(57)【要約】【課題】  簡便に熱安定性に優れるＰＱＱ依存性ＰＤＨを製造する方法を提供する。【解決手段】  補欠分子族としてピロロキノリンキノンを含むポリオール脱水素酵素を、界面活性剤の存在下、２価性架橋試薬で化学修飾することを特徴とする。熱安定性に優れ、反応液中での安定性に優れるポリオール脱水素酵素を製造することができる。【選択図】            なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
補欠分子族としてピロロキノリンキノンを含むポリオール脱水素酵素を、界面活性剤の存在下、２価性架橋試薬で化学修飾することを特徴とする、熱安定性に優れるポリオール脱水素酵素の製造方法。
【請求項２】
前記ポリオール脱水酵素は、グリセロールを基質とすることを特徴とする、請求項１記載の製造方法。
【請求項３】
前記化学修飾されるポリオール脱水素酵素は、グルコノバクター属に属する細菌から得られるものである、請求項１または２記載の製造方法。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれかに記載の方法で得られるポリオール脱水素酵素を用いた、ポリオール測定試薬。
【請求項５】
請求項１〜３のいずれかに記載の方法で得られるポリオール脱水素酵素をグリセロールと反応させることを特徴とする、グリセロールの定量法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、補欠分子族としてピロロキノリンキノンを含むポリオール脱水素酵素（以下、ＰＱＱ依存性ＰＤＨとも称する。）を化学修飾することにより熱安定性に優れたＰＱＱ依存性ＰＤＨを製造する方法、及び該ＰＤＨを用いたグリセロール定量法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
従来から、試料中のグリセロールは、下記式で示すように、補酵素としてＮＡＤを利用するグリセロールデヒドロゲナーゼを用いて定量されてきた。
【０００３】
【数１】
2006271257.tif 000002
【０００４】
しかしながら、ＮＡＤは高価であるため、より安価で簡便なグリセロール測定法が求められてきた。その結果、人工電子受容体を利用できるピロロキノリンキノン（ＰＱＱ）依存性グリセロールデヒドロゲナーゼが研究されてきた。従来から、ＰＱＱ依存性グリセロールデヒドロゲナーゼとして酢酸菌由来のものが報告されているが（非特許文献１）、該酵素は細胞膜結合型酵素であり、疎水性が高いために水溶媒系では不安定であり、また、熱安定性も低い。特許文献１において、可溶化および安定化に界面活性剤やグリセロールを必要としない、シュードモナス・エスピー（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｓｐ．）ＴＥ３４９３由来のＰＱＱ依存性グリセロールデヒドロゲナーゼが報告されているが、５０℃、１０分間処理で残存活性は４０％程度であり、熱安定性が十分であるとはいえない。
【０００５】
測定用試薬に使用される酵素は、保存時の安定性が高いこと、凍結乾燥などによっても失活しないことなどが求められ、このような改良を目的として酵素に化学的修飾を行う技術も開発されている（特許文献２、３）。
【特許文献１】特許公報３０４１８４０号
【特許文献２】特開平１−３０９６８７号
【特許文献３】特許公報３１４３０５０号
【非特許文献１】Ａｍｅｙａｍａ  ｅｔ．  ａｌ．Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，４９，１００１−１０１０（１９８５）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
測定用試薬に不安定な酵素を用いると、反応液中および保存中に失活が起こり、結果として測定結果の精度に悪影響を与える。そのため、用いる酵素は特に、熱安定性に優れていることが要求される。しかしながら、上記非特許文献１記載のグルコノバクター属由来のＰＱＱ依存性グリセロールデヒドロゲナーゼおよび特許文献１記載のＰＱＱ依存性グリセロールデヒドロゲナーゼは熱安定性が十分でない。また、該特許文献１記載のＰＱＱ依存性グリセロールデヒドロゲナーゼは、特定の微生物から得られる酵素であり、入手が困難であるなどの問題がある。さらに、特許文献２、特許文献３で対象とする酵素は、いずれも水溶性の酵素を対象としたものであり、非特許文献１に記載される細胞膜結合型酵素、すなわち疎水性が高い酵素に対する効果は不明である。
【０００７】
このような状況のもと、本発明は、熱安定性、反応溶液中での安定性に優れるＰＱＱ依存性ＰＤＨの製造方法を提供するものである。
【０００８】
加えて、本発明は、上記ＰＱＱ依存性ＰＤＨを用いた正確なポリオールの定量方法を提供するものである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは、上記従来の問題点に鑑みＰＱＱ依存性ＰＤＨについて鋭意研究した結果、酢酸菌の一種であるグルコノバクター属から得られるＰＱＱ依存性ＰＤＨに対して化学修飾を行えば、ＮＡＤなどを補酵素とする酵素よりも安価なポリオール定量用酵素となること、該ＰＱＱ依存性ＰＤＨは疎水性が強いため水溶性酵素と同じ条件で架橋処理を行うと、酵素が凝集して架橋反応が均一に起こらないが、界面活性剤の存在下、２価性架橋試薬で化学修飾することにより酵素の凝集を抑制でき、その結果、極めて該酵素の熱安定性が向上すること、また、界面活性剤、２価性架橋試薬および酵素の濃度などを制御することにより、架橋後の酵素も凝集および不溶化しないことを見出し、本発明を完成させた。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の方法によれば、安価かつ簡便に熱安定性に優れるＰＱＱ依存性ＰＤＨを製造することができる。本発明の方法で得られるＰＱＱ依存性ＰＤＨは、架橋により酵素の立体構造が強固になり、熱安定性が向上したため、再現性よく、また精度も高くポリオールを定量することができる。
【００１１】
さらに本発明の方法によれば、ＰＱＱ依存性ＰＤＨを凝集および不溶化させることなく架橋することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１２】
本発明の第一は、補欠分子族としてピロロキノリンキノンを含むポリオール脱水素酵素を、界面活性剤の存在下、２価性架橋試薬で化学修飾することを特徴とする、熱安定性に優れる前記ポリオール脱水素酵素の製造方法である。
【００１３】
従来から、酢酸菌由来のＰＱＱ依存性ＰＤＨが知られていたが、酵素自体が疎水性であり、また不安定であることからポリオールの定量に使用されなかった。また、水溶性のＰＱＱ依存性グリセロールデヒドロゲナーゼもあるが、特定の細菌から単離されたものであるため入手が困難であり、また、熱安定性が低い。本発明は、入手が容易なグルコノバクター属に属する細菌の膜画分から得られるＰＱＱ依存性ＰＤＨを用いるため、利用しやすい。また、界面活性剤存在下、２価性架橋試薬を用いてＰＱＱ依存性ＰＤＨを化学修飾するだけで熱安定性を向上させることができ、しかも反応性は低下しない。以下、本発明を詳細に説明する。
【００１４】
本発明で化学修飾させる補欠分子族としてＰＱＱを含むポリオール脱水素酵素としては、従来公知の酵素をいずれも好ましく使用することができる。該酵素は、例えば、グルコノバクター属、シュードモナス属など様々な細菌が生成することが知られており、これらＰＱＱ依存性ＰＤＨ生産菌が生産するいずれのＰＱＱ依存性ＰＤＨも好適に使用することができる。これらの中でも本発明では、特にグルコノバクター属に属する細菌の膜画分に存在するＰＱＱ依存性ＰＤＨを好適に使用することができる。さらに、入手の容易さから、グルコノバクター属、特には、グルコノバクター・オキシダンス（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ  ｏｘｙｄａｎｓ）ＮＢＲＣ  ３１７１、３２５３、３２５８、３２８５、３２８９、３２９０、３２９１、グルコノバクター・フラテウリ（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ  ｆｒａｔｅｕｒｉｉ）ＮＢＲＣ  ３２５１、３２６０、３２６４、３２６５、３２６８、３２８６、グルコノバクター・セリナス（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ  Ｃｅｒｉｎｕｓ）ＮＢＲＣ  ３２６２等を使用することができる。このような微生物の代表菌株として、グルコノバクター・オキシダンス（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ  ｏｘｙｄａｎｓ）ＮＢＲＣ  ３２９１がある。
【００１５】
架橋構造を導入するＰＱＱ依存性ＰＤＨを調製するには、具体的には、上記ＰＱＱ依存性ＰＤＨ生産菌を栄養培地に培養し、該培養物からＰＱＱ依存性ＰＤＨを採取すればよい。ＰＱＱ依存性ＰＤＨ生産菌の培養にあたって使用する培地としては、使用菌株が資化しうる炭素源、窒素源、無機物、その他必要な栄養素を適量含有するものであれば、合成培地、天然培地いずれも使用できる。炭素源としては、例えばグルコース、グリセロール、ソルビトール等が使用される。窒素源としては、例えばペプトン類、肉エキス、酵母エキス等の窒素含有天然物や、塩化アンモニウム、クエン酸アンモニウム等の無機窒素含有化合物が使用される。無機物としては、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム、硫酸マグネシウム等が使用される。また、ＰＱＱ依存性ＰＤＨの生産誘導物質として、ポリオールを培地に添加しておくことが望ましい。培地は通常、振とう培養、あるいは通気撹はん培養で行う。培養温度は２０〜５０℃、好ましくは２０〜４０℃、培養ｐＨは５〜１０の範囲で、好ましくは６〜９に制御するのが良い。これら以外の条件下でも使用する菌株が生育すれば実施できる。培養期間は通常１〜５日が好ましく、菌体内にＰＱＱ依存性ＰＤＨが生産蓄積される。なお、これらのＰＱＱ依存性ＰＤＨは、上記培養によって得られた酵素でも、ＰＱＱ依存性ＰＤＨ遺伝子を大腸菌等に形質導入して得られた組換え酵素であっても良い。
【００１６】
次いで、得られたＰＱＱ依存性ＰＤＨを精製する。精製方法は一般に使用される精製法を用いることができ、例えば、抽出法には超音波破砕、ガラスビーズを用いる機械的な破砕、フレンチプレス、界面活性剤などいずれを用いてもよい。さらに抽出液については、硫安やぼう硝などの塩析法、塩化マグネシウムや塩化カルシウムなどの金属凝集法、プロタミンやポリエチレンイミンなどの凝集法、さらにはＤＥＡＥ（ジエチルアミノエチル）−セファロース、ＣＭ（カルボキシメチル）−セファロースなどのイオン交換クロマト法などにより精製することができる。またこれらの方法で得られた粗酵素液や精製酵素液は、例えば、スプレードライや凍結乾燥により粉末化できる。
【００１７】
本発明で使用する２価性架橋試薬は、ＰＱＱ依存性ＰＤＨに含まれるアミノ基などと反応して架橋構造を導入できるものであれば特に制限はなく、固定化酵素の分野で酵素の架橋剤として使用できるジアルデヒド化合物、ジカルボン酸化合物、ジイソシアネート系化合物、イミデート化合物などを好適に使用することができる。ジアルデヒド化合物としては、グルタルアルデヒド、スクシンジアルデヒド、アジピンアルデヒド等があり、ジカルボン酸化合物としては、アジピン酸、ジメチルアジピン酸等があり、ジイソシアネート系化合物としてはヘキサメチレンジイソシアネート、トルエンジイソシアネートなどがあり、イミデート化合物としては、ジメチルスベルイミデート、ジメチルピメルイミデートなどがある。本発明では、上記２価性架橋試薬の中でも、グルタルアルデヒドが特に好ましい。
【００１８】
本発明では、２価性架橋試薬による化学修飾を行うが、得られるＰＱＱ依存性ＰＤＨは酵素同士を相互に架橋するものではなく、酵素の立体構造を強固にすることで熱安定性を向上させるものである。したがって、酵素同士の架橋を防止するため、一般には上記酵素濃度を０．１〜３０ｍｇ／ｍｌ、好ましくは０．２〜２０ｍｇ／ｍｌ、特に好ましくは０．５〜１５ｍｇ／ｍｌに溶解した溶液に、上記２価性架橋試薬を濃度０．０１〜２０（Ｗ／Ｖ）％、好ましくは、０．０５〜１０（Ｗ／Ｖ）％、特に好ましくは０．０５〜３（Ｗ／Ｖ）％となるように添加して、架橋させることが好ましい。０．１（Ｗ／Ｖ）％を下回ると架橋量が少ないため、熱安定性の向上効果が低い。一方、３０（Ｗ／Ｖ）％を超えると、架橋率が向上し過ぎて酵素の失活を招く場合がある。反応を行う緩衝液は、ｐＨ６〜８のリン酸緩衝液、ｐＨ６．５〜８のＭＯＰＳ緩衝液などがある。
【００１９】
本発明では、ＰＱＱ依存性ＰＤＨを含む溶液には、界面活性剤が含まれていることが好ましい。界面活性剤の存在下、２価性架橋試薬により疎水性酵素を凝集させることなく架橋でき、酵素の立体構造が安定に保持され、熱安定性が向上するためである。このような界面活性剤としては、一般的に膜タンパク質の可溶化に用いられているものであればなんでもよく、トライトンＸ−１００、オクチルグルコシド、コール酸ナトリウムなどがある。界面活性剤の濃度は、０．０１〜１０ｗ／ｖ％であることが好ましく、より好ましくは０．０５〜５ｗ／ｖ％、特に好ましくは０．１〜１ｗ／ｖ％である。なお、ＰＱＱ依存性ＰＤＨに含まれるＰＱＱとＰＤＨは、界面活性剤の存在により分離もしくは変性する可能性がある。しかしながら、上記範囲の界面活性剤濃度であれば、ＰＱＱとＰＤＨとが一体化したＰＱＱ依存性ＰＤＨを変性することなく調製することができ、後記する実施例に示すように熱安定性が向上し、グリセロールなどの安定化剤の使用を回避できるためポリオールの定量を行うことができる。
【００２０】
架橋反応時の反応温度は、用いる２価性架橋試薬によって適宜選択することができるが、一般には０〜４０℃程度で行うことが好ましく、反応時間は１分〜４時間、好ましくは５分〜２時間程度、特に好ましくは５分〜１時間である。１分を下回ると架橋が十分でなく未架橋酵素量が多くなり、一方、４時間を越えると架橋率が上がりすぎ酵素の活性が失われる場合がある。
【００２１】
本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨが基質とするポリオールとしては、グリセロール、ソルビトール、アラビトール、マンニトールなどがある。２価性架橋試薬による架橋の際に、例えばグリセロールを基質とする場合には、上記溶媒にグリセロールを添加すれば、基質との結合部への架橋構造の形成を回避することができる。
【００２２】
架橋反応は、グリシン溶液またはトリス塩酸緩衝液のような停止剤を加えて反応させることで停止させることができる。上記架橋処理後、未反応のグリシン、２価性架橋試薬、２−アミノ−２−ヒドロキシメチル−１，３−プロパンジオール、および停止剤と２価性架橋試薬との反応物は、透析法、クロマトグラフィー法、限外濾過法等を行うことで除去することができる。本発明では、特に透析法を行うことが好ましい。その理由は、操作が簡便であり、コストがかからないためである。
【００２３】
上記方法で得られるＰＱＱ依存性ＰＤＨの至適ｐＨは８である。また、該ＰＱＱ依存性ＰＤＨを所定のｐＨの緩衝溶液中で４℃、１６時間保存してその残存活性を測定したところ、安定ｐＨは６〜９であった。また、５０℃で１０分間インキュベートした後の残存活性は、８０％であった。
【００２４】
上記方法によって得られたＰＱＱ依存性ＰＤＨは、ポリオールと電子受容体とを、対応する脱水素物と還元型電子受容体とに変換することができる。本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨが好適に使用できる電子受容体としては、フェリシアン化カリウム、２，６−ジクロロフェノールインドフェノール（ＤＣＩＰ）、Wurster's blue、ニトロテトラゾリウムブルー等がある。
【００２５】
本発明の第二は、上記方法で得られる補欠分子族としてピロロキノリンキノンを含むポリオール脱水素酵素を用いた、ポリオール測定試薬である。また、本発明の第三は、上記方法で得られるポリオール脱水素酵素をグリセロールと反応させることを特徴とする、グリセロールの定量法である。本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨは、ポリオールの定量性に優れ、ポリオール測定試薬として使用することができる。また、本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨは補欠分子族としてＰＱＱを有するため、あえてＰＱＱを反応系に添加することなく、ポリオールを定量することができる。
【００２６】
本発明のポリオール測定試薬は、本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨを含み、ポリオールを測定するために使用する試薬である。ポリオール脱水素酵素として本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨを使用する点に特徴があり、例えば特許公報３０４１８４０号、特許公報３４５０９１１号、特許公報３４９４３９８号などに記載されるポリオール測定で使用するポリオール脱水素酵素に代えて本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨを本発明のポリオール測定試薬として使用することができる。
【００２７】
本発明の定量法において、ポリオールを含む試料としては、食品、血清、血漿や全血等がある。また本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨは血清や血奬、全血等の中性脂肪測定にも使用することができる。すなわちこれらの試料に含まれる中性脂肪は、例えばリポプロテインリパーゼにより遊離脂肪酸とグリセロールに分解されるが、ここで生じたグリセロールを本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨを使用して、定量することができる。中性脂肪測定時には精神病治療患者、透析患者では遊離グリセロールが問題になるが、本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨを用いればグリセロールを予め消去するか、もしくはその量を測定しておくことで真の中性脂肪値を求めることが可能である。本発明のＰＱＱ依存性ＰＤＨは溶液中に界面活性剤を含んでいてもポリオールを正確に定量することができる。
【実施例】
【００２８】
次に実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、これらの実施例は何ら本発明を制限するものではない。
【００２９】
(酵素活性)
ＰＱＱ依存性ＰＤＨの酵素活性は、５０μＭ  ＤＣＩＰ、０．２ｍＭ  ５−メチルフェナジニウムメチルスルファート(ＰＭＳ)、４００ｍＭ  グリセロールを含んだ０．２％トライトンＸ−１００を含む１０ｍＭリン酸緩衝液ｐＨ  ７．０中に、酵素溶液を加え、酵素と基質の反応をＤＣＩＰの６００ｎｍの吸光度変化によって追跡し、その吸光度の減少速度を酵素の反応速度とした。１分間に１μｍｏｌのＤＣＩＰが還元される酵素活性を１単位（Ｕ）とした。なお、ＤＣＩＰのｐＨ７．０におけるモル吸光係数は１６．３ｍＭ−１とした。
【００３０】
（実施例１）
ソルビトール２質量％、酵母エキス０．３質量％、肉エキス０．３質量％、コーン・スティープ・リカー０．３質量％、ポリペプトン１質量％、尿素０．１質量％、ＫＨ２ＰＯ４０．１質量％、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ０．０２質量％、ＣａＣｌ２０．１質量％、ｐＨ７．０よりなる培地４００ｍｌを調製し、５００ｍｌ容の坂口フラスコに一本あたり該培地１００ｍｌずつを移し、１２１℃、２０分間オートクレーブした。
【００３１】
上記培地に、種菌として、グルコノバクター・オキシダンス（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ  ｏｘｙｄａｎｓ）ＮＢＲＣ  ３２９１を一白金耳植菌し、３０℃で２４時間培養し、種培養液とした。
【００３２】
次に上記と同じ組成で調製した培地６．６Ｌを１０Ｌ容ジャーファーメンターに移し、１２１℃で２０分間オートクレーブを行い、放冷後、種培養液４００ｍｌを移した。これを、７５０ｒｐｍ、通気量７Ｌ／分、３０℃で２４時間培養した。
【００３３】
培養液を遠心分離して集菌し、蒸留水で懸濁後、フレンチプレスにより菌体を破砕した。破砕液を遠心分離（５，０００ｇ、２０分、４℃）し、得られた上清を超遠心分離（４０，０００ｒｐｍ、９０分、４℃）して、膜画分を沈殿物として得た。
【００３４】
この膜画分を１０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）に懸濁し、終濃度が１質量％となるようにトライトンＸ−１００を加え、４℃で２時間撹拌した。超遠心分離（４０，０００ｒｐｍ、９０分、４℃）し、上清を０．２質量％トライトンＸ−１００を含む１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）で一晩透析し、これを可溶化膜画分とした。
【００３５】
この可溶化膜画分をＦＰＬＣにてＲｅｓｏｕｒｃｅＱ  ６ｍｌで夾雑するグルコース脱水素酵素を除いたポリオール脱水素酵素活性画分を得た。この画分を０．２質量％トライトンＸ−１００を含む１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）で一晩透析することにより、比活性１２．７Ｕ／ｍｇ蛋白の酵素標品を得た。これをグルコノバクター・オキシダンス由来ＰＤＨと称する。
【００３６】
ついで、該グルコノバクター・オキシダンス由来ＰＤＨ（比活性１２．７Ｕ／ｍｇ  蛋白、蛋白濃度：０．９ｍｇ／ｍｌ）０．８ｍＬに、終濃度１質量％になるように５質量％グルタルアルデヒド溶液２００μｌを加え、３０℃にて５分間穏やかに撹拌した。
【００３７】
反応後、０．２ｗ／ｖ％トライトンＸ−１００を含む１００ｍＭ  トリス塩酸緩衝液ｐＨ７．０で一晩透析することにより架橋反応を停止させるとともに、低分子量のものを取り除き、これを修飾ＰＤＨとした。架橋処理による活性の収率は８０％であった。
【００３８】
（実施例２）
実施例１で得た修飾ＰＤＨの熱安定性を検討するため、１０分間、ウォーターバスにより各温度でインキュベートした後、残存する酵素活性を測定した。結果を図１に示す（架橋ＰＤＨ）。また、実施例１で使用したグルコノバクター・オキシダンス（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ  ｏｘｙｄａｎｓ）ＮＢＲＣ  ３２９１を用いて同様に残存する酵素活性を測定した結果（未架橋ＰＤＨ）を併せて図１に示す。図１において、架橋処理により５０℃での残存活性は、約０％から約８０％にまで向上した。
【００３９】
（実施例３）
５０μＭ  ＤＣＩＰ、０．２ｍＭ  ＰＭＳ、酵素溶液（０．３Ｕ）を含んだ０．２質量％トライトンＸ−１００を含む１０ｍＭリン酸緩衝液ｐＨ７．０中に、終濃度が１００、２００、３００、４００、５００μＭになるようにグリセロールを加え、ＤＣＩＰの６００ｎｍにおける吸光度の減少を測定した。結果を図２に示す。
【００４０】
１００〜５００μＭグリセロールまで直線性がよく、定量可能であることが示唆された。
【産業上の利用可能性】
【００４１】
本発明によれば、簡便に熱安定性に優れるポリオール脱水素酵素を製造することができ、該酵素を使用して正確にポリオールを定量でき有用である。
【図面の簡単な説明】
【００４２】
【図１】実施例２の結果であり、本発明のＰＤＨが架橋構造の導入によって熱安定性が向上したことを示す図である。
【図２】実施例３の結果であり、本発明のＰＤＨを使用して、グリセロールの検量線が作成できることを示す図である。
【図１】
2006271257.tif 000003
【図２】
2006271257.tif 000004