(57)【要約】【課題】光学活性医薬、光学活性農薬などの中間体等としてきわめて有用な光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩を提供する。【解決手段】一般式(1)：2006219494.tif 000019（式中、Ｒ1は水素原子またはアルキル基を示し、Ｒ2およびＲ3はそれぞれ独立に水素原子、アシル基または置換もしくは非置換のアルキル基を示し、Ｒ2とＲ3とは直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。＊が付された炭素原子は不斉炭素原子である。）で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
一般式(4)：
【化１】
2006219494.tif 000015
（式中、Ｒ1は水素原子またはアルキル基を示し、＊が付された炭素原子は不斉炭素原子である。）
で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩。
【請求項２】
一般式(5)：
【化２】
2006219494.tif 000016
（式中、Ｒ1は水素原子またはアルキル基を示し、＊が付された炭素原子は不斉炭素原子である。）
で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩。
【請求項３】
一般式(2)：
【化３】
2006219494.tif 000017
（式中、Ｒ4はアルキル基を示し、Ｒ2およびＲ3は、それぞれ独立に水素原子、アシル基または置換もしくは非置換のアルキル基を示し、Ｒ2とＲ3とは直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。）
で表されるラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを、アスペルギルス(Aspergillus）属、リゾプス(Rhizopus)属、キャンディダ(Candida)属、バシラス(Bacillus)属、シュウドモナス(Pseudomonas)属またはエシェリキア(Esherichia)属に属し、エステル不斉加水分解酵素を有する微生物の培養物、菌体または菌体処理物の存在下で不斉加水分解することを特徴とする、
一般式(1)：
【化４】
2006219494.tif 000018
（式中、Ｒ1は水素原子またはアルキル基を示し、Ｒ2およびＲ3はそれぞれ独立に水素原子、アシル基または置換もしくは非置換のアルキル基を示し、Ｒ2とＲ3とは直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。＊が付された炭素原子は不斉炭素原子である。）
で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法。
【請求項４】
上記一般式(1)において、Ｒ2またはＲ3のいずれか一方が水素原子であり、他方がアシル基である、請求項３に記載の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法。
【請求項５】
上記一般式(1)において、Ｒ2とＲ3とが互いに結合して炭素原子数２〜６のアルキレン基を形成し、両者に結合している窒素原子とともに環を形成している、請求項３に記載の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法。
【請求項６】
上記微生物が、エステル不斉加水分解酵素をコードする遺伝子により形質転換された形質転換体である、請求項３〜５のいずれか１項に記載の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、医薬、農薬、液晶等の原料または中間体としてきわめて有用な光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩ならびにそれらの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類は、メタクリル酸エステルにアミンを付加させることで容易に合成することができることが報告されている(J. Org. Chem., 1958, 18, 898、Zh. Obshch. Khim. 1957, 27, 3302、Liebigs Ann. Chem., 1958, 608, 22、Ann. Chim. (Paris), (12)9, 1954, 674、特開平4-66580号公報および特開昭54-30178号公報参照）が、それらの光学活性体については何ら記載されていない。
【０００３】
一方、Chem. Pharm. Bull., 1977, 25(6), 1319には、光学活性１−フェニルエチルアミンをメタクリロニトリルに光学選択的に付加させ、２段階を経てα−メチル−β−アラニンを合成する方法が開示されている。さらに、TetrahedronAsymmetry, 1992, 3(6),723にも、光学活性アスパラギンを原料として６段階の反応を経て光学活性α−メチル−β−アラニンを合成する方法が開示されている。しかしながら、光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類の製造法については何ら開示されていない。
【０００４】
また、J. Am. Chem. Soc., 1989, 111, 6354には、２−アシルアミノ酸の光学分割には有効であるアシラーゼが３−アシルアミノイソ酪酸の光学分割には適用することができないことが報告されている。
【０００５】
光学活性３−アミノイソ酪酸の製造方法として、特開昭59-67252号公報記載の光学活性３−ヒドロキシイソ酪酸を出発原料とする方法が公知であるが、工業的に有利な方法とは言い難い。またこの方法によっても光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類は得られていない。
したがって、光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類と、その有効な合成方法の開発が望まれている。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の課題は、光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類を提供することにある。
また、本発明の課題は、光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類の製造方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、３−Ｎ置換アミノイソ酪酸のラセミ体エステルを光学選択的に加水分解する活性のある酵素および微生物を見出し、本発明を完成した。
【０００８】
本発明は、一般式(1)：
【０００９】
【化１】
2006219494.tif 000002
（式中、Ｒ1は水素原子またはアルキル基を示し、Ｒ2およびＲ3はそれぞれ独立に水素原子、アシル基または置換もしくは非置換のアルキル基を示し、Ｒ2とＲ3とは直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。＊が付された炭素原子は不斉炭素原子である。）
で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩である。
【００１０】
また、本発明は、一般式(2)：
【００１１】
【化２】
2006219494.tif 000003
（式中、Ｒ4はアルキル基を示す。Ｒ2およびＲ3は前記のとおりである。また、Ｒ2とＲ3とは直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。）
で表されるラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを、エステル不斉加水分解酵素の存在下で不斉加水分解することを特徴とする、上記一般式(1)で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法である。
【００１２】
さらに、本発明は、一般式(2)：
【００１３】
【化３】
2006219494.tif 000004
（式中、Ｒ2、Ｒ3およびＲ4は前記のとおりである。また、Ｒ2とＲ3とは、直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。）
で表されるラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを、アスペルギルス属(Aspergillus）属、リゾプス(Rhizopus)属、キャンディダ(Candida)属、バシラス(Bacillus)属、シュウドモナス(Pseudomonas)属またはエシェリキア(Esherichia)属に属し、エステル不斉加水分解能を有する微生物の培養物、菌体または菌体処理物の存在下で不斉加水分解することを特徴とする、上記一般式(1)で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法である。
【００１４】
特に、本発明は以下を包含する。
１．一般式(4)：
【００１５】
【化４】
2006219494.tif 000005
（式中、Ｒ1は水素原子またはアルキル基を示し、＊が付された炭素原子は不斉炭素原子である。）
で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩。
【００１６】
２．一般式(5)：
【００１７】
【化５】
2006219494.tif 000006
（式中、Ｒ1は水素原子またはアルキル基を示し、＊が付された炭素原子は不斉炭素原子である。）
で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩。
【００１８】
３．一般式(2)：
【００１９】
【化６】
2006219494.tif 000007
（式中、Ｒ4はアルキル基を示し、Ｒ2およびＲ3は、それぞれ独立に水素原子、アシル基または置換もしくは非置換のアルキル基を示し、Ｒ2とＲ3とは直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。）
で表されるラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを、アスペルギルス(Aspergillus）属、リゾプス(Rhizopus)属、キャンディダ(Candida)属、バシラス(Bacillus)属、シュウドモナス(Pseudomonas)属またはエシェリキア(Esherichia)属に属し、エステル不斉加水分解酵素を有する微生物の培養物、菌体または菌体処理物の存在下で不斉加水分解することを特徴とする、
一般式(1)：
【００２０】
【化７】
2006219494.tif 000008
（式中、Ｒ1は水素原子またはアルキル基を示し、Ｒ2およびＲ3はそれぞれ独立に水素原子、アシル基または置換もしくは非置換のアルキル基を示し、Ｒ2とＲ3とは直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。＊が付された炭素原子は不斉炭素原子である。）
で表される光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法。
【００２１】
４．上記一般式(1)において、Ｒ2またはＲ3のいずれか一方が水素原子であり、他方がアシル基である、上記３に記載の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法。
【００２２】
５．上記一般式(1)において、Ｒ2とＲ3とが互いに結合して炭素原子数２〜６のアルキレン基を形成し、両者に結合している窒素原子とともに環を形成している、上記３に記載の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法。
【００２３】
６．上記微生物が、エステル不斉加水分解酵素をコードする遺伝子により形質転換された形質転換体である、上記３〜５のいずれか１に記載の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩の製造方法。
【発明の効果】
【００２４】
本発明によれば、光学活性医薬、光学活性農薬などの中間体等としてきわめて有用な光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類およびその塩を提供することができた。また、本発明の製造方法によれば、そのような光学活性体を効率的に製造することができ、しかも生成した光学活性体の分離、精製も容易なので、生産性が向上し、工業的に有利である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２５】
以下、本発明を詳細に説明する。
上記一般式(1)、(2)、(4)または(5)において、Ｒ1およびＲ4で表されるアルキル基は、通常、炭素原子数１〜４のアルキル基であり、直鎖状、分岐状のいずれの構造でもよい。具体的には、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、sec-ブチル、tert-ブチル等が例示される。
【００２６】
上記一般式(1)または(2)において、Ｒ2およびＲ3で表されるアルキル基は、通常、炭素原子数１〜10のアルキル基であり、直鎖状、分岐状のいずれの構造でもよい。具体的には、メチル、エチル、プロピル、ブチル、イソブチル、tert−ブチル、ペンチル、イソペンチル、ネオペンチル、ヘキシル、ヘプチル、オクチル、デシル等が例示される。また、このアルキル基は置換されていてもよく、置換基としてはハロゲン基、水酸基などが例示される。
【００２７】
上記一般式(1)または(2)において、Ｒ2およびＲ3で表されるアシル基は、通常、炭素原子数１〜10のアシル基であり、直鎖状、分岐状のいずれの構造でもよい。具体的には、ホルミル、アセチル、プロピオニル、ブチリル、イソブチリル、バレリル、イソバレリル、ピバロイル、ヘキサノイル、オクタノイル、デカノイル等が例示される。
【００２８】
上記一般式(1)または(2)において、Ｒ2とＲ3とは、直接または他の原子を介して互いに結合して両者に結合している窒素原子とともに３〜７員環を形成していてもよい。ここで、他の原子としては、酸素原子、窒素原子、硫黄原子等が例示される。Ｒ2とＲ3とが結合して窒素原子とともに形成する環としては、アジリジル、アゼチジニル、ピロリジニル、ピペリジニル、ホモピペリジニル、モルホリジル、ピペラジニル、ピラゾリジニル等が挙げられる。このような環を形成している３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類としては、例えば、下記一般式(3)：
【００２９】
【化８】
2006219494.tif 000009
（式中、ｎは２〜６の整数であり、Ｒ1は前記のとおりである。）
で表される、上記一般式(1)中のＲ2とＲ3とが互いに結合して炭素原子数２〜６のアルキレン基を形成し、両者に結合している窒素原子とともに環を形成している化合物が挙げられる。
【００３０】
本発明の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類の塩としては、カルボン酸塩としてナトリウム塩、カリウム塩、リチウム塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、アンモニウム塩等が例示され、アミン塩として塩酸塩、臭化水素酸塩、硫酸塩、硝酸塩等の鉱酸塩、及び酢酸塩、プロピオン酸塩、酪酸塩、フマル酸塩、マロン酸塩、シュウ酸塩、安息香酸塩等の有機酸塩が例示される。
【００３１】
本発明の光学活性化合物は以下の方法で製造することができる。
原料としては、上記一般式(2)で表されるラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを用いる。このラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルは、従来公知の方法により容易に合成することができる。即ち、例えば、メタクリル酸メチル（ＭＭＡ）等のメタクリル酸エステルに、ピペリジン、ピロリジン、ジメチルアミン等のアミンを反応させることにより合成することができる。
【００３２】
また、Ｒ2および／またはＲ3がアシル基であるラセミ体３−アシルアミノイソ酪酸エステルは、ラセミ体３−アミノイソ酪酸をＮ−アシル化し、次いでエステル化することにより製造することができる。
【００３３】
ラセミ体３−アミノイソ酪酸は、メタクリル酸にアンモニアを付加する方法、またはメタクリロニトリルにアンモニアを付加した後に酸、アルカリ、酵素などを用いて加水分解する方法により製造することができる。但し、これらの方法においては、選択的にラセミ体３−アミノイソ酪酸または３−アミノイソブチロニトリルを製造することが困難である。というのは、アンモニア付加反応において生成する３−アミノイソ酪酸または３−アミノイソブチロニトリルは、更にそれぞれメタクリル酸またはメタクリロニトリルと反応し易く、２級アミンおよび／または３級アミンが生成するからである。この２級アミンおよび／または３級アミンの３−アミノイソ酪酸または３−アミノイソブチロニトリルからの分離は困難であり、したがって、これらの方法で純度の高いラセミ体３−アミノイソ酪酸または３−アミノイソブチロニトリルを得ることは困難である。
【００３４】
そこで、選択的にラセミ体３−アミノイソ酪酸を得るため、２−クロロプロピオン酸またはその誘導体とシアン化アルカリを反応させ、得られた２−メチルシアノ酢酸またはその誘導体を、ニッケル、パラジウム−炭等の還元触媒の存在下で接触還元する方法によりラセミ体３−アミノイソ酪酸を製造するのが好ましい。
【００３５】
ラセミ体３−アミノイソ酪酸のＮ−アシル化は、通常、ラセミ体３−アミノイソ酪酸をアルカリ水溶液中に溶解させた後、塩化アシルまたは酸無水物と反応させることにより行われる。
【００３６】
Ｎ−アシル化により得られたラセミ体３−アシルアミノイソ酪酸のエステル化は、通常、ラセミ体３−アシルアミノイソ酪酸をアルコールに溶解させた後、塩化チオニル、ジシクロヘキシルカルボジイミドなどの脱水剤を添加することにより行われる。また、アルコールは予め脱水したものを用いるのが好ましい。
【００３７】
本発明において使用する酵素は、ラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを不斉加水分解して光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸およびその対掌体エステルを製造する能力を有するエステル不斉加水分解酵素であれば酵素の種類、その製造源を問わない。例えば、各種のリパーゼ、プロテアーゼ、エステラーゼ等が使用可能であり、その中でも、アルカリプロテアーゼ、ブロメライン、トリプシンおよびニューラーゼが好ましい。
【００３８】
エステル不斉加水分解酵素としては、エステル不斉加水分解能を有する微生物から分離されたものを使用することができる。エステル不斉加水分解能を有する微生物としては、アスペルギルス(Aspergillus）属、リゾプス(Rhizopus)属、キャンディダ(Candida)属、バシラス(Bacillus)属、シュウドモナス(Pseudomonas)属、エシェリキア(Esherichia)属等に属する微生物が挙げられる。また、微生物としては、エステル不斉加水分解酵素をコードする遺伝子により形質転換された形質転換体も挙げることができる。アスペルギルス属に属し、エステル不斉加水分解能を有する微生物としては、例えば、アスペルギルス・オリゼ(Aspergillus oryzae)、アスペルギルス・サイトイ(Aspergillus saitoi)、アスペルギルス・ソジャエ(Aspergillus sojae) 、アスペルギルス・ニガー(Aspergillus niger)等が挙げられる。リゾプス属に属し、エステル不斉加水分解能を有する微生物としては、例えば、リゾプス・ニヴェウス(Rhizopus niveus)等が挙げられる。キャンディダ属に属し、エステル不斉加水分解能を有する微生物としては、例えば、キャンディダ・アンタークティカ(Candida antarctica)等が挙げられる。バシラス属に属し、エステル不斉加水分解能を有する微生物としては、例えば、バシラス・サブチリス(Bacillus subtilis)、バシラス・リシェニフォルミス(Bacillus licheniformis)、バシラス・ポリミキサ(Bacillus polymyxa)等が挙げられる。シュウドモナス属に属し、エステル不斉加水分解能を有する微生物としては、例えば、シュウドモナス・プチダ（Pseudomonas putida）FERM BP-3846等が挙げられる。エシェリキア属に属し、エステル不斉加水分解能を有する微生物としては、例えば、エシェリキア・コリ(Escherichia coli) FERM BP-3835等が挙げられる。このエシェリキア・コリFERM BP-3835は、シュウドモナス・プチダ（Pseudomonas putida）FERM BP-3846由来のエステラーゼをコードする遺伝子により形質転換された微生物である。
【００３９】
また、エステル加水分解酵素としては、市販品を用いることができる。具体的には、リパーゼアマノＡ６（商品名、天野製薬製、アスペルギルス属由来酵素）、リパーゼアマノＡＰ６（商品名、天野製薬製、アスペルギルス属由来酵素）、アマノニューラーゼＦ（商品名、天野製薬製、リゾプス属由来酵素）、ＳＩＧＭＡニューラーゼ（タイプXVIII)（商品名、リゾプス属由来酵素）、名糖リパーゼＯＦ（商品名、名糖産業製、キャンディダ属由来酵素）、ＳＩＧＭＡプロテアーゼ（タイプＩ）（商品名、牛膵臓由来酵素）、ＳＩＧＭＡプロテアーゼ（タイプII）（商品名、アスペルギルス属由来酵素）、ＳＩＧＭＡプロテアーゼ（タイプXIII）（商品名、アスペルギルス属由来酵素）、ＳＩＧＭＡプロテアーゼ（タイプXV）（商品名、バシラス属由来酵素）、ＳＩＧＭＡプロテアーゼ（タイプXVI)（商品名、バシラス属由来酵素）、ＳＩＧＭＡプロテアーゼ（タイプXIX)（商品名、アスペルギルス属由来酵素）、ＳＩＧＭＡプロテアーゼ（タイプXXIII)（商品名、アスペルギルス属由来酵素）、ＳＩＧＭＡプロテアーゼ（タイプXXXI）（商品名、バシラス属由来酵素）、ＳＩＧＭＡトリプシン（タイプII）（商品名、豚膵臓酵素）、Flukaリパーゼ（商品名、キャンディダ属由来酵素）、ＳＩＧＭＡブロメライン（商品名）、明治製菓アルカプロテアーゼ（商品名）、ＮＯＶＯアルカラーゼ2.5L（商品名、バシラス属由来酵素）、ＮＯＢＯディラザイム16.0L(商品名、バシラス属由来酵素）、ＮＯＶＯエスペラーゼ8.0L（商品名、バシラス属由来酵素）、ＮＯＶＯサビナーゼ16.0L(商品名、バシラス属由来酵素）、ＮＯＶＯサビナーゼ6.0T（商品名、バシラス属由来酵素）、長瀬生化学工業ビオプラーゼコンク（商品名、バシラス属由来酵素）、長瀬生化学工業デナチームＡＰ（商品名、アスペルギルス属由来酵素）等が例示される。
【００４０】
本発明の製造方法においては、上記エステル不斉加水分解酵素を反応に供するに際しては、該酵素が活性を示す限りその使用の態様は特に限定されず、精製された酵素はもちろんのこと、酵素を安定化するためなどの添加剤、例えば、グリセロール、エチレングリコール、プロパンジオール等の多価アルコール類；乳糖、ソルビトール、セルロース、デキストリン等の糖類；無機塩等との混合物の状態で使用してもよい。また、上記のようなエステル加水分解能を有する微生物を培地中で培養して得られる培養物をそのままか、または該培養物から遠心分離などの集菌操作によって得られる菌体若しくはその処理物をも用いることができる。菌体処理物としては、アセトン、トルエン等で処理した菌体、凍結乾燥菌体、菌体破砕物、菌体を破砕した無細胞抽出物、これらから酵素を抽出した粗酵素液等が挙げられる。また、例えば、無細胞抽出物からゲル濾過、イオン交換クロマトグラフィー等により活性画分を回収することにより酵素を分離、精製することもできる。さらに、酵素または微生物は、適当な担体に固定化して用いることにより、反応終了後に回収して再利用することができる。固定化は、酵素または微生物を架橋したアクリルアミドゲル等に包括固定したり、イオン交換樹脂、ケーソー土等の固体担体に物理的、化学的に固定することにより行う。
【００４１】
上記微生物の培養は、液体培地でも固体培地でも行うことができる。培地としては、微生物が通常資化しうる炭素源、窒素源、ビタミン、ミネラル等の成分を適宜配合したものが用いられる。微生物のエステル加水分解能を向上させるため、培地にエステル結合又はアミド結合を有する低分子化合物等の誘導剤等を少量添加することも可能である。培養は、微生物が生育可能である温度、pHで行われるが、使用する菌株の最適培養条件で行うのが好ましい。微生物の生育を促進させるため、通気攪拌を行う場合もある。
【００４２】
ラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを光学選択的に加水分解するには、ラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを溶媒に溶解乃至懸濁し、触媒となるエステル不斉加水分解酵素または上記微生物の培養物、菌体もしくは菌体処理物を加えて、反応温度および必要により反応液のpHを制御しながら３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルの半量程度が加水分解されるまで反応を続ける。場合によっては、初期の段階で反応を中止させたり、或いは過剰に反応させることもある。
【００４３】
反応溶媒としては、通常、イオン交換水、緩衝液等の水性媒体を使用するが、有機溶媒を含んだ系でも反応させることができる。有機溶媒を反応系に存在させることにより、選択率、変換率、収率等が促進される場合が多い。反応溶媒として有機溶媒を含んだ系を用いる場合、有機溶媒が水に溶解した状態のものを使用してもよく、また、有機溶媒と水とが２相系を形成したものを使用してもよい。有機溶媒としては、例えば、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、ブタノール、イソブタノール、t-ブチルアルコール、t-アミルアルコール等のアルコール類；ジエチルエーテル、イソプロピルエーテル、ジオキサン等のエーテル類；アセトン、メチルエチルケトン、メチルイソブチルケトン等のケトン類；ヘキサン、オクタン、ベンゼン、トルエン等の芳香族および脂肪族炭化水素系溶媒等を適宜使用することができる。
【００４４】
反応溶媒中の基質の濃度は、特に制限はなく、通常、0.1〜70重量％であるが、基質となるラセミ体３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルの溶解度、反応性等を考慮すると５〜40重量％が好ましい。
【００４５】
反応溶媒中の酵素量は当該反応に対する酵素の触媒能力に応じて適宜調整すればよく、特に制限はないが、0.01〜20重量％の範囲で使用することが好ましく、より好ましくは0.01〜５重量％の範囲である。
また、不斉加水分解反応の温度は５〜70℃が好ましく、10〜60℃がより好ましい。
【００４６】
更に、反応液のpHは、用いる酵素、微生物等の至適pHにより異なるが、一般的には、pH６〜9.5の範囲で行うのが好ましい。この範囲のpHで反応を行うことにより、化学的加水分解反応による光学純度の低下を抑制することができる。また、反応が進行するにつれて、生成したカルボン酸により反応液のpHが低下するが、この場合は適当な中和剤、例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等を加えることによって最適pHに維持することで反応の進行が促進される場合が多い。
【００４７】
尚、以上のような反応溶媒、基質濃度、反応温度、酵素濃度、反応液のpH等の反応条件は、条件の相違による反応収率、光学収率、立体選択性の厳密さなどを考慮して、目的とする光学活性体が最も多く採取できる条件を選択する。通常、反応が１時間〜１週間、好ましくは１〜72時間で終了するような反応条件を選択するのが好ましい。
【００４８】
このような不斉加水分解反応により、光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸が生成する。また、未反応の残存基質は、生成した光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸の対掌体エステルとなる。
【００４９】
生成した光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸およびその対掌体エステルの反応液からの単離は、蒸留、抽出、カラム分離等の一般的な単離法で行うことができる。例えば、触媒として微生物を使用した場合には、微生物の菌体を遠心分離、濾過などの操作により除去してから、ヘキサン、酢酸エチルなどの溶剤で抽出することにより未反応の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルを得ることができる。
【００５０】
また、反応溶媒に有機溶媒が多量に含まれる場合は、反応溶媒をいったん蒸留により除去した後、さらに適当な有機溶媒との組み合わせにより、同様に光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸とその対掌体エステルを抽出分離することができる。
【００５１】
得られた光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸は通常の方法でエステル化することにより光学活性を保持したまま３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルにすることができる。また、光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸エステルは通常の方法で加水分解することにより光学活性を維持したまま３−Ｎ置換アミノイソ酪酸とすることができる。したがって、任意の立体配置の光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類を取得できる。
【００５２】
これら光学活性３−Ｎ置換アミノイソ酪酸類には、アミンおよびカルボン酸が存在する場合があるが、この場合は常法によりアミン塩およびカルボン酸塩を形成させることができる。
【実施例】
【００５３】
以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
〔参考例１〕
（ラセミ体３−アセチルアミノイソ酪酸メチルの合成）
３−アミノイソ酪酸（東京化成工業（株）製）10ｇを１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液120mlに溶解し、これに無水酢酸12ｇをゆっくりと滴下して、室温、攪拌下で18時間反応させた。反応終了後、２Ｎ塩酸を加えてpH2.0に調整した。得られた反応混合液と等量の酢酸エチルによる抽出を３回行った。有機相を一つにまとめて無水硫酸ナトリウムにて脱水し、溶媒を減圧留去した。このようにして、ラセミ体３−アセチルアミノイソ酪酸9.2ｇが得られた。
【００５４】
得られたラセミ体３−アセチルアミノイソ酪酸に、無水メタノール66ｇを加え、塩化チオニル9.0ｇをゆっくりと滴下した。室温で18時間攪拌した後、減圧濃縮した。このようにして、ラセミ体３−アセチルアミノイソ酪酸メチル6.9ｇが得られた。
【００５５】
〔実施例１〕
（d(+)３−アセチルアミノイソ酪酸メチルおよびl(-)３−アセチルアミノイソ酪酸の合成）
エシェリキア・コリFERM BP-3835を、50μg/mlのアンピシリンを含むＬＢ培地（１％ポリペプトン、0.5％酵母エキスおよび0.5％NaCl）50mlに植菌し、３７℃で２４時間振盪培養した。培養終了後、培養液を遠心分離して菌体を採取した。得られた菌体の全量をイオン交換水で洗浄した。洗浄後、この菌体を50mMリン酸緩衝液(pH7.0) 50mlに懸濁し、この菌体懸濁液にラセミ体３−アセチルアミノイソ酪酸メチル５ｇを添加して30℃で20時間反応させた。反応中、適宜１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液を添加することにより反応液のpHを7.0に調整した。反応終了後、遠心分離により菌体を除き、未反応の３−アセチルアミノイソ酪酸メチルを酢酸エチルで抽出した。有機相を無水硫酸ナトリウムにて脱水し、溶媒を蒸発留去した。このようにして、光学活性３−アセチルアミノイソ酪酸メチル2.0ｇが得られた。
【００５６】
得られた光学活性３−アセチルアミノイソ酪酸メチルについて、ガスクロマトグラフィー（カラム；CP-Chirasil Dex CB,クロムパック社製）により光学純度を求めたところ、d(+)体100％e.e.であった。
【００５７】
上記の酢酸エチル抽出における抽出残渣の水相に２Ｎ塩酸を添加してpHを2.0に調整し、反応生成物である３−アセチルアミノイソ酪酸を酢酸エチルで抽出した。有機相を無水硫酸ナトリウムにて脱水し、溶媒を蒸発留去した。このようにして光学活性３−アセチルアミノイソ酪酸1.2ｇが得られた。
【００５８】
得られた反応生成物である光学活性３−アセチルアミノイソ酪酸をメタノール／塩酸混合液で処理してメチルエステル化し、上記と同様の方法で光学純度を測定したところ、l(-)体90％e.e.であった。
以下、得られたd(+)３−アセチルアミノイソ酪酸メチルの物性値を示す。
【００５９】
（1Ｈ−ＮＭＲスペクトル（図１））
溶媒：CDCl3 、内部標準：ＴＭＳ、270MHz
δH  1.19〜1.21    （3H, d, -CH3)
δH  1.95          （3H, s, -COCH3)
δH  2.62〜2.78    （1H, m, -CH-)
δH  3.20〜3.60    （2H, m, -CH2-)
δH  3.70          （3H, s, -COOCH3)
δH  6.00          （1H, b, -NH-)
【００６０】
（13Ｃ−ＮＭＲスペクトル（図２））
溶媒：CDCl3、内部標準：ＴＭＳ、270MHz
δC  14.9          （-CH3)
δC  23.3          （-COCH3)
δC  39.5          （-CH-)
δC  41.6          （-CH2-)
δC  51.9          （-COOCH3)
δC  170.2         （-CO-)
δC  176.1         （-COO-)
【００６１】
（光学純度）
100％e.e.
（比旋光度）
［α］D25＝＋53.12 （c ＝2.9, MeOH)
【００６２】
〔参考例２〕
（ラセミ体３−ピロリジルイソ酪酸メチルエステルの合成）
メタクリル酸メチル（ＭＭＡ）35.2ｇ（0.35mol)に、70℃に加熱しながら、ピロリジン17ｇ（0.24mol)を徐々に滴下し、ピロリジンが消失するまで反応を継続した。反応終了後、反応混合液を蒸留し、ラセミ体３−ピロリジルイソ酪酸メチルエステル31ｇを得た（１〜３mmHg、55〜58℃）。
【００６３】
〔参考例３〕
（ラセミ体３−ピペリジルイソ酪酸メチルエステルの合成）
メタクリル酸メチル（ＭＭＡ）35.2ｇ（0.35mol)に、70℃に加熱しながら、ピペリジン20ｇ（0.24mol)を徐々に滴下し、ピペリジンが消失するまで反応を継続した。反応終了後、反応混合液を蒸留し、ラセミ体３−ピペリジルイソ酪酸メチルエステル30ｇを得た（７〜５mmHg、72〜73℃）。
【００６４】
〔実施例２〕
（光学活性３−ピロリジルイソ酪酸およびそのメチルエステルの合成）
t-ブチルアルコール75ｇに、ラセミ体３−ピロリジルイソ酪酸メチル10ｇを溶解させ、水7.5ｇおよびＮＯＶＯアルカラーゼ2.5L（バシラス・リシェニフォルミス(Bacillus licheniformis)由来酵素）7.5ｇを加えて30℃で２日間反応させた。得られた反応混合液を濾過した後、濾液をエバポレーターで濃縮した。得られた濃縮液にn-ヘキサン50mlおよび水50mlを加えて分液し、有機相を回収した。硫酸ナトリウムで乾燥した後、濃縮した。このようにしてd(+)３−ピロリジルイソ酪酸メチルエステル2.1ｇが得られた。
【００６５】
また、水相を中和して濃縮した後、メタノール100mlに溶解させた。不溶物を濾別した後、硫酸４mlを加えてエステル化反応を行った。反応終了後、エバポレーターで濃縮してヘキサン60mlに懸濁させた。飽和炭酸ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した後濃縮した。このようにして、l(-)３−ピロリジルイソ酪酸メチルエステル5.8ｇが得られた。
【００６６】
d(+)およびl(-)３−ピロリジルイソ酪酸メチルエステル各2.0ｇに、それぞれ2.0Ｎ水酸化ナトリウム水溶液10mlを加え、室温で攪拌した。次いで、硫酸で中和し、濃縮乾固した。メタノール約10mlに可溶分を溶解させ、濾別した後濃縮し、それぞれd(+)３−ピロリジルイソ酪酸1.3ｇおよびl(-)３−ピロリジルイソ酪酸1.3ｇを得た。
各光学活性３−ピロリジルイソ酪酸類の比旋光度を表１に示す。
【００６７】
【表１】
2006219494.tif 000010
【００６８】
〔実施例３〕
（光学活性３−ピロリジルイソ酪酸ブチルの合成）
参考例２に準じて合成したラセミ体３−ピロリジルイソ酪酸ブチル10ｇを100mMリン酸緩衝液（pH７）90mlに溶解させ、ＮＯＶＯアルカラーゼ2.5L 5ｇを加えて30℃で６時間反応させた。得られた反応混合液を冷却しながらpH10に調節した後、ヘキサン100mlを加え、未反応の３−ピロリジルイソ酪酸ブチルを回収した。ヘキサン相をエバポレーターで濃縮した。このようにしてd(+)３−ピロリジルイソ酪酸ブチル2.1ｇが得られた。比旋光度 [α] D 24は＋20.1(neat)であった。
【００６９】
〔実施例４〕
（光学活性３−ピペリジルイソ酪酸およびそのメチルエステルの合成）
t-ブチルアルコール75ｇに、ラセミ体３−ピペリジルイソ酪酸メチル10ｇを溶解させ、水7.5ｇおよびＮＯＶＯアルカラーゼ2.5L 7.5ｇを加えて30℃で２日間反応させた。得られた反応混合液を濾過した後、濾液をエバポレーターで濃縮した。得られた濃縮液にn-ヘキサン50mlおよび水50mlを加えて分液し、有機相を回収した。硫酸ナトリウムで乾燥した後、濃縮した。このようにしてd(+)３−ピペリジルイソ酪酸メチルエステル3.8ｇが得られた。
【００７０】
また、水相を中和して濃縮した後、メタノール100mlに溶解させた。不溶物を濾別した後、硫酸４mlを加えてエステル化反応を行った。反応終了後、エバポレーターで濃縮してヘキサン60mlに懸濁させた。飽和炭酸ナトリウム水溶液で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥した後濃縮した。このようにして、l(-)３−ピペリジルイソ酪酸メチルエステル3.4ｇが得られた。
【００７１】
d(+)およびl(-)３−ピペリジルイソ酪酸メチルエステル各2.0ｇに、それぞれ2.0Ｎ水酸化ナトリウム水溶液10mlを加え、室温で攪拌した。次いで、硫酸で中和し、濃縮乾固した。メタノール約10mlに可溶分を溶解させ、濾別した後濃縮し、それぞれd(+)３−ピペリジルイソ酪酸1.3ｇおよびl(-)３−ピペリジルイソ酪酸1.4ｇを得た。
各光学活性３−ピぺリジルイソ酪酸類の比旋光度を表２に示す。
【００７２】
【表２】
2006219494.tif 000011
【００７３】
〔実施例５〕
100mMリン酸緩衝液（pH７）にラセミ体３−ピロリジルイソ酪酸メチルが１重量％になるように溶解させ、表３に示す酵素を0.1〜１重量％の範囲で適宜加えて、それぞれ30℃で18時間反応させた。ガスクロマトグラフィー（カラム：CP-Chirasil DEX CB 0.25mm×25M、クロムパック社製）により各d(+)３−ピロリジルイソ酪酸メチルの光学純度および濃度を求めた。結果を表３に示す。
【００７４】
【表３】
2006219494.tif 000012
【００７５】
〔実施例６〕
100mMリン酸緩衝液（pH７）にラセミ体３−ピペリジルイソ酪酸メチルが１重量％になるように溶解させ、表４および表５に示す酵素を0.1〜１重量％の範囲で適宜加えて、それぞれ30℃で１日間反応させた。ガスクロマトグラフィー（カラム：CP-Chirasil DEX CB 0.25mm×25M、クロムパック社製）により各d(+)３−ピロリジルイソ酪酸メチルの光学純度および濃度を求めた。結果を表４および表５に示す。
【００７６】
【表４】
2006219494.tif 000013
【００７７】
【表５】
2006219494.tif 000014
【図面の簡単な説明】
【００７８】
【図１】実施例１で得られたd(+)３−アセチルアミノイソ酪酸メチルの1Ｈ−ＮＭＲスペクトルを示す図である。
【図２】実施例１で得られたd(+)３−アセチルアミノイソ酪酸メチルの13Ｃ−ＮＭＲスペクトルを示す図である。
【図１】
2006219494.tif 000020
【図２】
2006219494.tif 000021