(57)【要約】      （修正有）【課題】腫瘍細胞表面に存在するレクチンと結合して腫瘍への高い集積能を示すリガンドを見いだし、該リガンドに放射性核種を結合する事により、腫瘍の診断・治療に有用な放射性診断剤及び治療剤を提供すること。【解決手段】腫瘍表面に存在するレクチンと特異的に結合する分子がＮ−アセチルグルコサミンまたはマンノースである糖蛋白よりなり、さらに糖蛋白としてアビジンが好適に用いられる。Ｉｎ−１１１、Ｔｃ−９９ｍ等で放射能標識された前記糖蛋白あるいはアビジンよりなる腫瘍診断剤及びＩｎ−１１１、Ｉ−１３１等で放射能標識された前記糖蛋白あるいはアビジンよりなる腫瘍治療剤。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
レクチンと特異的に結合する分子を有する糖蛋白を有効成分として含有する腫瘍治療剤。
【請求項２】
レクチンと特異的に結合する部分がＮ−アセチルグルコサミンまたはマンノースである糖蛋白質よりなる請求項１記載の腫瘍治療剤。
【請求項３】
糖蛋白がアビジンである請求項１または２記載の腫瘍治療剤。
【請求項４】
放射能標識された請求項１から３のいずれかに記載の腫瘍治療剤。
【請求項５】
放射能標識されたビオチンに、アビジンを結合した請求項３の腫瘍治療剤。
【請求項６】
Ｉｎ−１１１、Ｉ−１３１またはＩ−１２５より選ばれる１つで放射能標識された請求項４または５のいずれかに記載の腫瘍治療剤。
【請求項７】
請求項１ないし６記載の糖蛋白の腫瘍治療剤としての使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はヒト及び動物の腫瘍を診断・治療するための放射性医薬品に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒト及び動物体内に生じた腫瘍を診断するため、腫瘍に集積する物質と放射性核種を結合した医薬品の開発が進められている。放射性核種は細胞にとって有害であるため、正常部位へは集積せず、腫瘍細胞のみに結合してそのまま長時間集積する事が医薬品として望ましい。腹腔内腫瘍のために全身性の化学療法、腹腔内化学療法、外部からの粒子線治療、腔内への放射性コロイドの点滴注入などの処置がレーシーら（例えば、非特許文献１参照）により試みられてきたが十分な効果を示すアプローチではなかった。
【０００３】
放射性核種、化学治療剤や毒素を結合した抗腫瘍モノクロナル抗体を使った標的療法は腫瘍特異性が高く、正常細胞への毒性を抑え、腫瘍に対する毒性を強くすることができた。なかでも放射能標識した抗体を用いた腹腔内腫瘍の治療の試みが動物や患者に対して有効であった。しかしながら、血中放射能や正常組織での放射能標識物の非特異的取り込みが高かった為に、治療のための放射能投与には限界があった。
【０００４】
腫瘍細胞の表面にはレクチンが存在し、レクチンに結合したリガンドは細胞内に移行する事がロタン等（例えば、非特許文献２参照）により報告されている。レクチンは糖結合性蛋白であり、結合価が２価以上で動植物細胞を凝集し、多糖類や複合糖質を沈降させる。その結合特異性は単糖やオリゴ糖を用いた阻止試験で規定できるとされており、種々のレクチンが知られている。腫瘍表面のレクチンを特異的に認識する物質は腫瘍管理のために有望であると言えるが、十分にイメージングできるほど高い取り込みを示す効果的な物質は報告されていない。
【０００５】
【非特許文献１】Lacy et al;Management of malignant ascites, Surg.Gynecol.Obstet., 159:397-412頁、1984年
【非特許文献２】R. Lotan; Lectins in Cancer cells, Annals NewYork Academy Science, 551:385-398 頁、1988年
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、腫瘍細胞表面に存在するレクチンと結合し、腫瘍表面から腫瘍細胞内部へ移行できるリガンドが腫瘍の診断・治療に有用なキャリアーとなることを期待されながらも、適当なリガンドが見いだされていなかった状況に鑑み、レクチンと結合して腫瘍への高い集積能を示すリガンドを見いだし、当該リガンドに放射性核種を結合する事により、腫瘍の診断・治療に有用な放射性診断剤及び治療剤を提供する事を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
かかる課題を達成するため、本発明者らは鋭意研究を行った結果、腫瘍表面のレクチンと結合できる分子を有する糖蛋白を見いだし、本発明を完成した。すなわち、本発明はレクチンと特異的に結合する分子を有する糖蛋白を有効成分として含有する腫瘍診断剤または治療剤である。本発明の他の態様は、レクチンと特異的に結合する分子がＮ−アセチルグルコサミンまたはマンノースである糖蛋白よりなり、さらに糖蛋白としてアビジンが好適に用いられる。本発明の他の態様はＩｎ−１１１、Ｔｃ−９９ｍまたはＩ−１２３より選ばれる１つで放射能標識された前記糖蛋白あるいはアビジンよりなる腫瘍診断剤またはＩｎ−１１１、Ｉ−１３１またはＩ−１２５より選ばれる１つで放射能標識された前記糖蛋白あるいはアビジンよりなる腫瘍治療剤である。
【発明の効果】
【０００８】
腫瘍の治療は、腫瘍細胞だけでなく正常細胞にとっても有害な成分を使用するため、腫瘍に対し高い特異性を有する薬剤が求められていた。本発明のアビジンまたはアビジンのレクチン結合部位を有する物質は、腫瘍表面のレクチンとの特異性が高いので放射性物質を結合することで、腫瘍を標的とした治療を行うことが可能であり、また高い標的能力は腫瘍部分のイメージングに極めて有用である。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００９】
本発明の腫瘍診断剤または治療剤はレクチンと特異的に結合する分子を有する糖蛋白を有効成分としてなる。特に、レクチンと結合する分子は、好ましくは末端のＮ−アセチルグルコサミンまたはマンノースであり、糖蛋白としては前記の両社を併せ持つ、高度に糖化されたアビジンが好ましい。マウス腹腔内腫瘍によるアビジンおよびアビジンの誘導体の取り込みを糖鎖を有しないストレプトアビジン、炭水化物を有しないニュートラアビジンおよびＮ−アセチルグルコサミンとマンノースの両者を併せ持つアビジンをインビトロの実験で比較したところ、アビジンの取り込みが最も大きく、細胞数１０6 個において１８．２〜４７．２％であったのに対し、ストレプトアビジンでは４〜４．５％、ニュートラアビジンでは２．６〜４．８％であった。即ち、アビジンは腫瘍表面に発現するレクチンと最も強く結合すると考えられる。
【００１０】
さらに、レクチンと結合したアビジンが腫瘍内部へ移行すれば放射性アイソトープ、薬物等の診断または治療用薬剤のキャリアーとして有望である。そこでアビジンと特異的に結合することが知られており、その解離定数が１０-15 Ｍと極めて低いことから、種々の生化学的研究に使用されている（ヒラーらY.Hiller et al; Biotin binding to avidin, Oligosaccharaido side chainnot required for ligand association; Biochem. J., 248:167-171 頁、1978年）ビオチンを用いて以下の実験を行った。
【００１１】
インビボの実験において、アビジンを投与した後、ビオチンを投与する時、それらの投与間隔が短い内はアビジン−ビオチン結合物と同様の蓄積を示す。アビジンが腫瘍表面のレクチンと結合しているので後から投与したビオチンが腫瘍表面のアビジンと結合し、結果として同様の蓄積をもたらす。しかしながら、アビジンとビオチンの投与間隔が長くなるにつれてアビジン−ビオチン結合物を投与した場合のような蓄積は示さなくなる。これは、アビジンと結合したレクチンが時間の経過とともに腫瘍内へ移行するためであり、腫瘍内部に移行したアビジンはもはやビオチンと結合することができず、このために腫瘍への蓄積を示さなくなるためであると考えられる。このように、レクチンと結合し、腫瘍内部に移行することができるアビジンの性質は、腫瘍診断剤、腫瘍治療剤によって極めて有利である。
【００１２】
アビジンと放射性核種との結合物は、キレート剤を介してアビジンに結合させるか、反応性の高い放射性核種含有化合物をアビジンに結合させるか、または放射性核種をキレート剤を介してビオチンと結合させたものにアビジンを結合させることによって得られる。診断剤として用いられる核種としては、Ｉｎ−１１１、Ｔｃ−９９ｍ、Ｉｎ−１２３好適であるが、Ｃｕ−６４、Ｇａ−６７なども使用可能である。治療剤として用いられる核種としてはＩｎ−１１１、Ｉ−１３１、Ｉ−１２５が好適であるが、Ｈ−３、Ｃ−１４、Ｃｕ−６７、Ｒｅ−１８６、Ｒｅ−１８８、Ｙ−９０なども使用可能である。
【００１３】
ビオチンをＩｎ−１１１で標識する場合は、ＤＴＰＡ（ジエチレントリアミン５酢酸）−ビス（ビオシチンアミド）を緩衝液等に溶解し、Ｉｎ−１１１イオンを含む溶液を混合することで調製できる。ビオチンをＴｃ−９９ｍで標識する場合は、ＤＴＰＡ（ジエチレントリアミン５酢酸）−ビス（ビオシチンアミド）を緩衝液等に溶解し、適当な酸化還元電位を有する塩化第一スズのごとき還元剤を加え、Ｔｃ−９９ｍイオンを含む過テクネチウム酸溶液を混合する常套の方法により調製できる。アビジンをＩ−１３１標識するには、例えば荒野ら(J. Med. Chem. 34:2609-2618 頁、1994年) の方法に従い、Ｎ−サクシニミジル３ー（トリ−ｎ−ブチルスタニル）ベンゾエートを合成し、これをザルツスキーら(M. R. Zalutsky et al;Appl Radiat. Isot., 38/12:1051-1055 頁、1987年) の方法を用いて、ハロゲン交換反応によりＩ−１３１を結合させた後、アビジンと結合させればよい。
【００１４】
その他の放射性核種とアビジンまたはビオチンとの結合はそれぞれに適した交換反応やキレート形成性化合物を選択して用いることにより、適宜得ることが可能である。放射性核種標識結合物を放射性診断剤または放射性治療剤として供する場合は、上述した方法によって調製される標識物をさらにＨＰＬＣ法による精製に付して不純物および未反応のインジウムイオン、沃素イオン、過テクネチウム酸イオンを取り除いた後に使用してもよい。
【００１５】
放射能標識ビオチンとアビジンの結合物を腫瘍移植マウスの腹腔に注射し、ガンマカメラで撮像すると、腫瘍における取り込みは２時間から２４時間において観察された。腫瘍臓器を取り出してガンマカメラで撮像すると腫瘍での高い放射能レベルが観察され、生体分布データと矛盾しない結果となった。腫瘍細胞をマウス腹腔に移植し、放射能標識アビジンを投与したグループと放射能標識しないアビジンを投与したグループに分けて腫瘍細胞の重量と白血球数の変化を調べたところ、放射能標識したアビジンを用いたマウスのグループは放射能標識していないグループと比較して腫瘍重量は明らかに減少したが、白血球数はどちらのグループにも有意な減少は見られなかった。したがって、本発明の治療剤は白血球の不要な破壊なしに腫瘍を治療することができる。
【００１６】
放射性核種結合物は薬学的に許容される担体と混合することにより、放射性診断剤または放射性治療剤に調製することができる。かかる担体としては、薬学的に許容されるアスコルビン酸、ｐ−アミノ安息香酸などの安定化剤、水性緩衝液等のｐＨ調製剤、Ｄ−マンニトールなどの賦型剤、および放射化学的純度を改良するのに役立つクエン酸、酒石酸、マロン酸、グルコン酸ナトリウム、グルコヘプトン酸ナトリウムなどが挙げられる。また、これらの担体と共に用事調製用キットの形態でも本発明の放射性診断剤、放射性治療剤は提供が可能である。本発明の糖蛋白、望ましくはアビジンまたはその誘導体の放射性核種との結合物を含有してなる放射性診断剤または放射性治療剤は腹腔内投与、胸腔内投与、皮下（局所）注射、動脈注射のほか、静脈注射等の一般的に用いられる非経口的手段により投与される。その投与量は患者の体重、年齢、適当な放射性イメージング装置および対象疾患状態等の諸条件を考慮し、イメージングおよび治療が可能と考えられる放射能が決定される。
【００１７】
ヒトを対象とする場合、Ｔｃ−９９ｍで標識した結合物を用いた診断剤の投与量はＴｃ−９９ｍの放射能として３７ＭＢｑ〜１１１０ＭＢｑの範囲であり、好ましくは１８５ＭＢｑ〜１１１０ＭＢｑである。Ｉ−１２３、Ｉｎ−１１１の場合、も同様の範囲で使用可能である。また、Ｉ−１３１で標識した化合物を用いた治療剤の場合は、Ｉ−１３１の放射能として３７ＭＢｑ〜３７００ＭＢｑの範囲であり、好ましくは１１１０ＭＢｑ〜３７００ＭＢｑの範囲である。
【実施例】
【００１８】
（実施例１）  腫瘍モデルの確立
ＳＨＩＮ３（卵巣ガン細胞系）、ＬＳ１８０、ＬｏＶｏ（結腸ガン細胞系）、およびＡＯＩ（肺ガン細胞系）の細胞を、１０％の胎児牛血清、０．０３％Ｌ−グルタミン酸とともにＲＰＭＩ１６４０培養液中で培養した。対数増殖期細胞(subconfluent)はカルシウム、マグネシウムの無い０．０２％ＥＤＴＡを含むリン酸緩衝液を使って収穫した。メスのＢＡＬＢ／Ｃ  ｎｕ／ｎｕマウスに、０．２ｍｌの燐酸緩衝液に入れた３×１０6 のＬＳ１８０、ＬｏＶｏ、１×１０7 のＳＨＩＮ３，ＡＯＩを注射したところ、１１から２５日後に腫瘍が発現した。腫瘍重量は０．１から０．５ｍｇであった。
【００１９】
（実施例２）
（１）ビオチンのＩｎ−１１１標識
３μｇのＤＴＰＡ（ジエチレントリアミン５酢酸）−ビス（ビオシチンアミド）を０．３Ｍトリス塩酸緩衝液ｐＨ７．０に溶解し、１８．５ＭＢｑのＩｎ−１１１とともに室温で３０分間インキュベートした。放射能の９９％以上が固定化アビジンゲルに結合したため、Ｉｎ−１１１標識アビジンは精製なしに用いた。
【００２０】
（２）アビジンのＩ−１３１直接標識
荒野ら(J. Med. Chem., 34:2609-2618頁、1994年) の方法に従い、Ｎ−サクシニミジル３ー（トリ−ｎ−ブチルスタニル）ベンゾエートを合成し、これをザルツスキーら(M. R. Zalutsky et al;Appl Radiat.Isot., 38/12:1051-1055頁、1987年) の方法を用いて、ハロゲン交換反応によりＩ−１３１を結合させた後、アビジンと結合させて得た。
【００２１】
アビジンのビオチンを介した放射能標識アビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジンを放射能標識したビオチンと分子量比３−１０：１で混合し、３０分間放置して結合した。結合しなかった放射能標識ビオチンはファルマシア社製ＰＤ１０カラムによるクロマトグラフィーで除去した。
【００２２】
（実施例３）  インビトロでの反応性
実施例１で確立したＳＨＩＮ３、ＬＳ１８０、ＬｏＶｏ細胞とアビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジンとの反応性を調べた。放射能標識したアビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジンは５．７×４６ｍｍの微小遠心管中で１００μｌの燐酸緩衝液になん通りかの腫瘍細胞数とともに１時間インキュベートし、１０，０００×ｇで遠心した後、上澄を吸引除去した。細胞に結合した放射能の割合はオートウエルガンマカウンタ（アロカ製ＡＲＣ３００）で測定した。その結果を図１に示す。図１によると、アビジンはストレプトアビジン、ニュートラアビジンよりも腫瘍に対する結合性が明らかに高い。
【００２３】
（実施例４）  生体分布
生体分布の実験は、ビオチンを介して放射能標識したアビジンを投与した場合（１ステップ法）と、アビジンを投与した後、放射能標識したビオチンを投与した場合（２ステップ法）の２通りを行った。
【００２４】
（１ステップ法）
ビオチンを介してＩｎ−１１１標識したアビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジンを、実施例１で得た腫瘍移植マウスに注射した。放射能の分布はグループあたり４から５匹のマウスについて２−２４時間後に測定した。アビジンによる結果を表１に示す。表１ではアビジンは腫瘍に効果的に蓄積し、非腫瘍組織からは速やかに消失している。比較のためＬＳ１８０を用いた腫瘍移植マウスに放射能標識ビオチンを結合させたアビジン、ストレプトアビジンおよびニュートラアビジンを投与し、２時間後の放射能分布を調べた結果を表２に示す。
【００２５】
（表１）  腹腔内腫瘍移植マウスへの放射能標識アビジンの生体分布
【００２６】
【表１】
2006117685.tif 000002
（各々、４〜５匹のマウスでの臓器１ｇ当たりの放射能量又は比の平均値土標準
偏差）
【００２７】
（表２）  腹腔内腫瘍（ＬＳ１８０）移植マウスへの放射能標識アビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジンの生体分布（投与２時間後）
【００２８】
【表２】
2006117685.tif 000003
（各々、４〜５匹のマウスでの臓器１ｇ当たりの放射能量又は比の平均値土標準
偏差）
【００２９】
（２ステップ法）
ＬＳ１８０の腫瘍移植マウスに標識していないアビジン３００μｇを注射し、１−２４時間後にＩｎ−１１１標識ビオチン０．３μｇを注射した。ＬＳ１８０腫瘍移植マウスの１群については、アビジンを注射せず、Ｉｎ−１１１標識ビオチンのみを注射した。ビオチンを注射して２時間後グループあたり４ー５匹のマウスを殺して放射能分布を測定したところ結果を表３に示す。正常組織、腫瘍組織ともにアビジンを注射してから放射能標識ビオチンを投与するまでの時間が長くなるに従って、腫瘍での放射能は減少した。次に示すように内因性ビオチンの影響は僅かである。アビジンが腫瘍に対して特異的に結合しているにも拘らずアビジン注射後２４時間に投与されたビオチンの分布がアビジンを投与していない場合のビオチンの分布と類似しているのは、アビジンが腫瘍に内部移行した可能性が高い。
【００３０】
（表３）
腹腔内腫瘍（ＬＳ１８０）移植マウスへアビジンを予備標的した後、放射能標識したビオチンを投与した場合の、ビオチン投与後２時間の放射能分布
【００３１】
【表３】
2006117685.tif 000004
（各々、４〜５匹のマウスでの臓器１ｇ当たりの放射能量又は比の平均値土標準
偏差）
【００３２】
（参考例）  内因性ビオチンの影響
抗ヒト結腸癌モノクロナル抗体ＭＬＳ１２８の５ｍｇ／ｍｌの濃度でリン酸緩衝液に溶解し、９μｇのＮＨＳ−ＬＣ−ビオチン（ピアス社製）と共に４℃で２時間インキュベートして、ビオチン化抗体を得た。結合しなかったビオチンはファルマシア社製ＰＤ１０カラムにて除去した。３００μｇのビオチン化抗体を腫瘍移植マウス腹腔内に予備投与した後、５０μｇのストレプトアビジンを腹腔内に投与し、その２４時間後に放射能標識したビオチン抗体を投与した場合でも、ビオチンは腫瘍に結合した。これは内因性ビオチンの影響が僅かであることを示している。
【００３３】
（実施例５）  シンチグラム
画像解析のため、３．７μｇの放射能標識アビジンをＳＨＩＮ３腫瘍移植マウス腹腔に注射した。ピンホールコリメータを装着したサール社製ガンマカメラ（Ｓｅａｒｌｅ  Ｒａｄｉｏｇｒａｐｈｉｃｓ  Ｉｎｃ；ＰＨＯ／ＧＡＮＭＡ  ＬＦＯＢ）を用い、アビジン投与の２時間後と２４時間後にマウスを麻酔して得た画像を図２および図３に示した。また図４には臓器を取り出して並べた状態のシンチグラムを示す。２時間後、２４時間後とも良好な腫瘍蓄積が観察された。また、腫瘍での放射能蓄積は臓器を取り出して観察した場合にいっそう明かとなり、生体分布との一致が見られた。
【００３４】
（実施例６）  治療効果１
ＳＨＩＮ３腫瘍細胞１×１０7 個をヌードマウスの腹腔に投与し、２日後および４日後に１１．１ＭＢｑ，９．２５ＭＢｑのＩｎ−１１１標識アビジン（１００μｇ）を注射した。細胞移植の１３日後および１８日後にマウスを殺し、腫瘍重量と白血球数を測定した。放射能標識していないアビジンを同量注射したマウスを比較のために使用した。結果を表４に示す。検定はｔテストを用いた。放射能標識していないアビジンよりも、放射能標識したアビジンを用いた方が明らかに腫瘍重量を減らした（危険率０．０２％）。一方、白血球数には違いがなく、不要な破壊は起こしていない（危険率０．３％）。
【００３５】
（表４）
Ｉｎ−１１１−アビジン投与による腫瘍の重量と白血球数
【００３６】
【表４】
2006117685.tif 000005
【００３７】
（実施例７）  治療効果２
ＳＨＩＮ３腫瘍細胞１×１０7 をヌードマウスの腹腔に投与し、２日後および７日後に１１．１ＭＢｑのＩ−１３１標識アビジン（１００μｇ）を注射した。腫瘍と血液での放射能取り込みは、３０分後それぞれ４５．８、０．７１％ＩＤ／ｇ、２４時間後では１５．２，０．０５％ＩＤ／ｇであった。細胞移植の１８日後マウスを殺し、腫瘍重量を測定した。放射能標識していないアビジンを同量注射したマウスを比較のために使用した。結果を表５に示す。検定はｔテストを用いた。放射能標識していないアビジンよりも、放射能標識したアビジンを用いた方が明らかに腫瘍重量を減らした（危険率３％）。
【００３８】
（表５）
マウス腹腔への腫瘍細胞移植後、Ｉ−１３１−アビジン処置までの日数による腫瘍重量の変化
【００３９】
【表５】
2006117685.tif 000006
【産業上の利用可能性】
【００４０】
腫瘍の治療は、腫瘍細胞だけでなく正常細胞にとっても有害な成分を使用するため、腫瘍に対し高い特異性を有する薬剤が求められていた。本発明のアビジンまたはアビジンのレクチン結合部位を有する物質は、腫瘍表面のレクチンとの特異性が高いので放射性物質を結合することで、腫瘍を標的とした治療を行うことが可能であり、また高い標的能力は腫瘍部分のイメージングに極めて有用である。
【図面の簡単な説明】
【００４１】
【図１】アビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジンと腫瘍細胞ＳＨＩＮ３、ＬＳ１８０、ＬｏＶｏの腫瘍細胞数を変化させた場合の結合率を示す図である。
【００４２】
【図２】ＳＨＩＮ３腫瘍移植マウスに、Ｉｎ−１１１を標識したビオチンを結合したアビジンを投与後、２時間の全身シンチグラムを示す写真（生物の形態）である。
【００４３】
【図３】ＳＨＩＮ３腫瘍移植マウスに、Ｉｎ−１１１を標識したビオチンを結合したアビジンを投与後、２４時間の全身シンチグラムを示す写真（生物の形態）である。
【００４４】
【図４】ＳＨＩＮ３腫瘍移植マウスに、Ｉｎ−１１１を標識したビオチンを結合したアビジンを投与後、２４時間の腫瘍臓器をとりだしたシンチグラムを示す写真（生物の形態）である。
【符号の説明】
【００４５】
ＳＰ−−−脾臓
Ｉ−−−−腸間
Ｌ−−−−肝臓
ＳＴ−−−胃
Ｋ−−−−腎臓
Ｔ−−−−腫瘍
【図１】
2006117685.tif 000007
【図２】
2006117685.tif 000008
【図３】
2006117685.tif 000009
【図４】
2006117685.tif 000010