
206. Hybrid 2 (NCYC 227 x NCYC 229)
207. Hybrid 3 (NCYC 227 x NCYC 230)
208. Hybrid 4 (NCYC 227 x NCYC 230)
209. Hybrid 5 (NCYC 227 x NCYC 231)
210. Hybrid 6 (NCYC 227 x NCYC 231)
211. Hybrid 7 (NCYC 230 x NCYC 231)
212. Hybrid 15 (NCYC 227 x NCYC 232)
213. Hybrid 18 (NCYC 220 x NCYC 232) 
214. Hybrid 24 (NCYC 222 x NCYC 221) 
215. Hybrid 30 (NCYC 223 x NCYC 221)
216. Hybrid 38 (NCYC 224 x NCYC 226) 
217. Hybrid 39 (NCYC 225 x NCYC 226)
218. Hybrid 48 (NCYC 226 x A162/1 ex NCYC 216)
219. Hybrid 64 (NCYC 227 x A162/3 ex NCYC 216)
220. Single spore isolate A2/3 strain from NCYC 212 
221. Single spore isolate A38/3 strain from NCYC 213
222. Single spore isolate A48/1 strain from NCYC 213
223. Single spore isolate A85/1 strain from NCYC 214
224. Single spore isolate A101/1 strain from NCYC 214
225. Single spore isolate A101/2 strain from NCYC 214
226. Single spore isolate A104/1 strain from NCYC 214
646. x901-35C strain; alpha hom2 aro1A trp5 leu1 ade6 lys1 his6 ura1 arg4-1 thr1
647. x901-26A strain; alpha hom2 aro1A trp5 leu1 ade6 his6 ura1 arg4-2 thr1
648. x1069-1A strain; a ade1 his4 leu2 thr4 met2 trp5 ura1
650. DV 147 strain; alpha ade2, readily reverts to wild type
651. 4B strain; alpha his4 leu3 lys10(?) ade6 ade2 met(?),
652. S400D strain; a ilv1; has other unlisted requirements
653. S288C-27 strain; alpha ilv1, has other unlisted requirements
654. S2583D strain; alpha ilv2, has other unlisted requirements
655. S2582B strain; alpha ilv2, has other unlisted requirements
656. JB19 strain; alpha leu1 ade2
657. JB143 strain; alpha leu2 ade2
658. JA36 strain; a leu3 ade2 lys10
659. x 764 diploid hybrid strain; segregates for markers trp5 leu1 ade6 ura3 hom3 his6 lys1 arg4 mal1
660. x 373 tetraploid hybrid strain
661. x 362 hexaploid hybrid strain
663. xJ151 hybrid diploid strain; ATCC 60732; segregates for markers thr1 lys1 ura3 aro1A hom2 trp4 ade8; homozygous for ade2
664. xJ107 hybrid diploid strain; segregates for markers leu1 ura3 lys7 gal7 his8 ser1 ade2
264. S.Jackson Farmer's diploid strain 18, C53-8d x C24-13b) 1959
402. A.A.Eddy F28c strain, single spore isolate from NCYC 264) 1953
593. W.F.F.Oppenoorth (R7, O.Winge's C.L.303-9 hybrid strain) 1959
594. W.F.F.Oppenoorth (K83 S 58 hybrid strain) 1959
666. J.W.Millbank (respiratory deficient mutant derived from ale yeast NCYC 239) 1963
673. H.Laser (petite colony mutant by x-irradiation of baker's yeast) 1963
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする、遺伝子組換えイースト。
【請求項９】
以下に列挙するイーストSaccharomyces cerevisiaeの一つにおいて、
505. CBS (1957). CBS 1171, ATCC 18824. Type strain for Saccharomyces cerevisiae. From brewing yeast. 5:1:5:5:1
70. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces anamensis. NCTC 3864.
72. Schmitt (1924). Saccharomyces brasiliensis. 98 Carlsberg strain, NCTC 1808.
74. ATCC (1945). Saccharomyces carlsbergensis. ATCC 9080, ATCC 24904, CBS 2354. 
76. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces cartilaginosus. NCTC 3865.
77. A.Harden (1921). Baker's yeast strain. Requires thiamin, pantothenate and biotin (Arch.Biochem., 1947, 14, 369. J.Gen.Microbiol., 1983, 128, 2615-2620).
78. A.C.Chapman (1925). NCTC 2160
79. ATCC (1942). ATCC 7754, CBS 1368, NRRL Y-977, IFO 1346. Fleischmann brewer's strain. Assay of biotin.
80. H.B.Hutchinson (1930). GB 354, NCTC 5922.
【数１】
2005532055.tif 000005
82. A.Klocker (1920). NCTC 466.
83. A.Harden (1920). Carlsberg Laboratory strain 21, NCTC 381.
84. H.J.Bunker (1945). NCTC 7043.
85. A.J.Kluyver (1939). NCTC 5916.
86. ATCC (1942). ATCC 7753, CBS 1321, NCTC 6421. 
87. ATCC (1947). ATCC 9763, NRRL Y-567, CBS 2978, NCTC 10716 and NCTC 7239. 
89. ATCC (1946). ATCC 7921. From Fleischmann yeast cake. (J.Phys.Chem., 1928, 32, 1094).
90. A.Castellani (1928). NCTC 2779. Distiller's yeast.
91. A.Guilliermond (1925). Saccharomyces chevalieri. CBS 400, ATCC 9804, NCTC 2054. Type strain for Saccharomyces chevalieri. From wine.
92. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces delbrueckii. NCTC 3964.
93. A.C.Chapman (1925). Saccharomyces cerevisiae var. ellipsoideus. NCTC 2161. Wine yeast.
94. A.Klocker (1920). Saccharomyces ellipsoideus. NCTC 467, NRRL Y-129, ATCC 2338.
95. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces ellipsoideus var. cratericus. NCTC 3866.
96. M.B.Church (1922). Saccharomyces cerevisiae var. ellipsoideus. NCTC 1344. For the production of vinegar from apple juice.
97. H.B.Hutchinson (1945). Saccharomyces ellipsoideus. Michigan 48 strain. ATCC 10824, NCTC 7040.
99. J.L.Baker (1930). Saccharomyces festinans. From infected ale. (J.Inst.Brew., 1929, 35, 466).
104. M.Kir (1934). Hungarian Wine Yeast.
107. A.J.Kluyver (1939). Saccharomyces intermedius.
108. T.Castelli (1939). Saccharomyces italicus. From Chianti grape must.
109. Carlsberg Laboratory (1924). Saccharomyces lactis.
110. A.Guilliermond (1925). Saccharomyces lindneri. CBS 403. From West African ginger beer.
113. A.Guilliermond (1925). Saccharomyces vini.
118. Gray, McGill University (1932). Saccharomyces sake.
121. A.C.Chapman (1921). Saccharomyces thermantitonum.
122. B.von Euler (1921). Saccharomyces thermantitonum. (Biochem.Z., 1919, 97, 156).
124. A.Klocker (1920). NRRL Y-2434 Saccharomyces turbidans. (J.Inst.Brew., 1950, 56, 192).
125. A.Heinemann (1933). Saccharomyces ellipsoideus. (Exp.Cell.Res., 1958, 15, 214).
126. A.Klocker (1920). Saccharomyces validus.
167. B.W.Hammer (1922). Torula cremoris. From fermented cream.
176. A.J.Kluyver (1934). Zygosaccharomyces priorianus.
177. Anheuser-Busch Inc., USA (1927). Californian wine yeast. (J.Gen.Microbiol., 1982, 128, 2615-2620).
182. A.C.Chapman (1933). Fernbach 38 strain.
183. A.C.Chapman (1933). Fernbach 40 strain.
【数２】
2005532055.tif 000006
187. A.C.Chapman (1921). Kefir Yeast.
190. A.C.Chapman (1931). Saccharomyces logos. ATCC 60731, NCTC 3341. Killer character K1 (Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59-77).
192. G.Johnson (1936). Melbourne No.1 strain.
196. A.C.Chapman (1933). Yeast Race V.
197. Mehta (1925). Yeast Race II.
【数３】
2005532055.tif 000007
199. A.C.Chapman (1921). Saaz Yeast. NCTC 906, ATCC 2704, NRRL Y-239. From Bohemian brewery.
200. A.C.Thaysen (1920). Sternberg 675 strain. For production of glycerol.
201. R.M.Nattrass (1943). 61 strain.
202. Carlsberg Laboratory (1924). Wine yeast, Johannesburg II Wortmann 76 strain.
232. R.S.W.Thorne (1951).
S, American Yeast Foam. 1:1:3:5:1 ATCC 60782. Killer character K1(Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59-77; J.Ferm.Technol., 1985, 63, 421-429).
235. B.M.Brown (1951). Whitbread strain. ATCC 60733. Killer character K1 (Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59-77). 5:1:4:4:1.
244. CMI (1951). Saccharomyces intermedius. IMI 46336.
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291. S.Jackson via C.C.Lindegren (1951). Mrak 93 strain.
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325. A.E.Wiles (1951). T43 Yorkshire type yeast. (J.Inst.Brew., 1950, 56, 183).
341. A.E.Wiles (1951). From draught beer. 1:1:5:5:1
343. A.E.Wiles (1951). From draught beer. 1:1:5:5:1 (J.Inst.Brew., 1950, 56, 183).
344. A.E.Wiles (1951). Saccharomyces cerevisiae var. turbidans. From draught beer. (J.Inst.Brew., 1950, 56, 183).
345. A.E.Wiles (1951). Saccharomyces cerevisiae var. turbidans. From draught beer. (J.Inst.Brew., 1950, 56, 183).
346. A.E.Wiles (1951). Saccharomyces cerevisiae var. turbidans. From draught beer. (J.Inst.Brew., 1950, 56, 183).
356. C.H.Ridge (1953). Mead yeast.
357. T.Gray (1951). Avize-Cramant mead yeast.
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406. R.B.Gilliland (1954). Saccharomyces steineri.
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489. J.Lodder (1957). Single cell isolate from baking yeast. Requires inositol, pantothenate and biotin.
490. J.Lodder (1957). Single cell isolate from baking yeast.
491. J.Lodder (1957). Single cell isolate from baking yeast. Requires inositol, pantothenate, biotin and thiamin.
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1413. DSM (1982). DSM 70467. Sauternes strain.
1414. DSM (1982). DSM 70464. Tarragona strain.
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2776. F.C. Odds (1997). MAS 1..
2777. F.C. Odds (1997). MAS 2. 
2778. F.C. Odds (1997). MAS 3. 
2779. F.C. Odds (1997). MAS 4. 
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媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換えイースト。
【請求項１０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1SあるいはFLO1L の一つ以上を持っていることを特徴とする遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiae。
【請求項１１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーター（Mox あるいはHSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター）によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1SあるいはFLO1L の一つ以上をを持っていることを特徴とする遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiae。
【請求項１２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1SあるいはFLO1L の一つ以上を持っていることを特徴とする遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiaeによる好気性発酵方法。
【請求項１３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1SあるいはFLO1L の一つ以上を持っていることを特徴とする遺伝子組換えイーストによる好気性発酵方法。
【請求項１４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1SあるいはFLO1L を一つ以上持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１５】
．媒質の化学成分の特徴、pHあるいは物質刺激に応じ開始するプロモーターMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10 を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物による好気性発酵方法。
【請求項１７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物による好気性発酵方法。
【請求項１８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４と１７による発酵方法において遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5 、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４、１７による発酵方法において、遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項２０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FL1L、FLO10の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４、１７による発酵方法において、遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項２１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FL1L、FLO10の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項５、６、７、１１と１５による発酵方法において、遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項２２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FL1L、FLO10の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項５、６、７、８、９、１０、１１、１４と１５による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項２３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FL1L、FLO10の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項５、６、７、８、９、１０、１１、１４と１５による発酵方法において、遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項２４】
媒質中の砂糖と窒素のような栄養の存在あるいは欠如に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による遺伝子組換え微生物。
【請求項２５】
媒質中の砂糖と窒素のような栄養の存在あるいは欠如に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項２６】
媒質中の砂糖と窒素のような栄養の存在あるいは欠如に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項２７】
媒質中の砂糖と窒素のような栄養の存在あるいは欠如に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２４による、遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項２８】
媒質中のエタノールの中での存在あるいは欠如に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２４による、遺伝子組換え微生物に使用される微生物。
【請求項２９】
媒質中のエタノールの中での存在あるいは欠如に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項３０】
媒質中のエタノールの存在あるいは欠如に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項３１】
媒質中のエタノールの存在あるいは欠如に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項３２】
ｐＨの低下又は媒質の熱変動に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物。
【請求項３３】
ｐＨの低下又は媒質の熱変動に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項３４】
ｐＨの低下又は媒質の熱変動に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項３５】
ｐＨの低下又は媒質の熱変動に応じ開始されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１〜２３による、遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項３６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって開始されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項４、６、１２、１３、１６、１７、１８、１９、２０、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４と３５による遺伝子組換え微生物。
【請求項３７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項４、６、１２、１３、１６、１７、１８、１９、２０、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５と３６による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項３８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項４、６、１２、１３、１６、１７、１８、１９、２０、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５と３６による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項３９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項４、６、１２、１３、１６、１７、１８、１９、２０、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５と３６による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項４０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：HSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４、６、１２、１３、１６、１７、１８、１９、２０、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５と３６による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項４１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：HSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４０による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項４２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：HSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４０による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項４３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：HSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４０による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項４４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーターMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項４５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーターMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４４による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項４６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーターMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４４による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項４７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーターMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項４４による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項４８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：HSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項４９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーターHSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項４８による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項５０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーターHSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項４８による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項５１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーターHSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項４８による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項５２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター： ADHあるいはMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項５３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター： ADHあるいはMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項５２による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項５４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター： ADHあるいはMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項５２による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項５５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター： ADHあるいはMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項５２による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項５６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、 cyc8ou、cka2、FMC1の一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項５７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、 cyc8ou、cka2あるいはFMC1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項５６による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項５８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、 cyc8ou、cka2あるいはFMC1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項５６による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項５９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、 cyc8ou、cka2あるいはFMC1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項５６による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項６０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする特にPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis のイーストによって構成された遺伝子組換え微生物。
【請求項６１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換えノンワイルド微生物。
【請求項６２】
有用なタンパク質を生産することを特徴とする請求項１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１４、１５、２４、２８、３２、３６、４０、４４、４８、５２、５６、６０と６１による遺伝子組換え微生物を使用する好気性発酵方法。
【請求項６３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とするW204の遺伝子組換えビールイースト。
【請求項６４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項６３によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるプラスミド。
【請求項６５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項６３によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるカセット。
【請求項６６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項６３によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるベクター。
【請求項６７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1のひとつを持っていることを特徴とする請求項６３によるW204の遺伝子組換えビールイースト。
【請求項６８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部にによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1のひとつを持っていることを特徴とする請求項６３と６７によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるカセット。
【請求項６９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部にによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1のひとつを持っていることを特徴とする請求項６３と６７によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるプラスミド。
【請求項７０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによー：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項６３と６７によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるベクター。
【請求項７１】
有用なタンパク質を生産することを特徴とする請求項６３、６４、６５、６６、６７、６８、６９と７０によるW204の遺伝子組換えビールイーストを用いる好気性発酵方法。
【請求項７２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1SとFLO1Lを持っていることを特徴とするワイルド微生物ではないラインW204の遺伝子組換えビールイーストを使って有用なタンパク質を生産する好気性発酵方法。
【請求項７３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1SとFLO1Lを持っていることを特徴とする遺ワイルド微生物ではない伝子組換え微生物。
【請求項７４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とするワイルド微生物ではない遺伝子組換えビールイーストを使って有用なタンパク質を生産する好気性発酵方法。
【請求項７５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始するADH、Mox、HSP30pあるいはヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項７６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始するADH、Mox、HSP30pあるいはヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする請求項７５による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項７７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始するADH、Mox、HSP30pあるいはヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする請求項７５による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項７８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始するADH、Mox、HSP30pあるいはヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする請求項７５による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項７９】
請求項75による遺伝子組換え微生物を使って有用なタンパク質を生産する好気性発酵方法。
【請求項８０】
請求項75による遺伝子組換え微生物を使って有用なタンパク質を生産する嫌気性発酵方法。
【請求項８１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターの一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項５、７、８、９、１０、２１、２２と２３による遺伝子組換え微生物。
【請求項８２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターの一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする請求項５、７、８、９、１０、２１、２２と２３による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項８３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターの一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項５、７、８、９、１０、２１、２２と２３による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項８４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ開始する次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターの一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項５、７、８、９、１０、２１、２２と２３による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項８５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする特にPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項８６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項８７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO3を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項８８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO4を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項８９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO5を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO6を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO7を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO8を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO9を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO7を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO8を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO9を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項９８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換え藻。
【請求項９９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換え原生動物。
【請求項１００】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じて開始するプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO4を持っていることを特徴とするPichia pastorisからの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項１０１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換えバクテリア。
【請求項１０２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換え菌類。
【請求項１０３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換えアルカエ。
【請求項１０４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換えイースト。
【請求項１０５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10 を持っていることを特徴とする遺伝子組換えイースト。
【請求項１０６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする特にPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイースト。
【請求項１０７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする特にPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactis からの遺伝子組換えイースト
【請求項１０８】
以下に列挙するイーストにおいて
956. X2180-1A, ATCC 26786 a SUC2 mal gal2 CUP1 R.K.Mortimer
957. X2180-1B, ATCC 26787 alpha SUC2 mal gal2 CUP1 R.K.Mortimer
857. 158 a Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
858. 159 alpha Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
713. KIL-k2 From draught beer) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 M.Richards
738. KIL-k2 (brewery contaminant) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 A.P.Maule
761. KIL-k3 From palm wine), CBS 7903 J.Ferm.Technol., 1985, 63, 421-429 N.Okafor
1001. KIL-k2 (brewing yeast) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 
1561. A8209B his4-864 KIL-k1 G.Fink via T.Young
958. X2928-3D-1A a ade1 gal1 leu1 his2 ura3 trp1 met14 R.K.Mortimer
959. X2928-3D-1C alpha ade1 gal1 leu1 his2 ura3 trp1 met14 R.K.Mortimer
1786. STX 147-4C alpha ade1 his7 tyr1 gal1 cly8 ade5 aro2 met13 lys5 trp5 cyh2 arg4 lys1 ura4 gal2 ade2 rad56 L.Johnston
1620. STX77-6C alpha gal1 his4 trp1 hom3 ura3 CUP1 ilv3 ade3 rad52 rna1 L.Johnston
1618. X4119-19C a his7 tyr1 cdc9 trp4 aro1B hom2 rad2 thr1 lys11 gal2 ade2 L.Johnston
1661. X4120-19D alpha lys2 leu2 pet14 rad(?) rna3 ade8 aro1D met10 ade5 leu1 CUP1 L.Johnston
1619. STX66-4A a rad18 lys4 trp1 prt3 CUP1 gal2 ade2 met2 pha2 L.Johnston
1617. K396-22B alpha spo11 ura3 ade1 his1 leu2 lys7 met3 trp5 L.Johnston
1614. K381-9D alpha spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1613. K398-4D a spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1611. K382-23A a spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 L.Johnston
1612. K382-19D alpha spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 tyr1 L.Johnston
1616. K393-35C alpha spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1615. K399-7D a spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1383. DBY 747, ATCC 44774 a leu2-3 leu2-112 his3-DELTA1 trp4-289 ura3-52 Gene, 1979, 8, 17-24. J.F.Makins
1392. MC16 alpha leu2-3 his4-712FS) SUF2 ade2-1 lys2-1 Nature, 1981, 275, 104. J.F.Makins
1445. LL20 alpha his3-11 his3-15 leu2-3 leu2-112 J.Bacteriol., 1979, 140, 73-82 A.Coddington
1527. MD40/4C alpha leu2-3 leu2-112 his3-11 his3-15 ura2 trp1 CAN s B.Bowen
1528. AH22 a leu2-3 leu2-112 his4 canR B.Bowen
1627. D13-1A (YNN6) a trp1 his3-532 gal2 L.Johnston
1771. cdc9-1 (L89-6C) a cdc9-1 leu2 ade1 ade2 ura1 lys2 L.Johnston
804. D160 a ura3 his1 arg6 trp2 ade1 J.F.T.Spencer
805. A364A a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 J.Mol.Biol., 1976, 105, 427-443 J.F.T.Spencer
806. x112 alpha ade8-2 trp5-2 lys2-1 ura1-1 J.F.T.Spencer
808. GRH1 a trp1 ade1 his7 ura1 gal1 G.Stewart
1395. S1896D a met7 trp1 leu1 ade1 gal1 gal2 pet R.K.Mortimer
1396. F33 alpha met7 gal2 pet R.K.Mortimer
1623. X2181-1B a gal1 his2 trp1 ade1
1626. CG379 ade+ alpha his7-2 leu2-3 leu2-112 trp1-289 ura3-52 (ade5 rev)
1631. g440-7C alpha ade4 trp1 L.Johnston
1632. D273-11A alpha ade1 his1 trp2 L.Johnston
1662. alpha arg met L.Johnston
1663. a arg met L.Johnston
1664. alpha/alpha arg 2μ + L.Johnston
1719. A364A rho- a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 rho- L.Johnston
1720. B635 a cyc1-115 his1-1 lys2-1 trp2 L.Johnston
1772. L126-R9 a leu2 hom3-10 his1 L.Johnston
1790. a/a arg his 2μ + L.Johnston
1812. L126-2B a leu2 hom3-10 his1 L.Johnston
1821. S13 a his4 ura1 trp5 gal2 L.Johnston
1822. S49 a his4 ura1 trp5 gal2 ade6 L.Johnston
1961. GRF18 alpha leu2-3 leu2-212 his3-11 his3-15 canR G.Fink via D.MacKenzie
1356. A 137 alpha pho80-2 J.Bacteriol., 1973, 113, 727-738 A.Coddington
1357. A 138 a pho80-2 J.Bacteriol., 1973, 113, 727-738 A.Coddington
828. a ade1 J.F.T.Spencer
829. alpha ade1 J.F.T.Spencer
1577. a ade1 leu1 B.Pearson
1652. a ade1 leu2 B.Pearson
830. a ade2 J.F.T.Spencer
802. alpha ade2 (lys) J.F.T.Spencer
832. a ade3 J.F.T.Spencer
833. alpha ade3 (ura) J.F.T.Spencer
834. a ade4 J.F.T.Spencer
835. alpha ade4 (ura) J.F.T.Spencer
836. a ade5 J.F.T.Spencer
837. alpha ade5 (ura) J.F.T.Spencer
838. a ade6 J.F.T.Spencer
839. alpha ade6 (trp) J.F.T.Spencer
840. a ade7 J.F.T.Spencer
841. alpha ade7 J.F.T.Spencer
842. a ade8 J.F.T.Spencer
843. alpha ade8 (lys trp) J.F.T.Spencer
1654. cdc3-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc3-1 L.Johnston
1642. cdc4-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc4-1 L.Johnston
1643. cdc5-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc5-1 L.Johnston
1723. cdc6-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc6-1 L.Johnston
1729. cdc7-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc7-1 L.Johnston
1730. cdc8-141 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc8-141 L.Johnston
1667. cdc8-198 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc8-198 L.Johnston
1771. cdc9-1 (L89-6C) a cdc9-1 leu2 ade1 ade2 ura1 lys2 L.Johnston
1788. cdc9-1 rev1 cdc9-1 rev1 L.Johnston
1672. cdc9-12 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-12 L.Johnston
1673. cdc9-13 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-13 L.Johnston
1791. cdc9-3 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-3 2μ+ L.Johnston
1731. cdc9-4 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-4 L.Johnston
1732. cdc9-6 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-6 L.Johnston
1807. cdc9-7 (L82-2B) a cdc9-7 trp1 lys2 his7 L.Johnston
1808. cdc9-7 (L94-4D) a cdc9-7 trp1 ura3 L.Johnston
1670. cdc9-7 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-7 L.Johnston
1633. cdc9-7 rho- cdc9-7 rho- L.Johnston
1671. cdc9-8 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-8 L.Johnston
1674. cdc10-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc10-1 L.Johnston
1655. cdc11-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc11-1 L.Johnston
1733. cdc12-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc12-1 L.Johnston
1734. cdc13-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc13-1 L.Johnston
1735. cdc14-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc14-1 L.Johnston
1736. cdc18-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc18-1 L.Johnston
1737. cdc19-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc19-1 L.Johnston
1738. cdc26-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc26-1 L.Johnston
1665. cdc28-4 L31-7a a cdc28-4 tyr1 L.Johnston
1675. cdc30-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc30-1 L.Johnston
1676. cdc31-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc31-1 L.Johnston
1722. cdc36-16 SR661-2 a cdc36-16 trp1-1 ura1 L.Johnston
1666. cdc37-1 SR672-1 a cdc37-1 ura1 cyh2 L.Johnston
1641. cdc39-1 SR665-1 alpha cdc39-1 met2 tyr1 cyh2 L.Johnston
1677. cdc41 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc41 L.Johnston
1753. cdc6 (MH18) cdc6/cdc6 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1754. cdc13 (MH20) cdc13/cdc13 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1752. cdc15-1 (MH15) cdc15-1/cdc15-1 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1755. cdc17 (MH21) cdc17/cdc17 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1756. cdc21 (MH21) cdc21/cdc21 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1718. JC2 (L31-9a [a]/L31-2c [alpha]) cdc9/cdc9 cdc28/cdc28 ade/+ tyr1/tyr/1 canR/+ +/his1 L.Johnston
1797. cdc36(MH30) alpha/a gal1/gal1 ade1/+ his1/+ trp2/+ +/trp1 +/ura1
961. 2C-4 alpha arg4-2/+ arg4-17/+ CUP1/+ thr1/+; rec5 leu1 trp5 trp1 his5 ade2 Radiation Res., 1972, 49, 133 & 148 R.K.Mortimer
960. 2C-8 alpha arg4-2/+ arg4-17/+ CUP1/+ thr1/+; rec4 leu1 trp5 trp1 his5 ade2 Radiation Res., 1972, 49, 133 & 148 R.K.Mortimer
1823. dbf1 (L123-8A) alpha trp1 ura3 dbf1 L.Johnston
1824. dbf2 (L119-7D) alpha trp? ura3 ade1 dbf2 L.Johnston
1750. dbf2-3 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf2-3 L.Johnston
1825. dbf3 (L124-11D) a ura3 dbf3 L.Johnston
1751. dbf3-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf3-1 L.Johnston
1747. dbf8-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf8-1 L.Johnston
1748. dbf9-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf9-1 L.Johnston
1813. dbf10-1 (D141) alpha ade1 his1 trp2 dbf10-1 L.Johnston
1814. dbf11-1 (D132) alpha ade1 his1 trp2 dbf11-1 L.Johnston
1815. dbf13-1 (D101) alpha ade1 his1 trp2 dbf13-1 L.Johnston
1816. dbf14-1 (D22) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-1 L.Johnston
1817. dbf14-2 (D25) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-2 L.Johnston
1818. dbf14-3 (D44) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-3 L.Johnston
1819. dbf15-1 (D22) alpha ade1 his1 trp2 dbf15-1 L.Johnston
1820. dbf20-1 (D175) alpha ade1 his1 trp2 dbf20-1 L.Johnston
1794. MH25 alpha/a dbf2/dbf2 gal1-D5/gal1-A ade1/+ his1/his1 trp2/trp2 +/ura1 +/tyr1 +/ade2 +/his L.Johnston
1795. MH26 alpha/a dbf3/dbf3 gal1-D5/gal1-a ade1/ade1 his1/+ trp2/+ +/lys2 +/ura1 +/tyr1 +/ade2 L.Johnston
1796. MH27 alpha/a dbf4/dbf4 gal1-D5/gal1-A ade1/ade1 his1/his1 trp2/+ +/lys2 +/tyr1 +/ade2 +/his7 L.Johnston 
1621. g716-5a ho a can1 hom3-10 his1-7 L.Johnston
1622. 309 alpha ade2-R8 metX can1-11 L.Johnston
1717. L39-8C alpha trp1 or trp2 lys2 canR. L.Johnston
1628. 320 a rme ade2 ura3 leu1 can1-11 cyh2-21 L.Johnston
1716. alpha131-20 alpha ade2-R8 cyh2 can1 leu1 ura3 L.Johnston
807. x 464-20C alpha trp1 ade1 his2 leu1 gal1 J.F.T.Spencer
859. 168 a ade1 gal1 lys2 tyr1 his7 ura1 ade2 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
1789. L58.3b gal1 ade1 or ade2 L.Johnston
1638. L57-15b gal1 his7 lys2 tyr1 L.Johnston
1625. Z65 a/alpha gal1-1/gal1-4 lys2-1/lys2-2 tyr1-1/tyr1-2 his7-2/his7-1 ade1/+ +/ade2 +/ura L.Johnston
1757. M1-2B (YNN 27) alpha trp1 ura3-52 gal2 L.Johnston
865. 205 alpha gal7 lys2 tyr1 his4 leu2 thr4 MAL2 trp1 ade6 arg4 ura4 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
866. 206 a gal7 lys2 tyr1 his4 MAL2 trp1 ade6 arg4 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
1624. 108-3A a gal80 ade6 thr4 trp1 his3 rho- L.Johnston
1636. L53-14C a gal80 gal1-A tyr1 lys2 his7 ade1(or ade2) ura1 L.Johnston
1635. L52-36 alpha gal80 gal1-D5 ade1 his1 (or his8) trp1(or trp8) L.Johnston
1787. 106-3D alpha gal80 ura1 his1 L.Johnston
1634. MH10 alpha/a gal80/gal80 gal1-D5/gal1-A trp2/+ +/ura1 +/tyr1 +/lys2 +/his2 +/ade1 or 2 L.Johnston
867. 207 a ade1 gal1 ura3 his2 trp5 leu1 lys7 met2 MAL3 SUC2 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
864. 194 a ade1 trp5 MAL6 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
862. 191 a ade2 MAL3 SUC3 MEL1 MGL2 MGL3 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
861. 190 a his4 leu2 MAL2 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
863. 192 a trp1 ura3 MAL4 MEL1 MGL3 suc- gal3 gal4 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
2252. a/alpha trp1/+ his2/+ ade1/+ STA2/STA2 Biochem.J., 1988, 249, 163 I.Evans
860. 169 alpha ilv2 his FLO1FLO4) G.Stewart
868. 209 a ilv2 FLO1FLO4) G.Stewart
869. 209 alpha FLO1FLO4) G.Stewart
870. 210 a ade1 gal1 trp1 ura3 his2 leu1 met14 FLO1FLO4) G.Stewart
1391. sigma 1278b wild type (parent) J.Bacteriol., 1970, 103, 770 R.Robbins
1390. 2512C a gap1 J.Bacteriol., 1970, 103, 770 R.Robbins
1454. MP1, ATCC 42131 a/alpha ade2/+ his8/+ trp5-12/trp5-21 R.Fahrig
916. JCK5-5A alpha his4-A15 ade2-1 can(R) kar1-1 J.Conde
917. ABq 21 alpha his4-A15 ade2-1 can(R) kar1-2 nys(R) J.Conde
2266. BC3 leu2-3.112 trp1.1 ura3-52 pgk::TRP1 Nucl.Acids Res, 1988,16, 1333-1348 P.Piper
1639. a rad1 rad18 (+ other unlisted requirements) L.Johnston
1799. CM31/1d alpha rad1 leu his ade lys L.Johnston
1800. CM26/4c rad4-3 his leu L.Johnston
1763. CM4/1d alpha rad5 ura L.Johnston
1764. CM5/1b alpha rad7 leu L.Johnston
1805. CM21/9a a rad9 ade arg leu lys L.Johnston
1806. CM30/2C alpha rad11 ade arg his leu L.Johnston
1801. CM1/8a alpha rad18 ade2 leu2 his4 L.Johnston
1640. g739-2a a rad50-1 can1 his1 ade2(or adeX) L.Johnston
1721. g739-2d alpha rad50-1 hom3-10 his1 trp2 L.Johnston
1802. CM1/1C alpha rad51 lys2 leu2 his4 L.Johnston
1803. CM8/1a a rad54 ura his leu L.Johnston
1804. CM9/1a a rad55 leu his L.Johnston
1749. g725-12a alpha rad57-1 gal1-D5 hom3-10 his1-7 L.Johnston
1630. SK1 (L57.15b/L58.3b) gal1 het3 his7/+ lys2/+ tyr1/+ gal1-A/gal1-D5 +/ade1(or ade2) homothallic L.Johnston
1637. g761-10A [alpha]/g763-5c [a] rad51-3/rad51-3 gal1-A/gal1-5 his1-1/his1-7 +/his6 +/his7 tyr?/+ lys?/+ trp?/+ +/hom3-10 +/spo13-1 +/lys? +/tyr1 +/ura1 +/ade2 
1792. g650-4a [alpha]/g650-12a[a] rad52-1/rad52-1 CAN(s)/can(R) +/hom3-10 +/his1-7 +/trp ade4/+ ho/ho
1745. rna3-3 (D43) alpha ade1 his1 trp2 rna3-3 L.Johnston
1746. rna3-4 (D167) alpha ade1 his1 trp2 rna3-4 L.Johnston
1758. ts96 alpha ade1 his1 trp2 rna11-2 dds1-1 L.Johnston
1614. K381-9D alpha spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1612. K382-19D alpha spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 tyr1 L.Johnston
1611. K382-23A a spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 L.Johnston
1616. K393-35C alpha spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1617. K396-22B alpha spo11 ura3 ade1 his1 leu2 lys7 met3 trp5 L.Johnston
1613. K398-4D a spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1615. K399-7D a spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
227. Strain K, Manchester brewery strain, 1:5:4:2:1. 
228. Strain R, Sheffield brewery strain, 5:1:1:3:5.
229. Strain T, London brewery strain, 5:1:1:4:5.
230. Strain U, Birmingham brewery strain, 5:1:1:4:5.
231. Strain V, Burton-on-Trent brewery strain, 1:5:5:3:1. 
232. Strain S, American Yeast Foam, ATCC 60782, 1:1:3:5:1. 
205. Hybrid 1 (NCYC 227 x NCYC 228)
206. Hybrid 2 (NCYC 227 x NCYC 229)
207. Hybrid 3 (NCYC 227 x NCYC 230)
208. Hybrid 4 (NCYC 227 x NCYC 230)
209. Hybrid 5 (NCYC 227 x NCYC 231)
210. Hybrid 6 (NCYC 227 x NCYC 231)
211. Hybrid 7 (NCYC 230 x NCYC 231)
212. Hybrid 15 (NCYC 227 x NCYC 232)
213. Hybrid 18 (NCYC 220 x NCYC 232) 
214. Hybrid 24 (NCYC 222 x NCYC 221) 
215. Hybrid 30 (NCYC 223 x NCYC 221)
216. Hybrid 38 (NCYC 224 x NCYC 226) 
217. Hybrid 39 (NCYC 225 x NCYC 226)
218. Hybrid 48 (NCYC 226 x A162/1 ex NCYC 216)
219. Hybrid 64 (NCYC 227 x A162/3 ex NCYC 216)
220. Single spore isolate A2/3 strain from NCYC 212 
221. Single spore isolate A38/3 strain from NCYC 213
222. Single spore isolate A48/1 strain from NCYC 213
223. Single spore isolate A85/1 strain from NCYC 214
224. Single spore isolate A101/1 strain from NCYC 214
225. Single spore isolate A101/2 strain from NCYC 214
226. Single spore isolate A104/1 strain from NCYC 214
646. x901-35C strain; alpha hom2 aro1A trp5 leu1 ade6 lys1 his6 ura1 arg4-1 thr1
647. x901-26A strain; alpha hom2 aro1A trp5 leu1 ade6 his6 ura1 arg4-2 thr1
648. x1069-1A strain; a ade1 his4 leu2 thr4 met2 trp5 ura1
650. DV 147 strain; alpha ade2, readily reverts to wild type
651. 4B strain; alpha his4 leu3 lys10(?) ade6 ade2 met(?),
leaky mutant disomic for chromosome III, mates and sporulates well
652. S400D strain; a ilv1; has other unlisted requirements
653. S288C-27 strain; alpha ilv1, has other unlisted requirements
654. S2583D strain; alpha ilv2, has other unlisted requirements
655. S2582B strain; alpha ilv2, has other unlisted requirements
656. JB19 strain; alpha leu1 ade2
657. JB143 strain; alpha leu2 ade2
658. JA36 strain; a leu3 ade2 lys10
659. x 764 diploid hybrid strain; segregates for markers trp5 leu1 ade6 ura3 hom3 his6 lys1 arg4 mal1
660. x 373 tetraploid hybrid strain
661. x 362 hexaploid hybrid strain
663. xJ151 hybrid diploid strain; ATCC 60732; segregates for markers thr1 lys1 ura3 aro1A hom2 trp4 ade8; homozygous for ade2
664. xJ107 hybrid diploid strain; segregates for markers leu1 ura3 lys7 gal7 his8 ser1 ade2
264. S.Jackson Farmer's diploid strain 18, C53-8d x C24-13b) 1959
402. A.A.Eddy F28c strain, single spore isolate from NCYC 264) 1953
593. W.F.F.Oppenoorth (R7, O.Winge's C.L.303-9 hybrid strain) 1959
594. W.F.F.Oppenoorth (K83 S 58 hybrid strain) 1959
666. J.W.Millbank (respiratory deficient mutant derived from ale yeast NCYC 239) 1963
673. H.Laser (petite colony mutant by x-irradiation of baker's yeast) 1963
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換え次のラインの一つにおいて、遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiae：
【請求項１０９】
以下に列挙するイーストにおいて
505. CBS (1957). CBS 1171, ATCC 18824. 
70. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces anamensis. NCTC 3864.
72. Schmitt (1924). Saccharomyces brasiliensis. 98 Carlsberg strain, NCTC 1808.
74. ATCC (1945). Saccharomyces carlsbergensis. ATCC 9080, ATCC 24904, CBS 2354..
76. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces cartilaginosus. NCTC 3865.
77. A.Harden (1921). Baker's yeast strain..
78. A.C.Chapman (1925). NCTC 2160
79. ATCC (1942). ATCC 7754, CBS 1368, NRRL Y-977, IFO 1346.
80. H.B.Hutchinson (1930). GB 354, NCTC 5922.
81. ATCC (1942). ATCC 7752, CBS 1320, NRRL Y-973, IFO 1234..
82. A.Klocker (1920). NCTC 466.
83. A.Harden (1920). Carlsberg Laboratory strain 21, NCTC 381.
84. H.J.Bunker (1945). NCTC 7043.
85. A.J.Kluyver (1939). NCTC 5916.
86. ATCC (1942). ATCC 7753, CBS 1321, NCTC 6421.
87. ATCC (1947). ATCC 9763, NRRL Y-567, CBS 2978, NCTC 10716 and NCTC 7239. 89. ATCC (1946). ATCC 7921..
90. A.Castellani (1928). NCTC 2779. Distiller's yeast.
91. A.Guilliermond (1925). Saccharomyces chevalieri. CBS 400, ATCC 9804, NCTC 2054. Type strain for Saccharomyces chevalieri. From wine.
92. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces delbrueckii. NCTC 3964.
93. A.C.Chapman (1925). Saccharomyces cerevisiae var. ellipsoideus. NCTC 2161. Wine yeast.
94. A.Klocker (1920). Saccharomyces ellipsoideus. NCTC 467, NRRL Y-129, ATCC 2338.
95. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces ellipsoideus var. cratericus. NCTC 3866.
96. M.B.Church (1922). Saccharomyces cerevisiae var. ellipsoideus. NCTC 1344..
97. H.B.Hutchinson (1945). Saccharomyces ellipsoideus. Michigan 48 strain. ATCC 10824, NCTC 7040.
99. J.L.Baker (1930). Saccharomyces festinans..
104. M.Kir (1934). Hungarian Wine Yeast.
107. A.J.Kluyver (1939). Saccharomyces intermedius.
108. T.Castelli (1939). Saccharomyces italicus. From Chianti grape must.
109. Carlsberg Laboratory (1924). Saccharomyces lactis.
110. A.Guilliermond (1925). Saccharomyces lindneri. CBS 403. 
113. A.Guilliermond (1925). Saccharomyces vini.
118. Gray, McGill University (1932). Saccharomyces sake.
121. A.C.Chapman (1921). Saccharomyces thermantitonum.
122. B.von Euler (1921). Saccharomyces thermantitonum. (Biochem.Z., 1919, 97, 156).
124. A.Klocker (1920). NRRL Y-2434 Saccharomyces turbidans. 
125. A.Heinemann (1933). Saccharomyces ellipsoideus. (Exp.Cell.Res., 1958, 15, 214).
126. A.Klocker (1920). Saccharomyces validus.
167. B.W.Hammer (1922). Torula cremoris. From fermented cream.
176. A.J.Kluyver (1934). Zygosaccharomyces priorianus.
177. Anheuser-Busch Inc., USA (1927)..
182. A.C.Chapman (1933). Fernbach 38 strain.
183. A.C.Chapman (1933). Fernbach 40 strain.
【数４】
2005532055.tif 000008
187. A.C.Chapman (1921). Kefir Yeast.
190. A.C.Chapman (1931). Saccharomyces logos. ATCC 60731, NCTC 3341.
192. G.Johnson (1936). Melbourne No.1 strain.
196. A.C.Chapman (1933). Yeast Race V.
197. Mehta (1925). Yeast Race II.
【数５】
2005532055.tif 000009
199. A.C.Chapman (1921). Saaz Yeast. NCTC 906, ATCC 2704, NRRL Y-239..
200. A.C.Thaysen (1920). Sternberg 675 strain. For production of glycerol.
201. R.M.Nattrass (1943). 61 strain.
202. Carlsberg Laboratory (1924). Wine yeast, Johannesburg II Wortmann 76 strain.
232. R.S.W.Thorne (1951).
S, American Yeast Foam. 1:1:3:5:1 ATCC 60782.
235. B.M.Brown (1951). Whitbread strain. ATCC 60733..
244. CMI (1951). Saccharomyces intermedius. IMI 46336.
252. S.Jackson (1961). Saccharomyces ellipsoideus. Strain 6.
291. S.Jackson via C.C.Lindegren (1951). Mrak 93 strain.
311. S.Jackson (1951). Benskin's brewery strain 65.
325. A.E.Wiles (1951). T43 Yorkshire type yeast. (J.Inst.Brew., 1950, 56, 183).
341. A.E.Wiles (1951). From draught beer. 1:1:5:5:1
343. A.E.Wiles (1951). From draught beer. 1:1:5:5:1 (J.Inst.Brew., 1950, 56, 183).
344. A.E.Wiles (1951). Saccharomyces cerevisiae var. turbidans..
345. A.E.Wiles (1951). Saccharomyces cerevisiae var. turbidans. 
346. A.E.Wiles (1951). Saccharomyces cerevisiae var. turbidans..
356. C.H.Ridge (1953). Mead yeast.
357. T.Gray (1951). Avize-Cramant mead yeast.
358. T.Gray (1951). Plum mead yeast.
360. D.R.Jackson (1952). Seagram & Sons.
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374. L.Hemmons (1953). Saccharomyces oviformis. From hazy ale.
394. A.A. Eddy (1954). Saccharomyces chevalieri.
406. R.B.Gilliland (1954). Saccharomyces steineri.
410. R.B.Gilliland (1954). Saccharomyces fructuum.
429. L.J.Wickerham (1955). Flor yeast. NRRL Y-2036.
430. L.J.Wickerham (1955). Riesling wine yeast. NRRL Y-2037.
431. L.J.Wickerham (1955). NRRL Y-132, ATCC 2345, ATCC 44732, NCYC 73. 
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488. J.Lodder (1957). 
489. J.Lodder (1957). 
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491. J.Lodder (1957)..
506. CBS (1957). Saccharomyces cerevisiae var. ellipsoideus. CBS 1395, NRRL Y-1529. 
510. CBS (1957). Saccharomyces validus. CBS 1541..
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620. CBS (1962). Saccharomyces fructuum. CBS 3012..
621. CBS (1962). Saccharomyces fructuum. CBS 3013..
625. R.B.Gilliland (1960). Saccharomyces diastaticus. Flocculent strain.
626. CBS (1962). Saccharomyces oviformis. CBS 429, NRRL Y-1356, IFO 0262..
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713. M.Richards (1967). Saccharomyces diastaticus. ATCC 36902..
716. E.Min疵ik (1968). Thermophilic strain.
726. R.B.Gilliland (1970). 1430 Gilliland Class IV. 
727. R.B.Gilliland (1970). 1511 Gilliland Class I..
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1379. New Zealand brewery (1981)..
1380. New Zealand brewery (1981). 
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1407. S.Hara (1981). KL-88 Killer, sake strain. (Agric.Biol.Chem., 1981, 45, 1327-1324. Am.J.Enol.Vitic., 1980, 31, 28-37).
1408. S.Hara (1981). OC-2, IAM 4274. Mesophilic wine yeast. (Agric.Biol.Chem., 1981, 45, 1327-1324. Am.J.Enol.Vitic., 1980, 31, 28-37).
1409. S.Hara (1981). 2HYL-2. Hybrid NCYC 1406 x 1407. (Agric.Biol.Chem., 1981, 45, 1327-1324. Am.J.Enol.Vitic., 1980, 31, 28-37).
1410. S.Hara (1981). HY-1. Hybrid NCYC 1408 x 1407. (Agric.Biol.Chem., 1981, 45, 1327-1324. Am.J.Enol.Vitic., 1980, 31, 28-37).
1411. DSM (1982). DSM 70466. Bordeaux strain.
1412. DSM (1982). DSM 70461. Madeira strain.
1413. DSM (1982). DSM 70467. Sauternes strain.
1414. DSM (1982). DSM 70464. Tarragona strain.
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1451. Weston Research Labs (1982). 
1499. G.G.Stewart (1983). BB17..
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1534. G.M.Gadd (1984)..
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2777. F.C. Odds (1997). MAS 2..
2778. F.C. Odds (1997). MAS 3.
2779. F.C. Odds (1997). MAS 4.
2780. F.C. Odds (1997). MAS 5..
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媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiae。
【請求項１１０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換え遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiae。
【請求項１１１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiae。
【請求項１１２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiaeとの好気性発酵方法。
【請求項１１３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換えイーストSaccharomyces cerevisiaeによる好気性発酵方法。
【請求項１１４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるMoxプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１１５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるMoxプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１１６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物による好気性発酵方法。
【請求項１１７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物による好気性発酵方法。
【請求項１１８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１０４と１１７による発酵方法と遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１１９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１０４と１１７による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１２０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１０４と１１７による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１２１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1L、FLO10の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１０５、１０６、１０７、１１１、１１４と115による発酵方法のもとで遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１２２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1L、FLO10の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１０５、１０６、１０７、１１１、１１４と115による発酵方法のもとで遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１２３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1L、FLO10の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１０５、１０６、１０７、１１１、１１４と115による発酵方法のもとで遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１２４】
媒質中の砂糖と窒素のような栄養分の存在あるいは欠如によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物。
【請求項１２５】
媒質中の砂糖と窒素のような栄養分の存在あるいは欠如によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１２６】
媒質中の砂糖と窒素のような栄養分の存在あるいは欠如によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１２７】
媒質中の砂糖と窒素のような栄養分の存在あるいは欠如によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１２８】
媒質中のエタノールの存在あるいは欠如によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物。
【請求項１２９】
媒質中のエタノールの存在あるいは欠如によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１３０】
媒質中のエタノールの存在あるいは欠如によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１３１】
媒質中のエタノールの存在あるいは欠如によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１３２】
ｐＨの低下又は媒質の熱変動によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物。
【請求項１３３】
ｐＨの低下又は媒質の熱変動によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１３４】
ｐＨの低下又は媒質の熱変動によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１３５】
ｐＨの低下又は媒質の熱変動によって抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１２、１１３、１１４、１１５、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１３６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０４、１０６、１１２、１１３、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８、１２９、１３０、１３１、１３２、１３３、１３４と１３５による遺伝子組換え微生物。
【請求項１３７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０４、１０６、１１２、１１３、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８、１２９、１３０、１３１、１３２、１３３、１３４、１３５と１３６による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１３８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０４、１０６、１１２、１１３、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８、１２９、１３０、１３１、１３２、１３３、１３４、１３５と１３６による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１３９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０４、１０６、１１２、１１３、１１６、１１７、１１８、１１９、１２０、１２４、１２５、１２６、１２７、１２８、１２９、１３０、１３１、１３２、１３３、１３４、１３５と１３６による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１４０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるHSP30pあるいはpMET3プロモーター、の一つ又はその一部によって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１４１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるHSP30pあるいはpMET3プロモーター、の一つ又はその一部によって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１４０による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１４２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるHSP30pあるいはpMET3プロモーター、の一つ又はその一部によって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１４０による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１４３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるHSP30pあるいはpMET3プロモーター、の一つ又はその一部によって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１４０による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１４４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるMox プロモーター、の一つ又はその一部によって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１４５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるMox プロモーター、の一つ又はその一部によって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１４４による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１４６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるMox プロモーター、の一つ又はその一部によって統制された次のフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１４４による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１４７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるMox プロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１４４による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１４８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーター：HSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１４９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターHSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項１４８による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１５０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターHSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項１４８による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１５１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターHSP30p、pMET3、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項１４８による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１５２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターADHあるいはMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１５３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターADHあるいはMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項１５２による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１５４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターADHあるいはMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項１５２による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１５５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターADHあるいはMox又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO10を持っていることを特徴とする請求項１５２による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１５６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、 cyc8ou、cka2、FMC1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１５７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、 cyc8ou、cka2、FMC1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１５６による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１５８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、 cyc8ou、cka2、FMC1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１５６による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１５９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、 cyc8ou、cka2、FMC1の少なくとも一つを持っていることを特徴とする請求項１５６による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１６０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1を持っていることを特徴とする請求項１５６のによる特にイーストPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactisからの遺伝子組換え微生物。
【請求項１６１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換えノンワイルド微生物。
【請求項１６２】
有用なタンパク質を生産することを特徴とする請求項１０１、１０２、１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１１０、１１１、１１４、１１５、１２４、１２８、１３２、１３６、１４０、１４４、１４８、１５２、１５６、１６０と１６１による遺伝子組換え微生物を用いる好気性発酵方法。
【請求項１６３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の少なくとも一つを持っていることを特徴とするW204の遺伝子組換えビールイースト。
【請求項１６４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1を持っていることを特徴とする請求項１６３によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるプラスミド。
【請求項１６５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1を持っていることを特徴とする請求項１６３によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるカセット。
【請求項１６６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1を持っていることを特徴とする請求項１６３によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるベクター。
【請求項１６７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の一つを持っていることを特徴とする請求項１６３によるW204の遺伝子組換えビールイースト。
【請求項１６８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の一つを持っていることを特徴とする請求項１６３と１６７によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるカセット。
【請求項１６９】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の一つを持っていることを特徴とする請求項１６３と１６７によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるプラスミド。
【請求項１７０】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーター、の一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、FLO7、FLO8、FLO9、FLO11、Lg.FLO1の一つを持っていることを特徴とする請求項１６３と１６７によるW204の遺伝子組換えビールイーストに使用されるベクター。
【請求項１７１】
有用なタンパク質を生産することを特徴とする請求項１６３、１６４、１６５、１６６、１６７、１６８、１６９と１７０によるW204の遺伝子組換えビールイーストの好気性発酵方法。
【請求項１７２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1SとFLO1Lを持っていることを特徴とするW204のワイルドの微生物ではない遺伝子組換えビールイーストを使って有用なタンパク質の生産のための好気性発酵方法。
【請求項１７３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とするワイルドの微生物ではない請求項１０１による遺伝子組換え微生物。
【請求項１７４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とするワイルドの微生物ではない有用なタンパク質を生産する好気性発酵方法。
【請求項１７５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、ヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする遺伝子組換え微生物。
【請求項１７６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制される次のプロモーター：ADH、Mox、HSP30pあるいはヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする請求項１７５による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１７７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーター：ADH、Mox、HSP30pあるいはヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする請求項７５による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１７８】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーター：ADH、Mox、HSP30pあるいはヘレロロガスプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子PKC1を持っていることを特徴とする請求項１７５による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１７９】
請求項１７５による遺伝子組換え微生物を使って有用なタンパク質を生産するための好気性発酵方法。
【請求項１８０】
請求項１７５による遺伝子組換え微生物を使って有用なタンパク質を生産するための嫌気性発酵方法。
【請求項１８１】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターの一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０５、１０７、１０８、１０９、１１０、１２１、１２２と１２３による遺伝子組換え微生物。
【請求項１８２】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターの一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０５、１０７、１０８、１０９、１１０、１２１、１２２、１２３と１８１による遺伝子組換え微生物に使用されるプラスミド。
【請求項１８３】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターの一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０５、１０７、１０８、１０９、１１０、１２１、１２２、１２３と１８１による遺伝子組換え微生物に使用されるカセット。
【請求項１８４】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーター：ADH、Mox、HSP30p、pMET3、ヘレロロガスプロモーターの一つ又はその一部によって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする請求項１０５、１０７、１０８、１０９、１１０、１２１、１２２、１２３と１８１による遺伝子組換え微生物に使用されるベクター。
【請求項１８５】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子FLO1、FLO1S、FLO1Lの少なくとも一つを持っていることを特徴とするPichia pastoris、Hansenula polymorpha、Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolytica、Kluyveromyces lactisからの遺伝子組換えイーストによる嫌気性発酵方法。
【請求項１８６】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換え藻。
【請求項１８７】
媒質、ｐＨの化学成分の特徴あるいは物質刺激に応じ抑制されるプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を持っていることを特徴とする遺伝子組換え原生動物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、微生物を使っての工業生材料の生産と方法のために微生物中のフロクランテ遺伝子方法と付加に関する。
【０００２】
特に、この出願は遺伝的に変更される微生物に対応する、このような生体の生産方法とこれらの生体を使って発酵する方法に言及する。これら微生物は発酵容器の底で更に速く沈澱して発酵方法が終わった後にフロック化（綿状）になる、つまり、発酵の間に作り出した最終製品から分かれて、フロック化する。これは清浄化方法から成り立つ。 
【背景技術】
【０００３】
医学あるいは食料品の生材料の修正と生産での微生物の用途はこの方法の後のワイン、ビールとその他混合物のような製品で嫌気性反応を通して変えられた、ブドウ、大麦や他の要素といった基本的な例として砂糖の肥沃な材料のジュース発酵の方法として人類の始まりからの歴史より知られている。
【０００４】
バイオ工学の出現より、これらの変換の多くが分子レベルにおいてされるようになり、この方法よりタンパク質と派生品のようなほかの種類の生材料生成が可能となり、インシュリン、成長ホルモンとその他の人間の生き残りに不可欠な薬の生産を強く援助することができる。
【０００５】
バイオ工学での用語で発酵は、以前、嫌気性発酵に言及した。空気がないときには微生物が生材料を処理した。 嫌気性発酵の主な製品はアルコール、エタノール、アルコール入り飲み物とパン産業である。
【０００６】
ＤＮＡ組み換えテクニックより発酵物が好気性方法発酵で使われるようになった。好気性方法発酵では微生物ＤＮＡ組み換えのテクニックを通して、その生物の中に自然に含まれるかそれらの微生物中に導入された獲得した遺伝子の圧搾から結果として生じるたんぱく質、工業酵素のようなその他の物質を生産するために使用される。
【０００７】
発酵方法での重要な産業的な問題は価値のある最終製品の微生物の分離である。 清浄化として知られているこの段階はいくつかの方法で達成されている。 
【０００８】
清浄化技術は２つのマクログループに分かれる。最初のテクニックは微生物としてより大きいコンポーネントの最終製品の分離に関する。第２はかつて取り戻された製品の清浄化に関する。
【０００９】
この方法でより大きいコンポーネント、そのテクニックを指名するものに遠心分離機の使用あるいは空虚なろ過ロータリがある、遠心力を通して、それらが、このように微生物の最終の製品を切り離して、異なった密度で物質のより速い分離を強制すること。
【００１０】
このテクニックは高価な装置を必要とし、それらが大きい維持管理を求め、そしてそれらが方法で過度の損失を生成する。 
【００１１】
もう１つの使用される方法はデカンテーションである。デカンテーションは自然であるので、例えば、ブランデー生産の場合、非常にゆっくりである。 そのうえ、例えばワインの生産方法のように、ある特定の方法で、セルの早期の崩壊、所望でない物質の生成を引き起こすことがある。 
【００１２】
セルの崩壊は、セルの内部で、すなわち、それが分泌されなかったことが発見される利益のある製品であるとき、もう１つの用いられるスキルである。
崩壊は、媒質中に製品を開放し、セルの薄膜を壊す化学あるいは機械的物質を通して作られる。 
【００１３】
吸着のクロマトグラフィーはもう１つの非常に使用される方法であり、どんなに高価であるとしても、それはそれぞれのタイプの製品のために非常に重要である。 
【００１４】
これらすべての方法は最終製品を得るのが遅いため、あるいは、それらを処理する必要な産業的なプラントと関係する高いコストのため高価となる。
【００１５】
これらの問題を解決するために、不必要な材料を後退してその方法を容易にするために、フロキュレーションの現象（固まりでの微生物をまとめること）をもっと多く強烈に起させる様々な試みがあった。
【００１６】
遺伝子の修正の可能性でフロキュレーション現象は、価値ある製品の清浄化の方法の一部であって、いくつかの産業的な目的のために使われる。 フロキュレーション遺伝子を伴った条件付きのプロモーターの組み合わせは最初の発酵方法を最適化し、最初の清浄化段階にリンクするように製品の中に移された前物質を使用できるようにした。遺伝子はペプチドまたはたんぱく質を体系化するヌクレオチドを意味する。 遺伝子は２つのクラスに割り当てるプロモーターと表明されるコード化無しのエリアを所有する：いかなる刺激より独立した構成要素遺伝子と刺激が必要な統制遺伝子である。一方、それぞれのプロモーターがコードする部分に関するヌクレオチデオ配列と配置のそれ自身の特徴を所有しており、発酵培養液の構成について遺伝子の圧搾を抑制又は導入できる。
例として、ブドウ糖欠如と圧搾され、そして砂糖の欠如を禁止されるフロキュレーション遺伝子に隣接しているプロモーターADHの構造言及することができる。  
【００１７】
フロキュレーション方法は特定の遺伝子によって管理される。例えば、ワタリのFLO1（Agric. Biol. Chem.第５５巻第６−１９９１での１５４７から１５５２頁まで- J. ワタリ）と特許ＰＩ０００１１２２-３とでのペレイラ （２０００）特許とUS５,５８５,２７１リクエストでのワタリ （１９９６）で非常に知られている。 
【００１８】
ワタリは、リクエストUS５,５８５,２７１で、イーストで見いだされた フロキュレーション遺伝子FLO1に関する。ワタリの特許の最初の注意点は遺伝子であが、しかし、ワタリはイーストSaccharomyces cerevisiaeと一緒にビール生産でプロモーターADHを持つ遺伝子FLO1のコード部分の使用を例の中で言及する 
【００１９】
一般にこの参照はビールの生産的な方法に関係する、しかしこの方法は、フロクランテで、低い発酵スピード；表面で変動し、発酵を作り出す固まりの形成と方法の中で使用された大桶の通気は困難である；発酵した泡とクロッグの細胞中の欠如
【００２０】
ペレイラ （２０００）も同じくプロモーターADHを持っているFLO1遺伝子を使用する、しかしエタノールとワインの生産に適用できる特許出願（ＰＩ０００１１２２-３A）をした。この特許は３つの主な限界を所有する： i) それはアルコールの発酵に制限される、ｉｉ）発酵方法に制限される、（そしてそれは微生物と プラスミド を含まない）とｉｉｉ）使用はワイルドライン微生物に制限される。 
【００２１】
そのうえ、ペレイラの特許（２０００）は、産業的なイーストの大きい部分に不完全な、そして不満足なフロキュレーションのパターンを持っている遺伝子 FLO1が使われる。ワタリ（１９９６）より言及されたFLO1LとFLO1S遺伝子はそれら完全なフロキュレーションのためにより多くのセクションを持っているのでこの問題を修正する。 
【００２２】
フロキュレーション遺伝子に関係するもう１つの特許は小林（US５,８６６,３７４）のものである。このような特許はビール生産の遺伝子Lg-FLO1の用途を参照する。 ビール生産はアルコールと嫌気性発酵であり、産業的な薬剤と酵素のような他用を果たさない。そのうえ、この方法で発酵方法の終わりに感じやすいプロモーターを持つその遺伝子の状態の規制に言及しない。 
【００２３】
この方法は、ただ壊れかかっているLg-FLO1遺伝子または圧搾をふやすことにより、完全な遺伝子を使用する事により、ビールの発酵を改善する試みである。とにかく、この圧搾が高められるか除去される場合、全ての発酵の間唯一つの機能を持つ：綿状の固まりをもつか持たないか。 
【００２４】
ＧＢオリバーの特許２３５３７９８が、同じく特定のプロモーターによって統制されたフロキュレーション遺伝子を使う。使用されるフロキュレーションの遺伝子はプロモーターSRB1とPSA1を持っているPKC1である。この構成はちょうどビール生産のために使われる。遺伝子とプロモーターのこの組み合わせとこのビール生産での使用は我々の発明の範囲ではない。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【００２５】
本発明の目的は媒質の化学的組成、pH、物理的刺激に依存する開始した又は抑制されたプロモーターにより統制されたフロキュレーション遺伝子を有する遺伝子的に修正された微生物を獲得することである。
【００２６】
本当出願は色々な理由で技術の状態として、上記の特許と区別される。第一に現状の技術の状態として述べられている上記の特許は嫌気性の発酵方法に言及している一方、この出願は好気性の酸素発酵方法に言及している。 この相違は、科学的な、そして経済的な意味の、意外な効果をもたらす。嫌気性の発酵だけが一般的にワイン、エタノールとアルコール飲料のようなアルコール製品の生産を許す。好気性の発酵方法は例えばたんぱく質、医薬品、インシュリン、ワクチン、工業酵素や一般的な酵素のような、他の物質の生産を許す。これらの他の物質の生産はリコンビナント（組換え型）DN技術の方法により自然にその微生物に含まれるかその微生物に導入される与えられた遺伝子の圧搾から結果としてできる。
【００２７】
本発明は同じく、嫌気性発酵の方法に言及する、しかしこの場合、
我々はこの技術の状態の特許の中で言及されるものとは違うフロキュレーション遺伝子、プロモーター、微生物を利用する。
これらの相違は同じく、科学的な、そして経済的な意味の、意外な効果を生み出す。
フロキュレーション遺伝子、プロモーター、微生物の結合の違いは好気性と嫌気性の発酵方法の違いの両方に使用される微生物、ベクター、プラスミドとカセットのために特許出願に適用される。
【００２８】
この発明の出願は方法ばかりでなく遺伝子的に修正された微生物にも特許を要求する。特許は又、その遺伝子組換え微生物を作り出しを要求される微生物、ベクター、プラスミドスとカセットの特許の請求項のために同じく応用であった。
【００２９】
ワタリとオリバーの特許は遺伝的修正微生物としてイーストのみを請求した。 本発明で、我々は同じくバクテリア、藻、単細胞動物、菌類とアルカエを含んだ。全てのこれらの例えばユーカリオテスでないようなイーストから大きく異なっており、それらは扱いはより単純であり高温で生き残れ、フォトシンセシスを作る。
【００３０】
ペレイラの特許は微生物、ベクター、プラスミドスとカセットに関して求めない、ただ発酵方法の特許を請求する。 
【００３１】
ワタリの特許はSaccharomyces cerevisiae cepaW204のイーストでビール発酵のために遺伝子FLO1とプロモーターADHの使用を記載する。我々はSaccharomyces cerevisiaeに異なった特徴を持っているPichia pastoris、Hansenula polymorpha、 Saccharomyces fragilis、 Saccharomyces ellipsoideus、 Saccharomyces calsbergensis、Candida utilis、Candida lipolyticaあるいはKluyveromyces lactisのようなイーストでの遺伝子FLO1とADHを使用する。これら他のイーストはSaccharomyces cerevisiae より極めていっそう肥よくであり、発酵で異なった効果を持つ。  
【００３２】
Pichia pastorisとHansenula polymorphaはある特定のエリアに位置している遺伝子によって成文化されたタンパク質の生産のために非常に大きい生産性を持っている。 それらは大いに効率的な、Saccharomyces cerevisiaeよりずっと効率的な圧搾ベクターとして用いられる。  
【００３３】
例えば、Saccharomyces ellipsoideusは、ワインの発酵で使われる。例えば、Saccharomyces calsbergensisは罵ager買^イプのビールの生産に使われ、一方Saccharomyces cerevisiae は“ale買^イプののビールの生産に使われる。Candida utilis、 Candida lipolyticaとKluyveromyces lactisはエタノールの発酵で使われる。 
【００３４】
有効なストレインとして、以下が含まれる
956. X2180-1A, ATCC 26786 a SUC2 mal gal2 CUP1 R.K.Mortimer
957. X2180-1B, ATCC 26787 alpha SUC2 mal gal2 CUP1 R.K.Mortimer
857. 158 a Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
858. 159 alpha Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
713. KIL-k2 From draught beer) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 M.Richards
738. KIL-k2 (brewery contaminant) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 A.P.Maule
761. KIL-k3 From palm wine), CBS 7903 J.Ferm.Technol., 1985, 63, 421-429 N.Okafor
1001. KIL-k2 (brewing yeast) Antonie van Leeuwenhoek, 1978, 44, 59 
1561. A8209B his4-864 KIL-k1 G.Fink via T.Young
958. X2928-3D-1A a ade1 gal1 leu1 his2 ura3 trp1 met14 R.K.Mortimer
959. X2928-3D-1C alpha ade1 gal1 leu1 his2 ura3 trp1 met14 R.K.Mortimer
1786. STX 147-4C alpha ade1 his7 tyr1 gal1 cly8 ade5 aro2 met13 lys5 trp5 cyh2 arg4 lys1 ura4 gal2 ade2 rad56 L.Johnston
1620. STX77-6C alpha gal1 his4 trp1 hom3 ura3 CUP1 ilv3 ade3 rad52 rna1 L.Johnston
1618. X4119-19C a his7 tyr1 cdc9 trp4 aro1B hom2 rad2 thr1 lys11 gal2 ade2 L.Johnston
1661. X4120-19D alpha lys2 leu2 pet14 rad(?) rna3 ade8 aro1D met10 ade5 leu1 CUP1 L.Johnston
1619. STX66-4A a rad18 lys4 trp1 prt3 CUP1 gal2 ade2 met2 pha2 L.Johnston
1617. K396-22B alpha spo11 ura3 ade1 his1 leu2 lys7 met3 trp5 L.Johnston
1614. K381-9D alpha spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1613. K398-4D a spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1611. K382-23A a spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 L.Johnston
1612. K382-19D alpha spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 tyr1 L.Johnston
1616. K393-35C alpha spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1615. K399-7D a spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1383. DBY 747, ATCC 44774 a leu2-3 leu2-112 his3-DELTA1 trp4-289 ura3-52 Gene, 1979, 8, 17-24. J.F.Makins
1392. MC16 alpha leu2-3 his4-712FS) SUF2 ade2-1 lys2-1 Nature, 1981, 275, 104. J.F.Makins
1445. LL20 alpha his3-11 his3-15 leu2-3 leu2-112 J.Bacteriol., 1979, 140, 73-82 A.Coddington
1527. MD40/4C alpha leu2-3 leu2-112 his3-11 his3-15 ura2 trp1 CAN s B.Bowen
1528. AH22 a leu2-3 leu2-112 his4 canR B.Bowen
1627. D13-1A (YNN6) a trp1 his3-532 gal2 L.Johnston
1771. cdc9-1 (L89-6C) a cdc9-1 leu2 ade1 ade2 ura1 lys2 L.Johnston
804. D160 a ura3 his1 arg6 trp2 ade1 J.F.T.Spencer
805. A364A a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 J.Mol.Biol., 1976, 105, 427-443 J.F.T.Spencer
806. x112 alpha ade8-2 trp5-2 lys2-1 ura1-1 J.F.T.Spencer
808. GRH1 a trp1 ade1 his7 ura1 gal1 G.Stewart
1395. S1896D a met7 trp1 leu1 ade1 gal1 gal2 pet R.K.Mortimer
1396. F33 alpha met7 gal2 pet R.K.Mortimer
1623. X2181-1B a gal1 his2 trp1 ade1
1626. CG379 ade+ alpha his7-2 leu2-3 leu2-112 trp1-289 ura3-52 (ade5 rev)
1631. g440-7C alpha ade4 trp1 L.Johnston
1632. D273-11A alpha ade1 his1 trp2 L.Johnston
1662. alpha arg met L.Johnston
1663. a arg met L.Johnston
1664. alpha/alpha arg 2μ+ L.Johnston
1719. A364A rho- a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 rho- L.Johnston
1720. B635 a cyc1-115 his1-1 lys2-1 trp2 L.Johnston
1772. L126-R9 a leu2 hom3-10 his1 L.Johnston
1790. a/a arg his 2μ+ L.Johnston
1812. L126-2B a leu2 hom3-10 his1 L.Johnston
1821. S13 a his4 ura1 trp5 gal2 L.Johnston
1822. S49 a his4 ura1 trp5 gal2 ade6 L.Johnston
1961. GRF18 alpha leu2-3 leu2-212 his3-11 his3-15 canR G.Fink via D.MacKenzie
1356. A 137 alpha pho80-2 J.Bacteriol., 1973, 113, 727-738 A.Coddington
1357. A 138 a pho80-2 J.Bacteriol., 1973, 113, 727-738 A.Coddington
828. a ade1 J.F.T.Spencer
829. alpha ade1 J.F.T.Spencer
1577. a ade1 leu1 B.Pearson
1652. a ade1 leu2 B.Pearson
830. a ade2 J.F.T.Spencer
802. alpha ade2 (lys) J.F.T.Spencer
832. a ade3 J.F.T.Spencer
833. alpha ade3 (ura) J.F.T.Spencer
834. a ade4 J.F.T.Spencer
835. alpha ade4 (ura) J.F.T.Spencer
836. a ade5 J.F.T.Spencer
837. alpha ade5 (ura) J.F.T.Spencer
838. a ade6 J.F.T.Spencer
839. alpha ade6 (trp) J.F.T.Spencer
840. a ade7 J.F.T.Spencer
841. alpha ade7 J.F.T.Spencer
842. a ade8 J.F.T.Spencer
843. alpha ade8 (lys trp) J.F.T.Spencer
1654. cdc3-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc3-1 L.Johnston
1642. cdc4-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc4-1 L.Johnston
1643. cdc5-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc5-1 L.Johnston
1723. cdc6-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc6-1 L.Johnston
1729. cdc7-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc7-1 L.Johnston
1730. cdc8-141 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc8-141 L.Johnston
1667. cdc8-198 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc8-198 L.Johnston
1771. cdc9-1 (L89-6C) a cdc9-1 leu2 ade1 ade2 ura1 lys2 L.Johnston
1788. cdc9-1 rev1 cdc9-1 rev1 L.Johnston
1672. cdc9-12 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-12 L.Johnston
1673. cdc9-13 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-13 L.Johnston
1791. cdc9-3 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-3 2μ+ L.Johnston
1731. cdc9-4 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-4 L.Johnston
1732. cdc9-6 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-6 L.Johnston
1807. cdc9-7 (L82-2B) a cdc9-7 trp1 lys2 his7 L.Johnston
1808. cdc9-7 (L94-4D) a cdc9-7 trp1 ura3 L.Johnston
1670. cdc9-7 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-7 L.Johnston
1633. cdc9-7 rho- cdc9-7 rho- L.Johnston
1671. cdc9-8 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc9-8 L.Johnston
1674. cdc10-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc10-1 L.Johnston
1655. cdc11-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc11-1 L.Johnston
1733. cdc12-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc12-1 L.Johnston
1734. cdc13-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc13-1 L.Johnston
1735. cdc14-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc14-1 L.Johnston
1736. cdc18-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc18-1 L.Johnston
1737. cdc19-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc19-1 L.Johnston
1738. cdc26-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc26-1 L.Johnston
1665. cdc28-4 L31-7a a cdc28-4 tyr1 L.Johnston
1675. cdc30-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc30-1 L.Johnston
1676. cdc31-1 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc31-1 L.Johnston
1722. cdc36-16 SR661-2 a cdc36-16 trp1-1 ura1 L.Johnston
1666. cdc37-1 SR672-1 a cdc37-1 ura1 cyh2 L.Johnston
1641. cdc39-1 SR665-1 alpha cdc39-1 met2 tyr1 cyh2 L.Johnston
1677. cdc41 a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 cdc41 L.Johnston
1753. cdc6 (MH18) cdc6/cdc6 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1754. cdc13 (MH20) cdc13/cdc13 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1752. cdc15-1 (MH15) cdc15-1/cdc15-1 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1755. cdc17 (MH21) cdc17/cdc17 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1756. cdc21 (MH21) cdc21/cdc21 gal1/gal1 ade1/ade1 +/ade2 his1/his7 trp2/+ +/ura1 +/lys2 +/tyr1 2μ+ L.Johnston
1718. JC2 (L31-9a [a]/L31-2c [alpha]) cdc9/cdc9 cdc28/cdc28 ade/+ tyr1/tyr/1 canR/+ +/his1 L.Johnston
1797. cdc36(MH30) alpha/a gal1/gal1 ade1/+ his1/+ trp2/+ +/trp1 +/ura1
961. 2C-4 alpha arg4-2/+ arg4-17/+ CUP1/+ thr1/+; rec5 leu1 trp5 trp1 his5 ade2 Radiation Res., 1972, 49, 133 & 148 R.K.Mortimer
960. 2C-8 alpha arg4-2/+ arg4-17/+ CUP1/+ thr1/+; rec4 leu1 trp5 trp1 his5 ade2 Radiation Res., 1972, 49, 133 & 148 R.K.Mortimer
1823. dbf1 (L123-8A) alpha trp1 ura3 dbf1 L.Johnston
1824. dbf2 (L119-7D) alpha trp? ura3 ade1 dbf2 L.Johnston
1750. dbf2-3 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf2-3 L.Johnston
1825. dbf3 (L124-11D) a ura3 dbf3 L.Johnston
1751. dbf3-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf3-1 L.Johnston
1747. dbf8-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf8-1 L.Johnston
1748. dbf9-1 (D128) alpha ade1 his1 trp2 dbf9-1 L.Johnston
1813. dbf10-1 (D141) alpha ade1 his1 trp2 dbf10-1 L.Johnston
1814. dbf11-1 (D132) alpha ade1 his1 trp2 dbf11-1 L.Johnston
1815. dbf13-1 (D101) alpha ade1 his1 trp2 dbf13-1 L.Johnston
1816. dbf14-1 (D22) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-1 L.Johnston
1817. dbf14-2 (D25) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-2 L.Johnston
1818. dbf14-3 (D44) alpha ade1 his1 trp2 dbf14-3 L.Johnston
1819. dbf15-1 (D22) alpha ade1 his1 trp2 dbf15-1 L.Johnston
1820. dbf20-1 (D175) alpha ade1 his1 trp2 dbf20-1 L.Johnston
1794. MH25 alpha/a dbf2/dbf2 gal1-D5/gal1-A ade1/+ his1/his1 trp2/trp2 +/ura1 +/tyr1 +/ade2 +/his L.Johnston
1795. MH26 alpha/a dbf3/dbf3 gal1-D5/gal1-a ade1/ade1 his1/+ trp2/+ +/lys2 +/ura1 +/tyr1 +/ade2 L.Johnston
1796. MH27 alpha/a dbf4/dbf4 gal1-D5/gal1-A ade1/ade1 his1/his1 trp2/+ +/lys2 +/tyr1 +/ade2 +/his7 L.Johnston 
1621. g716-5a ho a can1 hom3-10 his1-7 L.Johnston
1622. 309 alpha ade2-R8 metX can1-11 L.Johnston
1717. L39-8C alpha trp1 or trp2 lys2 canR. L.Johnston
1628. 320 a rme ade2 ura3 leu1 can1-11 cyh2-21 L.Johnston
1716. alpha131-20 alpha ade2-R8 cyh2 can1 leu1 ura3 L.Johnston
807. x 464-20C alpha trp1 ade1 his2 leu1 gal1 J.F.T.Spencer
859. 168 a ade1 gal1 lys2 tyr1 his7 ura1 ade2 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
1789. L58.3b gal1 ade1 or ade2 L.Johnston
1638. L57-15b gal1 his7 lys2 tyr1 L.Johnston
1625. Z65 a/alpha gal1-1/gal1-4 lys2-1/lys2-2 tyr1-1/tyr1-2 his7-2/his7-1 ade1/+ +/ade2 +/ura L.Johnston
1757. M1-2B (YNN 27) alpha trp1 ura3-52 gal2 L.Johnston
865. 205 alpha gal7 lys2 tyr1 his4 leu2 thr4 MAL2 trp1 ade6 arg4 ura4 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
866. 206 a gal7 lys2 tyr1 his4 MAL2 trp1 ade6 arg4 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
1624. 108-3A a gal80 ade6 thr4 trp1 his3 rho- L.Johnston
1636. L53-14C a gal80 gal1-A tyr1 lys2 his7 ade1(or ade2) ura1 L.Johnston
1635. L52-36 alpha gal80 gal1-D5 ade1 his1 (or his8) trp1(or trp8) L.Johnston
1787. 106-3D alpha gal80 ura1 his1 L.Johnston
1634. MH10 alpha/a gal80/gal80 gal1-D5/gal1-A trp2/+ +/ura1 +/tyr1 +/lys2 +/his2 +/ade1 or 2 L.Johnston
867. 207 a ade1 gal1 ura3 his2 trp5 leu1 lys7 met2 MAL3 SUC2 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
864. 194 a ade1 trp5 MAL6 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
862. 191 a ade2 MAL3 SUC3 MEL1 MGL2 MGL3 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
861. 190 a his4 leu2 MAL2 suc- Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
863. 192 a trp1 ura3 MAL4 MEL1 MGL3 suc- gal3 gal4 Can.J.Microbiol., 1977, 23, 441 G.Stewart
2252. a/alpha trp1/+ his2/+ ade1/+ STA2/STA2 Biochem.J., 1988, 249, 163 I.Evans
860. 169 alpha ilv2 his FLO1FLO4) G.Stewart
868. 209 a ilv2 FLO1FLO4) G.Stewart
869. 209 alpha FLO1FLO4) G.Stewart
870. 210 a ade1 gal1 trp1 ura3 his2 leu1 met14 FLO1FLO4) G.Stewart
1391. sigma 1278b wild type (parent) J.Bacteriol., 1970, 103, 770 R.Robbins
1390. 2512C a gap1 J.Bacteriol., 1970, 103, 770 R.Robbins
1454. MP1, ATCC 42131 a/alpha ade2/+ his8/+ trp5-12/trp5-21 R.Fahrig
916. JCK5-5A alpha his4-A15 ade2-1 can(R) kar1-1 J.Conde
917. ABq 21 alpha his4-A15 ade2-1 can(R) kar1-2 nys(R) J.Conde
2266. BC3 leu2-3.112 trp1.1 ura3-52 pgk::TRP1 Nucl.Acids Res, 1988,16, 1333-1348 P.Piper
1639. a rad1 rad18 1799. CM31/1d alpha rad1 leu his ade lys L.Johnston
1800. CM26/4c rad4-3 his leu L.Johnston
1763. CM4/1d alpha rad5 ura L.Johnston
1764. CM5/1b alpha rad7 leu L.Johnston
1805. CM21/9a a rad9 ade arg leu lys L.Johnston
1806. CM30/2C alpha rad11 ade arg his leu L.Johnston
1801. CM1/8a alpha rad18 ade2 leu2 his4 L.Johnston
1640. g739-2a a rad50-1 can1 his1 ade2(or adeX) L.Johnston
1721. g739-2d alpha rad50-1 hom3-10 his1 trp2 L.Johnston
1802. CM1/1C alpha rad51 lys2 leu2 his4 L.Johnston
1803. CM8/1a a rad54 ura his leu L.Johnston
1804. CM9/1a a rad55 leu his L.Johnston
1749. g725-12a alpha rad57-1 gal1-D5 hom3-10 his1-7 L.Johnston
1630. SK1 (L57.15b/L58.3b) gal1 het3 his7/+ lys2/+ tyr1/+ gal1-A/gal1-D5 +/ade1(or ade2) homothallic L.Johnston
1637. g761-10A [alpha]/g763-5c [a] rad51-3/rad51-3 gal1-A/gal1-5 his1-1/his1-7 +/his6 +/his7 tyr?/+ lys?/+ trp?/+ +/hom3-10 +/spo13-1 +/lys? +/tyr1 +/ura1 +/ade2 
1792. g650-4a [alpha]/g650-12a[a] rad52-1/rad52-1 CAN(s)/can(R) +/hom3-10 +/his1-7 +/trp ade4/+ ho/ho
1745. rna3-3 (D43) alpha ade1 his1 trp2 rna3-3 L.Johnston
1746. rna3-4 (D167) alpha ade1 his1 trp2 rna3-4 L.Johnston
1758. ts96 alpha ade1 his1 trp2 rna11-2 dds1-1 L.Johnston
1614. K381-9D alpha spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1612. K382-19D alpha spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 tyr1 L.Johnston
1611. K382-23A a spo11 ura3 can1 cyh2 ade2 his7 hom3 L.Johnston
1616. K393-35C alpha spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
1617. K396-22B alpha spo11 ura3 ade1 his1 leu2 lys7 met3 trp5 L.Johnston
1613. K398-4D a spo11 ura3 ade6 arg4 aro7 asp5 met14 lys2 pet17 trp1 L.Johnston
1615. K399-7D a spo11 ura3 his2 leu1 lys1 met4 pet8 L.Johnston
227. Strain K, Manchester brewery strain, 1:5:4:2:1. 
228. Strain R, Sheffield brewery strain, 5:1:1:3:5.
229. Strain T, London brewery strain, 5:1:1:4:5.
230. Strain U, Birmingham brewery strain, 5:1:1:4:5.
231. Strain V, Burton-on-Trent brewery strain, 1:5:5:3:1. 
232. Strain S, American Yeast Foam, ATCC 60782, 1:1:3:5:1. 
205. Hybrid 1 (NCYC 227 x NCYC 228)
206. Hybrid 2 (NCYC 227 x NCYC 229)
207. Hybrid 3 (NCYC 227 x NCYC 230)
208. Hybrid 4 (NCYC 227 x NCYC 230)
209. Hybrid 5 (NCYC 227 x NCYC 231)
210. Hybrid 6 (NCYC 227 x NCYC 231)
211. Hybrid 7 (NCYC 230 x NCYC 231)
212. Hybrid 15 (NCYC 227 x NCYC 232)
213. Hybrid 18 (NCYC 220 x NCYC 232) 
214. Hybrid 24 (NCYC 222 x NCYC 221) 
215. Hybrid 30 (NCYC 223 x NCYC 221)
216. Hybrid 38 (NCYC 224 x NCYC 226) 
217. Hybrid 39 (NCYC 225 x NCYC 226)
218. Hybrid 48 (NCYC 226 x A162/1 ex NCYC 216)
219. Hybrid 64 (NCYC 227 x A162/3 ex NCYC 216)
220. Single spore isolate A2/3 strain from NCYC 212 
221. Single spore isolate A38/3 strain from NCYC 213
222. Single spore isolate A48/1 strain from NCYC 213
223. Single spore isolate A85/1 strain from NCYC 214
224. Single spore isolate A101/1 strain from NCYC 214
225. Single spore isolate A101/2 strain from NCYC 214
226. Single spore isolate A104/1 strain from NCYC 214
646. x901-35C strain; alpha hom2 aro1A trp5 leu1 ade6 lys1 his6 ura1 arg4-1 thr1
647. x901-26A strain; alpha hom2 aro1A trp5 leu1 ade6 his6 ura1 arg4-2 thr1
648. x1069-1A strain; a ade1 his4 leu2 thr4 met2 trp5 ura1
650. DV 147 strain; alpha ade2, readily reverts to wild type
651. 4B strain; alpha his4 leu3 lys10(?) ade6 ade2 met(?),
652. S400D strain; a ilv1; has other unlisted requirements
653. S288C-27 strain; alpha ilv1, has other unlisted requirements
654. S2583D strain; alpha ilv2, has other unlisted requirements
655. S2582B strain; alpha ilv2, has other unlisted requirements
656. JB19 strain; alpha leu1 ade2
657. JB143 strain; alpha leu2 ade2
658. JA36 strain; a leu3 ade2 lys10
659. x 764 diploid hybrid strain; segregates for markers trp5 leu1 ade6 ura3 hom3 his6 lys1 arg4 mal1
660. x 373 tetraploid hybrid strain
661. x 362 hexaploid hybrid strain
663. xJ151 hybrid diploid strain; ATCC 60732; segregates for markers thr1 lys1 ura3 aro1A hom2 trp4 ade8; homozygous for ade2
664. xJ107 hybrid diploid strain; segregates for markers leu1 ura3 lys7 gal7 his8 ser1 ade2
264. S.Jackson Farmer's diploid strain 18, C53-8d x C24-13b) 1959
402. A.A.Eddy F28c strain, single spore isolate from NCYC 264) 1953
593. W.F.F.Oppenoorth (R7, O.Winge's C.L.303-9 hybrid strain) 1959
594. W.F.F.Oppenoorth (K83 S 58 hybrid strain) 1959
666. J.W.Millbank (respiratory deficient mutant derived from ale yeast NCYC 239) 1963
673. H.Laser (petite colony mutant by x-irradiation of brewer's yeast) 1963
505. CBS (1957). CBS 1171, ATCC 18824. Type strain for Saccharomyces cerevisiae. From brewing yeast. 5:1:5:5:1
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74. ATCC (1945). Saccharomyces carlsbergensis. ATCC 9080, ATCC 24904, CBS 2354. 
76. A.C.Chapman (1933). Saccharomyces cartilaginosus. NCTC 3865.
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78. A.C.Chapman (1925). NCTC 2160
79. ATCC (1942). ATCC 7754, CBS 1368, NRRL Y-977, IFO 1346. Fleischmann brewer's strain. Assay of biotin.
80. H.B.Hutchinson (1930). GB 354, NCTC 5922.
【数６】
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85. A.J.Kluyver (1939). NCTC 5916.
86. ATCC (1942). ATCC 7753, CBS 1321, NCTC 6421. 
87. ATCC (1947). ATCC 9763, NRRL Y-567, CBS 2978, NCTC 10716 and NCTC 7239. 
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【００３５】
我々は同じく、請求項８、９、１０８と１０９において記載されているW204にまったく異なった特徴を持っているSaccharomyces cerevisiae cepaのイーストでの遺伝子FLO1とADHを使用する。これらセッパ（cepa）は、solemnity-annihilateに、細胞の分割で重要な特徴、薬に対して抵抗力ある、ダイプロイド（diploid）であるアミノ酸への浸透性と異なった発酵の時間と特徴を持っている。
【００３６】
イーストの更に知られているフロキュレーション遺伝子はFLO1又はFLO1S又は FLO1L, FLO2, FLO3, FLO4, FLO5, FLO6, FLO7, FLO8, FLO9, FLO10, FLO11, PKC1 と LgFLO1である。 我々が微生物について触れるとき、我々は同じくこれらと他のフロキュレーション遺伝子を持っているバクテリア、菌類とアルカエに触れている。 
【００３７】
本出願において、我々は微生物、カセット、ベクター、プラスミドスの特許のみではなくすでに言及される他の特許で触れているFLO1、FLO1s、FLO1LとPKC1といった遺伝子に基づいた方法も請求する。本出願で、我々は微生物、カセット、ベクター、 プラスミドスと遺伝子に基づく方法に同じく請求しているが、これらは例えばFLO2、FLO3、FLO4、FLO5、FLO6、 FLO7、FLO8、FLO9、FLO10とFLO11とLg.FLO1のような（発酵方法で統制されたプロモーターにフロキュレーション遺伝子を加えた自然）の特許の中で述べられていなかった。
これら遺伝子は遺伝子FLO1、FLO1s、FLO1LとPKC1 と異なった特徴を持っている。
これらの異なった特徴は砂糖のみをデフロキュレーションする能力で、酸の必要ない。この特徴は次の発酵サイクルからサブストラクトを付加することにより可逆的である方法を許すために非常に重要である。したがって、イーストは酸が加えられるときの起こる生産サイクルの中でもう一段階は必要なく再使用される。その上、酸を加える必要性の欠如は工程を安価に単純にする。
【００３８】
本出願では、我々がワタリの特許での、しかし他のプロモーターと一緒に結合するFLO1、FLO1SとFLO1Lが使った遺伝子の組み合わせについて同じく明白であるように請求した。ワタリはプロモーターADHを持つこれらの遺伝子を使った。 本出願で我々はプロモーターHSP30p、MOXとpMET3を持つこれらの遺伝子を使った。これらすべては意外な効果を生み出し、ADHから非常に異なった特徴を持っている。プロモーターADHはブドウ糖存在により抑圧され、そしてそのために、媒質中にブドウ糖がないとき動作する。フロキュレーション遺伝子を統制しているプロモーターADHの使用は媒体中のブドウ糖のレベルが非常に低いレベルに落下したときに起きる。 
【００３９】
このプロモーターが熱のショック、窒素の欠如と他の栄養、ｐＨ低下とエタノールの高集中のような他のそのような要因によってコントロールされるから、フロキュレーション遺伝子を有するプロモーターHSP30使用は異なった効果を生成する。これらの特徴のために、それは発酵方法の終わりと他の機構にてフロキュレーションの始まりを制御する。 従ってそれはただ必ずブドウ糖が終わるときではなく、前、あるいは後に発酵を終わらせる。 
【００４０】
フロキュレーション遺伝子を有するプロモーターMOXあるいはpMET3は異なった効果を生み出す、なぜならこれらのプロモーターは、ADHより強い圧搾を持っているのでフロキュレーションのハイファス高生産を生じる。 
【００４１】
本出願では、遺伝子sfl1ou、fsu1ou、fsu2ou、tup1ou、cyc8ou、 cka2あるいはFMC1を使用し遺伝子組換え微生物を請求し、それは、発酵方法の終わりを特徴づける効果によって統制されるプロモーターを有する遺伝子を結合する技術の状態の中にいかなる特許出願の範囲ではなかった。 本出願では、これら遺伝子はHSP30、pMET3、MOXとADHのプロモーターの範囲で統制されていた。
【００４２】
開始または抑制されるプロモーターへのフロキュレーション遺伝子部分をコーディングする結合は媒質の化学構成の特徴やpH又は物理的刺激により、様々な生産方法に関連する特徴をもたらす。
【００４３】
このような特徴を持っているプロモーターはADH、Mox、 HSP30pである。
このようなプロモーターはコード部へフロキュレーション遺伝子を加えることにより発酵方法の最後で開始するか抑制され、発酵方法がなされる容器の底に微生物の凝集と落ち着かせる。その影響は他に比べ製造が望まれる最終物質から微生物を分離するために有用である。
【００４４】
その物質は発酵層の中で栄養物と微生物を置く方法により製造され、その中で栄養物を与えられた有用な物質を製造する。
【００４５】
栄養物の消費の後で、促進因子は発酵層の底に落ち着かされる凝集遺伝子と微生物を活発化させ、有用な物質から分ける。
微生物が栄養物を消費するという生物学上の方法は好気的または嫌気的呼吸により規則化され、有用な物質はアルコールの発酵または特定の遺伝子のコピーからのできた物質の結果であるかもしれない。
すなわち、コード遺伝子は薬学的、産業的、化粧品の、農業的、そして他の有用なたんぱく質を製造する。
【００４６】
この方法でアルコール（嫌気的）発酵ばかりでなく、好気的発酵についても言及する。
【００４７】
第二の例で、微生物の中にすでに存在する遺伝子の圧搾の代わりに組換え型DNA技術が使用される。製造方法は非常に異なっているが、両方とも発酵という言葉で知られている。
【００４８】
嫌気性発酵において、呼吸方法で砂糖の変更としてアルコールが製造される。
第二の方法で、微生物からの特定遺伝子のコピーであり、最後の段階は細胞呼吸の新陳代謝の結果ではない。
好気的呼吸は全く異なった新陳代謝方法から構成される。
この違いは例えば製薬の製品（例えばインシュリン、抗生物質、成長ホルモンと他）、工業のそして農業の酵素（ゴマシャンタナ、アミノ酸、有機酸、芳香、ビタミン、 バイオ殺虫剤とその他）のような酒類とは違うほかの物質を製造する。
【００４９】
その上、我々は次の凝集遺伝子からの他の結果であるFLO10のような凝集遺伝子を使用する。
【００５０】
遺伝子FLO10は再び媒質中への砂糖の導入により凝集を防止する。
この効果は他の適用のために微生物の再使用をさせるので重要である。
酵母は再使用されないのでFLO1遺伝子はビール業界だけに使用される。
【００５１】
遺伝子FLO1は硫酸の導入により凝集を防止し、砂糖が次の発酵段階で再導入される時、次の製造段階ですでに凝集が防止されているので、遺伝子FLO10はこのコストのかかる段階を除外する。
【００５２】
他の様相はMOXとHSP30pのようなADHからの促進因子の使用である。
しかしながら、又、ADHのようなブドウ糖の存在により統制されたMoxはより高い凝集率を引き起こすADHよりももっと激しい圧搾を持つ。
HSP30p促進因子はブドウ糖の欠如ばかりでなく、窒素の欠如により活発化するので、又は温度ショック又はpHの落下のような物理的刺激により活発化するので、興味ある特徴を持つ。
【００５３】
もう一つの特徴はペレイラにより請求されたワイルド系ばかりでなく、プロジェクトの経済的に起こりうる事への欠くことのできないノンワイルド系である。
【００５４】
ノンワイルド系は研究室において最も簡単に扱われており、ＤＮＡ組み換え技術に、それと同時に制御された薬品、工業酵素、その他の製造のための好気的発酵の製造に使用されている。
【００５５】
その上、ペレイラに言及されるワイルド系とは反対のノンワイルド系のこの種の製造は遺伝子組換え生物での環境汚染の危険を心配する制御された製造環境中での製造するのための理想である。
【００５６】
ペレイラ（２０００）により言及される製造は環境への生物材料の漏洩を制御しない砂糖酒類ユージンの中の大きい工業桶の中で起こる。
しかし、逆としては砂糖―酒類ユージンのセントリフュージ生と大桶の中に、物材料の絶えない漏洩と蒸発がある。この特徴は生物安全制御生体による技術のタイプの使用を成長できなくする。
【００５７】
理論上、砂糖―酒類ユージンで環境への漏洩を制御することは可能であるが、その制御は経済的には起こりうることではない。
【００５８】
ノンワイルド酵母は薬品の製造品質の厳しい制御の存在のために重要である既知の新陳代謝の特徴を持つので、研究所ラインは薬品や工業酵素のようなたんぱく質の中で制御された実験室の発酵層に対して理想的である。
薬品の製造では室と含有物の制御はFDAの承認を得るために重要である。工業酵素の製造ではその多くは高い付加価値を持っているので、そのような制御はない。
したがって、この製造環境では、汚染制御は重要で、環境から大桶へ及び遺伝子組換え微生物を持つ大桶から環境への汚染の危険は最小である。
【００５９】
そのうえ、ノンワイルド系のもう一つの利点はよく知られた印を持つことであり、したがって、選ばれた修正細胞を促進し、より高い人間の健康リスクを持つ印の使用を避ける。
そのワイルド系の他の側面は、研究室系の様に、デプロイドでありハプロイドでないという事である。
デプロイドであることは、ワイルド酵母は高い製造効率を持ち、遺伝子の二つのコピーは修正されねばならないので、遺伝子の修正をされるためにもっと働くことを要求される。
ハポロイド酵母は修正されるべき唯一のコピーを持つ。
ワイルド酵母はプラスミド変更に対し安定しないので、発酵層の中に自然の選択という意味で異なった特徴を持つ。
【００６０】
この発明を実施する一つの方法は、プラスミド促進因子の中にADH 、MOXあるいはHSP30pをFLO1のようなコード部と一緒に置くことである。
この遺伝子は繰り返す部分を所持し再結合に悩むので、FLO1は様々な酵母の中に不十分な誘導因子インデックスを持つ。
FLO1LあるいはFLO1S遺伝子はより高い効き目を持つ。
しかし、遺伝子FLO1、FLO1LとFLO1Sだけが硫酸のような酸の存在の中で凝集を防止する。
【００６１】
遺伝子FLO10は砂糖を伴い凝集を防止し、それから次の生産サイクルの生材料による不凝集を作り出し、発酵方法をより単純により安価にする。
【００６２】
例；
遺伝子と促進因子は酵母の中に導入される遺伝子マーカーを伴いプラスミドの中に挿入される。
細胞は遺伝子組換え酵母を選択するだけのマーカーの特定な抗生物質を伴った媒質の中で成長した。
その後、その選択された酵母は促進因子の圧搾特性を伴って条件付で凝集をすることができる。
ブドウ糖が終了した時、窒素が終了した時、温度ショックがあった時またはｐＨの突然の墜落があった時、それらは凝集する。
とにかく、その凝集を活性剤が窒素の使用をできるだけ可能にする発酵方法の最後に発生することは興味あることである。
凝集が活性化すれば、微生物は底に落ち着き、最後の発酵製品が発酵桶のより高い部分により発酵桶から取り出されても良い。
【００６３】
段階ごとの実施例
ADHと遺伝子FLO5のようなブドウ糖により統制された誘導因子を結び付けたこの組換え型プラスミド構造（YEｐ）の中で、誘導因子の最後で制限酵素NdeI と HindIIIのために場所を使用して、したがって、誘導因子の関連は同じリーディング枠の位置３での凝集遺伝子に向かい位置５で作られる。
凝集遺伝子の位置３の上で停止コドンが導入された。
この構成において、アウキソトロフィーウラシラ（ URAA3 ）の補足マークを持ったプラスミドと抗生物質抵抗が使用される。これらの二つのマークはウリジンとウラシルのための栄養必要性を持つ実験室酵母を相補させ、同じく、妨げる因子に対する抵抗マークによる変換されたひずみの選択をさせる。
【００６４】
実験室試験の例
この凝集カセットは１,５キロボルト、200ohmsと１,２センチの容器の基準を設けた
エレクトロポレーションにより酵母の中に導入した。
変換した酵母は培養液媒質の中でウリジナとウラシラの欠如によって選ばれた。
発酵方法はブドウ糖が追加された最小の媒質の中で行なわれた。
１７時間の培養の後で凝集が起こった。
遺伝子FLO10の使用は凝集が発生した後、ブドウ糖の導入させ、凝集をはっきり可逆的な方法にした。
変換されたストレインは培養液の中で安定的にされた。
【国際調査報告】
2005532055.tif 000010
2005532055.tif 000011