(57)【要約】  水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム複合免疫アジュバント、その調製方法及びその使用に関する。解決されるべき技術的課題は、性能が良好な免疫アジュバントを提供することである。技術的課題を解決するための技術的解決法は、免疫アジュバントの調製における塩化ナトリウムの使用及びそれに基づいて得られる水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム複合免疫アジュバントを提供することである。複合免疫アジュバントは、主に水酸化アルミニウム及び塩化ナトリウムを含み、簡単で便利な使用、低コスト、強力な免疫活性、高い臨床安全性等の利点を有し、様々な抗原のために優れた複合免疫アジュバントであり、ワクチンの開発及び応用のための効果的な選択肢を提供する。
2019515005.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
水酸化アルミニウムゲル及び塩化ナトリウムを含む、複合免疫アジュバント。
【請求項２】
前記複合免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの含量が、生理学的レベルよりも高い、請求項１に記載の複合免疫アジュバント。
【請求項３】
前記塩化ナトリウムの最終的な質量分率が１．２％〜７．２％である、請求項１〜２のいずれか１項に記載の複合免疫アジュバント。
【請求項４】
前記塩化ナトリウムの最終的な質量分率が２．７％〜４．５％である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の複合免疫アジュバント。
【請求項５】
前記水酸化アルミニウムゲルの粒子サイズが１μｍ〜１０μｍの範囲である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の複合免疫アジュバント。
【請求項６】
抗原と、請求項１〜５のいずれか１項に記載の前記複合免疫アジュバントと、を含む、免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項７】
前記抗原と前記複合免疫アジュバント中の水酸化アルミニウムとの比が重量で１：１〜１００である、請求項６に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項８】
前記抗原と前記水酸化アルミニウムとの比が重量で１：５〜５０である、請求項７に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項９】
前記抗原が、腫瘍抗原、ウイルス抗原、又は細菌抗原の少なくとも１つである、請求項６〜８のいずれか１項に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項１０】
前記腫瘍抗原が、ＯＶＡ腫瘍モデル抗原、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ヒトメラノーマ関連抗原ｇＰ１００、メラノーマ抗原ｍａｇｅ−１、又は癌胎児性抗原の少なくとも１つから選択される、請求項９に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項１１】
前記ウイルス抗原が、Ｂ型肝炎ウイルス抗原、Ａ型肝炎ウイルス抗原、Ｃ型肝炎ウイルス抗原、ポリオウイルス抗原、狂犬病ウイルス抗原、黄熱ウイルス抗原、ＨＩＶ抗原、麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、風疹抗原、水痘抗原、ロタウイルス抗原、日本脳炎抗原、パピローマウイルス抗原、流行性出血熱ウイルス抗原、及びペストウイルス抗原等の一般的なウイルス抗原の少なくとも１つから選択され得ることを特徴とする、請求項９に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項１２】
前記細菌抗原が、黄色ブドウ球菌抗原、緑膿菌抗原、百日咳抗原、ジフテリア抗原、インフルエンザ菌抗原、髄膜炎菌抗原、破傷風トキソイド抗原、溶血性連鎖球菌抗原、非溶血性連鎖球菌抗原、肺炎球菌抗原、結核菌抗原、炭疽菌抗原、ビブリオコレラ抗原、レプトスピラ抗原、又はヘリコバクターピロリ抗原等の一般的な細菌抗原の少なくとも１つから選択される、請求項９に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項１３】
ａ．必要とされる抗原を水中に希釈又は溶解する工程と；
ｂ．必要な塩化ナトリウムを添加し、均一に混合する工程と；
ｃ．必要量の水酸化アルミニウムゲルを添加し、均一に混合する工程と；
を含む、請求項６〜１２のいずれか１項に記載の免疫アジュバント抗原複合体の調製方法。
【請求項１４】
ａ．高張性水酸化アルミニウムゲル複合アジュバントの原液を調製するために、水酸化アルミニウムゲルアジュバントに適量の塩化ナトリウムを添加する工程と；
ｂ．必要な抗原を水中に希釈又は溶解する工程と；
ｃ．必要量の高張性水酸化アルミニウム複合アジュバントを添加し、均一に混合する工程と；
を含む、請求項６〜１２のいずれか１項に記載の免疫アジュバント抗原複合体の調製方法。
【請求項１５】
ワクチンの調製における、請求項１〜５のいずれか１項に記載の複合免疫アジュバントの使用。
【請求項１６】
免疫アジュバントの調製における、塩化ナトリウムの使用。
【請求項１７】
前記免疫アジュバントが水酸化アルミニウムゲルを更に含む、請求項１６に記載の使用。
【請求項１８】
前記免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの用量が生理学的レベルよりも高い、請求項１７に記載の使用。
【請求項１９】
前記免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの用量が、そこから調製される免疫アジュバント抗原複合体中の塩化ナトリウムの質量分率が１．２％〜７．２％である、請求項１８に記載の使用。
【請求項２０】
前記免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの用量が、そこから調製される免疫アジュバント抗原複合体中の塩化ナトリウムの質量分率が２．７％〜４．５％である、請求項１９に記載の使用。
【請求項２１】
免疫アジュバント抗原複合体の調製における、塩化ナトリウムの使用。
【請求項２２】
前記免疫アジュバント抗原複合体が水酸化アルミニウムゲルのアジュバントを更に含む、請求項２１に記載の使用。
【請求項２３】
塩化ナトリウムの含量が１．２質量％〜７．２質量％である、請求項２２に記載の使用。
【請求項２４】
免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの用量が、そこから調製される免疫アジュバント抗原複合体中の塩化ナトリウムの質量分率が２．７％〜４．５％である、請求項２３に記載の使用。
【請求項２５】
抗原と水酸化アルミニウムとの比が重量で１：１〜１００である、請求項２２に記載の使用。
【請求項２６】
前記抗原と複合免疫アジュバント中の水酸化アルミニウムとの比が重量で１：５〜５０である、請求項２５に記載の使用。
【請求項２７】
前記抗原が、腫瘍抗原、ウイルス抗原、又は細菌抗原の少なくとも１つである、請求項２１〜２６のいずれか１項に記載の使用。
【請求項２８】
前記腫瘍抗原が、ＯＶＡ腫瘍モデル抗原、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ヒトメラノーマ関連抗原ｇＰ１００、メラノーマ抗原ｍａｇｅ−１、又は癌胎児性抗原の少なくとも１つから選択される、請求項２７に記載の使用。
【請求項２９】
前記ウイルス抗原が、Ｂ型肝炎ウイルス抗原、Ａ型肝炎ウイルス抗原、Ｃ型肝炎ウイルス抗原、ポリオウイルス抗原、狂犬病ウイルス抗原、黄熱ウイルス抗原、ＨＩＶ抗原、麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、風疹抗原、水痘抗原、ロタウイルス抗原、日本脳炎抗原、パピローマウイルス抗原、流行性出血熱ウイルス抗原、及びペストウイルス抗原等の一般的なウイルス抗原の少なくとも１つから選択される、請求項２７に記載の使用。
【請求項３０】
前記細菌抗原が、黄色ブドウ球菌抗原、緑膿菌抗原、百日咳抗原、ジフテリア抗原、インフルエンザ菌抗原、髄膜炎菌抗原、破傷風トキソイド抗原、溶血性連鎖球菌抗原、非溶血性連鎖球菌抗原、肺炎球菌抗原、結核菌抗原、炭疽菌抗原、ビブリオコレラ抗原、レプトスピラ抗原、又はヘリコバクターピロリ抗原等の一般的な細菌抗原の少なくとも１つから選択される、請求項２７に記載の使用。
【請求項３１】
塩化ナトリウムと注射用の適量の水とを加え、ワクチンを使用する前に塩化ナトリウムの質量分率を１．２％〜７．２％にする工程を含む、ワクチンの調製方法。
【請求項３２】
抗原に注射用の適量の水及び塩化ナトリウムを添加し、次に水酸化アルミニウムゲルアジュバントを添加し、ワクチンを使用する前の調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を１．２％〜７．２％にする工程；又は
前記抗原を水に直接溶解し、高張性水酸化アルミニウムゲル原液を添加し、調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を１．２％〜７．２％にする工程；又は
調製するワクチンが既に前記抗原及び水酸化アルミニウムゲルを含有している場合には、調製過程において塩化ナトリウムのアジュバントを直接添加し、調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を注射前に１．２％〜７．２％にする工程；
を含む、請求項３１に記載のワクチンの調製方法。
【請求項３３】
前記調製ワクチン中の塩化ナトリウムの最終的な質量分率が２．７％〜４．５％である、請求項３１に記載のワクチンの調製方法。
【請求項３４】
前記調製ワクチン中の抗原と水酸化アルミニウムとの比が重量で１：１〜１００である、請求項３２に記載のワクチンの調製方法。
【請求項３５】
前記調製ワクチン中の前記抗原と水酸化アルミニウムとの比が重量で１：５〜５０である、請求項３４に記載のワクチンの調製方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は生物医薬の分野に属し、特に、水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム複合免疫アジュバント、並びにその調製方法及びその使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
非特異的免疫賦活剤として、アジュバントは、数十年にわたりワクチン抗原に対する身体の免疫応答を改善するために使用されてきた。ワクチンにアジュバントを添加する目的は、抗原に対する身体の免疫応答を増強すること又は免疫応答のタイプを変化させることであり、これは特異的抗体及び／又は特異的細胞性免疫機能の産生が増加するように、抗原の特異的体液性免疫及び／又は細胞性免疫を促進することによって明らかになる。抗原及びアジュバントを一緒に体内に注入すると、抗原の量と有効な免疫化の頻度を減らし、早期免疫応答の成功率と免疫無防備状態の人々の応答を改善することができる。
【０００３】
水酸化アルミニウム及びリン酸アルミニウムに代表されるアルミニウムアジュバントは、中国当局によって承認されたヒト使用のためのいまなお合法的なワクチンアジュバントである。更に、水酸化アルミニウムは、米国ＦＤＡによって承認された唯一のヒトアジュバントでもある。その長い使用履歴にもかかわらず、アルミニウムアジュバントの作用機序はまだ完全には明らかではない。現在、「ストック効果」及び「免疫刺激効果」という２つのメカニズムがあることが考えられている。抗原がアルミニウムアジュバントに吸収されて、接種領域に抗原デポーを形成し、そこで非特異的免疫刺激が樹状細胞及びマクロファージ等の抗原提示細胞（ＡＰＣ）の認識及びエンドサイトーシスを誘引し、注射部位での抗原の持続放出は、ＡＰＣとＴリンパ球との間の相互作用時間を延長し、従って抗体応答を改善し、体液性免疫を増強する。
【０００４】
塩化ナトリウムは地球上の生活において重要な役割を果たしており、日常生活、産業、医療に広く使用されている。また、塩化ナトリウムは日常生活における食生活、及び医薬品に使用される生理食塩水の注射に必要な塩の主成分でもある。更に、塩化ナトリウムには、アクセスが簡単で、安価で、安全性が高いという利点がある。
【０００５】
新規なアジュバントの迅速な開発により、伝統的なアジュバントはますますワクチンのニーズを満たすことができなくなってきている。多数の免疫学的臨床試験により、水酸化アルミニウムコロイドアジュバントは、体液性免疫応答に対して強い刺激効果を有するが、細胞性免疫応答には弱い効果を有することが明らかになっている。従って、体液性免疫及び細胞性免疫の両方を産生するように身体を効果的に誘導することができるアルミニウムアジュバントを介する細胞性免疫の改善方法は、免疫アジュバントの現在の研究の焦点であり難題である。
【０００６】
現在、塩化ナトリウムは、化合物免疫アジュバントとしての水酸化アルミニウムとまだ組み合わされていない。従って、ワクチン調製のための新しい効果的な選択肢を提供するために、新規かつ良好に機能する免疫アジュバントが当該技術分野において緊急に必要とされている。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明によって解決されるべき技術的課題は、当技術分野において新しい効果的な選択肢を与えることができる、新規且つ良好に機能する免疫アジュバントを提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明の技術的課題を解決するための技術的手法は、水酸化アルミニウムゲルと生理学的レベルよりも高い塩化ナトリウムとを主成分とする複合免疫アジュバントを提供することである。
【０００９】
ここで、免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの用量は生理学的レベルよりも高く、これは最終的なアジュバント抗原複合体溶媒中の塩化ナトリウムの質量分率が０．９％以上であることを意味する。最終的な質量分率は、注射前の免疫アジュバント抗原複合体の濃度を指す。
【００１０】
ここで、前述の化合物免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの最終的な質量分率は、１．２％〜７．２％である。更に、化合物免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの最終的な質量分率は２．７％〜４．５％である。好ましくは、化合物免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの最終的な質量分率は３．６％である。
【００１１】
ここで、最終的な質量分率は、アジュバント抗原複合体溶媒１００ｍｌ中の塩化ナトリウムの質量（ｇ）を指す。
【００１２】
ここで、複合免疫アジュバント中の水酸化アルミニウムゲルの粒子サイズは、１μｍ〜１０μｍ、好ましくは２μｍ〜６μｍ、より好ましくは約３μｍの範囲である。
【００１３】
本発明は更に、複合免疫アジュバントに抗原を添加することによって形成される免疫アジュバント抗原複合体を提供する。免疫アジュバント抗原複合体は、当該技術分野においてワクチンとして言及されることもある。
【００１４】
ここで、免疫アジュバント抗原複合体中の抗原（Ａｇ）は、当技術分野において免疫応答を誘導することができる任意の物質である。
【００１５】
更に、抗原は、腫瘍抗原、ウイルス抗原、又は細菌抗原のうちの１以上である。
【００１６】
ここで、腫瘍抗原は、ＯＶＡ腫瘍モデル抗原（ＯＶＡ腫瘍モデル抗原はモデル又は標準化腫瘍特異的抗原として国際的に認識され、アジュバントの能力を試験して抗腫瘍免疫応答を誘導するための標準腫瘍特異的抗原として一般的に使用される。アジュバントが抗腫瘍免疫応答を誘導する場合には、そのアジュバントは抗腫瘍免疫応答を表す。）、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ヒトメラノーマ関連抗原ｇＰ１００、メラノーマ抗原ｍａｇｅ−１、又は癌胎児性抗原及び他の一般的な腫瘍のうちの１以上から選択することができる。
【００１７】
ここで、ウイルス抗原は、Ｂ型肝炎ウイルス抗原、Ａ型肝炎ウイルス抗原、Ｃ型肝炎ウイルス抗原、ポリオウイルス抗原、狂犬病ウイルス抗原、黄熱ウイルス抗原、ＨＩＶ抗原、麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、風疹抗原、水痘抗原、ロタウイルス抗原、日本脳炎抗原、パピローマウイルス抗原、流行性出血熱ウイルス抗原、及びペストウイルス抗原等の一般的なウイルス抗原の１以上から選択される。
【００１８】
ここで、細菌抗原は、黄色ブドウ球菌抗原、緑膿菌抗原、百日咳抗原、ジフテリア抗原、インフルエンザ菌抗原、髄膜炎菌抗原、破傷風トキソイド抗原、溶血性連鎖球菌抗原、非溶血性連鎖球菌抗原、肺炎球菌抗原、結核菌抗原、炭疽菌抗原、ビブリオコレラ抗原、レプトスピラ抗原、又はヘリコバクターピロリ抗原等の一般的な細菌抗原の少なくとも１つから選択される。
【００１９】
本発明は更に、免疫アジュバント／抗原複合体を調製する方法を更に提供し、
ａ．必要とされる抗原を水中に希釈又は溶解する工程と；
ｂ．必要な塩化ナトリウムを添加し、均一に混合する工程と；
ｃ．必要量の水酸化アルミニウムゲルを添加し、均一に混合する工程と；
を含む。
【００２０】
また、免疫アジュバント／抗原複合体は、
ａ．高張性水酸化アルミニウムゲル複合アジュバントの原液を調製するために、水酸化アルミニウムゲルアジュバントに適量の塩化ナトリウムを添加する工程と；
ｂ．必要な抗原を水中に希釈又は溶解する工程と；
ｃ．必要量の高張性水酸化アルミニウムゲル複合アジュバントを添加し、均一に混合する工程と；
によって調製することができる。
【００２１】
更に、抗原は、腫瘍抗原、ウイルス抗原、又は細菌抗原のうちの１以上である。
【００２２】
ここで、腫瘍抗原は、ＯＶＡ腫瘍モデル抗原、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ヒトメラノーマ関連抗原ｇＰ１００、メラノーマ抗原ｍａｇｅ−１、又は癌胎児性抗原等の１以上の一般的な腫瘍抗原から選択される。
【００２３】
ここで、ウイルス抗原は、Ｂ型肝炎ウイルス抗原、Ａ型肝炎ウイルス抗原、Ｃ型肝炎ウイルス抗原、ポリオウイルス抗原、狂犬病ウイルス抗原、黄熱ウイルス抗原、ＨＩＶ抗原、麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、風疹抗原、水痘抗原、ロタウイルス抗原、日本脳炎抗原、パピローマウイルス抗原、流行性出血熱ウイルス抗原、及びペストウイルス抗原等の一般的なウイルス抗原の１以上から選択される。
【００２４】
ここで、細菌抗原は、黄色ブドウ球菌抗原、緑膿菌抗原、百日咳抗原、ジフテリア抗原、インフルエンザ菌抗原、髄膜炎菌抗原、破傷風トキソイド抗原、溶血性連鎖球菌抗原、非溶血性連鎖球菌抗原、肺炎球菌抗原、結核菌抗原、炭疽菌抗原、ビブリオコレラ抗原、レプトスピラ抗原、又はヘリコバクターピロリ抗原等の一般的な細菌抗原の少なくとも１つから選択される。
【００２５】
技術的手法における質量分率は、アジュバント抗原複合体溶液１００ｍｌ中の塩化ナトリウムの質量（ｇ）を指す。
【００２６】
本発明はまた、予防及び／又は治療ワクチンであり得る免疫アジュバント抗原複合体から調製されるワクチンを提供することが理解され得る。例えば、免疫アジュバント抗原複合体は、ＨＢｓＡｇ等の肝炎抗原を標的とする肝炎ワクチン、百日咳抗原、ジフテリアトキソイド抗原、又は黄色ブドウ球菌抗原及び緑膿菌抗原等の細菌抗原を標的とする細菌ワクチン、並びにＯＶＡ腫瘍モデル抗原又は腫瘍特異的抗原を標的とする予防及び／又は治療の腫瘍ワクチンに調製することができる。本発明のワクチンは、被験体を免疫化するために皮下、腹腔内、又は筋肉内注射によって投与することができる。当然のことながら、当技術分野で利用可能な他の方法又は様々な方法の組み合わせも、免疫化に使用することができる。本発明のワクチンは、異なる免疫間隔を有することができ、１回又は複数回投与することができる。具体的には、実際の状況に応じて、免疫化時間及び時点を変更又は調整することができる。
【００２７】
免疫アジュバントとして使用することができる、良好に機能する水酸化アルミニウム−塩化ナトリウム複合アジュバントを構築するために、本発明は様々な水酸化アルミニウム−塩化ナトリウム製剤を試験する。本発明によれば、異なる質量分率の塩化ナトリウムをスクリーニングし、最良の効果は、塩化ナトリウム及び水酸化アルミニウムの複合物をアジュバントとして使用して調製したワクチン溶液中の塩化ナトリウムの質量分率が３．６％であるときに観察される。肝炎ワクチンモデルは、高力価の抗体及びＨＢｓＡｇに対するＩＦＮ−γをｉｎ  ｖｉｖｏで産生する。細菌ワクチンは、百日咳菌及びジフテリアトキソイドに対する高力価の抗体及びＩＦＮ−γ、黄色ブドウ球菌（ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ａｕｒｅｕｓ）及び緑膿菌（ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）に対する高力価の抗体、並びに細菌に対する防御効果を生じる。腫瘍ワクチンモデルに関して、予防及び治療免疫実験は、ｉｎ  ｖｉｖｏでのＯＶＡに対する抗体の産生及び特異的ＣＤ８キラーＴ細胞の活性化がＩＦＮ−γ分泌を増加させ、腫瘍成長を効果的に阻害することを証明する。
【００２８】
また、本発明は、免疫アジュバントの調製における塩化ナトリウムの使用を提供する。
【００２９】
ここで、免疫アジュバントは水酸化アルミニウムゲルを更に含む。
【００３０】
ここで、免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの用量は、生理学的レベルよりも高い。
【００３１】
ここで、免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの用量は、そこから調製される免疫アジュバント抗原複合体中の塩化ナトリウムの質量分率が１．２％〜７．２％になり、これは注射前の免疫アジュバント抗原複合体の濃度を示す。
【００３２】
また、本発明は、免疫アジュバント抗原複合体の調製における塩化ナトリウムの使用を提供する。
【００３３】
ここで、免疫アジュバント抗原複合体は、水酸化アルミニウムゲルのアジュバントを更に含む。
【００３４】
ここで、塩化ナトリウムの含量は１．２〜７．２質量％であり、これは注射前の免疫アジュバント抗原複合体の濃度を示す。塩化ナトリウムの含量は、２．７質量％〜４．５質量％が好ましく、３．６質量％がより好ましい。
【００３５】
ここで、抗原対水酸化アルミニウムの比は重量で１：１〜１００である。
【００３６】
ここで、化合物免疫アジュバント中の抗原対水酸化アルミニウムの比は重量で１：５〜５０である。
【００３７】
ここで、抗原は、腫瘍抗原、ウイルス抗原、又は細菌抗原のうちの１以上である。本発明はまた、塩化ナトリウムと注射用の適量の水とを加え、ワクチンを使用する前に塩化ナトリウムの質量分率が１．２％〜７．２％に達するようにすることを含む、ワクチンの調製方法を提供する。この方法は、場合により、
抗原に注射用の適量の水及び塩化ナトリウムを添加し、次に水酸化アルミニウムゲルアジュバントを添加し、ワクチンを使用する前に調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を１．２％〜７．２％にする工程；又は、
抗原を注射用の水に直接溶解し、高張性水酸化アルミニウムゲル原液を添加し、調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を１．２％〜７．２％にする工程；又は
調製するワクチンが既に抗原及び水酸化アルミニウムゲルを含有している場合には、調製過程において塩化ナトリウムをアジュバントとして直接添加し、調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を注射前に１．２％〜７．２％にする工程
の方法で実施することができる。
【００３８】
注射されるワクチン系における塩化ナトリウムの含量は、２．７〜４．５質量％が好ましく、３．６質量％がより好ましい。
【００３９】
ここで、上記の方法において、ワクチン中の抗原対水酸化アルミニウムの比は、重量で１：１〜１００、好ましくは重量で１：５〜５０である。
【００４０】
本発明における抗原と水酸化アルミニウムとの重量による比は、抗原と水酸化アルミニウムゲル中の純粋な水酸化アルミニウムとの比を指すことに留意すべきである。
【００４１】
明らかに、塩化ナトリウムは、技術的手法においてワクチンを調製するために必要な純度を有するべきである。一般に、少なくとも化学的に純粋な塩化ナトリウムを使用すべきである。
【００４２】
本発明は、ワクチンアジュバント及びワクチンの調製における塩化ナトリウムの使用を提供する。加えて、本発明はまた、新規なワクチンアジュバント、即ち水酸化アルミニウムゲル塩化ナトリウム複合免疫アジュバントを提供し、これは腫瘍ワクチン、並びに細菌ワクチン及びウイルスワクチン等の感染性疾患ワクチンの研究及び開発に使用することができる。予備解析により、その作用機序は、生理学的レベルを超える高張性塩化ナトリウムがＭφ、ＮＫ、及びＤＣ等の免疫細胞活性を活性化し、ＭＡＰＫシグナル経路を活性化し、ＤＣの成熟及び抗原の取り込み又は交差提示を促進することができることであり得ることが見出されている。更に、水酸化アルミニウムゲル中のアルミニウム塩は、抗原と結合して抗原デポーを形成し、抗原をゆっくりと安定的に放出することができ、またアルミニウムアジュバントは体液性免疫を誘導し、刺激することもできる。従って、それらの組み合わせは体液性免疫を刺激するだけでなく、細胞性免疫も刺激してより良い結果を達成することができる。
【００４３】
本発明の有益な効果は、本発明によってワクチンアジュバント及びワクチンの調製における塩化ナトリウムの使用が創造的に開発され、水酸化アルミニウム−塩化ナトリウム複合免疫アジュバントが更に開発されることである。これは強力な免疫活性及び高い臨床安全性の利点を有し、水酸化アルミニウム単独と比較して特定の細胞性免疫応答を誘導することができる。従って、これは様々な抗原に対する優れた水酸化アルミニウム−塩化ナトリウム複合体免疫アジュバントである。実験は、本発明の水酸化アルミニウム−塩化ナトリウム複合体をアジュバントとして使用して調製したワクチンからより良好な免疫効果及び抗腫瘍効果を得ることができ、様々な予防及び／又は治療ワクチンの開発及び応用に新しい選択肢をもたらすことを示す。
【図面の簡単な説明】
【００４４】
【図１】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、ＨＢｓＡｇモデルにおけるＨＢｓＡｇに対する各マウス群の血清抗体価を高めることができる実験結果を示す。
【図２】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、ＨＢｓＡｇモデルにおけるＨＢｓＡｇに対する各マウス群の特異的細胞性免疫応答を増強することができる実験結果を示す。
【図３】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、ＯＶＡモデルにおいてＯＶＡに対する各マウス群の血清抗体力価を増強することができる実験結果を示す。
【図４】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、ＨＢｓＡｇモデルにおいてＨＢｓＡｇに対する各マウス群の特異的細胞性免疫応答を増強することができる実験結果を示す。
【図５】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、予防及び治療の腫瘍モデルにおいてワクチンの抗腫瘍効果を増強することができることを示す。
【図６】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが特異的キラーＣＤ８＋Ｔ細胞（ＣＴＬ反応）を誘導した結果として、抗腫瘍効果を有する実験結果を示す。
【図７】高張性塩化ナトリウムがｉｎ  ｖｉｔｒｏで樹状細胞（ＤＣ）の成熟を促進することができる実験結果を示す。
【図８】高張性塩化ナトリウムがｉｎ  ｖｉｔｒｏでＤＣの抗原貪食を促進することができる実験結果を示す。
【図９】高張性塩化ナトリウムがｉｎ  ｖｉｔｒｏでＤＣ中の炎症性サイトカインの分泌を促進することができる実験結果を示す。
【図１０】高張性塩化ナトリウムがｉｎ  ｖｉｔｒｏでＤＣの抗原交差提示を促進することができる実験結果を示す。
【図１１】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが記憶Ｔ細胞を増加させ、腫瘍微小環境を改善することができる実験結果を示す。
【図１２】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ａｕｒｅｕｓ）モデルにおいて、各群のマウスの血清抗体価を高めることができる実験結果を示す。
【図１３】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが緑膿菌（ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）モデルにおいてマウスの各群の血清抗体価を高めることができる実験結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００４５】
本発明を図面と組み合わせて詳細に説明する。以下の実施形態ではワクチンの調製及び使用について更に説明する。本発明は、限定するものではないが、以下の実施形態に列挙する特定の方法及び工程を含む。
【００４６】
本発明は、生理学的レベルよりも高い塩化ナトリウムを免疫アジュバントとして使用することができ、複合免疫アジュバントを調製するために使用することができることを創造的に見出す。複合アジュバントとしての水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム複合体は、身体の体液性免疫及び細胞性免疫を効果的に誘導することができる。
【００４７】
本発明の複合アジュバントは２つの成分を有し、そのうち一般的な無機塩アジュバントとしての水酸化アルミニウムゲルアジュバントは、良好なタンパク質吸着効果によって、アルミニウムゲル分子の表面に可溶性抗原を吸着させ、抗原を濃縮し、注射の投与量を減少させることができる。更に、水酸化アルミニウムゲルは最も広く使用されており、低コストであり無毒で使い易いため、ヒトのワクチンとして米国ＦＤＡが承認した唯一のアジュバントでもある。更に、塩化ナトリウムは日常生活、産業、医学において広く使用されており、人体に対して非常に安全であり、極めて低コストである。
【００４８】
更なるスクリーニング試験によれば、本発明の化合物アジュバント中の塩化ナトリウムの用量は、改善された免疫効果を得るために塩化ナトリウムの最終的な質量分率が生理学的濃度よりも高くなるような用量である。例えば、用量が１．２％〜７．２％の範囲であるときに、より明らかな免疫効果が得られる。好ましくは、免疫アジュバントは、用量が２．７％〜４．５％の範囲であるときに、より良好な効果を生じさせることができる。本発明では、用量３．６％で最良の実験効果が得られる。本発明における塩化ナトリウムの質量分率は、抗原アジュバント複合溶媒１００ｍｌ中の塩化ナトリウムの質量（ｇ）を指す。明らかに、本発明の開示によれば、系内の塩化ナトリウムの濃度は、上記手法の標準に従ってワクチンの調製中に凍結乾燥、蒸発、又は希釈によって変化させることができることが当業者には知られているが、系内の塩化ナトリウムの濃度に必要な技術は、正式に使用する前に上記の範囲内で調整され、本発明の保護範囲に明確に該当するものとする。
【００４９】
上記の説明から当業者には、本発明の新規水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウムアジュバントが広い適用範囲及び安全な使用を有する免疫アジュバントであり、当技術分野で公知の様々な抗原に添加してワクチンとして更に使用するための免疫アジュバント抗原複合体を得ることができることは公知である。本発明の抗原（Ａｇ）は、当技術分野において免疫応答を誘導することができる任意の物質を指す。
【００５０】
更に、抗原は、腫瘍抗原、ウイルス抗原、又は細菌抗原のうちの１以上である。
【００５１】
ここで、腫瘍抗原は、腫瘍特異的抗原（ＴＳＡ）若しくは腫瘍関連抗原（ＴＡＡ）のタンパク質又は糖脂質成分を含む、当該分野で一般的な腫瘍抗原形態を指す。腫瘍抗原は、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ヒトメラノーマ関連抗原ｇＰ１００、メラノーマ抗原ｍａｇｅ−１、又は癌胎児性抗原等の１以上の一般的な腫瘍抗原から選択することができる。
【００５２】
ここで、ウイルス抗原は、Ｂ型肝炎ウイルス抗原、Ａ型肝炎ウイルス抗原、Ｃ型肝炎ウイルス抗原、ポリオウイルス抗原、狂犬病ウイルス抗原、黄熱ウイルス抗原、ＨＩＶ抗原、麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、風疹抗原、水痘抗原、ロタウイルス抗原、日本脳炎抗原、パピローマウイルス抗原、流行性出血熱ウイルス抗原、及びペストウイルス抗原等の一般的なウイルス抗原の１以上から選択される。更に、ウイルス抗原は、弱毒化又は不活性化ウイルス、ウイルスサブユニットワクチン、合成ペプチドワクチン、核酸ワクチン、及び当業者に明らかな他のウイルス抗原形態の形態を取ることができる。
【００５３】
ここで、細菌抗原は、黄色ブドウ球菌抗原、緑膿菌抗原、百日咳抗原、ジフテリア抗原、インフルエンザ菌抗原、髄膜炎菌抗原、破傷風トキソイド抗原、溶血性連鎖球菌抗原、非溶血性連鎖球菌抗原、肺炎球菌抗原、結核菌抗原、炭疽菌抗原、ビブリオコレラ抗原、レプトスピラ抗原、又はヘリコバクターピロリ抗原等の一般的な細菌抗原の少なくとも１つから選択される。細菌抗原は、当業者に明らかな死菌ワクチン、弱毒化ワクチン、及び様々な細菌の毒性ワクチン、様々な細菌の病原性成分トキソイド、又は細菌タンパク質を担体とする様々な細菌多糖類又は細菌性多糖類結合抗原の形態であり得る。
【００５４】
本発明によれば、水酸化アルミニウム型Ｂ型肝炎ワクチン又は百日咳及びジフテリアワクチンをベースに塩化ナトリウムアジュバントを添加し、より高い抗体力価及びＩＦＮ−γの分泌増加を得、水酸化アルミニウム型黄色ブドウ球菌又は緑膿菌ワクチンをベースに塩化ナトリウムアジュバントを添加し、より高い抗体力価及び細菌に対する防御効果を得る。更に、腫瘍に対して有効であることが証明された新規水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウムアジュバントを用いて、ＯＶＡ腫瘍モデル抗原の新規ワクチンを調製した。
【００５５】
水酸化アルミニウムは、一般に、１μｍ〜１０μｍ、好ましくは２μｍ〜６μｍの範囲の粒径で使用される。もちろん、水酸化アルミニウムの粒径の好ましい値は、異なる抗原と組み合わせられる可能性がある場合には適切に変動することがあり、好ましくは約３μｍである。
【００５６】
スクリーニング後、複合免疫アジュバント中の抗原と水酸化アルミニウムとの比は、重量で１：１〜１００、好ましくは重量で１：５〜５０である。
【００５７】
明らかに、当業者は、異なる抗原を有するワクチンを調製する場合、塩化ナトリウムの質量分率を上記の範囲内で合理的に調整し、複合免疫アジュバント中の抗原の用量及び抗原に対する水酸化アルミニウムゲルの重量比を合理的に調整することができる。
【００５８】
しかしながら、本発明の免疫アジュバント抗原複合体は、
方法１：
ａ．必要とされる抗原を水中に希釈又は溶解する工程；
ｂ．必要とされる塩化ナトリウムを添加し、均一に混合する工程；及び
ｃ．必要量の水酸化アルミニウムゲルを添加し、均一に混合する工程、
方法２：
ａ．高張性水酸化アルミニウムゲル複合アジュバントの原液を調製するために、水酸化アルミニウムゲルアジュバントに適量の塩化ナトリウムを添加する工程；
ｂ．必要とされる抗原を水中に希釈又は溶解する工程；及び
ｃ．必要量の高張性水酸化アルミニウムゲル複合アジュバントを添加し、均一に混合する工程、
の２つの方法によって調製することができる。
【００５９】
例えば、本発明の実施形態において、ＨＢｓＡｇ、百日咳菌、又はジフテリアトキソイドを抗原として使用する場合、免疫アジュバント／抗原複合体中のＨＢｓＡｇ、百日咳菌、又はジフテリアトキソイドの用量は１μｇであり、抗原と水酸化アルミニウムゲルとの比は好ましくは重量で１：５〜１：１００、より好ましくは重量で１：２５である。
【００６０】
ＯＶＡを抗原として使用する場合、免疫アジュバント／抗原複合体中のＯＶＡの用量は５μｇであり、抗原と水酸化アルミニウムゲルとの比は、好ましくは重量で１：５〜１：５０、より好ましくは重量で１：２５である。
【００６１】
本発明は更に、上記の技術に基づいてワクチンを調製するための新規な方法を開発する。この方法は、塩化ナトリウムと注射用の適量の水とを加え、ワクチンを使用する前に塩化ナトリウムの質量分率が１．２％〜７．２％に達するようにする工程を含む。
【００６２】
具体的には、この方法は、抗原に注射用の適量の水と塩化ナトリウムとを添加し、次に水酸化アルミニウムゲルアジュバントを添加し、調製したワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を１．２％〜７．２％にするか、又は注射用の水に抗原を直接溶解し、高張性水酸化アルミニウムゲル原液を添加し、調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を１．２％〜７．２％にすることによって実行できる。
【００６３】
調製されるワクチンが抗原及び水酸化アルミニウムゲルを含有している場合、この方法は、塩化ナトリウムと注射用の適量の水とを加えて、ワクチンを使用する前に注射するワクチン系を調製する工程と、注射するワクチン系における塩化ナトリウムの質量分率が１．２％〜７．２％に達することを可能にする工程とを含む。
【００６４】
上記方法において、注射されるワクチン系における塩化ナトリウムの質量分率は、２．７％〜４．５％が好ましく、約３．６％がより好ましい。
【００６５】
ここで、ワクチンは抗原及び水酸化アルミニウムゲルを含有する。当業者は、選択された異なる抗原及びワクチンの特定の用途に従って、抗原及び水酸化アルミニウムの相対量を適切に調節する能力を有する。一般に、抗原と水酸化アルミニウムとの比は、重量で１：１〜１００である。本発明の水酸化アルミニウムゲルは、市場で現在入手可能な水酸化アルミニウム免疫アジュバント、中国薬局方に従って現在臨床的に調製されている水酸化アルミニウムコロイドアジュバント、又は米国ＦＤＡの要件若しくは他国の関連する要件に従ってワクチン調製用に構成することができる水酸化アルミニウムコロイドであり得る。
【実施例】
【００６６】
実施例１：複合アジュバントのスクリーニング及び調製
【００６７】
材料及び試薬：水酸化アルミニウムアジュバント（アルヒドロゲル、水酸化アルミニウムゲル）は、Ａｍｅｒｉｃａｎ  ＩｎｖｉｖｏＧｅｎから購入した（白色懸濁液、１０ｍｇ／ｍＬ、粒子サイズ３μｍ）。Ｂ型肝炎表面抗原（ＨＢｓＡｇ）は、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｐｒｏｄｕｃｔｓ（ＡＲＰ）から購入し、塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）及びオボアルブミン（ＯＶＡ）は、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｓｉｇｍａ  Ｉｎｃ．から購入した。百日咳（Ｐ７２０８）及びジフテリアトキソイド（Ｄ０５６４）は、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｓｉｇｍａ  Ｉｎｃ．から購入した。黄色ブドウ球菌（Ｓ．ａ）又は緑膿菌（Ｐ．ａ）は、ＡＴＣＣから購入した（３３５９１及び２７８５３）。
【００６８】
免疫アジュバント抗原複合体は、
方法１、ａ．必要とされる抗原を水中に希釈又は溶解する工程、ｂ．必要とされる塩化ナトリウムを添加し、均一に混合する工程、及びｃ．必要量の水酸化アルミニウムゲルを添加し、均一に混合する工程、
方法２、ａ．高張性水酸化アルミニウムゲル複合アジュバントの原液を調製するために、水酸化アルミニウムゲルアジュバントに適量の塩化ナトリウムを添加する工程、ｂ．必要とされる抗原を水中に希釈又は溶解する工程、及びｃ．必要量の高張性水酸化アルミニウムゲル複合アジュバントを添加し、均一に混合する工程、
の２つの方法によって調製した。
【００６９】
更なるスクリーニング試験の後、塩化ナトリウムの最終的な質量分率が１．２％〜７．２％、好ましくは３．６％で免疫アジュバントの最良の効果をもたらした。本発明における塩化ナトリウムの質量分率は、抗原アジュバント複合溶媒１００ｍｌ中の塩化ナトリウムの質量（ｇ）を指す。
【００７０】
スクリーニング後、複合免疫アジュバント中の抗原と水酸化アルミニウムとの比は、重量で１：１〜１００、好ましくは重量で１：５〜５０であった。
【００７１】
ＨＢｓＡｇ、百日咳菌、又はジフテリア毒素を抗原として使用した場合、免疫アジュバント／抗原複合体中のＨＢｓＡｇ、百日咳菌、又はジフテリア毒素の用量は１μｇであり、抗原と水酸化アルミニウムゲルとの比は好ましくは１：５〜１：１００、より好ましくは１：２５であった。
【００７２】
モデル腫瘍特異的抗原としてＯＶＡを使用した場合、免疫アジュバント／抗原複合体中のＯＶＡの用量は５μｇであり、抗原と水酸化アルミニウムゲルとの比は、好ましくは重量で１：５〜１：５０、より好ましくは重量で１：２５であった。
【００７３】
実施例２：本発明におけるＢ型肝炎ワクチンアジュバントとしての塩化ナトリウムを用いた動物免疫試験
【００７４】
材料及び試薬：水酸化アルミニウムアジュバント、塩化ナトリウム、及びＨＢｓＡｇは、実施例１と同じである。ＢＡＬＢ／ｃマウスは、Ｂｅｉｊｉｎｇ  Ｖｉｔａｌ  Ｒｉｖｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ａｎｉｍａｌ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｃｏ．、Ｌｔｄ．から購入した。Ｂ型肝炎ウイルス表面抗体アッセイキット（Ｗａｎｔａｉ  ＢｉｏＰｈａｒｍ）、ＩＦＮ−γ用ＥＬＩＳＡキット（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、ＵＳＡ）、リンパ球分離培地（Ｄａｋｅｗｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈ  Ｃｏ．、Ｌｔｄ．）、７０μｍナイロンメッシュフィルター（Ｂｅｃｔｏｎ、Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ  ａｎｄ  Ｃｏｍｐａｎｙ、ＵＳＡ）、及び丸底２４ウェルプレート（ＮＵＮＫ）。
【００７５】
実験動物を、１．対照、２．ＨｂｓＡｇ、３．ＨｂｓＡｇ／Ａｌ（ＯＨ）３、４．ＨｂｓＡｇ／Ａｌ（ＯＨ）３／１．８％ＮａＣｌ、５．ＨｂｓＡｇ／Ａｌ（ＯＨ）３／３．６％ＮａＣｌ、６．ＨｂｓＡｇ／Ａｌ（ＯＨ）３／７．２％ＮａＣｌのようにグループ分けした。全ての群において、ＨＢｓＡｇは１μｇであり、Ａｌ（ＯＨ）３は２５μｇであり、ＨＢｓＡｇとＡｌ（ＯＨ）３との比は重量で１：２５であり、塩化ナトリウムの濃度はそれぞれ０、１．８％、３．６％、及び７．２％であった。動物数は各群５匹ずつであった。筋肉免疫を０、２、及び３週目に行い、次の実験のために血清及び脾臓リンパ球を４週目に採取した。
【００７６】
（１）抗体価の検出
各群のマウスの血清中の総ＩｇＧ及びＩｇＧサブクラス抗体力価を、ＥＬＩＳＡキット（Ｗａｎｔａｉ  ＢｉｏＰｈａｒｍ）によってアッセイした。希釈後の各血清抗体群の吸光度試験結果を図１に示す。ＨＢｓＡｇ群単独では抗体をほとんど産生できなかった。Ａｌ（ＯＨ）３単独又はＡｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバントを使用する群は、抗体の産生を効果的に刺激することができた。しかしながら、Ａｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバント群は、Ａｌ（ＯＨ）３群単独と比較して、より高いＩｇＧ及びＩｇＧ１抗体価を産生することができ、塩化ナトリウムの質量分率が３．６％のときに最も高い値に達した。
【００７７】
（２）サイトカインＩＦＮ−γの測定
ＩＦＮ−γは、ＥＬＩＳＡ及びフローサイトメトリにより測定した。詳細は以下の通りであり、最後の免疫化の１週間後にマウスを屠殺し、それらの脾臓を摘出した。脾臓リンパ球をｉｎ  ｖｉｔｒｏにてＨＢｓＡｇで刺激し、ＣＯ２インキュベータで７２時間インキュベートした。培養上清中のＩＦＮ−γ濃度をＥＬＩＳＡアッセイキットで測定した。
【００７８】
実験結果を図２に示す。ＨＢｓＡｇモデルでは、高塩／アルミニウムアジュバント群でＣＤ８＋ＩＮＦ−γ分泌及び細胞免疫の有意な増加が観察された。フローサイトメトリ及びＥＬＩＳＡの結果は一致していた。
【００７９】
実施例３：本発明におけるＯＶＡ腫瘍特異的抗原アジュバントとしての塩化ナトリウムを用いた動物免疫試験
【００８０】
材料及び試薬：水酸化アルミニウムアジュバント、塩化ナトリウム、及びＯＶＡは、実施例１と同じである。マウス、ＩＦＮ−γ用ＥＬＩＳＡキット、リンパ球分離培地、７０μｍナイロンメッシュフィルター、及び丸底２４／９６ウェルプレートは、実施例２と同じである。マウスリンパ管がん細胞ＥＧ．７（ＡＴＣＣ、ＵＳＡ）、Ｎａ２５１ＣｒＯ４（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ、ＵＳＡ）。
【００８１】
（１）本発明の新規アジュバントに基づくマウス同系腫瘍の増殖の予防及び治療実験
予防実験では、Ｃ５７マウスを、１．対照、２．ＯＶＡ、３．ＯＶＡ／Ａｌ（ＯＨ）３、４．ＯＶＡ／Ａｌ（ＯＨ）３／３．６％ＮａＣｌの４群に無作為に分けた。全ての群について、腫瘍特異的抗原としてＯＶＡは５μｇ、Ａｌ（ＯＨ）３は１２５μｇであり、ＯＶＡとＡｌ（ＯＨ）３との比は重量で１：２５であり、塩化ナトリウムをグループ分け要件による濃度で処方した。各群のマウスは１０匹であり、マウスの左臀部にそれぞれ０、２、及び３のワクチンを皮下注射した。最後の免疫化後、第７日目にマウスリンパ腫細胞（３×１０６／マウス）を右側に皮下接種し、マウス同系腫瘍モデルを樹立し、マウスの腫瘍体積を３日毎に測定した。
【００８２】
治療実験では、マウスを４群に無作為に分けた後、マウスリンパ腫細胞（３×１０６／マウス）を腫瘍が触診可能になるまで（ワクチン接種後３〜５日で約３ｍｍ）右側に皮下接種した。その後、予防実験に記載した各群の用量で週１回、３回連続してマウスに皮下免疫療法を行った。マウスの腫瘍体積を３日毎に測定した。
【００８３】
予防結果及び治療結果をそれぞれ図５に示す。対照群（対照、ＯＶＡ）及びＡｌ（ＯＨ）３アジュバントワクチン群単独と比較して、Ａｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバント群では、腫瘍増殖が有意に阻害された。
【００８４】
（２）抗体価の測定
実験方法及び群は実施例２と同様であり、１．対照、２．ＯＶＡ、３．ＯＶＡ／Ａｌ（ＯＨ）３、４．ＯＶＡ／Ａｌ（ＯＨ）３／１．８％ＮａＣｌ、５．ＯＶＡ／Ａｌ（ＯＨ）３／３．６％ＮａＣｌ、６．ＯＶＡ／Ａｌ（ＯＨ）３／７．２％ＮａＣｌであった。全ての群について、ＯＶＡは５μｇであり、Ａｌ（ＯＨ）３は１２５μｇであり、ＯＶＡとＡｌ（ＯＨ）３との比は重量で１：２５であり、塩化ナトリウムはグループ分けの要件による濃度で調製した。各群のマウスは５匹であった。最後の免疫化後、第７日目にマウス血清を採取し、各群のマウスにおける抗体力価を自己被覆ＥＬＩＳＡによってアッセイした。各群の抗体吸光度の検出結果を図３に示す。ＯＶＡ群単独では抗体をほとんど産生できなかった。Ａｌ（ＯＨ）３単独又はＡｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバントを使用する群は、抗体の産生を効果的に刺激することができる。しかしながら、Ａｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバント群は、Ａｌ（ＯＨ）３群単独と比較して、より高いＩｇＧ及びＩｇＧ１抗体価を産生することができ、塩化ナトリウムの質量分率が３．６％のときに最も高い値に達した。
【００８５】
（３）サイトカインＩＦＮ−γの測定
ＩＦＮ−γは、自己被覆ＥＬＩＳＡキット（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）及びフローサイトメトリによって測定した。詳細は以下の通りであり、最後の免疫化の１週間後にマウスを屠殺し、それらの脾臓を摘出した。脾臓リンパ球を５μｇの異なるＯＶＡペプチド断片で刺激し、ＣＯ２インキュベータ中で７２時間インキュベートした。培養上清中のＩＦＮ−γ濃度をＥＬＩＳＡアッセイキットで測定した。細胞をＩＮＦ−γ及び特異的ＯＶＡ−Ｔｅｔｒａｍｅｒ実験に使用した。
【００８６】
実験結果を図４に示す。ＯＶＡモデルの高塩／アルミニウムアジュバント群において、ＣＤ８＋ＩＮＦ−γ分泌が有意に増加することが見出された。フローサイトメトリ及びＥＬＩＳＡの結果は一致していた。更に、図４ｃは、特異的ＯＶＡテトラマーの陽性割合の増加を示し、これはＡｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム化合物アジュバントが特異的細胞性免疫を実際に誘導することを示す。
【００８７】
（４）本発明の新規アジュバントワクチンは、腫瘍特異的細胞傷害性Ｔリンパ球の殺傷機能を刺激する
細胞傷害性Ｔリンパ球の殺傷機能は、５１Ｃｒ放出試験によって検出された。
【００８８】
予防モデルに記載されているようにマウスに免疫を与えた。最後の免疫化の７日後に、マウス３匹を各群から無作為に選出した。マウスを無菌状態で解剖して脾臓リンパ球を分離し、１×１０７／ｍｌの濃度に調整した後、エフェクター細胞を得た。
【００８９】
ｉｎ  ｖｉｔｒｏで培養した腫瘍細胞Ｅ．Ｇ７を採取し、計数した。培地に基づいて腫瘍細胞の濃度を１×１０７／ｍｌに調整した。２００μｌの細胞を取り、１００μｃｉのＮａ２５１ＣｒＯ４を添加し、３７℃で２時間インキュベートし、標識し、３回洗浄した。細胞を計数した後、細胞濃度を０．５×１０５／ｍｌに調整し、５１Ｃｒ標識腫瘍細胞、即ち標的細胞を得た。丸底の９６ウェルプレートに、各ウェルにつき１００μｌの標的細胞懸濁液を添加し、表１の異なる比率に従ってエフェクター細胞を３つのウェルに加えた。
【００９０】
【表１】
2019515005.tif 000003
【００９１】
各ウェルに５１Ｃｒ標識腫瘍細胞１００μｌを加え、１００μｌの培地を天然放出群に添加し、１００μｌの１％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を最大放出群にそれぞれ添加した。９６ウェルプレートの水平ブリックを１５００ｒｐｍ／分で３０秒間遠心分離し、５％ＣＯ２インキュベータ内で、３７℃でインキュベートした。４〜６時間後、９６ウェルプレートの水平ブリックを１５００ｒｐｍ／分で５分間遠心分離し、各ウェルから１００μｌの上清をピペットで採り、Ｂａｃｋｍｅｎ５５０Ｂγカウンターでｃｐｍ値を検出した。ＣＴＬ殺傷率の式は、殺傷率％＝［（実験群ｃｐｍ−自然放出群ｃｐｍ）／（対照群ｃｐｍ−自然放出群ｃｐｍ）］×１００％である。
【００９２】
実験結果を図６ｄに示し、ここでＡｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバント群（ＯＶＡ／Ａｌ／３．６％ＮａＣｌ）は、対照群（対照、ＯＶＡ）又はＡｌ（ＯＨ）３アジュバント群単独（ＯＶＡ／Ａｌ）よりも効果的に腫瘍細胞に対する特異的ＣＴＬ応答を誘導することができる。
【００９３】
（５）本発明の新規なアジュバントワクチン免疫化により誘発されたマウス養子免疫療法実験及び抗体ブロッキング実験
マウスの右背部側面にＥＧ．７細胞（３×１０６／マウス）を皮下注射し、マウス同系腫瘍モデルを樹立し、マウスを各群５匹の４群に無作為に分けた。細胞性養子療法では、予防実験から得られた脾臓リンパ球１０７個／マウスを、１日前、マウス同系腫瘍モデルを樹立した１日後、及び３日後の合計３回、尾静脈から注射した。マウスの腫瘍体積の変化を３日毎に観察した。
【００９４】
血清養子療法では、予防実験から得られた血清２５０μｌ／マウスを、１日前及びマウス同系腫瘍モデルを樹立した後週２回３週間連続で尾静脈から注射した。マウスの腫瘍体積の変化を３日毎に観察した。
【００９５】
抗体ブロッキングでは、抗ＣＤ４、ＣＤ８、ＮＫモノクローナル抗体、又は対照非特異的ＲＡＴ抗体を、免疫化前日及び免疫化の間、週２回３週間連続で腹腔内注射により投与した。免疫化後、マウスにＥＧ．７細胞を接種し、マウス腫瘍生成曲線を３日毎にモニターした。
【００９６】
図６ａ、図６ｂ、及び図６ｃに示した実験結果は、血清養子療法が抗腫瘍効果をほとんど有さなかった一方で、細胞養子療法のＡｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバント群（ＯＶＡ／Ａｌ／３．６％ＮａＣｌ）は有意な抗腫瘍効果を有したことを明らかにする。更に、抗腫瘍効果はＣＤ４＋Ｔ細胞のブロッキングによって影響されなかったが、ＣＤ８＋Ｔ細胞のブロッキングは、化合物免疫アジュバントの抗腫瘍効果をほぼ完全に妨害し、これは、高塩／アルミニウム化合物アジュバントの抗腫瘍効果がそれによって誘導されたＣＤ８＋キラーＴリンパ球に起因し、ＣＤ４＋Ｔリンパ球ではないことを示す。
【００９７】
（６）本発明の新規なアジュバントワクチン免疫化による記憶Ｔリンパ球及びマウス腫瘍微小環境の変化
予防又は治療ワクチン実験における脾臓リンパ球又はマウスの腫瘍を単一細胞懸濁液に調製し、様々な免疫細胞集団の変化をフローサイトメトリによって検出した。
【００９８】
図１１ａに示す記憶Ｔリンパ球の実験結果は、Ａｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバント免疫化が、中枢及びエフェクターＣＤ４＋ＣＤ８＋Ｔリンパ球を有意に増加させ得ることを明らかにする。腫瘍微小環境について、図１１ｂ及び図１１ｃに示す結果は、Ａｌ（ＯＨ）３＋塩化ナトリウム複合体アジュバントが、腫瘍組織におけるＣＤ８＋キラーＴリンパ球の浸潤を増加させただけでなく、免疫抑制性ＭＤＳＣ及びＭ２マクロファージの数を減少させたことを明らかにする。
【００９９】
（７）本発明の新規な塩化ナトリウムアジュバントは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでＤＣの機能を促進することができる
主な抗原提示細胞として、ＤＣはワクチンの免疫応答において不可欠な役割を果たす。そこで我々は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのＤＣの機能に対する高ＮａＣｌ濃度の影響を研究した。
【０１００】
実験群を図７に示す。Ｃ５７ＢＬ／６マウス初代骨髄ＤＣを古典的方法により調製した。細胞をＧＭ−ＣＳＦ等のサイトカインで６日間分化及び刺激し、採取して塩化ナトリウムの異なる質量分率を含む培地で４８時間培養を続け、フローサイトメトリによってＣＤ８０及びＣＤ８６等の成熟分子の割合を検出し、ＥＬＩＳＡによって上清中の炎症性サイトカインの分泌をアッセイした。一方、部分細胞を採取し溶解してＲＮＡを調製し、ＲＴ−ＰＣＲによって関連する炎症分子のｍＲＮＡレベルを検出した。更に、異なる質量分率の塩化ナトリウム及び蛍光標識ＯＶＡ腫瘍モデル抗原又はデキストランを含む培地でＤＣを１時間培養し、蛍光顕微鏡又はフローサイトメトリによって関連する抗原の食作用を検出した。
【０１０１】
図７に示すように、高ＮａＣｌ濃度を有するＤＣのｉｎ  ｖｉｔｒｏ刺激は、その成熟を促進し、その表面上のＣＤ８０、ＣＤ８６、及びＭＨＣＩＩ等の分子の発現を増加させることができた。図８に示すように、高ＮａＣｌ濃度はまた、抗原のＤＣの食作用を促進し得る。図９に示すように、ｍＲＮＡ及びタンパク質レベルにおける炎症性サイトカインＩＬ６及びＩＬ１ｂの放出を更に増加させることができる。
【０１０２】
次に、高ＮａＣｌ濃度によって誘発された細胞特異的免疫応答が、ＤＣの交差抗原提示に関連するかどうかを引き続き調べた。
【０１０３】
ＤＣ／Ｔリンパ球共培養実験の実験群を図１０に示す。高ＮａＣｌ濃度及びｉｎ  ｖｉｔｒｏのＯＶＡ抗原及びＯＴ−１トランスジェニックマウス由来のＣＦＳＥ標識ＣＤ８＋Ｔリンパ球によって２〜３日間刺激したＤＣを共培養し、顕微鏡の白色光下でのＣＬＵＳＴＥＲの形成を観察し、フローサイトメトリによってＣＦＳＥ標識ＣＤ８＋Ｔリンパ球の増殖を検出し、採取した培養上清中のＩＬ２の分泌をＥＬＩＳＡによって検出した。
【０１０４】
免疫蛍光共局在化実験の実験群は同上であった。高ＮａＣｌ濃度及びｉｎ  ｖｉｔｒｏの蛍光標識ＯＶＡによって刺激したＤＣを固定して透過させ、プロテアソームとリソソームのオルガネラ蛍光タンパク質マーカで染色し、共焦点顕微鏡下で観察した。
【０１０５】
図１０ａ、図１０ｂ、及び図１０ｃによれば、ＤＣ／Ｔリンパ球共培養実験は、高ＮａＣｌ濃度で処理したＤＣが取り込まれ、ＯＶＡ抗原分子を特異的ＣＤ８＋Ｔリンパ球に提示し、ＩＬ２の増殖及び分泌を誘導し得ることを明らかにする。図１０ｄによれば、免疫蛍光共局在化実験はまた、ＯＶＡが、高ＮａＣｌ濃度で処理したＤＣ中のリソソームよりもプロテアソームによってほとんど分解されたことを明らかにする。従って、高ＮａＣｌ濃度は、ＤＣの交差抗原提示を有意に改善することができる。
【０１０６】
実施例４：本発明における細菌ワクチンアジュバントとしての塩化ナトリウムを用いた動物免疫試験
【０１０７】
材料及び試薬：水酸化アルミニウムアジュバント、塩化ナトリウム、黄色ブドウ球菌（Ｓ．ａ）又は緑膿菌（Ｐ．ａ）、百日咳菌、及びジフテリアトキソイドは、実施例１と同じである。Ｃ５７ＢＬ／６マウスは、Ｂｅｉｊｉｎｇ  Ｖｉｔａｌ  Ｒｉｖｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ａｎｉｍａｌ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｃｏ．、Ｌｔｄ．から購入した。ＩＦＮ−γ用ＥＬＩＳＡキット（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、ＵＳＡ）、リンパ球分離培地（Ｄａｋｅｗｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈ  Ｃｏ．、Ｌｔｄ．）、７０μｍナイロンメッシュフィルター（Ｂｅｃｔｏｎ、Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ  ａｎｄ  Ｃｏｍｐａｎｙ、ＵＳＡ）、及び丸底２４ウェルプレート（ＮＵＮＫ）。
【０１０８】
実験動物を、１．対照、２．Ｓ．ａ又はＰ．ａ、３．Ｓ．ａ又はＰ．ａ／Ａｌ（ＯＨ）３、４．Ｓ．ａ又はＰ．ａ／Ａｌ（ＯＨ）３／３．６％ＮａＣｌのように群にして免疫化した。具体的な免疫化計画は以下の通りであり、拡大培養の細菌溶液を遠心分離及び洗浄し、固定し、１％パラホルムアルデヒドで不活性化し洗浄し、ＰＢＳで再懸濁した。各群のマウスは５匹であった。０．０５ＯＤ（１×１０６ＣＦＵ／２００μＬ）、０．５ＯＤ（１×１０７ＣＦＵ／２００μＬ）、及び２．５ＯＤ（５×１０７ＣＦＵ／２００μＬ）の細菌溶液を用いて、０、２、及び３週目に３回皮下免疫化し、各免疫後に抗体検出の目的で血清を採取した。
【０１０９】
抗体価の検出は、各群のマウスの血清中の異なる細菌に対する特異的ＩｇＧ抗体力価を、１×１０７ＣＦＵ／１００μＬの全細菌抗原で被覆した自己被覆９６ウェルプレートを用いてＥＬＩＳＡによって検出した。図１２に示す実験結果は、黄色ブドウ球菌特異的抗体が検出され、Ａｌ（ＯＨ）３アジュバントが抗体レベルの上昇を助けることができ、高塩Ａｌ（ＯＨ）３アジュバントがより良好な効果を有することを明らかにする。同様に、緑膿菌特異的抗体が検出された。図１３に示す実験結果は、Ａｌ（ＯＨ）３アジュバントが抗体レベルの上昇を助けることができ、高塩Ａｌ（ＯＨ）３アジュバントがより良い効果を有することを明らかにする。百日咳菌又はジフテリア毒素の実験動物は、黄色ブドウ球菌及び緑膿菌と同じ群にグループ分けされた。全ての群について、百日咳菌又はジフテリア毒素は１μｇであり、Ａｌ（ＯＨ）３は２５μｇであり、百日咳菌又はジフテリア毒素とＡｌ（ＯＨ）３との比は重量で１：２５であり、塩化ナトリウムはグループ分けの要件による濃度で調製した。各群のマウスは５匹であった。０、２、及び３週目に筋肉免疫を行い、血清抗体のＥＬＩＳＡ試験のために毎週血清を採取した。実験結果は黄色ブドウ球菌及び緑膿菌に類似し、即ち、水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントは、ジフテリア毒素を誘導して特異的抗体を産生し、抗体産生を約４８％増加させることができる。また、水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントは、百日咳毒素の産生を約４５％多く誘導することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【手続補正書】
【提出日】平成31年1月8日(2019.1.8)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
水酸化アルミニウムゲル及び塩化ナトリウムを含む複合免疫アジュバントであって；前記複合免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの含量が、生理学的レベルよりも高く、前記塩化ナトリウムの最終的な質量分率が２．７％〜４．５％である、複合免疫アジュバント。
【請求項２】
前記塩化ナトリウムの最終的な質量分率が３．６％である、請求項１に記載の複合免疫アジュバント。
【請求項３】
前記水酸化アルミニウムゲルの粒子サイズが１μｍ〜１０μｍの範囲である、請求項１又は２に記載の複合免疫アジュバント。
【請求項４】
抗原と、請求項１〜３のいずれか１項に記載の前記複合免疫アジュバントと、を含む、免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項５】
前記抗原と前記複合免疫アジュバント中の水酸化アルミニウムとの比が重量で１：１〜１００である、請求項４に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項６】
前記抗原と前記水酸化アルミニウムとの比が重量で１：５〜５０である、請求項５に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項７】
前記抗原が、腫瘍抗原、ウイルス抗原、又は細菌抗原の少なくとも１つである、請求項４〜６のいずれか１項に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項８】
前記腫瘍抗原が、ＯＶＡ腫瘍モデル抗原、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ヒトメラノーマ関連抗原ｇＰ１００、メラノーマ抗原ｍａｇｅ−１、又は癌胎児性抗原の少なくとも１つから選択される、請求項７に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項９】
前記ウイルス抗原が、Ｂ型肝炎ウイルス抗原、Ａ型肝炎ウイルス抗原、Ｃ型肝炎ウイルス抗原、ポリオウイルス抗原、狂犬病ウイルス抗原、黄熱ウイルス抗原、ＨＩＶ抗原、麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、風疹抗原、水痘抗原、ロタウイルス抗原、日本脳炎抗原、パピローマウイルス抗原、流行性出血熱ウイルス抗原、及びペストウイルス抗原等の一般的なウイルス抗原の少なくとも１つから選択され得ることを特徴とする、請求項７に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項１０】
前記細菌抗原が、黄色ブドウ球菌抗原、緑膿菌抗原、百日咳抗原、ジフテリア抗原、インフルエンザ菌抗原、髄膜炎菌抗原、破傷風トキソイド抗原、溶血性連鎖球菌抗原、非溶血性連鎖球菌抗原、肺炎球菌抗原、結核菌抗原、炭疽菌抗原、ビブリオコレラ抗原、レプトスピラ抗原、又はヘリコバクターピロリ抗原等の一般的な細菌抗原の少なくとも１つから選択される、請求項７に記載の免疫アジュバント抗原複合体。
【請求項１１】
ａ．必要とされる抗原を水中に希釈又は溶解する工程と；
ｂ．必要な塩化ナトリウムを添加し、均一に混合する工程と；
ｃ．必要量の水酸化アルミニウムゲルを添加し、均一に混合する工程と；
を含む、請求項４〜１０のいずれか１項に記載の免疫アジュバント抗原複合体の調製方法。
【請求項１２】
ａ．高張性水酸化アルミニウムゲル複合アジュバントの原液を調製するために、水酸化アルミニウムゲルアジュバントに適量の塩化ナトリウムを添加する工程と；
ｂ．必要な抗原を水中に希釈又は溶解する工程と；
ｃ．必要量の高張性水酸化アルミニウム複合アジュバントを添加し、均一に混合する工程と；
を含む、請求項４〜１０のいずれか１項に記載の免疫アジュバント抗原複合体の調製方法。
【請求項１３】
ワクチンの調製における、請求項１〜３のいずれか１項に記載の複合免疫アジュバントの使用。
【請求項１４】
免疫アジュバントの調製における、塩化ナトリウムの使用であって、
前記免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの用量が生理学的レベルよりも高く、且つ前記免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの用量が、そこから調製される免疫アジュバント抗原複合体中の塩化ナトリウムの質量分率が２．７％〜４．５％である、使用。
【請求項１５】
前記免疫アジュバントが水酸化アルミニウムゲルを更に含む、請求項１４に記載の使用。
【請求項１６】
前記免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの用量が、そこから調製される免疫アジュバント抗原複合体中の塩化ナトリウムの質量分率が３．６％である、請求項１４に記載の使用。
【請求項１７】
免疫アジュバント抗原複合体の調製における、塩化ナトリウムの使用であって、
前記免疫アジュバント中の塩化ナトリウムの用量が生理学的レベルよりも高く、且つ前記免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの用量が、そこから調製される免疫アジュバント抗原複合体中の塩化ナトリウムの質量分率が２．７％〜４．５％である、使用。
【請求項１８】
前記免疫アジュバント抗原複合体が水酸化アルミニウムゲルのアジュバントを更に含む、請求項１７に記載の使用。
【請求項１９】
免疫アジュバント中の前記塩化ナトリウムの用量が、そこから調製される免疫アジュバント抗原複合体中の塩化ナトリウムの質量分率が３．６％である、請求項１７又は１８に記載の使用。
【請求項２０】
抗原と水酸化アルミニウムとの比が重量で１：１〜１００である、請求項１７に記載の使用。
【請求項２１】
前記抗原と複合免疫アジュバント中の水酸化アルミニウムとの比が重量で１：５〜５０である、請求項２０に記載の使用。
【請求項２２】
前記抗原が、腫瘍抗原、ウイルス抗原、又は細菌抗原の少なくとも１つである、請求項１７〜２１のいずれか１項に記載の使用。
【請求項２３】
前記腫瘍抗原が、ＯＶＡ腫瘍モデル抗原、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ヒトメラノーマ関連抗原ｇＰ１００、メラノーマ抗原ｍａｇｅ−１、又は癌胎児性抗原の少なくとも１つから選択される、請求項２２に記載の使用。
【請求項２４】
前記ウイルス抗原が、Ｂ型肝炎ウイルス抗原、Ａ型肝炎ウイルス抗原、Ｃ型肝炎ウイルス抗原、ポリオウイルス抗原、狂犬病ウイルス抗原、黄熱ウイルス抗原、ＨＩＶ抗原、麻疹抗原、流行性耳下腺炎抗原、風疹抗原、水痘抗原、ロタウイルス抗原、日本脳炎抗原、パピローマウイルス抗原、流行性出血熱ウイルス抗原、及びペストウイルス抗原等の一般的なウイルス抗原の少なくとも１つから選択される、請求項２２に記載の使用。
【請求項２５】
前記細菌抗原が、黄色ブドウ球菌抗原、緑膿菌抗原、百日咳抗原、ジフテリア抗原、インフルエンザ菌抗原、髄膜炎菌抗原、破傷風トキソイド抗原、溶血性連鎖球菌抗原、非溶血性連鎖球菌抗原、肺炎球菌抗原、結核菌抗原、炭疽菌抗原、ビブリオコレラ抗原、レプトスピラ抗原、又はヘリコバクターピロリ抗原等の一般的な細菌抗原の少なくとも１つから選択される、請求項２２に記載の使用。
【請求項２６】
塩化ナトリウムと注射用の適量の水とを加え、ワクチンを使用する前に塩化ナトリウムの質量分率を２．７％〜４．５％にする工程を含む、ワクチンの調製方法。
【請求項２７】
抗原に注射用の適量の水及び塩化ナトリウムを添加し、次に水酸化アルミニウムゲルアジュバントを添加し、ワクチンを使用する前の調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を２．７％〜４．５％にする工程；又は
前記抗原を水に直接溶解し、高張性水酸化アルミニウムゲル原液を添加し、調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を２．７％〜４．５％にする工程；又は
調製するワクチンが既に前記抗原及び水酸化アルミニウムゲルを含有している場合には、調製過程において塩化ナトリウムのアジュバントを直接添加し、調製ワクチン中の塩化ナトリウムの質量分率を注射前に２．７％〜４．５％にする工程；
を含む、請求項２６に記載のワクチンの調製方法。
【請求項２８】
前記調製ワクチン中の塩化ナトリウムの最終的な質量分率が３．６％である、請求項２６又は２７に記載のワクチンの調製方法。
【請求項２９】
前記調製ワクチン中の抗原と水酸化アルミニウムとの比が重量で１：１〜１００である、請求項２７に記載のワクチンの調製方法。
【請求項３０】
前記調製ワクチン中の前記抗原と水酸化アルミニウムとの比が重量で１：５〜５０である、請求項２７に記載のワクチンの調製方法。
【手続補正２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００４４
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００４４】
【図１】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、ＨＢｓＡｇモデルにおけるＨＢｓＡｇに対する各マウス群の血清抗体価を高めることができる実験結果を示す。
【図２】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、ＨＢｓＡｇモデルにおけるＨＢｓＡｇに対する各マウス群の特異的細胞性免疫応答を増強することができる実験結果を示す。
【図３】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、ＯＶＡモデルにおいてＯＶＡに対する各マウス群の血清抗体力価を増強することができる実験結果を示す。
【図４】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、ＯＶＡモデルにおいてＯＶＡに対する各マウス群の特異的細胞性免疫応答を増強することができる実験結果を示す。
【図５】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、予防及び治療の腫瘍モデルにおいてワクチンの抗腫瘍効果を増強することができることを示す。
【図６】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが特異的キラーＣＤ８＋Ｔ細胞（ＣＴＬ反応）を誘導した結果として、抗腫瘍効果を有する実験結果を示す。
【図７】高張性塩化ナトリウムがｉｎ  ｖｉｔｒｏで樹状細胞（ＤＣ）の成熟を促進することができる実験結果を示す。
【図８】高張性塩化ナトリウムがｉｎ  ｖｉｔｒｏでＤＣの抗原貪食を促進することができる実験結果を示す。
【図９】高張性塩化ナトリウムがｉｎ  ｖｉｔｒｏでＤＣ中の炎症性サイトカインの分泌を促進することができる実験結果を示す。
【図１０】高張性塩化ナトリウムがｉｎ  ｖｉｔｒｏでＤＣの抗原交差提示を促進することができる実験結果を示す。
【図１１】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが記憶Ｔ細胞を増加させ、腫瘍微小環境を改善することができる実験結果を示す。
【図１２】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ａｕｒｅｕｓ）モデルにおいて、各群のマウスの血清抗体価を高めることができる実験結果を示す。
【図１３】水酸化アルミニウムゲル−塩化ナトリウム免疫アジュバントが緑膿菌（ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）モデルにおいてマウスの各群の血清抗体価を高めることができる実験結果を示す。
【手続補正３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００９１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００９１】
各ウェルに５１Ｃｒ標識腫瘍細胞１００μｌを加え、１００μｌの培地を天然放出群に添加し、１００μｌの１％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を最大放出群にそれぞれ添加した。９６ウェルプレートの水平遠心ローターを１５００ｒｐｍ／分で３０秒間遠心分離し、５％ＣＯ２インキュベータ内で、３７℃でインキュベートした。４〜６時間後、９６ウェルプレートの水平遠心ローターを１５００ｒｐｍ／分で５分間遠心分離し、各ウェルから１００μｌの上清をピペットで採り、Ｂａｃｋｍｅｎ５５０Ｂγカウンターでｃｐｍ値を検出した。ＣＴＬ殺傷率の式は、殺傷率％＝［（実験群ｃｐｍ−自然放出群ｃｐｍ）／（対照群ｃｐｍ−自然放出群ｃｐｍ）］×１００％である。
【手続補正４】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００９５
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００９５】
抗体ブロッキングでは、抗ＣＤ４、ＣＤ８、ＮＫモノクローナル抗体、又は対照非特異的ＲＡＴ抗体を、免疫化前日及び免疫化の間、週２回３週間連続で腹腔内注射により投与した。免疫化後、マウスにＥＧ．７細胞を接種し、マウス腫瘍成長曲線を３日毎にモニターした。
【国際調査報告】
2019515005.tif 000017
2019515005.tif 000018
2019515005.tif 000019
2019515005.tif 000020
2019515005.tif 000021
2019515005.tif 000022