(57)【要約】【課題】  細胞表層に提示された酵素において、より酵素活性を高めるための方法を提供すること。【解決手段】  本発明の細胞表層に提示された酵素の活性を高める方法は、細胞表層に酵素を提示する組換え微生物を凍結乾燥する工程、および該凍結乾燥した微生物を水に懸濁して室温にて少なくとも４日間保存する工程を含む。好適な実施態様では、この微生物は酵母であり、そして酵素はリパーゼである。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞表層に酵素を提示する組換え微生物を凍結乾燥する工程、および
該凍結乾燥した微生物を水に懸濁して室温にて少なくとも４日間保存する工程、
を含む、細胞表層に提示された酵素の活性を高める方法。
【請求項２】
前記微生物が酵母である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記酵素がリパーゼである、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
請求項１から３のいずれかの項に記載の方法によって酵素活性が高められた、細胞表層に提示された酵素。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞表層に提示された酵素に関する。より詳細には、細胞表層に提示された酵素の活性を高める方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、酵母や細菌の細胞表層に有用なタンパク質を発現させる、細胞表層ディスプレイ技術が注目されている。例えば、酵母表層には、細胞表層局在タンパク質のＧＰＩアンカーを利用して、リパーゼ、アミラーゼ類、セルラーゼ類などの種々の酵素が提示されている（特許文献１および２）。また、酵母においては、糖鎖結合タンパク質ドメインを利用した、細胞表層ディスプレイ技術も開発されている（特許文献３）。細菌の表層へのタンパク質の発現については、Bacillus sp.由来のポリ−γ−グルタミン酸生合成酵素の遺伝子を含む発現プラスミドを利用して、グラム陽性菌である乳酸菌やグラム陰性菌である大腸菌の表層に種々のタンパク質を提示できることが知られている（特許文献４）。
【０００３】
このようにして酵素を細胞表層に提示する微生物は、微生物そのものが酵素として種々利用されている。例えば、リパーゼを表層に提示させた組換え酵母を、光学活性なエステル化合物の製造にそのまま酵素として利用したことが報告されている（特許文献５）。この特許文献５には、この組換え酵母を培養直後に蒸留水に懸濁して、室温で４〜８日間放置することによって、酵素活性が高められたことも開示されている。
【特許文献１】特開平１１−２９００７８号公報
【特許文献２】国際公開第０１／７９４８３号パンフレット
【特許文献３】国際公開第０２／０８５９３５号パンフレット
【特許文献４】国際公開第０３／０１４３６０号パンフレット
【特許文献５】特開２００４−１９４５５９号公報
【非特許文献１】植田ら，蛋白質・核酸・酵素，2001年，46巻，11号，1480-1487頁
【非特許文献２】Matumoto, T.ら，Applied and Environmental Microbiology，2002年，4517-4522頁
【非特許文献３】植田ら，Appl. Environ. Microbiol.，1997年，63巻，1362-1366頁
【非特許文献４】藤田ら，Appl. Environ. Microbiol.，2004年，70巻，1207-1212頁
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本発明は、細胞表層に提示された酵素（以下、細胞表層提示酵素という場合がある）において、さらに酵素活性を高めるための方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明は、細胞表層に提示された酵素の活性を高める方法を提供し、この方法は、細胞表層に酵素を提示する組換え微生物を凍結乾燥する工程、および該凍結乾燥した微生物を水に懸濁して室温にて少なくとも４日間保存する工程を含む。
【０００６】
好適な実施態様では、上記微生物は酵母である。
【０００７】
より好適な実施態様では、上記酵素はリパーゼであり、より好適には該リパーゼは、リゾプス・オリゼ由来である。
【０００８】
本発明はまた、上記の方法によって酵素活性が高められた、細胞表層に提示された酵素を提供する。
【発明の効果】
【０００９】
本発明の方法によれば、組換え微生物自体を酵素として利用し得る細胞表層に提示された酵素の活性を非常に簡単に高めることができる。すなわち、凍結乾燥後の組換え微生物を水に懸濁して室温保存するという非常に簡単な操作によって、凍結乾燥後に水に懸濁した直後と比較して、数十倍もの酵素活性を示す微生物が得られる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
本発明において、細胞表層提示酵素とは、例えば、ＧＰＩアンカー、糖鎖結合タンパク質ドメイン、外膜局在タンパク質の一部などによって、組換え微生物の表層に固定されている酵素をいう。好適には、酵素とＧＰＩアンカーまたは糖鎖結合タンパク質ドメインとの融合タンパク質であり得る。本発明において、細胞表層提示酵素を有する組換え微生物とは、その表層に酵素が固定されている組換え微生物をいう。このような組換え微生物は、それ自体を酵素として利用し得る。
【００１１】
（組換え微生物）
本発明において細胞表層に酵素が提示されている組換え微生物は、細胞表層に酵素を提示するように遺伝子操作された組換え体であれば、特に限定されない。例えば、細菌、真菌、植物細胞などが挙げられる。好適には、細胞壁を有する細胞であり、より好適には酵母である。
【００１２】
（酵素）
本発明において、細胞表層に提示され得る酵素は、特に限定されない。天然に存在する微生物の細胞表層に局在しない酵素であって、微生物の細胞表層に固定することを目的として配置される酵素が好ましい。例えば、分泌性酵素、外来酵素などが挙げられる。分泌性酵素としては、リパーゼ、アミラーゼ類、セルラーゼ類などが挙げられる。
【００１３】
本発明において、リパーゼとは、油脂から脂肪酸を遊離し得る活性を有する酵素をいう。ここで、油脂とは、グリセロールに脂肪酸が結合したものをいう。このような活性を有していれば、リパーゼの起源は特に限定されず、一般に、微生物、植物、および動物（例えば、豚膵臓）由来のリパーゼが用いられる。また、リパーゼは、１，３−特異的であってもよいし、非特異的であってもよい。このようなリパーゼとしては、例えば、セラチア属、シュードモナス属、スタフィロコッカス属、リゾプス属、ムコール属、アスペルギルス属、キャンディダ属、バシラス属に属する微生物に由来するリパーゼが挙げられる。より具体的には、Candida antarctica CBS6678株由来のリパーゼＢ、リゾプス・オリゼ（Rhisopus oryzae）由来のリパーゼなどが挙げられる。リパーゼは、工業的には、エステル交換反応にも利用されている。あるいは、リパーゼを凝集性酵母の細胞表層に発現させることにより、廃油などからバイオディーゼル燃料を製造できる。
【００１４】
本発明において、アミラーゼ類とは、デンプンを加水分解する酵素をいう。代表的には、グルコアミラーゼおよびα−アミラーゼが挙げられ、他にβ−アミラーゼ、イソアミラーゼなどが挙げられる。
【００１５】
本発明において、グルコアミラーゼとは、デンプンの非還元末端からグルコース単位を切り離していくエキソ型の加水分解酵素をいう。このような活性を有していれば、その起源は限定されないが、リゾプス属およびアスペルギルス属などのカビ由来のグルコアミラーゼが好ましい。例えば、非特許文献３に記載のように、Rhizopus oryzae由来のグルコアミラーゼが好適に用いられる。
【００１６】
本発明において、α−アミラーゼとは、デンプンのα１，４−グルコシド結合を加水分解するエンド型の酵素をいう。この活性を有していればその起源は限定されず、例えば、動物（唾液、膵臓など）、植物（麦芽など）、および微生物由来のα−アミラーゼが用いられる。微生物由来のα−アミラーゼとしては、Bacillus stearothermophilus、Streptococcus bovisなどに由来するものが挙げられる。例えば、無蒸煮デンプンを炭素源とする場合には、Streptococcus bovis由来のα−アミラーゼが好ましい。例えば、α−アミラーゼを酵母表層に発現させることにより、デンプン存在下で効率よくエタノールを製造することができる。上記グルコアミラーゼと組合せて発現させると、アルコール発酵が効率よく行われ得る。
【００１７】
本発明において、セルラーゼ類とは、セルロースを加水分解する酵素をいう。代表的には、エンドグルカナーゼおよびエキソセロビオヒドロラーゼが挙げられ、さらに他にβ−グルコシダーゼなどが挙げられる。
【００１８】
本発明において、エンドグルカナーゼとは、セルロースのβ１，４−グルコシド結合を加水分解するエンド型の酵素をいう。この活性を有していればその起源は限定されず、昆虫（シロアリなど）、カビ由来および微生物由来のエンドグルカナーゼが用いられる。微生物由来のエンドグルカナーゼとしては、Clostridium cellulovorans、Clostridium thermocellumなどに由来するもの、ならびにカビ由来のエンドグルカナーゼとしては、Trichoderma reeseiなどに由来するものが挙げられる。
【００１９】
本発明において、エキソセロビオヒドロラーゼとは、セルロースの非還元末端からセロビオース単位を切り離していくエキソ型の加水分解酵素をいう。このような活性を有していれば、その起源は限定されず、カビ由来および微生物由来のエキソセロビオヒドロラーゼが用いられるが、カビ由来のエキソセロビオヒドロラーゼが好ましい。例えば、非特許文献４に記載のように、Trichoderma reesei由来のエキソセロビオヒドロラーゼが好適に用いられる。
【００２０】
本発明において、β−グルコシダーゼとは、セルロースのβ１，４−グルコシド結合の加水分解によって生じたセロオリゴ糖をグルコース単位に加水分解する酵素をいう。この活性を有していればその起源は限定されないが、昆虫（シロアリなど）由来、植物（アーモンドなど）由来およびカビ由来のβ−グルコシダーゼが用いられる。カビ由来のβ−グルコシダーゼとしては、Aspergillus aculeatusなどに由来するものが挙げられる。
【００２１】
上記のセルラーゼ類を単独または組合せて酵母表層で発現させることにより、木質材料、例えば、紙、パルプまたはこれらの廃材から、アルコール発酵が効率よく行われ得る。
【００２２】
（細胞表層への固定）
本発明において、細胞表層に酵素を固定する手段は、固定すべき微生物に応じて適宜決定され得る。例えば、酵母の場合は、ＧＰＩアンカーや糖鎖結合タンパク質ドメインを利用し、細菌の場合は、外膜局在タンパク質の一部を利用することができる。
【００２３】
外膜局在タンパク質としては、例えば、ポリ−γ−グルタミン酸生合成酵素が挙げられる。このタンパク質を利用することにより、グラム陽性菌である乳酸菌やグラム陰性菌である大腸菌の表層に酵素を固定することができる（特許文献４）。
【００２４】
以下、酵素を酵母の細胞表層に提示する場合を例に挙げて、より詳細に説明する。
【００２５】
この場合、（ａ）細胞表層局在タンパク質のＧＰＩアンカーを利用する方法（特許文献１および２ならびに非特許文献１参照）、および（ｂ）細胞表層局在タンパク質の糖鎖結合タンパク質ドメインを利用する方法がある（特許文献３および非特許文献２参照）。これらの（ａ）および（ｂ）の両方の方法に用いられる細胞表層局在タンパク質としては、酵母の性凝集タンパク質であるα−またはａ−アグルチニン、ＦＬＯタンパク質（例えば、ＦＬＯ１、ＦＬＯ２、ＦＬＯ４、ＦＬＯ５、ＦＬＯ９、ＦＬＯ１０、およびＦＬＯ１１）、アルカリホスファターゼなどが挙げられる。
【００２６】
（ａ）ＧＰＩアンカーを利用する方法（特許文献１および２ならびに非特許文献１参照）
ＧＰＩアンカーによって、異種遺伝子を発現する方法は、分泌シグナル配列をコードするＤＮＡ−細胞表層局在タンパク質をコードする構造遺伝子−ＧＰＩアンカー付着認識シグナルをコードするＤＮＡ配列から発現され、細胞膜外に分泌された細胞表層局在タンパク質がＧＰＩアンカー付着認識シグナルを介して細胞膜のＧＰＩアンカーと結合することを利用する。すなわち、この細胞表層局在タンパク質をコードする構造遺伝子の全部または一部の配列を、酵素の構造遺伝子の配列に置換することにより、酵素が細胞表層に提示される。ＧＰＩアンカー付着認識シグナル配列としては、例えば、酵母のα−アグルチニンのＣ末端から数えて３２０アミノ酸の配列中に存在するＧＰＩアンカー付着認識シグナル配列が利用される。
【００２７】
（ｂ）糖鎖結合タンパク質ドメインを利用する方法（特許文献３および非特許文献２参照）
細胞表層局在タンパク質が糖鎖結合タンパク質である場合、その糖鎖結合タンパク質ドメインは、複数の糖鎖を有し、この糖鎖が細胞壁中の糖鎖と相互作用を行う、または絡み合うことによって、細胞表層に留まることが可能である。例えば、レクチン、レクチン様タンパク質などの糖鎖結合部位などが挙げられる。代表的には、ＧＰＩアンカータンパク質の凝集機能ドメインが挙げられる。ＧＰＩアンカータンパク質の凝集機能ドメインとは、ＧＰＩアンカリングドメインよりもＮ末端側にあり、複数の糖鎖を有し、凝集に関与していると考えられているドメインをいう。
【００２８】
この細胞表層局在タンパク質（凝集機能ドメイン）と酵素との融合タンパク質を発現させることにより、細胞表層に酵素が提示される。酵素を、細胞表層局在タンパク質（凝集機能ドメイン）の（１）Ｎ末端側に結合させる、（２）Ｃ末端側に結合させる、および（３）Ｎ末端側およびＣ末端側の両方に結合させることができる。例えば、酵素がリパーゼである場合、高いリパーゼ活性を維持する観点からは、（２）の糖鎖結合タンパク質ドメインのＣ末端側とリパーゼのＮ末端側とが連結された融合タンパク質として細胞表層に提示されることが望ましい。
【００２９】
したがって、例えば、
（１）分泌シグナル配列をコードするＤＮＡ−酵素の構造遺伝子−細胞表層局在タンパク質（凝集機能ドメイン）をコードする構造遺伝子、
（２）分泌シグナル配列をコードするＤＮＡ−細胞表層局在タンパク質（凝集機能ドメイン）をコードする構造遺伝子−酵素の構造遺伝子、
（３）分泌シグナル配列をコードするＤＮＡ−酵素の構造遺伝子−細胞表層局在タンパク質（凝集機能ドメイン）をコードする構造遺伝子−酵素の構造遺伝子、などのＤＮＡ配列を作成し、酵母に導入することにより、細胞表層に酵素を提示する酵母が得られる。上記のように、（２）のＤＮＡ配列が、最も好ましく利用できる。
【００３０】
上記（ａ）および（ｂ）の方法において、組換えＤＮＡに用いられる分泌シグナル配列は、細胞表層局在タンパク質の分泌シグナル配列でもよいし、発現した酵素を細胞外へ導くことができる他の分泌シグナル配列でもよい。例えば、グルコアミラーゼの分泌シグナル配列、酵母のα−またはａ−アグルチニンの分泌シグナル配列、リパーゼの分泌シグナル配列が好適に用いられる。酵素活性に影響を及ぼさなければ、細胞表層提示後に分泌シグナル配列およびプロ配列の一部または全部がＮ末端に残ってもよい。
【００３１】
上記の各種配列を含むＤＮＡの合成および結合は、当業者が通常用い得る技術で行われ得る。
【００３２】
上記ＤＮＡはプラスミドの形態であることが望ましい。このＤＮＡの出発材料は、例えば、酵母の２μｍプラスミドの複製起点（Ori）とColE1の複製起点とを有しており、また、酵母選択マーカー（例えば、薬剤耐性遺伝子、TRP、LEU2など）および大腸菌の選択マーカー（薬剤耐性遺伝子など）を有することが好ましい。また、酵素の構造遺伝子を発現させるために、この遺伝子の発現を調節するオペレーター、プロモーター、ターミネーター、エンハンサーなどのいわゆる調節配列をも含んでいることが望ましい。例えば、GAPDH（グリセルアルデヒド３’-リン酸デヒドロゲナーゼ）プロモーターおよびGAPDHターミネーターが挙げられる。このような出発材料のプラスミドの例としては、GAPDHプロモーター配列およびGAPDHターミネーター配列を含むプラスミドpYGA2270またはpYE22m、あるいはUPR-ICL（イソクエン酸リアーゼ上流領域）配列とTerm-ICL（イソクエン酸リアーゼのターミネーター領域）配列とを含むプラスミドpWI3などが挙げられる。
【００３３】
好適には、プラスミドpYGA2270またはpYE22mのGAPDHプロモーター配列とGAPDHターミネーター配列との間、あるいはプラスミドpWI3のUPR-ICLの配列とTerm-ICLの配列との間に、酵素を細胞表層に提示するためのＤＮＡを挿入すれば、目的のプラスミドが製造される。
【００３４】
導入されるＤＮＡは、前述のようなプラスミドの形態であってもよく、あるいは宿主の遺伝子に挿入して、または宿主の遺伝子と相同組換えを起こして染色体に取り込まれてもよい。
【００３５】
ＤＮＡが導入された細胞は、選択マーカー（例えば、TRP）で選択され、発現された酵素の活性を測定することにより選択される。酵素が細胞表層に固定されていることは、酵素に対する抗タンパク質抗体とFITC標識抗IgG抗体とを用いる免疫抗体法によって確認できる。
【００３６】
上記のようにして、酵素を細胞表層に提示する組換え微生物が得られる。
【００３７】
（細胞表層に提示された酵素の活性を高める方法）
本発明の細胞表層に提示された酵素の活性を高める方法において、まず、得られた細胞表層提示酵素を有する組換え微生物を、当業者が通常行うように凍結乾燥して保存する。次いで、この凍結乾燥した微生物を水に懸濁し、得られた懸濁液を室温にて少なくとも４日間保存する。
【００３８】
微生物を懸濁するための水としては、通常、蒸留水が用いられる。水の量は、凍結乾燥微生物の質量に対して、通常は約５０〜６０倍質量である。懸濁液の保存温度は、通常、室温であり、１５〜２５℃が好ましく、約２０℃がより好ましい。懸濁液の保存期間は、少なくとも４日間であり、好ましくは７〜２１日間である。この保存期間中、通常、懸濁液は、直接光を受けない場所に、好ましくは暗所に、静置される。
【００３９】
この処理により、酵素活性は処理前の活性に比べて高められ、好ましくは１０倍以上、より好ましくは２０倍以上、さらに好ましくは３０倍以上、よりさらに好ましくは５０倍以上に高められ得る。酵素活性が高められた微生物は、再度凍結乾燥して、さらに長期保存することができる。この微生物を再度の凍結乾燥後に使用する場合は、蒸留水または反応用の緩衝液に懸濁した後すぐに使用することができる。
【実施例】
【００４０】
［調製例］リパーゼを細胞表層に提示する酵母ＦＳ株（S. cerevisiae MT8-1/pWIFSproROL）の調製
Ａ：ＦＬＯ１の５’領域（シグナル配列および凝集機能ドメイン）の遺伝子の取得
次のようにしてＦＬＯ１の遺伝子を取得した。まず、S. cerevisiae ATCC60715から染色体ＤＮＡを抽出した。次いでこれをテンプレートとし、プライマーとして配列番号１および配列番号２に記載のヌクレオチド配列を用いてＰＣＲ増幅し、BamHIおよびBglIIで切断して、約３３００ｂｐの長さのBamHI-BglII断片（BamHI-BglII FLO1 3300bp断片）を得た。この３３００ｂｐ断片は、ＦＬＯ１の５’側の配列（分泌シグナル配列およびＦＬＯ１凝集機能ドメイン）を有していると思われる。
【００４１】
Ｂ：リパーゼ遺伝子の取得
次のようにして、Rhizopus oryzaeのリパーゼの遺伝子を取得した。簡単に述べると、まず、R. oryzae IFO4697から染色体ＤＮＡを抽出した。次いで、これをテンプレートとし、プライマーとして配列番号３および配列番号４に記載のヌクレオチド配列を用いてＰＣＲ増幅を行い、BamHIおよびSalIで切断して、約１１００ｂｐの長さのBamHI-SalI断片（BamHI-SalIリパーゼ断片）を得た。このリパーゼ断片は、リパーゼのプロ配列および成熟タンパク質配列を有しており、Beerらの報告（Biochim Biophys Acta, 1399: 173-180, 1998）に記載の配列とほぼ一致するものであった。
【００４２】
Ｃ：ＦＬＯ１の５’領域およびプロリパーゼの構造遺伝子をこの順で有するプラスミドの作成
目的のＤＮＡを有するプラスミドは、上記Ａで得られたＦＬＯ１の５’領域遺伝子と上記Ｂで得られたプロリパーゼ遺伝子とを接続することにより得られる。ＦＬＯ１誘導体とリパーゼとの融合タンパク質を作成するために、以下の操作を行った。
【００４３】
まず、マルチコピー型プラスミドpWI3を、BglIIで切断し、脱リン酸化後、上記Ａで得られたBamHI-BglII FLO1 3300bp断片を挿入して、プラスミドpWIFSを得た。次いで、このプラスミドpWIFSを、BglIIおよびXhoIで切断し、上記Ｂで得られたBamHI-SalIリパーゼ断片を挿入して、pWIFSpmROLを得た。
【００４４】
Ｄ：形質転換酵母の調製
得られたプラスミドpWIFSpmROLを、Yeast Maker（Clontech Laboratories, Inc., Palo Alto, CA）を用いた酢酸リチウム法によって非凝集性酵母S. cerevisiae MT8-1（MATa ade his3 leu2 trp1 ura3）（Tajimaら、Yeast, 1:67-77, 1985）に導入した。これを、L-トリプトファンを含まない適切なアミノ酸および塩基を補充したＳＤ−Ｗ寒天選択培地（6.7％ Yeast nitrogen base w/o amino acids (Difco Laboratories製)、２％グルコース、２％寒天末）を用いて培養した。生育した酵母を選択し、S. cerevisiae MT8-1/pWIFSproROLと命名した。以下、この株をＦＳ株という。
【００４５】
［実施例］リパーゼを細胞表層に提示する組換え酵母のリパーゼ活性を高める処理
上記調製例で得られたＦＳ株を以下のように培養した。なお、培養に用いた培地は、ＳＤＣ液体培地（ｐＨ６．０）（Yeast nitrogen base w/o amino acids：６．７ｇ／Ｌ、Ｄ−グルコース：２０．０ｇ／Ｌ、カザミノ酸：２０．０ｇ／Ｌ、Ｌ−ロイシン：１００ｍｇ／Ｌ、ヒスチジン：２０ｍｇ／Ｌ、ウラシル：２０ｍｇ／Ｌ、アデニン：２０ｍｇ／Ｌ）であった。プレート上のＦＳ株のコロニーを、１白金耳ずつ試験管中の培地（５ｍｌ×２）に植菌し、３０℃、１００ｏｐｍにて２４時間培養した。次いで、培養物を三角フラスコ中の培地（１００ｍｌ×２）に移し、３０℃、１００ｏｐｍにて７３時間培養した。さらに、消泡剤ＰＥ−Ｍ（和光純薬工業製）：３００〜１，５００μｌ／Ｌを含む５００ｍＬのＳＤＣ液体培地を入れた１Ｌジャーファーメンター中で、３０℃、６００ｒｐｍ、および１．５ＶＶＭにて１６７時間培養した。培養後、卓上遠心分離機を使用して菌体を収集した。収集した湿潤菌体収量は１８．４ｇであった。収集した菌体の一部を凍結乾燥し、１．７ｇの菌体を蒸留水１００ｍＬに懸濁し、室温にて９日間放置した。放置後、一旦凍結乾燥して保存した後、市販リパーゼ活性測定キット（大日本製薬  リパーゼキットＳ）を用いて、酵素の力価を測定した。なお、比較のために、培養後の収集した菌体の一部を、凍結乾燥せずに直接蒸留水に懸濁して（５４．９ｇ／ｍＬ）、９日間室温で放置した後、凍結乾燥して、酵素の力価を測定した。結果を図１に示す。
【００４６】
培養終了時の酵素力価は１０．５ＩＵ／ｇ（乾燥菌体）であったが、凍結乾燥＋９日間懸濁保存後の酵素力価（平均値）は、５５０．１ＩＵ／ｇ（乾燥菌体）に上昇した。一方、凍結乾燥なしの９日間懸濁保存後の酵素力価（平均値）は、３７０．５ＩＵ／ｇ（乾燥菌体）に上昇した。このことから、一旦凍結乾燥した後に懸濁保存した方が、より酵素活性が上昇することがわかった。
【産業上の利用可能性】
【００４７】
本発明の方法によれば、非常に簡単な操作によって、凍結乾燥後に水に懸濁した直後と比較して、数十倍もの酵素活性を示す微生物（菌体）が得られる。酵素を単離するなどの処理を必要とせず、そのまま活性の高い酵素として使用でき、しかも大量に生産可能である。そのため、細胞表層に提示された酵素の用途に応じて、工業的に利用され得る。例えば、タンパク質がリパーゼである場合は、医薬品原料化合物の製造における光学分割の触媒として、非常に有効に利用され得る。
【図面の簡単な説明】
【００４８】
【図１】菌体の保存時間と酵素活性との関係を示すグラフである。
【図１】
2006136223.tif 000002
【配列表】
2006136223000001.app