(57)【要約】  簡便な操作で正確なホモシステインを測定できる方法の提供。  ホモシステイン含有試料中において、ホモセリンにアーキア由来ホモセリン脱水素酵素を作用させてホモセリン脱水酵素活性を測定することを特徴とする、当該試料中のホモシステイン濃度の測定方法。【特許請求の範囲】
【請求項１】
ホモシステイン含有試料中において、ホモセリンにアーキア由来ホモセリン脱水素酵素を作用させてホモセリン脱水素酵素活性を測定することを特徴とする、当該試料中のホモシステイン濃度の測定方法。
【請求項２】
アーキア由来ホモセリン脱水素酵素が、スルフォロバス由来のホモセリン脱水素酵素である請求項１記載の測定方法。
【請求項３】
アーキア由来ホモセリン脱水素酵素が、スルフォロバス・トコダイ由来のホモセリン脱水素酵素である請求項１又は２記載の測定方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血液等の試料中のホモシステインの測定方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ホモシステインは、メチオニンの代謝中間物であり、健常の血漿中の濃度は低く、３〜１５μＭである。しかし、ホモシステインの血中濃度が高くなると、心血管疾患の危険因子になることが知られている。例えば冠動脈疾患患者や脳血管疾患患者では血液中ホモシステイン濃度が高値になることが知られており、さらに糖尿病、高血圧、高脂血症、腎不全、妊娠時の合併症、アルツハイマー病等でも血中ホモシステイン濃度が高くなるという報告もある。その作用は、血中ホモシステイン濃度の上昇によってホモシステインが酸化した際に生じる過酸化水素やスーパーオキシドラジカル等の酸化ストレスによって内皮細胞障害を起こし、動脈硬化等が促進されるといわれている。【０００３】
従来のホモシステインの定量方法には検体中のホモシステインをＳＨ基と反応する蛍光標識試薬で標識し、高速液体クロマトグラフィーにより分離して定量するプレラベルＨＰＬＣ法、検体を高速液体クロマトグラフィーで分離し、後にＳＨ基と反応する蛍光標識試薬で標識して定量するポストラベルＨＰＬＣ法、ホモシステインと特異的に作用する酵素を用い、酵素反応生成物を抗体法により定量する酵素免疫法、ホモシステインに特異的に作用する酵素を用い、酵素反応生成物を酵素法により定量する方法など、幾つかの定量方法が存在する（特許文献１〜４）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特許第３８６９６０１号公報
【特許文献２】特許第４２３３１６０号公報
【特許文献３】特許第４８０７９２０号公報
【特許文献４】米国特許出願公開２００４／００９６９２９号公報
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】日本大学生産工学部第４４回学術講演概要（２０１１−１２−３）５−５８
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかしながら、従来のホモシステインの測定法のうち、ＨＰＬＣを用いる方法は操作が煩雑であるという問題があり、酵素法については２種以上の酵素や酵素と抗体の組み合わせを使用するため操作が煩雑になる、試薬が高価になる等の問題があった。
従って、本発明は、簡便な操作で正確にホモシステインを測定できる方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
そこで本発明者は、新たなホモシステインの定量法について種々検討してきたところ、ホモシステインに対する活性を有しないことが知られている超好熱アーキア由来ホモセリン脱水素酵素を、ホモセリンとホモシステインの共存系に作用させたところ、全く意外なことに、ホモシステインにより当該酵素のアロステリック効果が生じ、当該酵素のホモセリンに対する脱水素活性がホモシステイン濃度依存的に向上し、その脱水素活性を直接測定すれば、試料中のホモシステイン濃度が正確に測定できることを見出し、本発明を完成した。【０００８】
すなわち、本発明は、以下の［１］〜［３］に係るものである。
［１］ホモシステイン含有試料中において、ホモセリンにアーキア由来ホモセリン脱水素酵素を作用させてホモセリン脱水素酵素活性を測定することを特徴とする、当該試料中のホモシステイン濃度の測定方法。
［２］アーキア由来ホモセリン脱水素酵素が、スルフォロバス由来のホモセリン脱水素酵素である［１］記載の測定方法。
［３］アーキア由来ホモセリン脱水素酵素が、スルフォロバス・トコダイ由来のホモセリン脱水素酵素である［１］又は［２］記載の測定方法。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、１種類の酵素を反応させるだけで試料中のホモシステイン濃度が簡便かつ正確に定量できる。また、反応系が単純なので、分光光度計を備えた自動分析装置により迅速に定量できる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】ホモシステインによるホモセリン脱水素酵素の活性化作用を示す図である。
【図２】ホモセリン脱水素酵素の１０μＭ  ＤＬ−ホモシステインによる活性化を示す図である。
【図３】ＤＬ−ホモシステインによる反応速度への影響（反応開始後５分後の反応速度と初速度の比に対するホモシステインの影響）を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明の試料中のホモシステイン濃度測定方法は、ホモシステイン含有試料中において、ホモセリンにアーキア由来ホモセリン脱水素酵素を作用させ、ホモセリン脱水素酵素活性を測定するものである。
【００１２】
用いられるホモシステイン含有試料としては、遊離のホモシステインを含有する生体試料であればよい。血液中でホモシステインは、遊離のホモシステインとしての存在量は少なく、そのほとんどが、ホモシスチン、ホモシステイン−システイン、ホモシステイン−タンパク質の形態で存在するので、まず還元してホモシステインを遊離させた試料を検体とするのが好ましい。この場合、測定されるのは総ホモシステイン量になる。ここで、還元処理手段としては、硫化水素、メタンチオール、２−メルカプトエタノール、ジチオスレイトール、チオグリセロール、システアミン等のチオール化合物を反応させる方法等が挙げられる。この還元処理方法は公知の手段を採用できる（１）Refsum,H.et al.,Homocysteine and cardiovascular disease.Annu.Rev. ed.(1998)Vol.49,pp.31-62、２）Mansoor,M.A.et al.,Redox status and protein binding of plasma homocysteine and other aminothiols in patients with homocystinuria.Metabolism(1993)Vol.42,pp.1481-5、３）Mansoor,M.A.et al.,Redox status and protein binding of homocysteine and other aminothiols in patients with early-onset peripheral vascular disease.Arteroiscier Thromb.Vasc.Biol.(1995)Vol.15,pp.232-40、４）Chambers,J.C.et al.,Investigation of relationship between reduced,oxidized,and protein-bound homocysteine and vascular endothelial function in healthy human subjects.Circ.Res.(2001)Vol.89,pp.187-192、５）橋本隆男ら、「ホモシステイン代謝」、薬学雑誌（２００７）１２７巻１０号１５７９−９２．）
また生体試料としては、血液、血漿、血清、髄液、リンパ液等が挙げられる。
【００１３】
好ましいホモシステイン含有試料は、還元処理された血液、血漿又は血清である。
【００１４】
本発明に用いられるホモセリン脱水素酵素は、哺乳類等の真核生物や細菌由来ではなくアーキア由来のホモセリン脱水素酵素である。細菌由来のホモセリン脱水素酵素はホモシステインで少し阻害されるという報告（RJ Rowbury,J.Gen.Microbiol.(1968),vol.54,pp.337-342）があり、使用できない。アーキア（古細菌）由来のホモセリン脱水素酵素であればよいが、スルフォロバス由来のホモセリン脱水素酵素が好ましく、特にスルフォロバス・トコダイ（Sulfolobus tokodaii）由来のホモセリン脱水素酵素がより好ましい。スルフォロバス属の好気、好酸、好熱性の古細菌は、陸上の火山や温泉などから採取でき、スルフォロバス・トコダイ以外にも、S. acidocaldarius、S. solfataricus、S. metallicus、S. shibatae、S. yangmingensis等も利用できる。
【００１５】
本発明者の研究によれば、非特許文献１に記載のように、アーキア由来のホモセリン脱水素酵素は、ホモセリンに対する脱水素酵素活性（ホモセリンからアスパラギン酸−４−セミアルデヒドへの酸化反応をＮＡＤ（Ｐ）に依存して可逆的に触媒する活性）は有するが、ホモシステインに対す活性はない。従って、このアーキア由来のホモセリン脱水素酵素がホモシステインによって活性化され、ホモシステインの存在下でホモセリン脱水素酵素活性が増強されることは全く予測できなかった。
【００１６】
アーキアからホモセリン脱水素酵素を採取するには、例えばアーキアを公知の手段により培養した培養液から採取することができるが、非特許文献１記載のように遺伝子組換え技術により形質転換した大腸菌を培養することにより採取することもできる。
【００１７】
ホモシステイン含有試料中で、ホモセリンにアーキア由来ホモセリン脱水素酵素を作用させるには、例えばホモシステイン含有試料にアーキア由来ホモセリン脱水素酵素を添加してインキュベートし、次いで所定量のホモセリンを添加すればよい。アーキア由来のホモセリン脱水素酵素の添加量は、特に限定されないが、０．０１〜１００Ｕ／ｍｌ程度、さらに０．５〜２Ｕ／ｍｌ程度が好ましい。また、ホモセリンの添加量は、所定量であり、例えば０．０１〜１００００ｍＭ、さらに１〜１００ｍＭが好ましい。なお、酵素反応はpH３〜１１の緩衝液中、１０〜１００℃で合計０．１分〜６０分インキュベートすればよい。
【００１８】
ホモセリン脱水素酵素活性は、ホモセリンからアスパラギン酸−４−セミアルデヒドへの酸化反応であり、ＮＡＤ又はＮＡＤＰに依存して進行するから、反応系中にＮＡＤ又はＮＡＤＰを存在させておき、ＮＡＤからＮＡＤＨの生成又はＮＡＤＰからＮＡＤＰＨの生成を分光光度計により吸光度を測定すれば、ホモセリン脱水素酵素活性、すなわちホモシステイン濃度が定量できる。
【００１９】
試料中のホモシステイン濃度は、予め作成しておいたホモシステイン濃度と酵素活性（例えば吸光度）に基づく検量線から決定することができる。
【実施例】
【００２０】
次に実施例を上げて本発明を詳細に説明する。【００２１】
実施例１
［古細菌由来ホモセリン脱水素酵素の生産］
ＤＤＢＪ（http://www.ddbj.nig.ac.jp/）等のデータベースから見出した好気・好酸性超好熱古細菌スルフォロバス・トコダイのゲノム上のＨＳＤＨ推定遺伝子（９１５ｂｐ）を増幅するプライマーを設計し、ＰＣＲにより遺伝子を増幅した。増幅した遺伝子を発現ベクターｐＥＴ１０１に挿入し発現プラスミドｐＳＴ１５１９を構築した。ｐＳＴ１５１９でBL21-CodonPlus(DE3)-RIL Competent Cellsを形質転換した後、５０μｌ／ｍｌアンピシリン含有ＬＢ培地でＯＤ660が０．６〜０．８になるまで振盪培養し、０．２ｍＭ  ＩＰＴＧを加え、３時間３７℃で培養した。培養で得られた菌体を遠心分離によって回収、１Ｍ  ＫＰＢ（ｐＨ７．０）、１０ｍＭ  ＭｇＣｌ2（ｐＨ７．０）で懸濁し、超音波破砕（出力３５％，on time ２ sec, off time ２ sec, total time ６０ min）を氷上で行った。更に、遠心分離後の上清を回収し、それを粗酵素液とし、酵素液をタンパク質濃度測定した。７０℃に加熱した恒温槽で粗酵素を２０分間加熱し、遠心分離によって上清を回収し、酵素液とした。【００２２】
実施例２
［活性測定］
酵素液（１Ｕ）に１００ｍＭ  リン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭ  ＭｇＣｌ2、１．３ｍＭ  ＮＡＤ+、各濃度のＤＬ−ホモシステインをセルに加え、５０℃で３分間インキュベートした。終濃度が１０ｍＭとなる様にＤＬ−ホモセリンを添加し反応を開始させ、５０℃において３４０ｎｍの吸光度を経時的に観測することで活性測定を行った。酵素の１Ｕｎｉｔは、５０℃で１分間に１μｍｏｌのＮＡＤＨを生じるのに必要な酵素量として定義した。図１にホモセリン脱水素酵素のホモシステインによる活性（ホモシステイン濃度と比活性の関係）化を示す。
図１から、本発明方法により、試料中のホモシステイン濃度が、ホモシステイン含有試料中で、ホモセリンとホモセリン脱水素酵素を作用させることにより、該試料中のホモシステイン濃度が定量できることがわかる。【００２３】
実施例３
［低濃度ホモシステインの活性測定］
酵素液（１Ｕ）に１００ｍＭ  リン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭ  ＭｇＣｌ2、１．３ｍＭ  ＮＡＤ+、各濃度のＤＬ−ホモシステインをセルに加え、５０℃で３分間インキュベートした。終濃度が８ｍＭとなる様にＤＬ−ホモセリンを添加し反応を開始させ、５０℃において３４０ｎｍの吸光度を経時的に観測することで活性測定を行った。
図２にホモセリン脱水素酵素の１０μＭ  ＤＬ−ホモシステインによる活性化を示す。血中濃度とほぼ同等の１０μＭ  ホモシステインによって経時的な吸光度変化が大きく影響を受けていることが示された。特に反応開始直後の初速度と反応５分後の速度がＤＬ−ホモシステインによって影響を受ける。
この初速度と５分後の反応速度の比を計算したところ、図３の様にＤＬ−ホモシステイン濃度との相関が得られた。この検量線によって数μＭのホモシステインの定量が可能である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【国際調査報告】
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