(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１の１６ｓ ｒＤＮＡ塩基配列を有するグルコンアセトバクター属（ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐ．）Ｄ４４菌株（寄託番号ＫＣＣＭ１１０７８Ｐ）を、グルコース２０ｇ／Ｌ、酵母抽出物５ｇ／Ｌ、ペプトン５ｇ／Ｌ、Ｎａ２ＨＰＯ４２．７ｇ／Ｌおよびクエン酸ナトリウム１．１５ｇ／Ｌを含むＨ．Ｓ培地で培養した培養物又は
配列番号２の１６ｓ ｒＤＮＡ塩基配列を有するグルコンアセトバクター・インターメディウス（Ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｉｎｔｅｒｍｅｄｉｕｓ）Ｄ４７菌株（寄託番号ＫＣＣＭ１１０７９Ｐ）を、グルコース２０ｇ／Ｌ、酵母抽出物５ｇ／Ｌ、ペプトン５ｇ／Ｌ、Ｎａ２ＨＰＯ４２．７ｇ／Ｌおよびクエン酸ナトリウム１．１５ｇ／Ｌを含むＨ．Ｓ培地、ココナツ原液１００％（ｗ／ｖ）のココナツ液体培地又はココナツ原液８５〜９４．９重量部、砂糖５〜１５重量部および硫安０．１〜１重量部を含む培地で培養した培養物
であるグルコンアセトバクター属菌株の培養物。
【請求項２】
前記培養物はセルロースを含む請求項１に記載の培養物。
【請求項３】
請求項１の培養物、該培養物の濃縮物およびこれらの乾燥物からなる群より選ばれた１種以上を含むセルロース産生用組成物。
【請求項４】
グルコンアセトバクター属菌株を培養する工程及び
前記培養物からセルロースを得る工程を含み、
前記グルコンアセトバクター属菌株を培養する工程は、
配列番号１の１６ｓ ｒＤＮＡ塩基配列を有するグルコンアセトバクター属（ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐ．）Ｄ４４菌株（寄託番号ＫＣＣＭ１１０７８Ｐ）を、グルコース２０ｇ／Ｌ、酵母抽出物５ｇ／Ｌ、ペプトン５ｇ／Ｌ、Ｎａ２ＨＰＯ４２．７ｇ／Ｌおよびクエン酸ナトリウム１．１５ｇ／Ｌを含むＨ．Ｓ培地で培養する工程、または
配列番号２の１６ｓ ｒＤＮＡ塩基配列を有するグルコンアセトバクター・インターメディウス（Ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｉｎｔｅｒｍｅｄｉｕｓ）Ｄ４７菌株（寄託番号ＫＣＣＭ１１０７９Ｐ）を、グルコース２０ｇ／Ｌ、酵母抽出物５ｇ／Ｌ、ペプトン５ｇ／Ｌ、Ｎａ２ＨＰＯ４２．７ｇ／Ｌおよびクエン酸ナトリウム１．１５ｇ／Ｌを含むＨ．Ｓ培地、ココナツ原液１００％（ｗ／ｖ）のココナツ液体培地又はココナツ原液８５〜９４．９重量部、砂糖５〜１５重量部および硫安０．１〜１重量部を含む培地で培養する工程であるセルロースの製造方法。
【請求項５】
請求項１のグルコンアセトバクター属菌株の培養物で産生されたセルロースを準備する工程及び
前記セルロースを樹脂に含浸させる工程を含むセルロース系樹脂の製造方法。
【請求項６】
前記セルロース系樹脂は、液晶表示装置の基板用として用いられるものである請求項５に記載のセルロース系樹脂の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はセルロースを産生しうる新規なグルコンアセトバクター属菌株に係り、さらに詳しくは、ナノ構造のセルロースを非常に高収率にて産生しうる新規なグルコンアセトバクター属菌株に関する。
【背景技術】
【０００２】
セルロースは、地球上で、最も多く存在する天然高分子の一種であり、略１０１１トンのセルロースが生合成されていると推算されており、ほとんどは高等植物の細胞壁繊維質成分を合成する。
【０００３】
セルロースの強靭性は全体構造に起因するが、その分子は１４，０００単位に至る鎖や微細繊維を形成し、これらが水素結合によって維持される捩れた綱状束をなしている。このようなセルロースの豊富な物量と他の天然高分子とは異なる物性により、様々な産業分野において再生資源として活用するための研究が盛んになされている。
【０００４】
１８８６年にブラウン（Ａ．Ｊ．Ｂｒｏｗｎ）によって酢酸菌がセルロースを産生するということが報告されて以来、微生物によって産生されるセルロース（Ｂａｃｔｅｒｉａｌ  Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ；以下「ＢＣ」と称する）は新素材として絶えず研究対象となっている。特に、ＢＣはリボン状繊維（ｒｉｂｂｉｎ−ｌｉｋｅ  ｂｕｎｄｌｅｓ）で構成されるのに対し、植物由来のセルロースは微細繊維（ｍｉｃｒｏｆｉｂｒｉｌｓ）の束（ｂｕｎｄｌｅｓ）状に形成される。
【０００５】
リボン状繊維で構成されるＢＣは、微細繊維の束状に形成される植物由来のセルロースとは異なり、リグニン及びヘミセルロースが全く含まれていない純粋状態で産生され、高い機械的強度、高保湿性、高結晶性、生分解性などのＢＣならではの長所のため、様々な産業分野において様々な用途に開発されている。
【０００６】
一方、液晶表示装置（ＬＣＤ）の基板素材としては、熱膨張係数が低くて透過率が高く、しかも、微細な太さを有する必要があり、現在は、高価なｓ−ｇｌａｓｓが用いられている。
しかし、ナノ構造のセルロースを用いることにより、ｓ−ｇｌａｓｓよりも熱特性が向上することが報告されている。ナノ構造のセルロースは微生物によって産生しうることが知られている（Ｓｃｈｒａａｍｍ，  Ｍ．  ａｎｄ  Ｓ．  Ｈｅｓｔｒｉｎ．  １０５４．  Ｆａｃｔｏｒｓ  ａｆｆｅｃｔｉｎｇ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ  ａｔ  ｔｈｅ  ａｉｒ／ｌｉｑｕｉｄ  ｉｎｔｅｒｆａｃｅ  ｏｆ  ａ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｏｆ  Ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｘｙｌｉｎｕｍ．Ｊ．Ｇｅｎ．  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．  １１：１２３−１２９）。このため、このようなセルロース産生活性がある微生物を開発することは、経済的に非常に有利である。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
しかし、ＢＣを産生する代表的な微生物として、アセトバクター・キシリナム（ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｘｙｌｉｎｕｍ）が知られているが、セルロースの産生効率が低く、これに代替することができる、新たな微生物の開発が切望されている。
上述した目的を達成するために、本発明は、グルコンアセトバクター属菌株：該属菌株の培養物：前記グルコンアセトバクター属菌株、前記菌株の培養物、前記菌株または培養物の濃縮物およびこれらの乾燥物からなる群より選ばれた１種以上を含むセルロース産生用組成物：セルロースの製造方法及びセルロース系樹脂の製造方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、セルロース産生効率に非常に優れた新たな微生物を開発するために鋭意研究した結果、グルコンアセトバクター属に属する新規な菌株を開発し、前記菌株が非常に有効にセルロースを産生しうるということを見出し、本発明を完成するに至った。
【０００９】
本発明は、セルロース産生活性があるグルコンアセトバクター（ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ）属菌株であって、前記菌株は、グルコンアセトバクター属（ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐ．）Ｄ４４菌株（寄託番号ＫＣＣＭ１１０７８Ｐ）またはグルコンアセトバクター・インターメディウス（Ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｉｎｔｅｒｍｅｄｉｕｓ）Ｄ４７菌株（寄託番号ＫＣＣＭ１１０７９Ｐ）であることを特徴とするグルコンアセトバクター属菌株を提供する。
また、本発明は、前記グルコンアセトバクター属菌株の培養物を提供する。
さらに、本発明は、前記グルコンアセトバクター属菌株、前記菌株の培養物、前記菌株または培養物の濃縮物およびこれらの乾燥物からなる群より選ばれたいずれか１種以上を含むセルロース産生用組成物を提供する。
また、本発明は、前記グルコンアセトバクター属菌株を培養する工程と、前記培養物からセルロースを得る工程とを含むセルロースの製造方法を提供する。
さらに、本発明は、前記グルコンアセトバクター属菌株によって産生されたセルロースを準備する工程と、前記セルロースを樹脂と含浸させる工程とを含むセルロース系樹脂の製造方法を提供する。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】本発明のＤ４４菌株の形態学的な観察結果を示すものであり、（ａ）は、光学顕微鏡による観察結果を示し、（ｂ）は、走査電子顕微鏡（ＳＥＭ）による観察結果を示す。
【図２Ａ】本発明のＤ４４菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列をグルコンアセトバクター・ラエティカスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列と比較して類似度を測定した結果を示すものである（＊：塩基配列が一致する部分）。
【図２Ｂ】本発明のＤ４４菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列をグルコンアセトバクター・ラエティカスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列と比較して類似度を測定した結果を示すものである（＊：塩基配列が一致する部分）。
【図２Ｃ】本発明のＤ４４菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列をグルコンアセトバクター・ラエティカスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列と比較して類似度を測定した結果を示すものである（＊：塩基配列が一致する部分）。
【図３】本発明のＤ４４菌株の酢酸菌科に属するグルコンアセトバクター属、グルコノバクター属およびアセトバクター属の菌に対する系統樹を示すものである。
【図４】本発明のＤ４４菌株のセルロースの生成有無を確認した結果である。
【図５】本発明のＤ４７菌株の形態学的な観察結果を示すものであり、（ａ）は、光学顕微鏡による観察結果であり、（ｂ）は、走査電子顕微鏡（ＳＥＭ）による観察結果である。
【図６Ａ】本発明のＤ４７菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列をグルコンアセトバクター・インターメディウスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列と比較して類似度を測定した結果を示すものである（＊：塩基配列が一致する部分）。
【図６Ｂ】本発明のＤ４７菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列をグルコンアセトバクター・インターメディウスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列と比較して類似度を測定した結果を示すものである（＊：塩基配列が一致する部分）。
【図６Ｃ】本発明のＤ４７菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列をグルコンアセトバクター・インターメディウスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列と比較して類似度を測定した結果を示すものである（＊：塩基配列が一致する部分）。
【図７】本発明のＤ４７菌株の酢酸菌科に属するグルコンアセトバクター属、グルコノバクターおよびアセトバクター属の菌に対する系統樹を示すものである。
【図８】本発明のＤ４７菌株のセルロース生成有無を確認した結果である。
【図９Ａ】本発明のＤ４７菌株をＨ．Ｓ培地で培養して産生されたセルロースを示すものである。
【図９Ｂ】本発明のＤ４７菌株をココナツ混合培地（２）で培養して産生されたセルロースを示すものである。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明のグルコンアセトバクター属菌株、具体的に、グルコンアセトバクター属Ｄ４４菌株（寄託番号ＫＣＣＭ１１０７８Ｐ）またはグルコンアセトバクター・インターメディウスＤ４７菌株（寄託番号ＫＣＣＭ１１０７９Ｐ）は、セルロース産生能に非常に優れた新規な菌株である。
【００１２】
本発明の菌株は酢酸菌（ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ）の一種であり、これに限定されないが、酢類から分離することができ、好ましくは、柿酢、より好ましくは、柿酢の表膜から分離することができる。
本発明の一実施の形態においては、柿酢の表膜から高収率のセルロース産生活性がある本発明の菌株を分離し、前記セルロース産生活性があることは公知の方法により確認することができる。例えば、本発明の菌株をＨ．Ｓ培地（下記表１参照）に接種して培地に表膜を形成するかどうか、または、Ｃａｒｒ培地（下記表１参照）に接種して色変化を引き起こすかどうかなどにより確認することができるが、これに限定されない（＜実施例１＞参照）。
また、本発明の菌株を同定するために形態学的特徴、生化学的特徴を分析したところ、本発明の菌株は下記表２に示す形態学的特徴を有し、下記表３（Ｄ４４）および表４（Ｄ４７）に示す生化学的特徴を有するグルコンアセトバクター属菌株である（＜実施例２＞参照）。
【００１３】
さらに、本発明の菌株がグルコンアセトバクター属に属する菌株であるかどうかをそれぞれ配列番号１の塩基配列で示される１６ｓ ｒＤＮＡ配列（Ｄ４４）および配列番号２の塩基配列で示される１６ｓ ｒＤＮＡ配列（Ｄ４７）を得て分析した結果、Ｄ４４菌株の場合、グルコンアセトバクター・ラエティカスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列に最も類似しているが、類似度は８７．２１５％に過ぎないことが分析された。本発明の菌株はグルコンアセトバクター属に属する新規な菌株であることが確認された。Ｄ４７菌株はグルコンアセトバクター・インターメディウスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列に最も類似しており、類似度は９９．７７６％であることが分析された。本発明の菌株はグルコンアセトバクター属に属する菌株であることが確認された（＜実施例２＞参照）。
本発明者らは上記のようにして分離および同定された本発明の菌株をそれぞれグルコンアセトバクター属菌株Ｄ４４およびグルコンアセトバクター・インターメディウスＤ４７と命名し、前記菌株を２００９年１１月１２日付けで韓国微生物保存センター（ＫＣＣＭ）寄託機関にそれぞれＫＦＣＣ１１４７０Ｐ寄託番号（Ｄ４４）およびＫＦＣＣ１１４７１Ｐ寄託番号（Ｄ４７）で寄託した。この後、２０１０年３月２６日付けで再び韓国微生物保存センター（ＫＣＣＭ）寄託機関にそれぞれＫＣＣＭ１１０７８Ｐ寄託番号（Ｄ４４）およびＫＣＣＭ１１０７９Ｐ寄託番号（Ｄ４７）で国際寄託した。
【００１４】
本発明のグルコンアセトバクター属菌株の培養物は、前記本発明の菌株を微生物の培養に用いられる公知の培地および培養方法を用いて製造することができる。
本発明のグルコンアセトバクター属菌株を培養するために用いられる培地は、通常、微生物の培養に用いられる培地が挙げられ、好ましくは、酢酸菌の培養に用いられる培地、より好ましくは、下記表１または表７に示す培地等が挙げられる。さらに好ましくは、セルロース産生のためのものであり、具体的に、下記表１に示すＨ．Ｓ培地または下記表７に示すココナツ混合培地（２）が挙げられる。これらを用いることにより、セルロースを一層高収率にて産生することができる（＜実施例４＞参照）。
【００１５】
前記Ｄ４４菌株は、好ましくは、グルコース２０ｇ／Ｌ、酵母抽出物５ｇ／Ｌ、ペプトン５ｇ／Ｌ、Ｎａ２ＨＰＯ４２．７ｇ／Ｌおよびクエン酸ナトリウム１．１５ｇ／Ｌを含むＨ．Ｓ培地またはココナツ原液１００％（ｗ／ｖ）のココナツ液体培地で培養することができる。前記酵母抽出物（ＣＡＳ番号：８０１３−０１−０２）（ヨーロッパ既存化学物質名録：２３２−３８７−９）の酵母は４０％以下の蛋白質を含有しており、１ｇ当たりに塩酸ジアミン０．１２ｍｇ以下、リボフラビン０．０４ｍｇ以下、ニコチン酸０．２５ｍｇ以下である無発酵性の黄白色の板状または粉末であり、ユニークな臭いの物理化学的特性を有している。
前記Ｄ４７菌株は、好ましくは、前記Ｈ．Ｓ培地、前記ココナツ液体培地、またはココナツ原液、砂糖および硫安を含み、好ましくは、前記ココナツ原液８５〜９４．９重量部、砂糖５〜１５重量部、および硫安０．１〜１重量部を含むココナツ混合培地で培養することができる。
前記硫安とは硫酸アンモニウムの略称であり、硫酸とアンモニアとを反応させて得られる白い結晶を意味し、好ましくは、純度１０〜９９．９％、より好ましくは、純度１０〜３０％、最も好ましくは、純度１５〜２５％の硫酸アンモニウムを使用することができる。
【００１６】
本発明の菌株の培養物は、前記培地に本発明の菌株を接種し、当該分野で公知の微生物の培養方法（例えば、静置培養、攪拌培養）により、好ましくは、酢酸菌の培養方法により、より好ましくは、１重量％（培地の総重量に対して）にて接種し、２８〜３０℃で４〜７日間培養する方法により製造することができる。より好ましくは、本発明の菌株を１重量％（培地の総重量に対して）にて培地に接種し、３０℃で培養することにより製造する。
【００１７】
本発明の培養物は、これに限定されないが、好ましくは、本発明の菌株によって産生されたセルロースを含む。
一方、本発明のセルロース産生用組成物は、前記本発明のグルコンアセトバクター属菌株、前記菌株の培養物、前記菌株または培養物の濃縮物およびこれらの乾燥物からなる群より選ばれた１種以上を含む。
本発明の菌株は、セルロースを非常に有効に産生することができるので、前記菌株、前記菌株の培養物、前記菌株または培養物の濃縮物およびこれらの乾燥物はセルロースを産生する組成物として用いて好適である。
前記菌株の培養物の製造方法については上述した通りであり、これに限定されないが、好ましくは、本発明の菌株をセルロース産生用培地、下記表１に示すＨ．Ｓ培地または下記表７に示すココナツ混合培地（２）に接種し、これに限定されないが、好ましくは、静置培養または攪拌培養、好ましくは静置培養して培養物を製造する方法が挙げられる。前記菌株または培養物の濃縮物およびこれらの乾燥物は、当該分野に公知の微生物または培養物の濃縮または乾燥方法により容易に製造することができる。
前記本発明のグルコンアセトバクター属菌株、前記菌株の培養物、前記菌株または培養物の濃縮物およびこれらの乾燥物は、これに限定されないが、好ましくは、本発明のセルロース産生用組成物に１重量％にて含有される。
【００１８】
本発明のセルロースの製造方法は、前記グルコンアセトバクター属菌株を培養する工程と、前記培養物からセルロースを得る工程とを含む。
前記菌株の培養方法は上述した通りであり、本発明のセルロースを産生するためには、これに限定されないが、本発明の菌株の培養によりセルロースの膜が形成されたものを水酸化ナトリウム溶液に浸漬させた後、蒸溜水により洗浄して純粋なセルロースを産生する方法が挙げられる。このようにして産生されたセルロースは、これに限定されないが、好ましくは、膜状である（＜実施例３＞参照）。
【００１９】
本発明の菌株によって産生されたセルロースは滑らかであり、堅固性および弾力性に優れており、厚さが約０．３ｍｍ〜約１２ｍｍであり、既存のバクテリアセルロースよりも厚さが顕著に向上した、熱特性に非常に優れたナノ構造のセルロースである（＜実施例３＞および＜実施例４＞参照）。
さらに、本発明の菌株は、セルロース産生活性に非常に優れており、特に、ＢＣを産生する代表的な微生物であるアセトバクター・キシリナム（ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｘｙｌｉｎｕｍ）と比較して、最少約３倍、最大約９７．５倍の顕著に高い効率にてセルロースを産生することができる（＜実施例３＞および＜実施例４＞参照）。
このため、本発明の菌株によって産生されたセルロースは熱特性に非常に優れたナノ構造のバクテリアセルロースであり、バイオナノ繊維として利用するのに好適である。
【００２０】
本発明のセルロース系樹脂の製造方法は、前記本発明のグルコンアセトバクター属菌株によって産生されたセルロースを準備する工程と、前記セルロースを樹脂と含浸させる工程とを含む。
前記セルロース系樹脂は、本発明のグルコンアセトバクター属菌株によって産生されたセルロースを用いたものであれば、当該分野に公知の製造方法により製造することができる。例えば、本発明のグルコンアセトバクター属菌株によって産生されたセルロースに熱可塑性樹脂および結合剤を混入し、これを圧出成形して製造することができる。
【００２１】
前記熱可塑性樹脂は、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリスチレンおよびポリ塩化ビニールからなる群より選ばれたものであることが好ましい。
前記結合剤は、マレイン化エチレン、マレイン化プロピレンおよびシランよりなる群から選ばれる１種以上であることが好ましい。
これらセルロース、熱可塑性樹脂及び結合剤からなる混合物には、安定剤、顔料、染料、無機物または有機物添加剤、電磁波遮断剤またはこれらの混合物の中から選ばれた１種以上の添加剤をさらに添加してもよい。
【００２２】
このようにして製造されたセルロース樹脂は熱特性に非常に優れたナノ構造のバクテリアセルロースが含まれているため、液晶表示装置の基板用に用いることができる。
したがって、本発明は、前記セルロース系樹脂の製造方法であって、セルロース系樹脂を製造する工程と、前記製造されたセルロース系樹脂を用いて液晶表示装置の基板を製造する工程とを含む液晶表示装置の基板の製造方法を提供する（Masaya Nogi and Hiroyuki Yano, Transparent Nanocomposites Based on Cellulose Produced by Bacteria Offer Potential Innovation in the Electronics Device Industry, Advanced materials 2008, pp1849-1852）。
また、本発明は、前記セルロース系樹脂を用いて製造された液晶表示装置の基板を提供する。
【００２３】
セルロースを産生する菌において、セルロースは、ＵＶ光の致死効果から細胞を防御し、菌の集落を形成して栄養源として同じ基質を使用する競争者から防御効果をもたらすと共に、細胞に湿気を提供して乾燥を防ぐことが知られている。
また、本発明のように微生物によって産生されたセルロースは、繊維の結晶化度、吸湿性などが高く、スピーカの振動板などへの産業的な応用可能性が高く、セルロース膜はゲル状態で肌触り性が良く、身体の表面に馴染み易く、さらに、医薬品や化粧材料成分の補水能が高く、皮膚の表面を保湿状態に維持することができて、医療用パッドや化粧パッド（例えば、マスクパック）、人工皮膚などに応用することができ、現在、セルロースを用いたマスクパックは商用化工程まで至っている。
さらに、セルロース膜を５％のＮａＯＨまたは０．５％のＮａＣｌにより処理してセルロース成分以外の物質を除去した後にこれを圧着すれば高弾性膜になることが判明し、日本のソニー社ではスピーカの音量振動板に応用して高性能ヘッドホンとして市販している。
【００２４】
また、本発明のように微生物によって産生されたセルロースを用いて紙を製紙すれば、紙の強度や弾性率が対照群に比べて２．５倍も増加する。合成高分子繊維、芳香剤ポリアミドやポリアミド単繊維に５〜２０％添加してシートを製作すれば、合成繊維に比べて、強度、熱安定性、形態安定性などに優れたシートが得られる。合成繊維だけではなく、ガラス繊維にセルロースを混入してシート状にすれば、空気ろ過用フィルター、プリント配線基板、床材料などに応用することが可能となる。
このような本発明の微生物由来のセルロースは、産業用素材、食品素材など多岐に亘って活用することができ、特に、環境にやさしい素材であるという点は無限の開発可能性と多様性を有している（Ｊｅｏｎｇ．，Ｙ．Ｊ．，Ｌｅｅ．，Ｉ．Ｓ．．  Ａ  ｖｉｅｗ  ｏｆ  ｕｔｉｌｉｚｉｎｇ  ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ  ｐｒｏｄｕｃｅｄ  ｂｙ  ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｂａｃｔｅｒｉａ．  Ｆｏｏｄ  Ｉｎｄｕｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ．，Ｖ  ｏｌ．５．，２５〜２９．，２０００．参照）。
【００２５】
本発明の菌株はセルロース産生活性に非常に優れており、本発明の菌株によって産生されたセルロースは熱特性に非常に優れたナノ構造のバクテリアセルロースであって、バイオナノ繊維として有効に用いることができる。特に、樹脂と含浸してセルロース系樹脂を製造する上で用いることができ、しかも、前記セルロース系樹脂は液晶表示装置の基板用に有効に用いることができる。
【００２６】
以下、実施例を挙げて本発明による高収率のセルロース産生活性がある新規なグルコンアセトバクター属菌株について詳述する。
但し、下記の実施例は本発明を例示するものに過ぎず、本発明の内容が下記の実施例に限定されることはない。
【００２７】
＜参考例１＞
実験に供された培地および培養条件
本発明の新規な菌株を分離および同定するために、下記表１に示す培地を使用した。なお、下記の実施例において特別に言及がない限り、前記培地を用いて本発明のセルロースの高収率産生菌株を３０℃で７日間培養して実験を行った。
【００２８】
【表１】
0005965104.tif 000002
【００２９】
＜実施例１＞
セルロースを高収率にて産生する新規な菌株の分離
＜実施例１−１＞
グルコンアセトバクター属Ｄ４４菌株の分離
本実験に供された菌株を在来式柿酢（全羅北道完州郡鳳東邑栗所里）の表膜から分離した。具体的に、柿酢の複数の部分を直接的に採取し、採取された部分によってＡ、Ｂ、Ｃ、Ｄと区別して命名し、これらのうちＤは柿酢の表膜から採取した試料である。
前記柿酢Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ原液を１％ずつＨ．Ｓ培地１００ｍに接種して７日間３０℃で培養した。前記培養後、Ｈ．Ｓ培地の表膜にセルロースを生成するＤ試料で単一菌株を１０−７まで希釈して固体Ｈ．Ｓ培地に塗抹した後、ランダムでコロニーを取って再び液体Ｈ．Ｓ培地に接種し、これらのうち培地に表膜を形成する菌株を分離した。
【００３０】
前記柿酢のＤ部分から分離された菌株を変色範囲がｐＨ５．２〜６．８であり、酸性で黄色、塩基性で紫色を帯びるブロモクレゾールパープル含有Ｃａｒｒ培地に接種し、黄色から紫色へと、さらに紫色から黄色へと色変化があることを確認することにより、前記分離された菌株がエタノールを酢酸に酸化させ、二酸化炭素と水に再酸化させる酸化経路を有していることを改めて確認することができた。これにより、前記菌株がセルロース産生菌株の特性を有していることが分かる（Ｊａｎｇ．  Ｏ．Ｙ．，  Ｊｏｏ．  Ｋ．Ｈ．，  Ｌｅｅ．  Ｊ．Ｈ．，  Ｂａｉｋ．  Ｃ．Ｇ．  ２００３．  Ｇｒｏｗｔｈ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ  ａｎｄ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ  ｏｆ  ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ  ｉｎ  ｓｔａｔｉｃ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｖｉｎｅｇａｒ．  Ｋｏｒｅａｎ  Ｊ．  Ｆｏｏｄ  ＳＣＩ．  ｔｅｃｈ．  ｖｏｌ．  ３５，  Ｎｏ．  ６，  ｐｐ．  １１５０〜１１５４）。
本発明者らは、前記セルロース生成活性がある菌株を「Ｄ４４」と命名した。
【００３１】
＜実施例１−２＞
グルコンアセトバクター・インターメディウス（Gluconacetobacter intermedius）Ｄ４７菌株の分離
本実験に供された菌株を在来式柿酢（全羅北道完州郡鳳東邑栗所里）の表膜から分離した。具体的に、在来式柿酢を製造するときに生成される被膜を農協から得て、滅菌済み解剖用はさみで十分に切断した後、少量をＨ．Ｓ培地に接種して７日間３０℃で培養した。前記培養後、Ｈ．Ｓ培地の表膜にセルロースが産生された試料で単一菌株を１０−７まで希釈して固体Ｈ．Ｓ培地に塗抹した後、ランダムでコロニーを取って液体Ｈ．Ｓ培地に再接種し、これらのうち培地に表膜を形成する菌株を分離した。
前記柿酢の表膜部分から分離された菌株を、変色範囲がｐＨ５．２〜６．８であり、酸性で黄色、塩基性で紫色を帯びるブロモクレゾールパープル含有Ｃａｒｒ培地に接種し、黄色から紫色へと、さらに紫色から黄色へと色変化があることを確認することにより、前記分離された菌株がセルロース生成活性があることを最終的に確認した。
本発明者らは、前記セルロース生成活性がある菌株を「Ｄ４７」と命名した。
【００３２】
＜実施例２＞
セルロースを高収率にて産生する新規な菌株の同定および寄託
＜２−１＞形態学的特徴
前記＜実施例１＞において分離されたＤ４４菌株およびＤ４７菌株のそれぞれの大きさ、形状、グラム染色およびコロニーの形状、色などを観察し、具体的に、ＧＹＣ培地でＤ４４菌株およびＤ４７菌株それぞれのコロニーを観察し、Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株がそれぞれ生成したセルロースを菌が除去されていない状態で光学顕微鏡および走査転写顕微鏡（ＳＥＭ）により観察した。
より具体的に、光学顕微鏡（Ｎｉｋｏｎ ＥＣＬＩＰＳＥ Ｅ６００、日本）を用いてＤ４４菌株およびＤ４７菌株の形状とグラム染色を、走査電子顕微鏡（ＳＥＭ）によりＤ４４菌株およびＤ４７菌の大きさと菌が産生したセルロース繊維を検鏡した。特に、電子顕微鏡はＣｈａｅの方法（Ｃｈａｅ．  Ｃ．Ｍ．１９７７．  Ｍａｃｅｒａｔｉｏｎ  ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｏｒ  ＳＥＭ  ｏｂｓｅｒｂａｔｉｏｎ  ’Ａ  ｌｅｇａｌ  ｍｅｄｉｃｉｎｅ  ｌｅｃｔｕｒｅ  ｒｏｏｍ’．  Ｋｙｕｎｇｐｏｏｋ  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ．  ｐ  ４０−５８）を変形して利用し、具体的に、Ｄ４４菌株およびＤ４７菌体を２％（ｖ／ｖ）グルタルアルデヒド （Ｇｌｕｔａｒａｌｄｅｈｙｄｅ）により２時間前固定し、２％（ｗ／ｖ）のＯｓＯ４により２時間後固定してエタノールにより順次に脱水した後、イソアミルアセタート（ｉｓｏａｍｙｌ ａｃｅｔａｔｅ）を処理して５５℃で乾燥し、金コートして検鏡した。Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株の形態学的特徴
についての観察結果を表２と、図１および図５に示す。
【００３３】
【表２】
0005965104.tif 000003
【００３４】
表２と、図１および図５に示すように、Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株はグラム陰性であり、桿状であり、胞子を形成せず、単一（ｓｉｎｇｌｅ）または対（ｐａｉｒ）で配列されて存在する。特に、図１および図５に示すように、Ｄ４４菌株およびＤ４７によって生成されたセルロース繊維内に前記菌株が内在されている。
【００３５】
＜２−２＞生化学的特徴
前記Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株の生化学的特徴を調べるために、Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株をそれぞれＨ．Ｓ液体培地に培養した後に採取した菌液を新たな培地に継代培養して使用した。
具体的に、本発明の新規なＤ４４菌株およびＤ４７菌株をそれぞれＦｒａｔｅｕｒ培地に接種して培養した後、培地中のＣａＣＯ３が中和するかどうかを確認してＤ４４菌株およびＤ４７菌株のエタノール酸化経路を確認した。
また、グリセロールでケトン体を形成するかどうかを確認するために、ＹＥＧ固体培地に前記各菌株をそれぞれ塗抹して５日間３０℃で培養した後、フェーリング液をコロニーの上に数滴滴下した後、オレンジ色への変色有無により確認した。
さらに、エタノールと塩化ナトリウムに対して菌株の生育とセルロースの生成有無を確認するために、ＳＭ培地に塩化ナトリウム０．５、１．０、１．５、２．０％（ｗ／ｖ）とエタノール１０％（ｖ／ｖ）をそれぞれ添加した培地に、Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株をそれぞれ接種して７日間３０℃で静置培養した後に観察した。
【００３６】
加えて、ＧＹＣ固体培地にＤ４４菌株およびＤ４７菌株をそれぞれ塗抹して７日間３０℃で培養した後に褐色色素の形成有無を確認し、γ−ピロンの生成有無を確認するために、葡萄糖５０ｇ／Ｌ、果糖５０ｇ／Ｌをそれぞれ含有するＹＰＣ培地に菌を塗抹して７日間３０℃で培養した後に塩化第二鉄（ｆｅｒｒｉｃ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）５％（ｗ／ｖ）溶液を滴下して確認した。このとき、紫色に変色すれば、菌株が葡萄糖と果糖を用いてγ−ピロンを生成することができると決めた（Ｊａｎｇ．  Ｏ．Ｙ．，  Ｊｏｏ．  Ｋ．Ｈ．，  Ｌｅｅ．  Ｊ．Ｈ．，  Ｂａｉｋ．  Ｃ．Ｇ．  ２００３．  Ｇｒｏｗｔｈ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ  ａｎｄ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ  ｏｆ  ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ  ｉｎ  ｓｔａｔｉｃ  ｃｕｌｔｕｒｅ  ｖｉｎｅｇａｒ．  Ｋｏｒｅａｎ  Ｊ．  Ｆｏｏｄ  ＳＣＩ．  ｔｅｃｈ．  ｖｏｌ．  ３５，  Ｎｏ．  ６，  ｐｐ．  １１５０〜１１５４）。
【００３７】
さらに、Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株の酢酸に対する抵抗性を調べるために、酢酸の濃度を２％（ｖ／ｖ）〜１０％（ｖ／ｖ）に調節したＧＹＰ培地にＤ４４菌株およびＤ４７菌株をそれぞれ接種し、次いで、７日間３０℃で培養後に調査した。
これらに加えて、生化学的実験はＡＰＩ ２０ＮＥキット（Ｂｉｏ−Ｍｅｒｉｅｕｘ、フランス）を用いて行い、導出された結果をバージーズ・マニュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー（Ｂｅｒｇｙ’ｓ  ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ  ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ）に準じて同定した（Ｋｒｉｇ，  Ｎ．Ｒ．，  Ｊ．Ｇ．  Ｈｏｌｔ．  １９８４．  Ｂｅｒｇｅｙ’ｓ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ  Ｖｏｌ．  １．  Ｔｈｅ  Ｗｉｌｌｉａｍ  ａｎｄ  Ｗｉｌｋｉｎｓ  Ｃｏ．Ｕ．Ｓ．Ａ．）。
前記実験結果を下記表３および表４に示し、その結果をアセトバクター属菌株、グルコノバクター属菌株およびグルコンアセトバクター属菌株と比較した。前記グルコンアセトバクター属菌は、Ｌｅｅ．  Ｏ．Ｓ．文献（Ｌｅｅ．  Ｏ．Ｓ．，  Ｊａｎｇ．  Ｓ．Ｙ．，Ｊｅｏｎｇ．  Ｙ．Ｊ．  ２００２．  Ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  Ｅｔｈａｎｏｌ  ｏｎ  ｔｈｅ  Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ  ａｎｄ  Ａｃｅｔｉｃ  Ａｃｉｄ  ｂｙ  Ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ  ｐｅｒｓｉｍｍｏｎｅｎｓｉｓ  ＫＪ１４５．  Ｊ  ．Ｋｏｒｅａｎ  Ｓｏｃ．  Ｆｏｏｄ  ｓｃｉ．  Ｎｕｔｒ．  ３１（４）．５７２−５７７．）に記載のものによる。
【００３８】
【表３】
0005965104.tif 000004
１）＋：陽性、２）−：陰性、３）ＮＤ：未決定
【００３９】
前記表３に示すように、本発明の新規なＤ４４菌株をＦｒａｔｅｕｒ培地に接種して培養した結果、培地中のＣａＣＯ３が中和して透明環が形成されることを観察することができ、培養１２日後にＣａＣＯ３が再沈殿されることを確認することができる。要するに、Ｄ４４菌株はエタノールを酢酸に、酢酸をＣＯ２とＨ２Ｏに酸化することが分かる（Ｓｏｎ．  Ｈ．Ｊ．，  Ｋｉｍ．  Ｋ．Ｋ．，  Ｋｉｍ．  Ｈ．Ｓ．，  Ｋｉｍ．Ｙ．Ｇ．  １９９９．  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ−ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ  ｂａｃｔｅｒｉａ．  Ｊ．  Ａｇｒｉ．  Ｔｅｃｈ  ＆  Ｄｅｖ．  Ｉｎｓｔ．）。
【００４０】
また、本発明のＤ４４菌株は５％（ｗ／ｖ）葡萄糖と果糖を用いてγ−ピロンを生成することができず、グリセロールからのケトン体形成反応で陽性を示す。さらに、前記Ｄ４４菌株はγ−ガラクトシダーゼ陽性、硝酸（ｎｉｔｒａｔｅ）から亜硝酸（ｎｉｔｒｉｔｅ）に還元させ、アセタート、果糖、葡萄糖、マンニトルを酸化させることはできるものの、乳酸（ｌａｃｔａｔｅ）は酸化させることができない。
さらに、本発明のＤ４４菌株は、インドール産生、ウレアーゼ、ゼラチン液化反応で陰性を示し、０．５、１．０、１．５、２．０％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムに生育可能であり、特に、０．５％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムでセルロースも生成することができる。しかし、２％（ｖ／ｖ）〜１０％（ｖ／ｖ）のアセタート濃度でＤ４４は生育することができないため耐性がないことが観察され、褐色色素を生成することができずに透明で且つ白いコロニーを形成する。
前記結果から、本発明のＤ４４菌株はグルコンアセトバクター（Ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ）属菌株であることが分かる。
【００４１】
【表４】
0005965104.tif 000005
１）＋：陽性、２）−：陰性、３）ＮＤ：未決定
【００４２】
前記表４に示すように、本発明のＤ４７菌株をＦｒａｔｅｕｒ培地に接種して培養した結果、培地中のＣａＣＯ３が中和して透明環が形成されることを観察することができ、培養８日後、ＣａＣＯ３が再沈殿されることを確認することができる。要するに、Ｄ４７菌株は、エタノールを酢酸に、酢酸をＣＯ２とＨ２Ｏに酸化することが分かる（Ｓｏｎ．  Ｈ．Ｊ．，  Ｋｉｍ．  Ｋ．Ｋ．，  Ｋｉｍ．  Ｈ．Ｓ．，  Ｋｉｍ．Ｙ．Ｇ．  １９９９．  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃｅｌｌｕｌｏｓｅ−ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ  ｂａｃｔｅｒｉａ．  Ｊ．  Ａｇｒｉ．  Ｔｅｃｈ  ＆  Ｄｅｖ．  Ｉｎｓｔ．）。
また、本発明のＤ４７菌株は、５％葡萄糖（ｗ／ｖ）と果糖を用いてγ−ピロンを生成することができず、前記Ｄ４４菌株とは異なり、グリセロールからのケトン体形成反応で陰性を示す。なお、前記Ｄ４７菌株は、前記Ｄ４４菌株とは異なり、β−ガラクトシダーゼ陰性であり、硝酸（ｎｉｔｒａｔｅ）から亜硝酸（ｎｉｔｒｉｔｅ）に還元させることができなかった。しかし、前記Ｄ４４菌株と同様に、アセタート、果糖、葡萄糖、マンニトルを酸化させることはできるものの、乳酸は酸化させることができない。
【００４３】
さらに、本発明のＤ４７菌株は、インドール産生、ウレアーゼ、ゼラチン液化反応で陰性を示し、０．５、１．０、１．５、２．０％（ｗ／ｖ）の塩化ナトリウムに生育可能であり、特に、０．５％の塩化ナトリウムでセルロースも生成することができる。しかしながら、２％（ｖ／ｖ）〜１０％（ｖ／ｖ）のアセタート濃度でＤ４７は生育することができずに耐性がないことが観察され、前記Ｄ４４菌株とは異なり、薄い褐色のコロニーを形成する。
前記結果から、本発明のＤ４７菌株は、グルコンアセトバクター（Ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ）属菌株であることが分かる。
【００４４】
＜２−３＞１６ｓ ｒＤＮＡ分析
前記＜実施例１＞において分離されたＤ４４菌株およびＤ４７菌株のｇＤＮＡを抽出するために、まず、Ｈ．Ｓ培地の表膜に生成されたセルロースを除去するために、セルラーゼ（Ｃｅｌｌｕｃｌａｓｔ、ｎｏｎｏｚｙｍｅ）を１％（ｖ／ｖ）添加して３７℃で１時間攪拌して培養し、ＤＮｅａｓｙ Ｂｌｏｏｄ ＆ Ｔｉｓｓｕｅキット（ＱＩＡＧＥＮ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて１６ｓ ｒＤＮＡを抽出および増幅し、１６ｓ ｒＤＮＡシーケンシングを通して配列番号１のＤ４４菌株の１６ｓ ｒＤＮＡの全体配列および配列番号２のＤ４７菌株の１６ｓ ｒＤＮＡの全体配列をそれぞれ得た。菌株の同定のために候補菌株からゲノムＤＮＡをＤＮｅａｓｙ(R)  Ｂｌｏｏｄ  ＆  Ｔｉｓｓｕｅキット（ＱＩＡＧＥＮ，  Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて分離した。ＤＮＡの精製は、製造社のガイドラインに準じて行った。
【００４５】
前記Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株の１６ｓ ｒＤＮＡのクローニングのために、プライマーとしては、配列番号３の５’−ＡＧＡＧＴＴＴＧＡＴＣＭＴ ＧＧＣＴＣＡＧ−３’（順方向）と、配列番号４の５’−ＡＣＧＧＧＣＧＧＧＴＧＴＧＴＲＣ−３’（逆方向）を用いてＰＣＲ増幅を行った。具体的に、ＰＣＲ増幅は、１００ｎｇ鋳型ＤＮＡ、０．５μＭのプライマーＤＮＡ、０．２ｍＭ ｄＮＴＰｓ、１０×Ｅｘ Ｔａｑ緩衝液およびＴａｑ重合酵素（ＴａＫａＲａ  ｂｉｏ  Ｉｎｃ．，  Ｊａｐａｎ）０．０２５Ｕ／μｌを用いて９５℃で３０秒変性、５８℃で３０秒の結合、７２℃で１分３０秒の伸張とする３５サイクルをＢｉｏｍｅｔｒａ社製サーモサイクラー（Ｔａｍｐａ、ＵＳＡ）により増幅させた。ＰＣＲ産物を１％のアガロースゲル電気泳動を行うことで確認した。確認されたＰＣＲ産物をＰＣＲ精製キット（Ｂｉｏｎｅｅｒ、Ｋｏｒｅａ）を用いて精製した後、Ｔ４リガーゼ（ｌｉｇａｓｅ）（Ｐｒｏｍｅｇａ、ＵＳＡ）を用いてｐＧＥＭ Ｔ−ｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ、ＵＳＡ）に連結し、１６ｓ ｒＤＮＡシーケンシングを通して前記各菌株の塩基配列情報を得た。
【００４６】
前記得られたＤ４４菌株およびＤ４７菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列からリボソーム遺伝子銀行からＤＮＡの相同性を調査して同定に参考し、Ｂｉｏｅｄｉｔプログラム（
1298607716195_0.html
）、Ｃｌｕｓｔａｌ Ｘプログラム、Ｍｅｇａプログラム（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｍｅｇａｓｏｆｔｗａｒｅ．ｎｅｔ／）を用いて類似同定された微生物との系統樹（ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｔｒｅｅ）を描いて類似種間の関係を観察した。
【００４７】
まず、前記Ｄ４４菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列とグルコンアセトバクター・ラエティカスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列（ＡＹ１８０９６１）との類似度を比較した結果、類似度が８７．２１５％に過ぎなかった。普通、菌株同定の類似度が約９８〜９９％でなければ類似菌として判定することができないが、Ｄ４４菌株とグルコンアセトバクター・ラエティカスとの類似度は８７．２１５％に過ぎず、本発明のＤ４４菌株は新規なものであることが分かる。
Ｃｌｕｓｔａｌ Ｘプログラムを用いて本発明のＤ４４とグルコンアセトバクター・ラエティカスとの類似度を再確認し、その結果を図２Ａから図２Ｃに示した。前記図２Ａから図２Ｃに示すように、Ｄ４４とグルコンアセトバクター・ラエティカスとの類似度は８７．２１５％に過ぎない。
【００４８】
前記類似度結果を参考として、同じ科に属する微生物を基にＤ４４との系統を調べるために、Ｂｉｏｅｄｉｔプログラム、Ｃｌｕｓｔａｌ Ｘプログラム、Ｍｅｇａプログラムを用いた。具体的に、酢酸菌（ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒａｃｅａｅ）科に属するグルコンアセトバクター（Ｇｌｕｃｏｎａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ）属とグルコノバクター（Ｇｌｕｃｏｎｏｂａｃｔｅｒ）属、アセトバクター（ａｃｅｔｏｂａｃｔｅｒ）属の類似菌に対して近隣結合法により作成した系統樹を図３に示した。
【００４９】
次に、前記Ｄ４７菌株の１６ｓ ｒＤＮＡ配列とグルコンアセトバクター・インターメディウスの１６ｓ ｒＤＮＡ配列（Ｙ１４６９４）との類似度を比較した結果、９９．７７４％の類似度を示した。このため、前記Ｄ４７菌株はグルコンアセトバクター・インターメディウスの類似菌であると判定され、グルコンアセトバクター・インターメディウスＤ４７と命名した。
さらに、Ｃｌｕｓｔａｌ Ｘプログラムを用いて本発明のＤ４７とグルコンアセトバクター・インターメディウスとの類似度を再確認し、その結果を図６Ａから図６Ｃに示した。前記図６Ａから図６Ｃに示すように、Ｄ４７とグルコンアセトバクター・インターメディウスが９９％類似していることが分かる。
但し、Ｄ４７菌株は、前記＜実施例２−２＞の表４に示すように、従来のグルコンアセトバクター属菌株とは異なり、グリセロール（ｇｌｙｃｅｒｏｌ）でジヒドロキシアセトン（ｄｉｈｙｄｒｏｘｙａｃｅｔｏｎｅ）を形成するケトン体生成（ｋｅｔｏｇｅｎｅｓｉｓ）反応をし、乳酸（ｌａｃｔａｔｅ）を過酸化させることができず、０．５％（ｗ／ｖ）のＮａＣｌをＨ．Ｓ培地に添加して培養するときに培地の表面にセルロースを形成しうるなど生化学的特性が従来のグルコンアセトバクター属菌株とは全く異なる新規な菌株であることを確認することができ、セルロース産生能においても、後述するように、従来のグルコンアセトバクター属菌株に比べて顕著に高い産生活性を有していることを確認した。
【００５０】
前記類似度結果を参考にして、同じ科に属する微生物を基にＤ４７の系統を調べるために、Ｂｉｏｅｄｉｔプログラム、Ｃｌｕｓｔａｌ Ｘプログラム、Ｍｅｇａプログラムを用いた。具体的に、酢酸菌科に属するグルコンアセトバクター属とグルコノバクター属、アセトバクター属の類似菌に対して近隣結合法により作成した系統樹を図７に示した。
【００５１】
＜２−４＞本発明の菌株の寄託
本発明者らは、上記のようにして分離および同定された本発明のグルコンアセトバクター属菌株を２０１０年３月２６日付けで韓国微生物保存センター（ＫＣＣＭ）国際寄託機関にそれぞれＫＣＣＭ１１０７８Ｐ寄託番号（Ｄ４４）およびＫＣＣＭ１１０７９Ｐ寄託番号（Ｄ４７）で寄託した。
【００５２】
＜実施例３＞
本発明の菌株のセルロース産生活性
＜３−１＞本発明の菌株のセルロース産生活性
前記Ｄ４４菌株およびＤ４７菌株をそれぞれＨ．Ｓ培地に接種してセルロースの生成有無を確認した結果を図４および図８に示す。
前記図４および図８に示すように、本発明のＤ４４菌株およびＤ４７菌株は培養してから２〜３日経過後に表膜にセルロースを形成し、培養期間が長くなるにつれてＤ４７によって生成されたセルロース膜はさらに厚くなって多重に形成される。
また、前記Ｈ．Ｓ培地にＤ４４菌株およびＤ４７菌株をそれぞれ１重量％接種（培地の総重量に対して）し、３０℃で７日間静置培養した後、産生されたセルロースを得て乾燥重量を測定し、その結果を表５および図９Ａに示す。具体的に、前記静置培養後、Ｈ．Ｓ培地の表膜に形成されたセルロースを回収して水道水により洗浄し、次いで、少量の０．１Ｎ ＮａＯＨ溶液に入れて１時間沸騰して溶菌させた。前記回収されたセルロースを水道水によりさらに洗浄した後、少量の蒸溜水に一日中入れて中和させた。中和されたセルロースをろ過して９０℃で抗量になるまで乾燥した後、乾燥されたセルロースをデシケーターで冷却した後に乾燥重量を測定した。
【００５３】
【表５】
0005965104.tif 000006
【００５４】
前記本発明のＤ４４菌株を用いて産生されたセルロース膜は、表面が滑らかであり、堅固性および弾力性があり、厚さは約０．３ｍｍであった。これに対し、前記本発明のＤ４７菌株を用いて産生されたセルロース膜は、表面が滑らかであり、堅固性及び弾力性があり、厚さは約４ｍｍであり、遥かに高いセルロース活性を示している。さらに、後述するように、ココナツ混合培地（２）でＤ４７菌株を用いて産生されたセルロース膜の厚さは約１２ｍｍであって、顕著に高いセルロース活性を示している。
【００５５】
＜３−２＞本発明の菌株のセルロース産生活性の比較
本発明のＤ４４菌株およびＤ４７菌株のセルロース産生活性をセルロース産生に用いられる公知の菌株であるアセトバクター・キシリナム菌株（ＫＣＣＭ４０２７４）と比較した。
前記本発明のＤ４４菌株とＤ４７菌株、およびアセトバクター・キシリナム  ＣＣＭ４０２７４菌株をそれぞれＨ．Ｓ培地に１重量％接種（培地の総重量に対して）した後に３０℃で７日間静置培養し、次いで、前記実施例＜３−１＞により産生されたセルロースの乾燥重量を測定し、その結果を下記表６に示す。
【００５６】
【表６】
0005965104.tif 000007
【００５７】
前記表６に示すように、本発明のＤ４４菌株およびＤ４７菌株は、アセトバクター・キシリナムと比較して、Ｄ４４菌株の場合に約３倍、そしてＤ４７菌株の場合に約４．３４倍のセルロースを産生することができ、本発明の菌株の中でも、特にＤ４７菌株は、Ｄ４４菌株に比べて約１．２７倍さらに多量のセルロースを産生することができ、セルロースを非常に高収率にて産生することができるということが分かる。
【００５８】
＜参考例２＞
培地の組成によるセルロース産生量の評価に供された培地および培養条件
本発明の菌株がＨ．Ｓ培地で産生するセルロースの量を一層増大させるための要因の一つとして、培地の組成による影響を確認するために、下記表７に示す組成で製造された培地に菌を培養した。
菌培養液は１％（ｖ／ｖ）にし、温度は３０℃に維持し、７日間培養後に乾燥重量を測定し、反復実験を通して平均値として使用した。
【００５９】
【表７】
0005965104.tif 000008
【００６０】
１）ココナツ原液：１００％原液であり、ｗｗｗ．ｏｎｅｄｒｉｎｋｓ．ｃｏｍ（Ｏｎｅ  ｗｏｒｌｄ  ｅｎｔｅｒｐｒｏｓｅｓ，ＬＬＣ，  ＵＳＡ．  ｍｅｄｅ  ｉｎ  ｂｒａｚｉｌ）で輸入
２）硫安：Ｓｉｇｍａ（ＵＳＡ）社製純度９９％の硫化アンモニウム
３）硫安：Ｃｈｉａ  Ｔａｉ  Ｃｏ．，  Ｌｔｄ．（Ｔｈａｉｌａｎｄ）社製純度２１％の硫化アンモニウム
【００６１】
＜実施例４＞
培地の組成による本発明の菌株のセルロース産生活性の増進試験
前記表７に示すように、培地組成を異ならせて、本発明のＤ４４菌株およびＤ４７菌株が産生したセルロースの乾燥重量および厚さを測定し、その結果を下記表８に示す。測定結果は、前記実施例３−２で用いられたアセトバクター・キシリナム菌株（ＫＣＣＭ４０２７４）と比較した。
【００６２】
【表８】
0005965104.tif 000009
【００６３】
前記表８に示すように、本発明のＤ４４菌株およびＤ４７菌株は、セルロースを産生する代表菌株であるアセトバクター・キシリナム菌株に比べて、セルロース産生量が全般的に遥かに高く現れ、特に、Ｄ４７菌株の場合、全ての培地で前記菌株のうち最も多量のセルロースを産生した。
具体的に、Ｈ．Ｓ培地およびココナツ液体培地でＤ４４菌株が産生したセルロースの乾燥重量は、アセトバクター・キシリナム菌株に比べて、それぞれ１９倍、５０倍に達し、Ｄ４７菌株はそれぞれ２２倍、９７．５倍に達することから、本発明の菌株がセルロースを遥かに高い収率にて産生することを確認した。
一方、ココナツ混合培地（１）、（２）でのセルロースの産生量を調べてみると、代表菌株であるアセトバクター・キシリナム菌株と本発明のＤ４４菌株との間にはセルロースの産生量に差がなかったが、本発明のＤ４７菌株の場合、産生したセルロースの乾燥重量がココナツ混合培地（１）で０．８０ｇ／Ｌであり、ココナツ混合培地（２）で５．１０ｇ／Ｌであることが判明し、それぞれ４倍、２５．５倍に達するセルロースの産生量を示して、アセトバクター・キシリナム菌株だけでなく、本発明のＤ４４菌株よりも顕著に高い収率にてセルロースを産生することができるということを確認した。
【００６４】
結論的に、本発明の菌株は、セルロースを産生する代表菌株であるアセトバクター・キシリナム菌株に比べて、遥かに高い収率にてセルロースを産生することができ、このようなセルロースの産生効率は培地の組成によって異なってくる。
すなわち、Ｄ４４菌株は、ココナツ混合培地よりもＨ．Ｓ合成培地で約９．５倍セルロースをさらに多く産生し、Ｄ４７菌株はＨ．Ｓ合成培地よりもココナツ原液に砂糖と硫安を添加して製造したココナツ混合培地（２）でセルロースを約２．３２倍さらに多く産生し、ココナツ混合培地（１）に比べては約６．４倍セルロースをさらに多く産生することが分かる。なお、Ｄ４７菌株がココナツ混合培地（２）で産生したセルロースの厚さを測定した結果、Ｈ．Ｓ合成培地で測定された４ｍｍに比べて、約３倍増加された約１２ｍｍの厚さを示し、厚さが顕著に増加されていることが分かる（図９Ａおよび図９Ｂ）。
【産業上の利用可能性】
【００６５】
本発明の菌株が産生したセルロースは、液晶表示装置の基板、スピーカの振動板、医療用パッドや化粧パッド、人工皮膚、空気ろ過用フィルター、プリント配線基板、床材料等の種々の産業用素材、食品素材など多岐にわたって利用することができる。
【図２Ａ】
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【図３】
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【図６Ａ】
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【図６Ｂ】
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【図６Ｃ】
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【図７】
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【図１】
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【図２Ｂ】
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【図２Ｃ】
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【図４】
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【図５】
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【図８】
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【図９Ａ】
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【図９Ｂ】
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【配列表】
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