(57)【要約】【課題】  新規な安定したタンパク質の組成物、およびタンパク質組成物の安定化方法を提供すること。【解決手段】  最頻粒子径が５００ｎｍ以下である超微細気泡を含む水とタンパク質を含む組成物、および最頻粒子径が５００ｎｍ以下である超微細気泡を含む水とタンパク質を混合することを含む、タンパク質組成物の安定化方法。【選択図】  図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
最頻粒子径が５００ｎｍ以下の超微細気泡を含む水とタンパク質を含む組成物。
【請求項２】
超微細気泡の最頻粒子濃度が１ｍｌあたり１００万個以上である、請求項１に記載の超微細気泡を含む水とタンパク質を含む組成物。
【請求項３】
粒子径１０００ｎｍ以下の気泡の粒子濃度が１ｍｌあたり５０００万個以上である、請求項１ないし２に記載の超微細気泡を含む水とタンパク質を含む組成物。
【請求項４】
前記超微細気泡が空気、酸素、水素、窒素、炭酸ガス、アルゴン、ネオン、キセノン、フッ素化気体および不活性化ガスから選択される１種または２種以上の気体でなる、請求項１ないし３のいずれかに記載の組成物。
【請求項５】
前記タンパク質が酵素である、請求項１ないし４のいずれかに記載の組成物。
【請求項６】
前記酵素が、ペルオキシダーゼ、プロテアーゼ、セルラーゼ、アミラーゼ、またはリパーゼである請求項５に記載の組成物。
【請求項７】
最頻粒子径が５００ｎｍ以下である超微細気泡を含む水とタンパク質を混合することを含む、タンパク質組成物の安定化方法。
【請求項８】
最頻粒子径が５００ｎｍ以下であり、最頻粒子濃度が１ｍｌあたり１００万個以上である超微細気泡を含む水とタンパク質を混合することを含む、タンパク質組成物の安定化方法。
【請求項９】
請求項７または８に記載のタンパク質組成物の安定化方法であって、超微細気泡を含む水の粒子径１０００ｎｍ以下の気泡の粒子濃度が１ｍｌあたり５０００万個以上である、タンパク質組成物の安定化方法。                                               
【請求項１０】
前記超微細気泡が空気、酸素、水素、窒素、炭酸ガス、アルゴン、ネオン、キセノン、フッ素化気体および不活性化ガスから選択される１種または２種以上の気体を内包する、請求項７ないし９のいずれかに記載のタンパク質組成物の安定化方法。
【請求項１１】
前記タンパク質が酵素である、請求項７ないし１０のいずれかに記載のタンパク質組成物の安定化方法。
【請求項１２】
前記酵素が、ペルオキシダーゼ、プロテアーゼ、セルラーゼ、アミラーゼ、またはリパーゼである、請求項１１記載のタンパク質組成物の安定化方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、最頻粒子径が５００ｎｍ以下である超微細気泡（ナノバブル、ＮＢとも呼ぶ）を含む水とタンパク質を含む組成物および最頻粒子径が５００ｎｍ以下である超微細気泡を含む水とタンパク質を混合することを含む、タンパク質組成物の安定化方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
酵素、抗体、ペプチド等のタンパク質は、洗剤、工業、化粧品、食品加工、医薬品、診断・検査、バイオセンサーへ広く利用されている。タンパク質の水溶性製剤／形態は、粉末に比べ取り扱いに優れる等の点から酵素を大量に利用する業界で汎用されている。しかし、一般に水溶液中の酵素は粉末体と比べ著しく不安定で保存性が悪く、長期間生理活性を維持できないという問題がある。従来よりタンパク質の生理活性を低下させずに供給する方法として、凍結乾燥法などを利用して熱をかけずにタンパク質を精製、安定化させ製剤を供給する方法が知られていた。またタンパク質を水溶液中で安定化させる方法としては、ウリカーゼ、パーオキシダーゼの安定化剤としてグリセリン等の多価アルコールを含有させる方法（特許文献１：特開平６−７０７９８）、コレステロールオキシダーゼを含む水溶液に、牛血清アルブミンやグルコース等の糖類あるいはリジン等のアミノ酸を添加する技術（特許文献２：特開平８−１８７０９５）、タンパク質は限定されないが、水溶液中に安定化剤としてグアニジン塩酸塩、尿素、ピリジン等の有機化合物を添加する技術（特許文献３：特開２０１１−６７２０２）等が知られていた。【０００３】
しかしながら、これらの公知技術にはいくつか課題があった。例えば、凍結乾燥法では脱水により変性するタンパク質には使用できないこと、および乾燥工程中に吸湿や酸化による変質が起こり易い等の課題があり、さらに酵素水溶液をその都度調整する必要があるため煩雑であった。タンパク質の水溶液中での安定化技術では、ウリカーゼ、パーオキシダーゼの安定化に多価アルコールを用いる方法、およびコレステロールオキシダーゼ水溶液の安定化に牛血清アルブミンや糖類やアミノ酸を用いる方法があるが、いずれも特定のタンパク質を安定化させる方法であり汎用性に欠けるという課題があった。また、タンパク質水溶液の安定化にグアニジン塩酸塩などの有機化合物を用いる方法は、汎用性はあるが、酵素と他の混合製剤とした場合、有機化合物と反応するものが含まれると利用できないとの課題があり、また添加濃度も適正な濃度に調整しなければならず煩雑であった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開平６−７０７９８
【特許文献２】特開平８−１８７０９５
【特許文献３】特開２０１１−６７２０２
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は上記の課題を有しない、新規な安定したタンパク質の組成物、およびタンパク質の安定化方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
上記課題に応えるべく、鋭意研究を重ねた結果、超微細気泡を含有する水とタンパク質を混合することにより、安定なタンパク質組成物が得られることを見いだし、本発明をなすに至った。
本発明は、最頻粒子径が５００ｎｍ以下である超微細気泡を含む水とタンパク質を含む組成物を提供する。また本発明は、超微細気泡の最頻粒子濃度が１ｍｌあたり１００万個以上である上記の超微細気泡を含む水とタンパク質を含む上記の組成物を提供する。さらには、本発明は粒子径１０００ｎｍ以下の気泡の粒子濃度が１ｍｌあたり５０００万個以上である超微細気泡を含む水とタンパク質を含む上記の組成物を提供する。【０００７】
さらに本発明は、最頻粒子径が５００ｎｍ以下である超微細気泡を含む水とタンパク質を混合することを含む、タンパク質組成物の安定化方法を提供する。また本発明は、最頻粒子径が５００ｎｍ以下であり、超微細気泡の最頻粒子濃度が１ｍｌあたり１００万個以上である超微細気泡を含む水とタンパク質を混合することを含む、タンパク質組成物の安定化方法を提供する。さらには、本発明は最頻粒子径が５００ｎｍ以下であり、粒子径１０００ｎｍ以下の気泡の粒子濃度が１ｍｌあたり５０００万個以上であり、任意に超微細気泡の最頻粒子濃度が１ｍｌあたり１００万個以上であることができる超微細気泡を含む水とタンパク質を混合することを含む、タンパク質組成物の安定化方法を提供する。【０００８】
本発明において前記超微細気泡内部は、これらに限定されるものではないが、空気、酸素、水素、窒素、炭酸ガス、アルゴン、ネオン、キセノン、フッ素化気体および不活性化ガスから選択される１種または２種以上の気体であることができる。【０００９】
本発明のタンパク質組成物において使用できるタンパク質としては、特に限定されないが、酵素、動物由来タンパク質、魚由来タンパク質、植物由来タンパク質、組み換えタンパク質、酵素、抗体、ペプチド等が挙げられ、たとえば以下のようなものが使用できる。
酵素類：酵素類としては、酸化還元酵素（コレステロールオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、アスコルビン酸オキシダーゼ、ポリフェノールオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ等）；転移酵素（アシルトランスフェラーゼ、スルホトランスフェラーゼ、トランスグルコシダーゼ等）；加水分解酵素（プロテアーゼ、セリンプロテアーゼ、アミラーゼ、リパーゼ、セルラーゼ、グルコアミラーゼ、リゾチーム、等）；付加脱離酵素（ペクチンリアーゼ等）；異性化酵素（グルコースイソメラーゼ等）；合成酵素（脂肪酸シンターゼ、リン酸シンターゼ、クエン酸シンターゼ、ヒアルロン酸リアーゼ、炭酸デヒドラーゼ等）；が使用できる。
組み換えタンパク質：組み換えタンパク質としては、タンパク製剤（インターフェロンα、成長ホルモン、インスリン、血清アルブミン）、ワクチン等が使用できる。
抗体：抗体としては、モノクローナル抗体及びポリクローナル抗体が使用できる。
ペプチド：ペプチドとしては、特にアミノ酸を限定するものではなく、ジペプチド、トリペプチド、ポリペプチド等が使用できる。【００１０】
好ましい態様においては、タンパク質は水溶性タンパク質であり、より好ましくはタンパク質は酵素であり、さらに好ましくはタンパク質は水溶性の酵素であり、最も好ましくはペルオキシダーゼ、プロテアーゼ、セルラーゼ、アミラーゼ、およびリパーゼから選択される少なくとも１つであることができる。【００１１】
使用されるタンパク質の量は、タンパク質の種類、用途などにより変化する。好ましい量は実験により適宜決定することができるが、一般的には１ｎｇ／ｍｌから３００ｍｇ／ｍｌ、好ましくは１０ｎｇ／ｍｌから１００ｍｇ／ｍｌ、さらに好ましくは３０ｎｇ／ｍｌから５０ｍｇ／ｍｌの範囲で使用することができる。【００１２】
本発明において使用される水は、これらに限定されるものではないが、水道水、精製水、イオン交換水、純水、超純水、脱イオン水、蒸留水、緩衝液、上水、天然水、ろ過水、高純水、飲料水および電解水から選択されることができる。
また水溶性溶媒、たとえばアルコール、グリコール、グリセリン、エーテル、ケトン、エステルなどを加えることもできる。
【発明の効果】
【００１３】
本発明のタンパク質を含む組成物は安定性に優れ、特にはｐＨの変化に対して安定であるｐＨ安定性、温度の影響を低減する温度安定性、および光による影響を低減する光安定性に優れるという効果を奏する。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】超微細気泡を含む水中の気泡の粒径分布の測定結果を示す図である。
【図２】日本薬局方精製水中の気泡の粒径分布の測定結果を示す図である。
【図３】カタラーゼ安定性測定試験の結果を示す図である。
【図４】リパーゼ安定性測定試験の結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
本発明において使用される超微細気泡は、最頻粒子径が５００ｎｍ以下、好ましくは最頻粒子径が３００ｎｍ以下、さらに好ましくは最頻粒子径が１５０ｎｍ以下であり、最も好ましくは最頻粒子径が１００ｎｍ以下であり、最頻粒子径の気泡の粒子濃度は１ｍｌ当たり好ましくは１００万個以上、さらに好ましくは３００万個以上、さらに好ましくは５００万個以上、さらに好ましくは７００万個以上、さらに好ましくは１０００万個以上、さらに好ましくは５０００万個以上、さらに好ましくは９０００万個以上、さらに好ましくは１億個以上、さらに好ましくは５億個以上、最も好ましくは９億個以上である。
【００１６】
本発明においては、総粒子濃度は１ｍｌあたり好ましくは５０００万個以上、さらに好ましくは７０００万個以上、さらに好ましくは８０００万個以上、さらに好ましくは１億個以上、さらに好ましくは６億個以上、さらに好ましくは１０億個以上、さらに好ましくは３０億個以上、さらに好ましくは５０億個以上、さらに好ましくは７０億個以上、さらに好ましくは１００億個以上、さらに好ましくは２００億個以上、さらに好ましくは５００億個以上、最も好ましくは７００億個以上であることができる。さらに好ましい態様では、１０００ｎｍ以上の気泡はほとんど存在しない。
【００１７】
本発明で使用される超微細気泡の粒径は非常に小さいために通常の粒度分布測定装置では正確に測定することができない。そのため本明細書中では、ナノ粒子解析システム  ナノサイトシリーズ（ＮａｎｏＳｉｇｈｔ社製）により測定した数値を利用している。ナノ粒子解析システム  ナノサイトシリーズ（ＮａｎｏＳｉｇｈｔ社製）は、ナノ粒子のブラウン運動の速度を計測し、その速度から粒子径を算出する。最頻粒子径は、存在する粒子の粒子径分布から確認でき、個数が極大値となる時の粒子径をいう。
なお、本発明における超微細気泡の粒子径および個数は、組成物配合後、２４時間の時点で測定した数値をいう。
【００１８】
なお、本願発明の組成物は、これらに限定されるものではないが、防腐剤および安定剤などの添加剤を含むことができる。防腐剤としては、これらに限定されるものではないが、たとえばポリヘキサメチレンビグアニドおよびパラベンなどが使用できる。また安定剤としては、これらに限定されるものではないが、たとえば糖類、抗生物質、アミノ配糖体、有機酸、補酵素、およびアミノ酸などが使用できる。また本願発明の組成物は界面活性剤を含むことができる。界面活性剤は水不溶性物質または水難溶性物質の添加剤を含む場合のみならず、水溶性の添加物を使用する場合でも、使用条件などに応じて適宜添加することができる。
【００１９】
超微細気泡表面のゼータ電位は、気泡の安定性に影響を与える。本発明で使用される超微細気泡表面は帯電し、そのゼータ電位の絶対値は５ｍＶ以上、好ましくは７ｍＶ以上、より好ましくは１０ｍＶ以上、さらに好ましくは２０ｍＶ以上、さらに好ましくは２５ｍＶ以上、最も好ましくは３０ｍＶ以上である。また、ゼータ電位の絶対値は、溶液の粘性率／溶液の誘電率に比例するため、低温条件下で超微細気泡を含む水とタンパク質を混合するほど安定性は高くなると考えられている。
【００２０】
本発明で使用される超微細気泡は、任意の公知の手段、たとえばスタティックミキサー式、ベンチュリ式、キャビテーション式、蒸気凝集式、超音波方式、旋回流方式、加圧溶解方式、微細孔方式で発生させることができる。好ましい気泡の発生方法は気液混合せん断方式である。
【００２１】
気液混合せん断方式による超微細気泡の発生に有用な装置としては、たとえば特許第４１１８９３９号に開示されている装置があげられる。この装置においては、流体旋回室内に導入された気液混合流体の多くは、前述の従来装置におけるように単純に吐出口に向うのとは異なり、一旦、吐出口のある方向とは反対方向に旋回流として進む。そして、その旋回流は、第１端壁部材によって反転させられ該第１端壁部材から第２端壁部材に向けて進むことになるが、このときの旋回回転半径は第１端壁部材に向かうときに比べて小さくなるので、その流速は高速となり、従って、該液体内に含まれる気体への剪断力が大きくなり、その微細化が促進される。
【００２２】
タンパク質の水溶液を超微細気泡発生装置により処理し、水溶液中に超微細気泡を発生させることにより、タンパク質が水中に溶解している本発明の組成物を製造することができる。また、超微細気泡を含む水に、タンパク質を溶解することによっても本発明の組成物を製造することができる。前記の超微細気泡を含む水は、先に述べた通りの最頻粒子径および個数を有することができる。
【００２３】
本明細書における本発明の説明および実施例の記述は本発明の様々な例示的な実施態様の詳細な説明のためにのみあり、当業者は本発明の範囲から逸脱することなく、本明細書に開示された実施態様に様々な改良および変更を行うことができる。したがって、本明細書の記載は本発明の範囲を何ら制限するものではなく、本発明の範囲は特許請求の範囲の記載によってのみ決定される。
【実施例】
【００２４】
大気の超微細気泡を含む水の調整
気液混合せん断方式による超微細気泡発生装置である株式会社協和機設製の「ＢＵＶＩＴＡＳ」により、日本薬局方精製水を使用して、超微細気泡を発生させた。生成した超微細気泡の粒径をナノ粒子解析システム  ナノサイトシリーズ（NanoSight社製）により測定した。測定結果を図１に示す。図の横軸はｎｍ単位での粒子径を、縦軸は１ｍｌ当たりのＮＢ粒子数（ナノバブル粒子数）（１０６個／ｍｌ）を示す。また図２に、日本薬局方精製水についての微細気泡の測定結果を示す。
生成した超微細気泡を含む水の最頻粒子径は８６ｎｍ、最頻粒子径における粒子濃度は７．５７×１０６個／ｍｌ、総粒子濃度は６．８６×１０８個／ｍｌであった。
日本薬局方精製水については、粒子濃度が非常に少なく、正規分布が見られないことから測定結果はノイズであると判断された。
以下の実施例においては、大気の超微細気泡を含む水は上記と同様に調整され、ブランクの比較例としては、大気の超微細気泡を含む水の代わりに、日本薬局方精製水を使用したものを用いた。【００２５】
１．  ペルオキシターゼの２０℃、５０℃における１０日間の安定性
ストレプトアビジン  ペルオキシダーゼを大気の超微細気泡を含む水に５０ｎｇ／ｍｌになるように加え、チューブに１．０ｍｌずつ分注し、２０、５０℃の条件で１、３および１０日間密栓保存した。次に、保存したストレプトアビジン  ペルオキシダーゼ水溶液１００μｌに、下記の通り調整した基質液を１００μｌ加え発色させた。
（基質液の調整方法）
下記組成からなる試薬を混合して基質液を得た。
ｏ−フェニレンジアミン  タブレット（ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ社製）：１個
７０ｍＭクエン酸緩衝液（クエン酸−リン酸ナトリウム；ｐＨ５．０）：１２．５ｍｌ
過酸化水素液：５μｌ
（酵素濃度および酵素活性残存率の算出方法）
サンプルに４Ｎ  Ｈ２ＳＯ４溶液を５０μｌ加え、発色反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）で４９２ｎｍにおける吸光度（Ａ４９２）を測定した。酵素濃度は、ストレプトアビジン  ペルオキシダーゼを用いて作成した検量線から求めた。また、サンプルの初期酵素活性をＡ、保存後の酵素活性をＢとし、次式から「酵素活性残存率」を算出した。
酵素活性残存率（％）＝（１−（Ａ−Ｂ）／Ａ）×１００
なお最頻粒子径における濃度は、最頻粒子径における濃度測定値（１０６個／ｍｌ）×測定時の希釈倍率として計算された。また総粒子濃度は、総粒子濃度における濃度測定値（１０８個／ｍｌ）×測定時の希釈倍率として計算された。
結果を下記の表１および表２に示す。【００２６】
【表１】
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【００２７】
【表２】
2013062054.tif 000004
【００２８】
実施例１−３は２０℃で１日、３日および１０日保存した時の結果を示し、実施例４−６は５０℃で１日、３日および１０日保存した時の結果を示す。２０℃における比較では酵素残存率が著しく向上したことが示されている。また５０℃における結果も非常に優れたものであった。【００２９】
２．  酵素の熱（８０℃）に対する安定性
（酵素液の調整）
ストレプトアビジン  ペルオキシダーゼを大気の超微細気泡を含む水に５０ｎｇ／ｍｌになるように加え、チューブに１．０ｍｌずつ分注し、８０℃の条件で３０分間密栓保存した。このとき、超微細気泡を含む水の最頻粒子濃度を、それぞれ１ｍｌあたり１０６個（実施例７および８）、１０７個（実施例９および１０）、１０８個（実施例１１および１２）になるように調整した。
次に、保存したストレプトアビジン  ペルオキシダーゼ水溶液１００μｌに、調整した下記試薬（基質液）を１００μｌ加え発色させた。
（基質液の調整）
下記組成からなる試薬を混合して基質液を得た。
ｏ−フェニレンジアミン  タブレット（ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ社製）：１個
７０ｍＭクエン酸緩衝液（クエン酸‐リン酸ナトリウム  ｐＨ５．０）：１２．５ｍｌ
過酸化水素液：５μｌ
（酵素濃度および酵素活性残存率の算出方法）
サンプルに４Ｎ  Ｈ２ＳＯ４溶液を５０μｌ加え、発色反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）で４９２ｎｍにおける吸光度を測定した。酵素濃度は、ストレプトアビジン  ペルオキシダーゼを用いて作成した検量線から求めた。また、サンプルの初期酵素活性をＡ、保存後の酵素活性をＢとし、次式から「酵素活性残存率」を算出した。
酵素活性残存率（％）＝（１−（Ａ−Ｂ）／Ａ）×１００
結果を下記の表３に示す。
総粒子濃度の増大がより優れた結果を提供することが示されている。
なお、実施例８において酵素残存率は０．０％であり、実施例１０においては酵素残存率は１５．２％となっている。比較例と比較して結果は向上しているものの、８０℃で８０分という条件下では実施例１２におけるように数億個の最頻粒子径濃度と数百億個の総粒子濃度が望ましいと考えられる。【００３０】
【表３】
2013062054.tif 000005
【００３１】
３．  酵素のｐＨに対する安定性
大気の超微細気泡を含む水を用いて、クエン酸緩衝液（ｐＨ４．６）、酢酸緩衝液（ｐＨ５．７）、リン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、ホウ酸緩衝液（ｐＨ８．９）を調整し、それぞれに、ストレプトアビジン  ペルオキシダーゼを５０ｎｇ／ｍｌになるように加えた。これをチューブに１．０ｍｌずつ分注し、８０℃の条件で２０分間密栓保存した。ストレプトアビジン  ペルオキシダーゼ水溶液１００μｌに、調整した下記試薬（基質液）を１００μｌ加え発色させた。
（基質液の調整）
下記組成からなる試薬を混合して基質液を得た。
ｏ−フェニレンジアミン  タブレット（ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ社製）：１個
７０ｍＭクエン酸緩衝液（クエン酸‐リン酸ナトリウム  ｐＨ５．０）：１２．５ｍｌ
過酸化水素液：５μｌ
（酵素濃度および酵素活性残存率の算出）
サンプルに４Ｎ  Ｈ２ＳＯ４溶液を５０μｌ加え、発色反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）で４９２ｎｍにおける吸光度を測定した。酵素濃度は、ストレプトアビジン  ペルオキシダーゼを用いて作成した検量線から求めた。また、サンプルの初期酵素活性をＡ、保存後の酵素活性をＢとし、次式から「酵素活性残存率」を算出した。
酵素活性残存率（％）＝（１−（Ａ−Ｂ）／Ａ）×１００
結果を下記の表４に示す。
本発明により広範なｐＨ範囲において優れた安定性が提供されることが示されている。【００３２】
【表４】
2013062054.tif 000006
【００３３】
４．  プロテアーゼの熱（８０℃）安定性
（酵素液の調整）
プロテアーゼを大気の超微細気泡を含む水に１０ｍｇ／ｍｌになるように加え、８０℃で３０分間放置した後、チューブに９９０μｌずつ分注した。アゾカゼイン  トリス−Ｃｌ（Ａｚｏｃａｓｅｉｎ  Ｔｒｉｓ−Ｃｌ）（１．３Ｍ）、ＣａＣｌ２（２０ｍＭ）溶液を０．０５（ｗ／ｖ）％になるように１０μｌ加え、６０℃に設定したヒーティングブロック（ヤマト科学株式会社製）で３０分間密栓保存した。
次に１０％（ｗ／ｖ）トリクロロ酢酸を１．１ｍｌ添加し２５〜２７℃の室温下で３０分間待ち、反応を停止させた。沈殿したタンパク質を分離するため、１３０００×ｇで１０分間遠心し、上清１ｍｌを別の１Ｍ  ＮａＯＨが１ｍｌ入ったチューブに発色させた。
（酵素活性および酵素活性残存率の算出方法）
調整した酵素液を用いて、マイクロプレートリーダー（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）で４５０ｎｍにおける吸光度（Ａ４５０）を測定した。また、ブランクにおいても上記と同様に４５０ｎｍにおける吸光度（Ａ４５０ｂ）を測定し、次式を用いて「酵素活性」として算出した。
酵素活性（Ｕ／ｍｌ）＝（Ａ４５０−Ａ４５０ｂ）／（０．００１×３０）
＊１ｕｎｉｔ（Ｕ）のプロテアーゼ活性は、「４５０ｎｍにおける吸光度が１分あたり０．００１増加すること」と定義する。
次に、サンプルの初期酵素活性をＡ、３０分保存したサンプルの酵素活性をＢとし、次式から「酵素活性残存率」を算出した。
酵素活性残存率（％）＝（１−（Ａ−Ｂ）／Ａ）×１００
結果を下記の表５に示す。
本発明によりプロテアーゼについても優れた熱安定性が得られることが示されている。【００３４】
【表５】
2013062054.tif 000007
【００３５】
５．カタラーゼの安定性
（試験方法）
（１）カタラーゼを精製水または超微細気泡を含む水（最頻粒子径；100nm、最頻粒子濃度；8.77×10６／ml、粒子径1000nm以下の総粒子濃度；6.18×10８／ml）にて１mg／ml（3809Unit／ml）水溶液に調整した。
（２）マイクロチューブに分注したカタラーゼ水溶液１mlをサーモシェイカー（500rpm）にて６２．５℃×所定の時間（20、30、40、50分）インキュベートした。その後、遠心分離器（14000rpm×５分間）にて沈殿処理した。
（３）処理したカタラーゼ水溶液の上清１００μL、３％過酸化水素水２００μL、リン酸緩衝液  （500Mm・pH5.8）２００μLと精製水１００μLをチューブに取り室温×１５分間反応させた。
（４）反応させた後、酵素を完全に失活するために100℃×５分間熱処理した。
（５）反応液を１００μL分取し、２９０nmにおける吸光度を測定した。測定した吸光度より検量線を用い過酸化水素分解率を算出した。
結果を図３に示す。【００３６】
６．リパーゼの安定性
（試験方法）
（１）リパーゼを精製水または超微細気泡を含む水（最頻粒子径；113nm、最頻粒子濃度；36.4×10６／ml、粒子径1000nm以下の総粒子濃度；20.9×10８／ml）にて０．０２mg／ml（２３．５２Unit／ml）水溶液に調整した。
（２）調整したリパーゼ水溶液を７０℃にて５分間インキュベートした。
（３）処理したリパーゼ水溶液５０μL、以下に記載された方法で調整された基質液１００μL、トリス塩酸緩衝液（pH8.2）５０μLを所定の時間×室温で反応させた。
反応液を分取し、４１０nmにおける吸光度を測定した。
結果を図４に示す。
（基質液の調整）
精製水１００mlに０．０１３５gのp−ニトロフェニルラウレート、０．０１７gのドデシル硫酸ナトリウム、１．０gのTriton X−100を混合し、６５℃にて水溶させた後、冷却した。
【図１】
2013062054.tif 000008
【図２】
2013062054.tif 000009
【図３】
2013062054.tif 000010
【図４】
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【国際調査報告】
2013062054.tif 000012
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