(57)【要約】  植物におけるアルミニウムの取り込みに関与する遺伝子を同定し、その遺伝子の利用方法を提供する。本発明は、配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、または配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを植物に発現可能に導入する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物の生産方法であって、
下記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを、植物に発現可能に導入することを特徴とする、形質転換植物の生産方法：
（ａ）配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；
（ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
【請求項２】
請求項１に記載の形質転換植物の生産方法によって生産されたことを特徴とする形質転換植物。
【請求項３】
アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を作製するためのキットであって、
下記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを備えていることを特徴とするキット：
（ａ）配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；
（ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は植物におけるアルミニウムの取り込みに関与する遺伝子の利用に関する。
【背景技術】
【０００２】
アルミニウムイオンは、植物に対して強い毒性を有している。土壌中に含まれているアルミニウムは酸性条件下(約ｐＨ５以下)においてアルミニウムイオンとして溶出し、例え低濃度（数μＭ）であっても、すばやく根の伸長阻害を引き起こし、根からの養水分の吸収を阻害する。【０００３】
このように、アルミニウムイオンは、酸性土壌において植物の生育を阻害する最大の因子であるが、植物におけるアルミニウムの取り込みが、植物のアルミニウム耐性のメカニズムに関与していることがわかってきた。本発明者は、ソバ、チャ、アジサイ等のアルミニウム耐性が高い植物は、土壌中のアルミニウムを吸収し、葉等の細胞の液胞内においてアルミニウムと有機酸との錯体を形成させ、無毒化させることによってアルミニウム耐性を獲得していることを報告している（非特許文献１）。【０００４】
また、アルミニウムは、花の色の決定にも関与している。本発明者は、アジサイでは、植物体内において色素であるデルフィニジンとアルミニウムとが結合することによって、花の色が赤から青へと変化することを報告している（非特許文献２）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Ma, J. F., Zheng, S. J., Hiradate, S. and Matsumoto, H. 1997. Detoxifying aluminium with buckwheat. Nature 390: 569-570.
【非特許文献２】Ma, J. F., Hiradate, S., Nomoto, K., Iwashita, T. and Matsumoto, H. 1997. Internal detoxification mechanism of Al in hydrangea. Identification of Al form in the leaves. Plant Physiol. 113:1033-1039.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
植物におけるアルミニウムの細胞内への取り込みのメカニズムを解明することは、植物におけるアルミニウム耐性のメカニズムを解明したり、花の色を人為的に改変させたりするために有用な手掛かりとなり得ると考えられる。【０００７】
しかし、どのような遺伝子が、植物におけるアルミニウムの取り込み（輸送）に関与するのかは不明であった。【０００８】
本発明は、上記の問題点に鑑みてなされたものであり、その目的は、植物におけるアルミニウムの取り込みに関与する遺伝子を同定し、その遺伝子の利用方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者は上記課題を解決すべく鋭意検討を行った。その結果、本発明者がイネから単離したＯｓＮｒａｔ１遺伝子が、植物におけるアルミニウムの輸送に関与することを初めて発見し、本発明を完成させるに至った。すなわち、本発明は以下の発明を包含する。【００１０】
本発明に係る形質転換植物の生産方法は、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物の生産方法であって、下記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを、植物に発現可能に導入することを特徴としている：
（ａ）配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；
（ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。【００１１】
本発明に係る形質転換植物は、本発明に係る形質転換植物の生産方法によって生産されたことを特徴としている。【００１２】
本発明に係るキットは、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を作製するためのキットであって、下記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを備えていることを特徴としている：
（ａ）配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；
（ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。【００１３】
本発明のさらに他の目的、特徴、および優れた点は、以下に示す記載によって十分わかるであろう。また、本発明の利益は、添付図面を参照した次の説明で明白になるであろう。
【発明の効果】
【００１４】
本発明に係る形質転換植物の生産方法によれば、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を生産することができるという優れた効果を奏する。具体的には、野生型の植物と比較して、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を生産することができる。【００１５】
本発明に係る形質転換植物は、アルミニウムの取り込みが促進されているため、例えば、アルミニウムを含有する土壌において栽培することによって、花弁の色を青色に改変させることができると考えられる。またアルミニウム耐性植物の作出にも応用できる。【００１６】
また、本発明に係るキットを用いれば、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を容易に作製することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】ＯｓＮｒａｔ１（Oryza sativa Nramp Aluminum transporter 1）と他の遺伝子との進化的関係を表す系統樹である。図１中の太実線の長さは、系統樹における進化距離が０．１の長さを表している。
【図２】図２は、ＮＥ７００９およびＮＦ７０４６それぞれのＯｓＮｒａｔ１遺伝子におけるレトロトランスポゾンＴｏｓ−１７の挿入位置を表す図である。
【図３】ＲＴ−ＰＣＲの結果を表す図である。
【図４】３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した後の、野生型イネ、ＮＥ７００９、およびＮＦ７０４６の根の伸長率（％）を表すグラフである。
【図５】ＮＥ７００９と野生型イネとを、異なる濃度のアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した後の、野生型イネおよびＮＥ７００９の根の伸長率（％）を表すグラフである。
【図６】ＮＥ７００９と、ＮＥ７０４６と、野生型イネとを、アルミニウム、カドミウム（Ｃｄ）、ランタン（Ｌｔ）のいずれかを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した後の、野生型イネ、ＮＥ７００９およびＮＥ７０４６の根の伸長率（％）を表すグラフである。
【図７】ＮＥ７００９および野生型イネについて、細胞内および細胞壁に存在するアルミニウム濃度を測定した結果を表すグラフである。図７の（ａ）は根の細胞シンプラスト液（root cell symplastic solution）に存在するアルミニウム濃度の経時的変化を表し、（ｂ）は細胞壁におけるアルミニウム含有量の経時的変化を表し、（ｃ）は根の細胞におけるアルミニウムの濃度のｐＨ依存的な変化を表している。
【図８】組織別ＲＴ−ＰＣＲの結果を表す図である。
【図９】根部位別ＲＴ−ＰＣＲの結果を表すグラフである。
【図１０】ＲＴ−ＰＣＲの結果を表すグラフであり、（ａ）は、他の金属に対するＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現を示し、（ｂ）は、野生型株を２０μＭアルミニウムを含む溶液で処理したときのイネの根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現の経時変化を示し、（ｃ）は、ａｒｔ１変異体におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現を示している。
【図１１】ＧＦＰ形質転換植物の根の先端または根の先端から１５ｍｍに位置する基部における免疫組織化学染色の結果を表す図である。
【図１２】タマネギ表皮細胞におけるＯｓＮｒａｔ１−ＧＦＰ融合タンパク質の局在を表す図である。
【図１３】酵母を用いたＯｓＮｒａｔ１タンパク質の機能解析の結果を表す図である。図１３の（ａ）は酵母の増殖を表す図であり、（ｂ）は、酵母におけるアルミニウムの取り込みを表すグラフであり、（ｃ）は、酵母におけるアルミニウムの取り込みの経時的変化を表すグラフである。
【図１４】酵母における、アルミニウム、アルミニウム−クエン酸錯体、およびアルミニウム−シュウ酸錯体の取り込みを表すグラフである。
【図１５】酵母を用いたＯｓＮｒａｔ１タンパク質の機能解析の結果を表す図である。図１５の（ａ）は鉄を制限した培地における酵母の増殖を表す図であり、（ｂ）は、マンガンを制限した培地における酵母の増殖を表す図であり、（ｃ）は酵母におけるカドミウムの取り込みを表すグラフである。
【図１６】Ｎｒａｔ１の過剰発現体のＲＴ−ＰＣＲの結果を表すグラフである。
【図１７】ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株と野生型イネとを、３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した後の、野生型イネおよびＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株の根の伸長率（％）を表すグラフである。
【図１８】ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株と野生型イネとについて、根の細胞内に取り込まれたアルミニウム量を表すグラフである。
【図１９】根の細胞におけるアルミニウムの蓄積を表す図である。図１９中、「ＮＥ７００９」はＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株、「５−５」および「５−７」はＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株を表す。
【図２０】酵母におけるアルミニウムの取り込みに対するカドミウムおよびマンガンの影響を示すグラフである。
【図２１】免疫染色の結果を示す図であり、（ａ）は、アルミニウム処理をしていない野生型イネの根における結果を示し、（ｂ）は、アルミニウム処理をしていないＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株の根における結果を示し、（ｃ）は、３０μＭアルミニウムで１２時間処理した野生型イネの根における結果を示し、（ｄ）は、３０μＭアルミニウムで１２時間処理したＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株の根における結果を示している。
【図２２】相補性検定の結果を示す図である。
【図２３】根のアルミニウムの取り込みにおける温度の影響を示す図である。（ａ）は、根の細胞シンプラスト液におけるアルミニウムの濃度を示し、（ｂ）は、根の細胞壁におけるアルミニウムの濃度を示している。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
以下、本発明の実施形態について詳細に説明する。ただし、本発明はこれに限定されるものではなく、記述した範囲内で種々の変形を加えた態様で実施できるものである。また、本明細書中に記載された学術文献および特許文献の全てが、本明細書中において参考として援用される。尚、本明細書において特記しない限り、数値範囲を示す「Ａ〜Ｂ」は、「Ａ以上、Ｂ以下」であることを示す。
【００１９】
〔１．形質転換植物の生産方法〕
本発明に係る形質転換植物の生産方法は、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物の生産方法であって、下記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを、植物に発現可能に導入する工程を含んでいる：
（ａ）配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；
（ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
【００２０】
本発明者は、細胞内へのアルミニウムの輸送に関与する遺伝子（ＯｓＮｒａｔ１遺伝子）をイネから新たに同定した。上記の配列番号１に示すポリペプチドは、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の翻訳産物である。すなわち、配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドは、本発明者によってイネから新たに同定された、細胞内へのアルミニウムの輸送に関与するタンパク質である。つまり、配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドは、植物のアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有しているといえる。
【００２１】
上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドとしては、例えば、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の全塩基配列を示した配列番号２の第５６番目のＡから第１６９３番目のＧに該当するポリヌクレオチドを挙げることができる。
【００２２】
ここで、本明細書において、上記「アルミニウムの取り込みを促進させた」とは、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドが導入されていない野生型の植物と比較して、形質転換植物におけるアルミニウムイオン（Ａｌ３＋）の取り込みを促進させたことを意図している。
【００２３】
アルミニウムイオン（Ａｌ３＋）の取り込みが促進したことは、野生型の植物と形質転換植物とを同じ条件で栽培し、栽培後の野生型の植物と形質転換植物とについて、植物全体におけるアルミニウムの蓄積量を比較することによって確認してもよいし、形質転換植物において上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドが発現している組織におけるアルミニウムの蓄積量を比較することによって確認してもよい。例えば、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドが根の組織に発現している場合は、野生型の植物の根と形質転換植物の根とにおけるアルミニウムの蓄積量を比較することによって確認することができる。植物におけるアルミニウムの蓄積量は、例えば、後述する実施例に示すフレームレス原子吸光法によって測定することができる。
【００２４】
また、上記「ポリペプチド」は、「ペプチド」または「タンパク質」とも換言できる。上記「１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加された」とは、部位特異的突然変異誘発法等の公知の変異ポリペプチド作製法により置換、欠失、または付加ができる程度の数（例えば２０個以下、好ましくは１０個以下、より好ましくは７個以下、さらに好ましくは５個以下、特に好ましくは３個以下）のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されることを意味する。このような変異ポリペプチドは、公知の変異ポリペプチド作製法により人為的に導入された変異を有するポリペプチドに限定されるものではなく、天然に存在する同様の変異ポリペプチドを単離精製したものであってもよい。
【００２５】
また、上記「ポリヌクレオチド」は、「核酸」または「核酸分子」とも換言でき、ヌクレオチドの重合体が意図されている。また、「塩基配列」は、「核酸配列」または「ヌクレオチド配列」とも換言でき、デオキシリボヌクレオチド（Ａ、Ｇ、Ｃ、およびＴと省略される）の配列として示される。また、「配列番号１に示す塩基配列からなるポリヌクレオチド」とは、配列番号１の各デオキシヌクレオチドＡ、Ｇ、Ｃおよび／またはＴによって示される配列からなるポリヌクレオチドを示している。
【００２６】
上記ポリヌクレオチドを取得する方法は、特に限定されるものではないが、公知の技術によって取得することができる。例えば、ＰＣＲ等の増幅手段を用いる方法によって取得することができる。具体的には、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドについて５’側および３’側の配列（またはその相補配列）に対応するプライマーをそれぞれ作製し、これらのプライマーを用いてゲノムＤＮＡ（またはｃＤＮＡ）等を鋳型にしてＰＣＲ等を行い、両プライマー間に挟まれるＤＮＡ領域を増幅することによって、上記のポリヌクレオチドを含むＤＮＡ断片を大量に取得することができる。
【００２７】
また、公知の日本晴の配列情報に基づいて、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子領域を増幅できるようなプライマーを設計し、そのプライマーを用いて、ゲノムＤＮＡ（またはｃＤＮＡ）またはＲＴ−ＰＣＲ産物を鋳型にして、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子領域を増幅することによっても上記ポリヌクレオチドを取得することができる。
【００２８】
また、上記ポリヌクレオチドまたはその一部の配列を含むオリゴヌクレオチドを含むＤＮＡ断片を単離し、クローニングする方法によってもポリヌクレオチドを取得することができる。例えば、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドの塩基配列の一部と特異的にハイブリダイズするプローブを調製し、ゲノムＤＮＡライブラリーやｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングすればよい。このようなプローブとしては、上記ポリヌクレオチドの塩基配列またはその相補配列の少なくとも一部に特異的にハイブリダイズするプローブであれば、いずれの配列および／または長さのものも用いることができる。
【００２９】
上記ポリヌクレオチドを取得するための供給源としては、特に限定されないが、配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチド（ＯｓＮｒａｔ１タンパク質）は、イネ品種日本晴に由来することから、イネ科植物（イネ、トウモロコシ等）を用いることが好ましい。
【００３０】
植物に導入される上記「ポリヌクレオチド」の形態としては、植物に発現可能に導入することができる限り特に限定されず、ＲＮＡ（例えば、ｍＲＮＡ）の形態、またはＤＮＡの形態（例えば、ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡ）であってもよい。
【００３１】
上記ポリヌクレオチドが導入される上記「植物」としては、特に限定されるものではなく、目的に応じて適宜選択することができる。例えば、イネ科植物、ナス科植物、マメ科植物、アジサイ科植物、バラ科植物等を挙げることができる。上記「イネ科植物」としては、例えば、イネ、オオムギ、コムギ、トウモロコシ、ライムギ、ソルガム等を挙げることができる。上記「ナス科植物」としては、例えば、ナス等を挙げることができる。上記「マメ科植物」としては、例えば、ダイズ等を挙げることができる。上記「アジサイ科植物」としては、例えば、アジサイ等を挙げることができる。上記「バラ科植物」としては、バラ等を挙げることができる。
【００３２】
本発明に係るアルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物の生産方法は、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチド、またはそのポリヌクレオチドを含む組換え発現ベクターが導入されており、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドを発現させるものであれば、特に限定されるものではない。尚、本明細書において、上記「アルミニウムの取り込みを促進させる活性」とは、「上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドが導入されていない野生型の植物と比較して、形質転換植物におけるアルミニウムの取り込みを促進させる活性」を意図している。
【００３３】
上記「組換え発現ベクター」は、（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを含むものであれば、その種類は特に限定されない。例えば、配列番号２の第５６番目のＡから第１６９３番目のＧに該当するｃＤＮＡが挿入された組換え発現ベクターを挙げることができる。組換え発現ベクターの作製には、プラスミド、コスミド等を用いることができるが、本発明はこれらに限定されない。
【００３４】
また、上記「組換え発現ベクター」は、植物の細胞（以下、「ホスト細胞」とも言う）において挿入遺伝子を発現させることが可能なものであれば、特に限定されるものではない。例えば、アグロバクテリウムを用いる方法（アグロバクテリウム感染法）によって植物に組換え発現ベクターを導入する場合には、組換え発現ベクターとして、ｐＢＩ系等のバイナリーベクターを用いることが好ましい。バイナリーベクターとしては、例えば、ｐＢＩＧ、ｐＢＩＮ１９、ｐＢＩ１０１、ｐＢＩ１２１、ｐＢＩ２２１等を挙げることができる。
【００３５】
また、上記「組換え発現ベクター」は、導入対象となる植物（導入対象植物）の細胞内において遺伝子を発現させることが可能なプロモーターを有するベクターであることが好ましい。プロモーターとしては公知のプロモーターを好適に用いることができる。例えば、カリフラワーモザイクウイルス３５Ｓプロモーター（ＣａＭＶ３５Ｓ）、ユビキチンプロモーターやアクチンプロモーター等を挙げることができる。これらのプロモーター配列と上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドとをプラスミド等に組み込んだ組換え発現ベクターとして用いることによって、導入したポリヌクレオチドを植物の細胞内において好適に発現させることができる。中でも、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を高発現させる観点から、カリフラワーモザイクウイルス３５Ｓプロモーターを用いることが好ましい。例えば、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を高発現させることにより、アルミニウムの取り込みがより促進された形質転換植物を生産することができる。
【００３６】
また、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子は、植物全体に発現させてもよいし、植物の特定の部位に特異的に発現させてもよい。例えば、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子を、アルミニウムと結合することによって色が変化する色素（例えば、デルフィニジン）を有する植物（例えば、アジサイ）の花弁に特異的に発現させることが考えられる。花弁にアルミニウムを蓄積させることによって、花弁の色を青色に改変することが可能となる。
【００３７】
ＯｓＮｒａｔ１タンパク質は植物の根に発現することが発明者によって明らかにされた。そこで、形質転換植物においてＯｓＮｒａｔ１タンパク質を好適に機能させる観点から、上記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを、上記植物の根において特異的に発現可能に導入することが好ましい。
【００３８】
例えば、根において特異的に発現する遺伝子を制御することが知られているプロモーターの制御下に上記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを導入することによって、上記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを、上記植物の根において特異的に発現させることができる。このようなプロモーターとしては、例えば、ＯｓＮｒａｔ１プロモーターを用いることができる。
【００３９】
上記ポリヌクレオチド、または上記組換え発現ベクターを植物に導入する方法、すなわち形質転換方法としては特に限定されるものではない。例えば、上記ポリヌクレオチド、または上記組換え発現ベクターを染色体に組み込ませてもよいし、相同組換えによって上記ポリヌクレオチドが染色体の特定の部位に組み込ませてもよい。また、上記ポリヌクレオチド、または上記組換え発現ベクターを植物内で一過的に発現させてもよい。
【００４０】
上記形質転換方法としては、従来公知の遺伝子工学的手法（遺伝子操作技術）を用いることができる。例えば、アグロバクテリウム感染法、電気穿孔法（エレクトロポレーション法）、リン酸カルシウム法、プロトプラスト法、酢酸リチウム法、およびパーティクルガン法等の従来公知の方法を好適に用いることができる。例えば、上記「アグロバクテリウム感染法」としては、Plant, J. 6: 271-282 (1994)に記載された方法を用いることができる。
【００４１】
また、上記ポリヌクレオチド、または上記組換え発現ベクターがホスト細胞に導入されたか否か、さらにはホスト細胞内で確実に発現しているか否かについては、各種マーカーを用いて確認することができる。例えば、ハイグロマイシンのような抗生物質に抵抗性を与える薬剤耐性遺伝子をマーカーとして用い、このマーカーと上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドとを含むプラスミド等を発現ベクターとしてホスト細胞に導入する方法を挙げることができる。この方法を用いれば、薬剤選択によって、導入された遺伝子がホスト細胞内で確実に発現しているか否かを確認することができる。
【００４２】
本発明に係る形質転換植物の生産方法によって生産された形質転換植物は、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチド、または上記の組換え発現ベクターが導入されており、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドを発現しているものである。すなわち、本発明に係る形質転換植物の生産方法によって生産された形質転換植物は、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチド（ＯｓＮｒａｔ１遺伝子）が導入されていない野生型の植物と比較して、アルミニウムの取り込みが促進されている。
【００４３】
具体的に説明すると、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドは、イネ（日本晴）に由来するＯｓＮｒａｔ１遺伝子に対応している。このため、上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドが導入された形質転換植物では、これらのポリヌクレオチドが導入されていない野生型の植物と比較して、植物におけるアルミニウムの取り込みが促進されると考えられる。
【００４４】
本発明に係る形質転換植物の生産方法によれば、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を容易に作製することができる。
【００４５】
〔２．形質転換植物〕
本発明に係る形質転換植物は、本発明に係る形質転換植物の生産方法によって生産されたことを特徴としている。
【００４６】
上記「本発明に係る形質転換植物の生産方法」については、上記「１．形質転換植物の生産方法」の項において説明した通りであるので、ここでは省略する。
【００４７】
本発明に係る形質転換植物の範疇には、植物体のみならず、種々の形態の植物細胞、例えば、懸濁培養細胞、プロトプラスト、葉の切片、カルス等も含まれる。また、本発明に係る形質転換植物の生産方法によって、植物の染色体に上記（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドが組み込まれた形質転換植物がいったん得られれば、当該植物から得られる種子にも上記ポリヌクレオチドが導入されている。従って、本発明には、形質転換植物から得られた種子も含まれる。
【００４８】
本発明に係る形質転換植物は、アルミニウムの取り込みが促進しているため、様々な用途に用いることができる。例えば、花の色を青色に改変させた植物とすることができると考えられる。
【００４９】
〔３．キット〕
本発明に係るキットは、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を作製するためのキットであって、下記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを備えていることを特徴としている：
（ａ）配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；
（ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
【００５０】
上記「ポリヌクレオチド」については、上記「１．形質転換植物の生産方法」の項において説明した通りであるので、ここでは省略する。
【００５１】
本発明に係るキットは、上述したポリヌクレオチド以外の成分を含んでいてもよい。例えば、上記ポリヌクレオチドを含む組み換え発現ベクターを作製するためのプラスミド、当該組換え発現ベクターを作製するために必要な試薬、バッファー、植物の形質転換を行うために必要な試薬等が含まれていてもよい。
【００５２】
本発明に係るキットを用いれば、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を容易に作製することができる。
【００５３】
本発明は上述した各実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。
【実施例】
【００５４】
以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は、これに限定されるものではない。【００５５】
発明者は、マイクロアレイ解析によって、アルミニウムによって発現誘導されるイネの遺伝子を多数特定し、その中のＯｓＮｒａｔ１について機能解析を行った。【００５６】
図１は、ＯｓＮｒａｔ１（Oryza sativa Nramp Aluminum transporter 1）と他の遺伝子との進化的関係を表す系統樹である。図１中の太実線の長さは、系統樹における進化距離が０．１の長さを表している。図１の系統樹は、ＣｌｕｓｔａｌＷ（DNA Data Bank of Japan (http://www.ddbj.nig.ac.jp/)）を用いて作成した。図１に示すように、ＯｓＮｒａｔ１はＮｒａｍｐファミリーに属している。しかし、後述する実施例に示すように、二価の金属イオンを輸送することが知られているＮｒａｍｐファミリーの他のメンバーとは異なり、三価のアルミニウムイオンを輸送するトランスポーターであることがわかった。ＯｓＮｒａｔ１は、他のメンバーとの低い相同性（アミノ酸レベルで、３６％〜５９％）を示した。【００５７】
（１．ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株を用いたＯｓＮｒａｔ１遺伝子の機能解析）
ＯｓＮｒａｔ１の機能を解析するために、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株（Ｔｏｓ−１７挿入株）２ライン（ＮＥ７００９およびＮＦ７０４６）を取得した。これらのＴｏｓ−１７挿入株は独立行政法人  農業生物資源研究所  イネゲノムリソースセンターより取り寄せた。ＮＥ７００９およびＮＦ７０４６は、レトロトランスポゾンＴｏｓ−１７の挿入によってＯｓＮｒａｔ１遺伝子が破壊されたイネ（日本晴）である。尚、本実施例において、「野生型イネ」とは、野生型の日本晴を意図している。図２は、ＮＥ７００９およびＮＦ７０４６それぞれのＯｓＮｒａｔ１遺伝子におけるレトロトランスポゾンＴｏｓ−１７の挿入位置を表す図である。【００５８】
まず、野生型イネ、ＮＥ７００９およびＮＦ７０４６を水耕栽培し、根からＲＮＡを抽出して、ＲＴ−ＰＣＲを行いＯｓＮｒａｔ１の発現量を調べた。逆転写反応は、SuperScript First-Strand Synthesis System for RT-PCR（インビトロジェン社製）を用いて行った。また、ＰＣＲの反応条件は以下の通りである。
反応液の組成：１０μＬの反応液に１倍濃度のバッファー、０．２ｍＭｄＮＴＰ、それぞれ０．５μＭのプライマー１組、２０倍希釈した逆転写産物１μＬ
ＰＣＲの条件：９５℃ ３０秒、（９５℃ １５秒、５８℃ １５秒、７２℃ ３０秒）×３０サイクル。【００５９】
図３は、ＲＴ−ＰＣＲの結果を表す図である。内部標準としてＨｉｓｔｏｎｅ Ｈ３の量を確認した。図３に示すように、ＮＥ７００９およびＮＦ７０４６において、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現が認められなかった。この結果から、ＮＥ７００９およびＮＦ７０４６では、確かにＯｓＮｒａｔ１遺伝子が破壊されていることを確認することができた。【００６０】
次に、野生型イネ（ｎ＝１０）、ＮＥ７００９（ｎ＝９）、およびＮＦ７０４６（ｎ＝５）を、３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露して、根の伸長を測定した。このとき、対照として、アルミニウムを含有しない０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した野生型イネ、ＮＥ７００９、およびＮＦ７０４６をそれぞれ用いた。【００６１】
図４は、３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した後の、野生型イネ、ＮＥ７００９、およびＮＦ７０４６の根の伸長率（％）を表すグラフである。グラフの縦軸は、対照における根の伸長を１００％としたときの上記の野生型イネ、ＮＥ７００９、およびＮＦ７０４６の根の伸長率を表している。【００６２】
図４に示すように、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株では、野生型イネと比較して根の伸長がより阻害された。これは、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株では、野生型イネよりもアルミニウム耐性が低下していることを示している。この結果から、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子は、植物におけるアルミニウム耐性に関与する遺伝子であることが予想された。【００６３】
次いで、ＮＥ７００９（各ｎ＝１０）と野生型イネ（各ｎ＝１０）とを、異なる濃度のアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露して、根の伸長を測定した。このとき、対照として、アルミニウムを含有しない０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した野生型イネおよびＮＥ７００９を用いた。【００６４】
図５は、ＮＥ７００９と野生型イネとを、異なる濃度のアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した後の、野生型イネおよびＮＥ７００９の根の伸長率（％）を表すグラフである。グラフの縦軸は、対照における根の伸長を１００％としたときの上記の野生型イネおよびＮＥ７００９の根の伸長率を表している。【００６５】
図５に示すように、いずれの濃度のアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液で処理した場合も、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株では、野生型イネと比較して根の伸長がより阻害された。すなわち、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株では、野生型イネよりもアルミニウム耐性が低下していた。【００６６】
そこで、ＮＥ７００９（各ｎ＝１０）と、ＮＥ７０４６（各ｎ＝１０）と、野生型イネ（各ｎ＝１０）とを、アルミニウム、カドミウム、ランタンのいずれかを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露して、根の伸長を測定した。このとき、それぞれの金属の濃度はアルミニウム３０μＭ、カドミウム１０μＭ、ランタン５μＭとなるように調製した。また、対照として、アルミニウムを含有しない０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した野生型イネ、ＮＥ７００９およびＮＥ７０４６を用いた。【００６７】
図６は、ＮＥ７００９と、ＮＥ７０４６と、野生型イネとを、アルミニウム、カドミウム（Ｃｄ）、ランタン（Ｌｔ）のいずれかを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した後の、野生型イネ、ＮＥ７００９およびＮＥ７０４６の根の伸長率（％）を表すグラフである。グラフの縦軸は、対照における根の伸長を１００％としたときの上記の野生型イネ、ＮＥ７００９およびＮＥ７０４６の根の伸長率を表している。【００６８】
図６に示すように、カドミウムまたはランタンを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液で処理した場合は、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株（ＮＥ７００９およびＮＥ７０４６）および野生型イネの根の伸長は同程度阻害された。すなわち、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株と野生型イネとでは、カドミウムおよびランタンに対する耐性は殆ど同じであった。一方、アルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液で処理した場合は、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株の根の伸長は、野生型イネと比較して、より阻害された。この結果から、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子は植物のアルミニウム耐性に特異的に関与する遺伝子であると考えられた。【００６９】
次いで、野生型イネおよびＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株（ＮＥ７００９およびＮＥ７０４６）について細胞内のアルミニウム濃度を比較した。具体的には、ＮＥ７００９、ＮＥ７０４６および野生型イネを、３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液において０〜１０時間処理した。処理後２時間毎に、根の先端から０〜１ｃｍの領域を採取した。採取した根を遠心分離することによって細胞外に存在する溶液を取り除いた後に、根を−８０℃に凍結した。その後、根を室温に戻し、遠心分離によって細胞シンプラスト液を得た。また、遠心分離後の残渣を８０％エタノールで３回洗浄した後に、２Ｎ塩酸を加えて、細胞壁に結合しているアルミニウムを溶出させた。細胞シンプラスト液および細胞壁からの抽出液に含まれるアルミニウムの量は、従来公知のフレームレス原子吸光法によって測定した。【００７０】
さらに、アルミニウムの取り込みにおけるｐＨの影響を調べるために、１０ｍＭホモピペス（homopipes）を用いてｐＨ４．０〜６．９の範囲に緩衝化した３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液において、ＮＥ７００９、ＮＥ７０４６および野生型イネ（各ｎ＝３）を８時間処理した。【００７１】
処理後、根の先端から０〜１ｃｍの領域を採取した。採取した根を遠心分離することによって細胞外に存在する溶液を取り除いた後に、根を−８０℃に凍結した。その後、根を室温に戻し、遠心分離によって細胞シンプラスト液を得た。また、遠心分離後の残渣を７０％エタノールで３回洗浄した後に、２Ｎ塩酸を加えて、細胞壁に結合しているアルミニウムを溶出させた。細胞シンプラスト液および細胞壁からの抽出液に含まれるアルミニウムの量は、従来公知のフレームレス原子吸光法によって測定した。【００７２】
図７は、ＮＥ７００９および野生型イネについて、細胞内および細胞壁に存在するアルミニウム濃度を測定した結果を表すグラフである。図７の（ａ）は細胞シンプラスト液（cell symplastic solution）に存在するアルミニウム濃度の経時的変化を表し、（ｂ）は細胞壁におけるアルミニウム含有量の経時的変化を表し、（ｃ）は細胞シンプラスト液におけるアルミニウムの濃度のｐＨ依存的な変化を表している。データは、平均値±標準偏差として示した。【００７３】
図７の（ａ）に示すように、野生型イネでは、アルミニウム溶液での処理時間に応じて、根の先端部分（先端から０〜１ｃｍの領域）の細胞シンプラスト液に存在するアルミニウムの濃度が経時的に上昇する傾向があった。一方、ＮＥ７００９では、アルミニウム溶液における処理時間に関わらず、根の先端部分（先端から０〜１ｃｍの領域）の細胞シンプラスト液に存在するアルミニウムの濃度が殆ど上昇しなかった。また、図７の（ｂ）に示すように、野生型イネとＮＥ７００９とでは、アルミニウム溶液での処理時間に応じて、根の先端部分（先端から０〜１ｃｍの領域）の細胞壁におけるアルミニウム量が経時的に増加することが明らかになった。そして、アルミニウム溶液における処理時間が長くなると、野生型イネよりも、ＮＥ７００９の方が、細胞壁に結合しているアルミニウム量が増加する傾向があることが明らかになった。この結果から、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子は、細胞内にアルミニウムを輸送する活性を有していることが考えられた。【００７４】
また、図７の（ｃ）に示すように、ｐＨ５．０より低い場合は、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株よりも野生型株の方が、アルミニウムの濃度が顕著に高かった。しかし、ｐＨ５．５を超えると、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株および野生型株のアルミニウムの濃度に差異はなかった。【００７５】
さらに、アルミニウムの取り込みにおける温度の影響を調べるために、ＮＥ７００９、ＮＥ７０４６および野生型イネを、３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液（ｐＨ４．２）において、４℃または２５℃で８時間処理した。【００７６】
処理後、根の先端から０〜１ｃｍの領域を採取し、上述した凍結−解凍法によって、細胞シンプラスト液および細胞壁からの抽出液を取得した。細胞シンプラスト液および細胞壁からの抽出液に含まれるアルミニウムの量は、従来公知のフレームレス原子吸光法によって測定した。【００７７】
結果を図２３に示す。図２３の（ａ）は、根の細胞シンプラスト液におけるアルミニウムの濃度を示し、（ｂ）は、根の細胞壁におけるアルミニウムの濃度を示している。図２３の（ａ）および（ｂ）に示すように、４℃では、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株および野生型株の根の細胞シンプラスト液および細胞壁のアルミニウムの取り込みに差異はなかった。これに対して、２５℃では、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株よりも野生型株の方が、根の細胞シンプラスト液におけるアルミニウムの濃度が高かった。また、２５℃では、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株よりも野生型株の方が、根の細胞壁におけるアルミニウムの濃度が低かった。この結果は、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質によるアルミニウムの取り込みは、能動的なプロセスであることを示唆するものである。【００７８】
さらに、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株および野生型株における他の陽イオンの取り込みを比較した。具体的には、野生型株およびＮＥ７００９を、１／２木村Ｂ溶液を用いて、１ヶ月間培養した。陽イオンの濃度は、ＨＮＯ３を用いて消化した後に、従来公知のフレームレス原子吸光法によって測定した。なお、１／２木村Ｂ溶液は、多量栄養素（ｍＭ）：ＭｇＳＯ４（０．２８），（ＮＨ４）２ＳＯ４（０．１８），Ｃａ（ＮＯ３）２（０．１８），ＫＮＯ３（０．０９），ＫＨ２ＰＯ４（０．０９）、および微量栄養素（ｍＭ）：Ｆｅ（ＩＩ）ＳＯ４（１０），Ｈ３ＢＯ３（３），ＭｎＣｌ２（０．５），ＣｕＳＯ４（０．２），ＺｎＳＯ４（０．４），（ＮＨ４）６Ｍｏ７Ｏ２４（１）を含む培養培地である。１／２木村Ｂ溶液は、１Ｎ ＮａＯＨを用いてｐＨ５．４に調整したものを用いた。【００７９】
結果を表１に示す。データは、平均値±標準偏差（ｎ＝３）として示した。表中の「−」は検出できなかったことを示している。【００８０】
【表１】
2011030793.tif 000002
表１に示すように、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株および野生型株の根および地上部において、カリウム、カルシウムおよびマグネシウムを含む多量栄養素の濃度、並びに鉄、銅、亜鉛およびマンガンを含む微量栄養素の濃度に差異はなかった。【００８１】
次いで、相補性検定を行った。相補性検定を行うために、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子のプロモーター領域（開始コドン（ＡＴＧ）の前の２．１ｋｂ）、ＯＲＦおよび３’−ＵＲＴ（終止コドン（ＴＧＡ）の後ろの１ｋｂ）を含む６．９１５ｋｂのＤＮＡ断片を、日本晴ゲノムＤＮＡからＰＣＲ法によって増幅した。ＤＮＡ断片をｐＰＺＰ２Ｈ−ｌａｃベクターに挿入し、アグロバクテリウム法によってＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株であるＮＥ７００９株に形質転換した。【００８２】
得られた形質転換株、野生型株、ＮＥ７００９を、３０μＭアルミニウムを含む溶液を用いて８時間処理した。その後、上述した凍結−解凍法によって根の細胞シンプラスト液を抽出し、従来公知のフレームレス原子吸光法によってアルミニウムの量を測定した。【００８３】
結果を図２２に示す。図２２は、相補性検定の結果を示す図であり、データは、平均値±標準偏差（ｎ＝３）として示した。図２２に示すように、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子をＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株に導入した形質転換株では、根の細胞シンプラスト液におけるアルミニウム濃度が、野生型イネと同じレベルまで上昇した。この結果から、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子は、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株における表現型に関与していることがさらに確認された。【００８４】
（２．ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現パターンの解析）
次いで、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現パターンを調べた。具体的には、野生型イネの苗を、アルミニウムを含有しない０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液、または３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液において６時間処理し、その後、根と地上部とを別々にサンプリングし、それぞれの組織からＲＮＡを抽出した。尚、本実施例で上記「地上部」とは、根を除く植物体（例えば、葉、茎等）を意図している。得られたＲＮＡを用いて、ＲＴ−ＰＣＲを行い、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量を調べた。逆転写反応は、SuperScript First-Strand Synthesis System for RT-PCR（インビトロジェン社製）を用いて行った。また、ＰＣＲの反応条件は以下の通りである。
反応液の組成：１０μＬの反応液に１倍濃度のバッファー、０．２ｍＭｄＮＴＰ、それぞれ０．５μＭのプライマー１組、２０倍希釈した逆転写産物１μＬ
ＰＣＲの条件：９５℃ ３０秒、（９５℃ １５秒、５８℃ １５秒、７２℃ ３０秒）×３０サイクル。【００８５】
図８は、組織別ＲＴ−ＰＣＲの結果を表す図である。内部標準としてＨｉｓｔｏｎｅ Ｈ３の量を確認した。図８に示すように、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子は主に根で発現しており、地上部では、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現が認められなかった。また、根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現は、アルミニウムによって増加することが明らかになった。【００８６】
次いで、野生型イネの根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現に対するアルミニウムの影響を調べた。具体的には、野生型イネ（各ｎ＝３）を、アルミニウムを含有しない０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液、または５０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液において６時間処理した。その後、根を先端から０〜１ｃｍの領域と、先端から１〜２ｃｍの領域とに切り分け、それぞれの根の領域からＲＮＡを抽出した。得られたＲＮＡを用いて、ＲＴ−ＰＣＲを行い、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量を調べた。逆転写反応は、SuperScript First-Strand Synthesis System for RT-PCR（インビトロジェン社製）を用いて行った。また、ＰＣＲの反応条件は以下の通りである。
反応液の組成：２０μＬの反応液に１倍濃度のSYBR Premix Ex Taq（タカラバイオ社製）、それぞれ０．２μＭのプライマー１組、２０倍希釈した逆転写産物２μＬ
ＰＣＲの条件：９５℃３０秒、（９５℃１５秒、５８℃１５秒、７２℃３０秒）×４０サイクル
Mastercycler ep realplex（エッペンドルフ社製）を用いてＰＣＲを行った。【００８７】
図９は、根部位別ＲＴ−ＰＣＲの結果を表すグラフである。図９に示すように、図８のＲＴ−ＰＣＲの結果と同様に、根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現は、アルミニウムによって誘導された。また、根の先端（先端から０〜１ｃｍの領域）よりも、根の基部（先端から１〜２ｃｍの領域）におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量が多いことが明らかになった。尚、図９のグラフの縦軸は、アルミニウム非存在下において先端から０〜１ｃｍの領域の根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量を１としたときの相対発現量を表している。【００８８】
さらに、アルミニウム以外の金属の存在、またはｐＨの変化によってＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現が誘導されるか調べた。具体的には、野生型イネ（各ｎ＝３）を、５０μＭアルミニウム、３０μＭカドミウム、１０μＭランタンのいずれかを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液（ｐＨ４．５）において６時間処理した。また、野生型イネを、ｐＨ４．５またはｐＨ５．６に調整した、アルミニウムを含有しない０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液において６時間処理した。その後、根の全体からＲＮＡを抽出した。得られたＲＮＡを用いて、ＲＴ−ＰＣＲを行い、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量を調べた。逆転写反応は、SuperScript First-Strand Synthesis System for RT-PCR（インビトロジェン社製）を用いて行った。また、ＰＣＲの反応条件は以下の通りである。
反応液の組成：２０μＬの反応液に１倍濃度のSYBR Premix Ex Taq（タカラバイオ社製）、それぞれ０．２μＭのプライマー１組、２０倍希釈した逆転写産物２μＬ
ＰＣＲの条件：９５℃ ３０秒、（９５℃ １５秒、５８℃ １５秒、７２℃ ３０秒）×４０サイクル
Mastercycler ep realplex（エッペンドルフ社製）を用いてＰＣＲを行った。【００８９】
結果を図１０の（ａ）に示す。図１０の（ａ）は、他の金属に対するＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現を示すグラフである。尚、図１０の（ａ）のグラフの縦軸は、アルミニウム非存在下、ｐＨ４．５の条件におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量を１としたときの相対発現量を表している。データは、平均値±標準偏差（ｎ＝３）として示した。【００９０】
図１０の（ａ）に示すように、図８および図９のＲＴ−ＰＣＲの結果と同様に、根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現は、アルミニウムによって誘導された。一方、根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現は、ｐＨの変化やアルミニウム以外の金属によって誘導されなかった。【００９１】
また、野生型株を２０μＭアルミニウムを含む溶液で処理し、その後、根の全体からＲＮＡを抽出した。得られたＲＮＡを用いて、ＲＴ−ＰＣＲを行い、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量を調べた。結果を図１０の（ｂ）に示す。図１０の（ｂ）は、野生型株を２０μＭアルミニウムを含む溶液で処理したときのイネの根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現の経時変化を示している。データは、平均値±標準偏差（ｎ＝３）として示した。【００９２】
図１０の（ｂ）に示すように、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量は、アルミニウムによって急速に増加し、アルミニウム処理後３時間で最大となることが明らかになった。【００９３】
さらに、Ｃ２Ｈ２型ジンクフィンガー転写因子（ａｒｔ１遺伝子）を欠損するイネ変異体におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現を調べた。野生型株およびａｒｔ１変異体を、２０μＭのアルミニウム溶液で４時間処理した。根におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現は、定量的リアルタイムＰＣＲ法によって測定した。結果を図１０の（ｃ）に示す。図１０の（ｃ）は、ａｒｔ１変異体におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現を示している。図１０の（ｃ）では、ヒストンＨ３（内部標準）に対する相対的な発現量を示している。データは、平均値±標準偏差（ｎ＝３）として示した。【００９４】
図１０の（ｃ）に示すように、ａｒｔ１変異体において、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現が、アルミニウムによって誘導されないことが確認された。この結果は、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現がＡＲＴ１によって制御されるという報告（Yamaji, N., Huang,C.F., Nagao, S., Yano, M., Sato, Y., Nagamura, Y., and Ma, J.F. (2009). A Zn-finger transcription factor ART1 regulates multiple genes implicated in aluminum tolerance in rice. Plant Cell 21: 3339-3349）と一致していた。【００９５】
次いで、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の細胞内での局在を調べるために、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子のプロモーターの制御下に蛍光タンパク質であるＧＦＰ（green fluorescent protein）をコードする遺伝子を組み込んだ融合遺伝子を含む組換え発現ベクター（ProOsNrat1-GFPベクター）を作製し、当該組換え発現ベクターを野生型イネに形質転換した。形質転換は、アグロバクテリウム法によって行った。【００９６】
得られたＧＦＰ形質転換植物におけるＧＦＰの局在を調べることによって、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質の根組織での発現部位を調べることができる。そこで、ＧＦＰ形質転換植物の根について、一次抗体として抗ＧＦＰ抗体（Ａ１１１２２、モレキュラープローブス社製）を用いて免疫組織化学染色を行い、根におけるＧＰＦの局在を調べた。【００９７】
図１１は、ＧＦＰ形質転換植物の根の先端または根の先端から１５ｍｍに位置する基部における免疫組織化学染色の結果を表す図である。図１１に示すように、根の先端では、すべての細胞にＧＦＰの発現が認められた。また、根の基部では、表皮以外のすべての細胞にＧＦＰの発現が認められた。すなわち、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質は、根の先端のすべての細胞、および基部の表皮を除く基部のすべての細胞で発現することが明らかになった。【００９８】
ＯｓＮｒａｔ１タンパク質の細胞内局在をさらに詳しく調べるために、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子とＧＦＰ遺伝子との融合遺伝子を作製し、カリフラワーモザイクウイルス３５Ｓプロモーターの制御下に当該融合遺伝子を組み込んだ組換え発現ベクター（35S::OsNrat1-GFPベクター）を作製した。陽性対照として、カリフラワーモザイクウイルス３５Ｓプロモーターの制御下にＧＦＰ遺伝子を組み込んだ組換え発現ベクター（35S::GFPベクター）を作製した。これらの組換え発現ベクターをそれぞれタマネギの表皮細胞に導入して、ＧＦＰの細胞内局在性を観察した。形質転換は、パーティクルガンによって行った。尚、ＧＦＰ遺伝子は、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子のＣ末端側にイン・フレームになるように融合させた。【００９９】
図１２は、タマネギ表皮細胞におけるＯｓＮｒａｔ１−ＧＦＰ融合タンパク質の局在を表す図である。図１２に示すように、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質は、細胞膜に局在することが明らかになった。【０１００】
さらに、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質の細胞局在および細胞内局在を調べるために、免疫染色を行った。抗体は、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質のアミノ酸配列（配列番号１）の第１位から第１８位までのアミノ酸配列に相当する合成ペプチドを、ウサギに免疫することによって取得した。【０１０１】
３０μＭアルミニウムで１２時間処理した野生型イネおよびＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株の根を用いて免疫染色を行った。免疫染色の手順は、従来公知の方法に従って行った（Yamaji, N., and Ma, J.F. (2007). Spatial distribution and temporal variation of the rice silicon transporter Lsi1. Plant Physiol. 143: 1306-1313を参照）。蛍光は、レーザ走査共焦点顕微鏡（LSM700; Carl Zeiss）を用いて観察した。【０１０２】
図２１は免疫染色の結果を示す図であり、（ａ）は、アルミニウム処理をしていない野生型イネの根におけるＯｓＮｒａｔ１タンパク質免疫染色の結果を示し、（ｂ）は、アルミニウム処理をしていないＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株の根におけるＯｓＮｒａｔ１タンパク質免疫染色の結果を示し、（ｃ）は、３０μＭアルミニウムで１２時間処理した野生型イネの根におけるＯｓＮｒａｔ１タンパク質免疫染色の結果を示し、（ｄ）は、３０μＭアルミニウムで１２時間処理したＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株の根におけるＯｓＮｒａｔ１タンパク質免疫染色の結果を示している。図中のスケールバーは、１００μｍに相当する。【０１０３】
図２１の（ａ）および（ｃ）に示すように、野生型イネにおいて、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質は、表皮細胞を除く全ての根の細胞において発現し、アルミニウムによって発現量が増加することが示された。【０１０４】
図２１の（ｂ）および（ｄ）に示すように、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株においては、シグナルが認められなかったことから、免疫染色に用いた抗体の特異性が確認された。【０１０５】
また、細胞内局在を調べるために、抗ＯｓＮｒａｔ１抗体とＤＡＰＩとを二重染色した。その結果、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質は、細胞膜に局在していることが明らかになった（図示しない）。【０１０６】
（３．ＯｓＮｒａｔ１タンパク質が有するアルミニウム輸送活性の解析）
ＯｓＮｒａｔ１遺伝子と、ＡｔＮｒａｍｐ４遺伝子（陰性対照）とを酵母に発現させて、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質のアルミニウムの輸送活性を解析した。具体的には、酵母（ＢＹ４７４１株（MATa his2△0 met15△0 ura3△0））に、発現ベクターｐＹＥＳ２（インビトロジェン社製）を用いてそれぞれの遺伝子を従来公知の酢酸リチウム法によって導入した。さらに、陰性対照としてｐＹＥＳ２ベクターのみを導入した。【０１０７】
得られた形質転換酵母を、０μＭ、１００μＭ、または２００μＭのアルミニウムを含有する寒天培地に播種し、３０℃で２日間または３日間培養した。酵母の増殖を指標として、アルミニウムの輸送活性の有無を判断した。つまり、アルミニウム輸送活性を有するタンパク質をコードする遺伝子が導入された形質転換酵母は、細胞内にアルミニウムを取り込むため、アルミニウムの毒性によって増殖が抑制されると考えた。また、短時間（２ｈ）の酵母へのアルミニウムの取り込みも測定した。【０１０８】
さらに、得られた形質転換酵母を５０μＭ ＡｌＣｌ３溶液（ｐＨ４．２）で処理し、アルミニウムの取り込みの経時的変化を測定した。【０１０９】
図１３は、酵母を用いたＯｓＮｒａｔ１タンパク質の機能解析の結果を表す図である。図１３の（ａ）は酵母の増殖を表す図であり、（ｂ）は、酵母におけるアルミニウムの取り込みを表すグラフであり、（ｃ）は、酵母におけるアルミニウムの取り込みの経時的変化を表すグラフである。酵母におけるアルミニウムの取り込みは、フレームレス原子吸光法によって測定した。データは、平均値±標準偏差（ｎ＝３）として示した。【０１１０】
図１３の（ａ）に示すように、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を発現させた酵母は、陰性対照としてｐＹＥＳ２ベクターを導入した酵母と比較して、アルミニウムを含有する培地において増殖が抑制された。この結果から、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質はアルミニウムの輸送活性を有することが明らかになった。一方、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質と同じＮｒａｍｐファミリーに属するＡｔＮｒａｍｐ４タンパク質を発現させた酵母の増殖は、陰性対照としてｐＹＥＳ２ベクターを導入した酵母と同じであった。【０１１１】
また、図１３の（ｂ）に示すように、ＯｓＮｒａｔ１の発現によって酵母へのアルミニウムの取り込みが増加することが明らかになった。【０１１２】
図１３の（ｃ）において、純取り込み（Net uptake）は、形質転換酵母と陰性対照との間のアルミニウム取り込み量の差を示している。図１３の（ｃ）に示すように、アルミニウムの取り込みは、形質転換酵母において時間とともに直線的に増加することが明らかになった。【０１１３】
さらに、アルミニウムの取り込みにおけるカドミウムおよびマンガンの影響を調べるために、形質転換酵母を、５０μＭのアルミニウムの存在下において、等濃度のカドミウムまたはマンガンを含む溶液で２時間処理した。酵母におけるアルミニウムの取り込みは、フレームレス原子吸光法によって測定した。【０１１４】
結果を図２０に示す。図２０は、酵母におけるアルミニウムの取り込みに対するカドミウムおよびマンガンの影響を示すグラフである。データは、平均値±標準偏差（ｎ＝３）として示した。図２０に示すように、等モル濃度の二価イオン（カドミウムおよびマンガン）の存在によってアルミニウムの取り込みが影響を受けないことが確認された。【０１１５】
ＯｓＮｒａｔ１タンパク質のアルミニウム輸送活性についてさらに解析を行った。具体的には、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を発現させた酵母、陰性対照としてＡｔＮｒａｍｐ４タンパク質を発現させた酵母およびｐＹＥＳ２ベクターを導入した酵母を、アルミニウムのみ、アルミニウム−クエン酸錯体、またはアルミニウム−シュウ酸錯体を含有する液体培地に播種し、４℃または３０℃で２時間培養した。尚、アルミニウム−クエン酸錯体は、アルミニウムとクエン酸とを５０：５００（μＭ）の割合で混合したものを用いた。アルミニウム−シュウ酸錯体は、アルミニウムとシュウ酸とを５０：５００（μＭ）の割合で混合したものを用いた。また、酵母におけるアルミニウムの取り込みは、図１３の（ｂ）と同様の方法によって測定した。【０１１６】
図１４は、酵母における、アルミニウム、アルミニウム−クエン酸錯体、およびアルミニウム−シュウ酸錯体の取り込みを表すグラフである。図１４に示すように、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を発現させた酵母は、アルミニウムイオンの輸送活性が向上したが、アルミニウムークエン酸錯体やアルミニウムーシュウ酸錯体に対する輸送活性は示さなかった。また、４℃の培養条件下において、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質によるアルミニウムイオンの輸送活性が抑制されることが明らかになった。植物はクエン酸等の有機酸を分泌することによってアルミニウムとの錯体を形成し細胞外でアルミニウムを無毒化すると考えられている。図１４に示す結果から、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質は錯体を形成しきれなかった遊離のアルミニウムイオンを細胞内に取り込むと考えられた。【０１１７】
さらに、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質の二価金属（Ｆｅ，Ｍｎ，Ｃｄ）に対する輸送活性を調べた。具体的には、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を発現させた酵母、陽性対照としてＡｔＮｒａｍｐ４タンパク質を発現させた酵母、陰性対照としてｐＹＥＳ２ベクターを導入した酵母を用いた。酵母株には鉄については鉄吸収能力が欠損したｆｅｔ３ｆｅｔ４変異株、マンガンについてはマンガン吸収能力が欠損したｓｍｆ１変異株、カドミウムについてはＢＹ４７４１株を用いた。【０１１８】
これらの酵母を鉄またはマンガンを加えていない（痕跡程度に含む）寒天培地に播種し、３０℃で３日間培養した。尚、痕跡程度に含まれる鉄およびマンガンの有効度をさらに下げるため、キレート化合物として鉄に対してはバソフェナントロリンジスルホン酸（ＢＰＤＳ）を０μＭ、８μＭまたは１０μＭの濃度で培地に添加し、マンガンに対してはＥＧＴＡを０ｍＭまたは２ｍＭの濃度で培地に添加した。また、酵母におけるカドミウムの取り込みは、０μＭ、２μＭ、５μＭ、１０μＭまたは２０μＭのカドミウムを含む液体培地において３０℃で２時間培養し、フレームレス原子吸光法によって測定した。【０１１９】
図１５は、酵母を用いたＯｓＮｒａｔ１タンパク質の機能解析の結果を表す図である。図１５の（ａ）は鉄を制限した培地における酵母の増殖を表す図であり、（ｂ）は、マンガンを制限した培地における酵母の増殖を表す図であり、（ｃ）は酵母におけるカドミウムの取り込みを表すグラフである。【０１２０】
図１５の（ａ）および（ｂ）に示すように、ＡｔＮｒａｍｐ４タンパク質を発現させた酵母は、鉄またはマンガンを制限した培地においても増殖したが、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を発現させた酵母は、ｐＹＥＳ２ベクターを導入した酵母と同様に、鉄またはマンガンを制限した培地において増殖が抑制された。これは、ＡｔＮｒａｍｐ４タンパク質は、鉄およびマンガンを輸送する活性を有しているが、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質には、鉄およびマンガンを輸送する活性が無いことを表している。【０１２１】
また、図１５の（ｃ）に示すように、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を発現させた酵母およびｐＹＥＳ２ベクターを導入した酵母と比較して、ＡｔＮｒａｍｐ４タンパク質を発現させた酵母は、カドミウムの取り込みが促進された。ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を発現させた酵母のカドミウムの取り込みは、ｐＹＥＳ２ベクターを導入した酵母と同程度であった。これらの結果から、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質は特異的なアルミニウム輸送体であることが明らかになった。【０１２２】
（４．ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現イネを用いたＯｓＮｒａｔ１遺伝子の機能解析）
さらに、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質についての生理学的な解析を行った。具体的には、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子をユビキチンプロモーターの制御下に組み込んだ組換え発現ベクターを作製し、当該組換え発現ベクターをアグロバクテリウム法によってイネ（品種：日本晴）に導入し、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質を過剰発現するＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株（株番号：５−５および５−７）を作製した。【０１２３】
まず、得られたＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株の根全体について、ＲＴ−ＰＣＲを行い、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現を調べた。ＲＮＡの抽出は、RNeasy plant extraction mini kit（キアゲン社製）を用いて行った。逆転写反応は、SuperScript First-Strand Synthesis System for RT-PCR（インビトロジェン社製）を用いて行った。また、ＰＣＲの反応条件は以下の通りである。
反応液の組成：２０μＬの反応液に１倍濃度のSYBR Premix Ex Taq（タカラバイオ社製）、それぞれ０．２μＭのプライマー１組、２０倍希釈した逆転写産物２μＬ
ＰＣＲの条件：９５℃ ３０秒、（９５℃ １５秒、５８℃ １５秒、７２℃ ３０秒）×４０サイクル
Mastercycler ep realplex（エッペンドルフ社製）を用いてＰＣＲを行った。【０１２４】
図１６は、Ｎｒａｔ１の過剰発現体のＲＴ−ＰＣＲの結果を表すグラフである（各ｎ＝３）。尚、図１６のグラフの縦軸は、アルミニウム非存在下におけるＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現量を１としたときの相対発現量を表している。ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株では、野生型のイネと比較して、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子の発現が約８０倍高いことが明らかになった。【０１２５】
そこで、上記ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株と野生型イネとを、３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露して、根の伸長と細胞内へのアルミニウムの取り込みとを測定した。このとき、対照として、アルミニウムを含有しない０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した野生型イネおよび過剰発現株を用いた。【０１２６】
図１７は、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株と野生型イネとを、３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露した後の、野生型イネおよびＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株の根の伸長率（％）を表すグラフである。グラフの縦軸は、対照における根の伸長を１００％としたときの上記の野生型イネおよびＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株の根の伸長率を表している。それぞれのグラフのデータ数は、５−５（ｎ＝９）、５−７（ｎ＝８）、野生型イネ（ｎ＝１３）である。【０１２７】
図１７に示すように、３０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液で処理した場合は、野生型イネと比較して、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株の根の伸長が大幅に阻害された。すなわち、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株のアルミニウム耐性が低下していた。【０１２８】
図１８は、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株と野生型イネとについて、根の細胞内に取り込まれたアルミニウム量を表すグラフである。それぞれのグラフのデータ数は、５−５（ｎ＝３）、５−７（ｎ＝３）、野生型イネ（ｎ＝３）である。図１８に示すように、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株では、アルミニウムの取り込みが促進された結果、野生型のイネと比較して、根の細胞内のアルミニウムの濃度が高くなっていた。【０１２９】
ＯｓＮｒａｔ１遺伝子が過剰に発現することによって、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株の根の細胞内にアルミニウムが過剰に取り込まれる。しかし、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株では、細胞内に取り込まれたアルミニウムを無毒化する仕組み、例えばアルミニウムを液胞内に蓄積させる活性は野生型イネと同じであるため、細胞内に蓄積された過剰のアルミニウムによって根の成長が阻害され、この結果、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株のアルミニウム耐性は野生型イネよりも弱くなったと考えられる。【０１３０】
次いで、アルミニウム特異的な蛍光染色試薬Ｍｏｒｉｎで根の細胞におけるアルミニウムの蓄積を観察した。具体的には、各種イネを、５０μＭアルミニウムを含有する０．５ｍＭ ＣａＣｌ２溶液に２４時間暴露して、根の異なる部位（根の先端から２ｍｍの領域および４ｍｍの領域）について切片を作製し、Ｍｏｒｉｎを用いて染色した。その後、染色した切片を顕微鏡下で観察した。【０１３１】
図１９は、根の細胞におけるアルミニウムの蓄積を表す図である。図１９中、「ＮＥ７００９」はＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株、「５−５」および「５−７」はＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株を表す。図１９に示すように、野生型イネと比較して、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子破壊株では、アルミニウムの蓄積量が少なかった。一方、ＯｓＮｒａｔ１遺伝子過剰発現株では、根の細胞内におけるアルミニウムの量が増加していた。【０１３２】
以上の生理学的解析結果から、ＯｓＮｒａｔ１タンパク質が、植物の細胞内へのアルミニウムの輸送に関与することが明らかになった。
【産業上の利用可能性】
【０１３３】
本発明によれば、アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を生産することができる。かかる形質転換植物は、アルミニウムの取り込みが促進されているので、例えば、アルミニウムを含有する土壌において栽培することによって、花の色を改変させた植物とすることができる。また酸性土壌でも生育できるアルミニウム耐性植物の作出にも応用できる。それゆえ、本発明は、農業において好適に利用することができる。
【図１】
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【図２】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図９】
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【図１０】
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【図１４】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図２０】
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【図２２】
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【図２３】
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【図３】
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【図８】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１５】
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【図１９】
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【図２１】
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【配列表】
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【手続補正書】
【提出日】平成23年5月19日(2011.5.19)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物の生産方法であって、
下記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを、植物に発現可能に導入することを特徴とする、形質転換植物の生産方法：
（ａ）配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；
（ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
【請求項２】
（削除）
【請求項３】
アルミニウムの取り込みを促進させた形質転換植物を作製するためのキットであって、
下記の（ａ）または（ｂ）のポリヌクレオチドを備えていることを特徴とするキット：
（ａ）配列番号１に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド；
（ｂ）配列番号１に示すアミノ酸配列において、１個または数個のアミノ酸が置換、欠失、および／または付加されたアミノ酸配列からなり、且つアルミニウムの取り込みを促進させる活性を有するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
【国際調査報告】
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