(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の（１）〜（４）の工程を含むことを特徴とする全血検体の酵素法による成分測定方法。
（１）全血検体を、酸化剤および界面活性剤を含む溶液で希釈する工程であって、前記酸化剤が、希釈した検体中での終濃度が１.４ｍＭ以上２７０ｍＭ以下であるよう調整されている亜硝酸塩を含むものであり、前記界面活性剤が、以下の（ａ）〜（ｈ）からなる群のうちいずれか１つ以上を含むものであり、かつ、前記検体を前記溶液で希釈してから１０秒後の５０５ｎｍの吸光度が一定である、工程。
（ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物
Ｒ−Ｏ−Ｘ  ・・・（Ｉ）
（Ｒは、炭素数が９〜１８のアルキル基または置換アルキル基であり、Ｘは、ポリオキシエチレン残基である。）
（ｂ）コール酸またはその誘導体
（ｃ）サポニン
（ｄ）ジギトニン
（ｅ) シュークロースモノラウレート
（ｆ) ｎ-ドデシル-β-Ｄ-マルトシド
（ｇ）オクチルチオグルコシド
（２）前記（１）で希釈した検体の目的成分を測定する工程。
（３）前記（１）で希釈した検体のヘモグロビン（Ｈｂ）量を定量する工程。
（４）前記（２）における測定結果を、前記（３）における定量値に基づいてヘマトクリット（Ｈｔ）補正を行うことにより、血清または血漿を測定した際の測定結果に換算する工程。
【請求項２】
前記酸化剤が亜硝酸ナトリウムまたは亜硝酸カリウムを含むものである、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記（ａ）で示される界面活性剤が、エマルゲン（登録商標）１３０Ｋ、エマルゲン（登録商標）１５０、エマルゲン（登録商標）１４７およびエマルゲン（登録商標）１２０からなる群のうちいずれか１つ以上であり、かつ、前記（ｂ）で示される界面活性剤が、デオキシコール酸である、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
以下の（１）〜（４）の工程を含むことを特徴とする全血検体の酵素法による成分測定方法。
（１）全血検体を、酸化剤および界面活性剤を含む溶液で希釈する工程であって、前記酸化剤が、希釈した検体中での終濃度が１.４ｍＭ以上２７０ｍＭ以下であるよう調整されている亜硝酸塩を含むものであり、かつ、前記界面活性剤が、以下の（ａ）〜（ｈ）からなる群のうちいずれか１つ以上を含むものである、工程。
（ａ）エマルゲン（登録商標）１３０Ｋ、エマルゲン（登録商標）１５０、エマルゲン（登録商標）１４７およびエマルゲン（登録商標）１２０からなる群のうちいずれか１つ以上
（ｂ）デオキシコール酸
（ｃ）サポニン
（ｄ）ジギトニン
（ｅ) シュークロースモノラウレート
（ｆ) ｎ-ドデシル-β-Ｄ-マルトシド
（ｇ）オクチルチオグルコシド
（２）前記（１）で希釈した検体の目的成分を測定する工程。
（３）前記（１）で希釈した検体のヘモグロビン（Ｈｂ）量を定量する工程。
（４）前記（２）における測定結果を、前記（３）における定量値に基づいてヘマトクリット（Ｈｔ）補正を行うことにより、血清または血漿を測定した際の測定結果に換算する工程。
【請求項５】
全血検体の酵素法による成分測定方法に用いるための希釈用溶液であって、酸化剤および界面活性剤を含み、前記酸化剤が、希釈した検体中での終濃度が１.４ｍＭ以上２７０ｍＭ以下であるよう調整されている亜硝酸塩を含むものであり、前記界面活性剤が、以下の（ａ）〜（ｈ）からなる群のうちいずれか１つ以上を含むものであり、かつ、前記検体を前記溶液で希釈してから１０秒後の５０５ｎｍの吸光度が一定である、溶液。
（ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物
Ｒ−Ｏ−Ｘ  ・・・（Ｉ）
（Ｒは、炭素数が９〜１８のアルキル基または置換アルキル基であり、Ｘは、ポリオキシエチレン残基である。）
（ｂ）コール酸またはその誘導体
（ｃ）サポニン
（ｄ）ジギトニン
（ｅ) シュークロースモノラウレート
（ｆ) ｎ-ドデシル-β-Ｄ-マルトシド
（ｇ）オクチルチオグルコシド
【請求項６】
前記酸化剤が亜硝酸ナトリウムまたは亜硝酸カリウムを含むものである、請求項５に記載の溶液。
【請求項７】
前記（ａ）で示される界面活性剤が、エマルゲン（登録商標）１３０Ｋ、エマルゲン（登録商標）１５０、エマルゲン（登録商標）１４７およびエマルゲン（登録商標）１２０からなる群のうちいずれか１つ以上であり、かつ、前記（ｂ）で示される界面活性剤が、デオキシコール酸である、請求項５または６に記載の溶液。
【請求項８】
全血検体の酵素法による成分測定方法に用いるための希釈用溶液であって、酸化剤および界面活性剤を含み、前記酸化剤が、希釈した検体中での終濃度が１.４ｍＭ以上２７０ｍＭ以下であるよう調整されている亜硝酸塩を含むものであり、かつ、前記界面活性剤が、以下の（ａ）〜（ｈ）からなる群のうちいずれか１つ以上を含むものである、溶液。
（ａ）エマルゲン（登録商標）１３０Ｋ、エマルゲン（登録商標）１５０、エマルゲン（登録商標）１４７およびエマルゲン（登録商標）１２０からなる群のうちいずれか１つ以上
（ｂ）デオキシコール酸
（ｃ）サポニン
（ｄ）ジギトニン
（ｅ) シュークロースモノラウレート
（ｆ) ｎ-ドデシル-β-Ｄ-マルトシド
（ｇ）オクチルチオグルコシド
【請求項９】
請求項５〜８のいずれかに記載の希釈用溶液を含む、酵素法で全血検体の成分を測定するための試薬。
【請求項１０】
請求項５〜８のいずれかに記載の希釈用溶液を含む、酵素法で全血検体の成分を測定するためのキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血液中の特定成分の測定において、全血状態から迅速に測定結果を得る方法に関する。さらに得られた測定結果から、血清又は血漿を仮想的に測定した場合の測定値へ変換する方法に関する。  
【背景技術】
【０００２】
医療分野、医学研究分野などにおいて、血液中の特定成分を測定することが必要とされ、そのために種々の測定方法が開発され、実施されている。  
【０００３】
一般的な測定方法としては、患者や被測定者から血液を採取し、得られた血液（以下、全血という）を遠心分離し、上澄み（血清又は血漿）を得、これを適当な緩衝液により希釈し、この希釈物と血清又は血漿中の特定成分と反応する試薬とを接触させることにより生じる物理化学的変化を測定する方法が挙げられる。
【０００４】
別の観点では、最近、ポイント・オブ・ケアテスティング（ＰＯＣＴ）の観点から「患者の身辺」または病院での「ベッドサイド」で、より迅速な検査が行われることが望まれているが、血清又は血漿を検体とする場合は、採血管の遠心分離作業を必要とし、一連の測定作業が煩雑になるだけでなく測定までに要する時間が長くなる問題点がある。
【０００５】
しかし、全血を検体とする場合には、多量に含まれる血球成分が測定値へ干渉する問題点がある。これを解決するため、予め血球成分の測定への影響を考慮するために、血液中に占める血球の容積の割合を示す数値であるヘマトクリット値を利用して、補正を行う方法が考案されている。    
【０００６】
例えば、特許文献１には、発色組成物を含有してなる多層分析色素子により、５００〜５９０ｎｍの範囲内で定められた一の波長の光を用いて赤血球内の色素の赤色濃度を測定する一方で、５００ｎｍよりも短波長側領域または５９０ｎｍよりも長波長側領域の範囲内で定められた一の波長の光を用いて血液検体の発色濃度を測定する方法が開示されており、このような構成の定量方法によれば、発色濃度から得られるグルコース値を、赤色濃度から得られるヘマトクリット値を用いて補正しつつ、グルコース濃度を定量することができるとされている。
また、特許文献２には、ヘモグロビンに特異的な吸収波長の光で測定された前記血液検体の光学特性と、前記呈色反応で生成した色素に特異的な、ヘモグロビンに特異的な吸収波長とは異なる吸収波長の光で測定された前記血液検体の光学特性とに基づいて、前記血液検体のヘマトクリット値を算出し、ヘマトクリット補正を行う方法が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特開２０００−２６２２９８
【特許文献２】特開２００９−２３６４８７
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
特許文献１および特許文献２に記載の方法は、赤血球の色素の赤色濃度またはヘモグロビンに特異的な吸収波長の光学特性値を用いて、予め用意された検量線に基づいて、ヘマトクリット値を算出する方法である。したがって、この方法では、赤血球またはヘモグロビンの酸化・還元状態の影響を受けるため、ヘマトクリット値を正確に測定するのは困難である。
すなわち、検量線は一義的に定められた条件（酸化・還元状態）において決定されたものであるのに対して、実際の赤血球の酸化・還元状態は測定に供される血液資料毎に異なるものである。そのため、赤血球の色素の赤色濃度またはヘモグロビンに特異的な吸収波長の光学特性値を用いてヘマトクリットを算出する方法では、ヘマトクリット値を正確に測定できず、ヘマトクリット値に起因する測定誤差を適切に補正するのは困難である。
【０００９】
本発明は上記の先行技術における問題点を解決することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、酸化剤および界面活性剤を含む溶液で全血検体を処理することにより
ヘモグロビンの酸化還元状態を一定にできることを見出し、本方法を用いることでヘモグロビン濃度からのヘマトクリットの補正の精度が向上し、その結果、全血検体の成分測定精度が向上することを見出し本発明に到達した。
さらに本発明によれば迅速にヘモグロビンの酸化還元状態を一定にできることより測定時間が大幅に短縮されるため、全血検体の成分測定を迅速に行うことが可能となる。
【００１１】
すなわち、本発明は以下のような構成からなる。
［項１］
以下の工程を含むことを特徴とする全血検体の成分測定方法。
（１）全血検体を、酸化剤および界面活性剤を含む溶液と希釈する工程。
（２）希釈した検体の目的成分を測定する工程。
（３）希釈した検体のヘモグロビン（Ｈｂ）量を定量する工程。
（４）（２）における測定結果を、（３）における定量値に基づいてヘマトクリット（Ｈｔ）補正を行うことにより、血清または血漿を測定した際の測定結果に換算する工程。
［項２］
酸化剤が亜硝酸塩を含むものである項１に記載の方法。
［項３］
希釈した検体中の亜硝酸塩の終濃度が１.４ｍＭ以上である項１〜２のいずれかに記載の方法。
［項４］
希釈した検体中の亜硝酸塩の終濃度が１.４ｍＭ以上２７０ｍＭ以下である項１〜２のいずれかに記載の方法。
［項５］
酸化剤が亜硝酸ナトリウムまたは亜硝酸カリウムを含むものであることを特徴とする項１〜４に記載の方法。
［項６］
界面活性剤が以下の（ａ）〜（ｈ）のうちいずれかである項１に記載の方法。
（ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物
Ｒ−Ｏ−Ｘ  ・・・（Ｉ）
（Ｒは、炭素数が９〜１８のアルキル基または置換アルキル基であり、Ｘは、ポリオキシエチレン残基である。）
（ｂ）コール酸またはその誘導体
（ｃ）サポニン
（ｄ）ジギトニン
(ｅ) シュークロースモノラウレート
(ｆ) ｎ-ドデシル-β-Ｄ-マルトシド
（ｇ）オクチルチオグルコシド
［項７］
以下の工程を含む全血検体の成分測定方法に用いるための希釈用溶液であって、酸化剤および界面活性剤を含むことを特徴とする希釈用溶液。
（１）全血検体を、希釈用溶液と希釈する工程。
（２）希釈した検体の目的成分を測定する工程。
（３）希釈した検体のヘモグロビン（Ｈｂ）量を定量する工程。
（４）（２）における測定結果を、（３）における定量値に基づいてヘマトクリット（Ｈｔ）補正を行うことにより、血清または血漿を測定した際の測定結果に換算する工程。
［項８］
項７の希釈用溶液を含む、全血検体の成分を測定するためのプロダクト。
【発明の効果】
【００１２】
本発明により、ヘモグロビンの酸化還元状態を迅速に一定状態にでき、その結果、ヘモグロビン濃度からのヘマトクリット補正の精度と速度が向上するため全血検体からの測定精度と速度が向上する。
また本発明で用いる酸化剤は特定成分の測定に用いる試薬への影響が少ない、（同一検体から複数の項目測定が可能）などの効果を有する。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】全血検体を、本発明の方法で用いる酸化剤および界面活性剤を含む溶液で希釈した際の、５０５ｎｍの吸光度の時間経過を示す。
【図２】ＨｂＡ１ｃ測定における本発明の方法と対照法との相関を示す。
【図３】ＧＬＵ測定における本発明の方法と対照法との相関を示す。
【図４】ＣＲＥ測定における本発明の方法と対照法との相関を示す。
【図５】ＢＵＮ測定における本発明の方法と対照法との相関を示す。
【図６】Ｔ−ＣＨＯ測定における本発明の方法と対照法との相関を示す。
【図７】ＨＤＬ−Ｃ測定における本発明の方法と対照法との相関を示す。
【図８】ＬＤＬ−Ｃ測定における本発明の方法と対照法との相関を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
本発明の実施の形態について詳細に説明すれば以下のとおりであるが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００１５】
本発明の測定方法の特徴的な構成
本発明の全血検体の成分測定方法は、以下の工程を含むことを特徴とする。
（１）全血検体を、酸化剤および界面活性剤を含む溶液と希釈する工程。
（２）希釈した検体の目的成分を測定する工程。
（３）希釈した検体のヘモグロビン（Ｈｂ）量を定量する工程。
（４）（２）における測定結果を、（３）における定量値に基づいてヘマトクリット（Ｈｔ）補正を行うことにより、血清または血漿を測定した際の測定結果に換算する工程。
【００１６】
用語の説明
「全血検体」
本発明の成分測定方法が対象とする検体は特に断らない限り全血であるが、本明細書において「全血検体」とは、全血に血球成分を全部または一部維持したまま適宜希釈等の処理を行ったものも含まれる。
【００１７】
「全血検体を希釈した検体」
本明細書において、「希釈した検体」（以下、「希釈した検体」を「希釈液」とも記す。）とは上述の定義による「全血検体」を他の溶液で希釈することを意味する。希釈に用いる溶液（以下、希釈に用いる溶液を「希釈用溶液」とも記す。）の組成は、「酸化剤および界面活性剤を含む溶液」を用いること以外は特に限定されない。また、希釈の方法も特に限定されない。
希釈のタイミングは、「ヘモグロビン量の定量」が完了するよりは前でないといけないが、「ヘモグロビン量の定量」と少なくとも一部の時間を共有して同時進行しても良い。希釈のタイミングは、「目的成分の測定」に対しては前でも後でも同時進行でも良く特に制限されない。
【００１８】
「目的成分の測定」
本発明の成分測定方法が対象とする目的成分およびその測定方法は、特に限定されない。
目的成分としては、総タンパク質（ＴＰ）、アルブミン（Ａｌｂ）、コリンエステラーゼ、乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ）、ＡＳＴ（ＧＯＴ）、ＡＬＴ（ＧＰＴ）、γ−ＧＴＰ、アルカリホスファターゼ、総ビリルビン（Ｔ．Ｂ）、直接ビリルビン（Ｄ．Ｂ）  、アミラーゼ（ＡＭＹ）、クレアチニン（ＣＲＥ）、クレアチンキナーゼ（ＣＫ）、総コレステロール（Ｔ−ＣＨＯ）、中性脂肪（トリグリセリド）、ＨＤＬコレステロール（ＨＤＬ−Ｃ）、ＬＤＬコレステロール（ＬＤＬ−Ｃ）、尿素窒素（ＢＵＮ）、ナトリウム（Ｎａ）、カリウム（Ｋ）、クロール（Ｃｌ）、カルシウム（ＣＡ）、無機リン（ＩＰ）、鉄（血清鉄：ＦＥ）、不飽和鉄結合能（ＵＩＢＣ）、グルコース（ＧＬＵ）、ＨｂＡ１ｃ、グリコアルブミン、インスリン、Ｃ反応性蛋白（ＣＲＰ）、ＣＥＡ、ＡＦＰ、ＰＳＡ、ＢＮＰ、ＮＴ−ｐｒｏＢＮＰなどが挙げられる。
目的成分の測定方法としては、検体と目的成分に反応する試薬とを接触させることにより生じる物理化学的変化を測定する方法など、種々の公知の測定原理を用いた方法が挙げられる。物理化学的変化としては、色素の化学変化や凝集による光学的・電気化学的変化などが例示され、その手段として、酵素などを介してもよい。
波長は、適宜設定すればよく３００ｎｍから８５０ｎｍの間であれば、特に限定されない。ヘモグロビン量の定量と同じ波長を用いることもできる。
【００１９】
「ヘモグロビン量の定量」
ヘモグロビン量定量方法は限定されるものではなく、種々の公知の方法を用いてよい。例えば赤血球の色素の赤色濃度を測定するのであれば、被検液を４５０ｎｍから７００ｎｍの範囲内のいずれかの波長で吸光度を測定する方法が例示される。測定波長の下限は４５０ｎｍ、さらには４８０ｎｍが好ましく、上限は７００ｎｍ、さらには６６０ｎｍが好ましい。ヘモグロビンをメト化して測定する場合、４８０ｎｍから５５０ｎｍの波長または５５０ｎｍから６６０ｎｍの範囲内のいずれかの波長で吸光度を測定することが例示される。特に５００ｎｍ付近（４９０ｎｍから５１０ｎｍ）または６３０ｎｍ付近（６２０ｎｍから６４０ｎｍ）が好ましい。
【００２０】
「ヘマトクリット補正」
希釈した検体の目的成分の測定結果を、ヘモグロビン定量値に基づいてヘマトクリット補正を行うことにより、血清または血漿を測定した際の測定結果に換算する方法は、特に限定されるものではなく、種々の公知の方法を用いてよい。例えば、上述の特許文献１または特許文献２に記載の方法を用いることができる。
【００２１】
「酸化剤」
本発明の成分測定方法で用いる酸化剤としては、特に限定されないが、フェリシアン化物、亜硝酸塩、硝酸塩、アジ化物、過マンガン酸カリウムなどが使用できる。
この中で、亜硝酸塩を含むものが特に好ましい。亜硝酸塩としては特に限定されないが、亜硝酸ナトリウムまたは亜硝酸カリウムを含むものが好ましい。亜硝酸塩が好ましいのは、生体成分の検出に一般的に用いられるトリンダー色素、カップラー、ロイコ色素への影響や成分特異的な酵素に対して影響が小さいためである。
亜硝酸塩に、さらに硝酸塩を含有させても良い。硝酸塩としては特に限定されないが、硝酸アンモニウムなどが例示できる。
好ましい亜硝酸塩と硝酸塩の組合せとしては、亜硝酸ナトリウムと硝酸アンモニウム
亜硝酸カリウムと硝酸アンモニウムの組み合わせが例示できる。
【００２２】
全血検体を酸化剤および界面活性剤を含む溶液と希釈する工程で得られた、希釈液中の亜硝酸塩の濃度は、下限が１．４ｍＭ、１．４５ｍＭ、４ｍＭ、７ｍＭ、１５ｍＭ、３６ｍＭであることが好ましい。上限は２７０ｍＭ、２６８．２５ｍＭ、２００ｍＭ、１５０ｍＭ、１００ｍＭ、７５ｍＭであることが好ましい。
【００２３】
なお、本明細書において、希釈液中の亜硝酸塩の終濃度は、原則として、希釈用溶液の製造時における亜硝酸塩の添加濃度に希釈倍率を乗じたもので示す。希釈用溶液の製造時の亜硝酸塩の添加濃度がわからない場合は、該溶液の亜硝酸濃度を公知の方法で実測した値に希釈倍率を乗じることにより求めることができる。それも出来ない場合は、希釈液の亜硝酸濃度を公知の方法で実測する。
【００２４】
希釈倍率は限定されないが、２倍以上が好ましい。
更に好ましくは４倍以上、８０倍以下である。検体に対する希釈倍率を４倍以上とすることで検体の均一化がより迅速に進む。一方で希釈上限倍率としては、測定項目ごとの測定限界感度を下回らない範囲で希釈することが好ましく、例えば８０倍、好ましくは５０倍以下に希釈する。
【００２５】
「界面活性剤」
本発明の成分測定方法で用いる界面活性剤としては、特に限定されないが、以下の（ａ）〜（ｇ）のうちいずれかが例示できる。
（ａ）下記式（Ｉ）で示される化合物
Ｒ−Ｏ−Ｘ  ・・・（Ｉ）
（Ｒは、炭素数が９〜１８のアルキル基または置換アルキル基であり、Ｘは、ポリオキシエチレン残基である。）
このような化合物としては、エマルゲン１３０Ｋ、エマルゲン１５０、エマルゲン１４７、エマルゲン１２０が例示できる。
（ｂ）コール酸またはその誘導体
このような化合物としては特に限定されないが、コール酸（ＣＡＳ番号：８１−２５−４）、デオキシコール酸（ＣＡＳ番号：８３−４４−３）、グリココール酸（ＣＡＳ番号：４７５−３１−０）、タウロコール酸（ＣＡＳ番号：８１−２４−３）などが例示できる。
（ｃ）サポニン
このような化合物としては特に限定されないが、例えばＣＡＳ番号：８０４７−１５−２が付与されている物質が市販されている。
（ｄ）ジギトニン
このような化合物としては特に限定されないが、例えばＣＡＳ番号：１１０２４−２４−１が付与されている物質が市販されている。
(ｅ) シュークロースモノラウレート
このような化合物としては特に限定されないが、例えばＣＡＳ番号：２５３３９−９９−５が付与されている物質が市販されている。
(ｆ) ｎ-ドデシル-β-Ｄ-マルトシド
このような化合物としては特に限定されないが、例えばＣＡＳ番号：６９２２７−９３−６が付与されている物質が市販されている。
（ｇ）オクチルチオグルコシド
このような化合物としては特に限定されないが、例えばＣＡＳ番号：８５６１８−２１−９が付与されている物質が市販されている。
なお、本明細書において、「エマルゲン」、「Ｔｗｅｅｎ」、「トリトン」「Ｔｒｉｔｏｎ」および「エマレックス」は、それぞれ登録商標である。
【００２６】
酸化剤と界面活性剤の組合せは、特に限定されない。例えば、以下のような組合せが例示できる。具体的には実施例に記載の組合せが例示できる。
・酸化剤：亜硝酸ナトリウムまたは亜硝酸カリウム（さらに硝酸アンモニウムが添加されていても良い。）
・界面活性剤：デオキシコール酸、Ｓｕｃｒｏｓｅ  ｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｓｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、エマルゲン１３０Ｋ、サポニン、ジギトニン、オクチルチオグルコシド、エマルゲン１５０、エマルゲン１４７およびエマルゲン１２０からなる群からなるいずれか１つ以上
【００２７】
あるいは以下の組合せでもよい。
・亜硝酸ナトリウム、デオキシコール酸およびシュークロースモノラウレート
・亜硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、デオキシコール酸およびシュークロースモノラウレート
・亜硝酸カリウム、硝酸アンモニウム、デオキシコール酸およびエマルゲン１３０Ｋ
・亜硝酸カリウム、硝酸アンモニウム、デオキシコール酸およびオクチルチオグルコシド
・亜硝酸ナトリウム、デオキシコール酸およびオクチルチオグルコシド
・亜硝酸ナトリウム、シュークロースモノラウレートおよびオクチルチオグルコシド
・亜硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、シュークロースモノラウレートおよびオクチルチオグルコシド
・亜硝酸ナトリウム、デオキシコール酸およびサポニン
・亜硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、デオキシコール酸およびサポニン
・亜硝酸ナトリウム、シュークロースモノラウレートおよびサポニン
・亜硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、シュークロースモノラウレートおよびサポニン
中でも「亜硝酸ナトリウム、デオキシコール酸およびシュークロースモノラウレート
」または「亜硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、デオキシコール酸およびシュークロースモノラウレート」の組合せが、より迅速にＨｂの酸化還元状態を一定にできるという理由により好ましい。
【００２８】
後述の実施例で示したように、この酸化剤と界面活性剤の組合せにより、ヘモグロビン吸収波長のタイムコースが短時間で安定するようになった。
この点について発明者らが、その機序をさらに検討したところ、ヘモグロビンの酸化還元状態が迅速に一定の状態に到達したためタイムコースが安定化したと推定された。
その結果として、全血検体の成分測定に要する時間が大幅に短縮され、迅速な測定方法を確立するに至った。
【００２９】
すなわち、本願発明の別の局面は、以下の工程を含み、測定時間が１０分、好ましくは５分、さらに好ましくは３分、さらに好ましくは２分、さらに好ましくは６０秒以下である全血検体の成分測定方法である。
（１）全血検体を、酸化剤および界面活性剤を含む溶液と希釈する工程。
（２）希釈した検体の目的成分を測定する工程。
（３）希釈した検体のヘモグロビン（Ｈｂ）量を定量する工程。
（４）（２）における測定結果を、（３）における定量値に基づいてヘマトクリット（Ｈｔ）補正を行うことにより、血清または血漿を測定した際の測定結果に換算する工程。
【００３０】
上記測定方法において、目的成分を測定する工程は特に限定されず、種々の公知の方法が利用できる。
例えば、汎用の自動分析機に適用できる２試薬系の方法が例示できる。この方法では、検体に第一試薬（Ｒ１）を加えて予め定められた時間定められた温度でインキュベート（第一反応）した後、さらに第二試薬（Ｒ２）を加えて予め定められた時間定められた温度でインキュベート（第二反応）し、この間に起こる物理化学的変化を反映する吸光度変化を、測定する。
第一反応の時間と第二反応の時間は分析機の性能に応じて適宜設定することができる。たとえば、５分−５分、２．５分−２．５分、１．５分−１．５分、１分−１分、３０秒−３０秒などとすればよい。第一反応と第二反応の時間は同じにする必要はなく、どちらかを他方より長くしてもよい。
【００３１】
上記測定方法において、Ｈｂ量を定量する工程は、目的成分の測定と別に行っても良いし、目的成分を測定する工程と同時に行ってもよい。目的成分を測定する工程と同時に行う場合、例えば、目的成分を測定する工程の第一反応の反応液において、色素の赤色濃度を測定することができる。こうすれば分析機の測定チャネルを増やさなくて済む利点がある。
測定の目的成分が複数に亘る場合は、任意の１つの目的成分を測定する工程においてＨｂ量を定量し、その結果を他の成分の測定に反映させてもよい。
【００３２】
後述の実施例でも示すように、全血検体を、本発明の方法で用いる酸化剤および界面活性剤を含む溶液で希釈することによって、迅速にＨｂの吸光度が一定になる。
このような現象がおこる理由は、本発明の界面活性剤を用いることでＨｂの溶血および試料の均一化が迅速に行われ、同時に、本発明の酸化剤によってＨｂがメト化されるため、迅速にヘモグロビンの酸化還元状態を一定にすることができるからであると考察される。
これにより、好ましくは希釈後６０秒、５０秒、４０秒、３０秒、２０秒、１０秒以下でＨｂの吸光度が一定になり、迅速なＨｂ定量が可能となることから、トータルでの測定時間が、好ましくは１０分、５分、３分、２分、６０秒以下と大幅に短縮されるため、迅速な測定が可能となる。
【００３３】
本発明の全血検体の成分測定方法について、具体的な事例を示して更に説明する。本発明は以下の事例により限定されるものではない。
［１］酸化剤および界面活性剤入りの前処理液で検体を希釈し５００ｎｍまたは６３０ｎｍを測定（Ｈｂ定量）する。得られた吸光度を（Ａ）ＡＢＳとする。
なお、５００ｎｍは４９０ｎｍから５１０ｎｍの波長であれば良く、６３０ｎｍは６２０ｎｍから６４０ｎｍの波長であれば良い。
［２］［１］のサンプルと測定項目の試薬を混合し、反応による発色が生じる前に測定項目の測定波長を測定（例えば、ＧＬＵまたはＢＵＮを、ＮＡＤを利用して測定する場合は３４０ｎｍ。例えば、ＣＲＥを、４−アミノアンチピリンとトリンダー試薬との縮合により生成するキノン色素を利用して測定する場合は５４０ｎｍ）する。得られた吸光度を（Ｂ）ＡＢＳとする。
［３］反応による発色が生じた後に測定項目を測定する。得られた吸光度を（Ｃ）ＡＢＳとする。
［４］（Ａ）よりＨｔ値（％）を求める。得られたＨｔ値を（Ｄ）％とする。
［５］（Ｃ）−（Ｂ）＝（Ｅ）より全血中の測定項目濃度を算出する。
［６］（Ｅ）×１００/１００−（Ｄ）の式より（Ｅ）を（Ｄ）で補正し、全血成分中の測定項目の値を血漿または血清中の値に変換して測定項目の値（Ｆ）を求める。
【００３４】
全血検体の成分測定方法に用いるための希釈用溶液
本発明はまた、以下の工程を含む全血検体の成分測定方法に用いるための希釈用溶液であって、酸化剤および界面活性剤を含むことを特徴とする希釈用溶液である。
（１）全血検体を、希釈用溶液と希釈する工程。
（２）希釈した検体の目的成分を測定する工程。
（３）希釈した検体のヘモグロビン（Ｈｂ）量を定量する工程。
（４）（２）における測定結果を、（３）における定量値に基づいてヘマトクリット（Ｈｔ）補正を行うことにより、血清または血漿を測定した際の測定結果に換算する工程。
【００３５】
本発明の希釈用溶液に用いる酸化剤、界面活性剤についての詳細は、上記の、本発明の全血検体の成分測定方法に関する説明によりサポートされる。
本発明の希釈用溶液には、上記のほか、必要な組成があれば適宜添加してもよい。
【００３６】
全血検体の成分を測定するためのプロダクト
本発明はまた、上記の希釈用溶液を含む、全血検体の成分を測定するためのプロダクトである。これらのプロダクトには、全血検体を測定するための試薬、キット、センサーなど種々の形態が例示できる。
なお、本明細書において「プロダクト」とは、使用者が当該用途を実行する目的で用いる１セットのうち一部または全部を構成する製品であって、本発明の希釈用溶液を含むものを意味する。
【００３７】
以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明は以下の実施例により限定されるものではない。
【実施例１】
【００３８】
［実施例１］溶血時間とＨｂ定量
＜希釈用溶液＞
実施例１
下記を含む水溶液を、下記の操作方法を実行したときに希釈液中で表記の濃度になるように作製した。
亜硝酸ナトリウム  １４．５ｍＭ
デオキシコール酸  ０．１％
シュークロースモノラウレート  ０．０５％
比較例１
下記を含む水溶液を、下記の操作方法を実行したときに希釈液中で表記の濃度になるように作製した。
アニリン    ０．１％    （分子量９３．１３    ０．１％＝１０．７ｍＭ）
Ｔｗｅｅｎ２０  ０．１％
＜操作方法＞
全血検体を希釈用溶液で２０倍に希釈し、希釈後、所定の経過時間（表１および図１では「処理時間」）における５０５ｎｍ（主波長）の波長を測定し吸光度を求めた。
【００３９】
【表１】
0005906604.tif 000002
【００４０】
表１および図１から、本発明（実施例）および比較例の添加剤について溶血時間とＨｂ定量性がわかる。
本発明の界面活性剤を用いることでＨｂの溶血および試料の均一化を迅速に行い、同時に酸化剤である亜硝酸塩によってＨｂがメト化されＨｂの酸化還元状態が一定になる。
本発明の実施例によれば希釈後１０秒で迅速なＨｂ定量が可能となることが確認された。これに対し比較例では、３００秒（５分）以上経過しても酸化還元状態が一定にならないことが確認された。
【実施例２】
【００４１】
［実施例２］添加剤とＨｂ定量および測定試薬のブランク、感度に与える影響
＜希釈用溶液＞
表２記載の各添加剤を含む水溶液を、下記の操作方法を実行したときに希釈液中で表記の濃度になるように作製した。
＜操作方法＞
１．Ｈｂ定量
全血検体を希釈用溶液で２０倍に希釈し、希釈１０秒後の５０５ｎｍ（主波長）の波長を測定し吸光度を求めた。なお、表２中  ＮＯ．２７、２８のフェロシアン化カリウムを用いた比較例は６３０ｎｍ（主波長）を測定し、５０５ｎｍでの測定値に換算した値を示した。
２．ＨｂＡ１ｃ測定
下記のＨｂＡ１ｃ測定試薬を用いた。
（１）ブランク測定
３７℃にインキュベートされたＲ１；１２０μＬに各希釈用溶液１０μＬを添加し、３７℃で反応を開始し、５分後に６６０ｎｍの主波長と８００ｎｍの副波長を測定し、主波長−副波長より吸光度を求めた。
（２）感度測定
日立７１８０形自動分析機を用いた。
（ＨｂＡ１ｃ濃度の測定）
３７℃にインキュベートされたＲ１；１２０μＬに検体１および検体２を各々の希釈用溶液で１／２０倍希釈した希釈液から１０μＬを添加し、３７℃で反応を開始した。
Ｒ１を添加してから５分後にＲ２；４０μＬを添加した。Ｒ２添加前及びＲ２添加５分後の６６０ｎｍの主波長と８００ｎｍの副波長との吸光度差を測定した。
検体２の吸光度差から検体１の吸光度差を減じて、感度を算出した。
検体１；ＨｂＡ１ｃ低値検体
Ｈｂ  １０１．０μｍｏｌ／Ｌ、ＨｂＡ１ｃ  ３．５４μｍｏｌ／Ｌ、ＨｂＡ１ｃ％が５．０％
検体２；ＨｂＡ１ｃ高値検体
Ｈｂ  １５３．８μｍｏｌ／Ｌ、ＨｂＡ１ｃ  １３．７０μｍｏｌ／Ｌ、ＨｂＡ１ｃ％が１０．２％
＜ＨｂＡ１ｃ測定試薬＞
Ｒ１
ＰＩＰＥＳ  ５０ｍｍｏｌ／Ｌ（ｐＨ７．０）
ＦＡＯＤ（フルクトシルアミノ酸オキシダーゼ）（ＦＰＯ−３０１（東洋紡績）  ２．０ＫＵ／Ｌ
ＤＡ−６７（３，７−ビス（ジメチルアミノ）−１０Ｈ−フェノチアジン、ＣＡＳ番号１１５８７１−１８−６）（和光純薬）      ５０μｍｏｌ／Ｌ
カタラーゼ  １００ＫＵ／Ｌ（東洋紡績）
ポリオキシエチレンラウリルエーテル（花王）    １．０％  （重量％）
Ｒ２
ＰＩＰＥＳ  ５０ｍｍｏｌ／Ｌ（ｐＨ７．０）
ＣａＣｌ２  １０ｍｍｏｌ／Ｌ
フェロシアン化カリウム  ０．０１ｇ／Ｌ
ペルオキシダーゼ（ＰＥＯ−３０２  東洋紡績）２０ＫＵ／Ｌ
サーモリシン（天野エンザイム）  ５０００ＫＵ／Ｌ
【００４２】
【表２】
0005906604.tif 000003
【００４３】
表２より本発明の添加剤はＨｂ定量を１０秒で完了でき、かつ測定試薬に影響を与えないことがわかった。
表２の実験番号１の実施例において、実施例１と同じように、１０秒経過以降は５０５ｎｍの吸光度は約１９０ｍＡＢＳで一定になっていた。したがって、１０秒経過後の吸光度が１９０ｍＡＢＳ前後に達していれば、Ｈｂの酸化還元状態が一定になっていると言える。
表２の各実験番号の実施例においては、１０秒後の吸光度が、いずれも１９０ｍＡＢＳ前後の値を示しており、ＨｂＡ１ｃ測定も、試薬ブランク、感度ともに問題ないレベルであった。
一方、実験番号８〜１１および２０の比較例においては、ＨｂＡ１ｃ測定は実験番号１０の感度を除いて良好であったものの、１９０ｍＡＢＳを大きく下回り、Ｈｂのメト化が十分でない状態にあることが示唆された。
また、表２の実験番号２７および２８の比較例においては、Ｈｂのメト化は十分であったものの、ＨｂＡ１ｃ測定時の試薬ブランクが異常に大きくなり、感度も各実験番号の実施例と比較して大幅に低下した。酸化剤のフェロシアン化カリウムが、ＨｂＡ１ｃ測定に影響を与えたと考えられる。
【実施例３】
【００４４】
［実施例３］ＨｂＡ１ｃ、ＧＬＵ同時測定
本特許の方法を用いて全血試料からＨｂＡ１ｃおよびＧＬＵの同時測定を行い、それぞれ対照法との相関性を比較した。
＜希釈用溶液＞
下記を含む水溶液を、下記の操作方法を実行したときに希釈液中で表記の濃度になるように作製した。
亜硝酸ナトリウム              １４．５ｍＭ
デオキシコール酸              ０．０５％
シュークロースモノラウレート  ０．０５％
（１）ＨｂＡ１ｃ、ＧＬＵ同時測定
（ａ）ＨｂＡ１ｃ測定
＜ＨｂＡ１ｃ測定試薬＞
Ｒ１、Ｒ２とも実施例２と同じ。
＜操作方法＞
（Ｈｂ濃度の測定）
３７℃にインキュベートされたＲ１；１２０μＬに下記の方法で希釈した検体を１０μＬ添加し、３７℃で反応を開始し、１分後に５０５ｎｍの吸光度を測定した。
結果を、キャリブレーター１（Ｈｂ  １０１．０μｍｏｌ／Ｌ、ＨｂＡ１ｃ  ３．５４μｍｏｌ／Ｌ、ＨｂＡ１ｃ％が５．０％）とキャリブレーター２（Ｈｂ  １５３．８μｍｏｌ／Ｌ、ＨｂＡ１ｃ  １３．７０μｍｏｌ／Ｌ、ＨｂＡ１ｃ％が１０．２％）とを用いて作成した検量線と対比してＨｂ濃度を求めた。
（ＨｂＡ１ｃ濃度の測定）
また、Ｒ１添加、１分後にＲ２；４０μＬを添加した。Ｒ２添加前及び添加１分後の６６０ｎｍの吸光度を測定した。結果を、上記と同じキャリブレーター１とキャリブレーター２とを用いて作成した検量線と対比してＨｂＡ１ｃ濃度を求めた。
（ＨｂＡ１ｃ  ％  の測定）
上記で得られた各検体のＨｂ濃度（μｍｏｌ／Ｌ）とＨｂＡ１ｃ濃度（μｍｏｌ／Ｌ）から、下記式によりＨｂＡ１ｃ（％）を算出した。
ＨｂＡ１ｃ（％）＝
｛９６．３×ＨｂＡ１ｃ濃度（μｍｏｌ／Ｌ）／Ｈｂ濃度（μｍｏｌ／Ｌ）｝＋１．６  
（ｂ）ＧＬＵ（グルコース）測定
＜ＧＬＵ測定試薬＞
Ｒ１
ＭＯＰＳＰ  ５０ｍｍｏｌ／Ｌ（ｐＨ７．０）（同仁化学）
ヘキソキナーゼ（ＨＸＫ−３１１  東洋紡績）  ４．０ＫＵ／Ｌ
β−ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸）（オリエンタル酵母）  １．０％（重量％）
ポリオキシエチレンラウリルエーテル（花王）    ０．１％  （重量％）
塩化マグネシウム六水和物  （ナカライ）  ０．２７％（重量％）
Ｒ２
ＴＡＰＳ  １００ｍｍｏｌ／Ｌ（ｐＨ８．５）（同仁化学）
ポリオキシエチレンラウリルエーテル（花王）    ０．１％  （重量％）
ＡＴＰ（アデノシン−５’−三リン酸二ナトリウム  ロシュ）０．２％  （重量％）
グルコース−６−リン酸脱水素酵素（Ｇ６Ｄ−３２１  東洋紡績）  ６．０ＫＵ／Ｌ
＜操作方法＞
３７℃にインキュベートされたＲ１；１６０μＬに下記の方法で希釈した検体を１．８μＬ添加し、３７℃で反応を開始した。Ｒ１添加、１分後にＲ２；５３μＬを添加した。Ｒ２添加前及び添加１分後の主波長３４０ｎｍおよび副波長４５０ｎｍの吸光度を測定した。全血測定結果は、蒸留水（ブランク）とグルコース２００ｍｇ／ｄＬのキャリブレーターを用いて作成した検量線と対比しグルコース濃度を求めた。さらに上記Ｈｂ定量値より予め算出しておいたＨｂ量とＨｔ値の相関式よりＨｔ値を検体ごとに算出し、検体ごとにＨｔ補正を行い、全血測定結果を血漿測定結果に換算した。
＜検体希釈方法＞  
血糖採血管で採取した検体（ｎ＝６０）を上記の希釈用溶液で１／２０希釈しＨｂＡ１ｃおよびＧＬＵを測定した。  
＜対照法＞
ＨｂＡ１ｃ；  対照法はＨＰＬＣ法であるＨＡ−８１８０（アークレイ）を用いて、通法に従い測定を実施した。
ＧＬＵ  ；  対照法は酵素法であるアクアオート  カイノスＧＬＵ試薬（カイノス）を用いた。上記血糖採血管を３０００ｒｐｍで１０分間遠心し、得られた血漿を試料として用い、通法に従い測定を実施した。
【００４５】
図２および図３よりそれぞれＨｂＡ１ｃ、ＧＬＵの対照法と比較し良好な相関性であることを確認した。本結果より全血検体からＨｂＡ１ｃとＧＬＵを同時に、かつ約２分という短時間で測定可能であることがわかった。
また、本実施例の測定タイムコースの生データを参照して、Ｒ１添加１分後のデータの代わりにＲ１添加３０秒後の吸光度データ、Ｒ２添加１分後のデータの代わりにＲ１添加３０秒後の吸光度データを取り出して、同様の処理を行った結果からも、対照法との良好な相関が確認された。本結果より全血検体からＨｂＡ１ｃとＧＬＵを同時に、かつ約１分という短時間で測定可能であることがわかった。
【実施例４】
【００４６】
［実施例４］ＣＲＥ（クレアチニン）測定
本特許の方法を用いて全血試料からＣＲＥの測定を行い、対照法との相関性を比較した。
＜希釈用溶液＞
下記を含む水溶液を、下記の操作方法を実行したときに希釈液中で表記の濃度になるように作製した。
亜硝酸ナトリウム              １４．５ｍＭ
デオキシコール酸               ０．０５％
シュークロースモノラウレート  ０．０５％
＜ＣＲＥ測定試薬＞
Ｒ１
ＰＩＰＥＳ  １００ｍＭ  （ｐＨ７．４）（同仁化学）
クレアチンアミジノヒドロラーゼ（ＣＲＨ−２２９  東洋紡績）    ８０Ｕ／ｍＬ
ザルコシンオキシダーゼ（ＳＡＯ−３５１  東洋紡績）  １０Ｕ／ｍＬ  
カタラーゼ（ＣＡＯ−５０９  東洋紡績）  ２００Ｕ／ｍＬ
アスコルビン酸オキシダーゼ（ＡＳＯ−３１１  東洋紡績）  １０Ｕ／ｍＬ
トリトンＸ−１００（ナカライ）  ０．１％
Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−ｍ−トルイジン  ２ｍＭ
（同仁化学）
Ｒ２
ＰＩＰＥＳ  １００ｍＭ  （ｐＨ７．４）（同仁化学）
クレアチニンアミドヒドロラーゼ（ＣＮＨ−３１１東洋紡績）  ３２０Ｕ／ｍｌ
ペルオキシダーゼ（ＰＥＯ−３０２  東洋紡績）  １５Ｕ／ｍＬ
４−アミノアンチピリン  （積水メディカル）  ３．２ｍＭ
＜操作方法＞
３７℃にインキュベートされたＲ１；１２０μＬに下記の方法で希釈した検体を２．７μＬ添加し、３７℃で反応を開始した。Ｒ１添加、１分後にＲ２；４０μＬを添加した。Ｒ２添加前及び添加１分後の主波長５４６ｎｍおよび副波長８００ｎｍの吸光度を測定した。全血測定結果は、蒸留水（ブランク）とクレアチニン５ｍｇ／ｄＬのキャリブレーターを用いて作成した検量線と対比しクレアチニン濃度を求めた。さらに、実施例３と同様に、予め算出しておいたＨｂ量とＨｔ値の相関式よりＨｔ値を検体ごとに算出し、検体ごとにＨｔ補正を行い、全血測定結果を血漿測定結果に換算した。
＜検体希釈方法＞  
ＥＤＴＡ−２Ｎａ採血管で採取した検体（ｎ＝３０）を上記の希釈用溶液で１／２０希釈しＣＲＥ濃度を測定した。  
＜対照法＞
対照法は上記実施例４の試薬にて、全血検体を遠心し（上記採血管を３０００ｒｐｍで１０分間遠心）、得られた血漿を試料として用い、測定を実施した。
【００４７】
図４より対照法と比較し良好な相関性であることを確認した。本結果より全血検体から約２分という短時間でＣＲＥ濃度を測定できることがわかった。
また、本実施例の測定タイムコースの生データを参照して、Ｒ１添加１分後のデータの代わりにＲ１添加３０秒後の吸光度データ、Ｒ２添加１分後のデータの代わりにＲ１添加３０秒後の吸光度データを取り出して、同様の処理を行った結果からも、対照法との良好な相関が確認された。本結果より全血検体から約１分という短時間でＣＲＥ濃度を測定できることがわかった。
【実施例５】
【００４８】
［実施例５］ＢＵＮ（尿素窒素）測定
本特許の方法を用いて全血試料からＢＵＮの測定を行い、対照法との相関性を比較した。
＜希釈用溶液＞
下記を含む水溶液を、下記の操作方法を実行したときに希釈液中で表記の濃度になるように作製した。
亜硝酸ナトリウム              １４．５ｍＭ
デオキシコール酸               ０．０５％
シュークロースモノラウレート  ０．０５％
＜ＢＵＮ測定試薬＞
Ｒ１
Ｂｉｃｉｎｅ  １００ｍＭ  （ｐＨ８．８）（同仁化学）
２−ケトイソヘキサン酸ナトリウム（ナカライ）  ０．０５％  （重量％）
β−ＮＡＤＨ（オリエンタル酵母）  ０．０２５％
ロイシンデヒドロゲナーゼ（ＬＥＤ−２０１  東洋紡績）  １．０ＫＵ／Ｌ
ＴｒｉｔｏｎＸ−１００（ナカライ）  ０．１％（重量％）
Ｒ２
Ｂｉｃｉｎｅ  １００ｍＭ  （ｐＨ８．５）（同仁化学）
２−ケトイソヘキサン酸ナトリウム（ナカライ）  ０．０５％  （重量％）
β−ＮＡＤＨ（オリエンタル酵母）  ０．０２５％
ロイシンデヒドロゲナーゼ（ＬＥＤ−２０１  東洋紡績）  ２．０ＫＵ／Ｌ
ウレアーゼ（ＵＲＨ−２０１  東洋紡績）  １１５ＫＵ／Ｌ
ＴｒｉｔｏｎＸ−１００（ナカライ）  ０．１％（重量％）
＜操作方法＞
３７℃にインキュベートされたＲ１；１２０μＬに下記の方法で希釈した検体を６．０μＬ添加し、３７℃で反応を開始した。検体添加後、３３秒から５４秒の３４０ｎｍの吸光度変化を測定した（Ａ）。Ｒ１添加、１分後にＲ２；４０μＬを添加した。検体添加後、６８秒から１０３秒の３４０ｎｍの吸光度変化を測定した（Ｂ）。全血測定結果は、蒸留水（ブランク）とＢＵＮ５０ｍｇ／ｄＬのキャリブレーターを用いて作成した検量線と対比し（Ｂ）−（Ａ）よりＢＵＮ濃度を求めた。
さらに、実施例３と同様に、予め算出しておいたＨｂ量とＨｔ値の相関式よりＨｔ値を検体ごとに算出し、検体ごとにＨｔ補正を行い、全血測定結果を血漿測定結果に換算した。
＜検体希釈方法＞  
ＥＤＴＡ−２Ｎａ採血管で採取した検体（ｎ＝３０）を上記の希釈用溶液で１／８希釈しＢＵＮ濃度を測定した。  
＜対照法＞
対照法は上記実施例５の試薬にて、全血検体を遠心し（上記採血管を３０００ｒｐｍで１０分間遠心）、得られた血漿を試料として用い、測定を実施した。
【００４９】
図５より対照法と比較し良好な相関性であることを確認した。本結果より全血検体から約２分という短時間でＢＵＮ濃度を測定できることがわかった。
また、本実施例の測定タイムコースの生データを参照して、Ｒ１添加１分後のデータの代わりにＲ１添加３０秒後の吸光度データ、Ｒ２添加１分後のデータの代わりにＲ１添加３０秒後の吸光度データを取り出して、同様の処理を行った結果からも、対照法との良好な相関が確認された。本結果より全血検体から約１分という短時間でＢＵＮ濃度を測定できることがわかった。
【実施例６】
【００５０】
［実施例５］Ｔ−ＣＨＯ、ＨＤＬ−Ｃ、ＬＤＬ−Ｃ測定
本特許の方法を用いて全血試料からＴ−ＣＨＯ、ＨＤＬ−Ｃ、ＬＤＬ−Ｃを同時測し、照法との相関性を比較した。
＜希釈用溶液＞
下記を含む水溶液を、下記の操作方法を実行したときに希釈液中で表記の濃度になるように作製した。
亜硝酸ナトリウム              １４．５ｍＭ
デオキシコール酸               ０．０５％
シュークロースモノラウレート  ０．０５％
＜Ｔ−ＣＨＯ測定試薬＞
Ｒ１
ＰＩＰＥＳ  １００ｍＭ  （ｐＨ７．０）（同仁化学）
ＥＤＴＡ・３Ｎａ    ０．０１％  （重量％）
塩化ナトリウム      １．４６％  （重量％）
塩化カルシウム    ０．００２％  （重量％）
塩化マグネシウム六水和物  ０．０８％（重量％）
Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−ｍ−アニシジン    ０．０２％  （重量％）
コレステロールエステラーゼ（ＣＯＥ−３１１  東洋紡績）    ０．６５ＫＵ／Ｌ
ペルオキシダーゼ（ＰＥＯ−３０１  東洋紡績）    ３ＫＵ／Ｌ、
アスコルビン酸オキシダーゼ（ＡＳＯ−３１１  東洋紡績）    ５ＫＵ／Ｌ
ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル（花王）  ０．１％（重量％）
ポリオキシエチレンアルキルフェノールエーテル（花王）  ０．０３％（重量％）
ポリオキシエチレンアルキルエーテル（花王）  ０．１５％（重量％）
ＴｒｉｔｏｎＸ−１１４（ナカライ）  ０．４％（重量％）
Ｒ２
ＰＩＰＥＳ  １００ｍＭ  （ｐＨ７．０）（同仁化学）
ＥＤＴＡ・３Ｎａ    ０．０２％  （重量％）
アジ化ナトリウム    ０．００５％（重量％）
４−アミノアンチピリン    ０．０２％（重量％）
フェロシアン化カリウム    ０．００１５％（重量％）
コレステロールオキシダーゼ（ＣＯＯ−３１１  東洋紡績）    １ＫＵ／Ｌ
ポリオキシエチレンジスチレン化フェニルエーテル（花王）  ０．１％（重量％）
ポリオキシエチレンアルキルフェノールエーテル（花王）  ０．０３％（重量％）
ポリオキシエチレンオレイルエーテル（花王）  ０．０５％（重量％）
［操作方法］
３７℃にインキュベートされたＲ１；１２０μＬに下記の方法で希釈した検体を１．５μＬ添加し、３７℃で反応を開始した。Ｒ１添加、１分後にＲ２；６０μＬを添加した。Ｒ２添加前及び添加１分後の主波長６００ｎｍおよび副波長８００ｎｍの吸光度を測定した。全血測定結果は、蒸留水（ブランク）と１８０ｍｇ／ｄＬ  Ｔ−ＣＨＯ標準血清の測定吸光度より算出して求めた。さらに、実施例３と同様に、予め算出しておいたＨｂ量とＨｔ値の相関式よりＨｔ値を検体ごとに算出し、検体ごとにＨｔ補正を行い、全血測定結果を血漿測定結果に換算した。
＜ＨＤＬ−Ｃ測定＞
［試薬］
Ｒ１
ＰＩＰＥＳ    ５０ｍＭ    （ｐＨ６．５）（同仁化学）
エチレンジアミン四酢酸ニナトリウム塩    ０．２ｍｍｏｌ／Ｌ
塩化マグネシウム    ５ｍｍｏｌ／Ｌ
塩化カルシウム    ０．１ｍｍｏｌ／Ｌ
Ｎ，Ｎ−ビス（３−Ｄ−グルコンアミドプロピル）デオキシコラミド（同仁化学社製）    ０．１％
コレステロールエステラーゼ（ＣＯＥ−３０１  東洋紡績）    ２Ｕ／ｍＬ
コレステロールオキシダーゼ（ＣＯＯ−３２１  東洋紡績）    ３Ｕ／ｍＬ
カタラーゼ（微生物由来  ロシュ）    １００Ｕ／ｍＬ
Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３−メトキシアニリン（同仁化学社製）        ０．１ｇ／Ｌ
Ｒ２
ＨＥＰＥＳ    １００ｍＭ    （ｐＨ８．２）  （同仁化学）
エチレンジアミン四酢酸ニナトリウム塩    ０．２ｍｍｏｌ／Ｌ
塩化カルシウム    ０．１ｍｍｏｌ／Ｌ
エマルゲンＡ９０（花王社製）        ０．３％
ペルオキシダーゼ（ＰＥＯ−３０１  東洋紡績）    ８Ｕ／ｍＬ
４−アミノアンチピリン        ０．４ｇ／Ｌ
［操作方法］
３７℃にインキュベートされたＲ１；１５０μＬに下記の方法で希釈した検体を１．６μＬ添加し、３７℃で反応を開始した。Ｒ１添加、１分後にＲ２；５０μＬを添加した。Ｒ２添加前及び添加１分後の主波長６００ｎｍおよび副波長８００ｎｍの吸光度を測定した。全血測定結果は、蒸留水（ブランク）と７０ｍｇ／ｄＬ  ＨＤＬ−Ｃ標準血清の測定吸光度より算出して求めた。さらに、実施例３と同様に、予め算出しておいたＨｂ量とＨｔ値の相関式よりＨｔ値を検体ごとに算出し、検体ごとにＨｔ補正を行い、全血測定結果を血漿測定結果に換算した。
＜ＬＤＬ−Ｃ測定＞
［試薬］
Ｒ１
ＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ    ５０ｍＭ    ｐＨ７．５
エチレンジアミン四酢酸ニナトリウム塩    ０．２ｍｍｏｌ／Ｌ
塩化カルシウム    ０．１ｍｍｏｌ／Ｌ
３−［（３−コラミドプロピル）ジメチルアンモニオ］プロパンスルホン酸（同仁化学社製）    ０．２％
カゼイン（和光純薬）    ２．５ｇ／Ｌ
コレステロールエステラーゼ（ＣＯＥ−３１１  東洋紡績）    ０．１Ｕ／ｍＬ
コレステロールオキシダーゼ（ＣＯＯ−３２１  東洋紡績）    ３Ｕ／ｍＬ
カタラーゼ（微生物由来  ロシュ）    １００Ｕ／ｍＬ
４−アミノアンチピリン    
Ｒ２
ＰＩＰＥＳ−ＮａＯＨ    ５０ｍＭ    ｐＨ７．５
エチレンジアミン四酢酸ニナトリウム塩    ０．２ｍｍｏｌ／Ｌ
塩化マグネシウム    １０ｍｍｏｌ／Ｌ
塩化カルシウム    ０．１ｍｍｏｌ／Ｌ
ポリオキシプロピレン（２）ポリオキシエチレンデシルエーテル（エマレックスＤＡＰＥ０２０７：日本エマル
ジョン社製）        ０．３％
ペルオキシダーゼ（ＰＥＯ−３０１  東洋紡績）    ８Ｕ／ｍＬ
Ｎ−エチル−Ｎ−スルホプロピル−３−メトキシアニリン（同仁化学社製）        ０．４ｇ／Ｌ
［操作方法］
３７℃にインキュベートされたＲ１；１５０μＬに下記の方法で希釈した検体を１．６μＬ添加し、３７℃で反応を開始した。Ｒ１添加、１分後にＲ２；５０μＬを添加した。Ｒ２添加前及び添加１分後の主波長６００ｎｍおよび副波長８００ｎｍの吸光度を測定した。全血測定結果は、蒸留水（ブランク）と１００ｍｇ／ｄＬ  ＬＤＬ−Ｃ標準血清の測定吸光度より算出して求めた。さらに、実施例３と同様に、予め算出しておいたＨｂ量とＨｔ値の相関式よりＨｔ値を検体ごとに算出し、検体ごとにＨｔ補正を行い、全血測定結果を血漿測定結果に換算した。
＜検体希釈方法＞  
ＥＤＴＡ−２Ｎａ採血管で採取した検体（ｎ＝３０）を上記の希釈用溶液で１／２０希釈しＴ−ＣＨＯ、ＨＤＬ−Ｃ、ＬＤＬ−Ｃ濃度を測定した。  
＜対照法＞
対照法は上記実施例６の試薬にて、全血検体を遠心し（上記採血管を３０００ｒｐｍで１０分間遠心）、得られた血漿を試料として用い、測定を実施した。
【００５１】
図６、図７、図８よりＴ−ＣＨＯ、ＨＤＬ−Ｃ、ＬＤＬ−Ｃのいずれも対照法と比較し良好な相関性であることを確認した。本結果より全血検体からＴ−ＣＨＯ、ＨＤＬ−Ｃ、ＬＤＬ−Ｃを同時に、かつ約２分という短時間で測定可能であることがわかった。
また、本実施例の測定タイムコースの生データを参照して、Ｒ１添加１分後のデータの代わりにＲ１添加３０秒後の吸光度データ、Ｒ２添加１分後のデータの代わりにＲ１添加３０秒後の吸光度データを取り出して、同様の処理を行った結果からも、対照法との良好な相関が確認された。本結果より全血検体からＴ−ＣＨＯ、ＨＤＬ−Ｃ、ＬＤＬ−Ｃを同時に、かつ約１分という短時間で測定可能であることがわかった。
【産業上の利用可能性】
【００５２】
本発明は、医療分野、医学研究分野などにおいて、血液中の特定成分を測定する際に有用である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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