(57)【要約】  核小体は強力な疾患バイオマーカーであり、例えば、がん療法における標的である。本発明は、８０のヒトｒタンパク質のそれぞれの枯渇が、核小体構造、プレｒＲＮＡプロセシング、成熟ｒＲＮＡ蓄積およびｐ５３定常状態レベルにどのような影響を及ぼすかに関する。本発明はさらに、正常な核小体形態と変化した核小体形態の定性的および定量的判別のための画像処理プログラムに関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
核小体崩壊または完全性を予測する、診断する、または確定するための方法であって、
（ａ）から（ｐｐ）：
（ａ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＬ１３、およびｅＬ３３；
（ｂ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ２１、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｕＬ２２、ｅＬ１４、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｅＬ１３、ｅＬ８、およびｅＬ３３；
（ｃ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＬ１３、ｅＬ８、およびｅＬ３３；
（ｄ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＳ３１、ｅＬ１３、ｅＬ８、およびｅＬ３３；
（ｅ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＬ１３、ｅＬ８、ｅＬ３３、ｅＬ３２、ｅＬ６、ｕＬ４、ｕＬ３、ｅＬ１８、ｕＬ１１、ｅＬ４０、ｕＬ１６、ｕＬ１４、およびｅＬ２４；
（ｆ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＳ３１、ｅＬ１３、ｅＬ８、ｅＬ３３、ｅＬ３２、ｅＬ６、ｕＳ１０、ｕＬ４、ｕＬ３、ｅＬ１８、ｕＬ１１、ｅＳ２５、ｅＬ４０、ｅＳ２１、ｕＬ１６、ｅＳ１９、ｕＬ１４、ｕＳ４、ｅＬ２４、ｅＳ２７、ｕＳ１７、およびｕＳ８；
（ｇ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＬ１３、ｅＬ８、ｅＬ３３、ｅＬ３２、ｅＬ６、ｕＬ４、ｕＬ３、ｅＬ１８、ｕＬ１１、ｅＬ４０、ｕＬ１６、ｕＬ１４、ｅＬ２４、ｕＬ１０、ｅＬ２８、ｅＬ２７Ｌ、ｅＳ３０、ｅＬ３１、ｅＬ１５、およびｅＬ２９；
（ｈ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＳ３１、ｅＬ１３、ｅＬ８、ｅＬ３３、ｅＬ３２、ｅＬ６、ｕＳ１０、ｕＬ４、ｕＬ３、ｅＬ１８、ｕＬ１１、ｅＳ２５、ｅＬ４０、ｅＳ２１、ｕＬ１６、ｅＳ１９、ｕＬ１４、ｕＳ４、ｅＬ２４、ｅＳ２７、ｕＳ１７、ｕＳ８、ｕＬ２４、  ｅＳ２６、ｕＳ１３、ｕＬ１０、ｅＬ２９、ｕＳ２、ｅＬ１５、ｅＳ４、ｕＳ５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｕＳ３、ｕＳ９、ｅＳ１７、ｕＳ１１、ｅＳ２８、ｅＬ２８、ｕＳ１４；
（ｉ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｕＬ４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ１３、およびｅＬ３６；
（ｊ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｕＳ１４、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＳ３０、ｅＬ１４、ｕＬ４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＳ１９、ｅＳ１０、ｅＬ１３、ｅＳ３１、およびｅＬ３６；
（ｋ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｕＬ４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｅＬ３３、およびｅＬ８；
（ｌ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｕＳ１４、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｅＳ１０、ｅＳ１９、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＳ３０、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、およびｅＬ３１；
（ｍ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＳ２７、ｅＬ３６、ｕＬ２４、ｅＬ１８、ｅＬ３２、ｅＬ２９、ｕＬ１６、ｅＬ２４、ｅＬ１５、ｅＬ４２、ｕＬ１０、ｅＬ１３、ｕＬ１１、ｅＬ４０、ｕＬ３、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、およびｅＬ３１；
（ｎ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ３３、ｅＳ２４、ｅＬ８、ｕＳ４、ｅＳ２８、ｅＳ２７、ｕＳ７、ｕＳ９、ｕＳ１９、ｅＬ３６、ｕＳ１１、ｕＳ８、ｕＬ２４、ｅＬ１８、ｅＬ３２、ｅＳ２７Ｌ、ｅＬ２９、ｕＬ１６、ｕＳ１３、ｅＬ２４、ｅＬ１５、ｕＳ１０、ｅＳ１０、ｅＬ４２、ｕＬ１０、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｕＬ１１、ｅＬ４０、ｕＬ３、ｅＳ１９、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＳ３０、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、およびｕＳ１４；
（ｏ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＳ３１、ｅＬ１３、ｅＬ８、ｅＬ３３、ｅＬ３２、ｅＬ６、ｕＳ１０、ｕＬ４、ｕＬ３、ｅＬ１８、ｕＬ１１、ｅＳ２５、ｅＬ４０、ｅＳ２１、ｕＬ１６、ｅＳ１９、ｕＬ１４、ｕＳ４、ｅＬ２４、ｅＳ２７、ｕＳ１７、ｕＳ８、ｕＬ１８、ｕＬ２４、  ｅＳ２６、ｕＳ１３、ｕＬ１０、ｅＬ２９、ｕＳ２、ｅＬ１５、ｅＳ４、ｕＳ５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｕＳ３、ｕＳ９、ｅＳ１７、ｕＳ１１、ｅＳ２８、ｅＬ２８、およびｕＳ１４；
（ｐ）ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＬ３６、ｅＬ１３、ｅＬ８、ｅＬ３３、ｅＬ３２、ｅＬ６、ｕＬ４、ｕＬ３、ｅＬ１８、ｕＬ１１、ｅＬ４０、ｕＬ１６、ｕＬ１４、ｅＬ２４、ｕＬ２４、ｕＬ１８、ｕＬ１０、ｅＬ２８、ｅＬ２７Ｌ、ｅＳ３０、ｅＬ３１、ｅＬ１５、およびｅＬ２９；
（ｑ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｕＳ１４、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＳ３０、ｅＬ１４、ｕＬ４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、ｅＳ１９、およびｅＳ１０；
（ｒ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｕＳ１４、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＳ３０、ｅＬ１４、ｕＬ４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、ｕＬ６、およびｅＳ１９；
（ｓ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、ｕＬ４、ｅＬ３７、ｅＬ３９、ｅＬ３４、およびｕＬ６；
（ｔ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｕＳ１４、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＳ３０、ｅＬ１４、ｕＬ４、およびｅＳ１０；
（ｕ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、ｕＬ１５、ｅＬ２７、ｅＬ１４、およびｕＬ４；
（ｖ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｕＳ１４、ｅＬ３１、ｅＬ６、ｅＬ２０、およびｅＳ１０；
（ｗ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、ｕＬ２２、ｅＬ３１、ｅＬ６、およびｅＬ２０；
（ｘ）ｕＬ１８、ｕＬ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、ｕＬ３０、およびｕＬ２２；
（ｙ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｅＬ３０、ｕＬ２９、およびｕＬ３０；
（ｚ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、ｕＬ１３、ｕＬ２９、およびｅＬ３０；
（ａａ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、ｅＬ３８、およびｕＬ１３；
（ｂｂ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、およびｅＬ３８；
（ｃｃ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、ｅＬ１９、およびｅＳ１０；
（ｄｄ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、およびｅＬ１９；
（ｅｅ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、ｅＬ２１、およびｅＳ１０；
（ｆｆ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、およびｅＬ２１；
（ｇｇ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、ｅＬ４３、およびｅＳ１０；
（ｈｈ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、ｕＬ２、およびｅＬ４３；
（ｉｉ）ｕｌ１８、ｕｌ５、ｕＬ１、およびｕＬ２；
（ｊｊ）ｕＬ１８、ｕＬ５、およびｕＬ１；
（ｋｋ）ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｌｌ）ｕＬ１８；
（ｍｍ）ｕＬ５；
（ｎｎ）ＢＸＤＣ１およびＲＲＳ１、もしくはリボソーム中央隆起部形成に関与する任意のタンパク質；
（ｏｏ）ｕＬ２４、ｕＬ１４、ｅＳ７、ｅＬ８、ｅＳ６、ｅＳ１９、ｕＳ１１、ｅＬ３７、ｅＳ２６、ｅＳ３１、ｅＳ２７Ｌ、ｕＳ１２、およびｕＳ１０を除く、上記リストから選択される任意の１つもしくは複数のリボソームタンパク質；または
（ｐｐ）ｕＬ５および／もしくはｕＬ１８を除く、上記リストから選択される任意の１つもしくは複数のリボソームタンパク質
のうちのいずれかを含むまたはそれからなる群から選択される１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のタンパク質またはｍＲＮＡ発現レベルを確定することを含む方法。
【請求項２】
細胞中のｐ５３のタンパク質レベルを増加させるまたは減少させるための方法であって、
（ａ）から（ｉ）：
（ａ）ｅＬ２９、ｕＳ２、ｅＬ１５、ｅＳ４、ｕＳ５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｕＳ３、ｕＳ９、ｅＳ１７、ｕＳ１１、ｅＳ２８、ｅＬ２８、ｕＳ１４、ｕＬ１０、ｕＳ１３、ｅＳ２６、ｕＬ２４、ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｂ）ｅＬ２９、ｅＬ１５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｅＬ２８、ｕＬ１０、ｕＬ２４、ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｃ）ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｄ）ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｅ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｆ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｇ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ１４、ｕＬ２２、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ２１、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｈ）ｅＬ２９、ｕＳ２、ｅＬ１５、ｅＳ４、ｕＳ５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｕＳ３、ｕＳ９、ｅＳ１７、ｕＳ１１、ｅＳ２８、ｅＬ２８、ｕＳ１４、ｕＬ１０、ｕＳ１３、ｅＳ２６、ｕＬ２４、ｕＬ１８、ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｉ）ｅＬ２９、ｅＬ１５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｅＬ２８、ｕＬ１０、ｕＬ２４、ｕＬ１８、ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
のうちのいずれかを含むまたはそれからなる群から選択される１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべてのリボソームタンパク質のｍＲＮＡまたはタンパク質レベルをそれぞれ減少させるまたは増加させることを含む方法。
【請求項３】
細胞中のｐ５３のタンパク質レベルをそれぞれ増加させるもしくは減少させるのに使用するための、または治療に使用するための、または核小体形態、構造もしくは完全性を変えるのに使用するための、請求項１に定義される（ａ）から（ｐｐ）のうちのいずれかまたは請求項２に定義される（ａ）から（ｉ）のうちのいずれかを含むまたはそれからなる群から選択される１つまたは複数のリボソームタンパク質の阻害剤または誘導剤。
【請求項４】
核小体形態、構造もしくは完全性を特徴付けるための方法であって、核小体支持区域および核小体強度パターンの１つまたは複数の形態計測特性を測定するまたは確定することを含み、
任意選択で、好ましくは、形態または形（小成分のサイズ、形状、および数を包含する）および内部パターン構造（画素強度の空間的構成および空間的変動を包含する）を含む、画像中の前記核小体の外観を、測定可能で定量化可能な様式で特徴付けるように、前記形態計測特性がパラメトリック関数により定義される方法。
【請求項５】
核小体形態、構造もしくは完全性が真核細胞または組織画像に基づいて、好ましくは細胞集団に基づいて特徴付けられる、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
コンピュータで実施される方法および／または自動化方法である、請求項４または５の記載の方法。
【請求項７】
ａ）１つまたは複数の真核細胞、または真核組織の、または好ましくは細胞集団の画像を得るまたは提供するステップと；
ｂ）任意選択で、前記画像を分割し、それによって個々の細胞または細胞核を得るステップと；
ｃ）前記画像を分割し、それによって、好ましくは複数の繋がった画素を含むまたはそれからなる１つまたは複数の核小体塊を得るステップであって、繋がった画素が核小体の繋がった成分を構成するまたは表す、ステップと；
ｄ）任意選択で、共局在により核小体塊を個々の細胞または細胞核に、したがって個々の細胞に割り当てるステップと；
ｅ）任意選択で前記細胞に割り当てられた前記核小体の繋がった成分、好ましくは最大のものの支持区域、および／または強度パターンを特徴付ける１つまたは複数の形態計測特性を細胞または核ごとに抽出するステップと；
ｆ）前記形態計測特性の（細胞のセットにわたる）確率分布を算出するステップと；
ｇ）前記確率分布と基準モデル分布を比較しかつ／または前記確率分布と基準モデル分布の重複を確定するステップと
を含む、請求項４から６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
好ましくは、
ａ）任意選択で、区別しなければならない細胞（複数可）（集団）または組織から細胞（集団）または組織画像試料を提供するまたは得ること、
ｂ）目的の２つの集団の代表的細胞核小体試料間で観察される主要で顕著な違いをとらえるために任意のパラメトリック核小体形態計測特性のセットを定義すること、
ｃ）それぞれの核小体形態計測特性に関連するパラメータを、その判別力を最大にする、すなわち、区別する細胞（複数可）（集団）に由来する形態計測特性確率分布間の重複を最小にするように選択すること、
ｄ）判別形態計測特性として、形態計測特性および判別する細胞（複数可）（集団）間に大きな分離をもたらすそれに関連する最適化パラメータを選択すること
により導かれる、判別核小体形態計測特性のセットを定義することを含む、請求項４から７のいずれかに記載の方法。
【請求項９】
前記核小体支持区域が前記核小体塊の空間的支持体のサイズおよび形状を確定する形態計測特性により特徴付けられ、好ましくは前記形態計測特性が別個の核小体もしくは前記核小体に寄与する別個の繋がった成分の数、および／またはそれらの成分のそれぞれの一部である画素の数をカウントし、ならびに／または前記形態計測特性が前記核小体塊の伸長（例えば、アスペクト比）、および／もしくは楕円規則性、および／もしくは凹面を反映する任意の定量的計量を含み；好ましくは、すべての形態計測特性が、（画素）強度のレベルによりパラメータ化され、そのレベルより上では画素が前記核小体塊の一部であると見なされ；ならびに／または
前記核小体強度パターンが、前記核小体強度パターンおよび／もしくは核小体の繋がった成分強度パターン、好ましくは前記核小体もしくは核小体の繋がった成分内の核小体シグナルの空間的変動、好ましくは最大の変動を確定する形態計測特性により特徴付けられ；空間的変動が好ましくは、前記核小体もしくは核小体の繋がった成分の境界の内部およびその上で測定され、好ましくは、核小体もしくは核小体の繋がった成分の境界の近隣で、前記核小体塊とバックグラウンド画像の間の核小体関連画素強度の推移の鋭敏度が測定され；好ましくは、核小体もしくは核小体の繋がった成分の内部では、前記形態計測特性は画素強度の空間的変動をとらえるように定義され；任意選択で、核小体関連画素強度値の極小値および／もしくは極大値の規模および／もしくは数が測定され、ならびに／または核小体もしくは核小体の繋がった成分の内部での相対的に小さな強度値を有する画素の数および／もしくは小強度バレーにより分離されている高強度小領域の数および／もしくは形状、好ましくは、すべての形態計測特性が、小／高強度という概念を定義するために採用された閾値により、および／または核小体もしくは核小体の繋がった成分の内部／外部という概念を定義するために考慮される構造化要素により、好ましくは数理形態学に基づいてパラメータ化される、
請求項４から８のいずれかに記載の方法。
【請求項１０】
分割化が、画素の強度が閾値よりも上にあるかどうかを確定することを含み、好ましくは、前記画素の強度が前記閾値よりも上にある場合、前記画素が核もしくは核小体などの目的の物理的要素の一部と見なされ、前記閾値は好ましくは、自動的に確定され、
任意選択で、分割化のために考慮される前記閾値が、前もって定義されたセットの値内の閾値を、好ましくは、前記閾値よりも上の画素の繋がったセットの面積が分割する核もしくは核小体などの物理的要素について予想されるサイズの下限よりも大きい、最大の値として選択する自動的で局所的に適応的な方法を使用して定義され；および／または
任意選択で、分割化のために考慮される前記閾値が、前記判別核小体形態計測特性の判別力を最大にするように定義される、
請求項７から９のいずれかに記載の方法。
【請求項１１】
前記核小体支持区域が、好ましくは、細胞中の最大の核小体もしくは最大の核小体の繋がった成分の核小体面積、細胞中の核小体もしくは核小体の繋がった成分の数、および／または、好ましくは、細胞中の最大の核小体もしくは最大の核小体の繋がった成分の鋭敏度指数を測定することにより、確定され；
任意選択で、核小体の繋がった成分の前記核小体と前記バックグラウンド画像の間の核小体関連画素強度の推移の鋭敏度が、それぞれが２つの画素強度閾値τ１とτ２、τ１＞τ２よりも上にある核小体画素の比として測定される、
請求項４から１０のいずれかに記載の方法。
【請求項１２】
前記核小体支持区域が、核小体支持体形状規則性を測定することにより、好ましくは、細胞中の最大の核小体または最大の核小体の繋がった成分の伸長形状因子、楕円規則性因子、および／または凹面因子を好ましくは測定することにより；好ましくは、前記楕円規則性因子を測定することにより、確定され、
任意選択で、前記伸長形状因子が、その主軸の周辺の前記核小体または核小体の繋がった成分の２つの二次モーメントλ１およびλ２に基づいて、好ましくは、その主軸の周辺の前記核小体または核小体の繋がった成分の２つの二次モーメントλ１およびλ２の比の平方根として確定され、
任意選択で、前記楕円規則性因子が前記核小体または核小体の繋がった成分の面積と前記核小体または核小体の繋がった成分の外部にあり、前記核小体または核小体の繋がった成分と同じ中心、同じ主軸、および同じ伸長を有する最小楕円の面積の間の比として確定され、
任意選択で、前記凹面因子が前記核小体または核小体の繋がった成分の面積とその凸閉包の面積の間の比の減少関数として確定される、
請求項４から１１のいずれかに記載の方法。
【請求項１３】
前記核小体強度パターンが、好ましくは細胞中の最大の核小体または最大の核小体の繋がった成分において画素強度の分布を測定することにより；好ましくはセルワイズダイナミックレンジ正規化に続いて；好ましくは、細胞中の最大の核小体または最大の核小体の繋がった成分のテクスチャーヒストグラム低テール指数、テクスチャーアップランド指数、テクスチャーピーク指数、テクスチャーバレー指数、および／またはテクスチャー極小値を好ましくは測定することにより；好ましくは、テクスチャーヒストグラム低テール指数、テクスチャーバレー指数、およびテクスチャー極小値を測定することにより確定され、
任意選択で、前記テクスチャーヒストグラム低テール指数を、画素強度閾値αよりも下にある画素のパーセンテージとして定義し、
任意選択で、前記テクスチャーアップランド指数を、閾値βよりも上のその強度を有する繋がった核小体画素の数として定義し、
任意選択で、前記テクスチャーピーク指数を、前記核小体または核小体の繋がった成分中の極大値の数として定義し、
任意選択で、前記テクスチャーバレー指数を、前記核小体または核小体の繋がった成分中の極小値の数として定義し、かつ／または
任意選択で、前記テクスチャー極小値を、前記核小体または核小体の繋がった成分中の最小の極小値の強度として定義する、
請求項４から１２のいずれかに記載の方法。
【請求項１４】
−  細胞中の最大核小体の面積；
−  前記楕円規則性因子；
−  前記テクスチャーヒストグラム低テール指数；
−  前記テクスチャーバレー指数；および
−  前記テクスチャー極小値
を確定することを含む、請求項４から１３のいずれかに記載の方法。
【請求項１５】
前記核小体が、好ましくは核小体特異的フィーチャー（例えば、密度、光学的高さ）または、ＦＢＬもしくはＰＥＳ１などのマーカー（例えば、核小体特異的または濃縮分子）を同定するまたは定量化することにより得られる画像において画像画素強度閾値処理に基づいて、好ましくは、閾値処理された画像中の繋がった成分として、同定され、
任意選択で、前記核小体支持区域が区域分割化閾値に基づいて確定され、前記核小体形状規則性が形状分割化閾値に基づいて確定され、および／または核小体テクスチャーパターンがテクスチャー分割化閾値に基づいて確定され、それぞれの閾値は好ましくは、対応する形態計測特性の判別力を最大にするように定義される、請求項４から１４のいずれかに記載の方法。
【請求項１６】
前記核小体形態、構造、または完全性が標準または基準核小体形態、構造、または完全性と比較され、好ましくは、前記核小体形態、構造、または完全性は前記標準または基準核小体形態、構造、または完全性に関する差異に基づいてスコア化され、好ましくは、前記標準または基準核小体形態、構造、または完全性は正常な核小体形態、構造、または完全性である、請求項４から１５のいずれかに記載の方法。
【請求項１７】
前記差異が、前記核小体または核小体の繋がった成分の集団のそれぞれの形態計測特性の分布と標準または基準核小体または核小体の繋がった成分の集団の対応する形態計測特性の分布の間の距離に基づく差異ベクトルとして確定され、特定の核小体または核小体の繋がった成分集団ｄについての所与の形態計測特性（ｉ）に関連する差異ベクトル成分は好ましくは、差異ベクトル成分を表す次の式；
【数８】
2019523392.tif 000029
に従って確定され、
μ（ｉ）およびμｒ（ｉ）は、それぞれ前記核小体または核小体の繋がった成分と前記標準または基準核小体または核小体の繋がった成分の形態計測特性（ｉ）の平均値であり、σ（ｉ）およびσｒ（ｉ）は、それぞれ前記核小体または核小体の繋がった成分と前記標準または基準核小体または核小体の繋がった成分の形態計測特性（ｉ）の標準偏差である、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】
核小体形態、構造、または完全性が、好ましくは、前記差異ベクトルのＬ１標準として、前記形態計測特性差異ベクトル成分の絶対値の増加関数から導き出される核小体崩壊の指数（ｉＮｏ）に基づいて特徴付けられ、前記ｉＮｏが以下の式：
【数９】
2019523392.tif 000030
に従って確定され、Ｎは形態計測特性の数であり、ａ（ｉ）はｉｔｈ形態計測特性についての重み係数であり、好ましくは、０＜ａ（ｉ）＜１であり、ｄ（ｉ）は前記ｉｔｈ形態計測特性についての差異ベクトル成分である、請求項４から１７のいずれかに記載の方法。
【請求項１９】
核小体崩壊表現型をクラスに再編成しかつ／または教師なしクラスター化および／もしくは主成分分析により核小体崩壊表現型をもっと低い次元で提示することをさらに含む、請求項７から１８のいずれかに記載の方法。
【請求項２０】
核小体崩壊をスコア化する、定量化する、もしくは分類するためおよび／または個人のもしくは細胞もしくは組織の健康状態を確定するためまたは診断のための方法であって、請求項１８または１９に記載の前記方法を実施するステップを含み、ｉＮｏ値が前記核小体崩壊の重大度または前記健康状態の重大度もしくは等級を示しており、
任意選択で、前記健康状態または診断が、がん、自己免疫疾患、ウイルス感染、神経変性障害、またはリボソーム病（がん素因、骨格問題、または血液学的問題など）を示している、方法。
【請求項２１】
核小体完全性または核小体崩壊を定量化するための方法であって、
ａ）異なる核小体形態または構造を判別することができる、好ましくは、正常な核小体形態と崩壊した核小体形態、構造、または完全性を、好ましくは、フィッシャー基準に従って、判別することができる１つまたは複数の核小体形態計測特性を同定するステップと、
ｂ）前記１つまたは複数の形態計測特性のそれぞれに数値を割り当てるステップであって、前記数値が前記正常な核小体形態と崩壊した核小体形態または構造の前記形態計測特性の間の距離と相関している、ステップと、
ｃ）すべての数値をまとめて、核小体完全性または核小体崩壊を定量化する全体スコアを得るステップと
を含む方法。
【請求項２２】
２つの細胞または細胞集団を判別する１つまたは複数の核小体形態計測特性のセットを同定するための方法であって、
ａ）目的の２つの集団の代表的核小体試料間で観察されるもっとも顕著な形態計測的違いをとらえるために任意のパラメトリック形態計測特性のセットを定義するステップと、
ｂ）好ましくは、フィッシャー基準に従って、その判別力を最大にしかつ／またはそれぞれの集団に由来する形態計測特性確率分布間の重複を最小にするために、それぞれの形態計測特性に関連するパラメータを選択するステップと、
ｃ）判別する集団間の大きな分離をもたらす前記形態計測特性およびその関連する最適化されたパラメータを選択するステップと、
ｄ）前記選択された形態計測特性の点から測定される距離の組合せに基づいて、例えば、加重総和を使用して、前記２つの細胞または細胞集団の間の距離を算出するステップと
を含む方法。
【請求項２３】
核小体形態、構造、完全性、もしくは崩壊に影響を及ぼす化合物を同定するための、またはｐ５３安定性および／もしくは定常レベルに影響を及ぼす化合物を同定するための、請求項１、２または４から２０のいずれかに記載の方法の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は核小体形態を評価および／または操作するための手段および方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
核内では、核小体は遺伝子発現に不可欠な特殊化した機能ドメインである（１）。核小体は、リボソーム生合成の最初のステップが行われる部位である（２）。リボソームはｍＲＮＡにコードされた遺伝情報をタンパク質に変換するリボ核タンパク質（ＲＮＰ）ナノマシンである。ヒトリボソームは４つのリボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）および２つのサブユニットに組織された８０のｒタンパク質を含有しており、このサブユニットはそれぞれが翻訳において特殊化した機能を果たす（３、４）。小サブユニット（ＳＳＵ）は、単一のｒＲＮＡ（１８Ｓ）および３３のｒタンパク質からなり、ｍＲＮＡを解読し、大サブユニット（ＬＳＵ）は、３つのｒＲＮＡ（５Ｓ、５．８Ｓ、および２８Ｓ）および４７のｒタンパク質を含み、アミノ酸が互いに結合してタンパク質になるペプチジルトランスフェラーゼ中心をもつ。核小体では、１８Ｓ、５．８Ｓ、および２８Ｓ  ｒＲＮＡは長い前駆体としてＲＮＡポイメラーゼＩ（Ｐｏｌ  Ｉ）により合成され、プレｒＲＮＡは修飾され、折り畳まれ、プロセシングされ、大半のｒタンパク質は組み立てられてリボソームサブユニットを形成する（２）。
【０００３】
ｒタンパク質は、ペプチド結合形成のリボソーム媒介触媒作用に関与してはいない（３、５）。にもかかわらず、ｒタンパク質はリボソームサブユニットの全体構造を形作り維持するのに不可欠な役割を果たしており、ｒタンパク質中の突然変異は発達障害およびヒト疾患に関連していることが多い（６）。とりわけ、リボソーム病は、ｒタンパク質またはリボソーム集合因子中の突然変異に起因する、リボソーム生合成機能障害により引き起こされるがん素因症候群である（７）。ｒタンパク質は腫瘍形成に密接に連結しており、抗腫瘍タンパク質ｐ５３の定常レベルを調節することに直接関与している（８）。これは、ｐ５３調節因子Ｈｄｍ２への特定のｒタンパク質の直接結合を通じて、特定の抗腫瘍監視経路の活性化を介して起こる（下および（９）参照）。
【０００４】
核小体は脂質膜により制限されていない。このせいで核小体は、時には重大な形態および組成変化により、ウイルス感染、ＤＮＡ損傷、および薬物処置などの細胞ストレスに即時に応答する高度に動的な構造体になる（１０、１１）。静止期中、羊膜真核生物の核小体は３つの形態学的に別個の層を示し（１２、１３）、これらの層はストレス下で徹底的に再組織化することが可能である（１４）。有糸分裂中、核小体は特定のリン酸化により制御されるＰｏｌ  Ｉ活性と平行して進行する解体／再集合の劇的な周期を経る（１５、１６）。細胞核１個あたりの核小体の数ならびに核小体の形状およびサイズもがんなどの増殖性疾患では大きく変動する（１７）。がん細胞は非がん細胞よりもリボソーム合成の阻害に対して感受性が高く、Ｐｏｌ  Ｉ阻害剤を用いた処置により選択的に死滅される（１８、１９）。細胞ストレスセンサー（２０）、疾患バイオマーカーおよびがん療法の標的（２１）として核小体が重要であるにもかかわらず、その構造完全性がどのようにして維持されているのかは全く不明のままである。
【０００５】
核小体の集合および維持の原理は理解からは程遠いが（１４）、非常に豊富であり非常に基本的であり、大部分が核小体中でプレｒＲＮＡ上に集合してリボソームサブユニット前駆体を形成するｒタンパク質は重要な役割を果たしている可能性がある。ｒタンパク質の集合は無秩序ではなく、正確な順番の事象に従う。ｒタンパク質の群は、リボソームサブユニット生合成の初期、中間、または後期段階でのその集合に基づいて定義されてきた（２２）。ｒタンパク質のｒＲＮＡとの時宜を得た会合が損なわれると、実際、プレｒＲＮＡプロセシングがひどく阻害され、リボソームサブユニット合成に失敗し、時には顕微鏡レベルで目に見える核小体構造の変化が生じることがある（２３）。現在まで、核小体構造維持へのｒタンパク質の関与に体系的に取り組むまたはこの過程へのｒタンパク質の関与を段階分けする試みが行われたことはない。
【０００６】
核小体は長く知られているがんバイオマーカーであり（１７）、治療標的であることが最近実証された（１９）が、信頼できる臨床アッセイに欠くために病理学者により広く使用されてはいない。したがって、特に核小体崩壊または核小体完全性などの形態を含む核小体表現型に関連しているまたは他の点で依存している、
例えば、核小体形態の層別化などの診断学に、しかし同様に、例えば、医薬品開発または評価で使用するためのモデル系の開発に役立つために、定性的ならびに定量的核小体評価を改良する必要性が当技術分野には存在する。
【発明の概要】
【０００７】
本発明の目的は、撮像装置（例えば、顕微鏡）を通じてそれぞれの集団を観察した場合に、例えば、センサーがとらえる光の分析に基づいて細胞の集団を判別する（例えば、正常な／健康な対異常な／疾患の）ための方法およびシステムを提供することである。
【０００８】
核小体形態欠損を定性的にも定量的にも特徴付けるため、我々は特定の画像処理アルゴリズムを開発し、その特定の実施形態は下に詳述している。手短に言えば、先ず、観察された核を核染色（ＤＡＰＩシグナル）の形状およびサイズ一貫性適応的閾値処理に基づいて分割した。次に、それぞれの核塊内で、ＧＦＰシグナル閾値処理および数理形態学（方法参照）を適用して核小体を繋がった成分に分割した。ＳＣＲ処置対照細胞の核小体からのｒタンパク質を枯渇させた細胞の核小体の判別を最適化するために、それぞれの核小体の最大の繋がった成分（ＬＣＣ）から５つの形状およびテクスチャーフィーチャー（または形態計測特性）を抽出した。これら５つのフィーチャーは、もっとも判別的フィーチャーとして１１のセットから選択され、区域、楕円規則性、最適化強度閾値より下の画素の百分率、最小強度、および極小値の数であった。５つのフィーチャーごとに、ｒタンパク質が枯渇された細胞と対照細胞でのフィーチャー分布間の統計的に有意な距離に対応するｄｋ値が算出された。したがって、細胞のそれぞれの集団は５つのｄｋ値により特徴付けられた。主成分分析（ＰＣＡ）を使用してこれら５つの次元を２つまで減らし、それぞれの点が１つのｓｉＲＮＡで処置された細胞の集団に対応する散布図でのデータの容易な可視化（図１ｂ）を可能にした。
【０００９】
本明細書では我々はヒト細胞から８０のｒタンパク質のそれぞれを体系的に枯渇させ、核小体構造完全性、プレｒＲＮＡプロセシング、成熟ｒＲＮＡの蓄積、およびｐ５３定常レベルに関する結果を調べた（図１ａの実験戦略参照）。
【００１０】
要約すると、我々は本明細書で、８０のヒトｒタンパク質の大部分を枯渇させても核小体構造に影響を及ぼさないことを示している。これはほぼすべてのＳＳＵ  ｒタンパク質にとりわけ当てはまる（図１）。これとは際立って対照的に、ＬＳＵタンパク質の約３分の１は正常な核小体構造を維持するのに不可欠であると思われる。この顕著な二分は、プレ４０Ｓサブユニットがプレ６０Ｓサブユニットよりも迅速に細胞質まで搬出され、プレ６０Ｓサブユニットの産生のほうが複雑であり、数多くの追加の核成熟ステップを必要とするという概念に一致する。核小体構造へのもっとも強力な寄与体にはｕＬ５およびｕＬ１８があり、これらは５Ｓ  ｒＲＮＡと一緒になってＨｄｍ２トラップおよびｐ５３スタビライザーを形成することが知られている（２５、２６）。
【００１１】
大半のｒタンパク質は、サブユニット集合過程の極めて初期に、核小体内でプレｒＲＮＡと会合する。注目すべき例外は、酸性タンパク質ｕＬ１０（以前はＰ０）、Ｐ１、およびＰ２であり、これらのタンパク質は酵母の細胞質に到達した後にのみプレ６０Ｓサブユニット上でＰストークを形成する（４７）。したがって、我々は酸性ｒタンパク質が核小体構造に何の影響も及ぼさないことを知った（補足図１１(Supplementary Fig. 11 (図Ｓ１１))）。
【００１２】
核小体構造維持に必要なｒタンパク質はごくわずかであるが、その大半はプレｒＲＮＡプロセシングに不可欠である（図４）。ｒタンパク質が関与しているプロセシングステップは主に、そのｒタンパク質が所属するサブユニットを構成するｒＲＮＡの合成をもたらすステップである。それを枯渇させると核小体構造にもっとも強力な影響を及ぼすｒタンパク質は、大サブユニット合成の経路における後期プロセシング反応に必要とされる（図２ａ、ｂ）。
【００１３】
プレｒＲＮＡプロセシングはリボソーム集合の優れたプロキシである。したがって、それぞれのｒタンパク質のプロセシングへの正確な関与を確立することにより、我々は、成熟中のリボソームサブユニットへのｒタンパク質の組込みの、したがって、リボソームランドマーク形成の順序は、細菌から酵母およびヒトまで進化を通じてずっと極めてよく保存されてきたという結論（２３、２８、３０、３１、４８）を偶発的に拡張する（補足図１０）。重要なことに、我々はこれがヒト大リボソームサブユニット集合でもそうであることを明らかにする。原核生物と真核生物の間の細胞組織化の、遺伝子発現戦略の大きな相違およびリボソーム集合機械の複雑さが増すことを考慮すると、これは全く注目に値する。
【００１４】
成熟６０Ｓ上では、それを枯渇させると核小体構造にもっとも強力な影響を及ぼすｒタンパク質は特定のランドマーク：ＣＰ（ｕＬ５およびｕＬ１８）、Ｌ１ストーク、およびＬ１ストークの直ぐ下領域を形成する（図２）。これらは後期集合サブユニット構造体である。さらに、ｕＬ５またはｕＬ１８の組込み、したがって、ＣＰの形成が特定のＣＰ集合因子の枯渇により妨げられると、核小体構造は崩壊する（図５）。核小体構造の完全性を維持する上でのこれらＲタンパク質の重要性は、細胞恒常性にとって重要であるチェックポイントの進化中の出現を反映しており、大サブユニット集合の後期ステップ、特にＣＰ形成が適切に起こることを保証すると我々は推測している。
【００１５】
一体どうしてＣＰ形成は監視されるのだろうか。第１に、成熟リボソームでは、ＣＰは翻訳に有益なサブユニット間相互作用に関与している（４９、５０）。さらに、ＣＰ形成は、大サブユニット上の不可欠なリボソームランドマークの成熟と密接に関連している可能性がある。ＣＰ形成に関して分かっていることを考慮するとこれはもっともらしい。５Ｓ  ＲＮＰは、前集合ブロック（４１）として成熟中の６０Ｓサブユニットに組み込まれ、これは保存された集合因子であるＲｐｆ２（酵母）／ＢＸＤＣ１（ヒト）およびＲｒｓ１／ＲＲＳ１により支援されるステップである（２６、４１、５１）（上参照）。しかし、前駆体６０Ｓでは、５Ｓ  ＲＮＰは１８０°回転を起こすまではその最終的立体構造をとらない（５１、５２）。この回転は、サブユニット成熟事象のカスケードおよび成熟中の６０Ｓ前駆体の隅から隅まで機械化学的リモデリングエネルギーの長距離伝達を促進する発動行程の役目を務めるように思われる（５２、５３）。その形成がＣＰの形成と厳密に関連付けられることがある構造体は保存されたＡ部位フィンガー（ＡＳＦ）ヘリックス３８を含み、これは解読過程を通じてずっとＡ部位ｔＲＮＡ（５４）、アミノ酸が互いに結合される、ペプチジルトランスフェラーゼ中心それ自体、およびおそらくホスホストーク（５２、５３）を監視するサブユニット間架橋の一部である。
【００１６】
いくつかのｒタンパク質はｐ５３レベルを調節するのに不可欠であることは現在では確立している（９、４３）。原則として、いかなるｒタンパク質の枯渇もリボ毒性ストレス応答を始動させ、ｕＬ５、ｕＬ１８、および５Ｓ  ｒＲＮＡを含む集合していないリボソーム成分の蓄積、およびＨｄｍ２の隔離をもたらすと予想される。したがって、大半のｒタンパク質はｐ５３レベルを調節するのに何らかの方法で関与していると予想された。実際、有意閾値として５倍増加を設定して、ヒトｒタンパク質の３分の２のうちのいずれか１つを枯渇させてもｐ５３蓄積に対して有意な影響を及ぼさないことを我々は明らかにしている（図６）。にもかかわらず、８０のうち２４のｒタンパク質はｐ５３恒常性にとり非常に重要であり、このｒタンパク質の枯渇はｐ５３レベルの５〜１０倍の増加を引き起こすことを我々は示している。これらの場合すべてにおいて、ｐ５３蓄積の増加は、ｕＬ５およびｕＬ１８の存在を必要とする（補足図９）。これは、上記の抗腫瘍核小体監視調節ループの活性化を意味する。その枯渇がｐ５３蓄積に影響を及ぼすｒタンパク質を同定すれば、リボソーム病の病因についての不可欠な洞察を与え、このリボソーム病はｒタンパク質の突然変異によりまたはリボソーム集合欠損により引き起こされるがん素因症候群である（７）。
【００１７】
現在まで、核小体監視の活性化は、ｐ５３安定化をもたらすが、核小体構造の崩壊または単に核小体機能の阻害を体系的に伴うのかどうかははっきりしなかった。リボソーム生合成阻害に応答してｐ５３が誘導されるのは実際、核小体崩壊に起因してきた（５５）が、研究では、ｐ５３の細胞レベルの上昇は、大規模核小体崩壊とは無関係に、ｒタンパク質枯渇後に起こることが可能であることも示されてきた（４４、５６）。これはｕＬ３０（以前はＲｐＬ７）枯渇後にとりわけそうである（４４）。我々は、これが２１のｒタンパク質の大きな群に実際当てはまることを明らかにして、この後者の所見を確かめた（表５）。
【００１８】
核小体は長く知られたがんバイオマーカーであり（１７）、最近実証された治療標的である（１９）。しかし、信頼できる臨床アッセイがないために核小体は病理学者により広く使用されていない。本明細書で開発された画像処理アルゴリズムおよび核小体崩壊の指数（ｉＮｏ）は、核小体形態変化を定性的にも定量的にも特徴付けるための頑強で多用途のツールである。我々は、このツールを複数の細胞株で、時間経過解析で、核小体の密な原線維成分または顆粒状成分のいずれかを用いて一貫して使用してきた（図３、補足図Ｓ３、Ｓ４）。このツールは、がん生物学およびリボソーム病に関する研究において大きな診断および予後可能性を保持し、そのリボソーム病のいくつかは、ｒタンパク質喪失または突然変異のせいで核小体完全性の顕著な崩壊を伴うと我々は考えている。
【００１９】
完全なデータセットおよび追加の情報は、本出願の提出日現在で、ｗｗｗ．ＲｉｂｏｓｏｍａｌＰｒｏｔｅｉｎｓ．ｃｏｍの完全に検索可能な情報豊富なデータベースにおいて利用可能である。
【００２０】
本発明は添付の特許請求の範囲により詳細に表現されており、特許請求の範囲もこれにより参照により明確に組み込まれる。
【図面の簡単な説明】
【００２１】
【図１】ヒトｒタンパク質の体系的スクリーニングを示す図であり、これによりｕＬ５（ＲＰＬ１１）およびｕＬ１８（ＲＰＬ５）が核小体構造維持のもっとも強力な寄与体であることが明らかにされている。パネルａ）実験戦略：８０のｒタンパク質はすべて特定のｓｉＲＮＡの使用によりヒト細胞において１つ１つ枯渇させた。核小体構造（蛍光顕微鏡）、成熟１８Ｓおよび２８Ｓ  ｒＲＮＡの蓄積（電気泳動図）、プレｒＲＮＡプロセシング（高分解能ノーザンブロッティング）、ならびにｐ５３の定常蓄積（蛍光ウェスタンブロッティング）がモニターされた。パネルｂ）核小体構造維持のためのその必要条件に従ったｒタンパク質の分類を示す主成分解析（ＰＣＡ）。それぞれのｒタンパク質は３つのノックダウン実験で枯渇され、それぞれが異なるｓｉＲＮＡで実施された。この分析のために我々が設計した撮像処理アルゴリズムは、５つの判別形状およびテクスチャーフィーチャー（または形態計測特性）を選択し、５つのｄｋ値を算出し、５つの次元をＰＣＡにより２つまで減らすことを含む。得られたプロットでは、それぞれのプロットは、１つのｓｉＲＮＡで処置された１つの細胞集団を表す。点強度は標的タンパク質を示しており、黒色形状は小サブユニット（ＳＳＵ）ｒタンパク質を白色形状は大サブユニット（ＬＳＵ）ｒタンパク質を表す。非ターゲティング対照ｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）で処置された３つの細胞集団の平均は対応する画像に繋がれた線で示される。灰色の記号は６つの較正対照（ＦＢＬ、ＧＦＰ、ＮＣＬ、ＮＰＭ、偽、およびＴＩＦ１Ａ、補足図１参照）を表す。挿入図は、代表的なタンパク質を枯渇させた細胞の核の画像を示し、ＤＮＡは明るく光を当てて染色され核小体は黒色形状（フィブリラリン）として現れる。２、３の代表的な例では、特定の記号が使用される（例えば、ダイアモンドはｕＬ５を表す）。ＲＰＳ、ＳＳＵのｒタンパク質；ＲＰＬ、ＬＳＵのｒタンパク質。パネルｃ）ｒタンパク質および較正対照はｒタンパク質が存在しないことにより引き起こされる核小体崩壊の重大度に応じて分類される。ｉＮｏまたは核小体崩壊の指数は、本研究で同定される５つのもっとも判別的な形状およびテクスチャーフィーチャーのｄｋ値の合計として定義される（８０のｒタンパク質の我々の実験スクリーンに提示される画像から算出された差異ベクトルのＬ１標準（実施例２参照））。ｉＮｏが高いほどより重大度の高い崩壊に対応する。パネルｂと同じ色分け；すなわち、黒色は小サブユニット（ＳＳＵ）ｒタンパク質を、白色は大サブユニット（ＬＳＵ）ｒタンパク質を表す。灰色点は３つの個別の実験の平均値である。メモ：ｒタンパク質は最近改訂された命名法に従って名付けられており、「ｅ」接頭辞は真核生物特異的を表し、「ｕ」は普遍的（細菌、古細菌、および真核生物に存在する）を表す。
【図２−ａ】ＰＤＢエントリー３Ｊ３Ｄ、３Ｊ３Ａ、３Ｊ３Ｆ、および３Ｊ３Ｂに基づいてヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデルを描いている図である。大サブユニットの後期集合ｒタンパク質は、核小体構造維持およびｐ５３恒常性へのもっとも強力な寄与体である。ｒタンパク質は核小体構造（ｉＮｏ値）（ａ）、プレｒＲＮＡプロセシング（ｂ）、またはｐ５３定常レベル（ｃ）に対するその枯渇の影響に従って色分けされる。左、サブユニット界面ビュー；右、溶媒露出ビュー。アミノアシル（Ａ）、ペプチジル（Ｐ）、および出口（Ｅ）ｔＲＮＡ部位が示されている。サブユニットの形態的フィーチャーは強調されている。ＬＳＵ上では：Ｌ１ストーク、中央隆起部（ＣＰ）、およびホスホストーク（Ｐストーク）。ＳＳＵ上では、ビーク（Ｂｅ）、ヘッド（Ｈ）、プラットホーム（Ｐｔ）、ボディー（Ｂｄ）、左フット（Ｌｆ）、および右フット（Ｒｆ）。
【図２−ｂ】ＰＤＢエントリー３Ｊ３Ｄ、３Ｊ３Ａ、３Ｊ３Ｆ、および３Ｊ３Ｂに基づいてヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデルを描いている図である。大サブユニットの後期集合ｒタンパク質は、核小体構造維持およびｐ５３恒常性へのもっとも強力な寄与体である。ｒタンパク質は核小体構造（ｉＮｏ値）（ａ）、プレｒＲＮＡプロセシング（ｂ）、またはｐ５３定常レベル（ｃ）に対するその枯渇の影響に従って色分けされる。左、サブユニット界面ビュー；右、溶媒露出ビュー。アミノアシル（Ａ）、ペプチジル（Ｐ）、および出口（Ｅ）ｔＲＮＡ部位が示されている。サブユニットの形態的フィーチャーは強調されている。ＬＳＵ上では：Ｌ１ストーク、中央隆起部（ＣＰ）、およびホスホストーク（Ｐストーク）。ＳＳＵ上では、ビーク（Ｂｅ）、ヘッド（Ｈ）、プラットホーム（Ｐｔ）、ボディー（Ｂｄ）、左フット（Ｌｆ）、および右フット（Ｒｆ）。
【図２−ｃ】ＰＤＢエントリー３Ｊ３Ｄ、３Ｊ３Ａ、３Ｊ３Ｆ、および３Ｊ３Ｂに基づいてヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデルを描いている図である。大サブユニットの後期集合ｒタンパク質は、核小体構造維持およびｐ５３恒常性へのもっとも強力な寄与体である。ｒタンパク質は核小体構造（ｉＮｏ値）（ａ）、プレｒＲＮＡプロセシング（ｂ）、またはｐ５３定常レベル（ｃ）に対するその枯渇の影響に従って色分けされる。左、サブユニット界面ビュー；右、溶媒露出ビュー。アミノアシル（Ａ）、ペプチジル（Ｐ）、および出口（Ｅ）ｔＲＮＡ部位が示されている。サブユニットの形態的フィーチャーは強調されている。ＬＳＵ上では：Ｌ１ストーク、中央隆起部（ＣＰ）、およびホスホストーク（Ｐストーク）。ＳＳＵ上では、ビーク（Ｂｅ）、ヘッド（Ｈ）、プラットホーム（Ｐｔ）、ボディー（Ｂｄ）、左フット（Ｌｆ）、および右フット（Ｒｆ）。
【図３】内在性ＰＥＳ１の検出に基づいて、異なるヒト細胞株において核小体形態の定量的モニタリングを示している図である。データによれば、８つの代表的ｒタンパク質を選択するために、核小体構造維持に弱くまたは強く寄与しているｒタンパク質は複数の細胞株で大部分が同じであることが示されている。（ａ）指示されたｒタンパク質は、２つの子宮頸癌細胞株（ＨｅＬａ−ＧＦＰ−ＦＢＬ、蛍光フィブリラリンを発現するように操作されており、遺伝的には非改変ＨｅＬａ）、１つの結腸癌細胞株（ＨＣＴ１１６）、および２つの肺癌細胞株（Ａ５４９およびＨ１９４４）において３日間ｓｉＲＮＡを用いて枯渇された。内在性ＰＥＳ１は特異的抗体を用いて免疫染色することにより検出した（実施例１参照）。対照として、細胞は非ターゲティング対照ｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）で処置して、ＮＰＭを枯渇させた（補足図１も参照）。（ｂ）内在性ＰＥＳ１シグナルに基づいて計算された指示されたｒタンパク質の３日間のｓｉＲＮＡ媒介枯渇後に得られた核小体崩壊指数の値（ｉＮｏ）。
【図４】プレｒＲＮＡプロセシングへのヒトｒタンパク質の関与を図式的に描いている図である。（ａ）アジレンバイオ分析器電気泳動図から計算される２８Ｓ／１８Ｓ比。使用された２つの異なるｓｉＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ＃１および＃２）についてのデータが示されている。（ｂ）本研究で使用した主要プレｒＲＮＡ中間体およびプローブ。４つのｒＲＮＡのうちの３つは、長い４７Ｓ一次転写産物としてＲＮＡ  Ｐｏｌ  Ｉにより産生される。１８Ｓ、５．８Ｓ、および２８Ｓ  ｒＲＮＡは、非コード外部（ＥＴＳ）および内部（ＩＴＳ）転写スペーサーにより分離される。プローブａ、ｂ、およびｃはそれぞれオリゴヌクレオチドＬＤ１８４４、ＬＤ１８２７、およびＬＤ１８２８である（実施例１参照）。（ｃ）ＳＳＵ  ｒタンパク質の枯渇によるプレｒＲＮＡプロセシング阻害。ノーザンブロット上では（補足図Ｓ５、Ｓ６、Ｓ１１参照）すべてのＲＮＡ種はホスフォイメージャーを用いて定量し、非ターゲティング対照（ＳＣＲ）に関して正規化し、その存在量は指示された色分けを使用してヒートマップ上に表した。ヒートマッププロファイルは「Ｒ」でクラスター化し、対応するタンパク質は、同じまたは類似するプロセシングステップに影響を及ぼすｒタンパク質のクラスに分類した。使用される異なるｓｉＲＮＡは示されている（＃）。アスタリスクは、使用されるｓｉＲＮＡに従って２つのグループに割り当てられたｒタンパク質に言及する。（ｄ）パネルＣと同じように、ＬＳＵ  ｒタンパク質について表す。
【図５】中央隆起部集合因子ＢＸＤＣ１およびＲＲＳ１が核小体構造完全性に必要であることを明らかにしている図である。（ａ）蛍光タンパク質に融合しているフィブリラリンを発現している細胞を、指示されたタンパク質をコードしている転写物を標的にするｓｉＲＮＡを用いて３日間処置した。２つの独立したｓｉＲＮＡ（＃１および＃２）をそれぞれの場合に使用した。非ターゲティング（ＳＣＲ）ｓｉＲＮＡ対照で処置された細胞は参考のため示されている。（ｂ）枯渇ごとに、核小体崩壊指数（ｉＮｏ）を計算した（図１および実施例１参照）。
【図６】ｐ５３恒常性へのヒトｒタンパク質の関与を示している図である。（ａ）定量的蛍光ウェスタンブロッティングにより確定されるｐ５３の定常レベル。ウェスタンブロット分析は代表的なｒタンパク質について示されており、ｐ５３レベルは同じｓｉＲＮＡを用いた細胞の処置後に得られた生物学的３通り（ｉ、ｉｉ、およびｉｉｉ）の平均値として下に示されている。使用したｓｉＲＮＡは、プロセシングおよび核小体スクリーンでのその証明された有効性に基づいて選択した（図１および４）。負荷について補正された（基準としてβアクチンを使用して）ｐ５３シグナルは、非ターゲティングｓｉＲＮＡ対照で処置された細胞で観察されたレベルに関して表された（ｐ５３＋／＋）。上のシグナルはｐ５３に対応し、下のシグナルはβアクチンに対応する。８０のｒタンパク質すべてについての完全なデータセットは補足図１１で入手可能である。負荷対照として、我々は、ｐ５３の基底レベルを提供する非ターゲティングｓｉＲＮＡ（ｐ５３＋／＋）でまたはボックスＣ／Ｄ  ｓｎｏＲＮＡ  Ｕ８（＃Ｕ８）の活性を抑制するアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトされたＨＣＴ１１６  ｐ５３＋／＋細胞を使用し、それによりｐ５３蓄積を６倍まで刺激した（Ｊ．−Ｌ．Ｌ、Ｅ．Ｎ．およびＤ．Ｌ．Ｊ．Ｌ．、投稿中）。バックグラウンド対照として、非ターゲティングｓｉＲＮＡ対照で処置され（ｐ５３−／−）、ｐ５３を発現しないマッチド同質遺伝子的ＨＣＴ１１６細胞株（ＨＣＴ１１６  ｐ５３−／−、参考文献３９）を使用した。（ｂ）ｒタンパク質はｐ５３定常レベルに対するその影響に従って分類した。非ターゲティング（ＳＣＲ）対照は黒色で、ＳＳＵｒタンパク質は白色で、ＬＳＵｒタンパク質は灰色で示されている。ヒストグラムバーはＳＤ付きの３通りの平均値である。その枯渇によりｐ５３レベルが５倍に増えるｒタンパク質は灰色のボックスで強調されている。
【図Ｓ１】核小体較正セット。使用される較正セットは、それが枯渇されると核小体構造を強く崩壊させると我々が確立した４つの対照タンパク質からなっていた。これらの対照タンパク質は、ＲＮＡポリメラーゼＩ（Ｐｏｌ  Ｉ）転写因子ＴＩＦ１Ａ、ヌクレオリン（ＮＣＬ）、およびヌクレオフォスミン（ＮＰＭ）である。さらなる標準化対照として、我々は偽処置（ＭＯＣＫ）細胞、ＦＢＬまたはＧＦＰを標的にするｓｉＲＮＡで処置された細胞、および非ターゲティングｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）で処置された細胞を使用した。白色シグナル、ＤＮＡ染色（ＤＡＰＩ）；白色内の黒色シグナル、ＧＦＰ。左欄、広視野モード２０×拡大率でとらえられた画像。右欄、共焦点モード４０×拡大率でとらえられた画像。これらの画像の右側には、核小体構造およびシグナル強度に対するｓｉＲＮＡ媒介枯渇の効果を描く模式図。
【図Ｓ２】核小体崩壊表現型の自動教師なし分類をベンチマークテストにかける。我々の新規の分類アルゴリズムをベンチマークテストにかけるために、テキストに記載される自動分類を手動分類と比較した。手動分類は、使用したそれぞれのｓｉＲＮＡを用いた枯渇後に得られた代表的画像の微細目視検査におよび弱い、中等度の、および強い崩壊に対応する３つの任意に定義されたクラスへの核小体崩壊表現型の割り当てに基づいていた。自動的におよび手動で得られた分類を重ねると、我々の自動化された手順に基づく表現型クラスへの割り当てが頑強であることが大いに確信できた。（ａ）ＰＣＡ（図１ｂ参照）。それぞれの円は、１つのｒタンパク質に対して特異的な１つのｓｉＲＮＡで処置された細胞の集団を表す。円は、顕微鏡画像の微細目視検査に基づく手動分類に従って強度でコード化されている。非ターゲティング対照（スクランブル、ＳＣＲ）は矢印で示されている。核小体構造維持への強力な寄与体は黒色であり、中等度寄与体は灰色であり、弱い寄与体は白色である。（ｂ）核小体構造維持への弱い、中等度の、および強い寄与体としてのｒタンパク質の手動分類を示す代表的画像。白色シグナル、ＤＮＡ染色；黒色シグナル、フィブリラリン。
【図Ｓ３】ｓｉＲＮＡ媒介ｒタンパク質枯渇後の核小体崩壊の動態。データは、算出したｉＮｏ値が表現型の重大度を確実に反映していること、および核小体崩壊が２回の細胞分裂に対応する２回の連続するラウンドの核小体分解／核小体生成（約７２時間）を経た細胞でもっとも良くスコア化されていることを示している。（ａ）指示されたｒタンパク質の２４時間、４８時間、および７２時間のｓｉＲＮＡ媒介枯渇後に得られた核小体崩壊指数（ｉＮｏ）の値であり、それぞれ白色、灰色、および黒色である。（ｂ）それぞれの時点で試験された１３のｒタンパク質の代表的画像。白色シグナル、ＤＮＡ染色；黒色シグナル、フィブリラリン。＃１は使用したｓｉＲＮＡに言及する（実施例１参照）。
【図Ｓ４】内在性顆粒成分マーカーＰＥＳ１の検出に基づく核小体形態の定量的モニタリング。データは、ｉＮｏ値は等しくＤＦＣ（フィブリラリン、ＦＢＬ）またはＣＣ（ＰＥＳ１）抗原検出に基づいて算出することが可能であることを示している。（ａ）フィブリラリンシグナル（白色バー）またはＰＥＳ１シグナル（黒色バー）に基づいて計算した場合の、指示されたｒタンパク質の３日間のｓｉＲＮＡ媒介枯渇後に得られた核小体崩壊指数（ｉＮｏ）の値。（ｂ）試験した１３のｒタンパク質の代表的画像。それぞれの場合、ｓｉＲＮＡ  ｎ°１（＃１）を使用した（実施例１参照）。白色シグナル、ＤＮＡ染色；黒色シグナル、フィブリラリン（上列）またはＰＥＳ１（下列）。
【図Ｓ５】プレｒＲＮＡプロセシングへの小サブユニットｒタンパク質の関与。（ａ）本研究で定義された３つのクラスのＳＳＵ  ｒタンパク質ごとのノーザンブロットの代表例（完全データセットは補足図１１参照）。偽処置細胞および非ターゲティングｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）またはｓｉＲＮＡターゲティングＵＴＰ１８もしくはＮＯＬ９で処置された細胞からなる較正セットを体系的に使用した（参考文献１参照）。検出されたＲＮＡ中間体の模式図が左側に示されている。２８Ｓ対１８Ｓ成熟ｒＲＮＡの比はバイオ分析器電気泳動図から計算した。（ｂ）図４ｃの拡大版、検出し定量したすべてのＲＮＡ中間体を示す。
【図Ｓ６−ａ】プレｒＲＮＡプロセシングへの大サブユニットｒタンパク質の関与。（ａ）本研究で定義された４つのクラスのＬＳＵｒタンパク質ごとのノーザンブロットの代表例（完全データセットは補足図１１参照）。偽処置細胞および非ターゲティングｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）またはｓｉＲＮＡターゲティングＵＴＰ１８もしくはＮＯＬ９で処置された細胞からなる較正セットを体系的に使用した（参考文献１参照）。検出されたＲＮＡ中間体の模式図が左側に示されている。２８Ｓ／１８Ｓ成熟ｒＲＮＡ比はバイオ分析器電気泳動図から計算した。（ｂ）図４ｄの拡大版、検出し定量したすべてのＲＮＡ中間体を示す。
【図Ｓ６−ｂ】プレｒＲＮＡプロセシングへの大サブユニットｒタンパク質の関与。（ａ）本研究で定義された４つのクラスのＬＳＵｒタンパク質ごとのノーザンブロットの代表例（完全データセットは補足図１１参照）。偽処置細胞および非ターゲティングｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）またはｓｉＲＮＡターゲティングＵＴＰ１８もしくはＮＯＬ９で処置された細胞からなる較正セットを体系的に使用した（参考文献１参照）。検出されたＲＮＡ中間体の模式図が左側に示されている。２８Ｓ／１８Ｓ成熟ｒＲＮＡ比はバイオ分析器電気泳動図から計算した。（ｂ）図４ｄの拡大版、検出し定量したすべてのＲＮＡ中間体を示す。
【図Ｓ７−ａ】プレｒＲＮＡプロセシングへのその関与に従ったｒタンパク質の我々の分類と以前の研究との比較。図は、我々の研究が文献を確証している（小サブユニットｒタンパク質）またはかなり補完している（大サブユニットＲタンパク質）のいずれかであることを示している。ＰＤＢエントリー３Ｊ３Ｄ、３Ｊ３Ａ、３Ｊ３Ｆおよび３Ｊ３Ｂに基づくヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデル。左、サブユニット界面ビュー；右、溶媒露出ビュー。アミノアシル（Ａ）、ペプチジル（Ｐ）、および出口（Ｅ）ｔＲＮＡ部位が示されている。サブユニットの形態フィーチャーが強調されている。ＬＳＵ上では：Ｌ１ストーク、中央隆起部（ＣＰ）、およびホスホストーク（Ｐストーク）。ＳＳＵ上では、ビーク（Ｂｅ）、ヘッド（Ｈ）、プラットホーム（Ｐｔ）、ボディー（Ｂｄ）、左フット（Ｌｆ）、および右フット（Ｒｆ）。（ａ）以前の研究：ｐ５３発現がＨＰＶ組込みにより破壊される子宮頸部がん細胞（ＨｅＬａ細胞）で行われた。ＳＳＵ  ｒタンパク質は参考文献２で試験され；４７のＬＳＵ  ｒタンパク質のうちの６つが参考文献３で試験された。（ｂ）本研究：ｐ５３を正常に発現している直腸癌細胞で行われた（ＨＣＴ１１６  ｐ５３＋／＋）（図４および補足図Ｓ５、Ｓ６、Ｓ１１に基づいている）。ｒタンパク質すべてを試験した。
【図Ｓ７−ｂ】プレｒＲＮＡプロセシングへのその関与に従ったｒタンパク質の我々の分類と以前の研究との比較。図は、我々の研究が文献を確証している（小サブユニットｒタンパク質）またはかなり補完している（大サブユニットＲタンパク質）のいずれかであることを示している。ＰＤＢエントリー３Ｊ３Ｄ、３Ｊ３Ａ、３Ｊ３Ｆおよび３Ｊ３Ｂに基づくヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデル。左、サブユニット界面ビュー；右、溶媒露出ビュー。アミノアシル（Ａ）、ペプチジル（Ｐ）、および出口（Ｅ）ｔＲＮＡ部位が示されている。サブユニットの形態フィーチャーが強調されている。ＬＳＵ上では：Ｌ１ストーク、中央隆起部（ＣＰ）、およびホスホストーク（Ｐストーク）。ＳＳＵ上では、ビーク（Ｂｅ）、ヘッド（Ｈ）、プラットホーム（Ｐｔ）、ボディー（Ｂｄ）、左フット（Ｌｆ）、および右フット（Ｒｆ）。（ａ）以前の研究：ｐ５３発現がＨＰＶ組込みにより破壊される子宮頸部がん細胞（ＨｅＬａ細胞）で行われた。ＳＳＵ  ｒタンパク質は参考文献２で試験され；４７のＬＳＵ  ｒタンパク質のうちの６つが参考文献３で試験された。（ｂ）本研究：ｐ５３を正常に発現している直腸癌細胞で行われた（ＨＣＴ１１６  ｐ５３＋／＋）（図４および補足図Ｓ５、Ｓ６、Ｓ１１に基づいている）。ｒタンパク質すべてを試験した。
【図Ｓ８】ＲＴｑＰＣＲによりｍＲＮＡレベルで確立されたｒタンパク質枯渇の効率。それを枯渇させてもｐ５３蓄積に有意な影響を及ぼさなかった４８のｒタンパク質（図６ｂ参照）では、ｍＲＮＡの残留レベルがＲＴｑＰＣＲにより確立され、そのうちの４０では２０％よりも下、残りの８では２０％と４５％の間の範囲であることが見出された。全ＲＮＡは指示されたｒタンパク質をコードする転写物に特異的なｓｉＲＮＡで２日間処置したＨＣＴ１１６細胞から抽出した。ｍＲＮＡの残留レベルはＲＴｑＰＣＲにより確立され、非ターゲティングｓｉＲＮＡ対照（ＳＣＲ）で処置された細胞において観察された残留レベルに正規化された。それぞれの実験は３通り実施した。
【図Ｓ９】８０のうち２４のｒタンパク質を枯渇させると、ｐ５３のレベルが有意に５倍に増え、この増加はｕＬ５およびｕＬ１８の存在を必要とする。ＨＣＴ１１６  ｐ５３＋／＋細胞は、指示されたタンパク質をコードする転写物に特異的なｓｉＲＮＡで２日間枯渇させた。それぞれのタンパク質は単独で、またはｕＬ１８もしくはｕＬ５枯渇と組み合わせて枯渇させた。対照として、細胞は非ターゲティングｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）で処置された。全タンパク質は、ｐ５３、ｐ２１（ｐ５３の転写標的）を標的にする抗体、および負荷対照としてβアクチンを用いてウェスタンブロッティングにより抽出し処理した。バンドは発光により明らかにした。（ａ）２４のｒタンパク質のそれぞれを個別に枯渇させる効果。（ｂ）中央隆起部集合因子ＢＸＤＣ１およびＲＲＳ１を枯渇させる効果。
【図Ｓ１０−ａ】集合しているリボソームサブユニット上へのｒタンパク質の集合の順序は進化を通じてずっと著しく保存されてきた。（ａ）ＰＤＢエントリー２ＡＶＹおよび２ＡＷ４に基づく細菌リボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで確立された通りに（参考文献４〜８）集合のその初期、中間、および後期順序に従って強度でコード化される。（ｂ）ＰＤＢエントリー３Ｕ５Ｂ、３Ｕ５Ｃ、３Ｕ５Ｄ、および３Ｕ５Ｅに基づく出芽酵母リボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、酵母細胞中の特定の初期、中間、または後期プレｒＲＮＡプロセシングステップにそれが必要とされることに基づいて標識される（参考文献９、１０）。これは大部分が、ｉｎ  ｖｉｖｏで確立された集合のその動態に一致する（参考文献１１）。（ｃ）ＰＤＢエントリー３Ｊ３Ｄ、３Ｊ３Ａ、３Ｊ３Ｆ、および３Ｊ３Ｂに基づくヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、本研究に従ってヒト細胞における特定のプロセシング反応に対するその影響に関して分類される（図４、補足図Ｓ５、Ｓ６、Ｓ１１に基づいて）。左、サブユニット界面ビュー；右、溶媒露出ビュー。アミノアシル（Ａ）、ペプチジル（Ｐ）、および出口（Ｅ）ｔＲＮＡ部位が示されている。サブユニットの形態フィーチャーが強調されている。ＬＳＵ上では：Ｌ１ストーク、中央隆起部（ＣＰ）、およびホスホストーク（Ｐ−ストーク）。ＳＳＵ上では、ビーク（Ｂｅ）、ヘッド（Ｈ）、プラットホーム（Ｐｔ）、ボディー（Ｂｄ）、左フット（Ｌｆ）、および右フット（Ｒｆ）。
【図Ｓ１０−ｂ】集合しているリボソームサブユニット上へのｒタンパク質の集合の順序は進化を通じてずっと著しく保存されてきた。（ａ）ＰＤＢエントリー２ＡＶＹおよび２ＡＷ４に基づく細菌リボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで確立された通りに（参考文献４〜８）集合のその初期、中間、および後期順序に従って強度でコード化される。（ｂ）ＰＤＢエントリー３Ｕ５Ｂ、３Ｕ５Ｃ、３Ｕ５Ｄ、および３Ｕ５Ｅに基づく出芽酵母リボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、酵母細胞中の特定の初期、中間、または後期プレｒＲＮＡプロセシングステップにそれが必要とされることに基づいて標識される（参考文献９、１０）。これは大部分が、ｉｎ  ｖｉｖｏで確立された集合のその動態に一致する（参考文献１１）。（ｃ）ＰＤＢエントリー３Ｊ３Ｄ、３Ｊ３Ａ、３Ｊ３Ｆ、および３Ｊ３Ｂに基づくヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、本研究に従ってヒト細胞における特定のプロセシング反応に対するその影響に関して分類される（図４、補足図Ｓ５、Ｓ６、Ｓ１１に基づいて）。左、サブユニット界面ビュー；右、溶媒露出ビュー。アミノアシル（Ａ）、ペプチジル（Ｐ）、および出口（Ｅ）ｔＲＮＡ部位が示されている。サブユニットの形態フィーチャーが強調されている。ＬＳＵ上では：Ｌ１ストーク、中央隆起部（ＣＰ）、およびホスホストーク（Ｐ−ストーク）。ＳＳＵ上では、ビーク（Ｂｅ）、ヘッド（Ｈ）、プラットホーム（Ｐｔ）、ボディー（Ｂｄ）、左フット（Ｌｆ）、および右フット（Ｒｆ）。
【図Ｓ１０−ｃ】集合しているリボソームサブユニット上へのｒタンパク質の集合の順序は進化を通じてずっと著しく保存されてきた。（ａ）ＰＤＢエントリー２ＡＶＹおよび２ＡＷ４に基づく細菌リボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで確立された通りに（参考文献４〜８）集合のその初期、中間、および後期順序に従って強度でコード化される。（ｂ）ＰＤＢエントリー３Ｕ５Ｂ、３Ｕ５Ｃ、３Ｕ５Ｄ、および３Ｕ５Ｅに基づく出芽酵母リボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、酵母細胞中の特定の初期、中間、または後期プレｒＲＮＡプロセシングステップにそれが必要とされることに基づいて標識される（参考文献９、１０）。これは大部分が、ｉｎ  ｖｉｖｏで確立された集合のその動態に一致する（参考文献１１）。（ｃ）ＰＤＢエントリー３Ｊ３Ｄ、３Ｊ３Ａ、３Ｊ３Ｆ、および３Ｊ３Ｂに基づくヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデル。ｒタンパク質は、本研究に従ってヒト細胞における特定のプロセシング反応に対するその影響に関して分類される（図４、補足図Ｓ５、Ｓ６、Ｓ１１に基づいて）。左、サブユニット界面ビュー；右、溶媒露出ビュー。アミノアシル（Ａ）、ペプチジル（Ｐ）、および出口（Ｅ）ｔＲＮＡ部位が示されている。サブユニットの形態フィーチャーが強調されている。ＬＳＵ上では：Ｌ１ストーク、中央隆起部（ＣＰ）、およびホスホストーク（Ｐ−ストーク）。ＳＳＵ上では、ビーク（Ｂｅ）、ヘッド（Ｈ）、プラットホーム（Ｐｔ）、ボディー（Ｂｄ）、左フット（Ｌｆ）、および右フット（Ｒｆ）。
【図Ｓ１１】１つのｒタンパク質についての完全データシートの例。８０のヒトｒタンパク質すべてについてのデータシートはａｔ  ｗｗｗ．ｒｉｂｏｓｏｍａｌＰｒｏｔｅｉｎｓ．ｃｏｍでのｔｈｅ  ｃｏｍｐａｎｉｏｎ  ｗｅｂｓｉｔｅ上で利用可能である。データシートは、成熟サブユニット上でのｒタンパク質の位置（Ａ）、プレｒＲＮＡプロセシングおよび成熟ｒＲＮＡ蓄積に対する（Ｂ）、核小体構造に対する（Ｃ）、ならびにｐ５３定常レベルに対する（Ｄ）その影響を示している。（Ａ）ＰＤＢエントリー、ＳＳＵ  ｒタンパク質では３Ｊ３Ｄおよび３Ｊ３Ａ、ならびにＬＳＵ  ｒタンパク質では３Ｊ３Ｆおよび３Ｊ３Ｂに基づくヒトリボソームサブユニットの３Ｄモデル。成熟サブユニット上の個々のｒタンパク質の位置は強調されている。小サブユニット上では、１８Ｓ  ｒＲＮＡは灰色で示され、大サブユニット上では、５Ｓ、５．８Ｓ、および２８Ｓ  ｒＲＮＡはそれぞれ赤色、青色、および灰色で示されている。左、界面ビュー；右、溶媒ビュー。主なリボソームフィーチャーが示されている（補足図１０参照）。（Ｂ）プレｒＲＮＡプロセシングおよび成熟ｒＲＮＡ蓄積に対するｒタンパク質枯渇の効果；検出されたすべてのプレｒＲＮＡ中間体および成熟ｒＲＮＡを示すノーザンブロットおよびエチジウムブロマイド染色変性アガロースゲル。２８Ｓ／１８Ｓ  ｒＲＮＡ比は電気泳動図から計算された。較正セット（補足図Ｓ５、Ｓ６に記載されている）は参考のために含まれている。検出されたＲＮＡを表す模式図は左側に示されている。定量化は図４および補足図Ｓ５、Ｓ６で入手可能である。（Ｃ）核小体構造に対するｒタンパク質枯渇の効果；３つの異なるｓｉＲＮＡ（＃１、＃２、および＃３）を用いて実施した２通りのスクリーン（ｉおよびｉｉ）での処置後に得られた代表的顕微鏡画像（青色シグナル、ＤＡＰＩ；緑色シグナル、フィブリラリン）。スクリーンごとのｉＮｏ値は右側に、および下の調整バーで示されている。ｉＮｏ値は０（乱れていない核小体）と０．２（激しく崩壊した構造）の間の範囲である。（Ｄ）ｐ５３定常レベルに対するｒタンパク質枯渇の効果：蛍光定量ウェスタンブロッティングは３通り（ｉ、ｉｉ、ｉｉｉ）実施した。ｐ５３シグナルは、基準としてβアクチン検出を使用して負荷について補正し、非ターゲティング（ＳＣＲ）対照で処置された細胞において得られたシグナルに関して表した（レーン２）。ｐ５３シグナルは３つの独立した実験の平均値として表した（詳細は図６参照）。較正セット（図６に記載されている）は参考のために含まれる。
【図Ｓ１２−ａ】アンクロップドノーザンブロットの例。高分解能変性アガロースゲルの例が示されている。（ａ）エチジウムブロマイド染色により成熟１８Ｓおよび２８Ｓ  ｒＲＮＡが明らかにされている。（ｂ、ｃ、ｄ）特異的なプローブを用いたノーザンブロッティングにより、プレｒＲＮＡが明らかにされている。すべてのＲＮＡ種は、特異的なプローブを用いた差次的ハイブリダイゼーションによりおよび参考文献１に記載されるように、それが枯渇するとよく特徴付けられたプレｒＲＮＡプロセシング阻害が起きる２つのタンパク質（ＵＴＰ１８およびＮＯＬ９）からなる較正セットを参照することにより同定された。使用されるプローブ（ｂでのＩＴＳ１、ｃでのＩＴＳ２、およびｄでの５’−ＥＴＳ）が実施例１に記載されている。レーン１、偽；レーン２、ＳＣＲ；レーン３、ＵＴＰ１８；レーン４、ＮＯＬ９；レーン５、ｕＳ３；レーン６、ｕＳ１７；レーン７、ｕＬ３０＃１；レーン８、ｕＬ３０＃２；レーン９、ｕＬ１３＃１；レーン１０、ｕＬ１３＃２；レーン１１、ｅＬ１４＃１；レーン１２、ｅＬ１４＃２；レーン１３、ｕｌ２２＃１；レーン１４、ｕｌ２２＃２；レーン１５、ｅＬ１８＃１；レーン１６、ｅＬ１８＃２；レーン１７、ｅＬ２２＃１；レーン１８、ｅＬ２２＃２；レーン１９、ｕＬ１４＃１；レーン２０、ｕＬ１４＃２；レーン２１、ｕＬ２４＃１；レーン２２、ｕＬ２４＃２。＃１および＃２は使用されたｓｉＲＮＡに言及している（実施例１参照）。
【図Ｓ１２−ｂ】アンクロップドノーザンブロットの例。高分解能変性アガロースゲルの例が示されている。（ａ）エチジウムブロマイド染色により成熟１８Ｓおよび２８Ｓ  ｒＲＮＡが明らかにされている。（ｂ、ｃ、ｄ）特異的なプローブを用いたノーザンブロッティングにより、プレｒＲＮＡが明らかにされている。すべてのＲＮＡ種は、特異的なプローブを用いた差次的ハイブリダイゼーションによりおよび参考文献１に記載されるように、それが枯渇するとよく特徴付けられたプレｒＲＮＡプロセシング阻害が起きる２つのタンパク質（ＵＴＰ１８およびＮＯＬ９）からなる較正セットを参照することにより同定された。使用されるプローブ（ｂでのＩＴＳ１、ｃでのＩＴＳ２、およびｄでの５’−ＥＴＳ）が実施例１に記載されている。レーン１、偽；レーン２、ＳＣＲ；レーン３、ＵＴＰ１８；レーン４、ＮＯＬ９；レーン５、ｕＳ３；レーン６、ｕＳ１７；レーン７、ｕＬ３０＃１；レーン８、ｕＬ３０＃２；レーン９、ｕＬ１３＃１；レーン１０、ｕＬ１３＃２；レーン１１、ｅＬ１４＃１；レーン１２、ｅＬ１４＃２；レーン１３、ｕｌ２２＃１；レーン１４、ｕｌ２２＃２；レーン１５、ｅＬ１８＃１；レーン１６、ｅＬ１８＃２；レーン１７、ｅＬ２２＃１；レーン１８、ｅＬ２２＃２；レーン１９、ｕＬ１４＃１；レーン２０、ｕＬ１４＃２；レーン２１、ｕＬ２４＃１；レーン２２、ｕＬ２４＃２。＃１および＃２は使用されたｓｉＲＮＡに言及している（実施例１参照）。
【図Ｓ１２−ｃ】アンクロップドノーザンブロットの例。高分解能変性アガロースゲルの例が示されている。（ａ）エチジウムブロマイド染色により成熟１８Ｓおよび２８Ｓ  ｒＲＮＡが明らかにされている。（ｂ、ｃ、ｄ）特異的なプローブを用いたノーザンブロッティングにより、プレｒＲＮＡが明らかにされている。すべてのＲＮＡ種は、特異的なプローブを用いた差次的ハイブリダイゼーションによりおよび参考文献１に記載されるように、それが枯渇するとよく特徴付けられたプレｒＲＮＡプロセシング阻害が起きる２つのタンパク質（ＵＴＰ１８およびＮＯＬ９）からなる較正セットを参照することにより同定された。使用されるプローブ（ｂでのＩＴＳ１、ｃでのＩＴＳ２、およびｄでの５’−ＥＴＳ）が実施例１に記載されている。レーン１、偽；レーン２、ＳＣＲ；レーン３、ＵＴＰ１８；レーン４、ＮＯＬ９；レーン５、ｕＳ３；レーン６、ｕＳ１７；レーン７、ｕＬ３０＃１；レーン８、ｕＬ３０＃２；レーン９、ｕＬ１３＃１；レーン１０、ｕＬ１３＃２；レーン１１、ｅＬ１４＃１；レーン１２、ｅＬ１４＃２；レーン１３、ｕｌ２２＃１；レーン１４、ｕｌ２２＃２；レーン１５、ｅＬ１８＃１；レーン１６、ｅＬ１８＃２；レーン１７、ｅＬ２２＃１；レーン１８、ｅＬ２２＃２；レーン１９、ｕＬ１４＃１；レーン２０、ｕＬ１４＃２；レーン２１、ｕＬ２４＃１；レーン２２、ｕＬ２４＃２。＃１および＃２は使用されたｓｉＲＮＡに言及している（実施例１参照）。
【図Ｓ１２−ｄ】アンクロップドノーザンブロットの例。高分解能変性アガロースゲルの例が示されている。（ａ）エチジウムブロマイド染色により成熟１８Ｓおよび２８Ｓ  ｒＲＮＡが明らかにされている。（ｂ、ｃ、ｄ）特異的なプローブを用いたノーザンブロッティングにより、プレｒＲＮＡが明らかにされている。すべてのＲＮＡ種は、特異的なプローブを用いた差次的ハイブリダイゼーションによりおよび参考文献１に記載されるように、それが枯渇するとよく特徴付けられたプレｒＲＮＡプロセシング阻害が起きる２つのタンパク質（ＵＴＰ１８およびＮＯＬ９）からなる較正セットを参照することにより同定された。使用されるプローブ（ｂでのＩＴＳ１、ｃでのＩＴＳ２、およびｄでの５’−ＥＴＳ）が実施例１に記載されている。レーン１、偽；レーン２、ＳＣＲ；レーン３、ＵＴＰ１８；レーン４、ＮＯＬ９；レーン５、ｕＳ３；レーン６、ｕＳ１７；レーン７、ｕＬ３０＃１；レーン８、ｕＬ３０＃２；レーン９、ｕＬ１３＃１；レーン１０、ｕＬ１３＃２；レーン１１、ｅＬ１４＃１；レーン１２、ｅＬ１４＃２；レーン１３、ｕｌ２２＃１；レーン１４、ｕｌ２２＃２；レーン１５、ｅＬ１８＃１；レーン１６、ｅＬ１８＃２；レーン１７、ｅＬ２２＃１；レーン１８、ｅＬ２２＃２；レーン１９、ｕＬ１４＃１；レーン２０、ｕＬ１４＃２；レーン２１、ｕＬ２４＃１；レーン２２、ｕＬ２４＃２。＃１および＃２は使用されたｓｉＲＮＡに言及している（実施例１参照）。
【図Ｓ１３−ａ】アンクロップドウェスタンブロットの例。本研究で実施されたウェスタンブロットハイブリダイゼーションはすべてよく特徴付けられた市販の抗体を使用した（実施例１参照）。蛍光（ａ）および発光（ｂ）検出では、ｐ５３は予想通り、３５ｋＤａと５５ｋＤａ分子量バンドの間に移動した（ｐ５３は４３．７ｋＤａの分子量を有する）。ｐ５３シグナルは核小体ストレス活性化すると増加した（ａではＵ８枯渇、ｂではｕＬ１枯渇、非ターゲティングＳｃｒ対照で処置した細胞で観察されたシグナルと比較して）。ｐ５３レベルは、ｕＬ５またはｕＬ１８と一緒にｕＬ１を同時枯渇すると激しく低減した（ｂ）。蛍光スクリーニングゲル（ｃで示される代表例）上では、βアクチン負荷対照（一番下の列）は予想通り、ｐ５３シグナル直下の単一バンドとして検出された（βアクチンは４２ｋＤａの分子量を有する）。ｐ５３バンド（一番上の列）は、非ターゲティングｓｉＲＮＡで処置された２通りのＨＣＴ１１６ｐ５３＋／＋細胞では一貫して低レベルで検出され（ｐ５３＋／＋レーン）、これはベースライン対照の役目を果たした。ｐ５３レベルは、Ｕ８  ｓｎｏＲＮＡ枯渇により引き起こされる核小体ストレスを受けると実質的に増加し（＃Ｕ８レーン）、これは正の対照の役目を果たした。ｐ５３バンドはＨＣＴ１１６ｐ５３−／−同質遺伝子的細胞株により提供される負の対照では検出されなかった（ｐ５３−／−）。星印は非特異的バンドを表す。
【図Ｓ１３−ｂ】アンクロップドウェスタンブロットの例。本研究で実施されたウェスタンブロットハイブリダイゼーションはすべてよく特徴付けられた市販の抗体を使用した（実施例１参照）。蛍光（ａ）および発光（ｂ）検出では、ｐ５３は予想通り、３５ｋＤａと５５ｋＤａ分子量バンドの間に移動した（ｐ５３は４３．７ｋＤａの分子量を有する）。ｐ５３シグナルは核小体ストレス活性化すると増加した（ａではＵ８枯渇、ｂではｕＬ１枯渇、非ターゲティングＳｃｒ対照で処置した細胞で観察されたシグナルと比較して）。ｐ５３レベルは、ｕＬ５またはｕＬ１８と一緒にｕＬ１を同時枯渇すると激しく低減した（ｂ）。蛍光スクリーニングゲル（ｃで示される代表例）上では、βアクチン負荷対照（一番下の列）は予想通り、ｐ５３シグナル直下の単一バンドとして検出された（βアクチンは４２ｋＤａの分子量を有する）。ｐ５３バンド（一番上の列）は、非ターゲティングｓｉＲＮＡで処置された２通りのＨＣＴ１１６ｐ５３＋／＋細胞では一貫して低レベルで検出され（ｐ５３＋／＋レーン）、これはベースライン対照の役目を果たした。ｐ５３レベルは、Ｕ８  ｓｎｏＲＮＡ枯渇により引き起こされる核小体ストレスを受けると実質的に増加し（＃Ｕ８レーン）、これは正の対照の役目を果たした。ｐ５３バンドはＨＣＴ１１６ｐ５３−／−同質遺伝子的細胞株により提供される負の対照では検出されなかった（ｐ５３−／−）。星印は非特異的バンドを表す。
【図Ｓ１４】核凝集体は形状凸面分析に基づいて取り除かれる。２つの分割された並置核が図示されている。主軸ＸおよびＹの方向で、δｏｕｔ、δ１ｉｎ、およびδ２ｉｎが主軸に平行な線のうちの１つ上の閾値より上であれば、形状は１つよりも多い核を含むと考えられる。
【図Ｓ１５】高度に対照的な（ａ）および弱く対照的な（ｂ）ＤＡＰＩ画像についての核の分割の結果。繋がった成分は提唱された階層的閾値処理に基づいて検出される。不規則な領域はその凸面のせいで拒絶される。一部の領域は、ＤＡＰＩ／ＧＦＰ強度分析が細胞は多分静止期ではないことを示しているために拒絶される。丸くなった残りの核のみが我々の分析では維持され、それに続く分析のために、形態学的演算：１３×１３拡張（dilation）、それに続いて３×３エロージョン（erosion）後に得られる分割化を考慮する。
【図Ｓ１６】ＳＣＲ処置対照細胞由来（ａ）、一定範囲の高レベルの核小体崩壊を有する細胞由来（ｂ）および目的の特定のタンパク質が枯渇された細胞由来（ｃ）の核小体の試料。それぞれの縦の列の細胞核は同じｓｉＲＮＡで処置された。画像はパーセンタイル９９．９％のより正規化された。
【図Ｓ１７】ＳＣＲ処置対照細胞での（ａ）またはタンパク質ｕＬ５について枯渇された細胞での（ｂ）核小体のフィブリラリン−ＧＦＰ強度プロファイル。（ａ）は補足図１６、パネルａの列１、縦の列２の核に対応する。（ｂ）は補足図１６、パネルｃの列１、縦の列５の核に対応する。
【図Ｓ１８】繋がった成分Ｃ（内部形状黒色輪郭）に関連する形状因子の図示。（ａ）伸長因子は主軸二次モーメント間の比を反映し、楕円形規則性は最小外部楕円体Ｃｅｌｌｉｐｓｅ（灰色輪郭の外形）対繋がった成分の面積比を測定する。（ｂ）凸面比は凸閉包Ｃｃｏｎｖｈｕｌｌ（灰色輪郭の外形）と繋がった成分の間の面積比を測定する。
【図Ｓ１９】補足図１６に示されている画像の極大値（白色点）および極小値（黒色点）の分布。極小値の密度は、ＳＣＲ処置対照細胞由来の核小体（パネルａ）よりも高レベルの核小体崩壊を有する細胞由来（パネルｂ）または目的のタンパク質が枯渇されている細胞由来（パネルｃ）の核小体のほうが高いことは明らかである。
【図Ｓ２０−ａｂ】３つのフィーチャー（ａ、ｂ、およびｃ）パラメータの関数としてのフィッシャーの最適化基準。
【図Ｓ２０−ｃ】３つのフィーチャー（ａ、ｂ、およびｃ）パラメータの関数としてのフィッシャーの最適化基準。
【発明を実施するための形態】
【００２２】
本発明の現在のシステムおよび方法を記載する前に、本発明は記載されている特定のシステムおよび方法または組合せに限定されないことは理解されるべきである。なぜならば、そのようなシステムおよび方法および組合せは、当然のことながら、変動することがあるからである。本明細書で使用される用語法は限定的であることを意図していないことも理解されるべきである。なぜならば、本発明の範囲は添付の特許請求の範囲によってのみ限定されるからである。
【００２３】
本明細書で使用されるように、単数形「１つ（a）」、「１つ（an）」および「その（the）」は、文脈が他の方法で明白に指示していなければ、単数と複数の参照対象の両方を含む。
【００２４】
本明細書で使用される用語「含む（comprising）」、「含む（comprises）」および「含む（comprised of）」は、「含む（including）」、「含む（includes）」または「含有する（containing）」、「含有する（contains）」と同義であり、包括的でまたは拡張可能であり、追加の列挙していないメンバー、要素または方法ステップを排除しない。本明細書で使用される用語「含む（comprising）」、「含む（comprises）」および「含む（comprised of）」は、用語「からなる（consisting of）」、「なる（consists）」および「からなる（consists of）」を含むことは認識されるであろう。
【００２５】
エンドポイントによる数値範囲の列挙は、それぞれの範囲内に包含されるすべての数字および分数、ならびに列挙されているエンドポイントを含む。
【００２６】
本明細書で使用される用語「約」または「おおよそ」は、パラメータ、量、時間的持続期間などの測定可能な値に言及する場合は、明記された値のおよびその値から＋／−１０％またはそれよりも少ない、好ましくは＋／−５％またはそれよりも少ない、さらに好ましくは＋／−１％またはそれよりも少ない、さらに好ましくは＋／−０．１％またはそれよりも少ない変動を、そのような変動が開示されている発明において実施するのに適切である限り、包含することが意図されている。修飾語「約」または「おおよそ」が言及する値が、それ自体も具体的に、望ましくは開示されていると理解されるべきである。
【００２７】
メンバーのグループのうちの１つもしくは複数または少なくとも１つのメンバー（複数可）などの、用語「１つもしくは複数」または「少なくとも１つ」はそれ自体明白であるが、さらなる例示によって、この用語はとりわけ、前記メンバーのうちのいずれか１つへの、または例えば、前記メンバーのうちのいずれか≧３、≧４、≧５、≧６もしくは≧７等などの、前記メンバーのうちのいずれか２つもしくはそれよりも多い、およびすべての前記メンバーにいたるまでへの言及を包含する。
【００２８】
本明細書で引用されるすべての参考文献はこれにより参照によってその全体が組み込まれる。特に、本明細書で具体的に言及されているすべての参考文献の教えは参照により組み込まれる。
【００２９】
他の方法で定義されていなければ、専門および科学用語を含む、本発明を開示するのに使用される用語はすべて、本発明が属する技術分野の当業者が一般に理解している意味を有する。さらなるガイダンスにより、用語定義は本発明の教えをもっとよく認識するように含まれる。
【００３０】
以下の段落では、本発明の異なる態様がさらに詳細に定義される。そのように定義されたそれぞれの態様は、それとは反対にはっきり示されていなければ、他のいかなる態様（単数または複数）と組み合わせてもよい。特に、好ましいまたは有利であるとして示されているいかなるフィーチャーも、好ましいまたは有利であるとして示されている他のいかなるフィーチャー（単数または複数）と組み合わせてもよい。
【００３１】
本明細書全体を通じて「１つの実施形態」または「実施形態」への言及は、その実施形態に関連して記載される特定のフィーチャー、構造または特性が本発明の少なくとも１つの実施形態に含まれることを意味する。したがって、本明細書全体を通じて種々の場所に語句「１つの実施形態で」または「実施形態で」が現れるのは、すべてが必ずしも同じ実施形態に言及しているわけではないが、同じ実施形態に言及している場合もある。さらに、本開示から当業者には明らかであろうが、１つまたは複数の実施形態において、特定のフィーチャー、構造または特性は、任意の適切な様式で組み合わせることができる。さらに、当業者には理解されるであろうが、本明細書に記載されるいくつかの実施形態は、他の実施形態に含まれるいくつかのフィーチャーは含み、他のフィーチャーは含まないけれども、異なる実施形態のフィーチャーの組合せは本発明の範囲内であり、異なる実施形態を形成することが意図されている。例えば、添付の特許請求の範囲では、請求されている実施形態のいずれもいかなる組合せでも使用することが可能である。
【００３２】
本発明の本説明では、その一部を形成し、本発明を実行してもよい特定の実施形態の例示としてのみ示される添付図面を参考にする。それぞれの要素に添付された丸括弧に入れられたまたは強調された参照数字は、例として要素を例示するだけであり、これによってそれぞれの要素を限定することを意図していない。他の実施形態を利用してもよく、本発明の範囲を逸脱することなく構造的または論理的変化を加えてもよいことは理解されるべきである。したがって、以下の詳細な説明は、限定的な意味で解釈するべきではなく、本発明の範囲は添付の特許請求の範囲により限定される。
【００３３】
一態様では、本発明は、核小体支持区域および核小体強度パターンの１つまたは複数の形態計測特性を測定するまたは確定することを含む、核小体形態、構造、または完全性を特徴付けるための方法に関する。ある特定の実施形態では、形態計測特性はパラメトリック関数により定義される。ある特定の実施形態では、方法は、形態または形（小成分のサイズ、形状、および数を包含する）および内部パターン構造（画素強度の空間的構成および空間的変動を包含する）を含む、画像中の核小体の外観を測定可能で定量化可能な様式で特徴付けることを含む。
【００３４】
例えば、個々の細胞核および／または細胞核小体は光強度捕獲に基づいて分割してもよい。光強度はそれぞれの細胞核小体を構成する核小体塊も明らかにする。それぞれの細胞集団は、一組の判別核小体フィーチャー（すなわち、形態計測特性）の確率的分布により記載してもよい。核小体フィーチャーは、１つの個々の細胞核内で核小体塊の空間的構成の１つの特定の局面を反映するスカラー値である。
【００３５】
ある特定の実施形態では、フィーチャーは、例えば、その平均標準偏差と比べた平均値の大きな違いにより測定される場合、２つの集団にわたり測定されたフィーチャー値の統計的分布が限られた重複を有する時に、２つの細胞集団を判別する。
【００３６】
２種類の細胞集団を判別する一組の核小体フィーチャーは、一態様ではまたは一実施形態では以下のステップで導き出されてもよい。
１）一組の任意のパラメトリックフィーチャーは、それぞれの集団の代表的核小体試料間で観察される主要な目立った違いをとらえると、例えば、当分野の専門家により定義される；
２）次に、それぞれのフィーチャーに関連するパラメータが、判別する対になった集団の例間の重複を最小限にするように選択される；
３）集団間の大きな分離をもたらすフィーチャーおよびその関連するパラメータのみが判別フィーチャーとして保持される。
【００３７】
一実施形態では、そのような方法は、
ａ）目的の２つの集団の代表的核小体試料間で観察されるもっとも顕著な形態計測的違いをとらえるために一組の任意のパラメトリック形態計測特性を定義するステップと、
ｂ）好ましくは、フィッシャー基準に従って、その判別力を最大にしかつ／またはそれぞれの集団に由来する形態計測特性確率的分布間の重複を最小にするために、それぞれの形態計測特性に関連するパラメータを選択するステップと、
ｃ）判別する集団間の大きな分離をもたらす形態計測特性およびその関連する最適化パラメータを選択するステップと、
ｄ）選択された形態計測特性に関して測定された距離の組合せに基づいて、例えば、加重総和を使用して、２つの細胞または細胞集団間の距離を算出するステップと
を含む。
【００３８】
したがって、一態様では、本発明は、異なる核小体形態または構造を有する２種類の細胞集団を判別するフィーチャーを同定するなどの、２種類の細胞集団を判別するフィーチャーを同定するための上記方法の使用に関する。
【００３９】
細胞集団をその核小体形態に関して区別する例として、本発明はある特定の実施形態で一組の選択されたパラメトリックフィーチャー、その最適化、および組合せを提供する。ある特定の実施形態では、組合せは、我々が比較したいと望む細胞集団に関連するフィーチャー分布間の正規化された距離の絶対値の（加重）合計（例えば、フィッシャースコア）をもたらす。他のフィーチャーおよび組合せが可能である。
【００４０】
細胞試料の核小体構造を明らかにする光強度パターン間の主要な目立った違いをとらえるように想定されるフィーチャーは、ある特定の実施形態では；
・    核小体塊の空間的支持体のサイズおよび／または形状を特徴付けるフィーチャー。それらのフィーチャーは好ましくは、核小体に寄与する別個の繋がった成分の数、および／またはそれらの成分のそれぞれの一部である画素の数をカウントする。フィーチャーは、核小体塊の伸長および／または楕円規則性および／または凹面を反映する任意の定量的計量を含んでいてもよい。それらのフィーチャーすべてが好ましくは、光強度のレベルによりパラメータ化され、そのレベルより上では画素は核小体塊の一部であると見なされる。
・    核小体の繋がった成分内の核小体シグナルの空間的変動を特徴付けるフィーチャー。空間的変動は繋がった成分の境界の内側および／または境界上で測定してもよい。繋がった成分の境界の周囲では、核小体塊と背景画像の間の核小体関連光強度の推移の鮮明さを測定してもよい。繋がった成分内部では、フィーチャーは光強度の空間的変動をとらえるように定義してもよい。実際、核小体関連光強度値の極小値および極大値のマグニチュードおよび数、ならびにさらに、または選択的に、相対的に小さな強度値を有する画素の数および／または繋がった成分内部の小強度バレーにより分離されている高強度小領域の数および形状を考慮してもよい。これらのフィーチャーはすべて、小／高強度という概念を定義するのに採用される閾値により、および／または好ましくは数理形態学に基づいて、成分の内部／外部という概念を定義するのに考慮される構造化要素によりパラメータ化してもよい。
【００４１】
本明細書で使用されるように、用語「形態」および「構造」は一般には、例えば、細胞または組織の画像上で同定されるなどの核小体の全外観のことであってもよい。「核小体完全性」および関連する「核小体崩壊」とは一般に、基準核小体形態または構造と比べた試料細胞（集団）または組織中の核小体形態または構造の類似性または相違点のことであってよい。好ましくは、そのような基準核小体形態または構造は「正常な」核小体形態または構造、例えば、非疾患細胞、または異常な核小体形態もしくは構造を持っていないことが知られている（および、したがって、疾患細胞を含むこともあるが、異常な核小体形態または構造を持たない）細胞の核小体形態または構造である。ある特定の実施形態では、標準または基準核小体形態は具体的に決定された細胞型（例えば、神経細胞、上皮細胞、等）でもよい。本明細書で使用されるように、用語「形態計測特性」とは一般に、形態または形（サイズおよび形状を包含する）および内部パターン構造（空間的構成および変動を包含する）を含む外観を記載することができ、測定可能で定量化できる任意のフィーチャーのことでもよい。
【００４２】
用語「核小体支持区域」とは一般に、本明細書の他の所で定義されているように、例えば、画像上の核小体の物理的な位置、または核小体を囲い込んでいる区域のことでもよい。用語「核小体強度パターン」とは一般に、本明細書の他の所で定義されているように、特定の強度関連形態計測フィーチャーおよびその分布のことでもよい。
【００４３】
ある特定の実施形態では、形態計測特性は、細胞、細胞集団、または組織の画像上で決定される。ある特定の実施形態では、形態計測特性は、組織切片の画像上で決定される。細胞または組織は、当技術分野で公知であり、細胞または組織撮像を可能にする技法により調製してもよい。ある特定の実施形態では、画像は特定の細胞構造または分子（例えば、核小体特異的成分、構造体、または分子）についての核染色または蛍光標識（例えば、抗体）のため、蛍光成分、例えば、ＤＡＰＩであるまたはこれを含む。しかし、本発明は、蛍光撮像の使用に限定されてはいない。当業者であれば、代替の撮像方法および技法を容易に想定することができる。ｉｎ  ｖｉｖｏ撮像方法も、発明（例えば、米国特許出願公開第２０１５／１５７２５４号明細書）に従ってある特定の実施形態で可能である。
【００４４】
ある特定の実施形態では、本明細書に記載される本発明に従った方法を使用して核小体形態、構造、完全性、または崩壊を定量的にスコア化する。
【００４５】
ある特定の実施形態では、本明細書に記載される本発明に従った方法を使用して、核小体崩壊、または異常な核小体形態もしくは構造の根底にあるおよび／またはこれらを特徴とする障害を定性的にまたは定量的に分類する、スコア化する、診断する、および／または段階分けする。ある特定の実施形態では、そのような障害はがん、自己免疫疾患、ウイルス感染、神経変性障害、またはリボソーム病（がん素因、骨格問題、または血液学的問題などの）である。
【００４６】
ある特定の実施形態では、本明細書に記載される本発明に従った方法を使用して、核小体崩壊の重大度、または標準もしくは基準と比べた核小体完全性の逸脱または相違に基づいて、細胞（集団）または組織を分類する、スコア化する、診断する、および／または段階分けする。
【００４７】
ある特定の実施形態では、本明細書に記載される本発明に従った核小体形態の特徴付けは、特定の予後と関連しているまたはその根底にある。
【００４８】
ある特定の実施形態では、本明細書に記載される本発明に従った核小体形態の特徴付けは、特定の処置計画と関連しているまたはその根底にある。
【００４９】
一態様では、本発明は、核小体崩壊をスコア化する、定量化する、もしくは分類するためのならびに／または個人のもしくは細胞もしくは組織の健康状態を確定するおよび／または予後の判断を行うための、または診断のための方法であって、本明細書に記載される本発明に従った方法を実施することを含む方法に関する。ある特定の実施形態では、本明細書の他の所に記載されるｉＮｏ値は前記核小体崩壊の重大度または前記健康状態の重症度もしくは等級を示す。ある特定の実施形態では、前記健康状態または診断は、がん／腫瘍／悪性腫瘍／増殖性疾患もしくは障害（または、過形成、形成異常、もしくは異形成などの前がん性／前新生物／前悪性障害もしくは段階）、自己免疫疾患、ウイルス感染、神経変性障害、またはリボソーム病（がん素因、骨格問題、または血液学的問題など）を示す。
【００５０】
ある特定の実施形態では、前記方法は対象または患者の細胞または組織試料を得るまたは提供することを含む。
【００５１】
一実施形態では、本発明は、本明細書に記載される本発明に従った方法であって、
ａ）１つまたは複数の真核細胞、もしくは真核組織の、または好ましくは細胞集団の画像を得るまたは提供するステップと、
ｂ）任意選択で、前記画像を分割し、それによって個々の細胞または細胞核を得るステップと、
ｃ）前記画像を分割し、それによって、好ましくは複数の繋がった画素を含む１つまたは複数の核小体塊を得るステップであって、その繋がった画素が核小体の繋がった成分を構成するまたは表す、ステップと、
ｄ）任意選択で、共局在により核小体塊を個々の細胞または細胞核に、したがって個々の細胞に割り当てるステップと、
ｅ）繋がった成分の支持区域、および強度パターンを特徴付ける１つまたは複数のフィーチャー（すなわち、形態計測特性）を抽出するステップと、
ｆ）前記フィーチャーの確率分布（例えば、細胞集団について）を算出するステップと、
ｇ）前記確率分布を基準モデル分布と比較しかつ／または前記確率分布と基準モデル分布の重複を確定するステップと
を含む方法に関する。
【００５２】
上記方法では、ｂ）および／またはｄ）は両方とも任意であってもよい。上記方法はしたがって、ｂ）；ｂ）およびｄ）；ｄ）；を含む、またはｂ）とｄ）のどちらも含まなくてもよい。
【００５３】
本明細書で使用されるように、用語「繋がった画素」とは、グラフまたは画像上の隣接するまたは近隣の画素、すなわち、互いに隣り合う（いかなる方向にも）画素のことである。ある特定の実施形態によれば、繋がった画素のセット（および、したがって拡大による区分もしくは成分または繋がった区分もしくは成分）は、それぞれが所与の閾値よりも上の強度を有する隣接する画素であるまたはそれらを含むまたはそれらからなる。それぞれの画素はノードであり、グラフまたは画像エッジは近傍系の定義から直接導き出され、この系は典型的には４つ（上、下、左、右）または８つの近傍（４＋斜め方向）をそれぞれの画素に割り当てる。無向グラフまたは画像の繋がった成分（またはただの成分）は、２つの任意の頂点がパスにより互いに接続されており、スーパーグラフまたはスーパー画像で追加の頂点には接続されていないサブグラフまたはサブ画像である。インシデントエッジ（incident edge）のない頂点はそれ自体繋がった成分である。したがって、核小体の繋がった成分は核小体画素のセットであり、ここでは２つの任意の画素をパス（一連の画素隣接関係）を通じて接続することが可能であり、核小体画素を含むだけである。
【００５４】
ある特定の実施形態では、そのような方法は、核小体形態が影響を受けている、異常である、または崩壊していると確定された場合には、対象を処置することをさらに含む。
【００５５】
一実施形態では、個々の細胞から細胞核小体の境界を定める最初のステップとして、細胞核は分割される。それぞれの細胞は単一の核を有する。核小体は特殊化した核内ドメインであり、これは定義によれば、すべて核内に含有される。したがって、高密度で、緻密で、スコア化するのが容易な核を分割することは、それぞれ個々の細胞に核小体を含有する細胞容積の境界を定めるための手段である。
【００５６】
核はある特定の実施形態では、例えば、および、限定せずにＤＡＰＩなどのＤＮＡ染料で染色してもよい。核輪郭はある特定の実施形態では、２ステップでＤＡＰＩチャネル（または核の他の染色もしくは可視化手段）から抽出してもよい。第１に（ステップ１）、相対的に高強度の大きい繋がった成分は、例えば、実施例２に記載されている適応的閾値処理法などの閾値処理法を使用して同定される。任意選択で、第２（ステップ２）では、著しい凹面を示していて、おそらくそれが凝集核に対応していることを示している繋がった成分は、ある特定の実施形態では拒絶してもよい。
【００５７】
ステップ１はある特定の実施形態では、強度閾値の上にある画素の十分に大きな繋がった成分に対応する核が選択されるように、ＤＡＰＩ画像（または核の他の染色もしくは可視化手段）の段階的な閾値処理からなる。確率的変動に取り組むため、ある特定の実施形態では、ヒト細胞核のサイズ範囲についての先行知識を活用しつつ、一連の増加する閾値を考慮することにより分割化を進行的に改良する階層的閾値処理戦略を採用してもよい。
【００５８】
ステップ２では、おそらく複数の核に対応している繋がった成分の拒絶が考慮される。このために、ある特定の実施形態では、それぞれの繋がった成分の凸面が分析される。例によれば、限定せずに、ある特定の実施形態では、繋がった成分の２つの主軸に平行にいくつかの線が引かれる。繋がった成分が凸面である場合、すべての平行線について、１または０のいずれかのセグメントが輪郭の内側にある。これとは対照的に、繋がった成分が凝集核を表す場合、その成分は強い凹面を提示し、輪郭の内部にある２つまたはそれよりも多いセグメントを含む平行線が存在する。１つの平行線が十分に長い外部セグメントにより分離されている２つの十分に長い内部セグメントを支持している場合、繋がれた成分は拒絶される。ある特定の実施形態では、特定の数の画素の閾値などの閾値が設定され、それに基づいて、特定の成分を含めるまたは排除するために内部および外部のセグメントの長さが確定される。それらの長さはある特定の実施形態では、成分を拒絶するには、例えば、少なくとも１、２、３、４、または好ましくは少なくとも５画素の閾値よりも大きくなければならない。閾値はある特定の実施形態では、手動で作成されるグラウンドトゥルース（ground truth）と比べて、単一核の大部分を保持しつつ複数の核の数を徹底的に低減するために経験的に設定してもよい。
【００５９】
ある特定の実施形態では、静止期の細胞のみが分析される。静止期の細胞を同定するため、ある特定の実施形態では、分割された成分でのＤＡＰＩ画像（または核の他の染色もしくは可視化手段）および／または核小体特異的染色の分布（または核の他の可視化手段）が考慮される。ＤＡＰＩ（または核の他の染色もしくは可視化手段）が十分に高密度で拡散している場合（例えば、核の画素の少なくとも５０％が０．３よりも大きい、好ましくは０．４よりも大きい、さらに好ましくは０．４７よりも大きい正規化されたＤＡＰＩ値を有し、ＤＡＰＩ画像（または核の他の染色もしくは可視化手段）がその極大値で正規化されている場合）、および／または核小体特異的染色（または核の他の可視化手段）が十分に局在化している場合（核の画素の少なくとも５０％が、０．７よりも低い、好ましくは０．６よりも低い、さらに好ましくは０．５３よりも低い正規化された核小体特異的染色（または核の他の可視化手段）値を有し、核小体特異的染色（または核の他の可視化手段）画像がその極大値で正規化されている場合）、ある特定の実施形態での細胞は静止期にあると見なされる。ある特定の実施形態での閾値は、画像の手動グラウンドトゥルースアノテーションに基づいて設定される。
【００６０】
最終的に、後処理ステップとして、ある特定の実施形態では、細胞のすべての核小体がそれぞれの分割された領域に含有されていることを確かめるため、それぞれの繋がった領域を閉じて拡大する基本的な数理形態学が適用される。ある特定の実施形態では、１３×１３の構造化要素により拡張に続いて３×３のエロージョンが行われる。
【００６１】
ある特定の実施形態では、本明細書で定義される形態計測特性は核内の核小体の実際の位置に依存しない。ある特定の実施形態では、本明細書で定義される形態計測特性はそれでも核小体塊の空間拡散を反映する。ある特定の実施形態では、それらの特性は手動で選択されたセットになった画像試料に基づいて定義され、この画像試料は典型的な正常な核小体パターンおよび異常な核小体パターンを描いている。ある特定の実施形態での代表的な試料の手動による抽出により、必ず調査したフィーチャーのセットが多様な核小体外観を判別することができるように適切なフィーチャーを導き出すことが可能になる。ある特定の実施形態では、それぞれの特性はパラメトリック関数として体系的に定義される（そのパラメータが全データベースにわたって最適化されて、フィーチャーが正常な細胞画像と遺伝子枯渇した細胞画像を区別できるように有利に）。
【００６２】
ある特定の実施形態では、基準対照細胞における外観多様性を代表するセットの手動選択細胞核小体画像が選択される（補足図１６参照）。さらに、または代わりに、ある特定の実施形態では、核小体強度を表す２−Ｄまたは３−Ｄグラフを使用して核小体外観多様性を可視化してもよい。
【００６３】
ある特定の実施形態では、核ごとに、すべての形態計測特性が核小体塊をバラバラになった繋がった成分のセットに分割することに関して定義される。ある特定の実施形態では、この分割は核小体画像閾値処理により得られ、これはその強度が閾値よりも上にある場合には画素が核小体の一部であると見なされることを意味する（核小体特異的染色または他の核小体可視化法もしくは技法を用いて有利に得られる）。ある特定の実施形態では、特性ごとに、分割化閾値パラメータは、対照細胞の特性の分布と崩壊した核小体形態または構造を有する細胞などの試験細胞の特性の分布の間の分離を最大にするように、自動的に定義される。ある特定の実施形態では、分割化閾値は形態計測特性パラメータであり、１つの形態計測特性からもう一方の形態計測特性まで変動することがある。
【００６４】
ある特定の実施形態では、核小体の支持の区域が特徴付けられる。ある特定の実施形態では、いわゆる区域分割化閾値τａを用いた閾値処理後に得られる繋がった成分のサイズと数が考慮されるまたは決定される。ある特定の実施形態では、ＡＡｌｃｃが閾値処理画像での最大の繋がった成分の面積を測定する。ある特定の実施形態では、ＡＮｃｃは核中の繋がった成分の数を表す。ある特定の実施形態では、鋭敏度指数ＡＳは核小体塊の限界を定める最前線に沿った強度勾配の鋭敏度を特徴付け、それぞれが２つの閾値τｉ１とτｉ２より上にあり、τｉ１＞τｉ２である核小体画素の比を測定する。
【００６５】
ある特定の実施形態では、核小体の形状およびテクスチャーを特徴付けるため、分割後に得られる最大の繋がった成分のみが考慮される。
【００６６】
ある特定の実施形態では、核小体形状規則性を定量化するため、形状分割化閾値τｓが採用される。ある特定の実施形態では、分割画像中の最大の繋がった成分の形状が特徴付けられる。ある特定の実施形態では、それぞれの特性はそのサイズとは無関係に形状を記載する。ある特定の実施形態では、伸長形状因子ＳＥｌｃｃは、その主軸の周りの繋がった成分ｃの２つの二次モーメントλ１およびλ２の比の平方根として定義される。ある特定の実施形態では、楕円規則性因子ＳＲｌｃｃは、繋がった成分の面積と繋がった成分の外側にあり、繋がった成分と同じ中心、同じ主軸、および同じ延長を有する最小楕円の面積の比として定義される。ある特定の実施形態では、凹部因子ＳＣｌｃｃは繋がった成分の面積とその凸閉包の面積の比として定義される。
【００６７】
ある特定の実施形態では、１つまたは複数の内部での強度の分布を反映する核小体テクスチャーパターンスカラー測定基準を特徴付けるため、好ましくは最大の繋がった成分が考慮される。ある特定の実施形態では、好ましくはセルワイズダイナミックレンジ正規化に続いて画素強度の分布が確定される。ある特定の実施形態では、繋がった成分はテクスチャー分割化閾値τｉに基づいて分割される。ある特定の実施形態では、テクスチャーヒストグラム低テール指数ＴＨｌｃｃは、好ましくは３×３画素構造化要素による繋がった成分のエロージョンの内部に位置している一方で、ある強度閾値αよりも下にある画素のパーセンテージを測定する。エロージョンはある特定の実施形態では、形状の境界上にある低強度画素を取り除くように形状に適用されてもよい。ある特定の実施形態では、テクスチャーアップランド指数ＴＵｌｃｃは、繋がった成分の内部に存在する一方で閾値βよりも上にある繋がった領域の数になるように定義される。ある特定の実施形態では、テクスチャーピーク指数ＴＰｌｃｃは繋がった成分での極大値の数になるように定義される。ある特定の実施形態では、テクスチャーバレー指数ＴＶｌｃｃは繋がった成分での極小値の数になるように定義される。ある特定の実施形態では、テクスチャー極小値ＴＬＭｌｃｃは繋がった成分での最小の極小値の強度として定義される。
【００６８】
ある特定の実施形態では、形態計測特性の選択は一般的な線形判別分析により導入されるフィッシャー基準に基づいている（２２）。ある特定の実施形態では、それらのパラメータまたは特性は、我々が判別したいと考えているフィーチャー分布間の分離を最大限にするように選択される（実施例２も参照）。当業者であれば、判別されるフィーチャー間の分離を等しく最大限にする別の選択基準も適用してよいことは理解されるであろう。ある特定の実施形態では、判別フィーチャーまたは特性は、特定のクラスに割り当てられたデータの分散（の合計）と比べて測定される、クラス平均値がよく分離している判別フィーチャーまたは特性である。
【００６９】
ある特定の実施形態では、パラメータ空間Ｐにあるベクトルｐによりパラメータ化されるフィーチャーを考慮すると、我々がもっとも良く判別したいと考えている２つのクラスの観察結果については、フィーチャー分布はｐの関数として知られていると想定される。フィッシャー最適化基準は、クラス分布間の分離を最大限にするベクトルｐ＊が：
【００７０】
【数１】
2019523392.tif 000002
として定義され、μ１（ｐ）、μ２（ｐ）およびσ１（ｐ）、σ２（ｐ）はそれぞれ、２つのクラスについてのパラメータｐで測定した場合、目的のフィーチャーの分布の平均値および標準偏差を示している。このフィッシャー基準は、画像ベースの形態学（２４）で広く使用されているｔ検定のウェルチ適応（２３）に等しい。
【００７１】
ある特定の実施形態では、パラメータ／特性は、対照細胞から、および崩壊した核小体形態を有する細胞などの試験細胞から抽出されるそれぞれの対の分布間で測定される分離の合計を最大限にするように選択される。
【００７２】
ある特定の実施形態では、差異ベクトルは、核小体のセットに関連する形態計測特性分布がその対応する基準分布と異なっている様子を要約するように定義される。ある特定の実施形態では、所与の画像フィーチャーでは、好ましくは、以下の式：
【００７３】
【数２】
2019523392.tif 000003
に従って、差異ｄは試験セットと基準セットの間で、好ましくは、それぞれのセットの平均フィーチャー値の違い対その分散の合計の比であると定義され、μ（ｉ）、μｒ（ｉ）およびσ（ｉ）、σｒ（ｉ）は特性／フィーチャーの平均値および標準偏差を示し、ｄは好ましくは差異ベクトル成分である。
【００７４】
ある特定の実施形態では、核小体崩壊レベルを定量するため、核小体崩壊、またはｉＮｏの指数が定義される。
【００７５】
ある特定の実施形態では、ｉＮｏは以下の式：
【００７６】
【数３】
2019523392.tif 000004
に従って定義され、Ｎはフィーチャーの数であり、ａ（ｉ）はｉｔｈフィーチャーの重み付け係数であり、好ましくは、０＜ａ（ｉ）＜１であり、ｄ（ｉ）はｉｔｈフィーチャーの差異ベクトル成分である。ある特定の実施形態では、ｉＮｏは差異ベクトルのＬ１標準である（すなわち、ａ（ｉ）はすべて等しい）。
【００７７】
ある特定の実施形態では、データのさらに低次元の提示が得られる。ある特定の実施形態では、そのような提示は主成分分析（ＰＣＡ）により得られてもよい。ある特定の実施形態では、最初の２つの主成分が考慮される。ある特定の実施形態では、ＰＣＡは、核小体形態、構造、または完全性に関連する平均的傾向をとらえる差異ベクトルに適用される。ある特定の実施形態では、最大のフィッシャースコアを有する、すなわち、正常なおよび変化した核小体をもっとも良く判別する３つの、好ましくは４つの、さらに好ましくは５つのフィーチャーが考慮される。ある特定の実施形態では、それらのフィーチャーは表７の最初の縦の列に収載されている通りである。
【００７８】
ある特定の実施形態では、本明細書に記載される方法はコンピュータ実行方法であり、特に本明細書に記載される本発明に従って核小体形態を特徴付けるためのコンピュータ実行方法である。したがって、ある特定の実施形態では、本発明は本明細書に記載され本発明に従ってコンピュータ上で遂行される方法に関する。関係する態様では、本発明は、コンピュータの内部メモリにロードされる場合、本明細書に記載される本発明に従ってコンピュータに方法を遂行させるコンピュータ読取り可能指示を含むコンピュータ読取り可能媒体を提供する。さらなる態様では、本発明は、本明細書に記載される本発明に従って方法を実行するための指示を含むデータストリームに関する。さらなる態様では、本発明は、本明細書に記載される本発明に従って方法を遂行するために設定されたコンピュータに関する。さらなる態様では、本発明は、本明細書に記載される本発明に従って方法を実行するためのコンピュータ読取り可能指示を含むデータキャリアに関する。さらなる態様では、本発明は、コンピュータの内部メモリにロードされる場合、本明細書に記載される本発明に従ってコンピュータに方法を遂行させるコンピュータ読取り可能指示を含むデータキャリアに関する。
【００７９】
一態様では、本発明は、核小体崩壊または完全性を予想する、診断する、予後の判断を行う、または確定するための方法であって、１つまたは複数の（リボソーム）タンパク質のタンパク質および／またはｍＲＮＡ発現レベルを確定することを含む方法に関する。ある特定の実施形態では、前記方法はｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。
【００８０】
ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、（ａ）から（ｐｐ）までのリストのいずれかのうちの、１つまたは複数、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、含まれるすべてとして選択され：
（ａ）ｅＬ３３、ｅＳ２４、ｅＬ８、ｕＳ４、ｅＳ２８、ｅＳ２７、ｕＳ７、ｕＳ９、ｕＳ１９、ｅＬ３６、ｕＳ１１、ｕＳ８、ｕＬ２４、ｅＬ１８、ｅＬ３２、ｅＳ２７Ｌ、ｅＬ２９、ｕＬ１６、ｕＳ１３、ｅＬ２４、ｅＬ１５、ｕＳ１０、ｅＳ１０、ｅＬ４２、ｕＬ１０、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｕＬ１１、ｅＬ４０、ｕＬ３、ｅＳ１９、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＳ３０、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＳ１４、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｂ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＳ２７、ｅＬ３６、ｕＬ２４、ｅＬ１８、ｅＬ３２、ｅＬ２９、ｕＬ１６、ｅＬ２４、ｅＬ１５、ｅＬ４２、ｕＬ１０、ｅＬ１３、ｕＬ１１、ｅＬ４０、ｕＬ３、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｃ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｅＳ１０、ｅＳ１９、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＳ３０、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＳ１４、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｄ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｅ）ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｅＳ１０、ｅＳ１９、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＳ３０、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＳ１４、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｆ）ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｇ）ｅＬ２９、ｕＳ２、ｅＬ１５、ｅＳ４、ｕＳ５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｕＳ３、ｕＳ９、ｅＳ１７、ｕＳ１１、ｅＳ２８、ｅＬ２８、ｕＳ１４、ｕＬ１０、ｕＳ１３、ｅＳ２６、ｕＬ２４、ｕＬ１８、ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｈ）ｅＬ２９、ｅＬ１５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｅＬ２８、ｕＬ１０、ｕＬ２４、ｕＬ１８、ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｉ）ｅＬ２９、ｕＳ２、ｅＬ１５、ｅＳ４、ｕＳ５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｕＳ３、ｕＳ９、ｅＳ１７、ｕＳ１１、ｅＳ２８、ｅＬ２８、ｕＳ１４、ｕＬ１０、ｕＳ１３、ｅＳ２６、ｕＬ２４、ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｊ）ｅＬ２９、ｅＬ１５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｅＬ２８、ｕＬ１０、ｕＬ２４、ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｋ）ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｌ）ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｍ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｎ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｏ）ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ１４、ｕＬ２２、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ２１、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｐ）ｅＬ３３、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
（ｑ）ｅＳ１０、ｅＳ１９、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＳ３０、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＳ１４、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｒ）ｅＳ１９、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＳ３０、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＳ１４、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｓ）ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｔ）ｅＳ１０、ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＳ３０、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＳ１４、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｕ）ｕＬ４、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｖ）ｅＳ１０、ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＳ１４、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｗ）ｅＬ２０、ｅＬ６、ｅＬ３１、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｘ）ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｙ）ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｚ）ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ａａ）ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｂｂ）ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｃｃ）ｅＳ１０、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｄｄ）ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｅｅ）ｅＳ１０、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｆｆ）ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｇｇ）ｅＳ１０、ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｈｈ）ｅＬ４３、ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｉｉ）ｕＬ２、ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｊｊ）ｕＬ１、ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｋｋ）ｕＬ５、およびｕＬ１８；
（ｌｌ）  ｕＬ１８；
（ｍｍ）ｕＬ５；
（ｎｎ）ＢＸＤＣ１およびＲＲＳ１、もしくはリボソーム中央隆起部形成に関与する任意のタンパク質；
（ｏｏ）ｕＬ２４、ｕＬ１４、ｅＳ７、ｅＬ８、ｅＳ６、ｅＳ１９、ｕＳ１１、ｅＬ３７、ｅＳ２６、ｅＳ３１、ｅＳ２７Ｌ、ｕＳ１２、およびｕＳ１０を除く、上記リストから選択される任意の１つもしくは複数のリボソームタンパク質；または
（ｐｐ）ｕＬ５および／もしくはｕＬ１８を除く、上記リストから選択される任意の１つもしくは複数のリボソームタンパク質。
【００８１】
ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、前記使用はｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。
【００８２】
関係する態様では、本発明は、核小体崩壊または完全性を予想する、診断する、予後の判断を行う、または確定するための、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現レベルを検出するための手段の使用を提供する。ある特定の実施形態では、そのような使用は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの任意の１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現レベルを検出するための手段の使用を含む。ｍＲＮＡまたはタンパク質発現を検出するための手段は、当技術分野では公知であり、さらなるガイダンスにより、および限定せずに、プライマー、プローブ、および抗体を含む。ある特定の実施形態では、前記使用は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ使用、ｉｎ  ｖｉｖｏ使用、またはｅｘ  ｖｉｖｏ使用である。ある特定の実施形態では、前記使用はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ使用ではない。
【００８３】
さらに進めると、一態様では、本発明は、核小体崩壊または完全性により特徴付けられるまたはこれに関連する疾患または障害を予想する、診断する、予後の判断を行う、または確定するための方法であって、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のタンパク質および／またはｍＲＮＡ発現レベルを確定することを含む方法に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、前記方法はｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。
【００８４】
関係する態様では、核小体崩壊または完全性により特徴付けられるまたはこれに関連する疾患または障害を予想する、診断する、予後の判断を行う、または確定するための、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現レベルを検出するための、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤などの、手段の使用を提供する。ある特定の実施形態では、そのような使用は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの任意の１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現レベルを検出するための手段の使用を含む。ある特定の実施形態では、そのような疾患または障害は、がん／腫瘍／悪性腫瘍／増殖性疾患もしくは障害（または、過形成、形成異常、もしくは異形成などの前がん性／前新生物／前悪性障害もしくは段階）、自己免疫疾患、ウイルス感染、神経変性障害、またはリボソーム病（がん素因、骨格問題、または血液学的問題などの）である。ある特定の実施形態では、前記使用は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ使用、ｉｎ  ｖｉｖｏ使用、またはｅｘ  ｖｉｖｏ使用である。ある特定の実施形態では、前記使用はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ使用ではない。
【００８５】
一態様では、本発明は、核小体崩壊または完全性により特徴付けられるまたはこれに関連する疾患または障害を処置する、軽減するまたは改善するための方法であって、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡまたはタンパク質レベルまたは活性を、例えば、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤を用いて、（特異的に）減少させるまたは増加させることを含む方法に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、そのような疾患または障害は、がん／腫瘍／悪性腫瘍／増殖性疾患もしくは障害（または、過形成、形成異常、もしくは異形成などの前がん性／前新生物／前悪性障害もしくは段階）、自己免疫疾患、ウイルス感染、神経変性障害、またはリボソーム病（がん素因、骨格問題、または血液学的問題などの）である。ある特定の実施形態では、前記使用は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。ある特定の実施形態では、そのような方法は、発現レベルまたは活性を増加するまたは減少するための治療有効量の前記手段を投与することを含む。
【００８６】
一態様では、本発明は、核小体崩壊または完全性により特徴付けられるまたはこれに関連する疾患または障害を処置する、軽減するまたは改善するのに使用するための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤などの、手段に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、そのような疾患または障害は、がん／腫瘍／悪性腫瘍／増殖性疾患もしくは障害（または、過形成、形成異常、もしくは異形成などの前がん性／前新生物／前悪性障害もしくは段階）、自己免疫疾患、ウイルス感染、神経変性障害、またはリボソーム病（がん素因、骨格問題、または血液学的問題などの）である。
【００８７】
一態様では、本発明は、核小体崩壊または完全性により特徴付けられるまたはこれに関連する疾患または障害を処置する、軽減するまたは改善するための薬物の製造のための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための手段の使用に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、そのような疾患または障害は、がん／腫瘍／悪性腫瘍／増殖性疾患もしくは障害（または、過形成、形成異常、もしくは異形成などの前がん性／前新生物／前悪性障害もしくは段階）、自己免疫疾患、ウイルス感染、神経変性障害、またはリボソーム病（がん素因、骨格問題、または血液学的問題などの）である。
【００８８】
一態様では、本発明は、核小体崩壊または完全性により特徴付けられるまたはこれに関連する疾患または障害を処置する、軽減するまたは改善するための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための手段の使用に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、そのような疾患または障害は、がん／腫瘍／悪性腫瘍／増殖性疾患もしくは障害（または、過形成、形成異常、もしくは異形成などの前がん性／前新生物／前悪性障害もしくは段階）、自己免疫疾患、ウイルス感染、神経変性障害、またはリボソーム病（がん素因、骨格問題、または血液学的問題などの）である。ある特定の実施形態では、前記使用は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ使用、ｉｎ  ｖｉｖｏ使用、またはｅｘ  ｖｉｖｏ使用である。ある特定の実施形態では、前記使用はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ使用ではない。
【００８９】
一態様では、本発明は、核小体形態、構造、または完全性を改変するまたは変更するための方法であって、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡまたはタンパク質レベルまたは活性を、例えば、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤を用いて、（特異的に）減少させるまたは増加させることを含む方法に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、前記方法は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。ある特定の実施形態では、前記使用は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。
【００９０】
一態様では、本発明は、核小体形態、構造、または完全性を改変するまたは変更するのに使用するための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡまたはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤などの、手段であって、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡまたはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）減少させるまたは増加させることを含む手段に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。
【００９１】
一態様では、本発明は、核小体形態、構造、または完全性を改変するまたは変更するための薬物の製造のための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤などの、手段の使用に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。
【００９２】
一態様では、本発明は、核小体形態、構造、または完全性を改変するまたは変更するのに使用するための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤などの、手段であって、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡまたはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）減少させるまたは増加させることを含む手段の使用に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（ａ）から（ｐｐ）までのいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、前記使用は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。
【００９３】
一態様では、本発明は、細胞中のｐ５３のタンパク質レベルまたは活性を増加させるまたは減少させるための方法であって、（１）から（９）までのリスト
１．  ｅＬ２９、ｕＳ２、ｅＬ１５、ｅＳ４、ｕＳ５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｕＳ３、ｕＳ９、ｅＳ１７、ｕＳ１１、ｅＳ２８、ｅＬ２８、ｕＳ１４、ｕＬ１０、ｕＳ１３、ｅＳ２６、ｕＬ２４、ｕＬ１８、ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
２．  ｅＬ２９、ｅＬ１５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｅＬ２８、ｕＬ１０、ｕＬ２４、ｕＬ１８、ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
３．  ｅＬ２９、ｕＳ２、ｅＬ１５、ｅＳ４、ｕＳ５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｕＳ３、ｕＳ９、ｅＳ１７、ｕＳ１１、ｅＳ２８、ｅＬ２８、ｕＳ１４、ｕＬ１０、ｕＳ１３、ｅＳ２６、ｕＬ２４、ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
４．  ｅＬ２９、ｅＬ１５、ｅＬ３１、ｅＳ３０、ｅＬ２７Ｌ、ｅＬ２８、ｕＬ１０、ｕＬ２４、ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
５．  ｕＳ８、ｕＳ１７、ｅＳ２７、ｅＬ２４、ｕＳ４、ｕＬ１４、ｅＳ１９、ｕＬ１６、ｅＳ２１、ｅＬ４０、ｅＳ２５、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｕＳ１０、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
６．  ｅＬ２４、ｕＬ１４、ｕＬ１６、ｅＬ４０、ｕＬ１１、ｅＬ１８、ｕＬ３、ｕＬ４、ｅＬ６、ｅＬ３２、ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
７．  ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＳ３１、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
８．  ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３６、ｕＬ６、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ３７、ｅＬ１４、ｅＬ２７、ｕＬ１５、ｅＬ２０、ｕＬ２２、ｕＬ３０、ｕＬ２９、ｅＬ３０、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ１９、ｅＬ２１、ｅＬ４３、ｕＬ２、およびｕＬ１；
９．  ｅＬ３３、ｅＬ８、ｅＬ１３、ｅＬ３４、ｅＬ３９、ｅＬ１４、ｕＬ２２、ｕＬ１３、ｅＬ３８、ｅＬ２１、ｕＬ２、およびｕＬ１；
のいずれかのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、含まれるすべてとして選択される、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべてのリボソームタンパク質のｍＲＮＡまたはタンパク質レベルまたは活性を、例えば、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤を用いて、それぞれ減少させるまたは増加させることを含む方法に関する。
【００９４】
ある特定の実施形態では、前記方法は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。
【００９５】
一態様では、本発明は、ｐ５３のタンパク質レベルまたは活性をそれぞれ減少させるまたは増加させるのに使用するための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤などの、手段に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（１）から（９）までのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。
【００９６】
一態様では、本発明は、ｐ５３のタンパク質レベルまたは活性をそれぞれ減少させるまたは増加させるための薬物の製造のための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤などの、手段の使用に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（１）から（９）までのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。
【００９７】
一態様では、本発明は、ｐ５３タンパク質レベルまたは活性をそれぞれ減少させるまたは増加させるための（リボソーム）タンパク質のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を（特異的に）増加させるまたは減少させるための、ｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現の誘発剤または阻害剤などの、手段の使用に関する。ある特定の実施形態では、前記（リボソーム）タンパク質は、上記（１）から（９）までのうちの１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての（リボソーム）タンパク質である。ある特定の実施形態では、前記使用は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ使用、ｉｎ  ｖｉｖｏ使用、またはｅｘ  ｖｉｖｏ使用である。ある特定の実施形態では、前記使用はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ使用ではない。
【００９８】
ある特定の実施形態では、本明細書に記載される本発明に従った処置方法および使用（核小体形態および／またはｐ５３タンパク質レベルの操作を含む）では、１つまたは複数の、例えば、２つまたはそれよりも多い、例えば、３つまたはそれよりも多い、例えば、すべての上記（ｐｐ）の（リボソーム）タンパク質の減少したｍＲＮＡおよび／またはタンパク質発現レベルが検出されまたは確定された場合、前記処置方法または使用はｕＬ５および／またはｕＬ１８のｍＲＮＡおよび／またはタンパク質レベルまたは活性を減少させるまたは増加させることを含んでいてよい。
【００９９】
一態様では、本発明は、核小体形態、構造、完全性、もしくは崩壊に影響を及ぼすもしくはこれを変更する化合物を同定するためまたはｐ５３  ｍＲＮＡもしくはタンパク質発現レベル、活性、安定性および／もしくは定常レベルに影響を及ぼすもしくはこれを変更する（増加するまたは減少する）化合物を同定するための本明細書に記載される本発明に従った方法のうちのいずれかの使用に関する。ある特定の実施形態では、前記使用は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ使用、ｉｎ  ｖｉｖｏ使用、またはｅｘ  ｖｉｖｏ使用である。ある特定の実施形態では、前記使用はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ使用ではない。
【０１００】
一態様では、本発明は、本明細書に記載される本発明に従った方法のうちのいずれかを用いて、核小体形態、構造、完全性、もしくは崩壊に影響を及ぼすもしくはこれを変更する化合物を同定するためまたはｐ５３  ｍＲＮＡもしくはタンパク質発現レベル、活性、安定性および／もしくは定常レベルに影響を及ぼすもしくはこれを変更する（増加するまたは減少する）化合物を同定するためのスクリーニング法に関する。ある特定の実施形態では、前記方法は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ方法、ｉｎ  ｖｉｖｏ方法、またはｅｘ  ｖｉｖｏ方法である。ある特定の実施形態では、前記方法はヒトまたは動物でのｉｎ  ｖｉｖｏ方法ではない。
【０１０１】
これらの方法のうちのいずれかにおいて、列挙された（リボソーム）タンパク質の検出または誘導または減少は、（単離された）細胞上で、細胞、組織または生物においてｉｎ  ｖｉｔｒｏで、ｅｘ  ｖｉｖｏで、またはｉｎ  ｖｉｖｏで実行してもよい。
【０１０２】
遺伝子もしくはタンパク質発現を増加させるもしくは減少させるまたはタンパク質安定性に影響を及ぼすための方法は当技術分野では公知である。そのような方法は、例えば、（条件的なまたは誘導性の）ノックアウト、（条件的なまたは誘導性の）ノックダウン（例えば、ｓｉＲＮＡ）、中和化合物（例えば、小分子、抗体、等）の使用、（条件的なまたは誘導性の）過剰発現、転写または翻訳活性化、等を含むがこれらに限定されない。組換えＤＮＡ技術の一般原則を述べている標準的参考文献はMolecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd ed., vol. 1-3, ed. Sambrook et al., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y., 2001; Current Protocols in Molecular Biology, ed. Ausubel et al., Greene Publishing and Wiley-Interscience, New York, 1996 (with periodic updates) ("Ausubel et al. 1996"); Innis et al., PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, Academic Press: San Diego, 1990を含む。微生物学の一般原則は、例えば、Davis, B. D. et al., Microbiology, 3rd edition, Harper & Row, publishers, Philadelphia, Pa. (1980)に述べられている。
【０１０３】
明確に言及されている場合以外、「対象」または「患者」は互換的に使用され、動物またはヒトのことである。動物は好ましくは脊椎動物、さらに好ましくは家畜動物、ウマ、ウサギ、マウス、ラット、ブタ、ヒツジ、ウシ、またはイヌ、等などの哺乳動物である。用語対象は具体的にはヒト患者を含む。
【０１０４】
用語「診断する（diagnosing）」または「診断（diagnosis）」は一般に、症状および徴候に基づいておよび／または様々な診断手順の（例えば、診断される疾患または状態に特徴的である１つまたは複数のバイオマーカーの存在、非存在および／または量を知ることからなどの）結果から対象の疾患または状態を認識する、決めるまたは結論を下す過程または行為のことである。
【０１０５】
用語「予後を判断する（prognosticating）」または「予後」は一般に、疾患または状態の進行に関する予測および回復の見通し（例えば、可能性、持続期間、および／または程度）のことである。
【０１０６】
がんの良好な予後は一般に、好ましくは容認できる期間内でのがんからの順調な部分的または完全な回復の予測のことを包含してもよい。がんの良好な予後はさらに一般的には、好ましくは所与の期間内での心不全状態がさらに悪化または憎悪しないという予測を包含してもよい。
【０１０７】
がんの良好な予後は一般に、がんの標準以下の回復および／または不十分に遅い回復、または実質的に回復しないもしくはさらなる悪化までもの予測を包含してもよい。
【０１０８】
本明細書で使用される用語「試料」または「生体試料」は、対象から得られるいかなる生物材料でも含む。試料は、全血、血漿、血清、赤血球、白血球（例えば、末梢血単核球）、唾液、尿、便（すなわち、糞便）、涙、汗、皮脂、乳頭吸引液、乳管洗浄細胞診、腫瘍滲出液、滑液、脳脊髄液、リンパ液、細針吸引液、羊水、他の任意の体液、細胞可溶化物、細胞分泌物、炎症液（inflammation fluid）、精液、および膣分泌物を含んでいてもよいがこれらに限定されない。試料は、組織試料および生検、組織ホモジネートおよび同類の物を含んでもよい。
【０１０９】
タンパク質、ポリペプチド、ペプチド、核酸、またはｍＲＮＡ分子の形態での１つまたは複数の核小体マーカーは、好ましくは他の分子および分析物を実質的に排除して、前記マーカーの存在もしくは非存在および／または量が試料中で検出されるまたは確定されると、試料中で「測定」される。
【０１１０】
用語「量（quantity）」、「量（amount）」および「レベル」は同義であり、一般に当技術分野ではよく理解されている。本明細書で使用される用語は特に、試料中のマーカーの絶対的定量化、または試料中のマーカーの相対的定量化、すなわち、本明細書で教えられる基準値と比較してなどの別の値と比較して、またはマーカーのベースライン発現を示す値の範囲と比較してでもよい。これらの値または範囲は、一人の患者からまたは患者の集団から入手することが可能である。
【０１１１】
試料中のマーカーの絶対量は、重量としてもしくはモル量として、またはさらに一般的には濃度、例えば、体積あたりの重量もしくは体積あたりのモルとして有利に表されてもよい。
【０１１２】
試料中のマーカーの相対量は、ある種の腫瘍または健康な試料由来の基準値と比較してなどの前記別の値と比較して増加もしくは減少として、または増大倍数もしくは減少倍数として有利に表されてもよい。
【０１１３】
本明細書で使用される用語「処置する」は、本明細書に記載される疾患または障害のうちのいずれか１つまたは複数を処置することを含む。例えば、がんの処置は、本発明の化合物または医薬組成物の形態で薬物を投与し、その結果がんが安定化される、低減されるまたは患者が治癒されることを意味する。
【０１１４】
本明細書で使用されるように、用語「処置する」または「処置」とは、治療的処置と予防的または防止的措置の両方のことであり、その目的は、疾患、例えば、がんの発生または伝播などの望ましくない生理的変化または障害を予防するまたは遅らせる（減らす）ことである。有益なまたは望ましい臨床結果は、検出可能であれ検出不可能であれ、症状の軽減、疾患の程度の減弱、疾患の安定化した（すなわち、悪化していない）状態、疾患進行の遅延もしくは緩慢化、疾患状態の寛解もしくは緩和、および軽快（部分的であれ全体的であれ）を含むがこれらに限定されない。「処置」は、処置を受けていない場合の予測される生存期間と比べて生存期間の延長も意味することが可能である。
【０１１５】
本明細書で使用されるように、「処置を必要とする対象」などの語句は、例えば、がんなどの所与の疾患または障害の処置から利益を得ると考えられる哺乳動物対象などの対象を含む。
【０１１６】
そのような対象は典型的には、状態、好ましくは、本明細書の他の所に定義されている疾患または障害、例えば、がんに罹っていると診断されたことのあるヒト、前記状態に罹るもしくは発症する傾向のあるヒトおよび／または状態を予防することができるヒトを含むがこれらに限定されない。
【０１１７】
用語「治療有効量」とは、対象において疾患または障害を処置する、すなわち、所望の局所的または全身的効果および成績を得るのに効果的な本発明の化合物または医薬組成物の量のことである。例としておよび限定せずに、増殖性疾患、例えば、がんの場合、治療有効量の薬物はがん細胞の数を低減する、腫瘍サイズを低減する、末端臓器へのがん細胞の浸潤を阻害する（すなわち、ある程度遅くするおよび好ましくは停止する）、腫瘍転移を阻害する（すなわち、ある程度遅くするおよび好ましくは停止する）、腫瘍成長をある程度阻害する、別のがん療法の有効性を増強する、および／またはがんに関連する症状のうちの１つもしくは複数をある程度軽減してもよい。薬物が成長を妨げるおよび／または存在するがん細胞を死滅させる限り、薬物は細胞分裂停止および／または細胞傷害性でもよい。がん療法では、有効性は、例えば、疾患進行までの時間（ＴＴＰ）を評価するおよび／または奏効率（ＲＲ）を確定することにより測定することが可能である。したがって、この用語は、研究者、獣医師、医師または他の臨床医が探究している組織、系、動物、またはヒトにおける生物学的または薬物応答を誘発する量の化合物または医薬組成物のことであり、この応答は処置中のがんの症状の軽減を含む。特に、これらの用語は、単回用量または複数回用量のいずれかで、がんに関連する臨床機能障害、症状、または合併症を予防する、治癒する、寛解する、または少なくとも最小化するのに必要な量の本発明に従った化合物または医薬組成物のことである。
【０１１８】
本明細書に記載される本発明に従った処置方法および使用はある特定の実施形態では、タンパク質またはｍＲＮＡ発現レベルまたは活性を誘導するまたは低減するための手段を含む組成物の投与を含んでいてもよい。ある特定の実施形態では、そのような組成物は医薬組成物である。ある特定の実施形態では、そのような組成物は１つまたは複数の薬学的に許容される賦形剤をさらに含む。
【０１１９】
本明細書で使用される用語「薬学的に許容される」は、医薬組成物のその他の成分と適合しそのレシピエントに有害ではない技法と手段と一致している。
【０１２０】
本明細書で使用される用語「薬学的に許容される塩」とは、塩酸塩、硫酸塩、およびリン酸塩などの無機酸付加塩、または酢酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、酒石酸塩、およびクエン酸塩などの有機酸付加塩を意味する。薬学的に許容される金属塩の例は、ナトリウム塩およびカリウム塩などのアルカリ金属塩、マグネシウム塩およびカルシウム塩などのアルカリ土類金属塩、アルミニウム塩ならびに亜鉛塩である。薬学的に許容されるアンモニウム塩の例は、アンモニウム塩およびテトラメチルアンモニウム塩である。薬学的に許容される有機アミン付加塩の例は、モルフォリンおよびピペリジンを有する塩である。薬学的に許容されるアミノ酸付加塩の例は、リジン、グリシンおよびフェニルアラニンを有する塩である。
【実施例】
【０１２１】
[実施例１]
材料および方法
核小体スクリーン
核小体スクリーンは自動ハイスループットプラットフォーム上で実施した。ｒタンパク質ごとに、３つの異なるｓｉＲＮＡを使用し、ｓｉＲＮＡごとに、２，０００細胞を撮像した。一貫性を保つため、全スクリーンは２通り行った。ｓｉＲＮＡ媒介枯渇の効率は無作為ショットガンＲＴｑＰＣＲアッセイで評価した。それが枯渇すると核小体構造に強い影響を及ぼすと我々が確立した４つの対照タンパク質からなる較正セットを使用した（補足図１）。
【０１２２】
細胞株
本研究で使用した細胞株は表１に収載している。細胞株はすべて５％ＣＯ２下３７℃で培養した。培養培地は１０％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ；Ｓｉｇｍａ）および１％ペニシリン−ストレプトマイシン（Ｐｅｎ−Ｓｔｒｅｐ、Ｇｉｂｒｏ）を補充した。一貫性を保つため、実験は１０から１５継代成長した細胞で実施した。核小体スクリーンは、ＧＦＰに融合したＦＢＬを安定的に発現している子宮頸がん（ＨｅＬａ）細胞（ＦＩＢ３６４）で実行した。細胞株はすべてＡＴＣＣ貯蔵所から購入し、ＬｏｏｋＯｕｔマイコプラズマＰＣＲ検出キット（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、ＭＰ００３５）で混入について定期的に検査した。
【０１２３】
【表１】
2019523392.tif 000005
【０１２４】
ｓｉＲＮＡ枯渇
ＦＩＢ３６４細胞株は、下に記載されるプロトコルに従ってそれぞれがｒタンパク質を標的にしている３つの別個のｓｉＲＮＡのうちのいずれかでトランスフェクトした（ｓｉＲＮＡ配列については表２）。全スクリーニング手順は２通り行った。枯渇は９６ウェルプレート（Ｐｏｒｖａｉｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）で実施した。トランスフェクション試薬混合物（０．１２５μｌのＩｎｔｅｒｆｅｒｉｎおよび２０μｌのＯｐｔｉｍｅｍ）をそれぞれのプレートウェルに添加し、室温で１０分間据えておいた。ｓｉＲＮＡ（１００ｎＭストック液の１０μｌ）をこの混合物に添加し室温でさらに３０分間据えておいた。細胞（１００，０００細胞／ｍｌのうちの７０μｌ）をそれぞれのウェルに添加し、プレートは３日間インキュベートした。個々のプレートごとに、７ウェルのセットを負および正の対照のために使用した。我々の較正セットは偽処置細胞（トランスフェクション試薬混合物のみでトランスフェクトした細胞）および非ターゲティングｓｉＲＮＡ（スクランブル、ＳＣＲ）でまたはＧＦＰ、フィブリラリン（ＦＢＬ）、ヌクレオフォスミン（ＮＰＭ）、ヌクレオリン（ＮＣＬ）、もしくはＴＩＦ１Ａに特異的なｓｉＲＮＡで処置した細胞からなる。細胞は２％ホルムアルデヒドに固定し、ＰＢＳで洗浄し、ＤＡＰＩ（ＰＢＳ中１対２０，０００の５ｍｇ／ｍｌ、Ｓｉｇｍａ）の存在下で１０分間インキュベートし、再び洗浄して撮像前にＰＢＳに保存した。中央隆起部集合ファクターＲＲＳ１およびＢＸＤＣ１の枯渇は同じプロトコルに従って実施した。
【０１２５】
【表２−１】
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【０１２６】
【表２−２】
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【０１２７】
【表２−３】
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【０１２８】
【表２−４】
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【０１２９】
【表２−５】
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【０１３０】
【表２−６】
2019523392.tif 000011
【０１３１】
【表２−７】
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【０１３２】
【表２−８】
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【０１３３】
【表２−９】
2019523392.tif 000014
【０１３４】
【表２−１０】
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【０１３５】
【表２−１１】
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【０１３６】
【表２−１２】
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【０１３７】
撮像
撮像は、ＭｅｔａＭｏｒｐｈ（ＭＤＳ  Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｃａｎａｄａ）により動くモーター駆動ステージ付のＺｅｉｓｓ  Ａｘｉｏ  Ｏｂｓｅｒｖｅｒ．Ｚ１顕微鏡上で実施した。画像は、２０×対物レンズ（Ｐｌａｎ  ＮｅｏＦｌｕａｒ、Ｚｅｉｓｓ）、ＬＥＤ照明（ＣｏｏｌＬｅｄ  ｐＥ−２）およびＣｏｏｌＳｎａｐ  ＨＱ２カメラを用いて広視野モードでとらえた。ウェルごとに１６の独立した視野が自動的にとらえられた。正しい焦平面は、ＭｅｔａＭｏｒｐｈのビルトイン自動焦点モジュールを使用することにより維持した。高解像度画像は、横河スピンディスクヘッドおよびＲｏｐｅｒ製のレーザー付きＨＱ２カメラ（４０５ｎｍ  １００ｍＷ  Ｖｏｒｔｒａｎ、４９１ｎｍ  ５０ｍＷ  Ｃｏｂｏｌｔ  Ｃａｌｙｐｓｏ、および５６１ｎｍ  ５０ｍＷ  Ｃｏｂｏｌｔ  Ｊｉｖｅ）および４０×対物レンズ（Ｐｌａｎ  ＮｅｏＦｌｕａｒ、Ｚｅｉｓｓ）を用いて、共焦点モードでとらえた。
【０１３８】
間接免疫蛍光法によるＰＥＳ１検出
ｓｉＲＮＡ媒介枯渇の３日後、細胞は２％ホルムアルデヒドに固定し、ＰＢＳで洗浄し、５％ＢＳＡおよび０．３％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を補充したＰＢＳ中、室温で１時間ブロックした。抗ＰＥＳ１抗体（抗ラット、１対１，０００；Ｅ．Ｋｒｅｍｍｅｒからの好意により）を１％ＢＳＡ、０．３％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を補充したＰＢＳに希釈し、４℃で一晩細胞と一緒にインキュベートした。細胞はＰＢＳで洗浄し、ＰＢＳ、１％ＢＳＡ、０．３％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００中室温で１時間、二次Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ５９４抗ラット抗体（１対１，０００、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）と一緒にインキュベートした。最後に、細胞はＰＢＳで洗浄し、ＤＡＰＩで処置し、上記の通りＺｅｉｓｓ顕微鏡で撮像した。
【０１３９】
画像処理およびｉＮｏ指数
実施例２は、統計的形態計測情報に基づいて、正常な核小体と変化した核小体の集団を区別するための方法論を提示する。先ず、ＦＩＢ−ＧＦＰ画像において正常な核小体形態と変化した核小体形態を区別するように個々の細胞核中で核小体形態を特徴付ける形状およびテクスチャーフィーチャーが導き出された。それぞれのフィーチャーは、そのパラメータを全データベースにわたって最適化してｒタンパク質枯渇細胞とＳＣＲ処置対照細胞において観察されるフィーチャーの分布間で算出されたフィッシャー基準を最大にすることができるように、パラメトリック関数として体系的に定義された。これらのフィーチャーが与えられると、次に我々は、基準集団でのその分布と比べて、ｒタンパク質枯渇細胞の集団でのその統計分布間の違いの定量的分析を実施した。このため、我々はいわゆる差異ベクトルを導入し、このベクトルのそれぞれの成分は特定のフィーチャーと関連しており、所与のｒタンパク質を枯渇させた細胞の集団について観察される分布と細胞（ＳＣＲ処置細胞）の基準集団について観察された分布間の距離を測定した。次に、我々は、核小体崩壊の指数（ｉＮｏ）を差異ベクトルのＬ１標準と定義した。この指数は核小体崩壊の重大度の程度を反映しており、すなわち、この指数はｒタンパク質を核小体構造に対するその影響に従ってランク付けする。さらに、差異ベクトルの主成分分析（ＰＣＡ）を使用して、遺伝子産物が枯渇することにより核小体の形態に影響を及ぼす主要な傾向を抽出し可視化した。ＰＣＡは次元縮退のための線形埋め込みを仮定して、核小体崩壊表現型の教師なしクラスター化を可能にする。コンピュータコードは補足情報セクションに記載されており、要請により利用可能である。
【０１４０】
プレｒＲＮＡプロセシング分析
プレｒＲＮＡ分析では、我々は、ｐ５３を正常に発現している結腸癌細胞株（ＨＣＴ１１６）を使用した（３９）。ノーザンブロット分析は、本質的に（３８）およびｗｗｗ．ＲｉｂｏｓｏｍｅＳｙｎｔｈｅｓｉｓ．ｃｏｍに記載される通りに実施した。手短に言えば、６ウェルプレートにおいて、ＨＣＴ１１６細胞にそれぞれのｒタンパク質をコードする転写物に特異的な１つのｓｉＲＮＡをトランスフェクトし、全ＲＮＡ抽出およびノーザンブロット分析に先立って２日間インキュベートした。使用したプローブは表３に記載されている。２つの独立した実験では２つの別個のｓｉＲＮＡを使用した。「Ｒ」ソフトウェアを使用してヒートマップを作成しクラスター化した。これらのピートマップは、ノックダウン状態でのプレｒＲＮＡレベルそれぞれ対非ターゲティング（スクランブル、ＳＣＲ）対照でのそのレベルの比の対数の可視的表現である。プレｒＲＮＡプロセシング分析で使用される較正セットは、偽処置細胞および非ターゲティングｓｉＲＮＡ（スクランブル、ＳＣＲ）でまたはＵＴＰ１８もしくはＮＯＬ９に特異的なｓｉＲＮＡで処置された細胞からなる（表２および（３８）およびｗｗｗ．ＲｉｂｏｓｏｍｅＳｙｎｔｈｅｓｉｓ．ｃｏｍ参照）。我々のクラスター化分析では、ｒタンパク質ごとに本研究で使用した２つの異なるｓｉＲＮＡを用いて得られたプロセシングデータの平均を取らず、むしろ、データを個別の実験と見なした。大半の場合、任意の特定のｒタンパク質について得られた２つの独立したプロセシングデータセットは高度にクラスター化されており、我々のスクリーンの頑強性を示している。少数の場合（図４において星印で示され、２つのＳＳＵおよび６つのＬＳＵｒタンパク質についてのみ観察される）、ヒートマップは同じクラスに属しておらず、１つの個別のｓｉＲＮＡから別のｓｉＲＮＡへの枯渇効率の固有の変動を反映している。検出されたＲＮＡ種すべてを使用して図４ｃおよび図４ｄに示されるヒートマップをクラスター化したが、単純化するために小（パネルｃ）、または大（パネルｄ）サブユニットの合成に直接関連するもののみを示していることに留意されたい。すべてのＲＮＡ種を用いたクラスターは補足図５、６に示している。２８Ｓ／１８Ｓ  ｒＲＮＡ比はＡｇｉｌｅｎｔバイオ分析器電気泳動図から製造業者の説明書に従って計算した。含まれないノーザンブロットの例は補足図１２に示されている。
【０１４１】
【表３−１】
2019523392.tif 000018
【０１４２】
【表３−２】
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【０１４３】
【表３−３】
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【０１４４】
ｐ５３定常レベル分析
ｐ５３定常分析では、我々はｐ５３を発現している結腸癌細胞株（ＨＣＴ１１６）を使用した（３９）。定量的ウェスタンブロット分析では、ＨＣＴ１１６細胞は、それぞれのｒタンパク質をコードする転写物に特異的な１つのｓｉＲＮＡを用いて独立して３回枯渇させた。使用したトランスフェクションプロトコルはｒＲＮＡプロセシング分析のセクションでの上記のプロトコルに類似していた。全タンパク質抽出では、６ウェルプレート由来の細胞は先ず３００μｌのトリプシンＥＤＴＡ（ＡＴＣＣ）で脱離させ、室温で１０分間、１００ｇでペレット化した。細胞は１ｍｌの冷ＰＢＳで洗浄し、室温で１０分間、１００ｇで再びペレット化した。次に、細胞は３０μｌの溶解バッファー（Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ８．０、２０ｍＭ；ＮＰ４０、０．５％；ＮａＣｌ、１５０ｍＭ；ＥＤＴＡ、１ｍＮ、プロテアーゼ阻害剤−Ｒｏｃｈｅ）に氷上で１５分間溶解させた。次に、溶解した細胞は４℃で１０分間、２０，０００ｇで遠心分離し、上清は細胞片のペレットから回収した。対照として、我々は非ターゲティングスクランブルｓｉＲＮＡおよびＵ８ｓｎｏＲＮＡを標的にするアンチセンスオリゴヌクレオチド（ＩＤＴ）を使用した（表２）。４０μｇの全タンパク質は４〜１２％ポリアクリルアミドゲル（Ｎｏｖｅｘ、Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｂｏｌｔ  Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ  Ｐｌｕｓ）上で分離し、低蛍光ＰＶＤＦ膜（Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ−ＦＬ、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）に製造業者のプロトコルに従って移した。膜は室温で１時間、Ｏｄｙｓｓｅｙブロッキングバッファー（Ｌｉ−Ｃｏｒ）でブロックした。一次抗体（１対４，０００抗βアクチン、Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ、ＳＣ６９８７９；および１対１，０００抗ｐ５３、Ｂｅｔｈｙｌ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ａ３００−２４７Ａ）を０．２％  Ｔｗｅｅｎ−２０（Ｓｉｇｍａ）を補充したＯｄｙｓｓｅｙブロッキングバッファーに添加し、膜は４℃で撹拌しながら一晩インキュベートした。膜は０．１％  Ｔｗｅｅｎ−２０を補充したＴＢＳ（ＴＢＳ−Ｔ）で３回洗浄した。蛍光色素を保持する二次抗体（１対２，０００  ＤｙＬｉｇｈｔ５５０抗マウス、Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、８４５４０；および１対２，０００  ＩＲＤｙｅ６８０抗ウサギ、Ｗｅｓｔｂｕｒｇ、９２６−６８０７１）を、０．１％  ＳＤＳおよび０．２％  Ｔｗｅｅｎ−２０を補充したＯｄｙｓｓｅｙブロッキングバッファーに添加し、膜は室温で撹拌しながら１時間インキュベートした。膜は、Ｃｈｅｍｉｄｏｃ（Ｂｉｏｒａｄ）を用いた蛍光シグナルの撮像前にＴＢＳ−Ｔで３回洗浄した。細胞ｐ５３定常レベルは赤色蛍光シグナル（ｐ５３に対応する）と緑色蛍光シグナル（βアクチンに対応する）の間の比を計算することにより評価した。実験ごとに、ＳＣＲ  ｓｉＲＮＡで処置したＨＣＴ１１６細胞に対応する２つの独立したレーンをゲル上に充填し、これらの２つのレーンからの結果は平均を取ってこの対照条件でのｐ５３のレベルを決定した。次に、すべてのデータは、この基準条件下でのｐ５３定常レベルの変動を確定するために、この平均値に調和させた。含まれないウェスタンブロットの例は補足図１３に示されている。補足図９では、ウェスタンブ���ットは、ゲルをＰＶＤＦ（Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｈｙｂｏｎｄ−Ｐ、ＲＰＮ３０３Ｆ）上に移し、ＨＲＰコンジュゲート二次抗体（Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ）およびＳｕｐｅｒｓｉｇｎａｌ  ＷｅｓｔＰｉｃｏ化学発光ＥＣＬ基質（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で暴露すること以外は、同じプロトコルに従って実施した。抗ｐ２１抗体はＣｅｌｌ  ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ（２９４７Ｓ）から購入した。
【０１４５】
それを枯渇させてもｐ５３レベルに影響を及ぼさなかった４８のｒタンパク質では、残留ｍＲＮＡレベルはＲＴｑＰＣＲにより確立した（補足図８参照）。逆転写はｑＳｃｒｉｐｔ  ｃＤＮＡ  ｓｕｐｅｒｍｉｘ（Ｑｕａｎｔａ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて実施した。ｑＰＣＲは、ＳｔｅｐＯｎｅ  ＰｌｕｓリアルタイムＰＣＲ装置（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）上で特異的なプライマー対（補足表３）およびｐｅｒｆｅｃｔａ  ＳＹＢＲ緑色ｓｕｐｅｒｍｉｘ（Ｑｕａｎｔａ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて実施した。それぞれの反応は３通り実施した。ｍＲＮＡの残留レベルはＧＡＰＤＨの残留レベルに正規化され、非ターゲティングｓｉＲＮＡ対照（ＳＣＲ）で処置された細胞において観察されたものに関して表された。
【０１４６】
[実施例２]
画像処理分析
本実施例では、正常な核小体と変化した核小体の集団を判別する統計的に確証されたツールを提供する低次元フィーチャーベクトルを使用して、核小体から定性的および定量的形態計測情報を抽出する我々の手順を説明する。
【０１４７】
概要
第一に、個々の細胞核小体を位置付けるためにデータベースのそれぞれの画像内で個々の細胞核がどのように分割されているのかを説明する。次に、それぞれ個々の細胞核において核小体形態を特徴付ける形状およびテクスチャーフィーチャーの小セットを導き出すために採用される方法論を提示する。最後に、特定の遺伝子産物について枯渇された細胞の集団におけるこれらのフィーチャーの分布と基準集団のフィーチャーの分布の間で観察される違いの定量分析を提示する。これにより我々は次元縮退技法を使用し、核小体構造に対するその影響に従ってｒタンパク質を層別化しランク付けする。階層化は、所与のｒタンパク質について枯渇された細胞の集団で観察される分布と細胞（ＳＣＲ処置細胞）の基準集団について観察される分布の間で測定される５つの距離（ｄｋ、ｋ≦５）の主成分分析に基づいており、それぞれの分布は特定の形状／テクスチャーフィーチャーに関連している。ランク付けでは、我々は、５つの絶対｜ｄｋ｜値の合計に対応する核小体崩壊の指数、またはｉＮｏを導入する。
【０１４８】
１．細胞核分割化
個々の細胞から細胞核小体を区切る最初のステップとして、細胞核を分割した。それぞれの細胞は単一の核を有する。核小体は特殊化した核内ドメインであり、定義によれば、このドメインはすべて核内に含有される。したがって、高密度で、緻密で、スコア化しやすい核を分割するのは、それぞれ個々の細胞において核小体を含有する細胞体積を区切る手段である。
【０１４９】
核はＤＮＡ染色ＤＡＰＩで染色される。核輪郭は２ステップでＤＡＰＩチャネル（青色）から抽出される。第一に、相対的に高強度の大きな繋がった成分は
独自の適応的閾値処理法を使用して同定される。第二に、著しい凹面を示す繋がった成分は、おそらく凝集した核に対応することを示しているが、拒絶される（補足図１４）。
【０１５０】
ステップ１は、強度閾値よりも上にある画素の十分に大きな繋がった成分に対応する核が選択されるように、ＤＡＰＩ画像の段階的閾値処理で構成される。試料調製（細胞播種、トランスフェクション手順、ＤＡＰＩ染色、細胞固定化、等）のおよび画像取得（照明、露出時間、等）のすべてのパラメータは完全に標準化され自動化されているが、個々の核のＤＡＰＩシグナル強度の固有の変動を我々は観察した。補足図１５はパネル（ａ）および（ｂ）においてそのような変動性の２つの極端な場合を比較する。これに取り組むため、我々は、ヒト細胞核のサイズ範囲に関する先行知識を活用する一方で、一連のＫ増加閾値を考慮することにより進行的に分割化を精密にしていく階層的閾値処理戦略を採用する。詳細な核分割化疑似コードは下に提供されている。
【０１５１】
入力
Ｉ：画像
λ１＜λ２＜…＜λｋ＜…＜λＫ＜：強度に関する閾値
Ｓ：好適な繋がった成分についての最小区域閾値
Ｓｍａｘ：最大核区域
∂Ｉ：画像Ｉの境界（最初と最後の横列と縦列）
【０１５２】
出力
Ｃ：分割された核に関連する繋がった成分のセット
Ｉ１←Ｉ＞λ１
Ｄ←繋がった＿成分（Ｉ１）
Ｃ１←｛ｄ∈Ｄ｜区域（ｄ）＞Ｓ｝
Ｆｏｒ  ｋ＝２…Ｋ
Ｉｋ←Ｉ＞λｋ
Ｄ←繋がった＿成分（Ｉｋ）
Ｃｋ←φ
Ｆｏｒ  ａｌｌ  ｃ∈Ｃｋ−１
Ｌ（ｃ）＝｛ｄ∈Ｄ｜ｄ⊂ｃ｝  ％ｃにおける繋がった成分
Ｌｓ（ｃ）＝｛ｄ∈Ｌ（ｃ）｜区域（ｄ）＞Ｓ｝％Ｓよりも大きいＬ（ｃ）における成分
【０１５３】
【数４】
2019523392.tif 000021
％強度に重要な増加のある１つの大きな繋がった成分
％ＯＲ少なくとも２つの大きな繋がった成分
Ｃｋ←Ｃｋ∪Ｌｓ（ｃ）
Ｅｌｓｅ％ｋｅｅｐ  ｃ
Ｃｋ←Ｃｋ∪｛ｃ｝
Ｅｎｄ  ｉｆ
Ｅｎｄ  ｆｏｒ  ａｌｌ
Ｅｎｄ  ｆｏｒ
％大きすぎるまたは画像境界に触れている繋がった成分は取り除く
Ｃ←｛ｃ∈Ｃｋ｜（区域（ｃ）＜Ｓｍａｘ）∧ｉｓ＿ｅｍｐｔｙ（ｃ∩∂Ｉ）｝
【０１５４】
画像処理コードはＭａｔＬａｂにプログラムされた。リボソームサブユニットの３Ｄモデルは、Ｐｙｍｏｌ  ｖ１．５．０．３、ＩｍａｇｅＪ（ｈｔｔｐ：／／ｉｍａｇｅｊ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｊ／）を用いて作成した顕微鏡図版用の画像、およびＰｒｉｓｍを用いて作成し分析したグラフを用いて作成した。
【０１５５】
要するに、λｋにｋｔｈ強度閾値を表示させ、０＜ｋ≦Ｋ、およびλｋ＜λｋ＋１、∀ｋ＜Ｋである。Ｉｋに閾値処理された２値画像を表示させ、すなわち、Ｉ（ｘ）＞λｋの場合Ｉｋ（ｘ）＝１、他では０、ｘ∈［１、Ｈ］×［１、Ｗ］、ＨおよびＷはそれぞれ画像の高さと幅を表示している。我々は、ステップｋで十分に大きな（サイズ閾値Ｓと比べて）繋がった成分のセットを表示するＣｋも導入する。初期化では、Ｃ１はＳよりも大きな画像Ｉ１中の繋がった成分を含む。次に、ステップｋ＋１での繋がった成分のセットＣｋ＋１は、以下の通り、ＣｋおよびＩｋ＋１から反復的に導き出される。Ｃｋ＋１は空集合に初期化される。繋がった成分ｃ∈Ｃｋごとに、我々はｃに含まれるＩｋ＋１での繋がった成分のリストＬ（ｃ）を考慮する。Ｌ（ｃ）がＳよりも大きなサイズを有する少なくとも２つの繋がった成分を含む場合、それらの繋がった成分はＣｋ＋１に加えられる。リストＬ（ｃ）がＳよりも大きな単一の繋がった成分ｃ’を含む場合、ｃとｃ’の間の平均強度の増加がそれぞれ１５％よりも大きいまたは小さいかどうかに応じて、ｃ’またはｃのいずれかがＣｋ＋１に加えられる。平均強度の増加が高いほどより正確な分割化を明らかにしており、１５％の値は経験上設定されたことに留意されたい。リストＬ（ｃ）がＳよりも大きないかなる成分も含まない場合、ｃはＣｋ＋１に加えられる。閾値Ｓｍａｘよりも小さなＣｋ中の繋がった成分は核を適度に分割していると予想される。実際に、閾値ＳおよびＳｍａｘは、ヒト細胞核のサイズ範囲の大部分を含むように、５００および５０００画素に設定されている。□ｋに関しては、我々は、２５０〜４５０までは２０ステップずつ、５００から１３００までは１００ステップずつ増加する一連の閾値を考慮した。得られた核分割化は、その範囲および粒度が十分である限り、使用された実際の順序とは比較的無関係であると思われた。
【０１５６】
第２のステップとして、我々は、おそらくＣＫ中の複数の核に対応している繋がった成分の拒絶を考慮する。このため、それぞれの繋がった成分の凸面を分析した（補足図１４）。具体的には、いくつかの線を繋がった成分の２つの主軸に平行に引く。繋がった成分が凸面である場合、すべての平行線に対して１または０セグメントのいずれかが輪郭の内部にある。これとは対照的に、繋がった成分が凝集した核を表す場合、その成分は強い凸面を示し輪郭の内部にある２つまたはそれよりも多いセグメントを含む平行線が存在する。１つの平行線が十分に長い外側のセグメントにより分離されている２つの十分に長い内側のセグメントを支持している場合、その繋がった成分は拒絶される。補足図１４では、外側と内側のセグメントの長さはそれぞれδｏｕｔ、δ１ｉｎ、およびδ２ｉｎに相当する。それらの長さは成分を拒絶するためには５画素の閾値よりも大きくなければならない。閾値は、手動で作成されたグラウンドトゥルースと比べて、単一の核の大部分を保持しつつ、複数の核の数を徹底的に低減するために経験上設定されている。Ｃは、非拒絶成分をすべておよびこのすべてのみを含むＣＫのサブセットを表示する。
【０１５７】
Ｃにおいて分割されている核の中で、静止期の細胞の核のみをさらに分析することに実際興味を持った。静止期の細胞の核を同定するため、ＤＡＰＩ画像および分割された成分中のＦＩＢ−ＧＦＰ（緑色チャネル）の分布を考慮する。細胞は、そのＤＡＰＩが十分に高密度で広がっている場合（核中の画素の少なくとも５０％が０．４７よりも大きな正規化されたＤＡＰＩ値を有し、ＤＡＰＩ画像がその最大値により正規化されている場合）、およびＦＩＢ−ＧＦＰが十分に局在化している場合（核中の画素の少なくとも５０％が０．５３よりも低い正規化されたＦＩＢ−ＧＦＰ値を有し、ＦＩＢ−ＧＦＰ画像がその最大値により正規化されている場合）には、静止期にあると見なされる。閾値は画像の手動グラウンドトゥルースアノテーションに基づいて設定した。これらの閾値は極めて厳密であり、その使用によりわずかな割合の静止期の細胞が失われるが、さらなる分析のために静止期の細胞のみを考慮する我々の狙いは首尾よく達成される。
【０１５８】
最後に、プロセシング後ステップとして、それぞれの分割された領域に含有される細胞のすべての核小体を確かめるため、我々は基本の数理形態学を適用してそれぞれの繋がった領域を閉じ拡大する。具体的には、１３×１３構造化要素による拡張の後には３×３エロージョンが続いた。
【０１５９】
補足図１５に描かれているように、我々が提唱する方法は高度な（パネルａ）でも弱い（パネルｂ）コントラストのＤＡＰＩ画像でも核を効果的に分割する。この図では、静止期核を分割する繋がった成分のセットは赤色で描かれている。非常に小さな偽陽性率と併せて、適切な検出率が達成された。この結果は我々の要求によく適している。なぜならば、我々はすべての核を検出することではなく、むしろそれぞれのＦＩＢ−ＧＦＰ画像から十分な数の代表的核小体パターン試料を収集することに興味があるからである。
【０１６０】
２．核小体画像フィーチャー
このセクションでは、ＦＩＢ−ＧＦＰ画像において正常な核小体形態と変化した核小体形態を判別すると我々が考える画像フィーチャーを導入する。分割された核ごとに、そのＦＩＢ−ＧＦＰシグナルは９９．９％のパーセンタイルにより正規化され、このセクションで提示されるフィーチャーすべてがこの正規化されたシグナルで算出される。
【０１６１】
セクション２．１は、独自のパラメータ化された画像フィーチャーをいくつか導入して、代表的な核小体のセットにおいて観察されるもっとも重大な視覚的違いを測定する。セクション２．２は、ｒタンパク質枯渇細胞とＳＣＲ処置対照細胞におけるフィーチャーの分布間の判別を最大にするように、それらのフィーチャーのパラメータを最適化する。
【０１６２】
２．１  判別核小体形態計測フィーチャー
細胞核内での核小体塊の分布は重要な確率的可変性を受けやすいとすぐに思われる。このことは補足図１６によく示されており、対照細胞から（パネルａ）および目的の特定のタンパク質が枯渇した細胞から（パネルｂ、ｃ）計数的に切除された核小体を示している。これらでは、核中心にまたは主軸に関する核小体塊の空間的構成は、所与のパネルの画像を横断してかなり変動し、それぞれのパネル由来の画像を区別するのに役立たない。したがって、核小体トポロジーがその成分の絶対的なおよび正規化された位置の点からどのように定義されるかを測定すると考えられるいかなるフィーチャーも我々の問題とは関連性はない。例えば、正規化された画像中のそのサイズおよび位置により定義される小パッチ上で観察される強度および勾配の点から物体の外見を定義する一般的な物体認識アプローチは役に立たない（１２〜１４）。輸送ベースのフィーチャーに関しては同じことが当てはまる（１５〜１７）。なぜならば、これらのフィーチャーは、塊の基準分布と比べて差異を測定するが、ここではこれは入手可能ではないからである。
【０１６３】
したがって、我々は、核内の核小体の実際の位置とは無関係な、それでも核小体塊の空間的広がりを反映するアドホックフィーチャーのセットの定義を考慮する。それらのフィーチャーは手動で選択されたセットの画像試料に基づいて定義されており、典型的な正常および異常核小体パターンを描いている（補足図１６参照）。代表的な試料の手動による抽出は、当面の問題に関連のあるフィーチャーを導き出す、すなわち、確実に調査されたフィーチャーのセットが核小体外見の多様性を判別することができるようにするのに必要とされる。しかし、それらの手動で注釈を付けた試料に我々の調査されたフィーチャーが（過剰）適合するのを回避するため、このセクションの残りの部分では、それぞれのフィーチャーは、確実にフィーチャーが正常な細胞画像と遺伝子枯渇細胞画像を区別できるようにするためにそのパラメータを全データベースにわたって最適化できるように、パラメトリック関数として体系的に定義される（セクション２．２参照）。
【０１６４】
パラメトリックフィーチャーの我々のセットを導き出すため、補足図１６は基準対照細胞でのおよび目的のタンパク質が枯渇された細胞での外見多様性を表している手動で選択された細胞核小体画像のセットを提示している。パネルｃ（ｒｅｓｐ．ｂ）は、目的の特定のタンパク質が枯渇された細胞由来の核小体（ｒｅｓｐ．非常に高いレベルの崩壊がある核小体）は大きく不規則であることが多い形状にあまねく広がっていることを示しており、この形状は対照細胞で観察されるかなり円形の点分布（パネルａ）とよい対照を成す。
【０１６５】
さらに、補足図１７に描かれている３Ｄグラフは、正常な核小体のＦＩＢ−ＧＦＰ強度の分布のほうが目的のタンパク質が枯渇された細胞の核小体におけるよりも滑らかであり尖っていないことを明らかにしている。それらの所見が動機になって、我々は、（ｉ）支持区域、（ｉｉ）形状規則性、および（ｉｉｉ）核小体ＧＦＰシグナルの強度の変動、すなわち、テクスチャーを特徴付けるフィーチャーを使用した。
【０１６６】
実際に、核ごとに、我々が提唱するフィーチャーすべてが、核小体塊をばらばらになった繋がった成分のセットに分割することに関して定義される。この分割化はＦＩＢ−ＧＦＰ画像閾値処理により得られ、これは画素がその強度が閾値よりも上にある場合には核小体の一部と見なされることを意味する。フィーチャーごとに、分割化閾値パラメータは、ＳＣＲ処置対照細胞についてと目的のタンパク質が枯渇されている細胞についてのフィーチャーの分布間の分離を最大にするように、次のセクションで提唱される方法に従って自動的に定義される。したがって、分割化閾値はフィーチャーパラメータであり、１つのフィーチャーともう一方のフィーチャーで変わることがある。他のフィーチャーパラメータは同様に最適化され、したがって、次のセクションに記載されるように、自動的に定義される。
【０１６７】
支持区域：
核小体の支持の区域を特徴付けるため、我々は先ずいわゆる区域分割化閾値τａを用いた閾値処理後に得られる繋がった成分のサイズおよび数を考慮する。具体的には、
−  ＡＡｌｃｃは閾値処理された画像での最大の繋がった成分の区域を測定する、および
−  ＡＮｃｃは核中の繋がった成分の数を表示する。
【０１６８】
さらに、核小体塊を区切る最前線の沿った強度勾配の鋭敏度を特徴付けるため、我々は、それぞれ２つの閾値τｉ１とτｉ２で、τｉ１＞τｉ２の上にある核小体画素の比を測定する鋭敏度指数ＡＳを導入した。
【０１６９】
形状およびテクスチャー：
核小体の形状およびテクスチャーを特徴付けるため、分割化後に得られる最大の繋がった成分のみを考慮する。なぜならば、小サイズの成分は当然のことであるが単一の円形ピークまで縮小し、形状およびテクスチャーに関して最大の繋がった成分をさらに代表的にする傾向があるからである。
【０１７０】
形状：
核小体形状規則性を定量化するため、我々は形状分割化閾値τｓを採用し、分割された画像での最大の繋がった成分の形状を特徴付けるために３つの別個の形状因子を考慮する。それぞれの因子はそのサイズとは無関係に形状を記載する。
【０１７１】
この３つの因子は補足図１８に図示されており、
−  伸長形状因子ＳＥｌｃｃ、これはその主軸の周囲の繋がった成分ｃの２つの二次モーメントλ１とλ２の比の平方根として定義され、
−  楕円規則性因子ＳＲｌｃｃ、これは繋がった成分の面積と繋がった成分の外側にあり、繋がった成分と同じ中心、同じ主軸、および同じ伸長を有する最小楕円の面積の間の比として定義され、
−  凹面因子ＳＣｌｃｃ、これは繋がった成分の面積とその凸閉包の面積の間の比として定義される
に対応する。
【０１７２】
テクスチャー：
核小体テクスチャーパターンを特徴付けるため、局所的バイナリーパターン（１８）、領域共分散（１９）、またはグレーレベルアウラマトリックス（２０）などのいくつかの都合の良いテクスチャー記述語をうまくいかずに調べた（データは示さず）後、我々は、テクスチャー分割化閾値τｉに基づいて分割された最大の繋がった成分内部の強度の分布を反映するいくつかの独自のスカラー測定基準を導入した。それらの測定基準は：
−  テクスチャーヒストグラム低テール指数ＴＨｌｃｃ、これは、３×３画素構造化要素２１による繋がった成分のエロージョン内部に位置するのと同時に、ある強度閾値αよりも下にある画素のパーセンテージを測定する。エロージョンは形状の境界上にある低強度画素を取り除くために形状に適用される；
−  テクスチャーアップランド指数ＴＵｌｃｃ、これは、繋がった成分内部にあるのと同時に、閾値βより上にある繋がった領域の数として定義され；
−  テクスチャーピーク指数ＴＰｌｃｃ、これは繋がった成分中の極大値の数として定義され；
−  テクスチャーバレー指数ＴＶｌｃｃ、これは繋がった成分中の極小値の数として定義され；
−  テクスチャー極小値ＴＬＭｌｃｃ、これは繋がった成分中の最小の極小値の強度として定義される。
【０１７３】
表６および補足図１９で観察することが可能なように、それらのスカラーフィーチャーは、補足図１６に描かれている代表的画像に対して適度に別個の値を有する。補足図１９は、極小値（赤色点）の数は一般に、対照核小体（パネルａ）よりも形態学的に崩壊された核小体（パネルｂおよびｃ）のほうが重要であることを図示している。したがって、我々は、極小値は正常な核小体と変化した核小体を区別するのに適切であると予想している（下参照）。
【０１７４】
【表４】
2019523392.tif 000022
【０１７５】
２．２．フィーチャーパラメータの教師あり最適化
本セクションは、上記フィーチャーの定義に関与しているパラメータが、正常な核小体と変化した核小体をもっとも良く判別するためにどのように選択されるのかを説明する。
【０１７６】
一般的な線形判別分析（ＬＤＡ）により導入されるフィッシャー基準に続いて（２２）、我々は、判別したいと考えているフィーチャー分布間の分離を最大にするようにそれらのパラメータを選択することを提唱する。
【０１７７】
要するに、フィッシャー最適化基準は、フィーチャーが２つのクラスのデータを分別することが可能かどうかを評価する問題を考慮して、それぞれのクラス由来のデータ試料の代表的なセットについてのフィーチャー値を知る。この問題に答える自然なステップは、それぞれのクラスからのフィーチャー値の平均（または平均値）を調べることで構成される。直感的に、平均値が近くなるに従って、フィーチャーは判別しなくなる。これは、平均値間に大きな距離があれば、クラス間の間隙は対応するフィーチャースペースで大きいと予測されることを暗示するからである。しかし、この間隙についての結論を引き出す前に、我々は、平均値間の所与の距離が有意であるかどうかを決定することが可能であるように、そのそれぞれの平均値の周辺でのフィーチャーの拡散を考慮に入れる必要もある。この推論に基づいて、フィッシャーは、２つのクラスの所見に関連する分布間の分離を、平均間の二乗距離対それぞれのクラス内の分散の合計の比と定義している（２２）。我々は同じ基準を採用して我々のフィーチャーのパラメータを最適化した。言い換えると、判別フィーチャーは、特定のクラスに割り当てられたデータの分散（の合計）と比べて測定して、クラス平均値がよく分離されているフィーチャーである。
【０１７８】
形式的に、パラメータスペースＰにあるベクトルｐによりパラメータ化されるフィーチャーを考慮すると、我々は、フィーチャー分布は、我々がもっとも良く判別したいと考えている２つのクラスの所見について、ｐの関数として知られている。次に、フィッシャー最適化基準は、クラス分布間の分離を最大にするベクトルｐ＊は：
【０１７９】
【数５】
2019523392.tif 000023
として定義され、
μ１（ｐ）、μ２（ｐ）およびσ１（ｐ）、σ２（ｐ）それぞれが、２つのクラスについてのパラメータｐを用いて測定すると、目的のフィーチャーの分布の平均値および標準偏差を表示していることを我々に知らせる。このフィッシャー基準は画像ベースの形態計測（２４）において広く使用されているｔ検定のウェルチ適応（２３）に等しい。
【０１８０】
それは判別する２つのクラスについて観察されるフィーチャーの分布に頼っているので、我々の提唱するパラメータ最適化法は監督されなければならない。我々の場合では、我々は実験準備の設計により、どの細胞画像が対照および（遺伝子枯渇）試験細胞に対応しているか分かっている。したがって、我々は互いに判別するべき対になった分布を容易に同定することが可能である。実際、我々は、ＳＣＲ処置対照細胞からと目的のタンパク質が枯渇されている細胞から抽出されるそれぞれの対になった分布間で測定される分離の合計を最大にするようにパラメータを選択した。
【０１８１】
補足図２０は、３つの異なるフィーチャーについてのフィッシャー最適化基準をその関連するパラメータの関数として提示している。我々は、パラメータ選択がフィーチャーの判別力に著しい影響を及ぼすことを観察している。
【０１８２】
我々の方法論が、セクション３に提示されているデータマイニングプロセスの結果に対する監督の影響を制限するように定義されてきたことをここで記述するだけの価値がある。具体的には、監督は、得られたフィーチャーが次のセクションでどのように組み合わされるかに関与することなく、厳密に教師なしのアプローチに基づいて、個々のフィーチャーパラメータの独立した選択に計画的に制限される。さらに、同じ培養物から抽出される試料の分布を区別するためにフィーチャーパラメータを定義することにより、我々は、基準クラスと比べて異なる種類の偏差を含有するクラスの利用により誘導されるフィーチャーの選択を偏らせることを回避する。
【０１８３】
３．核小体フィーチャー分布分析
本セクションは、ＳＣＲ処置対照細胞において観察される核小体のフィーチャーの分布が目的のタンパク質が枯渇されている細胞の核小体のフィーチャーとどのように比較するのかを分析する。主目標として、我々は、関連する核小体のフィーチャーの分布の分析に基づいて、特定のタンパク質の枯渇と関連する核小体崩壊の程度を定量化することを目標にした。したがって、我々は差異ベクトルを導入した。このベクトルのそれぞれの成分は特定のフィーチャーに関連しており、基準分布と目的の遺伝子枯渇分布の間の分離を測定する。次に、我々は、核小体崩壊の指数、または、ｉＮｏを差異ベクトルのＬ１標準であると定義した。これにより我々は核小体崩壊の重大度をランク付けすることが可能になった。
【０１８４】
二次および補完的結果として、我々は、次元縮退のための線形埋め込みを仮定して、差異ベクトルのセット間の主要成分を分析した。それにより、遺伝子枯渇を受けやすい場合、核小体の形態に影響を及ぼす主な傾向を抽出し可視化することが可能になる。このおかげで、我々は、教師なしの形態でクラス中の核小体崩壊表現型を再編成することができる。
【０１８５】
３．１．差異ベースの分布特徴付け
差異ベクトルは、核小体のセットに関連しているフィーチャー分布がその対応する基準分布とどのように異なっているのかを要約するように定義される。
【０１８６】
形式的には、正常な基準細胞からおよびｋｔｈ遺伝子枯渇プロセスを、すなわち、ｋｔｈサイレンサーを受けやすかった細胞からそれぞれ得られるＳｒおよびＳｋに、２つのセットの核小体画像を表示させる。所与の画像フィーチャーｆでは、我々は、セットＳｋと基準Ｓｒ間の差異ｄｋを、それぞれのセット上の平均フィーチャー値の差対それらの分散の和の比であると定義する。定義は当然なことにＮフィーチャーｆｉ、０＜ｉ≦Ｎ、にまで拡張し、セットＳｋに関連している差異ベクトルｄｋのｉｔｈ成分は
【０１８７】
【数６】
2019523392.tif 000024
と書け、μｋ（ｉ）、μｒ（ｉ）およびσｋ（ｉ）、σｒ（ｉ）はそれぞれセットＳｋおよびＳｒにわたるｉｔｈフィーチャーの平均値および標準偏差を表示している。
【０１８８】
３．２．差異ベクトルのＬ１標準
目的の特定のタンパク質の枯渇に関連する崩壊レベルを定量化するため、我々は、核小体崩壊の指数、または、ｉＮｏを、目的のその所与のタンパク質についての枯渇された細胞から得られる核小体画像のセットにわたって算出された差異ベクトルのＬ１標準として定義した（図１ｃ）。
【０１８９】
Ｓｋにサイレンサーｋを用いた処置により得られる核小体のセットを表示させ、Ｎをセクション２．１において定義される１１のフィーチャーにすると、核小体崩壊指数Δｋは：
【０１９０】
【数７】
2019523392.tif 000025
として測定される。
【０１９１】
３．３．差異ベクトルの主成分分析
主成分分析（ＰＣＡ）は次元縮退のための教師なし方法である。ＰＣＡを使用して、我々の研究で観察されるもっとも重要な表現型クラスを可視化する。ＰＣＡは最大の分散を有するデータ中の方向を捜し求め、続いてデータをそれに投影する。そのようなアプローチに続いて、我々はもっと低い次元のデータ表示を得て、これは「騒々しい」推定では意味の少ない方向の一部を取り除く。
【０１９２】
目的の特定のタンパク質の枯渇に関連する核小体崩壊をスコア化することに関心があるので、我々は特定のサイレンサーで枯渇された細胞中の核小体に関連する平均的傾向をとらえる差異ベクトルにＰＣＡを適用し、個々の核小体フィーチャーベクトルには適用しなかった。
【０１９３】
主成分に関連する固有ベクトルの解釈を促進するため、我々は、最大のフィッシャースコアを有する、すなわち、正常な核小体と変化した核小体をもっとも良く判別する５つのフィーチャーのみを考慮する。それらのフィーチャーは補足表７の最初の縦列に収載されている。
【０１９４】
【表５】
2019523392.tif 000026
【０１９５】
図１ｂは、２つのもっとも重大なＰＣＡ成分上にそれぞれの差異ベクトルを投影することにより得られる２Ｄポイントを描くＰＣＡ散布図を提示している。ＰＣＡ分析が、異なるレベルの崩壊および表現型クラスに対応して、グラウンドトゥルースクラスターを分離する提唱されるフィーチャーの線形組合せを見つけることに成功していることを我々は観察した。崩壊の性質が散布図における位置に応じて変化することを我々は実際、視覚的に観察する。
【０１９６】
補足表７は、最初の２つの主成分、すなわち、投影された差異ベクトルの最大可変性の２つの方向を提示している。この表は崩壊プロセスでの主要傾向を明らかにしている。
【０１９７】
第１のベクトルでの成分の兆候から、支配的な崩壊プロセスが核小体の区域（ＡＡｌｃｃ）を増加させ、その楕円規則性（ＳＲｌｃｃ）を低減することを我々は知った。崩壊プロセスは、分割された核小体での低強度画素の数（ＴＨｌｃｃ）、ならびに深さ（ＴＬＭｌｃｃ）および極小値の数（ＴＶｌｃｃ）も増加させ、これは核小体拡散の散在性を反映している。
【０１９８】
第２のベクトルは、楕円規則性（ＳＲｌｃｃ）およびヒストグラム低テール指数（ＴＨｌｃｃ）を除いて、第１のベクトルにより誘導される傾向と比べて反対の傾向を誘導する。したがって、単一ベクトルのみから生じると考えられるものと比べて、プラスの第２のＰＣＡ係数は楕円規則性の減少を助長する傾向があり、マイナスの第２のＰＣＡ係数はその減少を軽減する。これは、マイナスの第２のＰＣＲ係数の場合、核小体塊のより規則的で円形の形状により図１ｂにおいて反映されている。これとは対照的に、プラスの第２のＰＣＡ係数はさらに重度の崩壊に対応しており、第２のＰＣＡ成分の非存在下での類似するサイズの核小体について観察される形状よりも規則性のない形状を有する。
【０１９９】
ＲＮＡポリメラーゼＩ（Ｐｏｌ  Ｉ）を阻害すると、「核小体分離」または「核小体キャップ」と呼ばれる非常に特異的な核小体形態変化が生じることは文献で確立している（２５）。そのようなキャップは、例えば、細胞が低用量のアクチノマイシンＤで処置された場合に、または我々の実験準備で、Ｐｏｌ  Ｉ転写因子ＴＩＦ１Ａが枯渇された細胞において観察される（図１ｂ、キャップは小さな明るい点として見られる）。
【０２００】
ＰＣＡ分析が、別個の核小体崩壊表現型を教師なしの形態で分類する強力な方法である例証として、ＴＩＦ１Ａが枯渇された細胞の核小体は、文献（２５）と一致して、その他の対照または試験細胞との比較により著しく異なる核小体崩壊表現型を有し、グラフの上左隅に全体が孤立しマイナスの第１のＰＣＡ成分値により特徴付けられる２つのマゼンタ色の三角形に対応しており、この２つは、他の試験遺伝子について枯渇されている細胞に対応する他の大半のマゼンタ色の三角形とは対照的である。
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【０２０１】
[実施例３]
核小体構造に対するｒタンパク質枯渇の効果
緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）に融合された核小体メチルトランスフェラーゼフィブリラリン（ＦＢＬ）を安定的に産生しているヒト細胞に適切な転写物を標的にするｓｉＲＮＡをトランスフェクトし、３日間インキュベートし、蛍光顕微鏡により撮像した（方法参照）。それぞれのｒタンパク質は３つの実験で枯渇され、異なるｓｉＲＮＡがそれぞれの実験で使用された。全スクリーンは２通り行った。非ターゲティングｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）、偽処置細胞（ＭＯＣＫ）、および較正セットが含まれた（方法および補足図１参照）。較正セットは、その枯渇により中程度から重度までの核小体崩壊、核小体「キャップ」の形成（下参照）、または蛍光強度の低減（補足図１）をもたらすタンパク質からなっていた。
【０２０２】
核小体形態欠損を定性的にも定量的にも特徴付けるため、我々は特定の画像処理アルゴリズムを開発した（実施例２参照）。手短に言えば、我々は先ず、核染色（ＤＡＰＩシグナル）の形状およびサイズ一貫性適応的閾値処理に基づいて観察される核を分割した。次に、それぞれの核集団内で、ＧＦＰシグナル閾値処理および数学的形態（実施例１参照）を適用して、核小体を繋がった成分に分割した。ｒタンパク質を枯渇させた細胞の核小体とＳＣＲ処置対照細胞の核小体の判別を最適化するため、それぞれの核小体の最大の繋がった成分（ＬＣＣ）から５つの形状およびテクスチャーフィーチャーを抽出した。これらの５つのフィーチャーは、もっとも判別的なフィーチャーとして１１のセットから選択したが、区域、楕円規則性、最適化強度閾値より下の画素のパーセンテージ、最小強度、および極小値の数であった（方法参照）。５つのフィーチャーごとに、ｒタンパク質を枯渇させた細胞と対照細胞のフィーチャー分布間の統計的に有意な距離に応じたｄｋ値が算出された。したがって、それぞれの細胞集団は５つのｄｋ値で特徴付けられた。主成分分析（ＰＣＡ）を使用して、これら５つの次元を２つまで低減し、それぞれの点が１つのｓｉＲＮＡで処置された細胞集団に対応する散布図（図１ｂ）でのデータの容易な可視化が可能になった。
【０２０３】
ＰＣＡは、それを枯渇させると類似の核小体形態的表現型（図１ｂ）をもたらすタンパク質の群を明らかにした。４つの主要群が現れた。最大の群は、ＳＣＲ対照（赤色点として示される）を含有する灰色の楕円により示されるが、それを枯渇させても核小体構造に著しい影響を及ぼさないｒタンパク質を含む。重要なことに、ｒタンパク質の大部分、すなわち、ＳＳＵタンパク質のほぼすべて（緑色で示される）およびＬＳＵタンパク質の大まかに３分の２（マゼンタ色で）はこの群中にある。第２の群は、ＳＣＲ対照の真下であるが、それを枯渇させても核小体構造を変えないが蛍光強度を低減させたタンパク質を含む（例えば、ＧＦＰまたはＦＢＬに対してｓｉＲＮＡで処置した対照細胞、補足図１も参照）。ＲＮＡ  Ｐｏｌ  Ｉ転写因子ＴＩＦ１Ａを枯渇させた細胞は、ＲＮＡ  Ｐｏｌ  Ｉ阻害の既知の効果（１４）と一致して、特有の「核小体キャップ」を形成し、グラフの上左部分に孤立しているように思われた。４番目の群は、それを枯渇させると、核小体構造に極めて重大な影響を及ぼすことが分かった少数のｒタンパク質を含み、注目すべきことに、これらのタンパク質はほとんどＬＳＵタンパク質のみである。このクラスターはグラフの右の部分にテールを形成する。正常な核小体構造へのこれら主要な寄与体を枯渇させた細胞では、核小体は「ほどけたビーズのネックレス」として検出された（図１ｂ）。我々の自動化された分類は手動の分類で評価し、極めて頑強であることが見出された（補足図２）。
【０２０４】
その非存在により引き起こされる核小体崩壊の重大度に従ってｒタンパク質を層別化するため、我々は、核小体崩壊の指数（ｉＮｏ）を５つのｄｋ距離の絶対値の合計と定義した（方法参照）。ｒタンパク質ごとに、平均ｉＮｏを、３つの異なったｓｉＲＮＡを使用して得られる値に基づいて、計算しプロットした。得られたグラフでは、ｒタンパク質は、核小体構造に対する増加していく影響の順に上から下へと収載している（図１ｃ）。ＰＣＡから結論付けられるように、大半のｒタンパク質の枯渇は核小体構造に対して全く有意な影響を及ぼさないように思われ（ｉＮｏ＜０．０５）、その枯渇が最大の影響を及ぼすタンパク質はＬＳＵに属する（マゼンタ色）。予想外に、ｒタンパク質ｕＬ５（以前はＲＰＬ１１、（２４））およびｕＬ１８（以前はＲＰＬ５）は核小体構造完全性の維持に対するもっとも強力な寄与体の一つと思われる（図１ｃ）。これらは正確には、５Ｓ  ｒＲＮＡと共に、小リボヌクレオタンパク質複合体、５Ｓ  ＲＮＰを形成するタンパク質であり、この複合体はＨＤＭ２トラップとして機能し、ｐ５３依存性抗腫瘍核小体サーベイランスとして知られる調節性回路におけるｐ５３の定常レベルを制御する（２５、２６）。手短に言えば、ストレスのない細胞では、ｐ５３はＨｄｍ２媒介ユビキチン化によるプロテアソーム分解のために構成的に標的にされている。リボソーム生合成機能障害などの、核小体ストレスの事象では、非集合リボソーム成分が蓄積する。これらは５Ｓ  ＲＮＰを含み、５Ｓ  ＲＮＰはＨｄｍ２と相互作用して、Ｈｄｍ２をｐ５３から隔離する。その結果、ｐ５３は安定化されて細胞周期停止および細胞死を誘導する（９）。成熟６０Ｓサブユニットでは、５Ｓ  ＲＮＰは、後期集合構造体である中央隆起部（ＣＰ）を構成する（下参照）。
【０２０５】
リボソームサブユニット集合は、新生ｒＲＮＡへのｒタンパク質の進行性の結合およびリボソームランドマークの段階的な形成を伴う逐次プロセスである（２３、２７〜３１）。核小体構造にとって重要であるｒタンパク質は成熟リボソームサブユニット上の特定の区域に位置するのだろうかと我々は考えた。そのｉＮｏ値に従ったｒタンパク質の色分けにより、ヒトリボソーム３２の結晶構造（図２ａ）に基づく３Ｄモデル上では、核小体構造維持へのもっとも強力な寄与体がＬＳＵに属しており、核小体構造上に無作為に分布しておらず、むしろ、この寄与体はＣＰ、Ｌ１ストーク、およびＬ１ストークの直ぐ下の領域に対応する区域のサブユニット境界に優先的に位置していることが明らかになった（図２ａ）。これらのすべては後期形成構造体である（下参照）。
【０２０６】
核小体は、薬物処置またはウイルス感染などの細胞ストレスに対して重大な形態変化を通じて応答することができる高度に動的な構造体である（２０）。しかし、静止期では、核小体は極めて安定である。核小体は細胞分裂の開始時には解体され、このプロセスの終了時には再構成される（１４）。我々の核小体スクリーンでは、細胞は、核小体変化が容易に検出可能になるには少なくとも２周期の核小体分解／核小体生成を経なければならないと我々は推論したので、細胞はｒタンパク質枯渇の３日後に撮像された。この仮定は、我々が核小体形態欠損の外観の時間経過を確立したときに確かめられた（補足図３）。１３の代表的ｒタンパク質に焦点を合わせ、３日間の枯渇期間にわたり２４時間間隔で変化をモニターして、我々は、ｉＮｏ値の増加と並行して核小体崩壊が着実に増える（補足図３ｂ）ことを実際に見出した。核小体崩壊は７２時間の枯渇後に初めて明らかになった（補足図３ａ）。
【０２０７】
羊膜生物の細胞の核小体は３つの核小体サブコンパートメントを有する（１２、１３、３３）。我々の独自のスクリーンでは、密集した原線維成分（ＤＦＣ）マーカーである、ＦＢＬを使用して核小体形態を評価した。我々の結論を広げるため、ｒタンパク質枯渇に起因する核小体構造欠損が、異なる核小体サブコンパートメントのマーカーを用いて等しく観察可能かどうかを調べた。１３つの代表的ｒタンパク質に焦点を合わせた枯渇実験で、顆粒成分（ＧＣ）マーカーである、ＰＥＳ１抗原を免疫蛍光によりモニターすることにした（補足図４）。ＧＣタンパク質については予想通り、ＰＥＳ１染色はＦＢＬシグナルに末梢性であった（補足図４ｂ）。注目すべきことに、ＦＢＬとＰＥＳ１シグナルから算出されたｉＮｏスコアが極めて近いことを観察し、表現型重大度に従ったｒタンパク質の順位は大部分が類似していた（補足図４ａ）。ｒタンパク質枯渇に起因する核小体構造欠損は、ＤＦＣまたはＧＣ抗原を用いて同様にモニターすることが可能であると我々は結論付ける。
【０２０８】
その核のサイズが大きいのでＨｅＬａ細胞において核小体スクリーンを行った。
この理由のためにＨｅＬａ細胞は視覚的読取り情報が得られるハイスループットスクリーンにおいて使用するのに理想的である（例えば、３４、３５）。ＨｅＬａ−ＧＦＰ−ＦＢＬ細胞で観察される効果がどれほど一般的なのかを見るため、２つの子宮頸癌細胞株（ＨｅＬａ−ＧＦＰ−ＦＢＬおよびＨｅＬａ）、１つの結腸癌細胞株（ＨＣＴ１１６）、および２つの肺がん細胞株（Ａ５４９およびＨ１９４４）の５つの細胞株を試験した。８つの代表的なｒタンパク質を選択し、５つの細胞株それぞれで３日間そのｒタンパク質を枯渇させ、内在性ＰＥＳ１の免疫染色およびｉＮｏスコア算出により核小体構造をモニターした（図３）。試験したｒタンパク質では、核小体構造維持への弱いおよび強い寄与体が５つの細胞株すべてで大部分同じであることを見出し（図３）、ｕＬ５およびｕＬ１８がそれぞれの場合に重要な役割を果たしていた。
【０２０９】
[実施例４]
プレｒＲＮＡプロセシングに対するｒタンパク質枯渇の効果
核小体構造に対するｒタンパク質枯渇の効果とリボソーム生合成の欠損を互いに関連付けようと試みて、どのｒタンパク質がプレｒＲＮＡプロセシングに不可欠であるのかを確定した（図４）。成熟ｒＲＮＡは長い前駆体分子から産生される。成熟ｒＲＮＡは非コードスペーサーに包埋しており、作成するためには広範なプロセシングが必要である（２、３６）。プレｒＲＮＡプロセシング分析はリボソーム集合分析の優れた代理となる。なぜならば、ｒタンパク質が新生リボソームに結合できないとリボソーム生合成が遮断され、プレｒＲＮＡプロセシングが阻害され、サブユニット生合成が失敗するからである（２３、３０、３１、３７）。
【０２１０】
８０のｒタンパク質のそれぞれの合成は、適切なｓｉＲＮＡを用いてＨＣＴ１１６細胞において２日間ノックダウンされた。次に、全ＲＮＡは抽出し、バイオ分析器で泳動し、高分解能定量的ノーザンブロッティングにより分析した。ｒタンパク質ごとに２つの異なるｓｉＲＮＡを使用し、大部分が類似する結果を得た（図４）。対照として、ＵＴＰ１８およびＮＯＬ９を使用した。なぜならば、これらは枯渇するとよく確立したプレｒＲＮＡプロセシング欠損を生じるからである（補足図５、６、１１；（３８）参照）。さらなる対照として、非ターゲティングｓｉＲＮＡ（ＳＣＲ）および偽処置細胞を使用した（補足図５、６）。ＨＣＴ１１６およびＨｅＬａ細胞は両方とも上皮由来であり、上に示されるように、その核小体構造はｒタンパク質枯渇により類似する影響を受ける（図３）。ＨＣＴ１１６細胞でＲＮＡプロセシング研究およびｐ５３定常蓄積分析（下参照）を実施した。なぜならば、ＨｅＬａ細胞と違って、ＨＣＴ１１６細胞はｐ５３を正常に発現するからである３９。ＲＮＡ分析では、細胞は２日間のみ枯渇された。なぜならば、まさにＨＣＴ１１６細胞において、真実のプレｒＲＮＡプロセシング阻害は細胞周期停止およびアポトーシスに先行する初期欠損であり、この時点でもっともよくとらえられることを我々は前もって確立していたからであった（（３８）で考察されている）。
【０２１１】
２８Ｓ対１８Ｓ成熟ｒＲＮＡの比はバイオ分析器電気泳動図から導き出された（図４ａ）。ＳＳＵ  ｒタンパク質枯渇により、小サブユニット１８Ｓ  ｒＲＮＡの蓄積は大きく減少し、したがって２８Ｓ／１８Ｓ比は増加した（図４ａ）。相互に、ＬＳＵ  ｒタンパク質枯渇により大サブユニット２８Ｓ  ｒＲＮＡの蓄積は減少し、２８Ｓ／１８Ｓ比は低減した（図４ａ）。ノーザンブロットは特異的な放射性標識オリゴヌクレオチドを用いて探索し、既知の主要プレｒＲＮＡ中間体をすべて明らかにした（図４ｂ、補足図５、６、１１）。検出されたそれぞれのバンドはホスフォイメージャーを用いて定量化しＳＣＲ対照に関して正規化した。シグナルはヒートマップ上に示した（ＳＳＵ  ｒタンパク質については図４ｃ、ＬＳＵ  ｒタンパク質については図４ｄおよび補足図１１；（３８）も参照）。ヒートマップはソフトウェア「Ｒ」でクラスター化され、枯渇させると類似のプロセシングステップに影響を及ぼすｒタンパク質の機能的に関係する群を明らかにした（図４ｃ、ｄ、ならびに補足図Ｓ５、６および補足図１１）。ＳＳＵ  ｒタンパク質では、３つの群が現れ、それが枯渇すると初期プロセシング（クラス１）、後期プロセシング（クラス３）に影響を及ぼす、またはプロセシングに有意な影響を及ぼさない（クラス２）タンパク質である（図４ｃ、補足図５の代表例および完全データセットにつては補足図１１参照）。ＳＳＵ  ｒタンパク質の我々の分類はＨｅＬａ細胞で以前確立された分類（２３）に大部分一致している。我々は、４つのクラスのＬＳＵ  ｒタンパク質（図４ｄおよび補足図６、１１）：それを枯渇させると初期切断ステップ（クラス１）、中間切断ステップ（クラス３）、後期切断ステップ（クラス４）に影響を及ぼす、またはプロセシングには有意な影響を及ぼさない（クラス２）タンパク質を同定した（図４ｄおよび補足図６）。重要なことに、ＬＳＵ  ｒタンパク質のそのような分類は以前報告されていない。したがって、プレｒＲＮＡプロセシングへのｒタンパク質の関与の我々の分類は以前の研究を確証し大きく広げる（補足図７）。
【０２１２】
ｒタンパク質は、プロセシングへのその関与に従ってヒトリボソームの３Ｄモデル上に位置付けた（図２ｂ）。これにより、両方のサブユニット上で、著しく非対称性の分布が明らかになった。成熟小サブユニット上では、初期プロセシングステップに必要なｒタンパク質は、主要部およびプラットホームを形成するタンパク質であり（図２ｂ）、主要部およびプラットホームは両方とも初期集合サブユニット構造として知られている（２７、２８、４０）。後期切断ステップに影響を及ぼすｒタンパク質は、これとは対照的に、ヘッドおよびビークに対応し（図２ｂ）、これらは後期形成構造である（２７、２８、４０）。大サブユニット上では、初期プロセシングに重要であるｒタンパク質は主にリボソームの溶媒側に露出しており（右手側画で青色に図２ｂ）、中間切断に必要なｒタンパク質はＬ１ストークの下の境界面側にあり（左手側画でオレンジ色に）、後期プロセシングに重要なｒタンパク質は主にＣＰおよびＬ１ストークに対応している（赤色）。注目すべきことに、これはまさしく、これらの構造物が出芽酵母において形成されるのが明らかにされている順序である（３０）。
【０２１３】
我々の核小体構造とｒＲＮＡプロセシングデータを比較すると、それが枯渇されると核小体構造に最大の影響を与えるｒタンパク質（図２ａでは赤色）は大部分が、大リボソームサブユニットの形成において中間または後期プロセシングステップに必要なｒタンパク質であることが明らかにされる（図２ｂではオレンジ色および赤色）。このサブユニット内では、ｒタンパク質はほとんどが、Ｌ１ストークおよびＣＰを含む後期集合構造体に属する（ｕＬ５およびｕＬ１８）。結論として、実質的にすべてのｒタンパク質がプレｒＲＮＡプロセシングに重要であると思われるが、その大部分は核小体の構造完全性に影響を及ぼさない。
【０２１４】
ＢＸＤＣ１およびＲＲＳ１を含む、いくつかのトランス作用因子はＣＰ集合に必要である（２６、４１）。この機能は酵母とヒトの間で保存されている（２６、４１）。核小体構造に対するｕＬ５またはｕＬ１８枯渇の強い効果を考慮すると、およびこれらのタンパク質は両方ともＣＰ成分なので、我々は、ＣＰ形成に関与する因子の枯渇は深刻な核小体構造変化も引き起こすはずであると予想した。これは正しいことが判明し、我々はＢＸＤＣ１、ＲＲＳ１、または両方が枯渇すると、ｕＬ５またはｕＬ１８枯渇（図５ｂ）とほとんど同じくらい強く核小体構造に重大な影響を及ぼす（図５ａ）ことを見出した。
【０２１５】
[実施例５]
ｐ５３定常レベルに対するｒタンパク質枯渇の効果
一方ではｐ５３とリボソーム成分合成の間（４２）、もう一方では核小体の機能的完全性とｐ５３代謝安定性の間（４３）の数多くの関連を考慮して、我々はそれぞれ個々のｒタンパク質の枯渇がｐ５３の定常レベルにどのような影響を及ぼすのかを体系的に調べた。ｐ５３を発現している結腸癌細胞（ＨＣＴ１１６  ｐ５３＋／＋、（３９））にそれぞれのｒタンパク質転写物を標的にする１つのｓｉＲＮＡをトランスフェクトさせて２日間インキュベートした。この分析では、核小体およびプロセシングスクリーンにおけるその証明された有効性に基づいて選択した単一ｓｉＲＮＡを使用し、２日間枯渇を実行してＲＮＡ分析との直接比較可能にした。次に、全タンパク質を抽出し、定量的蛍光ウェスタンブロッティングにより分析した（図６ａおよび補足図１１）。
【０２１６】
観察されたｐ５３定常レベル増加は０から１０倍の範囲であった（図６ｂ）。ｒタンパク質の約３分の１（２４／８０）はｐ５３レベルに、有意な閾値として我々が任意に採用したカットオフ値である、少なくとも５倍の影響を及ぼすことが分かった（図６ｂ、灰色ボックス）。核小体構造に対する効果について観察されたように、我々は、これらのｒタンパク質のほぼすべてがＬＳＵに属することを見出し、唯一の例外はｅＳ３１であった。興味深いことに、ｐ５３依存性核小体サーベイランス（上で考察）に関与している、ｕＬ５またはｕＬ１８の枯渇は、以前の報告（２５、２６、４４）と一致して、ｐ５３定常レベルには有意な影響を及ぼさず、これらのタンパク質が細胞に蓄積する場合にＨｄｍ２トラップを形成する際のこれらのタンパク質の役割とは対照的であった（４４〜４６）。追加の対照として、我々はＲＴｑＰＣＲにより、それを枯渇させてもｐ５３蓄積に有意な影響を及ぼさない４８のｒタンパク質について（図６ｂ参照、ｅＬ２２からｅＳ２１まで）、ｍＲＮＡレベルでのｒタンパク質枯渇の効率を確立した（補足図８）。我々は枯渇が試験したすべてのｒタンパク質について効果的であることを見出し、その大半（４８のうちの４０）についての残留ｍＲＮＡレベルは２０％より下であった。試験した４８候補のうちの３１が枯渇させると著しいプロセシング欠損を示したことに（図４、補足図Ｓ５、Ｓ６、Ｓ１１参照）注目されたい。これは枯渇が効率的であることをさらに示すものである。
【０２１７】
上記の核小体ストレスのモデルを考慮して、我々は、２４のｒタンパク質が枯渇すると観察されるｐ５３に有意な増加がｕＬ５およびｕＬ１８を伴うのだろうかと考えた。これが事実であることを我々は見出し、２４のｒタンパク質のうちのいずれか１つとｕＬ５またはｕＬ１８のいずれかが同時に枯渇すると、ｐ５３とその転写標的ｐ２１の両方が正常レベルになった（補足図９ａ）。ＢＸＤＣ１およびＲＲＳ１の効果も調べた。リボソーム（ＣＰ）集合因子としてのこれらのタンパク質の役割から予想される通り、その枯渇もｐ５３およびｐ２１を増加させ、この増加はｕＬ５およびｕＬ１８に依存していた（補足図９ｂ）。
【０２１８】
図２ｃは、ｐ５３発現に対するその影響に従って成熟サブユニット上でのｒタンパク質の分布を示している。これにより、ｐ５３恒常性への有意な寄与体はすべてサブユニット上の後期集合構造体に対応していることが明らかになっている（図２ｂ、ｃ）。
【０２１９】
【表６−１】
2019523392.tif 000027
【０２２０】
【表６−２】
2019523392.tif 000028
【０２２１】
ｒタンパク質は最近改訂された命名法に従って収載されている（Ban et al, 2014, PMID 24524803）。前の命名法はカッコに与えられている。核小体崩壊の指数（ｉＮｏスコア）は０（正常な核小体）から０．２（崩壊した核小体）までの範囲に及ぶ（図１Ｃ参照）。ｉＮｏ値は２つの独立したスクリーン（スクリーンＩ／スクリーンＩＩ）から算出された。ｐ５３レベルは増大倍数で表される（０から１０．４、図４Ｂ）。任意に設定された有意カットオフ：ｐ５３増大倍数≧５；ｉＮｏ≧０．１、カットオフよりも上；中間の灰色、カットオフよりも下；白色、精選された「近カットオフ」ケース。ＳＳＵ、小サブユニットｒタンパク質；ＬＳＵ、大サブユニットｒタンパク質；ｉＮｏ、核小体崩壊の指数。ｉＮｏスコアおよびｐ５３レベルは上皮ヒト細胞において確立された。ｉＮｏスコアは、３日間ｒタンパク質を枯渇させた後ＨｅＬａ−ＦＢＬ−ＧＦＰ細胞において決定され；ｐ５３レベルは、２日間ｒタンパク質を枯渇させた後ＨＣＴ１１６  ｐ５３＋／＋細胞において決定された。
核小体構造に対して影響なし＆ｐ５３レベルに影響なし：５０ｒタンパク質
核小体構造に対して影響なし＆ｐ５３誘導：２１ｒタンパク質
核小体構造に対して影響＆ｐ５３誘導なし：２ｒタンパク質（ｕＬ５およびｕＬ１８）
核小体構造に対して影響＆ｐ５３誘導：８ｒタンパク質
ｕＬ５およびｕＬ１８は、注目すべきことに、これらのタンパク質が、８０のうち、それを枯渇させるとｐ５３を誘導せずに核小体構造に強い影響を及ぼすただ２つのｒタンパク質である点で独特である。
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【図１】
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【図２−ａ】
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【図２−ｂ】
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【図２−ｃ】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図Ｓ１】
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【図Ｓ２】
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【図Ｓ３】
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【図Ｓ４】
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【図Ｓ５】
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【図Ｓ６−ａ】
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【図Ｓ６−ｂ】
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【図Ｓ７−ａ】
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【図Ｓ７−ｂ】
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【図Ｓ８】
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【図Ｓ９】
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【図Ｓ１０−ａ】
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【図Ｓ１０−ｂ】
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【図Ｓ１０−ｃ】
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【図Ｓ１１】
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【図Ｓ１２−ａ】
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【図Ｓ１２−ｂ】
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【図Ｓ１２−ｃ】
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【図Ｓ１２−ｄ】
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【図Ｓ１３−ａ】
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【図Ｓ１３−ｂ】
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【図Ｓ１４】
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【図Ｓ１５】
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【図Ｓ１６】
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【図Ｓ１７】
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【図Ｓ１８】
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【図Ｓ１９】
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【図Ｓ２０−ａｂ】
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【図Ｓ２０−ｃ】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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