(57)【要約】【課題】  第１の毛髪用組成物として、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができる毛髪用組成物を提供し、第２の毛髪用組成物として、毛母細胞又は毛幹細胞に目的物質を効率よく送達することができる毛髪用組成物を提供する。【解決手段】  第１の毛髪用組成物として、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターを含有する毛髪用組成物を提供し、第２の毛髪用組成物として、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有し、毛母細胞又は毛幹細胞に送達すべき目的物質が内部に封入されたリポソームを含有する毛髪用組成物を提供する。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターを含有する毛髪用組成物。
【請求項２】
前記１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体が、１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体である請求項１記載の毛髪用組成物。
【請求項３】
前記１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体が、下記（ａ）又は（ｂ）のタンパク質である請求項２記載の毛髪用組成物。
（ａ）配列番号４記載のアミノ酸配列からなるタンパク質
（ｂ）配列番号４記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質
【請求項４】
前記発現ベクターがリポソームの内部に封入されている請求項１〜３のいずれかに記載の毛髪用組成物。
【請求項５】
前記リポソームが、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソームである請求項４記載の毛髪用組成物。
【請求項６】
前記ペプチドが連続した４〜２０個のアルギニン残基を含む請求項５記載の毛髪用組成物。
【請求項７】
前記ペプチドを構成する全てのアミノ酸残基がアルギニン残基である請求項５又は６記載の毛髪用組成物。
【請求項８】
前記ペプチドが疎水性基で修飾されており、前記疎水性基が脂質二重層に挿入され、前記ペプチドが前記脂質二重層から露出している請求項５〜７のいずれかに記載の毛髪用組成物。
【請求項９】
前記疎水性基がステアリル基である請求項８記載の毛髪用組成物。
【請求項１０】
連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有し、毛母細胞又は毛幹細胞に送達すべき目的物質が内部に封入されたリポソームを含有する毛髪用組成物。
【請求項１１】
前記ペプチドが連続した４〜２０個のアルギニン残基を含む請求項１０記載の毛髪用組成物。
【請求項１２】
前記ペプチドを構成する全てのアミノ酸残基がアルギニン残基である請求項１０又は１１記載の毛髪用組成物。
【請求項１３】
前記ペプチドが疎水性基で修飾されており、前記疎水性基が脂質二重層に挿入され、前記ペプチドが前記脂質二重層から露出している請求項１０〜１２のいずれかに記載の毛髪用組成物。
【請求項１４】
前記疎水性基がステアリル基である請求項１３記載の毛髪用組成物。
【請求項１５】
前記目的物質が、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターである請求項１０〜１４のいずれかに記載の毛髪用組成物。
【請求項１６】
前記１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体が、１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体である請求項１５記載の毛髪用組成物。
【請求項１７】
前記１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体が、下記（ａ）又は（ｂ）のタンパク質である請求項１６記載の毛髪用組成物。
（ａ）配列番号４記載のアミノ酸配列からなるタンパク質
（ｂ）配列番号４記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、毛髪用組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
毛根部で活発に増殖している毛母細胞が、毛髪特異的ケラチンを細胞内に貯め込み、互いの接着を強め、乾燥して死細胞と化すことにより、毛髪が形成される。外毛根鞘の立毛筋が付着している部分（バルジ）には毛幹細胞が存在しており、毛幹細胞は毛乳頭細胞の作用によって毛母細胞に分化すると考えられている。
【０００３】
毛根を包む毛包（hair follicle）が形成される間、外胚葉の肥厚によって生ずるプラコード（hair placode）及び間葉（mesenchyme）において、骨形成タンパク質（Bone morphogenetic protein：BPM）が発現し、毛包（hair follicle）形成の促進に関与する。例えば、ＢＭＰファミリーのメンバーであるＢＭＰ２、３、４及び７は、胚形成期から成人において皮膚及び毛包で発現することが報告されている（非特許文献１〜５）。また、ＢＭＰ中和タンパク質（BMP-neutralizing protein）であるノギン（Noggin）は、ＢＭＰ４と相互作用し、毛包形成を誘起することが報告されており（非特許文献６〜８）、このことは、ＢＭＰのダウンレギュレーション（downregulation）が毛包誘導の合図であることを示唆する。さらに、毛包形成の後、１Ａ型ＢＭＰ受容体を介したＢＭＰシグナルは、内毛根鞘（inner root sheath：IRS）の形成に必須であることが報告されている（非特許文献９〜１１）。さらに、マウスで過剰に発現させたノジンが毛周期及び成長期から退行期に至る毛包サイクル（hair follicle cycling）を短縮することが報告されている（非特許文献１２）。
【０００４】
一方、薬物、核酸、ペプチド、タンパク質、糖等を標的部位に確実に送達するためのベクターの開発が盛んに行われている。例えば、遺伝子治療においては、目的の遺伝子を標的細胞へ導入するためのベクターとして、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス等のウイルスベクターが開発されている。しかしながら、ウイルスベクターは、大量生産の困難性、抗原性、毒性等の問題があるため、このような問題点が少ないリポソームベクターが注目を集めている。リポソームベクターは、その表面に抗体、タンパク質、糖鎖等の機能性分子を導入することにより、標的部位に対する指向性を向上させることができるという利点も有している。
【０００５】
リポソームベクターに関し、凝縮化ＤＮＡ封入リポソームの表面をステアリル化オクタアルギニンで修飾することにより、凝縮化ＤＮＡの細胞導入効率が１０００倍、凝縮化ＤＮＡ封入リポソームの細胞への導入効率が１００倍向上したことが報告されている（非特許文献１３）。
【非特許文献１】Lyons, K.M.等, 「Genes & Development」, 1989年, 第3巻, p.1657-1668
【非特許文献２】Takahashi, H.等, 「Developmental Dynamics」, 1996年, 第207巻, p.439-449
【非特許文献３】Stelnicki, E.J.等, 「Plastic and Reconstructive Surgery」, 1998年, 第101巻, p.12-19
【非特許文献４】Wilson, N.等, 「Experimental Dermatology」, 1999年, 第8巻, p.367-368
【非特許文献５】Botchkarev, V.A.等, 「The FASEB Journal」, 2001年, 第15巻, p.2205-2214
【非特許文献６】Botchkarev, V.A.等, 「Nature Cell Biology」, 1999年, 第1巻, p.158-164
【非特許文献７】Kulessa, H.等, 「The EMBO Journal」, 2000年, 第19巻, p.6664-6674
【非特許文献８】Botchkarev, V.A.等, 「Journal of Investigative Dermatology」, 2002年, 第118巻, p.3-10
【非特許文献９】Kobielak, K.等, 「Journal of Cell Biology」, 2003年, 第163巻, p.609-623
【非特許文献１０】Yuhki, M.等, 「Development」, 2004年, 第131巻, p.1825-1833
【非特許文献１１】Andl, T.等, 「Development」, 2004年, 第131巻, p.2257-2268
【非特許文献１２】Guha, U.等, 「American Journal of Pathology」, 2004年, 第165巻, p.729-740
【非特許文献１３】Kogure, K.等, 「Journal of Controlled Release」, 2004年, 第98巻, p.317-323
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
毛髪には寿命があり、一定期間が過ぎると脱毛し、その後、一定期間が過ぎると新しい毛髪が生えてくる。このような発毛及び脱毛のサイクルは「毛周期」と呼ばれ、毛周期は、成長期、退行期及び休止期に分けられる。成長期の毛髪の割合が少なくなり、休止期の毛髪の割合が多くなると、薄毛となり、最終的に脱毛症に至る。従って、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができれば、脱毛症を予防又は治療できると考えられる。
【０００７】
そこで、本発明は、第１に、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができる毛髪用組成物を提供することを目的とする。
また、本発明は、第２に、毛母細胞又は毛幹細胞に目的物質を効率よく送達することができる毛髪用組成物を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
上記課題を解決するために、本発明は、第１の毛髪用組成物として、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターを含有する毛髪用組成物を提供する。
【０００９】
本発明の第１の毛髪用組成物に含有される発現ベクターが、毛母細胞又は毛幹細胞の内部で１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体を発現することにより、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができる。したがって、本発明の第１の毛髪用組成物は、脱毛症の予防又は治療に有用である。
【００１０】
本発明の第１の毛髪用組成物において、前記１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体が、１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体であることが好ましい。
【００１１】
本発明の第１の毛髪用組成物において、前記１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、例えば、下記（ａ）又は（ｂ）のタンパク質である。
（ａ）配列番号４記載のアミノ酸配列からなるタンパク質
（ｂ）配列番号４記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質
【００１２】
本発明の第１の毛髪用組成物において、前記発現ベクターがリポソームの内部に封入されていることが好ましい。リポソームは細胞外から細胞内へ移行可能であるので、発現ベクターがリポソームの内部に封入されていれば、発現ベクターが細胞内移行性を有しない場合（例えばプラスミドベクターである場合）であっても、発現ベクターを毛母細胞又は毛幹細胞の内部に送達することができる。
【００１３】
本発明の第１の毛髪用組成物において、前記リポソームが、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソームであることが好ましい。このようなリポソームを使用することにより、リポソームの内部に封入された発現ベクターを毛母細胞又は毛幹細胞の内部に効率よく送達することができる。
【００１４】
本発明の第１の毛髪用組成物において、前記ペプチドが連続した４〜２０個のアルギニン残基を含むことが好ましい。これにより、リポソームの毛母細胞又は毛幹細胞内への移行性を向上させることができる。
【００１５】
本発明の第１の毛髪用組成物において、前記ペプチドを構成する全てのアミノ酸残基がアルギニン残基であることが好ましい。これにより、リポソームの毛母細胞又は毛幹細胞内への移行性を向上させることができる。
【００１６】
本発明の第１の毛髪用組成物において、前記ペプチドが疎水性基で修飾されており、前記疎水性基が脂質二重層に挿入され、前記ペプチドが前記脂質二重層から露出していることが好ましい。
【００１７】
本発明の第１の毛髪用組成物において、前記疎水性基がステアリル基であることが好ましい。
【００１８】
上記課題を解決するために、本発明は、第２の毛髪用組成物として、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有し、毛母細胞又は毛幹細胞に送達すべき目的物質が内部に封入されたリポソームを含有する毛髪用組成物を提供する。
【００１９】
連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソームは、その内部に封入された目的物質を毛母細胞又は毛幹細胞の内部に効率よく送達することができる。したがって、本発明の第２の毛髪用組成物は、毛母細胞又は毛幹細胞に目的物質を効率よく送達することができる。
【００２０】
本発明の第２の毛髪用組成物において、前記ペプチドが連続した４〜２０個のアルギニン残基を含むことが好ましい。これにより、リポソームの毛母細胞又は毛幹細胞内への移行性を向上させることができる。
【００２１】
本発明の第２の毛髪用組成物において、前記ペプチドを構成する全てのアミノ酸残基がアルギニン残基であることが好ましい。これにより、リポソームの毛母細胞又は毛幹細胞内への移行性を向上させることができる。
【００２２】
本発明の第２の毛髪用組成物において、前記ペプチドが疎水性基で修飾されており、前記疎水性基が脂質二重層に挿入され、前記ペプチドが前記脂質二重層から露出していることが好ましい。
【００２３】
本発明の第２の毛髪用組成物において、前記疎水性基がステアリル基であることが好ましい。
【００２４】
本発明の第２の毛髪用組成物において、前記目的物質は、例えば、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターである。この場合、本発明の第２の毛髪用組成物は、本発明の第１の毛髪用組成物と同様に、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができるので、脱毛症の予防又は治療に有用である。
【００２５】
本発明の第２の毛髪用組成物において、前記１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体であることが好ましい。
【００２６】
本発明の第２の毛髪用組成物において、前記１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、例えば、下記（ａ）又は（ｂ）のタンパク質である。
（ａ）配列番号４記載のアミノ酸配列からなるタンパク質
（ｂ）配列番号４記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質
【発明の効果】
【００２７】
本発明により、第１に、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができる毛髪用組成物が提供される。また、本発明により、第２に、毛母細胞又は毛幹細胞に目的物質を効率よく送達することができる毛髪用組成物が提供される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２８】
以下、本発明について詳細に説明する。
〔第１の毛髪用組成物〕
本発明の第１の毛髪用組成物は、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターを含有する。
【００２９】
１型骨形成タンパク質受容体は、１型骨形成タンパク質受容体に属するいずれのタイプの骨形成タンパク質受容体であってもよい。１型骨形成タンパク質受容体としては、例えば、１Ａ型骨形成タンパク質受容体（Bone morphogenetic protein receptor type IA：BMPR1A）、１Ｂ型骨形成タンパク質受容体（Bone morphogenetic protein receptor type IB：BMPR1B）、アクチビン受容体様キナーゼ２（Aktivne-receptor Like Kinase 2：ALK2）等が挙げられるが、１Ａ型骨形成タンパク質受容体であることが好ましい。なお、１Ａ型骨形成タンパク質受容体の別名は、アクチビン受容体様キナーゼ３（Aktivne-receptor Like Kinase 3：ALK3）であり、１Ｂ型骨形成タンパク質受容体の別名は、アクチビン受容体様キナーゼ６（Aktivne-receptor Like Kinase 6：ALK6）である。
【００３０】
野生型（正常型）の１型骨形成タンパク質受容体は、骨形成タンパク質２（ＢＭＰ２）、骨形成タンパク質４（ＢＭＰ４）等の内因性リガンドとの結合により活性化し、リガンド依存的に生理作用を発揮する。これに対して、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、骨形成タンパク質２（ＢＭＰ２）、骨形成タンパク質４（ＢＭＰ４）等の内因性リガンドとの結合の有無に関わらず、構成的（恒常的）に活性化しており、リガンド非依存的に生理作用を発揮する。１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体が発揮する生理作用は、野生型の１型骨形成タンパク質受容体が発揮する生理作用と同様であり、例えば、細胞内伝達に関与する核移行タンパク質ｓｍａｄ１のリン酸化の促進等が挙げられる。
【００３１】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、骨形成タンパク質２（ＢＭＰ２）、骨形成タンパク質４（ＢＭＰ４）等の内因性リガンドとの結合能を保持していてもよいし、保持していなくてもよい。
【００３２】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、本発明の第１の毛髪用組成物が適用される動物の毛母細胞又は毛幹細胞内で生理作用を発揮し得る限り、いかなる動物由来の１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体であってもよいが、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体が由来する動物は、本発明の第１の毛髪用組成物が適用される動物と同種であることが好ましい。例えば、本発明の第１の毛髪用組成物が適用される動物がヒトである場合、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体が由来する動物はヒトであることが好ましい。
【００３３】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、野生型の１型骨形成タンパク質受容体のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列からなる。野生型の１型骨形成タンパク質受容体のアミノ酸配列において欠失、置換又は付加されるアミノ酸の個数及び位置は、構成的活性型変異体が作製され得る限り特に限定されるものではない。
【００３４】
例えば、ヒト、マウス、ラット等に由来する１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、ヒト、マウス、ラット等に由来する野生型の１Ａ型骨形成タンパク質受容体の２３３番目のアミノ酸をグルタミン（Ｇｌｎ）からアスパラギン酸（Ａｓｐ）へ置換することにより作製することができる（Chen D. et al., J Cell Biol. 1998, 13, 142(1), p.295-305.）。
【００３５】
ヒト、マウス、ラット等に由来する１Ｂ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体は、ヒト、マウス、ラット等に由来する野生型の１Ｂ型骨形成タンパク質受容体の２０３番目のアミノ酸をグルタミン（Ｇｌｎ）からアスパラギン酸（Ａｓｐ）へ置換することにより作製することができる（Wieser, R. et al., EMBO J. 1995, 14, p.2199-2208.）。
【００３６】
ヒト、マウス、ラット等に由来するアクチビン受容体様キナーゼ２の構成的活性型変異体は、ヒト、マウス、ラット等に由来する野生型のアクチビン受容体様キナーゼ２の２０７番目のアミノ酸をグルタミン（Ｇｌｎ）からアスパラギン酸（Ａｓｐ）へ置換することにより作製することができる（Wieser, R. et al., EMBO J. 1995, 14, p.2199-2208.）。
【００３７】
１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体としては、例えば、下記（ａ）又は（ｂ）のアミノ酸配列からなるタンパク質が挙げられる。
（ａ）配列番号４記載のアミノ酸配列からなるタンパク質（以下「タンパク質（ａ）」という。）
（ｂ）配列番号４記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質（以下「タンパク質（ｂ）」という。）
【００３８】
１Ｂ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体としては、例えば、下記（ｃ）又は（ｄ）のアミノ酸配列からなるタンパク質が挙げられる。
（ｃ）配列番号８記載のアミノ酸配列からなるタンパク質（以下「タンパク質（ｃ）」という。）
（ｄ）配列番号８記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質（以下「タンパク質（ｄ）」という。）
【００３９】
アクチビン受容体様キナーゼ２の構成的活性型変異体としては、例えば、下記（ｅ）又は（ｆ）のアミノ酸配列からなるタンパク質が挙げられる。
（ｅ）配列番号１２記載のアミノ酸配列からなるタンパク質（以下「タンパク質（ｅ）」という。）
（ｆ）配列番号１２記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質（以下「タンパク質（ｆ）」という。）
【００４０】
タンパク質（ａ）は、ヒト由来の野生型の１Ａ型骨形成タンパク質受容体（配列番号６）のうち、２３３番目のアミノ酸であるグルタミン（Ｇｌｎ）をアスパラギン酸（Ａｓｐ）に変異させることにより作製された、ヒト由来の１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体であり、タンパク質（ｃ）は、ヒト由来の野生型の１Ｂ型骨形成タンパク質受容体（配列番号１０）のうち、２０３番目のアミノ酸であるグルタミン（Ｇｌｎ）をアスパラギン酸（Ａｓｐ）に変異させることにより作製された、ヒト由来の１Ｂ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体であり、タンパク質（ｅ）は、ヒト由来の野生型のアクチビン受容体様キナーゼ２（配列番号１４）のうち、２０７番目のアミノ酸であるグルタミン（Ｇｌｎ）をアスパラギン酸（Ａｓｐ）に変異させることにより作製された、ヒト由来のアクチビン受容体様キナーゼ２の構成的活性型変異体である。
【００４１】
タンパク質（ｂ）には、構成的活性型の１Ａ型骨形成タンパク質受容体としての機能を有する限り、ヒト由来の１Ａ型骨形成タンパク質受容体の変異体に加え、ヒト以外の哺乳動物（例えば、サル、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ブタ、ラクダ、ウサギ、イヌ、ネコ、ラット、マウス）由来の１Ａ型骨形成タンパク質受容体の変異体が含まれ、タンパク質（ｄ）には、構成的活性型の１Ｂ型骨形成タンパク質受容体としての機能を有する限り、ヒト由来の１Ｂ型骨形成タンパク質受容体の変異体に加え、ヒト以外の哺乳動物（例えば、サル、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ブタ、ラクダ、ウサギ、イヌ、ネコ、ラット、マウス）由来の１Ｂ型骨形成タンパク質受容体の変異体が含まれ、タンパク質（ｆ）には、構成的活性型のアクチビン受容体様キナーゼ２としての機能を有する限り、ヒト由来のアクチビン受容体様キナーゼ２の変異体に加え、ヒト以外の哺乳動物（例えば、サル、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ブタ、ラクダ、ウサギ、イヌ、ネコ、ラット、マウス）由来のアクチビン受容体様キナーゼ２の変異体が含まれる。
【００４２】
配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列において欠失、置換、挿入又は付加されるアミノ酸の個数及び位置は、タンパク質（ｂ）、（ｄ）及び（ｆ）が構成的活性型の１型骨形成タンパク質受容体としての機能を有する限り特に限定されるものではない。
【００４３】
配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換又は挿入される位置としては、例えば、シグナルペプチド、細胞外ドメイン、膜貫通ドメイン等が挙げられる。シグナルペプチド、細胞外ドメイン又は膜貫通ドメインは、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体を作製する上で特に必要ない。配列番号４記載のアミノ酸配列のうち、１〜２０番目のアミノ酸からなる部分がシグナルペプチドに相当し、２１〜１５２番目のアミノ酸からなる部分が細胞外ドメインに相当し、１５３〜１８０番目のアミノ酸からなる部分が膜貫通ドメインに相当する。配列番号８記載のアミノ酸配列のうち、１〜１４番目のアミノ酸からなる部分がシグナルペプチドに相当し、１５〜１２６番目のアミノ酸からなる部分が細胞外ドメインに相当し、１２７〜１４８番目のアミノ酸からなる部分が膜貫通ドメインに相当する。配列番号１２記載のアミノ酸配列のうち、１〜２０番目のアミノ酸からなる部分がシグナルペプチドに相当し、２１〜１２３番目のアミノ酸からなる部分が細胞外ドメインに相当し、１２４〜１４６番目のアミノ酸からなる部分が膜貫通ドメインに相当する。配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列において１又は複数個のアミノ酸が付加される位置は特に限定されるものではなく、例えば、Ｎ末端、Ｃ末端等が挙げられる。
【００４４】
配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列において欠失、置換又は付加されるアミノ酸の個数は１又は複数個である。
【００４５】
配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列のうち、細胞外ドメイン又は膜貫通ドメインに相当する部分において欠失又は置換されるアミノ酸の個数は適宜調節することができ、細胞外ドメイン又は膜貫通ドメインに相当する部分の一部が欠失又は置換されてもよいし、細胞外ドメイン又は膜貫通ドメインに相当する部分の全体が欠失又は置換されてもよいが、細胞外ドメイン又は膜貫通ドメインに相当する部分において欠失又は置換されるアミノ酸の個数は、通常１〜１０個、好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜３個である。
【００４６】
配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列のうち、細胞外ドメイン及び膜貫通ドメイン以外の部分において欠失又は置換されるアミノ酸の個数は、通常１〜１０個、好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜３個である。
【００４７】
配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列のうち、細胞外ドメイン又は膜貫通ドメインに相当する部分において挿入されるアミノ酸の個数は、通常１〜１０個、好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜３個であり、それ以外の部分において挿入されるアミノ酸の個数は通常１〜１０個、好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜３個である。
【００４８】
配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列において付加されるアミノ酸の個数は、付加の方法等によって適宜調節することができる。例えば、他のタンパク質又はペプチドと融合させる場合、配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列において付加されるアミノ酸の個数は、融合させるタンパク質又はペプチドの種類等に応じて適宜調節することができる。例えば、βガラクトシダーゼを融合させる場合には１０４８個のアミノ酸が付加され、グリーン・フルオレセント・プロテイン（ＧＦＰ）を融合させる場合には２３８個のアミノ酸が付加され、ポリヒスチジン鎖（Ｈｉｓ−ｔａｇ）を融合させる場合には６個のアミノ酸が付加される。部位特異的変異誘発法等を利用する場合、配列番号４、８及び１２記載のアミノ酸配列において付加されるアミノ酸の個数は、通常１〜１０個、好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜３個である。
【００４９】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡは、１骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするオープンリーディングフレームとその３'末端に位置する終止コドンとを含む。１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡは、オープンリーディングフレームの５'末端及び／又は３'末端に非翻訳領域（ＵＴＲ）を含むことができる。
【００５０】
タンパク質（ａ）をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号３記載の塩基配列からなるＤＮＡが挙げられ、タンパク質（ｃ）をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号７記載の塩基配列からなるＤＮＡが挙げられ、タンパク質（ｅ）をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号１１記載の塩基配列からなるＤＮＡが挙げられる。
【００５１】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡは、野生型の１型骨形成タンパク質受容体をコードするＤＮＡに、部位特異的変異誘発法等によって人為的に変異を導入することにより得ることができる。変異の導入は、例えば、変異導入用キット、例えば、Mutant-K（TaKaRa社製）、Mutant-G（TaKaRa社製）、TaKaRa社のLA-PCR in vitro Mutagenesis シリーズキットを用いて行うことができる。
【００５２】
ヒト由来の野生型の１Ａ型骨形成タンパク質受容体をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号５記載の塩基配列からなるＤＮＡが挙げられ、その他の哺乳動物由来の野生型の１Ａ型骨形成タンパク質受容体をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号５記載の塩基配列からなるＤＮＡと相補的なＤＮＡにストリンジェントな条件下でハイブリダイズし得るＤＮＡが挙げられる。ヒト由来の野生型の１Ｂ型骨形成タンパク質受容体をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号９記載の塩基配列からなるＤＮＡが挙げられ、その他の哺乳動物由来の野生型の１Ｂ型骨形成タンパク質受容体をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号９記載の塩基配列からなるＤＮＡと相補的なＤＮＡにストリンジェントな条件下でハイブリダイズし得るＤＮＡが挙げられる。ヒト由来の野生型のアクチビン受容体様キナーゼ２をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号１３記載の塩基配列からなるＤＮＡが挙げられ、その他の哺乳動物由来の野生型のアクチビン受容体様キナーゼ２をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号１３記載の塩基配列からなるＤＮＡと相補的なＤＮＡにストリンジェントな条件下でハイブリダイズし得るＤＮＡが挙げられる。
【００５３】
「ストリンジェントな条件」としては、例えば、４２℃、２×ＳＳＣ及び０．１％ＳＤＳの条件、好ましくは６５℃、０．１×ＳＳＣ及び０．１％ＳＤＳの条件が挙げられ、配列番号５、９又は１３記載の塩基配列からなるＤＮＡと相補的なＤＮＡにストリンジェントな条件下でハイブリダイズし得るＤＮＡとしては、配列番号５、９又は１３記載の塩基配列からなるＤＮＡと９０％以上、好ましくは９５％以上、さらに好ましくは９８％以上の相同性を有するＤＮＡが挙げられる。
【００５４】
塩基配列が既に決定されているＤＮＡについては化学合成によって得ることもできる。ＤＮＡの化学合成は、市販のＤＮＡ合成機、例えば、チオホスファイト法を利用したＤＮＡ合成機（島津製作所社製）、フォスフォアミダイト法を利用したＤＮＡ合成機（パーキン・エルマー社製）を用いて行うことができる。
【００５５】
ヒト由来の野生型の１型骨形成タンパク質受容体をコードするＤＮＡは、脳、肝臓、血液、皮膚等の組織から抽出したｍＲＮＡを用いてｃＤＮＡライブラリーを作製し、配列番号５、９又は１３記載の塩基配列に基づいて合成したプローブを用いて、ｃＤＮＡライブラリーから目的のＤＮＡを含むクローンをスクリーニングすることにより得ることができる。
【００５６】
ｃＤＮＡライブラリーを作製する際には、脳、肝臓、血液、皮膚等の組織から全ＲＮＡを得た後、オリゴｄＴ−セルロースやポリＵ−セファロース等を用いたアフィニティーカラム法、バッチ法等によりポリ（Ａ）＋ＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を得る。この際、ショ糖密度勾配遠心法等によりポリ（Ａ）＋ＲＮＡ（ｍＲＮＡ）を分画してもよい。次いで、得られたｍＲＮＡを鋳型として、オリゴｄＴプライマー及び逆転写酵素を用いて一本鎖ｃＤＮＡを合成した後、該一本鎖ｃＤＮＡから二本鎖ｃＤＮＡを合成する。このようにして得られた二本鎖ｃＤＮＡを適当なクローニングベクターに組み込んで組換えベクターを作製し、該組換えベクターを用いて大腸菌等の宿主細胞を形質転換し、テトラサイクリン耐性、アンピシリン耐性を指標として形質転換体を選択することにより、ｃＤＮＡのライブラリーを得ることができる。ｃＤＮＡライブラリーを作製するためのクローニングベクターは、宿主細胞中で自立複製できるものであればよく、例えば、ファージベクター、プラスミドベクター等を使用することができる。宿主細胞としては、例えば、大腸菌（Escherichia coli）等を使用することができる。
【００５７】
大腸菌等の宿主細胞の形質転換は、塩化カルシウム、塩化マグネシウム又は塩化ルビジウムを共存させて調製したコンピテント細胞に、組換えベクターを加える方法等により行うことができる。なお、ベクターとしてプラスミドを用いる場合は、テトラサイクリン、アンピシリン等の薬剤耐性遺伝子を含有させておくことが好ましい。
【００５８】
ｃＤＮＡライブラリーの作製にあたっては、市販のキット、例えば、SuperScript Plasmid System for cDNA Synthesis and Plasmid Cloning（Gibco BRL社製）、ZAP-cDNA Synthesis Kit（ストラタジーン社製）等を使用することができる。
【００５９】
ｃＤＮＡライブラリーから目的のＤＮＡを含むクローンをスクリーニングする際には、配列番号５、９又は１３記載の塩基配列に基づいてプライマーを合成し、これを用いてポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を行い、ＰＣＲ増幅断片を得る。ＰＣＲ増幅断片は、適当なプラスミドベクターを用いてサブクローニングしてもよい。次いで、ｃＤＮＡライブラリーに対して、ＰＣＲ増幅断片をプローブとしてコロニーハイブリダイゼーション又はプラークハイブリダイゼーションを行うことにより、目的のＤＮＡを得ることができる。プローブとしては、ＰＣＲ増幅断片をアイソトープ（例えば、３２Ｐ、３５Ｓ）、ビオチン、ジゴキシゲニン等で標識したものを使用することができる。目的のＤＮＡを含むクローンは、抗体を用いたイムノスクリーニング等の発現スクリーニングによっても得ることができる。
【００６０】
取得されたＤＮＡの塩基配列は、ＤＮＡ断片をそのまま、又は適当な制限酵素等で切断した後、常法によりベクターに組み込み、通常用いられる塩基配列解析方法、例えば、マキサム−ギルバートの化学修飾法、ジデオキシヌクレオチド鎖終結法を用いて決定できるが、通常は、３７３Ａ ＤＮＡシークエンサー（Perkin Elmer社製）等の塩基配列分析装置を用いて配列決定する。
【００６１】
以上のようにして、ヒト由来の野生型の１型骨形成タンパク質受容体をコードするＤＮＡを得ることができる。その他の哺乳動物由来の野生型の１型骨形成タンパク質受容体をコードするＤＮＡは、例えば、サル、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ブタ、ラクダ、ウサギ、イヌ、ネコ、ラット、マウス等の哺乳動物由来のｃＤＮＡライブラリーから、配列番号５、９又は１３記載の塩基配列からなるＤＮＡと相補的なＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡをスクリーニングすることにより得ることができる。
【００６２】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターは、本発明の第１の毛髪用組成物が適用される動物の毛母細胞又は毛幹細胞内で１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを発現し得る限り特に限定されるものではなく、例えば、プラスミドベクター、ウイルスベクター等が挙げられるが、プラスミドベクターであることが好ましい。プラスミドベクターとしては、例えば、大腸菌由来のプラスミド（例えば、pRSET、pBR322、pBR325、pUC118、pUC119、pUC18、pUC19）、枯草菌由来のプラスミド（例えば、pUB110、pTP5）、酵母由来のプラスミド（例えば、YEp13、YEp24、YCp50）等が挙げられ、ウイルスベクターとしては、例えば、レトロウイルス、ワクシニアウイルス、アデノウイルス、シンリンセムリキウイルス等の動物ウイルスが挙げられる。
【００６３】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターは、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを発現ベクターのプロモーターの下流に挿入することにより作製することができる。１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡは、その機能が発揮されるように発現ベクターに組み込まれることが必要であり、発現ベクターは、プロモーターの他、エンハンサー等のシスエレメント、スプライシングシグナル、ポリＡ付加シグナル、選択マーカー（例えば、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子）、リボソーム結合配列（ＳＤ配列）等を有していてもよい。
【００６４】
発現ベクターが有するプロモーターは、本発明の第１の毛髪用組成物が適用される動物の毛母細胞又は毛幹細胞内で機能し得る限り特に限定されるものではなく、例えば、ＳＲαプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＬＴＲ（Long Terminal Repeat）プロモーター、ＣＭＶプロモーター、ヒトサイトメガロウイルスの初期遺伝子プロモーター等が挙げられる。
【００６５】
１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターは、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体を単一のタンパク質として発現することが好ましいが、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体を融合タンパク質として発現してもよい。１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体と融合させるタンパク質としては、例えば、β−ガラクトシダーゼ、プロテインＡ、プロテインＡのＩｇＧ結合領域、クロラムフェニコール・アセチルトランスフェラーゼ、ポリ（Ａｒｇ）、ポリ（Ｇｌｕ）、プロテインＧ、マルトース結合タンパク質、グルタチオンＳ-トランスフェラーゼ、ポリヒスチジン鎖（Ｈｉｓ−ｔａｇ）、Ｓペプチド、ＤＮＡ結合タンパク質ドメイン、Ｔａｃ抗原、チオレドキシン、グリーン・フルオレセント・プロテイン（Green Fluorescent Protein：ＧＦＰ）、ヘマグルチニンタンパク質（ＨＡ）−ｔａｇ、ＦＬＡＧ−ｔａｇ、Ｍｙｃ−ｔａｇ、Ｔ７遺伝子１０タンパク質、ウシパピローマウイルスＬ１タンパク質、ＶＳＶ−Ｇ−ｔａｇ等が挙げられる。
【００６６】
発現ベクターが細胞内移行性を有する場合（例えばウイルスベクターである場合）、本発明の第１の毛髪用組成物は発現ベクターをそのまま含有することができるが、発現ベクターが細胞内移行性を有しない場合（例えばプラスミドベクターである場合）、本発明の第１の毛髪用組成物は発現ベクターをリポソームの内部に封入された状態で含有することが好ましい。
【００６７】
発現ベクターを内部に封入するリポソームは、本発明の第１の毛髪用組成物が適用される動物の毛母細胞又は毛幹細胞内への移行性を有する限り特に限定されるものではないが、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソームであることが好ましい。なお、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソームについては、〔第２の毛髪用組成物〕の項で詳細に説明する。
【００６８】
本発明の第１の毛髪用組成物は、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターのみから構成されていてもよいし、薬学的に許容される担体及び／又は添加剤とともに常法に従って製剤化されていてもよい。本発明の第１の毛髪用組成物がとり得る剤形は特に限定されるものではないが、外用剤であることが好ましい。外用剤としては、例えば、軟膏剤、クリーム剤、ムース剤、懸濁剤、乳剤、ローション剤、エアゾル剤等が挙げられる。本発明の第１の毛髪用組成物は、保湿剤、界面活性剤、乳化剤、増粘剤、保存剤、ｐＨ調整剤、着色剤、着香剤、殺菌剤、清涼刺激剤、止痒剤、フケ止め剤等を含有することができる。本発明の第１の毛髪用組成物に含有される１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターの量は、毛髪用組成物の剤形等に応じて適宜調節することができる。
【００６９】
本発明の第１の毛髪用組成物を適用できる動物は、毛髪を有する動物である限り特に限定されるものではなく、ヒト、サル、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ブタ、ラクダ、ウサギ、イヌ、ネコ、ラット、マウス等の哺乳動物が挙げられる。本発明の第１の毛髪用組成物は、動物体のうちいかなる部分の毛髪に対しても適用することができる。
【００７０】
本発明の第１の毛髪用組成物を使用する際、毛髪が生えている部位（例えば頭皮）又は毛髪が生えてくる部位（例えば頭皮）に本発明の第１の毛髪用組成物を適当量塗布、噴霧等する。これにより、本発明の第１の毛髪用組成物に含有される発現ベクターは、毛穴を通じて毛母細胞又は毛幹細胞に到達する。発現ベクターが毛穴を通じて毛母細胞又は毛幹細胞に到達しやすいように、本発明の第１の毛髪用組成物にワセリン等の油脂を含有させておくことが好ましい。毛母細胞又は毛幹細胞に到達した発現ベクターは細胞内に移行し、細胞内で１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体を発現する。これにより、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができる。したがって、本発明の第１の毛髪用組成物は、脱毛症の予防又は治療に有用である。
【００７１】
本発明の第１の毛髪用組成物によって予防又は治療可能な脱毛症は特に限定されるものではなく、例えば、円形脱毛症、男性型脱毛症、壮年性脱毛症、トリコチロマニア、休止期脱毛、全身病による脱毛、皮膚感染症による脱毛、皮膚腫瘍による脱毛、瘢痕性脱毛、薬品・化学物質による脱毛等が挙げられる。
【００７２】
〔第２の毛髪用組成物〕
本発明の第２の毛髪用組成物は、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有し、毛母細胞又は毛幹細胞に送達すべき目的物質が内部に封入されたリポソームを含有する。なお、以下、「連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチド」を「本発明のペプチド」といい、「連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有し、毛母細胞又は毛幹細胞に送達すべき目的物質が内部に封入されたリポソーム」を「本発明のリポソーム」という。
【００７３】
本発明のリポソームは、脂質二重層膜構造を有する閉鎖小胞である限り、脂質二重層膜の数は特に限定されるものではなく、多重膜リポソーム（ＭＬＶ）であってもよいし、ＳＵＶ（small unilamella vesicle）、ＬＵＶ（large unilamella vesicle）、ＧＵＶ（giant unilamella vesicle）等の一枚膜リポソームであってもよい。
【００７４】
一枚膜リポソームについてはリポソーム膜の外表面がリポソームの表面であり、多重膜リポソームについては最外層のリポソーム膜の外表面がリポソームの表面である。本発明のリポソームは、表面以外の部分（例えば、リポソーム膜の内表面）に本発明のペプチドを有していてもよい。
【００７５】
本発明のリポソームのサイズは特に限定されるものではないが、直径５０〜８００ｎｍであることが好ましく、直径２５０〜４００ｎｍであることがさらに好ましい。
【００７６】
本発明のリポソームにおいて、リポソーム膜を構成する脂質の種類は特に限定されるものではなく、その具体例としては、ホスファチジルコリン（例えば、ジオレオイルホスファチジルコリン、ジラウロイルホスファチジルコリン、ジミリストイルホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン、ジステアロイルホスファチジルコリン等）、ホスファチジルグリセロール（例えば、ジオレオイルホスファチジルグリセロール、ジラウロイルホスファチジルグリセロール、ジミリストイルホスファチジルグリセロール、ジパルミトイルホスファチジルグリセロール、ジステアロイルホスファチジグリセロール）、ホスファチジルエタノールアミン（例えば、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン、ジラウロイルホスファチジルエタノールアミン、ジミリストイルホスファチジルエタノールアミン、ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン、ジステアロイルホスファチジエタノールアミン）、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸、カルジオリピン等のリン脂質又はこれらの水素添加物；スフィンゴミエリン、ガングリオシド等の糖脂質が挙げられ、これらのうち１種又は２種以上を用いることができる。リン脂質は、卵黄、大豆その他の動植物に由来する天然脂質（例えば、卵黄レシチン、大豆レシチン等）、合成脂質又は半合成脂質のいずれであってもよい。なお、リポソーム膜に含有される脂質量は、リポソーム膜を構成する総物質量の通常７０〜１００％（モル比）、好ましくは７５〜１００％（モル比）、さらに好ましくは８０〜１００％（モル比）である。
【００７７】
リポソーム膜には、リポソーム膜を物理的又は化学的に安定させたり、リポソーム膜の流動性を調節したりするために、例えば、コレステロール、コレステロールコハク酸、ラノステロール、ジヒドロラノステロール、デスモステロール、ジヒドロコレステロール等の動物由来のステロール；スチグマステロール、シトステロール、カンペステロール、ブラシカステロール等の植物由来のステロール（フィトステロール）；チモステロール、エルゴステロール等の微生物由来のステロール；グリセロール、シュクロース等の糖類；トリオレイン、トリオクタノイン等のグリセリン脂肪酸エステルのうち、１種又は２種以上を含有させることができる。その含有量は特に限定されるものでないが、リポソーム膜を構成する総脂質に対して５〜４０％（モル比）であることが好ましく、１０〜３０％（モル比）であることがさらに好ましい。
【００７８】
本発明のペプチドに含まれる連続したアルギニン残基の個数は複数個である限り特に限定されるものではないが、通常４〜２０個であり、好ましくは６〜１２個、さらに好ましくは７〜１０個である。本発明のペプチド全体を構成するアミノ酸残基の個数は特に限定されるものではないが、通常４〜３５個、好ましくは６〜３０個、さらに好ましくは８〜２３個である。本発明のペプチドは、連続した複数個のアルギニン残基のＣ末端及び／又はＮ末端に任意のアミノ酸配列を含むことができるが、本発明のペプチドを構成する全てのアミノ酸残基がアルギニン残基であることが好ましい。
【００７９】
連続した複数個のアルギニン残基のＣ末端又はＮ末端に付加されるアミノ酸配列は、剛直性を有するアミノ酸配列（例えば、ポリプロリン）であることが好ましい。ポリプロリンは、柔らかくて不規則な形をとっているポリエチレングリコールと異なり、直線的で、ある程度の堅さを保持している。また、連続した複数個のアルギニン残基のＣ末端又はＮ末端に付加されるアミノ酸配列に含まれるアミノ酸残基は酸性アミノ酸以外のアミノ酸残基であることが好ましい。負電荷を有する酸性アミノ酸残基が、正電荷を有するアルギニン残基と静電的に相互作用し、アルギニン残基の効果を減弱させる可能性があるためである。
【００８０】
本発明のリポソームの表面に存在する本発明のペプチドの量は、リポソーム膜を構成する総脂質に対して通常０．１〜３０％（モル比）、好ましくは１〜２５％（モル比）、さらに好ましくは２〜２０％（モル比）である。
【００８１】
本発明のリポソームは、その表面に有する本発明のペプチドを介して細胞内へ移行することができる。リポソームの細胞内移行経路がエンドサイトーシスに依存する場合、リポソーム膜はその主要成分としてカチオン性脂質を含む必要があるが、本発明のリポソームの細胞内移行経路は、エンドサイトーシスにのみ依存するわけではないので、リポソーム膜にカチオン性脂質が含まれている必要はない。すなわち、本発明のリポソームにおいて、リポソーム膜は、カチオン性脂質及び非カチオン性脂質のいずれか一方で構成されていてもよいし、両方で構成されていてもよい。但し、カチオン性脂質は細胞毒性を有するので、本発明のリポソームの細胞毒性を低減させる点からは、リポソーム膜に含まれるカチオン性脂質の量を出来る限り少なくすることが好ましく、リポソーム膜を構成する総脂質に対するカチオン性脂質の割合は０〜４０％（モル比）であることが好ましく、０〜２０％（モル比）であることがさらに好ましい。
【００８２】
カチオン性脂質としては、例えば、ＤＯＤＡＣ（dioctadecyldimethylammonium chloride）、ＤＯＴＭＡ（N-(2,3-dioleyloxy)propyl-N,N,N-trimethylammonium）、ＤＤＡＢ（didodecylammonium bromide）、ＤＯＴＡＰ（1,2-dioleoyloxy-3-trimethylammonio propane）、ＤＣ−Ｃｈｏｌ（3β-N-(N',N',-dimethyl-aminoethane)-carbamol cholesterol）、ＤＭＲＩＥ（1,2-dimyristoyloxypropyl-3-dimethylhydroxyethyl ammonium）、ＤＯＳＰＡ（2,3-dioleyloxy-N-[2(sperminecarboxamido)ethyl]-N,N-dimethyl-1-propanaminum trifluoroacetate）等が挙げられる。
【００８３】
「非カチオン性脂質」とは、中性脂質又はアニオン性脂質を意味し、中性脂質としては、例えば、ジアシルホスファチジルコリン、ジアシルホスファチジルエタノールアミン、コレステロール、セラミド、スフィンゴミエリン、セファリン、セレブロシド等が挙げられ、アニオン性脂質としては、例えば、カルジオリピン、ジアシルホスファチジルセリン、ジアシルホスファチジン酸、Ｎ−スクシニルホスファチジルエタノールアミン（Ｎ−スクシニルＰＥ）、ホスファチジン酸、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルエチレングリコール、コレステロールコハク酸等が挙げられる。
【００８４】
本発明のリポソームの好ましい態様として、本発明のペプチドが疎水性基で修飾されており、疎水性基が脂質二重層に挿入され、本発明のペプチドが脂質二重層から露出しているリポソームを例示することができる。なお、本態様において、「ペプチドが脂質二重層から露出している」には、ペプチドが脂質二重層の外表面又は内表面のいずれか一方から露出している場合、両方から露出している場合が含まれる。
【００８５】
疎水性基は、脂質二重層に挿入され得る限り特に限定されるものでない。疎水性基としては、例えば、ステアリル基等の飽和又は不飽和の脂肪酸基、コレステロール残基等のステロール残基、リン脂質残基、糖脂質残基、長鎖脂肪族アルコール残基（例えば、ホスファチジルエタノールアミン残基等）、ポリオキシプロピレンアルキル基、グリセリン脂肪酸エステル残基等が挙げられるが、これらのうち特に炭素数１０〜２０の脂肪酸基（例えば、パルミトイル基、オレイル基、ステアリル基、アラキドイル基等）が好ましい。
【００８６】
本発明のリポソームは、例えば、水和法、超音波処理法、エタノール注入法、エーテル注入法、逆相蒸発法、界面活性剤法、凍結・融解法等の公知の方法を用いて作製することができる。
【００８７】
水和法によるリポソームの製造例を以下に示す。
リポソーム膜の構成成分である脂質と、疎水性基で修飾された本発明のペプチドとを有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより脂質膜を得る。この際、有機溶剤としては、例えば、ペンタン、ヘキサン、ヘプタン、シクロヘキサン等の炭化水素類；塩化メチレン、クロロホルム等のハロゲン化炭化水素類；ベンゼン、トルエン等の芳香族炭化水素類；メタノール、エタノール等の低級アルコール類；酢酸メチル、酢酸エチル等のエステル類；アセトン等のケトン類等が挙げられ、これらを単独で又は２種以上を組み合わせて使用することができる。次いで、脂質膜を水和させ、攪拌又は超音波処理することにより、本発明のペプチドを表面に有するリポソームを製造する。
【００８８】
また、水和法による別の製造例を以下に示す。
脂質二重層の構成成分である脂質を有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより脂質膜を得、この脂質膜を水和させ、攪拌又は超音波処理することによりリポソームを製造する。次いで、このリポソームの外液に、疎水性基で修飾された本発明のペプチドを添加することにより、リポソームの表面に本発明のペプチドを導入することができる。
【００８９】
リポソームを所定のポアサイズのフィルターで通過させることにより、一定の粒度分布を持ったリポソームを得ることができる。また、公知の方法に従って、多重膜リポソームから一枚膜リポソームへの転換、一枚膜リポソームから多重膜リポソームへの転換を行うことができる。
【００９０】
本発明のリポソームの内部に封入される、毛母細胞又は毛幹細胞に送達すべき目的物質としては、例えば、薬物、核酸、ペプチド、タンパク質、糖又はこれらの複合体等が挙げられ、診断、治療等の目的に応じて適宜選択することができる。なお、「核酸」には、ＤＮＡ又はＲＮＡに加え、これらの類似体又は誘導体（例えば、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、ホスホロチオエートＤＮＡ等）が含まれる。また、核酸は一本鎖又は二本鎖のいずれであってもよいし、線状又は環状のいずれであってもよい。
【００９１】
目的物質が水溶性である場合には、リポソームの製造にあたり脂質膜を水和する際に使用される水性溶媒に目的物質を添加することにより、リポソーム内部の水相に目的物質を封入することができる。また、目的物質が脂溶性である場合には、リポソームの製造にあたり使用される有機溶剤に目的物質を添加することにより、リポソームの脂質二重層に目的物質を封入することができる。
【００９２】
目的物質が核酸（例えば、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有するプラスミドベクター）である場合、封入すべき核酸を予めカチオン性物質と複合体化させておくことが好ましい。核酸とカチオン性物質との複合体の存在下、脂質膜を水和し、次いで攪拌又は超音波処理することにより、核酸とカチオン性物質との複合体が封入されたリポソームを簡便かつ効率よく製造することができる。
【００９３】
「カチオン性物質」とは、その分子中にカチオン性基を有する物質を意味し、静電的相互作用により核酸と複合体を形成することができる。カチオン性物質の種類は核酸と複合体を形成し得る限り特に限定されるものではなく、例えば、カチオン性脂質（例えば、Lipofectamine（Invitrogen社製））；カチオン性基を有する高分子；ポリリジン、ポリアルギニン、リジンとアルギニンの共重合体等の塩基性アミノ酸の単独重合体若しくは共重合体又はこれらの誘導体（例えばステアリル化誘導体）；ポリエチレンイミン等のポリカチオン性ポリマー；プロタミン又はその誘導体（例えば硫酸プロタミン）等が挙げられるが、これらのうち特にプロタミン又はその誘導体が好ましい。カチオン性基は正に荷電し得る限り特に限定されるものではなく、例えば、アミノ基；メチルアミノ基、エチルアミノ基等のモノアルキルアミノ基；ジメチルアミノ基、ジエチルアミノ基等のジアルキルアミノ基；イミノ基；グアニジノ基等が挙げられる。
【００９４】
核酸とカチオン性物質との複合体は、その構成比率によって全体としてプラス電荷又はマイナス電荷を帯びているので、非カチオン性脂質又はカチオン性脂質との静電的相互作用により、リポソーム内部に複合体を効率よく封入することができる。
【００９５】
脂質二重層の構成成分である脂質と、疎水性基で修飾された本発明のペプチドとを有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより得られる脂質膜は、カチオン性物質である本発明のペプチドを含有しているので、その組成によっては上記複合体と脂質膜との静電的相互作用が弱くなる場合がある。そのような場合には、本発明のペプチドを含有しない脂質膜を使用することが好ましい。本発明のペプチドを含有しない脂質膜は、疎水性基で修飾された本発明のペプチドを有機溶剤に溶解することなく、脂質二重層の構成成分である脂質を有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより得られる。リポソーム表面への本発明のペプチドの導入は、複合体が封入されたリポソームの形成の後に行われる。
【００９６】
本発明の第２の毛髪用組成物は、本発明のリポソームのみから構成されていてもよいし、薬学的に許容される１種以上の担体及び／又は添加剤とともに常法に従って製剤化されていてもよい。本発明の第２の毛髪用組成物がとり得る剤形は特に限定されるものではないが、外用剤であることが好ましい。外用剤としては、例えば、軟膏剤、クリーム剤、ムース剤、懸濁剤、乳剤、ローション剤、エアゾル剤等が挙げられる。本発明の第２の毛髪用組成物は、保湿剤、界面活性剤、乳化剤、増粘剤、保存剤、ｐＨ調整剤、着色剤、着香剤、殺菌剤、清涼刺激剤、止痒剤、フケ止め剤等を含有することができる。本発明の第２の毛髪用組成物に含有される本発明のリポソームの含有量は、毛髪用組成物の剤形等に応じて適宜調節することができる。
【００９７】
本発明の第２の毛髪用組成物を適用できる動物は、毛髪を有する動物である限り特に限定されるものではなく、ヒト、サル、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ブタ、ラクダ、ウサギ、イヌ、ネコ、ラット、マウス等の哺乳動物が挙げられる。本発明の第２の毛髪用組成物は、動物体のうちいかなる部分の毛髪に対しても適用することができる。
【００９８】
本発明の第２の毛髪用組成物を使用する際、毛髪が生えている部位又は毛髪が生えてくる部位に本発明の第２の毛髪用組成物を適当量塗布、噴霧等する。これにより、本発明の第２の毛髪用組成物に含有される本発明のリポソームは、毛穴を通じて毛母細胞又は毛幹細胞に到達する。本発明のリポソームが毛穴を通じて毛母細胞又は毛幹細胞に到達しやすいように、本発明の第２の毛髪用組成物にワセリン等の油脂を含有させておくことが好ましい。毛母細胞又は毛幹細胞に到達した本発明のリポソームが細胞内に移行することにより、本発明のリポソームの内部に封入されていた目的物質は細胞内に放出される。これにより、目的物質を毛母細胞又は幹細胞の細胞内に送達することができる。
【００９９】
目的物質が、１型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを有する発現ベクターである場合、目的物質を毛母細胞又は毛幹細胞の細胞内に送達することにより、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができる。したがって、本発明の第２の毛髪用組成物は、脱毛症の予防又は治療に有用である。本発明の第２の毛髪用組成物によって予防又は治療可能な脱毛症は特に限定されるものではなく、例えば、円形脱毛症、男性型脱毛症、壮年性脱毛症、トリコチロマニア、休止期脱毛、全身病による脱毛、皮膚感染症による脱毛、皮膚腫瘍による脱毛、瘢痕性脱毛、薬品・化学物質による脱毛等が挙げられる。
【０１００】
目的物質が染毛剤である場合、目的物質を毛母細胞又は毛幹細胞の細胞内に送達することにより、毛髪を染色することができる。
目的物質がケラチン遺伝子を有する発現ベクターである場合、目的物質を毛母細胞又は毛幹細胞の細胞内に送達することにより、毛髪をコートするキューティクルを増加させることができる。
【実施例】
【０１０１】
〔実施例１〕
１．リポソームの調製
（１）硫酸プロタミン溶液1.5mL（硫酸プロタミン濃度：0.1mg/mL，溶媒：10mM HEPES緩衝液（pH7.4））に、ＣＭＶプロモーターの下流に連結されたＬａｃＺ遺伝子を有するプラスミドｐＣＭＶβ（Clontech社製）溶液1mL（プラスミド濃度：0.1mg/mL，溶媒：10mM HEPES緩衝液（pH7.4））をボルテックス条件下で滴下し、硫酸プロタミンとプラスミドとを静電的に相互作用させ、プラスミドを凝縮化させた。なお、硫酸プロタミンとプラスミドとの比を調節することにより（硫酸プロタミン：プラスミド＝1.5：1（重量比））、凝縮化プラスミドを正に帯電させた。
【０１０２】
（２）負電荷を有する脂質を含む脂質混合物（ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン：コレステロールコハク酸＝9：2（モル比））をクロロホルムに溶解した後、クロロホルムを蒸発除去することにより脂質膜を得た。負電荷を有する脂質を含む脂質薄膜（1.375μモル）に、正に帯電した凝縮化プラスミド懸濁液2.5mL（凝集化プラスミド濃度：0.04mg/mL，溶媒：10mM HEPES緩衝液（pH7.4））を添加して水和することにより、脂質膜表面に凝縮化プラスミドを静電的に結合させた。
【０１０３】
（３）穏やかな超音波で処理することにより、凝縮化プラスミドを脂質膜中に封入し、プラスミド封入リポソームを調製した。
【０１０４】
（４）プラスミド封入リポソーム懸濁液に、ステアリル化オクタアルギニン溶液61μL（ステアリル化オクタアルギニン濃度：2mg/mL，溶媒：水）を添加し、室温で一定時間インキュベートすることにより、リポソーム表面にステアリル化オクタアルギニンを分配させた（ステアリル化オクタアルギニンの分配量：脂質量の5モル％）。このようにして、オクタアルギニンを表面に有するプラスミド封入リポソームを調製した。
【０１０５】
２．動物への塗布
（１）ケタミン（200mg/kg体重）及びキシラジン（10mg/kg体重）の混合物の腹腔内投与により４週令ＩＣＲマウス（毛周期は生後最初の成長期にある）を麻酔し、麻酔下ＩＣＲマウスの背側の毛髪をバリカンで剃髪し、オクタアルギニンを表面に有するプラスミド封入リポソーム懸濁液（DNA濃度：40μｇ/ｍＬ，溶媒：水）を剃髪部へ塗布した。塗布量はＤＮＡ量に換算して2μg/cm2とした。また、コントロールとして、リポフェクトアミン（Invitogen社製，カタログ番号18324-111）とプラスミドとの複合体（リポフェクトアミン：プラスミド＝5：1（重量比））懸濁液を剃髪部へ塗布した。塗布後、乾燥防止の為にマウス１個体あたり0.1〜0.2gのワセリンを剃髪部に塗抹した。
【０１０６】
（２）２週間後に背側の皮膚サンプルを採取し、4％パラホルムアルデヒドで固定した凍結切片（15μm）を作製した。
【０１０７】
（３）凍結切片をX-gal染色し、青色に染まった毛髪を陽性としてカウントし、観察した毛髪の総数に対する陽性毛髪の数の割合を求め、これをプラスミドの取り込み効率とした。この際、内因性のガラクトシダーゼ活性により青色に染まる部分が皮膚内（特に皮脂腺及び毛根周囲）に存在していたため、内因性のガラクトシダーゼ活性の影響が少ない部分を選択した。
【０１０８】
X-gal染色は次のようにして行った。凍結切片を0.01％ デオキシコール酸ナトリウム（sodium deoxycholate）、0.02％ NP40及び1mM MgCl2を含むPBSでインキュベート後、1mg/mL X-gal（5-bromo-4-chloro-3-indoyl-βD-galactopyranoside）、5mM K-フェロシアニド（K-ferrocyanide）、5mM K-フェリシアニド（K-ferricyanide）、0.01％ デオキシコール酸ナトリウム（sodium deoxycholate）、0.02％ NP40及び１mM MgCl2を含むPBS中で染色した。
【０１０９】
プラスミドの取り込み効率の測定結果を表１に示す。なお、表１中、「アルギニン修飾リポソーム」は、オクタアルギニンを表面に有するプラスミド封入リポソーム懸濁液を塗布した場合の結果であり、「コントロール」は、リポフェクトアミンとプラスミドとの複合体懸濁液を塗布した場合の結果であり、「未処理」は、いずれの懸濁液も塗布しなかった場合の結果である。
【０１１０】
【表１】
2006241110.tif 000002
【０１１１】
表１に示すように、オクタアルギニンを表面に有するプラスミド封入リポソーム懸濁液を塗布した場合のプラスミドの取り込み効率は、リポフェクトアミンとプラスミドとの複合体懸濁液を塗布した場合のプラスミドの取り込み効率よりも顕著に大きかった。毛髪は、毛母細胞又は毛幹細胞から形成されるものであるので、オクタアルギニンを表面に有するリポソームによれば、リポソームの内部に封入された物質を毛母細胞又は毛幹細胞内へ効率よく送達できることが明らかとなった。
【０１１２】
また、X-gal染色後の毛髪の様子を図１に示す。なお、図１中、「Non-treatment」は、いずれの懸濁液も塗布しなかった場合の毛髪の様子（陰性）を示し、「MEND-LacZ」は、オクタアルギニンを表面に有するプラスミド封入リポソーム懸濁液を塗布した場合の毛髪の様子（陽性）を示す。図１に示すように、オクタアルギニンを表面に有するプラスミド封入リポソーム懸濁液を塗布した後も、毛周期は成長期にあった。
【０１１３】
〔実施例２〕
１．リポソームの調製
（１）硫酸プロタミン溶液1.5mL（硫酸プロタミン濃度：0.1mg/mL，溶媒：10mM HEPES緩衝液（pH7.4））に、プラスミド溶液1mL（プラスミド濃度：0.1mg/mL，溶媒：10mM HEPES緩衝液（pH7.4））をボルテックス条件下で滴下し、硫酸プロタミンとプラスミドとを静電的に相互作用させ、プラスミドを凝縮化させた。なお、硫酸プロタミンとプラスミドとの比を調節することにより（硫酸プロタミン：プラスミド＝1.5：1（重量比））、凝縮化プラスミドを正に帯電させた。
【０１１４】
プラスミドとしては、マウス由来の１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体（配列番号２）をコードするＤＮＡ（配列番号１，図２中「ca-BMPR1A」と記載）を導入したプラスミドpIRES2-EGFP（Clontech社製，図２参照）を使用した（以下「caBmpr1a-pIRES2-EGFP」という）。また、コントロールとして、ヒト由来の１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを導入していないプラスミドpIRES2-EGFPを使用した（以下「pIRES2-EGFP」という）。
【０１１５】
（２）負電荷を有する脂質を含む脂質混合物（ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン／コレステロールコハク酸＝9：2（モル比））をクロロホルムに溶解した後、クロロホルムを蒸発除去することにより脂質膜を得た。負電荷を有する脂質を含む脂質薄膜（1.375μモル）に、正に帯電した凝縮化プラスミド懸濁液2.5mL（凝集化プラスミド濃度：0.04mg/mL，溶媒：10mM HEPES緩衝液（pH7.4））を添加し水和することにより、脂質膜表面に凝縮化プラスミドを静電的に結合させた。
【０１１６】
（３）穏やかな超音波で処理することにより、凝縮化プラスミドを脂質膜中に封入し、プラスミド封入リポソームを調製した。
【０１１７】
（４）プラスミド封入リポソーム懸濁液に、ステアリル化オクタアルギニン溶液61μL（ステアリル化オクタアルギニン濃度：2mg/mL，溶媒：水）を添加し、室温で一定時間インキュベートすることにより、リポソーム表面にステアリル化オクタアルギニンを分配させた（ステアリル化オクタアルギニンの分配量：脂質量の5モル％）。このようにして、オクタアルギニンを表面に有するプラスミド封入リポソームを調製した。以下、caBmpr1a-pIRES2-EGFPを封入したリポソームを「MEND-caBmpr1a」といい、pIRES2-EGFPを封入したリポソームを「MEND-Control」という。
【０１１８】
２．動物への塗布
（１）ケタミン（200mg/kg体重）及びキシラジン（10mg/kg体重）の混合物の腹腔内投与により４週令ＩＣＲマウス（毛周期は生後最初の成長期にある）を麻酔し、麻酔下ICRマウスの背側の毛髪をバリカンで剃髪し、オクタアルギニンを表面に有するプラスミド封入リポソーム懸濁液（ＤＮＡ濃度：40μg/mL，溶媒：水）を剃髪部へ塗布した。塗布量はDNA量に換算して2μg/cm2とした。塗布後、乾燥防止の為にマウス１個体あたり0.1〜0.2gのワセリンを剃髪部に塗抹した。
【０１１９】
（２）塗布後２週間経過時点で背側の皮膚サンプルを採取し、4％パラホルムアルデヒドで固定した凍結切片（15μm）を作製した。
【０１２０】
（３）凍結切片をヘマトキシン・エオジン（ＨＥ）染色、外毛根鞘（outer root sheath：ＯＲＳ）染色又はアルカリフォスファターゼ（ＡＰ）染色した結果を図３に示す。図３中、「ＨＥ」はＨＥ染色の染色像、「ＯＲＳ」はＯＲＳ染色の染色像、「ＡＰ」はアルカリフォスファターゼ染色の染色像を表す。ＨＥ染色の染色像において、黒色矢印は、塗布前から休止期であった毛包を示し、白色矢印は、塗布時に成長期であった毛包を示す。ＡＰ染色の染色像において、黒色矢印は脂腺（sebaceous gland）を示し、灰色矢印は真皮乳頭（dermal papillae）を示す。
【０１２１】
ＯＲＳ染色は次のようにして行った。凍結切片をブロッキング液（0.01％ TritonX及び1.5％正常ヤギ血清を含有するPBS）中でインキュベーションし、抗ケラチン5ウサギポリクローナル抗体（COVANCE社製）と4℃で一晩反応させた後、VECTASTAIN ABC-GOキット（Vector社製）を用いて染色した。
【０１２２】
アルカリフォスファターゼ染色は次のようにして行った。凍結切片をPBSにて洗浄（5分×3回）後、ＡＰ用発色溶液を添加して室温で10分間反応させた。なお、ＡＰ用発色溶液は、0.15mg/mLニトロブルーテトラゾリウム（Nitro Blue Tetrazolium（NBT））の70％N，N-ジメチルホルムアミド溶液、及び0.188mg/mL 5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリルリン酸p-トルイジン塩（5-Bromo-4-chloro-3-indolyl Phosphate p-Toluidine Salt（BCIP））のN,N-ジメチルホルムアミド溶液をＡＰ用発色バッファー（100mM Tris-HCl（pH9.5），100mM NaCl，50mM MgCl2，0.1％ Tween20）に加えたものである。
【０１２３】
図３に示すように、MEND-caBmpr1a塗布後２週間経過時において、白色矢印で示される毛包（塗布時に成長期にあった毛包）は真皮（dermis，図３中「ｄ」で示す層）で観察されたが、MEND-Control塗布後２週間経過時において、白色矢印で示される毛包（塗布時に成長期にあった毛包）は、皮下（subcutaneous space，図３中「ｓ」で示す層）で観察された。すなわち、MEND−caBmpr1aを塗布することにより、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができた。
【０１２４】
また、図３に示すように、MEND-Control塗布後２週間経過時におけるＡＰ活性は、脂腺及び真皮乳頭において観察されたが、MEND−caBmpr1a塗布後２週間経過時におけるＡＰ活性は、外毛根鞘で観察された。真皮乳頭では毛周期全体を通じて強いアルカリホスファターゼ（ＡＰ）活性が観察され、外毛根鞘では後期成長期（late anagen）及び初期退行期（early catagen）においてＡＰ活性が観察され、脂腺では退行期及び休止期においてＡＰ活性が観察されることが知られている。したがって、MEND-Control塗布後２週間経過時における毛周期は退行期又は休止期であり、MEND−caBmpr1aを塗布したマウスの毛周期は、成長期から退行期への移行途中であった。すなわち、MEND−caBmpr1aを塗布することにより、毛周期における成長期から退行期への移行を遅らせることができた。
【０１２５】
（４）塗布後７週間経過時点で、（２）と同様にして凍結切片を作製し、これを（３）と同様にしてＨＥ染色及びＡＰ染色した。凍結切片をＨＥ染色又はＡＰ染色した結果を図４に示す。
【０１２６】
図４に示すように、MEND-caBmpr1a塗布後７週間経過時における毛包は、MEND-Control塗布後２週間経過時における毛包と同様の形態を示した。このことから、MEND−caBmpr1aを塗布することにより、毛周期における成長期から退行期への移行が遅れることが確認された。
【０１２７】
（５）データは示さないが、MEND-caBmpr1a塗布２週間後の毛包においては、細胞周期Ｍ期のマーカーであるリン酸化ヒストン３の免疫染色が陽性であり、細胞増殖マーカーPCNAの免疫染色も陽性であった。一方、MEND−Control塗布２週間後の毛根においては、いずれのマーカーの免疫染色も陰性であった。このことから、MEND−Controlを塗布したマウスの毛周期は退行期又は休止期であり、MEND−caBmpr1aを塗布したマウスの毛周期は、成長期から退行期への移行途中であることが確認された。
【図面の簡単な説明】
【０１２８】
【図１】X-gal染色後の毛髪の様子を示す図である。
【図２】マウス由来の１Ａ型骨形成タンパク質受容体の構成的活性型変異体をコードするＤＮＡを導入したプラスミドpIRES2-EGFPの構成を示す図である。
【図３】塗布後２週間経過時点で採取した皮膚サンプルをヘマトキシン・エオジン（ＨＥ）染色、外毛根鞘（outer root sheath：ＯＲＳ）染色又はアルカリフォスファターゼ（ＡＰ）染色した結果を示す図である。
【図４】塗布後７週間経過時点で採取した皮膚サンプルをＨＥ染色及びＡＰ染色した結果を示す図である。
【図２】
2006241110.tif 000003
【図１】
2006241110.tif 000004
【図３】
2006241110.tif 000005
【図４】
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【配列表】
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