(57)【要約】本発明は、種子殻の破砕工程、水溶性バラスト物質の抽出液を用いた酸加水分解工程、及びリグニン、セルロース及びメラニンから成る目的組成物の生成工程、及び水洗乾燥工程から構成される吸着剤の製造方法であって、  前記酸加水分解は０．１〜３６％の酸溶液を用いて０．３〜４．５時間をかけて０．１〜０．７ＭＰａの圧力下沸騰方式で実施され、及び前記水洗を水及び又は０．１〜１．０％アルカリ溶液を用いて、さらに軟水を用いて実施した後に生成物を乾燥させることを特徴とする前記製造方法に関する。本発明吸着剤はリグニン、セルロース及びメラニンを基材とする有孔多平面マトリックスから成る。本発明は、吸着剤及び、中毒症、フリーラジカル病、環境毒素に起因する下痢症候群、ウイルス及び細菌感染症の予防及び治療、及びマイコトキシン、農薬、質の悪い（高過酸化物価を与える）飼料に起因するあらゆる動物における動物疾患の予防及び治療のための前記吸着剤の使用についても開示している。【特許請求の範囲】
【請求項１】
破砕種子殻の酸加水分解により、水溶性バラスト物質を抽出し、かつ、リグニン、セルロース及びメラニンから成る組成物の生成を行う工程と、
水を用いた濯ぎ及び乾燥を行う工程から構成される吸着剤の製造方法であって、
前記酸加水分解は０．１〜０．７ＭＰａの圧力下沸騰方式で０．３〜２．５時間の間に実施され、前記濯ぎは水及び又は０．１〜１．０％アルカリ溶液を用いて、次いでさらに軟水を用いて実施され、及び全体での有孔度が０．０４〜５０μの範囲内となる有孔多平面マトリックスから成り、かつマトリックス上に生物活性物質（ＢＡＳ）から成る複合物が固定状に含まれる吸着剤が生成されることを特徴とする前記方法。
【請求項２】
銀イオンを含浸させる工程、及びプロバイオテックバクテリアの細菌バイオマスを固定させる工程をさらに含むことを特徴とする請求項１項記載の方法。
【請求項３】
前記含浸が、静止状態にある製品吸着剤に平衡濃度の銀イオンが含まれる水溶性銀塩を処理することによって実施され、及びイオン収着値がフレンドリッヒ式；
ｒ＝Ｋ・Ｃｎ
式中、ｒは収着値（ｍｍｏｌ／ｇ）、
Ｋ、ｎ（１，２）は定数、及び
Ｃは平衡濃度ｇ／ｌを表す、に基づいて設定されることを特徴とする請求項２項記載の方法。
【請求項４】
製品吸着剤が、濃度が少なくとも１０８ＣＦＵ（コロニー形成単位）であるプロバイオテックバクテリア細菌懸濁液を用いて培養され、次いで分離され、さらに等温条件で固体相が乾燥されることにより固定されることを特徴とする請求項２項記載の方法。
【請求項５】
種子殻の酸加水分解によって得られる炭素含有異種重合組成物からなり、
全体として０．０４〜５０μの範囲内の有孔度をもつリグニン、セルロース及びメラニンから構成される多孔多平面マトリックス、及び
バイオフラボノイド類、ペクチン類、ロイコアントシアン類、カテキン類、フェノール・カルボン酸類、タンニン類及びそれらの混合物から選択される生物活性物質を含んで成る吸着剤。
【請求項６】
下記組成；
リグニン        ２５〜７０重量％
セルロース      ２０〜６５重量％
メラニン        １〜１０重量％
及び
バイアフラボノイド類  １４２．６〜６１５．５ｍｇ／％
ペクチン類      ０．４９９〜１．９１２％
ロイコアントシアン類  ０．１〜２．７６％
カテキン類      ０．２〜１４６．６ｍｇ／％
フェノール・カルボン酸類    ２１２．５〜６９７．９ｍｇ／％及び
タンニン類      ０．５８〜０．８３％
から成ることを特徴とする請求項５項記載の吸着剤。
【請求項７】
前記有孔多平面マトリックスが、直径０．１〜１５μmの単一孔を有する帯状螺旋形状のリグニン粒子から成る化学結合下位構造と、直径５〜５０μmの単一孔を有する長手方向伸張形状のセルロース繊維から成る化学結合下位構造と、さらに個々の管が正円筒形状から大きさが５〜４００μmの塊状にいたるまでの種々形状のメラニン粒子から成る化学結合下位構造から構成されることを特徴とする請求項５項または６項記載の吸着剤。
【請求項８】
前記吸着剤に、銀イオンあるいはプロバイオテックバクテリアの細菌バイオマスの形態をとる表面改質剤がさらに含まれることを特徴とする請求項５〜７項のいずれかに記載の吸着剤。
【請求項９】
前記銀イオンが、Ｋ＝（２．５−２．１１）・１０４Ｍ−１において間隔ｎ１＝（０．０１３−０．０１９）ｍｍｏｌ／ｇで強結合定数、及びＫ＝（１．８−２．０）・１０３Ｍ−１において間隔ｎ２＝（０．０６４−０．０７４）ｍｍｏｌ／ｇで弱結合定数をもつ活性結合中心としての役割を果たすことを特徴とする請求項８項記載の吸着剤。
【請求項１０】
前記プロバイオテックバクテリアの細菌バイオマスに、Bacillus, Lactobacillus、あるいはBifidobacteriumのいずれかの細菌が吸着剤１ｇに対して少なくとも１０８ＣＦＵ相当量含まれることを特徴とする請求項８項記載の吸着剤。
【請求項１１】
前記吸着剤の医薬としての使用。
【請求項１２】
あらゆる動物におけるマイコトキシン、農薬、質の悪い（高過酸化価を与える）飼料に起因した動物疾患の予防及び治療のための、中毒症、フリーラジカル病、環境毒素に起因する下痢症候群、ウイルス及び細菌感染症の予防及び治療のための請求項１１項記載の吸着剤の使用。
【請求項１３】
質の悪い飼料に起因した環境中毒症及び中毒症の予防及び治療のため、吸着剤を飼料と伴に飼料質量に対して０．１５〜２．０％量で投与することを特徴とする請求項１１項または１２項記載の吸着剤の使用。
【請求項１４】
前記吸着剤が、Salmonella属、Escherichia属、Clostridia属、Pasteurella属、Campillobacteria属、Staohylococci属、Streptococci属細菌による感染症、ニューカッスル病ウイルス、感染性気管支炎、感染性滑液包病（ガンボロ病）、腸内ウイルス病、及び感染性咽頭気管炎の治療に用いられることを特徴とする請求項１１〜１３のいずれかに記載の吸着剤の使用。
【請求項１５】
前記吸着剤を、病気の臨床徴候が消えるまで、５〜１４日間１日当たり１〜２回体重１ｋｇ当たり０．２〜１．５ｇの投与量で投与することを特徴とする請求項１４項記載の吸着剤の使用。
【請求項１６】
飼料用繊維添加物としての吸着剤の使用。
【請求項１７】
品質向上のため、及び又は飼料保存のための、請求項１６項記載の飼料添加物としての吸着剤の使用。
【請求項１８】
抗酸化剤、抗細菌剤、及び抗ウイルス剤として用いる請求項１６項記載の飼料添加物としての吸着剤の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は吸着剤の製造方法、該方法により得られる吸着剤、及び該吸着剤の飼料添加物及び医薬、特に獣医科用の治療及び予防医薬としての使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
吸着剤として数種のものがそれらの製造方法と共に公知である。吸着剤としては、農産物のリグノセルロース原料の廃物、例えばビート根ケーキ、藁、籾殻、種々木材のおがくず、小麦ふすま等から製造される有機物、あるいは無機物が用いられる。これら吸収材料を、生物組織体からのマイコトキシン、重金属、有機化合物等の環境毒素の結合や排除のために適用することは公知である。しかしながら、公知の吸着剤にはいくつかの欠点がある。
【０００３】
無機質吸着剤（クレー；珪酸アルミニウム−例えばハメトックス、ベントナイト、バーミキュライト等）は作用スペクトラムが狭く、動物性飼料濃度を低下させ、それら無機物の発生場所によって異なるが、それらの多様な化学構造及び有害不純物の不可避的存在ゆえに胃腸管活性の部分的低下がひき起こされる。
【０００４】
ＲＵ２２５３５１０Ｃ１には、有機吸着剤、及びオイルケーキ、すなわちカボチャ種子加工廃物からの吸着剤の製造方法が提案されている。この方法によれば、廃物ケーキは水洗され、１５〜２０分間コンディショニングされ、次いで水切りされ、さらに再度新鮮な水を加えられ、混合され、コンディショニングされ、再度水切りされ、そして洗浄水の着色がなくなるまでこのような処理工程が反復される。次いで、残渣が１００〜１５０℃で不変重量となるまで乾燥され、次いで破砕され、分散され、粒径０．２〜２．０ｍｍのものだけが選抜される。得られた吸着剤のバルク重量は０．４〜０．６ｇ／ｃｍ３であり、ケルダール法によれば少なくとも４．５質量％の窒素、及び少なくとも４質量％の繊維が含まれる。この方法の欠点は、吸着剤の作用対象が農薬、マイコトキシン及び類似の潜在的危険物質及び有害物質に限られているにも拘わらず、技術的にかなり複雑なことである。
【０００５】
さらにＲＵ２０６２６４７Ｃ１には、多糖類を原料とした吸着剤及びその製造方法が記載されている。この方法によれば、多糖類原料−植物廃物または微生物バイオマス（小麦ふすま、Aspergillus foetidus M-45のバイオマス、Trichoderma viride 13/10等）−が粒径３ｍｍ以下まで破砕され、次いで水対固形分比率１０：２０でｐＨ３．５〜１１．０の懸濁液（濃度５〜１０％）が生成され、気圧１〜１．５の過剰圧力下（大気圧以上）で０．５〜４．０時間スチーム処理される。生成された固形塊は洗浄され、乾燥される。得られた吸着剤は飲用水の工業的精製、放射性核種及び重金属の除去、及び医療目的に利用される。この方法の不利な点は、吸着剤の収率が低いこと、水の消費が多いこと、最初の原料のスチーム処理により工程でのエネルギー要求が高いことである。この方法によって得られる吸着剤の吸収性能は低く、適用範囲も狭い。
【０００６】
ひまわり種子殻から生成される食品吸着剤及びその製造方法もＲＵ２２５５８０３Ｃ１から公知である。この製造方法には、温度４５〜５５℃で３０〜１００分間の溶媒抽出によってひまわり種子殻からバラスト物質を除去する工程が含まれている。この抽出に用いるガソリン、石油エーテル及びネフラスはひまわり種子殻との混合比で１：５〜１：２０の範囲内で溶媒として使用でき、後続の工程で溶媒中に殻を安定させることによって、バラスト物質溶液からひまわり種子の殻が分離される。分離された種子殻固形相は水で希釈され、得られた混合液は１０〜６０分間コンディショニングされ、次いで−４〜−２０℃で３０〜２４０分間凍結及びコンディショニングされ、さらに２５〜１００℃で解凍される。次いで生成物を１００〜２００℃で乾燥することにより暗色状態のベジタブルオイルを精製するための吸着剤が得られる。しかし、この吸着剤は製造工程が複雑であること、及び適用範囲が限定されることが欠点となっている。
【０００７】
植物由来活性炭等の他の有機吸着剤（例：Bio-Mos, Mycosorb, Mycofix Plus)は概して高価であり、また活性スペクトルも限定されている。
【０００８】
急性中毒の治療に用いられる炭素血液吸着剤ＫＡＵが、「炭素血液吸着剤ＫＡＵ」、開発者：ウクライナ科学アカデミー吸収生態学吸収問題研究所、252142 Kiev, Palladin pr., 32/34.振興資料, 1992から公知である。この吸着剤は破砕種子あるいは堅果殻から得られる活性炭を基材として製造され、中・高分子量の有毒物質の吸収を保証する多量の大形孔によって生ずる流体力学特性及び運動特性を特徴としている。血液吸着剤ＫＡＵは、工業的及び家内工業的毒物、医薬品、フングス毒素、農薬、及び他毒素による急性中毒において組織内血液の体外解毒剤として処方される。
【０００９】
しかしながら、この吸着剤には低吸収性及び低選択性の欠点がある。
【００１０】
特許ＲＵ２０６０８１８Ｃ１に記載された吸着剤は、水道水からのＣａ２＋イオンの除去に効果的である。この方法において、水中の開始時カルシウムイオン含量が(21±4)・10-4m-3であった場合、吸着剤を含んだカラム通過後におけるカルシウムイオン濃度は、ArsenazoＩＩＩで測定した場合、(0.8±0.1)・10-4m-3である。ここで吸着剤は、炭素、水素、窒素、硫黄及び酸素を特定の比率で含む天然の水溶性ポリマーから成るものである。この吸着剤によれば一連の重金属、放射性核種も吸収可能であり、また本吸着剤はpH2〜8.5の範囲内で有効に作用する。本吸着剤によって結合された粗製油は界面活性剤を必要とせずに長時間水面上に保持される。この吸着剤は食品産業、環境浄化、特に溶液からの放射性核種の除去、石油製品の汚染除去のためのエコロジー、さらに動物器官からの重金属の排出において利用可能である。本方法により得られた吸着剤の欠点は、その吸収活性に限界があること、また１種のみの生物活性成分、すなわちその実用的用途を実質的に限定するメラニンしか含んでいないことである。
【００１１】
ＲＵ２０６０８１８Ｃ１において吸着剤の製造方法は、ひまわり種子殻（外皮）を破砕して粉状化する工程と、９〜１２規定の塩酸溶液を用いて酸加水分解を２０℃で３５〜４５日間行う工程と、加水分解性生物を水洗及び乾燥する工程から構成される。
【００１２】
加水分解には濃度３５〜５０％の硫酸が使用可能である。硫酸による酸加水分解は温度１００℃では３〜６時間で実施可能である。前記破砕は粉体が得られるまで継続され、次いで３０〜５０％酸を用いて重量比１：８〜１０で処理される。得られた加水分解生成物はまず標準条件で蒸留水を用いて濯がれ、次いで８０℃の熱蒸留水で流水中にＳＯ４２−が検出されなくなるまで濯がれる。乾燥前に生成物はさらにエタノールを用いて濯がれ、乾燥され、そして最終的に植物性吸着剤が得られる。
【００１３】
この公知の植物性吸着剤の製造方法の欠点は、長い加水分解工程を経るために、濃縮酸、濯ぎ水、及び電力の大量消費が必要とされ、そのため本方法の生産性が低いことである。また、本方法の不利な点として、高濃度の鉱酸が必要とされること、酸の選択幅が狭いこと、そして各酸種ごとに特定の加水分解方法を取る必要があること（この点から本方法の技術的有効性が減じられている）も挙げられる。本方法は生産性が低く、２０℃では３５〜４５日間を要し、１００℃でも３〜６時間を要する。また、熱蒸留水も含めて大量の蒸留水を必要とするため電力消費も増大する。濯ぎにアルコールを用いれば本方法に要するコストがかなり上昇し、また潜在する有用な生物活性物質の流出を起こすことにもなりかねない。最終生産物量が低下すれば、植物性原料の最適利用ができなくなる。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１４】
本発明は上記欠点のない吸着剤の製造方法を提供すること、及び用途範囲の広い吸着剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１５】
すなわち、本発明は、種子殻を破砕する工程、酸加水分解を行って水溶性バラスト物質を抽出し、リグニン、セルロース及びメラニンから成る目的組成物を生成する工程、及び水洗及び乾燥工程から成る吸着剤製造方法であって、前記酸加水分解は、０．１〜３６％酸溶液、好ましくは １〜３６％、より好ましくは１〜１０％、最も好ましくは１〜５％酸溶液を用いて、０．１〜０．７ＭＰａ（１〜７気圧）、好ましくは混合液飽和蒸気圧〜３．０気圧の下の沸騰状態で０．３〜４．５時間、好ましくは１．５〜４．５時間行われ、前記水洗は水あるいは０．１〜１．０％アルカリ溶液、次いで軟化水（脱塩水）を用いて行われ、及び前記生成物は次いで乾燥されて、吸着剤には全体としての有孔度が０．０４〜５０μであるリグニン、セルロース及びメラニンを基材とする有孔多平面マトリックスが含まれることを特徴とする、前記吸着剤製造方法を提案するものである。
【００１６】
特許請求の範囲に記載された方法では、操作モードの最適化により、また開始原料、すなわち種子殻、特にひまわり種子殻、そば種子殻、豆莢、他の有色種子殻、プラム、サクランボ、ブルーベリー、暗色系ブドウ、ブラックカラント等の果皮などの種々ベリーの暗色系果皮を処理する処理剤の選択によってプロセスサイクルが軽減されている。
【００１７】
原料に対して基本的に必要とすることは色素メラニンが存在することである。このように得られる吸着剤は、広範囲に亘る危険性のあり得る化学物質や微生物よりも均質な吸収特性をもつものである。例えば、農薬、マイコトキシン、ポリ塩素化ビフェニル、ウイルス、病原性細菌、及び複合炭化水素等の有害化学物質を吸収することが可能である。
【００１８】
前記吸着剤には多形態をした孔（微小孔、中間孔、大形孔）が分散され、表面上に化学的に活性な中心部分と、種々大きさ、幾何学的形状、化学的性質をもつ分子を吸収する生物活性成分を有する有孔多平面構造をしている。
【００１９】
酸加水分解には硫酸、塩酸、あるいはオルトリン酸が使用可能である。
【００２０】
生成物の洗浄は水または水酸化アンモニウム溶液、水酸化ナトリウム溶液、あるいは水酸化カリ溶液を用いて洗浄液のｐＨが３．５〜４．５になるまで実施可能である。
【００２１】
加水分解生成物をアルカリ溶液で洗浄する前に、さらに水洗浄を沸騰方式で１０〜１５分間追加実施することも可能である。
【００２２】
軟水を用いて中性化された加水分解性生物の濯ぎは、濯ぎ水のｐＨ値が４．５〜６．４に達するまで継続される。もしくは、飲用水、蒸留（凝縮）水、あるいは脱イオン水を生成物の濯ぎに用いることも可能である。
【００２３】
本製造方法によって吸着剤の長期保存を可能とする無菌生成物が得られることに注意しなければならない。好ましい実施態様においては、本発明方法にはさらに、吸着剤に銀イオンを含浸させる工程、及び又はプロバイオテックバクテリアの細菌バイオマスを固定させる工程が含まれる。
【００２４】
本発明吸着剤は、その濯ぎ後あるいは乾燥後に有利な条件で直接含浸させ、あるいは固定させることが可能である。
【００２５】
銀イオンを用いた含浸は好ましくは静状態にある製品を水溶性銀塩、例えば硝酸銀を用いて銀イオンの平衡濃度で処理することによって実施され、イオン収着値はフレンドリッヒ式；
ｒ＝Ｋ・Ｃｎ
式中、ｒは収着値（ｍｍｏｌ／ｇ）、Ｋ，ｎ（１，２）は定数、及びＣは平衡濃度（ｇ／ｌ）を示す、に従って限定される。
【００２６】
あるいは、吸着剤をプロバイオテックバクテリアの培養液、例えばバチルス属(Bacillus), ラクトバチルス属(Lactobacillus), ビフィドバクテリウム属(Bifidobacterium)、あるいはそれら細菌の混合物の少なくとも濃度１０８ＣＦＵ（コロニー形成単位）と共に培養して固定させることも可能である。前記固定操作は好ましい実施態様によって固体／液体相率１：１０で少なくとも１時間実施され、次いで固体相の抽出及び乾燥が実施される。この乾燥は好ましくは温度＋３７℃で２４時間実施される。
【００２７】
本発明の別の観点によれば、有孔多平面マトリックスに構造化されたリグニン、セルロース、メラニンを含む種子殻の加水分解によって得られる含炭素ヘテロ重合体から成る吸着剤も提案される。
【００２８】
好ましい実施態様によれば、この吸着剤には下記物質が下記含量範囲内で含まれる。
リグニン         ２５〜７０重量％
セルロース       ２０〜６５重量％
メラニン         １〜１０重量％
さらに別の好ましい実施態様によれば、この吸着剤には下記物質が下記含量範囲内で含まれる。
リグニン         ３９．９〜５８．８重量％
セルロース       ４０．６〜５０．９重量％
メラニン         １．０〜８．０重量％
【００２９】
前記吸着剤にはさらに、バイオフラボノイド類、多糖類（グルコース、フルクトース、サッカライド）、ペクチン類、ロイコアントシアン類、カテキン類、フェノールカルボン酸類、タンニン類、及びこれらの混合物から選択される生物活性炭素含有物質を含ませることが可能である。
【００３０】
これらの物質は下記含量範囲内で前記吸着剤中に存在可能である。
バイオフラボノイド類: 142.6〜615.5 mg/%
多糖類（グルコース、フルクトース、サッカライド）：0.195〜0.444％
ペクチン類: 0.499〜1.912%
ロイコアントシアン類: 0.1〜2.76%
カテキン類: 0.2〜146.6 mg/%
フェノールカルボン酸類: 212.5〜697.9 mg/%、及び
タンニン類: 0.58〜0.83%
但し、上記において１ mg/% = 10 ppmである。
【００３１】
前記有孔多平面マトリックスは、好ましくは孔径が０．１〜１５μmの帯状螺旋形リグニン粒子、幅方向に延びた形状をした孔径５〜５０μmのセルロース繊維、及び長さ５μm以下の管形状の粒子から成る大きさが４００μm以下のメラニン凝集体が物理的かつ化学的に結合した下位構造から成るものである。
【００３２】
前記吸着剤にはさらに銀イオンの形態を取る表面改質剤が含まれていてもよく、またプロバイオテックバクテリアの細菌塊から成るものであってもよい。
【００３３】
銀イオンは、Ｋ＝（２．５−２．１１）１０４Ｍ−１において間隔ｎ１＝（０．０１３−０．０１９）ｍｍｏｌ／ｇで強結合定数、及びＫ＝（１．８−２．０）１０３Ｍ−１において間隔ｎ２＝（０．０６４−０．０７４）ｍｍｏｌ／ｇで弱結合定数をもつ活性結合中心の形態で吸着剤上に存在可能である。
【００３４】
プロバイオテックバクテリアの細菌塊には、Bacillus subtilius、Lactobacillus、またはBifidobacterium等の細菌が吸着剤当たり（０．１８１〜２．２６）１０９ＣＦＵ／ｇの量で含まれる。
【００３５】
本発明の別の観点によれば、本発明は吸着剤の医薬品、特に獣医科用医薬品としての使用に関し、中毒症、フリーラジカル病、環境有毒物に基因する下痢症候群、ウイルス及び細菌性感染症の予防及び治療、及びあらゆる種類の動物におけるマイコトキシ、農薬、質の悪い飼料（過酸化物の数が多い）によって引き起こされる動物疾患の予防及び治療のための吸着剤の使用を目的とする。
【００３６】
環境有毒物及び悪質な飼料による中毒の予防のために、吸着剤は、飼料の汚染状態によって異なるが、飼料塊に対し０．１５〜２．０％の割合で飼料塊へ混ぜて投与される。
【００３７】
Salmonella属、Escherichia属、Clostridia属、Pasteurella属、Campillobacteria属、Staphylococci属、Streptococci属の細菌、及びニューカッスル病ウイルスによって引き起こされる感染症、感染性気管支炎、感染性滑液包病（ガムボロ病）、腸内ウイルス、及び感染性咽頭気管炎の予防及び複合治療のためには、吸着剤は飼料と共に体重ｋｇ当たり０．２〜１．５ｇの割合で１日に１〜２回、病気の症状が無くなるまで、５〜１４日の期間消化管中へ投与される。
【００３８】
吸着剤の抗微生物活性は、銀濃度が(9.7x10-4〜0.97)g/lである銀硝酸塩溶液から銀を吸収して導入することにより、あるいは吸着剤１ｇ当たり１０８ＣＦＵ（コロニー形成単位）以上のプロバイオテックバクテリアを導入することにより、さらに増大させることが可能である。Bacillus、Lactobacillus、あるいはBifidobacterium属細菌はプロバイオテックバクテリアとして使用可能である。
【００３９】
前記吸着剤は、原料を処理することにより植物性繊維濃度が９８％まで増加するため、飼料添加物として飼料の繊維含量を増加させるためにも利用可能である。
【図面の簡単な説明】
【００４０】
【図１】リグニンの微細構造を示した写真である。
【図２】セルロースの微細構造を示した写真である。
【図３】メラニンの微細構造を示した写真である。
【図４】腸吸着剤の表面形態を示した写真（９０００倍）である。
【図５】リグニン（１）、セルロース（２）、メラニン（３）によるベンゾールの吸収等温線である。
【図６】リグニン（１）、セルロース（２）、メラニン（３）によるメタノールの吸収等温線である。
【図７】リグニン（１）、セルロース（２）、メラニン（３）による水の吸収等温線である。
【図８】銀濃度に対する吸収等温線及び銀抽出比を示した図である。図中、Ｃは銀平衡濃度（μmol/l)、ｒは銀吸収（μmol/g・吸着剤）、及びｗは銀抽出比（％）を表す。
【図９】腸吸着剤の表面形態を示した写真（５０００倍）である。
【図１０】腸吸着剤の表面形態を示した写真（１０００倍）である。
【図１１】プロバイオテックバクテリアの菌塊によって改質された腸吸着剤の表面形態を示した写真（１０００倍）である。
【図１２】アスコルビン酸塩の存在においてＦｅ２＋イオンによって誘導される内部光レセプタ部分の過酸化比に対する吸着剤の阻害活性を比較したチャートである。
【図１３】鶏肝臓中のリンデンの残留量の動態を示したグラフである。
【図１４】鶏筋肉中のリンデンの残留量の動態を示したグラフである。
【図１５】吸収された農薬のクロマトグラムである。
【図１６】吸収された農薬のクロマトグラムである。
【図１７】吸着剤によるルミノール化学ルミネセンスの消滅を示すしたグラフである。
【図１８】空腸の粘膜中のα-アミラーゼ活性を示したグラフである。
【図１９】鶏血清中のマロンジアルデヒド含量を示したグラフである。
【図２０】鶏血清中のヒドロペルオキシド含量を示したグラフである。
【図２１】実験３０日後における脂肪の酸価を示したグラフである。
【図２２】３０日後の脳中のＭＤＡ含量を示したグラフである。
【００４１】
次に添付図面１〜２２を参照しながら本発明について説明する。
【００４２】
本発明に係る製造方法の実施例として、以下において、吸着剤のみならず、その使用方法についても説明する。
【００４３】
提案された製造方法によれば、破砕段階において、細胞殻が確実に破壊され、化学物質にとってアクセスし易い微粒子が生成される。破砕された原料の加水分解は、過剰圧（０．１〜０．７ＭＰａ（１〜７気圧）の範囲内）下で沸騰方式で濃度（０．１〜３６）％の酸（硫酸、あるいは塩酸、あるいはオルトリン酸）を用いて実施される。前記加水分解処理時間は本質的に０．３〜４．５時間まで短縮されており、また酸の消費も低減されている。同時に、リグノセルロースの効率的な分解、セルロースの部分的重合、及び酸素存在下で強酸、カルボキシル基、フェノール基、カルボニル基、水酸基、及び他の表面基の生成も観察される。濯ぎ液のｐＨが３．５〜４．５になるまで水酸化アンモニウム、あるいは水酸化ナトリウム、あるいは水酸化カリの０．１〜１．０％溶液を用いて加水分解生成物を濯ぐ作業を行うことにより、残存酸を効率的に中性化することができ、好ましくは下記組成、ビオフラボノイド（１４２．６〜６１５．５）ｍｇ％、多糖類（グルコース、フルクトース、サッカロース）（０．１９５〜０．４４４）％、ペクチン類（０．４９９〜１．９１２）％、ロイコアントシアン類（０．１〜２．７６）％、カテキン類（０．２〜１４６．６）ｍｇ％、フェノール・カルボン酸（２１２．５〜６９７．９）ｍｇ％、及びタンニン類（０．５８〜０．８３）％から成る最適なバランスのある生物活性炭素含有物質を生成することが可能となる。このようなアルカリによる濯ぎによれば、後続における加水分解生成物の水での濯ぎの水消費量を大幅に減らすことができ、この方法での全体としての出力消費が低減される。
【００４４】
前記濯ぎの効率を高めるため、アルカリ液を用いた処理前に、加水分解生成物を沸騰方式でさらに水で１０〜１５分間濯ぐことにより残存酸の中性化に要するアルカリ消費量を減らすことができる。
【００４５】
リグニン、セルロース及びメラニンを基材とする総有孔度が０．０４〜５０μmである有孔多平面マトリックスを図１〜３、４、９及び１０に示す。吸着剤のマトリックスは、多形態をした孔が広く分散した下位構造から成る不規則構造をしたヘテロ重合体を呈する。前記下位構造は互いに物理的かつ化学的に結合し、孔の寸法が０．０４〜１５μmである帯状螺旋形状のリグニン粒子（図１）、孔の寸法が５〜５０μmである長手方向伸長セルロース繊維、及び長さ５μm以下の分離形管形状をした粒子から成る寸法４００μm以下のメラニン凝集体（図３）から構成される。中形及び大形の移動孔の存在、及びヘテロ重合体マトリックス内面の化学的性質の上記特性によって、高い医学生物学的活性を与える吸着剤の吸収特性（図４、６及び１２）及び高い抗有毒物活性及び抗ラジカル活性の双方が確保されていると考えられる。
【００４６】
吸着剤のヘテロ重合体マトリックス内面の化学的性質の特徴として、プロトン生成（カルボキシル及びヒドロキシ）イオン交換基の存在があり、この存在によって吸着剤は弱酸性カチオン交換体として作用する。
【００４７】
ヘテロ重合体化学成分、すなわち効率的な吸収及び構造特性をもち、かつ有孔多平面マトリックスに構造化されたリグニン、セルロース及びメラニンと、酸性の性質をもつ基（ヒドロキシ、カルボニル、カルボキシル、その他）の双方が吸着剤表面上に存在することにより、種々の金属微量元素、例えば銀、あるいはプロバイオテックバクテリアの拮抗活性のある菌塊を用いて吸着剤を容易に改質することが可能である。
【００４８】
従って、上述したように、銀イオンを含浸させることにより吸着剤を改質させることが可能である。
【００４９】
プロバイオテックバクテリアの拮抗活性バイオマスを固定させることによる改質は、多平面マトリックス構造中におけるバイオマスの供給場所によって異なるが、それらバイオマスの吸着剤孔への侵入能、孔内部での再生能、及び種々形状及び寸法のプロバイオテック塊の形成能を考慮すれば好ましい方法である。前記固定化は、Bacillus、あるいはLactobacillus、あるいはBifidobacterium等のプロバイオテックバクテリアの菌液と共に吸着剤を培養することによって達成される。空気乾燥条件まで乾燥を行った後に得られる吸着剤は、複合抗細菌性製品、すなわち一定範囲の病原性微生物に対して高い拮抗活性をもつヘテロ重合組成物である。本方法によって得られる吸着剤の利点は消化管（ＧＩＴ）中における長期有効性であり、本吸着剤は乾燥後その有効性を長期間保ち、またＧＩＴ全体に亘って長く活性を確保するものである。
【発明を実施するための手段】
【００５０】
下記表に本発明の実施態様の一例と、得られた吸着剤についての検討結果を示す。
【実施例】
【００５１】
実施例１（表１第２欄）
最初の原料であるひまわり種子殻を０．５〜３．５ｍｍサイズまで破砕し、塩酸３６％溶液を用いて固体／液体比１：７で３気圧の沸騰方式下で２．０時間処理する。次いで、加水分解生成物を沸騰水で１０分間濯ぎ、固体相を水酸化アンモニウム１％溶液を用いて、そのｐＨ値が４．５に達するまで抽出及び濯ぎを行い、次いで固体相を再度抽出して、濯ぎ流水中のｐＨが６．２〜６．４になるまで軟水を用いて濯ぎを継続する。
【００５２】
実施例２（表１第３欄）
実施例１と同様にして破砕された最初の原料を硫酸２８％溶液を用いて固体／液体比１：７で３気圧下の沸騰方式で１．５時間処理し、続いて加圧下で沸騰水を用いて１５分間濯ぎ、次いで固体相を水酸化カリ０．５％溶液を用いてｐＨ値が４．０となるまで抽出及び濯ぎを行い、濯ぎ流水中のｐＨが５．８〜６．３になるまで軟水を用いて濯ぎを継続する。得られた生成物は湿度が１２．５％となるまで乾燥され、最後に吸着剤は対照試験に供される。表１に得られた吸着剤に関する試験結果を示す（第３欄）。
【００５３】
実施例３（表１第４欄）
破砕された最初の原料は硫酸２０％溶液により固体／液体比１：６で２気圧の沸騰方式下で１．５時間加水分解処理され、固体相は水酸化カリ０．１％溶液を用いてｐＨ値が４．５になるまで抽出及び濯ぎ処理され、次いでｐＨが５．２になるまで軟水で濯ぎ処理され、湿度が７．８％となるまで乾燥され、得られた吸着剤は試験に供される。多平面マトリックス表面の典型的微細構造の電子顕微鏡写真（1000倍）を図１０に示す。
【００５４】
実施例４（表１第５欄）
最初の原料は塩酸１６％溶液により固体／液体比１：７で１気圧下の沸騰方式で１．５時間加水分解処理され、固体相は分離され、水酸化アンモニウム１％溶液でｐＨ値が３．５になるまで濯ぎ処理され、次いでｐＨ値が４．９になるまで軟水で濯ぎ処理される。得られた物質は湿度が１０．４％となるまで乾燥され、得られた吸着剤は試験に供される。
【００５５】
実施例５（表１第６欄）
最初の原料をオルトリン酸５％溶液を用いて固体／液体比１：３で１．５気圧下沸騰方式で４．５時間加水分解処理し、固体相を分離してｐＨ値が４．５になるまで水酸化カリ０．１％溶液を用いて濯ぎ処理を行い、次いで軟水を用いてｐＨ値が５．０になるまで濯ぎ処理を行い、湿度が８．５％になるまで乾燥処理する。得られた吸着剤は表１に示したパラメータを有する。
【００５６】
実施例６（表１第７欄）
最初の原料を硫酸０．３％溶液を用いて固体／液体比１：８で２．５気圧下沸騰方式で４．５時間加水分解処理し、固体相を分離してｐＨ値が４．２になるまで水酸化ナトリウム０．５％溶液を用いて濯ぎ処理を行い、次いで軟水を用いてｐＨ値が５．８になるまで濯ぎ処理を行い、湿度が０．８％になるまで乾燥処理して対照試験を実施する。得られた吸着剤は表１に示したパラメータを有する。
【００５７】
実施例７（表１第８欄）
最初の原料を硫酸１０％溶液を用いて固体／液体比１：８で２気圧下沸騰方式で０．５時間加水分解処理し、固体相を分離してｐＨ値が４．２になるまで水酸化アンモニウム０．１％溶液を用いて濯ぎ処理を行い、次いで軟水を用いてｐＨ値が５．９になるまで濯ぎ処理を行い、湿度が１９．８％になるまで乾燥処理して対照試験を実施する。得られた吸着剤は表１に示したパラメータを有する。
【００５８】
【表１】
2009542434.tif 000002
【００５９】
実施例８：銀改質型腸内吸着剤の調製
実施例１〜７のいずれかによって得られた吸着剤へ下記方法により銀イオンを含浸させることが可能である。実施例３によって１００ｇ／ｌ濃度、ｐＨ６．３の懸濁液状態で得られた吸着剤を銀イオン濃度Ｃが０．０５７ｇ／ｌのＡｇＮＯ３溶液中へ入れる。次いでこの混合液を混和して、平衡濃度に達するまで３０〜４０分間静止状態に保持する。イオン吸収値はフレンドリッヒ式；
ｒ＝Ｋ・Ｃｎ
（式中、ｒは吸収値ｍｍｏｌ／ｇを表し、Ｋ及びｎ（１，２）は定数、Ｃは銀イオン濃度Ｍ−１を表す）に従って設定される。次いで、液体相を濾過により分離して、固体残渣を蒸留水あるいは軟水で濯いでから１００℃で乾燥する。これにより得られた吸着剤には下記特性が備えられる。
水分含量、質量％          １９．１
比容積ｇ／ｌ       ２４０
抽出物酸度ｐＨ     ２．３５
灰残分％           ０．６
メチレンブルー吸収能（ｐＨ７．０）ｍｇ／ｇ ５６．０
強結合定数ｎ１（Ｋ＝２．５・１０−４Ｍ−１）ｍｍｏｌ／ｇをもつ活性結合中心のある銀イオン数           ０．０１３〜０．０１９
強結合定数ｎ２（Ｋ＝１．８・１０−３Ｍ−１）ｍｍｏｌ／ｇをもつ活性結合中心のある銀イオン数           ０．０６４〜０．０７４
【００６０】
実施例９：プロバイオテックバクテリアのバイオマスを用いた吸着剤の改質
実施例４の吸着剤を乾燥キャビネット中において＋８０℃で２時間加熱する。プロバイオテックバクテリアの懸濁液を調製し、この目的のため、細菌、Bacillus subtilius、Lactobacillus、あるいはBifidobacteriumの各系統の1日生長分を生理食塩水中に取り出し、光学的濁り標準に従って１０億（１０８）コロニー形成単位（ＣＦＵ）／ｍｌに調製した。次いで、吸着剤を得られた細菌懸濁液と共に固体／液体比１：１０で混合して１時間培養した。選定したパラメータに基づき、吸着剤１ｇには、細菌懸濁液から細菌が１００％吸収されたと仮定すれば１回の治療及び予防投与量に当たる約１０９ＣＦＵのプロバイオテックバクテリアが含まれる。次いで固体相を液体相から分離し、＋３７℃で乾燥する。最終的に得られた吸着剤を吸収試験に供し、吸収された細菌の活性を標準法に従って調整する。
実施例３、８及び４、９によって得られる腸内吸着剤の吸収及び構造特性を表２、３にそれぞれ示す。
【００６１】
【表２】
2009542434.tif 000003
表中、ａｍ、ｍｍｏｌ／ｇは単層容積、
Ｑ１−λ、ＫＪ／ｍｏｌは純吸収熱、
Ａ、ｍ２／ｇは比表面積、
Ｖ、ｃｍ３／ｇは全孔容積、及び
Ｖｍｉ、ｃｍ３／ｇは微細孔容積を表す。
【００６２】
【表３】
2009542434.tif 000004
表中、ＣはＢＥＴ式の定数である。
【００６３】
開発された吸着剤及びその製造方法はパイロット製造条件において試験されている。本発明に係る新規な吸着剤は、農薬、マイコトキシン、質の悪い飼料による家禽の急性及び慢性中毒に対し、また細菌やウイルスによる感染症に対しても、家畜飼料への有効な治療的及び予防的飼料添加物となることが確認されている。生体外試験及び生体内試験により、最適な生物活性投与量及び吸着剤の医薬製剤としての投与方法が決定されている。
以下に本発明における実施例を示す。
【００６４】
実施例１０：生体外条件でのマイコトキシンの吸収効率
表４に本発明吸着剤による種々マイコトキシンの結合効率を獣医によって実用されている公知製剤である「マイコソーブ(Mycosorb)」と比較して示す（マイコトキシン吸収％）。
表４から理解されるように、本発明吸着剤の吸収活性は、広範に使用されているマイコトキシン吸着剤である「マイコソーブ」よりも高い。
【００６５】
【表４】
2009542434.tif 000005
【００６６】
実施例１１：生体外条件における吸着剤の抗細菌活性
【００６７】
【表５】
2009542434.tif 000006
【００６８】
表５から理解されるように、銀イオンを伴う吸着剤によって、Staph. aureus系統"Covan I"、E. coli系統"A-M"、及びPast. multocida系統"K MIEV-26"それぞれの細菌培養コロニーの成長は最初の３０分間の暴露によって有効に抑制される。この効果は、銀を含む吸着剤の生物活性体の腸内細菌の細菌酵素、タンパク質及び膜構造に対する生化学的作用及び触媒作用の複合作用によって生ずると考えられる。
【００６９】
吸着剤の作用に対する感受性を見た場合、検討された微生物において、Pasteurella multocida、Escherichia coli、Staphylococcus aureusの順となる。同時に、グラム陽性ミクロフローラはグラム陰性ミクロフローラよりも吸着剤の作用に対してより感受性であると判別される。
【００７０】
本発明吸着剤の微生物細胞に対する吸収能を、獣医科において実用されている類似製品と比較して下記表に示す。
【００７１】
【表６】
2009542434.tif 000007
【００７２】
表６から理解されるように、本発明吸着剤の微生物細胞に対する吸収能は、「マイクロソーブ」よりも３．３〜３．４倍高く、また「リグナソーブ」よりも２．１〜２．２倍高い（両者とも市販製品である）。
【００７３】
実施例１２：生体外条件における本発明吸着剤の抗ウイルス活性
本発明吸着剤の、鶏に広範に認められるウイルス病であるニューカッスル病（ＮＤ）、感染性滑液包病（ＩＢＤ）、ガンボロ病、及び感染性気管支炎（ＩＢ）に対して実験によって確認された活性を表７、８、９に示す。
本発明吸着剤の保護作用は、移植可能な種々系統の細胞培養、ＦＬ（ヒト羊膜）、ＳＰＥＶ（ブタ胎児腎臓）、ＭＤＶＫ（ウシ腎臓）、ＦＲＨＫ−４ｘ（ミドリキヌザル胎児腎臓）、及び初期トリプシン２２細胞株、ＦＥＫ（鶏胎児繊維芽細胞）において見出されている。
ニューカッスル病（ラ・ソタ系統）、感染性気管支炎（系統Ｈ−１２０）、及び感染性滑液包病（系統ＫＭＩＥＶ−１３）のそれぞれに対する生理食塩水中に溶解された生乾燥ワクチンを感染材料として用いた。ウイルスの感染投与量は上記細胞培養の培養液の滴定を行って決定する。
表７に本発明吸着剤濃度の細胞培養ＦＬ及びＳＰＥＶ中におけるＩＢＤ及びＩＢウイルスの力価に対する効果についての結果を示す。
【００７４】
【表７】
2009542434.tif 000008
【００７５】
表７から理解されるように、本発明吸着剤によって細胞培養ＦＬ及びＳＰＥＶはＩＢＤウイルス及びＩＢウイルスの増殖から有効に保護される。本発明吸着剤の作用により、前記ウイルスの力価は、対照との比較における実験において０．５〜３．７５ｌｇＴＣＤ５０／ｍｌ（１ｍｌ中の組織細胞病原性の対数）まで減じられる。
本発明吸着剤によるＩＢＤウイルス及びＩＢウイルスの感染活性の抑制はＳＰＥＶ細胞単層に対する吸着剤の処理時間によって異なり、この抑制効果は表８に示した通りである。
【００７６】
【表８】
2009542434.tif 000009
【００７７】
表８から理解されるように、本発明吸着剤でウイルス懸濁液を処理することによりＩＢウイルスの感染活性の抑制が行われるが、この抑制は処理期間に左右される。暴露３０分あるいは６０分後に細胞単層上においてウイルス懸濁液と吸着剤を混合することによりＩＢウイルスの感染活性は完全に抑制されるが、このことは対照区との比較試験において、ＣＰＥ（細胞病原性）の欠如によることが示されている。対照区では細胞単層の１００％衰退が観察された。
表９に、鶏のニューカッスル病ウイルスの力価に対する本発明吸着剤の影響に関するデータを示す。
【００７８】
【表９】
2009542434.tif 000010
【００７９】
吸着剤を加えない場合のＮＤウイルス力価は８．０ｌｏｇ２である。吸着剤を１．２５ｍｇ／ｍｌ及び２．５ｍｇ／ｍｌ濃度で添加したウイルス含有液とした後においても、ウイルスにＨＡＲ（血球凝集反応）は認められない。濃度０．３２５ｍｇ／ｍｌ及び０．６５ｍｇ／ｍｌではウイルスの存在は目立たなかったが、対照区と比較して力価は劣った。
従って、本発明吸着剤は、生体外において、感染性滑液包病（ガンボロ病）ウイルス及び感染性気管支炎ウイルスの感染を受ける細胞培養ＦＬ及びＳＰＥＶに対し高い保護作用をもつことが分かる。この保護作用は、対照区との比較において、感染性滑液包病に関してはウイルス力価が３．０〜３．２５ｌｇＴＣＤ５０／ｍｌまで低下し、また感染性気管支炎に関してはウイルス力価が３．２５〜３．７５ｌｊＴＣＤ５０／ｍｌまで低下することによって示される。
【００８０】
実施例１３：生体外条件における本発明吸着剤の抗酸化活性
本発明吸着剤（リン酸緩衝液懸濁液）の抗酸化活性（ＡＯＡ）を、ルミノールの発光消滅法によって調べる。反応媒体（全容積３．０ｍｌ）には、５０ｍＭ Ｋ−リン酸緩衝液（ｐＨ７．４）、１００μＭヒトヘモグロビン、９０μＭルミノール、及び種々濃度の本発明吸着剤を含ませた。対照区には本発明吸着剤に代えて０．１Ｍ Ｋ−リン酸緩衝液を用いた。反応媒体中へ１３０μＭ過酸化水素を加えて化学ルミネセンスを開始させた。本発明吸着剤によるルミノール化学ルミネセンス消滅の典型的画像を図１７に示す（リン酸緩衝液への均質吸着剤懸濁液の濃度１７０、２５０、４１０、８１０μｇ／ｍｌそれぞれへの添加後におけるルミノール消滅度を曲線２〜６にそれぞれ示し、及び対照区におけるそれを曲線１に示す）。本発明吸着剤がＡＯＡを示し、その効果は吸着剤濃度に依存して異なることが理解できる。
既知の抗酸化剤であるアスコルビン酸に対して本発明吸着剤のＡＯＡを計算すると下記結果が得られる。すなわち、本発明吸着剤の抗酸化活性は、吸着剤乾燥重量ｇ当たりアルコルビン酸０．０４±０．０１ｍｍｏｌに相当する。
【００８１】
実施例１４：生体外条件における本発明吸着剤の農薬吸収活性
生体外条件における本発明吸着剤の種々農薬に対する結合効率を図１５及び図１６に示す。図１５は２，４−ＤＢＥのクロマトグラムを示したグラフである。（ａ）はｐＨ７以下での本発明吸着剤による吸収前、及び（ｂ）は吸収後を示すグラフであり、抽出容積は２ｍｌ、農薬添加量は吸着剤ｇ当たり１０μｇである。グラフ（ｂ）は縮尺１：１６であり、２，４−ＤＢＥの場合リテンション・タイム１２．８８分でのピークは１６である。図１６は農薬混合物ＣＬＰ−２６０の吸着剤における吸収を示すクロマトグラムであり、（ａ）はｐＨ７以下、抽出容積２ｍｌ、吸着剤ｇ当たり農薬添加量１０μｇにおける吸着剤への吸収前、及び（ｂ）は吸収後を示す。グラフ（ｂ）の縮尺は１：１０であり、リテンション・タイムごとのピークの中で、１〜３分は抽出剤（ヘキサン）中の不純物、５〜７分は農薬分解物、１１．４４分はγ−へキサクロルシクロヘキサン（リンデン）、１２．２８分はヘプタクロル、１３．２９分はアルドリン、１７．８８分はディルドリン、１８．５９分はエンドリン、２０．０５分はＤＤＤ（ＤＤＴ分解物）、及び２０．６７分はＤＤＴによる吸収を示す。
この実験から、本発明吸着剤によって環境上極めて有害な農薬が効率的に吸収されると結論することが可能である。
【００８２】
実施例：マイコトキシン中毒症の予防
試験計画に従ってブロイラー種の鶏に対して試験を実施した。鶏を３つのグループ（各グループは２５羽で構成）に分けて同一微気象条件下で飼育器中に収容した。試験は鶏が日令４５日になるまで３０日間継続実施した。全試験期間中、グループ１の鶏には飼料ｋｇ当たり１００μｇ量のマイコトキシンＴ−２と６２μｇ量のオクラトキシンＡを含む飼料を与えた。グループ２の鶏にも同様な飼料を与え、この場合本発明吸着剤は有害物が含まれる飼料中へ飼料質量の１％相当量を添加した。グループ３の鶏にはマイコトキシンも吸着剤も含まれない純粋な飼料を与えた。すべての飼料について脂肪過酸化価は標準であり、ヨウ素の０．１％を超えなかった。鶏は臨床的なフレがあるため毎日観察を行い、１５日毎に鶏の体重を測り、血液学的及び生化学的パラメータを調べるため血液サンプルを腋血管から採取した。実験終了後、鶏を屠殺し、死後肝臓及び腎臓のサンプルを摘出して毒物学的検査を行った。心臓、肝臓、膵臓、ファブリキウス嚢及び胃も摘出して重量測定及び組織学的研究に供した。検査に供した鶏の肝臓及び腎臓の毒性及び生物的指標を表１０に示す。
【００８３】
【表１０】
2009542434.tif 000011
【００８４】
表１０から、グループ１から得た肝臓及び腎臓サンプルによって毒性が十分示され、生成物に低度の生物活性があることが観察される（生物活性値はそれぞれ６９．９％及び７０．１％）。吸着剤を摂食したグループ２の鶏から得られた臓器サンプルでは、これら指標値はさらに高く（それぞれ９８．９％及び８９．１％）、グループ３の指標値に近く、グループ２の臓器には毒性は認められないか、あるいはあっても僅かである。体重変化の動態をみると、吸着剤を受けたグループ２の鶏では平均日ごと獲得体重が対照グループの鶏よりも１１．２％高いことが示された。
【００８５】
ゼアラレノンによって引き起こされるマイコトキシン中毒症に対する本発明吸着剤の予防効果を類似の方法によって測定した。この研究は初期の吠え期にある若い豚に対して実施した。
【００８６】
臨床的に健康な子豚（年齢：１．５ヶ月）５頭から成るグループを３グループ設けた。試験実施前、マイコトキシン中毒症期間中の腸内消化過程における腸内容量を調べるため、各グループから３頭に手術を行って空腸上へ瘻孔を取り付けた。
【００８７】
グループ１の子豚は、ゼアラレノン・マイコトキシンを飼料重量当たり０．３８〜０．４０ｍｇ濃度で添加し、脂肪過酸化価がヨウ素の０．１〜０．２５％である飼料を与えて３週間に亘って飼育した。飼料の毒性は毎週チェックした。グループ２の子豚にはゼアラレノン・マイコトキシンが添加され、かつ飼料１ｋｇ当たり吸着剤が１．５ｇ添加された飼料を与えた。グループ３の子豚は対照区とし、これらの子豚には良質な飼料を与えた。
【００８８】
試験の全期間に亘って子豚の完全な臨床検査を行い、試験開始時、及び７日目、１４日目、及び２１日目（試験終了日）に血液サンプルを採取して血液学的及び生化学的分析を行った。血液は環状静脈洞から採取した。試験開始時及び２１日目に、子豚の体重を測定して平均各日体重増加量を調べた。
【００８９】
空腸内容物が瘻孔を通して得られたものかを調べるため、空腸消化についてもプローブを用いて同時に調査した。腸内消化の特徴はα−アミラーゼ活性から判定される。α−アミラーゼは腸内内容物の液部分中、粘膜表面上のバイオプテート上、３つの脱着部分中、及び粘膜組織中に見出される。
【００９０】
試験対象とされた子豚は、器官及び組織の形態学的及び組織学的研究、及び食肉及び内臓の獣医衛生検査のため２１日目に屠殺された。
【００９１】
ゼアラレノンを高含量（飼料ｋｇ当たり０．３８〜０．４０ｍｇ）含む質の悪い飼料を摂食したことにより病的経過が引き起こされ、その病的経過は肝臓の急性炎症及び炎症性ジストロフィーの拡がりによって特徴付けられる。さらに、このような経過は急性状態で推移し、進行性腎臓不全症状が発現されてくる。グループ２の子豚について吸着剤を飼料ｋｇ当たり１．５ｇ添加することにより著しい保護効果が生じ、これにより、
この病的経過に特有な症状の強さが減じられ、病状が慢性型へと変化し、腎臓不全の徴候も見られなくなる、
小腸内消化過程の抑制を減じ、ついで回復させる、
飼料と共に器官中へ入った場合には、肝臓及び腎臓の重大な機能不全をひき起し、これらの器官の相対生物活性値に影響を与えるゼアラレノンの生物活性値を改善する。マイコトキシンで汚染された飼料への吸着剤添加後における影響対象器官の生物活性値は、（マイコトキシン量が多い場合、実質的に最大濃度限界より高い場合には、）健康な動物と比較して僅かしか減少しなかった。
【００９２】
従って、α-アミラーゼ活性から推定される空腸における消化過程が減じられ、また図１８に示されているように吸着剤によって消化過程抑制の防止が促進される。肝臓及び腎臓の機能状態にも重大な影響が及ぶが、吸着剤を投与することによって病気の動物に比較して生物活性値の維持が促進される。
【００９３】
実施例１６：鶏下痢症候群の治療
治療効果を調べるため、日令１０日のヒヨコを３グループ設けた（各グループ１０頭、２グループは試験用、１グループは対照区）。試験開始前に、すべてのグループのヒヨコの体重測定を行った。グループ１のヒヨコに吸着剤／プロバイオテック混合物（ＳＰＣ）を１％ｗ／ｗ添加した飼料を５日間摂食させ、グループ２のヒヨコには塩基性プロバイオテック類似物−「バチルス・サブチリス調製品ＢＰＳ−４４（Bacillus subtilis BPS-44の調製品、ウクライナ製）」を１０ｍｌ（０．０２ｇ）添加した飼料を摂食させ、さらにグループ３（対照区）のヒヨコには医薬物質が添加されていない通常飼料を摂食させた。次いで全グループのヒヨコの体重を測定し、細菌Escherichia coli（鳥病原性系統ＳＭ）の濃度２．５億ＣＦＵ（感染量−３億ＣＦＵ）の懸濁液１．２ｍｌを用いて経口感染させた。次の５日間では感染したヒヨコの観察及び同一条件での吸着剤の投与を行った。異なる試験ステージにおけるヒヨコの取得体重の変化を表１１に示す。
【００９４】
【表１１】
2009542434.tif 000012
【００９５】
観察全期間を通して最初の２つのグループのヒヨコは病気にならず、臨床的に健康で活発に飼料及び水を摂食した。対照区のヒヨコにはふさぎ症状、食欲低下、水消費量の低下が認められ、２羽は下痢を起こし、１羽は感染４日後に死亡した。表１１から理解されるように、ＳＰＣにはその基礎物質であるＢＰＳ−４４を上回る効率的成長刺激作用がある。予防及び治療期間中に新複合物ＳＰＣを投与することにより、ヒヨコの体重が前記基礎物質よりも２．８〜３．４％増加する。表１１は微生物バイオマスが吸着剤表面にある状態を示した写真である（１０００倍）。
【００９６】
実施例１７：子豚の下痢症候群に対する吸着剤・プロバイオテック複合体（ＳＰＣ）の治療効果及び予防効果試験
子豚の下痢症候群期間中における吸着剤・プロバイオテック複合体（ＳＰＣ）の治療及び予防効果について調べるため、生後１．５月の子豚で７グループ（各グループ７頭）を構成した。Sal. cholerae Suisの培養液を動物体重ｋｇ当たり２・１０９ＣＦＵの細菌量で与えることにより試験対象となる子豚のすべてに下痢症候群が引き起こされた。この培養液は動物感染用に選抜されたものである。何故なら、サルモネラ菌はヒトの急性食中毒や動物の下痢症候群をひき起こす最も危険な有毒伝染細菌であるからである。
【００９７】
サルモネラ症状の発現及び進行後、グループ１の子豚には抗生物質「コバクタン」の筋肉注射を体重１０ｋｇ当たり０．５ｍｌの薬量で、また抗毒素血清を１頭当たり３０ｍｌの投与量で与えた。グループ２の子豚には抗生物質「コバクタン」の筋肉注射を体重１０ｋｇ当たり０．５ｍｌの薬量で、また吸着剤を体重ｋｇ当たり１ｇの投与量で経口投与した。グループ３の子豚には抗生物質「コバクタン」の筋肉注射を体重１０ｋｇ当たり０．５ｍｌの薬量で、またＳＰＣを体重ｋｇ当たり１ｇの投与量で経口投与した。グループ４の子豚には吸着剤を体重ｋｇ当たり１ｇの投与量で与えた。グループ５の子豚には抗生物質「コバクタン」を体重１０ｋｇ当たり０．５ｍｌの薬量で与えた。グループ６の子豚にはＳＰＣを体重ｋｇ当たり１ｇの投与量で経口投与した。さらに、グループ６の子豚には感染前の５日間吸着剤・プロバイオテック複合物を体重ｋｇ当たり１ｇの投与量で経口投与した。
吸着剤は５日間の期間中毎日一回接触させた。
対照区であるグループ７の子豚には何も処理は行っていない。
【００９８】
全試験期間を通して動物の完全臨床検査を実施し、血液サンプルは試験開始時、４日目、及び１０日目（試験終了）に血液学及び生化学的研究のために採取した。子豚は試験１０日目に器官及び組織の生態学的、組織学的、細菌学的分析を目的として屠殺され、また肉及び内臓の獣医・衛生技術熟練に供した。
【００９９】
分析により以下のことが判明した。
サルモネラ症における子豚の治療中に「コバクタン」及び抗毒素血清の投与（グループ１）、「コバクタン」及び吸着剤の投与（グループ２）、あるいは「コバクタン」及び吸着剤・プロバイオテック複合物（ＳＰＣ）の投与（グループ３）を行うことによって、病気の臨床症状の急速な（５日目）消失、感染、炎症経過の抑制及び中毒状態の抑制、肝臓機能の回復が速められた。
ＳＰＣを予防目的で投与された子豚（グループ６）に関しては、全試験期間を通して感染及び炎症経過の進行を示す確信に足る変化を記録できなかった。
試験に用いた動物の死体の肉及び内臓を用いた獣医・衛生技術熟練作業において以下のことが示された。
屠殺された動物の筋肉組織の化学構造に対する試験に用いた吸着剤投与の影響は皆無であった。
すべてのグループの子豚の物理化学的数値に有意な差異はなく、通常の範囲内であった。しかしながら、グループ６の動物の肉のｐＨ値が他のグループの動物のｐＨ値よりも多少低かった。これは肉の成熟及び貯蔵にとって良好な結果である。
試験グループ及び対照区の動物の肉の生物的数値の表示値には重要な差異はなかった。試験を行ったサンプルのいずれにも毒性は示されなかった。
動物の実質的器官、すなわち肝臓及び腎臓の生物的数値及び食物安全性の明僚化において重要なずれが検出された。グループ４及び５の産出物の生物的数値に幾分の低下が観察された。これらグループからは僅かに目立つ毒性が検出されたが、これは浸滴虫の繁殖速度の１０％減少、形態変化、及び死虫の存在を生ずる程度のものであった。
【０１００】
【表１２】
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【０１０１】
上述した指標の変化はグループ１、２、３及び６のサンプルについては観察されなかった。肉の毒性パラメータ及び生物的パラメータを表１２に、また肝臓の毒性及び生物的パラメータを表１３に示す。
【０１０２】
【表１３】
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【０１０３】
実施例１８：鶏のニューカッスル病（ＮＢ）ウイルス、感染性咽頭気管炎ウイルス（ＩＬＴ）、及び感染性気管支炎ウイルス（ＩＢ）感染中における吸着剤の生体内治療及び予防作用
ニューカッスル病ウイルスに対する吸着剤の効果を調べるため、日令１２日のＦＰＦ種ヒヨコを２グループ（各グループを１０羽で構成）設けた。グループ１（試験グループ）のヒヨコには吸着剤を飼料へ１％量加えてニューカッスル病ウイルス感染前の５日間及び感染後の１０日間摂食させた。グループ２（対照区）のヒヨコには吸着剤を含まない飼料を摂食させた。全グループのヒヨコへの感染はニューカッスル病ウイルスの基準毒性系統”Ｔ−５３”を１０００ＥＬＤ５０ｍｌ／０．２ｍｌ濃度で筋肉注射して実施した。感染後１０日間の期間観察を実施した。
【０１０４】
感染４日目に特徴的な臨床徴候、すなわち低度の麻痺、頭部の震えを示しているグループ２（対照区）のヒヨコ２羽の病状を記録した。これら２羽は死亡した。５日目、グループ１（試験区）のヒヨコ１羽が特徴的臨床徴候を伴う病状を示した。グループ２（対照区）のヒヨコ３羽が発病し、死亡した。６日目、対照区において、さらにヒヨコ２羽の発病及び死亡が記録された。感染後７日目、各グループにおいてヒヨコがそれぞれ２羽発病し死亡した。８日目、グループ１のヒヨコ１羽が発病・死亡し、グループ２のヒヨコ１羽（最終個体）が発病し、感染後９日目に死亡した。グループ１に関し、さらに５日間観察を続けたが発病・死亡は記録されなかった。表１４にヒヨコの発病及び脂肪に関するデータを示す。
表から理解されるように、グループ２では１００％の発病率及び脂肪率が観察されたのに対し、グループ１ではヒヨコの６０％が発病に至らなかった。
【０１０５】
【表１４】
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【０１０６】
死亡したヒヨコはすべて解剖し死後検査を実施した。死亡したすべてのヒヨコの十二指腸に粘膜上壊死病巣を伴った出血性炎症が記録され、さらにグループ２のヒヨコ３羽において筋肉と腺性心室の移行部分に出血が記録された。
【０１０７】
感染性気管支炎ウイルスに対する吸着剤の効果を調べるため、ＦＰＦ種のヒヨコ日令１２日を各１０羽ずつ２グループに構成した。グループ１（試験区）のヒヨコには吸着剤を飼料へ１％量混入させて感染性気管支炎ウイルスの感染前５日間と感染後１０日間の期間摂食させた。グループ２（対照区）のヒヨコには吸着剤の含まれない飼料を与えた。このグループのヒヨコに対する感染は感染性気管支炎ウイルスの基準毒性系統”Chapaevsky"を濃度１０００ＥＬＤ５０`mｌ／０．２ｍｌで鼻孔経由によって接種して実施した。感染後１０日間観察を実施した。ヒヨコの体重測定は試験前（基礎体重）、試験５日後（感染）、及び試験１５日後（試験終了日）に実施した。
【０１０８】
観察期間中、試験区ではヒヨコ５羽が発病し、対照区ではヒヨコ８羽が発病したが死亡したヒヨコはなかった。病気は呼吸症状（結膜炎、鼻炎）を伴い激しくない状況で進行した。感染１０日後、両グループのヒヨコを屠殺して死後検査を実施した。病気のヒヨコの気管中に重篤なカタル性滲出液が記録された。ＥＬＩＳＡ（酵素連関免疫吸着検定）法による感染後１０日目の血液検査により、特定抗体の欠如が試験区では３０％、及び対照区では１０％の割合で示された。
感染１０日後における平均取得体重は、試験区では３５５．９ｇ、また対照区では３０２．３ｇであった（表１５参照）。
【０１０９】
【表１５】
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【０１１０】
感染性咽頭気管炎ウイルスに対する吸着剤の効果を調べるため、ＦＰＦ種のヒヨコ（日令２５日、各グループ１０羽）を２グループ構成した。グループ１（試験区）のヒヨコには吸着剤を飼料へ１％量混入させて感染性咽頭気管炎ウイルスの感染前５日間と感染後１０日間の期間摂食させた。グループ２（対照区）のヒヨコには吸着剤の全く含まれない飼料を与えた。これら両グループのヒヨコに対する感染は感染性咽頭気管炎ウイルスの基準毒性系統”Bogatischevsky"を濃度１００００ＥＩＤ５０`mｌ／０．２ｍｌで経気管投与による接種にて実施した。感染後１０日間観察を実施した。ヒヨコの体重測定は感染前、及び感染１０日後（試験終了日）に実施した。
【０１１１】
観察期間中、試験区のヒヨコ６羽が発病し、他方対照区ではヒヨコ８羽が発病したが、死亡したヒヨコはいなかった。この病気は結合炎症をともって軽い症状で進行した。感染１０日目に両グループのヒヨコを屠殺して死後検査を実施した。病気のヒヨコに繊維性の結合炎症が記録された。ＥＬＩＳＡ法による感染後１０日目の血清検査により、特定抗体の欠如が試験区では２０％、及び対照区では１０％の割合で示された。
【０１１２】
【表１６】
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【０１１３】
感染後１０日間における平均取得体重は試験区で７８５．６ｇ、対照区で７６４．４ｇであった（表１６参照）。
従って、ニューカッスル病ウイルスによる感染において、試験区で６０％、対照区で０％と吸着剤の高い治療及び予防効果が示された。一定のウイルスに対する吸着剤の高い効果は、小腸及び大腸における基本的局在性に関連するものである。
ヒヨコの感染性気管支炎ウイルス及び感染性咽頭気管炎ウイルス感染中に吸着剤の効果低減が記録されたが、これは明らかに呼吸器官中におけるウイルスの主要局在位置に関連したものである。
【０１１４】
実施例１９：子豚の中毒性肝栄養失調症の治療
中毒性肝栄養失調症に罹患した子豚の２グループ（各グループ１５頭）に対して治療を実施した。グループ１（試験区）の子豚には、吸着剤を治療及び予防の主剤として子豚体重ｋｇ当たり０．５ｇの投与量で飼料と共に回復まで毎日投与した。グループ２（対照区）の子豚は同一飼育及び維持条件に置いて、標準物質である抗生物質ゲオミシンを用いて治療を行った。
治療期間中においては、全試験動物の臨床状態について測定した。治療１日目、３日目、６日目、及び９日目、各グループから５頭の血液を採取して生化学的分析を行った。治療の結果による脂肪、色素、タンパク質交換等の指標の変化（Ｍ±ｍ，Ｐ）について表１７に示す。
これらの結果から理解できるように、試験区の動物において肝臓の抗毒素機能の回復、脂肪及び色素交換の最適化が治療後３日目には始まり、９日目になっても猶認められる。前記物質による治療後に肝臓構造の修繕再生が記録されているが、これは肝細胞の類壊死病巣数の減少、肝臓ガーダー破壊の減少、及び増殖細胞の僅かな量で示されるものである。
【０１１５】
【表１７】
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【０１１６】
実施例２０：過酸化脂質（ＰＯＬ）高含有飼料飼育中における６グループから成るブロイラー種ヒヨコの器官抗毒素タンパク質系に対する吸着剤の影響（供試ブロイラー種、日令：１５日）
試験期間は３０日間とした。飼料へ大豆油を飼料１００ｇ当たり４ｍｌの割合で加えた［飼料の酸価は２６〜３０．０ｍｇＫＯＨの範囲内、過酸化価は全試験期間を通してヨウ素の０．４５％〜０．５９％の範囲内である（通常は２０．０ｍｇＫＯＨ以下、かつヨウ素の０．３％以下）］。グループ１、２、３及び４のヒヨコに脂肪分解物を含む飼料を摂食させた。吸着剤と飼料を、グループ１に関しては飼料質量に対して０．５％、グループ２に関しては１％、グループ３に関しては１．５％、グループ４に関しては２％の割合で混合した。グループ５のヒヨコには、脂肪の過酸化価及び酸価（脂肪酸価２０．０ｍｇＫＯＨ、脂肪過酸化価：ヨウ素の０．０６％）が正常である通常のブロイラー用飼料（レシート５Ｂ）を与えた。グループ６のヒヨコには、グループ１〜４における過酸化物パラメータと同様の大豆油を添加した飼料を与えた。
【０１１７】
試験期間中、観察はすべてのグループのヒヨコについて実施した。ヒヨコの臨床状態、すなわちそれらの行動及び飼料消費状況について考慮を払った。試験開始前（基礎数値）、試験１５日目、及び試験３０日目にヒヨコの体重測定及び血液採取（全血及び血清用）を実施した。この血液試験には、脂肪過酸化物酸化（ＰＯＬ）、すなわちマロンジアルデヒド（ＭＤＡ）、脂質ヒドロペルオキシド、スーパーオキシドジスムターゼ（ＳＯＤ）活性を含めた。
試験終了時、ヒヨコを屠殺して体内脂肪及び脳のサンプルを採取した。体内脂肪の酸価及び過酸化価を測定した。脳中のＭＤＡ濃度も測定した。
【０１１８】
試験３０日目、グループ２〜４のヒヨコにグループ６のヒヨコと比較してかなり低いが、グループ５（正常な脂肪を含む飼料）の数値を超えないＳＯＤ活性が観察された。これは試験区において対照区に比べてＰＯＬ経過が低下していることの証拠である。吸着剤の保護作用は試験３０日目における試験区におけるヒドロペルオキシドの顕著な減少、及び試験１５日目及び３０日目におけるマロンジアルデヒド濃度によっても確認される。
【０１１９】
他の生化学的パラメータ及び血液学的パラメータの検討により、生体内条件において、吸着剤に過酸化物酸化生成物含量が増加された飼料の負作用に対する顕著な保護作用があることが示された。実際、試験区のヒヨコ血液中のＭＤＡ濃度は１６〜１８％低く、ＳＯＤ活性は１０〜１２．５％低く、またヒドロペルオキシド含量は吸着剤を含まない酸化飼料が与えられたヒヨコに比べて２８〜３５％低い。試験区のヒヨコにおけるこれらの数値は正常飼料を与えられたグループのヒヨコの数値に近いものである。吸着剤を種々投与量で与えられたヒヨコの体内脂肪の酸価は２６〜３０％低く、正常飼料を与えられたヒヨコの酸価と大きく異ならない。試験区のヒヨコの脳中ＭＤＡ濃度は、吸着剤を含まない酸化飼料を与えられたヒヨコに比べて４２〜５６％低く、このことは図１９、２０、２１、２２、７、８、９、１０に示した通りである。
従って、吸着剤の適用には脂質過酸化物酸化の主パラメータに対する正常化作用がある。吸着剤は、酸化程度の高い脂質を含む飼料が与えられる全期間に亘って投与されるべきである。
【０１２０】
実施例２１：農薬による急性及び慢性中毒における吸着剤の治療効果
除草剤２，４−Ｄ及び殺虫剤リンデン（１，２，３，４，５，６−ヘキサクロルシクロヘキサン）による急性中毒期間中に下記方法において試験を実施した。日令３０日のブロイラー種ヒヨコから２グループ（各グループ２５羽）を編成し、このような２グループをさらに編成して２群とした。各群において、一組のヒヨコには吸着剤を飼料へ飼料質量の１％相当量混入して摂食させた。グループ２には吸着剤を全く含まない飼料を与えた。試験開始後２日目に、プローブを用いて２，４−Ｄを飼料中へ取り込み、第一群のヒヨコへ体重ｋｇ当たり５００ｍｇを一回投与して中毒させ、また第二群のヒヨコにはリンデンを体重ｋｇ当たり１５ｍｇ与えて中毒させた。すべてのヒヨコについて毎日臨床状態を考慮しながら観察した。農薬の投与後１日目、２日目、３日目、４日目、及び５日目に、各グループからヒヨコ５羽を屠殺して筋肉及び肝臓組織を採取して農薬の残留量を定量した。
除草剤２，４−Ｄ及びリンデンの残留量の変化を図に示し（図１３及び１４）、農薬によるヒヨコの急性中毒期間中における吸着剤の効果を示す。４日目にはヒヨコの肝臓からほぼ完全に除草剤２，４−Ｄが、また５日目にはリンデンが除去され、同時に、吸着剤を投与を受けていない対照区のヒヨコよりもよりも臨床中毒症状が緩和されて記録された。
除草剤２，４−Ｄ及びリンデンによる慢性中毒中における吸着剤適用の効果を表１８及び１９にそれぞれ示す。このれら表には吸着剤の投与を受けたヒヨコの体重変化も示されている。
【０１２１】
日令３０日のブロイラー種を４グループに編成し、このような４グループをさらに設けて２群とした。第１群のグループ１、グループ２、グループ３のヒヨコに除草剤２，４−Ｄを体重ｋｇ当たり２００ｍｇの投与量で与えた。第２群においては、殺虫剤であるリンデンを体重ｋｇ当たり５ｍｇの薬量でプローブを用いて２０日の期間毎日素嚢中へ投与した。両群ともにグループ４は対照区とした。グループ１のヒヨコには、各群とも、吸着剤を飼料中に１％量含ませて与えた。グループ２のヒヨコには植物性吸着剤を飼料中へ２％量含ませて与えた。グループ３及び４のヒヨコは、吸着剤を含まない通常飼料を用いて飼育した。両群のすべてのグループの鶏について臨床症状を考慮した観察を毎日実施した。体重測定、生化学的検査及び血液学的検査のための血液採取を下記条件で試験開始時、１０日目、及び２０日目に行った。
【０１２２】
【表１８】
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【０１２３】
【表１９】
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【０１２４】
農薬による慢性中毒状態において飼料中に吸着剤が１％量、及び２％量含まれた飼料を与えられたヒヨコの体重取得変化、血液学的パラメータ及び生化学的パラメータに関しては、正常飼料を与えられた対照区のヒヨコと比較しても大きな相違は認められなかった。農薬による慢性中毒状態にあって吸着剤を与えられなかったヒヨコの成長及び発育は、対照区グループのヒヨコに比較して遅延した。血液学的パラメータ及び生化学的パラメータにおける対照区のヒヨコとの偏差も記録した。従って、吸着剤の投与によって急性中毒中の農薬除去が早められ、臨床状態が正常化され、慢性中毒期間中に経過が入れ替わることが分かる。
【０１２５】
実施例２２：飼育中における雌鶏の産卵生産性、及び養鶏製品の品質に対する吸着剤の影響
各グループが２５羽から成る４グループの産卵鶏（日令１６０日、品種Hisex white）の卵の品質に対する吸着剤の影響を調べた。試験期間は３０日間とした。グループ１の鶏は標準の良質混合飼料ＰＫ１Ｂで飼育した。グループ２の鶏には、脂肪過酸化価がヨウ素の０．４〜０．５％である酸化大豆油を飼料質量に対して１％相当量添加した類似混合飼料を与えた。グループ３の鶏にはグループ２と同様に酸化大豆油が混合されているが、さらに吸着剤が飼料重量に対して１％相当量添加された飼料を与えた。グループ４は対照区であり、このグループの鶏には良質大豆油を飼料重量に対して２％添加した混合飼料ＰＫ１Ｂを与えた。試験期間中、雌鶏の産卵品質を毎日調査し、卵黄の酸価測定値、ビタミンＡ及びカロチノイド類の含量、さらに形態的パラメータ（指標として、形状、重量、卵殻厚、等）を記録した。卵黄中のＨＡＩＲ（血球凝集阻害反応）でのニューカッスル病ウイルス抗体の存在、及びＤＰＲ（拡散沈降反応）での感染性咽頭炎ウイルス抗体の存在を判定した。雌鶏へのこれら病気に対するワクチン接種は日令１２０日の時に実施した。
産卵品質、卵黄酸価変化、標準的指標に従った卵品質、及び卵黄中の経卵抗体レベルに対する吸着剤の影響を示すパラメータを表２０、２１、２２及び２３に示す。
表２０によれば、グループ３に最も高い産卵能力が認められるが、このグループの雌鶏には吸着剤を含む準標準的飼料が与えられ、グループ４の雌鶏には良質油が添加された飼料が与えられている。最も質の劣る産卵がグループ２で記録されているが、このグループの雌鶏には吸着剤を含まない質の悪い飼料が与えられている。
【０１２６】
【表２０】
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【０１２７】
【表２１】
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【０１２８】
【表２２】
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【０１２９】
表２１に基づいて、グループ３の鶏から得られた卵黄の酸価はグループ２のそれよりもかなり少なく、このことより脂肪の酸化度の高い質の悪い飼料を摂食している期間中において卵品質の本パラメータに対し吸着剤が有益な影響を与えることが確認できる。
表２２によれば、すべてのグループの鶏についての卵品質パラメータは正常範囲内である。しかしながら、ビタミンＡ含量、カロチノイド類含量、及び卵平均重量等の主要パメータはグループ３ではかなり高くなっている。グループ２との比較において、ビタミンＡでは４．６％、カロチノイド類では２１．８％、平均卵重量では１．６％などの大きな差異が生じている。
表２３によれば、質の悪い混合資料を与えた鶏（グループ２）から得られた卵黄中のＮＤウイルス及びＩＢＤ（ガンボロ病）ウイルスに対する経卵抗体の力価は他のグループの力価よりもずっと低かった。
【０１３０】
【表２３】
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【０１３１】
従って、鶏の基本飼料へ吸着剤を添加（飼料重量の１％量）することにより、質の悪い飼料によって影響される産卵能力及び卵品質パラメータが正常化され、また同時に経卵免疫反応も正常化される。
本吸着剤は動物疾病の予防及び治療に必要な試験に合格しており、動物及び養鶏用の医薬分野において多分野への使用が推奨可能である。本吸着剤の使用は、完全混合飼料へ配合して、産業に起因する不変的あるいは一時的汚染地域における環境毒物による動物組織に対する負の影響を除去するために、また動物の疾病及び中毒状態の流行地域において抗生物質あるいは他の安全とは言えない解毒物質の使用必要性を減じ、あるいは排除するための予防物質として特に有用である。
【０１３２】
本発明に係る新規吸着剤の本質的利点は、その高い製造生産性と使用効率、広範な作用性、及び既存の類似品に比較しての安価性にある。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【国際調査報告】
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