(57)【要約】【課題】  標的細胞を基材上に固定する固定化材及びその製造方法を提供する。【解決手段】  シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞を基材上に固定する固定化材であって、基材と、該基材の表面に単分子膜状に配列した所定の鎖長のリンカーと、該リンカーを介して前記基材上に配置されたシデロフォア又はそのアナログとを備える。前記リンカーの鎖長は、前記基材上に配置された状態の前記標的細胞の細胞膜を理論上貫通しない長さに規定されている。【選択図】  図２
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞を基材上に固定する固定化材であって、
基材と、
該基材の表面に単分子膜状に配列した所定の鎖長のリンカーと、
該リンカーに結合し、該リンカーを介して前記基材上に配置されたシデロフォア又は該シデロフォアのアナログであって少なくとも一種の金属をキレートし得る部分を備えたアナログと、
を備えており、ここで前記リンカーの鎖長は、前記基材上に配置された状態の前記標的細胞の細胞膜を理論上貫通しない長さに規定されていることを特徴とする細胞固定化材。
【請求項２】
前記シデロフォア又はアナログにキレートされた金属を含む、請求項１に記載の細胞固定化材。
【請求項３】
シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞を基材上に固定する固定化材であって、
基材と、
該基材の表面に単分子膜状に配列した所定の鎖長のリンカーと、
該リンカーに結合し、該リンカーを介して前記基材上に配置されたシデロフォア又は該シデロフォアのアナログであって少なくとも一種の金属をキレートし得る部分を備えたアナログと、
前記シデロフォア又はアナログにキレートされた重金属であって前記標的細胞内において該シデロフォア又はアナログから実質的に遊離されない重金属と、
を備えることを特徴とする細胞固定化材。
【請求項４】
前記リンカーの鎖長は、前記基材上に配置された状態の前記標的細胞の細胞膜を理論上貫通する長さに規定されている、請求項３に記載の細胞固定化材。
【請求項５】
前記標的細胞が細菌細胞である、請求項１〜４のいずれかに記載の細胞固定化材。
【請求項６】
前記基材、前記リンカー及び前記シデロフォア又はアナログは、該基材とシデロフォア又はアナログとの間で該リンカーを介した電子伝達が可能となる物質により構成されている、請求項１〜５のいずれかに記載の細胞固定化材。
【請求項７】
前記シデロフォア又はアナログは、下記式（１）：
−Ｃ［Ｒ1Ｎ（ＯＨ）Ｃ（＝Ｏ）Ｒ2］3          （１）
（式中、Ｒ1は二価の有機基である。Ｒ2は炭素数１〜６のアルキル基である。）；
で表される構造部分を備える、請求項１〜６のいずれかに記載の細胞固定化材。
【請求項８】
シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞を基材上に固定する固定化材を製造する方法であって、以下の工程：
所定の鎖長のリンカーが表面に単分子膜状に配列した基材を用意する工程、ここで該リンカーの鎖長は、該基材上に配置された状態の前記標的細胞の細胞膜を理論上貫通しない長さに規定される；及び
少なくとも一種のシデロフォア又は該シデロフォアのアナログであって少なくとも一種の金属をキレートし得る部分を備えたアナログを、前記リンカーに結合する工程；
を包含する方法。
【請求項９】
前記シデロフォア又はアナログに所定の金属をキレートする工程をさらに含む、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞を基材上に固定する固定化材を製造する方法であって、以下の工程：
所定の鎖長のリンカーが表面に単分子膜状に配列した基材を用意する工程；及び
少なくとも一種のシデロフォア又は該シデロフォアのアナログであって少なくとも一種の金属をキレートし得る部分を備えたアナログを、前記リンカーに結合する工程；及び
前記シデロフォア又はアナログに、少なくとも一種の重金属であって前記標的細胞内において該シデロフォア又はアナログから実質的に遊離されない重金属をキレートする工程；
を包含する方法。
【請求項１１】
前記リンカーに結合させるシデロフォア又はアナログとして、下記式（２）：
Ｘ−Ｃ［Ｒ1Ｎ（ＯＨ）Ｃ（＝Ｏ）Ｒ2］3      （２）
（式中、Ｒ1は二価の有機基である。Ｒ2は炭素数１〜６のアルキル基である。Ｘは前記リンカーの先端と結合し得る官能基である。）；
で表される人工シデロフォア又はそのアナログを使用する、請求項８〜１０のいずれかに記載の方法。
【請求項１２】
下記式（３）：
Ｙ−Ｃ［Ｒ3ＮＨＣ（＝Ｏ）Ｒ4Ｎ（ＯＨ）Ｃ（＝Ｏ）Ｒ5］3      （３）
（式中、Ｒ3及びＲ4は同一の又は異なるアルキレン基であってＲ3の炭素数とＲ4の炭素数との合計は３〜６である。Ｒ5は炭素数１〜６のアルキル基である。Ｙはアミノ基、アルキルアミノ基又はニトロ基である。）
で表される人工シデロフォア。
【請求項１３】
下記式（４）：
【化１】
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で表される、人工シデロフォア。
【請求項１４】
シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞を基材上に固定する方法であって、以下の工程：
請求項１〜７のいずれかに記載の固定化材を用意する工程；及び
前記固定化材に含まれるシデロフォア又はアナログによってキレートされ得る少なくとも一種の金属の存在下において該固定化材に前記標的細胞を接触させる工程；
を包含する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、所定の標的細胞を基材上に固定する細胞固定化材及びその製造方法に関する。また本発明は、そのような固定化材の製造に適した新規な人工シデロフォアに関する。
【背景技術】
【０００２】
細胞内に鉄（Ｆｅ）を取り込む機構の一つとしてシデロフォアを介する機構が知られている。シデロフォアは、細菌や真菌がＦｅイオンを取り込むために体外に分泌する分子である。分泌されたシデロフォアは環境中のＦｅを捕捉して錯体（シデロフォア−Ｆｅ複合体）を形成する。この錯体は、膜タンパク質であるシデロフォアレセプターにより認識され、該レセプター部位を透過して細胞内に取り込まれる。そして、取り込まれた錯体からＦｅイオンが遊離され、細胞活動に利用される。なお、自らシデロフォアの生産及び分泌を行わない細菌等のなかにも、他の細菌等により生産され分泌された（外来性の）シデロフォアを利用して同様にＦｅを取り込むものがある。
特許文献１には、基板表面から少なくとも所定長さ離して該基材表面にリンカーで繋ぎ止めたリガンド（ヘム、シデロフォア、多糖類等）を用いて、生物学的分析対象物を同定する方法が記載されている。シデロフォア等を利用して病原体を同定する技術に関する他の従来技術文献として特許文献２が挙げられる。
【０００３】
【特許文献１】特開２００３−１８５６６８号公報
【特許文献２】米国特許出願公開第２００４／０１３７４２８号明細書
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本発明は、シデロフォアを介するＦｅ取込機構を利用して所定の標的細胞をより適切に固定することのできる固定化材を提供することを一つの目的とする。本発明の他の一つの目的は、かかる固定化材の好適な製造方法を提供することである。さらに他の目的は、そのような固定化材の製造等に用いる材料として好適な人工シデロフォアを提供することである。また、該固定化材を用いて細胞を固定する方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明によると、シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞（例えば細菌細胞）を基材上に固定する細胞固定化材が提供される。その固定化材は、基材と、該基材の表面に単分子膜状に配列した所定の鎖長のリンカーとを備える。また、該リンカーに結合し、該リンカーを介して前記基材上に配置されたシデロフォア又は該シデロフォアのアナログであって少なくとも一種の金属をキレートし得る部分を備えたアナログを備える。ここで、前記リンカーの鎖長は、前記基材上に配置された状態の前記標的細胞の細胞膜を理論上貫通しない長さに規定されている。
かかる構成の固定化材は、リンカーを介して基材上に配置されたシデロフォア又はアナログを備える。したがって、該シデロフォア又はアナログと標的細胞との親和性（典型的には、標的細胞がシデロフォア又はアナログの金属錯体を認識して細胞内に取り込もうとする性質）を利用して、該標的細胞を効率よく捕捉することができる。ここで、リンカーの鎖長は「標的細胞の細胞膜を貫通しない長さ」に規定されている。したがって標的細胞は、上記シデロフォア又はアナログの金属錯体を細胞膜より内側まで取り込むことはできない。このため、細胞内（細胞膜よりも内側）に取り込んだシデロフォア−金属複合体（錯体）から金属を遊離させて利用する、という本来の金属取り込み機構が完遂されない。換言すれば、該取り込み機構の途中で、複合体が細胞膜の内側までは取り込まれないことによって、その進行が妨げられる。このことを利用して、標的細胞がシデロフォア又はそのアナログに捕捉された状態（すなわち、標的細胞が基材上に固定された状態）を安定して維持することができる。
【０００６】
上記固定化材が備える基材の材質や形状等は特に限定されず、固定化材の用途等に応じて適当な基材を種々選択することができる。例えば、ガラス、鉱物、樹脂、金属又はこれらを適宜複合させて成る複合材料を主構成材料とする基材を好ましく使用することができる。後述するように該基材とシデロフォア又はアナログ（以下、単に「シデロフォア」ということもある。）との間で電子伝達が可能な固定化材を構成する場合には、少なくともシデロフォアの配置される表面が導電性材料からなる基材が好ましい。そのような導電性表面を有する基材として、例えば、ガラス、鉱物（例えば雲母）、樹脂等の表面に、金（Ａｕ）、銀（Ａｇ）、銅（Ｃｕ）、ニッケル（Ｎｉ）等の導電性金属の薄膜を有する基材を用いることができる。また、導電性金属からなる金属板を基材としてもよい。
【０００７】
該基材上に配列されたリンカーの鎖長は、標的細胞の細胞膜を理論上貫通しない長さの範囲内にある。細胞の細胞膜の状態（厚さ）は周囲の環境等によって異なり得るが、ここに開示される一つの細胞固定化材は、基材上に配置された状態の細胞の細胞膜の厚さ（すなわち、顕微鏡観察等により把握された標的細胞の細胞膜あるいは細胞膜および細胞壁の厚さ）を基準として、その状態における細胞膜の厚さを超えない長さのリンカーを備える。細胞膜の厚さは、その細胞（標的細胞）の種類によっても異なる得る。例えば大腸菌の場合、その外膜の厚さは数十Å程度（膜全体では２５０Å程度）である。このように、標的細胞に応じて適切な長さのリンカー（当該標的細胞の細胞膜の厚さを超えない鎖長のリンカー）を有する固定化材を設計することができる。リンカーの鎖長が短すぎると標的細胞を固定化する効率が低下傾向となる場合があるため、通常は、リンカーの鎖長を少なくとも凡そ６Å以上とすることが好ましい。かかる鎖長のリンカーが基材表面に単分子膜状に配列していることは、この固定化材の表面の各部における特性（細胞固定特性）が均一化されるという点で有利である。
ここに開示される固定化材の一つの好ましい態様では、リンカーの長さが概ね５０Å（５ｎｍ）未満である。典型的には、リンカーの長さが概ね６Å以上５０Å未満である。他の好ましい態様では、リンカーの長さが概ね３０Å未満（典型的には、６Å以上３０Å未満）である。より好ましい態様では、リンカーの長さが概ね６Å以上１５Å未満である。
【０００８】
上記固定化材は、前記シデロフォア又はアナログにキレートされた金属を含む態様であり得る。このような固定化材によると、あらかじめ金属がキレートされたシデロフォア又はアナログ（すなわち、シデロフォア又はアナログの金属錯体）が標的細胞によって速やかに認識されることから、標的細胞をより効率よく固定することができる。
シデロフォア又はアナログにキレートさせる金属は、そのキレート錯体（複合体）が標的細胞のレセプターによって認識され得るものであればよい。そのような金属の典型例は鉄（Ｆｅ）である。また、前述の条件を具備する限り、Ｆｅ以外の各種金属をシデロフォア又はアナログにキレートさせてもよい。キレートさせる金属の好適例（Ｆｅ以外）としては、Ｃｒ（クロム）、Ｒｕ（ルテニウム）、Ｒｈ（ロジウム）、Ｏｓ（オスミウム）等の重金属（密度４ｇ／ｃｍ3以上の金属をいう。）が挙げられる。
【０００９】
本発明により提供される他の一つの細胞固定化材は、シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞（例えば細菌細胞）を基材上に固定する固定化材であって、基材と、該基材の表面に単分子膜状に配列した所定の鎖長のリンカーとを備える。また、該リンカーに結合し、該リンカーを介して前記基材上に配置されたシデロフォア又は該シデロフォアのアナログであって少なくとも一種の金属をキレートし得る部分を備えたアナログを備える。さらに、前記シデロフォア又はアナログにキレートされた重金属であって前記標的細胞内において該シデロフォア又はアナログから実質的に遊離されない重金属を備える。そのような重金属の好適例としてはＣｒ，Ｒｕ，Ｒｈ及びＯｓが挙げられる。
かかる構成の固定化材は、基材上に配置されたシデロフォア又はアナログの重金属錯体（すなわち、重金属をキレートしているシデロフォア又はアナログ）と標的細胞との親和性を利用して、該標的細胞を効率よく捕捉することができる。一方、上記錯体を構成する重金属は前記標的細胞内において該シデロフォア又はアナログから実質的に遊離されない。このため、細胞内に取り込んだシデロフォア−金属複合体（錯体）から金属を遊離させて利用する、という本来の金属取り込み機構を完遂することができない。換言すれば、該取り込み機構の途中で（少なくとも、該錯体を構成する金属が実質的に遊離されないことによって）その進行が妨げられる。このことを利用して、シデロフォア又はそのアナログに標的細胞が捕捉された状態を安定して維持することができる。
【００１０】
この種の固定化材に使用する基材としては、先に説明した固定化材と同様のものを使用することができる。リンカーの鎖長は、基材上に配置された状態の標的細胞の細胞膜を理論上「貫通しない」長さであってもよく、あるいは該細胞膜を理論上「貫通する」長さであってもよい。標的細胞内でシデロフォアから実質的に遊離されない重金属が該シデロフォアにキレートされている本態様の固定化材では、リンカーの鎖長に拘わらず、金属の取り込み機構の進行をいずれかの段階で妨げることができるからである。すなわち、(1).シデロフォア錯体が標的細胞のレセプターに認識される段階、(2).該標的細胞がシデロフォア錯体を取り込もうとすることによって該標的細胞にシデロフォア錯体が結合する段階、(3).シデロフォア錯体が細胞膜よりも内部まで移送される段階、及び、(4).その細胞内においてシデロフォア錯体から金属を遊離させる段階、のうち、標的細胞の細胞膜を貫通しない鎖長のリンカーを有する固定化材では上記(3).の段階で、細胞膜を貫通する鎖長のリンカーを有する固定化材では上記(4).の段階で、金属取り込み機構の進行が妨げられる。このことを利用して、標的細胞が基材に固定された状態（シデロフォアに捕捉された状態）を安定して維持することができる。
【００１１】
標的細胞内においてシデロフォアから遊離しない重金属をキレートさせたタイプの細胞固定化材における好ましい一つの態様では、前記リンカーの鎖長が、前記基材上に配置された状態の前記標的細胞の細胞膜を理論上「貫通する」長さに規定されている。かかる態様によると、シデロフォア−金属複合体が標的細胞の細胞膜の内側まで取り込まれた状態で該標的細胞を固定することができる。したがって、標的細胞をより安定的に固定することができる。
【００１２】
ここに開示される固定化材は、上記シデロフォア又はアナログと基材との間で上記リンカーを介した電子伝達が可能な固定化材とすることができる。そのような固定化材の一つの好適例では、前記基材、前記リンカー及び前記シデロフォア又はアナログが、該基材とシデロフォア又はアナログとの間で該リンカーを介した電子伝達が可能となる物質により構成されている。
かかる構成によると、例えば、基材上に固定化された標的細胞の活動に伴う電流の発生（電気信号）を、リンカーを介して基材側で検出することができる。このことを利用して、基材上に固定化された標的細胞の状態をモニターし得る。また、かかる構成によると、例えば、基材からリンカーを介してシデロフォアに電流を印加することによって、シデロフォアにキレートされている金属の酸化数を制御し得る。これにより、例えば、上記金属とシデロフォア又はアナログとの相互作用の程度を調節することができる。
このような電子伝達が可能な固定化材は、少なくともシデロフォアの配置される表面が導電性材料（Ａｕ，Ａｇ，Ｃｕ，Ｎｉ等）からなる基材を備えることが好ましい。リンカーとしては、(1).鎖長が概ね１５Å未満である、及び、(2).鎖の一部又は全体が共役系を構成している、の少なくとも一方を満たすものが好ましい。
【００１３】
上記シデロフォア又はアナログは、例えば、下記式（１）：
−Ｃ［Ｒ1Ｎ（ＯＨ）Ｃ（＝Ｏ）Ｒ2］3          （１）；
表される構造部分を備えるシデロフォア又はアナログであり得る。ここで、上記式中のＲ1は二価の有機基である。該式中のＲ2は、炭素数１〜６（好ましくは１〜３）のアルキル基である。
上記式（１）は、ヒドロキサム酸（アミドのＮ−ヒドロキシアミド置換体）部分を有する置換基が一つの炭素（左端の炭素）に三つ結合しているタイプの、三脚構造の配位子である。このような三脚型配位子を構成するシデロフォア又はアナログは、上記ヒドロキサム酸部分を利用して金属（例えば、Ｆｅ，Ｃｒ，Ｒｕ，Ｒｈ及びＯｓのうち一又は二以上）を適切にキレートすることができるので好ましい。
【００１４】
より好ましい態様では、上記シデロフォア又はアナログが、下記式（１’）：
−Ｃ［Ｒ3ＮＨＣ（＝Ｏ）Ｒ4Ｎ（ＯＨ）Ｃ（＝Ｏ）Ｒ5］3    （１’）；
表される構造部分を備える。上記式中のＲ3及びＲ4は、同一の又は異なるアルキレン基であって、Ｒ3の炭素数とＲ4の炭素数との合計は３〜６である。また、上記式中のＲ5は、炭素数１〜６（さらに好ましくは１〜３）のアルキル基である。Ｒ3が炭素数２〜４のアルキレン基であり、Ｒ4が炭素数１〜３のアルキレン基であり、かつ、Ｒ3の炭素数とＲ4の炭素数との合計が３〜６であるシデロフォア又はアナログが好ましい。
【００１５】
このような固定化材は、シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する種々の標的細胞（細菌細胞のような原核細胞、真菌細胞、動物細胞、植物細胞のような真核細胞）の固定に利用することができる。特に好ましい固定対象（標的細胞）としては、各種の細菌細胞が挙げられる。
【００１６】
本発明によると、また、シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞を基材上に固定する細胞固定化材の製造方法が提供される。その製造方法は、所定の鎖長のリンカーが表面に単分子膜状に配列した基材を用意する工程を含む。ここで、該リンカーの鎖長は、該基材上に配置された状態の前記標的細胞の細胞膜を理論上貫通しない長さに規定される。この製造方法は、また、少なくとも一種のシデロフォア又は該シデロフォアのアナログであって少なくとも一種の金属をキレートし得る部分を備えたアナログを、前記リンカーに結合する工程を含む。この製造方法は、例えば、標的細胞の細胞膜を理論上貫通しない長さに規定された鎖長のリンカーを有する上記固定化材を製造する方法として好ましく採用され得る。
【００１７】
上記製造方法では、まず、所定の鎖長のリンカーが表面に単分子膜状に配列した基材を用意する。基材表面にリンカーを配列する方法としては、従来公知の各種の方法を適宜採用することができる。例えば、基材の表面を構成する材質がガラス又は樹脂である場合には、上記所定の鎖長に対応した構造の公知のシランカップリング剤等を基材表面に結合させることによってリンカーを形成することができる。また、基材の表面を構成する材質が金（特に好ましくは、真空蒸着された金薄膜）である場合には、チオール基（ＳＨ）あるいはジスルフィド基（ＳＳ）を有する有機化合物を用いて、該金表面に良好な自己組織化膜を形成し得る。このとき基材表面に配列されているリンカーは、典型的には、その先端（基材上に配置されていない側の端部、すなわち自由端）に、後続する工程でシデロフォア又はアナログを結合するための官能基を有する。
【００１８】
次いで、用意した基材の表面に配列したリンカーにシデロフォアを結合させる。かかる結合を適切に行うために、リンカーの先端にある官能基（リンカー側官能基）の種類に応じて、該官能基と反応し得る官能基（シデロフォア側官能基）を備えたシデロフォアを使用することが好ましい。リンカー側官能基とシデロフォア側官能基との好ましい組み合わせとしては、スクシンイミド基で活性化されたエステルとアミノ基との組み合わせ、カルボキシル基とアミノ基との組み合わせ、アルデヒド基とアミノ基との組み合わせ、等を例示することができる。
ここに開示される製造方法は、さらに、前記シデロフォア又はアナログに所定の金属をキレートする工程を含むことができる。この金属キレート工程は、従来公知の各種の方法を適用して実施することができる。
【００１９】
本発明により提供される他の一つの固定化材製造方法は、所定の鎖長のリンカーが表面に単分子膜状に配列した基材を用意する工程を含む。好ましい一つの態様では、該リンカーの鎖長は、該基材上に配置された際の前記標的細胞の細胞膜を理論上貫通する長さに規定される。この製造方法は、また、少なくとも一種のシデロフォア又は該シデロフォアのアナログであって少なくとも一種の金属をキレートし得る部分を備えたアナログを、前記リンカーに結合する工程を含む。さらに、前記シデロフォア又はアナログに、少なくとも一種の重金属であって前記標的細胞内において該シデロフォア又はアナログから実質的に遊離されない重金属をキレートする工程を含む。この製造方法は、例えば、標的細胞内において該シデロフォアから実質的に遊離しない重金属が該シデロフォアにキレートされた上記固定化材を製造する方法として好ましく採用され得る。
【００２０】
好ましい一つの態様では、前記リンカーに結合させるシデロフォア又はアナログとして、下記式（２）：
Ｘ−Ｃ［Ｒ1Ｎ（ＯＨ）Ｃ（＝Ｏ）Ｒ2］3          （２）；
で表される人工シデロフォア、又は、上記式（２）で表される人工シデロフォアのアナログを使用する。ここで、上記式中のＲ1は二価の有機基である。該式中のＲ2は、炭素数１〜６（好ましくは１〜３）のアルキル基である。また、Ｘは、リンカーの先端と結合し得る官能基である。用意した基材に配置されたリンカーが先端にイミド基（好ましくはスクシンイミド基）を有する場合、Ｘの好適例としては、アミノ基（ＮＨ2）又はアルキルアミノ基（ＮＨＲ0，ここでＲ0はアルキル基であり、好ましくはメチル基又はエチル基である。）が挙げられる。
【００２１】
本発明によると、下記式（３）：
Ｙ−Ｃ［Ｒ3ＮＨＣ（＝Ｏ）Ｒ4Ｎ（ＯＨ）Ｃ（＝Ｏ）Ｒ5］3    （３）；
で表される人工シデロフォアが提供される。ここで、上記式中のＲ3及びＲ4は、同一の又は異なるアルキレン基であって、Ｒ3の炭素数とＲ4の炭素数との合計は３〜６である。また、上記式中のＲ5は、炭素数１〜６（さらに好ましくは１〜３）のアルキル基である。また、上記式中のＹは、アミノ基（ＮＨ2）、アルキルアミノ基（ＮＨＲ0，ここで、Ｒ0はアルキル基であり、好ましくはメチル基又はエチル基である。）又はニトロ基（ＮＯ2）である。Ｒ3が炭素数２〜４のアルキレン基であり、Ｒ4が炭素数１〜３のアルキレン基であり、かつ、Ｒ3の炭素数とＲ4の炭素数との合計が３〜６であるシデロフォア又はアナログが好ましい。
【００２２】
上記式（３）で表される化合物の典型例は、下記式（４）で表される人工シデロフォアである。これは、上記式（３）におけるＲ3がプロピレン基であり、Ｒ4が炭素数１〜４の直鎖アルキル基であり、Ｒ5がメチル基であり、Ｙがアミノ基である化合物に相当する。
【００２３】
【化１】
2006124346.tif 000003
【００２４】
本発明によると、シデロフォアを介して鉄を内部に取り込む機構を有する所定の標的細胞を基材上に固定する方法が提供される。その方法は、上述したいずれかの固定化材を用意する工程を含む。また、該固定化材に含まれるシデロフォア又はアナログによってキレートされ得る少なくとも一種の金属の存在下において該固定化材に前記標的細胞を接触させる工程を含む。かかる細胞固定化方法によると、上述したいずれかの固定化材を使用して、該固定化材に標的細胞を適切に固定することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２５】
以下、本発明に関する具体的な実施例につき説明するが、本発明をかかる具体例に示すものに限定することを意図したものではない。また、本明細書において特に言及している内容以外の技術的事項であって本発明の実施に必要な事項は、従来技術に基づく当業者の設計事項として把握され得る。本発明は、本明細書及び図面によって開示されている技術内容と当該分野における技術常識とに基づいて実施することができる。
【００２６】
＜実施例１：人工シデロフォア［Ｓ１］の合成＞
（合成例１）
以下に示す合成スキームにより、人工シデロフォア合成用の中間体（三脚部分）を合成した。
【００２７】
【化２】
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【００２８】
ニトロメタン３０．５ｇ及びトリトンＢ（ベンジルトリメチルアンモニウムヒドロキシド）５ｇをジオキサン５０ｇに溶解させた。該ジオキサン溶液を撹拌しながらアクリロニトリル７９．５ｇを加えた。その際、反応液の温度が約３０℃が保たれるようにコントロールした。該反応液を室温で１８時間撹拌した後、希塩酸で中和した。これを同量のジクロロエタンに加え、水２５ｍＬで洗浄した後に濃縮して沈殿を得た。該沈殿をエタノールに溶解させて再結晶を行った。このようにして、上記合成スキームに示す化合物［１］の結晶４９ｇを得た。
上記で得られた化合物［１］の結晶５．００ｇ（２２．７ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）５０ｍＬに溶解させた。このＴＨＦ溶液を撹拌しながら、１Ｍ（ｍｏｌ／Ｌ）のＢＨ3を含むＴＨＦ溶液１２０ｍＬを滴下した。この反応液を４時間還流した。反応液を室温に冷却した後、ｐＨが１〜２になるまで２Ｍの塩酸を加え、ＮａＯＨで中和した。この溶液を濃縮することにより、上記合成スキームに示す化合物［２］の沈殿を得た。
【００２９】
（合成例２）
以下に示す合成スキームにより、人工シデロフォア合成用の中間体（ヒドロキサム酸構造を提供する部分）を合成した。なお、下記スキーム中の「Ｂｚｌ」はベンジル基を表している。
【００３０】
【化３】
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【００３１】
無水フタル酸４４ｇ（０．３ｍｏｌ）と塩酸ヒドロキシルアミン２６ｇ（０．３２ｍｏｌ）とを水１００ｍＬに懸濁させた。この懸濁液に無水炭酸ナトリウム２０ｇ（０．１９ｍｏｌ）を徐々に加えた。その後、６０〜７０℃で一時間加熱し、室温に冷却した。得られた結晶を濾過し、熱エタノールに溶解させた。ここに濃塩酸を加え、室温に冷却した。このようにして、Ｎ−ヒドロキシフタルイミドの白色針状結晶を得た。収量は３９ｇ、収率は８０％であった。
【００３２】
得られたＮ−ヒドロキシフタルイミド１５．０１ｇ（９．２０×１０-2ｍｏｌ）をジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）１５０ｍＬに溶解させた。この溶液を撹拌しつつ、無水炭酸カリウム９．６５ｇ（６．９８×１０-2ｍｏｌ）を徐々に加え、塩化ベンジル２２．８５ｇ（１．８０×１０-1ｍｏｌ）を滴下して加えた。これを室温で２４時間撹拌した後、３００ｍＬの冷水に注ぎ込み、０〜５℃に数分間放置した。析出した結晶を濾過し、１０ｍＬの水で３回洗浄した。得られた粗結晶を熱エタノールから再結晶して、Ｎ−ベンジルオキシフタルイミドの白色針状結晶を得た。収量は１７．４１ｇ、収率は７４．６％であった。
【００３３】
得られたＮ−ベンジルオキシフタルイミド１０．１３ｇ（４．００×１０-2ｍｏｌ）とヒドラジン一水和物２．７６ｇ（５．５１×１０-2ｍｏｌ）とをエタノール３００ｍＬに溶解させた。この溶液を加熱して２時間還流した。室温まで放冷した後、濃塩酸４．８３ｍＬを加え、氷冷水中に十数分間放置した。析出した沈殿物を濾取し、エタノール１６．６ｍＬで３回、冷水１００ｍＬで１回洗浄した。この洗浄液と濾液とを混合し、ロータリーエバポレータで減圧乾固した。その残渣に２００ｍＬの冷水を加え、不溶物を濾過した。得られた濾液に粒状水酸化ナトリウムを、油相が分離してくるまで加えた。この溶液をジエチルエーテル７０ｍＬで４回抽出し、エーテル相を無水硫酸マグネシウムで乾燥した。この溶液を濾過し、ロータリーエバポレータで減圧濃縮して、油状のＮ−ベンジルオキシアミン（上記合成スキームに示す化合物［３］）を得た。収量は４．７１ｇ、収率は９５．５％であった。
【００３４】
得られたＮ−ベンジルオキシアミン１２．２６ｇ（０．１０ｍｏｌ）と３−ブロモプロピオン酸５．１０ｇ（０．０３３ｍｏｌ）とをメタノール８０ｍＬに溶解させた。この溶液を加熱して５時間還流した。その後、反応液を濃縮し、その残渣に１０％炭酸ナトリウム水溶液を加えて溶解させた。この溶液をジエチルエーテルで抽出して未反応のＮ−ベンジルオキシアミンを除去した。水相に塩酸を加えてｐＨを１〜２とし、ジエチルエーテルで抽出して未反応の３−ブロモプロピオン酸を除去した。次いで、この水相に炭酸水素ナトリウムを加えてｐＨ３〜４に調整し、ジエチルエーテルで目的物を抽出した。そのエーテル相を無水硫酸マグネシウムで乾燥し、濃縮して、無色油状の３−ベンジルオキシアミノプロピオン酸を得た。収量は２．５３ｇ、収率は３８．９％であった。
【００３５】
得られた３−ベンジルオキシアミノプロピオン酸２．０８ｇ（１０．７ｍｍｏｌ）とトリエチルアミンとを酢酸エチル１００ｍＬに溶解させた。この溶液を氷冷及び撹拌しつつ、塩化アセチル１．２６ｇ（１６．０ｍｍｏｌ）を含む酢酸エチル溶液３０ｍＬを滴下して加えた。析出したトリエチルアミン塩酸塩を濾去した後、反応液を１０％クエン酸水溶液４０ｍＬで２回、水４０ｍＬで１回、飽和食塩水４０ｍＬで１回洗浄した。これを無水硫酸マグネシウムで乾燥し、濃縮して、無色油状の３−（Ｎ−アセチル−Ｎ−ベンジルオキシアミノ）プロピオン酸（上記合成スキームに示す化合物［４］）を得た。収量は１．４９ｇ、収率は５８．７％であった。
【００３６】
（合成例３）
これらの合成例により得られた化合物を使用して、以下に示す合成スキームによって人工シデロフォア［Ｓ１］を合成した。なお、下記スキーム中の「ＤＭＴ−ＭＭ」は、４−（４，６−ジメトキシ−１，３，５−トリアジン−２−イル）−４−メチルモルフォリニウムクロライド（下記化学式（５）に示す化合物）を表している。また、下記スキーム中のｎはいずれも２である。
【００３７】
【化４】
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【００３８】
【化５】
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【００３９】
化合物［２］０．４２ｇ（１．７９ｍｍｏｌ）及び化合物［４］１．４９ｇ（６．２８ｍｍｏｌ）を水−メタノール混合溶媒（水：メタノールの体積比１：４）に溶解した溶液５０ｍＬ中に、少量のトリエチルアミンと、縮合剤としてのＤＭＴ−ＭＭ  １．７４ｇ（６．９１ｍｍｏｌ）とを加え、室温で数日間攪拌した。
反応液を濃縮した後、水１００ｍＬを加えて酢酸エチル１００ｍＬで３回抽出した。これを無水硫酸マグネシウムで乾燥し、濃縮して白色油状物を得た。ＥＳＩ−ＭＡＳＳ（エレクトロスプレーイオン化質量分析）の結果から、上記合成スキームに示す化合物［５］が得られたことを確認した。分析データを以下に示す。
ＥＳＩ−ＭＡＳＳ：ｍ／Ｚ＝９１２．０［Ｍ＋Ｎａ］+  。
【００４０】
得られた化合物［５］を水／メタノール混合溶媒（水：メタノールの体積比１：４）に溶解した。これを約３．０４×１０5Ｐａ（３ａｔｍ）のＨ2雰囲気下でＰｄ／Ｃ触媒により接触還元して油状の固体を得た。ＥＳＩ−ＭＡＳＳの結果から、上記合成スキームに示す化合物［Ｓ１］が得られたことを確認した（ｍ／Ｚ＝５９０．３［Ｍ＋Ｈ］+）。この化合物［Ｓ１］は、一つの炭素に、各々ヒドロキサム酸型の配位子を有する三つの置換基及び一つのアミノ基が結合した、三脚型ヒドロキサム酸構造の人工シデロフォアの一例である。
【００４１】
（合成例４）
得られた人工シデロフォア［Ｓ１］と、これと等モルのＦｅ（ＣｌＯ4）3・ｎＨ2Ｏとを水中で混合した。溶液の色は速やかにオレンジ色に変化した。その結果物につき、ＵＶ−Ｖｉｓ（紫外−可視光）スペクトル及びＥＳＩ−ＭＡＳＳ分析を行った。それらの分析データを以下に示す。
ＵＶ−Ｖｉｓスペクトル（水中）：λmax＝４２２ｎｍ。
ＥＳＩ−ＭＡＳＳ：ｍ／Ｚ＝６４３．４［Ｍ＋Ｈ］+  。
上記ＵＶ−Ｖｉｓスペクトルのデータにより、三本の腕（ヒドロキサム酸型の配位子を有する三つの置換基）によるＦｅ（III）イオンへのキレート配位が示唆された。また、上記のＥＳＩ−ＭＡＳＳスペクトルは、目的とする化合物にＨ+が付加したものに相当する。これらの結果から、以下に示す錯体［Ｓ１−Ｆｅ］の形成を確認した。これは、人工シデロフォア［Ｓ１］をリガンドとするＦｅ（III）錯体であって、該シデロフォアの三本の腕がＦｅイオンに６座でキレート配位した構造を有する。
【００４２】
【化６】
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【００４３】
＜実施例２：人工シデロフォア［Ｓ２］の合成＞
合成例２により得られたＮ−ベンジルオキシアミン（化合物［３］）を出発物質として、以下に示す合成スキームにより、人工シデロフォア合成用の中間体（ヒドロキサム酸構造を提供する部分）を合成した。
【００４４】
【化７】
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【００４５】
Ｎ−ベンジルオキシアミン１４．６５ｇ（０．１１９ｍｏｌ）をメタノール１００ｍＬに溶解し、ブロモ酢酸５．５１ｇ（０．０４０ｍｏｌ）を加えた後、１５〜２０℃で３日間放置した。その後、反応液をロータリーエバポレータで減圧乾固した。その残渣に１０％炭酸ナトリウム水溶液１００ｍＬを加えて溶解させ、ジエチルエーテル１００ｍＬで５回抽出した。水相に塩酸を加えてｐＨを２まで下げ、一時間冷却して沈殿を完全に析出させた。析出物を濾過し、冷水で洗浄した後に乾燥した。このようにして、Ｎ−ベンジルオキシグリシン（Ｎ−ベンジルオキシアミノ酢酸）の白色粉末を得た。収量は６．１８ｇ、収率は８５．０％であった。
【００４６】
得られたＮ−ベンジルオキシグリシンを酢酸ｔ−ブチルに加え（Ｎ−ベンジルオキシグリシン１ｇあたり酢酸ｔ−ブチル１００ｍＬ）、７０％ＨＣｌＯ4を４〜６ｍＬ加えて溶解させた。室温にて２〜３日放置した後、飽和炭酸ナトリウム水溶液を加えて反応液を中和した。有機相を無水硫酸マグネシウムで乾燥した後、濃縮して無色油状のＮ−ベンジルオキシグリシンｔ−ブチルエステルを得た。
【００４７】
得られたＮ−ベンジルオキシグリシンｔ−ブチルエステルを酢酸エチル１５０〜２００ｍＬに溶解した。これにトリエチルアミンを加え（Ｎ−ベンジルオキシグリシンを基準として０．５当量）、−５℃で攪拌しながら塩化アセチルの酢酸エチル溶液３０ｍＬ（Ｎ−ベンジルオキシグリシンを基準として０．５当量の塩化アセチルを含む）を１〜２時間かけて滴下した。滴下終了後、再びトリエチルアミンと塩化アセチルとを同様にして加え、さらに３０分間攪拌した。析出したトリエチルアミン塩酸塩を濾去した後、反応液を５％炭酸ナトリウム水溶液、０．１Ｎ塩酸、及び飽和食塩水でそれぞれ洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥して濃縮した。これを水−メタノール混合溶媒（又はジエチルエーテル−ヘキサン混合溶媒）により結晶化して、Ｎ−アセチル−Ｎ−ベンジルオキシグリシンｔ−ブチルエステルの白色結晶を得た。Ｎ−ベンジルオキシグリシンを基準とした収率は６７〜８２％であった。
【００４８】
得られたＮ−アセチル−Ｎ−ベンジルオキシグリシンｔ−ブチルエステルにトリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）５〜１０ｍＬを加え、４０℃で２〜５時間攪拌した。反応液を減圧濃縮し、水−メタノール混合溶媒（又はジエチルエーテル−ヘキサン混合溶媒）により結晶化して、Ｎ−アセチル−Ｎ−ベンジルオキシグリシン（上記合成スキームに示す化合物［６］）を得た。収率は７８〜８７％であった。
【００４９】
合成例３における３−（Ｎ−アセチル−Ｎ−ベンジルオキシアミノ）プロピオン酸に代えてＮ−アセチル−Ｎ−ベンジルオキシグリシン（化合物［６］）を使用して、合成例３と同様の合成経路によって下記の化学式で表される人工シデロフォア［Ｓ２］を合成した。なお、この化学式中のｎはいずれも１である。
【００５０】
【化８】
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【００５１】
＜実施例３：人工シデロフォアの機能の確認＞
上記実施例により得られた人工シデロフォア［Ｓ１］の機能を確認するため、該シデロフォアの菌体への取込実験を行った。菌体としては、自らはシデロフォアの合成・分泌を行わず、外来のシデロフォアを利用してＦｅイオンを取り込むMicrobacterium flavescensを使用した。
ペプトン１ｇ、乾燥酵母１ｇ、Ｋ2ＨＰＯ4  ２００ｍｇ及び鉄キレート剤（天然シデロフォア）２μｇを、Ｍｉｌｌｉ−Ｑ水（商標「Ｍｉｌｌｉ−Ｑ」（ミリポア社製品）により精製した精製水）１００ｍＬに溶かし、ｐＨ７．４に調整した後、高温高圧で滅菌処理して液体培地を調製した。この培地に人工シデロフォア［Ｓ１］を１μＭ（１μｍｏｌ／リットル）の濃度となるように加えて３０℃で数日間インキュベーションを行った。その間、培地の濁度を濁度計にて測定することによって菌体の培養（増殖）をモニターした。また、コントロール（対照）として、人工シデロフォア［Ｓ１］に代えて同濃度（１μＭ）の天然シデロフォア（商品名「Deferoxamine mesylate」、ＳＩＧＭＡ社製品）を使用した点以外は上記と同様にインキュベーションを行って菌体の培養をモニターした。
培養時間の経過に伴う濁度の変化を図１に示す。この図からわかるように、人工シデロフォアを用いた培地においても、天然シデロフォアを用いた場合（コントロール）と同様に菌体の増殖が可能であった。この結果は、Microbacterium flavescensが上記人工シデロフォアをＦｅイオンの取り込みに利用し得ること、換言すれば、該人工シデロフォアが菌体に取り込まれることを示唆している。また、この人工シデロフォアが、天然シデロフォアと同様に菌体のシデロフォアレセプターに認識されることが確認された。
なお、大腸菌（Escherichia Coli）を用いて同様の培養試験を行ったところ、上記と同様の生理活性が観測された。
【００５２】
＜実施例４：固定化材の製造＞
上記人工シデロフォア［Ｓ１］を用いて、図２に示す手順で細胞固定化材を製造した。基材としては、真空蒸着法により形成された厚さ１００ｎｍの金（Ａｕ）薄膜を表面に有する雲母板（１４ｍｍ×１４ｍｍ角）を使用した。上記金薄膜（金電極）を水素炎でアニール処理した後、Ｍｉｌｌｉ−Ｑ水及びＤＭＳＯで洗浄した。次いで、この基材をＤＴＳＰ（ジチオビス（Ｎ−スクシンイミジルプロピオネート））のＤＭＳＯ溶液（２０ｍＭ）に室温で１５分間浸漬した。これにより、金薄膜の表面をＤＴＳＰ残基（Ｎ−スクシンイミジル−３−チオプロピオネート（ＮＳＴＰ））で修飾した。なお、実際には多数のＤＴＳＰ残基が金表面に単分子膜状に配列するが、図では見易さのため一単位のＤＴＳＰ残基のみを表示している。
【００５３】
上記表面修飾が施された基材をＤＭＳＯ及びＭｉｌｌｉ−Ｑ水で洗浄した後、人工シデロフォア［Ｓ１］の水溶液（１ｍＭ）に一日間浸漬した。人工シデロフォア［Ｓ１］のアミノ基（−ＮＨ2）とＤＴＳＰ残基の先端（自由端、すなわち基材に結合していない側の端部）との縮合反応によって、人工シデロフォア［Ｓ１］とＤＴＳＰ残基とが結合した。このようにして、人工シデロフォア［Ｓ１］がリンカー（ＤＴＳＰ残基）を介して金薄膜に結合された構造の固定化材を得た。
【００５４】
＜実施例５：固定化性能の確認＞
実施例３と同様の組成及び方法で調製した液体培地に、実施例４で製造した固定化材（人工シデロフォア修飾基材）を浸漬させ、菌体（Microbacterium flavescens）を添加した後、３０℃で数日間のインキュベーションを行った。また、対照として人工シデロフォアによる修飾がされていない基材（非修飾基材）を使用し、同様に菌体のインキュベーションを行った。これらの固定化材及び非修飾基材（未処理の金薄膜）の表面をリン酸バッファ溶液（５０ｍＭ、ｐＨ７．４）で十分に洗浄した後、それらの表面を光学顕微鏡で観察した。その結果を、固定化材については図３に、非修飾基材については図４に示す。図示するように、人工シデロフォアで修飾された基材（固定化材）の表面には菌体がみられた。これに対して、未処理の金薄膜の表面には菌体がみられなかった。図３と同じ表面をさらに走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）で観察したところ、図５に示すように、菌体が基材上に固定されている様子がはっきりと確認された。
【００５５】
以上、本発明の具体例を詳細に説明したが、これらは例示にすぎず、特許請求の範囲を限定するものではない。特許請求の範囲に記載の技術には、以上に例示した具体例を様々に変形、変更したものが含まれる。
また、本明細書又は図面に説明した技術要素は、単独であるいは各種の組み合わせによって技術的有用性を発揮するものであり、出願時請求項記載の組み合わせに限定されるものではない。また、本明細書又は図面に例示した技術は複数目的を同時に達成するものであり、そのうちの一つの目的を達成すること自体で技術的有用性を持つものである。
【図面の簡単な説明】
【００５６】
【図１】人工シデロフォア存在下における菌体の培養時間と濁度の変化との関係を示すグラフである。
【図２】実施例４における細胞固定化材の製造方法を示す説明図である。
【図３】菌体培養後の固定化材の表面の光学顕微鏡写真である。
【図４】菌体培養後の金薄膜の表面の光学顕微鏡写真である。
【図５】菌体培養後の固定化材の表面を観察したＳＥＭ像である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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