(57)【要約】本発明は、癌疾患の診断および治療、特に腫瘍細胞における細胞毒性の媒介、ならびに、特に、細胞毒性反応の開始方法として、任意で１以上の化学療法剤と併用した癌疾患改善抗体（ＣＤＭＡＢ：ｃａｎｃｅｒｏｕｓ  ｄｉｓｅａｓｅ  ｍｏｄｉｆｙｉｎｇ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）の使用に関する。本発明は、さらに、本発明のＣＤＭＡＢを使用した結合アッセイに関する。【選択図】図１
2009531293.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ヒトＣＤ５９へ特異的に結合できるモノクローナル抗体またはリガンドであり、前記モノクローナル抗体またはそのリガンドが、ＡＴＣＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．ＰＴＡ−５０６５を有するハイブリドーマ細胞株１０Ａ３０４．７から得られた単離モノクローナル抗体と同じヒトＣＤ５９のエピトープまたはエピトープ群と反応して、前記モノクローナル抗体またはリガンドが前記単離モノクローナル抗体のその標的ヒトＣＤ５９抗原への結合を競合阻害できることを特徴とする、モノクローナル抗体またはリガンド。
【請求項２】
ヒトＣＤ５９へ特異的に結合できるモノクローナル抗体またはリガンドであり、前記モノクローナル抗体またはそのリガンドが、ＩＤＡＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．２８０１０４−０２を有するハイブリドーマ細胞株ＡＲ３６Ａ３６．１１．１から得られた単離モノクローナル抗体と同じヒトＣＤ５９のエピトープまたはエピトープ群と反応して、前記モノクローナル抗体またはリガンドが前記単離モノクローナル抗体のその標的ヒトＣＤ５９抗原への結合を競合阻害できることを特徴とする、モノクローナル抗体またはリガンド。
【請求項３】
ＡＴＣＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．ＰＴＡ−５０６５を有するハイブリドーマ細胞株１０Ａ３０４．７およびＩＤＡＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．２８０１０４−０２を有するハイブリドーマ細胞株ＡＲ３６Ａ３６．１１．１からなるグループから選択されるハイブリドーマによって産生される単離モノクローナル抗体が識別するエピトープまたはエピトープ群と同じエピトープまたはエピトープ群を識別するモノクローナル抗体またはリガンドであり、前記モノクローナル抗体またはリガンドが前記単離モノクローナル抗体のその標的ヒトＣＤ５９抗原への結合を競合阻害できることを特徴とする、モノクローナル抗体またはリガンド。
【請求項４】
ヒトＣＤ５９抗原を発現するヒト癌性腫瘍の治療過程であり、ＡＴＣＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．ＰＴＡ−５０６５を有するハイブリドーマ細胞株１０Ａ３０４．７およびＩＤＡＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．２８０１０４−０２を有するハイブリドーマ細胞株ＡＲ３６Ａ３６．１１．１からなるグループから選択されるハイブリドーマによって産生される単離モノクローナル抗体が識別するのと同じエピトープまたはエピトープ群を識別する少なくとも１つのモノクローナル抗体またはリガンドの前記ヒト癌を患う個人への投与を含み、前記エピトープまたはエピトープ群の結合が全身腫瘍組織量の減少に効果的である治療過程。
【請求項５】
ヒトＣＤ５９抗原を発現するヒト癌性腫瘍の治療過程であり、少なくとも１つの化学療法剤との併用での、ＡＴＣＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．ＰＴＡ−５０６５を有するハイブリドーマ細胞株１０Ａ３０４．７およびＩＤＡＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．  ２８０１０４−０２を有するハイブリドーマ細胞株ＡＲ３６Ａ３６．１１．１からなるグループから選択されるハイブリドーマによって産生される単離モノクローナル抗体が識別するのと同じエピトープまたはエピトープ群を識別する少なくとも１つのモノクローナル抗体またはリガンドの前記ヒト癌を患う個人への投与を含み、前記投与が全身腫瘍組織量の減少に効果的である治療過程。
【請求項６】
ヒト腫瘍から選択される組織サンプルにおいてＣＤ５９のエピトープまたはエピトープ群を発現する癌性細胞の有無を判定するための結合アッセイであり、前記ヒト腫瘍由来の組織サンプルの提供、ＡＴＣＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．ＰＴＡ−５０６５を有するハイブリドーマ細胞株１０Ａ３０４．７およびＩＤＡＣ  Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．２８０１０４−０２を有するハイブリドーマ細胞株ＡＲ３６Ａ３６．１１．１からなるグループから選択されるハイブリドーマによって産生される単離モノクローナル抗体が識別するのと同じエピトープまたはエピトープ群を識別する少なくとも１つのモノクローナル抗体またはリガンドの提供、前記の少なくとも１つのモノクローナル抗体またはそのリガンドと前記組織サンプルとの接触、および前記の少なくとも１つのモノクローナル抗体またはそのリガンドと前記組織サンプルとの結合、これにより前記組織サンプルにおける前記癌性細胞の有無を示す結合アッセイ。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、癌疾患の診断および治療、特に腫瘍細胞における細胞毒性の媒介、ならびに、特に、細胞毒性反応の開始方法として、任意で１以上の化学療法剤と併用した癌疾患改善抗体（ＣＤＭＡＢ）の使用に関する。発明は、さらに、本発明のＣＤＭＡＢを使用した結合アッセイに関する。
【背景技術】
【０００２】
ＣＤ５９は、１８〜２０ｋＤａのグリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）結合膜糖タンパク質である。ＣＤ５９は、ヒト赤血球表面から最初に単離され、補体活性化の阻害因子として機能する。その後、補体媒介性の溶解性を高めるために開発された数種の抗体の標的がＣＤ５９であることが発見された。これらの抗体が独立して開発されたため、ＭＥＭ−４３抗原、反応性細胞融解の膜阻害因子（ＭＩＲＬ）、Ｈ１９、膜攻撃複合体抑制因子（ＭＡＣＩＦ）、分子量２０，０００のホモロガス制限因子（ＨＲＦ２０）、プロテクティン（Ｗａｌｓｈ，  Ｔｏｎｅ  ｅｔ  ａｌ．１９９２）など、ＣＤ５９には複数の名称がつけられている。
【０００３】
ＣＤ５９抗原は、アミノ酸解析およびＮＭＲによって十分に特性付けされている。ＣＤ５９抗原は、１２８個のアミノ酸から成り、最初の２５個がシグナル配列を構成する。１０個のシステイン残基が存在し、強固に折り畳まれた分子をもたらす。１８番目の位置のアスパラギン残基はＮ−グリコシル化されることが判明しており、７７番目の位置のアスパラギン残基はＧＰＩアンカーに連結されている。Ｃ末端残基は、ＧＰＩ結合タンパク質の特徴である（Ｄａｖｉｅｓ  ａｎｄ  Ｌａｃｈｍａｎｎ  １９９３）。
【０００４】
ＣＤ５９は、ヒトの赤血球表面において最初に発見されたが、広く発現している分子である。フローサイトメトリー、免疫組織化学、ノーザンブロット解析からの細胞分布に関する多数のデータによって、赤血球の他、血小板、白血球、線維芽細胞などの造血細胞を含む多種類の細胞や組織における発現が明らかになっている（Ｍｅｒｉ，  Ｗａｌｄｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．１９９１）。ＣＤ５９は、体全体、特に腎臓、気管支、膵臓、皮膚表皮、胆管、だ液腺の血管や管内皮に多量に存在する（Ｍｅｒｉ，  Ｗａｌｄｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．１９９１）。発現は、肺、肝臓、胎盤、甲状腺、精子において認められている（Ｄａｖｉｅｓ  ａｎｄ  Ｌａｃｈｍａｎｎ  １９９３）。可溶性ＣＤ５９が、だ液、尿、涙、汗、髄液、母乳、羊水、精漿において検出されている（Ｄａｖｉｅｓ  ａｎｄ  Ｌａｃｈｍａｎｎ  １９９３）。可溶性ＣＤ５９の起源は依然として特定されておらず、可溶性ＣＤ５９が分泌されて、ホスホリパーゼによって切断されるのか、または別の方法によって細胞から流出するのかは依然として不明である（Ｄａｖｉｅｓ  ａｎｄ  Ｌａｃｈｍａｎｎ  １９９３）。ＣＤ５９は、多くのＢ細胞株、中枢神経系組織、肝実質、膵ランゲルハンス島には存在しないと考えられる（Ｍｅｒｉ，  Ｗａｌｄｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．１９９１）。
【０００５】
ＣＤ５９は正常な細胞や組織において広く発現しているが、ＣＤ５９は悪性腫瘍においても広く発現している。正常組織と比較して、特定種の癌においてはＣＤ５９発現が上昇しており、発現レベルは腫瘍の分化段階と相関しているとの証拠がある。悪性神経膠腫、白血病、リンパ腫の他、甲状腺癌、前立腺癌、乳癌、卵巣癌、肺癌、結腸直腸癌、膵臓癌、胃癌、腎臓癌、皮膚癌において中程度から高レベルのＣＤ５９発現が報告されている（Ｆｉｓｈｅｌｓｏｎ、Ｄｏｎｉｎ  ｅｔ  ａｌ．２００３）。
【０００６】
ＣＤ５９によって補体活性化後の膜攻撃複合体（ＭＡＣ）の形成が抑制されることが知られている。ＭＡＣ形成は、補体カスケードの最終事象の１つであり、細胞膜に孔を開けて、最終的には細胞を破壊する。ＣＤ５９はＣ５ｂ−８に結合して、その後のＣ９分子の重合およびＭＡＣ形成を妨げる。補体受容体１型（ＣＲ１、ＣＤ３５）、膜補因子タンパク質（ＭＣＰ、ＣＤ４６）、分解促進因子（ＤＡＦ、ＣＤ５５）などの他の補体抑制性タンパク質は、補体カスケードにおいてより早い時期に作用する。補体活性化は、標的細胞の破壊または細胞の活性化をもたらし、これによって白血球が集まり、周囲の平滑筋が縮小して、血管透過性が高まる。
補体活性化は、抗体依存性の細胞毒性（ＡＤＣＣ）および補体依存性の細胞毒性（ＣＤＣＣ）においても役割を果たす。補体活性化は、調節が不十分な場合、標的組織に損傷を与えうる炎症反応を招く。ＣＤ５９および他の補体抑制性タンパク質によって、補体カスケードの活性化による自己組織傷害が防がれる。ＣＤ５９などの補体抑制性タンパク質の過剰発現が、悪性腫瘍が獲得することの多い補体活性化に対する耐性亢進の一因となりうると仮定されている（Ｊａｒｖｉｓ，  Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．１９９７）。この場合、補体抑制性タンパク質に対するモノクローナル抗体による治療によって、この耐性を克服可能であり、免疫療法や他の治療に対する腫瘍の反応性が高まる。
【０００７】
発作性夜間ヘモグロビン尿症（ＰＮＨ）は造血性幹細胞に影響を与える稀な遺伝性疾患であり、補体攻撃に対する感受性が異常に高まった細胞が生じる（Ｄａｖｉｅｓ  ａｎｄ  Ｌａｃｈｍａｎｎ  １９９３）。症状としては、慢性溶血、貧血、血栓症が挙げられる（Ｓｕｇｉｔａ  ａｎｄ  Ｍａｓｕｈｏ  １９９５）。赤血球、顆粒球、単球、血小板、場合によってはリンパ球など、ＰＮＨの影響を受ける細胞は、ＧＰＩ結合タンパク質を欠損している（Ｄａｖｉｅｓ  ａｎｄ  Ｌａｃｈｍａｎｎ  １９９３）。罹患細胞では、アセチルコリンエステラーゼ、ＬＦＡ−３、ＨＵＰＡＲ、補体制御因子タンパク質ＣＤ３５、ＣＤ４６、ＣＤ５５、ＣＤ５９が欠損している（Ｄａｖｉｅｓ  ａｎｄ  Ｌａｃｈｍａｎｎ  １９９３）。ＣＤ５９発現が完全に欠けているが、他の補体制御ＧＰＩ結合タンパク質のいずれの発現も欠けていない１症例が報告されている。この欠損は、溶血性貧血や血栓症などのＰＮＨ様症状と関連している（Ｄａｖｉｅｓ  ａｎｄ  Ｌａｃｈｍａｎｎ  １９９３）。ＣＤ５９機能欠損と関連する望ましくない作用があるが、完全な喪失が致命的ではないことがこの個人によって証明されている。癌治療の困難な仕事に直面している場合、溶血の副作用は克服すべき許容可能な障害である。
【０００８】
ＣＤ５９遺伝子の１つをノックアウトしたマウスモデルにおいても、ＣＤ５９欠損がインビボにおいて致命的ではないことが証明されている。マウスにおいては２つの型のＣＤ５９（ＣＤ５９ａおよびＣＤ５９ｂ）が発現している。ＣＤ５９ａは血液細胞などの様々なマウス組織で発現しているが、ＣＤ５９ｂ発現は精巣でのみ確認されている。Ｍｉｗａらは、インビボでの自然発生的な補体攻撃から赤血球を保護するためのＣＤ５９の役割を評価するためにＣＤ５９ａ欠損マウスを作成した。彼らは、ノックアウトマウスが発育して、溶血性貧血の徴候もなく正常に生存し、ヘモグロビン濃度の有意な上昇は認められないと報告した。コブラ毒因子（ＣＶＦ）の注射によって誘発させた補体攻撃に対して赤血球の感受性が高まるにもかかわらず、野生型と比較して、自然発生的な補体攻撃による赤血球排除が有意に高まることはなかった（Ｍｉｗａ，  Ｚｈｏｕ  ｅｔ  ａｌ．２００２）。
【０００９】
ラット抑制性タンパク質（ＲＩＰ）と呼ばれる２１ｋＤａの膜糖タンパク質がラットにおいて同定されている。ＲＩＰはＣ５ｂ−８段階以降のＭＡＣ集合を抑制して、ホスファチジルイノシトール特異的ホスホリパーゼＣによってラット赤血球から放出される。Ｎ端末配列とともに、これらの因子は、ＲＩＰがヒトＣＤ５９のラットホモログであることを示唆している。ラットＲＩＰに対するマウスのモノクローナル抗体である６Ｄ１のＦ（ａｂ’）２断片を雄のウィスター系ラット群に投与した。同じ試験において、ラットの異なる膜結合補体調節タンパク質に対する抗体である５Ｉ２の断片も投与した。６Ｄ１断片の注入後、心拍数や血圧に変化は認められなかった。心臓、肺、肝臓において断片結合が検出された。唯一の観察された影響は、白血球数のわずかな増加と赤血球数の減少であり、血小板数に変化は認められなかった。対照的に、５Ｉ２断片を注入することで、注入後２時間までに、血圧が急上昇し、白血球と血小板が急減し、赤血球数が断続的に上昇した（Ｍａｔｓｕｏ，  Ｉｃｈｉｄａ  ｅｔ  ａｌ．１９９４）。
【００１０】
キメラモノクローナル抗体であるＲｉｔｕｘｉｍａｂ（Ｒｉｔｕｘａｎ，  Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ，  Ｓａｎ  Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ，  ＣＡ）は、ＣＤ２０抗原に対するものであり、非ホジキンリンパ腫（ＮＨＬ）の治療における使用が認められている。多くのＣＤ２０＋患者が治療に反応せず、また反応する大半の患者が最終的には治療に耐性となる。この耐性を克服する取り組みでは、ＣＤＣＣを増やすための抗ＣＤ５９抗体の使用について研究されてきた。補体の存在下においてＲｉｔｕｘａｎ治療に対して耐性であるＮＨＬおよびＭＭ細胞株はインビトロでＣＤ５９を発現するが、同じ治療に感受性のＮＨＬおよびＭＭ細胞株はＣＤ５９を発現しない。耐性細胞株の１つを抗ＣＤ５９抗体（ＹＴＨ５３．１）とプレインキュベーションさせることで、Ｒｉｔｕｘｉｍａｂとヒトの補体での治療に対する細胞の感受性が高まった。ＣＤ２０＋であるが、Ｒｉｔｕｘｉｍａｂ治療で疾患が進行した患者から分離した腫瘍においても高いＣＤ５９発現レベルが認められている（Ｔｒｅｏｎ，  Ｅｍｍａｎｏｕｉｌｉｄｅｓ  ｅｔ  ａｌ．２００５）。
【００１１】
三次元極小腫瘍球状体（ＭＴＳ）を使用して、乳癌（Ｔ４７Ｄ）および卵巣奇形腫（ＰＡ−１）においてインビトロでのＣＤ５９抗体ＹＴＨ５３．１の活性を評価した。ＭＴＳは培養において増殖させた多細胞の凝集体であり、単層培養物や浮遊液培養物よりもインビボで認められる凝集体に近いモデルを示している。このグループによる過去の研究では、ＭＴＳとして増殖させたＰＡ−１細胞が浮遊培養させたＰＡ−１細胞よりも補体による溶解により耐性であることが示されていた。この耐性が克服できたか否かを評価するために、クロム放出アッセイによって細胞毒性を測定し、ビオチン化ＹＴＨ５３．１によるＭＴＳの前処理後のヨウ化プロピジウム（ＰＩ）の取り込みによって細胞傷害を可視化させた。抗体はビオチン標識ＣＤ５９に対する親和性を保持していたが、古典的補体経路の活性化能を喪失していた。乳癌細胞（Ｓ２）に対して作成したウサギの抗ヒトポリクローナル抗体が使用して、古典的経路を活性化させた。オーバーナイトでのＹＴＨ５３．１とのインキュベーションによってＭＴＳが完全に浸潤し、クロム放出アッセイによってＹＴＨ５３．１、Ｓ２、ヒト補体の存在下での１〜２時間の誘導期後に３３％の細胞が殺されることが示された。電子顕微鏡検査法によって、ＹＴＨ５３．１、Ｓ２、ヒト補体とのインキュベーション後にＴ４７Ｄ腫瘍の平均容積が２８％減少したことが明らかになった。ＰＩインキュベーション後の螢光顕微鏡検査法によって、ＹＴＨ５３．１、Ｓ２、ヒト補体とのインキュベーション後、Ｔ４７Ｄ、ＰＡ−１、ＭＴＳにおいていくつかの死んだ細胞層が明らかになった。これらの結果をまとめると、抗ＣＤ５９抗体によってインビトロでの腫瘍細胞の補体媒介性溶解を促進できることが示されている（Ｈａｋｕｌｉｎｅｎ  ａｎｄ  Ｍｅｒｉ  １９９８）。
【００１２】
別のグループは、ヒトの転移性前立腺腺癌細胞株ＤＵ１４５およびＰＣ３の補体媒介性溶解に対する耐性が、ＣＤ５９抗体ＹＴＨ５３．１で処理することでインビトロで克服できることを見出した。クロム放出アッセイは、ＹＴＨ５３．１とビオチン化ＹＴＨ５３．１の存在下、非存在下における細胞死の測定に利用した。ＣＤ５９抗体の非存在下では、いずれの細胞株も補体媒介性溶解に対して完全に耐性であった。ＹＴＨ５３．１処理では、ＰＣ３細胞の５６％、ＤＵ１４５細胞の３４％の殺傷によって、この耐性が克服された。ビオチン化ＹＴＨ５３．１処理では、耐性克服の程度は低かった、ＰＣ３の４７％、ＤＵ１４５細胞の２０％が殺傷された。ＤＵ１４５との比較で、ＰＣ３の感受性の増大は、ＰＣ３によるＣＤ５９発現の増加に起因すると考えられる。ビオチン化抗体は恐らくは古典的経路（Ｊａｒｖｉｓ，  Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．１９９７）を活性化しないため、天然抗体とビオチン化抗体との効果の差は、補体の古典的経路の活性化とＣＤ５９の中和の複合的な結果を実証している。古典的経路による補体活性化を加えることで、活性が限界量しか増大されないため（例、ＰＣ３細胞においてビオチン化ＹＴＨ５３．１での４７％に対してＹＴＨ５３．１で５６％）、抗体活性の大部分は補体抑制の遮断に起因すると考えられる（Ｊａｒｖｉｓ，  Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．１９９７）。今日まで抗ＣＤ５９抗体であるＹＴＨ５３．１のインビボ分析はない。インビボの前臨床癌モデルにおける治療効果を示す抗ＣＤ５９抗体に関する報告はない。
【００１３】
癌治療としてのモノクローナル抗体：癌を示す各個人は他者とは異なり、個人識別と同様に他の癌とは異なる癌を持つ。これにもかかわらず、現在の治療法では、癌の病期および種類が同じ患者は同じ方法で治療している。これらの患者の少なくとも３０％が一次治療で失敗するため、治療をさらに繰り返すことになり、治療の失敗、転移、最終的には死の可能性が高まる優れた治療法は、特定の個人に対するオーダーメイド治療であろう。オーダーメイドに適する現行の唯一の治療法は外科手術である。化学療法および放射線治療を患者に対して個別化することはできず、外科手術自体は、たいていの場合、治癒をもたらすには不十分である。
【００１４】
モノクローナル抗体の出現によって、各抗体が一つのエピトープを標的にしているため、オーダーメイド治療の開発方法の可能性はいっそう現実的になった。さらに、特定の個人の腫瘍を特異的に特徴付ける一連のエピトープを標的とする抗体の組み合わせを作成できる。
【００１５】
癌細胞と正常細胞との有意差を識別することは、癌細胞に形質転換細胞に特異的な抗原が含まれることであり、科学界では、これらの癌抗原に特異的に結合する形質転換細胞を特異的に標的とするようにモノクローナル抗体を設計できると長い間考えられているため、モノクローナル抗体は癌細胞排除するための「特効薬」としての役割を果たすことができると考えられている。しかし、１種のモノクローナル抗体が全ての癌症例において有用となるわけではなく、クラス、標的癌治療としてモノクローナル抗体を配置できることが現在広く認識されている。開示している本発明の教示に従って単離したモノクローナル抗体は、例えば、全身腫瘍組織量の減少など、患者に有益となるように癌疾患の経過を改善することが示されており、癌疾患改善抗体（ＣＤＭＡＢ）または「抗癌」抗体など様々に呼ばれうる。
【００１６】
現在、癌患者に治療の選択肢がほとんどないのが通例である。癌治療への管理アプローチは全生存率および全罹患率を改善させた。しかし、特定の個人に対して、これらの改善された統計データは、それらの各人の状況における改善とは必ずしも相関していない。
【００１７】
このように、同じコホート内の他の患者の各腫瘍を医師が個別に治療できる方法論が出される場合、これによって１個人のみに対するオーダーメイド治療の個別アプローチが可能になりうる。このような治療経過によって、理想的には、治癒率が向上し、より良好な転帰がもたらされて、長年にわたる要求が満たされうる。
【００１８】
歴史的には、ヒトの癌治療においてポリクローナル抗体の使用による成功例はわずかである。リンパ腫および白血病はヒト血漿で治療されてきたが、長期にわたる鎮静や反応はほとんど認められなかった。さらに、再現性に欠けており、また化学療法と比較してさらなる利益はなかった。乳癌、黒色腫、腎細胞癌などの固形腫瘍は、ヒトの血液、チンパンジー血清、ヒト血漿、ウマ血清でも治療されてきたが、対応する結果は予測不可能で効果は認められていない。
【００１９】
固形腫瘍に対するモノクローナル抗体については多くの臨床試験が行なわれてきた。１９８０年代には、少なくとも４例のヒト乳癌における臨床試験が行なわれており、ここでは、特定の抗原に対する抗体を使用して、もしくは組織選択性に基づき、少なくとも４７人の患者において反応者が１例しか認められなかった。１９９８年にヒト化抗Ｈｅｒ２／ｎｅｕ抗体（Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標））とシスプラチンとの併用を利用した臨床試験に初成功した。この試験では、患者３７例において反応を評価しており、その内の約４分の１が部分的に反応し、別の４分の１において疾患の軽微な、または安定した進行が認められた。反応者における進行までの期間の中央値は８．４ヶ月間で、反応持続期間の中央値は５．３カ月であった。
【００２０】
Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）はＴＡＸＯＬ（登録商標）との併用で第一選択薬として１９９８年に承認された。臨床試験の結果では、ＴＡＸＯＬ（登録商標）単剤投与群（３．０カ月）との比較で、ＴＡＸＯＬ（登録商標）を併用した抗体療法（６．９カ月）を受けた人において病気進行までの期間の中央値の延長が認められた。生存期間のわずかな延長も認められた、Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）＋Ｔａｘｏｌ（登録商標）治療群対Ｔａｘｏｌ（登録商標）単剤治療群＝２２ヶ月：１８ヶ月。また、ＴＡＸＯＬ（登録商標）との比較で、抗体＋ＴＡＸＯＬ（登録商標）の併用群における完全寛解患者と部分寛解のいずれの患者数も増加していた（それぞれ８％対２％、３４％対１５％）。しかし、Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）＋ＴＡＸＯＬ（登録商標）治療では、ＴＡＸＯＬＲ単剤治療との比較で、心毒性の発生率が高まった（１３％対１％）。また、Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）治療は、現在、その機能や生物学的に重要なリガンドが不明である受容体、ヒト上皮増殖因子受容体（Ｈｅｒ２／ｎｅｕ）を過剰発現する患者（免疫組織化学（ＩＨＣ）解析により測定）においてのみ効果的である（転移性乳癌を持つ患者の約２５％）。したがって、乳癌患者での必要性は依然ほとんど満たされていない。Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）治療から利益を得ることができる患者でさえやはり化学療法が必要であり、結果的に、依然として、少なくともある程度はこの種の治療による副作用に対処する必要がある。
【００２１】
結腸直腸癌を調査する臨床試験では、糖タンパク質と糖脂質の両方を標的とする抗体が含まれる。腺癌にある程度の特異性を有する１７−１  Ａなどの抗体は、患者６０例以上における第２相臨床試験を受ける。他の試験では、１７−１  Ａの使用によって、シクロホスファミドを追加使用したプロトコルでの患者５２例において完全寛解が１例、そして軽微な反応が２例認められた。今日まで、１７−１  Ａに関する第３相臨床試験において、ステージＩＩＩ結腸癌に対するアジュバント治療と同様の有効性の改善は実証されていない。撮像用に初めて承認されたヒト化マウスモノクローナル抗体を使用した場合でも腫瘍は退縮しなかった。
【００２２】
ごく最近になって、モノクローナル抗体を使用した結腸直腸癌の臨床的試験において陽性結果が得られている。２００４年、イリノテカン化学療法に難治性である、ＥＧＦＲを発現している転移性結腸直腸癌患者の二次治療にＥＲＢＩＴＵＸ（登録商標）が承認された。第２相試験（２治療群）および１治療群での試験の結果において、イリノテカンと併用したＥＲＢＩＴＵＸ（登録商標）での奏功率はそれぞれ２３％、１５％であり、疾患進行までの期間の中央値はそれぞれ４．１ヶ月間、６．５ヶ月間であった。第２相試験（２治療群）および１治療群での別の試験の結果において、ＥＲＢＩＴＵＸ（登録商標）での奏功率はそれぞれ１１％、９％であり、疾患進行までの期間の中央値はそれぞれ１．５ヶ月間、４．２ヶ月間であった。
【００２３】
結果的に、スイスおよび米国の両国では、イリノテカンとの併用でのＥＲＢＩＴＵＸ（登録商標）治療、米国では、ＥＲＢＩＴＵＸ（登録商標）単剤治療が、一次治療であるイリノテカン治療に失敗した直腸癌患者における二次治療として承認されている。したがって、Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）と同様に、スイスではモノクローナル抗体と化学療法の併用治療のみが承認されている。また、スイスおよび米国では、患者に対する治療は二次治療としてのみ承認されている。また、２００４年には、転移性結腸直腸癌の一次治療として５−フルオロウラシル静注化学療法との併用でＡＶＡＳＴＩＮ（登録商標）が承認された。第３相臨床試験の結果では、ＡＶＡＳＴＩＮ（登録商標）＋５−フルオロウラシルで治療した患者の生存期間の中央値の延長が実証された（２０ヶ月間対１６ヶ月間）。一方、ここでもＨｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）およびＥＲＢＩＴＵＸ（登録商標）と同様に、モノクローナル抗体と化学療法の併用としてのみ治療は承認されている。
【００２４】
また、肺癌、脳腫瘍、卵巣癌、膵臓癌、前立腺癌、胃癌については好ましくない結果が続く。非小細胞肺癌における最も有望な最近の結果は、第３相臨床試験から出されており、この試験では、化学療法薬Ｔａｘｏｔｅｒｅと併用した殺細胞薬ドキソルビシン結合モノクローナル抗体（ＳＧＮ−１５；  ｄｏｘ−ＢＲ９６，  ａｎｔｉ−Ｓｉａｌｙｌ−ＬｅＸ）が治療に含まれる。タキソテールは、肺癌の二次治療用にＦＤＡが承認した唯一の化学療法薬である。初期データにおいては、タキソテール単剤と比較して、全生存率の改善が示されている。試験のために募集された患者６２例中３分の２がタキソテールとの併用でＳＧＮ−１５を服用し（併用投与）、残りの３分の１がタキソテール単剤を服用した。タキソテール単剤での５．９ヶ月間と比較して、タキソテールとの併用でＳＧＮ−１５を服用した患者での全生存期間の中央値は７．３ヶ月間であった。１年目、１８ヶ月目の全生存率は、タキソテールとの併用でＳＧＮ−１５を服用した患者ではそれぞれ２９％、１８％、タキソテール単剤を服用した患者では２４％、８％であった。さらなる臨床試験が計画されている。
【００２５】
前臨床においては、黒色腫に対するモノクローナル抗体の使用で限られた一定の成功を収めている。これらの抗体のごく少数しか臨床試験まで進んでおらず、今日までいずれも承認されておらず、第３相臨床試験において好ましい結果は示されていない。
【００２６】
明らかに発病の一因となる既知の遺伝子３０，０００種の産物中、関与する標的が同定されていないために疾患を治療するための新薬の発見が遅れている。癌研究において、潜在的な薬剤標的は、それらが腫瘍細胞中で過剰発現しているという事実のみを理由に選択される場合が多い。次に、このようにして同定した標的を複数の化合物との相互作用でスクリーニングする。潜在的な抗体治療の場合、これらの候補化合物は、通例、Ｋｏｈｌｅｒ＆Ｍｉｌｓｔｅｉｎが定めた基本原理に従った従来のモノクローナル抗体作成方法でよって得られる（１９７５，  Ｎａｔｕｒｅ，  ２５６，  ４９５−４９７，  Ｋｏｈｌｅｒ  ａｎｄ  Ｍｉｌｓｔｅｉｎ）。抗原（例、全細胞、細胞分画、精製抗原）で免疫したマウスから脾細胞を回収して、不死化させたハイブリドーマのパートナー細胞と融合させた。結果として得られるハイブリドーマをスクリーニングして、標的に最も強固に結合する抗体の分泌物で選択する。これらの方法を利用して、Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（登録商標）やＲＩＴＵＸＩＭＡＢなど、癌細胞を標的とする多くの治療／診断用抗体が作成され、親和性に基づいて選択されている。この戦略には２つの欠点がある。第一に、組織特異的な発癌過程に関する知見が不足しており、これらの標的を同定するための過剰発現による選択など、結果として得られる方法が単純なために、治療や診断での抗体結合に適当な標的の選択は制限される。第二に、受容体に最も高い親和性で結合する薬物分子が、通例、シグナルを開始または抑制する確率が最も高いという仮定は常には当てはまらない。
【００２７】
乳癌および結腸癌の治療でのある程度の進歩にもかかわらず、単剤または併用で有効な抗体治療の開発は全ての種類の癌に対しては不十分であった。
【００２８】
先行特許：
特許文献１には、患者の細胞または組織からクローニングしたＭＨＣ遺伝子を患者の腫瘍由来の細胞にトランスフェクションさせる過程が開示されている。次に、トランスフェクションさせたこれらの細胞を患者へのワクチン接種に使用する。
【００２９】
特許文献２には、哺乳動物の腫瘍細胞または正常細胞の細胞内成分には特異的であるが、細胞外成分には特異的ではないモノクローナル抗体の入手、モノクローナル抗体の標識、標識抗体と腫瘍細胞の殺傷治療を受けた哺乳動物の組織との接触、標識抗体と変性腫瘍細胞の細胞内成分との結合測定による治療効果の判定の段階を含む過程が開示されている。ヒトの細胞内抗原を標的とする抗体の調製時において、悪性細胞がこのような抗原の便利な供給源であることを該出願人は認識している。
【００３０】
特許文献３は、新規抗体およびその作成方法を提供している。具体的には、この特許においては、正常細胞への結合性がずっと低く、例えば結腸や肺などのヒトの腫瘍に関連するタンパク質抗原への強い結合特性を持つモノクローナル抗体の作成を教示している。
【００３１】
特許文献４は、外科手術によるヒト癌患者からの腫瘍組織の摘出、腫瘍細胞を得るための腫瘍組織の処理、腫瘍細胞に対する、生存可能であるが、腫瘍形成能のない放射線照射、転移を同時抑制しながら一次細胞の再発を抑制可能な患者に対するワクチンの調製におけるこれらの細胞の利用を含む、癌治療方法を提供する。この特許においては、腫瘍細胞の表面抗原に反応するモノクローナル抗体の作成について教示している。ｃｏｌ．４，  ｌｉｎｅｓ  ４５  ｅｔ  ｓｅｑ．に記載の通り、該出願人はモノクローナル抗体の作成において自己腫瘍細胞を使用しており、ヒトの腫瘍における積極的な特異的免疫療法を示している。
【００３２】
特許文献５では、ヒトの癌腫を特徴とするが、上皮性組織由来であることに依存しない糖タンパク質抗原について教示している。
【００３３】
特許文献６には、Ｈｅｒ２発現細胞においてアポトーシスを誘導する抗Ｈｅｒ２抗体、抗体を産生するハイブリドーマ細胞株、抗体を使用した癌の治療方法、抗体を含む薬学的組成物について記載されている。
【００３４】
特許文献７には、腫瘍や非腫瘍組織の材料から精製した粘液抗原に対するモノクローナル抗体産生用の新しいハイブリドーマ細胞株について記載されている。
【００３５】
特許文献８には、所望の抗原に特異的な抗体を産生するヒトリンパ球の作成方法、つまり、モノクローナル抗体の産生方法、そしてこの方法によって産生されるモノクローナル抗体について記載されている。この特許には、癌の診断や治療に有用な抗ＨＤヒトモノクローナル抗体の産生について特記されている。
【００３６】
特許文献９は、ヒト癌細胞に反応性の抗体、抗体断片、抗体複合体、一本鎖免疫毒素に関する。これらの抗体が作用する機序は２つの要素からなり、つまり分子がヒトの癌の表面に発現している細胞膜抗原と反応する点、さらに抗体は癌細胞内に内在化されて、続いて結合可能となり、抗体‐薬物、抗体‐毒素複合体を形成する際に有用となる点である。非修飾状態では、抗体は特定濃度で細胞毒素特性も示す。
【００３７】
特許文献１０には、腫瘍の治療と予防のための自己抗体の使用が開示されている。しかし、この抗体は老齢の哺乳動物由来の抗細胞核自己抗体である。この場合、自己抗体は免疫系において認められる自然抗体の１種と言われている。自己抗体は「老齢の哺乳動物」に由来するため、自己抗体が治療を受ける患者に実際に由来している必要はない。また、この特許には、老齢の哺乳動物由来の天然のモノクローナル抗細胞核自己抗体、およびモノクローナル抗細胞核自己抗体を産生するハイブリドーマ細胞株について開示されている。
【００３８】
特許文献１１明細書には、糖尿病治療用の抗糖化ＣＤ５９抗体の使用について開示されている。
【特許文献１】米国特許第５，７５０，１０２号
【特許文献２】米国特許第４，８６１，５８１号
【特許文献３】米国特許第５，１７１，６６５号
【特許文献４】米国特許第５，４８４，５９６号
【特許文献５】米国特許第５，６９３，７６３号
【特許文献６】米国特許第５，７８３，１８６号
【特許文献７】米国特許第５，８４９，８７６号
【特許文献８】米国特許第５，８６９，２６８号
【特許文献９】米国特許第５，８６９，０４５号
【特許文献１０】米国特許第５，７８０，０３３号
【特許文献１１】米国特許出願第２００５００３２１２８Ａ１号
【発明の開示】
【００３９】
本発明者らは、過去に、癌性疾患の治療において有用な個別のオーダーメイド抗腫瘍抗体の選択過程に関する米国特許第６，１８０，３５７号（表題：Ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｉｚｅｄ  Ｐａｔｉｅｎｔ  Ｓｐｅｃｉｆｉｃ  Ａｎｔｉ−Ｃａｎｃｅｒ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）を与えている。タンパク質の構造物や機能に顕著な影響を及ぼすことなく、一部のアミノ酸配列のポリペプチドを様々に改変できることは、当技術分野において十分に認識されている。抗体の分子再配列において、骨格部位の核酸やアミノ酸の配列における修飾を一般に許容できる。これらには、限定はされないが、置換（好ましくは保存的置換）、欠失、付加が挙げられる。さらに、標準的な化学療法薬（例、放射性核種）を本発明のＣＤＭＡＢと結合させることで、前記化学療法剤の使用に重点を置くことは本発明の範囲内である。ＣＤＭＡＢを毒素、細胞毒素成分、酵素（例、ビオチン結合酵素）、造血細胞に結合させて、抗体複合体を形成させることもできる。
【００４０】
本出願では、癌性疾患改善モノクローナル抗体をコード化するハイブリドーマ細胞株を単離するために、患者３５７例において教示された患者に特異的な癌抗体の作成方法を利用している。これらの抗体は、１つの腫瘍に対して特異的にすることができるため、癌治療のオーダーメイドが可能になる。本請求において、以降、細胞殺傷（細胞毒素）または細胞増殖抑制（細胞分裂停止）特性を有する抗腫瘍抗体を「細胞毒性を有する」と呼ぶ。癌の病期分類や診断にこれらの抗体を使用でき、腫瘍の転移を治療するために使用できる。予防的治療による癌予防にこれらの抗体を使用できる。従来の創薬パラダイムに従って作成した抗体とは異なり、このようにして作成した抗体は過去に悪性組織の増殖および／または生存率にとって不可欠であることが示されていない分子や経路を標的にしうる。さらに、これらの抗体の結合親和性は、より強い親和性相互作用に適さない可能性のある細胞毒素事象の開始要件として適している。
【００４１】
個別化された抗腫瘍治療への期待は、患者の管理方法に変化をもたらしうる。可能性が高い臨床シナリオは、提出時での腫瘍サンプルの回収、そして保存である。このサンプルによって、既存の癌性疾患改善抗体パネルから腫瘍型を決めることができる。従来、患者は病期分類されるが、患者をさらに病期分類する際に利用可能な抗体を使用できる。患者は既存の抗体で迅速に治療でき、本明細書において開示するスクリーニング方法との併用で、本明細書に記載の方法により、もしくはファージディスプレイライブラリーを使用して、腫瘍特異的抗体パネルを作成できる。治療する腫瘍と同じエピトープの一部を他の腫瘍が持つ可能性があるため、作成した全ての抗体を抗腫瘍抗体ライブラリーに添加する。この方法に従って作成した抗体は、これらの抗体に結合する癌を持つ全ての患者の癌性疾患の治療にも有用となりうる。
【００４２】
抗腫瘍抗体に加えて、多様な治療計画の一部として、現在推奨されている治療を受けることを患者は選択できる。この方法論で単離した抗体については非癌性細胞に対する毒性が比較的低いという事実から、単剤または従来の治療との併用で、高用量の抗体を併用できる。高い治療指数は、治療耐性細胞の出現の可能性を低下させる短いタイムスケールでの再治療を可能にするであろう。
【００４３】
患者が初回治療に難治性である、もしくは転移が発生した場合には、再治療のために腫瘍特異的抗体の作成過程を繰り返すことができる。さらに、抗腫瘍抗体は患者から入手した赤血球に結合させて、転移治療のために再注入できる。転移癌に対する効果的な治療はほとんどなく、通例、転移は死を招く不良転帰の前兆になる。一方で、通例、転移性癌においては血管新生が活発であり、赤血球による抗腫瘍抗体の送達によって、腫瘍部位での抗体の濃縮効果が認められうる。転移前でさえ、大部分の癌細胞が生存のために宿主の血液供給に依存しており、赤血球に結合させた抗腫瘍抗体はｉｎ  ｓｉｔｕの腫瘍に対しても効果的となりうる。または、他の造血細胞（例、リンパ球、マクロファージ、単球、ナチュラルキラー細胞など）に抗体を結合させることができる。
【００４４】
５種類の抗体が存在しており、それぞれがその重鎖によって付与される機能に関連している。裸抗体による癌細胞の殺傷は、抗体依存性の細胞毒性または補体依存性の細胞毒性によって媒介されると一般に考えられる。例えば、マウスのＩｇＭ抗体およびＩｇＧ２ａ抗体は、補体系のＣ１成分に結合することによってヒトの補体を活性化させることで、腫瘍溶解に導くことができる補体活性化の古典的経路を活性化できる。ヒト抗体では、補体活性化に最も効果的な抗体は一般にＩｇＭとＩｇＧ１である。ＩｇＧ２ａアイソタイプおよびＩｇＧ３アイソタイプのマウス抗体は、単球、マクロファージ、顆粒球、および特定のリンパ球による細胞殺害に導きうるＦｃ受容体を持つ細胞傷害性細胞を動員する際に効果的である。ＩｇＧ１アイソタイプおよびＩｇＧ３アイソタイプいずれのヒト抗体もＡＤＣＣを媒介する。
【００４５】
抗体媒介性の癌殺傷の考えられる別の機序は、細胞膜内および関連する糖タンパク質や糖脂質において様々な化学結合の加水分解を触媒するように機能する抗体、いわゆる触媒抗体の利用を介している。
【００４６】
抗体媒介性の癌細胞殺傷にはさらに３つの機序が存在する。第１は、癌細胞に存在する推定抗原に対する免疫反応を身体に誘導させるワクチンとしての抗体の使用である。第２は、増殖受容体を標的にして、それらの機能を妨げる、もしくはその機能が効果的に失われるように受容体をダウンレギュレーションさせる抗体の使用である。第３は、ＴＲＡＩＬ  Ｒ１またはＴＲＡＩＬ  Ｒ２などの死受容体、もしくはαＶβ３などのインテグリン分子のライゲーションなど、細胞死を直接招く細胞表面成分の直接ライゲーションによるこれらの抗体の作用である。
【００４７】
制癌剤の臨床的有用性は、許容範囲内のリスクプロファイル下での患者に対する薬物の利益に基づいている。癌治療において、一般に最も求められる利益は延命であるが、延命の他に十分に認識された他の利益も多数存在する。治療が生存に悪影響を及ぼさない場合、これらの他の利益として、症状の軽減、有害事象に対する防御、再発までの期間や無病生存期間の延長、進行までの時間の延長が挙げられる。これらの基準が一般に受け入れられており、米食品医薬品局（ＦＤＡ）などの規制機関によってこれらの利益をもたらす薬物が承認される（Ｈｉｒｓｃｈｆｅｌｄ  ｅｔ  ａｌ．  Ｃｒｉｔｉｃａｌ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  ｉｎ  Ｏｎｃｏｌｏｇｙ／Ｈｅｍａｔｏｌｇｙ  ４２：１３７−１４３  ２００２）。これらの基準に加えて、これらの種類の利益の前兆となりうる他の評価項目の存在が十分に認識されている。一部では、米国ＦＤＡが認めた早期承認過程では、患者への利益を予測しうる代用評価項目の存在を認めている。２００３年末時点で、この過程により１６の薬品が承認され、これらの内の４つが完全に承認された（つまり、追跡調査において代用評価項目によって予測された患者への直接の利益が実証された）。固形腫瘍における薬効を判定する際の１つの重要な評価項目は、治療に対する反応の測定による全身腫瘍組織量の評価である（Ｔｈｅｒａｓｓｅ  ｅｔ  ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  ９２（３）：２０５−２１６  ２０００）。このような評価のための臨床基準（ＲＥＣＩＳＴ基準）は、癌の国際専門家グループＳｏｌｉｄ  Ｔｕｍｏｒｓ  Ｗｏｒｋｉｎｇ  ＧｒｏｕｐのＲｅｓｐｏｎｓｅ  Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ  Ｃｒｉｔｅｒｉａによって公表されている。全身腫瘍組織量に及ぼす効果が実証されている薬物は、ＲＥＣＩＳＴ基準による客観的反応によって示される通り、適当な対照群と比較して、最終的には患者に直接の利益をもたらす傾向がある。前臨床現場においては、一般に、全身腫瘍組織量は評価や記録がより簡単である。前臨床試験を臨床現場に置き換えることができる点で、前臨床モデルにおいて生存期間を延長させる薬物の臨床的有用性が最も期待される。臨床治療に好反応をもたらすのと同様に、前臨床現場において全身腫瘍組織量を減少させる薬物も疾患に顕著な直接的影響を及ぼしうる。生存期間の延長は、制癌剤治療において最も求められる臨床転帰であるが、臨床的有用性を伴う他の利益も存在しており、疾患進行の遅延、生存期間の延長、またはこれらの両方と相関しうる全身腫瘍組織量の低下によって、直接の利益や臨床的影響ももたらすことができる（Ｅｃｋｈａｒｄｔ  ｅｔ  ａｌ．Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ：  Ｓｕｃｃｅｓｓｅｓ  ａｎｄ  Ｆａｉｌｕｒｅｓ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｔｒｉａｌ  Ｄｅｓｉｇｎｓ  ｏｆ  Ｔａｒｇｅｔｅｄ  Ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ；  ＡＳＣＯ  Ｅｄｕｃａｔｉｏｎａｌ  Ｂｏｏｋ，  ３９ｔｈ  Ａｎｎｕａｌ  Ｍｅｅｔｉｎｇ，  ２００３，  ｐａｇｅｓ  ２０９−２１９）。その内容が参照により本明細書に組み入れられる米国特許第６，１８０，３５７号の過程、および米国特許第６，７９４，４９４号、出願番号１０／９９４，６６４、出��番号１１／０６７，３６６、仮出願出願番号６０／５４８，６６７に開示されている過程を実質的に利用して、ヒトの結腸（１０Ａ３０４．７）または前立腺（ＡＲ３６Ａ３６．１１．１）腫瘍組織由来の細胞でマウスを免疫後、マウスモノクローナル抗体１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１を得た。１０Ａ３０４．７抗原およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗原を異なる組織由来の広範なヒト細胞株の細胞表面上に発現させた。乳癌細胞株ＭＤＡ−ＭＢ−２３１（ＭＢ−２３１）およびＭＣＦ−７、結腸癌細胞株ＳＷ１１１６、前立腺癌細胞株ＰＣ−３、卵巣癌細胞株ＯＶＣＡＲ−３は、インビトロで１０Ａ３０４．７の細胞毒素作用に感受性であった。前立腺癌細胞株ＬｎＣａｐはインビトロでのＡＲ３６Ａ３６．１１．１の細胞毒素作用に感受性であった。
【００４８】
インビボでの抗腫瘍活性を実証することで、インビトロでの乳癌細胞に対する１０Ａ３０４．７の細胞毒性の結果をさらに拡大適用させた（出願番号１０／９９４，６６４に開示）。インビボのヒト乳癌モデルにおいて、１０Ａ３０４．７によって腫瘍増殖が抑制されて、全身腫瘍組織量が減少した。移植後５６日目、最終投与後６日目、１０Ａ３０４．７治療群における平均腫瘍容積は、アイソタイプ対照治療群における腫瘍容積の１％であった（ｐ＝０．０００３，ｔ検定）。試験を通して毒性の臨床徴候は認められなかった。週１回の間隔で測定する体重は、健康の代用評価項目であった。治療期間の終わりに、群間において体重に有意差は認められなかった（ｐ＝０．３５Ｉ２，ｔ検定）。したがって、ヒトの乳癌異種移植モデルにおいて１０Ａ３０４．７は耐容性に優れており、全身腫瘍組織量を低下させた。
【００４９】
インビボでの抗腫瘍活性を実証することで、インビトロでの前立腺癌細胞に対するＡＲ３６Ａ３６．１１．１の細胞毒性の結果をさらに拡大適用させた（出願番号１１／０６７，３６６に開示）。ヒト前立腺癌のインビボモデルでの予防において、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１によって腫瘍増殖が抑制され、全身腫瘍組織量が減少した。移植後４１日目、最終投与後５日目、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１治療群における平均腫瘍容積は、緩衝剤対照治療群における腫瘍容積の１４％であった（ｐ＝０．０００９，ｔ検定）。ＰＣ−３前立腺癌異種移植モデルにおいて、体重は疾患進行の代用指標として使用できる（Ｗａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．Ｉｎｔ  Ｊ  Ｃａｎｃｅｒ，  ２００３）。試験終了（４１日目）までに、対照動物は、試験開始から、２７％の体重減少を示した。対照的に、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１治療群は、対照群より有意に体重が増えていた（ｐ＝０．０１７）。全般的に、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１治療群においては体重がわずか６％減少し、緩衝剤対照群での２７％減少よりもずっと少なかった。したがって、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１は耐容性に優れており、ヒト前立腺癌異種移植モデルにおいて全身腫瘍組織量および悪液質を減少させた。
【００５０】
抗前立腺癌作用に加えて、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１については、インビボの腫瘍予防モデルにおいてＳＷ１１１６結腸癌細胞に対する抗腫瘍活性が実証された（出願番号１１／０６７，３６６に開示）。移植後５５日目、最終投与後５日目、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１治療群における平均腫瘍容積は、緩衝剤対照群における腫瘍容積の５１％であった（ｐ＝０．００５５，ｔ検定）。試験を通して毒性の臨床徴候は認められなかった。週１回の間隔で測定する体重は健康および発育不全の代用評価項目であった。治療期間の終わりに、群間において体重に有意差は認められなかった（ｐ＝０．４４０９，ｔ検定）。したがって、ヒトの結腸癌異種移植モデルにおいてＡＲ３６Ａ３６．１１．１は耐容性に優れており、全身腫瘍組織量を低下させた。
【００５１】
また、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１については、インビボの腫瘍予防モデルにおいてＭＤＡ−ＭＢ−２３１（ＭＢ−２３１）乳癌細胞に対する抗腫瘍活性が実証された（出願番号１１／０６７，３６６に開示）。ＡＲ３６Ａ３６．１１．１は腫瘍増殖を完全に抑制して、全身腫瘍組織量を低下させた。移植後５６日目、最終投与後６日目、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１治療群における平均腫瘍容積は、アイソタイプ対照治療群における腫瘍容積の０％であった（ｐ＝０．０００２，ｔ検定）。試験を通して毒性の臨床徴候は認められなかった。週１回の間隔で測定する体重は健康および発育不全の代用評価項目であった。治療期間の終わりに、群間において体重に有意差は認められなかった（ｐ＝０．０６７６，ｔ検定）。したがって、ヒトの結腸癌異種移植モデルにおいてＡＲ３６Ａ３６．１１．１は耐容性に優れており、全身腫瘍組織量を低下させた。
【００５２】
また、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１については、インビボの腫瘍予防モデルにおいてＭＢ−２３１乳癌細胞に対する抗腫瘍活性が実証された（出願番号１１／０６７，３６６に開示）。この確立されたインビボのヒト乳癌モデルにおいて、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１は腫瘍増殖を完全に抑制して、全身腫瘍組織量を低下させた。移植後８３日目、最終投与後２日目、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１治療群における平均腫瘍容積は、緩衝剤対照治療群における腫瘍容積の４６％であった（ｐ＝０．００３８，ｔ検定）。これは平均Ｔ／Ｃ  ３２％に相当する。試験を通して毒性の臨床徴候は認められなかった。週１回の間隔で測定する体重は健康および発育不全の代用評価項目であった。治療期間の終わりに、群間において体重に有意差は認められなかった（ｐ＝０．６４９３，ｔ検定）。
【００５３】
まとめると、このデータは、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１の抗原が癌関連抗原であり、ヒトの癌細胞において発現され、病理学的に関連する癌標的であることを示している。
【００５４】
本発明には１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１の開発および使用について記載されており、これらは米国特許第６，１８０，３５７号に記載の過程により作成し、動物モデルでの確立されていない／確立された腫瘍増殖における細胞毒性アッセイでのその効果によって同定している。本発明は、標的分子ＣＤ５９に存在するエピトープまたはエピトープ群に特異的に結合し、悪性腫瘍に対してインビトロでの細胞毒性も持つが、正常細胞に対しては持たず、インビボのヒト癌モデルにおける腫瘍増殖の抑制を直接媒介する試薬について初めて記載している点で、癌治療分野における進歩を示している。同様の特性が示されていないため、これは過去に記載した他の抗ＣＤ５９抗体に関連する進歩である。さらなる進歩は、これらの抗体を抗腫瘍抗体ライブラリーに包含させることで、異なる抗腫瘍抗体の適当な併用の決定により、異なる抗原マーカーを発現する腫瘍を標的にできる可能性が高まり、腫瘍の増殖および発生を標的として、抑制する際に最も効果的になる点である。
【００５５】
全体として、本発明は、治療剤の標的としての１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗原の使用について教示しており、これらを投与した際、哺乳動物において抗原を発現している癌の全身腫瘍組織量を低下させて、治療を受けた動物の生存期間を延長させることもできる。本発明は、これらの抗原を標的として、哺乳動物において抗原を発現している癌の全身腫瘍組織量を抑制・低下させて、この抗原を発現する癌を持つ哺乳動物の生存期間を延長させるためのＣＤＭＡＢ（１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１）、およびこれらの誘導体、これらのリガンド（例、細胞毒性を誘導するこれらのリガンド、これらの抗原結合断片）の使用についても教示している。さらに、本発明は、この抗原を発現する腫瘍を持つ哺乳動物の診断、治療予測、予後診断に有用となりうる癌性細胞における１０Ａ３０４．７抗原およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗原の検出の利用についても教示している。
【００５６】
したがって、ハイブリドーマ細胞株および対応する単離モノクローナル抗体および前記ハイブリドーマ細胞株がコード化されるその抗原結合断片を単離するために、特定の個人に由来する癌性細胞、または１以上の特定の細胞株に対して作成した癌性疾患改善抗体（ＣＤＭＡＢ）の作成方法の利用が本発明の目的であり、ＣＤＭＡＢは癌細胞に対して細胞毒性を有するが、同時に非癌性細胞に対する毒性は比較的低い。
【００５７】
癌性疾患改善抗体、そのリガンドおよび抗原結合断片について教示することも本発明の別の目的である。
【００５８】
細胞毒性が抗体依存性の細胞毒性によって媒介される癌性疾患改善抗体の作成も本発明のさらなる目的である。
【００５９】
細胞毒性が補体依存性の細胞毒性によって媒介される癌性疾患改善抗体の作成も本発明のさらなる目的である。
【００６０】
細胞毒性が細胞の化学結合の加水分解における触媒作用である癌性疾患改善抗体の作成も本発明のさらなる目的である。
【００６１】
癌の診断、予後診断、モニタリング用の結合アッセイに有用な癌性疾患改善抗体の作成も本発明のさらなる目的である。
【００６２】
具体例、実施例、具体的な態様によって示した以下の記載から、本発明の他の目的および利点が明らかになろう。
【００６３】
（図面の簡単な説明）
図１は細胞毒性アッセイにおける１０Ａ３０４．７対陽性／陰性対照の比較。
図２はＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＡ）および１０Ａ３０４．７（パネルＢ）をプローブに用いたＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質のウエスタンブロット。分子量マーカーを左に示している。
図３は１０Ａ３０４．７（パネルＡ）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＢ）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３０４．７、パネルＣ）、ＩｇＧ２ｂアイソタイプ対照（８Ｂ１Ｂ．１、パネルＤ）をプローブに用いたウエスタンブロット。レーン１〜４は、１０Ａ３０４．７（レーン１）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（レーン２）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３０４．７、レーン３）、ＩｇＧ２ｂアイソタイプ対照（８Ｂ１Ｂ．１、レーン４）で免疫沈降させたＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜である。レーン５はＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質であり、レーン６はシアリダーゼＡ、Ｏ−グリカナーゼ、β（１−４）ガラクトシダーゼ、β−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ、ＰＮＧａｓｅＦで脱グリコシル化させた脱グリコシル化ＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質である。分子量マーカーを左に示している。
図４はＡＲ３６Ａ３６．１１．１（レーン１）およびＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（レーン２）で免疫沈降させたＭＤＡ−ＭＢ−２３１のコロイドブルー染色（パネルＡ）およびウエスタンブロット（パネルＢ）。分子量マーカーを左に示している。
図５は１０Ａ３０４．７（パネルＡ）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＢ）、マウス抗ヒトＣＤ５９（ＭＥＭ−４３、パネルＣ）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３Ｂ．６、パネルＤ）をプローブに用いた、マウス抗ヒトＣＤ５９（ＭＥＭ−４３、レーン１）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（レーン２）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３Ｂ．６、レーン３）で免疫沈降させたＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質のウエスタンブロット。分子量マーカーを左に示している。
図６Ａ−６Ｃはヒト正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１に対する陽性／陰性対照の比較。
図７はヒト正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７（Ａ）またはＡＲ３６Ａ３６．１１．１（Ｂ）または抗アクチン（Ｃ）または陰性アイソタイプ対照（Ｄ）で得られたヒト正常子宮内膜／分泌組織での結合パターンを示す典型的な顕微鏡写真。１０Ａ３０４．７では染色は陰性を示し、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１は血管内皮での染色は弱陽性を示した（矢参照）。倍率は２００Ｘである。
図８Ａ−８Ｃは様々なヒト腫瘍組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１に対する陽性／陰性対照の比較。
図９はヒトの複数腫瘍組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７（Ａ）またはＡＲ３６Ａ３６．１１．１（Ｂ）または抗アクチン（Ｃ）または陰性アイソタイプ対照（Ｄ）で得られたヒト正常子宮内膜／分泌組織での結合パターンを示す典型的な顕微鏡写真。１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１では腫瘍細胞に対して染色は陽性を示した。倍率は２００Ｘである。
図１０はヒト肝臓腫瘍および正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７結合のまとめ。
図１１はヒト正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７（Ａ）またはアイソタイプ対照抗体（Ｂ）で得られた肝細胞癌組織、および１０Ａ３０４．７（Ｃ）またはアイソタイプ対照抗体（Ｄ）で得られた非腫瘍肝臓組織での結合パターンを示す典型的な顕微鏡写真。１０Ａ３０４．７では腫瘍細胞において染色は強陽性を示し、正常組織において染色は陰性を示した。倍率は２００Ｘである。
【発明を実施するための最良の形態】
【００６４】
一般に、概要、説明、実施例、請求項において使用する語句や表現は、以下のように定義している。
【００６５】
「抗体」とは、広義で使用されており、具体的には、例えば、一つのモノクローナル抗体（アゴニスト、アンタゴニスト、中和抗体、脱免疫化させたマウスキメラ抗体またはヒト抗体）、多エピトープ特異性を持つ抗体組成物、単鎖抗体、免疫複合体、抗体断片（下記参照）を指す。
【００６６】
本明細書の「モノクローナル抗体」とは、実質的に同種の抗体集団から入手された抗体を指し、つまり、集団を構成する個別の抗体は微量で存在しうる考えられる天然の突然変異を除いて同一である。モノクローナル抗体の特異性は高く、一つの抗原部位を標的としている。さらに、異なる決定基（エピトープ）を標的とする異なる抗体を含むポリクローナル抗体調製物とは対照的に、各モノクローナル抗体は一つの決定基を標的とする。その特異性に加えて、モノクローナル抗体は他の抗体が混入することなく合成できる点で有利である。「モノクローナルの」という修飾語は、実質的に同種の抗体集団から入手される抗体の特徴を指しており、特定の方法による抗体産生が必要になるとは解釈されない。例えば、本発明で使用するモノクローナル抗体は、Ｋｏｈｌｅｒらが最初に記載した（マウスまたはヒト）ハイブリドーマ法（Ｎａｔｕｒｅ，  ２５６：４９５  （１９７５））によって作成でき、または組み換えＤＮＡ法（米国特許第４，８１６，５６７号参照）によって作成できる。「モノクローナル抗体」は、例えば、Ｃｌａｃｋｓｏｎら（Ｎａｔｕｒｅ，  ３５２：６２４−６２８  （１９９１））およびＭａｒｋｓら（Ｊ．  Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ，  ２２２：５８１−５９７  （１９９１））が記載した方法を利用して、ファージ抗体ライブラリーから単離することもできる。
【００６７】
「抗体断片」は、好ましくは抗原結合またはその可変領域を含む、完全な抗体の１部を構成する。抗体断片の例としては、完全長未満の抗体、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ断片、ｄｉａｂｏｄｙ、線状抗体、単鎖抗体分子、単鎖抗体、単一ドメイン抗体分子、融合タンパク質、組み換えタンパク質、抗体断片から形成された多特異性抗体が挙げられる。
【００６８】
「完全な」抗体は、軽鎖定常領域（ＣＬ）および重鎖定常領域、ＣＨ１、ＣＨ２、ＣＨ３の他、抗原結合可変領域を含む抗体である。定常領域は、天然配列定常領域（例、ヒト天然配列定常領域）またはそのアミノ酸配列の変異体でありうる。好ましくは、完全な抗体は１以上のエフェクター機能を持つ。
【００６９】
重鎖の定常領域のアミノ酸配列に応じて、完全な抗体を異なる「クラス」に割り当てることができる。完全な抗体には５つの主なクラスが存在する：ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ、ＩｇＭ。これらの数種は、さらに、「サブクラス」（アイソタイプ）、例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ、ＩｇＡ２に分けることができる。抗体の異なるクラスに対応する定常領域のドメインはそれぞれα、δ、ε、γ、μと呼ばれる。免疫グロブリンの異なったクラスのサブユニット構造と３次本来の形状はよく知られている。
【００７０】
抗体の「エフェクター機能」とは、抗体のＦｃ領域（天然配列Ｆｃ領域またはアミノ酸配列の変異Ｆｃ領域）に起因するそれらの生物活性を指す。抗体エフェクター機能の例としては、Ｃ１ｑ結合、補体依存性の細胞毒性、Ｆｃ受容体結合、抗体依存性の細胞によって媒介される細胞毒性（ＡＤＣＣ）、貪食作用能、細胞表面受容体（例、Ｂ細胞受容体、ＢＣＲ）などのダウンレギュレーションが挙げられる。
【００７１】
「抗体依存性の細胞によって媒介される細胞毒性」および「ＡＤＣＣ」とは、Ｆｃ受容体（ＦｃＲｓ）を発現する非特異的細胞傷害性細胞（例、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞、好中球、マクロファージ）が標的細胞上の結合抗体を認識して、その後、標的細胞を溶解させる細胞媒介性の反応を指す。ＡＤＣＣを媒介する主な細胞であるＮＫ細胞はＦｃγＲＩＩＩのみを発現するが、単球はＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩ、ＦｃγＲＩＩＩを発現する。造血細胞でのＦｃＲ発現は、ＲａｖｅｔｃｈとＫｉｎｅｔ（Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ  ９：４５７−９２（１９９１））のｐ４６４、表３にまとめられている。目的分子のＡＤＣＣ活性を評価するために、米国特許第５，５００，３６２号または米国特許第５，８２１，３３７号に記載のようなインビトロＡＤＣＣアッセイを実施できる。このようなアッセイに有用なエフェクター細胞としては、末梢血単核球細胞（ＰＢＭＣ）やナチュラルキラー（ＮＫ）細胞が挙げられる。または、もしくは、さらに、例えば、Ｃｌｙｎｅｓら（ＰＮＡＳ  （ＵＳＡ）  ９５：６５２−６５６  （１９９８））が開示しているような動物モデルにおいて、目的分子のＡＤＣＣ活性をインビボで評価できる。
【００７２】
「エフェクター細胞」は、１以上のＦｃＲを発現し、エフェクター機能を担う白血球である。好ましくは、細胞は少なくともＦｃγＲＩＩＩを発現し、ＡＤＣＣエフェクター機能を担う。ＡＤＣＣを媒介するヒト白血球の例としては、末梢血単核球細胞（ＰＢＭＣ）、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞、単球、細胞傷害性Ｔ細胞、好中球が挙げられ、ＰＢＭＣとＮＫ細胞が好ましい。例えば、エフェクター細胞は天然材料（例、血液または本明細書に記載のＰＢＭＣ）から単離できる。
【００７３】
「Ｆｃ受容体」または「ＦｃＲ」は、抗体のＦｃ領域に結合する受容体を記載する際に使用される。好ましいＦｃＲは、天然配列のヒトＦｃＲである。さらに、好ましいＦｃＲは、ＩｇＧ抗体（γ受容体）を結合させる受容体であり、これらの受容体の対立遺伝子変異体および選択的スプライスを受けた受容体を含む、ＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩ、Ｆｃγ  ＲＩＩＩサブクラスの受容体が含まれる。ＦｃγＲＩＩ受容体としては、ＦｃγＲＩＩＡ（「「活性化受容体」）そしてＦｃγＲＩＩＢ（「抑制性受容体」）が挙げられ、主にその細胞質ドメインにおいて異なる類似のアミノ酸配列を持つ。受容体活性化ＦｃγＲＩＩＡは、その細胞質ドメインにおいて免疫受容体チロシン活性化モチーフ（ＩＴＡＭ）を含む．  受容体抑制性ＦｃγＲＩＩＢは、その細胞質ドメインにおいて免疫受容体チロシン抑制モチーフ（ＩＴＩＭ）を含む（例、Ｍ．  ｉｎ  Ｄａｅｒｏｎ，  Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５：２０３−２３４  （１９９７）のレビュー参照）。ＦｃＲは、ＲａｖｅｔｃｈおよびＫｉｎｅｔ（Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ  ９：４５７−９２  （１９９１））、Ｃａｐｅｌら（Ｉｍｍｕｎｏｍｅｔｈｏｄｓ  ４：２５−３４  （１９９４））、ｄｅ  Ｈａａｓら（Ｊ．  Ｌａｂ．Ｃｌｉｎ．Ｍｅｄ．１２６：３３０−４１  （１９９５））において再検討されている。今後同定されるＦｃＲｓを含む他のＦｃＲが、本明細書の「ＦｃＲ」に含まれる。該用語には、新生児受容体ＦｃＲｎも含まれ、これは母親から胎児へのＩｇＧの移入に関与する（Ｇｕｙｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．１  １７：５８７  （１９７６）  ａｎｄ  Ｋｉｍ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２４：２４２９  （１９９４））。
【００７４】
「補体依存性の細胞毒性」または「ＣＤＣ」は、補体の存在下で標的を溶解させる能力を指す。同種抗原が結合した分子（例、抗体）に補体系（Ｃ１ｑ）の第１成分が結合することで補体活性化経路が始動する。補体活性化を評価するために、ＣＤＣアッセイ（例、  Ｇａｚｚａｎｏ−Ｓａｎｔｏｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ  ２０２：  １６３  （１９９６）に記載）を実施できる。
【００７５】
「可変」とは、抗体間において可変領域の特定部分の配列が広範囲にわたって異なり、特定抗原に対する各特定抗体の結合および特異性において使用されるという事実を指す。しかし、可変性は抗体の可変領域全体に一様に分布しているわけではない。これは、軽鎖／重鎖可変領域内の超可変領域と呼ばれる３つの断片に集中している。可変領域のより保存性の高い部分をフレームワーク領域（ＦＲ）と呼ぶ。天然の重鎖および軽鎖の可変領域は、それぞれ４つのＦＲから成り、３つの超可変領域に結合したβシートの配置を主に取り、これはループを形成して、βシート構造の一部を形成する場合がある。各鎖の超可変領域はＦＲによって他の鎖の超可変領域とまとめられ近接しており、抗体の抗原結合部位の形成に寄与する（Ｋａｂａｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ  ｏｆ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，  ５ｔｈ  Ｅｄ．  Ｐｕｂｌｉｃ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｓｅｒｖｉｃｅ，  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ，  Ｂｅｔｈｅｓｄａ，  Ｍｄ．（１９９１）参照）．  定常領域は、抗原への抗体の結合に直接関与しないが、抗体依存性の細胞毒性（ＡＤＣＣ）における抗体の関与など様々なエフェクター機能を示す。
【００７６】
本明細書の「超可変領域」とは、抗原結合に関与する抗体のアミノ酸残基を指す。一般に、超可変領域は、「相補性決定領域」または「ＣＤＲ」のアミノ酸残基（例、軽鎖可変領域の２４−３４（Ｌ１）、５０−５６（Ｌ２）、８９−９７（Ｌ３）残基および重鎖可変領域の３１−３５（Ｈ１）、５０−６５（Ｈ２）、９５−１０２（Ｈ３）残基、Ｋａｂａｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ  ｏｆ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，  ５ｔｈ  Ｅｄ．  Ｐｕｂｌｉｃ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｓｅｒｖｉｃｅ，  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ，  Ｂｅｔｈｅｓｄａ，  Ｍｄ．（１９９１））、および／または「高頻度可変性ループ」の残基（例、軽鎖可変領域の２６３２  （Ｌ１）、５０−５２  （Ｌ２）、９１−９６  （Ｌ３）残基および重鎖可変領域の２６−３２（Ｈ１）、５３−５５（Ｈ２）、９６−１０１（Ｈ３）残基、Ｃｈｏｔｈｉａ  ａｎｄ  Ｌｅｓｋ  Ｊ．  Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１９６：９０１−９１７  （１９８７））から成る。「フレームワーク領域」または「ＦＲ」残基は、本明細書に定める超可変領域の残基以外の可変領域の残基である。抗体のパパイン分解によって、「Ｆａｂ」断片と呼ばれる２つの同一の抗原結合断片が生じ、それぞれが一つの抗原結合部位および残りの「Ｆｃ」を伴い、「Ｆｃ」の名称は易結晶性を反映している。ペプシン処理によって、２つの抗原結合部位を持ち、依然として抗原を架橋できるＦ（ａｂ’）２ 断片が生じる。
【００７７】
「Ｆｖ」は、完全な抗原認識部位および抗原結合部位を含む最小抗体断片である。この部位は、１つの重鎖と１つの軽鎖の可変領域が非共有結合的に強固に結合した二量体から成る。各可変領域の３つの超可変領域が相互作用して、ＶＨ−ＶＬ二量体の表面上に抗原結合部位の輪郭を示すのはこの構造である。集合して、６つの超可変領域は抗体に抗原結合特異性を与える。しかし、全結合部位よりも親和性が低いものの、一つの可変領域（または抗原に特異的なわずか３つの超可変領域を含むＦｖの半分）でも抗原を識別して、結合する能力を持つ。Ｆａｂ断片は、軽鎖の定常領域と重鎖の第１定常領域（ＣＨ１）も含む。抗体のヒンジ領域からの１以上のシステインを含む重鎖ＣＨ１領域のカルボキシ末端に数個の残基が付加することで、Ｆａｂ’断片はＦａｂ断片とは異なる。Ｆａｂ’−ＳＨは、定常領域のシステイン残基が少なくとも１つのチオール基を持つＦａｂ’の本明細書における表記である。Ｆ（ａｂ’）２抗体断片は、本来、間にヒンジシステインを持つＦａｂ’対として産生された。抗体断片の他の化学結合も公知である。
【００７８】
任意の脊椎動物種由来の抗体の「軽鎖」は、それらの定常領域のアミノ酸配列に基づき、カッパ（Ｋ）およびラムダ（λ）と呼ばれる２つの明らかに異なるタイプの内の１つに割り当てられることができる。
【００７９】
「単鎖Ｆｖ」または「ｓｃＦｖ」抗体断片は、抗体のＶＨ／ＶＬ領域から成り、これらの領域は１つのポリペプチド鎖に存在している。好ましくは、ＦｖポリペプチドはさらにＶＨとＶＬドメインの間にポリペプチドリンカーを含み、これによってｓｃＦｖが抗原結合のための所望の構造を形成できる。ｓｃＦｖに関するレビュー（Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ  ｉｎ  Ｔｈｅ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ  ｏｆ  Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，  ｖｏｌ．  １  １３，  Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ  ａｎｄ  Ｍｏｏｒｅ  ｅｄｓ．，  Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，  ｐｐ．２６９−３１５  （１９９４））を参照すること。
【００８０】
「Ｄｉａｂｏｄｙ」とは、２つの抗原結合部位を伴う小さな抗体断片を指し、この断片は同じポリペプチド鎖（ＶＨ−ＶＬ）内において可変軽鎖領域（ＶＬ）に結合した可変重鎖領域（ＶＨ）から成る。同じ鎖上の２つの領域間での対合を可能にするための非常に短いリンカーを使用することで、領域を別の鎖の相補領域と対合させて、２つの抗原結合部位を形成させる。Ｄｉａｂｏｄｙについては、例えば、欧州特許第４０４，０９７号、国際公開広報第９３／１１１６１号、Ｈｏｌｌｉｎｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ，  ９０：６４４４−６４４８（１９９３）に詳述されている。
【００８１】
「単離」抗体は、同定、分離、および／またはその自然環境の成分から回収された抗体である。自然環境の混入成分は、抗体の診断や治療における使用を妨げ、酵素、ホルモン、他のタンパク性／非タンパク質性の溶質を含みうる原料である。抗体の自然環境において少なくとも１成分が存在しないため、単離抗体には組み換え細胞内のｉｎ  ｓｉｔｕの抗体が含まれる。一方、通常、単離抗体は少なくとも１つの精製段階によって調製できる。
【００８２】
目的の抗原（例、ＣＤ５９）に「結合する」抗体は、十分な親和性で抗原に結合可能な抗体であり、該抗体は該抗原を発現する細胞を標的とする治療薬として有用である。抗体がＣＤ５９に結合する抗体である場合、通常、これは他の受容体とは対照的に選択的にＣＤ５９に結合し、Ｆｃとの非特異的接触などの偶発的な結合、または他の抗原に共通する翻訳後修飾物への結合を含まず、他のタンパク質と有意に交差反応しない抗体である。目的の抗原に結合する抗体の検出方法は、当技術分野において周知であり、限定はされないが、ＦＡＣＳ、細胞ＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロットなどのアッセイを挙げることができる。
【００８３】
本明細書で使用する「細胞」、「細胞株」、「細胞培養」という表現は、互換性を持って使用しており、全てのこれらの表記には子孫細胞も含まれる。故意の、または偶発的な突然変異のため、全ての子孫細胞がＤＮＡ含量において厳密に同一ではない可能性があることも理解されている。本来の形質転換細胞においてスクリーニングした同じ機能または生物活性を持つ突然変異体の子孫細胞が含まれる。別の表記が意図されている状況から明らかであろう。
【００８４】
「治療」とは、治療的処置および予防対策の両方を指し、目的は、標的となる病態や疾患を予防または抑制（低下）させることである。治療を必要とする人々としては、疾患傾向のある人々や疾患を予防する必要のある人々の他、既に疾患を伴う人々が挙げられる。このように、本明細書において治療される哺乳動物は、疾患の診断が下されている、もしくは疾患に罹りやすい、または疾患に感受性がありうる。
【００８５】
「癌」および「癌性の」とは、通例、無制御の細胞増殖や細胞死を特徴とする哺乳動物の生理学的状態を指す、またはこれについて記載している。癌の例としては、限定はされないが、癌腫、リンパ腫、芽細胞腫、肉腫、白血病、リンパ様悪性腫瘍が挙げられる。これらの癌のより具体的な例としては、頭頚部癌の他、扁平上皮癌（例、上皮性扁平上皮癌）、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、肺と扁平上皮癌および肺の腺癌、腹膜癌、肝細胞性癌、消化管癌を含む胃癌、膵臓癌、膠芽腫、子宮頸癌、卵巣癌、肝臓癌、膀胱癌、肝細胞癌、乳房癌、結腸癌、直腸癌、結腸直腸癌、子宮内膜癌または子宮癌、唾液腺癌、腎臓癌、前立腺癌、外陰癌、甲状腺癌、肝癌、肛門癌、陰茎癌が挙げられる。
【００８６】
「化学療法薬」は癌の治療に有用な化合物である。化学療法薬の例としては、チオテパとシクロホスファミド（ＣＹＴＯＸＡＮ（商標））などのアルキル化剤、ブスルファン、インプロスルファン、ピポスルファンなどのスルホン酸アルキル、ベンゾドーパ、カルボコン、メチュアドーパ（ｍｅｔｕｒｅｄｏｐａ）、ウレドーパ（ｕｒｅｄｏｐａ）などのアジリジン、アルトレタミン、トリエチレンメラミン、トリエチレンホスホロアミド、トリエチレンチオホスホラミド（ｔｒｉｅｔｈｙｌｅｎｅｔｈｉｏｐｈｏｓｐｈａｏｒａｍｉｄｅ）、トリメチローロメラミン（ｔｒｉｍｅｔｈｙｌｏｌｏｍｅｌａｍｉｎｅ）を含むエチレンイミン類（ｅｔｈｙｌｅｎｉｍｉｎｅｓ）およびメチルメラミン類（ｍｅｔｈｙｌａｍｅｌａｍｉｎｅｓ）、クロラムブシル、クロルナファジン、コロホスファミド（ｃｈｏｌｏｐｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、エストラムスチン、イホスファミド、メクロレタミン、塩酸メクロレタミン酸化物、メルファラン、ノベンビチン（ｎｏｖｅｍｂｉｃｈｉｎ）、フェネステリン、プレドニムスチン、トロホスアミド、ウラシルマスタードなどのナイトロジェンマスタード系、カルムスチン、クロロゾトシン、ホテムスチン（ｆｏｔｅｍｕｓｔｉｎｅ）、ロムスチン、ニムスチン、ラニムスチンなどのニトロソウレア、アクラシノマイシン（ａｃｌａｃｉｎｏｍｙｓｉｎｓ）、アクチノマイシン、アスラマイシン（ａｕｔｈｒａｍｙｃｉｎ）、アザセリン、ブレオマイシン、カクチノマイシン、カリケミシン（ｃａｌｉｃｈｅａｍｉｃｉｎ）、カラビシン（ｃａｒａｂｉｃｉｎ）、ｃａｒｎｏｍｙｃｉｎ、カルジノフィリン、クロモマイシン、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、デトルビシン（ｄｅｔｏｒｕｂｉｃｉｎ）、６−ジアゾ−５−オキソ−Ｌ−ノルロイシン、ドキソルビシン、エピルビシン、エソルビシン（ｅｓｏｒｕｂｉｃｉｎ）、イダルビシン、マルセロマイシン（ｍａｒｃｅｌｌｏｍｙｃｉｎ）、マイトマイシン、ミコフェノール酸、ノガラマイシン、オリボマイシン（ｏｌｉｖｏｍｙｃｉｎｓ）、ペプロマイシン、ポトフィロマイシン（ｐｏｔｆｉｒｏｍｙｃｉｎ）、ピュロマイシン、キラマイシン（ｑｕｅｌａｍｙｃｉｎ）、ロドルビシン（ｒｏｄｏｒｕｂｉｃｉｎ）、ストレプトニグリン、ストレプトゾシン、ツベルシジン、ウベニメクス、ジノスタチン、ゾルビシンなどの抗生物質、メトトレキセートおよび５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）などの代謝拮抗薬、デノプテリン、メトトレキセート、プテロプテリン、トリメトレキセートなどの葉酸類似体、フルダラビン、６−メルカプトプリン、チアミプリン（ｔｈｉａｍｉｐｒｉｎｅ）、チオグアニンなどのプリン類似体、アンシタビン、アザシチジン、６−アザウリジン、カルモフール、シタラビン、ｄｉｄｅｏｘｙｕｒｉｄｉｎｅ、ドキシフルリジン、エノシタビン、フロクスウリジン、５−ＦＵなどのピリミジン類似体、カルステロン、プロピオン酸ドロモスタノロン、エピチオスタノール、メピチオスタン、テストラクトンなどのアンドロゲン、アミノグルテチミド、ミトーテン、トリロスタンなどの抗副腎剤、フロリン酸のような葉酸補充物、アセグラトン、アルドホスファミドグリコシド、アミノレブリン酸、アムサクリン、ベストラブシル（ｂｅｓｔｒａｂｕｃｉｌ）、ビサントレン（ｂｉｓａｎｔｒｅｎｅ）、エデトラキサート（ｅｄａｔｒａｘａｔｅ）、デホファミン（ｄｅｆｏｆａｍｉｎｅ）、デメコルチン、ジアジコン、ｅｌｆｏｒｍｉｔｈｉｎｅ、酢酸エリプチニウム、エトグルシド（ｅｔｏｇｌｕｃｉｄ）、硝酸ガリウム、ヒドロキシ尿素、レンチナン、ロニダミン、ミトグアゾン、ミトキサントロン、モピダモール（ｍｏｐｉｄａｍｏｌ）、ニトラクリン、ペントスタチン、フェナメット（ｐｈｅｎａｍｅｔ）、ピラルビシン、ポドフィリン酸、２−ｅｔｈｙｌｈｙｄｒａｚｉｄｅ、プロカルバジン、ＰＳＫ（登録商標）、ラゾキサン、シゾフィラン、スピロゲルマニウム、テヌアゾン酸、トリアジコン（ｔｒｉａｚｉｑｕｏｎｅ）、２，２’，２”−トリクロロトリエチルアミン、ウレタン、ビンデシン、ダカルバジン、マンノムスチン、ミトブロニトール、ミトラクトール、ピポブロマン、ガシトシン（ｇａｃｙｔｏｓｉｎｅ）、アラビノシド（Ａｒａ−Ｃ）、シクロホスファミド、チオテパ、タキサン、例、パクリタキセル（ＴＡＸＯＬ（登録商標），  Ｂｒｉｓｔｏｌ−Ｍｙｅｒｓ  Ｓｑｕｉｂｂ  Ｏｎｃｏｌｏｇｙ，  Ｐｒｉｎｃｅｔｏｎ，  Ｎ．Ｊ．）およびドセタキセル（ＴＡＸＯＴＥＲＥ（登録商標），  Ａｖｅｎｔｉｓ，  Ｒｈｏｎｅ−Ｐｏｕｌｅｎｃ  Ｒｏｒｅｒ，  Ａｎｔｏｎｙ，  Ｆｒａｎｃｅ）、クロラムブシル、ゲムシタビン、６−チオグアニン、メルカプトプリン、メトトレキセート、シスプラチンやカルボプラチンなどのプラチナ類似体、ビンブラスチン、プラチナ、エトポシド（ＶＰ−１６）、イホスファミド、マイトマイシンＣ、ミトキサントロン、ビンクリスチン、ビノレルビン、ナベルビン、ミトキサントロン、テニポシド、ダウノマイシン、アミノプテリン、ゼローダ、イバンドロネート、ＣＰＴ−１１、トポイソメラーゼ阻害剤ＲＦＳ  ２０００、ジフルオロメチルオルニチン（ＤＭＦＯ）、レチノイン酸、エスペラミシン、カペシタビン、および上記のいずれかの薬学的に許容される塩、酸、誘導薬が挙げられる。タモキシフェン、ラロキシフェン、アロマターゼ抑制性４（５）−イミダゾール、４‐ヒドロキシタモキシフェン、トリオキシフェン、ケオキシフェン、ＬＹ１１７０１８、オナプリストン、トレミフェン（Ｆａｒｅｓｔｏｎ）、およびフルタミド、ニルタミド、ビカルタミド、ロイプロライド、ゴセレリンなどの抗アンドロゲン剤、および上記のいずれかの薬学的に許容される塩、酸、誘導薬などの腫瘍に及ぼすホルモンの作用を調節または抑制するように作用する抗ホルモン薬もこの定義に含まれる。
【００８７】
治療の目的となる「哺乳動物」とは、ヒト、マウス、ＳＣＩＤマウスまたはヌードマウスまたはマウス系統、家畜を含む哺乳動物、そして羊、犬、馬、猫、牛などの動物園、ペット、スポーツ用の動物に分類される任意の動物を指す。好ましくは、本明細書の哺乳動物はヒトである。
【００８８】
「オリゴヌクレオチド」は、既知の方法（１９８８年５月４日に公開された欧州特許第２６６，０３２号などに記載の固相技術を利用したホスホロトリエステル、フォスファイト、またはホスホラミダイト化学、もしくは（Ｆｒｏｅｈｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，  １４：５３９９−５４０７，  １９８６）に記載のデオキシヌクレオシドＨ−ホスホン酸中間体による）によって化学合成される長さの短い単鎖または二本鎖のポリデオキシヌクレオチドである。次にポリアクリルアミドゲルでこれらを精製する。
【００８９】
特に断らない限り、本明細書の「ＣＤ５９」とは、哺乳動物のグリコシルホスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）結合膜糖タンパク質（別名、ＭＥＭ−４３抗原、反応性細胞融解の膜阻害因子（ＭＩＲＬ）、Ｈ１９、膜攻撃複合体抑制因子（ＭＡＣＩＦ）、分子量２０，０００のホモロガス制限因子（ＨＲＦ２０）、プロテクティン（Ｗａｌｓｈ，  Ｔｏｎｅ  ｅｔ  ａｌ．１９９２）など）を指す。
【００９０】
「キメラ」抗体は、重鎖および／または軽鎖の一部が、特定種に由来する抗体または特定の抗体クラスやサブクラスに属する抗体における対応する配列と同じである、もしくは相同である免疫グロブリンであり、鎖の残り部分は、所望の生物活性を示す限り、これらの抗体の断片の他、別の種に由来する抗体または別の抗体クラスやサブクラスに属する抗体における対応する配列と同じ、もしくは相同である（米国特許第４，８１６，５６７号、Ｍｏｒｒｉｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ，  ８１：６８５１−６８５５  （１９８４））。
【００９１】
ヒト以外（例、マウス）の「ヒト化」型抗体は、特異的なキメラ免疫グロブリン、免疫グロブリン鎖または免疫グロブリン鎖の断片（Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ）２、または抗体の他の抗原結合部分配列）であり、ヒト以外の免疫グロブリンに由来する最小限の配列を含んでいる。大半において、ヒト化抗体はヒト免疫グロブリン（レシピエント抗体）であり、このヒト免疫グロブリンにおいて、レシピエント抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ）由来の残基を、所望の特異性、親和性、能力を有する、マウス、ラット、ラットなどのヒト以外の種（ドナー抗体）のＣＤＲに由来する残基で置換している。一部の例では、ヒト免疫グロブリンのＦｖフレームワーク領域（ＦＲ）残基を対応するヒト以外のＦＲ残基と置換させている。さらに、ヒト化抗体は、レシピエント抗体および取り込ませたＣＤＲ配列やＦＲ配列のいずれでも認められない残基を含みうる。これらの改変を施すことで、抗体の性能を向上・最適化させる。一般に、ヒト化抗体は、少なくとも１つ、通例、２つの可変領域の実質的に全てを含み、ここでＣＤＲ領域の全て、または実質的に全てがヒト以外の免疫グロブリンの領域と一致しており、ＦＲ残基の全て、または実質的に全てがヒト免疫グロブリンのコンセンサス配列の領域である。ヒト化抗体は、任意で、免疫グロブリン定常領域の一部（Ｆｃ）、通例、ヒト免疫グロブリンの一部を含む。
【００９２】
「脱免疫化」抗体は、任意の種に対して、免疫原性のない、もしくは免疫原性の低い免疫グロブリンである。抗体に対する構造変化によって脱免疫化させることができる。当業者に公知の脱免疫化技術を利用できる。適当な脱免疫化技術は、例えば、２０００年６月１５日に公開された国際公開広報第００／３４３１７号に記載されている。
【００９３】
「相同性」については、配列を並べて、相同性（％）を最高にするために適宜ギャップを導入した後でのアミノ酸配列変異体における同一残基の割合と定義している。配列比較の方法およびコンピュータプログラムは当技術分野において周知である。
【００９４】
本出願では一貫して、ハイブリドーマ細胞株から産生された単離モノクローナル抗体の他、ハイブリドーマ細胞株は、それらの内部表記（１０Ａ３０４．７またはＡＲ３６Ａ３６．１１．１）または寄託表記（ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５０６５またはＩＤＡＣ  ２８０１０４−０２）によっても呼ばれる。
【００９５】
本明細書の「リガンド」としては、標的抗原への結合特異性を示す部分が挙げられ、これは完全な抗体分子や少なくとも抗原結合領域またはその一部を持つ任意の分子（抗体分子の可変部分）、例えば、Ｆｖ分子、Ｆａｂ分子、Ｆａｂ’分子、Ｆ（ａｂ’）．ｓｕｂ．２分子、二重特異性抗体、融合タンパク質、またはＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５０６５またはＩＤＡＣ  ２８０１０４−０２と表記されるハイブリドーマ細胞株から産生された単離モノクローナル抗体が結合した抗原（ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５０６５抗原またはＩＤＡＣ  ２８０１０４−０２抗原）を特異的に識別して結合する遺伝子組み換え分子でありうる。
【００９６】
本明細書の「抗原結合部位」は、標的抗原を識別する分子の一部を意味する。
【００９７】
本明細書の「競合阻害する」とは、従来の抗体相互競合アッセイを利用して、ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５０６５またはＩＤＡＣ  ２８０１０４−０２と表記されるハイブリドーマ細胞株から産生された単離モノクローナル抗体（ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５０６５抗体またはＩＤＡＣ  ２８０１０４−０２抗体）が標的とする決定基部位を認識して結合できることを意味する（Ｂｅｌａｎｇｅｒ  Ｌ．，  Ｓｙｌｖｅｓｔｒｅ  Ｃ．  ａｎｄ  Ｄｕｆｏｕｒ  Ｄ．  （１９７３），  Ｅｎｚｙｍｅ  ｌｉｎｋｅｄ  ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ  ｆｏｒ  ａｌｐｈａ  ｆｅｔｏｐｒｏｔｅｉｎ  ｂｙ  ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｖｅ  ａｎｄ  ｓａｎｄｗｉｃｈ  ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ．  Ｃｌｉｎｉｃａ  Ｃｈｉｍｉｃａ  Ａｃｔａ  ４８，  １５）。
【００９８】
本明細書の「標的抗原」とは、ＡＴＣＣＰＴＡ−５０６５抗原またはＩＤＡＣ２８０１０４−０２抗原、またはこれらの一部である。
【００９９】
本明細書の「免疫複合体」とは、細胞毒素、放射性薬剤、酵素、毒素、抗腫瘍薬、治療剤に化学的または生物学的に結合させた抗体などの分子またはリガンドである。標的に結合可能な限り、抗体を分子に沿った任意の部位で細胞毒素、放射性薬剤、抗腫瘍薬、治療剤に結合させることができる。免疫複合体の例としては、抗体‐毒素化学複合体や抗体‐毒素融合タンパク質が挙げられる。
【０１００】
本明細書の「融合タンパク質」とは、抗原結合領域を生物活性分子（例、毒素、酵素、タンパク質薬剤）に結合させた任意のキメラタンパク質を意味している。
【０１０１】
本明細書に記載の発明をより十分に理解するために、以下の記載を示す。
【０１０２】
本発明は、ＡＴＣＣＰＴＡ−５０６５抗原またはＩＤＡＣ２８０１０４−０２抗原を識別して結合するリガンド（ＡＴＣＣＰＴＡ−５０６５リガンドまたはＩＤＡＣ２８０１０４−０２リガンド）を提供する。
【０１０３】
ハイブリドーマＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５０６５またはＩＤＡＣ  ２８０１０４−０２によって産生されるモノクローナル抗体のその標的抗原への免疫特異的結合を競合阻害する抗原結合領域を持つ限り、発明のリガンドは任意の形状でよい。このように、ＡＴＣＣＰＴＡ−５０６５抗体またはＩＤＡＣ２８０１０４−０２抗体と同じ結合特異性を持つ任意の組み換えタンパク質（例、抗体がリンホカインまたは腫瘍抑制増殖因子などの第二のタンパク質と結合した融合タンパク質）も本発明の範囲内にある。
【０１０４】
本発明の一態様では、リガンドはＡＴＣＣＰＴＡ−５０６５抗体またはＩＤＡＣ２８０１０４−０２抗体である。
【０１０５】
他の態様では、リガンドは抗原結合断片であり、抗原結合断片は、Ｆｖ分子（単鎖Ｆｖ分子など）、Ｆａｂ分子、Ｆａｂ’分子、Ｆ（ａｂ’）２分子、融合タンパク質、二重特異的抗体、ヘテロ抗体、ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５０６５抗体またはＩＤＡＣ  ２８０１０４−０２抗体の抗原結合領域を持つ任意の組み換え分子でよい。本発明のリガンドは、ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５０６５モノクローナル抗体またはＩＤＡＣ２８０１０４−０２モノクローナル抗体が標的とするエピトープに向けられている。
【０１０６】
本発明のリガンドは、誘導体分子を産生するように修飾できる（分子内のアミノ酸修飾による）。化学修飾も可能である。
【０１０７】
誘導体分子はポリペプチドの機能特性を保持しており、つまり、このような置換を持つ分子によってＡＴＣＣＰＴＡ−５０６５抗原またはＩＤＡＣ２８０１０４−０２抗原、もしくはこれらの一部へのポリペプチドの結合が依然として可能になりうる。
【０１０８】
これらのアミノ酸置換には、限定はされないが、当技術分野において「保存的」として知られるアミノ酸置換が挙げられる。
【０１０９】
例えば、これは、「保存的アミノ酸置換」と呼ばれる、タンパク質の立体構造や機能を変えることなく特定のアミノ酸置換をタンパク質に施すことができる場合が多いという、タンパク質化学において十分に確立された原則である。
【０１１０】
このような変化としては、イソロイシン（Ｉ）、バリン（Ｖ）、ロイシン（Ｌ）とこれらの疎液性アミノ酸の他のいずれかとの置換およびその逆、アスパラギン酸（Ｄ）とグルタミン酸（Ｅ）およびその逆、グルタミン（Ｑ）とアスパラギン（Ｎ）およびその逆、そしてセリン（Ｓ）とスレオニン（Ｔ）およびその逆が挙げられる。タンパク質の３次元構造の特定アミノ酸の環境およびその役割に応じて、他の置換も保存的と見なすことができる。例えば、アラニンとバリン（Ｖ）と同様に、グリシン（Ｇ）とアラニン（Ａ）は置換可能な場合が多い。比較的疎液性の高いメチオニン（Ｍ）は、ロイシンやイソロイシン、そして場合によってはバリンで置換できることが多い。リジン（Ｋ）とアルギニン（Ｒ）については、電荷をアミノ酸残基の顕著な特徴としており、２つのアミノ酸残基のｐＫ値に有意差がない部位において置換可能な場合が多い。特定の環境において、さらに他の変化を「保存的」と見なすことができる。
【０１１１】
抗体が与えられれば、当業者であれば、競合阻害リガンド、例えば、同じエピトープを識別する競合抗体を作成できる（Ｂｅｌａｎｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  １９７３）。１つの方法では、抗体によって識別される抗原を発現する免疫原での免疫付与が必要となりうる。サンプルとしては、限定はされないが、組織、単離タンパク質、または細胞株を挙げることができる。結果として得られるハイブリドーマは、競合アッセイを利用してスクリーニング可能であり、これはＥＬＩＳＡ、ＦＡＣＳ、免疫沈降など、試験抗体の結合を抑制する抗体を同定するアッセイである。別の方法では、前記抗原を識別する抗体のファージディスプレイライブラリーおよびパニングを利用可能であった（Ｒｕｂｉｎｓｔｅｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００３）。いずれの場合でも、標的抗原への結合における本来の抗体よりも高い競合性に基づいてハイブリドーマが選択されうる。したがって、このようなハイブリドーマは、本来の抗体と同じ抗原を識別するという特徴を持ち、同じエピトープをより特異的に識別しうる。
【０１１２】
実施例１
インビトロでの細胞毒性
ＣＬ−１０００フラスコ（ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，  Ｏａｋｖｉｌｌｅ，  ＯＮ）にハイブリドーマを培養して、回収、再播種を週２回行なうことで１０Ａ３０４．７モノクローナル抗体を作成した。Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｇ  Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  ４  Ｆａｓｔ  Ｆｌｏｗ（Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，  Ｂａｉｅ  ｄ’Ｕｒｆｅ，  ＱＣ）を用いた標準的な抗体精製方法に従った。ヒト化、キメラ化、またはマウスのモノクローナル抗体の利用は本発明の範囲内である。
【０１１３】
細胞毒性アッセイにおける緩衝剤の希釈液対照の他、両陽性対照（抗ＥＧＦＲ抗体（Ｃ２２５，  ＩｇＧ１，  ｋａｐｐａ，  ５μｇ／ｍＬ，  Ｃｅｄａｒｌａｎｅ，  Ｈｏｒｎｂｙ，  ＯＮ、抗ＦＡＳ，  ＩｇＭ，  ｋａｐｐａ，  １０μｇ／ｍＬ，  ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，  Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，  ＣＡ）、シクロヘキシミド（ＣＨＸ，  ０．５  ｍｉｃｒｏｍｏｌａｒ，  Ｓｉｇｍａ，  Ｏａｋｖｉｌｌｅ，  ＯＮ）、ＮａＮ３（０．１％，  Ｓｉｇｍａ，  Ｏａｋｖｉｌｌｅ，  ＯＮ）、および陰性アイソタイプ対照８Ｂ１Ｂ．１（抗ブルータングウイルス、自家精製）を１０Ａ３０４．７と比較した（図１）。２つの膵臓癌細胞株（ＢｘＰＣ−３、ＰＬ４５）において、１０μｇ／ｍＬで１０Ａ３０４．７とアイソタイプ対照抗体を評価した。両細胞株はＡＴＣＣ（Ｍａｎａｓｓａｓ，  ＶＡ）から入手した。カルセインＡＭは、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ（Ｅｕｇｅｎｅ，  ＯＲ）から入手した。以下の変更を加えて、メーカーの説明書に従ってアッセイを実施した。アッセイの前に、所定の適当な密度で細胞を播種した。２日後、１００μＬの精製抗体または対照を培地中に希釈させて、次に細胞プレートに移して、５％  ＣＯ２インキュベーター内で５日間培養させた。次に、プレートを裏返すことで空にして、培養液を吸い取り乾燥させた。マルチチャネルスクイーズボトルから各ウェルにＭｇＣｌ２とＣａＣｌ２を含む室温のＤＰＢＳを分注して、３回軽くたたき、裏返すことで空にして、培養液を吸い取り乾燥させた。各ウェルにＭｇＣｌ２とＣａＣｌ２を含むＤＰＢＳで希釈させた蛍光カルセイン染色液５０μＬを加えて、３７℃の５％  ＣＯ２インキュベーター内で３０分間培養させた。Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ  ＨＴＳ７０００蛍光プレートリーダーでプレートを読ませて、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ  Ｅｘｃｅｌでデータを解析して、図１の表に結果を示した。各抗体について、３回試験を行なった４つの実験において認められた平均細胞毒性に基づく５〜５０のスコア、およびアッセイ間で認められた変動に基づく２５〜１００のスコアが得られた。これらの２つのスコア（細胞毒性スコア）の合計を図１に示している。試験した細胞株における５５以上の細胞毒性スコアを陽性と見なした。米国特許第６，７９４，４９４号において過去に開示された通り、１０Ａ３０４．７はＢｘＰＣ−３細胞に細胞毒性作用を持たなかった。膵臓ＰＬ４５細胞株において、緩衝剤陰性対照およびアイソタイプ陰性対照のいずれをも上回る、特異的な細胞毒性が１０Ａ３０４．７抗体について認められた。緩衝剤では測定可能な細胞毒性は認められなかった。この特定の実験において、８Ｂ１Ｂ．１アイソタイプ対照は、ＰＬ４５細胞株に対して通常の細胞毒性よりも高い細胞毒性を示し、これはバイオアッセイにおいて固有の変動作用でありうる。アイソタイプ対照の効果は高かったが、１０Ａ３０４．７で得られた結果は各実験において一貫して高かった。これらの結果は、１０Ａ３０４．７が機能的特異性を持ち、ヒト膵臓癌由来の標的癌細胞を標的にできることを示している。
【０１１４】
実施例２
ウエスタンブロット法による結合タンパク質の同定
１０Ａ３０４．７抗体およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体によって識別される抗原を同定するために、抗原を発現する細胞膜をゲル電気泳動にかけて、ウエスタンブロッティングを利用してメンブレンにトランスファーさせ、これらの抗体に結合するタンパク質を判定した。
【０１１５】
１．膜の調製
過去の研究から、重症複合型免疫不全症（ＳＣＩＤ）マウスにおける異種移植片として増殖させたＭＤＡ−ＭＢ−２３１（ＭＢ−２３１）細胞株によって例示される通り、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１は乳癌に対して効果を示した。したがって、ＭＢ−２３１膜調製物を抗原の同定に使用した。全細胞膜はＭＢ−２３１細胞のコンフルエント培養物から調製した。細胞重層から培地を除き、細胞をリン酸塩緩衝生理食塩液（ＰＢＳ）で洗った。プラットホームシェーカー上で分離緩衝液（Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ，  Ｇｒａｎｄ  Ｉｓｌａｎｄ，  ＮＹ）を用いて細胞を３７℃、２０分間分離させた。細胞を回収して、４℃で１０分間、９００ｇの遠心分離にかけた。遠心分離後、細胞の沈殿をＰＢＳ中で再浮遊させて、４℃で１０分間、９００ｇの遠心分離に再びかけて洗った。上精を捨てて、沈殿を−８Ｏ℃で保存した。細胞１ｇ当たり緩衝液３  ｍＬの比率で、Ｃｏｍｐｌｅｔｅ  ｐｒｏｔｅａｓｅ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ  ｃｏｃｋｔａｉｌ（Ｒｏｃｈｅ，  Ｌａｖａｌ  ＱＣ）５０ｍＬ当たり錠剤１個を含むホモジナイゼーション緩衝液に細胞の沈殿を再浮遊させた。細胞を溶解させるために、氷上でポリトロンホモジナイザー使用して細胞浮遊液をホモジナイズした。核小片を除去するために、細胞ホモジネートを４℃で１０分間、１５，０００ｇの遠心分離にかけた。上精を回収して、チューブに分注し、４℃で９０分間、７５，６００ｇの遠心分離にかけた。上精を静かにチューブから除去して、各膜沈殿物を約５ｍＬのホモジナイゼーション緩衝液に再浮遊させた。全てのチューブの再浮遊させた沈殿物を１本のチューブに合わせて、４℃で９０分間、７５，６００ｇの遠心分離にかけた。チューブから上精を静かに除去して、沈殿物の重さを量った。膜沈殿物１ｇ当たり緩衝液３ｍＬの比率で、１％  Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を含む可溶化緩衝液を沈殿に加えた。プラットホームシェーカー上で３００ｒｐｍ、１時間、膜を氷上で可溶化させた。膜溶液を７５，６００ｇの遠心分離にかけて、不溶性物質を沈殿させた。可溶化膜タンパク質を含む上精を静かにチューブから除去して、タンパク質含量を分析し、−８０℃で保存した。
【０１１６】
２．ウエスタンブロット
膜タンパク質をＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動で分離させた。ＭＢ−２３１膜タンパク質２０μｇを非還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥサンプル緩衝液と混合させて、２枚の４〜２０％勾配ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル（Ｂｉｏ−Ｒａｄ，  Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，  ＯＮ）のレーンに添加した。未染色分子量マーカー（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，  Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ，  ＯＮ）のサンプルをレファレンスのレーンに流した。１００Ｖで１０分間、その後、サンプル緩衝液の染色先端部はゲルから流出するまで１５０Ｖで電気泳動を実施した。１６時間の４０Ｖ電気ブロッティングによって、タンパク質をゲルからＰＶＤＦメンブレン（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ，  Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ，  ＭＡ）にトランスファーさせた。トランスファー後、０．５％  Ｔｗｅｅｎ−２０（ＴＢＳＴ）を含む５％スキムミルク粉末のトリス緩衝生理食塩水溶液でメンブレンをブロッキングした。メンブレンをＴＢＳＴで３回洗い、５％スキムミルク粉末のＴＢＳＴ溶液に希釈させた５μｇ／ｍＬ  １０Ａ３０４．７または５μｇ／ｍＬ  ＡＲ３６Ａ３６．１１．１と２時間インキュベートさせた。ＴＢＳＴで３回洗った後、Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌｓ（Ｗｅｓｔ  Ｇｒｏｖｅ，  ＰＡ）のホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）結合ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｆｃ）と共にメンブレンをインキュベートさせた。このインキュベーション後、ＴＢＳＴで３回洗い、ＥＣＬ  Ｐｌｕｓ  ｗｅｓｔｅｒｎ  ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｒｅａｇｅｎｔｓ（Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，  Ｂａｉｅ  ｄ’Ｕｒｆe，  ＱＣ）とインキュベーションさせた。ブロットを化学発光フィルム（Ｋｏｄａｋ，  Ｃｅｄｅｘ，  Ｆｒａｎｃｅ）に暴露させて、Ｘ光線メディカルプロセッサを使用して現像した。
【０１１７】
図２は、メンブレン下部においてタンパク質と強く結合したＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＡ）、１０Ａ３０４．７（パネルＢ）を示している。分子量スタンダードとの比較で、抗体は約２０ｋＤａのタンパク質と結合している。両方の抗体が同様のパターンでＭＢ−２３１メンブレンに結合している。
【０１１８】
実施例３
ＡＲ３６Ａ３６．１１．１、１０Ａ３０４．７が結合した抗原の交差免疫沈降および脱グリコシル化
【０１１９】
１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１が結合した抗原が同一であるか否かを判定するために、ＭＢ−２３１膜を２つの抗体で交差免疫沈降させた。反応が機能的抗体に特異的であることを保証するために、適当なアイソタイプ対照（ＡＲ３６Ａ３６．１１．１のアイソタイプであるＩｇＧ２ａに対しては８Ａ３Ｂ．６、１０Ａ３０４．７のアイソタイプであるＩｇＧ２ｂに対しては８Ｂ１Ｂ．１）が含まれた。
【０１２０】
１．免疫沈降
各抗体２００μｇを０．１  Ｍ  リン酸ナトリウム（ｐＨ６．０）１ｍＬに希釈させた。１抗体当たり１００μＬのプロテインＧセファロースビーズ（Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，  Ｂａｉｅ  ｄ’Ｕｒｆｅ，  ＱＣ）を１ｍＬの０．１  Ｍ  リン酸ナトリウム（ｐＨ６．０）で３回洗った。希釈した抗体を一定分量のビーズに添加して、撹拌しながら室温で１時間インキュベートした。１４，０００ｒｐｍの極小遠心分離機で２0秒間スピンさせて、上精を吸引除去し、非結合抗体を除去した。抗体コートビーズを１ｍＬの０．１  Ｍリン酸ナトリウム（ｐＨ７．４）で３回洗い、続いて１ｍＬの０．２  Ｍ  トリエタノールアミン（ｐＨ８．２）で２回洗った。抗体結合ビーズを１ｍＬの０．２  Ｍ  トリエタノールアミン（ｐＨ８．２）に再浮遊させて、次に５．２ｍｇのジメチルピメリミデート（Ｓｉｇｍａ，  Ｏａｋｖｉｌｌｅ，  ＯＮ）を加えて、撹拌しながら１時間インキュベートさせることで化学的架橋させた。抗体架橋ビーズを１．５ｍＬの５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）で１回洗い、続いて撹拌させながら１ｍＬの５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）と３０分間室温でインキュベーションさせた。ビーズをＰＢＳで３回洗い、次に０．０２％アジ化ナトリウムを含むＰＢＳ  １００μＬに再浮遊させて、４℃で保存した。
【０１２１】
前記結合ビーズを使用して、ＭＢ−２３１膜との免疫沈降のために、４種の抗体（ＡＲ３６Ａ３６．１１．１、１０Ａ３０４．７、８Ａ３Ｂ．６、８Ｂ１Ｂ．１）を使用した。２００μｇのＭＢ−２３１膜調製物を１抗体当たり１ｍＬの通常の溶解緩衝液（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．４）、１５０ｍＭ  塩化ナトリウム、２ｍＭ  ＥＤＴＡ、１％  Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００、５０ｍＭ  フッ化水素ナトリウム、２ｍＭ  オルトバナジン酸ナトリウム、１Ｘプロテアーゼ阻害剤混合液）で希釈させた。１抗体ごとに５０μｇの抗体結合ビーズを希釈したＭＢ−２３１膜に加えて、転倒撹拌させながら４０℃で２時間インキュベートさせた。免疫複合体結合ビーズを通常の溶解緩衝液で３回、ＰＢＳで１回洗った。免疫複合体結合ビーズをＰＢＳで再浮遊させて、使用まで４℃で保存した。
【０１２２】
２．脱グリコシル化
ＡＲ３６Ａ３６．１１．１および１０Ａ３０４．７の抗原結合における炭水化物基の役割を検証するために、ＭＢ−２３１膜を脱グリコシル化させた。メーカーの説明書に従い、非還元条件下で、ＧＬＹＫＯ酵素消化キット（ＰｒｏＺｙｍｅ，  Ｓａｎ  Ｌｅａｎｄｒｏ，  ＣＡ）のＰＮＧａｓｅＦ、シアリダーゼＡ、Ｏ−グリカナーゼ、β（１−４）ガラクトシダーゼ、β−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼと１００μｇのＭＢ−２３１膜をインキュベートさせた。追加で１００μｇのＭＢ−２３１膜を脱グリコシル緩衝液とのみインキュベートさせて、グリコシル化対照反応とした。
【０１２３】
３．ウエスタンブロット
グリコシル化／脱グリコシルＭＢ−２３１膜の他、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１、ＩｇＧ２ａアイソタイプ、ＩｇＧ２ｂアイソタイプ、免疫沈降ＭＢ−２３１膜を非還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥサンプル緩衝液と合わせて、４枚の１２％  ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル（Ｂｉｏ−Ｒａｄ，  Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，  ＯＮ）に添加した。未染色分子量マーカーをレファレンスのレーンに添加した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、続いて実施例２に記載のウエスタンブロットによってメンブレンを分離させた。図３には、１０３０４．７で免疫沈降させたＭＢ−２３１膜（レーン１）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１で免疫沈降させたＭＢ−２３１膜（レーン２）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照で免疫沈降させたＭＢ−２３１膜（レーン３）、ＩｇＧ２ｂアイソタイプ対照で免疫沈降させたＭＢ−２３１膜（レーン４）、ＭＢ−２３１グリコシル化膜（レーン５）、ＭＢ−２３１脱グリコシル化膜（レーン６）に対する１０Ａ３０４．７（パネルＡ）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＢ）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（パネルＣ）、ＩｇＧ２ｂアイソタイプ対照（パネルＤ）の結合を示している。パネルＡとＢでは全てレーンで結合が同一であり、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１と１０Ａ３０４．７が同じ抗原を識別することを示している。１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１で免疫沈降させたＭＢ−２３１膜（レーン１、２）の２０ｋＤａ領域における大きなスミアは、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１をプローブとして用いた場合にのみ現われ（パネルＡ、Ｂ）、アイソタイプ対照をプローブとして用いた場合には現れず（パネルＣ、Ｄ）、この領域における結合が機能的抗体に特異的であることを示している。ＭＢ−２３１膜をアイソタイプ対照（レーン３、４）と免疫沈降させた場合、２０ｋＤａ領域において反応が認められず、抗原に対する機能的抗体の特異性をさらに示している。１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１のいずれも、グリコシル化ＭＢ−２３１膜（レーン５）の２０  ｋＤａ領域の二重バンドに結合する。膜を脱グリコシル化した場合に反応のシフトが認められ（レーン６）、抗原はグリコシル化を受けるが、炭水化物基が抗原結合に必須ではないことを示している。
【０１２４】
実施例４
１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１が結合する抗原の同定
【０１２５】
１．免疫沈降
ＡＲ３６Ａ３６．１１．１が結合した抗原は、免疫沈降によってＭＢ−２３１細胞から単離した。実施例３に従い、適宜スケールアップさせて、１ｍＬのＰｒｏｔｅｉｎ  Ｇ  Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，  Ｂａｉｅ  ｄ’Ｕｒｆe，  ＱＣ）を２ｍｇの抗体と架橋させた。ＡＲ３６Ａ３６．１１．１と８Ａ３Ｂ．６の両方を架橋させた。
【０１２６】
１０ｍＬのＲＩＰＡ緩衝液（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、１％  ＮＰ−４０、０．５％  デオキシコール酸ナトリウム、０．１％  ＳＤＳ、２  ｍＭ  オルトバナジン酸ナトリウム、１Ｘプロテアーゼ阻害剤混合液）で１０  ｍｇのＭＢ−２３１を希釈させた。３  ｍＬのＳｅｐｈａｒｏｓｅ  ４Ｂ（Ｓｉｇｍａ，  Ｏａｋｖｉｌｌｅ，  ＯＮ）を添加して、転倒混和させながら、４℃で２時間インキュベートさせた。転倒混和させながら、４℃で２時間、４℃の０．１  Ｍ  ＮａＨ２ＰＯ４（ｐＨ７．４）で希釈した０．５  ｍｇ／ｍＬ  ＢＳＡと６０μＬの抗体結合ビーズを同時にインキュベーションさせた。抗体結合ビーズをＲＩＰＡ緩衝液で２回洗い、水分を捨てた。免疫沈降において、事前に余分なものを除去したＭＢ−２３１膜をＳｅｐｈａｒｏｓｅ  ４Ｂビーズから除いて、８Ａ３Ｂ．６結合ビーズに加えて、転倒混和させながら４℃で２時間インキュベーションさせた。アイソタイプ対照とのインキュベーション後、希釈させた膜調製物を転倒混和させながら４℃で２時間ＡＲ３６Ａ３６．１１．１結合ビーズとインキュベーションさせた。両方のビーズを緩衝液で２回、ＰＢＳで１回洗った。
【０１２７】
２．ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
免疫沈降させたビーズを３０μＬのＳＤＳ−ＰＡＧＥサンプル緩衝液に再浮遊させて、３分間沸騰させて、室温まで冷ました。２１μＬのサンプルを１２％  ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル（Ｂｉｏ−Ｒａｄ，  Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，  ＯＮ）の１つのレーンに、残りの７μＬを別のレーンに添加した。タンパク質スタンダードおよび事前に染色した分子量マーカー（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，  Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ，  ＯＮ）もゲルに含めた。１００Ｖで１０分間、次に、染料の先端がゲルから流れ出るまで１５０Ｖでゲルを泳動させた。事前に染色した分子量マーカーを添加したレーンに沿ってゲルをカットした。実施例２に開示したプロトコルに従って、２１μＬを添加したゲルの一部をＣｏｌｌｏｉｄａｌ  Ｂｌｕｅで染色させて、ゲルの他の一部はＡＲ３６Ａ３６．１１．１を用いたウエスタンブロッティング用ＰＶＤＦメンブレンにトランスファーさせた。
【０１２８】
メーカーの説明書に従って、Ｃｏｌｌｏｉｄａｌ  Ｂｌｕｅ染色試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，  Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ，  ＯＮ）を調製して、ゲルを室温の染色液中で撹拌させながらオーバーナイトでインキュベートさせた。ゲルを水中で２時間インキュベートさせて、バックグラウンドの染色液を取り除いた。図４は、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１で免疫沈降させたＭＢ−２３１膜（レーン１）および８Ａ３Ｂ．６  ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照で免疫沈降させたＭＢ−２３１膜（レーン２）を示している。染色したゲル上の２０ｋＤａの薄い二本のバンド（パネルＡ、レーン１）は、ウエスタンブロットで認められる反応に対応している（パネルＢ、レーン１）。これらの２本のバンドは、レーン２のゲルの領域およびタンパク質を添加しなかったバックグラウンド対照の領域と一緒に、滅菌ガラスパスツールピペットを使用して染色ゲルから抽出した。
【０１２９】
３．質量分析
抽出したゲル小片は、Ｉｎ−Ｇｅｌ  Ｔｒｙｐｔｉｃ  Ｄｉｇｅｓｔｉｏｎ  ｋｉｔ（Ｐｉｅｒｃｅ，  Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，  ＩＬ）を使用して消化させた。ＣＨＣＡマトリックスを使用して、各サンプルの一部をＨ４  ＰｒｏｔｅｉｎＣｈｉｐ  Ａｒｒａｙ（Ｃｉｐｈｅｒｇｅｎ，  Ｆｒｅｅｍｏｎｔ，  ＣＡ）にスポットした。ＰｒｏｔｅｉｎＣｈｉｐ  Ｓｏｆｔｗａｒｅ（Ｃｉｐｈｅｒｇｅｎ）を使用して、Ｃｉｐｈｅｒｇｅｎ  ＳＥＬＤＩ  ／ＭＳでアレイチップを分析した。ＡＲ３６Ａ３６．１１．１免疫沈降反応での下二本のバンド固有のペプチドピークは１５４０．６  Ｄａ、１６４９．６  Ｄａ、１７４１．６  Ｄａ、１７７８．１  Ｄａ、２０１５．２  Ｄａであった。ＰｒｏＦｏｕｎｄペプチドマッピングデータベース（Ｒｏｃｋｅｆｅｌｌｅｒ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ）を利用して、ＣＤ５９がこれらのペプチドの供給源として同定される確率は１．００、推定Ｚ値は１．９２であった。ＣＤ５９には１５３９．６  Ｄａ、１６４８．６  Ｄａ、２０１４．１  Ｄａのペプチドが含まれる。
【０１３０】
４．確認
ＡＲ３６Ａ３６．１１．１と１０Ａ３０４．７によって識別される抗原がＣＤ５９であることを確認するために、ＭＢ−２３１膜を市販の研究用抗ＣＤ５９抗体と交差免疫沈降させた。実施例３に記載の通り、マウス抗ヒトＣＤ５９であるクローンＭＥＭ−４３（ＩｇＧ２ａ）（Ｓｅｒｏｔｅｃ，  Ｒａｌｅｉｇｈ，  ＮＣ）５０μｇを２５μＬのプロテインＧセファロースビーズと架橋させた。実施例３に記載の通り、抗ＣＤ５９、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１、８Ａ３Ｂ．６  ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照に結合させたビーズ２５μＬで１５０μｇ  Ｘ  ３のＭＢ−２３１膜を免疫沈降させた。ビーズを４５μＬのＰＢＳに再浮遊させて、次に１５μＬのＳＤＳ−ＰＡＧＥサンプル緩衝液を加えて、サンプルは３分間沸騰させた。室温まで冷ました後、サンプルを４〜２０％  ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル（Ｂｉｏ−Ｒａｄ，  Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，  ＯＮ）の１ウェル毎に１５μＬのサンプルを添加した。前記の通りに電気泳動およびウエスタンブロットを実施した。５％スキムミルクに希釈させた３．３３μｇ／ｍＬの抗ＣＤ５９  （ＭＥＭ−４３）、５μｇ／ｍＬのＡＲ３６Ａ３６．１１．１、５μｇ／ｍＬの１０Ａ３０４．７、５μｇ／ｍＬの８Ａ３Ｂ．６  ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照とメンブレンを２時間インキュベーションさせた。図５は、１０Ａ３０４．７（パネルＡ）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＢ）、マウス抗ヒトＣＤ５９（ＭＥＭ−４３、パネルＣ）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３Ｂ．６、パネルＤ）をプローブに用いた、マウス抗ヒトＣＤ５９（ＭＥＭ−４３、レーン１）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（レーン２）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３Ｂ．６、レーン３）で免疫沈降させたＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質のウエスタンブロットを示している。アイソタイプ対照（パネルＤ）をプローブに用いたメンブレンの場合、高分子量の領域において反応が現れたため、バックグラウンドと見なした。１０Ａ３０４．７（パネルＡ）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＢ）、抗ＣＤ５９（パネルＣ）でインキュベートさせたブロットは、全３レーンにおいて染色が同じであり、低分子量バンドがＡＲ３６Ａ３６．１１．１と抗ＣＤ５９で免疫沈降させたメンブレンと特異的に反応している。これによって、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１によって識別される抗原がＣＤ５９であることが確認される。
【０１３１】
実施例５
正常ヒト組織の染色
ＩＨＣ試験を実施して、ヒトにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗原の分布を特性付けした。更なる実験の条件を決定するために、ＩＨＣ最適化試験が先に実施された。
【０１３２】
組織切片を５８℃のオーブン内で１時間乾燥させることで脱パラフィン処理して、Ｃｏｐｌｉｎ  ｊａｒ内のキシレンに４分間５回浸すことでワックス除去した。一連の段階的エタノール洗浄（１００％〜７５％）による処理後、水中で切片を再水和させた。次にスライドを１０ｍＭ  クエン酸緩衝液（ｐＨ６）（Ｄａｋｏ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  Ｏｎｔａｒｉｏ）に浸して、高、中、低出力に設定したマイクロ波に５分間かけて、最後に冷ＰＢＳ中に浸した。次にスライドを３％過酸化水素水溶液に６分間浸して、ＰＢＳで５分間３回洗い、乾燥させて、室温のＵｎｉｖｅｒｓａｌ  ｂｌｏｃｋｉｎｇ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｄａｋｏ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  Ｏｎｔａｒｉｏ）中で５分間インキュベーションさせた。１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１、モノクローナルマウス抗ビメンチン（Ｄａｋｏ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  Ｏｎｔａｒｉｏ）、またはアイソタイプ対照抗体（哺乳動物の組織においては存在しない、または誘導されない酵素であるアスペルギルスニガーグルコース酸化酵素、Ｄａｋｏ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  Ｏｎｔａｒｉｏ）を抗体希釈緩衝液（Ｄａｋｏ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  Ｏｎｔａｒｉｏ）中で作業濃度（各抗体５μｇ／ｍＬ）にまで希釈させて、室温で１時間インキュベーションさせた。スライドをＰＢＳで５分間３回洗った。ＨＲＰ結合二次抗体（Ｄａｋｏ  Ｅｎｖｉｓｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  Ｏｎｔａｒｉｏ）を用いて、室温で３０分間、一次抗体の免疫反応を検出／可視化させた。この段階の後、スライドをＰＢＳで５分間３回洗い、免疫ペルオキシダーゼ染色用ＤＡＢ（３，３’−ｄｉａｍｉｎｏｂｅｎｚｉｄｉｎｅ  ｔｅｔｒａｈｙｄｒａｃｈｌｏｒｉｄｅ、Ｄａｋｏ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  Ｏｎｔａｒｉｏ）発色基質溶液を添加して、室温で１０分間、発色反応を起こさせた。スライドを水道水で洗って、発色反応を終わらせた。Ｍｅｙｅｒ’ｓ  Ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ（Ｓｉｇｍａ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ，  Ｏａｋｖｉｌｌｅ，  ＯＮ）での対比染色後、、スライドを段階的エタノール（７５〜１００％）で脱水させて、キシレンで不要物を除去した。封入剤（Ｄａｋｏ  Ｆａｒａｍｏｕｎｔ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  Ｏｎｔａｒｉｏ）を用いてスライドにカバーガラスを付けた。Ａｘｉｏｖｅｒｔ  ２００（Ｚｉｅｓｓ  Ｃａｎａｄａ，  Ｔｏｒｏｎｔｏ，  ＯＮ）を用いてスライドを顕微鏡検査して、デジタル画像を撮影して、Ｎｏｒｔｈｅｒｎ  Ｅｃｌｉｐｓｅ  Ｉｍａｇｉｎｇ  Ｓｏｆｔｗａｒｅ（Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，  ＯＮ）を用いて保存した。組織病理学者が結果を読み取り、得点化し、解釈した。
【０１３３】
ヒト正常臓器組織アレイ（Ｉｍｇｅｎｅｘ，  Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，  ＣＡ）を用いて５９の正常ヒト組織へ抗体を結合させた。図６は、正常ヒト組織のアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１染色の結果を示している。ＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体は、主に、上皮組織（様々な臓器の血管内皮、皮膚および扁桃腺の扁平上皮、乳管上皮、鼻粘膜上皮、だ液腺の腺上皮および管上皮、肝臓の胆管上皮、膵臓の腺上皮およびランゲルハンス島、膀胱の粘膜上皮、前立腺の腺上皮に結合した。１０Ａ３０４．７抗体は、脾臓のリンパ球および好中球、末梢神経繊維、血管の平滑筋繊維、精巣のライディヒ細胞、胎盤の栄養膜組織への結合を示した。細胞は細胞質と膜に局在しており、広範な染色パターンを伴った。抗体は、主に、上皮組織（皮膚の脂線、乳管上皮、鼻粘膜、だ液腺の腺上皮および管上皮、血管内皮、膀胱の粘膜上皮、前立腺の腺上皮および筋上皮）に結合した。抗体は平滑筋繊維や栄養膜胎盤組織への結合も示した。１０Ａ３０４．７は、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１との結合を示したヒト正常組織のサブグループに結合した（図７）。１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体は、過去に抗ＣＤ５９抗体について報告された結合と一致するヒト組織への結合を示した。したがって、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体は、ヒトでの使用に適用できる。
【０１３４】
実施例６
ヒト腫瘍組織の染色
１０Ａ３０４．７または３６Ａ３６．１１．１抗原がヒト腫瘍組織において発現しているか否かを判定するために、複数のヒト腫瘍組織アレイ（Ｉｍｇｅｎｅｘ，  Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，  ＣＡ）で抗体を個別に試験した。各患者について以下の情報を与えた：年齢、性別、器官、診断。利用した染色方法は、実施例５で開示した染色方法と同じであった。ヒト正常組織アレイについて記載されている通り、同じ陽性／陰性対照抗体を使用した。全ての抗体を作業濃度５μｇ／ｍＬで使用した。
【０１３５】
図８に開示されている通り、試験した腫瘍の１７／５４（３２％）にＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体は結合した。抗体の結合は、２／１７の腫瘍で強く、２／１７で中程度、４／１７で弱く、そして９／１７で判定不能であった。腫瘍細胞および間質血管で組織特異性が認められた。細胞は膜と細胞質に局在しており、広範な染色パターンを伴った。試験した腫瘍の９／５４（１７％）に１０Ａ３０４．７抗体が結合した。抗体の結合は、４／５４で中程度、２／５４で弱く、そして３／５４で判定不能であり、試験したいずれの腫瘍でも強い結合は認められなかった。腫瘍細胞および間質血管で組織特異性が認められた。細胞は膜と細胞質に局在しており、広範な染色パターンを伴った。正常ヒト組織と同様に、１０Ａ３０４．７抗体は、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１が結合した腫瘍のサブグループに結合した。
【０１３６】
したがって、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗原が様々な腫瘍種の膜に局在していることが示された。これらの結果は、１０Ａ３０４．７とＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体が、限定はされないが、皮膚癌、肝臓癌（図９）、膵臓癌を含む多種類の癌における治療薬としての可能性を持つことを示唆している。
【０１３７】
実施例７
ヒト肝臓腫瘍組織の染色
１０Ａ３０４．７がヒト腫瘍組織に結合するか否かをさらに評価するために、肝臓腫瘍組織アレイ（Ｉｍｇｅｎｅｘ，  Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，  ＣＡ）で抗体を試験した。各患者について以下の情報を与えた：年齢、性別、器官、診断。利用した染色方法は、実施例５で開示した染色方法と同じであった。ヒト正常組織アレイにおいて記載されている通り、同じ陰性対照抗体を使用した。使用した陽性対照抗体は、抗ＡＦＰ（α１フェトプロテイン、クローンＡＦＰ−１１Ａｂｃａｍ，  Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，  ＭＡ）であった。作業濃度１０μｇ／ｍＬで使用した抗ＡＦＰを除き、全ての抗体を作業濃度５μｇ／ｍＬで使用した。
【０１３８】
図１０に開示されている通り、１０Ａ３０４．７については、１０／４９（２０％）の肝臓癌の切片に結合し、主に原発性肝細胞癌に結合していることが示された。原発性胆管癌および転移性胆管癌のいずれも抗体との５０％の結合を示した。腫瘍細胞および血管内皮で組織特異性が認められた。抗体の結合と腫瘍の病期との間に関係は認められなかった。抗体は１／９の非腫瘍性肝臓組織の切片に対する弱い結合を示し、小血管の内皮に限定されなかった（図１１）。１０Ａ３０４．７抗原は、肝臓腫瘍組織において特異的に発現していると考えられる。したがって、１０Ａ３０４．７は肝臓癌の治療における治療薬としての可能性を持っている。
【０１３９】
証拠の優勢から、１０Ａ３０４．７とＡＲ３６Ａ３６．１１．１はＣＤ５９に存在するエピトープのライゲーションを通じて抗腫瘍効果を媒介することが示されている。実施例２〜４において、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体を使用して、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞などの発現細胞から同種抗原を免疫沈降できることが示されている。さらに、限定はされないが、ＦＡＣＳ、細胞ＥＬＩＳＡ、ＩＨＣによって例示される方法を利用して、ＣＤ５９抗原部分を発現し、ＣＤ５９抗原部分に特異的に結合する細胞および／または組織の検出において１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体を使用可能であることを示すことができた。
【０１４０】
このように、免疫沈降させた１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗原は、ＦＡＣＳ、細胞ＥＬＩＳＡ、ＩＨＣアッセイを利用して、これらの細胞または組織への抗体の結合を抑制可能であることを示すことができた。さらに、１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１抗体の場合と同様、他の抗ＣＤ５９抗体を使用して、他の形状のＣＤ５９抗原を免疫沈降、単離させることが可能であり、同じ種類のアッセイを利用して、抗原を発現する細胞または組織へのこれらの抗体の結合を抑制するために抗原を使用することもできる。
【０１４１】
本明細書に記載の全ての特許および出版物は、本発明の当業者の水準を示している。全ての特許および出版物は、各出版物が具体的かつ個別に示されて、参照により本明細書に組み入れられるかのように、同程度に参照により本明細書に組み入れられる。
【０１４２】
特定の形の発明を例示しており、本明細書に記載し、示している部分の特定の形や配置に限定されないことを理解する必要がある。本発明の範囲を逸脱することなく、様々な変更を施すことができ、本明細書に示し、記載したものに本発明が限定されないことは、当業者には明らかである。本発明が目的を実行して、本発明に本来備わっている目的や利点の他、記載の目的や利点を達成するために十分に適用されることを当業者であれば容易に理解しうる。本明細書に記載の任意のオリゴヌクレオチド、ペプチド、ポリペプチド、生物学的に関連する化合物、方法、手順、技術は、ここでは好ましい態様を示しており、例示を意図しており、範囲を制限することを意図していない。本明細書における変更および他の用途は、当業者が考え付くものであり、本発明の精神に含まれ、添付の請求項の範囲によって定義される。本発明は特定の好ましい態様に関連して記載しているが、主張の通り、本発明はこれらの特定の態様に限定されないことを理解する必要がある。実際に、当業者には明らかな本発明の実施方法に関する様々な改変が、以下の請求の範囲に含まれることを意図している。
【図面の簡単な説明】
【０１４３】
【図１】細胞毒性アッセイにおける１０Ａ３０４．７対陽性／陰性対照の比較。
【図２】ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＡ）および１０Ａ３０４．７（パネルＢ）をプローブに用いたＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質のウエスタンブロット。分子量マーカーを左に示している。
【図３】１０Ａ３０４．７（パネルＡ）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＢ）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３０４．７、パネルＣ）、ＩｇＧ２ｂアイソタイプ対照（８Ｂ１Ｂ．１、パネルＤ）をプローブに用いたウエスタンブロット。レーン１〜４は、１０Ａ３０４．７（レーン１）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（レーン２）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３０４．７、レーン３）、ＩｇＧ２ｂアイソタイプ対照（８Ｂ１Ｂ．１、レーン４）で免疫沈降させたＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜である。レーン５はＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質であり、レーン６はシアリダーゼＡ、Ｏ−グリカナーゼ、β（１−４）ガラクトシダーゼ、β−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼ、ＰＮＧａｓｅＦで脱グリコシル化させた脱グリコシル化ＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質である。分子量マーカーを左に示している。
【図４】ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（レーン１）およびＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（レーン２）で免疫沈降させたＭＤＡ−ＭＢ−２３１のコロイドブルー染色（パネルＡ）およびウエスタンブロット（パネルＢ）。分子量マーカーを左に示している。
【図５】１０Ａ３０４．７（パネルＡ）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（パネルＢ）、マウス抗ヒトＣＤ５９（ＭＥＭ−４３、パネルＣ）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３Ｂ．６、パネルＤ）をプローブに用いた、マウス抗ヒトＣＤ５９（ＭＥＭ−４３、レーン１）、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１（レーン２）、ＩｇＧ２ａアイソタイプ対照（８Ａ３Ｂ．６、レーン３）で免疫沈降させたＭＤＡ−ＭＢ−２３１膜タンパク質のウエスタンブロット。分子量マーカーを左に示している。
【図６Ａ】ヒト正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１に対する陽性／陰性対照の比較。
【図６Ｂ】ヒト正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１に対する陽性／陰性対照の比較。
【図６Ｃ】ヒト正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１に対する陽性／陰性対照の比較。
【図７】ヒト正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７（Ａ）またはＡＲ３６Ａ３６．１１．１（Ｂ）または抗アクチン（Ｃ）または陰性アイソタイプ対照（Ｄ）で得られたヒト正常子宮内膜／分泌組織での結合パターンを示す典型的な顕微鏡写真。１０Ａ３０４．７では染色は陰性を示し、ＡＲ３６Ａ３６．１１．１は血管内皮での染色は弱陽性を示した（矢参照）。倍率は２００Ｘである。
【図８Ａ】様々なヒト腫瘍組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１に対する陽性／陰性対照の比較。
【図８Ｂ】様々なヒト腫瘍組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１に対する陽性／陰性対照の比較。
【図８Ｃ】様々なヒト腫瘍組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１に対する陽性／陰性対照の比較。
【図９】ヒトの複数腫瘍組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７（Ａ）またはＡＲ３６Ａ３６．１１．１（Ｂ）または抗アクチン（Ｃ）または陰性アイソタイプ対照（Ｄ）で得られたヒト正常子宮内膜／分泌組織での結合パターンを示す典型的な顕微鏡写真。１０Ａ３０４．７およびＡＲ３６Ａ３６．１１．１では腫瘍細胞に対して染色は陽性を示した。倍率は２００Ｘである。
【図１０】ヒト肝臓腫瘍および正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７結合のまとめ。
【図１１】ヒト正常組織でのマイクロアレイにおける１０Ａ３０４．７（Ａ）またはアイソタイプ対照抗体（Ｂ）で得られた肝細胞癌組織、および１０Ａ３０４．７（Ｃ）またはアイソタイプ対照抗体（Ｄ）で得られた非腫瘍肝臓組織での結合パターンを示す典型的な顕微鏡写真。１０Ａ３０４．７では腫瘍細胞において染色は強陽性を示し、正常組織において染色は陰性を示した。倍率は２００Ｘである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６Ａ】
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【図６Ｂ】
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【図６Ｃ】
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【図７】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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【図８Ｃ】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【国際調査報告】
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