(57)【要約】  本発明は、凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの調製プロセスに関し、当該プロセスは、（ａ）アミホスチンの溶液と強酸とを反応させて２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を得るステップと、（ｂ）賦形剤が添加されたまたはされていない２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を凍結乾燥するステップと、を含む。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの調製プロセスであって、
（ａ）アミホスチンの溶液と強酸とを反応させて２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を得るステップと、
（ｂ）賦形剤が添加されたまたはされていない２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を凍結乾燥するステップと、
を含む、プロセス。
【請求項２】
前記強酸は、塩酸、リン酸、硫酸、およびそれらの混合物からなる群から選択される、請求項１に記載のプロセス。
【請求項３】
前記強酸は、塩酸である、請求項１または２に記載のプロセス。
【請求項４】
前記ステップ（ａ）は、５０℃〜９０℃の範囲で行われる、請求項１〜３のいずれか１項に記載のプロセス。
【請求項５】
前記ステップ（ａ）は、３０分〜２４時間行われる、請求項１〜４のいずれか１項に記載のプロセス。
【請求項６】
前記アミホスチンの濃度は、８０ｍｇ／ｍｌ〜５００ｍｇ／ｍｌの範囲にある、請求項１〜５のいずれか１項に記載のプロセス。
【請求項７】
前記酸のモル濃度は、１Ｍ〜４Ｍの範囲にある、請求項１〜６のいずれか１項に記載のプロセス。
【請求項８】
前記アミホスチンの量と前記酸の量とのモル比は、１：０．５〜１：３の範囲にある、請求項１〜７のいずれか１項に記載のプロセス。
【請求項９】
前記ステップ（ａ）の後且つ前記ステップ（ｂ）の前に、前記賦形剤が添加されたまたはされていない２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を希釈するためのステップ（ａ１）をさらに含む、請求項１〜８のいずれか１項に記載のプロセス。
【請求項１０】
前記ステップ（ａ１）は、水または少なくとも１つのポロキサマーを含む水溶液を、２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液に添加するステップを含む、請求項９に記載のプロセス。
【請求項１１】
請求項１〜１０のいずれか１項に記載のプロセスによって得られる、２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの凍結乾燥物。
【請求項１２】
請求項１１に記載の凍結乾燥物を水溶液で再構成するステップを含む、賦形剤が添加されたまたはされていない２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールのサーモゲル組成物の調製プロセス。
【請求項１３】
請求項１２に記載のプロセスによって得られる２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールのサーモゲル組成物。
【請求項１４】
抗癌療法、より詳細には、放射線療法および／または化学療法による癌の治療に伴って損傷した粘膜組織または皮膚組織を治療または保護するために使用される、請求項１３に記載のサーモゲル組成物。
【請求項１５】
放射線誘発性口腔粘膜炎を治療するために使用される、請求項１３に記載のサーモゲル組成物。
【請求項１６】
放射線誘発性皮膚紅斑を治療するために使用される、請求項１３に記載のサーモゲル組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの凍結乾燥製剤の調製プロセスと、当該プロセスによって得られるような凍結乾燥物（lyophilisate）の調製プロセスに関する。
【背景技術】
【０００２】
アミホスチンは、アルカリホスファターゼの作用下で２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオール（アミノチオール）遊離活性に変換されるリン酸化プロドラッグである。現在、アミホスチンは静注投与されるが、その投与に起因した重篤な副作用（低血圧や吐き気等）を伴う。アミホスチンは、動物およびヒトへの経口投与による試験が行われてきたが、これらの研究により、アミホスチンとアミノチオールが主に消化管内で著しく分解されてほとんど吸収されないことが判明した（Kouvaris JR et al, Amifostine: the first selective-target and broad spectrum radioprotector. The Oncologist 2007; 12:738-747）。
【０００３】
アミホスチンは、現在、エチオール（Ethyol）（登録商標）として各国で市販されており、以下の目的のための静脈内灌流剤の滅菌凍結乾燥粉末である。
・  進行卵巣癌患者に対するシスプラチンの反復投与に伴う累積腎毒性の減少。
・  頭頸部癌に対する術後放射線療法を受けている患者における中等度から重度の口腔乾燥の発生率の減少。この場合、放射線照射部位（radiation port）は、耳下腺の大部分を含む。
【０００４】
米国特許第６，２３９，１１９号は、アミホスチンおよび関連化合物の局所的投与を用いて、放射線療法および／または化学療法による癌の治療に伴って損傷した粘膜組織を治療または保護する方法を開示している。また、アミホスチンおよび関連化合物の局所的投与を用いて、粘膜炎に伴う感染症を治療および予防する方法も開示している。
【０００５】
しかしながら、現在まで、放射線誘発性口腔粘膜炎の治療に有効なアミホスチンまたはその誘導体を含む安定なサーモゲル製剤は開発されていない。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の目的は、２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールを含み且つ粘膜組織または皮膚に付着する、化学放射線防護用の安定な局所用製剤を調製することである。
【０００７】
本発明の別の目的は、賦形剤が添加されたまたはされていない、安定な凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの調製プロセスを提供することである。
【０００８】
本発明の別の目的は、放射線誘発性粘膜炎を治療するための感熱性ゲル中に配合されるまたは配合された安定な凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールを提供することである。
【０００９】
本発明の別の目的は、放射線誘発性皮膚紅斑を治療するための感熱性ゲル中に配合されるまたは配合された安定な凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールを提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明は、賦形剤が添加されたまたはされていない、凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの調製プロセスに関し、より詳細には、安定な凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの調製プロセスに関し、当該プロセスは、以下のステップを含む。
【００１１】
（ａ）アミホスチンの溶液と強酸とを反応させて２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を得るステップ。
【００１２】
（ｂ）賦形剤が添加されたまたはされていない２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を凍結乾燥するステップ。
【００１３】
また、本発明は、賦形剤が添加されたまたはされていない２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの凍結乾燥製剤の調製プロセスにも関し、当該プロセスは、上述したステップを含む。
【発明の効果】
【００１４】
本発明による調製プロセスは、得られた凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの安定性を改善するという利点を有する。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】１回目の有効性試験におけるパーキンズスコアおよび体重の経時変化を示すグラフである。
【図２】２回目の有効性試験におけるパーキンズスコアおよび体重の経時変化を示すグラフである。
【図３】３回目の有効性試験におけるパーキンズスコアおよび体重の経時変化を示すグラフである。
【図４】紅斑スコアの経時変化を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１６】
好ましくは、得られた凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールは、ＩＣＨ（医薬品規制調和国際会議）のガイドラインに基づいて一定期間保管した場合、当該生成物の総重量に対して、好ましくは５重量％未満、より好ましくは２重量％未満、さらに好ましくは１重量％（面積％）未満のジスルフィド（または他の不純物）を含有する。
【００１７】
好ましくは、凍結乾燥２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオール（またはアミノチオール）は、塩の形態をとる。以下に示すように、アミホスチンからアミノチオールへの変換に強酸を用いると、塩が得られる。
【００１８】
より詳細には、塩酸を用いた場合の変換ステップを、次のように表すことができる。
【００１９】
2019535801.tif 000002
【００２０】
本発明によれば、アミホスチンの溶液は、アミホスチンの酸性溶液を含む。
【００２１】
本発明によれば、「強酸」という用語は、溶液中で完全にイオン化される酸を指す。本願の範囲におけるこの用語は、医薬分野で広く使用されている任意選択の酸を指す。好ましくは、本発明による強酸のｐＫａの値は、２．０以下である。
【００２２】
好ましくは、強酸は、塩酸、リン酸、硫酸、およびそれらの混合物からなる群から選択される。最も好ましくは、強酸は、塩酸である。
【００２３】
上記で定義されたステップ（ａ）の目的は、可能な限り少ない不純物を含み且つ可能な限り完全なアミノチオールへの変換を得ることである。得られたアミノチオールの溶液は、高純度である。
【００２４】
好ましい実施形態によれば、上記で定義されたステップ（ａ）は、アミホスチンの溶液と塩酸とを反応させるステップを含む。
【００２５】
好ましい実施形態によれば、ステップ（ａ）は、５０℃〜９０℃の範囲で行われる。
【００２６】
５０℃未満では、変換プロセスは長くなりすぎて（２４時間以上）、アミノチオールの収率は９０％未満になる。９０℃を超えると、変換プロセスは加速されるが、未知の不純物が新たに生成される。
【００２７】
好ましくは、ステップ（ａ）は、５０℃〜７０℃の範囲で行われ、最も好ましくは、６０℃で行われる。
【００２８】
好ましい実施形態によれば、ステップ（ａ）は、３０分〜２４時間行われる。
【００２９】
３０分未満では、変換は完全ではなく、アミノチオールの収率は９０％未満になる。２４時間を超えると、未知の不純物が新たに生成される。
【００３０】
好ましくは、ステップ（ａ）は、１時間行われる。
【００３１】
好ましい実施形態によれば、アミホスチンの濃度は、８０ｍｇ／ｍｌ〜５００ｍｇ／ｍｌの範囲にある。
【００３２】
アミホスチンの濃度が８０ｍｇ／ｍｌであると、希釈ステップを行うことが有利であり、より詳細には、以下で説明する希釈ステップ（ａ１）を行うことが有利である。
【００３３】
アミホスチンは溶解性を有するため、アミホスチンの濃度が５００ｍｇ／ｍｌを超えると、このプロセスを行うことは困難になる。
【００３４】
好ましくは、アミホスチンの濃度は、５００ｍｇ／ｍｌである。
【００３５】
好ましい実施形態によれば、酸のモル濃度は、１Ｍ〜４Ｍの範囲にある。
【００３６】
酸のモル濃度が１Ｍ未満になると、変換プロセスは長くなりすぎる場合があり、アミノチオールの収率は９０％未満になる。
【００３７】
酸のモル濃度が４Ｍを超えると、得られたサーモゲルの最終ｐＨは低くなりすぎる（ｐＨ≦４．０）ため、サーモゲルは投与に適さなくなる。したがって、ｐＨを調整する別のステップを行う必要がある。
【００３８】
好ましくは、酸のモル濃度は、４Ｍである。
【００３９】
一実施形態によれば、アミホスチンの量と酸の量とのモル比は、１：０．５〜１：３の範囲にあり、好ましくは、１：０．５〜１：２の範囲にある。
【００４０】
モル比が１：０．５未満になると、変換プロセスは長くなりすぎて、アミノチオールの収率は９０％未満になる。
【００４１】
モル比が１：３を超えると、得られたサーモゲルの最終ｐＨは低くなりすぎる（ｐＨ≦４．０）ため、サーモゲルは投与に適さなくなる。したがって、ｐＨを調整する別のステップを製造プロセスに追加する必要がある。
【００４２】
ステップ（ｂ）は、リオフィリゼーション（lyophilization）やクリオデシケーション（cryodesiccation）としても知られる凍結乾燥（freeze-drying）のステップである。このステップでは、賦形剤が添加されたまたはされていない２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を凍結させ、次に周囲の圧力を低下させて、材料中の凍結水を固相から気相に直接昇華させる。ここでいう賦形剤とは、浸透促進剤、芳香剤および甘味料などの矯味剤、粘膜付着剤、共溶媒、保湿剤、着色剤およびポロキサマーとしての他の機能性賦形剤を含む。
【００４３】
好ましくは、凍結乾燥ステップでは、凍結速度、凍結時棚温度および一次乾燥時棚温度を含むいくつかのパラメータが考慮される。
【００４４】
好ましい実施形態によれば、凍結速度は速い。好ましくは、当該ステップの４０分間の凍結速度は、約１．６℃／分である。凍結速度が速いと、凍結中に氷マトリックスによって排除される高濃度の酸性溶質による凍結乾燥物の表面上への「皮膜（skin）」（または「殻（shell）」）の形成を回避することができる。
【００４５】
好ましい実施形態によれば、凍結時棚温度は低い。好ましくは、昇華前にすべての酸性アミノチオールの溶液を凍結するために、凍結時棚温度は約−６０℃である。
【００４６】
好ましい実施形態によれば、一次乾燥の棚温度は低い。好ましくは、生成物の融解を回避するために、一次乾燥の棚温度は−４０℃未満である。一次乾燥の初期段階において、生成物の温度はその生成物の融解温度より低い。
【００４７】
本発明によるプロセスは、ステップ（ａ）の後且つステップ（ｂ）の前に、賦形剤が添加されたまたはされていない２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液を希釈するためのステップ（ａ１）をさらに含んでもよい。
【００４８】
好ましくは、ステップ（ａ１）は、水または少なくとも１つのポロキサマーを含む水溶液を、２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液に添加するステップを含む。
【００４９】
好ましくは、ステップ（ａ１）は、少なくとも１つのポロキサマーを含む水溶液を、２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの溶液に添加するステップを含む。
【００５０】
ポロキサマー（商品名：プルロニック（Pluronics（登録商標））、ルトロール（Lutrol（登録商標））、コリフォール（Kolliphor（登録商標）））は、プロピレンオキシド（ＰＯ）と、エチレンオキシド（ＥＯ）とを低分子量の水溶性プロピレングリコールに順次添加することで合成されたエチレンオキシドとプロピレンオキシドの非イオン性ブロックコポリマーである（Thermosensitive Self-Assembling Block Copolymers as Drug Delivery Systems. G. Bonacucina, M. Cespi, G. Mencarelli, G. Giorgiono and G. F. Palmieri. Polymers 2011, 3, 779-811）。
【００５１】
【化１】
2019535801.tif 000003
【００５２】
好ましくは、本発明で使用されるポロキサマーは、ポロキサマー４０７、ポロキサマー１８８、およびそれらの混合物である。
【００５３】
ポロキサマー４０７は、局所用医薬製剤において一般的に使用されるコポリマーである。
【００５４】
ポロキサマー４０７とポロキサマー１８８の混合物は、その感熱性のために医薬用途に広く使用されている。この２つのグレードのポロキサマー４０７および１８８の組み合わせによって、ゾル−ゲル温度転移をターゲットとすることができる。
【００５５】
一定のポロキサマー４０７の濃度でポロキサマー１８８の濃度を増加させると、まず最大値となるまでゾル−ゲル温度転移が徐々に増加して、その後減少する。
【００５６】
また、本発明は、上記で定義されたプロセスによって得られる２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの凍結乾燥物に関し、より詳細には、安定な２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの凍結乾燥物に関する。
【００５７】
また、本発明は、２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールのサーモゲル組成物の調製プロセスに関し、より詳細には、２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールの安定なサーモゲル組成物の調製プロセスに関し、上記で定義された凍結乾燥物を水溶液で再構成するステップを含む。
【００５８】
本発明によれば、感熱性ゲルは、投与前、例えば室温または５℃±３℃で液体であり、加熱条件に従ってゼリー化するin situ形成型のゲルである。冷却後、このゲルは再び液化する。
【００５９】
この再構成ステップで使用される水溶液は、上記で定義された水および／またはポロキサマーを含み得る。
【００６０】
好ましくは、上記で定義された、少なくとも１つのポロキサマーを含む溶液で希釈を行うステップ（ａ１）を含むプロセスによって凍結乾燥アミノチオールが調製された場合、当該水溶液は、水によって構成される。
【００６１】
好ましくは、上記で定義された、水のみで希釈を行うステップ（ａ１）を含むプロセスによって凍結乾燥アミノチオールが調製された場合、当該水溶液は、少なくとも１つのポロキサマーを含む。
【００６２】
好ましくは、この水溶液中に、例えばトランスキトール（Transcutol（登録商標））（ジエチレングリコールモノエチルエーテル）のような浸透促進剤、芳香剤および甘味料などの矯味剤、粘膜付着剤、共溶媒、保湿剤、着色剤および他の機能性賦形剤を含む賦形剤を添加することができるが、これに限定されない。
【００６３】
好ましくは、再構成ステップで使用される水溶液は、ハッカおよび／または苦味抑制剤などの芳香剤、および／または浸透促進剤などの他の賦形剤をさらに含む。
【００６４】
例えば、凍結乾燥アミノチオールの再構成ステップで使用される水溶液は、好ましくは、ハッカ、苦味抑制剤、および水をそれぞれ４重量％、０．０５重量％、９５．９５重量％含有する。
【００６５】
また、本発明は、上記で定義されたプロセスに従って得られる２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールのサーモゲル組成物に関する。
【００６６】
また、本発明は、放射線誘発性口腔粘膜炎を治療するために使用される、上述した２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールのサーモゲル組成物に関する。
【００６７】
また、本発明は、放射線誘発性皮膚紅斑を治療するために使用される、上述した２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールのサーモゲル組成物に関する。
【００６８】
また、本発明は、抗癌療法、より詳細には、放射線療法および／または化学療法による癌の治療に伴って損傷した粘膜組織または皮膚組織を治療または保護するために使用される、上述した２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールのサーモゲル組成物に関する。
【００６９】
また、本発明は、上記で定義されたサーモゲル組成物の適用によって、抗癌療法、より詳細には、放射線療法および／または化学療法による癌の治療に伴って損傷した粘膜組織または皮膚組織を治療または保護する方法に関する。
【００７０】
放射線療法による癌の治療に伴う損傷としては、口腔粘膜炎（頭頸部癌に対する放射線療法の場合）、頸部上皮炎（頭頸部癌に対する放射線療法の場合）、食道炎（肺に対する放射線療法の場合）、皮膚紅斑（乳房に対する放射線療法の場合）、腸炎（腹部に対する照射の場合）、腟炎および腟乾燥（骨盤に対する照射の場合）、直腸炎（骨盤に対する照射の場合）、脱毛症（脳に対する照射の場合）が挙げられる。
【００７１】
より詳細には、本発明は、頸部上皮炎、乳癌の場合の皮膚紅斑、および脳に対する照射の場合の脱毛症からなる群から選択される損傷を治療するために使用される、上述した２−［（３−アミノプロピル）アミノ］エタンチオールのサーモゲル組成物に関する。
【実施例】
【００７２】
Ａ−溶液中のアミホスチンのアミノチオールへの変換
実施例Ａ−１：１Ｍ塩酸またはリン酸における状態
３５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液（原薬はShangai Boylechem Co., Ltd.から購入）を１Ｍ塩酸またはリン酸中で調製し、５０℃の水浴中で２４時間加熱した。２４時間後、溶液の組成をＨＰＬＣ法により分析した。アミホスチン、アミノチオールおよびジスルフィドの面積％を以下の表に示す。
【００７３】
【表１】
2019535801.tif 000004
【００７４】
１Ｍリン酸におけるアミホスチンは、未知の不純物を生成することなく、またジスルフィドをわずかに生成して、完全に変換された（１Ｍ塩酸におけるアミホスチンは、わずかに残留しながら、ほぼ完全に変換された）。
【００７５】
実施例Ａ−２：４Ｍ塩酸における状態
５００ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液を４Ｍ塩酸中で調製し、５０℃または６０℃の水浴中で２４時間加熱した。１時間後、３時間後、６時間後および２４時間後、溶液の組成をＨＰＬＣ法により分析した。アミホスチン、アミノチオールおよびジスルフィドの面積％を以下の表に示す。
【００７６】
【表２】
2019535801.tif 000005
【００７７】
４Ｍ塩酸におけるアミホスチンは、未知の不純物を生成することなく、５０℃では６時間後、６０℃ではわずか１時間後に、完全に変換された。
【００７８】
実施例Ａ−３（比較例）：クエン酸における状態
３５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液を１Ｍクエン酸（弱酸）中で調製し、５０℃の水浴中で２４時間加熱した。２４時間後、溶液の組成をＨＰＬＣ法により分析した。アミホスチン、アミノチオールおよびジスルフィド（ＷＲ−３３２７８）の面積％を以下の表に示す。
【００７９】
【表３】
2019535801.tif 000006
【００８０】
クエン酸におけるアミホスチンは、完全に変換されたが、大量の未知の不純物が新たに生成されたため、適切ではない。
【００８１】
この比較例は、アミホスチンのアミノチオールへの変換には、本発明による強酸ではないクエン酸の使用は適さないことを示している。
【００８２】
実施例Ａ−４（比較例）：酢酸における状態
３５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液を１Ｍ酢酸中で調製し、５０℃の水浴中で２４時間加熱した。２４時間後、溶液の組成をＨＰＬＣ法により分析した。アミホスチン、アミノチオールおよびジスルフィドの面積％を以下の表に示す。
【００８３】
【表４】
2019535801.tif 000007
【００８４】
酢酸におけるアミホスチンは、完全に変換されることなく、未変換のアミホスチンが残留した。さらに、大量の未知の不純物が新たに生成された。
【００８５】
この比較例は、アミホスチンのアミノチオールへの変換には、本発明による強酸ではない酢酸の使用は適さないことを示している。
【００８６】
Ｂ−凍結乾燥の実施例
実施例Ｂ−１：マトリックスとして１Ｍ塩酸を用いた凍結乾燥
まず、実施例Ａ−１に基づいて、アミホスチンの溶液を１Ｍ塩酸中でアミノチオールに変換させた。変換後、溶液を水で希釈して、アミノチオールとして示す５０ｍｇ／ｍｌの最終溶液を得た。２ｍｌをガラスバイアルに分配して、凍結乾燥した。
【００８７】
凍結乾燥法の一例：
【表５】
2019535801.tif 000008
【００８８】
凍結乾燥後に得られた固形物の外観は、良好であった。再構成のために、ポロキサマー４０７／１８８をそれぞれ１９重量％／６重量％含有するプラセボゲルを２ｍｌ加え、５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールの最終感熱性ゲルを得た。このゲルのゲル化温度は、２５℃〜３０℃の範囲にあった。
【００８９】
実施例Ｂ−２：マトリックスとして４Ｍ塩酸およびポロキサマー２１／４を用いた凍結乾燥
まず、（実施例Ａ−２に基づいて）５００ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液を、６０℃で１時間、４Ｍ塩酸中でアミノチオールに完全に変換させた。変換後、溶液をポロキサマーＰ４０７／Ｐ１８８（それぞれ２１重量％／４重量％）で希釈して、アミノチオールとして示す５０ｍｇ／ｍｌの最終ゲルを得た。次に、２ｍｌをガラスバイアルに分配して、凍結乾燥した。
【００９０】
凍結乾燥法の一例：
【表６】
2019535801.tif 000009
【００９１】
凍結乾燥後に得られた固形物の外観は、良好であった。
【００９２】
再構成のために、水を１．４ｍｌ加え、５０ｍｇ／ｍｌのＷＲ−１０６５の最終感熱性ゲルを得た。このゲルのゲル化温度は、２８℃〜３０℃の範囲にあった。
【００９３】
実施例Ｂ−３：マトリックスとして４Ｍ塩酸およびポロキサマー１８／６を用いた凍結乾燥
まず、（実施例Ａ−２に基づいて）５００ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液を、６０℃で１時間、４Ｍ塩酸中でアミノチオールに完全に変換させた。変換後、溶液をポロキサマーＰ４０７／Ｐ１８８（それぞれ１８重量％／６重量％）で希釈して、アミノチオールとして示す５０ｍｇ／ｍｌの最終ゲルを得た。次に、２ｍｌをガラスバイアルに分配して、凍結乾燥した。
【００９４】
適用した凍結乾燥法は、実施例Ｂ−２で示したものと同じである。
【００９５】
凍結乾燥後に得られた固形物の外観は、良好であった。
【００９６】
再構成のために、水を１．４ｍｌ加え、５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールの最終感熱性ゲルを得た。このゲルのゲル化温度は、６５℃〜７０℃の範囲にあった。
【００９７】
実施例Ｂ−４：マトリックスとして１Ｍ塩酸およびポロキサマー２０／４を用いた凍結乾燥
まず、３５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液を、６０℃で６時間、１Ｍ塩酸中でアミノチオールに完全に変換させた。変換後、溶液をポロキサマーＰ４０７／Ｐ１８８（それぞれ２０重量％／４重量％）で希釈して、アミノチオールとして示す５０ｍｇ／ｍｌの最終ゲルを得た。次に、２ｍｌをガラスバイアルに分配して、凍結乾燥した。
【００９８】
適用した凍結乾燥法は、実施例Ｂ−２で示したものと同じである。
【００９９】
凍結乾燥後に得られた固形物の外観は、良好であった。
【０１００】
再構成のために、水を１．５ｍｌ加え、５０ｍｇ／ｍｌのＷＲ−１０６５の最終感熱性ゲルを得た。このゲルのゲル化温度は、３０℃〜３５℃の範囲にあった。
【０１０１】
実施例Ｂ−５：マトリックスとして１Ｍ塩酸およびポリソルベート８０を用いた凍結乾燥
まず、実施例Ａ−１に基づいて、アミホスチンの溶液を１Ｍ塩酸中でアミノチオールに変換させた。変換後、溶液を抗凍結剤である０．２％のポリソルベート８０を含有する水で希釈して、アミノチオールとして示す５０ｍｇ／ｍｌの最終溶液を得た。２ｍｌをガラスバイアルに分配して、凍結乾燥した。
【０１０２】
適用した凍結乾燥法は、実施例Ｂ−２で示したものと同じである。
【０１０３】
得られた固形物は、凍結乾燥中に崩壊して、融解したような外観を有した。再構成のために、ポロキサマー４０７／１８８をそれぞれ１９重量％／６重量％含有するプラセボゲルを２ｍｌ加え、５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールの最終感熱性ゲルを得た。このゲルのゲル化温度は、２５℃〜３０℃の範囲にあった。
【０１０４】
実施例Ｂ−６：マトリックスとして４Ｍ塩酸を用いた凍結乾燥
まず、実施例Ａ−２に基づいて、アミホスチンの溶液を４Ｍ塩酸中でアミノチオールに完全に変換させた。変換後、溶液を水で希釈して、アミノチオールとして示す５０ｍｇ／ｍｌの最終溶液を得た。次に、２ｍｌをガラスバイアルに分配して、凍結乾燥した。
【０１０５】
凍結乾燥法の一例：
【表７】
2019535801.tif 000010
【０１０６】
得られた固形物は、凍結乾燥中に崩壊して、融解したような外観を有した。
【０１０７】
再構成のために、ポロキサマー４０７／１８８をそれぞれ１９重量％／６重量％含有するプラセボゲルを２ｍｌ加え、５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールの最終感熱性ゲルを得た。このゲルのゲル化温度は、約３０℃である。
【０１０８】
実施例Ｂ−７：マトリックスとして４Ｍ塩酸および水酸化ナトリウムを用いた凍結乾燥
まず、実施例Ａ−２に基づいて、アミホスチンの溶液を４Ｍ塩酸中でアミノチオールに完全に変換させた。変換後、１０Ｍ水酸化ナトリウムを加えて溶液のｐＨをｐＨ＞６．０となるよう調整した。次に、調整した溶液を水で希釈して、アミノチオールとして示す５０ｍｇ／ｍｌの最終溶液を得た。２ｍｌをガラスバイアルに分配して、凍結乾燥した。
【０１０９】
適用した凍結乾燥法は、実施例Ｂ−１で示したものと同じである。
【０１１０】
得られた固形物は、凍結乾燥中にかなり崩壊して、融解したような外観を有した。再構成のために、ポロキサマー４０７／１８８をそれぞれ１９重量％／６重量％含有するプラセボゲルを２ｍｌ加え、５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールの最終感熱性ゲルを得た。このゲルのゲル化温度は約３０℃である。
【０１１１】
Ｃ−アミノチオールゲルの調製
実施例Ｃ−１：５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを得るための、ポロキサマーゲルによる凍結乾燥粉末の再構成
５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを調製するために、実施例Ｂ−１（凍結乾燥マトリックス中の１ＭＨＣｌ）または実施例Ｂ−５（凍結乾燥マトリックス中の１ＭＨＣｌ＋ＰＳ８０）に記載したようにして得られた凍結乾燥物に、Ｐ４０７／Ｐ１８８（それぞれ１９重量％／６重量％）を２ｍｌ加えた。製剤化された最終ゲルのゲル化温度は、２５℃〜３０℃の範囲にあった。
【０１１２】
実施例Ｃ−２：５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを得るための、ポロキサマーゲルによる凍結乾燥粉末の再構成
５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを調製するために、実施例Ｂ−６（凍結乾燥マトリックス中の４ＭＨＣｌ）または実施例Ｂ−７（凍結乾燥マトリックス中の４ＭＨＣｌ＋ＮａＯＨ）に記載したようにして得られた凍結乾燥物に、Ｐ４０７／Ｐ１８８（それぞれ１９重量％／６重量％）を２ｍｌ加えた。製剤化された最終ゲルのゲル化温度は、約３０℃である。
【０１１３】
実施例Ｃ−３：５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを得るための、水溶液による凍結乾燥粉末の再構成
５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを調製するために、実施例Ｂ−２に記載したようにして得られた凍結乾燥粉末に、例えば、ハッカ／苦味抑制剤／水をそれぞれ４重量％／０．０５重量％／９５．９５重量％含有する溶液を１．４ｍｌ加えた。製剤化された最終ゲルのゲル化温度は、約２７℃〜２９℃である。
【０１１４】
実施例Ｃ−４：５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを得るための、水溶液による凍結乾燥粉末の再構成
５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを調製するために、実施例Ｂ−４に記載したようにして得られた凍結乾燥粉末に、水を１．５ｍｌ加えた。製剤化された最終ゲルのゲル化温度は、約３０℃〜３５℃である。
【０１１５】
実施例Ｃ−５：５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを得るための、水溶液による凍結乾燥粉末の再構成
５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを調製するために、実施例Ｂ−３に記載したようにして得られた凍結乾燥粉末に、水を１．４ｍｌ加えた。製剤化された最終ゲルのゲル化温度は、約６５℃〜７０℃である。
【０１１６】
Ｄ−アミノチオール（ＷＲ−１０６５）の凍結乾燥粉末の安定性
以下の安定性を比較するために、安定性試験を行った。
・  酸性条件下（１ＭＨＣｌまたは４ＭＨＣｌ）におけるアミホスチン（それぞれ３５０ｍｇ／ｍｌまたは５００ｍｇ／ｍｌ）を変換させ、水またはＰ４０７／Ｐ１８８の混合物で希釈した後に、（ＡおよびＢの実施例に基づいて）凍結乾燥して得られたＷＲ−１０６５。
・  ＷＲ−１０６５塩酸塩結晶粉末。
【０１１７】
安定性は、２５℃／６０％ＲＨのアルゴン雰囲気下で保管された試料の分析を行うことで評価された。アルゴンである理由は、同じ安定性条件下で２つの材料を評価することができるためである。
【０１１８】
【表８】
2019535801.tif 000011
【０１１９】
得られた安定性試験の結果は以下の通りである。
・  ２５℃／６０％ＲＨで１ヶ月後、試験したすべてのアミノチオール製剤中で検出された不純物は２％未満であり、この値は安定したままであった。
・  酸性条件下でのアミホスチンの変換から得られた凍結乾燥ＷＲ−１０６５およびＷＲ−１０６５塩酸塩は、同じ安定性を示した。
【０１２０】
Ｅ−安定なアミホスチン活性代謝物ゲル治療法の開発の試み
実施例Ｅ−１：アミノチオールの安定化
まず、アミノチオールのサーモゲルを開発する可能性に関して評価を行い、冷蔵条件下で少なくとも６ヶ月間安定な且つ迅速に使用できる製剤を得た。
【０１２１】
アミノチオールゲル製剤は、５℃または室温で保管すると安定しない。アミノチオールは、保管中、酸化不純物（ジスルフィドＷＲ−３３２７８）中で著しく分解される。
【０１２２】
例えば、５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルを５℃で１５日間保管すると、ジスルフィド不純物が３．６％（面積％）から１３．８％（面積％）へ増加した。
2019535801.tif 000012
【０１２３】
溶液中のアミノチオールの安定性を改善するために、以下の様々なパラメータを試験した。
・  酸化防止剤および／またはキレート剤のような防腐剤を含む添加剤（メタ重亜硫酸、ＥＤＴＡ、酒石酸、クエン酸、Ｎ−アセチルシステイン、α−リポ酸、塩酸システイン、アスコルビン酸、ジチオトレイトールＤＴＴ）。
・  窒素不活化。
・  薬物濃度（５０ｍｇ／ｍｌ、２２０ｍｇ／ｍｌ）。
【０１２４】
例えば、安定性試験は、５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールゲルに対して５℃±３℃で１ヵ月後に行われた。まず、（実施例Ａ−１に基づいて）１ＭＨＣｌ中で加熱した３５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液を変換させて、アミノチオールの溶液を調製した。次に、溶液を（アミノチオールとして示す）様々な抗酸化溶液で５０ｍｇ／ｍｌに希釈して、５℃±３℃の安定下に置いた。
【０１２５】
【表９】
2019535801.tif 000013
【０１２６】
試験した添加剤（酸化防止剤、キレート剤）が何であれ、アミノチオールの溶液は、５℃で十分に安定ではなく、ジスルフィド架橋の形成を回避することができなかった。さらに、Ｎ−アセチルシステインは、アミノチオールの分解を促進させて、重大な不純物を新たに生成させた。したがって、この選択は、アミノチオールを安定化するためには適切ではない。
【０１２７】
これらの中で最良の安定性は、０．５％のＤＴＴを有する製剤によって得られた。本製剤は、５℃で少なくとも１ヵ月間安定であったが、０．５％のＤＴＴは、今回の使用目的には適切ではない。
【０１２８】
実施例Ｅ−２：アミホスチンからアミノチオールへの迅速な変換
アミノチオールは安定でないので、本発明者らは、投与直前にアミノチオール（ＷＲ−１０６５）に変換されるアミホスチンのサーモゲルを開発する可能性に関して評価を行った。評価の目的は、商業的に適した生成物を開発するために、３０分未満で完全（＞９０％）に変換される適切な条件を見出すことであった。
【０１２９】
以下の実験において、様々なプラセボゲルにアミホスチンの結晶粉末を添加して、アミノチオールＷＲ−１０６５への変換率および収率を測定した。
【０１３０】
以下の様々なパラメータを試験した。
・  酸（塩酸、酢酸、リン酸、クエン酸、硫酸、過塩素酸）。
・  アミホスチンの濃度（２０ｍｇ／ｍｌ〜８０ｍｇ／ｍｌ）。
・  温度（３７℃または室温）。
【０１３１】
例えば、１４重量％のポロキサマーＰ４０７と、２６重量％のＰ１８８と、１５体積％または３０体積％の１ＭＨＣｌとの混合物を含有するプラセボゲル中に、４０ｍｇ／ｍｌの濃度でアミホスチン結晶性粉末を直接組み入れた。３７℃で３０分後、および室温で３０分から３時間まで、変換をモニターした。
【０１３２】
【表１０】
2019535801.tif 000014
【０１３３】
試験したパラメータにかかわらず、室温または３７℃で３０分後のアミノチオールへの変換率は、非常に低かった（得られた最大値は約３０％）。
【０１３４】
実施例Ｅ−３：ジスルフィドからアミノチオールへの迅速な変換
３０分以内にアミホスチンをアミノチオールに変換させることは困難であるため、投与直前にジスルフィドＷＲ−３３２７８をアミノチオールＷＲ−１０６５に変換させる別の製剤の選択肢に関して評価を行った。
【０１３５】
ジスルフィドからアミノチオールへの変換を、多量（３７．７面積％）のジスルフィドを含有するゲル製剤で試験した。ジスルフィド結合を還元するために、強力な還元剤であるジチオトレイトール（ＤＴＴ）を様々な濃度で試験した。
【０１３６】
まず、（実施例Ａ−１に基づいて）１ＭＨＣｌ中で加熱した３５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液を変換させて、アミノチオール溶液を調製した。次に、溶液を（アミノチオールと示す）水で５０ｍｇ／ｍｌに希釈し、室温で数日間保管して、分解によって多量のジスルフィドを生成させた。数日後、最終ゲルにＤＴＴを加え、室温でＤＴＴと共に３０分間インキュベートした後に、分析した。
【０１３７】
【表１１】
2019535801.tif 000015
【０１３８】
ＤＴＴを用いると、室温で３０分でジスルフィドをアミノチオールにかなり還元することができたが、ＤＴＴに必要な濃度は、毒性学的反応として認められる量よりも高かった。
【０１３９】
Ｆ−放射線関連口腔粘膜炎の予防のためのアミノチオールを含有する本発明によるサーモゲルの前臨床評価
実施例Ｆ−１：有効性試験のためのゲル製剤の調製
有効性試験には、以下の製剤を用いた。有効性試験の前日に製剤を調製し、５℃で保管して、投与日に分析した。
【０１４０】
使用したアミホスチンバッチの純度を考慮した。アミノチオール製剤のｍｇ／ｍｌ単位の濃度は、等価のアミホスチン濃度として示す。分子比を用いると、８０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンは、５０ｍｇ／ｍｌのアミノチオールに相当する。
【０１４１】
塗布状態をより良く視覚化するために、全てのゲル製剤をブリリアントブルーで着色した。
【０１４２】
【表１２】
2019535801.tif 000016
【０１４３】
ゲルＮｏ．１は、本発明によるサーモゲル組成物と同じ組成を有する（本発明による再構成凍結乾燥物に相当）。
【０１４４】
実施例Ｆ−２：実施例Ｆ−１のゲル製剤の有効性試験
本実施例の目的は、アミホスチンを含有する実施例Ｆ−１のサーモゲル組成物の、in vivoでの放射線誘発性口腔粘膜炎に対する有効性を評価することであった。
【０１４５】
Janvier CERT（Le Genest St.Isle, France）から購入した雌のＣ５７ＢＬ／６マウス（１２週齢）を、７日間の馴化期間後に使用した。これらは、食物（SAFE reference R0340, Augy, France）と水を自由に摂取できる環境に置かれ、室温２２±２℃および相対湿度５５±１５％で１２時間の明暗サイクルで飼育された。
【０１４６】
Varian社のＮＤＩ−２２６Ｘ線管（２００ｋＶ、１５ｍＡ、０．２ｍｍＣｕ）を用いて、１．３３Ｇｙ／分の線量率で局所的に照射を行い、身体の他の部分は鉛シールドで保護した。体重減少が２４時間以上で初期体重の２０％を超えた場合、または重篤な臨床徴候が認められた場合には、マウスを安楽死させた（倫理的評価項目）。
【０１４７】
以下の実験は、Mangoni Mangoni, M., Vozenin, M.C., Biti, G., and Deutsch, E. (2012).  Normal tissues toxicities triggered by combined anti-angiogenic and radiation therapies: hurdles might be ahead.（British journal of cancer, 107, 308-314.）に記載されている口腔粘膜炎モデルを用いて行われた。
【０１４８】
体重とパーキンズスコアという２つのパラメータをモニターした。これは、肉眼的観察により評価された浮腫と紅斑について個別のスコアを有する、パーキンズらが考案した任意のスコアシステムである（Parkins, C.S., Fowler, J.F., and Yu, S. (1983). A murine model of lip epidermal/mucosal reactions to X-irradiation. Radiotherapy and oncology: Journal of the European Society for Therapeutic Radiology and Oncology 1, 159-165）。実際、高線量の照射では、照射から約５日後には口唇の表皮／粘膜の反応が観察され、照射から約１０日〜１３日後にはピークに達した。主な反応は、浮腫と紅斑であった。パーキンズスコアは、浮腫のスコアと紅斑のスコアの合計を表す。
【０１４９】
パーキンズスコアは、次のように算出される：「パーキンズスコア」＝浮腫スコア＋紅斑スコア。
【０１５０】
【表１３】
2019535801.tif 000017
【０１５１】
【表１４】
2019535801.tif 000018
【０１５２】
＜実験＞
マウスの鼻に単回照射を行った。これは口唇の粘膜／表皮の反応を誘発し、その反応を肉眼的観察およびスコアリングによりモニターした。
【０１５３】
口腔粘膜炎の重症度および持続期間に対する活性物質を含有するまたは含有しないゲルの効果を明らかにするために、盲検試験を行った。プラセボゲル（ゲルＮｏ．３）、８０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンを含有するゲル（ゲルＮｏ．２）、および５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンチオールを含有するゲル（ゲルＮｏ．１）（８０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンに相当）の３つのゲルに関して評価を行った。ゲル塗布の１０分前に、マウスに麻酔をかけた（ケタミン７５ｍｇ／ｋｇ＋ドミター１ｍｇ／ｋｇを腹腔内注射）。ゲルを口内（各頬に５μｌ）および口唇（４０μｌ）に塗布した。したがって、総量５０μｌがマウスの粘膜を覆い、これは、マウス１匹あたり４ｍｇのアミホスチンに相当する。ゲルの塗布から３０分後に、２０Ｇｙの単一画分（線量率１．３３Ｇｙ／分）をマウスの鼻に照射した。麻酔混合物の注射から１時間後に、アンチセダンを注射した。これらのマウスを、照射の３０分前にアミホスチンの静注投与（ＩＶ）（マウス１匹当たり４ｍｇ、すなわち２０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンの溶液の、２００μｌの静注投与に相当）を受けたマウス、および２０Ｇｙの局所的照射のみを受けた対照群のマウスと比較した。
【０１５４】
つまり、マウス３０匹を以下の５つの群に分けて、照射を行った。
・  対照群。
・  プラセボゲル群。
・  アミホスチンゲル（８０ｍｇ／ｍｌ、アミホスチン４ｍｇ／マウス）群。
・  アミノチオールゲル（５０ｍｇ／ｍｌ、アミホスチン８０ｍｇ／ｍｌまたはアミホスチン４ｍｇ／マウスに相当）群。
・  アミホスチン静注投与（ＩＶ）（２０ｍｇ／ｍｌ、アミホスチン４ｍｇ／マウス）群。
【０１５５】
図１は、パーキンズスコアおよび体重の経時変化を示すグラフである。図１では、曲線（＊）は対照群を示し、曲線（■）はプラセボゲル群を示し、曲線（◆）はアミホスチンゲル群を示し、曲線（▲）はアミホスチンチオールゲル群を示し、曲線（×）はアミホスチンＩＶ群を示す。
【０１５６】
腹側位でマウスの鼻に２０Ｇｙの線量を照射したところ、著しい体重減少および全身の健康状態の悪化を特徴とする重篤な表現型が誘発された。すべての対照マウスは、１４日目〜２０日目の間に殺処分された。プラセボゲル群では、マウスの表現型はさらに悪化する傾向を示したため、それより早めに殺処分された。生存期間中央値は、プラセボゲル群および対照群のそれぞれについて、１６日および１９日であった。
【０１５７】
ただし、この違いは統計的に重要ではないことに留意されたい（ログランク検定）。驚くべきことに、マウスは対照群のマウスと経時的に同様の表現型を示したため、ゲル中のアミホスチンの存在は粘膜炎の発生および強度に対して目に見える影響を及ぼさなかった。それどころか、アミホスチンの静注投与は、中程度の強度の粘膜反応をもたらした。浮腫および紅斑は、照射後２０日目には完全に消失し、この群では、２回目のピーク（治癒期間）は観察されなかった（図１）。興味深いことに、アミホスチンチオールゲルを用いると、マウスは中間表現型を示した。たとえ粘膜炎が確認されたとしても、急性反応（１０日目〜１５日目）の間に体重の減少はみられなかった。これらのマウスは、アミホスチンゲル群のマウスの運命とは明らかに対照的に、殺処分に至る評価項目に達することなく、すべて実験終了時に生存していた。
【０１５８】
アミホスチンゲル群およびアミホスチンチオールゲル群で観察された逆の表現型およびアミホスチンゲルの有効性の明らかな欠如は、アミホスチンがゲル中に含まれて鼻に塗布される場合、アミホスチンがアミホスチンチオールに変換されないか、または効率よく変換されないことを示唆している。したがって、放射線誘発性粘膜炎の発症を少なくとも部分的に予防するために、遊離活性化合物アミホスチンチオールを直接投与する必要がある。
【０１５９】
実施例Ｆ−３：２回目の有効性試験のためのゲル製剤の調製
有効性試験には、以下の製剤を用いた。有効性試験の前日に製剤を調製し、５℃で保管して、投与日に分析した。
【０１６０】
使用したアミホスチンバッチの純度を考慮した。ｍｇ／ｍｌ単位の濃度は、等価のアミホスチン濃度として示す。
【０１６１】
【表１５】
2019535801.tif 000019
【０１６２】
ゲルＮｏ．４、５および６は、本発明によるサーモゲル組成物と同じ組成を有する（本発明による再構成凍結乾燥物に相当）。
【０１６３】
実施例Ｆ−４：実施例Ｆ−３のゲル製剤の有効性試験
２回目の有効性試験の目的は、放射線誘発性粘膜炎に対するアミホスチンチオールの影響に関する１回目の試験で得られた結果を確認することと、用量反応関係に関するデータを確立することであった。８０ｍｇ／ｍｌのアミホスチン（５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンチオールに相当）を含有するゲルで中間的な効果が観察されたことから、電離放射線に対する口腔粘膜保護をより根本的に改善できるかを判定するために、より高濃度のゲルを試験することは興味深いものであった。
【０１６４】
本実験は、２０ｍｇ／ｍｌ、４０ｍｇ／ｍｌまたは８０ｍｇ／ｍｌのアミホスチン（それぞれ１２．５ｍｇ／ｍｌ、２５ｍｇ／ｍｌまたは５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンチオールに相当）を含有するゲルを用いて行った。実験終了まですべてのマウスが生存するように、より低い線量（１８Ｇｙの単回照射）で鼻に照射を行った。
【０１６５】
様々な量の化合物をマウスに投与した（マウス１匹あたり１ｍｇ、２ｍｇまたは４ｍｇ）。
【０１６６】
実施例Ｆ−２と同じ実験手順を用いた。簡単に説明すると、マウスに麻酔をかけ、群（ゲル塗布または静注投与）に応じて１０分後にアミホスチンまたはアミホスチンチオールを投与または投与せず、アミホスチンまたはアミホスチンチオールの投与から３０分後に背側位でマウスに１８Ｇｙの線量を照射して、２０分後に覚醒させた。
【０１６７】
マウス４０匹を以下の６つの群に分けた。
・  対照群（ｎ＝マウス６匹）。
・  プラセボゲル群（ｎ＝マウス６匹）。
・  アミホスチンチオールゲル（２０ｍｇ／ｍｌ、アミホスチン１ｍｇ／マウス）群（ｎ＝マウス６匹）。
・  アミホスチンチオールゲル（４０ｍｇ／ｍｌ、アミホスチン２ｍｇ／マウス）群（ｎ＝マウス６匹）。
・  アミホスチンチオールゲル（８０ｍｇ／ｍｌ、アミホスチン４ｍｇ／マウス）群（ｎ＝マウス６匹）。
・  アミホスチン静注投与（ＩＶ）（２０ｍｇ／ｍｌ、アミホスチン４ｍｇ／マウス）群（ｎ＝マウス５匹）。
【０１６８】
各群について、口腔粘膜炎の発症を、群に応じて５匹または６匹のマウスで評価を行った。１８Ｇｙの線量の照射は、１回めの有効性試験で用いられた２０Ｇｙの線量の照射よりも軽度の表現型を誘発した。体重減少は調製可能であり、マウスはすべて実験終了時に生存していた。
【０１６９】
図２は、パーキンズスコアおよび体重の経時変化を示すグラフである。図２では、曲線（◆）は対照群を示し、曲線（＊）はプラセボゲル群を示し、曲線（▲）はゲル群Ｎｏ．４を示し、曲線（■）はゲル群Ｎｏ．５を示し、曲線（×）はゲル群Ｎｏ．６を示し、曲線（●）はアミホスチンＩＶ群を示す。
【０１７０】
予想されたように、照射は、図２に示すように１３日目に対照群において粘膜反応のピークを誘発した。次に、実施例Ｆ−２でアミホスチンチオールゲル群において既に観察されたように、１８日目から３０日目まで治癒期間が続いた。アミホスチンＩＶ群においても、粘膜反応の急性ピークは１２日目に観察されたが、対照群のゲルで観察されたものより強度が低かった（それぞれのスコアは２．２、３．６）。実施例Ｆ−２で既に観察されたように、この群では治癒期間がほとんどなかった。他の群では、ピーク時のスコアは、プラセボゲル群および２０ｍｇ／ｍｌ、４０ｍｇ／ｍｌならびに８０ｍｇ／ｍｌのアミホスチン（それぞれ１２．５ｍｇ／ｍｌ、２５ｍｇ／ｍｌならびに５０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンチオールに相当）ゲル群において、それぞれ４．１、３．２、２．８および２．４であった。治癒期間中、対照群、プラセボゲル群、２０ｍｇ／ｋｇおよび４０ｍｇ／ｋｇのアミホスチンチオールゲル群の曲線は、互いにほとんど差がなかった。２０ｍｇ／ｋｇのアミホスチンチオールゲルの塗布は、粘膜炎のピークの強度を変化させず、治癒期間中に記録されたスコアは、対照群のスコアに匹敵した。
【０１７１】
４０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンチオールゲル群において、粘膜炎ピークの強度の減少が観察された。これは、８０ｍｇ／ｍｌのアミホスチンチオールゲルでさらに増強され、治癒期間中に記録されたスコアを減少させた。
【０１７２】
実施例Ｆ−５：３回目の有効性試験のための、水溶液による凍結乾燥粉末の再構成によるゲル製剤の調製
以下に説明する分画照射を用いた有効性試験のために、以下の製剤を用いた。有効性試験の前日に凍結乾燥サーモゲルを再構成し、５℃で保管して、投与日に分析した。
【０１７３】
使用したアミホスチンバッチの純度を考慮した。ｍｇ／ｍｌ単位の濃度は、等価のアミホスチン濃度として示す。
【０１７４】
【表１６】
2019535801.tif 000020
【０１７５】
再構成後、最終製剤ゲルＮｏ．８および９は、本発明による凍結乾燥前の組成と同じ組成を有する。
【０１７６】
実施例Ｆ−６：実施例Ｆ−５のゲル製剤の有効性試験
３回目の有効性試験の目的は、分画照射レジメンの構築において再構成された凍結乾燥サーモゲルを用いた、放射線誘発性粘膜炎に対するアミホスチンチオールの影響に関する１回目の実験で得られた結果を確認することであった。
【０１７７】
本実験は、プラセボゲルおよび４０ｍｇ／ｍｌのアミホスチン（２５ｍｇ／ｍｌのアミホスチンチオールに相当）を含有するゲルを用いて行った。８Ｇｙの４画分を４日間（０日目から３日目まで毎日、０日目は治療開始日に相当）連続して鼻に照射を行った。生物学的には、１８Ｇｙの１画分と同等であるため（生物学に有効な線量：ＢＥＤ〜１２０Ｇｙ）、８Ｇｙの４画分の分画スキームを選択した。各分画照射前に、同量の化合物（マウス１匹あたり２ｍｇのアミホスチンに相当）をマウスに投与した。したがって、この化合物を４日間連続して４回投与した。
【０１７８】
各日について、実施例Ｆ−２と同じ実験手順を用いた。簡単に説明すると、マウスに麻酔をかけ、群（ゲル塗布または静注投与）に応じて１０分後にアミホスチンまたはアミホスチンチオールを投与または投与せず、アミホスチンまたはアミホスチンチオールの投与から３０分後に背側位でマウスに８Ｇｙの線量を照射して、２０分後に覚醒させた。同じ実験手順を４日間連続して繰り返した。
【０１７９】
マウス２４匹を以下の４つの群に分けた。
・  ゲルなし照射の群（ｎ＝マウス６匹）。
・  アミホスチンチオールゲル（２５ｍｇ／ｍｌ、２ｍｇのアミホスチンまたは１．２５ｍｇのアミホスチンチオール／マウス／日に相当）で照射の群（ｎ＝マウス６匹）。
・  プラセボゲルで照射の群（ｎ＝マウス４匹）。
・  アミホスチン静注投与（ＩＶ）（アミホスチン２ｍｇ／マウス）で照射の群（ｎ＝マウス６匹）。
【０１８０】
各群について、口腔粘膜炎の発症および体重を、３日目から６０日目まで毎日（６日／週）分析した。図３は、パーキンズスコアおよび体重の経時変化を示すグラフである。図３では、曲線（◆）は対照群を示し、曲線（＊）はプラセボゲル群を示し、曲線（▲）はゲル群Ｎｏ．９を示し、曲線（■）はアミホスチンＩＶ群を示す。
【０１８１】
単回照射後に既に観察されたように、粘膜反応のピークは、対照群において初回の照射から１５日後に誘発された。治癒期間は照射後６０日まで続いた。１２日目〜１６日目に顕著な体重減少が観察され、粘膜炎のピークと相関していた。
【０１８２】
予想されたように、プラセボゲルは粘膜炎の発症、強度および持続期間に関して何ら影響を示さなかった。アミホスチンＩＶ群においても、粘膜反応の急性ピークは１５日目前後に観察されたが、強度は低く（スコアはアミホスチンＩＶ群で２．６、対照群で６．４）、マウスは３０日目までに粘膜炎から回復した。興味深いことに、アミホスチンＩＶ群と同じ結果がアミホスチンチオールゲル群で観察された。すなわち、ピークのスコアは２．６であり、マウスは３０日後には粘膜炎の徴候を全く示さなかった。したがって、アミホスチンチオールゲルを局所的に塗布することで、マウスを放射線誘発性粘膜炎から保護することができた。このゲルを用いると、粘膜炎の強度および持続期間がより低くなった。
【０１８３】
Ｇ−放射線関連皮膚紅斑の予防のためのアミノチオールを含有する本発明のサーモゲルの前臨床評価
実施例Ｇ−１：有効性試験のための、水溶液による凍結乾燥粉末の再構成によるゲル製剤の調製
以下に説明する分画照射を用いた有効性試験のために、以下の製剤を用いた。有効性試験の前日に凍結乾燥サーモゲルを再構成し、５℃で保管して、投与日に分析した。
【０１８４】
使用したアミホスチンバッチの純度を考慮した。ｍｇ／ｍｌ単位の濃度は、等価のアミホスチン濃度として示す。
【０１８５】
【表１７】
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【０１８６】
再構成後、最終製剤ゲルＮｏ．１０および１１は、本発明による凍結乾燥前の組成と同じ組成を有する。
【０１８７】
実施例Ｇ−２：実施例Ｇ−１のゲル製剤の有効性試験
本実施例の目的は、アミホスチンを含有する実施例Ｇ−１のサーモゲル組成物の、in vivoでの放射線誘発性皮膚紅斑に対する有効性を評価することであった。
【０１８８】
Janvier CERT（Le Genest St.Isle, France）から購入した雌のＣ５７ＢＬ／６マウス（１２週齢）を、７日間の馴化期間後に使用した。これらは、食物（SAFE reference R0340, Augy, France）と水を自由に摂取できる環境に置かれ、室温２２±２℃および相対湿度５５±１５％で１２時間の明暗サイクルで飼育された。
【０１８９】
ＸＲＡＤ３２０のＸ線管（３２０ｋＶ、１２．５ｍＡ）を用いて、１．０８Ｇｙ／分の線量率で局所的に照射を行い、身体の他の部分は鉛シールドで保護した。マウスの背部の皮膚のみに照射を行った。重篤な臨床徴候が認められた場合、または実験終了時に体重減少が２４時間以上で初期体重の２０％を超えた場合には、マウスを安楽死させた（倫理的評価項目）。
【０１９０】
高線量の照射では、照射から約１５日目から表皮反応（紅斑、落屑、潰瘍の形成など）が観察され、照射から約２０日目にピークに達した。任意のスコアシステムを用いて、放射線誘発性皮膚紅斑の発症に関して評価を行った。
【０１９１】
【表１８】
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【０１９２】
＜実験＞
本有効性試験の目的は、分画照射レジメンの構築において再構成された凍結乾燥サーモゲルを用いた、放射線誘発性皮膚紅斑に対するアミホスチンチオールの影響に関する評価を行うことであった。
【０１９３】
本実験は、プラセボゲルおよび４０ｍｇ／ｍｌのアミホスチン（２５ｍｇ／ｍｌのアミホスチンチオールに相当）を含有するゲルを用いて行った。１２Ｇｙの４分画を４日間（１日目から４日目まで毎日、１日目は治療開始日に相当）連続してマウスの背部の皮膚に照射を行った。各分画照射前に、同量の化合物（マウス１匹あたり４ｍｇのアミホスチンに相当）をマウスに投与した。したがって、この化合物を４日間連続で４回投与した。
【０１９４】
各日について、同様の実験手順を用いた。簡単に説明すると、マウスに麻酔をかけ、群に応じて１０分後にアミホスチンチオールゲルまたはプラセボゲルをマウスの背部の脱毛した皮膚に直接塗布した（ゲルの最終容量＝１００μｌ）。１時間後、水に浸した湿布を用いてゲルを除去した。次に、マウスに１２Ｇｙの線量を照射して、１０分後に覚醒させた。同じ実験手順を４日間連続して繰り返した。
【０１９５】
マウス１０匹を以下の３つの群に分けた。
・  ゲルなし照射の群（ｎ＝マウス４匹）。
・  アミホスチンチオールゲル（ゲルＮｏ．１１）（２５ｍｇ／ｍｌ、４ｍｇのアミホスチンまたは２．５ｍｇのアミホスチンチオール／マウス／日に相当）で照射の群（ｎ＝マウス３匹）。
・  プラセボゲル（ゲルＮｏ．１０）で照射の群（ｎ＝マウス３匹）。
【０１９６】
各群について、皮膚紅斑の発症および体重を、３日目から５０日目まで毎日（６日／週）分析した。肉眼的観察およびスコアリングにより表皮反応をモニターした。図４は、紅斑スコアの経時変化を示すグラフである。対照群、プラセボゲル（ゲルＮｏ．１０）群、およびゲル群Ｎｏ．１１を示す個々の曲線を、それぞれ図４Ａ〜図４Ｃに示す。
【０１９７】
我々の実験において、マウスの皮膚に対する照射は、２０日目前後の表皮反応のピークを伴う重篤な落屑を誘発した。落屑は、観察期間の終わりには横ばいでありながら依然として存在していた。実験期間中、体重減少は観察されなかった。予想されたように、プラセボゲルは表皮反応の発生、強度、持続期間に関して何ら影響を示さなかった。興味深いことに、アミホスチンチオールゲルで処置したマウスの群では、３匹中２匹で紅斑の発症が遅延し、そのうちの１匹が皮膚反応から治癒し、５０日目までに紅斑から回復した（５０日目でのスコアは０．５）。したがって、アミホスチンチオールゲルを局所的に投与することで、放射線誘発性紅斑からマウスを保護することができると考える。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【国際調査報告】
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