(57)【要約】【課題】核酸関連タンパク質である精製されたポリペプチドを提供する。【解決手段】以下の（ａ）乃至（ｆ）からなる群から選択した単離されたポリペプチドである。（ａ）SEQ ID NO:1-20からなる群から選択したアミノ酸配列からなるポリペプチド。（ｂ）SEQ ID NO:1-20からなる群から選択したアミノ酸配列と少なくとも９０％が同一である天然のアミノ酸配列を含むポリペプチド。（ｃ）SEQ ID NO:1-20からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的活性断片。（ｄ）SEQ ID NO:1-20からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片。【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の（ａ）乃至（ｆ）からなる群から選択した単離されたポリペプチド。
（ａ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０（配列番号１乃至１０）からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｂ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−６及びＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：９−１０からなる群から選択した或るアミノ酸配列と少なくとも９０％が同一であるような天然アミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｃ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：７のアミノ酸配列に対して少なくとも９９％が同一であるような天然アミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｄ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：８のアミノ酸配列に対して少なくとも９８％が同一であるような天然アミノ酸配列を含むポリペプチド
（ｅ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的活性断片
（ｆ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片
【請求項２】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を含む、請求項１に記載の単離されたポリペプチド。
【請求項３】
請求項１のポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチド。
【請求項４】
請求項２のポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチド。
【請求項５】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１１−２０からなる群から選択したポリヌクレオチド配列を含む、請求項４に記載の単離されたポリヌクレオチド。
【請求項６】
請求項３に記載のポリヌクレオチドに機能的に連結したプロモーター配列を含む組換えポリヌクレオチド。
【請求項７】
請求項６に記載の組換えポリヌクレオチドを用いて形質転換した細胞。
【請求項８】
請求項６に記載の組換えポリヌクレオチドを含む遺伝形質転換体。
【請求項９】
請求項１のポリペプチドを生産する方法であって、
（ａ）  前記ポリペプチドの発現に好適な条件下で、請求項１のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドに機能的に連結したプロモーター配列を含む組換えポリヌクレオチドで形質転換される細胞を培養する過程と、
（ｂ）  そのように発現した前記ポリペプチドを回収する過程と
を含み、
前記組換えポリヌクレオチドが、請求項１に記載の前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドに機能的に連結したプロモーター配列を含むことを特徴とする方法。
【請求項１０】
前記ポリペプチドが、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を含むことを特徴とする請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
請求項１に記載のポリペプチドと特異結合するような単離された抗体。
【請求項１２】
以下の（ａ）乃至（ｉ）からなる群から選択した単離されたポリヌクレオチド。
（ａ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１１−２０からなる群から選択したポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド
（ｂ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１１−１６及びＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１９−２０からなる群から選択した或るポリヌクレオチド配列に対して少なくとも９０％が同一であるような天然ポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド
（ｃ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１７のポリヌクレオチド配列に対して少なくとも９９％が同一であるような天然ポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド
（ｄ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１８のポリヌクレオチド配列に対して少なくとも９８％が同一であるような天然ポリヌクレオチド配列を持つポリヌクレオチド
（ｅ）  （ａ）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド
（ｆ）  （ｂ）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド
（ｇ）  （ｃ）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド
（ｈ）  （ｄ）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド
（ｉ）  （ａ）〜（ｈ）のＲＮＡ等価物
【請求項１３】
請求項１２に記載のポリヌクレオチドの少なくとも６０の連続したヌクレオチドを含む単離されたポリヌクレオチド。
【請求項１４】
請求項１２に記載のポリヌクレオチドの配列を有する標的ポリヌクレオチドをサンプル中から検出する方法であって、
（ａ）  前記サンプル中の前記標的ポリヌクレオチドに相補的な配列を持つ少なくとも２０の連続したヌクレオチドを持つプローブを用いて前記サンプルをハイブリダイズする過程と、
（ｂ）  前記ハイブリダイゼーション複合体の存在・不存在を検出し、該複合体が存在する場合にはオプションでその量を検出する過程と
を含み、
前記プローブと前記標的ポリヌクレオチドあるいはその断片との間でハイブリダイゼーション複合体が形成される条件下で、プローブが前記標的ポリヌクレオチドに特異的にハイブリダイズすることを特徴とする方法。
【請求項１５】
前記プローブが少なくとも６０の連続したヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
請求項１２に記載のポリヌクレオチドの配列を有する標的ポリヌクレオチドをサンプル中から検出する方法であって、
（ａ）  ポリメラーゼ連鎖反応増幅を用いて前記標的ポリヌクレオチドまたはその断片を増幅する過程と、
（ｂ）  前記の増幅した標的ポリヌクレオチドまたはその断片の存在・不存在を検出し、該標的ポリヌクレオチドまたはその断片が存在する場合にはオプションでその量を検出する過程と
を含むことを特徴とする方法。
【請求項１７】
請求項１のポリペプチドと、薬剤として許容できる賦形剤とを含むことを特徴とする組成物。
【請求項１８】
前記ポリペプチドが、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を含むことを特徴とする請求項１７に記載の組成物。
【請求項１９】
機能的ＮＡＡＰの発現の低下に関連する疾患や病態の治療方法であって、そのような治療を要する患者への請求項１７の組成物の投与を含む治療方法。
【請求項２０】
請求項１に記載のポリペプチドのアゴニストとしての有効性を確認するために化合物をスクリーニングする方法であって、
（ａ）  請求項１のポリペプチドを含むサンプルを化合物に曝すステップと、
（ｂ）  前記サンプルにおいてアゴニスト活性を検出するステップと
を含むことを特徴とするスクリーニング方法。
【請求項２１】
請求項２０に記載の方法によって同定したアゴニスト化合物と、薬剤として許容できる賦形剤とを含むことを特徴とする組成物。
【請求項２２】
機能的ＮＡＡＰの発現の低下に関連する疾患や病態の治療方法であって、
そのような治療を要する患者への請求項２１の組成物の投与を含む治療方法。
【請求項２３】
請求項１に記載のポリペプチドのアンタゴニストとしての有効性を確認するために化合物をスクリーニングする方法であって、
（ａ）  請求項１のポリペプチドを含むサンプルを化合物に曝すステップと、
（ｂ）  前記サンプルにおいてアンタゴニスト活性を検出するステップとを含むことを特徴とするスクリーニング方法。
【請求項２４】
請求項２３に記載の方法によって同定したアンタゴニスト化合物と、薬剤として許容できる賦形剤とを含むことを特徴とする組成物。
【請求項２５】
機能的ＮＡＡＰの過剰発現に関連する疾患や病態の治療方法であって、そのような治療を要する患者への請求項２４の組成物の投与を含む治療方法。
【請求項２６】
請求項１に記載のポリペプチドに特異結合する化合物をスクリーニングする方法であって、
（ａ）  請求項１のポリペプチドを適切な条件下で少なくとも１つの試験化合物に混合させる過程と、
（ｂ）  請求項１のポリペプチドの試験化合物との結合を検出し、それによって請求項１のポリペプチドに特異結合する化合物を同定する過程と
を含むことを特徴とする方法。
【請求項２７】
請求項１に記載のポリペプチドの活性を調節する化合物をスクリーニングする方法であって、
（ａ）  請求項１のポリペプチドの活性が許容される条件下で、請求項１のポリペプチドを少なくとも１つの試験化合物と混合する過程と、
（ｂ）  請求項１に記載のポリペプチドの活性を試験化合物の存在下で算定する過程と、
（ｃ）  試験化合物の存在下での請求項１のポリペプチドの活性を、試験化合物の不存在下での請求項１のポリペプチドの活性と比較する過程と
を含み、
試験化合物の存在下での請求項１のポリペプチドの活性の変化が、請求項１のポリペプチドの活性を調節する化合物を標示するような方法。
【請求項２８】
請求項５の配列を含む標的ポリヌクレオチドの発現を変容させるのに効果的な化合物をスクリーニングする方法であって、
（ａ）  前記標的ポリヌクレオチドの発現に好適な条件下で、該標的ポリヌクレオチドを含むサンプルを化合物に曝露する過程と、
（ｂ）  前記標的ポリヌクレオチドの発現改変を検出する過程と、
（ｃ）  可変量の前記化合物の存在下と前記化合物の不存在下で、前記標的ポリヌクレオチドの発現を比較する過程と
を含むことを特徴とする方法。
【請求項２９】
試験化合物の毒性を算定する方法であって、
（ａ）  核酸を含む生物学的サンプルを前記試験化合物で処理する過程と、
（ｂ）  処理した前記生物学的サンプルの核酸と、請求項１２のポリヌクレオチドの少なくとも２０の連続するヌクレオチドを持つプローブをハイブリダイズさせる過程であって、このハイブリダイゼーションゼーションが、前記プローブと前記生物学的サンプル中の標的ポリヌクレオチドとの間で特異的なハイブリダイゼーション複合体が形成される条件下で行われ、前記標的ポリヌクレオチドが、請求項１２のポリヌクレオチドまたはその断片のポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドである過程と、
（ｃ）  ハイブリダイゼーション複合体の収量を定量する過程と、
（ｄ）  前記処理された生物学的サンプル中のハイブリタイゼーション複合体の量を、処理されていない生物学的サンプル中のハイブリタイゼーション複合体の量と比較する過程と
を含み、
前記処理された生物学的サンプル中のハイブリタイゼーション複合体の量の差が、前記試験化合物の毒性を標示するような方法。
【請求項３０】
生物学的サンプル中のＮＡＡＰの発現に関連する症状または疾患に対する診断試験法であって、
（ａ）  前記生物学的サンプルと請求項１１の抗体との混合を、前記抗体が前記ポリペプチドに結合し、抗体とポリペプチドとの複合体を形成するのに適した条件下で行う過程と、
（ｂ）  前記複合体を検出する過程と
を含み、
前記複合体の存在が、前記生物学的サンプル中の前記ポリペプチドの存在と相関することを特徴とする方法。
【請求項３１】
請求項１１の抗体であって、
（ａ）  キメラ抗体
（ｂ）  単鎖抗体
（ｃ）  Ｆａｂ断片
（ｄ）  Ｆ（ａｂ′）２  断片
（ｅ）  またはヒト化抗体である抗体。
【請求項３２】
請求項１１に記載の抗体と、許容できる賦形剤とを含む組成物。
【請求項３３】
被検者におけるＮＡＡＰの発現に関連する症状又は疾患の診断方法であって、
請求項３２に記載の組成物の有効量を前記被検者に投与する過程を含むことを特徴とする方法。
【請求項３４】
前記抗体が標識されることを特徴とする請求項３２に記載の組成物。
【請求項３５】
被検者におけるＮＡＡＰの発現に関連する症状又は疾患の診断方法であって、
請求項３４に記載の組成物の有効量を前記被検者に投与する過程を含むことを特徴とする方法。
【請求項３６】
請求項１１に記載の抗体の特異性を有するポリクローナル抗体を調製する方法であって、
（ａ）  抗体反応を誘発する条件下で、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列またはその免疫原性断片を含むポリペプチドを用いて動物を免疫化する過程と、
（ｂ）  前記動物から抗体を単離する過程と、
（ｃ）  前記単離された抗体を前記ポリペプチドでスクリーニングし、それによって、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチドに特異結合するポリクローナル抗体を同定する過程と
を含むことを特徴とする方法。
【請求項３７】
請求項３６に記載の方法で産出したポリクローナル抗体。
【請求項３８】
請求項３７に記載のポリクローナル抗体及び適切なキャリアーを含む組成物。
【請求項３９】
請求項１１に記載の抗体の特異性を有するモノクローナル抗体を作製する方法であって、
（ａ）  抗体反応を誘発する条件下で、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列またはその免疫原性断片を含むポリペプチドを用いて動物を免疫化する過程と、
（ｂ）  前記動物から抗体産出細胞を単離する過程と、
（ｃ）  前記抗体産出細胞と不死化した細胞とを融合して、モノクローナル抗体を産出するハイブリドーマ細胞を形成する過程と、
（ｄ）  前記ハイブリドーマ細胞を培養する過程と、
（ｅ）  ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチドに特異結合するようなモノクローナル抗体を前記培養物から単離する過程とを含むことを特徴とする方法。
【請求項４０】
請求項３９に記載の方法で産出したモノクローナル抗体。
【請求項４１】
請求項４０に記載のモノクローナル抗体及び適切なキャリアーを含む組成物。
【請求項４２】
Ｆａｂ発現ライブラリをスクリーニングすることにより産出されることを特徴とする請求項１１に記載の抗体。
【請求項４３】
組換え免疫グロブリンライブラリのスクリーニングにより前記抗体を産出することを特徴とする請求項１１に記載の抗体。
【請求項４４】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドをサンプル中で検出する方法であって、
（ａ）  請求項１１に記載の抗体と前記ポリペプチドとの特異結合を許容する条件下で、前記抗体と１サンプルとをインキュベートする過程と、
（ｂ）  特異結合を検出する過程とを含み、該特異結合が、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドがサンプル中に存在することを標示することを特徴とする方法。
【請求項４５】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０  からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドを精製する方法であって、
（ａ）  請求項１１に記載の抗体と前記ポリペプチドとの特異結合を許容する条件下で、前記抗体と１サンプルとをインキュベートする過程と、
（ｂ）  前記サンプルから前記抗体を分離し、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１−１０からなる群から選択したアミノ酸配列を含む精製ポリペプチドを得る過程と
を含むことを特徴とする方法。
【請求項４６】
マイクロアレイの少なくとも１つが請求項１３に記載のポリヌクレオチドであることを特徴とするマクロアレイ。
【請求項４７】
ポリヌクレオチドを含むサンプルの発現プロファイルを作製する方法であって、
（ａ）  サンプル中のポリヌクレオチドを標識化する過程と、
（ｂ）  ハイブリダイゼーション複合体が形成されるのに適した条件下で請求項４６のマイクロアレイのエレメントとサンプル中の標識化ポリヌクレオチドとを接触させる過程と、
（ｃ）  サンプル中のポリヌクレオチドの発現を定量する過程と
を含むことを特徴とする方法。
【請求項４８】
或る固体基板上の固有の物理的位置に付着された種々のヌクレオチド分子を有するアレイであって、
少なくとも１つの前記ヌクレオチド分子が、或る標的ポリヌクレオチドの少なくとも３０の連続したヌクレオチド群と特異的にハイブリダイズ可能な最初のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチド配列を含み、前記の標的ポリヌクレオチドが請求項１２に記載のポリヌクレオチドであることを特徴とするアレイ。
【請求項４９】
請求項４８に記載のアレイで、前記の最初のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドの配列が前記の標的ポリヌクレオチドの少なくとも３０の連続したヌクレオチドに完全に相補的であることを特徴とするアレイ。
【請求項５０】
請求項４８に記載のアレイで、前記の最初のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドの配列が前記の標的ポリヌクレオチドの少なくとも６０の連続したヌクレオチドに完全に相補的であることを特徴とするアレイ。
【請求項５１】
請求項４８に記載のアレイで、前記の最初のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドの配列が前記の標的ポリヌクレオチドに完全に相補的であることを特徴とするアレイ。
【請求項５２】
請求項４８に記載のアレイで、マイクロアレイであることを特徴とするアレイ。
【請求項５３】
請求項４８に記載のアレイで、前記のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドの最初の配列を含むヌクレオチド分子にハイブリダイズした前記の標的ポリヌクレオチドを有することを特徴とするアレイ。
【請求項５４】
請求項４８に記載のアレイで、リンカーが少なくとも１つの前記のヌクレオチド分子と前記の固体基板を連結していることを特徴とするアレイ。
【請求項５５】
請求項４８に記載のアレイで、基板上の固有の物理的位置の各々が複数のヌクレオチド分子を含み、任意の単一の固有の物理的位置でのその複数のヌクレオチド分子は同一の配列を有し、基板上の固有の物理的位置の各々は、基板上の別の固有の物理的位置でのヌクレオチド分子の配列とは異なる配列を有するヌクレオチド分子を含むことを特徴とするアレイ。
【請求項５６】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項５７】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項５８】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項５９】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項６０】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：５のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項６１】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：６のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項６２】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：７のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項６３】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：８のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項６４】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：９のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項６５】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１０のアミノ酸配列を含む請求項１に記載のポリペプチド。
【請求項６６】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１１のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項６７】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１２のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項６８】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１３のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項６９】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１４のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項７０】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１５のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項７１】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１６のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項７２】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１７のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項７３】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１８のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項７４】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１９のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【請求項７５】
ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２０のポリヌクレオチド配列を含む請求項１２に記載のポリヌクレオチド。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、核酸関連タンパク質の核酸配列及びアミノ酸配列に関する。本発明はまた、これらの配列を利用した、細胞増殖異常、神経疾患神経疾患、発達障害、自己免疫／炎症性疾患、及び感染症の、診断・治療・予防に関する。本発明は更に、核酸関連タンパク質の核酸配列及びアミノ酸配列の発現における、外来化合物の効果についての算定に関する。
【背景技術】
【０００２】
多細胞生物は、構造及び機能が著しく異なる多様な細胞型から構成されている。細胞型は遺伝子発現パターンの特徴によって決定され、また、異なった細胞型は発生中に、オーバーラップするが弁別的な一組の遺伝子群を発現する。遺伝子発現の空間的及び時間的な調節は、細胞増殖、細胞分化、アポトーシス、及び生物の発達に必要なその他のプロセスにとって極めて重要である。更に、遺伝子発現は、細胞外シグナルに応答して調節される。細胞外シグナルは、細胞間伝達を仲介し、様々な細胞型の作用を協調させる。適切な遺伝子調節はまた、細胞を効率よく機能させる。これを確実にするため、その機能が要求される遺伝子群のみが所定の時期に発現される。
【０００３】
転写因子
転写調節タンパク質は、遺伝子発現の制御に必須である。これらのタンパク質の一部は転写因子として機能し、遺伝子の転写を開始、活性化、抑制し、又は終了させる。転写因子は一般に遺伝子のプロモーター、エンハンサー、又は上流調節領域に、配列特異的に結合する（ただし、一部の因子は遺伝子コード領域内又はその下流の調節エレメントに結合する）。転写因子はDNAの特定の領域に単独で結合するか、又は他のアクセサリー因子との複合体として結合する(概説は Lewin, B. (1990) Genes IV, Oxford University Press, New York, NY, 及びCell Press, Cambridge, MA, 554-570ページを参照)。
【０００４】
DNAの二重らせん構造とリピート配列群とがトポロジー的及び化学的な特徴を生み出し、これらの特徴は転写因子によって認識され得る。これらの特徴とは、水素結合の供与基と受容基、疎水性パッチ、主溝と副溝、及び、配列の規則的な繰り返しストレッチ群（repeated stretches：ヘリックス内に特有な折れ曲がり群を誘導）である。通常、転写因子が特異的に認識するDNA配列モチーフ群は、約20ヌクレオチドの長さである。複数の、隣接した転写因子結合モチーフ群が遺伝子調節に必要な場合もある。
【０００５】
多くの転写因子は、DNA結合の構造的モチーフ群を組み込む。これらのモチーフはαヘリックス又はβシートからなり、DNAの主溝に結合する。４種の良く特徴付けられたモチーフが、ヘリックス・ターン・ヘリックス、Znフィンガー、ロイシン・ジッパー、及びヘリックス・ループ・ヘリックスである。これらのモチーフを持つタンパク質は、単独で単量体として作用したり、又は、ホモ二量体やヘテロ二量体を形成したりしてDNAと相互作用する。
【０００６】
ヘリックス・ターン・ヘリックス・モチーフは２つのαヘリックスからなり、これらは、決まった角度で、アミノ酸群の或る短鎖によって接続されている。一方のヘリックスが、主溝に結合する。ヘリックス・ターン・ヘリックス・モチーフの１例はホメオボックス・モチーフであり、これはホメオドメイン蛋白質に在る。ホメオドメイン蛋白質は発生期に前後体軸（anterior-posterior body axis）を決めるのに重要であり、動物界全体で保存されている。キイロショウジョウバエのアンテナペディア（Antennapedia）蛋白質及びウルトラバイソラックス（Ultrabithorax）蛋白質は、原型的なホメオドメイン蛋白質である(Pabo, C.O. 及び R.T. Sauer (1992) Annu. Rev. Biochem. 61:1053-1095)。
【０００７】
Znフィンガーモチーフは亜鉛イオンに結合する。このモチーフは一般に、周期的に配置されたシステイン残基とヒスチジン残基からなる約３０アミノ酸のタンデムリピート群を持つ。この配列パターンの２例、C2H2とC3HC4 (「RING」フィンガー)については既に記載されている(Lewin, 前出)。Znフィンガータンパク質の各々が１つの逆平行βシート及び１つのαヘリックスを持ち、それらの近接性とコンフォメーションとは、亜鉛イオンによって維持されている。DNAとの接触は、ヘリックスの前のアルギニン残基によって、並びにαヘリックスの第２の残基、第３の残基、及び第６の残基によってなされる。Znフィンガーモチーフの変異体の例には、あまり解明されていないシステインリッチモチーフ群があり、これらの変異体モチーフは、亜鉛又は他の金属イオンと結合する。これらの変異体モチーフはヒスチジン残基を持たない場合があり、一般に非反復である。タンパク質の各ZnフィンガーのαヘリックスがDNA二重らせんの主溝と接触できるように、Znフィンガーモチーフはそのタンパク質内にタンデム型にリピートされ得る。この、タンパク質とDNAとの間の接触の繰り返しによって、強力且つ特異的なDNA−タンパク質相互作用が起こる。この相互作用の強度及び特異性は、タンパク質内のZnフィンガーモチーフの数によって調節され得る。Znフィンガーは、初めはDNAと直接相互作用する領域としてDNA結合タンパク質群において同定されたが、DNAと結合しない種々のタンパク質にも出現する（Lodish, H.他 (1995) Molecular Cell Biology, Scientific American Books, New York NY, 447-451ページ）。例えば、Galcheva-Gargova, Z. 他 ((1996) Science 272:1797-1802) は、種々のサイトカイン受容体と相互作用するZnフィンガー蛋白質群を同定している。
【０００８】
C2H2タイプのZnフィンガーシグネチャモチーフには、或る28アミノ酸の配列があり、この配列には、2つの保存されたCys残基、及び2つの保存されたHis残基が、１つのC-2-C-12-H-3-Hタイプのモチーフ内に含まれる。C2H2型モチーフは一般に、多重タンデムリピート内に出現する。或るシステインリッチドメインであってモチーフAsp-His-His-Cysを持つドメイン(DHHC-CRD)は、Znフィンガー蛋白質の独立サブグループとして同定されている。DHHC-CRD領域は、成長と発達とに関与すると思われている。或るDHHC-CRD突然変異体は、Rasの機能欠損を示す。Rasは小さな膜結合型GTP結合タンパク質であり、細胞の成長と分化とを調節する。一方、他のDHHC-CRDタンパク質類は、おそらくRasとは無関係の経路群で機能する(Bartels, D.J. 他 (1999) Mol. Cell Biol. 19:6775-6787)。
【０００９】
Znフィンガー転写因子は、しばしば、モジュラー配列モチーフ群を伴う。このモチーフの例は、Kruppel-associated box (KRAB) 及びSCANドメインである。例えば、低αリポ蛋白血症（hypoalphalipoproteinemia）感受性遺伝子ZNF202は、或るSCANボックスと或るKRABドメイン（8つのC2H2 Znフィンガーモチーフ群が続く）とをコードする(Honer, C. 他 (2001) Biochim. Biophys. Acta 1517:441-448)。SCANドメインは、高度に保存されたロイシンリッチモチーフであり、約60アミノ酸からなり、Znフィンガー転写因子のアミノ末端に見られる。SCANドメインは、最も多くはC2H2 Znフィンガーモチーフに連結しており、この連結は、それらのカルボキシル末端を通じてなされる。生化学的な結合研究は、SCANドメインを選択的なヘテロ及びホモタイプのオリゴマー化ドメインとして確定している。SCANドメインが媒介するタンパク質複合体は、転写因子の生物学的機能を変調させるよう機能するようである(Schumacher, C. 他 (2000) J. Biol. Chem. 275:17173-17179)。
【００１０】
KRAB (Kruppel-associated box)ドメインは、保存されたアミノ酸配列であって約75アミノ酸にまたがる。KRABドメインは、C2H2 Znフィンガーをコードする300〜700種の遺伝子のほぼ３分の１に見られる。KRABドメインは、フィンガーリピートに対してN末端側に見られる。KRABドメインは、一般に２つのエキソンによってコードされる。KRAB-A領域又はボックスが１つのエキソンによってコードされ、KRAB-B領域又はボックスが第２エキソンによってコードされる。KRABドメインの機能は、転写の抑制である。転写抑制を達成するため、KRAB-associated protein-1（１種の転写コリプレッサー）又はKRAB-A相互作用タンパク質のどちらかが動員される。KRABドメインを持つタンパク質は、発生期に調節的な役割を果たすようである(Williams, A.J. 他 (1999) Mol. Cell Biol. 19:8526-8535)。高度に近縁のヒトKRAB Znフィンガー蛋白質群は全ヒト組織で検出し得るが、或るサブグループは、ヒトTリンパ球に高度に発現される(Bellefroid, E.J. 他 (1993) EMBO J. 12:1363-1374)。ZNF85 KRAB Znフィンガー遺伝子はヒトZNF91ファミリのメンバーであり、正常成人精巣や、精上皮腫（seminoma）や、NT2/D1 奇形癌腫細胞株に高度に発現される(Poncelet, D.A. 他 (1998) DNA Cell Biol.17:931-943)。
【００１１】
C4モチーフは、ホルモン調節されるタンパク質に見られる。C4モチーフは一般に、唯2つのリピートのみを持つ。多数の真核生物タンパク質及びウイルス蛋白質には、或る保存されたシステインリッチドメインがあり、これは40〜60残基からなり、C3HC4 Znフィンガー又はRINGフィンガーと呼ばれる。このドメインは亜鉛２原子と結合する。また、おそらくタンパク質間相互作用の仲介に関与する。亜鉛ライゲーション系の3次元の「十字（cross-brace）」構造は、RINGドメイン独自のものである。このようなドメイン内のシステイン群の間隔は、C-x(2)-C-x(9 〜39)-C-x(1 〜 3)-H-x(2  〜3)-C-x(2)-C-x(4 〜 48)-C-x(2)-Cである。PHDフィンガーは、或るC4HC3 Znフィンガー様モチーフであって、クロマチンが媒介する転写調節に関与すると思われる核タンパク質に見られる。
【００１２】
GATAタイプの転写因子には１つ又は２つのZnフィンガードメインがあり、これらのZnフィンガードメインは、連続したヌクレオチド配列であるGATAを有するDNAの領域に特異結合する。NMR研究の示すところでは、このZnフィンガーには２枚の不規則な逆平行βシートと１つのαヘリックスとがあり、続いて、フィンガーのC末端までの長いループがある。(Ominchinski, J.G. (1993) Science 261:438-446)。このヘリックスと、２枚のβシートを接続するループとがDNAの主溝と接触し、一方、結合の特性を決める部位であるC末端部は、副溝内に巻き付けて入り込む。
【００１３】
LIMモチーフには約60アミノ酸残基があり、７つの保存されたシステイン残基と１つのヒスチジンとが、１つのコンセンサス配列内に含まれる(Schmeichel, K.L. 及び Beckerle, M.C. (1994) Cell 79:211-219)。LIMファミリには、発達、分化、及び細胞成長に関与し得る、転写因子と細胞骨格タンパク質とを含む。一例のアクチン結合LIMタンパク質は、細胞骨格と細胞形態形成との調節において役割を果たし得る(Roof, D.J. 他 (1997) J. Cell Biol. 138:575-588)。アクチン結合LIMタンパク質のN末端ドメインには、４つの二重Znフィンガーモチーフ群があり、LIMコンセンサス配列を有する。アクチン結合LIMタンパク質のC末端ドメインは、既知のアクチン結合タンパク質（例えばデマチン：dematin及びビリン：villin）との配列類似性を示す。アクチン結合LIMタンパク質は、Fアクチンと結合する。この結合は、デマチン様C末端ドメインを通じて行う。LIMドメインは、他のLIM結合タンパク質とのタンパク質間相互作用を仲介するように思われる。
【００１４】
骨髄性細胞の発達は、組織特異的な転写因子群によって制御される。骨髄性Znフィンガー蛋白質(MZF)としては、MZF-1とMZF-2とがある。MZF-1は好中性顆粒球の発生の調節において機能する。或るネズミ相同体MZF-2は、骨髄性細胞群、特に好中球系にコミットされた細胞に発現される。MZF-2は、G-CSFによって下方調節される。また、好中球発生において独自の機能を持つようである(Murai, K. 他 (1997) Genes Cells 2:581-591)。
【００１５】
ロイシンジッパーモチーフは、ロイシンに富むアミノ酸群の或るストレッチからなり、これは両親媒性のαヘリックスを形成できる。この構造は、２つのロイシンジッパー蛋白質の二量体化のための基盤を提供する。ロイシンジッパーに隣接する領域は通常は塩基性であり、タンパク質二量体化すると、主溝に結合するための最適な配置となる。このようなモチーフを持つタンパク質を総称してbZIP転写因子と呼ぶ。ロイシンジッパーモチーフは癌原遺伝子であるFosとJunとに見られる。FosとJunとはヘテロ二量体転写因子であるAP1を有する。AP1は、細胞成長と、細胞系統の決定とに関わる（Papavassiliou, A.G. (1995) N. Engl. J. Med. 332:45-47)。
【００１６】
ヘリックス・ループ・ヘリックス・モチーフ（HLH）は１つの短いαヘリックスと、これが１つのループによって接続された長いαヘリックスとからなる。このループは柔軟なので、２本のヘリックスは、互いに対して折れ曲がることができ、DNAに結合できる。転写因子であるMycは、原型的なHLHモチーフを持つ。
【００１７】
NF-κ-B/Relシグネチャは、或るファミリの真核細胞転写因子を規定する。この転写因子は、発癌や、胚の発生、分化、及び免疫応答に関与する。Rel 相同性ドメイン(RHD)を持つ殆どの転写因子は、二量体として、或るコンセンサスDNA配列モチーフであるκ-Bと結合する。Rel ファミリのメンバーは、高度に保存された300アミノ酸ドメインであるRel 相同性ドメインを共有する。特徴的なRel C末端ドメインは、遺伝子活性化及び細胞質固着の機能に関わる。RHDドメインを持つことが知られるタンパク質の例には、脊椎動物核因子NF-κ-B（或るDNA結合サブユニットと転写因子p65とのヘテロ二量体）、哺乳類転写因子RelB、及び脊椎動物プロト癌遺伝子c-relがあり、c-relは、分化とリンパ球新生とに関わるタンパク質である(Kabrun, N., 及び Enrietto, P.J. (1994) Semin. Cancer Biol. 5:103-112)。
【００１８】
或るDNA結合モチーフであるARID (ATリッチ相互作用ドメイン)は、或る進化的に保存されたファミリのタンパク質を特徴づける。約100残基のARID配列は、細胞成長、分化、及び組織特異的遺伝子発現の調節への関与が強く示唆される一連のタンパク質に存在する。ARIDタンパク質の例には、Bright (B細胞特異的遺伝子発現の調節因子)、dead ringer (発達に関与)、及びMRF-2 (サイトメガロウイルスエンハンサーからの発現を抑制)を含む。(Dallas, P.B. 他 (2000) Mol. Cell Biol. 20:3137-3146)。
【００１９】
ELM2 (Egl-27及びMTA1 相同性2)ドメインは、腫瘍転移関連タンパク質MTA1、及びタンパク質ER1に見られる。線虫（Caenorhabditis elegans）遺伝子egl 27は、胚パターン形成に必要である。ヒトMTA1遺伝子は転移性癌で発現が上昇し、この遺伝子は、ヒストン脱アセチル酵素活性と、ヌクレオソームのリモデリング活性とを持つ或るタンパク質複合体の成分である(Solari, F. 他 (1999) Development  126:24832494)。ELM2ドメインは通常、myb様DNA結合ドメインのN末端に見られる。ELM2はまた、或るARID DNAに会合しているのが見られる。
【００２０】
殆どの転写因子には特徴的なDNA結合モチーフがあり、上記モチーフ群の種々の変異体と新規のモチーフ群とが、これまでに、また現在も特徴付けられている(Faisst, S. 及び S. Meyer (1992) Nucl. Acids Res. 20:3-26)。
【００２１】
クロマチン結合タンパク質
核内で、DNAはクロマチンに詰められる。クロマチンはコンパクトな組織であり、DNAの、転写因子へのアクセス可能性を制限し、遺伝子調節において主要な役割を果たす(前出のLewin, 409-410ページ)。クロマチンのコンパクトな構造は、クロマチン結合タンパク質によって決定され影響される。このようなタンパク質としては、ヒストン、高移動度グループ（HMG）タンパク質、及びクロモドメイン蛋白質がある。５種のクラスのヒストン、H1、H2A、H2B、H3及びH4があり、全ては高度に塩基性の低分子量タンパク質である。クロマチンの基盤ユニットであるヌクレオソームには、200塩基対のDNAと、H2A、H2B、H3及びH4それぞれ２つずつのコピーとがある。H1は、隣接ヌクレオソーム群を連結する。HMGタンパク質は、低分子量の非ヒストン蛋白質であり、DNAを巻き戻すことと、一本鎖DNAを安定させることにおいて役割を果たすと思われる。クロモドメイン蛋白質は、高度にコンパクト化されたヘテロクロマチンの形成において重要な役割を果たし、ヘテロクロマチンは転写的にはサイレント（不活動）である。
【００２２】
有糸分裂中、全てのDNAはヘテロクロマチンへコンパクト化され、転写が停止する。間期における転写は、クロマチンの一領域の活性化によって始まる。活性化したクロマチンは脱凝縮される。脱凝縮には、クロマチンヒストンの結合係数、リン酸化及びアセチル化状態の変化が伴うようである。HMGタンパク質のHMG13とHMG17は、活性化クロマチンに選択的に結合する。トポイソメラーゼはDNAのスーパーヘリックステンションを除去する。活性化領域は脱凝縮するため、遺伝子調節タンパク質と転写因子がDNA上で構築可能になる。
【００２３】
真核生物染色体の複製は、さまざまなタンパク質によって細胞分裂サイクルの調節に組み込まれている。たとえば、複製中のDNA分子のヌクレオソームの構築には核クロマチン形成因子１（CAF-1）が必要である。CAF-1は、H3/H4四量体の、DNAへの沈着を仲介する。CAF-1によるヌクレオソーム構築はG1/S期特異的サイクリン依存性タンパク質キナーゼ２及びタイプ1タンパク質ホスファターゼ（PP1）による可逆的リン酸化に依存するため、細胞周期調節機構とDNA複製がカップリングされる(Keller, C. 及び Krude, T. (2000) J. Biol. Chem. 275:35512-35521)。酵母の有糸分裂を完了するためには、PP1の調節サブユニットであるsds22が必要である。sds22は11個のロイシンリッチリピートを含んでいるが、これらはPP1と他のタンパク質の間の相互作用を仲介すると考えられている(Ceulemans, H. 他 (1999) Eur. J. Biochem. 262:36-42)。
【００２４】
染色体凝縮調節因子（RCC1）は、クロマチンに結合して核GTP結合タンパク質Ranのグアニンヌクレオチド交換因子の役割を果たす真核生物タンパク質である。RCC1が失われると、細胞が早めに有糸分裂を始めてしまう。このことは、RCC1がクロマチンの状態を感知してRanを通じてそれを細胞周期の進行とカップリングすることを示唆している(Nishijima, H. 他 (2000) Prog. Cell Cycle Res. 4:145-156)。
【００２５】
クロマチン構造のパターンは安定に受け継がれる。また、遺伝可能な、遺伝子発現のパターン群を生み出す。哺乳動物の場合、各雌細胞の２つのX染色体のうちの１つは、接合子の発生中に、ヘテロクロマチンへの凝縮により不活性化する。この染色体の不活性状態は遺伝するため、成体雌は、父方のXと母方のXの、クローン細胞グループのクラスタ群のモザイクになっている。凝縮したX染色体は減数分裂中に再び活性化される。
【００２６】
クロマチンはサラセミア（グロビン遺伝子座の非凝縮化に必要な遺伝子座調節領域（LCR）の除去に起因する遺伝性の貧血）などのタンパク質発現障害に関連している。
【００２７】
遺伝子調節に関連する疾患及び障害
ヒトにおける腫瘍疾患の多くは、不適切な遺伝子発現によって起こり得る。悪性の細胞成長は、腫瘍促進遺伝子の過剰発現、又は腫瘍抑制遺伝子の不十分な発現によって起こり得る（Cleary, M. L. (1992) Cancer Surv. 15:89-104）。Znフィンガー型の転写調節因子WT1は、ウィルムス腫瘍を持つ子供では不活性化されている腫瘍抑制タンパク質である。大細胞リンパ腫で重要な役割を果たすオンコジーンbcl-6もZnフィンガータンパク質である(Papavassiliou, A.G. (1995) N. Engl. J. Med. 332:45-47)。染色体転座によっても、或る遺伝子のコード配列を別の無関係遺伝子の調節領域と融合させる、キメラ座（chimeric loci）が生成され得る。このような配列は、おそらく不適切な遺伝子転写を引き起こす。また、悪性腫瘍を引き起こす可能性もある。例えばバーキット型リンパ腫では、転写因子Mycが免疫グロブリン重鎖遺伝子座に転座され、Myc発現を大きく増強し、急速な細胞成長を生じて白血病をもたらす(Latchman, D. S. (1996) N. Engl. J. Med. 334:28-33)。
【００２８】
更に、免疫系は、細胞防御機構の漸進的な選択、増幅、及び動員を調整するイベントのカスケードを活性化することにより、感染や外傷に応答する。遺伝子の活性化及び抑制の複雑かつバランスの取れたプログラムが、このプロセスに関与している。しかしながら、遺伝子発現の不適切或いは不十分な調節によって起こる免疫系の過度の活性化は、組織や器官に相当な損傷を与え得る。この損傷は、関節炎、アレルゲン、心臓発作、卒中、及び感染に関連する免疫応答についての文献に詳しく記載されている（Isselbacher 他 Harrison's Principles of Internal Medicine, 13/e, McGraw Hill, Inc. 及び Teton Data Systems Software, 1996）。自己免疫性多腺性内分泌不全症カンジダ症外胚葉性ジストロフィ（APECED）の原因遺伝子が最近単離され、２つのPHDタイプZnフィンガーモチーフを持つ或るタンパク質をコードすることが見出された(Bjorses, P. 他 (1998) Hum. Mol. Genet. 7:1547-1553)。
【００２９】
更に、多細胞生物の産生は、発生の適当な段階における細胞分化の誘導及び調整に基づいている。このプロセスの中心は、体中の細胞及び組織に固有性を与える差次的な遺伝子発現である。発生中に遺伝子発現の調節に失敗すると、発生／発達障害が起こり得る。Znフィンガー型転写調節因子の突然変異に起因するヒトの発達障害には以下が含まれる。泌尿生殖器の発生異常（WT1に関連）；Greig頭蓋・多合指趾症候群（cephalopolysyndactyly）、Pallister-Hall症候群、及び軸後性多指症（postaxial polydactyly）タイプA（GLI3に関連）；並びに、肛門、腎臓、手足及び耳の異常を特徴とするTownes-Brocks症候群(SALL1関連)である(Engelkamp, D. 及び van Heyningen, V. (1996) Curr. Opin. Genet. Dev. 6:334-342; Kohlhase, J. 他 (1999) Am. J. Hum. Genet. 64:435-445)。
核酸の合成
ポリメラーゼ
DNAとRNAとの複製は、細胞の複製と機能とにとって死活的なプロセスである。DNAとRNAとの複製を仲介する酵素がそれぞれDNAポリメラーゼ及びRNAポリメラーゼであり、この仲介は「鋳型取り（templating）」プロセスで行う。このプロセスでは、DNA又はRNAストランドのヌクレオチド配列が、相補的塩基対合によってDNA又はRNAどちらかの相補的な核酸配列にコピーされる。しかし、この２つのプロセスには、根本的な相違がある。
【００３０】
DNAポリメラーゼが触媒する反応は、或るポリヌクレオチド鎖（プライマー鎖）の3'-OH末端へのデオキシリボヌクレオチドの逐次付加であり、このプライマー鎖は第二の（鋳型）ストランドと対合される。新たなDNAストランドは、したがって5'から3'方向へ成長する(Alberts, B. 他 (1994) The Molecular Biology of the Cell, Garland Publishing Inc., New York, NY, 251-254ページ)。この重合反応の基質は対応するデオキシヌクレオチド三リン酸であり、ポリメラーゼに認識されるためには、鋳型ストランド上の正しいヌクレオチドと塩基対合する必要がある。DNAは二重らせんとして存在するので、二本鎖のそれぞれが、新たな相補的ストランドの形成のための鋳型となり得る。したがって、分裂中の細胞の２個の娘細胞のそれぞれが、１本は古く１本は新しいストランドを持つ新たなDNA二重らせんを受け継ぐ。したがって、DNAは、DNAポリメラーゼによって「半保存的に」複製されると言われる。新たなDNAの合成に加え、DNAポリメラーゼはまた、損傷したDNAの修復にも関わる。これは、下記の「リガーゼ」で述べる。
【００３１】
DNAポリメラーゼと対照的に、RNAポリメラーゼは１本のDNA鋳型ストランドを用いてDNAをRNAに「転写」し、これにはリボヌクレオチド三リン酸を基質として用いる。DNA重合と同様、RNA重合は、5'から3'方向に、リボヌクレオシド一リン酸の、成長するRNA鎖の3'-OH末端への付加によって進む。DNA転写はメッセンジャーRNA (mRNA)を産生し、mRNAはタンパク質合成のための情報を運ぶ。DNA転写はまた、転移RNA、リボソームRNAや、構造的又は触媒的な機能を持つ他のRNAをも産生する。真核細胞では、３種の別々のRNAポリメラーゼが、３タイプのRNAを合成する(Alberts 他、前出 367-368ページ)。RNAポリメラーゼIは大きなリボソームRNAを作り、RNAポリメラーゼIIはタンパク質へと翻訳されるmRNAを作り、RNAポリメラーゼIIIは、種々の小さな安定したRNA（5SリボソームRNAや転移RNA（tRNA）等）を作る。どの場合も、RNA合成の開始は、RNAポリメラーゼの、DNA上のプロモーター領域への結合によってなされ、合成の開始は、プロモーター内の開始部位で起こる。合成の完了は、DNA内の停止（終了）シグナルでなされ、ここでポリメラーゼと完成したRNA鎖とが解放される。
【００３２】
リガーゼ
DNA修復のプロセスによって、偶発的な塩基変化（原因は例えば酸化損傷、加水分解的攻撃、DNAの無秩序なメチル化など）が、DNAの複製又は転写が起きる前に修正される。DNA修復プロセスの効率が良いので、偶発的な塩基変化の1000分の１未満のみが突然変異を起こす(Alberts 他、前出 245-249ページ)。殆どのタイプのDNA修復に共通の３つのステップは、（１）損傷又は変容した塩基又はヌクレオチドの、DNAヌクレアーゼによる切除。（２）切除されたヌクレオチドが残したギャップへの、正しいヌクレオチドの挿入。これはDNAポリメラーゼが、相補的ストランドを鋳型として用いて行う。（３）挿入されたヌクレオチド（群）と既存DNAストランドとの間に残った切れ目の、DNAリガーゼによる埋め合わせ（sealing）、である。最後の反応において、DNAリガーゼはATP加水分解からのエネルギーを用い、切れ目の入ったホスホジエステル結合の5'末端を活性化した後、DNAストランドの3'-OHとの新たな結合を形成する。ブルーム症候群は遺伝性のヒト疾患であるが、この患者はこのDNAライゲーションが部分的に欠損しているため、癌の発症の増加を示す(Alberts 他、前出 247ページ)。
【００３３】
ヌクレアーゼ
ヌクレアーゼ酵素には、DNAを加水分解するDNアーゼと、RNAを加水分解するRNアーゼとがある。２種のヌクレアーゼは、核酸代謝において別々の目的で働く。ヌクレアーゼは、隣接するヌクレオチド間のホスホジエステル結合を加水分解する。エンドヌクレアーゼは内部の位置で加水分解し、エキソヌクレアーゼは3'又は5'末端のヌクレオチド位置で加水分解する。例えばDNAポリメラーゼにおける或るDNAエキソヌクレアーゼ活性は、ポリメラーゼによって成長するDNAストランドの3'-OH末端に付着されたヌクレオチドの内、不適切に対合したヌクレオチドを除去するよう働くので、「校正」機能を提供する。上記したように、DNAエンドヌクレアーゼ活性は、DNA修復プロセスの切除ステップに関わる。
【００３４】
RNアーゼ（RNase）もまた、種々の機能を提供する。例えばRNase Pはリボ核タンパク質酵素であり、tRNA前駆体群の5'末端の切断を、それらの成熟プロセスの一部として行う。RNase Hは、或るRNA/DNAハイブリッドのRNAストランドを消化する。このようなハイブリッドはレトロウイルスが侵入した細胞に生じ、RNase Hは、レトロウイルス複製サイクルにおける重要な酵素である。膵臓RNアーゼは膵臓によって腸内に分泌され、摂取した食物の中のRNAを加水分解する。血清と細胞抽出物とにおけるRNアーゼ活性の上昇は、種々の癌や感染疾患で見られる(Schein, C.H. (1997) Nat. Biotechnol. 15:529-536)。RNアーゼ活性の調節が、腫瘍血管新生、アレルギー反応、ウイルスの感染及び複製、並びに真菌感染を制御する手段として研究されている。
【００３５】
核酸の修飾
メチラーゼ
特定ヌクレオチドのメチル化はDNA、RNA双方で起こり、この２種の高分子において別々の機能を提供する。DNAでシトシン残基のメチル化は5-メチルシトシンを形成し、これは、DNA二重らせん内で互いに塩基対合したCG配列群内で特異的に起こる。メチル化のこのパターンは、DNA複製時に世代間で受け渡される。これを行う酵素は「維持メチラーゼ」と呼ばれ、既にメチル化されたCG配列と塩基対合したCG配列上で優先的に作用する。このようなメチル化は、活性遺伝子と非活性遺伝子との区別を、遺伝子を「オンにする（turn on）」調節タンパク質の結合を防ぐ一方、遺伝子を不活化するタンパク質の結合を許すことによって行うようである(Alberts 他、前出 448-451ページ)。RNA代謝では、「tRNAメチラーゼ」がtRNAにおける幾つかのヌクレオチド修飾の１つを起こす。この修飾は、この分子のコンフォメーションと塩基対合とに影響し、適切なmRNAコドンの、特異的tRNA群による認識を促進する。主なメチル化パターンとしてはグアニン残基のジメチル化があり、これはN,N-ジメチルグアニンを形成する。
【００３６】
ヘリカーゼ及び一本鎖結合タンパク質
ヘリカーゼ酵素は、DNA、RNA双方の二重らせん構造を不安定化し、巻き戻す。DNA複製は２本のストランドでほぼ同時に起こるので、２本のストランドは先ず分離して複製「フォーク」を産生し、DNAポリメラーゼが作用できるようにする必要がある。２種の複製タンパク質がこのプロセスに寄与する。DNAヘリカーゼと、一本鎖結合タンパク質とである。DNAヘリカーゼは、ATPを加水分解し、そのエネルギーを用いてDNAストランドを分離させる。一本鎖結合タンパク質(SSB)が次に、露出したDNAストランドに結合するが、塩基を覆いはせず、DNAポリメラーゼによる鋳型取りのためにそれらを一時的に安定化する(Alberts 他、前出 255-256ページ)。
【００３７】
RNAヘリカーゼは、RNAのコンフォメーションと２次構造とを変容させ調節する。DNAヘリカーゼと同様、RNAヘリカーゼは、ATP加水分解に由来するエネルギーを利用し、RNA二重鎖を不安定化し巻き戻す。RNAヘリカーゼの最も良く特徴付けられ偏在するファミリはDEADボックスファミリであり、その名は、保存されたBタイプATP結合モチーフに由来する。このモチーフは、このファミリのタンパク質にとって特徴的である。40種を超すDEADボックスヘリカーゼが、細菌、昆虫、酵母、両生類、哺乳類、及び植物に及ぶ多様な生物において同定されている。DEADボックスヘリカーゼは、多様なプロセスにおいて機能する。そのプロセスとしては例えば翻訳開始、スプライシング、リボソームの集合、及び、RNAの編集、輸送、安定性がある。これらのRNAヘリカーゼの例としては、酵母Drs1タンパク質（リボソームRNAプロセシングに関与）、酵母TIF1及びTIF2並びに哺乳類eIF-4A（これらはRNA翻訳の開始に必須である）、及びヒトp68抗原（細胞の成長及び分化を調節）がある(Ripmaster, T.L. 他 (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:11131-11135; Chang, T.-H. 他 (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:1571-1575)。これらのRNAヘリカーゼは、強い配列相同性を、約420アミノ酸のストレッチにわたり示す。これらの保存された配列としては、或るATP結合タンパク質のAモチーフのコンセンサス配列、「DEADボックス」配列（ATPアーゼ活性に関与）、配列SAT（実際のヘリカーゼ巻き戻し：actual helicase unwinding領域に関与）、及び、RNA結合とATP加水分解とに必要なオクタペプチドコンセンサス配列がある(Pause, A. 他 (1993) Mol. Cell Biol. 13:6789-6798)。これらの保存された領域以外の差異は、個々のタンパク質の機能上の役割における差異を反映すると思われる(Chang, T.H. 他 (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:1571-1575)。
【００３８】
数種のDEADボックスヘリカーゼは、精子形成と胚形成とにおいて、組織特異的及びステージ特異的な役割を果たす。DEADボックス1タンパク質(DDX1)の過剰発現は、神経芽腫(Nb)と網膜芽腫(Rb)との進行において役割を果たすと思われる(Godbout, R. 他 (1998) J. Biol. Chem. 273:21161-21168)。これらの観察の示唆するところでは、DDX1は、腫瘍進行の促進又は増強を、癌細胞内のRNAの正常な二次構造と発現レベルとを改変することによって行う。別のDEADボックスヘリカーゼ群は、腫瘍形成に直接又は間接的に関与すると思われる(前出Godbout で考察されている)。例えばネズミp68は紫外線で誘発した腫瘍において突然変異し、ヒトDDX6は、B細胞リンパ腫に関連する或る染色体易切断点（chromosomal breakpoint）に位置する。同様に、DDX10とNUP98（１種の核膜孔タンパク質：nucleoporin）とからなるキメラ蛋白質は、数種の骨髄性悪性腫瘍の病原に関与するようである。
【００３９】
トポイソメラーゼ
DNAストランドを複製前に分離する他に、２本のストランドは、DNAヘリカーゼによる分離の前に、互いから「巻き戻す」必要がある。この機能を行うタンパク質は、DNAトポイソメラーゼとして知られる。DNAトポイソメラーゼは、可逆的ヌクレアーゼとして効果的に作用してDNAストランド内のホスホジエステラーゼ結合を加水分解し、二本鎖を互いに対して自由に回転できるようにしてヘリックスを巻き戻した後、二本鎖の間の元のホスホジエステル結合を再結合させる。  トポイソメラーゼは、転写、複製、クロマチン形成、組換え、及び染色体分離、によって生じたDNAのトポロジー的再編成を担う必須酵素である。DNAへの高次らせんコイルの導入は、前進する酵素（processive enzyme）（例えばRNAポリメラーゼ）の通過によって、又は、ヘリカーゼによるDNAストランドの複製前の分離によってなされる。DNAの合成、貯蔵、修復のプロセス中に、結び目（knotting）と連環（concatenation）とが生じ得る。全てのトポイソメラーゼの働きは、DNAのリボース‐リン酸主鎖内のホスホジエステル結合を壊して行う。この酵素にある或る触媒チロシン残基が、切れやすいホスホジエステル結合に求核攻撃することによって反応中間体を生じる。この中間体では、共有結合が、この酵素と、壊れたストランドの１端との間に形成される。或るチロシンDNAホスホジエステラーゼは、偶発するデッドエンドトポイソメラーゼI‐DNA中間体の中のこの結合を加水分解することでDNAの修復に機能する（Pouliot, J. J.他(1999) Science 286:552-555）。
【００４０】
２タイプのDNAトポイソメラーゼ、タイプIとタイプIIとがある。タイプIトポイソメラーゼは単量体として働いてDNAの一本鎖に切れ目を作る。一方、タイプIIトポイソメラーゼはホモ二量体として働き、二本鎖の双方を切断する。DNAトポイソメラーゼIは、DNAヘリックス内に一本鎖の切れ目を生じることによって、ヘリックスの二本鎖が、反対のストランドの中の、残るホスホジエステル結合を軸に回転できるようにする。DNAトポイソメラーゼIはDNAヘリックスの二本鎖の双方に一時的な切れ目を作り、ここで二本の二重らせんが互いに交差する。このトポイソメラーゼIIは、２つの連環した環状DNAを、効果的に分離できる(Alberts 他、前出 260-262ページ)。タイプIIトポイソメラーゼは、真核生物では増殖する細胞（癌細胞など）にほとんど限られている。このためトポイソメラーゼIIは、抗癌剤の標的である。トポイソメラーゼIIは、多剤耐性（MDR）に関係すると思われている。その理由は、この酵素がDNA結合剤（ドキソルビシン：doxorubicinやビンクリスチン：vincristineなど）によるDNA損傷の修復を助けると思われるからである。
【００４１】
トポイソメラーゼIファミリには、トポイソメラーゼI（TopoI）とトポイソメラーゼIII（TopoIII）とを含む。ヒトのトポイソメラーゼIの結晶構造が示唆するところでは、無傷DNAストランドを軸とした回転を、この酵素が部分的に制御する。この「制御された回転（controlled rotation）」モデルでは、タンパク質-DNA相互作用がこの回転を制限する。これはDNA内のねじれひずみ（torsional strain）が駆動する(Stewart, L. 他 (1998) Science 379:1534-1541)。構造的にはTopoIは、その活性部位領域内の触媒チロシン残基と、多数の他の保存された残基で認識できる。TopoIは、転写時に機能すると思われる。２種のTopoIIIがヒトでは既知であり、これらは原核生物トポイソメラーゼに相同で、保存されたチロシンと、このファミリに特異的な活性部位シグネチャとを持つ。TopoIIIは、減数分裂組換え（meiotic recombination）において役割を果たすことが示唆されている。マウスのある種のTopoIIIは精巣組織で高度に発現され、その発現の増加は、太糸期（pachytene）における細胞数の増加に伴う(Seki, T. 他 (1998) J. Biol. Chem. 273:28553-28556)。
【００４２】
トポイソメラーゼIIファミリには、２種のイソ酵素（IIα及びIIβ）を含み、２種は別々の遺伝子がコードする。TopoIIは二本鎖DNAの切断を、再現性のある非無作為の方法で優先的に、或るATリッチ領域で行うが、切断部位選択性の原理は未知である。構造上はTopoIIには４つのドメインがある。その最初の２つは構造的に類似し、おそらく真核生物TopoIの類似ドメインとは遠い相同性を持つ。第二ドメインには触媒チロシンと、高度に保存されたペンタペプチドとを持つ。IIαイソフォームは、染色体分離時にDNAを解くこと（unlinking）に関係するようである。IIαを発現するがIIβを発現しない細胞株は、IIβが細胞プロセスに非必須であることを示唆するが、IIβノックアウトマウスは、神経発生における不全のため周産期に死亡した。主な異常が主に後期発生イベント(神経形成)時に起きたことは、IIβが有糸分裂ではなくDNA修復時に必要であることを示唆する(Yang, X. 他 (2000) Science 287:131-134)。
【００４３】
トポイソメラーゼは多数の病態に関わると思われており、トポイソメラーゼ毒は、数種のヒト悪性腫瘍癌に有効な抗腫瘍薬であることが示されている。TopoIはファンコニ貧血（Fanconi's anemia）では誤った場所に局在する。また、この疾患に見られる染色体切断に関わると思われる(Wunder, E. (1984) Hum. Genet. 68:276281)。毛細血管拡張性運動失調（A-T）細胞での短縮されたTopoIIIの過剰発現は、部分的にA-T表現型を抑制するが、これはおそらく優性阻害機序（dominant negative mechanism）による。これが示唆するところでは、TopoIIIはA-Tでは調節解除される(Fritz, E. 他 (1997) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:4538-4542)。TopoIIIはまた、ブルーム症候群（Bloom's Syndrome）遺伝子産物と相互作用する。また、腫瘍抑制因子としての役割を持つことを示唆されている(Wu, L. 他 (2000) J. Biol. Chem. 275:9636-9644)。異常なTopoII活性は、しばしば癌や、増加した癌リスクを伴う。大きく低下したTopoII活性が、全てではないが数種のA-T細胞株に見られている(Mohamed, R. 他 (1987) Biochem. Biophys. Res. Commun. 149:233-238)。一方、TopoIIは、DNAの分断を、A-T遺伝子(ATM)の領域で行い得る。ATMは、全てのDNA損傷応答性細胞周期チェックポイントを制御する(Kaufmann, W.K. (1998) Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 217:327-334)。トポイソメラーゼがDNAを分断する能力は、抗腫瘍薬の基礎として用いられている。トポイソメラーゼ毒は、デッドエンド共有結合DNA-酵素複合体の細胞内の数を増すことによって作用し、最終的には細胞死経路の引き金となる(Fortune, J.M. 及び N. Osheroff (2000) Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 64:221-253; Guichard, S.M. 及び M.K. Danks (1999) Curr. Opin. Oncol. 11:482-489)。TopoIに対する抗体は全身性強皮症（systemic sclerosis）患者の血清中に見られ、この抗体のレベルは、この疾患に関与する肺のマーカーとして利用できそうである(Diot, E. 他 (1999) Chest 116:715-720)。最後に、ヒトのTopoIのDNA結合領域は、遺伝子治療用のDNA送達伝播体として用いられている(Chen, T.Y. 他 (2000) Appl. Microbiol. Biotechnol. 53:558-567)。
【００４４】
リコンビナーゼ
遺伝子組換えは、或る生物のゲノム内でのDNA配列の再編成プロセスであり、環境の変化に応じたその生物の遺伝子変異を提供する。DNA組換えによって、或る個体のゲノム内にある遺伝子の特定の組み合わせにおける変異が可能になり、これらの遺伝子の発現の時期とレベルとにおける変異も可能である（前出Alberts他 263-273ページを参照）。２種の広範なクラスの遺伝子組換え（普遍的組換えと部位特異的組換え）が広く認識されている。普遍的組換えでは、任意の相同的な１対のDNA配列間の遺伝子交換を伴う。これらの配列の位置は通常、同じ染色体の２つのコピー上にある。このプロセスを補助する酵素であるリコンビナーゼは、DNA二重鎖の一方のストランドに幾分無作為的に「ニック（切れ目）を入れ」、他の二重鎖にある相補的ストランドとの交換を可能にする。このプロセスは、通常は染色体内の遺伝子の編成を変えない。部位特異的組換えでは、リコンビナーゼは組み換える分子の一方又は双方にある特定のヌクレオチド配列を認識する。塩基対合はこの形の組み換えには関与しないので、組み換える分子の間のDNA相同性は不要である。普遍的組換えとは異なり、部位特異的組み換えは、染色体内のヌクレオチド配列群の相対位置を改変できる。
【００４５】
ＲＮＡ代謝
リボ核酸（RNA）は直鎖の一本鎖重合体である（４種のヌクレオチドであるATP、CTP、UTP、及びGTPからなる）。殆どの生物では、RNAの転写は、デオキシリボ核酸（DNA）のコピーとしてなされ、DNAがその生物の遺伝子材料である。レトロウイルスでは、DNAでなくRNAが遺伝子材料として働く。遺伝子材料のRNAコピーは、タンパク質をコードするか、もしくは生物内で種々の構造的、触媒的、又は調節的な役割を果たす。RNAの分類は、その細胞内局在と機能とに基づく。メッセンジャーRNA (mRNA)は、ポリペプチドをコードする。リボソームRNA (rRNA)は、リボソーム蛋白質と組み合わされてリボソームとなる。リボソームは細胞質粒子であり、mRNAをポリペプチドへ翻訳する。転移RNA (tRNA)はサイトゾルのアダプター分子であり、mRNA翻訳における機能はmRNAコドンと、そのコドンに適合するアミノ酸との双方の認識である。ヘテロ核RNA (hnRNA)としては、mRNA前駆体と、他の種々のサイズの核内RNAとを含む。核内低分子RNA (snRNA)は核内スプライセオソーム複合体の一部である。この複合体は、mRNA前駆体内に介在する非コード配列（イントロン）群を除去し、エキソン群を再結合する。
【００４６】
タンパク質は、DNAからのRNAの転写や、RNAプロセシング、及び、タンパク質へのmRNAの翻訳の際に、RNAと会合する。タンパク質はまた、RNAが構造的、触媒的、又は調節的な目的で利用される際に、RNAと会合する。
【００４７】
ＲＮＡプロセシング
リボソームRNA (rRNA)は、リボソーム蛋白質と組み合わされてリボソームとなる。リボソームは細胞質粒子であり、メッセンジャーRNA (mRNA）をポリペプチドへ翻訳する。真核生物リボソームは60S (大)サブユニットと40S (小)サブユニットとからなり、両ユニットが共になって80Sリボソームを形成する。18S、28S、5S、及び5.8SのrRNAに加え、リボソームには生物の種類によって50から80種を超す別々のリボソーム蛋白質が含まれる。リボソーム蛋白質の分類は、それらが属するサブユニットによる(すなわち、大きな60Sサブユニットに関連するならL、小さい40SサブユニットならS)。大腸菌リボソームはもっとも詳しく研究されており、50種の蛋白質を持ち、その多くは全ての生物で保存されている。９種のリボソーム蛋白質の構造の解明が3.0D未満の分解能でなされており(すなわちS5、S6、S17、L1、L6、L9、L12、L14、L30)、共通のモチーフ群（例えばb-a- b蛋白質フォールド群）と、b-ストランドの間に位置する酸性及び塩基性のRNA結合モチーフ群とを明らかにした。殆どのリボソーム蛋白質はrRNAと直接に接触すると思われる(概説はLiljas, A. 及び Garber, M. (1995) Curr. Opin. Struct. Biol. 5:721-727; また、Woodson, S.A. 及び Leontis, N.B. (1998) Curr. Opin. Struct. Biol. 8:294-300; Ramakrishnan, V. 及び White, S.W. (1998) Trends Biochem. Sci. 23:208-212を参照)。
【００４８】
リボソーム蛋白質は、翻訳を調節するために、翻訳後修飾を受けたり、他のリボソーム関連タンパク質と相互作用したりすることがある。例えば高度に相同な40Sリボソーム蛋白質S6キナーゼであるS6K1とS6K2とは細胞成長の調節において主要な役割を果たすが、これはタンパク質合成装置（例えばリボソーム蛋白質）を作り上げる翻訳成分の生合成を制御することにより行う。S6K1の場合、少なくとも８つのリン酸化部位が、キナーゼ活性化を階層的な手法で仲介すると思われる(Dufner 及び Thomas (1999) Exp. Cell. Res. 253:100-109)。数種のリボソーム蛋白質（L1を含む）はまた翻訳抑制因子として機能し、これはリボソーム蛋白質をコードする多シストロン性mRNAと結合して行う(概説は前出Liljas, A. 及び前出Garber, M.)。
【００４９】
最近の証拠が示唆するところでは、多数のリボソーム蛋白質が、蛋白質生合成へのこれらの関与とは独立した二次機能を持つ。これらの蛋白質は、細胞増殖の調節因子として、また数例では細胞死の誘発因子として機能する。例えばヒトのリボソーム蛋白質L13aの発現は、アポトーシスを誘発することが示されている。これは、細胞周期のG2/M期に細胞成長を停止させて行う。L13aの発現の抑制は標的細胞内にアポトーシスを誘発し、これが示唆するところでは、この蛋白質は、適量では、細胞生存に必要である。同様の結果が酵母でも得られている。ここでは、L13aの酵母相同体である、rp22とrp23との不活化によって、重度の成長遅滞と死とを招いた。非常に近縁のリボソーム蛋白質であるL7は、G1期の細胞を停止させ、アポトーシスをも誘発する。したがって、或るサブセットのリボソーム蛋白質は、細胞周期チェックポイントとして機能すると思われ、新規ファミリの細胞増殖調節因子を構成するようである。
【００５０】
個々のリボソーム蛋白質の、無傷リボソームの表面へのマッピングがなされた。これには3D免疫低温電子顕微鏡（immunocryoelectronmicroscopy）を用い、これによって特定のリボソーム蛋白質群に対して産生された抗体群が可視化された。L1、L7、及びL12のマッピングに向けて進歩がなされているが、無傷リボソームの構造の解明は、わずかに20〜25Dの分解能であり、別々の粗構造（crude structures）の間には矛盾がある(Frank, J. (1997) Curr. Opin. Struct. Biol. 7:266-272)。
【００５１】
３種の別々の部位が、リボソーム上で同定されている。アミノアシルtRNA受容部位(A部位)は、チャージした（charged）tRNAを受け取る(例外は開始tRNAである）。ペプチジルtRNA部位(P部位)は新生ポリペプチドと結合し、A部位からのアミノ酸が、この伸長する鎖に付加される。脱アシル化したtRNA群は、脱出部位(E部位)内に結合した後、リボソームから解放される。リボソームの構造の概説は、Stryer, L. (1995) Biochemistry W.H. Freeman and Company, New York NY 888-908lページ; Lodish, H. 他 (1995) Molecular Cell Biology Scientific American Books, New York NY 119-138ページ; 及び Lewin, B (1997) Genes VI Oxford University Press, Inc. New York, NYを見られたい。
【００５２】
種々の蛋白質が、核内で転写されたRNAのプロセシングに必要である。mRNAプロセシングの前段階としては、5'末端へのメチルグアノシンでのキャッピング、3'末端のポリアデニル化、及び、イントロンを除去するためのスプライシングを含む。DNAからの一次RNA転写物は、エキソン、イントロン双方の配列を有する遺伝子の忠実なコピーであり、イントロン配列がRNA転写物から切り出されることが、蛋白質をコードするmRNAを産出するために必要である。mRNAの「スプライシング」は、核内で、大きな多成分リボ核タンパク質複合体（スプライセオソームとして知られる）の補助を受けてなされる。スプライセオソーム複合体は、５種の低分子核内リボ核タンパク質粒子(snRNP)である、U1、U2、U4、U5、及びU6からなる。それぞれのsnRNP内には、１つの種のsnRNAと、約10種のタンパク質とを含む。数種のsnRNPのRNA成分は、イントロンのコンセンサス配列を認識し塩基対合する。タンパク質成分は、スプライセオソーム構築と、スプライシング反応とを仲介する。snRNPタンパク質に対する抗体は、全身性紅斑性狼瘡患者の血中に見られる(Stryer, L. (1995) Biochemistry W.H. Freeman and Company, New York NY, 863ページ)。
【００５３】
不均質核内リボ核タンパク質(hnRNP)の役割は、スプライシングや、成熟RNAの細胞質への移出、及び、mRNA翻訳にあることが同定されている(Biamonti, G. 他 (1998) Clin. Exp. Rheumatol. 16:317-326)。hnRNPの例としては、酵母タンパク質群である、Hrp1p（RNAの切断と3'末端でのポリアデニル化に関与）、Cbp80p（RNAの5'末端のキャッピングに関与）、及び、Npl3p（核からのmRNAの移出に関与する哺乳類hnRNP A1の相同体）がある(Shen, E.C. 他 (1998) Genes Dev. 12:679-691)。hnRNPは、リウマチ性疾患における自己免疫応答の重要な標的であることが示されている(前出Biamonti)。
【００５４】
多くのsnRNPタンパク質及びhnRNPタンパク質は、或るRNA認識モチーフ(RRM)によって特徴付けられる(概説はBirney, E. 他 (1993) Nucleic Acids Res. 21:5803-5816)。RRMは、約80アミノ酸の長さであり、α／βサンドイッチの形に編成された４本のβストランドと２本のαヘリックスとを形成する。RRM内には、コアのRNP-1オクタペプチドモチーフと、周囲の保存された配列群とを含む。snRNPタンパク質に加え、上記モチーフ群を持つRNA結合タンパク質の例には、新生RNAを安定させるヘテロ核リボ核タンパク質と、選択的スプライシングを調節する因子群とを含む。選択的スプライシング因子には発生的に調節されるタンパク質が含まれ、その特異的な例は下等真核生物（例えばキイロショウジョウバエや線虫Caenorhabditis elegans）において同定されている。これらのタンパク質は、それぞれ発生プロセス（例えばパターン形成や性決定）において重要な役割を果たす(例えばHodgkin, J. 他 (1994) Development 120:3681-3689を参照)。
【００５５】
殆どの真核生物mRNAの3'末端は、また、ポリアデニル化による転写後修飾を受ける。ポリアデニル化は、２種の、酵素的に別々のステップを経て進む。(i)新生mRNAのヌクレオチド鎖切断が、3'非翻訳(非コード)領域内のシス作用ポリアデニル化シグナル群でなされ、(ii)ポリ(A)トラクト（poly(A) tract）が、5' mRNA断片へ付加される。シス作用RNA配列群の存在が、両方のステップに必要である。これらの配列としては、5'-AAUAAA-3'（切断部位の10〜30ヌクレオチド上流に位置）と、あまり保存されていないGU-リッチ配列エレメント又はU-リッチ配列エレメント（切断部位の10〜30ヌクレオチド下流に位置）とを含む。切断刺激因子(CstF)、切断因子I(CF I)、及び切断因子II(CF II)は切断反応に関わり、一方、切断及びポリ(A)付加特異性決定因子(CPSF)とポリ(A)ポリメラーゼ(PAP)とは、切断とポリアデニル化との双方に必要である。付加的酵素であるポリ(A)結合タンパク質II(PAB II)は、ポリ(A)トラクト伸長を促進する(Ruegsegger, U. 他 (1996) J. Biol. Chem. 271:6107-6113; 及びその参照文献)。
【００５６】
翻訳
真核生物ｍRNAの翻訳は遺伝子発現過程の中でも高度に競合的で厳密に調節されたステップである。このステップの制御は通常、律速的な開始期に行われる。翻訳開始に関与するリボソームタンパク質は従来から知られていて、その生化学的活性は、現在受け入れられている、翻訳のキャップ依存性開始のモデルの構築に用いられた(Merrick, W.C. 他 (1996)  Translational Control, Hershey, J.W.B. 他編集, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 31-69ページ)。このモデルによると、5'キャップ構造 (m7GpppN) が真核生物開始因子４F(eIF4F)複合体をmRNAに引き寄せる。eIF4Fはキャップ結合タンパク質eIF4E、RNA依存性ATPアーゼeIF4A、及びモジュラー因子eIF4Gからなるヘテロ多量体複合体である。小さな（40S）リボソームサブユニットがｍRNAの5'末端に結合する。これが5' UTRの二次構造を巻き戻すと考えられている43S複合体である。これにより形成された４８Sが今度は開始サイクルを通じて前進する。後で43S複合体がmRNAに沿って動くのをスキャニングと呼ぶが、この動きは（通常）最初のAUGトリプレットを開始コドンとして正確に認識できる理由としてもっとも妥当である。Met-tRNAi とのコドン・アンチコドン塩基対形成が真核生物開始因子2(eIF2)結合GTP 加水分解をトリガする。この加水分解は真核生物開始因子5(eIF5)によって触媒される。これによって開始因子が解離し、大きな（60S）サブユニットが結合して80Sリボソームが形成されると考えられている。
【００５７】
遺伝子コードの正しい翻訳は、適切な転移RNA(tRNA)との連結を形成する各アミノ酸に依存する。アミノアシル-tRNA 合成酵素(aaRS) は、全ての生物に在る本質的なタンパク質である。aaRSは、タンパク質の生合成の最初の段階として、アミノ酸の活性化と、その同族tRNAとの正しい付着とを担う。原核生物は少なくとも20種の異なるタイプのaaRSを持ちアミノ酸ごとに1種類のaaRSを持つが、真核生物は通常、異なるアミノ酸の各々のために細胞質ゾル形態とミトコンドリア形態の2つのaaRSを有する。20種のaaRS酵素は2つの構造的クラスに分け得る。クラスI酵素はtRNAの3'末端で2'ヒドロキシルにアミノ酸を加え、クラスII酵素はtRNAの3'末端で3'ヒドロキシルにアミノ酸を加える。各クラスは触媒的ドメインの特有のトポロジーによって特徴づけられる。クラスI酵素には、ヌクレオチド結合した「ロスマンフォールド」に基づく触媒的ドメインがある。特に、或るコンセンサステトラペプチドのモチーフは、高度に保存的である(Prosite Document PDOC00161, Aminoacyl-transfer RNA synthetases class-I signature)。クラスI酵素は、アルギニン、システイン、グルタミン酸、グルタミン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、チロシン、トリプトファン及びバリンに特異的である。クラスII酵素は、中心的触媒ドメイン（７本鎖の逆平行β-シートドメインからなる）と、N末端及びC末端調節ドメインを持つ。クラスII酵素は酵素のヘテロ二量体構造或いはホモ二量体構造に基づく２つのグループに分けられ、後者は更にN末端及びC末端調節ドメインの構造によって分けられる(Hartlein, M. 及び Cusack, S. (1995) J. Mol. Evol. 40:519-530)。クラスII酵素は、アラニン、アスパラギン、アスパラギン酸、グリシン、ヒスチジン、リジン、フェニルアラニン、プロリン、セリン及びトレオニンに特異的である。
【００５８】
数種のaaRSには編集（エディティング）機能もある。例えばIleRSはバリンを誤って活性化しVal-tRNAIle を形成する場合があるが、この生成物は、誤ってチャージした生成物を破壊する或る加水分解作用によって取り除かれる。この編集活性は、クラスI酵素のRossman foldドメイン内の長い挿入配列である接続ポリペプチド 1 領域（connective polypeptide 1 region）（CP1）で見つかる 2 番目の触媒サイト内に位置する（Schimmel, P. 他(1998) FASEB J. 12:1599-1609）。AaRS はまた tRNA プロセシングでも役割を果たす。成熟した tRNA は細胞質に移出される前に、核の中でそれぞれのアミノ酸でチャージされることが示されている。またこのアミノ酸との結合は品質管理機構として機能し、確実にtRNAを機能的に保っている可能性がある（Martinis, S.A. 他(1999) EMBO J. 18:4591-4596）。
【００５９】
最適条件下でのポリペプチド合成の進行速度は、約40アミノ酸残基／秒である。翻訳時の誤った取り込みの比率は10-4 の位であり、主な原因はアミノアシル-t-RNAに間違ったアミノ酸でチャージされたことである。不正にチャージしたtRNAは細胞毒性を持つ。その理由は、それらが不正アミノ酸残基を、伸長するポリペプチドに組み込むためである。翻訳の速度は、最適な伸長速度と、翻訳忠実度の必要性との折衷で決まると推測される。数学的計算による予測では、10-4 が、生物系におけるタンパク質合成の最大許容エラー率である(概説は前出 Stryer, L. 及び Watson, J. 他 (1987) The Benjamin/Cummings Publishing Co., Inc. Menlo Park, CA)。特にエラーの多いアミノアシル-tRNAチャージングイベントは、tRNAGln のグルタミン（Gln）との結合である。このミスチャージングを補正する機序があり、これはその起源を進化の中に持つようである。Glnはポリペプチド合成に利用され自然界に現われる20種の天然アミノ酸の最後の集団にあった。グラム陽性真正細菌、シアノバクテリア、始原菌（Archeae）、及び真核生物のオルガネラは、Gln-tRNAGln の合成のための非典型的経路（noncanonical pathway）を持ち、この経路はGlu-tRNAGln (Glu-tRNAシンテターゼであるGluRSが合成)のトランスフォーメーションに基づくものであり、酵素であるGlu-tRNAGln アミドトランスフェラーゼ(Glu-AdT)を用いる。アミド基転移経路に関わる反応は次のとおりである(Curnow, A.W. 他 (1997) Nucleic Acids Symposium 36:2-4)。
GluRS
tRNAGln + Glu + ATP → Glu-tRNAGln + AMP + PPi
Glu-AdT
Glu-tRNAGln + Gln + ATP → Gln-tRNAGln + Glu + ADP + P
【００６０】
類似の酵素であるAsp-tRNAAsn アミドトランスフェラーゼは始原菌に存在し、Asp-tRNAAsn をAsn-tRNAAsnへ転換する。ホルミラーゼ(formylase)酵素は真正細菌においてMet-tRNAfMet をfMet-tRNAfMet へ転換し、これは近縁の酵素のようである。或る加水分解活性もまた、ミスチャージしたVal-tRNAIle を破壊することが同定されている(Schimmel, P. 他 (1998) FASEB J. 12:1599-1609)。原始的な生物形態におけるGlu-AdTの進化の、或る可能性のあるシナリオは、特異的グルタミニル-tRNAシンテターゼ(GlnRS)の不在が、Gln-tRNAGlnの合成のための代替経路を必要としたというものである。事実、グラム陽性細菌におけるGlu-AdTオペロンの欠失は致死的である(Curnow, A.W. 他 (1997) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94:11819-11826)。他の生物におけるGluRS活性の存在が自然界の翻訳機構における高度の保存によって推測されているが、GluRSは、ヒトを含む全ての生物において同定されていない。このような酵素は、翻訳忠実度を確保し、欠陥ポリペプチドの合成を減らすよう働くと思われる。
【００６１】
タンパク質合成における機能に加えて、特定のアミノアシルtRNA合成酵素群は、細胞忠実度、RNA スプライシング、RNA輸送、アポトーシス、及び転写と翻訳の調節で役割を果たす。 例えばヒトのチロシルtRNA合成酵素はたんぱく質分解により、別々のサイトカイン活性を持つ 2 つの部分に裂け得る。Ｃ末端ドメインは単球と白血球の走化作用を示し、また、ミエロペルオキシダーゼ、腫瘍壊死因子-α、及び組織因子の生成を刺激する。N末端ドメインはインターロイキン-8 タイプA受容体に結合し、インターロイキン8様サイトカインとして機能する。ヒトのチロシルtRNA合成酵素（TyrRS）はアポトーシス段階の腫瘍細胞から分泌される。また、アポトーシスを加速する可能性がある（Wakasugi, K 及び Schimmel, P (1999) Science 284:147-151）。ミトコンドリア型のアカパンカビ（Neurospora crassa）TyrRS 及び 出芽酵母（S. cerevisiae）LeuRSはグループIイントロンの数種のスプライシング活性に必須であり、ヒトのミトコンドリアLeuRSは酵母のヌル種（null strain）において酵母LeuRSとして代用できる。数種のバクテリアaaRSは、それ自身の転写又は翻訳の調節に関与している（前出Martinis）。数種のaaRSは、細胞増殖、分化、及びアポトーシスにおいて役割を持つシグナル伝達分子の１クラスである、ジアデノシン オリゴホスフェートを合成できる（Kisselev, L.L 他(1998) FEBS Lett. 427:157-163; Vartanian, A. 他 (1999) FEBS Lett. 456:175-180）。
【００６２】
アミノアシル-tRNAに対する自己抗体は、リウマチ関節炎、皮膚筋炎、及び多発性筋炎など、自己免疫疾患の患者によって産生される。また、複雑な間質性肺疾患（ILD）と強度に相関する(Freist, W. 他 (1999) Biol. Chem. 380:623-646; Freist, W. 他 (1996) Biol. Chem. Hoppe Seyler 377:343-356)。これらの自己抗体はウイルス感染に応じて産生されるとみられ、コクサッキー ウイルスは動物に実験的ウイルス性筋炎を誘発するために用いられている。
【００６３】
aaRS構造の、人体と病原体とでの比較は、新規の抗生物質の設計に有用となっている（Schimmel、前出）。遺伝子操作したaaRS群を用いてin vivoで、非天然アミノ酸群のタンパク質類への部位特異的取り込みが可能となっている(Liu, D.R. 他 (1997) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:10092-10097)。
【００６４】
tRNAの修飾
修飾されたリボヌクレオシドであるプソイドウリジン(Ψ)は、転移RNA (tRNA)、大小のリボソームRNA (rRNA)、及び核内低分子RNA (snRNA)のアンチコドン領域に偏在する。Ψは、tRNAに存在する最も一般的な修飾ヌクレオシド(すなわちG、A、U、及びC以外)である。タンパク合成に無関係のわずかな酵母tRNAのみが、Ψを持たない (Cortese, R. 他 (1974) J. Biol. Chem. 249:1103-1108)。ウリジンからΨへの転換を担う酵素であるプソイドウリジン合成酵素 (プソイドウリジル酸シンターゼ)は初め、ネズミチフス菌（Salmonella typhimurium）から単離された (Arena, F. 他 (1978) Nucleic Acids Res. 5:4523-4536)。この酵素はそれ以後、多数の哺乳類(例えば去勢ウシやマウス)から単離されている(Green, C.J. 他 (1982) J. Biol. Chem. 257:3045-52並びにChen, J.及びPatton, J.R. (1999) RNA 5:409-419)。tRNAプソイドウリジン合成酵素は、このファミリの、最も広く研究されているメンバーである。これらの酵素の最適活性には、チオール供与体(システインなど)と、一価カチオン(アンモニアやカリウムなど)とが必要である。付加的補因子や高エネルギー分子(ATPやGTP)は不要である(Green、前出)。別の真核生物プソイドウリジン合成酵素群が同定されており、rRNAに特異的なようである(概説はSmith, C.M.及びSteitz, J.A. (1997) Cell 89:669-672)。また、或る二重特異性酵素は、tRNA基質とrRNA基質との双方を利用することが同定されている(Wrzesinski, J. 他 (1995) RNA 1: 437-448)。ΨがtRNAのアンチコドンループ内に不在の場合、細菌(Singer, C.E. 他 (1972) Nature New Biol. 238:72-74)と酵母(Lecointe, F. (1998) 273:1316-1323)との双方において成長が低下するが、この遺伝子欠損は致死的ではない。
【００６５】
別のリボヌクレオシド修飾が主に真核細胞で起こる。これはグアノシンからN2,N2-ジメチルグアノシン(m22G)への転換であり、サイトゾル及びミトコンドリアのtRNAのDステムの塩基位置26又は10で起こる。この転写後修飾は、tRNA構造の安定化を、別のtRNA二次構造及び三次構造の形成を防ぐことで行うと思われる。酵母tRNAAsp は、この修飾を持たない点が特異である。この修飾は真正細菌には起こらず、理由はおそらく、これらの細胞とオルガネラとにおけるtRNAの構造が配列によって制約され、転写後修飾によって別の構造の形成を防ぐ必要がないためである(Steinberg, S.及びCedergren, R. (1995) RNA 1:886-891、及びその参照文献）。グアノシンからm22Gへの転換を担う酵素は、63 kDaのS-アデノシルメチオニン(SAM)-依存性tRNA N2,N2-ジメチルグアノシンメチルトランスフェラーゼである(TRM1 遺伝子産物とも呼ばれ、本明細書ではTRMと呼ぶ) (Edqvist, J. (1995) Biochimie 77:54-61)。この酵素は、核とミトコンドリアとの双方に局在する(Li, J-M. 他(1989) J. Cｅｌl. Biol.109:1411-1419)。  アフリカツメガエル由来のTRMでの研究に基づくと、修飾されるG26の直前のC11〜G24とG10〜C25との位置での塩基対合には或る要件があると思われ、tRNAの別の構造的特徴も、G26基質の適切な提示に必要に思われる (Edqvist. J. 他(1992) Nucleic Acids Res. 20:6575-6581)。酵母での研究が示唆するところでは、或る弱いオーカーtRNAサプレッサ(sup3-i)を有する細胞群は、TRM活性が無ければ翻訳終了を抑制できないことから、TRMが真核細胞においてtRNAの正しい三次元構造の確保という、より一般的な機能にくわえて、抑制の頻度を調整する役割をも持つことを示唆する(Niederberger, C. 他(1999) FEBS Lett. 464:67-70)。
【００６６】
翻訳開始
翻訳の開始は、３つのステージに分けることができる。第一ステージは、或る開始転移RNA (Met-tRNAf)と40Sリボソームサブユニットとから43S開始前複合体を形成する。第二ステージは、43S開始前複合体をmRNAと結合させた後、複合体を正しいAUG開始コドンに移動させる。第三ステージは、60Sリボソームサブユニットを40Sサブユニットに導き、開始コドンにおいて80Sリボソームを産生する。翻訳の調節には主に、開始プロセスにおける第一及び第二のステージが関わる(V.M. Pain (1996) Eur. J. Biochem. 236:747-771)。
【００６７】
数種の開始因子(その多くは複数のサブユニットを持つ)が、開始tRNAと40Sリボソームサブユニットとの複合に関わる。eIF2は１種のグアニンヌクレオチド結合タンパク質であり、開始tRNAを40Sリボソームサブユニットまで動員する。eIF2はGTPと結合した時にのみ開始tRNAと会合する。eIF2Bは１種のグアニンヌクレオチド交換タンパク質であり、eIF2の、GDP結合不活性型からGTP結合活性型への転換を担う。2種の別の因子であるeIF1AとeIF3とは、40Sサブユニットと結合し安定化させ、これは18SリボソームRNA及び特定のリボソーム構造タンパク質群と相互作用して行う。eIF3はまた、40SリボソームサブユニットとmRNAとの会合にも関わる。Met-tRNAf、eIF1A、eIF3及び40Sリボソームサブユニットは共に、43S開始前複合体を形成する（Pain、前出）。
【００６８】
細菌の翻訳開始因子IF2は、始原菌、酵母、哺乳動物、zebrafish、及びトウモロコシで同定されている相同体で進化的に保存されていることがわかっている(Choi, S.D. 他 (1998) Science 280:1757-1760; Lee, J.H. 他 (1999) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96:4342-4347)。酵母IF2をコードする遺伝子を欠いた出芽酵母の突然変異株を使って、IF2活性に関するこの進化的な保存を実証することができる。前出のChoi他に記載されているように、こうした突然変異株から調製された翻訳抽出物のタンパク質生合成活性は、組換えｙIF2を加えることにより回復することができる。これらの同じ翻訳抽出物の生物学的活性がヒト又は始原菌いずれのIF2の添加によっても回復するということは（前出のLee他）、進化を通じてIF2の機能が普遍的に保存されたとする説を支持する。
【００６９】
43S開始前複合体がmRNA分子と結合するには、複数の付加的因子が必要であり、このプロセスは、いくつかのレベルで調節される。eIF4Fという複合体は、３種のタンパク質、eIF4E, eIF4A, 及びeIF4Gからなる複合体である。eIF4EはmRNAの5'-末端m7GTPキャップを認識して結合し、eIF4Aは二方向性のRNA依存型ヘリカーゼであり、eIF4Gは一種の足場ポリペプチドである。eIF4Gは三つの結合ドメインを持つ。eIF4GのN末端側の三分の一はeIF4Eと相互作用し、中央の三分の一はeIF4Aと相互作用し、C末端の三分の一は43S開始前複合体に結合したeIF3と相互作用する。したがって、eIF4Gは、40SリボソームサブユニットとmRNAとの橋渡しをする(M.W. Hentze (1997) Science 275:500-501)。
【００７０】
eIF4Fが43S開始前複合体の結合を開始する能力は、mRNAの構造的特徴によって調節される。mRNA分子は、5'キャップとAUG開始コドンとの間に非翻訳領域(UTR)を持つ。数種のmRNAでは、この領域は43S開始前複合体の結合を妨害する二次構造を形成する。eIF4Aのヘリカーゼ活性は、この二次構造を除去して43S開始前複合体の結合を促進するよう機能すると思われる（Pain、前出）。
【００７１】
eIF4Eの過剰発現は細胞又は組織の急速な増殖及び悪性転換をもたらす。eIF4Eは２つの強力な腫瘍血管形成因子(VEGF 及び FGF-2)の翻訳を選択的に強めることにより、これらの因子の合成を促進する。eIF4Eは全ての頭部及び頚部の扁平上皮細胞癌及び一部のディスプラスチックマージン(dysplastic margins)において過剰発現される。頭部と頚部の腫瘍形成は、臨床的に明らかな前癌病変の後に複数ステップで起きると提案されている(Nathan 他 (1999) Laryngoscope 109:1253-1258; De Benedetti 及び Harris (1999) Int. J. Biochem. Cell Biol. 31:59-72)。
【００７２】
翻訳伸長
伸長プロセスでは、付加的アミノ酸群が開始メチオニンに結合し、完全ポリペプチド鎖を形成する。伸長因子であるEF1α、EF1βγ、及びEF2が、開始後のポリペプチド鎖の伸長に関わる。EF1αは、GTP結合タンパク質である。EF1αのGTP結合型では、EF1αがアミノアシルtRNAをリボソームのA部位に導く。新規に到着したアミノアシルtRNAに付着していたアミノ酸は、ペプチド結合を開始メチオニンとの間に形成する。EF1α上のGTPはGDPへ加水分解され、EF1α-GDPはリボソームから解離する。EF1βγがEF1α-GDPと結合し、GDPをEF1αから解離させることにより、EF1αはGTPと結合できるようになり新規サイクルが始まる。
【００７３】
次々にアミノアシルtRNAがリボソームに導かれ、EF-G(別のGTP結合タンパク質)が、リボソームのA部位からP部位へ、そして最後にはE部位へのtRNAの移動を触媒する。これにより、リボソームとmRNAは翻訳中に結合したままでいられる。
【００７４】
伸長因子２（eEF-2）は100kDaのタンパク質であってリボソームの転座反応を触媒し、その結果ｍRNAに沿ってリボソームが動く。eEF-2 は非常に特異的なCa2+/カルモジュリン依存性eEF-2キナーゼの標的である。.eEF-2をリン酸化すると翻訳時に不活性になる。このことはCa2+により、eEF-2のリン酸化を通じてタンパク質合成を調節できることを意味する。したがって、eEF-2のリン酸化は、細胞周期及びその他の、細胞内のCa2+ 濃度変化が細胞の新しい生理的な状態を誘発するようなプロセスを調節する。これらのプロセスにおけるeEF-2リン酸化の主な役割は、細胞質内のCa2+ 濃度の過渡的な増加への応答として全体的な翻訳が起こるのを一時的に阻止することである。翻訳を一時的に阻止することにより、細胞の一つの生理的状態から別の状態への遷移がトリガされることがある。なぜなら、短命なリプレッサーがなくなって新しい遺伝子群の発現を活性化するからである(Ryazanov 及び Spirin (1990) New Biol. 2:843-850)。
【００７５】
mRNAの翻訳を調節する他のリボソームタンパク質としては、網膜芽細胞種タンパク質（Rb1）、HIV-1 TAR RNA結合タンパク質（TARBP-b）、v-fos形質転換エフェクタータンパク質（Fte-1）、コリン癌腫(colin carcinoma)ラミニン結合タンパク質、ウィルムス腫瘍関連タンパク質（QM）,リボソームホスホプロテインP0、P1及びP2、ユビキチン、及びエプスタインバーウイルスの小RNA関連タンパク質（EAP）などが挙げられる。
【００７６】
翻訳終了
放出因子（release factor）であるeRFが翻訳を終了させる。eRFはmRNA内の停止コドンを認識し、ポリペプチド鎖をリボソームから遊離させる。
【００７７】
新規の核酸関連タンパク質及びそれらをコードするポリヌクレオチド群の発見により、新規の組成物群を提供することで、当分野の要望に応えることができる。これら新規の組成物は、細胞増殖異常、神経疾患、発達障害、自己免疫／炎症疾患、及び感染症の、診断・治療・予防において有用であり、また、核酸関連タンパク質の核酸配列及びアミノ酸配列の発現における外来化合物群の効果についての算定にも有用である。
【発明の開示】
【発明の効果】
【００７８】
本発明は、総称して「NAAP」、個別にはそれぞれ「NAAP-1」、「NAAP-2」、「NAAP-3」、「NAAP-4」、「NAAP-5」、「NAAP-6」、「NAAP-7」、「NAAP-8」、「NAAP-9」及び「NAAP-10」と呼ぶ核酸関連タンパク質である精製されたポリペプチドを提供する。或る実施態様において本発明は、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列からなるポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列と少なくとも９０％が同一である天然のアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的活性断片、又は（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片を含む群から選択した単離されたポリペプチドを提供する。一実施態様では、SEQ ID NO:1-10のアミノ酸配列を含む単離されたポリペプチドを提供する。
【００７９】
また、本発明は（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列と少なくとも９０％の相同性を有する天然のアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的活性断片、及び（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片からなる群より選択されたポリペプチドをコードするような単離されたポリヌクレオチドを提供する。一実施態様では、ポリヌクレオチドはSEQ ID NO:1-10からなる群から選択したポリペプチドをコードする。別の実施態様では、ポリヌクレオチドはSEQ ID NO:11-20からなる群から選択される。
【００８０】
本発明は更に、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列と少なくとも90%が同一である天然のアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的活性断片、及び（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片からなる群から選択したポリペプチドをコードするようなポリヌクレオチドと機能的に連結したプロモーター配列を有する組換えポリヌクレオチドを提供する。一実施態様では、本発明は組換えポリヌクレオチドを用いて形質転換した細胞を提供する。別の実施態様では、本発明は組換えポリヌクレオチドを含む遺伝形質転換体を提供する。
【００８１】
更に本発明は、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択されたアミノ酸配列からなるポリペプチドと、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択されたアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有する天然のアミノ酸配列からなるポリペプチドと、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択されたアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的に活性な断片と、（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択されたアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片とで構成される群から選択されたポリペプチドを製造する方法を提供する。製造方法は、（ａ）ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドに機能的に連結したプロモーター配列を含む組換えポリヌクレオチドを用いて形質転換した細胞をポリペプチドの発現に適した条件下で培養する過程と、（ｂ）そのように発現したポリペプチドを回収する過程とを含む。
【００８２】
本発明は更に、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列と少なくとも９０％同一である天然のアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的活性断片、及び（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片から構成される群から選択されたポリペプチドに特異結合するような単離された抗体を提供する。
【００８３】
本発明は更に、（ａ）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択したポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド、（ｂ）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択したポリヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有する天然のポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド、（ｃ）（ａ）に相補的なポリヌクレオチド、（ｄ）（ｂ）に相補的なポリヌクレオチド、及び（ｅ）（ａ）〜（ｄ）のRNA等価物からなる群から選択された単離されたポリヌクレオチドを提供する。一実施態様では、ポリヌクレオチドは少なくとも６０の連続したヌクレオチドを有する。
【００８４】
本発明は更に、サンプル中の標的ポリヌクレオチドを検出する方法を提供する。ここで、標的ポリヌクレオチドは（ａ）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択したポリヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチド、（ｂ）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択したポリヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有する天然のポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド、（ｃ）（ａ）に相補的なポリヌクレオチド、（ｄ）（ｂ）に相補的なポリヌクレオチド、及び（ｅ）（ａ）〜（ｄ）のRNA等価物からなる群から選択されたポリヌクレオチドの配列を有する。検出方法は、（ａ）サンプル中の前記の標的ポリヌクレオチドに相補的な配列を含む、少なくとも２０の連続したヌクレオチドを含むプローブを用いて該サンプルをハイブリダイズする過程と、（ｂ）ハイブリダイゼーション複合体の存在・不存在を検出し、複合体が存在する場合にはオプションでその量を検出する過程からなり、プローブと標的ポリヌクレオチド或いはその断片の間でハイブリダイゼーション複合体が形成されるような条件下で、プローブは標的ポリヌクレオチドに特異的にハイブリダイズする。一実施態様では、プローブは少なくとも６０の連続したヌクレオチドを含む。
【００８５】
本発明はまた、サンプル中の標的ポリヌクレオチドを検出する方法を提供する。ここで、標的ポリヌクレオチドは、（ａ）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択したポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド、（ｂ）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択したポリヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有する天然のポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド、（ｃ）（ａ）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（ｄ）（ｂ）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、及び（ｅ）（ａ）〜（ｄ）のRNA等価物からなる群から選択された配列のポリヌクレオチドを有する。検出方法は、（ａ）ポリメラーゼ連鎖反応増幅を用いて標的ポリヌクレオチド又はその断片を増幅する過程と、（ｂ）前記の増幅した標的ポリヌクレオチド又はその断片の存在・不存在を検出し、該標的ポリヌクレオチド又はその断片が存在する場合にはオプションでその量を検出する過程を含む。
【００８６】
本発明は更に、有効量のポリペプチドと薬剤として許容できる賦形剤とを含む組成物を提供する。有効量のポリペプチドは、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有する天然のアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチドの生物学的活性断片、及び（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列の免疫原性断片からなる群から選択される。一実施態様では、この組成物はSEQ ID NO:1-16からなる一群から選択されたアミノ酸配列を持つ。更に、本発明は、機能的NAAPの発現の低下に関連した疾患や症状の治療を必要とする患者にこの組成物を投与することを含む方法を提供する。
【００８７】
本発明はまた、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有する天然のアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的活性断片、及び（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片からなる群から選択されたポリペプチドのアゴニストとしての有効性を確認するために化合物をスクリーニングする方法を提供する。スクリーニング方法は、（ａ）ポリペプチドを含むサンプルを化合物に曝す過程と、（ｂ）サンプル中のアゴニスト活性を検出する過程とを含む。別法では、本発明は、この方法によって同定されたアゴニスト化合物と好適な医薬用賦形剤とを含む組成物を提供する。更なる別法では、本発明は、機能的NAAPの発現の低下を伴う疾患や症状の治療を要する患者への、この組成物の投与方法を提供する。
【００８８】
本発明は更に、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択した或るアミノ酸配列を持つポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択した或るアミノ酸配列との少なくとも９０％の同一性を有する天然アミノ酸配列を持つポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を持つポリペプチドの生物学的活性断片、及び（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を持つポリペプチドの免疫原性断片、からなる群から選択したポリペプチドのアンタゴニストとしての有効性につき、或る化合物をスクリーニングする方法を提供する。スクリーニング方法は、（ａ）該ポリペプチドを含むサンプルを或る化合物に曝す過程と、（ｂ）サンプル中のアンタゴニスト活性を検出する過程からなる。別の一実施態様で本発明は、この方法で同定したアンタゴニスト化合物と薬物として許容し得る賦形剤とを有する組成物を提供する。更なる別法では、本発明は、機能的NAAPの過剰な発現に関連した疾患や症状の治療を必要とする患者へのこの組成物の投与を含む方法を提供する。
【００８９】
本発明は更に、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列と少なくとも９０％の同一性を有する天然のアミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの生物学的活性断片、又は（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列を有するポリペプチドの免疫原性断片を含む群から選択されたポリペプチドに特異結合する化合物をスクリーニングする方法を提供する。スクリーニング方法は、（ａ）ポリペプチドを適切な条件下で少なくとも１つの試験化合物と混合させる過程と、（ｂ）試験化合物とのポリペプチドの結合を検出し、それによってポリペプチドに特異結合する化合物を同定する過程とを含む。
【００９０】
本発明は更に、（ａ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択した或るアミノ酸配列を持つポリペプチド、（ｂ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択したアミノ酸配列との少なくとも９０％の同一性を有する或る天然アミノ酸配列を含むポリペプチド、（ｃ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択した或るアミノ酸配列を持つポリペプチドの生物学的活性断片、及び（ｄ）SEQ ID NO:1-10からなる群から選択した或るアミノ酸配列を持つポリペプチドの免疫原性断片、からなる群から選択した或るポリペプチドの活性を調節する或る化合物をスクリーニングする方法を提供する。スクリーニング方法は、（ａ）該ポリペプチドの活性にとり許容し得る条件下で、該ポリペプチドを少なくとも１つの試験化合物と混合する過程と、（ｂ）該ポリペプチドの活性をこの試験化合物の存在下で算定する過程と、（ｃ）この試験化合物の存在下での該ポリペプチドの活性をこの試験化合物の不存在下での該ポリペプチドの活性と比較する過程からなり、この試験化合物の存在下での該ポリペプチドの活性の変化は、該ポリペプチドの活性を調節する化合物を標示する。
【００９１】
更に本発明は、SEQ ID NO:11−20からなる群から選択されたポリヌクレオチド配列を含む標的ポリヌクレオチドの発現を変容させるのに効果的な化合物をスクリーニングする方法を提供し、その方法には、（ａ）この標的ポリヌクレオチドを含むサンプルを化合物に曝露する過程と、（ｂ）この標的ポリヌクレオチドの発現の変容を検出する過程と、（c）可変量の化合物の存在下と化合物の非存在下で標的ポリヌクレオチドの発現を比較する過程が含まれる。
【００９２】
本発明は更に、試験化合物の毒性の算定方法を提供する。この方法には、以下の過程がある。（ａ）核酸群を有する生体サンプルを試験化合物で処理する過程。（ｂ）処理済み生体サンプルの核酸群をハイブリダイズする過程。この過程には、次のようなプローブを用いる。（i）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択した或るポリヌクレオチド配列を持つポリヌクレオチド、（ii）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択した或るポリヌクレオチド配列との少なくとも９０％の同一性を有する天然ポリヌクレオチド配列を有するポリヌクレオチド、（iii）（i）に相補的な配列を持つポリヌクレオチド、（iv）（ii）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、（v）（i）〜（iv）のRNA等価物、からなる群から選択した或るポリヌクレオチドの少なくとも２０の連続したヌクレオチド群からなるプローブである。ハイブリダイゼーションは、上記プローブと生物学的サンプル中の標的ポリヌクレオチドの間に特定のハイブリダイゼーション複合体が形成されるような条件下で発生し、上記標的ポリヌクレオチドは、（i）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択したポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド、（ii）SEQ ID NO:11-20からなる群から選択したポリヌクレオチド配列と少なくとも９０％の同一性を有する天然のポリヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチド、（iii）（i）のポリヌクレオチドに相補的な配列を有するポリヌクレオチド、（iv）（ii）のポリヌクレオチドに相補的なポリヌクレオチド、及び（v）（i）〜（iv）のRNA等価物からなる群から選択する。或いは、標的ポリヌクレオチドは、上記（i）〜（v）からなる群から選択したポリヌクレオチド配列の断片を有する。毒性の算定方法には更に（ｃ）ハイブリダイゼーション複合体の量を定量する過程と、（ｄ）処理した生物学的サンプルのハイブリダイゼーション複合体の量を、非処理の生物学的サンプルのハイブリダイゼーション複合体の量と比較する過程を含み、処理した生物学的サンプルのハイブリダイゼーション複合体の量との差は、試験化合物の毒性を意味する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００９３】
（本発明の記載について）
本発明のタンパク質、ヌクレオチド配列及び方法について説明するが、その前に、説明した特定の装置、材料及び方法に本発明が限定されるものではなく、改変し得ることを理解されたい。また、ここで使用する専門用語は特定の実施例を説明する目的で用いたものに過ぎず、特許請求の範囲にのみ限定される本発明の範囲を限定することを意図したものではないことも併せて理解されたい。
【００９４】
請求の範囲及び明細書中で用いている単数形の「或る」及び「その（この）」の表記は、文脈から明らかにそうでないとされる場合を除いて複数のものを指す場合もあることに注意しなければならない。従って、例えば「或る宿主細胞」と記されている場合にはそのような宿主細胞が複数あることもあり、「或る抗体」と記されている場合には単数又は複数の抗体、及び、当業者に公知の抗体の等価物等についても言及しているのである。
【００９５】
本明細書中で用いる全ての技術用語及び科学用語は、特に定義されている場合を除き、当業者に一般に理解されている意味と同じ意味を有する。本明細書で説明するものと類似或いは同等の任意の装置、材料及び方法を用いて本発明の実施又は試験を行うことができるが、ここでは好適な装置、材料、方法について説明する。本発明で言及する全ての刊行物は、刊行物中で報告されていて且つ本発明に関係して用い得る細胞株、プロトコル、試薬及びベクターについて説明及び開示する目的で引用しているものである。本明細書のいかなる開示内容も、本発明が先行技術の効力によってこのような開示に対して先行する権利を与えられていないことを認めるものではない。
【００９６】
（定義）
用語「NAAP」は、天然、合成、半合成或いは組換え体などの、全ての種（特にウシ、ヒツジ、ブタ、ネズミ、ウマ及びヒトを含む哺乳動物）から得られる実質的に精製されたNAAPのアミノ酸配列を指す。
【００９７】
用語「アゴニスト」は、NAAPの生物学的活性を強めたり、模倣する分子を指す。アゴニストの例として、タンパク質、核酸、糖質、小分子その他の任意の化合物や組成物を挙げることができるが、これらはNAAPと直接相互作用することによって、或いはNAAPが関与する生物学的経路の構成成分に作用することによって、NAAPの活性を調節する。
【００９８】
用語「対立遺伝子変異体／変異配列」は、NAAPをコードする別の形の遺伝子を指す。対立遺伝子変異体は、核酸配列における少なくとも１つの突然変異から作製し得る。また、変容したRNA又はポリペプチドからも作製し得る。ポリペプチドの構造又は機能は、変異することもしないこともある。遺伝子は、天然の対立遺伝子変異体を全く有しないか、１個若しくは数個の天然の対立遺伝子変異体を有し得る。対立遺伝子変異体を生じさせる通常の突然変異性変化は一般に、ヌクレオチドの自然な欠失、付加又は置換に帰するものである。これら各変化は、単独で或いは他の変化と共に、所定の配列内で1回若しくは数回生じ得る。
【００９９】
NAAPをコードする「変容した／改変された」核酸配列に含む配列には、様々なヌクレオチドの欠失、挿入、或いは置換を有し、その結果、NAAPと同一のポリペプチドを、或いは、NAAPの機能的特徴の少なくとも１つを備えるポリペプチドを生じる配列がある。この定義には、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列にとり正常な染色体の遺伝子座ではない位置での、対立遺伝子変異配列群への不適当或いは予期しないハイブリダイゼーションを含み、また、NAAPをコードするポリヌクレオチドの或る特定のオリゴヌクレオチドプローブを用いて容易に検出可能な或いは検出困難な多型性を含む。コードされるタンパク質も「変容する／改変される」ことがあり、また、サイレント変化を生じた結果、機能的に等価なNAAPとなるような、アミノ酸残基の欠失、挿入又は置換を持ち得る。意図的なアミノ酸置換は、生物学的或いは免疫学的にNAAPの活性が保持される範囲で、残基群の、極性、電荷、溶解度、疎水性、親水性、及び／又は両親媒性についての、類似性に基づいて成され得る。例えば、負に帯電したアミノ酸にはアスパラギン酸及びグルタミン酸があり、正に帯電したアミノ酸にはリジン及びアルギニンがある。親水性値が近似している非荷電極性側鎖を有するアミノ酸には、アスパラギンとグルタミン、セリンとトレオニンがある。親水性値が近似している非荷電側鎖を有するアミノ酸には、ロイシンとイソロイシンとバリン、グリシンとアラニン、フェニルアラニンとチロシンがある。
【０１００】
用語「アミノ酸」及び「アミノ酸配列」は、オリゴペプチド、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質配列、或いはそれらの任意の断片を指し、天然の分子及び合成分子を含む。「アミノ酸配列」が天然のタンパク質分子の配列を指す場合、「アミノ酸配列」及び類似の用語は、アミノ酸配列を記載したタンパク質分子に関連する完全で元のままのアミノ酸配列に限定するものではない。
【０１０１】
用語「増幅」は、核酸配列の複製物を作製することに関連する。増幅は通常、当業者によく知られたポリメラーゼ連鎖反応（PCR）技術を用いて行う。
【０１０２】
用語「アンタゴニスト」は、NAAPの生物学的活性を阻害或いは減弱する分子を指す。アンタゴニストとしては、NAAPと直接に相互作用するか或いはNAAPが関与する生物学的経路の諸成分に作用してNAAPの活性を調節する、抗体などのタンパク質、核酸、糖質、小分子、任意の他の化合物や組成物を含み得る。
【０１０３】
「抗体」の語は、抗原決定基と結合することができる、そのままの免疫グロブリン分子やその断片、例えばFab、F(ab')2 及びFv断片を指す。NAAPポリペプチド群と結合する抗体類の作製には、免疫抗原として、無傷ポリペプチド群を用いることができ、又は、当該の小ペプチド群を有する断片群を用い得る。動物（マウス、ラット、ウサギ等）を免疫化するために用いるポリペプチド又はオリゴペプチドは、ＲＮＡの翻訳に、又は化学合成によって得られるポリペプチド又はオリゴペプチドに由来し得るもので、所望によりキャリアタンパク質に抱合することも可能である。通常用いられるキャリアであってペプチドと化学結合するものは、ウシ血清アルブミン、サイログロブリン及びスカシガイのヘモシアニン（KLH）等がある。その結合ペプチドは、動物を免疫化するために用いる。
【０１０４】
用語「抗原決定基」は、特定の抗体と接触する、分子の領域（即ちエピトープ）を指す。タンパク質又はタンパク質断片を用いて宿主動物を免疫化する場合、タンパク質の多数の領域が、抗原決定基（タンパク質の特定の領域又は３次元構造）に特異結合する抗体の産生を誘導し得る。抗原決定基は、抗体に結合するための無損傷抗原（即ち免疫応答を誘導するために用いられる免疫原）と競合し得る。
【０１０５】
用語「アプタマー（aptamer）」は、核酸又はオリゴヌクレオチド分子であって、特定の分子ターゲットに結合する分子を指す。アプタマーはin vitroでの進化プロセスに由来する（例えば、SELEX（Systematic Evolution of Ligands by EXponential Enrichmentの略、試験管内選択法）、米国特許第5,270,163号に記述）。これは、大規模な組み合わせライブラリ群から標的特異的アプタマー配列を選択するプロセスである。アプタマー組成は、２本鎖又は１本鎖であってもよく、デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、ヌクレオチド誘導体、又は他のヌクレオチド様分子を含み得る。アプタマーのヌクレオチド成分は、修飾された糖基（例えばリボヌクレオチドの2'-OH基が2'-F又は2'-NH2で置換し得る）を有することが可能で、そのような糖基はヌクレアーゼへの抵抗性又は血液中でのより長い寿命などの望ましい性質に改善し得る。循環系からアプタマーが除去される速度を遅くするために、アプタマーを高分子量キャリア等の分子に抱合させることができる。アプタマーは、たとえば架橋剤の光活性化によって、各々の同種リガンドと特異的に架橋させることができる（Brody, E.N. 及び L. Gold (2000) J. Biotechnol. 74:5-13等を参照）。
【０１０６】
「intramer」の用語はin vivoで発現されるアプタマーを意味するたとえば、ワクシニアウイルスに基づくＲＮＡ発現系は、白血球の細胞質で特定のＲＮＡ アプタマーが高レベルで発現するために使用されている（Blind, M. 他 (1999) Proc. Natl Acad. Sci. USA 96:3606-3610）。
【０１０７】
「spiegelmer」の語はＬ-ＤＮＡ、Ｌ-ＲＮＡその他の左旋性ヌクレオチド誘導体又はヌクレオチド様分子を含むアプタマーを指す。左旋性ヌクレオチドを含むアプタマーは、右旋性のヌクレオチドを含む基質に通常作用する天然の酵素による分解に耐性がある。
【０１０８】
本明細書において「アンチセンス」は、特定の核酸配列のセンス（コーディング）鎖と塩基対を形成し得る任意の組成物を指す。アンチセンス成分には、DNAや、RNAや、ペプチド核酸（PNA）や、ホスホロチオ酸、メチルホスホン酸又はベンジルホスホン酸等の修飾されたバックボーン結合を有するオリゴヌクレオチドや、2'-メトキシエチル糖又は2'-メトキシエトキシ糖等の修飾された糖類を有するオリゴヌクレオチドや、或いは5-メチルシトシン、2-デオキシウラシル又は7-デアザ-2'-デオキシグアノシン等の修飾された塩基を有するオリゴヌクレオチドがある。アンチセンス分子は、化学合成又は転写を含む任意の方法で製造することができる。相補的アンチセンス分子は、ひとたび細胞に導入されたら、細胞が形成した天然の核酸配列と塩基対を形成し、転写又は翻訳を妨害する二重鎖を形成する。「負」又は「マイナス」という表現は、ある参考ＤＮＡ分子のアンチセンス鎖を意味し、「正」又は「プラス」という表現はある参考ＤＮＡ分子のセンス鎖を意味しうる。
【０１０９】
用語「生物学的に活性」は、天然分子の構造的、調節的、或いは生化学的な機能を有するタンパク質を指す。同様に、用語「免疫学的に活性」又は「免疫原性」は、天然或いは組換え体のNAAP、合成NAAP、又はそれらの任意のオリゴペプチドが、適当な動物或いは細胞内の特定の免疫応答を誘発して特定の抗体と結合する能力を指す。
【０１１０】
「相補(的)」又は「相補性」の語は、塩基対形成によってアニーリングする2つの一本鎖核酸の間の関係を指す。例えば、「5'-AGT-3'」は、その相補配列「3'-TCA-5'」との対を形成する。
【０１１１】
「〜のポリヌクレオチド配列を含む(有する)組成物」又は「〜のアミノ酸配列を含む（有する）組成物」は広い意味で、所定のポリヌクレオチド配列若しくはアミノ酸配列を含む任意の組成物を指す。この組成物には、乾燥製剤又は水溶液が含まれ得る。NAAPをコード、若しくはNAAPの断片をコードするポリヌクレオチド配列を持つ組成物は、ハイブリダイゼーションプローブとして使用され得る。このプローブは、凍結乾燥状態で保存可能であり、糖質などの安定化剤と結合させることが可能である。ハイブリダイゼーションにおいては、塩（例えばNaCl）、界面活性剤（例えばドデシル硫酸ナトリウム；SDS）及びその他の構成成分（例えばデンハート液、粉乳、サケの精子のDNA等）を含む水溶液中にプローブを分散させることができる。
【０１１２】
「コンセンサス配列」は、不要な塩基を分離するためにDNA配列の解析を繰り返し行い、XL-PCRキット（PE Biosystems,Foster City CA）を用いて５'及び／又は３'の方向に伸長され、再度シークエンシングされた核酸配列、又はGELVIEW 断片構築システム（GCG, Madison, WI）又はPhrap (University of Washington, Seattle WA)等の断片構築用のコンピュータプログラムを用いて１つ或いはそれ以上のオーバーラップするcDNAやEST、又はゲノムDNA断片から構築された核酸配列を指す。伸長及び構築の両方を行ってコンセンサス配列を決定する配列もある。
【０１１３】
用語「保存的なアミノ酸置換」は、元のタンパク質の特性を殆ど変えない置換を指す。即ち、置換によってそのタンパク質の構造や機能が大きくは変わらず、そのタンパク質の構造、特にその機能が保存される。下表は、タンパク質中で元のアミノ酸と置換できて、保存アミノ酸置換と認められるアミノ酸を示している。
2005504509.tif 000002
【０１１４】
保存アミノ酸置換では通常、（ａ）置換領域におけるポリペプチドのバックボーン構造、例えばβシートやα螺旋構造、（ｂ）置換部位における分子の電荷又は疎水性、及び／又は（ｃ）側鎖の大部分を保持する。
【０１１５】
用語「欠失」は、１個以上のアミノ酸残基が欠如するアミノ酸配列の変化、或いは１個以上のヌクレオチドが欠如する核酸配列の変化を指す。
【０１１６】
用語「誘導体」は、化学修飾されたポリヌクレオチド又はポリペプチドを指す。例えば、アルキル基、アシル基、ヒドロキシル基又はアミノ基による水素の置換は、ポリヌクレオチド配列の化学修飾に含まれ得る。ポリヌクレオチド誘導体は、天然分子の生物学的又は免疫学的機能を少なくとも１つは保持しているポリペプチドをコードする。ポリペプチド誘導体は、グリコシル化、ポリエチレングリコール化（pegylation）、或いは任意の同様なプロセスであって、誘導起源のポリペプチドの少なくとも１つの生物学的若しくは免疫学的機能を保持するプロセスによって、修飾されたポリペプチドである。
【０１１７】
「検出可能な標識」は、測定可能な信号を発生し得る、ポリヌクレオチドやポリペプチドに共有結合或いは非共有結合するレポーター分子や酵素を指す。
【０１１８】
「差次的発現」は少なくとも2つの異なったサンプルを比較することによって決められる、増加（上方調節）、或いは減少（下方調節）、又は欠損遺伝子又はタンパク発現の欠損を指す。このような比較は例えば、治療後サンプルと未治療のサンプル又は病態のサンプルと正常サンプルの間で行われ得る。
【０１１９】
「エキソンシャフリング」は、異なるコード領域（エキソン）の組換えを意味する。1つのエキソンはコードされるタンパク質の1つの構造的又は機能的ドメインを代表し得るため、安定したサブストラクチャー群の新たな組み合わせによって、新しいタンパク質が組立てられることが可能であり、新しいタンパク質機能の進化を促進できる。
【０１２０】
用語「断片」は、NAAPの又はNAAPをコードするポリヌクレオチドの固有の部分であって、その親配列（parent sequence）と配列は同一であるが親配列より長さが短いものを指す。断片は、定義された配列の全長から１ヌクレオチド／アミノ酸残基を差し引いた長さよりも短い長さを有し得る。例えば或る断片は、５〜１０００の連続したヌクレオチド又はアミノ酸残基を有し得る。プローブ、プライマー、抗原、治療用分子として、或いはその他の目的のために用いられる断片は、少なくとも５、１０、１５、２０、２５、３０、４０、５０、６０、７５、１００、１５０、２５０若しくは５００の連続したヌクレオチド或いはアミノ酸残基長さであり得る。断片は、分子の特定領域から選択的に選択し得る。例えば、ポリペプチド断片は、所定の配列に示すような最初の２５０又は５００アミノ酸（又はポリペプチドの最初の２５％又は５０％）から選択された或る長さの連続したアミノ酸を有し得る。これらの長さは明らかに例として挙げているものであり、本発明の実施例では、配列表、表及び図面を含む明細書に裏付けされた任意の長さであってよい。
【０１２１】
SEQ ID NO:11-20 の断片は、例えば、この断片を得たゲノム内の他の配列とは異なる、SEQ ID NO:11-20 を明確に同定する固有のポリヌクレオチド配列の領域を含む。SEQ ID NO:11-20のある断片は、例えば、ハイブリダイゼーションや増幅技術、又はSEQ ID NO:11-20を関連ポリヌクレオチド配列から区別する類似の方法に有用である。SEQ ID NO:11-20の断片の正確な長さ及び、断片が対応するSEQ ID NO:11-20の領域は、断片に対する意図した目的に基づき当業者が慣例的に決定することが可能である。
【０１２２】
SEQ ID NO:1-10 のある断片は、SEQ ID NO:11-20のある断片によってコードされる。 SEQ ID NO:1-10 のある断片には、SEQ ID NO:1-10を特異的に同定する固有のアミノ酸配列領域が含まれている。 例えば、SEQ ID NO:1-10 のある断片は、SEQ ID NO:1-10を特異認識する抗体を産出するための免疫原性ペプチドとして有用である。 SEQ ID NO:1-10 のある断片の正確な長さ、及びその断片が対応するSEQ ID NO:1-10 の領域は、断片に対する意図した目的に基づき当業者が慣例的に決定することが可能である。
【０１２３】
「完全長」ポリヌクレオチド配列とは、少なくとも１つの翻訳開始コドン（例えばメチオニン）、オープンリーディングフレーム及び翻訳終止コドンを有する配列である。「完全長」ポリヌクレオチド配列は、「完全長」ポリペプチド配列をコードする。
【０１２４】
「相同性」の語は、２つ以上のポリヌクレオチド配列又は２つ以上のポリペプチド配列の配列類似性、互換性、又は配列同一性を意味する。
【０１２５】
ポリヌクレオチド配列についての用語「一致率」又は「一致性％」とは、標準化されたアルゴリズムを用いてアラインメントされる、２つ以上のポリヌクレオチド配列間の一致する残基の百分率のことである。このようなアルゴリズムは、２配列間のアラインメントを最適化するために比較する配列において、標準化された再現性のある方法でギャップを挿入するので、２つの配列をより有意に比較できる。
【０１２６】
ポリヌクレオチド配列間の一致率は、MEGALIGN version 3.12e配列アラインメントプログラムに組込まれているようなCLUSTAL Vアルゴリズムのデフォルトのパラメータを用いて決定できる。このプログラムは、LASERGENE ソフトウエアパッケージ(一組の分子生物学的分析プログラム)(DNASTAR, Madison WI)の一部である。このCLUSTAL Vは、Higgins, D.G.及びP.M. Sharp（1989）CABIOS 5:151-153、Higgins, D.G. 他（1992）CABIOS 8:189-191に記載されている。ポリヌクレオチド配列をペアワイズアラインメントする際のデフォルトパラメータは、Ktuple=2、gap penalty=5、window=4、「diagonals saved」=4と設定される。「weighted」残基重み付け表がデフォルトで選択される。一致率は、アラインメントされたポリヌクレオチド配列間の「類似性パーセント」としてCLUSTAL Vによって報告される。
【０１２７】
或いは、米国国立バイオテクノロジー情報センター（NCBI）のBasic Local Alignment Search Tool（BLAST）が一般的に用いられ、且つ、無料で入手可能な配列比較アルゴリズム一式を提供している（Altschul, S.F. 他（1990）J. Mol. Biol. 215:403-410）。BLASTアルゴリズムは、幾つかの情報源から入手可能であり、メリーランド州ベセスダにあるNCBI及びインターネット（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/）からも入手可能である。このBLASTソフトウェア一式には、既知のポリヌクレオチド配列と様々なデータベースの別のポリヌクレオチド配列とのアラインメントに用いられる「blastn」を含む、様々な配列分析プログラムが含まれる。「BLAST 2 Sequences」と呼ばれるツールが入手可能であり、２つのヌクレオチド配列の直接のペアワイズで比較するために用いられる。「BLAST 2 Sequences」は、http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/bl2.htmlにアクセスして、対話形式で利用ができる。「BLAST 2 Sequences」ツールは、blastn 及び blastp（以下に記載）の両方に用い得る。BLASTプログラムは、一般的には、ギャップ及び他のパラメータをデフォルト設定に設定して用いる。例えば、２つのヌクレオチド配列を比較するために、デフォルトパラメータに設定された「BLAST 2 Sequences」ツールVersion 2.0.12（2000年4月21日）を用いてblastnを実行してもよい。デフォルトパラメータの設定例を以下に示す。
【０１２８】
2005504509.tif 000003
【０１２９】
一致率は、ある定義された配列の全長（例えば特定のSEQ IDナンバーで定義された配列）で測定し得る。或いは、より短い長さ、例えば、定義された、より大きな配列から得られた断片（例えば少なくとも２０、３０、４０、５０、７０、１００又は２００の連続したヌクレオチドの断片）の長さと比較して一致率を測定してもよい。ここに挙げた長さは単なる例示的なものに過ぎず、表、図及び配列リストを含めた本明細書に記載された配列に裏付けられた任意の配列長さの断片を用いて、一致率を測定し得る長さを説明し得ることを理解されたい。
【０１３０】
高度の相同性を示さない核酸配列が、それにもかかわらず遺伝子コードの縮重が原因で類似のアミノ酸配列をコードする場合がある。この縮重を利用して核酸配列内で変化を生じさせて、全ての核酸配列が実質上同一のタンパク質をコードするような多数の核酸配列を生成し得ることを理解されたい。
【０１３１】
ポリペプチド配列に用いられる用語「一致率」又は「一致性％」とは、標準化されたアルゴリズムを用いてアラインメントされる２つ以上のポリペプチド配列間の一致する残基の百分率のことである。ポリペプチド配列アラインメントの方法は公知である。保存的アミノ酸置換を考慮するアラインメント方法もある。既に詳述したこのような保存的置換は通常、置換部位の電荷及び疎水性を保存するので、ポリペプチドの構造を（したがって機能も）保存する。
【０１３２】
ポリペプチド配列間の一致率は、MEGALIGN version 3.12e配列アラインメントプログラムに組込まれているようなCLUSTAL Vアルゴリズムのデフォルトのパラメータを用いて決定できる（既に説明したのでそれを参照されたい）。CLUSTAL Vを用いて、ポリペプチド配列をペアワイズアラインメントする際のデフォルトパラメータは、Ktuple=1、gap penalty=3、window=5、「diagonals saved」=5と設定される。PAM250マトリクスが、デフォルトの残基重み付け表として選択される。ポリヌクレオチドアラインメントと同様に、CLUSTAL Vは、アラインメントされたポリペプチド配列対間の「類似率」として一致率を報告する。
【０１３３】
或いは、NCBI BLASTソフトウェア一式を用いてもよい。例えば、２つのポリペプチド配列をペアワイズで比較する場合、「BLAST 2 Sequences」ツールVersion 2.0.12（2000年4月21日）のblastpをデフォルトパラメータに設定して用い得る。デフォルトパラメータの設定例を以下に示す。
【０１３４】
2005504509.tif 000004
【０１３５】
一致率は、定義された（例えば特定の配列番号で定義された）ポリペプチド配列全体の長さと比較して測定し得る。或いは、より短い長さ、例えばより大きな定義されたポリペプチド配列から得られた断片（例えば少なくとも１５、２０、３０、４０、５０、７０又は１５０の連続した残基の断片）の長さと比較して一致率を測定してもよい。ここに挙げた長さは単なる例示的なものに過ぎず、表、図及び配列リストを含めた本明細書に記載された配列に裏付けられた任意の配列長さの断片を用いて、或る長さであってその長さに対して一致率を測定し得る長さを説明し得ることを理解されたい。
【０１３６】
「ヒト人工染色体（HAC）」は、約６kb 〜１０MbのサイズのDNA配列を含み得る、安定した染色体複製の分離及び維持に必要な全てのエレメントを含む直鎖状の小染色体である。
【０１３７】
用語「ヒト化抗体」は、もとの結合能力を保持しつつよりヒトの抗体に似せるために、非抗原結合領域のアミノ酸配列が変えられた抗体分子を指す。
【０１３８】
「ハイブリダイゼーション」とは、所定のハイブリダイゼーション条件下で、ある一本鎖ポリヌクレオチドがある相補的な一本鎖と塩基対を形成するアニーリングのプロセスである。特異的ハイブリダイゼーションは、２つの核酸配列が高い相補性を共有することを示すものである。特異的ハイブリダイゼーション複合体は許容的アニーリング条件下で形成され、「洗浄」ステップ後もハイブリダイズされたままである。洗浄ステップは、ハイブリダイゼーションプロセスのストリンジェンシーを決定する際に特に重要であり、よりストリンジェントな条件では、非特異結合（即ち完全には一致しない核酸鎖間の対の結合）が減少する。核酸配列のアニーリングに対する許容条件は、当業者が慣例的に決定できる。許容条件は、どのハイブリダイゼーション実験でも一定でありうるが、洗浄条件は所望のストリンジェンシーを得るように、従ってハイブリダイゼーション特異性も得るように実験によって変更することができる。アニーリングが許容される条件は、例えば、温度が６８℃で、約６×SSC、約１％（w/v）のSDS、並びに約１００μｇ／ｍｌのせん断して変性したサケ精子DNAが含まれる。
【０１３９】
一般に、ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーは或る程度、洗浄ステップを実行する温度を基準にして表すことができる。このような洗浄温度は通常、所定のイオン強度及びpHにおける特定の配列の融点（Tm）より約５〜２０℃低くなるように選択する。このTmは、所定のイオン強度及びpHの条件下で、完全に一致するプローブに標的配列の５０％がハイブリダイズする温度である。Tmを計算する式及び核酸のハイブリダイゼーション条件はよく知られており、Sambrook 他 (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 第2版, 1-3巻, Cold Spring Harbor Press, Plainview NYに記載されており、特に2巻の9章を参照されたい。
【０１４０】
本発明のポリヌクレオチド間の高いストリンジェンシーのハイブリダイゼーションでは、約０．２x SSC及び約0.１％のSDSの存在の下、約６８℃で１時間の洗浄過程を含む。別法では、６５℃、６０℃、５５℃、４２℃の温度で行う。SSC濃度は、約０.１％のSDS存在下で、約０.１〜２×SSCの範囲で変化し得る。通常は、ブロッキング剤を用いて非特異ハイブリダイゼーションを阻止する。このようなブロッキング剤には、例えば、約１００〜２００μg/mlのせん断した変性サケ精子DNAがある。特定条件下で、例えばRNAとDNAのハイブリダイゼーションに有機溶剤、例えば約３５〜５０％v/vの濃度のホルムアミドを用いることもできる。洗浄条件の有用なバリエーションは、当業者には自明であろう。ハイブリダイゼーションは、特に高ストリンジェント条件下では、ヌクレオチド間の進化的な類似性を示唆し得る。このような類似性は、ヌクレオチド及びヌクレオチドにコードされるポリペプチドに対する類似の役割を強く示唆している。
【０１４１】
用語「ハイブリダイゼーション複合体」は、相補的な塩基間の水素結合によって、形成された２つの核酸配列の複合体を指す。ハイブリダイゼーション複合体は、溶解状態で形成し得る（C0t又はR0t解析等）。或いは、一方の核酸配列が溶解状態で存在し、もう一方の核酸配列が固体支持体（例えば紙、膜、フィルタ、チップ、ピン又はガラススライド、或いは他の適切な基板であって細胞若しくはその核酸が固定される基板）に固定されているような２つの核酸配列間に形成され得る。
【０１４２】
用語「挿入」或いは「付加」は、１個以上のアミノ酸残基或いはヌクレオチドがそれぞれ追加されるアミノ酸配列或いは核酸配列の変化を指す。
【０１４３】
「免疫応答」は、炎症、外傷、免疫異常症、伝染性疾患又は遺伝性疾患に関連する症状を指し得る。これらの症状は、細胞及び全身の防御系に作用し得る種々の因子、例えばサイトカイン、ケモカイン、その他のシグナル伝達分子の発現によって特徴づけることができる。
【０１４４】
用語「免疫原性断片」は、生物（例えば哺乳類）に導入すると免疫応答を引き起こし得る、NAAPのポリペプチド断片又はオリゴペプチド断片を指す。「免疫抗原性断片」の語には、本明細書中で開示したような或いは当分野で既知であるような任意の抗体産出方法において有用なNAAPの任意のポリペプチド又はオリゴペプチド断片も含まれる。
【０１４５】
用語「マイクロアレイ」は、基板上の複数のポリヌクレオチド、ポリペプチド又はその他の化合物の構成を指す。
【０１４６】
用語「エレメント」又は「アレイエレメント」は、マイクロアレイ上に固有の指定された位置を有する、ポリヌクレオチド、ポリペプチド又はその他の化合物を指す。
【０１４７】
用語「モジュレート」又は「活性を調節」は、NAAPの活性を変化させることを指す。例えば、モジュレートによって、NAAPのタンパク質活性の、或いは結合特性の、又はその他の生物学的特性、機能的特性或いは免疫学的特性の変化が起き得る。
【０１４８】
「核酸」及び「核酸配列」の語は、ヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド又はこれらの断片を指す。「核酸」及び「核酸配列」の語は、ゲノム起源又は合成起源のDNA又はRNAであって一本鎖又は二本鎖であるか或いはセンス鎖又はアンチセンス鎖を表し得るようなDNA又はRNAや、ペプチド核酸（PNA）や、任意のDNA様又はRNA様物質を指すこともある。
【０１４９】
「機能的に連結した」は、第１の核酸配列と第２の核酸配列が機能的な関係にある状態を指す。例えば、プロモーターがコード配列の転写又は発現に影響を及ぼす場合には、そのプロモーターはそのコード配列に機能的に連結している。同一のリーディングフレーム内で２つのタンパク質コード領域を接続する必要がある場合、機能的に連結したDNA配列は非常に近接するか、或いは連続的に隣接し得る。
【０１５０】
「ペプチド核酸（PNA）」は、末端がリシンで終わるアミノ酸残基のペプチドのバックボーンに結合した、少なくとも約５ヌクレオチドの長さのオリゴヌクレオチドを含む、アンチセンス分子又は抗遺伝子剤を指す。末端のリシンは、この組成に溶解性を与える。PNAは、相補的一本鎖DNA又はRNAに優先的に結合して転写の伸長を停止するものであり、ポリエチレングリコール化して細胞におけるPNAの寿命を延長し得る。
【０１５１】
NAAPの「翻訳後修飾」としては、脂質化、グリコシル化、リン酸化、アセチル化、ラセミ化、蛋白分解的切断、及びその他の当分野で既知の修飾を含み得る。これらのプロセスは、合成的或いは生化学的に生じ得る。生化学的修飾は、NAAPの酵素環境に依存し、細胞の種類によって異なることとなる。
【０１５２】
「プローブ」とは、核酸配列の内、NAAPやそれらの相補配列、又はそれらの断片をコードし、同一配列や対立遺伝子核酸配列、又は関連する核酸配列の検出に用いる配列を指す。プローブは、単離されたオリゴヌクレオチド又はポリヌクレオチドであって、検出可能な標識又はレポーター分子に結合したものである。典型的な標識には、放射性アイソトープ、リガンド、化学発光試薬及び酵素がある。「プライマー」とは、相補的な塩基対を形成して標的のポリヌクレオチドにアニーリング可能な、通常はDNAオリゴヌクレオチドである短い核酸である。プライマーは次に、DNAポリメラーゼ酵素によって標的DNA鎖に沿って延長し得る。プライマー対は、例えばポリメラーゼ連鎖反応（PCR）による核酸配列の増幅（及び同定）に用い得る。
【０１５３】
本発明に用いるようなプローブ及びプライマーは通常、既知の配列の少なくとも１５の連続したヌクレオチドを含んでいる。特異性を高めるために長めのプローブ及びプライマー、例えば開示した核酸配列の少なくとも２０、２５、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００又は１５０の連続したヌクレオチドからなるようなプローブ及びプライマーを用いてもよい。これよりもかなり長いプローブ及びプライマーもある。表、図面及び配列リストを含む本明細書に裏付けされた任意の長さのヌクレオチドを用いることができるものと理解されたい。
【０１５４】
プローブ及びプライマーの調製及び使用方法については、Sambrook, J. 他 (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 第2版,1-3巻, Cold Spring Harbor Press, Plainview NY、Ausubel, F.M. 他, (1987) Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publ. Assoc. & Wiley-Intersciences, New York NY、Innis他 (1990) PCR Protocols, A Guide to Methods and Applications Academic Press, San Diego CA等を参照されたい。PCRプライマー対は、その目的のためのコンピュータプログラム、例えばPrimer（Version 0.5, 1991, Whitehead Institute for Biomedical Research, Cambridge MA）を用いるなどして既知の配列から得ることができる。
【０１５５】
プライマーとして用いるオリゴヌクレオチドの選択は、そのような目的のために本技術分野でよく知られているソフトウェアを用いて行う。例えばOLIGO 4.06ソフトウェアは、各１００ヌクレオチドまでのPCRプライマー対の選択に有用であり、オリゴヌクレオチド及び最大５,０００までの大きめのポリヌクレオチドであって３２キロベースまでのインプットポリヌクレオチド配列から得たものを分析するのにも有用である。類似のプライマー選択プログラムには、拡張能力のための追加機能が組込まれている。例えば、PrimOUプライマー選択プログラム（テキサス州ダラスにあるテキサス大学南西部医療センターのゲノムセンターから一般向けに入手可能）は、メガベース配列から特定のプライマーを選択することが可能であり、従ってゲノム全体の範囲でプライマーを設計するのに有用である。Primer3プライマー選択プログラム（Whitehead Institute/MIT Center for Genome Research（マサチューセッツ州ケンブリッジ）より入手可能）を用いれば、プライマー結合部位として避けたい配列を指定できる「非プライミングライブラリ（mispriming library）」を入力できる。Primer3は特に、マイクロアレイのためのオリゴヌクレオチドの選択に有用である。（後二者のプライマー選択プログラムのソースコードは、それぞれの情報源から得てユーザー固有のニーズを満たすように変更してもよい。）PrimerGenプログラム（英国ケンブリッジ市の英国ヒトゲノムマッピングプロジェクト-リソースセンターから一般向けに入手可能）は、多数の配列アラインメントに基づいてプライマーを設計し、それによって、アラインメントされた核酸配列の最大保存領域又は最小保存領域の何れかとハイブリダイズするようなプライマーの選択を可能にする。従って、このプログラムは、固有であって保存されたオリゴヌクレオチド及びポリヌクレオチドの断片の同定に有用である。上記選択方法のいずれかによって同定したオリゴヌクレオチド及びポリヌクレオチドの断片は、ハイブリダイゼーション技術において、例えばPCR又はシークエンシングプライマーとして、マイクロアレイエレメントとして、或いは核酸のサンプルにおいて完全又は部分的相補的ポリヌクレオチドを同定する特異プローブとして有用である。オリゴヌクレオチドの選択方法は、上記の方法に限定されるものではない。
【０１５６】
本明細書における「組換え核酸」は天然の配列ではなく、２つ以上の配列の離れたセグメントを人工的に組み合わせた配列である。この人為的組み合わせはしばしば化学合成によって達成するが、より一般的には核酸の単離セグメントの人為的操作によって、例えばのSambrookらの文献（前出）に記載されているような遺伝子工学的手法によって達成する。組換え核酸の語は、単に核酸の一部を付加、置換又は欠失した変異核酸も含む。しばしば組換え核酸には、プロモーター配列に機能的に連結した核酸配列が含まれる。このような組換え核酸は、例えばある細胞を形質転換するために使用されるベクターの一部とすることが可能である。
【０１５７】
或いはこのような組換え核酸は、ウイルスベクターの一部であって、例えばワクシニアウイルスに基づくものであり得る。そのようなワクシニアウイルスは哺乳動物に接種され、その組換え核酸が発現されて、その哺乳動物内で防御免疫応答を誘導するように使用することができる。
【０１５８】
「調節因子」は、通常は遺伝子の非翻訳領域に由来する核酸配列であり、エンハンサー、プロモーター、イントロン及び５'及び３'の非翻訳領域（UTR）を含む。調節因子は、転写、翻訳又はRNA安定性を調節する宿主タンパク質又はウイルスタンパク質と相互作用する。
【０１５９】
「レポーター分子」は、核酸、アミノ酸又は抗体の標識に用いられる化学的又は生化学的な部分である。レポーター分子には、放射性核種、酵素、蛍光剤、化学発光剤、発色剤、基質、補助因子、阻害因子、磁気粒子及びその他の当分野で既知の成分がある。
【０１６０】
本明細書において、DNA配列に対する「RNA等価物」とは、基準となるDNA配列と同じ直鎖の核酸配列から構成されるが、窒素性塩基のチミンがウラシルに置換され、糖鎖のバックボーンがデオキシリボースではなくリボースからなる。
【０１６１】
用語「サンプル」は、その最も広い意味で用いられている。NAAP、NAAPをコードする核酸群、又はその断片群を含むと推定されるサンプルとしては、体液と、細胞や細胞から単離した染色体や細胞内小器官（オルガネラ）や膜からの抽出物と、細胞と、溶液中に存在する又は基板に固定されたゲノムDNA、RNA、cDNAと、組織と、組織プリントなどがあり得る。
【０１６２】
用語「特異的結合」及び「特異的に結合する」は、タンパク質若しくはペプチドと、アゴニスト、抗体、アンタゴニスト、小分子、若しくは任意の天然若しくは合成の結合組成物との間の相互作用を指す。この相互作用は、タンパク質の特定の構造（例えば抗原決定基即ちエピトープ）であって結合分子が認識するものが存在するか否かに依存している。例えば、抗体がエピトープ「Ａ」に対して特異的である場合、結合していない標識した「Ａ」及び抗体を含む反応液に、エピトープＡを含むポリペプチド或いは結合していない無標識の「Ａ」が存在すると、抗体と結合する標識Ａの量が減少する。
【０１６３】
用語「実質的に精製された」は、自然の環境から取り除かれてから、単離或いは分離された核酸配列或いはアミノ酸配列であって、自然に結合している組成物が少なくとも約６０％除去されたものであり、好ましくは約７５％以上除去、最も好ましくは９０％以上除去されたものを指す。
【０１６４】
「置換」とは、一つ以上のアミノ酸又はヌクレオチドをそれぞれ別のアミノ酸又はヌクレオチドに置き換えることである。
【０１６５】
用語「基板」は、任意の好適な固体或いは半固体の支持物を指し、膜及びフィルタ、チップ、スライド、ウエハ、ファイバー、磁気又は非磁気ビーズ、ゲル、チューブ、プレート、ポリマー、微小粒子、毛細管が含まれる。基板は、壁、溝、ピン、チャネル、孔等、様々な表面形態を有することができ、基板表面にはポリヌクレオチドやポリペプチドが結合する。
【０１６６】
「転写イメージ(transcript image)」又は「発現プロファイル（プロフィール）」は、所定条件下での所定時間における特定の細胞の種類又は組織による集合的遺伝子発現のパターンを指す。
【０１６７】
「形質転換(transformation)」とは、外来DNAが受容細胞に導入されるプロセスのことである。形質転換は、本技術分野で知られている種々の方法に従って自然条件又は人工条件下で生じ得るものであり、外来性の核酸配列を原核宿主細胞又は真核宿主細胞に挿入する任意の既知の方法を基にし得る。形質転換の方法は、形質転換する宿主細胞の種類によって選択する。限定するものではないが形質転換方法には、ウイルス感染、電気穿孔法（エレクトロポレーション）、熱ショック、リポフェクション及び微粒子銃を用いる方法がある。「形質転換された細胞」には、導入されたDNAが自律的に複製するプラスミドとして或いは宿主染色体の一部として複製可能である安定的に形質転換された細胞が含まれる。更に、限られた時間に一過的に導入DNA若しくは導入RNAを発現する細胞も含まれる。
【０１６８】
ここで用いる「遺伝形質転換体(transgenic organism)」とは任意の生物体であり、限定するものではないが動植物を含み、生物体の１個以上の細胞が、ヒトの関与によって、例えば本技術分野でよく知られているトランスジェニック技術によって導入された異種核酸を有する。核酸の細胞への導入は、直接又は間接的に、細胞の前駆物質に導入することにより、計画的な遺伝子操作によって、例えば微量注射法によって或いは組換えウイルスでの感染によって行う。遺伝子操作の語は、古典的な交雑育種或いは試験管内受精を指すものではなく、組換えDNA分子の導入を指すものである。本発明に基づいて予期される遺伝形質転換体には、バクテリア、シアノバクテリア、真菌及び動植物がある。本発明の単離されたDNAは、本技術分野で知られている方法、例えば感染、形質移入、形質転換又はトランス接合（transconjugation）によって宿主に導入することができる。本発明のDNAをこのような生物体に移入する技術はよく知られており、前出のSambrook ら (1989) 等の参考文献に記載されている。
【０１６９】
特定の核酸配列の「変異体」は、核酸配列１本全部の長さに対して特定の核酸配列と少なくとも４０％の相同性を有する核酸配列であると定義する。 その際、デフォルトパラメータに設定した「BLAST 2 Sequences」ツールVersion 2.0.9（1999年5月7日）を用いてblastnを実行する。このような核酸対は、所定の長さに対して、例えば少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％又はそれ以上の相同性を示し得る。或る変異体は、例えば「対立遺伝子」変異体（前述）、「スプライス」変異体、「種」変異体又は「多型性」変異体として記載し得る。スプライス変異体は参照分子とかなりの相同性を有し得るが、mRNAプロセッシング中のエキソンの選択的スプライシングによって通常、より多く又はより少数のヌクレオチドを有することになる。対応するポリペプチドは、追加機能ドメインを有するか或いは参照分子に存在するドメインが欠落していることがある。種変異体は、種によって異なるポリヌクレオチド配列である。結果的に生じるポリペプチドは通常、相互にかなりのアミノ酸相同性を有する。多型性変異体は、所与の種の個体間での特定遺伝子のポリヌクレオチド配列中での変異である。多型変異配列はまた、ポリヌクレオチド配列の１つのヌクレオチドが異なる「１塩基多型性」（SNP）も含み得る。SNPの存在は、例えば特定の個体群、病状又は病状性向を示し得る。
【０１７０】
特定のポリペプチド配列の「変異体」は、ポリペプチド配列の１本の長さ全体で特定のポリペプチド配列に対して少なくとも４０％の相同性を有するポリペプチド配列として定義される。定義づけには、デフォルトパラメータに設定した「BLAST 2 Sequences」ツールVersion 2.0.9（1999年5月7日）を用いてblastpを実行する。このようなポリペプチド対は、所定の長さに対して、例えば少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％又はそれ以上の配列同一性を示し得る。
【０１７１】
（発明）
本発明は、新規のヒト核酸関連タンパク質群（NAAP）及び、NAAPをコードするポリヌクレオチド群の発見に基づく。また、これらの組成物を利用した、細胞増殖異常、神経疾患、発達障害、自己免疫／炎症性障害、及び感染症の、診断、治療、及び予防の開発に基づく。
【０１７２】
表１は、本発明の完全長ポリヌクレオチド配列及びポリペプチド配列の命名の概略である。各ポリヌクレオチド及びその対応するポリペプチドは、１つのIncyteプロジェクト識別番号（IncyteプロジェクトID）と相関する。各ポリペプチド配列は、ポリペプチド配列識別番号（ポリペプチドSEQ ID NO）とIncyteポリペプチド配列番号（IncyteポリペプチドID）によって表示した。各ポリヌクレオチド配列は、ポリヌクレオチド配列識別番号（ポリヌクレオチドSEQ ID NO）とIncyteポリヌクレオチドコンセンサス配列番号（IncyteポリヌクレオチドID）によって表示した。
【０１７３】
表２は、GenBankタンパク質（genpept）データベースとPROTEOMEデータベースとに対するBLAST分析で同定した、本発明のポリペプチド群に相同な配列群を示す。列１及び列２はそれぞれ、本発明の各ポリペプチドに対するポリペプチド配列識別番号（ポリペプチド SEQ ID NO :）及びそれに対応するIncyte ポリペプチド配列番号（Incyte ポリペプチド ID）を示す。列３は、GenBankの最も近い相同体のGenBank識別番号（Genbank ID NO :）と最も近いPROTEOME データベース相同体のPROTEOME データベース識別番号 (PROTEOME ID NO:) を示す。列４は、各ポリペプチドとその相同体との間の一致を表す確率スコアを示す。列５は、GenBankとPROTEOME データベースの相同体の注釈を示し、更に該当箇所には関連する引用文献も示す。 これらを引用することを以って本明細書の一部とする。
【０１７４】
表３は、本発明のポリペプチドの様々な構造的特徴を示す。列１及び列２はそれぞれ、本発明の各ポリペプチドのポリペプチド配列識別番号（SEQ ID NO :）及びそれに対応するIncyte ポリペプチド配列番号（Incyte ポリペプチド ID）を示す。列３は、各ポリペプチドのアミノ酸残基数を示す。列４及び列５はそれぞれ、GCG配列分析ソフトウエアパッケージのMOTIFSプログラム（Genetics Computer Group, Madison WI）によって決定された、リン酸化及びグリコシル化の可能性のある部位を示す。列６は、シグネチャ配列、ドメイン、及びモチーフを含むアミノ酸残基を示す。列７は、タンパク質の構造／機能の分析のための分析方法を示し、該当箇所には更に分析方法に利用した検索可能なデータベースを示す。
【０１７５】
表２及び３は共に、本発明の各々のポリペプチドの特性を要約しており、それら特性が、請求の範囲に記載されたポリペプチドが核酸関連タンパク質であることを確立している。例えば、SEQ ID NO:1はW321残基からT721残基にかけてニワトリのDNAトポイソメラーゼI (GenBank ID g1786132)と72％の同一性を有することがBasic Local Alignment Search Tool (BLAST)によって示された（表2参照）。BLAST確率スコアは4.3e-225であり、これは観察されたポリペプチド配列アラインメントが偶然に得られる確率を示している。SEQ ID NO:1はまた、真核生物DNAトポイソメラーゼIドメインを有するが、 これは、隠れマルコフモデル（HMM）を基にした保存されたタンパク質ファミリドメインのPFAMデータベースにおいて、統計的に有意な一致を検索して決定された （表3参照）。BLIMPS、MOTIFS、及びPROFILESCAN解析からのデータは、SEQ ID NO:1 がDNAトポイソメラーゼであるという、更に確証的な証拠を提供する。別の例では、SEQ ID NO:2 はG187残基〜P610残基でヒトのトポイソメラーゼ関連機能タンパク質(GenBank ID g5565687) と64％の同一性を有することがBLASTによって示され、確率スコアは7.9e-145であった（表2参照）。また、SEQ ID NO:2 はヌクレオチジルトランスフェラーゼドメインを持っているが、これはHMMベースのPFAMデータベースにおいて、統計的に有意な一致を検索して決定された （表3参照）。MOTIFS 及びBLAST解析よりのデータは、SEQ ID NO:2がトポイソメラーゼであることを更に確証する証拠を提供する。別の例では、SEQ ID NO:3 はW159残基〜F718残基でニワトリのDNAトポイソメラーゼI(GenBank ID g1786132) と71％の同一性を有することがBLASTによって示され、確率スコアは1.0e-231であった。SEQ ID NO:3 は更にW159残基〜F718残基でヒトのDNAトポイソメラーゼI(GenBank ID g339804 及び g339806) と71％の同一性を有することがBLASTによって示され、確率スコアはそれぞれ9.1e-231及び9.1e-231であった。SEQ ID NO:3 は更にW159残基〜F718残基でチャイニーズハムスター及びマウスのDNAトポイソメラーゼI(GenBank ID g297079及びg220618)とそれぞれ70％及び69％の同一性を有することがBLASTによって示された。BLAST確率スコアはそれぞれ5.0e-230及び4.5e-229であった（表2参照）。また、SEQ ID NO:3 は真核生物DNAトポイソメラーゼIドメインを持っているが、これはHMMベースのPFAMデータベースにおいて、統計的に有意な一致を検索して決定された （表3参照）。BLIMPS、MOTIFS、及びPROFILESCAN解析よりのデータは、SEQ ID NO:3 が真核生物DNAトポイソメラーゼである、更に実証的な証拠を提供する。別の例では、SEQ ID NO:5 はM1残基〜M531残基でヒトのRCC1様G交換因子RLG (GenBank ID g3789799) と７０％の同一性を有することがBLASTによって示され、確率スコアは4.1e-211であった（表2参照）。また、SEQ ID NO:5は染色体凝縮調節因子（RCC1）ドメイン及びBTB/POZドメインを持っているが、これはHMMベースのPFAMデータベースにおいて、統計的に有意な一致を検索して決定された （表3参照）。BLIMPS、MOTIFS、及びPROFILESCAN解析よりのデータは、SEQ ID NO:5 がRCC1ファミリタンパク質である、更に実証的な証拠を提供する。別の例では、SEQ ID NO:７ はM48残基〜A860残基でヨーロッパアナウサギの翻訳開始因子eIF2C (GenBank ID g3253159) と99％の同一性を有し、配列全長にわたって94％の同一性を有することがBLASTによって示され、確率スコアは0.0であった（表2参照）。SEQ ID NO:6 はT2残基〜E340残基でシロイ��ナズナの推定上の翻訳開始因子eIF-2Bαサブユニット (GenBank ID g4006818) と59％の同一性を有することがBLASTによって示され、確率スコアは9.93-93であった。また、SEQ ID NO:6 は開始因子2サブユニットファミリドメインを持っているが、これはHMMベースのPFAMデータベースにおいて、統計的に有意な一致を検索して決定された （表3参照）。BLIMPS及び追加BLAST解析よりのデータは、SEQ ID NO:6 及びSEQ ID NO:7 がタンパク質翻訳開始因子である、更に実証的な証拠を提供する。別の例では、SEQ ID NO:8 はK129残基〜K494残基でシロイヌナズナのATP依存性RNA ヘリカーゼ (GenBank ID g4895231)と38％の同一性を有し、R13残基〜N168残基で51％の同一性を有することがBLASTによって示され、確率スコアは2.6e-91であった（表2参照）。また、SEQ ID NO:8はヘリカーゼ保存性C末端ドメイン及びDEAD/DEAHボックスヘリカーゼドメインを持っているが、これはHMMベースのPFAMデータベースにおいて、統計的に有意な一致を検索して決定された （表3参照）。BLIMPS、MOTIFS、及びPROFILESCAN解析よりのデータは、SEQ ID NO:8がDEAD-box サブファミリATP依存ヘリカーゼである、更に実証的な証拠を提供する。別の例では、SEQ ID NO:10 はM172残基〜R212残基でヒトのトポイソメラーゼI (GenBank ID g15919359)と100％の同一性を有し、L285残基〜E865残基で95％の同一性を有することがBLASTによって示され、確率スコアは0.0であった（表2参照）。SEQ ID NO:10は更に核に局在するタンパク質でトポイソメラーゼであるものと相同性を有することがPROTEOMEデータベースを使ったBLAST解析によって示された。また、SEQ ID NO:10は真核生物DNAトポイソメラーゼI触媒コアドメイン及び真核生物DNAトポイソメラーゼI DNA結合ドメインを持っているが、これはHMMベースのPFAMデータベースにおいて、統計的に有意な一致を検索して決定された （表3参照）。BLIMPS、MOTIFS、及びPROFILESCAN解析からのデータは、SEQ ID NO:10 がトポイソメラーゼであるという、更に確証的な証拠を提供する。SEQ ID NO:4及びSEQ ID NO:9は同様の方法で解析してアノテーションを付けた。SEQ ID NO:1-10の解析のためのアルゴリズム及びパラメータが表７で記述されている。
【０１７６】
表４に示すように、本発明の完全長ポリヌクレオチド配列は、cDNA配列又はゲノムDNA由来のコード（エキソン）配列を用いて、或いはこれら２種類の配列を任意に組み合わせて構築(アセンブリ)した。列１は本発明の各ポリヌクレオチドに対するポリヌクレオチド配列識別番号（ポリヌクレオチドSEQ ID NO）及び対応するIncyteポリヌクレオチドコンセンサス配列番号（Incyte ID）、及び塩基対の各ポリヌクレオチド配列の長さを示している。列2は、本発明の完全長ポリヌクレオチド配列を組み立てるために使用されるcDNA配列及び／又はゲノム配列の開始ヌクレオチド（５'）位置及び終了ヌクレオチド（３'）位置を示すとともに、SEQ ID NO:11-20を同定するため、或いはSEQ ID NO:11-20と関連するポリヌクレオチド配列とを区別するためのハイブリダイゼーション又は増幅技術に有用なポリヌクレオチド配列の断片の開始ヌクレオチド（５'）位置及び終了ヌクレオチド（３'）位置を示す。
【０１７７】
表４の列２で記述されたポリヌクレオチド断片は、具体的にはたとえば組織特異的なｃDNAライブラリ又はプールされたcDNAライブラリに由来するIncyte cDNAを指す場合がある。或いは列2の識別番号は、完全長ポリヌクレオチド配列のアセンブリに寄与するGenBank cDNA又はESTを指す場合もある。更に、列2のポリヌクレオチド断片は、ENSEMBL（The Sanger Centre、英国ケンブリッジ）データベースから由来した配列（即ち「ENST」命名を含む配列）を同定し得る。或いは、列2で記述されたポリヌクレオチド断片は、NCBI RefSeq Nucleotide Sequence Records データベースから由来する場合もあり（即ち「NM」又は「NT」の命名を含む配列）、またNCBI RefSeq Protein Sequence Recordsから由来する場合もある（即ち「NP」の命名を含む配列）。又は列２で記述されたポリヌクレオチド断片は、「エキソンスティッチング（exon-stitching）」アルゴリズムにより結び合わせたcDNA及びGenscan予想エキソンの両方からなる群を指す場合がある。例えば、FL_XXXXXX_N1_N2_YYYYY_N3_N4  として同定されるポリヌクレオチド配列はアルゴリズムが適用される配列のクラスタの識別番号がXXXXXXであり、アルゴリズムにより生成される予測の番号がYYYYY であり、（もし存在すれば）N1,2,3..が解析中に手動で編集された可能性のある特定のエキソンであるような「縫合された」配列である( 実施例５参照 )。又は、列2のポリヌクレオチド断片は「エキソンストレッチング（exon-stretching）」アルゴリズムにより結び合わせたエキソンの集合を指す場合もある。例えば、FLXXXXXX_gAAAAA_gBBBBB_1_N として同定されるポリヌクレオチド配列は「ストレッチ」配列である。ここでXXXXXXはIncyteプロジェクト識別番号、gAAAAAは「エキソンストレッチング」アルゴリズムを適用したヒトゲノム配列のGenBank識別番号、gBBBBBは一番近いGenBankタンパク質相同体のGenBank識別番号又はNCBI RefSeq 識別番号である。（実施例５を参照。）あるRefSeq配列が「エキソンストレッチング」アルゴリズムのためのタンパク質相同体として使用された場合では、RefSeq識別番号（「NM」、「NP」、又は「NT」によって表される）が、GenBank識別子（即ち、gBBBBB）の代わりに使用される場合もある。
【０１７８】
或いは、接頭コードは、手動で編集された構成配列、ゲノムDNA配列から予測された構成配列、又は組み合わされた配列解析方法から由来する構成配列を同定する。次の表は、構成配列の接頭コードと、接頭コードに対応する配列分析方法の例を列記する(実施例４と５を参照)。
2005504509.tif 000005
【０１７９】
場合によっては、最終コンセンサスポリヌクレオチド配列を確認するために表4に示すような配列の適用範囲と重複するIncyte cDNAの適用範囲が得られたが、それに関連するIncyte cDNA識別番号は示さなかった。
【０１８０】
表５は、Incyte cDNA配列を用いて構築された完全長ポリヌクレオチド配列のための代表的なcDNAライブラリを示している。代表的なcDNAライブラリは、上記のポリヌクレオチド配列を構築及び確認するために用いられるIncyte cDNA配列によって最も頻繁に代表されるIncyte cDNAライブラリである。cDNAライブラリを作製するために用いた組織及びベクターを表５に示し、表６で説明している。
【０１８１】
本発明には、NAAPの変異体も含まれる。好適なNAAP変異配列は、NAAPの機能的或いは構造的特徴の少なくとも１つを有し、かつ該NAAPアミノ酸配列に対して少なくとも約８０％のアミノ酸配列同一性、或いは少なくとも約９０％のアミノ酸配列同一性、更には少なくとも約９５％のアミノ酸配列同一性を有する配列である。
【０１８２】
本発明はまた、NAAPをコードするポリヌクレオチドを提供する。特定の実施態様において、本発明は、NAAPをコードする、SEQ ID NO:11-20からなる一群から選択された１配列を持つポリヌクレオチド配列を提供する。SEQ ID NO:11-20のポリヌクレオチド配列には、配列表に示したように等価RNA配列をも含むが、そこでは窒素塩基チミンの出現はウラシルに置換され、糖のバックボーンはデオキシリボースではなくリボースで構成される。
【０１８３】
本発明にはまた、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列の変異配列を含む。詳細には、このような変異体ポリヌクレオチド配列は、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列との、少なくとも約７０％のポリヌクレオチド配列同一性、或いは少なくとも約８５％のポリヌクレオチド配列同一性、更には少なくとも約９５％ものポリヌクレオチド配列同一性を持つこととなる。本発明の或る実施態様では、SEQ ID NO:11-20からなる群から選択された核酸配列と少なくとも約７０％、或いは少なくとも約８５％、又は少なくとも約９５％ものポリヌクレオチド配列同一性を有するようなSEQ ID NO:11-20からなる群から選択された配列を有するポリヌクレオチド配列の変異配列を含む。上記の任意のポリヌクレオチド変異体は、NAAPの機能的若しくは構造的特徴を少なくとも１つ有するアミノ酸配列をコードし得る。
【０１８４】
更に別の例では、本発明の或るポリヌクレオチド変異配列は、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列のスプライス変異配列である。或るスプライス変異配列はNAAPをコードするポリヌクレオチド配列との顕著な配列同一性を持つ部分複数を有し得るが、mRNAプロセッシング中のエキソン群の選択的スプライシングによって生ずる、配列の数ブロックの付加又は欠失により、通常、より多数又はより少数のポリヌクレオチドを有することになる。或るスプライス変異配列には、約７０％未満、又は約６０％未満、或いは約５０％未満のポリヌクレオチド配列同一性が、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列との間で全長に渡って見られるが、このスプライス変異配列のいくつかの部分には、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列の各部との、少なくとも約７０％、或いは少なくとも約８５％、又は少なくとも約９５％、なお又は１００％の、ポリヌクレオチド配列同一性を有することとなる。たとえば、SEQ ID NO:11の配列を含むポリヌクレオチド、SEQ ID NO:13の配列を含むポリヌクレオチド及びSEQ ID NO:20の配列を含むポリヌクレオチドは全てお互いのスプライス変異体である。上記したスプライス変異配列は何れも、NAAPの機能的或いは構造的特徴の少なくとも１つを有する或るアミノ酸配列をコードし得る。
【０１８５】
遺伝暗号の縮重により、NAAPをコードする種々のポリヌクレオチド配列が作り出され、中には、既知のいかなる天然遺伝子のポリヌクレオチド配列群とも最小の類似性しか有しない配列もあることは、当業者には理解されよう。したがって本発明には、可能コドン選択に基づく組み合わせの選択によって産出し得るようなありとあらゆる可能性のあるポリヌクレオチド配列変異体を網羅し得る。これらの組み合わせは、天然NAAPのポリヌクレオチド配列に適用される標準的なトリプレット遺伝暗号を基に作られる。また、こうした全ての変異が明確に開示されていると考慮されたい。
【０１８６】
NAAPとその変異配列とをコードするヌクレオチド配列は一般に、好適に選択されたストリンジェンシー条件下で天然NAAPのヌクレオチド配列とハイブリダイズ可能であるが、非天然コドン群を含めるなどの実質的に異なるコドン使用を有する、NAAP或いはその誘導体をコードするヌクレオチド配列を作り出すことは、有益であり得る。宿主が特定のコドンを利用する頻度に基づいて、特定の真核宿主又は原核宿主に発生するペプチドの発現率を高めるようにコドンを選択することが可能である。コードされるアミノ酸配列を改変せずに、NAAP及びその誘導体をコードするヌクレオチド配列を実質的に改変する別の理由には、天然配列から作られる転写物より例えば長い半減期など好ましい特性を備えるRNA転写物を作ることもある。
【０１８７】
本発明には、また、NAAPとその誘導体群とをコードする、DNA配列群又はその断片群を、完全に合成化学によって作り出す過程をも含む。作製後、当分野で公知の試薬類を用いて、この合成配列を任意の多くの入手可能な発現ベクター及び細胞系中に挿入し得る。更に、合成化学を用いて、NAAP又はその任意の断片をコードする配列に突然変異を導入し得る。
【０１８８】
更に本発明には、種々のストリンジェンシー条件下で、請求項に記載されたポリヌクレオチド配列、特に、SEQ ID NO:11-20 及びそれらの断片とハイブリダイズ可能なポリヌクレオチド配列が含まれる（例えば、Wahl, G.M.及びS.L. Berger（1987）Methods Enzymol.152:399-407、Kimmel, A.R.（1987）Methods Enzymol. 152:507-511を参照)。  アニーリング及び洗浄条件を含むハイブリダイゼーションの条件は、「定義」に記載されている。
【０１８９】
DNAシークエンシングの方法は当分野では公知であり、本発明のいずれの実施例もDNAシークエンシング方法を用いて実施可能である。DNAシークエンシング方法には酵素を用いることができ、例えばDNAポリメラーゼIのクレノウ断片、SEQUENASE（US Biochemical, Cleveland OH）、Taqポリメラーゼ（Applied Biosystems）、熱安定性T7ポリメラーゼ（Amersham, Pharmacia Biotech, Piscataway NJ）を用いることができる。或いは、例えばELONGASE増幅システム（Life Technologies, Gaithersburg MD）において見られるように、ポリメラーゼと校正エキソヌクレアーゼを併用することができる。好適には、MICROLAB2200液体転移システム（Hamilton, Reno, NV）、PTC200サーマルサイクラー（MJ Research, Watertown MA）及びABI CATALYST 800サーマルサイクラー（Applied Biosystems）等の装置を用いて配列の準備を自動化する。次に、ABI 373 或いは 377 DNAシークエンシングシステム（Applied Biosystems）、MEGABACE 1000 DNAシークエンシングシステム（Molecular Dynamics, Sunnyvale CA）又は当分野で既知の他の方法を用いてシークエンシングを行う。結果として得られた配列を当分野でよく知られている種々のアルゴリズムを用いて分析する（Ausubel, F.M. (1997) Short Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York NY, unit 7.7、Meyers, R.A. (1995) Molecular Biology and Biotechnology, Wiley VCH, New York NY, 856-853ページ等を参照）。
【０１９０】
当分野で周知の、PCR法をベースにした種々の方法と、部分的ヌクレオチド配列とを利用して、NAAPをコードする核酸配列を伸長し、プロモーターや調節エレメントなど、上流にある配列を検出し得る。例えば、使用し得る方法の１つである制限部位PCR法は、ユニバーサルプライマー及びネステッドプライマーを用いてクローニングベクター内のゲノムDNAから未知の配列を増幅する方法である（例えば、Sarkar, G. (1993) PCR Methods Applic. 2:318-322を参照）。別の方法に逆PCR法があり、これは広範な方向に伸長させたプライマーを用いて環状化した鋳型から未知の配列を増幅する方法である。鋳型は、既知のゲノム遺伝子座及びその周辺の配列を含む制限酵素断片から得る（例えばTriglia, T. 他(1988) Nucleic Acids Res.16:8186)。  第３の方法としてキャプチャPCR法があり、これはヒト及び酵母菌人工染色体DNAの既知の配列に隣接するDNA断片をPCR増幅する方法に関与している。（例えばLagerstrom, M. 他(1991) PCR Methods Applic.1:111-119)。  この方法では、PCRを行う前に複数の制限酵素の消化及びライゲーション反応を用いて未知の配列領域内に組換え二本鎖配列を挿入することが可能である。未知の配列群を検索するために用い得る他の複数の方法も当分野で既知である（例えばParker, J.D.他(1991) Nucleic Acids Res. 19:30553060を参照)。  更に、PCR、ネステッドプライマー及びPromoterFinderライブラリ（Clontech, Palo Alto CA）を用いてゲノムDNAをウォーキングすることができる。この手順は、ライブラリをスクリーニングする必要がなく、イントロン／エキソン接合部を見付けるのに有用である。全てのPCRベースの方法では、市販されているソフトウェア、例えばOLIGO 4.06プライマー分析ソフトウェア（National Biosciences, Plymouth MN）或いは別の好適なプログラムを用いて、長さが約２２〜３０ヌクレオチド、GC含有率が約５０％以上、温度約６８℃〜７２℃で鋳型に対してアニーリングするようにプライマーを設計し得る。
【０１９１】
完全長cDNAをスクリーニングする際は、より大きなcDNAを含むようにサイズ選択されたライブラリを用いるのが好ましい。更に、ランダムプライマーのライブラリは、しばしば遺伝子の５'領域を有する配列を含み、オリゴd(T)ライブラリが完全長cDNAを作製できない状況に対して好適である。ゲノムライブラリは、５'非転写調節領域への配列の伸長に有用であろう。
【０１９２】
市販のキャピラリー電気泳動システムを用いて、シークエンシング又はPCR産物のサイズを分析し、又はそのヌクレオチド配列を確認することができる。具体的には、キャピラリーシークエンシングは、電気泳動による分離のための流動性ポリマーと、４つの異なるヌクレオチドに特異的であるような、レーザで活性化される蛍光色素と、発光された波長の検出に利用するCCDカメラとを有し得る。出力／光の強度は、適切なソフトウェア（Applied Biosystems社のGENOTYPER、SEQUENCE NAVIGATOR等）を用いて電気信号に変換し得る。サンプルのロードからコンピュータ分析及び電子データ表示までの全プロセスがコンピュータ制御可能である。キャピラリー電気泳動法は、特定のサンプルに少量しか存在しないようなDNA小断片のシークエンシングに特に適している。
【０１９３】
本発明の別の実施例では、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列又はその断片を組換えDNA分子にクローニングして、適切な宿主細胞内にNAAP、その断片又は機能的等価物を発現させることが可能である。遺伝暗号固有の縮重により、実質的に同じ或いは機能的に等価のアミノ酸配列をコードする別のDNA配列を産生し、これらの配列をNAAPの発現に利用し得る。
【０１９４】
種々の目的で、NAAPをコードする配列群を改変するために、当分野で一般的に既知の複数の方法を用いて、本発明のヌクレオチド配列群を組換えることができる。この組換えの多様な目的には、遺伝子産物のクローン化の、或いはプロセッシング及び／又は発現のモディフィケーションが含まれるが、これらに限定されるものではない。遺伝子断片及び合成オリゴヌクレオチドのランダムなフラグメンテーション及びＰＣＲ再アセンブリによるＤＮＡシャッフリングを用い、ヌクレオチド配列を組み換えることが可能である。例えば、オリゴヌクレオチドを介した部位特異的変異誘導を利用して、新規な制限部位の作製、グリコシル化パターンの変更、コドン優先の変更、スプライス変異体の生成等を起こす突然変異を導入し得る。
【０１９５】
本発明のヌクレオチドは、MOLECULARBREEDING (Maxygen Inc., Santa Clara CA; 米国特許第5,837,458号; Chang, C.-C. 他 (1999) Nat. Biotechnol. 17:793-797; Christians, F.C. 他 (1999) Nat. Biotechnol. 17:259-264; Crameri, A. 他 (1996) Nat. Biotechnol. 14:315-319)などのDNAシャッフリング技術の対象となり得る。これにより、生物活性又は酵素活性、或いは他の分子や化合物と結合する能力など、NAAPの生物学的特性を改変或いは改良し得る。DNAシャッフリングは、遺伝子断片のPCRを介する組換えを用いて遺伝子変異体のライブラリを作製するプロセスである。ライブラリはその後、その遺伝子変異体を所望の特性に同定するような選択又はスクリーニングにかける。次にこれらの好適な変異体をプールし、更に反復してDNAシャッフリング及び選択／スクリーニングを行ってもよい。従って、人工的な育種及び急速な分子の進化によって多様な遺伝子が作られる。例えば、ランダムポイント突然変異を有する単一の遺伝子の断片を組み換えて、スクリーニングし、その後所望の特性が最適化されるまでシャッフリングすることができる。或いは、所定の遺伝子を同種又は異種のいずれかから得た同一遺伝子ファミリの相同遺伝子と組み換え、それによって天然に存在する複数の遺伝子の遺伝多様性を、定方向の制御可能な方法で最大化させることができる。
【０１９６】
別の実施態様によれば、NAAPをコードする配列は、当分野で周知の化学的方法を用いて、全体或いは一部が合成可能である（例えば、Caruthers. M.H.他(1980) Nucleic Acids Symp. Ser. 7:215-223; 及び Horn, T.他(1980) Nucleic Acids Symp. Ser. 7:225-232を参照)。別法として、化学的方法を用いてNAAP自体又はその断片を合成することが可能である。例えば、種々の液相又は固相技術を用いてペプチド合成を行うことができる（例えばCreighton, T. (1984) Proteins, Structures and Molecular Properties, WH Freeman, New York NY, 55-60ページ; 及び Roberge, J.Y.他(1995) Science 269:202-204を参照）。自動合成はABI 431Aペプチドシンセサイザ（Applied Biosystems）を用いて達成し得る。更に、NAAPのアミノ酸配列又は任意のその一部を、直接合成の際に改変することにより、及び／又は他のタンパク質からの配列群又は任意のその一部と組み合わせることにより、或る天然ポリペプチドの配列を有するポリペプチド又は変異体ポリペプチドが作製され得る。
【０１９７】
このペプチドは、分取用高速液体クロマトグラフィを用いて実質的に精製し得る（Chiez, R.M.及びF.Z. Regnier (1990) Methods Enzymol. 182:392-421などを参照）。この合成ペプチドの組成は、アミノ酸分析又はシークエンシングによって確認できる（前出のCreighton, 28-53ページ等を参照）。
【０１９８】
生物学的に活性なNAAPを発現させるために、NAAPをコードするヌクレオチド配列又はその誘導体を好適な発現ベクターに挿入し得る。好適な発現ベクターとは、好適な宿主に挿入されたコーディング配列の転写及び翻訳の制御に必要なエレメント群を持つベクターである。必要なエレメントとしては、該ベクターと、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列群とにおける調節配列群（エンハンサー、構成型及び発現誘導型のプロモーター、５'及び３'の非翻訳領域など)が含まれる。このようなエレメントは、強度及び特異性が様々である。特定の開始シグナル類を用いて、NAAPをコードする配列群の、より効果的な翻訳を達成できる。このようなシグナルには、ATG開始コドンと、コザック配列などの近傍の配列が含まれる。NAAPをコードする配列群、その開始コドン、及び上流の調節配列群が、好適な発現ベクターに挿入された場合は、更なる転写制御シグナルや翻訳制御シグナルは必要ないこともある。しかしながら、コーディング配列或いはその断片のみが挿入された場合は、インフレームのATG開始コドンを含む外来性の翻訳調節シグナルが発現ベクターに含まれるようにすべきである。外来性の翻訳エレメント及び開始コドンは、様々な天然物及び合成物を起源とし得る。用いられる特定の宿主細胞系に好適なエンハンサーを含めることで発現の効率を高めることが可能である。（Scharf, D. 他 (1994) Results Probl. Cell Differ. 20:125-162.等を参照）。
【０１９９】
当業者に周知の方法を用いて、NAAPをコードする配列と、好適な転写及び翻訳制御エレメントとを持つ発現ベクターを作製し得る。これらの方法には、in vitro組換えDNA技術、合成技術、及びin vivo遺伝子組換え技術が含まれる(例えば、 Sambrook, J. 他. (1989) Molecular Cloning. A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, Plainview NY, 4章及び8章, 及び１6-17章; 及びAusubel, F.M. 他. (1995) Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, New York NY, ch. 9章、13章及び16章を参照)。
【０２００】
種々の発現ベクター／宿主系を利用して、NAAPをコードする配列群の保持及び発現ができる。限定するものではないがこのような発現ベクター／宿主系には、組換えバクテリオファージ、プラスミド又はコスミドDNA発現ベクターで形質転換させた細菌や、酵母菌発現ベクターで形質転換させた酵母菌などの微生物や、ウイルス発現ベクター（例えばバキュロウイルス）に感染した昆虫細胞系や、ウイルス発現ベクター（例えばカリフラワーモザイクウイルス：CaMV又はタバコモザイクウイルス：TMV）又は細菌発現ベクター（例えばTi又はpBR322プラスミド）で形質転換させた植物細胞系、動物細胞系等がある。（前出のSambrook、前出のAusubel、Van Heeke, G. 及び S.M. Schuster (1989) J. Biol. Chem. 264:5503-5509、; Engelhard、E.K. ら (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:3224-3227、Sandig, V. ら (1996) Hum. Gene Ther. 7:1937-1945、Takamatsu, N. (1987) EMBO J. 6:307-311、;『マグローヒル科学技術年鑑』(The McGraw Hill Yearbook of Science and Technology) (1992) McGraw Hill New York NY, 191-196ページ、Logan, J. 及び T. Shenk (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81:3655-3659、Harrington, J.J. ら (1997) Nat. Genet. 15:345-355等を参照）レトロウイルス、アデノウイルス、ヘルペスウイルス又はワクシニアウイルス由来の発現ベクター、又は種々の細菌性プラスミド由来の発現ベクターを用いて、ヌクレオチド配列を標的器官、組織又は細胞集団へ送達することができる（Di Nicola, M. 他 (1998) Cancer Gen. Ther. 5(6):350-356、Yu, M. 他 (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90(13):6340-6344、Buller, R.M. 他 (1985) Nature 317(6040):813-815; McGregor, D.P. 他 (1994) Mol. Immunol. 31(3):219-226、Verma, I.M. 及び N. Somia (1997) Nature 389:239-242等を参照）。本発明は使用される宿主細胞によって限定されるものではない。
【０２０１】
細菌系では、多数のクローニングベクター及び発現ベクターが、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列の使用目的に応じて選択可能である。例えば、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列の慣例的なクローニング、サブクローニング、増殖には、PBLUESCRIPT（Stratagene, La Jolla CA）又はPSPORT１プラスミド（Life Technologies）などの多機能の大腸菌ベクターを用いることができる。ベクターのマルチクローニング部位にNAAPをコードする配列をライゲーションするとlacＺ遺伝子が破壊され、組換え分子を含む形質転換された細菌の同定のための比色スクリーニング法が可能となる。更にこれらのベクターは、クローニングされた配列におけるin vitro転写、ジデオキシのシークエンシング、ヘルパーファージによる一本鎖のレスキュー、入れ子欠失の生成にも有用であろう(例えば、Van Heeke, G. 及び S.M. Schuster (1989) J. Biol. Chem. 264:5503-5509を参照)。例えば、抗体の産生のためなどに多量のNAAPが必要な場合は、NAAPの発現をハイレベルで誘導するベクターが使用できる。例えば、強力な誘導SP６バクテリオファージプロモーター又は誘導T7バクテリオファージプロモーターを含むベクターが使用できる。
【０２０２】
酵母の発現系を使用してNAAPを産出することもできる。α因子、アルコールオキシダーゼ、PGHプロモーター等の構成型或いは誘導型のプロモーターを含む多数のベクターが、出芽酵母菌（Saccharomyces cerevisiae） 又はピキア酵母（Pichia pastoris）に使用可能である。更に、このようなベクターは、発現したタンパク質の分泌か細胞内への保持のどちらかを誘導し、安定した増殖のために宿主ゲノムの中に外来配列を組み込む。(例えば、Ausubel, 1995,前出、Bitter, G.A. 他 (1987) Methods Enzymol.153:516-544、及びScorer. C. A. 他 (1994) Bio/Technology 12:181-184を参照)。
【０２０３】
植物系もNAAPの発現に使用可能である。NAAPをコードする配列の転写は、ウイルスプロモーター、例えば単独或いはTMV（Takamatsu, N. (1987) EMBO J 6:307-311）由来のオメガリーダー配列と組み合わせて用いられるようなCaMV由来の35S及び19Sプロモーターによって促進される。或いは、RUBISCOの小サブユニット等の植物プロモーター又は熱ショックプロモーターを用いてもよい（例えば、Coruzzi, G. 他 (1984) EMBO J. 3 : 1671-1680 ; Broglie, R. 他 (1984) Science 224 : 838-843 ; 及び Winter, J. 他 (1991) Results Probl. Cell Differ. 17 : 85-105を参照）これらの作製物は、直接DNA形質転換に又は病原体を媒介とする形質移入によって、植物細胞内に導入可能である。（『マグローヒル科学技術年鑑』(The McGraw Hill Yearbook of Science and Technology) (1992) McGraw Hill New York NY, 191-196ページ等を参照。
【０２０４】
哺乳動物細胞においては、多数のウイルスベースの発現系を利用し得る。アデノウイルスが発現ベクターとして用いられる場合、後期プロモーターと３連リーダー配列とからなるアデノウイルス転写／翻訳複合体に、NAAPをコードする配列群をライゲーションし得る。アデノウイルスゲノムの非必須E1又はE3領域へ挿入することにより、宿主細胞内でNAAPを発現する感染ウイルスを得ることができる(例えば、Logan, J. 及び T. Shenk (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81:3655-3659を参照)。更に、ラウス肉腫ウイルス（RSV）エンハンサー等の転写エンハンサーを用いて、哺乳動物宿主細胞における発現を増大させ得る。SV40又はEBVをベースにしたベクターを用いてタンパク質を高レベルで発現させることもできる。
【０２０５】
ヒト人工染色体（HAC）を用いて、プラスミドに含まれ且つプラスミドから発現するものより大きなDNAの断片を送達することもできる。治療のために約６kb〜１０MbのHACsを作製し、従来の輸送方法（リポソーム、ポリカチオンアミノポリマー、又はベシクル）で供給する。(例えば、Harrington. J.J. 他 (1997) Nat. Genet.15:345-355を参照)。
【０２０６】
哺乳動物系内の組換えタンパク質の長期にわたる産生のためには、細胞株におけるNAAPの安定した発現が望ましい。例えば、NAAPをコードする配列を細胞株に形質転換するために、発現ベクター類と、同じベクター上の或いは別のベクター上の選択可能マーカー遺伝子とを用い得る。用いる発現ベクターは、ウイルス起源の複製要素、及び／又は内因性の発現要素を持ち得る。ベクターの導入後、選択培地に移す前に強化培地で約１〜２日間細胞を増殖させることができる。選択可能マーカーの目的は選択培地への抵抗性を与えることであり、選択可能マーカーが存在することにより、導入された配列をうまく発現するような細胞の成長及び回収が可能となる。安定的に形質転換された細胞の耐性クローンは、その細胞型に適した組織培養技術を用いて増殖可能である。
【０２０７】
任意の数の選択系を用いて、形質転換細胞株を回収できる。限定するものではないがこのような選択系には、tk−単純細胞のために用いられる単純ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼ遺伝子と、apr−細胞のために用いられるアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ遺伝子がある(例えば、Wigler, M. 他 (1977) Cell 11:223-232; 及びLowy, I. 他(1980) Cell 22:817-823を参照)。また、選択の基礎として代謝拮抗物質、抗生物質或いは除草剤への耐性を用いることができる。例えばdhfrはメトトレキセートに対する耐性を与え、neoはアミノグリコシッドネオマイシン及びG-418に対する耐性を与え、alsはクロルスルフロンに対する耐性を、patはホスフィノトリシンアセチルトランスフェラーゼに対する耐性を各々与える( Wigler, M. 他 (1980) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77:3567-3570; Colbere-Garapin, F. 他 (1981) J. Mol. Biol. 150:1-14 等を参照。)この他の選択可能な遺伝子、例えば、代謝のための細胞の必要条件を変えるtrpB及びhisDは、文献に記載されている(例えばHartman, S.C. 及び R.C. Mulligan (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85:8047-8051を参照)。可視マーカー、例えばアントシアニン、緑色蛍光タンパク質（GFP；Clontech）、βグルクロニダーゼ及びその基質βグルクロニド、又はルシフェラーゼ及びその基質ルシフェリン等を用いてもよい。これらのマーカーを用いて、トランスフォーマントを特定するだけでなく、特定のベクター系に起因する一過性或いは安定したタンパク質発現を定量することが可能である(Rhodes, C.A. (1995) Methods Mol. Biol. 55:121-131等を参照)。
【０２０８】
マーカー遺伝子発現の存在／不存在によって目的の遺伝子の存在が示唆されても、その遺伝子の存在及び発現の確認が必要な場合もある。例えば、NAAPをコードする配列がマーカー遺伝子配列の中に挿入された場合、NAAPをコードする配列を持つ形質転換された細胞は、マーカー遺伝子機能の欠落により同定可能である。又は、単一プロモーターの制御下で、或るマーカー遺伝子を、NAAPをコードする１配列とタンデムに配置することもできる。誘導又は選択に応答したマーカー遺伝子の発現は通常、タンデム遺伝子の発現も示す。
【０２０９】
一般に、NAAPをコードする核酸配列を含み且つNAAPを発現する宿主細胞は、当業者によく知られている種々の方法を用いて同定することが可能である。限定するものではないが当業者によく知られている方法には、DNA-DNA或いはDNA-RNAハイブリダイゼーションと、PCR増幅とがあり、また、核酸配列或いはタンパク質配列の検出、定量、或いはその両方を行うための、膜系、溶液ベース或いはチップベースの技術を含む、タンパク質の生物学的検定法又は免疫学的検定法もある。
【０２１０】
特異的ポリクローナル抗体又は特異的モノクローナル抗体を用いてNAAPの発現の検出と計測とを行うための免疫学的方法は、当分野で既知である。このような技術の例としては、酵素結合イムノソルベントアッセイ（ELISA）、ラジオイムノアッセイ（RIA）、蛍光活性化細胞選別（FACS）などが挙げられる。NAAP上の２つの非干渉エピトープに反応するモノクローナル抗体群を用いた、２部位のモノクローナルベースイムノアッセイ（two-site, monoclonal-based immunoassay）が好ましいが、競合結合試験を用いることもできる。これらのアッセイ及びこれ以外のアッセイは、当分野で公知である（Hampton. R. 他 (1990) Serological Methods, a Laboratory Manual. APS Press. St Paul. MN, Sect. IV、Coligan, J. E. 他 (1997) Current Protocols in Immunology, Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience, New York NY、Pound, J.D. (1998) Immunochemical Protocols, Humans Press, Totowa NJ等を参照）。
【０２１１】
多岐にわたる標識方法及び抱合方法が、当業者に知られており、様々な核酸アッセイ及びアミノ酸アッセイにこれらの方法を用い得る。NAAPをコードするポリヌクレオチドに関連する配列を検出するための、標識されたハイブリダイゼーションプローブ或いはPCRプローブを生成する方法には、オリゴ標識化、ニックトランスレーション、エンドラベリング（末端標識化)、又は標識されたヌクレオチドを用いるPCR増幅が含まれる。別法として、NAAPをコードする配列、又はその任意の断片を、mRNAプローブを生成するためのベクターにクローニングすることも可能である。このようなベクターは、当分野において知られており、市販もされており、T7、T3又はSP6等の好適なRNAポリメラーゼ及び標識されたヌクレオチドを加えて、in vitroでRNAプローブの合成に用いることができる。このような方法は、例えばAmersham Pharmacia Biotech、Promega（Madison WI）、U.S. Biochemical等から市販されている種々のキットを用いて実行することができる。検出を容易にするために用い得る好適なレポーター分子或いは標識には、基質、補助因子、インヒビター、磁気粒子のほか、放射性核種、酵素、蛍光剤、化学発光剤、発色剤等がある。
【０２１２】
NAAPをコードするヌクレオチド配列で形質転換された宿主細胞は、細胞培地でのこのタンパク質の発現及び回収に好適な条件下で培養される。形質転換細胞から製造されたタンパク質が分泌されるか細胞内に留まるかは、使用される配列、ベクター、或いはその両者に依存する。NAAPをコードするポリヌクレオチド群を持つ発現ベクター類は、原核細胞膜又は真核細胞膜を透過してのDMEの分泌を指示するシグナル配列群を持つように設計できることは、当業者には理解されよう。
【０２１３】
更に、宿主細胞株の選択は、挿入した配列の発現を調節する能力又は発現したタンパク質を所望の形に処理する能力によって行い得る。限定するものではないがこのようなポリペプチドの修飾には、アセチル化、カルボキシル化、グリコシル化、リン酸化、脂質化及びアシル化がある。タンパク質の「プレプロ」又は「プロ」形を切断する翻訳後のプロセシングを利用して、タンパク質の標的への誘導、折りたたみ及び／又は活性を特定することが可能である。翻訳後の活性のための特異的な細胞装置及び特徴のある機構を有する種々の宿主細胞（例えばCHO、HeLa、MDCK、MEK293、WI38等）は、American Type Culture Collection（ATCC, Manassas, VA）から入手可能であり、外来タンパク質の正しい修飾及び処理を確実にするように選択し得る。
【０２１４】
本発明の別の実施態様では、NAAPをコードする、天然核酸配列、修飾された核酸配列、又は組換え核酸配列を、或る異種配列に結合させることにより、上記した任意の宿主系内で、或る融合タンパク質の翻訳を生じ得る。例えば、市販の抗体によって認識できる異種部分を含むキメラNAAPタンパク質は、NAAP活性のインヒビターに対するペプチドライブラリのスクリーニングを促進し得る。また、異種タンパク質部分及び異種ペプチド部分も、市販されている親和性基質を用いて融合タンパク質の精製を促進し得る。限定されるものではないがこのような部分には、グルタチオンＳトランスフェラーゼ（GST）、マルトース結合タンパク質（MBP）、チオレドキシン（Trx）、カルモジュリン結合ペプチド（CBP）、6-His、FLAG、c-myc、赤血球凝集素（HA）がある。GSTは固定化グルタチオン上で、MBPはマルトース上で、Trxはフェニルアルシンオキシド上で、CBPはカルモジュリン上で、そして6-Hisは金属キレート樹脂上で、同族の融合タンパク質の精製を可能にする。FLAG、c-myc及び赤血球凝集素（HA）は、これらのエピトープ標識を特異的に認識する市販されているモノクローナル抗体及びポリクローナル抗体を用いて、融合タンパク質の免疫親和性精製を可能にする。また、融合タンパク質が、NAAPをコードする配列と異種タンパク質配列との間にタンパク質分解切断部位を持つように遺伝子操作すると、精製後にNAAPが異種部分から切断され得る。融合タンパク質の発現及び精製方法は、前出のAusubel (1995) 10章に記載されている。市販されている種々のキットを用いて融合タンパク質の発現及び精製を促進することもできる。
【０２１５】
本発明の更なる実施態様では、TNTウサギ網状赤血球可溶化液又はコムギ胚芽抽出系(Promega)を用いてin vitroで、放射能標識したNAAPの合成が可能である。これらの系は、T7、T3又はSP6プロモーターと機能的に連結したタンパク質コード配列の、転写及び翻訳をカップルさせる。翻訳は、例えば35Sメチオニンのような放射能標識したアミノ酸前駆体の存在下で起こる。
【０２１６】
本発明のNAAP又はその断片を用いて、NAAPに特異結合する化合物をスクリーニングすることができる。少なくとも１つ又は複数の試験化合物を用いて、NAAPへの特異的な結合をスクリーニングすることが可能である。試験化合物の例には、抗体、オリゴヌクレオチド、タンパク質（例えば受容体）又は小分子が挙げられる。
【０２１７】
或る実施態様では、このように同定された化合物は、NAAPの天然リガンドに密接に関連し、例えばリガンドやその断片であり、又は天然基質や、構造的又は機能的な擬態物質（mimetic）、或いは自然結合パートナーである（Coligan, J.E. 他 (1991) Current Protocols in Immunology 1(2)の5章等を参照）。同様に、この化合物は、NAAPが結合する天然受容体に、或いは例えばリガンド結合部位など少なくともこの受容体の或る断片に、密接に関連し得る。何れの場合も、既知の技術を用いてこの化合物を合理的に設計することができる。或る実施例では、これら化合物のためのスクリーニングには、分泌タンパク質として、或いは細胞膜上でNAAPを発現する、好適な細胞群の作製が含まれる。好適な細胞には、哺乳動物、酵母、ショウジョウバエ、又は大腸菌からの細胞が含まれる。NAAPを発現する細胞又はNAAPを含有する細胞膜分画を試験化合物と接触させて、NAAP又はこの化合物のどちらかの結合、刺激、又は活性の阻害を分析する。
【０２１８】
或るアッセイは、単に試験化合物をポリペプチドに実験的に結合させ、フルオロフォア、放射性同位体、酵素抱合体又はその他の検出可能な標識によりその結合を検出することができる。例えば、このアッセイは、少なくとも１つの試験化合物を、溶液中の、或いは固体支持物に固定されたNAAPと混合するステップと、NAAPとこの化合物との結合を検出するステップを含み得る。別法では、標識された競合物の存在下での試験化合物の結合の検出及び測定を行うことができる。更にこのアッセイでは、無細胞再構成標本、化学ライブラリ又は天然の生成混合物を用いて実施することができ、試験化合物は、溶液中で遊離させるか固体支持体に固定させる。
【０２１９】
本発明のNAAP又はその断片を用いて、NAAPの活性をモジュレートする化合物をスクリーニングすることが可能である。このような化合物には、アゴニスト、アンタゴニスト、部分的アゴニスト、又は逆アゴニスト等が含まれる。或る実施例では、NAAPを少なくとも１つの試験化合物と混合する、NAAPの活性が許容される条件下でアッセイを実施し、試験化合物の存在下でのNAAPの活性と、試験化合物不在下でのNAAPの活性とを比較する。試験化合物の存在下でのNAAPの活性の変化は、NAAPの活性を調節する化合物の存在を示唆する。
別法では、試験化合物を、NAAPの活性に適した条件下で、NAAPを含むin vitroすなわち無細胞系と混合してアッセイを実施する。これらアッセイの何れにおいても、NAAPの活性を調節する試験化合物は間接的に調節する場合があり、その際は試験化合物と直接接触する必要がない。少なくとも１つから複数の試験化合物をスクリーニングすることができる。
【０２２０】
別の実施態様では、胚性幹細胞（ES細胞）における相同組換えを用いて動物モデル系内で、NAAP又はその哺乳類相同体をコードするポリヌクレオチドを「ノックアウト」する。このような技術は当技術分野において周知であり、ヒト疾患動物モデルの産生に有用である（米国特許第5,175,383号及び第5,767,337号等を参照）。例えば129/SvJ細胞株等のマウスES細胞は初期のマウス胚に由来し、培地で増殖させることができる。このES細胞は、ネオマイシンホスホトランスフェラーゼ遺伝子（neo: Capecchi, M.R. (1989) Science 244:1288-1292）等のマーカー遺伝子で破壊した目的の遺伝子を含むベクターで形質転換する。このベクターは、相同組換えにより宿主ゲノムの対応する領域に組み込まれる。別法では、Cre-loxP系を用いて相同組換えを行い、組織特異的又は発生段階特異的に目的遺伝子をノックアウトする（Marth, J.D. (1996) Clin. Invest. 97:1999-2002; Wagner, K.U. 他 (1997) Nucleic Acids Res. 25:4323-4330）。形質転換したES細胞を同定し、例えばC57BL/6マウス系等から採取したマウス細胞胚盤胞に微量注入する。胚盤胞を偽妊娠メスに外科的に導入し、得られるキメラ子孫の遺伝形質を決め、これを交配させてヘテロ接合性系又はホモ接合性系を作製する。このようにして作製した遺伝子組換え動物は、可能性のある治療薬や毒性薬剤で検査することができる。
【０２２１】
NAAPをコードするポリヌクレオチドをin vitroでヒト胚盤胞由来のES細胞において操作することが可能である。ヒトES細胞は、内胚葉、中胚葉及び外胚葉の細胞の種類を含む少なくとも８つの別々の細胞系統に分化する可能性を有する。これらの細胞系統は、例えば神経細胞、造血系統及び心筋細胞に分化する（Thomson, J.A. 他 (1998) Science 282:1145-1147）。
【０２２２】
NAAPをコードするポリヌクレオチドを用いて、ヒト疾患をモデルとした「ノックイン」ヒト化動物（ブタ）又は遺伝子組換え動物（マウス又はラット）を作製することもできる。ノックイン技術を用いて、NAAPをコードするポリヌクレオチドの或る領域を動物ES細胞に注入し、注入した配列を動物細胞ゲノムに組み込ませる。形質転換細胞を胞胚に注入し、胞胚を上記のように移植する。遺伝子組換え子孫又は近交系について研究し、可能性のある医薬品を用いて処理し、ヒトの疾患の治療に関する情報を得る。別法では、例えばNAAPを乳汁内に分泌するなどNAAPを過剰に発現する哺乳動物近交系は、便利なタンパク質源となり得る（Janne, J. 他 (1998) Biotechnol. Annu. Rev. 4:55-74）。
【０２２３】
（治療）
NAAPの領域と核酸関連タンパク質の領域との間には、例えば配列及びモチーフの文脈における、化学的及び構造的類似性が存在する。更に、NAAPを発現する組織の例としては脳組織、脳腫瘍組織及び正常な好酸球があり、表６にも示されている。従って、NAAPは、細胞増殖異常、神経疾患、発達障害、及び自己免疫／炎症性疾患、及び感染症においてある役割を果たすと考えられる。NAAPの発現又は活性の増大に関連する疾患の治療においては、NAAPの発現又は活性を低下させることが望ましい。また、NAAPの発現又は活性の低下に関連する疾患の治療においては、NAAPの発現又は活性を増大させることが望ましい。
【０２２４】
従って、一実施態様では、NAAPの発現又は活性の低下に関連した疾患の治療又は予防のために、被験者にNAAP又はその断片や誘導体が投与され得る。限定するものではないが、このような疾患には細胞増殖異常、神経疾患、発達障害、自己免疫／炎症疾患、及び感染症が含まれ、細胞増殖異常には日光角化症、動脈硬化、アテローム硬化、滑液包炎、硬変、肝炎、混合性結合組織病（MCTD）、骨髄線維症、発作性夜間ヘモグロビン尿症、真性多血症、乾癬、原発性血小板血症、並びに、腺癌、白血病、リンパ腫、黒色腫、骨髄腫、肉腫、及び奇形癌など癌、具体的には、副腎、膀胱、骨、骨髄、脳、乳房、頚部、胆嚢、神経節、消化管、心臓、腎臓、肝臓、肺、筋肉、卵巣、膵臓、副甲状腺、陰茎、前立腺、唾液腺、皮膚、脾臓、精巣、胸腺、甲状腺、及び子宮の癌が含まれ、神経疾患には、癲癇、虚血性脳血管障害、脳卒中、脳腫瘍、アルツハイマー病、ピック病、ハンチントン病、痴呆、パーキンソン病及びその他の錐体外路障害、筋萎縮性側索硬化及びその他の運動ニューロン障害、進行性神経性筋萎縮症、網膜色素変性症（色素性網膜炎）、遺伝性運動失調、多発性硬化症及び他の脱髄疾患、細菌性及びウイルス性髄膜炎、脳膿瘍、硬膜下膿瘍、硬膜外膿瘍、化膿性頭蓋内血栓性静脈炎、脊髄炎及び神経根炎、ウイルス性中枢神経系疾患と、プリオン病（クールー、クロイツフェルト‐ヤコブ病、及びGerstmann-Straussler-Scheinker症候群を含む）、致死性家族性不眠症、神経系性栄養病及び代謝病、神経線維腫症、結節硬化症、小脳網膜血管腫症（cerebelloretinal hemangioblastomatosis）、脳三叉神経血管腫症候群、中枢神経系性精神遅滞及び他の発達障害、脳性麻痺、神経骨格異常症、自律神経系障害、脳神経疾患、脊髄疾患、筋ジストロフィ他の神経筋障害、末梢神経疾患、皮膚筋炎及び多発性筋炎と、遺伝性、代謝性、内分泌性、及び中毒性ミオパシーと、重症筋無力症、周期性四肢麻痺、精神障害（気分性、不安性の障害、統合失調症／分裂病）、季節性感情障害（SAD）、静座不能、健忘症、緊張病、糖尿病性ニューロパシー、遅発性ジスキネジア、ジストニー、パラノイド精神病、帯状疱疹後神経痛、トゥーレット病が含まれ、発達障害には尿細管性アシドーシス、貧血、クッシング症候群、軟骨形成不全性小人症、デュシェンヌ／ベッカー型筋ジストロフィ、癲癇、性腺形成異常、WAGR症候群（ウィルムス腫瘍、無虹彩症、尿生殖器異常、精神遅滞）、スミス‐マジェニス症候群（Smith-Magenis syndrome）、骨髄異形成症候群、遺伝性粘膜上皮異形成、遺伝性角皮症や、シャルコーマリーツース病及び神経線維腫症などの遺伝性神経病、甲状腺機能低下症、水頭症や、Syndenham舞踏病（Syndenham's chorea）及び脳性小児麻痺などの発作障害、二分脊椎、無脳症、頭蓋脊椎披裂、先天性緑内障、白内障、感音難聴が含まれ、自己免疫／炎症疾患には、後天性免疫不全症候群（AIDS）、アジソン病（慢性原発性副腎機能不全）、成人呼吸窮迫症候群、アレルギー、強直性脊椎炎、アミロイド症、貧血、喘息、アテローム性動脈硬化、自己免疫性溶血性貧血、自己免疫性甲状腺炎、自己免疫性多腺性内分泌カンジダ症外胚葉ジストロフィ（APECED）、気管支炎、胆嚢炎、接触皮膚炎、クローン病、アトピー性皮膚炎、皮膚筋炎、糖尿病、肺気腫、リンパ球傷���因子性偶発性リンパ球減少症、新生児溶血性疾患（胎児赤芽球症）、結節性紅斑、萎縮性胃炎、糸球体腎炎、グッドパスチャー症候群、痛風、グレーブス病、橋本甲状腺炎、過好酸球増加症、過敏性腸症候群、多発性硬化症、重症筋無力症、心筋又は心膜炎症、骨関節炎、骨粗しょう症、膵炎、多発性筋炎、乾癬、ライター症候群、リウマチ様関節炎、強皮症、シェーグレン症候群、全身性アナフィラキシー、全身性エリテマトーデス、全身性強皮症、血小板減少性紫斑病、潰瘍性大腸炎、ぶどう膜炎、ウェルナー症候群、癌合併症、血液透析、体外循環や、ウイルス、細菌、真菌、寄生虫及び原虫の感染症、蠕虫感染症、外傷が含まれ、感染症には、アデノウイルス、アレナウイルス、ブンヤウイルス（bunyavirus）、カリチウイルス（calicivirus）、コロナウイルス、フィロウイルス、ヘパドナウイルス、ヘルペスウイルス、フラビウイルス、オルソミクソウイルス、パルボウイルス、パポーバウイルス、パラミクソウイルス、ピコルナウイルス、ポックスウイルス、レオウイルス、レトロウイルス、ラブドウイルス、トガウイルスに分類されるウイルス病原体による感染や、細菌による感染（肺炎球菌、ブドウ球菌、連鎖球菌、バシラス菌、コリネバクテリウム、クロストリジウム、髄膜炎菌、淋菌、リステリア、モラクセラ、キンゲラ、ヘモフィルス、レジオネラ、百日咳菌類(ボルデテラ)や、シゲラ、サルモネラ、カンピロバクターを含むグラム陰性腸内細菌、シュードモナス、ビブリオ、ブルセラ、野兎病菌類(フランシセラ)、エルシニア、バルトネラ、norcardium、放線菌、ミコバクテリウム、spirochaetale、リケッチア、クラミジア、マイコプラズマに分類）、真菌感染(分類はアスペルギルス、ブラストミセス、皮膚糸状菌、クリプトコッカス、コクシジオイデス、malasezzia、ヒストプラスマ、又は他の真菌症起因菌)、寄生虫感染(分類はプラスモディウムすなわちマラリア原虫、寄生性アメーバ、リーシュマニア、トリパノソーマ、トキソプラズマ、ニューモシスチスカリニ、腸内原虫(ジアルジアなど）、トリコモナス、組織線虫(旋毛虫など)、腸管寄生線虫(回虫など)、リンパ管フィラリア線虫、吸虫(住血吸虫など)、及び条虫（サナダムシなど）)が含まれる。
【０２２５】
別の実施態様では、限定するものではないが上に列記した疾患を含む、NAAPの発現又は活性の低下に関連した疾患の治療又は予防のために、NAAP又はその断片や誘導体を発現し得るベクターを被験者に投与し得る。
【０２２６】
更に別の実施態様では、限定するものではないが上に列記した疾患を含む、NAAPの発現又は活性の低下に関連した疾患の治療又は予防のために、実質的に精製されたNAAPを有する組成物を、好適な医薬用キャリアと共に被験者に投与し得る。
【０２２７】
更に別の実施態様では、限定するものではないが上に列記した疾患を含む、NAAPの発現又は活性の低下に関連した疾患の治療又は予防のために、NAAPの活性を調節するアゴニストを被験者に投与し得る。
【０２２８】
更なる実施例では、NAAPの発現又は活性の増大に関連した疾患の治療又は予防のために、被験者にNAAPのアンタゴニストを投与し得る。限定するものではないが、このような疾患の例には、上記した細胞増殖異常、神経疾患、発達障害、自己免疫／炎症性疾患、及び、感染症が含まれる。一実施態様では、NAAPと特異的に結合する抗体が直接アンタゴニストとして、或いはNAAPを発現する細胞又は組織に薬剤を運ぶターゲッティング機構或いは送達機構として間接的に用いられ得る。
【０２２９】
別の実施例では、NAAPをコードするポリヌクレオチドの相補配列を発現するベクターを被験者に投与して、限定するものではないが上記した疾患を含む、NAAPの発現又は活性の増大に関連した疾患の治療又は予防を成し得る。
【０２３０】
別の実施例では、本発明の任意のタンパク質、アンタゴニスト、抗体、アゴニスト、相補配列、又はベクターを、別の好適な治療薬と組み合わせて投与することもできる。併用療法で用いる好適な治療薬は、当業者が従来の医薬原理に従って選択し得る。治療薬と組み合わせることにより、上記した種々の疾患の治療又は予防に相乗効果をもたらし得る。この方法を用いることにより少量の各薬剤で医薬効果をあげることが可能となり、それによって副作用の可能性を低減し得る。
【０２３１】
NAAPのアンタゴニストは、本技術分野で一般的に知られている方法を用いて製造し得る。具体的には、精製されたNAAPを用いて抗体を作るか、治療薬のライブラリをスクリーニングして、NAAPと特異結合するものを同定することが可能である。NAAPへの抗体も、本技術分野で公知の方法を用いて産生され得る。限定するものではないがこのような抗体には、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、一本鎖抗体、Fab断片、及びFab発現ライブラリによって作られた断片が含まれ得る。中和抗体（即ち二量体の形成を阻害する抗体）は通常、治療用に好適である。一本鎖抗体(例えば、ラクダ又はラマ)は有力な酵素阻害剤であり、またペプチド擬態物質の設計及び免疫吸着剤やバイオセンサーの開発に利点があるであろう(Muyldermans, S. (2001) J. Biotechnol. 74:277-302)。
【０２３２】
抗体の産生のためには、ヤギ、ウサギ、ラット、マウス、ラクダ、ヒトコブラクダ、ラマ、ヒト及びその他のものを含む種々の宿主が、NAAP 又は任意の断片、又は免疫原性の特性を備えるそのオリゴペプチドの注入によって免疫化され得る。宿主の種に応じて、種々のアジュバントを用いて免疫応答を高めることもできる。限定するものではないがこのようなアジュバントには、フロイントアジュバントと、水酸化アルミニウム等のミネラルゲルアジュバントと、リゾレシチン、プルロニックポリオル、ポリアニオン、ペプチド、油性乳剤、スカシガイのヘモシニアン、ジニトロフェノール等の界面活性剤とがある。ヒトに用いられるアジュバントの中では、BCG（カルメット‐ゲラン杆菌）及びコリネバクテリウム‐パルバム（Corynebacterium parvum）が特に好ましい。
【０２３３】
NAAPに対する抗体を誘導するために用いるオリゴペプチド、ペプチド又は断片は、少なくとも約５個のアミノ酸からなるアミノ酸配列を持つものが好ましく、一般的には約１０個以上のアミノ酸からなるものとなる。これらのオリゴペプチド、ペプチド又は断片は、天然のタンパク質のアミノ酸配列の一部と同一であることが望ましい。NAAPアミノ酸類の短いストレッチ群は、KLHなど他のタンパク質の配列と融合され、このキメラ分子に対する抗体群が産生され得る。
【０２３４】
NAAPに対するモノクローナル抗体は、培地内の連続した細胞株によって、抗体分子を産生する任意の技術を用いて作製することが可能である。限定するものではないがこのような技術には、ハイブリドーマ技術、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ技術及びEBV-ハイブリドーマ技術がある（Kohler, G. 他 (1975) Nature 256:495-497、Kozbor, D. 他 (1985) .J. Immunol. Methods 81:31-42、Cote, R.J. 他 (1983) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80:2026-2030、Cole, S.P. 他 (1984) Mol. Cell Biol. 62:109-120等を参照）。
【０２３５】
更に、「キメラ抗体」作製のために発達したヒト抗体遺伝子にマウス抗体遺伝子をスプライシングするなどの技術が、好適な抗原特異性及び生物学的活性を備える分子を得るために用いられる（例えば、Morrison, S.L.他. (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. 81:6851-6855; Neuberger, M.S.他. (1984) Nature 312:604-608; Takeda, S.他 (1985) Nature 314:452,454を参照。）別法では、当分野で周知の方法を用い、一本鎖抗体の産生のための記載された技術を適用して、NAAP特異的一本鎖抗体を生成する。関連特異性を有するがイディオタイプ組成が異なるような抗体を、ランダムな組み合わせの免疫グロブリンライブラリからチェーンシャッフリングによって産生することもできる（Burton D.R. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:10134-10137等を参照）。
【０２３６】
抗体の産生は、リンパ球集団におけるin vivo産生の誘導によって、或いは文献に開示されているように非常に特異的な結合試薬の免疫グロブリンのライブラリ又はパネルのスクリーニングによっても行い得る。（Orlandi, R. 他 (1989) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86: 3833-3837、Winter, G. 他 (1991) Nature 349:293-299等を参照）。
【０２３７】
NAAPに対する特異的な結合部位を含む抗体断片も産生され得る。例えば、限定するものではないが、このような断片には、抗体分子のペプシン消化によって作製されるF(ab')2 断片と、F(ab')2 断片のジスルフィド架橋を還元することによって作製されるFab断片とがある。或いは、Fab発現ライブラリを作製することによって、所望の特異性を持つモノクローナルFab断片を迅速且つ容易に同定することが可能となる（Huse, W.D. 他 (1989) Science 246:1275-1281等を参照）。
【０２３８】
種々のイムノアッセイを用いてスクリーニングし、所望の特異性を有する抗体を同定することができる。確立された特異性を有するポリクローナル抗体又はモノクローナル抗体の何れかを用いる免疫放射定量測定法又は競合結合アッセイに対する数々のプロトコルは、本技術分野において公知である。このようなイムノアッセイは通常、NAAPとその特異抗体との間の複合体形成の計測を含む。２つの非干渉性NAAPエピトープに対して反応性を持つモノクローナル抗体群を用いる、２部位モノクローナルベースのイムノアッセイが一般に利用されるが、競合結合試験も利用できる(Pound、前出)。
【０２３９】
ラジオイムノアッセイ技術と共にScatchard分析などの様々な方法を用いて、NAAPに対する抗体の親和性を評価し得る。親和性を結合定数Kaで表すが、このKaは、平衡状態下の、NAAP抗体複合体のモル濃度を、遊離抗体と遊離抗原とのモル濃度で除して得られる値である。ポリクローナル抗体類は多様なNAAPエピトープに対する親和性が不均一であり、或るポリクローナル抗体製剤に関して判定したKaは、NAAP抗体群の平均の親和性又は結合活性を表す。モノクローナル抗体は或る特定のNAAPエピトープに対して単一特異的であり、モノクローナル抗体の或る製剤について判定したKaは、親和性の真の測定値を表す。Ka値が１０９〜１０１２Ｌ／ｍｏｌの高親和性抗体製剤は、NAAP-抗体複合体が激しい操作に耐えなければならないイムノアッセイに用いるのが好ましい。Ka値が１０６〜１０７Ｌ／ｍｏｌの低親和性抗体製剤は、NAAPが抗体から最終的に活性化状態で解離する必要がある免疫精製（immunopurification）及び類似の処理に用いるのが好ましい。 (Catty, D. (1988) Antibodies, Volume I: A Practical Approach. IRL Press, Washington, DC; Liddell, J. E. 及び Cryer, A. (1991) A Practical Guide to Monoclonal Antibodies, John Wiley & Sons, New York NY)。
【０２４０】
ポリクローナル抗体製剤の抗体価及び結合活性を更に評価して、後に使う或る適用例に対するこのような製剤の品質及び適性を決定することができる。例えば、少なくとも１〜２ｍｇ／ｍｌの特異的な抗体、好ましくは５〜１０ｍｇ／ｍｌの特異的な抗体を含むポリクローナル抗体製剤は一般に、NAAP-抗体複合体を沈殿させなければならない処理に用いられる。抗体の特異性、抗体価、結合活性、様々な適用例における抗体の品質や使用に対する指針については、一般に入手可能である（前出のCattyの文献、同Coligan 他の文献等を参照）。
【０２４１】
本発明の別の実施例では、NAAPをコードするポリヌクレオチド、又はその任意の断片や相補配列を、治療目的で使用することができる。或る実施例では、NAAPをコードする遺伝子のコーディング領域や調節領域に相補的な配列やアンチセンス分子（DNA、RNA、PNA、又は修飾したオリゴヌクレオチド）を設計して遺伝子発現をモディフィケーションし得る。このような技術は当分野では周知であり、アンチセンスオリゴヌクレオチド又はより大きな断片を、NAAPをコードする配列の制御領域、又はコード領域に沿った、さまざまな位置から設計可能である（例えばAgrawal, S.,編集（1996）Antisense Therapeutics, Humana Press Inc., Totawa NJを参照）。
【０２４２】
治療に用いる場合、アンチセンス配列を好適な標的細胞に導入するのに好適な任意の遺伝子送達系を用いることができる。アンチセンス配列は、転写時に標的タンパク質をコードする細胞配列の少なくとも一部に相補的な配列を作製する発現プラスミドの形で細胞内に送達することが可能である(例えばSlater, J.E. 他 (1998) J. Allergy Clin. Immunol. 102(3):469-475; 及びScanlon, K.J. 他 (1995) 9(13):1288-1296を参照。) また、アンチセンス配列は、例えばレトロウイルスやアデノ随伴ウイルスベクターなどのウイルスベクターを用いて細胞内に導入することもできる（Miller, A.D. (1990) Blood 76:271、前出のAusubel、Uckert, W. and W. Walther (1994) Pharmacol. Ther. 63(3):323-347等を参照）。その他の遺伝子送達機構には、リポソーム系、人工的なウイルスエンベロープ及び当分野で公知のその他のシステムが含まれる（Rossi, J.J. (1995) Br. Med. Bull. 51(1):217-225; Boado、R.J.他 (1998) J. Pharm. Sci. 87(11):1308-1315、Morris, M.C. 他 (1997) Nucleic Acids Res. 25(14):2730-2736. 等を参照）。
【０２４３】
本発明の別の実施態様では、NAAPをコードするポリヌクレオチドを、体細胞若しくは生殖細胞の遺伝子治療に用いることが可能である。遺伝子治療を行うことにより、（i）遺伝子欠損症（例えばＸ染色体連鎖遺伝（Cavazzana-Calvo, M.他 (2000) Science 288:669-672）により特徴付けられる重症複合型免疫不全(SCID)-X1病の場合）、先天性アデノシンデアミナーゼ（ADA）欠損症に関連する重症複合型免疫不全症候群（Blaese, R.M. 他 (1995) Science 270:475-480、Bordignon, C.他 (1995) Science 270:470-475）、嚢胞性繊維症（Zabner, J.他 (1993) Cell 75:207-216: Crystal、R.G.他 (1995) Hum. Gene  Therapy 6:643-666、Crystal, R.G.他. (1995) Hum. Gene Therapy 6:667-703）、サラセミア（thalassamia）、家族性高コレステロール血症、第VIII因子若しくは第IX因子欠損に起因する血友病（Crystal, 35  R.G. (1995) Science 270:404-410、Verma, I.M. and Somia. N. (1997) Nature 389:239-242）を治療し、（ii）条件的致死性遺伝子産物を発現させ（例えば制御不能な細胞増殖に起因する癌の場合）、（iii）細胞内の寄生生物（例えばヒト免疫不全ウイルス(HIV)（Baltimore, D. (1988) Nature 335:395-396、Poescbla, E.他 (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 93:11395-11399）などヒトレトロウイルス、B型若しくはC型肝炎ウイルス（HBV、HCV）、Candida albicans及びParacoccidioides brasiliensis等の真菌寄生菌、並びにPlasmodium falciparum及びTrypanosoma cruzi等の原生動物寄生体に対する防御機能を有するタンパク質を発現させることができる。NAAPの発現若しくは調節に必要な遺伝子の欠損が疾患を引き起こす場合、導入した細胞の好適な集団からNAAPを発現させて、遺伝子欠損によって起こる症状の発現を緩和することが可能である。
【０２４４】
本発明の更なる実施例では、NAAPの欠損による疾患や異常症を、NAAPをコードする哺乳類発現ベクターを作製して、これらのベクターを機械的手段によってNAAP欠損細胞に導入することによって治療する。in vivo或いはex vitroの細胞に用いる機械的導入技術には、（i）個々の細胞内への直接的なDNA微量注射法、（ii）遺伝子銃、（iii）リポソームを介した形質移入、（iv）受容体を介した遺伝子導入、及び（v）DNAトランスポゾンの使用がある（Morgan, R.A. 及び W.F. Anderson（1993）Annu. Rev. Biochem. 62:191-217、Ivics, Z.（1997）Cell 91:501-510; Boulay, J-L. 及びH. Recipon（1998）Curr. Opin. Biotechnol. 9:445-450）。
【０２４５】
NAAPの発現に影響を及ぼし得る発現ベクターには、限定するものではないが、PCDNA 3.1、EPITAG、PRCCMV2、PREP、PVAX、PCR2-TOPOTAベクター(Invitrogen, Carlsbad CA)、PCMV-SCRIPT、PCMV-TAG、PEGSH／PERV (Stratagene, La Jolla CA)、PTET-OFF、PTET-ON、PTRE2、PTRE2-LUC、PTK-HYG (Clontech, Palo Alto CA)が含まれる。NAAPを発現させるために、（i）構成的に活性なプロモーター（例えば、サイトメガロウイルス（CMV）、ラウス肉腫ウイルス（RSV）、SV40ウイルス、チミジンキナーゼ（TK）、若しくはβ−アクチン遺伝子等）、(ii)誘導性プロモーター（例えば、市販されているT-REXプラスミド（Invitrogen）に含まれている、テトラサイクリン調節性プロモーター（Gossen, M. 及び H. Bujard (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89:5547-5551; Gossen, M. 他 (1995) Science 268:1766-1769; Rossi, F.M.V. 及び H.M. Blau (1998) Curr. Opin. Biotechnol. 9:451-456））、エクジソン誘導性プロモーター（市販されているプラスミドPVGRXR及びPINDに含まれている：Invitrogen）、FK506／ラパマイシン誘導性プロモーター、又はRU486／ミフェプリストーン誘導性プロモーター（Rossi, F.M.V. 及び H.M. Blau, 前出）、又は（iii）正常な個体に由来するNAAPをコードする内在性遺伝子の天然のプロモーター若しくは組織特異的プロモーターを用いることが可能である。
【０２４６】
市販のリポソーム形質転換キット（例えばInvitrogen社のPerFect Lipid Transfection Kit）を用いれば、当業者は実験の各パラメータを最適化する努力をさほど要さず、ポリヌクレオチド群を、培養中の標的細胞群に送達し得る。別法では、リン酸カルシウム法（Graham. F.L. 及び A.J. Eb (1973) Virology 52:456-467）若しくは電気穿孔法（Neumann, B. 他 (1982) EMBO J. 1:841-845）を用いて形質転換を行う。初代培養細胞にDNAを導入するためには、標準化された哺乳動物の形質移入プロトコルの修飾が必要である。
【０２４７】
本発明の別の実施例では、NAAPの発現に関連する遺伝子欠損によって起こる疾患や障害を、（i）レトロウイルス末端反復配列（LTR）プロモーター若しくは或る独立プロモーターのコントロール下でNAAPをコードするポリヌクレオチドと、（ii）好適なRNAパッケージングシグナル群と、（iii）追加のレトロウイルス・シス作用性RNA配列と、効率的なベクター増殖に必要なコーディング配列とを伴うRev応答性エレメント（RRE）と、からなるレトロウイルスベクターを作製して治療することができる。レトロウイルスベクター（例えばPFB及びPFBNEO）はStratagene社から市販されており、刊行データ（Riviere, I. 他 (1995) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92:6733-6737）に基づいている。上記データを引用することをもって本明細書の一部とする。ベクターは、好適なベクター産生細胞株（VPCL）において増殖され、VPCLは、標的細胞上の受容体に対する親和性を有するエンベロープ遺伝子又はVSVg等の汎親和性エンベロープタンパク質を発現する（Armentano, D. 他 (1987) J. Virol. 61:1647-1650、Bender, M.A. 他 (1987) J. Virol. 61:1639-1646、Adam, M.A. 及び A.D. Miller (1988) J. Virol. 62:3802-3806、Dull, T. 他 (1998) J. Virol. 72:8463-8471、Zufferey, R. 他 (1998) J. Virol. 72:9873-9880）。Riggに付与された米国特許第5,910,434号（「Method for obtaining retrovirus packaging cell lines producing high transducing efficiency retroviral supernatant」）において、レトロウイルスパッケージング細胞株を得るための方法が開示されており、引用することをもって本明細書の一部とする。レトロウイルスベクターの増殖、細胞集団（例えばCD4+ Ｔ細胞）の形質導入、及び形質導入した細胞の患者への戻しは、遺伝子治療の分野では当業者に公知の方法であり、多数の文献に記載されている（Ranga, U. 他 (1997) J. Virol. 71:7020-7029、Bauer, G. 他 (1997) Blood 89:2259-2267、Bonyhadi, M.L. (1997) J. Virol. 71:4707-4716、Ranga, U. 他 (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95:1201-1206、Su, L. (1997) Blood 89:2283-2290）。
【０２４８】
別法では、アデノウイルス系遺伝子治療の或る送達系を用いて、NAAPの発現に関連する１つ以上の遺伝子異常を有する細胞群に、NAAPをコードするポリヌクレオチド群を送達する。アデノウイルス系ベクターの作製及びパッケージングについては、当業者に公知である。複製欠損型アデノウイルスベクターは、免疫調節タンパク質をコードする遺伝子を膵臓の無損傷の膵島内に導入するために広く用いられることが証明された（Csete, M.E. 他 (1995) Transplantation 27:263-268）。使用できる可能性のあるアデノウイルスベクターは、Armentanoに付与された米国特許第5,707,618号（「Adenovirus vectors for gene therapy」）に記載されており、引用することをもって本明細書の一部とする。アデノウイルスベクターについては、Antinozzi, P.A. 他 (1999) Annu. Rev. Nutr. 19:511-544 及び Verma, I.M. 及び N. Somia (1997) Nature 18:389:239-242も参照されたい。両文献は、引用することをもって本明細書の一部とする。
【０２４９】
別法では、ヘルペス系遺伝子治療の送達系を用いて、NAAPの発現に関連する１つ或いは複数の遺伝子異常を有する標的細胞に、NAAPをコードするポリヌクレオチドを送達する。単純ヘルペスウイルス（HSV）系ベクター類は、HSVが向性を持つ中枢神経細胞にNAAPを導入する際に、特に有益たりうる。ヘルペス系ベクターの作製及びパッケージングは、当業者に公知である。複製適格性単純ヘルペスウイルス（HSV）I型系のベクターは、レポーター遺伝子を霊長類の眼に送達するために用いられてきた（Liu, X. 他 (1999) Exp. Eye Res.169:385-395）。HSV-1ウイルスベクターの作製についても、DeLucaに付与された米国特許第5,804,413号（「Herpes simplex virus swains for gene transfer」）に開示されており、該特許の引用をもって本明細書の一部とする。 米国特許第5,804,413号には、ヒト遺伝子治療を含む目的のために好適なプロモーターの制御下において細胞に導入される少なくとも１つの外因性遺伝子を有するゲノムを含む組換えHSV d92についての記載がある。上記特許はまた、ICP4、ICP27及びICP22を欠失した組換えHSV系統の作製及び使用について開示している。HSVベクターについては、Goins, W.F. 他 (1999) J. Virol. 73:519-532 及び Xu, H. ら (1994) Dev. Biol. 163:152-161も参照されたい。両文献は、引用をもって本明細書の一部とする。クローン化ヘルペスウイルス配列の操作、巨大ヘルペスウイルスのゲノムの異なったセグメント群を含む多数のプラスミドを形質移入した後の組換えウイルスの産生、ヘルペスウイルスの成長及び増殖、並びにヘルペスウイルスの細胞への感染は、当業者に公知の技術である。
【０２５０】
別法では、或るαウイルス（正の一本鎖RNAウイルス）ベクターを用いて、NAAPをコードするポリヌクレオチド群を標的細胞群に送達する。プロトタイプのαウイルスであるセムリキ森林熱ウイルス（Semliki Forest Virus, SFV）の生物学的研究が広範に行われており、遺伝子導入ベクター類はSFVゲノムに基づく（Garoff, H. 及び K.-J. Li (1998) Cun. Opin. Biotech. 9:464-469）。αウイルスRNAの複製中に、通常はウイルスのカプシドタンパク質をコードするサブゲノムRNAが作り出される。このサブゲノムRNAは、完全長のゲノムRNAより高いレベルに複製されるため、酵素活性（例えばプロテアーゼ及びポリメラーゼ）を有するウイルスタンパク質に比べてカプシドタンパク質が過剰産生される。同様に、NAAPをコードする配列をαウイルスゲノムのカプシドをコードする領域に導入することによって、ベクター導入細胞において多数のNAAPをコードするRNAが産生され、高いレベルでNAAPが合成される。通常、αウイルスの感染は、数日以内の細胞溶解を伴う。一方、シンドビスウイルス（SIN）の或る変異体を有するハムスター正常腎臓細胞（BHK-21）群が持続的な感染を確立する能力は、αウイルスの溶解複製を遺伝子治療に適用できるように好適に変更可能であることを示唆している（Dryga, S.A. 他 (1997) Virology 228 :74-83）。αウイルスの宿主域は広いので、様々なタイプの細胞にNAAPを導入できることとなる。或る集団におけるサブセットの細胞の特定形質導入は、形質導入前に細胞の選別を必要とし得る。αウイルスの感染性cDNAクローンの処置方法、αウイルスのcDNA及びRNAの形質移入方法及びαウイルスの感染方法は、当業者に公知である。
【０２５１】
転写開始部位（transcription initiation site）由来のオリゴヌクレオチドを用いて遺伝子発現を阻害することも可能である。転写開始部位とは例えば開始部位(start site)から数えて約−１０と約＋１０の間である。同様に、三重らせん塩基対の形成方法を用いて阻害が可能となる。三重らせん塩基対形成は、ポリメラーゼ、転写因子又は調節分子の結合のために十分に開くような二重らせんの能力を阻害するので、三重らせん塩基対形成は有用である。三重らせんDNAを用いる最近の治療の進歩については文献に記載がある（Gee, J.E. 他 (1994) in: Huber, B.E.and B.I. Carr, Molecular and Immunologic Approaches, Futura Publishing Co., Mt. Kisco, NY, 163-177ページ等を参照。）相補配列又はアンチセンス分子もまた、転写物がリボソームに結合するのを阻止することによってmRNAの翻訳を阻止するべく設計することができる。
【０２５２】
リボザイムは酵素的RNA分子であり、RNAの特異的切断を触媒するためにリボザイムを用いることもできる。リボザイム作用のメカニズムは、相補的標的RNAへのリボザイム分子の配列特異的ハイブリダイゼーションとその後に起こる内ヌクレオチド鎖切断に関与している。例えば、人工的に作製されたハンマーヘッド型リボザイム分子が、NAAPをコードする配列の、内ヌクレオチド鎖切断を特異的且つ効果的に触媒できる可能性がある。
【０２５３】
任意のRNA標的内の特異的リボザイム切断部位は、GUA、GUU、GUC配列を含めたリボザイム切断部位に対して標的分子をスキャンすることによって先ず同定される。一度同定されると、切断部位を含む標的遺伝子の領域に対応する１５〜２０リボヌクレオチドの短いＲＮＡ配列が、そのオリゴヌクレオチドを機能不全にするような２次構造の特徴をもっていないかを評価することが可能になる。候補標的の適合性の評価も、リボヌクレアーゼ保護アッセイを用いて相補的オリゴヌクレオチドとのハイブリダイゼーションのアクセス可能性をテストすることによって行うことができる。
【０２５４】
本発明の相補リボ核酸分子及びリボザイムは、核酸分子合成のために当分野で既知の任意の方法を用いて作製し得る。作製方法には、固相フォスフォアミダイト化学合成等のオリゴヌクレオチドを化学的に合成する方法がある。或いは、NAAPをコードするDNA配列のin vitro及びin vivo転写によってRNA分子を産生し得る。このようなDNA配列は、T7やSP6等の好適なRNAポリメラーゼプロモーターを用いて多様なベクター内に取り込むことが可能である。或いは、相補的RNAを構成的或いは誘導的に合成するようなこれらcDNA産物を、細胞株、細胞又は組織内に導入することができる。
【０２５５】
細胞内の安定性を高め、半減期を長くするためにRNA分子を修飾することができる。限定するものではないが可能な修飾には、分子の５'末端、３'末端、或いはその両方においてフランキング配列を追加したり、分子の主鎖内においてホスホジエステラーゼ結合ではなくホスホロチオネート又は2' O-メチルを使用したりすることが含まれる。この概念は、PNAの産出に固有のものであるが、これら全ての分子に拡大することができる。そのためには、内因性エンドヌクレアーゼによって容易には認識されないアデニン、シチジン、グアニン、チミン、及びウリジンにアセチル−、メチル−、チオ−及び同様の修飾をしたものや、非従来型塩基、例えばイノシン、クエオシン（queosine）、ワイブトシン（wybutosine）等を含める。
【０２５６】
本発明の更なる実施例は、NAAPをコードするポリヌクレオチドの発現の改変に有効な化合物をスクリーニングする方法を含む。限定するものではないが特異ポリヌクレオチドの発現改変を起こすのに有効な化合物には、オリゴヌクレオチド、アンチセンスオリゴヌクレオチド、三重らせん形成オリゴヌクレオチド、転写因子その他のポリペプチド転写制御因子、及び特異ポリヌクレオチド配列と相互作用し得る非高分子化学的実体がある。有効な化合物は、ポリヌクレオチド発現のインヒビター又はエンハンサーのいずれかとして作用することによりポリヌクレオチド発現を改変し得る。従って、NAAPの発現又は活性の増加に関連する疾患の治療においては、NAAPをコードするポリヌクレオチドの発現を特異的に阻害する化合物が治療上有用であり、NAAPの発現又は活性の低下に関連する疾患の治療においては、NAAPをコードするポリヌクレオチドの発現を特異的に促進する化合物が治療上有用であり得る。
【０２５７】
特異ポリヌクレオチドの発現改変における有効性に対して、少なくとも１個から複数個の試験化合物をスクリーニングし得る。試験化合物は、当分野で通常知られている任意の方法により得られる。このような方法には、ポリヌクレオチドの発現を変容させる場合と、既存の、商用又は専用の、天然又は非天然の化合物ライブラリから選択する場合と、標的ポリヌクレオチドの化学的及び／又は構造的特性に基づく化合物を合理的にデザインする場合と、組み合わせ的に又は無作為に生成した化合物のライブラリから選択する場合に有効であることが知られているような化合物の化学修飾がある。NAAPをコードするポリヌクレオチドを持つサンプルを、このようにして得た試験化合物の少なくとも１つに曝露する。サンプルには例えば、無傷細胞、透過化処理した細胞、又はin vitro無細胞系すなわち再構成生化学系があり得る。NAAPをコードするポリヌクレオチドの発現における改変は、当分野で周知の任意の方法でアッセイする。通常は、NAAPをコードするポリヌクレオチドの配列に相補的なヌクレオチド配列を有するプローブを用いたハイブリダイゼーションにより、特定のヌクレオチドの発現を検出する。ハイブリダイゼーション量を定量し、それによって１つ若しくは複数の試験化合物に曝露される及び曝露されないポリヌクレオチドの発現の比較に対する基礎を形成し得る。試験化合物に曝露されるポリヌクレオチドの発現における変化の検出は、ポリヌクレオチドの発現を改変する際に試験化合物が有効であることを示している。特異ポリヌクレオチドの発現改変に有効な化合物に対して、例えば分裂酵母（Schizosaccharomyces pombe）遺伝子発現系（Atkins, D. 他 (1999) 米国特許第5,932,435号、Arndt, G.M. 他 (2000) Nucleic Acids Res. 28:E15）又はHeLa細胞等のヒト細胞株（Clarke, M.L. 他 (2000) Biochem. Biophys. Res. Commun. 268:8-13）を用いてスクリーニングを実行する。本発明の特定の実施例は、特異的ポリヌクレオチド配列に対するアンチセンス活性のためのオリゴヌクレオチド（デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、ペプチド核酸、修飾オリゴヌクレオチド）の組み合わせライブラリをスクリーニングすることに関与している（Bruice, T.W. 他 (1997) 米国特許第5,686,242号、Bruice, T.W. 他 (2000) 米国特許第6,022,691号）。
【０２５８】
ベクターを細胞又は組織に導入する多数の方法が利用可能であり、in vivo、in vitro及びex vivoの使用に対して同程度に適している。ex vivo治療の場合、ベクターを患者から採取した幹細胞内に導入し、クローニング増殖して同一患者に自家移植で戻すことができる。トランスフェクション、リポソーム注入又はポリカチオンアミノポリマーによる送達は、当分野でよく知られている方法を用いて実行することができる（Goldman, C.K. 他 (1997) Nat. Biotechnol. 15:462-466.等を参照）。
【０２５９】
上記の治療方法はいずれも、例えば、ヒト、イヌ、ネコ、ウシ、ウマ、ウサギ、サル等の哺乳動物を含めて治療が必要な全ての対象に適用できる。
【０２６０】
本発明の更なる実施例は、通常薬剤として許容できる賦形剤で処方される活性成分を有する組成物の投与に関連する。賦形剤には例えば、糖、でんぷん、セルロース、ゴム及びタンパク質がある。様々な処方が通常知られており、詳細はRemington's Pharmaceutical Sciences（Maack Publishing, Easton PA）の最新版に記載されている。このような組成物は、NAAP、NAAPの抗体、擬態物質、アゴニスト、アンタゴニスト、又はインヒビターなどからなる。
【０２６１】
本発明に用いられる組成物は、任意の数の経路によって投与することができ、限定するものではないが経路には、経口、静脈内、筋肉内、動脈内、骨髄内、クモ膜下腔内、心室内、肺、経皮、皮下、腹腔内、鼻腔内、腸内、局所、舌下又は直腸がある。
【０２６２】
肺から投与する組成物は、液状又は乾燥粉末状で調製し得る。このような組成物は通常、患者が吸入する直前にエアロゾル化する。小分子（例えば従来の低分子量有機薬）の場合には、速効製剤のエアロゾル送達は当分野で公知である。高分子（例えばより大きなペプチド及びタンパク質）の場合には、当該分野において肺の肺胞領域を介しての肺送達が最近向上したことにより、インスリン等の薬剤を実質的に血液循環へ輸送することを可能にした（Patton, J.S. 他, 米国特許第5,997,848号等を参照）。肺送達は、針注射なしに投与する点で優れており、有毒な可能性のある浸透エンハンサーの必要性をなくす。
【０２６３】
本発明での使用に適した組成物には、所定の目的を達成するために必要なだけの量の活性成分を含有する組成物が含まれる。有効投与量の決定は、当業者の能力の範囲内で行う。
【０２６４】
NAAPを有する、又はその断片群を有する高分子群を直接、細胞内に送達すべく、特殊な種々の形状の組成物群が調製され得る。例えば、細胞不透過性高分子を含むリポソーム製剤は、細胞融合及び高分子の細胞内送達を促進し得る。別法では、NAAP又はその断片を、HIV Tat-1タンパク質から得た短い陽イオンN末端部に結合することもできる。このようにして生成された融合タンパク質は、マウスモデル系の脳を含む全ての組織の細胞に形質導入することがわかっている（Schwarze, S.R. 他 (1999) Science 285:1569-1572）。
【０２６５】
任意の化合物に対して、先ず細胞培養アッセイ、例えば新生物性細胞の細胞培養アッセイにおいて、或いは、動物モデル、例えばマウス、ラット、ウサギ、イヌ、サル又はブタなどにおいて、治療有効量を推定することができる。動物モデルはまた、好適な濃度範囲及び投与経路を決定するためにも用い得る。このような情報を用いて、次にヒトに対する有益な投与量及び投与経路を決定することができる。
【０２６６】
治療有効投与量とは、症状や容態を回復させる、たとえばNAAP又はその断片、NAAPの抗体、NAAPのアゴニスト又はアンタゴニスト、インヒビターなど活性成分の量を指す。治療有効性及び毒性は、細胞培養又は動物実験における標準的な薬学手法によって、例えばED50（集団の５０％の治療有効量）又はLD50（集団の５０％の致死量）統計を計算するなどして判定できる。毒性効果の治療効果に対する投与量比が治療指数であり、LD50/ED50比として表すことができる。高い治療指数を示すような組成物が望ましい。細胞培養アッセイ及び動物実験から得られたデータは、ヒトに用いるための投与量の範囲を策定するのに用いられる。このような組成物が含まれる投与量は、毒性を殆ど或いは全く含まず、ED50を含むような血中濃度の範囲にあることが好ましい。用いられる投与形態、患者の感受性及び投与の経路によって、投与量はこの範囲内で様々に変わる。
【０２６７】
正確な投与量は、治療が必要な被験者に関する要素を考慮して、現場の医者が決定することになる。効果的なレベルの活性成分を与え、或いは所望の効果を維持するべく、投与量及び投与を調節する。被験者に関する要素としては、疾患の重症度、患者の全身の健康状態、患者の年齢、体重及び性別(ジェンダー)、投与の時間及び頻度、併用薬、反応感受性及び治療に対する応答等を考慮しうる。作用期間が長い組成物は、特定の製剤の半減期及びクリアランス率によって３〜４日毎に１度、１週間に１度、或いは２週間に１度の間隔で投与し得る。
【０２６８】
通常の投与量は、投与の経路にもよるが約０.１〜１００,０００μgであり、合計で約１gまでとする。特定の投与量及び送達方法に関するガイダンスは文献に記載されており、現場の医者は通常それを利用することができる。当業者は、タンパク質又はインヒビターに対する処方とは異なる、ヌクレオチドに対する処方を利用することになる。同様に、ポリヌクレオチド又はポリペプチドの送達は、特定の細胞、状態、位置等に特異的なものとなる。
【０２６９】
（診断）
別の実施例では、NAAPに特異的に結合する抗体を、NAAPの発現によって特徴付けられる障害の診断に、又は、NAAPやNAAPのアゴニスト又はアンタゴニスト、インヒビターで治療を受けている患者をモニターするためのアッセイに用い得る。診断目的に有用な抗体は、上記の治療の箇所で記載した方法と同じ方法で調合される。NAAPの診断アッセイには、ヒトの体液から、或いは細胞や組織の抽出物から、抗体及び標識を用いてNAAPを検出する方法が含まれる。この抗体は修飾されたものもされていないものも可能であり、レポーター分子との共有結合又は非共有結合で標識化できる。レポーター分子としては広くさまざまな種類が本分野で知られており、また使用可能であるが、そのうちのいくつかは上記で説明されている。
【０２７０】
NAAPを測定するための様々なプロトコル、例えばELISA、RIA、FACS等が当分野では周知であり、変容した、或いは異常なレベルのNAAPの発現を診断するための基盤を提供する。正常或いは標準的なNAAPの発現の値は、複合体の形成に適した条件下で、正常な哺乳動物、例えばヒトなどの被験体から採取した体液又は細胞抽出物と、NAAPに対する抗体とを混合させることによって確定する。標準複合体形成量は、種々の方法、例えば測光法で定量できる。被験体、対照、及び、生検組織からの疾患サンプルでの、NAAP発現の量を標準値と比較する。標準値と被験者との偏差が疾患を診断するパラメータとなる。
【０２７１】
本発明の別の実施態様によれば、NAAPをコードするポリヌクレオチドを診断のために用いることもできる。用いられることができるポリヌクレオチドには、オリゴヌクレオチド配列、相補的RNA及びDNA分子、そしてPNAが含まれる。これらのポリヌクレオチドを用いて、NAAPの発現が疾患と相関し得る生検組織における遺伝子発現を検出し定量し得る。この診断アッセイを用いて、NAAPの存在の有無、更には過剰な発現を判定し、治療時のNAAPレベルの調節を監視する。
【０２７２】
或る実施形態では、NAAP又は近縁の分子をコードする、ゲノム配列などポリヌクレオチド配列を検出可能なPCRプローブ類とのハイブリダイゼーションを、NAAPをコードする核酸配列を同定するために用いることができる。プローブが高度に特異的な領域（例えば５'調節領域）から作られている、或いはやや特異性の低い領域（例えば保存されたモチーフ）から作られているかという、プローブの特異性と、ハイブリダイゼーション或いは増幅のストリンジェンシーとによって、そのプローブがNAAPをコードする天然配列のみを同定するかどうか、或いは対立遺伝子変異配列や関連配列を同定するかどうかが決まることとなる。
【０２７３】
プローブはまた、関連する配列の検出に利用でき、また、NAAPをコードする任意の配列との少なくとも５０％の配列同一性を有し得る。本発明のハイブリダイゼーションプローブには、DNA或いはRNAが可能であり、SEQ ID NO:11-20の配列、或いはNAAP遺伝子のプロモーター、エンハンサー、イントロンを含むゲノム配列に由来し得る。
【０２７４】
NAAPをコードするDNAに対して特異的なハイブリダイゼーションプローブの作製方法には、NAAPをコード又はNAAP誘導体をコードするポリヌクレオチド配列をmRNAプローブの作製のためのベクターにクローニングする方法がある。ｍＲＮＡプローブ作製のためのベクターは、当業者に知られており、市販されており、好適なＲＮＡポリメラーゼ及び好適な標識されたヌクレオチドを加えることによって、in vitroでＲＮＡプローブを合成するために用いられ得る。ハイブリダイゼーションプローブは、種々のレポーターの集団によって標識され得る。レポーター集団の例としては、32P又は35S等の放射性核種、或いはアビジン／ビオチン結合系を介してプローブに結合されたアルカリホスファターゼ等の酵素標識などが挙げられる。
【０２７５】
NAAPをコードするポリヌクレオチド配列を、NAAPの発現に関係する疾患の診断に用い得る。限定するものではないが、このような疾患には細胞増殖異常、神経疾患、発達障害、自己免疫／炎症疾患、及び感染症が含まれ、細胞増殖異常には日光角化症、動脈硬化、アテローム硬化、滑液包炎、硬変、肝炎、混合性結合組織病（MCTD）、骨髄線維症、発作性夜間ヘモグロビン尿症、真性多血症、乾癬、原発性血小板血症、並びに、腺癌、白血病、リンパ腫、黒色腫、骨髄腫、肉腫、及び奇形癌など癌、具体的には、副腎、膀胱、骨、骨髄、脳、乳房、頚部、胆嚢、神経節、消化管、心臓、腎臓、肝臓、肺、筋肉、卵巣、膵臓、副甲状腺、陰茎、前立腺、唾液腺、皮膚、脾臓、精巣、胸腺、甲状腺、及び子宮の癌が含まれ、神経疾患には、癲癇、虚血性脳血管障害、脳卒中、脳腫瘍、アルツハイマー病、ピック病、ハンチントン病、痴呆、パーキンソン病及びその他の錐体外路障害、筋萎縮性側索硬化及びその他の運動ニューロン障害、進行性神経性筋萎縮症、網膜色素変性症（色素性網膜炎）、遺伝性運動失調、多発性硬化症及び他の脱髄疾患、細菌性及びウイルス性髄膜炎、脳膿瘍、硬膜下膿瘍、硬膜外膿瘍、化膿性頭蓋内血栓性静脈炎、脊髄炎及び神経根炎、ウイルス性中枢神経系疾患と、プリオン病（クールー、クロイツフェルト‐ヤコブ病、及びGerstmann-Straussler-Scheinker症候群を含む）、致死性家族性不眠症、神経系性栄養病及び代謝病、神経線維腫症、結節硬化症、小脳網膜血管腫症（cerebelloretinal hemangioblastomatosis）、脳三叉神経血管腫症候群、中枢神経系性精神遅滞及び他の発達障害、脳性麻痺、神経骨格異常症、自律神経系障害、脳神経疾患、脊髄疾患、筋ジストロフィ他の神経筋障害、末梢神経疾患、皮膚筋炎及び多発性筋炎と、遺伝性、代謝性、内分泌性、及び中毒性ミオパシーと、重症筋無力症、周期性四肢麻痺、精神障害（気分性、不安性の障害、統合失調症／分裂病）、季節性感情障害（SAD）、静座不能、健忘症、緊張病、糖尿病性ニューロパシー、遅発性ジスキネジア、ジストニー、パラノイド精神病、帯状疱疹後神経痛、トゥーレット病が含まれ、発達障害には尿細管性アシドーシス、貧血、クッシング症候群、軟骨形成不全性小人症、デュシェンヌ／ベッカー型筋ジストロフィ、癲癇、性腺形成異常、WAGR症候群（ウィルムス腫瘍、無虹彩症、尿生殖器異常、精神遅滞）、スミス‐マジェニス症候群（Smith-Magenis syndrome）、骨髄異形成症候群、遺伝性粘膜上皮異形成、遺伝性角皮症や、シャルコーマリーツース病及び神経線維腫症などの遺伝性神経病、甲状腺機能低下症、水頭症や、Syndenham舞踏病（Syndenham's chorea）及び脳性小児麻痺などの発作障害、二分脊椎、無脳症、頭蓋脊椎披裂、先天性緑内障、白内障、感音難聴が含まれ、自己免疫／炎症疾患には、後天性免疫不全症候群（AIDS）、アジソン病（慢性原発性副腎機能不全）、成人呼吸窮迫症候群、アレルギー、強直性脊椎炎、アミロイド症、貧血、喘息、アテローム性動脈硬化、自己免疫性溶血性貧血、自己免疫性甲状腺炎、自己免疫性多腺性内分泌カンジダ症外胚葉ジストロフィ（APECED）、気管支炎、胆嚢炎、接触皮膚炎、クローン病、アトピー性皮膚炎、皮膚筋炎、糖尿病、肺気腫、リンパ球傷害因子性偶発性リンパ球減少症、新生児溶血性疾患（胎児���芽球症）、結節性紅斑、萎縮性胃炎、糸球体腎炎、グッドパスチャー症候群、痛風、グレーブス病、橋本甲状腺炎、過好酸球増加症、過敏性腸症候群、多発性硬化症、重症筋無力症、心筋又は心膜炎症、骨関節炎、骨粗しょう症、膵炎、多発性筋炎、乾癬、ライター症候群、リウマチ様関節炎、強皮症、シェーグレン症候群、全身性アナフィラキシー、全身性エリテマトーデス、全身性強皮症、血小板減少性紫斑病、潰瘍性大腸炎、ぶどう膜炎、ウェルナー症候群、癌合併症、血液透析、体外循環や、ウイルス、細菌、真菌、寄生虫及び原虫の感染症、蠕虫感染症、外傷が含まれ、感染症には、アデノウイルス、アレナウイルス、ブンヤウイルス（bunyavirus）、カリチウイルス（calicivirus）、コロナウイルス、フィロウイルス、ヘパドナウイルス、ヘルペスウイルス、フラビウイルス、オルソミクソウイルス、パルボウイルス、パポーバウイルス、パラミクソウイルス、ピコルナウイルス、ポックスウイルス、レオウイルス、レトロウイルス、ラブドウイルス、トガウイルスに分類されるウイルス病原体による感染や、細菌による感染（肺炎球菌、ブドウ球菌、連鎖球菌、バシラス菌、コリネバクテリウム、クロストリジウム、髄膜炎菌、淋菌、リステリア、モラクセラ、キンゲラ、ヘモフィルス、レジオネラ、百日咳菌類(ボルデテラ)や、シゲラ、サルモネラ、カンピロバクターを含むグラム陰性腸内細菌、シュードモナス、ビブリオ、ブルセラ、野兎病菌類(フランシセラ)、エルシニア、バルトネラ、norcardium、放線菌、ミコバクテリウム、spirochaetale、リケッチア、クラミジア、マイコプラズマに分類）、真菌感染(分類はアスペルギルス、ブラストミセス、皮膚糸状菌、クリプトコッカス、コクシジオイデス、malasezzia、ヒストプラスマ、又は他の真菌症起因菌)、寄生虫感染(分類はプラスモディウムすなわちマラリア原虫、寄生性アメーバ、リーシュマニア、トリパノソーマ、トキソプラズマ、ニューモシスチスカリニ、腸内原虫(ジアルジアなど）、トリコモナス、組織線虫(旋毛虫など)、腸管寄生線虫(回虫など)、リンパ管フィラリア線虫、吸虫(住血吸虫など)、及び条虫（サナダムシなど）)が含まれる。NAAPをコードするポリヌクレオチド配列は、変容したNAAP発現を検出するために患者から採取した体液或いは組織を利用する、サザーン法やノーザン法、ドットブロット法、或いはその他の膜系の技術や、PCR法や、ディップスティック（dipstick）、ピン（pin）、及びマルチフォーマットのELISA式アッセイ、及びマイクロアレイに使用可能である。このような定性方法又は定量方法は、当分野で公知である。
【０２７６】
或る特定の態様では、NAAPをコードするヌクレオチド配列群は、関連する障害、特に上記した障害を検出するアッセイ類において有用であり得る。NAAPをコードするヌクレオチド配列を、標準的な方法で標識化し、ハイブリダイゼーション複合体の形成に好適な条件の下、患者から採取した体液或いは組織のサンプルに加えることができる。好適なインキュベーション期間が経過したらサンプルを洗浄し、シグナルを定量して標準値と比較する。患者サンプル中のシグナルの量が、対照サンプルと較べて著しく変化している場合は、該サンプル内の、NAAPをコードするヌクレオチド配列群のレベル変化の存在が、関連する障害の存在を標示する。このようなアッセイは、動物実験、臨床試験における特定の治療効果を推定するため、或いは個々の患者の治療をモニターするために用いることもできる。
【０２７７】
NAAPの発現に関連する疾患の診断の基礎を提供するために、発現の正常すなわち標準的なプロフィールが確立される。これは、ハイブリダイゼーション或いは増幅に好適な条件の下、動物或いはヒトのいずれかの正常な被験体から抽出された体液或いは細胞と、NAAPをコードする配列或いはその断片とを混合することにより達成され得る。実質的に精製されたポリヌクレオチドを既知量用いて行った実験から得た値を正常な被験者から得た値と比較することにより、標準ハイブリダイゼーションを定量することができる。このようにして得た標準値は、疾患の徴候を示す患者から得たサンプルから得た値と比較することができる。標準値からの偏差を用いて疾患の存在を確定する。
【０２７８】
疾患の存在が確定されて治療プロトコルが開始されると、患者の発現レベルが正常な被検者に観察されるレベルに近づき始めたかどうかを測定するため、ハイブリダイゼーションアッセイを定期的に繰り返し得る。連続アッセイから得られた結果を用いて、数日から数ヶ月の期間にわたる治療の効果を示し得る。
【０２７９】
癌に関しては、個体からの生体組織における異常な量の転写物（過少発現又は過剰発現）の存在は、疾患の発生素質を示したり、実際に臨床的症状が現われる前に疾患を検出する方法を提供したりし得る。この種のより明確な診断により、医療の専門家が予防方法又は積極的な治療法を早くから利用し、それによって癌の発生又は更なる進行を防止することが可能となる。
【０２８０】
NAAPをコードする配列群から設計したオリゴヌクレオチド群の更なる診断的利用には、PCRの利用を含み得る。これらのオリゴマーは、化学的に合成するか、酵素により生産するか、或いはin vitroで産出し得る。オリゴマーは、好ましくはNAAPをコードするポリヌクレオチドの断片、或いはNAAPをコードするポリヌクレオチドと相補的なポリヌクレオチドの断片を含み、最適化した条件下で、特定の遺伝子や条件を識別するために利用される。また、オリゴマーは、やや緩いストリンジェンシー条件下で、近縁のＤＮＡ或いはＲＮＡ配列の検出、定量、或いはその両方のため用いることが可能である。
【０２８１】
或る実施態様においては、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列群に由来するオリゴヌクレオチドプライマー類を用いて、一塩基多型（SNP）を検出し得る。SNPは、多くの場合にヒトの先天性又は後天性遺伝病の原因となるような置換、挿入及び欠失である。限定するものではないがＳＮＰの検出方法には、ＳＳＣＰ（single-stranded conformation polymorphism）及び蛍光ＳＳＣＰ（ｆＳＳＣＰ）がある。SSCPでは、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列群に由来のオリゴヌクレオチドプライマー類とポリメラーゼ連鎖反応法（PCR）とを用いた、DNAの増幅を行う。ＤＮＡは例えば、病変組織又は正常組織、生検サンプル、体液その他に由来し得る。ＤＮＡ内のＳＮＰは、一本鎖形状のＰＣＲ生成物の２次及び３次構造に差異を生じさせる。差異は非変性ゲル中でのゲル電気泳動法を用いて検出可能である。ｆＳＣＣＰでは、オリゴヌクレオチドプライマーを蛍光性に標識する。それによってＤＮＡシークエンシング機などの高処理機器でアンプリマー（amplimer）の検出が可能になる。更に、インシリコSNP（in silico SNP, isSNP）と呼ばれる配列データベース分析法は、一般的なコンセンサス配列へ構築されるような個々のオーバーラップするDNA断片の配列を比較することにより、多型性を同定し得る。これらのコンピュータベースの方法は、ＤＮＡの実験室での調製に、また統計モデル及びＤＮＡ配列クロマトグラムの自動分析を用いたシークエンシングのエラーに起因する配列の変異をフィルタリングして除去する。別の態様では、例えば高処理MASSARRAYシステム（Sequenom, Inc., San Diego CA）を用いた質量分析によりSNPを検出し、特徴付ける。
【０２８２】
ヒト疾患の遺伝的根拠を研究するためにＳＮＰを用いることができる。例えば、少なくとも16の一般的ＳＮＰが非インスリン依存型真性糖尿病と関連がある。ＳＮＰは、嚢胞性線維症、鎌状赤血球貧血或いは慢性肉芽腫症等の単一遺伝子病の疾患転帰の差異を研究する面でも有用である。例えば、マンノース結合レクチンの変異体であるMBL2は、嚢胞性線維症の肺での有害な転帰と相関することが示されてきた。SNPはまた、薬理ゲノミックス（命にかかわる毒性など、患者の薬への反応に影響する遺伝的変異体の同定）にも役立つ。例えば、N-アセチルトランスフェラーゼにおける変異は抗結核剤、イソニアジドに応答した末梢神経障害の高発生率と関連しているが、ALOX5 遺伝子のコアプロモータの変異は５-リポキシゲナーゼ経路を標的とする抗喘息薬での治療に対する臨床的反応を減少する。異なった集団でのSNPの分布についての分析は遺伝的浮動、突然変異、組み換えや選択の調査、及び集団の起源の追跡及び集団の移動の追跡に有用である。(Taylor, J.G. 他 (2001) Trends Mol. Med. 7:507-512; Kwok, P.-Y. 及び Z. Gu (1999) Mol. Med. Today 5:538-543; Nowotny, P. 他 (2001) Curr. Opin. Neurobiol. 11:637-641)。
【０２８３】
NAAPの発現を定量するために用い得る方法には、ヌクレオチドの放射標識又はビオチン標識、対照核酸の共増幅（coamplification）、及び標準曲線から得た結果の補間もある(例えば、 Melby, P.C. 他 (1993) J. Immunol. Methods 159:235-244; Duplaa, C. 他 (1993) Anal. Biochem. 212:229-236を参照)。目的のオリゴマーが種々の希釈液中に存在し、分光光度法又は比色反応によって定量が迅速になるような高処理フォーマットのアッセイを行うことによって、複数のサンプルの定量速度を加速することができる。
【０２８４】
更に別の実施例では、本明細書で記載した任意のポリヌクレオチド配列由来のオリゴヌクレオチド又はより長い断片を、マイクロアレイにおけるエレメントとして用いることができる。多数の遺伝子の関連発現レベルを同時にモニターする転写イメージング技術にマイクロアレイを用いることが可能である。これについては、以下に記載する。マイクロアレイはまた、遺伝変異体、突然変異及び多型性の同定に用いることができる。この情報を用いることで、遺伝子機能を決定し、疾患の遺伝的根拠を理解し、疾患を診断し、遺伝子発現の機能としての疾病の進行／後退をモニターし、疾病治療における薬剤の活性を開発及びモニターすることができる。特に、患者にとって最もふさわしく、有効な治療法を選択するために、この情報を用いて患者の薬理ゲノムプロフィールを開発することができる。例えば、患者の薬理ゲノムプロフィールに基づき、患者に対して高度に効果的で副作用を殆ど示さない治療薬を選択することができる。
【０２８５】
別の実施例では、NAAP、NAAPの断片、NAAPに特異的な抗体を、マイクロアレイ上のエレメントとして用いることができる。マイクロアレイを用いて、上記のようなタンパク質−タンパク質相互作用、薬剤−標的相互作用及び遺伝子発現プロフィールをモニター又は測定することが可能である。
【０２８６】
或る実施例は、或る組織又は細胞タイプの転写イメージを生成するような本発明のポリヌクレオチドの使用に関連する。転写イメージは、特定の組織又は細胞タイプによる遺伝子発現の包括的パターンを表す。包括的遺伝子発現パターンは、所与の条件下で所与の時間に発現した遺伝子の数及び相対存在量を定量することにより分析し得る（Seilhamer 他の米国特許第5,840,484号 「Comparative Gene Transcript Analysis」を参照。該特許は特に引用することを以って本明細書の一部となす）。従って、特定の組織又は細胞タイプの転写又は逆転写全体に本発明のポリヌクレオチド又はその相補体をハイブリダイズすることにより、転写イメージを生成し得る。或る実施例では、本発明のポリヌクレオチド又はその相補体がマイクロアレイ上のエレメントのサブセットを複数含むような高処理フォーマットでハイブリダイゼーションを発生させる。結果として得られる転写イメージは、遺伝子活性のプロフィールを提供し得る。
【０２８７】
転写イメージは、組織、株化細胞、生検又はその生物学的サンプルから単離した転写物を用いて生成し得る。転写イメージは従って、組織又は生検サンプルの場合にはin vivo、又は株化細胞の場合にはin vitroでの遺伝子発現を反映する。
【０２８８】
本発明のポリヌクレオチドの発現のプロフィールを作製する転写イメージはまた、工業的又は天然の環境化合物の毒性試験のみならず、in vitroモデル系及び薬剤の前臨床評価と併せて使用し得る。全ての化合物は、作用及び毒性のメカニズムを示す、しばしば分子フィンガープリント又は毒性シグネチャ(toxicant signatures)と称されるような特徴的な遺伝子発現パターンを惹起する（Nuwaysir, E.F. 他 (1999) Mol. Carcinog. 24:15 3-159、Steiner, S. 及び N.L. Anderson (2000) Toxicol. Lett. 112-113:467-471、該文献は特に引用することを以って本明細書の一部となす）。
【０２８９】
試験化合物が、既知の毒性を有する化合物のシグネチャと同様のシグネチャを有する場合には、毒性特性を共有している可能性がある。フィンガープリント又はシグネチャは、多数の遺伝子及び遺伝子ファミリからの発現情報を含んでいる場合には、最も有用且つ正確である。理想的には、発現のゲノム全域にわたる測定が最高品質のシグネチャを提供する。たとえ、発現が任意の試験された化合物によって変容しない遺伝子があったとしても、それらの発現レベルを残りの発現データをノーマライズするために使用できるため、それらの遺伝子は重要である。ノーマライズ手順は、異なる化合物で処理した後の発現データの比較に有用である。毒性シグネチャの要素に遺伝子機能を割り当てることが毒性メカニズムの解釈に役立つが、毒性の予測につながるシグネチャの統計的マッチングに遺伝子機能の知識は必要とされない（例えば２０００年２月２９日にNational Institute of Environmental Health Sciencesより発行されたPress Release 00-02を参照されたい。これについてはhttp://www.niehs.nih.gov/oc/news/toxchip.htmで入手可能である）。従って、毒性シグネチャを用いる中毒学的スクリーニングの際に、全ての発現した遺伝子配列を含めることは重要且つ望ましいことである。
【０２９０】
或る実施例では、核酸を含有する生物学的サンプルを試験化合物で処理することにより試験化合物の毒性を算定する。処理した生物学的サンプル中で発現した核酸は、本発明のポリヌクレオチドに特異的な１つ若しくは複数のプローブでハイブリダイズし、それによって本発明のポリヌクレオチドに対応する転写物レベルを定量し得る。処理した生物学的サンプル中の転写物レベルを、未処理生物学的サンプル中のレベルと比較する。両サンプルの転写物レベルの差は、処理されたサンプル中で試験化合物が引き起こす毒性反応を示す。
【０２９１】
別の実施例は、本発明のポリペプチド配列を用いて組織又は細胞タイプのプロテオームを分析することに関連する。プロテオームの語は、特定の組織又は細胞タイプでのタンパク質発現の包括的パターンを指す。プロテオームの各タンパク質成分は、個々に更に分析の対象とすることができる。プロテオーム発現パターン即ちプロフィールは、所与の条件下で所与の時間に発現したタンパク質の数及び相対存在量を定量することにより分析し得る。従って細胞のプロテオームのプロフィールは、特定の組織又は細胞タイプのポリペプチドを分離及び分析することにより作成し得る。或る実施例では、１次元等電点電気泳動によりサンプルからタンパク質を分離し、２次元ドデシル硫酸ナトリウムスラブゲル電気泳動により分子量に応じて分離するような２次元ゲル電気泳動により分離が達成される（前出のSteiner 及び Anderson）。タンパク質は、通常クーマシーブルー又は銀染色液又は蛍光染色液などの物質を用いてゲルで染色することにより、分散した、独自の位置にある点としてゲル中で可視化される。各タンパク質スポットの光学密度は、通常サンプル中のタンパク質レベルに比例する。異なるサンプル、例えば試験化合物又は治療薬で処理又は未処理のいずれかの生物学的サンプルから得られるタンパク質スポットの光学密度を比較し、処理に関連するタンパク質スポット密度の変化を同定する。スポット内のタンパク質は、例えば化学的又は酵素的切断とそれに続く質量分析を用いる標準的な方法を用いて部分的にシークエンシングする。スポット内のタンパク質の同一性は、その部分配列を、好適には少なくとも５個の連続するアミノ酸残基を、本発明のポリペプチド配列と比較することにより決定し得る。場合によっては、決定的なタンパク質同定のための更なる配列が得られる。
【０２９２】
プロテオームのプロフィールは、NAAPに特異的な抗体を用いてNAAP発現レベルを定量することによっても作成可能である。或る実施例では、マイクロアレイ上でエレメントとして抗体を用い、マイクロアレイをサンプルに曝して各アレイエレメントへのタンパク質結合レベルを検出することによりタンパク質発現レベルを定量する（Lueking, A. 他 (1999) Anal. Biochern. 270:103-111、Mendoze, L.G. 他 (1999) Biotechniques 27:778-788）。検出は当分野で既知の様々な方法で行うことができ、例えば、チオール又はアミノ反応性蛍光化合物を用いてサンプル中のタンパク質を反応させ、各アレイのエレメントにおける蛍光結合の量を検出し得る。
【０２９３】
プロテオームレベルでの毒性シグネチャも中毒学的スクリーニングに有用であり、転写レベルでの毒性シグネチャと並行に分析するべきである。或る組織の或るタンパク質に対しては、転写物とタンパク質の存在量の相関が乏しいこともあるので（Anderson, N.L. 及び J. Seilhamer (1997) Electrophoresis 18:533-537）、転写イメージにはそれ程影響しないがプロテオームのプロフィールを変化させるような化合物の分析においてプロテオーム毒性シグネチャは有用たり得る。更に、体液中の転写物の分析はmRNAの急速な分解のために困難なので、プロテオームのプロフィール作成はこのような場合により信頼し得、情報価値があり得る。
【０２９４】
別の実施例では、タンパク質を含有する生物学的サンプルを試験化合物で処理することにより試験化合物の毒性を算定する。処理された生物学的サンプル中で発現したタンパク質は、各タンパク質の量を定量し得るように分離する。各タンパク質の量を、未処理生物学的サンプル中の対応するタンパク質の量と比較する。両サンプルのタンパク質量の差は、処理サンプル中の試験化合物に対する毒性反応を示す。個々のタンパク質は、個々のタンパク質のアミノ酸残基をシークエンシングし、これら部分配列を本発明のポリペプチドと比較することにより同定する。
【０２９５】
別の実施例では、タンパク質を含有する生物学的サンプルを試験化合物で処理することにより試験化合物の毒性を算定する。生物学的サンプルから得たタンパク質は、本発明のポリペプチドに特異的な抗体を用いてインキュベートする。抗体により認識されたタンパク質の量を定量する。処理された生物学的サンプル中のタンパク質の量を、未処理生物学的サンプル中のタンパク質の量と比較する。両サンプルのタンパク質量の差は、処理サンプル中の試験化合物に対する反応を示す。
【０２９６】
マイクロアレイは、本技術分野で既知の方法を用いて調製し、使用し、そして分析しうる（Brennan, T.M. 他 (1995) の米国特許第5,474,796号、Schena, M. 他 (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:10614-10619、Baldeschweiler 他の (1995) PCT出願第WO95/251116号、Shalon, D.他の (1995) PCT出願第WO95/35505号、Heller, R.A. 他 (1997) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:2150-2155、Heller, M.J. 他の (1997) 米国特許第5,605,662号等を参照）。様々なタイプのマイクロアレイが公知であり、詳細については、DNA Microarrays: A Practical Approach, M. Schena, 編集. (1999) Oxford University Press, Londonに記載されている。 該文献は、特に引用することを以って本明細書の一部となす。
【０２９７】
本発明の別の実施態様ではまた、NAAPをコードする核酸配列群を用いて、天然ゲノム配列をマッピングするのに有用なハイブリダイゼーションプローブ群を産生し得る。コード配列又は非コード配列のいずれかを用いることができ、或る例では、コード配列より非コード配列の方が好ましい。例えば、多重遺伝子ファミリのメンバー内でのコード配列の保存により、染色体マッピング中に望ましくないクロスハイブリダイゼーションが生じる可能性がある。核酸配列は、特定の染色体、染色体の特定領域又は人工形成の染色体、例えば、ヒト人工染色体（HAC）、酵母人工染色体（YAC）、細菌人工染色体（BAC）、細菌P1産物、或いは単一染色体cDNAライブラリに対してマッピングされる（例えばHarrington, J.J. 他（1997）Nat. Genet. 15:345-355; Price, C.M.（1993）Blood Rev. 7:127-134; Trask, B.J.（1991）Trends Genet. 7:149-154を参照）。一度マッピングすると、本発明の核酸配列を用いて例えば或る病状の遺伝を特定の染色体領域の遺伝又は制限酵素断片長多型（RFLP）と相関させるような遺伝子連鎖地図を発生させ得る。(例えば、 Lander, E.S. and D. Botstein (1986) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 83:7353-7357を参照。)
【０２９８】
蛍光in situハイブリッド形成法（FISH）は、他の物理的及び遺伝地図データと相関し得る（前出のHeinz-Ulrich, ら (1995) in Meyers, 965-968ページ.等を参照）遺伝地図データの例は、種々の科学雑誌或いはOnline Mendelian Inheritance in Man（ＯＭＩＭ）のウェブサイトに見ることができる。物理的染色体地図上の、NAAPをコードする遺伝子の位置と、特定の疾患との相関性、或いは特定の疾患に対する素因との相関性は、この疾患と関連するDNAの領域の決定に役立ち得るため、位置を決定するクローニングの作業を促進し得る。
【０２９９】
確定した染色体マーカーを用いた連鎖分析等の物理的マッピング技術及び染色体標本原位置ハイブリッド形成法を用いて、遺伝地図を拡張することができる。例えばマウスなど別の哺乳動物の染色体上に遺伝子を配置することにより、正確な染色体上の遺伝子座が未知でも、関連するマーカー類をしばしば明らかにし得る。この情報は、位置クローニングその他の遺伝子発見技術を用いて遺伝的疾患を探す研究者にとって価値がある。疾患又は症候群に関与する遺伝子が、血管拡張性失調症の11q22-23領域のように、特定のゲノム領域への遺伝的連関によって大まかに位置決めがなされると、該領域にマップされた任意の配列は、更なる調査のための関連遺伝子或いは調節遺伝子を提示している可能性がある（Gatti, R.A.他 (1988) Nature 336:577-580等を参照）転座、反転などに起因する、健常者、保有者、罹病者の三者間における染色体位置の相違を検出する場合にも、本発明のヌクレオチド配列を用い得る。
【０３００】
本発明の別の実施態様では、NAAP、その触媒作用断片或いは免疫原性断片又はそのオリゴペプチド群を、種々の任意の薬剤スクリーニング技術における、化合物のライブラリ群のスクリーニングに用い得る。薬剤スクリーニングに用いる断片は、溶液中に遊離しているか、固体支持物に固定されるか、細胞表面上に保持されるか、細胞内に位置しうる。NAAPと検査する薬剤との結合による複合体の形成を測定することもできる。
【０３０１】
別の薬剤スクリーニング方法は、目的のタンパク質に対して好適な結合親和性を有する化合物を高い処理能力でスクリーニングするために用いられる(Geysen, 他 (1984) PCT application WO84/03564等を参照)。この方法においては、多数の異なる小さな試験用化合物を固体基板上で合成する。試験用化合物は、NAAP、或いはその断片と反応してから洗浄される。次に、結合したNAAPを本技術分野で周知の方法で検出する。精製したNAAPはまた、上記した薬剤スクリーニング技術に用いるプレート上に直接コーティングできる。別法では、非中和抗体を用いてペプチドを捕捉し、ペプチドを固体支持物に固定することもできる。
【０３０２】
別の実施例では、NAAPと特異結合可能な中和抗体がNAAPとの結合について試験化合物と競合する、競合的薬剤スクリーニングアッセイを用いることができる。この方法では、抗体を用いて、１つ以上の抗原決定基をNAAPと共有するどのペプチドの存在をも検出できる。
【０３０３】
別の実施例では、NAAPをコードするヌクレオチド配列を、将来に開発される分子生物学技術であり、現在知られているヌクレオチド配列の特性（限定はされないが、トリプレット遺伝コード、特異的な塩基対相互作用等を含む）に依存する新技術に用い得る。
【０３０４】
更に詳細説明をしなくとも、当業者であれば以上の説明を以って本発明を最大限に利用できるであろう。従って、これ以下に記載する実施例は単なる例示目的にすぎず、いかようにも本発明を限定するものではない。
【０３０５】
本明細書において開示した全ての特許、特許出願及び刊行物は、米国特許出願第60/270,858号、第60/274,071号、第60/283,496号、第60/268,118号、第60/270,963号、第60/271,194号及び第344,650号を含め、言及することをもって特に本明細書の一部となす。
【実施例】
【０３０６】
１  cDNAライブラリの作製
Incyte cDNA群の由来は、LIFESEQ GOLDデータベース (Incyte Genomics, Palo Alto CA)に記載されたcDNAライブラリ群である。幾つかの組織はホモジナイズしてグアニジニウムイソチオシアネート溶液に溶解し、他の組織はホモジナイズしてフェノールに又は変性剤群の好適な混合液に溶解した。混合液の１例であるTRIZOL（Life Technologies）は、フェノールとグアニジンイソチオシアネートとの単相溶液である。結果として得られた溶解物は、塩化セシウムのクッション液の上に重層して遠心分離するかクロロホルムで抽出した。イソプロパノールか、酢酸ナトリウムとエタノールか、いずれか一方、或いは別の方法を用いて、溶解物からＲＮＡを沈殿させた。
【０３０７】
ＲＮＡの純度を高めるため、ＲＮＡのフェノールによる抽出及び沈殿を必要な回数繰り返した。場合によっては、ＤＮA分解酵素でＲＮＡを処理した。殆どのライブラリでは、オリゴd(T)連結常磁性粒子（Promega）、OLIGOTEXラテックス粒子（QIAGEN, Chatsworth CA）又はOLIGOTEX mRNA精製キット（QIAGEN）を用いて、ポリ(A+) RNAを単離した。別法では、別のRNA単離キット、例えばPOLY(A)PURE mRNA精製キット（Ambion, Austin TX）を用いて組織溶解物からRNAを直接単離した。
【０３０８】
場合によってはStratagene社へのRNA提供を行い、対応するｃＤＮＡライブラリをStratagene社が作製することもあった。そうでない場合は、UNIZAPベクターシステム（Stratagene）又はSUPERSCRIPTプラスミドシステム（Life Technologies）を用いて本技術分野で既知の推奨方法又は類似の方法でcDNAを合成し、cDNAライブラリを作製した（前出のAusubel, 1997, 5.1-6.6ユニット等を参照）。逆転写は、オリゴd(T)又はランダムプライマーを用いて開始した。合成オリゴヌクレオチドアダプターを二本鎖cDNAに連結反応させ、好適な制限酵素でcDNAを消化した。殆どのライブラリに対して、cDNAのサイズ（３００〜１０００bp）選択は、SEPHACRYL S1000、SEPHAROSE CL2B又はSEPHAROSE CL4Bカラムクロマトグラフィ（Amersham Pharmacia Biotech）、或いは分取用アガロースゲル電気泳動法を用いて行った。cDNAは好適なプラスミドのポリリンカーの適合する制限酵素部位に結合させた。好適なプラスミドは、例えばPBLUESCRIPTプラスミド（Stratagene）、PSPORT1 プラスミド(Life Technologies)、PCDNA2.1 プラスミド (Invitrogen, Carlsbad CA)、PBK-CMV プラスミド (Stratagene)、PCR2-TOPOTAプラスミド (Invitrogen)、PCMV-ICISプラスミド (Stratagene)、pIGEN (Incyte Genomics, Palo Alto CA)、pRARE (Incyte Genomics)、plNCY（Incyte Genomics）又はその誘導体である。組換えプラスミドは、Stratagene社のXL1-Blue、XL1-BIueMRF又はSOLR、或いはLife Technologies社のDH5α、DH10B又はELECTROMAX DH10Bを含む大腸菌細胞に形質転換した。
【０３０９】
２  cDNAクローンの単離
UNIZAPベクターシステム（Stratagene）を用いたin vivo切除によって、或いは細胞溶解によって、実施例1のようにして得たプラスミドを宿主細胞から回収した。プラスミドの精製には、下記の少なくとも１つを用いた。すなわちMagic又はWIZARD Minipreps DNA精製システム（Promega）、AGTC Miniprep精製キット（Edge Biosystems, Gaithersburg MD）、QIAGEN社のQIAWELL 8 Plasmid、QIAWELL 8 Plus Plasmid及びQIAWELL 8 Ultra Plasmid 精製システム、R.E.A.L. Prep 96プラスミド精製キットのいずれかである。プラスミドは、沈殿させた後、0.1mlの蒸留水に再懸濁して、凍結乾燥して或いは凍結乾燥しないで４℃で保管した。
【０３１０】
別法では、高処理フォーマットにおいて直接結合ＰＣＲ法を用いて宿主細胞溶解物からプラスミドＤＮＡを増幅した（Rao, V.B. (1994) Anal. Biochem. 216:1-14）。宿主細胞の溶解及び熱サイクリング過程は、単一反応混合液中で行った。サンプルを処理し、それを３８４ウェルプレート内で保管し、増幅したプラスミドＤＮＡの濃度をPICOGREEN色素（Molecular Probes, Eugene OR）及びFLUOROSKAN II蛍光スキャナ（Labsystems Oy, Helsinki, Finland）を用いて蛍光分析的に定量した。
【０３１１】
３  シークエンシング及び分析
実施例２に記載したようにプラスミドから回収したIncyte cDNAを、以下に示すようにシークエンシングした。cDNAのシークエンス反応は、標準的方法或いは高処理装置、例えばABI CATALYST 800 サーマルサイクラー（Applied Biosystems）又はPTC-200 サーマルサイクラー（MJ Research）をHYDRAマイクロディスペンサー（Robbins Scientific）又はMICROLAB 2200（Hamilton）液体転移システムと併用して処理した。cDNAのシークエンス反応は、Amersham Pharmacia Biotech社が提供する試薬、又はABIシークエンシングキット、例えばABI PRISM BIGDYE Terminator cycle sequencing ready reaction kit（Applied Biosystems）の試薬を用いて準備した。ｃＤＮＡのシークエンス反応の電気泳動的分離及び標識したポリヌクレオチドの検出には、MEGABACE 1000 DNAシークエンシングシステム（Molecular Dynamics）か、標準ABIプロトコル及び塩基呼び出し(base calling)ソフトウェアを用いるABI PRISM 373又は377シークエンシングシステム（Applied Biosystems）か、或いはその他の本技術分野で既知の配列解析システムを用いた。ｃＤＮＡ配列内のリーディングフレームは、標準的方法（前出のAusubel, 1997, 7.7ユニットに概説）を用いて決定した。ｃＤＮＡ配列の幾つかを選択して、実施例８に記載した方法で配列を伸長させた。
【０３１２】
Incyte cDNA配列に由来するポリヌクレオチド配列は、ベクター、リンカー及びポリ(A)配列を除去し、あいまいな塩基対をマスクすることによって有効性を確認した。 その際、BLAST、動的プログラミング及び隣接ジヌクレオチド頻度分析に基づくアルゴリズム及びプログラムを用いた。次に、IncyteのcDNA配列、又はその翻訳を公共のデータベース（例えばGenBankの霊長類及びげっ歯類、哺乳動物、脊椎動物、真核生物のデータベースと、BLOCKS、PRINTS、DOMO、PRODOM）と、ヒト、ラット、マウス、線虫、出芽酵母（Saccharomyces cerevisiae）、分裂酵母（Schizosaccharomyces pombe）、及び鵞口瘡カンジダ（Candida albicans ）からの配列を含むPROTEOMEデータベース（Incyte Genomics, Palo Alto CA）、及びPFAM等隠れマルコフモデル（HMM）に基づいたタンパク質ファミリデータベース並びに、SMART(Schultz 他(1998) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95:5857-5864; Letunic, I. 他 (2002) Nucleic Acids Res. 30:242-244)のようなHMMに基づいたタンパク質ドメインデータベースから選択したデータベースに対して問い合わせた（HMMは、遺伝子ファミリのコンセンサス１次構造を分析する確率的アプローチである。Eddy, S.R. (1996) Cuff. Opin. Struct. Biol. 6:361-365等を参照）。問い合わせは、BLAST、FASTA、BLIMPS及びHMMERに基づくプログラムを用いて行った。Incyte cDNA配列は、完全長のポリヌクレオチド配列を産出するように構築された。或いは、GenBank cDNA、GenBank EST、ステッチされた配列、ストレッチされた配列又はGenscan予測コード配列（実施例４及び５を参照）を用いてIncyte cDNAの集団を完全長まで伸長させた。Phred、Phrap及びConsedに基づくプログラムを用いて構築し、GenMark、BLAST及びFASTAに基づくプログラムを用いてcDNAの集団をオープンリーディングフレームに対してスクリーニングした。対応する完全長ポリペプチド配列を誘導するべく完全長ポリヌクレオチド配列を翻訳した。或いは、本発明のポリペプチドは完全長翻訳ポリペプチドの任意のメチオニン残基で開始し得る。引き続いて、GenBankタンパク質データベース（genpept）、SwissProt、ＰＲＯＴＥＯＭＥデータベース、BLOCKS、PRINTS、DOMO、PRODOM及びProsite等のデータベース、PFAM等の隠れマルコフモデル（HMM）に基づいたタンパク質ファミリデータベース、及びSMARTのようなHMMに基づいたタンパク質ドメインデータベースに対する問い合わせによって完全長ポリペプチド配列を分析した。完全長ポリヌクレオチド配列はまた、MACDNASIS PROソフトウェア（日立ソフトウェアエンジニアリング, South San Francisco CA）及びLASERGENEソフトウェア（DNASTAR）を用いて分析した。ポリヌクレオチド及びポリペプチド配列アラインメントは、アラインメントした配列間の一致率も計算するMEGALIGNマルチシークエンスアラインメントプログラム（DNASTAR）に組み込まれているようなCLUSTALアルゴリズムによって指定されるデフォルトパラメータを用いて作製する。
【０３１３】
Incyte ｃＤＮＡ及び完全長配列の分析及びアセンブリに利用したツール、プログラム及びアルゴリズムの概略と、適用可能な説明、参照文献、閾値パラメータを表7に示す。用いたツール、プログラム及びアルゴリズムを表７の列１に、それらの簡単な説明を列２に示す。列３は好適な参照文献であり、全ての文献は全体を引用を以って本明細書の一部となす。適用可能な場合には、列４は２つの配列が一致する強さを評価するために用いたスコア、確率値その他のパラメータを示す（スコアが高いほど、又は確率値が低いほど、２配列間の相同性が高くなる）。
【０３１４】
完全長ポリヌクレオチド配列及びポリペプチド配列の組み立て及び分析に用いる上記のプログラムは、SEQ ID NO:11-20のポリヌクレオチド配列断片の同定にも利用できる。 ハイブリダイゼーション及び増幅技術に有用である約２０〜約４０００ヌクレオチドの断片を表４の列2に示した。
【０３１５】
４  ゲノムDNAからのコード配列の同定及び編集
推定上の核酸関連タンパク質は、先ず公共のゲノム配列データベース（例えばgbpriやgbhtg）に対しGenscan遺伝子同定プログラムを実行して同定した。Genscanは、様々な生物からのゲノムDNA配列を分析する汎用遺伝子同定プログラムである（Burge, C. 及び S. Karlin (1997) J. Mol. Biol. 268:78-94、Burge, C. 及び S. Karlin (1998) Curr. Opin. Struct. Biol. 8:346-354を参照）。プログラムは予測エキソンを連結し、メチオニンから終止コドンに及ぶ構築されたｃＤＮＡ配列を形成する。Genscanの出力は、ポリヌクレオチド及びポリペプチド配列のFASTAデータベースである。Genscanが一度に分析する配列の最大範囲は、３０kbに設定した。これらのGenscan予測cDNA配列の内、どの配列が核酸関連分子をコードするかを決定するために、コードされるポリペプチドを、PFAMモデル群に対し核酸関連分子について問い合わせて分析した。潜在的な核酸関連タンパク質はまた、既に核酸関連タンパク質としてアノテーションが付けられたIncyte cDNA配列に対する相同性を基に同定された。こうして選択されたGenscan予測配列は、次にBLAST分析により公共データベースgenpept及びgbpriと比較した。必要であれば、genpeptからのトップのBLASTヒットと比較することによりGenscan予測配列を編集し、余分な又は取り除かれたエキソンなどのGenscanにより予測された配列のエラーを修正する。BLAST分析はまた、任意のIncyte cDNA又はGenscan予測配列の公共cDNA適用範囲の発見に用いられるので、転写の証拠を提供する。Incyte cDNA適用範囲が利用できる場合には、この情報を用いてGenscan予測配列を修正又は確認した。完全長ポリヌクレオチド配列は、実施例３に記載された構築プロセスを用いて、Incyte cDNA配列及び／又は公共のcDNA配列でGenscan予測コード配列を構築することにより得た。或いは、完全長ポリヌクレオチド配列は編集又は未編集のGenscan予測コード配列に完全に由来する。
【０３１６】
５  ｃDNA配列データを使ったゲノム配列データの構築
ステッチ配列（Stitched Sequence）
部分cDNA配列は、実施例４に記載のGenscan遺伝子同定プログラムにより予測されたエキソンを用いて伸長させた。実施例３に記載されたように構築された部分ｃＤＮＡは、ゲノムＤＮＡにマッピングし、関連するｃＤＮＡ及び１つ若しくは複数のゲノム配列から予測されたGenscanエキソンを含むクラスタに分解した。ｃＤＮＡ及びゲノム情報を統合するべくグラフ理論及び動的プログラミングに基づくアルゴリズムを用いて各クラスタを分析し、引き続いて確認、編集又は伸長して完全長配列を産出するような潜在的スプライシング変異体を生み出した。区間の長さ全体がクラスタ中の２以上の配列に存在するような配列区間を同定し、そのように同定された区間は推移性により等しいと考えられた。例えば、１つのｃＤＮＡ及び２つのゲノム配列に或る区間が存在する場合、３つの区間は全て等しいと考えられた。このプロセスは、無関係であるが連続したゲノム配列をｃＤＮＡ配列により結び合わせて架橋し得る。このようにして同定された区間を、親配列（parent sequence）に沿って現われる順にステッチアルゴリズムで縫い合わせ、可能な最も長い配列及び変異配列を作製する。１種類の親配列に沿って発生した区間間の連鎖（ｃＤＮＡ−ｃＤＮＡ又はゲノム配列−ゲノム配列）は、親の種類を変える連鎖（ｃＤＮＡ−ゲノム配列）に優先した。結果として得られるステッチ配列は、翻訳されてBLAST分析により公共データベースgenpept及びgbpriと比較された。Genscanにより予測された不正確なエキソンは、genpeptからのトップのBLASTヒットと比較することにより修正した。必要な場合には、追加cDNA配列を用いるかゲノムＤＮＡの検査により配列を更に伸長させた。
【０３１７】
ストレッチ配列（Stretched Sequence）
部分ＤＮＡ配列は、BLAST分析に基づくアルゴリズムにより完全長まで伸長された。先ず、BLASTプログラムを用いて、GenBankの霊長類、げっ歯類、哺乳動物、脊椎動物及び真核生物のデータベースなどの公共データベースに対し、実施例３に記載されたように構築された部分ｃＤＮＡを問い合わせた。次に、最も近いGenBankタンパク質相同体をBLAST分析によりIncyte cDNA配列又は実施例４に記載のGenScanエキソン予測配列のいずれかと比較した。結果として得られる高スコアリングセグメント対（HSP）を用いてキメラタンパク質を産出し、翻訳した配列をGenBankタンパク質相同体上にマッピングした。元のGenBankタンパク質相同体と比較して、キメラタンパク質内では挿入又は欠失が起こり得る。GenBankタンパク質相同体、キメラタンパク質又はその両方をプローブとして用い、公共のヒトゲノムデータベースから相同ゲノム配列を検索した。このようにして、部分的なDNA配列を相同ゲノム配列の付加によりストレッチすなわち伸長した。結果として得られるストレッチ配列を検査し、完全遺伝子を含んでいるか否かを決定した。
【０３１８】
６  NAAPをコードするポリヌクレオチドの染色体マッピング
SEQ ID NO:11-20を構築するために用いた配列を、BLAST及び他のSmith-Watermanアルゴリズムの実装を用いて、Incyte LIFESEQデータベース及び公共のドメインデータベースの配列と比較した。SEQ ID NO:11-20 と一致するこれらのデータベースの配列を、Phrapなどの構築アルゴリズム（表７）を使用して、連続及びオーバーラップした配列のクラスタに組み入れた。スタンフォード・ヒトゲノムセンター（SHGC）、ホワイトヘッド・ゲノム研究所（WIGR）、Genethon等の公的な情報源から入手可能な放射線ハイブリッド及び遺伝地図データを用いて、クラスタ化された配列が既にマッピングされていたかを決定した。マッピングされた配列がクラスタに含まれている場合は、個々の配列番号を含めてそのクラスタの全配列が地図上の位置に割り当てられた。
【０３１９】
地図上の位置は、ヒト染色体の範囲又は間隔として表される。センチモルガン間隔の地図上の位置は、染色体のpアームの末端に関連して測定する。（センチモルガン（cM）は、染色体マーカー間の組換え頻度に基づく計測単位である。平均して、１cMは、ヒト中のDNAの１メガベース（Mb）にほぼ等しい。尤も、この値は、組換えのホットスポット及びコールドスポットに起因して広範囲に変化する。）cM距離は、配列が各クラスタ内に含まれるような放射線ハイブリッドマーカーに対して境界を提供するようなGenethonによってマッピングされた遺伝マーカーに基づく。NCBI「GeneMap'99」（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genemap/）などの公的に入手可能なヒト遺伝子マップ及びその他の情報源を用いて、既に同定された疾患遺伝子類が、上記の区間内若しくは近傍にマップされているかを決定できる。
【０３２０】
このようにして、SEQ ID NO:15は、X染色体の138.8から198.1センチモルガンの区間内にマップされ、またSEQ ID NO:17は、8番染色体の152.50センチモルガンからｑ末端の区間内にマップされた。
【０３２１】
７  ポリヌクレオチド発現の分析
ノーザン分析は、転写された遺伝情報の存在を検出するために用いられる実験技術であり、特定の細胞種又は組織からのRNAが結合されている膜への標識されたヌクレオチド配列のハイブリダイゼーションに関与している。（前出のSambrook, 7章、同Ausubel. F.M. 他, 4章及び16章等を参照）。
【０３２２】
BLASTを適用した類似のコンピュータ技術を用いて、GenBankやLifeSeq（Incyte Genomics）等のｃDNAデータベースにおいて同一又は関連分子を検索した。ノーザン分析は、多数の膜系ハイブリダイゼーションよりも非常に速い。更に、特定の一致を厳密な或いは相同的なものとして分類するか否かを決定するため、コンピュータ検索の感度を変更することができる。検索の基準は積スコアであり、次式で定義される。
【０３２３】
2005504509.tif 000006
積スコアは、２つの配列間の類似度及び配列が一致する長さの両方を考慮している。積スコアは、０〜１００のノーマライズされた値であり、次のようにして求める。BLASTスコアにヌクレオチドの配列一致率を乗じ、その積を２つの配列の短い方の長さの５倍で除する。高スコアリングセグメント対（HSP）に一致する各塩基に＋５のスコアを割り当て、各不一致塩基対に−４を割り当てることにより、BLASTスコアを計算する。２つの配列は、２以上のHSPを共有し得る（ギャップにより隔離され得る）。２以上のHSPがある場合には、最高BLASTスコアのセグメント対を用いて積スコアを計算する。積スコアは、断片的オーバーラップとBLASTアラインメントの質とのバランスを表す。例えば積スコア１００は、比較した２つの配列の短い方の長さ全体にわたって１００％一致する場合のみ得られる。積スコア７０は、一端が１００％一致し、７０％オーバーラップしているか、他端が８８％一致し、１００％オーバーラップしているかのいずれかの場合に得られる。積スコア５０は、一端が１００％一致し、５０％オーバーラップしているか、他端が７９％一致し、１００％オーバーラップしているかのいずれかの場合に得られる。
【０３２４】
或いは、NAAPをコードするポリヌクレオチド配列を、由来する組織に対して分析する。例えば或る完全長配列は、Incyte cDNA配列（実施例３を参照）と少なくとも一部はオーバーラップするように構築される。各cDNA配列は、ヒト組織から作製されたcDNAライブラリに由来する。各ヒト組織は、以下の器官／組織カテゴリーの１つに分類される。即ち心血管系、結合組織、消化器系、胎芽構造、内分泌系、外分泌腺、女性生殖器、男性生殖器、生殖細胞、血液及び免疫系、肝、筋骨格系、神経系、膵臓、呼吸器系、感覚器、皮膚、顎口腔系、非分類性／混合性又は尿路。各カテゴリーのライブラリ数を数えて、全カテゴリーの総ライブラリ数で除する。同様に、各ヒト組織は、以下の疾患／条件カテゴリー即ち癌、細胞株、発達、炎症、神経性、外傷、心血管、プール、その他の１つに分類される。 各カテゴリーのライブラリ数を数えて、全カテゴリーの総ライブラリ数で除する。得られるパーセンテージは、NAAPをコードするcDNAの、組織特異的発現及び疾患特異的発現を反映する。cDNA配列及びcDNAライブラリ／組織の情報は、LIFESEQ GOLD データベース（Incyte Genomics, Palo Alto CA）から得ることができる。
【０３２５】
８  NAAPをコードするポリヌクレオチドの伸長
完全長のポリヌクレオチド配列はまた、完全長分子の適切な断片から設計したオリゴヌクレオチドプライマー複数を用いて該断片を伸長させて生成した。一方のプライマーは既知の断片の５'伸長を開始するべく合成し、他方のプライマーは既知の断片の３'伸長を開始するべく合成した。開始プライマーは、長さが約２２〜３０ヌクレオチド、GC含有率が約５０％以上となり、約６８〜７２℃の温度で標的配列にアニーリングするように、OLIGO 4.06ソフトウェア（National Biosciences）或いは別の適切なプログラムを用いて、cDNAから設計した。 ヘアピン構造及びプライマー−プライマー二量体を生ずるようなヌクレオチドの伸長は全て回避した。
【０３２６】
配列を伸長するために、選択されたヒトｃＤＮＡライブラリを用いた。２段階以上の伸長が必要又は望ましい場合には、付加的プライマー或いはプライマーのネステッドセットを設計した。
【０３２７】
高忠実度の増幅が、当業者によく知られている方法を利用したPCR法によって得られた。 PCRは、PTC-200 サーマルサイクラー（MJ Research, Inc.）を用いて９６穴プレート内で行った。反応混合液は、鋳型DNAを有し、また、200 nmolの各プライマーを有する。また、Mg２+と（NH4）2SO4と２−メルカプトエタノールとを含有する反応バッファと、Taq DNAポリメラーゼ（Amersham Pharmacia Biotech）と、ELONGASE酵素（Life Technologies）と、Pfu DNAポリメラーゼ（Stratagene）とを含有する。プライマー対であるPCI AとPCI Bとに対し、以下のパラメータで増幅した。ステップ1: 94℃, 3分、 ステップ 2: 94℃, 15 秒、ステップ 3: 60℃, 1 分、ステップ 4: 68℃, 2 分、 ステップ 5: ステップ2、3及び 4を20回反復する。  ステップ6: 68℃, 5 分、ステップ7:  4℃で保存する。別法では、プライマーの組、T7とSK+に対して以下のパラメータで増幅を行った。ステップ1: 94℃, 3分、 ステップ 2: 94℃, 15 秒、ステップ 3: 57℃, 1 分、ステップ 4: 68℃, 2 分、 ステップ 5: ステップ2、3及び 4を20回反復する。  ステップ6: 68℃、 5 分、ステップ7:  4℃で保存する。
【０３２８】
各ウェルのDNA濃度は、１X TE及び0.5μlの希釈していないPCR産物に溶解した100μlのPICOGREEN定量試薬(0.25(v/v) PICOGREEN; Molecular Probes, Eugene OR)を不透明な蛍光光度計プレート(Corning Costar, Acton MA)の各ウェルに分配してDNAが試薬と結合できるようにして測定した。サンプルの蛍光を計測してDNAの濃度を定量すべく、プレートをFluoroskan II（Labsystems Oy, Helsinki, Finland）でスキャンした。反応混合物のアリコート５〜１０μlを１％アガロースミニゲル上で電気泳動法によって解析し、どの反応が配列の伸長に成功したかを決定した。
【０３２９】
伸長したヌクレオチドは、脱塩及び濃縮して３８４ウェルプレートに移し、CviJIコレラウイルスエンドヌクレアーゼ（Molecular Biology Research, Madison WI）を用いて消化し、pUC 18ベクター（Amersham Pharmacia Biotech）への再連結反応前に音波処理又はせん断した。ショットガン・シークエンシングのために、消化したヌクレオチドを低濃度（０.６〜０.８％）のアガロースゲル上で分離し、断片を切除し、寒天をAgar ACE（Promega）で消化した。伸長させたクローンをＴ４リガーゼ（New England Biolabs, Beverly MA）を用いてpUC 18ベクター（Amersham Pharmacia Biotech）に再連結し、Pfu DNAポリメラーゼ（Stratagene）で処理して制限部位のオーバーハングを満たし、大腸菌細胞に形質移入した。形質移入した細胞を選択して抗生物質を含む培地に移し、それぞれのコロニーを切りとってLB/2Xカルベニシリン培養液の384ウェルプレートに３７℃で一晩培養した。
【０３３０】
細胞を溶解して、Taq DNAポリメラーゼ(Amersham Pharmacia Biotech)及びPfu DNAポリメラーゼ(Stratagene)を用いて以下の手順でDNAをPCR増幅した。ステップ1: 94℃, 3分、 ステップ 2: 94℃, 15 秒、ステップ 3: 60℃, 1 分、ステップ 4: 72℃, 2 分、 ステップ 5: ステップ2、3及び 4を29回反復する。  ステップ6: 72℃, 5 分、ステップ7:  4℃で保存する。上記のようにPICOGREEN試薬(Molecular Probes)でDNAを定量した。DNAの回収率が低いサンプルは、上記と同一の条件を用いて再増幅した。サンプルは20％ジメチルスルホキシド（１：２, v/v）で希釈し、DYENAMIC エネルギートランスファー シークエンシングプライマー、及びDYENAMIC DIRECT kit（Amersham Pharmacia Biotech）又はABI PRISM BIGDYE ターミネーターサイクル シークエンシング反応キット（Terminator cycle sequencing ready reaction kit）（Applied Biosystems）を用いてシークエンシングした。
【０３３１】
同様に、上記手順を用いて完全長ポリヌクレオチド配列を検証し、或いはそのような伸長のために設計されたオリゴヌクレオチド及び適切なゲノムライブラリを用いて５'調節配列を得る。
【０３３２】
９  NAAPをコードするポリヌクレオチドにおける１塩基多型性の同定
一塩基多型（SNP）として知られる一般的なDNA配列変異体がLIFESEQ データベース(Incyte Genomics)を用いてSEQ ID NO:11-20 において同定された。実施例３に記述されているように、同じ遺伝子からの配列を共にクラスタにして構築し、これによって遺伝子のすべての配列変異体の同定ができた。一連のフィルタから成るアルゴリズムが、ＳＮＰを他の配列変異体から区別するために用いられた。前段フィルタは、最小限のPhredクオリティスコア15を要求することにより大多数のベースコールのエラーを除去し、また、配列アライメントエラーや、ベクター配列、キメラ及びスプライス変異体の不適当なトリミングにより生じるエラーを取り除いた。先進の染色体分析の自動化手順により、推定上のSNPの近傍のオリジナルのクロマトグラムファイルを分析した。クローンエラーフィルタは統計的に生み出されたアルゴリズムを用いて、逆転写酵素、ポリメラーゼ、又は体細胞突然変異によって引き起こされるエラーのような、実験処理時に導入されるエラーを識別した。クラスタエラーフィルタは、統計的に生み出されたアルゴリズムを用いて近接の相同体又は偽遺伝子のクラスタ化に起因するエラー、又は非ヒト配列によるコンタミネーションにより生じたエラーを同定した。フィルタの最終セットは、免疫グロブリン又はT細胞受容体に見出される重複とSNPを除去した。
【０３３３】
高速処理MASSARRAY システム(Sequenom, Inc.) を用いて質量分析によって更に特徴付けるために数種のSNPを選択して、四つの異なったヒト母集団中のSNP部位における対立遺伝子発生頻度を分析した。白人母集団は、ユタ州の83人、フランス人4人、ベネズエラ３人及びアーミッシュ派２人を含む92人(男性46人、女性46人)で構成された。アフリカ人集団は194人（男性97人、女性97人）から成り、全てアフリカ系アメリカ人である。ヒスパニック母集団はすべてメキシコ系ヒスパニックの324人( 男性162人、 女性162人)からなる。アジア系の集団は126人（男性64人、女性62人）からなり、中国人43％、日本人31％、コリアン13％、ベトナム人5％、他のアジア系8％の親の構成が報告されている。対立形質の発生頻度は最初に白人母集団において分析し、いくつかの例において、この母集団で対立形質分散を示さなかったSNPは他の三つの母集団において更に検査しなかった。
【０３３４】
１０  個々のハイブリダイゼーションプローブの標識化及び使用
SEQ ID NO:11-20から導き出されたハイブリダイゼーションプローブを用いて、cDNA、mRNA、又はゲノムDNAをスクリーニングする。約２０塩基対からなるオリゴヌクレオチドの標識について特に記載するが、より大きなヌクレオチド断片に対しても事実上同一の手順が用いられる。オリゴヌクレオチドは、OLIGO 4.06ソフトウェア（National Biosciences）等の最新ソフトウェアを用いて設計し、各オリゴマー５０pmolと、[γ-32P]アデノシン３リン酸 （Amersham Pharmacia Biotech）２５０μCiと、T4ポリヌクレオチドキナーゼ（DuPont NEN, Boston MA）を混合することにより標識する。標識したオリゴヌクレオチドは、SEPHADEX G-25超細繊分子サイズ排除デキストラン ビードカラム（Amersham Pharmacia Biotech）を用いて実質的に精製する。Ase I、Bgl II、Eco RI、Pst I、Xba1又はPvu II（DuPont NEN）のいずれか１つのエンドヌクレアーゼで消化されたヒトゲノムＤＮＡの典型的な膜ベースのハイブリダイゼーション解析において、毎分１０7カウントの標識されたプローブを含むアリコットを用いる。
【０３３５】
各消化物から得たDNAは、０.７％アガロースゲル上で分画してナイロン膜（Nytran Plus, Schleicher & Schuell, Durham NH）に移す。ハイブリダイゼーションは、４０℃で１６時間行う。 非特異的シグナルを除去するため、例えば０.１×クエン酸ナトリウム食塩水及び０.５％ドデシル硫酸ナトリウムに一致する条件下で、ブロットを室温で順次洗浄する。オートラジオグラフィ又はそれに代わるイメージング手段を用いてハイブリダイゼーションパターンを視覚化し、比較する。
【０３３６】
１１  マイクロアレイ
マイクロアレイの表面上でアレイエレメントの結合又は合成は、フォトリソグラフィ、圧電印刷（インクジェット印刷、前出のBaldeschweiler等を参照）、機械的マイクロスポッティング技術及びこれらから派生したものを用いて達成することが可能である。上記各技術において基板は、均一且つ無孔の固体とするべきである（Schena (1999) 前出）。推奨する基板には、シリコン、シリカ、スライドガラス、ガラスチップ及びシリコンウエハがある。或いは、ドットブロット法又はスロットブロット法に類似のアレイを利用して、熱的、紫外線的、化学的又は機械的結合手順を用いて基板の表面にエレメントを配置及び結合させてもよい。通常のアレイは、利用可能な、当業者に公知の方法と機械とを用いて作製でき、任意の適正数のエレメントを有し得る(例えばSchena, M. 他. (1995) Science 270:467-470、Shalon, D.他. (1996) Genome Res. 6:639-645、Marshall, A.及びJ. Hodgson (1998) Nat. Biotechnol. 16:27-31等を参照)。
【０３３７】
完全長ｃＤＮＡ、発現配列タグ（EST）、又はその断片又はオリゴマーは、マイクロアレイのエレメントと成り得る。ハイブリダイゼーションに好適な断片又はオリゴマーを、レーザGENEソフトウェア（DNASTAR）等の本技術分野で公知のソフトウェアを用いて選択することが可能である。アレイエレメントは、生物学的サンプル中でポリヌクレオチドを用いてハイブリダイズされる。生物学的サンプル中のポリヌクレオチドは、検出を容易にするために蛍光標識又はその他の分子タグに抱合される。ハイブリダイゼーション後、生物学的サンプルからハイブリダイズされていないヌクレオチドを除去し、蛍光スキャナを用いて各アレイエレメントにおいてハイブリダイゼーションを検出する。或いは、レーザ脱離及び質量スペクトロメトリを用いてもハイブリダイゼーションを検出し得る。マイクロアレイ上のエレメントにハイブリダイズする各ポリヌクレオチドの相補性の度合及び相対存在度は、算定し得る。 一実施例におけるマイクロアレイの調製及び使用について、以下に詳述する。
【０３３８】
組織又は細胞サンプルの調製
グアニジニウムチオシアネート法を用いて組織サンプルから全RNAを単離し、オリゴ(dT)セルロース法を用いてポリ(A)+RNAを精製する。各ポリ(A)+RNAサンプルを、MMLV逆転写酵素、0.05pg/μlのオリゴ(dT)プライマー（21mer）、１×第一鎖合成バッファ、0.03unit/μlのRNアーゼ阻害因子、500μMのdATP、500μMのdGTP、500μMのdTTP、40μMのdCTP、40μMのdCTP-Cy3（BDS）又はdCTP-Cy5（Amersham Pharmacia Biotech）を用いて逆転写する。逆転写反応は、GEMBRIGHTキット（Incyte）を用いてポリ(A)+RNA 200 ng 含有の25体積ml内で行う。特異的対照ポリ(A)+RNAは、非コード酵母ゲノムDNAからin vitro転写により合成する。37℃で２時間インキュベートした後、各反応サンプル（１つはＣｙ3、もう１つはＣｙ5標識）は、２.５mlの０.５M水酸化ナトリウムで処理し、８５℃で２０分間インキュベートし、反応を停止させてRNAを分解させる。サンプルは、２つの連続するCHROMA SPIN 30ゲル濾過スピンカラム（CLONTECH Laboratories, Inc. (CLONTECH), Palo Alto CA）を用いて精製する。 混合後、２つの反応サンプルは、１mlのグリコーゲン（１mg/ml）、６０mlの酢酸ナトリウム及び３００mlの１００％エタノールを用いてエタノール沈殿させる。サンプルは次に、SpeedVAC（Savant Instruments Inc., Holbrook NY）を用いて完全に乾燥させ、１４μlの５×SSC／０.２％SDS中で再懸濁する。
【０３３９】
マイクロアレイの調製
本発明の配列を用いて、アレイエレメントを作製する。各アレイエレメントは、クローン化ｃＤＮＡインサートを持つベクター含有細菌細胞から増幅する。ＰＣＲ増幅は、cDNAインサートの側面に位置するベクター配列に相補的なプライマーを用いる。３０サイクルのＰＣＲによって、１〜２ngの初期量から５μgを超える最終量までアレイエレメントを増幅する。増幅されたアレイエレメントは、SEPHACRYL-400（Amersham Pharmacia Biotech）を用いて精製される。
【０３４０】
精製したアレイエレメントは、ポリマーコートされたスライドグラス上に固定する。顕微鏡スライドグラス（Corning）は、処理の間及び処理後に０.１％のSDS及びアセトン中で超音波処理をかけ、蒸留水で充分に洗浄する。スライドグラスは、４％フッ化水素酸（VWR Scientific Products Corporation (VWR), West Chester PA）中でエッチングし、蒸留水中で充分に洗浄し、９５％エタノール中で０.０５％アミノプロピルシラン（Sigma）を用いてコーティングする。コーティングしたスライドガラスは、１１０℃のオーブンで硬化させる。
【０３４１】
米国特許第5,807,522号で説明されている方法を用いて、コーティングしたガラス基板にアレイエレメントを付加する。 該特許は、引用を以って本明細書の一部となす。平均濃度が１００ng/μlのアレイエレメントDNA１μlを高速ロボット装置により開放型キャピラリープリンティングエレメント（open capillary printing element）に充填する。装置はここで、スライド毎に約５nlのアレイエレメントサンプルを加える。
【０３４２】
マイクロアレイには、STRATALINKER ＵＶ架橋剤（Stratagene）を用いてＵＶ架橋する。マイクロアレイは、室温において０.２％ＳＤＳで１度洗浄し、蒸留水で３度洗浄する。リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)（Tropix, Inc., Bedford MA）中の０.２％カゼイン中において６０℃で３０分間マイクロアレイをインキュベートした後、前に行ったように０.２％ＳＤＳ及び蒸留水で洗浄することにより、非特異結合部位をブロックする。
【０３４３】
ハイブリダイゼーション
ハイブリダイゼーション反応液は、５×SSC、０.２％SDSハイブリダイゼーション緩衝液にCy3及びCy5標識したcDNA合成産物を各０.２μg含む９μlのサンプル混合体を含めたものである。サンプル混合体は、６５℃まで５分間加熱し、マイクロアレイ表面上に等分して１.８cm2 のカバーガラスで覆う。アレイは、顕微鏡用スライドより僅かに大きい空洞を有する防水チェンバーに移す。チェンバーのコーナーに１４０μlの５×SSCを加えることにより、チェンバー内部を湿度100%に保持する。アレイを含むチェンバーは、６０℃で約６．５時間インキュベートする。アレイは、第１洗浄緩衝液中（１×SSC,０.１％SDS）において４５℃で１０分間洗浄し、第２洗浄緩衝液中（０.１×SSC）において各々４５℃で１０分間３度洗浄して乾燥させる。
【０３４４】
検出
レポーター標識したハイブリダイゼーション複合体は、Ｃｙ3の励起のためには４８８nm、Ｃｙ5の励起のためには６３２nmでスペクトル線を発生し得るInnova70混合ガス10Ｗレーザ（Coherent, Inc., Santa Clara CA）を備えた顕微鏡で検出する。２０×顕微鏡対物レンズ（Nikon, Inc., Melville NY）を用いて、アレイ上に励起レーザ光の焦点を当てる。アレイを含むスライドを顕微鏡のコンピュータ制御のX-Yステージに置き、対物レンズを通過してラスタースキャンする。本実施例で用いた１.８cm×１.８cmのアレイは、２０μmの解像度でスキャンした。
【０３４５】
２つの異なるスキャンで、混合ガスマルチラインレーザは２つのフルオロフォアを連続的に励起する。発光された光は、波長に基づき分離され、２つのフルオロフォアに対応する２つの光電子増倍管検出器（PMT R1477, Hamamatsu Photonics Systems, Bridgewater NJ）に送られる。アレイと光電子増倍管間に設置された好適なフィルタを用いて、シグナルをフィルタする。用いるフルオロフォアの最大発光の波長は、Cy3では５６５nm、Cy5では６５０nmである。装置は両方のフルオロフォアからのスペクトルを同時に記録し得るが、レーザ源において好適なフィルタを用いて、フルオロフォア１つにつき１度スキャンし、各アレイを通常２度スキャンする。
【０３４６】
スキャンの感度は通常、既知濃度でサンプル混合体に添加されるｃＤＮＡ対照種により発生されるシグナル強度を用いて較正する。アレイ上の特定の位置には相補的ＤＮＡ配列が含まれ、その位置におけるシグナルの強度を重量比1：100,000でハイブリダイゼーション種と相関させる。異なる源泉（例えば試験される細胞及び対照細胞など）からの２つのサンプルを、各々異なるフルオロフォアで標識し、他と異なって発現した遺伝子を同定するために単一のアレイにハイブリダイズする場合には、２つのフルオロフォアで較正するｃＤＮＡのサンプルを標識し、ハイブリダイゼーション混合液に各々等量を加えることによって較正を行う。
【０３４７】
光電子増倍管の出力は、IBMコンパチブルPCコンピュータにインストールされた12ビットRTI-835Hアナログディジタル（A/D）変換ボード（Analog Devices, Inc., Norwood MA）を用いてディジタル化される。ディジタル化されたデータは、青色（低シグナル）から赤色（高シグナル）までの擬似カラー範囲へのリニア20色変換を用いてシグナル強度がマッピングされたようなイメージとして表示される。データは、定量的にも分析される。2つの異なるフルオロフォアを同時に励起及び測定する場合には、各フルオロフォアの発光スペクトルを用いて、データはまずフルオロフォア間の光学的クロストーク（発光スペクトルの重なりに起因する）を補正する。
【０３４８】
グリッドが蛍光シグナルイメージ上に重ねられ、それによって各スポットからのシグナルはグリッドの各エレメントに集められる。各エレメント内の蛍光シグナルは統合され、シグナルの平均強度に応じた数値が得られる。シグナル分析に用いるソフトウェアは、GEMTOOLS遺伝子発現分析プログラム（Incyte）である。
【０３４９】
１２  相補的ポリヌクレオチド
NAAPをコードする配列或いはその任意の一部に対して相補的な配列は、天然NAAPの発現を検出、低減又は阻害するために用いられる。約１５〜３０塩基対を含むオリゴヌクレオチドの使用について記すが、これより小さな或いは大きな配列の断片の場合でも本質的に同じ方法を用いることができる。適切なオリゴヌクレオチド群を設計するため、Oligo 4.06ソフトウェア（National Biosciences）及び、NAAPのコーディング配列を用いる。転写を阻害するためには、最も独特な５' 配列から相補的オリゴヌクレオチドを設計し、これを用いてプロモーターがコーディング配列に結合するのを阻害する。翻訳を阻害するには、相補的なオリゴヌクレオチドを設計して、NAAPをコードする転写物にリボソームが結合するのを防ぐ。
【０３５０】
１３  NAAPの発現
NAAPの発現及び精製は、細菌若しくはウイルスを基にした発現系を用いて行うことができる。細菌内でATRSを発現させるには、抗生物質耐性遺伝子と、cDNA転写レベルを高める誘導性プロモーターとを有する好適なベクターにcDNAをサブクローニングする。このようなプロモーターには、lacオペレーター調節因子と併用するT5又はT7バクテリオファージプロモーター、及びtrp-lac(tac)ハイブリッドプロモーターが含まれるが、これらに限定するものではない。組換えベクターを、BL21（DE3）等の好適な細菌宿主に形質転換する。抗生物質耐性細菌にNAAPを発現させるには、イソプロピルβ−Dチオガラクトピラノシド(IPTG)で誘発する。真核細胞でのNAAPの発現は、昆虫細胞株又は哺乳動物細胞株に、一般にバキュロウイルスとして知られるAutographica californica核多角体病ウイルス(AcMNPV)の組換え型を感染させて行う。バキュロウイルスの非必須ポリヘドリン遺伝子をNAAPをコードするcDNAと置換するには、相同組換えを行うか、或いは、トランスファープラスミドの媒介を伴う、細菌の媒介による遺伝子転移を行う。ウイルスの感染力は維持され、強力なポリヘドリンプロモーターによって高いレベルのcDNAの転写が行われる。組換えバキュロウイルスは、多くの場合はSpodoptera frugiperda（Sf9）昆虫細胞への感染に用いられるが、ヒト肝細胞の感染にも用いられることもある。後者の感染の場合は、バキュロウイルスの更なる遺伝的変更が必要になる（Engelhard. E. K.他 (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:3224-3227、Sandig, V. 他 (1996) Hum. Gene Ther. 7:1937-1945.等を参照）。
【０３５１】
殆どの発現系では、NAAPが、例えばグルタチオンＳトランスフェラーゼ(GST)と、又はFLAGや6-Hisなどのペプチドエピトープ標識と合成された融合タンパク質となるため、未精製の細胞溶解物からの組換え融合タンパク質の親和性ベースの精製を、迅速に１ステップで行い得る。GSTは日本住血吸虫からの26kDaの酵素であり、タンパク質の活性及び抗原性を維持した状態で、固定化グルタチオン上で融合タンパク質の精製を可能とする（Amersham Pharmacia Biotech）。精製後、GST部分を、特異的に操作した部位においてNAAPからタンパク分解的に切断することが可能である。ＦＬＡＧは８アミノ酸のペプチドであり、市販されているモノクローナル及びポリクローナル抗ＦＬＡＧ抗体（Eastman Kodak）を用いて免疫親和性精製を可能にする。６ヒスチジン残基が連続して伸長した6-Hisは、金属キレート樹脂（QIAGEN）上での精製を可能にする。タンパク質の発現及び精製の方法は、前出のAusubel（1995）10章、16章に記載されている。これらの方法で精製したNAAPを直接用いて以下の実施例１７、１８、及び１９の、適用可能なアッセイを行うことができる。
【０３５２】
１４  機能的アッセイ
NAAPの機能は、哺乳動物細胞培養系において生理的に高められたレベルでの、NAAPをコードする配列の発現によって算定する。cDNAを高いレベルで発現する強いプロモーターを持つ哺乳動物発現ベクターにcDNAをサブクローニングする。選択されるベクターには、pCMV SPORTプラスミド（Life Technologies）及びpCR 3.1プラスミド（Invitrogen, Carlsbad CA）が含まれ、どちらもサイトメガロウイルスプロモーターを有する。リポソーム製剤或いは電気穿孔法を用いて、５〜１０μgの組換えベクターをヒト細胞株、例えば内皮由来又は造血由来の細胞株に一過的に形質移入する。更に、標識タンパク質をコードする配列を含む１〜２μgのプラスミドを同時に形質移入する。標識タンパク質の発現により、形質移入された細胞と形質移入されていない細胞を区別する手段が与えられる。また、標識タンパク質の発現によって、ｃＤＮＡの組換えベクターからの発現を正確に予想できる。標識タンパク質は、例えば緑色蛍光タンパク質（GFP；Clontech）、CD64又はCD64-GFP融合タンパク質から選択できる。自動化された、レーザ光学に基づく技術であるフローサイトメトリー（FCM）を用いて、GFP又はCD64-GFPを発現する形質移入された細胞を同定し、その細胞のアポトーシス状態や他の細胞特性を評価する。ＦＣＭは、細胞死に先行するか或いは同時に発生する現象を診断する蛍光分子の取り込みを検出して計量する。このような現象として挙げられるのは、ヨウ化プロピジウムによるＤＮＡ染色によって計測される核ＤＮＡ含量の変化、前方散乱光と90°側方散乱光によって計測される細胞サイズと粒度の変化、ブロモデオキシウリジンの取込量の低下によって計測されるDNA合成の下方調節、特異抗体との反応性によって計測される細胞表面及び細胞内におけるタンパク質の発現の変容、及びフルオレセイン抱合したアネキシンＶタンパク質の細胞表面への結合によって計測される原形質膜組成の変容がある。フローサイトメトリー法については、Ormerod, M. G. (1994) Flow Cytometry Oxford, New York, NY.に記述がある。
【０３５３】
遺伝子発現に与えるNAAPの影響は、NAAPをコードする配列と、CD64又はCD64-GFPのどちらかとが形質移入された、高度に精製された細胞集団を用いて評価することができる。CD64又はCD64-GFPは、形質移入された細胞表面で発現し、ヒト免疫グロブリンG（IgG）の保存領域と結合する。形質移入された細胞と形質転換されない細胞とは、ヒトIgGかCD64に対する抗体のどちらかで被覆された磁気ビーズを用いて効率的に分離できる（DYNAL, Lake Success NY）。mRNAは、当業者に周知の方法で細胞から精製できる。NAAPと、目的とする他の遺伝子とをコードするmRNAの発現は、ノーザン分析やマイクロアレイ技術で分析できる。
【０３５４】
１５  NAAPに特異的な抗体の作製
ポリアクリルアミドゲル電気泳動法(PAGE；例えば、Harrington, M.G. (1990) Methods Enzymol. 182:488-495を参照)又は他の精製技術で実質的に精製されたNAAP を用いて、標準的なプロトコルで動物（ウサギ、マウス等）を免疫化して抗体を作り出す。
【０３５５】
別法では、NAAPアミノ酸配列をLASERGENEソフトウェア（DNASTAR）を用いて解析して免疫原性の高い領域を決定し、対応するオリゴペプチドを合成してこれを用いて当業者に周知の方法で抗体を生産する。Ｃ末端付近の、或いは隣接する親水性領域内のエピトープなどの適切なエピトープの選択については、当分野で周知である(例えば、前出のAusubel, 1995,11章を参照)。
【０３５６】
通常は、長さ約１５残基のオリゴペプチドを、Fmocケミストリを用いるABI 431A ペプチドシンセサイザ（Applied Biosystems）を用いて合成し、N-マレイミドベンゾイル-N-ヒドロキシスクシンイミドエステル（MBS）を用いた反応によってKLH（Sigma-Aldrich, St. Louis MO）に結合させて、免疫原性を高める（前出のAusubel, 1995 等を参照）。完全フロイントアジュバントにおいてオリゴペプチド-KLH複合体を用いてウサギを免疫化する。得られた抗血清の抗ペプチド活性及び抗NAAP活性を試験するには、ペプチド又はATRSを基板に結合し、１％BSAを用いてブロッキング処理し、ウサギ抗血清と反応させて洗浄し、更に放射性ヨウ素標識されたヤギ抗ウサギIgGと反応させる。
【０３５７】
１６  特異的抗体を用いる天然NAAPの精製
天然NAAP或いは組換えNAAPを実質的に精製するため、NAAPに特異的な抗体群を用いるイムノアフィニティークロマトグラフィを行う。イムノアフィニティーカラムは、CNBr-活性化したSEPHAROSE（Amersham Pharmacia Biotech）のような活性化クロマトグラフィ用レジンと抗NAAP抗体とを共有結合させることにより形成する。結合後に、製造者の使用説明書に従って樹脂をブロックし、洗浄する。
【０３５８】
NAAPを有する培養液をイムノアフィニティーカラムに通し、NAAPを優先的に吸着できる条件で（例えば、界面活性剤の存在下で高イオン強度のバッファで）そのカラムを洗浄する。そのカラムを、抗体とNAAPとの結合を切るような条件で（例えば、或るpH２〜３のバッファ、或いは高濃度の、例えば尿素又はチオシアン酸イオンなどのカオトロープで）溶出させ、NAAPを回収する。
【０３５９】
１７  NAAPと相互作用する分子の同定
NAAP、又は生物学的に活性なその断片を、125Iボルトンハンター試薬で標識する(例えば Bolton A.E. 及び W.M. Hunter (1973) Biochem. J. 133:529-539を参照)。マルチウェルプレートの各ウェルに予め配列しておいた候補の分子群を、標識したNAAPと共にインキュベートし、洗浄して、標識されたNAAP複合体を有する全てのウェルをアッセイする。様々なNAAP濃度で得られたデータを用いて、候補分子と結合したNAAPの数量、親和性、及び会合についての値を計算する。
【０３６０】
別法では、NAAPと相互作用する分子を、Fields, S.及び O. Song(1989, Nature 340:245-246)に記載の酵母２−ハイブリッドシステム（yeast two-hybrid system）を、又は、MATCHMAKERシステム(Clontech)など２−ハイブリッドシステムに基づく市販キットを用いて分析する。
【０３６１】
NAAPは又はイスループット型の酵母２ハイブリッドシステムを使用するPATHCALLINGプロセス（CuraGen Corp., New Haven CT）に用いて、遺伝子の２つの大きなライブラリによってコードされるタンパク質間の全ての相互作用を決定することができる（Nandabalan, K. 他 (2000) 米国特許第6,057,101号）。
【０３６２】
１８  NAAP活性の実証
NAAP活性を、その、レポーター遺伝子の転写を刺激する能力によって測定する（Liu, H. Y. 他 (1997) EMBO J. 16 : 5289-5298）。このアッセイは、十分に特徴付けられたレポーター遺伝子作成物であるLexAop-LacZを用いる。このLexAop-LacZは、大腸菌LacZ酵素をコードする配列に融合されたLexA DNA転写調節エレメント（LexAop）からなる。融合遺伝子の作成及び発現、細胞への融合遺伝子の導入、及び、LacZ酵素活性の測定方法は、当業者に周知である。NAAPをコードする配列を、LexA転写因子に由来するDNA結合ドメインとNAAPとからなる融合タンパク質、LexA-NAAPの合成を指示するプラスミドにクローニングする。LexA-NAAP融合タンパク質をコードする得られたプラスミドを、LexAop-LacZレポーター遺伝子を持つプラスミドと共に酵母細胞内に導入する。対照細胞と比較したLexA-NAAP形質移入細胞に関連するLacZ酵素活性の量が、NAAPによって刺激された転写の量に比例する。
【０３６３】
或いはNAAPの活性は、亜鉛に結合する能力として測定される。5〜10μMのサンプル溶液（2.5 mMの酢酸アンモニウム溶液中(pH 7.4)）を0.05 Mの硫酸亜鉛溶液 (Aldrich, Milwaukee WI)と、100μMのジチオスレイトール（10%メタノールを添加）の存在下で混合する。サンプルと硫酸亜鉛溶液とのインキュベートを20分間おこなう。反応溶液をVYDACカラム（約300オングストロームのボアサイズ（bore size）、5μmの粒径）(Grace Vydac, Hesperia CA)に通す。これにより、亜鉛-サンプル複合体を溶液から単離し、次に質量分析計(PE Sciex, Ontario, Canada)にかける。サンプルに結合した亜鉛の定量には、機能的原子量である63.5 Daを用いる（この原子量を観測したのはWhittal, R. M. 他(2000) Biochemistry 39:8406-8417である）。
【０３６４】
或いは、NAAPの核酸結合活性を判定する或る方法は、ポリアクリルアミドゲル泳動移動度シフトアッセイを伴う。このアッセイの調製では、NAAPは、NAAP cDNAを有する真核生物発現ベクターを用い、COS7、HeLa、若しくはCHOなど、哺乳類細胞株を形質転換することで発現される。形質転換の後、この細胞株がNAAPを発現し蓄積するのに適した条件下で、これらの細胞を４８〜７２時間インキュベーションする。可溶化した蛋白質を有する抽出物の調製は、NAAPを発現する細胞から行いうる。この方法は当分野で周知である。NAAPを有する抽出物の各部分を、[32P]標識したRNA又はDNAに添加する。当分野で公知の技術により放射性核酸をin vitroで合成することが可能である。混合物を５〜１０分間バッファした条件下でRNA分解酵素とDNA分解酵素のインヒビターの存在下に25℃でインキュベートする。インキュベートした後に、サンプルをポリアクリルアミドゲル電気泳動法によって分析する。その後にオートラジオグラフ法により分析する。バンドがオートラジオグラム上に存在すれば、NAAPと放射性転写物との複合体の形成を示す。同様の移動度のバンドは、非形質転換細胞から調製した対照抽出物を用いて準備したサンプル中には見られないであろう。
【０３６５】
或いはNAAPのメチラーゼ活性を判定する或る方法では、供与体基質と受容体基質との間での放射標識メチル基の転移を測定する。反応混合液(50μl の最終容量)には、15 mMのHEPES（pH 7.9）、1.5 mMのMgCl2、10 mMジチオスレイトール、3%ポリビニルアルコール、1.5μCi [メチル-3H]AdoMet (0.375 μMのAdoMet) (DuPont-NEN)、0.6μgのNAAP、及び受容体基質（例えば0.4μgの [35S]RNA又は 6-メルカプトプリン(6-MP)、最大1 mMの最終濃度）を含む。反応混合液は30℃で30分間、次に65℃ で5分間インキュベートする。
【０３６６】
[メチル-3H]RNAの分析法は次のとおりである。(1) 50μlの2×ローディングバッファ(20 mMのTris-HCl（pH 7.6）、1 MのLiCl、1 mMのEDTA、1%ドデシル硫酸ナトリウム(SDS))及び50μlオリゴd(T)-セルロース(1×ローディングバッファ中に10 mg/ml)を反応混液に添加し、インキュベートを室温で振盪しながら30分間おこなう。(2)反応混液を96穴ろ過プレート(真空装置に接続)に移す。(3)各サンプルを逐次洗浄する。これには３つの2.4 mlアリコットの1×オリゴd(T)ローディングバッファ（0.5% SDS又は 0.1% SDSを有するものと、SDSを有しないもの）を用いる。(4) RNAの溶出を、300μlの水で96ウェル収集プレートへ行い、シンチレーションバイアル(液体シンチラントを含有)に移し、放射能を判定する。
【０３６７】
[メチル-3H]6-MPの分析法は次のとおりである。(1) 500μlの0.5 M ホウ酸バッファ（pH 10.0）を、次に20% (v/v)でトルエンに希釈したイソアミルアルコールの2.5 mlを、反応混液に添加する。(2) サンプルの混合を、10秒間、ボルテックスで良く撹拌しておこなう。(3) 遠心分離を700g で10分間おこなった後、1.5 mlの有機相をシンチレーションバイアル( 0.5 ml 無水エタノールと液体シンチラントとを含有)に移し、放射能を判定する。(4) 結果の補正を、6-MPの、有機相への抽出について行う（約41%）。
【０３６８】
或いは、NAAPのタイプIトポイソメラーゼ活性のアッセイを、或るスーパーコイルDNA基質の弛緩(relaxation)に基づき行う。NAAPのインキュベートをその基質と共に、Mg2+ とATPとを欠くバッファ中で行い、反応を終了させ、生成物をアガロースゲルにロードする。変容したトポアイソマーの、スーパーコイル基質からの弁別は、電気泳動でできる。このアッセイはタイプIトポイソメラーゼ活性に特異的である。その理由は、Mg2+とATPとが、タイプIIトポイソメラーゼに必要な補因子だからである。
【０３６９】
別方法として、NAAPのタイプIIトポイソメラーゼ活性のアッセイを、或るキネトプラストDNA（KDNA）基質の脱連環(decatenation)に基づいて行い得る。NAAPのインキュベートをKDNAと共に行い、反応を終了させ、生成物をアガロースゲルにロードする。単量体環状KDNAの、連環したKDNAとの弁別は、電気泳動でできる。タイプIトポイソメラーゼ活性とタイプIIトポイソメラーゼ活性とを測定する市販キットはTopogen (Columbus OH)で得られる。
【０３７０】
別方法として、NAAPのATP依存性RNAヘリカーゼ巻き戻し活性は、Zhang及びGrosse (1994; Biochemistry 33:3906-3912)に記載された方法で測定できる。RNA巻き戻し用の基質には 32P-標識RNAを含み、このRNAは二本のRNAストランド(194及び130ヌクレオチドの長さ)からなり、17塩基対のduplex領域を持つ。RNA基質を、37℃で30分間、ATP、Mg2+、Tris-HClバッファ（pH 7.5）で可変量のNAAPと共にインキュベートする。次に、10%SDS-ポリアクリルアミドゲルを通す電気泳動法によって一本鎖RNA生成物を二本鎖ＲＮＡ基質から分離し、オートラジオグラフ法により定量する。回収した一本鎖RNAの量は、調製物中のNAAP量に比例する。
【０３７１】
或いはNAAP機能のアッセイは、哺乳動物細胞培養系において生理的に高められたレベルでの、NAAPをコードする配列の発現によって算定する。cDNAを高いレベルで発現する強いプロモーターを持つ哺乳動物発現ベクターにcDNAをサブクローニングする。選択されるベクターとしては、pCMV SPORT（Life Technologies）及びpCR3.1（Invitrogen Corporation, Carlsbad CA）があり、どちらもサイトメガロウイルスプロモーターを持つ。リポソーム製剤或いは電気穿孔法を用いて、５〜１０μgの組換えベクターをヒト細胞株、好ましくは内皮由来又は造血由来の細胞株に一時的に形質移入する。更に、標識タンパク質をコードする配列を含む１〜２μgのプラスミドを同時に形質移入する。
【０３７２】
標識タンパク質の発現により、形質移入された細胞と形質移入されていない細胞を区別する手段が与えられる。また、標識タンパク質の発現によって、ｃＤＮＡの組換えベクターからの発現を正確に予想できる。標識タンパク質は、例えば緑色蛍光タンパク質（GFP; CLONTECH）、CD64又はCD64-GFP融合タンパク質から選択できる。自動化された、レーザ光学に基づく技術であるフローサイトメトリー（FCM）を用いて、GFP又はCD64-GFPを発現する形質移入された細胞を同定し、それらの細胞のアポトーシス状態や他の細胞特性を評価する。
【０３７３】
ＦＣＭは、細胞死に先行するか或いは同時に発生する現象を診断する蛍光分子の取り込みを検出して計量する。このような現象として挙げられるのは、ヨウ化プロピジウムによるＤＮＡ染色によって計測される核ＤＮＡ含量の変化、前方散乱光と90°側方散乱光によって計測される細胞サイズと粒度の変化、ブロモデオキシウリジンの取込量の低下によって計測されるDNA合成の下方調節、特異抗体との反応性によって計測される細胞表面及び細胞内におけるタンパク質の発現の変容、及びフルオレセイン抱合したアネキシンＶタンパク質の細胞表面への結合によって計測される原形質膜組成の変容とがある。フローサイトメトリー法については、Ormerod, M. G. (1994) Flow Cytometry, Oxford, New York NYに記述がある。
【０３７４】
遺伝子発現に与えるNAAPの影響は、NAAPをコードする配列と、CD64又はCD64-GFPのどちらかとが形質移入された、高度に精製された細胞集団を用いて評価することができる。CD64又はCD64-GFPは、形質移入された細胞表面で発現し、ヒト免疫グロブリンG（IgG）の保存領域と結合する。形質移入された細胞と形質移入されない細胞とは、ヒトIgGかCD64に対する抗体のどちらかで被覆された磁気ビーズを用いて効率的に分離できる（DYNAL, Inc., Lake Success NY）。mRNAは、当業者に周知の方法で細胞から精製できる。NAAPと、目的とする他の遺伝子とをコードするmRNAの発現は、ノーザン分析やマイクロアレイ技術で分析できる。
【０３７５】
NAAPのプソイドウリジン合成酵素活性のアッセイには、トリチウム(3H) 放出アッセイを、Nurse 他((1995) RNA 1:102-112)を改作して行い、RNA中の3H-放射標識ウリジル酸(U)が異性化されてプソイドウリジン(Ψ)になるときの、Uのピリミジン成分のC5 位置からの3Hの放出を測定する。典型的な500μlアッセイ混液の内容は、50 mMのHEPESバッファ(pH 7.5)、100 mM酢酸アンモニウム、5 mMジチオスレイトール、1 mMのEDTA、30 単位のRNase阻害剤、及び0.1〜4.2μMの [5-3H]tRNA (約1μCi/nmolのtRNA)である。反応を開始するには、5μlより少量のNAAPの濃縮溶液(又はNAAP含有サンプル)を添加し、インキュベートを5分間37 ℃で行う。NAAPを加えた後、反応混液の一部を様々な経過時間(最長30分まで)に採取し、Norit-SA3 (12% w/v)を含有する1 mlの0.1 MのHClに希釈して反応を停止する。停止した反応混液の遠心分離を5分間、最大速度のマイクロ遠心機で行い、上澄みのろ過を、グラスウールの詰め物を通して行う。ペレットを、1 mlの0.1 M HCl中で2回、再懸濁して洗浄した後、遠心分離する。洗浄後の上澄みの各々を、別々にグラスウールの詰め物に通し、元のろ過物と混合する。混合したろ過物の一部を、シンチレーション液(最大１０ｍｌ)と混合し、シンチレーションカウンタでカウントする。RNAから放出された3Hの量、また可溶性ろ液に存在する3Hの量が、サンプルにおけるプソイドウリジン合成酵素活性の量に比例する(Ramamurthy, V. (1999) J. Biol. Chem. 274:22225-22230)。
【０３７６】
或いはNAAPのプソイドウリジン合成酵素活性のアッセイは、30 ℃〜37 ℃で、次の混液で行う。すなわち100 mMのTris-HCl (pH 8.0)、100 mM 酢酸アンモニウム、5 mMのMgCl2、2 mMジチオスレイトール、0.1 mMのEDTA、及び1〜2 fmolの[32P]-放射標識ランオフ(runoff)転写物(産生はin vitro で、適切なRNAポリメラーゼすなわちT7又はSP6で行う)を基質として含む混液である。NAAPを加えて反応を開始させるか、反応液に加えずに対照サンプルとする。インキュベート後、RNAをフェノール-クロロホルムで抽出し、エタノール中に沈殿させる。また、完全に加水分解して3-ヌクレオチド一リン酸にするためRNase T2を用いる。水解物の分析には2次元薄層クロマトグラフィを用い、32P放射ラベルの量（ΨMP及びUMPスポット中に存在する量）の評価を、薄層クロマトグラフィプレートをフィルム又はPhosphorImager スクリーンに曝した後に行う。基質RNA中のウリジル酸残基の相対数を考慮してΨMPとUMPとの相対量を判定し、この量を用いてtRNA分子の量に対するΨの相対量を計算する(モルΨ/tRNAモル、又はモルΨ/tRNAモル/分で表す)。この量が、NAAPサンプル中のプソイドウリジン合成酵素活性の量に一致する(Lecointe, F. 他. (1998) J. Biol. Chem. 273:1316-1323)。
【０３７７】
NAAPのN2,N2-ジメチルグアノシン転移酵素((m22G)メチルトランスフェラーゼ)活性の測定は、160μl反応混液に以下を含有して行う。すなわち100 mMのTris-HCl (pH 7.5)、0.1 mMのEDTA、10 mMのMgCl2、20 mMのNH4Cl、1mMジチオスレイトール、6.2μMのS-アデノシル-L-[メチル-3H]メチオニン(30〜70 Ci/mM)、8μgのm22G-欠損tRNA又は野生型tRNA（酵母由来）及び約100μgの精製NAAP又はNAAP含有サンプルを含む。反応液を30℃で90分間インキュベートし、氷上で冷却する。各反応液の一部を、100μg BSAを含む1 mlの水に希釈する。1 mlの2 M HClを各サンプルに加え、酸性不溶性産物を氷上で20分間沈殿させた後、収集のためのろ過をガラス繊維フィルタで行う。収集した物質の洗浄を数回、塩酸で行い、液体シンチレーションカウンタを用いて定量する。3Hが、m22Gを欠損した酸性不溶性tRNAに取り込まれる量が、NAAPサンプル中のN2,N2-ジメチルグアノシン転移酵素活性の量に比例する。基質tRNAを含まない反応、又は既に修飾された野生型tRNAを含む反応は対照反応として役だち、この反応では酸性不溶性3H-標識産物は得られないはずである。
【０３７８】
NAAPのポリアデニル化活性の測定には、in vitro のポリアデニル化反応を用いる。反応混合液の作製は氷上で行い、以下を含む。10μl の 5 mM ジチオスレイトール、0.025% (v/v) NONIDET P-40、50 mMクレアチンリン酸、6.5% (w/v)ポリビニルアルコール、0.5ユニット/μlのRNAGUARD (Amersham Pharmacia Biotech)、0.025μg/μlクレアチン・キナーゼ、1.25 mM コルジセピン5'-三リン酸、及び3.75 mMのMgCl2で、総容量25μlとする。60 fmolのCstF、50 fmolのCPSF、240 fmolのPAP、4μlの未精製CF II、又は部分的に精製したCF IIと、可変量CF Iを次に反応混液に加える。容量を調整して23.5μlにするため、以下を有するバッファを加える。50 mMのTrisHCl（pH 7.9）、10% (v/v)グリセロール、及び0.1 mMのNa-EDTAである。最終的な硫酸アンモニウム濃度は20 mM未満とする。反応を氷上で開始するため、15 fmol の 32P標識mRNA前駆体テンプレートと、2.5μgの無標識tRNAを含む1.5μlの水を加える。反応液を次にインキュベートする。これは30 ℃で75〜90分間行い、停止するには75μl (約2倍量)のプロテイナーゼKミックス(0.2 MのTris-HCl（pH 7.9）、300 mMのNaCl、25 mMのNa-EDTA、2% (w/v) SDS)、1μlの10 mg/mlプロテイナーゼK、0.25μlの20 mg/mlグリコーゲン及び23.75μlの水を加える。インキュベート後、RNAをエタノールで沈殿させ、分析を6% (w/v)ポリアクリルアミド、8.3 M尿素シーケンシングゲル上で行う。乾燥したゲルの感光を、オートラジオグラフィで、又はホスホイメージャー(phosphoimager)で行う。切断活性を判定するには、切断産物の量を、mRNA前駆体テンプレートの量と比較する。いずれかのポリペプチド成分を反応から除くことと、NAAPを代替することとは、mRNA前駆体ポリアデニル化におけるNAAPの特定の生物機能を同定する上で有用である(Ruegsegger, U. 他  (1996) J. Biol. Chem. 271:6107-6113及びその中の参考文献)。
【０３７９】
tRNA合成酵素活性は、[14C]−標識されたアミノ酸の存在下で基質tRNAのアミノアシル化として測定される。NAAPは緩衝液中で、[14C]−標識されたアミノ酸と好適な同族tRNA（例えば、[14C]アラニン及び tRNAala）と共にインキュベートされる。14C-標識の産物は遊離[14C]アミノ酸からクロマトグラフィによって分離され、取り込まれた[14C]はシンチレーションカウンタで測定される。このアッセイでは、14C-標識産物の量がNAAPの活性に比例する。
【０３８０】
或いはNAAP活性を測定するため、NAAP含有サンプルのインキュベートを、以下を含む溶液で行う。1 mMのATP、5 mMのHepes-KOH (pH 7.0)、2.5 mMのKCl、1.5 mM塩化マグネシウム、及び0.5 mMのDTTであり、また誤ってアシル化した[14C]-Glu-tRNAGln (例えば1μM)及び同様の濃度の無標識Lグルタミンをも含む。反応を停止させるため3 M酢酸ナトリウム(pH 5.0)を加えた後、混液の抽出を同量の水‐飽和フェノールで行い、水相と有機相とを分離する遠心分離を15,000×g、室温で1分間おこなう。水相の沈殿を3倍量のエタノール、-70℃で15分間おこなう。沈殿したアミノアシル-tRNAを回収する遠心分離を15,000×g、4℃で15分間おこなう。ペレットの再懸濁を25 mMのKOHで行い、脱アシル化を65℃で10分間おこない、中和を0.1 MのHClで行い(最終pH 6〜7)、真空乾燥する。乾燥ペレットの再懸濁を水中で行い、セルロースTLCプレート上にスポットする。プレートの展開を、イソプロパノール／蟻酸／水又はアンモニア／水／クロロホルム／メタノール中で行う。イメージを濃度計分析し、GluとGlnとの相対量の計算を、スポットのRf値と相対強度とに基づき行う。NAAP活性の計算を、GluがGlu-tRNAGln としてアシル化され転換した結果のGlnの量に基づき行う(Curnow, A.W. 他(1997) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:11819-11826)。
【０３８１】
別方法として、NAAPの活性はin vitro 翻訳アッセイの使用によって実証することができる。このアッセイでは酵母翻訳開始因子2（IF2）をコードするFUN12遺伝子を欠いたS. cervisiae の突然変異株を利用する。これらの株は遅速成長表現型を示すが、任意の供給源から得られたIF2を加えることにより救うことができる（正常速度で成長させることができる）。IF2としては組換え法によって産生された、又は他の生物体から単離されたものを含む。簡潔に言えば、fun 12_株J133は低コピー数FUN12プラスミドpC479、NAAPを持つ発現プラスミド、又はベクターのみの何れかで形質転換される。対照株と試験株を、ガラクトース１０％と必要栄養サプリメントを含む合成最小培地上にストリーキングして、プレートを5日間30℃ でインキュベートする。In vitro 翻訳抽出物をfun 12_株J133から調製する。抽出物を、２００ngのルシフェラーゼｍRNA及び増加する量の、対照株、又はIF2の供給源を含む試験株とインキュベートする。サンプルの発光を、翻訳反応に加えた試験タンパク質の量の関数としてプロットする(Lee, J.H. 他 (1999) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96:4342-4347)。
【０３８２】
別方法として、NAAPのクロマチン分子活性はDnase Iに対する感度を測定することによって実証される(Dawson, B.A. 他 (1989) J. Biol. Chem. 264:12830-12837)。サンプルをDNase Iで処理した後、当業者に公知のニック修復技法を使って、ビオチン標識された開裂可能なヌクレオチドアナログ（5-[(N-ビオチンアミド)ヘキサノアミドエチル1,3-チオプロピオニル-3-アミノアリル]-2'-デオキシウリジン 5'-三リン酸）を挿入する。精製し、EcoRI制限エンドヌクレアーゼで消化した後、ビオチン標識された配列をストレプトアビジン及びビオチンセルロースに順次結合させることでアフィニティ単離する。
【０３８３】
１９  NAAPアゴニスト及びアンタゴニストの同定
NAAPの活性化若しくは抑制のアゴニスト若しくはアンタゴニストを、実施例１７で記述したアッセイを用いてテストし得る。アゴニストはNAAP活性の増加を引き起こし、アンタゴニストはNAAP活性の減少を引き起こす。
【０３８４】
当業者には、本発明の範囲及び精神から逸脱しない、本発明の記載した方法及びシステムの種々の修正及び変更は自明であろう。本発明について説明するにあたり特定の好適実施例に関連して説明を行ったが、本発明の範囲が、そのような特定の実施例に不当に制限されるべきではないことを理解されたい。実際に、分子生物学又は関連分野の専門家には明らかな、本明細書に記載されている本発明の実施方法の様々な修正は、特許請求の範囲内にあるものとする。
【０３８５】
（表の簡単な説明）
表１は、本発明の完全長ポリヌクレオチド配列及びポリペプチド配列の命名法の概略を示す。
【０３８６】
表２は、本発明のポリペプチド群のGenBank識別番号と、最も近いGenBank相同体の注釈（annotation）と、PROTEOMEデータベース識別番号と、PROTEOMEデータベース相同体群の注釈とを示す。各ポリペプチドとその相同体が一致する確率スコアも併せて示す。
【０３８７】
表３は、予測されるモチーフ及びドメインを含む本発明のポリヌクレオチド配列の構造的特徴を、ポリペプチドの分析に用いるための方法、アルゴリズム及び検索可能なデータベースと共に示す。
【０３８８】
表４は、本発明のポリヌクレオチド配列を構築するために用いたcDNAやゲノムDNA断片を、ポリヌクレオチド配列の選択した断片と共に示す。
【０３８９】
表５は、本発明のポリヌクレオチドの代表的なcDNAライブラリを示す。
【０３９０】
表６は、表５に示したcDNAライブラリの作製に用いた組織及びベクターを説明する付表である。
【０３９１】
表7は、本発明のポリヌクレオチドとポリペプチドの分析に用いたツール、プログラム、アルゴリズムを、適用可能な説明、参照文献及び閾値パラメータと共に示す。
【０３９２】
【表１】
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【０３９３】
【表２−１】
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【０３９４】
【表２−２】
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【０３９５】
【表３−１】
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【０３９６】
【表３−２】
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【０３９７】
【表３−３】
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【０３９８】
【表３−４】
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【０３９９】
【表３−５】
2005504509.tif 000014
【０４００】
【表３−６】
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【０４０１】
【表４−１】
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【０４０２】
【表４−２】
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【０４０３】
【表４−３】
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【０４０４】
【表４−４】
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【０４０５】
【表４−５】
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【０４０６】
【表５】
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【０４０７】
【表６−１】
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【０４０８】
【表６−２】
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【０４０９】
【表７−１】
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【０４１０】
【表７−２】
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【国際公開パンフレット】
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【国際公開パンフレット（コレクトバージョン）】
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【国際調査報告】
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