(57)【要約】【課題】遺伝子破壊の手法を用いて、微生物の抗生物質生産量を２倍以上に増加させる方法、およびこれを用いた抗生物質産生微生物、並びに抗生物質代謝中間体の生産量を増加させる方法を提供する【解決手段】本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法は、ｐＳＬＡ２−Ｌ上のｏｒｆ７９遺伝子を破壊することにより、上記遺伝子を破壊しない場合に対してランカマイシンの生産量を９．５倍に、ランカサイジンの生産量を２倍に増加させることができた。【選択図】図９
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
微生物の遺伝子であって、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、上記微生物の抗生物質生産量を２倍以上に増加させることを特徴とする抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項２】
上記遺伝子はｔｅｔＲ型リセプター遺伝子群に含まれることを特徴とする請求項１に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項３】
上記微生物が放線菌であることを特徴とする請求項１または２に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項４】
上記放線菌がストレプトマイセス・ロチェイであることを特徴とする請求項３に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項５】
上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質が塩基性タンパク質であることを特徴とする請求項１から４のいずれか１項に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項６】
上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質が、以下の（ａ）又は（ｂ）に記載のタンパク質であることを特徴とする請求項１から５のいずれか１項に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
（ａ）配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
（ｂ）配列番号１に示されるアミノ酸配列において、１個又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／または付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質。
【請求項７】
上記遺伝子として、以下の（ｃ）又は（ｄ）に記載の遺伝子が用いられることを特徴とする請求項１から６のいずれか１項に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
（ｃ）配列番号２に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｄ）配列番号２に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズし、かつ、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子。
【請求項８】
上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子が破壊された微生物は、上記遺伝子が破壊されていない微生物と比較して、生合成関連遺伝子の発現が促進されていることを特徴とする請求項１から７のいずれか１項に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項９】
上記生合成関連遺伝子は、以下の（ｅ）から（ｎ）のいずれかに記載の遺伝子であることを特徴とする請求項８に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
（ｅ）配列番号１５に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｆ）配列番号１５に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｇ）配列番号１６に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｈ）配列番号１６に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｉ）配列番号１７に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｊ）配列番号１７に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｋ）配列番号１８に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｌ）配列番号１８に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｍ）配列番号１９に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｎ）配列番号１９に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
【請求項１０】
上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊した遺伝子断片を含むベクターを、微生物に導入する形質転換工程を含んでいることを特徴とする請求項１から９のいずれか１項に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項１１】
さらに、上記ベクターを構築するベクター構築工程を含んでいることを特徴とする請求項１０に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項１２】
上記抗生物質がランカマイシンまたはランカサイジンであることを特徴とする請求項１から１１のいずれか１項に記載の抗生物質産生微生物の生産方法。
【請求項１３】
オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子が破壊された微生物において、さらに、抗生物質の生合成関連遺伝子を破壊することによって抗生物質代謝中間体の生産量を増加させることを特徴とする抗生物質代謝中間体の生産方法。
【請求項１４】
上記抗生物質の生合成関連遺伝子がチトクロムｐ−４５０水酸化酵素をコードする遺伝子であることを特徴とする請求項１３に記載の抗生物質代謝中間体の生産方法。
【請求項１５】
請求項１から１２のいずれか１項に記載の生産方法により生産された抗生物質産生微生物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、遺伝子破壊による抗生物質産生微生物の生産方法およびこれを用いて得られる抗生物質産生微生物、並びに抗生物質代謝中間体の生産方法に関するものであり、特に、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、微生物の抗生物質生産量を増加させる抗生物質産生微生物の生産方法およびこれを用いて得られる抗生物質産生微生物、並びに抗生物質代謝中間体の生産方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
抗生物質の生合成遺伝子クラスターは１９９０年代から数多くクローニング・解析されており、例えば、放線菌Ｓ．ｒｏｃｈｅｉ  ７４３４ＡＮ４株が有する線状プラスミドｐＳＬＡ２−Ｌの全塩基配列（２１０，６１４ｂｐ）が決定され、その上にランカサイジン生合成遺伝子群（ｌｋｃ，ｏｒｆ４−ｏｒｆ１８）が存在することが明らかにされている（図１、特許文献１）。図１は、線状プラスミドｐＳＬＡ２−Ｌの遺伝子地図を示すものである。
【０００３】
上記図１に記載されたｌｋｃクラスター中にはポリケチド生合成を司るポリケチド合成酵素（ＰＫＳ）とペプチド生合成を司る非リボゾーム性ペプチド合成酵素（ＮＲＰＳ）が融合したタンパク質をコードする遺伝子（ｏｒｆ１８）がある。ＰＫＳ−ＮＲＰＳ融合遺伝子は近年になってａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ  ＴＡやｍｙｘｏｔｈｉａｚｏｌ，ａｌｂｉｃｉｄｉｎなどに見出されており、その有効な利用は従来のＰＫＳ遺伝子改変による新規ポリケチド創製の幅を革新的に広げる可能性がある。また、ランカサイジンＰＫＳ遺伝子を詳細に解析すると、通常のモジュール型ＰＫＳと異なり、鎖延長及び修飾に対して繰り返し機能するｉｔｅｒａｔｉｖｅ型ＰＫＳの存在も示唆され、両者の混合物であると考えられている。
【０００４】
また、これまでに、生合成遺伝子を改変したり異種間の遺伝子を組み換えることにより、抗生物質の生合成機構の解析やハイブリッド抗生物質の創製が盛んに行われており、中でも代表的な土壌微生物である放線菌についてはよく研究がなされている。
【０００５】
放線菌における抗生物質生合成の多くは、γ−ブチロラクトン骨格をもつ低分子オートレギュレーターによって制御されており、この制御システムでは、オートレギュレーターがリセプタータンパク質（以下「オートレギュレーターリセプター」と称する）に結合してそれをプロモーターから解離させ、その下流の遺伝子の転写が開始されて生合成が進行する（非特許文献１）。例えば、放線菌のオートレギュレーターリセプターＡｒｐＡはリプレッサーとして働いているが、オートレギュレーターであるＡファクターが結合するとプロモーターから離れ、ＡｒｐＡの標的遺伝子ａｄｐＡの転写が開始される（図２）。
【０００６】
こうして発現した標的遺伝子ａｄｐＡがストレプトマイシン生合成遺伝子群の転写を活性化する。実際、ＡｒｐＡをコードする遺伝子を破壊すると、ストレプトマイシンの生産性が向上することが報告されている（非特許文献２、図３）。図３は、Ｓ．ｇｒｉｓｅｕｓの親株（遺伝子非破壊株；ＷＴ）と、ＡｒｐＡ破壊株（ΔａｒｐＡ）とのストレプトマイシン産生の様子を示すものである。その他、Ｓ．ｖｉｒｇｉｎｉａｅのｔｅｔＲ型リセプタータンパク質であるＢａｒＢをコードする遺伝子を破壊すると、抗生物質の総生産量の変化は少ないが、早期生産が促されることが報告されている（非特許文献３、図４）。
【０００７】
また、抗生物質の生合成に関する研究は、生合成経路の過程で生じている変化を調べるため、主に抗生物質の生合成関連遺伝子を破壊した微生物が蓄積する代謝中間体の精密構造解析によって行われている。
【０００８】
なお、上記ランカサイジンは、１９６６年に大阪府額田の土壌から採取された放線菌Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｒｏｃｈｅｉ  ｖａｒ．ｖｏｌｕｂｉｌｉｓの代謝産物として単離された。この化合物は図５に示したように６員環ラクトンを環内に含む、炭素−炭素結合による特異な１７員環構造を有しており、従来のマクロライド系抗生物質とは全く異なる化学構造である。その化学構造の特異性から活性発現のメカニズムおよび生合成起源に大いに興味が持たれている。ランカサイジンＡ（１）（商品名：セデカマイシンｓｅｄｅｃａｍｙｃｉｎ）は豚赤痢の原因菌Ｔｒｅｐｏｎｅｍａ  ｈｙｏｄｙｓｅｎｔｅｒｉａｅに特異的に作用し溶菌及び変形させるので、豚赤痢の予防及び治療薬として飼料に添加して用いられている（武田薬品から販売）。また、ランカサイジンＣ（２）はコレラ菌Ｖｉｂｒｉｏ  ｃｈｏｌｅｒａｅに対して強力に作用することが知られており、ランカサイジン誘導体のその他の薬理活性にも興味が持たれている。
【特許文献１】ＰＣＴ／ＪＰ０３／０７７６７（国際公開日：２００３年１２月３１日）
【非特許文献１】大西康夫、堀之内末治，化学と生物  Ｖｏｌ．４０，１８５−１９０，（２００２）
【非特許文献２】Yasuo Ohnishi, Shogo Kameyama, Hiroyasu Onaka and Sueharu Horinouchi., Molecular Microbiology 34（１）, 102-111,（１９９９）
【非特許文献３】Kiyoshi Matsuno, Yasuhiro Yamada, Chang-Kwon Lee and Takuya Nihira., Arch. Microbiol. １８１, ５２−５９,（２００４）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
上述のような生合成遺伝子の改変は、しばしば新規抗生物質の生産量の劇的な減少を引き起こす。この問題を解決するために、変異誘発剤処理や紫外線照射などによって野生株に何らかの変異を起こさせ、数千を超えるコロニーをスクリーニングして、大量生産株を得る試みがなされてきた。しかしながら、このようなランダムスクリーニングは偶然性に期待するところが大きく、多大な労力と時間を必要とするという問題がある。
【００１０】
また、抗生物質の生合成研究のためには生合成経路を途中の段階で止めて代謝中間体を取得するため、生合成関連遺伝子の破壊が行われるが、代謝中間体の生産量は、遺伝子を破壊せずに通常の生合成を進めた場合と比較すると著しく減少するため（親株の１０％未満に減少することもよく見受けられる）、代謝中間体の取得自体が非常に困難であるという問題がある。
【００１１】
本発明は上記課題に鑑みてなされたものであって、その目的は、遺伝子破壊の手法を用いて、微生物の抗生物質生産量を２倍以上に増加させる方法、およびこれを用いた抗生物質産生微生物、並びに抗生物質代謝中間体の生産量を増加させる方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明者は、上記課題を解決すべく鋭意検討を行った結果、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、上記遺伝子が破壊された微生物の抗生物質生産量が飛躍的に増加することを見出した。また、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子が破壊された微生物において、さらに、抗生物質の生合成関連遺伝子を破壊すると抗生物質代謝中間体の生産量が飛躍的に増加することを見出して、本発明を完成するに至った。
【００１３】
すなわち、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法は、微生物の遺伝子であって、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、上記微生物の抗生物質生産量を２倍以上に増加させることを特徴としている。
【００１４】
また、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記遺伝子はｔｅｔＲ型リセプター遺伝子群に含まれることが好ましい。
【００１５】
さらに、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記微生物が放線菌であることが好ましい。
【００１６】
さらに、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記微生物がストレプトマイセス・ロチェイであることが好ましい。
【００１７】
また、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記タンパク質が塩基性タンパク質であることが好ましい。
【００１８】
さらに、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記タンパク質が、以下の（ａ）又は（ｂ）記載のタンパク質であることが好ましい。
（ａ）配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
（ｂ）配列番号１に示されるアミノ酸配列において、１個又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／または付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質。
【００１９】
また、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記遺伝子として、以下の（ｃ）又は（ｄ）記載の遺伝子が用いられることが好ましい。
（ｃ）配列番号２に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｄ）配列番号２に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズし、かつ、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子。
【００２０】
後述するように、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質（以下「非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質」とも称する）をコードする遺伝子と、オートレギュレーター生産遺伝子と相同性のある遺伝子とを破壊して構築した二重遺伝子破壊株は抗生物質を生産せず、非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子のみを破壊した単独遺伝子破壊株の抗生物質生産量は顕著に増加した。このことから、上記非リプレッサー遺伝子のみを破壊した単独遺伝子破壊株を構築すれば、微生物の抗生物質生産量を増加させることができると考えられる。
【００２１】
本発明は、微生物の上記非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子を破壊し、抗生物質生産量を２倍以上に増加させるものであるので、実用上有用なレベルで微生物の抗生物質生産量を増加させることができる。
【００２２】
また、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子が破壊された微生物は、上記遺伝子が破壊されていない微生物と比較して、生合成関連遺伝子の発現が促進されていることが好ましい。
【００２３】
さらに、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記生合成関連遺伝子は、以下の（ｅ）から（ｌ）のいずれかに記載の遺伝子であることが好ましい。
（ｅ）配列番号１５に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｆ）配列番号１５に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｇ）配列番号１６に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｈ）配列番号１６に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｉ）配列番号１７に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｊ）配列番号１７に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｋ）配列番号１８に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｌ）配列番号１８に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
【００２４】
後述する実施例に示すように、非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子が破壊された微生物では、上記遺伝子が破壊されていない微生物と比較して、多種類の生合成関連遺伝子の発現が促進されていることから、上記遺伝子が破壊されることにより微生物の代謝活性が高められると考えられる。抗生物質の生産活性も代謝活性の一つであることから、上記遺伝子が破壊された微生物では、抗生物質生産量を飛躍的に増加させることができるものと考えられる。
【００２５】
また、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊した遺伝子断片を含むベクターを、微生物に導入する形質転換工程を含んでいることが好ましい。さらに、上記ベクターを構築するベクター構築工程を含んでいることが好ましい。
【００２６】
これにより、上記タンパク質をコードする遺伝子を破壊した遺伝子を微生物内で発現させることができる。それゆえ、微生物の抗生物質生産量を飛躍的に増加させることができる。
【００２７】
また、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記抗生物質がランカマイシンまたはランカサイジンであることが好ましい。
【００２８】
また、本発明に係る抗生物質の代謝中間体の生産方法は、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊した微生物において、さらに抗生物質の生合成関連遺伝子を破壊することによって抗生物質の代謝中間体の生産量を増加させることを特徴としている。さらに、本発明に係る抗生物質の代謝中間体の生産方法では、上記抗生物質の生合成関連遺伝子はチトクロムｐ−４５０水酸化酵素をコードする遺伝子であることが好ましい。
【００２９】
上記構成によれば、予め非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子が破壊されているため微生物は抗生物質を生産しやすい状態になっており、抗生物質の生合成関連遺伝子のみを破壊する場合よりも代謝反応は進行しやすい。したがって、抗生物質の代謝中間体を容易に得ることができ、抗生物質の生合成機構解析に役立てることができる。
【００３０】
また、本発明に係る抗生物質産生微生物は、上記生産方法により生産されたことを特徴としている。上記微生物は、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、抗生物質生産量を２倍以上に増加させたものである。したがって、抗生物質の大量調製に用いることができる。
【発明の効果】
【００３１】
本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法は、以上のように、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、上記微生物の抗生物質生産量を２倍以上に増加させるものである。上記遺伝子を破壊した微生物では、生合成関連遺伝子の発現が著しく促進される。それゆえ、微生物の抗生物質の生産を飛躍的に増加させることができるという効果を奏する。
【００３２】
また、本発明に係る抗生物質の代謝中間体の生産方法は、以上のように、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊した微生物において、さらに抗生物質の生合成関連遺伝子を破壊することによって抗生物質の代謝中間体の生産量を増加させるものである。それゆえ、代謝中間体取得の困難性から、これまで解明が困難であった抗生物質の生合成機構の解析に役立てることができるという効果を奏する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３３】
本発明の一実施形態について説明すれば、以下のとおりであるが、本発明はこれに限定されるものではない。
（本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法）
一実施形態において、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法は、微生物の遺伝子であって、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、上記微生物の抗生物質生産量を２倍以上に増加させるものである。
【００３４】
オートレギュレーターリセプターとは、特有のＤＮＡ結合性へリックス−ターン−へリックス配列をもつＤＮＡ結合タンパク質である。オートレギュレーターリセプターは、微生物の生育初期には二次代謝の開始に必要な遺伝子のプロモーター領域に結合してその転写を抑制するが、生育が進み、オートレギュレーターが一定濃度を超えると、オートレギュレーターと結合することによって構造変化を起こし、ＤＮＡから解離して上記遺伝子の転写を促進するという機能を有している。
【００３５】
本明細書におけるｔｅｔＲ型リプレッサーファミリーのうち、「オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質」は、上記オートレギュレーターリセプターの機能を有していないタンパク質であればよい。したがって、例えば、オートレギュレーターと結合することはできるが、オートレギュレーターが結合してもＤＮＡから解離しないタンパク質や、二次代謝の開始に必要な遺伝子のプロモーター領域に結合するが、オートレギュレーターとは結合しないタンパク質等も、「オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有する」ということができる。
【００３６】
上記オートレギュレーターリセプターは、上記オートレギュレーターとリガンド特異性を示すものであれば特に限定されるものではない。例えば、放線菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ、以下Ｓ．と略記する）Ｓ．ａｖｅｒｍｉｔｉｌｉｓのＡｖａＲ（ＳＡＶ３７０５）、Ｓ．ｖｉｒｇｉｎｉａｅのＢａｒＡ、Ｓ．ａｎｓｏｃｈｒｏｍｏｇｅｎｅｓのＳａｂＲ、Ｓ．ｔｅｎｄａｅのＴａｒＡ、Ｓ．ｃｏｅｌｉｃｏｌｏｒ  Ａ３（２）のＳｃｂＲ（ＳＣＯ６２６５）、Ｓ．ｖｅｎｅｚｕｅｌａｅのＪａｄＲ２、Ｓ．ｒｏｃｈｅｉのＯｒｆ８２（ＳｒｒＡ）、Ｓ．ｐｒｉｓｔｉｎａｅｓｐｉｒａｌｉｓのＳｐｂＲ、Ｓ．ｇｒｉｓｅｕｓのＡｒｐＡ、Ｓ．ｌａｖｅｎｄｕｌａｅ  ＦＲＩ−５のＦａｒＡ、Ｋｉｔａｓａｔｏｓｐｏｒａ  ｓｅｔａｅのＫｓｂＡ等を挙げることができる。
【００３７】
また、上記オートレギュレーターとしては、Ｓ．ｇｒｉｓｅｕｓのＡファクター、Ｓ．ｖｉｒｇｉｎｉａｅのバージニアブタノライド、Ｓ．ｌａｖｅｎｄｕｌａｅのＩＭ−２、Ｓ．ｃｏｅｌｉｃｏｌｏｒ  Ａ３（２）のＳＣＢ１、Ｓ．ｖｉｒｉｄｏｃｈｒｏｍｏｇｅｎｅｓのファクターＩ等を挙げることができる。
【００３８】
上記遺伝子がオートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子であるかどうかは、従来公知の方法によって確認することができる。例えば、二重遺伝子破壊株構築法を挙げることができる。
【００３９】
この方法は、オートレギュレーターの遺伝子またはオートレギュレーターの遺伝子と相同性のある遺伝子と、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子かどうか確認したい遺伝子（以下「確認対象遺伝子」という）とを破壊して二重遺伝子破壊株を構築し、当該破壊株が抗生物質を生産するかどうかを確認する方法である。
【００４０】
もし確認対象遺伝子がオートレギュレーターリセプターとして働いているならば、オートレギュレーター遺伝子を破壊しても抗生物質が生産されるはずであるが、確認対象遺伝子がオートレギュレーターリセプターとして働いていないならば、抗生物質は生産されないため、確認対象遺伝子がオートレギュレーターリセプタータンパク質の機能とは異なる機能を有するタンパク質であるか否かを確かめることができる。
【００４１】
一実施形態において、上記遺伝子はｔｅｔＲ型リセプター遺伝子群に含まれることが好ましい。ｔｅｔＲ型リセプター遺伝子群とは、テトラサイクリンリプレッサー型リセプターをコードする遺伝子群であり、ｔｅｔＲ型リセプターとは、抗生物質耐性に関与する遺伝子群の調節を行うｔｅｔＲファミリーに属すると考えられるタンパク質である。上に例として挙げたオートレギュレーターリセプターもｔｅｔＲ型リセプターに分類されるものであるが、機能未同定のｔｅｔＲ型リセプター遺伝子は多数存在している。本発明によって、ｔｅｔＲ型リセプター遺伝子にコードされ、かつ、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することによって微生物の抗生物質生産を２倍以上に増加させることができることが初めて明らかとなった。
【００４２】
また、上記遺伝子は、２本鎖ＤＮＡのみならず、それを構成するセンス鎖およびアンチセンス鎖といった各１本鎖ＤＮＡやＲＮＡも包含する。ＤＮＡには、例えばクローニングや化学合成技術又はそれらの組み合わせで得られるようなｃＤＮＡやゲノムＤＮＡなどが含まれる。さらに、上記遺伝子は、上記非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする配列以外に、非翻訳領域（ＵＴＲ）の配列やベクター配列（発現ベクター配列を含む）などの配列を含むものであってもよい。
【００４３】
上記遺伝子の破壊に用いる方法は、特に限定されるものではなく、従来公知の方法を用いて行うことができる。すなわち、標的とする遺伝子と相同的な塩基配列を持つが、欠失、挿入などの変異を起こして遺伝子として働き得ないＤＮＡを細胞中に導入して相同的組換えを起こさせ、この変異をゲノム上の遺伝子に取り込ませることにより不活化すればよい。具体的には、辻本豪三、田中利男編「ゲノム機能研究プロトコール、ｐｐ１７３−１８０、羊土社（２０００）」等の方法を用いて行うことができる。
【００４４】
上記微生物は、抗生物質を生産するものであれば特に限定されるものではない。例えば、上述の放線菌の他、細菌、糸状菌、担子菌、不完全菌、酵母等を挙げることができる。中でも放線菌は、現在までに得られている抗生物質のうち約６０％、治療に使用されている抗生物質の９０％以上を生産していることから、抗生物質を生産する能力が高いと考えられ、好ましく用いられる。また、上記放線菌としては特に限定されるものではなく、アクチノミセス目の中でミコバクテリウムを除く一群の細菌であればよい。例えば、Ｓ．ａｍｂｏｆａｃｉｅｎｓ、Ｓ．ａｖｅｒｍｉｔｉｌｉｓ、Ｓ．ｒｏｃｈｅｉ、Ｓ．ｖｉｒｇｉｎｉａｅ、Ｓ．ａｎｓｏｃｈｒｏｍｏｇｅｎｅｓ、Ｓ．ｔｅｎｄａｅ、Ｓ．ｃｏｅｌｉｃｏｌｏｒ、Ｓ．ｖｅｎｅｚｕｅｌａｅ、Ｓ．ｆｒａｄｉａｅ、Ｓ．ｐｒｉｓｔｉｎａｅｓｐｉｒａｌｉｓ、Ｓ．ｇｒｉｓｅｕｓ、Ｓ．ｌａｖｅｎｄｕｌａｅ、Ｓ．ｒｉｍｏｓｕｓ等を挙げることができる。中でも、Ｓ．ｒｏｃｈｅｉ（ストレプトマイセス・ロチェイ）は、抗生物質等の二次代謝物の生産に関与する線状プラスミドｐＳＬＡ２―Ｌの中にランカサイジン生合成遺伝子群が存在していることが明らかにされており（図１、特許文献１）、抗生物質の生産に好適に用いることができることから、特に好ましく用いられる。
【００４５】
本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法によって生産される抗生物質の種類は特に限定されるものではなく、微生物によって作られ、微生物その他の生活細胞の発育その他の機能を阻害する物質であればよい。例えば、β−ラクタム系抗生物質、アミノグリコシド系抗生物質、マクロライド系抗生物質、テトラサイクリン系抗生物質、ペプチド系抗生物質、核酸系抗生物質、ポリエン系抗生物質等を挙げることができる。また、上記抗生物質には半合成抗生物質などの誘導体も含まれる。
【００４６】
上記マクロライド系抗生物質としては、１４員環マクロライドであるランカマイシンや、６員環ラクトンを環内に含む炭素−炭素結合による特異な１７員環構造という、従来のマクロライド系抗生物質とは全く異なる化学構造を有したランカサイジンなどがあげられる。特に活性発現のメカニズムおよび生合成起源に興味を持たれているという観点から、ランカサイジンがより好ましい。活性発現のメカニズムおよび生合成起源に興味が持たれているという観点から、ランカマイシンまたはランカサイジンであることが好ましい。
【００４７】
一実施形態において、上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質は塩基性タンパク質であることが好ましい。ここで「塩基性タンパク質」とは、等電点が生理的ｐＨよりアルカリ側にあるタンパク質をいう（生化学辞典第２版、ｐ２０９、東京化学同人）。一般的に、上記オートレギュレーターリセプターは酸性タンパク質であることが多く、塩基性のリセプタータンパク質としてはｐＳＬＡ２−ＬにコードされたＯｒｆ７９やＳ．ｖｉｒｇｉｎｉａｅに存在するＢａｒＢ等、わずか数例が知られているのみであることから、タンパク質の等電点は上記非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質を選抜する際の指標になりうる。ここで、上記等電点は生理的ｐＨよりアルカリ側であれば特に限定されるものでないが、８以上であることが好ましく、９以上であることがさらに好ましく、１１以上であることが特に好ましい。
【００４８】
微生物の抗生物質生産量は、従来公知の方法を用いて確認することができる。例えば、微生物学的検査方法、クロマトグラフィー法等を用いればよい。微生物学的検査方法としては、抗生物質の量を感受性菌の生育阻止度で定量する方法や、薄層クロマトグラフィー（あるいはろ紙クロマトグラフィー）で混合物質を分離後、検定用の寒天プレートに置き、一定時間インキュベート後、抗生物質の存在位置を知る方法であるバイオオートグラフィー等の方法を用いることができる。
【００４９】
「微生物の抗生物質生産量を２倍以上に増加させる」とは、上記非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子を有する微生物において、上記遺伝子を破壊した微生物の抗生物質生産量が、上記遺伝子を破壊していない微生物の抗生物質生産量の２倍以上であるとの意である。上記「２倍以上」とは、特に限定されるものではないが、３倍以上であることが好ましく、５倍以上であることがさらに好ましく、９倍以上であることが特に好ましい。抗生物質生産量は、上述の公知の方法を用いて測定すればよい。
【００５０】
一実施形態において、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質が以下の（ａ）又は（ｂ）記載のタンパク質であることが好ましい。
（ａ）配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
（ｂ）配列番号１に示されるアミノ酸配列において、１個又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／または付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質。
【００５１】
上記配列番号１に示されるアミノ酸配列は、放線菌の線状プラスミドｐＳＬＡ２−Ｌ上に存在するｔｅｔＲ型リセプター遺伝子であるｏｒｆ７９がコードするタンパク質のアミノ酸配列である。上記非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質は、その一部が改変された変異タンパク質であってもよい。すなわち、上記タンパク質には、（ｂ）配列番号１に示されるアミノ酸配列において、１個又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつ、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質も含まれる。
【００５２】
上記「１個又はそれ以上のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加された」とは、特に限定されるものではないが、部位特異的突然変異誘発法等の公知の変異タンパク質作製法により置換、欠失、挿入、及び／又は付加できる程度の数（好ましくは１０個以下、より好ましくは７個以下、さらに好ましくは５個以下）のアミノ酸が置換、欠失、挿入、及び／又は付加されるものであることが好ましい。
【００５３】
このように、上記（ｂ）のタンパク質は、上記（ａ）のタンパク質の変異タンパク質である。なお、ここでいう「変異」は、主として公知の変異タンパク質作製法により人為的に導入された変異を意味するが、天然に存在する同様の変異タンパク質であってもよい。
【００５４】
以上説示した上記タンパク質は、アミノ酸がペプチド結合してなるポリペプチドであればよいが、これに限定されるものではなく、ポリペプチド以外の構造を含む複合タンパク質であってもよい。したがって、上記タンパク質は、既に説明した構造以外に、他の構造を含む複合タンパク質であっても良い。ここでいうポリペプチド以外の構造としては、糖鎖やイソプレノイド基等を挙げることができるが、特に限定されるものではない。
【００５５】
また、上記タンパク質は、付加的なポリペプチドを含むものであってもよい。このようなポリペプチドが付加される場合としては、例えば、ＨｉｓやＭｙｃ、Ｆｌａｇ等によって上記タンパク質がエピトープ標識されているような場合が挙げられる。
【００５６】
上記非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子には、当該遺伝子の変異体が含まれる。変異体は、天然の対立遺伝子変異体のように、天然に生じ得る。「対立遺伝子変異体」によって、生物の染色体上の所定の遺伝子座を占める遺伝子のいくつかの交換可能な形態の１つが意図される。天然に存在しない変異体は、例えば当該分野で周知の変異誘発技術を用いて生成され得る。
【００５７】
このような変異体としては、上記タンパク質をコードする遺伝子の塩基配列において１または数個の塩基が欠失、置換、または付加した変異体が挙げられる。変異体は、コードもしくは非コード領域、またはその両方において変異され得る。コード領域における変異は、保存的もしくは非保存的なアミノ酸欠失、置換、または付加を生成し得る。
【００５８】
一実施形態において、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記遺伝子として、以下の（ｃ）又は（ｄ）記載の遺伝子が用いられることが好ましい。
（ｃ）配列番号２に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｄ）配列番号２に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズし、かつ、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子。
【００５９】
上記配列番号２に示される塩基配列は、放線菌の線状プラスミドｐＳＬＡ２−Ｌ上に存在するｔｅｔＲ型リセプター遺伝子であるｏｒｆ７９のオープンリーディングフレーム領域である。
【００６０】
なお、上記「ストリンジェントな条件」とは、少なくとも９０％以上の同一性、好ましくは少なくとも９５％以上の同一性、最も好ましくは９７％の同一性が配列間に存在する時にのみハイブリダイゼーションが起こることを意味する。
【００６１】
上記ハイブリダイゼーションは、J. Sambrook et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2nd Ed., Cold Spring Harbor Laboratory（１９８９）に記載されている方法のような従来公知の方法で行うことができる。通常、温度が高いほど、塩濃度が低いほどストリンジェンシーは高くなる（ハイブリダイズし難くなる）。ハイブリダイゼーションの条件としては、従来公知の条件を好適に用いることができ、特に限定されるものではない。
【００６２】
一実施形態において、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法では、上記非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子が破壊された微生物は、上記遺伝子が破壊されていない微生物と比較して、生合成関連遺伝子の発現が促進されていることが好ましい。上記生合成関連遺伝子には、生合成反応を直接司る遺伝子の他、生合成の調節を司る生合成制御遺伝子も含まれる。上記生合成制御遺伝子としては、特に限定されるものではないが、以下の（ｅ）から（ｌ）のいずれかに記載の遺伝子であることが好ましい。また、上記生合成反応を直接司る遺伝子としては、特に限定されるものではないが、以下の（ｍ）または（ｎ）に記載の遺伝子であることが好ましい。
（ｅ）配列番号１５に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｆ）配列番号１５に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｇ）配列番号１６に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｈ）配列番号１６に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｉ）配列番号１７に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｊ）配列番号１７に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｋ）配列番号１８に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｌ）配列番号１８に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
（ｍ）配列番号１９に示される塩基配列をオープンリーディングフレーム領域として有する遺伝子。
（ｎ）配列番号１９に示される塩基配列からなる遺伝子と相補的な塩基配列からなる遺伝子とストリンジェントな条件でハイブリダイズする遺伝子。
であることが好ましい。
【００６３】
非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子が破壊された微生物では、上記遺伝子が破壊されていない微生物と比較して、多種類の生合成関連遺伝子の発現が促進されることが本発明によって明らかとなった。すなわち、上記遺伝子が破壊されることにより多種類の生合成関連遺伝子の発現が著しく増大するため、上記遺伝子が破壊された微生物では、抗生物質生産量を飛躍的に増加させることができるものと考えられる。
【００６４】
また、他の実施形態において、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法は、上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊した遺伝子断片を含むベクターを、微生物に導入する形質転換工程を含んでいる。さらに、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法は、上記ベクターを構築するベクター構築工程を含んでいることが好ましい。
【００６５】
上記ベクター構築工程は、上記オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊した遺伝子断片を含むベクターを構築する工程であれば特に限定されるものではない。上記ベクターとしては、従来公知の種々のベクターを用いることができる。例えば、プラスミド、ファージ、またはコスミド等を用いることができ、導入される微生物や導入方法に応じて適宜選択することができる。具体的には、例えば、ｐＢＲ３２２，ｐＵＣ１９，ｐＵＣ１１９，ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ  ＳＫ＋，Ｓｕｐｅｒ  ＣｏｓIといったベクター等を挙げることができる。
【００６６】
上記ベクターは、発現ベクターであってもよく、発現ベクターでなくてもよい。発現ベクターとする場合は、宿主の種類に応じて適宜プロモーター、ターミネーターを選択すればよい。プロモーターとしては、例えば大腸菌のｌａｃプロモーター、ｔｒｐプロモーター、ｔａｃプロモーター、λＰＬプロモーター、放線菌のＰｔｉｐＡプロモーター等が挙げられる。上記プロモーターは、上記遺伝子を発現しうるように連結され、ベクター内に導入されていればよく、発現ベクターとしての具体的な構造は特に限定されるものではない。
【００６７】
上記ベクターを微生物に導入する形質転換工程は、特に限定されるものではなく、上記ベクターを微生物に導入して、上記遺伝子を破壊した遺伝子断片を発現させるようになっていればよい。上記ベクターを微生物に導入する方法は特に限定されるものではなく、従来公知の方法を用いることができる。例えば、微生物のプロトプラストを調製して上記ベクターと混合し、ＤＮＡを取り込ませる方法や、エレクトロポレーション法等を用いることができる。
【００６８】
他の実施形態において、本発明に係る抗生物質の代謝中間体の生産方法は、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊した微生物において、さらに抗生物質の生合成関連遺伝子を破壊することによって抗生物質の代謝中間体の生産量を増加させるものである。
【００６９】
上記抗生物質の代謝中間体とは、特に限定されるものではなく、抗生物質の代謝開始から終了までの過程において得られる物質であればよい。例えば、ランカマイシンの生合成過程において得られるＬＭ−ＫＡ２８Ａ（１５−デオキシランカマイシン）や、ＬＭ−ＫＫ０１Ａ（８−デオキシランカマイシン）、ＬＭ−ＫＡ２８Ｂ（８，１５−ジデオキシランカマイシン誘導体）等が挙げられる。
【００７０】
また、抗生物質の生合成関連遺伝子についても特に限定されるものではなく、抗生物質の代謝開始から終了までの過程に関与する遺伝子であればよい。例えば、ランカマイシンの生合成過程に関与するチトクロムｐ−４５０水酸化酵素をコードする遺伝子や、デオキシ糖の生合成遺伝子の一つであるｄＴＤＰ−Ｄ−グルコース４，６−デヒドラターゼ等が挙げられる。チトクロムｐ−４５０水酸化酵素をコードする遺伝子の例としては、Ｓ．ｒｏｃｈｅｉのｏｒｆ２６やｏｒｆ３７を挙げることができる。なお、非（オートレギュレーター）リセプタータンパク質をコードする遺伝子については既に説明したとおりである。
【００７１】
他の実施形態において、本発明に係る微生物は、既に説明した本発明に係る生産方法により生産されたものである。上記微生物は、抗生物質を生産するものであれば特に限定されるものではない。例えば、上述の放線菌の他、細菌、糸状菌、担子菌、不完全菌、酵母等を挙げることができる。
【００７２】
（本発明の有用性）
本発明は、微生物の抗生物質生産量または抗生物質の代謝中間体の生産量を増加させることにより一定の効果がある分野に有用性がある。具体例を以下にいくつか挙げるが、本発明の有用性は、これらに限定されるものではない。
【００７３】
本発明は、微生物の遺伝子であって、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、上記微生物の抗生物質生産量を２倍以上に増加させることができることを初めて明らかにした。本発明によれば、従来行われてきたランダムスクリーニングによる抗生物質大量生産株を得る方法のように、偶然に左右されることがなく、確実に抗生物質を大量生産することができる。したがって、抗生物質の生産に要する労力を大幅に軽減することができ、生産コストを大幅に削減することができ、非常に有用である。
【００７４】
また、特に、本発明に係る抗生物質産生微生物の生産方法は、その化学構造の特異性から活性発現のメカニズムおよび生合成起源に大いに興味が持たれており、豚赤痢菌やコレラ菌に対する強力な抗菌活性を示す重要な抗生物質であるランカサイジンの生産量を増加させることができる。上記のような特性を有することから、ランカサイジンおよびその誘導体のその他の薬理活性については今後解明が進展することが期待されているが、本発明によれば、ランカサイジンを安価に大量供給することが可能となる。したがって、その機能解明に寄与するところが大きいと考えられ、非常に有用である。
【００７５】
また、ランカマイシンは１９６０年にＳｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ  ｖｉｏｌａｃｅｏｎｉｇｅｒから初めて単離された中性の１４員環マクロライド化合物であり、その化学構造は世界中で研究が進んでいるエリスロマイシンのそれときわめて類似している。作用機作はリボゾーム５０Ｓサブユニットと結合し、ペプチド転移反応を阻害する、というものであり、Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ａｕｒｅｕｓ  ９１４４，Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｕｂｔｉｌｉｓ  １０７０７，Ｓａｒｃｉｎａ  ｌｕｔｅａ  ９３４１に対してそれぞれ６．２５，６．２５，０．７８μｇ／ｍｌの最小阻止濃度（ＭＩＣ）を有する（Martin, J. R., Egan, R. S., Goldstein, A. W., Mueller, S. L., Helv. Chim. Acta ５９, １８８６−１８９４（１９７６））。
【００７６】
現在、薬剤耐性菌の出現によりエリスロマイシンの誘導体の研究が精力的に進められており、ランカマイシンの生合成遺伝子をエリスロマイシンの生合成遺伝子と置換することによって、ハイブリッド型エリスロマイシンなどを創製することが考えられている。本発明によれば、ランカマイシンを安価に大量供給することが可能となる。したがって、上記ハイブリッド型エリスロマイシンの創製等に寄与するところが大きいと考えられ、非常に有用である。
【００７７】
さらに、本発明に係る抗生物質代謝中間体の生産方法は、抗生物質代謝中間体を容易に取得することができるので、代謝中間体取得の困難さからこれまで困難であった抗生物質の生合成機構の解明に大きく寄与することができ、非常に有用である。
【００７８】
また、本発明に係る抗生物質産生微生物は、本発明に係る生産方法により生産されたものであるため、抗生物質の大量供給に寄与することができ、非常に有用である。
【００７９】
なお、本発明は、以上説示した各構成に限定されるものではなく、特許請求の範囲に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても、本発明の技術的範囲に含まれる。
【００８０】
以下、本発明について、実施例に基づいてより具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。当業者は、本発明の範囲を逸脱することなく、種々の変更、修正、および改変を行うことができる。
【実施例】
【００８１】
（実験方法）
［１．使用菌株、培地等］
放線菌Ｓ．ｒｏｃｈｅｉの親株、すなわち遺伝子破壊を行わない株として、線状プラスミドｐＳＬＡ２−Ｌのみを有する５１２５２株（Kinashi, H., Mori, E., Hatani, A., and Nimi, O., J. Antibiot. 47, 1447-1455．（１９９４））を用いた。
【００８２】
放線菌のＤＮＡ調製は、ＹＥＭＥ液体培地（０．３％ｙｅａｓｔ  ｅｘｔｒａｃｔ,  ０．５％ｐｏｌｙｐｅｐｔｏｎ，  ０．３％ｍａｌｔ  ｅｘｔｒａｃｔ,  １％Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｅ，３４％ｓｕｃｒｏｓｅ，  ５ｍＭ  ＭｇＣｌ２，ａｎｄ  ０．２５％ｇｌｙｃｉｎｅ）を用いて行った。
【００８３】
遺伝子クローニングにはＥ．ｃｏｌｉ  ＸＬ１−Ｂｌｕｅを用い、アンピシリン（１００μｇ／ｍｌ）を含んだＬｕｒｉａ  Ｂｅｒｔａｎｉ（ＬＢ）培地で培養した。また、放線菌の抗生物質生産及びバイオアッセイにはＹＭＧ培地（０．４％ｙｅａｓｔ  ｅｘｔｒａｃｔ，１．０％ｍａｌｔ  ｅｘｔｒａｃｔ，ａｎｄ  ０．４％  ｇｌｕｃｏｓｅ，ｐＨ７．３）とＴＳＢ培地（ｔｒｙｐｔｉｃ  ｓｏｙ  ｂｒｏｔｈ，３０ｇ／ｌｉｔｅｒ）をそれぞれ用いた。
【００８４】
大腸菌及び放線菌のＤＮＡ調製は、それぞれ Sambrook, J., Fritsch, E.F., and Maniatis, T., Molecular cloning: A laboratory manual（Cold Spring Harbor, NY: Cold Spring Harbor Laboratory Press,（１９８９））.および Kieser, T., Bibb, M.J., Buttner, M.J., Chater, K.F., and Hopwood, C.A., Practical Streptomyces genetics（Norwich, United Kingdom: The John Innes Foundation,（２０００））のプロトコールに従った。
［２．ｏｒｆ７９破壊用ベクターの構築方法］
整列コスミドＡ８（Mochizuki, S., Hiratsu, K., Suwa, M., Ishii, T., Sugino, F., Yamada, K. and Kinashi, H. Mol., Microbiol. 48, 1501-1510, （２００３））を制限酵素ＰｓｔＩ及び Ｅｃｏ４７ＩＩＩで完全消化し、得られた４．３ｋｂ断片を制限酵素ＰｓｔＩ及びＳｍａＩで完全消化したベクターｐＵＣ１９に連結し、全長７．０ｋｂのプラスミドｐＫＡＲ３００４を得た。
【００８５】
そして制限酵素ＢｓｉＷＩを用いて完全消化し、次いでｓｅｌｆ−ｌｉｇａｔｉｏｎに賦してｏｒｆ７９のN末端領域を４９９ｂｐ欠失したプラスミドｐＫＡＲ３００６を得た。最後にｐＫＡＲ３００６を制限酵素ＥｃｏＲＩ及びＰｓｔＩで切断し、そのベクター領域を放線菌−大腸菌シャトルベクターｐＲＥＳ１８（Ishikawa, J., Niino, Y., and Hotta, K., FEMS Microbiol. Lett. 145, 113-116,（１９９６））と置換して遺伝子破壊用プラスミドｐＫＡＲ３００８を得た。
［３．放線菌への形質転換］
放線菌の強い制限修飾系を避けるために、大腸菌のメチル化酵素欠損株Ｅ．ｃｏｌｉ  ＥＴ１２５６７（MacNeil, D.J., Gewain, K.M., Ruby, C.L., Dezeny, G., Gibbons, P.H., and MacNeil, T., Gene 111, 61-68．(１９９２)）に形質転換してプラスミドｐＫＡＲ３００８を再調製した。
【００８６】
定法 （Kieser, T., Bibb, M.J., Buttner, M.J., Chater, K.F., and Hopwood, C.A., Practical Streptomyces  genetics（Norwich, United Kingdom: The John Innes Foundation，（２０００））に従って放線菌 Ｓ．ｒｏｃｈｅｉ  ５１２５２株のプロトプラスト（５０μｌ）を調製し、それに５μｌのｐＫＡＲ３００８を混合してさらにＴ−ｂｕｆｆｅｒ（ＰＥＧ１０００を２５％含む）１５０μｌとよく混和し、直ちにＲ１Ｍ寒天培地（Zhang, H., Shinkawa, H., Ishikawa, J., Kinashi, H., and Nimi, O., J. Ferment. Bioeng. 83, 217-221，（１９９７））に塗布した。２８℃で１８時間培養し、３ｍｌのＳＮＡ培地（３００μｇのチオストレプトンを含む）を重層した。さらに２８℃で２−３日培養し、生育の見られた形質転換体を１０μｇ／ｍｌのチオストレプトンを含むＹＭＧ寒天培地に接種した。
［４．遺伝子破壊］
上記３．で得られた形質転換体をチオストレプトン（１０μｇ／ｍｌ）のみを含むＹＭＧ液体培地１０ｍｌに植菌し、２４時間毎に植え継ぎを行った。４回の植え継ぎの後、チオストレプトン（１０μｇ／ｍｌ）を含むＹＥＭＥ液体培地１０ｍｌに植え継ぎ、プロトプラストを調製した。
【００８７】
次に、Ｐ−ｂｕｆｆｅｒで適当に希釈したプロトプラスト溶液をＲ１Ｍ培地にスプレッドして再生させた。得られたシングルコロニーを、チオストレプトンを含まないＹＭＧ液体培地１０ｍｌに植菌し、２４時間毎に植え継ぎを行った。５回の植え継ぎの後、上述のように希釈プロトプラスト溶液を調製し、Ｒ１Ｍ培地に塗布して再生させた。
【００８８】
得られたシングルコロニーをチオストレプトン（１０μｇ／ｍｌ）を含むＹＭＧ寒天培地と、チオストレプトンを含まないＹＭＧ寒天培地にそれぞれ移植した。３日間２８℃で培養し、チオストレプトン感受性コロニーを数個選んでＹＭＧ液体培地に植菌し２８℃で培養した。この培養液を用いてＤＮＡを調製し、サザンブロット解析を行った。
［５．薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）とバイオオートグラフィー］
Ｓ．ｒｏｃｈｅｉ  ５１２５２株とｏｒｆ７９遺伝子破壊株（ＫＡ０７株）の前培養液１ｍｌをＴＳＢ培地１００ｍｌに植菌し、２８℃で培養した後、４８時間後に培養液をサンプリングした。サンプリングした培養液を５０００ｒｐｍで１０分（４°Ｃ）遠心後、その上清を分液漏斗に移し、等量の酢酸エチルを用いて抽出を行った。
【００８９】
この酢酸エチル層をエバポレーターで濃縮し、粗抽出液を得た。展開溶媒はクロロホルム−メタノール＝１５：１を用い、展開したＴＬＣプレートを乾かした後、検定菌 Ｍｉｃｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｕｔｅｕｓを重層したＴＳＢ寒天培地（上層；０．８％ａｇａｒ, 下層；１．５％ａｇａｒ）に３０分間密着させた。ＴＬＣプレートをはずしてから、バイオオートグラフィー用プレートを２８℃で一晩静置した。
［６．リアルタイムＰＣＲ］
（６−１．Ｔｏｔａｌ  ＲＮＡの調製）
Ｔｏｔａｌ  ＲＮＡの調製には、Ｈｉｇｈ  Ｐｕｒｅ  ＲＮＡ  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（ロシュ製）を用いた。坂口フラスコで１００ｍｌの培地を２８℃で４８時間培養した。そのうち培養液１ｍｌを５０００ｒｐｍで集菌し、２００μｌの１０ｍＭトリス緩衝液で懸濁した。２００μｇのリゾチームを加え、３７℃で１０分間インキュベーションした。ついで４００μｌのｌｙｓｉｓ／−ｂｉｎｄｉｎｇ  ｂｕｆｆｅｒ（緑色のキャップ）を加えてよく混ぜ合わせた。
【００９０】
次に、溶液をＨｉｇｈ  Ｐｕｒｅフィルタースピンカラム（フィルターチューブとリザーバーチューブで構成されている）に充填し、１０，０００ｒｐｍで１５秒間遠心した。リザーバーチューブに溜まった濾液を捨て、フィルターチューブに９０μｌのＤＮａｓｅｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒと１０μｌのＤＮａｓｅＩ溶液を加え、室温で１時間反応させた。スピンカラムに５００μｌのｗａｓｈ  ｂｕｆｆｅｒ  Ｉを加え、１０，０００ｒｐｍで１５秒間遠心した。
【００９１】
濾液を捨て、フィルターチューブに５００μｌのｗａｓｈ  ｂｕｆｆｅｒ  ＩＩを加え、１０，０００ｒｐｍで１５秒間遠心した。ふたたび濾液を捨て、フィルターチューブに２００μｌのｗａｓｈ  ｂｕｆｆｅｒＩＩを加え、１０，０００ｒｐｍで１５秒間遠心した。リザーバーチューブを１．５ｍｌのエッペンドルフチューブと交換し、フィルターチューブに１００μｌのｅｌｕｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒを加えた。そして１０，０００ｒｐｍで１分間遠心し、ｔｏｔａｌＲＮＡ溶液を得た。
【００９２】
（６−２．逆転写酵素によるｃＤＮＡ（相補ＤＮＡ）の調製）
調製したｔｏｔａｌＲＮＡ（５００ｎｇ／μｌ）からのｃＤＮＡ合成にはＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｒ  Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（ロシュ製）を用いた。まず以下の表１に示す反応液を調製した。
【００９３】
【表１】
2006296419.tif 000003
【００９４】
この反応液を６５℃で５分間反応させ、直ちに氷冷した。その後以下の表２に示す混合物を加えて全量を２０μｌにした。
【００９５】
【表２】
2006296419.tif 000004
【００９６】
この反応液を２５℃で１０分間反応させ、ついで５５℃で３０分間反応させて逆転写反応を行った。反応終了後８５℃で５分間反応させ酵素を失活させて、直ちに氷上に置いた。この液をテンプレートｃＤＮＡ溶液（以下「テンプレート」と表記）とした。
【００９７】
（６−４．ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒを利用したリアルタイムＰＣＲ）
リアルタイムＰＣＲの反応試薬にはＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ  ＦａｓｔＳｔａｒｔ  ＤＮＡ  Ｍａｓｔｅｒ  ＳＹＢＲ  Ｇｒｅｅｎ  Ｉ（ロシュ製）を用い、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ  クイックシステム３５０Ｓ（ロシュ製）を用いて測定した。反応液の調製は以下の表３に示す比率で行った。
【００９８】
【表３】
2006296419.tif 000005
【００９９】
この溶液２０μｌを表４に示す各プライマーに対して、またテンプレートｃＤＮＡ（５１２５２株もしくはＫＡ０７株由来）の種類に応じて調製した。
【０１００】
【表４】
2006296419.tif 000006
【０１０１】
表４において、番号の後ろにＦまたはＳと付したものはフォワードプライマーであり、ＲまたはＡＳと付したものはリバースプライマーである。
【０１０２】
ライトサイクラーでのＰＣＲ反応は、９５℃１０分の変性反応、９５℃１０秒の変性反応の後、アニール反応（プライマー７１；５８℃１０秒、プライマー７５；５９℃１０秒、プライマー８２；５８℃１０秒、プライマー８５；５６℃１０秒、プライマー５５；５７℃１０秒）、伸長反応（プライマー７１、７５，８５，５５；７２℃７秒、プライマー８２；７２℃１２秒）を行い、９５℃１秒→７０℃１０秒→９５℃０秒メルティングした後、４０℃で３０秒冷却した。
［実施例１：ｏｒｆ７９遺伝子破壊株のサザンブロット解析］
図６は、ｏｒｆ７９遺伝子破壊株構築の手順を示す模式図である。図７は、ｏｒｆ７９遺伝子破壊株のサザンブロット解析の結果を示すものである。遺伝子破壊株は相同的組み換えによる二重交差（ｄｏｕｂｌｅ  ｃｒｏｓｓｏｖｅｒ）を行って構築した。
【０１０３】
上記二重交差について、図８を参照しながら説明する。まず線状プラスミドと破壊用プラスミドの相同領域で最初の相同的組み換えが起こり、図８に示したＢ−（１）もしくはＢ−（２）という株が得られる。ついで起こる相同的組み換えで、もし（４）のように組み換えが起きれば目的の遺伝子破壊株が得られる。一方、もし（３）のようにおきれば元の状態に戻る。すなわち二重交差により得られる株には元の野生株に戻ったものも存在することになる。これがレーン３と６である。
【０１０４】
図７において、レーン１およびレーン７は分子量マーカーである。レーン２は遺伝子破壊を行っていない放線菌Ｓ．ｒｏｃｈｅｉの親株（５１２５２株）の泳動結果を示し、２．８ｋｂ、１．７ｋｂ、１．１ｋｂにバンドが検出された。レーン４およびレーン５は、ｏｒｆ７９遺伝子破壊株（ＫＡ０７株）の泳動結果を示しており、親株（５１２５２株）の遺伝子から図６に示す制限酵素ＢｓｉＷＩの２つの認識部位に挟まれる４９９ｂｐを除去した結果、２．８ｋｂと１．１ｋｂのバンドが消失し、３．４ｋｂのバンドが新たに検出された。［実施例２：ｏｒｆ７９ 破壊株におけるランカサイジンおよびランカマイシンの生産増加］
放線菌線状プラスミドｐＳＬＡ２―Ｌ上に存在するｔｅｔＲ型リセプター遺伝子の中の３つ（ｏｒｆ７４，ｏｒｆ７９，ｏｒｆ８２）を上述の方法によって破壊し、放線菌のランカサイジン（以下「ＬＣ」と称する）およびランカマイシン（以下「ＬＭ」と称する）の生産に上記遺伝子破壊が与える影響を調べた。
【０１０５】
ｏｒｆ７４およびｏｒｆ８２を破壊したところ（ｏｒｆ７４破壊株、ｏｒｆ８２破壊株をそれぞれＫＡ１６株、ＫＡ１２株と命名）、これらの株ではＬＣおよびＬＭの生産性に顕著な違いはなかった。
【０１０６】
一方、ｏｒｆ７９破壊株（ＫＡ０７株と命名）ではＬＣおよびＬＭの生産量が著しく増大した。特に、ＬＭの生産量は親株（５１２５２株）と比較して９．５倍に増加した。また、ＬＣの生産量は２倍に上昇したが、これは生産菌自身の耐性能限界までＬＣが生産されたためと考えられる。結果を表５に示した。
【０１０７】
【表５】
2006296419.tif 000007
【０１０８】
また、バイオオートグラフィーの結果を図９に示した。ＫＡ０７株ではランカマイシン、ランカサイジンともに親株と比較して産生量が大幅に増加しているのが観察された。
【０１０９】
ｏｒｆ７９遺伝子がコードするタンパク質がオートレギュレーターリセプターとして機能しているか否かを確かめるため、Ａファクター（オートレギュレーターとして知られる）の生産遺伝子ａｆｓＡと相同性のあるｏｒｆ８５と、ｏｒｆ７９遺伝子との二重遺伝子破壊株を構築し、当該二重遺伝子破壊株の抗生物質生産について検討した。ｏｒｆ７９がオートレギュレーターリセプターとして働いているならば、オートレギュレーター遺伝子ｏｒｆ８５を破壊しても抗生物質は生産されるはずである。
【０１１０】
図１０は、二重遺伝子破壊株の抗生物質生産量を比較した結果を示す図である。図１０に示すように、ｏｒｆ７９とｏｒｆ８５との二重遺伝子破壊株（ＫＡ２０株）はＬＣ、ＬＭともに生産しなかった。さらに、ｏｒｆ７４、ｏｒｆ８２についても同様に二重遺伝子破壊株を構築したところ、ｏｒｆ７４とｏｒｆ８５との二重遺伝子破壊株（ＫＡ２２株）はＬＣ、ＬＭともに生産しなかったが、ｏｒｆ８２とｏｒｆ８５との二重遺伝子破壊株（ＫＡ２１株）で抗生物質の生産が確認できた。
【０１１１】
図１０に示す結果から、オートレギュレーターリセプターはｏｒｆ８２がコードするタンパク質であることが明らかとなり、ｏｒｆ７９がコードするタンパク質はオートレギュレーターリセプターの機能を有さないこと、すなわち、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有することが明らかとなった。
［実施例３：遺伝子機能とタンパク質の性状とに関する検討］
ｏｒｆ７９破壊株（ＫＡ０７株）の高い抗生物質生産能はどのような要因によって引き起こされるのかについて検討した。リアルタイムＰＣＲを用いて遺伝子発現解析を行ったところ、上記ＫＡ０７株は親株（５１２５２株）と比較して、多数の生合成遺伝子の発現を著しく高めていた。リアルタイムＰＣＲによってＫＡ０７株と親株との遺伝子発現を比較、解析した結果を図１１および図１２に示した。
【０１１２】
図１１より、ＫＡ０７株は、生合成制御遺伝子であるｏｒｆ７１，ｏｒｆ８５，ｏｒｆ７５，ｏｒｆ５５の発現を高めていることが分かる。また、図１２より、ＫＡ０７株は、生合成反応を直接司る遺伝子であるｏｒｆ１８の発現を高めていることが分かる。オートレギュレーターリセプター遺伝子であるｏｒｆ８２の遺伝子発現には変化は認められなかった。ｏｒｆ８２の遺伝子が過剰に発現し、その結果オートレギュレーターリセプタータンパク質が大量に生産されてしまうと、逆に抗生物質生産量は激減すると予想できるため、ｏｒｆ８２の遺伝子発現に変化がないという結果は、ＫＡ０７株の抗生物質産生量が増加したという結果を支持するものであった。
【０１１３】
さらに、オートレギュレーターの生産量が抗生物質生産に影響する可能性も考えられたので、ｏｒｆ７９破壊株（ＫＡ０７株）と親株（５１２５２株）のオートレギュレーターの生産量を比較した。しかしながら両者には大きな違いがなく、ｏｒｆ７９はオートレギュレーターの生産調節には関与せず、むしろ生合成遺伝子群全体を調節していると考えられた。
【０１１４】
他の放線菌類で見いだされているｔｅｔＲ型リセプタータンパク質との比較を表６に示した。
【０１１５】
【表６】
2006296419.tif 000008
【０１１６】
表６に示すように、Ｏｒｆ７９はＳ．ｆｒａｄｉａｅのＴｙｌＱやＳ．ｖｉｒｇｉｎｉａｅのＢａｒＢと高い相同性を有していた。ＢａｒＢをコードする遺伝子の破壊株は抗生物質の早期生産を促すが、抗生物質総生産量の変化は示さないことが報告されている（非特許文献３、図４）。すなわち、ＢａｒＢはオートレギュレーターリセプターとは異なる役割を果たしていると考えられるが、図４から明らかなように、抗生物質は、最大でＢａｒＢをコードする遺伝子を破壊していない野生株（ＷＴ）の約１．７倍増加したにとどまった。抗生物質生産はある時期で停止するため、これ以上の劇的な増加はないものと考えられる。一方、ｏｒｆ７９破壊株では表５に示すように、ＬＣが２倍、ＬＭが９．５倍に増加し、大幅な増加が見られた。
【０１１７】
図１３は、ＢａｒＢをコードする遺伝子の破壊株における遺伝子発現を調べたＲＴ−ＰＣＲの結果を表すものである（非特許文献３を参照）。図１３に示した数字は培養時間（単位：時間）を表している。図１３に示すように、ＢａｒＢをコードする遺伝子の破壊株では、生合成関連遺伝子（ｂａｒＡ、ｏｒｆ５、ｖａｒＭ）のいずれにおいても遺伝子発現量は増加していない。一方、上述のようにＫＡ０７株においては生合成関連遺伝子の発現量が増加した。すなわち、生合成関連遺伝子の発現量が大きく異なる点で、ＢａｒＢをコードする遺伝子の破壊株とＫＡ０７株とは明確に区別される。
【０１１８】
また、ｏｒｆ７９がコードするタンパク質の等電点（ｐＩ）は１１．１１であり、塩基性タンパク質であることが分かった。図１４は、ｏｒｆ７９がコードするタンパク質の等電点を解析した結果を示すグラフである。上記タンパク質のアミノ酸配列を分析した結果、アミノ酸総残基数２２８のうち、アルギニンが２６残基、ヒスチジンが８残基、リシンが５残基であることが明らかとなった。
【０１１９】
一般的にオートレギュレーターリセプターは酸性タンパク質であることが多く、塩基性のリセプタータンパク質はｏｒｆ７９の他にはＢａｒＢの他わずか数例が知られているのみである。表６に示すように、機能未同定のｔｅｔＲ型リセプター遺伝子は他にも多数存在しているため、機能未同定のｔｅｔＲ型リセプタータンパク質とｏｒｆ７９によってコードされるタンパク質との相同性や両者の等電点を比較することにより、ｏｒｆ７９のように抗生物質の生産増加に関与する遺伝子を検出することが可能である。
［実施例４：抗生物質代謝中間体の生産］
ｏｒｆ７９破壊株（ＫＡ０７株）を親株として用い、抗生物質の生合成関連遺伝子を破壊した株の構築を試みた。一例としてランカマイシン生合成におけるチトクロムＰ−４５０水酸化酵素のＯｒｆ３７の破壊株を示す。通常どおり５１２５２株を親株として用いた場合は、代謝中間体ＬＭ−ＫＡ２８Ａ（１５−デオキシランカマイシン）の生産量は０．７ｍｇ／ｌであったが、ＫＡ０７株を用いた場合は、１３ｍｇ／ｌと大幅に生産量が増大した。
【産業上の利用可能性】
【０１２０】
以上のように、本発明では、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより、生合成関連遺伝子の遺伝子発現レベルを著しく上昇させることができるので、微生物の抗生物質生産を飛躍的に増加させることができる。そのため、本発明は抗生物質を製造する分野や、抗生物質が利用される分野、例えば、製薬業、畜産業、農業、水産業等に広く応用することが可能である。
【０１２１】
また、本発明では、オートレギュレーターリセプターの機能とは異なる機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を破壊した微生物において、抗生物質の生合成関連遺伝子をさらに破壊するので、抗生物質代謝中間体の生産量を増加させることができる。そのため、本発明は抗生物質の生合成機構を解明するための基礎研究に利用することが可能である。
【図面の簡単な説明】
【０１２２】
【図１】線状プラスミドｐＳＬＡ２−Ｌの遺伝子地図に関する従来技術を示すものである。
【図２】Ｓ．ｇｒｉｓｅｕｓのＡファクター・シグナルカスケードとｐＳＬＡ２−Ｌにコードされた相同タンパク質に関する従来技術を表す図である。
【図３】ＡｒｐＡをコードする遺伝子を破壊したＳ．ｇｒｉｓｅｕｓにおけるストレプトマイシンの生産に関する従来技術を表す図である。
【図４】ＢａｒＢをコードする遺伝子を破壊したＳ．ｖｉｒｇｉｎｉａｅにおけるバージニアマイシン生産に関する従来技術を表す図である。
【図５】Ｓ．ｒｏｃｈｅｉ  ７４３４ＡＮ４株が生産する抗生物質の構造を示す図である。
【図６】ｏｒｆ７９遺伝子破壊株構築の手順を示す模式図である。
【図７】ｏｒｆ７９遺伝子破壊株のサザンブロット解析の結果を示すものである。
【図８】相同的組み換えによる二重交差を用いた遺伝子破壊株構築の模式図である。
【図９】ｏｒｆ７９破壊株（ＫＡ０７株）と親株（５１２５２株）のバイオオートグラフィーの結果を示す図である。
【図１０】二重遺伝子破壊株の抗生物質生産量を比較した結果を示す図である。
【図１１】リアルタイムＰＣＲによってＫＡ０７株と親株との遺伝子発現を比較、解析した結果を示す図である。
【図１２】リアルタイムＰＣＲによってＫＡ０７株と親株とのｏｒｆ１８遺伝子の発現を比較、解析した結果を示す図である。
【図１３】ＢａｒＢをコードする遺伝子の破壊株における遺伝子発現を調べたＲＴ−ＰＣＲの結果に関する従来技術を表すものである。
【図１４】ｏｒｆ７９がコードするタンパク質の等電点を解析した結果を示すグラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図８】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１４】
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【図７】
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【図９】
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【図１０】
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【図１３】
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【配列表】
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