(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に反応し、タマウミヒドラプラヌラ幼生には反応しないモノクローナル抗体又はその抗原結合フラグメント。
【請求項２】
前記抗体が、FERM P-21903、FERM P-21906、FERM P-21905、及びFERM P-21907からなる群から選ばれるいずれかの受託番号で寄託されているハイブリドーマから産生されることを特徴とする請求項１に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合フラグメント。
【請求項３】
請求項１又は２に記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ。
【請求項４】
ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出用試薬であって、
請求項１又は２に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合フラグメントを含有する検出用試薬。
【請求項５】
ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出器であって、
請求項１又は２に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合フラグメントが固定化されていることを特徴とする検出器。
【請求項６】
ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出キットであって、
請求項１又は２に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合フラグメントを含むことを特徴とする検出キット。
【請求項７】
ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出方法であって、
試料に、請求項１又は２に記載のモノクローナル抗体又はその抗原結合フラグメントを反応させることを特徴とする検出方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に特異的なモノクローナル抗体又はそのフラグメント、前記モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ、並びに、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出用試薬、検出器、検出キット、及び検出方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
火力・原子力発電所等を含む臨海プラント及び沿岸水産設備においては、ベニクダウミヒドラによる被害が増大する傾向にある。この被害は、ベニクダウミヒドラから放出され、プランクトンとして浮遊する、アクチヌラ幼生（付着期幼生）の大量付着によって生じるが、塩素注入によりある程度抑制できる。従って、塩素注入による抑制化を効率よく行うために、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の発生状況や残存状況を容易に把握することができる手法の開発が求められている。
従来、ベニクダウミヒドラが属するヒドロ虫綱における抗原に特異的に結合する抗体として、ヒドロ虫綱の蛍光タンパク質に特異的に結合する抗体が知られているのみで（特許文献１参照）、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に特異的に結合する抗体は開発されていなかった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特表２００６−５０６１００号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本発明は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に特異的な反応性を示すモノクローナル抗体又はそのフラグメント、前記モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ、並びに、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出用試薬、検出器、検出キット、及び検出方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明者らは、上記課題を解決すべく、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生で免疫したマウスの脾臓細胞とマウスミエローマ細胞とを融合することにより得られたハイブリドーマから、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生には反応を示すが、該ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生と同様に浮遊するタマウミヒドラプラヌラ幼生やミズクラゲプラヌラ幼生には反応を示さないモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを同定し、本発明を完成するに至った。
【０００６】
すなわち、本発明は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に反応し、タマウミヒドラプラヌラ幼生には反応しないモノクローナル抗体又はそのフラグメントである。
また、本発明は、上記モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマである。
本発明は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出用試薬であって、上記モノクローナル抗体又はそのフラグメントを含有する。
本発明は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出器であって、上記モノクローナル抗体又はそのフラグメントが固定化されていることを特徴とする。
本発明は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出キットであって、上記モノクローナル抗体又はそのフラグメントを含む。
本発明は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出方法であって、上記モノクローナル抗体又はそのフラグメントを反応させる工程を含む。
上記抗体は、例えば、FERM P-21903、FERM P-21906、FERM P-21905、及びFERM P-21907などの受託番号で寄託されているハイブリドーマから産生されるものである。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に特異的な反応性を示すモノクローナル抗体又はそのフラグメント、前記モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ、並びに、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出用試薬、検出器、検出キット、及び検出方法を提供することができる。
【発明を実施するための形態】
【０００８】
上記知見に基づき完成した本発明を実施するための形態を、実施例を挙げながら詳細に説明する。実施の形態及び実施例に特に説明がない場合には、J. Sambrook, E. F. Fritsch & T. Maniatis (Ed.), Molecular cloning, a laboratory manual (3rd edition), Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, New York (2001); F. M. Ausubel, R. Brent, R. E. Kingston, D. D. Moore, J.G. Seidman, J. A. Smith, K. Struhl (Ed.), Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons Ltd.等の標準的なプロトコール集に記載の方法、あるいはそれを修飾したり、改変した方法を用いる。また、市販の試薬キットや測定装置を用いている場合には、特に説明が無い場合、それらに添付のプロトコールを用いる。
【０００９】
＝＝モノクローナル抗体又はそのフラグメント＝＝
本発明にかかるモノクローナル抗体は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に反応し、タマウミヒドラプラヌラ幼生には反応しないものであれば特に制限されるものではないが、ミズクラゲプラヌラ幼生、キタクダウミヒドラ幼生、ヒメクダウミヒドラ幼生、アカフジツボキプリス幼生、コペポータ、ムラサキイガイペディベリジャー幼生等の他の種に反応しないものが好ましい。また、本発明に係るフラグメントとしては、上記モノクローナル抗体の一部からなり、可変領域を含む抗原結合部位であれば特に制限されるものではない。なお、モノクローナル抗体が幼生に反応するというとき、その幼生の形状は、ｗｈｏｌｅ-ｍｏｕｎｔであっても、組織切片であっても、粗抽出液（超音波装置、ホモジナイザー等で処理した溶解物）であっても、当業者が抗体反応に用いる形状であれば、特に限定されない。また、その幼生に対して行う処理（固定、溶解、抽出等）も、当業者が抗体反応に用いるために通常行う処理であれば、特に限定されない。
【００１０】
＝＝モノクローナル抗体及びそのフラグメントの製造方法＝＝
本発明に係るモノクローナル抗体は、上記モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ（以下、「本発明に係るハイブリドーマ」と称する。）から得ることができる。本発明に係るハイブリドーマを用いたモノクローナル抗体の製造は、常法に従って行うことができる。該製造は、例えば、該ハイブリドーマを適当な培養培地で培養し、培養上清を回収することにより行ってもよいが、該ハイブリドーマを哺乳類動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ブタ、ウシ、ウマ、イヌ、サル等）の腹腔内に投与し、腹水を回収することにより行ってもよい。なお、モノクローナル抗体の精製は、上記ハイブリドーマの培養上清又は培養したハイブリドーマを超音波装置、ホモジナイザー等で処理した溶解物、又は前述のハイブリドーマを腹腔内に投与した哺乳類動物から採取した腹水を、常法、例えば、硫安塩析、クロマトグラフィー（例えば、イオン交換クロマトグラフィーやアフィニティークロマトグラフィー等）、ゲル濾過等の方法、又はこれらの方法を適宜組み合わせた方法により行うことができる。
【００１１】
本発明に係るハイブリドーマとしては、例えば、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センターにおいて受託番号FERM P-21903、FERM P-21906、FERM P-21905、及びFERM P-21907で寄託されている細胞株［それぞれＴ−Ｈ３Ｈ７（１）、Ｔ−Ｈ３Ａ１（６）、Ｔ−Ｈ３Ｇ１０（４）、及びＴ−Ｐ２Ｆ１２（７）］などを用いることができる。
【００１２】
本発明に係るフラグメントは、例えば、Ｆａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）２フラグメント等を用いることができる。これらのフラグメントは、例えば、上記モノクローナル抗体をタンパク質分解酵素によって部分消化することにより得ることができる。なお、タンパク質分解酵素としては、ＦａｂフラグメントやＦ（ａｂ’）２フラグメントを得ることができるものであればどのようなものであってもよいが、例えば、ペプシン、フィシン等の分解酵素を用いることができる。
【００１３】
＝＝＝ハイブリドーマの作製＝＝＝
本発明に係るハイブリドーマは、常法により作製することができる。以下に一例を示す。まず、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生（付着期幼生）又はその粗抽出液等を抗原として用い、適当な量の抗原（アジュバントを使用してもよい。）を哺乳類動物（例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ブタ、ウシ、ウマ、イヌ、サル等）の静脈内、皮下、腹腔内等に（1〜複数回）投与して免疫する。その後、免疫した動物から抗体産生細胞を採取し、採取した抗体産生細胞と骨髄腫細胞（ミエローマ細胞）とを融合させてハイブリドーマを作製する。得られたハイブリドーマの中で、タマウミヒドラプラヌラ幼生には反応性を示さないが、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生には反応性を示すモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ、好ましくは、ミズクラゲプラヌラ幼生、キタクダウミヒドラ幼生、ヒメクダウミヒドラ幼生、アカフジツボキプリス幼生、コペポータ、ムラサキイガイペディベリジャー幼生等にも反応性を示さないモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを選定することにより、本発明に係るハイブリドーマを得ることができる。
【００１４】
前記抗体産生細胞とミエローマ細胞は、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウィルス（ＨＶＪ）等の細胞融合促進剤を用いて細胞融合することができるが、エレクトロポレーション等の電気刺激を利用して細胞融合することもできる。なお、細胞融合の効率を高めるために、ジメチルスルホキシドやレシチン等の補助剤を細胞融合促進剤とともに用いてもよい。
【００１５】
前記抗体産生細胞としては、例えば、脾臓細胞、リンパ節細胞、胸腺細胞、末梢血細胞等を用いることができる。これらの細胞は、動物から脾臓、リンパ節、胸腺、又は末梢血を摘出し、摘出した組織を破砕、濾過、遠心分離等することにより得ることができる。また、前記ミエローマ細胞としては、各種動物由来の細胞株を用いてもよいが、それ自身薬剤に対して抵抗性を示さないが、融合すると薬剤に対して抵抗性を示す細胞株を用いることが好ましい。これにより、細胞融合した後、薬剤を添加した培養培地で培養することにより、細胞融合によって得られたハイブリドーマの選択が容易となる。なお、融合させる抗体産生細胞とミエローマ細胞は、同種の動物由来の細胞を用いることが望ましいが、異なる種の動物由来の細胞を用いてもよい。
【００１６】
本発明に係るハイブリドーマの選定は、常法のスクリーニングやクローニングにより行うことができる。ハイブリドーマのスクリーニングには、例えば、酵素免疫測定法（ＥＩＡ：Enzyme ImmunoAssay、ＥＬＩＳＡ：Enzyme-Linked Immunosorbent Assay）、放射線免疫測定法（ＲＩＡ：Radio Immuno Assay）、ウエスタンブロッティング等を用いることができ、ハイブリドーマのクローニングには、例えば、限界希釈法、軟寒天法、フィブリンゲル法、蛍光励起セルソーター法等を用いることができる。本発明に係るハイブリドーマの選定において、上記スクリーニング及びクローニングを繰り返し行うことにより、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生又はその粗抽出液に対して特異性の高いモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを選択することが可能となる。
【００１７】
なお、上記ハイブリドーマのスクリーニングでは、最低限ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生又はその粗抽出液と、タマウミヒドラプラヌラ幼生又はその粗抽出液との反応性を調べればよいが、さらに、ミズクラゲプラヌラ幼生、キタクダウミヒドラ幼生、ヒメクダウミヒドラ幼生、アカフジツボキプリス幼生、コペポータ、ムラサキイガイペディベリジャー幼生等の他の幼生若しくはプランクトン又はその粗抽出液との反応性を調べることがより好ましい。これにより、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生又はその粗抽出液に対してより特異性の高いモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを得ることができ、このハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体を用いることにより、様々な幼生又はプランクトンを含む試料（例えば、海水等）中からベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生を特異的に検出することができるようになる。従って、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の存在の有無の確認、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の同定、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の量の測定等を行うことが可能となる。また、火力・原子力発電所等を含む臨海プラント及び沿岸水産設備の周辺海域や取水口付近におけるベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の発生状況や残存状況を容易に把握・推定することが可能となり、もってベニクダウミヒドラによる被害の抑制化を図ることが可能となる。
【００１８】
＝＝モノクローナル抗体又はそのフラグメントの使用＝＝
本発明に係るモノクローナル抗体は、タマウミヒドラプラヌラ幼生には反応性を示さないが、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に対して特異的な反応性を示す。従って、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントは、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の特異的な検出に有用である。
【００１９】
上記モノクローナル抗体としては、タマウミヒドラプラヌラ幼生以外の幼生又はプランクトン（例えば、ミズクラゲプラヌラ幼生、キタクダウミヒドラ幼生、ヒメクダウミヒドラ幼生、アカフジツボキプリス幼生、コペポータ、ムラサキイガイペディベリジャー幼生等）には反応性を示さないものが好ましい。このようなモノクローナル抗体又はそのフラグメントを用いることにより、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生をより効率よく検出することができるようになる。
【００２０】
さらに、本発明に係るモノクローナル抗体又はフラグメントを用いることにより、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生を効率よく選択・回収することが可能となる。ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の回収は、モノクローナル抗体又はそのフラグメントとの親和性を利用して行うことができる。例えば、磁性体を結合させた本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントをベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に作用させ、その後、磁石を用いて本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントを回収することにより行うことができる。なお、前記磁性体としては、例えば、鉄、酸化鉄等を用いることができる。その他、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の回収において、ＦＡＣＳ（Fluorescence Activated Cell Sorting）、ｐａｎｎｉｎｇ等の方法を用いてもよい。
【００２１】
本発明に係るベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出は、試料（例えば、海水若しくは川水又はそれを超音波装置、ホモジナイザー等で処理した溶解物等）に、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントを加えて試料中のベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生由来の抗原と反応させることにより、その抗原を同定することにより行うことができる。
【００２２】
従って、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントを含む試薬、キット、又は器具は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出用試薬、検出キット、及び検出器として利用可能である。
【００２３】
なお、本発明に係るベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出用試薬は、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントを含むものであればどのようなものでもよく、例えば、緩衝液（例えば、リン酸塩、炭酸塩、塩酸塩等の塩の溶液）、防腐剤（例えば、アジ化ナトリウム等）、非特異的な反応を抑制するための物質（例えば、ブロックエース、ゼラチン、スキムミルク等）、免疫学的手法によりベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生を検出するのに必要な物質（例えば、標識物質等）、安定剤（例えば、ＢＳＡ、ヤギ血清等）等の、抗体又はそのフラグメント以外に抗原の検出用試薬に含ませる一般的な物質が１又は２以上、さらに含まれていてもよい。
【００２４】
本発明に係るベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出器は、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントが媒体（例えば、濾紙等の紙、ガラス、繊維、ニトロセルロース等の変性セルロース、ナイロン、プラスチック等から成るフィルター、メンブレン、プレート、ディッシュ等）に固定化されているものを含めばどのようなものでもよく、例えば、緩衝液（例えば、リン酸塩、炭酸塩、塩酸塩等の塩の溶液）、防腐剤（例えば、アジ化ナトリウム等）、非特異的な反応を抑制するための物質（例えば、ブロックエース、ゼラチン、スキムミルク等）、免疫学的手法によりベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生を検出するのに必要な物質（例えば、標識物質、発色基質、二次抗体、発色増強剤等）、安定剤（例えば、ＢＳＡ、ヤギ血清等）等の、抗体又はそのフラグメント以外に抗原の検出器に含ませる一般的な物質が１又は２以上、さらに含まれていてもよい。
【００２５】
本発明に係るベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出器の一例としては、試料を滴下する部分又は試料を浸す第一の部分と、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントが固定化された第二の部分と、本発明に係るモノクローナル抗体が産生されたホストの動物種の免疫グロブリンに特異的に反応する抗免疫グロブリン抗体等が固定化された第三の部分を有し、第二の部分が第一の部分と第三の部分との間に備えられ、第一の部分には、金属コロイド粒子（例えば、金コロイド粒子等）、重金属（例えば、金、白金等）、蛍光物質（例えば、ＦＩＴＣ（フルオレセインイソチオシアネート）、ローダミン、ファロイジン等）、着色ラテックス粒子等の標識物質で標識された、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントを含むクロマトグラフ媒体を挙げることができる。上記クロマトグラフ媒体としては、例えば、ガラスやシリカ等の無機繊維からなる濾紙、ニトロセルロース等の変性セルロース等を用いることができる。このようなクロマトグラフ媒体を用いることにより、試料中にベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生が存在するかどうかを検出することが可能になる。
【００２６】
その原理としては、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生又はその溶解物を含む試料をクロマトグラフ媒体の第一の部分に滴下したり、試料に第一の部分を浸したりすると、試料中のベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生又はその溶解物は、第一の部分に含まれる標識されたモノクローナル抗体又はそのフラグメントと反応して複合体を形成し、複合体を含む試料が媒体中を広がるのを利用して、その複合体は第二の部分へと移動し、第二の部分において固定化された上記モノクローナル抗体又はそのフラグメントに捕捉されてその位置で標識物質によりベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出が可能となる。第一の部分から移動したフリーの抗体は、第三の部分へと移動し、第三の部分において固定化された抗免疫グロブリン抗体に捕捉され、第三の部分で発色が生じる。この第三の部分での発色は、検出の陽性対照となる。これに対して、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生由来の抗原を含まない試料を第一の部分に滴下したり、試料に第一の部分を浸したりすると、第一の部分に含まれる標識されたモノクローナル抗体又はそのフラグメントが、第二の部分を素通りして第三の部分へと移動し、第三の部分において固定化された抗免疫グロブリン抗体に捕捉され、第三の部分でのみ発色が生じる。このように、第二の部分にシグナルが現れたか否かによって、試料中にベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生が存在するかどうかを判定することが可能となる。
【００２７】
一方、本発明に係るベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出キットは、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントを含むものであればどのようなものでもよく、本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメント以外に、例えば、緩衝液（例えば、リン酸塩、炭酸塩、塩酸塩等の塩の溶液）、防腐剤（例えば、アジ化ナトリウム等）、非特異的な反応を抑制するための物質（例えば、ブロックエース、ゼラチン、スキムミルク等）、免疫学的手法によりベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生を検出するのに必要な物質（例えば、標識物質、発色基質、二次抗体、発色増強剤等）、安定剤（例えば、ＢＳＡ、ヤギ血清等）等の抗原の検出キットに含ませる一般的な物質、若しくは本発明に係るモノクローナル抗体又はそのフラグメントが媒体に固定化されている検出器、又はこれらのうち２以上を組み合わせたものが含まれていてもよい。
【００２８】
なお、標識物質としては、例えば、蛍光物質（例えば、ＦＩＴＣ、ローダミン、ファロイジン等）、金等のコロイド粒子、重金属（例えば、金、白金等）、色素タンパク質（例えば、フィコエリトリン（ＰＥ）、フィコシアニン（ＰＣ）等）、放射性同位元素（例えば、３Ｈ、３２Ｐ、３５Ｓ、１２５Ｉ、１３１Ｉ等）、酵素（例えば、ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ等）、ビオチン、ストレプトアビジン等の物質を用いることができるがこれらに制限されるものではなく、公知の標識物質を用いてもよい。また、発色基質としては、上記酵素に対する発色基質であれば特に制限されるものではなく、例えば、ジアミノベンジジン（ＤＡＢ）、ｏ-フェニレンジアミン(o-Phenylenediamine)、過酸化水素水、ＢＣＩＰ/Ｎｉｔｒｏ-ＴＢ（5-Bromo-4-chloro-3-indolylphosphate/Nitrotetrazolium blue）、ｐＮＰＰ（para-nitorophenylphosphate）等を用いることができる。発色増強剤としては、上記基質の発色を増強させることができるものであればどのようなものでもよく、例えば、硫酸等を用いることができ、二次抗体としては、例えば、本発明に係るモノクローナル抗体が産生されたホストの動物種の免疫グロブリンに特異的に反応する抗免疫グロブリン抗体、抗ＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）、抗ＩｇＧ（Ｆｃ）等を用いることができる。
また、上記免疫学的手法としては、ＥＩＡ（Enzyme Immunoassay）、蛍光免疫測定法、ＥＬＩＳＡ（Enzyme-Linked Immunosorbent Assay）、ＲＩＡ（Radioimmuno assay）、ウエスタンブロッティング、ラテックス凝集法、イムノクロマト法、サンドイッチ法等の公知の方法を用いることができる。
【００２９】
以上のように、本発明に係るベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の検出方法を用いることにより、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の同定やベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の分離及び量の測定が可能となるが、検出キットや検出器を用いることにより、より容易にベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生を同定することができるようになる。
【実施例】
【００３０】
以下に本発明を実施例によって具体的に説明する。なお、これらの実施例は本発明を説明するためのものであって、本発明の範囲を限定するものではない。
【００３１】
実施例１：ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に特異的に反応するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの樹立
＜ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生によるマウスの免疫＞
１０週齢のＢＡＬＢ／ｃマウス（メス）の腹腔内に抗原（ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生１００〜２００個／３００〜４００μLのＰＢＳ）を５回注射し（１回目の投与から１６８日目に２回目の投与を、２回目の投与から２４日目に３回目の投与を、３回目の投与から２１日目に４回目の投与を、４回目の投与から３９日目に５回目の投与を行った。）、マウスを免疫した。
【００３２】
＜脾臓細胞の単離＞
最終免疫から４日後に、マウスから脾臓を摘出し、１０％のＦＢＳ（Fetal Bovine Serum；GIBCO社製）及び１％の抗生物質（Antibiotic-Antimycotic；GIBCO社製）を含むＲＰＭＩ１６４０（GIBCO社製）培地中で滅菌ステンレスメッシュを用いて裏漉しし、細胞を分散・懸濁させて脾臓細胞を得た。この脾臓細胞を１０％のＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０培地（ＦＢＳ＋培地）で洗浄・遠心した後、ＲＰＭＩ１６４０培地（ＦＢＳ−培地）で３回遠心・洗浄し、脾臓細胞を回収した。
【００３３】
＜細胞融合とＨＡＴ選択；ＰＥＧ法＞
ミエローマ細胞（マウス骨髄癌細胞、Ｐ３Ｕ１）と脾臓細胞を１：１の割合で混合し、その後遠心して上清を除去し、細胞ペレット（沈殿）を作製した。これに、１ｇのＰＥＧ４０００（ポリエチレングリコール；MERCK社Article No.9727）とＦＢＳ−培地１ｍLとを混合した溶液１ｍLを添加し、１分間撹拌した。その後、ＦＢＳ−培地（３７℃）２ｍＬを添加し、１分間攪拌した後、ＦＢＳ−培地（３７℃）８ｍＬを添加した後、遠心（1000rpm×5分間）分離処理を行い、細胞融合処理を行った。続いて、ＦＢＳ＋培地１０ｍＬを添加して細胞群を懸濁させ、これを、ＦＢＳ＋培地１０ｍＬが入った分室シャーレ４枚にそれぞれ２ｍＬずつ播種し、ＣＯ２インキュベータ内で静置培養を行った。培養開始から１日後、各シャーレから培地を４ｍＬずつ取り、２×ＨＡＴ培地６ｍＬとconditioned medium ０．３〜０．４ｍＬを各シャーレに添加し（終濃度０．８×ＨＡＴ培地）、ＣＯ２インキュベータ内で４日間静置培養を行った。
【００３４】
＜細胞融合とＨＡＴ選択;不活化ウィルス法＞
GenomOne-CF（不活化センダイウィルス外膜：HVJ-E、石原産業(株)製）を用いて細胞融合も行った。まず、ミエローマ細胞と脾臓細胞を１：２の割合で混合した後、遠心して上清を除去し、細胞ペレット（沈殿）を作製した。これに、氷冷した融合用緩衝液（１倍濃度液）を添加（脾臓細胞１０８細胞あたり１ｍＬ添加）し、細胞群を懸濁させた。氷冷したHVJ-E懸濁液を添加（細胞懸濁液１ｍＬあたり２５μＬを添加）し、氷上で５分間静置した。その後、遠心（4℃、1000rpm×5分間）を行い、３７℃で１５分間インキュベーションした。続いて、ＦＢＳ＋培地（３７℃）１０ｍＬを添加して細胞群を懸濁させた（脾臓細胞１０８細胞／５０ｍＬ）。これを、ＦＢＳ＋培地１０ｍＬが入った分室シャーレ３枚にそれぞれ２ｍＬずつ播種し、ＣＯ２インキュベータ内で静置培養を行った。培養開始から１日後、各シャーレから培地を４ｍＬずつ取り、２×ＨＡＴ培地６ｍＬとconditioned medium ０．３〜０．４ｍＬを各シャーレに添加し（終濃度０．８×ＨＡＴ培地）、ＣＯ２インキュベータ内で６〜１０日間静置培養を行った。
【００３５】
＜ハイブリドーマ細胞のスクリーニング＞
各シャーレの各セル内で明瞭な増殖が確認されたハイブリドーマ細胞のコロニーのうち、シングルコロニーを形成しているコロニーをピックアップし、選択増殖培地［１×ＨＴ培地と１０％の細胞増殖因子（conditioned medium from J774A.1 cells、Sigma-aldrich社）を含む］の入った９６穴ウェルプレートに移し、ハイブリドーマの培養を行った。その後、明瞭なハイブリドーマの増殖が確認されたウェルについて、その培養上清を採取し、以下のＥＬＩＳＡ法により抗体の産生を確認した。
【００３６】
＜ＥＬＩＳＡ法＞
以下の各処理において、特に記載がない場合は室温にて処理（反応を含む）を行った。
（１）ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ７．５）を加え、氷中でホモジナイズを行い、５０００ｒｐｍで２０分間遠心することにより得たベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生粗抽出液をタンパク質濃度２０μｇ／ｍＬになるように調製した。
（２）（１）で得られたベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生粗抽出液５０μＬを、９６穴イワキＥＬＩＳＡプレートの各ウェルに加え、４℃一晩インキュベートして抗原をウェル底面に吸着させた。
（３）（２）で吸着処理した各ウェルをＴＢＳ（０．５Ｍ ＮａＣｌ及び２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ；ｐＨ７．５）２００μＬで洗浄した。
（４）各ウェルを１％ ＢＳＡを含むＴＢＳ １００μlで１時間ブロッキングした。
（５）各ウェルをＴＴＢＳ（０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０を含むＴＢＳ）２００μｌで３回洗浄した。
（６）ハイブリドーマを培養することにより得られた培養上清（一次抗体）５０μＬを各ウェルに加え、２時間反応させた。
（７）各ウェルをＴＴＢＳ ２００μｌで４回洗浄した。
（８）各ウェルに２次抗体（アルカリフォスファターゼ標識抗マウスＩｇＧ（Ｆｃ）ヤギ抗体、BETHYL社）溶液（ＴＢＳで５００倍に希釈した溶液）５０μｌを加えて１時間反応させた。
（９）各ウェルをＴＴＢＳ ２００μｌで５回洗浄した。
（10）各ウェルに基質（アルカリフォスファターゼ基質キット、BIO-RAD 社）溶液 １００μｌを加え、１時間振盪することにより発色させた。
（11）マイクロプレートリーダー（BIO-RAD Model550）を用いて、各ウェルの溶液の吸光度（４０５ｎｍ）を測定した。
【００３７】
上記ＥＬＩＳＡ法により高い抗体産生能が確認されたハイブリドーマについて、２４穴ウェルで２〜５日間培養し、ＥＬＩＳＡ法によりベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生粗抽出液に対して結合性の高い抗体を産生するハイブリドーマ（Ｔ−Ｈ３Ｈ７（１）、Ｔ−Ｈ３Ａ１（６）、Ｔ−Ｈ３Ｇ１０（４）、Ｔ−Ｐ２Ｆ１２（７）等）を得た。
【００３８】
実施例２：
次に、実施例１により得られた４個のハイブリドーマ［Ｔ−Ｈ３Ｈ７（１）、Ｔ−Ｈ３Ａ１（６）、Ｔ−Ｈ３Ｇ１０（４）、及びＴ−Ｐ２Ｆ１２（７）］の各培養上清に含まれるモノクローナル抗体が、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生に対して特異的に反応するか否かを調べるため、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生、タマウミヒドラプラヌラ幼生、ミズクラゲプラヌラ幼生、甲殻類プランクトン（アカフジツボキプリス幼生、コペポーダ）、及び二枚貝幼生（ムラサキイガイペディベリジャー幼生）の粗抽出液（タンパク質の濃度；20μg/ml）との反応性を、実施例１に記載のELISA法と同様に確認した。なお、各粗抽出液は、各幼生又はプランクトンに50mM Tris-HCl（PH7.5）を加えて、氷中でホモジナイズを行い、５０００ｒｐｍで２０分間遠心することにより調製した。
また、各ハイブリドーマが産生する抗体のアイソタイプを、マウスモノクローナル抗体アイソタイピングキット（Roche Applied Science）を用いて調べた。
これらの結果を表１に示す。表１に示すように、上記４個のハイブリドーマクローンの上清は、ベニクダウミヒドラアクチヌラ幼生の粗抽出液に対して反応性を示し、タマウミヒドラプラヌラ幼生、ミズクラゲプラヌラ幼生、甲殻類プランクトン（アカフジツボキプリス幼生、コペポーダ）、及び二枚貝幼生（ムラサキイガイペディベリジャー幼生）の粗抽出液には反応性を示さなかった。
【表１】
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