(57)【要約】  肝炎を効果的に予防および治療することができるだけでなく、使用時に副作用がなく安全な、モノアセチルジアシルグリセロール化合物を含有する肝炎の予防または治療用組成物が開示される。前記組成物は、明細書の化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール化合物を有効成分として含有する。明細書の化学式１中、Ｒ１およびＲ２は、それぞれ独立して、炭素原子数１４〜２２の脂肪酸基である。【選択図】図１
2019534273.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記化学式１で表示されるモノアセチルジアシルグリセロール化合物を有効成分として含有する、肝炎の予防または治療用薬学的組成物: 
(化学式１) 
2019534273.tif 000008
式中、Ｒ１及びＲ２はそれぞれ独立して、炭素原子数１４〜２２の脂肪酸基である。
【請求項２】
前記Ｒ１およびＲ２はそれぞれ独立して、パルミトイル、オレオイル、リノレオイル、リノレノイル、ステアロイル、ミリストイル、およびアラキドノイルで構成される群から選択されることを特徴とする請求項１に記載の肝炎の予防または治療用薬学的組成物。 
【請求項３】
前記モノアセチルジアシルグリセロール化合物は下記の化学式２で表示される化合物であることを特徴とする請求項１に記載の肝炎の予防または治療用薬学的組成物:
(化学式２)
2019534273.tif 000009
。
【請求項４】
前記モノアセチルジアシルグリセロール化合物は、ＩＬ‐４、ＩＬ‐６および／またはＭＩＰ‐２の発現および／または活性を抑制することを特徴とする請求項１に記載の肝炎の予防または治療用薬学的組成物。
【請求項５】
前記ＭＩＰ‐２は、ＣＸＣＬ２および／またはＩＬ‐８であることを特徴とする請求項４に記載の肝炎の予防または治療用薬学的組成物。
【請求項６】
前記ＩＬ‐４は、肝サイトカインのリン酸化、吸着分子の発現、および／または好中球の移動を抑制することを特徴とする請求項４に記載の肝炎の予防または治療用薬学的組成物。
【請求項７】
前記サイトカインは、ＰＫＣ‐ζ、ＰＫＣδ、ＰＫＣθ、ＳＴＡＴ６、およびこれらの混合物からなる群から選択されることを特徴とする請求項６に記載の肝炎の予防または治療用薬学的組成物。
【請求項８】
下記化学式１で表示されるモノアセチルジアシルグリセロール化合物を有効成分として含有し、肝炎を予防または改善することができる健康機能食品組成物: 
(化学式１) 
2019534273.tif 000010
式中、Ｒ１及びＲ２はそれぞれ独立して、炭素原子数１４〜２２の脂肪酸基である。
【請求項９】
請求項１または請求項８に記載の組成物を肝炎疾患の疑心個体に投与するステップを含む、肝炎の予防または治療方法。
【請求項１０】
前記組成物に含まれるモノアセチルジアシルグリセロール化合物の投与量は、１日０．００１〜２０００ｍｇ／ｋｇであることを特徴とする請求項９に記載の肝炎の予防または治療方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、モノアセチルジアシルグリセロール化合物を含有する肝炎の予防または治療用組成物に関し、より詳細には、肝炎を効果的に予防および治療することができるだけでなく、使用時に副作用がなく安全な、モノアセチルジアシルグリセロール化合物を含有する肝炎の予防または治療用組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
肝臓は、体の臓器において最も重要な代謝器官の１つであって、胆汁分泌、栄養素の貯蔵、解毒作用などの重要な機能を果たすため、肝臓に異常が起こる場合は、糖質代謝、脂質代謝、タンパク質と窒素代謝、アミノ酸代謝、タンパク質代謝や肝性脳疾患、ビタミン代謝、吸収不良などの代謝性障害が発生し、肝炎、脂肪性肝臓、肝硬変症などの肝臓疾患が悪化し得る。現在まで知られている肝臓疾患としては、薬物などによる急性肝炎、飲酒などによる脂肪肝、ウイルス感染による急性肝炎、前記急性肝炎が変形した慢性肝炎、または前記障害に伴う肝硬変などの様々な肝臓機能障害を生じる疾患が知られている。
【０００３】
中でも、肝炎は、Ｔ細胞媒介の免疫反応および肝の炎症による疾患である。このような条件で、新規白血球の増加、および肝臓内におけるかかる細胞らの部位は、病気の発症を誘導する。肝炎の発症機構については多く知られているが、依然として、治療の目標（対象、標的）は、満足のいくものではない。コンカナバリンＡ（Ｃｏｎｃａｎａｖａｌｉｎ  Ａ、以下、ＣｏｎＡ）は、Ｔ細胞の活性およびＴ細胞媒介の肝損傷の招来を誘導する(Gantner F, Leist M, Lohse AW, Germann PG, Tiegs G. Concanavalin A-induced T-cell- mediated hepatic injury in mice: the role of tumor necrosis factor. Hepatology 1995;21:190-198)。このような肝細胞の損傷状態で、Ｔ細胞とマクロファージは、ＩＦＮγ、ＴＮＦα、ＩＬ‐４などの種々のサイトカインを分泌し、特に、ＩＬ‐４およびＩＬ‐１３はＳＴＡＴ６を活性化させる。これは、Ｔｈ２分化、組織付着、炎症および造血組織に対する様々な効果を起こす主な原因である。ＩＬ‐４は、ヒト臍帯静脈血管内皮によるＩＬ‐８の生産(Striz I, Mio T, Adachi Y, Robbins RA, Romberger DJ, Rennard SI. IL-4 and IL-13 stimulate human bronchial epithelial cells to release IL-8. Inflammation 1999;23:545-555)、およびこのサイトカインのＳＴＡＴ３経路を介した好中球のトラフィッキングの調節を誘導する。また、最近の報告によると、ＩＬ‐４によるＳＴＡＴ６の活性が白血球の移動を促進することにより、肝損傷の悪化を誘導することもある(Jaruga B, Hong F, Sun R, Radaeva S, Gao B. Crucial role of IL-4/STAT6 in T cell-mediated hepatitis: up-regulating eotaxins and IL-5 and recruiting leukocytes. J Immunol 2003;171:3233-3244)。
【０００４】
また、かかる肝臓疾患を治療するための薬物を開発しようとする努力が続けられているが、今まで、肝臓疾患に対して臨床的に効果が認められた薬物は少数に過ぎない。このような薬物の薬理効果を検索するための最も有用な方法としては、四塩化炭素（ＣＣｌ４）により誘発される血清中のＧＯＴおよびＧＰＴのレベルの急激な増加に対する保護効果を測定する方法が知られており、このように四塩化炭素によって誘発された肝臓疾患を抑制可能な物質として検索された薬物は、肝保護活性（ｌｉｖｅｒ‐ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ  ａｃｔｉｏｎ）および解毒促進効果（ｄｅｔｏｘｉｆｙｉｎｇ  ｅｆｆｅｃｔ）を示すと知られている(参照: Kiso, Y., Shoyaku, 36:238-243, 1982; Glende, E. A., Biochem. Pharmacol., 25:2163-2169, 1976)。また、四塩化炭素と類似に肝臓疾患を誘発させる物質として知られているガラクトサミンは、肝に特異的に作用して各種疾患を引き起こし得るが、主に、肝細胞壊死、および肝細胞と肝門脈（ｈｅｐａｔｉｃ  ｐｏｒｔａｌ  ｖｅｉｎ）における炎症を誘発させ、慢性肝臓疾患に誘導する場合、肝硬変、細胞性腫瘍を誘発させ得ると知られている。
【０００５】
現在まで、肝臓疾患の治療剤として種々の製品が開発されているが、実質的にその効能が立証されたものは、シリマリン（ｓｉｌｙｍａｒｉｎ、ＳＩＬ）、ビフェニルジメチルジカルボン酸塩（ｂｉｐｈｅｎｙｌ  ｄｉｍｅｔｈｙｌ  ｄｉｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ、ＤＤＢ）、ウルソデオキシコール酸（ｕｒｓｏｄｅｏｘｙｃｈｏｌｉｃ  ａｃｉｄ、ＵＤＣＡ）などのいくつかの種類に過ぎず、これらの治療剤は、適用可能な肝臓疾患の種類が制限されているという欠点がある。これは、肝臓の多様な機能により、一種類の疾患を治療するために治療剤を投与する場合、目的の疾患は治療できたが、不測の副作用が発生することもあり、肝臓疾患が誤診される際には、治療剤の誤投与により肝臓疾患がさらに悪する恐れもあるためである。さらに、現在まで開発された殆どの薬物は、発症した肝臓疾患を治療するための薬物であり、肝臓疾患を予め予防できる薬物についての研究成果は不十分な状況である。そこで、副作用がなく、肝臓疾患の予防および治療に使用可能な薬物の開発が強く求められており、副作用のない、肝臓疾患の予防および治療効果を示す成分を天然物抽出物から抽出しようとする努力が続けられている。例えば、緑茶から抽出された抽出物がＵＤＰ‐グルクロノシルトランスフェラーゼ（ＵＤＰ‐ｇｌｕｃｕｒｏｎｏｓｙｌ  ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）の活性を増加させ、肝臓内の発癌物質の排出を増加させることができるという結果(参照: A. Bu-Abbas et al., Food and Chemical Toxicology, 33(1):27-30, 1995; O. S. Sohn et al., Food and Chemical Toxicology, 36:617-621, 1998)が報告されたこともあるが、実質的な肝癌の治療効果は証明できていない。また、その他の肝臓疾患を好転させることが可能な抽出物に関する研究は、なかなか進展がない状況である。
【０００６】
したがって、副作用がなく、肝炎の予防および治療に効果的に使用可能な組成物を開発すべきであることの必要性が高くなりつつある。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
したがって、本発明の目的は、肝炎を効果的に予防または治療しながら副作用のない、モノアセチルジアシルグリセロール化合物を含有する、肝炎の予防または治療用組成物を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
前記目的を達成するために、本発明は、下記化学式１で表示されるモノアセチルジアシルグリセロール化合物を有効成分として含有する、肝炎の予防または治療用薬学的組成物を提供する:
(化学式１) 
2019534273.tif 000003
式中、Ｒ１及びＲ２は、それぞれ独立して、炭素原子数１４〜２２の脂肪酸基である。
【０００９】
本発明はまた、前記モノアセチルジアシルグリセロール化合物を有効成分として含有し、肝炎を予防または改善することができる健康機能食品組成物および、前記薬学的組成物を肝炎疾患の疑心個体に投与するステップを含む、肝炎の予防または治療方法を提供する。
【発明の効果】
【００１０】
本発明による組成物は、肝炎の予防または治療に有用であるだけでなく、使用時に副作用がなく安全に使用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】本発明のＰＬＡＧを用いた、肝炎を予防するメカニズムの一例を示す図である。
【図２】本発明の組成物を投与した際に、血漿中のサイトカインの変化を示すグラフである。
【図３】本発明の組成物を投与した際に、肝組織中のサイトカインの変化を示すグラフ（Ａ）およびＲＴ‐ＰＣＲ写真（Ｂ）である。
【図４】本発明の組成物を投与した際に、血液（Ａ）および肝組織（Ｂ）中の好中球および白血球の変化を示すグラフである。
【図５】本発明の組成物を投与した際に、肝組織中の損傷部位に位置する好中球細胞の残存有無を示す写真である。
【図６】本発明の組成物を投与した際に、肝損傷に対するＰＬＡＧの緩和効果を示す写真である。
【図７】本発明の組成物を投与した際に、ＰＬＡＧの投与量による、肝細胞起源のＨｅｐＧ３Ｂ細胞およびＨＬ‐６０細胞のＷＳＴ  ａｓｓａｙ結果を示すグラフである。
【図８】本発明の組成物を投与した際に、ＰＬＡＧの投与量による、ＩＬ‐４により誘導されるＳＴＡＴ６の活性および関連信号伝逹機構の抑制効果を示す図である。
【図９】本発明のＰＬＡＧおよびＰＬＧの構造（Ａ）および効果比較（ＢおよびＣ）を示す図である。
【図１０】本発明の組成物を投与した際に、ＳＴＡＴ６の転写活性を示すグラフである。
【図１１】本発明の組成物を投与した際に、ＰＬＡＧに投与量による、ＩＬ‐８およびＶＣＡＭ‐１の発現変化と細胞接着能の減少効果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
以下、添付図面を参照し、本発明をより詳細に説明する。
【００１３】
本発明による肝炎の予防または治療用薬学組成物は、下記化学式１で表されるモノアセチルジアシルグリセロール化合物を有効成分として含有する:
【００１４】
(化学式１) 
2019534273.tif 000004
式中、Ｒ１およびＲ２は、それぞれ独立して、炭素原子数１４〜２２、好ましくは炭素原子数１５〜２０の脂肪酸基である。
【００１５】
本発明において用語、「モノアセチルジアシルグリセロール化合物」とは、１つのアセチル基と２つのアシル基を有するグリセロールの誘導体を意味し、モノアセチルジグリセロール（ＭＡＤＧ）ともいう。上記の式において、Ｒ１およびＲ２は、それぞれ炭素原子数１４〜２２の脂肪酸基(脂肪酸からヒドロキシ基を除いた残りの部分を意味)であり、好ましくはパルミトイル（ｐａｌｍｉｔｏｙｌ）、オレオイル（ｏｌｅｏｙｌ）、リノレオイル（ｌｉｎｏｌｅｏｙｌ）、リノレノイル（ｌｉｎｏｌｅｎｏｙｌ）、ステアロイル（ｓｔｅａｒｏｙｌ）、ミリストイル（ｍｙｒｉｓｔｏｙｌ）またはアラキドノイル（ａｒａｃｈｉｄｏｎｏｙｌ）などであってもよいが、これらに限定されない。さらに好ましくは、上記Ｒ１及びＲ２の組み合わせはオレオイル／パルミトイル、パルミトイル／オレオイル、パルミトイル／リノレオイル、パルミトイル／リノレノイル、パルミトイル／アラキドノイル、パルミトイル／ステアロイル、パルミトイル／パルミトイル、オレオイル／ステアロイル、リノレオイル／パルミトイル、リノレオイル／ステアロイル、ステアロイル／リノレオイル、ステアロイル／オレオイル、ミリストイル／リノレオイルまたはミリストイル／オレオイルなどであってもよく、最も好ましくは、上記Ｒ１及びＲ２の組み合わせはそれぞれパルミトイル／リノレノイルである。また、光学活性において、上記モノアセチルジアシルグリセロール化合物は（Ｒ）−形、（Ｓ）−形またはラセミ体であってもよく、好ましくはラセミ体であり、上記化合物の立体異性体もすべて本発明の範囲内に含まれる。
【００１６】
例えば、上記モノアセチルジアシルグリセロール類化合物は、好ましくは、下記化学式２で表示される化合物であってもよい:
(化学式２)
2019534273.tif 000005
。
【００１７】
上記化学式２で表示される化合物は１−パルミトイル（ｐａｌｍｉｔｏｙｌ）−２−リノレオイル（ｌｉｎｏｌｅｏｙｌ）−３−アセチルグリセロール（ａｃｅｔｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ）であり、上記化学式のＲ１とＲ２は、それぞれパルミトイルとリノレオイルである場合に該当し、必要に応じて、「ＥＣ−１８」または「ＰＬＡＧ」 とも命名される。
【００１８】
本発明のモノアセチルジアシルグリセロール類化合物は、鹿茸から抽出／分離したり、公知の有機合成法により製造される。例えば、鹿茸をヘキサンで抽出し、その抽出の残余を再びクロロホルムにより抽出した後、収得した抽出液を減圧蒸留して鹿茸のクロロホルム抽出物を収得することができる。上記抽出において使用される抽出溶媒であるヘキサン及びクロロホルムの量はそれぞれ使用された鹿茸が浸る程度の量であれば十分で、一般的には、鹿茸１ｋｇに対しヘキサン及びクロロホルムをそれぞれ４〜５ｌの割合で使用されるが、抽出溶媒の種類及び使用量は、これに限定されない。このような方法で収得した鹿茸のクロロホルム抽出物が、シリカゲルコラムクロマトグラフィー及びＴＬＣ方法によりさらに分画化され精製されて、本発明に使用されるモノアセチルジアシルグリセロール類化合物が得られる。上記クロマトグラフィー精製段階の溶離液としてはクロロホルム／メタノール、ヘキサン／酢酸エチル、ヘキサン／酢酸エチル／酢酸などが用いられるが、これに制限されない。
【００１９】
上記モノアセチルジアシルグリセロール化合物を化学的に合成する方法の一例は、大韓民国特許登録番号１０−０７８９３２３号公報に開示されている。上記特許方法によると、（ａ）１−Ｒ１−グリセロールの３番位置に保護基を導入して１−Ｒ１−３−保護基−グリセロールを製造する過程、（ｂ）１−Ｒ１−３−保護基−グリセロールの２番位置にＲ２基を導入して１−Ｒ１−２−Ｒ２−３−保護基−グリセロールを製造する過程及び、（ｃ）１−Ｒ１−２−Ｒ２−３−保護基−グリセロールの脱保護反応及びアセチル化反応を同時に実行する過程により、目的とするモノアセチルジアシルグリセロール類化合物を合成することができる、他の方法としてはホスファチジルコリンを加酢酸分解（ａｃｅｔｏｌｙｓｉｓ）方法を使用してもよいが、これに限定されない。
【００２０】
前記モノアセチルジアシルグリセロール化合物は、肝炎の改善、予防、または治療において優れた活性を示す。
【００２１】
本発明の薬学(Pharmaceutical)組成物に含まれるモノアセチルジアシルグリセロール化合物の含量は、特に限定されないが、組成物総重量に対して０．０００１〜１００．０重量％、好ましくは０．００１〜９９重量％、さらに好ましくは０．００１〜５０重量％、最も好ましくは０．０１〜２０重量％を含むことができる。必要に応じて、本発明の薬学組成物は、肝炎の治療効果を有する他の活性成分をさらに含んでもよく、例えば、軟質カプセル（ｓｏｆｔ  ｃａｐｓｕｌｅ）として製造する場合には、酸化防止剤（ａｎｔｉ‐ｏｘｉｄａｎｔ）として、０〜５重量％、好ましくは０．１〜３重量％、より好ましくは０．５〜１．５重量％のαトコフェロール（ａｌｐｈａ‐ｔｏｃｏｐｈｅｒｏｌ）などを含んでもよい。本発明の薬学的組成物は錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤、懸濁剤、内用液剤、シロップ剤、滅菌された水溶液、非水性溶剤、懸濁剤、凍結乾燥剤、坐剤などの剤形を有することができ、経口または非経口の様々な剤形であってもよい。製剤化に際して、通常使用される充填剤、増量剤、結合剤、湿潤剤、崩壊剤、界面活性剤などの希釈剤または賦形剤を用いることができる。したがって、本発明に係る薬学的組成物は、薬学組成物の製造時に通常用いる適切な担体、賦形剤、希釈剤などをさらに含んでもよい。上記薬学的組成物は錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤、懸濁剤、内用液剤、油剤、シロップ剤、滅菌された水溶液、非水性溶剤、懸濁剤、凍結乾燥剤、坐剤などの剤形を有することができ、経口または非経口の様々な剤形であってもよい。製剤化に際して、通常使用される充填剤、増量剤、結合剤、湿潤剤、崩壊剤、界面活性剤などの希釈剤または賦形剤を用いることができる。経口投与のための固形製剤には錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤などが含まれ、このような固形製剤は、一つ以上の化合物に少なくとも一つ以上の賦形剤、例えば、澱粉、炭酸カルシウム、スクロース（ｓｕｃｒｏｓｅ）、ラクトース（ｌａｃｔｏｓｅ）、ゼラチンなどを混合して調製する。また、単純な賦形剤以外にステアリン酸マグネシウム、タルクなどのような潤滑剤も用いることができる。経口投与のための液状製剤としては懸濁剤、内用液剤、油剤、シロップ剤などがなどがあって、よく使用される単純希釈剤である水、リキッドパラフィン以外に様々な賦形剤、例えば湿潤剤、甘味剤、芳香剤、保存剤などを含むことができる。非経口投与のための製剤には、滅菌された水溶液、非水性溶剤、懸濁剤、乳剤、凍結乾燥製剤、坐剤などがある。非水性溶剤、懸濁溶剤にはプロピレングリコール（ｐｒｏｐｙｌｅｎｅ  ｇｌｙｃｏｌ）、ポリエチレングリコール、オリーブオイルなどの植物性油、オレイン酸エチルのような注射可能なエステルなどが用いることができる。坐剤の基剤にはウィテプソル（ｗｉｔｅｐｓｏｌ）、マクロゴール、ツイン（ｔｗｅｅｎ）６１、カカオ脂、ラウリン脂、グリセロゼラチンなどが用いることができる。
【００２２】
本発明の組成物は薬学的に有効な量で投与することができる。本発明において、用語「薬学的に有効な量」とは、医学的治療に適用可能な合理的な受恵／危険の比率で疾患を治療するのに十分な量を意味し、有効用量のレベルは個体の種類、年齢、性別、体重、病気の種類、病気の重症度、薬物の活性、薬物に対する敏感度、薬物の形態、投与経路、投与期間、排出比率、同時に使用される薬物、その他医学分野によく知られている要素とによって決定できる。本発明の組成物は個別治療剤として投与したり、他の治療剤と併用して投与が可能であり、他の治療剤とは順次または同時に投与が可能である。上記要素いずれもを考慮して副作用なしに最小限の量で最大効果が得られる量を投与するのが重要であり、当業者によって容易に決定可能である。本発明の化合物の望ましい投与量は、正しい医学的判断の範囲内で担当医によって決定されるが、一般に０．００１〜２０００ｍｇ／ｋｇの量、好ましくは０．０５〜４００ｍｇ／ｋｇ、より好ましくは０．１〜２００ｍｇ／ｋｇの量を一日１回〜複数回に分けて投与することができる。例えば、体重６０ｋｇの成人に、１日１ｍｇ〜１ｇの用量、好ましくは３０ｍｇ〜１２０ｍｇの用量で１回〜複数回投与してもよい。本発明の組成物は、毒性および副作用がないため、予防または治療の目的で長期間服用することも可能である。本発明の組成物は、肝炎の予防または治療を目的とする全ての個体に適用可能である。このような個体の例は、人間だけでなく、猿、犬、猫、ウサギ、モルモット、ラット、マウス、牛、羊、豚、ヤギなどのような非人間動物、哺乳類などを含む。
【００２３】
また、下記化学式１で表示されるモノアセチルジアシルグリセロール化合物を有効成分として含有し、肝炎を予防または改善することができる健康機能食品組成物を提供する: 
(化学式１) 
2019534273.tif 000006
式中、Ｒ１及びＲ２はそれぞれ独立して、炭素原子数１４〜２２の脂肪酸基である。 
【００２４】
すなわち、本発明のモノアセチルジアシルグリセロール化合物を健康機能食品組成物に含むさせて、対象個体の肝炎を予防または改善することができる。上記モノアセチルジアシルグリセロール化合物、肝炎に対しては上記で説明したとおりである。本発明の化合物を健康機能食品組成物に含めて使用する場合、有効成分の混合量は使用目的により適するように決定される。一般的に、食品または飲料の製造時に本発明の 化合物は原料１００重量部に対し、好ましくは０．０１〜１５重量部、より好ましくは０．０２〜１０重量部、最も好ましくは０．３〜１重量部の量で添加 することができる。しかし、健康調節及び衛生を目的とする長期間の摂取時の場合には上記量は上記範囲以下であることができ、 必要に応じて、上記範囲以上の量でも使用することができる。本発明の化合物を含まれる健康機能食品の種類には特別な制限はなく、具体的な例としては肉類、ソーセージ、パン、チョコレート、キャンディ類、スナック類、菓子類、ピザ、ラーメン、その他の麺類、ガム類、アイスクリーム類を含む酪農製品、各種スープ、飲料、茶、ドリンク剤、アルコール飲料、ビタミン複合剤などがあり、通常的な健康機能食品を全て含み、動物用飼料を含むことができる。
【００２５】
また、本発明の健康機能食品組成物が飲料形態に用いられる場合は、通常の甘味剤、香味剤または天然炭水化物などを追加成分として含有してもよい。上記天然炭水化物とは、ブドウ糖、果糖などのモノサッカライド、マルトース、シュークロスなどのジサッカライド、デキストリン、サイクロデキストリンなどのポリサッカライド、及びキシリトール、ソルビトール、エリトリトールなどの糖アルコールであってもよい。上記天然炭水化物の比率は、本発明の組成物１００ｍｌ当たり好ましくは、約０．０１ないし０．０４ｇ、より好ましくは０．０２乃至０．０３ｇであってもよい。上記甘味剤としては、タウマチン、ステビア抽出物などの天然甘味剤及びサッカリン、アスファルタムなどの合成甘味剤などが挙げられる。上記以外に本発明の健康機能食品組成物は種々の栄養剤、ビタミン、電解質、風味剤、着色剤、ペクト酸及びその塩、アルギン酸及びその塩、有機酸、保護性コロイド増粘剤、ｐＨ調節剤、安定化剤、防腐剤、グリセリン、アルコール、炭酸飲料に使われる炭酸化剤などを含有してもよい。その他、天然果物ジュース、果物ジュース飲料及び野菜飲料の製造のための果肉を含有してもよい。
【００２６】
また、本発明は、上記薬学的組成物を肝炎の疑心個体に投与するステップを含む、肝炎の予防または治療方法を提供する。すなわち、本発明の化合物を肝炎の疑心個体に投与することで、肝炎を効率的に治療できる。本発明において、前記肝炎が疑われる個体は、肝炎を有しているか、発症可能性のある個体を意味する。本発明の 治療方法において、上記モノアセチルジアシルグリセロール化合物の種類、モノアセチルジアシルグリセロール化合物の投与量、および肝炎については上記で説明したとおりだ。本発明で用語、「投与」はいかなる適切な方法で肝炎の疑心個体に本発明の薬学的組成物を導入するのを意味する。投与経路は目的組織に到達できる限り経口または非経口の多様な経路であってもよく、例えば、経口投与、腹腔内投与、経皮投与(局所塗布など) 、静脈内投与、筋肉内投与、皮下内投与、内皮投与、鼻内投与、直腸内投与、鼻腔内投与などを含むが、これらに制限されない。本発明において用語、「予防」は、本発明の組成物の投与で肝炎の発病を抑制または遅延させるあらゆる行為を意味し、「治療」とは、本発明の組成物によって肝炎疾患症状が好転したり有益に変更されるあらゆる行為を意味し、「改善」は、本発明の組成物を利用して肝炎疾患の疑心及び発症個体の症状が好転されたり有益となるあらゆる行為を意味する。
【００２７】
図１は、本発明のＰＬＡＧを用いた、肝炎を予防するメカニズムの一例を示す図である。図１に示されたように、コンカナバリンＡ（ｃｏｎｃａｎａｖａｌｉｎ  Ａ）によりＩＬ‐４が誘導され、誘導されたＩＬ‐４は、血液から肝に好中球を移動させながら、ＳＴＡＴ６のリン酸化を誘導する。これにより好中球が集められ、リン酸化されたＳＴＡＴ６によってＩＬ‐８、エオタキシン（ｅｏｔａｘｉｎ）などのケモカインが分泌され、さらに好中球細胞の移動を促進させることにより、肝組織の損傷を誘導する。上記のメカニズムに本発明の組成物を投与すると、ＩＬ‐４、ＩＬ‐６、ＭＩＰ‐２（例えば、ＣＸＣＬ２および／またはＩＬ‐８など）などの発現および／または活性を抑制し、ＰＫＣ‐ζ、ＰＫＣδ、ＰＫＣθ、ＳＴＡＴ６、およびこれらの混合物などのリン酸化、吸着分子の発現、および／または好中球の血液から肝への過度な移動を押さえることで、肝炎を予防または治療することができる。
【００２８】
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明は下記実施例により限定されるものではない。
【００２９】
１‐パルミトイル‐２‐リノレオイル‐３‐アセチルグリセロール（ＥＣ‐１８またはＰＬＡＧ）の肝炎の予防および治療効能を確認するために、コンカナバリンＡ（ｃｏｎｃａｎａｖａｌｉｎ  Ａ、以下、ＣｏｎＡ）により誘導される肝炎の減衰モデルを利用して実験を行った。実験モデルとして、１０週齢のＢａｌｂ／ｃ系マウス（コアテック社、韓国）を特定病原体除去動物（ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｐａｔｈｏｇｅｎ  ｆｒｅｅ、ＳＰＦ）下で維持させて用い、ＰＬＡＧおよびＰＬＧ（エンジケム生命科学、韓国）は、体内または体外処理する前に準備した。また、Ｈｅｐ３Ｂ、ＨｅｐＧ２、ＥＬ‐４、およびＨＬ‐６０細胞系（米国菌株銀行、ＡＴＣＣ）を、５％のＣＯ２および３７℃の温度下で培養した。体内で進行するグループ間の比較時には、分散分析（ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｖａｒｉａｎｃｅ、ＡＮＯＶＡ）の１つの分析方法により値を分析し、体外で進行する２つの実験群の比較時には、独立したスチューデントｔ検定（ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓ  ｔ  ｔｅｓｔ）により値を分析した。統計的有意はｐ＜０．０５と仮定した。
【００３０】
［実施例１］対照群および実験群の準備
マウスを、対照群、ＣｏｎＡ処理群、およびＰＬＡＧ前処理群の３つのグループに無作為に分けた。前記ＣｏｎＡおよびＰＬＡＧは、何れもＰＢＳ（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒ  ｓａｌｉｎｅ）に溶解させて使用した。マウスにＰＢＳまたはＰＬＡＧを口腔投与し、２時間後に、２０ｍｇ／ｋｇ  ＢＷのＣｏｎＡをＣｏｎＡ処理群およびＰＬＡＧ前処理群にそれぞれ静脈注射した。その後、ＰＬＡＧは、１００ｍｇ／ｋｇ  ＢＷの量をマウスに口腔投与した。ここで、ＢＷはｂｏｄｙ  ｗｅｉｇｈｔを意味する。
【００３１】
［実験例１］血漿および組織のサイトカイン（ｃｙｔｏｋｉｎｅ）の分析
血液サンプルは、実施例１のマウスから、ＣｏｎＡ投与１８時間後に心臓穿刺（ｃａｒｄｉａｃ  ｐｕｎｃｔｕｒｅ）により得て、３，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離した。肝組織のホモジネートにあるサイトカインを測定するために、動物を犠牲にした後、ＰＢＳを用いて肝を洗浄した。肝を均質化させ、ＰＢＳ中で、７０μｍメッシュセルストレーナー（ｍｅｓｈ  ｃｅｌｌ  ｓｔｒａｉｎｅｒ、ＢＤ  Ｆａｌｃｏｎ  ｃｅｌｌ  ｓｔｒａｉｎｅｒ、ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｂｅｄｆｏｒｄ、ＭＡ）を用いて濾過した。また、上清液は、２，０００ｒｐｍの速度で５分間遠心分離して収集した。下層のセルペレットはＰＢＳ中で再浮遊させ、一般の血液検査（ｃｏｍｐｌｅｔｅ  ｂｌｏｏｄ  ｃｅｌｌ  ｃｏｕｎｔ、ＣＢＣ）分析した。血漿サンプルおよび肝ホモジネートの上清液は、サイトカインが測定されるまで零下２０度を維持させた。ＩＬ‐６、ＩＬ‐１０、ＩＬ‐４、ＭＩＰ‐２、およびＩＦＮγの濃度はエリサ（ＥＬＩＳＡ）セットを用いて検出した。
【００３２】
図２は、本発明の組成物を投与した際に、血漿中のサイトカインの変化を示すグラフである。図２に示されたように、ＰＬＡＧは、ＣｏｎＡが投与されたマウス血漿のＩＬ‐４、ＩＬ‐６、ＩＬ‐１０、ＭＩＰ‐２を減少させた。具体的に、ＣｏｎＡを注射したマウス血漿のＩＬ‐４、ＩＬ‐６、ＩＬ‐１０、ＭＩＰ‐２が、対照群マウスよりも非常に高く、ＣｏｎＡの刺激によって増加したＩＬ‐４、ＩＬ‐６、ＩＬ‐１０、およびＭＩＰ‐２が、ＰＬＡＧを摂取したマウスでかなり減少していた。また、ＣｏｎＡにより誘導された群で増加したＩＦＮγの濃度は、ＰＬＡＧを処理していないマウスに比べて、有意に減少していなかった。したがって、ＰＬＡＧが、ＣｏｎＡ処理により誘導される肝炎に関連する発症を誘導するサイトカインの分泌を減少させることができることが分かる。
【００３３】
また、 図３は、本発明の組成物を投与した際に、肝組織中のサイトカインの変化を示すグラフ（Ａ）およびＲＴ‐ＰＣＲ写真（Ｂ）である。図３に示されたように、肝のＩＬ‐４およびＭＩＰ‐２の高いタンパク質およびｍＲＮＡの程度は、ＣｏｎＡが投与されたマウスの肝組織中で観察された。ＣｏｎＡが投与された群におけるおイトカイン（ＩＬ‐４、ＭＩＰ‐２など）の増加した発現は、ＰＬＡＧをさらに投与した群でかなり減少していた。このような結果から、ＰＬＡＧが、血漿中のＩＬ‐４およびＭＩＰ‐２などのようなサイトカインを調節するということが分かる（図３のＡ参照）。また、ケモカイン受容体ＣＸＣＲ４  ｍＲＮＡおよび吸着分子、ＩＣＡＭ‐１およびＶＣＡＭの調節は、ＣｏｎＡにより誘導される肝組織でＲＴ‐ＰＣＲにより評価した。その結果、ＰＬＡＧが、ＣＸＣＲ４  ｍＲＮＡの発現を下向き調節させ、ＩＣＡＭ‐１およびＶＣＡＭを含む吸着分子には影響を与えないことが分かる（図３のＢ参照）。
【００３４】
［実験例２］全血および肝サンプルの血液学的分析
全血および肝サンプルは、実施例１のマウスから、ＣｏｎＡ投与１８時間後に採取した。マウスから採取した切断された肝は、実験例１で上述したように均質化させた。血液検査（Ｃｏｍｐｌｅｔｅ  ｂｌｏｏｄ  ｃｏｕｎｔ、ＣＢＣ）分析は、全白血球細胞の定量、全白血球細胞の好中球およびリンパ球の一部を含み、血液学分析では、マインドレイＢＣ５３００を用いて測定した（Ｓｈｅｎｚｈｅｎ  Ｍｉｎｄｒａｙ  Ｂｉｏ―ｍｅｄｉｃａｌ  Ｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃｓ、Ｃｈｉｎａ）。
【００３５】
図４は、本発明の組成物を投与した際に、血液（Ａ）および肝組織（Ｂ）中の好中球および白血球の変化を示すグラフである。図４に示されたように、循環性白血球の数は、Ｃｏｎ‐Ａにより刺激されたマウスでやや下向き調節され、循環性好中球は、ＰＬＡＧを追加投与した群でかなり増加した（図４のＡ）。また、肝に存在する白血球の数は、Ｃｏｎ‐Ａを投与したマウスで増加し、肝に存在する好中球の数は、ＰＬＡＧを追加投与した群でかなり減少した（図４のＢ）。このような結果は、血液から肝への白血球の移動（噴出）が、ＣｏｎＡが投与されたマウスで加速し、好中球の移動は、ＰＬＡＧを追加投与した群で元に戻ることを意味する。
【００３６】
［実験例３］組織学分析
肝部位は、実施例１のマウスから、ＣｏｎＡ投与８時間後に採取した。上記の肝部位を１０％の中性緩衝ホルマリン（ｎｅｕｔｒａｌ  ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｆｏｒｍａｒｌｉｎ）に固定し、パラフィンに包埋して５ｕｍの厚さに切断した。パラフィンを除去し、再水和（ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ）した後、薄片をヘマトキシリン（ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ）およびエオシン（ｅｏｓｉｎ）で染色した。また、好中球を識別するために、肝部位を抗‐マウス好中球抗体で染色した。全てのサンプルをレイカ（Ｌｅｉｃａ、Ｗｅｔｚｌａｒ、Ｇｅｒｍａｎｙ）光学顕微鏡下で組織学的に評価し、デジタル画像をＸ２００倍率で撮影した。
【００３７】
図５は、本発明の組成物を投与した際に、肝組織中の損傷部位に位置する好中球細胞の残存有無を示す写真である。図５に示されたように、肝で、ＣｏｎＡの投与は多数の白血球の浸潤を誘導し、その後、自己組織の破壊に影響を与えることもあり得るが、ＰＬＡＧを投与することで、肝への好中球の移動を緩和させる可能性を有している。全好中球数は、抗‐好中球抗体を用いて免疫組織学的染色により測定した。ＣｏｎＡを投与した肝組織は、肝細胞の損傷が激しいのに対し、ＰＬＡＧを処理した肝組織は、肝細胞の損傷が殆どないことが分かる。したがって、ＣｏｎＡの刺激により向上した好中球は、ＰＬＡＧを処理することで効果的に緩和させることができる。図５において、スケールバー（ｓｃａｌｅ  ｂａｒ）は２００ｕｍを意味する。
【００３８】
図６は、本発明の組成物を投与した際に、肝損傷に対するＰＬＡＧの緩和効果を示す写真である。図６に示されたように、肝損傷に対するＰＬＡＧの緩和効果を、ヘマトキシリン‐エオジン染色を用いて実験した。肝部位の組織学的検査では、８時間以内に、深刻な肝細胞損傷、肝の肝類洞（ｈｅｐａｔｉｃ  ｓｉｎｕｓｏｉｄ）構造および肝への好中球の浸潤などの、ＣｏｎＡを静脈投与した結果を引き起こすことを確認した。しかし、１００ｍｇ／ｋｇのＰＬＡＧを投与した時には、ＰＬＡＧの処理により、好中球浸潤の分布が少なく、且つ壊死巣（ｎｅｃｒｏｔｉｃ  ｆｏｃｉ）が殆どないなど、上述のような病的な変化が著しく緩和された。したがって、ＰＬＡＧが、ＣｏｎＡにより誘導される肝炎を緩和させるということが分かる。
【００３９】
［実験例４］ウエスタンブロット分析
Ｈｅｐ３Ｂ細胞を、１２穴のウェルプレート（ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅ、各ウェル当たり２．５ｘ１０＾５）に入れ、様々な濃度（０．１、１、１０、１００ｕｇ／ｍＬ）のＰＬＡＧで処理して２時間後に、ＩＬ‐４で１時間活性化させた。全タンパク質抽出物は、ｐｈｏｓｐｈｏ‐ＳＴＡＴ６、ＳＴＡＴ６、ｐｈｏｓｐｈｏ‐ＪＡＫ１、およびｐｈｏｓｐｈｏｒ‐ＰＫＣξ／λ  Ａｂｓ（細胞信号、Ｃｅｌｌ  ｓｉｇｎａｌｉｎｇ）で免疫ブロット法を用いて確認した。
【００４０】
ＨＬ‐６０細胞は１２穴のウェルプレート（各ウェル当たり１ｘ１０＾６）に入れ、  上述のように処理した。全タンパク質抽出物は、ｐｈｏｓｐｈｏ‐ＰＫＣのイソ型タンパク質（δ、θ、ξ／λ、α／β）（細胞信号、Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ）およびＧＡＰＤＨ  Ａｂｓ（Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｇｙ  Ｉｎｃ．，ＣＡ）で免疫ブロット法を用いて確認した。検出は、Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ  Ｗｅｓｔｅｒｎ  Ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ  ＨＲＰ  Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ(Millipore Corporation, Billerica, MA)を用いて行った。
【００４１】
図７は、本発明の組成物を投与した際に、ＰＬＡＧの投与量による、肝細胞起源のＨｅｐＧ３Ｂ細胞およびＨＬ‐６０細胞のＷＳＴ  ａｓｓａｙ結果を示すグラフであり、図８は、本発明の組成物を投与した際に、ＰＬＡＧの投与量による、ＩＬ‐４により誘導されるＳＴＡＴ６の活性および関連信号伝逹機構の抑制効果を示す図である。図７および図８に示されたように、ＰＬＡＧを用いた肝損傷の緩和のための細胞内のメカニズムを体外状態で確認した。ＨｅｐＧ２およびＨｅｐ３Ｂを肝細胞として使用し、ＨＬ‐６０を好中球細胞として使用した。肝細胞および白血球中のＥＣ‐１８の細胞毒性は、ＷＳＴ  ａｓｓａｙにより確認した。Ｈｅｐ３ＢおよびＨＬ‐６０細胞の生存は、それぞれ１，０００ｕｇ／ｍＬ以上の濃度を有するＰＬＡＧとともに培養する２４時間の間、影響を受けなかった（図７参照）。ＷＳＴ  ａｓｓａｙの結果に基づき、１００、１０、１ｕｇ／ｍＬのＰＬＡＧを細胞に使用した。ＰＫＣ‐ξ／λ、ＪＡＫ１、およびＳＴＡＴ６の活性は、ＣｏｎＡにより誘導される肝炎で重要な役割をし、このようなキナーゼはＩＬ‐４によって増加した。ウエスタンブロット分析では、ＰＫＣおよびＳＴＡＴ６のリン酸化がＩＬ‐４の刺激によって誘導され、このようなキナーゼ（ＰＫＣ、ＳＴＡＴ６など）のリン酸化は、投与量依存法によりＰＬＡＧを処理することで、著しく緩和された（図８参照）。このことから、ＰＬＡＧがＰＫＣ‐ξ／λの活性を緩和させることにより、ＩＬ‐４により誘導される肝炎を効果的に制御することができることが分かる。また、ＰＬＡＧは、ＰＫＣイソタイプ（ｉｓｏｔｙｐｅ）のうち、ＰＫＣδとＰＫＣθの活性緩和にも影響を与えることを確認したのに対し、ＰＫＣα／βの活性緩和には影響を与えなかった（図８Ｂ参照）。また、図９は、本発明のＰＬＡＧおよびＰＬＧの構造（Ａ）、および効果比較（ＢおよびＣ）を示した図である。図９に示されたように、ＰＬＡＧの選択性を、それぞれのＳＴＡＴ６リン酸化および転写活性において、ＰＬＡＧおよびＰＬＧを比較することで確認した。ＰＬＧはＤＡＧのプロトタイプ（ｐｒｏｔｏｔｙｐｅ）であり、ＰＬＡＧはアセチル化されたＤＡＧのタイプである（図９のＡ参照）。肝損傷（ｌｉｖｅ  ｉｎｊｕｒｙ）の緩和に対するＰＬＡＧ機能の特異性は、ＳＴＡＴ６活性分析により間接的に検査した。抗‐リン酸（ｐｈｏｓｐｈｏ）‐ＳＡＴ６を使用したウエスタンブロット分析は、ＳＴＡＴ６のリン酸化が、ＰＬＡＧを処理したＨｅｐ３Ｂ細胞でかなり減少するが、ＰＬＧを処理した細胞内では変化しないことを示す。上述のような結果から、ＰＬＡＧが、ＣｏｎＡにより誘導される肝炎中で、肝損傷から保護する非常に特別な役割をするということが分かる。
【００４２】
［実験例５］ＲＮＡ分離およびＲＴ‐ＰＣＲ分析
全ＲＮＡは、ＴＲＩｚｏｌ試薬(Incitrogen, Carlsbad, CA)で肝ホモジネートから分離した。ＨＬ‐６０細胞を１２穴のウェルプレート（各ウェル当たり１ｘ１０＾６）に入れ、実験例４と同様に処理した。ｃＤＮＡは、Ｍ‐ＭＬＶ逆転写酵素とオリゴ‐ｄＴ(Promega, Madison, WI)を用いて、全細胞ＲＮＡから合成した。ＰＣＲプライマー（Ｂｉｏｎｅｅｒ、Ｄａｅｊｅｏｎ）は、プライマー３プログラムを利用してデザインし、マウスおよびヒトのプライマー配列は、下記表１のとおりである。
【００４３】
【表１】
2019534273.tif 000007
【００４４】
反応サンプルのｃＤＮＡの増幅量は、２％のアガロースゲル（Ｒｏｃｈｅ  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｓｃｉｅｎｃｅ、Ｓａｌｔ  Ｌａｋｅ  ｃｉｔｙ、ＵＴ）電気泳動により確認した。
【００４５】
［実験例６］ルシフェラーゼレポーター遺伝子の分析
ＨｅｐＧ２およびＨｅｐ３Ｂ細胞を、ＳＴＡＴ６の結合部位(p4xSTAT6-Luc2P; Addgene, Cambridge, MA)の４つの対を含んでいるレポータールシフェラーゼプラスミド（ｐｌａｓｍｉｄ）に形質移入し、レポーターベクターをＡｔｔｒａｃｔｅｎｅ試薬と細胞系中に形質移入した。ＳＴＡＴ６レポーターベクターの活性のために、１０ｎｇ／ｍｌのＩＬ‐４を６時間細胞に処理して使用し、ルシフェラーゼの活性は、ルミノメータにより、ルシフェラーゼ分析システムを用いて測定した。各サンプルのルシフェラーゼの活性は、ＰＬＡＧに形質移入されたサンプルに該当するものとして正規化された。
【００４６】
図１０は、本発明の組成物を投与した際に、ＳＴＡＴ６の転写活性を示すグラフである。図１０に示されたように、好中球の移動のための遺伝子発現に関連するＳＴＡＴ６の転写活性は、１０および１００ｕｇ／ｍｌのＰＬＡＧ、および陽性対照群として２０ｎＭおよび２００ｎＭのＳＴＡＴ６抑制剤を処理することで、効果的に防止されるということが分かる。このようなデータから、ＥＣ‐１８が、ＰＫＣ‐ξ／λの活性を緩和し、ＰＫＣ‐ξ、ＪＡＫ１、およびＳＴＡＴ６カスケード内の連続的なＪａｋ１の脱リン酸化に対する効果があることが分かる。
【００４７】
［実験例７］好中球吸着の分析
フィブロネクチン（ｆｉｂｒｏｎｅｃｔｉｎ）の好中球吸着に対するＰＬＡＧの効果有無を調べるために、２４穴の組織培養プレートを、以前研究(Wang YH, Wang WY, Liao JF, Chen CF, Hou YC, Liou KT, Chou YC, et al. Prevention of macrophage adhesion molecule-1 (Mac-1)-dependent neutrophil firm adhesion by taxifolin through impairment of protein kinase-dependent NADPH oxidase activation and antagonism of G protein-mediated calcium influx. Biochem Pharmacol 2004;67:2251-2262.)と同様にフィブロネクチンでコーティングした。前記プレートを、２５ｕｇ／ｍｌのフィブロネクチンと３７℃で２時間培養させた。結合していないタンパク質（ｕｎｂｕｎｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ）を洗浄して除去し、好中球を、実験２時間前にＰＬＡＧで前処理した。好中球の活性は、４時間ＩＬ‐４とともに行った。吸着されていない好中球は、吸引（誤嚥、ａｓｐｉｒａｔｉｏｎ）により溶離し、ＰＢＳで２回洗浄した。付着された好中球は、血球計算板（ｈｅｍｏｃｙｔｏｍｅｔｅｒ）を用い、各ウェルの底にある細胞の数を計算して測定した。残っている吸着細胞を培養器で１８時間保管し、この際、細胞への分光計評価のために、ＷＳＴ‐１試薬（Ｒｏｃｈｅ  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｓｃｉｅｎｃｅ）に曝した。
【００４８】
図１１は、本発明の組成物を投与した際に、ＰＬＡＧに投与量による、ＩＬ‐８およびＶＣＡＭ‐１の発現変化と細胞接着能の減少効果を示す図である。図１１に示されたように、ＲＴ‐ＰＣＲデータは、ＨＬ‐６０細胞がフィブロネクチンに吸着されるように、ＩＬ‐４によって刺激されて分泌されるＩＬ‐８およびＶＣＡＭ‐１の発現を、ＰＬＡＧの投与により（投与量依存法など）効果的に抑制させることができるということを示す（図１１のＡ）。ＩＬ‐４および／またはＰＬＡＧにより調節されるＨＬ‐６０の活性は、ＷＳＴ‐１の分析および細胞数を用いて計算した。１０ｎｇ／ｍｌのＩＬ‐４は、コーティングされたフィブロネクチンへの吸着のためのＨＬ‐６０細胞を刺激するのに十分であり、１００、１０、１ｕｇ／ｍＬのＰＬＡＧは、投与量に依存するＨＬ‐６０の吸着を非常に減少させた（図１１のＢおよびＣ参照）。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【国際調査報告】
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2019534273.tif 000023
2019534273.tif 000024
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