(57)【要約】本発明は、細胞により内部移行させられる粒子の形態で投与され、細胞におけるその存在をＭＲＩ技法で検出することができる、ランタニド類又は遷移金属に基づいた常磁性錯体に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞により内部移行され、そこで酵素的に分解され、又はその周囲の環境におけるエフェクタによって分解されて水溶性のＭＲ画像プローブを生じる微粒子の形態で投与される、ＭＲ画像プローブとしてのランタニド又は遷移金属キレートの常磁性錯体を含む不溶性粒子。
【請求項２】
その不溶性が、キレートケージの表面に結合した疎水性置換基によることを特徴とする請求項１に記載の粒子。
【請求項３】
疎水性置換基が、エステル結合又はアミド結合を介して常磁性錯体に共役する脂肪族鎖である請求項２に記載の粒子。
【請求項４】
その不溶性が、粒子自体を形成する高分子成分に起因することを特徴とする請求項１に記載の粒子。
【請求項５】
常磁性錯体が、高分子成分に共有結合することを特徴とする請求項４に記載の粒子。
【請求項６】
常磁性錯体が、Ｇｄ（III）キレートである請求項１〜５のいずれか１項に記載の粒子。
【請求項７】
常磁性錯体が、Ｍｎ（II）又はＭｎ（III）のキレートである請求項１〜５のいずれか１項に記載の粒子。
【請求項８】
不溶性高分子が、キトサン又はその誘導体である請求項４に記載の粒子。
【請求項９】
常磁性錯体が、非共有結合の相互作用を介して高分子の網目の内部に捕捉される請求項８に記載の粒子。
【請求項１０】
常磁性錯体が、負の残留電荷を付与されているＧｄ（III）キレートである請求項９に記載の粒子。
【請求項１１】
常磁性錯体が、負の残留電荷を付与されているＭｎ（II）又はＭｎ（III）のキレートである請求項９に記載の粒子。
【請求項１２】
安定な懸濁液の形成に有利に働き、かつ、血中での粒子の寿命を延ばすようにデキストランポリマー又はそのほかの好適な物質で覆われる請求項１〜１１のいずれか１項に記載の粒子。
【請求項１３】
それらを対象として、当該細胞の外膜上の特異的認識部位と相互作用するようにできるので、それらの細胞への内部移行を刺激するシントンにより機能化される請求項１〜１１のいずれか１項に記載の粒子。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
細胞系のＭＲＩによる視覚化には、大量の常磁性錯体単位の内部移行が必要とされる。大量の金属錯体を細胞内に導入する最も効率の良い経路は、微細に分割した粒子の形態でそれらを内部移行させることであることが判っている。従って、細胞の種類の特徴に依存して、ａ）貪食能又はｂ）受容体刺激性のエンドサイトーシスを介して内部移行を行ってもよい。後者の場合、細胞表面を対象とすることに関与する単位は、微粒子表面に結合しなければならず、微粒子表面は場合により、ＭＲＩの造影剤として一般に採用される酸化鉄に使用される手段に類似するものによって被覆される。いったん内部移行すると、図６に模式的に開示するように、適切な酵素の活性によって、又はいずれにしろ、周囲の微細環境の内部での好適なエフェクタによって徐々に分解され、常磁性錯体の単一単体として放出される。細胞内における微粒子の存在は、Ｔ２強調法によるＭＰＩ技術によって容易に検出できる一方で、ＭＲ画像プローブとも呼ばれる遊離の錯体単位の存在はＴ１強調法によってさらに容易に明らかにされる。粒子を徐々に分解する酵素は、該当する細胞内に天然に存在してもよいし、既知の分子生物学的手法によって特異的に発現されてもよいし、又は該当する細胞区画に局在する形態で投与されてもよい。
【０００２】
〔発明の背景〕
遷移金属（特にＭｎ（II）及びＭｎ（III））及びランタニド類（Ｇｄ（III））の常磁性錯体は、組織プロトンの緩和率を大きく高めるという能力のために磁気共鳴画像における造影剤（ＣＡ）として用いられている。ほとんどの場合、それらは細胞外分布を有し、臓器及び組織の潅流を評価する、又は血液脳関門などにおけるいかなる異常も明らかにする上で特に有益であることが証明されている。血管造影の適用では、血清アルブミンとの非共有性の相互作用を介した血管区画におけるＣＡの分離が調べられる。少ない例では、肝細胞特異的作用剤が、能動輸送に際して肝細胞には入っていくが、この臓器に存在してもよい転移には入らないのと同様に、診断能力は、ＣＡの細胞内分布に関係する。さらなる例は、浸透圧ショックによる赤血球内への常磁性錯体の内部移行である。この手法によって、大量の常磁性錯体を含む赤血球が提供され、それからＭＲＩ画像における流量、容積などの重要な情報を得てもよい。
【０００３】
最近、ＭＲＩ手法において視覚化するために特定の細胞種を標識する可能性について着目されている。現在の診断プロトコールにおける改善に関連した適用の例は、腫瘍細胞に過剰発現される受容体を対象とすることに関係している。これらの場合、細胞標識を、細胞膜の外側表面へのＣＡの蓄積を介してか、又は好適な再生可能な受容体による内部移行を介してかのいずれかで行うことができる。大きな関心が持たれるその他の適用は、幹細胞の追跡における興味深い展望とともに、細胞のホーミングをモニターする可能性に関する。遺伝子治療における遺伝子移入を立証する細胞標識を用いる可能性も高い革新性がある。治療遺伝子を対象とすることは極めて興味深い可能性であり、関連する研究は、将来大きく発展することが期待されている。広まるであろう遺伝子治療技術（ウイルス又はタンパク質／ＤＮＡ複合体又はリポソーム／ＤＮＡ付加体）とは別に、好適な遺伝子移入の指標を開発することが必要であろう。今日まで、「in vitro」の研究は、感染させた細胞におけるβ−ガラクトシダーゼのような酵素又は緑色蛍光タンパク質を発現する遺伝子の使用を含む手法に頼っている。言い換えれば、特定の細胞の感染手法では、利用法は、疾患の治療に特異的な遺伝子だけでなく、投与した遺伝子物質の核への移行に関する情報を提供する指標のための遺伝子も含有する構築物から成る。ＭＲＩの高い空間解像能によって、この手法は当然、遺伝子移行過程をモニターするとみなされている。Meadaらは、酵素、β−ガラクトシダーゼによって切断されるガラクトース単位を１つ含有するＧｄ−ＨＰＤＯ３Ａ誘導体を用いた。変換は、ＭＲ画像により示すことができる錯体の緩和度の変化を誘導する。実際には、このアプローチは、たとえば、限られた緩和度の向上のような幾つかの因子、さらに当該細胞に錯体を特異的に導入することの困難さ（Meadaらの論文では、錯体は、β−ガラクトシダーゼ遺伝子を形質移入した卵母細胞に直接注射される）によって明らかに限定される。別の著者は、過剰発現したトランスフェリン受容体による遺伝子移入の指標としての磁鉄鉱粒子の使用を提案した。当該タンパク質は、磁性粒子の内部移行に対してキャリアとして働く。このアプローチに対する限界の１つは、これらの粒子が磁性感受性における変化に作用するのと同様に、負ではなく、正のコントラストの増強を観察することが好ましいことである。さらに、大量の鉄の細胞への内部移行はその代謝的な最終結末に重大な懸念を生じる。
【０００４】
従って、当該細胞に向けた特異的向性を付与され、かつ、得られるＭＲＩ画像で高いコントラストを達成できる常磁性錯体（正のコントラスト）の放出に基づいた新しい細胞標識戦略の開発に対するニーズがある。
【０００５】
〔発明の説明〕
序論で述べたように、指標酵素をコードする遺伝子は、細胞の標識手法に用いられることが多い。他方で、過剰発現した特定の酵素の検出は、多数の病態で高い診断価値を持つことが多い。ＭＲＩによる所見については、特定の酵素の存在が、水プロトンの緩和において意味のある変動を誘導することが必要である。さらに効果的にするには、この過程によって「緩和計測的にサイレント（relaxometrically silent）」な種が「緩和計測的にアクティブ（relaxometrically active）」な種に変換されるべきである。
【０００６】
この目的は、細胞により内部移行され、そこで酵素的に、又はその周囲の環境におけるエフェクタによって分解され、水溶性ＭＲ画像プローブを生じる微粒子の形態で投与される、ＭＲ画像プローブとしてのランタニド又は遷移金属キレートの常磁性錯体を含む不溶性粒子によって得ることができることが今や判っている。
【０００７】
本発明の粒子は、それらを不溶性にするようにキレートケージの表面に結合した疎水性置換基を持ってもよい。
【０００８】
前記疎水性の置換基は、たとえば、エステル結合又はアミド結合を介して常磁性錯体に共役する脂肪族鎖を含む。
【０００９】
又は、該粒子は、不溶性の高分子成分（たとえば、キトサン又は誘導体）から成り、常磁性錯体がそれに共有結合してもよく、若しくは常磁性錯体が非共有性の相互作用を介して高分子の網目の内部に捕捉されてもよい。
【００１０】
好ましくは、該常磁性錯体は、Ｇｄ（III）キレート、Ｍｎ（II）又はＭｎ（III）キレートである。
【００１１】
高分子成分との非共有性の相互作用は、負の残留電荷を付与された常磁性錯体、たとえば、負の残留電荷を付与されたＧｄ（III）、Ｍｎ（II）又はＭｎ（III）を使用することによって得られてもよい。
【００１２】
又は、Ｇｄ錯体粒子は、−酸化鉄に基づいた粒子に用いられる手法と同様に−たとえば、デキストラン又はそのほかの物質のようなポリマー基材によって部分的に又は完全に覆うことができる。粒子表面におけるこの処理はまた、血液循環におけるシステムの滞留時間を制御する機能も有する。微粒子を覆う物質は、標的細胞の表面に存在する特異的単位を分子レベルで認識できる１以上のシントンで機能化することができる。認識した後、好適に機能化された酸化鉄（たとえば、トランスフェリン受容体に結合する場合）で見られるものに類似して内部移行が起きる。
【００１３】
常磁性キレートを含む粒子（「緩和計測的にサイレント」）が好適な酵素によって分解される場合、単一単位の常磁性キレートが放出される。この過程は、常磁性キレートの放出が水プロトンの縦緩和時間の進行性の低下を決定するので、容易にモニターすることができる。この事実は、好ましい化合物の１つについて図７で例示されている。
【００１４】
これらの所見を考慮して、溶解性が、細胞内に天然には存在しないが、分子生物学的技法で特異的に発現される酵素によって促進されるそのほかの粒子を調製することができる。粒子の細胞への導入は、細胞性の形質移入法において遺伝子物質の送達に日常的に用いられているので、従来の技法である。貪食能が不可能な細胞については、細胞表面の受容体の刺激を介して活性化されることが知られている飲作用過程を利用することができる。
【００１５】
後で特異的酵素によって分解を受けてもよい粒子の調製への種々のアプローチは、以下のようであることができる。たとえば、ｉ）当該酵素について特異的な配列を含有するペプチド鎖で架橋することにより、特定の系を不溶性にする、又はii）特異的酵素によって分解を受けるような方法で場合により官能基化された相反する電荷を持つ高分子系（たとえば、ポリリジン／ポリグルタメート）の間で不溶性の付加体を形成することができる、又はiii）酵素作用に感受性のスペーサーによって錯体表面から分離される疎水性置換基を導入することができる。錯体単位は高分子に共有結合することができ、又は高分子自体との特異的な相互作用により粒子の網目に捕捉することができる。
【００１６】
酵素の外にも、粒子を破壊することができるそのほかのエフェクタ、たとえば、粒子周囲の微細環境におけるｐＨ、イオン、ホルモン及び代謝産物を考慮することができる。
【００１７】
細胞への粒子の導入は、大量の常磁性錯体単位を捕捉する最も有効な方法であると思われる。いったん、内部移行させると、粒子は酵素又はそのほかの作用剤によって進行性に破壊されるので、造影剤単位の可溶性プールを形成することができる。このアプローチは、極めて一般的に実用本位であることができる。１つの例は、微粒子を内部移行させた母細胞由来の増殖過程をモニターすることに関する。細胞の分裂過程及び得られる子孫が局在する領域の描写は、幹細胞に関する適用で特に重要である。
【００１８】
適用のそのほかの例は、動脈硬化プラークの形成及びそのほかの病態に大きく関係するマクロファージ活性を持つ細胞の局在に関係してもよい。
【００１９】
例として、Ｇｄ（III）錯体に基づく粒子は、２つのカルボキシ基が、系を不溶性にする疎水性の鎖で誘導体化されたＧｄＤＴＰＡ誘導体によって表される。
【００２０】
脂肪族長鎖が、エステラーゼにより加水分解されるエステル官能基によってＧｄ（III）キレートの表面に結合し、従って、同封された図７で概略されるように、Ｇｄ（III）錯体の可溶性誘導体を放出し、粒子を進行性に破壊する。可溶性錯体の量（水プロトンの緩和速度を高めるのに十分寄与し、Ｔ１強調法により得られるＭＲＩ画像にコントラストを創る）は、酵素の量に依存するので、方法は、当該細胞における酵素活性のレポーターとして作用する造影剤を提供してもよい。
【００２１】
追加の例として、エステル官能基の代わりにペプチド結合を含有する類似の系が調製され、適切なプロテイナーゼ酵素によるそれらの切断が評価されている
【実施例】
【００２２】
実施例１
脂肪族鎖が分布するＤＴＰＡ及びそのＧｄ（III）との錯体の合成
Ｈ2Ｎ−ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ−ＣＨ2−ＣＨ2−ＯＯＣ−Ｃ17Ｈ35とのＤＴＰＡ−ビスアンヒドリドの反応によってリガンドを合成した。リガンド（わずかに水溶性）をＧｄＣｌ3により錯体化し、白色の粉末（錯体Ｇｄ−１）として沈殿する不溶性キレートを得た。
【化１】
2005533842.tif 000002
【００２３】
実施例２
錯体Ｇｄ−１におけるエステラーゼ活性の「in vitro」評価
Ｇｄ−１粒子に対する、２種の異なる酵素（ブタ肝臓に由来するエステラーゼ［Ｅ．Ｃ３．１．１．１］及びクロモバクテリウム・ビスコサム（Chromobacterium viscosum）由来のリパーゼ［ＥＣ３．１．１．３４］）の活性を評価した。酵素の存在下で、５０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液ｐＨ＝８及び３１０Ｋにて、Ｇｄ−１の懸濁液は、濁度の進行性の低下を示し、それは可溶性Ｇｄ（III）の形成を示唆している。
【００２４】
この挙動は、０．５Ｔ及び２９８Ｋで作動するＮＭＲ分光計（ステラー・スピンマスター（Stelar Spinmaster））での水プロトンの緩和率(Ｒ1)の測定により確認された。
【００２５】
図１に示すように、酵素の非存在下では、Ｒ1は変化せず、その値は純水のそれ（０．３８ｓ−１）と違わず、それは、粒子表面上のＧｄ錯体及び／又は溶解した少量の錯体の限られた寄与を反映した。
【００２６】
エステラーゼ（２mg）の存在下では、Ｒ1は迅速に上昇し、２〜３時間後、Ｇｄ−１錯体のエステル結合の加水分解から生じる可溶性Ｇｄ（III）に対して予想される値に達した。観察された２つの曲線における差異、従って、異なる反応動態は、Ｇｄ錯体懸濁液に加えた２つの酵素のmg当たりの異なる活性単位量に起因しうる。
【００２７】
その後、マクロファージのエステラーゼを調べた。この目的で、約４ｘ１０6個のマクロファージを超音波処理による細胞溶解に付し、約１mgのＧｄ−１を細胞溶解物に加えた。細胞溶解物に存在する酵素が、迅速に疎水性のエステル基を切断するので、可溶性のＧｄ錯体が放出された。可溶性Ｇｄ錯体の形成には、水プロトンの緩和率の上昇が上手く続く（図２）。約２時間後、酵素反応は定常状態に達した。
【００２８】
実施例３
Ｕ９３７単球におけるＧｄ−１の貪食的取り込み
前もって、ＴＰＡによる３日間の処理で細胞分化を誘導したＵ９３７単球で、Ｇｄ−１粒子の貪食的取り込みを行った。Ｇｄ−１粒子の大きさは電子顕微鏡観察で測定し、測定された直径は、０．５〜１０μmの範囲だった。ほとんどの粒子は１０μm未満の直径を有しており、それは貪食過程を行わせるのに十分小さかった。取り込みは３７℃で行い、異なった２種類の量のＧｄ−１と共に以後の時間（１〜１２時間）細胞をインキュベートした。３７℃での数時間のインキュベートの後、培地を除き、５mLのＰＢＳにて細胞を３回洗浄した。これらの条件では、培地に懸濁されたＧｄ−１粒子は溶解しなかった；実際、培地の緩和度は、純水のそれ（０．４５ｓ-1）に極めて近いままであった。細胞内で検出されるＧｄ（III）の量は、インキュベート時間に直接比例したが、動態曲線の飽和には１２時間では達しなかった（図３）。予想どおり、貪食されたＧｄ（III）の量は、時間ゼロでは、培養培地に加えられた錯体の量に比例した。この挙動をサイトゾル抽出物における水プロトンの緩和率と比較することは興味深い。これは、貪食作用の完了後、細胞を−８０℃にて３回凍結することにより得られた。サイトゾル抽出物における緩和率はインキュベート時間に比例したが、貪食されたＧｄ（III）の総量の場合に見られたものとは対照的に、頭打ちの傾向があった(図４）。大量に内部移行した錯体はおそらく、加水分解に関与する酵素の作用を阻害する。
【００２９】
細胞に内部移行したＧｄが培地に溶解したＧｄ−１に由来するかどうかを確かめるために、次いで、マクロファージによるＧｄ可溶性錯体の取り込みから成る対照実験を行った。
【００３０】
この目的で、Ｇｄ−１粒子の存在下で使用したものと同じ条件で、異なった量のＧｄ−ＨＰＤＯ３Ａ（市販）を細胞と共にインキュベートした。サイトゾル抽出物で測定した水プロトンの緩和率は細胞内にＧｄ−ＨＰＤＯ３Ａが全く存在しないことを示した。この方法で、マクロファージの表面は、Ｇｄ−ＨＰＤＯ３Ａのような錯体を内部移行させることができる特異的又は非特異的な受容体を欠くことが実証された。
【００３１】
実施例４
Ｇｄ−１に対する細胞内エステラーゼ活性の「in vivo」評価
Ｇｄ−１粒子をプローブとして用い、未処理細胞内での酵素活性を評価する実験を設定した。この目的で、２ｘ１０6個の細胞（上述のようにマクロファージに分化するＵ９３７単球）を含有する異なったカプセルを、５mLの培地（ＲＰＭＩ）に懸濁した約５mgのＧｄ−１粒子と共に３７℃にて４時間インキュベートした。この期間の後、ＰＢＳにて細胞を３回洗浄し、さらに５mLのＲＰＭＩで覆い、３７℃にて様々な時間再びインキュベートした。この方法で、内部移行工程に依存する時間間隔でＧｄ−１粒子のエステラーゼが触媒する加水分解に由来する貢献を分離することができる。連続的な時間間隔（０．５、１、２時間）でプロトンの緩和率を測定した。Ｇｄ−１粒子の存在下、４時間のインキュベートの後、細胞は約６０nmｏｌの錯体を内部移行させたが、内部移行した粒子のたった５０％しかこの時点で加水分解されておらず、緩和度全体にも貢献していなかった。実際、Ｇｄ−１を欠く培地で細胞を再懸濁した場合のサイトゾル抽出物の緩和度は２．５であり、酵素的加水分解の続く２時間で３．７に上昇した。従って、内部移行したＧｄ−１粒子の８０％が細胞性エステラーゼによって可溶化されたと想定することができる(図５）。
【００３２】
実施例５
超音波処理による微粒子の調製
Ｇｄ−１の微粒子を調製するために、粒子懸濁液全体を超音波処理した。音響化学装置はＴＥＫＩＭＰモデル（Castelfranco Veneto TV、イタリア）であった。装置のテフロンチューブで水性のＧｄ−１（５０mg／７mL）懸濁液を調製した。超音波処理の条件は以下のとおりであった：周波数：１８．２KHz、出力：２５０Ｗ、時間：１０分間。冷却システムにより、懸濁液を５℃未満の温度に維持した。次いで、超音波処理した懸濁液をろ過した（カットオフ０．８μM）。ろ液中のＧｄ含量は、出発懸濁液に含有された全Ｇｄの１０〜２０％に相当した。
【００３３】
実施例６
Ｇｄ−１による好中球の標識
標識された細胞についての適用の１つは、原因不明の発熱に冒された患者における感染部位の同定を扱うことである。このことは、患者から採血した検体から常法で得られる好中球を標識することを意味する。標識した後、ＭＲＩ検査の対象である患者に好中球を再び注射しなければならない。
【００３４】
好中球（約２．５ｘ１０6）の標識は、実施例５に従って調製した０．４mgのＧｄ−１の粒子を含有する培地中でそれら（５mL）をインキュベートすることによって行った。
【００３５】
３７℃にて２．５時間インキュベートした後、細胞を回収し、ＰＢＳにて数回洗浄し、次いで解析した。タンパク質mg当たりのＧｄの量は、８．８ｘ１０-8モルであり、すなわち、粒子の細胞内での分解後の量は、ＭＲＩ技法により標識された細胞の視覚化に十分であった。
【００３６】
実施例７
超音波処理後のＧｄ−１によるマクロファージの標識
マクロファージ活性が付与されたＵ９３７細胞による内部移行アッセイにおいて、実施例５で記載した超音波処理で得られた粒子を調べた。インキュベート培地は、０．２mgのＧｄ−１（全部で）を含有した。約４時間のインキュベート後、内部移行したＧｄの量は、タンパク質mg当たり最大値、２ｘ１０-8モルに達した。このことは、約１０％が細胞に取り込まれたことを意味する。いったん、酵素的分解が進むと、シグナル強度は進行性に上昇し、定常状態に達し、それは、この種のプロトコールの適用に十分なだけ長く続いた。
【００３７】
実施例８
Ｇｄ−２の合成
【化２】
2005533842.tif 000003
【００３８】
リンクアミド（Rink Amido）樹脂を用いて固相合成により生成物を調製した。
１１−アミノウンデカン酸のアミノ基を前もってＦｍｏｃ保護し、次いで、固相ペプチド合成のために従来のＦｍｏｃ−ａ．ａプロトコールにより樹脂に結合させた。
【００３９】
ＤＭＡ中で膨潤させた樹脂に対して、ＰｙＢｏｐ、ＨＯＢｔ及びＤＩＰＥＡの存在下で６回の連続的カップリング（Ｎ−Ｆｍｏｃ−１１−アミノウンデカン酸、Ｎ−Ｆｍｏｃロイシンｘ４、マレイルアミノ−ＬＩＳＩＮＯ−誘導体）を行った。
【００４０】
ピペリジンによりＦｍｏｃの脱保護を行い、試薬Ｂにより樹脂の最終切断を行った。ＤＭＡ、ＣＨ2Ｃｌ2及びジエチルエーテルにより原料を洗浄し、ＨＰＬＣにより精製した。
【００４１】
ＬＩＳ−ＤＴＰＡのマレオイル誘導体は、既知のＬＩＳ−ＤＴＰＡリガンドのＣＨ2Ｃｌ2中での無水マレイン酸との単純な反応により得られた。ＧｄＣｌ3による常法によりＧｄ−錯体を得た。Ｇｄ−錯体は、水不溶性の薄黄色の固形物であった。
【００４２】
実施例９
Ｇｄ−２粒子に対するプロテイナーゼ活性の「in vitro」評価
Ｇｄ−２の水性懸濁液（３０mg／mL）に、少量（約１mg）のタンパク質分解酵素、ＭＭＰ−１２を加えた。そのような酵素はペプチド結合を切断すると予想された。常温にて１時間、懸濁液を撹拌した。次いで、上清０．１mLを２０MHzで作動するステラー・スピンマスター分光計でＴ１測定に付した。０．８５ｓ−１のＲ１が測定された。長い反応時間（４時間）で同様の実験を行い、Ｒ１は１．８ｓ−１であることが判った。この所見は、可溶性Ｇｄ−キレートの放出とともに不溶性シントンの切断という点で説明することができる。
【００４３】
実施例１０
可溶性Ｇｄ−キレートを捕捉する不溶性高分子系により作製される生分解性粒子
可溶性のＧｄキレートを捕捉する不溶性マトリクスによってナノ粒子を形成することができる。マトリクスは特異的酵素の作用によって生分解可能である。細胞内の分解が進むにつれて、可溶性のＧｄキレートの放出が生じ、次いで、得られるＭＲ画像におけるシグナルが増加する。
【００４４】
ＭＲＩ適用のための生分解性粒子のこの部類の例は、キトサンとＧｄ−ＤＴＰＡとのナノ粒子を形成することによって得られる。ナノ粒子（平均直径が２５０nm前後）を形成するための続く十分に確立した手順に従って、１００mgのキトサン当たり、約６〜９mgのＧｄを捕捉することが可能であった。
【００４５】
Ｇｄ−ＤＩＰＡを捕捉している５mgのキトサンのナノ粒子を、４ｘ１０6個のＵ９３７細胞を含有するペトリ皿に加えた。３７℃で６時間インキュベートした後、細胞を回収し、ＰＢＳにて数回洗浄した。次いで、ＩＣＰにより内部移行したＧｄの量を測定した。内部移行した量（９．８ｘ１０-8モル／タンパク質mg）はＭＲＩの視覚化に十分であることが判った。
【図面の簡単な説明】
【００４６】
【図１】錯体Ｇｄ−１における２種の異なるエステラーゼ活性のin vitro評価の結果を示す。
【図２】錯体Ｇｄ−１におけるマクロファージのエステラーゼ活性のin vitro評価の結果を示す。
【図３】Ｕ９３７単球におけるＧｄ−１の貪食的取り込みについての結果を示す。
【図４】サイトゾル抽出物における水プロトンの緩和率を示す。
【図５】Ｇｄ−１に対する細胞内エステラーゼ活性のin vivo評価の結果を示す。
【図６】常磁性錯体単位の内部移行の模式図を示す。
【図７】常磁性キレートの放出の例を示す。
【図１】
2005533842.tif 000004
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【国際調査報告】
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2005533842.tif 000012
2005533842.tif 000013