(57)【要約】【課題】ゲノム由来のＤＮＡ断片、ＲＮＡ由来のポリヌクレオチド断片、タンパク質、ペプチド等の分離回収に好適な電気泳動分離物回収方法、及びこれを用いる電気泳動装置を提供する。【解決手段】熱溶融性ゲルに展開した電気泳動分離バンドに集束光を照射し、特定の電気泳動分離バンド部分を溶解し、これをピペットで吸引し、回収する。【選択図】図２
2006098328.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
熱溶融性ゲルに展開した電気泳動分離バンドの特定の電気泳動分離バンド部分に集束光を照射し、該電気泳動分離バンド部分を溶解して回収することを特徴とする電気泳動分離物回収方法。
【請求項２】
熱溶融性ゲルに展開した電気泳動分離バンドを持つ電気泳動分離ゲル基板を保持する手段、前記電気泳動分離バンドの特定の電気泳動分離バンド部分を検出する手段、前記検出された電気泳動分離バンド部分に集束光を照射し加熱する手段、前記加熱により溶融したゲルを吸引する手段を備えたことを特徴とする電気泳動分離物回収装置。
【請求項３】
前記電気泳動分離ゲル基板を保持する手段が温度調整手段を保持する請求項２記載の電気泳動分離物回収装置。
【請求項４】
前記加熱により溶融したゲルを吸引する手段がピペットと該ピペットを溶解された特定の電気泳動分離バンド部分にアクセスする手段を備えた請求項２記載の電気泳動分離物回収装置。
【請求項５】
前記熱溶融性ゲルに、少なくともゲル構造を維持できるだけのアガロースを含む請求項１記載の電気泳動分離物回収法。
【請求項６】
前記熱溶融性ゲルのアガロースの融点が６０℃以下の請求項１記載の電気泳動分離物回収法。
【請求項７】
熱溶融性ゲルに展開した電気泳動分離バンドの特定の電気泳動分離バンド部分に集束光を照射し、該電気泳動分離バンド部分を溶解して回収することを特徴とする電気泳動分離物回収方法に適用する熱溶融性ゲル基板であって、前記熱溶融性ゲルが０．０２ｍｍ以上０．２ｍｍ以下でガラス基板に固定されていることを特徴とする熱溶融性ゲル基板。
【請求項８】
加熱により溶融したゲルを吸引する前記手段が、ピペット内側に第1の電極が取り付けられているピペットで、外部の容器に設置した電極との間に電界をかけることのできる構造であることを特徴とする電気泳動分離物回収装置。
【請求項９】
前記ピペットにあらかじめ電解液を挿入する工程、集束光で溶融したゲルを吸い上げる工程、ピペット内に吸い上げたゲルの温度を下げて再度ゲル化させる工程、ピペットチップ先端を電解液をいれた容器に接触させる工程、前記ピペット内で電解液と接している第1の電極と容器内の第2の電極との間に第2の電極を正極として電界をかけ、ピペットチップ内で固まったゲルに含まれる電気泳動分離物質を容器中の電解液に電気泳動され溶出する工程からなる電気泳動分離物回収方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
発明は、生体試料の分離分析装置に関し、特に、ゲノム由来のＤＮＡ断片、ＲＮＡ由来のポリヌクレオチド断片、タンパク質、ペプチド等の分離回収に好適な電気泳動分離物回収方法、及びこれを用いる電気泳動装置に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
生体物質の分析や分取には電気泳動を用いた分離技術が最も広く用いられている。例えば、ＤＮＡ解析の分野では、ポリアクリルアミドゲル電気泳動を用いてＤＮＡの配列決定が頻繁に行われている。既に、大腸菌、酵母のような微生物の全ゲノム配列が解明され、多細胞生物では、線虫、ハエの全ゲノムがほぼ解明されている。ヒトの全ゲノム配列は２０００年代の早い時期に配列解析が終了する予定である。
【０００３】
このような高分解能を有する電気泳動の泳動媒体としては、ポリアクリルアミドゲルのほか、メチルセルロースやアクリルアミドポリマーやその誘導体からなる高分子が用いられる。
【０００４】
分離分取用の電気泳動では一般的に、泳動媒体としてゲルを固定したガラス平板を用いる。ゲルは、０．５〜１ｍｍ程度のスペースをもつ２枚のガラス板の間に形成し、これを立ててゲル板の上下に電極槽を設けるバーチカルタイプと、ゲルを一枚のガラスやプラスチックシートの上に塗布した片面オープンのゲル板を水平に置き、両端に電極槽を設けるホリゾンタルタイプがある。ＤＮＡ分離用に多用されるサブマリン電気泳動もホリゾンタルタイプである。いずれも平板を用いることからスラブ電気泳動として知られている。
【０００５】
分離方法としては、試料を一次元に展開して分離する一次元電気泳動と２種類の異なる電気泳動原理に基づいて物質を２次元平面に展開する２次元電気泳動がある。
【０００６】
一次元電気泳動では、物質を等電点で分離する等電点電気泳動、タンパク質を分子量で分離するＳＤＳ電気泳動や濃度勾配ゲル電気泳動、電荷と分子量の兼ね合いで分離する方法、特定物質とのアフィニティーで分離するアフィニティー電気泳動などがある。２次元電気泳動では、一次元目に等電点電気泳動、２次元目にＳＤＳ電気泳動や濃度勾配ゲル電気泳動や電荷と分子量の兼ね合いで分離する方法を組み合わせるケースが多い。
【０００７】
いずれの電気泳動においても、試料をゲル中に展開分離した後、必要な分離バンドを検出して、この部分を切り出して回収する。回収したゲル断片は小さく切って中に含まれる分離物質を溶出させたり、電場の中に置き、溶液中に電気泳動的に溶出させたりして回収する。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
上記のように、従来の技術では電気泳動分離バンドの位置をあらかじめカッターなどで切り出して回収する。このため、分離バンドの大きさや形状がまちまちな電気泳動分離バンドを隣接するバンドと区別して認識し、エリアを特定して切り出すのに、手間と時間がかかる問題がある。自動化する上でも、上記条件を満たすのは容易ではない。ゲルは一般的に柔らかく、切断時に歪むのもコンタミネーションの原因となり目的物質の回収に影響する。
【０００９】
特に、タンパク質の２次元電気泳動では、量の異なるタンパク質が数百〜数千スポットに亘って２次元に展開しており、巨大スポットの隣に小さなスポットが隣接しているケースなどは切り出しに困難を極める。
【００１０】
電気泳動による分離後の２次元電気泳動ゲルの目的スポットの位置をゲルの厚み方向から電極で挟み、電気的に溶出することで自動化する方法もあるが、電気力線がゲル内で広がるため、やはり隣接スポットからのコンタミネーションの問題が残る。
【００１１】
本発明の目的は、上記のような問題点を解決し、分離スポットから分離物質を高純度で確実に回収できるよう形状を工夫したゲル版、分離ゲルスポットを認識し、分離ゲルスポットを回収する電気泳動分離物回収装置ならびに電気泳動分離物回収法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
今までの電気泳動群利物質の回収技術を検討すると、分離後にゲルを切り出すところに問題があることに気づく。自動化する場合、分離バンドを認識してその位置を切り出すわけであるが、切り出し冶具が邪魔になり、観察しながら切り出しを行おうとすると、困難な場合が多い。画像を取り込み、画像データを基に切り出しを行うのが一般的であるが、形状が柔らかいゲルでは微妙な切り出しが困難である。電極を用いて回収する場合も、電極が邪魔となるので取り込み画像を参照にしてスポット位置に電極を移動させて回収する。
【００１３】
本発明では、ゲルスポットの位置と形状を確認しながらスポットに含まれる分離物質を回収する。このために、光を用いて光熱変換作用でゲルを溶かして回収する。ゲルは熱拡散による溶融範囲のブロード化を抑えるため、０．５ｍｍ以下できれば０．２ｍｍ以下の薄層でかつ基板に接した形状とするのが望ましい。照射する光はスポットに対して十分小さい必要があるので集束光を用いる。また、光が熱に変わらなければならないので、１４８０ｎｍのレーザーを用いる。レーザーはゲル中の水に吸収され発熱する。熱でゲルが溶融する必要性から、ゲルにはアガロース、アガロースを含むリニアーポリアクリルアミドやジメチルセルロースなど、アガロースとリニアーポリアクリルアミドやジメチルセルロースなどの共重合体を用いる。特に、タンパク質を分離する場合は、融点が６０℃以下の低融点アガロースを含む上記ゲルを使用する。
【発明の効果】
【００１４】
光が当たり、熱に変換され、溶けるゲルの範囲は厳密に規定できるので、どのような形状の分離スポットからでも分離物質を低クロスコンタミネーションで回収できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１５】
（実施例１）
図１は実施例１の電気泳動により分離バンドが形成される様子を模式的に示す図、図２（Ａ）、（Ｂ）および（Ｃ）は、図１で説明した分離バンドの熱による溶融回収を模式的に示す図である。ここでは、１次元の電気泳動でＰＣＲ産物を分離する例で説明する。
【００１６】
ここで使用した試料は配列番号１と配列番号２の配列の合成オリゴＤＮＡ（濃度：０．２ｐｍｏｌ／μｌ）を、それぞれ、プライマーとして、ヒトｍＲＮＡのｃＤＮＡから定法に従いＰＣＲ増幅を行う。ＰＣＲは９４℃変性５秒間、５５℃アニール１０秒間、７２℃１０秒間のサイクルを３５回繰り返す。反応液量は２μｌで行う。データベースから予想されるＰＣＲ産物の塩基長は２３３ｂｐである。
CTGAGCGAGT GAGAACCTAC TG    ：（配列番号１）
AGCCACATCA GCTATGTCCA       ：（配列番号２）
図１において、１はガラス基板である。ガラス基板１の上に１０ｃｍ角、０．１ｍｍ厚の２％のアガロースゲル２が塗布してある。アガロースゲルの厚みは０．２ｍｍでアガロースゲルサイズは９０×９０ｍｍである。アガロースゲル２にはスリット３が設けてあり、試料を添加することができる。スリット３の大きさは幅５ｍｍで電気泳動方向に０．５ｍｍである。図では、平面図を省略したが、適当な間隔、例えば、１０ｍｍ離れた位置に周期的にスリット３が配置され、複数の試料を同時に電気泳動できる構造とされる。
【００１７】
ゲルはＴｒｉｓ−酢酸（ｐＨ８．２）の緩衝液兼電解液を含むスポンジ４−１と４−２を介し、マイナス電極５−１とプラス電極５−２が接続できる構造をしている。試料用液０．５μｌをスリット３に毛管現象で入れ、湿潤箱に入れ、直ちに、電極５−１と５−２を電源に接続して、電界をかける。もちろん従来のサブマリン電気泳動のように、ゲルを電解液の中に浸して電気泳動を行ってもよい。１５Ｖ／ｃｍの電界強度で、たとえば、３０分間電気泳動を行う。
【００１８】
このときゲルには、電解液のほかエチヂウムブロマイドを所定の量入れておく。試料にはエチヂウムブロマイドは入れるが電解液は入れない。理想的には水に溶解したＰＣＲ産物が好ましいが、ＰＣＲ溶液を水で２倍以上薄めたものでもよい。これは、試料用液中のＰＣＲ産物がゲルに入り込むときのスタッキング効果を狙うものである。エチヂウムブロマイドは２本鎖ＤＮＡにインターカレーとしてＹＡＧレーザー５４５ｎｍで励起すると蛍光を発するので容易に確認できる。６−１から６−４はこのようにして電気泳動分離された分離バンドを表す。ここでは、バンド６−３が溶かして回収する目的のバンドである。
【００１９】
図２（Ａ）に示すように、波長が１４８０ｎｍのレーザー光７を照射する。レーザービームは５０μｍφに絞ってある。これ以上電気泳動分離バンドのスポット径が小さい場合は、レーザービームを更に絞る必要があるが、この場合は１０倍程度の顕微鏡用対物レンズを用いれば良い。１３は、レンズを挿入した場合のレンズを示す。ただし、この場合は、対物レンズが挿入されるので、ゲルの広い範囲の蛍光観察はできなくなる。切り出したい電気泳動分離バンドの一部を確認できるだけとなるが、ステージを動かしながら目的スポットを確認しながらのレーザー照射となるので問題ない。通常は対物レンズ１３を使用しないでも良い場合が多い。
【００２０】
レーザー光７を照射すると、きわめて短時間の内に、ゲル３のバンド６−３の部分のゲルの温度が上昇し、ゲルが溶解する。９はピペットであり、シリンジポンプ１４に連動しており、溶解したゲルを吸い出すことができる。図２（Ｂ）に示すように、この操作で分離バンド６‐３があったところは穴８が開き、分離バンド６−３はピペットの中に６−３’のように吸い出される。
【００２１】
次いで、図２（Ｃ）に示すように、ピペット９を移動し、シリンジポンプ１４を操作して、ピペット９から、他のプレート１０の上に吐き出すと参照符号１１のように分離バンドのドットとして回収することができる。
【００２２】
図３（Ａ）、（Ｂ）は、このようにして分離した分離バンドのドット１１と、分離前のＰＣＲ増幅によって得られた溶液を解析した結果を示す波形図である。ここでは、（株）日立製作所製のｉ−チップ（マイクロ電気泳動チップ）とコスモ−ｉチップ電気泳動装置で解析した結果を示す波形図である。
【００２３】
図３（Ａ）に示すように、分離バンドのドット１１の解析した結果では、２３０ｂｐの位置に実質的にシングルの電気泳動分離バンドが得られる。分離バンドのドット１１の解析した結果を、データベースとの比較で検討すると、予想されるＰＣＲ産物の塩基長は２３３ｂｐのピーク２０−３’以外にバンドが見られないことがわかる。分離前のＰＣＲ増幅産物からは、複数のバンドに対応したピーク２０−１、２０−２、２０−３、２０−４が検出される。
【００２４】
（実施例２）
実施例２では、２次元電気泳動で分離したタンパク質分離スポットを本発明の装置で分離回収する例について説明する。
【００２５】
電気泳動は１次元が等電点電気泳動である。キャリーアンホライト（ｐＨ４−７）を含む０．５％アガロースゲルで、大きさは、１ｍｍ直径長さ８ｃｍのガラス管の中で４００Ｖで８時間泳動する。泳動終了後ガラス管からゲルを押し出し、９０×９０×０．２ｍｍの２次元目のゲルのマイナス極側から１０ｍｍの位置に乗せる。２次元目のゲルは２％アガロースである。２次元目は緩衝液としてＴｒｉｓ―酢酸緩衝液（ｐＨ８．５）を用いる。クマシーブリリアントブルーＲ２５０で情報に従い染色すると、タンパク質分離バンドがブルーに染まる。
【００２６】
図４は、２次元電気泳動で分離した特定のバンドを回収するための装置構成を示す概略図である。
【００２７】
本装置では、２次元電気泳動分離ゲル１００に分離したタンパク質スポットを観察しながら集束光加熱を行うために、分離ゲル１００の上面に全体観察用光学系２００、分離ゲル１００の下面にレーザー加熱光学系３００を持つ。
【００２８】
まず、全体観察用光学系２００は、以下のような構成になっている。光源１７０から照射された光は、電気泳動分離ゲル１００に照射される。照射された光は、反射光として対物レンズ２０５とフィルター２０６を通りＣＣＤカメラ２０７に到達する。ＣＣＤカメラ２０７に得られる画像データは画像処理解析装置１６１に送られ、スポットの検出と位置合わせ、レーザー加熱の進行状況をモニターするのに使われる。
【００２９】
レーザー加熱光学系３００では、例えば、モニター画面を見て使用者が与えるレーザー照射信号に応じて、レーザー光源１４１から照射された光が、フィルター３０９で波長選択された後に、ダイクロイック・ミラー３１０によって対物レンズ３０５に誘導され、ゲル１００に集光する。集光点を移動させる場合には、可動ダイクロイック・ミラー３１０を移動させることで、ゲル１００平面内でのレーザーの集束位置を動かすことが可能である。レーザー集束光の当たった場所はゲルが融解するが、これは発光点として光学系２００で観察可能である。対物レンズ３０５によるレーザー照射は、ダイクロイック・ミラー３１０、ミラー１４４、レンズ１４５とフィルター１４６を介して、画像処理解析装置１６１に送られる。画像処理解析装置１６１は、レーザー照射の情報から、レーザー光源１４１に、レーザー照射の停止信号を送る。
【００３０】
カメラ２０７で得られた画像データは画像処理解析装置１６１によって解析される。さまざまな解析結果を基に可動ダイクロイック・ミラー３１０や、ゲル基板１００が載っている温調板１０１付の可動ＸＹステージ３０４の位置を制御するためにＸ−Ｙ方向に自在に移動させるステージ移動用モーター１６２を駆動することが出来る。これによってタンパク質分離スポットの形状を認識したり、認識後にレーザー照射を追跡したり、することが可能である。あるいは、スポットを次々に認識し順次レーザー加熱を行ったり、ピペット９の位置を操作し、シリンジ１４を操作して溶解したアガロースを回収したり出来る。
【００３１】
レーザー照射が終わると直ちにピペット９がスポットのあった位置に移動し、溶融したアガロースを吸い上げる。ピペット９にはヒーターが取り付けられており、必要に応じて３０℃から６５℃にピペット温度を保つことができる。溶融したアガロースはいずれ再凝固するのでピペットのアクセスは速やかに行わなければならない。まずレーザー照射中はレーザー照射光軸近傍にアクセスし、レーザー照射が終わると直ちにアガロースが解けた部分に移動し、溶融アガロースを吸い上げる。図示していないが、矢印２１０のように、ピペット９はＸＹ移動と上下移動が可能なアームに取り付けられており画像処理装置１６１の指示により速やかにスポット位置に移動する。
【００３２】
ピペット９に吸い上げられたアガロースは、実施例１で説明したと同様にして、解析される。
（実施例２）
図５は、実施例１で説明した、集束光加熱で溶融した電気泳動スポット部分の熱溶融性ゲルの回収法とは異なった実施例２の回収法とそのためのピペットの構造を示す図である。これは、図４で示した、２次元電気泳動で分離した特定のバンドを回収するための装置のピペット１４の代わりに装着し、２次元電気泳動により２次元展開したタンパク質分離スポットからタンパク質を回収する方法として説明する。
【００３３】
ピペット４００にはチップ４０１が取り付けてある。チップ４０１はディスポーサブルに使用できる。まず、ピペットのシリンダー４００’を操作し、ピペット内に電解液４０４を満たす。ピペット４００には内側に第１の電極４０２が取り付けられている。実施例１と同様に集束光で溶融したゲルを吸い上げる。この時点でゲルの温度は下がり、ピペットチップ４０１内でゲル化する。その後、チップ４０１の先端を容器４０６に所定の量入れた電解液に浸す。容器４０６には第２の電極４０３が取り付けてある。第１の電極４０２をマイナス、第２の電極４０３をプラスにして両者の間に１５Ｖ／ｃｍの電界をかける。すると、チップ４０１内で固まったゲル４０５に含まれる分離タンパク質が、容器４０６の中の電解液４０７に電気泳動されて溶出する。この操作で容器４０６に目的のタンパク質を回収できる。
［配列表］
SEQUENCE LISTING
<110> Onchip Cellomics Consortium
<120> Electrophoresis product collecting device and method
<130> NT04P1125
<160> 3
<210> 1
<211> 22
<212> DNA 
<213> Artificial Sequence
<400> 1
ctgagcgagt gagaacctac tg   22
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<400> 2
agccacatca gctatgtcca   20
【図面の簡単な説明】
【００３４】
【図１】実施例１の電気泳動により分離バンドが形成される様子を模式的に示す図ある。
【図２】（Ａ）、（Ｂ）および（Ｃ）は、図１で説明した分離バンドの熱による溶融回収を模式的に示す図である。
【図３】（Ａ）、（Ｂ）は、このようにして分離した分離バンドのドット１１と、分離前のＰＣＲ増幅によって得られた溶液を解析した結果を示す波形図である。
【図４】２次元電気泳動で分離した特定のバンドを回収するための装置構成を示す概略図である。
【図５】実施例１で説明した、集束光加熱で溶融した電気泳動スポット部分の熱溶融性ゲルの回収法とは異なった実施例２の回収法とそのためのピペットの構造を示す図である。
【符号の説明】
【００３５】
１…ガラス基板、２…アガロースゲル、３…スリット、４−１，４−２…スポンジ、５−１，５−２…電極、６−１〜６−４…分離バンド、７…レーザー光、８…穴、９…ピペット、１０…プレート、１１…分離バンドのドット、１３…レンズ、１４…シリンジポンプ、２０−１，２０−２，２０−３，２０−４…分離バンドに対応したピーク、１００…２次元電気泳動分離ゲル、２００…全体観察用光学系、３００…レーザー加熱光学系、２０５…対物レンズ、２０６…フィルター、２０７…ＣＣＤカメラ、１１６…画像処理解析装置、１７０…光源、１４１…レーザー光源、３０９…フィルター、３１０…ダイクロイック・ミラー、３０５…対物レンズ、１４４…ミラー、１４５…レンズ、１４６…フィルター、１０１…温調板、１６２…ステージ移動用モーター、２１０…ピペット９のＸＹ移動と上下移動を意味する矢印、３０４…可動ＸＹステージ、４００…ピペット、４００’…シリンダー、４０１…チップ、４０２，４０３…電極、４０４…電解液、４０５…ゲル、４０６…容器。
【図１】
2006098328.tif 000003
【図２】
2006098328.tif 000004
【図３】
2006098328.tif 000005
【図４】
2006098328.tif 000006
【図５】
2006098328.tif 000007
【手続補正書】
【提出日】平成17年12月7日(2005.12.7)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００３３
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００３３】
ピペット４００にはチップ４０１が取り付けてある。チップ４０１はディスポーサブルに使用できる。まず、ピペットのシリンダー４００’を操作し、ピペット内に電解液４０４を満たす。ピペット４００には内側に第１の電極４０２が取り付けられている。実施例１と同様に集束光で溶融したゲルを吸い上げる。この時点でゲルの温度は下がり、ピペットチップ４０１内でゲル化する。その後、チップ４０１の先端を容器４０６に所定の量入れた電解液に浸す。容器４０６には第２の電極４０３が取り付けてある。第１の電極４０２をマイナス、第２の電極４０３をプラスにして両者の間に１５Ｖ／ｃｍの電界をかける。すると、チップ４０１内で固まったゲル４０５に含まれる分離タンパク質が、容器４０６の中の電解液４０７に電気泳動されて溶出する。この操作で容器４０６に目的のタンパク質を回収できる。
［配列表］
SEQUENCE LISTING
<110> Onchip Cellomics Consortium
<120> Electrophoresis product collecting device and method
<130> NT04P1125
<160> 3
<210> 1
<211> 22
<212> DNA 
<213> Artificial Sequence
<220>
<221>
<223> Synthesized DNA
<400> 1
ctgagcgagt gagaacctac tg   22
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<221>
<223> Synthesized DNA
<400> 2
agccacatca gctatgtcca   20