(57)【要約】  基材の表面が抗血栓性と血管内皮細胞接着性を併せ持つ生体適合性高分子層で覆われ、生体に埋め込みまたは接合して使用される生体適合性器具であって、前記高分子層が、細胞接着ペプチド含有高分子の架橋による高分子マトリックスよりなる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
基材の表面が抗血栓性と血管内皮細胞接着性を併せ持つ生体適合性高分子層で覆われ、生体に埋め込みまたは接合して使用される生体適合性器具であって、前記高分子層が、細胞接着ペプチド含有高分子の架橋による高分子マトリックスよりなることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項２】
請求項1に記載の生体適合性器具において、前記高分子マトリックスが、高分子がクエン酸活性エステル体により架橋されてなるものであることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項３】
請求項２に記載の生体適合性器具において、前記クエン酸活性エステル体が、トリスクシンイミジルシトレートまたは、トリスルホスクシンイミジルシトレートであることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項４】
請求項１から３のいずれかに記載の生体適合性器具において、前記細胞接着ペプチド含有高分子が、ゼラチン、アルカリ処理ゼラチン、酸処理ゼラチン、コラーゲン、アテロコラーゲン、アルカリ処理コラーゲン、フィブリノーゲン、ケラチン、フィブロイン、ラミニン、フィブロネクチン、ビトロネクチン、およびこれらの誘導体から選ばれる１種または２種以上の組合せにより成ることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項５】
請求項１から４のいずれかに記載の生体適合性器具において、前記細胞接着ペプチドが、アルギニン−グリシン−アスパラギン酸（ＲＧＤ）、チロシン−イソロイシン−グリシン−セリン−アルギニン（ＹＩＧＳＲ）、およびイソロイシン−リシン−バリン−アラニン−バリン（ＩＫＶＡＶ）のペプチド配列から選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項６】
請求項１から５のいずれかに記載の生体適合性器具において、基材が、高分子材料、金属材料、セラミックス材料、不織布、および生体組織から選ばれる１種または２種以上の複合材料であることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項７】
請求項６に記載の生体適合性器具の基材が高分子材料である場合において、前記高分子材料が、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリスチレン、ポリウレタン、シリコーン、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリε-カプロラクトン、ポリ乳酸−グリコール酸共重合体、ポリε-カプロラクトン−グリコール酸共重合体、およびポリ乳酸−ポリε-カプロラクトン共重合体から選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項８】
請求項６に記載の生体適合性器具の基材が金属材料である場合において、前記金属材料が、ＳＵＳ３１６Ｌステンレス、コバルト−クロム合金、ニッケルフリー高窒素ステンレス、マグネシウム合金、および形状記憶合金から選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項９】
請求項６に記載の生体適合性器具の基材がセラミックス材料である場合において、前記セラミックス材料が、ハイドロキシアパタイト焼結体、低結晶性ハイドロキシアパタイト、β−トリカルシウムフォスフェート、およびα−トリカルシウムフォスフェートから選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項１０】
請求項１から９のいずれかに記載の生体適合性器具において、酸、アルカリ又は有機溶媒により表面処理された基材の表面に高分子層が形成されていることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項１１】
請求項１から１０のいずれかに記載の生体適合性器具において、その高分子マトリックス内に薬剤が包含されていることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項１２】
請求項１１に記載の生体適合性器具において、前記薬剤が細胞分化誘導剤、抗ガン剤、免疫抑制剤、細胞成長因子、サイトカイン、トロンビン阻害薬、抗血栓薬、血栓溶解剤、線維素溶解薬、血管痙攣阻害薬、カルシウムチャネル遮断薬、血管拡張薬、高血圧治療薬、抗菌薬、抗生物質、表面糖タンパク質受容体阻害薬、抗血小板薬、細胞分裂抑制薬、微小管阻害薬、抗分泌薬、アクチン阻害薬、リモデリング阻害薬、アンチセンス・ヌクレオチド、代謝拮抗剤、抗増殖性物質、抗癌化学治療薬、抗炎症性ステロイドまたは非ステロイド抗炎症薬、免疫抑制剤、成長ホルモン・アンタゴニスト、成長因子、ドーパミン・アゴニスト、放射線治療薬、ペプチド、タンパク質、酵素、細胞外マトリックス成分、阻害薬、フリーラジカル・スカベンジャー、キレート剤、抗酸化剤、抗ポリメラーゼ、抗ウィルス薬、光力学治療薬、および遺伝子治療薬から選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項１３】
請求項１２に記載の細胞分化誘導剤がタミバロテンであることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項１４】
医療処置において、生体に埋め込み又は接合して使用される医療器具であって、請求項１から１３のいずれかに記載の生体適合性器具が、医療処置に適合する構造に構成されたものであることを特徴とする医療機器。
【請求項１５】
生体内の血管内に挿入されて、その内側から血管を広げるように拡張されるステントであって、請求項１から１４のいずれかに記載の生体適合性器具が、ステントの構造に構成されたものであることを特徴とするステント。
【請求項１６】
請求項１０に記載の生体適合性器具において、前記酸が、王水であることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項１７】
請求項４に記載の生体適合性器具において、前記細胞接着ペプチド含有高分子が、疎水化されていることを特徴とする生体適合性器具。
【請求項１８】
基材の表面に、細胞接着ペプチド含有高分子と架橋剤を含むコーティング溶液をコーティングして、抗血栓性と血管内皮細胞接着性を併せ持つ高分子層を形成することを特徴とする生体適合性器具の製造方法。
【請求項１９】
請求項１８に記載の生体適合性器具の製造方法において、前記コーティングを複数回行うことを特徴とする生体適合性器具の製造方法。
【請求項２０】
請求項１８に記載の生体適合性器具の製造方法において、前記コーティング溶液は、薬剤を含有することを特徴とする生体適合性器具の製造方法。
【請求項２１】
請求項１８に記載の生体適合性器具の製造方法において、前記細胞接着ペプチド含有高分子を疎水化する工程を含むことを特徴とする生体適合性器具の製造方法。
【請求項２２】
請求項１８に記載の生体適合性器具の製造方法において、前記コーティング溶液は薬剤を含有し、生体適合性器具からの所望の薬剤徐放性に応じて前記コーティング溶液中の架橋剤の濃度を5ｍＭ〜200ｍＭの範囲で調整する工程を含むことを特徴とする生体適合性器具の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、基材の表面が抗血栓性と血管内皮細胞接着性を有する生体適合性高分子層でコーティングされ、生体に埋め込みまたは血液と接触して使用される生体適合性器具に関する。
【背景技術】
【０００２】
ステントは、血液と接触して使用される医療機器の1つであり、虚血性心疾患や解離性大動脈溜などの循環器系疾患を治療するために使用されている。虚血性心疾患においては、冠動脈ステント留置術が主要な治療方法となっているが、いったん拡張した血管内腔が再び狭窄してしまう再狭窄が20−40％の症例に生じ、再度の血行再建術を要することが最大の問題となっていた。再狭窄の弱点を克服する方法として、冠動脈ステント表面から薬剤を徐放する薬剤溶出性ステントが開発され、臨床で使用されているが、現行の薬剤溶出性ステントは薬剤徐放化のために合成高分子マトリックスあるいは分解によって酸を生じるポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリカプロラクトンおよびこれらの共重合体を使用しているため、血管壁の創傷治癒が遷延し、血管内皮細胞によるステント内腔の内皮化が起こらないため、慢性期に血栓形成による血管の閉塞が生じる（特許文献１、２参照）。また、血栓症を防止するために、副作用発現率の非常に高い抗血小板薬を6か月から1年間、アスピリンを永続的に内服しなければならないという欠点もある。【０００３】
このように、血液と長期間接触して使用される医療機器の表面改質には限界があり、血管内皮細胞の抗血栓性を利用しようとする試みが行われている。生体内の血管では、血管内皮細胞が剥離した部分には血栓が形成するが、血管内皮が存在している部分は血栓が形成しないためである。【０００４】
血管内皮細胞層を形成した医療機器を調製する手法として、大きく２つの方法がある。１つ目の手法は、医療機器の内面に、あらかじめ血管内皮細胞を播種して内膜を形成させた後に移植するという方法である。しかし、この方法では、細胞の採取、培養などの工程が必要であるために緊急を要する場合に使うことができず、細胞の採取に際して患者負担が大きいという欠点がある。もう一つの手法として、移植後早期に血液と接触して使用される医療機器の表面上に血管内皮細胞の接着性や増殖性を促すような物質を固定化する方法がある。この方法は、接着性ペプチドやコラーゲン、フィブロネクチンなどの細胞外マトリックスタンパク質、そして血管内皮細胞の増殖を促進する成長因子などの蛋白質が検討されている。血管内皮細胞の接着性や増殖性を促進する手法としては、細胞接着に関わるペプチド配列や成長因子を、高分子基材上にアクリル酸などをグラフト重合することによりカルボキシル基を導入し、共有結合で固定化する方法や、細胞外マトリックスタンパク質や成長因子と多孔質高分子体からなる複合材料についても開示されている（特許文献３、４、５、６、７、８）。【０００５】
このような表面において血管内皮細胞の接着性や増殖性が認められているが、得られる材料は医療機器の埋入直後に起こる血栓形成抑制効果が考慮されていないという欠点がある。そのため、移植直後には抗血栓性を有し、移植中長期においては血管内皮細胞が接着して被覆される生理活性を持った高分子層がコーティングされた生体適合性器具の開発が望まれていた。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開平８−３３７１８号公報
【特許文献２】特開平９−５６８０７号公報
【特許文献３】特開平１０−１３７３３４号公報
【特許文献４】特開平５−７６５８８号公報
【特許文献５】特表平１１−５０４５４８号公報
【特許文献６】特表２００１−５０２１８７号公報
【特許文献７】特表２００５−５０３２４０号公報
【特許文献８】特開２００６−６８４０１号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、表面に抗血栓性と血管内皮細胞接着性を併せ持つ生体適合性高分子層をコーティングした生体適合性器具とそれを用いた医療機器等を提供することを課題としている。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
発明１は、基材の表面が抗血栓性と血管内皮細胞接着性を併せ持つ生体適合性高分子層で覆われ、生体に埋め込みまたは接合して使用される生体適合性器具であって、前記高分子層が、細胞接着ペプチド含有高分子の架橋による高分子マトリックスよりなることを特徴とする。【０００９】
発明２は、発明1の生体適合性器具において、前記高分子マトリックスが、高分子がクエン酸活性エステル体により架橋されてなるものであることを特徴とする。【００１０】
発明３は、発明２の生体適合性器具において、前記クエン酸活性エステル体が、トリスクシンイミジルシトレート、または、トリスルホスクシンイミジルシトレートであることを特徴とする。【００１１】
発明４は、発明１から３のいずれかの生体適合性器具において、その細胞接着ペプチド含有高分子が、ゼラチン、アルカリ処理ゼラチン、酸処理ゼラチン、コラーゲン、アテロコラーゲン、アルカリ処理コラーゲン、フィブリノーゲン、ケラチン、フィブロイン、ラミニン、フィブロネクチン、ビトロネクチンおよびこれらの誘導体から選ばれる１種または２種以上の組合せにより成ることを特徴とする。【００１２】
発明５は、発明１から４のいずれかの生体適合性器具において、請求項１から４のいずれかに記載の生体適合性器具において、前記細胞接着ペプチドが、アルギニン−グリシン−アスパラギン酸（ＲＧＤ）、チロシン−イソロイシン−グリシン−セリン−アルギニン（ＹＩＧＳＲ）、およびイソロイシン−リシン−バリン−アラニン−バリン（ＩＫＶＡＶ）のペプチド配列から選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする。【００１３】
発明６は、発明１から５のいずれかの生体適合性器具において、基材が、高分子材料、金属材料、セラミックス材料、不織布、および生体組織から選ばれるの１種または２種以上の複合材料であることを特徴とする。【００１４】
発明７は、発明６の生体適合性器具の基材が高分子材料である場合において、前記高分子材料が、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリスチレン、ポリウレタン、シリコーン、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリε-カプロラクトン、ポリ乳酸−グリコール酸共重合体、ポリε-カプロラクトン−グリコール酸共重合体、およびポリ乳酸−ポリε-カプロラクトン共重合体から選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする。【００１５】
発明８は、発明６の生体適合性器具の基材が金属材料である場合において、前記金属材料が、ＳＵＳ３１６Ｌステンレス、コバルト−クロム合金、ニッケルフリー高窒素ステンレス、マグネシウム合金、および形状記憶合金から選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする。【００１６】
発明９は、発明６の生体適合性器具の基材がセラミックス材料である場合において、前記セラミックス材料が、ハイドロキシアパタイト焼結体、低結晶性ハイドロキシアパタイト、β−トリカルシウムフォスフェート、およびα−トリカルシウムフォスフェートから選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする。【００１７】
発明１０は、発明１から９のいずれかの生体適合性器具において、酸、アルカリ又は有機溶媒により表面処理された基材の表面に高分子層が形成されていることを特徴とする。【００１８】
発明１１は、発明１から１０のいずれかの生体適合性器具において、その高分子マトリックス内に薬剤が包含されていることを特徴とする。【００１９】
発明１２は、発明１１の生体適合性器具において、前記薬剤が細胞分化誘導剤、抗ガン剤、免疫抑制剤、細胞成長因子、サイトカイン、トロンビン阻害薬、抗血栓薬、血栓溶解剤、線維素溶解薬、血管痙攣阻害薬、カルシウムチャネル遮断薬、血管拡張薬、高血圧治療薬、抗菌薬、抗生物質、表面糖タンパク質受容体阻害薬、抗血小板薬、細胞分裂抑制薬、微小管阻害薬、抗分泌薬、アクチン阻害薬、リモデリング阻害薬、アンチセンス・ヌクレオチド、代謝拮抗剤、抗増殖性物質、抗癌化学治療薬、抗炎症性ステロイドまたは非ステロイド抗炎症薬、免疫抑制剤、成長ホルモン・アンタゴニスト、成長因子、ドーパミン・アゴニスト、放射線治療薬、ペプチド、タンパク質、酵素、細胞外マトリックス成分、阻害薬、フリーラジカル・スカベンジャー、キレート剤、抗酸化剤、抗ポリメラーゼ、抗ウィルス薬、光力学治療薬、および遺伝子治療薬から選ばれる１種または２種以上の組合せであることを特徴とする。【００２０】
発明１３は、発明１２の生体適合性器具において、細胞分化誘導剤がタミバロテンであることを特徴とする。【００２１】
発明１４は、医療処置において、生体に埋め込み又は接合して使用される医療器具であって、発明１から１３のいずれかの生体適合性器具が、医療処置に適合する構造に構成されたものであることを特徴とする医療機器である。【００２２】
発明１５は、生体内の血管内に挿入されて、その内側から血管を広げるように拡張されるステントであって、発明１から１４のいずれかの生体適合性器具が、ステントの構造に構成されたものであることを特徴とするステントである。【００２３】
発明１６は、発明１０に記載の生体適合性器具において、前記酸が、王水であることを特徴とする。【００２４】
発明１７は、発明４に記載の生体適合性器具において、前記細胞接着ペプチド含有高分子が、疎水化されていることを特徴とする生体適合性器具。【００２５】
発明１８は、基材の表面に、細胞接着ペプチド含有高分子と架橋剤を含むコーティング溶液をコーティングして、抗血栓性と血管内皮細胞接着性を併せ持つ高分子層を形成することを特徴とする生体適合性器具の製造方法である。【００２６】
発明１９は、発明１８に記載の生体適合性器具の製造方法において、前記コーティングを複数回行うことを特徴とする。【００２７】
発明２０は、発明１８に記載の生体適合性器具の製造方法において、前記コーティング溶液は、薬剤を含有することを特徴とする。【００２８】
発明２１は、発明１８に記載の生体適合性器具の製造方法において、前記細胞接着ペプチド含有高分子を疎水化する工程を含むことを特徴とする。【００２９】
発明２２は、発明１８に記載の生体適合性器具の製造方法において、前記コーティング溶液は薬剤を含有し、生体適合性器具からの所望の薬剤徐放性に応じて前記コーティング溶液中の架橋剤の濃度を5ｍＭ〜200ｍＭの範囲で調整する工程を含むことを特徴とする。
【発明の効果】
【００３０】
本発明は、生体適合性の高分子層が高分子の架橋により得られた高分子マトリックスにより構成されているので、基材とこの高分子層とは共有結合、分子間相互作用および機械的アンカー効果によりコーティングすることができる。【００３１】
そのため、高分子層には、細胞接着ペプチド含有高分子を用いることが可能であり、生体適合性器具の表面特性を、抗血栓性と血管内皮細胞接着性を併せ持つ性質に変換することができるのみならず、再狭窄抑制効果という、血管平滑筋細胞の異常増殖をも抑制することが可能になる。【００３２】
特に、発明２、３に示すように、クエン酸活性エステル体を前記細胞接着ペプチド含有高分子の架橋剤として使用することで抗血栓性と血管内皮細胞接着性を併せ持つ生体適合性高分子層をコーティングすることが可能になる。【００３３】
また、このように構成した高分子層には、高分子マトリックス内に薬剤等の低分子化合物を包含させて徐放することができるため、前記のような効果をより一層高めるのに有用なものであって、高分子マトリックス構造とするには不適切な材料でも、生体適合性器具の機能改善に用いることができる。【００３４】
さらに、前記各本発明の機能をステントにも適用でき、従来には得られることが不可能とされた、抗血栓性、血管内皮細胞接着性（内皮化）並びに再狭窄性抑制のいずれの効果も有するステントを提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００３５】
【図１】表1 SNo.1-01の外観写真である。
【図２】表1 SNo.1-04の外観写真である。
【図３】表1 SNo.1-05の外観写真である。
【図４】表1 SNo.1-06の外観写真である。
【図５】表1 SNo.1-07の外観写真である。
【図６】表1 SNo.1-07の電子顕微鏡写真である。
【図７】表1 SNo.1-08の外観写真である。
【図８】表1 SNo.1-08の電子顕微鏡像写真である。
【図９】表1 SNo.1-09の外観写真である。
【図１０】表1 SNo.1-09の電子顕微鏡像写真である。
【図１１】表1 SNo.1-10の外観写真である。
【図１２】表1 SNo.1-13の外観写真である。
【図１３】表1 SNo.1-14の外観写真である。
【図１４】表1 SNo.1-15の外観写真である。
【図１５】表1 SNo.1-16の外観写真である。
【図１６】表1 SNo.1-16の電子顕微鏡像写真である。
【図１７】表1 SNo.1-17の外観写真である。
【図１８】表1 SNo.1-17の電子顕微鏡像写真である。
【図１９】表1 SNo.1-18の外観写真である。
【図２０】表1 SNo.1-18の電子顕微鏡像写真である。
【図２１】表1 SNo.1-19の外観写真である。
【図２２】表1 SNo.1-19の電子顕微鏡像写真である。
【図２３】表1 SNo.1-20の外観写真である。
【図２４】表1 SNo.1-20の電子顕微鏡像写真である。
【図２５】表1 SNo.1-20のステントのブタ冠動脈留置後の内面写真である。
【図２６】表1 SNo.1-20のステントのブタ冠動脈留置後の内面電子顕微鏡像写真である。
【図２７】表1 SNo.1-23ステントの抗血栓性試験評価後の外観写真である。
【図２８】表1 SNo.1-23ステントの抗血栓性試験評価後のサンプル電子顕微鏡像写真である。
【図２９】表1 SNo.1-26ステントのブタ冠動脈留置後の内面写真である。
【図３０】表1 SNo.1-26ステントのブタ冠動脈留置後の内面電子顕微鏡像写真である。
【図３１】表1 SNo.1-27ステントの抗血栓性試験評価後の外観写真である。
【図３２】表1 SNo.1-27ステントの抗血栓性試験評価後の電子顕微鏡像写真である。
【図３３】表1 SNo.1-28ステントの抗血栓性試験評価後の外観写真である。
【図３４】表1 SNo.1-28ステントの抗血栓性試験評価後の電子顕微鏡像写真である。
【図３５】表1 SNo.1-29ステントの抗血栓性試験評価後の外観写真である。
【図３６】表1 SNo.1-29ステントの抗血栓性試験評価後の電子顕微鏡像写真である。
【図３７】表1 SNo.1-30ステントのブタ冠動脈留置後の内面写真である。（比較例）
【図３８】表1 SNo.1-30ステントのブタ冠動脈留置後の内面電子顕微鏡像写真である。（比較例）
【図３９】表1 SNo.1-04ディスクの血管内皮細胞接着試験後の外観写真である。
【図４０】表1 SNo.1-06ディスクの血管内皮細胞接着試験後の外観写真である。
【図４１】表1 SNo.1-13ステントの血管内皮細胞接着試験後の外観写真である。
【図４２】表1 SNo.1-15ステントの血管内皮細胞接着試験後の外観写真である。
【図４３】表5のアセトン(SNo.5-01)、NaOH(SNo.5-02)、希王水(SNo.5-03)処理したSUS316Lステンレス表面のATR-IRスペクトルである。
【図４４】ステントの表面に種々の回数コーティングを行った結果を示す図である。
【図４５】コーティング後のステント表面および断面のSEM観察像である。
【図４６】レチノイル化ゼラチンの合成スキームを例示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００３６】
以下、本発明について詳細に説明する。
【００３７】
本発明の基材としては、高分子材料、金属材料、セラミックス材料、不織布、および生体組織から選ばれる１種または２種以上の複合材料などを使用可能である。すなわち、高分子層が共有結合、分子間相互作用あるいは機械的アンカー効果により基材表面に固定されるものであれば、種類は問わない。生体組織においては、細胞外マトリックス成分としてコラーゲンやラミニンなどのアミノ基を有する生体高分子とクエン酸活性エステル体と反応可能であるため、アミノ基と活性エステルとの反応により固定化することが可能である。
【００３８】
また、基材用の前記高分子材料としては、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリスチレン、ポリウレタン、シリコーン、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリε-カプロラクトン、ポリ乳酸−グリコール酸共重合体、ポリε-カプロラクトン−グリコール酸共重合体、ポリ乳酸−ポリε-カプロラクトン共重合体などが使用可能である。これらは、表面へのアミノ基の導入あるいはヤスリなどによる凹凸の導入が可能であるため、高分子層を共有結合、分子間相互作用あるいは機械的アンカー効果で基材表面に固定することができる。
【００３９】
前記金属材料としては、ＳＵＳ３１６Ｌステンレス、コバルト−クロム合金、ニッケルフリー高窒素ステンレス、マグネシウム合金、形状記憶合金などが使用可能である。これらの金属材料は、表面にクエン酸活性エステル体と反応可能な水酸基を有しているため、高分子層を共有結合あるいは分子間相互作用で基材表面に固定することができる。
【００４０】
前記セラミックス材料としては、ハイドロキシアパタイト焼結体、低結晶性ハイドロキシアパタイト、β−トリカルシウムフォスフェート、およびα−トリカルシウムフォスフェートから選ばれる１種または２種以上の組合せが使用可能である。これらのセラミックス材料は、表面にクエン酸活性エステル体と反応可能な水酸基が存在するため、高分子層を共有結合あるいは分子間相互作用で基材表面に固定することができる。
【００４１】
また、基材の表面は、コーティングされる前に酸、アルカリ、有機溶媒により表面処理を施すことで、下記実施例３より明らかな通り、剥離強度が高い点で、他のものより優れた結果を得ている。
【００４２】
本発明に用いる高分子マトリックスについては、細胞接着ペプチドを含有するものであれば良く、下記実施例の他、以下のようなものが使用可能である。
【００４３】
また、主体となる高分子に、他の高分子材料や薬剤などの低分子有機化合物を混合してなり、主たる高分子とクエン酸活性エステル体との架橋反応により得られた高分子マトリックスと薬剤が分子レベルで複合化した材料とすることがより好ましい。
【００４４】
細胞接着ペプチド含有高分子を高分子マトリックスの主材料として用いることにより、クエン酸活性エステル体との架橋による細胞接着ペプチドの濃縮とクエン酸由来カルボキシル基の導入を行うことが可能になり、血管内皮細胞接着性と抗血栓性を有する高分子層をコーティングすることができる。
【００４５】
前記コーティングの細胞接着ペプチド含有高分子は、好ましくはコラーゲン、アテロコラーゲン、アルカリ処理コラーゲン、ゼラチン、酸処理ゼラチン、アルカリ処理ゼラチン、ケラチン、血清アルブミン、卵白アルブミン、遺伝子組み換えアルブミン、ヘモグロビン、カゼインおよびグロブリン、フィブリノーゲン、およびこれらの誘導体である。
【００４６】
さらに好ましくはアルカリ処理コラーゲン、アルカリ処理ゼラチン及びその誘導体などが挙げられ、分子内にアミノ基を有しており、クエン酸活性エステル体との架橋反応に適していることが望ましい。
【００４７】
特に、細胞接着ペプチド含有高分子であることは、下記実施例１の表１より、コラーゲンやゼラチンが細胞接着ペプチドを持った高分子であることから明らかな通り、コラーゲンやゼラチンが細胞接着ペプチドを持っているためにコーティングされた基材が血管内皮細胞接着性を獲得していることから、細胞接着ペプチドを含まないものより優れている。
【００４８】
さらに、この細胞接着ペプチドが、アルギニン−グリシン−アスパラギン酸（ＲＧＤ）、チロシン−イソロイシン−グリシン−セリン−アルギニン（ＹＩＧＳＲ）、およびイソロイシン−リシン−バリン−アラニン−バリン（ＩＫＶＡＶ）のペプチド配列から選ばれるの１種または又は２種以上の組合せである場合は、下記実施例１の表１より明らかな通り、コラーゲンやゼラチンがＲＧＤなどの分子配列を持っているためにコーティングされた基材が血管内皮細胞接着性を獲得していることから、細胞接着ペプチドを含まないものより優れている。
【００４９】
高分子マトリックス調製用の高分子の濃度は特に限定されないが、好ましくは７．５〜３０質量％、より好ましくは、１５質量％±６質量％、さらに好ましくは１５質量％±３質量％である。この高分子の濃度が過少であると、架橋密度が高い架橋構造が維持され難く、高分子マトリックスが得られ難い。また、高分子マトリックス調製用の高分子とクエン酸活性エステル体との混合溶液では、両者の濃度比は３（質量％）対４（ｍＭ）となる方がよい。例えば、１５質量％の高分子濃度の場合、クエン酸活性エステル体の濃度は、２０ｍＭが好ましい。１５質量％の高分子濃度の場合にクエン酸活性エステル体の濃度が２０ｍＭ未満であると抗血栓性効果が得られ難い。また、同高分子濃度条件で、クエン酸活性エステル体の濃度が２０ｍＭ以上の場合には、クエン酸活性エステル体の濃度が２０ｍＭより増加するにつれ架橋密度が高い架橋構造が維持され難く、高分子マトリックスが得られ難い。
【００５０】
前記コーティング材料の高分子マトリックスを構成する架橋剤としてはクエン酸活性エステル体が望ましい。このクエン酸活性エステル体を用いることは、下記実施例のSNo.1-17,1-27 より明らかな通り、クエン酸活性エステル体を用いると抗血栓性と血管内皮細胞接着性を発現するという点で、クエン酸活性エステル体を用いないものより優れた結果を得ている。
【００５１】
さらに、このクエン酸活性エステル体が、トリスクシンイミジルシトレート、およびトリ（スルホスクシンイミジル）シトレートから選ばれる１種または２種以上の組合せである場合もアミノ基と反応して高分子層を生成することが可能なため用いることができる。
【００５２】
また、前記のような細胞接着ペプチド含有高分子を前記のようなクエン酸活性エステル体で架橋することは、下記実施例１の表１より明らかな通り、抗血栓性と血管内皮細胞接着性を示す点で、他のものより優れた結果を得ている。
【００５３】
前記高分子マトリックスを得るために適したクエン酸活性エステル体の濃度は、高分子マトリックス調製用の高分子の濃度にもよるが、好ましくは５〜２００ｍＭで、より好ましくは５〜１００ｍＭ、さらに好ましくは５〜４０ｍＭである。
【００５４】
このクエン酸活性エステル体が不足する場合には高分子マトリックスを構成する高分子の架橋点が少なく、高分子マトリックス構造が維持されない。過剰であると個々の高分子とクエン酸のカルボキシル基の１つあるいは２つが結合して、架橋に使用されなくなり、その結果、架橋点が減少し、構造が維持されない。
【００５５】
架橋反応の温度は、好ましくは１５℃から３７℃、より好ましくは１５℃から３０℃、さらに好ましくは常温である。過剰な高温で反応させると反応速度が速くなるため、均一なコーティングが難しい。また、過小な低温で反応させた場合、溶媒が凍ってしまい反応を進めることが難しい。
【００５６】
また、反応時間は、室温（２５℃）において２４時間以内が好ましい。例えば、反応溶液全体に対してクエン酸活性エステル体２０ｍＭを添加した場合、室温における高分子マトリックスの形成時間は１０〜２０分以内である。
【００５７】
前記薬剤としては、水に難溶性の低分子化合物が好ましい。また、薬剤としては、同様の実施方法において高分子層に組み込むことが可能な、細胞分化誘導剤、抗ガン剤、免疫抑制剤、細胞成長因子、サイトカイン、トロンビン阻害薬、抗血栓薬、血栓溶解剤、線維素溶解薬、血管痙攣阻害薬、カルシウムチャネル遮断薬、血管拡張薬、高血圧治療薬、抗菌薬、抗生物質、表面糖タンパク質受容体阻害薬、抗血小板薬、細胞分裂抑制薬、微小管阻害薬、抗分泌薬、アクチン阻害薬、リモデリング阻害薬、アンチセンス・ヌクレオチド、代謝拮抗剤、抗増殖性物質、抗癌化学治療薬、抗炎症性ステロイドまたは非ステロイド抗炎症薬、免疫抑制剤、成長ホルモン・アンタゴニスト、成長因子、ドーパミン・アゴニスト、放射線治療薬、ペプチド、タンパク質、酵素、細胞外マトリックス成分、阻害薬、フリーラジカル・スカベンジャー、キレート剤、抗酸化剤、抗ポリメラーゼ、抗ウィルス薬、光力学治療薬、および遺伝子治療薬から選ばれる１種または２種以上の組合せとすることができる。細胞分化誘導剤は、水に難溶性のタミバロテンが好ましく、抗ガン剤としては同じく水に難溶性のパクリタキセルおよび誘導体が好ましく、免疫抑制剤としては同じく水に難溶性のシロリムスおよび誘導体が好ましい。
【００５８】
前記コーティング材料を調製するのに用いることができる溶媒としては、高分子マトリックス調製用の高分子、クエン酸活性エステル体を溶解し、添加材料を化学的に分解することのない溶媒であり、非プロトン性極性溶媒が望ましく、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ−メチルピロリドン、１，１，１，３，３，３‐ヘキサフルオロイソプロパノールが挙げられる。
【００５９】
高分子マトリックス調製用の高分子とクエン酸活性エステル体からなる高分子マトリックス形成時に生成する反応生成物（Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミド）や未反応物の除去には、得られた高分子マトリックスを純水に浸漬することによって除去が可能である。
【００６０】
また、高分子マトリックス中に含まれる有機溶媒を純水に置換する際には、内包した添加材料（低分子有機化合物等）の溶解や高分子の加水分解を抑制する必要がある。この観点から、溶媒の純水との置換は、好ましくは０〜２０℃、より好ましくは０〜１０℃、さらに好ましくは０〜５℃である。
【００６１】
前記コーティング材料を生成するための混合溶液の調製において、混合のための具体的手段は限定されないが、例えば小型のミキサーのような攪拌装置などを用いて十分均一に混合することが好ましい。
【００６２】
以下、実施例により本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれらの実施例に何ら限定されるものではない。
【実施例１】
【００６３】
以下、実施例１により、前記コーティング材料を具体的に説明する。
[高分子層の基材へのコーティング]
薬剤であるタミバロテン（Ａｍ８０）の終濃度が０，３５，２４５，７００ｍＭとなるように７．５，１５，３０％のアルカリ処理ゼラチン（豚皮膚由来）あるいはアルカリ処理コラーゲン（豚皮膚由来）／１０％乳酸−ＤＭＳＯ溶液１ｍｌと混合し、終濃度が１０，２０，４０ｍＭとなるようにクエン酸活性エステル体（ＴＳＣ；トリスクシンイミジルシトレート）の１０％乳酸−ＤＭＳＯ溶液２５０μｌを５ｍｌチューブに加え、３０秒間撹拌後、遠心分離機により３０秒間脱泡し、高分子コーティング溶液を調製した。得られた高分子コーティング溶液に基材を１０秒間浸漬した。【００６４】
基材として、ディスク状のものとステントを用いた。【００６５】
ディスク状の基材は、厚さ１ｍｍで、直径が１０−１２ｍｍであり、その材質が、表１に示すように、ＳＵＳ*（ＳＵＳ３１６Ｌ（Ｃ：０．０３％以下、Ｓｉ：１％以下、Ｍｎ：２％以下、Ｐ：０．０４５％以下、Ｓ：０．０３％以下、Ｎｉ：１２〜１５％、Ｍｏ：２〜３％）、ＨＮＳ*（高窒素ステンレス鋼（２３Ｃｒ−１Ｍｏ−１Ｎ））、ＣｏＣｒ*（ＣｏＣｒ合金（６５Ｃｏ−２９Ｃｒ−６Ｍｏ）、ＨＡＰ*（ハイドロキシアパタイト焼結体）、アクリル*（アクリル製樹脂（サンデーシート、(株)アクリルサンデー社製）で表面をやすりで祖面化したもの）、又は、ＰＴＥＥ*（（ポリエチレンテレフタレート（ＰＴＦＥ）製不織布、有限会社ヤマカツラボ）のものを用いた。【００６６】
また、ステントは、長さ１０ｍｍ、直径１．４ｍｍであり、材質が、ＳＵＳ*製、ＣｏＣｒ*製又はＨＮＳ*製のものを用いた。【００６７】
その後、ディスク状サンプルの内、直径が１０ｍｍのディスク状基材については２５ｍｌコニカルチューブに入れて遠心分離機（３５００ｒｐｍ，１分間）にかけ、コーティング層を均一化した。その他のディスク状サンプルも同様の方法でコーティングを行った。  そして、１晩室温にて風乾した後、４℃の超純水に８時間浸漬し、デシケーター中で１晩室温にて乾燥し、コーティング層を有するディスク状サンプルを得た。【００６８】
一方、ステントについては、高分子コーティング溶液に１０ｓｅｃ浸漬後、カットした注射針にステントを差し込み、遠心分離（６０００ｒｐｍ，１０秒間）により、ステントのエッジ部分についた余分な反応溶液を除いた。その後、４℃の超純水を入れた遠心管１５ｍＬにステントを浸漬し、乳酸、ＤＭＳＯおよび副生成物であるＮ−ヒドロキシスクシンイミドを取り除いた。超純水は２時間おきに１日あたり５回交換した。水交換を３日間繰り返した後、１昼夜風乾して、デシケーターで１日乾燥後、高分子層がコーティングされたステントを得た。【００６９】
また、コントロールとして０．０１Ｎ−ＨＣｌに溶解したアテロコラーゲン(Ｃ*)をＣｏＣｒ製ステントにコーティングしたサンプル（表1の１−２７）についても同様の手順で調製した。【００７０】
[高分子層をコーティングした基材の抗血栓性評価]
上記で得られたサンプルをラットより採取した新鮮な血液約１ｍＬ中に浸漬し、１５〜３０分間インキュベート（３７℃）した後、０．１Ｍリン酸緩衝液（ＰＢＳ）で３回洗浄し、実体顕微鏡および電子顕微鏡にて血栓形成を観察した。【００７１】
ＳＮｏ．１−０１、１−０４〜１−１０、１−１３〜１−２０、１−２３、１−２７〜１−２９の条件に対して種々の基材表面に対する本発明の高分子層コーティングの効果を検討した。【００７２】
ＳＮｏ．１−０１、１−０４〜１−０６に示すようにディスク状のＳＵＳ３１６Ｌ（ＳＵＳ*）、アクリル*、ＰＴＦＥ*、ＨＡＰ*の場合においては、抗血栓性は認められなかった。（図１〜４参照）一方、ＳＮｏ．１−１０、１−１３〜１−１５に示すように本発明の高分子層をコーティングすることにより有意に抗血栓性が基材表面に付与されることが明らかとなった（図１１〜１４参照）。【００７３】
また、ＳＵＳ*製、ＣｏＣｒ*製およびＨＮＳ*製ステントについても同様の評価を行った。ＳＮｏ．１−０７〜１−０９に示すようにステント単独の場合には、抗血栓性は認められず、ステントストラッド表面およびストラッド間にフィブリンネットワークの形成が認められた（図５〜１０参照）。一方、ＳＮｏ．１−１６〜１−１８に示すように本発明の高分子層をコーティングすることにより、ステントストラッド表面およびストラッド間には血栓形成が認められず、抗血栓性が付与されることが明らかとなった（図１５〜２０参照）。また、ＳＮｏ．１−２７に示すように市販のコラーゲンをＣｏＣｒ*製ステントにコーティングしたもののみでは、血栓形成が認められ、抗血栓性が付与されないことが明らかとなった（図３１，３２参照）。さらにＳＮｏ．１−１９、１−２０、１−２８、１−２９に示すように薬剤Ａｍ８０を含有した高分子層コーティングについても評価した結果、血栓形成が認められず、抗血栓性が付与されることが明らかとなった（図２１〜２４，３３〜３６参照）。また、ＳＮｏ．１−２３に示すように、薬剤Ａｍ８０濃度が高い場合には、やや血栓が形成される傾向があった（図２７〜２８参照）。【００７４】
[血管内皮細胞接着性および再内皮化評価]
上記で調製したディスク状基材上に正常ヒト臍帯静脈血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ，Ｌｏｎｚａ）を５×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌとなるように播種した。培地は、内皮細胞基本培地に内皮細胞添加因子（ＥＧＭ−２Ｂｕｌｌｅｔ  Ｋｉｔ，Ｌｏｎｚａ）を加えたものを使用した。３７度、５％ＣＯ２の条件下で培養１日後、ＷＳＴ−１（Ｃｅｌｌ  Ｃｏｕｎｔｉｎｇ  Ｋｉｒ，同仁化学）試薬により細胞数を計数した。同じ条件で３〜７回の実験を行った結果を種々の基材上における細胞接着数とした。また、アクリル*およびＨＡＰ*については、ギムザ染色により定性的に評価した。【００７５】
一方、ステントについては、調製後のサンプルをカテーテルに搭載した後、エチレンオキサイドガスにて滅菌し、生後３ヶ月のブタ（体重約６０ｋｇ）を麻酔下、左冠動脈前下行枝（ＬＡＤ）、左冠動脈左回旋枝（ＬＣＸ）または右冠動脈（ＲＣＡ）に留置した。２週間後、ステント留置部の血管を取り出し、再内皮化の様子をマクロ観察および中性緩衝ホルマリンにて固定後のミクロ組織の観察を走査型電子顕微鏡にて再内皮化および血栓形成の様子を観察した。【００７６】
ＳＮｏ．１−０１〜１−０６，１−１０〜１−１５の条件に対して種々の基材表面に対する本発明の高分子層コーティングの効果をＨＵＶＥＣの播種により検討した。【００７７】
ＳＮｏ．１−０１〜０６において、高分子層コーティングが無い場合ＨＡＰにおいてはやや接着性が認められたものの、それ以外の基材はＨＵＶＥＣの接着性が乏しいという結果が得られた。【００７８】
一方、ＳＮｏ．１−１０〜１５に示すように、高分子層コーティングを施した基材においては有意に高いＨＵＶＥＣの接着性が得られた。表２には、接着したＨＵＶＥＣの定量的な評価を行った結果を示すが、高分子層コーティングにより１．５〜５倍以上の接着細胞数の増加が認められることが明らかとなった（図３９〜４２、表２参照）。【００７９】
一方、ステントについては、ＳＮｏ．１−２０、１−２６、１−３０の条件に対して再内皮化の評価を行った。図２３〜２６に示すように本発明の高分子層コーティングを施したステントの場合においては、再内皮化が認められ、血栓形成が認められないことから、生体内においても抗血栓性が保持されることが明らかとなった。一方、市販品のＣｙｐｈｅｒステントにおいては、図３７、３８に示すように再内皮化が認められず、ステントストラッド間に多数の血栓形成が認められた。このことから、本発明の高分子層コーティングが、生体内においても従来品と比較して有意に再内皮化と抗血栓性を示すことが明らかとなった。【００８０】
[薬剤徐放性評価]
上記で得られたＡｍ８０（仕込み濃度３５ｍＭ，２４５ｍＭ，７００ｍＭ）を含有した高分子層を有するステントを８０℃のオーブンで１０分加熱後、ＵＶ照射を１０分間行い滅菌した後、０．１Ｍリン酸緩衝液（ＰＢＳ）（ｐＨ７．４）１ｍＬ中に浸漬し、３７℃で放置した。一定期間後、溶出液をサンプリングし、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）によりＡｍ８０のステントからの溶出量を定量した。ステント上に搭載されたＡｍ８０の全量は、調製したステントを１ｍｇ／ｍＬのコラゲナーゼおよびＣａＣｌ２を含む０．１Ｍ  ＰＢＳ（ｐＨ７．４）１ｍＬに浸漬し、３７℃で２４時間インキュベートしてコーティング層を酵素的に分解した後、フィルター（０．２μｍ）でろ過し、ろ液をＨＰＬＣにより定量した。【００８１】
ＳＮｏ．１−１９〜２５，２８の条件に対してステントからの薬剤Ａｍ８０の徐放性を検討した。【００８２】
表３に示すように仕込み薬剤Ａｍ８０濃度が３５ｍＭの場合においては、徐放は検出されなかったが、２４５ｍＭ以上になると８週間に渡る薬剤の溶出が認められた。また、４週後の溶出量で比較すると、高分子のゼラチン溶液の濃度を増加させると同じ仕込み薬剤濃度でも徐放量が増加することが明らかとなった。また、架橋剤であるＴＳＣ濃度を増加させることによっても薬剤徐放量が増加することが明らかとなった。【００８３】
この現象は、高分子層の成分であるゼラチンとＡｍ８０がπ-π相互作用などの分子間相互作用により相互作用をしているためであると示唆される。【００８４】
【表１】
2011096402.tif 000002
【００８５】
【表２】
2011096402.tif 000003
【００８６】
【表３】
2011096402.tif 000004
【実施例２】
【００８７】
[再狭窄抑制効果の検証]【００８８】
前記において調製したステントを左冠動脈前下行枝（ＬＡＤ）、左冠動脈左回旋枝（ＬＣＸ）または右冠動脈（ＲＣＡ）に留置した。ＬＡＤ，ＬＣＸ，ＲＣＡへ留置するステントの数は、最大で２個とした。４週間後、再狭窄の程度を定量的冠動脈造影法（ＱＣＡ）により調べ、冠動脈のＡＨＡ（米国心臓協会：American Heart Association）分類により評価した。【００８９】
ＡＨＡ分類による狭窄率は、狭窄が無い場合を０％、１〜２５％を２５％、２５〜５０％を５０％、５１〜７５％を７５％、７５〜９９％（造影剤の流れの狭窄部での遅延なし）を９０％、７５〜９９％（造影剤の流れの狭窄部での遅延あり）を９９％、完全な狭窄を１００％とした。【００９０】
それぞれの条件について５〜９個のステントを留置し、再狭窄率が４５％以下のサンプル数の割合を算出し、その割合が６０％以上のものを再狭窄抑制効果有りと定義した。比較例としてＣｏＣｒ製ベアメタルステント（ＣｏＣｒ−ＢＭＳ）、ＳＵＳ３１６Ｌ製ベアメタルステント（ＳＵＳ−ＢＭＳ）、Ｃｙｐｈｅｒステント（ジョンソン＆ジョンソン社製）を使用した。【００９１】
比較例のＣｏＣｒ−ＢＭＳ（４−０８）、ＳＵＳ−ＢＭＳ（４−０９）、Ｃｙｐｈｅｒ（４−１０）と比較して高分子層コーティング（４−０１）あるいはＡｍ８０含有高分子層をコーティング（４−０４〜０７）することによる有効性が認められた。【００９２】
【表４】
2011096402.tif 000005
【実施例３】
【００９３】
[基材とコーティング層の界面接合力向上のための前処理効果]
金属表面にシランカップリング剤などのアンカー分子を導入することなく高分子コーティング層と金属とを強固に接着することを目的とし、基材とコーティングとの界面の結合力を調べるため、金属−高分子層間界面が剥離する力を測定した。基材表面に高分子層をコーティングする前にその表面（１０ｍｍφ，厚さ１ｍｍディスク）を有機溶媒（アセトン：ＡＳ）、希王水（５０％王水：ＡＲ）または１０％水酸化ナトリウム水溶液（Ｎａ）中に１時間浸漬させることで表面処理を行なった。表面処理した基材表面に、前記表３に示すそれぞれのコーティングを施し、水中に３日間浸漬し、乾燥させたものを表５のサンプルとした。サンプルの上下に瞬間接着剤を介して測定治具と接着させた後、片方を上方向に引き上げることで剥離時の応力を測定した。【００９４】
表５には、様々な処理表面上におけるコーティング高分子層と基材との剥離強度を示している。有機溶媒あるいはアルカリ処理よりも希王水を用いた酸処理条件は、最も効果的に高分子層と接合することが明らかとなった。この表面処理による剥離強度の違いを明らかにするため、種々の前処理を行った後の基板の全反射赤外吸収スペクトル（ＡＴＲ−ＩＲ）測定を行った。図４３に示すようにアセトン、ＮａＯＨ処理の基板は自然酸化膜による１１６０ｃｍ−１の吸収が確認できるが、希王水処理の基板は自然酸化膜ピークが減少している。すなわち、希王水処理により基板表面の酸化被膜が減少して現れた結晶粒界が剥離強度の増加を促す一因となっていることが示唆された。【００９５】
【表５】
2011096402.tif 000006
【実施例４】
【００９６】
基材の表面の高分子層について、コーティングの回数が与える影響について検討した。  具体的には、架橋剤として13mMのＴＳＣを含む10％アルカリ処理ゼラチン(AlGltn)/ヘキサフルオロイソプロパノール(HFIP)溶液に、タミバロテン（Am80）を35mMとなるように調製した溶液を用いて、ステントの表面に種々の回数コーティングを行った。【００９７】
結果を図４４に示す。図４４に示されているように、コーティング回数を１，５，１０回と増加させるにつれ、Am80の含有量は、ほぼ直線的に増加した。このことから、コーティング回数を制御することによりAm80含有量を制御することが可能であることが確認された。【００９８】
一方、コーティング後のステント表面および断面のSEM観察像を図４５に示す。図４５に示したように、コーティング回数に比例して、基材表面の高分子層が厚くなることが確認された。10回コーティング後には、高分子層が2-3μmの厚みでコーティングされた。
【実施例５】
【００９９】
基材表面にコーティングする高分子層について、コーティング溶液およびコーティング工程を種々の条件とし、高分子層に含まれる薬剤の徐放性（溶出量）に与える影響を検討した。【０１００】
ステントの表面に、高分子層として、10%アルカリ処理ゼラチンと架橋剤（ＴＳＣ）を以下の［表６］に示した条件でコーティングした。また、薬剤としてタミバロテン（Ａｍ80）を使用し、高分子層に含まれる濃度が35mMとなるように調整した。そして、調製後のステントを37℃、0.1Mリン酸緩衝液中（pH7.4）１mLに浸漬し、7日後のAm80の溶出量を検証した。【０１０１】
結果は、［表６］に示す。【０１０２】
【表６】
2011096402.tif 000007
【０１０３】
条件１〜４の結果から、架橋剤の含有量を高めると薬剤徐放性も高まる傾向があることが確認される。また、条件５〜７の結果から、トップコートを行った場合には、溶出量に影響をあまり及ぼさないことが分かる。
【実施例６】
【０１０４】
基材表面にコーティングされた高分子層からの薬剤の溶出時間を制御する方法について検討した。【０１０５】
細胞接着性ぺプチド含有高分子としてゼラチンを使用した。ゼラチン中のアミノ基の一部をレチノイル（RA）基またはエイコサペンタエン（EPA）基で修飾することで疎水化を行い、Am80の徐放制御が可能かどうかについて検討した。
＜１＞ 疎水化ゼラチンの合成
１）ゼラチン中のアミノ基に対してエイコサペンタエン酸基を50％の割合で化学修飾した。（以下、この疎水化ゼラチンをE50Gと記載する。）
２）ゼラチン中のアミノ基に対してRetinoyl基を0、25、50、75％の割合で化学修飾した。レチノイル化ゼラチンの合成スキームを図４６に示す。
（以下、この疎水化ゼラチンを各々、R0G、R25G、R50GおよびR75Gと記載する。）【０１０６】
＜２＞薬剤含有高分子マトリックスの調製
薬剤としてタミバロテン（Ａｍ80）を使用し、Am80（35mM）を含む10％RG(E50G、R0G、R25G、R50GおよびR75G)/DMSO溶液を調製後、終濃度が13ｍMとなるようにTSC/DMSO溶液を添加し板状に成形した。水（4℃）中に72時間浸漬して、DMSOを水に置換し、副生成物を除去した後、凍結乾燥させることで乾燥したAm80含有マトリックスを得た。【０１０７】
＜３＞Am80含有マトリックスからのAm80の溶出
乾燥したAm80含有マトリックス約1mgを50mLコニカルチューブにはかりとった後、0.1MPBS (pH7.4) 50ｍLを加え37℃で静置し、７日後に溶出液のうち1mLを取り、HPLC用サンプルとし、マトリックス1g当たりの7日後のAm80溶出量およびマトリックスからの7日後のAm80放出率を調べた。なお、詳細なHPLCの測定条件を以下に示す。【０１０８】
HPLC測定条件
Columun: Nacalai Tesque COSMOSIL PACKED COLUMN (Size:4.6 I.D.×150 mm; Type:5C18-AR-II WATERS)
移動層：5% HOAc/CH3CN=35/65 (v/v)
カラム温度：40.0℃
流速：1.00 mL/min
注入量：10.0 μL
検出波長：286 nm【０１０９】
＜４＞結果
結果を［表７］に示す。［表７］のAm80放出率は、各条件（R0G、R25G、R50G、R75G、Ｅ50Ｇ）について徐放性試験前のステントの細胞接着性ぺプチド含有高分子（ゼラチン）中に含まれるAm80量を100％として算出した。【０１１０】
【表７】
2011096402.tif 000008
表７に示したように、ゼラチンを疎水化することで、薬剤（Am80）の溶出量、放出率を制御することができた。したがって、細胞接着性ぺプチド含有高分子を疎水化した生体適合性器具を使用すれば、薬剤の種類や生体適合性器具の使用者の状態等に応じて薬剤の溶出時間（徐放性）を制御可能であることが確認された。
【産業上の利用可能性】
【０１１１】
本発明は、基材上へ高分子層をパターン化してコーティングすることにより、診断用材料としての用途としても適用できる。
【図４３】
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【図４４】
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【図４６】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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【図３３】
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【図３４】
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【図３５】
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【図３６】
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【図３７】
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【図３８】
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【図３９】
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【図４０】
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【図４１】
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【図４２】
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【図４５】
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【国際調査報告】
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