(57)【要約】【課題】本発明は、抗菌性および抗ウイルス性を有するイネ科植物の抽出成分をペット、家畜など動物に飲料水を介して摂取させることにより、ペットにあっては健康を維持し疾病からの回復促進ができる飲料水を、家畜にあっては抗生物質等の薬剤の使用を廃止でき、痢病率の低下、微量栄養素の不足状態化の回避、肉質、芳香、味の向上等を企図でき、しかも安心して食用に供することのできる飲料水を提供しようとするものである。【解決手段】イネ科植物の抽出成分を含んでなる動物向け飲料水用添加剤。水と、上記飲料水用添加物とを含む動物向け飲料水。飲料用水全体に対して、添加剤を０．００００１〜３０重量％添加してなる上記飲料水。イネ科植物の抽出成分が、イネ科植物の葉および／または稈を蒸煮したのち、水性溶媒で抽出したものである上記飲料水。【特許請求の範囲】
【請求項１】
イネ科植物の抽出成分を含んでなる動物（ただし鳥類を除く）向け飲料水用添加剤。
【請求項２】
水と、請求項１記載の飲料水用添加物とを含む動物（ただし鳥類を除く）向け飲料水。
【請求項３】
飲料用水全体に対して、添加剤を０．００００１〜３０重量％添加してなる請求項２記載の飲料水。
【請求項４】
イネ科植物が、イネ科タケ亜科植物である請求項２または３記載の飲料水。
【請求項５】
イネ科タケ亜科植物が、ササ属である請求項４記載の飲料水。
【請求項６】
イネ科植物の抽出成分が、イネ科植物の葉および／または稈を蒸煮したのち、水性溶媒で抽出したものである請求項２〜５いずれか記載の飲料水。
【請求項７】
蒸煮が、イネ科植物の葉および／または稈を、減圧弁および気液分離装置により乾き度を向上させた乾燥蒸気で１２０〜２５０℃で３０秒から１時間蒸煮するものである請求項６記載の飲料水。
【請求項８】
蒸煮が、イネ科植物の葉および／または稈と水を１００：５０〜１００：１５０の重量混合比の下、蒸煮温度１２０〜２５０℃で蒸煮するものである請求項６記載の飲料水。
【請求項９】
水性溶媒抽出温度が、１００〜１５０℃である請求項６〜８いずれか記載の飲料水。
【請求項１０】
請求項２〜９いずれか記載の飲料水を、動物（ただし鳥類を除く）へ給与することを特徴とする動物の飼育方法。
【請求項１１】
請求項２〜９いずれか記載の飲料水を、動物（ただし鳥類を除く）へ給与することを特徴とする動物の食肉の生産方法。
【請求項１２】
請求項１１記載の生産方法で得られる食肉。
【請求項１３】
イネ科植物の抽出成分を含んでなる動物（ただし鳥類を除く）向け原虫汚染防止剤
【請求項１４】
請求項２〜９いずれか記載の飲料水である原虫汚染防止剤。
【請求項１５】
原虫が、コクシジウムである請求項１３または１４記載の原虫汚染防止剤。
【請求項１６】
請求項１３〜１５いずれか記載の汚染防止剤を、動物（ただし鳥類を除く）へ給与することを特徴とする原虫汚染防止方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、イネ科植物の抽出成分を含む、ペット、家畜（ただし鳥類を除く）などの動物の飲料水に関する。
本発明の飲料水は、コクシジウムに代表される原虫の汚染防止剤としても機能し、原虫汚染を防止することができる。
【背景技術】
【０００２】
ペットとしてイヌやネコ等の動物等が飼われたり、食用等の目的で、豚、牛等の家畜が多頭飼育されている。
これらのペット、家畜に対しては、健康維持、生産性の向上、短期間の養成などのそれぞれの目的に合わせて専用の飼料が、供給されている。しかし、共通して、栄養価を高めた化学合成物や腐敗防止のため合成抗菌剤あるいは抗生物質等の添加された飼料が使用されている。
【０００３】
しかし、これら合成抗菌剤あるいは抗生物質を連続投与すると薬剤耐性菌が出現するようになり、その感染症抑制効果が著しく低下し問題となっている。さらにこれらの薬剤がペット、家畜の体内に残留することによるペット・人体への影響が懸念されている。また、ペットにおいては肥満から派生する各種疾病を有するイヌやネコ等が増加している。
【０００４】
一方、一般に細菌を殺すには細菌が栄養を取り込み、たんぱく質などを作って増える生物であることから、抗生物質を投与すると細菌は栄養物といっしょに取り込みその毒性で死ぬことが知られている。よって抗生物質は細菌に取り込まれやすいように作られている。一方、ウイルスはたんぱく質の殻とその中に遺伝情報だけを持つ粒子であり、動物の細胞に寄生し細胞を壊しながら増え続けるため炎症を起こし病気になる。だが、ウイルスは抗生物質を取り込まないため効果はなく、強い薬でたたこうとすると細胞まで殺してしまう。ウイルスの感染症には予防を目的にしたワクチンが有効であり、細菌とウイルスでは明らかに死滅させるメカニズムが異なっている。
【０００５】
クマザサ抽出成分は、抗菌性、抗腫瘍性対策に有効であることが判明している。（特許文献１参照）。しかし、イネ科植物の抽出物を、飲料水を介して、効率的に動物に摂取させることは知られていない。
【０００６】
一方、イネ科植物から抽出物を得る方法として、特開平06−197800号公報、特開平11−199502号公報等にササ類の葉および／または稈を高温、高圧の飽和水蒸気処理することで糖類を効率よく抽出する方法が開示されている。また、特開2002−322079号公報には高温、高圧の飽和水蒸気処理で得る方法が開示されている。また、特開2002−322079号公報には高温、高圧の飽和水蒸気処理で得られたササ抽出物をピロリ菌に対する抗菌、除菌剤に用いている。しかし、このようにして得たイネ科、例えば、イネ科タケ亜科植物の抽出物を有効成分として添加配合されてなるペット、家畜用飲料水、および給与して得られる畜産品に関する例は示されていない。
【０００７】
兎、牛、羊、豚等の家畜類、犬、猫等のペット類のコクシジウム症は、ある種の寄生性原虫の感染によって起こる伝染病であり、世界的に多く発生している。コクシジウム症は例えば、牛では、離乳後から、一年未満の育成子牛に発症しやすく、E.zuerniiやE.bovis などの重度感染時にみられる。E.zuerniiは感染後７〜９日目に、E.bovisは感染後１５〜１６日目に発症することが知られている。豚に寄生するIsosporaは８種類いるが、哺乳豚の下痢の原因になるのはIsospora suisだけで、哺乳豚下痢の診断では約２０％がこのコクシジウムが原因とされている。
これに感染した動物は下痢、血便等の症状を呈し、治療が遅れた場合または症状が重い場合は斃死することも多く、そして斃死に至らなくても発育が阻害される。そのためにコクシジウム症は被害の極めて大きい動物疾患の一つであり、例えば子牛の死亡原因は52.5％が下痢、21.3％が肺炎である。したがって下痢、肺炎を防ぐことで生産性の向上を図ることができる。
従来は、上記の動物のコクシジウム症の予防や治療に際して、抗生物質、合成抗菌剤からなる化学療法剤およびワクチン等の生物学製剤が主に使用されてきた。しかし、農畜産物の「安全・安心」が強く望まれる中、従来使用されてきた抗生物質や合成抗原虫薬などを添加しない畜産物生産技術の確立が養鶏関係者から要請されている。
【０００８】
抗生物質や合成殺原虫剤の使用は、家畜生産物への残留問題から使用制限が厳しく、産卵中の家畜には投与禁止、また肉として出荷する前にはかなりの期間投与が禁止されている。そのため家畜飼育舎はコクシジウム原虫（オーシスト）に汚染されてしまう。また、消毒剤はオーシスト状態のコクシジウム原虫には殺虫効果が無く、家畜飼育舎のコクシジウム汚染が日毎に累積されているのが実情である。そこで、安全性に問題の無い有効なコクシジウム汚染防止方法の開発が望まれ、天然型抗コクシジウム剤が検討されいくつかの例が開示されている。特開平８−２３１３２８号ではクロストリジウム属に属する菌体を使用するする方法と防止剤が開示され、コクシジウムのオーシストの減少が例示されている。特開平７−２５５３８６号では０．１又は０．４重量％緑茶粉末を混合した飼料を投与することによる飼料等および予防方法が開示されている。特開平７−４６９６３号ではテルペン類を投与する方法が開示され、特開平５−５６７５５号では中鎖脂肪酸のトリグリセライドを含有する飼料が開示され、原虫疾患の改善が例示されているが、イネ科、例えば、イネ科タケ亜科植物の抽出物がコクシジウム症に有効であるとの報告はない。
【特許文献１】ＷＯ９９／６２４４４号パンフレット。
【特許文献２】特開平０６−１９７８００号
【特許文献３】特開平１１−１９９５０２号
【特許文献４】特開２００２−３２２０７９号
【特許文献５】特開平０８−２３１３２８号
【特許文献６】特開平０７−２５５３８６号
【特許文献７】特開平０７−  ４６９６３号
【特許文献８】特開平０５−  ５６７５５号
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明は、抗菌性および抗ウイルス性を有するイネ科植物の抽出成分をペット、家畜（ただし鳥類を除く）など動物に飲料水を介して摂取させることにより、ペットにあっては健康を維持し疾病からの回復促進ができる飲料水を、家畜にあっては抗生物質等の薬剤の使用を廃止でき、痢病率の低下、微量栄養素の不足状態化の回避、肉質、芳香、味の向上等を企図でき、しかも安心して食用に供することのできる飲料水を提供しようとするものである。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明は、イネ科植物の抽出成分を含んでなる動物（ただし鳥類を除く）向け飲料水用添加剤に関する。
【００１１】
また、本発明は、水と、上記飲料水用添加物とを含む動物（ただし鳥類を除く）向け飲料水に関する。
【００１２】
また、本発明は、飲料用水全体に対して、添加剤を０．００００１〜３０重量％添加してなる上記飲料水に関する。
【００１３】
また、本発明は、イネ科植物が、イネ科タケ亜科植物である上記飲料水に関する。
【００１４】
また、本発明は、イネ科タケ亜科植物が、ササ属である上記飲料水に関する。
【００１５】
また、本発明は、イネ科植物の抽出成分が、イネ科植物の葉および／または稈を蒸煮したのち、水性溶媒で抽出したものである上記飲料水に関する。
【００１６】
また、本発明は、蒸煮が、イネ科植物の葉および／または稈を、減圧弁および気液分離装置により乾き度を向上させた乾燥蒸気で１２０〜２５０℃で３０秒から１時間蒸煮するものである上記飲料水に関する。
【００１７】
また、本発明は、蒸煮が、イネ科植物の葉および／または稈と水を１００：５０〜１００：１５０の重量混合比の下、蒸煮温度１２０〜２５０℃で蒸煮するものである上記飲料水に関する。
【００１８】
また、本発明は、水性溶媒抽出温度が、１００〜１５０℃である上記飲料水に関する。
【００１９】
また、本発明は、上記飲料水を、動物（ただし鳥類を除く）へ給与することを特徴とする動物の飼育方法に関する。
【００２０】
また、本発明は、上記飲料水を、動物（ただし鳥類を除く）へ給与することを特徴とする動物の食肉の生産方法に関する。
【００２１】
また、本発明は、上記生産方法で得られる食肉に関する。
【００２２】
また、本発明は、イネ科植物の抽出成分を含んでなる動物（ただし鳥類を除く）向け原虫汚染防止剤に関する。
【００２３】
また、本発明は、上記飲料水である原虫汚染防止剤に関する。
【００２４】
また、本発明は、原虫が、コクシジウムである上記原虫汚染防止剤に関する。
【００２５】
また、本発明は、上記汚染防止剤を、動物（ただし鳥類を除く）へ給与することを特徴とする原虫汚染防止方法に関する。
【発明の効果】
【００２６】
本発明により、合成抗菌剤あるいは抗生物質を使用せずに天然由来のイネ科植物の抽出成分をペット、家畜（ただし鳥類を除く）など動物に、攪拌混合もしくは溶解混合もしくはカプセル化した動物用飲料を摂取されることにより、痢病率の低下、微量栄養素の不足状態化の回避、肉質、芳香、味の向上等を企図でき、しかも安心して食用に供することのできる飼料用添加剤を提供できる。また、コクシジウムに代表される原虫による動物の罹患を、劇的に低減することが可能となった。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２７】
本発明の動物（ただし鳥類を除く）向け飲料水用添加剤は、イネ科植物の抽出成分を含んでなる。
本発明では、動物（ただし鳥類を除く）に給与する飲料水に、イネ科、例えば、イネ科タケ亜科植物の抽出物を有効成分として、乾燥固形分で0.00001重量％〜３０重量％、好ましくは0.0001重量％〜１０重量％を含んでなる動物用飲料水として得られる。
【００２８】
（イネ科植物定義）
本発明で用いるイネ科植物には特に限定はないが、好ましいのは、イネ科およびイネ科亜科植物で、およそ600属と10000種が属する被子植物単子葉類である。亜科の代表的な属にはタケ亜科メダケ属、イネ亜科イネ属、ウシノケグサ亜科コムギ属、カゼクサ亜科シバ属、ヨシ亜科ヨシ属、キビ亜科キビ属、キビ亜科ススキ属などがあり、イネ、コムギ、トウモロコシ、オオムギ、サトウキビ、タケ、ササなどが属する。本発明ではイネ科植物のいずれを用いても良い。
【００２９】
本発明で用いるイネ科およびイネ科タケ亜科の例として、ホウライチク属、タンスイチク属、ヒマラヤカラムス属、インドカラムス属、カンチク属、クゥンズウェア属、チュスクエア属、オタテア属、ヤダケ属、メダケ属、クマザサ属、アズマザサ属に属するものが好ましい。なかでもクマザサ属が望ましく例としてオクヤマザサ、ゴテンバザサ、カツラギザサ、スズダケ、コウヤチク、フイリスズ、クマスズ、キスジスズ、ケスズ、ウンゼンザサ、ミヤマクマザサ、ネマガリダケ、キンメイチシマ、コンシマネマガリ、シモフリネマガリ、マキバネマガリ、チャボマキバチシマ、キアケボノネマガリ、ノチザエキフネマガリ、タカラネマガリ、ヤネフキザサ、キシマヤネフキザサ、ミヤコザサ、ホソバザサ、フイリホソバザサ、チマキザサ、シャコタンチク、タンナザサ、クマイザサ、ツボイザサ、アケボノイブキザサ、クマザサ、チュウゴクザサ等などが挙げられるが、これに限られるものではない。
一般的に竹もしくは笹と呼ばれ包括されているものそれぞれが有効であり、特に、クマザサ、クマイザサ、チシマザサなど、葉の周辺に白っぽい隈取りができる総称的にクマザサと呼ばれるものが好ましい。
【００３０】
（抽出成分）
本発明の抽出物の成分は複雑で必ずしも明確ではないが、フェニルプロパノイド、酢酸、ギ酸、３−ヒドロキシピリジンを各々０．５ｍｇ／ｇ以上含有し、かつ加熱残分を４０〜６０重量％に調製したときの糖類の含有量が５０ｍｇ／ｇ以下であることが好ましい。フェニルプロパノイドは、クマル酸、フェルラ酸、カフェ酸、バニリンから選ばれる少なくとも一つの化合物であることが好ましい。
【００３１】
（使用するイネ科植物）
本発明に用いるイネ科植物の植物体は、乾燥前の生葉でも良いが、十分に乾燥したものが好ましく、好ましい水分はイネ科植物の葉および／または稈全体に対して１０％以下であり、それより多い場合であると腐敗、発酵により成分が変質する恐れがある。本発明の蒸煮に用いるイネ科植物の葉および／または稈の形態については細片化したものが好ましく、好ましい大きさは０．５〜２０ｍｍであり、０．５ｍｍよりも小さいと抽出後の固液分離が困難となり２０ｍｍよりも大きいと抽出効率が悪くなる。
【００３２】
（抽出法）
本発明で用いられる、イネ科植物の植物体の抽出物を得る方法は特に限定されないが、イネ科植物を水、アルコールなどの抽出溶剤に浸漬等して得ることができる。また、市販品として入手もできる。また、イネ科植物の抽出物は適宜、水等で希釈して使用することができる。
【００３３】
本発明で用いられる、イネ科植物の植物体の抽出物を得る方法は特に限定されないが、例えば特開平06−197800号公報、特開平11−199502号公報、特開2002−322079号公報、特願2004-222710や、特願2004-242239に記載された方法を使用できる。
【００３４】
本発明で用いられる、イネ科植物の抽出物は、イネ科植物の蒸煮工程を経た後、抽出されることが特に好ましい。本発明の蒸煮は高温、高圧に耐えうる装置であれば如何なるものでも実施できる。以下、イネ科植物が笹の葉の場合を想定して説明とする。ほかの植物体、あるいは、葉以外の部分の場合も同様に行うことができる。
【００３５】
蒸煮時の温度は１２０〜２５０℃、あるいは、好ましくは１５０〜２２０℃、更に好ましくは１６０〜１９０℃である。１２０℃未満では、原料が乾燥葉で有る場合を除いて、笹中のヘミセルロースの分解による細胞壁の破壊がほとんど起こらないため所望の成分を十分に抽出することができず、２５０℃より高温では有効成分の分解が激しくなり薬効が損なわれるおそれがある。蒸煮を行なう時間は３０秒から１時間の間が好ましく、さらに好ましくは５分から２０分の間が良く、３０秒より短いとヘミセルロースの加水分解が不十分となり成分量が少なくなり、1時間より長いと得られた成分の分解が起こりやはり得
られる成分量が少なくなる。蒸煮終了後、加圧を解除する際は一気に装置を開放形にして大気圧とする方がササの葉または稈の組織破壊がより進み、抽出効率が向上するので好ましい。  
【００３６】
蒸煮に用いられる蒸気は、ボイラー等蒸気の発生源と蒸煮を行なう装置を結ぶ蒸気配管途中に気水分離装置および減圧弁を設けた装置の蒸気が好ましい。当該装置を用いることにより蒸気の乾き度が向上する。乾き度が高くドレンと呼ばれる蒸気の凝縮水が少ない程、特定成分を効率よく抽出するとともに糖類の抽出量を適度にコントロールすることが可能となる。蒸気の乾き度は簡便な測定方法が存在しないため、通常の製造装置においては直接測定するのは困難である。そのため乾燥蒸気を得るためには気液分離装置メーカー等が保有する乾き度測定システム等により９９％以上の乾き度が達成できることが確認された気液分離装置を使用するのが好ましい。気液分離装置には遠心式とバッフル式があるがバッフル式のほうが蒸気量に関わらず安定して高い乾き度を達成できるため好ましい。
【００３７】
蒸煮中に蒸煮装置内に空気が残存すると飽和水蒸気と笹の葉または稈との接触が阻害され蒸煮が不十分となり抽出効率の低下につながるため好ましくない。空気の残存を避ける手段としては手動または自動空気抜き弁を開放した状態で蒸気を導入し蒸煮装置から空気を追い出せばよい。空気を追い出す蒸気温度は８０〜２００℃であればよく好ましくは１００〜１８０℃であり、空気を追い出す時間は０．５〜６０分が良い。
【００３８】
原料が乾燥葉（含水量が１０重量％以下）で有る場合は、蒸煮時の乾燥葉および／または稈と水の比は１００：５０〜１５０の混合比にして蒸煮することも好ましい。１００：５０よりも少ない水の比率下ではヘミセルロース等の加水分解に必要とされる水分量が不足し、１００：１５０よりも多い水の比率下では蒸気が笹葉に到達せず細胞壁の破壊がほとんど起こらないため所望の成分を十分に抽出することができない。また、蒸煮時の温度は１２０〜１７０℃が最も好ましい。１２０℃未満では笹中のヘミセルロースの分解による細胞壁の破壊がほとんど起こらないため所望の成分を十分に抽出することができず、１７０℃より高温ではクマル酸などの有効成分の分解が激しくなり薬効が損なわれるおそれがある。蒸煮を行なう時間は３０秒から１時間の間が好ましく、さらに好ましくは５分から２０分の間が良く、３０秒より短いとヘミセルロースの加水分解が不十分となり成分量が少なくなり、1時間より長いと得られた成分の分解が起こりやはり得られる成分量が少
なくなる場合がある。蒸煮終了後、加圧を解除する際は一気に装置を開放形にして大気圧とする方がササの葉または稈の組織破壊がより進み、抽出効率が向上するので好ましい。
【００３９】
水性溶媒で抽出方法は、蒸煮後に、冷却もしくは温度を保持したまま、水性溶媒を添加し、室温から１８０℃、好ましくは、１００〜１５０℃の条件で、前記水性溶媒に、蒸煮された笹の葉を漬浸する。抽出時の温度は１００〜１５０℃が最も好ましい。１００℃未満では抽出効率が低下し、１５０℃より高温では有効成分の分解が激しくなりやはり得られる成分量が少なくなる。抽出を行なう時間は１０分から１時間の間が好ましく、さらに好ましくは１５分から３０分の間が良く、１０分より短いと溶出量が少なくなり抽出効率が低下し、1時間より長いと得られた成分の分解が起こりやはり得られる成分量が少なく
なる。
【００４０】
本発明に用いられる水性溶媒はメタノール、エタノール、アセトン等の水溶性溶媒またはそれらの水溶液、水が好ましく、植物体抽出物の用途によって許される場合はアルカリ水溶液を用いることで抽出効率を上げることができる。本発明に用いられるアルカリ水溶液は水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素アンモニウム等が好ましい。
【００４１】
本発明において、蒸煮工程、抽出工程は、それぞれを本発明の主旨を逸脱しない範囲で、繰り返し行われていてもよい。また、各工程前後に、さらに、保持工程などの他の工程が設けられていてもよい。
【００４２】
水は、イネ科植物の抽出成分のより、褐色系に着色する。しかし、水に着色剤を添加して、動物の好む色に着色してもよい。着色剤としては特に限定させないが、食用色素、クロロフィル等の食品添加物として認められている色素が望ましい。
【００４３】
（添加前の抽出物の形態）
本発明のイネ科植物の抽出物を飲料水に含ませる形態に特に限定はなく、溶液であっても固形であってもよく、また、その他の化合物との混合物であってもよい。混合物である場合は、スプレードライ、凍結乾燥、デキストリンなど添加等の処理したものであってもよい。さらに、濾過、カラム精製、溶剤洗浄などの選別工程を経たものであってもよい。
例えば、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、タルク、流動性向上剤等、一般的に造粒に使用される添加剤を用いても良い。例えば、デンプン、乳糖、マンニットカルボキシメチルセルロースナトリウム、ヒドロキシプロピルセルロース等の結晶セルロース、カルボキシメチルセルロースカルシウム、ステアリン酸マグネシウム等の軽質無水ケイ酸等、酢酸セルロース、キトサン、アルギン酸カルシウム、アルギン酸カルシウム、脱脂米糖、油かす、大豆粉、小麦粉、無水ケイ酸、フスマ、もみがら粉、炭酸カルシウム、ミルクカルシウム、酸化マグネシウム、重炭酸ナトリウム、結晶セルロース、澱粉、ビール酵母、糖、還元乳糖、植物油脂等等を適宜組み合わせて処方することにより、錠剤、カプセル剤、顆粒剤等として製造することができる。
【００４４】
（供給方法）
本発明の抽出物を含む飲料水の形態に特に限定はなく、予め水に上記抽出物を添加（溶解・分散などを含む）したものをボトル等に詰めて予製したものでもよく、あるいは予め水の入った給水器に後から添加する方法でも良い。
また、魚介類や両棲類など、水中に生息する動物を対象とする場合は、本発明の飲料水用添加剤、あるいは、飲料水をそのまま、水中に添加すると有効濃度以下になってしまう恐れがある。この場合、マイクロカプセルなど公知の技術により拡散しない飲料水の形態で供給されてもよい。
【００４５】
（添加前の抽出物の形態）
本発明のイネ科植物の抽出物を飲料水に含ませる形態に特に限定はなく、溶液であっても固形であってもよく、また、その他の化合物との混合物であってもよい。混合物である場合は、スプレードライ、凍結乾燥、デキストリンなど添加等の処理したものであってもよい。さらに、濾過、カラム精製、溶剤洗浄などの選別工程を経たものであってもよい。
【００４６】
例えば、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、タルク、流動性向上剤等、一般的に造粒に使用される添加剤を用いても良い。例えば、デンプン、乳糖、マンニットカルボキシメチルセルロースナトリウム、ヒドロキシプロピルセルロース等の結晶セルロース、カルボキシメチルセルロースカルシウム、ステアリン酸マグネシウム等の軽質無水ケイ酸等、酢酸セルロース、キトサン、アルギン酸カルシウム、脱脂米糖、油かす、大豆粉、小麦粉、無水ケイ酸、フスマ、もみがら粉、炭酸カルシウム、ミルクカルシウム、酸化マグネシウム、重炭酸ナトリウム、結晶セルロース、澱粉、ビール酵母、糖、還元乳糖、植物油脂等を適宜組み合わせて処方することにより、錠剤、カプセル剤、顆粒剤等として製造することができる。
【００４７】
本発明の飲料水を施すべき動物には、ペット、家畜（ただし鳥類を除く）、魚介類などが包含される。ペットとしてはイヌ、ネコ、ウサギなどのほ乳類、カメ、ヘビなどのは虫類、蛙、ヤモリなどの両生類、金魚、熱帯魚などの魚類、カブトムシ、スズムシなどの昆虫などが挙げられる。
家畜としては豚、牛、馬、ヤギ、羊などを、あるいは、水産養殖魚類としてブリ、タイ、ヒラメ、フグ、シマアジ、カンパチ、サケ、マス、コイ、ウナギ、アユ、イワナ、エビなどを例示することができる。
【００４８】
（推測される作用）
イネ科植物、例えば、竹または笹の植物体の抽出成分に関しては、リグニン・セルロース・ヘミセルロース・多糖類・ポリフェノールを多く含んでいることが推測されておりその成分は複雑で必ずしも明確ではない。
【００４９】
イネ科植物、例えば、竹または笹の植物体の抽出成分は、キシロース、アラビノース等のペントース（五炭糖）、ガラクトース、グルコース等のヘキソース（六炭糖）などを主成分とする単糖、およびそれらが重合したキシロオリゴ糖、アラビノオリゴ糖、あるいはキシロース、アラビノースが相互に複雑に架橋したアラビノキシランなどの多糖類が含まれることが知られている。
また他の植物と比較した場合に、クマル酸、フェルラ酸・カフェ酸・バニリンなどのフェニルプロパノイド系ポリフェノールがイネ科植物に多く含まれることが知られている。これら以外にも酢酸・ギ酸・プロピオン酸・乳酸などの有機酸類や、アミノ酸、３−ヒドロキシピリジンなどの含窒素環化合物、なども多量に含まれている。
特に先述の蒸煮工程を経ることにより、これらの化合物の収量が格段に向上している。
【００５０】
生物学的または生化学的に解明されていないが、本発明の動物用飲料水がイネ科植物抽出成分を含むことにより、これらの糖類、ポリフェノール類、あるいは有機酸類が、生体物質の活性化を高め、動物の体内環境を整え、食肉の質感の向上などに寄与しているものと推察される。
腸内の細菌は、摂取した食物の消化、吸収の促進など有用な面と、腸内でアンモニア、インドールなどの腐敗物質を生成する有害な面とがある。しかし本来、宿主に利用されるべきアミノ酸が、腐敗菌によって有害物質を生成することは、栄養素の損失ばかりでなく、家畜の健康や成長に悪影響を及ぼす。
【００５１】
このようにイネ科植物、例えば、イネ科タケ亜科植物の抽出物を含む飲料水を摂取することで、腸内の有用微生物の増加を促すことで動物の健康維持に寄与し、さらには有用微生物の増加に伴って、有害微生物の増殖が抑制され、有害微生物が生産するアンモニア、硫化水素、アミンなどの悪臭物質の生成も抑制されるので、食肉のの味覚に影響の１つである臭いが改善されることも推測される。
また、糞尿などの悪臭が改善され、生育により良好な環境となることも期待される。
【００５２】
（原虫）
本発明でいう原虫とは「高橋忠夫（2000）第一章 土の原生動物. 日本土壌微生物学会（編）新・土の微生物（7）. 博友社、p. 5-54」に記載される、単細胞の動物群（原生動物）を云い、病原性であったり，病原性はなくとも脊椎動物寄生性であるなど，何らかの点で脊椎動物に係わりがある原生動物の一群を指す。
例えば家畜伝染病予防法に規定されるバベシア・カニスBabesia canis、バベシア・ディバージエンスBabesia divergens、バベシア・ギブソニBabesia gibsoni、バベシア・ヤキモビBabesia jakimovi、バベシア・マジョールBabesia major、バベシア・オカルタンスBabesia occultans、バベシア・オバタBabesia ovata、バランチジウム・コリBalantidium coli、クリプトスポリジウム・ベイレイCryptosporidium baileyi、クリプトスポリジウム・メレアグリディス Cryptosporidium meleagridis、クリプトスポリジウム・ムリスCryptosporidium muris、クリプトスポリジウム・パルバムCryptosporidium parvum、アイメリア・アセルブリナEimeriaa cervulina、アイメリア・アデノイデスEimeria adenoeides、アイメリア・アーサーターEimeria ahsata、アイメリア・アンセリスEimeria anseris、アイメリア・アルロインギEimeria arloingi、アイメリア・アウブルネンシスEimeria auburnensis、アイメリア・バタリEimeria bateri、アイメリア・ボビスEimeria bovis、アイメリア・クリステンセニイEimeria christenseni、アイメリア・ダナイローバEimeria danailova、アイメリア・デブリエッキEimeria debliecki、アイメリア・ディスパーサEimeria dispersa、アイメリア・エリプソイダリスEimeria ellipsoidalis、アイメリア・ガロパボニスEimeria gallopavonis、アイメリア・イレシドゥアEimeria irresidua、アイメリア・コトラニEimeria kotlani、アイメリア・マグナEimeria magna、アイメリア・マツバヤシEimeria matsubayashi、アイメリア・マキシマEimeria maxima、アイメリア・メディアEimeria media、アイメリア・メレアグリミティスEimeria meleagrimitis、アイメリア・ナグプレンシスEimeria nagpurensis、アイメリア・ネカトリックスEimeria necatrix、アイメリア・ネオレポリスEimeria neoleporis、アイメリア・ニナコリアヤキモバエEimeria ninakohlyakimovae、アイメリア・ノセンスEimeria nocens、アイメリア・オビノイダリスEimeria ovinoidalis、アイメリア・パーフォランスEimeria perforans、アイメリア・ピリフォルミスEimeria piriformis、アイメリア・ポリータEimeria polita、アイメリア・サイタマエEimeria saitamae、アイメリア・スカブラEimeria scabra、アイメリア・スピノーサEimeria spinosa、アイメリア・スティダイEimeria stiedai、アイメリア・テネラEimeria tenella、アイメリア・ツノダイEimeria tsunodai、アイメリア・トランカータEimeria truncata、アイメリア・ウズラEimeria uzura、アイメリア・ワイオミングエンシスEimeria wyomingensis、アイメリア・ツェルニィEimeria zuernii、エンセファリトゾーン・クニクリEncephalitozoon cuniculi、ジアルジア・カニスGiardia canis、ジアルジア・デュオデナリスGiardia duodenalis、ヘキサミタ・メレアグリディスHexamita meleagridis、シチメンチョウヘキサミタ、ヒストモナス・メレアグリディスHistomonas meleagridis、イソスポラ・アラマタエンシスIsospora alamataensis、イソスポラ・スイスIsospora suis、レイシュマニア・ブラジリエンシスLeishmania braziliensis、レイシュマニア・ドノバニLeishmania donovani、レイシュマニア・トロピカLeishmania tropica、ロイコチトゾーン・アンドリューシLeucocytozoon andrewsi、ロイコチトゾーン・ガリィLeucocytozoon galli、ロイコチトゾーン・サブラゼシィLeucocytozoon sabrazesi、ロイコチトゾーン・ショウテデニィLeucocytozoon schoutedeni、ロイコチトゾーン・シモンディLeucocytozoon simondi、ロイコチトゾーン・スミシLeucocytozoon smithi、ペンタトリコモナス・ホミニスPentatrichomonas hominis、プラスモディウム・サーカムフレクサム Plasmodium circumflexum、プラスモディウム・エロンガタムPlasmodium elongatum、プラスモディウム・ガリナセウムPlasmodium gallinaceum、プラスモディウム・ジュクスタヌクレアエ Plasmodium juxtanucleare、プラスモディウム・ロフラエPlasmodium lophurae、プラスモディウム・レリクタムPlasmodium relictum、ザルコシスティス・クルージSarcocystis cruzi、ザルコシスティス・クニクリSarcocystis cuniculi、ザルコシスティス・ミーシェリアーナ Sarcocystis miescheriana、ザルコシスティス・ポリシフェリスSarcocystis porcifelis、ザルコシスティス・スイホミニスSarcocystis suihominis、ザルコシスティス・テネラSarcocystis tenella、ザルコシスティス・ミエスケリアナSarcocystis miescheriana、タイレリア・ミュータンスTheileria mutans、タイレリア・セルゲンティTheileria sergenti、トリコモナス・ガリナエTrichomonas gallinae、トリコモナス・ガリナルムTrichomonas gallinarum、ティゼリア・ペルニシオーサTyzzeria perniciosa、ウェニョネラ・フィリプレビネイWenyonella philliplevinei、赤痢アメーバ、マラリア原虫、トキソプラズマ、トリコモナス、トリパノソーマ、クリプトスポリジウム、バーベシア・マイクロティなどが挙げられる。
本発明の原虫汚染防止剤は、日常的に予防の目的で給与されてもよいし、発症して隔離された動物に給与して症状を緩和させる目的で給与されてもよい。
【００５３】
（イネ科植物抽出物  製造方法１）
０．５〜５ｍｍに粉砕された水分７％の乾燥したクマイザサの葉および稈２ｋｇを高圧蒸煮缶に仕込み、貫流ボイラーで発生させた２ＭＰａの高圧蒸気を予め乾き度測定システムにより乾き度が９９．５％まで達成されることが確認されたセパレーターにより気液分離しさらに減圧弁により１．６ＭＰａまで減圧することで乾き度を向上させた蒸気を高圧蒸煮缶に導入した。蒸気導入当初は空気抜き弁を開放にして１００℃で１０分間蒸気を蒸煮缶内部に通過させることで空気を追い出し、空気抜き弁を閉じて１００℃から１０分間かけて１８０℃まで昇温させそのままの温度で１０分間保持後一気に加圧解除した。高圧蒸煮した葉および稈を加圧抽出缶に仕込み水８ｋｇを加えて室温から１１０℃まで３０分間かけて昇温し、そのままの温度で５分間保持しその後１時間かけて加圧状態を解除した。抽出物をろ過、減圧濃縮して加熱残分５０％のササ抽出物を得た。
【００５４】
（イネ科植物抽出物  製造方法２）
０．５〜５ｍｍに粉砕された水分７％の乾燥したトウモロコシ果皮４００ｇと純水４００ｇ（含水率５０重量％）を高圧蒸煮缶に仕込み、１０分間かけて１６０℃まで昇温させそのままの温度で１０分間保持後一気に加圧解除した。高圧加水蒸煮した葉および稈に水４ｋｇを加えて室温から１１０℃まで５分間かけて昇温し、そのままの温度で３０分間保持後加圧状態を解除した。抽出物をろ過、減圧濃縮して加熱残分５０％のトウモロコシ果皮抽出物を得た。
【００５５】
（イネ科植物抽出物  製造方法３）
０．５〜５ｍｍに粉砕された水分７％の乾燥したイネの葉および茎４００ｇと純水４００ｇ（含水率５０重量％）を高圧蒸煮缶に仕込み、１０分間かけて２００℃まで昇温させそのままの温度で１０分間保持後一気に加圧解除した。高圧加水蒸煮した葉および稈に水酸化ナトリウム１．８ｇを溶解した水４ｋｇを加えて室温から１１０℃まで５分間かけて昇温し、そのままの温度で３０分間保持後加圧状態を解除した。抽出物をろ過、減圧濃縮して加熱残分５０％のイネ抽出物を得た。
【００５６】
（イネ科植物抽出物  製造方法４）
製造方法２のトウモロコシ果皮の代わりに、クマイザサを用いた以外は、製造方法２と同様に操作を行って、加熱残分５０％のクマイザサ抽出物を得た。
【００５７】
＜ペット、家畜（ただし鳥類を除く）用飲料水＞
以下数値は特に断らない限り、重量部を表し、合計１００になるよう調製した。
【００５８】
試験例１
上記製造方法１で製造された本発明の飲料水用添加剤を加えたペット、家畜（ただし鳥類を除く）用飲料水で飼育（以下、「添加飼育」と言う）した場合と、比較例として、本発明の飲料水用添加剤を添加していない飲料水を用いた従来方法による飼育（以下、「従来飼育」と言う。）とについて実験した。
【００５９】
雌豚４頭から産まれた仔豚３４頭を、離乳後、１７頭づつ２つのグループに分け、それぞれ１２０日間行ったところ、表１に示すような結果を得た。表１中、体重および飲料水に関する数値は各グループにおける１頭あたりの平均値である。
【００６０】
【表１】
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【００６１】
試験例１の結果では、成育の度合いを判断する日増体重は、従来飼育によるグループと比較すると、添加飼育グループは５．３％の増加となっている。また、飼育中における添加飼育グループの豚は従来飼育グループに比べて温順であり、毛は短毛で艶を有していた。排泄物についても、同種の飼料を与えたにもかかわらず、従来飼料グループは悪臭を放すのに対し、添加飼料グループでは悪臭が極端に少なく、蝿の数も少なかった。
【００６２】
試験例２
上記製造方法４で製造本発明の飲料水用添加剤を加えた水産養殖魚用飲料水１、２、３を用いてウナギのパラコロ病に対する感染予防効果を調べた。比較例として、本発明の飲料水用添加剤を添加していない飲料水を調製し、体重約１２０〜１４０ｇのウナギの成魚２４尾を６尾づつ４グループに分け、水産養殖魚用飼料１、２、３および比較例でそれぞれ飼育した。飼育は１００Ｌ容量水槽に８０Ｌの地下水を入れ、濾過器を設置し、循環濾過を行った。
【００６３】
また、水槽にはヒーターを設置し、水温を２５〜２７℃にコントロールし、エアレーションも行った。飲料水は、ウナギ１尾あたり２ｇづつ水槽に投与し、６日間行った。投与後、各グループに対しパラコロ病菌を腹腔内接種による人為感染させ、感染による各グループの死亡数および感染症状を観察した。
【００６４】
感染方法は、１．５％食塩水の培地で３７℃、２４時間培養したエドワルドジエラ・タルダ菌液を遠心分離にて集菌し、適当量の生理食塩水にて懸濁し、１×１０6個／ｍｌと
なるように希釈した。その希釈菌液０．２ｍｌをウナギの腹腔内に注射し感染させた。感染後、７日目の結果を表２に示す。
【００６５】
【表２】
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【００６６】
試験例２の結果より、養殖魚の飼育において、本発明の飲料水は魚類感染症に対して予防効果を有することが示された。  
【００６７】
(実施例３)
離乳期（生後３０日齢）の仔ウシ１０頭を２群に分け、飲用水へのササ抽出物添加の無い対照群（比較例３）と、ササ抽出物添加の有る試験群（実施例３）の下痢症状の発症率を比較した。対照群の飲用水には通常の井戸水を使用し、試験群では井戸水に対してササ抽出物を１重量％となるように添加して、投与方法は自由飲水とした。
試験開始５日間後（感染０日目）、両群にEimeria bovisのオーシストを経口感染させたのち、下痢症状の発症・および糞便中のオーシスト数を、しょ糖液浮遊法でオーシストの有無を検査した後、糞便１ｇ中のオーシスト数をプランクトン計算盤を用いて計数して、オーシスト数を算出し、ｎ＝５の平均値を示した。
【００６８】
【表３】
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【００６９】
予めササ抽出物の飲水がなかった比較例１では、感染７日目には下痢症状を発症し、オーシスト数も増加していた。しかし一方、予めササ抽出物を飲用されていた実施例１では、糞便中のオーシスト数は若干の増加を認めたものの下痢症状は呈さなかった。
離乳後の仔ウシは下痢による体力消耗を予防することで、その成長を順調にし、生産性を向上させることができる。
【００７０】
（実施例４）
離乳期（生後５日齢）の仔豚１０頭を２群に分け、飲用水へのササ抽出物添加の無い対照群（比較例４）と、ササ抽出物添加の有る試験群（実施例４）の下痢症状の発症率を比較した。対照群の飲用水には通常の井戸水を使用し、試験群では井戸水に対してササ抽出物を０．５重量％となるように添加して、投与方法は自由飲水とした。
試験開始３日間後（感染０日目）、両群にIsospore suisのオーシストを経口感染させたのち、下痢症状の発症・および糞便中のオーシスト数を、しょ糖液浮遊法でオーシストの有無を検査した後、糞便１ｇ中のオーシスト数をプランクトン計算盤を用いて計数して、オーシスト数を算出し、ｎ＝５の平均値を示した。
【００７１】
【表４】
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【００７２】
予めササ抽出物の飲水がなかった比較例２では、感染５日目には下痢症状を発症し、オーシスト数も増加していた。しかし一方、予めササ抽出物を飲用されていた実施例２では、糞便中のオーシスト数は若干の増加を認めたものの下痢症状は呈さなかった。
離乳後の仔豚は下痢による体力消耗を予防することで、その成長を順調にし、生産性を向上させることができる。