(57)【要約】  本発明はＣＸＣＲ４のアンタゴニストである化合物およびＣＸＣＲ４活性化に関連する臨床状態の治療のためのその使用方法を提供する。特に、本発明の化合物は環状ペプチドを含む。本発明の化合物は、これに限定されるものではないが、がん、肺線維症、ＨＩＶ感染、関節リウマチおよび他の免疫障害を含む様々な免疫障害を治療するために使用することができる。さらに、本発明の化合物は幹細胞治療にも使用することができる。ある特定の態様において、本発明の化合物は次の式の環状ペプチドまたはその薬学的に許容される塩である：2019534893.tif 000031式中、ａは０または１；ＡＡ１はそれに結合しているイオウ原子と共に、３−メルカプトプロピオン酸、任意に置換されたシステイン、または任意に置換されたホモシステインである；ＡＡ２はそれに結合しているイオウ原子と共に、システインまたはホモシステインである；Ａｒ１は任意に置換されたアリールである；Ｘ１は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、またはＬｙｓ（ｉＰｒ）である；Ｘ２は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｌｙｓ（ｉＰｒ）、そのＤ−異性体または不存在である；Ｘ３はＧｌｙまたは不存在である；Ｘ４はＰｈｅ、２Ｎａｌ、１Ｎａｌまたは不存在である；Ｘ５はＧｌｙまたは不存在である；Ｒ２は−ＯＲ４または−ＮＨＲ５であって、Ｒ４はＨまたはアルキル；およびＲ５はＨ、アルキル、任意に置換されたアリール、任意に置換されたアラルキルである。
2019534893.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
次の式の化合物またはその薬学的に許容される塩：
【化１】
2019534893.tif 000029
式中、
ａは０または１；
ＡＡ１はそれに結合しているイオウ原子と共に、３−メルカプトプロピオン酸、任意に置換されたシステイン、または任意に置換されたホモシステイン；
ＡＡ２はそれに結合しているイオウ原子と共に、システインまたはホモシステイン；
Ａｒ１は任意に置換されたアリール；
Ｘ１は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、またはＬｙｓ（ｉＰｒ）；
Ｘ２は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｌｙｓ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ａｒｇ、Ｄ−Ｄａｐ、Ｄ−Ｄａｂ、Ｄ−Ｏｒｎ、Ｄ−Ｌｙｓ、Ｄ−Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｌｙｓ（ｉＰｒ）または不存在；
Ｘ３はＧｌｙまたは不存在；
Ｘ４はＰｈｅ、２Ｎａｌ、１Ｎａｌまたは不存在；
Ｘ５はＧｌｙまたは不存在；
Ｒ２は−ＯＲ４または−ＮＨＲ５；
Ｒ４はＨまたはアルキル；および
Ｒ５はＨ、アルキル、任意に置換されたアリール、任意に置換されたアラルキルである。
【請求項２】
次の式の請求項１に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩：
【化２】
2019534893.tif 000030
式中、
ａは０または１；
ｍおよびｎは独立して１または２；
Ｒ１はＨまたは−ＮＨＲ３であって、Ｒ３はＨ、アルキル、アシル、任意に置換されたアリール、任意に置換されたアラルキル、−Ｃ（＝Ｏ）−Ａｒａであって、Ａｒａは任意に置換されたアリール；および
Ａｒ１、Ｘ１、Ｘ２、Ｘ３、Ｘ４、Ｘ５およびＲ２は請求項１に定義されているものである。
【請求項３】
薬学的に許容される塩は酢酸塩、塩酸塩、またはトリフルオロ酢酸塩である、請求項１または２に記載の化合物。
【請求項４】
ａ＝１およびＡｒ１は任意に置換されたフェニルである、請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項５】
ｍ＝１およびｎ＝１である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項６】
ｍ＝１およびｎ＝２である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項７】
ｍ＝２およびｎ＝１である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項８】
Ｘ２は、 （Ｄ）−異性体または不存在である、請求項１〜７のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項９】
Ｘ４は、 （Ｄ）−異性体または不存在である、請求項１〜８のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項１０】
Ｒ１はＨおよびｍ＝１である、請求項１〜９のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項１１】
Ｒ１はＡｃ−ＮＨおよびｍ＝２である、請求項１〜９のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項１２】
Ｒ２は−ＮＨ（Ｅｔ）およびＸ４とＸ５は不存在である、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項１３】
配列番号４〜２８からなる群から選択される、請求項１に記載の化合物。
【請求項１４】
ｍ＝１、ｎ＝１およびＲ１はＮＨＲ３であって、Ｒ３は請求項２で定義されるものである、請求項１〜５のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項１５】
ｍ＝１、ｎ＝２およびＲ１はＮＨＲ３であって、Ｒ３は請求項２で定義されるものである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項１６】
ｍ＝２、ｎ＝１およびＲ１はＮＨＲ３であって、Ｒ３は請求項２で定義されるものである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項１７】
請求項１の化合物またはその薬学的に許容される塩、および薬学的に許容される賦形剤を含む医薬組成物。
【請求項１８】
薬学的に許容される賦形剤は、薬学的に許容される担体、希釈剤、賦形剤、結合剤、香味剤、またはそれらの組合せを含む、請求項１７に記載の医薬組成物。
【請求項１９】
ＣＸＣＲ４活性化に関連する臨床状態を被っている対象を治療する方法であって、前記方法は請求項１〜１６のいずれか１項に記載の化合物の治療有効量を治療が必要な対象に投与することを含む、方法。
【請求項２０】
前記臨床状態は関節リウマチ、肺線維症、ＨＩＶ感染、または癌を含む、請求項１９に記載の方法。
【請求項２１】
前記癌は、乳癌、膵臓がん、黒色腫、前立腺がん、腎がん、神経芽細胞腫、非ホジキンリンパ腫、肺がん、卵巣がん、結腸直腸がん、多発性骨髄腫、多形神経膠芽腫、および慢性リンパ性白血病からなる群から選択される、請求項２０に記載の方法。
【請求項２２】
関節リウマチ、肺線維症、ＨＩＶ感染、または癌を有する患者の治療方法であって、前記方法は請求項１〜１６のいずれか１項に記載の化合物の治療有効量を治療が必要な対象に投与することを含む、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
関連出願との相互参照
【０００２】
２０１６年９月６日出願の米国仮出願番号62/384,132、２０１７年５月１１日出願の米国仮出願番号62/505,064の全ては、その全体が参照により本明細書に組み込まれ、本願はこれらの優先の利益を請求する。
【０００３】
発明の分野
【０００４】
本発明は、Ｃ−Ｘ−Ｃケモカイン受容体タイプ４（ＣＸＣＲ４）アンタゴニストおよびその使用方法に関する。特に、本発明の化合物は環状ペプチドおよびその類似体である。本発明の化合物は、ＣＸＣＲ４の過剰発現および／または上方制御に関連した病態、例えば、がん、ＨＩＶ感染、免疫障害（例えば、関節リウマチ）および肺線維症を治療するのに有用である。本発明の化合物は幹細胞治療においても使用することができる。
【背景技術】
【０００５】
ケモカインとケモカイン受容体のペアである、ＣＸＣＬ１２（間質細胞由来因子１またはＳＤＦ−１とも呼ばれる）とＣＸＣＲ４が、造血、多段階の腫瘍形成、および胚発生において重要な役割を果たすことが研究により示されている(非特許文献１；非特許文献２)。例えば、ＣＸＣＬ１２によるＣＸＣＲ４の活性化は、炎症および胚発生中の前駆細胞のの遊走に応答して、免疫系における白血球の走化性を方向づけることが示されている。ＣＸＣＬ１２によるＣＸＣＲ４の活性化はまた、乳癌転移および記憶Ｔ細胞遊走に関与するシグナル伝達経路を媒介することが示されている(非特許文献３)。
【０００６】
ＣＸＣＲ４（Ｇタンパク質共役型受容体、フシン(fusin)またはＣＤ１８４としても知られる）は、さまざまなヒトの癌で構成的に発現または過剰発現しており、局所的な腫瘍細胞の増殖、生存および血管新生を促進する(非特許文献４)。ＣＸＣＲ４は、ＨＩＶ侵入および宿主細胞の感染のための共受容体であり、潜在的なＨＩＶ療法として評価されていることも報告されている(非特許文献５；非特許文献６)。
【０００７】
間質細胞由来因子１（ＳＤＦ−１／ＣＸＣＬ１２）は骨髄間質細胞によって構成的に高レベルで発現され (非特許文献７)、それはＴ細胞、単球、プレＢ細胞、樹状細胞および造血前駆細胞にとって非常に効率的な走化性因子です(非特許文献８；非特許文献９)。ＳＤＦ−１またはＣＸＣＲ４遺伝子のいずれかのマウスにおける標的破壊は、非常に類似した表現型をもたらし、致死であり、胎児骨髄におけるリンパ性造血と骨髄性造血の両方の欠如を含む、多くの重度の発達障害を伴う(非特許文献１０)。さらに、ＳＤＦ−１およびＣＸＣＲ４が造血幹細胞の骨髄への生着において重要な役割を果たすことが示されている(非特許文献１１)。
【０００８】
これらの深刻な疾患におけるＣＸＣＲ４／ＳＤＦ−１シグナル伝達経路の関与を考慮すると、このシグナル伝達経路は重要な治療標的と考えられる。
【０００９】
ＡＭＤ３１００（ｂｉｃｙｃｌａｍ ＣＸＣＲ４アンタゴニスト）は、多発性骨髄腫および非ホジキンリンパ腫の患者における幹細胞の移植のための造血幹細胞動員における使用のための顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）との組み合わせでＦＤＡによって承認されている。ＡＭＤ０７０（別の低分子ＣＸＣＲ４アンタゴニスト）は、ＨＩＶ感染のための第ＩＩ相臨床試験に進んだ。ＣＴＣＥ９９０８（二価（二量体）ペプチドＣＸＣＲ４アンタゴニスト）は、癌の治療法として探求されてきた。初期のリードＴ１４０（ジスルフィド環状ペプチド）に基づき、Fujiiと共同研究者らは、３ｎＭのＩＣ５０でＣＸＣＲ４形質移入体への１２５Ｉ−ＳＤＦ−１の結合を阻害する、ＦＣ１３１（環状ペンタペプチドラクタムCXCR4アンタゴニスト）をさらに開発した (非特許文献１２；非特許文献１３)。最近になって、ＣＸＣＲ４に対するアンタゴニストとしての環状ペプチドラクタムが腎臓癌の治療のための第ＩＩ相臨床試験において評価された (非特許文献１４)。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【００１０】
【非特許文献１】Broxmeyer, H.E. etal., Int. J. Hematol.2001, 74, 9-17
【非特許文献２】Horuk, R., Nat.Rev. Drug Discov.2009, 8, 23-33
【非特許文献３】Orimo, A., et al.,Cell 2005, 121, 335-348
【非特許文献４】Huang, E.H., et al., J. Surg. Res. 2009, 155,231-236
【非特許文献５】Tamamura, H., etal., Biochem. Biophys. Res.Commun. 1998, 253, 877-882
【非特許文献６】Oberlin, E. et al., Nature, 1996, 382,833-835
【非特許文献７】Nagasawa T., et al., Proc. Natl. Acad. Sci.USA 1994, 91, 2305-2309
【非特許文献８】Baggiolini M.,Nature 1998, 392, 565-568
【非特許文献９】Moser B., et al., Nat. Immunol. 2001, 2,123-128
【非特許文献１０】Zou, Y.R. et al., Nature 1998, 393, 595-599
【非特許文献１１】Peled A., et al.,Science 1999, 283, 845-848
【非特許文献１２】Fujii et al., Angew. Chem. Int. Ed. 2003,42:3251-3253
【非特許文献１３】Tamamura, et al. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2000,10, 2633-2637
【非特許文献１４】Peng, S., et al., Mol. Cancer Ther. 2015,14, 480-490
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
これらの研究努力にもかかわらず、治療的処置の選択肢として強力かつ選択的である改善されたＣＸＣＲ４アンタゴニストに対する必要性が存在する。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
ＣＸＣＲ４は、癌、ウイルス感染、ならびに関節リウマチなどの自己免疫病理を含む様々な疾患および障害における免疫および炎症反応において重要な役割を果たす。本発明のいくつかの態様は、ＣＸＣＲ４アンタゴニストである化合物およびそれを使用してＣＸＣＲ４の過剰発現および／または活性化によって現れるまたは関連する臨床状態を治療する方法を提供する。特に、本発明のいくつかの態様において、次の式の化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する： 
【化１】
2019534893.tif 000003
式中、ａは０または１；ＡＡ１はそれに結合しているイオウ原子と共に、３−メルカプトプロピオン酸、任意に置換されたシステイン、または任意に置換されたホモシステインである；ＡＡ２はそれに結合しているイオウ原子と共に、システインまたはホモシステインである；Ａｒ１は任意に置換されたアリールである；Ｘ１は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、またはＬｙｓ（ｉＰｒ）である；Ｘ２は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｌｙｓ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ａｒｇ、Ｄ−Ｄａｐ、Ｄ−Ｄａｂ、Ｄ−Ｏｒｎ、Ｄ−Ｌｙｓ、Ｄ−Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｌｙｓ（ｉＰｒ）または不存在である；Ｘ３はＧｌｙまたは不存在である；Ｘ４はＰｈｅ、２Ｎａｌ、１Ｎａｌまたは不存在である；Ｘ５はＧｌｙまたは不存在である；Ｒ２は−ＯＲ４または−ＮＨＲ５であって、Ｒ４はＨまたはアルキル；Ｒ５はＨ、アルキル、任意に置換されたアリール、任意に置換されたアラルキルである。用語「任意に置換された」は、システインまたはホモシステインをいう場合、システインまたはホモシステインのα-アミノ基が任意に置換されていることを意味する。典型的な置換基としては、カルボキシル基（例えば、アシル、ベンゾイル、２−フェニルアシルなど）、アルキル基、および当業者に知られている他のアミノ保護基が含まれるが、これらに限定されない。
【００１３】
より具体的にいくつかの態様において、本発明の化合物は次の式の化合物またはその薬学的に許容される塩である：
【化２】
2019534893.tif 000004
式中、ｍおよびｎの各々は独立して１または２である；Ｒ１はＨまたは−ＮＨＲ３であって、Ｒ３はＨ、アルキル、アシル、任意に置換されたアリール、任意に置換されたアラルキル、−Ｃ（＝Ｏ）−Ａｒａであって、Ａｒａは任意に置換されたアリールである；およびＡｒ１、Ｘ１、Ｘ２、Ｘ３、Ｘ４、Ｘ５およびＲ２は本明細書に定義されているものである。
【００１４】
いくつかの態様において、ａは０であり、かつｎは１であり、すなわち次式の化合物である：
【化３】
2019534893.tif 000005
式中、Ｒ１、Ｘ１〜Ｘ５、Ｒ２およびｍは本明細書に定義されているものである。
【００１５】
本発明の化合物の具体的な例は以下を含むが、これに限定されるものではない：シクロ [Mpa-Tyr-Arg-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Arg-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2 (配列番号４)； シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Arg-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2 (配列番号５); シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2(配列番号６)；シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-(D-Arg)-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2(配列番号７)；シクロ[Mpa-Arg-Tyr-Arg-2Nal-Gly-Cys]-Arg-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2 (配列番号８)；シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-(D-Phe)-Gly-NH(Et)(配列番号９)；シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH(Et) (配列番号１０)；シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-2Nal-Gly-NH2(配列番号１１); Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2(配列番号１２)；Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(配列番号１３)；ベンゾイル−シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(配列番号１４)；ベンゾイル−シクロ[Cys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-hCys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(配列番号１５)；ベンゾイル−シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH(Et) (配列番号１６)；フェニルアセチル−シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(配列番号１７); Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH(Et) (配列番号１８)；シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Lys(Ac)-NH(Et)(配列番号１９)；シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Lys(ラウロイル)-NH(Et)(配列番号２０)；シクロ [Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Lys(パルミトイル)-NH(Et)(配列番号２１); 
【化４】
2019534893.tif 000006
式中ｍおよびｎの各々は独立して１または２である；
【化５】
2019534893.tif 000007
；
【化６】
2019534893.tif 000008
式中、Ｒ３はアルキルまたはアシルである。-S-CH2-Ar-CH2-S-部分を有する化合物において、それぞれの「-S-CH2-」基は、アリール基上の異なる場所で置換され得ることが理解されるべきである。例えば、Arがフェニルであるとき、「-S-CH2-」基はフェニル環系の１，２−、１，３−または１，４−位に存在することができる。
【００１６】
本発明の別の態様では、そのような治療を必要とする対象に治療有効量の式Ｉの化合物を投与することによる、ＣＸＣＲ４の過剰発現および／または上方制御に関連する臨床状態を有する対象を治療する方法を提供する。本発明の化合物を用いて治療することができる例示的な臨床状態としては、関節リウマチ、肺線維症、ＨＩＶ感染、および癌を含むが、これらに限定されない。本発明の化合物で治療することができる癌の具体例には乳癌、膵臓がん、黒色腫、前立腺がん、腎がん、神経芽細胞腫、非ホジキンリンパ腫、肺がん、卵巣がん、結腸直腸がん、多発性骨髄腫、多形神経膠芽腫、および慢性リンパ性白血病が含まれる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】図１は、いくつかのＭＬＢペプチドがＴＮＢＣＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞におけるリガンド（ＳＤＦ−１α）誘導細胞遊走を阻害することができたことを示すアッセイデータである。０時間の緑色は最初のスクラッチ領域を示す；１２時間または１６時間の緑色は、細胞が移動していない残りの領域を示す。
【図２】図２は、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞に対する細胞遊走アッセイの定量化を示すグラフである。
【図３】図３は、ＭＬＢペプチドがＳＤＦ−１α誘導性ＨＣＣ１８０６細胞遊走も阻害することを示すアッセイデータである。０時間の緑色は最初のスクラッチ領域を示す；１２時間の緑色は細胞が移動していない残りの領域を示す。
【図４】図４は、ＨＣＣ１８０６細胞遊走アッセイの定量化を示すグラフである。
【図５】図５は、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞に対する細胞浸潤アッセイの定量化を示すグラフである。
【図６】図６は、ＨＣＣ１８０６細胞に対する細胞浸潤アッセイの定量化を示すグラフである。
【図７】図７は、ＮＳＣＬＣＡ５４９細胞に対する細胞浸潤アッセイの定量化を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
定義：
【００１９】
用語「アルキル」は、１〜１８個、典型的には１〜１２個、そしてしばしば１〜６個の炭素原子の飽和直鎖状一価炭化水素部分または３〜１８個、典型的には３〜１２そしてしばしば３〜６個の炭素原子の飽和分岐状一価炭化水素部分をいう。例示的なアルキル基としては、メチル、エチル、ｎ−プロピル、２−プロピル、ｔｅｒｔ−ブチル、イソブチル、ペンチル、ネオペンチル、オクチル、ドデシル、オクタデシルなどが含まれるが、これらに限定されない。
【００２０】
用語「アシル」は式−Ｃ（＝Ｏ）−Ｒａの部分をいい、Ｒａは本明細書で定義されるアルキルである。
【００２１】
用語「アリール」は、６〜２４個の環原子の一価の単環式、二環式または三環式芳香族炭化水素部分をいう。例示的なアリール基としては、フェニル、ナフト−１−イル、ナフト−２−イル、アントラセニルなどが含まれるが、これらに限定されない。用語「任意に置換されたアリール」は、アリール基が、環構造内の１個以上、好ましくは１、２または３個の置換基で任意に置換され得ることを意味する。アリール基中に２個以上の置換基が存在するとき、各置換基は独立して選択される。アリール基の例示的な置換基としては、アルキル、ハロアルキル、ヘテロアルキル、ハロ、ニトロ、シアノ、アシル、カルボン酸およびそれらのエステル（例えば、−ＣＯ２Ｒであって、ＲはＨまたはアルキル）およびアミドなどが含まれるが、これらに限定されない。
【００２２】
用語「ハロ」、「ハロゲン」および「ハロゲン化物」は、本明細書中で交換可能に使用され、フルオロ、クロロ、ブロモ、またはヨードをいう。
【００２３】
「ハロアルキル」は、１個以上の水素原子が同一または異なるハロゲン化物で置き換えられている、本明細書で定義のアルキル基を意味する。用語「ハロアルキル」は、全てのアルキル水素原子がハロゲン原子で置き換えられている過ハロゲン化アルキル基も含む。例示的なハロアルキル基は。−ＣＨ２Ｃｌ、−ＣＦ３、−ＣＨ２ＣＦ３、−ＣＨ２ＣＣｌ３、などを含むが、これらに限定されない。
【００２４】
「ヘテロアルキル」は、炭素原子の代わりに炭素、水素および１個以上のヘテロ原子を含む飽和アルキル部分、あるいは任意で＝Ｏ、−ＯＲａ、−Ｃ（Ｏ）Ｒａ、−ＮＲｂＲｃ、−Ｃ（Ｏ）ＮＲｂＲｃおよび−Ｓ（Ｏ）ｎＲｄ（ｎは０から２の整数）から独立して選択される１個以上のヘテロ原子含有置換基を意味する。
【００２５】
「アラルキル」は、式−ＲｂＲｃの部分を指し、式中、Ｒｂはアルキレン基であり、Ｒｃは本明細書で定義されるアリール基である。用語「任意に置換されたアラルキル」は、アリール基（すなわち、Ｒｃ部分）が本明細書に定義されるとおり任意に置換されたアリールであることを意味する。例示的なアラルキル基としては、ベンジル、フェニル基が任意に置換されているベンジル基などが含まれるが、これらに限定されない。
【００２６】
「アルキレン」は、１〜１８個、好ましくは１〜１２個、より好ましくは１〜８個の炭素原子の飽和直鎖状二価炭化水素部分、または３〜１８個、好ましくは３〜１２個、より好ましくは３〜８個の炭素原子の分岐状飽和二価炭化水素部分をいう。例示的なアルキレン基としては、メチレン、エチレン、プロピレン、ブチレン、ペンチレンなどが含まれるが、これらに限定されない。
【００２７】
「薬学的に許容される賦形剤」は、一般的に安全で無毒で生物学的にもその他の点でも望ましくない医薬組成物を調製するのに有用であり、獣医学的用途ならびにヒトの薬学的用途に許容される賦形剤を含む賦形剤をいう。
【００２８】
化合物の「薬学的に許容される塩」は、薬学的に許容され、かつ親化合物の所望の薬理学的活性を有する塩を意味する。そのような塩は以下を含む：（１）塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸などの無機酸で形成された酸付加塩；または酢酸、プロピオン酸、ヘキサン酸、シクロペンタンプロピオン酸、グリコール酸、ピルビン酸、乳酸、マロン酸、コハク酸、リンゴ酸、マレイン酸、フマル酸、酒石酸、クエン酸、安息香酸、３−（４−ヒドロキシベンゾイル）安息香酸、ケイ皮酸、マンデル酸、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸、１，２−エタンジスルホン酸、２−ヒドロキシエタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、４−クロロベンゼンスルホン酸、２−ナフタレンスルホン酸、４−トルエンスルホン酸、カンファースルホン酸、４−メチルビシクロ［２．２．２］-オクト−２−エン−１−カルボン酸、グルコヘプトン酸、３−フェニルプロピオン酸、トリメチル酢酸、三級ブチル酢酸、ラウリル硫酸、グルコン酸、グルタミン酸、ヒドロキシナフトエ酸、サリチル酸、ステアリン酸、ムコン酸などの有機酸で形成される；または（２）親化合物中に存在する酸性プロトンが金属イオン、例えば、アルカリ金属イオン、アルカリ土類イオン、またはアルミニウムイオンで置換されたときに形成される塩；または、エタノールアミン、ジエタノールアミン、トリエタノールアミン、トロメタミン、Ｎ−メチルグルカミンなどの有機塩基と配位結合する塩。
【００２９】
「保護基」とは、分子中の反応性基に結合したときにその反応性をマスクする、低下させる、または防止する、アルキル基以外の部分をいう。保護基の例は、T.W. Greene and P.G.M. Wuts, ProtectiveGroups in Organic Synthesis, 3rd edition, JohnWiley & Sons, New York, 1999、および Harrisonand Harrison et al., Compendium of SyntheticOrganic Methods, Vols. 1-8 (JohnWiley and Sons,1971-1996)に見つけることができ、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。代表的なヒドロキシ保護基としては、アシル基、ベンジルおよびトリチルエーテル、テトラヒドロピラニルエーテル、トリアルキルシリルエーテルおよびアリルエーテルを含む。代表的なアミノ保護基としては、ホルミル、アセチル、トリフルオロアセチル、ベンジル、ベンジルオキシカルボニル（ＣＢＺ）、ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル（Ｂｏｃ）、トリメチルシリル（ＴＭＳ）、２−トリメチルシリル-エタンスルホニル（ＳＥＳ）、トリチルおよび置換トリチル基、アリルオキシカルボニル、９−フルオレニルメチルオキシカルボニル（ＦＭＯＣ）、ニトロ-ベラトリルオキシカルボニル（ＮＶＯＣ）などを含む。
【００３０】
「対応する保護基」は、それが結合しているヘテロ原子（すなわち、Ｎ、Ｏ、ＰまたはＳ）に対応する適切な保護基を意味する。
【００３１】
「治療有効量」は、疾患を治療するために哺乳動物に投与したときに、その疾患に対してそのような治療を行うのに十分な化合物の量を意味する。「治療有効量」は、化合物、疾患およびその重症度、ならびに治療される哺乳動物の年齢、体重などに応じて変わるであろう。
【００３２】
疾患の「治療」または「処置」は以下を含む：（１）疾患を予防すること、すなわち、疾患の臨床状態を、その疾患にさらされるかまたはその素因を与える可能性があるがその疾患の症状をまだ経験していないかまたは示していない哺乳動物において発症しないようにすること；（２）疾患を抑制すること、すなわち、疾患またはその臨床症状の発症を阻止または軽減すること；または（３）疾患を和らげること、すなわち、疾患やその臨床状態の後退を引き起こすこと。
【００３３】
本明細書で使用される、用語「処理する」、「接触させる」または「反応させる」は、指示されたおよび／または所望の生成物を生成するために適切な条件下で２つ以上の試薬を添加または混合することをいう。示されたおよび／または所望の生成物を生成する反応は必ずしも最初に添加された２つの試薬の組み合わせから直接生じないかもしれず、すなわち、最終的に指示されたおよび／または所望の生成物の形成をもたらす、混合物中で生成される１つ以上の中間体であってもよいことが理解されるべきである。
【００３４】
「Ｋｉ」値は、Enzymes,A Practical Introduction to Structure, Mechanism, and Data Analysis,Robert A.Copeland, Wiley-VCH, New York, 1996, 207頁の式７．２２を用いることにより、以下に記載のＣＸＣＲ４／１２５Ｉ−ＳＤＦ−α結合アッセイにおいて決定されたＩＣ５０値を用いて計算される。
【００３５】
用語「ＳＤＦ−１」は、現在類似の機能を示すと理解されている２つのアイソフォーム、ＳＤＦ−１αおよびＳＤＦ−１βを含む。
【００３６】
本明細書で使用される、ある変数について言及する用語「上記で定義されたもの」および「本明細書で定義されたもの」は、その変数の広い定義、ならびにもしあれば好ましい、より好ましいおよび最も好ましい定義を参照により組み入れる。
【００３７】
本明細書で使用される、「ＣＸＣＲ４の活性に関連する臨床状態」は、ＣＸＣＲ４の過剰発現、活性化および／または上方制御に起因する対象における任意の疾患または異常状態、または本発明の化合物によって治療することができる任意の疾患または異常臨床状態を意味する。例えば、ＣＸＣＲ４は、リンパ腫および慢性リンパ性白血病を含む、さまざまな固形悪性腫瘍および血液悪性腫瘍において機能的に発現されるかまたは過剰発現される。ＣＸＣＲ４アンタゴニストによるＣＸＣＲ４の阻害は、それらの患者にとって実行可能な治療法を潜在的に提供することができる。
【００３８】
本発明の化合物: 本発明のいくつかの態様において次の式の化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する： 
【化７】
2019534893.tif 000009
式中、ａは０または１；ＡＡ１はそれに結合しているイオウ原子と共に、３−メルカプトプロピオン酸、任意に置換されたシステイン、または任意に置換されたホモシステインである；ＡＡ２はそれに結合しているイオウ原子と共に、システインまたはホモシステインである；Ａｒ１は任意に置換されたアリールである；Ｘ１は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、またはＬｙｓ（ｉＰｒ）である；Ｘ２は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｌｙｓ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ａｒｇ、Ｄ−Ｄａｐ、Ｄ−Ｄａｂ、Ｄ−Ｏｒｎ、Ｄ−Ｌｙｓ、Ｄ−Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｌｙｓ（ｉＰｒ）または不存在である；Ｘ３はＧｌｙまたは不存在である；Ｘ４はＰｈｅ、２Ｎａｌ、１Ｎａｌまたは不存在である；Ｘ５はＧｌｙまたは不存在である；Ｒ２は−ＯＲ４または−ＮＨＲ５であって、Ｒ４はＨまたはアルキル；Ｒ５はＨ、アルキル、任意に置換されたアリール、任意に置換されたアラルキルである。ある特定の態様において、本発明の化合物は次の式の化合物またはその薬学的に許容される塩である：
【化８】
2019534893.tif 000010
式中、ａは整数０または１であり、ｍおよびｎの各々は独立して１または２である；Ｒ１はＨまたは−ＮＨＲ３であって、Ｒ３はＨ、Ｃ２−１８アルキル、Ｃ２−１８アシル、任意に置換されたＣ６−２４アリール、または
式−［Ｃ（＝Ｏ）］ａ−［Ｒ１ａ］ｂ−Ａｒ１ａ（式中、ａとｂのいずれか一方が１であれば、ａとｂは０か１のいずれかであり、Ｒ１ａはアルキレンであり、Ａｒ１ａは任意に置換されたアリールである）の部分；Ｘ１は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、またはＬｙｓ（ｉＰｒ）である；Ｘ２は、Ａｒｇ、Ｄａｐ、Ｄａｂ、Ｏｒｎ、Ｌｙｓ、Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｌｙｓ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ａｒｇ、Ｄ−Ｄａｐ、Ｄ−Ｄａｂ、Ｄ−Ｏｒｎ、Ｄ−Ｌｙｓ、Ｄ−Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｌｙｓ（ｉＰｒ）または不存在である；Ｘ３はＧｌｙ、Ｌｙｓ、Ｌｙｓ（アシル）または不存在である；Ｘ４はＰｈｅ、２Ｎａｌ、１Ｎａｌ、またはその（Ｄ）異性体または不存在である；Ｘ５はＧｌｙまたは不存在である；Ｒ２は−ＯＨまたは−ＮＨＲ４であって、Ｒ４はＨ、Ｃ１−１８アルキル、任意に置換されたＣ６−２４アリール、または任意に置換されたアラルキルである。
【００３９】
ｍが１およびＲ１が−ＮＨ２のとき、式IAの化合物の残りの末端アミノ酸基がシステインであり、ｍが２およびＲ１が−ＮＨ２のとき、式IAの化合物の残りの末端アミノ酸基がホモシステイン（「ｈＣｙｓ」）であると理解されるべきである。同様に、ｎが１のとき、該アミノ酸基はシステインであり、ｎが２のとき、該アミノ酸基はホモシステインである。Ｒ１がＨであり、およびｍが１のとき、対応するアミノ酸部分、すなわち式−Ｓ− ＣＨ２ＣＨ（Ｒ１）−Ｃ（＝Ｏ）−の部分は、３−メルカプトプロピオン酸部分である。
【００４０】
本開示を通して、任意のアミノ酸残基は、明示的に述べられていない限り、（Ｌ）−異性体または（Ｄ）−異性体のいずれかであり得る。さらに、天然アミノ酸および非天然アミノ酸の両方が３文字コードで記載されており、それらは当業者に周知である。例えば、Ｄａｐはジアミノプロピオン酸を表し、Ｄａｂは２，４−ジアミノ酪酸を表し、Ｏｒｎはオルニチンを表す。そして、アミノ酸残基の側鎖官能基に存在する置換基は括弧で示されている。したがって、Ｌｙｓ（ｉＰｒ）は、リジンの側鎖上のアミン官能基がイソプロピル基で置換されているリジンを指す。同様に、Ｌｙｓ（アシル）は、リジンの側鎖上のアミン官能基がアシル基（すなわち、−Ｃ（＝Ｏ）ＣＨ３）で置換されている（すなわち、結合している）リジンを指す。２Ｎａｌは３−（２−ナフチル）−アラニンを指し、１Ｎａｌは１−ナフチルアラニンを指す。さらに、アミノ酸は一般に、アミノ末端からカルボキシ末端に向かって左から右に示される。角括弧“[  ]”内のアミノ酸残基は環状構造内にあり、角括弧外の基は環化環の外側にある。
【００４１】
いくつかの態様において、Ｘ１は（Ｌ）−異性体アミノ酸である。さらに他の態様では、Ｘ２は（Ｌ）−または（Ｄ）−異性体のいずれかであっても存在しなくてもよい。ある特定の態様において、Ｘ２は（Ｄ）−異性体アミノ酸または不存在である、すなわち、Ｘ２は、Ｄ−Ｄａｂ、Ｄ−Ｏｒｎ、Ｄ−Ｌｙｓ、Ｄ−Ｄａｐ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｄａｂ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｏｒｎ（ｉＰｒ）、Ｄ−Ｌｙｓ（ｉＰｒ）または不存在である。さらに他の態様では、Ｘ２は、（Ｌ）−異性体アミノ酸である。さらに他の態様では、Ｘ３は、（Ｌ）−異性体アミノ酸である。さらなる態様において、Ｘ４は、 （Ｌ）−異性体アミノ酸である。さらに他の態様では、Ｘ５は、 （Ｌ）−異性体アミノ酸である。
【００４２】
さらに他の態様では、Ｘ４は、（Ｄ）−異性体または不存在であり、すなわち、Ｄ−Ｐｈｅ、Ｄ−２Ｎａｌ、Ｄ−１Ｎａｌまたは不存在である。
【００４３】
さらに他の態様では、Ｒ３はＨ、Ｃ２−１８アルキル、Ｃ２−１８アシル、任意に置換されたＣ６−２４アリール、任意に置換されたベンジル、任意に置換されたベンゾイルである
【００４４】
さらに他の態様では、Ｒ２は−ＯＨまたは−ＮＨＲ５であって、Ｒ５はＨ、Ｃ１−１８アルキル、任意に置換されたＣ６−２４アリール、任意に置換されたベンジルである。
【００４５】
ある特定の態様において、薬学的に許容される塩は酢酸塩または塩酸塩である。
【００４６】
さらに別の特定の態様において、Ｒ１は水素またはｍ＝１である。
【００４７】
さらに別の特定の態様において、Ｒ２は−ＮＨ（Ｅｔ）であり、Ｘ４とＸ５は不存在である。
【００４８】
いくつかの態様において、Ａｒ１はフェニルまたはナフチルであり、すなわち、それぞれ
【化９】
2019534893.tif 000011
または
【化１０】
2019534893.tif 000012
の式の部分である。−ＣＨ２−基はフェニル基の１，２−、１，３−、１，４−で、またはナフチル基の１，２−、１，３−、１，４−、１，５−、１，６−、１，７−、１，８−、２，３−、２，４−等の位置で置換することができる。典型的には、Ａｒ１はフェニルである。
ある特定の態様において、Ａｒ１は１，２−置換フェニルであり、すなわち−ＣＨ２− 基は互いに対して１，２−位で置換されている。
【００４９】
さらにいくつかの態様において、Ｒ３はＨ、Ｃ２−１８アルキル（すなわち、式−Ｃ（＝Ｏ）−Ｒ１ｂの部分であって、ここでＲ１ｂはＣ１−１７アルキル）、式−［Ｃ（＝Ｏ）］ａ−［Ｒ１ａ］ｂ−Ａｒ１ａの部分であって、ａおよびｂは０または１のいずれかであり、ａまたはｂの少なくとも一方が１である場合、Ｒ１ａはアルキレンかつＡｒ１ａは任意に置換されたアリールである。いくつかの態様において、Ｒ３は、任意に置換されたベンジルまたは任意に置換されたベンゾイルである。アラルキル、ベンジル、またはベンゾイルをいう場合の「任意に置換された」という用語は、芳香族部分が任意に置換されていることを意味すると理解されるべきである。
【００５０】
さらに別の態様において、Ｒ４は、任意に置換されたアラルキルである。ある特定の態様において、Ｒ４は、任意に置換されたベンジルである。
【００５１】
本発明の特定の化合物のいくつかは、実施例１〜２３の生成物および中間体を含むがこれらに限定されない。例えば、これに限定されるものではないが、シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH(Et) (配列番号１０)；シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(配列番号２５); Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(配列番号１３); Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH(Et) (配列番号１８)；および以下の式の化合物： 
【化１１】
2019534893.tif 000013
(式中、Ｒ３はアルキルまたはアシル、すなわち、式-C(=O)CH3の部分、またはベンゾイル、すなわち、式-C(=O)Phの部分である)、
【化１２】
2019534893.tif 000014
(式中、ｍ＝１およびｎ＝２；ならびに式中、ｍ＝２およびｎ＝１)；
【化１３】
2019534893.tif 000015
；
【化１４】
2019534893.tif 000016
；および
【化１５】
2019534893.tif 000017
、およびその薬学的に許容される塩を含む。
次の式の化合物は、
【化１６】
2019534893.tif 000018
次の式の構造を有するものとして存在し得ることも理解されるべきである：
【化１７】
2019534893.tif 000019
同様に、次の式の化合物は、
【化１８】
2019534893.tif 000020
次の式によっても表すことができる：
【化１９】
2019534893.tif 000021
または、シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2NaI-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Lys(Ac)-NHEt (配列番号１９)。
【００５２】
さらにまた、本明細書に記載の特定の態様の組み合わせは他の態様を形成することができる。例えば、ある特定の態様において、Ｒ１は水素、ｍは１、Ｒ２は−ＮＨ（Ｅｔ）、そしてＸ４とＸ５は不存在である。この場合、様々な化合物が本発明の範囲内で例示されている。
【００５３】
上記で説明されている、上記列挙された化合物中の用語「シクロ」は、環状結合が存在する場所を示す。したがって、例えば、Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(配列番号１３)の化合物中、環状結合（例えば、ジスルフィド結合）は、ホモシステイン硫黄原子とシステイン硫黄原子との間に存在する。
この化合物は次の式によっても表すことができる：
【化２０】
2019534893.tif 000022
または
【化２１】
2019534893.tif 000023
式中、グリシンのカルボキシル末端の−ＯＨ基はＮＨ２基で置換されている。
【００５４】
特に明記しない限り、全てのアミノ酸鎖は通常の形で、すなわちアミノ末端からカルボキシル末端への方向が左から右へ記載されている。
【００５５】
医薬組成物:別の態様において、本発明は、式Ｉの化合物および／またはその薬学的に許容される塩を含む医薬組成物を提供する。医薬組成物はまた、薬学的に許容される担体、希釈剤、または賦形剤を含み得る。
【００５６】
本発明は、少なくとも１つの薬学的に許容される担体、および任意で希釈剤、賦形剤、および／または他の治療的成分および／または予防的成分と一緒に、少なくとも１つの本発明の化合物および／または薬学的に許容される塩、またはそのそれらの溶媒和物を含む医薬組成物を含む。
【００５７】
一般に、本発明の化合物は、同様の用途に役立つ薬剤について許容されている投与方法のいずれかによって治療有効量で投与される。適切な投与量範囲は、典型的には毎日１〜５００ｍｇ、典型的には１〜１００ｍｇ、そしてしばしば１〜３０ｍｇであるが、例えば、治療される疾患の重症度、対象の年齢および相対的健康状態、使用される化合物の効力、投与の経路および形態、投与が向けられる適応症および関与する開業医の好みと経験などの多数の要因に依存する。そのような疾患を治療する当業者は、過度の実験をせずに、そして個人的な知識および本出願の開示に依拠して、治療上有効な量の本発明の化合物を確かめることができる。
【００５８】
本発明の化合物は、経口（口腔および舌下を含む）、直腸、経鼻、局所、肺、膣、または非経口（筋肉内、動脈内、髄腔内、皮下および静脈内を含む）での投与または吸入または吹送による投与に適した形に適したものを含む医薬製剤として投与される。典型的な投与方法は一般に、苦痛の程度に応じて調整することができ便利な一日量投与計画を用いた経口投与である。しかしながら、場合によっては、例えば、癌または関節リウマチの治療のために、本発明の化合物を癌細胞または関節リウマチの部位に直接注射することができる。
【００５９】
１以上の従来のアジュバント、担体、または希釈剤と一緒の本発明の化合物は、医薬組成物および単位投与量の形態にすることができる。医薬組成物および単位剤形は、追加の活性化合物または原理の有無にかかわらず、従来の割合の通常の成分を含むことができ、単位剤形は、使用される意図された１日用量範囲に見合った任意の適切な有効量の活性成分を含み得る。医薬組成物は、例えば、錠剤または充填カプセルなどの固体、半固体、粉末、徐放性製剤、または例えば、液剤、懸濁剤、乳剤、エリキシル剤などの液体、または経口使用のための充填カプセルとして使用することができ；または直腸投与用または膣内投与用の坐剤の形で使用することができ；または非経口使用のための滅菌注射用溶液の形態で使用することができる。錠剤当たり、約１ミリグラム、より広くは約０．０１〜約１００ミリグラムの活性成分を含有する製剤は、適切な代表的な単位剤形である。
【００６０】
本発明の化合物は、多種多様な経口投与剤形に処方することができる。医薬組成物および剤形は、活性成分として本発明の化合物またはその薬学的に許容される塩を含むことができる。薬学的に許容される担体は固体または液体のいずれでもよい。固形製剤としては、散剤、錠剤、丸剤、カプセル剤、カシェ剤、坐剤、および分散性顆粒剤が含まれる。固体担体は、希釈剤、香味剤、可溶化剤、滑剤、懸濁剤、結合剤、防腐剤、錠剤崩壊剤、またはカプセル化材料としても作用し得る１以上の物質であり得る。散剤では、担体は一般に微粉化された固体であり、それは微粉化された活性成分との混合物である。錠剤では、活性成分は一般に、必要な結合能力を有する担体と適切な割合で混合され、そして所望の形状および大きさに圧縮される。散剤および錠剤は、好ましくは約１〜約７０パーセントの活性化合物を含有する。適切な担体としては、炭酸マグネシウム、ステアリン酸マグネシウム、タルク、糖、ラクトース、ペクチン、デキストリン、デンプン、ゼラチン、トラガカント、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、低融点ワックス、カカオバターなどが含まれるが、これらに限定されない。「製剤」という用語は、担体としてまたは担体を含まない活性成分がそれに付随する担体によって囲まれているカプセルを提供する、担体としてのカプセル化材料を用いた活性化合物の製剤を含むことを意図している。同様に、カシェ剤およびトローチ剤が含まれる。錠剤、散剤、カプセル剤、丸剤、カシェ剤、およびトローチ剤は、経口投与に適した固体形態としてあり得る。
【００６１】
経口投与に適した他の形態としては、乳剤、シロップ剤、エリキシル剤、水溶液、水性懸濁液を含む液体形態調製物、または使用直前に液体形態調製物に変換されることが意図される固体形態調製物が含まれる。エマルジョンは、溶液中、例えば、プロピレングリコール水溶液中で調製することができ、または例えばレシチン、ソルビタンモノオレエート、またはアラビアゴムなどの乳化剤を含むことができる。水溶液は活性成分を水に溶解しそして適切な着色剤、香味剤、安定剤および増粘剤を添加することにより調製できる。水性懸濁液は、例えば、天然または合成ゴム、樹脂、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、および他のよく知られている懸濁剤などの粘性材料を用いて微粉化活性成分を水中に分散させることによって調製することができる。固形製剤は、溶液、懸濁液、および乳濁液を含み、そして活性成分に加えて、着色剤、香味剤、安定剤、緩衝剤、人工および天然の甘味剤、分散剤、増粘剤、可溶化剤などを含み得る。
【００６２】
本発明の化合物はまた、非経口投与（例えば、注射、例えばボーラス注射または連続注入または治療部位への直接注射による）のために処方することもでき、アンプル、予め充填されたシリンジ、小容量輸液、または保存料を添加した複数回投与用容器中の単位投与形態で提供することができる。組成物は、懸濁液、溶液、または油性もしくは水性ビヒクル中のエマルジョン、例えば水性ポリエチレングリコール中の溶液などの形態をとることができる。油性または非水性の担体、希釈剤、溶媒またはビヒクルの例には、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、植物油（例えば、オリーブ油）、および注射用有機エステル（例えば、オレイン酸エチル）が含まれ、保存剤、湿潤剤、乳化剤または懸濁剤、安定化剤および／または分散剤などの製剤化剤を含み得る。あるいは、活性成分は、滅菌固体の無菌単離によって得られる、または使用前に適切なビヒクル、例えば、滅菌水、パイロジェンフリー水で構成するために溶液から凍結乾燥することによって得られる粉末形態であり得る。
【００６３】
本発明の化合物は、軟膏剤、クリーム剤もしくはローション剤として、または経皮パッチ剤として表皮への局所投与用に製剤化することができる。軟膏剤およびクリーム剤は、例えば、適切な増粘剤および／またはゲル化剤を添加して、水性または油性基剤を用いて処方することができる。ローション剤は、水性または油性基剤を用いて製剤化することができ、そして一般に、１以上の乳化剤、安定化剤、分散剤、懸濁剤、増粘剤、または着色剤も含有するであろう。口腔内への局所投与に適した製剤は、風味を付けた基剤中、通常はスクロースおよびアラビアゴムまたはトラガカント中に活性薬剤を含むトローチ；ゼラチンおよびグリセリンまたはスクロースおよびアラビアゴムのような不活性塩基中に活性成分を含むトローチ；および活性成分を適切な液体担体中に含む口腔洗浄剤を含む。
【００６４】
本発明の化合物は、座薬として投与するために製剤化することができる。脂肪酸グリセリドまたはカカオ脂の混合物のような低融点ワックスが最初に溶融されそして活性成分が例えば撹拌により均質に分散される。次いで、溶融した均質混合物を都合のよい大きさの型に注ぎ入れ、冷却しそして固化させる。
【００６５】
本発明の化合物は膣内投与用に製剤化することもできる。ペッサリー、タンポン、クリーム、ゲル、ペースト、フォームまたはスプレーは、活性成分に加えて、当技術分野において適切であることが知られているような担体を含む。
【００６６】
本発明の化合物は経鼻投与用に製剤化することができる。液剤または懸濁剤は、例えば点滴器、ピペットまたはスプレーを用いる通常の手段によって鼻腔に直接適用される。製剤は単回または複数回投与形態で提供することができる。点滴器またはピペットの後者の場合、これは、患者が適切な所定量の溶液または懸濁液を投与することによって達成することができる。スプレーの場合、これは、例えば計量噴霧スプレーポンプによって達成することができる。
【００６７】
本発明の化合物は、鼻腔内投与を含む、特に気道へのエアロゾル投与用に製剤化することができる。化合物は、一般に、例えば５ミクロン以下のオーダーの小さい粒径を有する。そのような粒径は、当技術分野において公知の手段によって、例えば微粒子化によって得ることができる。活性成分は、クロロフルオロカーボン（ＣＦＣ）、例えばジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、もしくはジクロロテトラフルオロエタン、または二酸化炭素もしくは他の適切な気体などの適切な噴射剤と共に加圧パックで提供される。エアロゾルは、レシチンなどの界面活性剤も便宜上含むことができる。薬物の投与量は定量弁によって制御することができる。あるいは、活性成分は、乾燥粉末、例えばラクトース、デンプン、例えばヒドロキシプロピルメチルセルロースなどのデンプン誘導体およびポリビニルピロリジン（ＰＶＰ）などの適切な粉末基剤中の化合物の粉末混合物の形態で提供することができる。粉末担体は、典型的には鼻腔内でゲルを形成する。粉末組成物は例えばゼラチンまたは吸入器によって投与され得るブリスターパックの例えばカプセルまたはカートリッジ中の単位用量形態で提供され得る。
【００６８】
所望により、製剤は、有効成分の持続放出または制御放出投与に適合した腸溶性コーティングを用いて調製することができる。例えば、本発明の化合物は、経皮または皮下薬物送達装置に製剤化することができる。これらの送達システムは、化合物の持続放出が必要または望ましいとき、および治療計画に対する患者の服薬遵守が重要であるときに有利である。経皮送達システム中の化合物はしばしば皮膚接着性固体支持体に付着している。目的の化合物はまた、浸透促進剤、例えば、アゾン（１−ドデシルアザシクロヘプタン−２−オン）と組み合わせることもできる。持続放出送達システムは、外科手術または注射によって皮下層に皮下挿入することができる。皮下インプラントは、例えばシリコンゴム、または生分解性ポリマー例えばポリ乳酸などの脂溶性膜中に化合物を封入している。
【００６９】
医薬製剤は典型的には単位剤形である。そのような形態では、製剤はしばしば適切な量の活性成分を含有する単位用量に細分される。単位剤形は、包装された調製物であり得、この包装は、包装された錠剤、カプセル剤、およびバイアルまたはアンプル中の粉末などの、別々の量の調製物を含む。また、単位剤形は、カプセル剤、錠剤、カシェ剤、もしくはトローチ剤それ自体であり得るか、または包装形態の適切な数のこれらのいずれかであり得る。
【００７０】
他の適切な医薬担体およびそれらの製剤は、Remington: The Science andPractice of Pharmacy 1995, edited by E.W. Martin, Mack Publishing Company, 19thedition, Easton, Paに記載されている。
【００７１】
治療に使用するために、治療上有効量の式Ｉの化合物、ならびにその薬学的に許容される塩を未処理の化学物質として投与することができる場合、活性成分を医薬組成物として提供することが可能である。すなわち、本開示は、治療上有効量の式（Ｉ）の化合物またはその薬学的に許容される塩、および１以上の薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤を含む医薬組成物をさらに提供する。組み合わせが適用される場合、この用語は、組み合わせて、連続的にまたは同時に投与されるかにかかわらず、治療効果をもたらす活性成分の組み合わせ量をいう。式Ｉの化合物およびその薬学的に許容される塩は上記の通りである。担体、希釈剤、または賦形剤は、製剤の他の成分と適合性があり、そのレシピエントに有害ではないという意味で許容されるものでなければならない。本開示の別の態様によれば、式（Ｉ）の化合物、またはその薬学的に許容される塩、またはそれらのプロドラッグを１以上の薬学的に許容される担体、希釈剤、または賦形剤と混合することを含む医薬製剤の製造方法も提供される。
【００７２】
本開示の組成物が本開示の化合物と１以上の追加の治療薬または予防薬との組み合わせを含む場合、化合物および追加の薬剤の両方は、通常約１０〜１５０％の間のレベルの用量で、より典型的には単独療法治療計画において約１０〜８０％の間の通常投与用量で提供される。
【００７３】
実用性:本発明の化合物は、関節リウマチ、肺線維症、ＨＩＶ感染、および癌の治療を含むがこれらに限定されない様々な臨床状態の治療に使用することができる。本発明の化合物を用いて治療することができる例示的な癌としては、乳癌、膵臓癌、黒色腫、前立腺癌、腎臓癌、神経芽細胞腫、非ホジキンリンパ腫、肺癌、卵巣癌、結腸直腸癌、多発性骨髄腫、多形性膠芽腫、および慢性リンパ性白血病を含むがこれらに限定されない。
【００７４】
本発明の方法は、ＣＸＣＲ４／ＳＤＦ−１相互作用またはＣＸＣＲ４受容体活性に関連した任意の障害を治療することを含む。治療的処置とは、疾患の進行を遅らせること、中断すること、抑止すること、制御すること、または止めることを含む工程をいうが、必ずしもすべての疾患関連症状、状態、または障害を完全に排除することを含むものではない。
【００７５】
本発明の化合物は様々な経路で投与することができる。典型的には、本発明の化合物は非経口投与用に処方される。
【００７６】
本発明のさらなる目的、利点、および新規の特徴は、限定することを意図しない以下の実施例を検討することによって当業者に明らかになるであろう。実施例において、実施するために構造的に簡潔にされた手順は現在時制で記載されており、実験室で行われた手順は過去時制で記載されている。
【実施例】
【００７７】
以下の略語が使用されている：Ac: アセチル；Boc: ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル； BOP:（ベンゾトリアゾール−１−イルオキシ）−トリス（ジメチルアミノ）ホスホニウムヘキサフルオロホスフェート；Bz: ベンゾイル；Bzl: ベンジル；Dab: １，４−ジアミノ酪酸；Dap:１，３−ジアミノプロピオン酸;DCC: ジシクロヘキシルカルボジイミド；DCM: ジクロロメタン；DIC: ジイソプロピルカルボジイミド；DIEA: ジイソプロピルエチルアミン；DMF: N，N−ジメチルホルムアミド；DMSO:ジメチルスルホキシド；EDT: １，２−エタンジチオール；Et:エチル；Fmoc: ９−フルオロ−エニルメトキシカルボニル；HATU: Ｎ−［（ジメチルアミノ）−１Ｈ−１，２，３−トリアゾロ［４，５−ｂ］ピリジン−１−イルメチレン］−Ｎ−メチルメタンアミニウムヘキサフルオロホスフェートＮ−オキシド； HBTU: O−ベンゾ−トリアゾリル−N，N，N’，N’−テトラメチルウロニウムヘキサフルオロホスフェート； HCTU:１Ｈ−ベンゾトリアゾリウム１− [ビス（ジメチルアミノ）メチレン]−５−クロロ−３−オキシドヘキサフルオロホスフェート；HOBt: ヒドロキシベンゾトリアゾール；hCys: ホモシステイン；iPr: イソプロピル；IPA: イソプロピルアルコール；Me:メチル； Mpa: ３−メルカプトプロピオン酸；2Nal: ２−ナフチルアラニン；1Nal: １−ナフチルアラニン； NMM: Ｎ−メチルモルホリン；NMP: Ｎ−メチルピロリドン；Orn: オルニチン； Pbf: ２，２，４，６，７−ペンタメチル−ジヒドロベンゾフラン−５−スルホニル；PBS: リン酸緩衝食塩水；PyBOP:（ベンゾトリアゾール−１−イルオキシ）−トリス（ピロリジノ）−ホスホニウムヘキサフルオロ−ホスフェート；PyBrOP: ブロモトリス（ピロリジノ）ホスホニウムヘキサフルオロホスフェート； tBu: ｔｅｒｔ−ブチル；TFA:トリフルオロ酢酸；TFE: トリフルオロエタノール；THF:テトラヒドロフラン；TIS:トリイソプロピルシラン； Trt:トリチル； すべての一般的なアミノ酸は、３文字の記号として表現されるか、または他に指定されている。
【００７８】
以下の実施例に記載の本発明の化合物の調製は、限定的ではなく例示的であることを意味する。これらの実施例のそれぞれにおいて、観察された分子量は逆畳み込み値（de-convoluted value）として報告されている。該逆畳み込み値は、式ＭＷ（実測値）＝ｎ（ｍ／ｚ）−ｎから導き出され、ここで、ｍ／ｚは荷電イオン（正モード）を表し、ｎは特定の種の電荷数である。質量スペクトル中に複数の荷電種が存在する場合、観察された分子量は平均として報告される。
【００７９】
ペプチド合成、環状構造形成、および塩交換の一般的な方法:本技術分野で公知の固相ペプチド合成化学を用いてペプチドを合成した。これらのペプチドの環状構造は、ジスルフィドについては、酸性酸（acidic acid）の存在下でのヨウ素酸化を使用することによって確立され、またはビスチオエーテル環については、１５ｍＭ重炭酸アンモニウム溶液などの塩基の存在下で、ビス（ハロメチル）アリール化合物を用いて、典型的には１．３当量のビス（ブロモメチル）アリール化合物を用いて求核置換によって確立された。
【００８０】
最終生成物を逆相ＨＰＬＣにより精製し、そして分析用ＨＰＬＣおよび質量分析によりさらに特徴付けた。逆相ＨＰＬＣから精製されたペプチドは通常トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）形態であった。この塩は、典型的には、酢酸塩または塩酸塩のような、より薬学的に都合の良い塩の形態に変換された。ＴＦＡ塩中のペプチドを塩酸塩に変換することは、希塩酸溶液中でＴＦＡ塩中のペプチドを繰り返し凍結乾燥することによって達成することができる。ＴＦＡ塩中のペプチドの酢酸塩への変換のために、典型的には以下の方法が使用された。
【００８１】
強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１ＮＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【００８２】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。
【００８３】
実施例１：シクロ[Mpa-Tyr-Arg-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Arg-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2 (配列番号４): 配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Arg(Pbf)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Arg(Pbf)-Gly-(D-Phe)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、１１の主要工程で達成した。
【００８４】
段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-（D-Phe）をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１１、3-（トリチルチオ）プロピオン酸(Mpa(Trt))のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。
【００８５】
完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【００８６】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mL（１リットル中に５００ｍｇの粗ペプチド）で水に溶解し、溶液のｐＨを磁気撹拌しながら１Ｍの炭酸アンモニウム溶液を用いてpH 6.5に調整した。撹拌しながら、粗ペプチド溶液に過酸化水素溶液を最終濃度0.03%まで添加してジスルフィド結合形成を促進した。質量分析によりモニターしたところ、環化は1時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。
【００８７】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１ＮＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【００８８】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度96.64%；MW計算値：1353.49；MW観測値：1353.45；ペプチド含有量82.88％；酢酸含有量7.78%。
【００８９】
実施例２：シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Arg-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2 (配列番号５): 配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Arg(Pbf)-Gly-(D-Phe)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、１１の主要工程で達成した。
【００９０】
段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-（D-Phe）をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１１、3-（トリチルチオ）プロピオン酸(Mpa(Trt))のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。
【００９１】
完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【００９２】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mL（１リットル中に５００ｍｇの粗ペプチド）で水に溶解し、溶液のｐＨを磁気撹拌しながら１Ｍの炭酸アンモニウム溶液を用いてpH 6.5に調整した。撹拌しながら、粗ペプチド溶液に過酸化水素溶液を最終濃度0.03%まで添加してジスルフィド結合形成を促進した。質量分析によりモニターしたところ、環化は1時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【００９３】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１ＮＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【００９４】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度98.78%；MW計算値：1366.93；MW観測値：1367.70；ペプチド含有量83.55%；酢酸含有量7.75%。
【００９５】
実施例３：シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2(配列番号６): 配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr)-Gly-(D-Phe)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、１１の主要工程で達成した。
【００９６】
段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-（D-Phe）をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１１、3-（トリチルチオ）プロピオン酸(Mpa(Trt))のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。
【００９７】
完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【００９８】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mL（１リットル中に５００ｍｇの粗ペプチド）で水に溶解し、溶液のｐＨを磁気撹拌しながら１Ｍの炭酸アンモニウム溶液を用いてpH 6.5に調整した。撹拌しながら、粗ペプチド溶液に過酸化水素溶液を最終濃度0.03%まで添加してジスルフィド結合形成を促進した。質量分析によりモニターしたところ、環化は1時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【００９９】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１ＮＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【０１００】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度98.14%；MW計算値：1381.35；MW観測値：1381.80；ペプチド含有量85.26%；酢酸含有量6.77%。
【０１０１】
実施例４: シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-(D-Arg)-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2(配列番号７)：配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-(D-Arg(Pbf))-Gly-(D-Phe)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、１１の主要工程で達成した。
【０１０２】
段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-（D-Phe）をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１１、3-（トリチルチオ）プロピオン酸(Mpa(Trt))のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。
【０１０３】
完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１０４】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mL（１リットル中に５００ｍｇの粗ペプチド）で水に溶解し、溶液のｐＨを磁気撹拌しながら１Ｍの炭酸アンモニウム溶液を用いてpH 6.5に調整した。撹拌しながら、粗ペプチド溶液に過酸化水素溶液を最終濃度0.03%まで添加してジスルフィド結合形成を促進した。質量分析によりモニターしたところ、環化は1時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１０５】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１ＮＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を10％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【０１０６】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度97.02%；MW計算値：1366.83；MW観測値：1367.25；ペプチド含有量83.77%；酢酸含有量8.37%。
【０１０７】
実施例５： シクロ[Mpa-Arg-Tyr-Arg-2Nal-Gly-Cys]-Arg-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2 (配列番号８)：配列Mpa(Trt)-Arg(Pbf)-Tyr(tBu)-Arg(Pbf)-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Arg(Pbf)-Gly-(D-Phe)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、１１の主要工程で達成した。
【０１０８】
段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-2NalをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１１、3-（トリチルチオ）プロピオン酸(Mpa(Trt))のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。
【０１０９】
完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１１０】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mL（１リットル中に５００ｍｇの粗ペプチド）で水に溶解し、溶液のｐＨを磁気撹拌しながら１Ｍの炭酸アンモニウム溶液を用いてpH 6.5に調整した。撹拌しながら、粗ペプチド溶液に過酸化水素溶液を最終濃度0.03%まで添加してジスルフィド結合形成を促進した。質量分析によりモニターしたところ、環化は1時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１１１】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１ＮＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【０１１２】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度96.05%；MW計算値：1353.49；MW観測値：1353.00；ペプチド含有量83.51%；酢酸含有量5.51%。
【０１１３】
実施例６: シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-(D-Phe)-Gly-NH(Et)(配列番号９): 配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Gly-(D-Phe)-Glyは２−クロロトリチルクロリド樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、4.0 gの該樹脂をDCM中で2時間膨潤させ、DMFで4回次いでDCMで1回洗浄した。０．４ミリモル／グラムの置換に基づいて、最初の残基Fmoc-Glyの装填は、DIEAで活性化された４当量のアミノ酸を用いてDCM中で行われた。室温で1.5時間カップリングした後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。 Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。線状ペプチドの段階的鎖集合を続けてそして全部で１１の主要工程で達成した。
【０１１４】
Fmoc-Glyのカップリング後、工程２では、3当量のFmoc-(D-Phe)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１１、3-（トリチルチオ）プロピオン酸(Mpa(Trt))のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して工程を続けた。
【０１１５】
完成した線状ペプチド酸を、DCM中20％TFE（樹脂１グラム当たり30 mL）を用いて室温で９０分間完全に保護された形態で樹脂から切断した。該切断溶液を濾過により分離し、DCM中の同じ20％TFEを用いて60分間、2回目の切断を行った。樹脂を再度濾過により除去し、次いで２つの切断溶液を一緒にした。溶媒をrotovapで除去し、残渣を真空乾燥して、粗製の完全保護線状ペプチド酸、Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Gly-(D-Phe)-Gly-OHを得た。
【０１１６】
エチルアミノ化:粗線状ペプチド酸を乾燥DMFに15mg/mLで溶解した。ペプチド酸溶液に、３モル当量のＨＡＴＵ、２，４，６−トリメチルピリジン、およびエチルアミンをそれぞれ添加した。エチルアミノ化反応は、質量分析法によりモニターし１時間以内に達成された。溶媒を蒸発させ、残渣を真空乾燥した。
【０１１７】
脱保護:凍結乾燥粗線状ペプチドの側鎖保護は、室温で70分間10mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて取り除いた。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１１８】
環化:粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mLで20％酢酸に溶解した。撹拌しながら、ペプチド溶液が淡黄色に変わるまで0.03% mole/Lのヨウ素溶液を添加する。環化の間、溶液を可視光から保護した。質量分析によりモニターしたところ、環化は0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１１９】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１Ｎ ＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【０１２０】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度96.54%；MW計算値：1408.69；MW観測値：1409.10；ペプチド含有量84.46%；酢酸含有量6.64%。
【０１２１】
実施例７:シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH(Et) (配列番号１０):配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Glyは２−クロロトリチルクロリド樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、4.0 gの該樹脂をDCM中で2時間膨潤させ、DMFで4回次いでDCMで1回洗浄した。０．４ミリモル／グラムの置換に基づいて、最初の残基Fmoc-Glyの装填は、DIEAで活性化された４当量のアミノ酸を用いてDCM中で行われた。室温で1.5時間カップリングした後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。 Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。線状ペプチドの段階的鎖集合を続けてそして全部で９の主要工程で達成した。
【０１２２】
Fmoc-Glyのカップリング後、工程２では、3当量のFmoc-Lys(iPr,Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程９、3-（トリチルチオ）プロピオン酸(Mpa(Trt))のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して工程を続けた。
【０１２３】
完成した線状ペプチド酸を、DCM中20％TFE（樹脂１グラム当たり30 mL）を用いて室温で９０分間完全に保護された形態で樹脂から切断した。該切断溶液を濾過により分離し、DCM中の同じ20％TFEを用いて60分間、2回目の切断を行った。樹脂を再度濾過により除去し、次いで２つの切断溶液を一緒にした。溶媒をrotovapで除去し、残渣を真空乾燥して、粗製の完全保護線状ペプチド酸、Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Gly-OHを得た。
【０１２４】
エチルアミノ化:粗線状ペプチド酸を乾燥DMFに15mg/mLで溶解した。ペプチド酸溶液に、３モル当量のＨＡＴＵ、２，４，６−トリメチルピリジン、およびエチルアミンをそれぞれ添加した。エチルアミノ化反応は、質量分析法によりモニターし１時間以内に達成された。溶媒を蒸発させ、残渣を真空乾燥した。
【０１２５】
凍結乾燥粗線状ペプチドの側鎖保護は、室温で70分間10 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて取り除いた。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１２６】
環化:粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mLで20％酢酸に溶解した。撹拌しながら、ペプチド溶液が淡黄色に変わるまで0.03% mole/Lのヨウ素溶液を添加した。環化の間、溶液を可視光から保護した。質量分析によりモニターしたところ、環化は0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１２７】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１ＮＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【０１２８】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.71%；MW計算値：1204.51；MW観測値：1205.25；ペプチド含有量81.60%；酢酸含有量11.26%。
【０１２９】
実施例８: シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-2Nal-Gly-NH2(配列番号１１)：配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr)-Gly-2Nal-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、１１の主要工程で達成した。
【０１３０】
段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-2NalをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１１、3-（トリチルチオ）プロピオン酸(Mpa(Trt))のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。
【０１３１】
完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１３２】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mL（１リットル中に５００ｍｇの粗ペプチド）で水に溶解し、溶液のｐＨを磁気撹拌しながら１Ｍの炭酸アンモニウム溶液を用いてpH 6.5に調整した。撹拌しながら、粗ペプチド溶液に過酸化水素溶液を最終濃度0.03%まで添加してジスルフィド結合形成を促進した。質量分析によりモニターしたところ、環化は1時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１３３】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１ＮＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【０１３４】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度96.44%；MW計算値：1430.43；MW観測値：1431.00；ペプチド含有量84.33%；酢酸含有量7.07%。
【０１３５】
実施例９: Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-(D-Phe)-Gly-NH2(配列番号１２)：配列hCys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr)-Gly-(D-Phe)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、１１の主要工程で達成した。
【０１３６】
段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-（D-Phe）をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１１、Fmoc-hCys(Trt)のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。工程１１のため、Ｎ末端のFmocをDMF中の20％ピペリジンを使用して除去し、そしてα−アミノ基のアセチル化を22 mLの無水酢酸/DIEA/DMF（1:1:4、v/v）の混合物で室温で30分間実施した。完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１３７】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mL（１リットル中に５００ｍｇの粗ペプチド）で水に溶解し、溶液のｐＨを磁気撹拌しながら１Ｍの炭酸アンモニウム溶液を用いてpH 6.5に調整した。撹拌しながら、粗ペプチド溶液に過酸化水素溶液を最終濃度0.03%まで添加してジスルフィド結合形成を促進した。質量分析によりモニターしたところ、環化は1時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１３８】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１Ｎ ＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。樹脂は精製ペプチドの塩変換の準備ができた。
【０１３９】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離した。樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度96.38%；MW計算値：1451.84；MW観測値：1452.60；ペプチド含有量83.88%；酢酸含有量7.82%。
【０１４０】
実施例１０: Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(配列番号１３)：配列hCys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、９の主要工程で達成した。段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-Lys(iPr)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程９、Fmoc-hCys(Trt)のカップリングまで、それぞれFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。工程９のため、Ｎ末端のFmocをDMF中の20％ピペリジンを使用して除去し、そしてα−アミノ基のアセチル化を22 mLの無水酢酸/DIEA/DMF（1:1:4、v/v）の混合物で室温で30分間実施した。完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１４１】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mL（１リットル中に５００ｍｇの粗ペプチド）で水に溶解し、溶液のｐＨを磁気撹拌しながら１Ｍの炭酸アンモニウム溶液を用いてpH 6.5に調整した。撹拌しながら、粗ペプチド溶液に過酸化水素溶液を最終濃度0.03%まで添加してジスルフィド結合形成を促進した。質量分析によりモニターしたところ、環化は1時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１４２】
塩交換態様: 強陰イオン交換樹脂（塩化物形態、置換３ミリモル／ｇ、含水量５０％、ペプチド１グラム当たり２グラムの樹脂を使用）を最初にミリＱ水で３回洗浄し、次いで１Ｎ ＮａＯＨ溶液で３回、５分／１回洗浄し、次いでミリＱ水で５回、５分／１回洗浄した。ｐＨが約７．４に達するまで樹脂を７５％エタノール水でさらに洗浄した。この樹脂を１０％酢酸溶液で各回５分ずつ３回処理した。次いで樹脂を１％酢酸溶液で３回、各回５分洗浄した。
【０１４３】
精製された凍結乾燥ペプチドを１％酢酸溶液に溶解しそして上記の調製した樹脂に添加した。混合物を室温で１時間撹拌または磁気撹拌した。上清を分離し、樹脂を１％酢酸溶液で３回洗浄した。上清と洗浄液を組み合わせ、０．２２μｍの膜を通して濾過し、そして凍結乾燥し、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度96.13%；MW計算値：1247.61；MW観測値：1248.00；ペプチド含有量81.02%；酢酸含有量10.09%。
【０１４４】
実施例１１： ベンゾイル-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(MLB-021)(配列番号１４)：配列hCys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr,Boc)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、９の主要工程で達成した。段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc- Lys(iPr,Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１０、前工程のアミノ酸のように行われる安息香酸のカップリングまで、それぞれFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。工程１０のため、Fmoc除去は行わなかった。
【０１４５】
得られたペプチドを脱保護し、室温で70分間36ｍＬのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切断した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１４６】
凍結乾燥粗ペプチドを、0.5 mg/mLの２０％酢酸を含有する水（１リットル中に500 mgの粗ペプチド）に溶解した。撹拌しながら、溶液が淡黄色になるまで、0.03%モル／Ｌのヨウ素溶液をペプチド溶液に添加した。質量分析によりモニターしたところ、環化は暗所で0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１４７】
塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.98%；MW計算値：1310.64；MW観測値：1310.70；ペプチド含有量78.48%。
【０１４８】
実施例１２：ベンゾイル-シクロ[Cys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-hCys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(MLB-022)(配列番号１５)：配列Cys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-hCys(Trt)-Lys(iPr,Boc)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、９の主要工程で達成した。段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc- Lys(iPr,Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１０、前工程のアミノ酸のように行われる安息香酸のカップリングまで、それぞれFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。工程１０のため、Fmoc除去は行わなかった。
【０１４９】
完成したペプチドを脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１５０】
凍結乾燥粗ペプチドを、0.5 mg/mLの２０％酢酸を含有する水（１リットル中に500 mgの粗ペプチド）に溶解した。撹拌しながら、溶液が淡黄色になるまで、0.03%モル／Ｌのヨウ素溶液をペプチド溶液に添加した。質量分析によりモニターしたところ、環化は暗所で0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１５１】
塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.64%；MW計算値：1310.64；MW観測値：1310.55；ペプチド含有量69.25%。
【０１５２】
実施例１３：ベンゾイル-シクロ[Cys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(MLB-023)(配列番号２７)：配列Cys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)- Lys(iPr,Boc)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、９の主要工程で達成した。段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc- Lys(iPr,Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１０、前工程のとおり行われる安息香酸のカップリングまで、それぞれFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。工程１０のため、Fmoc除去は行わなかった。
【０１５３】
完成したペプチドを脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１５４】
粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥粗ペプチドを、0.5 mg/mLの20％酢酸を含有する水（１リットル中に500 mgの粗ペプチド）に溶解した。撹拌しながら、溶液が淡黄色になるまで、0.03%モル／Ｌのヨウ素溶液をペプチド溶液に添加した。質量分析によりモニターしたところ、環化は暗所で0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１５５】
塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度97.04%；MW計算値：1296.61；MW観測値：1296.75；ペプチド含有量78.15%。
【０１５６】
実施例１４： ベンゾイル-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH(Et) (MLB-024) (配列番号１６)：配列hCys(Trt)-Tyr(tBu)- Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)- Lys(iPr,Boc)-Glyは２−クロロトリチルクロリド樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、4.0 gの該樹脂をDCM中で2時間膨潤させ、DMFで4回次いでDCMで1回洗浄した。０．４ミリモル／グラムの置換に基づいて、最初の残基Fmoc-Glyの装填は、5当量のDIEAで活性化された4当量のアミノ酸を用いてDCM中で行われた。室温で1.5時間カップリングした後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。 Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。線状ペプチドの段階的鎖集合を続けてそして全部で９の主要工程で達成した。
【０１５７】
Fmoc-Glyのカップリング後、工程２では、3当量のFmoc-Lys(iPr,Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。工程１０、前工程のアミノ酸のように行われる安息香酸のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。工程１０のため、Fmoc除去は行わなかった。
【０１５８】
完成した線状ペプチド酸を、DCM中20％TFE（樹脂１グラム当たり30 mL）を用いて室温で９０分間完全に保護された形態で樹脂から切断した。該切断溶液を濾過により分離し、DCM中の同じ20％TFEを用いて60分間、2回目の切断を行った。樹脂を再度濾過により除去し、次いで２つの切断溶液を一緒にした。それから溶媒を除去し、残渣を真空乾燥して、粗製の完全保護線状ペプチド酸、配列ベンゾイル-hCys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Gly-OHを得た。
【０１５９】
C末端エチルアミノ化と側鎖保護除去:粗線状ペプチド酸を乾燥DMFに15 mg/mLで溶解した。ペプチド酸溶液に、３モル当量のＨＡＴＵ、２，４，６−トリメチルピリジン、およびエチルアミンをそれぞれ添加した（3：3：3、モル比）。エチルアミノ化反応は、質量分析法によりモニターし１時間以内に達成された。溶媒を蒸発させ、残渣を真空乾燥した。
【０１６０】
凍結乾燥粗線状ペプチドの側鎖保護は、室温で70分間10 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて取り除いた。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１６１】
環化:粗製凍結乾燥生成物を環化反応に直接使用した。凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mLで20％酢酸に溶解した。撹拌しながら、ペプチド溶液が淡黄色に変わるまで0.03% mole/Lのヨウ素溶液を添加した。環化の間、溶液を可視光から保護した。質量分析によりモニターしたところ、環化は0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１６２】
塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度97.59%；MW計算値：1338.69；MW観測値：1338.90；ペプチド含有量97.59%。
【０１６３】
実施例１５：フェニルアセチル-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH2(MLB-025)(配列番号１７)：配列hCys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)- Lys(iPr,Boc)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、９の主要工程で達成した。段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングし、続いてDMF中20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc- Lys(iPr,Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程１０、フェニルアセチルのカップリングまで、それぞれFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。２０％ＤＩＥＡ／ ＤＭＦ中の３当量の塩化フェニルアセチルを用いて５０分間フェニルアセチル化を行った。その後Fmoc除去は必要とされなかった。
【０１６４】
完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１６５】
凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mLで20％酢酸含有水に溶解した。撹拌しながら、ペプチド溶液が淡黄色に変わるまで0.03% mole/Lのヨウ素溶液を添加した。質量分析によりモニターしたところ、環化は暗所で0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１６６】
上述のとおりの塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.67%；MW計算値：1324.67；MW観測値：1324.65。
【０１６７】
実施例１６：Ac-シクロ[hCys-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Gly-NH(Et) (MLB-026) (配列番号１８)：配列hCys(Trt)-Tyr(tBu)- Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)- Lys(iPr,Boc)-Glyは２−クロロトリチルクロリド樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、4.0 gの該樹脂をDCM中で2時間膨潤させ、DMFで4回次いでDCMで1回洗浄した。０．４ミリモル／グラムの置換に基づいて、最初の残基Fmoc-Glyの装填は、5当量のDIEAで活性化された4当量のアミノ酸を用いてDCM中で行われた。室温で1.5時間カップリングした後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。 Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。線状ペプチドの段階的鎖集合を続けてそして全部で９の主要工程で達成した。
【０１６８】
Fmoc-Glyのカップリング後、工程２では、3当量のFmoc-Lys(iPr,Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。工程９、Fmoc-hCys(Trt)のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。工程９のため、Ｎ末端のFmocをDMF中の20％ピペリジンを使用して除去し、そしてα−アミノ基のアセチル化を22 mLの無水酢酸/DIEA/DMF（1:1:4、v/v）の混合物で室温で30分間実施した。
【０１６９】
完成した線状ペプチド酸を、DCM中20％TFE（樹脂１グラム当たり30 mL）を用いて室温で９０分間完全に保護された形態で樹脂から切断した。該切断溶液を濾過により分離し、DCM中の同じ20％TFEを用いて60分間、2回目の切断を行った。樹脂を再度濾過により除去し、次いで２つの切断溶液を一緒にした。それから溶媒を除去し、残渣を真空乾燥して、粗製の完全保護線状ペプチド酸、配列Ac-hCys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Gly-OHを得た。
【０１７０】
C末端エチルアミノ化と側鎖保護除去:粗線状ペプチド酸を乾燥DMFに15 mg/mLで溶解した。ペプチド酸溶液に、３モル当量のＨＡＴＵ、２，４，６−トリメチルピリジン、およびエチルアミンをそれぞれ添加した（3：3：3、モル比）。エチルアミノ化反応は、質量分析法によりモニターし１時間以内に達成された。溶媒を蒸発させ、残渣を真空乾燥した。
【０１７１】
凍結乾燥粗線状ペプチドの側鎖保護は、室温で70分間10 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて取り除いた。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１７２】
環化:凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mLで20％酢酸に溶解した。撹拌しながら、ペプチド溶液が淡黄色に変わるまで0.03%mole/Lのヨウ素溶液を添加した。環化の間、溶液を可視光から保護した。質量分析によりモニターしたところ、環化は0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１７３】
上述のとおり塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.03%；MW計算値：1276.62；MW観測値：1276.65。
【０１７４】
実施例１７：シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Lys(Ac)-NH(Et)(MLB-027)(配列番号１９)：配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Lys(Ac)は２−クロロトリチルクロリド樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、4.0 gの該樹脂をDCM中で2時間膨潤させ、DMFで4回次いでDCMで1回洗浄した。０．４ミリモル／グラムの置換に基づいて、最初の残基Fmoc-Lys(Ac)の装填は、DIEAで活性化された3当量のアミノ酸を用いてDCM中で行われた。室温で1.5時間カップリングした後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。 Fmoc保護の除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。線状ペプチドの段階的鎖集合を続けてそして全部で９の主要工程で達成した。
【０１７５】
Fmoc-Lys(Ac)のカップリング後、工程２では、3当量のFmoc-Lys(iPr, Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。工程９、3-（トリチルチオ）プロピオン酸（Mpa(Trt)）のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。
【０１７６】
完成した線状ペプチド酸を、DCM中20％TFE（樹脂１グラム当たり30 mL）を用いて室温で９０分間完全に保護された形態で樹脂から切断した。該切断溶液を濾過により分離し、DCM中の同じ20％TFEを用いて60分間、2回目の切断を行った。樹脂を再度濾過により除去し、次いで２つの切断溶液を一緒にした。それから溶媒を除去し、残渣を真空乾燥して、粗製の完全保護線状ペプチド酸、Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Lys(Ac)-OHを得た。
【０１７７】
C末端エチルアミノ化と側鎖保護除去:粗線状ペプチド酸を乾燥DMFに15 mg/mLで溶解した。ペプチド酸溶液に、３モル当量のＨＡＴＵ、２，４，６−トリメチルピリジン、およびエチルアミンをそれぞれ添加した。エチルアミノ化反応は、質量分析法によりモニターし１時間以内に達成された。溶媒を蒸発させ、残渣を真空乾燥した。
【０１７８】
凍結乾燥粗線状ペプチドの側鎖保護は、室温で70分間10 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて取り除いた。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１７９】
環化:凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mLで20％酢酸に溶解した。撹拌しながら、ペプチド溶液が淡黄色に変わるまで0.03%mole/Lのヨウ素溶液を添加した。環化の間、溶液を可視光から保護した。質量分析によりモニターしたところ、環化は0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１８０】
上述のとおり塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.50%；MW計算値：1318.70；MW観測値：1318.80；ペプチド含有量77.53%。
【０１８１】
実施例１８: シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Lys(ラウロイル)-NH(Et)(MLB-028) (配列番号２０): 配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Lys(dde)は２−クロロトリチルクロリド樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、4.0 gの該樹脂をDCM中で2時間膨潤させ、DMFで4回次いでDCMで1回洗浄した。０．４ミリモル／グラムの置換に基づいて、最初の残基Fmoc-Lys(Dde)(Dde: 1-（4,4-ジメチル-2,6-ジオキソシクロヘキシリデン）エチル)の装填は、DIEAで活性化された3当量のアミノ酸を用いてDCM中で行われた。室温で1.5時間カップリングした後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。 Fmoc保護の除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。線状ペプチドの段階的鎖集合を続けてそして全部で９の主要工程で達成した。
【０１８２】
3-（トリチルチオ）プロピオン酸（Mpa（Trt））のカップリング後、室温で5分間、5％ヒドラジンでリジン側のε−アミノのDde保護を解除した。それから樹脂をDMFで3回洗浄した。ヒドラジン脱保護を３回繰り返した。最後の脱保護後、樹脂をDMFで5回洗浄し、次いで脱保護した樹脂に3当量のラウリン酸を加えDMF中のHOBt/DICで活性化した。カップリングを６０分間進行させた。次いで樹脂をDMFで3回、そしてDCMで2回洗浄した。切断する前に樹脂を真空乾燥した。
【０１８３】
完成した線状ペプチド酸を、DCM中20％TFE（樹脂１グラム当たり30 mL）を用いて室温で９０分間完全に保護された形態で樹脂から切断した。該切断溶液を濾過により分離し、DCM中の同じ20％TFEを用いて60分間、2回目の切断を行った。樹脂を再度濾過により除去し、次いで２つの切断溶液を一緒にした。それから溶媒を除去し、残渣を真空乾燥して、粗製の完全保護線状ペプチド酸、Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Lys(ラウロイル)-OHを得た。
【０１８４】
C末端エチルアミノ化と側鎖保護除去。粗線状ペプチド酸を乾燥DMFに15 mg/mLで溶解した。ペプチド酸溶液に、３モル当量のＨＡＴＵ、２，４，６−トリメチルピリジン、およびエチルアミンをそれぞれ添加した。エチルアミノ化反応は、質量分析法によりモニターし１時間以内に達成された。溶媒を蒸発させ、残渣を真空乾燥した。
【０１８５】
凍結乾燥粗線状ペプチドの側鎖保護は、室温で70分間10 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて取り除いた。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１８６】
環化:凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mLで20％酢酸に溶解した。撹拌しながら、ペプチド溶液が淡黄色に変わるまで0.03%mole/Lのヨウ素溶液を添加した。環化の間、溶液を可視光から保護した。質量分析によりモニターしたところ、環化は0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１８７】
上述のとおり塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.42%；MW計算値：1458.97；MW観測値：1458.75；ペプチド含有量78.19%。
【０１８８】
実施例１９: シクロ[Mpa-Tyr-Lys(iPr)-(D-Arg)-2Nal-Gly-Cys]-Lys(iPr)-Lys(パルミトイル)-NH(Et)(MLB-029) (配列番号２１)：配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Lys(dde)は２−クロロトリチルクロリド樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、4.0 gの該樹脂をDCM中で2時間膨潤させ、DMFで4回次いでDCMで1回洗浄した。０．４ミリモル／グラムの置換に基づいて、最初の残基Fmoc-Lys(Dde)(Dde: 1-（4,4-ジメチル-2,6-ジオキソシクロヘキシリデン）エチル)の装填は、DIEAで活性化された3当量のアミノ酸を用いてDCM中で行われた。室温で1.5時間カップリングした後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。 Fmoc保護の除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。線状ペプチドの段階的鎖集合を続けてそして全部で９の主要工程で達成した。
【０１８９】
3-（トリチルチオ）プロピオン酸（Mpa（Trt））のカップリング後、室温で5分間、5％ヒドラジンでリジン側のε−アミノのDde保護を解除した。それから樹脂をDMFで3回洗浄した。ヒドラジン脱保護を３回繰り返した。最後の脱保護後、樹脂をDMFで5回洗浄した。次いで脱保護した樹脂に3当量のパルミチン酸を加えDMF中のHOBt/DICで活性化した。カップリングを６０分間進行させた。次いで樹脂をDMFで3回、そしてDCMで2回洗浄した。切断する前に樹脂を真空乾燥した。
【０１９０】
完成した線状ペプチド酸を、DCM中20％TFE（樹脂１グラム当たり30 mL）を用いて室温で９０分間完全に保護された形態で樹脂から切断した。該切断溶液を濾過により分離し、DCM中の同じ20％TFEを用いて60分間、2回目の切断を行った。樹脂を再度濾過により除去し、次いで２つの切断溶液を一緒にした。それから溶媒を除去し、残渣を真空乾燥して、粗製の完全保護線状ペプチド酸、Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Lys(パルミトイル)-OHを得た。
【０１９１】
C末端エチルアミノ化と側鎖保護除去。粗線状ペプチド酸を乾燥DMFに15 mg/mLで溶解した。ペプチド酸溶液に、３モル当量のＨＡＴＵ、２，４，６−トリメチルピリジン、およびエチルアミンをそれぞれ添加した。エチルアミノ化反応は、質量分析法によりモニターし１時間以内に達成された。溶媒を蒸発させ、残渣を真空乾燥した。
【０１９２】
凍結乾燥粗線状ペプチドの側鎖保護は、室温で70分間10mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて取り除いた。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１９３】
環化:凍結乾燥した粗ペプチドを0.5 mg/mLで20％酢酸に溶解した。撹拌しながら、ペプチド溶液が淡黄色に変わるまで0.03%mole/Lのヨウ素溶液を添加した。環化の間、溶液を可視光から保護した。質量分析によりモニターしたところ、環化は0.5時間以内に完了した。環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１９４】
上述のとおり塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.31%；MW計算値：1515.08；MW観測値：1515.00。
【０１９５】
実施例２０：
【化２２】
2019534893.tif 000024
：配列Cys(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)- Lys(iPr,Boc)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、９の主要工程で達成した。段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングした。カップリング後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。Fmoc保護の除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。続いて、DMF中の20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-Lys(iPr, Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。
【０１９６】
次いで、工程１０、前工程のアミノ酸のように行われる安息香酸のカップリングまで、それぞれFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。工程１０のため、Fmoc除去は行わなかった。完成したペプチドを同時に脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０１９７】
粗製凍結乾燥線状ペプチドを次の環化反応に直接使用した。１当量の凍結乾燥粗ペプチドを、以下のように予め調製した溶液に添加した：１．３当量の１，２−ビスブロモメチルベンゼンを5mg/mLでアセトニトリルに溶解した。超音波処理を使用することにより、溶解を速めることが可能となる。粗線状ペプチドを1.5mg/mLの最終濃度まで添加する前に、１，２−ビスブロモメチルベンゼンの溶液を等容量の１５ｍＭ重炭酸アンモニウム水溶液と混合した。反応を１時間撹拌しながら進行させた。ＭＳモニタリングにより環化が完了したことを確認した。
【０１９８】
環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０１９９】
上述のとおり塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度97.04%；MW計算値：1296.61；MW観測値：1296.75；ペプチド含有量78.15%。
【０２００】
実施例２１：
【化２３】
2019534893.tif 000025
：配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr,Boc)-Glyは２−クロロトリチルクロリド樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、4.0 gの該樹脂をDCM中で2時間膨潤させ、DMFで4回次いでDCMで1回洗浄した。０．４ミリモル／グラムの置換に基づいて、最初の残基Fmoc-Glyの装填は、5当量のDIEAで活性化された4当量のアミノ酸を用いてDCM中で行われた。室温で1.5時間カップリングした後、未反応の置換部位をメタノール／ＤＩＥＡ（１：１、ｖ／ｖ、２４ｍＬ）で３０分間キャッピングした。 Fmoc保護の除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。線状ペプチドの段階的鎖集合を続けてそして全部で９の主要工程で達成した。
【０２０１】
Fmoc-Glyのカップリング後、工程２では、3当量のFmoc-Lys(iPr,Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、室温で2時間、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。次いで、工程９、Mpa(Trt)のカップリングまで、それぞれ対応するFmoc保護アミノ酸を使用して工程を続けた。この工程でのカップリング後、Fmoc除去は行わなかった。
【０２０２】
完成した線状ペプチド酸を、DCM中20％TFE（樹脂１グラム当たり30 mL）を用いて室温で９０分間完全に保護された形態で樹脂から切断した。該切断溶液を濾過により分離し、DCM中の同じ20％TFEを用いて60分間、2回目の切断を行った。樹脂を再度濾過により除去し、次いで２つの切断溶液を一緒にした。それから溶媒を除去し、残渣を真空乾燥して、粗製の完全保護線状ペプチド酸、配列Mpa(Trt)-Tyr(tBu)-Lys(iPr, Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)-Lys(iPr, Boc)-Gly-OHを得た。
【０２０３】
C末端エチルアミノ化と側鎖保護除去:粗線状ペプチド酸を乾燥DMFに15 mg/mLで溶解した。ペプチド酸溶液に、３モル当量のＨＡＴＵ、２，４，６−トリメチルピリジン、およびエチルアミンをそれぞれ（3：3：3、モル比）添加した。エチルアミノ化反応は、質量分析法によりモニターし１時間以内に達成された。溶媒を蒸発させ、残渣を真空乾燥した。
【０２０４】
凍結乾燥粗線状ペプチドの側鎖保護は、室温で70分間10 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて取り除いた。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０２０５】
環化:１当量の凍結乾燥粗ペプチドを、以下のように予め調製した溶液に添加した：１．３当量の１，２−ビスブロモメチルベンゼンを5mg/mLでアセトニトリルに溶解した。超音波処理を使用すると、溶解を速めることが可能となる。粗線状ペプチドを1.5mg/mLの最終濃度まで添加する前に、１，２−ビスブロモメチルベンゼンの溶液を等容量の１５ｍＭ重炭酸アンモニウム水溶液と混合した。反応を１時間撹拌しながら進行させた。ＭＳモニタリングにより環化が完了したことを確認した。
【０２０６】
環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０２０７】
上述のとおり塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度97.59%；MW計算値：1309.69；MW観測値：1309.20。
【０２０８】
実施例２２：
【化２４】
2019534893.tif 000026
：配列Cys(Trt)-Tyr(tBu)- Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)- Lys(iPr,Boc)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、９の主要工程で達成した。段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングした。ニンヒドリンテストは陰性だった。続いて、DMF中の20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-Lys(iPr, Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。それぞれFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。最後の残基Fmoc-Cys(Trt)のカップリング後、DMF中の20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。無水酢酸／ＤＩＥＡ／ＤＭＦ（１：１：４、ｖ／ｖ／ｖ）の混合物22 mLを用いて室温で３０分間、Ｎ末端アセチル化を行った。次いで樹脂をDMFで３回、次いでDCMで２回洗浄し、真空乾燥した。
【０２０９】
完成したペプチドを脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０２１０】
１当量の凍結乾燥粗ペプチドを、以下のように予め調製した溶液に添加した：１．３当量の１，２−ビスブロモメチルベンゼンを5mg/mLでアセトニトリルに溶解した。超音波処理を使用することにより、溶解を速めることが可能となる。粗線状ペプチドを1.5mg/mLの最終濃度まで添加する前に、１，２−ビスブロモメチルベンゼンの溶液を等容量の１５ｍＭ重炭酸アンモニウム水溶液と混合した。反応を１時間撹拌しながら進行させた。ＭＳモニタリングにより環化が完了したことを確認した。
【０２１１】
環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０２１２】
上述のとおり塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度97.59%；MW計算値：1338.70；MW観測値：1338.60；ペプチド含有量82.22%。
【０２１３】
実施例２３：
【化２５】
2019534893.tif 000027
：配列Cys(Trt)-Tyr(tBu)- Lys(iPr,Boc)-(D-Arg(Pbf))-2Nal-Gly-Cys(Trt)- Lys(iPr,Boc)-GlyはRink AM樹脂を使用して標準的なFmoc化学によって組み立てられた。簡単に説明すると、3.6 gのRink AM樹脂をDCM中で14時間膨潤させ、次いでDMFで4回洗浄した。Fmocの除去は、DMF中の20％ピペリジン中、室温で20分間行い、DMFで数回洗浄した。ニンヒドリンテストは陰性だった。段階的鎖構築は線状ペプチドのＣ末端から始まり、９の主要工程で達成した。段階１において、3当量の保護アミノ酸Fmoc-GlyをDMF中のDCC/HOBtで活性化し、上記のFmoc除去Rink AM樹脂と室温で2時間カップリングした。ニンヒドリンテストは陰性だった。続いて、DMF中の20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。段階２において、3当量のFmoc-Lys(iPr, Boc)をDMF中のDCC/HOBtで活性化し、工程１からの脱保護樹脂にカップリングさせた。それぞれFmoc保護アミノ酸を使用して適切な工程を続けた。最後の残基Fmoc-Cys(Trt)のカップリング後、DMF中の20％ピペリジンを用いて20分間Fmoc除去をした。無水酢酸／ＤＩＥＡ／ＤＭＦ（１：１：４、ｖ／ｖ／ｖ）の混合物22 mLを用いて室温で３０分間、Ｎ末端アセチル化を行った。次いで樹脂をDMFで３回、次いでDCMで２回洗浄し、真空乾燥した。
【０２１４】
完成したペプチドを脱保護し、室温で70分間36 mLのTFA/EDT/TIS/H2O/チオアニソール/フェノールの切断カクテル（100 mLの溶液当たり81.5 mLのTFA、2.5 mLのEDT、1.0 mLのTIS、5.0 mLのH2O、5.0 mLのチオアニソール、5.0グラムのフェノールを含む）を用いて樹脂から切り離した。この切断混合物に８容量のメチルｔ−ブチルエーテルを加えた。粗ペプチド沈殿物を3000rpmで3分間の遠心分離により分離した。粗ペプチド沈殿物をメチルｔ−ブチルエーテルで３回洗浄した。次いで粗ペプチドをアセトニトリル水溶液に溶解し、そして凍結乾燥した。
【０２１５】
１当量の凍結乾燥粗ペプチドを、以下のように予め調製した溶液に添加した：１．３当量の１，３−ビスブロモメチルベンゼンを5mg/mLでアセトニトリルに溶解した。超音波処理を使用することにより、溶解を速めることが可能となる。粗線状ペプチドを1.5mg/mLの最終濃度まで添加する前に、１，３−ビスブロモメチルベンゼンの溶液を等容量の１５ｍＭ重炭酸アンモニウム水溶液と混合した。反応を１時間撹拌しながら進行させた。ＭＳにより環化が完了したことを確認した。
【０２１６】
環化最終生成物を逆相分取カラムDaisogel（50×250 mm、8 mm）；移動相−溶媒Ａ：0.1%TFA水；溶媒Ｂ：0.1%ＴＦＡアセトニトリルを用いて精製した。目的生成物を含む画分を組み合わせて凍結乾燥した（ＴＦＡ塩）。
【０２１７】
上述のとおり塩交換により、酢酸塩中のペプチドを得た。最終ペプチド生成物の分析ＨＰＬＣ純度95.23%；MW計算値：1338.82；MW観測値：1338.45。
【０２１８】
ヒトＣＸＣＲ４／１２５Ｉ−ＳＤＦ−１α結合阻害アッセイ:Ｃｈｅｍ−１細胞中で発現されたヒトケモカイン受容体ＣＸＣＲ４を改変ＨＥＰＥＳ緩衝液ｐＨ７．４中で使用した。０．５μｇ（膜タンパク質はロットごとに変わる可能性があり、使用される濃度は必要に応じて調整された）一定分量を０．０３ｎＭ［１２５Ｉ］ＳＤＦ−１αと共に２５℃で９０分間インキュベートした。非特異的結合は、３０ｎＭのＳＤＦ−１αの存在下で推定された。膜を濾過し、洗浄し、次いでフィルターを計数して特異的に結合した［１２５Ｉ］ＳＤＦ−１αを決定した。化合物を、１１点希釈で１０μＭから始めてスクリーニングした(Valenzuela-Fernandez A, etal. J Biol Chem. 277(18):15677, 2002)。ＣＸＣＲ４結合データをそれらの物理的特徴付けと一緒に以下の表に示す。
表１：例示されたペプチドの特徴付けおよび結合活性
【表１】
2019534893.tif 000028
【０２１９】
腫瘍細胞遊走および浸潤アッセイ:細胞遊走は、胚発生、組織再編成、血管新生、免疫細胞輸送、慢性炎症、創傷治癒および腫瘍転移などの多くの生物学的および病理学的過程の基本的要素である多段階過程である。
【０２２０】
細胞浸潤は癌の特徴の一つである。それは細胞遊走に関連し、そして転移において重要な役割を果たす。転移は、結果として癌患者の死亡率の主たる理由である。腫瘍細胞が転移性腫瘍を形成する能力は、主に細胞の細胞形態を変化させて再編成し、細胞外マトリックス（ECM）を分解する能力によって決定される。
【０２２１】
細胞移動および浸潤の増加は、ヒト癌細胞の転移能の増強を示唆する。したがって、この実験の目的は、トリプルネガティブ乳がん（ＴＮＢＣ）および非小細胞肺がん（ＮＳＣＬＣ）細胞の遊走および浸潤を阻害する本発明の化合物の能力を決定することである。そのような阻害は、ＴＮＢＣおよびＮＳＣＬＣの腫瘍転移に対する治療活性を示す。
【０２２２】
IncuCyteシステムによる遊走アッセイ: IncuCyte（登録商標）ZOOM システム (Essen BioScience,Inc.,アナーバー、ミシガン州)は細胞の遊走および浸潤を動的にモニターするために使用された。この自動化システムは、細胞培養インキュベーターの安定した環境内での細胞の挙動（増殖、運動性、遊走、浸潤など）のリアルタイム定量、典型的なエンドポイント分析の限界を排除することを可能にする、統合生細胞イメージングおよび分析プラットフォームである。実験手順は以下の概要のとおり：
１．       細胞を１０％ＦＢＳを添加したＤＭＥ／Ｆ１２またはＲＰＭＩ１６４０培地中で増殖させた。
２．       細胞を、２４時間後に増殖細胞が単層としておよそ８０〜９０％コンフルエントに達するような密度で９６ウェル組織培養プレート上に播種した。（ＭＤＡ−ＭＢ−２３１：５００００／ウェル；ＨＣＣ１８０６：４００００／ウェル；Ａ５４９：５００００／ウェル）
３．     細胞を２時間飢餓状態にした（無血清培地（ＳＦＭ）で培養した）。Essen BioScience, Inc.によって提供される創傷メーカーを使用して各ウェルに引っ掻き傷を付けた。次いでプレートをＰＢＳで２回洗浄した。
４．       細胞を、１００μｌの無血清培地（ＳＦＭ）中のＤＭＳＯ（対照）またはペプチドＣＸＣＲ４−アンタゴニスト（２００ｎｍｏｌ／Ｌ）で２時間前処理した。
５．       次に、培地を、ＤＭＳＯまたはペプチドＣＸＣＲ４−アンタゴニスト（２００ｎｍｏｌ／Ｌ）と組み合わせたリガンドＳＤＦ−１α（１００ｎｇ／ｍｌ）の有無にかかわらず、新鮮なＳＦＭ（１００μｌ）と交換した。
６．       次にプレートをIncuCyteシステムに入れ、通常の細胞培養インキュベーターで１〜２日間インキュベートした。４時間毎にIncuCyteスキャンによって得られたデータをIncuCyteソフトウェアによって分析し、そして創傷治癒曲線を作成した。
アッセイデータは図１〜４に報告される。図１は、本発明の化合物が、ＴＮＢＣＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞におけるリガンド（ＳＤＦ−１α）誘導細胞遊走を阻害できたことを示す。ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞は上記の細胞遊走アッセイにより分析した。２００ｎｇ／ｍｌのＳＤＦ−１αを使用した。 使用した本発明の化合物（例えば、ＭＬＢ−００９、ＭＬＢ−０１０、ＭＬＢ−０１４、およびＭＬＢ−０１１）の濃度は２００ｎｍｏｌ／Ｌであった。０時間の緑色は最初のスクラッチ領域を示し；１２時間または１６時間で、緑色は細胞遊走のない残りの領域を示す。図２は、図１に記載のＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞に対する細胞遊走アッセイの定量化である。図３は、本発明の化合物がＳＤＦ−１α誘導ＨＣＣ１８０６細胞遊走も阻害することを示す。別のＴＮＢＣＨＣＣ１８０６細胞株を細胞遊走アッセイを用いて分析した。１００ｎｇ／ｍｌのＳＤＦ−１αを使用した。使用した化合物（ＭＬＢ−００９、ＭＬＢ−０１０、ＭＬＢ−０１４、およびＭＬＢ−０１１）の濃度は２００ｎｍｏｌ／Ｌであった。０時間の緑色は最初のスクラッチ領域を示し；１２時間で、緑色は細胞遊走のない残りの領域を示す。図４は、図３に記載のＨＣＣ１８０６細胞遊走アッセイの定量化である。
【０２２３】
IncuCyteシステムによる浸潤アッセイ:IncuCyte（登録商標） ZOOM システム (Essen BioScience, Inc.,アナーバー、ミシガン州)は癌細胞の浸潤を動的にモニターするためにも使用された。このアッセイの実験手順を以下に提供する：
１．       ＳＦＭで１：１００に希釈したマトリゲルを９６ウェル組織培養プレート（５０μｌ／ウェル）に加えた。該プレートを通常の細胞培養インキュベーターに一晩置いた。
２．       １０％ＦＢＳを添加したＤＭＥ／Ｆ１２またはＲＰＭＩ１６４０培地中で増殖させた細胞を上記の９６ウェルプレート上に播種した。（ＭＤＡ−ＭＢ−２３１：５００００／ウェル；ＨＣＣ１８０６：４００００／ウェル；Ａ５４９：５００００／ウェル）
３．       翌日、細胞を２時間飢餓状態にした（ＳＦＭで培養した）。IncuCyte機器を介した創傷メーカーを使用して各ウェルに引っ掻き傷を付けた。次いでプレートをＰＢＳで２回洗浄した。
４．       細胞を、１００μｌのＳＦＭ中のＤＭＳＯ（対照）または本発明の化合物（２００ｎｍｏｌ／Ｌ）で２時間前処理した。
５．       次に、細胞培養培地を、１：２０の比（５０μｌ／ウェル）でＳＦＭで希釈したマトリゲルと交換した。該プレートをインキュベーターに1時間静置した。
６．       ＳＤＦ−１α（１００ｎｇ／ｍｌ）＋ＤＭＳＯまたは本発明の化合物（２００ｎｍｏｌ／Ｌ）を含むかまたは含まない新鮮なＳＦＭ（１００μｌ）を９６ウェルプレートの各ウェルに添加した。
７．       次に該プレートをIncuCyteシステムに入れ、通常の細胞培養インキュベーターで１〜２日間インキュベートした。４時間毎にIncuCyteスキャニングを通して得られたデータをIncuCyteソフトウェアにより分析し、そして細胞浸潤曲線を作成した。
そのデータは図５〜７で報告される。図５は、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞に対する細胞浸潤アッセイの定量化である。図６は、ＨＣＣ１８０６細胞に対する細胞浸潤アッセイの定量化である。図７は、ＮＳＣＬＣＡ５４９細胞に対する細胞浸潤アッセイの定量化である。
【０２２４】
前述された本発明の説明は、例示および説明の目的で提示されている。前述は、本発明を本明細書に開示された形態に限定することを意図するものではない。本発明の説明は、１以上の実施態様ならびに特定の変形された態様および修正された態様の説明を含んでいるが、例えば本開示の理解後の当業者の技術および知識の範囲内であり得る他の変形した態様および修正された態様は本発明の範囲内である。代替の、交換可能な、および／または同等の構造、機能、範囲、または請求されたものに対するステップを含む、特許請求されたものと代替の、交換可能な、および／または均等な構造、機能、範囲または工程を含む、許可される範囲の代替の態様を含む権利を取得することを意図するものであり、そのような代替の、交換可能な、および／または均等な構造、機能、範囲、または工程が、本明細書に開示されているかどうかにかかわらず、特許性のある主題を公に捧げることを意図するものではない。本明細書中に引用された全ての参考文献は、その全体が参考として援用される。
【０２２５】
図面の用語
Relative Wound Density (Percent) 相対創傷密度（パーセント）
Time (Hours)  時間（時間）
【図１】
2019534893.tif 000032
【図２】
2019534893.tif 000033
【図３】
2019534893.tif 000034
【図４】
2019534893.tif 000035
【図５】
2019534893.tif 000036
【図６】
2019534893.tif 000037
【図７】
2019534893.tif 000038
【配列表】
2019534893000001.app
【国際調査報告】
2019534893.tif 000039
2019534893.tif 000040
2019534893.tif 000041