(57)【要約】  本発明は、支持体又は基板を備えるマイクロ流体キット又はデバイスであって、該支持体又は基板が少なくとも１つのチャネルを基板内に備え、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を検出する認識部位又はセンシング領域を含む、マイクロ流体キット又はデバイスの、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱により分析物を検出するためのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける使用に関する。【選択図】図１
2019515310.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
マイクロチップを備え、該マイクロチップが基板を備えるキット又はデバイスであって、該基板が該基板内に少なくとも１つのチャネルを備え、該チャネルが入口と、出口と、該入口及び出口を接続する流路とを備え、該入口及び出口が共に中央平面を画定し、該流路の一部が該中央平面を横方向に走り、該中央平面を横方向に走る流路の一部が、キレート剤上の配向抗体を含み、標的分析物を検出することが可能な修飾表面を有する認識部位又はセンシング領域を含み、
キレート剤による修飾表面を有する前記認識部位又はセンシング領域が、下記式ＩＩ：
【化１】
2019515310.tif 000011
（式中、Ｒは１個〜１５個の炭素原子を有するアルキル基である）によって表される１つ以上のカルボン酸基を含有するジアゾニウムアリール化合物で機能化された熱可塑性材料で構成され、
上述の式ＩＩの化合物による機能化によって生じるカルボン酸基が、Ｎα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩又はニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択されるキレート剤に共有結合で連結し、該金属（ＩＩ）塩がＣｕ２＋の塩として理解され、
中央平面が前記チャネルを対称に２分割するように通る平面であり、前記センシング領域が前記抗体で機能化された金属キレート活性化表面の部分として規定され、前記入口と前記出口との間で前記中央平面を横方向に走る前記流路内とされる、
キット又はデバイスの、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱により分析物を検出するためのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける使用。
【請求項２】
前記キレート剤がニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩であり、該金属（ＩＩ）塩がＣｕ２＋の塩として理解される、請求項１に記載の使用。
【請求項３】
前記キレート剤がＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩であり、該金属（ＩＩ）塩がＣｕ２＋の塩として理解される、請求項１に記載の使用。
【請求項４】
前記キット又はデバイスが、以下の要素：
ａ．  レーザー等の外部光源、
ｂ．  前記標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子、
ｃ．  フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、前記外部光源を照射した場合に前記金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備える、請求項１〜３のいずれか一項に記載の使用。
【請求項５】
前記キット又はデバイスが、以下の要素：
ａ．  外部光源、
ｂ．  前記標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｃ．  任意に、前記外部光源を照射した場合に前記金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備える、請求項１〜４のいずれか一項に記載の使用。
【請求項６】
前記キット又はデバイスが、以下の要素：
ａ．  外部光源、
ｂ．  任意に標識分子に結合した、前記標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子（検出生体分子）、
ｃ．  前記検出生体分子又は該検出生体分子を修飾する標識を特異的に認識する生体分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、前記外部光源を照射した場合に前記金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備える、請求項１〜５のいずれか一項に記載の使用。
【請求項７】
前記キット又はデバイスが、赤外線カメラ又はサーモパイルからなるリストから選択される、前記外部光源を照射した場合に前記金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイスを更に備える、請求項４〜６のいずれか一項に記載の使用。
【請求項８】
基板を備えるキット又はデバイスであって、該基板が該基板内に少なくとも１つのチャネルを備え、該チャネルが入口と、出口と、該入口及び出口を接続する流路とを備え、該入口及び出口が共に中央平面を画定し、該流路の一部が該中央平面を横方向に走り、該中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を検出する認識部位を含み、
認識部位を含む、前記中央平面を横方向に走る流路の一部が、請求項１で規定される式ＩＩによって表される、１つ以上のカルボン酸基を含有する前記ジアゾニウムアリール化合物で機能化され、上述の機能化によって生じるカルボン酸基がＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩又はニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択されるキレート剤に共有結合で連結し、該金属（ＩＩ）塩がＣｕ２＋の塩として理解される、キット又はデバイス。
【請求項９】
前記基板がポリ（メタクリル酸メチル）、ポリスチレン、ポリ（ジメチルシロキサン）、ポリエチレンテレフタレート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリ乳酸、ポリ（Ｄ，Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）又は環状オレフィンコポリマー等の熱可塑性材料で構成され、前記認識部位又はセンシング領域に固定化された、前記標的分析物を認識することが可能な抗体を備える、請求項８に記載のキット又はデバイス。
【請求項１０】
前記キレート剤がニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩であり、該金属（ＩＩ）塩がＣｕ２＋の塩として理解される、請求項８又は９に記載のキット。
【請求項１１】
前記キレート剤がＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩であり、該金属（ＩＩ）塩がＣｕ２＋の塩として理解される、請求項８又は９に記載のキット。
【請求項１２】
以下の要素：
ａ．  レーザー等の外部光源、
ｂ．  前記標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子、
ｃ．  フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、前記外部光源を照射した場合に前記金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備える、請求項８〜１１のいずれか一項に記載のキット又はデバイス。
【請求項１３】
以下の要素：
ａ．  外部光源、
ｂ．  前記標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｃ．  任意に、前記外部光源を照射した場合に前記金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備える、請求項８〜１１のいずれか一項に記載のキット又はデバイス。
【請求項１４】
以下の要素：
ａ．  外部光源、
ｂ．  任意に標識分子に結合した、前記標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子（検出生体分子）、
ｃ．  前記検出生体分子又は該検出生体分子を修飾する標識を特異的に認識する生体分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、前記外部光源を照射した場合に前記金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備える、請求項８〜１１のいずれか一項に記載のキット又はデバイス。
【請求項１５】
赤外線カメラ又はサーモパイルからなるリストから選択される、前記外部光源を照射した場合に前記金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイスを更に備える、請求項８〜１４のいずれか一項に記載のキット又はデバイス。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はマイクロ流体力学の分野に関し、特にマイクロ流体チップが、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱により分析物を検出する多数の免疫測定法（ＥＬＩＳＡ免疫測定法等）への使用に特に好適であることを示す。
【背景技術】
【０００２】
超高感度かつ低コストの食品汚染物質の検出が必要とされる農業食品分野において、バイオセンシングの市場の拡大が見られる。
【０００３】
特に、養鶏業の企業がサルモネラ（Salmonella）、大腸菌（E. coli）又はカンピロバクター（Campylobacter）等の病原体の存在／非存在について日常的な管理試験を行っており、検出プロトコルは肉自体、及びブーツスワブ（boot swabs）、作業ブーツ、作業台、家禽肥育、採卵鶏農場等において広く規制される。
【０００４】
サルモネラの特異的検出については、国際標準化機構の方法６５７９（ＩＳＯ）及びアメリカ食品医薬品局のBacteriological Analytical Manual Chapter 5: Salmonella（ＦＤＡ）等の標準培養方法が、家禽肉及び家禽肉製品の両方について９ＣＦＵ／ｍＬ（１ｍＬ当たりのコロニー形成単位）と非常に低い検出限界を有するにもかかわらず、方法を終了させるのに最大５日間（生化学的及び血清学的確認を含む；ＩＳＯ、２００２年；ＦＤＡ、２００７年）を必要とし、多数のサンプルの日常的モニタリングに効率的でないことから、この病原体の検出に必要とされる時間を短縮するためにＥＬＩＳＡ等の免疫測定法、又はＰＣＲ及び保存培養等の他の好適なアッセイに基づく種々の方法が開発されている。これに関連して、産業及び実験室の両方について政府当局が法的手段を取るための結果を報告する迅速、正確かつ経済的な方法が極めて重要である。これらの方法の１つは、Ｖｉｔｅｋ免疫診断アッセイシステムサルモネラ（ＶＩＤＡＳ  ＳＬＭ）法による、サルモネラの存在についての多数のサンプルの正確かつ迅速なスクリーニングを可能にする自動化酵素結合蛍光アッセイベースのシステムである、Ｖｉｔｅｋ免疫診断アッセイ（ＶＩＤＡＳ；Biomerieux，Marcy L'Etoile，France）である。ＶＩＤＡＳ  ＥＳＬＭの検出限界は、家禽肉及び家禽肉製品の両方について４８時間で９０ｃｆｕ／ｍＬと決定された。
【０００５】
しかしながら、サルモネラの存在についてサンプルをスクリーニングする、Ｖｉｔｅｋ免疫診断アッセイを含むこれまでの全ての既知の試験が、適格な人員及び特別な実験室設備を必要とし、結果の取得を大幅に遅らせる。既知の試験のいずれかのサルモネラ陽性結果が、早期に処置することができる場合を除き、収容ユニット内の全てのニワトリの屠殺を意味し得ることを考慮に入れると、病原体の存在を可能な限り迅速かつ効率的に特定し、適切な措置を講じることは食品産業にとって主要課題である。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明はサルモネラ、大腸菌又はカンピロバクター等の病原体を含む広範な分析物を効率的に同定する迅速、高感度かつ特異的な方法を提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本明細書に開示されるように、様々な例示的な実施の形態において、マイクロ流体チップが、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱により分析物を検出する多数の免疫測定法への使用に特に好適であることを示す。これらのデバイスは、１つ以上のサンプル流体中の１つ以上の標的分析物の存在を検出するのに有用である。かかるデバイスを作製及び使用する方法及びプロセスも実施例に開示される。
【０００８】
したがって、本発明は特に、支持体又は基板を備えるマイクロ流体キット又はデバイスであって、該支持体又は基板が基板内に少なくとも１つのチャネルを備え、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を検出する認識部位又はセンシング領域を含む、マイクロ流体キット又はデバイスの、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱により分析物を検出するためのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける使用に関する。
【０００９】
中央平面がチャネルを対称に２分割するように通る平面であり、センシング領域が抗体で機能化された金属キレート活性化表面の部分として規定され、入口と出口との間で中央平面を横方向に走る流路内とされることに留意されたい。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】マイクロ流体プロトタイプを示す図である。ＮＣ＝陰性対照；ＰＣ：陽性対照。
【図２】３０ｍＷ  ＮＩＲビームの照射時のバッファーで希釈し、マイクロ流体チャンバ上に直接吸着させた２つの異なる濃度のサルモネラについての温度の増分の測定を示す図である。
【図３】マイクロ流体チップの表面上に直接吸着させた種々の濃度のサルモネラＴ．の温度の増分ΔＴの測定を示す図である。
【図４】マイクロ流体チップの表面上でサンドイッチ免疫測定法により検出された種々の濃度のサルモネラＴ．の存在に起因する温度の増分ΔＴの測定を示す図である。
【図５】３０ｍＷ  ＮＩＲレーザービームの照射時のマイクロ流体チップ上のサンドイッチフォーマットでのリン酸バッファーで希釈した１つの濃度のサルモネラの免疫検出に起因する温度の増分の測定を示す図である。
【図６】マイクロ流体チップの表面上に吸着させたＡｂ上のサルモネラの低い検出限界を示す図である。
【図７】３０ｍＷ  ＮＩＲレーザービームの照射時のサルモネラの２つの希釈物をドープした実サンプル中のサルモネラの存在に起因する温度の増分ＤＴの測定を示す図である。
【図８】検量線からの実サンプルの定量化を示す図である。
【図９】３０ｍＷ  ＮＩＲレーザービームの照射時の共有結合で固定化した捕捉抗体を使用する３０ＣＦＵ／ｍｌをドープしたＰＢＳ中のサルモネラの存在に起因する温度の増分ΔＴの測定を示す図である。
【図１０】３０ｍＷ  ＮＩＲレーザービームの照射時の配向固定化した捕捉抗体を使用する３０ＣＦＵ／ｍｌをドープしたＰＢＳ中のサルモネラの存在に起因する温度の増分ΔＴの測定を示す図である。
【図１１】マイクロ流体チップ表面の種々の表面機能化の比較を示す図である。
【図１２】２２５ｍｌのペプトン中２５ｇの鶏肉の実サンプル中の６０ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラの検出を示す図である。
【図１３】配向捕捉抗体で機能化されたマイクロ流体チップ上での実サンプル（２２５ｍｌのペプトン中２５ｇの鶏肉の実サンプル）中のサルモネラの定量化を示す図である。
【図１４】配向捕捉抗体で機能化されたマイクロ流体チップ上でのボルトン培養培地中のカンピロバクター・ジェジュニの定量化を示す図である。
【図１５】市販のＥＬＩＳＡキット（Indoor BiotechnologyによるＡｒａ  ｈ  １  ＥＬＩＳＡキット（ＥＬ−ＡＨ１）、Ａｒａ  ｈ  １  ＥＬＩＳＡキット（２Ｃ１２／２Ｆ７）；www.inbio.com）を用いたＡｒａ  ｈ１のＬＯＤの決定を示す図である。
【図１６】配向捕捉抗体で機能化されたマイクロ流体チップ上での実サンプル中のＡｒａ  ｈ  １の定量化を示す図である。
【図１７】マイクロ流体チップチャンバ表面上に吸着させた（absorbed）アルブミンを検出する直接免疫測定法を示す図である。
【図１８】マイクロ流体チップ表面上に共有結合で固定化した捕捉抗体を用いてコラーゲンを検出するサンドイッチ免疫測定法を示す図である。
【図１９】ガラス表面の種々の表面機能化の比較を示す図である。
【図２０】配置１：サンプルの後ろのサーモパイルを示す図である。
【図２１】配置１：サルモネラＴの検量線を示す図である。
【図２２】配置２：サンプルの前のサーモパイルを示す図である。
【図２３】配置２：サルモネラＴの検量線を示す図である。
【図２４】フローチャートである。
【図２５】ＥＬＩＳＡ及びサンドイッチドットブロットによる種々のＣＦＵのサルモネラ（Ａｇ）の検出を示す図である。陰性対照として、ドットブロットをサルモネラの非存在下で行った（Ａｇなし）。
【図２６】ＨＥＡＴＳＥＮＳを用いたサルモネラの検出のために実行される概要プロトコルを示す図である。
【図２７】視覚的方法を用いた２００マイクロリットルのサンプル中の１５０ＣＦＵのサルモネラのＨＥＡＴＳＥＮＳ検出を示す図である。
【図２８】ＰＶＤＦ膜上に直接吸着させた種々のＣＦＵのサルモネラの検出に起因する温度の増分の測定を示す図である。サンプルに０．４ＷのＮＩＲビームを３０秒間照射した。
【図２９】Ａ）ＮＴＡ−Ｃｏ２＋及び抗ＣＤ３で機能化された金ナノ粒子のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル；Ｂ）ＮＴＡ−Ｃｕ２＋及び抗ＨＲＰで機能化された金ナノ粒子のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルを示す図である。レーン：（Ａ）（１）抗ＣＤ３  ３５μｇ／ｍＬ；（２）上清ＡｕＮＰ−ＮＴＡ−Ｃｏ２＋；（３）洗浄１後の上清；（４）洗浄２後の上清；（５）洗浄３後の上清；（６）。
【図３０】抗ＨＲＰ及び酵素ＨＲＰとのインキュベーション後のＮＴＡ−Ｃｕ２＋（青線）及びＮＴＡ−Ｃｏ２＋（赤線）で機能化された金ナノ粒子の活性を示す図である。条件：２５℃で５０ｍＭ  リン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ６．０）中の電子供与体としての１ｍＭ  ＡＢＴＳ及び電子受容体としての１ｍＭ  Ｈ２Ｏ２。
【図３１】ニッケルイオン及び銅イオンで活性化した市販のストリップ上でのＨＲＰを検出する免疫測定法を示す図である。Ａ）Ｎｉ及びＣｕで機能化し、１０μｇ／ｍｌ及び２０μｇ／ｍｌの抗ＨＲＰ抗体を固定化した表面上のＨＲＰの活性；Ｂ）ＨＲＰ活性後のＴＭＢ基質に対する４５０ｎｍでの吸光度。
【図３２】銅イオン及びニッケルイオンで活性化し、１０μｇ／ｍｌ及び２０μｇ／ｍｌの抗ＨＲＰ抗体で機能化された市販のストリップを用いて行ったＨＲＰ免疫測定法のＨＥＡＴＳＥＮＳ測定を示す図である。
【図３３】本発明者らの手順を用いたＮＴＡ−Ｃｕ２＋（赤線）；ＵＶ放射を用いたＮＴＡ−Ｎｉ２＋（青線）による修飾ＣＯＣサンプルのＦＴＩＲスペクトル；非処理ＣＯＣサンプルのＦＴＩＲスペクトル（黒線）を示す図である。
【図３４】ＣｕＳＯ４のＥＤＴＡ溶液の７２７ｎｍでの吸光度の較正点及び極大値のＵＶ−ｖｉｓスペクトルを示す図である。
【図３５】Ａ）インキュベーション工程後に得られるマイクロ流体チップ表面から除去されるＣｕ−ＥＤＴＡのＵＶ−Ｖｉｓスペクトル；Ｂ）分析された表面上でのＣｕ２＋濃度の外挿を示す図である。
【図３６】ニッケルイオン（比較例）及び銅イオン（ＮＩＴ）で活性化した表面上でＨＲＰを検出する免疫測定法；Ｎｉ及びＣｕで機能化し、抗ＨＲＰ抗体を固定化した表面上でのＨＲＰの活性；ＨＲＰ活性後のＡＢＴＳ基質に対する４１２ｎｍでの吸光度を示す図である。
【図３７】２つの金属キレート化表面上の配向固定化抗体によって捕捉されるビオチン化ＨＲＰの存在に起因する温度の増分（ΔＴ）を示す図である。
【図３８】ニッケルイオン（比較例）及び銅イオン（ＮＩＴ）で活性化した表面上でサルモネラＴ．を検出する比色免疫測定法を示す図である。陽性対照の４１２ｎｍでの吸光度を陰性対照と比較して報告するが、ＮＣ１は捕捉抗体の非存在下でのアッセイを指し、ＮＣ２は分析物サルモネラの非存在下でのアッセイを指し、ＮＣ３は検出抗体の非存在下でのアッセイを指し、ＮＣ４はストレプトアビジン−ＨＲＰの非存在を指す。
【図３９】ニッケルイオン（Ｄ４）及び銅イオン（ＮＩＴ）アッセイにより活性化した表面上で１０００ＣＦＵのサルモネラＴ．を検出するＨＥＡＴＳＥＮＳ免疫測定法；様々に機能化された表面上の分析物の存在に対する温度の増分（ΔＴ）の測定を示す図である。陽性対照の４１２ｎｍでの吸光度を陰性対照と比較して報告するが、ＮＣ１は捕捉抗体の非存在下でのアッセイを指し、ＮＣ２は分析物サルモネラの非存在下でのアッセイを指し、ＮＣ３は検出抗体の非存在下でのアッセイを指す。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
定義
本発明の目的上、以下の定義が下記に含まれる。
【００１２】
「含む（comprising）」という用語は、「含む」という語の前にある（follows）ものを含み、これに限定されないことを意味する。このため、「含む」という用語の使用は、列挙される要素が所要又は必須であるが、他の要素が任意であり、存在していても又は存在していなくてもよいことを示す。
【００１３】
「のみからなる（consisting of）」は、「のみからなる」という句の前にあるものを含み、これに限定されることを意味する。このため、「のみからなる」という句は、列挙される要素が所要又は必須であり、他の要素が存在し得ないことを示す。
【００１４】
本明細書で使用される「キット」又は「デバイス」という用語が任意の特定のデバイスに限定されず、本発明の実施に好適な任意のデバイスを含むことにも留意されたい。
【００１５】
本明細書で使用される場合、「マイクロ流体力学」は、マイクロメートルサイズのチャネル内の液体の流れを取り扱う科学である。マイクロ流体力学とみなされるには、チャネルの少なくとも１つの寸法がマイクロメートル又は数十マイクロメートルの範囲でなくてはならない。マイクロ流体力学は、科学（マイクロチャネル内の流体の挙動の研究）及び技術（分析物を同定及び定量化する本明細書に開示されるデバイスのような様々な用途のためのマイクロ流体デバイスの製造）の両方としてみなすことができる。
【００１６】
本明細書で使用される場合、「マイクロ流体チップ又はデバイス」は、材料（例えばガラス、シリコン、熱可塑性材料、又はポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）等のポリマー）にエッチング又は成形された一連のマイクロチャネルを指す。マイクロ流体チップを形成するマイクロチャネルは、所望の特徴（生化学的環境の混合、圧送、選別、制御）を達成するために互いに接続される。マイクロ流体チップ内に封じ込められた、このマイクロチャネルのネットワークは、マクロの世界とミクロの世界との境界面としてチップを貫通する入力口及び出力口によって外部と接続する。これらの孔を介して、液体（又は気体）が、外部能動システム（圧力調節器、プッシュシリンジ（push-syringe）又は蠕動ポンプ）によって又は受動的な方法（例えば静水圧）で、（チューブ、シリンジアダプタ又は更にはチップの単純な孔を介して）マイクロ流体チップに注入され、マイクロ流体チップから除去される。好ましくは、本明細書で使用される場合、「マイクロ流体チップ又はデバイス」は、サンドイッチ免疫測定法等の免疫測定法を行い、分析物を検出するのに特に好適な、支持体又は基板を備えるチップ又はデバイスであって、該支持体又は基板が基板内に少なくとも１つのチャネルを備え、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を検出する認識部位又はセンシング領域を含む、チップ又はデバイスとして理解される。
【００１７】
本明細書で使用される場合、「Ｈｅａｔｓｅｎｓ方法論又は技術」という用語は、シグナル伝達系として金属ナノ粒子の光熱変換特性を用いる任意の方法論として理解される。バイオセンサーにおけるタグとしてこのシステムを使用する根拠は、表面プラズモン吸収バンドの存在による。これらの吸収バンドは、ナノ粒子に衝突する光の周波数が粒子伝導帯の電子の集団振動周波数と共鳴し、励起を引き起こす場合に生じる。この現象は、「局在表面プラズモン共鳴」（ＬＳＰＲ）として知られる。共鳴バンドのスペクトルにおける位置は粒子の形状、サイズ及び構造（中空又は中実）、並びに粒子が存在する誘電体媒質に応じて大きく異なる。ＬＳＰＲは、高いモル吸光係数（約３×１０１１Ｍ−１ｃｍ−１）をもたらし、１０６個のフルオロフォア分子に等しい効率及びナノ粒子に近接した局所電場の顕著な増大を伴う。金、銀又は銅ナノ粒子等の金属ナノ粒子が、この表面プラズモン共鳴効果を有する。好適な周波数のレーザー等の高強度外部光源を照射することで、これらの粒子は、吸収したエネルギーの一部を熱の形で放出することが可能であり、表面の周辺で局部的な温度の上昇を生じる。
【００１８】
本明細書で使用される場合、「金属ナノ粒子」という用語は、標準電子顕微鏡法（electro-microscopy）を用いて測定可能な全ての幾何学的寸法が１ｎｍ〜１０００ｎｍ、好ましくは１ｎｍ〜２００ｎｍであり、フォトニック特性を有する、酸化状態のいずれか又は合金のいずれかの金属原子の任意の単結晶又は多結晶クラスターとして理解される。本明細書に開示される金属ナノ粒子は、対称であっても又は非対称であってもよく、棒、角柱、星形又はナノケージ（nanocages）等の様々な形状を有する。本明細書に開示される金属粒子は、効率的な形で光を吸収し、熱を発生する能力を有する必要がある。「効率的な形」という用語は、当業者によって十分に理解され、効率的な形は、標準手段によって測定される温度対照射時間のプロットの傾きから得られる値である０．０３℃／秒として理解することができるが、その値に限定されない。本発明の好ましい実施形態では、上記金属原子は貴金属である。本発明のより好ましい実施形態では、上記金属原子は金、銀又は銅原子である。本発明の更により好ましい実施形態では、これらは管状又は三角形の金又は銀原子である。
【００１９】
本明細書で使用される場合、「カルボン酸官能基」又は「エポキシ官能基」又は「アミン官能基」又は「チオール官能基」又は「アジド官能基」又は「ハロゲン化物」又は「マレイミド官能基」又は「ヒドラジド官能基」又は「アルデヒド基」又は「アルキン基」という用語は、本明細書で共通一般知識によって理解されるように使用される。
【００２０】
本発明において、外部光源は、３８０ｎｍ〜１１００ｎｍのエネルギーを有し、金、銀、銅、又はそれらの合金若しくは酸化状態のいずれかをベースとする金属粒子のＬＳＰＲバンドの励起を、好ましくは近赤外範囲（７５０ｎｍ〜１１００ｎｍ）で（スペクトルの可視範囲で吸収する、サンプル中に存在する干渉生体分子（ヘモグロビン等）によるエネルギー吸収が、そのエネルギー範囲で起こらないため）生じる能力を有する任意の電磁放射源として理解される。
【００２１】
本発明において、認識分子又は捕捉生体分子は、任意のタイプの化学的又は生物学的相互作用により特定の分析物を特異的に認識することが可能な任意の分子として理解される。
【００２２】
本発明において、第２の認識分子又は検出生体分子は、任意のタイプの化学的又は生物学的相互作用により特定の分析物を特異的に認識することが可能な任意の分子として理解される。
【００２３】
本発明のバイオセンサーに認識要素として使用される分子は、長期にわたって安定し、支持体及びナノ粒子の表面上に固定化した後もその構造及び生物活性を保存することに加え、特定の分析物を他の化合物の存在下で認識するのに十分に選択的な親和性を有する必要がある。抗体、ペプチド、酵素、タンパク質、多糖、核酸（ＤＮＡ）、アプタマー又はペプチド核酸（ＰＮＡ）を、開発されたシステムにおいて認識分子として使用することができる。
【００２４】
説明
本発明は多種多様の分析物、例えばサルモネラ、大腸菌若しくはカンピロバクターのような食品病原体、Ａｒａ  Ｈ  １等のアレルゲン、又はコラーゲン若しくはアルブミン等の他の分析物を迅速かつ効率的な形で同定する高度に特異的な高感度の方法を提供することの解決法を与える。
【００２５】
この目的で、本発明の著者らは、Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術（定義を参照されたい）を用いて標的分析物を検出することが可能な抗体による多数の機能化表面を併用した。したがって、抗体による機能化表面と組み合わせた熱発生の制御が、本発明において開発された新世代の検出システムの基礎として選ばれた。本明細書で用いられる分析物を検出するプロトコルの段階を、３つの主要段階：サンプル前処理、処理及び検出に分けられる図２４に示すフローチャートにまとめる。
【００２６】
この技術を実行するために、初めにサルモネラ・ティフィムリウムに特異的な抗体の適切なカップリングを、ＥＬＩＳＡ法及びドットブロットアッセイフォーマットを用いて試験した。分析物として、BacTRaceからの弱毒化サルモネラ・ティフィムリウム（https://www.kpl.com/catalog/productdetail.cfm?catalog_ID=17&Category_ID=415&Product_ID=952）を、アッセイを実行及び最適化するためのモデルとして使用した。
【００２７】
分析物の存在の標識として酵素を使用する、この標準方法論（ＥＬＩＳＡ）を用いたサルモネラの検出では、図２５に示されるようにＥＬＩＳＡアッセイの場合に１４００ＣＦＵ、ドットブロットアッセイフォーマットによる検出の場合に３１２５ＣＦＵの検出限界（ＬＯＤ）が達成された。抗体が標的分析物（サルモネラ・ティフィムリウム）に結合することが実証された後、検出を行うための幾つかの表面を、センシングプラットホームの開発のためにＨｅａｔｓｅｎｓ技術と組み合わせて試験した。特に、以下の表面：ニトロセルロース、ＰＶＤＦ、シクロオレフィンポリマー（ＣＯＰ）及びパターン化ＴｉＯ２フィルムが選ばれた。
【００２８】
上述の表面を、抗体による機能化及び本明細書で下記に報告する熱伝導率についてのそれらの異なる能力から選択した：
ニトロセルロース  ０．１２Ｗ／（ｍ  Ｋ）〜０．２１Ｗ／（ｍ  Ｋ）。
ＰＶＤＦ  ０．１７Ｗ／ｍ−Ｋ〜０．１９Ｗ／ｍ−Ｋ。
シクロオレフィンポリマー（ＣＯＰ）（マイクロ流体チップ）  ０．１２Ｗ／（ｍ  Ｋ〜０．１５Ｗ／（ｍ  Ｋ）。
パターン化ＴｉＯ２フィルム  １１．８Ｗ／ｍ．Ｋ。
【００２９】
本発明全体を通して示されるように、検出表面として使用するのに理想的な表面は、ｉ）配向結合を確実にする機能化方法論の使用を可能とし、ｉｉ）高い熱伝導率を有する必要がある。ＨＥＡＴＳＥＮＳに使用される検出支持体の熱伝導率を増大することで、分析物と相互作用する金属ナノ粒子により放出される熱がより迅速かつより正確な形で熱検出器から測定されることから、分析物の免疫検出の感度が改善する。
【００３０】
ここで、本明細書で試験した種々の表面の機能化を下記に説明する：
ニトロセルロース／ＰＶＤＦ：適正なバッファー中で適当な濃度の捕捉抗体を１ドット当たり１５μｌ〜２５μｌ（ニトロセルロース又はＰＶＤＦの中央近くに注意して液滴を添加する）、ドットブロットシステムを用いて７００ｍｂａｒの真空で堆積させ、７００ｍｂａｒの真空で１０分間乾燥させた。その後、抗体で機能化された膜を、４ｍｌの洗浄溶液（０．５％ＢＳＡ及び０．５％Ｔｗｅｅｎを含むＰＢＳバッファー）を添加することで２回洗浄し、撹拌しながら室温で１０分間インキュベートした後、溶液を捨てた。次いで、膜を５ｍｌのブロッキング溶液（５％ＢＳＡ及び０．５％Ｔｗｅｅｎを含むＰＢＳバッファー）と撹拌しながら３７℃で６０分間インキュベートし、先に述べた条件で更に２回洗浄した。これによりニトロセルロース膜は分析物とのインキュベーションが可能な状態となった。
パターン化ＴｉＯ２フィルム：５μｇ／ｍｌの捕捉抗体を吸着させた後、表面をブロッキングした。
マイクロ流体チップ：シクロオレフィンポリマー及びＰＭＭＡで構成されるチップを、５μｇ／ｍｌの捕捉抗体でポリマー表面への物理的吸着により機能化した。サンドイッチアッセイだけでなく、直接免疫測定法も試験するために、同様に種々のＣＦＵのサルモネラもチップ表面上に直接吸着させた。
【００３１】
ニトロセルロース又はＰＶＤＦ膜及びパターン化ＴｉＯ２フィルムの分析物とのインキュベーションを行うために、バッファー（それぞれリン酸バッファー、ペプトン培養培地及び実サンプル）中の種々の濃度の分析物２００μｌと撹拌しながら３７℃で３０分間インキュベートした。インキュベートした支持体を、４００μｌの洗浄溶液（０．５％ＢＳＡ及び０．５％Ｔｗｅｅｎを含むＰＢＳバッファー）を添加することで２回洗浄し、撹拌しながら室温で５分間インキュベートした。この洗浄工程が完了したら、４００μｌの１０ｍＭリン酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７）を添加することで２回の付加的な洗浄工程を行い、表面を撹拌しながら室温で５分間インキュベートした。最終検出工程は、支持体とブロッキングバッファー（５％ＢＳＡ及び０．５％Ｔｗｅｅｎを含むＰＢＳバッファー）で希釈した２０μｇ／ｍｌのストレプトアビジン＠ｎａｎｏｐｒｉｓｍとの３７℃で３０分間のインキュベーションとした。次いで、表面を３７℃で１５分間乾燥させた。図２６に免疫測定法を行う検証手順の概要スキームを示す。
【００３２】
各実験について、以下の対照：
捕捉抗体の非存在、
分析物の非存在、
ビオチン化検出抗体の非存在、
ストレプトアビジン＠Ｎａｎｏｐｒｉｓｍの非存在、
を導入して抗体とサルモネラとの特異的相互作用を検証した。
【００３３】
サルモネラの検出を、初めに機能化膜／支持体と組み合わせた感熱紙を使用する半定量的な方法で行い、感熱紙の焼け（burning）として示した。使用した支持体は、捕捉抗体で機能化されたＰＶＤＦとし、２００マイクロリットルのサンプル中１５０ＣＦＵ〜６０００ＣＦＵの範囲の種々の希釈率のサルモネラの捕捉、及び当然ながら検出を試験した。検出抗体で機能化されたｎａｎｏｐｒｉｓｍとのインキュベーション後の膜の照射により、２００マイクロリットルのサンプル中１５０ＣＦＵのサルモネラの視覚的検出が達成され、検出を図２７に示す。
【００３４】
しかしながら、上記の視覚的方法では、病原体が９０ＣＦＵ／ｍｌ未満の量のように僅か数ＣＦＵ／ｍｌと殆ど存在しない食品汚染サンプルへの使用に十分な検出限界は達成されなかった。
【００３５】
この問題を解決するために、本発明の著者らは市販のサーモパイルを用いる定量的検出の使用を試みる。この意味で、ＩＲ照射時にｎａｎｏｐｒｉｓｍによって放出される熱を、MelexisによるＭｌＸ９０６２０等のＩＲサーモパイルを使用して測定することができることに留意されたい。このサーモパイルはサンプルと接触させることなく熱放射を検出し、温度を測定するのに好適である。
【００３６】
ＭｌＸ９０６２０サーモパイルは、専用の低雑音チョッパ安定化増幅器及び高速ＡＤＣが組み込まれた６４個のＩＲピクセルを有する。ＰＴＡＴ（絶対温度比例；Proportional to Absolute Temperature）センサーが、チップの周囲温度を測定するために組み込まれる。これには３Ｖ単電源（±０．６Ｖ）が必要とされるが、デバイスは較正され、ＶＤＤ＝２．６Ｖで最高の性能を発揮する。ＭＬＸ９０６２０は、工場で広範な温度範囲：周囲温度センサーについては−４０℃〜８５℃、サンプル温度については−５０℃〜３００℃較正されている。アレイの各ピクセルが、独自の視野内の全ての物体の平均温度を測定する（ｎＦＯＶと呼ばれる）。
【００３７】
定量的検出のために、サルモネラを２００マイクロリットルのサンプル中３７５ＣＦＵ〜６０００ＣＦＵの範囲の種々のＣＦＵ希釈率でＰＶＤＦ支持体上に直接固定化し、特に３７５ＣＦＵを含有する希釈率及び７００ＣＦＵを含有する希釈率を使用した。検出を、図２８に示されるように、分析物と相互作用するｎａｎｏｐｒｉｓｍの存在によって生じる温度の増分を測定することによって定量的に行った。
【００３８】
陰性対照として、同じ検出プロトコルに従うが、サルモネラとはインキュベートしないこれらの膜の温度の上昇を測定した。期待されるように、サルモネラの非存在下でｎａｎｏｐｒｉｓｍは膜と相互作用せず、この対照の温度の増分の増大は観察されなかった。
【００３９】
リン酸バッファーで予め希釈し、表面上に直接吸着させたサルモネラの存在下で、３７５ＣＦＵの温度の増分はおよそ１９℃であり、一方で７００ＣＦＵのサルモネラはおよそ２７℃の増分を生じた。しかしながら、視覚的方法と同様、病原体が９０ＣＦＵ／ｍｌ未満の量のように僅か数ＣＦＵ／ｍｌと殆ど存在しない食品汚染サンプルへの使用に十分な検出限界は達成されなかった。
【００４０】
この問題を解決するために、ＴｉＯ２パターン化支持体等のＰＶＤＦ及びニトロセルロース以外の支持体の使用を試みた。しかし、これまでに示した視覚的検出方法及び定量的検出方法と同様、この場合も確実な形での十分な検出限界は達成されなかった。
【００４１】
この問題を解決するために、マイクロ流体技術とＨｅａｔｓｅｎｓ技術との組合せを試み、確実な形での十分な検出限界により標的分析物を検出することが可能な一連の免疫測定法を行った。この目的で、実施例の材料及び方法に示される製作された非修飾マイクロ流体チップを、２つの希釈率のサルモネラの直接固定化の試験に使用した。この目的で、６００００ＣＦＵ／ｍｌ及び２００００ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラＴ．を１０μｌ（それぞれ表面上に合計で６００ＣＦＵ及び２００ＣＦＵ）、検出表面に吸着させた。病原体の直接固定化後に表面をＢＳＡでブロッキングし、ビオチン化検出抗体と反応させた。最後に、これらを洗浄し、ストレプトアビジン−ＡｕＮａｎｏｐｒｉｓｍ溶液と更に反応させた。
【００４２】
図２に、ビオチン化検出抗体による認識及びストレプトアビジン−Ｎａｎｏｐｒｉｓｍとの更なる相互作用の後のサルモネラの存在に起因する、表面のＮＩＲ照射時に測定された温度の増分を示す。ビオチン化検出抗体の非存在下（ＮＣ２）では、ストレプトアビジン＠ＡｕＮＰｒｉｓｍの非存在下（ＮＣ３）と同様、有意でない温度の増分が見られる。温度の増分は、サルモネラのＣＦＵ量に比例していた。これらの結果から、マイクロ流体チップの製作及びそのＨＥＡＴＳＥＮＳへの応用についてのこの材料の適合性が示される。さらに、結果により種々のＣＦＵ希釈率のサルモネラをマイクロ流体チップ上に直接固定化し、検量線を作成する可能性が予想される。
【００４３】
これらの結果を考慮して、次に０ＣＦＵ／ｍｌ〜２４００００ＣＦＵ／ｍｌの範囲の種々の濃度（ＣＦＵ／ｍｌ）のサルモネラＴを１０μｌ使用した。これらをマイクロ流体チップ上に直接吸着させ、抗サルモネラビオチン化抗体で検出して、種々の濃度のサルモネラの存在に起因する温度の増分を測定した。次いで、ストレプトアビジン＠ＡｕＮｐｒｉｓｍを抗体と相互作用させ、全ての単一センシング領域にＩＲレーザーを照射した。各チャンバの温度を測定し、温度の増分を算出した。図３にサルモネラのＣＦＵ／ｍｌ量に応じて算出された温度の増分を示す。
【００４４】
測定された温度の上昇は、マイクロ流体チップの表面上に直接吸着させたＣＦＵ量の増大によるものであった。
【００４５】
マイクロ流体チップがＨＥＡＴＳＥＮＳ技術への応用に好適であることが示されたため、マイクロ流体チップを使用することにより選択病原体を検出するサンドイッチ型免疫測定法を行った。この目的で、マイクロチップの各マイクロチャンバを、５μｇ／ｍｌの抗サルモネラ捕捉抗体（５μＬ）の表面への直接吸着により抗サルモネラ捕捉抗体で機能化した。次いで、サルモネラの捕捉事象、並びにストレプトアビジン−ＡｕＮｐｒｉｓｍでの検出及びストレプトアビジン−ＡｕＮｐｒｉｓｍとの相互作用を、１ｍｌのサンプルを各チャネルに注入して流体モードで行った。アッセイは、リン酸バッファーで希釈したサルモネラの２つの異なるＣＦＵ／ｍｌ濃度、２０００００ＣＦＵ／ｍｌ及び２４００００ＣＦＵ／ｍｌでそれぞれ行った。図４にサルモネラＴの存在に起因する温度の増分の傾向を説明する。検量線の傾向は線形でなく、分析物と相互作用する多量のｎａｎｏｐｒｉｓｍの存在に起因するシグナルの飽和が示された。２つの未知濃度のサルモネラの検出は、自由度調整済み決定係数（adj. R-Square）が０．９８８４３に等しい曲線と値が一致する指数方程式から算出した。
【００４６】
サンドイッチフォーマットでの免疫測定法の有効性が示されたため、ドープバッファー中の病原体の濃度を減少させることによってサルモネラｔ．の検出限界の改善を試みた。この意味で、１×ＰＢＳ中１５００ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラＴ．が第１の試験で検出された最低（first lower）濃度であった。この目的で、１ｍｌのサンプルを２００μl／ｍｌの流量でチャネルに注入した。サンプルを注入した後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）で洗浄した。次いで、２００μl／ｍｌを用いて２分間、検出抗体をその抗原と相互作用させた。３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）ですすいだ。ストレプトアビジン＠ＡｕＮＰｒをチャネルに注入した。流量は２００μｌ／ｍｌで２分間とした。３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）ですすぎ、乾燥させた。
【００４７】
図５に陰性対照に関する１５００ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラの温度の増分を示す。サルモネラの存在下でのマイクロチャンバの温度の増分は、サルモネラの非存在下（ＮＣ１）、検出抗体の非存在下（ＮＣ２）及びストレプトアビジン−ＡｕＮＰｒｉｓｍの非存在下（ＮＣ３）のそれぞれの対照の温度増分よりも高かった。サルモネラの存在に起因する温度の増分は、予想値とは異なるにも関わらず、全ての陰性対照よりも高かった。陰性対照の温度の増分の正の値は、免疫測定法における試薬間の非特異的相互作用を示していた。非特異的相互作用は、表面の不完全な機能化及びブロッキング又は免疫測定法における不適切な流量に関連付けることができる。このようにして、表面抗体機能化を一定に保ち、免疫測定法における流量を変更することにより、図６に示されるようにサルモネラの検出限界及びバックグラウンドに起因するシグナルを改善することが可能であった。
【００４８】
同じ実験を、実食品サンプルである、種々のＣＦＵのサルモネラをドープした２２５ｍｌのペプトン事前富化培養培地中の２５ｇの鶏肉を使用して行った。捕捉抗体をマイクロ流体チップ上に吸着させ、表面を１×ＰＢＳ中の５％ＢＳＡ−０１％Ｔｗｅｅｎで１５０ｍｌ／分の流量を用いてブロッキングした。
【００４９】
次いで、洗浄バッファーを使用することにより２５０μｌ／分の流量を用いて洗浄を行った。
【００５０】
１ｍｌの実サンプル中のサルモネラの捕捉、並びにビオチン化検出抗体による検出、及びストレプトアビジン＠ｎａｎｏｐｒｉｓｍとの相互作用を、１５μｌ／分の流量での流れを用いて行った。
【００５１】
マイクロ流体チップ内で行った免疫分析の結果を図７に示す。検量線を作成した後、既知の種々の濃度のサルモネラに起因する温度の増分を測定することで、実サンプル中の病原体の未知濃度を検量線から決定した（図８）。
【００５２】
サルモネラをドープしたサンプルのより高い温度の増分から、マイクロ流体技術と組み合わせたＨＥＡＴＳＥＮＳが、２２５ｍｌのペプトン中２５ｇの鶏肉のような複雑なマトリックスについての数ＣＦＵの細菌の超高感度検出に好適であることが明らかに示される。
【００５３】
実サンプル中のサルモネラの存在に起因する温度の増分は、細菌と抗体との特異的相互作用に影響を及ぼす多量の肉タンパク質の存在のために、リン酸バッファー中のものと僅かに異なる。
【００５４】
ＨＥＡＴＳＥＮＳとマイクロ流体技術との組合せが数ＣＦＵの分析物の超高感度検出に好適であることが示されたため、ＥＤＣ／ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ反応による第一級アミンとの安定したアミド結合の形成により、捕捉抗体を共有結合で固定化するのに使用されるマイクロ流体チップ表面をカルボン酸末端基で修飾することによって、この技術の改善を試みた。
【００５５】
この意味で、１０ｍＭ  ＥＤＣ及び２０ｍＭ  ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳで予め活性化した各マイクロチャンバの表面を２０μｌの５μｇ／ｍｌの捕捉抗体で機能化した。捕捉抗体の共有結合での固定化、及び３７℃で１時間の１×ＰＢＳ中の５％ＢＳＡ／０．１％Ｔｗｅｅｎによる表面のブロッキングの後に、チップを蠕動ポンプに接続し、３００μｌ／分の流量を用いて４分間洗浄バッファーで洗浄した。３０ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラＴ．を１ｍｌ、マイクロ流体チャネル内に１５０μｌ／分の流量で１分間流した後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルをバッファー溶液で洗浄した。次いで、４００μｌのビオチン化検出抗体をチャネル内に流した。
【００５６】
図９に示す結果から、３０ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラをドープしたサンプルにおける温度増分が種々の対照と比較して高いことが示される。このタイプの固定化では、抗体は主に「フラットオン（flat-on）」配向をとり、Ｆｃ及び２つのＦａｂフラグメントが表面上に横たわる。
【００５７】
次いで、金属キレート化による抗体の配向固定化を試みた。固定化は、抗体の重鎖（Ｆｃ）中のヒスチジンに富む金属結合部位又はタンパク質に融合したポリＨｉｓタグ配列への金属キレート化によって達成した。金属結合部位がＣ末端又はＮ末端のいずれかにあることから、このように表面に結合する抗体及びＨｉｓタグ付きタンパク質は、結合部位が表面から離れた方向に向かって配向し、最大の抗原結合又は好都合なタンパク質配向が可能となる。さらに、金属キレート化による配向固定化は、金属キレート化固定化の結合定数が、ヒスチジン結合のキレート効果と複数の金属キレート基の標的結合との組合せのために非常に高いことから、安定した抗体固定化ももたらす。解離定数は１０−７Ｍ−１〜１０−１３Ｍ−１と推定される。多くの用途について、これにより抗原−抗体相互作用と同等の結合強度がもたらされる。一方、金属キレート化による抗体の配向固定化のための抗体付着の実験条件は、共有結合での配向固定化手順に用いられるものよりも穏やかである。利点として、キレートへの抗体結合を便宜上、可逆的又は不可逆的に調整することもできる。加えて、ｈｉｓタグ付き組み換えタンパク質の固定化に用いることもできることから、より多用途である。
【００５８】
捕捉抗体の配向固定化を達成するために、マイクロ流体チャンバチップを表面の段階的修飾において金属−キレート錯体で機能化した。初めに、表面を例えば３−（４−アミノフェニル）プロピオン酸、３−アミノフェニル酢酸、４−アミノフェニル酢酸又は４−（４−ニトロフェニル）酪酸等のカルボン酸基を含有するアリールアミン化合物で機能化した。この具体例について、異なる生体分子の固定化であってもＰｈＢｕｔを使用したが、炭素数２〜１６の範囲の種々の長さのｎ−アルキルカルボン酸を有するアリールアミン化合物の使用がより適切であり得る。
【００５９】
ジアゾ化（diazotated）ＰｈＢｕｔのアリールラジカルの共有結合グラフト化によって導入したカルボン酸基（スキームＩＩ）を、ＥＤＣによって触媒されるＳＮＨＳによるエステル化によって活性化し、遊離アミノ基を介したＡＮＴＡ−Ｍ（ＩＩ）（Ｃｕ２＋、Ｎｉ２＋、Ｃｏ２＋）錯体の共有結合を促進した（スキームＩＩＩ）。次いで、これらを５μｇ／ｍｌの捕捉抗体２０μｌとインキュベートした。得られるＮＴＡ−Ｍ（ＩＩ）錯体の末端は、水分子によって占められる２つの遊離配位部位を含有し、捕捉抗体のヒスチジン残基に置き換えられて配向固定化が生じる。その後、チップを蠕動ポンプに接続し、３００μｌ／分の流量を用いて４分間洗浄バッファーで洗浄した。１ｍｌの３０ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラＴ．をマイクロ流体チャネル内に１５０μｌ／分の流量で１分間流した後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルをバッファーで洗浄した。次いで、４００μｌのビオチン化検出抗体をチャネル内に流した。
【００６０】
図１０に、配向した形の捕捉抗体で機能化されたマイクロ流体チップ上でのサルモネラの検出を示す。
【００６１】
興味深いことに、このタイプの固定化についてのサルモネラの存在に起因する温度増分は、それぞれの対照について得られるものよりも高く、更には直接吸着及び共有結合での固定化についての先の結果で得られるものよりも更に高かった。この意味で、種々の固定化方法の比較研究を行った。種々の抗体表面機能化の戦略の比較を図１１に示すが、この例に示される表面機能化戦略の各々についての生成するバックグラウンドシグナルと比較した、検出されるサルモネラに起因する温度の増分が示される。
【００６２】
図１１に、金属キレート化による捕捉抗体の配向固定化が、サルモネラの存在に起因する温度増分の増大を生じるだけでなく、非特異的相互作用（バックグラウンド）によって生成するシグナルの減少を生じることにより最良の結果をもたらすことを示す。これらの結果から、チップの表面の正確な機能化戦略が、ＨＥＡＴＳＥＮＳ標識（金ｎａｎｏｐｒｉｓｍ等）の非特異的吸着を回避しながら最適な抗体付着を好都合な配向で得るのに極めて重要であることが示される。この方法が共有結合での配向固定化に優る利点を示すことも注目に値する。どちらの方法論も結合のための配向抗体付着が得られるという利点を有するが、抗体が主に「フラットオン」配向をとり、Ｆｃ及び２つのＦａｂフラグメントが表面上に横たわる共有結合での固定化とは対照的に、金属キレート化固定化の場合、抗体は表面に垂直に配向した「エンドオン（end-on）」配向で配置される。
【００６３】
次いで、実施例６に示される有利な抗体の配向固定化を、実サンプル中のサルモネラの検出について試験した。結果を図１２に報告するが、陰性対照によって生成するシグナルと比較した、既知のサルモネラＣＦＵ数をドープした実サンプル中のサルモネラに起因する温度の増分が示される。
【００６４】
マイクロ流体チップ表面上に固定化された配向抗体上での実サンプル中のサルモネラの存在に起因する温度増分も、それぞれの対照について得られるものよりも高かった。検量線を作成した後、実サンプル中の既知の種々の濃度のサルモネラ及び未知濃度の病原体に起因する温度の増分の測定値を、図１３に報告されるように決定した。実サンプルにドープするのに使用される理論数のＣＦＵ／ｍｌの存在に起因する温度の増分は、検量線のＣＦＵ数と一致する。
【００６５】
したがって、マイクロ流体技術が、分析物検出のためのＨＥＡＴＳＥＮＳプロトコルを行うのに必要とされる好ましくは使い捨てのカートリッジの製作に最良のアプローチとして選択された。さらに、捕捉生体分子（抗体等）の配向配置と組み合わせたマイクロ流体技術が、分析物検出のためのＨＥＡＴＳＥＮＳプロトコルを行うのに必要とされる好ましくは使い捨てのカートリッジの製作に優れたアプローチとして本明細書で示された。
【００６６】
最後に、実施例８、９及び１０に明らかに示されるように、マイクロ流体技術とＨｅａｔｓｅｎｓ技術との組合せは、多種多様の分析物、例えば、限定されるものではないが、微生物、添加剤、薬物、食品病原体等の病原微生物、食品成分、環境汚染物質、殺虫剤、ヌクレオチド、医療バイオマーカー等のバイオマーカー、又は毒性化合物等の検出及び定量化に好適であることに留意することが重要である。したがって、本明細書に記載されるセンサーシステムは任意の特異的な分析物に限定されない。
【００６７】
Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術と組み合わせたマイクロ流体技術の使用
本明細書に開示されるように、様々な例示的な実施形態において、マイクロ流体チップが、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱により分析物を検出する多数の免疫測定法への使用に特に好適であることを示す。
【００６８】
これらのデバイスは、１つ以上のサンプル流体中の１つ以上の標的分析物の存在を検出するのに有用である。かかるデバイスを作製及び使用する方法及びプロセスも実施例に開示される。
【００６９】
したがって、本発明の第１の態様は、支持体又は基板を備えるマイクロ流体キット又はデバイスであって、該支持体又は基板が基板内に少なくとも１つのチャネルを備え、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を検出する認識部位又はセンシング領域を含む、マイクロ流体キット又はデバイスの、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱により分析物を検出するためのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける使用に関する。
【００７０】
本発明の第１の態様の好ましい実施形態では、流路の一部は中央平面を複数回横方向に走る。本発明の第１の態様の別の好ましい実施形態では、流路の一部が中央平面を実質的に垂直に走っていてもよい。本発明の第１の態様の別の好ましい実施形態では、流路の一部が入口から出口に向かって連続的に走っていてもよい。本発明の第１の態様の別の好ましい実施形態では、デバイスは複数のチャネルを有する。本発明の第１の態様の別の好ましい実施形態では、デバイスは、１つ以上のチャネルの各々に認識部位を有する複数のマイクロチャンバを有する。本発明の第１の態様のまた別の好ましい実施形態では、各チャネルの入口は、共通ローディングチャネルに接続される。本発明の第１の態様の更に別の好ましい実施形態では、デバイスは、実施例の材料及び方法のセクションに記載のマイクロチップ又はデバイスの特徴を含む。
【００７１】
加えて、本発明の第１の態様のデバイスの基板又は表面は、熱可塑性材料、シリコン、金属又は炭素等の様々な材料から構成されていてもよいことに留意されたい。好ましくは、これはポリ（メタクリル酸メチル）、ポリスチレン、ポリ（ジメチルシロキサン）、ポリエチレンテレフタレート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリ乳酸、ポリ（Ｄ，Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）、ポリカーボネート、環状オレフィンコポリマー、シリコン、ガラス等により構成され得る。
【００７２】
実施例において説明されるように（実施例６〜９を参照されたい）、マイクロチップの表面のセンシング領域の機能化は、捕捉生体分子の共有結合又は配向配置をもたらすことによってセンサーの特徴を改善する。
【００７３】
このため、本発明の第１の態様又はその好ましい実施形態のいずれかの別の好ましい実施形態では、認識部位又はセンシング領域を含む中央平面を横方向に走る流路の一部を、１つ以上のカルボン酸官能基又はエポキシ官能基又はアミン官能基又はチオール官能基又はアジド官能基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基で機能化する。
【００７４】
これらのタイプの表面を上述の官能基で機能化する種々の方法を実施例に示す。いずれにせよ、概して、
ａ．  支持体又は基板がコオレフィンポリマー等の熱可塑性材料で構成される場合、機能化は、１つ以上のカルボン酸基又はエポキシ基又はアミン基又はチオール基又はアジド基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基を含有するジアゾニウムアリール化合物を使用して行われ、
ｂ．  支持体又は基板がポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）等のシリコン材料又はガラスで構成される場合、機能化は、１つ以上のカルボン酸基又はエポキシ基又はアミン基又はチオール基又はアジド基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基を保有する有機官能性アルコキシシラン分子を用いた自己集合により行われ、
ｃ．  支持体又は基板が鉄、コバルト、ニッケル、白金、パラジウム、亜鉛、銀、銅又は金等の金属で構成される場合、機能化は、１つ以上のカルボン酸基又はエポキシ基又はアミン基又はチオール基又はアジド基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基（例えば、金及び銀の場合はチオール基）を保有する金属と相互作用することが可能な分子を用いた自己集合により行われ、
ｄ．  支持体又は基板がグラフェン等の炭素材料で構成される場合、機能化は、上記工程ａ）において確立されるように、又はアルデヒド及びカルボン酸官能基を生成する酸化により、又は１つ以上のカルボン酸基若しくはエポキシ基若しくはアミン基若しくはチオール基若しくはアジド基若しくはハロゲン化物若しくはマレイミド官能基若しくはヒドラジド官能基若しくはアルデヒド若しくはアルキン基を有する機能化ポリマーの疎水性結合により行われる。
【００７５】
上記の表面のいずれかをカルボン酸官能基で機能化するのが好ましい。より好ましくは、支持体又はマイクロ流体チップ若しくはデバイスは熱可塑性材料で構成され、ジアゾニウムアリール化合物は下記式Ｉ又はＩＩによって表される：
【化１】
2019515310.tif 000003
（式中、Ｒは１個〜１５個の炭素原子を有するアルキル基又はエチレン基であり、
Ｚはカルボン酸基、エポキシ基、アミン基、チオール基、アジド基、ハロゲン化物、マレイミド官能基、ヒドラジド官能基、アルデヒド基又はアルキン基、好ましくはカルボン酸基又はエポキシ基である）、又は、
【化２】
2019515310.tif 000004
（式中、Ｒは１個〜１５個の炭素原子を有するアルキル基である）。
【００７６】
上記式Ｉ又はＩＩのジアゾニウム成分は、これらの式のいずれかのアルキル又はエチレン成分に対してパラ位又はメタ位に配置する又は位置付けるのが好ましい。上記式Ｉ又はＩＩのいずれかのジアゾニウムアリール化合物の作製に好適なアリールアミン化合物の例は、３−（４−アミノフェニル）プロピオン酸、３−アミノフェニル酢酸、４−アミノフェニル酢酸、４−（４−ニトロフェニル）酪酸又は４−（４−アミノフェニル）酪酸である（実施例を参照されたい）。
【００７７】
本発明の第１の態様の更に好ましい実施形態では、マイクロチップ又はデバイスの表面を、好ましくはＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩、ニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩、イミノ二酢酸（ＩＤＡ）金属（ＩＩ）塩、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）金属（ＩＩ）塩、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択されるキレート剤で更に修飾又は機能化し、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等の二価金属の塩として理解される。これは、キレート剤と上記で言及される活性化官能基のいずれか（キレート剤と直接反応させるために活性化する必要がないエポキシ基のような基を除く）との直接反応によって達成され、ここで、
カルボン酸基は、ＥＤＣ／ＳＮＨＳ媒介アミド化（スキームＩＩＩ）により活性化することができ、
アミン基はカルボニル基で活性化することができ、
チオール基は、スルフヒドリル反応性架橋剤を形成することによって活性化することができ、ここで、スルフヒドリルはマレイミド、ハロアセチル又はピリジルジスルフィドから選択することができ、
アルキン又はアジド基はクリック化学により活性化することができ、
アルデヒド基はシッフ塩基形成により活性化することができる。
【００７８】
好ましくは、支持体は熱可塑性材料で構成され、アリールアミン化合物は、（Ｎ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ’−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）によって触媒される、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミド塩（Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ）でのエステル化により活性化されたカルボン酸基を含有する。
【００７９】
より好ましくは、支持体は熱可塑性材料で構成され、アリールアミン化合物は、（Ｎ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ’−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）によって触媒される、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミド塩（Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ）でのエステル化により活性化されたカルボン酸基を含有し、キレート剤はＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩であり、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等の二価金属の塩として理解される。
【００８０】
実施例において説明されるように、ＡＮＴＡ金属（ＩＩ）塩等のキレート剤によるマイクロチップの表面の活性化は、改善されたセンシングプラットホームをもたらす抗体の配向配置を達成するのに特に有利である。
【００８１】
本発明の第１の態様又はその好ましい実施形態のいずれかの更に好ましい実施形態では、認識部位又はセンシング領域を含む中央平面を横方向に走る流路の一部が、
ａ．  認識部位若しくはセンシング領域上に固定化された標的分析物を認識することが可能な認識分子、又は、
ｂ．  認識部位若しくはセンシング領域上に固定化された分析物、
を備えていてもよい。
【００８２】
好ましくは、上記認識分子は、限定されるものではないが、ペプチド、多糖、毒素、タンパク質受容体、レクチン、酵素、抗体、抗体フラグメント、組み換え抗体、抗体デンドリマー錯体、核酸（ＤＮＡ、ＲＮＡ）、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、分子インプリントからなるリストから選択することができる。上記認識分子は抗体、そのフラグメント又は組み換え抗体であるのが好ましい。
【００８３】
本発明の第２の態様では、本発明の第１の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源、
ｂ．  標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子、又は、
ｃ．  フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【００８４】
本発明の第３の態様では、本発明の第１の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源、又は、
ｂ．  標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｃ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【００８５】
本発明の第４の態様では、本発明の第１の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源、
ｂ．  任意に標識分子に結合した、標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子（検出生体分子）、又は、
ｃ．  検出生体分子若しくは検出生体分子を修飾する標識を特異的に認識する生体分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【００８６】
本発明の第２〜第４の態様のいずれかのキット又はデバイスは、赤外線カメラ又はサーモパイルからなるリストから選択される、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイスを更に備えるのが好ましい。
【００８７】
本発明の第５の態様は、分析物が微生物、添加剤、薬物、食品病原体等の病原微生物、食品成分、環境汚染物質、殺虫剤、ヌクレオチド、医療バイオマーカー等のバイオマーカー、又は毒性化合物である、先の本発明の態様のいずれかによるデバイスの使用に関する。標的分析物は、サルモネラ、カンピロバクター、コラーゲン、アルブミン及びＡｒａ  Ｈ１からなるリストから選択されるのが好ましい。
【００８８】
抗体の配向固定化のために機能化されたセンシング領域を有するマイクロ流体デバイス又はチップ
実施例６〜９において確立されるように、抗体等の捕捉生体分子が配向配置を有するようにマイクロチップ又はデバイスのセンシング領域を機能化することにより、マイクロチップ技術とＨｅａｔｓｅｎｓ技術とを組み合わせたセンサーシステムにおける分析物の検出について明らかな利点がもたらされる。
【００８９】
このため、本発明の第６の態様は、支持体又は基板を備えるキット又はデバイスであって、該支持体又は基板が基板内に少なくとも１つのチャネルを備え、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を検出する認識部位又はセンシング領域を含み、
認識部位又はセンシング領域を含む中央平面を横方向に走る流路の一部がキレート剤で機能化された、
キット又はデバイスに関する。
【００９０】
本発明の第６の態様の好ましい実施形態では、キレート剤はＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩、ニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩、イミノ二酢酸（ＩＤＡ）金属（ＩＩ）塩、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）金属（ＩＩ）塩、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択されるのが好ましく、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等、好ましくはＣｕ２＋の二価金属の塩として理解される。キレート剤はＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩又はニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択されるのが好ましく、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等、好ましくはＣｕ２＋の二価金属の塩として理解される。これは、キレート剤と活性化官能基との直接反応によって達成され、ここで、
カルボン酸基は、ＥＤＣ／ＳＮＨＳ媒介アミド化（スキームＩＩＩ）により活性化することができ、
アミン基はカルボニル基で活性化することができ、
チオール基は、スルフヒドリル反応性架橋剤を形成することによって活性化することができ、ここで、スルフヒドリルはマレイミド、ハロアセチル又はピリジルジスルフィドから選択することができ、
アルキン又はアジド基はクリック化学により活性化することができ、
アルデヒド基はシッフ塩基形成により活性化することができる。
【００９１】
好ましくは、支持体は熱可塑性材料で構成され、アリールアミン化合物は、（Ｎ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ’−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）によって触媒される、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミド塩（Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ）でのエステル化により活性化されたカルボン酸基を含有する。
【００９２】
より好ましくは、支持体は熱可塑性材料で構成され、アリールアミン化合物は、（Ｎ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ’−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）によって触媒される、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミド塩（Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ）でのエステル化により活性化されたカルボン酸基を含有し、キレート剤はＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩又はニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択され、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等、好ましくはＣｕ２＋の二価金属の塩として理解される。
【００９３】
本発明の第６の態様又はその好ましい実施形態のいずれかの更に好ましい実施形態では、認識部位又はセンシング領域を含む中央平面を横方向に走る流路の一部が、
ａ．  認識部位若しくはセンシング領域上に固定化された標的分析物を認識することが可能な認識分子、又は、
ｂ．  認識部位若しくはセンシング領域上に固定化された分析物、
を備えていてもよい。
【００９４】
好ましくは、上記認識分子は、限定されるものではないが、ペプチド、多糖、毒素、タンパク質受容体、レクチン、酵素、抗体、抗体フラグメント、組み換え抗体、抗体デンドリマー錯体、核酸（ＤＮＡ、ＲＮＡ）、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、分子インプリントからなるリストから選択することができる。上記認識分子は抗体、そのフラグメント又は組み換え抗体であるのが好ましい。
【００９５】
本発明の第７の態様では、本発明の第６の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源、
ｂ．  標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子、又は、
ｃ．  フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【００９６】
本発明の第８の態様では、本発明の第６の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源（好ましくは、外部光源は発光ダイオード（ＬＥＤ）からなり、該光源は６００ｎｍ〜１１００ｎｍで発光するのが好ましい）、又は、
ｂ．  標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｃ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【００９７】
本発明の第９の態様では、本発明の第６の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源、
ｂ．  任意に標識分子に結合した、標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子（検出生体分子）、又は、
ｃ．  検出生体分子若しくは検出生体分子を修飾する標識を特異的に認識する生体分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【００９８】
本発明の第７又は第８の態様のいずれかのキット又はデバイスは、赤外線カメラ又はサーモパイルからなるリストから選択される、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイスを更に備えるのが好ましい。
【００９９】
サンプル流体中の分析物の存在の検出に好適なマイクロチップ技術とＨｅａｔｓｅｎｓ技術とを組み合わせたセンサーシステム
本発明の付加的な態様は、マイクロチップ技術とＨｅａｔｓｅｎｓ技術とを組み合わせた完全センサーシステムに関する。
【０１００】
したがって、本発明の第１０の態様は、サンプル流体中の分析物の存在を検出するデバイス又はシステムであって、
ａ．  支持体又は基板と、
ｂ．  基板内のチャネルであって、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を認識することが可能な認識分子（捕捉生体分子）が上に固定化されたセンシング領域を含む、チャネルと、
ｃ．  レーザー又はＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源と、
ｄ．  標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子（検出生体分子）と、
ｅ．  フォトニック特性を有する金属ナノ粒子と、
ｆ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイスと、
を備える、デバイス又はシステムに関する。
【０１０１】
本発明の第１１の態様は、サンプル流体中の分析物の存在を検出するデバイス又はシステムであって、
ａ．  基板と、
ｂ．  基板内のチャネルであって、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を認識することが可能な認識分子（捕捉生体分子）が上に固定化されたセンシング領域を含む、チャネルと、
ｇ．  レーザー又はＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源と、
ｃ．  標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子（検出生体分子）で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子と、
ｄ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイスと、
を備える、デバイス又はシステムに関する。
【０１０２】
本発明の第１２の態様は、サンプル流体中の分析物の存在を検出するデバイス又はシステムであって、
ａ．  基板と、
ｂ．  基板内のチャネルであって、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を認識することが可能な認識分子（捕捉生体分子）が上に固定化されたセンシング領域を含む、チャネルと、
ｃ．  レーザー又はＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源と、
ｄ．  任意に標識分子に結合した、標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子（検出生体分子）と、
ｅ．  検出生体分子又は検出生体分子を修飾した標識を特異的に認識する生体分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子と、
ｆ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイスと、
を備える、デバイス又はシステムに関する。
【０１０３】
本発明の第１０〜第１２の態様のいずれかのシステム又はデバイスのセンシング領域を、「Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術と組み合わせたマイクロ流体技術の使用」と題するセクションに記載される技法のいずれかに従い、該セクションに記載される官能基のいずれかを用いて機能化することができることに留意されたい。用いられる機能化は認識分子、好ましくは抗体の配向配置を可能とするのが好ましい。
【０１０４】
加えて、本発明の第１０〜第１２の態様のいずれかの完全センサーシステムの構成要素の１つとして言及されるマイクロチップ又はデバイスを、「Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術と組み合わせたマイクロ流体技術の使用」と題するセクションに記載の実施形態のいずれかに記載されるように更に特徴付けることができることに更に留意されたい。
【０１０５】
Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術を用いて分析物を検出することによって免疫測定法を行うのに好適なマイクロチップ又はデバイスのセンシング領域を機能化するプロセス
実施例において説明されるように（実施例６〜９を参照されたい）、マイクロチップの表面のセンシング領域の機能化は、捕捉生体分子の共有結合又は配向配置をもたらすことによってセンサーの特徴を改善する。
【０１０６】
「Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術と組み合わせたマイクロ流体技術の使用」と題するセクション又は「抗体の配向固定化のために機能化されたセンシング領域を有するマイクロ流体デバイス又はチップ」と題するセクションにおいて既に確立されているように、Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術を用いて分析物を検出することによって免疫測定法を行う際に使用されるマイクロチップ又はデバイスのセンシング領域は、多数の異なる方法で機能化することができる。マイクロチップ又はデバイスを機能化する種々の方法は、本発明全体を通して示される、機能化すべき材料のタイプ及びマイクロチップ又はデバイスのいずれかのセンシング領域を機能化することが望まれる有機官能基（カルボン酸官能基又はエポキシ官能基又はアミン官能基又はチオール官能基又はアジド官能基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基等）のタイプに応じて異なる。
【０１０７】
この意味で、マイクロチップ又はデバイスの基板又は表面が熱可塑性材料、シリコン、金属又は炭素等の様々な材料から構成されていてもよいことに留意されたい。好ましくは、これはポリ（メタクリル酸メチル）、ポリスチレン、ポリ（ジメチルシロキサン）、ポリエチレンテレフタレート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリ乳酸、ポリ（Ｄ，Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）、ポリカーボネート、環状オレフィンコポリマー、シリコン、ガラス等により構成することができる。
【０１０８】
これらのタイプの表面を上述の官能基で機能化する種々の方法が実施例に示される。この意味で、本発明の第１３の態様は、支持体又は基板を備えるマイクロチップ又はデバイスであって、該支持体又は基板が基板内に少なくとも１つのチャネルを備え、チャネルが入口と、出口と、入口及び出口を接続する流路とを備え、入口及び出口が共に中央平面を画定し、流路の一部が中央平面を横方向に走り、中央平面を横方向に走る流路の一部が、標的分析物を検出する認識部位又はセンシング領域を含む、マイクロチップ又はデバイスのセンシング領域を機能化する方法に関し、
ここで、
ａ．  支持体又は基板がコオレフィンポリマー等の熱可塑性材料で構成される場合、機能化は、１つ以上のカルボン酸基又はエポキシ基又はアミン基又はチオール基又はアジド基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基を含有するジアゾニウムアリール化合物を使用して行われ、
ｂ．  支持体又は基板がポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）等のシリコン材料又はガラスで構成される場合、機能化は、１つ以上のカルボン酸基又はエポキシ基又はアミン基又はチオール基又はアジド基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基を保有する有機官能性アルコキシシラン分子を用いた自己集合により行われ、
ｃ．  支持体又は基板が鉄、コバルト、ニッケル、白金、パラジウム、亜鉛、銀、銅又は金等の金属で構成される場合、機能化は、１つ以上のカルボン酸基又はエポキシ基又はアミン基又はチオール基又はアジド基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基（例えば、金及び銀の場合はチオール基）を保有する金属と相互作用することが可能な分子を用いた自己集合により行われ、
ｄ．  支持体又は基板がグラフェン等の炭素材料で構成される場合、機能化は、上記工程ａ）において確立されるように、又はアルデヒド及びカルボン酸官能基を生成する酸化により、又は１つ以上のカルボン酸基若しくはエポキシ基若しくはアミン基若しくはチオール基若しくはアジド基若しくはハロゲン化物若しくはマレイミド官能基若しくはヒドラジド官能基若しくはアルデヒド若しくはアルキン基を有する機能化ポリマーの疎水性結合により行われる。
【０１０９】
好ましくは、マイクロ流体チップ又はデバイスの支持体が熱可塑性材料で構成される場合、ジアゾニウムアリール化合物は下記式Ｉ又はＩＩによって表される：
【化３】
2019515310.tif 000005
（式中、Ｒは１個〜１５個の炭素原子を有するアルキル基又はエチレンであり、
Ｚはカルボン酸基、エポキシ基、アミン基、チオール基、アジド基、ハロゲン化物、マレイミド官能基、ヒドラジド官能基、アルデヒド基又はアルキン基、好ましくはカルボン酸基又はエポキシ基である）、又は、
【化４】
2019515310.tif 000006
（式中、Ｒは１個〜１５個の炭素原子を有するアルキル基である）。
【０１１０】
上記式Ｉ又はＩＩのジアゾニウム成分は、これらの式のいずれかのアルキル又はエチレン成分に対してパラ位又はメタ位に配置する又は位置付けるのが好ましい。上記式Ｉ又はＩＩのいずれかのジアゾニウムアリール化合物の作製に好適なアリールアミン化合物の例は、３−（４−アミノフェニル）プロピオン酸、３−アミノフェニル酢酸、４−アミノフェニル酢酸、４−（４−ニトロフェニル）酪酸又は４−（４−アミノフェニル）酪酸である。
【０１１１】
本発明の第１３の態様の更に好ましい実施形態では、マイクロチップ又はデバイスの表面を、好ましくはＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩、ニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩、イミノ二酢酸（ＩＤＡ）金属（ＩＩ）塩、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）金属（ＩＩ）塩、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択されるキレート剤で更に修飾又は機能化し、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等の二価金属の塩として理解される。これは、キレート剤と上記で言及される活性化官能基のいずれかとの直接反応によって達成され、ここで、
カルボン酸基は、ＥＤＣ／ＳＮＨＳ媒介アミド化（スキームＩＩＩ）により活性化することができ、
アミン基はカルボニル基で活性化することができ、
チオール基は、スルフヒドリル反応性架橋剤を形成することによって活性化することができ、ここで、スルフヒドリルはマレイミド、ハロアセチル又はピリジルジスルフィドから選択することができ、
アルキン又はアジド基はクリック化学により活性化することができ、
アルデヒド基はシッフ塩基形成により活性化することができる。
【０１１２】
好ましくは、支持体は熱可塑性材料で構成され、アリールアミン化合物は、（Ｎ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ’−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）によって触媒される、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミド塩（Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ）でのエステル化により活性化されたカルボン酸基を含有する。
【０１１３】
より好ましくは、支持体は熱可塑性材料で構成され、アリールアミン化合物は、（Ｎ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ’−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）によって触媒される、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミド塩（Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ）でのエステル化により活性化されたカルボン酸基を含有し、キレート剤はＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩又はニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択され、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等、好ましくはＣｕ２＋の二価金属の塩として理解される。
【０１１４】
実施例において説明されるように、ＡＮＴＡ金属（ＩＩ）塩等のキレート剤によるマイクロチップの表面の活性化は、改善されたセンシングプラットホームをもたらす抗体の配向配置を達成するのに特に有利である。
【０１１５】
抗体の配向固定化のために機能化されたセンシング領域を有するキット又はデバイス
最後に、実施例に示されるように、抗体等の捕捉生体分子が配向配置を有するように任意の支持体（ガラス等のマイクロチップ又はデバイスの支持体でなくてもよい）のセンシング領域を機能化することによって、Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術を用いたセンサーシステムにおける分析物の検出について明らかな利点がもたらされることに留意されたい。
【０１１６】
このため、本発明の第１４の態様は、支持体又は基板を備えるキット又はデバイスであって、該基板又は表面が熱可塑性材料、シリコン、金属又は炭素等の様々な材料から構成されていてもよく、上記支持体又は基板が標的分析物を検出する認識部位又はセンシング領域を含み、該認識部位又はセンシング領域がキレート剤で機能化される、キット又はデバイスに関する。
【０１１７】
本発明の第１４の態様の好ましい実施形態では、キレート剤は、好ましくはＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩、ニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩、イミノ二酢酸（ＩＤＡ）金属（ＩＩ）塩、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）金属（ＩＩ）塩、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択され、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等の二価金属の塩として理解される。キレート剤は、キレート剤と活性化官能基との直接反応により支持体を機能化し、ここで、
カルボン酸基は、ＥＤＣ／ＳＮＨＳ媒介アミド化（スキームＩＩＩ）により活性化することができ、
アミン基はカルボニル基で活性化することができ、
チオール基は、スルフヒドリル反応性架橋剤を形成することによって活性化することができ、ここで、スルフヒドリルはマレイミド、ハロアセチル又はピリジルジスルフィドから選択することができ、
アルキン又はアジド基はクリック化学により活性化することができ、
アルデヒド基はシッフ塩基形成により活性化することができる。
【０１１８】
「Ｈｅａｔｓｅｎｓ技術を用いて分析物を検出することによって免疫測定法を行うのに好適なマイクロチップ又はデバイスのセンシング領域を機能化するプロセス」と題するセクションでは、本発明全体を通して言及される有機官能基のいずれかを用いて種々の支持体又は表面を機能化する方法を説明していることに留意されたい。
【０１１９】
支持体は、１つ以上のカルボン酸基又はエポキシ基又はアミン基又はチオール基又はアジド基又はハロゲン化物又はマレイミド官能基又はヒドラジド官能基又はアルデヒド又はアルキン基を保有する有機官能性アルコキシシラン分子を用いた自己集合により機能化されたガラスで構成されるのが好ましく、上記官能基は任意に活性化されており、キレート剤、好ましくはＮα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩又はニトリロ三酢酸（ＮＴＡ）金属（ＩＩ）塩からなるリストから選択されるキレート剤と直接反応し、ここで、金属（ＩＩ）塩はＣｕ２＋、Ｎｉ２＋又はＣｏ２＋等、好ましくはＣｕ２＋の二価金属の塩として理解される。
【０１２０】
本発明の第１４の態様又はその好ましい実施形態のいずれかの更に好ましい実施形態では、認識部位又はセンシング領域は、
ａ．  認識部位若しくはセンシング領域上に固定化された標的分析物を認識することが可能な認識分子、又は、
ｂ．  認識部位若しくはセンシング領域上に固定化された標的分析物、
を備えていてもよい。
【０１２１】
好ましくは、上記認識分子は、限定されるものではないが、ペプチド、多糖、毒素、タンパク質受容体、レクチン、酵素、抗体、抗体フラグメント、組み換え抗体、抗体デンドリマー錯体、核酸（ＤＮＡ、ＲＮＡ）、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、分子インプリントからなるリストから選択することができる。上記認識分子は抗体、そのフラグメント又は組み換え抗体であるのが好ましい。
【０１２２】
本発明の第１５の態様では、本発明の第１４の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源、
ｂ．  標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子、又は、
ｃ．  フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【０１２３】
本発明の第１６の態様では、本発明の第１４の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源、又は、
ｂ．  フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｃ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【０１２４】
本発明の第１７の態様では、本発明の第６の態様又はその好ましい実施形態のいずれかのキット又はデバイスは、以下の要素：
ａ．  レーザー若しくはＬＥＤ光等のＨｅａｔｓｅｎｓ技術への使用に好適な外部光源、
ｂ．  任意に標識分子に結合した、標的分析物を認識することが可能な第２の認識分子（検出生体分子）、又は、
ｃ．  検出生体分子若しくは検出生体分子を修飾する標識を特異的に認識する生体分子で機能化された、フォトニック特性を有する金属ナノ粒子、及び、
ｄ．  任意に、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイス、
の少なくとも１つを更に備えていてもよい。
【０１２５】
本発明の第１５〜第１７の態様のいずれかのキット又はデバイスは、赤外線カメラ又はサーモパイルからなるリストから選択される、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱を検出することが可能なデバイスを更に備えるのが好ましい。
【０１２６】
最後に、本発明の第１８の態様は、本発明の第１４〜第１７の態様のいずれかのキット又はデバイスの、外部光源を照射した場合に金属ナノ粒子によって発生する熱により分析物を検出するためのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける使用に関する。
【０１２７】
本明細書において本発明を広く一般的に記載した。一般的開示に含まれるより狭い種及び亜属集団（sub-generic groupings）の各々も本発明の一部をなす。これには、削除される事柄が本明細書で具体的に挙げられているか否かに関わらず、その属から任意の対象を除く条件又は否定的限定を伴う本発明の一般的記載が含まれる。
【０１２８】
他の実施形態が以下の特許請求の範囲及び非限定的な例に含まれる。加えて、本発明の特徴又は態様が群に関して記載される場合、それにより本発明が群の任意の個々の成員又は成員の亜群に関しても記載されることが当業者には認識される。
【実施例】
【０１２９】
材料及び方法
マイクロチップの製作
病原体、例えばサルモネラ及びカンピロバクター、Ａｒａ  ｈ１等のアレルゲン、並びにアルブミン及びコラーゲン等の他のタンパク質分子の検出のためのサンドイッチ免疫測定法を、本発明のマイクロ流体チップにおいて実行した。これらを図１に示されるように、以下の目標仕様を満たすように適切にスケッチし、製作した：
１．  マイクロ流体チップの製作への熱可塑性材料（コオレフィンポリマー）の使用、特に５０μｍ〜１５０μｍの範囲の厚さを有するフィルムの使用。本実施例に使用したマイクロチップは、温度をモニタリングする側に約１００μｍの厚さを有する熱可塑性材料を使用することによって構成した。
２．  おおよその寸法が５ｍｍ×３ｍｍ、深さが０．１ｍｍ、総容量が１μｌ〜３μｌのマイクロチャンバの組込み。マイクロ流体チャンバの容量は１μｌである。
３．  各マイクロチャンバは、更に互いに少なくとも１０ｍｍ離れるものとする。
４．  少なくとも３つの異なる液体の挿入が可能な使い勝手の良い設計。
５．  ５つの異なる検出チャネルの組込み
１×対照（検量線も含む）：
検出チャネル１つ当たり一列の５つのマイクロチャンバを含む。各マイクロチャンバに専用の入口及び出口を含む、全てのマイクロチャンバが一列に配置される。
４×検出：
検出チャネル１つ当たり一列の３つのマイクロチャンバを含む。
各検出チャネルが専用の出口を有する。
【０１３０】
最終チップ設計は、試薬の直接的挿入を可能にする３つの専用の入口を含む（図１を参照されたい）。次いで、検出アッセイが５つの異なるマイクロチャネルに分けられる。カートリッジの最上部に配置されたマイクロチャネルは、較正プロトコルを行うのに専用のものである。これは既知の濃度の分析物を含む５つの異なるマイクロチャンバを含む。他の４つのマイクロチャネルがアッセイ自体に使用され、異なるサンプル及び内部対照の使用が可能となる。汚染問題を回避するために、専用の入口を用いて各サンプルを注入する。加えて、各サンプルマイクロチャネルは、統計的に関連したアッセイの反復試験を行うための３つの等しいマイクロチャンバを含むように設計した。
【０１３１】
マイクロ流体チップのレイアウトは当初、家禽区域に存在する病原体の特異的検出のために概念的に設計されたが、本明細書で言及するマイクロチップはＡｒａ  ｈ１、コラーゲン及びアルブミン等の他の生体分子の検出にも首尾よく適用された。この意味で、本発明は本明細書に記載されるマイクロ流体チップの特定のレイアウトに限定されない。
【０１３２】
マイクロチップの種々の機能化のための試薬
４−（４−アミノフェニル）酪酸（ＰｈＢｕｔ）、亜硝酸ナトリウム（ＮａＮＯ２）、次亜リン酸（Ｈ３ＰＯ２、Ｈ２Ｏ中５０ｗｔ％）、（Ｎ−（３−ジメチルアミノプロピル）−Ｎ’−エチルカルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣ）、Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミドナトリウム塩（Ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ）、Ｎα，Ｎα−ビス（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン水和物（ＡＮＴＡ）、硫酸銅（ＩＩ）、２０ｍＭ  ＨＥＰＥＳバッファー（ｐＨ８．０）、２．５Ｎ  ＮａＯＨ溶液、１Ｎ  ＨＣｌ溶液、無水エタノール（ＥｔＯＨ）、蒸留Ｉ型（Type-I）水（１８．２Ｍｏｈｍ−１超）。ストレプトアビジンＲｅｆ  ７１００−０５  Ｌｏｔ（Lote）  Ａ２８０５−ＰＡ０５Ｈ。乾燥トルエン中の３−（２，３−エポキシプロポキシ）プロピルトリメトキシシランの２％溶液。１０ｍＭ炭酸バッファー（ｐＨ１０．８）。１０ｍＭ  ＭＥＳ（２−（Ｎ−モルホリノ）エタンスルホン酸）バッファー（ｐＨ５）。ピラニア溶液（Ｈ２ＳＯ４：Ｈ２Ｏ２  ３：１）。
【０１３３】
サルモネラ・ティフィムリウムの検出のための試薬
ａ．  捕捉抗体：抗サルモネラ・ティフィムリウム０−４抗体［１Ｅ６］  ａｂ８２７４−Abcam  ２ｍｇ／ｍＬ。
ｂ．  ５μｇ／ｍＬ、１×ＰＢＳに溶解（disuelto en）。
ｃ．  ブロッキング：ＴＢＳ−Ｔ  ０．１％＋ＢＳＡ  ５％。
ｄ．  抗原：BacTraceのサルモネラ・ティフィムリウム陽性対照  Ｒｅｆ  ５０−７４−０１−ＫＰＬ。細胞数：３×１０９ＣＦＵ／ｍＬ。
ｅ．  検出抗体：抗サルモネラ抗体（ビオチン）ａｂ６９２５５−Abcam  ４ｍｇ／ｍＬ
ｆ．  希釈率１／５０００、ＴＢＳ−Ｔ  ０．１％＋ＢＳＡ  ５％に溶解。
【０１３４】
カンピロバクター・ジェジュニ（Campylobacter jejuni）の検出のための試薬
ａ．  捕捉抗体：抗カンピロバクター・ジェジュニ抗体ａｂ１５５８５５  Ｌｏｔ：ＧＲ１４６９３０−４  ０．１ｍｇ／ｍＬ。
ｂ．  希釈率１／２０＝５．０μｇ／ｍＬ  １×ＰＢＳ。
ｃ．  抗原：BacTraceのカンピロバクター・ジェジュニ陽性対照  Ｒｅｆ  ５０−９２−９３。Ｌｏｔ  １４０５１３−ＫＰＬ  細胞数：４．６４×１０８ＣＦＵ／ｍＬ。
ｄ．  検出抗体：抗カンピロバクター・ジェジュニ抗体−ビオチン  ａｂ５３９０９  Ｌｏｔ  ＧＲ９３２６０−３。
ｅ．  希釈率１／１０００  ＴＢＳ−Ｔ  ０．１％＋ＢＳＡ  ５％。
【０１３５】
Ａｒａ  ｈ１の検出のための試薬
ａ．  捕捉抗体：モノクローナル抗体２Ｃ１２マウスＩｇＧ１  Ｌｏｔ：３００８３  ２．７ｍｇ／ｍＬ
ｂ．  希釈率１／５００＝５．４μｇ／ｍＬ  １×ＰＢＳ。
ｃ．  アレルゲン標準ｎＡｒａｈ１  Ｒｅｆ  ＥＬ−ＡＨ１−Ｓｔａｎｄａｒｄ。Ｌｏｔ  ３８０１８  ２００００ｎｇ／ｍＬ。
ｄ．  検出抗体：モノクローナル抗体２Ｆ７マウスＩｇＧ１−ビオチン化  Ｌｏｔ  ３６０６９。
ｅ．  希釈率１／１０００  ＰＢＳ−Ｔ  ０．１％＋ＢＳＡ  ５％。
ｆ．  希釈率１／２０００  ＰＢＳ−Ｔ  ０．１％＋ＢＳＡ  ５％。
【０１３６】
アルブミン及びコラーゲンの検出のための試薬
ａ．  ＯＶＡポリクローナル抗体：ヤギ抗ウサギＩｇＧ  Ｈ＆Ｌ（ビオチン）、Abcam  ｒｅｆ：ａｂ６７２０
ｂ．  マウスにおいて産生されるモノクローナル抗鶏卵アルブミン（オボアルブミン）抗体、Sigma  ｒｅｆ：Ａ６０７５
ｃ．  Ｉ型コラーゲンに対するマウスモノクローナル抗体、GeneTex  ｒｅｆ：ＧＴＸ２６３０８
ｄ．  Ｉ型コラーゲンに対するウサギポリクローナル抗体（ビオチン）、Genetex  ｒｅｆ：ＧＴＸ２６５７７
【０１３７】
実施例１．  ジアゾ化ＰｈＢｕｔの共有結合グラフト化によるカルボン酸基でのマイクロ流体チップ表面機能化
カルボン酸基での表面機能化は、化学還元（Ｈ３ＰＯ２）及びＵＶ放射の両方によって生成する、チャンバチップの表面に結合するジアゾ化ＰｈＢｕｔ（スキームＩ）のアリールラジカルの共有結合グラフト化によって得られる（スキームＩＩ）。
【０１３８】
手順
１．  ＰｈＢｕｔのジアゾ化
ジアゾ化ＰｈＢｕｔを、０．３Ｍの最終濃度を達成する量のＮａＮＯ２を０．５Ｍ  ＨＣｌ中で調製した０．１Ｍ  ＰｈＢｕｔ溶液に溶解することにより、氷浴内で使用する前にｉｎ  ｓｉｔｕで得る。この混合物を表面修飾に使用する前に４℃に１０分間保持する。
【０１３９】
【化５】
2019515310.tif 000007
【０１４０】
２．  ジアゾ化ＰｈＢｕｔの共有結合グラフト化
表面修飾の前にチップをエタノールですすぎ、乾燥させる。次いで、３６５ｎｍの波長でＵＶランプ（８Ｗ）下に曝露することによって、これらに紫外（３０５ｎｍ〜３９５ｎｍの範囲のＵＶ）光を１５分間照射する。上記のように調製されたばかりのジアゾ化ＰｈＢｕｔ溶液を、０．１６Ｍの最終濃度が達成されるようにＨ３ＰＯ２酸溶液と混合し、チップのチャンバ上に滴下キャスティングする（drop casted）。これらを再びＵＶランプ下に置き、３６５ｎｍの波長で３０分間照射する。最後に、修飾されたチップをランプから取り出し、無水ＥｔＯＨで十分にすすぐ。
【０１４１】
【化６】
2019515310.tif 000008
【０１４２】
実施例２．  ニトリロ三酢酸−Ｃｕ（ＩＩ）によるカルボン酸終端表面のマイクロ流体チャンバチップ修飾
ＮＴＡ−Ｃｕ（ＩＩ）表面修飾は、ＥＤＣ／ＳＮＨＳ媒介アミド化（スキームＩＩＩ）によるカルボン酸基の活性化及びＡＮＴＡの第一級アミン（−ＮＨ２）との直接反応によって達成される。
【０１４３】
【化７】
2019515310.tif 000009
表面修飾チャンバのカルボキシレート基の活性化及びその後のＡＮＴＡ−Ｃｕ（ＩＩ）錯体によるＮＨＳ−エステルのアミド化を幾つかの工程で行う。初めに、２０ｍＭ  ＳＮＨＳ及び１０ｍＭ  ＥＤＣ溶液を、ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ試薬を蒸留Ｉ型水に溶解することによって調製し、ＥＤＣ試薬に移す。この試薬を含有する溶液をチップのチャンバ上に滴下キャスティングし、室温で１時間反応させる。その後、チップを蒸留Ｉ型水ですすぎ、１０ｍＭ重炭酸ナトリウム溶液（ｐＨ１０）中の２５ｍＭ  ＡＮＴＡの溶液において一晩インキュベートし、キレートを導入する。最後に、過剰な試薬を水で洗浄することによって除去した後、乾燥させ、チップのチャンバを１００ｍＭ硫酸銅（ＩＩ）水溶液において３時間インキュベートすることによって、ニトリロ三酢酸−Ｃｕ（ＩＩ）錯体（ＡＮＴＡ−Ｃｕ２＋）が表面上に形成される。チップを再び洗浄し、乾燥させることで、抗体固定化が可能な状態となる。
【０１４４】
実施例３．  他のニトリロ三酢酸−Ｍ（ＩＩ）（Ｎｉ２＋、Ｃｏ２＋）錯体によるカルボン酸終端表面のマイクロ流体チャンバチップ修飾
他のＮＴＡ−Ｍ２＋錯体による表面修飾は、ＮＴＡ−Ｃｕ（ＩＩ）と同じ手順に従い、ＣｕＳＯ４の代わりに対応する金属塩（ＣｏＣｌ２、ＮｉＳＯ４又はＮｉＣｌ２）を上記と同様の濃度で用いて達成することもできる。ヒスチジンタグ付きタンパク質及び抗体に対するＮＴＡキレート化金属原子の結合親和性は、Ｃｕ（ＩＩ）＞Ｎｉ（ＩＩ）＞Ｃｏ（ＩＩ）の順序に従う。
【０１４５】
実施例４．  ガラス表面の機能化
共有結合非配向及び配向固定化の２つのタイプのガラス表面の生体機能化を行った。ガラス支持体を活性化するために、表面をオービタルシェーカーにおいて室温で１時間、ピラニア溶液で清浄する。続いて、スライドをｍｉｌｌｉ−Ｑ水ですすぎ、乾燥させる。次いで、乾燥トルエン中の３−（２，３−エポキシプロポキシ）プロピルトリメトキシシランの２％溶液をオービタルシェーカーにおいて室温で一晩、活性化ガラス支持体上に添加する。その後、スライドをトルエン及び１０ｍＭ炭酸バッファー（ｐＨ１０．８）で入念に洗浄する。スライドを乾燥させた後、ガラス支持体をオービタルシェーカーにおいて２５ｍＭ  ＮＴＡと共に室温で３時間インキュベートする。その後、ガラス支持体をｐＨ１０．８の１０ｍＭ炭酸バッファーで十分に洗浄する。
【０１４６】
配向固定化を行うために、ＮＴＡ−表面を錯体化環境のために１００ｍＭ  ＣｕＳＯ４と共に水溶液中、室温で一晩インキュベートする。次いで、スライドをｍｉｌｌｉ−Ｑ水で洗浄する。非配向の共有結合での固定化については、更なるカルボキシル基活性化のためにＮＴＡ−表面に室温で４５分間、１０ｍＭ  ＭＥＳ（ｐＨ５）中の５０ｍＭ  ＥＤＣ及び７５ｍＭ  ＳＮＨＳをロードする。次いで、表面を１０ｍＭ  ＭＥＳ（ｐＨ５）で洗浄する。
【０１４７】
実施例５．  表面機能化  −  捕捉抗体によるマイクロ流体チャンバチップの修飾
１．  物理的吸収
抗体表面修飾の前に、チップをＥｔＯＨですすぎ、乾燥させる。次いで、１×ＰＢＳ中５μｌの５μｇ／ｍｌ捕捉抗体をマイクロ流体チャネル内のマイクロ流体チャンバ（センシング領域）の表面上にのみキャスティングし、３７℃で１時間インキュベートする。
【０１４８】
表面を１×ＰＢＳですすぎ、ブロッキングバッファー（１×ＰＢＳ中の５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）と共に４℃で一晩インキュベートする。
【０１４９】
表面を洗浄し、チップを上部（ＰＭＭＡ）と組み合わせ、蠕動ポンプに接続する。
【０１５０】
２．  カルボキシル化により機能化されたマイクロ流体チャンバチップの捕捉抗体による表面修飾：共有結合抗体固定化
表面修飾チャンバのカルボキシレート基の活性化及びその後の捕捉抗体によるＮＨＳ−エステルのアミド化を、以下に記載のように２工程プロセスで行う：
１．  １０ｍＭ  ＭＥＳバッファー（ｐＨ６）中１０μｌの２０ｍＭ  ＳＮＨＳ及び１０ｍＭ  ＥＤＣとの１０分間のカルボキシル化−マイクロチャンバのインキュベーション。
２．  １０ｍＭ  ＭＥＳ（ｐＨ６）による洗浄、及び各マイクロチャンバ上での１０μｌの５μｇ／ｍｌ捕捉抗体との３７℃で１時間のインキュベーション。
【０１５１】
捕捉抗体の共有結合での固定化、及び３７℃で１時間の１×ＰＢＳ中の５％ＢＳＡ／０．１％Ｔｗｅｅｎによる表面のブロッキング後に、チップを蠕動ポンプに接続し、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、各チャネルを洗浄バッファーですすぐ。
【０１５２】
３．  ニトリロ三酢酸−Ｍ（ＩＩ）（Ｃｕ２＋、Ｎｉ２＋、Ｃｏ２＋）錯体で機能化されたマイクロ流体チャンバチップの捕捉抗体による修飾：配向抗体固定化
ＮＴＡ−Ｍ（ＩＩ）（Ｃｕ２＋、Ｎｉ２＋、Ｃｏ２＋）で機能化されたマイクロ流体チャンバチップへの捕捉抗体による修飾を、以下に記載のように単一工程で行う：５μｇ／ｍｌの捕捉抗体５μｌをマイクロ流体チャネルのセンシング領域の表面上にのみ堆積させ、３７℃で１時間インキュベートする。
【０１５３】
次いで、表面をすすぎ、ブロッキングバッファー（１×ＰＢＳ中の５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）と共に４℃で一晩インキュベートする。その後、表面をすすぎ、チップを上部（ＰＭＭＡ）と組み合わせ、蠕動ポンプに接続する。
【０１５４】
実施例６．  マイクロ流体チップを用いた免疫測定法
以下、サルモネラの検出のために材料及び方法において言及したマイクロチップで実行される種々の免疫測定法を説明する。加えて、これらの方法により得られた結果を比較した。
【０１５５】
１．  サルモネラ検出のための直接免疫測定法：２つの異なる希釈率のサルモネラで直接機能化されたチップを用いた第１の試験の温度増分
材料及び方法に示される製作された非修飾マイクロ流体チップを、２つの希釈率のサルモネラの直接固定化の試験に使用した。
【０１５６】
６００００ＣＦＵ／ｍｌ及び２００００ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラＴ．を１０μｌ（それぞれ表面上に合計で６００ＣＦＵ及び２００ＣＦＵ）、検出表面に吸着させた。病原体の直接固定化後に表面をＢＳＡでブロッキングし、ビオチン化検出抗体と反応させた。最後に、これらを洗浄し、ストレプトアビジン−ＡｕＮａｎｏｐｒｉｓｍ溶液と更に反応させた。
【０１５７】
免疫測定法の特異性を試験するために、以下の対照実験を行った：１）ＮＣ１＝サルモネラの非存在、５％ＢＳＡで表面をブロッキングした；２）ＮＣ２＝ビオチン化検出抗体の非存在；３）ＮＣ３＝ストレプトアビジン−ＡｕＮＰｒｉｓｍの非存在。
【０１５８】
図２に、ビオチン化検出抗体による認識及びストレプトアビジン−Ｎａｎｏｐｒｉｓｍとの更なる相互作用の後のサルモネラの存在に起因する、表面のＮＩＲ照射時に測定された温度の増分を報告する。
【０１５９】
ビオチン化検出抗体の非存在下（ＮＣ２）では、ストレプトアビジン＠ＡｕＮＰｒｉｓｍの非存在下（ＮＣ３）と同様、有意でない温度の増分が見られる。
【０１６０】
温度の増分は、サルモネラのＣＦＵ量に比例する。これらの結果から、マイクロ流体チップの製作及びそのＨＥＡＴＳＥＮＳへの応用についてのこの材料の適合性が示される。さらに、結果により種々のＣＦＵ希釈率のサルモネラをマイクロ流体チップ上に直接固定化し、検量線を作成する可能性が予想される。
【０１６１】
２．  サルモネラ検出のための直接免疫測定法：サルモネラの直接固定化の第１の試験の温度増分及びマイクロ流体チップ上での２つの異なる希釈率のサルモネラの検出。検量線試験の構築。
０ＣＦＵ／ｍｌ〜２４００００ＣＦＵ／ｍｌの範囲の種々の濃度（ＣＦＵ／ｍｌ）のサルモネラＴを１０μｌ、マイクロ流体チップ上に直接吸着させ、抗サルモネラビオチン化抗体で検出して、種々の濃度のサルモネラの存在に起因する温度の増分を測定した。次いで、ストレプトアビジン＠ＡｕＮｐｒｉｓｍを抗体と相互作用させ、全てのセンシング領域にＩＲレーザーを照射した。各チャンバの温度を測定し、温度の増分を算出した。図３にサルモネラのＣＦＵ／ｍｌ量に応じて算出された温度の増分を示す。
【０１６２】
測定された温度の上昇は、マイクロ流体チップの表面上に直接吸着させたＣＦＵ量の増大によるものであった。
【０１６３】
３．  サルモネラ検出のためのサンドイッチ免疫測定法：サンドイッチ免疫測定法の第１の試験の温度増分、マイクロ流体チップ上での２つの異なる希釈率のサルモネラの検出
マイクロ流体チップがＨＥＡＴＳＥＮＳ技術への応用に好適であることが示されたため、マイクロ流体チップを使用することにより選択病原体を検出するサンドイッチ型免疫測定法を行った。この目的で、マイクロチップの各マイクロチャンバを、５μｇ／ｍｌの抗サルモネラ捕捉抗体（５μＬ）の表面への直接吸着により抗サルモネラ捕捉抗体で機能化した。次いで、サルモネラの捕捉事象、並びにストレプトアビジン−ＡｕＮｐｒｉｓｍでの検出及びストレプトアビジン−ＡｕＮｐｒｉｓｍとの相互作用を、１ｍｌのサンプルを各チャネルに注入して流体モードで行った。
【０１６４】
アッセイは、リン酸バッファーに希釈した２つの異なるサルモネラのＣＦＵ／ｍｌ濃度、２０００００ＣＦＵ／ｍｌ及び２４００００ＣＦＵ／ｍｌでそれぞれ行った。図４にサルモネラＴの存在に起因する温度の増分の傾向を説明する。
【０１６５】
検量線の傾向は線形でなく、分析物と相互作用する多量のｎａｎｏｐｒｉｓｍの存在に起因するシグナルの飽和が示された。２つの未知濃度のサルモネラの検出は、自由度調整済み決定係数が０．９８８４３に等しい曲線と値が一致する指数方程式から算出した。
【０１６６】
サンドイッチフォーマットでの免疫測定法の有効性が示されたため、ドープバッファー中の病原体の濃度を減少させることによってサルモネラｔ．の検出限界の改善を試みた。
【０１６７】
１×ＰＢＳ中１５００ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラＴ．が第１の試験で検出された最低濃度であった。
【０１６８】
１ｍｌのサンプルを２００μｌ／ｍｌの流量でチャネルに注入した。サンプルを注入した後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）で洗浄した。次いで、２００μｌ／ｍｌを用いて２分間、検出抗体をその抗原と相互作用させた。３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）ですすいだ。ストレプトアビジン＠ＡｕＮＰｒをチャネルに注入した。流量は２００μｌ／ｍｌで２分間とした。３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）ですすぎ、乾燥させた。
【０１６９】
図５に陰性対照に関する１５００ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラの温度の増分を示す。サルモネラの存在下でのマイクロチャンバの温度の増分は、サルモネラの非存在下（ＮＣ１）、検出抗体の非存在下（ＮＣ２）及びストレプトアビジン−ＡｕＮＰｒｉｓｍの非存在下（ＮＣ３）のそれぞれの対照の温度増分よりも高かった。
【０１７０】
サルモネラの存在に起因する温度増分は、予想値とは異なるにも関わらず、全ての陰性対照よりも高かった。陰性対照の温度の増分の正の値は、免疫測定法における試薬間の非特異的相互作用を示していた。非特異的相互作用は、表面の不完全な機能化及びブロッキング又は免疫測定法における不適切な流量に関連付けることができる。このようにして、表面抗体機能化を一定に保ち、免疫測定法における流量を変更することにより、図６に示されるようにサルモネラの検出限界及びバックグラウンドに起因するシグナルを改善することが可能であった。
【０１７１】
同じ実験を、実食品サンプルである、種々のＣＦＵのサルモネラをドープした２２５ｍｌのペプトン事前富化培養培地中の２５ｇの鶏肉を使用して行った。捕捉抗体をマイクロ流体チップ上に吸着させ、表面を１×ＰＢＳ中の５％ＢＳＡ−０１％Ｔｗｅｅｎで１５０μｌ／分の流量を用いてブロッキングした。
【０１７２】
次いで、洗浄バッファーを使用することにより２５０μｌ／分の流量を用いて洗浄を行った。
【０１７３】
１ｍｌの実サンプル中のサルモネラの捕捉、並びにビオチン化検出抗体による検出、及びストレプトアビジン＠ｎａｎｏｐｒｉｓｍとの相互作用を、１５μｌ／分の流量での流れを用いて行った。
【０１７４】
マイクロ流体チップ内で行った免疫分析の結果を図７に示す。
【０１７５】
検量線を作成した後、既知の種々の濃度のサルモネラに起因する温度の増分を測定することで、実サンプル中の病原体の未知濃度を検量線から決定した（図８）。
【０１７６】
サルモネラをドープしたサンプルのより高い温度の増分から、ＨＥＡＴＳＥＮＳが、２２５ｍｌのペプトン中２５ｇの鶏肉のような複雑なマトリックスについての数ＣＦＵの細菌の超高感度検出に好適であることが明らかに示される。
【０１７７】
実サンプル中のサルモネラの存在に起因する温度の増分は、細菌と抗体との特異的相互作用に影響を及ぼす多量の肉タンパク質の存在のために、リン酸バッファー中のものと僅かに異なる。
【０１７８】
４．  サルモネラ検出のためのサンドイッチ免疫測定法：マイクロ流体チップに対する捕捉ａｂの共有結合での固定化の影響
カルボン酸末端基によるマイクロ流体チップ表面の修飾を、ＥＤＣ／ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳ反応による第一級アミンとの安定したアミド結合の形成により捕捉抗体を共有結合で固定化するために用いることができる。
【０１７９】
この意味で、１０ｍＭ  ＥＤＣ及び２０ｍＭ  ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳで予め活性化した各マイクロチャンバの表面を２０μｌの５μｇ／ｍｌの捕捉抗体で機能化した。捕捉抗体の共有結合での固定化、及び３７℃で１時間の１×ＰＢＳ中の５％ＢＳＡ／０．１％Ｔｗｅｅｎによる表面のブロッキングの後に、チップを蠕動ポンプに接続し、３００μｌ／分の流量を用いて４分間洗浄バッファーで洗浄した。３０ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラＴを１ｍｌ、マイクロ流体チャネル内に１５０μｌ／分の流量で１分間流した後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルをバッファー溶液で洗浄した。次いで、４００μｌのビオチン化検出抗体をチャネル内に流した。
【０１８０】
図９に示す結果から、３０ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラをドープしたサンプルにおける温度増分が種々の対照と比較して高かったことが示される。このタイプの固定化では、抗体は主に「フラットオン」配向をとり、Ｆｃ及び２つのＦａｂフラグメントが表面上に横たわる。
【０１８１】
５．  サルモネラ検出のためのサンドイッチ免疫測定法：マイクロ流体チップ上の金属キレート化による捕捉抗体の配向固定化
金属キレート化による抗体の配向固定化は、本明細書に示されるように最適かつ多用途の方法である。固定化は、抗体の重鎖（Ｆｃ）中のヒスチジンに富む金属結合部位又はタンパク質に融合したポリＨｉｓタグ配列への金属キレート化によって達成される。金属結合部位がＣ末端又はＮ末端のいずれかにあることから、このように表面に結合する抗体及びＨｉｓタグ付きタンパク質は、結合部位が表面から離れた方向に向かって配向し、最大の抗原結合又は好都合なタンパク質配向が可能となる。さらに、金属キレート化による配向固定化は、金属キレート化固定化の結合定数が、ヒスチジン結合のキレート効果と複数の金属キレート基の標的結合との組合せのために非常に高いことから、安定した抗体固定化ももたらす。解離定数は１０−７Ｍ−１〜１０−１３Ｍ−１と推定される。多くの用途について、これにより抗原−抗体相互作用と同等の結合強度がもたらされる。一方、金属キレート化による抗体の配向固定化のための抗体付着の実験条件は、共有結合での配向固定化手順に用いられるものよりも穏やかである。利点として、キレートへの抗体結合を便宜上、可逆的又は不可逆的に調整することもできる。加えて、ｈｉｓタグ付き組み換えタンパク質の固定化に用いることもできることから、より多用途である。
【０１８２】
捕捉抗体の配向固定化を達成するために、マイクロ流体チャンバチップを表面の段階的修飾において金属−キレート錯体で機能化した。初めに、表面を例えば３−（４−アミノフェニル）プロピオン酸、３−アミノフェニル酢酸、４−アミノフェニル酢酸又は４−（４−ニトロフェニル）酪酸等のカルボン酸基を含有するアリールアミン化合物で機能化した。この具体例について、異なる生体分子の固定化であってもＰｈＢｕｔを使用したが、炭素数２〜１６の範囲の種々の長さのｎ−アルキルカルボン酸を有するアリールアミン化合物の使用がより適切であり得る。
【０１８３】
ジアゾ化ＰｈＢｕｔのアリールラジカルの共有結合グラフト化によって導入したカルボン酸基（スキームＩＩ）を、ＥＤＣによって触媒されるＳＮＨＳによるエステル化によって活性化し、遊離アミノ基を介したＡＮＴＡ−Ｍ（ＩＩ）（Ｃｕ２＋、Ｎｉ２＋、Ｃｏ２＋）錯体の共有結合を促進した（スキームＩＩＩ）。次いで、これらを５μｇ／ｍｌの捕捉抗体２０μｌとインキュベートした。得られるＮＴＡ−Ｍ（ＩＩ）錯体の末端は、水分子によって占められる２つの遊離配位部位を含有し、捕捉抗体のヒスチジン残基に置き換えられて配向固定化が生じる。その後、チップを蠕動ポンプに接続し、３００μｌ／分の流量を用いて４分間洗浄バッファーで洗浄した。１ｍｌの３０ＣＦＵ／ｍｌのサルモネラＴ．をマイクロ流体チャネル内に１５０μｌ／分の流量で１分間流した後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルをバッファーで洗浄した。次いで、４００μｌのビオチン化検出抗体をチャネル内に流した。
【０１８４】
図１０に、配向するように捕捉抗体で機能化されたマイクロ流体チップ上でのサルモネラの検出を示す。
【０１８５】
興味深いことに、このタイプの固定化についてのサルモネラの存在に起因する温度増分は、それぞれの対照について得られるものよりも高く、更には直接吸着及び共有結合での固定化についての先の結果で得られるものよりも高かった。この意味で、種々の固定化方法の比較研究を行った。種々の抗体表面機能化の戦略の比較を図１１に示すが、この例に示される表面機能化戦略の各々についての生成するバックグラウンドシグナルと比較した、検出されるサルモネラに起因する温度の増分が示される。
【０１８６】
図１１に、金属キレート化による捕捉抗体の配向固定化が、サルモネラの存在に起因する最高の温度増分を生じ、非特異的相互作用（バックグラウンド）によって生成するシグナルを最小とすることにより最良の結果をもたらすことを示す。これらの結果から、チップの表面の正確な機能化戦略が、ＨＥＡＴＳＥＮＳ標識（金ｎａｎｏｐｒｉｓｍ）の非特異的吸着を回避しながら最適な抗体付着を好都合な配向で得るのに極めて重要であることが示される。この方法が共有結合での配向固定化に優る利点を示すことも注目に値する。どちらの方法論も結合のための配向抗体付着が得られるという利点を有するが、抗体が主に「フラットオン」配向をとり、Ｆｃ及び２つのＦａｂフラグメントが表面上に横たわる共有結合での固定化とは対照的に、金属キレート化固定化の場合、抗体は表面に垂直に配向した「エンドオン」配向で配置される。
【０１８７】
実施例７．  実食品サンプル中のサルモネラの検出
実施例６に示される有利な抗体の配向固定化を、実サンプル中のサルモネラの検出について試験した。結果を図１２に報告するが、陰性対照によって生成するシグナルと比較した、既知のサルモネラＣＦＵ数をドープした実サンプル中のサルモネラに起因する温度の増分が示される。
【０１８８】
マイクロ流体チップ表面上に固定化された配向抗体上での実サンプル中のサルモネラの存在に起因する温度増分も、それぞれの対照について得られるものよりも高かった。
【０１８９】
検量線を作成した後、実サンプル中の既知の種々の濃度のサルモネラ及び未知濃度の病原体に起因する温度の増分の測定値を、図１３に報告されるように決定した。
【０１９０】
実サンプルをドープするのに使用される理論数のＣＦＵ／ｍｌの存在に起因する温度の増分は、検量線のＣＦＵ数と一致する。
【０１９１】
実施例８．  カンピロバクター・ジェジュニ検出のためのサンドイッチ免疫測定法：マイクロ流体チャンバ表面上への捕捉抗体の配向固定化
マイクロ流体チャンバの捕捉抗体の配向機能化のために確立されたプロトコルをサンドイッチ免疫測定法と共に、この技術の普遍性を実証するためにカンピロバクター・ジェジュニ等のサルモネラとは異なる病原体の検出に用いた。
【０１９２】
カンピロバクター・ジェジュニはサルモネラ属菌、リステリア・モノサイトゲネス（Listeria monocytogenes (L. monocytogenes)）及び大腸菌（Escherichia coli (E. coli)）Ｏ１５７：Ｈ７と共に、食物関連死のおよそ６７％を占めると推定される４つの細菌性病原体の１つである（Mead et al., 1999）。カンピロバクターのスクリーニングは世界的に培養、顕微鏡検査、計数法及び生化学検査、ＰＣＲ、免疫測定法等の食料製品中のこの病原体の検出に利用可能な種々の定量化法を用いて日常的に行われる（Yang et al., 2013）。上述の方法の一部は高感度かつ迅速であるが、高コストであり、膨大なサンプルの調製を必要とし、選択性が低く、時間がかかるという支障がある。実際、サルモネラについては、殆どの鶏肉加工品（poultry-based products）が生産日から数日以内に消費されることから、方法が行われている間に集団がカンピロバクターに曝露され、食品由来疾病の大発生につながるために、このことは利用可能な方法の課題となっている（Che et al., 2001）。
【０１９３】
マイクロ流体チップ内でのＨＥＡＴＳＥＮＳを用いたＣ．ジェジュニの免疫検出は、コスト効率がよく、迅速、容易、高感度かつ信頼性が高い診断アプローチをもたらす。
【０１９４】
Ｃ．ジェジュニは、加熱殺菌及び凍結乾燥の状態で購入した。これらをＰＢＳ中に種々の希釈率で再懸濁し、ボルトン培養培地における未知サンプルの更なる検出のための検量線（図１４）を作成するために使用した。
【０１９５】
ＨＥＡＴＳＥＮＳ技術とマイクロ流体チャンバ表面の抗体の配向機能化との組合せにより、ボルトン培養培地におけるカンピロバクターの低いＬＯＤ（検出限界）を達成することができる。
【０１９６】
１５０ＣＦＵ／ｍｌのカンピロバクターを検出する、高感度ＱＣＭサンドイッチ免疫測定法の開発を記載しているMasdor et Al.（Masdor et Al. Biosensors and bioelectronics 78, 2016, 328-336）によって報告されたカンピロバクターＪのセンシングと比較して、ＨＥＡＴＳＥＮＳは１００ＣＦＵ／ｍｌ未満のこの特定の細菌病原体の検出を可能にする。
【０１９７】
さらに、この検出限界は、２１０倍少ない捕捉抗体を表面上に固定化し、バックグラウンドを減少させ、チップの製造コストを低下させても達成される。
【０１９８】
実施例９．  Ａｒａ  ｈ  １検出のためのサンドイッチ免疫測定法：マイクロ流体チャンバ表面上への捕捉抗体の配向固定化
本方法論の普遍性を更に説明するために、更なる分析物を用いて本実施例を行った。
【０１９９】
ラッカセイ（アラキス・ヒポゲア（Arachis hypogaea））は、食物が引き起こす致命的なアナフィラキシーを含む重度のアレルギー反応と最もよく関連するアレルゲンの１つである。米国の食品アレルゲン表示・消費者保護法２００４年（ＦＡＬＣＰＡ  ２００４、公法１０８〜２８２、タイトルＩＩ）、及び欧州連合の指令２００３／８９／ＥＣ及び２００７／６８／ＥＣによって改訂される指令２０００／１３／ＥＣに従うと、食料製品中のラッカセイの存在は、そのラベル上に表示する必要がある。
【０２００】
食品アレルゲンを検出する現在の参照方法はＥＬＩＳＡであるが、ＨＰＬＣ、キャピラリー電気泳動（ＣＥ）、レーザー誘起蛍光（ＬＩＦ）検出による方法、酵素結合免疫親和性クロマトグラフィー（enzyme linked immune affinity chromatography；ＥＬＩＡＣ）、サイズ排除クロマトグラフィー及びＳＰＲ等の他の分析法も存在する。決定されたＥＬＩＳＡのＬＯＤを図１５に示す。
【０２０１】
ＨＥＡＴＳＥＮＳ技術とマイクロ流体チャンバ表面の抗体の配向機能化との組合せにより、同じ捕捉抗体及び検出抗体の組合せを用いて、ＰＢＳ中でより低いＡｒａ  ｈ１のＬＯＤを達成することができる（図１６）。
【０２０２】
このため、ＨＥＡＴＳＥＮＳを、Ａｒａ  ｈ１を検出するバイオアッセイにおいて、配向機能化マイクロ流体表面と組み合わせて首尾よく用いることができた。
【０２０３】
Ａｒａ  ｈ１のバイオセンサー検出限界は、市販のＥＬＩＳＡキット（ＬＯＤ≒１０ｎｇ／ｍｌ）と比較して１桁（ＬＯＤ＜０．４ｎｇ／ｍｌ）、ＳＰＲ（J. Pollet et al. / Talanta 83 (2011) 1436-1441）等の他の検出法と比較して数桁改善された。
【０２０４】
実施例１０．  他の分析物に適用されるマイクロ流体力学におけるＨＥＡＴＳＥＮＳ
歴史的な塗料の結合剤の特性評価は依然として、何十年も前に開発され、新たに出現したナノテクノロジーの世界の利点を生かす、より高感度、特異的、低コストかつ迅速な方法論によって置き換えられた従来の分子生物学の方法論に依存している。
【０２０５】
ＨＥＡＴＳＥＮＳをルネサンス前の絵画、装飾写本及び彫刻において最も使用されている結合剤の２つであるコラーゲン及びアルブミンのマイクロ流体チップにおける検出に適用した。本実施例でも本方法論の普遍性を更に説明する。
【０２０６】
１．  マイクロ流体チップチャンバ表面上に吸着させたアルブミンの検出のための直接免疫測定法
アルブミンの検出のための直接免疫測定法を実行した。この目的で、陽性対照（ＰＣ１）としてのアルブミンの２つのマイクロサンプル：Ｚａｃｃｈｉ（商標）からの粉末のアルブミン（サンプル４）及びガラス表面に塗布し、１年半空気に曝した卵白からの別のアルブミン（サンプル５）のサンプルをマイクロ流体チャンバ表面上に直接固定化した。固定化後に、３ｍｇ／ｍＬのＰＢＳ中のミルクでチップ表面を３７℃で１時間（少なくとも）覆い、振盪することでチップの表面をブロッキングした。
【０２０７】
免疫測定法の特異性を試験するために、以下の対照実験を行った：１）ＮＣ１＝アルブミンの非存在及び２）ＮＣ２＝検出抗体の非存在。
【０２０８】
処理（settle）プロトコルに従ってマイクロ流体チップ内で行った直接免疫測定法の結果を図１７に示す。
【０２０９】
結果から、バイオアッセイにおいて機能化マイクロ流体表面と組み合わせて用いたＨＥＡＴＳＥＮＳが、顔料中のアルブミンを検出することが可能であることが実証される。本センシング方法論は、顔料のような複雑なマトリックスにおけるアルブミン定量化の可能性ももたらす。
【０２１０】
２．  マイクロ流体チップ表面上に共有結合で固定化した捕捉抗体を用いたコラーゲンの検出のためのサンドイッチ免疫測定法
コラーゲンの検出を、サンドイッチフォーマットの免疫測定法を用いることによっても実行した。
【０２１１】
捕捉抗体をマイクロ流体チップ表面上に既述の固定化プロトコルを用いて固定化し、２つのマイクロサンプル：水中の兎膠（rabbit skin glue）（１０％（ｗ／ｗ））からのマイクロサンプル（サンプル４）、及び検出抗体によって認識された、４０年以上前に塗布された膠＋ＣａＣＯ３の混合物により作製された塗料からの別のマイクロサンプル（実サンプル）を、マイクロ流体チップ内に流した。
【０２１２】
免疫測定法の特異性を試験するために、以下の対照実験を行った：１）ＮＣ１＝コラーゲンの非存在及び２）ＮＣ２＝検出抗体の非存在。
【０２１３】
ＨＥＡＴＳＥＮＳ技術とマイクロ流体チャンバ表面の抗体機能化との組合せにより、実サンプル中のコラーゲンを同定することができる。
【０２１４】
マイクロ流体チップにおいてＨＥＡＴＳＥＮＳ技術を用いたコラーゲン検出の結果を図１８に示す。
【０２１５】
結果から、サンドイッチ免疫測定法において機能化マイクロ流体表面と組み合わせて用いたＨＥＡＴＳＥＮＳが、顔料中のコラーゲンを検出することが可能であることが実証される。本センシング方法論は、顔料のような複雑なマトリックスにおけるコラーゲン定量化の可能性ももたらす。
【０２１６】
実施例１１．  サンドイッチ免疫測定法のプロトコル
以下のプロトコルが、マイクロ流体デバイス及びＨｅａｔｓｅｎｓ技術を用いたサンドイッチ免疫測定法に特に好適であることが見出された：
１．  チャネルを、洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）を１５０μｌｍｌの流量で５分間圧送することによって平衡化する。
２．  次いで、１ｍｌの分析物サンプルを１５０μｌ／ｍｌの流量でチャネルに注入する。
３．  サンプルの後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）で洗浄する。
４．  検出抗体をチャネルに注入する。流量は１５０μｌｍｌで２．５分間とする。
５．  検出抗体の後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）で洗浄する。
６．  ストレプトアビジン＠ＡｕＮＰｒをチャネルに注入する。流量は１５０μｌｍｌで２．５分間である。
７．  ストレプトアビジン＠ＡｕＮＰｒの後、３００μｌ／分の流量を用いて４分間、チャネルを洗浄バッファー（１×ＰＢＳ中の０．５％ＢＳＡ、０．１％ｔｗｅｅｎ）で洗浄し、乾燥させる。
【０２１７】
実施例１２．  他の材料表面への配向機能化方法論の拡張
マイクロ流体チップ上の金属キレートでの機能化による配向固定化方法論は、金属（鉄、コバルト、ニッケル、白金、パラジウム、亜鉛、銅及び金）、炭素（グラフェン、ダイヤモンド、ナノチューブ、ナノドット）、及びシリコン表面等の他のタイプの表面にまで拡張することができる。カルボン酸基を含有するジアゾニウムアリール誘導体のグラフト化を、金属キレート層による更なる段階的機能化のプラットホームであるこれらの表面上でも達成することができる。
【０２１８】
ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）及びガラス等の他の表面を、カルボン酸官能基又はエポキシ基を保有する有機官能性アルコキシシラン分子を用いた自己集合により表面を被覆することによって機能化することも可能である。このようにして、シラン処理及び金属キレート層（ＮＴＡ−Ｃｕ２＋）の更なる導入により、エポキシ基で機能化されたガラス表面において研究を行った。金属キレートにより機能化されたガラス表面を生体分子の配向及び非配向の共有結合での固定化の両方についてアッセイし、分析物を高感度な方法で検出するためにサンドイッチ免疫測定法を用いた。
【０２１９】
単純なガラス表面の修飾を４工程で行った。第１の工程については、エポキシシランを表面上にグラフト化するためにガラス支持体の活性化を行い、全ての有機残基を除去した。第２の工程では、シランのゲル形成を回避するために乾燥トルエンを用いてエポキシシランによる機能化を行った。表面上のエポキシ基により、ｐＨ１０．８でのＮＴＡのアミン基との効率的な反応が保証され、ＮＴＡのアミンがエポキシ基を高モル比で開環する。最後に、最終工程では、金属イオンをＮＴＡ部分にキレート化して分析物を配向させるために支持体を１００ｍＭのＣｕＳＯ４と共にインキュベートした。
【０２２０】
スライドガラスをＮＴＡ−Ｃｕ２＋で機能化した後、ＨＥＡＴＳＥＮＳ技術を用いたサルモネラの検出のための免疫測定法を（配向固定化を用いることにより）行った。比較のために、直接吸着及び共有結合フラットオン抗体固定化等の他の固定化方法もアッセイした。種々の抗体表面機能化の戦略の結果を図１９に示すが、生成したバックグラウンドシグナルと比較した、検出されたサルモネラに起因する温度の増分が各々の表面機能化について示される。
【０２２１】
この図からも、金属キレート化による捕捉抗体の配向固定化が、サルモネラの存在に起因する高い温度の増分に関してだけでなく、非特異的相互作用（バックグラウンド）に起因するゼロのシグナルを生じることによっても最良の結果をもたらすことが実証される。それにより、ＨＥＡＴＳＥＮＳ標識（金ｎａｎｏｐｒｉｓｍ）の非特異的吸着を回避した上で、好都合な配向の最適な抗体付着を得るために重大な工程としての正確な機能化戦略が示される。
【０２２２】
ガラス表面機能化は迅速、容易、単純かつ低コストであり、種々のタイプの生体分子に用いることができる。
【０２２３】
実施例１３．  標的化分析物の存在によって引き起こされる温度の増分の測定に使用される熱センサーの種々の配置の説明
分析物捕捉にマイクロ流体チップを用いたＨＥＡＴＳＥＮＳのセンシング設定の重要な利点は、全構成要素が多数の異なる方法で構築及び小型化するのに好適であることであり、これらの１つが図２０に示すものである。
【０２２４】
センサーシステムの考え得る２つの配置は下記の通りである：
１．  サンプルの後ろの熱センサー、及び、
２．  サンプルの前の熱センサー。
【０２２５】
この意味で、レーザー及びサーモパイル（熱センサー）を、サーモパイルをサンプルに向け、僅かに上に傾けて同じ平面に、又は異なる平面に配置することができる。この傾斜はサーモパイルの飽和による。レーザービームをサーモパイルに直接照射する場合、全ての温度値が最大に達し、測定は有効でない。サーモパイルは１０度×４０度のＦＯＶを有し、反応が行われるカメラは高さ３ｍｍ、幅５ｍｍである。これにより、カメラをカバーするのに最適な１７ｍｍというサンプルとサーモパイルとの間の距離がもたらされ、測定を確実にするには、これは２０ｍｍに設定される。
【０２２６】
レーザー及びサーモパイルを同じ平面に配置し、背後から測定する場合、サンプルは、検出される熱が広がらず、全情報を得ることができるようにより薄い幅でサーモパイルに隣接して設置される。
【０２２７】
図２０に示される配置（同じ平面）を用いて記録された結果は、サルモネラＣＦＵ数の増分に関連した温度の線形増分を表し、採取されたサンプルは検量線と一致する（図２１を参照されたい）。
【０２２８】
しかしながら、レーザー及びサーモパイルが異なる平面に配置されていてもよい。この場合も、サーモパイルはサンプルに向けられ、レーザー照射を回避するために垂直に（ほぼ４０度）傾けられる（図２２）。サンプルまでの距離は同様に２０ｍｍに設定され、サーモパイルは試料の熱増分を検出することができる。
【０２２９】
サンプルの前での測定では、より薄い幅がサーモパイル及びレーザーの側である必要がある。ここで、レーザーが集束して照射され、光がマイクロ流体チップのより薄い部分を通過し、サンプルに照射される。
【０２３０】
図２３において、得られた曲線は指数曲線であり、値は０．９９８６４に等しい自由度調整済み決定係数で曲線と一致した。測定の飽和が明らかに見てとれる。この特定の場合では、飽和は提示される配置とレーザー照射下のｎａｎｏｐｒｉｓｍの挙動との組合せにより、検出限界が以前の処理と比較して増大し、より少ないＣＦＵについてより高い温度増分が達成されたことから、非常に低濃度のｎａｎｏｐｒｉｓｍの存在下で達成された。
【０２３１】
提示した結果はＶｅｎｔｕｓレーザーシステムを用いて達成されたが、ＨＥＡＴＳＥＮＳ技術の特徴を考えると、レーザーダイオード及びＬＥＤ等の他のＮＩＲ光源も使用することができる。
【０２３２】
実施例１４．  ポリスチレン表面をＵＶ照射（１８５ｎｍ）によって機能化し、カルボン酸基の生成をもたらす手順に対する本発明による抗体固定化方法論  センシング用途については、センシングが行われる支持体上の認識生体分子の固定化は、センシングプラットホームに高い感度をもたらすために可能な限り安定し、配向され、高収率である必要がある。
【０２３３】
ＨＥＡＴＳＥＮＳセンシングプラットホームについては、本明細書に報告されるように、センシングプラットホームの実施に使用される特異的な捕捉抗体の配向固定化について化学的性質を変更した。抗体重鎖（Ｆｃ）中に存在するヒスチジンに富む金属結合部位に対するＮＴＡ−Ｍ２＋の金属キレート化による表面上の抗体の配向固定化について２つの主要因が見られる：
１）ヒスチジン残基の配位結合に用いられる金属。
２）抗体の配向固定化の成功のための金属キレート表面密度。
【０２３４】
ＨＥＡＴＳＥＮＳセンシングプラットホームの第１の主要因は、用いられるＮＴＡ−金属キレートである。この意味で、ＮＴＡ−金属キレート：ＮＴＡ−Ｃｕ２＋及びＮＴＡ−Ｃｏ２＋で機能化された金ナノ粒子上の抗体の固定化を、抗ＨＲＰ及び抗ＣＤ３をそれぞれ用いてアッセイし、ＨＥＡＴＳＥＮＳセンシングプラットホームの高感度を達成するために独自の方法論が使用されることを実証した。
【０２３５】
固定化された抗体の量は、固定化プロセスにおける各工程の前後で上清中に残存するタンパク質を測定することによって算出した。サンプルを取り出し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分析した。ゲル（１２％）を使用し、銀で染色した。
【０２３６】
ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルにおいて見られるように（図２９）、抗体溶液中でのインキュベーション後のＮＴＡ−Ｃｏ２＋で機能化された金ナノ粒子は、両方のゲルのそれぞれについてインプット及び固定化後の上清（レーン１、２）の両方で同様のシグナルを生じ、どちらの抗体についても抗体分子の付着がないことが示された。対照的に、両方のゲルのレーン７においては、固定化後の抗体のシグナルが見られ、ゲル１ではバンドが生じず、ゲル２ではＮＴＡ−Ｃｕ２＋で機能化された金ナノ粒子への抗体分子の完全付着の結果としてバンドが生じる。
【０２３７】
ＮＴＡ−Ｃｏ２＋及びＮＴＡ−Ｃｕ２＋で機能化された金ナノ粒子上の抗体固定化を、ＨＲＰとのインキュベーション及びその後のその酵素活性の測定によっても評価した。図３０に見られるように、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋キレートで修飾された金ナノ粒子のみが抗ＨＲＰとのインキュベーション後に酵素活性を示し、抗体固定化が確認された。対照的に、ＮＴＡ−Ｃｏ２＋で機能化されたナノ粒子については、ごく僅かな活性しか観察されなかった。
【０２３８】
他の二価金属と比較した銅に対する抗体の高い親和性は、銅イオン及びニッケルイオンで機能化された平らな表面の市販のストリップ（２Ｄシステム）を用いることでも実証する。この意味で、ＨＲＰに対する抗体分子をこれらの機能化金属キレート表面上に固定化し、捕捉されたＨＲＰの存在を比色免疫測定法によって定量化した。図３１Ａに示されるように、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋機能化表面は、ＨＲＰの活性に関連してより強い黄色を示した。これにより、ＮＴＡ−Ｎｉ２＋機能化表面よりも多量の捕捉されたＨＲＰ酵素、ひいては固定化された抗体の存在が示される。このことは、４５０ｎｍでのＨＲＰの基質に対する吸光度を測定することによって図３１Ｂに更に明らかに示される。ＮＴＡ−Ｃｕ２＋機能化表面は、ＮＴＡ−Ｎｉ２＋よりも最大５倍高い吸光度を示した。
【０２３９】
これらの結果から、Ｎｉと比較した場合に銅キレートで活性化された表面上に配向固定化された抗体のより高い結合能が明らかとなる。同じ実験を、ＨＥＡＴＳＥＮＳセンシング検出について非対称金ナノ粒子を標識として用いて行った（図３２を参照されたい）。
【０２４０】
銅キレート化表面のより高い抗体捕捉効率もＨＥＡＴＳＥＮＳ検出方法論を用いることで確立される。この意味で、温度の増分は１０μｇ／ｍＬの抗ＨＲＰをＣｕイオン上に固定化した場合にＮｉイオンと比較してほぼ２倍であった。
【０２４１】
これら全ての結果から、ＮＴＡ−Ｍ２＋の金属キレート化による表面上の抗体の配向固定化に用いられる金属の重要性が実証される。
【０２４２】
抗体重鎖（Ｆｃ）中に存在するヒスチジンに富む金属結合部位へのＮＴＡ−Ｍ２＋の金属キレート化による表面上の抗体の配向固定化について強い影響を与える別の主要因は、抗体固定化の収率に影響を及ぼす金属キレート表面密度である。この事実を実証するために、種々の被覆率のＮＴＡ−Ｃｕ２＋を用いた抗体−ＨＲＰ固定化研究を、金表面修飾ナノ粒子を３Ｄシステムとして用いて行った。これらは、触媒としてのＥＤＣ／ｓｕｌｆｏ−ＮＨＳのその組込みの濃度を変化させることによって得た。
【０２４３】
表１に、低い及び高い表面被覆率のＮＴＡ−Ｃｕ２＋及びＮＴＡ−Ｃｏ２＋でそれぞれ機能化された金ナノ粒子上に固定化された抗ＨＲＰの酵素ＨＲＰ活性を示す。
【０２４４】
【表１】
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【０２４５】
抗体−ＨＲＰとのインキュベーション後の高表面被覆率のＮＴＡ−Ｃｕ２＋で機能化された金ナノ粒子のみが、抗ＨＲＰ固定化に関連した実質的に完全な酵素活性をもたらすことが観察される。逆に、低濃度のＮＴＡ−Ｃｕ２＋又はＮＴＡ−Ｃｏ２＋で修飾された金ナノ粒子について活性は観察されなかった。
【０２４６】
これにより、抗体固定化が表面上の金属キレートの密度によって大きく影響され、これが制御すべき重要な要因であることが実証される。
【０２４７】
検出を行う表面上への捕捉抗体の固定化に対する活性基及び金属の密度の影響も２Ｄ表面上で評価した。この意味で、２つの異なるプロトコルを比較した。特に、Chiu Wai Kwok et alの論文「モルフォゲンソニックヘッジホッグ（Ｓｈｈ）の調査のためのｉｎ  ｖｉｔｒｏ細胞培養系（In vitro cell culture systems for the investigation of the morphogen Sonic hedgehog (Shh)）」（２０１１年１１月１６日）に記載されるプロトコルを用い、マイクロチップ表面をＵＶ照射（１８５ｎｍ）によって機能化し、カルボン酸基の生成をもたらした。次いで、形成されたカルボン酸基とのＮｉ２＋等の二価金属の配位によってキレートを形成した。キレート化は４０ｍＭ  ＮｉＳＯ２を用いて行い、これをＣＯＯＨポリマー表面上にアミノ末端基を介して予め導入したＮ２−Ｎ２−ビス−（カルボキシメチル）−Ｌ−リシンと反応させた。次いで、金属修飾表面を用いてポリ（６）ヒスチジン（hystidine）タグ付きタンパク質、この特定の場合ではＳｈｈＮタンパク質を固定化した。
【０２４８】
かかるプロトコルをＨＥＡＴＳＥＮＳ表面機能化と比較したが、上記とは対照的にカルボン酸基の導入は、アリールジアゾニウム塩化学及びＵＶ光（３６５ｎｍ、８Ｗ）を用いて有機層をグラフト化することによって達成された。次いで、カルボン酸表面を、１０ｍＭ及び２０ｍＭ  ＥＤＣ  ｓｕｌｐｈｏ−ＮＨＳのそれぞれによって触媒されるアミド化により２０ｍＭ  Ｎ２−Ｎ２−ビス−（カルボキシメチル）−Ｌ−リシン−２５ｍＭ  ＣｕＳＯ４で機能化した。２工程の化学修飾により、高密度の活性基を有する均一な層の作製が保証される。
【０２４９】
両方の表面についての界面変化の評価をフーリエ変換赤外（ＦＴＩＲ）測定によって特性評価した。これらはＵｎｉｖｅｒｓａｌ  ＡＴＲ  Ｓａｍｐｌｉｎｇ  Ａｃｃｅｓｓｏｒｙ（Perkin Elmer）を備えるＳｐｅｃｔｒｕｍ  Ｏｎｅ  ＦＴ−ＩＲ分光計で行った。
【０２５０】
ＮＩＴ手順によってＮＴＡ−Ｃｕ２＋で機能化された修飾サンプルのＦＴＩＲ研究により、非処理サンプル（図３３）と比較した、ＮＴＡのアミドの振動モードと関連する特徴的なバンドの出現（図３３）及びカルボン酸基の振動モードと関連する特徴的なバンドの出現が明らかとなった。３４２０ｃｍ−１及び３７８０ｃｍ−１での吸収バンドはアミド基のＮ−Ｈストレッチに相当し、１６０９ｃｍ−１及び１７４７ｃｍ−１でのバンドはカルボン酸のストレッチＣ＝Ｏ基に関連付けられた。対照的に、ＮＴＡ−Ｎｉ２＋で修飾された表面（図３３）はアミド基の吸収バンドを示さなかったが、アミン基と関連するＮＨ吸収及びカルボン酸基のごく小さなバンドを示した。さらに、表面チップ上の金属キレートの密度を、センシングの改善が得られるＮＴＡ−Ｃｕ２＋のｍｍ２を知るために定量化した。ＥＤＴＡを用いてキレート化表面から除去されるＣｕ２＋の濃度を決定することによって定量化を行った。
【０２５１】
ＣｕＳＯ４はＮＴＡとキレートを形成して抗体を配向させるが、ＣＯＯＨ：Ｃｕ２＋比は３：１であるため、１ｍｏｌのＣｕ２＋は３モルのＮＴＡのＣＯＯＨに対応する。検量線の５点のＵＶ−Ｖｉｓスペクトルを図３４に示すが、対応するＣｕＳＯ４のピークを見るために吸光度を５００ｎｍ〜９００ｎｍで測定する。マイクロ流体チップ表面から除去されるＣｕ２＋−ＥＤＴＡのスペクトルを図３５Ａに示す。４μＭ  Ｃｕ２＋の濃度は、吸光度値を図３４Ｂに示す検量線に外挿することによって求められる。Ｃｕ２＋がＮＴＡの３つのＣＯＯＨ基と配位することを考えると、マイクロ流体チップ表面の９．４２ｍｍ２の総表面積では４μＭのＣｕＳＯ４が１２μＭのＮＴＡのＣＯＯＨと配位する。したがって、平らな表面上で最適な抗体の密度を得るためには、ｍｍ２に対するキレート基の最低濃度が１．３μＭのＣＯＯＨ及び０．４３μＭのＣｕ２＋であることが見出された。
【０２５２】
同様の実験を、Chiu Wai Kwok et alにおいて報告された方法論を用いることでＮＴＡ−Ｎｉ２＋で修飾された表面を用いて行い、ごく僅かな吸光度値、ひいては検出不可能なＮｉ２＋量が得られた。これらの結果から、Chiu Wai Kwok et alの技術を用いた場合にＮＩＴ技術よりも低いキレート機能化の収率が更に確認される。
【０２５３】
表面機能化のプロトコル（ＮＩＴ及びChiu Wai Kwok et al）に応じた抗体固定化及び修飾表面へのその結合能の差異も分析した。ＨＲＰに対する抗体を、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋及びＮＴＡ−Ｎｉ２＋キレート機能化表面上に固定化した。ＨＲＰを捕捉する固定化抗体の結合能は、比色方法及びＨｅａｔｓｅｎｓ検出によって決定される、表面上のＨＲＰの活性を測定することによって実証される。
【０２５４】
図３６にＨＲＰとのインキュベーション後のＮＴＡ−Ｃｕ２＋（ＮＩＴ方法論）及びＮＴＡ−Ｎｉ２＋キレート（Chiu Wai Kwok et alの方法論）機能化表面の酵素活性の結果を示す。両方の表面上での活性の結果から抗体固定化が確認されるが、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋キレート修飾表面上で決定されるＮＴＡ−Ｎｉ２＋表面よりも高い吸光度の強度により、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋の高い表面被覆率の結果としてより高い抗体の固定化の収率が実証される。したがって、ＮＩＴ方法論による表面修飾によって行った場合の抗体の固定化は、Chiu Wai Kwok et alにおいて報告されるものよりもはるかに良好な結果をもたらす。
【０２５５】
この結果を、ＨＥＡＴＳＥＮＳアッセイを行うことによって更に確認する。この意味で、２つの金属キレート化表面上に配向固定化された抗体によって捕捉されるビオチン化ＨＲＰの存在に起因する温度の増分を図３７に示す。測定される温度の増分は、ＮＴＡ−Ｎｉ２＋表面で測定される温度の増分と比較してＮＴＡ−Ｃｕ２＋キレート修飾表面上でより高くなり、この場合もＮＩＴ方法論を用いることによる抗体固定化のより高い収率が示される。
【０２５６】
Chiu Wai Kwok et alと比較したＮＩＴ方法論のプロトコル及び強度の差異を実証する他のアプローチは、高感度のＨＥＡＴＳＥＮＳセンシングプラットホームを用いた病原体サルモネラの検出であった。抗体の固定化を、ＮＴＡ−金属キレート：ＮＴＡ−Ｃｕ２＋（ＮＩＴにおいて開発されたプロトコルに従う）及びＮＴＡ−Ｎｉ２＋（文献Chiu Wai Kwok et alにおいて報告されたプロトコルに従う）で機能化された両方の表面上でアッセイした。総量１０００ＣＦＵのサルモネラを配向固定化した捕捉抗体と相互作用させた。表面上では、ビオチン化検出抗体によりストレプトアビジン−ＨＲＰ（比色アッセイ）又はストレプトアビジン−ｎａｎｏｐｒｉｓｍ（ＨＥＡＴＳＥＮＳアッセイ）との相互作用が可能な病原体が検出された。図３８に、Chiu Wai Kwok et alにおいて報告されたプロトコルを用いて機能化された表面と比較して、ＮＩＴによって開発されたプロトコルを用いて機能化された表面上の分析物の存在に対するより高い強度のＨＲＰ酵素の吸光度が示される。明らかなように、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋で機能化された表面上の１０００ＣＦＵのサルモネラの検出の吸光度の強度は、ＮＴＡ−Ｎｉ２＋機能化表面上での同じ量の分析物の検出に対して測定された吸光度と比較して３倍超高い。
【０２５７】
様々に活性化された表面上のサルモネラの検出に対するＨＥＡＴＳＥＮＳアッセイの結果を図３９に示す。ＨＥＡＴＳＥＮＳアッセイの結果から、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋キレート表面上で同じ量のサルモネラについてＮＴＡ−Ｎｉ２＋よりも高い温度の増分が示される。さらに、陽性アッセイと比較してＮＴＡ−Ｎｉ２＋上で行ったアッセイにおいてより高い陰性対照のシグナルから、Chiu Wai Kwok et alによって報告されたプロトコルを用いた表面機能化の有効性の欠如が実証された。表面上の活性基の不均一な被覆率は、表面との分析物及び検出抗体の非特異的相互作用を引き起こし得る。そのうえ、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋表面上で行ったアッセイにおける陰性対照のシグナルは陽性対照より３倍低く、検出が非常に効果的となる。さらに、それらのシグナルはＮＴＡ−Ｎｉ２＋表面上でのアッセイの陰性対照よりも低く、ＮＴＡ−Ｃｕ２＋表面のより良好な化学機能化が示される。種々の表面機能化プロトコルが表面上の活性基のより高い被覆率及び均一性をもたらし、抗体固定化の能力の改善、及びより高い結合能、及びＨＥＡＴＳＥＮＳアッセイのより高い感度がもたらされる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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【図３３】
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【図３４】
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【図３５】
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【図３６】
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【図３７】
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【図３８】
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【図３９】
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【国際調査報告】
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