(57)【要約】【課題】本発明は、不死化された、悪性ヒト先人前立腺上皮細胞株またはそれから誘導された前立腺癌の診断および治療に有用な細胞株に関する。【解決手段】より具体的には、本発明は、染色体８ｐ上に存在する、少なくとも一つのヘテロ接合体性の対立遺伝子欠失を有することを特徴とする、クローン化され、不死化された、圧生のヒト成人前立腺上皮細胞株及び癌の診断及び治療のためのこれらの細胞株の使用に関する。さらにまた、本発明は特異的染色体欠失の分析によるこれらの細胞株の特性決定を提供する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
染色体８ｐ上に存在する、少なくとも一つのヘテロ接合体性の対立遺伝子欠失を有することを特徴とする、ＡＴＣＣにＣＲＬ−１２２６３として寄託されたクローン化され、不死化された、悪性前立腺上皮細胞株１５３５−ＣＰ１ＴＸ．１４．３であって、ここで、少なくとも一つの対立遺伝子欠失が遺伝子座ＳＦＴＰ−２、Ｄ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６、ＮＥＦＬ、及びＤ８Ｓ１３１に位置し、そして、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ３１、ＨＬＡ−Ｂ７、ＨＬＡ−Ｂ３７、ＨＬＡ−Ｃｗ６、ＨＬＡ−Ｃｗ７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０４、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０２、及びＨＬＡ−ＤＲＢ４＊０１０１を含む、前記細胞株。
【請求項２】
染色体８ｐ上に存在する、少なくとも一つのヘテロ接合体性の対立遺伝子欠失を有することを特徴とする、ＡＴＣＣにＣＲＬ−１２２６４として寄託されたクローン化され、不死化された、悪性前立腺上皮細胞株１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．４であって、ここで、少なくとも一つの対立遺伝子欠失が遺伝子座Ｄ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６、及びＤ８Ｓ１３１に位置し、そして、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ２３、ＨＬＡ−Ｂ５０、ＨＬＡ−Ｂ７０、ＨＬＡ−Ｃｗ２、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊１１０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０１、及びＨＬＡ−ＤＲＢ３＊０２０２を含む、前記細胞株。
【請求項３】
染色体８ｐ上に存在する、少なくとも一つのヘテロ接合体性の対立遺伝子欠失を有することを特徴とする、ＡＴＣＣにＣＲＬ−１２２６５として寄託されたクローン化され、不死化された、悪性前立腺上皮細胞株１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．１であって、ここで、少なくとも一つの対立遺伝子欠失が遺伝子座Ｄ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６、及びＤ８Ｓ１３１に位置し、そして、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ２３、ＨＬＡ−Ｂ５０、ＨＬＡ−Ｂ７０、ＨＬＡ−Ｃｗ２、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊１１０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０１、及びＨＬＡ−ＤＲＢ３＊０２０２を含む、前記細胞株。
【請求項４】
ヘテロ接合体性の少なくとも一つの対立遺伝子欠失を有することを特徴とし、原発性悪性前立腺腫瘍に由来する、ATCCにCRL-12038として寄託された不死化された、悪性、ヒト、成人前立腺上皮細胞株1532-CP2TXであって、細胞株中の前記ヘテロ接合体性の対立遺伝子欠失が前立腺腫瘍中の悪性上皮細胞におけるヘテロ接合体性の欠失に特有なものであって、ここで、少なくとも一つの対立遺伝子欠失が染色体８ｐ上に存在し、少なくとも一つの対立遺伝子欠失が遺伝子座Ｄ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６、及びＮＥＦＬに位置し、そして、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ｂ８、ＨＬＡ−Ｂ５７、ＨＬＡ−Ｃｗ６、ＨＬＡ−Ｃｗ７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０４、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ３＊０１０１、及びＨＬＡ−ＤＲＢ４＊０１０１を含む、前記細胞株。
【請求項５】
ＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０４１として寄託された不死化された、悪性、ヒト、成人前立腺上皮細胞株１５３５−ＣＰ１ＴＸであって、ここで、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ３１、ＨＬＡ−Ｂ７、ＨＬＡ−Ｂ３７、ＨＬＡ−Ｃｗ６、ＨＬＡ−Ｃｗ７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０４、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０２、及びＨＬＡ−ＤＲＢ４＊０１０１を含む、前記細胞株。
【請求項６】
ヘテロ接合体性の少なくとも一つの対立遺伝子欠失を有することを特徴とする、ＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３７として寄託された不死化された、悪性、ヒト、成人前立腺上皮細胞株１５４２−ＣＰ３ＴＸであって、ここで、少なくとも一つの対立遺伝子欠失が染色体８ｐ上に存在し、少なくとも一つの対立遺伝子欠失が遺伝子座Ｄ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６、Ｄ８Ｓ１３７、及びＤ８Ｓ１３１に位置し、そして、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ２３、ＨＬＡ−Ｂ５０、ＨＬＡ−Ｂ７０、ＨＬＡ−Ｃｗ２、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊１１０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０１、及びＨＬＡ−ＤＲＢ３＊０２０２を含む、前記細胞株。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか１項の、不死化された、ヒト、成人、悪性、前立腺上皮細胞株、そのクローン、又はその溶解した細胞、及び薬学的に許容される担体を含む、組成物。
【請求項８】
助剤（ａｄｊｕｖａｎｔ）、共刺激分子、サイトカイン、ケモカイン、接着分子、ＭＨＣ分子またはそれらの組み合わせをさらに含む、請求項７の組成物。
【請求項９】
ＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３６として寄託された不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株１５３２−ＮＰＴＸであって、ここで、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ｂ８、ＨＬＡ−Ｂ５７、ＨＬＡ−Ｃｗ６、ＨＬＡ−Ｃｗ７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０４、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０１０１、及びＨＬＡ−ＤＲＢ４＊０１０１を含む、前記細胞株。
【請求項１０】
ＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３９として寄託された不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株１５３５−ＮＰＴＸであって、ここで、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ３１、ＨＬＡ−Ｂ７、ＨＬＡ−Ｂ３７、ＨＬＡ−Ｃｗ６、ＨＬＡ−Ｃｗ７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０４、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０２、及びＨＬＡ−ＤＲＢ４＊０１０１を含む、前記細胞株。
【請求項１１】
ＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０４０として寄託された不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株１５４２−ＮＰＴＸであって、ここで、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ２３、ＨＬＡ−Ｂ５０、ＨＬＡ−Ｂ７０、ＨＬＡ−Ｃｗ２、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊１１０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０１、及びＨＬＡ−ＤＲＢ３＊０２０２を含む、前記細胞株。
【請求項１２】
請求項４の不死化された、悪性、成人前立腺上皮細胞株、そしてＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３６として寄託された不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株１５３２−ＮＰＴＸを含む組成物であって、ここで、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ｂ８、ＨＬＡ−Ｂ５７、ＨＬＡ−Ｃｗ６、ＨＬＡ−Ｃｗ７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０４、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ３＊０１０１、及びＨＬＡ−ＤＲＢ４＊０１０１を含む、前記組成物。
【請求項１３】
請求項５の不死化された、悪性、成人前立腺上皮細胞株、そしてＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３９として寄託された不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株１５３５−ＮＰＴＸを含む組成物であって、ここで、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ３１、ＨＬＡ−Ｂ７、ＨＬＡ−Ｂ３７、ＨＬＡ−Ｃｗ６、ＨＬＡ−Ｃｗ７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０７、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０４、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０２、及びＨＬＡ−ＤＲＢ４＊０１０１を含む、前記組成物。
【請求項１４】
請求項６の不死化された、悪性、成人前立腺上皮細胞株、そしてＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０４０として寄託された不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株１５４２−ＮＰＴＸを含む組成物であって、ここで、細胞株のＨＬＡ型がＨＬＡ−Ａ１、ＨＬＡ−Ａ２３、ＨＬＡ−Ｂ５０、ＨＬＡ−Ｂ７０、ＨＬＡ−Ｃｗ２、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊０３０１、ＨＬＡ−ＤＲＢ１＊１１０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０２０１、ＨＬＡ−ＤＱＢ１＊０３０１、及びＨＬＡ−ＤＲＢ３＊０２０２を含む、前記組成物。
【請求項１５】
請求項１〜６のいずれか１項の、不死化された、悪性、ヒト、成人前立腺上皮細胞株、そのクローン、またはその溶解した細胞を含む、前立腺癌ワクチン。
【請求項１６】
サイトカイン、ケモカイン、共刺激分子、接着分子またはＭＨＣ分子をコードする遺伝子の一つまたはそれ以上が該細胞に組み込まれていることをさらに含む、請求項１５の前立腺癌ワクチン。
【請求項１７】
請求項１〜６のいずれか１項の、不死化された、悪性、成人前立腺上皮細胞株を、試験すべき剤に暴露して、該剤の該細胞株に対する効果を評価することを含む、治療剤候補のスクリーニング方法。
【請求項１８】
効果が細胞毒性である、請求項１７の方法。
【請求項１９】
効果が細胞増殖の阻害である、請求項１７の方法。
【請求項２０】
（ａ）少なくとも一種の、請求項１〜６のいずれか１項の、不死化された、成人、悪性、前立腺上皮細胞株、そのクローン、またはその溶解した細胞、及び（ｂ）一組の説明書を含む、キット。
【請求項２１】
不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株をさらに含む、請求項２０のキットであって、正常細胞株および悪性細胞株が同一の原発性悪性前立腺腫瘍に由来する、前記キット。
【請求項２２】
不死化された、悪性、ヒト、成人前立腺上皮細胞株がＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３８として寄託された１５３２−ＣＰ２ＴＸであり、そして不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株がＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３６として寄託された１５３２−ＮＰＴＸである、請求項２１のキット。
【請求項２３】
不死化された、悪性、ヒト、成人前立腺上皮細胞株がＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０４１として寄託された１５３５−ＣＰ１ＴＸであり、そして不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株がＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３９として寄託された１５３５−ＮＰＴＸである、請求項２１のキット。
【請求項２４】
不死化された、悪性、ヒト、成人前立腺上皮細胞株がＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０３７として寄託された１５４２−ＣＰ３ＴＸであり、そして不死化された、正常、ヒト、成人前立腺上皮細胞株がＡＴＣＣにＣＲＬ−１２０４０として寄託された１５４２−ＮＰＴＸである、請求項２１のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
発明の分野
本発明は不死化された悪性のヒト成人前立腺上皮細胞株に関連する。本発明はまた、それらの細胞株の個々の細胞クローンにも関連する。本発明はさらに対立遺伝子ヘテロ接合性の喪失の解析によって特徴づけられた、不死化された悪性のヒト成人前立腺上皮細胞の細胞株およびクローンにも関連する。とくに、本発明は自家組織の正常および悪性前立腺上皮細胞の細胞株およびクローンおよびそれらの研究への応用に関連する。本発明はまた前立腺癌の診断および治療におけるその細胞の使用にも関連する。
【背景技術】
【０００２】
発明の背景
長期のヒト前立腺癌細胞株をｉｎ  ｖｉｔｒｏで確立することが困難であることは前立腺腫瘍形成の理解および前立腺癌に対する新しい治療法の発達に向けての進歩を阻害してきた。今日まで転移損傷から生成された４つの前立腺癌細胞株だけが前立腺腫瘍形成を制御している生物学的および分子的なことがらに関する生体内での実験の大部分に対する基礎を提供してきた。従って、長期の前立癌細胞株が確立されることは学術的、診断的、および治療的に大きな必要性がある。
【０００３】
近年、前立腺癌は米国の男性において最も一般的診断される癌となってきた。本年だけても、新規の前立腺癌は３００，０００件近く、４０，０００件以上が死亡していると見積もられており、癌の致死率は肺癌に続いて２位となっている（１）。前立腺癌による死亡は主に転移した疾患に起因しているにも関わらず、新しく診断された患者の６０％近くは局在した一次腫瘍を有している。局在した疾患に対しては外科手術および放射線治療がしばしば有効であるが、伝播した転移性の疾患は多くの場合治療不能である。あらゆる科学的努力にも関わらず、前立腺癌の発生及び進行を引き起こす生物学的な事柄に関しては比較的僅かしか知られていない。前立腺癌の治療のための新しい方策の発達には一次前立腺癌の形成及びその転移の進行に関与する細胞および分子的な事柄に対する理解の向上が必要である。
【０００４】
転移性の損傷から生成された４つのヒト前立腺癌細胞株（ＬＮＣａＰ，Ｄｕ１４５，ＰＣ−３，ＴＳＵ−Ｐｒ１）は大部分の前立腺癌に関する生体内での実験の基盤を提供してきた。一次（非転移性）前立腺癌から短期の細胞株を生体外で培養するための大きな進歩がなされた。それらの進歩は培溶液の発達および新鮮な組織の調製および前立腺上皮細胞の培養技術の改良を含む（３，４）。しかしながら、一次腫瘍由来の長期のヒト前立腺上皮細胞株の確立及びその維持は、生体外での不死化ができない限り不可能であった。そのために、長期の不死化した細胞株を記載した報告は僅かであり、それらは正常な前立腺上皮の培養に限られていた（５，６，７，８）。従って本研究の目標は一次腫瘍に由来する永続的に分裂する前立腺癌細胞株を生成するための信頼できる方法を確立することであった。
【０００５】
さらに、不死前立腺上皮細胞株の確立に固有の困難なことは、正常な上皮細胞と培養された前立腺癌細胞を区別することに伴う問題である。複数の短期前立腺上皮培養細胞に関する過去の細胞遺伝学的な見積りによって局在した前立腺癌から生じた細胞株の大部分は正常な男性の核型を示すことが明らかにされた（９，１０，１１）。このことは、短期培養細胞の顕微鏡形態の顕著でないこと、および異種移植の完全な不成功とあわせて、ヒト一次前立腺癌細胞の同定及び特徴付けを極度に困難にしていた。
【０００６】
前立腺癌の発生は対立遺伝子の染色体欠失によって表れる潜在的な癌抑制遺伝子の不活化を含む細胞内の複数の遺伝的変化の結果として起こると信じられている（１２に解説されている）。新鮮な（培養されていない）一次前立腺癌標本における染色体欠失を調べた初期の研究は染色体１０ｑおよび１６ｑ上の対立遺伝子ヘテロ接合性の消失（ａｌｌｅｌｉｃ  ｌｏｓｓ  ｏｆ  ｈｅｔｅｒｏｚｙｇｏｓｉｔｙ，ＬＯＨ）を示している（１３，１４，１５）。それに続く研究は８番染色体短腕上に顕著に高い頻度で対立遺伝子の消失があることを示しており、従って前立腺癌に関連した腫瘍抑制遺伝子の位置の候補のリストの上位に染色体８ｐはなっている（１６，１７，１８）。さらに、近年の９９の微小切除された腫瘍（１９）および５４の微小切除されたＰＩＮ損傷（２０）についての、染色体８ｐの短腕上におけるＬＯＨの調査は、相当する正常な対照群と比べて染色体８ｐ１２−２１上の腫瘍抑制遺伝子（群）の不活性化の強力な証拠を示した。従って、染色体８ｐ１２−２１上のこの小さな欠失領域内のＬＯＨを調べることは一次腫瘍に由来するヒト前立腺上皮細胞株の同定および特徴付けのための強力な代替的方法になりうる。
【０００７】
本発明は一次前立腺腫瘍に由来する複数のヒト腫瘍細胞株の生成の成功および特徴的な遺伝学的解析である。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
発明の概要
本発明は腫瘍性および正常の前立腺組織に由来する長期のヒト上皮細胞株の単離、不死化、および解析および、これらの細胞株の研究及び前立腺癌治療における応用を提供する。とくに、本発明の目的は、悪性および良性の自家標本の両方に由来する無限増殖能を持った前立腺上皮細胞株を用いて達成された。
【０００９】
本発明の細胞株は上皮細胞腫瘍形成のモデルとして有用である。例えば、本発明の不死化した前立腺上皮細胞株はとくに前立腺癌の腫瘍形成の理解のために有用である。本発明は不死化した良性の成人前立腺細胞株を、不死化した自家性の悪性成人前立腺細胞株とともに、良性から悪性の細胞表現型への変化を引き起こす遺伝学的な出来事を決定することおよび、前立腺癌における遺伝の役割を調べるための試薬として使用することを提供する。
【００１０】
本発明は単離された不死化した悪性のヒト成人前立腺上皮細胞株である。本発明のもう一つの側面は、少なくとも一つの対立遺伝子ヘテロ接合性の消失（ＬＯＨ）をもつものとして特徴付けられたクローン化された不死化した悪性の成人前立腺上皮細胞株である。本発明のさらなる側面は染色体１、８Ｐ、１０および／または１６上の一つまたはそれ以上の対立遺伝子の消失をもつものとして特徴づけられたクローン化された不死化した悪性のヒト成人前立腺細胞株である。
【００１１】
本発明の細胞株は前もって選択されたタンパク質を生成する方法及び上皮細胞起源のタンパク質を生成する方法において利用され得る。例えば、本発明の細胞株は、診断の指標または免疫学的治療の標的として用いられ得る悪性の前立腺関連タンパク質の単離において有用である。本発明の一つの態様においてはタンパク質の生成の方法は本発明の上皮細胞株の培養の段階および新しい細胞によって生産された一つまたはそれ以上のタンパク質を採集する段階からなる。このようなタンパク質をコードする遺伝子の同定はそのタンパク質またはその一部の効率的な大量生産のための組み替えベクターの構築を可能にする。
【００１２】
本発明の細胞株はまた、例えば化学治療用薬剤、生物学的応答修飾剤、またはアンチセンスオリゴヌクレオチドのような治療用試薬の前立腺癌に対する効果の生体外での試験にも有用である。
【００１３】
本発明の細胞株はまた前立腺癌の再発を治療または予防するための全細胞ワクチンとしても有用である。全細胞ワクチンはそのままの状態でアジュバンドとともに投与されるかまたは、例えば様々なサイトカイン、ケモカイン、接着分子またはＭＨＣ分子をコードする外来遺伝子によって修飾されて投与され得る。
【００１４】
本発明の細胞株はまた、前立腺癌反応性の抗体または末梢血由来の免疫細胞またはリンパ節細胞を増大させるための刺激として前立腺癌患者に対して投与するために治療上有用である。
【００１５】
本発明はまた、免疫系によって認識される前立腺関連抗原の分子クローニングに用いる不死の前立腺細胞株を提供する。これらの抗原はさらに前立腺癌の予防または治療のための組み替えワクチンへと発展される。
【００１６】
本発明はさらに本発明の細胞株の一つまたはそれ以上からなる薬剤組成物、および薬理学的、治療的、および診断的な不死細胞株の利用、および不死細胞株からなる薬理学的組成物を提供する。
【００１７】
本発明のこれらおよびその他の目的は付属の明細書および添付の図表によって明らかになる。
【課題を解決するための手段】
【００１８】
発明の詳細な説明
本発明は正常な前立腺および前立腺癌細胞株を含む数多くの新鮮な外科的標本に由来するヒト成人前立腺上皮細胞株およびそのクローンの単離、不死化、および解析および、それらの研究及び治療に対する潜在的な応用を提供する。
【００１９】
本発明は一般的に不死細胞株および細胞株のクローンおよびここに述べた細胞株の一つまたはそれ以上からなる薬剤組成物、およびそれらの薬剤活性試薬としての使用を提供する。
【００２０】
特に、本発明は不死化した悪性の成人前立腺上皮細胞株を提供するおよび適合する自家不死化した悪性および正常な前立腺上皮細胞株を提供する。不死化した前立腺上皮細胞株は本明細書において１５１０−ＣＰ（前立腺腫瘍）、１５１２−ＮＰ（正常前立腺）、１５１２−ＣＰ、１５１９−ＣＰ、１５３２−ＮＰ（１５３２−ＮＰＴＸと記してある１５３２−ＮＰは１９９６年２月２日に１２３０１  Ｐａｒｋｌａｗｎ  Ｄｒｉｖｅ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｕｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）に登録番号ＲＬ−１２０３６として寄託された。）、１５３２−ＣＰ１，１５３２ＣＰ２（１５３２−ＣＰ２ＴＸと記してある１５３２−ＣＰ２は１９９６年２月２日にＲｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡＴＣＣに登録番号ＣＲＬ−１２０３８として寄託された。）、１５３５−ＮＰ（１５３５−ＮＰＴＸと記してある１５３５−ＮＰは１９９６年２月２日にＲｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡＴＣＣに登録番ＣＲＬ−１２０３９として寄託された。）、１５３５−ＳＶ（貯精嚢、ｓｅｍｉｎａｌ  ｖｅｓｉｃｌｅ）、１５３５−ＣＰ１（１５３５−ＣＰ１ＴＸと記してある１５３５−ＣＰ１は１９９６年２月２日にＲｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡＴＣＣに登録番号ＣＲＬ−１２０４１として寄託された。）、１５３５−ＣＰ２、１５４２−ＮＰ（１５４２−ＮＰＴＸと記してある１５４２−ＮＰは１９９６年２月２日にＲｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡＴＣＣに登録番号ＣＲＬ−１２０４０として寄託された。）、１５４２−ＳＶ、１５４２−ＣＰ１、１５４２−ＣＰ２、および１５４２−ＣＰ３（１５４２−ＣＰ３Ｘと記してある１５４２−ＣＰ３は１９９６年２月２日に１２３０１  Ｐａｒｋｌａｗｎ  Ｄｒｉｖｅ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡＴＣＣに登録番号ＣＲＬ−１２０３７として寄託された）。
【００２１】
本発明はまたクローン化された不死化した悪性の前立腺上皮細胞株をも提供する。さらに本発明はまた少なくとも１つの対立遺伝子ヘテロ接合性の消失（ＬＯＨ）を持つものとして特徴づけられたクローンをも提供する。
【００２２】
一つの態様においてはクローン化された不死化した悪性のヒト成人前立腺上皮細胞株は少なくとも１つの対立遺伝子のヘテロ接合性の消失を持つものとして特徴づけられている。ヘテロ接合性の消失は染色体１、８、１０および１６といった染色体のうちの一つまたはそれ以上の上に起こり得る。一つの態様においてはクローン化された不死の悪性ヒト成人前立腺上皮細胞株は染色体８ｐの上の一つまたはそれ以上の遺伝子座にヘテロ接合性の消失をもつものとして特徴づけられている。さらなる態様においてはクローン化された不死の悪性ヒト成人前立腺上皮細胞株は染色体８ｐの上の遺伝子座１２から２１に一つまたはそれ以上の対立遺伝子のヘテロ接合性の消失をもっている。
【００２３】
ある態様においてはクローン化された不死の悪性ヒト成人前立腺上皮細胞株はＤ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６およびＤ８Ｓ１３１の上部の対立遺伝子の消失をもつものとして特徴づけられる。クローン化された不死化した細胞株はＡＴＣＣ  ＣＲＬ−１２２６５として１９９７年１月１５日にブダペスト条約の規定に基づいてＲｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎに供与されたクローン化された不死の悪性ヒト成人前立腺上皮細胞株である１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．１と同定される特徴を持っている。
【００２４】
もう一つのある態様においてはクローン化された不死の悪性ヒト成人前立腺上皮細胞株はＤ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６およびＤ８Ｓ１３１の上位の対立遺伝子の消失をもつものとして特徴づけられている。クローン化された不死化した細胞株はＡＴＣＣ  ＣＲＬ−１２２６４として１９９７年１月１５日にブダペスト条約の規定に基づいてＲｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎに供与されたクローン化された不死の悪性ヒト成人前立腺上皮細胞株である１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．４と同定される特徴を持っている。
【００２５】
もう一つのある態様においてはクローン化された不死の悪性ヒト成人前立腺上皮細胞株はＳＦＴＰ−２、Ｄ８Ｓ１３６およびＣ８Ｓ１３１の下位の対立遺伝子およびＣ８Ｓ１３３およびＮＥＦＬの上位の対立遺伝子の消失をもつものとして特徴づけられている。クローン化された細胞株はＡＴＣＣ  ＣＲＬ−１２２６３として１９９７年１月１５日にブダペスト条約の規定に基づいてＲｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭａｒｙｌａｎｄのＡｍｎｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎに供与されたクローン化された不死の悪性ヒト成人前立腺上皮細胞株である１５３５−ＣＰ１ＴＸ．１４．３と同定される特徴を有する。
【００２６】
本発明の細胞系およびクローン細胞はヒトパピローマウィルス（ＨＰＶ）遺伝子またはその一部を用い、不死化される。ある具体例として、悪性細胞は組換えレトロウィルスのＥ６およひＥ７をコードするＨＰＶの部分を用い不死化される。本発明の不死化した悪性前立腺上皮細胞の培養細胞は、１年以上にわたり安定で生存可能のままである。
【００２７】
本発明はヒト成人前立腺上皮細胞の純粋な細胞系の単離およびクローン化の方法を提供するものである。特に、この方法は細胞培養から非上皮細胞、特に線維芽細胞を除去するのに効果的である。この方法は一次腫瘍を、形態的に正常な前立腺および悪性の前立腺に類似の細胞または組織へ精密に切開することを必要とする。線維芽細胞の成長を阻害するために牛胎児血清および／またはコレラトキシンをほとんど含まない、またはまったく含まない培地で培養される。分別トリプシン処理も培養中の前立腺上皮細胞から線維芽細胞を除去するために用いられる。その結果、上皮細胞系は９０％以上、好ましくは１００％純粋である。引き続き行う細胞系のクローン化の結果、細胞は１００％純粋な上皮細胞となる。
【００２８】
本発明のもう一つの面は不死化した悪性前立腺上皮細胞の選択の方法である。以前の当該技術分野においては、悪性前立腺上皮細胞を正常な前立腺上皮細胞から区別する方法として、ＰＳＡ発現、ＰＡＰ発現、アンドロゲンによるＰＳＡ系の正の制御（ｕｐ−ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ）、ヌードマウスにおける悪性腫瘍の増殖、および異数体の核型などのマーカーを用いてきた。しかし、これらのマーカーでは、悪性の前立腺上皮細胞を正常細胞から確実に区別することはできない。ヘテロ接合体の喪失を指標とする、本発明の不死化した悪性の前立腺上皮細胞の選択の方法は、恒常的で再現性のある選択の方法を提供する。この方法は特定の染色体上の対立遺伝子座の特異的な欠失を同定する、少なくとも一つのＤＮＡマーカーを利用する。この方法の態様として、ＤＮＡマーカーは８番染色体上の対立遺伝子座の特異的欠失を同定する。この方法は、特定の染色体上の一つ以上の対立遺伝子座の欠失、または複数の染色体上の対立遺伝子座欠失を同定するために多くのＤＮＡマーカーを用いるだろう。
【００２９】
悪性細胞を検出および同定する方法において、特定の染色体上の遺伝子座に特異なＰＣＲプライマーを、不死化した前立腺上皮細胞系から単離したＤＮＡと保温し、ＰＣＲ検定を行う。既知の正常細胞から得たＤＮＡコントロールとの比較により、増幅産物を一つまたはより多くの遺伝子座位についてＬＯＨを解析する。ＬＯＨの基準は、正常なＤＮＡコントロールとの比較で、最低７５％の対立遺伝子座欠失が悪性細胞で放射線写真により検出されることである。当該技術分野において通常の知識を有するものに知られる他の方法は、差異を検出するためのデンシトメーター解析を含み、ＬＯＨの基準は悪性細胞で最低３０％の対立遺伝子座欠失が検出されることである。
【００３０】
本発明の不死化した悪性前立腺上皮の細胞系およびクローンは、正常な前立腺細胞では見いだされないまたは活性でない、悪性前立腺上皮細胞に特異的または過剰発現している新規遺伝子の同定にも役立つ。この新規遺伝子には癌誘導遺伝子、増殖因子遺伝子、癌遺伝子、癌抑制遺伝子が含まれるが、これに限らない。これらの遺伝子は当該技術分野において通常の知識を有するものに知られる、標準差し引きハイブリッド形成、差異表示法、または標本差異解析（ＲＤＡ）（５１，５２）などのＲＮＡ差し引き解析の方法を用いて同定される。新規遺伝子は当該技術分野において通常の知識を有するものに知られる標準的分子生物学の技術を用いてクローニングされる。前立腺ガンの発達に関与する新規遺伝子の同定は、前立腺ガンの阻害または抑制に役立つ反コード鎖オリゴヌクレオチドの開発（４２）または組換えＤＮＡワクチンの開発を可能とするだろう。
【００３１】
本発明の細胞系は上皮細胞癌遺伝子学のモデルとして役立つ。例えば、本発明の前立腺上皮細胞系は、とくに前立腺ガンの腫瘍化を理解する上で役立つ。本発明は良性から悪性へと細胞の表現型が変わるときの遺伝学的出来事を規定する指示薬として、同じ患者由来の悪性前立腺細胞系との組み合わせに用いるため、および前立腺ガンの遺伝形質の役割の調査のための良性の前立腺細胞系を提供する。
【００３２】
本発明の細胞系は前選択タンパク質またはその一部の生産方法や悪性前立腺上皮細胞起源タンパク質の生産の方法に利用することが可能である。例えば、本発明の細胞系は診断のためのマーカーまたは免疫治療の標的として働く前立腺ガン関連タンパク質の単離に役立つ。発明の具象において、タンパク質の生産方法は、本発明の上皮細胞系の培養の工程、および新規細胞により産生される一つまたはそれ以上のタンパク質の回収の工程を含むように規定される。そのようなタンパク質をコードする遺伝子の同定は、標準的科学技法を用い、組換えベクター、およびタンパク質またはその一部の効率的大容量生産のための宿主細胞の構築を可能とする。
【００３３】
本発明は、前立腺ガン関連タンパク質またはその一部を発現する新規組換えウィルスを含む。組換えウィルスは一つまたはそれ以上の共刺激分子、サイトカイン、ＭＨＣ分子、ケモカイン、および前立腺ガン関連タンパク質またはその一部に対する免疫応答を増強する類似の分子を発現するだろう。組換ウィルスベクターによる外因性遺伝子産物の構築および発現は、当該技術分野において通常の知識を有するものに知られる方法でおこなう（４３−５０）。
【００３４】
本発明は不死化したヒト成人前立腺上皮細胞系またはクローン由来のＤＮＡまたはＲＮＡを含む。興味深いことは、不死化したヒト悪性成人前立腺上皮細胞から単離したＤＮＡまたはＲＮＡはＬＯＨを示す。また、興味深いのは、調和した自家移植をした、不死化ヒト正常細胞、および悪性成人前立腺上皮細胞由来のＤＮＡおよびＲＮＡである。単離したＤＮＡ、およびＲＮＡまたはそれらのオリゴヌクレオチドは前立腺ガンまたは個体の前癌の検出および診断に用いられるだろう。ＤＮＡ、および器Ａまたはオリゴヌクレオチドは、サザンブロット解析、ノザンブロット解析、ＰＣＲ、ＲＴ−ＰＣＲおよび前立腺ガンまたは前癌の検出および診断に用いられる解析などの標準的分子生物学の技法で用いられるプローブ探査および／またはプライマーとして用いられる。興味深いことは、１、８、１０および１６番染色体などの一つまたはそれ以上の染色体上の対立遺伝子座の欠失を有するＤＮＡと対応するＲＮＡである。特に興味深いのは、８番染色体上の一つまたはそれ以上の対立遺伝子座の欠失を有するＤＮＡと対応するＲＮＡである。
【００３５】
前立腺ガン抗原またはその抗原基（エピトープ）をコードするむき出しのＤＮＡは前立腺癌に対する活発な免疫治療のために用いられるだろう。当該技術分野において知られる技術を用いて、コードされる前立腺ガン抗原またはその抗原基に対する細胞性および体液性の両方の免疫反応を誘導するために、むき出しのＤＮＡまたは脂質に結合させたむき出しのＤＮＡを筋肉または皮膚へ注射することができる（３３−４１）。
【００３６】
本発明の細胞系は生体内または試験管内での前立腺癌に対する治療薬の効果の検定にも役立つ。例えば、化学治療薬、生体反応調節剤、またはアンチセンスオリゴヌクレオチドなどの遺伝的試薬について、この効果をスクリーニングできる。検定すべき化学試料または薬剤は生体内または試験管内で細胞存在下に置かれる。適当な期間の露出後、細胞に対する化学試料または薬剤の効果は、細胞毒素検定、タンパク質阻害検定、腫瘍増殖の阻害などの当該技術分野において知られる方法により検定される。生命維持に必要な代謝機能を阻害する、または細胞を殺す化学試料または薬剤は効果的な治療薬と考えられる。
【００３７】
本発明の細胞系およびクローンは、前立腺ガンの治療または再発を防ぐための全細胞ワクチンとしても役立つ。全細胞ワクチンは、そのままで、佐剤との組み合わせで、又は例えはさまざまなサイトカイン、ケモカイン、共刺激分子、接着分子、ＭＨＣ分子などをコードする外因遺伝子（トランスジーン）により修飾した形で投与される。そのような修飾は、本発明の免疫原およびワクチンの免疫治療効果を高めるために用いられる。
【００３８】
遺伝子は、エレクトロポレーション、ポリブレン誘導ＤＮＡ導入、プラスミドや組換えウィルスなどを介して、などでの当該技術分野において知られる方法により、不死化したヒト悪性前立腺上皮細胞系またはクローンへ組み込まれる。一つまたはそれ以上の目的の遺伝子を含む組換えウィルスはＷＯ９４／１６７１６，ＷＯ９６／１１２７９およびＷＯ９６／１０４１９に記載されるように構築される。
【００３９】
本発明において用いることができる共刺激分子は、Ｂ７−１，Ｂ７−２，Ｂ７−３，ＩＣＡＭ−１，ＬＦＡ−１，ＬＦＡ−３，ＣＤ７２などを含むがこれらには限らない。
本発明において利用できるサイトカインはＩＬ−２，ＧＭ−ＣＳＦ，ＴＮＦα，ＩＦＮγ，ＩＬ−１２，ＩＬ−４，ＩＬ７などを含むがこれらには限らない。
【００４０】
ＭＨＣ分子はクラスＩ、クラスＩＩ分子などを含むがこれに限らない。非標準ＭＨＣ分子、またはＣＤ１などのＭＨＣ類似分子もまた用いられるだろう。
ケモカインは、ＲＡＮＴＥＳ，ＩＬ−８，ＭＩＰ１−α，ＭＩＰ−βなどを含むがこれらには限らない。
【００４１】
本発明の細胞系は、前立腺ガン反応性抗体を生じる刺激剤、または末梢血またはリンパ節の細胞由来の免疫細胞の刺激剤として、前立腺ガン患者の処置のための治療上有益である。
【００４２】
本発明は免疫系に認識される前立腺ガン関連抗原の分子クローニングへの使用のための不死化した前立腺細胞系を提供する。クローニングされた抗原は前立腺癌の抑制または治療のための組換えワクチンへと開発される。
【００４３】
さらに本発明は、本発明の不死化細胞系からなる薬剤化合物、並びに不死化細胞系および不死化細胞系からなる薬剤組成物の薬理的、治療的、および診断的使用を提供する。
薬剤組成物、ワクチンおよび免疫原は薬理分野において通常の技術を有するものに知られる標準的技術に従い調製される。そのような組成物は、患者に対し患者に必要な投薬量を当該技術分野において通常の技術を有するものに知られる技術で、患者ごとの年齢、体重、及び体調などの因子およびを考慮に入れ、適した投薬方法により投薬されることが可能である。
【００４４】
組成物、ワクチンおよび免疫原による免疫化の方法は、非経口的方法（静脈注射、腹膜下注射、皮内注射、筋肉注射または皮下注射）であろう。組成物、ワクチン、および免疫原は腫瘍隗へ直接投与してもよい。さらに、組成物は試験管内において抗原特異な細胞毒性Ｔリンパ球を刺激するために用い、そののちこのリンパ球を患者に戻すこともできる。
【００４５】
組成物、ワクチン、および免疫原は、ミョウバン、不完全フロイント佐剤、およびその類似物、サイトカイン、共刺激分子、ケモカイン、接着分子、ＨＭＣ分子などの佐剤とともに共投与または連続投与されるだろう。さらに、組成物、ワクチン、および免疫原は、抗新生物薬、抗腫瘍薬、抗癌薬として、および／または抗新生物薬、抗腫瘍薬、抗癌薬の副作用を減少させるあるいは緩和させる薬剤とともに共投与または連続投与されるだろう。
【００４６】
ワクチンまたは本発明の組成物の例は、懸濁液、シロップ剤、エリキシル薬、および非経口として皮下注射、皮内注射、筋注射、または静脈注射などのための調製などの液体製剤を含む。薬剤組成物は、滅菌水、生理食塩水、グルコースなどの安定な担体、希釈液、または補形剤とともに混合されるだろう。
【００４７】
処置の効果は、悪性細胞または前立腺癌のペプチドまたはそれらの一部分を認識する抗体または免疫細胞の産生、抗原特異細胞毒性の評価、特異的サイトカインの産生、または腫瘍の後退により検定されることが可能である。
【００４８】
不死化したヒト成人前立腺上皮細胞またはその一部分はキットの型式で供給されるだろう。そのキットは一つまたはそれ以上の不死化ヒト成人前立腺上皮細胞またはその一部分を含むだろう。その一部分とは溶解した細胞、細胞断片、細胞間物質、細胞外成分、タンパク質、ＤＮＡ、ＲＮＡ、糖脂質などを含む。キットは自己由来のヒト成人悪性不死化前立腺上皮細胞またはその一部分を、自己由来のヒト成人正常不死化前立腺上皮細胞またはその一部分との組み合わせで含んでもよい。ある態様において、キットは不死化したヒト成人正常細胞系、１５３２−ＮＰと自己由来不死化ヒト成人悪性細胞系、１５３２−ＣＰ１および／または１５３２−ＣＰ２の組み合わせからなる。別の態様においては、キットは不死化したヒト成人正常上皮細胞系、１５３５−ＮＰと自己由来不死化ヒト成人悪性細胞系、１５３５−ＣＰ１、１５３５−ＣＰ２および／または１５３５−ＣＰ１ＴＸ．１４．３．の組み合わせからなる。また、別の態様において、キットは不死化したヒト成人正常上皮細胞系、１５４２−ＮＰと自己由来不死化ヒト成人悪性細胞系、１５４２−ＣＰ１、１５４２−ＣＰ２、１５４２−ＣＰ３、１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．１．および／または１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．４．のうち一つまたはそれ以上との組み合わせからなる。キットは適当な担体、希釈液、補形剤を含む個別の容器を含んでもよい。キットは、佐剤、サイトカイン、共刺激分子、ケモカイン、接着分子、ＭＨＣ分子、抗新生物剤、抗腫瘍剤、免疫検定試薬、ＰＣＲ試薬、放射線標識なども含んでもよい。付加的に、キットは材料の混合または結合、および／または投与の教本を含むだろう。
【００４９】
ここで用いられた「不死化した」という用語は、細胞系が、ガラス器具ないにおいて最適な増殖培地で培養したとき、老化することなく連続的に増殖するということを意味する。
【００５０】
本発明はこの発明の細胞系に対するポリクローナルおよびモノクローナル抗体を含む。これらの抗体は本発明の方法で用いる抗体含有組成物の調製に用いられることが可能である。抗体は当該技術分野において通常の技術を有するものに知られる方法に従い調製される。特に、本発明の不死化した前立腺細胞系に対し産生されたモノクローナル抗体は、前立腺ガンの検出および治療への使用に有用である。抗体またはその抗原結合部位は悪性前立腺細胞に結合する。抗体またはその抗原結合部位は、少なくとも一つの前立腺腫瘍拒絶抗原、または少なくとも一つの前立腺ガン関連抗原およびその抗原基に対し免疫反応性を有する。
【００５１】
例示的抗体分子は、完全イムノグロブリン分子、実質的完全イムノグロブリン、またはＦ（ａｂ）、Ｆ（ａｂ）２、およびＦ（ｖ）を含む抗原結合部位を有するイムノグロブリン分子の部分である。ポリクローナルまたはモノクローナル抗体は当該技術分野において通常の技術を有するものに知られる方法に従い調製される（Ｋｏｈｌｅｒ  ａｎｄ  Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，１９７５  Ｎａｔｕｒｅ  ２５６：４９５−４９７；Ｃａｍｐｂｅｌｌモノクローナル抗体技術、ゲッシ動物とヒトのハイブリドーマの製造と特徴Ｂｕｒｄｏｎ  ｅｔ  ａｌ（ｅｄｓ）（１９８５），生化学および分子生物学における研究技術１３巻、Ｅｌｓｅｖｉｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ａｍｓｔｅｒｄａｍ）。抗体またはその一部分は、Ｔｒａｕｎｅｃｋｅｒ  ｅｔ  ａｌ  Ｔｈｅ  ＥＭＢＯ  Ｊ．１０（２）：３６５５−３６５９，１９９１およびＭｉｌｅｎｉｃ，Ｄ．Ｅ．ｅｔ  ａｌ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ５１，６３６３−６３７１，１９１およびヒト型抗体に関しては米国特許第５，５３０，１０１に記載されるように、キメラ抗体、一本鎖抗体技術を含む遺伝工学的技術により製造されるだろう。
【００５２】
抗体またはその一部は免疫治療に用いられるだろう。抗体またはその一部は単独で、または当該技術分野において知られる化学治療剤または免疫抑制剤とともに投与されるだろう。
【００５３】
抗体またはその一部は特に悪性前立腺細胞を標的し、殺傷するための免疫毒素としても用いられるだろう。免疫毒素は２つの構成要素により特徴づけられ、試験管内、または生体内において選択的に細胞を殺傷するのに特に有用である。一つの構成成分は、細胞が接触または吸収されたとき、通常は細胞に致死的に作用する細胞毒性剤である。２つめの構成成分は、輸送媒体として知られ、毒性剤を悪性前立腺細胞など、特定の細胞型に対し輸送する手段を提供する。２つの構成成分は、さまざまなよく知られる化学的段階により互いに結合される。例えば細胞毒性剤がタンパク質のとき、抗体への連結はヘテロ二官能性架橋剤、例えばＳＰＤＰ、カルボジイミド、グルタルアルデヒド、およびその類似体などによって行われるだろう。さまざまな免疫毒素の産生の手順は、当該技術分野においてよく知られている、例えば「モノクローナル抗体−毒素融合体：魔法の弾薬を目指して」、Ｔｈｏｒｐｅ  ｅｔ  ａｌ，臨床薬におけるモノクロナル抗体，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，ｐｐ．１６８−１９０（１９８２）の中に見られる。構成成分は、Ｃｈａｕｄｈａｒｙ  ｅｔ  ａｌ  Ｎａｔｕｒｅ  ３３９，３９４（１９８９）に概説されているようにして連結することもできる。
【００５４】
さまざまな細胞毒素は免疫毒素における使用に適している。細胞毒薬剤は、ヨウ素−１３１または他のヨウ素同位体、イットリウム−９０、レニウム−１８８、ビスマス−２１２、または他のα線放出体などの放射線核種や、ビンデシン、メトトレキサート、アドリアミシン、タキソール、およびシスプラチナムなどの多くの化学治療薬や、ヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質、シュードモナス外毒素Ａ、リシン、ジフテリア毒、リシンＡ鎖およびこれらの類似物（Ｃｈｉｍｅｒｉｃ  ｏｘｉｎｓ，Ｏｌｓｎｅｓ  ａｎｄ  Ｐｈｉｌｌ，Ｐｈａｎｎａｃ．Ｔｈｅｒ．２５，３５５−３８１（１９８２）のようなリボソーム阻害タンパク質、およびＭｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｆｏｒ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｔｈｅｒａｐｙ，ｅｄｓ．Ｂａｌｄｗｉｎ  ａｎｄ  Ｂｙｅｒｓ，ｐｐ．１５９−１７９，２２４−２６６，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，１９８５を参照）などの細胞毒タンパク質を含むが、これらに限らない。
【００５５】
診断の目的に対し、抗体は標識または非標識のどちらでも用いられるだろう。非標識抗体は他の標識された抗体との組み合わせで用いられるだろう。放射線核種、蛍光、酵素、酵素基質、酵素共因子、酵素阻害剤、試薬、およびそのようなものなど多くの種類の標識が用いられる。多くの型の免疫検定が有用であり、当該技術分野において通常の技術を有するものにより知られる。
【００５６】
本発明中の細胞系、遺伝子、タンパク質、および抗体はさまざまな治療および診断に有用である。より特異的な例証を以下に記載する。
明記した参考文献は参照により本明細書に援用される。
【実施例】
【００５７】
実施例１
（１）培養上皮細胞系列が生成された患者の性質
前立腺上皮細胞系列が、中ないし高度の段階（Ｇｌｅａｓｏｎ段階６−８）の腫瘍を持つ点で一貫性のある６人の患者に由来する根治的前立腺切除の標本から生成された。（表１を参照のこと。）細胞の培養は、新鮮な根治的前立腺切除標本から切除された一次腫瘍結節の機械的な破壊または酵素的な消化によって生成された。培養方法の詳細な記述は実施例２を参照のこと。
表１：前立腺癌患者：臨床情報
【００５８】
【表１】
2006122052.tif 000002
【００５９】
（２）組織標本の病理学的解析
前立腺癌細胞系列の生成に使用した新鮮な組織標本の病理学的解析によって、ある癌標本は純粋な腫瘍であり、別のものは良性および悪性細胞の混合物から成ることが明らかになった。標本の予備的同定は、技術を有する病理学者による肉眼による試験に委ねられた。表２を参照のこと。顕微鏡による同定は技術を有する病理学者による１０ヶ所の高拡大視野の試験に委ねられた。ＢＰＨ=良性前立腺肥大、ＰＩＮ=前立腺上皮細胞間新生物。ａ=細胞型の混合物、ｂ=８０％の標本が良性の筋繊維間質からなる。ｃ=ひとつの顕微鏡学的な癌の細胞増殖巣が認められた。
表２：新鮮な前立腺標本の病理学的解析
【００６０】
【表２】
2006122052.tif 000003
【００６１】
（３）前立腺由来細胞系列の上皮起源の確認
前立腺由来細胞系列の上皮起源はサイトケラチン染色により確認された。高分子量および低分子量サイトケラチンの両方が、６個の根治的前立腺切除標本（正常前立腺、前立腺癌、正常精嚢）に由来する１６の細胞系列すべてにおいて発現されていた。いずれの前立腺由来の細胞系列も（但し、１５１９−ＣＰの早期継代は除く）ＰＳＡまたはＰＡＰを発現しなかった。表３を参照のこと：Ｆ=線維芽細胞、ＮＰ=正常前立腺、ＳＶ=精嚢、ＣＰ=癌腫前立腺、ａ=高分子量および低分子量サイトケラチンの両方を含む、ｂ=ＰＳＡおよびＰＡＰの発現が培養継代数５において記録されたが、試験管内（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）での継代を続けた後に消えた。ｃ=観察された染色はバックグラウンドである可能性があった。
表３：不死の前立腺上皮細胞系列の免疫細胞化学的解析
【００６２】
【表３】
2006122052.tif 000004
【００６３】
（４）細胞表面の表現型の確認
細胞表面の表現型の確認は実施例ＩＩ表６に記載した。
【００６４】
（５）前立腺上皮細胞系列の遺伝学的解析
第８染色体における対立遺伝子の欠失はＰＩＮおよび侵食性前立腺癌と関連しており、したがって、前立腺癌標本由来の上皮細胞系列の性質決定のための代替的方法を示唆している。ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）を用いた、染色体８ｐ上の１０個の分離した遺伝子座における対立遺伝子の欠失試験により、試験を行った９系統のクローン化されていない癌由来の細胞系列中の１系統において、１個の遺伝子座におけるヘテロ接合性の欠失（ＬＯＨ）が明らかになり、これが確立された長期の一次前立腺腫瘍細胞系列であることを示唆している。試験管内（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）での培養のためには、最も純粋な腫瘍断片を分離することに細心の注意を払ったが、引き続きいて、元の腫瘍標本を顕微鏡で評価したところでは、良性の上皮、ＢＰＨ、ＰＩＮ、および／または侵食性の腫瘍からなる変動性の混合物であり（表２を参照）、ＬＯＨが隠されているおそれがあったため、正確な性質決定のためには上皮細胞のクローン化を必要とした。本明細書に記載されている前立腺細胞系列の最終的な遺伝学的性質決定、および前述の系列の単一細胞のクローン化は以下に記載した。
【００６５】
実施例２
不死悪性前立腺上皮細胞の単一細胞のクローン化および性質決定
材料および方法
一次細胞培養の生成
細胞系列の産生に使用した組織標本は、中度から高度の局地的前立腺癌（Ｇｌｅａｓｏｎ段階６−８、腫瘍段階Ｔ２ＣからＴ３Ｃ）の治療のためにＮＣＩにおいて根治的前立腺切除を実行中の６人の連続的患者から得られた。手術室から直接得られた新鮮な切除前立腺は無菌条件下で熟練病理学者によって分離された。肉眼による検査において正常な前立腺、前立腺癌、または正常な精嚢と称される組織は、細胞培養を産生する目的で別個に分離された。培養は機械的な破壊（直径＜１ｃｍの断片）または酵素的な消化（＞１ｃｍ断片）（２１）によって生成された。１５１０番および１５１２番の患者から得られた標本は酵素的な消化により調製され、その後の培養は機械的な破壊によって生成された。酵素的消化のために、細分された組織は１００ｍｌの消化培地に懸濁し、撹拌板上に室温で一晩放置した。その結果生じた単一細胞の懸濁液を滅菌されたＰＢＳによって洗浄し、増殖培地（以下を参照）に再懸濁し、ラット尾部Ｉ型コラーゲン（Ｃｏｌｌａｂｏｒａｔｉｖｅ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ  Ｐｒｏｄｕｃｔｓ，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）で覆われた６穴プレートに分配した。標本の機械的破壊のためには、組織断片を少量の増殖培地中で２−３ｍｍ四方の立方体に注意深く細分し、その結果生じた組織および細胞の懸濁液を６穴プレートに分配した。全ての培養は１穴あたり１ｍｌの体積で生成され、３７度、５％ＣＯ２で保温された。生育中の細胞および組織を固定化し、およびプレートに接着させるために、それらを２−３日間静置した。次に、未接着の残留断片を注意深く吸い取り、穴を３−５ｍｌの新鮮な培地で満たした。培養培地は規則的に２−４日毎に取り替え、増殖している着生細胞は次にトリプシンによる脱離処理を行った。確立した増殖培養物は組織培養フラスコ（Ｆａｌｃｏｎ，Ｂｅｃｔｏｎ  Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ，Ｌｉｎｃｏｌｎ  Ｐａｒｋ，ＮＪ）の中で維持した。前立腺および精嚢上皮細胞系列のための増殖培地は、２５μｇ／ｍｌウシ脳下垂体抽出物、５ｎｇ／ｍｌ上皮増殖因子、２ｍＭ  Ｌ−グルタミン、１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液、抗生物質、および５％熱不活化ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）（Ｂｉｏｆｌｕｉｄｓ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）を含む、ケラチノサイト血清欠乏培地（ケラチノサイト−ＳＦＭ。ＧＩＢＣＯ−ＢＲＬ，Ｇｒａｎｄ  Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）からなる。新鮮な組織標本からの上皮培養の生成のためには、ＦＢＳの濃度を１−２％に減少し、および／または夾雑的線維芽細胞の増殖から保護するために１０−２０ｎｇ／ｍｌの濃度でコレラ毒素（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を添加した。まれに上皮細胞培養液に線維芽細胞が残存する場合は、純粋な上皮細胞培養物を獲得するために、分別的トリプシン処理（３７℃で１−２分保温し、次に、さらに着生した上皮細胞を残すために遊離の線維芽細胞を洗浄除去する）が非常に成功した。
【００６６】
自己由来の線維芽細胞系列は良性の前立腺間質組織の機械的な破壊から産生され、１０％熱不活化ＦＢＳを含むＲＰＭＩ  １６４０培地で培養された。自己由来のエプスタイン−バーウイルス感染Ｂ細胞系列は標準的な技術を用いて産生され、ＲＰＭＩ  １６４０+１０％ＦＢＳにおいて培養された。
【００６７】
転移性前立腺癌細胞の培養
着生の細胞系列ＬＮＣａＰ、ＤＵ１４５、ＰＣ−３（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ１７４０，ＨＴＢ８１，ＣＲＬ１４３５の各々）およびＴＳＵ−Ｐｒ１（Ｊｏｈｎｓ  Ｈｏｐｋｉｎｓ大学，Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，寛大にもＭＤのＷｉｌｌｉａｍ  Ｉｓｓａｃｓ博士より提供された；Ｉｉｚｕｍｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｕｒｏｌ．１３７：１３０４−１３０６，１９８７に記載されている）を１０％ＦＢＳを添加したＲＰＭＩ  １６４０培地において維持した。
【００６８】
一次細胞培養の不死化
細胞培養の不死化は、活性的に増殖している細胞を、ヒト乳頭腫ウイルス血清型１６（ＨＰＶ１６）のＥ６およびＥ７形質転換タンパク質および真核生物選択マーカーであるネオマイシンリン酸転移酵素をコードするＬＸＳＮ１６Ｅ６Ｅ７と称されるレトロウイルス（寛大にもＤｅｎｉｓｅ  Ｇａｌｌｏｗａｙ博士，Ｆｒｅｄ  Ｈｕｔｃｈｉｎｓｏｎ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｅｎｔｅｒ，Ｓｅａｔｔｌｅ，ＷＡより提供された）（２２）によって形質導入することにより達成された。不死化の調製において、短期上皮細胞培養（培養継代１−３）を１：２に分け、少なくとも４８時間、６穴プレートにおいて再接着させ、５０−６０％の集密状態の培養を得た。ＬＸＳＮ１６Ｅ６Ｅ７組換えウイルスによる形質導入は、培養培地を、１０μｇ／ｍｌ  ＤＥＡＥ−デキストラン（Ｓｉｇｍａ）の存在下で２４時間の間レトロウイルス産生系列ＰＡ３１７（２２）から収集した培養上清に置き換えることにより達成された。
【００６９】
不死化された細胞培養の単一細胞のクローン化
不死上皮細胞培養のクローン集団はＬＯＨ性質の研究のために産生された。簡潔に述べると、集密的な細胞培養をトリプシンにより採収し、洗浄および計数をおこなった。細胞は、ケラチノサイト増殖培地（上を参照）において２−５細胞／ｍｌの濃度に連続的に希釈し、９６穴・平底微小培養プレートの穴８−１０個に２００μｌ／穴（≦１細胞穴）ずつ分配した。ＤＮＡ抽出および低温保存のための十分な細胞を確保するために、＜１細胞／穴の希釈に起源をもつ集密細胞を２４穴プレートに展開した。
【００７０】
免疫細胞化学的解析
不死化された培養細胞の免疫細胞化学的研究のために、細胞をトリプシンで採収し、洗浄し、ペレットにした。細胞のペレットは次に１０％緩衝化ホルマリンで固定し、パラフィンで包囲した。前立腺標本由来の新鮮な組織断片もまたホルマリンで固定し、パラフィンで包囲した。新鮮な腫瘍標本および培養した細胞塊から５ミクロンの切片を調製し、帯電したスライドの上に乗せた（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｐｉｔｔｓｂｕｒｇｈ，ＰＡ）（２３）。アビジン−ビオチン・ペルオキシダーゼ複合体法および以下の一次抗体を用いて免疫細胞化学を行った：抗ヒト前立腺特異的抗原（ＰＳＡ）モノクローナル抗体（Ｄａｋｏ  Ｃｏｒｐ，Ｃａｒｐｅｎｔｅｒｉａ，ＣＡ）；抗ヒト前立腺アシッドホスファターゼ（ＰＡＰ）ポリクローナル抗体（Ｄａｋｏ  Ｃｏｒｐ，Ｃａｒｐｅｎｔａｎｉａ，ＣＡ）；抗ヒトサイトケラチンＣＡＭ５．２（Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ，Ｓａｎ  Ｊｏｓｅ，ＣＡ）；および抗ヒトサイトケラチンＡＥ１／ＡＥ３（Ｂｏｅｌｉｎｇｅｒ−Ｍａｎｎｈｅｉｍ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）。細胞系列および腫瘍組織断片は細胞の染色の割合（＜２５％，２５−５０％，５０−７５％または＞７５％）および染色強度（１+から４+まで）をもとに評価した。
【００７１】
フローサイトメトリー
将来的な研究およびさらなる性質決定のために、長期前立腺上皮細胞系列における免疫学的に重要な表面分子の発現量を決定することは興味深いことであった。不死化された細胞培養を採収し、以下のモノクローナル抗体による染色をおこなった：ＣＤ５４（抗ＩＣＡＭ−１），ＣＤ８０（抗７．１），ＣＤ８６（抗７．２）（Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ），Ｗ６／３２（抗ＨＬＡ−Ａ，Ｂ，Ｃ）およびＬ２４３（抗ＨＬＡ−ＤＲ）（ＡＴＣＣ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）（２１）。ＭＨＣ分子の表面での発現を増強させるために、フローサイトメトリー解析の前に細胞をＩＦＮ−γ５００Ｕ／ｍｌの存在下で７２時間培養した。
【００７２】
顕微解剖およひＤＮＡ抽出
ホルマリンで固定しパラフィンで包囲した組織試料由来の正常な前立腺上皮細胞または侵食性腫瘍細胞の、選択した細胞増殖巣の顕微解剖は既に記載したとおり直射光顕微鏡可視化のもとで行われた（２４，２５，２６）。簡潔に述べると、未染色のホルマリン固定およびパラフィン包囲した５ミクロンの組織学的組織断片をスライドグラス上に調製し、およびキシレンによって２回脱パラフィン化し、９５％エタノールで２回洗浄し、エオシンで染色して風乾した。隣接した断片はヘマトキシリンおよびエオシンで染色した。興味のある特異的細胞をエオシン染色したスライドグラスから選択し、改良を加えた使い捨ての３０ゲージの針で顕微解剖した。ＤＮＡは顕微解剖により得られた１−５Ｘ１０３個の細胞から抽出した。場合によっては、癌または正常な上皮の分離した隣接する一つ以上の細管に由来する細胞を組み合わせた。ＤＮＡはまた活性的に増殖している不死化された培養から得られた１−５Ｘ１０４個の細胞からも抽出した。細胞は即座に、０．０１Ｍ  ＴＲＩＳ−ＨＣ１  ｐＨ８．０，１ｍＭ  ＥＤＴＡ，１％Ｔｗｅｅｎ  ２０，および０．１ｍｇ／ｍｌプロテイナーゼＫを含む溶液（顕微解剖した細胞に対しては２０μｌ、または培養細胞に対しては２００μｌ）に再懸濁し、３７℃で一晩インキュベートした。インキュベーションに続いて、プロテイナーゼＫを不活化するためにその混合物を５−１０分煮沸し、次のポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）解析のために４℃で保存した。
【００７３】
ヘテロ接合性の欠失の検出
染色体８ｐ１２−２１におけるＬＯＨの検出のために使用した多ＤＮＡマーカーにはＳＦＴＰ−２，Ｄ８Ｓ１３３，Ｄ８Ｓ１３６，ＮＥＦＬ，Ｄ８Ｓ１３７，Ｄ８Ｓ１３１，Ｄ８Ｓ３３９，およびＡＮＫを含めた。ＤＮＡミクロサテライトマーカーを増幅するために使用したＰＣＲプライマーの組は以下の通りである：
【００７４】
【表４】
2006122052.tif 000005
【００７５】
【表５】
2006122052.tif 000006
【００７６】
【表６】
2006122052.tif 000007
【００７７】
【表７】
2006122052.tif 000008
【００７８】
【表８】
2006122052.tif 000009
【００７９】
【表９】
2006122052.tif 000010
【００８０】
【表１０】
2006122052.tif 000011
【００８１】
【表１１】
2006122052.tif 000012
【００８２】
ＰＣＲは既に記載されたように行われた（１９）。簡潔に述べれば、１２．５μｌ  ＰＣＲ反応混合物は、２００μＭ  ｄＡＴＰ，ｄＧＴＰおよびｄＴＴＰ；４０μＭ  ｄＣＴＰ；０．８ｍＭプライマー（Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，Ｈｕｎｔｓｖｉｌｌｅ，Ａｌａ．，またはＡｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  ＤＮＡ合成機において合成された）；２μＣｉ［α３２Ｐ］ｄＣＴＰ；１６μＭ塩化テトラメチルアンモニウム（２７）；１Ｘ  ＰＣＲ反応緩衝液（１．２５ｍＭ  ＭｇＣｌ２を含む）および１ユニットのＴａｑポリメラーゼ（Ｂｏｅｌｉｎｇｅｒ  Ｍａｎｎｈｅｉｍ）を含めた。マーカーＤ８Ｓ１３３およびＤ８Ｓ１３７においては生成産物の増幅および精度を改善するために５％ＤＭＳＯを加えた。すべてのマーカーについて反応は以下のように行われた：９５℃２分、次に２８から４０サイクル（マーカーに依存する）のアニーリングおよび伸長反応（９５℃３０秒、アニーリング温度で３０秒、および７２℃３０秒）および７２℃で２分間の保温と続けた。各々のマーカーに対するアニーリング温度は、プライマーの長さおよび組成に基づく最初の推算から経験的に決定した。
【００８３】
標識された増幅ＤＮＡ試料を９０℃で５−１０分変性し、７％アクリルアミド（３０：０．８アクリルアミド：ビスアクリルアミド）、５．６Ｍ尿素、３２％ホルムアミドおよび１Ｘ  ＴＢＥ（０．０８９Ｍ  Ｔｒｉｓ  ｐＨ８．３、０．０８９Ｍホウ酸、０．００２Ｍ  ＥＤＴＡ）からなるゲルにのせた（２８）。試料は９５で２−４時間電気泳動した。ゲルは配列決定用ゲルろ紙（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）に転写し、Ｋｏｄａｋ  Ｘ−ＯＭＡＴフィルムによって放射線写真を行った。ＬＯＨの基準は、一つのアリルにおいて、自己由来の新鮮なＰＢＬ対照と比較して少なくとも７５％の欠失として、３人の独立な検査員による直接可視化によって決定された。十分な量のＤＮＡが使用可能な場合は、ＬＯＨは少なくとも２種類の独立した実験によって証明した。
【００８４】
結果
細胞培養のための組織獲得
一次（非転移性）標本由来の不死前立腺腫瘍細胞系列の生産には従来困難が伴うことが知られていたため、先ず最も大きな粗悪な外見の癌小結節（１から３ｃｍ）が、培養細胞を生産するための新鮮な組織原として選択された。次に最初の３試験（患者１５１０、１５１２、１５１９）由来の隣接する組織分画の顕微鏡観察にから、「癌」標本には良性前立腺上皮、良性前立腺肥大（ＢＰＨ）、前立腺上皮内腫瘍形成（ＰＩＮ）および浸潤性癌細胞の様々な混合物が含まれることが判明した。しかし、患者１５１２および１５１９由来の「正常」標本は良性の前立腺上皮のみから構成されていた（表２）。
【００８５】
後の患者から癌細胞系列を生成するための純粋癌細胞を得る可能性を上昇させるために、小組織断片（＜１ｃｍ）が組織培養、凍結およびパラフィン切片用の隣接切片とともに獲得された。さらに、可能な場合には、複数の別々の癌組織断片が培養細胞作製のために個々の標本から選択された。これらのより緊縮な条件を用いることにより、３つの根本的前立腺除去手術標本（患者１５３２、１５３５、１５４２）について７回中６回の試験で少なくとも９５％の腫瘍形成細胞（ＰＩＮと侵入腫瘍）を含む組織切片を獲得することが可能であった。さらに、３つの良性前立腺上皮細胞系列および２つの良性精嚢上皮細胞系列の生成に適した組織断片が、これらの根本的前立腺除去手術標本から解剖摘出することに成功した（表２）。
【００８６】
前立腺由来細胞系列の不死化および免疫細胞化学的分析
表２に示された１７組織標本（患者１５１９由来正常前立腺）のうち１つを除いて全てが短期間培養で容易に確立された。しかし、細胞増殖は比較的遅く、５−６週間以上の生存能力のある活発に成長する培養細胞を確立するためには、試験管内での上皮培養細胞の不死化が必要であった。粘着性単層培養細胞が、ＨＰＶ１６のＥ６およびＥ７形質転換タンパク質をコードする組換えレトロウイルスで２または３継代に渡って形質転換され、その結果１６個の長期上皮細胞系列が生じた。そのうち４個は正常前立腺由来、２個は精嚢由来、１０個は一次癌標本由来である。さらに、４患者の前立腺ストロマから生成した不死繊維芽細胞系列が確立された。形質転換の成功は、１ｍｇ／ｍｌ濃度のＧ４１８中での細胞生存率、および同時に観察された非不死化培養細胞に比べて、５０培養継代以上の細胞生存率の増加と増殖の速さにより確認された（図１Ａ）。顕微鏡下で、全ての不死化前立腺上皮細胞系列は良性組織由来か悪性組織由来かによらず同じ形態を示した。即ち、培養細胞の形態は良性細胞を悪性細胞から区別するための指標にはならない（図１Ｂ）。
【００８７】
前立腺由来の細胞系列の上皮および前立腺起源を確認するために、免疫細胞化学分析が活発に増殖する不死培養由来の細胞塊に対して行われた（表３）。正常前立腺由来、正常精嚢由来および前立腺腫瘍標本由来のものを含む、当研究室で生成した全ての上皮細胞系列により、高および低分子量サイトケラチンが発現された。７５％以上の細胞が、確立された転移性前立腺腫瘍細胞系列ＬＮＣａＰ、ＤＵ１４５、ＰＣ−３およびＴＳＵ−Ｐｒ１で観察された染色と同程度の強度４+で染色された。即ち、これらの培養の上皮起源が確証された。対照の繊維芽細胞系列または黒色腫細胞ではいかなる有意なサイトケラチン発現も観察されなかった。
【００８８】
サイトケラチン発現陽性によって、一次前立腺腫瘍標本から生成した細胞系列が事実上皮起源であることが示されたが、これらの培養細胞による前立腺関連タンパク質ＰＳＡおよびＰＡＰの発現を検査することも同様に重要であった。患者１５１９から生成した不死前立腺腫瘍由来細胞系列（１５１９−ＣＰＴＸ）のみが、５培養継代後もこれらのタンパク質を検出可能なレベルで発現した（各々、＞７５％の強度２−３+の細胞染色、および＞７５％の強度４+の細胞染色）。しかし３０培養継代後では、ＰＳＡおよびＰＡＰの発現は１５１９−ＣＰＴＸにおいてもはや検出されなかった。さらに、この細胞系列の継代の後期では、発現はＩＦＮ−５−アザ−２'−デオキシシチジンまたはジヒドロキシテストステロンにより誘導されなかった。ＰＳＡおよびＰＡＰの発現のための固定された前立腺腫瘍組織切片の免疫組織化学的検定からは、しばしば癌炭化の弱い不均質の染色と、これらのタンパク質のいかなる検出可能な発現も示さないいくつかの癌フォーカスが見られた。反対に、同じ顕微鏡下の分画でのすべての正常な腺はＰＳＡおよびＰＡＰについて強く均一に染色された（図２）。前立腺腫瘍細胞による生体内（ｉｎ  ｓｉｔｕ）でのＰＳＡおよびＰＡＰの弱い不均質な発現は、不死化前立腺癌由来細胞系列で発現が見られないことを説明し得る。しかし、良性前立腺上皮細胞系列で発現がないことは相当する組織分画で観察される強い発現と相関せず、ＰＳＡおよびＰＡＰの発現の欠損は試験管内での細胞培養の結果としても生じ得るということが示唆される。
【００８９】
顕微解剖された組織でのＬＯＨについての染色体８ｐの検定
上述したように、本発明の「前立腺腫瘍」細胞系列は多くの場合、良性および悪性の細胞型の混合物を含む組織試料に事実上由来する（図２）。全ての培養細胞は長期増殖を誘導するためにレトロウイルスでの形質転換を必要とし、また良性および悪性の形質転換された前立腺上皮細胞は形態的にも組織化学的にも区別が不可能であるため、新規に生成した培養細胞の特性決定のための代替法としてＬＯＨ分析の使用が開発された。まず対応する新鮮な組織切片から顕微解剖された癌フォーカスまたは正常上皮細胞において、染色体８ｐ１２−２１上のＬＯＨが検査された。顕微解剖された前立腺腫瘍標本における高割合のＬＯＨを検出することが示されている（１９）、８つのミクロサテライトマーカーのついたパネルが染色体８ｐ欠失を同定するために選択された。８つのミクロサテライトマーカーのパネルは、図３に示すように、染色体８の遺伝子座１１から２１の欠失を同定することができる。顕微鏡下で正常な外見をもつ細胞が悪性形質転換の前駆体としてＬＯＨを含むと仮定することにより、低温保存された新鮮な、自己由来のＰＢＬがＬＯＨ分析のための正常の対照として用いられた。６患者全てが、新鮮なＰＢＬ由来のＤＮＡの分析により、検査された４または８つ以上の遺伝子座でヘテロ接合している（情報を与える）ことが示された。しかし、２患者（１５１９および１５３２）については、顕微解剖された癌標本はＬＯＨの証拠を示さず、ＬＯＨ分析はこれらの標本に由来する培養細胞の特性決定に有用であり得ないことが示唆された（表４）。
表４  前立腺腫瘍または良性上皮の顕微解剖病巣における染色体８ｐ上のＬＯＨ
【００９０】
【表１２】
2006122052.tif 000013
【００９１】
異型接合性の保持（○）
異型接合性の欠失（●）
非情報的（同型接合性対立遺伝子）（−）
非決定（ｎｄ）
【００９２】
反対に、患者１５１０および１５１２からの顕微解剖された腫瘍は検査された全ての情報座位においてＬＯＨを示した。患者１５３５については、６つの別々の顕微解剖された癌フォーカスが検査され、全てがＬＯＨの同様のパターンを示した。興味深いことに、患者１５４２からの顕微解剖された異なる１２の癌のＬＯＨ分析からはＬＯＨについて異なるパターンが示され、１２中４つは検査された１６全ての情報対立遺伝子の保持を示した（表５）。顕微解剖された正常上皮は、患者１５１０由来の標本を例外として、染色体８ｐ上のＬＯＨの証拠を示さなかった。患者１５１０由来の顕微解剖された「正常な」３つのフォーカスはすべて、自己由来の癌で観察されたＬＯＨのパターンと一致した大きなＬＯＨを示し、この種の研究のための正常対照としてＰＢＬを使用することの重要性が強調される。
表５  患者１５４２由来の顕微解剖された前立腺組織および不死化細胞系列における染色体８ｐ上のＬＯＨ
【００９３】
【表１３】
2006122052.tif 000014
【００９４】
ＬＯＨなし（ＮＬ）
上部対立遺伝子の欠失（ＬＵ）
下部対立遺伝子の欠失（ＬＬ）
非決定（ｎｄ）
ａ連続的培養継代番号
ｂ７つの個々のクローンの代表
ｃ３０個の個々のクローンの代表
ｄクローン１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．１
ｅクローン１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．４
【００９５】
患者１５４２由来の不死化細胞系列のＬＯＨ分析
患者１５４２から生産された細胞培養の異型接合性の欠損は、１２の異なる顕微解剖された癌フォーカスにおいて表れたＬＯＨの様々なパターンにてらして特に興味深い。この患者はＤ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６、Ｄ８Ｓ１３７、Ｄ８Ｓ１３１、Ｄ８Ｓ３３９およびＡＮＫについて情報を示している。これらの座位のうち４つにおいて、癌、正常前立腺、正常精嚢、および正常繊維芽細胞由来の培養細胞における対立遺伝子の欠失に関して詳細に検査した（表５）。１５４２−ＣＰ３ＴＸとして示す癌由来の初期継代の大量培養（継代３、６、１３）を反復的に分析することからは、検査された４つのミクロサテライトマーカーのいずれについてもＬＯＨが見られなかった。しかし、２１連続培養継代（約６カ月）後、１５４２−ＣＰ３ＴＸは検査された４つの位置全てにおいて上部対立遺伝子の欠失を示した。この欠失パターンは、顕微解剖された癌位置７番に見られるパターンと同じであった。３０の単一細胞クローンが１５４２−ＣＰ３ＴＸの継代２３より生成され、全てが非クローン化後期継代培養および顕微解剖された癌７番と同じＬＯＨパターンを示し、大量後期継代細胞系列のクローンの、またはクローンに近い組成を示した。これらの知見はまた１５４２−ＣＰ３ＴＸの初期継代におけるＬＯＨの検出の失敗は、大量培養における異なるパターンを持つ複数の癌クローンの存在を示唆し、ＰＣＲに基づく方法でのＬＯＨの検出が阻害されたと思われる。このことを調べるため、１５４２−ＣＰ３ＴＸの初期継代（継代８）から単細胞クローンが生成され、ＬＯＨを検査された（図４）。９クローンのうち７つは、患者１５４２由来の顕微解剖された癌のうちの１２個中３個と同様、Ｄ８Ｓ１３６またはＤ８Ｓ１３１においてＬＯＨを示さなかった。しかし、１つのクローン（クローン４）（１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．４）は顕微解剖された癌７番、１５４２−ＣＰ３ＴＸの後期継代およびその派生クローンのパターンと同じＬＯＨのパターンを示し、後期継代大量培養中の多くを占める癌クローンは明らかに非常に初期の培養継代に存在したことが示唆された。興味深いことに、初期継代１５４２−ＣＰ３ＴＸ由来のクローン１（１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．１）は他の８つの初期継代クローンについて観察されたのとは異なるＬＯＨパターンを示し、Ｄ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６およびＤ８Ｓ１３１の下部対立遺伝子の欠失が伴った。このことは、再び、２つの顕微解剖された癌（１番および３番）において検出されたＬＯＨパターンと一致している。注意すべきは、患者１５４２由来の初期および後期継代の不死化培養正常前立腺上皮、精嚢、または繊維芽細胞を用いた反復的実験ではＬＯＨが検出されなかったことである。このことは癌から派生した細胞において観察されたＬＯＨは培養によるアーティファクトであったという可能性に対する反証となる。
【００９６】
５つの残りの患者由来の培養細胞における染色体８ｐ１２−２１のＬＯＨの検査
患者１５１０および１５１２において、ＬＯＨは顕微解剖された癌標本中の多数の座位で検出された（表４）。しかし、対応する癌含有組織標本から生成された不死化上皮培養細胞は、初期または後期培養継代で大量レベルで試験された場合ＬＯＨを示さなかった。同様に、後期培養継代から成長したクローン（１５１０−ＣＰＴＸについては継代２３、１５１２−ＣＰＴＸについては継代３１）はＬＯＨの証拠を示さなかった。このことは、これらの培養が生産されたもとの組織標本にはかなりの量の正常前立腺上皮が存在すること（表２）と、試験管内が正常細胞が過剰成長することを反映している。非常に初期の培養継代でこれらの細胞系列をクローニングすることがより多くの価値ある結果を生む可能性がある。
【００９７】
患者１５１９（１フォーカス）および１５３２（８フォーカス）由来の顕微解剖された癌フォーカスの検査はＬＯＨを示さなかった（表４）。それにもかかわらず、これらの腫瘍から確立された培養細胞をＬＯＨについて評価した。患者１５１９の場合は、大量培養１５１９−ＣＰＴＸの検査から、検査された６つの情報座位で異型接合性の保持が示された。しかし、培養継代２４由来の１１の単細胞クローンのうち１つが単一の座位Ｄ８Ｓ１３３でＬＯＨを示した。患者１５３２の場合は、獲得された２つの癌標本のうち一つから生成された大量培養系列１５３２−ＣＰ２ＴＸ（表２）が長時間の培養後のみ（継代２４）にかぎってＤ８Ｓ１３３、Ｄ８Ｓ１３６およびＮＥＦＬにおいてＬＯＨを示した。後期培養継代から生成された１０クローンすべても同じ欠失パターンを示した。しかし、患者１５３２由来の正常前立腺組織由来の不死化培養細胞の１つは２０培養継代後にもＬＯＨの証拠を示さなかった。同様に、自己由来の不死化繊維芽細胞系列は１５３２−ＣＰ２ＴＸで失われたのと同じ３つの対立遺伝子における異型接合性を保持した。即ち、単一の１５１９−ＣＰＴＸクローンおよび１５３２−ＣＰ２ＴＸで観察されたＬＯＨから、これらの結果が分析のために解剖されなかった生体内（ｉｎ  ｓｉｔｕ）腫瘍フォーカスに存在するＬＯＨを反映し得ることが示唆される。
【００９８】
患者１５３５由来の培養細胞で興味深い結果が得られた。この場合、広範なＬＯＨが６つの別々の顕微解剖された癌フォーカスにおいて示され、全てが同じパターンの欠失を示した（表４）。前立腺腫瘍から生成された初期および後期継代の培養細胞は、正常前立腺由来および正常精嚢由来のものと同様、ＬＯＨを示さなかった。同様に、培養継代２７で生成された１１の癌クローンは欠失を示さなかった。しかし初期継代癌培養（継代１２）のクローニングによって、６つの顕微解剖された癌病巣と合うＬＯＨパターンを持つ一つのクローンが明らかになった（クローン１５３５−ＣＰ１ＴＸ．１４．３）。これらの結果は、患者１５４２で観察された結果を再現しており、純粋な癌培養細胞を得るためには組織学的に異質な前立腺腫瘍標本から生成した不死化培養細胞の初期クローニングが必要であることを示している。
【００９９】
前立腺腫瘍由来の不死化細胞系列によるＭＨＣ分子の発現
不死化癌由来細胞系列における表面ＭＨＣの発現の検査は、免疫学的研究のためのこれらの系列の潜在的有用性を考慮するために重要である。６患者全てに由来する培養は、フローサイトメトリーで決定したところ有意量の表面ＭＨＣ  ｃｌａｓｓ  １と接着分子ＩＣＡＭ−１を発現した（表６）。
表６：不死化前立腺上皮細胞系列によるＭＨＣおよび接着分子の細胞表面での発現
【０１００】
【表１４】
2006122052.tif 000015
【０１０１】
不死化された系列のいかなるものも、ＭＨＣ  ｃｌａｓｓ  ＩＩまたはＢ７ファミリーの共刺激分子（Ｂ７．１、Ｂ７．２）のどちらも検出可能なレベルでは発現しなかった。しかし以前にメラノーマ細胞系列で報告されたように（２９）、ＭＨＣ分子の発現がＩＦＮ−γの存在下で上流制御されることができるかどうかを決定することは興味深い。細胞系列１５３２−ＣＰ２ＴＸ、１５３５−ＣＰ１ＴＸおよび１５４２−ＣＰ３ＴＸ由来の不死化された癌を５００Ｕ／ｍｌ  ＩＦＮ−γの存在下で７２時間培養し、その後ＭＨＣの発現を検査した。全てが有意量のＭＨＣｃ１ａｓｓＩＩ分子の発現を誘導された。さらに処理されていない対照と比較した場合、ＭＨＣ  ｃｌａｓｓ  Ｉ分子の発現も増強されていた（図５Ｃと５Ａの比較）。このことに照らし、これらの不死化癌由来細胞系列は、前立腺一次悪性腫瘍の患者におけるＣＤ４＋およびＣＤ８＋細胞媒介性免疫応答の研究または刺激のために潜在的に有益な試薬の一つである。
【０１０２】
前立腺上皮細胞系列のＨＬＡ型決定
前立腺上皮細胞系列が由来する個々の患者についてＨＬＡ型決定を行った。Ａ、Ｂ、Ｃ型は当該技術分野で既知の方法を用いたリンパ球の血清型決定によって決定された。ＤＲおよびＤＱ型は標準的な方法を用いたリンパ球の遺伝子型決定により決定された。ＨＬＡ型の結果は表７に示されている。
表７  前立腺上皮細胞系列のＨＬＡ型
【０１０３】
【表１５】
2006122052.tif 000016
【０１０４】
文献リスト
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５．  Ｒｈｉｍ，Ｊ．Ｓ．，Ｗｅｂｂｅｒ，Ｍ．Ｍ．，Ｂｅｌｌｏ，Ｄ．，Ｌｅｅ，Ｍ．Ｓ．，Ａｍｓｔｅｉｎ，Ｐ．，Ｃｈｅｎ．Ｌ．，ａｎｄ  Ｊａｙ，Ｇ．Ｓｔｅｐｗｉｓｅ  ｉｍｍｏｒｔａｌｉｚａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｔｒａｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａｄｕｌｔ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌｓ  ｂｙ  ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ  ｏｆ  ＨＰＶ−１８  ａｎｄ  ｖ−Ｋｉ−ｒａｓ．
Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．９１：１１８７４−１１８７８，１９９４．
６．  Ｂｏｎｄｏｕ，Ｐ．，Ｃｕｓｓｅｎｏｔ，Ｏ．，Ｓｏｌｉｍａｎ，Ｈ．．Ｖｉｌｌｅｔｔｅ，Ｊ．Ｍ．，Ｔｅｉ１１ａｃ，Ｐ．，ＬｅＤｕｃ，Ａ．，ａｎｄ  Ｆｉｅｔ，Ｊ．Ｄｉｓｔｉｎｃｔ  ａｎｄｒｏｇｅｎ  ５  ａｌｐｈａ−ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ  ｐａｔｈｗａｙｓ  ｉｎ  ｃｕｌｔｕｒｅｄ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ  ａｎｄ  ｉｍｍｏｒｔａｌｉｚｅｄ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌｓ  ｆｒｏｍ  ｎｏｒｍａｌ  ｈｕｍａｎ  ａｄｕｌｔ  ｐｒｏｓｔａｔｅ．Ｊ．Ｕｒｏｌ．，１５２：２２６−２３１，１９９４．
７．  Ｌｅｅ，Ｍ．，Ｇａｒｋｏｖｅｎｋｏ，Ｅ．，Ｙｕｎ，Ｊ．Ｓ．，Ｗｅｉｊｅｒｍａｎ，Ｐ．Ｃ．，Ｐｅｅｈｌ．Ｄ．Ｍ．，Ｃｈｅｎ．Ｌ．，ａｎｄ  Ｒｈｉｍ，Ｊ．Ｓ．Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａｄｕｌｔｈ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌｓ  ｉｍｍｏｔａｌｉｚｅｄ  ｂｙ  ｐｏｌｙｂｒｅｎｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ＤＮＡ  ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ  ｗｉｔｈ  ａ  ｐｌａｓｍｉｄ  ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ  ａｎ  ｏｒｉｇｉｎ−ｄｅｆｅｃｔｉｖｅ  ＳＶ４０ｇｅｎｏｍｅ．Ｉｎｔ．Ｊ．Ｏｎｃｏｌ．，４：８２１−８３０，１９９４．
８．  Ｗｅｉｊｅｒｍａｎ，Ｐ．Ｃ．，Ｋｏｅｎｉｇ  Ｊ．Ｊ．，Ｗｏｎｇ，Ｓ．Ｔ．，Ｎｉｅｓｔｅｒｓ，Ｇ．Ｍ．，ａｎｄ  Ｐｅｅｈｌ，Ｄ．Ｍ．Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｏｎ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｉｍｍｏｒｔａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌｓ  ｏｆ  ｎｏｒｍａｌ  ａｎｄ  ｍａｌｉｇｎａｎｔ  ｏｒｉｇｉｎ  ｕｓｉｎｇ  ｈｕｍａｎ  ｐａｐｉｌｌｏｍａｖｉｒｕｓ  ｔｙｐｅ  １８  ＤＮＡ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５４：５５７９−５５８３，１９９４．
９．  Ｂｒｏｔｈｍａｎ，Ａ．Ｒ．，Ｐｅｅｈｌ，Ｄ．Ｍ．，Ｐａｔｅｌ，Ａ．Ｍ．，ａｎｄ  ＭｃＮｅａｌ，Ｊ．Ｅ．Ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ  ａｎｄ  ｐａｔｔｅｒｎ  ｏｆ  ｋａｒｙｏｔｙｐｉｃ  ａｂｎｏｒｍａｌｉｔｉｅｓ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｃａｎｃｅｒ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５０：３７９５−３８０３，１９９０．
１０．  Ｂｒｏｔｈｍａｎ，Ａ．Ｒ．，Ｐｅｅｈｌ，Ｄ．Ｍ．，Ｐａｔｅｌ，Ａ．Ｍ．，ＭａｃＤｏｎａｌｄ，Ｇ．Ｒ．，ＭｃＮｅａｌ，Ｊ．Ｅ．，Ｌａｄａｇａ，Ｌ．Ｅ．，ａｎｄ  Ｓｃｈｅｌｌｈａｍｍｅｒ，Ｐ．Ｆ．Ｃｙｔｏｇｅｎｅｔｉｃ  ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ  ｏｆ  ２０  ｃｕｌｔｕｒｅｄ  ｐｒｉｍａｒｙ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ｔｕｍｏｒｓ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｇｅｎｅｔ．Ｃｙｔｏｇｅｎｅｔ．，５５：７９−８４，１９９１．
１１．  Ｂｒｏｔｈｍａｎ，Ａ．Ｒ．，Ｐａｔｅｌ．Ａ．Ｍ．，Ｐｅｅｈｌ．Ｄ．Ｍ．，ａｎｄ  Ｓｃｈｅｌｌｈａｍｌｎｅｒ，Ｐ．Ｆ．Ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ｔｕｍｏｒ  ｃｕｌｔｕｒｅｓ  ｕｓｉｎｇ  ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ｉｎ−ｓｉｔｕ  ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（ＦＩＳＨ）．Ｃａｎｃｅｒ  Ｇｅｎｅｔ．Ｃｙｔｏｇｅｎｅｔ．，６２：１８０−１８５，１９９２．
１２．  Ｉｓａａｃｓ，Ｗ．Ｂ．，Ｂｏｖａ，Ｇ．Ｓ．，Ｍｏｒｔｏｎ，Ｒ．Ａ．，Ｂｕｓｓｅｍａｋｅｒｓ，Ｊ．Ｄ．，ａｎｄ  Ｅｗｉｎｇ，Ｃ．Ｍ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｂｉｏｌｏｇｙ  ｏｆ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｃａｎｃｅｒ．Ｓｅｍｉｎａｒｓ  ｉｎ  Ｏｎｃｏｌｏｇｙ，２１：５１４−５２１，１９９４．
１３．  Ｃａｒｔｅｒ，Ｂ．Ｓ．，Ｅｗｉｎｇ，Ｃ．Ｍ．，Ｗａｒｄ，Ｗ．Ｓ．，Ｔｒｅｉｇｅｒ，Ｂ．Ｆ．，Ａａｌｄｅｒｓ，Ｔ．Ｗ．，Ｓｃｈａｌｋｅｎ，Ｊ．Ａ．，Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｊ．Ｉ．，ａｎｄ  Ｉｓａａｃｓ，Ｗ．Ｂ．Ａｌｌｅｌｉｃ  ｌｏｓｓ  ｏｆ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓ  １６ｑ  ａｎｄ  １０ｑ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｃａｎｃｅｒ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．８７：８７５１−８７５５，１９９０．
１４．  Ｂｅｒｇｅｎｈｅｉｍ，Ｕ．Ｓ．Ｒ．，Ｋｕｎｉｍｉ，Ｋ．，Ｃｏｌｌｉｎｓ．Ｖ．Ｐ．，ａｎｄ  Ｅｋｍａｎ，Ｐ．Ｄｅｌｅｔｉｏｎ  ｍａｐｐｉｎｇ  ｏｆ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓ８，１０，ａｎｄ  １６  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ．Ｇｅｎｅｓ，Ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓ  ａｎｄ  Ｃａｎｃｅｒ，３：２１５−２２０，１９９１．
１５．  Ｓａｋａｒ，Ｗ．Ａ．，Ｍａｃｏｓｋａ，Ｊ．Ａ．，Ｂｅｎｓｏｎ，Ｐ．，Ｇｒｉｇｎｏｎ，Ｄ．Ｊ．，Ｗｏｌｍａｎ，Ｓ．Ｒ．，Ｐｏｎｔｅｓ，Ｊ．Ｅ．，ａｎｄ  Ｃｒｉｓｓｍａｎ，Ｊ．Ｄ．Ａｌｌｅｌｉｃ  ｌｏｓｓ  ｉｎ  ｌｏｃａｌｌｙ  ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ，ｍｕｌｔｉｓａｍｐｌｅｄ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｃａｎｃｅｒ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５４：３２７３−３２７７，１９９４１６．  Ｂｏｖａ，Ｇ．Ｓ．，Ｃａｒｔｅｒ，Ｂ．Ｓ．，Ｂｕｓｓｅｍａｋｅｒｓ，Ｍ．Ｊ．Ｇ．，Ｅｍｉ，Ｍ．，Ｆｕｊｉｗａｒａ，Ｙ．，Ｋｙｐｒｉａｎｏｕ，Ｎ．，Ｊａｃｏｂｓ，Ｓ．Ｃ．，Ｒｏｂｉｎｓｏｎ，Ｊ．Ｃ．，Ｅｐｓｔｅｉｎ，Ｊ．Ｉ．，Ｗａｌｓｈ，Ｐ．Ｃ．，ａｎｄ  Ｌｓａａｃｓ，Ｗ．Ｂ．Ｈｏｍｏｚｙｇｏｕｓ  ｄｅｌｅｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｆｒｅｑｕｅｎｔａｌｌｅｌｉｃ  ｌｏｓｓ  ｏｆ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ  ８ｐ２２  ｌｏｃｉ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｃａｎｃｅｒ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５３：３８６９−３８７３，１９９３．
１７．  Ｔｒａｐｍａｎ，Ｊ．，Ｓｌｅｄｄｅｎｓ．Ｈ．Ｆ．Ｂ．Ｍ．，ｖａｎ  ｄｅｒ  Ｗｅｉｄｅｎ，Ｍ．Ｍ．，Ｄｉｎｊｅｎｓ，Ｗ．Ｎ．Ｍ．，Ｋｏｎｉｇ，Ｊ．Ｊ．，Ｓｃｈｒｏｄｅｒ，Ｆ．Ｈ．，Ｆａｂｅｒ，Ｐ．Ｗ．，ａｎｄ  Ｂｏｓｍａｎ，Ｆ．Ｔ．Ｌｏｓｓ  ｏｆ  ｈｅｔｅｒｏｚｙｇｏｓｉｔｙ  ｏｆ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ８ｍｉｃｒｏｓａｔｅｌｌｉｔｅ  ｌｏｃｉ  ｉｍｐｌｉｃａｔｅｓ  ａ  ｃａｎｄｉｄａｔｅ  ｔｕｍｏｒ  ｓｕｐｐｒｅｓｓｏｒ  ｇｅｎｅ  ｂｅｔｗｅｅｎ  ｔｈｅ  ｌｏｃｉ  Ｄ８Ｓ８７  ａｎｄ  Ｄ８Ｓ１３３  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｃａｎｃｅｒ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５４：６０６１−６０６４，１９９４．
１８．  Ｍａｃｏｓｋａ，Ｊ．Ａ．，Ｔｒｙｂｕｓ，Ｔ．Ｍ．，Ｂｅｎｓｏｎ，Ｐ．Ｄ．，Ｓａｋｒ，Ｗ．Ａ．，Ｇｒｉｇｎｏｎ，Ｄ．Ｊ．，Ｗｏｊｎｏ，Ｋ．Ｄ．，Ｐｉｅｔｒｕｋ，Ｔ．，ａｎｄ  Ｐｏｗｅｌｌ，Ｉ．Ｊ．Ｅｖｉｄｅｎｃｅ  ｆｏｒ  ｔｈｒｅｅ  ｔｕｍｏｒ  ｓｕｐｐｒｅｓｓｏｒ  ｇｅｎｅ  ｌｏｃｉ  ｏｎ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ  ８ｐ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｃａｎｃｅｒ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５５：５３９０−５３９５，１９９５．
１９．  Ｖｏｃｋｅ，Ｃ．Ｄ．，Ｐｏｚｚａｔｔｉ，Ｒ．Ｏ．，Ｂｏｓｔｗｉｃｋ，Ｄ．Ｇ．，Ｆｌｏｒｅｎｃｅ，Ｃ．Ｄ．，Ｊｅｎｎｉｎｇｓ，Ｓ．Ｂ．，Ｓｔｒｕｐ，Ｓ．Ｅ．，Ｄｕｒａｙ，Ｐ．Ｈ．，Ｌｉｏｔｔａ，Ｌ．Ａ．，Ｅｍｍｅｒｔ−Ｂｕｃｋ，Ｍ．Ｒ．，ａｎｄ  Ｌｉｎｅｈａｎ，Ｗ．Ｍ．Ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ９９  ｍｉｃｒｏｄｉｓｓｅｃｔｅｄ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｃａｒｃｉｎｏｍａｓ  ｒｅｖｅａｌｓ  ａ  ｈｉｇｈ  ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ  ｏｆ  ａｌｌｅｌｉｃ  ｌｏｓｓ  ｏｎ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ  ８ｐｌ２−２１．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５６：２４１１−２４１６，１９９６．
２０．  Ｅｍｍｅｒｔ−Ｂｕｃｋ，Ｍ．Ｒ．，Ｖｏｃｋｅ，Ｃ．Ｄ．，Ｐｏｚｚａｔｔｉ，Ｒ．Ｏ．，Ｄｕｒａｙ，Ｐ．ＩＬ，，Ｊｅｎｎｉｎｇｓ，，Ｓ．Ｂ．，Ｆｌｏｒｅｎｃｅ，Ｃ．Ｄ．，Ｚｈｕａｎｇ，Ｚ．，Ｂｏｓｔｗｉｃｋ，Ｄ．Ｇ．，Ｌｉｏｔｔａ，，Ｌ．Ａ．，ａｎｄ  Ｌｉｎｅｈａｎ，Ｗ．Ｍ．Ａｌｌｅｌｉｃ  ｌｏｓｓ  ｏｎ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ  ８ｐ１２−２１  ｉｎ  ｍｉｃｒｏｄｉｓｓｅｃｔｅｄ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ｉｎｔｒａｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｎｅｏｐｌａｓｉａ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５５：２９５９−２９６２，１９９５．
２１．  Ｔｏｐａｌｉａｎ，Ｓ．Ｌ．，Ｍｕｕｌ，Ｌ．Ｍ．，Ｓｏｌｏｍｏｎ．Ｄ．，ａｎｄ  Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ，Ｓ．Ａ．Ｅｘｐａｎｓｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｉｎｆｉｌｔｒａｔｉｎｇ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ  ｆｏｒ  ｕｓｅ  ｉｎ  ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｍｐｙ  ｔｒｉａｌｓ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈ．，１０２：１２７−１４１，１９８７．
２２．  Ｈａｌｂｅｒｔ，Ｃ．Ｌ．，Ｄｅｍｅｒｓ，Ｇ．Ｗ．，ａｎｄ  Ｇａｌｌｏｗａｙ，Ｄ．Ａ．Ｔｈｅ  Ｅ７  ｇｅｎｅ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｐａｐｉｌｌｏｍａｖｉｒｕｓ  ｔｙｐｅ  １６  ｉｓ  ｓｕｆｆｉｃｉｅｎｔ  ｆｏｒ  ｉｍｍｏｒｔａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌｓ．Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．，６５：４７３−４７８．１９９１．
２３．  Ｔｏｐａｌｉａｎ，Ｓ．Ｌ．．Ｓｏｌｏｍｏｎ，Ｄ．，Ａｖｉｓ，Ｆ．Ｐ．，Ｃｈａｎｇ，Ａ．Ｅ．，Ｆｒｅｅｒｋｓｅｎ，Ｄ．Ｌ．，Ｌｉｎｅｈａｎ，Ｗ．Ｍ．，Ｌｏｔｚｅ，Ｍ．Ｔ．，Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ．Ｃ．Ｎ．，Ｓｅｉｐｐ，Ｃ．Ａ．，Ｓｉｍｏｎ，Ｐ．，Ｓｉｍｐｓｏｎ，Ｃ．Ｇ．，ａｎｄ  Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ，Ｓ．Ａ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ  ｏｆ  ｐａｔｉｅｎｔｓ  ｗｉｔｈ  ａｄｖａｎｃｅｄ  ｃａｎｃｅｒ  ｕｓｉｎｇ  ｔｕｍｏｒ−ｉｎｆｉｌｔｒａｔｉｎｇ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ  ａｎｄ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−２：Ａｐｉｌｏｔ  ｓｔｕｄｙ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｏｎｃｏｌ．，６：８３９−８５３，１９８８．
２４．  Ｅｍｍｅｒｔ−Ｂｕｃｋ，Ｍ．Ｒ．，Ｒｏｔｈ，Ｍ．Ｊ．，Ｚｈｕａｎｇ，Ｚ．，Ｃａｍｐｏ，Ｅ．，Ｒｏｚｈｉｎ，Ｊ．，Ｓｌｏａｎｅ，Ｂ．Ｆ．，Ｌｉｏｔｔａ，Ｌ．Ａ．，Ｓｔｅｔｌｅｒ−Ｓｔｅｖｅｎｓｏｎ，Ｗ．Ｇ．Ｉｎｃｒｅａｓｅｄ  ｇｅｌａｔｉｎａｓｅ  Ａ  ａｎｄ  ｃａｔｈｅｐｓｉｎ  Ｂ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｉｎ  ｉｎｖａｓｉｖｅ  ｔｕｍｏｒ  ｒｅｇｉｏｎｓ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｃｏｌｏｎ  ｃａｎｃｅｒ  ｓａｍｐｌｅｓ．Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．，１５４：１２８５−１２９０，１９９４．
２５．  Ｚｈｕａｎｇ，Ｚ．，Ｂｅｒｔｔｈｅａｕ，Ｐ．，Ｅｍｍｅｒｔ−Ｂｕｃｋ，Ｍ．Ｒ．，Ｌｉｏｔｔａ，Ｌ．Ａ．，Ｇｎａｒｒａ．Ｊ．，Ｌｉｎｅｈａｎ，Ｗ．Ｍ．，Ｌｕｂｅｎｓｋｙ，Ｉ．Ａ．Ａ  ｎｅｗ  ｍｉｃｒｏｄｉｓｓｅｃｔｉｏｎ  ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ  ｆｏｒ  ａｒｃｈｉｖａｌ  ＤＮＡ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｃｅｌｌ  ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ  ｉｎ  ｌｅｓｉｏｎｓ  ｌｅｓｓ  ｔｈａｎ  ｏｎｅ  ｍｉｌｌｉｍｅｔｅｒ．Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．，１４６：６２０−６２５，１９９５．
２６．  Ｚｈｕａｎｇ，Ｚ．，Ｍｅｒｉｎｏ．Ｍ．Ｊ．，Ｃｈｕａｑｕｉ，Ｒ．，Ｌｉｏｔｔａ．Ｌ．Ａ．，ａｎｄ  Ｅｍｍｅｒｔ−Ｂｕｃｋ．Ｍ．Ｒ．Ｉｄｅｎｔｉｃａｌ  ａｌｌｅｌｉｃ  ｌｏｓｓ  ｏｎ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ  １１ｑ１３  ｉｎ  ｍｉｃｒｏｄｉｓｓｅｃｔｅｄ  ｉｎ  ｓｉｔｕ  ａｎｄ  ｉｎｖａｓｉｖｅ  ｈｕｍａｎ  ｂｒｅａｓｔ  ｃａｎｃｅｒ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，５５：４６７−４７１，１９９５．
２７．  Ｈｕｎｇ，Ｔ．，Ｍａｋ，Ｋ．，ａｎｄ  Ｆｏｎｇ，Ｋ．Ａ．Ａ  ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ  ｅｎｈａｎｃｅｒ  ｆｏｒ  ｐｏｌｙ  ｍｅｒａｓｅ  ｃｈａｉｎ  ｒｅａｃｔｉｏｎ．Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓ．，１８：４９５３，１９９０．
２８．  Ｌｉｔｔ，Ｍ．，Ｈａｕｇｅ，Ｘ．，ａｎｄ  Ｓｈａｒｍａ，Ｖ．Ｓｈａｄｏｗ  ｂａｎｄｓ  ｓｅｅｎ  ｗｈｅｎ  ｔｙｐｉｎｇ  ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ  ｄｉｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｒｅｐｅａｔｓ：ｓｏｍｅ  ｃａｕｓｅｓ  ａｎｄ  ｃｕｒｅｓ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１５：２８０−２８４，１９９３．
２９．  Ｍａｒｋｕｓ，Ｎ．Ｒ．，Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ，Ｓ．Ａ．，ａｎｄ  Ｔｏｐａｌｉａｎ．Ｓ．Ｌ．Ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｃｙｔｏｋｉｎｅ  ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ  ｂｙ  ｍｅｌａｎｏｍａ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ＣＤ４+Ｔ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ．Ｊ．Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｒｅｓ．，１５：７３９−７４６，１９９５．
３０．  Ｂｕｒｒｏｗｓ，Ｍ．Ｔ．，Ｂｕｒｎｓ，Ｊ．Ｅ，ａｎｄ  Ｓｕｚｕｋｉ，Ｙ．Ｓｔｕｄｉｅｓ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｇｒｏｗｔｈ  ｏｆ  ｃｅｌｌｓ．Ｔｈｅ  ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｂｌａｄｄｅｒ  ａｎｄ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ｔｕｍｏｒｓ  ｏｕｔｓｉｄｅ  ｔｈｅ  ｂｏｄｙ．Ｊ．Ｕｒｏｌ．１：３，１９１７．
３１．  Ｈｏｒｏｓｚｅｗｉｃｚ，Ｊ．Ｓ．，Ｌｅｏｎｇ，Ｓ．Ｓ．，Ｋａｗｉｎｓｋｉ，Ｅ．，Ｋａｒｒ，Ｊ．Ｐ．，Ｒｏｓｅｎｔｂａｌ，Ｈ．，Ｃｈｕ，Ｔ．Ｍ．，Ｍｉｒａｎｄ，Ｅ．Ａ．，ａｎｄ  Ｍｕｒｐｈｙ，Ｇ．Ｐ．ＬＮＣａＰ  ｍｏｄｅｌ  ｏｆ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，４３：１８０９−１８１８，１９８３．
３２．  Ｈｅｎｔｔｕ，Ｐ．，Ｌｉａｏ，Ｓ．，ａｎｄ  Ｖｉｈｋｏ，Ｐ．Ａｎｄｒｏｇｅｎｓ  ｕｐ−ｒｅｇｕｌａｔｅ  ｔｈｅ  ｈｕｍａｎ  ｐｒｏｓｔａｔｅ  ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ａｎｔｉｇｅｎ  ｍｅｓｓｅｎｇｅｒ  ｒｉｂｏｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ（ｍＲＮＡ），ｂｕｔ  ｄｏｗｎ−ｒｅｇｕｌａｔｅ  ｔｈｅ  ｐｒｏｓｔａｔｉｃ  ａｃｉｄ  ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ  ｍＲＮＡ  ｉｎ  ｔｈｅ  ＬＮＣａＰ  ｃｅｌｌ  ｌｉｎｅ．Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ，１３０：７６６−７７２，１９９２．
３３．  Ｃｏｏｎｅｙ，Ｅ．Ｌ．ｅｔ  ａｌ  １９９１  Ｌａｎｃｅｔ  Ｖｏｌ．３３７：５６７．
３４．  Ｗｏｌｆｆ，Ｊ．Ａ．ｅｔ  ａｌ  １９９０  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｖｏｌ．２４７：１４６５．
３５．  Ｄａｖｉｓ，Ｈ．Ｌ．ｅｔ  ａｌ  １９９３  Ｈｕｍ，Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ，Ｖｏｌ．４：１５１．
３６．  Ｙａｎｇ，Ｎ．Ｓ．ｅｔ  ａｌ  １９９０  Ｐｒｏｃ，Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ，Ｓｃｉ  ＵＳＡ  Ｖｏｌ．８７：９５６８．
３７．  Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｒ．Ｓ．ｅｔ  ａｌ  １９９１  Ｐｒｏｃ，Ｎａｔ'ｌ−Ａｃａｄ，Ｓｃｉ  ＵＳＡ  Ｖｏｌ．８８：２７２６．
３８．  Ｆｙｎａｎ，Ｅ．Ｒ．ｅｔ  ａｌ  １９９５  Ｐｒｏｃ，Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ，Ｓｃｉ  ＵＳＡ  Ｖｏｌ．９０：１１４７８．
３９．  Ｅｉｓｅｎｂｒａｕｍ，Ｍ．Ｄ．ｅｔ  ａｌ  １９９３  ＤＮＡ  ａｎｄ  ＣｅｌｌＢｉｏｌ，Ｖｏｌ．１２：７９１．
４０．  Ｆｕｌｌｅｒ，Ｄ．Ｈ．ｅｔ  ａｌ  １９９４  ＡＩＤＳ  Ｒｅｓ，Ｈｕｍ．Ｒｅｔｒｏｖｉｒ．Ｖｏｌ  １０（Ｉｌ）：１４３３．
４１．  Ａｃｓａｄｉ，Ｇ．ｅｔ  ａｌ  １９９１  Ｎａｔｕｒｅ  Ｖｏｌ．３５２：８１５．
４２．  Ｍａｔｔｅｕｃｃｉ，Ｍ．Ｄ．ｅｔ  ａｌ  １９９６，Ｎａｔｕｒｅ  ｖｏｌ．３８４：２０−２２．
４３．  Ｐｅｒｋｕｓ  ｅｔ  ａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９８５  Ｖｏｌ．２２９：９８１−９８４．
４４．  Ｋａｕｆｍａｎ  ｅｔ  ａｌ  Ｉｎｔ，Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ  １９９１，Ｖｏｌ．４８：９００−９０７．
４５．  Ｍｏｓｓ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９１  Ｖｏｌ．２５２：１６６２．
４６．  Ｓｍｉｔｈ  ａｎｄ  Ｍｏｓｓ  ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  Ｎｏｖ／Ｄｅｃ  １９８４，ｐ．３０６−３１２．
４７．  Ｕ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ  Ｎｏ．４，７３８，８４６．
４８．  Ｓｕｔｔｅｒ  ａｎｄ  Ｍｏｓｓ  Ｐｒｏｃ，Ｎａｔ'１  Ａｃａｄ．Ｓｃｉ  ＵＳＡ  １９９２  Ｖｏｌ．８９：１０８４７−１０８５１．
４９．  Ｂａｘｂｙ  ａｎｄ  Ｐａｏｌｅｔｔｉ  Ｖａｃｃｉｎｅ  １９９２  Ｖｏｌ．１０：８−９．
５０．  ＰＣＴ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ  Ｎｏ．ＷＯ９４／１６７１６  ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ  Ａｕｇｕｓｔ  ４，１９９４．
５１．  Ｓｈｏｒｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，３ｒｄ  ｅｄ．Ｆ．Ａｕｓｕｂｅｌ  ｅｔ  ａｌ，ｅｄｓ．Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  &  Ｓｏｎ，Ｉｎｃ．，１９９５．
５２．  Ｂａｓｉｃ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，２ｎｄ  ｅｄ．Ｌ．Ｄａｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ，ｅｄｓ．
Ａｐｐｌｅｔｏｎ  &  Ｌａｎｇｅ，１９９４．
【図面の簡単な説明】
【０１０５】
【図１】図１Ａおよび１Ｂ。死化した前立腺上皮細胞株の形態および増殖に関する特性。（１Ａ）は前立腺癌標本より生成された培養細胞１５１０−ＣＰの永続的な増殖を達成するためにレトロウィルスＬＸＳＮ１６Ｅ６Ｅ７による不死化が必要であった。細胞は継代３において形質導入するか（１５１０−ＣＰＴＸ）、または形質導入せず（１５１０−ＣＰＮＶ）、そして継代５及び１０のそれぞれの時期に２４穴プレート中での増殖を観察した。（１Ｂ）は１０培養継代後の１５１０−ＣＰＴＸの顕微鏡写真（２００倍、位相差顕微鏡）。この培養像は良性または悪性の標本から生成されたその他の前立腺上皮細胞株に典型的なものである。
【図２】良性および悪性の前立腺細胞による組織内でのＰＳＡの発現。患者１５１０からの前立腺全摘による正常な前立腺上皮（二重矢印）とともに浸潤した前立腺癌（矢印）の領域を含むパラフィン封埋組織切片。黒い色素は抗−ＰＳＡモノクロナール抗体の結合を示している。正常な前立腺上皮細胞によるＰＳＡの発現は強く一様であるのに対し、癌細胞による発現は弱く、一様でない。間にあるストロマ細胞はＰＳＡを発現していない。（２００倍）。
【図３】ヘテロ接合性の消失解析に用いられたミクロサテライト指標の相対的な位置を同定した染色体８ｐの遺伝学的地図。
【図４】患者１５４２より得られた新鮮な細胞および培養された細胞上のミクロサテライトＤ８Ｓ１３６のＰＣＲ解析。レーン１、１５４２−ＮＰＴＸ、継代２６。レーン２、微小切除された新鮮な腫瘍#１１。レーン３、クローン化されていない１５４２−ＣＰ３ＴＸ、継代２１。レーン４−６、１５４２−ＣＰ３ＴＸの８継代目に由来する腫瘍クローン１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．１、１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．３および１５４２−ＣＰ３ＴＸ．８．４。
【図５】５Ａ−５Ｆ。ＩＦＮ−γは１５４２−ＣＰ３ＴＸの表面にＭＨＣクラスＩおよびＩＩ分子の増強された発現を誘導する。未処理の１５４２−ＣＰ３ＴＸ細胞は中程度の量のクラスＩ分子を発現している（モノクロナール抗体Ｗ６／３２による染色）（５Ａ）が検出できる量のクラスＩＩ分子は発現していない（モノクロナール抗体Ｌ２４３）（５Ｂ）。ＩＦＮ−γ５００Ｕ／ｍｌに３日間さらされた後ではクラスＩの発現は増大し（５Ｃ）、クラスＩＩの発現は誘導されている（５Ｄ）。自家のＥＢＶ−形質転換Ｂ細胞によるＭＨＣの発現が比較のために示されている（５Ｅおよび５Ｆ）。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【配列表】
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