(57)【要約】      （修正有）【課題】核酸複合体を表面に形成させ、生体分子との相互作用を可能とする方法を提供する。【解決手段】核酸分子（Ａ）が固相上に固定化されており、該核酸分子（Ａ）と核酸分子（Ｂ）がハイブリダイズできるように設計し、該核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズできるように設計し、該核酸分子（Ａ）と該核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズできないように設計し、該核酸分子（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）をハイブリダイズさせて複合体を形成させ、該複合体に含まれる該核酸分子（Ｂ）と該核酸分子（Ｃ）とからなる二本鎖核酸と生体分子を接触させることで、該二本鎖核酸と該生体分子との相互作用を観察する。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
二本鎖核酸と生体分子との相互作用を観察するための方法であって、核酸分子（Ａ）が固相上に固定化されており、該核酸分子（Ａ）と核酸分子（Ｂ）がハイブリダイズできるように設計し、該核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズできるように設計し、該核酸分子（Ａ）と該核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズできないように設計し、該核酸分子（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）をハイブリダイズさせて複合体を形成させ、該複合体に含まれる該核酸分子（Ｂ）と該核酸分子（Ｃ）とからなる該二本鎖核酸と、該生体分子を接触させることを特徴とする相互作用観察方法
【請求項２】
核酸分子（Ａ）が平面基板上にアレイ状にスポットされ固定化されていることを特徴とする請求項１に記載の相互作用観察方法
【請求項３】
核酸分子（Ａ）が平面基板上にアレイ状にスポットされ固定化されていて、該核酸分子（Ａ）の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする請求項１に記載の相互作用観察方法。
【請求項４】
二本鎖核酸の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする請求項２、３に記載の相互作用観察方法。
【請求項５】
核酸分子（Ｂ）および核酸分子（Ｃ）の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする請求項２、３に記載の相互作用観察方法。
【請求項６】
固相が金属であることを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載の相互作用観察方法
【請求項７】
固相が透明平面基板上に形成された金薄層であることを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載の相互作用観察方法
【請求項８】
相互作用を観察する方法が表面プラズモン共鳴法であることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載の相互作用観察方法
【請求項９】
相互作用を観察する方法が表面プラズモン共鳴イメージング法であることを特徴とする請求項１〜８のいずれかに記載の相互作用観察方法
【請求項１０】
生体分子がタンパク質であることを特徴とする請求項１〜９のいずれかに記載の相互作用観察方法
【請求項１１】
生体分子が転写因子であることを特徴とする請求項１〜１０のいずれかに記載の相互作用観察方法
【請求項１２】
生体分子と二本鎖核酸との相互作用を観察するためのアレイであって、核酸分子（Ａ）が固相上に固定化されており、該核酸分子（Ａ）と核酸分子（Ｂ）がハイブリダイズでき、該核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズでき、該核酸分子（Ａ）と該核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズできないように設計し、該核酸分子（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）をハイブリダイズさせて複合体を形成させることにより、該複合体中に、該核酸分子（Ｂ）と該核酸分子（Ｃ）とからなる生体分子との相互作用を測定するための該二本鎖核酸が含まれることを特徴とする相互作用観察用アレイ。
【請求項１３】
核酸分子（Ａ）が平面基板上にスポットされ固定化されていることを特徴とする請求項１２に記載の相互作用観察用アレイ
【請求項１４】
核酸分子（Ａ）が平面基板上にスポットされ固定化されていて、該核酸分子（Ａ）の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする請求項１２に記載の相互作用観察用アレイ。
【請求項１５】
二本鎖核酸の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする請求項１２〜１４のいずれかに記載の相互作用観察用アレイ。
【請求項１６】
核酸分子（Ｂ）および核酸分子（Ｃ）の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする請求項１２〜１４のいずれかに記載の相互作用観察用アレイ。
【請求項１７】
固相が金属であることを特徴とする請求項１２〜１６のいずれかに記載の相互作用観察用アレイ
【請求項１８】
固相が透明平面基板上に形成された金薄層であることを特徴とする請求項１２〜１７のいずれかに記載の相互作用観察用アレイ
【請求項１９】
請求項１２〜１８のいずれかに記載のアレイを含むことを特徴とする二本鎖核酸と生体分子との相互作用を観察するための試薬キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、表面上に形成された核酸複合体と、生体分子の相互作用解析を行う方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来から遺伝子を検出する方法としてＤＮＡアレイの技術が用いられてきた。ＤＮＡアレイは、一本鎖ＤＮＡを基板上に固定化しておき、そのＤＮＡに相補的な核酸がハイブリダイゼーションしたかどうかを蛍光ラベルや化学発光などを用いて検出するのが一般的である。従って、核酸同士の相互作用を検出するのが目的である。
【０００３】
近年は核酸同士だけでなく、ＤＮＡ−タンパク質相互作用の観察が注目をあびてきている。その理由として核酸配列に特異的なタンパク質の存在が広く知られるようになったことが挙げられる。中でも結合・解離の相互作用が重要視されている。
ＤＮＡ−タンパク質の結合・解離の相互作用評価として一般的な方法はゲルシフト法であり、ＤＮＡ−タンパク質を相互作用させた状態で、ゲル内の移動速度を観察する方法である。しかし、ゲルシフト法はスループットが低く、多量のサンプルを扱うのは非常に困難である。また、平衡状態を測定するため、結合・解離速度の評価は不可能である。
【０００４】
そこで、ＤＮＡアレイの技術を応用して、二本鎖ＤＮＡのアレイを作製し、タンパク質との相互作用を解析する方法が探索されてきた。例えば同一のプライマー部分を有する一本鎖ＤＮＡをアレイ状に固相に固定化しておき、プライマーをハイブリダイゼーションさせた上で、表面上でのポリメラーゼ操作によって二本鎖とする方法が開示されている（例えば特許文献１参照）。この方法は同一のプライマー部分を有する長い一本鎖ＤＮＡを固定化している場合は非常に効果がある。しかし、基板上でのＤＮＡポリメラーゼの反応条件の最適化、反応操作は煩雑であり、ＤＮＡ鎖が５０塩基以下の場合は相補的ＤＮＡを合成して、それぞれハイブリダイゼーションさせたほうが簡便であろう。
【０００５】
また、特許文献１では二本鎖ＤＮＡは緑色蛍光蛋白（ＧＦＰ）などによってラベル化されたタンパク質との相互作用が観察されているが、ラベル操作はタンパク質の機能や特性を変える可能性が指摘されており、ＤＮＡ−タンパク質相互作用を普遍的に測定できる方法とは言えない。
【０００６】
基板上で酵素処理を行わず、二本鎖ＤＮＡをハイブリダイゼーションさせてから、電極基板上に固定化し、酵素との相互作用を観察する方法が示されている（例えば非特許文献１参照）。ここでは金基板に結合性をもつチオール基をＤＮＡ分子に導入しておき、金基板に直接固定化する方法をとっている。この方法は電極全体に二本鎖ＤＮＡを固定化するものであり、アレイの概念は示されていない。また、この方法ではＤＮＡ分子は金表面に横たわる形でも存在することが知られていること、ＤＮＡ分子が基板に近すぎてＤＮＡ分子のモビリティが十分に確保できないことから、タンパク質の基板表面への拡散速度が律速となるために、タンパク質との相互作用Ｋｉｎｅｔｉｃｓを正確に測定するのは困難である。また、ＤＮＡ分子だけで金表面に自己組織化によって固定化すると密に充填できないために、メルカプトヘキサノールでブロッキングする必要が生じる。メルカプトヘキサノールの方が自己組織化能は強く、先に金に固定化したＤＮＡ分子とメルカプトヘキサノールの交換反応がおこるため、表面に残るＤＮＡ分子の密度は極めて低くなり、タンパク質との相互作用によって得られる信号は非常に小さくなる。
【０００７】
アレイ上にてＤＮＡ−タンパク質相互作用をラベルフリーに観察する報告もされている（例えば非特許文献２）。ここでは二種類の一本鎖ＤＮＡを固定化しておき、片方に相補的なＤＮＡをアレイ全体に曝し、片方のみをハイブリダーゼーションさせた後、一本鎖結合型蛋白（ＳＳＢ）との相互作用を表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）イメージング法によって観察している。このようにアレイ全体に相補的なＤＮＡを曝す場合、固定化されたＤＮＡの配列が大きく異なる場合は問題ないが、配列の近いＤＮＡが固定化されている場合、ミスマッチでも一部結合する問題がある。よって、チップ全体に相補的ＤＮＡを曝す方法には限界がある。
【０００８】
そこで、Ｋｙｏらは、チオール末端ＤＮＡとその相補的ＤＮＡを予めアニールして二本鎖ＤＮＡを形成させておいてから、アレイ状に基板上に固定化し、同時に複数のＤＮＡ−タンパク質相互作用の観察に成功した（学術文献２）。しかし、チオール末端ＤＮＡは非常に高価であり、網羅的な解析を行うには膨大な資金が必要となる問題があった。また、チオール基は酸化されやすい問題があり、保存安定性にも欠けているため、数多くのチオール末端ＤＮＡを使って研究を行うのは困難が伴っていた。
【０００９】
一種のチオール末端ＤＮＡを表面全体に固定化しておき、スポットの部分のみ、目的のプローブをハイブリダイゼーションによって表面に固定化する方法も提案されている（特許文献３）。この方法であると、チオール末端ＤＮＡは一種のみでよく、コストを低減する可能性を秘めている。しかし、この発明ではチップ全面にＤＮＡを固定化する必要があるため、チオール末端ＤＮＡの消費量が多く、コストがかかる問題が残る。また、一本鎖ＤＮＡをハイブリダイゼーションによってアレイ状に固定化し、一塩基多型（ＳＮＰｓ）の解析に用いているものの、タンパク質の解析には全く触れられていない。
【００１０】
【特許文献１】米国特許６３２６４８９
【特許文献２】米国特許６１２７１２９
【特許文献３】特開２００４−２０５４１４
【非特許文献１】Ｂｏｏｎら  Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，  ２０（２００２）２８２−２８６
【非特許文献２】Ｋｙｏら  Ｇｅｎｅｓ  Ｃｅｌｌｓ，  ９（２００４）１５３−１６４
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
本発明の課題は、核酸複合体を表面に形成させ、生体分子との相互作用を可能とする方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明者らは鋭意検討した結果、以下に示す手段により、上記課題を解決できることを見出した。
１．二本鎖核酸と生体分子との相互作用を観察するための方法であって、核酸分子（Ａ）が固相上に固定化されており、該核酸分子（Ａ）と核酸分子（Ｂ）がハイブリダイズできるように設計し、該核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズできるように設計し、該核酸分子（Ａ）と該核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズできないように設計し、該核酸分子（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）をハイブリダイズさせて複合体を形成させ、該複合体に含まれる該核酸分子（Ｂ）と該核酸分子（Ｃ）とからなる該二本鎖核酸と、該生体分子を接触させることを特徴とする相互作用観察方法
２．核酸分子（Ａ）が平面基板上にアレイ状にスポットされ固定化されていることを特徴とする１の相互作用観察方法
３．核酸分子（Ａ）が平面基板上にアレイ状にスポットされ固定化されていて、該核酸分子（Ａ）の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする１の相互作用観察方法。
４．二本鎖核酸の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする２、３の相互作用観察方法。
５．核酸分子（Ｂ）および核酸分子（Ｃ）の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする２、３の相互作用観察方法。
６．固相が金属であることを特徴とする１〜５のいずれかの相互作用観察方法
７．固相が透明平面基板上に形成された金薄層であることを特徴とする１〜６のいずれかの相互作用観察方法
８．相互作用を観察する方法が表面プラズモン共鳴法であることを特徴とする１〜７のいずれかの相互作用観察方法
９．相互作用を観察する方法が表面プラズモン共鳴イメージング法であることを特徴とする１〜８のいずれかの相互作用観察方法
１０．生体分子がタンパク質であることを特徴とする１〜９のいずれかの相互作用観察方法
１１．生体分子が転写因子であることを特徴とする１〜１０のいずれかの相互作用観察方法
１２．生体分子と二本鎖核酸との相互作用を観察するためのアレイであって、核酸分子（Ａ）が固相上に固定化されており、該核酸分子（Ａ）と核酸分子（Ｂ）がハイブリダイズでき、該核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズでき、該核酸分子（Ａ）と該核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズできないように設計し、該核酸分子（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）をハイブリダイズさせて複合体を形成させることにより、該複合体中に、該核酸分子（Ｂ）と該核酸分子（Ｃ）とからなる生体分子との相互作用を測定するための該二本鎖核酸が含まれることを特徴とする相互作用観察用アレイ。
１３．核酸分子（Ａ）が平面基板上にスポットされ固定化されていることを特徴とする１２の相互作用観察用アレイ
１４．核酸分子（Ａ）が平面基板上にスポットされ固定化されていて、該核酸分子（Ａ）の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする１２の相互作用観察用アレイ。
１５．二本鎖核酸の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする１２〜１４のいずれかの相互作用観察用アレイ。
１６．核酸分子（Ｂ）および核酸分子（Ｃ）の配列が異なるスポットが、少なくとも２種類以上あることを特徴とする１２〜１４のいずれかの相互作用観察用アレイ。
１７．固相が金属であることを特徴とする１２〜１６のいずれかの相互作用観察用アレイ
１８．固相が透明平面基板上に形成された金薄層であることを特徴とする１２〜１７のいずれかの相互作用観察用アレイ
１９．１２〜１８のいずれかのアレイを含むことを特徴とする二本鎖核酸と生体分子との相互作用を観察するための試薬キット。
【発明の効果】
【００１３】
本発明は安価に基板上に核酸複合体を形成する方法、及び核酸複合体と生体分子の相互作用解析を行う方法を可能とする。アレイに応用可能であり、網羅的解析に用いることができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１４】
以下に本発明を詳細に説明する。本発明は、核酸複合体を表面に形成させる方法、核酸複合体と生体分子との相互作用を観察する方法を開示している。
【００１５】
生体分子間の相互作用を解析する対象はますます広がっている。近年は網羅的に相互作用を解析する試みがされており、ハイスループット化が要求されるようになった。しかし、それにはスループット量に対応した、多種類の分析する物質を用意する必要があり、コストがかかっていた。本発明は、網羅的解析を低コストで実現するものである。
【００１６】
本発明では核酸分子（Ａ）が固相上に固定化されており、核酸分子（Ｂ）の一部が核酸分子（Ａ）と相補的に結合することで、（Ｂ）が固定化されている。さらに、核酸分子（Ｃ）は、核酸分子（Ｂ）の一部と相補的に結合することで、表面に固定されている。核酸分子（Ａ）と核酸分子（Ｃ）の間には直接的な相互作用は存在していない。（Ａ）の配列の一部または全部が（Ｂ）と相補的に結合しているが、相補的に結合している塩基数は１１以上であることが好ましく、１５以上であるとさらに好ましい。（Ｃ）の配列の一部または全部が（Ｂ）と相補的に結合しており、相補的に結合している塩基数は１１以上であることが好ましく、１５以上であるとさらに好ましい。相補的な関係となっている塩基数が多いほど、融点（Ｔｍ）が上昇し、二本鎖が安定するからである。核酸分子（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）のいずれにおいても、その配列の少なくとも一部がハイブリダイゼーションによって相補的に別の分子と結合している。
【００１７】
核酸分子（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）の長さは特に限定されるものではないが、前記理由により、分子（Ａ）と（Ｃ）は１１塩基以上であることが好ましく、１５塩基以上であるとさらに好ましい。分子（Ｂ）は２２塩基以上であることが好ましく、３０塩基以上であるとさらに好ましい。
【００１８】
核酸分子（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）を形成させる方法は特に限定されるものではないが、（１）（Ａ）を固定化しておき、（Ｂ）をハイブリダイゼーションさせて、次に（Ｃ）をハイブリダイゼーションさせる方法、（２）（Ａ）を固定化しておき、予め（Ｂ）と（Ｃ）を溶液中でハイブリダイゼーションさせた複合体を（Ａ）と接触させる方法、（３）（Ａ）と（Ｂ）と（Ｃ）を溶液中でハイブリダイゼーションさせて複合体としてから固定化する方法などが挙げられる。その中で、（２）の方法が平面基板上にアレイを作製するのが容易であり、好ましい。
【００１９】
核酸分子はＤＮＡ、ＲＮＡだけでなく、ＰＮＡ（ペプチド核酸）やＬＮＡ（Ｌｏｃｋｅｄ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ）などの人工核酸、さらにはそれらの誘導体を含む。
核酸分子（Ａ）が固定化される方法は、共有結合、配位結合、イオン結合、疎水結合、水素結合などが挙げられるが、なかでも共有結合であることが好ましい。核酸分子（Ａ）の末端に何らかの官能基、結合グループが導入されていることが好ましく、該官能基または結合グループを介して、固相化されるのがさらに好ましい。官能基または結合グループとしてはアミノ基、チオール基、ビオチンなどが挙げられるが、なかでもチオール基は共有結合が可能であり、非イオン性であり、反応が特異的に進むため最も好ましい。チオール基は表面に形成したマレイミド基、エポキシ基、チオール基、ジスルフィド基と反応することができる。また、チオール基は金の（１１１）面に直接結合することもできる。
【００２０】
本発明における固相は金属であることが好ましい。金属基板は表面加工が容易であり、さまざまな光学的測定法や水晶発振子の方法に使用することができるからである。また、熱安定性にも優れ、薬剤耐性も高いことも有利な点である。形態は、平面基板、ナノ粒子を含むビーズなどが挙げられるが、アレイへの応用ができる有利さから、平面基板が好ましい。
【００２１】
金属基板としては透明基板上に形成された金薄層が好ましい。金−硫黄結合を利用し、アルカンチオール分子が金表面に自己組織化単分子層を形成することが知られている。この方法を使って、表面に官能基を容易に導入することができる。あるいは、チオール末端の核酸分子（Ａ）を直接、金表面に結合することも可能である。金表面に官能基または結合グループを導入した後に、核酸分子（Ａ）の末端の官能基または結合グループを使って、核酸分子（Ａ）を固定化することも可能である。
【００２２】
好ましい形態としては、アミノ基末端のアルカンチオールの自己組織化単分子層を形成させて、表面をアミノ基とし、アミノ基反応性のＮ−ヒドロキシスクシンイミドと、チオール基反応性のマレイミド基を有する架橋剤を反応させて、表面をマレイミド基とし、チオール末端の核酸分子（Ａ）とマレイミド基とのカップリングによって共有結合で（Ａ）を固定化する方法が挙げられる。架橋剤の分子の中にポリエチレングリコールなどのスペーサーが入っていると、分子（Ａ）にモビリティを与えることができ、表面への非特異的吸着が抑制する効果が期待できるために、さらに好ましい。
【００２３】
固相に固定化された核酸分子（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）の複合体は、生体分子と相互作用が観察するのに用いられる。本発明における相互作用観察の対象は、核酸分子（Ｂ）と（Ｃ）の複合体と生体分子である。核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）がハイブリダイズすることで、生体分子と相互作用できる二本鎖核酸が形成される。この二本鎖核酸と、生体分子との相互作用を観察すればよい。
【００２４】
相互作用観察の手段としては、ラベルフリーかつリアルタイム測定が可能な表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）法が好ましい。生体分子の中にはラベル操作によって機能・活性に変化が生じる場合があり、タンパク質でその傾向は顕著である。よって、ラベルフリーな測定方法は好都合である。またリアルタイムで測定できる点から、平衡状態だけではなく、結合と解離の速度を解析することが可能となり、生体分子の機能を知るための貴重な情報が得られる。
【００２５】
ＳＰＲ法としてはＳＰＲイメージング法が好ましい。ＳＰＲイメージング法はアレイ全体に偏光平行光を照射し、その反射光をＣＣＤカメラで撮影するため、アレイのある地点における表面プラズモン共鳴角変位を反射光強度の変化によって知ることが可能である。よって、複数の（Ｂ）と（Ｃ）の複合体を固定化したアレイと生体分子の相互作用解析をラベルフリーかつリアルタイムに測定することが可能である。
【００２６】
本発明においては、核酸分子（Ａ）がアレイ状に固定化されていることが好ましい。アレイ上の各スポットにおいて、核酸分子（Ａ）は共通であっても、スポット毎に複数種類あってもかまわない。核酸分子（Ａ）は一種類であると、コストがかからないため、より好ましいが、これに限定されるものではない。核酸分子（Ａ）の末端に何らかの官能基、結合グループが導入されていることが好ましいのはすでに述べたが、このような核酸は比較的高価であり、何種類も用意するとコストがかかる問題があるが、核酸分子（Ａ）が一種類であると、その問題は回避できる。
【００２７】
核酸分子（Ｂ）と（Ｃ）は、実験に用いる際に、精製されていなくてもよい。コスト面を考えると、非精製である方が好ましい。核酸分子（Ａ）と（Ｂ）と（Ｃ）は相補的であるように設計されているため、非精製であっても、必要な分子だけが相補鎖を形成し、複合体を形成することができるからである。
【００２８】
アレイの形態としては、核酸分子（Ａ）がアレイ状にスポットとして固定化されていることが好ましい。スポットとは不連続であり、互いに分け隔てる領域が存在していることを言う。スポットの形状は特に限定されるものではなく、円形、四角形などが挙げられる。スポットの作製方法も特に限定されるものではなく、スポッティングによって微小量の核酸分子（Ａ）の溶液の液滴を基板上に形成させる方法や、基板表面をパターン化してから、パターンで核酸分子（Ａ）を導入する方法などが挙げられる。
【００２９】
アレイの各スポットにおいて、二本鎖核酸の配列が異なるスポットが少なくとも２種類以上、好ましくは複数配置されている方がよい。そうすれば、生体分子と、複数の二本鎖核酸との相互作用が網羅的に解析できるからである。
【００３０】
このようなアレイを作成するためには、複数の核酸分子（Ｂ）は互いに混じりあうことなく、アレイの各スポットにおいて固定化されている核酸分子（Ａ）とハイブリダイズさせ、ついで、複数の核酸分子（Ｂ）にそれぞれ相補的な配列を有する核酸分子（Ｃ）を互いに混じりあうことなく、対応するそれぞれの核酸分子（Ｂ）が存在する場所にハイブリダイズさせればよい。つまり、核酸分子（Ｂ）は核酸分子（Ｃ）とハイブリダイズできる関係にあり、核酸分子（Ｂ）’は核酸分子（Ｃ）’ とハイブリダイズできる関係にあるとすると、核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｂ）’を互いに交わることなく、別々の核酸分子（Ａ）が固定化されているスポットにハイブリダイズさせる。ついで、核酸分子（Ｂ）がスポットされている場所には核酸分子（Ｃ）を、核酸分子（Ｂ）’がスポットされている場所には核酸分子（Ｃ）’を互いに交わることなくハイブリダイズさせればよい。本説明においては、２種類の二本鎖核酸のアレイ作成方法を例に挙げて説明したが、複数の二本鎖核酸のアレイを作成する場合も同様の方法を適用すればよい。
【００３１】
また、あらかじめ複数の核酸分子（Ｂ）とそれぞれに対応する核酸分子（Ｃ）とをハイブダイズし、互いに混じりあうことなく、アレイの各スポットにおいて固定化されている核酸分子（Ａ）と相補的に結合させてもよい。つまり、核酸分子（Ｂ）は核酸分子（Ｃ）とハイブリダイズできる関係にあり、核酸分子（Ｂ）’は核酸分子（Ｃ）’ とハイブリダイズできる関係にあるとすると、核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）を、また、核酸分子（Ｂ）’と核酸分子（Ｃ）’をあらかじめハイブリダイズしておき、互いに交わることなく、別々の核酸分子（Ａ）が固定化されているスポットにハイブリダイズさせればよい。複数の二本鎖核酸のアレイを作成する場合も同様の方法を適用すればよい。
【００３２】
また、複数の核酸分子（Ｂ）と、それぞれに対応する核酸分子（Ｃ）と、核酸分子（Ａ）とをあらかじめハイブダイズし、互いに混じりあうことなく、アレイにスポットし固定化してもよい。つまり、核酸分子（Ｂ）は核酸分子（Ｃ）とハイブリダイズできる関係にあり、核酸分子（Ｂ）’は核酸分子（Ｃ）’ とハイブリダイズできる関係にあるとすると、核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）と核酸分子（Ａ）とを、また、核酸分子（Ｂ）’と核酸分子（Ｃ）’と 核酸分子（Ａ）とをあらかじめハイブリダイズしておき、互いに交わることなく、別々にアレイにスポットし固定化させればよい。複数の二本鎖核酸のアレイを作成する場合も同様の方法を適用すればよい。
【００３３】
所望のスポットに所望の二本鎖核酸が形成されたい場合は、核酸分子（Ａ）をスポット毎に複数種類用意してもよい。例えば、核酸分子（Ａ）と核酸分子（Ｂ）をハイブリダイズできるように、核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）をハイブリダイズできるように設計し、また、核酸分子（Ａ）’と核酸分子（Ｂ）’をハイブリダイズできるように、核酸分子（Ｂ）’と核酸分子（Ｃ）’をハイブリダイズできるように設計する。核酸分子（Ａ）と核酸分子（Ａ）’を互いに混じりあうことなく、アレイにスポットし固定化しておく。例えば、そのアレイに、核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）の複合体をアレイに接触させると、アレイ上の核酸分子（Ａ）のみが固定化されているスポットのみに、核酸分子（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）の複合体が形成される。核酸分子（Ｂ）’と核酸分子（Ｃ）’の複合体をアレイに接触させると、アレイ上の核酸分子（Ａ）’のみが固定化されているスポットのみに、核酸分子（Ａ）’、（Ｂ）’及び（Ｃ）’の複合体が形成される。核酸分子（Ｂ）と核酸分子（Ｃ）の複合体と核酸分子（Ｂ）’と核酸分子（Ｃ）’の複合体は同時にアレイへ接触させても構わない。複数の二本鎖核酸のアレイを作成する場合も同様の方法を適用すればよい。このように、核酸分子（Ａ）の異なるスポットを２種類以上用意しておけば、所望のアレイ作製が容易となる。
【００３４】
測定対象となる生体分子としては、タンパク質が好ましい。タンパク質はラベル操作によって活性・機能が変化する場合が多いからである。さらに好ましくは、二本鎖核酸と相互作用することが知られている転写因子である。変異の入った二本鎖核酸配列と転写因子の相互作用を解析し、転写因子の機能を知るために本発明は大いに有用である。
【実施例】
【００３５】
以下に実施例を示して本発明を具体的に説明するが、本発明は実施例に限定されるものではない。
【００３６】
［実施例］
（単一配列の一本鎖ＤＮＡアレイの作製）
チップはＭｕｌｔｉＳＰＲｉｎｔｅｒ  ＮＨ２チップ（東洋紡績製）を用いた。チップの大きさは１８ｍｍ×１８ｍｍ、厚さ２ｍｍである。このチップにはＮＨ２基が導入された５００μｍ四方のスポット領域が８×１２＝９６個形成されている。スポット領域の中心間の距離は１ｍｍとなっている。スポット領域ではない領域（バックグラウンド領域）には、非特異吸着を抑制するポリエチレングリコールが固定化されている。
【００３７】
ヘテロ二官能性ポリエチレングリコール（ＭＡＬ−ｄＰＥＧ１２−ＮＨＳ  ｅｓｔｅｒ：Ｑｕａｎｔａ  Ｂｉｏｄｅｓｉｇｎ製）をリン酸緩衝液（２０ｍＭ  リン酸、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、ｐＨ７．２：ＰＢＳ）に５ｍｇ／ｍｌで溶解し、金表面のアミノ基に反応させ、表面がマレイミド基である５００μｍ四方の正方形スポットが９６個並んだチップを得た。ここに、核酸分子（Ａ）に相当するＤＮＡ（Ｄ１）の５μＭ  ５×ＳＳＣ（７５ｍＭクエン酸ナトリウム、７５０ｍＭ  ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）溶液をスポットし、一本鎖であるＤ１をアレイ状に表面に固定化した。Ｄ１の５’末端はチオール基となっており、表面のマレイミド基との反応性を有している。実施例で使用したＤＮＡの配列を表１に示す。
【００３８】
【表１】
2006170794.tif 000002
【００３９】
Ｄ１の溶液のスポッティングには、自動スポッター（ＭｕｌｔｉＳＰＲｉｎｔｅｒスポッター：東洋紡績製）を用い、９６スポット全てにＤＮＡ１の溶液をスポットした。１４時間反応させてＤ１を表面に固定化した後、未反応のマレイミド基をブロッキングするために、ＰＥＧチオール（日本油脂製ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ  ＭＥＳＨ−５０Ｈ）を１０ｍｇ／ｍｌの濃度でＰＢＳ溶液に溶解して、２５０μｌをチップ上に注出し、一時間反応させた。ここで用いたＰＥＧチオールの分子量は５，０００であり、親水性が非常に高く、非特異吸着を抑制する効果が期待できる。得られたチップを０．２×ＳＳＣ、０．２％ＳＤＳで洗浄し、フリーのＤＮＡを除去し、ＰＢＳと水で洗浄し、Ｄ１が等間隔に９６点並んだアレイを得た。
【００４０】
（ＭＡＲＥプローブの固定化）
固定化用プローブの配列を表１に示す。Ｄ２とＤ４はＤ１と相補的な部分を１８塩基有し、かつ、解析用の配列２５塩基を有している。Ｄ３とＤ５は、それぞれＤ２とＤ４の解析用配列の相補的配列である。先にＤ２  ５０μＭ、Ｄ３  １００μＭ  ５ＸＳＳＣ溶液を１０μｌ調製し、Ｄ２とＤ３をハイブリダイゼーションさせ、Ｄ２とＤ３の複合体を形成させた。ハイブリダイゼーション操作は混合溶液を沸騰浴中にて５分、０℃に急冷し１５分、その後３７℃で三時間インキュベートすることで行った。Ｄ４とＤ５の複合体に関しても同様に調製を行った。得られた複合体の溶液を水で５倍に希釈し、その溶液５μｌを使い、自動スポッター（ＭｕｌｔｉＳＰＲｉｎｔｅｒスポッター：東洋紡績製）を用いて、複合体をＤ１がアレイ状に並んだチップにスポッティングし、Ｄ１とのハイブリダイゼーションによって核酸分子（Ｂ）／（Ｃ）の複合体（Ｄ２／Ｄ３、Ｄ４／Ｄ５）を表面に固定化した。固定化の模式図を図１に示す。
【００４１】
Ｄ２／Ｄ３、Ｄ４／Ｄ５の複合体部分はＭＡＲＥ（Ｍａｆ  Ｒｅｌａｔｅｄ  Ｅｌｅｍｅｎｔ）と呼ばれている配列であり、転写因子Ｍａｆ群との相互作用がみられることが知られている。Ｄ２／Ｄ３はＭａｆＧの認識配列（ＭＡＲＥ２５）であり、Ｄ４／Ｄ５はＭａｆＧの非認識配列（ＭＡＲＥ２３）である。１３塩基配列（ＴＧＣＴＧＡＧＴＣＡＧＣＡ）がＭＡＲＥコンセンサス配列として知られており、パリンドロームとなっている。  
【００４２】
（ＳＰＲ測定）
得られたアレイはＰＢＳで洗浄し、ＳＰＲイメージング装置（ＭｕｌｔｉＳＰＲｉｎｔｅｒ：東洋紡績製）にセットし、１０ｍＭ  Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ７．９、２００ｍＭ  ＮａＣｌ、４ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．００５％Ｔｗｅｅｎ２０の転写因子測定用緩衝液をフローセル内に流した。
【００４３】
ＳＰＲからのシグナルが安定したのを確認した後に、転写因子ＭａｆＧのホモ二量体を１μｇ／ｍｌの濃度で上記転写因子測定用緩衝液に溶解してセル内に１０分間１００μｌ／ｍｉｎの速度で注入し、さらに転写因子を含まない緩衝液を流し、結合と解離のＳＰＲシグナルの変化を観察した。
【００４４】
観察はＤ２／Ｄ３（ＭＡＲＥ２５）とＤ４／Ｄ５（ＭＡＲＥ２３）の固定化部位と何もＤＮＡが固定化されていない部分（ブランク部）の三点で実施した。ＳＰＲシグナルの変化を示すグラフを図２に示す。ＭＡＲＥ２５配列のみにＭａｆＧホモ二量体が結合し、ＭＡＲＥ２３、バックグラウンド部位にはほとんど結合しないのが観察できた。このように、チオール末端ＤＮＡを一種類のみでアレイを作製し、相互作用解析することが可能であった。また、Ｄ２、Ｄ３、Ｄ４、Ｄ５は精製していないグレードで問題なくアレイが作製でき、大幅なコストダウンを図ることができた。
【００４５】
［比較例］
（二本鎖ＤＮＡアレイの作製）
ヘテロ二官能性ポリエチレングリコール（ＭＡＬ−ｄＰＥＧ１２−ＮＨＳ  ｅｓｔｅｒ：Ｑｕａｎｔａ  Ｂｉｏｄｅｓｉｇｎ製）をリン酸緩衝液（２０ｍＭ  リン酸、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、ｐＨ７．２：ＰＢＳ）に５ｍｇ／ｍｌで溶解し、２００μｌをＭｕｌｔｉＳＰＲｉｎｔｅｒ  ＮＨ２チップ（東洋紡績製）上に祖注ぎ、２時間反応させ、表面がマレイミド基である５００μｍ四方の正方形スポットが９６個並んだチップを得た。
【００４６】
比較例に使用したＤＮＡの配列を表２に示す。実施例におけるＤ２に相当するのが、Ｄ６であり、ＭＡＲＥ２５配列含むとともにチオール末端となっている。また、Ｄ４はＤ７に相当し、ＭＡＲＥ２３配列を含む。
【００４７】
【表２】
2006170794.tif 000003
【００４８】
Ｄ６／Ｄ３複合体（二本鎖ＤＮＡ）を２５μＭ  Ｄ６、１００μＭ  Ｄ３の混合溶液を沸騰浴中にて５分、０℃に急冷し１５分、その後３７℃で三時間インキュベートすることで形成させた。Ｄ７／Ｄ５複合体に関しても同様に行った。ハイブリダイゼーションした二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）を自動スポッター（ＭｕｌｔｉＳＰＲｉｎｔｅｒ：東洋紡績製）を用いてマレイミド基に修飾したチップ上にスポッティングし、１５時間反応させてｄｓＤＮＡを表面に固定化した。未反応のマレイミド基をブロッキングするために、ＰＥＧチオールを１０ｍｇ／ｍｌの濃度でＰＢＳ溶液に溶解して、２５０μｌをチップ上に注出し、一時間反応させた。得られたチップは０．２×ＳＳＣ、０．２％ＳＤＳで洗浄した。得られたＤＮＡアレイの配置図を図３に示す。
【００４９】
このチップは実施例と同様にＳＰＲ測定を行ったところ、実施例と同様の結果が得られた。しかし、このチップの作製には二種類のチオール末端ＤＮＡが必要であり、非常に高価である。今後、網羅的な解析を行う場合、配列の数に応じたチオール末端ＤＮＡが必要となり、非常にコストの高い研究となる。
【産業上の利用可能性】
【００５０】
本発明は安価に基板上に核酸複合体を形成する方法、及び核酸複合体と生体分子の相互作用解析を行う方法を可能とする。アレイに応用可能であり、網羅的解析に用いることができる。特に、変異の入った二本鎖核酸配列と転写因子の相互作用を解析し、転写因子の機能を知るために本発明は大いに有用であることからも、産業界に大きく寄与することが期待される。
【図面の簡単な説明】
【００５１】
【図１】ＤＮＡ固定化の模式図（実施例）
【図２】ＭａｆＧホモ二量体の結合解離曲線（実施例）
【図３】ＤＮＡ固定化の模式図（比較例）
【図１】
2006170794.tif 000004
【図２】
2006170794.tif 000005
【図３】
2006170794.tif 000006
【配列表】
2006170794000001.app