(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ｓｐａｒｃ遺伝子に対してプライマー１（配列番号：３）およびプライマー２（配列番号：４）を用いて増幅される核酸によりコードされるＳＰＡＲＣのフラグメントと、シュードモナス・エキソトキシンＡのドメインＩａとを融合させた融合タンパク質を含んでなる脊椎動物用の飼料組成物であって、
前記脊椎動物が魚であることを特徴とする、
脊椎動物用の飼料組成物。
【請求項２】
前記ＳＰＡＲＣのフラグメントと、前記シュードモナス・エキソトキシンＡのドメインＩａとを融合させた前記融合タンパク質が、エビ体内にバイオカプセル化された複合タンパク質であることを特徴とする請求項１記載の組成物。
【請求項３】
前記融合タンパク質において、前記フラグメントがタンデムリピートされていることを特徴とする請求項１記載の組成物。
【請求項４】
配列番号：１のミオスタチンエピトープフラグメントと、シュードモナス・エキソトキシンＡのドメインＩａとを融合させた融合タンパク質をさらに含んでなることを特徴とする請求項１記載の組成物。
【請求項５】
前記配列番号：１のミオスタチンエピトープフラグメントと、前記シュードモナス・エキソトキシンＡのドメインＩａとを融合させた前記融合タンパク質が、エビ体内にバイオカプセル化された複合タンパク質であることを特徴とする請求項４記載の組成物。
【請求項６】
前記融合タンパク質において、前記フラグメントがタンデムリピートされていることを特徴とする請求項４記載の組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は培養方法に関し、さらに詳細には、脊椎動物用の食品組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
世界人口の急速な増加および耕地面積の低下に伴い、利用可能な飼料資源は次第に不足してきており、世界中の飼料製造において、単位面積当たりの生産量を改善し、栄養価の添加を増す傾向にある。
【０００３】
水産業に関して言えば、海からの漁獲高はほぼ飽和状態にあり、また、日常の動物タンパク質市場における魚製品の需要は増大していることから、製品供給不足を補う必要がある。
【０００４】
ハタ科（Epinephelus spp.） は、マハタ属、ハタ亜科、ハタ科、硬骨魚綱 スズキ目に属する温水性魚の一種であり、世界じゅうの熱帯および亜熱帯水域に幅広く分布しており、養殖業にとって、アジアおよび太平洋領域におけるもっとも重要な経済的魚種として一般に認められている。台湾では、養殖魚は主に、ヤイトハタ（Epinephelus malabaricus）、チャイロマルハタ（Epinephelus coioides）、タマカイ（Epinephelus lanceolatus）およびノミノクチ（Epinephelus fario）である。一般に、ハタ科は市場に出す少なくとも８〜１２ヶ月前に養殖されなければならない；しかしながら、最終的な収穫高は高くない。ウイルスおよび細菌感染に起因する幼魚の早期死亡率に加えて、例えば、気象要因、水質汚染問題、餌料生物の管理および養殖の間の管理はすべて、実施者にとってのリスクを増大する。したがって、魚の養殖の発育速度の改善、市場に出す前の養殖時間の短縮、ならびに、飼料要求率（与えた飼料の重量／魚体の体重増加）および養殖の間の潜在的リスクの低減の方法についての研究は、ハードワークに値するものとなっている。
【０００５】
酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質（ＳＰＡＲＣ）とは、オステオネクチンまたはＢＭ４０とも称され、約３５〜４５ｋＤａのタンパク質サイズを有し、主として細胞外マトリクス（ＥＣＭ）に分布する。また、これは、マトリクス細胞のタンパク質であり、ＥＣＭまたは細胞への結合特性を有する多機能性糖タンパク質である。
【０００６】
ＳＰＡＲＣは主にＥＣＭ内に分布する；しかしながら、ＳＰＡＲＣの機能は、構造の構成に関与し細胞を支持する、マトリクスの通常の構造タンパク質とは異なる；それどころか、ＳＰＡＲＣは、特に、細胞とＥＣＭを連結する架橋の働きをし、幾つかの種類の細胞マトリクス・タンパク質の産生、貯蔵および蓄積を制御することができる調節タンパク質である（非特許文献１〜２）。しかしながら、ＳＰＡＲＣは、主に胚発生の間に発現し、細胞分化、組織の石灰化および生成、骨の発達、形態、および器官の形成に多いに関与する。明らかな発現は、主に、傷ついた皮膚または組織の修復および再編成のプロセスを生じることから、成体生物におけるこのタンパク質の発現レベルは、低下傾向にある（非特許文献２）。
【０００７】
ＳＰＡＲＣは、３つの機能ドメインに分けることができる（非特許文献３）：
１．弱い親和性で５〜８つのカルシウムイオンと結合することができ、細胞伸長を阻害し、ＥＣＭの産生を制御する機能を有する、タンパク質のＮ−末端にある酸性ドメイン；
２．複数のシステインを含み、ホリスタチンと似た機能を有し、細胞増殖を阻害する能力があり、さらに別の特異的配列、すなわち、銅イオン結合配列（Ｋ）ＧＨＫを含み（非特許文献４）、血管増殖促進機能を有する、ホリスタチン様ドメイン；
３．ＳＰＡＲＣのＣ末端であり、２つのＥＦ−ハンドモチーフを有し、カルシウムイオンと高い親和性で結合することができ、細胞または一部のコラーゲンと結合することができ、さらに、細胞の増殖および伸長を阻害する効果を有する、細胞外カルシウムイオン結合ドメイン（ＥＣドメイン）（非特許文献５）。
【０００８】
現在のところ、ＳＰＡＲＣの生物学的機能についての研究および考察について幾つかの結果が報告されており、インビトロにおけるマウス内皮細胞培養の観察を通じて幾つかの特性が見出されている：
（Ｉ）ＳＰＡＲＣの発現は、細胞形態の伸長を阻害して、細胞をほぼ円形にし（非特許文献６）；また、ＥＣＭ組成物および一部のＥＣＭタンパク質の発現を制御して、細胞と細胞外マトリクスとの結合を調整し、細胞形態および遊走能を変化させること（非特許文献７；および非特許文献８）ができる；
（ＩＩ）細胞周期の進行を阻害して、サイクルを中期Ｇ１期で停止する、すなわち、細胞増殖阻害機能を有する（非特許文献９）；
（ＩＩＩ）血管細胞培養の研究から、内皮細胞が血管増殖促進特性を有することが見出された（非特許文献１０）。インビボにおいて、ＳＰＡＲＣ遺伝子をノックダウンしたマウスが生後間もなく白内障を患うことが判明し、このことにより、ＳＰＡＲＣは目のレンズの発達にとって必須タンパク質であると考えられる（非特許文献９）。研究を通じて、ＳＰＡＲＣ遺伝子をノックダウンしたマウスでは、皮膚構造における異常変化、すなわち、肥厚性の脂肪層の脂肪細胞の体積および数が増大し、血中の脂肪細胞によって分泌されるレプチンの濃度が上昇することも見出されており、このことにより、ＳＰＡＲＣタンパク質はインビボにおける体内の脂肪量の変化の制御との相関関係を有すると考えられる（非特許文献１１）。
【０００９】
ミオスタチンは、成長および分化因子−８（ＧＤＦ−８）とも称され、形質転換成長因子ＴＧＦ−βの仲間である。ミオスタチンは、筋肉の成長および分化を負に制御しうる。牛およびヒトの体内における研究を通じて、ミオスタチンの機能が失われた場合に、筋肉の成長および分化の負の制御が効かなくなることから、筋肉の増大が生じることが見出されている（非特許文献１２；および非特許文献１３）。哺乳動物の研究では、マウスのミオスタチンがノックダウンされ（非特許文献１４）、マウスの筋肉においてミオスタチン阻害タンパク質（例えば、ホリスタチン）の高レベルの発現または信号伝達にとって必須の受容タンパク質ＡｃｔＲＩＩＢの機能不全（非特許文献１５）が筋肉の増大を発生させる。硬骨魚の研究では、胎芽成長を促進するため、アンチセンスモルホリノ・ノックダウン技術を用いて、ゼブラフィッシュの胎芽のミオスタチン−１のｍＲＮＡを阻害する（非特許文献１６）；あるいは、ＲＮＡｉ技術を用いてゼブラフィッシュのミオスタチン−１の機能を封じ、それによって大型のゼブラフィッシュの特徴を発現させる（非特許文献１７）。筋肉細胞は組織薄片についてさらに研究されており、体積の肥大および筋肉細胞数の過形成が筋肉繊維の発現をもたらしうることが判明している。
【００１０】
一方、インビトロにおける細胞株の研究では、Ｃ２Ｃ１２筋芽細胞株においてミオスタチンが高濃度で発現される場合、筋芽細胞の増殖は阻害され、Ｇ１期の細胞を細胞周期のＳ期で停止できることが指摘されている（非特許文献１８）。一方、筋肉の星状膠細胞においてミオスタチンが高濃度で発現される場合には、ミオスタチンが筋肉の星状膠細胞の活性化および自己再生を阻害しうることが見出されており（非特許文献１９）、このことは、ミオスタチンが筋発生の負の制御の役割を果たすことを証明している。筋肉細胞の制御に加えて、他の文献では、ミオスタチンが脂質生成を阻害する機能を有することが指摘されており（非特許文献２０）、また、他の研究において、ミオスタチンが筋芽細胞のアポトーシスを阻害する機能を有することも指摘されている（非特許文献２１）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【００１１】
【非特許文献１】Bradshaw and Sage, 2001, J Clin Invest 107；1049-1054
【非特許文献２】Lane and Sage, 1994, FASEB J 8；163-173
【非特許文献３】Hohenester et al., 1997, EMBO J 16；3778-3786
【非特許文献４】Iruela-Arispe et al., 1995, Mol Biol Cell 6；327-343
【非特許文献５】Maurer et al., 1995, J Mol Biol 253；347-357
【非特許文献６】Murphy-Ullrich et al., 1991, J Cell Biol 115；1127-1136
【非特許文献７】Hasselaar et al., 1991, J Biol Chem 266；13178-13184
【非特許文献８】Tremble et al., 1993, J Cell Biol 121；1433-1444
【非特許文献９】Yan and Sage, 1999, J Histochem Cytochem 47；1495-1506
【非特許文献１０】Funk and Sage, 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88；2648-2652
【非特許文献１１】Bradshaw et al., 2003, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100；6045-6050
【非特許文献１２】McPherron and Lee, 1997, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94, 12457-12461
【非特許文献１３】Schuelke et al, 2004, The New England Journal of Medicine 350, 2682-2688
【非特許文献１４】McPherron and Lee, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94；12457-12461
【非特許文献１５】Lee and McPherron, 2001, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 98；9306-9311
【非特許文献１６】Amali et al, 2004, Developmental Dynamics 229；847-856
【非特許文献１７】Acosta et al, 2005, Journal of Biotechnology 119；324-331
【非特許文献１８】Thomas et al, 2000, The Journal of Biological Chemistry 275；40235-40243
【非特許文献１９】McCroskery, 2003, The Journal of Cell Biology 162；1135-1147
【非特許文献２０】Rebbapragada et al, 2003, Molecular and Cellular Biology 23；7230-7242
【非特許文献２１】Rios et al, 2001, Biochemical and Biophysical Research Communications 280；561-566
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
しかしながら、ミオスタチンおよびＳＰＡＲＣの研究において、筋肉増加に加えて、養殖業における原価管理にとって重要な、飼料要求率（与えた飼料の重量／体重増加）についての報告はない。さらには、脊椎動物に免疫を付与する従来の方法は、エピトープを注入するが、これは時間と人件費がかかり、脊椎動物は容易に傷む。したがって、飼料要求率を低減する食品組成物の開発は、養殖における発育速度の改善のために、当業界において必要とされている。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明は、養殖の発育速度の改善、市場に出す前の培養時間の短縮、および飼料要求率および養殖の間の潜在的リスクの低減のための脊椎動物用の食品組成物に関する。
【００１４】
本発明は、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質（secreted protein acidic and rich in cysteine）、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質のフラグメント（fragment of secreted protein acidic and rich in cysteine）、抗−酸性かつシステイン豊富な非分泌性タンパク質抗体（anti-secreted protein acidic and rich in cysteine antibody）、または酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質の抗体の抗フラグメント（anti-fragment of secreted protein acidic and rich in cysteine antibody）を含む脊椎動物用の食品組成物を提供する。
【００１５】
本発明に従った食品組成物は、ミオスタチン、ミオスタチンのフラグメント、抗ミオスタチン抗体、またはミオスタチン抗体の抗フラグメントをさらに含むことが好ましい。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質（ＳＰＡＲＣ）の免疫阻害を受けたハタの抗体の血清力価を示すグラフ。
【図２】酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質の免疫阻害を受けたハタの体重変化を示すグラフ。
【図３】ミオスタチンの免疫阻害を受けたハタの抗体の血清力価を示すグラフ。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
本発明は、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質のフラグメント、抗−酸性かつシステイン豊富な非分泌性タンパク質抗体、または酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質の抗体の抗フラグメントを含む脊椎動物用の食品組成物に関する。
【００１８】
本発明に従った食品組成物は、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質の機能を阻害することによって脊椎動物の飼料要求率を低下させる。
【００１９】
好ましくは、本発明に従った食品組成物は、ミオスタチン、ミオスタチンのフラグメント、抗ミオスタチン抗体、またはミオスタチン抗体の抗フラグメントをさらに含む。
【００２０】
本発明の食品組成物は、脊椎動物に適している。好ましくは、本発明の食品組成物は魚に適しており；さらに好ましくは、魚は硬骨魚綱に属し、現在、ゼブラフィッシュ（Danio rerio）、タイセイヨウサケ（Atlantic salmon）、モザンビークティラピア（Mozambique tilapia）、ストライプドバス（Morone saxatilis）、ヨーロッパヘダイ（Morone saxatilis）、ニジマス（Oncorhynchus mykiss）、カワマス（Salvelinus fontinalis）、ナマズ（Silurus asotus）、チャイロマルハタおよびスズキ（Lateolabrax japonicus）を含めた魚のミオスタチンはクローン化されてきており、そのアミノ酸配列は高度に保存されており、したがって、ミオスタチンが幾つかの機能を有すると考えられる；特に好ましくは、魚は硬骨魚綱スズキ目に属し；特に好ましくは、魚は硬骨魚綱スズキ目ハタ科に属し；特に好ましくは、魚は硬骨魚綱スズキ目ハタ科ハタ亜科に属し；特に好ましくは、魚は硬骨魚綱スズキ目ハタ科ハタ亜科マハタ属に属し；最も好ましくは、魚はチャイロマルハタである。
【００２１】
本発明の食品組成物は、例えば、遺伝子、転写、翻訳、タンパク質活性および信号経路の段階において、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質の機能を阻害することによって脊椎動物における飼料要求率を改善するためのものである。当業者は、例えば、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質自体の活性が阻害される、または、受容タンパク質の機能が阻害されるなど、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質の機能を阻害するための適切な操作を選択することができる。好ましくは、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質の機能は、免疫阻害方法を通じて阻害され、ここで、タンパク質活性は阻害されるが、脊椎動物に全体的な悪影響を生じさせない。
【００２２】
本発明の好ましい実施の形態では、免疫阻害方法は、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質のフラグメント、抗−酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質の抗体、または酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質の抗体の抗フラグメントを脊椎動物に投与することである。好ましくは、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質のフラグメントはエピトープである。当業者は、抗酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質および／または抗ミオスタチン抗体またはそのエピトープの抗体を得るために、タンパク質またはそのエピトープを発現する遺伝子をコードした酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質をクローン化して入手し、タンパク質またはエピトープを動物の身体に免疫を付与することができる。本発明の抗体は、脊椎動物の身体自体が抗体を産生できるように、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質またはそのエピトープを他の動物に与えて免疫付与し、精製することによって、または、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質またはそのエピトープを脊椎動物の身体に直接与えて免疫付与することによって獲得することができる。本発明の抗体はポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体であって差し支えなく、抗体はポリクローナル抗体であることが好ましい。
【００２３】
本明細書では「エピトープ」という用語は、タンパク質抗原における、抗原を発現する免疫応答を誘発することができるフラグメントのことをいい、これは、構造予測を通じて、またはタンパク質フラグメントを選択し、免疫付与された動物における免疫応答を観察することによって、入手することができる。
【００２４】
ミオスタチンは、ＴＧＦ−β群の他の物質とその配列が極めて類似しており、３つの部位：（１）タンパク質の分泌物から放出する信号としてのＮ−末端の疎水性ドメイン；（２）高度に保存されたタンパク質 開裂位置ＲＸＲＲ（配列番号：２）；（３）システイン豊富なＣ末端活性ドメイン（Sharma et al、1999、Journal of cellular physiology 180；1-9）を含む。脊椎動物におけるミオスタチンのアミノ酸配列がＣ末端の活性ドメインにおいて高度に保存されていることが多くの報告において確認されている（McPherron et al、1997、Nature 387；83-90）。現在、ミオスタチンの研究において、ミオスタチンに対して高い特異性を有するモノクローナル抗体ＪＡ１６では（Whittemore et al、2003、Biochemical and Biophysical Research Communications 300；965-971）、ミオスタチンとの結合位置を解析することによって、結合位置がマウスのミオスタチンのＣ末端における１５のアミノ酸ＤＦＧＬＤＣＤＥＨＳＴＥＳＲＣ（配列番号：１）にあることが判明し、したがって、Ｃ末端ドメインは抗原性フラグメントであることが確認できる。したがって、好ましくは、ミオスタチンの抗原性フラグメントはミオスタチンのＣ末端ドメインであり；さらに好ましくは、ミオスタチンのＣ末端ドメインは配列番号：１に示す配列を有する。
【００２５】
一方、エピトープは小さいペプチドフラグメントであり、小さいフラグメント抗原が動物に直接免疫付与される場合、免疫応答は十分ではない可能性がある。免疫応答の改善には、タンデムリピート単位を含む直線アレイ・エピトープ（ＬＡＥ）の構築が好ましい。加えて、抗原の送達を補助するため、細菌毒素を使用して、毒素を排除した毒素活性を輸送システムとして利用し、それによって、毒素の特性を利用した全般的な免疫付与を達成してもよい。好ましくは、本発明のＬＡＥは、シュードモナス菌の外毒素（ＰＥ）ＡのドメインＩａと融合される。シュードモナス菌の外毒素は、６６ｋＤａの分子量を有し、６１３のアミノ酸を含み、そのタンパク質構造は、主として、３つのドメインを含み、ドメインＩａ（アミノ酸１〜２５２）は受容体結合領域であり、哺乳動物の細胞の細胞膜におけるα２−マクログロブリン／低密度リポタンパク質受容体（ＬＤＬＲ）との結合に関与し、受容体が媒介するエンドサイトーシスを通じて細胞内膜系へと入る。シュードモナス・エキソトキシンＡは誘発された免疫応答を効果的に促進することができることが証明されている（Donnelly et al, 1993, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90; 3530-3534）。
【００２６】
本発明のもう１つの好ましい実施の形態では、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質のフラグメント、抗−酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質の抗体、または酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質抗体の抗フラグメントは、エビ体内にバイオカプセル化される。エビは、魚に簡単に与えられる飼料として通常使用される。好ましくは、エビは幼生のエビであり；さらに好ましくは、幼生は凍結乾燥されて粉末化される。
【００２７】
本発明のもう１つの別の好ましい実施の形態では、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質、酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質のフラグメント、抗−酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質の抗体、または酸性かつシステインおよび／またはミオスタチン豊富な分泌タンパク質抗体の抗フラグメントは、微生物において発現され、その微生物は、エビにおけるカプセル化など、組成物に添加することができる。好ましくは、微生物の培養物は、凍結乾燥され、粉末化される。別の態様では、微生物は大腸菌（Escherichia coli）である。
【００２８】
本発明の１つの好ましい実施の形態では、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質の機能の免疫阻害は、対照群と比較して、約５％を超える飼料要求率の低減に有効であり；さらに好ましくは、約８％〜約４０％である。
【００２９】
以下の実施例は、単に例証の目的で与えられるものであって、本発明の範囲を制限することは意図されていない。
【実施例】
【００３０】
実施例１：酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質（ＳＰＡＲＣ）の免疫阻害:
抗原の調製：
７０±１０ｇの平均体重および５〜６インチ（１２．７〜１５．２４ｃｍ）の平均長を有する合計４８匹のチャイロマルハタを対照群および実験群として使用し、試験期間は５ヶ月であった。プライマー１（配列番号：３）およびプライマー２（配列番号：４）を用いてｓｐａｒｃ遺伝子を増幅することによって抗原を調製した。
【００３１】
５０Ｌの発酵タンクでエピトープを含めた大腸菌（Ｅ. ｃｏｌｉ）ＢＬ２１（ＤＥ３）株を培養するために、３５Ｌの発酵培養プロセスを確立した。４本の試験官に入った、３７℃でＬＢ／アンピシリン培地を用いて一晩培養した５ｍｌの細菌株を、それぞれ、０．２ＬのＬＢ／アンピシリン培地に接種し、合計１Ｌを３７℃においてＯＤ600が０．３になるまで振とう培養し、次いで、３５Ｌの培養培地に加え、サンプルを採取して毎時のＯＤ600を決定し、成長曲線の変化をモニタした。成長曲線に従って適切な時点をさらに選択し、０．１ｍＭの最終濃度を有するＩＰＴＧを加え、大腸菌が融合タンパク質を高濃度で発現するように誘発し、３７℃で３時間、振とう培養し、遠心分離して細菌を回収した。融合タンパク質の発現をＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウェスタンブロット法によって決定し、最適な３５Ｌの発酵条件を決定した。
【００３２】
バイオカプセル化したアルテミア・サリナ（Altemia salina L.）の経口ワクチンの調製
アルテミア・サリナの培養：
４ｇのアルテミア・サリナの乾燥卵の重量を測定し、２５０ｍｌのビーカーに入れ、１５０ｍｌの淡水を加えて０．５時間浸漬した。アルテミア・サリナの残った卵をスクリーンでろ過し、適量の淡水で洗浄した。アルテミア・サリナの残りの卵を５Ｌの培養液に加えて均一に分散させた。エアストーンを設置して空気の送入を開始し、空気の取り込み量を約５００ｃｍ3／分に調整した（溶存酸素が２ｐｐｍを超えるように維持）。照明装置を点灯し、室温および水温を２６〜２８℃に保った。２４時間後、空気の送入を停止し、照明装置を容器の底部に移し、走光性を利用してアルテミア・サリナの幼生を容器の底部に引き寄せ、５分間そのままにした。この時点で、非培養の卵および培養後の空になった卵の殻を水面に浮かせて、浮いた卵の殻をサイフォンの原理または水を吸い込むことができる他の手段を利用して除去した。培養した初齢の幼生をスクリーンで穏やかにろ過し（細孔１２０μｍ）、海水で穏やかに洗浄し、２Ｌの新鮮な培養液に加えた。孵化液を穏やかに攪拌し、アルテミア・サリナの幼生を均一に分散させた。１ｍｌの培養液を吸引し、１ｍｌの格子状のカウンタプレートに滴下した。幼生の摂動を防ぐため、５０℃の熱板上に１０分間、幼生を置くことによって死滅させて、カウントを容易にしてもよい。カウント時には、カウンタプレートを、観察のため、６０〜１００倍の倍率の解剖顕微鏡下に置いた。カウンタプレートを１０００格子になるように切断し、カウント方法は、１０×１０格子（０．１ｍｌあたりの幼生の数）を無作為に選択して幼生の数を数え、プレート上の他の位置の数も同様にカウントし、平均し、１０を乗じて、１ｍｌあたりの幼生の数、またはプレート上の幼生の合計数を得ることによってカウントしてもよい。カウント結果に従って、アルテミア・サリナの密度を、１ｍｌあたり５００個の幼生になるように調整した。エアストーンを設置し、空気の送入を開始し、空気の取り込み量が約３００〜４００ｃｍ3／分になるように調整した（溶存酸素が２ｐｐｍを超えるように維持）。室温および水温を２６〜２８℃に保った。１２〜１８時間の培養後、アルテミア・サリナは最初の脱皮を経て、２齢の幼生になった。この時点で、バイオカプセル化工程が行われる。
【００３３】
バイオカプセル化：大腸菌を遠心分離して１０００×ｇで沈降させた。余った培地をデカンテーションし、細菌を等量のＰＢＳで再懸濁し、細菌上の余剰培地を洗い流した。１０００×ｇで再び遠心分離を行い、細菌を適量のＰＢＳに再懸濁して、１×１０10ｃｆｕ／ｍＬの濃度の細菌液を調製した。滅菌法は加熱滅菌であり、細菌液を１０分間、６５℃の水浴に入れ、次に、滅菌液を１０分間、氷上に置いた。２齢の幼生のアルテミア・サリナを所望の容量にパッケージし、大腸菌の最終濃度が約１×１０10ｃｆｕ／ｍＬになるように、調製した細菌液を加え、空気を適切に２時間送入した。
【００３４】
カプセル化の結果の判定：
サンプリングの前に空気の送入を停止し、２ｍｌのカプセル化したアルテミア・サリナ溶液を小さいスクリーン上に吸引し、大量の淡水で洗浄した。アルテミア・サリナの幼生を遠心分離管に吸引した。マイクロ遠心分離管を−２０℃の冷凍庫に１０分間入れて、 アルテミア・サリナの幼生を凍結して死滅させ、死滅したアルテミア・サリナの幼生を９ｃｍの培養皿に注ぎ、少量の滅菌水を加えてアルテミア・サリナの幼生を均一に分散させ、つぎに、２齢の幼生５００個をピペットマンを用いてマイクロ遠心分離管に吸引し、３００ｒｐｍで遠心分離して幼生を遠心分離管の底部に集め、遠心分離管内の水を除去し、１００μＬの滅菌水に置き換えた。アルテミア・サリナの幼生を、マイクロ遠心分離管内で微小粉砕用の棒を用いて注意深く粉砕した。サンプルをＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウェスタンブロット法に供した。
【００３５】
アルテミア・サリナを含む飼料の調製
ろ過したまたは未ろ過の２齢のアルテミア・サリナの水を可能な限り除去し、凍結乾燥機を用いて凍結乾燥して粉末化した。アルテミア・サリナの粉末を、通常の粉砕した飼料と１：１０００の比で混合し、再び粒化した。
【００３６】
食品組成物の調製：
細菌液を濃縮し、凍結乾燥機を用いて凍結乾燥して粉末化した。細菌粉末を１ｇの飼料に対して３．３×１０9ｃｆｕの大腸菌粉末の比で粉砕した飼料と混合し、再び粒化した。
【００３７】
動物実験
アルテミア・サリナ群：実験動物を４群：実験群のＰＥＩａ−エピトープ群、および、それぞれ、通常の飼料 、アルテミア・サリナ含有飼料およびＰＥＩａフラグメントを用いてカプセル化したアルテミア・サリナを含む飼料を与えた、３つの対照群に分けた。約５２．３６ｇの平均体重および５〜６インチ（１２．７〜１５．２４ｃｍ）の平均長を有する合計８０尾のチャイロマルハタを使用し、実験期間は約１２週間であった。動物には、毎月曜日、火曜日、水曜日に抗原を含む飼料を与え、毎木曜日、金曜日、土曜日に通常の飼料を与え、日曜日には絶食させ、魚の体液を免疫付与前および免疫付与後２週間の時点で採取し、これを２０〜４０分間放置した後に固化し、遠心分離し、ＥＬＩＳＡ用の血液の上清成分のサンプルを取り、血中の内因性タンパク質に対する抗体力価を決定した。
【００３８】
酵素結合免疫吸着法（ＥＬＩＳＡ）
抗原−抗体の特異的結合を利用して、１μｇ（１００μｌ）のＳＰＡＲＣ−Ｈｉｓ組み換えタンパク・フラグメントを、初めにコーティングバッファーと均質に混合し、その混合物を９６ウェルＮｕｎｃ−Ｉｍｍｕｎｏ（商標）プレート（ＮＵＮＣ（商標））の底部に加え、４℃で一晩静置し、タンパク質を底部に結合させた。プレートをＰＢＳＴで３回洗浄し、５％のスキムミルクを含む１００μｌのＴＢＳＴ溶液を加えて室温で１時間反応させ、再び、ＰＢＳＴで少なくとも３回洗浄した。ＰＢＳＴで希釈した試験用血清を一次抗体として使用し、ウェルに加え、室温で約２〜３時間静置した。プレートＰＢＳＴで少なくとも３回洗浄し、次に、二次抗体として、１００μｌのマウスの非ハタ科血清を室温で１時間静置し、ＰＢＳＴで少なくとも３回洗浄した。最後に、後部にアルカリ・ホスファターゼを連結させた１００μｌのヤギの非マウス血清を三次抗体として加え、室温で１時間静置し、プレートをＰＢＳＴで洗浄した。最後に、５０μｌの基質溶液ｐ−ニトロフェニルリン酸塩の錠剤を各ウェルに加え、室温で３０分間静置し（色調の顕在化に応じて）、細胞酵素分析装置でＯＤ405における吸収度を測定した。
【００３９】
結果
アルテミア・サリナ群
最初にハタ科の魚の血液を採取し、血清を分離し、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質のエピトープを含む組み換え融合タンパク質の給餌後の各段階において、ＥＬＩＳＡ法で、組み換えしたハタ科の魚の酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質の、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質エピトープについて、ハタ科の魚の血清の抗体力価を決定した。免疫付与後１０週間の時点における抗体力価を決定したところ、１２週間に至るまで、継続的に上昇しており、ＰＥＩａ−エピトープ群の抗体力価は、通常の飼料、アルテミア・サリナを含む飼料およびＰＥＩａフラグメントでカプセル化したアルテミア・サリナを含む飼料を与えた３つの対照群の力価に比べて高く、抗体力価は約３９５に至った（図１参照）。
【００４０】
１２週間の動物実験における飼料の合計消費量および飼料要求率を計算した。統計データから、１２週間におけるＰＥＩａ−エピトープ実験群および他の３つの対照群の飼料の合計消費量はほぼ等量であり、平均飼料要求率はＰＥＩａ−エピトープ実験群では１．４６、通常の飼料 、アルテミア・サリナを含む飼料およびＰＥＩａフラグメントでカプセル化したアルテミア・サリナを含む飼料を与えた３つの対照群では２．６７、２．５８、および２．８１であり、言い換えれば、酸性かつシステイン豊富な分泌タンパク質のエピトープを与えた実験群は、他に比べて、市場に出す前に消費した飼料の量が少なく、肉量の多いハタ科の魚が得られたことが判明した（表１参照）。
【表１】
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【００４１】
実施例２：ミオスタチンの免疫阻害:
ミオスタチン・エピトープ組み換えタンパク発現大腸菌（E. coli）の調製
５０Ｌの発酵タンクでエピトープを含んだ大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）株を培養するため、３５Ｌの発酵培養プロセスを確立した。４本の試験官に入った、３７℃でＬＢ／アンピシリン培地を用いて一晩培養した５ｍｌの細菌株を、それぞれ、０．２ＬのＬＢ／アンピシリン培地に接種し、合計１Ｌを３７℃においてＯＤ600が０．３になるまで振とう培養し、次いで、３５Ｌの培養培地に加え、サンプルを採取して２時間毎のＯＤ600を決定し、成長曲線の変化をモニタした。成長曲線に従って適切な時点をさらに選択し、０．１ｍＭの最終濃度を有するＩＰＴＧを加え、大腸菌が融合タンパク質を高濃度で発現するように誘発し、３７℃で３時間、振とう培養し、遠心分離して細菌を回収した。融合タンパク質の発現をＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウェスタンブロット法によって決定し、最適な３５Ｌの発行条件を決定した。
【００４２】
バイオカプセル化したアルテミア・サリナの経口ワクチンの調製
４ｇのアルテミア・サリナの乾燥卵の重量を測定し、２５０ｍｌのビーカーに入れ、１５０ｍｌの淡水を加えて０．５時間浸漬した。アルテミア・サリナの残った卵をスクリーンでろ過し、適量の淡水で洗浄した。アルテミア・サリナの残りの卵を５Ｌの培養液に加えて均一に分散させた。エアストーンを設置して空気の送入を開始し、空気の取り込み量を約５００ｃｍ3／分に調整した（溶存酸素が２ｐｐｍを超えるように維持）。照明装置を点灯し、室温および水温を２６〜２８℃に保った。２４時間後、空気の送入を停止し、照明装置を容器の底部に移し、走光性を利用してアルテミア・サリナの幼生を容器の底部に引き寄せ、５分間そのままにした。この時点で、非培養の卵および培養後の空になった卵の殻を水面に浮かせて、浮いた卵の殻をサイフォンの原理または水を吸い込むことができる他の手段を利用して除去した。培養した初齢の幼生をスクリーンで穏やかにろ過し（細孔１２０μｍ）、海水で穏やかに洗浄し、２Ｌの新鮮な培養液に加えた。孵化液を穏やかに攪拌し、アルテミア・サリナの幼生を均一に分散させた。１ｍｌの培養液を吸引し、１ｍｌの格子状のカウンタプレートに滴下した。幼生の摂動を防ぐため、５０℃の熱板上に１０分間、幼生を置くことによって死滅させて、カウントを容易にしてもよい。カウント時には、カウンタプレートを、観察のため、６０〜１００倍の倍率の解剖顕微鏡下に置いた。カウンタプレートを１０００格子になるように切断し、カウント方法は、１０×１０格子（０．１ｍｌあたりの幼生の数）を無作為に選択して幼生の数を数え、プレート上の他の位置の数も同様にカウントし、平均し、１０を乗じて、１ｍｌあたりの幼生の数、またはプレート上の幼生の合計数を得ることによってカウントしてもよい。カウント結果に従って、アルテミア・サリナの密度を、１ｍｌあたり５００個の幼生になるように調整した。エアストーンを設置し、空気の送入を開始し、空気の取り込み量が約３００〜４００ｃｍ3／分になるように調整した（溶存酸素が２ｐｐｍを超えるように維持）。室温および水温を２６〜２８℃に保った。１２〜１８時間の培養後、アルテミア・サリナは最初の脱皮を経て、２齢の幼生になった。この時点で、バイオカプセル化工程が行われる。
【００４３】
バイオカプセル化：大腸菌を遠心分離して１０００×ｇで沈降させた。余った培地をデカンテーションし、細菌を等量のＰＢＳで再懸濁し、細菌上の余剰培地を洗い流した。１０００×ｇで再び遠心分離を行い、細菌を適量のＰＢＳに再懸濁して、１×１０10ｃｆｕ／ｍＬの濃度の細菌液を調製した。滅菌法は加熱滅菌であり、細菌液を１０分間、６５℃の水浴に入れ、次に、滅菌液を１０分間、氷上に置いた。２齢の幼生のアルテミア・サリナを所望の容量にパッケージし、大腸菌の最終濃度が約１×１０10ｃｆｕ／ｍＬになるように、調製した細菌液を加え、空気を適切に２時間送入した。
【００４４】
カプセル化の結果の判定：サンプリングの前に空気の送入を停止し、２ｍｌのカプセル化したアルテミア・サリナ溶液を小さいスクリーン上に吸引し、大量の淡水で洗浄した。アルテミア・サリナの幼生を遠心分離管に吸引した。マイクロ遠心分離管を−２０℃の冷凍庫に１０分間入れて、 アルテミア・サリナの幼生を凍結して死滅させ、死滅したアルテミア・サリナの幼生を９ｃｍの培養皿に注ぎ、少量の滅菌水を加えてアルテミア・サリナの幼生を均一に分散させ、つぎに、２齢の幼生５００個をピペットマンを用いてマイクロ遠心分離管に吸引し、３００ｒｐｍで遠心分離して幼生を遠心分離管の底部に集め、遠心分離管内の水を除去し、１００μＬの滅菌水に置き換えた。アルテミア・サリナの幼生を、マイクロ遠心分離管内で微小粉砕用の棒を用いて注意深く粉砕した。サンプルをＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウェスタンブロット法に供した。
【００４５】
動物実験
アルテミア・サリナ群：実験動物を４群：実験群のＰＥＩａ−エピトープ群、および、それぞれ、通常の飼料 、アルテミア・サリナ含有飼料およびＰＥＩａフラグメントを用いてカプセル化したアルテミア・サリナを含む飼料を与えた、３つの対照群に分けた。約１５７ｇの平均体重および５〜６インチ（１２．７〜１５．２４ｃｍ）の平均長を有する合計４０尾のチャイロマルハタを使用し、実験期間は約４ヶ月であった。動物には、毎月曜日、火曜日、水曜日に抗原を含む飼料を与え、毎木曜日、金曜日、土曜日に通常の飼料を与え、日曜日には絶食させ、魚の体液を免疫付与前および免疫付与後２週間の時点で採取し、これを２０〜４０分間放置した後に固化し、遠心分離し、ＥＬＩＳＡ用の血液の上清成分のサンプルを取り、血中の内因性タンパク質に対する抗体力価を決定した。
【００４６】
アルテミア・サリナを含む飼料の調製：
ろ過したまたは未ろ過の２齢のアルテミア・サリナの水を可能な限り除去し、凍結乾燥機を用いて凍結乾燥して粉末化した。アルテミア・サリナの粉末を、通常の粉砕した飼料と１：１０００の比で混合し、再び粒化した。
【００４７】
食品組成物の調製：
細菌液を濃縮し、凍結乾燥機を用いて凍結乾燥して粉末化した。細菌粉末を１ｇの飼料に対して３．３×１０9ｃｆｕの大腸菌粉末の比で粉砕した飼料と混合し、再び粒化した。
【００４８】
結果
アルテミア・サリナ群
最初にハタ科の魚の血液を採取し、血清を分離し、ミオスタチンエピトープを含めた組み換えエピトープ を含む組み換え融合タンパク質の給餌後の各段階において、ＥＬＩＳＡ法で、組み換えしたハタ科の魚のミオスタチンのＣ末端エピトープについて、ハタ科の魚の血清の抗体力価を決定した。免疫付与後１０週間の時点における抗体力価を決定したところ、１６週間に至るまで、継続的に上昇しており、ＰＥＩａ−エピトープ群の抗体力価は、通常の飼料、アルテミア・サリナを含む飼料およびＰＥＩａフラグメントでカプセル化したアルテミア・サリナを含む飼料を与えた３つの対照群の力価に比べて高く、抗体力価は約９２０に至った（図３参照）。
【００４９】
４ヶ月の動物実験における飼料の合計消費量および飼料要求率を計算した。統計データから、４ヶ月におけるＰＥＩａ−エピトープ実験群および他の３つの対照群の飼料の合計消費量はほぼ等量であり、平均飼料要求率はＰＥＩａ−エピトープ実験群では１．３５、通常の飼料 、アルテミア・サリナを含む飼料およびＰＥＩａフラグメントでカプセル化したアルテミア・サリナを含む飼料を与えた３つの対照群では１．７２、１．７６、および１．８２であり、言い換えれば、ミオスタチンのエピトープを与えた実験群は、他に比べて、市場に出す前に消費した飼料の量が少なく、肉量の多いハタ科の魚が得られたことが判明した（表２参照）。
【表２】
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【００５０】
本発明の実施の形態について例証し、説明してきたが、当業者によるさまざまな変更および改善が可能である。本発明は例証される特定の形態に限定されず、本発明の精神および範囲から逸脱していないすべての変更は添付の特許請求の範囲に定義される範囲内にあることが意図されている。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【配列表】
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