(57)【要約】【課題】  ドライアイおよび／またはドライマウスを治療するための組成物を提供する。【解決手段】  クラステリンを産生している細胞を含んでなる治療用組成物をドライアイおよび／またはドライマウスの治療に用いる。クラステリンを産生している細胞は、ＳＰ細胞またはクラステリンをコードする遺伝子を導入された細胞を用いることができる。また、有効成分としてクラステリンを含んでなる治療用組成物を酸化ストレスを介して生じる疾患の治療に用いる。【選択図】        なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
クラステリンを産生している細胞を含んでなる、ドライアイおよび／またはドライマウスを治療するための治療用組成物。
【請求項２】
クラステリンを産生している前記細胞が、ＳＰ細胞である請求項１に記載の治療用組成物。
【請求項３】
クラステリンを産生している前記細胞が、クラステリンをコードする遺伝子を導入された細胞である請求項１に記載の治療用組成物。
【請求項４】
クラステリンを産生している前記細胞が、クラステリンをコードする遺伝子を導入された繊維芽細胞である請求項１に記載の治療用組成物。
【請求項５】
有効成分としてクラステリンを含んでなる、酸化ストレスを介して生じる疾患を治療するための治療用組成物。
【請求項６】
酸化ストレスを介して生じる疾患が、ドライアイおよび／またはドライマウスである治療用組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ドライアイおよび／またはドライマウスを治療するための組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
種々の疾患により失われた組織を再生するために、幹細胞による再生医療の応用が検討されている。糖尿病やパーキンソン病などの疾患モデル動物では、胚性幹細胞（Embryonic stem cell：ＥＳ細胞）、骨髄細胞、組織幹細胞を用いた組織再生による治療の奏効が報告されており、その臨床応用が期待される。これらの幹細胞を用いた治療法は、難治性疾患を初めとした、治療法が未確立の疾患に対する新たな治療法となり得ると考えられており、多数の疾患への適用が試みられている。
【０００３】
眼科領域では、すでに、スティーブン・ジョンソン症候群や角膜化学傷、角膜熱傷などによる角膜障害に対して、角膜幹細胞移植を応用し効果が得られている。スティーブン・ジョンソン症候群では角膜障害と共に涙液分泌障害も認められるため、重篤な乾燥性角膜炎（いわゆるドライアイ）の原因となることが多い。ドライアイは、シェーグレン症候群や頭頸部悪性腫瘍の放射線治療後にもみられ、これらの疾患では唾液分泌障害によるドライマウス（口腔乾燥症）を呈することも知られている。シェーグレン症候群では、ドライアイの症状が持続し、重篤な場合は失明に至る可能性があり、またドライマウス症状を合併することにより、齲食、歯周病、種々の細菌感染症や誤嚥性肺炎に至り、著しいquality of life（ＱＯＬ）の低下をきたす。従って、その根治療法の確立は、国民のＱＯＬの向上に対する急務である。
【０００４】
ドライアイ等の治療には、人工涙液を点眼することによるものが多く、様々な組成の人工涙液が開発されている（例えば、特許文献１などを参照）。近年では血清を用いる方法が注目されつつあり、特にドライアイ患者の症状改善に、優れた効果があることが知られている（例えば、特許文献２参照）。しかし、このような外部から水分を補う治療は、自覚症状を軽減させる対症療法でしかなく、症状を一時的に軽減させるだけに過ぎなかった。
【特許文献１】特許公開２０００−１５９６５９号公報
【特許文献２】特許公開２００２−２９９７７号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
したがって、本発明は、重篤なドライアイ及びドライマウスの症状を緩和し、または継続的に抑えるための治療組成物を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは、組織幹細胞に富んだ分画として知られるＳＰ細胞（ｓｉｄｅ  ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ  ｃｅｌｌ）を涙腺及び唾液腺に移入することにより、涙液及び唾液分泌量が回復することがわかった。また、涙腺及び唾液腺へのＳＰ細胞移入による効果は、主にＳＰ細胞から分泌されるクラステリン（ｃｌｕｓｔｅｒｉｎ）によることを明らかにした。
【０００７】
したがって、本発明は、クラステリンを産生している細胞を含んでなる、ドライアイおよび／またはドライマウスを治療するための治療用組成物を提供する。
【０００８】
クラステリンを産生している前記細胞は、ＳＰ細胞またはクラステリン遺伝子を導入された任意の細胞を用いることができる。クラステリン遺伝子を導入された細胞は、繊維芽細胞を例示できる。
【０００９】
さらに、本発明は、有効成分としてクラステリンを含んでなる、酸化ストレスを介して生じる疾患を治療するための治療用組成物を提供する。酸化ストレスを介して生じる疾患の例としては、ドライアイおよびドライマウスが例示できるが、その他、白内障、ガン、膠原病、リウマチなどに加えて、糖尿病や虚血性心疾患、動脈硬化等の生活習慣病、腎不全も含まれる。
【発明の効果】
【００１０】
本発明のドライアイ及びドライマウスの治療用組成物によれば、従来治療が困難であったドライアイ及びドライマウスを効果的に治療することができる。また、クラステリンを有効成分として含む治療用組成物により、酸化ストレスを介して生じる疾患を治療することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
本発明の細胞含有治療用組成物により治療可能ないわゆるドライアイは、シンプルドライアイ（涙液減少症）、スティーブン・ジョンソン症候群や角膜化学傷、角膜熱傷などによる角膜障害、眼乾燥症、乏涙症、シェーグレン症候群、乾性角結膜炎、スティーブン−ジェンソン症候群、眼類天疱胞、眼瞼縁炎、白内障術後や、アレルギー性結膜炎に伴うドライアイ等である。本発明の組成物は、特に重篤なドライアイに対して有効である。また、本発明の細胞含有治療用組成物により治療可能ないわゆるドライマウス（口腔乾燥症）は、スティーブン・ジョンソン症候群、シェーグレン症候群に伴うドライマウスなどが上げられる。その他、糖尿病、腎疾患などの全身疾患、薬の副作用、腫瘍、炎症、老化、中枢や末梢の神経障害、ストレス、頭頸部悪性腫瘍の放射線治療後のドライアイ及びドライマウスにも、本発明の組成物は有効である。
【００１２】
本発明の治療用組成物に含まれる細胞は、治療を受ける本人の細胞であっても、治療を受ける本人以外の培養細胞株であっても使用することができる。しかし、非自己の細胞を移植すると拒絶反応により宿主の組織に生着しない可能性が高いため、本人由来の細胞が好ましい。また、用いることのできる細胞は、クラステリンを発現している細胞であればよく、例えば、ＳＰ細胞やクラステリン遺伝子を恒常的に発現するよう遺伝子操作した細胞（例えば、線維芽細胞など）や、診断目的で患者より採取した涙腺・唾液腺上皮細胞あるいは口腔粘膜上皮などを用いることができる。
【００１３】
クラステリンは、アポリポプロテインＪとも呼ばれる抗炎症性の糖タンパク質であるが（Ｊｅｎｎｅ Ｄ.Ｅ. , Ｔｓｃｈｏｐｐ Ｊ. Ｃｌｕｓｔｅｒｉｎ： ｔｈｅ ｉｎｔｒｉｇｕｉｎｇ ｇｕｉｓｅｓ ｏｆ ａ ｗｉｄｅｌｙ ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ. Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ. Ｓｃｉ. １７: １５４−１５９（１９９２））、その機能は十分には解明されていない。クラステリンは、遺伝子は公知である（例えば、ＥＭＢＬ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．ＡＹ３４１２４４、Ｇｅｎｅ Ｂａｎｋ ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ. ＮＭ＿００１８３１、Ｇｅｎｅ  Ｂａｎｋ ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ. ＮＭ＿２０３３３９、Ｌａｋｉｎｓ ＪＮ, Ｐｏｏｎ Ｓ, Ｅａｓｔｅｒｂｒｏｏｋ-Ｓｍｉｔｈ ＳＢ, Ｃａｒｖｅｒ ＪＡ, Ｔｅｎｎｉｓｗｏｏｄ ＭＰ, Ｗｉｌｓｏｎ ＭＲ. Ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｔｈａｔ ｃｌｕｓｔｅｒｉｎ ｈａｓ ｄｉｓｃｒｅｔｅ ｃｈａｐｅｒｏｎｅ  ａｎｄ ｌｉｇａｎｄ ｂｉｎｄｉｎｇ ｓｉｔｅｓ. Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ. ４１：２８２−９１（２００２））。
【００１４】
クラステリンをコードする遺伝子を導入された細胞は、クラステリンをコードする遺伝子に適当なプロモーターを連結させた発現ベクターを細胞に遺伝子導入して作成することができる。プロモーターは、涙腺および唾液腺でクラステリン遺伝子を発現させることができる限り、構成的プロモーターであっても誘導的プロモーターであってもよい。例えば、ＣＡＧ、ＣＭＶ、ＲＳＶ、Ｌａｍａ６、ａｍｙｌａｓｅのプロモーターなどを用いることができる。また、用いることのできるベクター  は、例えば、ｐＣＡＧＩｐｕｒｏ、ｐｃＤＮＡ３．１、ＰＲｃ/ＲＳＶ、レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクターなどが挙げられる。クラステリン遺伝子を含むベクターの細胞への導入には、公知の方法、例えば、注入、エレクトロポレーション、カルシウムクロライド法、ＤＥＡＥ−デキストラン法、リポフェクション、インフェクションなどを用いることができる。
【００１５】
涙腺及び唾液腺への細胞の移入にあたり、例えば、１×１０3〜１×１０6個、好ましくは、５×１０3〜１×１０4個の細胞を移入することができるが、患者の症状に応じて適宜変更可能である。
【００１６】
また、本発明によるドライアイおよび／またはドライマウスの治療用組成物は、有効成分としてクラステリンを０．００１ｍｇ〜１ｍｇ/ｍｌ含む。本発明の治療用組成物は、クラステリン以外の組成物、例えば、防腐剤、保存剤、安定剤等を含んでもよく、また、公知の抗酸化作用を有する薬剤を更に含んでも良い。クラステリンを有効成分として含む治療用組成物は、涙腺および唾液腺に局所投与することにより、ドライアイおよびドライマウスの症状を緩和または軽減できる。この治療要素生物の剤型として、軟膏、クリーム、ローション、エアロゾル、スプレー等が挙げられる。
【実施例】
【００１７】
＜ＳＰ細胞の採取＞
マウス涙腺及び唾液腺から組織幹細胞に富んだ分画として知られるＳＰ細胞を採取し、ＳＰ細胞特異的に発現する遺伝子をＤＮＡマイクロアレイにより同定した。
【００１８】
６週齢のマウスから、涙腺及び唾液腺組織を摘出し、コラゲナーゼ及びヒアルロニダーゼにより細胞を解離させ、フィルターメッシュにより上皮塊を分離した。得られた上皮塊を、０．２５％のトリプシンと１ｍＭのＥＤＴＡにより１０分間処理し、機械的に解離させた。さらに、解離した上皮細胞の一部をトリパンブルーにより染色して、生存率が９０％以上であることを確認した。残りの上皮細胞を、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２により染色した後、ＵＶレーザーを照射し、ＦＡＣＳにより４５０ｎｍと６７５ｎｍの２波長で展開した。その結果、蛍光強度の低い特徴的な細胞集団として得られるＳＰ細胞が検出された（図１ａ）。
【００１９】
また、これらの細胞集団は、ＡＢＣトランスポーター阻害剤であるレセルピンで前処理することにより消失することが確認された（図１ｂ）。全体の細胞に対するＳＰ細胞の割合は、涙腺及び唾液腺ともに、ほぼ０．５〜１．０％であった。
【００２０】
＜涙液・唾液分泌障害マウスへのＳＰ細胞の移入＞
放射線照射により、涙液・唾液分泌障害を呈するマウスを作成し、涙腺及び唾液腺にＳＰ細胞を移入して、涙液及び唾液の分布の回復が起こるかどうかを検討した。
マウスの涙腺及び唾液腺に１５Ｇｙの放射線照射を行い、照射１週間後に涙液及び唾液量を測定して、分泌量の減少したことを確認して涙液・唾液分泌障害マウスとした。
ＧＦＰ（Ｇｒｅｅｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｐｒｏｔｅｉｎ；緑色蛍光タンパク質）をコードする遺伝子をトランスジェニックしたマウスから採取した、５×１０3〜１×１０4個のＳＰ細胞を、放射線照射２週間後の涙液・唾液分泌障害マウスの涙腺及び唾液腺に移入した。移入後、経時的にムスカリン性アセチルコリン受容体のアゴニストであるピロカルピン投与による涙液・唾液分泌量を測定して、ＳＰ細胞移入による効果を検討した。
【００２１】
涙液及び唾液ともに移植後１ヶ月での分泌量の回復が認められ、その回復効果は持続し、移入後８週でも、涙液および唾液の分泌量の回復が認められた（図２）。ＳＰ細胞が移入された涙腺及び唾液腺を摘出して、蛍光顕微鏡により観察した結果、腺房細胞様構造をとるＧＦＰ陽性細胞の存在が認められた。
【００２２】
しかし、確認されたＧＦＰ陽性細胞（すなわち、移入されたＳＰ細胞）数と涙液及び唾液の分泌量との間に、明らかな相関はなく、移入されたＳＰ細胞から分泌される液性因子が、放射線照射後に残存する腺房細胞の涙液及び唾液分泌に関与している可能性が考えられた。
【００２３】
＜ＳＰ遺伝子特異的に発現する遺伝子の解析＞
移入したＳＰ細胞から分泌される液性因子が、残存する腺房細胞の涙液及び唾液分泌を促進する可能性を検討するために、ＳＰ細胞特異的に発現している遺伝子をマイクロアレイにより解析した。
【００２４】
ＳＰ細胞に特異的に発現される各種の遺伝子が解析されたが、中でも、クラステリン（ｃｌｕｓｔｅｒｉｎ）をコードする遺伝子が、涙液及び唾液腺に共通して高い発現が示されていた。
【００２５】
＜クラステリンの機能解析＞
クラステリンの機能を解析するために、クラステリンをコードする遺伝子をマウス線維芽細胞株（ＳＴＯ）に導入して、クラステリンを恒常的に発現する細胞株ＳＴＯｃｌｕを作成した。
【００２６】
ＳＴＯｃｌｕ細胞をＨ2Ｏ2により刺激した後、生細胞数をトリパンブルーにより計測した。Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン及びカタラーゼを活性酸素種のインヒビターとして用いた。結果を図３に示す。Ｈ2Ｏ2により刺激した野生型ＳＴＯ細胞に比べて、ＳＴＯｃｌｕ細胞の生細胞数が有意に高いことが認められた。
【００２７】
Ｈ2Ｏ2は以下の反応により、ヒドロキシラジカルを介して細胞を障害することが知られている。
【数１】
2006335684.tif 000002
【００２８】
図３から、クリスタリンがヒドロキシラジカルを含む活性酸素種（ＲＯＳ）を除去することにより、細胞障害を抑制している可能性が想定された。クリスタリンの細胞障害に対する機能を解析するため、ＳＴＯ細胞及びＳＴＯｃｌｕ細胞それぞれについて、Ｈ2Ｏ2刺激後に誘導される細胞内の活性酸素の量を測定した。結果を図４に示す。
【００２９】
その結果、ＳＴＯｃｌｕ細胞は、ＳＴＯ細胞と比べて、Ｈ2Ｏ2により誘導された活性酸素種の量が少ないことが示され、クリスタリンが活性酸素種（ＲＯＳ）の除去に関与していることが示唆された。
【００３０】
＜培地中に分泌されたクラステリンの機能解析＞
ＳＴＯｃｌｕ細胞では培養上清中に分泌型のクラステリンの存在が認められた。この分泌型のクラステリンがＨ2Ｏ2刺激による細胞障害に対して抑制的に働く可能性を検証するために、Ｈ2Ｏ2刺激直前に培地交換を行った場合と行わなかった場合における生細胞数の経時的変化を検討した。
ＳＴＯｃｌｕ細胞を２つの群に分け、一方は培地交換を行った直後にＨ2Ｏ2刺激を行い、生細胞数を計測した。他方は、上記同様にＳＴＯｃｌｕ細胞をＨ2Ｏ2により刺激した後、生細胞数を計測した。培地交換の直後にＨ2Ｏ2刺激を行ったＳＴＯｃｌｕ細胞を図５Ａに、直線に培地交換せずにＨ2Ｏ2刺激を行ったＳＴＯｃｌｕ細胞を図５Ｂに示す。
【００３１】
この結果、ＳＴＯｃｌｕ、Ｍｏｃｋともに生細胞数の増加が認められたが、ＳＴＯｃｌｕでは培地交換を行わなかった場合に相乗的に生細胞数の増加が認められた。このことにより、培地交換により細胞分泌物が失われた場合に比べて、培地交換しなかった場合には、培養上清中に分泌されたクラステリンがＨ2Ｏ2刺激による細胞障害を抑制する機能を果たしていることが示された。
【００３２】
図４と図５に示したこれらの結果から、涙液及び唾液の分泌障害の回復にＳＰ細胞が分泌するクリステリンが関与していることが示された。また、クラステリンの作用は、酸化ストレスからの細胞保護作用であることが示された。すなわち、クラステリン遺伝子導入細胞から産生されるクラステリンはフリーラジカル除去能を有するものといえる。
【図面の簡単な説明】
【００３３】
【図１】Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２による染色及びＵＶレーザー照射によるＳＰ細胞の検出を示す図である。
【図２】ＳＰ細胞移入後８週の涙液および唾液の分泌量の回復を示すグラフである。
【図３】Ｈ2Ｏ2により刺激したＳＴＯ細胞とＳＴＯｃｌｕ細胞の生細胞数（相対値）の比較を示すグラフである。
【図４】Ｈ2Ｏ2刺激後に誘導されるＳＴＯ細胞とＳＴＯｃｌｕ細胞の活性酸素の量の比較を示すグラフである。
【図５】Ｈ2Ｏ2刺激直前にＳＴＯｃｌｕ細胞の培地を交換した場合と培地交換をしない場合との生細胞数の比較を示すグラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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