(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
少なくとも５個の隣接するカチオン性アミノ酸残基を含有する少なくとも１つの親水性セグメントと
少なくとも５個の隣接する疎水性アミノ酸残基を含有する少なくとも１つの疎水性セグメントと
を含み、前記親水性セグメントが前記疎水性セグメントよりも多数のアミノ酸残基を含有する、少なくとも４０のアミノ酸残基の少なくとも１種の合成コポリペプチドと、
水と、
を含む抗微生物組成物であって、
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが水性媒体中で多量体構造を形成し、
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが水性媒体中で微生物を阻害するかまたは死滅させ、かつ、
前記組成物が微生物を阻害するまたは死滅させる、
抗微生物組成物。
【請求項２】
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが実質的に天然アミノ酸のみを含む、請求項１に記載の組成物。
【請求項３】
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが４０％以下の疎水性残基含量を有する、請求項１に記載の組成物。
【請求項４】
水性媒体中で形成される前記構造が、溶液中の多量体、ミセル、シート、ベシクル、およびフィブリルよりなる群から選択される、請求項１に記載の組成物。
【請求項５】
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが、同一のアミノ酸組成物のランダム配列コポリペプチドよりも少なくとも１ ｌｏｇ低い水中臨界凝集濃度（ＣＡＣ）を有する、請求項１に記載の組成物。
【請求項６】
インビトロで哺乳動物細胞を死滅させるよりも低い濃度でインビトロの微生物を死滅させるかまたは阻害することを特徴とする、請求項１に記載の組成物。
【請求項７】
組織に対して低毒性を示す濃度でインビボで哺乳動物組織中または哺乳動物組織上で微生物を死滅させるかまたは阻害することを特徴とする、請求項１に記載の組成物。
【請求項８】
１００μｇ／ｍＬ以下の少なくとも１種の合成コポリペプチドの濃度で、スタフィロコッカス・エピデルミディス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ）または大腸菌の３ｌｏｇ超の減少により測定されるようにインビトロで微生物を死滅させるかまたは阻害することを特徴とする、請求項１に記載の組成物。
【請求項９】
前記組成物は、少なくとも５０Ｐａの貯蔵弾性率を有するヒドロゲルを形成する、請求項１に記載の組成物。
【請求項１０】
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが血小板凝集を促進する、請求項１に記載の組成物。
【請求項１１】
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドがフィブリン溶解を阻害する、請求項１に記載の組成物。
【請求項１２】
分散混合物またはエマルジョン中の非混和性相の組合せをさらに含む、請求項１に記載の組成物。
【請求項１３】
ステロイド剤、炎症誘発剤、抗炎症剤、抗座瘡剤、保存剤、止血剤、血管新生剤、創傷治癒剤、抗癌剤、および他の抗微生物剤から選択されるさらなる活性医薬成分（ＡＰＩ）をさらに含む、請求項１に記載の組成物。
【請求項１４】
感染症の予防または治療のための、局所抗感染のための、微生物コロニー除去のための、創傷治療のための、手術部位治療のための、外傷治療のための、火傷治療のための、糖尿病性足部潰瘍治療のための、手指衛生のための、補綴具およびインプラントを被覆するための、食品保存のための、および溶液保存のための、薬品の製造における、請求項１〜１３の何れか一項に記載の組成物の使用。
【請求項１５】
哺乳類における感染症の予防又は治療のための医薬の製造における抗微生物組成物の使用であって、前記組成物は、少なくとも５個の隣接するカチオン性アミノ酸残基を含有する少なくとも１つの親水性セグメントと
少なくとも５個の隣接する疎水性アミノ酸残基を含有する少なくとも１つの疎水性セグメントと
を含み、前記親水性セグメントが前記疎水性セグメントよりも多数のアミノ酸残基を含有する、少なくとも４０のアミノ酸残基の少なくとも１種の合成コポリペプチドと、
水と、
を含み、
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが水性媒体中で多量体構造を形成し、
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが水性媒体中で微生物を阻害または死滅させ、かつ、
前記組成物が微生物を阻害又は死滅する、使用。
【請求項１６】
哺乳類における止血を促進するための医薬の製造における、止血組成物の使用であって、前記組成物は、
少なくとも５個の隣接するカチオン性アミノ酸残基を含有する少なくとも１つの親水性セグメントと
少なくとも５個の隣接する疎水性アミノ酸残基を含有する少なくとも１つの疎水性セグメントと
を含み、前記親水性セグメントが前記疎水性セグメントよりも多数のアミノ酸残基を含有する、少なくとも４０のアミノ酸残基の少なくとも１種の合成コポリペプチドと、
水と、
を含み、
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが水性媒体中で多量体構造を形成し、
前記少なくとも１種の合成コポリペプチドが水性媒体中で微生物を阻害または死滅させ、かつ、
前記組成物が止血を促進する、使用。
【請求項１７】
前記組成物が一以上のさらなる止血剤を含む、請求項１６に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
先行出願の相互参照
本出願は、準拠法で認められた範囲内で参照により本明細書に組み入れられる２０１０年８月２３日出願の米国仮特許出願第６１／３７６，１９５号に基づく利益および優先権を主張する。
【０００２】
米国政府の支援
該当なし。
【背景技術】
【０００３】
本発明は、微生物を死滅させる（または阻害する）ことが可能であり、かつ低哺乳動物毒性を有する物質組成物に関する。本発明はまた、限定されるものではないが保存剤、消毒剤を含む特定の組成物およびさまざまな状況でのその使用、ならびに創傷感染症さらには他の感染性疾患の予防および治療に関する。
【０００４】
カチオン性抗微生物剤は、有用性が実証されてきたが、毒性が問題である。半世紀以上にわたり、カチオン性（正荷電）抗微生物剤は、全身性抗生物質から工業用洗浄剤に至るまで、さまざま医療現場および非医療現場で使用されてきた。カチオン性抗微生物剤は、典型的には哺乳動物膜よりも負の電荷を呈する細菌膜に優先的に結合する。この相互作用は、膜機能を破壊して、潜在的に細菌細胞死を引き起こしうる。カチオン性抗微生物化合物としては、特定の抗生物質（たとえばポリミキシン）、ビスビグアニド（たとえばクロルヘキシジン）、高分子ビグアニド（たとえばポリヘキサメチレンビグアニド）、および第四級アンモニウム化合物（ＱＡＣ）（たとえば塩化ベンザルコニウム）、さらには天然抗微生物ペプチド（ＡＭＰ）（たとえばデフェンシン）が挙げられる。各クラスのカチオン性抗微生物化合物は、１つ以上の状況で抗微生物活性が実証されてきたが、毒性は、一貫した問題であった［１〜１２］。
【０００５】
バチルス・ポリミキサ（Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐｏｌｙｍｙｘａ）により産生されるポリミキシンは、疎水性尾部を有する環状ペプチドである［６、７］。環状ペプチド部分（正荷電の約１０アミノ酸残基）は、グラム陰性細菌の外膜上に見いだされる負荷電リポポリサッカリド（ＬＰＳ）と強く相互作用する。疎水性尾部は、細菌膜と相互作用して、場合によってはそれを破壊すると考えられる。ポリミキシンは、シュードモナス・アエルギノサ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）（Ｐ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ））、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ）（Ｅ．ｃｏｌｉ）、およびエンテロバクター属（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ）の種をはじめとする多くのグラム陰性細菌に対しては抗微生物活性を有するが、プロテウス属（Ｐｒｏｔｅｕｓ）細菌、ほとんどのセラチア属（Ｓｅｒｒａｔｉａ）細菌、またはグラム陽性細菌に対しては限られた活性を有する［７］。有意な神経毒性および腎毒性が原因で、全身性抗生物質としてのその使用が制限されてきた［１３］。現在、ポリミキシンは、多剤耐性Ｐ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）に起因する感染症などの高抗生物質耐性のグラム陰性感染症に対する最後の手段として使用されることもある。それはまた、局所性抗微生物剤として皮膚の小さい切り傷および擦り傷に使用される。
【０００６】
クロルヘキシジンは、一般的皮膚清浄、手術前入浴、および手術部位準備のための消毒洗浄剤として、手術前の外科現場で広く使用される［７］。クロルヘキシジンは、広範にわたるグラム陽性細菌およびグラム陰性細菌に対して活性であるが、いくつかのグラム陰性細菌（たとえば、Ｐ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）、プロビデンチア属（Ｐｒｏｖｉｄｅｎｔｉａ）の種）による耐性が報告されている［５、１０］。２〜４％クロルヘキシジンを含有する製剤
は、抗微生物剤として最も有効であると思われるが、皮膚刺激を引き起こしうる。全体的にみて、クロルヘキシジンは、最小量の化合物が吸収されるので、無傷の皮膚に適用する場合、比較的安全である。しかしながら、刺激性および毒性があるので、クロルヘキシジンは、眼、耳、脳組織、および髄膜の近傍での使用が禁忌である［２］。創傷洗浄剤および含嗽剤として、低濃度（たとえば、０．０５％〜０．１２％）が使用されることもある。低ｐＨ環境では活性が低下するので、活性はｐＨ依存性である。それに加えて、クロルヘキシジンは、アニオン性化合物（たとえば、硬水、石鹸、アルギン酸塩）との適合性がなく、有機物質（たとえば、血液）の存在下で活性低下を呈する。
【０００７】
ポリヘキサメチレンビグアニド（ＰＨＭＢ）は、４０年以上にわたりさまざまな民生用途で使用されてきた。ＰＨＭＢは、水泳プール消毒剤、可塑化ＰＶＣ保存剤、および汎用環境殺生物剤で使用される［１］。ＰＨＭＢの初期の製造では、５００〜６，０００ｇ／ｍｏｌの範囲内の分子量を有する高多分散オリゴマーが得られた。化学的特性解析の結果が限られていたので、医薬品での初期のＰＨＭＢの使用が大幅に制限された。最近のＰＨＭＢ製剤は、多分散性に対処可能になってきた。クロルヘキシジンと同様に、ＰＨＭＢの使用は、眼、耳、脳組織、髄膜、および関節では禁忌である［４］。
【０００８】
第四級アンモニウム化合物（ＱＡＣ）は、典型的には４個のアルキル基に直接結合した１個の窒素原子を含有する両性界面活性剤であり、疎水性構造はさまざまでありうる［１、２］。ＱＡＣは、主に静細菌性であるが、より高い濃度では特定の生物に対して殺細菌性でありうる。ＱＡＣは、グラム陽性細菌に対しては抗微生物性であるが、グラム陰性細菌（たとえば、Ｐ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ））に対してはそれほど有効でない。グラム陰性菌に対する活性が弱いので、ＱＡＣは、一般的には、手指消毒用として健康管理の現場で使用されない。グラム陰性桿菌で汚染されたＱＡＣ化合物に対して、感染症のいくつかの発症が追跡されてきた［８］。ＱＡＣは、多剤排出ポンプにより媒介される耐性機序をより受けやすいと思われる。また、活性は、有機物の存在下で大幅に低下する。
【０００９】
天然抗微生物ペプチド（ＡＭＰ）は、多くの場合、カチオン性である。天然抗微生物ペプチド（ＡＭＰ）（典型的には５０アミノ酸未満）は、昆虫から哺乳動物までほとんどの種に広く分布しており、先天性免疫で重要な役割を果たすと考えられる［１４］。ＡＭＰは、細菌、ウイルス、菌類、および寄生生物の強力な死滅／阻害を示すことが実証されてきた［１５］。ＡＭＰは、感染症の予防および抑制に重要であると考えられる。ＡＭＰは、皮膚、気道、胃腸管上皮などの界面に多量に堆積され、炎症部位で白血球により放出される。白血球は、ファゴリソソーム中でその直接死滅機序の一部としてＡＭＰを使用する。特定のＡＭＰは、炎症および適応免疫の調節に寄与する［１５］。それに加えて、ＡＭＰは、精子細胞および癌細胞に対する阻害活性が実証されてきた。
【００１０】
ほとんどのＡＭＰは、物理的な受容体非依存性形態の死滅を引き起こす構造上の特徴を共有する［９］。ＡＭＰの広く認められている作用機序は、細胞死を引き起こす微生物膜破壊または撹乱（ときにはそれに続く細孔形成）である。典型的には、ＡＭＰは、空間的に分離された正荷電ドメインおよび疎水性ドメインを含有する（カチオン性両親媒性物質）。ＡＭＰの実質的な疎水性含有率（典型的には３０〜６０％のモル分率）は、ペプチドが脂質二重層中に分配しうる程度がそれにより支配されるので、抗微生物活性の重要な特性である［１６］。αヘリックスを形成するＡＭＰは、「多くの場合、溶液中では伸長コンフォーマーまたは非構造化コンフォーマーとして存在し」、「両親媒性リン脂質膜と相互作用すると」ヘリックス状になる［１６］。このことから、「細菌の外表面および膜の局所環境は重要であり、ペプチドと膜との結合および膜中へのペプチドの挿入に必要である抗微生物ペプチドのコンホメーション変化を誘導可能であること」が示唆される［３］。
【００１１】
ナイシン（食品保存剤として使用されてきた細菌由来ＡＭＰ）は、油−水混合物に対して弱乳化剤であることが示された。このプロセスは、有意にｐＨ依存性および温度依存性である［１７］。
【００１２】
いくつかの天然ＡＭＰおよび関連技術には、特許権が付与されてきた。ＬｅｈｒｅｒおよびＳｅｌｓｔｅｄは、マクロファージから単離されたデフェンシンの配列に類似したＡＭＰ配列を開示した（米国特許第４，５４３，２５２号明細書）。最初は特定のカエルの皮膚から単離されたマガイニンクラスのＡＭＰは、Ｚａｓｌｏｆｆにより記載されている（米国特許第４，８１０，７７７号明細書）。特定的には配列欠失体または配列置換体である修飾マガイニンもまた、記載されている（たとえば、米国特許第４，９６２，２７７号明細書、同第５，２２１，７３２号明細書、同第５９１２２３１号明細書、および同第５，７９２，８３１号明細書）。ＳｅｌｓｔｅｄおよびＣｕｌｌｏｒは、広域スペクトル抗微生物化合物としてウシインドリシジンＡＭＰを開示した（米国特許第５，３２４，７１６号明細書）。
【００１３】
合成ペプチド系カチオン性オリゴマーは、抗微生物剤として機能しうる。Ｓａｌｉｃｋおよび同僚は、十分な塩濃度の存在下で抗微生物ヒドロゲルを形成可能な配列特異的βヘアピンペプチド（２０ｍｅｒ）を開示した（米国特許出願公開第２０１１／０１７１３０４号明細書）。ペプチドは、「水に溶解された時、正荷電側鎖間の電荷反発によりアンフォールディングされて可溶性を維持する」。塩の添加は、「側鎖由来の電荷を遮蔽してペプチドをフォールディングさせ」、「βシートリッチなフィブリルの網状構造形態に集合」しうるβヘアピンをもたらすと考えられる。ペプチドは、６０％の疎水性含有率で構成され、メチシリン耐性スタフィロコッカス・アウレウス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ａｕｒｅｕｓ）（ＭＲＳＡ）に対して有効な抗微生物活性に重要であると思われる２個のアルギニン残基を含有する。本発明者らは、「ゲルから拡散するペプチドが活性剤でない」ことを報告してきたので、ペプチド自体は、本質的に抗微生物性であるとは思われない。Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）をペプチドの１００μＭ（約２３０μｇ／ｍｌ）水性溶液（すなわち、ヒドロゲルではない）に付したとき、「細菌増殖は、ごくわずかに影響された」。したがって、抗微生物活性を得るには、細菌をヒドロゲル表面に直接接触させなければならず、「ゲル化されずにフォールディングされた」ペプチドは、細菌増殖を阻害しない。他の近縁βヘアピンペプチドで類似の知見が報告された［１８］。
【００１４】
Ｇｅｌｌｍａｎおよび共同研究者は、明確に定義された二次構造を有するβ−アミノ酸オリゴマーを含有する抗微生物組成物を開示した（米国特許第６，０６０，５８５号明細書、同第６，６８３，１５４号明細書、米国特許出願公開第２００７／００８７４０４号明細書、同２００８／０１６６３８８号明細書）。βペプチドは、ペプチド骨格中にコンフォメーション柔軟性を制限する環構造を含有する。また、ＤｅＧｒａｄｏおよび共同研究者は、トリβペプチドのオリゴマー（７ｍｅｒ以下）を含有する抗細菌βペプチドを記載した（米国特許第６，６７７，４３１号明細書）。
【００１５】
天然ＡＭＰの全体構造を模倣しうる他の合成ペプチド系化合物が記載されてきた。ＤｅＧｒａｄｏは、天然ＡＭＰのマガイニンおよびセクロピンの構造特性に基づく両親媒性ランダム配列βペプチドを報告した［１９］。Ｇｅｌｌｍａｎおよび共同研究者は、２１残基の平均長さ、１．４の多分散指数（Ｍｎ／Ｍｗ）、および４０％の疎水性残基を有するランダム配列βペプチドオリゴマーを記載してきた［２０］。他の研究で、Ｇｅｌｌｍａｎは、ヘリックス状βペプチドを同定した［１９］。ヘリックス状円筒に沿った６０％の「疎水性面」は、最適抗微生物活性を有することが見いだされたが、４０％の面は、低活性を呈した。
【００１６】
非天然ビルディングブロックを含む合成カチオン性ポリマーは、抗微生物剤として機能しうる。非天然ビルディングブロックまたは非天然繰返し単位を有するいくつかのクラスの合成抗微生物ポリマーが記載されてきており、それらは、Ｔｅｗによる２００７年のレビューのテーマである［２２］。これらのポリマーは、天然に見いだされない構造／単量体単位を有する。これらの非天然ポリマーは、多くの場合、容易なかつ費用効率の高い合成および酵素分解に対する安定性を特徴とする。しかしながら、これらのおよび他の非天然ポリマーの制限要因としては、限られた抗微生物活性、さらには生体適合性および生分解性の欠如を挙げることができる。このクラスの材料は、非天然ビルディングブロック（たとえば、アリールアミド、高共役芳香族基）を含み、本発明の範囲外であるとみなされる［２１〜２５］。（たとえば、米国特許第７，１７３，１０２号明細書、米国特許出願公開第２００８／０１７６８０７号明細書、同第２０１０／０１０５７０３号明細書を参照されたい）。
【００１７】
抗微生物ペプトイド（Ｎ−置換グリシン）は、Ｗｉｎｔｅｒおよび共同研究者により記載されてきた［２８］。広範にわたるグラム陽性細菌およびグラム陰性細菌に対して一連の短い（三量体）ペプトイドが試験され、溶血活性（ＨＣ５０）は抗微生物活性（最小阻止濃度ＭＩＣ）よりも低かった。代表的トリペプトイドは、単純感染モデルにおいてインビボでＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）感染マウスを保護した。
【００１８】
コポリペプチドの合成方法（Ｄｅｍｉｎｇ法）。従来の合成方法は、複数の性質の直交（または準直交）改変を含むオリゴペプチドライブラリーの効率的合成を妨げてきた。改変の対象となる重要な性質としては、アミノ酸配列、全鎖長、およびカチオン性アミノ酸と疎水性アミノ酸との比が挙げられる。さらにまた、低多分散性（１．０〜１．４のＰＤＩ）のコポリペプチド混合物の実用的な費用効果の高い合成は、容易に達成可能になっていない［２５］。
【００１９】
複数の性質の制御および低多分散性化合物を形成する能力により、複数の構造機能相関の最適化が可能になるであろう。合成ポリペプチドＡＭＰ研究の主要な問題は、固相合成の製造コストが極端に高いことである。それに加えて、固相合成法および溶相合成法の両方の有意な化学的制限要因としては、連鎖成長の制御の欠如が挙げられる。これは、鎖分岐、多分散性、および低生成物収率をもたらす。
【００２０】
１９９７年、Ｄｅｍｉｎｇは、アミノ酸誘導体を重合してオリゴペプチド鎖にするための明確に定義された開始剤を開発した［２５、２６］。この方法では、バッチ方式でアミノ酸単量体を成長鎖に付加した。開始剤は、高分子量の狭い分布のマルチブロックポリペプチド製剤が得られるように制御された合成を可能にする遷移金属錯体であった。開始剤および合成方法は、文献およびいくつかの特許（米国特許第６，６８０，３６５号明細書、同第６，６３２，９２２号明細書、同第６，６８６，４４６号明細書、同第６，８１８，７３２号明細書、同第７，３２９，７２７号明細書、米国特許出願公開第２００８／０１２５５８１号明細書）に詳細に記載されている。
【００２１】
典型的には、合成ポリペプチドは、単純二元組成を有する（たとえば、リシン（Ｋ）、ロイシン（Ｌ）コポリマー）。両親媒性ポリペプチドは、イオン性アミノ酸単量体を含有する（たとえば、中性疎水性アミノ酸（たとえば、ロイシン、アラニン（Ａ））と共重合されたリシン、アルギニン（Ｒ）、グルタミン酸（Ｅ））。単量体付加方法を変更することにより、コポリマー鎖に沿ってブロック状、ランダム、または両者の組合せ（すなわち、ランダム配列のブロック）のアミノ酸残基配列が得られるように、共重合を行うことができる。
【００２２】
溶液中のランダム合成コポリペプチドは、抗微生物活性を示す。Ｄｅｍｉｎｇ研究室では、ランダムに配置されたさまざまな比のカチオン性（リシン（Ｋ））アミノ酸および疎水性（ロイシン（Ｌ）、イソロイシン（Ｉ）、バリン（Ｖ）、フェニルアラニン（Ｆ）、またはアラニン（Ａ））アミノ酸を含有する一連の水溶性コポリペプチドの抗微生物活性を観測してきた［２７］。コポリペプチドは、懸濁増殖アッセイでＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）（グラム陽性）、Ｐ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）（グラム陰性菌）、および大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）（グラム陰性菌）に対してさまざまな抗微生物活性を示した。リシン−アラニンコポリペプチドは、広範にわたり「試験された３種すべての細菌に対して毒性作用」を示し、「最も有効な組合せの抗微生物コポリマー」であると結論付けられた。リシン−アラニンコポリペプチドおよびリシン−ロイシンコポリペプチドの円二色性スペクトルから、「溶液中で遊離状態のとき、明確なランダムコイルコンフォメーションをとる」ことが明らかにされた。この研究では、ミセル剤として意図的に製剤化されたまたはエマルジョン剤／ナノエマルジョン剤中に組み込まれた合成ブロック配列コポリペプチドまたは合成コポリペプチドの抗微生物活性は検討されなかった（［２８、２９］も参照されたい）。
【００２３】
Ｄｅｍｉｎｇ合成法を用いて、Ｃｈａｎ−Ｐａｒｋおよび同僚は、最近、２〜３種の異なるアミノ酸を含有する可溶性ランダム配列コポリペプチドの抗微生物活性を研究した［２６］。リシン−フェニルアラニンまたはリシンン−フェニルアラニンン−ロイシンを含むランダム２５ｍｅｒコポリペプチドは、５種の微生物に対して最も広範な活性を示し、かつ最も低いＭＩＣを有していた。抗微生物活性に及ぼす全ペプチド長および疎水性含有率の影響が調べられた。リシン−フェニルアラニンコポリペプチドは、「より短い長さまたはより長い長さのときよりも２５残基長の時のほうが、より広範な抗細菌活性」を有すると報告された。リシン−フェニルアラニン化合物（および他のランダムコポリペプチド）の最適疎水性含有率は、約６０％であることが見いだされた。しかしながら、最適化されたリシン−フェニルアラニン化合物およびリシンン−フェニルアラニンン−ロイシン化合物は、他の天然および合成のペプチドと比較して高い溶血活性を示した。これらの化合物は、「疎水性が高いため（６０％）またはより疎水性の高い種が存在するため、哺乳動物赤血球に対して高毒性を引き起こしたとも考えられる」ことが、著者らにより示唆された。それに加えて、リシン−アラニンランダムコポリペプチドおよびリシン−ロイシンランダムコポリペプチドは、菌類生物カンジダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ  ａｌｂｉｃａｎｓ）に対して有意な活性を示さなかった。円二色性分析から、リシン−フェニルアラニンランダムコポリペプチドおよびリシンン−フェニルアラニンン−ロイシンランダムコポリペプチドは、「明確な二次構造の欠如」を示し、αヘリックスもβシートも形成しないことが示唆された。
【００２４】
合成コポリペプチドは、階層構造を達成するように製剤化可能である。高分子電解質および疎水性ドメインの両方が存在すると、マイクロ相偏析材料が得られる。得られる超構造は、溶液中の多量体、ミセル、エマルジョン（油を含む）、シート、ベシクル、およびヒドロゲルを形成するフィブリルを含みうる。さまざまな階層構造形態への自己集合は、組成および鎖長の変更、濃度の変更、Ｌ−、Ｄ−、またはラセミアミノ酸の存在、ならびに側鎖および鎖末端（たとえば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ））の修飾により制御可能である。疎水性ドメインの二次構造（すなわち、ランダムコイル対αヘリックス）は、超構造形成で重要な役割を果たす。疎水性ドメインまたはポリマーセグメントの性質は、鎖間で確立される分子間相互作用のタイプを決定する。これらの引力相互作用は、溶媒との相互作用によりバランスが保たれる。分子ごとにおよび超分子の断片ごとに、自己会合の自由エネルギーと水和の自由エネルギーとの間に平衡が存在する。
【００２５】
合成コポリペプチドはまた、ヒドロゲルを形成するように設計可能である。長い親水性ブロック（カチオン性またはアニオン性）や秩序化疎水性ブロック（たとえばαヘリックス）などの特定の特徴は、ヒドロゲル形成に有利であることが示された。Ｋ１８０Ｌ２０（および他のＫｘＬｙ）ブロックコポリペプチドを含むいくつかの合成コポリペプチド系ヒドロゲルは、インビボで生体適合性であることが、研究により示唆される。ブロックコポリペプチドヒドロゲルは、ネズミ中枢神経系（ＣＮＳ）中で組織スキャフォールドとして機能しうることが、Ｄｅｍｉｎｇらにより以前報告された［２７］。ヒドロゲルは、マウス前脳中に注入され、インビボで３Ｄゲル状堆積物を形成した。毒性、炎症、および神経膠症は、最小限に抑えられ、生理食塩水対照に類似していた。８週間後、多くの場合、コポリペプチド堆積物は、隣接組織に類似した細胞密度で血管新生されたことから、ヒドロゲルは、細胞の移動および増殖を支援することが示唆される。
【００２６】
Ｄｅｍｉｎｇ（ＰＣＴ国際公開第２００９／０２５８０２号パンフレット）は、合成ブロックコポリペプチドにより安定化されたナノエマルジョンおよびダブルナノエマルジョンを開示した［２７］。乳化されたコポリペプチドの抗微生物活性は、そこには開示されなかった。
【００２７】
コポリペプチドを用いることなく調製されたナノエマルジョンは、いくらかの抗微生物活性を呈しうる。Ｂａｋｅｒおよび共同研究者は、抗微生物剤としてのナノエマルジョンの使用に重点をおいた。彼らは、リン酸塩系界面活性剤または他の小分子界面活性剤により安定化された抗微生物エマルジョンを報告した（米国特許第６，０１５，８３２号明細書、同第６，５０６，８０３号明細書、同第６，５５９，１８９号明細書、同第６，６３５，６７６号明細書、同第５，６１８，８４０号明細書、同第５，５４７，６７７号明細書、および同第５，５４９，９０１号明細書）。
【００２８】
カチオン性両親媒性物質の抗微生物活性および／または哺乳動物細胞毒性と高次構造形態へのその集合との間の潜在的関係は、十分に理解されていない。限られた関連情報が報告されてきた。たとえば、ε−ポリリシン（ＥＰＬ）の抗微生物活性は、溶液中の遊離ＥＰＬと対比して、脂質への配位および乳化によりわずかに低下した［３３］。
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００２９】
本発明は、高抗微生物活性（インビトロまたはインビボで）および低哺乳動物毒性を有する物質組成物ならびにそれらの性質を有する合成コポリペプチドの使用を説明する。とくに、カチオン性（正荷電）抗微生物剤は、全身性抗生物質から工業用洗浄剤に至るまで、さまざま医療現場および非医療現場で５０年以上にわたり使用されてきた。実質的な有効性にもかかわらず、多くの医療現場でのその使用は、実質的な毒性が原因で制限されてきた。本発明は、カチオン性抗微生物剤に固有の毒性の制約を克服する。簡単に述べると、カチオン性要素と疎水性要素との関係を制御することにより、我々は、多くの場合、独特の階層構造の利点を生かして、高抗微生物活性および低哺乳動物毒性を有する材料を設計する。本発明は、ブロック両親媒性を達成するようにコポリペプチド鎖に沿って親水性および／または疎水性のアミノ酸残基をブロック状配列形態にグループ化することを包含する。これは、多くの天然ＡＭＰさらにはランダム配列および交互配列および特定配列の合成コポリペプチドおよび合成ペプチドを特徴付けるフェイシャル両親媒性とは異なる。本発明の目的では、ブロック状配列またはブロック配列のコポリペプチドは、単一アミノ酸（たとえばリシンもしくはロイシン）または単一アミノ酸タイプ（カチオン性もしくは疎水性）の少なくとも５残基の隣接した繰返しをそれぞれ含有する１つ以上の異なるドメインからなるコポリペプチドとして特徴付けられる。これとは対照的に、ランダムコポリペプチドは、配列内の２つ以上の異なるアミノ酸残基（またはアミノ酸タイプ）の非秩序化統計分布からなるコポリペプチドとして特徴付けられる。
【００３０】
本発明に係る合成コポリペプチドは、これまでに記載された天然および合成の抗微生物剤とは区別される次の分子的特徴の１つ以上を有する。第１に、比較的長い全鎖長（鎖１本あたり４０〜２５０アミノ酸残基またはそれ以上）、第２に、親水性（典型的にはカチオン性）ドメインの多量体提示、第３に、比較的低い疎水性残基含有率（典型的には４０％以下のモル分率）、そして第４に、疎水性ドメインの相互作用を介する自己会合／自己集合（多くの場合、ブロック配列に基づく）。説明すると、本発明の範囲を限定するものではないが、高抗微生物活性は、微生物の表面のアニオン性（負）電荷と非常に効果的に相互作用する長い親水性（カチオン性）セグメント、多量体親水性（カチオン性）セグメント、またはその両方の提示から生じると考えられる。さらに説明すると、本発明の範囲を限定するものではないが、比較的低い疎水性含有率、疎水性ドメインの自己会合性（多くの場合、ブロック配列に基づく）、またはその両方は、高疎水性または高両親媒性の材料濃厚物への組織暴露を制限するように機能することにより、哺乳動物毒性を低減すると考えられる。特定の場合、この限られた疎水性暴露または両親媒性暴露は、経時的にデポ徐放効果およびより高い抗微生物活性の可能性を有して（より低い哺乳動物毒性と共に）、インビボでより多量の抗微生物材料の投与を可能にしうる。
【００３１】
本発明の範囲を限定するものではないが、高抗微生物活性（インビトロまたはインビボで）および低毒性の達成は、次のもの、すなわち、単量体の選択（たとえば、特定のカチオンおよび疎水性物質）、単量体の空間分布（たとえば、ブロック状配列ｖｓランダム配列）、疎水性単量体のモル分率、単量体の光学純度、秩序化疎水性ドメインｖｓ無秩序化疎水性ドメイン（たとえば、αヘリックスｖｓランダムコイル）、単量体／残基の化学修飾、ハイブリッド組成物（たとえば、コポリペプチド−ポリマーコンジュゲート）を含む１つ以上の因子に依存しうると認識される。
【００３２】
これらの合成コポリペプチドは、部分的には、十分に溶解された親水性（典型的にはカチオン性）ドメインにより安定化される不十分に溶媒和された疎水性領域の相互作用を介して、自己会合／自己集合するように設計可能である。特定の例としては、溶液中の多量体、ミセル、シート、ベシクル、およびヒドロゲルを形成するフィブリル、さらには油との混合に基づくエマルジョンを含有する製剤が挙げられる。例として、我々は、抗微生物洗浄溶液、抗微生物ヒドロゲル、および抗微生物エマルジョンを開発した。これらの製剤はすべて、創傷、他の組織、または他の種々の表面に適用可能である。本発明に係る誘導分子自己集合は、階層構造を含めて、化学的特徴および生物学的特徴を決定する。それは、親水性残基および疎水性残基の不均一分布に基づくならびに典型的には不規則なかつ明確に定義されていない材料を生じる、種々のランダム配列合成コポリペプチドの自己会合とは異なる。
【００３３】
また、好ましい実施形態では、限定されるものではないが、創傷感染症または他の感染性疾患の予防および治療を含めて、ヒトまたは動物の疾患で全体的な有効性および毒性に影響を及ぼしうる特定の品質を考慮してもよい。これらの特徴としては、限定されるものではないが、流動性（適用を容易にする）、組織被覆率、抗微生物生体活性の持続期間、生体適合性、分解、生体内分布、さらには炎症反応への影響、組織修復、血管新生、止血、免疫原性などが挙げられる。特定の医療現場では（たとえば、外科的創傷または外傷性創傷）、有効性および毒性は、合成コポリペプチドと組織との相互作用に実質的に依存しうる。特定の利点は、局所的な集中した抗微生物活性を提供可能である場合、損傷組織に容易に沈着および／または直接結合する合成コポリペプチドに由来しうる。ヒトまたは動物の疾患での全体的な有効性および安全性は、特定の疾患および患者の全身状態に依存するであろう。インビボ生体活性は、製剤化および階層構造に実質的に依存し、しかもインビボ活性は、インビトロ試験により十分に明らかにされえないことが予想される。
【図面の簡単な説明】
【００３４】
【図１】図１は、コポリペプチドの構築に使用可能なさまざまな分子ビルディングブロックを示す図である。
【図２】図２は、ｄ−ＴＦＡ中のＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０ブロックコポリペプチドの１Ｈ−ＮＭＲである。
【図３】図３は、選択された抗微生物ブロックコポリペプチド、すなわち、Ａ）Ｋｘ（ｒａｃ−Ｌ）ｙ、Ｂ）ランダムＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０、Ｃ）Ｋ５５（ｒａｃ−Ａ）２０、Ｄ）Ｋ５５（ｒａｃ−Ｖ）２０、Ｅ）Ｋ５５（ｒａｃ−Ｖ）２０、Ｆ）Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ／Ｆ）２０、Ｇ）ＲＨ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０、Ｈ）Ｅ６４（ｒａｃ−Ｌ）２０、Ｉ）ＰＥＧ２０５（ｒａｃ−Ｌ）２０、およびＪ）Ｋ６０Ｌ２０の構造を示す図である。
【図４】図４は、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）、Ｓ．エピデルミディス（Ｓ．ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ）、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）、およびＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）に対するＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０ブロックコポリペプチドの抗微生物活性を示している。Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０を細菌と共に３０分間インキュベートした後、プレーティングして増殖に供した。
【図５】図５は、さまざまな含有率の疎水性アミノ酸残基を有するコポリペプチドのＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）および大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）に対する抗微生物活性を示している。
【図６】図６は、１００μｇ／ｍＬの濃度のコポリペプチドのＣ．アルビカンス（Ｃ．ａｌｂｉｃａｎｓ）に対する抗微生物活性を示している。
【図７】図７は、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）およびプロピオニバクテリウム・アクネス（Ｐｒｏｐｉｏｎｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ａｃｎｅｓ）（Ｐ．アクネス（Ｐ．ａｃｎｅｓ））に対するＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０ブロックコポリペプチドの抗微生物活性を示している。Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０を細菌と共に３０分間インキュベートした後、プレーティングして増殖に供した。
【図８】図８は、さまざまなサイズのブロック疎水性ドメインを有する１０μｇ／ｍＬのペプチド濃度のコポリペプチドのＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）および大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）に対する抗微生物活性を示している。
【図９】図９は、さまざまなサイズの疎水性ドメインを有する１０μｇ／ｍＬのペプチド濃度のコポリペプチドのＰ．アクネス（Ｐ．ａｃｎｅｓ）に対する抗微生物活性を示している。
【図１０】図１０は、ブロック状空間分布またはランダム空間分布の単量体で製剤化された１０μｇ／ｍＬのペプチド濃度のコポリペプチドのＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）および大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）に対する抗微生物活性を示している。
【図１１】図１１は、齧歯動物モデルにおけるＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０の抗微生物活性を示している。追加のコポリペプチドと共にＰＢＳまたはＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０で予浸されたポリプロピレンメッシュをラットの皮下に挿入し、１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８またはＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）（臨床ブタ単離物）のいずれかの接種物を追加した。２日後、留置メッシュをプレーティングして細菌計数に供した。
【図１２】図１２は、齧歯動物モデルにおけるＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０の抗微生物活性を示している。追加のコポリペプチドと共にＰＢＳまたはＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０で予浸されたポリプロピレンメッシュをラットの皮下に挿入し、１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８またはＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）（臨床ブタ単離物）のいずれかの接種物を追加した。種々の時点で、留置メッシュをプレーティングして細菌計数に供した。
【図１３】図１３は、齧歯動物モデルにおけるＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０の抗微生物活性を示している。追加のコポリペプチドと共にＰＢＳまたは２ｍｇ／ｍｌのＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０で予浸されたポリプロピレンメッシュをラットの皮下に挿入し、１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８またはＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）（臨床ブタ単離物）のいずれかの接種物を追加した。２日後、周囲組織をプレーティングして細菌計数に供した。
【図１４】図１４は、齧歯動物モデルにおける炎症アッセイの結果を示している。追加のコポリペプチドと共にＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０コポリペプチドで予浸されたポリプロピレンメッシュをラットの皮下に挿入し、１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８の接種物を追加した。４８時間後、炎症に関して組織学的検査により組織を解析した。０＝正常、１＝軽度、２＝中度、３＝重度。
【図１５】図１５は、ブタモデルにおけるＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０の抗微生物活性を示している。Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０（１０ｍｇ／ｍＬ）を創傷に適用し、４時間後、残留物質を吸引し、１０７個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８を創傷に追加した。４８時間後、細菌数を評価した。
【図１６】図１６は、ブタモデルにおける炎症アッセイの結果を示している。Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０（１０ｍｇ／ｍＬ）を創傷に適用し、３０分後、１０４または１０７個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）またはＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）を創傷に追加した。４８時間後、炎症（細胞浸潤および壊死を含む）に関して組織学的検査により組織を解析した。
【図１７】図１７は、５００μｇ／ｍＬのＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０で創傷を処理して２１日間にわたりモニターしたブタモデルにおける創傷治癒を示している。
【図１８】図１８は、溶液剤またはエマルジョン剤として製剤化されたＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０ブロックコポリペプチドのＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）および大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）に対する抗微生物活性を示している。
【図１９】図１９は、溶液剤またはエマルジョン剤のいずれかとして製剤化されたさまざまなサイズの疎水性ドメインを有する１０μｇ／ｍＬのペプチド濃度のコポリペプチドのＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）に対する抗微生物活性を示している。
【図２０】図２０は、エマルジョン剤として製剤化されたＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０コポリペプチドのＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）に対するインビボ抗微生物活性を示している。追加のコポリペプチドと共にコポリペプチドで予浸されたポリプロピレンメッシュをラットの皮下に挿入し、１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８の接種物を追加した。２日後、留置メッシュをプレーティングして細菌計数に供した。
【図２１】図２１は、齧歯動物モデルにおける炎症アッセイの結果を示している。Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０コポリペプチドをエマルジョン剤として製剤化し、追加のコポリペプチドと共にコポリペプチドで予浸されたポリプロピレンメッシュをラットの皮下に挿入した。１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８の接種物を追加し、４８時間後、炎症に関して組織学的検査により組織を解析した。０＝正常、１＝軽度、２＝中度、３＝重度。
【図２２】図２２は、エマルジョンとして製剤化された５００μｇ／ｍＬのＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０で創傷を処理して２１日間にわたりモニターしたブタモデルにおける創傷治癒を示している。
【図２３】図２３は、Ｋ１８０Ｌ２０ブロックコポリペプチドの抗微生物活性を示している。Ｋ１８０Ｌ２０を細菌と共に３０分間インキュベートした後、プレーティングして増殖した。
【図２４】図２４は、齧歯動物モデルにおけるＫ１８０Ｌ２０の抗微生物活性を示している。追加のコポリペプチドと共にＰＢＳまたはＫ１８０Ｌ２０で予浸されたポリプロピレンメッシュをラットの皮下に挿入した。１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８またはＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）（臨床ブタ単離物）のいずれかの接種物を追加した。４８時間後、留置メッシュおよび周囲組織をプレーティングして細菌計数に供した。
【図２５】図２５は、齧歯動物モデルにおける炎症アッセイの結果を示している。追加のコポリペプチドと共にＰＢＳまたはＫ１８０Ｌ２０コポリペプチドで予浸されたポリプロピレンメッシュをラットの皮下に挿入し、１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８の接種物を追加した。４８時間後、炎症（細胞浸潤および壊死を含む）に関して組織学的検査により周囲組織を解析した。
【図２６】図２６は、ブタモデルにおけるＫ１８０Ｌ２０の抗微生物活性を示している。Ｋ１８０Ｌ２０（４０ｍｇ／ｍＬ）を創傷に適用し、４時間後、１０７個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）６５３８を創傷に追加した。４８時間後、最終細菌数を評価した。
【図２７】図２７は、全血の凝固時間に及ぼす１０μｇ／ｍＬのコポリペプチド濃度のコポリペプチドの影響を示している。
【図２８】図２８は、血液凝固に及ぼす１０μｇ／ｍＬのコポリペプチド濃度のコポリペプチドの影響を測定するトロンボエラストグラフィー（ＴＥＧ）アッセイの結果を示している。Ｒ時間は、ＴＥＧ装置中への血液の配置と粘度の初期増加（０から２ｍｍまでのトレース増加により測定される）との間の待ち時間である。Ｒ時間は、架橋増加前の凝固因子の酵素活性に対応する。Ｋ時間は、２から２０ｍｍまでの振幅増加に対応する。α角は、Ｒ時間とＫ時間との間のＴＥＧトレースの傾きである。α角は、血餅成長速度の尺度であり、最大振幅（ＭＡ）は、最大トレースであり、血餅強度の絶対尺度を提供する。
【図２９】図２９は、多血小板血漿中での血小板凝集に及ぼす１００μｇ／ｍＬのコポリペプチド濃度のコポリペプチドの影響を示している。
【図３０】図３０は、血小板凝集に及ぼすコポリペプチドの影響を示している。
【図３１】図３１は、１ｍｇ／ｍｌのアルブミンを含む１００、１０００μｇ／ｍｌ、および１０００μｇ／ｍｌの濃度のＲＨ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０コポリペプチドのフィブリン溶解に及ぼす影響を測定するために用いたフィブリンゲルプレートアッセイを示している。
【図３２】図３２は、コポリペプチドを含有するＰＥＧ系ゲル剤で充填された５分での１５ｍｍ創傷を示したブタ静脈出血の画像を示している。
【図３３】図３３は、ポリペプチド合成データの表（表１）である。ただし、ａ＝ＭｎおよびＰＤＩは、第１のセグメントすなわちポリ（Ｎε−ＣＢＺ−Ｌ−リシン）のゲル浸透クロマトグラフィー（ＧＰＣ）を用いて決定される。組成は、ｂ＝ＧＰＣおよび１Ｈ−ＮＭＲまたはｃ＝ｄ−ＴＦＡ中の１Ｈ−ＮＭＲを用いて計算された。ｄ＝Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０のグアニル化により合成された。
【図３４】図３４は、１００μｇ／ｍＬのコポリペプチド濃度で大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）１１２２９および大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）Ｏ１５７：Ｈ７の９９．９９％増殖阻害に要する最小接触時間（分）の表（表２）である。
【図３５】図３５は、食品関連微生物を含む種々の微生物に対するコポリペプチドの最小阻止濃度（ＭＩＣ）を示す表（表３）である。
【図３６】図３６は、３０秒間の接触時間後の１ｍｇ／ｍｌの濃度のコポリペプチドによるＡ型インフルエンザ（エンベロープウイルス）に対する対数減少を示す表（表４）である。
【図３７】図３７は、Ｂ．サブチリス（Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ）内生胞子に対するエマルジョン剤として製剤化されたコポリペプチドの最小阻止濃度（ＭＩＣ）を示す表（表５）である。
【図３８】図３８は、溶液剤またはエマルジョン剤として製剤化された１００μｇ／ｍＬの濃度のコポリペプチドのヒトケラチノサイトでのインビトロ細胞傷害性を示す表（表６）である。
【図３９】図３９は、１０μｇ／ｍＬの濃度のコポリペプチドに対するトロンボエラストグラフィー（ＴＥＧ）パラメーターを示す表（表７）である。＊値は、未処理の対照との有意差があった（ｐ＜０．０５）。
【発明を実施するための形態】
【００３５】
以下の説明は、当業者であればいずれも本発明の実施および使用が可能になるように提供されており、本発明者により本発明の最良の実施形態とみなされるものを明示している。しかしながら、高抗微生物活性および低毒性を有する合成コポリペプチドを提供する本発明の一般的原理を本明細書に具体的に規定してきたので、当業者であれば種々の変更形態がすぐにわかる状態になっていよう。
【００３６】
本発明に係る抗微生物コポリペプチド組成物は、ブロック形態で配置された１つ以上のカチオン性アミノ酸（たとえば、リシン、アルギニン、ホモアルギニン、オルニチン）および１つ以上の疎水性アミノ酸（たとえば、ロイシン、バリン、イソロイシン、フェニルアラニン、アラニン）を含有しうる（図１〜３、図３３（表１））。ポリカチオン性両親媒性ポリペプチド（たとえば、中性ｐＨでプロトン化されるアミン基、ペルアルキル化アンモニウム、またはグアニジニウムを含有するもの）は、高抗微生物活性を呈する。たとえば、図４に示されるように、我々は、５５個のリシンのブロックとそれに続く２０個のＤおよびＬ（ラセミ）ロイシンのブロックからなる合成コポリペプチド（Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０）が、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）（グラム陽性）、Ｓ．エピデルミディス（Ｓ．ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ）（グラム陽性）、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）（グラム陰性菌）、およびＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）（グラム陰性菌）に対して実質的な抗微生物活性を有することを実証した。我々はまた、いくつかの他の細菌および菌類の生物に対する活性を実証した（以下を参照されたい）。多くの他の合成コポリペプチドを合成した（図３３（表１））。これらは、実質的な抗微生物活性を示す。これとは対照的に、中性ｐＨ（約７）では、ポリアニオン性ポリペプチド（たとえば、Ｅ６４（ｒａｃ−Ｌ）２０）は、低抗微生物活性を呈する。
【００３７】
図５に示されるように、カチオン性アミノ酸のリシンと他の疎水性アミノ酸とに基づくジブロック合成コポリペプチドは、強抗微生物活性を示す。他の研究で、我々は、リシン残基の部分グアニル化により高抗微生物活性が得られることを実証した。たとえば、Ｘ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０は、Ｘ＝Ｋ／ＲＨ（ホモアルギニン）の場合、高抗微生物活性を達成した。すべての他の性質を一定に保ちながら、疎水性アミノ酸組成を変更しても、高インビトロ抗微生物活性がまた維持された（図５）。特定的には、ポリ（Ｌ−リシン−ＨＣｌ）５５−ｂｌｏｃｋ−ポリ（ラセミ疎水性アミノ酸）２０のＫ５５（ｒａｃ−Ｘ）２０は、Ｘ＝アラニン（Ａ）、イソロイシン（Ｉ）、ロイシン／フェニルアラニン（Ｌ／Ｆ）、またはバリン（Ｖ）の場合、非常に低い濃度（１０μｇ／ｍｌ）で、グラム陽性（Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ））細菌およびグラム陰性（大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ））細菌の両方で細菌数の最大観測可能（６ｌｏｇ）減少を達成した。選択されたコポリペプチドはまた、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）Ｏ１５７：Ｈ７や他の食品媒介病原体を含む他の微生物に対して、さらには特定の内生胞子形態の微生物に対して、かなり有効であることが示された（図３４および３５（表２および３））。これらの化合物はまた、図６にカンジダ・アルビカンス（Ｃａｎｄｉｄａ  ａｌｂｉｃａｎｓ）に対して示されるように、特定の菌類生物に対して有効であることが示された。図７に示されるように、特定の微生物（たとえば、Ｐ．アクネス（Ｐ．ａｃｎｅｓ））は、特定のコポリペプチドに対する感受性が他の微生物（たとえば、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ））よりも低いこともある。溶相コポリペプチドはまた、Ｈ１Ｎ１インフルエンザウイルスに対して抗ウイルス活性を示した（図３６（表４））。この実験では、ＲＨ／Ｋ（部分グアニル化リシン）ジブロックコポリペプチドは、とくに活性であることが注目すべき点であった。
【００３８】
これらのブロックコポリペプチドで、我々はまた、疎水性ブロックの長さを変化させた時の高抗微生物活性を実証した（図８および９）。予期せずして、我々は、４０％未満の疎水性含有率を有するブロックコポリペプチドを含めて、いくつかの一連の合成ブロックコポリペプチドで高抗微生物活性を実証した。５または１０個程度の少ない疎水性ロイシンアミノ酸のブロックを有する分子でさえも、５５個のカチオン性リシンアミノ酸のブロックで構築されたとき、良好な抗微生物活性を示した。
【００３９】
別の研究で、我々は、長い親水性ブロック（すなわちＫ９０よりも長い）を有するブロック状コポリペプチドが抗微生物剤として有効であることを実証した（図１０）。それに加えて、我々は、より長い長さ（１００アミノ酸残基を超える）のランダム合成コポリペプチドが非常に有効な抗微生物剤であることを実証した。このことは、さまざまな疎水性含有率の化合物にもあてはまった。
【００４０】
別のインビトロ研究で、我々は、溶液中のブロック配列コポリペプチドが類似の組成のランダム配列コポリペプチドよりも細胞傷害性が低いことを実証した。たとえば、我々は、溶液中のブロック状配列Ｋ５５Ｌ２０が４７．４μｇ／ｍｌでマウスケラチノサイトの細胞生存能を５０％低減するが（ＥＣ５０）、ランダム配列の類似の組成の合成コポリペプチドが溶液中で２１．０μｇ／ｍｌのＥＣ５０を有することを見いだした。同様に、溶液中のブロック配列Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０は、溶液中のランダム配列Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０よりも細胞傷害性が低いことが判明した。以下で説明されるように、さまざまな合成コポリペプチドは、エマルジョン製剤で抗微生物性であることが判明した。この製剤では、ブロック配列合成コポリペプチドはまた、たとえブロック配列コポリペプチド安定化エマルジョンが典型的には等価な（ときにはより高い）抗微生物活性を示したとしても、ランダム配列コポリペプチドよりも細胞傷害性が低いことが判明した（より低いＥＣ５０）。
【００４１】
溶相ブロック配列合成コポリペプチドＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０は、また創傷感染症の予防の齧歯動物モデルで有効であることが示された（図１１〜１３）。我々は、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）およびＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）に対する感染症予防モデルで細菌数の減少を実証した。一貫性のある濃度依存性の減少、典型的には、２０μｇ／ｍｌのコポリペプチドＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０で１〜３ｌｏｇの減少、２ｍｇ／ｍｌで完全（またはほぼ完全）な減少が観測された。この研究から、コポリペプチド製剤は、複合的生体液に暴露されたとき、活性状態を維持するが示唆される。とくに、コポリペプチドは、水性サスペンジョン剤として製剤化可能であるか、または油および水と混合してナノエマルジョン剤の形態に自己集合可能であるか、のいずれかであった。特定の抗微生物コポリペプチドは、有効な界面活性剤である（エマルジョン剤に関しては以下を参照されたい）。
【００４２】
重要なこととして、溶液中のブロック配列合成コポリペプチドＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０は、開放創に対して刺激性でないと思われた。図１４に示されるように、組織病理学的証拠から、炎症は、対照処理のレベル以下であることが示唆された。
【００４３】
溶相抗微生物コポリペプチドはまた、ブタ感染症予防モデルできわめて有効であることが判明した。図１５に示されるように、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）を接種する前にＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０溶液剤を開放創に適用したところ、微生物感染症は完全に予防された。別の研究で、疎水性ブロックがラセミポリ−Ｄ／Ｌ−ロイシンであるコポリペプチドＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０は、動物モデルで優れた組織生体適合性を呈した。たとえば、２日間ブタ開放創研究（図１６）では、対照と対比してＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０処理の動物では、「漿液細胞滲出物および好中球性炎症は、それぞれ、軽度および最小度でありそれほど重篤ではない」ことが、組織学的解析（獣医病理学者による）から示された。単核性炎症、浮腫、または出血に関して、差は観測されなかった。２１日間ブタ創傷治癒研究（非感染）では、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０処理創傷および対照処理創傷は、獣医病理学者により、炎症、壊死、および上皮被覆率に関して、類似していることが判明した（図１７）。
【００４４】
合成コポリペプチドに基づく抗微生物エマルジョン剤。この合成コポリペプチドは、エマルジョン剤を安定化しうる（および／またはそれに提示されうる）有効な界面活性剤となるように設計することが可能である。我々は、さまざまな合成コポリペプチドエマルジョン製剤がインビトロで有効な抗細菌剤であることを実証した（図１８および１９）。とくに、この抗微生物エマルジョン剤は、Ｂ．サブチリス（Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ）内生胞子に対して活性であることが判明した（図３７（表５））。溶相コポリペプチドに関連して以上に説明したように、エマルジョン製剤は、Ｈ１Ｎ１インフルエンザウイルス（図３６（表４））に対して、さらには非エンベロープバクテリオファージに対して、抗ウイルス活性を示した。
【００４５】
合成コポリペプチドに基づく抗微生物エマルジョン剤はまた、齧歯動物の感染症予防モデルで有効であることが判明した（図２０）。我々は、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）に対する感染症予防モデルで細菌数の減少を実証した。一貫性のある濃度依存性の減少、典型的には、２０μｇ／ｍｌのコポリペプチドＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０系エマルジョン剤で１〜４ｌｏｇの減少、２ｍｇ／ｍｌで完全（またはほぼ完全）な減少が観測された。この研究から、コポリペプチドエマルジョン製剤は、複合的生体液に暴露されたとき、活性状態を維持することが示唆される。この抗微生物エマルジョン剤は、創傷で十分に認容性があると思われ、組織学的検査により評価されるように、対照処理よりも増大された炎症を引き起こさなかった（図２１）。それに加えて、この抗微生物エマルジョン剤は、創傷治癒（非感染）の２１日間ブタモデルで十分に認容性があることが判明した（図２２）。
【００４６】
さらなる研究から、抗微生物合成コポリペプチドエマルジョン剤は、インビトロでより少ない細胞傷害性を有することが示唆された（図３８（表６））。他の研究では、この観測結果は、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０、Ｋ５５Ｌ２０、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ／Ｆ）２０を含む複数の合成コポリペプチドにわたり一貫性があった。まとめると、合成ブロック配列コポリペプチドを階層構造のエマルジョン剤およびナノエマルジョン剤の形態で構成することにより、抗微生物活性の改良、哺乳動物毒性の低減、またはその両方が可能になることが、これらのデータから示唆される。
【００４７】
合成コポリペプチドに基づく抗微生物ヒドロゲル剤。本発明はまた、抗微生物ヒドロゲル剤を形成するフィブリルの形態に自己集合するブロックコポリペプチドを説明する。以下で説明されるように、Ｋ１８０Ｌ２０は、ヒドロゲル形成剤であり、インビトロで強抗微生物活性およびインビボ研究で有効な微生物増殖予防を示した。図２３に示されるように、Ｋ１８０Ｌ２０は、創傷感染症に重要であることが知られているグラム陽性の（Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）細菌、Ｓ．エピデルミディス（Ｓ．ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ））細菌、およびグラム陰性の（大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）細菌、Ｐ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ））細菌に対して、インビトロで強力な抗微生物活性を示した（６．３μｇ／ｍＬで５＋ｌｏｇの減少）。タイムキルアッセイでは、１００μｇ／ｍＬのＫ１８０Ｌ２０は、Ｓ．エピデルミディス（Ｓ．ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ）、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）、およびＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）に対して、５分以内で３ｌｏｇの減少を示した。
【００４８】
他の研究では、Ｋ１８０Ｌ２０ブロックコポリペプチドはインビボで抗微生物性であることが実証された。図２４に示されるように、Ｋ１８０Ｌ２０は、異物を含む齧歯動物閉鎖創モデルで微生物増殖の阻害に有効であった。このモデルでは、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）またはＫ１８０Ｌ２０で予浸されたメッシュをＳｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙラットの背側頸部の皮下に挿入し、続いて、１０６個のＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）またはＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）を追加した。さらなるＰＢＳまたはＫ１８０Ｌ２０を追加し、創傷を閉鎖し、そして動物をケージに４８時間戻した。Ｋ１８０Ｌ２０（２ｍｇ／ｍｌおよび２０ｍｇ／ｍｌ）は、メッシュおよび隣接組織から培養された細菌（Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）およびＰ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）の両方）の数を実質的に低減した。炎症の増大は、感染症の齧歯動物モデルにおいてこの抗微生物ヒドロゲル剤では観測されなかった（図２５）。
【００４９】
別の研究では、ヒドロゲル系ブロック配列コポリペプチドＫ１８０Ｌ２０は、ブタ開放創モデルでＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）の阻害に有効であった（図２６）。２５〜３５ｋｇのヨークシャー種交雑ブタの背側胸部および側方胸部に直径１ｃｍの全層創傷を形成した。Ｋ１８０Ｌ２０ヒドロゲル剤（または対照緩衝液）を適用し、４時間後、創傷にＳ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）を接種した。４８時間後、標準的微生物学法により細菌数に関して創傷を評価した。図２６に示されるように、Ｋ１８０Ｌ２０ヒドロゲル剤は、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）のカウント数を十分に低減した。
【００５０】
ブロック配列構造。特定の実施形態では、この抗微生物コポリペプチド組成物は、２個以上の連続したカチオン性アミノ酸／単量体（たとえば、リシン、アルギニン）のセグメントまたは２個以上の連続した疎水性アミノ酸／単量体（たとえば、ロイシン、イソロイシン、バリン、アラニン、フェニルアラニン）のセグメントを含有する１つ以上のブロックを含むブロック配列構造を有しうる。特定の場合、トリブロックまたはマルチブロックの化合物（すなわち、個別のアミノ酸、単量体のいくつかのブロック、および／または他のポリマーブロック）は、とくに有効でありうる。交互のアミノ酸または単量体のブロックもまた、有効でありうるが、ランダム配列のブロックもまた、特定の状況では有利でありうる。他の実施形態はまた、異なるポリマーに化学結合された同一のアミノ酸／単量体または異なるアミノ酸／単量体のコポリペプチドブロックまたはセグメントを特徴としうる。ブロックコポリペプチド／コポリマーの生体活性および化学組成はまた、ランダムコポリペプチド／コポリマーのものよりも再現性がありうると予想される。ブロックコポリペプチドはまた、ランダムコポリペプチドよりも免疫原性がありうると予想される。ブロックは、さまざまな親水性度または疎水性度を呈する天然および／または非天然のアミノ酸で構成されうる。天然アミノ酸（疎水性のもの、たとえば、限定されるものではないが、アラニン、グリシン、イソロイシン、ロイシン、フェニルアラニン、バリン、および親水性のもの、たとえば、限定されるものではないが、アルギニン、アスパラギン酸、アスパラギン、グルタミン酸、グルタミン、リシン、セリン、チロシン、もしくはトレオニン）、または非天然アミノ酸、たとえば、限定されるものではないが、フッ素化炭化水素もしくは不飽和炭化水素、さらにはエナンチオピュア混合物またはラセミ混合物を使用することが可能である。ポリペプチド材料に加えて、すなわち、合成ポリマーとペプチドセグメントまたはブロックとを含有するハイブリッドもまた、抗微生物活性の増大、哺乳動物毒性の低減、またはその両方を呈しうる。たとえば、疎水性ポリペプチドを親水性ポリマーもしくはオリゴマーにコンジュゲートさせてもよく、または疎水性合成ポリマーもしくはオリゴマーを親水性ペプチドにコンジュゲートさせてもよく、これらは、結合されたアミノ酸で全体が構成された材料と類似の特徴を呈しうる。ポリマー骨格中に直接組み込むかグラフトとして組み込むなどにより、ペプチドのセグメント、ブロック、またはドメインを、合成オリゴマーまたは合成ポリマーのセグメントで置き換えることも可能である。
【００５１】
我々は、ブロック配列構造を用いて分子の自己会合または自己集合を誘導することが可能であることを実証した。たとえば、我々は、臨界凝集濃度（ＣＡＣ）を決定することにより、ブロック配列コポリペプチドＫ５５Ｌ２０がランダム配列Ｋ５５Ｌ２０（ＣＡＣ＝１６０μＭ）よりも実質的に強い自己会合（ＣＡＣ＝０．３３μＭ）を呈すことを実証した。この分子設計要素は、設計階層構造が関与する我々の発明の好ましい実施形態に重要である。
【００５２】
設計階層構造。この組成物は、多量体、ミセル、ヒドロゲル、ベシクルなどの階層構造またはそれらの混合物として製剤化されてもよい。抗微生物要素を、より効率的な方法またはより高い局所濃度のいずれかで活性剤を提示する高次構造に、組織化することにより、抗微生物活性の増大または哺乳動物毒性の低減またはその両方を誘導しうる。たとえば、エマルジョンの液体界面の親水性セクションのカチオン電荷密度を高くすることにより、微生物とのより良好な相互作用をもたらすことができる。同様にして、ベシクル、ミセル、ラメラ、ヒドロゲルなどの他の高次構造もまた、単離された抗微生物要素単独よりも効果的に抗微生物要素を送達することができうる。一方、両親媒性ポリマー中に存在して、ときには疎水性セグメントのより高秩序化された構造に関与する二次相互作用は、哺乳動物毒性の低減に関与しうる。
【００５３】
これらの設計合成コポリペプチドは、階層構造（たとえば、多量体、ミセル、エマルジョン、ヒドロゲル、ベシクル）の形態に自己集合することにより、抗微生物活性（インビトロもしくはインビボで）の増大、毒性の低減、またはその両方を行いうる。さらに、これらの化合物は、局所的な集中した抗微生物活性を提供することができる場合、損傷組織に容易に沈着しうる、および／または直接結合しうる。
【００５４】
特定の実施形態では、これらの組成物は、エマルジョン剤、マイクロエマルジョン剤、もしくはナノエマルジョン剤として製剤化されてもよく、またはそれらに混合されてもよい。特定的には、このエマルジョン剤は、高抗微生物活性、低哺乳動物毒性、またはその両方を有するように設計されてもよい。これらの活性は、油相の組成やドロップレットサイズなどの１つ以上の追加の因子に依存しうると認識される。
【００５５】
特定の実施形態では、これらの抗微生物コポリペプチドは、ヒドロゲル剤として製剤化されてもよい。これらの抗微生物分子は、ヒドロゲル剤の形態に自己集合するであろう。本質的に抗微生物性の物理ヒドロゲル剤には、細径開口（たとえば２０ゲージ針）を貫通可能でありうるかまたは小組織空隙に進入してから迅速に再ゲル化可能でありうるという利点があると予想される。これらのヒドロゲル形成抗微生物コポリペプチドは、やや組織接着性かつ光学的透明性になるように設計されてもよい。それらは、局在化された集中した抗微生物活性さらには標準的ヒドロゲル剤の利点（たとえば体液貯留）を提供すると予想される。ヒドロゲル剤を形成するフィブリルの形態に自己集合するコポリペプチドの抗微生物性は、ゲル化濃度をかなり下回る濃度で実証された。たとえば、Ｋ１８０Ｌ２０は、１０μｇ／ｍｌの濃度で強抗微生物性であるが、そのゲル化濃度は、約１０ｍｇ／ｍｌであることが示された。このことから、この材料は、本質的に抗微生物性であると同時に、巨視的性質を製剤に提供する階層構造の形態に自己会合可能であることが立証される。また、ヒドロゲル形成濃度（たとえば２０ｍｇ／ｍｌ）のＫ１８０Ｌ２０は、インビボ感染症予防モデルで有効な抗微生物剤であるとともに、いくつかのインビボモデルで低毒性を有することが示された。
【００５６】
長鎖長。特定の実施形態では、これらの抗微生物コポリペプチド組成物は、比較的長い鎖長（たとえば１００アミノ酸超）を有しうる。より長い鎖長を有する合成コポリペプチドは、特定の状況で有効性の増大、哺乳動物毒性の低減、またはその両方を呈するように最適化可能であると予想される。とくに、それらは、複数の活性部位、コンフォメーション、ドメイン、または断片を呈しうるので、部分的な複合体化または分解の後でさえも、継続してより効果的に抗微生物活性を呈しうる。長鎖状コポリペプチドは、微生物表面とより効果的に相互作用し、かつ一度に２つ以上の微生物と相互作用しうる。より長いポリペプチドは、細菌膜の負荷電成分を架橋することにより、細菌膜をより効果的に破壊することができうる。それらはまた、特定の可溶性の生体分子または組織成分と相互作用可能でありうるとともに、分子セグメントを遊離状態にして微生物と相互作用可能でありうる。
【００５７】
低疎水性含有率。これらの組成物は、他の抗微生物ペプチドと比較して低モル分率たとえば３５％以下の疎水性単量体（たとえば、ロイシン、イソロイシン、バリン、アラニン、フェニルアラニン、または非ペプチド疎水性単量体）を有しうる。本発明では、我々は、低モル分率の疎水性単量体（たとえば、ｆＨＭ＝８％、１８％、２５％、３５％）を有するブロックコポリペプチドが高抗微生物活性および低哺乳動物毒性をもたらしうると認識している。そのような化合物は、高ｆＨＭを有するコポリマーに固有の特定の制限を克服しうる。低ｆＨＭを有する両親媒性コポリマーは、いくつかの顕著な利点を呈する。たとえば、疎水性含有率の低減により哺乳動物毒性が低減されると予想される。抗微生物ペプチドの疎水性含有率を増加させると、おそらく哺乳動物細胞膜に対する細菌の選択性が低減されることにより、溶血活性が増加すると報告されてきた［２２］。他の利点としては、水性溶液への溶解度の改良が挙げられうる。本発明に係るいくつかの組成物では、低ｆＨＭが採用されている。具体的には、我々は、約８％程度の低いモル分率の疎水性単量体を用いて高抗微生物活性を実証した。さらに、我々は、疎水性含有率の低減または親水性含有率の増大のいずれかにより、高抗微生物活性を達成可能であることを示した。
【００５８】
エナンチオ純度は二次構造に影響を及ぼす。特定の実施形態では、アミノ酸のエナンチオ純度（特定的には疎水性ドメイン中）は、自己集合特性を制御するために使用可能である。例として、我々は、Ｋ５５Ｌ２０およびＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０の両方が、非常に低濃度（１０μｇ／ｍｌ）で、グラム陽性（Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ））株およびグラム陰性（大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）、Ｐ．アエルギノサ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ））株の両方で、細菌の減少を達成することを実証した。ラセミ混合物またはさまざまな光学純度の混合物は、溶解性の改良および凝集の低減を呈しうる。重要なこととして、わずかなＤ−アミノ酸の組込みは、バイオフィルムに対する治療用途で特有の利点を有しうる［３８］。さらに、光学純度の減少は、自己会合特性および／または自己集合特性に影響を及ぼす秩序化二次構造を除去する。たとえば、我々は、臨界凝集濃度（ＣＡＣ）を決定することにより、ブロック配列コポリペプチドＫ５５Ｌ２０がＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０（ＣＡＣ＝８．１μＭ）よりも強い会合（ＣＡＣ＝０．３３μＭ）を呈することを実証した。
【００５９】
溶液準安定性。特定の実施形態では、これらの抗微生物コポリペプチド組成物は、比較的低い溶液安定性を有するように設計可能である。さらに、これらの材料は、微生物（たとえば、細菌のマイクロコロニーおよびバイオフィルム）上に一般に見いだされる負荷電要素との相互作用部位および組織損傷部位に結合／沈積するように設計可能である。これらの溶液「準安定」抗微生物分子は、容易に沈積しうる（たとえば、反対電荷の微生物または哺乳動物組織材料と相互作用する場合）。特定の利点は、局所的な集中した抗微生物活性を提供可能である場合、損傷組織に容易に沈着および／または直接結合する合成コポリペプチドに由来しうる。さらに、抗微生物コポリペプチド（または他の抗微生物材料）は、微生物（たとえば、細菌のマイクロコロニーおよびバイオフィルム）の部位に結合／沈着することにより、特定の状況でより有効になりうる。生体物質（たとえば、血清、創傷液、損傷組織、細菌バイオフィルム）の不在下では合成コポリペプチド階層構造が完全に溶媒和された状態を維持するが、生体物質に結合すると準安定になるように、特定の設計要素が組み込まれてもよい。抗微生物材料は、準安定になった後、組織または細菌コロニーに沈着しうるので、局所濃度が劇的に増加して抗微生物剤としておよび／または抗微生物障壁として機能する。
【００６０】
多価性。特定の実施形態では、これらの組成物は、複数の抗微生物部位を含むように工学操作されてもよい。これらの抗微生物部位は、カチオン電荷の局所領域および／または疎水性の局所領域を含みうる。したがって、単一材料は、微生物を死滅させうる／阻害しうるいくつかの異なる活性部位を有しうる。このようにして、単一超分子構築物で「マルチヒット」法を行いうるので、より大きい有効性の提供および微生物の耐性可能性のさらなる低減が可能である。それに加えて、相加活性または相乗活性が観測されうる。それに加えて、この材料は、分解に伴って抗微生物断片を放出しうる。
【００６１】
微生物選択性。これらの組成物は、特定の微生物を他のものよりも優先的に標的化するように工学操作可能である。とくに、伝統的正常フローラ（たとえば、Ｐ．アクネス（Ｐ．ａｃｎｅｓ））よりも伝統的病原性生物（たとえば、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）、メチシリン耐性Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）（ＭＲＳＡ））を標的化することが、とくに有益な利点でありうる。さらに、選択されたウイルス、細菌、または菌類を標的化することは、手指衛生剤での使用や創傷感染症予防での使用などの特定の臨床状況に適合しうる。我々は、Ｐ．アクネス（Ｐ．ａｃｎｅｓ）に対してよりも、Ｓ．アウレウス（Ｓ．ａｕｒｅｕｓ）に対してインビトロで高い活性を示す複数の合成コポリペプチドを開発した。
【００６２】
混合物。特定の実施形態では、これらの組成物は、２つ以上の個別の抗微生物コポリペプチド／コポリマーを用いて製剤化されてもよい。このようにして、組成物で「ツーヒット」法を行いうるので、より大きい有効性の提供および微生物の耐性出現のさらなる低減が可能である。それに加えて、相加活性または相乗活性が観測されうる。
【００６３】
特定の実施形態では、これらの組成物は、単量体アミノ酸または残基の化学修飾を行って、たとえば、第一級アミン（たとえば、リシン単量体のもの）からグアニジニウム基への変換を行って、合成されてもよい。他の修飾としては、アルキル化、アシル化、アミド化、ハロゲン化、エステル交換、還元的アミノ化、あるいは官能基の付加または単量体アミノ酸もしくは残基の既存の官能基の修飾を行う他の化学変換が挙げられうる。
【００６４】
特定の実施形態では、これらの組成物は、さまざまなクラスの他の抗微生物剤（たとえば、アルコール、塩素系化合物、第四級アンモニウム化合物、フェノール化合物、クロルヘキシジン、抗生物質、抗体）を用いて製剤化されてもよい。これは、本発明に係る組成物を公知の抗微生物剤と混合することを含みうる。それは、合成コポリペプチド／コポリマーを送達剤タイプまたはデポ剤タイプ（たとえば、エマルジョン剤、ダブルナノエマルジョン剤、ベシクル剤、ヒドロゲル剤）として製剤化すること、および１つ以上の追加の抗微生物物質を組み込むこと、を含みうる。
【００６５】
特定の実施形態では、これらの組成物は、生体活性材料または他の活性医薬成分（ＡＰＩ）を用いて製剤化されてもよい。このようにして、製剤は、抗微生物活性さらには第２または第３の機能を提供することが可能である。可能なものとしては、止血材料、創傷治癒を支援する増殖因子、炎症誘発剤または抗炎症剤、および免疫モジュレーターが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００６６】
特定の実施形態では、合成抗微生物コポリペプチド／コポリマーは、他の生体活性要素（たとえば、特定配列、ブロック、階層構造、または化学修飾）を含有するように設計されてもよい。たとえば、それらは、血小板結合、血小板活性化、凝固促進、フィブリン溶解減少、体液吸収、物理障壁作用などの１つ以上の機序により止血を促進する要素を含有しうる。本発明では、本質的に止血性である合成コポリペプチド、さらには抗微生物活性と止血活性とを兼備するものが想定される（図２７〜３２、図３９（表７））。
【実施例】
【００６７】
実験
概要。使用前、窒素下でアルミナ充填カラムに通すことにより、無水テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）を準備した。１０５、１０４、および１０３Å  Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ  ５μｍカラムで、溶出液としてＤＭＦ中の０．１Ｍ  ＬｉＢｒおよび約５ｍｇ／ｍＬのポリペプチド濃度を用いて、Ｗｙａｔｔ  ＤＡＷＮ  ＥＯＳ光散乱検出器および、Ｗｙａｔｔ  Ｏｐｔｉｌａｂ  ＤＳＰを備えたＳＳＩポンプを利用して、６０℃でタンデムゲル浸透クロマトグラフィー／光散乱（ＧＰＣ／ＬＳ）を行うことにより、分子量（Ｍｎ）および多分散度（ＰＤＩ）を得た。ポリスチレン膜を用いて校正されたＰｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ  ＲＸ１  ＦＴＩＲ分光光度計を利用して、フーリエ変換赤外スペクトル（ＦＴＩＲ）を記録した。Ｂｒｕｋｅｒ  ＡＶＡＮＣＥ  ４００ＭＨｚ分光計を利用して、１Ｈ  ＮＭＲスペクトルを記録した。Ｐｕｒｅｌａｂ  Ｏｐｔｉｏｎ  ５６０逆浸透式浄水器を用いて、脱イオン（ＤＩ）水を精製した。Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｍｉｌｌｉ−Ｑ  Ｂｉｏｃｅｌ  Ａ１０精製ユニットから、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ水を得た。
【００６８】
ブロックコポリペプチド合成−概要。既刊文献プロトコルを用いて、α−アミノ酸−Ｎ−カルボキシアンヒドリドＮＣＡ単量体を合成した。（ＰＭｅ３）４Ｃｏ開始剤を用いて、すべてのブロックコポリペプチドを重合した。ＧＰＣ、１Ｈ  ＮＭＲ、およびＩＲ分光法を用いて、得られたポリペプチドの特性解析を行った。ｄ−ＴＦＡ中で記録された１Ｈ  ＮＭＲスペクトルの積分値を解析することにより、コポリマーの組成を決定した。組成はすべて、予測値の５％以内であることが判明した。ポリマー鎖長分布（Ｍｗ／Ｍｎ）は、１．１〜１．３の範囲内であった。
【００６９】
ポリ（Ｎε−ＣＢＺ−Ｌ−リシン）５５−ｂ−ポリ（ｒａｃ−ロイシン）２０、Ｚ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０。ドライボックス内で、攪拌子を備えた５００ｍＬ平底フラスコ中にＮε−ＣＢＺ−Ｌ−リシン、Ｚ−Ｋ  ＮＣＡ（１１．３４ｇ、３７ｍｍｏｌ）を入れた。無水ＴＨＦ（２２７ｍＬ）を添加し、次いで、プラスチック栓で密封した。次いで、シリンジを介して（ＰＭｅ３）４Ｃｏのアリコート（１８．９ｍＬの４０ｍｇ／ｍＬ  無水ＴＨＦ溶液、２．１ｍｍｏｌ）を添加し、そしてフラスコを密封して４５分間攪拌した。アリコート（５０μＬ）を重合系から取り出してＧＰＣ分析に供した（Ｍｎ＝１４．７×１０３ｇ／ｍｏｌ、Ｍｗ／Ｍｎ＝１．１２）。次いで、ストックのポリ（Ｎε−ＣＢＺ−Ｌ−リシン）５５を８つの画分に等分して（それぞれ０．２６ｍｍｏｌの（ＰＭｅ３）４Ｃｏ開始剤）、１２５ｍＬ平底フラスコ中に入れた。各画分に、必要に応じて異なる量の疎水性Ｄ，Ｌ  ＮＣＡを添加した。たとえば、Ｚ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０を合成するために、Ｄ，Ｌロイシン（Ｌ）ＮＣＡのアリコート（５．３ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、１．７ｍｍｏｌ）を添加して一晩重合させた。
【００７０】
類似の手順を用いて、次のブロックコポリマー、すなわち、Ｚ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）５、Ｄ，ＬロイシンＮＣＡ（１．３ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、０．４２ｍｍｏｌ）、Ｚ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）１０、Ｄ，ＬロイシンＮＣＡ（２．７ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、０．８４ｍｍｏｌ）、Ｚ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）３０、Ｄ，ＬロイシンＮＣＡ（７．９ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、２．５ｍｍｏｌ）、Ｚ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ｉ）２０、Ｄ，Ｌイソロイシン（Ｉ）ＮＣＡ（５．３ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、１．７ｍｍｏｌ）、Ｚ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ／Ｆ）２０、Ｄ，ＬロイシンＮＣＡ（２．６ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、０．８４ｍｍｏｌ）およびＤ，Ｌフェニルアラニン（Ｆ）ＮＣＡ（３．２ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、０．８４ｍｍｏｌ）、Ｚ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ａ）２０、Ｄ，Ｌアラニン（Ａ）ＮＣＡ（３．９ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、１．７ｍｍｏｌ）、ならびにＺ−Ｋ５５（ｒａｃ−Ｖ）２０、Ｄ，Ｌバリン（Ｖ）ＮＣＡ（５．３ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、１．７ｍｍｏｌ）を作製した。
【００７１】
ポリ（Ｌ−リシン・ＨＣｌ）５５−ｂ−ポリ（ｒａｃ−ロイシン）２０、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０。ポリ（Ｎε−ＣＢＺ−Ｌ−リシン）５５−ｂ−ポリ（ｒａｃ−ロイシン）２０をドライボックスから取り出した。ＴＨＦを減圧下で除去し、次いで、トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）（５０ｍＬ）中に溶解させた。次いで、フラスコを氷浴中に入れ、続いて、ＨＢｒ（３３％酢酸溶液、６．０ｍＬ、１９．７ｍｍｏｌ）を添加して２時間撹拌した。反応混合物（５０ｍＬ）にジエチルエーテルを添加し、続いて、遠心分離（３，０００ｒｐｍで３分間）することにより、脱保護されたポリマーを単離した。次いで、ジエチルエーテルを用いて、さらに２回にわたり、沈殿したポリマーを洗浄して遠心分離した。次いで、単離されたポリマーをＭｉｌｌｉｐｏｒｅ水中に溶解させ、そして２回／日で各溶液を交換して、テトラナトリウムＥＤＴＡ（３ｍｍｏｌ、４日間）、０．１Ｍ  ＨＣｌ（２日間）、ＤＩ水（１日間）、０．１Ｍ  ＮａＣｌ（２日間）、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ水（２日間）で透析した（２，０００ＭＷＣＯ膜）。透析されたポリマーを凍結乾燥により単離して、乾燥白色粉末（０．８０ｇ、８４％）として生成物を得た。
【００７２】
類似の手順を用いて、次のブロックコポリマー、すなわち、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）５（０．５１ｇ、６２％）、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）１０（０．７０ｇ、８１％）、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ）３０（０．７７ｇ、７４％）、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｉ）２０（０．７８ｇ、８１％）、Ｋ５５（ｒａｃ−Ｌ／Ｆ）２０（０．７４ｇ、７９％）、Ｋ５５（ｒａｃ−Ａ）２０（０．８２ｇ、９２％）、およびＫ５５（ｒａｃ−Ｖ）２０（０．８２ｇ、８８％）を作製した。
【００７３】
ポリ（エチレングリコール）２０５−ｂ−ポリ（ｒａｃ−ロイシン）２０、ＰＥＧ２０４（ｒａｃ−Ｌ）２０。使用前、０．５０ｇのω−アミノ末端ポリ（エチレングリコール）モノメチルエーテルＰＥＧ２０５−ＮＨ２（Ｍｎ＝９，０００ｇ／ｍｏｌ、ＰＤＩ＝１．０８）を無水ベンゼン中で脱水し、続いて、蒸留により溶媒を除去して、乾燥固体を得た。ドライボックス内で、ＰＥＧ２０５−ＮＨ２（０．５０ｇ、５．６×１０−５モル）を４．０ｍＬの無水ＤＭＦ中に溶解させた。次いで、Ｌ−ロイシンＮＣＡ（８３ｍｇ、０．５３ｍｍｏｌ）およびＤ−ロイシンＮＣＡ（８３ｍｇ、０．５３ｍｍｏｌ）を無水ＤＭＦ（２．５ｍＬ）中に溶解させ、次いで、重合混合物に添加した。十分に重合されるまで、溶液を室温で３日間撹拌した。次いで、ドライボックスから取り出して、５ｍＬのＭｉｌｌｉｐｏｒｅ水を添加し、次いで、透析膜（２，０００ＭＷＣＯ膜）に移し、そして２回／日で各溶液を交換して、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ水（３日間）で透析した。透析されたポリマーを凍結乾燥により単離して、乾燥白色粉末（０．５１ｇ、８２％）として生成物を得た。１Ｈ−ＮＭＲ
ポリ（Ｌ−グルタミン酸−Ｎａ）６４−ｂ−ポリ（ｒａｃ−ロイシン）２０、Ｅ６４（ｒａｃ−Ｌ）２０。ドライボックス内で、攪拌子を備えた２５０ｍＬ平底フラスコ中にγ−ベンジル−Ｌ−グルタミン酸、Ｂｚｌ−Ｇｌｕ  ＮＣＡ（５．００ｇ、１９ｍｍｏｌ）を入れた。無水ＴＨＦ（１００ｍＬ）を添加し、次いで、プラスチック栓で密封した。次いで、シリンジを介して（ＰＭｅ３）４Ｃｏのアリコート（１１．５ｍＬの４０ｍｇ／ｍＬ無水ＴＨＦ溶液、１．２７ｍｍｏｌ）を添加し、そしてフラスコを密封して１時間攪拌した。アリコート（５０μＬ）を重合系から取り出してＧＰＣ分析に供した（Ｍｎ＝１３．９×１０３ｇ／ｍｏｌ、Ｍｗ／Ｍｎ＝１．２７）。次いで、Ｄ，Ｌロイシン（Ｌ）ＮＣＡのアリコート（１８．７ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、６．０ｍｍｏｌ）を添加して一晩重合させた。次いで、ＴＨＦを減圧下で除去し、次いで、無水ＣＨ２Ｃｌ２（１００ｍＬ）中に溶解させた。ベンジル保護基を除去するために、シリンジを介してヨードトリメチルシラン（１０．８ｍＬ、７６ｍｍｏｌ）を添加した。還流冷却器をフラスコに取り付けて、４０℃で一晩還流させた。次いで、溶媒を減圧下で除去し、そして１Ｍ  ＮａＯＨを添加して一晩撹拌し、次いで、濾過して沈殿物を除去し、２回／日で各溶液を交換して、５ｍＭ重亜硫酸ナトリウムおよび０．１Ｍ  ＮａＯＨ（３日間）、次いで、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ水（４日間）で透析した（６〜８，０００ＭＷＣＯ膜）。次いで、透明溶液を凍結乾燥させて白色綿毛状固体（１．２６ｇ、３６％）を得た。
【００７４】
ポリ（Ｌ−ホモアルギニン・ＨＣｌ）５５−ｂ−ポリ（ｒａｃ−ロイシン）２０、ＲＨ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０。攪拌子の入った５００ｍＬ丸底フラスコ中にＫ５５（ｒａｃ−Ｌ）２０（１．００ｇ、０．０９ｍｍｏｌ）を添加し、次いで、１Ｍ  ＮａＯＨ（１３７ｍＬ）中に分散させた。次いで、３，５−ジメチル−１−ピラゾールホルムアミジニウム硝酸塩を添加した（３．９３ｇ、１９．６ｍｍｏｌ）。ＨＣｌを用いてｐＨをｐＨ＝１０に調整し、次いで、４０℃の油浴中に入れて４８時間攪拌した。反応をクエンチするために、０．１Ｍ  ＨＣｌで溶液をｐＨ＝３に酸性化し、次いで、透析バッグ（２，０００ＭＷＣＯ）中に入れ、そして２回／日で各溶液を交換して、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ水（５日間）で透析した。透析されたポリマーを凍結乾燥により単離して、白色粉末（０．９５ｇ、７８％）として生成物を得た。
【００７５】
ポリ（Ｌ−リシン・ＨＣｌ）８０−ｃｏ−ポリ（Ｌ−リシン）８０、Ｋ８０（ｒａｃ−Ｌ）２０。攪拌子の入った５０ｍＬポリプロピレン遠心管にポリ（Ｌ−リシン・ＨＣｌ）８０、Ｋ８０（７５ｍｇ、５．７μｍｏｌ）を添加し、次いで、５０ｍＭ  ２−（Ｎ−モルホリノ）エタンスルホン酸（ＭＥＳ）緩衝液（１５ｍＬ）中に溶解させた。次いで、テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）を添加した（１４．３ｍＬ）。この溶液に、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（５３０μＬの１０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ／水溶液、４６μｍｏｌ）、オクタン酸（６６０μＬの１０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ溶液、４６μｍｏｌ）、および１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド（２．６ｍＬの５０ｍｇ／ｍＬ  ＴＨＦ／水溶液、０．６８ｍｍｏｌ）を添加した。溶液を一晩撹拌させた。翌日、溶液を透析バッグ（２，０００ＭＷＣＯ）中に入れ、そして２回／日で各溶液を交換して、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ水（３日間）、０．０１Ｍ  ＨＣｌ（２日間）、０．０１Ｍ  ＮａＯＨ（１日間）、０．０１Ｍ  ＨＣｌ（１日間）、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ水（２日間）で透析した。透析されたポリマーを凍結乾燥により単離して、白色粉末（６８ｍｇ、８５％）として生成物を得た。
【００７６】
ピレン蛍光による臨界凝集濃度（ＣＡＣ）。ポリペプチド溶液（２ｍＬ）を濃度範囲（２．０×１０−３〜２．０×１０−１２Ｍ）で水中に分散させた。アセトン中にピレンを溶解させることにより、ストックピレン溶液を作製した（６．０×１０−２Ｍ）。次いで、１２×１０−７Ｍの水中最終濃度になるように適切な量のピレンストック溶液を添加し、そしてアセトンを蒸発除去した。各ポリペプチド溶液に、６．０×１０−７Ｍの最終濃度になるように、２．０ｍＬの水性ストックピレン溶液を添加した。次いで、各溶液を一晩平衡化させた後、測定を行った。蛍光スペクトルを記録するために、３．０ｍＬの各ポリペプチド溶液を４．０ｍＬポリスチレンキュベットに添加した。３９０ｎｍの発光波長で励起スペクトルを３００〜３６０ｎｍの範囲内で記録した。すべてのスペクトルを１ｓｅｃ／０．５ｎｍの積算時間で操作した。サンプルごとに２つのピークの強度比Ｉ３３８／Ｉ３３３をポリペプチド濃度（Ｍ）の関数としてプロットした。プロットの外挿線形あてはめの交点としてＣＡＣを決定した。
【００７７】
エマルジョン製剤。典型的な製剤では、８００μＬの１ｗ／ｖ％ポリペプチド溶液を１．５ｍＬ滅菌遠心管に添加した。次いで、最終体積分率（φ＝０．２）になるように、２００μＬの油相、典型的には１０ｃＳｔの粘度を有するポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）（０．２μｍ滅菌フィルターを介して濾過することにより滅菌した）を添加した。ハンドヘルド超音波ホモジナイザー（Ｃｏｌｅ−Ｐａｒｍｅｒ  ４７１０  Ｓｅｒｉｅｓ  Ｍｏｄｅｌ  ＡＳＩ、３５〜４０％の出力）を用いて溶液を１分間乳化し、ナノスケールのドロップレット（動的光散乱ＤＬＳ測定に基づいて直径約４００〜５００ｎｍ）を形成した。
【００７８】
したがって、以下の特許請求の範囲は、以上で具体的に例示および説明されたもの、概念的に均等なもの、明らかに置換え可能なもの、さらには本発明の本質的概念が本質的に組み込まれたものを含むことを理解されたい。前述の好ましい実施形態の種々の適応形態および変更形態を、本発明の範囲から逸脱することなく、構成可能であることは、当業者であればわかるであろう。例示された実施形態は、単に例を挙げることを目的として記載されたものにすぎず、本発明を限定するものとみなしてはならない。したがって、本明細書で具体的に説明した以外に、添付の特許請求の範囲内で、本発明を実施しうることを理解されたい。
付記
［１］少なくとも５個のカチオン性アミノ酸残基と、
ブロック状アミノ酸配列であって、前記ブロックの少なくとも１つが少なくとも１０個の親水性アミノ酸残基を含有し、かつ前記ブロックの少なくとも１つが少なくとも５個の疎水性アミノ酸残基を含有する、ブロック状アミノ酸配列と、
微生物を阻害するまたは死滅させる能力と、
を含む合成コポリペプチド。
［２］少なくとも５個のカチオン性アミノ酸残基と、
秩序化階層構造形態への誘導自己集合を促進するアミノ酸配列と、
微生物を阻害するまたは死滅させる能力と、
を含む合成コポリペプチド。
［３］全鎖長が２５アミノ酸残基以上である、［２］に記載の合成コポリペプチド。
［４］前記階層構造が、ミセル、ベシクル、シート、およびフィブリルよりなる群から選択される、［２］に記載の合成コポリペプチド。
［５］前記微生物が、細菌、ウイルス、菌類、および原生動物よりなる群から選択される、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［６］少なくとも２０個の連続した親水性アミノ酸残基を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［７］少なくとも５０個の連続した親水性アミノ酸残基を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［８］少なくとも８０個の連続した親水性アミノ酸残基を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［９］少なくとも１００個の連続した親水性アミノ酸残基を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１０］少なくとも１２０個の連続した親水性アミノ酸残基を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１１］少なくとも５個の連続した疎水性アミノ酸残基を有する少なくとも１つブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１２］少なくとも１０個の連続した疎水性アミノ酸残基を有する少なくとも１つブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１３］少なくとも１５個の連続した疎水性アミノ酸を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１４］少なくとも２０個の連続した疎水性アミノ酸を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１５］少なくとも３０個の連続した疎水性アミノ酸を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１６］少なくとも４０個の連続した疎水性アミノ酸を有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１７］疎水性アミノ酸残基が前記コポリペプチドのアミノ酸残基の３０％以下を構成する、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１８］疎水性アミノ酸残基が前記コポリペプチドのアミノ酸残基の２０％以下を構成する、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［１９］疎水性アミノ酸残基が前記コポリペプチドのアミノ酸残基の１０％以下を構成する、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［２０］少なくとも３つのブロックを含むアミノ酸配列をさらに含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［２１］前記合成コポリペプチドの臨界凝集濃度が、前記合成コポリペプチドと同一のアミノ酸残基組成を有するランダム配列合成コポリペプチドの臨界凝集濃度よりも少なくとも２０％低い、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［２２］階層構造形態への前記合成コポリペプチドの会合の速度が、前記合成コポリペプチドと同一のアミノ酸残基組成を有するランダム配列合成コポリペプチドの会合の速度よりも少なくとも２０％高い、または前記合成コポリペプチドにより形成された階層構造の解離の速度が、前記合成コポリペプチドと同一のアミノ酸残基組成を有するランダム配列合成コポリペプチドにより形成された階層構造の解離の速度よりも少なくとも２０％低い、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［２３］前記合成コポリペプチドが、少なくとも５０Ｐａの貯蔵弾性率を有するヒドロゲルを形成する、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［２４］前記合成コポリペプチドが、０．０１％（ｗ／ｗ）程度の低い濃度でヒドロゲルを形成する、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［２５］前記合成コポリエプチドが、非混和性相の組合せを有する混合物中に組み込まれて、分散混合物またはエマルジョンを形成する、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［２６］前記非混和性相が、油混和性相および水混和性相から選択される、［２５に記載の合成コポリペプチド。
［２７］前記分散混合物またはエマルジョンが、水中油、油中水、水中油中水、および油中水中油から選択される、［２６に記載の合成コポリペプチド。
［２８］前記合成コポリペプチドが哺乳動物細胞を死滅させるよりも低い濃度で微生物を死滅させるまたは阻害する能力をさらに含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［２９］食品保存、溶液保存、手指衛生、局所抗感染、補綴具およびインプラントの被覆、創傷治療、手術部位治療、火傷治療、糖尿病性足部潰瘍治療、ならびに外傷治療から選択される用途で使用される、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３０］ステロイド剤、炎症誘発剤、抗炎症剤、抗座瘡剤、保存剤、止血剤、血管新生剤、創傷治癒剤、および抗癌剤から選択される追加の活性医薬成分（ＡＰＩ）をさらに含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３１］前記コポリペプチドが、前記階層構造の形成または強度に寄与する１つ以上の他の材料の存在下で複合階層構造形態に製剤化される、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３２］前記コポリペプチドが修飾単量体アミノ酸を用いて合成される、または前記アミノ酸残基が重合後に修飾される、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３３］リシン、アルギニン、ホモアルギニン、およびオルニチンよりなる群から選択される荷電アミノ酸を含む親水性ブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３４］セリンおよびチロシンよりなる群から選択される非荷電極性アミノ酸を含む親水性ブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３５］ロイシン、バリン、フェニルアラニン、イソロイシン、アラニン、およびそれらの混合物組合せよりなる群から選択される非極性疎水性アミノ酸を含む親水性ブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３６］１個以上のβ−アミノ酸残基をさらに含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３７］前記合成ポリペプチドが病原性微生物を選択的に標的にする、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３８］共有結合修飾側鎖を有するアミノ酸残基を含有する少なくとも１つのブロックを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［３９］前記共有結合修飾側鎖が、ＰＥＧ側鎖およびＮ−四級化側鎖よりなる群から選択される、［３８に記載の合成コポリペプチド。
［４０］親水性ブロックが、「クリックケミストリー」という手段またはインドール、グリコール、マロネート、ジカルボキシレート、トリアゾール、およびＰＥＧよりなる群から選択されるスペーサーを含有する手段により共有結合される、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［４１］１つ以上のブロックがアミノ残基のＬ−、Ｄ−、ラセミ混合物または異なる光学純度の混合物を含有することを含む、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［４２］０．１％（ｗ／ｗ）未満の濃度でインビトロで微生物を阻害するまたは死滅させる能力を備える、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［４３］抗微生物活性および止血性を示す、［１］または［２］に記載の合成コポリペプチド。
［４４］上記［１］または［２］に記載の２つ以上の合成コポリペプチドの混合物。
［４５］上記［１］または［２］に記載の１つ以上の抗微生物合成コポリペプチドと他のポリマーまたはコポリマーとの混合物。
［４６］前記ポリマーまたはコポリマーが、アルギネート、キトサン、ＰＥＧ、変性セルロース、および他のポリサッカリドよりなる群から選択される、［４５に記載の混合物。
［４７］上記［１］または［２］に記載の１つ以上の抗微生物合成コポリペプチドと他の抗微生物剤との混合物。
［４８］前記他の抗微生物剤が、アルコール、塩素系化合物、第四級アンモニウム化合物、フェノール化合物、クロルヘキシジン、抗生物質、および抗体よりなる群から選択される、［４７］に記載の混合物。
［４９］１つ以上の８アミノ酸以上のペプチドブロックと１つ以上の非ペプチドブロックとを含有する合成コポリペプチド−ポリマーハイブリッド。
［５０］抗微生物活性、および止血材料、創傷治癒を支援する増殖因子、炎症誘発剤および抗炎症剤、及び免疫モジュレーターよりなる群から選択されるさらなる活性を提供するための、抗微生物合成コポリペプチドとポリマーまたはコポリマーと生体活性材料または他の活性医薬成分（ＡＰＩ）との混合物。
【００７９】
参考文献
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１５．      Ｓａｌｉｃｋ，  Ｄ．Ａ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｉｎｈｅｒｅｎｔ  ａｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｏｆ  ａ  ｐｅｐｔｉｄｅ−ｂａｓｅｄ  ｂｅｔａ−ｈａｉｒｐｉｎ  ｈｙｄｒｏｇｅｌ．  Ｊ  Ａｍ  Ｃｈｅｍ  Ｓｏｃ，  ２００７．  １２９（４７）：  ｐ．  １４７９３−９．
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１７．      Ｅｐａｎｄ，  Ｒ．Ｆ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｕａｌ  ｍｅｃｈａｎｉｓｍ  ｏｆ  ｂａｃｔｅｒｉａｌ  ｌｅｔｈａｌｉｔｙ  ｆｏｒ  ａ  ｃａｔｉｏｎｉｃ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ−ｒａｎｄｏｍ  ｃｏｐｏｌｙｍｅｒ  ｔｈａｔ  ｍｉｍｉｃｓ  ｈｏｓｔ−ｄｅｆｅｎｓｅ  ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ｐｅｐｔｉｄｅｓ．  Ｊ  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ，  ２００８．  ３７９（１）：  ｐ．  ３８−５０．
１８．      Ｐｏｒｔｅｒ，  Ｅ．Ａ．，  Ｂ．  Ｗｅｉｓｂｌｕｍ，  ａｎｄ  Ｓ．Ｈ．  Ｇｅｌｌｍａｎ，  Ｍｉｍｉｃｒｙ  ｏｆ  ｈｏｓｔ−ｄｅｆｅｎｓｅ  ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ｂｙ  ｕｎｎａｔｕｒａｌ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ：  ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ｂｅｔａ−ｐｅｐｔｉｄｅｓ．  Ｊ  Ａｍ  Ｃｈｅｍ  Ｓｏｃ，  ２００２．  １２４（２５）：  ｐ．  ７３２４−３０．
１９．      Ｇａｂｒｉｅｌ，  Ｇ．Ｊ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ  Ｄｉｓｅａｓｅ：  Ｃｏｎｎｅｃｔｉｎｇ  Ｉｎｎａｔｅ  Ｉｍｍｕｎｉｔｙ  ｔｏ  Ｂｉｏｃｉｄａｌ  Ｐｏｌｙｍｅｒｓ．  Ｍａｔｅｒ  Ｓｃｉ  Ｅｎｇ  Ｒ  Ｒｅｐ，  ２００７．  ５７（１−６）：  ｐ．  ２８−６４．
２０．      Ｌｉｕ，  Ｄ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎｏｎｔｏｘｉｃ  ｍｅｍｂｒａｎｅ−ａｃｔｉｖｅ  ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ａｒｙｌａｍｉｄｅ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ．  Ａｎｇｅｗ  Ｃｈｅｍ  Ｉｎｔ  Ｅｄ  Ｅｎｇｌ，  ２００４．  ４３（９）：  ｐ．  １１５８−６２．
２１．      Ｔｅｗ，  Ｇ．Ｎ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｏｆ  ａｎ  ａｂｉｏｔｉｃ  ｈｏｓｔ  ｄｅｆｅｎｓｅ  ｐｅｐｔｉｄｅ  ｍｉｍｉｃ．  Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ，  ２００６．  １７５８（９）：  ｐ．  １３８７−９２．
２２．      Ｉｌｋｅｒ，  Ｍ．Ｆ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｕｎｉｎｇ  ｔｈｅ  ｈｅｍｏｌｙｔｉｃ  ａｎｄ  ａｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌ  ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ  ｏｆ  ａｍｐｈｉｐｈｉｌｉｃ  ｐｏｌｙｎｏｒｂｏｒｎｅｎｅ  ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ．  Ｊ  Ａｍ  Ｃｈｅｍ  Ｓｏｃ，  ２００４．  １２６（４８）：  ｐ．  １５８７０−５．
２３．      Ｋｕｒｏｄａ，  Ｋ．，  Ｇ．Ａ．  Ｃａｐｕｔｏ，  ａｎｄ  Ｗ．Ｆ．  ＤｅＧｒａｄｏ，  Ｔｈｅ  ｒｏｌｅ  ｏｆ  ｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃｉｔｙ  ｉｎ  ｔｈｅ  ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ａｎｄ  ｈｅｍｏｌｙｔｉｃ  ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ  ｏｆ  ｐｏｌｙｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ  ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ．  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，  ２００９．  １５（５）：  ｐ．  １１２３−３３．
２４．      Ｗａｎｇ，  Ｙ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ａｎｄ  Ｈｅｍｏｌｙｔｉｃ  Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ  ｏｆ  Ｃｏｐｏｌｙｍｅｒｓ  ｗｉｔｈ  Ｃａｔｉｏｎｉｃ  ａｎｄ  Ｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃ  Ｇｒｏｕｐｓ：  Ａ  Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ  ｏｆ  Ｂｌｏｃｋ  ａｎｄ  Ｒａｎｄｏｍ  Ｃｏｐｏｌｙｍｅｒｓ．  Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，  ２０１１：  ｐ．  ｎ／ａ−ｎ／ａ．
２５．      Ｇｏｏｄｓｏｎ，  Ｂ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｎｏｖｅｌ  ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ｐｅｐｔｏｉｄｓ．  Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ  Ａｇｅｎｔｓ  Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ，  １９９９．  ４３（６）：  ｐ．  １４２９−３４．
２６．      Ｄｅｍｉｎｇ，  Ｔ．Ｊ．，  Ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ  ａｎｄ  Ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ  Ｈｙｂｒｉｄ  Ｃｏｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｖｉａ  ＮＣＡ  Ｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ．  ＣｈｅｍＩｎｆｏｒｍ，  ２００７．  ３８（５）：  ｐ．  ｎｏ−ｎｏ．
２７．      Ｄｅｍｉｎｇ，  Ｔ．Ｊ．，  Ｍｅｔｈｏｄｏｌｏｇｉｅｓ  ｆｏｒ  ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ  ｂｌｏｃｋ  ｃｏｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ：  ｍａｔｅｒｉａｌｓ  ｗｉｔｈ  ｆｕｔｕｒｅ  ｐｒｏｍｉｓｅ  ｉｎ  ｄｒｕｇ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ．  Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ，  ２００２．  ５４：  ｐ．  １１４５−１１５５．
２８．      Ｗｙｒｓｔａ，  Ｍ．Ｄ．，  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ａｎｄ  ｓｔｕｄｉｅｓ  ｏｆ  ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ  ｍａｔｅｒｉａｌｓ：  Ｓｅｌｆ−ａｓｓｅｍｂｌｅｄ  ｂｌｏｃｋ  ｃｏｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ  ａｍｐｈｉｐｈｉｌｅｓ，  ＤＮＡ−ｃｏｎｄｅｎｓｉｎｇ  ｂｌｏｃｋ  ｃｏｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  ｍｅｍｂｒａｎｅ−ｉｎｔｅｒａｃｔｉｖｅ  ｒａｎｄｏｍ  ｃｏｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ，  ２００２，  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，  Ｓａｎｔａ  Ｂａｒｂａｒａ．  ｐ．  １２５．
２９．      Ｗｙｒｓｔａ，  Ｍ．Ｄ．，  Ａ．Ｌ．  Ｃｏｇｅｎ，  ａｎｄ  Ｔ．Ｊ．  Ｄｅｍｉｎｇ，  Ａ  ｐａｒａｌｌｅｌ  ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ  ａｐｐｒｏａｃｈ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｉｎｔｅｒａｃｔｉｖｅ  ｃｏｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ．  Ｊ  Ａｍ  Ｃｈｅｍ  Ｓｏｃ，  ２００１．  １２３（５１）：  ｐ．  １２９１９−２０．
３０．      Ｄｅｍｉｎｇ，  Ｔ．Ｊ．，  Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ  ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ  ｆｏｒ  ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．  Ｐｒｏｇｒｅｓｓ  ｉｎ  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２００７．  ３２：  ｐ．  ８５８−８７５．
３１．      Ｚｈｏｕ，  Ｃ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｈｉｇｈ  ｐｏｔｅｎｃｙ  ａｎｄ  ｂｒｏａｄ−ｓｐｅｃｔｒｕｍ  ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｚｅｄ  ｖｉａ  ｒｉｎｇ−ｏｐｅｎｉｎｇ  ｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａｌｐｈａ−ａｍｉｎｏａｃｉｄ−Ｎ−ｃａｒｂｏｘｙａｎｈｙｄｒｉｄｅｓ．  Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，  ２０１０．  １１（１）：  ｐ．  ６０−７．
３２．      Ｙａｎｇ，  Ｃ．Ｙ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｏｍｐａｔｉｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ａｍｐｈｉｐｈｉｌｉｃ  ｄｉｂｌｏｃｋ  ｃｏｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ  ｈｙｄｒｏｇｅｌｓ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｃｅｎｔｒａｌ  ｎｅｒｖｏｕｓ  ｓｙｓｔｅｍ．  Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ，  ２００９．  ３０：  ｐ．  ２８８１−２８９８．
３３．      Ｈａｎｓｏｎ，  Ｊ．Ａ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｎｏｓｃａｌｅ  ｄｏｕｂｌｅ  ｅｍｕｌｓｉｏｎｓ  ｓｔａｂｉｌｉｚｅｄ  ｂｙ  ｓｉｎｇｌｅ−ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ  ｂｌｏｃｋ  ｃｏｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅｓ．  Ｎａｔｕｒｅ，  ２００８．  ４５５：  ｐ．  ８５−８９．
３４．      Ｈｏ，  Ｙ．−Ｔ．，  Ｓ．  Ｉｓｈｉｚａｋｉ，  ａｎｄ  Ｍ．  Ｔａｎａｋａ，  Ｉｍｐｒｏｖｉｎｇ  ｅｍｕｌｓｉｆｙｉｎｇ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｏｆ  ［ｖａｒ  ｅｐｓｉｌｏｎ］−ｐｏｌｙｌｙｓｉｎｅ  ｂｙ  ｃｏｎｊｕｇａｔｉｏｎ  ｗｉｔｈ  ｄｅｘｔｒａｎ  ｔｈｒｏｕｇｈ  ｔｈｅ  Ｍａｉｌｌａｒｄ  ｒｅａｃｔｉｏｎ．  Ｆｏｏｄ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，  ２０００．  ６８（４）：  ｐ．  ４４９−４５５．
３５．      Ｌａｍ，  Ｈ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄ−ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄｓ  ｇｏｖｅｒｎ  ｓｔａｔｉｏｎａｒｙ  ｐｈａｓｅ  ｃｅｌｌ  ｗａｌｌ  ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ  ｉｎ  ｂａｃｔｅｒｉａ．  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ２００９．  ３２５（５９４７）：  ｐ．  １５５２−５．
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図９】
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【図２０】
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【図２６】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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【図３３】
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【図３９】
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