(57)【要約】【課題】本発明の目的は、グルコシダーゼやアルカリホスファターゼ等の加水分解酵素を用いた酵素反応において、酵素反応効率を向上させる技術を提供することである。【解決手段】特定のベタイン誘導体には、加水分解酵素の酵素反応効率を格段顕著に向上させる作用があり、当該ベタイン誘導体を低濃度で存在させるだけでも、これらの酵素反応効率を飛躍的に向上させることが可能になる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
一般式（１）に示すベタイン誘導体の存在下で、加水分解酵素による酵素反応を行うことを特徴とする、酵素反応方法。
【化１】
2013035856.tif 000030
［一般式（１）中、Ｒ１〜Ｒ３の内、少なくとも２つの基は、同一又は異なって、炭素数５又は６の直鎖又は分岐状のアルキル基を示し、且つＲ１〜Ｒ３の内、残りの１つの基は、炭素数１〜８の直鎖又は分岐状のアルキル基を示す。ｎは１〜５の整数を示す。］
【請求項２】
Ｒ１〜Ｒ３が同一又は異なって炭素数５又は６の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１である、請求項１に記載の酵素反応方法。
【請求項３】
Ｒ１〜Ｒ３の内、少なくとも２つの基は、同一又は異なって、炭素数５又は６の直鎖状のアルキル基であり、残りの１つの基は、炭素数５〜８の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１である、請求項１に記載の酵素反応方法。
【請求項４】
一般式（１）に示すベタイン誘導体及び下記一般式（２）に示すベタイン誘導体の存在下で酵素反応を行う、請求項１〜３のいずれかに記載の酵素反応方法。
【化２】
2013035856.tif 000031
［一般式（２）中、Ｒ４〜Ｒ６は、同一又は異なって、炭素数１〜４の直鎖若しくは分岐状のアルキル基、又は水素原子を示し、ｎは１〜５の整数を示す。］
【請求項５】
一般式（１）に示すベタイン誘導体が０．００００１〜０．０４Ｍの濃度で存在する、請求項１乃至４のいずれかに記載の酵素反応方法。
【請求項６】
加水分解酵素が、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ及びプロテアーゼからなる群より選択される少なくとも１種である、請求項１乃至５のいずれかに記載の酵素反応方法。
【請求項７】
加水分解酵素がα−グルコシダーゼである請求項１乃至５のいずれかに記載の酵素反応方法。
【請求項８】
一般式（１）に示すベタイン誘導体を有効成分として含む、加水分解酵素の反応効率の向上剤。
【化３】
2013035856.tif 000032
［一般式（１）中、Ｒ１〜Ｒ３及びｎは前記と同じ。］
【請求項９】
一般式（１）に示すベタイン誘導体が０．００００１〜０．０４Ｍの濃度で使用される、請求項８に記載の向上剤。
【請求項１０】
更に、下記一般式（２）に示すベタイン誘導体を含む請求項８又は９に記載の向上剤。
【化４】
2013035856.tif 000033
［一般式（２）中、Ｒ４〜Ｒ６及びｎは前記と同じ。］
【請求項１１】
加水分解酵素が、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ及びプロテアーゼからなる群より選択される少なくとも１種である、請求項８乃至１０のいずれかに記載の向上剤。
【請求項１２】
請求項１乃至７のいずれかに記載の酵素反応方法を行うためのキットであって、下記一般式（１）に示すベタイン誘導体と、加水分解酵素と、を含むことを特徴とする、キット。
【化５】
2013035856.tif 000034
［一般式（１）中、Ｒ１〜Ｒ３及びｎは前記と同じ。］
【請求項１３】
一般式（１）に示すベタイン誘導体が０．００００１〜０．０４Ｍの濃度で使用されることを示す実験手順書を含む、請求項１２に記載のキット。
【請求項１４】
加水分解酵素が、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ及びプロテアーゼからなる群より選択される少なくとも１種である、請求項１２又は１３に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ、プロテアーゼ等の加水分解酵素を用いた酵素反応において、酵素反応効率を向上させる技術に関する。
【背景技術】
【０００２】
グルコシダーゼは、グルコシド結合を加水分解する反応を触媒する酵素であり、様々な分野で産業的に利用されている。グルコシダーゼは、糖のα−グルコシド結合を加水分解するα−グルコシダーゼと、糖のβ−グルコシド結合を加水分解するβ−グルコシダーゼに大別される。α−グルコシダーゼは、デンプンの液化や糖化、デンプンの改変、洗剤、織物の脱サイズ等の処理に使用されており、産業上、不可欠な酵素である。また、β−グルコシダーゼは、植物系バイオマスに含まれるセルロースを糖化できるため、近年、植物系バイオマスの有効利用が注目されると共に脚光を浴びている。【０００３】
また、アルカリホスファターゼは、リン酸エステル化合物を加水分解して脱リン酸化させる反応を触媒する酵素であり、ＮＢＴ／ＢＣＩＰ（ｎｉｔｒｏｂｌｕｅ  ｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ  ａｎｄ  ５−ｂｒｏｍｏ−４−ｃｈｌｏｒｏ−２−ｉｎｄｏｌｙｌｐｈｏｓｐｈａｔｅ）等の基質を加水分解して発色・発光させることができるため、ＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロッティング、生体組織片の染色等に使用される標識酵素として汎用されている。【０００４】
また、スルファターゼは、硫酸エステル化合物を加水分解する酵素であり、ヘパリンやコンドロイチン硫酸などの硫酸化多糖における硫酸エステルの加水分解等に使用され、化粧品、医療分野において利用されている。【０００５】
また、リパーゼは、脂肪酸エステル化合物を加水分解する酵素であり、食品用フレーバーや香料の製造、食品中の油脂の除去等の食品工業分野、製紙工程における原木からの脂肪（ピッチ）の除去、洗剤等に広く利用されている。【０００６】
更に、プロテアーゼは、ペプチド結合の加水分解を触媒する酵素であり、タンパク質の低分子化、タンパク質の除去、繊維の加工・改質、洗剤等に利用され、食品、医薬品、繊維等の幅広い分野で使用される酵素である。【０００７】
一方、一般に、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ、プロテアーゼ等の加水分解酵素を用いた酵素反応では、生成物やエフェクター分子との結合によって反応過程で反応速度が頭打ちになる場合が多い。このような頭打ちとなる現象を改善して酵素反応の効率を高めることができれば、前述の加水分解酵素を利用する様々な技術分野で多大なメリットをもたらすことになる。例えば、グルコシダーゼの酵素反応効率の向上は、植物系バイオマスに含まれるセルロースの糖化率を高め、ひいてはバイオマスエタノールの生成効率の向上に資することになる。また、アルカリホスファターゼの酵素反応効率の向上は、臨床検査薬、ＥＬＩＳＡやウエスタンブロッティング等を利用した目的物質の検出法において、目的物質の検出感度を高め、更には目的物質の検出時間を短縮することも可能にする。また、スルファターゼ、リパーゼ、プロテアーゼ等の酵素反応効率の向上は、これらの酵素反応が利用される各種分野において製造効率の向上や品質向上に寄与し得ることが期待される。【０００８】
従来、酵素反応において、酵素活性を高める技術は報告されている。例えば、非特許文献１及び２には、糖を含むアルコール、ポリオール類を酵素反応溶液に添加することにより酵素活性を向上させる方法が開示されている。また、非特許文献３及び４には、ポリエチレングリコールや牛血清アルブミンのようなタンパク質を酵素反応溶液に添加することによって、酵素活性を向上できることが開示されている。また、非特許文献５には、グリシンが酵素活性を向上させることも開示されている。しかしながら、これらの非特許文献の技術でも、依然として、酵素の反応効率の向上効果を十分に満足させるものではない。【０００９】
また、特定構造のベタイン誘導体が酵素反応効率を向上させることが報告されている（特許文献１）。特許文献１の技術は、酵素の反応効率の向上の点で、優れた技術を開示しているが、グルコシダーゼやアルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ、プロテアーゼ等の加水分解酵素を使用する技術分野では、酵素反応の効率が高い程、前述する利点も大きくなるため、これらの酵素の反応効率をより一層高めることが実現できれば、これらの酵素を利用する産業に多大なる技術進歩をもたらすと考えられている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】特開２０１０−２２０６０７号公報
【非特許文献】
【００１１】
【非特許文献１】Ｓ．  Ｎ．  Ｔｉｍａｓｈｅｆｆ，Ａｄｖ．  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｃｈｅｍ．，  ５１，  ３５５  （１９９８）
【非特許文献２】Ｍ．  Ｍｅｊｒｉ，  ｅｔ  ａｌ．，Ｃａｒｂｏｈｙｄｒ．  Ｐｏｌｙｍ．，  ４５，  １６１  （２００１）
【非特許文献３】Ｋ．  Ｈａｙａｓｈｉ，  ｅｔａｌ．，  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，  １４，  ７８１７  （１９８６）
【非特許文献４】Ｋ．  Ｔｏｔａｎｉ，  ｅｔａｌ．，  Ｊ．  Ａｍ．  Ｃｈｅｍ．  Ｓｏｃ．，  １３０，  ２１０１  （２００８）
【非特許文献５】Ｖ．  Ｖａｔｈｉｐａｄｉｅｋａｌ，ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．，  ３８８，  ６１  （２００７）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
本発明は、グルコシダーゼやアルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ、プロテアーゼ等の加水分解酵素を用いた酵素反応において、酵素反応効率を向上させる技術を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意検討を行ったところ、特定のベタイン誘導体には、加水分解酵素の酵素反応効率を格段顕著に向上させる作用があり、当該ベタイン誘導体を低濃度で存在させるだけでも、これらの酵素反応効率を飛躍的に向上させ得ることを見出した。本発明は、かかる知見に基づいて更に検討を重ねることにより完成したものである。【００１４】
即ち、本発明は、下記に掲げる態様の発明を提供する。
項１．一般式（１）に示すベタイン誘導体の存在下で、加水分解酵素による酵素反応を行うことを特徴とする、酵素反応方法。
【化１】
2013035856.tif 000002
［一般式（１）中、Ｒ１〜Ｒ３の内、少なくとも２つの基は、同一又は異なって、炭素数５又は６の直鎖又は分岐状のアルキル基を示し、且つＲ１〜Ｒ３の内、残りの１つの基は、炭素数１〜８の直鎖又は分岐状のアルキル基を示す。ｎは１〜５の整数を示す。］
項２．Ｒ１〜Ｒ３が同一又は異なって炭素数５又は６の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１である、項１に記載の酵素反応方法。
項３．Ｒ１〜Ｒ３の内、少なくとも２つの基は、同一又は異なって、炭素数５又は６の直鎖状のアルキル基であり、残りの１つの基は、炭素数５〜８の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１である、項１に記載の酵素反応方法。
項４．一般式（１）に示すベタイン誘導体及び下記一般式（２）に示すベタイン誘導体の存在下で酵素反応を行う、項１〜３のいずれかに記載の酵素反応方法。
【化２】
2013035856.tif 000003
［一般式（２）中、Ｒ４〜Ｒ６は、同一又は異なって、炭素数１〜４の直鎖若しくは分岐状のアルキル基、又は水素原子を示し、ｎは１〜５の整数を示す。］
項５．一般式（１）に示すベタイン誘導体が０．００００１〜０．０４Ｍの濃度で存在する、項１乃至４のいずれかに記載の酵素反応方法。
項６．加水分解酵素が、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ及びプロテアーゼからなる群より選択される少なくとも１種である、項１乃至５のいずれかに記載の酵素反応方法。
項７．加水分解酵素がα−グルコシダーゼである項１乃至５のいずれかに記載の酵素反応方法。
項８．一般式（１）に示すベタイン誘導体を有効成分として含む、加水分解酵素の反応効率の向上剤。
【化３】
2013035856.tif 000004
［一般式（１）中、Ｒ１〜Ｒ３及びｎは前記と同じ。］
項９．一般式（１）に示すベタイン誘導体が０．００００１〜０．０４Ｍの濃度で使用される、項８に記載の向上剤。
項１０．更に、下記一般式（２）に示すベタイン誘導体を含む項８又は９に記載の向上剤。
【化４】
2013035856.tif 000005
［一般式（２）中、Ｒ４〜Ｒ６及びｎは前記と同じ。］
項１１．加水分解酵素が、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ及びプロテアーゼからなる群より選択される少なくとも１種である、項８乃至１０のいずれかに記載の向上剤。
項１２．項１乃至７のいずれかに記載の酵素反応方法を行うためのキットであって、下記一般式（１）に示すベタイン誘導体と、加水分解酵素と、を含むことを特徴とする、キット。
【化５】
2013035856.tif 000006
［一般式（１）中、Ｒ１〜Ｒ３及びｎは前記と同じ。］
項１３．一般式（１）に示すベタイン誘導体が０．００００１〜０．０４Ｍの濃度で使用されることを示す実験手順書を含む、項１２に記載のキット。
項１４．加水分解酵素が、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ及びプロテアーゼからなる群より選択される少なくとも１種である、項１２又は１３に記載のキット。
【発明の効果】
【００１５】
本発明によれば、特定のベタイン誘導体を使用することにより、グルコシダーゼ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ、プロテアーゼ等の加水分解酵素を用いた酵素反応において、酵素反応効率を格段顕著に向上させることができる。また、本発明では、特定のベタイン誘導体を酵素反応液中に低濃度で存在させるだけでも、加水分解酵素の反応効率を著しく向上させることが可能になっている。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】実施例１において、α−グルコシダーゼを用いた酵素反応において、ベタイン誘導体の添加による酵素反応効率を評価した結果を示す。
【図２】実施例２において、β−グルコシダーゼを用いた酵素反応において、ベタイン誘導体の添加による酵素反応効率を評価した結果を示す。
【図３】実施例３において、α−グルコシダーゼを用いた酵素反応において、ベタイン誘導体の混合物の添加による酵素反応効率を評価した結果を示す。
【図４】実施例４において、アルカリホスファターゼを用いた酵素反応において、ベタイン誘導体の添加による酵素反応効率を評価した結果を示す。
【図５】実施例５において、スルファターゼを用いた酵素反応において、ベタイン誘導体の添加による酵素反応効率を評価した結果を示す。
【図６】実施例６において、リパーゼを用いた酵素反応において、ベタイン誘導体の添加による酵素反応効率を評価した結果を示す。
【図７】実施例７において、プロテアーゼを用いた酵素反応において、ベタイン誘導体の添加による酵素反応効率を評価した結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
１．酵素反応方法
本発明は、一般式（１）に示すベタイン誘導体の存在下で、加水分解酵素による酵素反応を行うことを特徴とする。以下、本発明について、詳細に説明する。
【００１８】
ベタイン誘導体
本発明で使用するベタイン誘導体は、以下の一般式（１）に示す構造である。
【００１９】
【化６】
2013035856.tif 000007
【００２０】
一般式（１）中、Ｒ１〜Ｒ３の内、少なくとも２つの基は、同一又は異なって、炭素数５又は６の直鎖又は分岐状のアルキル基を示し、且つＲ１〜Ｒ３の内、残りの１つの基は、炭素数１〜８の直鎖又は分岐状のアルキル基を示す。一般式（１）中、Ｒ１〜Ｒ３は、好ましくは、同一又は異なって、炭素数５又は６の直鎖又は分岐状のアルキル基；或いは少なくとも２つの基は、同一又は異なって、炭素数５又は６の直鎖又は分岐状のアルキル基であり、残りの１つの基は、炭素数５〜８の直鎖又は分岐状のアルキル基である。更に好ましくは、Ｒ１〜Ｒ３は、炭素数５又は６の直鎖状のアルキル基；或いは少なくとも２つの基は、同一又は異なって、炭素数５又は６の直鎖又は分岐状のアルキル基であり、残りの１つの基は、炭素数５〜８の直鎖状のアルキル基である。
【００２１】
また、一般式（１）中、ｎは、１〜５、好ましくは１〜３、更に好ましくは１の整数を示す。
【００２２】
本発明に使用される一般式（１）に示すベタイン誘導体の好適な具体例として、Ｒ１〜Ｒ３が同一又は異なって炭素数５又は６の直鎖又は分岐状のアルキル基であり、且つｎが１〜３の整数；更に好ましくはＲ１〜Ｒ３が同一又は異なって炭素数５又は６の直鎖又は分岐状のアルキル基であり、且つｎが１又は２であるもの；特に好ましくはＲ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１であるもの、或いは特に好ましくはＲ１〜Ｒ３が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１であるものが例示される。
【００２３】
本発明においては、これらのベタイン誘導体から１種を選択して単独で使用することもでき、２種以上を組み合わせて使用することもできる。
【００２４】
一般式（１）に示すベタイン誘導体は、例えば、特開２００９−９６７６６号公報等に記載の方法で製造することができ、更に後述する合成例１−２を参照して公知の有機合成法を用いて製造することもできる。
【００２５】
また、上記一般式（１）に示されるベタイン誘導体と、下記一般式（２）に示すベタイン誘導体とを組み合わせ、これらのベタイン誘導体の存在下で酵素反応を行ってもよい。
【００２６】
【化７】
2013035856.tif 000008
【００２７】
一般式（２）中、Ｒ４〜Ｒ６は、同一又は異なって、炭素数１〜４の直鎖若しくは分岐状のアルキル基、又は水素原子を示す。一般式（２）中、好ましくは、Ｒ４〜Ｒ６の少なくとも１つ、より好ましくは２つ、更に好ましくはＲ４〜Ｒ６の全てが炭素数１〜４の直鎖状のアルキル基を示す。一般式（２）中、特に好ましくはＲ４〜Ｒ６は、炭素数４の直鎖状アルキル基である。
【００２８】
また、一般式（１）中、ｎは、１〜５、好ましくは１〜３、更に好ましくは１の整数を示す。
【００２９】
一般式（２）に示される化合物は、例えば、特開２００９−９６７６６号公報等に記載の方法及び後述する参考合成例１の記載を参照して公知の有機合成法を用いて製造することができる。
【００３０】
上記一般式（１）に示されるベタイン誘導体と一般式（２）に示されるベタイン誘導体の組み合わせは、各一般式を満たしていれば特に制限されるものではない。ここでは、一般式（１）においてＲ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１であるベタイン誘導体と、一般式（２）においてＲ４〜Ｒ６が炭素数４の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１であるベタイン誘導体を例示する。これらのベタイン誘導体を組み合わせて用いる場合であっても、後述する酵素の少なくとも１種が使用される酵素反応に適用され得る。後述する実施例においては、これらのベタイン誘導体の存在下でα−グルコシダーゼによる酵素反応を行うことによって反応効率が顕著に向上する結果が例示されている。
【００３１】
酵素
本発明の酵素反応方法に使用される酵素は、加水分解酵素である。本発明で使用される加水分解酵素としては、具体的には、グルコシダーゼ、アミラーゼ、グルコアミラーゼ、セルラーゼ、キチナーゼ、セロビナーゼ、キシラナーゼ、ガラクトシダーゼ、マンノシダーゼ、マンナーゼ、キチナーゼ等の糖加水分解酵素；アルカリホスファターゼ、リン酸ホスファターゼ、スルファターゼ、ヌクレオチダーゼ、リボヌクレアーゼ、リパーゼ、ホスホリパーゼ等のエステル加水分解酵素；エーテル加水分解酵素；ペプチダーゼ、サブチリン、ペクチナーゼ、トリプシン、キモトリプシン、プラスミン、カルボキシペプチダーゼ、サーモライシン等のペプチド（アミド）加水分解酵素等が挙げられる。本発明においては、これらの加水分解酵素から１種を選択して単独で使用してもよく、２種以上を組み合わせて使用してもよい。本発明で使用される加水分解酵素の由来についても、特に制限されず、微生物、植物、動物等の如何なる由来であってもよい。
【００３２】
上記加水分解酵素の中でも、酵素反応効率をより一層向上せしめるという観点から、好ましくはグルコシダーセ、アルカリホスファターゼ、スルファターゼ、リパーゼ及プロテアーゼが挙げられ、更に好ましくはグルコシダーゼが挙げられる。
【００３３】
本発明で使用されるグルコシダーセとしては、α−グルコシダーゼ及びβ−グルコシダーゼのいずれであってもよいが、α−グルコシダーゼがより好適な加水分解酵素として挙げられる。また、本発明で使用されるグルコシダーセの由来についても特に制限されず、微生物、植物、動物等の如何なる由来であってもよい。
【００３４】
本発明で使用されるグルコシダーセの好適な例として、Ｂａｃｉｌｌｕｓ  Ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ由来のα−グルコシダーゼ、及びアーモンド由来のβ−グルコシダーゼが例示される。
【００３５】
本発明で使用されるアルカリホスファターゼとしては、その由来については特に制限されず、微生物、植物等の如何なる由来であってもよい。本発明で使用されるアルカリホスファターゼの好適な一例として、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ由来のものが例示される。
【００３６】
本発明で使用されるスルファターゼは、その由来については特に制限されず、微生物、植物等の如何なる由来であってもよい。本発明で使用されるスルファターゼの好適な一例として、Ｈｅｌｉｘ  Ｐｏｍａｔｉａ由来のものが例示される。
【００３７】
本発明で使用されるリパーゼとしては、その由来については特に制限されず、微生物、植物、動物組織等の如何なる由来であってもよい。本発明で使用されるリパーゼの好適な一例として、Ｃａｎｄｉｄａ由来のものが例示される。
【００３８】
本発明で使用されるプロテアーゼとしては、いずれのプロテアーゼを使用してもよく、例えば、プラスミン、トリプシン、キモトリプシン、サブチリン、ペクチナーゼ、カルボキシペプチダーゼ、サーモライシン等が挙げられ、これらのうちでも好適なプロテアーゼとしてプラスミン、トリプシンが例示される。また、本発明で使用されるプロテアーゼの由来も特に制限されず、微生物、植物、動物由来のいずれであってもよい。本発明で使用されるプロテアーゼの好適な例としては、ヒト血漿由来プラスミン、動物由来トリプシン等が例示される。
【００３９】
基質
本発明の酵素反応に使用される基質は、採用する加水分解酵素の種類や酵素反応の目的等に応じて適宜設定すればよい。
【００４０】
例えば、α−グルコシダーゼを使用する場合であれば、基質としては、α−グルコシド結合を有する化合物であればよく、具体的には、澱粉、アミロペクチン、麦芽糖、マルトオリゴ糖、アルキル又はアリール−α−グルコシド（例えば、メチル−α−Ｄ−グルコピラノシド、α−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシド）等が挙げられる。
【００４１】
β−グルコシダーゼを使用する場合であれば、基質としては、β−グルコシド結合を有する化合物であればよく、具体的には、セルロース、セロオリゴ糖、セロビオース、ゲンチオビオース、アルキル又はアリール−β−グルコシド（例えば、メチル−β−Ｄ−グルコピラノシド、β−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシド）等が挙げられる。
【００４２】
アルカリホスファターゼを使用する場合であれば、基質としては、ＮＢＴ／ＢＣＩＰ（ｎｉｔｒｏｂｌｕｅ  ｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ  ａｎｄ．  ５−ｂｒｏｍｏ−４−ｃｈｌｏｒｏ−２−ｉｎｄｏｌｙｌ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）（ロッシュ）やファーストレッド（シグマ）等の発色基質；アトフォス（商標）（ロッシュ社製）やＨＮＰＰ（ｈｙｄｒｏｘｙ−３−ｎａｐｈｔｈｏｉｃ  ａｃｉｄ−２’−ｐｈｅｎｙｌａｎｉｌｉｄｅｐｈｏｓｐｈａｔｅ）等の蛍光発光基質；ジオキセタン等の化学発光基質が挙げられる。
【００４３】
スルファターゼを使用する場合であれば、基質としては、硫酸エステル化合物であればよく、例えば、ヒアルロン酸、コンドロイチン４−硫酸、コンドロイチン６−硫酸等のグリコサミノグリカン；ニトロフェノール硫酸塩等が挙げられる。スルファターゼの基質として、より具体的にはｐ−ニトロフェニルサルフェートカリウム塩が例示される。
【００４４】
リパーゼを使用する場合であれば、基質としては、脂肪酸とグリセロールとのエステル化合物であればよく、例えば、トリグリセリド、ジグリセリド、モノグリセリド等が挙げられる。また、脂肪酸に限らず、芳香族酸やアルコール、フェノール類のエステルでもよく、例えば、ｐ−ニトロフェニルエステル等が挙げられる。リパーゼの基質としてより具体的には、４−ニトロフェニルブチレートが例示される。
【００４５】
プロテアーゼを使用する場合であれば、基質としては、ペプチド結合を有する化合物であればよく、例えば、タンパク質、ペプチド等が挙げられる。プロテアーゼの基質としてより具体的には、Ｚ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−ｐ−ニトロアニリドが例示される。
【００４６】
酵素反応の条件
本発明の酵素反応では、上記加水分解酵素を上記基質に作用させる従来の酵素反応系に、上記一般式（１）に示すベタイン誘導体を添加することにより行われる。
【００４７】
本発明の酵素反応において、加水分解酵素及び基質の濃度については、特に制限されず、使用する加水分解酵素や基質の種類、酵素反応の目的等に応じて適宜設定される。一例として、加水分解酵素の濃度として、通常０．０００１〜５００００ｎｇ／ｍＬが挙げられ、基質の濃度として、通常０．０００００１〜１Ｍが挙げられる。
【００４８】
また、本発明の酵素反応において、一般式（１）に示すベタイン誘導体の酵素反応溶液中での使用濃度としては、例えば、０．０００００１〜１Ｍ程度、好ましくは０．００００１〜１Ｍ程度が挙げられる。特に、本発明では、一般式（１）に示すベタイン誘導体の使用濃度が、０．００００１〜０．０４Ｍ、特に０．００００１〜０．０２Ｍという低濃度であっても、格段顕著に酵素反応効率を向上させることができる。このような本発明の利点に鑑みれば、本発明の酵素反応における一般式（１）に示すベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．００００１〜０．０２Ｍが挙げられる。より具体的には、一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合であれば、好ましくは０．０００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．００１〜０．０４Ｍが挙げられる。また、一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合であれば、好ましくは０．００００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．００００１〜０．０１Ｍが挙げられる。また、一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１及びＲ２が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、Ｒ３が炭素数４の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合であれば、好ましくは０．０００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．０００５〜０．０１Ｍが挙げられる。また、一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１及びＲ２が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、Ｒ３が炭素数８の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合であれば、好ましくは０．０００００１〜０．００１Ｍ、更に好ましくは０．００００１〜０．０００５Ｍが挙げられる。
【００４９】
ベタイン誘導体を２種以上組み合わせて使用する場合、各ベタイン誘導体の使用濃度は、各ベタイン誘導体による反応効率の向上効果を考慮して、上記の濃度範囲に基づいて適宜設定することができる。
【００５０】
また、前記一般式（１）に示されるベタイン誘導体と、前記一般式（２）に示されるベタイン誘導体とを組み合わせて使用する場合の各ベタイン誘導体の使用濃度は、例えば、一般式（１）に示されるベタイン誘導体０．０００００１Ｍ〜０．０４Ｍに対し、一般式（２）に示されるベタイン誘導体０．００１〜０．２Ｍが挙げられる。
【００５１】
本発明の酵素反応において、加水分解酵素と一般式（１）に示すベタイン誘導体の種類に応じた当該ベタイン誘導体の特に好適な使用濃度として、下記の範囲が挙げられる。
【００５２】
α−グルコシダーゼを使用する場合
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．０００１〜０．０２Ｍ、更に好ましくは０．００１〜０．０１Ｍが挙げられる。
【００５３】
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０２Ｍ、より好ましくは０．０００１〜０．０１Ｍ、更に好ましくは０．０００２〜０．００１Ｍが挙げられる。
【００５４】
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１及びＲ２が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、Ｒ３が炭素数４の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０４Ｍ、より好ましくは０．０００１〜０．０２Ｍ、更に好ましくは０．０００５〜０．００５Ｍが挙げられる。
【００５５】
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１及びＲ２が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、Ｒ３が炭素数８の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０００５Ｍ、更に好ましくは０．００００１〜０．０００２５Ｍが挙げられる。
【００５６】
また、αグルコシダーゼを用いた加水分解反応において、前記一般式（１）に示されるベタイン誘導体と、前記一般式（２）に示されるベタイン誘導体とを組み合わせて使用する場合の各ベタイン誘導体の使用濃度は、例えば、一般式（１）に示されるベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物であり、一般式（２）に示されるベタイン誘導体がＲ４〜Ｒ６が炭素数４の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１である化合物であるとき、一般式（１）に示されるベタイン誘導体０．０００００１Ｍ〜０．０４Ｍ、好ましくは０．００００１Ｍ〜０．０１Ｍに対し、一般式（２）に示されるベタイン誘導体０．０００１〜０．５Ｍ、好ましくは０．００１Ｍ〜０．２Ｍが挙げられる。
【００５７】
β−グルコシダーゼを使用する場合
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．０００１〜０．０４Ｍが挙げられる。
【００５８】
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．０００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．０００５〜０．０１５Ｍが挙げられる。
【００５９】
アルカリホスファターゼを使用する場合
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０１Ｍ、より好ましくは０．００００５〜０．００５Ｍ、更に好ましくは０．０００２〜０．０００５Ｍが挙げられる。
【００６０】
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数６の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．０００００１〜０．０１Ｍ、より好ましくは０．０００００１〜０．００２Ｍ、更に好ましくは０．００００１〜０．０００６Ｍが挙げられる。
【００６１】
スルファターゼを使用する場合
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．０００１〜０．０２Ｍが挙げられる。
【００６２】
リパーゼを使用する場合
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．０００１〜０．０２Ｍが挙げられる。
【００６３】
プロテアーゼを使用する場合
一般式（１）に示すベタイン誘導体が、Ｒ１〜Ｒ３が炭素数５の直鎖状のアルキル基であり、且つｎが１の化合物である場合、当該ベタイン誘導体の使用濃度として、好ましくは０．００００１〜０．０４Ｍ、更に好ましくは０．０００１〜０．０２Ｍが挙げられる。
【００６４】
本発明の酵素反応は、使用する加水分解酵素や基質、酵素反応の目的等を踏まえて、酵素反応を行うのに適した溶媒（例えば、緩衝液）中で行われる。
【００６５】
本発明の酵素反応の反応温度については、使用する加水分解酵素が作用できる範囲、好ましくは使用する酵素の至適温度範囲に設定すればよい。
【００６６】
また、本発明の酵素反応を行う反応系（反応液）のｐＨについても、使用する加水分解酵素が作用できる範囲、好ましくは使用する酵素の至適ｐＨ範囲に設定すればよい。
【００６７】
本発明の酵素反応における反応時間については、使用する加水分解酵素や基質の種類、酵素反応の進行具合、酵素反応の目的等を踏まえて、適宜設定すればよい。
【００６８】
酵素反応の適用対象
本発明の酵素反応は、使用する酵素や基質の種類に応じて、様々な分野で使用することができる。
【００６９】
例えば、加水分解酵素としてα−グルコシダーゼを使用する場合、本発明の酵素反応は、デンプンの液化や糖化、デンプンの改変、織物の脱サイズ等に適用することができる。
【００７０】
また、加水分解酵素としてβ−グルコシダーゼを使用する場合、本発明の酵素反応は、セルロースの糖化等に適用することができる。
【００７１】
また、加水分解酵素として、アルカリホスファターゼを使用する場合、アルカリホスファターゼを標識酵素として用いることにより、本発明の酵素反応は、臨床検査薬、ＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロッティング、生体組織片の染色等における化学発光検出又は発色検出のために使用することができる。
【００７２】
また、加水分解酵素としてスルファターゼを使用する場合、本発明の酵素反応は、ヘパリンやコンドロイチン硫酸などの硫酸化多糖における硫酸エステルの加水分解等に適用することができ、化粧料や医薬品の製造において利用することができる。
【００７３】
また、加水分解酵素としてリパーゼを使用する場合、本発明の酵素反応は、食品用フレーバーや香料の製造、食品中の油脂の除去、製紙工程における原木からの脂肪（ピッチ）の除去等に適用することができる。また、本発明の酵素反応を油汚れの除去等の洗浄の目的に利用することもできる。
【００７４】
また、加水分解酵素としてプロテアーゼを使用する場合、本発明の酵素反応は、タンパク質の低分子化、タンパク質の除去、繊維の加工・改質等に適用することができる。また、本発明の酵素反応を、タンパク質汚れ除去等の洗浄の目的に利用することができる。
【００７５】
２．加水分解酵素の反応効率の向上剤
また、本発明は、一般式（１）に示すベタイン誘導体を有効成分として含む、加水分解酵素の反応効率の向上剤を提供する。当該向上剤は、前記一般式（１）に示されるベタイン誘導体に加え、前記一般式（２）に示されるベタイン誘導体を更に含んでいてもよい。
【００７６】
当該剤は、加水分解酵素を基質に作用させる酵素反応系で、当該酵素の反応効率を向上させるために使用されるものであり、その使用態様は、前記「１．酵素反応方法」の欄に記載の通りである。
【００７７】
３．キット
更に、本発明は、上記酵素反応方法を行うためのキットをも提供する。本発明のキットは、一般式（１）に示すベタイン誘導体、及び加水分解酵素を含むものである。
【００７８】
本発明のキットは、加水分解酵素としてアルカリホスファターゼを含む場合には、必要に応じて、酵素反応に供される発光基質又は発色基質を含んでいてもよく、また、アルカリホスファターゼは、抗体やタンパク質に連結された状態であってもよい。
【００７９】
また、本発明のキットは、前述する酵素反応についてのプロトコールを示した実験手順書が含まれていてもよい。
【実施例】
【００８０】
以下、実施例を挙げて、本発明を説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。【００８１】
合成例１  Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ−ｎ−ペンチルグリシネート（ベタイン１）の合成（同定）
３００ｍｌの三ツ口フラスコにトリペンチルアミン２５ｍｌを加え、酢酸エチル２５０ｍｌに溶解させた。窒素気流下、ブロモ酢酸エチル８．６４ｍＬを６分間かけてゆっくりと滴下した。滴下終了後、反応溶液を室温で５日間攪拌した。５日後、反応を止め、溶媒を減圧留去し、残渣をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、クロロホルム：メタノール＝１０：１）で精製し、褐色油状物の前駆体を得た。【００８２】
得られた前駆体を蒸留水５０ｍｌに溶解した。この溶液を陰イオン交換カラム（アンバーライト：登録商標ＩＲＡ−４０２、ローム  アンド  ハース社製）を充填したカラムに通した。溶離液をエバポレーターで減圧濃縮し、五酸化二リンの共存下、減圧乾燥し、ベタイン（Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ−ｎ−ペンチルグリシネート）（以下、ベタイン１と表記する）を得た（収量１９．２０ｇ、収率８６％）。得られたベタイン１について、Ｈ  ＮＭＲ、ＡＴＲ−ＩＲ、及びＥＳＩ−ＭＳにより分析した結果を表１〜３に示す。また、ベタイン１の構造式を以下に示す。【００８３】
【化８】
2013035856.tif 000009
【００８４】
【表１】
2013035856.tif 000010
【００８５】
【表２】
2013035856.tif 000011
【００８６】
【表３】
2013035856.tif 000012
【００８７】
合成例２  Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ−ｎ−ヘキシルグリシネート（ベタイン２）の合成（同定）
３００ｍｌの三ツ口フラスコにトリヘキシルアミン２５ｍｌを加え、酢酸エチル１００ｍｌに溶解させた。窒素気流下、ブロモ酢酸エチル７．４ｍＬを３分間かけてゆっくりと滴下した。滴下終了後、反応溶液を室温で５日間攪拌した。５日後、反応を止め、溶媒を減圧留去し、残渣をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、クロロホルム：メタノール＝１０：１）で精製し、褐色油状物の前駆体を得た。【００８８】
得られた前駆体を蒸留水５０ｍｌに溶解した。この溶液を陰イオン交換カラム（アンバーライト：登録商標ＩＲＡ−４０２、ローム  アンド  ハース社製）を充填したカラムに通した。溶離液をエバポレーターで減圧濃縮し、五酸化二リンの共存下、減圧乾燥し、ベタイン（Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ−ｎ−ヘキシルグリシネート）（以下、ベタイン２と表記する）を得た（収量１２．２３ｇ、収率５６％）得られたベタイン２について、Ｈ  ＮＭＲ、ＡＴＲ−ＩＲ、及びＥＳＩ−ＭＳにより分析した結果を表４〜６に示す。また、ベタイン２の構造式を以下に示す。【００８９】
【化９】
2013035856.tif 000013
【００９０】
【表４】
2013035856.tif 000014
【００９１】
【表５】
2013035856.tif 000015
【００９２】
【表６】
2013035856.tif 000016
【００９３】
参考合成例１  Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ−ｎ−ブチルグリシネート（ベタイン３）の合成（同定）
トリペンチルアミンの代わりにトリブチルアミンを使用し、合成時の諸条件を適宜変更した以外は、上記実施例１と同様の方法によってベタイン（Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリ−ｎ−ブチルグリシネート）（以下、ベタイン３と表記する）を得た。得られたベタイン３について、Ｈ  ＮＭＲ、ＡＴＲ−ＩＲ、及びＥＳＩ−ＭＳにより分析した結果を表７〜９に示す。また、ベタイン３の構造式を以下に示す。【００９４】
【化１０】
2013035856.tif 000017
【００９５】
【表７】
2013035856.tif 000018
【００９６】
【表８】
2013035856.tif 000019
【００９７】
【表９】
2013035856.tif 000020
【００９８】
合成例３  Ｎ，Ｎ，−ジ−ｎ−ヘキシル−Ｎ−ｎ−ブチルグリシネート（ベタイン４）の合成（同定）
１００ｍｌの三ツ口フラスコにＮ，Ｎ，−ジ−ｎ−ヘキシル−Ｎ−ｎ−ブチルアミン３．０７ｇを加え、酢酸エチル３０ｍｌに溶解させた。窒素気流下、ブロモ酢酸エチル１．２６ｍＬを３分間かけてゆっくりと滴下した。滴下終了後、反応溶液を室温で５日間攪拌した。２日後、反応を止め、溶媒を減圧留去し、残渣をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、ヘキサン：酢酸エチル＝５０：１→クロロホルム→クロロホルム：メタノール＝２０：１）で精製し、淡黄色油状物の前駆体を得た。【００９９】
得られた前駆体を蒸留水２０ｍｌに溶解した。この溶液を陰イオン交換カラム（アンバーライト：登録商標ＩＲＡ−４０２、ローム  アンド  ハース社製）を充填したカラムに通した。溶離液をエバポレーターで減圧濃縮し、五酸化二リンの共存下、減圧乾燥し、ベタイン（Ｎ，Ｎ，−ジ−ｎ−ヘキシル−Ｎ−ｎ−ブチルグリシネート）（以下、ベタイン４と表記する）を得た（収量１．１０ｇ、収率３２％）得られたベタイン４について、Ｈ  ＮＭＲ、ＡＴＲ−ＩＲ、及びＥＳＩ−ＭＳにより分析した結果を表１０〜１２に示す。また、ベタイン４の構造式を以下に示す。【０１００】
【化１１】
2013035856.tif 000021
【０１０１】
【表１０】
2013035856.tif 000022
【０１０２】
【表１１】
2013035856.tif 000023
【０１０３】
【表１２】
2013035856.tif 000024
【０１０４】
合成例５  Ｎ，Ｎ，−ジ−ｎ−ヘキシル−Ｎ−ｎ−オクチルグリシネート（ベタイン５）の合成（同定）
３００ｍｌの三ツ口フラスコにＮ，Ｎ，−ジ−ｎ−ヘキシル−Ｎ−ｎ−オクチルアミン６．７９ｇを加え、酢酸エチル６８ｍｌに溶解させた。窒素気流下、ブロモ酢酸エチル２．２４ｍＬを５分間かけてゆっくりと滴下した。滴下終了後、反応溶液を室温で５日間攪拌した。７日後、反応を止め、溶媒を減圧留去し、残渣をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、ヘキサン：酢酸エチル＝５０：１→クロロホルム→クロロホルム：メタノール＝２０：１）で精製し、褐色油状物の前駆体を得た。【０１０５】
得られた前駆体を蒸留水２０ｍｌに溶解した。この溶液を陰イオン交換カラム（アンバーライト：登録商標ＩＲＡ−４０２、ローム  アンド  ハース社製）を充填したカラムに通した。溶離液をエバポレーターで減圧濃縮し、五酸化二リンの共存下、減圧乾燥し、ベタイン（Ｎ，Ｎ，−ジ−ｎ−ヘキシル−Ｎ−ｎ−オクチルグリシネート）（以下、ベタイン５と表記する）を得た（収量０．３４ｇ、収率５％）得られたベタイン５について、Ｈ  ＮＭＲ、ＡＴＲ−ＩＲ、及びＥＳＩ−ＭＳにより分析した結果を表１３〜１５に示す。また、ベタイン５の構造式を以下に示す。【０１０６】
【化１２】
2013035856.tif 000025
【０１０７】
【表１３】
2013035856.tif 000026
【０１０８】
【表１４】
2013035856.tif 000027
【０１０９】
【表１５】
2013035856.tif 000028
【０１１０】
実施例１  α−グルコシダーゼの反応速度に及ぼすベタイン誘導体の効果
得られたベタイン誘導体（ベタイン１〜５）の添加による酵素活性向上効果を評価、検討するため、ベタイン誘導体存在下でのα−グルコシダーゼの加水分解速度を測定した。α−グルコシダーゼ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ  Ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ由来）（型番Ｇ３６５１−２５０ｕｎ、シグマアルドリッチ製）の基質としては、紫外可視分光測定から加水分解をモニターできるα−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシド（型番３２５−３４６７１、和光純薬製）を用いた。【０１１１】
基質であるα−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシドは３５０ｎｍに極大吸収波長を持つが、α−グルコシダーゼによってグルコースとｐ−ニトロフェノールに加水分解されると、ｐＨ７．０においてはｐ−ニトロフェノールは水酸基のプロトンが解離してｐ−ニトロフェノラートとなる。結果として、極大吸収波長は長波へシフトし、４０５ｎｍの吸光度が上昇する。４０５ｎｍのｐ−ニトロフェノラートのモル吸光係数（ｐＨ７．０、３７℃）である７６６０Ｍ-1ｃｍ-1を利用すれば、加水分解によって生成するｐ−ニトロフェノールの濃度を見積もることができ、反応速度を算出することができる。【０１１２】
加水分解速度の測定は、酵素反応溶液（１００ｍＭ  リン酸緩衝溶液（ｐＨ７．０），２ｍＭ  α−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシド，２．５×１０-5ｍｇ／ｍＬ  α−グルコシダーゼ）を用いて、３７℃で行った。ベタイン誘導体は、最終濃度０〜１０００ｍＭとなるように上記酵素反応溶液に添加した。【０１１３】
α−グルコシダーゼの反応速度は反応時間に対する４０５ｎｍの吸光度変化のグラフの初期の傾きから算出し、加水分解産物であるｐ−ニトロフェノールのモル吸光係数（ｐＨ７．０、３７℃）７６６０Ｍ-1ｃｍ-1を用いて加水分解速度を算出した。【０１１４】
また、酵素活性の誤差を最小限とするため、ベタイン誘導体添加による効果を活性比で表した。当該「活性比」とは、「ベタイン誘導体の非存在下での酵素の反応速度」に対する「ベタイン誘導体の存在下での酵素の反応速度」の比を指す。【０１１５】
得られた結果を図１及び表１６に示す。なお、図１には、低濃度のベタイン誘導体での本発明の効果を明らかにするために、ベタイン１、２、４及び５が５ｍＭまでの濃度範囲での測定結果を示す。３つのブチル基を有するベタイン３では、１００ｍＭ付近に活性比の極大が存在するが、３つのペンチル基を有するベタイン１では７ｍＭ付近に、３つのヘキシル基を有するベタイン２では、０．５ｍＭ付近にシフトし、活性化に必要となるベタイン誘導体濃度が有意に低下することが示された。特に、表１６から明らかなように、少なくとも２つのペンチル基又はヘキシル基を有するベタイン誘導体（ベタイン１、２、４、及び５）は、３つのブチル基を有するベタイン誘導体（ベタイン３）に比して、１４〜２０００倍も低濃度で反応速度６．５×１０-7〜７．８×１０-7Ｍ  ｍｉｎ-1程度を達成することができていた。なお、ベタイン３は、１００ｍＭの濃度で酵素に対する活性化効果が最大になることが知られている（特開２０１０−２２０６０７号公報参照）。【０１１６】
【表１６】
2013035856.tif 000029
【０１１７】
実施例２  β−グルコシダーゼの反応速度に及ぼすベタイン誘導体の効果
β−グルコシダーゼに与えるベタイン誘導体の添加効果を比較した。β−グルコシダーゼとしては、市販のβ−グルコシダーゼ（Ａｌｍｏｎｄ由来（型番３０６−５０９８１）和光純薬製）を用いて評価し、ベタイン誘導体としてはベタイン１、２及び３を用いた。β−グルコシダーゼの反応速度は、反応時間に対する４０５ｎｍの吸光度変化のグラフの初期の傾きから算出し、加水分解物であるｐ−ニトロフェノールのモル吸光係数（ｐＨ７．０，  ３７℃）７６６０Ｍ-1ｃｍ-1を用いて加水分解速度を算出した。【０１１８】
測定条件は、酵素反応溶液（１００ｍＭ  リン酸緩衝溶液（ｐＨ７．０），  ２ｍＭ  β−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシド，  １．３×１０-3ｍｇ／ｍＬ  β−グルコシダーゼ）を用いて、３７℃で行った。ベタイン１、２及び３はそれぞれ、最終濃度０〜１０００ｍＭとなるように上記酵素反応溶液に添加し、反応時間（分）に対して産生されたｐ−ニトロフェノールの濃度を測定した結果を図２に示す。【０１１９】
図２から明らかなように、３つのペンチル基又はヘキシル基を有するベタイン誘導体（ベタイン１及び２）は、３つのブチル基を有するベタイン誘導体（ベタイン３）に比して、β−グルコシダーゼによる酵素反応を顕著に向上させていた。とりわけ、３つのペンチル基を有するベタイン誘導体（ベタイン１）では１〜４０ｍＭの範囲で、また３つのヘキシル基を有するベタイン誘導体（ベタイン２）は０．５〜１５ｍＭの範囲で、酵素反応効率を顕著に向上できることが明らかになった。【０１２０】
実施例３  α−グルコシダーゼの反応速度に及ぼすベタイン誘導体の混合物による効果
ベタイン誘導体（ベタイン１及び３）の混合物の反応速度に対する効果について検討するため、ベタイン１とベタイン３の混合物を添加して、α−グルコシダーゼの活性比測定を行った。【０１２１】
測定条件は、酵素反応溶液（１００ｍＭ  リン酸緩衝溶液（ｐＨ７．０），２ｍＭ  α−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシド，２．５×１０-4ｍｇ／ｍＬ  α−グルコシダーゼ）を用いて、３７℃で行った。ベタイン１、ベタイン３又はベタイン１及び３の混合物を酵素反応溶液に添加して反応時間６０分の間に産生されたｐ−ニトロフェノールの濃度を測定し、活性比を算出した。ｐ−ニトロフェノールの濃度の測定及び活性比の算出は、前記実施例１に記載の方法に従って行った。【０１２２】
ここで、酵素反応溶液に添加するベタイン１の濃度は、極大活性化濃度付近の３ｍＭとし、ベタイン３の濃度を２５ｍＭとした。また、ベタイン１及び３の混合物については、ベタイン１を３ｍＭ、ベタイン３を２５ｍＭとした。得られた結果を図３に示す。【０１２３】
ベタイン誘導体を混合物として添加すると、ベタイン誘導体が相互作用し合うことによって、酵素反応に対する活性化効果が互いに干渉して活性比はほとんどかわらない、もしくは、低下することが予想された。また、前記試験例１の結果からも明らかなように、ベタイン３は、他のベタイン誘導体に比して酵素に対する活性化効果は劣ることが示されている。しかし、本発明のベタイン誘導体（ベタイン１及び３）を混合して使用すると、図３から明らかなように、ベタイン１又はベタイン３単独の場合と比較して活性比が顕著に上昇することが示された。【０１２４】
実施例４  アルカリフォスファターゼの反応速度に及ぼすベタイン誘導体の効果
グルコシダーゼ以外の加水分解酵素に与えるベタイン誘導体の添加効果を調べるため、リン酸エスエル加水分解酵素であるアルカリホスファターゼを用いて実験を行った。アルカリホスファターゼとしては、市販のアルカリホスファターゼ（Ｅ．ｃｏｌｉ由来（型番０１２−１０６９１）、和光純薬製）を用いて評価し、ベタイン誘導体としてはベタイン１、２及び３を用いた。アルカリホスファターゼの反応速度は、反応時間に対する４０５ｎｍの吸光度変化のグラフの初期の傾きから算出し、加水分解物であるｐ−ニトロフェノールのモル吸光係数（ｐＨ７．０，  ３７℃）７６６０Ｍ-1ｃｍ-1を用いて加水分解速
度を算出した。【０１２５】
測定条件は、酵素反応溶液（１００ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝溶液（ｐＨ７．５），  ２ｍＭ  ｐ−ニトロフェニルホスフェート，  １．０×１０-3ｍｇ／ｍＬ  アルカリホスファターゼ）を用いて、３７℃で行った。ベタイン１、２及び３はそれぞれ、最終濃度０〜５０ｍＭとなるように上記酵素反応溶液に添加し、反応時間（分）に対して産生されたｐ−ニトロフェノールの濃度を測定した結果を図４示す。【０１２６】
図４から明らかなように、３つのペンチル基又はヘキシル基を有するベタイン誘導体（ベタイン１及び２）は、３つのブチル基を有するベタイン誘導体（ベタイン３）に比して、アルカリホスファターゼによる酵素反応を顕著に向上させていた。とりわけ、３つのペンチル基を有するベタイン誘導体（ベタイン１）では０．２〜０．５ｍＭの範囲で、また３つのヘキシル基を有するベタイン誘導体（ベタイン２）は０．１〜０．６ｍＭの範囲で、アルカリホスファターゼによる酵素反応効率を顕著に向上できることが明らかになった。【０１２７】
実施例５  スルファターゼの反応速度に及ぼすベタイン誘導体の効果
エステル加水分解酵素であるスルファターゼに対するベタインの添加効果を検討するため、ベタイン非存在下、ベタイン１（５ｍＭ）、ベタイン３（１００ｍＭ）の存在下においてリパーゼによる基質の加水分解反応を行った。【０１２８】
スルファターゼとしては、市販のスルファターゼ（Ｈｅｌｉｘ  Ｐｏｍａｔｉａ由来）（型番Ｓ９９２６−１０ＫＵ、シグマアルドリッチ製）を使用した。また、基質としては、加水分解によってα−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシドと同じ生成物（即ち、ｐ−ニトロフェノ−ル）を生成し、紫外可視分光測定から加水分解をモニターできるｐ−ニトロフェニルサルフェートカリウム塩（型番Ｐ４９０３−１０ＭＧ、シグマアルドリッチ製）を使用した。従って、本実施例５においても、実施例１と同様の方法により反応速度を算出して活性比を求めることができる。【０１２９】
加水分解速度の測定は、酵素反応溶液（１００ｍＭ  リン酸緩衝溶液（ｐＨ７．０），２．０ｍＭ  ｐ−ニトロフェニルサルフェートカリウム塩，１．２５×１０-2ｍｇ／ｍＬ  スルファターゼ）を用いて、３７℃で行った。前記酵素反応溶液にベタイン１又はベタイン３を添加して応時間０〜６０分間で産生されたｐ−ニトロフェノールの濃度を測定し、活性比を算出した。結果を図５に示す。【０１３０】
図５から明らかなように、他の加水分解酵素と同様に、ベタイン１はベタイン３の２０分の１の濃度でもスルファターゼによる加水分解を促進していることが明らかとなった。【０１３１】
実施例６  リパーゼの反応速度に及ぼすベタイン誘導体の効果
エステル加水分解酵素であるリパーゼに対するベタインの添加効果を検討するため、ベタイン非存在下、ベタイン１（５ｍＭ）、ベタイン３（１００ｍＭ）の存在下においてリパーゼによる基質の加水分解反応を行った。【０１３２】
リパーゼとしては、市販のリパーゼＡＹＳアマノ（型番３２９−５８３７１、和光純薬製）を使用した。また、リパーゼの基質としては、加水分解によってα−ｐ−ニトロフェニル−Ｄ−グルコピラノシドと同じ生成物（即ち、ｐ−ニトロフェノ−ル）を生成し、紫外可視分光測定から加水分解をモニターできる４−ニトロフェニルブチレート（型番Ｎ９８７６−１Ｇ、シグマアルドリッチ製）を用いた。従って、本実施例６においても、実施例１と同様の方法により反応速度を算出して活性比を求めることができる。【０１３３】
加水分解速度の測定は、酵素反応溶液（１００ｍＭ  リン酸緩衝溶液（ｐＨ７．０），０．５ｍＭ  ４−ニトロフェニルブチレート，５．０×１０-3ｍｇ／ｍＬリパーゼ）を用いて、３７℃で行った。前記酵素反応溶液にベタイン１又はベタイン３を添加して反応時間０〜３０分間で産生されたｐ−ニトロフェノールの濃度を測定し、活性比を算出した。結果を図６に示す。【０１３４】
図６から明らかなように、ベタイン３はわずかに活性化をもたらしたが、ベタイン１はベタイン３の２０分の１の濃度でもリパーゼによる加水分解を大幅に促進していることが明らかとなった。【０１３５】
実施例７  プロテアーゼの反応速度に及ぼすベタイン誘導体の効果
ペプチド結合（アミド結合）の加水分解酵素であるプロテアーゼに対するベタインの添加効果を検討するため、ベタイン非存在下、ベタイン１（５ｍＭ）、ベタイン３（１００ｍＭ）の存在下においてプロテアーゼによる加水分解反応を行った。【０１３６】
プロテアーゼとしては、市販のプラスミン（Ｈｕｍａｎ  ｐｌａｓｍａ由来）（型番Ｐ１８６７−１５０ＭＧ、シグマアルドリッチ製）又はトリプシン（型番２０３−１１３０２、和光純薬製）を用いた。また、基質としては、加水分解によってｐ−ニトロアニリンを生成し、紫外可視分光測定から加水分解をモニターできるＺ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−ｐ−ニトロアニリド（型番Ｃ２２７６−２５ＭＧ、シグマアルドリッチ製）を用いた。【０１３７】
プロテアーゼの反応速度は反応時間に対する４０５ｎｍの吸光度変化のグラフの初期の傾きから算出し、加水分解産物であるｐ−ニトロアニリンのモル吸光係数（ｐＨ７．０、３７℃）６１２３Ｍ-1ｃｍ-1を用いて加水分解速度を算出した。【０１３８】
加水分解速度の測定は、酵素反応溶液（１００ｍＭ  リン酸緩衝溶液（ｐＨ７．０），０．４ｍＭ  Ｚ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｒｇ−ｐ−ニトロアニリド，１．２５×１０-3ｍｇ／ｍＬプラスミン又は５．０×１０-4ｍｇ／ｍＬトリプシン）を用いて、３７℃で行った。反応時間０〜６０分間で産生されたｐ−ニトロフェノールの濃度を測定し、活性比を算出した。結果を図７に示す。【０１３９】
図７から明らかなように、他の加水分解酵素と同様に、ベタイン１はベタイン３の２０分の１の濃度でもアミド結合の加水分解を促進していることが示された。
【図１】
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【図２】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図３】
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【国際調査報告】
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