(57)【要約】  本発明は、目的分子の生産のために遺伝的に改変された微生物を培養することを含んでなる、発酵プロセスにおける炭素の供給源の変換による目的分子の新規な生産方法に関し、ここで、微生物はＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子を含んでなり、かつ、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節するタンパク質の発現は下方調節されている。本発明はまた、本発明の方法において使用される遺伝的に改変された微生物に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記の工程：
炭素の供給源として糖質を含んでなる適当な培養培地で、目的分子の生産のために遺伝的に改変された微生物を培養すること、および
前記培養培地から目的分子を回収すること
を含んでなる、発酵プロセスにおける炭素の供給源の変換による目的分子の生産方法であって、
前記遺伝的に改変された微生物が、ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子を含んでなり、かつ、
前記遺伝的に改変された微生物において、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質の発現が低減されている、前記方法。
【請求項２】
ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子が、遺伝的に改変された微生物に対して異種である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子が、遺伝的に改変された微生物に対して天然である、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質をコードする天然遺伝子が、前記の遺伝的に改変された微生物において減弱または欠失されている、請求項１〜３の一項に記載の方法。
【請求項５】
微生物が、腸内細菌科、バチルス科、クロストリジウム科、ストレプトミセス科、コリネバクテリウム科、サッカロミセス科および酵母からなる群から選択される、請求項１〜４の一項に記載の方法。
【請求項６】
微生物が、大腸菌、肺炎桿菌、サーモアナエロバクテリウム・サーモサッカロリティクム、クロストリジウム・スフェノイデスまたはサッカロミセス・セレビシエからなる群から選択される、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
微生物が、大腸菌である、請求項１〜６の一項に記載の方法。
【請求項８】
二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼＤＵＦ２９９タンパク質をコードする遺伝子ｐｐｓＲが、減弱または欠失されている、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
微生物が、目的分子の生産の増大のために遺伝的に改変されている、請求項１〜８の一項に記載の方法。
【請求項１０】
目的分子が、アルコール、糖質、カルボン酸、生物燃料、溶媒およびアミノ酸から選択される、請求項１〜９の一項に記載の方法。
【請求項１１】
目的分子が、エタノール、エチレン、エチレングリコール、グリコール酸、プロピレン、アクリル酸、イソプロパノール、乳酸、１，３−プロパンジオール、１，２−プロパンジオール、プレノール、イソブテン、ブタジエン、ブタンジオール、ブタノール、イソブタノール、メチルエチルケトン、コハク酸、グルタミン酸、イソプレン、アジピン酸、ムコン酸、リシン、ドデカン二酸、ファルネセン、および２，４−ジヒドロキシ酪酸から選択される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
炭素の供給源としての糖質からの目的分子の生産を増大させるための遺伝的に改変された微生物であって、
前記遺伝的に改変された微生物が、ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子を含んでなり、かつ、
前記遺伝的に改変された微生物において、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質の発現が低減されている、遺伝的に改変された微生物。
【請求項１３】
請求項２〜８のいずれか一項に定義されるように改変されている、請求項１２に記載の遺伝的に改変された微生物。
【請求項１４】
二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼＤＵＦ２２９をコードする遺伝子ｐｐｓＲが、減弱または欠失されている、請求項１２または１３に記載の遺伝的に改変された微生物。
【請求項１５】
目的分子が、エタノール、エチレン、エチレングリコール、グリコール酸、プロピレン、アクリル酸、イソプロパノール、乳酸、１，３−プロパンジオール、１，２−プロパンジオール、プレノール、イソブテン、ブタジエン、ブタンジオール、ブタノール、イソブタノール、メチルエチルケトン、コハク酸、グルタミン酸、イソプレン、アジピン酸、ムコン酸、リシン、ドデカン二酸、ファルネセン、および２，４−ジヒドロキシ酪酸から選択される、請求項１２〜１４の一項に記載の遺伝的に改変された微生物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、目的分子の生産のために遺伝的に改変された微生物を培養することを含んでなる、発酵プロセスにおける炭素の供給源の変換による目的分子の新規な生産方法に関し、ここで、前記微生物はＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子を含んでなり、かつ、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節するタンパク質の発現は下方調節されている。本発明はまた、本発明の方法において使用される遺伝的に改変された微生物に関する。
【背景技術】
【０００２】
細菌では、外部糖質（糖類）は、細胞内に輸送され、ホスホエノールピルビン酸：糖ホスホトランスフェラーゼ系（ＰＴＳ）によってリン酸化される。ホスホエノールピルビン酸（ＰＥＰ）は、中枢代謝の重要な分子である。多くの微生物では、増殖を支える糖質は取り込まれ、それと同時に糖質１分子につき１分子のＰＥＰを消費するＰＴＳによってリン酸化される（Ｐｏｓｔｍａ  ＆  Ｒｏｓｅｍａｎ  １９７６）。このＰＴＳは、２つの細胞質タンパク質、酵素Ｉ（ＥＩ）とＨＰｒ、および取り込まれる糖質に特異的な様々な数の膜タンパク質複合体（酵素ＩＩ、ＥＩＩ）から構成される。これらのＥＩ、ＨＰｒおよびＥＩＩタンパク質は総て一緒に、ＰＥＰと糖質の間のホスホリル転移鎖として働き、それが細胞膜を通過する際にリン酸化される：
ＥＩ＋ＰＥＰ→ＥＩ−Ｐ＋ピルビン酸
ＥＩ−Ｐ＋Ｈｐｒ→Ｈｐｒ−Ｐ＋ＥＩ
Ｈｐｒ−Ｐ＋ＥＩＩ→ＥＩＩ−Ｐ＋Ｈｐｒ
ＥＩＩ−Ｐ＋糖質（外部）→糖質−Ｐ（内部）＋ＥＩＩ
【０００３】
ＰＴＳに対するリン酸供与体としてのその働きに加え、ＰＥＰはまた、ピルビン酸キナーゼ酵素を介してピルビン酸を生成する解糖の最終工程にも関与する（Ｋｏｒｎｂｅｒｇ  ＆  Ｍａｌｃｏｖａｔｉ  １９７３）：
ＰＥＰ＋ＡＤＰ→ピルビン酸＋ＡＴＰ
【０００４】
さらに、ＰＥＰは、ＰＥＰカルボキシラーゼ酵素によって触媒される、オキサロ酢酸を生成する補充反応を介して解糖とクエン酸回路をつなぐ（Ｃａｎｏｖａｓ  ＆  Ｋｏｒｎｂｅｒｇ  １９６５）：
ＰＥＰ＋ＨＣＯ３−→オキサロ酢酸＋Ｐｉ
【０００５】
ＰＥＰはまた、コリスム酸経路を介し、芳香族アミノ酸の前駆体であるキノンおよびＣ１代謝産物でもある（Ｐｉｔｔａｒｄ  ＆  Ｗａｌｌａｃｅ  １９６６）：
２ＰＥＰ＋エリトロース−４−リン酸＋ＡＴＰ＋ＮＡＤ（Ｐ）＋→コリスム酸＋４Ｐｉ＋ＡＤＰ＋ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ＋Ｈ＋
【０００６】
いくつかの研究グループが、目的生成物の生産および収率を高めるためにＰＥＰのアベイラビリティーを高める戦略を開発している：ＰＴＳおよび／またはピルビン酸キナーゼ酵素の不活化（Ｇｏｓｓｅｔ  ｅｔ  ａｌ．  １９９６、Ｍｅｚａ  ｅｔ  ａｌ．  ２０１２）、グローバルレギュレーターＣｓｒＡの不活化（Ｔａｔａｒｋｏ  ＆  Ｒｏｍｅｏ  ２００１）、糖新生酵素ＰＥＰカルボキシキナーゼ（Ｋｉｍ  ｅｔ  ａｌ．  ２００４）またはＰＥＰシンターゼ（Ｐａｔｎａｉｋ  ｅｔ  ａｌ．  １９９２）の過剰発現。
【０００７】
酵素ＰＥＰシンターゼ（ＰＰＳ、ＥＣ  ２．７．９．２）は、ＡＴＰのＡＭＰへの加水分解を伴うピルビン酸のＰＥＰへのリン酸化を触媒する（Ｃｏｏｐｅｒ  ＆  Ｋｏｒｎｂｅｒｇ，１９６５）：
ピルビン酸＋ＡＴＰ＋Ｈ２Ｏ→ＰＥＰ＋ＡＭＰ＋Ｐｉ
【０００８】
多くの微生物では、ＰＰＳは、ＤＵＦ２９９ファミリーに属するＰＰＳ調節タンパク質（ＰＲＰＰ）により媒介されるリン酸化／脱リン酸化機構により調節される（Ｂｕｒｎｅｌｌ，２０１０）。
【０００９】
Ｂｕｒｎｅｌｌの研究の狙いは、タンパク質ＤＵＦ２９９および前記タンパク質をコードする遺伝子の構造および機能を同定することである。しかしながら、この文献には、目的分子の生産を増大させるなどの特定の効果を得るためにこのタンパク質の発現を調節できるということは示唆されていない。
【発明の概要】
【００１０】
本出願人は、驚くことに、ＰＰＳ発現を調節するタンパク質の発現の不活化が、微生物での発酵プロセスによって通常生産される目的分子の生産の増大を可能とすることを見出した。
【００１１】
本発明者らの発見は、特許出願ＷＯ２００４０３３４７１で示唆されているものなどの代謝産物の生産を増大させるために知られている他の従来技術の方法のいくつかの欠点を克服することを可能とすることから有利である。
【００１２】
実際に、目的分子の生産を増大させるためには、多くの場合、いくつかの遺伝的改変を行うことによって生産微生物の炭素源取り込みを改善することが必要である。しかしながら、炭素源取り込み、より詳しくは、糖質輸送に関与する遺伝子は、複雑な調節系に結びついている（Ｇａｂｏｒ  ｅｔ  ａｌ，２０１１；  Ｋｏｔｒｂａ  ｅｔ  ａｌ，２００１）。よって、このような遺伝的改変は予測できない結果をもたらし、得られる株は不安定である可能性がある。さらに、これらの方法は高コストである。
【００１３】
従って、安定な微生物株を用いて低コストで目的分子の生産を可能とする新たな方法を提供する必要がある。
【００１４】
本発明によれば、ＰＰＳ調節タンパク質（ＰＲＰＰ）のみを不活化することによって目的生成物の生産を高めることが可能である。
【００１５】
よって、第１の側面に関し、本発明は、下記の工程：
炭素の供給源として糖質を含んでなる適当な培養培地で、目的分子の生産のために遺伝的に改変された微生物を培養すること、および
前記培養培地から目的分子を回収すること
を含んでなる、発酵プロセスにおける炭素の供給源の変換による目的分子の生産方法であって、
前記遺伝的に改変された微生物がＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子を含んでなり、かつ、
前記遺伝的に改変された微生物において、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質の発現が低減されている、前記方法に関する。
【００１６】
本発明の方法において使用される微生物は、ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子とＰＰＳの発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質の発現の低減とを有するなどの特定の特徴を有する。ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現が糖質取り込みのカスケード全体の機能性に影響を及ぼさずに影響を受けている遺伝的に改変された微生物を取得できるということは明らかではなかったので、この微生物は特異で驚くべきものであると考えることができる。
【００１７】
よって、第２の側面に関して、本発明は、炭素の供給源としての糖質からの目的分子の生産を高めるために遺伝的に改変された微生物に関し、前記の遺伝的に改変された微生物は、ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子とＰＰＳの発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質の発現の低減とを含んでなる。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
発明の詳細な説明
本発明を詳細に説明する前に、本発明は特に例示される方法に限定されず、当然のことながら可変であることが理解されるべきである。本明細書で使用される技術用語は、単に本発明の特定の実施形態を説明することを目的とし、限定を意図するものではなく、添付の特許請求の範囲によってのみ限定されることも理解されるべきである。
【００１９】
本明細書に引用される前記または下記の総ての刊行物、特許および特許出願は、それらの全内容が引用することにより本明細書の一部とされる。しかしながら、本明細書に記載される刊行物は、これらの刊行物に報告される、また、本発明に関連して使用可能なプロトコール、試薬およびベクターを説明および開示する目的で引用される。
【００２０】
さらに、本発明の実施は、特に断りのない限り、当技術分野の技術の範囲内の従来の微生物学的および分子生物学的技術を使用する。このような技術は当業者に周知であり、文献で詳細に説明されている。
【００２１】
本明細書および添付の特許請求の範囲で使用される場合、単数形「１つの(a)」、「１つの(an)」、および「その(the)]は、文脈がそうではないことを明示しない限り、複数の指示対象を含むことに留意されたい。よって、例えば、「１つの微生物(a microorganism)」という場合には複数のそのような微生物を含み、「１つの酵素(an enzyme)」という場合には、１以上の酵素を指すなどである。そうではないことが定義されない限り、本明細書で使用される総ての技術用語および科学用語は、本発明が属する技術分野の熟練者が一般に理解しているものと同じ意味を有する。本明細書に記載されるものと類似または同一の材料および方法も本明細書を実施または試験するために使用できるが、以下、好ましい材料および方法を記載する。
【００２２】
本明細書で使用する場合、以下の用語が特許請求の範囲および明細書の説明のために使用できる。
【００２３】
下記の特許請求の範囲および本発明の前記において、文脈がそうではないことを必要としない限り、言葉または必要な含意を表現するために、「を含んでなる(comprise)」または「を含んでなる(comprises)」もしくは「を含んでなる(comprising)」などの変形は、包含の意味で、すなわち、記載の特徴の存在を明示するが、本発明の種々の実施形態におけるさらなる特徴の存在または追加を排除しないために使用される。
【００２４】
本発明の記載において、遺伝子およびタンパク質は、大腸菌において相当する遺伝子の名称を用いて特定される。しかしながら、そうではないことが明示されない限り、これらの名称の使用は、本発明によればより一般的な意味を有し、他の生物体、より詳しくは、微生物の相当する遺伝子およびタンパク質を総て包含する。
【００２５】
ＰＦＡＭ（アラインメントおよび隠れマルコフモデルのタンパク質ファミリーデータベース(protein families database of alignments and hidden Markov models)）は、タンパク質配列アラインメントの大きなコレクションを表す。各ＰＦＡＭは、複数のアラインメントの可視化、タンパク質ドメインの視認、生物間の分布の評価、他のデータベースへのアクセスの獲得、および既知のタンパク質構造の可視化を可能とする。
【００２６】
ＣＯＧ（タンパク質のオーソロガスグループのクラスター(clusters of orthologous groups of proteins)）は、３８の主要な系統発生的系統を表す６６の完全に配列が決定されたゲノム由来のタンパク質を比較することによって得られる。各ＣＯＧは少なくとも３系統から得られ、これは前者の保存されたドメインの同定を可能とする。
【００２７】
相同配列およびそれらの相同性パーセントを特定する手段は当業者の周知であり、特に、ＢＬＡＳＴプログラム（Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ，１９９０）を含む。得られた配列は、次に、例えば、プログラムＣＬＵＳＴＡＬＷまたはＭＵＬＴＡＬＩＮを用いて活用（例えばアライン）することができる。
【００２８】
既知の遺伝子に関してＧｅｎＢａｎｋに示されている参照を用い、当業者は、他の生物、細菌株、酵母、真菌、哺乳動物、植物などにおける等価な遺伝子を決定することができる。この慣例の作業は、有利には、他の微生物に由来する遺伝子と配列アラインメントを行い、別の生物の相当遺伝子をクローニングするための縮重プローブを設計することによって決定することができるコンセンサス配列を用いて行われる。これらの分子生物学の常法は当業者に周知であり、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ  ｅｔ  ａｌ．（２００１）で特許請求されている。
【００２９】
上記のように、本発明の方法は、発酵プロセス中の炭素の供給源の変換により、目的分子の生産を可能とし、
炭素の供給源として糖質を含んでなる適当な培養培地で、目的分子の生産のために遺伝的に改変された微生物を培養すること、および
前記培養培地から目的分子を回収すること
を含み、
前記遺伝的に改変された微生物は、ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子とホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質の発現の低減とを含んでなる。
【００３０】
用語「発酵プロセス」、「発酵」、または「培養」は、本明細書では互換的に微生物の増殖を表して使用される。発酵は一般に、発酵槽で、少なくとも１つの単純炭素源と要すれば代謝産物の生産に必要な補助基質を含有する、使用する微生物に適合された既知の定義された組成の無機培養培地を用いて行われる。特に、大腸菌のための無機培養培地は、Ｍ９培地（Ａｎｄｅｒｓｏｎ，１９４６）、Ｍ６３培地（Ｍｉｌｌｅｒ，１９９２）またはＳｃｈａｅｆｅｒ  ｅｔ  ａｌ．（１９９９）によって定義されるものなどの培地と同一または類似の組成のものであり得る。
【００３１】
本発明の文脈で、「発酵変換」は、微生物が適当な発酵条件下で培養される場合に炭素源の目的分子への変換が起こることを意味する。
【００３２】
「培養培地」は、本明細書では、炭素源または炭素基質；窒素源、例えば、ペプトン、酵母抽出物、肉抽出物、麦芽抽出物、尿素、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウムおよびリン酸アンモニウム；リン源、例えば、リン酸一カリウムまたはリン酸二カリウム；微量元素（例えば、金属塩）、例えば、マグネシウム塩、コバルト塩および／またはマンガン塩；ならびにアミノ酸およびビタミンなどの増殖因子などの微生物の維持および／または増殖に必須または有益な栄養素を含んでなる培地（例えば、無菌液体培地）を意味する。
【００３３】
本発明による用語「炭素の供給源」、「炭素源」または「炭素基質」は、微生物が代謝可能であり、少なくとも１個の炭素原子を含有するいずれの分子も指す。本発明による好ましい炭素源の例には、限定されるものではないが、糖質を含む。
【００３４】
本発明の好ましい実施形態では、炭素源は再生可能な供給原料から誘導される。再生可能な供給原料は、短い遅延時間内で、目的生成物へのその変換を可能とするに十分な量で再生され得る特定の工業プロセスに必要とされる原料として定義される。前処理されたまたはされていない植物バイオマスは、特に好ましい再生可能な炭素源である。
【００３５】
用語「糖質」は、本明細書では、微生物により代謝可能であり、少なくとも１個の炭素原子と２原子の水素と１原子の酸素を含有するいずれの炭素源も指す。本発明の糖質は、好ましくは、グルコース、フルクトース、スクロース、マンノース、キトビオース、セロビオース、トレハロース、ガラクチトール、マンニトール、ソルビトール、ガラクトサミン、Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン、Ｎ−アセチルグルコサミン、Ｎ−アセチルムラミン酸、ラクトース、ガラクトース、ソルボース、マルトース、Ｎ，Ｎ’−ジアセチルキトビオース、アスコルビン酸塩、β−グルコシドから選択される。本発明のより好ましい実施形態では、炭素の供給源は、グルコース、フルクトース、マンノース、セロビオース、スクロース、およびそれらの任意の組合せから選択される。
【００３６】
当業者は、本発明による方法において微生物を増殖させるために必要な培養条件を容易に決定することができる。特に、細菌は２０℃〜５５℃、優先的には２５℃〜４０℃に含まれる温度で発酵させ得ることが周知である。大腸菌は、より詳しくは、約３０℃〜約３７℃に含まれる温度で培養することができる。
【００３７】
この培養法は、回分法、流加法または連続法のいずれかで、好気条件、微好気条件または嫌気条件下で行うことができる。
【００３８】
本発明の方法の特定の実施形態によれば、ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子は、遺伝的に改変された微生物に対して異種（組換え微生物）または天然（野生型微生物）である。
【００３９】
「遺伝子」とは、本明細書では、特定のタンパク質（すなわち、ポリペプチド）、または特定の場合では、機能的もしくは構造的ＲＮＡ分子をコードする核酸分子またはポリヌクレオチドを意味する。本発明の文脈で、本明細書に言及される遺伝子は、酵素、排出系または取り込み輸送体などのタンパク質をコードする。本発明による遺伝子は、内因性遺伝子または外因性遺伝子のいずれかである。
【００４０】
用語「組換え微生物」または「遺伝的に改変された微生物」は、本明細書で使用する場合、天然には見られない、天然に見られる相応の微生物とは遺伝的に異なる細菌、酵母、または真菌を指す。本発明によれば、用語「改変」は、微生物に導入または誘導されたいずれの遺伝的変化も表す。微生物は、新たな遺伝的要素の導入、内因性もしくは外因性遺伝子の発現の増強もしくは減弱、または内因性遺伝的要素の欠失のいずれかを介して改変されてよい。さらに、微生物は、定方向突然変異誘発と特定の選択圧下での進化を組み合わせることにより新規な代謝経路の発生および進化を強いることによって改変されてもよい（例えば、ＷＯ２００４０７６６５９参照）。
【００４１】
本発明の文脈において、用語「外因性遺伝子」（あるいはまた「異種遺伝子」もしくは「導入遺伝子」）は、その微生物において天然には存在しない遺伝子を指す。それは人為的であってもよいし、またはそれは別の微生物に起源してもよい。
【００４２】
さらに、本発明の文脈において、目的タンパク質をコードする外因性遺伝子が特定の微生物で発現されれば、この遺伝子の合成型は好ましくは、好ましくないコドンまたはあまり好ましくないコドンを同じアミノ酸をコードする前記微生物の好ましいコドンで置換することによって構築されることが理解されなければならない。実際に、コドン使用頻度は微生物間で異なり、それは目的タンパク質の組換え発現レベルに影響を及ぼし得ることが当技術分野で周知である。この問題を克服するために、コドン最適化法が開発され、Ｇｒａｆ  ｅｔ  ａｌ．（２０００）、Ｄｅｍｌ  ｅｔ  ａｌ．（２００１）またはＤａｖｉｓ  ＆  Ｏｌｓｅｎ（２０１１）に詳細に記載されている。ＧｅｎｅＯｐｔｉｍｉｚｅｒ（登録商標）ソフトウエア（Ｌｉｆｅｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）またはＯｐｔｉｍｕｍＧｅｎｅ（商標）ソフトウエア（ＧｅｎＳｃｒｉｐｔ）など、いくつかのソフトウエアがコドン最適化決定のために開発されている。言い換えれば、目的タンパク質をコードする外因性遺伝子は、好ましくは、特定の微生物における発現のためにコドンが最適化される。
【００４３】
本発明の方法の別の実施形態によれば、遺伝的に改変された微生物は、発現が減弱または欠失されているホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質をコードする天然遺伝子を含んでなる。他の世界では(In other worlds)、前記遺伝的に改変された微生物において、二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質をコードする天然遺伝子の発現は、非改変微生物に比べて減弱または欠失されている。好ましくは、本発明の微生物において、二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質をコードする天然遺伝子は欠失されている。
【００４４】
「天然遺伝子」または「内因性遺伝子」とは、本明細書では、前記遺伝子が微生物に天然に存在することを意味する。
【００４５】
本発明の文脈において、微生物が１以上の内因性遺伝子の発現レベルを「調節する」ために遺伝的に改変されれば、それは前記遺伝子の発現レベルがその天然の発現レベルとの比較により上方調節されているか、下方調節されている（すなわち、減弱されている）か、または完全に破壊されていることを意味する。よって、このような調節は、理論的には、遺伝子産物の活性の増強、あるいはまた内因性遺伝子産物のより低い活性もしくは無活性をもたらし得る。
【００４６】
内因性遺伝子活性および／または発現レベルはまた、遺伝子産物を改変するためにそれらのコード配列に突然変異を導入することによって改変することもできる。内因性遺伝子の欠失はまた、微生物内のその発現を全面的に阻害するために行うこともできる。内因性遺伝子の発現を調節する別法は、この遺伝子の発現レベルを上方調節または下方調節するためにそのプロモーター（すなわち、野生型プロモーター）をより強いまたはより弱いプロモーターに交換することである。このような目的に好適なプロモーターは相同または異種であってよく、当技術分野で周知である。内因性遺伝子の発現を調節するための適当なプロモーターを選択することは、当業者の技術の範囲内にある。
【００４７】
本発明の別の実施形態によれば、微生物は、機能的ＰＴＳ糖系を発現する微生物から選択される。優先的には、微生物は、腸内細菌科(Enterobacteriaceae)、クロストリジウム科(Clostridiaceae)、バチルス科(Bacillaceae)、ストレプトミセス科(Streptomycetaceae)、デイノコッカス科(Deinococcaceae)、ニトロソモナス科(Nitrosomonadaceae)、ビブリオ科(Vibrionaceae)、シュードモナス科(Pseudomonadaceae)、コリネバクテリウム科(Corynebacteriaceae)、サッカロミセス科(Saccharomyceteceae)および酵母を含んでなる群から選択される。より優先的には、微生物は、シトロバクター属(Citrobacter)、コリネバクテリウム属(Corynebacterium)、デイノコッカス属(Deinococcus)、大腸菌属(Escherichia)、パントエア属(Pantoea)、クレブシエラ属(Klebsiella)、ニトロソモナス属(Nitrosomonas)、フォトラブダス属(Photorhabdus)、フォトバクテリウム属(Photobacterium)、シュードモナス属(Pseudomonas)、サルモネラ属(Salmonella)、セラチア属(Serratia)、赤痢菌属(Shigella)およびエルシニア属(Yersinia)の種である。さらにより優先的には、微生物は、大腸菌(Escherichia coli)、肺炎桿菌(Klebsiella pneumoniae)、クレブシエラ・オキシトカ(Klebisella oxytoca)、緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)、シュードモナス・フルオレッセンス(Pseudomonas fluorescens)、ネズミチフス菌(Salmonalla typhimurium)、サルモネラ・エンテリカ(Salmonella enterica)、セラチア・マルセッセンス(Serratia marcescens)、パントエア・アナナティス(Pantoea ananatis)、コリネバクテリウム・グルタミカム(Corynebacterium glutamicum)、デイノコッカス・ラジオデュランス(Deinococcus radiodurans)、サーモアナエロバクテリウム・サーモサッカロリティクム(Thermoanaerobacterium thermosaccharolyticum)、クロストリジウム・スフェノイデス(Clostridium sphenoides)、およびサッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)から選択される。
【００４８】
特に、これらの例は改変大腸菌株を示すが、これらの改変は同じ科の他の微生物でも容易に行うことができる。
【００４９】
大腸菌は腸内細菌科に属し、グラム陰性、桿状、非胞子形成性であるメンバーを含んでなり、一般に１〜５μｍの長さである。ほとんどのメンバーは移動に鞭毛を用いるが、小数の属は非運動性である。この科の多くのメンバーは、ヒトおよびその他の動物の腸に見られる腸管内菌叢の通常の一部であるが、他は水もしくは土壌中に見られ、または様々な異なる動物および植物の寄生体である。大腸菌は、最も重要なモデル生物の一つであるが、腸内細菌科の他の重要なメンバーとして、クレブシエラ属、特に、肺炎桿菌、およびサルモネラ菌属がある。
【００５０】
本発明の方法の別の実施形態によれば、配列番号２の二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼＤＵＦ２９９タンパク質をコードする配列番号１の遺伝子ｐｐｓＲが欠失されている（「ΔｐｐｓＲ」と呼ぶこともできる）。
【００５１】
用語「欠失される」は、本明細書で使用する場合、遺伝子の発現の完全な抑制を指す。この発現の抑制は、遺伝子の発現の阻害、遺伝子の発現に必要なプロモーター領域の総てもしくは一部の欠失、または遺伝子のコード領域の欠失であり得る。欠失された遺伝子は、本発明による株の同定、単離および精製を助ける選択マーカー遺伝子によって置換することができる。例えば、遺伝子発現の抑制は、相同組換えの技術によって達成され得る（Ｄａｔｓｅｎｋｏ  ＆  Ｗａｎｎｅｒ，２０００）。
【００５２】
別の実施形態では、二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼＤＵＦ２９９タンパク質をコードする遺伝子ｐｐｓＲが減弱されてよい。
【００５３】
用語「減弱される」は、本明細書で使用する場合、遺伝子の発現の部分的抑制を指す。この発現の減弱は、野生型プロモーターのより弱い天然または合成プロモーターとの交換、またはアンチセンスＲＮＡもしくは干渉ＲＮＡ（ｉＲＮＡ）、より詳しくは、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）もしくは短鎖ヘアピンＲＮＡＳ（ｓｈＲＮＡ）を含むｐｐｓＲ遺伝子発現を低減する薬剤の使用のいずれかであり得る。例えば、プロモーター交換は、相同組換えの技術によって達成され得る（Ｄａｔｓｅｎｋｏ  ＆  Ｗａｎｎｅｒ，２０００）。
【００５４】
タンパク質の、特にこのタンパク質の、発現または機能の阻害に好適な当業者に既知の他のいずれの方法も使用可能である。
【００５５】
本発明の方法は、様々な目的分子を大量に生産するために使用可能である。よって、本発明の方法は、アルコール、糖質、カルボン酸、生物燃料、溶媒およびアミノ酸から選択される分子の生産の増大を可能とする。
【００５６】
特に、本発明の方法は、エタノール、エチレン、エチレングリコール、グリコール酸、プロピレン、アクリル酸、イソプロパノール、乳酸、１，３−プロパンジオール、１，２−プロパンジオール、プレノール、イソブテン、ブタジエン、ブタンジオール、ブタノール、イソブタノール、メチルエチルケトン、コハク酸、グルタミン酸、イソプレン、アジピン酸、ムコン酸、リシン、ドデカン二酸、ファルネセン、および２，４−ジヒドロキシ酪酸から選択される目的分子の生産の増大を可能とする。
【００５７】
より詳しくは、本発明の方法は、グリコール酸、１，２−プロパンジオール、および１，３−プロパンジオールから選択される目的分子の生産の向上を可能とする。
【００５８】
用語「１，２−プロパンジオール生産の向上」は、ｐｐｓＲ遺伝子の欠失または減弱前の微生物に比べた１，２−プロパンジオールの生産性の増大および／または１，２−プロパンジオールの力価の増大および／または１，２−プロパンジオール／炭素源収率の増大および／または１，２−プロパンジオールの純度の増大を指す。培養液中の微生物による１，２−プロパンジオールの生産は、当業者に知られた標準的分析手段、特に、ＨＰＬＣによって明白に記録することができる。１，２−プロパンジオール生産が増大した遺伝的に改変された微生物のいくつかの例は、大腸菌株についてはＷＯ２０１５１７３２４７およびＷＯ２０１２１７２０５０特許出願、ＵＳ６０８７１４０特許、ならびにＡｌｔａｒａｓ  ＆  Ｃａｍｅｒｏｎ（１９９９）に、また、酵母株についてはＪｏｏｎ−Ｙｏｕｎｇ  ｅｔ  ａｌ（２００８）に開示されている。これらの開示の総ては引用することにより本明細書の一部とされる。
【００５９】
好ましくは、本発明の１，２−プロパンジオールを生産する微生物は大腸菌株であり、少なくとも
・配列番号３もしくは５のｍｇｓＡまたはｍｇｓＡ＊遺伝子および／または配列番号７、９もしくは１１の遺伝子ｙｑｈＤまたはｙａｆＢまたはｙａｈＫから選択される遺伝子および／または配列番号１３のクロストリジウム・ベエイジェリンキー(Clostridium beijerinckii)由来ａｄｈ遺伝子および／または配列番号１５のｇｌｄＡ遺伝子の過剰発現、
・配列番号１７の遺伝子ｇｌｏＡ、配列番号１９および２１のｐｆｌＡＢ、配列番号２３のａｄｈＥ、配列番号２５のｌｄｈＡ、配列番号２７および２９のａｌｄＡおよびａｌｄＢ、配列番号３１のｅｄｄ、配列番号３３のａｒｃＡ、配列番号３５のｎｄｈおよび配列番号３７、３９、４１、４３のｆｒｄＡＢＣＤから選択される少なくとも１つの遺伝子の欠失
を含んでなる。
【００６０】
用語「グリコール酸生産の向上」は、その親株、すなわち、ｐｐｓＲ遺伝子の欠失または減弱前の微生物に比べたグリコール酸の生産性の増大および／またはグリコール酸の力価の増大および／またはグリコール酸／炭素源収率の増大および／またはグリコール酸の純度の増大を指す。培養液中での微生物によるグリコール酸の生産は、当業者に知られた標準的分析手段、特に、ＨＰＬＣによって明白に記録することができる。グリコール酸生産が増大したいくつかの遺伝的に改変された微生物は、グリコール酸生産酵母株については特許出願ＷＯ２０１４１６２０６３およびＷＯ２０１３０５０６５９に、また、グリコール酸生産大腸菌株についてはＷＯ２０１２０２５７８０およびＷＯ２０１１１５７７２８に開示されている。これらの開示の総ては引用することにより本明細書の一部とされる。
【００６１】
好ましくは、本発明のグリコール酸生産微生物は大腸菌株であり、少なくとも
・配列番号４５の遺伝子ａｃｅＢ、配列番号４７のｇｌｃＢ、配列番号４９のｇｃｌ、配列番号５１のｅｄａ、それぞれ配列番号５３−５５−５７−５９のｇｌｃＤＥＦＧ、配列番号２７のａｌｄＡ、配列番号６１のｉｃｄ、配列番号６３のａｃｅＫ、配列番号６５のｐｔａ、配列番号６７のａｃｋＡ、配列番号６９のｐｏｘＢ、配列番号７１のｉｃｌＲまたは配列番号７３のｆａｄＲ、配列番号７５のｐｇｉ、配列番号７７のｕｄｈＡ、配列番号３１のｅｄｄ、配列番号２５のｌｄｈＡ、配列番号３のｍｇｓＡ、配列番号３３のａｒｃＡ、配列番号７９のｇｌｃＡ、配列番号８１のｌｌｄＰおよび配列番号８３のｙｊｃＧから選択される少なくとも１つの遺伝子の発現の減弱および／または
・配列番号８５のａｃｅＡおよび／または配列番号８７のｙｃｄＷの過剰発現
を含んでなる。
【００６２】
用語「１，３−プロパンジオール生産の向上」は、その親株、すなわち、ｐｐｓＲ遺伝子の欠失または減弱前の微生物に比べた１，３−プロパンジオールの生産性の増大および／または１，３−プロパンジオールの力価の増大および／または１，３−プロパンジオール／炭素源収率の増大および／または１，３−プロパンジオールの純度の増大を指す。培養液中での微生物による１，３−プロパンジオールの生産は、当業者に知られた標準的分析手段、特に、ＧＣ−ＭＳによって明白に記録することができる。１，３−プロパンジオール生産が増大したいくつかの遺伝的に改変された微生物は、１，３−プロパンジオール生産クロストリジウム株については特許出願ＷＯ２００８０５２５９５、ＷＯ２０１０１２８０７０およびＷＯ２０１２０６２８３２に、また、１，３−プロパンジオール生産大腸菌株についてはＷＯ２００４０３３６４６、ＷＯ２０１００７６３２４、ＷＯ２０１２００４２４７およびＷＯ２０１６０５０９５９に開示されている。これらの開示の総ては引用することにより本明細書の一部とされる。
【００６３】
好ましくは、本発明の１，３−プロパンジオール生産微生物は大腸菌株であり、少なくとも
・配列番号８９のｙｃｉＫ、配列番号９１のｂｔｕＲ、配列番号９３のｐｐｃ、配列番号９５のｇａｌＰ、配列番号９７のｇｌｋ、配列番号９９の肺炎桿菌由来ｄｈａＢ１、配列番号１０１の肺炎桿菌由来ｄｈａＢ２、配列番号１０３の肺炎桿菌由来ｄｈａＢ３、配列番号１０５の肺炎桿菌由来ｄｈａＢ４、配列番号１０７の肺炎桿菌由来ｏｒｆＸ、配列番号１０９のサッカロミセス・セレビシエ由来ＤＡＲ１、配列番号１１１のサッカロミセス・セレビシエ由来ＧＰＰ２から選択される少なくとも１つの遺伝子の過剰発現および／または
・配列番号１１３のｇａｐＡ、配列番号１１５のｙｑｈＣ、配列番号１１７のｇｌｐＫ、配列番号１５のｇｌｄＡ、配列番号０３のｍｇｓＡ、配列番号６７のａｃｋ、配列番号６５のｐｔａ、配列番号３３のａｒｃＡ、配列番号３１のｅｄｄ、配列番号１１９のｐｔｓＨ、配列番号１２１のｐｔｓＩ、配列番号１２３のｃｒｒおよび配列番号３５のｎｄｈから選択される少なくとも１つの遺伝子の発現の減弱
を含んでなる。
【００６４】
【表１】
2019520081.tif 000002
2019520081.tif 000003
2019520081.tif 000004
【００６５】
上述のように、糖は細菌細胞に輸送され、ホスホエノールピルビン酸：糖ホスホトランスフェラーゼ系（ＰＴＳ））によりリン酸化される。リン酸化された糖、特に、リン酸化されたグルコースは、高濃度では細胞に毒性があり、結果として、ＰＴＳ系は高度に調節される。このことは、この系が複雑であるという事実と相まって、この系の取り扱いを極めて困難にする。しかしながら、下記のように、本発明者らは驚くことに、ＰＰＳ発現を調節する少なくとも１つのタンパク質を欠くＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子を含んでなる遺伝的に改変された微生物を作出した。
【００６６】
よって、第２の側面において、本発明は、炭素の供給源としての糖質から目的分子の生産の増大のために遺伝的に改変された微生物に関し、前記遺伝的に改変された微生物は、ＰＴＳ糖質利用系をコードする機能的遺伝子とホスホエノールピルビン酸(Phosphenolpyruvate)シンターゼ（ＰＰＳ）の発現を調節する二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼタンパク質の発現の低減とを含んでなる。
【００６７】
この遺伝的に改変された微生物は、本発明の方法で使用されるものと同じ遺伝的特徴を有する。特に、この微生物において、二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼＤＵＦ２２９をコードする遺伝子ｐｐｓＲは、低減または減弱されている。より優先的には、遺伝子ｐｐｓＲは、本発明の微生物においては欠失されている。
【００６８】
従って、前記微生物は、本発明による発酵法で、目的分子、例えば、エタノール、エチレン、エチレングリコール、グリコール酸、プロピレン、アクリル酸、イソプロパノール、乳酸、１，３−プロパンジオール、１，２−プロパンジオール、プレノール、イソブテン、ブタジエン、ブタンジオール、ブタノール、イソブタノール、メチルエチルケトン、コハク酸、グルタミン酸、イソプレン、アジピン酸、ムコン酸、リシン、ドデカン二酸、ファルネセン、および２，４−ジヒドロキシ酪酸から選択される分子の生産を増大させるために使用可能である。
【００６９】
好ましくは、前記微生物は、本発明による発酵法で、１，３−プロパンジオール、１，２−プロパンジオール、およびグリコール酸から選択される化合物のうち少なくとも１つの生産を増大させるために使用可能である。
【実施例】
【００７０】
実施例１：株の構築のための方法
以下に示される実施例では、大腸菌に関してＤａｔｓｅｎｋｏ  ＆  Ｗａｎｎｅｒ，（２０００）が十分に記載している相同組換えを用い、複製ベクターおよび／または種々の染色体欠失、および置換を含む大腸菌株を構築するために当技術分野で周知の方法を使用した。同様に、組換え微生物において１または複数の遺伝子を発現または過剰発現するためのプラスミドまたはベクターの使用は、当業者には周知である。好適な大腸菌発現ベクターの例としては、ｐＴｒｃ、ｐＡＣＹＣ１８４ｎ  ｐＢＲ３２２、ｐＵＣ１８、ｐＵＣ１９、ｐＫＣ３０、ｐＲｅｐ４、ｐＨＳ１、ｐＨＳ２、ｐＰＬｃ２３６などが含まれる。
【００７１】
以下の実施例ではいくつかのプロトコールが使用された。本発明で使用されたプロトコール１（相同組換えによる染色体改変、組換え体の選択）、プロトコール２（ファージＰ１の形質導入）およびプロトコール３（抗生物質カセットの切り出し、要すれば、耐性遺伝子は除去された）は、特許出願ＥＰ２５３２７５１で詳しく記載されている。抗生物質耐性カセットは、ｐＫＤ３、ｐＫＤ４、ｐＫＤ１３またはＦＲＴ部位の前後に別の抗生物質耐性遺伝子を含有する他のいずれかのプラスミドで増幅させることができる。染色体改変は、当業者が設計可能な適当なオリゴヌクレオチドを用いたＰＣＲ分析によって確認した。
【００７２】
実施例２：株１〜６の構築物
株１の構築
ｔｐｉＡ遺伝子によりコードされるトリオースリン酸イソメラーゼを発現させ、ｇａｐＡ遺伝子によりコードされるグリセルアルデヒドリン酸デヒドロゲナーゼの発現を調節するために、相同組換え法を使用した（プロトコール１および３に従う）。ｔｐｉＡ遺伝子を、特許出願ＷＯ２００８１１６８５２の実施例３に記載されているように、特許出願ＷＯ２０１５１７３２４７の実施例２に記載のＭＧ１６５５  ｌｐｄ＊  ＤｔｐｉＡ  ＤｐｆｌＡＢ  ＤａｄｈＥ  ＤｌｄｈＡ  ＤｇｌｏＡ  ＤａｌｄＡ  ＤａｌｄＢ  Ｄｅｄｄ  ＤａｒｃＡ  Ｄｎｄｈ  ＤｆｒｄＡＢＣＤ進化株に導入した。次に、ｇａｐＡ発現「ＣＩ８５７−ＰＲ０１／ＲＢＳ１１−ｇａｐＡ」を調節するためのゲノム改変を、特許ＥＰ２５３２７５１に記載されるように従前の株に導入した。ｇｌｄＡ＊（Ａ１６０Ｔ）遺伝子を、特許出願ＥＰ２５３２７５１に記載されているようにｐＭＥ１０１ＶＢ０６プラスミドにクローニングした。このプラスミドをｐＰＧ００７８と呼称した。スクロース上の大腸菌の増殖を可能とするために、プラスミドｐＵＲ４００由来の遺伝子ｓｃｒＫ、ｓｃｒＹＡＢおよびｓｃｒＲ（Ｓｃｈｍｉｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９８２）をプラスミドｐＢＢＲ１ＭＣＳ３上のそれらの天然プロモーター下にクローニングした。このプラスミドをｐＰＧ０２３１と呼称した。
【００７３】
最後に、プラスミドｐＰＧ００７８およびｐＰＧ０２３１を従前の株に形質転換して株１を得た。
【００７４】
株２の構築
ｇｌｄＡ遺伝子を不活化するために、相同組換え法を使用した（プロトコール１に従う）。ＤｇｌｄＡのオリゴヌクレオチド：配列番号１２５および１２６を、ＰＣＲにより耐性カセットを増幅させるために使用した。保持した株をＭＧ１６５５  ＤｇｌｄＡ：：Ｃｍと呼称した。ＤｇｌｄＡ：：Ｃｍ欠失を、Ｐ１ファージ形質導入（プロトコール２に従う）によって進化株ＭＧ１６５５  ｌｐｄ＊  ＤｔｐｉＡ  ＤｐｆｌＡＢ  ＤａｄｈＥ  ＤｌｄｈＡ  ＤｇｌｏＡ  ＤａｌｄＡ  ＤａｌｄＢ  Ｄｅｄｄ  ＤａｒｃＡ  Ｄｎｄｈ  ＤｆｒｄＡＢＣＤに移入した。クロストリジウム・ベエイジェリンキー由来のａｄｈ遺伝子（Ｈａｎａｉ  ｅｔ  ａｌ．，２００７）を、特許出願ＷＯ２００８／１１６８５３に記載のｐＭＥ１０１ＶＢ０１プラスミドにクローニングした。このプラスミドをｐＰＧ０４６８と呼称した。
【００７５】
最後に、プラスミドｐＰＧ０２３１およびｐＰＧ０４６８を従前の株に形質転換して株２を得た。
【００７６】
株３の構築
ｐｔｓＨＩ＋ｃｒｒオペロンを不活化するために、相同組換え法を使用した（プロトコール１に従う）。ＤｐｔｓＨＩｃｒｒのオリゴヌクレオチド：配列番号１２７および１２８を、耐性カセットをＰＣＲ増幅させるために使用した。保持した株をＭＧ１６５５  ＤｐｔｓＨＩ＋ｃｒｒ：：Ｋｍと呼称した。ＤｐｔｓＨＩ＋ｃｒｒ：：Ｋｍ欠失をＰ１ファージ形質導入（プロトコール２に従う）によって株２に移入して株３を得た。
【００７７】
株４および５の構築
下表２は、株４および５を構築するための全プロトコールを記載する特許出願の参照を示す。
【００７８】
【表２】
2019520081.tif 000005
【００７９】
株６の構築
ｐｔｓＨＩ＋ｃｒｒオペロンを再構築するために、Ｋｍ耐性カセットを、相同組換え法（プロトコール１に従う）を用いてオペロンの下流に導入した。ｐｔｓＨＩｃｒｒのオリゴヌクレオチド：配列番号１２９および１３０を、耐性カセットをＰＣＲ増幅させるために使用した。保持した株をＭＧ１６５５  ｐｔｓＨＩ＋ｃｒｒ：：Ｋｍと呼称した。ｐｔｓＨＩ＋ｃｒｒ：：Ｋｍ改変を、Ｐ１ファージ形質導入（プロトコール２に従う）によって株５に移入して株６を得た。
【００８０】
実施例３：株７〜１２の構築
ｐｐｓＲ遺伝子によりコードされたＰＥＰシンターゼ調節タンパク質ＰＳＲＰを不活化するために、相同組換え法を使用した（プロトコール１および３に従う）。ＤｐｐｓＲのオリゴヌクレオチド：配列番号１３１および１３２を、耐性カセットをＰＣＲ増幅させるために使用した。保持した株をＭＧ１６５５  ＤｐｐｓＲ：：ＫｍまたはＭＧ１６５５  ＤｐｐｓＲ：：Ｇｔと呼称した。最後に、ＤｐｐｓＲ：：ＫｍまたはＭＧ１６５５  ＤｐｐｓＲ：：Ｇｔ欠失を、Ｐ１ファージ形質導入（プロトコール２に従う）によって、実施例２に示す株に導入した。
【００８１】
【表３】
2019520081.tif 000006
【００８２】
株１３の構築
大腸菌由来のホスホエノールピルビン酸シンターゼを過剰発現するために、特許出願ＷＯ２００８１１６８５３に記載のｐＪＢ１３７−ＰｇａｐＡ−ｐｐｓＡプラスミドを株１に形質転換して株１３を得た。
【００８３】
実施例４：振盪フラスコ培養および収率
１，２−プロパンジオール生産株を、糖としてスクロースまたはグルコースまたはマンノースまたはマルトースのいずれかならびに４０ｇ／Ｌ  ＭＯＰＳを使用すること以外は、特許出願ＥＰ２５３２７５１に記載されているようにフラスコ培養で培養した。要すれば、１００μＭ  ＩＰＴＧを培地に加えた。残留する糖ならびに生産された１，２−プロパンジオール（ＰＧ）およびヒドロキシアセトン（ＨＡ）を、屈折率検出を用いたＨＰＬＣによって定量した。
【００８４】
振盪フラスコ培養およびグリコール酸（ＡＧ）定量のための方法は、ＷＯ２０１０１０８９０９に記載の通りであった。
【００８５】
振盪フラスコ培養および１，３−プロパンジオール（ＰＤＯ）定量のための方法は、ＷＯ２００４０３３６４６に記載の通りであった。
【００８６】
総ての培養に関して、必要であれば、抗生物質を、カナマイシンおよびスペクチノマイシンの場合には５０ｍｇ．Ｌ−１の濃度で、クロラムフェニコールの場合には３０ｍｇ．Ｌ−１の濃度で、ゲンタマイシンの場合には１０ｍｇ．Ｌ−１の濃度で加えた。
【００８７】
【表４】
2019520081.tif 000007
【００８８】
株７は、ＰＴＳ系によっては輸送されないマルトースを除く総ての条件で株１よりも良好な収率を示した。株１３は株１とは違いがなく、これはｐｐｓＲがなお発現されれば過剰発現ｐｐｓは有効でないことを示す。株１０および１２は、対応する対照株４および６よりも良好な収率を示した。株１１は、この系統においてはグルコースに関しては非ＰＴＳ輸送系であることによれば、株５と違いは無かった。
【００８９】
結論
上記の実施例により示されたように、二機能性ＡＤＰ依存性キナーゼ−Ｐｉ依存性ピロホスホリラーゼＤＵＦ２９９タンパク質をコードするｐｐｓＲの欠失は、糖輸送のためのＰＴＳ系を用いて微生物における１，２−プロパンジオール、１，３−プロパンジオールおよびグリコール酸の生産を増大させることを可能とする。
【００９０】
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