(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
肢に末梢血管疾患を有する患者における再灌流を強化するための医薬組成物であって、製薬上許容される担体と、フィブリン糊と、ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団を、該疾患の治療に有効な量で含み、
該臍帯組織は、実質的に血液を含まず、
該均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能を示し、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及びテロメラーゼを発現せず、
前記単離細胞集団は、酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現し、
前記フィブリン糊は、１６〜２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、３９．３〜６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを最終濃度として含み、前記医薬組成物が、前記肢の上肢部および下肢部に筋肉内注射される、
医薬組成物。
【請求項２】
前記単離細胞集団が、次の特性：
（ａ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｂ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｃ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、並びに、
（ｄ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する、
のうち１つ又は２つ以上を有する、請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項３】
前記末梢血管疾患が、末梢虚血である、請求項１又は２に記載の医薬組成物。
【請求項４】
前記単離細胞集団が、投与の前に、インビトロで誘導され、骨格筋、血管筋、周細胞又は血管内皮系統に分化する、請求項１〜３のいずれか１項に記載の医薬組成物。
【請求項５】
前記細胞集団が、末梢血管疾患の治療を促進する遺伝子産物を産生するよう遺伝子操作される、請求項１〜４のいずれか１項に記載の医薬組成物。
【請求項６】
前記組成物が、抗血栓薬、免疫抑制薬、免疫調節薬、血管新生促進薬、抗アポトーシス薬、及びこれらの混合物からなる群から選択される薬剤を更に含む、請求項１〜５のいずれか１項に記載の医薬組成物。
【請求項７】
前記組成物が、少なくとも１つの他の細胞種を更に含む、請求項１〜６のいずれか１項に記載の医薬組成物。
【請求項８】
前記他の細胞種が、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、又はその他の複能性若しくは多能性幹細胞である、請求項７に記載の医薬組成物。
【請求項９】
前記医薬組成物が栄養効果をもたらす、請求項１〜８のいずれか１項に記載の医薬組成物。
【請求項１０】
前記栄養効果が、血管内皮細胞の増殖である、請求項９に記載の医薬組成物。
【請求項１１】
前記医薬組成物が、血管内皮細胞及び／又は血管内皮前駆細胞の、前記末梢疾患部位への遊走を誘導する、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の医薬組成物。
【請求項１２】
前記医薬組成物が、血管平滑筋細胞及び／又は血管平滑筋前駆細胞の、前記末梢疾患部位への遊走を誘導する、請求項１〜１１のいずれか１項に記載の医薬組成物。
【請求項１３】
前記医薬組成物が、周細胞の、前記末梢血管疾患部位への遊走を誘導する、請求項１〜１２のいずれか１項に記載の医薬組成物。
【請求項１４】
肢に末梢血管疾患を有する患者における再灌流を強化するための薬剤であって、該薬剤が、フィブリン糊と、ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団とを、該疾患の治療に有効な量で含み、
該臍帯組織は、実質的に血液を含まず、
該均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能を示し、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及びテロメラーゼを発現せず、
前記単離細胞集団は、酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現し、
前記フィブリン糊は、１６〜２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、３９．３〜６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを最終濃度として含み、前記医薬組成物が、前記肢の上肢部および下肢部に筋肉内注射される、
薬剤。
【請求項１５】
前記単離細胞集団が、次の特性：
（ａ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｂ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｃ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、並びに、
（ｄ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する、のうちの１つ又は２つ以上を有する、請求項１４に記載の薬剤。
【請求項１６】
前記末梢血管疾患が末梢虚血である、請求項１４又は１５に記載の薬剤。
【請求項１７】
前記単離細胞集団が、投与の前に、インビトロで誘導され、骨格筋、血管筋、周細胞又は血管内皮系統に分化する、請求項１４〜１６のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項１８】
前記細胞集団が、末梢血管疾患の治療を促進する遺伝子産物を産生するよう遺伝子操作される、請求項１４〜１７のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項１９】
抗血栓薬、免疫抑制薬、免疫調節薬、血管新生促進薬、抗アポトーシス薬、及びこれらの混合物を更に含む、請求項１４〜１８のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項２０】
少なくとも１つの他の細胞種の投与を更に含む、請求項１４〜１９のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項２１】
前記他の細胞種が、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、又はその他の複能性若しくは多能性幹細胞である、請求項２０に記載の薬剤。
【請求項２２】
前記細胞集団が栄養効果をもたらす、請求項１４〜１６のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項２３】
前記栄養効果が、血管内皮細胞の増殖である、請求項２２に記載の薬剤。
【請求項２４】
前記細胞集団が、血管内皮細胞及び／又は血管内皮前駆細胞の、前記末梢疾患部位への遊走を誘導する、請求項１４〜２３のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項２５】
前記細胞集団が、血管平滑筋細胞及び／又は血管平滑筋前駆細胞の、前記末梢疾患部位への遊走を誘導する、請求項１４〜２４のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項２６】
前記細胞集団が、周細胞の、前記末梢血管疾患部位への遊走を誘導する、請求項１４〜２５のいずれか１項に記載の薬剤。
【請求項２７】
肢に末梢血管疾患を有する患者における再灌流を強化するためのキットであって、フィブリノーゲン、トロンビン、及び、ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団を、該疾患の治療に有効な量で含み、
該臍帯組織は、実質的に血液を含まず、
該均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能を示し、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及びテロメラーゼを発現せず、
前記単離細胞集団は、酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現し、
前記フィブリン糊は、１６〜２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、３９．３〜６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを最終濃度として含み、前記医薬組成物が、前記肢の上肢部および下肢部に筋肉内注射される、
キット。
【請求項２８】
使用説明書を更に含む、請求項２７に記載のキット。
【請求項２９】
前記フィブリノーゲン及び前記均質な単離細胞集団が、１つの組成物中にある、請求項２７に記載のキット。
【請求項３０】
トロンビンが、使用の直前に前記組成物に添加される、請求項２９に記載のキット。
【請求項３１】
前記単離細胞集団が、次の特性：
（ａ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｂ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｃ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、並びに、
（ｄ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する、のうち１つ又は２つ以上を有する、請求項２７に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（関連出願の相互参照）
本出願は、米国特許出願第１１／６１７，３４６号（２００６年１２月２８日出願）の一部継続出願であり、これは米国特許仮出願第６０／７５４，３６６号（２００５年１２月２８日出願）の利益を主張するものであり、この内容の全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【０００２】
（発明の分野）
本発明は、末梢血管疾患患者、特に末梢虚血のある患者の、細胞療法又は再生療法分野に関する。特に本発明は、血管新生を刺激し、血流を改善し、末梢虚血事象により損傷した骨格筋の再生、修復、及び改善を行い、並びに、骨格筋を虚血損傷から保護する能力を有する臍帯組織に由来する細胞を提供する。
【背景技術】
【０００３】
本明細書を通して、特許、公開された出願、技術論文及び学術論文などの各種刊行物が引用される。それらの引用された各出版物はその全体が、参照することにより本明細書に組み込まれる。
【０００４】
末梢血管疾患（ＰＶＤ）は、血管（特に四肢の、心臓から離れた領域）におけるアテローム性動脈硬化閉塞により生じ、その閉塞近辺及び下流の組織に対する血流の低下を招き、酸素潅流が不十分になり得る。ＰＶＤはしばしば、腸骨血管、大腿及び膝窩血管、鎖骨下血管に現われ、その影響は血栓、塞栓、又は外傷によって悪化し得る。米国では、特に高齢者及び糖尿病患者を含め、約８００万〜１２００万人がＰＶＤに苦しんでいると推定されている。
【０００５】
ＰＶＤの一般的な症状には、上肢・下肢及び手足の痙攣、四肢及び手足におけるしびれ、脱力、筋肉疲労、痛み、四肢及び手足の低体温、手足の変色、皮膚の乾燥又は鱗状化、並びに高血圧が挙げられる。最も一般的な症状は、閉塞した血管の下流の筋肉における痛み、緊張、及び疲労による跛行又は感覚であり、これらは歩行などの何らかの運動形態中に起こるが、一定の休止時間後に自然に解消する。
【０００６】
病理生理学的には、閉塞した血管は、その閉塞部位及びその遠位側にある組織に虚血を引き起こす。この虚血は一般に末梢虚血と呼ばれ、これは心臓から離れた場所で生じることを意味する。虚血の程度は、閉塞の大きさと数、その閉塞が筋肉又は臓器の近くにあるかどうか、及び十分な重複脈管構造があるかどうかに相関する。より重篤な場合は、虚血に冒された組織に壊死が生じ、冒された四肢の切断、あるいは患者の死亡さえももたらすことがある。
【０００７】
より重篤なＰＶＤの現行の治療方法には、化学療法レジメン、血管形成、ステント挿入、再建術、バイパス移植、罹患組織の切除、又は切断が挙げられる。残念ながら、多くの患者にとって、そのようなインターベンションは限られた成功しか収めておらず、多くの患者で、状態又は症状が悪化している。
【０００８】
現在、幹細胞（分裂かつ分化が可能）又はその他の供給源（平滑筋細胞及び骨格筋細胞を含む）から得た筋肉細胞のいずれかを用いて、組織損傷の修復又は逆転を支援することに関心が寄せられている。標的組織を再構築するための臨床ツールとして幹細胞移植を利用することにより、生理学的及び解剖学的機能を復元させることができる。幹細胞に関係する本出願の技術は広範に及び、組織工学、遺伝子治療送達及び細胞療法を包含し、すなわち、外部から生細胞又は細胞成分を供給することにより、これらの剤を生産又は含有するバイオ治療薬を標的部位に送達するものである（総括についてはＴｒｅｓｃｏ，Ｐ．Ａ．ｅｔ  ａｌ．（２０００）Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  ４２：２〜３７を参照されたい）。幹細胞の識別により、再生医療用に特定の細胞型を選択的に生成することを目的とした研究が促進されている。
【０００９】
これまで、治療法として可能性のある幹細胞技術を実現するにあたり、十分な数の幹細胞を得るのが困難であることが障害であった。胚組織又は胎生組織は幹細胞資源のうちの一つである。これまでに、ヒトを含む数多くの哺乳類種から胚幹細胞及び前駆細胞が単離されており、そのうちの幾つかの細胞型は自己再生能及び増殖能を示し、数多くの異なる細胞系統へと良好に分化することが示されている。しかしながら、胎芽又は胎児の供給源から得た幹細胞の偏差には、倫理的及び道徳的な問題が提起されており、分化複能性又は分化多能性細胞の他の供給源を特定することによりこの問題を回避することが望ましい。
【００１０】
臍帯及び胎盤などの分娩後に得られる組織は、幹細胞の代替源として関心を集めている。これまでに、例えば、胎盤の潅流による幹細胞の回収法あるいは臍帯血又は組織からの回収法が報告されている。これらの手法では、得られる臍帯血の量又は細胞の質が不十分であり、並びにこれらの資源より得られる細胞集団の性質が均一でなく又は性質に欠くため、幹細胞の調達法としては限界がある。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
一連の骨格筋、周細胞、又は脈管系統に分化する能力を有するそのような細胞の実質的に均一な集団を、確実かつ十分に特性付けられた状態で豊富に供給することは、骨格筋の修復、再生及び改善のため、脈管形成の刺激及び／又は支援のため、並びに、特にＰＶＤ患者における末梢虚血事象後の血流の改善のための、様々な診断及び治療用途に有利となり得る。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明の一態様は、末梢血管疾患を有する患者を治療する方法を特徴とし、この方法は、末梢血管疾患を治療するために、臍帯組織由来細胞の有効量を患者に対して投与することを含み、この臍帯組織由来細胞は、実質的に血液を含まないヒト臍帯組織から誘導され、この細胞は、培養中で自己複製及び増殖が可能であり、少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は血管内皮表現型に分化する潜在能力を有し、この細胞は、増殖のためにＬ−バリンを必要とし、少なくとも約５％の酸素中で増殖でき、この細胞は更に、下記の特性のうち少なくとも１つを含む：（ａ）培養下で少なくとも約４０回倍加する潜在能力、（ｂ）コーティングされた、若しくはコーティングされていない組織培養容器上に付着して増殖し、このコーティングされた組織培養容器は、ゼラチン、ラミニン、コラーゲン、ポリオルニチン、ビトロネクチン、又はフィブロネクチンのコーティングを含む、（ｃ）組織因子、ビメンチン、及びα−平滑筋アクチンのうちの少なくとも１つの産生、（ｄ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＰＤＧＦｒ−α、ＰＤ−Ｌ２及びＨＬＡ−Ａ、Ｂ、Ｃのうちの少なくとも１つの産生、（ｅ）フローサイトメトリーによって検出されるような、ＣＤ３１、ＣＤ３４、ＣＤ４５、ＣＤ８０、ＣＤ８６、ＣＤ１１７、ＣＤ１４１、ＣＤ１７８、Ｂ７−Ｈ２、ＨＬＡ−Ｇ、及びＨＬＡ−ＤＲ、ＤＰ、ＤＱのうち少なくとも１つの産生の欠如、（ｆ）線維芽細胞、間葉系幹細胞、又は腸骨稜の骨髄細胞である、ヒト細胞と比べて、インターロイキン８；レチクロン１；ケモカイン（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド１（黒色腫増殖刺激活性、α）；ケモカイン（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド６（顆粒球走化性タンパク質２）；ケモカイン（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド３；腫瘍壊死因子、α誘導タンパク質３のうちの、少なくとも１つをコードする遺伝子に関して増大する、遺伝子の発現、（ｇ）線維芽細胞、間葉系幹細胞、又は腸骨稜の骨髄細胞のヒト細胞と比べて、低身長ホメオボックス２；熱ショック２７ｋＤａタンパク質２；ケモカイン（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド１２（ストロマ細胞由来因子１）；エラスチン（大動脈弁上狭窄症、ウィリアムズ−ビューレン症候群）；ホモサピエンスｍＲＮＡ；ｃＤＮＡ  ＤＫＦＺｐ５８６Ｍ２０２２（クローンＤＫＦＺｐ５８６Ｍ２０２２由来）；間葉ホメオボックス２（増殖停止特異的ホメオボックス）；ｓｉｎｅ  ｏｃｕｌｉｓホメオボックスホモログ１（ドロソフィラ）；クリスタリン、α  Ｂ；形態形成のｄｉｓｈｅｖｅｌｅｄ関連アクチベータ２；ＤＫＦＺＰ５８６Ｂ２４２０タンパク質；ニューラリン１の類似体；テトラネクチン（プラスミノーゲン結合タンパク質）；ｓｒｃ相同性３（ＳＨ３）及びシステイン豊富ドメイン；コレステロール２５−ヒドロキシラーゼ；ｒｕｎｔ関連転写因子３；インターロイキン１１受容体α；プロコラーゲンＣ−エンドペプチダーゼエンハンサー；ｆｒｉｚｚｌｅｄホモログ７（ドロソフィラ）；仮定的遺伝子ＢＣ００８９６７；コラーゲン、ＶＩＩＩ型、α  １；テネイシンＣ（ヘキサブラキオン）；ｉｒｏｑｕｏｉｓホメオボックスタンパク質５；へファエスチン；インテグリンβ  ８；シナプス小胞糖タン���ク質２；神経芽腫、腫瘍形成抑制１；インスリン様増殖因子結合タンパク質２、３６ｋＤａ；ホモサピエンスｃＤＮＡ  ＦＬＪ１２２８０  ｆｉｓ、クローンＭＡＭＭＡ１００１７４４；サイトカイン受容体様因子１；カリウム中間体／低コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー４；インテグリン、β  ７；ＰＤＺ結合モチーフ（ＴＡＺ）を有する転写コアクチベータ；ｓｉｎｅ  ｏｃｕｌｉｓホメオボックスホモログ２（ドロソフィラ）；ＫＩＡＡ１０３４タンパク質；小胞関連膜タンパク質５（ミオブレビン）；ＥＧＦ含有フィビュリン様細胞外マトリックスタンパク質１；初期成長応答３；ｄｉｓｔａｌ−ｌｅｓｓホメオボックス５；仮定的タンパク質ＦＬＪ２０３７３；アルド−ケト還元酵素ファミリー１、メンバーＣ３（３−αヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ、ＩＩ型）；バイグリカン；ＰＤＺ結合モチーフ（ＴＡＺ）を有する転写コアクチベータ；フィブロネクチン１；プロエンケファリン；インテグリン、β様１（ＥＧＦ様リピートドメインを有する）；ホモサピエンスｍＲＮＡ完全長インサートｃＤＮＡクローンＥＵＲＯＩＭＡＧＥ  １９６８４２２；ＥｐｈＡ３；ＫＩＡＡ０３６７タンパク質；ナトリウム利尿ペプチド受容体Ｃ／グアニル酸シクラーゼＣ（心房ナトリウム利尿ペプチド受容体Ｃ）；仮定的タンパク質ＦＬＪ１４０５４；ホモサピエンスｍＲＮＡ；ｃＤＮＡ  ＤＫＦＺｐ５６４Ｂ２２２（クローンＤＫＦＺｐ５６４Ｂ２２２由来）；ＢＣＬ２／アデノウイルスＥ１Ｂ  １９ｋＤａ相互作用タンパク質３様；ＡＥ結合タンパク質１；シトクロムｃオキシダーゼサブユニットＶＩＩａポリペプチド１（筋肉）、のうちの、少なくとも１つをコードする遺伝子に関して減少する、遺伝子の発現、ニューラリン１の類似体；Ｂ細胞転位遺伝子１；仮定的タンパク質ＦＬＪ２３１９１；及びＤＫＦＺｐ５８６Ｌ１５１のうちの、少なくとも１つをコードする遺伝子に関して減少する、遺伝子の発現、（ｈ）ＭＣＰ−１、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＧＣＰ−２、ＨＧＦ、ＫＧＦ、ＦＧＦ、ＨＢ−ＥＧＦ、ＢＤＮＦ、ＴＰＯ、ＭＩＰ１ｂ、ＲＡＮＴＥＳ、及びＴＩＭＰ１のうちの、少なくとも１つの分泌、（ｉ）ＥＬＩＳＡで検出した場合に、ＴＧＦ−β２、ＡＮＧ２、ＰＤＧＦｂｂ、ＭＩＰ１ａ及びＶＥＧＦのうち少なくとも１つの分泌の欠如。
【００１３】
特定の一実施形態において、この末梢血管疾患は、末梢虚血である。特定の実施形態において、この細胞は、投与の前にインビトロで誘導され、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は血管内皮系統細胞に分化している。他の実施形態において、この細胞は、末梢血管疾患の治療を促進するため、遺伝子産物を産生するよう遺伝子操作される。
【００１４】
本方法の幾つかの実施形態において、細胞は、少なくとも１つの他の細胞種と共に投与され、これには、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、又はその他の複能性若しくは多能性幹細胞が含まれ得る。この、他の細胞型は、臍帯組織由来細胞と同時に、又は臍帯組織由来細胞の前に、若しくは臍帯組織由来細胞の後に、投与することができる。
【００１５】
他の実施形態において、この細胞は、少なくとも１つの他の薬剤と共に投与され、これは例えば、抗血栓薬、抗炎症薬、免疫抑制薬、免疫調節薬、血管新生促進薬、又は抗アポトーシス薬であり得る。この、他の薬剤は、臍帯組織由来細胞と同時に、又は臍帯組織由来細胞の前に、若しくは臍帯組織由来細胞の後に、投与することができる。
【００１６】
この細胞は好ましくは、末梢虚血部位又はその近くに投与されるが、末梢虚血部位から離れた部位に投与することもできる。これらは注射、注入、患者に埋め込まれるデバイスにより、又は細胞を含むマトリックス若しくはスカフォールドの埋め込みによって、投与することができる。この細胞は、患者の骨格筋、血管平滑筋、又は血管内皮に対して、栄養効果（例えば増殖）をもたらし得る。この細胞は、骨格筋細胞、血管平滑筋細胞、血管内皮細胞、骨格筋前駆細胞、周細胞、血管平滑筋前駆細胞、又は血管内皮前駆細胞の、末梢血管疾患（例えば末梢虚血）の部位（単数又は複数）への遊走を誘発し得る。
【００１７】
本発明の別の一態様は、末梢血管疾患を有する患者を治療するための医薬組成物及びキットを特徴とし、これは、製薬上許容される担体と、上記の臍帯組織由来細胞又はそのような臍帯組織由来細胞から作製される調製物とを含む。幾つかの好ましい実施形態において、この調製物はＦＧＦ及びＨＧＦを含む。この医薬組成物及びキットは、上述したような本発明の方法を実施するために設計及び／又は配合される。
【００１８】
本発明の別の一態様により、上述の方法は、臍帯組織由来細胞から作製された調製物を使用して実施され、この調製物は、臍帯組織由来細胞の細胞溶解物、臍帯組織由来細胞の細胞外マトリックス、又は臍帯組織由来細胞が増殖した馴化培地を含む。そのような調製物は、ＦＧＦ及びＨＧＦを含むことが望ましい。
【００１９】
本発明の他の態様は、臍帯組織由来細胞の細胞溶解物、細胞外マトリックス、又は馴化培地を含む調製物を包含した医薬組成物及びキットを特徴とする。
【００２０】
本発明の一実施形態は、末梢血管疾患を有する患者を治療する方法であって、フィブリン糊と、ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団とを含む医薬組成物を、その疾患の治療に有効な量で投与することを含み、この臍帯組織は、実質的に血液を含まず、かつ、均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能を示し、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及び／又はテロメラーゼを発現しない。単離細胞集団は、下記のうち１つ又は２つ以上を有し得る：
（ａ）酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現する、
（ｂ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｃ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｄ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、並びに、
（ｄ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する。
【００２１】
一実施形態において、この末梢血管疾患は、末梢虚血である。この医薬組成物は、末梢虚血の部位に投与される。別の一実施形態において、この医薬組成物は局所的に投与される。一実施形態において、この医薬組成物は、注射、注入、患者に埋め込まれるデバイスにより、又はこの医薬組成物を含むマトリックス若しくはスカフォールドの埋め込みによって、投与される。別の一実施形態において、この医薬組成物は筋肉内注射及び筋肉中の脂肪蓄積内への注射によって投与される。別の一実施形態において、この医薬組成物は、循環中に直接侵入しないように、間質空間内へ注入することにより投与される。単離細胞集団は、投与前に、インビトロで誘導され、骨格筋、血管筋、周細胞、又は血管内皮系統に分化し得る。この細胞集団は、末梢血管疾患の治療を促進するため、遺伝子産物を産生するよう遺伝子操作され得る。所望により、この組成物は更に、抗血栓薬、免疫抑制薬、免疫調節薬、血管新生促進薬、抗アポトーシス薬、及びこれらの混合物からなる群から選択される薬剤を含む。あるいは、この組成物は更に、少なくとも１つの他の細胞種（例えば、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、又はその他の複能性若しくは多能性幹細胞）を含む。一実施形態において、この医薬組成物は栄養効果（例えば血管内皮細胞の増殖）をもたらす。別の一実施形態において、この医薬組成物は、血管内皮細胞及び／又は血管内皮前駆細胞の、末梢疾患部位への遊走を誘導する。更に別の一実施形態において、この医薬組成物は、血管平滑筋細胞及び／又は血管平滑筋前駆細胞の、末梢疾患部位への遊走を誘導する。別の一実施形態において、この医薬組成物は、周細胞の、末梢血管疾患部位への遊走を誘導する。一実施形態において、フィブリン糊はフィブリノーゲン及びトロンビンを含む。別の一実施形態において、このフィブリン糊は、約１６〜約２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、約３９．３〜約６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを含む。
【００２２】
本発明の別の一実施形態は、末梢血管疾患を有する患者を治療する方法であって、フィブリン糊（例えばフィブリノーゲンとトロンビンとを含む組成物）と、ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団とを含む医薬組成物を、その疾患の治療に有効な量で投与することを含み、この臍帯組織は、実質的に血液を含まず、かつ、均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能を示し、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及び／又はテロメラーゼを発現しない。この単離細胞集団は、下記の１つ又は２つ以上を含む、他の特徴を有し得る：
（ａ）酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現する、
（ｂ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｃ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｄ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、並びに、
（ｄ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する。
【００２３】
一実施形態において、この末梢血管疾患は末梢虚血であり、かつ所望により、フィブリン糊と細胞集団とが、末梢虚血の部位に投与される。様々な投与経路を使用することができ、これには、注射、注入、患者に埋め込まれるデバイスにより、又はこの細胞を含むマトリックス若しくはスカフォールドの埋め込みによる投与が挙げられる。一実施形態において、この細胞集団とフィブリン糊とは、局所的に投与される（例えば、筋肉内注射及び筋肉中の脂肪蓄積内への注射によって）。別の一実施形態において、この細胞とフィブリン糊とは、循環中に直接侵入しないように、間質空間内へ注入することにより投与される。所望により、この単離細胞集団は、投与前に、インビトロで誘導され、骨格筋、血管筋、周細胞、又は血管内皮系統に分化する。この細胞集団は、末梢血管疾患の治療を促進するため、遺伝子産物を産生するよう遺伝子操作され得る。一実施形態において、この方法は更に、抗血栓薬、免疫抑制薬、免疫調節薬、血管新生促進薬、抗アポトーシス薬、及びこれらの混合物からなる群から選択される薬剤を投与することを含む。別の一実施形態において、この方法は更に、少なくとも１つの他の細胞種（例えば、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、又はその他の複能性若しくは多能性幹細胞）を投与することを含む。一実施形態において、この細胞集団は栄養効果（例えば血管内皮細胞の増殖）をもたらす。この細胞集団は、血管内皮細胞及び／又は血管内皮前駆細胞の、末梢疾患部位への遊走を誘導し得る。あるいは、この細胞集団は、血管平滑筋細胞及び／又は血管平滑筋前駆細胞の、末梢疾患部位への遊走を誘導し得る。この細胞集団は、周細胞の、末梢血管疾患部位への遊走を誘導し得る。フィブリン糊は、フィブリノーゲンとトロンビンとを含み得る。一実施形態において、このフィブリン糊は、ヒト臍帯組織から得られた単離均質細胞集団と同時に、又はこれより前に、又は後に投与される。別の一実施形態において、このフィブリン糊は、約１６〜約２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、約３９．３〜約６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを含む。
【００２４】
本発明の別の一実施形態は、末梢血管疾患を有する患者を治療するためのキットであって、フィブリノーゲン、トロンビン、及び、ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団の、その疾患の治療に有効な量を含み、この臍帯組織は、実質的に血液を含まず、かつ、前記均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能を示し、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及び／又はテロメラーゼを発現しない。このキットは更に、使用指示書を含み得る。一実施形態において、フィブリノーゲンと、均質な単離細胞集団とは、使用の直前にトロンビンを添加し得る組成物中に提供される。この単離細胞集団は、下記の１つ又は２つ以上を含む、他の特徴を有し得る：
（ａ）酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現する、
（ｂ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｃ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｄ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、並びに、
（ｄ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する。
【００２５】
一実施形態において、このキットは、約１６〜約２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、約３９．３〜約６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを含む。一実施形態において、このキットは、フィブリン及び第ＸＩＩ因子を含むフィブリノーゲン構成成分と、トロンビン及びカルシウムを含むトロンビン構成成分とを含む。
【００２６】
本発明の他の特徴及び利点は、「発明を実施するための形態」の項とそれに続く実施例を参照することにより理解されよう。
【図面の簡単な説明】
【００２７】
【図１】内皮細胞増殖における、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）、ＭＳＣ、及び線維芽細胞の影響を示す。共培養の培地（Ｈａｙｆｌｉｃｋ  ８０％＋ＥＧＭ−２ＭＶ  ２０％又はＨａｙｆｌｉｃｋ  ５０％＋ＥＧＭ−２ＭＶ  ５０％）に、内皮細胞を、細胞５０００個／ｃｍ２（細胞１０，０００個／ウェル）の密度で２４ウェル組織培養皿の底部に播種し、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）、ＭＳＣ、又は線維芽細胞は、細胞５０００個／ｃｍ２（細胞１，６５０個／インサート）の密度で、トランスウエルインサートの内側に播種した。７日間の共培養の後、細胞を収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。更に内皮細胞を陽性対照として、ＥＧＭ−２ＭＶ培地中に保持した。図１Ａは、ＨＵＶＥＣ。図１Ｂは、ＨＣＡＥＣ。図１Ｃは、ＨＩＡＥＣ。
【図２】内皮細胞増殖における、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）及び中和抗体の影響を示す。共培養の培地（Ｈａｙｆｌｉｃｋ  ５０％＋ＥＧＭ−２ＭＶ  ５０％）に、ＨＵＶＥＣ又はＨＣＡＥＣを、細胞５０００個／ｃｍ２（細胞１０，０００個／ウェル）の密度で２４ウェル組織培養皿の底部に播種し、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）は、細胞５０００個／ｃｍ２（１，６５０個／インサート）の密度で、トランスウエルインサートの内側に播種した。ＦＧＦ（７μｇ／ｍＬ）、ＨＧＦ（１μｇ／ｍＬ）、又はＶＥＧＦ（１μｇ／ｍＬ）に対する中和抗体も、この時点で添加された。７日間の共培養の後、細胞を収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。更に内皮細胞を陽性対照として、ＥＧＭ−２ＭＶ培地中に保持した。増殖因子のみで処理された細胞、及び増殖因子と中和抗体で処理された細胞を示す。図２Ａは、ＨＵＶＥＣ。図２Ｂは、ＨＣＡＥＣ。
【図３】ＨＵＶＥＣの増殖における、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）細胞溶解物及び中和抗体の影響を示す。ＨＵＶＥＣは、ＥＧＭ−２ＭＶ培地中細胞５０００個／ｃｍ２（細胞１０，０００個／ウェル）の密度で２４ウェル組織培養皿の底部に播種し、８時間置いた。その後、０．５％  ＦＢＳを含み増殖因子を含まないＥＧＭ−２ＭＶ培地０．５ｍＬ中で、一晩インキュベーションすることで、細胞を血清枯渇させた。その後、ＦＢＳ、新たに準備したｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）細胞溶解物、及び、ＦＧＦ（７μｇ／ｍＬ）又はＨＧＦ（１μｇ／ｍＬ）に対する中和抗体を加えた。４日間の培養の後、細胞を収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。薄い灰色のバーは培地対照。中程度の灰色のバーは、タンパク質６２．５μｇを含む溶解物でインキュべーションしたＨＵＶＥＣ。濃い灰色のバーは、タンパク質１２５μｇを含む溶解物でインキュべーションしたＨＵＶＥＣ。
【図４】内皮細胞の遊走に対するｈＵＴＣとＭＳＣの影響を示す。共培養の培地（Ｈａｙｆｌｉｃｋ  ５０％及びＥＧＭ−２ＭＶ  ５０％）に、ＨＵＶＥＣ又はＨＣＡＥＣは、細胞５０００個／ｃｍ２（細胞２３，０００個／インサート）の密度でトランスウエルインサートの内側に播種し、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）又はＭＳＣは、６ウェルの組織培養皿の底部に、細胞５０００個／ｃｍ２（細胞４８，０００個／ウェル）の密度で、播種した。７日間の共培養の後、トランスウエルインサートの下側にあった細胞を収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。更に内皮細胞を、対照としてＥＧＭ−２ＭＶ培地中に保持した。図４Ａは、ＨＵＶＥＣ。図４Ｂは、ＨＣＡＥＣ。
【図５】内皮細胞の遊走における、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）及び中和抗体の影響を示す。共培養の培地（Ｈａｙｆｌｉｃｋ  ５０％及びＥＧＭ−２ＭＶ  ５０％）に、ＨＵＶＥＣ又はＨＣＡＥＣは、細胞５０００個／ｃｍ２（細胞２３，０００個／インサート）の密度でトランスウエルインサートの内側に播種し、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）は、６ウェルの組織培養皿の底部に、細胞５０００個／ｃｍ２（細胞４８，０００個／ウェル）の密度で、播種した。ＦＧＦ（７μｇ／ｍＬ）又はＨＧＦ（１μｇ／ｍＬ）に対する中和抗体も、この時点で添加された。７日間の共培養の後、トランスウエルインサートの下側にあった細胞を収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。更に内皮細胞を、対照としてＥＧＭ−２ＭＶ培地中に保持した。図５Ａは、ＨＵＶＥＣ。図５Ｂは、ＨＣＡＥＣ。
【図６】実施例５に開示されている研究の、ＮＳＧマウスでの実験によるレーザードップラー潅流データを示す。データは平均値±標準誤差として示されている。データポイントの識別は凡例に記載されている。カッコ内の数字は、（１）該当する対照に比較してＰ＜０．００１、（２）フィブリンなしのｈＵＴＣ細胞に比較してＰ＜０．０５。
【図７】実施例５に開示されている研究の、ヌードマウスでの実験によるレーザードップラー潅流データを示す。データは平均値±標準誤差として示されている。データポイントの識別は凡例に記載されている。カッコ内の数字は、（１）該当する対照に比較してＰ＜０．００１、（２）フィブリンなしのｈＵＴＣ細胞に比較してＰ＜０．０５。
【図８】実施例６に開示されている研究の、全身的（ＩＶ）、局所的（ＩＭ）、及び局所的＋フィブリン糊投与を比較したレーザードップラー潅流データを示す。データは平均値±標準誤差として示されている。
【図９】実施例６に開示されている研究の、局所的（ＩＭ）に投与されたフィブリンの離中ｈＵＴＣの様々な投与量を示したレーザードップラー潅流データを示す。データは平均値±標準誤差として示されている。
【図１０】実施例６に開示されている研究で損傷後１４目の、全身的（ＩＶ）、局所的（ＩＭ）、及び局所的＋フィブリン糊投与を比較したレーザードップラー潅流データを示す。明確にするためデータは平均値として示す。
【図１１】実施例７に開示されている研究のレーザードップラー潅流データを示す。データポイントの識別は凡例に記載されている。＊は、Ｐ＜０．０５、＊＊＊は、Ｐ＜０．００１。
【図１２】実施例７に開示されている研究の、２１日目まで生存したマウスの虚血肢を非虚血肢と比較した毛細血管の密度を示す。
【図１３】実施例７に開示されている研究の、２１日目まで生存したマウスの虚血肢を非虚血肢と比較した小動脈の密度を示す。
【発明を実施するための形態】
【００２８】
本明細書及び請求項を通して様々な用語が使用される。これらの用語には、特に断らないかぎりは当該技術分野における通常の意味が与えられるものとする。他の具体的に定義される用語は、本明細書に提供される定義と一致する様式で解釈される。
【００２９】
「幹細胞」は、単一細胞の、自己複製する能力、並びに自己複製前駆細胞、非複製前駆細胞、及び最終分化細胞を含めた子孫細胞を産生するために分化する能力の双方によって定義される、未分化細胞である。幹細胞はまた、インビトロで、複数の胚葉（内胚葉、中胚葉、及び外胚葉）から、様々な細胞系統の機能的細胞へと分化する能力によって、並びに、移植後に、複数の胚葉の組織を生じさせる能力、及び胚盤胞内への注射後に、全てではないが殆どの組織に、実質的に寄与する能力によって、特徴付けられる。
【００３０】
幹細胞は、その発達能によって、（１）全能性、（２）多能性、（３）複能性、（４）少能性、及び（５）単能性として分類される。「全能性」細胞は、全ての胚細胞型及び胚体外細胞型を生じさせることが可能である。「多能性」細胞は、全ての胚細胞型を生じさせることが可能である。「複能性」細胞には、細胞系統のサブセットで、特定の組織、臓器、又は生理系内の全てを生じさせることが可能であるものが含まれる。例えば、造血幹細胞（ＨＳＣ）は、ＨＳＣ（自己複製）、血球限定の少能性前駆細胞、並びに血液の正常構成要素である全ての細胞型及び成分を含む子孫を生成することができる。「少能性」細胞は、複能性幹細胞より制限された細胞系統サブセットを生じさせることができる。「単能性」細胞は、単一の細胞系統（例えば精子発生幹細胞など）を生じさせることができる。
【００３１】
幹細胞はまた、それらの幹細胞を得ることができる供給源に基づいても分類される。「成体幹細胞」は、全般的には、複数の分化細胞型を含む組織内に見出される、複能性の未分化細胞である。成体幹細胞は、自己複製することができる。通常の状況下では、成体幹細胞はまた、その細胞が起源とする組織の、特殊化した細胞型、また恐らくは他の組織型を産生するように、分化することもできる。「胚幹細胞」は、胚盤胞期の胚の内部細胞塊からの、多能性細胞である。「胎生幹細胞」は、胎児組織又は胎膜を起源とする幹細胞である。「分娩後幹細胞」は、出産後に入手可能な胚体外組織、すなわち、胎盤及び臍帯を実質的に起源とする、複能性若しくは多能性の細胞である。これらの細胞は、迅速な増殖、及び多くの細胞系統への分化に関する潜在能力を含めた、多能性幹細胞に固有の特徴を保有することが見出されている。分娩後幹細胞は、血液由来（例えば、臍帯血から得られる幹細胞のような）又は非血液由来（例えば、臍帯及び胎盤の非血液組織から得られるような）のものとすることができる。
【００３２】
「胚組織」は、典型的には、胚（ヒトでは、受精から、約６週間の発達までの期間を指す）を起源とする組織として定義される。胎児組織は、ヒトでは約６週間の発達から分娩までの期間を指す、胎児に由来する組織を指す。胚体外組織は、胚又は胎児に関連するが、胚又は胎児を起源とはしない組織である。胚体外組織としては、胚体外膜（絨毛膜、羊膜、卵黄嚢、及び尿膜）、臍帯、及び胎盤（それ自体は、絨毛膜及び母体基底脱落膜から形成される）が挙げられる。
【００３３】
「分化」は、特殊化されていない（「未確定の」）細胞、又は比較的特殊化されていない細胞が、例えば、神経細胞又は筋細胞などの、特殊化細胞の特徴を獲得するプロセスである。「分化した」細胞は、細胞の系統の範囲内で、より特殊化した（「確定した」）状態を呈している細胞である。「確定した」という用語は、分化のプロセスに適用される場合、通常の状況下では、特定の細胞型又は細胞型のサブセットへと分化を継続して、通常の状況下では、異なる細胞型へと分化することも、又はより未分化の細胞型に復帰することもできない地点まで、分化経路が進行している細胞を指す。「脱分化」は、細胞が細胞系統内で比較的特殊化されて（又は傾倒して）いない状況に戻るプロセスを指す。本明細書で使用されるとき、細胞の「系統」は、その細胞の遺伝性、すなわち、その細胞がどの細胞に由来するか、またその細胞がどのような細胞を生じさせることができるかを規定する。ある細胞の系統とは、所定の発生及び分化の遺伝体系内にその細胞を位置付けるものである。
【００３４】
広義には、「前駆細胞」は、それ自体よりも分化した子孫を作り出す能力を有し、かつ前駆細胞のプールを補充する能力を更に保持する細胞である。その定義によれば、幹細胞自体もまた、最終分化細胞へのより直接的な前駆細胞であるため、前駆細胞である。以下でより詳細に説明されるように、本発明の細胞に言及する場合、この広い意味での前駆細胞の定義を使用することができる。より狭義には、前駆細胞は、分化経路での中間体である細胞として定義される場合が多く、すなわち、前駆細胞は、幹細胞から生じるものであり、成熟細胞型又は細胞型のサブセットを産生する際の中間体である。このタイプの前駆細胞は、全般的には、自己複製が不可能である。したがって、このタイプの細胞が、本明細書で言及される場合には、その細胞は、「非複製前駆細胞」、又は「中間的前駆体」若しくは「中間的前駆細胞」と称される。
【００３５】
本明細書で使用されるとき、「中胚葉性、外胚葉性又は内胚葉性系統に分化する」という表現は、それぞれ、特定の中胚葉性、外胚葉性又は内胚葉性系統になることが確定した細胞を指す。中胚葉性系統に分化する（特定の中胚葉性細胞を生じさせる）細胞の例としては、脂肪形成、軟骨形成、心臓形成、皮膚形成、造血、血管形成、筋形成、神経形成、尿生殖器形成、骨形成、心膜形成（pericardiogenic）、又は間質性細胞が挙げられるがこれらに限定されない。外胚葉性系統に分化する細胞の例としては、上皮細胞、神経形成細胞、及び神経膠形成細胞が挙げられるがこれらに限定されない。内胚葉性系統に分化する細胞の例としては、多能性細胞、肝臓形成細胞、腸の内層を生じさせる細胞、並びに膵臓形成及び脾臓形成細胞を生じさせる細胞が挙げられるがこれらに限定されない。
【００３６】
本発明に使用される細胞は一般に、「臍帯組織由来細胞（ＵＴＣ又はｈＵＴＣ）」を指すものとして一般的に引用される。それらの細胞はまた、場合によって、「臍由来細胞（ＵＤＣ）」と称することもできる。更には、それらの細胞は、幹細胞又は前駆細胞であるとして説明することができ、後者の用語は、広義に使用される。由来する、という用語は、その細胞が、それらの生物学的起源から得られ、インビトロで、増殖されているか又は他の方法で操作されている（例えば、増殖培地中で培養されて、その集団を増殖させ、かつ／又は細胞株を産生する）ことを示すために使用される。臍幹細胞のインビトロ操作、及び本発明の臍由来細胞の独自の特徴が、以下で詳細に説明される。
【００３７】
「周細胞」は、当該技術分野においてルジェ細胞とも呼ばれ、典型的に微小血管の血管基底膜内に埋め込まれた状態で見出される細胞を指し（Ａｒｍｕｌｉｋ  Ａ  ｅｔ  ａｌ．（２００５）Ｃｉｒｃ．Ｒｅｓ．９７：５１２〜２３）、これは、とりわけ、内皮細胞とのコミュニケーション／シグナリング、血管収縮、血管拡張、血流の調節、血管形成及び発達、血管形成、並びに内皮分化及び成長の停止において、役割を果たしていると考えられている（Ｂｅｒｇｅｒｓ  Ｇ  ｅｔ  ａｌ．（２００５）Ｎｅｕｒｏ−Ｏｎｃｏｌｏｇｙ  ７：４５２〜６４）。
【００３８】
培養中の細胞を説明するうえで様々な用語が用いられる。「細胞培養物」とは、全般的には、生体から取得され、制御条件下で増殖される（「培養下」又は「培養される」）細胞を指す。「初代細胞培養物」は、最初の継代培養の前に、生物から直接取得された細胞、組織、又は器官の培養物である。細胞は、細胞増殖及び／又は細胞分裂を促進する条件下で、増殖培地内に定置される場合に、培養増殖して、細胞の大集団を生じさせる。細胞を培養中で増殖させる場合、細胞増殖の速度は、細胞の数が倍加するのに必要な時間の量によってしばしば測定される。この時間は、「倍加時間」と称される。
【００３９】
「細胞株」は、初代細胞培養物の１回以上の継代培養によって形成される、細胞の集団である。継代培養の各回は、「継代数」と呼ばれる。細胞が継代培養される場合、それらの細胞は、「継代されている」として言及される。特定の細胞の集団又は細胞株は、細胞が継代された数によってしばしば呼ばれるか又は特徴付けられる。例えば、１０回継代された培養細胞集団はＰ１０培養物と呼ばれる場合がある。初代培養、すなわち、組織から細胞を単離した後の最初の培養はＰ０と称される。最初の継代培養の後、細胞は２次培養（Ｐ１又は継代数１）といわれる。２回目の継代培養の後では、細胞は３次培養（Ｐ２又は継代数２）となる、といった具合である。当業者であれば、継代期間中に集団は何度も倍加し得るものであり、したがってある培養の集団倍加の回数は継代数よりも大きいことは理解されるであろう。それぞれの継代間の期間における細胞の増殖（すなわち、集団倍加数）は、播種密度、支持体、培地、培養条件、及び継代間の時間等を含むがこれらに限定されない多くの因子に依存する。
【００４０】
「馴化培地」は、特定の細胞又は細胞の集団が、その中で培養されて、その後取り出された、培地である。細胞が培地中で培養される場合、それらの細胞は、他の細胞に栄養的支援を提供することができる細胞因子を、分泌する場合がある。そのような栄養因子としては、ホルモン、サイトカイン、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）、タンパク質、小胞、抗体、及び顆粒が挙げられるが、これらに限定されない。細胞性因子を含む培地が馴化培地である。
【００４１】
一般的に、「栄養因子」は、細胞の生存、成長、増殖、及び／又は成熟を促進するか、あるいは細胞の活性の増大を刺激する物質として定義される。
【００４２】
培養脊椎動物細胞に言及する場合、「老化」という用語（同様に、「複製老化」又は「細胞老化」）は、有限の細胞培養に起因する特性、すなわち、それらの細胞が、有限数の集団倍加（「ヘイフリック限界」と称される場合がある）を超えて増殖する能力がないことを指す。細胞老化は、最初に、線維芽細胞様細胞を使用して説明されたが、培養下で成功裏に増殖させることができる、殆どの正常ヒト細胞型が、細胞老化を経る。種々の細胞型のインビトロでの寿命は、様々であるが、その最大寿命は、典型的には、１００回未満の集団倍加である（これは、全ての培養細胞が老化することにより、その培養物を分裂不能にさせる、倍化の数である）。老化は、経時的な時間に応じて決定されるものではなく、むしろ、その培養物が経験している、細胞分裂又は集団倍加の数によって測定される。それゆえ、必須増殖因子を除去することによって休止させた細胞は、増殖因子が再導入されると、成長及び分裂を再開して、その後、継続的に増殖させた等価の細胞と同じ数の倍加を実施することが可能となる。同様に、様々な数の集団倍加の後に、液体窒素中で細胞を凍結させ、次いで解凍して培養する場合、それらの細胞は、未凍結のまま維持された培養細胞と実質的に同じ数の倍加を経る。老化細胞は、死細胞又は死に至りつつある細胞ではなく、実際には、プログラム細胞死（アポトーシス）に耐性を示し、３年もの長い間、その非分裂状態で維持されている。これらの細胞は、紛れもなく生存しており、代謝的に活性であるが、分裂することはない。この老化細胞の非分裂状態は、いずれの生物学的薬剤、化学的薬剤、又はウイルス剤によっても、可逆性であることは、未だに見出されていない。
【００４３】
本明細書で使用される用語「増殖培地」は、全般に、臍帯組織由来細胞の培養に十分な培地を指す。具体的には、本発明の細胞の培養に関して、現時点で好ましい１つの培地は、ダルベッコ変法必須培地（ＤＭＥＭ）を含む。ＤＭＥＭ−低グルコース（ＤＭＥＭ−ＬＧ）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ））が、特に好ましい。このＤＭＥＭ−ＬＧは、血清（最も好ましくはウシ胎児血清又はヒト血清）が添加されている。典型的に、１５％（ｖ／ｖ）ウシ胎児血清（例えば、規定ウシ胎児血清、Ｈｙｃｌｏｎｅ（Ｌｏｇａｎ  ＵＴ））が、抗生物質／抗真菌剤（好ましくは１００Ｕ／ｍＬのペニシリン、１００ｍｇ／ｍＬのストレプトマイシン、及び０．２５ｍｇ／ｍＬのアンホテリシンＢ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）））、並びに０．００１％（ｖ／ｖ）の２−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ  ＭＯ））と共に添加される。場合によっては、異なる増殖培地が使用されるか、又は異なる補助剤が提供され、これらは、通常は、増殖培地に対する補助剤として、本テキスト内に示される。特定の合成培地においては、細胞は血清が全く存在しない中で増殖し得る。そのような場合、細胞は特定の増殖因子を必要とする場合があり、これは細胞の支持及び維持のために培地に添加することができる。現在、無血清培地での増殖のために添加される好ましい因子としては、ｂＦＧＦ、ＥＧＦ、ＩＧＦ−Ｉ、及びＰＤＧＦのうち１つ又は２つ以上が挙げられる。より好ましい実施形態において、因子のうち２つ、３つ、又は４つ全てが無血清培地又は合成培地に添加される。他の実施形態において、細胞の増殖を支持又は改善するために、無血清培地にＬＩＦが添加される。
【００４４】
また本発明に関して、本明細書で使用されるとき、用語「標準増殖条件」とは、５％のＣＯ２を含む標準雰囲気中、３７℃で細胞を培養することを指す。相対湿度は約１００％に維持される。前述の条件は、培養に関して有用であるが、そのような条件は、細胞を培養するための、当該技術分野において利用可能な選択肢を認識する当業者によって、変更することが可能である点を理解されたい。
【００４５】
用語「有効量」とは、本明細書で記述されるとき、特定の生物学的結果を達成するのに有効な、化合物、材料、又は組成物の、濃度又は量を指す。そのような結果には、骨格組織の再生、修復若しくは改善、血流の改善、並びに／又は末梢虚血患者における血管形成の刺激及び／又は支持が挙げられるがこれらに限定されない。そのような有効活性は、例えば、本発明の細胞及び／又は組成物を、末梢虚血患者に対して投与することにより、達成することができる。インビボで患者に投与される臍帯組織由来細胞に関しては、有効量は、最小で数百個〜最多で数百万個超までの範囲であり得る。具体的な実施形態では、有効量は、１０３〜１０１１個の細胞の範囲、より具体的には、少なくとも約１０４個の細胞であり得る。投与される細胞の数は、治療される障害の詳細に応じて決定され、それらの詳細としては、医薬生物学者には周知の、他の要因の中でも特に、治療されるサイズ又は総容積／表面積、並びに治療される領域の場所に対する、投与部位の近接性が挙げられるが、これらに限定されないことが理解されるであろう。
【００４６】
用語「治療する（treat）」、「治療している（treating）」又は「治療（treatment）」は、損傷、病理、又は病状の減弱又は改善における、何らかの成功又は成功の兆候を指し、これには、寛解（abatement）、緩解（remission）、症状の減少、損傷、病理、又は病状を患者にとってより許容できるものにすること、変性又は減退速度を遅くすること、変性による最終的な衰弱を和らげること、あるいは患者の肉体的又は精神的健康を改善すること、生存期間の長さを延長することなどの、何らかの客観的又は主観的パラメータを含む。症状の治療又は改善は、身体検査、神経学的検査及び／又は精神医学的評価の結果など客観的又は主観的パラメータに基づくものであり得る。
【００４７】
「有効期間（又は時間）」及び「有効条件」という用語は、薬剤又は医薬組成物が、その意図された結果を達成するために必要であるか、若しくは好ましい、期間あるいは他の制御可能な条件（例えば、インビトロの方法に関しては、温度、湿度）を指す。
【００４８】
用語「患者」又は「被験者」は、本明細書において互換可能に使用され、本明細書に記述される薬剤若しくは治療用組成物で治療されるか、又は、本明細書に記述される方法に従って治療される、動物、好ましくは哺乳類、より好ましくはヒトを指す。
【００４９】
「虚血」とは、脈管構造の何らかの狭窄又は閉塞によって起こる、生体臓器、組織、又は部分への血液供給の減少若しくは停止を指す。「虚血エピソード」又は「虚血イベント」は、本明細書において互換可能に使用され、何らかの一過性又は永久的虚血を指す。「末梢虚血」とは、脈管構造の何らかの狭窄又は閉塞によって起こる、心臓を除く、生体臓器、組織、又は部分への血液供給の減少若しくは停止を指す。「末梢血管疾患」（ＰＶＤ）は、心臓及び脳以外の血管の疾患を指す。これはしばしば、四肢へ血管を運ぶ血管の狭窄を含み、次の２つのタイプの循環障害により起こるものである：（１）血管を狭める短期的な痙攣を含む機能的末梢血管疾患、（２）例えば炎症又は脂質妨害物によって起こる、血管内の構造的変化を含む器質的末梢血管疾患。本明細書で使用されるとき、ＰＶＤにはレイノー病、間欠性跛行及び重症虚血肢も含まれる。
【００５０】
「薬学的に許容できる担体（又は培地）」という用語は、生物学的に適合可能な担体又は培地という用語と、互換的に使用することができ、治療的に投与される細胞及び他の薬剤と適合可能であるばかりではなく、健全な医学的判断の範囲内で、妥当な利益／リスクの比率に見合った、過度の毒性、炎症、アレルギー反応、若しくは他の合併症を伴わない、ヒト及び動物の組織と接触させる使用に関しても好適である、試薬、細胞、化合物、材料、組成物、並びに／あるいは剤形を指す。本明細書でより詳細に説明されるように、本発明での使用に関して好適な、薬学的に許容できる担体としては、液体材料、反固体材料（例えば、ゲル）、及び固体材料（例えば、細胞スカフォールド及びマトリックス、管、シート、並びに当該技術分野において既知であり、かつ本明細書でより詳細に説明されるような他の材料）が挙げられる。これらの反固体材料及び固体材料は、身体内部での分解に抵抗するように（「非生分解性」）設計することができ、又はそれらの材料は、身体内部で分解するように（「生分解性」、「生物浸食性」）設計することもできる。生分解性材料は、更に、「生体再吸収性」又は「生体吸収性」とすることができ、すなわち、その材料は、体液内に溶解して吸収される（水溶性インプラントが一例である）か、あるいは他の材料への転化によって、若しくは自然経路を通じた崩壊及び排出によって、分解され、最終的に身体から排出されることが可能である。生分解速度は、体内に埋め込まれた後の望ましい放出速度によって異なり得る。このマトリックスはまた、望ましいように、新たに成長する骨格筋、周細胞、血管平滑筋、又は血管内皮組織によって置き換えられるまでの間、一時的なスカフォールドとして機能する。よって、一実施形態において、このマトリックスは、臍帯組織由来細胞と共に使用される他の持続放出性薬剤のために提供され、かつ患者における組織成長のための構造を提供し得る。他の実施形態において、このマトリックスは単に、組織発生のための一時的なスカフォールドを提供する。このマトリックスは、粒子状形態（直径１０マイクロメートル超のマクロ粒子、又は直径１０マイクロメートル未満のミクロ粒子）であってよく、あるいは、構造的に安定した３次元インプラント（例えばスカフォールド）の形態であってもよい。インプラントは例えば、立方体、円筒形、チューブ、ブロック、フィルム、シート、又は適切な解剖学的形態であり得る。
【００５１】
本明細書では、細胞又は組織移植に関して幾つかの用語が使用される。用語「自家移入」、「自家移植」、「自家移植片」などの用語は、移植ドナーが移植レシピエントでもある移植を指す。用語「同種異系移入」、「同種異系移植」、「同種異系移植片」などの用語は、移植ドナーが移植レシピエントと同じ種であるが、同じ個体ではないような移植を指す。ドナー細胞が、レシピエントと組織適合的に一致している細胞移植は、「同系移入」と称される場合がある。用語「異種移入」、「異種移植」、「異種移植片」などの用語は、移植ドナーがその移植レシピエントとは異なる種であるような移植を指す。
【００５２】
本明細書で説明される様々な実施形態において、本発明は、臍組織に由来する前駆細胞及び細胞集団を利用する、末梢血管疾患治療のための、方法及び医薬組成物を特徴とする。これらの方法及び医薬組成物は、血管形成を刺激及び支持し、血流を改善し、末梢血管イベントによって損傷した骨格筋を再生、修復及び改善し、並びに／又は骨格筋を虚血損傷から保護するよう設計される。本発明の医薬品調製及び方法に使用される、細胞溶解物、馴化培地などを含む細胞、細胞集団及び調製物は、米国特許公開第２００５／００５８６３１号及び第２００５／００５４０９８号、並びに本明細書で下記に詳述されている。
【００５３】
本発明の一実施形態は、本明細書に記述される臍帯組織由来細胞による末梢血管疾患の治療方法である。本発明の一実施形態において、この細胞は、医薬組成物の一部として提供される。
【００５４】
本発明の別の一実施形態において、末梢血管疾患の治療方法は、フィブリン糊（フィブリンシーラントとも呼ばれる）を利用する。本明細書で使用される用語「フィブリン糊」は、フィブリン凝固を形成するために使用される任意の生物学的又は合成物質を包含するものとする。一実施形態において、このフィブリン糊は細胞着床のためのスカフォールドである。このフィブリン糊は最適なように、十分な期間、体内での分解に耐える能力を有する。一実施形態において、このフィブリン糊は、フィブリノーゲン（第Ｉ因子）（例えば組換えフィブリノーゲン又は血液から精製されたフィブリノーゲン）及びトロンビンを含む。別の一実施形態において、このフィブリン糊は、フィブリノーゲン、トロンビン、第ＸＩＩＩ因子、並びに所望により、カルシウム、アプロチニン、フィブロネクチン及びプラスミノーゲンのうち１つ又は２つ以上を含む。更に別の一実施形態において、このフィブリン糊は、フィブリノーゲン、トロンビン、並びに所望により、第ＸＩＩＩ因子、抗フィブリン分解（anti-fribinolytic）剤（例えばトラネキサム酸（transexamic acid））、安定剤（例えばアルギニン塩酸塩）、カルシウム、アプロチニン、フィブロネクチン及びプラスミノーゲンのうち１つ又は２つ以上を含む。別の一実施形態において、このフィブリン糊は、添加されたプロテアーゼ阻害剤を実質的に含まない。更に別の一実施形態において、このフィブリン糊は、ＢＡＣ２（フィブリノーゲン）及びトロンビンを含む。別の一実施形態において、このフィブリン糊は、ＥＶＩＣＥＬ（登録商標）フィブリン糊（ＥＶＩＣＥＬ（登録商標）フィブリンシーラント（ヒト）、Ｏｍｒｉｘ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ）（トロンビン及びＢＡＣ２（フィブリノーゲン））である。一実施形態において、このフィブリン糊は多成分系として提供することができ、これは、フィブリン（及び所望により第ＸＩＩＩ因子）を含む１つの構成成分と、トロンビン（及び所望に寄りカルシウム）を含むもう１つの構成成分とが使用前に混合される。別の一実施形態において、このフィブリン糊は、米国特許仮出願第６１／３７２，９２９号（２０１０年８月１２日）に記述されているスカフォールドであり、このフィブリンスカフォールドの記述、特性及び使用に関する開示全体が参照により本明細書に組み込まれる。
【００５５】
このフィブリン糊は、本明細書に記述される臍帯組織由来細胞（臍由来細胞）と同時に、又は前に、又は後に投与することができる。一実施形態において、このフィブリン糊と本明細書に記述される臍由来細胞は、例えば医薬組成物などの組成物の形態で提供される。一実施形態において、この組成物は局所的に投与される（例えば筋肉注射又は筋肉中の脂肪蓄積内への注射によって）。別の一実施形態において、このフィブリン糊と本明細書に記述される臍由来細胞は、局所的に投与される（例えば筋肉注射又は筋肉中の脂肪蓄積内への注射によって）。別の一実施形態において、この組成物、又は細胞とフィブリン糊とは、循環中に直接侵入しないように、間質空間内へ注入することにより投与される。別の一実施形態において、この方法は、局所投与の直前にトロンビンが添加されたフィブリノーゲン中の細胞を提供することを含む。一実施形態において、このフィブリン糊は、約１６〜約２４ＩＵ／ｍＬ、あるいは１８〜２２ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、約３９．３〜６０．７ｍｇ／ｍＬ、あるいは約４５〜約６０ｍｇ／ｍＬ、あるいは約４０〜約５５ｍｇ／ｍＬ、あるいは約４５〜約５５ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲン（例えばＢＡＣ２）とを含む。更に別の一実施形態において、このフィブリン糊は、約１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３又は２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、約４０、４３、４５、４８、５０、５２、５３、５８又は６０ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを含む。一実施形態において、約１×１０６個の細胞がこのフィブリン糊と共に使用される。
【００５６】
本明細書で説明される方法によれば、哺乳類の臍帯は、満期妊娠若しくは早期妊娠のいずれかの終了時に、又はその直後に、例えば、出産後の圧出の後に回収される。この臍帯組織は、出産部位から、実験室へと、フラスコ、ビーカー、培養皿、又は袋などの、滅菌容器内で移送することができる。この容器は、溶液又は培地を含み得、それらの溶液又は培地としては、例えば、ダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）（ダルベッコ最小必須培地とも呼ばれる）若しくはリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）などの、食塩水、又はウィスコンシン大学液若しくはペルフルオロ化合物溶液などの、移植に使用される器官の移送のために使用される、任意の溶液が挙げられるが、これらに限定されない。限定するものではないが、ペニシリン、ストレプトマイシン、アンホテリシンＢ、ゲンタマイシン、及びナイスタチンなどの、１種以上の抗生物質及び／又は抗真菌剤を、培地若しくは緩衝液に添加することができる。臍組織は、ヘパリン含有溶液などの抗凝固溶液で、すすぐことができる。臍帯組織由来細胞の抽出の前に、この組織を約４〜１０℃に保つことが好ましい。この組織は、臍由来細胞の抽出の前に凍結させないことが、更により好ましい。
【００５７】
臍由来細胞の分離は好ましくは無菌的環境中で行われる。臍帯は、当該技術分野において既知の手段によって、胎盤から分離することができる。好ましくは、臍帯組織由来細胞の分離を行う前に、血液及び屑を組織から除去する。例えば、この臍組織は、緩衝溶液（リン酸緩衝生理食塩水を含むがこれに限定されない）で洗浄することができる。この洗浄緩衝液はまた、１種以上の抗真菌剤及び／又は抗生物質（例えばペニシリン、ストレプトマイシン、アンホテリシンＢ、ゲンタマイシン、及びナイスタチンを含むがこれらに限定されない）も含み得る。
【００５８】
臍帯全体又はその断片若しくは切片を含む臍組織は、機械的な力（細断力又は剪断力）によって脱凝集される。現時点で好ましい実施形態では、この単離手順はまた、酵素消化プロセスも利用する。多くの酵素が、培養下での増殖を促進するための、複合組織マトリックスからの個々の細胞の単離に関して有用であることは、当該技術分野において既知である。弱い消化性（例えば、デオキシリボヌクレアーゼ、及び中性プロテアーゼであるディスパーゼ）から、強い消化性（例えば、パパイン及びトリプシン）の範囲にわたる消化酵素が市販されている。本明細書に適合する酵素の非網羅的なリストとしては、粘液溶解酵素活性、メタロプロテアーゼ、中性プロテアーゼ、セリンプロテアーゼ（トリプシン、キモトリプシン、又はエラスターゼなど）、及びデオキシリボヌクレアーゼが挙げられる。メタロプロテアーゼ、中性プロテアーゼ、及び粘液溶解活性から選択される酵素活性が、現時点で好ましい。例えば、コラゲナーゼは、組織から様々な細胞を単離するために有用であることが既知である。デオキシリボヌクレアーゼは、一本鎖ＤＮＡを消化することができ、単離中の細胞凝集を最小限に抑えることができる。好ましい方法には、例えばコラゲナーゼ及びディスパーゼで、又はコラゲナーゼ、ディスパーゼ及びヒアルロニダーゼで、酵素処置することが含まれる。特定の実施形態において、コラゲナーゼと中性プロテアーゼディスパーゼの混合物が、この分離段階に使用される。より具体的な実施形態では、Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ  ｈｉｓｔｏｌｙｔｉｃｕｍ由来の少なくとも１種のコラゲナーゼ、並びにプロテアーゼ活性のディスパーゼ、及びサーモリシンのいずれかの存在下での消化を採用する。更に別の実施形態では、コラゲナーゼとディスパーゼ両方の酵素活性での消化を採用する。また、コラゲナーゼ活性及びディスパーゼ活性に加えて、ヒアルロニダーゼ活性での消化を含む方法も利用される。様々な組織源から細胞を単離するための、そのような多くの酵素処理が、当該技術分野において既知であることが、当業者には理解されるであろう。例えば、商標名ＬＩＢＥＲＡＳＥ（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ（Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ））として販売されている組織解離用酵素配合物が、当該方法での使用に好適である。他の酵素の供給源が既知であり、当業者はまた、そのような酵素を、それらの天然源から直接取得することもできる。当業者はまた、本発明の細胞を単離する際の有用性に関して、新たな、又は追加的な酵素若しくは酵素の組合せを評価するための設備も、十分に備えている。好ましい酵素処理は、０．５時間、１時間、１．５時間、又は２時間以上の長さである。他の好ましい実施形態では、組織は、この解離段階の酵素処理の間、３７℃でインキュベートされる。
【００５９】
本発明の幾つかの実施形態において、臍組織は、例えば、新生児、新生児／母体、及び胎盤の母体の態様などの、様々な組織の態様を含む切片へと分離される。次いで、分離された切片は、本明細書で説明される方法に従って、機械的解離及び／又は酵素的解離によって解離される。新生児系統又は母体系統の細胞は、当該技術分野において既知の任意の手段によって、例えば、Ｙ染色体に関する、核型分析又はその場ハイブリダイゼーションによって、同定することができる。
【００６０】
分離された細胞、又は細胞が由来する臍組織は、細胞培養を開始又は播種するのに使用することができる。細胞外マトリックス又はリガンド、例えば、ラミニン、コラーゲン（ネイティブ、未変性、又は架橋）、ゼラチン、フィブロネクチン、及びその他の細胞外マトリックスタンパク質によりコーティングしていない又はコーティングした組織培養用滅菌容器に単離細胞を移入する。臍帯由来細胞は、細胞の生育を維持することのできる任意の培養培地で培養し、これには例えば、ＤＭＥＭ（高又は低グルコース）、改変ＤＭＥＭ、ＤＭＥＭ／ＭＣＤＢ  ２０１、イーグル基本培地、ハムＦ１０培地（Ｆ１０）、ハムＦ−１２培地（Ｆ１２）、イスコフ改変ダルベッコ培地、間葉系幹細胞増殖培地（ＭＳＣＧＭ）、ＤＭＥＭ／Ｆ１２、ＲＰＭＩ  １６４０、及び商標名ＣＥＬＬ−ＧＲＯ−ＦＲＥＥ（登録商標）（Ｍｅｄｉａｔｅｃｈ，Ｉｎｃ．（Ｈｅｒｎｄｏｎ，ＶＡ））として販売されている無血清培地（serum/media free medium）などが挙げられるがこれらに限定されない。この培養培地は、例えば、好ましくは約２〜１５％（ｖ／ｖ）のウシ胎児血清（ＦＢＳ）；ウマ血清（ＥＳ）；ヒト血清（ＨＳ）；好ましくは約０．００１％（ｖ／ｖ）のβ−メルカプトエタノール（ＢＭＥ又は２−ＭＥ）；１種以上の増殖因子、例えば、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、上皮増殖因子（ＥＧＦ）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）、インスリン様増殖因子−１（ＩＧＦ−１）、白血球阻止因子（ＬＩＦ）、及びエリスロポエチン（ＥＰＯ）；Ｌ−バリンを含むアミノ酸；例えば、単独若しくは組合せでの、ペニシリンＧ、硫酸ストレプトマイシン、アンホテリシンＢ、ゲンタマイシン、及びナイスタチンなどの、微生物汚染を制御するための、１種以上の抗生物質並びに／あるいは抗真菌剤を含めた、１種以上の構成成分を添加することができる。培養培地は好ましくは、下記の実施例で定義される増殖培地を含む。
【００６１】
細胞は、細胞増殖を可能にする密度で、培養容器中に播種される。好ましい実施形態では、細胞は、空気中約０〜約５体積パーセントのＣＯ２で培養される。一部の好ましい実施形態では、細胞は、空気中約２〜約２５パーセントのＯ２で、好ましくは、空気中約５〜約２０パーセントのＯ２で培養される。細胞は、好ましくは、約２５〜約４０℃の温度で培養され、より好ましくは、約３７℃の温度で培養される。細胞は、好ましくは、インキュベータ内で培養される。培養容器内の培地は、静的状態とすることができ、又は例えば、バイオリアクターを使用して、攪拌することもできる。臍帯由来細胞は、好ましくは、低酸化ストレス下で（例えば、グルタチオン、ビタミンＣ、カタラーゼ、ビタミンＥ、Ｎ−アセチルシステインを添加して）生育させる。「低酸化ストレス」とは、本明細書で使用されるとき、フリーラジカルが培養細胞に損傷を与えないか、又は損傷が最低限に抑えられる条件を指す。
【００６２】
最も適切な細胞培地、培地調製、及び細胞培養技術の選択方法は、当該技術分野において周知であり、Ｄｏｙｌｅ  ｅｔ  ａｌ．（編）、１９９５年、「ＣＥＬＬ  ＆  ＴＩＳＳＵＥ  ＣＵＬＴＵＲＥ：ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ  ＰＲＯＣＥＤＵＲＥＳ」、Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ（Ｃｈｉｃｈｅｓｔｅｒ）；Ｈｏ及びＷａｎｇ（編）、１９９１年、「ＡＮＩＭＡＬ  ＣＥＬＬ  ＢＩＯＲＥＡＣＴＯＲＳ」、Ｂｕｔｔｅｒｗｏｒｔｈ−Ｈｅｉｎｅｍａｎｎ（Ｂｏｓｔｏｎ）を含めた、様々な出展で説明され、それらは、参照により本明細書に組み込まれる。
【００６３】
単離された細胞又は組織断片を、十分な期間にわたって培養した後に、臍組織からの遊走、若しくは細胞分裂のいずれか、又は双方の結果として、臍帯組織由来細胞が増殖することとなる。本発明の一部の実施形態では、臍帯組織由来細胞は、継代され、すなわち、最初に使用されたものと同じタイプ、若しくは異なるタイプの新鮮培地を収容する、別個の培養容器に取り出され、その細胞の集団は、有糸分裂的に増殖することができる。本発明の細胞は、継代数０と老化との間の任意の時点で、使用することができる。この細胞は、好ましくは、約３回〜約２５回継代され、より好ましくは、約４回〜約１２回継代され、好ましくは、１０回又は１１回継代される。クローニング及び／又はサブクローニングを実行することにより、細胞のクローン集団が単離されていることを確認することができる。
【００６４】
本発明の幾つかの態様において、臍帯組織内に存在する種々の細胞型は、その臍帯組織由来細胞を単離することができるサブ集団へと分画される。分画又は選択は、細胞分離のための標準的技術を使用して達成することができ、それらの標準的技術としては、臍組織をその構成細胞へと解離する酵素処理、その後の特定の細胞型のクローニング及び選択、例えば、形態学的マーカー及び／又は生化学的マーカーに基づく選択；所望される細胞の選択的増殖（正の選択）、不必要な細胞の選択的破壊（負の選択）；例えば大豆凝集素を使用するような、混合集団中での示差的な細胞凝集能に基づく分離；凍結−解凍手順；混合集団中での示差的な細胞接着特性；濾過；従来の遠心分離法及びゾーン遠心分離法；遠心溶出法（対向流遠心分離法）；単位重力分離法；向流分布法；電気泳動；及び蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）が挙げられるが、これらに限定されない。クローン選択及び細胞分離技術の概説に関しては、参照により本明細書に組み込まれる、Ｆｒｅｓｈｎｅｙ，１９９４，ＣＵＬＴＵＲＥ  ＯＦ  ＡＮＩＭＡＬ  ＣＥＬＬＳ：Ａ  ＭＡＮＵＡＬ  ＯＦ  ＢＡＳＩＣ  ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ，３ｒｄ  Ｅｄ．，Ｗｉｌｅｙ−Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋを参照されたい。
【００６５】
培養培地は、例えば、必要に応じて、例えばピペットで、皿から培地を慎重に吸引して、新鮮培地を補充することによって変更される。インキュベーションは、十分な数又は密度の細胞が、皿内に蓄積するまで継続される。標準的技術を使用して、又はセルスクレーパーを使用して、元の外移植組織の切片を取り出し、残余の細胞をトリプシン処理することができる。トリプシン処理の後、細胞を収集して、新鮮培地に取り出し、上記のようにインキュベートする。一部の実施形態では、培地は、トリプシン処理の約２４時間後に、少なくとも１回交換して、あらゆる浮遊細胞を除去する。培養中に残る細胞は、臍帯組織由来細胞であると見なされる。
【００６６】
臍帯組織由来細胞は、凍結保存することができる。したがって、下記で詳細に説明される、好ましい一実施形態において、自家移入に関する（母又は子のいずれかに関する）臍帯組織由来細胞は、子供の誕生後に適切な臍組織から誘導して、次いで、それらが後に移植に必要とされる場合に利用可能となるように、凍結保存することができる。
【００６７】
臍帯組織由来細胞は、例えば、増殖特性（例えば、集団倍加能力、倍加時間、老化までの継代数）、核型分析（例えば、正常核型；母体系統又は新生児系統）、フローサイトメトリー（例えば、ＦＡＣＳ分析）、免疫組織化学及び／又は免疫細胞化学（例えば、エピトープの検出に関する）、遺伝子発現プロファイリング（例えば、遺伝子チップアレイ；ポリメラーゼ連鎖反応（例えば、逆転写酵素ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲ、及び従来のＰＣＲ））、タンパク質アレイ、タンパク質分泌（例えば、血漿凝固アッセイ又はＰＤＣ−馴化培地の分析によるもの、例えば、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）によるもの）、混合リンパ球反応（例えば、ＰＢＭＣの刺激の尺度として）、並びに／あるいは当技術分野において既知の他の方法によって、特徴付けることができる。
【００６８】
臍組織由来の細胞の例は、２００４年６月１０日に、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ（１０８０１  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｂｌｖｄ．，Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ））に寄託されており、以下のＡＴＣＣアクセッション番号が割り当てられている：（１）菌株表示ＵＭＢ  ０２２８０３（Ｐ７）は、アクセッション番号ＰＴＡ−６０６７が割り当てられ；（２）菌株表示ＵＭＢ  ０２２８０３（Ｐ１７）は、アクセッション番号ＰＴＡ−６０６８が割り当てられている。
【００６９】
様々な実施形態において、臍帯組織由来細胞は、以下の増殖の特徴のうちの１つ又は２つ以上を保有する：（１）培養下での増殖のためにＬ−バリンを必要とする；（２）約５％〜少なくとも約２０％の酸素を含有する大気中での増殖が可能である；（３）老化に到達する前に、培養下で少なくとも約４０回倍加する潜在能力を有する；（４）コーティングされた、若しくはコーティングされていない組織培養容器（ゼラチン、ラミニン、コラーゲン、ポリオルニチン、ビトロネクチン、又はフィブロネクチンのコーティングを含む）上に付着して増殖する。
【００７０】
特定の実施形態において、臍帯組織由来細胞は正常核型を所有しており、これは細胞が継代する際に維持される。核型分析は、胎盤由来の母体細胞から、新生児細胞を同定して識別するために、特に有用である。核型分析に関する方法は、当業者に利用可能であり、既知である。
【００７１】
他の実施形態において、臍帯組織由来細胞は、（１）組織因子、ビメンチン、及びα−平滑筋アクチンのうちの少なくとも１つの産生；（２）フローサイトメトリーによって検出されるような、ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＰＤＧＦｒ−α、ＰＤ−Ｌ２、及びＨＬＡ−Ａ、Ｂ、Ｃ細胞表面マーカーのうちの少なくとも１つの産生を含めた、特定のタンパク質の産生によって特徴付けることができる。他の実施形態において、臍帯組織由来細胞は、フローサイトメトリーによって検出されるような、ＣＤ３１、ＣＤ３４、ＣＤ４５、ＣＤ８０、ＣＤ８６、ＣＤ１１７、ＣＤ１４１、ＣＤ１７８、Ｂ７−Ｈ２、ＨＬＡ−Ｇ、及びＨＬＡ−ＤＲ、ＤＰ、ＤＱ細胞表面マーカーのうちの少なくとも１つの産生の欠如によって、特徴付けることができる。組織因子、ビメンチン、及びα−平滑筋アクチンのうちの少なくとも２つを産生する細胞が、特に好ましい。タンパク質組織因子、ビメンチン、及びα−平滑筋アクチンの３つ全てを産生するような細胞が、より好ましい。
【００７２】
他の実施形態において、臍帯組織由来細胞は、線維芽細胞、間葉系幹細胞、又は腸骨稜の骨髄細胞のヒト細胞と比べて、インターロイキン８；レチクロン１；ケモカイン（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド１（黒色腫増殖刺激活性、α）；ケモカイン（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド６（顆粒球走化性タンパク質２）；ケモカイン（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド３；及び腫瘍壊死因子、α誘導タンパク質３のうちの、少なくとも１つをコードする遺伝子に関して増大する、遺伝子の発現によって特徴付けることができる。
【００７３】
更に他の実施形態において、臍帯組織由来細胞は、線維芽細胞、間葉系幹細胞、又は腸骨稜の骨髄細胞のヒト細胞と比べて、低身長ホメオボックス２；熱ショック２７ｋＤａタンパク質２；ケモカイン（Ｃ−Ｘ−Ｃモチーフ）リガンド１２（ストロマ細胞由来因子１）；エラスチン（大動脈弁上狭窄症、ウィリアムズ−ビューレン症候群）；ホモサピエンスｍＲＮＡ；ｃＤＮＡ  ＤＫＦＺｐ５８６Ｍ２０２２（クローンＤＫＦＺｐ５８６Ｍ２０２２由来）；間葉ホメオボックス２（増殖停止特異的ホメオボックス）；ｓｉｎｅ  ｏｃｕｌｉｓホメオボックスホモログ１（ドロソフィラ）；クリスタリン、α  Ｂ；形態形成のｄｉｓｈｅｖｅｌｅｄ関連アクチベータ２；ＤＫＦＺＰ５８６Ｂ２４２０タンパク質；ニューラリン１の類似体；テトラネクチン（プラスミノーゲン結合タンパク質）；ｓｒｃ相同性３（ＳＨ３）及びシステイン豊富ドメイン；コレステロール２５−ヒドロキシラーゼ；ｒｕｎｔ関連転写因子３；インターロイキン１１受容体α；プロコラーゲンＣ−エンドペプチダーゼエンハンサー；ｆｒｉｚｚｌｅｄホモログ７（ドロソフィラ）；仮定的遺伝子ＢＣ００８９６７；コラーゲン、ＶＩＩＩ型、α  １；テネイシンＣ（ヘキサブラキオン）；ｉｒｏｑｕｏｉｓホメオボックスタンパク質５；へファエスチン；インテグリンβ  ８；シナプス小胞糖タンパク質２；神経芽腫、腫瘍形成抑制１；インスリン様増殖因子結合タンパク質２、３６ｋＤａ；ホモサピエンスｃＤＮＡ  ＦＬＪ１２２８０  ｆｉｓ、クローンＭＡＭＭＡ１００１７４４；サイトカイン受容体様因子１；カリウム中間体／低コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー４；インテグリン、β  ７；ＰＤＺ結合モチーフ（ＴＡＺ）を有する転写コアクチベータ；ｓｉｎｅ  ｏｃｕｌｉｓホメオボックスホモログ２（ドロソフィラ）；ＫＩＡＡ１０３４タンパク質；小胞関連膜タンパク質５（ミオブレビン）；ＥＧＦ含有フィビュリン様細胞外マトリックスタンパク質１；初期成長応答３；ｄｉｓｔａｌ−ｌｅｓｓホメオボックス５；仮定的タンパク質ＦＬＪ２０３７３；アルド−ケト還元酵素ファミリー１、メンバーＣ３（３−αヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ、ＩＩ型）；バイグリカン；ＰＤＺ結合モチーフ（ＴＡＺ）を有する転写コアクチベータ；フィブロネクチン１；プロエンケファリン；インテグリン、β様１（ＥＧＦ様リピートドメインを有する）；ホモサピエンスｍＲＮＡ完全長インサートｃＤＮＡクローンＥＵＲＯＩＭＡＧＥ  １９６８４２２；ＥｐｈＡ３；ＫＩＡＡ０３６７タンパク質；ナトリウム利尿ペプチド受容体Ｃ／グアニル酸シクラーゼＣ（心房ナトリウム利尿ペプチド受容体Ｃ）；仮定的タンパク質ＦＬＪ１４０５４；ホモサピエンスｍＲＮＡ；ｃＤＮＡ  ＤＫＦＺｐ５６４Ｂ２２２（クローンＤＫＦＺｐ５６４Ｂ２２２由来）；ＢＣＬ２／アデノウイルスＥ１Ｂ  １９ｋＤａ相互作用タンパク質３様；ＡＥ結合タンパク質１；シトクロムｃオキシダーゼサブユニットＶＩＩａポリペプチド１（筋肉）のうちの、少なくとも１つをコードする遺伝子に関して減少する、遺伝子の発現によって特徴付けることができる。
【００７４】
他の実施形態において、臍帯組織由来細胞は、ＭＣＰ−１、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＧＣＰ−２、ＨＧＦ、ＫＧＦ、ＦＧＦ、ＨＢ−ＥＧＦ、ＢＤＮＦ、ＴＰＯ、ＭＩＰ１ｂ、ＲＡＮＴＥＳ、及びＴＩＭＰ１のうちの、少なくとも１つの分泌によって特徴付けることができる。幾つかの実施形態において、臍帯組織由来細胞は、ＥＬＩＳＡで検出した場合に、ＴＧＦ−β２、ＡＮＧ２、ＰＤＧＦｂｂ、ＭＩＰ１ａ及びＶＥＧＦのうち少なくとも１つの分泌を欠いていることによって特性づけることができる。
【００７５】
幾つかの好ましい実施形態において、細胞は、実質的に血液を含まない臍帯組織から誘導され、培養下で自己複製及び増殖が可能であり、増殖のためにＬ−バリンを必要とし、少なくとも約５％の酸素中で増殖可能であり、かつ、次の特性のうち少なくとも１つを含む：培養下で少なくとも約４０回倍加する潜在能力を有する；コーティングされた若しくはコーティングされていない組織培養容器（ゼラチン、ラミニン、コラーゲン、ポリオルニチン、ビトロネクチン、又はフィブロネクチンのコーティングを含む）上に付着して増殖する；ビメンチン及びα−平滑筋アクチンの産生；ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３、及びＣＤ９０の産生；並びに、遺伝子の発現が、線維芽細胞、間葉系幹細胞、又は腸骨稜の骨髄細胞であるヒト細胞と比べて、インターロイキン８及びレチクロン１をコードする遺伝子に関して増大する。幾つかの実施形態において、そのような細胞はＣＤ４５及びＣＤ１１７を産生しない。この段落で記述されている細胞は、末梢血管疾患を有する患者の治療のための方法に使用することができ、末梢血管疾患を治療するための医薬組成物に使用することができ、例えば、その医薬組成物は、それらの特性を有する細胞及び製薬上許容される担体を含み、かつ、本明細書に記述及び例示される方法及び医薬組成物を作製、使用、及び実践するためのキットに使用することができる。加えて、この段落で記述されている細胞は、馴化細胞培地を生成するのに使用でき、本明細書に記述及び例示される方法及び医薬組成物を作製、使用、及び実践するために使用可能な、例えば細胞抽出物及び細胞レベル下分画などの調製物を作製するのに使用できる。
【００７６】
好ましい実施形態において、このセルはテロメラーゼ（ｈＴｅｒｔ）を発現しない。したがって、本発明の一実施形態は、テロメラーゼ（ｈＴｅｒｔ）を発現せず、かつ本明細書に開示される特性の１つ又は２つ以上を有する、臍由来細胞である。
【００７７】
本発明の一実施形態において、細胞は、実質的に血液を含まないヒト臍帯組織から分離され、培養下で自己複製及び増殖が可能であり、かつ、ＣＤ１１７及び／又はテロメラーゼの産生を欠いている。この細胞は所望により、（ｉ）酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現し、並びに／又は（ｉｉ）ＣＤ３１、ＣＤ３４、又はＣＤ４５を発現せず、並びに／又は（ｉｉｉ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞、又は腸骨稜の骨髄細胞と比べて、より高いレベルのインターロイキン８又はレチクロン１を発現し、並びに／又は（ｉｖ）少なくとも、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は血管内皮表現型のいずれかの細胞に分化する潜在能力を有し、並びに／又は（ｖ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３、及びＣＤ９０を発現する。本発明の別の一実施形態において、細胞は、実質的に血液を含まないヒト臍帯組織から分離され、培養下で自己複製及び増殖が可能であり、かつ、ＣＤ１１７、ＣＤ３４、ＣＤ３１及び／又はテロメラーゼの産生を欠いている。本発明の更に別の一実施形態において、細胞は、実質的に血液を含まないヒト臍帯組織から分離され、培養下で自己複製及び増殖が可能であり、かつ、ＣＤ１１７、ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ３１及び／又はテロメラーゼの産生を欠いている。
【００７８】
幾つかの態様で本発明と共に使用するために、現時点で好ましい細胞は、とりわけ、上述の特性を有する臍帯組織由来細胞であり、より具体的には、それらの細胞が、正常核型を有し、継代で正常核型を維持する場合であり、更には、それらの細胞が、マーカーＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＰＤＧＦｒ−α、及びＨＬＡ−Ａ、Ｂ、Ｃのそれぞれを発現する場合であり、それらの細胞が、列記されたマーカーに対応する、免疫学的に検出可能なタンパク質を産生する場合である。前述に加えて、フローサイトメトリーによって検出されるような、マーカーＣＤ３１、ＣＤ３４、ＣＤ４５、ＣＤ１１７、ＣＤ１４１、又はＨＬＡ−ＤＲ、ＤＰ、ＤＱのいずれに対応するタンパク質も産生しないような細胞が、更により好ましい。
【００７９】
様々な表現型に導かれる株に沿って分化する潜在能力を有する特定の細胞は、不安定であるため、自然発生的に分化する場合がある。現在、本発明と共に使用するのに好ましい細胞は、自発的に分化しない細胞であり、例えば、筋芽細胞、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、血管形成（hemangiogenic）、血管形成（angiogenic）、脈管形成（vasculogenic）、又は血管内皮系に沿って自発的に分化しないものである。好ましい細胞は、増殖培地で生育させた場合に、細胞表面上に産生される細胞マーカーがほぼ安定しており、かつ例えば、商標名ＧＥＮＥＣＨＩＰ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ，Ｉｎｃ．（Ｓａｎｔａ  Ｃｌａｒａ，ＣＡ））として販売されている医療診断検査を用いて判定される各種遺伝子の発現パターンがほぼ安定している。この細胞は、例えば、複数回の集団倍加を経る継代時に、それらの表面マーカー特性を、実質的に一定なまま保持する。
【００８０】
本発明の別の態様は、上述のような臍帯組織由来細胞の細胞集団の使用を特徴とする。幾つかの実施形態において、この細胞集団は不均質である。本発明の不均質細胞集団は、本発明の臍帯組織由来細胞を少なくとも約５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、又は９５％含む。本発明の不均質細胞集団は更に、幹細胞又はその他の前駆細胞（例えば筋芽細胞又はその他の筋肉前駆細胞、血管芽細胞、又は血管前駆細胞）を含み、あるいは更に、完全に分化した骨格筋細胞、平滑筋細胞、周細胞、又は血管内皮細胞を含み得る。幾つかの実施形態において、この集団は実質的に均質であり、すなわち、実質的に臍帯組織由来細胞のみを含む（好ましくは少なくとも９６％、９７％、９８％、９９％又はそれ以上の臍帯組織由来細胞を含む）。本発明の均質細胞集団は、臍由来又は胎盤由来細胞を含み得る。臍由来細胞の均質集団は、好ましくは、母体系統の細胞を含まない。胎盤由来細胞の均質集団は、新生児又は母体系統のものであり得る。細胞集団の均質性は、当該技術分野において既知の任意の方法によって、例えば、細胞選別（例えば、フローサイトメトリー）によって、又は既知の方法によるクローン増殖によって、達成することができる。それゆえ、好ましい均質な細胞集団は、臍帯組織由来細胞のクローン細胞株を含み得る。そのような集団は、極めて望ましい機能性を有する細胞クローンが単離されている場合、特に有用である。
【００８１】
また本明細書で提供されるのは、血管平滑筋、血管内皮、周細胞、又は骨格筋経路に沿った幹細胞分化を刺激するような、１つ又は２つ以上の因子の存在下、又は条件下において、培養された細胞集団の利用である。そのような因子は、当該技術分野において既知であり、当業者には、分化に好適な条件の決定は、慣用の実験方法を使用して達成することができる点が、理解されるであろう。そのような条件の最適化は、統計的実験計画及び分析によって達成することができ、例えば、応答曲面法により、例えば生物学的培養での、複数の変数の同時最適化が可能となる。現在好ましい因子としては、成長又は栄養因子、ケモカイン、サイトカイン、細胞酸生物、脱メチル化剤、及びその他の、血管形成（angiogenic）、血管形成（hemangiogenic）、脈管形成（vasculogenic）、骨格筋、血管平滑筋、又は血管内皮の経路又は系統に沿った幹細胞分化を刺激することが、既知であるか又は後でそれが見出される刺激が含まれるが、これらに限定されない。
【００８２】
臍帯組織由来細胞は、治療に有用な遺伝子生成物を産生し、付加的な血管形成若しくは成長を促進若しくは支持する血管形成剤を産生し、又は、虚血損傷の領域に対して内皮前駆細胞を補充する因子を産生するよう、遺伝子組み換えを行うこともできる。内皮前駆細胞は、特に虚血イベントの後に、血管形成及び血流を促進する（Ｕｒｂｉｃｈ  Ｃ  ａｎｄ  Ｄｉｍｍｅｌｅｒ  Ｓ（２００４）Ｃｉｒｃ．Ｒｅｓ．９５：３４３〜５３）。内皮細胞補充の役割を担う因子には、ＶＥＧＦ、ストロマ由来因子−１（ＳＤＦ−１）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、Ｇ−ＣＳＦ、スタチン、ストロゲン、ＰＰＡＲγ、ＣＸＣＲ４、ＦＧＦ、及びＨＧＦが挙げられるがこれらに限定されない。遺伝子改変は、様々なベクターのうちのいずれかを使用して達成することができ、それらのベクターとしては、組み込みウイルスベクター、例えば、レトロウイルスベクター若しくはアデノ随伴ウイルスベクター；非組み込み複製ベクター、例えば、パピローマウイルスベクター、ＳＶ４０ベクター、アデノウイルスベクター；又は複製欠陥ウイルスベクターが挙げられるが、これらに限定されない。細胞内にＤＮＡを導入する他の方法としては、リポソーム、電気穿孔法、粒子ガンの使用、又は直接的ＤＮＡ注入によるものが挙げられる。
【００８３】
宿主細胞は、好ましくは、とりわけ、プロモーター配列若しくはエンハンサー配列、転写ターミネーター、ポリアデニル化部位などの、１つ又は２つ以上の適切な発現制御要素、及び選択マーカーによって制御されるか、あるいは有効に関連するＤＮＡで、形質転換又は形質移入される。任意のプロモーターを使用して、挿入遺伝子の発現を駆動することができる。例えば、ウイルスプロモーターとしては、ＣＭＶプロモーター／エンハンサー、ＳＶ４０、パピローマウイルス、エプスタイン−バールウイルス、又はエラスチン遺伝子プロモーターが挙げられるが、これらに限定されない。一部の実施形態では、目的の遺伝子の発現を制御するために使用される、これらの制御要素が、遺伝子の調節発現を可能とすることにより、インビボで必要とされる場合にのみ、その産物が合成される。一過性発現が所望される場合には、構成的プロモーターが、好ましくは、非組み込みベクター及び／又は複製欠陥ベクター内で使用される。あるいは、誘導性プロモーターを使用して、必要とされる際に、挿入遺伝子の発現を駆動することも可能である。誘導性プロモーターとしては、メタロチオネイン及び熱ショックタンパク質に関連するものが挙げられるが、これらに限定されない。
【００８４】
外来ＤＮＡの導入後に、操作された細胞を、富化培地中で増殖させ、次いで、選択培地に切り替えることができる。外来ＤＮＡ中の選択マーカーは、選択に耐性を付与し、細胞が、例えば、プラスミド上に、その染色体中に外来ＤＮＡを安定に組み込み、増殖して増殖巣を形成することを可能にし、次にこの増殖巣は、クローン化して細胞株へと増殖することができる。この方法は、有利には、遺伝子産物を発現する細胞株を操作するために、使用することができる。
【００８５】
本発明の細胞は、埋め込み部位での炎症若しくは拒絶反応を促進する因子の発現を、「ノックアウト」又は「ノックダウン」するように、遺伝子組み換えすることができる。標的遺伝子発現レベル又は標的遺伝子産物活性レベルの低減のための、負変調技術を、以下で説明する。「負変調」とは、本明細書で使用するとき、調節処理の非存在下での標的遺伝子産物のレベル及び／又は活性に対する、標的遺伝子産物のレベル及び／又は活性の低減を指す。骨格筋細胞、血管平滑筋細胞、周細胞、血管内皮細胞、又はこれらの前駆細胞に本来ある遺伝子発現は、例えば、相同組み換え技法を用いて遺伝子を不活性化することにより発現を阻害するなど、数多くの技法を用いて低減又はノックアウトすることができる。典型的には、タンパク質の重要領域をコードするエクソン（すなわち、その領域に対して５’側のエクソン）が、陽性選択マーカー、例えばｎｅｏによって干渉され、標的遺伝子からの正常なｍＲＮＡの産生が妨げられて、その遺伝子の不活性化がもたらされる。遺伝子はまた、遺伝子の一部に欠失を作り出すことによって、又は遺伝子全体を欠失させることによって、不活性化することもできる。標的遺伝子と相同であり、ゲノム中では遠く離れている２つの領域を有するコンストラクトを使用することにより、２つの領域間に介在する配列を欠失させることができる（Ｍｏｍｂａｅｒｔｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，１９９１，８８：３０８４〜３０８７）。アンチセンス、ＤＮＡザイム、リボザイム、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、及び標的遺伝子の発現を阻害する他のそのような分子もまた、標的遺伝子活性のレベルを低減するために使用することができる。例えば、主要組織適合遺伝子複合体（ＨＬＡ）の発現を阻害する、アンチセンスＲＮＡ分子は、免疫反応に関して、最も汎用的であることが示されている。また更には、標的遺伝子活性のレベルを低減する際に、３重螺旋分子を利用することもできる。これらの技術は、Ｌ．Ｇ．Ｄａｖｉｓ  ｅｔ  ａｌ．（編），１９９４，ＢＡＳＩＣ  ＭＥＴＨＯＤＳ  ＩＮ  ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ  ＢＩＯＬＯＧＹ，２ｎｄ  ｅｄ．，Ａｐｐｌｅｔｏｎ  ＆  Ｌａｎｇｅ（Ｎｏｒｗａｌｋ，ＣＮ）によって、詳細に説明されている。
【００８６】
別の一態様において、本発明は、臍帯組織由来細胞から調製された細胞溶解物及び細胞可溶性分画、又は、臍帯組織由来細胞を含む不均質若しくは均質細胞集団、並びに、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、若しくは血管内皮経路に沿って分化するよう遺伝子組み換えされるか又は刺激された、臍帯組織由来細胞若しくはその集団を利用する。そのような溶解物及びその画分は、多くの有用性を有する。インビボでの細胞溶解物の可溶性画分（すなわち、実質的に膜を含まない）の使用により、例えば、拒絶反応、又は他の有害な免疫学的応答を誘発する可能性が最も高い、相当量の細胞表面タンパク質を導入することなく、有益な細胞内環境を、患者内で同種異系的に使用することが可能となる。細胞を溶解する方法は、当該技術分野において周知であり、機械的破壊、酵素破壊、化学的破壊、又はこれらの組み合わせの様々な手段を含む。そのような細胞溶解物は、増殖培地中の細胞から直接、したがって、分泌された増殖因子等を含有した状態で調製されてもよく、又は例えば、ＰＢＳ若しくは他の溶液で、培地なしに洗浄した細胞から調製されてもよい。洗浄細胞は、好ましい場合には、元の集団密度よりも高い濃度で、再懸濁させることができる。
【００８７】
一実施形態では、例えば、細胞を破壊し、その後に細胞画分を分離しないことによって、細胞溶解物の全体が調製される。別の実施形態では、当該技術分野において既知の慣用的方法、例えば、遠心分離、濾過、又は同様の方法によって、細胞の可溶性画分から、細胞膜画分が分離される。
【００８８】
臍帯組織由来細胞の集団から調製される、細胞溶解物又は細胞可溶性画分は、そのまま使用するか、例えば限外濾過若しくは凍結乾燥によって更に濃縮するか、又は更に乾燥させるか、部分的に精製するか、当該技術分野において既知の、薬学的に許容できる担体若しくは希釈剤と組み合わせるか、又は生物学的製剤、例えば薬学的に有用なタンパク質組成物などの、他の化合物と組み合わせることができる。細胞溶解物又はその画分は、インビトロ若しくはインビボで、単独で、又は、例えば自家若しくは同系の生細胞と共に、使用することができる。細胞溶解物は、インビボに導入される場合には、治療部位で局所的に、又は遠隔に導入して、例えば、必要な細胞増殖因子を、患者に提供することができる。
【００８９】
更なる一実施形態において、臍帯組織由来細胞はインビトロで培養して、高終了の生物学的産物を産生させることができる。臍帯組織由来細胞は、目的とする具体的な生物学的産物（例えば、栄養因子）を天然に産生するか、又は生物学的産物を産生するように遺伝子操作されており、本明細書で説明される培養技術を使用して、クローン増殖させることができる。あるいは、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は血管内皮系統への分化を誘導する培地中で、細胞を増殖させることができる。いずれの場合でも、その細胞によって産生され、培地中に分泌された生物学的産物は、例えば、幾つか例を挙げると、示差的タンパク質沈殿法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、電気泳動、及びＨＰＬＣなどの、標準的な分離技術を使用して、容易に単離することができる。「バイオリアクター」を使用して、例えば、インビトロで３次元培養物に栄養を与えるための、フロー法を活用することができる。本質的には、新鮮培地が、３次元培養物を通過する際、生物学的産物は、培養物から洗い出され、次いで、上記のように、その流出物から単離することができる。
【００９０】
あるいは、目的の生物学的産物は、細胞内部に留まる場合があり、それゆえ、その収集には、上述のように、細胞を溶解させることが必要となる場合がある。次いで、上記の技術のうちの、任意の１つ又は２つ以上を使用して、その生物学的産物を精製することができる。
【００９１】
他の実施形態において、本発明は、以下に記述されるように、インビトロ及びインビボで使用するための、臍帯組織由来細胞から得た馴化培地を利用する。細胞馴化培地の使用により、拒絶又は他の有害な免疫反応を引き起こす可能性がある無傷細胞を導入することなく、臍帯組織由来細胞によって分泌された有益な栄養の因子を、同種で患者に使用することを可能にする。馴化培地は、培地に細胞を培養して、次に培地から細胞を取り除くことによって調製される。
【００９２】
臍帯組織由来細胞の集団から調製される馴化培地は、そのまま使用するか、例えば限外濾過若しくは凍結乾燥によって更に濃縮するか、又は更に乾燥させるか、部分的に精製するか、当該技術分野において既知の、薬学的に許容できる担体若しくは希釈剤と組み合わせるか、又は生物学的製剤、例えば薬学的に有用なタンパク質組成物などの、他の化合物と組み合わせることができる。培養上清は、インビトロ又はインビボで、単独で、又は例えば、自家生細胞又は同系生細胞と組み合わせて、使用してもよい。インビボで導入する場合、馴化培地は、治療部位で局所的に導入してもよく、又は患者に必要な細胞の増殖、若しくは栄養の因子を供給するために遠隔で導入してもよい。
【００９３】
別の実施形態では、液体、固体、又は半個体の基質上に臍帯組織由来細胞を培養することによって産生される、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）が調製、収集され、組織の修復又は置換を必要とする患者内への、生細胞の埋め込みの代替案として利用される。臍帯組織由来細胞が、インビトロで、本明細書の他の箇所で説明されるような３次元フレームワーク上に、所望の量のＥＣＭがそのフレームワーク上に分泌されるような条件下で、培養される。新たな組織を含む細胞が除去され、例えば注射剤調製としての更なる使用のために、そのＥＣＭが処理される。このことを達成するために、フレームワーク上の細胞を死滅させ、そのフレームワークから、あらゆる細胞残渣を除去する。このプロセスは、多種多様な方法で実施することができる。例えば、凍結保存剤を使用することなく、その生組織を液体窒素中で急速冷凍することができ、又は細胞が浸透圧に反応して破裂するように、滅菌蒸留水中に組織を浸漬させることができる。
【００９４】
細胞を殺した後、弱い洗剤（例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、３−［（３−コラミドプロピル）ジメチルアミニオ］−１−プロパンスルホネート（ＣＨＡＰＳ）又は双性イオン洗剤）ですすぐ処理により、細胞膜を破壊し細胞残渣を除去することができる。あるいは、細胞膜を分解し、細胞内容物の除去を可能とする試薬で、その組織を酵素消化させ、かつ／又は抽出することができる。そのような酵素の例としては、ヒアルロニダーゼ、ディスパーゼ、プロテアーゼ、及びヌクレアーゼが挙げられるが、これらに限定されない。洗剤の例としては、例えば、アルキルアリールポリエーテルアルコール（ＴＲＩＴＯＮ  Ｘ−１００）、オクチルフェノキシポリエトキシ−エタノール（Ｒｏｈｍ  ａｎｄ  Ｈａａｓ（Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ））、ＢＲＩＪ−３５、ポリエトキシエタノールラウリルエーテル（Ａｔｌａｓ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．（Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ））、ポリソルベート２０（ＴＷＥＥＮ  ２０）、ポリエトキシエタノールソルビタンモノラウラート（Ｒｏｈｍ  ａｎｄ  Ｈａａｓ（Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ））、ポリエチレンラウリルエーテル（Ｒｏｈｍ  ａｎｄ  Ｈａａｓ（Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ））などの非イオン性洗剤；及び、例えば、ドデシル硫酸ナトリウム、硫酸化高級脂肪族アルコール、分枝鎖又は非分枝鎖中に７〜２２個の炭素原子を含有するスルホン化アルカン及びスルホン化アルキルアレンなどの、イオン性洗剤が挙げられる。
【００９５】
ＥＣＭの回収は、少なくとも部分的には、新しい組織が、生分解性又は非生分解性（金属の場合）である３次元フレームワーク上で形成されているかどうかによって、様々な方法で達成することができる。例えば、そのフレームワークが、非生分解性である場合には、音波処理、高圧水ジェット、機械的掻き取り、又は洗剤若しくは酵素での穏和な処理、あるいは上記の任意の組合せを、そのフレームワークに施すことによって、ＥＣＭを取り出すことができる。
【００９６】
フレームワークが、生分解性である場合には、例えば、そのフレームワークを溶液中で分解させるか、又は溶解させることによって、ＥＣＭを収集することができる。あるいは、生分解性フレームワークが、それ自体ＥＣＭと共に注射することができる材料からなる場合には、そのフレームワーク及びＥＣＭは、その後の注射のために、全体として処理することができる。あるいは、ＥＣＭは、非生分解性フレームワークからのＥＣＭの収集に関して上述された方法のうちのいずれかによって、生分解性フレームワークから取り出すことができる。全ての収集プロセスは、好ましくは、ＥＣＭを変性させないように設計される。
【００９７】
ＥＣＭを収集した後、更にＥＣＭを処理することができる。例えば、ＥＣＭは、音波処理などによる、当該技術分野において周知の技術を使用して、微粒子へと均質化することができるため、そのＥＣＭは、外科用ニードルの中を通過することができる。ＥＣＭの成分はまた、必要に応じて、γ線照射によって架橋することができる。好ましくは、ＥＣＭは、０．２５〜２メガラドで照射することにより、ＥＣＭを滅菌及び架橋することができる。グルタルアルデヒドなどの、毒性の薬剤を使用する化学架橋も可能であるが、一般的には好ましくない。
【００９８】
ＥＣＭ中に存在する様々なタイプのコラーゲンなどの、タンパク質の量及び／又は比率は、本発明の細胞によって産生されるＥＣＭと、１種以上の他の細胞型のＥＣＭとを混合することによって、調整することができる。更には、タンパク質、増殖因子、及び／又は薬物などの、生物学的に活性な物質を、ＥＣＭ中に組み込むことができる。例示的な生物学的に活性な物質としては、注射部位での治癒及び組織修復を促進する、ＴＧＦ−βなどのような、組織増殖因子が挙げられる。そのような追加的薬剤は、例えば、細胞溶解物の全体、可溶性細胞分画、あるいは臍帯組織由来細胞によって産生される更なる精製成分及び産物と共に、本明細書で上述された任意の実施形態で利用することができる。
【００９９】
別の一態様において、本発明は、末梢虚血エピソードにより生じた損傷又は損壊の治療のため、様々な方法で、臍帯組織由来細胞、臍帯組織由来細胞集団、臍帯組織由来細胞の構成成分及び産物を利用する医薬組成物を提供する。特定の実施形態は、生細胞（臍帯組織由来細胞単独、又は他の細胞種と混合して）を含む医薬組成物を包含する。他の実施形態は、臍帯組織由来細胞の構成成分（例えば、細胞溶解物、可溶性細胞分画、馴化培地、ＥＣＭ、若しくはこれらの任意の構成成分）、又は産物（例えば、臍帯組織由来細胞から自然に産生されるか、若しくは臍帯組織由来細胞からの遺伝子組み換え、馴化培地により産生される、栄養因子又はその他の生物学的因子）を含む医薬組成物を包含する。いずれの場合でも、この医薬組成物は、当該技術分野において既知の、抗炎症剤、抗アポトーシス剤、抗酸化剤、増殖因子、筋肉栄養因子、又は筋肉再生薬若しくは筋肉保護薬などの、他の活性剤を更に含み得る。
【０１００】
この医薬組成物に添加できる他の構成成分の例としては次のものが挙げられるが、これらに限定されない：（１）他の筋有益（myobeneficial）薬若しくは筋保護薬、又は血管有益（angiobeneficial）薬若しくは血管保護薬、（２）選択された細胞外マトリックス成分（例えば、当該技術分野で既知の１つ又は２つ以上のタイプのコラーゲン、及び／又は増殖因子）、富血小板血漿、及び、薬剤（あるいは、臍帯組織由来細胞は、増殖因子を発現し産生するように、遺伝子操作することができる）、（３）抗アポトーシス薬（例えばエリスロポエチン（ＥＰＯ）、ＥＰＯミメティボディ、トロンボポエチン、インスリン様増殖因子（ＩＧＦ）−Ｉ、ＩＧＦ−ＩＩ、肝細胞増殖因子、カスパーゼ阻害剤）、（４）抗炎症化合物（例えば、ｐ３８  ＭＡＰキナーゼ阻害剤、ＴＧＦ−β阻害剤、スタチン、ＩＬ−６及びＩＬ−１阻害剤、ペミロラスト、トラニラスト、ＲＥＭＩＣＡＤＥ（登録商標）（Ｃｅｎｔｏｃｏｒ，Ｉｎｃ．（Ｍａｌｖｅｒｎ，ＰＡ））、シロリムス、及び非ステロイド系抗炎症薬（ＮＳＡＩＤＳ）（例えばテポキサリン、トルメチン、スプラフェン）、（５）免疫抑制薬若しくは免疫調節薬（例えば、カルシニューリン阻害剤、ｍＴＯＲ阻害剤、抗増殖薬、副腎皮質ステロイド、及び様々な抗体）、（６）抗酸化剤（例えば、プロブコール、ビタミンＣ及びＥ、コエンザイムＱ−１０、グルタチオン、Ｌ−システイン、並びにＮ−アセチルシステイン）、（６）局所麻酔薬、（７）栄養因子（例えば、アグリン、ＶＥＧＦ、ＶＥＧＦ−Ｂ、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＶＥＧＦ−Ｄ、ＮＥＧＦ−１、ＮＥＧＦ−２、ＰＤＧＦ、ＧＤＦ、ＩＧＦ１、ＩＧＦ２、ＥＧＦ、及びＦＧＦ）、並びに、（８）虚血組織へ内皮前駆細胞を補充し、取り込むよう作用する因子（例えば、例を挙げるなら、ＶＥＧＦ、ＳＤＦ−１、ＥＰＯ、Ｇ−ＣＳＦ、スタチン、エストロゲン、ＰＰＡＲγ、及びＣＸＣＲ４など）。
【０１０１】
本発明の医薬組成物は、臍帯組織由来細胞、それらの構成成分又は産物（製薬上許容される担体又は培地と共に配合された、臍帯組織由来細胞から作製された調製物を含む）を含む。製薬上許容される好適な担体としては、水、食塩水（例えばリンガー液）、アルコール、油、ゼラチン、ポリビニルピロリジン、炭水化物（例えばラクトース、アミロース、若しくはデンプン、脂肪酸エステル）、及びヒドロキシメチルセルロースが挙げられる。そのような調製物は、滅菌することができ、また必要に応じて、滑沢剤、防腐剤、安定剤、湿潤剤、乳化剤、浸透圧に影響を及ぼす塩、緩衝剤、及び着色剤などの、補助剤と混合することができる。本発明での使用に好適な医薬担体は、当該技術分野において既知であり、例えば、Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（１７ｔｈ  Ｅｄ．Ｍａｃｋ  Ｐｕｂ．Ｃｏ．（Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡ））及び国際特許公開ＷＯ  ９６／０５３０９号に記述されている。
【０１０２】
排他的ではないが、典型的には、臍帯組織由来細胞の成分又は産物を含むが、生細胞を含まない医薬組成物は、液体として（又は経口送達が適切である場合には、固形錠剤、カプセル剤などとして）製剤される。これらは、標的の骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は血管内皮組織に対し、薬剤及び生物学的分子の送達を達成するための、当該技術分野において既知の任意の許容される経路によって投与するよう配合することができ、この経路には経口、経鼻、点眼及び腸管外（静脈内を含む）が挙げられるがこれらに限定されない。腸管外投与の具体的な経路は、筋肉、皮下、腹膜内、髄腔内、大槽内、又は針付き注射器を経由し、又はカテーテル（ポンプ機器を伴うか若しくは伴わない）を経由するものが挙げられるが、これらに限定されない。
【０１０３】
臍帯組織由来の生細胞を含む医薬組成物は、典型的に、液体、半固体（例えばゲル（フィブリン糊を含む））、又は固体（例えば、血管若しくは骨格筋組織操作に適切なマトリックス、スカフォールド、及び同様物）として配合される。液体組成物は、標的の血管又は骨格筋組織への生細胞の送達を達成するため、当該技術分野において既知の、許容可能な任意の経路による投与用に、配合される。典型的にこれらは、針付き注射器を経由し、及び／又はカテーテル（ポンプ機器を伴うか若しくは伴わない）を経由して、筋内送達、静脈送達、若しくは動脈内送達を含むがこれらに限定されない投与経路によって、拡散的な方法で、あるいは、末梢虚血性の損傷、損壊、若しくは窮迫部位を標的とした方法での、注射若しくは輸液を含む。
【０１０４】
半固体若しくは固体担体中に生細胞を含む医薬組成物は、典型的に、虚血性の損傷、損壊、若しくは窮迫部位への外科的な埋め込みのために配合される。液体組成物もまた、外科的手技によって投与することができる点が、理解されるであろう。具体的な実施形態では、半個体又は個体の医薬組成物は、非生分解性若しくは生分解性とすることができる、半透性のゲル、格子、細胞スカフォールドなどを含み得る。例えば、特定の実施形態において、外因性細胞を周囲から隔絶することが望ましいか又は適切である可能性があるが、依然として、周囲の骨格筋若しくは血管細胞に対して、その外因性細胞が生物由来分子（例えば、筋栄養因子、血管栄養因子、内皮前駆細胞補充因子）を分泌し送達することができる可能性がある。これらの実施形態において、細胞は、自律性インプラントとして配合することができ、このインプラントは、移植細胞を宿主組織から物理的に分離するような、非分解性の選択透過性障壁によって囲まれた、臍帯組織由来生細胞又は臍帯組織由来細胞を含む細胞集団を含む。そのようなインプラントは、「免疫防護性」と称される場合があるが、薬理学的に誘導された免疫抑制が存在することなく、免疫細胞及び巨大分子が移植細胞を殺すことを妨げることができるため、時折「免疫保護性」と呼ばれる（このような装置及び方法の概説については、例えば、Ｐ．Ａ．Ｔｒｅｓｃｏ  ｅｔ  ａｌ．，（２０００）Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖ．４２：３〜２７を参照されたい）。
【０１０５】
他の実施形態では、本発明の医薬組成物に関して、多種多様な分解性ゲル及び分解性ネットワークが利用される。例えば、持続放出性製剤に関して特に好適な、分解性材料としては、ポリ（乳酸）、ポリ（乳酸−コ−グリコール酸）、メチルセルロース、ヒアルロン酸、コラーゲンなどの、生体適合性ポリマーが挙げられる。薬物送達ビヒクル中の分解性ポリマーの構造、選択、及び使用は、Ａ．Ｄｏｍｂ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｐｏｌｙｍｅｒｓ  ｆｏｒ  Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  ３：２７９〜２９２を含めた、幾つかの刊行物で概説されている。
【０１０６】
他の実施形態において、生分解性、好ましくは、生体再吸収性若しくは生体吸収性の、スカフォールド若しくはマトリックスの上、又はその中に、細胞を送達することが望ましいか又は適切であり得る。これらの典型的な３次元生体材料は、スカフォールドに付着されるか、スカフォールド内部に分散されるか、又はスカフォールド内に封入された細胞外マトリックス内に組み込まれる、生細胞を含む。体内の標的部分にいったん埋め込まれたこれらのインプラントは、宿主組織に一体化され、ここに移植細胞が徐々に定着する（例えば、Ｔｒｅｓｃｏ，ＰＡ，ｅｔ  ａｌ．（２０００）上記参照、及びＨｕｔｍａｃｈｅｒ，ＤＷ（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｍａｔｅｒ．Ｓｃｉ．Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｅｄｎ．１２：１０７〜１７４を参照）。
【０１０７】
生体適合性マトリックスは、ホモポリマー、コポリマー、及びブロックポリマー、並びにこれらの組み合わせを含む天然ポリマー、改質天然ポリマー、又は合成生分解性ポリマーで構成され得る。概して、ポリマーは合成の元になるモノマーに基づいて命名されることに留意する。
【０１０８】
好適な生分解性ポリマー若しくはポリマー類の例としては、フィブリン、コラーゲン、エラスチン、ゼラチン、ビトロネクチン、フィブロネクチン、ラミニン、トロンビン、ポリ（アミノ酸）、酸化セルロース、トロポエラスチン、絹、リボ核酸、デオキシリボ核酸、タンパク質、ポリヌクレオチド、再構成基底膜マトリックス、デンプン、デキストラン、アルギン酸塩、ヒアルロン、キチン、キトサン、アガロース、多糖類、ヒアルロン酸、ポリ（乳酸）、ポリ（グリコール酸）、ポリエチレングリコール、脱細胞化組織、自己集合性ペプチド、ポリペプチド、グリコサミノグリカン、それらの誘導体、及びそれらの混合物が挙げられる。グリコール酸及び乳酸の両方について、中間環状二量体は、一般に、重合に先行して調製及び精製される。これらの中間二量体はそれぞれ、グリコリド及びラクチドと呼ばれる。他の有用な生分解性ポリマー若しくはポリマー類には、脂肪族ポリエステル、ポリ（シュウ酸アルキレン）、チロシン由来ポリカーボネート、ポリイミノカーボネート、ポリオルトエステル、オイルオキサエステル、ポリアミドエステル、アミノ基を含むポリオキサエステル、ポリ（プロピレンフマレート）、ポリジオキサノン、ポリカーボネート、ポリオキサレート、ポリ（α−ヒドロキシ酸）、ポリ（エステル）、ポリウレタン、ポリ（エステルウレタン）、ポリ（エーテルウレタン）、ポリ無水物、ポリアセテート、ポリカプロラクトン、ポリ（オルトエステル）、ポリアミノ酸、ポリアミド、並びにそれらの混合物及びコポリマーが挙げられるがこれらに限定されない。追加的な有用な生分解性ポリマーとしては、Ｌ−乳酸及びＤ−乳酸のステレオポリマー、ビス（ｐ−カルボキシフェノキシ）プロパンとセバシン酸とのコポリマー、セバシン酸コポリマー、カプロラクトンのコポリマー、ポリ（乳酸）／ポリ（グリコール酸）／ポリエチレングリコールのコポリマー、ポリウレタンとポリ（乳酸）とのコポリマー、α−アミノ酸のコポリマー、α−アミノ酸とカプロン酸とのコポリマー、α−ベンジルグルタメートとポリエチレングリコールとのコポリマー、コハク酸塩とポリ（グリコール）とのコポリマー、ポリホスファゼン、ポリ（ヒドロキシアルカノエート）、及びこれらの混合物が挙げられるがこれらに限定されない。二成分系、三成分系もまた想到される。
【０１０９】
一般に、マトリックスとして用いられる適切な生分解性ポリマーは、意図された適用に適切であり、組織が成長し治癒されるまで十分に無傷のままであり、炎症反応若しくは有毒反応を引き起こさず、目的を果たした後に体内で代謝され、形成されるべき望ましい最終産物へと容易に加工され、許容できる品質保持期間を示し、容易に滅菌されるような機械的な特性を有するように、望ましく構成される。
【０１１０】
本発明の一態様において、このマトリックスを形成するために用いられる生体適合性ポリマーは、ヒドロゲルの形態である。本発明の一実施形態において、このヒドロゲルはフィブリン糊を含む。一般的に、ヒドロゲルは、自重の２０％以上の水を吸収し、かつ明瞭な三次元構造を維持することのできる架橋ポリマー材料である。この定義には、水性環境で膨潤する乾燥架橋ポリマー、並びに水で膨潤させた材料を含む。ポリマーが生物由来のものであろうと、半合成的なものであろうと、又は完全に合成させたものであろうと、親水性ポリマーの母体を架橋してヒドロゲルを製造することができる。ヒドロゲルは、合成ポリマー材料から製造してもよい。このような合成ポリマーは、特性及び予想され得るロット間の不均一さを調整することができ、一般的に免疫原性の心配のない、信頼できる材料源になる。このマトリックスは、自己集合性ペプチドから形成されるヒドロゲルを含み得、これについては米国特許第５，６７０，４８３号及び同第５，９５５，３４３号、米国特許出願公開第２００２／０１６０４７１号、並びにＰＣＴ国際特許出願ＷＯ  ０２／０６２９６９号に記述されている。
【０１１１】
薬剤送達用途においてヒドロゲルを価値あるものにする特性としては、平衡膨潤度、吸着動力学、溶質透過性、及びこれらのインビボ性能特性が挙げられる。化合物の透過性の一部は、膨潤度すなわち含水量、及び生分解速度による。ゲルの機械的強度は膨潤強度に正比例することから、複合系により機械的強度を増強させるよう、基質にヒドロゲルを取り付け得ることも、本発明に企図される範囲に含まれる良好な例である。幾つかの実施形態において、ヒドロゲルを多孔質基材に浸透させて、ヒドロゲルの有用な送達特性と共に基材の機械強度を得ることもできる。
【０１１２】
本発明で使用できるスカフォールド若しくはマトリックス（時に、「フレームワーク」と総称される）の非限定的例としては、織物、編物、編組、メッシュ、不織布、ねじれ編みなどの布状構造、多孔性発泡体、半多孔性発泡体、有孔フィルム若しくはシート、微粒子、ビーズ、及び球、並びに上記の構造を組み合わせた複合構造が挙げられる。例えば、商標名ＶＩＣＲＹＬ縫合糸（Ｅｔｈｉｃｏｎ，Ｉｎｃ．（Ｓｏｍｅｒｖｉｌｌｅ，ＮＪ））として販売されているグリコール酸と乳酸との吸収性合成コポリマー（ＰＧＡ／ＰＬＡ）で構成される繊維を用いて、不織性マットを形成することができる。米国特許第６，３５５，６９９号に記述されるように、例えば、冷凍乾燥法（凍結乾燥法）などのプロセスにより作製された、ポリ（ε−カプロラクトン）／ポリ（グリコール酸）（ＰＣＬ／ＰＧＡ）コポリマーからなる発泡体も、利用することができる。自己集合性ペプチド（例えば、ＲＡＤ１６）などのヒドロゲルもまた、使用することができる。その場で形成される分解性ネットワークも、本発明の使用に好適である（例えば、Ａｎｓｅｔｈ，ＫＳ  ｅｔ  ａｌ．（２００２）Ｊ．Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  ７８：１９９〜２０９；Ｗａｎｇ，Ｄ．ｅｔ  ａｌ．，（２００３）Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  ２４：３９６９〜３９８０；米国特許公開第２００２／００２２６７６号（Ｈｅ  ｅｔ  ａｌ．）を参照）。これらの、その場で形成される材料は、注射に好適な流体として配合し、次いで、その場又はインビボで、様々な手段（例えば、温度、ｐＨ、露光の変更）によって導入することができる。
【０１１３】
別の実施形態では、このフレームワークは、生体吸収性材料、例えば、ＰＧＡ、ＰＬＡ、ＰＣＬのコポリマー若しくはブレンド、又はヒアルロン酸から作製された、マルチフィラメント糸で構成することができる、フェルトである。この糸は、圧着、切断、カーディング、及びニードリングからなる、標準的なテキスタイル加工技術を使用して、フェルトへと作製される。別の実施形態では、細胞は、複合材料構造体とすることができる、発泡体スカフォールド上に播種される。
【０１１４】
上記の多くの実施形態において、フレームワークは、血管形状などの有用な形状に成型することができる。更に、臍帯組織由来細胞は、例えば、繊維芽細胞含有ＧＤＣ血管内コイルを調製するために使用される方式に対応する方式で、事前形成された非分解性の、外科用装置又は埋め込み可能装置上に、培養することができる点が、理解されるであろう（Ｍａｒｘ，ＷＦ  ｅｔ  ａｌ．，（２００１）Ａｍ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｒａｄｉｏｌ．２２：３２３〜３３３）。
【０１１５】
これらのマトリックス、スカフォールド、又は装置は、細胞付着を増強するために、細胞の接種の前に処理することができる。例えば、接種の前に、ナイロンマトリックスは、０．１モルの酢酸で処理して、ポリリシン、ＰＢＳ、及び／又はコラーゲン中でインキュベートすることにより、そのナイロンをコーティングすることができる。ポリスチレンは、硫酸を使用して、同様に処理することができる。フレームワークの外側表面もまた、そのフレームワークの血漿コーティング、あるいはタンパク質（例えば、コラーゲン、弾性繊維、細網繊維）、糖タンパク質、グリコサミノグリカン（例えば、ヘパリン硫酸、コンドロイチン−４−硫酸、コンドロイチン−６−硫酸、デルマタン硫酸、ケラチン硫酸）、遺伝子材料（例えばサイトカイン及び増殖因子）、細胞マトリックス、並びに／又はその他の材料（細胞の生存及び分化に影響を与える因子のうち、ゼラチン、アルギン酸塩、寒天、アガロース、及び植物ゴムなどを含むがこれらに限定されない）のうち１種以上の添加などによって、細胞の付着若しくは増増殖、及び組織の分化を改善するように、改変することができる。
【０１１６】
ｈＵＴＣ含有フレームワークは、当該技術分野において既知の方法に従って調製される。例えば、細胞は、準集密又は集密まで、培養容器内で自由に増殖させて、その培養物から取り上げ、フレームワーク上に接種することができる。必要に応じて、細胞の接種前、接種中、若しくは接種後に、培養培地に増殖因子を添加することにより、分化及び組織形成を誘発させることができる。あるいは、フレームワーク上での細胞の増殖が増強されるように、又はインプラントの拒絶のリスクが低減されるように、フレームワーク自体を改変することができる。それゆえ、１種以上の生物学的に活性な化合物を、局所放出のために、フレームワークに添加することができ、それらの化合物としては、抗炎症化合物、免疫抑制剤、又は増殖因子が挙げられるが、これらに限定されない。
【０１１７】
臍帯組織由来細胞、臍帯組織由来細胞の一部、又は臍帯組織由来細胞を含む細胞集団、又は臍帯組織由来細胞の構成要素、又は臍帯組織由来細胞により産生された産物は、特に末梢血管疾患患者において、骨格筋細胞及び組織の修復、再生及び改善を支援し促進するため、血流を改善するため、そして血管形成を刺激及び／又は促進するために、様々な方法で使用することができる。そのような利用は、インビトロ法、エクスビボ法、及びインビボ法を包含する。
【０１１８】
一実施形態において、上述のように、臍帯組織由来細胞は、この細胞によって自然に産生されるか、骨格筋、血管平滑筋、周皮細胞、若しくは、血管内皮系統へと分化するように誘導された細胞によって産生されるか、又は、遺伝子操作経由の細胞によって産生される、生物学的産物を産生するよう、インビトロで培養することができる。例えば、ＴＩＭＰ１、ＴＰＯ、ＫＧＦ、ＨＧＦ、ＦＧＦ、ＨＢＥＧＦ、ＢＤＮＦ、ＭＩＰ１ｂ、ＭＣＰ１、ＲＡＮＴＥＳ、Ｉ３０９、ＴＡＲＣ、ＭＤＣ、及びＩＬ−８は、増殖培地中で増殖させた臍由来細胞から分泌されることが見出されている。加えて、ＶＥＧＦ、ＳＤＦ−１、ＥＰＯ、Ｇ−ＣＳＦ、スタチン、エストロゲン、ＰＰＡＲγ、及びＣＸＣＲ４などの内皮前駆細胞補充のための因子は、臍帯組織由来細胞により産生され得、増殖培地中に分泌され得る。骨格筋又は血管の修復及び再生に使用するための他の栄養因子（まだ検出も試験もされていないが）は、臍帯組織由来細胞により産生され、かつ培地中に分泌される可能性が高い。
【０１１９】
この点において、本発明の他の一実施形態では、未分化臍帯組織由来細胞、又は骨格筋若しくは血管系統への分化を刺激する条件下で培養された臍帯組織由来細胞のいずれかから、馴化培地を産生するための、臍帯組織由来細胞の利用を特徴とする。そのような馴化培地は、インビトロ又はエクスビボでの、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、若しくは血管内皮前駆細胞の培養における使用が想到され、あるいは、インビボでの、臍帯組織由来細胞の均質集団、又は、臍帯組織由来細胞と、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、若しくは血管内皮前駆細胞とを含む不均質集団を含む移植細胞を支持するための使用が想到され、あるいは、例えば虚血性損傷部位へ内皮前駆細胞を補充するための使用が想到される。
【０１２０】
更に別の一実施形態は、様々な目的のための、ｈＵＴＣ細胞溶解物、可溶性細胞画分若しくはその成分、又はＥＣＭ若しくはその成分の使用を含む。上述のように、これらの成分の一部は、医薬組成物中で使用することができる。他の実施形態では、細胞溶解物又はＥＣＭを使用して、外科的な使用のための、若しくは埋め込みのための、若しくはエクスビボ目的のための物質又は装置を、コーティングするか、あるいは他の方法で処理することにより、そのような処理の過程で接触する細胞又は組織の、治癒若しくは生存が促進される。幾つかの好ましい実施形態において、臍帯組織由来細胞から作製されるそのような調製物は、ＦＧＦ及びＨＧＦを含む。
【０１２１】
別の一実施形態において、臍帯組織由来細胞は、他の細胞、特に、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、又は血管内皮前駆細胞に、栄養的支持を提供するためのインビトロでの共培養において、有利に使用される。幾つかの好ましい実施形態において、この栄養的支持とは、細胞の増殖である。共培養に関しては、臍帯組織由来細胞及び望ましい他の細胞は、それら２つの細胞型が接触する条件下で共培養されることが、望ましい場合がある。このことは、例えば、培養培地中、又は好適な培養基質上に、不均質な細胞の集団として、それらの細胞を播種することによって達成することができる。あるいは、臍帯組織由来細胞をまずコンフルエンスまで成長させることができ、その後、培養中で、２番目の望ましい細胞型の基質として役立つ。この後者の実施形態では、それらの細胞は、例えば、膜又は同様の装置によって、更に物理的に分離させることができ、これにより、共培養の期間の後に、他の細胞型を取り出して、個別に使用することができる。骨格筋若しくは血管細胞型の増殖及び分化を促進するための共培養における臍帯組織由来細胞の使用には、研究及び臨床上／治療上の分野において、妥当性が見出され得る。例えば、臍帯組織由来細胞の共培養を利用して、例えば、基礎研究の目的で、又は、薬剤スクリーニングアッセイの目的で、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は血管内皮細胞の培養中での成長及び分化を促進することができる。また、臍帯組織由来細胞の共培養は、後で治療目的に投与するために、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は血管内皮前駆細胞のエクスビボ増殖に利用することもできる。例えば、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は血管内皮前駆細胞を、エクスビボでの臍帯組織由来細胞の共培養で増殖した個人のものから採取し、その後、その個人（自家移入）若しくは他の個人（同系若しくは同種移入）に戻すことができる。これらの実施形態において、エクスビボでの増殖後、臍帯組織由来細胞と、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、若しくは血管内皮前駆細胞とを含む混合細胞集団を、治療が必要な患者に投与可能であることが理解されよう。あるいは、自家移入が適切又は望ましい状況では、共培養された細胞集団を、患者に投与するために、培養中で物理的に分離して、自家の骨格筋、血管平滑筋、若しくは血管内皮前駆体を取り除くことができる。
【０１２２】
米国特許出願公開第２００５／００５８６３１号、同第２００５／００５４０９８号、及び同第２００５／００５８６３０号に記述されているように、臍帯組織由来細胞は、体内に効果的に移植され、かつ、許容された動物モデルにおいて、血流を改善し、組織壊死を低減したことが示されている。本発明で示す発見とともに、これらの見解は、本発明の好ましい実施形態を支持し、臍帯組織由来細胞は、末梢血管疾患患者における骨格筋及び／又は血管組織を修復又は再生することによって、あるいは、末梢血管疾患患者における血流を改善し、又は、血管形成を刺激及び／又は支持することによって、虚血性損傷又は損壊を治療するための細胞療法に用いられる。一実施形態において、臍帯組織由来細胞は、体内の標的位置、特に、虚血エピソードの位置若しくはその付近に移植され、この臍帯組織由来細胞は、骨格筋、血管平滑筋、周細胞、若しくは、血管内皮表現型のうち１つ又は２つ以上に分化することができ、この臍帯組織由来細胞は、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋前駆細胞、周前駆細胞、若しくは、血管内皮前駆細胞、並びに／又は、骨格筋細胞、血管平滑筋細胞、周細胞、若しくは、血管内皮細胞に、その場で栄養的補助を提供することができ、この臍帯組織由来細胞は、虚血性損傷の部位へ内皮前駆細胞を補充する因子を産生することができ、あるいは、この臍帯組織由来細胞は、これらのうち２つ以上の方法において有益な効果を及ぼすことができる。この臍帯組織由来細胞は、ＧＦＧＦｍ、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＨＧＦ、ＩＧＦ−１、ＴＰＯ、及び同様物を含むがこれらに限定されない栄養因子を分泌する。この臍帯組織由来細胞は、新しい血管の形成を刺激するための血管芽細胞などの、血管前駆細胞の補充を助けることができる。
【０１２３】
臍帯組織由来細胞は、投与された患者の体に、栄養作用を及ぼすことができる。例えば、臍帯組織由来細胞は、骨格筋細胞、血管平滑筋細胞、血管内皮細胞、周細胞、又はそれらの前駆細胞に栄養作用を及ぼすことができる。幾つかの好ましい実施形態において、この栄養作用とは、そのような細胞の増殖である。臍帯組織由来細胞は、投与された患者の体内で、細胞の遊走を誘導することもできる。そのような遊走は、末梢虚血のような末梢血管疾患の修復、再生、治療を促進することができる。例えば、末梢血管疾患の部位又はその近くに投与された臍帯組織由来細胞は、罹患した組織及びその周囲を、修復、再生、又は治療するために、末梢血管疾患の部位へと細胞の遊走を誘導することができる。臍帯組織由来細胞は、骨格筋細胞、血管平滑筋細胞、血管内皮細胞、周細胞、又はそれらの前駆細胞の遊走を誘導することができる。好ましい実施形態において、臍帯組織由来細胞は、末梢血管疾患の部位又は少なくともその近くに、血管内皮細胞及び／又は血管内皮前駆細胞の遊走を誘導する。幾つかの実施形態において、遊走は、ＦＧＦ及び／又はＨＧＦによって、好ましくは、臍帯組織由来細胞によって発現したＦＧＦ及びＨＧＦによって、誘導又は支持される。また、細胞溶解物、細胞内分画、及び同様物を含む、臍帯組織由来細胞から作られた調製物は、末梢血管疾患を治療するために用いることができる。そのような調製物は、本明細書に記述及び例示されているような製薬上許容される担体と共に配合することができ、かつ、末梢血管疾患を治療するために有効な量で、患者に投与することができる。好ましい実施形態において、臍帯組織由来細胞から作製される調製物は、ＦＧＦ及びＨＧＦを含む。
【０１２４】
本発明の特定の実施形態は、末梢虚血性損傷又は損壊を治療するための、血管の直接の修復、再生、置換、又は、血管の修復、再生、若しくは置換の支持を目的とする。
【０１２５】
臍帯組織由来細胞は、単独で（例えば、実質的に均質な集団として）投与でき、あるいは、他の細胞とともに混合剤として投与できる。上述したように、臍帯組織由来細胞は、マトリックス若しくはスカフォールドとともに、又は、従来の製薬上許容される担体とともに、医薬調製物中に配合して投与することができる。臍帯組織由来細胞を他の細胞と共に投与する場合、他の細胞と同時に投与することができ、また他の細胞と連続して投与することができる（他の細胞の前でも後でもよい）。臍帯組織由来細胞と併用投与してもよい細胞には、筋細胞、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、又は血管内皮前駆細胞、及び／又は他の複能性若しくは多能性幹細胞が挙げられるがこれらに限定されない。種々の型の細胞を、投与の直前若しくは少し前に臍帯由来細胞と混合することができ、又はそれらの細胞と共に、投与前の一定期間にわたって、共培養することもできる。
【０１２６】
臍帯組織由来細胞は、当該技術分野において既知の、抗炎症薬、抗アポトーシス薬、抗酸化剤、増殖因子、血管形成因子、又は、筋再生薬若しくは筋保護薬のような、他の有益な薬剤若しくは生物由来分子又は他の活性薬剤と共に投与することができる。臍帯組織由来細胞が他の薬剤と共に投与される場合、それらの臍帯組織由来細胞は、単一の医薬組成物として一緒に、又は別個の医薬組成物として、他の薬剤と同時に、若しくは逐次的に（他の薬剤の投与より前、又は後のいずれかで）、投与することができる。他の薬剤は、当該技術分野の医師が適切だと判断した場合、移植前に開始して回復経過全体にわたって継続する治療レジメンの一部であってよく、移植時又は移植の後に開始する治療レジメンの一部であってもよい。
【０１２７】
臍帯組織由来細胞と共に投与できる他の構成成分の例としては次のものが挙げられるが、これらに限定されない：（１）他の血管形成因子、血管形成薬、又は筋再生性若しくは筋保護性の因子若しくは薬剤、（２）選択された細胞外マトリックス成分（例えば、当該技術分野で既知の１つ又は２つ以上のタイプのコラーゲン、及び／又は増殖因子）、富血小板血漿、及び、薬剤（あるいは、臍帯組織由来細胞は、増殖因子を発現し産生するように、遺伝子操作することができる）、（３）抗アポトーシス薬（例えばエリスロポエチン（ＥＰＯ）、ＥＰＯミメティボディ、トロンボポエチン、インスリン様増殖因子（ＩＧＦ）−Ｉ、ＩＧＦ−ＩＩ、肝細胞増殖因子、カスパーゼ阻害剤）、（４）抗炎症化合物（例えば、ｐ３８  ＭＡＰキナーゼ阻害剤、ＴＧＦ−β阻害剤、スタチン、ＩＬ−６及びＩＬ−１阻害剤、ペミロラスト、トラニラスト（Tranliast）、ＲＥＭＩＣＡＤＥ（登録商標）（Ｃｅｎｔｏｃｏｒ，Ｉｎｃ．（Ｍａｌｖｅｒｎ，ＰＡ））、シロリムス、及び非ステロイド系抗炎症薬（ＮＳＡＩＤＳ）（例えばテポキサリン、トルメチン、スプラフェン）、（５）免疫抑制薬若しくは免疫調節薬（例えば、カルシニューリン阻害剤、ｍＴＯＲ阻害剤、抗増殖薬、副腎皮質ステロイド、及び様々な抗体）、（６）抗酸化剤（例えば、プロブコール、ビタミンＣ及びＥ、コエンザイムＱ−１０、グルタチオン、Ｌ−システイン、並びにＮ−アセチルシステイン）、（６）局所麻酔薬、など。
【０１２８】
一実施形態において、臍帯組織由来細胞は、未分化細胞、すなわち、成長培地の中で培養された細胞として投与する。あるいは、臍帯組織由来細胞は、培養中で、望ましい骨格筋、血管平滑筋、周細胞、又は、血管内皮の表現型への分化を刺激する条件に曝露した後に、投与することができる。
【０１２９】
本発明の細胞は、外科的埋め込み、注射、送達（例えば、カテーテル、注射器、シャント、ステント、マイクロカテーテル、又はポンプによる）又は他の方法で、虚血損傷、損壊、又は窮迫部位に、直接的若しくは間接的に投与することができる。本発明の細胞、若しくはその組成物の投与経路には、静脈内、筋肉、皮下、鼻内、髄腔内、大槽内、又は針付き注射器を経由し、又はカテーテル（ポンプ機器を伴うか若しくは伴わない）を経由するものが挙げられるが、これらに限定されない。
【０１３０】
細胞が、半固体又は固体の装置内に投与される場合、身体内の正確な場所内への外科的埋め込みが、典型的には、好適な投与手段である。しかしながら、液体若しくは流体の医薬組成物を、血液を通じて、若しくは、罹患した筋肉組織に（例えば、拡散性虚血損傷の場合のような拡散性の患部全体に）直接投与してもよい。臍帯組織由来細胞の遊走は、化学的シグナル、増殖因子、又はカルパインによって導くことができる。
【０１３１】
臍帯組織由来細胞、又は、臍帯組織由来細胞を含む組成物及び／又はマトリックスは、マイクロカテーテル、体内カテーテル法（intracatheterization）、又はミニポンプを経由して部位に送達することができる。溶媒賦形剤又は担体は、患者に対し、特に、細胞分化が誘導されるべき部位に対し局所的に投与するために、製薬上許容されることが既知である任意のものでありうる。例としては、液体培地、例えば、ダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）、滅菌生理食塩水、滅菌リン酸緩衝生理食塩水、リーボビッツ培地（Ｌ１５、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ））、滅菌ブドウ糖液、及び、他の任意の生理学的に許容される液体が挙げられる。
【０１３２】
他の実施形態は、製薬上許容される担体及び臍帯組織由来細胞構成成分（例えば、細胞溶解物又はその成分）、又は産物（例えば、臍帯組織由来細胞から自然に産生されるか、若しくは臍帯組織由来細胞からの遺伝子組み換え、馴化培地により産生される、栄養因子又はその他の生物学的因子）、又は、臍帯組織由来細胞増殖成長培地、又は、増殖培地から精製された産物を投与することによって、末梢虚血損傷若しくは損壊を治療する方法を包含する。好ましい実施形態において、この生物学的因子はＦＧＦ及びＨＧＦである。これらの方法は、当該技術分野において既知の、増殖因子、血管形成因子、筋再生薬、又は筋保護薬などの、他の活性薬剤を更に含み得る。
【０１３３】
臍帯組織由来細胞、又は、本明細書に記述されている任意の他の治療組成物若しくは医薬組成物を投与するための剤形及びレジメンは、個々の患者の病状（例えば、末梢虚血イベントに由来する損傷若しくは損壊の性質及び程度、年齢、性別、体重、全般的な医学的状態、及び、医師に既知であるその他の因子）を考慮して、良好な臨床慣例に従って開発される。それゆえ、患者に投与される医薬組成物の有効量は、当該技術分野において既知であるような、これらの考慮事項によって決定される。
【０１３４】
臍帯組織由来細胞は、混合リンパ球反応における同種のＰＢＭＣを刺激しないことが示されている。したがって、同種又は異種による移植でさえ、臍帯組織由来細胞は、場合によっては許容可能である可能性がある。幾つかの実施形態において、臍帯組織由来細胞はそれ自体、免疫抑制効果を提供し、それによって、移植された臍帯組織由来細胞の宿主拒絶反応を妨げる。このような例では、細胞治療中の薬理学的な免疫抑制は、必要でなくなる可能性がある。
【０１３５】
しかしながら、他の場合には、細胞療法を開始する前に、患者を薬理学的に免疫抑制することが、望ましいか、又は適切な場合がある。このことは、全身性若しくは局所性の免疫抑制剤の使用を通じて達成することができ、又は上述のように、封入装置内の細胞を送達することによって、達成することができる。移植細胞に対する免疫反応を、低減若しくは排除するための、これらの手段及び他の手段は、当該技術分野において既知である。代わりに、臍帯組織由来細胞を、上記で述べたように、免疫原性を低減するように、遺伝子操作してもよい。
【０１３６】
生きている患者内の、移植された臍帯組織由来細胞の生存は、様々な走査技術、例えば、コンピュータ体軸断層撮影（ＣＡＴ又はＣＴ）スキャン、磁気共鳴映像（ＭＲＩ）スキャン、又は陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）スキャンの使用を通じて、判定することができる。移植生存の判定はまた、骨格筋組織又は血管組織を摘出し、目視で、又は顕微鏡を介して、それらを検査することによって、死後に実施することもできる。あるいは、骨格筋細胞、血管平滑筋細胞、周細胞、血管内皮細胞に特異的な染色で、細胞を処理することが可能である。移植細胞はまた、ローダミン標識マイクロスフェア若しくはフルオレセイン標識マイクロスフェア、ファーストブルー、第２鉄微小粒子、ビスベンズアミドなどの、トレーサー染色剤、又はβ−ガラクトシダーゼ若しくはβ−グルクロニダーゼなどの、遺伝子導入されたリポーター遺伝子産物の、事前組み入れによっても、同定することができる。
【０１３７】
別の一態様において、本発明は、血管形成を刺激及び／又は支持するため、血流を改善ため、並びに、末梢虚血イベントによって損傷又は損壊した骨格筋を再生、修復、及び改善するための、様々な方法で、臍帯組織由来細胞、臍帯組織由来細胞集団、臍帯組織由来細胞の構成成分及び産物を利用するキットを提供する。虚血イベントによって引き起こされた損壊若しくは損傷の治療、又は、他の予定された治療のために用いられる場合、キットは、少なくとも臍帯組織由来細胞及び製薬上許容される担体（液体、半固体、固体）を含む１つ又は２つ以上の細胞集団を含み得る。このキットはまた、細胞を投与する手段、例えば注射による手段も、任意選択的に含み得る。このキットは、細胞の使用に関する使用説明書を、更に含み得る。軍隊使用のためなどの、野戦病院使用のために調製されるキットは、組織スカフォールド、外科用縫合糸などを含む、全手順供給品を含み得、細胞は、急性損傷の修復と併せて使用される。明細書に記述されるアッセイ及びインビトロ法のためのキットは、（１）臍帯組織由来細胞又は臍帯組織由来細胞の構成成分若しくは産物、（２）インビトロ法を実践するための試薬、（３）適切な場合、他の細胞若しくは細胞集団、並びに（４）インビトロ法を実行するための使用説明書、のうちの１つ又は２つ以上を含み得る。
【０１３８】
以下の実施例は、より詳細に本発明を記述する。これらの実施例は、本明細書で記述される本発明の態様の更なる例示を提供するためのものであり、限定するためのものではない。
【実施例】
【０１３９】
（実施例１）
ネズミ後肢末梢虚血モデルにおける臍由来細胞の効力
材料及び方法
臍細胞培養及び分離。臍由来細胞（ＵＤＳ）は、米国特許公開第２００５／００５８６３１号又は同第２００５／００５４０９８号の記述に従って調製された。細胞は、１０継代又は１１継代（集団倍加約２０〜２５回）まで培養し、その後凍結保存した。
【０１４０】
虚血モデル治療群：
【０１４１】
【表１】
0005937210.tif 000002
【０１４２】
注射用サンプル調製細胞は注射直前に解凍するか（群３〜５）、又は、細胞を２４〜３０時間培養した（群６）。トリパンブルー染色及び血球計で計数することによって、細胞を計数し、生存性を決定した。細胞若しくはプラスミド（１００μｇ）の全量をＰＢＳ  １００μＬに再懸濁させ、マウスに注射するために、２７ゲージ針の３００μＬツベルクリン注射器に充填した。
【０１４３】
手術。０日目、胸腺欠損ヌードマウスにおいて、左大腿動脈の片側連結及び切除によって、急性後肢虚血を外科的に誘導した。ＵＤＣ治療又は対照として、少なくともｎ＝８の６つの群に、マウスを分けた。マウスを無作為に、群１〜５のための治療群に割り当てた。本研究において、群６は後で追加したため、無作為性は生じなかった。その上、スケジュールの調整ができなかったために、本来の研究と同時にマイクロＣＴ／ＰＥＴを実施することできなかった。この分析を、２１日の研究が完了した後に登録された８匹の追加動物（４つの対照、４つの培養細胞１）の群で実施した。
【０１４４】
細胞注射。手術後１日目、足底領域のレーザードップラー撮像分析のために、マウスを麻酔した。マウスがまだ麻酔状態である間に、細胞を左の（虚血性の）肢の５つの部位、すなわち、（１）前脛骨筋に２０μＬ、（２）腓腹筋に２０μＬ×２ヶ所、（３）四頭筋束の大腿直筋に２０μＬ×２ヶ所に注射した。
【０１４５】
分析。レーザードップラー撮像を、１、４、８、１４、２１日目に実行した。２１日目に、薄切片形成及びＣＤ３１抗体による免疫組織化学染色のために、マウスを屠殺し、前脛骨筋（ＴＡ）、腓腹筋、四頭筋を摘出し、低温固定した。８日目に、筋肉の潅流状態を測定するために、フルオロメタンガスを使用したマイクロＣＴ／ＰＥＴ分析を実施した。これらのマウスをその直後に屠殺し、低温固定の薄切片上のＣＤ３１免疫組織化学法のために、後肢筋肉を加工した。
【０１４６】
除外基準。手術後１日目に重度のつま先壊死を示したマウスを、注射の前に研究から除外した。また、重度の壊死（例えば、足全体の壊死）のために、又は、重度の体重低下を経験するか、若しくはさもなくば、激痛の兆しを示した場合は、そのマウスを研究の任意の時に除外した。
【０１４７】
結果
これらの実験のねらいは、齧歯類後肢虚血モデルにおいて、ＵＤＣが細胞を損傷から保護するかどうかを判定することであった。このモデルは、大腿部の血流に損傷を作り出し、損傷の約２４時間後、その範囲に細胞を注射することによって、実施された。これらの動物の手足の潅流を推定し、これと、損傷のない反対側の手足とを比較することによって、結果を評価した。また、動物の脈管構造及び損傷を評価するための研究の終わりに、これらの動物から組織を収集した。この研究は、移植細胞の異種間の拒絶反応を回避するために、ヌードマウスにおけるヒト細胞でも実施された。
【０１４８】
図１に示す結果は、ＵＤＣがマウスに利益を与えることを示す。これは、培養細胞で処理して４日目及び８日目の動物では、潅流が改善され、また、８日目の注射の前に即座に解凍した１２０３０４細胞で処理した動物でも、血流は改善されたからである。細胞０７２８０４Ａは、任意の時点で利益を示さなかった。このことは、２つの細胞ロット間の違いを示唆している。概して、動物は、この動物系統がある程度自然に修復する可能性を有している時間以上の改善を示した。また、これらの動物は、比較的若く、それは生得的な再生可能性における１つの要素である可能性がある。
【０１４９】
ＴＡ筋肉を研究の終わりに収集し、抗ＣＤ３１抗体により血管内皮細胞を検出するために、切片を探査した。代表的な結果を図２に示す。結果は、ＰＢＳ対照動物が全体的な壊死を示し、虚血性手足において脈管構造を制限し（例えば、マウス番号２６及び４３）、一方、ＵＤＣ治療の四肢が、ＣＤ３１染色の相対的に高いレベルを示し、壊死のレベルを低減したことを示している。また、結果は、培養ＵＤＣで治療した動物が、対照物（ＰＢＳ対照、及び、幾つかの場合では、正常な（損傷していない）四肢）と比較して改善された脈管構造を示したことを示唆している。正常四肢と比較して、虚血性であるが治療された四肢において、増加したＣＤ  ３１染色が観察された。ＶＥＧＦプラスミド、Ｕｍｂ０７２８０４Ａで処理された動物は、ＰＢＳ対照と同様の結果を示した。
【０１５０】
要約
これらの結果は、げっ歯類後肢虚血モデルにおいて、臍帯由来細胞は血流を改善し、組織壊死を低減するのに有効であるというエビデンスを提示している。研究は注射の前に即座に解凍された２つの異なるロットの臍細胞を含み、結果は、ロット間で違いが存在する可能性を示唆した。また、幾つかの活性を有すると思われる細胞を、注射の前に約４８時間培養し、その他の治療群の中に含めた。これらの細胞は最も効果的であると思われ、これは、培養することが細胞の活性プロファイルを変えることを示唆している。また、組織学的な結果は、この治療が保護的な効果を提供することができるというエビデンスを提示している結果は、ＵＤＣが効果を及ぼすメカニズムについて、十分な情報を提示していない。作用に関する特定の理論若しくはメカニズムに拘束されるものではないが、新しい血管の成長を刺激し、損傷の進行から筋肉組織を保護することによって、例えば、アポトーシスから保護すること、又は、外因性の活性剤を補充することによって、これらの細胞が効果を及ぼす可能性が考えられる。作用の正確なメカニズムを調査するために、更なる研究が必要である。
【０１５１】
参考文献
１）Ｒｅｈｍａｎ，Ｊ．ｅｔ  ａｌ．（２００４）Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ  １０９：１２９２〜１２９８。
【０１５２】
（実施例２）
内皮ネットワーク形成アッセイ
血管形成、すなわち、新しい脈管構造の形成は、新しい組織の成長のために必要である。血管形成の誘導は、多くの病理学上の病状における重要な治療目標である。インビトロアッセイにおける臍帯組織由来細胞の潜在的な血管形成活性を同定するために、基底膜抽出物である商標名ＭＡＴＲＩＧＥＬ（ＢＤ  Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  Ｌａｂｗａｒｅ（Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ））の生物由来細胞培養基質でコーティングされた培養プレート上に内皮細胞を接種するという、よく確立された方法を行った（Ｎｉｃｏｓｉａ  ａｎｄ  Ｏｔｔｉｎｅｔｔｉ（１９９０）Ｉｎ  Ｖｉｔｒｏ  Ｃｅｌｌ  Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．２６（２）：１１９〜２８）。ＭＡＴＲＩＧＥＬ（ＢＤ  Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  Ｌａｂｗａｒｅ（Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ））上で内皮細胞を血管形成因子とともに処理することによって、細胞を毛細血管と同様のネットワークを形成するように刺激するだろう。このことは、血管形成の刺激因子及び阻害因子を試験するための共通のインビトロアッセイである（Ｉｔｏ  ｅｔ  ａｌ．（１９９６）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ  ６７（１）：１４８〜５２）。実験は、培養ウェルインサート上に接種した臍帯組織由来細胞とともに共培養するシステムを用いた。これらの透過性インサートは、内皮細胞培養培地と臍帯組織由来細胞培養培地との間の培地成分の受動的交換を可能にする。
【０１５３】
方法及び材料
細胞培養
臍帯組織由来細胞及び胎盤組織由来細胞。ヒト臍帯及び胎盤を受領し、細胞を前述のように単離した（実施例１参照）。細胞をゼラチンコート組織培養プラスチックフラスコ上の増殖培地（ダルベッコ変法必須培地（ＤＭＥＭ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ））、１５％（ｖ／ｖ）ウシ胎仔血清（Ｈｙｃｌｏｎｅ（Ｌｏｇａｎ  ＵＴ））、ペニシリン１００Ｕ／ｍＬ、ストレプトマイシン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）１００μｇ／ｍＬ、０．００１％（ｖ／ｖ）２−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）））の中で培養した。この培養物を、５％のＣＯ２下、３７℃でインキュベーションした。実験に使用した細胞は、４継代〜１２継代の間のものであった。
【０１５４】
活発に増殖している細胞をトリプシン処理し、計数し、ＣＯＳＴＡＲ  ＴＲＡＮＳＷＥＬＬ直径６．５ｍｍの組織培養インサート（Ｃｏｒｎｉｎｇ（Ｃｏｒｎｉｎｇ，ＮＹ））上に、細胞１５，０００個／インサートで接種した。細胞を、標準的増殖条件下、３７℃、増殖培地中で、４８〜７２時間、インサート上で培養した。
【０１５５】
ヒト間葉系幹細胞（ｈＭＳＣ）。ｈＭＳＣｓをＣａｍｂｒｅｘ（Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ，ＭＤ）から購入し、ＭＳＣＧＭ（Ｃａｍｂｒｅｘ）中で培養した。培養物を標準的増殖条件下でインキュベーションした。
【０１５６】
活発に増殖しているＭＳＣをトリプシン処理し、計数し、ＣＯＳＴＡＲ  ＴＲＡＮＳＷＥＬＬ直径６．５ｍｍの組織培養インサート（Ｃｏｒｎｉｎｇ（Ｃｏｒｎｉｎｇ，ＮＹ））上に、細胞１５，０００個／インサートで接種した。細胞を、標準的増殖条件下、増殖培地中で、４８〜７２時間、インサート上で培養した。
【０１５７】
ヒト臍静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）。ＨＵＶＥＣをＣａｍｂｒｅｘ（Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ，ＭＤ）から入手した。細胞を、ＥＢＭ若しくはＥＧＭ内皮細胞培地（Ｃａｍｂｒｅｘ）のいずれかの中で、別個の培養中で増殖させた。細胞を、標準的増殖条件下、標準組織培養プラスチック上で増殖させた。アッセイで用いた細胞は、４継代〜１０継代の間のものであった。
【０１５８】
ヒト冠状動脈内皮細胞（ＨＣＡＥＣ）。ＨＣＡＥＣは、Ｃａｍｂｒｅｘ  Ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ（Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ，ＭＤ）から購入した。これらの細胞もまた、ＥＢＭ若しくはＥＧＭ培地配合物のいずれかの中で、別個の培養中で維持した。細胞を、標準的増殖条件下、標準組織培養プラスチック上で増殖させた。実験のために使用した細胞は、４継代〜８継代の間のものであった。
【０１５９】
内皮ネットワーク形成（ＭＡＴＲＩＧＥＬ）アッセイ。培養プレートを、メーカーの仕様に従って、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（ＢＤ  Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  Ｌａｂｗａｒｅ（Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ））でコーティングした。簡単に言うと、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（ＢＤ  Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  Ｌａｂｗａｒｅ（Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ））を４℃で解凍し、約２５０μＬに分注し、凍らせた２４ウェル培養プレート（Ｃｏｒｎｉｎｇ）の各ウェル上に等しく分配した。その後、材料を凝固させるために、プレートを、３７℃で３０分間、インキュベーションした。活発に増殖している内皮細胞培養物をトリプシン処理し、計数した。細胞を２％  ＦＢＳの入った成長培地中で、遠心分離し、再懸濁し、上澄みを吸引することによって、２回洗浄した。コートウェル上、２％（ｖ／ｖ）ＦＢＳの入った成長培地約０．５ｍＬの中に、細胞を２０，０００細胞／ウェルで接種した。その後、細胞を定着させるように、約３０分間インキュベーションした。
【０１６０】
その後、内皮細胞培養物を、内皮細胞反応の陽性対照とするために、１０ｎｍｏｌヒトｂＦＧＦ（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ（Ｒｏｃｋｙ  Ｈｉｌｌ，ＮＪ））、又は１０ｎｍｏｌヒトＶＥＧＦ（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ（Ｒｏｃｋｙ  Ｈｉｌｌ，ＮＪ））のいずれかで処理した。臍帯組織由来細胞を接種したトランスウェルインサートを、インサートチャンバー中に２％  ＦＢＳを含む成長培地の入った適切なウェルに加えた。培養物を、５％  ＣＯ２下、３７℃で、約２４時間インキュベーションした。ウェルプレートをインキュベータから取り除き、内皮細胞培養物像をＯｌｙｍｐｕｓ倒立顕微鏡（Ｏｌｙｍｐｕｓ（Ｍｅｌｖｉｌｌｅ，ＮＹ））で収集した。
【０１６１】
結果
胎盤由来細胞又は臍帯由来細胞とともに共培養した系では、ＨＵＶＥＣは細胞ネットワークを形成する（データ図示なし）。ＨＵＶＥＣ細胞は、ｈＭＳＣ及び１０ナノモルｂＦＧＦによる共培養実験において、限定的な細胞ネットワークを形成する（図示なし）。任意の処理なしのＨＵＶＥＣ細胞は、ネットワーク形成がほとんどないか、又は全くないことが示された（データ図示なし）。これらの結果は、臍帯組織由来細胞がＨＵＶＥＣを刺激する血管形成因子を放出することを示唆する。
【０１６２】
胎盤由来細胞又は臍帯由来細胞とともに共培養した系では、ＣＡＥＣは細胞ネットワークを形成する（データ図示なし）。
【０１６３】
表２−１は、増殖培地中に胎盤組織由来細胞及び臍帯組織由来細胞によって放出された既知の血管形成因子の濃度を示している。上述のように、胎盤組織由来細胞及び臍帯組織由来細胞をインサート上に接種した。細胞を、３７℃、大気酸素中、インサート上で、４８時間培養し、その後、２％  ＦＢＳ培地に切り換え、３７℃、２４時間に戻した。培地を取り除き、即座に凍結し、−８０℃で保存し、ＳｅａｒｃｈＬｉｇｈｔ多重ＥＬＩＳＡアッセイ（Ｐｉｅｒｃｅ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏｍｐａｎｙ（Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ））によって分析した。示した結果は、２回の測定値の平均である。結果は、臍帯由来細胞及び胎盤由来細胞が、検出できる濃度の血小板由来増殖因子−ｂｂ（ＰＤＧＦ−ｂｂ）、又は、ヘパリン結合表皮増殖因子（ＨＢＥＧＦ）を放出しないことを示す。細胞は、測定可能な量の、メタロプロテアーゼ組織阻害因子１（ＴＩＭＰ−１）、アンジオポエチン２（ＡＮＧ２）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、ケラチノサイト増殖因子（ＫＧＦ）、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）を放出する。
【０１６４】
【表２】
0005937210.tif 000003
臍帯由来細胞及び胎盤由来細胞を、大気酸素中、２％  ＦＢＳを含む培地中で、２４時間培養した。培地を除去し、ＳｅａｒｃｈＬｉｇｈｔ多重ＥＬＩＳＡアッセイ（Ｐｉｅｒｃｅ）で解析した。結果は、２回の分析の平均である。値は、培地ミリリットル当たりのピコグラムで報告された培地中の濃度である。Ｐｌａｃ：胎盤由来細胞、Ｕｍｂ  ｃｏｒｄ：臍帯由来細胞。
【０１６５】
表２−２は、臍帯由来細胞及び胎盤由来細胞によって放出された既知の血管形成因子の濃度を示している。上述のように、臍帯由来細胞及び胎盤由来細胞をインサート上に接種した。細胞を、５％酸素、増殖培地中、インサート上で、４８時間培養し、その後、２％  ＦＢＳ培地に切り換え、５％  Ｏ２下インキュベーション、２４時間に戻した。培地を取り除き、即座に凍結し、−８０℃で保存し、ＳｅａｒｃｈＬｉｇｈｔ多重ＥＬＩＳＡアッセイ（Ｐｉｅｒｃｅ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏｍｐａｎｙ（Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ））によって分析した。示した結果は、２回の測定値の平均である。結果は、臍帯由来細胞及び胎盤由来細胞が、検出できる濃度の血小板由来増殖因子−ｂｂ（ＰＤＧＦ−ＢＢ）、又は、ヘパリン結合表皮増殖因子（ＨＢＥＧＦ）を放出しないことを示す。細胞は、測定可能な量の、メタロプロテアーゼ組織阻害因子１（ＴＩＭＰ−１）、アンジオポエチン２（ＡＮＧ２）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、ケラチノサイト増殖因子（ＫＧＦ）、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）を放出する。
【０１６６】
【表３】
0005937210.tif 000004
臍帯由来細胞及び胎盤由来細胞を、５％酸素中、２％  ＦＢＳを含む培地中で、２４時間培養した。培地を除去し、ＳｅａｒｃｈＬｉｇｈｔ多重ＥＬＩＳＡアッセイ（Ｐｉｅｒｃｅ）で解析した。結果は、２回の分析の平均である。値は、培地ミリリットル当たりのピコグラムで報告された培地中の濃度である。Ｐｌａｃ：胎盤由来細胞、Ｕｍｂ  ｃｏｒｄ：臍帯由来細胞。
【０１６７】
要約。
結果は、インビトロでのＭＡＴＲＩＧＥＬ（ＢＤ  Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  Ｌａｂｗａｒｅ（Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ））アッセイで、分娩後由来細胞が、ヒト臍静脈細胞と冠動脈内皮細胞との両方を、ネットワークを形成するよう刺激することができることを示す。この効果は、このアッセイシステムにおいて、既知の血管形成因子とともに見られたものと同様である。これらの結果は、臍帯由来細胞及び胎盤由来細胞が、インビボでの血管形成を刺激するために有用であることを示唆する。
【０１６８】
（実施例３）
内皮細胞のインビトロでの増殖及び遊走におけるｈＵＴＣの効果
本研究は、ヒト臍組織由来細胞（ｈＵＴＣ）の、インビトロでの内皮細胞の増殖及び遊走についての効果を決定するために実施された。ｈＵＴＣ及び内皮細胞を共培養することによって、そして、ヒト臍静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）の培養物をｈＵＴＣ溶解物とともにインキュベーションすることによって、これらの効果を調べた。本明細書で示された結果は、ｈＵＴＣが内皮細胞の増殖及び遊走を誘導することを示す。更に、データは、これらの効果が部分的に、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）及び肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）によって媒介されることを示唆する。
【０１６９】
材料及び方法
細胞培養
凍結保存したヒト臍組織由来細胞（ｈＵＴＣ）（ロット番号１２０３０４）を、８〜９継代で解凍し、ゼラチンコートフラスコ上に接種し、ヘイフリック成長培地（ＤＭＥＭ低グルコース（Ｇｉｂｃｏ、カタログ番号１１８８５−０８４）、１５％  ｖ／ｖウシ胎仔血清（ＦＢＳ、Ｈｙｃｌｏｎｅ、カタログ番号ＳＨ３００７０．０３）、０．００１％  ｖ／ｖ  β−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ、カタログ番号Ｍ７１５４）、５０Ｕ／ｍＬペニシリン、５０μｇ／ｍＬストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ、カタログ番号３８１０−７４−０））中で培養した。本明細書に記述される研究について、使用した細胞は、１０継代又は１１継代であった。ヒト臍静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ、カタログ番号Ｃ２５１７Ａ）、ヒト冠動脈内皮細胞（ＨＣＡＥＣ、カタログ番号ＣＣ２５８５）、ヒト腸骨動脈内皮細胞（ＨＩＡＥＣ、カタログ番号ＣＣ２５４５）をＣａｍｂｒｅｘから入手し、内皮増殖培地（ＥＧＭ−２ＭＶ、カタログ番号３２０２）中で、メーカーの推奨に従って培養した。また、ヒト間葉系幹細胞（ＭＳＣ、カタログ番号ＰＴ−２５０１）をＣａｍｂｒｅｘから購入し、間葉系幹細胞増殖培地（ＭＳＣＧＭ、カタログ番号ＰＴ−３００１）中で、メーカーの推奨に従って維持した。ヒト皮膚線維芽細胞（ＣＣＤ９）はＡＴＣＣからのものであり、１０％  ＦＢＳ、１Ｕ／ｍＬペニシリン−ストレプトマイシンを含むＤＭＥＭ／Ｆ１２培地中で維持した。
【０１７０】
所定の継代のために、細胞をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、カタログ番号１４１９０）で一度洗浄し、トリプシン処理（０．２５％トリプシン−ＥＤＴＡ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、カタログ番号２５２００−０５６）により解離させた。細胞は、Ｇｕａｖａ（登録商標）機器（Ｇｕａｖａ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ｈａｙｗａｒｄ，ＣＡ））を用いて計数し、細胞５０００個／ｃｍ２の密度で播種した。細胞を３〜４日毎に定期的に継代した。
【０１７１】
増殖因子と抗体
組み換えヒト塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ、カタログ番号１００−１８Ｂ）及び、組み替えヒト肝細胞増殖因子（ＨＧＦ、カタログ番号１００−３９）は、Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ製であり、組み換えヒト血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ、カタログ番号２９３−ＶＥ）は、Ｒ  ａｎｄ  Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ製であった。ｂＦＧＦに対する抗体（カタログ番号ａｂ１１９３７）、ＨＧＦに対する抗体（カタログ番号ａｂ１０６７８）、ＶＥＧＦに対する抗体（カタログ番号ａｂ９５７０）をＡｂｅａｍ（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＭＡ）から購入した。
【０１７２】
細胞溶解物の調製
細胞溶解物を、以前に成長させた凍結ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）細胞ペレットから準備した。簡単に言うと、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）を４日間培養し、トリプシン処理で採取し、遠心分離によってペレットにした。その後、細胞をＰＢＳで３回洗浄し、ＰＢＳ中に細胞１×１０７個／ｍＬで再懸濁した。懸濁液１ｍＬのアリコートを１．５ｍＬ滅菌シリコン化微小遠心チューブ中に入れ、３００ｒｃｆで５分間遠心分離した。ＰＢＳを吸引し、細胞ペレットを、使用するまで−８０℃で保存した。
【０１７３】
細胞溶解物を調製するために、細胞ペレットを含むチューブを、液体窒素（ＬＮ２）中に６０秒間浸し、その後、即座に３７℃の水浴に６０秒間、又は、解凍されるまでであるが３分未満、浸した。この段階を３回くり返した。この段階の後、凍結解凍サンプルを１３，０００ｒｃｆ、４℃で、１０分間遠心分離し、その後、氷上に置いた。上澄みを注意深く取り除き、新しい滅菌シリコン化１．５ｍＬチューブに移した。遠心分離段階を３回繰り返し、結果的に生じた上澄みを集めた。タンパク質濃度を、Ｑｕｉｃｋｓｔａｒｔ  Ｂｒａｄｆｏｒｄタンパク質アッセイキット（Ｂｉｏ−ｒａｄ、カタログ番号５００−０２０１）のマイクロアッセイプロトコルを用いて、測定した。
【０１７４】
細胞増殖の測定
細胞を採取し、指定された培地配合物に直接、細胞５，０００個／ｃｍ２の濃度で播いた。共培養実験のために、２４ウェルトランスウェル（Ｃｏｒｎｉｎｇ、カタログ番号３４１３）を、ウェルの底の上に播いた内皮細胞（細胞１０，０００個／ウェル）とともに用い、ｈＵＴＣ、ＭＳＣ、若しくは、線維芽細胞を、トランスウェルインサート（細胞１，６５０個／トランスウェルインサート）の内側に播いた。指定された期間で、ｈＵＴＣ、ＭＳＣ、若しくは、線維芽細胞を含むインサートを取り除き廃棄した。各ウェルに９０μＬのトリプシンを加えることによって、内皮細胞を採取した。ピペッティングで上下させることによって、細胞を引き離し、その後、９６ウェルプレートに移した。培地９０μＬを加えることによって、トリプシンを抑制した。染色溶液２０μＬ（培地１８μＬ＋Ｇｕａｖａ  Ｖｉａｃｏｕｎｔ  Ｆｌｅｘ試薬１μＬ＋ＤＭＳＯ  １μＬ）を加えることによって、細胞を染色し、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置（Ｇｕａｖａ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ｈａｙｗａｒｄ，ＣＡ））を用いて定量した。
【０１７５】
ＨＵＶＥＣの増殖におけるｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）細胞溶解物の効果を研究するために、ＨＵＶＥＣを、ＥＧＭ−２ＭＶ培地の入った２４ウェル組織培養皿上に細胞１０，０００個／ウェルの密度で接種し、８時間置いた。その後、０．５％  ＦＢＳを含み増殖因子を含まないＥＧＭ−２ＭＶ培地０．５ｍＬ中で、一晩インキュベーションすることで、細胞を血清枯渇させた。その後、ＦＢＳ、新たに準備したタンパク質を含むｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）細胞溶解物６２．５μｇ又は１２５μｇ、及び、ＦＧＦ（７μｇ／ｍＬ）又はＨＧＦ（１μｇ／ｍＬ）に対する中和抗体を加えた。４日間の培養の後、細胞を収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。
【０１７６】
内皮細胞増殖におけるｈＵＴＣ介在性増加の潜在的なメカニズムの研究のために、ＦＧＦ（７μｇ／ｍＬ）、ＨＧＦ（１μｇ／ｍＬ）、ＶＥＧＦ（１μｇ／ｍＬ）に対する中和抗体を、ＨＵＶＥＣ及びＨＣＡＥＣと、ｈＵＴＣとの共培養中に含めた。細胞を最初に播いた時に、抗体を細胞培養培地に加えた。７日間の共培養の後、細胞を収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。
【０１７７】
細胞遊走の評価
細胞遊走を測定するために、６ウェルトランスウェル（Ｃｏｒｎｉｎｇ、カタログ番号３４２８）設定を用いた。指定された培地配合物に直接、細胞５，０００個／ｃｍ２の密度で、細胞を接種した。トランスウェルインサートの内側に、内皮細胞を接種し（細胞２３，０００個／トランスウェルインサート）、ウェルの底に、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）又はＭＳＣを播いた（細胞４８，０００個／ウェル）。共培養７日後に、トランスウェルの下側の細胞数を計数することによって、遊走を評価した。簡単に言うと、トランスウェルを、清潔なウェルへ移し、ＰＢＳで洗浄した。ウェルの底にトリプシンを加えることによって、ウェルの下側の細胞を採取した。完全増殖培地を加えることによって、トリプシンを抑制し、遠心分離によって、細胞を収集した。その後、細胞を培地２５μＬで再懸濁させ、このうちの２０μＬを用いて、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置で細胞計数を得た。
【０１７８】
内皮細胞遊走におけるｈＵＴＣ介在性増加の潜在的なメカニズムの研究のために、ＦＧＦ（７μｇ／ｍＬ）、ＨＧＦ（１μｇ／ｍＬ）に対する中和抗体を、ＨＵＶＥＣ及びＨＣＡＥＣと、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）との共培養中に入れた。細胞を最初に播いた時に、抗体を細胞培養培地に加えた。７日間の共培養の後、トランスウエルインサートの下側にあった細胞を収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。
【０１７９】
結果
内皮細胞の増殖におけるｈＵＴＣの効果
内皮細胞の増殖におけるｈＵＴＣの効果を研究するために、共培養システムを利用した。このことは、２４ウェル組織培養皿の底に播いた内皮細胞、及び、トランスウェルインサートの内側に播いたｈＵＴＣのトランスウェル設定を用いて実施された。これらの実験では、２つの異なる培地配合（「材料と方法」に記述されている培地組成物）、すなわち、（１）ヘイフリック培地８０％＋ＥＧＭ−２ＭＶ培地２０％（Ｈ８０）、又は（２）ヘイフリック培地５０％＋ＥＧＭ−２ＭＶ培地５０％（Ｈ５０）を用いた。共培養６日又は７日後、トランスウェルインサートを取り除き、内皮細胞をトリプシン処理によって採取し、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を用いて計数した。
【０１８０】
Ｈ５０と比較して、Ｈ８０中で培養された内皮細胞の増殖におけるｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）の効果を、図１に示す。Ｈ５０中で維持されたＨＵＶＥＣの増殖は、Ｈ８０中で維持されたものよりも高かったが（図１Ａ）、ＨＣＡＥＣ及びＨＩＡＥＣは、これらの共細胞培地配合物中で同様の成長を示している（図１Ｂ、及び図１Ｃ）。両方の培地配合物において、内皮細胞と、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）との共培養は、７日後に細胞数の顕著な増加を示す結果となった。ｈＵＴＣ及び内皮細胞のその後の共培養研究を、全て、ヘイフリック培地５０％＋ＥＧＭ−２ＭＶ培地５０％（Ｈ５０）培地配合物で実施した。
【０１８１】
また、他の細胞型が内皮細胞増殖に影響を与える能力を有するかどうか決定するために、内皮細胞との共培養中で、ＭＳＣ及び線維芽細胞を試験した。図１Ａに示すように、共培養培地（Ｈ５０又はＨ８０）中のＨＵＶＥＣの増殖、及び、ＭＳＣ又は線維芽細胞とともに共培養したものには、全く違いがなかった。同じことが、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）との共培養で、結果的に増加した細胞増殖を生じたＨＣＡＥＣ（図１Ｂ）及びＨＩＡＥＣ（図１Ｃ）についても真であったが、共培養培地（Ｈ５０又はＨ８０）中の細胞とＭＳＣとともに共培養した細胞間では、違いは見られなかった。
【０１８２】
内皮細胞増殖におけるｈＵＴＣ介在性増加の潜在的なメカニズムを調べるために、ＦＧＦ（７μｇ／ｍＬ）、ＨＧＦ（１μｇ／ｍＬ）、ＶＥＧＦ（１μｇ／ｍＬ）に対する中和抗体を、ＨＵＶＥＣ及びＨＣＡＥＣと、ｈＵＴＣとの共培養中に含めた。図２Ａ〜図２Ｄの結果は、ＦＧＦ及びＨＧＦに対する中和抗体を添加することが、ＨＵＶＥＣ及びＨＣＡＥＣの両方において、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）によって誘導された細胞数の増加を低減させたことを示している。これらの研究のために用いた濃度で、これらの中和抗体は、増殖因子によって誘導されたＨＵＶＥＣの増殖を阻止した（図２Ａ及び２Ｂ）。興味深いことに、ＶＥＧＦに対する中和抗体は、ＨＵＶＥＣ（図２Ａ及び２Ｂ）並びにＨＣＡＥＣ（図２Ｃ及び２Ｄ）と、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）との共培養によって誘導された細胞増殖について、有意な効果を有さなかったことがわかる。別の研究では、ＦＧＦ及びＶＥＧＦに対する中和抗体の培養培地へ加えることによって、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）の増殖は影響を受けなかった（データ図示なし）。
【０１８３】
ＨＵＶＥＣの増殖におけるｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）細胞溶解物の効果
また、ＨＵＶＥＣの増殖における細胞溶解物の効果を決定するために研究が行われた。ＨＵＶＥＣをＥＧＭ−２ＭＶ培地の入った２４ウェルプレート上に、細胞５０００個／ｃｍ２の密度で、８時間接種した。その後、０．５％ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）を含み増殖因子を含まないＥＧＭ−２ＭＶ培地０．５ｍＬ中で、一晩インキュベーションすることによって、細胞を血清枯渇させた。インキュベーション後、新たに準備されたｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）細胞溶解物を様々な濃度で加えた。幾つかの例では、ＦＧＦ、ＨＧＦ、及び中和抗体も含められた。４日間の培養の後、ＨＵＶＥＣを収集して、Ｇｕａｖａ（登録商標）装置を使用して計数した。
【０１８４】
図３は、細胞溶解物を加えることによって、低血清（０．５％  ＦＢＳ）で維持されている細胞と比較して、ＨＵＶＥＣの細胞数の増加が導かれ、細胞数の増加が細胞溶解物の添加量に比例したということを示す。用いた細胞溶解物のより低い濃度（６．２５μｇ／ｍＬ）により、結果的に、最適な培地条件（１０％  ＦＢＳ）中でインキュベーションした細胞と同程度の細胞数になった。更に、ＦＧＦ若しくはＨＧＦのいずれかに対する中性抗体を加えることにより、２つの異なる濃度の細胞溶解物によって誘導された細胞数の増加を緩和した。これらの結果は、ＨＵＶＥＣと、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）との共培養で得られた結果と一致する。
【０１８５】
内皮細胞の遊走におけるｈＵＴＣの効果
トランスウェル膜（孔の大きさ＝８マイクロメートル）を通って移動してきた細胞の数を決定することによって、内皮細胞の遊走を評価した。反応細胞、すなわち、内皮細胞を、６ウェルトランスウェルインサート上に接種し、ｈＵＴＣをウェルの底に播いた。共培養後、トランスウェルの下側の細胞を採取し、計数した。図４Ａは、ｈＵＴＣ及びＭＳＣとともに共培養されたＨＵＶＥＣの遊走を示す。ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）は、トランスウェルの下側へのＨＵＶＥＣの移動を誘導したが、ＭＳＣは誘導しなかった（図４Ａ）。同じ結果が、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）との共培養で、培地対照と比較して、結果的により多くのトランスウェルを通過した細胞移動が生じたＨＣＡＥＣにおいて観察された（図４Ｂ）。
【０１８６】
ＦＧＦ及びＨＧＦに対する中和抗体を使用することによって、ＨＵＶＥＣ及びＨＣＡＥＣの遊走行動におけるｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）の効果を、更に試験した。図５Ａで示したように、これらの抗体によって、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）によって誘導されたＨＵＶＥＣの遊走が低減された。ＨＣＡＥＣと、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）との共培養において、ＨＧＦに対する中和抗体は、細胞遊走におけるｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）介在性の増加を妨げたが、ＦＧＦに対する中和抗体は、増加を妨げなかった（図５Ｂ）。
【０１８７】
要約
本明細書で概説された結果は、インビトロでの内皮細胞の増殖行動及び遊走行動におけるｈＵＴＣの効果を説明する。ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）及び内皮細胞の共培養、若しくは、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）から準備された細胞溶解物とともに内皮細胞を直接インキュベーションすることを用いて、本研究を実施した。
【０１８８】
増殖の研究のために、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）の効果を試験し、異なる血管床由来の３つの内皮細胞型を、反応細胞として用いた。ｈＵＴＣでの共培養は、内皮細胞の増殖の増強をもたらした。ＭＳＣ又は線維芽細胞との共培養は、結果的に、培養対照と同程度の細胞数を生じた。ＦＧＦ及びＨＧＦに対する中和抗体を加えることによって、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）に対するＨＵＶＥＣの増殖反応を弱めたが、ＶＥＧＦに対する中和抗体では、そうではなかった。このことは、ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）による増殖の誘導が、ＦＧＦ及びＨＧＦによって仲介されることを暗示する。ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）溶解物とのＨＵＶＥＣのインキュベーションが、共培養で観察された結果と同じであることは、注目に値する。
【０１８９】
移動は、トランスウエルの下側にある細胞数を計数することで定量化した。ＨＵＶＥＣ及びＨＣＡＥＣの両方をキラー細胞として使用した。増殖に関する試験とは異なり、これらの細胞の移動反応はわずかに異なる。ｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）は、ＨＵＶＥＣ及びＨＣＡＥＣ両方の遊走を誘導した。ＭＳＣは、ＨＵＶＥＣの遊走を誘導しなかった。このことは、この反応がｈＵＴＣ特異的であることを示唆する。ＦＧＦ及びＨＧＦに対する抗体は、ＨＵＶＥＣの遊走におけるｈＵＴＣ（ロット番号１２０３０４）の効果を打ち消したが、ＨＧＦに対する抗体のみが、ＨＣＡＥＣの遊走に影響を与えた。このことは、２つの内皮細胞型間の違いを示唆している。
【０１９０】
要約すると、データは、ｈＵＴＣが、インビトロで内皮細胞の増殖及び遊走を誘導することを示す。これらの観察された効果において、中和抗体の使用は、ＦＧＦ及びＨＧＦ両方に関係する。しかしながら、他の因子もまた、内皮細胞の増殖及び遊走行動に関わっている可能性がある。
【０１９１】
（実施例４）
臍由来細胞内でのテロメラーゼ発現
テロメラーゼは、染色体の完全性を保護し、また細胞の複製寿命を延長するために役立つ、テロメア繰り返し体を合成するように機能する（Ｌｉｕ，Ｋ  ｅｔ  ａｌ．、ＰＮＡＳ，１９９９年：９６：５１４７〜５１５２）。テロメラーゼは、テロメラーゼＲＮＡテンプレート（ｈＴＥＲ）、及びテロメラーゼ逆転写酵素（ｈＴＥＲＴ）の、２つの成分からなる。テロメラーゼの調節は、ｈＴＥＲではなく、ｈＴＥＲＴの転写によって決定される。ｈＴＥＲＴ  ｍＲＮＡに関するリアルタイムポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）は、それゆえ、細胞のテロメラーゼ活性を判定するための、公認された方法である。
【０１９２】
細胞単離。リアルタイムＰＣＲ実験を実行して、ヒト臍帯組織由来細胞のテロメラーゼ産生を判定した。ヒト臍帯組織由来細胞を、上述の実施例に従って調製した。全般的には、正常な分娩後の、Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｄｉｓｅａｓｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｉｎｔｅｒｃｈａｎｇｅ（Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，Ｐａ．）から得た臍帯を洗浄して、血液及び残渣を除去し、機械的に解離させた。次いで、その組織を、培養培地中、コラゲナーゼ、ディスパーゼ、及びヒアルロニダーゼを含む消化酵素と共に、３７℃でインキュベートした。ヒト臍帯組織由来細胞を、上記の実施例に記載される方法に従って培養した。間葉系幹細胞及び正常皮膚線維芽細胞（ｃｃ−２５０９ロット番号９Ｆ０８４４）を、Ｃａｍｂｒｅｘ（Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ，Ｍｄ）から入手した。多能性ヒト精巣胎芽性癌（奇形腫）細胞株ｎＴｅｒａ−２細胞（ＮＴＥＲＡ−２  ｃｌ．Ｄｌ）（Ｐｌａｉａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ，２００６；２４（３）：５３１〜５４６を参照）を、ＡＴＣＣ（Ｍａｎａｓｓａｓ，Ｖａ．）から購入し、上述の方法に従って培養した。
【０１９３】
全ＲＮＡの単離。ＲＮｅａｓｙ（登録商標）ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ（Ｖａｌｅｎｃｉａ，Ｃａ．））を使用して、ＲＮＡを細胞から抽出した。ＲＮＡは、５０マイクロリットルＤＥＰＣ処理済み水で溶出させ、−８０℃で保存した。ＲＮＡは、ＴａｑＭａｎ（登録商標）逆転写試薬（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ（Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ，Ｃａ．））でランダムヘキサマーを用い、２５℃で１０分間、３７℃で６０分間、及び９５℃で１０分間、逆転写させた。各試料を−２０℃で保存した。
【０１９４】
リアルタイムＰＣＲ。Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  Ａｓｓａｙｓ−Ｏｎ−Ｄｅｍａｎｄ（商標）（ＴａｑＭａｎ（登録商標）遺伝子発現アッセイとしても既知）を、メーカーの仕様（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）に従って使用して、ｃＤＮＡサンプルに対してＰＣＲを実行した。この市販のキットは、ヒト細胞内のテロメラーゼに関してアッセイを行うために、広く使用されている。簡潔には、ｈＴＥＲＴ（ヒトテロメラーゼ遺伝子）（Ｈｓ００１６２６６９）及びヒトＧＡＰＤＨ（内部対照）を、ＡＢＩ  ｐｒｉｓｍ  ７０００  ＳＤＳソフトウェア（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）と共に７０００配列検出システムを使用して、ｃＤＮＡ及びＴａｑＭａｎ（登録商標）Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ  ＰＣＲマスターミックスと混合した。熱サイクル条件は、最初に５０℃で２分間及び９５℃で１０分間とし、その後に、９５℃で１５秒間及び６０℃で１分間の４０サイクルとした。ＰＣＲデータは、メーカーの仕様に従って分析した。
【０１９５】
ヒト臍帯由来細胞（ＡＴＣＣ受入番号ＰＴＡ−６０６７）、線維芽細胞、及び間葉系幹細胞を、ｈＴＥＲＴ及び１８Ｓ  ＲＮＡに関してアッセイした。表４−１に示すように、ｈＴＥＲＴ、よってテロメラーゼは、ヒト臍帯組織由来細胞内では検出されなかった。
【０１９６】
【表４】
0005937210.tif 000005
【０１９７】
ヒト臍帯組織由来細胞（単離株０２２８０３、ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−６０６７）及びｎＴｅｒａ−２細胞のアッセイを行ったところ、それらの結果は、ヒト臍帯組織由来細胞の４つのロットでは、テロメラーゼの発現を示さなかったが、一方で、テラトーマ細胞株は、高レベルの発現を表した（表４−２）。
【０１９８】
【表５】
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【０１９９】
それゆえ、本発明のヒト臍帯由来細胞は、テロメラーゼを発現しないということを、結論付けることができる。
【０２００】
（実施例５）
ネズミ後肢虚血モデルにおけるｈＵＴＣ移植の効力
過去のデータから、ｈＵＴＣの全身投与は、片側後肢虚血のマウスで治療後５日目及び１０日目に有意な血流改善をもたらすことが示された。加えて、ある比較実験研究は、ｈＵＴＣの全身性（経静脈）注射は、局所（筋肉内）注射に比べ、より顕著な血流修復をもたらしたことを示している。
【０２０１】
この実施例は、末梢後肢虚血のマウスモデル（片側性虚血モデル）における、ｈＵＴＣ及びフィブリン糊中ｈＵＴＣの筋肉注射の効果を評価する。免疫不全状態ヌードマウス及びＮＯＤ／ｓｃｉｄ  ＩＬ２ｒγ−／−（ＮＳＧ）系統マウスが使用された。
【０２０２】
動物モデル＆説明
本実施例の研究について、ヌードマウスとＮＳＧマウスの間で比較が行われた。
【０２０３】
ＮＳＧマウス系統は、成熟リンパ球、Ｔ細胞、Ｂ細胞、及びＮＫ細胞の欠損を含む複数の免疫不全を備えているため、異種移植研究用に関心が寄せられている。これらの動物は６ヶ月以上生存し、致死量以下の放射線照射後であっても胸腺リンパ腫を生じない（Ｉｔｏ  Ｍ．ｅｔ  ａｌ．（２００２）Ｂｌｏｏｄ．１００：３１７５〜８２）。
【０２０４】
片側性後肢虚血は、これらのマウスにおいて作製された。簡単に言えば、動物をイソフルラン吸入により麻酔した。左後肢中線で切開を行った。大腿動脈及びその分枝を、鼠径靱帯から、伏在動脈と膝窩動脈の分岐まで、結紮した。結紮間の領域は摘出し、切開部を５−０シルクＶｉｃｒｙｌ縫合糸（Ｅｔｈｉｃｏｎ）で閉じた。
【０２０５】
細胞及びフィブリン糊
凍結細胞懸濁液が断熱容器輸送により供給された。受領後、細胞を液体窒素に移して長期保存した。細胞は、注射直前に解凍した。トリパンブルー染色及び血球計で計数することによって、細胞を計数し、生存性を決定した。全用量をＰＢＳに再懸濁させ、注射のため、２８ゲージ針を備えた０．３ｍＬツベルクリン注射器に充填した。
【０２０６】
フィブリン糊（ＥＶＩＣＥＬ（登録商標）フィブリンシーラント（ヒト用）、Ｏｍｒｉｘ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ）を、この研究に用いた。使用前に構成成分を解凍し、最終濃度がトロンビン１６〜２４ＩＵ／ｍＬ、ＢＡＣ２（フィブリノーゲン）３９．３〜６０．７ｍｇ／ｍＬになるよう希釈した。トロンビンストック溶液（ストック濃度約８００〜１２００ＩＵ／ｍＬ）及びＢＡＣ２（フィブリノーゲン）（ストック濃度約５５〜８５ｍｇ／ｍＬ）を、トロンビンは１：５０、ＢＡＣ２は１：１．４に、それぞれ希釈した。
【０２０７】
実験計画
合計４８匹のヌードマウス（週齢６〜８週）及び４８匹のＮＯＧ／ＳＣＩＤ（ＮＳＧ）マウス（週齢６〜１１週）を、誕生日付でマッチングし、表５−１に示すように無作為に群に分けた。
【０２０８】
【表６】
0005937210.tif 000007
【０２０９】
エンドポイント検査は、下記のパラメータを測定することにより実施された：
１、７、１４、２１及び２８日目のレーザードップラー撮像による血流評価；７日目（各群から３匹）及び２８日目に、ＣＤ３１染色による毛細血管密度の評価。
【０２１０】
方法
片側性後肢虚血の形成から１日後、溶媒、溶媒中ｈＵＴＣ、フィブリン糊、又はフィブリン糊中ｈＵＴＣを、虚血後肢筋肉に注射した。
【０２１１】
ｈＵＴＣ注射は、特定の回数の溶媒中ｈＵＴＣ及びフィブリン糊中ｈＵＴＣを、虚血後肢筋肉に注射した。これらは、上肢に注射３回（３回×２０μＬ）、下肢に２回（２回×２０μＬ）、合計用量１００μＬであった。対照動物は、細胞と同様にして溶媒を投与された。
【０２１２】
フィブリン糊中ｈＵＴＣの注射のたびに、細胞はトロンビン中で再懸濁された（最終濃度１６〜２４ＩＵ／ｍＬ）。ＢＡＣ２（フィブリノーゲン、最終濃度３９．３〜６０．７ｍｇ／ｍＬ）は、別個のエッペンドルフ管に分注した。
【０２１３】
注入直前に、トロンビン中ｈＵＴＣを、ＢＡＣ２の入った管に移し、混合し、０．３ｍＬツベルクリン注射器（２８ゲージ針）に充填し、マウス後肢に注射した。１００μＬを、５回の２０μＬ筋肉内（ＩＭ）注射で投与した（上肢に３回注射、下肢に２回注射）。対照動物は、細胞と同様の方法で、フィブリン糊の投与を受けた。
【０２１４】
統計分析
データは、平均値±平均値の標準偏差として表現された。スチューデントの両側ｔ検定で、各群の比較が行われた。
【０２１５】
血流の評価
マウス後肢の血液潅流は、Ｍｏｏｒ  ＬＤＩ装置を備えたレーザードップラー撮像を用いて評価した。動物をイソフルラン吸入で麻酔し、３７℃に設定した加温パッドに乗せる。ベースライン虚血を確定するため、両後肢の足底領域の血液潅流データを、損傷形成から２４時間収集した。７、１４、２１、及び２８日目に、連続潅流評価を実施した。データは、左肢（虚血）対右肢（非虚血）における潅流値の比として報告される。
【０２１６】
結果及び分析
レーザードップラー潅流撮像
ＮＳＧマウスの、レーザードップラー潅流データ（非虚血の対照右肢に比べた虚血の左肢における潅流のパーセンテージとして表わされる）を、図６及び表５−２（下記）に示す。最大の治療効果は、フィブリンマトリックス中で送達したｈＵＴＣで観察された。これらのマウスにおける相対的潅流量は、２１日目で、フィブリン対照群のほぼ倍であった（４０．３±２．４３対２２．６±２．３４）。２１及び２８日目において、この影響は両対照群に比べて有意に大きく（Ｐ＜０．００１）、また溶媒のみで投与されたｈＵＴＣを投与された群に比べても有意に大きかった（Ｐ＜０．０５）。相対的潅流に対する溶媒中ｈＵＴＣ投与の効果は、２８日目で、対照より２７％大きかった（Ｐ＜０．０５）。この時点で、溶媒のみ中ｈＵＴＣ治療を受けたＮＳＧマウスの虚血肢における相対的潅流は、３０．０±２．３であり、一方、溶媒のみの治療を受けたマウスは２３．７±１．６であった。
【０２１７】
【表７】
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【０２１８】
ヌードマウスの潅流データを図７及び表５−３に示す。フィブリン中ｈＵＴＣでの治療は、虚血肢の潅流を有意に増加させ（Ｐ＜０．０５）、１４日目（５３．９±４．７）及び２１日目（５３．４±３．２）であった一方、フィブリンのみでの治療対照群はそれぞれ３９．２±１．７及び４０．９±３．７であった。フィブリン中細胞の効果は、２８日目で、対照群（４０．８±４．３）に比べて高い傾向を示した（５２．０±５．８）。しかし、動物間の測定値に大きな偏差があったため有意ではなかった。２１日目で、溶媒のみ中ｈＵＴＣの局所投与は、潅流の強化傾向を示し（６４．０±６．３対対照群４３．７±７．４）、２８日目（５２．０±３．５対４０．８±４．９）には潅流の有意な強化を示した（Ｐ＜０．０５）。フィブリン中又は溶媒のみで投与されたｈＵＴＣの効果の間には、有意な差はなかった。
【０２１９】
【表８】
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【０２２０】
これらのデータは、ＮＳＧマウス系統とヌードマウス系統の両方において、ＩＭ注射により局所的に投与されたｈＵＴＣは、フィブリン担体と混合したときに早期の効果を有することを示している。ＮＳＧマウスにおいては、溶媒のみで細胞を投与した場合よりも、有意に、持続的効果が大きかった。
【０２２１】
結論
虚血形成から１日後にｈＵＴＣの直接筋肉内投与を行うことにより、ＮＳＧマウスとヌードマウスの両方において、虚血筋肉の再潅流が強化された。ＮＳＧマウスにフィブリンマトリックス中の細胞を投与したところ、溶媒のみで細胞を投与した場合よりも優れた反応を生じると見られた。ネズミの後肢末梢虚血モデルにおいて、ｈＵＴＣの直接筋肉内投与で治療した動物は、ＮＳＧマウスとヌードマウスの両方において、虚血肢の再潅流強化が示された。しかしながら、フィブリン糊中ｈＵＴＣで治療された動物は、ＮＳＧマウスにおいて、溶媒のみで細胞を投与された場合に比べ、より顕著かつ持続的な反応を呈した。
【０２２２】
（実施例６）
末梢肢虚血のＮＯＤ／ｓｃｉｄ  ＩＬ２ｒγ−／−マウスモデルにおけるｈＵＴＣ移植の効力：投与量及び投与量の研究
この研究では、末梢後肢虚血のマウスモデル（片側性後肢虚血モデル）におけるｈＵＴＣの効力を評価した。この研究で、ＮＯＤ／ｓｃｉｄ  ＩＬ２ｒγ−／−（ＮＳＧ）系統マウスが使用された。血流修復の効果は、ｈＵＴＣを（１）溶媒と共に局所投与（筋肉内）、（２）フィブリン糊と共に局所投与（筋肉内）、又は（３）全身投与（静脈内）した場合を評価された。この研究では、フィブリン糊あり又はなしで、様々な用量で筋肉内投与されたｈＵＴＣの、血流修復に対する効果も評価した。
【０２２３】
材料及び方法
動物モデル＆説明
ＮＳＧマウスが使用された。ＮＳＧマウス系統は、成熟リンパ球、Ｔ細胞、Ｂ細胞、及びＮＫ細胞の欠損を含む複数の免疫不全を備えているため、異種移植研究用に関心が寄せられている。これらの動物は６ヶ月以上生存し、致死量以下の放射線照射後であっても胸腺リンパ腫を生じない（Ｉｔｏ  Ｍ．ｅｔ  ａｌ．（２００２）Ｂｌｏｏｄ．１００：３１７５〜８２）。
【０２２４】
片側性後肢虚血は、これらのマウスにおいて作製された。簡単に言えば、動物をイソフルラン吸入により麻酔した。左後肢中線で切開を行った。大腿動脈及びその分枝を、鼠径靱帯から、伏在動脈と膝窩動脈の分岐まで、結紮した。結紮間の領域は摘出し、切開部を５−０シルクＶｉｃｒｙｌ縫合糸（Ｅｔｈｉｃｏｎ）で閉じた。
【０２２５】
細胞及びフィブリン糊
凍結保存されたｈＵＴＣを、注射直前に解凍した。トリパンブルー染色及び血球計で計数することによって、細胞を計数し、生存性を決定した。全用量を溶媒又はフィブリン糊中に再懸濁させ、注射のため、２８ゲージ針を備えた０．３ｍＬツベルクリン注射器に充填した。
【０２２６】
フィブリン糊（ＥＶＩＣＥＬ（登録商標）フィブリンシーラント（ヒト用）、Ｏｍｒｉｘ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ）が使用された。使用前に構成成分を解凍し、最終濃度がトロンビン１６〜２４ＩＵ／ｍＬ、ＢＡＣ２（フィブリノーゲン）３９．３〜６０．７ｍｇ／ｍＬになるよう希釈した。トロンビンストック溶液（ストック濃度約８００〜１２００ＩＵ／ｍＬ）及びＢＡＣ２（フィブリノーゲン）（ストック濃度約５５〜８５ｍｇ／ｍＬ）が提供され、トロンビンは１：５０、ＢＡＣ２は１：１．４に、それぞれ希釈された。
【０２２７】
実験計画
ＮＳＧマウス（週齢６〜１１週）を、誕生日付でマッチングし、下の表６−１に示すように無作為に群に分けた。
【０２２８】
【表９】
0005937210.tif 000010
【０２２９】
片側性後肢虚血の形成から一日後、ｈＵＴＣを全身的又は局所的に注射した。全身的注射については、溶媒１００μＬ中の特定の回数のｈＵＴＣを、０．３ｃｃツベルクリン注射器（２８ゲージ針）を用いて、尾静脈から投与した。細胞注射は、約１分間かけて実施した。対照動物は溶媒のみを投与された。
【０２３０】
局所注射は、特定の回数の溶媒中ｈＵＴＣ及びフィブリン糊中ｈＵＴＣを、虚血後肢筋肉に注射した。注射は５か所に行われた、それぞれ、２０μＬ筋肉内（ＩＭ）注入を投与した。これらは、上肢に注射３回（３回×２０μＬ）、下肢に２回（２回×２０μＬ）、合計用量１００μＬであった。対照動物は、細胞と同様にして溶媒を投与された。
【０２３１】
フィブリン糊中ｈＵＴＣの注射のたびに、細胞はトロンビン中で再懸濁された（最終濃度１６〜２４ＩＵ／ｍＬ）。ＢＡＣ２（フィブリノーゲン、最終濃度３９．３〜６０．７ｍｇ／ｍＬ）は、別個のエッペンドルフ管に分注した。注入直前に、トロンビン中ｈＵＴＣを、ＢＡＣ２の入った管に移し、混合し、０．３ｍＬツベルクリン注射器（２８ゲージ針）に充填し、マウス後肢に注射した。１００μＬ用量を、５回の２０μＬ筋肉内（ＩＭ）注射で投与した（上肢に３回注射、下肢に２回注射）。対照動物は、細胞と同様の方法で、フィブリン糊の投与を受けた。
【０２３２】
血流の評価
マウス後肢の血液潅流は、Ｍｏｏｒ  ＬＤＩ装置を備えたレーザードップラー撮像を用いて評価した。動物をイソフルラン吸入で麻酔し、３７℃に設定した加温パッドに乗せた。ベースライン虚血を確定するため、両後肢の足底領域の血液潅流データを、損傷形成から２４時間収集した。損傷後７、１４、２１、及び２８日目に、連続潅流評価を実施した。データは、左肢（虚血）対右肢（非虚血）における潅流値の比として報告される。
【０２３３】
結果
各群の虚血肢における相対的潅流の平均値（±標準誤差）値が、表６−２（下記）に表示されている。有意水準５％で、３セットのデータ（例えばＩＭ（フィブリンなし）、ＩＭ（フィブリンあり）及びＩＶ（フィブリンなし））について、二元配置分散分析法を実施した。時間と治療の全体的な影響が評価された。全ての群において、治療と時間に有意な効果があった（Ｐ＜０．０１）。ボンフェローニ検定を実施して、全ての群を対照と比較し、各セット（例えばＩＭ、フィブリンありＩＭ、及びＩＶ）内で互いに比較した。
【０２３４】
【表１０】
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【０２３５】
３つの異なる投与方式での効果の度合には、明確な差はなかった。損傷から２８日後で、フィブリン中１×１０６個のｈＵＴＣを用いた場合は、相対的潅流が約４３．４％であり、ｈＵＴＣ単独では最大の相対的潅流４０．６％を生じた（図８参照）。全身投与された細胞については、ｈＵＴＣが投与されたマウスの虚血肢における相対的潅流は、損傷から２１日後と２８日後において、対照よりも有意に大きかった（Ｐ＜０．０１）。
【０２３６】
局所（ＩＭ）投与を用いた場合では、２つの細胞投与用量が試験された。損傷から２１日後と２８日後において、高用量は、対照とは有意に異なっていた（Ｐ＜０．０５）。低用量では、どの日についても対照と有意な差はなかった。高用量群と低用量群は、どの時点についても、互いに有意な差はなかった（表６−２）。
【０２３７】
局所（ＩＭ）投与を用いて、フィブリン糊中ｈＵＴＣの４つの異なる用量が試験された。１×１０６個の細胞を投与された群において、虚血肢における相対的潅流は、損傷から２１日後（Ｐ＜０．０５）及び２８日後（Ｐ＜０．０１）で、対照よりも有意に大きかった。細胞０．５、０．２５及び０．１２５×１０６個の用量が投与された群における相対的潅流はどれも、損傷から２１日後で、対照よりも有意に大きかった（それぞれＰ＜０．００１、Ｐ＜０．０１及びＰ＜０．０５）。用量群のいずれの間にも、有意な差はなかった（図９）。
【０２３８】
用量増加に従って再潅流が増加に向かうわずかな傾向があり、これは特に損傷後１４日目で明らかである（明確にするため、誤差バーなしのデータを図１０に示す）。
【０２３９】
まとめると、３つのどの方法によって投与されたｈＵＴＣ治療動物も、虚血肢の再潅流増加を示した。この研究において、投与方式に伴う効果の度合には、明確な差はなかった。最高用量群において、損傷から２８日後に、相対的潅流が有意に高くなっており、これは投与経路又は細胞数とは独立であったことがわかる。
【０２４０】
（実施例７）
末梢肢虚血のマウスモデルにおけるｈＵＴＣ細胞移植の効力の評価：投与経路研究
この研究の目的は、ｈＵＴＣ細胞投与が末梢肢虚血のマウスモデル（片側性虚血モデル）において血流を修復するかどうかを評価することであった。静脈内投与と筋肉内投与の２つの投与経路の間で比較が行われた。筋肉内投与には、フィブリンマトリックス中の細胞懸濁液も含まれた。
【０２４１】
方法
治療群を下記の表７−１に示す。
【０２４２】
【表１１】
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【０２４３】
群５及び６のＩＭ投与のフィブリン糊配合を、下記の表７−２に示す。
【０２４４】
【表１２】
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【０２４５】
オスの免疫寛容ヌードマウス（週齢８〜１０週）に、外科的に誘導した片側性後肢虚血を施した。手術から１日後、両後肢の血流をレーザードップラー潅流撮像（ＬＤＰＩ）によって評価した。ｈＵＴＣ細胞の１回用量（１０６個）又は溶媒対照を、表７−１に示すように、６つの群のマウス（Ｎ＝１５匹／群）に投与した。投与経路は、尾静脈からのＩＶ注射１００μＬ、又は、同じ累積用量で、虚血肢の上脚（３か所）及び下肢（２か所）の骨格筋に２０μＬずつＩＭ注射した。ＩＭ注射を受けた２つの群において、フィブリンマトリックスも含まれていた。
【０２４６】
１、３、７、１０、１４及び２１日目で連続ＬＤＰＩを実施した。２１日目はこの研究の最終日となった。手術の３日前、及び手術から１０日後に、水泳持久力を評価した。マウスは、水没して５秒以内に表面に浮かび上がることができない場合、水泳持久力の限界に達したと判断された。虚血後水泳持久力時間の、虚血前平均持久力時間に対する比が、比較された。死後の腓腹筋組織サンプルが、本研究の２１日目に達した各群のマウス５匹ずつの、虚血肢及び正常肢から取得され、毛細血管（ＣＤ３１／ＰＥＣＡＭ−１）及び小動脈（平滑筋αアクチン）の組織学的染色を行った。免疫染色スライドのデジタル画像から、脈管密度を定量化した。
【０２４７】
７日目に採取した組織の細胞生着及び脈管密度が評価された。ＩＶ細胞治療群と対照群との相対的潅流値平均の分離が、２１日目で統計学的に異なっているということから、７日目の脈管密度分析は、有用でないと見なされた。細胞生着アッセイは、細胞検出方法の技術的困難のため実施されなかった。
【０２４８】
血流の評価
マウス後肢の血流は、Ｍｏｏｒ  ＬＤＩ装置を備えたレーザードップラー撮像を用いて評価した。動物をイソフルラン吸入で麻酔し、３７℃に設定した加温パッドに乗せる。ベースライン虚血を確定するため、両後肢の足底領域の血液潅流データを、損傷形成から２４時間収集する。５、１０、１５及び２０日目に、連続潅流評価を実施した。データは、左肢（虚血）対右肢（非虚血）における潅流値の比として報告された。
【０２４９】
水泳持久力試験
マウスは、水泳チャンバにおいて泳ぎ又は浮いていられる能力についても監視された。このために、マウスは水泳チャンバで浮いていられるよう訓練された。マウスは３日間毎日訓練された。この期間の終了後、マウスは、疲労するまで浮かんでいられる時間の長さにより、評価された。これは、７〜１０秒以内に呼吸するために水面に上がってこられなくなることとして定義された（ベースライン、−３日目）。０日目、マウスは片側性後肢損傷を被り、損傷から２４時間後に細胞が投与された。動物は次に、１０日目と１５日目に、水泳能力／浮かんでいられる持久力について評価された。
【０２５０】
結果及び分析
肢の壊死による動物数の減少は全ての群で少なかった。動物数減少は全て、１週間以内に発生した。研究から除去された各群のマウス数（カッコ内に示す）は、群１（２）、群２（１）、群３（２）、群４（２）、群５（１）、及び群６（２）であった。
【０２５１】
レーザードップラー潅流撮像
レーザードップラー潅流データ（非虚血の対照右肢に比べた虚血の左肢における潅流のパーセンテージとして表わされる）を、図１１及び表７−３に示す。ＩＶ注射により生理食塩水を投与された対照に比べ、ｈＵＴＣ細胞のＩＶ注射により治療されたマウスにおいて、相対的再潅流が強化された。この効果は、７、１０及び２１日目で顕著であった。他の治療群のいずれも、適切な対照との間の有意な差はなかった。全ての対照群動物において、相対的潅流の、説明のつかない最大値が、１４日目に生じた。２１日目までに、対照動物における値は減少した。ＩＶ対照群の２匹のマウスの１４日目の相対的潅流値は、１００％を超えた相対値により、除外された。これらの除外があっても、ＩＶ細胞群と対照群との間で、この時点で差はなかった。
【０２５２】
【表１３】
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【０２５３】
２１日目に採取された薄い切片の免疫組織学的染色において、両下肢の毛細血管及び小動脈密度が測定された。微小血管密度と潅流との間に相関関係はなかった。毛細血管の相対的密度は、対照群と治療群との間で有意な差はなかった（図１２）。
【０２５４】
対照群と治療群の動物で、小動脈密度に差はなかった（図１３）。フィブリンと共に直接注射された筋肉中では、小動脈の密度が低くなる傾向があった。
【０２５５】
層流に対抗して泳ぐマウスの能力が、手術前及び手術から１０日後に再び評価された。各セッションで、虚血導入前に水泳の合計時間が記録され、比較された。機能的評価において、対照群と治療群の間で有意な差はなかった。
【０２５６】
まとめると、この結果は、ｈＵＴＣの静脈内投与は、損傷から３日目、１０日目、及び２１日目に、虚血筋肉中の血流の修復をもたらしていることを示している。特に、虚血形成から１日後のｈＵＴＣ静脈内投与は、虚血筋肉の再潅流促進をもたらし、実験終了時（２１日目）に相対的潅流がより高レベルとなった。他の治療は、この研究において用いられたどの測定によっても、明らかな影響は有していなかった。ＩＶ投与ｈＵＴＣが再潅流を強化するメカニズムは、虚血領域の血管再成長の分析に基づいて、明らかではなかった。この観察された影響は、他のメカニズムで説明される可能性がある。最近、全身的に投与された骨髄由来間葉系幹細胞が、肺にトラップされ、そこで、公園焼成因子の分泌を介して離れたところでの保護を促進し、これにより、すでに受けた損傷の組織に対する度合を低減し得ることが示されている（Ｌｅｅ  ｅｔ  ａｌ．（２００９）Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ．５（１）：５４〜６３）。
【０２５７】
本発明は、上記で説明及び例示された実施形態に限定されるものではない。添付の特許請求の範囲内での、変型形態及び修正が可能である。
【０２５８】
〔実施の態様〕
（１）  末梢血管疾患を有する患者を治療する方法であって、フィブリン糊と、ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団とを含む医薬組成物を、該疾患の治療に有効な量で投与することを含み、該臍帯組織は、実質的に血液を含まず、かつ、該均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能があって、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及び／又はテロメラーゼを発現しない、方法。
（２）  前記単離細胞集団が、次の特性：
（ａ）酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現する、
（ｂ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｃ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｄ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、及び
（ｅ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する、のうちの１つ又は２つ以上を有する、実施態様１に記載の方法。
（３）  前記末梢血管疾患が、末梢虚血である、実施態様１に記載の方法。
（４）  前記医薬組成物が、末梢虚血の部位に投与される、実施態様３に記載の方法。
（５）  前記医薬組成物が、筋肉内注射又は筋肉中の脂肪蓄積内への注射によって投与される、実施態様４に記載の方法。
【０２５９】
（６）  前記医薬組成物が、局所的に投与される、実施態様１に記載の方法。
（７）  前記医薬組成物が、注射、注入、患者に埋め込まれるデバイスにより、又は該医薬組成物を含むマトリックス若しくはスカフォールドの埋め込みによって投与される、実施態様１に記載の方法。
（８）  前記単離細胞集団が、投与の前に、インビトロで誘導され、骨格筋、血管筋、周細胞（pericty）又は血管内皮系統に分化する、実施態様１に記載の方法。
（９）  前記細胞集団が、末梢血管疾患の治療を促進する遺伝子産物を産生するよう遺伝子操作される、実施態様１に記載の方法。
（１０）  前記組成物が、抗血栓薬、免疫抑制薬、免疫調節薬、血管新生促進薬、抗アポトーシス薬、及びこれらの混合物からなる群から選択される薬剤を更に含む、実施態様１に記載の方法。
【０２６０】
（１１）  前記組成物が、少なくとも１つの他の細胞種を更に含む、実施態様１に記載の方法。
（１２）  前記他の細胞種が、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、又はその他の複能性若しくは多能性幹細胞である、実施態様１１に記載の方法。
（１３）  前記医薬組成物が栄養効果をもたらす、実施態様１に記載の方法。
（１４）  前記栄養効果が、血管内皮細胞の増殖である、実施態様１３に記載の方法。
（１５）  前記医薬組成物が、血管内皮細胞及び／又は血管内皮前駆細胞の、前記末梢疾患部位への遊走を誘導する、実施態様１に記載の方法。
【０２６１】
（１６）  前記医薬組成物が、血管平滑筋細胞及び／又は血管平滑筋前駆細胞の、前記末梢疾患部位への遊走を誘導する、実施態様１に記載の方法。
（１７）  前記医薬組成物が、周細胞の、前記末梢血管疾患部位への遊走を誘導する、実施態様１に記載の方法。
（１８）  前記フィブリン糊が、フィブリノーゲン及びトロンビンを含む、実施態様１に記載の方法。
（１９）  前記フィブリン糊が、約１６〜約２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、約３９．３〜約６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを含む、実施態様１８に記載の方法。
（２０）  末梢血管疾患を有する患者を治療する方法であって、フィブリン糊とヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団とを、該疾患の治療に有効な量で投与することを含み、該臍帯組織は、実質的に血液を含まず、かつ、該均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能を示し、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及び／又はテロメラーゼを発現しない、方法。
【０２６２】
（２１）  前記単離細胞集団が、次の特性：
（ａ）酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現する、
（ｂ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｃ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｄ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、及び
（ｅ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する、のうちの１つ又は２つ以上を有する、実施態様２０に記載の方法。
（２２）  前記末梢血管疾患が末梢虚血である、実施態様２０に記載の方法。
（２３）  前記細胞及びフィブリン糊が、前記末梢虚血部位に投与される、実施態様２０に記載の方法。
（２４）  前記フィブリン糊及び前記細胞集団が、局所的に投与される、実施態様２０に記載の方法。
（２５）  前記細胞集団及びフィブリン糊が、注射、注入、患者に埋め込まれるデバイスにより、又は該細胞集団を含むマトリックス若しくはスカフォールドの埋め込みによって投与される、実施態様２０に記載の方法。
【０２６３】
（２６）  前記単離細胞集団が、投与の前に、インビトロで誘導され、骨格筋、血管筋、周細胞又は血管内皮系統に分化する、実施態様２０に記載の方法。
（２７）  前記細胞集団が、末梢血管疾患の治療を促進する遺伝子産物を産生するよう遺伝子操作される、実施態様２０に記載の方法。
（２８）  抗血栓薬、免疫抑制薬、免疫調節薬、血管新生促進薬、抗アポトーシス薬、及びこれらの混合物からなる群から選択される薬剤を投与することを更に含む、実施態様２０に記載の方法。
（２９）  少なくとも１つの他の細胞種を投与することを更に含む、実施態様２０に記載の方法。
（３０）  前記他の細胞種が、骨格筋細胞、骨格筋前駆細胞、血管平滑筋細胞、血管平滑筋前駆細胞、周細胞、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、又はその他の複能性若しくは多能性幹細胞である、実施態様２９に記載の方法。
【０２６４】
（３１）  前記細胞集団が栄養効果をもたらす、実施態様２０に記載の方法。
（３２）  前記栄養効果が、血管内皮細胞の増殖である、実施態様３０に記載の方法。
（３３）  前記細胞集団が、血管内皮細胞及び／又は血管内皮前駆細胞の、前記末梢疾患部位への遊走を誘導する、実施態様２０に記載の方法。
（３４）  前記細胞集団が、血管平滑筋細胞及び／又は血管平滑筋前駆細胞の、前記末梢疾患部位への遊走を誘導する、実施態様２０に記載の方法。
（３５）  前記細胞集団が、周細胞の、前記末梢血管疾患部位への遊走を誘導する、実施態様２０に記載の方法。
【０２６５】
（３６）  前記フィブリン糊が、フィブリノーゲン及びトロンビンを含む、実施態様２０に記載の方法。
（３７）  前記フィブリン糊が、約１６〜約２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、約３９．３〜約６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを含む、実施態様３６に記載の方法。
（３８）  前記フィブリン糊が、前記ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団と同時に、又はこれより前に、又は後に投与される、実施態様２０に記載の方法。
（３９）  末梢血管疾患を有する患者を治療するためのキットであって、フィブリノーゲン、トロンビン、及び、ヒト臍帯組織から得られた均質な単離細胞集団を、該疾患の治療に有効な量で含み、該臍帯組織は、実質的に血液を含まず、かつ、該均質な単離細胞集団は、培養時に自己複製能及び増殖能を示し、分化する潜在能力を有し、かつＣＤ１１７及び／又はテロメラーゼを発現しない、キット。
（４０）  使用説明書を更に含む、実施態様３９に記載のキット。
【０２６６】
（４１）  前記フィブリノーゲン及び前記均質な単離細胞集団が、１つの組成物中にある、実施態様３９に記載のキット。
（４２）  トロンビンが、使用の直前に前記組成物に添加される、実施態様４０に記載のキット。
（４３）  前記キットが、約１６〜約２４ＩＵ／ｍＬのトロンビンと、約３９．３〜約６０．７ｍｇ／ｍＬのフィブリノーゲンとを含む、実施態様３９に記載のキット。
（４４）  前記単離細胞集団が、次の特性：
（ａ）酸化された低密度リポタンパク質受容体１、レチクロン、ケモカイン受容体リガンド３、及び／又は顆粒球走化性タンパク質を発現する、
（ｂ）ＣＤ３１、ＣＤ３４又はＣＤ４５を発現しない、
（ｃ）ヒト線維芽細胞、間葉系幹細胞又は腸骨稜骨髄細胞と比較して、インターロイキン８又はレチクロン１の発現レベルが増加している、
（ｄ）少なくとも骨格筋、血管平滑筋、周細胞又は血管内皮表現型の細胞に分化する潜在能力を有する、並びに、
（ｅ）ＣＤ１０、ＣＤ１３、ＣＤ４４、ＣＤ７３及びＣＤ９０を発現する、のうち１つ又は２つ以上を有する、実施態様３９に記載のキット。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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