(57)【要約】本発明者らはヒト患者において濾胞形成を誘発する際に用いるためグリコシル化を増加し半減期を長くする新規のＦＳＨ変異体を設計した。本発明のＦＳＨ変異体製剤の使用は一層少ないＦＳＨの累積的投与量の使用を可能にして同じかまたはより良い臨床結果を達成することができる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
１個のＮ−グリコシル化部位を変異Ｆ１７ＴによってＦＳＨアルファサブユニットに導入したＦＳＨ変異体。
【請求項２】
１個のＮ−グリコシル化部位を変異Ｅ５６ＮによってＦＳＨアルファサブユニットに導入したＦＳＨ変異体。
【請求項３】
１個のＮ−グリコシル化部位を変異Ａ７０ＮによってＦＳＨベータサブユニットに導入したＦＳＨ変異体。
【請求項４】
１個のＮ−グリコシル化部位を変異Ｖ７８ＮによってＦＳＨベータサブユニットに導入したＦＳＨ変異体。
【請求項５】
１個のＮ−グリコシル化部位を変異Ｇ１００ＮによってＦＳＨベータサブユニットに導入したＦＳＨ変異体。
【請求項６】
２個のＮ−グリコシル化部位を変異Ｄ４１Ｎ／Ａ４３ＴによってＦＳＨベータサブユニットに導入したＦＳＨ変異体。
【請求項７】
請求項１−６の何れか１項記載のＦＳＨ変異体および少なくとも１個の製薬学的に許容できるキャリヤまたは賦形剤からなる組成物。
【請求項８】
請求項１−６の何れか１項記載のＦＳＨ変異体または請求項７記載の組成物の有効量を哺乳動物に投与することからなる、生殖能力のない哺乳動物の治療方法。
【請求項９】
請求項１−６の何れか１項記載のＦＳＨ変異体または請求項７記載の組成物の有効量を哺乳動物に投与することからなる、哺乳動物における濾胞形成の刺激方法。
【請求項１０】
請求項１−６の何れか１項記載のＦＳＨ変異体または請求項７記載の組成物の有効量を哺乳動物に投与することからなる、哺乳動物における卵巣過刺激の誘発方法。
【請求項１１】
請求項１記載のＦＳＨ変異体を符号化するヌクレオチド配列。
【請求項１２】
請求項２記載のＦＳＨ変異体を符号化するヌクレオチド配列。
【請求項１３】
請求項３記載のＦＳＨ変異体を符号化するヌクレオチド配列。
【請求項１４】
請求項４記載のＦＳＨ変異体を符号化するヌクレオチド配列。
【請求項１５】
請求項５記載のＦＳＨ変異体を符号化するヌクレオチド配列。
【請求項１６】
請求項６記載のＦＳＨ変異体を符号化するヌクレオチド配列。
【請求項１７】
請求項１１−１６の何れか１項記載のヌクレオチド配列からなる発現ベクター。
【請求項１８】
請求項１７記載のベクターからなる宿主細胞。
【請求項１９】
真核である請求項１８記載の宿主細胞。
【請求項２０】
哺乳動物である請求項１９記載の宿主細胞。
【請求項２１】
ＦＳＨ変異体の発現に対し伝導性の条件下に請求項１８−２０の何れか１項記載の宿主細胞を培養することからなる、ＦＳＨ変異体の精製方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はゴナドトロピンの分野に関し、特に生殖性疾患の治療に用いることに関する。
【背景技術】
【０００２】
ゴナドトロピンは濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）、黄体形成ホルモン（ＬＨ）および絨毛性ゴナドトロピン（ＣＧ）を含むヘテロダイマー糖タンパク質の群である。これらのホルモンは雌雄における生殖腺機能を制御する。これら各ホルモンは２つの非共有結合サブユニットからなる。ＦＳＨ、ＬＨおよびｈＣＧに共通のアルファ−サブユニット、また、これらの各々に特異的なベータ−サブユニットであり、ベータ−サブユニットは各ホルモンに生物学上特異性を与える。
ゴナドトロピンの全てにおいて、各サブユニットはアスパラギン結合（Ｎ−結合）オリゴ糖側鎖をもつ。ヒトホルモンの一般のアルファ−サブユニットでは、これらは部位５２と７８に結合する。ヒトのＦＳＨおよびＣＧでは、２つのＮ−結合オリゴ糖側鎖はＦＳＨの部位７および２４で、ｈＣＧの部位１３および３０でベータ−サブユニットに結合する。ヒトＬＨでは、１つのオリゴ糖はベータ−サブユニットの部位３０に結合する。ｈＣＧはさらにカルボキシ末端部位（ＣＴＰ）に存在する４つのセリン結合（Ｏ−結合）オリゴ糖側鎖をもつ。
ゴナドトロピンは再生サイクルにおいて決定的な役割を演じ、それらの使用は補助再生技術（ＡＲＴ）、例えばインヴィトロ受精（ＩＶＦ）、細胞質内精子注入に関連したＩＶＦ（ＩＶＦ／ＩＣＳＩ）および胚移動、ならびに天然または子宮内媒精（ＩＵＩ）のいずれかによるインヴィヴォ受精を受ける無排卵患者における排卵誘発（ＯＩ）に必須である。
ＡＲＴは一般にコントロールされた卵巣超刺激（ＣＯＨ）を用いて行われ雌の配偶子の数を増加する。ＣＯＨの標準療法は下方制御段階を含み、内因性ゴナドトロピンはゴナドトロピン放出ホルモン（ＧｎＲＨ）作用薬を投与し、次に濾胞性発生（濾胞形成）がＦＳＨの１日投与量、通常は約１５０−２２５ＩＵ／日で誘発される刺激段階によって抑制される。あるいは刺激は自発的または誘発された月経後に始まるが、（一般に約６日の刺激性段階をスタートする）ＧｎＲＨ−アンタゴニストの投与により不充分なＬＨサージの発生を避ける。少なくとも３個の濾胞＞１６ｍｍ（１８ｍｍのひとつ）であるとき、ｈＣＧの単一ボーラス（５−１０，０００ＩＵ）を与えて天然ＬＨサージを模倣し、排卵を誘発する。卵母細胞回復はｈＣＧ注入後３６−３８時間に合わされる。
ＯＩは一般に約７５−１５０ＩＵ／日の投与量でＦＳＨを毎日投与して行われる。ＡＲＴ指標よりはあまり頻繁ではないけれども、ＧｎＲＨアゴニストまたはアンタゴニストでの下方制御を用いることができる。ｈＣＧを与えてインヴィヴォ受精前にＬＨサージを模倣する、これは規則的な性交またはＩＵＩのいずれかによって行われる。
ＡＲＴおよびＯＩのための上記の典型的な措置は延長された期間、すなわち平均１０日、若干の患者には２１日までにわたってゴナドトロフィンを毎日注入する必要がある。効力増加のＦＳＨ製剤の開発はＦＳＨの１日の投与量を減らし、および／または治療期間を短縮し（すなわち少ない注入）および／またはあまり頻繁に注入しなくてすむ。これはＡＲＴおよびＯＩの措置をさらに手軽に患者に優しくする。
さらに、インヴィトロ受精で用いるＡＲＴは起こりうる災難を伴う。例えば、各小胞は生存能力のある卵母細胞を生成せず、各生存能力のある卵母細胞はうまく受精せず、そして若干の胚は生存能力がない。さらに、一旦生存能力がある胚を選択すると、子宮への移動および移殖がうまくいかない可能性がある。生命の誕生の機会を最大にするため、いくつかの濾胞の成長と成熟を刺激することが望ましく、複数の卵母細胞の収集を確保する。
ＯＩの指標では、対照的に、３個より多くなく好ましくは１個の優性な濾胞を得ることを目的とする（複数の妊娠を避けるためである）。
ＡＲＴおよびＯＩを受ける若干の患者は従来のＦＳＨ製剤で治療するとき成長濾胞の数が減少する。これはＡＲＴをうける際の成功因子を限定し、移動および／または定温保存に入手できる胚の数が制限される。またＩＵＩを受ける患者の成功因子を制限し、そこでは１以上の濾胞を得ることが重要である。この種の応答を示す患者は約３３−３５才以上の患者、ＦＳＨ基準の上昇した患者で、エステラジオール基準を上げ、またはインヒビンｂ基準を減らした患者を含む。
雄では、精子形成はＦＳＨによるセルトリ細胞の刺激に依存する。ＦＳＨ欠乏は少数精子をもたらし、よって不妊症となる。従来のＦＳＨ製剤を用いた雄不妊症の治療は１８ヶ月まで週３回のＦＳＨ注射が必要である。
追加のグリコシル化部位をもつ変更されたＦＳＨ分子はＷＯ０１／５８４９３（マクシゲン）に記載されている。変更されたＦＳＨ分子の１例は生理活性を減らしインヴィヴォ半減期を増加することがテストされ報告されている。
濾胞形成を刺激する力を高めたＦＳＨ製剤の開発は継続して必要とされている。またＦＳＨへの応答を減らした患者を治療するための新規ＦＳＨ製剤の必要性もある。また、さらに長い半減期のＦＳＨ製剤が望ましく、これはＡＲＴ、ＯＩおよび雄不妊症のための、治療のプロトコルを短縮しおよび／または累積的投薬を減らしおよび／または投与回数を少なくすることができる。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００３】
本発明者らはヒト患者における生殖障害を治療する際に用いるためグリコシル化を増加し半減期を長くする新規のＦＳＨ変異体を設計した。本発明のＦＳＨ変異体製剤の使用は同じかまたはより良い臨床結果を達成するためのＦＳＨの累積投与量を減らして用いることを可能にする。
【課題を解決するための手段】
【０００４】
従って、本発明はＦＳＨ活性を示す変異体ＦＳＨを提供し、野生タイプのＦＳＨと比べると、この変異体ＦＳＨは少なくとも１の追加のグリコシル化部位をもち、グリコシル化部位はグリカンをもつ。本発明はさらに変異体ＦＳＨを符号化する核酸分子を与える。また本発明の核酸の任意の１つを含むベクターが本発明に含まれる。
本発明はまた本発明の変異体ＦＳＨを発現する組換え宿主細胞、特に変異体ＦＳＨを符号化するＦＳＨ核酸分子からなるベクターで形質転換された宿主細胞でもある。さらなる面では、本発明は変異体ＦＳＨおよび製薬学的に許容できる担体または賦形剤を含む組成物を提供する。
さらにまた、本発明は変異体ＦＳＨを生産する方法を提供する。本方法はＦＳＨ変異体核酸、例えば、ＦＳＨ変異体核酸を含むベクターを含む細胞を提供し、該細胞をＦＳＨ変異体を発現するために十分な状態下に培養することを含む。発現したＦＳＨ変異体を次に細胞から回収する。
本発明はまた、濾胞形成を刺激し、排卵を誘発し、卵巣過刺激を含む、雄雌の不妊症、ならびに哺乳類の生殖障害を治療する方法を提供する。
他の面では、本発明は排卵誘発、濾胞形成の刺激および卵巣過刺激の制御、特にＡＲＴに関連して、変異体ＦＳＨの使用を提供する。
【発明の効果】
【０００５】
本発明者らはヒト患者において濾胞形成を誘発する際に用いるためグリコシル化を増加し半減期を長くする新規のＦＳＨ変異体を設計したので、本発明のＦＳＨ変異体製剤の使用は一層少ないＦＳＨの累積的投与量の使用を可能にして良い臨床結果を得ることができた。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００６】
ＦＳＨの結晶構造から導かれる情報に基づき、本発明者らは、アスパラギンまたはトレオニンを特異的アミノ酸に置換し、これにより付加的なグリコシル化認識部位を作成し、増大したグリコシル化変異体をデザインした。
特異的な置換は以下の通りである：
ベータサブユニット中：Ａ７０Ｎ、Ｖ７８Ｎ、Ｇ１００ＮおよびＤ４１Ｎ／Ａ４３Ｔ；
アルファサブユニット中：Ｆ１７ＴおよびＥ５６Ｎ。
インヴィヴォでの可能性のあるＮ−グリコシル化部位は、コンセンサスパターンＡｓｎ−Ｘａａ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒに特異的であり、パターンＡｓｎ−Ｘａａ−Ｃｙｓには少し劣って特異的であることが知られている。ここで、Ｘａａは任意のアミノ酸残基である。Ａｓｎ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ配列に対するＮ−グリコシル化の可能性は約５０％であり、これはＡｓｎ−Ｘａａ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒの他のコンセンサスパターンに比べて統計的に低いものである。しかしながら、コンセンサストリペプチドの存在は、アスパラギン残基をグリコシル化すると結論するには十分でない。
タンパク質の折りたたみは、Ｎ−グリコシル化の制御に重要な役割を果たす。折りたたまれたタンパク質構造の内部にコンセンサス残基が埋め込まれると、特定部位におけるグリコシル化は見込めなくなる。さらに、変異によってグリコシル化が導入される場合、変異した残基はタンパク質の三次元構造を分裂させてはならず、あるいはタンパク質の受容体結合または活性といった所望の機能を減じてはならない。これらの理由により、タンパク質分子の構造の知識は、グリコシル化変異体のデザインの成功に重大な意味をもつ。
タンパク質の３次元構造に対する洞察を得るために使われてきた２つの方法は、モデリングおよびＸ線結晶構造である。ｈＣＧおよびＦＳＨは基本的に同一の折りたたみパターンを持つが、２つの構造は有意に異なり（Ｆｏｘら、２００１）、そしてＦＳＨ分子における個々のアミノ酸残基についての詳細な構造は、既に決定したｈＣＧ構造からは適切にモデルすることができない（Ｗｕら、１９９４；Ｌａｐｔｈｏｒｎら、１９９４）。本発明者らは、ヒトＦＳＨ分子の結晶構造のみに基づいて変異体をデザインした（Ｆｏｘら、２００１）。
結晶構造中、非対称性の各ユニットに２つのＦＳＨ分子（４サブユニット）がある。これら２つの分子は、重なり合い、匹敵し、そして各残基は、タンパク質分子の構造を分裂しないようなＮ−グリコシル化の可能性のある部位を同定するために視覚的に検査された。
ＦＳＨ、ｈＣＧおよびＴＳＨを含む糖タンパクホルモン分子の潜在的機能的に重要な部位を明らかにするために、構造的な知識も分析した。ｈＣＧ分子単独（Ｗｕら、１９９４；Ｌａｐｔｈｏｒｎら、１９９４）ならびに、中和および非中和抗体のＦｖフラグメントとの複合体（Ｔｅｇｏｎｉら、１９９９）の結晶構造の比較研究によって、受容体結合および活性についての重要な部位の手がかりが得られた。ｈＣＧ分子の「ウエスト様の」片側面は、受容体の細胞外ドメインへとても結合しやすく、そしてこの相互作用のタイプは、ＦＳＨ−ＦＳＨＲ系にも推論できた。
構造の知識を用いることで、ＦＳＨリガンド（Ｆｏｘら、２００１）をその受容体モデルに十分合わせることができた（Ｊｉａｎｇら、１９９５）。以下の６部位変異体を選択した。これらすべては、ＦＳＨ分子の「ウエスト領域」の片面上にリガンド−受容体相互作用をもつ。
ベータサブユニット中：Ａ７０Ｎ、Ｖ７８Ｎ、Ｇ１００ＮおよびＤ４１Ｎ／Ａ４３Ｔ；
アルファサブユニット中：Ｆ１７ＴおよびＥ５６Ｎ；
ここで、Ａはアラニン、Ｄはアスパラギン酸、Ｅはグルタミン酸、Ｆはフェニルアラニン、Ｇはグリシン、Ｎはアスパラギン、Ｔはトレオニン、Ｖはバリン、そして「Ｅ４Ｎ」という表記は、位置４においてアスパラギン（Ｎ）でグルタミン酸（Ｅ）を置換したことを示す。配列の番号付けでは、ヒトＦＳＨアルファのアミノ酸配列は、図６またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に示された成熟した配列に従って番号付けされる。ヒトＦＳＨベータのアミノ酸配列は、図７またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２に示された成熟した配列に従って番号付けされる。
従って、本発明は、タンパク質上の一あるいはそれ以上の付加的なグリコシル化部位を加えることによる増加したグリコシル化の結果としての、増加した半減期を持つＦＳＨ調製に関する。このような部位は、たとえば当然変異誘発を用いることで、セリン、トレオニン、リシンまたはアスパラギン残基によってＦＳＨタンパク質主鎖中の残基を置換することによって導入される。インヴィヴォにおけるグリコシル化について、導入した部位は、次の配列：Ｎ−Ｘ′―Ｓ／Ｔ／Ｃ−Ｘ″の、「Ｎ−グリコシル化部位」を形成するようなものでなければならい。式中Ｘ′はプロリンをのぞく任意のアミノ酸残基で、Ｘ″はＸ′と同一または同一でないことができる任意のアミノ酸残基でかつプロリンでないことが好ましく、Ｎはアスパラギンであり、そしてＳ／Ｔ／Ｃは、セリン、トレオニンまたはシステイン、好ましくはセリンまたはトレオニン、もっとも好ましくはトレオニンである残基をあらわす。
【０００７】
ＦＳＨ変異体を産生する方法：
従来技術において既知の任意の適当な方法によって、本発明のＦＳＨ変異体を産生することができる。これらの方法には、各ＦＳＨ変異体をエンコードし、適切に移入した宿主中でアミノ酸を発現するヌクレオチド配列の合成を含む。本発明のＦＳＨ変異体は、化学合成によってまたは化学合成と組換えＤＮＡ技術の組み合わせによっても産生することができる。
本発明のＦＳＨ変異体は、ポリペプチド鎖が二量体ポリペプチドを形成するようにインヴィヴォで二量体化されている、ＦＳＨアルファおよびＦＳＨベータサブユニットを２つの別々のポリペプチド鎖の形で含むことができ、またはペプチド結合またはペプチドリンカーによって共有的に連結する２つのサブユニットからなる一本鎖構成体の形で含むことができる。リンカーペプチドのアミノ酸残基は、ＦＳＨ変異体の活性と有意に干渉しない性質を示さなければならない。
本発明のＦＳＨ変異体のアルファまたはベータサブユニットをエンコードするヌクレオチド配列は、親のＦＳＨサブユニットをエンコードするヌクレオチド配列を単離または合成することよって作成することができる。たとえば、図６および７にそれぞれ示されたアミノ酸配列または、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ１または２をそれぞれに示されたアミノ酸配列をもつ、ｈＦＳＨアルファまたはｈＦＳＨベータである。次に、関連するアミノ酸残基の置換に影響するようにヌクレオチド配列を変える。本明細書の実施例１のように、ヌクレオチド配列を部位特異的突然変異誘発によって修飾することができる。代替として、ヌクレオチド配列は化学的な合成によって調製することができ、ここではＦＳＨ変異体の特異的なアミノ酸配列に基づいてオリゴヌクレオチドをデザインする。
本ポリペプチドをエンコードするヌクレオチド配列を、組換えベクターに挿入し、所望の形質移入宿主細胞中でポリペプチドを発現するのに必要な調節配列に操作可能に結合させる。従来技術の一つは、これらベクター、発現調節配列および宿主の選択を、過度の実験をすることなく行うことができる。
組換えベクターは自律的複製ベクターであることができる。すなわち、染色体外の存在物として存在するベクターで、その複製は染色体の複製とは独立であり、たとえばプラスミドである。代替としてベクターは、宿主細胞に導入すると宿主細胞ゲノムに組み込まれて、組み込んだ染色体とともに複製されるものである。
前記ベクターは好ましくは、本発明のヌクレオチドをエンコードするヌクレオチド配列が、配列の転写のために必要な付加的なセグメントに操作可能に連結している発現ベクターである。前記ベクターは、典型的にはプラスミドまたはウイルスＤなから抽出される。ここにおいて記述した、宿主細胞中における発現のための適切な発現ベクターは、市販のものを入手できるか文献に記載されているものである。
組換えベクターは、問題の宿主細胞中でベクターが複製できるようにするＤＮＡ配列をさらに含むことができる。このような配列の例は、（宿主細胞が哺乳類細胞のときは）、複製のＳＶ４０起点である。
前記ベクターは、選択的マーカーをも含むことができる。たとえばその生成物が宿主細胞中で欠損を補完する遺伝子、たとえばジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）をコードする遺伝子、または、アンピシリン、カナマイシン、テトラサイクリンクロラムフェニコール、ネオマイシン、ハイグロマイシンもしくはメトトレキセートといった薬剤への耐性を与える遺伝子である。
前記ベクターはＤＨＦＲといった増幅可能な遺伝子をも含むことができて、このため、
変異ＦＳＨのＤＮＡを含む増幅可能な遺伝子の多数のコピーおよびフランキング配列をもつ細胞が、適切な培地上で選択可能となる。
用語「調節配列」は、本発明のポリペプチドの発現のために必要なまたは有利であるすべてのコンポーネントを含むように定義される。哺乳類細胞における転写を方向づけるのに適当なコントロール配列の例は、ＳＶ４０とアデノウイルスの初期および後期プロモーター、例えばアデノウイルス２主要後期プロモーター、ＭＴ−１（メタロチオネイン遺伝子）プロモーターおよびヒトサイトメファロウイルス前初期遺伝子プロモーター（ＣＭＶ）を含む。
部位特異的突然変異誘発、合成、ＰＣＲ、または他の方法のいずれにせよ、ＦＳＨ変異体をエンコードする本発明のヌクレオチド配列は、シグナルペプチドをエンコードするヌクレオチド配列も選択的に含むことができる。発現する細胞中からポリペプチドが分泌されるときに、前記シグナルペプチドは存在する。存在しているならば、このようなシグナルペプチドは、ポリペプチドの発現のために選択された細胞によって認識される。シグナルペプチドは、ポリペプチドと相同的であることができ（たとえば、ｈＦＳＨサブユニットと正常に結合することができる）、もしくは非相同的であることができる（すなわち、ｈＦＳＨよりほかの他のソースから生じている）。あるいは宿主細胞と相同的または非相同的であることができ、すなわち、宿主細胞から通常発現されるシグナルペプチドであることができ、もしくは宿主細胞から通常発現されないシグナルペプチドであることができる。
遺伝子組換え動物もしくは植物と同様、バクテリア、真菌（酵母を含む）、植物、昆虫、哺乳動物もしくは他の適切な動物細胞または細胞系を含む、任意の適切な宿主が、本発明のポリペプチドサブユニットを産生するために使用されることができる。適切な哺乳動物の宿主細胞の例として、植物細胞と同様に、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞系（たとえば、ＣＨＯ−ＫＬ；ＡＴＣＣ  ＣＣＬ−６１）、ミドリザル細胞系（ＣＯＳ）（たとえば、ＣＯＳ  １（ＡＴＣＣ  ＣＲＬ−１６５０）、ＣＯＳ７（ＡＴＣＣ  ＣＲＬ−１６５１））；マウス細胞（たとえばＮＳＩＯ）、ベビーハムスター腎臓（ＢＩ―ＥＫ）細胞系（たとえば、ＡＴＣＣ  ＣＲＬ−１６３２またはＡＴＣＣ  ＣＣＬ−１０）、およびヒト細胞（たとえば、ＢＥＫ２９３（ＡＴＣＣ  ＣＲＬ−１５７３））を含む。さらなる好適な細胞系は従来技術に知られていて、米国菌培養収集所といった公的な保管所から利用できる。哺乳動物宿主細胞への外来性ＤＮＡの導入方法は、リン酸カルシウム介在トランスフェクション、エレクトロポレーション、ＤＥＡＥ−デキストラン介在トランスフェクション、リポソーム介在トランスフェクション、およびウイルスベクターを含む。
従来技術で知られている方法を使ったポリペプチドの産生に適した栄養培地中で、細胞は培養される。たとえば、適切な培地中、ポリペプチドが発現および／または単離されることのできる条件下でなされる、フラスコ振盪法、研究室もしくは工業的な発酵槽でなされる小規模または大規模発酵（連続的、バッチ、流加、もしくは固体発酵法）によって細胞を培養することができる。従来技術に知られている手順を用いて、炭素および窒素原料ならびに無機塩類を含む好適な栄養培地中において培養はなされる。好適な培地は、市販の供給品から入手可能か、あるいは公表された組成（たとえば米国菌培養収集所のカタログ）に従って調製することができる。栄養培地中にポリペプチドが分泌されると、これを培地から直接回収することができる。ポリペプチドが分泌されなかった場合は、細胞溶解物から回収することができる。
得られた生成変異ＦＳＨポリペプチドは、従来技術に知られている方法によって回収することができる。たとえば、遠心分離、濾過、抽出、スプレードライ、蒸発、または沈殿を含むが、それには限定されない通常の操作によって、これを栄養培地から回収することができる。
変異ＦＳＨポリペプチドは、クロマトグラフィー（たとえばイオン交換、アフィニティー、疎水性、等電点電気泳動、およびサイズ除外）、電気泳動操作（たとえば分離等電点電気泳動法）、示差溶解度（例えば硫酸アンモニウム沈殿法）、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、または抽出を含むがそれには限定されない従来技術で知られている様々な手順によって精製することができる。
【０００８】
ＦＳＨ変異体の使用
一つの面において、本発明に従うＦＳＨ変異体を含む製薬組成を本発明は提供する。このような製薬組成は、たとえば排卵誘発または補助生殖技術（ＡＲＴ）と組み合わせて、濾胞形成を刺激するのに使用することができる。本発明のＦＳＨ変異体は、複数の濾胞発生および成熟を誘発するのに特に適しているので、複数の卵母細胞を収集するのが望ましいＡＲＴにおいて使用するのに特に適している。
代わりになるべきものとして、投与量を慎重に仕立てることで、本発明のＦＳＨ変異体をＯＩのための単一濾胞形成、または生体内受精のための、ＩＵＩのための少濾胞形成（約３までの濾胞）を誘発させるために使用することができる。単一濾胞形成は、ＦＳＨ変異体の少ない投与量、あるいは通常のＦＳＨ調製に比して少ない頻度の投与量によっても達成することができる。たとえばＯＩにおいて、本発明のＦＳＨ調製は、患者の反応に基づき、３日ごとに２２５−４００ＩＵ、またはそれより少ない投与量で投与される。患者の反応は断層撮影によって追跡することができる。
本発明のＦＳＨ変異体は、管理下卵巣過刺激（ＣＯＨ）療法において使用することができる。ＣＯＨの標準療法は下方制御段階を含み、内因性黄体ホルモン（ＬＨ）はゴナドトロピン放出ホルモン（ＧｎＲＨ）作用薬を投与し、次に濾胞性発生（濾胞形成）がＦＳＨの１日投与量、通常は約１５０−２２５ＩＵ／日で誘発される刺激段階によって下方制御される。あるいは刺激は自発的または誘発された月経後にＦＳＨで、次いで（一般に約６日の刺激性段階をスタートする）ＧｎＲＨ−アンタゴニストの投与により始まる。少なくとも３個の濾胞＞１６ｍｍ（１８ｍｍのひとつ）であるとき、ｈＣＧの単一ボーラス（５−１０，０００ＩＵ）を与えて天然ＬＨサージを模倣し、排卵を誘発する。卵母細胞回復はｈＣＧ注入後３６−３８時間に合わされる。
本発明のＦＳＨ変異体はＯＩおよびＩＵＩにも用いることができる。たとえば、本発明の調製によるＦＳＨ刺激は、約７５−１５０ＩＵ／日の投与量で、自発的または誘発された月経後に開始される。１ないし３の濾胞が少なくとも直径１６ｍｍに達したとき、排卵を誘発するためにｈＣＧの単一ボーラスが投与される。定型的な性交またはＩＵＩによって、インヴィヴォにおいて媒精がなされる。
既知のＦＳＨ調製に比して本発明のＦＳＨ変異体は増加した半減期をもつので、上記のような療法は、濾胞の個数および生存度の観点で同一もしくはよりよい反応を達成する一方、少ないＦＳＨのＩＵ投与を採用し、および／またはＦＳＨ刺激期間を減じることによって修正することができる。たとえば、本発明のＦＳＨ調製を使用することで、一日量が約５０−１５０ＩＵのＦＳＨ、好ましくは約５０−１００、さらに好ましくは約５０−７５ＩＵのＦＳＨで、十分な濾胞形成を達成することができる。通常一日一回または二回を基準として、ＦＳＨの投与はなされる。投与期間は約１４日以内、好ましくは約１２日以内、さらに好ましくは１１もしくは１０日以内である。
ＯＩのためには、本発明のＦＳＨ変異体製剤は、２５−１５０ＩＵ／日、好ましくは５０−１２５ＩＵ／日の投与量によって投与することができる。
男性不妊を治療するために、通常の性交またはＡＲＴ技術を用いて、媒精のための十分な水準に精子形成が達するまで、本発明のＦＳＨ変異体製剤を３×１５０から３００ＩＵ／週で投与する。
本発明におけるＦＳＨ変異体のより長い半減期によって、長期間作用性の製剤として投与することができる。通常のＦＳＨは、第二日ごとに約３００ＩＵ投与することができ、一方で毎日約１５０ＩＵ投与することと同様の結果を達成することができる。「長期間作用性」という表現は、二日ごとよりも頻繁でなく投与されるＦＳＨ調製を包含するように意味づけされる。本発明の好ましいＦＳＨ変異体は、三日ごと、四日ごと、五日ごと、六日ごとまたは七日ごとに投与することができ、一方で通常のＦＳＨを毎日投与するのに比しても同様または良好な結果をもたらす。
【０００９】
本発明の製薬的組成
一面において、ＦＳＨの変異体またはそれに従う製薬的組成を、病気、障害または状態の治療のための薬物製造に使用することができる。
他面において、本発明に従うポリペプチドまたは製薬的組成は、哺乳動物、特にヒトを治療する方法で、そのようなポリペプチドまたは製薬的組成を必要とする哺乳動物への投与によって構成される方法に使用される。
当業者にとって明らかなことに、効果的な本発明の接合体、調製または組成は、とりわけ、病気、投与量、投与計画、ポリペプチドまたは接合体または組成が単独または他の治療薬との組み合わせで投与されるか否か、成分の血清中半減期、および患者の全般的な健康に依存する。一般的には、本発明の調製物または組成物の効果的投与は治療効果を確実にするために十分な量である。
本発明のＦＳＨ変異体は通常、一またはそれ以上の製薬的に許される担体または賦形剤を含む組成中で投与される。「製薬的に許される」とは、投与される患者にいかなる有害な効果も引き起こさない担体または賦形剤を意味する。このような製薬的に許される担体および賦形剤は従来技術に知られており、そして本発明のポリペプチドまたは接合体は、既知の方法によって製薬的な合成物に調剤できる（たとえば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、  第１８版、  Ａ．  Ｒ．  Ｇｅｎｎａｒｏ、編、Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏｍｐａｎｙ（１９９０））；  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ、  Ｓ．  ＦｒｏｋｊａｅｒおよびＬ．  Ｈｏｖｇａａｒｄ、編、Ｔａｙｌｏｒ  ＆  Ｆｒａｎｃｉｓ（２０００）；およびＨａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｅｘｃｉｐｉｅｎｔｓ、第３版、Ａ．  Ｋｉｂｂｅ、編、Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｐｒｅｓｓ（２０００）参照）。本発明のポリペプチドまたは接合体から構成される組成物に使用することができる製薬的に可能な賦形剤は、たとえば、緩衝剤、安定化剤、保存剤、等張化剤、非イオン性界面活性剤もしくは洗浄剤（「湿潤剤」）、酸化防止剤、かさ上げ剤もしくは賦形剤、キレート剤および共溶媒を含む。
本発明のＦＳＨ変異体の製薬的組成は、種々の形態で処方することができ、たとえばすぐに使える溶液もしくは懸濁液、ゲル、凍結乾燥した液体、または他の任意の適切な形態の液体を含み、たとえば溶液を調製するために適した粉末または結晶を含む。好ましい形態は個々の治療の適応症に依存し、これは当業者にとって明らかである。
本発明のＦＳＨ変異体を含む製薬的な組成物は、静脈内、筋肉内、腹腔内、皮内、皮下、舌下、頬側、鼻腔、経皮、吸入、または他の許容できる任意の方法、たとえばＰｏｗｄｅｒＪｅｃｔもしくはＰｒｏＬｅａｓｅ技術またはペンインジェクション装置を用いることで、投与することができる。投与の好適な方法は治療する個々の適応症に依存し、これは当業者にとって明らかである。特に、組成物が皮下に投与されるときが有利である。なぜなら患者自身での投与を可能にするからである。
本発明の製薬的な組成物は、他の治療薬との組み合わせで使用することができる。これらの薬剤は、同一の製薬的な組成物の一部として組み入れることができ、または本発明のポリペプチドまたは接合体とは別に投与することができ、いずれにしても同時的にまたは他の任意の許容できる治療計画に従うことができる。加えて、本発明のポリペプチド、接合体または製薬的な組成物は、他の治療の補助剤として使用することができる。
本発明は以下の、非制限的な実施例によって説明することができる。
【実施例１】
【００１０】
Ｎ−結合グリコシル化ＦＳＨ変異体の生成
ＦＳＨのアルファおよびベータサブユニットのｃＤＮＡｓは、ｐＤＯＮＲベクター（インヴィトロゲン）中へサブクローニングされた。Ｑｕｉｃｋ  Ｃｈａｎｇｅ（登録商標）部位特異的突然変異誘発キット（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）が、ＦＳＨのアルファおよびベータサブユニットへＮ−結合グリコシル化部位を導入するために使われた。Ｑｕｉｃｋ  Ｃｈａｎｇｅ（登録商標）システムは、所望の変異体を含む二つの合成オリゴヌクレオチドプライマーを使用する。下記のオリゴヌクレオチド対を、Ｎ−結合グリコシル化部位導入のために使用した。Ｖ７８ＮのためのＣＣ  ＴＴＧ  ＴＡＴ  ＡＣＡ  ＴＡＣ  ＣＣＡ  ＡＡＣ  ＧＣＣ  ＡＣＣ  ＣＡＧ  ＴＧＴ  ＣＡＣおよびＧＴＧ  ＡＣＡ  ＣＴＧ  ＧＧＴ  ＧＧＣ  ＧＴＴ  ＴＧＧ  ＧＴＡ  ＴＧＴ  ＡＴＡ  ＣＡＡ  ＧＧ、Ａ７０ＮのためのＧＣ  ＴＧＴ  ＧＣＴ  ＣＡＣ  ＣＡＴ  ＡＡＣ  ＧＡＴ  ＴＣＣ  ＴＴＧ  ＴＡＴ  ＡＣＡ  ＴＡＣ  ＣおよびＧＧＴ  ＡＴＧ  ＴＡＴ  ＡＣＡ  ＡＧＧ  ＡＡＴ  ＣＧＴ  ＴＡＴ  ＧＧＴ  ＧＡＧ  ＣＡＣ  ＡＧＣ、Ｄ４１Ｎ／Ａ４３ＴのためのＧＡＴ  ＣＴＧ  ＧＴＧ  ＴＡＴ  ＡＡＧ  ＡＡＣ  ＣＣＡ  ＡＣＴ  ＡＧＧ  ＣＣＣ  ＡＡＡ  ＡＴＣ  ＣＡおよびＴＧＧ  ＡＴＴ  ＴＴＧ  ＧＧＣ  ＣＴＡ  ＧＴＴ  ＧＧＧ  ＴＴＣ  ＴＴＡ  ＴＡＣ  ＡＣＣ  ＡＧＡ  ＴＣ、Ｇ１００ＮのためのＴＧＴ  ＡＣＴ  ＧＴＧ  ＣＧＡ  ＧＧＣ  ＣＴＧ  ＡＡＣ  ＣＣＣ  ＡＧＣ  ＴＡＣ  ＴＧＣ  ＴＣＣおよびＧＧＡ  ＧＣＡ  ＧＴＡ  ＧＣＴ  ＧＧＧ  ＧＴＴ  ＣＡＧ  ＧＣＣ  ＴＣＧ  ＣＡＣ  ＡＧＴ  ＡＣＡ、Ｅ５６ＮのためのＧ  ＡＡＣ  ＧＴＣ  ＡＣＣ  ＴＣＡ  ＡＡＣ  ＴＣＣ  ＡＣＴ  ＴＧＣ  ＴＧおよびＣＡ  ＧＣＡ  ＡＧＴ  ＧＧＡ  ＧＴＴ  ＴＧＡ  ＧＧＴ  ＧＡＣ  ＧＴＴ  Ｃ、ならびにＦ１７ＴのためのＣＡＧ  ＧＡＡ  ＡＡＣ  ＣＣＡ  ＡＣＣ  ＴＴＣ  ＴＣＣ  ＣＡＧ  ＣＣおよびＧＧ  ＣＴＧ  ＧＧＡ  ＧＡＡ  ＧＧＴ  ＴＧＧ  ＧＴＴ  ＴＴＣ  ＣＴＧ。変異体の配列は、ＡＢＩ  ＰＲＩＳＭ  ＢｉｇＤｙｅ（登録商標）  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  ｖ３．０  Ｒｅａｄｙ  Ｒｅａｃｔｉｏｎ  Ｃｙｃｌｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  Ｋｉｔに続いてＡＢＩ  ＰＲＩＳＭ  ３１０  Ｇｅｎｅｔｉｃ  Ａｎａｌｙｚｅｒを使用して確認した。
【実施例２】
【００１１】
Ｎ−結合グルコシル化変異体のインビトロ活性
ｐＣＩ哺乳動物発現ベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）をＧＡＴＥＷＡＹ  ベクター転換システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を使用してＧＡＴＥＷＡＹ指定ベクターに変換した。Ｇａｔｅｗａｙ（登録商標）クローニングテクノロジー（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を使用して、通常の組換えサブユニットを加えてアルファおよびベータ変異体をｐＣＩ発現ベクターにサブクローニングした。ｐＣＩ発現ベクターは、挿入した遺伝子の発現を調節するヒトサイトメガロウイルス最初期エンハンサー／プロモーター、発現を促進する遺伝子上流のイントロン、および転写を終結させる挿入した遺伝子から下流のサルウイルス４０遅発型ポリアデニル化シグナルを含む。ｐＣＩ中のＥ５６ＮおよびＦ１７Ｔアルファ変異体は、ｐＣＩ中従来の組換えＦＳＨベータとともに同時形質移入され、他方、ｐＣＩ中のＡ７０Ｎ、Ｇ１００Ｎ、Ｖ７８ＮおよびＤ４１Ｎ／Ａ４３Ｔベータ変異体は、ｐＣＩ中従来の組換えアルファサブユニットとともに同時形質移入された。対照として、ｐＣＩ中従来の組換えＦＳＨベータサブユニットおよびｐＣＩ中アルファサブユニットが同時形質移入された。リン酸カルシウム法（Ｗｕｒａｍ特許）を用いて、ＨＥＫ２９３細胞（ＡＴＴＣ、ＣＲＬ−１０８５２）中へプラスミドを過渡的に形質移入した。形質移入１日後、培地を、インシュリン１μｇ／ｍｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、１８１４０−０２０）、亜セレン酸ナトリウム６．８  ｎｇ／ｍｌ（Ｓｉｇｍａ、Ｓ５２６１）およびクエン酸第二鉄（Ｓｉｇｍａ、Ｆ３３８８）１２．２  ｎｇ／ｍｌを含むＤＭＥＭ／Ｆ１２（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、１１３２０−０３３）に取り換えた。培地交換後１日で、培養上清を収集し、すべての細胞細片を除去するために４℃、約８００×ｇで５分間遠心分離した。培養上清中のＦＳＨ濃度は、ＦＳＨ用ＥＬＩＳＡキット（Ａｌｐｈａ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ、０２００）を用いて決定した。
ＦＳＨ変異体および従来の組換えＦＳＨのアゴニスト活性を、ＣＨＯ／ＦＳＨＲ／Ｌｕｃ試験法によって検査した。この試験法中、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞系を、ｃＡＭＰ応答エレメント（ＣＲＥ）の制御下、ヒトＦＳＨ受容体およびルシフェラーゼレポーター遺伝子と安定に形質移入した。ＦＳＨ受容体の作用薬は、細胞中のｃＡＭＰ水準を増加させ、これはＣＲＥＢ（ｃＡＭＰ応答エレメント結合）タンパク質の活性を上げることになる。このタンパク質はＤＮＡ上のＣＲＥと相互作用し、このエレメントの下流にあるルシフェラーゼ遺伝子の転写を増加させることとなる。過渡的な形質移入からの培養上清の種々の量をＣＨＯ／ＦＳＨＲ／Ｌｕｃ細胞に加え、培養３．５時間後に処理細胞中のルシフェラーゼ量を、ＬｕｃＬｉｔｅルシフェラーゼレポータ遺伝子分析キット（Ｐａｃｋａｒｄ  ＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅ、６０１６９１１）およびＴｏｐＣｏｕｎｔ  ＮＸＴマイクロプレートシンチレーションおよびルミネッセンスカウンター（Ｐａｃｋａｒｄ）を用いて測定した。従来の組換えＦＳＨと比較して、Ｎ−結合グリコシル化変異体の全６個は、ＣＨＯ／ＦＳＨＲ／Ｌｕｃ試験法で活性を示した（図１、２、３および４参照）。
【実施例３】
【００１２】
Ｎ−結合グルコシル化変異体の分析
従来の組換えベータサブユニットまたはＶ７８Ｎベータ変異体のいずれかを含むｐＣＩプラスミドを、従来の組換えアルファサブユニットとともにｐＣＩ中に同時形質移入した。Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ  ２０００法（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて、プラスミドをＣＨＯ細胞へ過渡的に形質移入した。形質移入１日後、Ｌ−グルタミン４  ｍＭ、Ｌ−メチオニン１５μｇ／ｍｌ、１％ウシ胎児透析血清（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、２６４００−０４４）および［３５Ｓ］システイン１００  ｕＣｉ／ｍｌ（Ａｍｅｒｓｈａｍ−Ｐｈａｒｍａｃｉａ、ＳＪ１５２３２）を含む、ＤＭＥＭ−メチオニン、シスチンおよびＬ−グルタミン（Ｓｉｇｍａ、Ｄ０４２２）中で4時間細胞を培養して、細胞を［３５Ｓ］システインによって標識化した。培養上清を除去し、５分間Ｂｉｏｆｕｇｅフレスコ（Ｈｅｒａｅｕｓ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）中１６，０００×ｇで遠心分離し、次に０．４５  μｍ  Ａｃｒｏｄｉｓｃフィルター（Ｇｅｌｍａｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、４１８４）を通じて濾過することで、培地をさらに清浄化した。清浄化した培地に、最終濃度が５０ｍＭになるようｐＨ７．４の１Ｍトリスを加え、最終濃度が０．１％になるようにＴｗｅｅｎ２０を加えた。ＦＳＨのベータサブユニットに対するモノクローナル抗体へ結合するＳｅｐａｈｒｏｓｅ  Ｃｌ−４Ｂを、標識化したＦＳＨが免疫沈降するように加えた。免疫沈降を、ｐＨ７．４の５０ｍＭトリス、０．１％のＴｗｅｅｎ  ２０および１５０ｍＭ塩化ナトリウムを含む溶液で３回洗浄し、続いてｐＨ７．４の５０ｍＭトリスで一回洗浄した。ジチオスレイトールを含むトリス−グリシン標本抽出緩衝液（Ｊｕｌｅ、Ｉｎｃ．，ＴＧＳＢ２ＸＲ）を免疫沈降に加えて、約１００℃で３分間加熱し、Ｂｉｏｆｕｇｅフレスコ（Ｈｅｒａｅｕｓ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）中１６，０００×ｇで５分間遠心分離した。あらかじめ成形したポリアクリルアミド１２％のトリス−グリシンゲル（Ｊｕｌｅ  Ｉｎｃ．，  ＨＬＣ１５６）上に上清を載せ、Ｈｏｅｆｅｒ  ＳＥ４００電気泳動ユニットによって１２時間１２５Ｖにてゲルを電気泳動した。電気泳動後室温にて３０分間、４０％メタノールおよび１０％酢酸を含む固定液にゲルを配置し、次に３０分間、１０％酢酸および１％グリセロールを含むグリセロール溶液中に配置した。８０℃で１時間、Ｂｉｏ−Ｒａｄモデル５８３ゲルドライヤー上にてゲルを乾燥した。乾燥後２０分間、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｙｎａｍｉｃｓ  Ｐｈｏｓｐｈｏｒｉｍａｇｅｒ：４５５ＳＩ上にゲルを露出した。結果、Ｖ７８Ｎ変異体のベータサブユニットは、従来の組換えＦＳＨベータサブユニットに比べて大きな分子量をもつことを示し、これはＶ７８Ｎ変異体が導入した部位でグリコシル化していることを表す。
【実施例４】
【００１３】
変異ＦＳＨの調製スケール
ヒトＦＳＨのアルファおよびベータサブユニットのｃＤＮＡｓを、ｐＤＯＮＲベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中へサブクローニングした。Ｑｕｉｃｋ  Ｃｈａｎｇｅ（登録商標）部位特異的突然変異誘発キット（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）を使用して、ＦＳＨのアルファおよびベータサブユニット中へＮ−結合グリコシル化部位を導入した。Ｑｕｉｃｋ  Ｃｈａｎｇｅ（登録商標）システムは、所望の変異体を含む二つの合成オリゴヌクレオチドプライマーを利用する。Ｎ−結合グリコシル化部位を導入するために以下のオリゴヌクレオチド対を使用した。Ｖ７８ＮのためのＣＣ  ＴＴＧ  ＴＡＴ  ＡＣＡ  ＴＡＣ  ＣＣＡ  ＡＡＣ  ＧＣＣ  ＡＣＣ  ＣＡＧ  ＴＧＴ  ＣＡＣおよびＧＴＧ  ＡＣＡ  ＣＴＧ  ＧＧＴ  ＧＧＣ  ＧＴＴ  ＴＧＧ  ＧＴＡ  ＴＧＴ  ＡＴＡ  ＣＡＡ  ＧＧ、Ａ７０ＮのためのＧＣ  ＴＧＴ  ＧＣＴ  ＣＡＣ  ＣＡＴ  ＡＡＣ  ＧＡＴ  ＴＣＣ  ＴＴＧ  ＴＡＴ  ＡＣＡ  ＴＡＣ  ＣおよびＧＧＴ  ＡＴＧ  ＴＡＴ  ＡＣＡ  ＡＧＧ  ＡＡＴ  ＣＧＴ  ＴＡＴ  ＧＧＴ  ＧＡＧ  ＣＡＣ  ＡＧＣ、Ｄ４１Ｎ／Ａ４３ＴのためのＧＡＴ  ＣＴＧ  ＧＴＧ  ＴＡＴ  ＡＡＧ  ＡＡＣ  ＣＣＡ  ＡＣＴ  ＡＧＧ  ＣＣＣ  ＡＡＡ  ＡＴＣ  ＣＡおよびＴＧＧ  ＡＴＴ  ＴＴＧ  ＧＧＣ  ＣＴＡ  ＧＴＴ  ＧＧＧ  ＴＴＣ  ＴＴＡ  ＴＡＣ  ＡＣＣ  ＡＧＡ  ＴＣ、Ｇ１００ＮのためのＴＧＴ  ＡＣＴ  ＧＴＧ  ＣＧＡ  ＧＧＣ  ＣＴＧ  ＡＡＣ  ＣＣＣ  ＡＧＣ  ＴＡＣ  ＴＧＣ  ＴＣＣおよびＧＧＡ  ＧＣＡ  ＧＴＡ  ＧＣＴ  ＧＧＧ  ＧＴＴ  ＣＡＧ  ＧＣＣ  ＴＣＧ  ＣＡＣ  ＡＧＴ  ＡＣＡ、Ｅ５６ＮのためのＧ  ＡＡＣ  ＧＴＣ  ＡＣＣ  ＴＣＡ  ＡＡＣ  ＴＣＣ  ＡＣＴ  ＴＧＣ  ＴＧおよびＣＡ  ＧＣＡ  ＡＧＴ  ＧＧＡ  ＧＴＴ  ＴＧＡ  ＧＧＴ  ＧＡＣ  ＧＴＴ  Ｃ、ならびにＦ１７ＴのためのＣＡＧ  ＧＡＡ  ＡＡＣ  ＣＣＡ  ＡＣＣ  ＴＴＣ  ＴＣＣ  ＣＡＧ  ＣＣおよびＧＧ  ＣＴＧ  ＧＧＡ  ＧＡＡ  ＧＧＴ  ＴＧＧ  ＧＴＴ  ＴＴＣ  ＣＴＧ。変異体ｃＤＮＡのＤＮＡ配列は、ＡＢＩ  ＰＲＩＳＭ  ＢｉｇＤｙｅ（登録商標）  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  ｖ３．０  Ｒｅａｄｙ  Ｒｅａｃｔｉｏｎ  Ｃｙｃｌｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  Ｋｉｔに続いてＡＢＩ  ＰＲＩＳＭ  ３１０  Ｇｅｎｅｔｉｃ  Ａｎａｌｙｚｅｒを使用して確認した。
ｐＣＩ哺乳動物発現ベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）をＧＡＴＥＷＡＹ  ベクター転換システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を使用してＧＡＴＥＷＡＹ指定ベクターに変換した。Ｇａｔｅｗａｙ（登録商標）クローニングテクノロジー（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を使用して、野生型サブユニットに加えてアルファおよびベータ変異体をｐＣＩ発現ベクターにサブクローニングした。ｐＣＩ発現ベクターは、挿入した遺伝子の発現を調節するヒトサイトメガロウイルス最初期エンハンサー／プロモーター、発現を促進する遺伝子上流のイントロン、および転写を終結させる挿入した遺伝子から下流のサルウイルス４０遅発型ポリアデニル化シグナルを含む。ｐＣＩ中のＥ５６ＮおよびＦ１７Ｔアルファ変異体は、ｐＣＩ中の野生型のＦＳＨベータとともに同時形質移入され、他方、ｐＣＩ中のＡ７０Ｎ、Ｇ１００Ｎ、Ｖ７８ＮおよびＤ４１Ｎ／Ａ４３Ｔベータ変異体は、ｐＣＩ中の野生型のアルファサブユニットとともに同時形質移入された。対照として、ｐＣＩ中の野生型のＦＳＨベータサブユニットおよびｐＣＩ中アルファサブユニットが同時形質移入された。リン酸カルシウム法（たとえば、ＷＯ９６／０７７５０に記述）を用いて、ＨＥＫ２９３細胞（ＡＴＴＣ、ＣＲＬ−１０８５２）中へプラスミドを過渡的に形質移入した。択一的なものとして、野生型のベータサブユニットまたはＶ７８Ｎベータサブユニットのいずれかを含むｐＣＩプラスミドを、野生型アルファサブユニットとともにｐＣＩ中へ同時形質移入した。プラスミドは、ＣＨＯ細胞中へ過渡的または安定に形質移入することもできる。形質移入１日後、培地を、インシュリン１μｇ／ｍｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、１８１４０−０２０）、亜セレン酸ナトリウム６．８  ｎｇ／ｍｌ（Ｓｉｇｍａ、Ｓ５２６１）およびクエン酸第二鉄（Ｓｉｇｍａ、Ｆ３３８８）１２．２  ｎｇ／ｍｌを含むＤＭＥＭ／Ｆ１２（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、１１３２０−０３３）に取り換えた。培地交換後１日で、培養上清を収集し、すべての細胞細片を除去するために約４℃、８００×ｇで５分間遠心分離した。上清を除去し、５分間Ｂｉｏｆｕｇｅフレスコ（Ｈｅｒａｅｕｓ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）中１６，０００×ｇで遠心分離し、次に０．４５  μｍ  Ａｃｒｏｄｉｓｃフィルター（Ｇｅｌｍａｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、４１８４）を通じて濾過することで、培地をさらに清浄化した。清浄化した細胞抽出物に、最終濃度が５０ｍＭになるようｐＨ７．４の１Ｍトリスを加え、最終濃度が０．１％になるようにＴｗｅｅｎ２０を加えた。
ジビニルスルホンを用いて固定化した抗ＦＳＨモノクローナル抗体で誘導化したＳｅｐｈａｒｏｓｅ上で、免疫親和性クロマトグラフィを用いて、ＦＳＨ変異体を細胞抽出物から精製した（免疫親和性樹脂−抗−ＦＳＨ―ＭｃＡｂ−ＤＶＳ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ）。このような樹脂は、当業者に知られた方法により生成することができる。たとえば、ＷＯ８８／１０２７０に開示されている。
前記樹脂を４℃、ｐＨ＝７．５の０．１Ｍのトリス−ＨＣｌ、０．３Ｍ塩化ナトリウムを含む平衡緩衝液中で平衡化した。カラムの全ＦＳＨ結合能力の８０−９０％に対応するＩＵ  ＦＳＨ量（ラジオイムノアッセイ、ＲＩＡによる）とともにカラムを配置した。
溶出のＯＤ２８０が０．０２より低くなるまで、非保持タンパク質を平衡化緩衝液（上記）で抽出した。
吸収した変位ＦＳＨを、４℃で１Ｍアンモニア溶液を用いて免疫樹脂から抽出した。免疫樹脂体積の約４倍に相当する溶出物が得られ、４℃で氷酢酸を加えてｐＨを９．０に調整し、そして溶液をＡｍｉｃｏｎ装置（膜カットオフは１０，０００Ｄａ）で限外濾過し、少体積に濃縮した。
濃縮した変位ＦＳＨ溶液を、次に、ＵＶ検出器および分離用グラジエント発生器を備えたＷａｔｅｒｓ  Ｐｒｅｐ  ＬＣ  ５００Ａ液体クロマトグラフィーを用いて、逆相ＨＰＬＣの段階にかける。カラム処理に先立ち、溶液のｐＨを約５．６に調節する。室温にてあらかじめ０．０５Ｍ酢酸アンモニウム緩衝液でｐＨ＝５．６に平衡化した、Ｃ１８逆相カラム（プレパック５００Ｃ１８カートリッジ  ウォーターズ）溶液を配置した。流速は１００ｍｌ／分で、溶出物は２８０ｎｍでモニターした。
変異体ＦＳＨは、移動相の５０％以下のイソプロパノールグラジエントによって溶出した。分析用ガスクロマトグラフィ（ＧＰＣ）およびラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）によって、フラクションをチェックした。４０℃以下で減圧蒸留し有機溶媒を除去した。そして溶液を冷凍および凍結乾燥した。
【００１４】
この明細書で引用された刊行物および特許出願は、これら参考文献によって特にあるいは個々に引用された参考文献も同様に、ここに参考文献として組み込まれるものとして意図している。前記発明中で理解の明確化を目的として説明および例示がある程度詳細に記述されているが、本発明に照らして当業者にとって明らかなことには、添付した請求項の精神および視野から離れることなく一定の変更および修正を作ることは容易である。
【００１５】
参考文献：
１）Ｆｏｘ  ＫＭ、Ｄｉａｓ  ＪＡ、Ｖａｎ  Ｒｏｅｙ  Ｐ、２００１。Ｔｈｒｅｅ−ｄｉｍｅｎｓｉｏｎａｌ  ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｆｏｌｌｉｃｌｅ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ  ｈｏｒｍｏｎｅ．Ｍｏｌ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．，１５：３７８。
２）Ｗｕ  Ｈら、１９９４。Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｃｈｏｒｉｏｎｉｃ  ｇｏｎａｄｏｔｒｏｐｉｎ  ａｔ  ２．６Ａ  ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎ  ｆｒｏｍ  ＭＡＤ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｓｅｌｅｎｏｍｅｔｈｉｏｎｙｌ  ｐｒｏｔｅｉｎ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ．２：５４５。
３）Ｔｅｇｏｎｉ  Ｍら、１９９９。Ｃｒｙｓｔａｌ  ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ  ｏｆ  ａ  ｔｅｒｎａｒｙ  ｃｏｍｐｌｅｘ  ｂｅｔｗｅｅｎ  ｈｕｍａｎ  ｃｈｏｒｉｏｎｉｃ  ｇｏｎａｄｏｔｒｏｐｉｎ（ｈＣＧ）  ａｎｄ  ｔｗｏ  Ｆｖ  ｆｒａｇｍｅｎｔｓ  ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ａｌｐｈａ  ａｎｄ  ｂｅｔａ−ｓｕｂｕｎｉｔｓ．
４）Ｊｉａｎｇ  Ｘ．ら、１９９５。Ｓｒｕｃｔｕｒｅ  ｐｒｅｄｉｃｔｉｏｎｓ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ｌｉｇａｎｄ−ｂｉｎｄｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎ  ｏｆ  ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ  ｈｏｒｍｏｎｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ  ａｎｄ  ｔｈｅ  ｎａｔｕｒｅ  ｏｆ  ｈｏｒｍｏｎｅ−ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ．  ３：１３４１。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】従来の組換え型ＦＳＨおよび野生型ＦＳＨと比較しての、Ｆ１７Ｔ変異体およびＥ５６Ｎ変異体に対するＦＳＨ活性の用量反応を図示する。
【図２】従来の組換え型ＦＳＨおよび野生型ＦＳＨと比較しての、Ｄ４１Ｎ／Ａ４３Ｔ変異体およびＧ１００Ｎ変異体に対するＦＳＨ活性の用量反応を図示する。
【図３】従来の組換え型ＦＳＨと比較しての、Ａ７０Ｎ変異体に対するＦＳＨ活性の用量反応を図示する。
【図４】従来の組換え型ＦＳＨおよび野生型ＦＳＨと比較しての、Ｆ１７ＴおよびＥ５６変異体に対するＦＳＨ活性の用量反応を図示する。
【図５】野生型ＦＳＨと比較しての、Ｖ７８Ｎ変異体のより高分子量を示している電気泳動ゲルの提示である。
【図６】成熟したヒトＦＳＨアルファサブユニットのアミノ酸配列である（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１）。
【図７】成熟したヒトＦＳＨベータサブユニットのアミノ酸配列である（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２）。
【図８】ＦＳＨ変異体Ｆ１７Ｔのアミノ酸配列である（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３）。
【図９】ＦＳＨ変異体Ｅ５６Ｎのアミノ酸配列である（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４）。
【図１０】ＦＳＨ変異体Ａ７０Ｎのアミノ酸配列である（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：５）。
【図１１】ＦＳＨ変異体Ｖ７８Ｎのアミノ酸配列である（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：６）。
【図１２】ＦＳＨ変異体Ｇ１００Ｎのアミノ酸配列である（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：７）。
【図１３】ＦＳＨ変異体Ｄ４１Ｎ／Ａ４３Ｔのアミノ酸配列である（ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：８）。
【図１】
2005520573.tif 000002
【図２】
2005520573.tif 000003
【図３】
2005520573.tif 000004
【図４】
2005520573.tif 000005
【図５】
2005520573.tif 000006
【図６】
2005520573.tif 000007
【図７】
2005520573.tif 000008
【図８】
2005520573.tif 000009
【図９】
2005520573.tif 000010
【図１０】
2005520573.tif 000011
【図１１】
2005520573.tif 000012
【図１２】
2005520573.tif 000013
【図１３】
2005520573.tif 000014
【配列表】
2005520573000001.app
【国際調査報告】
2005520573.tif 000015
2005520573.tif 000016
2005520573.tif 000017