(57)【要約】  本発明は、一般に、抗炎症性化合物、好ましくは酸感受性抗炎症剤、例えばＩＬ  １０および／または可溶性ＴＮＦレセプターおよび／またはトレフォイル因子を、経口経路を介して腸粘膜に送達するための投与ストラテジーに関する。本発明に従う好ましい特徴は、生存リコンビナント酵母細胞、好ましくはそれぞれのタンパク質を産生するように加工されたSaccharomyces細胞の懸濁液の接種である。【特許請求の範囲】
【請求項１】
粘膜炎症を処置するための医薬の調製のためのリコンビナント抗炎症性化合物産生酵母株および／またはサイトカインアンタゴニスト産生酵母株の使用。
【請求項２】
前記粘膜炎症が炎症性腸疾患である、請求項１に記載のリコンビナント酵母の使用。
【請求項３】
抗炎症性化合物またはサイトカインアンタゴニストが、ＩＬ−１０、トレフォイル因子、例えばＴＦＦ１、ＴＦＦ２またはＴＦＦ３、ＴＮＦアンタゴニスト、例えば可溶性ＴＮＦレセプター、ＩＮＣＡ、ＡＢＩＮ、ＩＬ−１２アンタゴニスト、インターフェロンγアンタゴニスト、ＩＬ−１アンタゴニストおよびウイルスにコードされたサイトカインアナログ、例えばＥＢＶ  ＢＣＲＦ１からなる群より選ばれる、請求項１または２に記載のリコンビナント酵母株の使用。
【請求項４】
前記抗炎症性化合物またはサイトカインアンタゴニストが、グリコシル化を回避または制限するように突然変異されている、請求項１〜３のいずれか１項に記載のリコンビナント酵母の使用。
【請求項５】
前記抗炎症性化合物が、非グリコシル化ＩＬ−１０である、請求項４に記載のリコンビナント酵母の使用。
【請求項６】
酵母株が、Saccharomyces sp.、Hansenula sp.、Kluyveromyces sp.、Schizzosaccharomyces sp.、Zygosaccharomyces sp.、Pichia sp.、Monascus sp.、Geotrichum sp.およびYarrowia sp.からなる群より選ばれる、請求項１〜５のいずれか１項に記載のリコンビナント酵母株の使用。
【請求項７】
Saccharomyces sp.がSaccharomyces cerevisiaeである、請求項６に記載のリコンビナント酵母株の使用。
【請求項８】
リコンビナント酵母株がSaccharomyces cerevisiae亜種boulardiiである、請求項７に記載のリコンビナント酵母株の使用。
【請求項９】
炎症性腸疾患が、慢性大腸炎、クローン病または潰瘍性大腸炎である、請求項１〜８のいずれか１項に記載のリコンビナント酵母株の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、一般に、抗炎症性化合物、好ましくは酸感受性抗炎症剤、例えばＩＬ  １０および／または可溶性ＴＮＦレセプターおよび／またはトレフォイル因子（trefoil factor）を経口経路を介して腸粘膜に送達するための投与ストラテジーに関する。本発明に従う好ましい特徴は、生存リコンビナント酵母細胞、好ましくはそれぞれのタンパク質を産生するように加工されたSaccharomyces細胞の懸濁液の接種である。例として、遠位結腸の慢性炎症がデキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）を投与することにより誘発されたマウスを使用した。組織学的評価によりスコア化された処置は、明らかに炎症および疾患症候の後退をもたらした。この知見は、まったく予想外である。何故ならば、腸粘膜と相互作用することができる生存乳酸菌のみがサイトカインを送達しそして大腸炎を治癒させるのに適当であると思われていたからである。
【０００２】
哺乳動物における免疫系は、多様で複雑であり、そして自然および適応免疫機構および反応を含む。免疫系は、しばしば体液性免疫応答または細胞性免疫応答のいずれかに関して記載される。体液性免疫は、広くＢ細胞による抗体産生および作用を指し；細胞性免疫は、Ｔ細胞、樹状細胞、好中球、単球およびマクロファージを含む細胞により媒介される。Ｔ細胞およびＢ細胞は、リンパ球の２つのカテゴリーである。
【０００３】
それによって免疫系が通常作用しそしてそれ自体を調節する機構の１つはいわゆるサイトカインの産生を含む。サイトカインはいくつかの正および負の免疫応答を媒介することが知られている。サイトカインは、ターゲット細胞上のレセプターに結合することにより通常作用する。サイトカインの活性は、いくつかの方法で、例えば、可溶性レセプター（レセプターの細胞外ドメイン）の投与またはサイトカインアナログもしくは誘導体により妨害されうる。
【０００４】
ＩＬ−１０は、いくつかの作用または効果を媒介することができるサイトカインである。ＩＬ−１０は、異なるクラスまたはサブセットのＴｈ細胞（Ｔヘルパー細胞）の免疫応答の制御に関与していることが知られている。
【０００５】
炎症性腸疾患（ＩＢＤ）は、胃腸管の部分の慢性の非特異的炎症により特徴付けられる胃腸障害の群を指す。潰瘍性大腸炎（ＵＣ）およびクローン病（ＣＤ）は、ヒトのＩＢＤの最も顕著な例である。それらは、小児の発育遅延、直腸脱出症、糞便中の血液（例えばメレナおよび／または血便排泄）、衰弱、鉄欠乏症および貧血、例えば鉄欠乏貧血および慢性疾患もしくは慢性炎症の貧血を含む多くの症候および合併症と関連している。ＩＢＤの病因は明らかではない。これについては、Wyngaarden and Smith (eds.) Cecil's Textbook of Medicine (W.B. Saunders Co. 1985), Berkow (ed.) The Merck Manual of Diagnosis and Therapy (Merck Sharp & Dohme Research Laboratories, 1982)、およびHarrison's Principles of Internal Medicine, 12th Ed., McGraw-Hill, Inc. (1991)が参照される。
【０００６】
ＩＢＤの発生率は、地理的位置と共に大きく変動する。ヨーロッパにわたる共同研究は、南部と比較して北の中央部で１０００００当たりＵＣは１０．４そしてＣＤは５．６の発生率を示し、ＵＣおよびＣＤについてそれぞれ４０％、８０％高い発生率である。ＵＣおよびＣＤの両方とも長期間の病気であるので、それらは、クオリティーオブライフの真の妨害に該当する。クローン病は、２０歳代および５０歳代における発生率の著しいピークを示す発症の双峰性年齢分布を有する。より高い発生率およびより重篤な疾患プロファイルは、若い方の年齢におけるピークと関連している。このことはＣＤを特に痛烈にしている。何故ならば、罹患した青年および若年成人は、特にこの社会的集団と関連した、生活からの高い期待を実質的に奪われるからである。
【０００７】
潰瘍性大腸炎は、主として結腸粘膜において発現を有する、慢性の、非特異的な、炎症性のそして潰瘍性の疾患を指す。それは、頻繁に、血性下痢、腹部痙攣、糞便中の血液および粘液、倦怠感、発熱、貧血、食欲不振、体重減少、白血球増加、低アルブミン血症および赤血球沈降速度（ＥＳＲ）の上昇により特徴付けられる。
【０００８】
合併症は、出血、中毒性大腸炎、中毒性巨大結腸、偶発性直腸膣瘻および、大腸癌発達の危険の増加を含み得る。
【０００９】
潰瘍性大腸炎は、結腸から離れた合併症、例えば、関節炎、強直性脊椎炎、仙腸骨炎、後部ブドウ膜炎、結節性紅斑、壊疽性膿皮症、および上強膜炎とも関連している。
【００１０】
処置は、疾患の重篤さおよび期間と共に相当変動する。例えば、脱水および電解質不均衡を防止するための輸液治療は、重篤な発作において頻繁に指示される。更に、特別な食事療法が時々有用である。薬物療法は、種々のコルチコステロイド、スルファサラジンおよびその誘導体のいくつか、ならびにおそらく免疫抑制剤を含む。
【００１１】
クローン病は、潰瘍性大腸炎と共通した多くの特徴を共有する。クローン病は、相当散在している潰瘍性大腸炎の病変とは対照的に、隣接した正常な腸から病変が鋭く境界を画される傾向があるという点で区別されうる。更に、クローン病は、回腸（回腸炎）ならびに回腸および結腸（回結腸炎）を主として苦しめる。ある場合には、結腸のみが罹病し（肉芽腫性大腸炎）そしてときには小腸全体が含まれる（空回腸炎）。まれな場合には、胃、十二指腸または食道が含まれる。病変は、臨床的症例のほぼ半分においてサルコイド型類上皮肉芽腫を含む。クローン病の病変は経壁的であり得、深い潰瘍、浮腫および繊維症を含み、これらは閉塞およびフィステル形成ならびに膿瘍形成をもたらしうる。これは、通常はるかに浅い病変を生じる潰瘍性大腸炎と対照をなすが、繊維症、閉塞、フィステル形成および膿瘍の合併症は潰瘍性大腸炎においても時折見られる。
【００１２】
処置は、両疾患について類似しておりそしてステロイド、スルファサラジンおよびその誘導体、ならびに免疫抑制性剤、例えばシクロスポリンＡ、メルカプトプリンおよびアザチオプリンを含む。更に最近開発された処置は、いくらかはまだ臨床試験中であるが、ＴＮＦ抗体などのＴＮＦブロッキング化合物の全身性投与（注射による）を包含する。
【００１３】
ＩＢＤは、病因学的処置の不存在の故に公衆衛生における真正の問題を表す。多くの患者が慣用の医学治療、例えば抗炎症性コルチコステロイド処置で首尾よく扱われるが、大部分は疾患の再発活性を有しそして２／３は手術を必要とする。
【００１４】
炎症性腸疾患の原因は不明である。ＣＤおよびＵＣの病原は、おそらく遺伝子的因子と環境的因子（例えば細菌性因子）との間の相互作用を含むが、これまでに明確な病因学的因子は同定されていない。主たる理論は、異常な免疫応答（おそらく腸内菌叢により駆動される）がＩＢＤにおいて起こるというものである。しかしながら、十分に確立されていることは、Ｔ細胞が病原において重要な役割を演じるということである。活性化されたＴ細胞は、抗炎症性サイトカインおよび炎症誘発性サイトカインの両方を産生することができる。この知見を有して、ＩＢＤに、合理的な方式で対抗しうる。中和モノクローナル抗体または抗炎症性サイトカインを利用する新規な抗炎症治療は、ＩＢＤの原因となる免疫調節異常をモデュレーションする可能性を示す。高度に顕著かつ有効な新たな治療は、上記した抗ＴＮＦモノクローナル抗体による全身性処置である。ｃＡ２インフリキシマブ抗体の、５〜２０mg.kg−1の範囲の単回静脈内用量は、活動性クローン病において高い臨床的改善をもたらした。０．５〜２５μg.kg−1の範囲の用量を使用して７日間毎日の処置方式において全身性投与されたリコンビナントＩＬ−１０の使用は、クローン病活動性スコアの減少および寛解の増加を示した。いくつかの非常に有望な治療（炎症誘発性サイトカインのからめ込み（tangling）またはＴ細胞浸潤物の確立）が、実験モデルから現在出現している。しかしながら、すべてのこれらのストラテジーは全身性投与を必要とする。ＩＢＤの重篤な合併症は、ひどく衰弱させそして最終的に死に至らせることがありうる。
【００１５】
ＩＢＤを処置するためのいくつかの方法は、当該技術分野で知られている。Schering Corp.に譲渡されたUS Patent 5,368,854において、哺乳動物の炎症性腸疾患を処置するためにＩＬ−１０を使用する方法が開示されている。この方法では、ＩＢＤ（炎症性腸疾患）を有する哺乳動物にサイトカインが投与される。この参考文献に記載されたＩＬ−１０の投与は、非経口（例えば血管内、好ましくは静脈内）である。
【００１６】
しかし、ＩＢＤに罹患している（ヒト）患者のためのこのような投与経路に欠点がないわけではないことは明らかである。はるかに容易かつ簡便な方法は、ＩＬ−１０などのサイトカインまたは同様な治療活性を有するサイトカインアンタゴニストを含む医薬の経口投与である。更に重要なことに、治療剤の局所放出は、より高い有効性、およびより少ない、全身性活性に起因する望まれない副作用を可能とする。
【００１７】
Cambridge University Technical Services Ltd.に譲渡されたWO 97/14806において、非侵襲性バクテリア、例えば、Lactococcusを使用することにより生物学的に活性なポリペプチドおよび／または抗原を、身体、特に粘膜における該ポリペプチドの鼻腔内投与により送達するための方法が開示されている。WO 00/23471は大腸炎がサイトカイン産生Lactococcus株によりいかに処置されうるかを詳細に教示している。
【００１８】
ＩＢＤに罹患している患者の回復を達成するために、損傷された細胞および該損傷された細胞を含む器官、例えば結腸を修復することが必要である。いくつかの研究は、抗炎症性化合物産生Lactococcusの治癒効果が、生存乳酸菌と抗炎症性化合物との組み合わせによるものであり、抗炎症性化合物単独によるものではないことを示している。実際、ＩＬ  １０についてSteidler et al. (2000)およびトレフォイル因子の場合のVandenbroucke et al. (2004)の両方が、ＩＬ  １０産生Lactococcusが処置前にＵＶ照射により死滅させられている場合には効果が得られなかったが、これらの場合に活性化合物は溶解しているバクテリアにより腸で放出されていたはずであることを明らかに示している。
【００１９】
ＩＬ−１０産生Lactococcus lactisによる大腸炎の処置は、成功であることが証明された。しかしながら、主要な欠点は、Lactococcusの急速に減少する生存率であり、そして腸における乏しい生存であり、これは正確な投薬および処置のタイミングを困難にする。腸におけるタンパク質またはペプチドの送達のための代替として、Blanquet et al. (2004, WO 01/98461)は、リコンビナントSaccharomyces cerevisiaeを使用して、腸においてタンパク質またはペプチドを送達する可能性を記載している。このシステムはある場合には有用であるかもしれないが、この送達の方法は腸粘膜との相互作用が必要である疾患については成功しないかも知れないということが一般に認められている。実際に、著者らは送達を試験するために人工腸システムを使用したので、彼等は、「このシステムは能動および促進輸送などの腸壁の生理学的プロセスをシミュレーションすることはできない」ということを彼ら自身示している。活性分子のバイオアベイラビリティまたは活性に関するデータは入手できない（Blanquet et al. 2004）。特にＩＬ−１０の場合に、遺伝子分泌細胞型により産生された局所的サイトカイン微小環境がきわめて重要であることは十分に実証されている（Croxford et al., 2001）。サイトカイン産生細胞の細胞壁組成、細胞サイズおよび細胞が粘膜と相互作用する能力を含むがそれらに限定されないいくつかの因子が、役割を演じ得る。更に、酵母代謝産物、酵母抗原および酵母は過敏性腸症候群の可能なトリガーであるという最近のデータがある（Santelmann and Howard, 2005）。従って、過度の実験なしに乳酸菌で得られた結果を酵母に外挿することはできず、そしてLactococcusの特殊な免疫モデュレーション特性に鑑みて、当業者は、大腸炎の処置のために、ＩＬ  １０などの抗炎症剤をin situで腸に送達する酵母のポジティブな結果を予想しないであろう。
【００２０】
驚くべきことに、ＩＬ  １０などの抗炎症性化合物を産生するリコンビナント酵母が、ＩＢＤまたは粘膜炎などの粘膜炎症の処置のために使用されうるということを本発明者らは見出した。本発明者らの発明は、粘膜炎症を処置するための医薬の調製のために抗炎症性化合物を産生するリコンビナント酵母を使用することである。
【００２１】
酵母ホスト株により産生されるべき前記抗炎症性化合物は、当業者に知られている任意の抗炎症性化合物であることができる。あるいは、酵母は、非限定的な例として、不活性な基質を抗炎症性化合物に変換することができるキナーゼ、ホスフォターゼ、プロテアーゼまたはアセチル化酵素などの修飾酵素を産生してもよい。非限定的な例として、前記抗炎症性化合物は、サイトカイン、例えばＩＬ−１０、サイトカインアンタゴニスト（例えば、ＴＮＦアンタゴニスト、ＩＬ−１２アンタゴニスト、インターフェロンγアンタゴニスト、またはＩＬ−１アンタゴニスト）、抗炎症性ポリペプチド（例えば、トレフォイル、ＡＢＩＮまたはＩＮＣＡタンパク質）、またはウイルスにコードされたサイトカインアナログ、例えばＥＢＶ  ＢＣＲＦ１であることができる。サイトカインアンタゴニストは、当業者に知られておりそして可溶性レセプターおよび抗サイトカイン抗体を含むがそれらに限定されない。好ましくは、抗炎症性化合物はＩＬ−１０である。
【００２２】
抗炎症性化合物がグリコシル化部位を含む場合には、好ましくは１つ以上のこれらの部位を、グリコシル化を回避または制限するように、好ましくは酵母における過剰グリコシル化を回避または制限するように、突然変異させる。好ましい態様は、非グリコシル化ＩＬ−１０、好ましくは１つ以上の可能性のあるグリコシル化部位が突然変異されている非グリコシル化ＩＬ−１０を産生するリコンビナント酵母である。
【００２３】
好ましくは、抗炎症性化合物をコードする遺伝子（１つまたは複数）は、プラスミド上に位置した異種遺伝子である。適当なプラスミドは、当業者に知られておりそしてエピソームプラスミド、人工染色体または組み込みプラスミドを含むが、それらに限定されない。
【００２４】
リコンビナント酵母は、哺乳動物腸内で生存することができる任意の酵母であることができる。好ましくは、該酵母は、既知のプロバイオティク能力を有し、例えば、ケフィール、コンブチャ（kombucha）または乳製品からなる群より選ばれる酵母株である。なお更に好ましくは、該リコンビナント酵母は、Saccharomyces sp.、Hansenula sp.、Kluyveromyces sp.、Schizzosaccharomyces sp.、Zygosaccharomyces sp.、Pichia sp.、Monascus sp.、Geotrichum sp.およびYarrowia sp.からなる群より選ばれる。なお更に好ましくは該酵母はSaccharomyces cerevisiaeであり、最も好ましくはSaccharomyces cerevisiae亜種boulardiiである。好ましくは、リコンビナント酵母ホスト−ベクター系は、生物学的に封じ込められた系である。生物学的封じ込めは当業者に知られておりそして栄養要求突然変異、好ましくはＴｈｙＡ突然変異などの自殺栄養要求突然変異、またはその同等物の導入により実現されうる。あるいは、生物学的封じ込めは、抗炎症性化合物をコードする遺伝子を有するプラスミドのレベルで実現されうる。これは、非限定的な例として、少数の世代の後に失われる不安定なエピソーム構築物を使用することにより実現されうる。いくつかのレベルの封じ込め、例えば、プラスミド不安定性および栄養要求性を組み合わせて高レベルの封じ込めを確実にすることができる。
【００２５】
好ましくは、粘膜炎症はＩＢＤである。炎症性腸疾患、例えば、慢性大腸炎、クローン病または潰瘍性大腸炎は、本発明に従って、適切な投薬量の活性抗炎症性化合物、好ましくはＩＬ−１０、更に好ましくは非グリコシル化ＩＬ−１０により処置されることができ、そして予想外なことに、罹病した結腸の見かけ上正常で健康な状態への回復を与える。
【００２６】
あるいは、リコンビナント酵母による抗炎症性化合物、例えばＩＬ−１０の投与は、粘膜炎などの他の粘膜炎症を処置するのに使用することができる。ＩＬ−１０は、単独でまたは少なくとも１つの追加の治療剤と組み合わせて投与することができる。このような作用物質の例は、コルチコステロイド、スルファサラジン、スルファサラジンの誘導体、免疫抑制剤、例えばシクロスポリンＡ、メルカプトプリン、アザチオプリンおよび他のサイトカインを含む。共投与は、逐次的であるかまたは同時的であることができる。共投与は、一般に、特定された時間間隔の間に、複数の（２つ以上の）治療剤がレシピエント中に存在することを意味する。典型的には、第２の作用物質が第１の作用物質の半減期以内に投与されるならば、この２つの作用物質は共投与されていると考えられる。本明細書に記載する他方の治療剤は、他の化合物、好ましくは相補的作用を有する化合物、例えば非限定的な例としてトレフォイル因子を送達するLactococcusまたは酵母株などの他の微生物送達系であることができる。
【００２７】
従って、本明細書に開示された本発明は、リコンビナント酵母によるin situ合成を介したＩＬ−１０の局在化送達に関する。その結果として、炎症は、ＤＳＳで誘発された慢性大腸炎において少なくとも３０％減少し、そしてＩＬ−１０−／−１２９Ｓｖ／Ｅｖマウスにおける大腸炎の発症を防止する。それ故、この方法は、抗炎症性タンパク質の全身性投与に頼る強力で、十分に確立されそして受け入れられた治療と比較して、同等に効率的である。
【００２８】
本明細書で使用される酵母ベクターは、食品、好ましくはプロバイオティク特性を有する食品から、または既知のプロバイオティクスから選択され、そして免疫適格性個体に対して全体的に無害である。特にSaccharomyces cerevisiae亜種boulardiiの場合に、臨床実験が利用可能であり、そして腸における通過時間が研究されている。本明細書において非常に重要であることが示された、正確な投薬量および処置期間中のタイミングは、かくして容易に得ることができる。
【００２９】
ベクターの生存率のための重要な要件は、本発明に示されている。これは、ＩＬ−１０のin situ合成の必要を示す。ベクターは実際に、結腸におけるＩＬ−１０のde novo合成を示すことによりこれを達成することができる。酵母は、本発明に従えば、この点でWO 00/23471に記載のLactococcus lactisにまさる明白な利点を有する。何故ならば、それは処置期間中のその生存率をより安らかに保ちそしてそれはLactococcusよりも腸においてより良好に生存しているからである。
【００３０】
この方法は、潜在的副作用に関して、全身性送達を通じて望ましい濃度よりもまたは達成可能な濃度さえよりも高い濃度での治療におけるＩＬ−１０の持続しかつ局在化した存在についての疑問に答えることができる。
【００３１】
定義
本明細書で使用するいくつかの用語を、分かり易くするために以下に説明する。一般に、用語「症候」は、疾患のもしくは患者の状態の任意の主観的証拠を指す。これは、患者により認知される証拠を含む。ＩＢＤの症候の例は、下痢、腹痛、熱、メレナ、血便排泄および体重減少を含む。
【００３２】
用語「徴候」は、一般に、通常診察する医師により認知される疾患または状態の任意の客観的証拠、あるいは検査室評価または他の試験、例えば超音波検査もしくはＸ線写真試験で正体を現す特徴を指す。ＩＢＤの徴候のいくつかの例は、腹部腫瘤、舌炎、アフタ性潰瘍、肛門裂傷、肛門周囲フィステル、貧血、吸収不良および鉄欠乏症を含む。ときには、徴候と症候は重複する。例えば、患者が血便を訴え（症候）、そして糞便サンプルの検査室試験が血液について陽性となる（徴候）。
【００３３】
用語「適切な投薬量」または「有効量」は、自己免疫状態の、または望ましくないもしくは不適切な炎症性応答もしくは免疫応答の症候もしくは徴候を軽減するのに十分な量または投薬量を意味する。特定の患者のための有効量は、処置される状態、患者の全体的健康、投与の方法、経路および用量、および副作用の重篤さなどの因子に依存して変動し得る。
【００３４】
「サイトカイン」は、細胞表面レセプターに結合することにより通常局所的に作用しそして特定の遺伝子の発現を活性化する、ある範囲の細胞型により一過性で産生されるポリペプチド因子を意味する。
【００３５】
「アンタゴニスト」は、レセプターに結合するがレセプターを活性化しない、従ってアゴニストの作用を競合的に阻害する化合物を意味する。
【００３６】
「アゴニスト」は、レセプターに結合しそしてレセプターを活性化する化合物（例えば、ホルモンおよび神経伝達物質のような内在性リガンド、化学的に合成された化合物、アルカロイドのような天然産物）である。
【００３７】
「化合物」は、単純または複雑有機および無機分子、ペプチド、ペプチド模倣物、タンパク質、抗体、炭水化物、核酸またはその誘導体を含む任意の生物学的または化学的化合物を意味する。
【００３８】
本明細書で使用される用語「タンパク質」および「ポリペプチド」は、相互に交換可能である。「ポリペプチド」は、アミノ酸のポリマーを指しそして分子の特定の長さを意味しない。この用語は、ポリペプチドの翻訳後修飾、例えばグリコシル化、リン酸化およびアセチル化も含む。
【００３９】
実施例
実施例における材料および方法
株および培養培地
Saccharomyces cerevisiae INV Sc1（mating-α、his3Δ1、leu2-3、-112trp1-289およびura3-52）はInvitrogen（商標）から得た。
【００４０】
Saccharomyces cerevisiae亜種boulardiiは、市販のプロバイオティク調製物から単離した。
【００４１】
最少培地は、０．６７％Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids（Difco, Detroit, MI）、２％デキストロース（Merck, Darmastadt, Germany）および０．０７７％ＣＳＭ−ＵＲＡ（Bio 101 Systems, Morgan Irvine, CA）からなるＳＤ＋ＣＳＭ−Ｕであった。
【００４２】
ＹＰＤ培地は、１％酵母エキス、Difco；２％デキストロース、Merck；２％ペプトン、Difcoからなる。
【００４３】
リコンビナントＤＮＡ技術
ＤＮＡのＰＣＲ増幅は、ＶＥＮＴポリメラーゼによりそして製造者により推奨された条件を使用して行った。ＤＮＡ修飾酵素および制限エンドヌクレアーゼを標準条件下で、製造者により推奨されたバッファー中で使用した。一般的な分子クローニング技術ならびにＤＮＡおよびタンパク質の電気泳動を本質的に記載されたとおりに行った（Sambrook et al., 1990）。S. cerevisiaeをエレクトロポレーションによりトランスフォーメーションしそしてトランスフォーマントを指示された適当な選択培地上で選択した。
【００４４】
発現プラスミドの構築
プラスミドｐＰＩＣ９２におけるｍＩＬ１０のサブクローニング
成熟ｍＩＬ１０のＤＮＡコード配列を、プラスミドｐＴ１ｍＩＬ１０（Schotte et al., 2000）からｏｌｉｇｏ  ｍＩＬ１０  Ｓ
【表１】
2009510154.tif 000002
およびｏｌｉｇｏ  ｍＩＬ１０  ＡＳ
【表２】
2009510154.tif 000003
によりＰＣＲ増幅した（Vent（登録商標）ポリメラーゼ、NEB, Ipswich, MA）。これにより４７４ｂｐのＤＮＡフラグメントを得た。このｍＩＬ１０  ＰＣＲフラグメントを、制限酵素ＮａｅＩ（ＮＥＢ）で線状化したプラスミドｐＰＩＣ９２上に存在するSaccharomyces cerevisiaeのプレプロα接合因子（ｐｐＭＦ）分泌シグナルの後にインフレームでライゲーションした。得られた構築物をｐＰＩＣ９２ｍＩＬ１０と名づけた（図１）。プラスミドｐＰＩＣ９２は、プラスミドｐＰＩＣ９Ｋ（Invitrogen（商標）, Carlsbad, CA）に由来する。Escherichia coli MC1061熱コンピテント細胞を、ｐＰＩＣ９２ｍＩＬ１０ライゲーション混合物でトランスフォーメーションした。
【００４５】
ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０のプラスミドｐＹＥＳ２へのサブクローニング
ｐＹＥＳ２（図２；Invitrogen）は、Saccharomyces cerevisiaeにおけるリコンビナントタンパク質の誘導性発現のためにデザインされた５．９ｋｂのベクターである。このベクターの特徴は、関心のある遺伝子の容易なクローニングおよびウラシル原栄養性によるトランスフォーマントの選択を可能とする（それはＵＲＡ３マーカーを含有する）。ｐＹＥＳ２ベクターは、Saccharomyces cerevisiaeにおけるリコンビナントタンパク質の高レベル発現用にデザインされている。それは、ガラクトース誘導性発現を可能とするＧＡＬ１プロモーターを含有する。このベクターは、２μ複製起点を有しそしてエピソームで高コピーに（細胞あたり１０〜４０コピー）維持される。このベクターは、Ｅ．ｃｏｌｉにおける容易なクローニングおよび選択を可能とするＥ．ｃｏｌｉ  ｐＵＣオリジンおよびアンピシリン耐性も含有する。
【００４６】
ベクターｐＹＥＳ２を、ＢａｍＨＩ（ＮＥＢ）およびＸｂａＩ（ＮＥＢ）の組み合わせ消化により消化した。５７８０ｂｐのベクターＤＮＡフラグメントを単離した。プラスミドｐＰＩＣ９２ｍＩＬ１０をＢａｍＨＩ（ＮＥＢ）およびＳｐｅＩ（ＮＥＢ）の組み合わせ消化により消化した。７５１ｂｐのＤＮＡフラグメントを単離した。２つの選択したＤＮＡバンド（５７８０および７５１ｂｐ）をライゲーションしそしてＥ．ｃｏｌｉ  ＭＣ１０６１熱コンピテント細胞にトランスフォーメーションした。構築したプラスミドをｐＹＥＳ２−ｍＩＬ１０と名づけた（図３）。
【００４７】
プラスミドｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０の構築
先に構築したプラスミドｐＹＥＳ２−ｍＩＬ１０は、ＧＡＬ１プロモーターのガラクトースによる誘導時にのみｍＩＬ１０分泌があるという欠点を有していた。ｍＩＬ１０を分泌するSaccharomyces株のin vivo使用のために、それらがｍＩＬ１０を構成的に分泌するということは非常に重要である。この目標を達成するために、本発明者らはＧＡＬ１プロモーターを構成性の非常に強いトリオースリン酸イソメラーゼ（ＴＰＩプロモーター）により置換した。ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０発現カセットを、Saccharomyces cerevisiae高コピー数（２μオリジン）プラスミド上で構成性の強いＴＰＩプロモーターのコントロール下にサブクローニングした。
【００４８】
ＴＰＩ−ｐｐＭＦ’フラグメントを、プラスミドｐＳＣＴＰＩＭＦ３からｏｌｉｇｏ  ＳｐｅＩ−ＴＰＩ−Ｓ（図４のオリゴ番号１；
【表３】
2009510154.tif 000004
）およびアンチセンスｏｌｉｇｏ  ｐｐＭＦ−ｍｉｄｄｌｅ−ＡＳ（図４Ａのオリゴ番号２；
【表４】
2009510154.tif 000005
）によりＰＣＲ増幅した。これにより５００ｂｐの長さを有するＴＰＩ−ｐｐＭＦ’ＰＣＲを得た。ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０ＰＣＲフラグメントを、先に構築したプラスミドｐＰＩＣ９２ｍＩＬ１０からｏｌｉｇｏ  ｐｐＭＦ−ｓｔａｒｔ−Ｓ（図４Ａのオリゴ番号３；
【表５】
2009510154.tif 000006
）およびｏｌｉｇｏ  ｍＩＬ１０−ＥｃｏＲＩ−ｍｉｄｄｌｅ−ＡＳ（図４Ａのオリゴ番号４；
【表６】
2009510154.tif 000007
）により増幅した。得られたＰＣＲフラグメントｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０は５２５ｂｐの長さを有していた。
【００４９】
ＴＰＩ−ｐｐＭＦ’およびｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０フラグメントを、２つの先のＰＣＲ反応からの外側オリゴ：ｏｌｉｇｏ  ＳｐｅＩ−ＴＰＩ−Ｓ（図４Ｂのオリゴ番号１；
【表７】
2009510154.tif 000008
）およびｏｌｉｇｏ  ｍＩＬ１０−ＥｃｏＲＩ−ｍｉｄｄｌｅ−ＡＳ（図４Ｂのオリゴ番号４；
【表８】
2009510154.tif 000009
）によるオーバーレイＰＣＲ（overlay PCR）におけるテンプレートとして使用した。組立てたＳｐｅＩ−ＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０−ＥｃｏＲＩ  ＰＣＲフラグメント（図４Ｂ）は、９８９ｂｐの長さを有しており、これをアガロースゲルで精製しそして制限酵素ＳｐｅＩおよびＥｃｏＲＩにより消化した。
【００５０】
先に構築したベクターｐＹＥＳ２−ｍＩＬ１０をＳｐｅＩおよびＥｃｏＲＩにより消化した。５４６６ｂｐのＤＮＡフラグメントを単離しそしてＳｐｅＩ−ＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０−ＥｃｏＲＩ  ＰＣＲフラグメントとライゲーションした。これにより、ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０と名づけられたプラスミドを得た（図５）。熱コンピテントＭＣ１０６１Ｅ．ｃｏｌｉ細胞をｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０ライゲーション混合物でトランスフォーメーションした。
【００５１】
動物
１１週齢の雌のＢＡＬＢ／ｃマウスをCharles River Laboratories（Sulzfeld, Germany）から得た。それらをＳＰＦ条件下に収容した。すべてのマウスに、標準実験室食餌を与えそして随意に水道水を与えた。動物の研究は、Ethics Committee of the Department for Molecular Biomedical Research, Ghent Universityにより承認された（File No. 04/02）。
【００５２】
ＤＳＳによる慢性大腸炎の誘発
約２１gの重量のあるマウスに、通常の飲料水による１０日の回復期間と交互する、飲料水中の５％（ｗ／ｖ）ＤＳＳ（40kDa，Applichem, Darmstadt, Germany）の４サイクルの投与により慢性大腸炎を誘発した（Okayasu et al., 1990; Kojouharoff et al., 1997）。処置は、４サイクル目のＤＳＳの２１日後に任意に開始した。異なる群を１４日間処置した。最後の処置の１４日後に、マウスを殺傷しそして分析した。
【００５３】
統計的解析
すべてのデータを平均±ＳＥＭとして表した。データを、一元配置分散分析（ＡＮＯＶＡ）、続いてフィッシャーの最小有意差（ＬＳＤ）多重比較事後検定により統計的に解析した。
【００５４】
Lactococcusコントロール
ＩＬ−１０を分泌するLactococcusによる処置を、Steidler et al. (2000)により記載のとおりに行った。
【００５５】
実施例１：ｍＩＬ１０を分泌するSaccharomyces株の構築
１μgのプラスミドｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０（Qiagen midi plasmid kit, Hilden, Germanyにより調製された；Ｅ．ｃｏｌｉ株ＭＣ１０６１［ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０から］）を、エレクトロコンピテントSaccharomyces cerevisiae INV Sc1細胞にエレクトロポレーションした。トランスフォーメーションされた酵母細胞をウラシル欠損（選択）最少培地上にプレーティングした。ＰＣＲスクリーニングによって、ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０プラスミドが存在するSaccharomyces cerevisiaeトランスフォーマントを同定した。これを、Saccharomyces cerevisiae INV Sc1［ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０］と名づけた。
【００５６】
実施例２：Saccharomyces cerevisiaeによるｍＩＬ１０の分泌
Saccharomyces株Saccharomyces cerevisiae INV Sc1［ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０］およびベクターコントロールSaccharomyces cerevisiae INV Sc1［ｐＹＥＳ２］の１つのコロニーをそれぞれ５０mlの最少ウラシル欠損培地（ＳＤ＋ＣＳＭ−Ｕ）中に接種した。３０℃で２４時間の好気性成長の後に、細胞を遠心（２５００ｔｍｐで５分間）によりペレット化しそしてＹＰＤ培地中で濃縮しないか（２×１０Ｅ8ＣＦＵ／ml）または２倍濃縮した。異なる時点（８、１２、２４および４８時間）で、上清サンプルをｍＩＬ１０定量および特徴付けのために採取した。４８時間の成長期間中、Saccharomyces cerevisiae上清のｐＨは７で安定であった。
【００５７】
培養上清中に分泌されたマウスＩＬ−１０の量を評価するためにサンドイッチＥＬＩＳＡをセットアップした。ポリクローナルウサギ抗マウスＩＬ−１０（５μg ml-1；Prepro Tech, London, England）を捕獲抗体として使用した。マウスＩＬ−１０に対するモノクローナルビオチン結合抗体（Pharmingen, San Diego, USA）を１／１０００希釈で適用して捕獲されたＩＬ−１０を検出した。ビオチン化複合体を１／１０００希釈のセイヨウワサビペルオキシダーゼ結合ストレプトアビジン（Pharmingen）と反応させそしてＴＭＢ基質（Pharmingen）との反応により可視化した。工程の間に、マイクロタイタープレートを水で２回そして０．０５％TritonX-100（Sigma）を含有するＰＢＳで１回洗浄した。非特異的結合を防止するために、プレートを０．１％カゼインを含有するＰＢＳ中でインキュベーションした。
【００５８】
１２時間の成長の後に、Saccharomyces cerevisiae INV Sc1［ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０］株は、細胞を１倍濃縮した場合は０．８±０．０μg/mlのｍＩＬ１０を分泌しそして細胞を２倍濃縮した場合は１．６±０．１μg/mlのｍＩＬ１０を分泌した（図６）。２４時間の成長の後に、Saccharomyces cerevisiae INV Sc1［ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０］株は、細胞を１倍濃縮した場合は２．８±０．２μg/mlのｍＩＬ１０を分泌しそして細胞を２倍濃縮した場合は６．０±０．２μg/mlのｍＩＬ１０を分泌した（図６）。そして最後に、４８時間の成長の後に、Saccharomyces cerevisiae INV Sc1［ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０］株は、細胞を１倍濃縮した場合は５．０±０．３μg/mlのｍＩＬ１０を分泌しそして細胞を２倍濃縮した場合は１０．２±０．３μg/mlのｍＩＬ１０を分泌した（図６）。空のベクターコントロールSaccharomyces cerevisiae INV Sc1［ｐＹＥＳ２］は、いずれの所定の時点でもｍＩＬ１０の産生を示さなかった（図６）。
【００５９】
タンパク質をＴＣＡ沈殿により培養上清から抽出し、次いでＬａｅｍｍｌｉサンプルバッファー（Laemmli, 1970）中に溶解した。タンパク質画分をドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＰＡＧＥ）（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）により分離しそしてニトロセルロース膜上にエレクトロブロッティングした（Burnette, 1981）。
【００６０】
マウスインターロイキン１０を、１／１０００希釈の一次抗体としてのポリクローナルウサギ抗マウスＩＬ−１０を用いるイムノブロッティングにより検出した（Prepro Tech, London, U.K.）。二次抗体は、アルカリホスファターゼに結合したヤギ抗ウサギＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（SBA, Birmingham, USA）でありそしてこれを１／１０００希釈で使用した。酵素活性をＮＢＴ／ＢＣＩＰ基質（Boehringer Mannheim, GmbH, Germany）により可視化した。図７は、２４時間の成長の後のウエスタンブロットによるSaccharomyces cerevisiae INV S.c.1上清におけるｍＩＬ１０の検出を示す。Saccharomyces細胞を２４時間の成長のためにＹＰＤ中でそれぞれ１倍または２倍濃縮した。
【００６１】
Saccharomycesにより分泌されたリコンビナントＩＬ−１０の生物学的活性をＭＣ／９マウスマスト細胞系による増殖アッセイにおいて試験した。ＩＬ−１０の生物学的力価を、増殖しているマスト細胞による［３Ｈ］チミジンの取り込みの刺激から決定した。既知の特異的活性の標準（BioSource International, Camarillo, CA）を、内部コントロールとして使用した。
【００６２】
実施例３：非グリコシル化マウスＩＬ１０の産生
グリコシル化は分泌されたＩＬ−１０の活性に影響し得るので、本発明者らは、非グリコシル化マウスインターロイキン１０を分泌するSaccharomyces cerevisiae株を生成しようとした。ｍＩＬ１０は２つの潜在的Saccharomyces cerevisiaeＮ−グリコシル化部位（Ｎ−Ｘ−Ｓ／Ｔコンセンサス配列、潜在的グリコシル化部位を太字で示す）を含有する。
【００６３】
【表９】
2009510154.tif 000010
【００６４】
部位１１−ＮＣＴ−１９は、溶媒に向けて配向されているループ内に位置している。この部位は、ＩＬ−１０レセプターとの相互作用には関与しないようである。この認識部位は、ヒト（ｈ）ＩＬ１０においては保存されていない。ｈＩＬ１０では、アミノ酸配列は１１−ＳＣＴ−１３である。１１−ＮＣＴ−１３部位は、Saccharomyces cerevisiaeのための理想的なグリコシル化部位であると思われる。このグリコシル化部位は、１１−ＮＣＴ−１３を、ｈＩＬ１０におけるように１１−ＳＣＴ−１３にまたは１１−ＱＣＴ−１３（Ｑは構造的にＮに近似したアミノ酸である；突然変異を太字で示す）に突然変異させることによりｍＩＬ１０から除去しうる。ｍＩＬ１０の両突然変異とも作製した。
【００６５】
部位１１６−ＮＫＳ−１１８は、ｍＩＬ１０の安定化および構造のために重要であると思われる。ＮおよびＳは、付近の残基の骨格とのＨ結合形成に関与している。この部位のアミノ酸配列は、ヒトおよびＩＬ１０のすべての他の既知のホモログにおいて厳密に保存されている。プログラムＧｌｙＰｒｏｔは、この部位を潜在的グリコシル化部位として認識しない。ｈＩＬ１０では、この部位は保存されておりそしてグリコシル化されていない（Vieira et al., 1991）。このことは、１１６−ＮＫＳ−１１８部位はマウスＩＬ１０においてもグリコシル化されていないことを示唆する。それにもかかわらず、１１６−ＮＫＳ−１１８部位の１１６−ＱＫＳ−１１８への突然変異を、可能性のある効果を試験するために作製した。
【００６６】
全部で、４つの異なる突然変異（非グリコシル化）形態のｍＩＬ１０を分泌する４つの異なるSaccharomyces cerevisiae構築物を作製した。２つの構築物は、第１のグリコシル化部位において突然変異されており、それはそれぞれＳおよびＱに突然変異されている。更に、本発明者らは第１のグリコシル化部位がそれぞれＳおよびＱに突然変異されそして第２のグリコシル化部位がＱに突然変異されている２つの構築物も作製した。
【００６７】
ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ突然変異体においては、第１の潜在的グリコシル化部位のみが突然変異されている。１１−ＮＣＴ−１３配列は１１−ＳＣＴ−１３に突然変異されている。
【００６８】
ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｑ突然変異体においては、第１の潜在的グリコシル化部位のみが突然変異されている。１１−ＮＣＴ−１３配列は１１−ＱＣＴ−１３に突然変異されている。
【００６９】
ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ２Ｑ突然変異体においては、第１の（１１−ＮＣＴ−１３）および第２の（１１６−ＮＫＳ−１１８）潜在的グリコシル化部位の両方が突然変異されている。第１の潜在的グリコシル化部位１１−ＮＣＴ−１３は１１−ＳＣＴ−１３に突然変異されている。第２の潜在的グリコシル化部位１１６−ＮＫＳ−１１８は１１６−ＱＫＳ−１１８に突然変異される。
【００７０】
ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｑ２Ｑ突然変異体においては、第１の（１１−ＮＣＴ−１３）および第２の（１１６−ＱＫＳ−１１８）潜在的グリコシル化部位が突然変異されている。第１の潜在的グリコシル化部位１１−ＮＣＴ−１３は１１−ＱＣＴ−１３に突然変異されている。第２の潜在的グリコシル化部位１１６−ＮＫＳ−１１８は１１６−ＱＫＳ−１１８に突然変異されている。ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ、ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｑ  ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ２ＱおよびｍＩＬ１０ｎｇ１Ｑ２Ｑ  ｍＩＬ突然変異体をｐＹＥＳ２Ｔ−ｐｐＭＦにサブクローニングして、それぞれプラスミドｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ、ｐＹＥＳ２Ｔｎｇ１Ｑ、ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ２ＱおよびｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０１Ｑ２Ｑを生成する。これらのプラスミドを、Saccharomyces cerevisiae株INV S.c.1中に導入した。
【００７１】
すべてのトランスフォーマントおよびベクターコントロールSaccharomyces cerevisiae INV Sc1［ｐＹＥＳ２］の１つのコロニーをそれぞれ５０mlの最少ウラシル欠損培地（ＳＤ＋ＣＳＭ−Ｕ）中に接種した。３０℃で２４時間の好気性成長の後に、細胞を遠心（２５００ｔｍｐで５分）によりペレット化しそしてＹＰＤ培地中に再懸濁した。２４時間目に、上清サンプルをｍＩＬ１０定量および特徴付けのために採取した。４８時間の成長の期間中、Saccharomyces cerevisiae上清のｐＨはｐＨ７で安定であった。
【００７２】
タンパク質をＴＣＡ沈殿により培養上清から抽出し、次いでＬａｅｍｍｌｉサンプルバッファー（Laemmli 1970）中に溶解した。タンパク質画分をＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分離しそしてニトロセルロース膜上にエレクトロブロッティングした（Burnette 1981）。
【００７３】
マウスインターロイキン１０を、１／１０００希釈の一次抗体としてのポリクローナルウサギ抗マウスＩＬ−１０を用いて検出した（Prepro Tech, London, U.K.）。二次抗体は、アルカリホスファターゼに結合したヤギ抗ウサギＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（SBA, Birmingham, USA）でありそしてこれを１／１０００希釈で使用した。酵素活性をＮＢＴ／ＢＣＩＰ基質（Boehringer Mannheim, GmbH, Germany）により可視化した。図８は、ＹＰＤ中で２４時間の成長の後のウエスタンブロットによる異なるSaccharomyces cerevisiae INV S.c.1株の上清におけるｍＩＬ１０の検出を示す。１１−ＮＣＴ−１３Saccharomyces  ｍＩＬ１０グリコシル化部位を１１−ＳＣＴ−１３に変える（ｈＩＬ１０におけるように）ことにより、本発明者らは、SaccharomycesによるｍＩＬ１０の過剰グリコシル化を排除することができた。第１の潜在的グリコシル化部位の除去（１１−ＳＣＴ−１３）は、ｍＩＬ１０グリコシル化を回避するのに十分であった。第２の１１６−ＮＫＳ−１１８グリコシル化部位の１１６−ＱＫＳ−１１８への除去は利益を与えなかった。動物研究実験では、天然のｍＩＬ１０形態および第１の潜在的グリコシル化部位を１１−ＳＣＴ−１３にヒト化したｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓを使用した。
【００７４】
実施例４：プラスミドで駆動される方法でｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓを分泌する生存S.cerevisiaeによる慢性ＤＳＳ大腸炎の処置
慢性大腸炎の処置のためのｍＩＬ１０分泌Saccharomyces cerevisiae株の治療有効性を、デキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）誘発マウスモデルにおいて評価した。マウスに、記載されたとおりにＤＳＳにより慢性大腸炎を誘発した（Okayasu et al., 1990; Kohouharoff et al., 1997）。非グリコシル化形態のｍＩＬ１０を分泌するSaccharomyces cerevisiae INV Sc1トランスフォーマント２×１０8CFUによる１４日間の毎日の処置（ｎ＝１０；Ｓ．ｃ．ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ）は、モック（ｎ＝１０）およびSaccharomyces cerevisiaeベクターコントロール（ｎ＝１０）処置した群と比較して有意に低い遠位結腸の組織学的スコアをもたらした（図９）。確立された慢性ＤＳＳ大腸炎に対するＳ．ｃ．ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ処置の有効性は、ｍＩＬ１０を分泌するL.lactis  ２×１０9CFUによる１４日間の毎日の処置で観察された有効性に匹敵した（ｎ＝１０；ＬＬ−ｍＩＬ１０；図９）。Saccharomyces cerevisiaeにより分泌された非グリコシル化形態のｍＩＬ１０（ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ）は、治療有効性に関してグリコシル化形態よりも良好な成績であった（図９）。
【００７５】
実施例５：遺伝子改変（ＧＭ）生物学的封じ込めｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ分泌Saccharomyces cerevisiae株の構築
Saccharomyces cerevisiaeによる治療タンパク質の安定な分泌を達成するために、タンパク質発現カセットがゲノムに組み込まれることが重要である。非選択環境下では、Saccharomyces cerevisiaeは、有害性の原因となり必須でない治療遺伝子発現プラスミドを急速に失い、そしてリコンビナント遺伝子のＤＮＡが自然へと広がり、これはきわめて望ましくない。生物学的に封じ込められ、従って環境において生存できないＧＭ Saccharomyces cerevisiae株を作製することも重要である。従って、栄養要求株である不稔（ｓｔｅ）一倍体研究室株（Botstein et al., 1979）を使用した。栄養要求性酵母株は富栄養培地中でのみ生存することができる。最少培地または環境中で、これらの酵母株は、成長停止を経て、その後それらは死滅する。不稔（ｓｔｅ）でもある一倍体栄養要求性酵母株は、治療遺伝子のＤＮＡを他の酵母株に伝達することができない。本発明者らは、一倍体不稔Saccharomyces cerevisiae Meyen ex E.C. Hansen VC5株（MATα, ste）（Mackay et al., 1974a; Mackay et al., 1974b）を使用してｍＩＬ１０を分泌させた。必須のＵＲＡ３遺伝子およびプロモーターを、強い構成性のＴＰＩプロモーターにより先行されたｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ遺伝子と相同組換えによって交換する（図１０）。
【００７６】
ＵＲＡ３プロモーターを含む完全オロチジン−５’ホスフェート（ＯＭＰ）デカルボキシラーゼ（ＵＲＡ３）遺伝子（図１１）を、構成性の強いＴＰＩプロモーターおよびそれに続くｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ  ＤＮＡフラグメントにより置換した。ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ  ＤＮＡフラグメントにおいて、第１のグリコシル化部位をヒト化し（これによりSaccharomyces cerevisiaeによる過剰グリコシル化の問題を回避する）、そしてｐｐＭＦ分泌シグナルにインフレームで融合する。
【００７７】
ＰＵＲＡ３−ＵＲＡ３のＰＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓによる置換により、本発明者らは、ｕｒａ３栄養要求株を作製した。ウラシルの非存在下では、この株は、成長停止を経て、死滅する。Saccharomyces cerevisiaeゲノムは完全に配列決定されておりそして公開されている（Dietrich et al., 1997）。ＵＲＡ３領域のＤＮＡ配列に基づいて、それぞれ５０ヌクレオチド（ｎｔ）のＰＵＲＡ３−ＵＲＡ３の５’および３’フランキング領域をＰＣＲ産物の５’および３’末端に付加したＰＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｈＩＬ１０発現カセットの増幅を可能とする（１０Ｂ）オリゴを開発した（図１０Ａにおけるオリゴ１＝５’ＵＲＡ３Ｐ−ＴＰＩ−Ｓ、
【表１０】
2009510154.tif 000011
およびオリゴ２＝ｍＩＬ１０−３’ＵＲＡ３−ＡＳ、
【表１１】
2009510154.tif 000012
）。このＰＣＲフラグメントを、ＬｉＯＡｃ／ＰＥＧでコンピテントにしたSaccharomyces cerevisiae VC5細胞に導入した（Schiestl et al., 1989; Gietz et al., 2001）。ＰＣＲフラグメントのＰＵＲＡ３−ＵＲＡ３領域との５０ｎｔの相同性領域は、ＰＵＲＡ３−ＵＲＡ３フラグメントのＰＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｈＩＬ１０発現カセットとの相同組換えおよび置換を可能とする。５−フルオロオロト酸（５−ＦＯ）を含有する最少培地上に酵母をプレーティングすることにより、ＰＵＲＡ３−ＵＲＡ３がＰＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓにより置換されている酵母のみが、生き残ることができる（ＵＲＡ３は５−ＦＯを毒性の５−フルオロウラシルに変換する）。コロニーを更にＰＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓの存在（オリゴ５〜６およびオリゴ７〜８；図１０Ｃ）およびＰＵＲＡ３−ＵＲＡ３の非存在（オリゴ３〜４、図１０Ｂ）に関してＰＣＲスクリーニングにより調べる（オリゴ３＝ＵＲＡ３−Ｓ、
【表１２】
2009510154.tif 000013
オリゴ４＝ＵＲＡ３−ＡＳ、
【表１３】
2009510154.tif 000014
オリゴ５＝５’ＵＲＡ３  ｆｌａｎｋｉｎｇ−Ｓ、
【表１４】
2009510154.tif 000015
オリゴ６＝ｍＩＬ１０ＡＳ、
【表１５】
2009510154.tif 000016
オリゴ７＝ｍＩＬ１０−Ｓ、
【表１６】
2009510154.tif 000017
オリゴ８＝３’ＵＲＡ３  ｆｌａｎｋｉｎｇ−ＡＳ、
【表１７】
2009510154.tif 000018
【００７８】
ウラシルなしの最少培地における構築したSaccharomyces cerevisiae ＶＣ５  ｓｔｅ  ｕｒａ３−  ｍＩＬ１０＋株の成長の非存在は、自動化濁度計（Bioscreen）を使用して確認した。成長は富栄養培地中では正常であった。
【００７９】
Saccharomyces株Saccharomyces cerevisiae ＶＣ５  ｓｔｅ  ｕｒａ３−  ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓ＋およびベクターコントロールSaccharomyces cerevisiae ＶＣ５  ｓｔｅ  ｕｒａ３−の１つのコロニーをそれぞれ５０mlのＹＰＤ中に接種した。３０℃で２４時間の好気性成長の後に、細胞を遠心（２５００ｔｍｐで５分間）によりペレット化しそして新たなＹＰＤ培地中に再懸濁した。更なる２４時間の後に、ｍＩＬ１０の定量および特徴付けのために上清サンプルを採取した。４８時間の成長期間中、Saccharomyces cerevisiae上清のｐＨは７で安定であった。タンパク質をＴＣＡ沈殿により培養上清から抽出し、次いでＬａｅｍｍｌｉサンプルバッファー（Laemmli, 1970）中に溶解した。タンパク質画分をＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分離しそしてニトロセルロース膜上にエレクトロブロッティングした（Burnette,1981）。マウスインターロイキン１０を、１／１０００希釈の一次抗体としてのポリクローナルウサギ抗マウスＩＬ−１０を用いて検出した（Prepro Tech, London, U.K.）。アルカリホスファターゼに結合したヤギ抗ウサギＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（SBA, Birmingham, USA）を、１／１０００希釈で、二次抗体として使用した。酵素活性を、ＮＢＴ／ＢＣＩＰ基質（Boehringer Mannheim, GmbH, Germany）により可視化した。
【００８０】
図１２は、Saccharomyces cerevisiae  ＶＣ５  ｕｒａ３  ｓｔｅ  ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓクローン上清中のｍＩＬ１０検出を示す。L.lactis  ＭＧ１３６３［ｐＴ１ｍＩＬ１０］をポジティブコントロールとして使用した。図から、本発明者らは、構築したＧＭ生物学的封じ込めSaccharomyces cerevisiae  ＶＣ５  ｕｒａ３  ｓｔｅ  ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓクローンは、ｍＩＬ１０を上清中に効果的に分泌しそしてin vivoにおけるＩＬ−１０産生およびＩＢＤの処置のために使用することができると結論することができる。
【００８１】
【表１８】
2009510154.tif 000019
2009510154.tif 000020
【図面の簡単な説明】
【００８２】
【図１】ｐＰＩＣ９２ＭＩＬ１０のプラスミドマップ。
【図２】ベクターｐＹＥＳ２のプラスミドマップ。
【図３】ｐＹＥＳ２−ｍＩＬ１０のプラスミドマップ。
【図４】オーバーレイＰＣＲによるＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０フラグメントの構築。番号は使用したプライマーを示す（本文参照）。
【図５】ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０のプラスミドマップ。
【図６】時間の関数で（０、８、１２、２４および４８時間後）サンドイッチＥＬＩＳＡにより決定したSaccharomyces cerevisiae INV S.c.1［ｐＹＥＳ２］およびSaccharomyces cerevisiae INV S.c.1［ｐＹＥＳ２Ｔ−ｍＩＬ１０］によるｍＩＬ１０分泌。
【図７】ｍＩＬ１０のウエスタンブロット検出。シグナルはＹＰＤにおける２４時間の成長の後の０．５ml培養上清中に存在するタンパク質の量に対応する。
【図８】ｍＩＬ１０および非グリコシル化ｍＩＬ−１０のウエスタンブロット検出。シグナルはＹＰＤにおける２４時間の成長の後の０．５ml培養上清中に存在するタンパク質の量に対応する。
【図９】遠位結腸の組織学的スコアの統計的評価。すべてのデータを平均±ＳＥＭとして表す。データを、一元配置分散分析（ＡＮＯＶＡ）、続いてフィッシャーの最小有意差（ＬＳＤ）多重比較事後検定により統計的に解析した。＊は、それぞれ、Ｐ＜０．０３５およびＰ＜０．０１２のモックおよびSaccharomyces cerevisiaeベクターコントロール処置群との比較における統計的有意差を表す。＋は、それぞれ、Ｐ＜０．０８５およびＰ＜０．１５２のモックおよびLactococcus lactisベクターコントロール処置群との比較における統計的差を表す。
【図１０】Saccharomyces cerevisiae  ＶＣ５におけるＰＵＲＡ３−ＵＲＡ３のＰＴＰＩ−ｐｐＭＦ−ｍＩＬ１０ｎｇ１Ｓによる遺伝子置換。番号（１〜８）は使用した異なるプライマーを示す。
【図１１】Saccharomyces cerevisiaeの染色体Ｖの１０８５０４〜１２０２９９ｂｐ領域のゲノム構成（Dietrich et al., 1997）；ＹＥＬＯ２３ＣおよびＹＥＬＯ２０Ｃは未知の機能を有する遺伝子であり；ＧＥＡ２はＡＤＰリボシル化因子（ＡＲＦ）のグアニンヌクレオチド交換因子２をコードし；ＵＲＡ３はオロチジン−５’−ホスフェート（ＯＭＰ）デカルボキシラーゼをコードし；ＴＩＭ９はポリトピック内膜タンパク質の輸入および挿入を担うミトコンドリア膜間タンパク質をコードする。
【図１２】ｍＩＬ１０のウエスタンブロット検出。シグナルはＹＰＤにおける２４時間の成長の後の０．５ml培養上清中に存在するタンパク質の量に対応する。
【図１】
2009510154.tif 000021
【図２】
2009510154.tif 000022
【図３】
2009510154.tif 000023
【図４】
2009510154.tif 000024
【図５】
2009510154.tif 000025
【図１１】
2009510154.tif 000026
【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１２】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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