【手続補正書】
【提出日】平成19年9月28日(2007.9.28)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００１７
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００１７】
多型対立遺伝子を担持する個体はＤＮＡ、ＲＮＡ、またはタンパク質レベルで、当業者に既知の様々な方法を使用して検出できる。同定および検出の戦略は、例えばＥＰ７３０,６６３、ＥＰ７１７,１１３、およびＰＣＴ  ＵＳ９７／０２１０２に記載されている。本発明の方法は、予め特徴付けられた多型の検出を含み得る。すなわち、ジェノタイピング位置およびその部位に存在する多型の形態の性質が既に決定されている(上記の調べられた遺伝子に関する記載参照)。この情報の利用可能性は、既知の多型の形態の特異的同定のために設計すべきプローブの組を可能にする。一ヌクレオチド多型を含む対立遺伝子の同定は、標的サンプルからのＤＮＡの増幅を含み得る。これは例えば、ＰＣＲにより達成できる。一般のＰＣＲ法は：Principles and Applications for DNA Amplification, (ed. Erlich, Freeman Press, New York, New York, 1992)；ＰＣＲプロトコールは：A Guide to Methods and Applications(eds. Innis, et al., Academic Press, San Diego, Calif., 1990)を参照。特異的ＤＮＡ配列における多型の検出は、対立遺伝子特異的制限酵素開裂を利用した制限フラグメント長多型検出(Kan & Dozy, Lancet II: 910 912(1978))、固定化オリゴヌクレオチド(Saiki et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 86: 6230 6234(1969))またはオリゴヌクレオチドアレイ(Maskos & Southern, Nucl. Acids Res. 21: 2269 2270(1993))を含む、対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドプローブとのハイブリダイゼーション(Wallace et al, Nucl. Acids Res. 6: 3543 3557(1978))、対立遺伝子特異的ＰＣＲ(Newton et al., Nucl. Acids Res. 17: 2503 2516(1989))、ミスマッチ修復検出(ＭＲＤ)(Faham & Cox, Genome Res. 5: 474 482(1995))、ＭｕｔＳタンパク質の結合(Wagner et al., Nucl. Acids Res. 23: 3944 3948(1995)、変性剤濃度勾配ゲル電気泳動(ＤＧＧＥ)(Fisher & Lerman, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 80: 1579 1583(1983))、一本鎖高次構造多型検出(Orita et al., Genomics 5: 874 879(1983))、不適正塩基対でのＲＮＡｓｅ開裂(Myers et al., Science 230: 1242(1985))、ヘテロ二本鎖ＤＮＡの化学的(Cotton et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 8Z: 4397 4401(1988))もしくは酵素的(Youil et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92: 87 91(1995))開裂、対立遺伝子特異的プライマー伸長法に基づく方法(Syvanen et al., Genomics 8: 684 692(1990))、遺伝学的ビット解析(ＧＢＡ)(Nikiforov et al., Nucl. Acids Res. 22: 4167 4175(1994))、オリゴヌクレオチドライゲーションアッセイ(ＯＬＡ)(Landegren et al., Science 241: 1077(1988))、対立遺伝子特異的ライゲーション連鎖反応(ＬＣＲ)(Barrany, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88: 189 193(1991))、ギャップＬＣＲ(Abravaya et al., Nucl. Acids Res. 23: 675 682(1995))、当分野で既知の標準法を使用した放射活性および／または蛍光ＤＮＡシークエンシング、およびペプチド核酸(ＰＮＡ)アッセイ(Orum et al., Nucl. Acids Res. 21: 5332 5356(1993); Thiede et al., Nucl. Acids Res. 24: 983 984(1996))を含むが、これらに限定されない様々な方法により達成できる。さらなる手引きは、Sambrook J et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Third Edition(Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, New York, 2000)により提供される。
【手続補正２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００３９
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００３９】
加えて、本明細書に記載の新規多型部位のいずれかの場所に存在する対立遺伝子の同一性を、目的である多型部位と連鎖不平衡にある本明細書に記載していない多型部位のジェノタイピングから間接的に決定し得る。第一の部位の特定の変異の存在が、第二の部位の他の変異の予測性を増加させるとき、２箇所の部位は連鎖不平衡にあると言うべきである(Stevens JC, Mol Diag 4: 309-317(1999)参照)。本明細書に記載の多型部位と連鎖不平衡にある多型部位は、本明細書で試験していない遺伝子の領域または他のゲノム領域に位置し得る。本明細書に記載の新規多型部位と連鎖不平衡にある多型部位のジェノタイピングは、多型部位の対立遺伝子の同定の検出について記載の方法のいずれかを含むが、これらに限定されない方法により行い得る。
【手続補正３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００９５
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００９５】
本明細書で使用する“ポリヌクレオチド”なる用語は、非修飾または修飾ＲＮＡまたはＤＮＡであり得る、すべてのＲＮＡまたはＤＮＡを意味すべきである。ポリヌクレオチドは、一本鎖および二本鎖ＤＮＡ、一本鎖と二本鎖領域の混合物であるＤＮＡ、一本鎖および二本鎖ＲＮＡ、および一本鎖と二本鎖領域の混合物であるＲＮＡ、一本鎖または、より典型的に、二本鎖または一本鎖および二本鎖領域の混合物であり得るＤＮＡおよびＲＮＡを含むハイブリッド分子を含むが、これらに限定されない。加えて、ポリヌクレオチドは、ＲＮＡまたはＤＮＡまたはＲＮＡとＤＮＡの両方を含む三本鎖領域を言及する。ポリヌクレオチドはまた１個またはそれ以上の修飾塩基を含むＤＮＡまたはＲＮＡならびに安定性もしくは他の理由のために修飾された主鎖を有するＤＮＡまたはＲＮＡも含む。
【手続補正４】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１０１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１０１】
処置に対する臨床応答と遺伝子型またはハプロタイプの間の相関を導き出すために、処置を受けている個体の集団(以後“臨床集団”と呼ぶ)により示される臨床応答に対するデータを得る必要がある。この臨床データは、既に行われている臨床試験の結果の解析により得てよくおよび／または臨床データは１種またはそれ以上の新規臨床試験の設計および実施により得てよい。
【手続補正５】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１１０
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１１０】
マーカーの絶対的発現レベルに基づいた決定とは別に、マーカーの標準化発現レベルに基づいた決定をなし得る。発現レベルを、マーカーの絶対的発現レベルを、その発現とマーカーではない遺伝子、例えば、構成的に発現されているハウスキーピング遺伝子の発現を比較することにより補正して標準化する。標準化のための適当な遺伝子は、アクチン遺伝子または上皮細胞特異的遺伝子のようなハウスキーピング遺伝子を含む。この標準化は、一つのサンプル、例えば患者サンプル中の発現レベルと他のサンプルのまたは異なる供給源からのサンプルの比較を可能にする。
【手続補正６】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１１１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１１１】
あるいは、発現レベルを相対的発現レベルとして提供できる。マーカーの相対的発現レベルを決定するための、マーカーの発現レベルを、１０個またはそれ以上の正常サンプル対疾患生物学的サンプル、好ましくは５０個またはそれ以上のサンプルについて決定し、その後当該サンプルの発現レベルを決定する。多数のサンプルにおいてアッセイした遺伝子の各々の平均発現レベルを決定し、これをマーカーの基線発現レベルとして使用する。試験サンプルに関して決定したマーカーの発現レベル(発現の絶対的レベル)を、次いでこのマーカーに関して得た平均発現値で割る。これにより相対的発現レベルが提供される。
【手続補正７】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１１７
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１１７】
当業者は、抗体または抗原を結合するための多くの他の担体を知っており、このような支持体を本発明での使用に適合できるであろう。例えば、患者細胞から単離されたタンパク質をポリアクリルアミドゲル電気泳動で流し、ニトロセルロースのような固体相支持体上に固定化する。次いで、該支持体を適当な緩衝液で洗浄し、続いて検出可能に標識された抗体で処理する。次いで、該固体相支持体を緩衝液で２回洗浄し、非結合抗体を除去する。固体支持体上の結合標識の量を次いで慣用の手段で測定し、この測定値を血中または他の体組織中のタンパク質の濃度に翻訳する。
【手続補正８】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１３６
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１３６】
要約すると、表５および６におけるデータは、臨床試験で見られた肝細胞毒性が、Ｎ−ベンゾイル−スタウロスポリンに対する様々な暴露の結果であるとの証拠を提供しなかった。
【手続補正９】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１４１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１４１】
しかしながら、ＩＬ１Ａ  ＳＮＰの両方、ＰＧ座位ＩＤ２７９および３０２は、来院３、４、または５で記録された最大血清アスパルテートトランスアミナーゼ値と関連した(各々ｐ＝０.０３１および０.０２９)。ＰＧ座位ＩＤ２７９、ＩＬ１ＡのプロモーターにおけるＣ→Ｔ転移(GenBank accession number X03833の５４９位)がＰＧ座位ＩＤ３０２と連鎖不平衡であることが報告されている。Jouvenne Pet al., Eur Cytokine Netw 10: 33 6(1999)。我々の発見は、これらの２箇所の座位の強い関係を支持する(９９.９９％)。ＰＧ座位ＩＤ３０２は、アラニンからセリンへのアミノ酸置換をもたらすエクソン５におけるＧ→Ｔ塩基変化(GenBank accession number X03833の６２８２位)である。これらＳＮＰの各々について、ＴＴ遺伝子型は稀である；ＰＧ座位ＩＤ２７９および３０２について、２個体のみがＴＴである。この理由のため、我々は、ＴＴホモ接合体個体と、ＧＴ(ＰＧ座位ＩＤ３０２)またはＣＴ(ＰＧ座位ＩＤ２７９)ヘテロ接合体を一緒に解析した。故に、ＰＧ座位ＩＤ２７９について、ＣＣ遺伝子型の対象をその座位でＴ(ＣＴまたはＴＴのいずれか)の対象と比較した。ＰＧ座位ＩＤ２７９について、ＣＣ個体の平均最大血清アスパルテートトランスアミナーゼ値は３７.１Ｕ／Ｌ、であり、一方Ｔ(ＣＴおよびＴＴ)個体は、２３.１Ｕ／Ｌの有意に低い平均最大血清アスパルテートトランスアミナーゼ値であった(ｐ＝０.００８９、ＡＮＯＶＡ)。同様に、ＰＧ座位ＩＤ３０２について、ＧＧである対象をＴ(ＧＴまたはＴＴのいずれかである対象)と比較した。データをこの方法を使用して分類したとき、各座位における遺伝子型と、肝細胞毒性の発生の間のかなり強い関係が見られた。ＰＧ座位ＩＤ３０２について、ＧＧ個体は３６.６Ｕ／Ｌの平均最大血清アスパルテートトランスアミナーゼレベルを有し、これはＴ(ＣＴおよびＴＴ)個体の平均最大血清アスパルテートトランスアミナーゼレベルである２２.９Ｕ／Ｌより有意に高かった(ｐ＝０.００９７、ＡＮＯＶＡ)。図１および図２における散布図は、Ｎ−ベンゾイル−スタウロスポリン摂取中に最高最大血清アスパルテートトランスアミナーゼ値であった対象が、ＰＧ座位ＩＤ２７９でＣＣおよびＰＧ座位ＩＤ３０２でＧＧであったことを示す。
【手続補正１０】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１４２
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１４２】
臨床試験において、複数のＳＮＰを肝細胞毒性との関係について試験したため、補正因子を結果に適用した。ボンフェローニ補正法は、ｐ値を１７倍(この治験で調べた多型ＳＮＰの数)に調節することを必要とする。
【数１】
2007512231.tif 000001
(式中、η＝PCL412 試験の数。)この補正因子を使用すると、ｐ＞０.００２９で関連するＳＮＰは有意ではない。ＩＬ１Ａ多型と、血清アスパルテートトランスアミナーゼレベルの関係は、０.００８９および０.００９７のｐ値を有した。