(57)【要約】本明細書に開示されている本発明は、ＭＣＩと診断を受けた患者において軽度認知機能障害からアルツハイマー病への移行を予測するためのインビトロ細胞アッセイのためである。方法は、次のステップ：ａ）ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；ｂ）その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；ｃ）培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；ｄ）培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；およびｅ）増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、統計解析を（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果により行い、統計解析結果は患者のＭＣＩからＡＤへの移行への予測となる。
2019530454.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＭＣＩと診断を受けた患者において軽度認知機能障害（ＭＣＩ）からアルツハイマー病（ＡＤ）への移行を予測するためのインビトロ細胞アッセイであって、前記アッセイは：
ａ．ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
ｂ．その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
ｃ．培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；
ｄ．培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および
ｅ．増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、
統計解析を（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果により行い、統計解析結果は前記患者のＭＣＩからＡＤへの移行への予測となる、
前記アッセイ。
【請求項２】
（ａ）および（ｂ）における前記培養培地中の前記血清の最終濃度が、０．５％〜５％、好ましくは１％である、請求項１に記載のアッセイ。
【請求項３】
ステップ（ａ）が、前記培養培地中に前記細胞を播種した２４時間後に前記培養培地に前記血清を添加することを含む、請求項１または２に記載のアッセイ。
【請求項４】
ステップ（ａ）における前記培養培地が、ＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴを含む、請求項１〜３のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項５】
ステップ（ａ）において言う前記増殖期が、４８時間の期間である、請求項１〜４のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項６】
前記培養培地が、ステップ（ａ）と（ｂ）の間で交換され、（ｂ）において使用される前記培養培地はＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴの全てを含むことはない、請求項１〜５のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項７】
ステップ（ｂ）の分化期の初期において前記培養培地に前記血清を添加する、請求項６に記載のアッセイ。
【請求項８】
ステップ（ｂ）において言う前記分化期が、７日以下の期間である、請求項１〜７のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項９】
前記患者の教育状況を決定するさらなるステップを含む、請求項１〜８のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項１０】
教育状況が、正規教育の総年数に対応する、請求項１〜９のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項１１】
前記患者の前記教育状況が、前記統計解析に含まれる、請求項９または１０に記載のアッセイ。
【請求項１２】
前記海馬前駆細胞が、ヒト多分化能海馬前駆細胞である、請求項１〜１１のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項１３】
前記海馬前駆細胞が、条件付不死化細胞である、請求項１〜１２のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項１４】
前記海馬前駆細胞が、ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃセルライン由来細胞である、請求項１〜１３のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項１５】
前記海馬前駆細胞の増殖レベルを、前記増殖期の終わりに決定する、請求項１〜１４のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項１６】
前記増殖レベルを、前記海馬細胞のＫｉ６７発現の測定により決定する、請求項１５に記載のアッセイ。
【請求項１７】
Ｋｉ６７発現を、抗Ｋｉ６７抗体を用いて測定する、請求項１６に記載のアッセイ。
【請求項１８】
前記平均細胞数を、前記増殖期の終わりおよび前記分化期の終わりにおいて決定する、請求項１〜１７のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項１９】
アポトーシス細胞死を、前記分化期の終わりにおいて決定する、請求項１〜１８のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項２０】
アポトーシス細胞死を、ＣＣ３発現の測定により決定する、請求項１〜１９のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項２１】
ＣＣ３発現を、抗ＣＣ３抗体を用いて測定する、請求項２０に記載のアッセイ。
【請求項２２】
ＡＤ薬物臨床治験に選択することの適格性に関して、ＭＣＩと診断を受けた患者の層別化を支援するインビトロ細胞アッセイであって、前記アッセイは：
ａ．ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
ｂ．その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
ｃ．培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；
ｄ．培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および
ｅ．増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、
統計解析を（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果により行い、前記統計解析結果を使用して前記臨床治験に選択することの前記患者の適格性を決定することができる、
前記アッセイ。
【請求項２３】
前記方法を使用して、ＡＤ薬物臨床治験に選択された患者が前記治験に含まれるのに適した候補であったかどうかを遡及的に判別する、請求項２２に記載のアッセイ。
【請求項２４】
（ｆ）分化後に存在する成熟神経細胞、未成熟神経細胞、もしくはグリア細胞のレベル、ならびに／または
（ｇ）増殖中もしくは増殖後のアポトーシスレベル、
の１つ以上を測定することをさらに含み、
（ｆ）および／または（ｇ）の結果を使用して、臨床治験に選択することの前記患者の適格性を決定することができる、
請求項２２または２３に記載のアッセイ。
【請求項２５】
ＭＣＩと診断された患者に行った治療の有効性の評価を支援するインビトロ細胞アッセイであって、前記アッセイが：
ａ．ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
ｂ．その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
ｃ．培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；
ｄ．培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および
ｅ．増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、
前記アッセイを治療期間中規則的間隔で反復して異なる時点において（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果を生じ、前記異なる時点における結果の比較を使用して前記治療有効性の評価を支援することができる、
前記アッセイ。
【請求項２６】
前記患者が、ＭＣＩからＡＤへ移行することを予測される、請求項２５に記載のアッセイ。
【請求項２７】
前記ＭＣＩからＡＤへの移行予測が、請求項１〜２１のいずれか一項に記載のアッセイを行った結果である、請求項２６に記載のアッセイ。
【請求項２８】
前記規則的間隔が、６か月の間隔である、請求項２５〜２７のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項２９】
（ｆ）分化後に存在する成熟神経細胞、未成熟神経細胞、もしくはグリア細胞のレベル、ならびに／または
（ｇ）増殖中もしくは増殖後のアポトーシスレベル、
の１つ以上を測定することをさらに含み、
（ｆ）および／または（ｇ）の結果を使用して、経時的に治療の有効性をモニターすることができる、
請求項２５〜２８のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項３０】
ＭＣＩと診断された患者の病気進行をモニターするためのインビトロ細胞アッセイであって、前記アッセイが：
ａ．ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
ｂ．その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
ｃ．培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；
ｄ．培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および
ｅ．増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、
前記方法を規則的間隔で反復して異なる時点において（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果を生じ、前記異なる時点の結果の比較を使用して病気進行をモニターすることができる、
前記アッセイ。
【請求項３１】
前記規則的間隔が、６か月の間隔である、請求項３０に記載のアッセイ。
【請求項３２】
（ｆ）分化後に存在する成熟神経細胞、未成熟神経細胞、もしくはグリア細胞のレベル、ならびに／または
（ｇ）増殖中もしくは増殖後のアポトーシスレベル、
の１つ以上を測定することをさらに含み、
異なる時点において測定された（ｆ）および／または（ｇ）の結果の比較を使用して病気進行をモニターすることができる、
請求項３０または３１に記載のアッセイ。
【請求項３３】
（ａ）および（ｂ）における前記培養培地中の前記血清の最終濃度が、０．５％〜５％、好ましくは１％である、請求項２２〜３２のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項３４】
ステップ（ａ）が、前記培養培地中に前記細胞を播種した２４時間後に前記培養培地に前記血清を添加することを含む、請求項２２〜３３のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項３５】
ステップ（ａ）における前記培養培地が、ＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴを含む、請求項２２〜３４のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項３６】
ステップ（ａ）において言う前記増殖期が、４８時間の期間である、請求項２２〜３５のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項３７】
前記培養培地が、ステップ（ａ）と（ｂ）の間で交換され、（ｂ）において使用される前記培養培地はＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴの全てを含むことはない、請求項２２〜３６のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項３８】
ステップ（ｂ）の分化期の初期において前記培養培地に前記血清を添加する、請求項３７に記載のアッセイ。
【請求項３９】
ステップ（ｂ）において言う前記分化期が、７日以下の期間である、請求項２２〜３８のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項４０】
前記患者の教育状況を決定するさらなるステップを含む、請求項２２〜３９のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項４１】
教育状況が、正規教育の総年数に対応する、請求項４０に記載のアッセイ。
【請求項４２】
前記海馬前駆細胞が、ヒト多分化能海馬前駆細胞である、請求項２２〜４１のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項４３】
前記海馬前駆細胞が、条件付不死化細胞である、請求項２２〜４２のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項４４】
前記海馬前駆細胞が、ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃセルライン由来細胞である、請求項２２〜４３のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項４５】
前記海馬前駆細胞の増殖レベルを、前記増殖期の終わりに決定する、請求項２２〜４４のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項４６】
前記増殖レベルを、前記海馬細胞のＫｉ６７発現の測定により決定する、請求項４５に記載のアッセイ。
【請求項４７】
Ｋｉ６７発現を、抗Ｋｉ６７抗体を用いて測定する、請求項４６に記載のアッセイ。
【請求項４８】
前記平均細胞数を、前記増殖期の終わりおよび前記分化期の終わりにおいて決定する、請求項２２〜４７のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項４９】
アポトーシス細胞死を、前記分化期の終わりにおいて決定する、請求項２２〜４８のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項５０】
アポトーシス細胞死を、ＣＣ３発現の測定により決定する、請求項２２〜４９のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項５１】
ＣＣ３発現を、抗ＣＣ３抗体を用いて測定する、請求項５０に記載のアッセイ。
【請求項５２】
未成熟神経細胞を、Ｄｃｘの発現レベルの決定により測定する、請求項２４、２９、または３２のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項５３】
成熟神経細胞を、Ｓ１００βの発現レベルの決定により測定する、請求項２４、２９、または３２のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項５４】
増殖中のアポトーシスを、ＣＣ３の発現レベルの決定により測定する、請求項２４、２９、または３２のいずれか一項に記載のアッセイ。
【請求項５５】
請求項１〜５４のいずれか一項に記載のアッセイまたは方法におけるヒト海馬前駆細胞を含む基質の使用。
【請求項５６】
前記海馬前駆細胞が、条件付不死化細胞である、請求項５５に記載の基質の使用。
【請求項５７】
前記海馬前駆細胞が、ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃセルライン由来細胞である、請求項５５または請求項５６に記載の基質の使用。
【請求項５８】
ＭＣＩからＡＤへの移行のバイオマーカー、ＡＤの進行のバイオマーカーおよび／またはＡＤをモニターするためのバイオマーカーとしての海馬神経新生の使用。
【請求項５９】
ＡＤの治療標的および／またはＡＤ発症を遅延する介入標的としての海馬神経新生の使用。
【請求項６０】
請求項５８に記載のＭＣＩからＡＤへの移行のバイオマーカーとして、または、請求項５９に記載のＡＤの治療標的および／またはＡＤ発症を遅延する介入標的としての海馬神経新生の使用であって、ヒト血清に、好ましくは１％のヒト血清最終濃度に不死化ヒト海馬前駆細胞を暴露することにより海馬神経新生をインビトロで測定する、前記使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、軽度認知機能障害からアルツハイマー病への移行を診断するためのアッセイに関する。
【背景技術】
【０００２】
アルツハイマー病（ＡＤ）は、現在、世界において推定４，０００万人を苦しめている認知症の最も多い原因である。ＡＤは遺伝性であり得るが、原因の多くは散発性であり、いずれも遅発性ＡＤの発症リスクの一因となるとされる食習慣、運動、および教育などの生活要因である。世界人口内における年齢上昇および座りがちな生活のせいで、認知症を有する人々の数は、２０３０年までに７，５００万人に増加するとされ、グローバル経済に、緩和ケアにおける推定２兆ドルの負担がかかるとされている。この莫大な経済および情動的負担は、部分的には、病気の進行を食い止めることおよび発症前にＡＤを診断することの両方を対処できないことによる。
【０００３】
ＡＤを原因とする認知症は、長期発症前段階が先行し、次いで軽度認知機能障害（ＭＣＩ）と診断される。重要なことには、ＭＣＩと診断された人が全て最終的にＡＤを発症するわけではない。認識力が安定なままの人もいれば、レビー小体型認知症、血管性認知症および／または前頭側頭型認知症などの他の病気に進行する人もいる。
【０００４】
海馬は、ＡＤにおいて最も影響を受ける脳領域であり、海馬神経細胞は、その変性症が観察される主要神経細胞サブタイプである。現在、遅発性ＡＤを発症前に診断することができないので、患者がＡＤに罹患していると特定される時までには、海馬は既にかなり傷害を受けていることが多い。このことは、治療は予防と対照的に治癒する必要があるので、効果的治療の開発の困難さの度合いを増している。さらに、ＡＤ患者に観察される認知機能低下の進行性の性質が理由で、臨床治験はＭＣＩと診断された患者を取り込むことが多いが、必ずしもＡＤ発症に進むとは限らない。臨床治験にこれらの患者を選択することは、信頼度のある検査の下で治療有効性を評価する能力を大いに与える。
【０００５】
ＡＤの別の可能性のある病理学的特徴は、海馬神経新生（ＨＮ）の機能障害である。ＨＮは、海馬神経細胞が脳内で絶えず生成される過程である。最近まで、成熟脳においてＨＮが起こるかどうかは不確かであった。しかしながら、現在、海馬依存性学習および記憶においてＨＮが基本的役割を果たしていると山のような証拠が示唆している。脳脊髄液との動的交換をすることができる血液由来因子によりＨＮは病気に冒されると考えられている。これらの因子は、全身環境（ＳＭ）としてまとめて知られている。ＳＭの組成は、ＡＤの危険因子であると知られている同じ生活要因の多くにより大いに影響を受ける。それ自体として、海馬神経細胞の変性症に加えて、ＨＮの機能障害は、特に、海馬がＡＤにおいて最初に病気に冒される脳構造の１つであるとき、ＡＤなどの神経変性疾患の進行における関連する病理学的イベントであり得る。
【０００６】
それにもかかわらず、ＨＮを直接測定または生体において海馬前駆細胞の最期を追跡する手段がないのが主な理由で、ヒト脳およびその臨床的関連におけるＨＮの役割は不確かなままである。病気進行におけるＨＮの変化が役割を果たすか否か、または認知回復力を得るための進行中の病態に対する代償的役割をＨＮが果たすかどうかも不確かなままである。
【０００７】
新規な臨床および診断ツールの開発を可能とするために、ＨＮおよびＡＤ発症の関係性がより理解される必要がある。
【発明の概要】
【０００８】
本発明の第一の態様は、ＭＣＩと診断を受けた患者において軽度認知機能障害（ＭＣＩ）からアルツハイマー病（ＡＤ）への移行を予測するためのインビトロ細胞アッセイであって、該アッセイは：（ａ）ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；（ｂ）その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；（ｃ）培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；（ｄ）培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および（ｅ）増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、統計解析を（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果により行い、統計解析結果は患者のＭＣＩからＡＤへの移行への予測となる、アッセイを提供する。
【０００９】
本発明の第二の態様は、ＡＤ薬物臨床治験に含めることの適格性に関して、ＭＣＩと診断を受けた患者の層別化を支援するインビトロ細胞アッセイであって、該アッセイは：（ａ）ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；（ｂ）その後、前記ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；（ｃ）培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；（ｄ）培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および（ｅ）増殖した海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果を使用して前記臨床治験に選択することについての患者の適格性を判定することができる、アッセイを提供する。
【００１０】
本発明の第三の態様は、ＭＣＩと診断された患者に行った治療の有効性の評価を支援するインビトロ細胞アッセイであって：（ａ）ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；（ｂ）その後、前記ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；（ｃ）培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；（ｄ）培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および（ｅ）増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、該アッセイを治療期間中規則的間隔で反復して異なる時点において（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果を生じ、前記異なる時点における結果を比較して前記治療有効性の評価を支援する、アッセイを提供する。
【００１１】
本発明の第四の態様は、ＭＣＩと診断された患者の病気の進行をモニターするためのインビトロ細胞アッセイであって：（ａ）ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；（ｂ）その後、前記ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；（ｃ）培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；（ｄ）培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および（ｅ）増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、該方法を規則的間隔で反復して異なる時点において（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果を生じ、前記異なる時点の結果を比較して病気の進行をモニターする、アッセイを提供する。
【００１２】
本発明の第五の態様は、本発明の第一〜第四の態様のいずれかに記載のアッセイまたは方法におけるヒト海馬前駆細胞を含む基質の使用である。
【００１３】
本発明の第六の態様は、ＭＣＩからＡＤへの移行のバイオマーカー、ＡＤの進行のバイオマーカーおよび／またはＡＤをモニターするためのバイオマーカーとして海馬神経新生
の使用である。
【００１４】
本発明の第七の態様は、ＡＤの治療標的および／またはＡＤ発症を遅延する介入標的として海馬神経新生の使用である。
【００１５】
本発明の第八の態様は、本発明の第六の態様に記載のＭＣＩからＡＤへの移行のバイオマーカーとして、または、本発明の第七の態様に記載のＡＤの治療標的および／またはＡＤ発症を遅延する介入標的としての海馬神経新生の使用であって、ヒト血清に、好ましくは０．５（ｖ／ｖ）％〜５（ｖ／ｖ）％の範囲のヒト血清の最終濃度に、最も好ましくは１（ｖ／ｖ）％の最終濃度に不死化ヒト海馬前駆細胞を暴露することにより海馬神経新生をインビトロで測定する、使用である。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
本発明を次の図を参照して説明する：
【図１Ａ】インビトロ海馬神経新生の増殖中のＭＣＩコンバーターおよびＭＣＩ非コンバーターの血清の影響を示す。ｘ軸には、ＡＤへの移行点を０に分類し、一方、ＭＣＩ非コンバーターに対する０は最終来院を示す。
【図１Ｂ】インビトロ海馬神経新生の分化中のＭＣＩコンバーターおよびＭＣＩ非コンバーターの血清の影響を示す。ｘ軸には、ＡＤへの移行点を０に分類し、一方、ＭＣＩ非コンバーターに対する０は最終来院を示す。
【図１Ｃ】インビトロ海馬神経新生の増殖中のＭＣＩコンバーターおよびＭＣＩ非コンバーターの血清の影響を示す。海馬前駆細胞をＭＣＩコンバーターおよびＭＣＩ非コンバーターの１％血清で処理した場合の増殖細胞（Ｋｉ６７＋細胞）数変化を示す。ｘ軸には、ＡＤへの移行点を０に分類し、一方、ＭＣＩ非コンバーターに対する０は最終来院を示す。
【図１Ｄ】インビトロ海馬神経新生の分化中のＭＣＩコンバーターおよびＭＣＩ非コンバーターの血清の影響を示す。アッセイの増殖およびその後の分化段階中のＭＣＩコンバーターまたはＭＣＩ非コンバーターのいずれかの血清の存在下で海馬前駆細胞を培養した場合に神経新生から得られた成熟Ｍａｐ２＋神経細胞のパーセンテージを示す。ｘ軸には、ＡＤへの移行点を０に分類し、一方、ＭＣＩ非コンバーターに対する０は最終来院を示す。
【図１Ｅ】インビトロ海馬神経新生の増殖中のＭＣＩコンバーターおよびＭＣＩ非コンバーターの血清の影響を示す。ＭＣＩコンバーターの血清が増殖中の海馬前駆細胞の生存率低下を引き起こし、この効果は時間依存性であることを示す。
【図１Ｆ】インビトロ海馬神経新生の分化中のＭＣＩコンバーターおよびＭＣＩ非コンバーターの血清の影響を示す。ＭＣＩコンバーターの血清が分化中の海馬前駆細胞の生存率低下を引き起こし、この効果は時間依存性であることを示す。
【図２】アルツハイマー病に移行する尤度を推定する統計的モデルの予測精度を示す受信者動作特性（ＲＯＣ）曲線を示す。予測モデル（ＡＵＣ＝０．９６７５）は、このモデルの優れた判別能力を示す。感度＝９２．１１％、特異度＝９４．１２％、陽性予測値＝９７．２２％、陰性予測値＝８４．２１％。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
本発明は、軽度認知機能障害（ＭＣＩ）患者から得られた血清サンプルが、インビトロで海馬神経新生（ＨＮ）に差別的に影響を与えるという本発明者らの発見に基づいている。より詳細には、患者の血清がＨＮを調節する程度が、該患者がアルツハイマー病（ＡＤ）を発症するかどうかの正確に予測因子であることを本発明者らは発見した。特に、個体の教育達成状況および／または食習慣などの生活要因と組み合わせて、患者の血清がＨＮを調節する程度は、ＭＣＩ患者がＡＤ発症に進むかどうかを正確に予測因子であることを本発明者らは見出した。
【００１８】
この発見を基礎として、ＭＣＩ患者において発症前にＡＤを診断することを可能とする迅速で非侵襲的インビトロアッセイを本発明者らは開発した。これは、患者から得られた血清の小サンプルを含む細胞培養培地の添加および前記培地を使用してインビトロでヒト海馬前駆細胞を培養することにより達成することができる。細胞は増殖期および分化期を経験するので、異なる生体現象を測定し、その後、ＭＣＩ患者がＡＤを発症するかどうかを正確に予測することができる統計解析と組み合わせることができる。徴候発症前にＡＤを診断する能力は、さらなる認知機能低下を阻止する、または回復さえさせるために、治療介入のための貴重な手段を提供する。
【００１９】
したがって、本発明の第一の態様は、ＭＣＩと診断を受けた患者において軽度認知機能障害（ＭＣＩ）からアルツハイマー病（ＡＤ）への移行を予測するためのインビトロ細胞アッセイであって、該アッセイは：
（ａ）ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
（ｂ）その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
（ｃ）培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；
（ｄ）培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および
（ｅ）増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、
統計解析を（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果により行い、統計解析結果は前記患者のＭＣＩからＡＤへの移行への予測となる、アッセイを提供する。
【００２０】
用語「血清」および「全身環境（ＳＭ）」は本明細書において互換的に使用され、当技術分野においてその通常の意味を有する。血清は、血液細胞でも凝固因子でもない血液成分である。血清は、フィブリノーゲン以外の血漿である。
【００２１】
全身環境の成分は、概して、食習慣、運動、および炎症状態を含む多くの因子により影響を受ける。全身環境は、ＡＤおよびヒト神経新生などの他の神経変性疾患において乱される過程に影響を与えることができる場合がある。
【００２２】
当技術分野において周知であり、従来の当業者にルーチン的な標準的な放血技術を用いて、血清（またはＳＭ）を、患者、好ましくはヒト患者から得られた血液のサンプルから抽出することができる。本発明との関連で、ＳＭは、血液サンプルの血清成分のみを含む。
【００２３】
本明細書で使用されるとき、用語「海馬神経新生（ＨＮ）」は、海馬脳領域の歯状回において新生神経細胞が造られる過程を表す。ＨＮは、出生前発達中最も活性であり、神経新生細胞が成熟神経細胞に分化する成長時の脳の集合に関与している。神経新生は、新生神経細胞が吻側移動経路を経て嗅球に移動することができる脳室下帯においても起こることができる。これは、様々な成長因子および分裂促進因子の存在下で刺激される。成長因子の正確な組合せは生成される神経細胞の種類を決定する。
【００２４】
用語「海馬前駆細胞」は、当技術分野においてその通常の意味を有し、脳の海馬領域における神経新生に関連する前駆細胞を表す。本発明の好ましい実施形態では、海馬前駆細胞は、ヒト多分化能海馬前駆細胞である。
【００２５】
用語「軽度認知機能障害（ＭＣＩ）」は、当技術分野においてその通常の意味を有し、個体の年齢および教育に基づいて通常期待されるもの以上の認知機能低下の発症に関連す
る脳機能症候群を表す。ＭＣＩは、個体の日常活動を妨げるほどではない。これは、正常老化とアルツハイマー病などの認知症型疾患との間の過渡期として起こり得る。例えば、ＭＣＩを、Ｐｅｔｅｒｓｅｎ，Ｒ．Ｃ．，ｅｔ  ａｌ．，Ａｒｃｈ  Ｎｅｕｒｏｌ．（１９９９）５６（３）：ｐ．３０３−８に定義されている判断基準に従って診断することができる。
【００２６】
用語「アルツハイマー病（ＡＤ）」は、当技術分野においてその通常の意味を有し、慢性神経変性疾患を表す。例えば、ＡＤを、ＭｃＫｈａｎｎ，Ｇ．  ｅｔ  ａｌ．，Ｎｅｕｒｏｌｏｇｙ（１９８４）３４（７）：ｐ．９３９−４４に定義されている判断基準に従って診断することができる。
【００２７】
用語「対象」および「患者」は、本明細書において互換的に使用され、ＭＣＩの臨床診断を受けた個体を表す。患者または対象は、サル、ブタ、ネコ、イヌまたはウマなどのいずれかの哺乳類であってよいが、好ましくは、患者または対象はヒトである。
【００２８】
用語「統計解析」は、アッセイの測定されたイベントの結果を入力して患者が病気発症に進むかどうかに関しての指標を提供することができるいずれかの方法を表す。本発明との関連で、統計解析の好ましい出力は、ＡＤへ移行するＭＣＩ患者の尤度を示す確率スコアである。好ましくは、確率スコアは、ＭＣＩの診断（時点０）から３．５年以内にＡＤへ移行する患者の尤度に関する。
【００２９】
特に適した統計解析は、当業者に周知であろう。最も適した統計解析は、アッセイの複数の測定可能なイベントから得られた結果を積算することができるだろう。本発明の好ましい実施形態では、統計解析の方法は、ロジスティック回帰分析である。ロジスティック回帰分析は医療を含む多くの分野において広く使用されている。例えば、ロジスティック回帰分析を使用して、年齢、性別、肥満度指数、および複数の血液検査の結果を含む多くの可変因子（すなわち、測定可能イベント）に基づいて、糖尿病を発症している患者の重症度（または確率）が決定されている。ロジスティック回帰分析は１つ以上の独立変数（すなわち、測定変数）に基づいて二値応答を推定するために使用される二値ロジスティックモデルである。したがって、組み合わされた測定可能イベントの結果に基づくと、病気を発症する患者の確率は、０〜１であろう。したがって、疾患を有するまたは有しないと知られている患者コホートからの確率スコアの結果を使用して、該疾患発症確率が独立変数（すなわち、測定イベント）の組合せた値に対してプロットされるロジスティック回帰曲線を作成することができる。それから、得られた曲線を、ロジスティック回帰曲線とフィットさせることができる。それから、直線回帰曲線（または曲線の関数）を使用して、独立変数（すなわち、測定イベント）の結果に基づいて疾患発症する患者の確率を評価することができ、確率は０〜１のいずれかの値として報告され、０は疾患発症の確率０％を示し、１は疾患発症の確率１００％を示す。本発明では、確率スコアは、ＭＣＩ患者のＡＤへの移行の尤度を報告する。
【００３０】
最低でも、統計解析は、増殖期後または増殖期中に観察される増殖レベル、増殖期後または増殖期中の平均細胞数、および分化後に観察されるアポトーシスレベルの結果を積算することができるだろう。しかしながら、複数の他の測定可能な現象を統計解析に含めることもできる。例えば、分化後または増殖期に存在すると決定されるグリア細胞、成熟神経細胞、または未成熟神経細胞の細胞数うち１つ以上を、統計解析に含めてもよい。
【００３１】
測定可能イベントは、アッセイから直接測定することができるイベントに限定しなくてもよい。本発明の好ましい実施形態では、患者の生活要因の１つ以上も統計解析に含める。前記生活要因としては、患者の教育状況、食習慣因子、患者のアルコール摂取、患者が喫煙するかどうか、または過去に喫煙していたかどうか、および患者が一人暮らし（単独
生活）かどうかを挙げることができる。教育状況は、対象より受けられた正規教育の年数として定義される。正規教育は、学校、カレッジ、大学で過ごした年数および卒業後またはより高いレベルの資格のための勉強に費やした年数と定義される。食習慣因子としては、サプリメント、特に、ビタミン類およびオメガ３脂肪酸の摂取が挙げられる。
【００３２】
ＡＤに移行するＭＣＩ患者の尤度を決定するために（ｃ）〜（ｅ）の結果を統計解析に組み合わせることの有用性または妥当性を、受信者動作特性（ＲＯＣ）曲線を用いて可視化することができる。ＲＯＣ曲線は、診断ツールの特異度および感度のトレードオフを示し、その精度を表す。ｙ軸では、感度、または真陽性分画（すなわち、アッセイによりＡＤを発症すると正確に特定されたＭＣＩ患者数）は、［（真陽性検査結果数）／（真陽性数＋偽陰性結果数）］と定義される。これは、疾病または病態の存在下、陽性とも呼ばれる。これは、罹患部分群（すなわち、ＡＤに移行した患者）から単独で算出される。ｘ軸では、偽陽性分画（すなわち、ＡＤに移行するとアッセイにより誤って特定されたＭＣＩ患者、または１−特異度）は、［（偽陽性検査結果数）／（真陰性数＋偽陽性結果数）］と定義される。これは、特異度の指標であり、罹患していない部分群から全体的に算出される。真陽性および偽陽性分画は２つの異なる部分群からの検査結果を用いることにより個別に全体的に算出されるので、ＲＯＣ曲線は、サンプルにおける疾患の有病率と無関係である。ＲＯＣ曲線上の各点は、特定の識別閾値に対応する感度／特異度対を表す。完全差別化された検査（結果の２つの分布の重複がない）は、真陽性分画が１．０、または１００％（完全感度）であり、偽陽性分画が０（完全特異度）である左上隅を通るＲＯＣ曲線を有する。完全差別化された検査（２つの群について同じ分布の結果）の理論曲線は、左下隅から右上隅への４５°対角線である。ほとんどの曲線は、これら２つの極端なものの間にある。定性的に、曲線が左上隅に近いほど、全体的な検査精度はより高くなる。
【００３３】
臨床検査の診断精度を定量化する１つの簡便な目標は、単数によりその性能を表現することである。最も一般的な包括的測定は、ＲＯＣ曲線の曲線下面積（ＡＵＣ）である。ＲＯＣ曲線下面積は、知覚測定が病態の正確な特定を可能とする確率の測定である。慣例により、この面積は、通常、≧０．５である。値は１．０（２つの群の検査値の完全分離）〜０．５（検査値の２つの群間の明白な分布差がない）の範囲となる。面積は、対角線に最も近い点などの曲線の特定の部分または９０％特異度における感度にのみ依存しないが、曲線全体に依存する。これは、ＲＯＣ曲線がいかに完全なもの（面積＝１．０）に近いかの定量的、記述的表現である。本発明との関連で、２つの異なる病態は、ＭＣＩ患者がＡＤ発症に進むかどうか、またはＡＤ発症に進みそうでないかどうかである。診断検査の将来の適用において使用される閾値または「カットオフ」値を算出する場合、ＲＯＣ曲線データおよび検査の臨床要件をまとめて考えてもよい。値がこのカットオフ値より大きい（またはこのカットオフ値より小さい）と測定された場合、検査は「陽性」であると見なされ、臨床症状に適切であるさらなる措置がとられ得る。カットオフ値の設定における重要な特徴は検査の必要な特異度（すなわち、真陽性率）である。慣例により、多くの診断検査に必要な特異度は、前以て９０％、９５％であるとされており、または実際には１００％に近いとされている。ＭＣＩのＡＤへの移行を予測する検査では、患者についての偽陰性結果の危険な結果が理由で、おそらく有効な検査は１００％に近づく必要があると思われる。それから、これらの特異度を達成するために必要なカットオフ値をＲＯＣ曲線から読んでもよい。曲線上のこの点は、検査感度（真陰性率）に関する値も示すだろう。あるいは、最適なカットオフ値を、グラフの左上隅に最も近いＲＯＣ曲線上の点を選択することにより得てもよい。ＡＤへの移行を診断するこの特定のアッセイのＡＵＣは０．９６５であり（図４）、アッセイから導かれた確率スコアが９６．５％の信頼値を有することを意味する。
【００３４】
本発明のアッセイを上手く行うために、血清濃度範囲をステップ（ａ）および（ｂ）において細胞培養培地に追加することができる。アッセイにおいて使用される最適な血清濃
度は、強力なアッセイ読み取りを行いながら可能な限り少ない血清を用いることとのバランスである。この点を考慮して、本発明者らは、最適な濃度範囲が培地中０．５（ｖ／ｖ）％〜５（ｖ／ｖ）％の血清であることを見出した。したがって、好ましい実施形態では、（ａ）および（ｂ）における培養培地中の血清の最終濃度は、０．５（ｖ／ｖ）％〜５（ｖ／ｖ）％である。最も好ましくは、血清濃度は、１（ｖ／ｖ）％である。
【００３５】
好ましい実施形態では、ステップ（ａ）は、培養培地中に細胞を播種した２４時間後に培養培地に血清を添加することを含む。ステップ（ａ）における培養培地は、好ましくは、上皮増殖因子（ＥＧＦ）、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）および４−ヒドロキシテストステロン（４−ＯＨＴ）の１つ以上を含む。ＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴは、ヒト海馬前駆細胞の無限増殖を可能とする成長因子の組合せである。好ましくは、ステップ（ａ）における培養培地は、これらの成長因子の３つ全てを含む。ステップ（ａ）において言う増殖期は、好ましくは４８時間である。
【００３６】
好ましい実施形態では、培養培地は、ステップ（ａ）および（ｂ）の間で交換される。好ましくは、ステップ（ｂ）において使用される培養培地は、ＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴの全てを含むことはない。細胞培養培地からのＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴの除去は、前駆細胞の神経細胞、アストロサイト、およびオリゴデンドロサイトへの自然分化を誘発する。好ましくは、ステップ（ｂ）の分化期の初期において、培養培地に血清を添加する。ステップ（ｂ）において言う分化期は、好ましくは、７日以下の期間である。
【００３７】
好ましい実施形態では、本発明の第一態様によるアッセイは、患者の生活要因の１つ以上を決定するさらなるステップを含む。好ましい実施形態では、患者の教育状況は、統計解析に含まれる。好ましくは、教育状況は、正規教育の総年数に対応する。好ましくは、患者がＭＣＩからＡＤへ移行するのを予測するために、患者の教育状況は統計解析に含まれる。
【００３８】
好ましい実施形態では、本発明のアッセイにおいて使用されるヒト海馬前駆細胞を、例えば、ＥＧＦ、ｂＦＧＦ、および４−ＯＨＴの存在下で細胞が無限に分化するように、レトロウイルス導入によりｃ−ｍｙｃＥＲＴＡＭ発がん遺伝子を導入することにより条件付不死化する。より好ましくは、海馬前駆細胞は、ＨＰＣ０Ａ０７セルライン由来の細胞、より好ましくはＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞である。このセルラインおよびｃ−ｍｙｃＥＲＴＡＭ発がん遺伝子導入システムは、欧州特許出願公開第１６４５６２６（Ａ１）号（この内容はその全文を参照することにより組み入れられる）に詳細に記載されている。ＨＰＣ０Ａ０７細胞は、ＥＣＡＣＣ受託番号０４０９２３０２で寄託されている。
【００３９】
好ましい実施形態では、海馬前駆細胞の増殖レベルを、増殖期の終わりに決定する。増殖中に増加すると知られている特定の細胞マーカーレベルの測定により増殖を定量化することができる。増殖レベルを決定するために測定することができるこのような１つのマーカーは、Ｋｉ６７である。Ｋｉ６７は、リボソームＲＮＡ合成に関連する核タンパク質である。多くの異なる方法により、Ｋｉ６７レベルを測定することができ、ＥＬＩＳＡアッセイ、リボソームプロファイリング、フローサイトメトリー法、蛍光顕微鏡、またはウェスタンブロット解析が挙げられる。
【００４０】
好ましい実施形態では、Ｋｉ６７は、増殖レベルの決定に使用されるマーカーである。Ｋｉ６７発現を、抗Ｋｉ６７抗体を用いて測定することができ、該抗体をＫｉ６７との結合後にその検出を可能とするマーカーと結合してよい。
【００４１】
好ましい実施形態では、平均細胞数を増殖期の終わりおよび分化期の終わりにおいて決
定する。生細胞または固定細胞のカウントのための技術および方法は、当業者に周知である。非限定的例として、Ｃｅｌｌｉｎｓｉｇｈｔ  Ｐｅｒｓｏｎａｌ  Ｃｅｌｌ  Ｉｍａｇｅｒ  （ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を用いて行う半自動定量化方法は、固定細胞をカウントするのに特に適している。製造者指示書に従ってこの方法を行うことができる。
【００４２】
好ましい実施形態では、分化期の終わりにおいてアポトーシス細胞死を決定する。アポトーシス、またはアポトーシス細胞死は、細胞がプログラム細胞死する精密に制御された機序である。アポトーシス中に細胞が経験する形態変化数のいずれか１つを検出することにより、アポトーシスを測定することができる。このような形態変化としては、ブレッブ（ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｂｌｅｂｂｉｎｇ）、細胞収縮、クロマチン凝縮および断片化、ならびにグローバルｍＲＮＡ崩壊が挙げられる。非限定的例として、細胞集団内の細胞内のアポトーシス細胞数を、その凝縮クロマチン構造および凝縮細胞形態をもたらすアポトーシス細胞により示される固有光散乱プロファイルに基づきフローサイトメトリーを用いて決定することができる。アポトーシス核内の固有クロマチン構造がいくつかの核染色の特徴的蛍光サインを生じるとき、共通の核蛍光マーカーを使用してアポトーシスを検出することもできる。アポトーシス細胞の固有代謝プロファイルは、ＡＤＰおよびＡＴＰなどの特定の代謝の存在を定量化する検査を使用してアポトーシスを測定することもできることを意味する。あるいは、蛍光顕微鏡またはウェスタンブロット解析を使用してアポトーシス中に上方制御されることが知られているレベルタンパク質を定量化することができる。適切なアポトーシス関連タンパク質は当業者に周知であり、このいくつかは、本発明との関連でアポトーシスを検出および定量化することに適している。好ましくは、切断カスパーゼ３（ＣＣ３）レベルを使用してアポトーシスの程度を定量化する。好ましくは、ＣＣ３レベルを、抗ＣＣ３抗体を使用して測定する。
【００４３】
経時的（ｃ）〜（ｅ）の結果の漸進的変化を使用して、経時的にＡＤに向かうＭＣＩの診断を受けた患者の進行を示すことができることが予測される。例えば、各時点におけるＡＤへ移行する患者の確率を示すために、（ｃ）〜（ｅ）の結果を統計解析に適用することができる。確率スコアの増加は、患者がＡＤへの移行に向かってさらに進行していることを示しているだろう。確率スコアの減少は、患者がＡＤへの移行に向かってさらに進行していないことを示しているだろう。ＡＤへの移行の確率の漸進的変化を使用してＡＤへの移行を阻止するための治療の有効性をモニターすることもできる。例えば、確率スコアが、治療を行っている間、経時的に減少または現状維持する場合、治療は効果がある。あるいは、確率スコアが、治療を行っている間、経時的に増加する場合、治療は効果がない。同様に、（ｃ）〜（ｅ）の結果を使用して患者の血清によるＨＮの調節を阻害する化合物を同定してもよく、したがって、特定の化合物はＡＤ治療開発の有望な主たる候補物であってよいことを推測する。例として、ＭＣＩからＡＤへ移行したと知られている患者から得られた血清を、候補薬物分子の存在および非存在下にインキュベートして、該化合物により結果または（ｃ）〜（ｅ）の結果が如何に変化するかを観察することができる。化合物の存在下での（ｃ）〜（ｅ）の結果を統計解析に適用して確率を作成し、化合物の非存在下での（ｃ）〜（ｅ）の結果から算出された確率スコアと比較する。ＡＤへの移行の確率スコアが化合物の存在下においてより低い場合、薬物を治療組成物の開発のための有望な候補分子と見なしてよい。
【００４４】
したがって、本発明の第二態様は、ＡＤ薬物臨床治験に選択することの適格性に関して、ＭＣＩの診断を受けた患者の層別化を支援するインビトロ細胞アッセイを提供する。このアッセイは：
（ａ）ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
（ｂ）その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られ
た血清を含む培養培地中で培養するステップ；
（ｃ）培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；
（ｄ）培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および
（ｅ）増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、
統計解析を（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果により行い、前記統計解析結果を使用して前記臨床治験に選択することの前記患者の適格性を決定することができる。
【００４５】
本発明の第二態様の好ましい実施形態では、方法を使用して、ＡＤ薬物臨床治験に選択された患者が前記治験に含まれるのに適した候補であったかどうかを遡及的に判別することができる。多くのＡＤ治療に不成功に終わった臨床治験は、ＭＣＩに罹患している患者およびＡＤに罹患している患者の両方を組み入れた患者コホートを含む。治療は、通常、患者がＡＤ発症になりそうであるかどうかに関係なくＭＣＩ全体の群に対して行われる。ＡＤ治療の有効性を調査して、臨床治験においてＡＤ発症の低い確率を有するＭＣＩ患者の選択は、有効性および治験結果の信頼性を低下させるだろう。したがって、このアッセイを使用して、該患者はＡＤへの移行に進まなかったことが理由で治療は認知機能低下を上手く回復または阻害しなかったのかどうかを判別することができる。治験結果の解析において治験に選択することに適した患者のみを選択することは、治療効果のより正確な状況を浮かび上がらせることを可能とする。
【００４６】
好ましい実施形態では、アッセイは：（ｆ）分化後に存在する成熟神経細胞、未成熟神経細胞、もしくはグリア細胞のレベル、または（ｇ）増殖中もしくは増殖後のアポトーシスレベルの１つ以上を測定することをさらに含む。（ｆ）および／または（ｇ）の結果を使用して、臨床治験に選択することの前記患者の適格性を決定することができる。
【００４７】
好ましくは、未成熟神経細胞、成熟神経細胞、またはグリア細胞のレベルを、それぞれ、Ｄｃｘ、Ｍａｐ２、またはＳ１００βのレベルの検出により測定する。好ましくは、アポトーシスレベルを、ＣＣ３発現のレベルの検出により測定する。これらのタンパク質のいずれかの発現レベルを、前に記載した従来方法のいずれかを用いて定量化することができる。
【００４８】
本発明の第三の態様は、ＭＣＩと診断された患者に行った治療の有効性の評価を支援するインビトロ細胞アッセイを提供する。このアッセイは、以下のステップを含む：
（ａ）ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
（ｂ）その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
（ｃ）培養された前記前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；
（ｄ）培養された前記前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および
（ｅ）増殖した前記海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップを含み、
該アッセイを治療期間中規則的間隔で反復して異なる時点において（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果を生じ、前記異なる時点における結果を比較して前記治療有効性の評価を支援する。
【００４９】
本発明の第三態様の好ましい実施形態では、治療を行っている患者がＭＣＩからＡＤに移行することを予測する。好ましくは、ＭＣＩからＡＤへの移行の予測は、本発明の第一態様によるアッセイを行った結果である。
【００５０】
本発明の本態様では、患者に行っている治療は、ＭＣＩからＡＤへの移行を予防するこ
とを目的とする。
【００５１】
好ましい実施形態では、前記規則的間隔は、６か月毎の間隔である。規則的間隔でのアッセイの実施は、治療の長期的有効性をモニターすることを可能とする。好ましくは、ＭＣＩの初期診断に対応するベースライン（Ｔ０）から間隔を算出する。
【００５２】
好ましい実施形態では、アッセイは：（ｆ）分化後に存在する成熟神経細胞、未成熟神経細胞、もしくはグリア細胞のレベル、ならびに／または（ｇ）増殖中もしくは増殖後のアポトーシスレベルの１つ以上を測定することをさらに含む。（ｆ）および／または（ｇ）の結果を使用して、経時的に治療の有効性をモニターすることができる。
【００５３】
好ましくは、未成熟神経細胞、成熟神経細胞、またはグリア細胞のレベルを、それぞれ、Ｄｃｘ、Ｍａｐ２、またはＳ１００βのレベルの検出により測定する。好ましくは、アポトーシスレベルを、ＣＣ３発現のレベルの検出により測定する。これらのタンパク質のいずれかの発現レベルを、本明細書に記載されている従来方法のいずれかを用いて定量化することができる。
【００５４】
第四の態様によれば、本発明は、ＭＣＩと診断された患者の病気の進行をモニターするためのインビトロ細胞アッセイを提供する。該アッセイは：
（ａ）  ヒト海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の増殖期中、前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
（ｂ）  その後、前記海馬前駆細胞を、前記前駆細胞の分化期間中に前記患者から得られた血清を含む培養培地中で培養するステップ；
（ｃ）  前記培養前駆細胞の増殖レベルを決定するステップ；
（ｄ）  前記培養前駆細胞の平均細胞数を決定するステップ；および
（ｅ）  前記増殖海馬前駆細胞の分化後のアポトーシス細胞死をモニターするステップ、
を含み、
該方法を規則的間隔で反復して異なる時点において（ｃ）〜（ｅ）の各々の結果を生じ、前記異なる時点の結果を、病気進行をモニターするために比較する。
【００５５】
本発明の第四態様の好ましい実施形態では、前記規則的間隔は、６か月毎の間隔である。好ましくは、ＭＣＩの初期診断に対応するベースライン（Ｔ０）から間隔を算出する。
【００５６】
別の好ましい実施形態では、アッセイは、次の１つ以上を測定することをさらに含む：（ｆ）分化後に存在する成熟神経細胞、未成熟神経細胞、もしくはグリア細胞のレベル、ならびに／または（ｇ）増殖中もしくは増殖後のアポトーシスレベル。（ｆ）および／または（ｇ）の結果を異なる時点において比較して病気進行のモニタリングを支援することができる。
【００５７】
好ましくは、未成熟神経細胞、成熟神経細胞、またはグリア細胞のレベルを、それぞれ、Ｄｃｘ、Ｍａｐ２、またはＳ１００βのレベルの検出により測定する。好ましくは、アポトーシスレベルを、ＣＣ３発現のレベルの検出により測定する。これらのタンパク質のいずれかの発現レベルを、本明細書に記載されている従来方法のいずれかを用いて定量化することができる。
【００５８】
本発明の第二、第三および第四の態様の各々の好ましい実施形態では、ステップ（ａ）および（ｂ）における培養培地中の血清の最終濃度は、０．５（ｖ／ｖ）％〜５（ｖ／ｖ）％、最も好ましくは１（ｖ／ｖ）％である。
【００５９】
本発明の第二、第三および第四の態様の各々の好ましい実施形態では、ステップ（ａ）は、培養培地中に細胞を播種した２４時間後に培養培地に血清を添加することを含む。好ましくは、ステップ（ａ）における培養培地は、ＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴを含む。
【００６０】
本発明の第二、第三および第四の態様の各々の好ましい実施形態では、ステップ（ａ）で言う増殖期は、４８時間の期間である。
【００６１】
本発明の第二、第三および第四の態様の各々の好ましい実施形態では、培養培地をステップ（ａ）および（ｂ）の間で交換する。好ましくは、（ｂ）において使用される培養培地は、ＥＧＦ、ｂＦＧＦおよび４−ＯＨＴの全てを含むことはない。ステップ（ｂ）の分化期の初期において、培養培地に血清を添加してよい。好ましくは、ステップ（ｂ）において言う分化期は、７日以下の期間である。
【００６２】
本発明の第二、第三および第四の態様の各々の好ましい実施形態では、アッセイは、患者の生活要因の１つ以上を決定するさらなるステップを含む。好ましい実施形態では、患者の教育状況は、統計解析に含まれる。好ましくは、教育状況は、正規教育の総年数に対応する。
【００６３】
本発明の第二、第三および第四の態様の各々の好ましい実施形態では、アッセイにおいて使用される海馬前駆細胞を、例えば、ＥＧＦ、ｂＦＧＦ、および４−ＯＨＴの存在下で細胞が無限に分化するように、レトロウイルス導入によりｃ−ｍｙｃＥＲ発がん遺伝子を導入することにより条件付不死化する。より好ましくは、海馬前駆細胞は、ＨＰＣ０Ａ０７セルライン由来の細胞、より好ましくはＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞である。
【００６４】
好ましい実施形態では、海馬前駆細胞の増殖レベルを、増殖期の終わりに決定する。好ましくは、増殖レベルを、海馬細胞のＫｉ６７発現の測定により決定する。Ｋｉ６７発現を、抗Ｋｉ６７抗体を用いて測定することができる。
【００６５】
本発明の第二、第三および第四の態様の各々の好ましい実施形態では、平均細胞数を、増殖期の終わりおよび分化期の終わりにおいて決定する。
【００６６】
本発明の第二、第三および第四の態様の各々の好ましい実施形態では、アポトーシス細胞死を、分化期の終わりにおいて決定する。アポトーシス細胞死を、ＣＣ３発現の測定により決定することができる。ＣＣ３発現を、抗ＣＣ３抗体を用いて測定することができる。
【００６７】
本発明の第五態様は、上記に記載されている本発明の第一〜第四態様のいずれかによりアッセイにおけるヒト海馬前駆細胞を含む基質の使用である。
【００６８】
好ましくは、アッセイにおいて使用される海馬前駆細胞を、例えば、ＥＧＦ、ｂＦＧＦ、および４−ＯＨＴの存在下で細胞が無限に分化するように、レトロウイルス導入によりｃ−ｍｙｃＥＲ発がん遺伝子を導入することにより条件付不死化する。より好ましくは、海馬前駆細胞は、ＨＰＣ０Ａ０７セルライン由来の細胞、より好ましくはＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞である。
【００６９】
基質は、細胞アッセイを行うためのいずれもの従来の基質であってよい。適切な基質は、当業者に明白であろう。
【００７０】
本発明の第六の態様は、ＭＣＩからＡＤへの移行のバイオマーカー、ＡＤの進行のバイ
オマーカーおよび／またはＡＤをモニターするためのバイオマーカーとしての海馬神経新生の使用である。
【００７１】
本発明の第七態様では、ＡＤの治療標的および／またはＡＤ発症を遅延する介入標的としての海馬神経新生の使用を提供する。
【００７２】
本発明の第八態様は、本発明の第六態様によるＭＣＩからＡＤへの移行に関するバイオマーカーとして、または、本発明の第七態様によるＡＤの治療標的および／またはＡＤ発症を遅延するための介入標的としての海馬神経新生の使用を対象とする。好ましくは、不死化ヒト海馬前駆細胞をヒト血清に暴露することにより海馬神経新生をインビトロで測定し、ヒト血清最終濃度は好ましくは１（ｖ／ｖ）％である。
【００７３】
好ましい実施形態では、分化期の終わりにおいてアポトーシス細胞死を決定する。
【００７４】
以下の非限定的例を参照して、本発明をさらに説明する。
【実施例】
【００７５】
ＡＤに移行した（ＭＣＩコンバーター）かまたは継続的追跡調査来院を通して認識力が安定したままである（ＭＣＩ非コンバーター）かのいずれかのＭＣＩ患者由来のヒト海馬前駆細胞および長期血清サンプルを利用することにより、本発明者らは、ＨＮに対するヒト全身環境（すなわち、全身環境（ｓｙｓｔｅｍｉｃ  ｍｉｌｉｅｕ）の組成物）の寄与の確立および本発明者らのＨＮアッセイをＭＣＩからＡＤへの移行を予測するのに使用することができるかどうかの判別をしようとした。
【００７６】
材料および方法
セルライン
正常終了に従い、ＵＫおよびＵＳＡ倫理的法的ガイドラインに従い、Ａｄｖａｎｃｅｄ
Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ  Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ（米国カリフォルニア州アラメダ）（Ｓｔａｎｇｌ，Ｄ．  ｅｔ  ａｌ  ２００９；Ｚｕｎｓｚａｉｎ，Ｐ．Ａ．  ｅｔ  ａｌ  ２０１２；Ａｎａｃｋｅｒ．Ｃ．  ｅｔ  ａｌ  ２０１３）から得られた第一３か月雌胎児海馬組織由来のヒト多分化能海馬前駆細胞／幹細胞株ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ（英国ＲｅＮｅｕｒｏｎ  Ｌｉｍｉｔｅｄ）を使用して全ての実験を行った。上皮増殖因子（ＥＧＦ）、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）および４−ヒドロキシタモキシフェン（４−ＯＨＴ）の存在下、無限に増殖可能とするｃ−ｍｙｃ−ＥＲＴＡＭトランスジーンの導入により、ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞を条件付不死化した（Ｐｏｌｌｏｃｋ，Ｋ．ら（２００６））。これらの因子の除去は、神経細胞、アストロサイトまたはオリゴデンドロサイトへの自然分化を誘発する。
【００７７】
血清サンプル
１）ＡＤを原因とする認知症を後に発症した（ＭＣＩコンバーター、ｎ＝３８、２〜５回の毎年追跡調査来院）または２）ＡＤを発症せず（ＭＣＩ非コンバーター、ｎ＝１８、３〜６回の毎年追跡調査来院）、一時的な記憶問題を有したが診断から少なくとも３年間の期間にわたって記憶力が安定なままであったＭＣＩと診断された個体由来の１％ヒト血清に、増殖および分化しているＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞を暴露した。各試験の被験者由来長期血清サンプルを使用して経時的にＨＮ変化をモニターした。これにより、各追跡調査来院および経時的にＨＮにおける対象のばらつき内および対象のばらつき間のモデリングに応じて神経新生読み取りを得ることを可能とした。試験のためにＭＣＩ非コンバーターを選択する場合、最低３回の年次評価を必要とした。同様に、絶対的に最低でもＭＣＩコンバーターから２つの血清サンプル、１つは移行時に集め、少なくとも１つはＭＣＩ段階からの血清サンプルであった。血清サンプルを−８０℃で貯蔵し、実験を行う前に１
回の凍結／解凍サイクルを行った。
【００７８】
インフォームドコンセントの原理（Ｌｏｖｅｓｔｏｎｅ，  Ｓ．ら（２００９））に従って、ＥＵ  ＡｄｄＮｅｕｒｏＭｅｄ  Ｃｏｎｓｏｒｔｉｕｍ、多施設欧州研究、およびＫｉｎｇ’ｓ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｐａｒｔｎｅｒｓ−Ｄｅｍｅｎｔｉａ  Ｃａｓｅ  Ｒｅｇｉｓｔｅｒ（ＫＨＰ−ＤＣＲ）、ＵＫ臨床および集団ベースの研究のフレームワーク内に全ての血清サンプルを集めた。（ＭｃＫｈａｎｎ，Ｇ．  ｅｔ  ａｌ  １９８４）および［２７］基準に従って、起こりそうなＡＤの診断を行った。（Ｐｅｔｅｒｓｏｎ，Ｒ．Ｃ．  ｅｔ  ａｌ  ２００１）基準に従ってＭＣＩを診断した。継続的な追跡調査来院中に臨床診断を行った。認知（機能）評価の時に血清を集めた。
【００７９】
ヒト海馬神経新生に対する全身環境の影響を検査するためのインビトロアッセイ
全身環境（すなわち、血清、またはより詳細には全身環境（ｓｙｓｔｅｍｉｃ  ｍｉｌｉｅｕ））が如何にヒトＨＮに影響を及ぼすか試験するために、本発明者らは、ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞を１％血清で処理するインビトロアッセイを開発および最適化した。増殖（４８時間）および分化（７日）の両方の間に、細胞培養液に血清を添加した。細胞播種２４時間後、培地（詳細は、Ａｎａｃｋｅｒ，Ｃ．ら  ２０１１）を、１％血清を含む培地と交換した。４８時間後、細胞を４％パラホルムアルデヒド中に固定した。
【００８０】
ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞の分化に対する全身的効果を検査するために、１％血清の存在下での増殖４８時間後（上記のように）、培地を、４−ＯＨＴ、ＥＧＦおよびＦＧＦを含まない培地と交換して細胞が自然に分化するのを可能とした。分化７日後に実験を終了して、培地交換および別の血清添加を避けた。加えて、この時間は、未成熟および成熟神経細胞の変化を検出するのに充分である（Ａｎａｃｋｅｒ，Ｃ．  ｅｔ  ａｌ  ２０１１；Ｚｕｎｓｚａｉｎ，Ｐ．Ａ．  ｅｔ  ａｌ  ２０１２；Ａｎａｃｋｅｒ，Ｃ．  ｅｔ
ａｌ  ２０１３）。１％血清を添加した培地を、ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞の増殖および分化の両方の間に１回のみ添加した。各実験のため、３つの生物学的反復（３つの異なる継代数の細胞）を使用し、各生物学的反復のため、技術的トリプリケートがあるだろう。１５〜２４の範囲の継代数のＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞を用いて全ての実験を行った。
【００８１】
免疫組織化学および半自動解析
増殖は、ウサギポリクローナル抗Ｋｉ６７（Ａｂｃａｍ社）抗体を用いて評価した；アポトーシス−ウサギモノクローナル抗ＣＣ３抗体；神経分化−ウサギポリクローナル抗Ｄｃｘ（Ａｂｃａｍ社）、マウスモノクローナル抗Ｍａｐ２（Ａｂｃａｍ社）。第二抗体をＡｌｅｘａ  ４８８またはＡｌｅｘａ５５５（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）と結合し、核をＤＡＰＩと対比染色した。細胞数および表現型の半自動定量化を、ハイスループット装置Ｃｅｌｌｉｎｓｉｇｈｔ  Ｐｅｒｓｏｎａｌ  Ｃｅｌｌ  Ｉｍａｇｅｒ  Ｖ２（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を用いて、９６ウェルプレートで行った。
【００８２】
統計解析
一変量解析のため、両側ペアードｔ−スチューデント検定、ボンフェローニ補正を用いた事後比較の一元および二元配置分散分析を使用した。
【００８３】
データセットの長期的側面のせいで、各個体に使用できる評価情報の様々な数を含めることを可能とし、追跡調査来院間が等間隔であることを必要としないので、本発明者らは、反復測定のため線形混合効果回帰モデルを使用した。ランダム切片モデルおよびランダム傾きモデルを、推定の方法として制限付き最尤法にフィットさせた。全ての解析を、年齢、性別、および教育状況に関して調節した。
【００８４】
モデルにおけるランダム効果を特定するために、各血清提供者にＩＤを割り当てた。モデル解釈を支援するために、個体の年齢はコホートメジアン（７７歳）を中心とした。移行までの時間を年で測定し、ＭＣＩからＡＤへの移行を示す０に中心がある。移行前の時間を負とし、移行後の時間を正の値とした。教育年数またはメジアンで二分する（低教育≦教育１０年、高教育＞教育１０年）かのいずれかでモデル中に教育を入れた。ＭＣＩコンバーターまたは非コンバーターへの分類は二分した（ＭＣＩコンバーターは１とし、非コンバーターは０とした）。
【００８５】
多くの個別の特徴または併存疾患がＨＮおよび／またはＡＤのリスクに影響を与え得ることを考えれば、モデル中に考えられる可能性のある予測因子の中でも以下のものであった：ＡＤ危険因子（性別、メジアン辺りに中心のある年齢および移行までの時間（またはＭＣＩ非コンバーターのベースラインからの時間））、教育レベル、単独生活およびＭＭＳＥスコア（ベースラインＭＭＳＥ、ＭＭＳＥスコア変化／年）；併存疾患（糖尿病、関節炎、高血圧症、甲状腺機能低下症、鬱病、がん、脳卒中、狭心症、炎症およびアレルギー）；薬物摂取（抗鬱剤、スタチン系薬剤、非ステロイド系抗炎症薬）；サプリメント（ビタミン類、オメガ３脂肪酸）；生活スタイル関連因子（習慣性の飲酒、喫煙）。加えて、本発明者らは、異なる予測因子のいくつかの生物学的に納得できる相互作用も試験した。全ての混合効果回帰モデルを、赤池情報量規準（ＡＩＣ）、尤度比検定および逸脱度を用いて評価した。
【００８６】
ロジスティック回帰分析および受信者動作特性（ＲＯＣ）曲線を行い、ＡＤへの移行の予測における選択された変数の分類精度を決定した。曲線下面積を使用して、ＭＣＩコンバーターおよび安定なＭＣＩ間の識別を推定した。
【００８７】
全ての統計解析を、Ｐｒｉｓｍ５．０ソフトウェア（ＧｒａｐｈＰａｄ  Ｓｏｆｔｗａｒｅ社）またはＳＴＡＴＡ１３を用いて行った。
【００８８】
結果
血清提供者のベースラインおよび長期的特徴
試験に記録された個体のベースライン特性および疫学的病歴についての詳細な情報を表１中に示している。「ベースライン」は、アッセイを最初に行う点を表す。これは、血清を集めたときの最初の患者の来院である。全ての被験者は、年齢（ｐ＝０．３２０）および性別を（ｐ＝０．１２９、表１参照）マッチさせた。ＭＣＩコンバーターは、ＭＣＩ非コンバーターと比較して終えた教育年数が有意に少なかった（ｐ＝０．００２）。ＭＣＩコンバーターは、ＭＭＳＥにおいても有意に少ないスコアであった（ｐ＝０．０３１）。
【００８９】
表１．試験の被験者のベースライン特性および疫学的病歴。併存疾患は、疾病の履歴または現在罹患していることを表す。薬物摂取は、薬物治療の履歴または現在の摂取のいずれかを意味する。全データは、数（％）または平均（±ＳＤ）として示す。
【００９０】
【表１】
2019530454.tif 000003
＊サプリメントは、ビタミン類およびオメガ３脂肪酸を含んだ。
【００９１】
血清提供者の疫学的病歴をモデリング段階において使用して、ＨＮおよび／またはＡＤに影響を及ぼし得るいずれかの可能性のある交絡因子の調節を可能とする。
【００９２】
増殖減少および神経新生増加はＭＣＩからＡＤへの進行を特徴付ける
第一に、ＭＣＩコンバーター由来長期血清サンプルを用いて、本発明者らは、ベースライン診断からＡＤへの移行までのＨＮに対する全身環境の影響を解析した。本発明者らは、各追跡調査来院に対応する神経新生読み取りを得て、ヒトＨＮに対する全身効果の個体内および個体間の差のモデリングを行った。反復測定のための混合効果モデルをフィットさせてＨＮ変化の軌跡に影響を及ぼす因子を特定した。年齢はＨＮの有意な予測因子ではない（データ示さず）ので、本発明者らは、長期解析−移行までの時間、すなわち、ＡＤを原因とする認知症の臨床診断までの年数の時間を可能とする別の測定を使用した。試験に使用された最後の血清サンプルをＡＤへの移行時に得るので、これを０の値とし、移行までの時間を負の値（すなわち、移行前の１年は−１年である）とした。
【００９３】
ヒト海馬前駆細胞の増殖に対するＭＣＩからＡＤへのコンバーターの血清効果
ランダム切片モデルは、病気進行にわたって海馬前駆細胞数の増加があることを予測している（ｐ＝０．００２、表２）。これは増殖増加に関連しておらず、逆に、移行までの時間にわたる海馬前駆細胞増殖レベル減少（％Ｋｉ６７＋細胞、ｐ＜０．０００１、表２）を検出した。移行までの時間は、増殖ならびに平均細胞数および％Ｋｉ６７＋細胞の両方のランダム切片モデル（表２参照）における細胞数の唯一の有意な予測因子であった。
【００９４】
加えて、ランダム傾きを有する混合効果モデルは、アポトーシス細胞死レベル（％ＣＣ３＋細胞、ｐ＜０．０００１、表２）がＡＤへの移行までの時間の低下と共に増加することを予測している。より高い教育を有する個体に関して、その増加は、１０．５年未満の教育を有するものと比較してより少なく、食習慣などの教育レベルと関連する環境因子が病気進行の間の細胞死に対する有意に影響を及ぼすことを示唆している。
【００９５】
平均細胞数についての分散パーセンテージは６６．９％、Ｋｉ６７については８８．９２％、およびＣＣ３については８８．３％であり、モデルの優れた適合を示していた。
【００９６】
ヒト海馬前駆細胞の分化に対するＭＣＩからＡＤへのコンバーターの血清効果
ヒト海馬前駆細胞を、増殖中および分化中の両方に血清サンプルに暴露した。ランダム切片（細胞数、Ｄｃｘに対して）またはランダム傾き（Ｍａｐ２に対して）を有する混合効果モデルは、病気進行と共に細胞数増加（ｐ＝０．０３７、表２）および未成熟（Ｄｃｘ、ｐ＝０．０２１、表２）および成熟（Ｍａｐ２、ｐ＝０．０４４、表２）神経細胞レベルの増加があることを予測している。本発明者らは、分化中におけるアポトーシスのヒト海馬前駆細胞数の有意な変化を検出しなかった（データ示さず）。
【００９７】
移行までの時間は、アッセイの分化段階中における平均細胞数の唯一の有意な予測因子であった（表２参照）。ベースラインにおけるＭＭＳＥスコアおよび移行までの時間は、未成熟神経細胞数、すなわち、ベースラインにおけるより高いＭＭＳＥスコア、Ｄｃｘ陽性神経細胞のより少ない数を予測している。血清提供者の性別は、成熟神経細胞の予測レベルに有意に影響を与え、移行までの時間に合わせて制御する場合、女性は、男性と比較して平均して３．３４％少ないＭａｐ２陽性細胞を有する。
【００９８】
平均細胞数についての分散パーセンテージは７２．４７％、Ｄｃｘについては５８．３１％、Ｍａｐ２については５５．８３％であり、モデルの優れた適合を示していた。
【００９９】
アッセイの増殖および分化段階に関する混合効果モデルに含めた場合、変数および併存疾患（表１に挙げた通り）は有意でなかった。有意な相互作用効果は決定されなかった。
【０１００】
表２．ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞をＭＣＩコンバーター由来１％血清に暴露した場合の、ヒト海馬神経新生の変化に影響を及ぼす因子（従属変数）  最も低いＡＩＣおよび逸脱を有するモデルを最良の適合として選択した。解析における全予測因子についての係数推定（β）、標準誤差ＳＥ（β）、回帰係数の９５％信頼区間（ＣＩ）および有意水準を提供する。
【０１０１】
【表２−１】
2019530454.tif 000004
【表２−２】
2019530454.tif 000005
【０１０２】
表３．ＨＰＣ０Ａ０７／０３Ｃ細胞をＭＣＩコンバーターまたはＭＣＩ非コンバーターのいずれか由来１％血清に暴露した場合、ヒト海馬神経新生に影響を及ぼす重要因子（従属変数）  最も低いＡＩＣおよび逸脱を有するモデルを最良の適合として選択した。解析における全予測因子についての係数推定（β）、標準誤差ＳＥ（β）、回帰係数の９５％信頼区間（ＣＩ）および有意水準を提供する。
【０１０３】
【表３】
2019530454.tif 000006
【０１０４】
ＭＣＩコンバーター対ＭＣＩ非コンバーター
ＨＮに対するＭＣＩコンバーターおよびＭＣＩ非コンバーター由来血清の影響の比較は、ヒト海馬前駆細胞の増殖中および分化中の両方における有意差を示した。
【０１０５】
適合モデルを用いて、本発明者らは、アッセイの増殖段階中、血清に暴露された海馬前駆細胞数は継続的追跡調査来院とともに増加するが、しかしながら、ＭＣＩコンバーター由来血清で処理した細胞数は、ＭＣＩ非コンバーター由来血清の効果と比較して高いことを示した（ｐ＜０．０００１、図１）。
【０１０６】
一方、Ｋｉ６７陽性細胞数が時間と共に減少するが、しかしながら、これらをＭＣＩコンバーター由来血清に付した場合それほど有意でないことが観察された（ｐ＝０．０００１、図１ｃ）。加えて、ＭＣＩコンバーター由来血清が増殖中（ｐ＝０．０００１、Ｒ２＝０．０９９、Ａｄｊ  Ｒ２＝０．０９３、図１ｅ）および分化中（ｐ＜０．０００１、Ｒ２＝０．２６３、Ａｄｊ  Ｒ２＝０．２５８、図１ｆ）の両方においてより高いアポトーシス細胞死をもたらすが、しかしながら、この影響は時間非依存性であることが検出された。
【０１０７】
適合モデルは、アッセイの分化段階中、血清で処理した細胞数の全体的減少があることを示し、ＭＣＩコンバーター由来血清で処理したヒト海馬前駆細胞はＭＣＩ非コンバーター由来血清で処理した細胞と比較して有意に高い数の減少を特徴とした（ｐ＝０．０００１）。さらに、成熟神経細胞数（Ｍａｐ２陽性細胞）数は、細胞をＭＣＩコンバーター由来血清で処理した場合に有意に増加した（ｐ＝０．０００５、図１ｄ）。
【０１０８】
ベースラインデータに逐次ロジスティック回帰分析を適用することにより、本発明者らは、ＭＣＩからＡＤへの移行の最良予測因子を決定した。
【０１０９】
表４は、ヒト海馬神経新生のインビトロモデルおよび逐次ロジスティック回帰分析に基づいたＡＤへの移行の予測因子を示す。（予測因子：教育（年で測定）、増殖中の平均細胞数、増殖マーカー（Ｋｉ６７）、分化中のアポトーシス（切断型カスパーゼ３（ＣＣ３））。
【０１１０】
【表４】
2019530454.tif 000007
＊モデルにおける予測因子各々についてのｐ値
【０１１１】
適合のホスマー・レメショウ適合度（ｐ＝０．３２４）およびＳｔａｔａリンクテストを用いてモデルの適合を確認し、指定誤差がないことを示した（＿ｈａｔ＝０．００１、＿ｈａｔｓｑ＝０．１１０）。個体のＭＣＩコンバーターまたは非コンバーター群への割り当てにおける選択された予測因子の精度を評価するため、受信者動作特性（ＲＯＣ）解
析を行った（図２参照）。図２は、モデルの優れた識別力（曲線下面積、ＡＵＣ＝９６．７５％）が将来のコンバーターおよび非コンバーターを識別することを示している。モデルがコンバーター９２．１１％を正確に分類し、ＭＣＩ非コンバーター９４．１２％を正確に識別することを示している。
【０１１２】
結論
このデータは、ＭＣＩと診断された患者から得られた血清サンプルを、インビトロで海馬前駆細胞と共にインキュベートし、その後、海馬神経新生に対する血清サンプルの効果をインビトロでモニターすることを使用して、前記患者がＭＣＩからアルツハイマー病に移行する尤度を正確に予測することができることを示している。
【図１Ａ】
2019530454.tif 000008
【図１Ｂ】
2019530454.tif 000009
【図１Ｃ】
2019530454.tif 000010
【図１Ｄ】
2019530454.tif 000011
【図１Ｅ】
2019530454.tif 000012
【図１Ｆ】
2019530454.tif 000013
【図２】
2019530454.tif 000014
【国際調査報告】
2019530454.tif 000015
2019530454.tif 000016
2019530454.tif 000017