(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）ＡＴＣＣ３３９７０由来の、アミノ酸序列を有する野生型サイコースエピマー化酵素の変異体であって、前記アミノ酸序列番号（以下、‘序列番号’）３３番がイソロイシン（Ｉｌｅ）から、システイン（Ｃｙｓ）及びバリン（Ｖａｌ）からなる群より選ばれた一つのアミノ酸に置換されたアミノ酸序列を有する、熱安定性が向上したサイコースエピマー化酵素変異体。
【請求項２】
アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）ＡＴＣＣ３３９７０由来の、アミノ酸序列を有する野生型サイコースエピマー化酵素の変異体であって、前記序列番号３３番がイソロイシンから、システイン及びバリンからなる群より選ばれた一つのアミノ酸に置換され、前記序列目録１の序列番号２１３番がセリンからシステインに置換されたアミノ酸序列を有する、熱安定性が向上したサイコースエピマー化酵素変異体。
【請求項３】
請求項１又は請求項２に記載のサイコースエピマー化酵素変異体を暗号化する遺伝子を含む組換え発現ベクター。
【請求項４】
請求項３に記載の組換え発現ベクターで形質転換されたことを特徴とする、コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）ｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２（受託番号ＫＣＣＭ１１２０４Ｐ）。
【請求項５】
請求項１又は請求項２に記載のサイコースエピマー化酵素変異体を用いて果糖からサイコースを生産する方法。
【請求項６】
請求項４に記載の組換えられたコリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）ｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２（受託番号ＫＣＣＭ１１２０４Ｐ）を用いて果糖からサイコースを生産する方法。
【請求項７】
請求項１又は請求項２に記載の前記サイコースエピマー化酵素変異体を固定化させた担体で充填したカラムを含むことを特徴とする、サイコース生産用固定化反応器。
【請求項８】
請求項７に記載の前記固定化反応器に果糖溶液を供給してサイコースを生産する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、熱安定性を向上させた、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）由来のサイコースエピマー化酵素変異体及びこれを用いたサイコースの生産方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
Ｄ―サイコース（Ｄ―ｐｓｉｃｏｓｅ）は、天然物質内にほとんど存在しないか、又は少量のみ存在するため稀少糖（ｒａｒｅ  ｓｕｇａｒ）として知られている単糖類であって、超低熱量でありながらも砂糖と類似する程の甘味を有しており、機能性甘味料として広く用いられている。
【０００３】
サイコースは、果糖（ｆｒｕｃｔｏｓｅ）のエピマーであって、甘味の強度と種類は果糖と非常に類似するが、果糖とは異なり、体内でほとんど代謝されないので熱量がゼロに近く、脂質合成に関与する酵素の活性を抑制して腹部肥満を減少させる効能を有するので、ダイエット食品の有効成分として有用に使用することができる。また、砂糖代替甘味料として広く用いられているキシリトールなどの糖アルコール類の場合、一定量以上摂取すると下痢を誘発するなどの副作用を起こす一方、サイコースは副作用がほとんどないと知られている（Ｍａｔｓｕｅ，Ｔ．，Ｙ．Ｂａｂａ，Ｍ．Ｈａｓｈｉｇｕｃｈｉ，Ｋ．Ｔａｋｅｓｈｉｔａ，Ｋ．Ｉｚｕｍｏｒｉ、及びＨ．Ｓｕｚｕｋｉ．２００１．Ｄｉｅｔａｒｙ  Ｄ―ｐｓｉｃｏｓｅ、ａ  Ｃ―３  ｅｐｉｍｅｒ  ｏｆ  Ｄ―ｆｒｕｃｔｏｓｅ，ｓｕｐｐｒｅｓｓｅｓ  ｔｈｅ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｏｆ  ｈｅｐａｔｉｃ  ｌｉｐｏｇｅｎｉｃ  ｅｎｚｙｍｅｓ  ｉｎ  ｒａｔｓ．Ａｓｉａ  Ｐａｃ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｎｕｔｒ．１０：２３３―２３７.；Ｍａｔｓｕｏ，Ｔ．，及びＫ．Ｉｚｕｍｏｒｉ．２００４.Ｄ―ｐｓｉｃｏｓｅ，ａ  ｒａｒｅ  ｓｕｇａｒ  ｔｈａｔ  ｐｒｏｖｉｄｅｓ  ｎｏ  ｅｎｅｒｇｙ  ａｎｄ  ａｄｄｉｔｉｏｎａｌｌｙ  ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｆｏｒ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ．Ａｓｉａ  Ｐａｃ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｎｕｔｒ．１３：Ｓ１２７）。
【０００４】
このような理由により、サイコースはダイエット甘味料として脚光を浴びており、食品産業分野においてサイコースを効率的に生産できる方法に対する開発の必要性が高まっている。このようにサイコース開発の必要性が台頭するにつれて、従来の生物学的な方法を用いて果糖からサイコースを生産する多様な研究が進められてきた。果糖をサイコースに転換させ得る酵素としては、アグロバクテリウム・ツメファシエンス由来のサイコースエピマー化酵素（Ｄ―ｐｓｉｃｏｓｅ  ３―ｅｐｉｍｅｒａｓｅ）及びシュードモナス・チコリ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｃｉｃｈｏｒｉｉ）又はロドバクター・スフェロイデス（Ｒｈｏｄｏｂａｃｔｅｒ  ｓｐｈａｅｒｏｉｄｅｓ）由来のタガトースエピマー化酵素が知られており、サイコースエピマー化酵素がタガトースエピマー化酵素に比べて高い活性を示すことで知られている。
【０００５】
コリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属菌株は、Ｌ―リシン、Ｌ―トレオニン及び各種核酸を含む飼料、医薬品及び食品などの分野で多様な用途を有する化学物質を生産する産業用微生物である。このようなコリネバクテリウム属菌株は、ＧＲＡＳ（Ｇｅｎｅｒａｌｌｙ  Ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ  Ａｓ  Ｓａｆｅ）菌株であって、遺伝子操作及び大量培養に容易な菌株特性を有している。さらに、多様な工程条件で高い安定性を有する菌株であって、他の細菌に比べて相対的に堅い細胞膜構造を有しているので、結果的に、高い糖濃度などによる高い浸透圧下でも菌体が安定的な状態で存在するという生物学的特性を有している。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】大韓民国登録特許公報Ｂ１第１０―０７４４４７９号（２００７．０８．０１．公告）
【特許文献２】大韓民国公開特許公報Ａ第１０―２０１１―００３５８０５号（２０１１．０４．０６．公開）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明者は、活性は高いが、熱安定性が非常に低いため活用度が低下する、アグロバクテリウム・ツメファシエンス由来のサイコースエピマー化酵素の問題を発見した上で、今日の重要な食品素材として関心度の高いサイコースを産業的に大量生産できるように、熱安定性を向上させたサイコースエピマー化酵素変異体を発明し、これを用いたサイコースの連続的生産方法を発明するに至った。
【０００８】
具体的に、本発明は、特定の序列番号のアミノ酸を置換させることによって、熱安定性を向上させたサイコースエピマー化酵素変異体を提供することを目的とする。
【０００９】
また、本発明の一様態は、前記のサイコースエピマー化酵素変異体の遺伝子を含む組換え発現ベクター、及び前記組換え発現ベクターで形質転換された組換え菌株を提供することを目的とする。
【００１０】
また、本発明は、前記酵素変異体又は組換え菌株を用いて製造された固定化反応器、及び前記固定化反応器を用いてサイコースを連続的に生産する方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明は、特定の序列番号のアミノ酸を置換させることによって、熱安定性を向上させたサイコースエピマー化酵素変異体を提供する。また、本発明は、前記のサイコースエピマー化酵素変異体の遺伝子を含む組換え発現ベクター、及び前記組換え発現ベクターに形質転換された組換え菌株を提供する。また、本発明は、前記酵素変異体又は組換え菌株を用いて製造された固定化反応器、及び前記固定化反応器を用いてサイコースを連続的に生産する方法を提供する。
【００１２】
より具体的に、本願発明の一様態は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）由来の野生型サイコースエピマー化酵素の変異体であって、アミノ酸序列番号（以下、‘序列番号'）３３番がイソロイシン（Ｉｌｅ）から、ロイシン（Ｌｅｕ）、システイン（Ｃｙｓ）及びバリン（Ｖａｌ）からなる群より選ばれた一つのアミノ酸に置換されたアミノ酸序列、又は序列番号２１３番がセリン（Ｓｅｒ）からシステインに置換されたアミノ酸序列を有する、熱安定性が向上したサイコースエピマー化酵素変異体を提供する。
【００１３】
本発明の更に他の一様態によると、アグロバクテリウム・ツメファシエンス由来の野生型サイコースエピマー化酵素の変異体であって、序列番号３３番がイソロイシンから、ロイシン、システイン及びバリンからなる群より選ばれた一つのアミノ酸に置換され、序列番号２１３番がセリンからシステインに置換されたアミノ酸序列を有する、熱安定性が向上したサイコースエピマー化酵素変異体を提供する。
【００１４】
本発明の更に他の一様態によると、前記サイコースエピマー化酵素変異体を暗号化する遺伝子を含む組換え発現ベクターを提供する。
【００１５】
本発明の更に他の一様態によると、前記組換え発現ベクターで形質転換されたコリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）ｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２を提供する。
【００１６】
本発明の更に他の一様態によると、前記サイコースエピマー化酵素変異体を用いて果糖からサイコースを生産する方法を提供する。
【００１７】
本発明の更に他の一様態によると、前記の組換えられたコリネバクテリウム・グルタミカムｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２を用いて果糖からサイコースを生産する方法を提供する。
【００１８】
本発明の更に他の一様態によると、前記サイコースエピマー化酵素変異体を固定化させた担体で充填したカラムを含む、サイコース生産用固定化反応器を提供する。
【００１９】
本発明の更に他の一様態によると、前記固定化反応器に果糖溶液を供給してサイコースを生産する方法を提供する。
【発明の効果】
【００２０】
本発明は、特定の序列番号のアミノ酸を置換させたサイコースエピマー化酵素変異体に関し、前記サイコースエピマー化酵素変異体は、酵素活性が低下しないとともに熱安定性が著しく向上した特性を有しており、今日の重要な食品素材として脚光を浴びているサイコースをより効率的に大量に生産できるようにするという利点を有する。
【００２１】
具体的に、本発明の前記酵素変異体は、野生型サイコースエピマー化酵素に比べて、一般的な酵素反応温度で遥かに延長された半減期を有するので、サイコースを生産するにおいて一度作られたサイコースエピマー化酵素をより長期間使用できるようにし、生産時間及び費用の節減によって生産効率を高めることができるという利点を有する。
【００２２】
また、本発明は、前記サイコースエピマー化酵素変異体を発現できるように組換えられた組換えベクター、及び前記組換えベクターで形質転換された組換え菌株であるコリネバクテリウム・グルタミカムｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２を提供し、前記酵素変異体又は前記組換え菌株を用いて固定化反応器を形成し、サイコースを連続的に大量生産できる方法を提供するという利点を有する。
【図面の簡単な説明】
【００２３】
【図１】アグロバクテリウム・ツメファシエンス由来のサイコースエピマー化酵素変異体の遺伝子を含む組換え発現ベクターを示した図である。
【図２】ＤＳＣ（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ  ｓｃａｎｎｉｎｇ  ｃａｌｏｒｉｍｅｔｅｒ）を用いたアグロバクテリウム・ツメファシエンス由来のサイコースエピマー化酵素の野生型及び変異体（Ｓ２１３Ｃ、Ｉ３３Ｌ、及びＩ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃ）の見かけの融解プロファイルを示したグラフである。このグラフのピーク部分は酵素の見かけの融解温度を示す。
【図３】アグロバクテリウム・ツメファシエンス由来のサイコースエピマー化酵素の野生型及び変異体（Ｓ２１３Ｃ、Ｉ３３Ｌ、及びＩ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃ）の分子モデリング結果を示す図である。（ａ）及び（ｂ）は、それぞれ野生型及びＩ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃ変異体の二次構造を示したもので、（ｃ）及び（ｄ）は、それぞれ野生型及びＳ２１３Ｃ変異体のアミノ酸序列２１３番目のアミノ酸（野生型の場合はセリン（Ｓｅｒ）、Ｓ２１３Ｃ変異体の場合はシステイン（Ｃｙｓ））周辺の推定上の水素結合を示したものであって、（ｅ）及び（ｆ）は、それぞれ野生型及びＩ３３Ｌ変異体の芳香族グループ間の相互作用を示したものである。
【図４】本発明の一様態に係る方法において、変異体を用いた固定化反応器の反応温度５０℃での運転安定性を示したグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００２４】
本発明は、特定の序列番号のアミノ酸を置換させることによって、熱安定性を向上させたサイコースエピマー化酵素変異体を提供する。また、本発明は、前記のサイコースエピマー化酵素変異体の遺伝子を含む組換え発現ベクター、及び前記組換え発現ベクターで形質転換された組換え菌株を提供する。また、本発明は、前記酵素変異体又は組換え菌株を用いて製造された固定化反応器、及び前記固定化反応器を用いてサイコースを連続的に生産する方法を提供する。
【００２５】
以下、本願発明についてより詳細に説明する。本願明細書に記載されていない内容は、本願発明の技術分野又は類似する分野で熟練した者であれば十分に認識して類推可能なものであるので、それについての説明は省略する。
【００２６】
本発明の一様態によると、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）由来の野生型サイコースエピマー化酵素の変異体であって、アミノ酸序列番号（以下、‘序列番号'）３３番がイソロイシン（Ｉｌｅ）から、ロイシン（Ｌｅｕ）、システイン（Ｃｙｓ）及びバリン（Ｖａｌ）からなる群より選ばれた一つのアミノ酸に置換されたアミノ酸序列、又は序列番号２１３番がセリン（Ｓｅｒ）からシステインに置換されたアミノ酸序列を有することを特徴とする、熱安定性が向上したサイコースエピマー化酵素変異体を提供する。
【００２７】
前記アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）は、公知の菌株であって、アグロバクテリウム・ツメファシエンスＡＴＣＣ  ３３９７０であり得る。
【００２８】
前記アグロバクテリウム・ツメファシエンス由来の野生型サイコースエピマー化酵素は、大韓民国公開特許公報（Ａ）第１０―２０１１―００３５８０５号の序列目録１のアミノ酸序列を有したり、又はその機能性断片であり得る。前記"機能性断片"とは、序列目録番号１のアミノ酸序列に一部のアミノ酸の置換、挿入又は欠失などによる変異を含み、果糖をサイコースに転換させる活性を有する断片を意味する。
【００２９】
前記サイコースエピマー化酵素変異体は、前記のアグロバクテリウム・ツメファシエンス由来の野生型サイコースエピマー化酵素のアミノ酸序列のうち、特定の序列番号のアミノ酸が置換されたアミノ酸序列を有する酵素を意味する。
【００３０】
前記サイコースエピマー化酵素変異体は、より望ましくは、序列番号３３番がイソロイシンからロイシンに置換されたものであり得る。
【００３１】
本発明の更に他の一様態によると、前記サイコースエピマー化酵素の変異体は、序列番号３３番がイソロイシンから、ロイシン、システイン及びバリンからなる群より選ばれた一つのアミノ酸に置換され、序列番号２１３番がセリンからシステインに置換されたアミノ酸序列を有することを特徴とする、熱安定性が向上したサイコースエピマー化酵素変異体を提供する。
【００３２】
前記サイコースエピマー化酵素変異体は、より望ましくは、序列番号３３番がイソロイシンからロイシンに置換され、序列番号２１３番がセリンからシステインに置換されたものであり得る。
【００３３】
本発明の更に他の一様態によると、サイコースエピマー化酵素変異体の遺伝子を含む組換え発現ベクターを提供する（図１）。
【００３４】
本発明の更に他の一様態によると、前記組換え発現ベクターで形質転換されたことを特徴とする、コリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）ｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２を提供する。
【００３５】
前記組換えられた菌株コリネバクテリウム・グルタミカムｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２は、ブダペスト条約に従ってソウル西大門区弘済１洞所在の韓国微生物保存センター（Ｋｏｒｅａｎ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｅｎｔｅｒ  ｏｆ  Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ、ＫＣＣＭ）に２０１１年８月１８日付けで受託番号ＫＣＣＭ１１２０４Ｐとして寄託した。
【００３６】
本発明の更に他の一様態によると、前記サイコースエピマー化酵素変異体又は前記組換えられたコリネバクテリウム・グルタミカムｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２を用いて果糖からサイコースを生産する方法を提供する。
【００３７】
本発明の更に他の一様態によると、前記サイコースエピマー化酵素変異体又は前記組換えられたコリネバクテリウム・グルタミカムｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２を固定化させた担体で充填したカラムを含むことを特徴とする、サイコース生産用固定化反応器を提供する。
【００３８】
前記"固定化反応器"とは、サイコースを生産するための反応が、担体に固定化された菌株又は酵素によって、又は担体に固定化された菌株又は酵素が充填されたカラムを通して起きる反応器を意味する。すなわち、固定化は、生物学的活性を提供する物質、この場合、サイコースエピマー化酵素又はこれを含む菌株が担体に固定化されたことを意味する。
【００３９】
前記酵素変異体又は組換え菌株を固定化させる担体としては、本発明の技術分野又は類似する分野で酵素又は菌株の固定化用途で使用可能な担体であればいずれのものも使用することができ、望ましくは、アルギン酸ナトリウム（ｓｏｄｉｕｍ  ａｌｇｉｎａｔｅ）を使用することができる。
【００４０】
アルギン酸ナトリウムは、海藻の細胞壁に豊富に存在する天然コロイド性多糖類であって、マンヌロン酸（β―Ｄ―ｍａｎｎｕｒｏｎｉｃ  ａｃｉｄ）及びグルロン酸（α―Ｌ―ｇｌｕｒｏｎｉｃ  ａｃｉｄ）で構成されており、含量の面では無作為でベータ―１，４結合をなして形成され、菌体や酵素が安定的に固定化され得るので有利である。
【００４１】
本発明の更に他の一様態によると、前記固定化反応器に果糖溶液を供給してサイコースを生産する方法を提供する。
【００４２】
本明細書で使用される用語“半減期”は、酵素又は酵素変異体の酵素反応初期の相対的活性を１００としたとき、前記相対的活性が５０になるまでにかかる期間を意味する。
【００４３】
本明細書で使用される用語“運転安定性”は、目的産物（本願ではサイコース）を連続的に生産するために、反応器を初期活性に対比して適切な水準の生産性を維持しながら運転できることを意味し、通常、運転期間（時間単位など）で表示される。
【００４４】
以下、実施例及び比較試験例を記述することによって本願発明をより詳細に説明する。ただし、下記の実施例及び比較試験例は、本願発明の一例示に過ぎなく、本願発明の内容がこれに限定されると解釈してはならない。
【００４５】
サイコースエピマー化酵素及びブドウ糖異性化酵素の活性測定方法
【００４６】
サイコースエピマー化酵素の活性は、果糖を基質として用いて測定した。２０ｍＭの基質が含有された５０ｍＭのＰＩＰＥＳ（ｐｉｐｅｒａｚｉｎｅ―Ｎ，Ｎ'―ｂｉｓ（２―ｅｔｈａｎｅｓｕｌｆｏｎｉｃ  ａｃｉｄ））緩衝溶液ｐＨ８．０中に前記酵素又は前記酵素を含む試料を添加して５０℃で１０分間反応させた後、前記反応液に最終濃度が２００ｍＭになるように塩酸を添加して反応を中断させた。果糖とサイコースの濃度は、ＲＩ（Ｒｅｆｒａｃｔｉｖｅ  Ｉｎｄｅｘ）検出器が装着されたＨＰＬＣで測定した。ＨＰＬＣ分析は、８０℃に設定されたカラム（ＢＰ―１００  Ｃａ２＋ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ  ｃｏｌｕｍｎ）に試料を注入した後、移動相溶媒として蒸留水を０．５ｍｌ／ｍｉｎの速度で通過させる条件で行った。酵素単位（ｕｎｉｔ）は、ｐＨ８．０及び５０℃の条件で１分当たり１マイクロモル（μｍｏｌｅ）のサイコースを生産する量として定義した。
【００４７】
実施例１
【００４８】
無作為的な変異を起こす方法（ｒａｎｄｏｍ  ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）による、熱安定性が向上したサイコースエピマー化酵素変異体の製造
【００４９】
アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）ＡＴＣＣ  ３３９７０由来のサイコースエピマー化酵素（大韓民国公開特許公報（Ａ）第１０―２０１１―００３５８０５号の序列目録１のアミノ酸序列と同一）を鋳型とし、エラー―プローン重合酵素連鎖反応法（ｅｒｒｏｒ―ｐｒｏｎｅ  ＰＣＲ）を通してサイコースエピマー化酵素の変異体ライブラリーを構成した。
【００５０】
具体的に、１０００個の塩基対当たり２個ないし３個の変異を起こさせる、一般的なＰＣＲ突然変異誘発キット（ＰＣＲ  ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  ｋｉｔ）を用いた。ＮｃｏＩ及びＰｓｔＩ制限酵素認識部位の序列が導入されたオリゴヌクレオチドをプライマーとして使用し、重合酵素連鎖反応を行うことによって、サイコースエピマー化酵素の変異体をコードする遺伝子ライブラリーを構成した後、これをＥ．ｃｏｌｉ  ＢＬ２１に挿入した。
【００５１】
前記サイコースエピマー化酵素の変異体遺伝子を含んでいるｐＴｒｃ９９Ａプラスミドを有しているＥ．ｃｏｌｉ  ＢＬ２１を、５０μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有しているＬＢ培地に接種し、３７℃で６時間培養した後、これを一部採取し、５０μｇ／ｍｌのアンピシリン及び０．１ｍＭのＩＰＴＧを含んでいる培地に移して３７℃で６時間培養し、酵素の発現を誘導した。培養液を６０℃で５分間熱処理し、最終濃度が１５ｍＭになるように果糖を入れて５０℃で３０分間反応させた後、一般的な果糖分析キット（ｆｒｕｃｔｏｓｅ  ａｓｓａｙ  ｋｉｔ）を用いて残っている果糖の量を測定し、合計５０００個の変異株のうち、野生型酵素と比較したときに約１．２倍の活性を示す変異株１５０個を選別した。
【００５２】
前記の選別された１５０個の変異株に対して、再び前記のような方法で酵素の発現を誘導した。培養された細胞は超音波処理して破砕し、前記細胞破砕液を遠心分離してサイコースエピマー化酵素を含む上澄液を収得した後、上述した"サイコースエピマー化酵素の活性測定方法"を用いてその酵素活性を測定した。測定の結果、５５℃の反応温度で高い半減期を示す２３種の変異体を再選別した。
【００５３】
再選別された２３種の変異体の遺伝子をｐＴｒｃ９９ＡからｐＥＴ―２４ａ（＋）に移し、これを用いてＥ．ｃｏｌｉ  ＢＬ２１を形質転換させた。前記組換え菌株Ｅ．ｃｏｌｉ  ＢＬ２１を５０μｇ／ｍｌのカナマイシンを含むＬＢ培地を用いて３７℃で培養し、ＯＤ６００が０．６になったとき、最終濃度が０．１ｍＭになるようにＩＰＴＧ（Ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ―ｂｅｔａ―ｔｈｉｏｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）を注入して１６℃で１６時間培養した。培養液を遠心分離して菌体を収去した後、３００ｍＭのＫＣｌ及び１０ｍＭのイミダゾールを含んでいる５０ｍＭのリン酸塩緩衝溶液に再懸濁し、前記懸濁液に超音波処理を行って細胞を破砕させた。細胞破砕液を遠心分離してサイコースエピマー化酵素を含む上澄液を収得し、金属イオン親和性クロマトグラフィー（ｍｅｔａｌ  ｉｏｎ  ａｆｆｉｎｉｔｙ  ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）を用いて精製した。前記の精製された酵素内のイミダゾールは、脱塩カートリッジ（ｄｅｓａｌｔｉｎｇ  ｃａｒｔｒｉｄｇｅ）を用いて除去された。
【００５４】
再選別された２３種の変異体の５５℃での半減期を測定し、そのうち半減期が最も高い５種の変異体を選別した。前記の選別された５種の変異体及び野生型の相対活性及び５５℃での半減期は、下記の表１に示す通りである。
【００５５】
【表１】
0006043354.tif 000002
【００５６】
半減期の測定結果、Ｇ６７Ｃ＞Ｉ３３Ｌ＞Ｓ２１３Ｃ＞Ｖ９６Ａ＞Ｓ８Ｔの順に高い半減期を示し、このうち、酵素の活性まで考慮して、Ｉ３３Ｌ及びＳ２１３Ｃの２種の変異体を最も望ましい変異体として選定した。
【００５７】
ここで、Ｉ３３Ｌを例に挙げて本願明細書で使用された酵素変異体の名称を説明すると、数字３３は、サイコースエピマー化酵素野生型を基準にしてアミノ酸序列の３３番目のアミノ酸が置換されたことを意味し、数字の両側のアルファベットＩ、Ｌは、それぞれアミノ酸の頭文字を意味するものであって、これをまとめると、Ｉ３３Ｌは、３３番目のアミノ酸がイソロイシン（Ｉｌｅ）からロイシン（Ｌｅｕ）に置換されたことを意味する。
【００５８】
実施例２
【００５９】
経験的設計方法（ｒａｔｉｏｎａｌ  ｄｅｓｉｇｎ）による、熱安定性が向上したサイコースエピマー化酵素変異体の製造
【００６０】
前記実施例１によって、熱安定性が増加すると同時に、活性が大きく低下しない変異体としてＳ２１３ＣとＩ３３Ｌを選定した。これに基づいて、アミノ酸序列３３番と２１３番に部位特異的変異（ｓｉｔｅ―ｄｉｒｅｃｔｅｄ  ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）を行った。
【００６１】
具体的に、極性でありながら電荷を有さない２１３番のセリン（Ｓｅｒ）を、極性でありながら電荷を有さないアミノ酸であるトレオニン（Ｔｈｒ）、システイン（Ｃｙｓ）、メチオニン（Ｍｅｔ）；非極性アミノ酸であるプロリン（Ｐｒｏ）；陰電荷を帯びる残基であるグルタミン酸（Ｇｌｕ）；及び陽電荷を帯びる残基であるリシン（Ｌｙｓ）にそれぞれ置換した。
【００６２】
非極性残基である３３番のイソロイシンは、極性でありながら電荷を有さない残基であるシステイン；非極性残基であるバリン（Ｖａｌ）、ロイシン、プロリン；陰電荷を帯びる残基であるグルタミン酸；陽電荷を帯びる残基であるリシンにそれぞれ置換した。
【００６３】
前記の置換されたそれぞれの変異体及び野生型の相対的活性及び５５℃での半減期を測定した。
【００６４】
その結果、酵素の活性に大きく影響を与えないとともに、熱安定性が増加した変異体としてＩ３３Ｌ、Ｉ３３Ｃ、Ｉ３３Ｖ及びＳ２１３Ｃを得た。また、Ｓ２１３Ｃ及び、酵素の活性及び熱安定性を総合して見ると、序列番号３３番の置換のうち最も望ましいＩ３３Ｌを組み合わせた変異体を製作し、活性が優れるとともに、熱安定性が著しく増加したサイコースエピマー化酵素変異体（Ｉ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃ）を得た。
【００６５】
下記の表２は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス由来のサイコースエピマー化酵素の野生型、３３番又は２１３番のアミノ酸が置換された変異体及び３３番と２１３番のアミノ酸が全て置換された変異体Ｉ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃの相対活性及び５５℃での半減期を示したものである。
【００６６】
【表２】
0006043354.tif 000003
【００６７】
比較試験例１
【００６８】
サイコースエピマー化酵素野生型及び実施例２に係るサイコースエピマー化酵素変異体の見かけの融解温度の比較
【００６９】
サイコースエピマー化酵素野生型と実施例２に係るサイコースエピマー化酵素変異体であるＩ３３Ｌ、Ｓ２１３Ｃ及びＩ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃの熱安定性を判断するために、それぞれの酵素（又は変異体）の見かけの融解温度（ａｐｐａｒｅｎｔ  ｍｅｌｔｉｎｇ  ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ（Ｔｍ））を測定した。
【００７０】
測定の結果、野生型＜Ｓ２１３Ｃ＜Ｉ３３Ｌ＜Ｉ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃの順に見かけの融解温度が増加することを確認できた（図２）。具体的に、野生型と比較すると、Ｓ２１３Ｃの場合は約３．１℃、Ｉ３３Ｌの場合は約４．３℃、Ｉ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃの場合は約７．６℃増加した見かけの融解温度を示した。
【００７１】
比較試験例２
【００７２】
サイコースエピマー化酵素野生型及び実施例２に係るサイコースエピマー化酵素変異体の酵素反応速度の比較
【００７３】
サイコースエピマー化酵素野生型及び実施例２に係るサイコースエピマー化酵素変異体であるＩ３３Ｌ、Ｓ２１３Ｃ及びＩ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃの酵素反応速度を測定するために、それぞれの酵素（又は変異体）に対して、反応温度５０℃での酵素の動的媒介変数（ｋｉｎｅｔｉｃ  ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ）値を計算した。
【００７４】
その測定結果を下記の表３に示した。
【００７５】
【表３】
0006043354.tif 000004
【００７６】
各酵素の動的媒介変数値を測定した結果、野生型及び変異体Ｉ３３Ｌ、Ｓ２１３Ｃは類似する値を示した一方、Ｉ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃは、これより約１．４倍増加した酵素触媒効率（ｋｃａｔ／Ｋｍ）を示した。その理由は、Ｉ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃが他の変異体や野生型に比べて追加的な水素結合を形成し、野生型では発見できなかった芳香族グループ間の新しいスタッキング相互作用を形成するので、これによってより堅くかつ稠密な構造が形成された結果、基質との親和度が増加するためであると判断される（図３）。
【００７７】
より具体的に説明すると、分子モデリング結果に照らし合わせると、酵素の活性部位でない表面に位置しているアミノ酸残基である２１３番のセリン及び３３番のイソロイシンを有する野生型とは異なり、Ｉ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃでは、２１３番のシステイン（Ｃｙｓ）と３３番のロイシン（Ｌｅｕ）がコイルド―コイル（ｃｏｉｌｅｄ―ｃｏｉｌ）相互作用を形成していることが分かった（図３の（ａ）、（ｂ））。このようなコイルド―コイル相互作用は、タンパク質の構造を安定にするものとして知られている。
【００７８】
また、野生型において、２１３番のセリンは二つの推定上の水素結合（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｈｙｄｒｏｇｅｎ  ｂｏｎｄ）を形成するが、これをシステインに置換させたＳ２１３Ｃの場合、推定上の水素結合が６個に増加することが分かった（図３の（ｃ）、（ｄ））。これも、タンパク質の構造をより稠密にし、熱安定性を増加させ得るように助ける役割をするものと判断される。
【００７９】
また、分子モデリングにおいて、野生型は芳香族グループ間の相互作用を有していないように見える一方、変異体Ｉ３３Ｌでは芳香族グループ間のスタッキング相互作用が示されることを確認できた（図３の（ｅ）、（ｆ））。このような芳香族グループ間のスタッキング相互作用も、熱安定性を増加させた要因であると判断される。
【００８０】
実施例３
【００８１】
実施例２に係るＩ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃ変異体の遺伝子を含む組換えベクターで形質転換された組換え菌株の製造及び培養
【００８２】
（１）組換え菌株の製造
【００８３】
前記実施例２に係るＩ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃ変異体のＤＮＡを鋳型とし、それぞれＰｓｔＩとＸｂａＩ制限酵素認識部位の序列が導入されたオリゴヌクレオチドをプライマーとして使用し、重合連鎖反応を通してサイコースエピマー化酵素をコードする遺伝子を増幅させた。前記の増幅された遺伝子がコードしているサイコースエピマー化酵素を大量に発現するために、コリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）属バクテリアから由来されたシャトルベクターｐＣＪ―１（２００４年１１月６日付けで国際寄託機関である韓国微生物保存センターに寄託、受託番号ＫＣＣＭ―１０６１１）に制限酵素ＰｓｔＩとＸｂａＩで切断された前記の増幅されたＰＣＲ産物を挿入し、組換え発現ベクターｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２（図１）を製作した。
【００８４】
前記組換え発現ベクターを電気穿孔を用いてコリネバクテリウム・グルタミカム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ）ＡＴＣＣ１３０３２に形質転換によって導入し、アグロバクテリウム・ツメファシエンス由来のサイコースエピマー化酵素をコードする遺伝子を発現できる組換え菌株を製造した。
【００８５】
前記組換え菌株をコリネバクテリウム・グルタミカムｐＦＩＳ―１―ＡＴＰＥ―２と命じ、韓国微生物保存センター（Ｋｏｒｅａｎ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｅｎｔｅｒ  ｏｆ  Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ、ＫＣＣＭ）に２０１１年８月１８日付けで受託番号ＫＣＣＭ  １１２０４Ｐとして寄託した。
【００８６】
（２）組換え菌株の培養
【００８７】
前記（１）で得られた組換え菌株をそれぞれ１０μｇ／ｍｌ濃度のカナマイシンを含むＭＢ培地（Ｂａｃｔｏ―ｔｒｙｐｔｏｎ  １０ｇ／Ｌ、Ｂａｃｔｏ―ｙｅａｓｔ  ｅｘｔｒａｃｔ  ５ｇ／Ｌ、ＮａＣｌ  ５ｇ／Ｌ、Ｓｏｙｔｏｎｅ  ５ｇ／Ｌ）に初期濃度ＯＤ６００＝０．１で接種し、３０℃で２４時間培養してサイコースエピマー化酵素変異体の発現を誘導した。前記で収得された培養液を１０μｇ／ｍｌ濃度のカナマイシンを含有した変異培地（ブドウ糖８ｇ／Ｌ、ソイトン（ｓｏｙｔｏｎｅ）２０ｇ／Ｌ、（ＮＨ４）２ＳＯ４  １０ｇ／Ｌ、ＫＨ２ＰＯ４  １．２ｇ／Ｌ、ＭｇＳＯ４  １．４ｇ／Ｌ）を入れた発酵器にＯＤ６００＝０．６で接種し、３０℃で２０時間培養した。
【００８８】
実施例４
【００８９】
実施例３に係る組換え菌株の固定化及び固定化反応器を通したサイコースの連続的製造
【００９０】
前記実施例３によって組換え菌株を培養した後、前記培養液の遠心分離によって菌体を回収し、回収された細胞が２０％になるように５０ｍＭのＥＰＰＳ緩衝溶液（ｐＨ８．０）に懸濁させた。前記の懸濁された組換え菌株の菌体を２％（ｖ／ｖ）のアルギン酸ナトリウム（ｓｏｄｉｕｍ  ａｌｇｉｎａｔｅ）水溶液に添加し、前記混合液を注射器ポンプと真空ポンプを用いて１００ｍＭのＣａＣｌ２溶液に落とし、菌体がアルギン酸ナトリウムのビードに捕集された菌体―アルギネート結合体を生成させた。アルギン酸ナトリウムに固定化された前記組換え菌株を充填床カラム（ｐａｃｋｅｄ―ｂｅｄ  ｃｏｌｕｍｎ）に充填することによって形成された固定化反応器を通してサイコースを連続的に製造した。
【００９１】
比較試験例３
【００９２】
サイコースエピマー化酵素野生型を使用した固定化反応器及び実施例４に係る固定化反応器の運転安定性の比較
【００９３】
サイコースエピマー化酵素野生型を使用した固定化反応器及び実施例４に係る固定化反応器の運転安定性を測定するために、反応温度を５０℃に固定し、それぞれの反応器を通して２ヶ月間連続的にサイコース生産を実施し、その活性を測定した。このとき、果糖の濃度は４８０ｇ／Ｌで、流速は８５０ｍｌ／ｈであった。
【００９４】
測定の結果、野生型を使用した固定化反応器に比べて、熱安定性及び酵素活性が向上した変異体を使用した固定化反応器の場合、２ヶ月以上高い運転安定性を維持することが確認された。具体的に、野生型を使用した固定化反応器の場合は約３０日の半減期を有するが、Ｉ３３Ｌ―Ｓ２１３Ｃ変異体を使用した固定化反応器の場合は約７７日の半減期を有することが示された（図４）。
【００９５】
これによって、本発明による場合、酵素をより長期間使用できるようになり、サイコースの生産費用を節減させる効果をもたらすと期待される。
【図１】
0006043354.tif 000005
【図２】
0006043354.tif 000006
【図３】
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【図４】
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