(57)【要約】  対象における転移性癌を診断及び治療する方法が開示されている。この方法は、対象からの生体試料においてＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２のうちの少なくとも１つの発現を検出又は調節することを含む。
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
対象における癌転移を予防する方法であって、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂもしくはｍｉＲＮＡ３７４ｂのうちの少なくとも１つに対する阻害剤、又はｍｉＲＮＡ１２２及び／又はｍｉＲＮＡ１２２の発現を増加させる化合物、の有効量を対象に投与することを含む、方法。
【請求項２】
阻害剤が遺伝子サイレンシング核酸分子又は小分子である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
遺伝子サイレンシング核酸分子が、低分子干渉ＲＮＡ、アンチセンスオリゴヌクレオチド、低分子ヘアピン型ＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、リボザイム又は他のＲＮＡ干渉分子である、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
小分子がペプチド、ペプトイド、アミノ酸、アミノ酸類似体、有機又は無機化合物である、請求項２に記載の方法。
【請求項５】
阻害剤がＫｉｆ３ｂの阻害剤である、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
阻害剤がＳＲＰＫ１の阻害剤である、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
阻害剤がＴＭＥＭ２２９ｂの阻害剤である、請求項１に記載の方法。
【請求項８】
阻害剤がＣ１４ｏｒｆ１４２の阻害剤である、請求項１に記載の方法。
【請求項９】
阻害剤がＮｒ２ｆ１の阻害剤である、請求項１に記載の方法。
【請求項１０】
以下を含む、患者におけるＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２を検出する方法：
ヒト患者から生体試料を取得するステップ、
前記試料中にＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２が存在するか否かを検出するステップ、該ステップは、
抗Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩもしくはｍｉＲＮＡ１２２抗体、又はＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂもしくはｍｉＲＮＡ１２２ｍＲＮＡに相補的である核酸、に前記試料を接触させること、及びＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂもしくはｍｉＲＮＡ１２２と、前記抗体との間の結合、又はＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂもしくはｍｉＲＮＡ１２２ｍＲＮＡに相補的である核酸とのハイブリダイゼーション、を検出すること、による。
【請求項１１】
ヒト患者が癌を患っている、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
生体試料が腫瘍生検材料である、請求項１０に記載の方法。
【請求項１３】
Ｋｉｆ３ｂが検出される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１４】
ＳＲＰＫ１が検出される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１５】
ＴＭＥＭ２２９ｂが検出される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１６】
Ｃ１４ｏｒｆ１４２が検出される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１７】
Ｎｒ２ｆ１が検出される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１８】
ｍｉＲＮＡ１２２が検出される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１９】
以下を含む、患者における癌転移を診断及び治療する方法：
ヒト患者から生体試料を取得するステップ、
Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２のうちの少なくとも１つが前記生体試料中に存在するか否かを検出するステップ、
転移性癌もしくは転移性癌の発症を有する患者であると診断するステップであって、生体試料中にＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２の存在が検出された場合に診断する、及び
Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂもしくはｍｉＲＮＡ１２２の少なくとも１つに対する阻害剤、及び／又はｍｉＲＮＡ１２２の発現を増加させる化合物、の有効量を、前記診断された患者に投与するステップ。
【請求項２０】
生体試料が腫瘍生検材料である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２１】
阻害剤が遺伝子サイレンシング核酸分子又は小分子である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２２】
遺伝子サイレンシング核酸分子が、低分子干渉ＲＮＡ、アンチセンスオリゴヌクレオチド、低分子ヘアピン型ＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、リボザイム又は他のＲＮＡ干渉分子である、請求項２１に記載の方法。
【請求項２３】
小分子がペプチド、ペプトイド、アミノ酸、アミノ酸類似体、有機又は無機化合物である、請求項２１に記載の方法。
【請求項２４】
阻害剤がＫｉｆ３ｂの阻害剤である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２５】
阻害剤がＳＲＰＫ１の阻害剤である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２６】
阻害剤がＴＭＥＭ２２９ｂの阻害剤である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２７】
阻害剤がＣ１４ｏｒｆ１４２の阻害剤である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２８】
阻害剤がＮｒ２ｆ１の阻害剤である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２９】
以下の少なくとも１つの、対象における癌転移を予防するため使用：
Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂもしくはｍｉＲＮＡ１２２の阻害剤及び／又はｍｉＲＮＡ１２２の発現を増加させる化合物。
【請求項３０】
ヒト患者が癌を患っている、請求項２９に記載の使用。
【請求項３１】
阻害剤が遺伝子サイレンシング核酸分子又は小分子である、請求項２９に記載の使用。
【請求項３２】
遺伝子サイレンシング核酸分子が、低分子干渉ＲＮＡ、アンチセンスオリゴヌクレオチド、低分子ヘアピン型ＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、リボザイム又は他のＲＮＡ干渉分子である、請求項３１に記載の使用。
【請求項３３】
小分子がペプチド、ペプトイド、アミノ酸、アミノ酸類似体、有機又は無機化合物である、請求項３１に記載の使用。
【請求項３４】
阻害剤がＫｉｆ３ｂの阻害剤である、請求項２９に記載の使用。
【請求項３５】
阻害剤がＳＲＰＫ１の阻害剤である、請求項２９に記載の使用。
【請求項３６】
阻害剤がＴＭＥＭ２２９ｂの阻害剤である、請求項２９に記載の使用。
【請求項３７】
阻害剤がＣ１４ｏｒｆ１４２の阻害剤である、請求項２９に記載の使用。
【請求項３８】
阻害剤がＮｒ２ｆ１の阻害剤である、請求項２９に記載の使用。
【請求項３９】
以下の少なくとも１つの、対象における転移性癌を診断するための使用：
Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２。
【請求項４０】
ヒト患者が癌を患っている、請求項３９に記載の使用。
【請求項４１】
Ｋｉｆ３ｂが検出される、請求項３９に記載の使用。
【請求項４２】
ＳＲＰＫ１が検出される、請求項３９に記載の使用。
【請求項４３】
ＴＭＥＭ２２９ｂが検出される、請求項３９に記載の使用。
【請求項４４】
Ｃ１４ｏｒｆ１４２が検出される、請求項３９に記載の使用。
【請求項４５】
Ｎｒ２ｆ１が検出される、請求項３９に記載の使用。
【請求項４６】
ｍｉＲＮＡ１２２が検出される、請求項３９に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
一般に、本発明は癌の診断及び治療に関する。より具体的には、本発明は、対象における転移性癌を診断及び治療する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
転移性播種は、癌関連死の主な原因である（Ｍｅｈｌｅｎ  ａｎｄ  Ｐｕｉｓｉｅｕｘ、Ｎａｔ  Ｒｅｖ  Ｃａｎｃｅｒ  ６：４４９−４５８、２００６）。全身化学療法と協調した原発腫瘍の外科的切除は限局性癌の治療において成功を収めたが、転移性疾患は現代の標的治療に対してさえも非常に耐性があり、これらの癌を難治性にしている。実際に、将来の転移のリスクを軽減するために、多くの患者が生活の質に悪影響を及ぼす高度に病的な治療計画を受けている（Ｌａｕｅｒ  ｅｔ  ａｌ．Ｅｘｐｅｒｔ  Ｏｐｉｎ  Ｄｒｕｇ  Ｄｉｓｃｏｖ  １０：８１−９０、２０１５）。明らかに、腫瘍細胞の転移性播種の律速段階を標的とする治療法は、全身性疾患の脅威を取り除くことによって癌治療を有意に改善し、有害な副作用を伴う全身性治療法への依存を減らすことができる（Ｓｔｅｅｇ、Ｎａｔ  Ｒｅｖ  Ｃａｎｃｅｒ  １６：２０１−−２１８，２０１６；Ｌｉ  ａｎｄ  Ｋａｎｇ，Ｐｈａｒｍａｃｏｌ  Ｔｈｅｒ  １６１：７９−９６，２０１６；Ｚｉｊｌｓｔｒａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ  Ｃｅｌｌ  １３：２２１−２３４，２００８；Ｍｅｈｌｅｎ  ａｎｄ  Ｐｕｉｓｉｅｕｘ，Ｎａｔ  Ｒｅｖ  Ｃａｎｃｅｒ  ６：４４９−４５８，２００６）。
【０００３】
転移のプロセスは、血流内への浸潤、遠隔部位への播種、免疫検出の回避、生存、増殖及びそれに続く新しい微小環境への定着に対する腫瘍細胞の能力に依存する（Ｖａｌａｓｔｙａｎ  ａｎｄ  Ｗｅｉｎｂｅｒｇ、Ｃｅｌｌ  １４７：２７５−２９２、２０１１）。以前、血管内侵入速度はインビボ腫瘍細胞の運動性に大きく依存しており、また、テトラスパニンＣＤ１５１を標的とする遊走阻止抗体を用いて運動性が阻害されると、癌細胞の血管内侵入及び遠隔転移の両方が阻止されることが示された（Ｚｉｊｌｓｔｒａ  ｅｔ  ａｌ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｃｅｌｌ  １３：２２１−２３４，２００８；Ｐａｌｍｅｒ  ｅｔ  ａｌ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  ７４：１７３−１８７、２０１４）。インビボでの運動性及び血管内侵入を促進する遺伝子及びシグナル伝達ネットワークが、効率的な原発腫瘍形成に必要とされるものとは異なることを考えると、これらの遺伝子を同定し干渉することによって血管内侵入及び転移を予防することができる可能性がある。さらに、早期転移性疾患を検出するための改善された検査は、転移の完全な徴候に先立って治療機会の時間枠を提供し、進行癌に罹患している人々の全生存率を改善する可能性がある。
【発明の概要】
【０００４】
本発明の一態様によれば、対象における癌転移を予防するための方法が提供される。この方法は、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２のうちの少なくとも１つのモジュレーターの有効量を対象に投与することを含む。一実施形態では、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ又はｍｉＲＮＡ３７４ｂの阻害剤の有効量が対象に投与される。別の実施形態では、ｍｉＲＮＡ１２２、又はｍｉＲＮＡ１２２の発現を上方制御することができる化合物の有効量が対象に投与される。
【０００５】
本発明のさらなる態様によれば、患者におけるＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２を検出する方法が提供される。方法は、ヒト患者から生体試料を取得する工程と、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２抗体、もしくはＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２ｍＲＮＡに相補的である核酸に試料を接触させることによって、試料中にＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２が存在するかどうかを検出し、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２と抗体との結合、もしくはＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２ｍＲＮＡに相補的である核酸間のハイブリダイゼーションを検出する工程とを含む。
【０００６】
本発明の別の態様によれば、患者における癌転移を診断し治療する方法が提供される。方法は、ヒト患者から生体試料を取得する工程と、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ又はｍｉＲＮＡ３７４ｂのうちの少なくとも１つが生体試料中に存在するかどうか、及び／又はｍｉＲＮＡ１２２が生体試料に存在しないことを検出する工程と、生体試料中にＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ又はｍｉＲＮＡ３７４ｂの存在が検出される場合、及び／又はｍｉＲＮＡ１２２が存在しない場合に、転移性癌を有する患者又は転移性癌の発症を診断する工程と、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ又はｍｉＲＮＡ３７４ｂの少なくとも１つの阻害剤の有効量、及び／又はｍｉＲＮＡ１２２又はｍｉＲＮＡ１２２発現の上方制御が可能な化合物の有効量を、診断された患者に投与する工程とを含む。
【０００７】
本発明のさらなる態様によれば、対象における転移性癌を診断するためのＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ  ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２の少なくとも１つの使用が提供される。
【０００８】
本発明の別の態様によれば、対象における癌転移を予防するために、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ又はｍｉＲＮＡ３７４ｂの少なくとも１つの阻害剤、及び／又はｍｉＲＮＡ１２２又はｍｉＲＮＡ１２２の発現を上方制御することができる化合物の有効量の使用が提供される。
【０００９】
一実施形態では、阻害剤は遺伝子サイレンシング核酸分子又は小分子である。遺伝子サイレンシング核酸分子は、例えば、低分子干渉ＲＮＡ、アンチセンスオリゴヌクレオチド、低分子ヘアピン型ＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、リボザイム又は他のＲＮＡ干渉分子である。小分子は、ペプチド、ペプトイド、アミノ酸、アミノ酸類似体、有機又は無機化合物である。
【００１０】
さらなる実施形態では、ヒト患者は癌を患っている。
【００１１】
なおさらなる実施形態では、生体試料は腫瘍生検材料である。
【００１２】
本発明のこれら及び他の特徴、態様及び利点は、以下の説明及び添付の図面に関してよりよく理解されるようになるであろう。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】スクリーニングで同定された遺伝子がインビボでの増殖性癌細胞浸潤に必要であることを示すグラフ図である。ａ）スクランブルｓｈＲＮＡ、もしくはＫｉｆ３ｂ、ＳＲＰＫ１又はＮｒ２ｆ１を標的とするｓｈＲＮＡで形質導入したＨＥｐ３細胞によって産生された転移性コロニーを示す画像である。挿入図は転移性コロニー内の代表的な細胞の軌跡を示す。ｂ）左のパネルは、スクランブルｓｈＲＮＡ、もしくはＫｉｆ３ｂ、ＳＲＰＫ１又はＮｒ２ｆ１を標的とするｓｈＲＮＡで形質導入したＨＥｐ３細胞によって産生された原発腫瘍の侵襲前面を示す画像である。挿入図は、侵襲前面における代表的な細胞の軌跡を示す。右のパネルは、左のパネルの赤い点線の正方形からの浸潤細胞を示す。色分けされた矢印は、個々に対応して色分けされた標識細胞（ｃ１〜ｃ３）によって形成された細胞突出部を指す。ｃ）図１ａからの対照細胞株及び突然変異細胞株について、個々の細胞の軌跡の速度を示すグラフ図である。ｄ）図１ａからの対照細胞株及び突然変異細胞株について、個々の細胞の軌跡の変位速度（生産性）を示すグラフ図である。ｅ）図１ｂからの対照細胞株及び突然変異細胞株について、個々の細胞の軌跡の速度を示すグラフ図である。ｄ）図１ｂからの対照細胞株及び突然変異細胞株について、個々の細胞の軌跡の変位速度を示すグラフ図である。ｇ）図１ｂからの細胞株について、原発腫瘍から遊走した１視野当たりの浸潤細胞の数を示すグラフ図である。ｈ）図１ｂからの対照細胞株及び突然変異細胞株について、細胞当たりの細胞突出数を示すグラフ図である。
【図２】スクリーニングで同定された遺伝子を標的とすることがインビボでの自然発生癌細胞転移を阻止することを示すグラフ図である。ａ）対照（スクランブル）ｓｈＲＮＡ形質導入ＨＥｐ３細胞、又はＫｉｆ３ｂ、ＳＲＰＫ１及びＮｒ２ｆ１を標的とするｓｈＲＮＡを安定的に発現するＨＥｐ３細胞を皮下注射したヌードマウス肺の立体蛍光画像である。ｂ）ヒトａｌｕ  ｑ−ＰＣＲによって決定した、肺に転移したＨＥｐ３癌細胞の正確な定量化を示すグラフ図である。データは、相対転移量をパーセントで表し、標準曲線を用いて推定したときに検出された癌細胞の総数（色付きの数）を表す。ｃ）実験に使用される腫瘍を誘導した対照細胞株及びノックダウン細胞株の原発腫瘍重量を示すグラフ図である。
【図３】再注射によるスクリーニングで同定されたクローンの定量的検証を示すグラフ図である。ａ）スクリーニング中に単離されたコンパクトコロニー形成クローンの代表的な画像である。挿入図は複合材料のＣＩスコア、及び存在量によって並び替えたクローン内に存在するｓｈＲＮＡを示す。また、元の（ｗｔ）及びスクランブルｓｈＲＮＡを形質導入したＨＥｐ３細胞によって形成された代表的なコロニーも示されている。さらなる分析のために選択されたｓｈＲＮＡは赤で強調表示されている。ｂ）スクリーニングで同定されたクローンの線形指数分布を示すグラフ図である。ｃ）スクリーニングで同定されたクローンの密度指数分布を示すグラフ図である。ｄ）スクリーニングで同定されたクローンの面積指数分布を示すグラフ図である。
【図４】スクリーニングで同定された遺伝子の発現による突然変異細胞株ノックダウンの発生を示すグラフ図である。ａ）Ｋｉｆ３ｂ突然変異細胞株及び対照細胞株（ＨＥｐ３、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１及びＰＣ３）のウエスタンブロッティング分析を示す図である。ｂ）ＳＲＰＫ１突然変異細胞株及び対照細胞株（ＨＥｐ３、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１及びＰＣ３）のウエスタンブロッティング分析を示す図である。ｃ）Ｎｒ２ｆ１突然変異細胞株及び対照細胞株（ＨＥｐ３及びＭＤＡ−ＭＢ−２３１）のウエスタンブロッティング分析を示す図である。ｄ）ＴＭＥＭ２２９ｂ突然変異細胞株及び対照細胞株のｑ−ＰＣＲ分析を示すグラフ図である（ＨＥｐ３、野生型ＨＥｐ３における発現を１００％に設定）。ｅ）Ｃ１４ｏｒｆ１４２突然変異細胞株及び対照細胞株のｑ−ＰＣＲ分析を示すグラフ図である（ＨＥｐ３、野生型ＨＥｐ３における発現を１００％に設定）。（ｄ）及び（ｅ）の挿入図は、ＴＭＥＭ２２９ｂ及びＣ１４ｏｒｆ１４２の第２の独立したｓｈＲＮＡによって誘導されたコロニーについての代表的な画像を示す。
【図５】インビトロ癌細胞遊走に対するＫｉｆ３ｂ及びＳＲＰＫ１発現ノックダウンの効果を示すグラフ図である。磁気的付着性ステンシル、Ｍａｔを利用する修正セルスクラッチアッセイを用いた。ａ）対照細胞株及び突然変異Ｋｉｆ３ｂ細胞株のＭａｔ（磁気的付着性ステンシル）インビトロ遊走アッセイを示すグラフ図である。ｂ）対照細胞株及び突然変異体ＳＲＰＫ１細胞株のＭａｔインビトロ遊走アッセイを示すグラフ図である。各細胞株について、野生型の平均値を１００％に設定した。
【図６】スクリーニングで同定された遺伝子の発現上昇が、主要な種類のヒト癌における癌細胞の転移挙動と相関することを示すグラフ図である。ａ）皮膚癌、前立腺癌、頭頸部癌、肺癌、卵巣癌及び結腸癌における原発腫瘍に対する転移性病変における選択されたスクリーニングヒットの発現を示す図である（Ｏｎｃｏｍｉｎｅ）。ｂ）皮膚（黒色腫）癌におけるＮｒ２ｆ１、Ｃ１４ｏｒｆ１４２及びＫｉｆ３ｂ発現の免疫組織化学的分析を示す画像である。ｃ）前立腺癌におけるＳＲＰＫ１及びＫｉｆ３ｂ発現の免疫組織化学的分析を示す画像である。ｄ）頭頸部（扁平上皮癌）癌におけるＫｉｆ３ｂ発現の免疫組織化学的分析を示す画像である。ｅ）肺癌におけるＳＲＰＫ１及びＴＭＥＭ２２９ｂ発現の免疫組織化学的分析を示す画像である。ｆ）卵巣癌におけるＮｒ２ｆ１発現の免疫組織化学的分析を示す画像である。ｇ）結腸癌におけるＮｒ２ｆ１発現の免疫組織化学的分析を示す画像である。赤い矢印は浸潤性腫瘍の前面を指している。
【図７】陽性（抗ＣＤ１５１）及び陰性（スクランブルｓｈＲＮＡ）対照に対するスクリーニングヒットの複合コンパクト性指数（ＣＩ）分布のグラフ図である。陰性対照よりもはるかにコンパクトなスクリーニングヒットは緑色で表示されている。単一のｓｈＲＮＡ種を含むクローンは太字で表示されている。複数のｓｈＲＮＡを含むクローンの場合、２つの最も優勢なｓｈＲＮＡが示されている。統計的有意性は、ＦｉｓｈｅｒのＬＳＤ検定を用いた一元配置分散分析を使用して決定した（＊ｐ＜０．０５、＊＊ｐ、０．０１、＊＊＊ｐ＜０．００１）。
【図８】スクリーニングで同定されたｍｉＲＮＡの発現上昇が侵襲性転移病変形成を阻止することを示すグラフ図である。ａ）対照、ｍｉＲ１２２、ｍｉＲ３７４ｂ又は抗ｍｉＲＮＡ−１３０ｂ構築物を発現する癌細胞によって形成される転移性病変を示す画像である。ｂ）対照、ｍｉＲ１２２、ｍｉＲ３７４ｂ又は抗ｍｉＲＮＡ−１３０ｂ構築物を発現する癌細胞によって形成される転移性病変について、癌細胞と血管の接触長の定量化を示すグラフ図である。ｃ）対照、ｍｉＲ１２２、ｍｉＲ３７４ｂ又は抗ｍｉＲＮＡ−１３０ｂ構築物を発現する癌細胞によって形成される転移性病変について、癌細胞に接触している血管細胞のパーセンテージの定量化を示すグラフ図である。
【図９】スクリーニングで同定されたｍｉＲＮＡの発現上昇が癌細胞浸潤を阻止することを示すグラフ図である。ａ）対照（赤）又はｍｉＲ１２２（緑）の過剰発現細胞を発現する癌細胞によって形成される転移性病変を示す画像である。ｂ）対照（赤）又はｍｉＲ１２２（緑）の過剰発現細胞を発現する癌細胞の細胞遊走軌跡を示す画像である。ｃ）対照（赤）又はｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ構築物を発現する癌細胞変位速度の定量化を示すグラフ図である。ｄ）対照（赤）又はｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞（緑）の転移量（自然転移）の定量化を示すグラフ図である。
【図１０】スクリーニングで同定されたｍｉＲＮＡの発現上昇が血管系に沿った癌細胞浸潤を阻止することを示すグラフ図である。ａ）血管壁の隣にあるスクランブル対照（赤）又はｍｉＲ１２２（緑）過剰発現細胞を示す画像である。ｂ）又はｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ過剰発現細胞（２つの独立した構築物）について、癌細胞と血管の接触を示すグラフ図である。ｃ）血管系に沿った対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞突出部の色分け表示を示す画像である。ｄ）血管系に沿った対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞突出部の色分け表示を示す画像である。ｅ）対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞について、癌細胞突出部と血管壁の角度の定量化を示すグラフ図である。ｆ）対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞と血管配向コラーゲン線維（ＳＨＧ）との相互作用の画像化を示す。
【図１１】スクリーニングで同定されたｍｉＲＮＡの発現上昇が癌細胞のコラーゲンマトリックスへの浸潤を阻止することを示すグラフ図である。ａ）スクランブル対照、ｍｉＲ１２２過剰発現細胞又はＭＴ１−ＭＭＰ阻害剤（ｐｈｅｎａｎｔｒｉｏｎｅ、ｐｈ）処理細胞の３Ｄコラーゲンマトリックス（ラットテールコラーゲンゲル）への浸潤を示す画像である。ｂ）コラーゲンマトリックスへの癌細胞浸潤を示すグラフ図である。ｃ）コラーゲン分解の定量化を示すグラフ図である。ｄ）対照又はｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ細胞によるコラーゲン分解を示す（ａ）からの代表的な光学切片を示す画像である。ｅ）ニワトリＣＡＭコラーゲンマトリックス（ＳＨＧ）中の対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞の代表的な２Ｄ及び３Ｄ画像である。ｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ細胞はコラーゲンに侵入して表面に成長することができないことに注目されたい（下のパネル）。ｆ）癌細胞注射後１〜５日目の対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ細胞について、転移コロニー深度の定量化を示すグラフ図である。ｇ）癌細胞注射後１〜５日目の対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ細胞について、整列したコラーゲン束の定量化を示すグラフ図である。
【図１２】スクリーニングで同定されたｍｉＲＮＡの発現上昇が正常なＭＴ１−ＭＭＰの輸送及び局在化を阻止することを示すグラフ図である。ａ）対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ細胞におけるＭＴ１−ＭＭＰ小胞の局在化及び軌跡を示す代表的な画像である。ｂ）対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞におけるＭＴ１−ＭＭＰ小胞軌跡長の定量化を示すグラフ図である。ｃ）ニワトリＣＡＭコラーゲンマトリックス（ＳＨＧ）中の対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞の代表的な画像である。ｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ細胞は、突出部に接触しているコラーゲンにＭＴ１−ＭＭＰを適切に局在化できないことに注目されたい。ｄ）ニワトリＣＡＭ中の細胞と接触している対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌血管の代表的な画像である。ｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ細胞はＭＴ１−ＭＭＰを癌細胞と血管壁との接触領域に適切に局在化させることができないことに注目されたい。ｆ）破線に沿って行われた（ｄ）の画像を走査するシグナル強度線を示す画像である。赤い矢印は癌細胞と血管壁の接触を示す。ｇ）対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞について突出部におけるＭＴ１−ＭＭＰシグナル強度の定量化を示すグラフ図である。
【図１３】スクリーニングで同定されたｍｉＲＮＡの発現上昇が癌細胞の血管外遊出を阻止することを示すグラフ図である。ａ）ニワトリＣＡＭ血管系から血管外遊出する対照（赤）及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ（緑）細胞を示す代表的な画像である。ｂ）対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞の血管外遊出の定量化を示すグラフ図である。ｃ）ニワトリＣＡＭ血管系において血管外遊出する対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞（ＭＴ１−ＭＭＰ過剰発現、赤）の代表的な画像である。ｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ細胞は、ＭＴ１−ＭＭＰを突出部に接触している血管壁に適切に局在化できないことに注目されたい。ｄ）対照及びｍｉＲ１２２  ｏ／ｅ癌細胞について、突出部におけるＭＴ１−ＭＭＰシグナル強度の定量化を示すグラフ図である。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
以下の説明は、単なる一例としての、本発明を実施するために必要な組み合わせを限定しない、特定の一実施形態である。
【００１５】
一実施形態によれば、癌を有する対象における転移を予防するための方法が提供される。この方法は、癌性腫瘍におけるキネシン様タンパク質３ｂ（Ｋｉｆ３ｂ）、セリン／トレオニン−タンパク質キナーゼ１（ＳＲＰＫ１）、膜貫通タンパク質２２９ｂ（ＴＭＥＭ２２９ｂ）、染色体１４オープンリーディングフレーム１４２（Ｃ１４ｏｒｆ１４２）、核受容体サブファミリー２、グループＦ、メンバー１（Ｎｒ２ｆ１）、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２の少なくとも１つの遺伝子発現を調節することを含む。いくつかの実施形態において、方法は、癌性腫瘍におけるＫｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、及びｍｉＲＮＡ３７４ｂ  １２２の少なくとも１つの発現を低減、防止又は「サイレンシング」することを含む。他の実施形態では、この方法は癌性腫瘍におけるｍｉＲＮＡ１２２の発現を増加させることを含む。
【００１６】
本明細書に記載の方法を使用して、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２の発現が癌の運動性に関連することが見出され、これらの遺伝子の発現の調節は、癌が病巣病変から広がるのを予防した。
【００１７】
本議論の目的のために、用語「調節する」は、細胞における発現の基礎レベルと比較した場合の遺伝子発現の上方制御又は遺伝子発現の下方制御のいずれかを意味し得る。
【００１８】
遺伝子発現は、遺伝子の核酸配列からのポリペプチドの産生を指す場合があることが理解されるであろう。遺伝子発現は、転写及び翻訳プロセスの両方を含み得、したがって遺伝子発現は、ｍＲＮＡなどの核酸配列の産生（すなわち転写）、タンパク質の産生（すなわち翻訳）、又はその両方を指し得る。例として、各々が適切なプロモーター配列（例えば、構成的プロモーター又は誘導性プロモーター）によって駆動される特定の遺伝子の１つ又は複数のコピーを含むベクター（ウイルス性、プラスミド性又はその他のいずれか）をトランスフェクション、エレクトロポレーション、もしくはウイルス感染、又は当技術分野で公知の別の適切な方法によって細胞に導入することができる。特定の遺伝子を細胞に導入するための適切な発現ベクター技術は当技術分野において公知である（例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（４ｔｈ  Ｅｄ．）、２０１２、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓを参照）。
【００１９】
当業者に知られているように、特定の遺伝子を発現するためのヌクレオチド配列は、例えば、「Ｇｅｎｅｓ  ＶＩＩ」、Ｌｅｗｉｎ、Ｂ．Ｏｘｆｏｒｄ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ（２０００）、又は「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ」、Ｓａｍｂｒｏｏｋ  ｅｔ  ａｌ．Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、３ｒｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ（２００１）に記載されたような１つ以上の適切な特徴をコード又は含み得る。ポリペプチド又はタンパク質をコードするヌクレオチド配列は、市販のベクター又は発現カセットなどの適切なベクター又は発現カセットに組み込むことができる。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ  ｅｔ  ａｌ．（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、３ｒｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ（２００１））に概説されているように、ベクターは、標準的な分子生物学的技術を用いて個々に構築又は修飾することもできる。当業者は、ベクターが、ポリペプチド又はタンパク質をコードするヌクレオチド配列に作動可能に連結され得る所望の要素をコードするヌクレオチド配列を含み得ることを認識するであろう。所望の要素をコードするそのようなヌクレオチド配列には、適切な転写プロモーター、転写エンハンサー、転写ターミネーター、翻訳イニシエーター、翻訳ターミネーター、リボソーム結合部位、５’−非翻訳領域、３’−非翻訳領域、キャップ構造、ポリＡテール、及び／又は複製の起点が含まれ得る。適切なベクターの選択は、ベクターに組み込まれる核酸のサイズ、所望の転写及び翻訳制御要素の種類、所望の発現レベル、所望のコピー数、染色体への組み込みを所望するか否か、所望の選択プロセスの種類、又は形質転換を意図する宿主細胞もしくは宿主範囲など、いくつかの要因に依存し得るが、これらに限定されない。
【００２０】
本発明の一部として含まれるのは核酸ベクターであり、しばしば発現ベクターであり、これは、ｍｉＲＮＡ１２２遺伝子（遺伝子ＩＤ：４０６９０６）に対応するヌクレオチド配列、又は、Ｋｉｆ３ｂ（遺伝子ＩＤ：９３７１）、ＳＲＰＫ１（遺伝子ＩＤ：６７３２）、ＴＭＥＭ２２９ｂ（遺伝子ＩＤ：１６１１４５）、Ｃ１４ｏｒｆ１４２（遺伝子ＩＤ：８４５２０）、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１（遺伝子ＩＤ：７０）、Ｎｒ２ｆ１（遺伝子ＩＤ：７０２５）  ＫＩＡＡ０９２２（遺伝子ＩＤ：４２２４００）、ＫＤＥＬＲ３（遺伝子ＩＤ：１１０１５）、ＡＰＢＡ２（遺伝子ＩＤ：３２１）、ｍｉＲＮＡ  １３０ｂ（遺伝子ＩＤ：４０６９２０）、又はｍｉＲＮＡ３７４ｂ（遺伝子ＩＤ：１００１２６３１７）の遺伝子に対応する核酸に相補的であるか、又は少なくとも部分的に相補的である核酸配列を含有する。ベクターは、それが結合している別の核酸を輸送することができる核酸分子であり、プラスミド、コスミド、又はウイルスベクターを含み得る。ベクターは自律複製が可能であり得るか、又は宿主ＤＮＡに組み込まれ得る。ウイルスベクターは、例えば、複製欠損レトロウイルス、アデノウイルス及びアデノ随伴ウイルスを含み得る。
【００２１】
当業者は、細胞内の特定の遺伝子の発現が、様々な周知の方法のいずれかを使用して減少、予防、又は「抑制」され得ることを認識するであろう。非限定的な例として、遺伝子発現はとりわけ、ｓｉＲＮＡ（低分子干渉ＲＮＡ）、アンチセンスオリゴヌクレオチド（ＡＯＮ）、低分子ヘアピン型ＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）、マイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）、又は他のＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）又はアンチセンス遺伝子サイレンシングトリガなどの遺伝子サイレンシング核酸を用いて抑制され得る（例えば、Ｇａｙｎｏｒ  ｅｔ  ａｌ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｒｅｖ．３９：４１９６−４１８４、２０１０；Ｂｅｎｎｅｔｔ  ｅｔ  ａｌ．Ａｎｎｕａｌ  Ｒｅｖｉｅｗ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ  ５０：２５９‐２９３、２０１０参照）。遺伝子発現は、当技術分野で公知の他の転写前又は転写後の遺伝子サイレンシング技術によって減少させることができる。特定の遺伝子配列が与えられると、当業者は、その遺伝子配列を標的とすることができ、かつ遺伝子の発現を減少させることができる遺伝子サイレンシングオリゴヌクレオチドを設計できるであろう。Ｗｈｉｔｅｈｅａｄ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅから入手可能なもの、又はｓｉＲＮＡの販売業者から入手可能なものを含む、特定の遺伝子を標的とするためのｓｉＲＮＡ又はＡＯＮを設計するための様々なソフトウェアベースのツールが利用可能である。例えば、遺伝子発現ｍＲＮＡ配列の領域に完全に又は実質的に相補的であるｓｉＲＮＡアンチセンス鎖又はアンチセンスオリゴヌクレオチドを調製し、ＲＩＳＣ又はＲＮａｓｅ  Ｈ媒介ｍＲＮＡ分解を誘発することによって標的遺伝子サイレンシングに使用することができる。遺伝子サイレンシング核酸は、例えば、Ｗｉｌｅｙによって公表されているＣｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙに記載されているように調製することができる。
【００２２】
ｓｉＲＮＡ又はＲＮＡｉは、二本鎖ＲＮＡを形成し、かつｓｉＲＮＡが遺伝子又は標的遺伝子と同じ細胞に送達又は発現されるときに遺伝子又は標的遺伝子の発現を減少又は阻害する能力を有する核酸である。ｓｉＲＮＡは、相補鎖によって形成された短い二本鎖ＲＮＡである。ハイブリダイズして二本鎖分子を形成するｓｉＲＮＡの相補的部分は、標的分子配列に対して実質的又は完全な同一性をしばしば有する。一実施形態では、ｓｉＲＮＡは、標的遺伝子に対して実質的又は完全な同一性を有し、また二本鎖ｓｉＲＮＡを形成する核酸である。
【００２３】
ｓｉＲＮＡ分子を設計するとき、標的領域は開始コドンの５０〜１００ヌクレオチド下流の所定のＤＮＡ配列からしばしば選択される。最初は、ＵＴＲ結合タンパク質及び／又は翻訳開始複合体がｓｉＲＮＰ又はＲＩＳＣエンドヌクレアーゼ複合体の結合を妨害する可能性があると仮定して、５’又は３’  ＵＴＲ及び開始コドン付近の領域を避けた。時には、配列モチーフＡＡ（Ｎ１９）ＴＴ（Ｎ、ヌクレオチド）に一致する長さ２３ヌクレオチドの領域、及び約３０％から７０％のＧ／Ｃ含有量（しばしば、約５０％のＧＩＣ含有量）の領域がしばしば選択される。適切な配列が見つからない場合、モチーフＮＡ（Ｎ２  １）を使用して検索がしばしば拡張される。センスｓｉＲＮＡの配列は、時には、（Ｎ１９）ＴＴ又はＮ２１（２３塩基のモチーフの３から２３位）にそれぞれ対応する。後者の場合、センスｓｉＲＮＡの３’末端はしばしばＴＴに変換される。この配列変換の理論的根拠は、センス及びアンチセンス３’オーバーハングの配列組成に関して対称的二本鎖を生成することである。アンチセンスｓｉＲＮＡは、２３塩基モチーフの１〜２１位の相補鎖として合成される。２３塩基モチーフの１位はアンチセンスｓｉＲＮＡによって配列特異的に認識されないため、アンチセンスｓｉＲＮＡの最も３’側のヌクレオチド残基は慎重に選択することができる。しかしながら、アンチセンスｓｉＲＮＡの最後から２番目のヌクレオチド（２３塩基のモチーフの２位に相補的）はしばしば標的配列に相補的である。化学合成を単純化するために、ＴＴがしばしば利用される。Ｒがプリン（Ａ、Ｇ）であり、Ｙがピリミジン（Ｃ、Ｕ）である標的モチーフＮＡＲ（Ｎ１７）ＹＮＮに対応するｓｉＲＮＡがしばしば選択される。それぞれの２１ヌクレオチドセンス及びアンチセンスｓｉＲＮＡはしばしばプリンヌクレオチドで始まり、標的部位を変えることなくｐｏｌ  ＩＩＩ発現ベクターから発現させることもできる。最初に転写されたヌクレオチドがプリンである場合、ｐｏｌ  ＩＩＩプロモーターからのＲＮＡの発現はより効率的になり得る。
【００２４】
ｓｉＲＮＡの配列は、全長標的遺伝子、又はその部分配列に対応し得る。多くの場合、ｓｉＲＮＡは約１５〜約５０ヌクレオチドの長さである（例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡの各相補配列は１５〜５０ヌクレオチドの長さであり、二本鎖ｓｉＲＮＡは約１５〜５０塩基対の長さ、時には約２０〜３０ヌクレオチドの長さ、又は約２０〜２５ヌクレオチドの長さ、例えば、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９又は３０ヌクレオチドの長さである。ｓｉＲＮＡは時には約２１ヌクレオチドの長さである。ｓｉＲＮＡを使用する方法は当技術分野において公知であり、特定のｓｉＲＮＡ分子はＤｈａｒｍａｃｏｎ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ、Ｉｎｃを含む多数の会社から購入することができる。
【００２５】
遺伝子発現は、強力かつ特異的な遺伝子サイレンシング、ＲＮＡ干渉又はＲＮＡｉと呼ばれる現象を誘導する二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）の導入によって阻害され得る。例えば、Ｆｉｒｅ  ｅｔ  ａｌ．米国特許第６，５０６，５５９号、Ｔｕｓｃｈｌ  ｅｔ  ａｌ．ＰＣＴ国際公開番号ＷＯ０１／７５１６４、Ｍ．Ｋａｙ  ｅｔ  ａｌ．ＰＣＴ国際公開番号ＷＯ０３／０１０１８０Ａ１を参照）。このプロセスは、（低分子干渉ＲＮＡ又はｓｉＲＮＡを作製するために）二本鎖ＲＮＡのサイズを２０〜２４塩基対に減少させ、急性期反応、すなわちしばしば細胞死に至る宿主防御メカニズムを開始することなく哺乳動物細胞における遺伝子をスイッチオフすることによって改善された。ヒト細胞において、ｍＲＮＡレベルで哺乳動物細胞における標的化発現を阻害するためのＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）による転写後遺伝子サイレンシングの証拠が増えている。ヒト患者における腫瘍細胞の増殖及び遊走を阻害するため、及び転移性癌を阻害するために有効な方法についてさらなる証拠がある。
【００２６】
別の実施形態では、遺伝子サイレンシング核酸はリボザイムである。標的ヌクレオチド配列に対して特異性を有するリボザイムは、そのようなヌクレオチド配列に相補的である１つ以上の配列、及びｍＲＮＡ切断の要因である既知の触媒領域を有する配列を含み得る（例えば、米国特許第５，０９３，２４６号を参照）。例えば、活性部位のヌクレオチド配列がｍＲＮＡ中で切断されるべきヌクレオチド配列に相補的であるテトラヒメナＬ−１９  ＩＶＳ  ＲＮＡの誘導体が時には利用される（例えば、Ｃｅｃｈ  ｅｔ  ａｌ．米国特許第４，９８７，０７１号、及びＣｅｃｈ  ｅｔ  ａｌ．米国特許第５，１１６，７４２号を参照）。また、標的ｍＲＮＡ配列を用いて、ＲＮＡ分子のプールから特異的リボヌクレアーゼ活性を有する触媒性ＲＮＡを選択することができる。
【００２７】
アンチセンス、リボザイム、ＲＮＡｉ及びｓｉＲＮＡ核酸などの遺伝子サイレンシング核酸分子を改変して、修飾核酸分子を形成することができる。核酸は、分子の安定性、ハイブリダイゼーション又は溶解性を改善するために、塩基部分、糖部分又はリン酸骨格部分で改変することができる。例えば、核酸分子のデオキシリボースホスファート骨格を修飾して、ペプチド核酸を生成することができる（Ｈｙｒｕｐ  ｅｔ  ａｌ．Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ＆Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ４（１）：５−２３、１９９６を参照）。ペプチド核酸又はＰＮＡは、ＤＮＡ模倣物などの核酸模倣物を指し、デオキシリボースホスファート骨格が偽ペプチド骨格によって置き換えられ、４つの天然核酸塩基のみが保持されている。ＰＮＡの中性骨格は、低いイオン強度の条件下で、ＤＮＡ及びＲＮＡへの特異的ハイブリダイゼーションを可能にし得る。ＰＮＡオリゴマーの合成は、例えば、Ｈｙｒｕｐ  ｅｔ  ａｌ．に記載された標準固相ペプチド合成プロトコルを用いて行うことができる。
【００２８】
ＰＮＡ核酸は、本明細書に記載されている予後診断用途、診断用途、及び治療用途に使用することができる。例えば、ＰＮＡは、例えば転写又は翻訳の停止を誘導すること、又は複製を阻害することによる、遺伝子発現の配列特異的調節のためのアンチセンス又は抗遺伝子剤として使用することができる。ＰＮＡ核酸分子はまた、遺伝子中のＳＮＰの分析において（例えば、ＰＮＡ指向ＰＣＲクランピングによる）、他の酵素と組み合わせて使用する場合の人工制限酵素として（例えば、Ｓ１ヌクレアーゼ（Ｈｙｒｕｐ  ｅｔ  ａｌ．前出）、もしくはＤＮＡ配列決定又はハイブリダイゼーション用のプローブ又はプライマーとして（Ｈｙｒｕｐ  ｅｔ  ａｌ．前出）も使用され得る。
【００２９】
いくつかの実施形態では、ｍｉＲＮＡ１２２などの目的の遺伝子を、癌性腫瘍の基礎レベルと比較して過剰発現させて、癌が転移する可能性を最小限に抑える。遺伝子の過剰発現は、限定されるものではないが、目的の遺伝子を過剰発現する遺伝子構築物を用いて細胞／組織をトランスフェクトすることなど、多数の異なる方法で達成することができる。さらに、遺伝子／細胞の転写又は翻訳機構に影響を与える遺伝子構築物を用いて細胞／組織をトランスフェクトすることもまた、目的の遺伝子の過剰発現を引き起こすために使用され得る。さらに、癌性細胞において目的の遺伝子の発現を増加させる小分子を開発することができる。
【００３０】
核酸配列を細胞に挿入することに関連して、遺伝子を導入するとは「トランスフェクション」、「形質転換」又は「形質導入」を指し、核酸配列の真核細胞への組み込み又は導入を含み、核酸配列は場合により細胞のゲノムに組み込まれてもよく、又は一過性に発現されてもよい（例えば、トランスフェクトされたｍＲＮＡ）。タンパク質又は酵素は、タンパク質又は酵素自体を細胞内に送達することによって、もしくはタンパク質又は酵素をコードするｍＲＮＡを細胞内で発現させてその翻訳をもたらすことによって、細胞内に導入することができる。
【００３１】
遺伝子サイレンシング核酸分子は、任意の多数の周知の方法を用いて細胞に導入され得る。発現ベクター（ウイルス性、プラスミド性、又は他のいずれか）をトランスフェクト、エレクトロポレーション、又は他の方法で細胞に導入することができ、次いで遺伝子サイレンシングヌクレオチドを発現させることができる。あるいは、例えばトランスフェクションもしくはエレクトロポレーションによって（すなわち、限定されるものではないがＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（商標）、Ｏｌｉｇｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ、又は当技術分野で公知の他の適切な送達剤などのトランスフェクション試薬を用いて）、又は当技術分野で公知の標的化遺伝子又は核酸送達ビヒクルを通して、遺伝子サイレンシングヌクレオチド自体を細胞に直接導入してもよい。多くの送達ビヒクル及び／又は薬剤が当技術分野において周知であり、そのうちのいくつかは市販されている。遺伝子サイレンシング核酸のための送達戦略は、例えば、Ｙｕａｎ  ｅｔ  ａｌ．Ｅｘｐｅｒｔ  Ｏｐｉｎ．Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖ．８：５２１〜５３６、２０１１；Ｊｕｌｉａｎｏ  ｅｔ  ａｌ．Ａｃｃ．Ｃｈｅｍ．Ｒｅｓ．４５：１０６７−１０７６、２０１２、及びＲｅｔｔｉｇ  ｅｔ  ａｌ．Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．２０：４８３〜５１２、２０１２に記載されている。トランスフェクション方法の例は、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ  ｅｔ  ａｌ．（１９９４）Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋに記載されている。発現ベクターの例は、例えば、Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｖｅｃｔｏｒ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（Ｐｏｕｗｅｌｓ  ｅｔ  ａｌ．１９８５、Ｓｕｐｐ．１９８７）に記載されている。
【００３２】
当業者は、モノクローナル又はポリクローナル抗体又はそのＦａｂフラグメントなど、本明細書に記載の１つ以上のアミノ酸、核酸、タンパク質又は酵素を標的とする抗体又は抗体フラグメントが、標準的な実験室技術を用いて特定のアミノ酸、核酸、タンパク質又は酵素標的を標的とするために生成され得、したがって遺伝子をサイレンシングすることを理解するであろう。非限定的な例として、特定の標的に対するモノクローナル抗体は、ハイブリドーマ技術を用いて調製することができる（例えば、Ｈａｒｌｏｗ  ｅｔ  ａｌ．Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ、（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ、２ｎｄ  ｅｄ．１９８８）；Ｈａｍｍｅｒｌｉｎｇ  ｅｔ  ａｌ．Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ａｎｄ  Ｔ−Ｃｅｌｌ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ  ｐｐ５６３〜６８１（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ、ＮＹ、１９８１）を参照）。当業者は、特定のアミノ酸、タンパク質、核酸又は酵素標的に対する抗体を調製する方法及び技術を知っているであろう。そのような抗体は、アミノ酸、タンパク質、核酸又は酵素標的を結合して、それがその通常の機能を果たすことを妨げ、同じアミノ酸、核酸、タンパク質又は酵素の遺伝子サイレンシングから生じる結果と同様の結果をもたらす。したがって、特定の実施形態では、特定の遺伝子を標的とするか、又は「サイレンシング」するための遺伝子サイレンシング核酸の代わりに、抗体を使用することができる。
【００３３】
Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、又はｍｉＲＮＡ３７４ｂの活性を阻害する化合物は、本発明において有用であり得、小分子を含み得る。小分子は、ペプチド、ペプチド模倣薬（例えば、ペプトイド）、アミノ酸、アミノ酸類似体、１モル当たり約１０，０００グラム未満の分子量を有する有機又は無機化合物（すなわち、ヘテロ有機化合物又は有機金属化合物を含む）、１モル当たり約５，０００グラム未満の分子量を有する有機又は無機化合物、１モル当たり約１，０００グラム未満の分子量を有する有機又は無機化合物、１モル当たり約５００グラム未満の分子量を有する有機又は無機化合物、及びそのような化合物の塩、エステル、及び他の薬学的に許容される形態を含むが、これらに限定されない。
【００３４】
本明細書に記載の１つ以上の核酸及び／又はポリペプチドを含むか又はそれらから構成される化合物及び／又は組成物が使用され得ることが理解されよう。組成物は、１つ以上の薬学的に許容される希釈剤、担体、賦形剤、又は緩衝剤をさらに含み得る。組成物は、インビトロ又はインビボで細胞に１つ以上の核酸及び／又はポリペプチドを投与するために使用され得る。
【００３５】
治療薬として利用される場合、遺伝子サイレンシング核酸分子は、典型的には対象に投与されるか（例えば組織部位への直接注射によって）、又は、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ又はｍｉＲＮＡ３７４ｂなどの細胞内ｍＲＮＡ及び／又はポリペプチドをコードするゲノムＤＮＡとハイブリダイズ又は結合するようにｉｎ  ｓｉｔｕで生成され、それにより、例えば転写及び／又は翻訳を阻害することによって、ポリペプチドの発現を阻害する。あるいは、核酸分子をサイレンシングする遺伝子は、選択された細胞を標的とするように改変され得、次いで全身的に投与される。全身投与の場合、遺伝子サイレンシング核酸分子は、例えば遺伝子サイレンシング核酸分子を細胞表面受容体又は抗原に結合するペプチド又は抗体に結合することによって、選択された細胞表面上に発現される受容体又は抗原に特異的に結合するように修飾できる。遺伝子サイレンシング核酸分子はまた、ベクターを用いて細胞に送達することができる。遺伝子サイレンシング核酸分子の十分な細胞内濃度は、ベクター構築物中に、ｐｏｌ  ＩＩ又はｐｏｌ  ＩＩＩプロモーターなどの強力なプロモーターを組み込むことによって達成される。
【００３６】
本明細書で定義されるように、治療有効量のタンパク質又はポリペプチド（すなわち有効投与量）は、約０．００１〜３０ｍｇ／ｋｇ体重、時には約０．０１〜２５ｍｇ／ｋｇ体重、しばしば約０．１〜２０ｍｇ／ｋｇ体重、より頻繁には約１〜１０ｍｇ／ｋｇ、２〜９ｍｇ／ｋｇ、３〜８ｍｇ／ｋｇ、４〜７ｍｇ／ｋｇ、又は５〜６ｍｇ／ｋｇ体重の範囲である。タンパク質又はポリペプチドは、約１〜１０週間の間、時には２〜８週間の間、しばしば約３〜７週間の間、より頻繁には約４、５又は６週間の間、週に１回投与することができる。当業者は、疾患又は障害の重篤度、以前の治療、対象の一般的な健康状態及び／又は年齢、及び存在する他の疾患を含むがこれらに限定されない一定の要因が、対象を効果的に治療するために必要な投与量及びタイミングに影響を及ぼし得ることを認識するであろう。さらに、治療有効量のタンパク質、ポリペプチド、又は抗体を用いた対象の治療は、単回治療を含むことも、一連の治療を含むこともできる。
【００３７】
抗体については、０．１ｍｇ／ｋｇ体重（一般的には１０ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ）の投与量がしばしば利用される。抗体が脳内で作用するのであれば、５０ｍｇ／ｋｇ〜１００ｍｇ／ｋｇの投与量がしばしば適切である。一般に、部分的ヒト抗体及び完全ヒト抗体は、他の抗体よりも人体内でより長い半減期を有する。したがって、より低い投与量及びより低頻度の投与がしばしば可能である。脂質化などの修飾を用いて抗体を安定化し、取り込み及び組織浸透（例えば脳への）を増強することができる。抗体の脂質化のための方法は、Ｃｒｕｉｋｓｈａｎｋら（Ｃｒｕｉｋｓｈａｎｋ  ｅｔ  ａｌ．１９９７）によって記載されている。
【００３８】
抗体コンジュゲートは、所与の生物学的応答を改変するために使用することができ、薬物部分は古典的な化学療法剤に限定されると解釈されるべきではない。例えば、薬物部分は、所望の生物学的活性を有するタンパク質又はポリペプチドであり得る。そのようなタンパク質は、例えば、アブリン、リシンＡ、シュードモナス外毒素又はジフテリア毒素などの毒素、腫瘍壊死因子、αインターフェロン、βインターフェロン、神経成長因子、血小板由来成長因子、組織プラスミノーゲンアクチベーターなどのポリペプチド、又は例えばリンホカイン、インターロイキン−１（「ＩＬ−１」）、インターロイキン−２（「ＩＬ−２」）、インターロイキン−６（「ＩＬ−６」）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（「ＧＭ−ＣＳＦ」）、顆粒球コロニー刺激因子（「Ｇ−ＣＳＦ」）又は他の増殖因子などの生物学的応答修飾因子を含み得る。あるいは、Ｓｅｇａｌによって米国特許第４，６７６，９８０号に記載されているように、抗体を第２の抗体にコンジュゲートして抗体ヘテロコンジュゲートを形成することができる。
【００３９】
化合物については、例示的用量は、対象又は試料重量のキログラム当たりの化合物のミリグラム又はマイクログラム量、例えば、約１マイクログラム／ｋｇ〜約５００ミリグラム／ｋｇ、約１００マイクログラム／ｋｇ〜約５ミリグラム／ｋｇ、又は約１マイクログラム／ｋｇ〜約５０マイクログラム／ｋｇを含む。小分子の適切な用量は、調節される発現又は活性に関する小分子の効力に依存することが理解される。本明細書に記載のポリペプチド又は核酸の発現又は活性を調節するためにこれらの小分子のうちの１つ又は複数を動物（例えば、ヒト）に投与する場合、医師、獣医師、又は研究者は、例えば、最初は比較的低用量で処方し、その後適切な反応が得られるまで用量を増やす。さらに、任意の特定の動物対象についての具体的な用量レベルは、使用される具体的な化合物の活性、対象の年齢、体重、一般的な健康状態、性別、及び食生活、投与時間、投与経路、排泄速度、任意の薬物の組み合わせ、及び調節されるべき発現又は活性の程度を含む様々な要因に依存する。
【００４０】
核酸製剤に関して、遺伝子治療ベクターは、例えば、静脈内注射、局所投与（例えば、米国特許第５，３２８，４７０号を参照）又は定位注射（Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．１９９４）によって対象に送達され得る。遺伝子治療ベクターの薬学的調製物は、許容される希釈剤中の遺伝子治療ベクターを含み得るか、又は遺伝子送達ビヒクルが埋め込まれている徐放性マトリックスを含み得る。あるいは、完全な遺伝子送達ベクターが組換え細胞（例えば、レトロウイルスベクター）から無傷で産生され得る場合、薬学的調製物は、遺伝子送達系を産生する１つ以上の細胞を含み得る。遺伝子送達ベクターの例は本明細書に記載されている。
【００４１】
別の実施形態では、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２のうちの少なくとも１つの発現を用いて、癌が転移可能かどうかを検出する。この場合、癌を有する患者から生体試料を採取し、この試料を分析して、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、  ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ又はｍｉＲＮＡ３７４ｂのレベルが生体試料中の正常な基礎レベルを超えて増加するか、又はｍｉＲＮＡ１２２の場合には正常な基礎レベルを超えて減少するかどうかを検出する。ｍＲＮＡレベルを決定するために、対象から得られた生体試料から核酸を単離する。例えば、核酸は、血液、唾液、痰、尿、細胞掻爬物及び生検組織から単離することができる。核酸試料は、標準的な技術を用いて生体試料から単離することができる。核酸試料は、対象から単離され、次いで方法において直接利用されてもよく、あるいは、試料は単離され、ある期間貯蔵（例えば凍結）された後、分析に供されてもよい。
【００４２】
診断方法は、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）（例えば、米国特許第４，６８３，１９５号；第４，６８３，２０２号及び第６，０４０，１６６号、「ＰＣＲ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：Ａ  Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ」Ｉｎｎｉｓ  ｅｔ  ａｌ．（Ｅｄｓ．），１９９０，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ：Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋを参照）、逆転写酵素ＰＣＲ（ＲＴ−ＰＣＴ）、アンカーＰＣＲ、競合的ＰＣＲ（例えば、米国特許第ｃＤＮＡ末端の迅速増幅（ＲＡＣＥ）（例えば、Ｇｅｎｅ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  ａｎｄ  Ａｎａｌｙｓｉｓ：Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎｓ、１９９７、ｐｐ．９９−１１５を参照）、リガーゼ連鎖反応（ＬＣＲ）（例えば、ＥＰ  ０１  ３２０３０８を参照）、片側ＰＣＲ（Ｏｈａｒａ  ｅｔ  ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．１９８９，８６：５６７３−５６７７を参照）、ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション、Ｔａｑｍａｎに基づくアッセイ（Ｈｏｌｌａｎｄ  ｅｔ  ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．１９９１，８８：７２７６〜７２８０）、ディファレンシャルディスプレイ法（例えば、Ｌｉａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ．Ｒｅｓ．１９９３、２１：３２６９〜３２７５を参照）及び他のＲＮＡフィンガープリンティング技術、核酸配列に基づく増幅（ＮＡＳＢＡ）及び他の転写に基づく増幅システム（例えば、米国特許Ｎｏ．５，４０９，８１８及び５，５５４，５２７を参照）、Ｑベータレプリカーゼ、鎖置換増幅（ＳＤＡ）、修復連鎖反応（ＲＣＲ）、ヌクレアーゼ保護アッセイ、サブトラクションに基づく方法、Ｒａｐｉｄ−Ｓｃａｎ（商標）などを含むがこれに限定されない任意の適切な方法を用いて、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２のうちの少なくとも１つの発現レベルの決定を含み得ることが認識されるであろう。
【００４３】
他の場合において、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２の発現は、免疫ブロッティング、免疫沈降、及び酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）を含むがこれらに限定されない様々な技術によって、タンパク質レベルで検出され得る。したがって、対象由来のヌクレオチド配列によってコードされたポリペプチド又はタンパク質を、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２に関連するエピトープに特異的に結合する抗体と接触させることを用いて、個体が転移性癌を有するか又は発症しやすいかどうかを決定することができる。診断に適した細胞は、患者の血液、尿、唾液、組織生検材料及び剖検材料から得ることができる。
【００４４】
別の実施形態では、方法を実施するのに必要な構成要素はキットの一部として提供される。特に、キットは、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ、ｍｉＲＮＡ３７４ｂ又はｍｉＲＮＡ１２２に結合する分子、及びアッセイを実行するために必要な任意の緩衝剤を含む。この分子は、Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４ｏｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ１．５、ＡＣＴＣ１、Ｎｒ２ｆ１、ＫＩＡＡ０９２２、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ｍｉＲＮＡ１３０ｂ又はｍｉＲＮＡ３７４ｂの発現又は機能を下方制御する遺伝子サイレンシング核酸分子、小分子又は生物製剤、及び／又はｍｉＲＮＡ１２２の発現を上方制御することができる小分子又は遺伝子構築物である。任意選択で、キットは、アッセイにおける分子の使用のための説明書のセットを含むことができる。しかしながら、説明書は一組の紙の説明書である必要はなく、その代わりに説明書をＵＲＬアドレス又はＱＲ（商標）コードを通して提供することができることが想定される。
【００４５】
それに対する多数の改変が当業者には明らかであろうことが理解されるであろう。したがって、上記の説明及び添付の図面は、限定的な意味ではなく、本発明の例示として解釈されるべきである。一般に本発明の原理に従い、本発明が関連する技術分野における既知の又は慣習的な慣行の範囲内にあるような、また本明細書に記載される前に本明細書中の本質的な特徴に適用され得るような本開示からの逸脱を含む本発明の任意の変形、使用又は適合を網羅することが意図され、添付の特許請求の範囲の範囲内で以下の通りであることがさらに理解されるであろう。
【００４６】
以下の例は、当業者を対象とした例示目的のために提供される。これらの例は非限定的であることを意図しており、そして本明細書中の教示を考慮して当業者に知られているであろう多数の変形及び改変が可能であり得ることが理解されるであろう。
例
【００４７】
従来、インビボでの細胞運動性に必要な遺伝子の同定は、インビボで転移性病変の形成を視覚化することにおける固有の難しさによって妨げられてきた（Ｓａｈａｉ、Ｎａｔ  Ｒｅｖ  Ｃａｎｃｅｒ  ７：７３７−７４９、２００７、Ｋｉｓｈｉｍｏｔｏ  ｅｔ  ａｌ．Ｎａｔ  Ｍｅｄ  １２：１２１３−１２１９，２００６）。これに対処するために、生体内イメージングアプローチを殻のない卵外のトリ胚において使用して、インビボで腫瘍細胞の運動性を調節する遺伝子産物についてｓｈＲＮＡスクリーニングを実施した。静脈内注射後、癌細胞は胚の血管系全体に広く播種する。これらの癌細胞のかなりの部分は、漿尿膜（ＣＡＭ）中で単一細胞として停止し、そこでそれらは血管系外の基質への遊出を受け、浸潤性転移性コロニーへと増殖する。各々単一の癌細胞に由来するこれらのコロニーは、４日かけて約１ｍｍ２（コロニー当たり５０〜１００細胞）のサイズに達し、生体顕微鏡を使用して容易に視覚化することができる。単一胚のＣＡＭで数千の個々の転移性コロニーを同時に視覚化することができるため、このアプローチを用いて遺伝子の大きなライブラリーをスクリーニングすることができる。運動表現型を同定することは簡単である。ヒト頭頸部ＨＥｐ３細胞株などの運動性の高い癌細胞を注入すると、結果として生じるコロニーは、増殖細胞が遊出点からかなりの距離で遊走した「拡散」遊走表現型をとる。ＣＤ１５１特異的遊走阻止抗体を用いた場合に観察されるように、腫瘍細胞のインビボ運動性が低下すると、転移性コロニーは、高度に運動性の表現型と容易に区別される非常にコンパクトな形態を示す。密集した癌細胞で構成されるこれらのコンパクトな転移性病変は、周囲の組織から容易に切除することができ、さらなる分析に供することができる。ＣＤ１５１の標的化に関して従来見られたように、インビボ細胞運動性に必要とされる遺伝子の阻害はコンパクトコロニー表現型を導き、このアプローチを利用して血管内侵入及び転移に影響を与える細胞運動性の治療標的をスクリーニングすることが可能になる。
【００４８】
スクリーニングを行うため、内在性ＲＮＡｉ経路によるプロセシングを可能にするために天然ｍｉＲ−３０一次転写物を用いて構築されたヒトｓｈＲＮＡ  ＧＩＰＺマイクロＲＮＡ適合ｓｈＲＮＡレンチウイルスライブラリー（Ｏｐｅｎ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）でＨＥｐ３細胞を形質導入した。このライブラリーは、７つのプールに含まれる３０，７２８のヒト遺伝子を標的とする７９，８０５の配列検証済みｓｈＲＮＡと、成功した形質導入をモニターするためのＴｕｒｂｏＧＦＰとを含有する。各プールを用いて、培養中のＨＥｐ３細胞にＭＯＩ（０．２）で形質導入し、ポアソン分布に従って癌細胞当たり単一のｓｈＲＮＡの組み込みを支持した。２５，０００個の腫瘍細胞をトリ胚に静脈内注射すると、およそ１０％の細胞が静止し、容易にアクセス可能で目に見えるＣＡＭ臓器内に血管外遊出し、孤立した転移性コロニーを形成する。９９％の信頼度で７９８０５個のｓｈＲＮＡクローンの３倍カバレージを確実にするために、スクリーニングを１００個の胚において実施した。形質導入されたＧＦＰ発現細胞を、発生１０日目に卵外培養で胚に静脈内注射した。発生１５日目に、これらの１００個の胚のＣＡＭ中の２００，０００個以上のコロニーを生体内顕微鏡を用いて調査した。このうち、６７個の形態学的にコンパクトな転移性病変を同定し切除した。これらのコロニーを解離させ、選択下で培養し、５０個のクローンを培養中でうまく増殖させた。
【００４９】
組み込まれたｓｈＲＮＡを同定するために、各クローンからのインサートを一般的なフランキングプライマーを用いてＰＣＲによって増幅し、得られたｃＤＮＡ配列をＩｌｌｕｍｉｎａプラットフォーム上でのディープシークエンシングによって決定した。生の配列リードをストリンジェントなフィルタリングアルゴリズムにかけて、隣接するｍｉＲＮＡ配列を同定し、矛盾するループ配列及びステム塩基対ミスマッチを有するリードを排除した。次いで、フィルタリングされた配列をライブラリー及びヒトヌクレオチド（ｎｔ）データベースの両方に対してＢＬＡＳＴ分析にかけ、それらの存在量に従って順位付けした。５０個の単離されたクローンのうち１７個が単一のｓｈＲＮＡを含有し、一方残りの３３個のクローンは各々２個以上のｓｈＲＮＡを含有した。
【００５０】
次に、それらのコンパクトコロニー表現型の程度に従って、インビボでの生産的細胞遊走に対するそれらの影響に基づいて遺伝子標的を優先順位付けした。これは、実験的転移アプローチを使用することによって達成され、それによって外卵鶏胚への静脈内注射後に各クローンの表現型を検証し、得られた転移コロニーの画像を生体内イメージングを用いて捕捉した。カスタムＭａｔｌａｂベースのプログラムを開発して、３つの補完的なアルゴリズムを使用して各転移性コロニーの画像を分析した。インビトロでヒットクローンの増殖速度に有意差は検出されなかったが、いくつかのクローンはインビボで異なる速度で増殖することが観察された（図３ａ）。したがって、個々のコロニー間の増殖の違いによる影響を軽減し、インビボでの癌細胞の運動性について正確な評価を得るために、アルゴリズムは２つの異なるパラメータを分析するように設計し、Ａ）コロニーの重心からの癌細胞の遠さ（線形指数）、Ｂ）転移性コロニー領域内の癌細胞の密度（密度指数）、及びＣ）各転移コロニーが占める総面積（面積指数、図３ｂ〜図３ｄ）であった。簡単に言うと、第１のアルゴリズムは、ＧＦＰシグナルを使用して癌細胞の輪郭を描くマスクを作成し、重心を通る３６００ラインスキャンを使用してガウス分布にフィットする平均ラインプロットを作成する。対照ｓｈＲＮＡコロニーに対する個々のクローンによって形成されたコロニー間のガウスラジアルラインスキャン強度分布の偏差を使用して、コロニー線形指数を生成する。第２及び第３のアルゴリズムは、蛍光マスクを使用して個々の転移性コロニー領域（面積指数）を測定し、各領域内の蛍光密度（密度指数）を計算する。元のスクリーニングから得られた各クローンについて、１０個の個々のコロニーを分析し、次いでそれらの線形指数値及び面積指数値に基づいて分類した。各指数は、スクリーニングで同定されたコロニーの類似の順位付けを生じたが、いくつかの視覚的にコンパクトなクローンは、一方又は他方の方法単独では十分に同定できなかった（図３ｂ〜図３ｄ）。このため、３つのアルゴリズムを組み合わせて総合コロニーコンパクト性指数（ＣＩ）を作成し、それを用いて陽性対照（遊走阻止抗体を注入した胚のコロニー）及び陰性対照（スクランブルｓｈＲＮＡ発現ＨＥｐ３クローン、図３ａ〜図３ｄ）と比較したヒットクローンの表現型を層別化した。ＣＩは、各指数についてＺスコア（実験−対照／ＳＤ対照）から計算し、ＣＩ＝Ｚ（密度指数）−Ｚ（線形指数）−Ｚ（面積指数）であった。
【００５１】
ＣＤ１５１を標的とした遊走阻止抗体（陽性対照）で処理した後に生成された陽性対照コロニーの形態は、陰性対照であるスクランブルｓｈＲＮＡ発現細胞（陰性対照、８．５１５ｅ−００９±１．６８）によって生成された高度に侵襲性の転移性コロニーと比較して、ＣＩの最も劇的な増加（１７．１±１．６８）をもたらした（図３ａ）。ＣＩ指数の統計分析は、そのＣＩが陰性対照のものと有意に異なる（ｐ≦０．０５）転移コロニー表現型を有する２７個のクローンを明らかにした（図７）。これら２７個のクローンのうち１１個は、単一のｓｈＲＮＡ（Ｋｉｆ３ｂ、ＡＣＴＢ、ＳＲＰＫ１、ＴＭＥＭ２２９ｂ、Ｃ１４０ｒｆ１４２、ＫＢ−１４６０Ａ  １．５、ＡＣＴＣ１、ＫＤＥＬＲ３、ＡＰＢＡ２、ＫＩＡＡ０９２２及びＮｒ２ｆ１）を含有していた。単一のｓｈＲＮＡを含有し、ＣＩが５．０以上であるクローンを下流分析のために選択した（表１参照）。
【００５２】
【表１】
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【００５３】
観察されたインビボ運動性の阻害が標的遺伝子のｓｈＲＮＡ媒介枯渇によるものであり、標的外効果によるものではないことを確認するために、独立したｓｈＲＮＡ構築物を利用してＫｉｆ３ｂ（ＣＩ＝１２．４）、ＳＲＰＫ１（ＣＩ＝１１．２）、ＴＭＥＭ２２９ｂ（ＣＩ＝９．７）、Ｎｒ２ｆ１（ＣＩ＝５．９）及びＣ１４ｏｒｆ１４２（ＣＩ＝８．８）用の新しいＨＥｐ３クローンを作製した（図４ａ〜図４ｅ）。元のヒットクローン及び新たに誘導されたクローンにおける各標的タンパク質の遺伝子及びタンパク質発現の分析により、標的タンパク質の特異的ノックダウンが確認された（図４ａ〜図４ｅ）。次いで、独立したｓｈＲＮＡを有するクローンを、インビボ転移性コロニー形成アッセイを用いて検証したところ、全ての候補遺伝子が、それらの一次スクリーニングヒットクローンのものに類似したＣＩ値でコンパクトコロニー表現型を再現した（図４ｆ）。
【００５４】
治療的関連性及び特異的阻害剤を開発する可能性に基づき、さらなる研究でＫｉｆ３ｂ、Ｎｒ２ｆ１及びＳＲＰＫ１遺伝子に焦点を当てた。これらの遺伝子のノックダウンによって作り出された遊走表現型へのさらなる洞察を得るために、高解像度のインビボでのタイムラプス撮影を、個々の転移性コロニー及び対照（スクランブル）ｓｈＲＮＡ形質導入ＨＥｐ３細胞と比較した各クローン由来の原発腫瘍の侵襲前面で行った。これらの標的の各々のｓｈＲＮＡ媒介阻害は、癌細胞遊走の速度及び方向性の両方を低下させることが観察された（図１ａ〜図１ｆ）。ｓｈＫｉｆ３ｂ、ｓｈＮｒ２ｆ１及びｓｈＳＲＰＫ１クローンの各々からの癌細胞は、転移性病変内（図１ａ、図１ｃ〜図１ｄ）及び原発腫瘍の侵襲前面で（図１ｂ、図１ｅ〜図１ｆ）、運動性の欠如又は非生産的な遊走パターンのいずれかを示した。癌細胞の平均速度が転移と比較して浸潤性腫瘍の前面でより速いという事実にもかかわらず、腫瘍を回避した癌細胞の数は、対照と比較してｓｈＫｉｆ３ｂ、ｓｈＮｒ２ｆ１及びｓｈＳＲＰＫ１クローンにおいて有意に減少した（図１ｇ）。侵襲前面における対照クローン又はヒットクローンの生体内イメージングは、対照ＨＥｐ３細胞が運動性の方向に単一の優勢な突出部を形成する傾向がある一方で、ｓｈＫｉｆ３ｂ、ｓｈＮｒ２ｆ１及びｓｈＳＲＰＫ１クローンは非協調的な様式で全方向に延出する複数の突出部を形成する傾向があることを示した（図１ｂ、図１ｈ）。結論として、このスクリーニングアプローチは、指向性インビボ細胞遊走を調整するために必要とされる遺伝子を主に同定した。
【００５５】
インビボでの細胞運動性及び指向性細胞遊走に必要とされる遺伝子が血管内侵入及び転移にも必要とされるかどうかを試験するために、ヒットクローンを肺への自然転移のマウスモデルで評価した。この目的のために、皮下のＨＥｐ３腫瘍を、親のスクランブルｓｈＲＮＡ対照又はｓｈＫｉｆ３ｂ、ｓｈＮｒ２ｆ１及びｓｈＳＲＰＫ１発現腫瘍細胞を用いてヌードマウスの脇腹に確立した。原発腫瘍が１．５ｃｍ３に達したら、全載蛍光実体顕微鏡を用いて、次にヒトａｌｕ特異的ｑ−ＰＣＲを用いて定量的に、肺の転移の存在を調べた（図２ａ、図２ｂ）。ｓｈＲＮＡスクランブル対照ＨＥｐ３腫瘍を有する動物（ｎ＝２３）において、肺への有意な転移が蛍光イメージングによって検出された（図２ａ）。対照的に、ＫＩＦ３Ｂｓｈ／ｓｈ２、ＳＲＰＫ  １ｓｈ／ｓｈ２及びＮＲ２Ｆ  １ｓｈ／ｓｈ２腫瘍を有する動物の肺に転移性病変はめったに観察されず、転移性病変は非常に小さいサイズであった（図２ａ）。マウス肺における転移性ＨＥｐ３癌細胞の量を正確に定量するために、本発明者らはゲノムＤＮＡを抽出し、ヒト特異的ａｌｕ  ｑ−ＰＣＲを実施した。次いで、このデータをＨＥｐ３細胞から作成された標準曲線と比較することによって、肺の転移細胞の正確な計数を決定した。スクランブルｓｈＲＮＡ対照は、肺当たり平均２４０万個の播種性癌細胞を有した。対照的に、ＫＩＦ３Ｂｓｈ／ｓｈ２、ＳＲＰＫ  １ｓｈ／ｓｈ２及びＮＲ２Ｆ１ｓｈ／ｓｈ２腫瘍を有する動物は、転移性播種の劇的な抑制を示し、肺への転移の減少は、ＫＩＦ３Ｂｓｈ／ｓｈ２ではそれぞれ９９．５５％及び９９．６７％、ＳＲＰＫ  １ｓｈ／ｓｈ２ではそれぞれ９９．９８％及び９９．６６％、ＮＲ２Ｆ１ｓｈ／ｓｈ２ではそれぞれ９９．７１％及び９９．８１％であった（図２ｂ）。屠殺時に、対照とヒットｓｈＲＮＡクローン腫瘍との間の原発腫瘍重量に有意差はなかった（図２ｃ）。これらの結果から、Ｋｉｆ３ｂ、Ｎｒ２ｆ１及びｓｈＳＲＰＫ１は各々、インビボ癌細胞運動性及び自然転移の成功の両方に必要であり、したがって、転移のための非常に有望な治療標的を表すことが確認される。
【００５６】
観察された運動性表現型が高度に転移性のヒト類表皮癌細胞株ＨＥｐ３に特異的であり得るという可能性を考慮すると、Ｋｉｆ３ｂ、ＳＲＰＫ１及びＮｒ２ｆ１におけるヒットは、２つの異なるタイプのヒト上皮癌を表す２つの追加の細胞株であるＭＤＡ−ＭＢ−２３１（乳癌）及びＰＣ３（前立腺癌）において抑制された。Ｋｉｆ３ｂ発現のサイレンシングは、全ての癌細胞株においてインビトロでの細胞遊走を効率的に阻止した（図５ａ）。興味深いことに、ＳＲＰＫ１のサイレンシングは、インビトロでＨＥｐ３及びＰＣ３細胞の運動性を有意に阻害したが、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１のインビトロ運動性には影響を及ぼさなかった（図５ｂ）。最後に、Ｎｒ２ｆ１のサイレンシングは、インビトロでＨＥｐ３の遊走を阻害したが、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１には効果がなかった。ＰＣ３細胞ではＮｒ２ｆ１の発現は検出されなかった（図５ｃ）。このことは、これらの遺伝子が従来のインビトロスクリーニングにおいて検出されなかった理由を説明し得る。実際、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞を用いてスクリーニングを実施した場合、ＳＲＰＫ１及びＮｒ２ｆ１は検出されないであろう。
【００５７】
独立したｍｉＲＮＡ構築物によるｍｉＲＮＡ１３０ｂ及びｍｉＲＮＡ１２２クローンの検証により、それらの非侵襲性表現型が確認された（図８Ａ）。重要なことに、ｍｉＲＮＡ−１２２又はｍｉＲＮＡ−１３０ｂ阻害剤を過剰発現するように操作されたＨＴ１０８０細胞は、ニワトリＣＡＭ血管系とあまり目立たない接触を示したコンパクトな転移性コロニーを形成した（図８Ｂ、図８Ｃ）。
【００５８】
スクリーニングで同定されたｍｉＲＮＡがインビボで癌細胞の浸潤性遊走を阻止するメカニズムへのさらなる洞察を得るために、癌細胞浸潤及び転移に対するｍｉＲＮＡ１２２過剰発現の効果に主眼を置いて生体内イメージング実験を行った。対照（ＲＦＰ）細胞は、既存の血管に沿って優先的に軌跡を描きながら、ＣＡＭ組織内に強く侵入したことが見出された（図９Ａ〜図９Ｃ及び図２Ａ〜図２Ｃ）。さらに、対照、スクランブルベクター形質導入細胞は、卵内転移モデルにおいてニワトリＣＡＭに活発に転移したが、ｍｉＲＮＡ１２２過剰発現細胞はそうすることができなかった（図９Ｆ）。示差的に標識された対照、スクランブルベクター発現細胞（ＲＦＰ）及びｍｉＲＮＡ１２２過剰発現細胞（ＧＦＰ）の共注射とそれに続く高解像度生体内イメージングにより、対照細胞が血管系に沿って優先的に突出し侵入し、血管周囲コラーゲン線維との明確な接触を形成し、一方ｍｉＲＮＡ１２２を過剰発現する細胞は、血管系とは無関係に突出及び浸潤し、血管周囲コラーゲンとの接触を形成しないことが明らかになった。（図１０Ａ〜図１０Ｆ）。ニワトリＣＡＭは、血管系が貫通するコラーゲンに富む膜を表す。転移性癌細胞は、ａ）既存のコラーゲン線維束に沿って移動し、ｂ）コラーゲンマトリックスを局所的に分解及び再編成し、後に方向性癌細胞浸潤に使用される整列したコラーゲンの束を作り出すことによって、コラーゲンに富むマトリックスに浸潤する。実際、ｍｉＲ１２２過剰発現細胞は人工３Ｄコラーゲンマトリックスに侵入することができなかった。３Ｄコラーゲン浸潤もＭＭＰ阻害剤フェナントロリンによって阻止され、このプロセスがプロテアーゼ依存性であることが確認された（図１１Ａ、図１１Ｂ）。３Ｄコラージュマトリックス内にコラーゲン分解領域がほぼ完全に存在しないことによって示されるように、ｍｉＲＮＡ１２２過剰発現細胞は、対照細胞よりも有意に少なくコラーゲンマトリックスを浸潤及び分解した（図１１Ｃ、図１１Ｄ）。ニワトリＣＡＭに血管内注射した場合、スクランブル形質導入細胞はコラーゲンマトリックス内に残り、活発にその付近に指向性コラーゲン束を形成した（図１１Ｅ〜図１１Ｇ）。対照的に、ｍｉＲＮＡ１２２細胞は、ＣＡＭ表面上で実質的に成長しているコラーゲンマトリックス内に深く留まることができず、コラーゲン再配列をほとんど又は全く示さなかった（図１１Ｅ〜図１１Ｇ）。コラーゲンに富むマトリックスの侵入及び再配列は、癌細胞関連プロテアーゼによるそれらの局所的タンパク質分解を必要とする。ＭＴ１−ＭＭＰは、活性及び局在化が効率的な癌細胞浸潤にとって重要であることが示されている重要なマトリックス分解酵素である。そのため、対照、スクランブル及びｍｉＲ１２２過剰発現ＨＴ１０８０細胞におけるＭＴ１−ＭＭＰ輸送及び局在化を調べた。最初に、インビトロ培養において、ｍｉＲＮＡ１２２を過剰発現している細胞は、著しく短い軌跡を示す拡大されたＭＴ１−ＭＭＰ陽性小胞と共に損なわれたＭＴ１−ＭＭＰ輸送を示すことが見出された（図１２Ａ、図１２Ｂ）。高解像度インビボイメージングにより、対照ＨＴ１０８０細胞ではＭＴ１−ＭＭＰは癌細胞突出部とコラーゲン線維の接触部位に局在化されたが、ｍｉＲＮＡ１２２過剰発現細胞ではＭＴ１−ＭＭＰは主に細胞質局在化を示していることが示された（図１２Ｃ）。さらに、血管周囲対照細胞ではＭＴ１−ＭＭＰは癌細胞と血管壁の接触部に局在したが、ｍｉＲＮＡ１２２過剰発現細胞ではＭＴ１−ＭＭＰは特異的局在化を示さなかった（図１２Ｄ〜図１２Ｇ）。次に、ｍｉＲＮＡ１２２が仲介するＭＴ１−ＭＭＰ輸送を調べて、それが癌細胞の血管外遊出の過程に必要かどうかを決定した。ｍｉＲＮＡ１２２過剰発現細胞は、対照のスクランブル感染ＨＴ１０８０細胞よりも有意に非効率的に血管外遊出していることが見出された（図１３Ａ、図１３Ｂ）。重要なことに、対照細胞において、ＭＴ１−ＭＭＰは、突出部からＭＴ１−ＭＭＰが枯渇したｍｉＲＮＡ１２２過剰発現細胞における血管壁破壊突出部（ｉｎｖａｄｏｐｏｄｉａ）への明確な局在化を示した（図１３Ｃ、図１３Ｄ）。
【００５９】
癌細胞株においていくつかの有望な転移治療標的を同定したため、ヒト癌の進行及び転移に対するこれらの遺伝子の潜在的な関連性を調べた。これを行うために、ヒト癌遺伝子発現データベースのＯｎｃｏｍｉｎｅコレクション（Ｒｈｏｄｅｓ  ｅｔ  ａｌ．Ｎｅｏｐｌａｓｉａ  ９：１６６−１８０、２００７）を調べて、それらの発現が転移又は臨床転帰不良に関連するかどうかを決定した。確かに、分析は、スクリーニングで同定されたトップヒット遺伝子が、黒色腫（Ｎｒ２ｆ１、Ｃ１４ｏｒｆ１４２及びＫｉｆ３ｂ）、前立腺（ＳＲＰＫ１及びＫｉｆ３ｂ）、頭頸部（Ｋｉｆ３ｂ）、肺（ＳＲＰＫ１及びＴＭＥＭ２２９ｂ）、卵巣（Ｎｒ２ｆ１）及び結腸（Ｎｒ２ｆ１）を含むいくつかの固形癌タイプの転移病変において有意に上方制御されることを示した（図６ａ）。さらに、ヒトタンパク質アトラスデータベースにおけるヒト癌の免疫組織化学的染色の詳細な調査は、ＳＲＰＫ１、Ｋｉｆ３ｂ、Ｎｒ２ｆ１、Ｃ１４ｏｒｆ１４２及びＴＭＥＭ２２９ｂが全て、癌病理学者によって描写されるようにこれらの癌の原発腫瘍の浸潤領域において有意に増加した発現を示すことを示した（図６ｂ〜図６ｇ）。
【００６０】
まとめると、抗転移治療標的の発見を可能にする定量的インビボアプローチを使用した。このアッセイの迅速かつ定量的な性質により、膨大な数の初期候補遺伝子を介した効率的なフィルタリングが可能になり、いくつかの新しい抗転移性標的の発見につながった。このスクリーニングアプローチを用いて同定された抗転移性標的は、インビトロで遊走する癌細胞の能力に対して全く又はほとんど効果がない。
【図１−１】
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【図１−２】
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【図２−１】
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【図２−２】
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【図３−１】
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【図３−２】
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【図４】
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【図５】
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【図６−１】
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【図６−２】
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【図６−３】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【国際調査報告】
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