(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
（１）血漿をインキュベートし、アンジオテンシン−Ｉを産生させる反応と、（２）産生したアンジオテンシン−ＩをＥＩＡにより定量する反応から成る血漿レニンの測定法において、血漿のインキュベートを行ったあと、レニン活性を阻害し、アンジオテンシン−Ｉの産生を抑制するために、アリスキレンまたはその塩を用いることを特徴とする、血漿レニン活性の測定法。
【請求項２】
（１）血漿をインキュベートし、アンジオテンシン−Ｉを産生させる反応と、（２）産生したアンジオテンシン−ＩをＥＩＡにより定量する反応から成る血漿レニン活性の測定に使用する試薬キットであって、血漿のインキュベートを行ったあと、レニン活性を阻害し、アンジオテンシン−１の産生を抑制するための試薬として、アリスキレンまたはその塩を添付することを特徴とする、血漿レニン活性の測定試薬キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血漿レニン活性の測定法およびキットに関するものである。
【背景技術】
【０００２】
血漿レニン活性は、１９６４年、ブッチヤー（Ｂｏｕｃｈｅｒ）らにより開発された、その後いくつもの改良が加えられ、現在は実施例に記載した方法が標準法といわれている（非特許文献１）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００３】
【非特許文献１】日内分泌会誌、第５７巻、第１１号、１６４５−１６５６頁（１９８１年）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
近年、副腎の腫瘍でアルドステロンを過剰に産生する原発性アルドステロン症は、全高血圧の約５％程度を占めることが明らかにされ、従来考えられてきた割合よりも約１０倍高いことから世界的に注目されている。
【０００５】
通常、原発性アルドステロン症の診断には、血液中の血漿アルドステロン濃度及び血漿レニン活性を測定して、血漿アルドステロン濃度と血漿レニン活性比を検査することが、重要であると世界的にも確認され、ますますレニン活性の正確な測定が重要視されてきている。
【０００６】
しかしながら、本発明者が検討した結果、後述実施例で示すように、ペプスタチン-Ａを使用する標準法では、レニン活性を完全に阻害したとは言えず、アンジオテンシン-Ｉの産生を完全に抑制できていないことが明らかとなった。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
そこで本発明者は、鋭意検討した結果、ペプスタチン-Ａの代わりに、アリスキレンと称されているδ−アミノ−γ−ヒドロキシ−ω−アリール−アルカン酸アミド誘導体またはその塩を用いることで、レニン活性を完全に阻害し、アンジオテンシン-Ｉの産生を完全に抑制できることを見出し、本発明を完成させた。したがって、本発明は以下のとおりである。
【０００８】
（１）血漿レニン活性を測定する際、レニン活性を阻害し、アンジオテンシン-Ｉの産生を抑制するために、δ−アミノ−γ−ヒドロキシ−ω−アリール−アルカン酸アミド誘導体またはその塩を用いることを特徴とする、血漿レニン活性の測定法。
【０００９】
（２）血漿レニン活性の測定に使用する試薬キットであって、レニン活性を阻害し、アンジオテンシン−１の産生を抑制するための試薬として、δ−アミノ−γ−ヒドロキシ−ω−アリール−アルカン酸アミド誘導体またはその塩を添付することを特徴とする、血漿レニン活性の測定試薬キット。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の最大の特徴は、ペプスタチン−Ａの代わりに、アリスキレンと称されているδ−アミノ−γ−ヒドロキシ−ω−アリール−アルカン酸アミド誘導体またはその塩を用いることで、これにより、従来の標準法と比較し、以下の効果を奏し、産業上きわめて有益である。
【００１１】
（１）ペプスタチン−Ａより安価なアリスキレンを使用でき、アリスキレンは化学合成品であるため、比較的安価に安定的に入手することが可能である。
【００１２】
（２）ペプスタチン−Ａは、一般に遊離酸であるため、水あるいは種々の緩衝液、及び有機溶媒に難溶であり、高濃度に溶解することが困難である。一方、アリスキレンは一般に塩酸塩またはヘミフマル酸塩の形で供給され、いずれも水、緩衝液、有機溶媒に可溶である。
【００１３】
（３）ペプスタチン−Ａは、溶解性が悪いため高濃度の溶液が調製できず、高濃度あるいは高比活性のレニン活性を抑制することはできない。一方、アリスキレンは、低濃度の溶液であっても、高濃度あるいは高い比活性のレニン活性を抑制することができ、従って検体中に含まれるアンジオテンシン−Ｉの濃度を長期間一定に保つことがはじめて可能となった。
【００１４】
（４）通常のレニン活性測定キットはトレーサー溶液中にレニン阻害剤としてのペプスタチン−Ａを含む構成となっている。このことはキットを構成する試薬数を少なく抑えるができる構成となっている一方で、血漿のインキュベート（アンジオテンシン−Ｉの産生反応）を行ったあと直ちに測定を行わなければならないことを示している。すなわち直ちに測定を開始しなければ血漿のインキュベートから測定までの間にレニンにより新たなアンジオテンシン−Ｉが産生される可能性があるため、信頼できる測定値を得ることが困難である。
【００１５】
また、ペプスタチン−Ａのレニンに対する阻害効果が不完全であるために、測定する検体によっては測定中に新たにアンジオテンシン−Ｉが産生されてしまう可能性も否定できない。アリスキレンを用いる本発明の系では血漿のインキュベート（アンジオテンシン−Ｉの産生反応）を行った後アリスキレンを含む停止液を検体に添加することで、レニンの活性を完全に抑制することができる。従って血漿のインキュベートから測定までに時間が経過してしまっても、安定したアンジオテンシン−Ｉ測定値を得ることが可能になる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】図１は、アンジオテンシン−Ｉ産生実験において、レニンの阻害剤としてペプスタチン−Ａ（１ｍＭ）を用いた場合のアンジオテンシン−Ｉ濃度の経時的変化を示す。
【図２】図２は、アンジオテンシン−Ｉ産生実験において、レニンの阻害剤としてペプスタチン−Ａ（３ｍＭ）を用いた場合のアンジオテンシン−Ｉ濃度の経時的変化を示す。
【図３】図３は、アンジオテンシン−Ｉ産生実験において、レニンの阻害剤としてペプスタチン−Ａ（１０ｍＭ）を用いた場合のアンジオテンシン−Ｉ濃度の経時的変化を示す。
【図４】図４は、アンジオテンシン−Ｉ産生実験において、レニンの阻害剤としてアリスキレン（２μＭ）を用いた場合のアンジオテンシン−Ｉ濃度の経時的変化を示す。
【図５】図５は、アンジオテンシン−Ｉ産生実験において、レニンの阻害剤としてアリスキレン（５μＭ）を用いた場合のアンジオテンシン−Ｉ濃度の経時的変化を示す。
【図６】図６は、アンジオテンシン−Ｉ産生実験において、レニンの阻害剤としてアリスキレン（１５μＭ）を用いた場合のアンジオテンシン−Ｉ濃度の経時的変化を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
本発明は、血漿レニン活性を測定する際、レニン活性を阻害し、アンジオテンシン-Ｉの産生を抑制するために、アリスキレンを用いることを特徴とする、血漿レニン活性の測定法に関するものである。
【００１８】
使用するサンプルとしては、ヒト、あるいは動物由来の血漿であればよい。
【００１９】
本発明に使用するアリスキレンとしては、δ−アミノ−γ−ヒドロキシ−ω−アリール−アルカン酸アミド誘導体またはその塩を例示することができる。この化合物群と塩は公知の化合物であり、いずれも使用可能である。
【００２０】
具体的には、特表2007-512382に記載の化合物を例示することができ、より具体的には２（Ｓ），４（Ｓ），５（Ｓ），７（Ｓ）−Ｎ−（２−ｃａｒｂａｍｏｙｌ−２−ｍｅｔｈｙｌｐｒｏｐｙｌ）−５−ａｍｉｎｏ−４−ｈｙｄｒｏｘｙ−２，７ｄｉｉｓｏｐｒｏｐｙｌ−８−（４−ｍｅｔｈｏｘｙ−３−（３−ｍｅｔｈｏｘｙｐｒｏｐｏｘｙ）ｐｈｅｎｙｌ）ｏｃｔａｎａｍｉｄｅまたはその塩（塩酸塩またはヘミフマル酸塩など）を好適なものとして例示することができる。
【００２１】
アリスキレンの使用濃度としては、レニン活性を阻害できる濃度であれば良く、具体的には０．１〜１００μＭの範囲から適宜小規模試験にて決定することができる。
【００２２】
本発明のレニン活性測定は、レニン活性阻害剤として、ペプスタチン-Ａの代わりに、アリスキレンを用いる以外は、レニン活性測定法の標準法に準じて、（１）血漿とインキュベートし、アンジオテンシン-Ｉを産生させる反応と（２）産生したアンジオテンシン-ＩをＥＩＡにより定量する反応に分け、実施すればよく、使用する試薬も、たとえば、実施例に示した試薬を使用することができるが、例示された試薬でなくても、この分野で常用されている他の試薬にも変更可能である。
【００２３】
ただし、従来の標準法では、血漿のインキュベート（アンジオテンシン−Ｉの産生反応）を行ったあと直ちに測定を行わなければならなかったが、本発明方法では、レニンの活性を完全に抑制することができるため、血漿のインキュベートからＥＩＡによる測定までに時間が経過してしまっても、安定したアンジオテンシン−Ｉ測定値を得ることが可能になる。
【実施例】
【００２４】
以下、実施例をあげて具体的に説明するが、本発明はこれらによって何ら限定されるものではない。
【００２５】
本発明法の測定手順
本発明の血漿レニン活性測定キットを、以下の試薬類により構成される。
Ａ．ヤギ抗ウサギＩｇＧ抗体固相プレート
Ｂ．アンジオテンシン−Ｉ標準液（０ｎｇ／ｍＬ〜６０ｎｇ／ｍＬ）
Ｃ．ＨＲＰ標識アンジオテンシン−Ｉ液（ヤマサ醤油社製、５ｐｍｏｌ／ｍＬ）
Ｄ．ウサギ抗アンジオテンシン−Ｉポリクローナル抗体液（Ｂａｃｈｅｍ社製、０．１μｇ／ｍＬ）
Ｅ．洗浄液（０．０５％ＴＷＥＥＮ２０含有ＰＢＳ）
Ｆ．発色液Ａ（３，３，５，５−テトラメチルベンジジン）
Ｇ．発色液Ｂ（過酸化水素水）
Ｈ．発色停止液（硫酸）
Ｉ．ｐＨ調整液（ＥＤＴＡ含有クエン酸緩衝液）
Ｊ．阻害剤Ａ（フッ化フェニルメチルスルホニル）
Ｋ．阻害剤Ｂ（ペプスタチン−Ａまたはアリスキレン）
【００２６】
また、測定用試料として、４種類の濃度でリコンビナントレニンを添加したヒト血漿を用意した。
【００２７】
レニン活性測定法の標準法においては、（１）血漿とインキュベートし、アンジオテンシン−Ｉを産生させる反応と（２）産生したアンジオテンシン−ＩをＥＩＡにより定量する反応に分けられるが、今回は測定中にレニンにより新たにアンジオテンシン−Ｉが産生されるかどうかを確認するため、以下の（５）に示すように、阻害剤Ｂ添加後の加温開始後、１、３、６時間後にサンプリングを行い、それぞれのアンジオテンシン−Ｉを測定した。
【００２８】
＜アンジオテンシン−Ｉ産生手順＞
（１）リコンビナントレニンを添加した血漿、ｐＨ調整液、阻害剤Ａを２０：２：１の比で混合した。
（２）（１）の試料を等容量ずつ分注した。
（３）（２）の試料に対し、さらに等容量の阻害剤Ｂを添加し、混合した。
（４）阻害剤Ｂを添加した（３）の試料を一度凍結後、３０℃の水浴に移し加温した。
（５）加温開始１、３、６時間後にサンプリングを行い、直ちに凍結した。
（６）全てのサンプルを回収後一斉に解凍し、以下に記述する手順に従いＥＩＡを行い、各試料中に含まれるアンジオテンシン−Ｉの濃度を定量した。
【００２９】
＜ＥＩＡ手順＞
（１）ヤギ抗ウサギＩｇＧ抗体固相プレートにアンジオテンシン−Ｉ標準液または各試料を５０μＬ／ウェル添加した。
（２）さらにＨＲＰ標識アンジオテンシン−Ｉ液及びウサギ抗アンジオテンシン−Ｉポリクローナル抗体液をそれぞれ５０μＬ／ウェル添加した。
（３）プレートをプレートシェーカーに載せ、２５℃にて、８００ｒｐｍの速度で撹拌しながら１時間反応させた。
（４）ウェル内の反応液を吸引除去し、洗浄液（０．０５％ＴＷＥＥＮ２０含有ＰＢＳ）を３００μＬ／ウェル添加し、吸引する洗浄操作を計３回行った。
（５）発色液Ａと発色液Ｂを用時等量混合し調製した発色液を１００μＬ／ウェル添加し、２０分間発色させた。
（６）発色停止液を１００μＬ／ウェル添加し、各ウェルの４５０ｎｍにおける吸光度をプレートリーダーにて測定した。
（７）標準液の吸光度より検量線を作成し、その検量線より各試料のアンジオテンシン−Ｉを算出した。
【００３０】
測定結果
図１〜図３に、レニン阻害剤（阻害剤Ｂ）として１ｍＭ〜１０ｍＭ  ペプスタチン−Ａ  ５０％メタノール溶液を用いた場合のアンジオテンシン−Ｉ濃度の経時変化を示す。１ｍＭペプスタチン−Ａを用いた場合は、いずれのレニン添加血漿においても反応時間の延長に伴うアンジオテンシン−Ｉ濃度の増加が見られた。すなわち１ｍＭペプスタチン−Ａではレニンの活性を完全に抑制できていない。ペプスタチン−Ａの濃度を３あるいは１０ｍＭに増量すると経時的なアンジオテンシン−Ｉ濃度の増加は抑制される傾向が見られたが、それでも完全に抑制されなかった。また、１０ｍＭペプスタチン−Ａは澄明な溶液とならず、懸濁状態となっており、このことはキットとしての試薬の供給上不適切な形態である。
【００３１】
一方、図４〜図６にはレニン阻害剤（阻害剤Ｂ）として１５〜２μＭ  アリスキレンヘミフマル酸塩  ５０％メタノール溶液を用いた場合のアンジオテンシン−Ｉ濃度の経時変化を示した。いずれの使用濃度においても、反応時間の延長に伴うアンジオテンシン−Ｉ濃度の増加は全く見られなかった。このことは、アリスキレンの添加によりレニンの活性を完全に抑制し、従ってアンジオテンシン−Ｉの測定値が安定することを示している。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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