(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
キシロースを有効成分として含んでなる、霊長類由来の多能性幹細胞維持用培地。
【請求項２】
多能性幹細胞がｉＰＳ細胞である、請求項１に記載の多能性幹細胞維持用培地。
【請求項３】
請求項１または２の培地を使用して、霊長類由来の多能性幹細胞を維持することを含んでなる、霊長類由来の多能性幹細胞の維持方法。
【請求項４】
請求項１または２の培地を使用して細胞を維持することによって、霊長類由来の多能性幹細胞の未分化性と多能性とを保持しつつ、細胞増殖を抑制することを含んでなる、霊長類由来の多能性幹細胞の維持方法。
【請求項５】
キシロースを有効成分とする、細胞増殖抑制剤。
【請求項６】
細胞が、多能性幹細胞である、請求項５に記載の細胞増殖抑制剤。
【請求項７】
多能性幹細胞が霊長類由来の多能性幹細胞である、請求項６に記載の細胞増殖抑制剤。
【請求項８】
多能性幹細胞がＥＳ細胞またはｉＰＳ細胞である、請求項６または７に記載の細胞増殖抑制剤。
【請求項９】
細胞が、ガン細胞である、請求項５に記載の細胞増殖抑制剤。
【請求項１０】
請求項５〜９のいずれか一項に記載の細胞増殖抑制剤を含んでなる、細胞増殖抑制用細胞培養用培地。
【請求項１１】
請求項６〜８のいずれか一項に記載の細胞増殖抑制剤を含んでなる、細胞増殖抑制用多能性幹細胞維持用培地。
【請求項１２】
キシロース以外の未分化維持因子を実質的に含まない、請求項１１に記載の細胞増殖抑制用多能性幹細胞維持用培地。
【請求項１３】
多能性幹細胞が霊長類由来の多能性幹細胞である、請求項１１または１２に記載の細胞増殖抑制用多能性幹細胞維持用培地。
【請求項１４】
多能性幹細胞がＥＳ細胞またはｉＰＳ細胞である、請求項１１〜１３のいずれか一項に記載の細胞増殖抑制用多能性幹細胞維持用培地。
【請求項１５】
請求項１、２および１０〜１４のいずれか一項に記載の培地を使用して、細胞を維持することを含んでなる、細胞の増殖制御方法。
【請求項１６】
請求項１、２および１１〜１４のいずれか一項に記載の培地を使用して細胞を維持することによって、多能性幹細胞の未分化性と多能性とを保持しつつ、細胞増殖を抑制することを含んでなる、多能性幹細胞の維持方法。
【請求項１７】
霊長類がヒトである、請求項１、１２および１３に記載の培地。
【発明の詳細な説明】
【発明の背景】
【０００１】
発明の分野
本発明は、キシロースを有効成分とする細胞増殖抑制剤、および該細胞増殖抑制剤を用いた細胞の増殖制御方法に関する。
【０００２】
背景技術
生物学では、人為的に生体外で培養する培養細胞が、ｉｎ ｖｉｔｒｏ実験系や再生医療および細胞療法において広く用いられている。その細胞の有する性状を一定に維持するためには、継代を行うことにより培地中にて細胞を増殖し続ける必要がある。しかしながら、初代培養細胞や有限細胞系などの継代回数に制限（寿命）のある株化していない細胞では、継代を行うことによってその細胞の性状が変化することが多い。
【０００３】
そのため、培養細胞を中〜長期間、その性状を一定に維持する場合には、凍結保存を行うのが一般的である。しかしながら、霊長類、特にヒトのＥＳ細胞やｉＰＳ細胞のような凍結・解凍に弱い細胞では、凍結保存を行うことによる細胞へのダメージが大きい。
【０００４】
また、増殖スピードの速い細胞や遅い培養細胞の場合、それらを使用する際、所望の細胞濃度に調整することは難しく、熟練が必要であった。一時的に細胞の環境温度を４℃など低温に変化させることにより細胞増殖を抑える方法も知られているが、維持できる時間は数時間単位であった。
【０００５】
さらに、培養細胞の中でもＥＳ細胞やｉＰＳ細胞のような多能性幹細胞では、継代を行うことによってそれら細胞の有する性状の一つである未分化性（分化能）を失うことが知られている。そこで、未分化性を維持するために、マウスＥＳ細胞の場合は、例えばＬＩＦ（白血病抑制因子）を添加する必要があった。また、霊長類ＥＳ細胞の場合は、未分化維持因子を添加し、あるいはフィーダー細胞の共存下培養を行う必要があった（特開２００７−２２８８１５号公報（特許文献１）参照）。しかしながら、これら未分化維持因子は高価なものが多く、またフィーダー細胞との共存下培養は煩雑なものであった。
【０００６】
したがって、凍結保存以外の方法で、細胞を継代する必要なく、その有する性状を維持したまま、簡便に細胞の増殖制御をする方法が求められている。
【０００７】
凍結保存以外の方法として、例えば、特開２００８−１０４４０７号公報（特許文献２）には、還元糖を含む細胞保存液を用いた冷蔵条件にて保存することを特徴とする付着生細胞の保存方法が開示されている。しかしながら、この方法では低温での冷蔵が必須であり、保存できる細胞の種類も限られていた。また、この文献には、キシロースを用いることについては何ら記載されていない。
【０００８】
キシロース（Ｘｙｌｏｓｅ）は、糖鎖の構成糖の一つであり、細胞間のコミュニケーションなど生体内において重要な役割を担っている。また、キシロースは、木質系バイオマスに豊富に含まれることが知られており、未利用資源として様々な分野での利用用途の拡大が求められている。しかしながら、培養細胞の分野では、細胞がキシロースをエネルギーとして利用できないと考えられているため、キシロースは用いられてこなかった。
【０００９】
本発明者らは、以前に、各種糖質（グルコース、キシロース、ガラクトースなど）によるマウスＥＳ細胞への影響を確認し、キシロースのマウスＥＳ細胞での未分化を維持できる可能性を報告している（横山忠幸ら,「各種糖含有環境下におけるマウスＥＳ細胞の増殖及びＥＢ形成への影響」, 第７回日本再生医療学会総会 抄録集, Vol.7, pp.239, 2008（非特許文献１）、横山忠幸ら,「Ｘｙｌｏｓｅ含有環境下におけるマウスＥＳ細胞の未分化維持に関する有効性の検討」, 第８回日本再生医療学会総会 抄録集, Vol.8, pp.221, 2009（非特許文献２））。
【００１０】
しかしながら、これらの文献では、マウスＥＳ細胞の未分化性以外の性状については、何ら記載されていない。中でも増殖能については、キシロース培地での３日間培養による細胞数がグルコース培地のものより少なかったことが報告されているのみであり、キシロース培地から通常培地に置換した場合の増殖能については何ら報告されていない。また、キシロースの利用は、発明者らが知る限り、マウスＥＳ細胞以外の細胞に関しては、何ら報告されていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１１】
【特許文献１】特開２００７−２２８８１５号公報
【特許文献２】特開２００８−１０４４０７号公報
【非特許文献】
【００１２】
【非特許文献１】横山忠幸ら,「各種糖含有環境下におけるマウスＥＳ細胞の増殖及びＥＢ形成への影響」, 第７回日本再生医療学会総会 抄録集, Vol.7, pp.239, 2008
【非特許文献２】横山忠幸ら,「Ｘｙｌｏｓｅ含有環境下におけるマウスＥＳ細胞の未分化維持に関する有効性の検討」, 第８回日本再生医療学会総会 抄録集, Vol.8, pp.221, 2009
【発明の概要】
【００１３】
本発明者らは、今般、細胞培養において、一般的な培地に含まれるグルコースをキシロースに代替した培地を用いると、細胞がグルコース以外の糖類をエネルギーとして利用できないため生存できないと考えられていたにもかかわらず、１週間を超える長い期間、通常の培養温度で、生存を維持でき、かつ、細胞増殖を抑えることができることを見出した。また、キシロース培地で細胞増殖を抑えた後に、通常のグルコース培地に置換したところ、初めからグルコース培地で培養した細胞と同レベルまで短期間で増殖できることを見出し、細胞に生存に影響する重大な障害を与えることなく、細胞の増殖を制御することに成功した。さらに、多能性幹細胞の場合には、未分化性と多能性とを保持したまま、細胞の増殖を制御することに成功した。
【００１４】
よって本発明は、細胞増殖抑制剤を提供すること、および該細胞増殖抑制剤を用いた細胞の増殖制御方法を提供することを目的とする。
【００１５】
本発明による細胞増殖抑制剤は、キシロースを有効成分とする。
【００１６】
本発明の一つの態様によれば、前記した剤において、細胞は多能性幹細胞である。
【００１７】
本発明の一つの態様によれば、前記した剤において、細胞はガン細胞である。
【００１８】
本発明の一つの態様によれば、本発明による細胞増殖抑制剤を含んでなる、細胞培養用培地が提供される。
【００１９】
本発明の一つの態様によれば、本発明による細胞増殖抑制剤を含んでなる、多能性幹細胞維持用培地であって、キシロース以外の未分化維持因子を実質的に含まない、多能性幹細胞維持用培地が提供される。
【００２０】
本発明の一つの態様によれば、本発明による培地を使用して、細胞を維持することを含んでなる、細胞の増殖制御方法が提供される。
【００２１】
本発明の一つの態様によれば、本発明による多能性幹細胞維持用培地を使用して細胞を維持することによって、多能性幹細胞の未分化性と多能性とを保持しつつ、細胞増殖を抑制することを含んでなる、多能性幹細胞の維持方法が提供される。
【００２２】
本発明の細胞増殖抑制剤によれば、通常の培養条件下において、細胞の性状を維持したまま、細胞の増殖を抑制することができる。このため、本発明による細胞増殖抑制剤は、凍結保存をするまでもない、細胞の短期間保存および維持に極めて有用である。
【００２３】
また、本発明による細胞の増殖制御方法は、通常の培地と、本発明の細胞増殖抑制剤を含んでなる培地とを置換する操作のみを行うため、熟練を要さず、大変簡便である。さらに本発明に用いられるキシロースは、未利用資源であるため、培養コストを低減することができる。
【００２４】
さらに、細胞が多能性幹細胞の場合には、本発明の増殖抑制剤を含んでなる培地を使用すると、多能性幹細胞の増殖を抑制しながら細胞を維持するのと共に、未分化維持因子を添加し、あるいはフィーダー細胞の共存下培養を行わなくても、細胞の未分化性と全能性とを保持することができる。したがって、凍結に弱い多能性幹細胞であっても、短期間であれば、凍結保存するのと同じように、未分化性と全能性とを保持したまま、多能性細胞を維持することができる。
【図面の簡単な説明】
【００２５】
【図１】図１は、例１のマウスＥＳ細胞をグルコース培地およびキシロース培地（本発明の培地）で培養した際の、ＭＴＴアッセイで評価した細胞生存率を示すグラフである。（Ａ）は、各培地で８日間培養した際の細胞生存率を示し、（Ｂ）は各培地で８日間培養後、通常のグルコース培地に置換し、さらに８日間培養を行った際の細胞生存率を示す。
【図２】図２は、例１のマウスＥＳ細胞のグルコース培地およびキシロース培地で培養した際の顕微鏡観察による結果を示す（倍率４０倍）。
【図３】図３は、例１のマウスＥＳ細胞をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際のＲＴ−ＰＣＲの結果を示す。
【図４】図４は、例１のマウスＥＳ細胞をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際の蛍光免疫染色の結果を示す（倍率２００倍）。
【図５】図５は、例１のマウスＥＳ細胞のＥＢ（胚様体）をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際の顕微鏡観察による結果を示す（倍率４０倍）。
【図６】図６は、例１のマウスＥＳ細胞のＥＢをグルコース培地およびキシロース培地で培養した際のＲＴ−ＰＣＲの結果を示す。
【図７】図７は、例１のマウスＥＳ細胞のＥＢをグルコース培地およびキシロース培地で培養した際の蛍光免疫染色の結果を示す（倍率４００倍）。
【図８】図８は、例１のマウスＥＳ細胞とＰＡ６フィーダー細胞との共培養による分化誘導の際の顕微鏡観察による結果を示す（培養後１４日目）（倍率２００倍）。
【図９】図９は、例１のマウスＥＳ細胞とＰＡ６フィーダー細胞との共培養による分化誘導の際のＲＴ−ＰＣＲの結果を示す。
【図１０】図１０は、例１のマウスＥＳ細胞とＰＡ６フィーダー細胞との共培養による分化誘導の際の蛍光免疫染色の結果を示す（培養後２１日目）（倍率１００倍）。
【図１１】図１１は、例２のヒトｉＰＳ細胞（Ｐ−ｉＰＳ細胞）をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際のＭＴＴアッセイで評価した細胞生存率を示すグラフである。（Ａ）は、各培地で８日間培養した際の細胞生存率を示し、（Ｂ）は各培地で８日間培養後、通常のグルコース培地に置換し、さらに８日間培養を行った際の細胞生存率を示す。
【図１２】図１２は、例３の膵腺ガン由来細胞（Ｐａｎｃ１細胞）をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際のＭＴＴアッセイで評価した細胞生存率を示すグラフである。（Ａ）は、各培地で８日間培養した際の細胞生存率を示し、（Ｂ）は各培地で８日間培養後、通常のグルコース培地に置換し、さらに８日間培養を行った際の細胞生存率を示す。
【図１３】図１３は、例３の膵腺ガン由来細胞（Ｐａｎｃ１細胞）をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際の顕微鏡観察による結果を示す（倍率１００倍）。
【図１４】図１４は、例４の膵腺ガン由来細胞（Ｍｉａ−Ｐａ−Ｃａ２細胞）をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際のＭＴＴアッセイで評価した細胞生存率を示すグラフである。（Ａ）は、各培地で８日間培養した際の細胞生存率を示し、（Ｂ）は各培地で８日間培養後、通常のグルコース培地に置換し、さらに８日間培養を行った際の細胞生存率を示す。
【図１５】図１５は、例５のヒト乳腺ガン由来細胞（ＭＣＦ７細胞）をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際のＭＴＴアッセイで評価した細胞生存率を示すグラフである。（Ａ）は、各培地で８日間培養した際の細胞生存率を示し、（Ｂ）は各培地で８日間培養後、通常のグルコース培地に置換し、さらに８日間培養を行った際の細胞生存率を示す。
【図１６】図１６は、例６のマウス繊維芽細胞（ＳＮＬ）をグルコース培地およびキシロース培地で培養した際のＭＴＴアッセイで評価した細胞生存率を示すグラフである。（Ａ）は、各培地で８日間培養した際の細胞生存率を示し、（Ｂ）は各培地で８日間培養後、通常のグルコース培地に置換し、さらに８日間培養を行った際の細胞生存率を示す。
【発明の具体的説明】
【００２６】
細胞増殖抑制剤
本発明による細胞増殖抑制剤は、前記したように、キシロースを有効成分とする。
【００２７】
キシロースは、木質系バイオマスに多く存在し、木糖とも呼ばれる五炭糖の単糖である。本発明に用いられるキシロースは、天然に多く存在するＤ−キシロースであってもよいし、合成により調製されるＬ−キシロース、ＤＬ−キシロースであってもよい。本発明で用いられるキシロースは、好ましくは、Ｄ−キシロースである。
【００２８】
本発明において、「有効成分」とは、本発明の目的である細胞増殖抑制作用を奏する上で必要とされる成分のことを意味する。ここで、細胞増殖抑制作用とは、細胞の生存を維持し、かつ、細胞増殖を抑えることを意味する。細胞増殖を抑制することによって、細胞を保存することができる。
【００２９】
本明細書において細胞とは、人為的に生体外で培養することができる細胞を意味し、例えば、多能性幹細胞、ガン細胞、株化細胞、初代培養細胞、および有限細胞系が包含される。本発明に用いられる細胞は、細胞増殖性が著しく高く、未分化性などの形質を保持する必要がある点で、好ましくは多能性幹細胞である。
【００３０】
本発明に用いられる多能性幹細胞とは、自分と同じ細胞を作る自己複製能と、組織や臓器を構成する他種類の細胞に分化する多分化能とを有する細胞のことを意味する。
【００３１】
多能性幹細胞としては、例えば、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）、胚性生殖細胞（ＥＧ細胞）、胚性ガン細胞（ＥＣ細胞）、成体多能性幹細胞（ＡＰＳ細胞）が包含される。また、多能性幹細胞は、動物、昆虫などを由来とするものが含まれうるが、好ましくは哺乳動物由来のものであり、より好ましくは霊長類由来のものである。本発明に用いられる多能性幹細胞は、好ましくはＥＳ細胞またはｉＰＳ細胞である。
【００３２】
ここで「多能性」とは、多分化能とも言い換えることができるが、外胚葉、中胚葉、内胚葉に属するいずれの分化細胞にも分化しうる能力、および外胚葉、中胚葉、内胚葉に属する少なくともそれぞれ一種の分化細胞に分化しうる性質をいい、生殖細胞への分化能も包含されうる。なお、分化細胞は、将来、体内の組織や臓器を構成する多種類の細胞に分化しうる。多能性を有するか否かは、例えば、ＰＡ６フィーダー細胞と多能性細胞とを共存下培養を行い、神経細胞に誘導されるか否かを評価すること、または各種分化マーカーの発現により判断することができる。
【００３３】
「未分化性」とは、まだ特定の細胞系列に分化していないことを意味し、幹細胞の階層的には比較的上位に位置する幹細胞が有する性状である。未分化性を有するか否かは、未分化細胞マーカー、例えば、Ｏｃｔ３／４、Ｎａｎｏｇ、Ｒｅｘ−１を測定することにより判断することができる。
【００３４】
本発明に用いられるガン細胞とは、ガン由来の細胞を意味する。例えば、膵腺ガン由来細胞、乳腺ガン由来細胞、肝ガン由来細胞などが挙げられる。具体的には、Ｐａｎｃ１、Ｍｉａ−Ｐａ−Ｃａ２またはＭＣＦ７などが挙げられる。
【００３５】
本発明に用いられる株化細胞とは、不死化した細胞株（ｃｅｌｌ ｌｉｎｅ；セルライン）を意味する。例えば、ＳＴＯ細胞、ＳＮＬ細胞などが挙げられる。本発明の増殖抑制剤を用いることにより、無駄な継代を省くことができる。
【００３６】
本発明に用いられる初代培養細胞とは、生体から採取した組織や細胞を最初に播種して培養した細胞を意味する。本発明に用いられる有限細胞系とは、継代回数に制限（寿命）のある継代培養細胞を意味する。本発明の増殖抑制剤を用いることにより、性状の変化しやすい初代培養細胞や有限細胞系を、維持、保存することができる。
【００３７】
本発明の増殖抑制剤は、生命活動を休止した状態での物質応答性試験や臨床検査に利用することが期待される。
【００３８】
本発明の一つの態様によれば、本発明の細胞増殖抑制剤を含んでなる、細胞培養用培地が提供される。
【００３９】
ここで「細胞培養用培地」とは、上記細胞の培養に適した培養用培地またはその組成物を意味し、細胞の生存に影響する重大な障害を与えることなく、その細胞の性状を保持したまま、細胞を一定数、一定期間生存させることを可能とするものである。細胞培養用培地は、粉末状であっても、液体状であってもよい。
【００４０】
本発明の細胞培養用培地におけるキシロースの含有量は特に制限はなく、培養する細胞の種類、培養目的、基礎培地の種類などに応じて、適宜変更することができる。培地におけるキシロースの含有量は、通常の基礎培地のグルコース量と同量であってもよく、好ましくは１．０〜１０．０ｇ／Ｌ、より好ましくは１．０〜５．０ｇ／Ｌ、さらに好ましくは３．０〜４．５ｇ／Ｌである。なお、本発明による培地中におけるキシロースの含有量が少量であっても、本発明は十分な効果を示すことができるが、キシロースは毒性がなく、水溶性にも優れるため、通常は多量に添加しても問題は実質的に生じない。
【００４１】
本発明に用いられる培地は、従来の細胞培養に用いられる培地中のグルコースをキシロースに置換することにより得られる。具体的には、培地中のグルコースをキシロースに置換した基礎培地に、必要に応じて、血清または血清代替物または他の成分を添加することにより得られる。
【００４２】
ここで、基礎培地としては、例えば、培地中のグルコースをキシロースに置換したダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）、イーグル最小必須培地（ＭＥＭ）、ハムＦ１２培地、ＭＣＤＢ培地、フィッシャー培地、およびＲＰＭＩ−１６４０培地が挙げられる。
【００４３】
血清または血清代替物は、公知のものであればいずれのものも用いることができる。例えば、血清としては、ＦＢＳ、ＦＣＳなどが挙げられ、血清代替物としては、ＫＳＲなどが挙げられる。
【００４４】
他の成分としては、非必須アミノ酸、ｐＨ調整剤などが挙げられる。
【００４５】
基礎培地に添加する血清もしくは血清代替物または他の成分は、好ましくは、膜処理により糖質を除去したものである。膜処理は、例えば、透析膜 ３６／３２（エーディア株式会社製）を用いることにより行うことができる。
【００４６】
また、本発明の一つの態様によれば、本発明の細胞増殖剤を含んでなる、多能性幹細胞維持用培地であって、キシロース以外の未分化維持因子を実質的に含まない多能性幹細胞維持用培地が提供される。
【００４７】
ここで「多能性幹細胞維持用培地」とは、上記多能性幹細胞の培養に適した培養用培地またはその組成物を意味し、未分化の多能性幹細胞の未分化性と多能性とを保持しつつ、細胞を一定数のまま、一定期間生存可能とするものである。
【００４８】
本発明の多能性幹細胞用培地は、キシロースを有効成分とする細胞増殖抑制剤を含んでなるため、多能性幹細胞用培地に必須の成分とされているキシロース以外の未分化維持因子（例えば、ＬＩＦ、フィーダー細胞由来の未分化維持因子）を実質的に含まなくても、多能性幹細胞の未分化性と多能性とを保持することができる。
【００４９】
本発明の一つの態様によれば、本発明の細胞培養用培地を使用して、細胞を維持することを含んでなる、細胞の増殖制御方法が提供される。
【００５０】
ここで「細胞の増殖制御」とは、所望の時期に細胞の増殖能を停止させ、細胞の生存に影響する重大な障害を細胞に与えることなくその細胞濃度を維持させ、その後所望の時期に細胞の増殖を再開させることを意味する。具体的には、細胞の増殖制御は、本発明の細胞培養用培地と、通常の細胞培養用培地とを置換することによって行うことができる。ここで、細胞によっては、増殖再開後の増殖スピードを、通常培養と同レベル、またはそれ以上にすることができる。
【００５１】
細胞の増殖制御は、通常の細胞培養温度および環境条件で行ってもよい。
【００５２】
細胞の増殖抑制期間は、培養する細胞の種類、培養目的、基礎培地の種類、培養温度などに応じて、適宜変更することができる。例えば、培地中のグルコースをキシロースに置換したＤＭＥＭを用いて通常の培養条件にて培養した場合、少なくとも１ヵ月は細胞の増殖を抑制することが期待でき、好ましくは少なくとも２６日間、より好ましくは少なくとも２１日間、さらに好ましくは少なくとも１４日間、さらにより好ましくは少なくとも８日間は、細胞の増殖を抑制することができる。
【００５３】
本発明の一つの態様によれば、本発明の多能性幹細胞未分化維持用培地を使用して細胞を維持することによって、多能性幹細胞の未分化性と多能性とを保持しつつ、細胞増殖を抑制することを含んでなる、多能性幹細胞の維持方法が提供される。
【実施例】
【００５４】
本発明を以下の例によって詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００５５】
例１：マウスＥＳ細胞での細胞増殖制御
（１）培地の調製
マウスＥＳ細胞（胚性幹細胞）培養用培地はそれぞれ下記の配合となるように調製した。
対照ＥＳ培地（グルコースＥＳ培地）：
ダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ；Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）、１５容量％ ＫｎｏｃｋＯｕｔ Ｓｅｒｕｍ Ｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔ（ＫＳＲ；Ｉｎｖｉｔｏｒｏｇｅｎ）、１００μＭ 非必須アミノ酸（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウム溶液（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、１０３Ｕ／ｍＬ ＬＩＦ（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ，Ｔｅｍｅｃｕｌａ，ＣＡ）、１００μＭ ２−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
本発明によるＥＳ培地（キシロースＥＳ培地）：
ＤＭＥＭ中のグルコースをＤ−キシロースに置換した変法ＤＭＥＭ（Ｍ−ＤＭＥＭ，日水製薬株式会社より入手）、糖質を透析膜（透析膜 ３６／３２、エーディア株式会社製）により除去した１５容量％ ＫＳＲ（日水製薬株式会社より入手）、１００μＭ 非必須アミノ酸、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウム溶液、１００μＭ ２−メルカプトエタノール、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン
【００５６】
（２）マウスＥＳ細胞の調製
マウスＥＳ細胞（１２９／ＳＶ系、Cell and Molecular Technologies, Philipsburg, NJ）は、０．１重量％ ゼラチン（Ｓｉｇｍａ）でコートした細胞培養ディッシュ（６ウェルプレート、株式会社サンプラテックより入手）にて、マイトマイシンＣ（Ｓｉｇｍａ）を用いて不活性化させたＳＮＬフィーダー細胞（信州大学より入手）層上で、３７℃、５％ＣＯ２存在下にて、培養されたものを用いた。培地は、上記グルコースＥＳ培地を用い、培地交換を毎日行った。
【００５７】
（３）マウスＥＳ細胞の増殖抑制作用
ＥＳ細胞をＳＮＬフィーダー細胞上で培養後、０．１重量％ トリプシン／１ｍＭ ＥＤＴＡ溶液を用いて、マウスＥＳ細胞のコロニーのみを回収し、不活性化させたＳＮＬフィーダー細胞を播種した９６ウェルプレート（ＡＧＣテクノグラス株式会社より入手）上にＥＳ細胞を播種し、３７℃、５％ＣＯ２存在下にて、上記グルコースＥＳ培地を用いて２〜３日間培養し、再度コロニーを形成させた。
【００５８】
コロニー形成後に、一方の培地を、キシロースＥＳ培地に置換して、培養した（「培養後０日目」とする）。
【００５９】
培養後８日目に、キシロースＥＳ培地で培養したＥＳ細胞コロニーは、培地をグルコースＥＳ培地に置換して、さらに８日間培養した。培養期間中、培地交換を毎日行った。
【００６０】
培養後０、１、４、８日目およびグルコースＥＳ培地へ置換後１、４、８日目（培養後９、１２、１６日目）に、それぞれの培地で培養したＥＳ細胞の生存率をＭＴＴアッセイにより測定した。ＭＴＴアッセイは、各回、６ウェルずつ行った。
【００６１】
ＭＴＴアッセイ
ＭＴＴ Ｃｅｌｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ａｓｓａｙ Ｋｉｔ（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ）を用いて、製品マニュアルに従って測定した。具体的には、９６ウェルプレートで培養した細胞の培地１００μＬを新鮮な培地に交換し、これに対してＭＴＴ試薬を１０μＬ添加後４時間インキュベートした。その後、生細胞が生成するホルマザン色素（青色）を、可溶化液（０．０４Ｎ ＨＣｌ／イソプロパノール）を加えてピペッティングを数回行って溶解させ、プレートリーダーを用いて吸光波長５７０ｎｍとリファレンス波長６３０ｎｍを用いて測定した。生存率は、培養後０日目を１００％として、それぞれの平均値±標準偏差を算出した。結果を図１ＡおよびＢに示す。
【００６２】
（４）マウスＥＳ細胞の性状試験
上記（３）と同様に、マウスＥＳ細胞のコロニーのみを回収し、不活化させたＳＮＬフィーダー細胞を播種した６ウェルプレート（株式会社サンプラテックより入手）に、ＥＳ細胞を２．０×１０４細胞／ウェルとなるように播種し、３７℃、５％ＣＯ２存在下にて、上記グルコースＥＳ培地を用いて２〜３日間培養し、再度コロニーを形成させた。コロニー形成後に、一方の培地をキシロースＥＳ培地に置換して、培養した（「培養後０日目」とする）。培地交換は毎日行った。
【００６３】
それぞれのマウスＥＳ細胞コロニー形態の観察、遺伝子発現の解析（ＲＴ−ＰＣＲ）および蛍光免疫染色による分化傾向の確認を行った。
【００６４】
コロニー形態の観察
培養後０日目、４日目、８日目のＥＳ細胞コロニーの形態を光学顕微鏡（ＩＸ７０、オリンパス株式会社製）で観察した。結果を図２に示す。
【００６５】
遺伝子発現の解析（ＲＴ−ＰＣＲ）
全ＲＮＡを、ＴＲＩｚｏｌ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｉｎｖｉｔｏｒｏｇｅｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）を用いて抽出した。抽出したＲＮＡからＳｕｐｅｒ Ｓｃｒｉｐｔ ＩＩ（Ｉｎｂｉｔｒｏｇｅｎ）を用いてｃＤＮＡを調製した。ｃＤＮＡサンプルは、下記表１のプライマーの内Ｏｃｔ３／４、Ｎａｎｏｇ、Ｒｅｘ−１、Ｎｅｓｔｉｎ、Ｂｒａｈｙｕｒｙ、Ｆｏｘａ２、β−ａｃｔｉｎを用いて、増幅した（Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ Ｄｉｃｅ、タカラバイオ株式会社製）。
【００６６】
【表１】
0006042099.tif 000002
【００６７】
結果を図３に示す。結果から明らかなように、未分化マーカーの発現が確認された。
【００６８】
蛍光免疫染色
培養後８日目のＥＳ細胞を４％パラホルムアルデヒド／リン酸緩衝液（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）で３０分間固定した。０．１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００／ＰＢＳを用いて透過処理を行い、１．５％正常ロバ血清または正常ヤギ血清で処理した。その後、一次抗体として、マウス抗Ｏｃｔ３／４（１：１００，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｐｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ，ＣＡ）およびウサギ抗Ｆｏｘａ２（１：８００,Ｃｅｌl Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）を用いて、４℃で一晩反応させ、洗浄後、二次抗体として、フルオレセインまたはＴＲＩＴＣ接合ＩｇＧで染色した。その後、ＤＡＰＩを用いて核染色した。結果を図４に示す。
【００６９】
（５）ＥＢの形成
マウスＥＢ（胚様体）培養用培地はそれぞれ下記の配合となるように調製した。
対照ＥＢ培地（グルコースＥＢ培地）：
ＤＭＥＭ、２０容量％ ＦＢＳ、１００μＭ 非必須アミノ酸、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウム溶液、１００μＭ ２−メルカプトエタノール、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン
本発明によるＥＢ培地（キシロースＥＢ培地）：
ＤＭＥＭ中のグルコースをＤ−キシロースに置換した変法ＤＭＥＭ（Ｍ−ＤＭＥＭ，日水製薬株式会社より入手）、糖質を透析膜により除去した２０容量％ ＦＢＳ、１００μＭ 非必須アミノ酸、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウム溶液、１００μＭ ２−メルカプトエタノール、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン
【００７０】
ＥＳ細胞をＳＮＬフィーダー細胞上で培養後、マウスＥＳ細胞コロニーのみを回収し、ハンギングドロップ法により、上記グルコースＥＢ培地およびキシロースＥＢ培地を用いて、ＥＢ（胚様体）を形成した。ここでグルコースＥＢ培地は、１０３Ｕ／ｍｌ ＬＩＦをさらに添加したグルコースＥＢ ＬＩＦ＋培地と、添加しないグルコースＥＢ ＬＩＦ−培地とを用いた。
【００７１】
培養後５日目にＥＢを回収した。回収したＥＢは、各ＥＢ培地を満たしたゼラチンコート細胞培養プレートでさらに培養し、回収後２１日間（培養後２６日間）、ＥＢ形態の観察、遺伝子発現の解析（ＲＴ−ＰＣＲ）、蛍光免疫染色による分化傾向の確認を行った。
【００７２】
ＥＢ形態の観察
回収後０日目、４日目、８日目（培養後５日目、９日目、１３日目）のＥＢの形態を光学顕微鏡で観察した。結果を図５に示す。結果に示されるように、グルコースＥＢ培地を用いたものは、伸展したが、キシロースＥＢ培地を用いたものは形態の変化が少なかった。
【００７３】
遺伝子発現の解析（ＲＴ−ＰＣＲ）
回収後４日目、７日目、１４日目（培養後９日目、１２日目、１９日目）のＥＢについて、上記（４）に記載の方法と同様の方法で、上記表１のプライマーの内Ｏｃｔ３／４、Ｎａｎｏｇ、Ｒｅｘ−１、Ｎｅｓｔｉｎ、Ｇｏｏｓｅｃｏｉｄ、Ｂｒａｈｙｕｒｙ、Ｆｏｘａ２、ＡＦＰ、ＧＡＴＡ４、β−ａｃｔｉｎを用いて、ＲＴ−ＰＣＲを行った。結果を図６に示す。
【００７４】
蛍光免疫染色
回収後８日目、２１日目（培養後１３日目、２６日目）のＥＢについて、一次抗体として、マウス抗Ｏｃｔ３／４（１：１００，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｐｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ，ＣＡ）、ウサギ抗Ｆｏｘａ２（１：８００,Ｃｅｌl Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）、ヤギ抗Ｓｏｘ１７（１：２００，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｐｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ，ＣＡ）、およびウサギ抗Ｎａｎｏｇ（１：２００，ＲｅｐｒｏＣＥＬＬ Ｉｎｃ，横浜、日本）を用いる以外は、上記（４）に記載の方法と同様の方法で、蛍光免疫染色を行った。
（６）ＥＳ細胞の神経細胞への分化誘導試験
神経系細胞へ分化誘導するために、ＳＮＬフィーダー細胞上で培養したＥＳ細胞を、マイトマイシンＣ処理したＰＡ６フィーダー細胞（理研ＢＲＣより入手）上に播種し、ＬＩＦを含まない上記グルコースＥＳ培地またはキシロースＥＳ培地で２１日間培養した。
【００７５】
培養から４、７、１４日目に、上記（４）と同様の方法で、グルコースＥＳ培地およびキシロースＥＳ培地それぞれのＥＳ細胞の形態観察、遺伝子発現の解析（ＲＴ−ＰＣＲ）、蛍光免疫染色を行った。ここで、ＲＴ−ＰＣＲでは、上記表１のプライマーの内Ｏｃｔ３／４、Ｎａｎｏｇ、Ｒｅｘ−１、Ｎｅｓｔｉｎ、Ｐａｘ−６、β−ａｃｔｉｎを用いた。また蛍光免疫染色では、一次抗体として、マウス抗Ｏｃｔ３／４（１：１００，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｐｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ，ＣＡ）、ウサギ抗Ｎａｎｏｇ（１：２００，ＲｅｐｒｏＣＥＬＬ Ｉｎｃ，横浜、日本）、マウス抗神経クラスＩＩＩβ−チューブリン（クローンＴｕｊ１，１：５００，マウスＩｇＧ２ａ、Ｃｏｖａｎｃｅ，Ｂｅｒｋｌｅｙ，ＣＡ）、およびウサギ抗ＭＡＰ２（１：１００，Ｃｈｅｍｉｃｏｎ，Ｔｅｍｅｃｕｌａ，ＣＡ）を用いた。結果を図８〜１０に示す。結果に示されるように、キシロースＥＳ培地では、ＥＳ細胞は神経細胞へ分化誘導されなかった。
【００７６】
例２：ヒトｉＰＳ細胞の細胞増殖制御
（１）培地の調製
ヒトｉＰＳ細胞（人工多能性幹細胞）培養用培地はそれぞれ下記の配合となるように調製した。
対照培地（グルコースｉＰＳ培地）：
ＤＭＥＭ／Ｆ１２（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）、２０容量％ ＫＳＲ（Ｉｎｖｉｔｏｒｏｇｅｎ）、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、１００μＭ β−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
本発明による培地（キシロースｉＰＳ培地）：
ＤＭＥＭ／Ｆ１２中のグルコースをＤ−キシロースに置換した変法ＤＭＥＭ／Ｆ１２（Ｍ−ＤＭＥＭ，日水製薬株式会社より入手）、糖質を透析膜（透析膜 ３６／３２、エーディア株式会社製）により除去した２０容量％ ＫＳＲ（日水製薬株式会社より入手）、２ｍＭ Ｌ−グルタミン、１００μＭ β−メルカプトエタノール（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
【００７７】
（２）ヒトｉＰＳ細胞の調製
ヒトｉＰＳ細胞として、エーラスダンロス症候群患者由来の疾患ｉＰＳ細胞（信州大学より入手）（以下、「Ｐ−ｉＰＳ」という）を用いた。Ｐ−ｉＰＳ細胞は、０．１重量％ゼラチン（Ｓｉｇｍａ）でコートした細胞培養ディッシュ（６ウェルプレート、サンプラテック株式会社より入手）にて、マイトマイシンＣ（Ｓｉｇｍａ）を用いて不活性化させたＭＥＦフィーダー細胞（オリエンタル酵母工業株式会社より入手）層上で、３７℃、５％ＣＯ２存在下で培養した。培地は、上記グルコースｉＰＳ培地を用い、培地交換を毎日行った。 
【００７８】
（３）ヒトｉＰＳ細胞の増殖抑制作用
Ｐ−ｉＰＳ細胞をＭＥＦフィーダー細胞上で培養後、０．２５重量％ トリプシンおよび０．１ｍｇ／ｍＬ ｃｏｌｌａｇｅｎａｓｅ IV（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて、Ｐ−ｉＰＳ細胞のコロニーのみを回収し、不活性化させたＭＥＦフィーダー細胞を播種した９６ウェルプレート（ＡＧＣテクノグラス株式会社より入手）上に、Ｐ−ｉＰＳ細胞を播種し、３７℃、５％ＣＯ２存在下にて、上記グルコースｉＰＳ培地を用いて４日間培養して再度コロニーを形成させた。
【００７９】
コロニー形成後に、一方の培地をキシロースｉＰＳ培地に置換して培養した（「培養後０日目」とする）。
【００８０】
培養後８日目に、キシロースｉＰＳ培地で培養したＰ−ｉＰＳ細胞は、培地をグルコースｉＰＳ培地に置換して、さらに８日間培養した。培養期間中、培地交換を毎日行った。
【００８１】
培養後０、１、４、８日目およびグルコース培地置換後１、４、８日目（培養後９、１２、１６日目）に、細胞の生存率をＭＴＴアッセイにより測定した。ＭＴＴアッセイは、各回、６ウェルずつ、上記例１（３）と同様の方法で行った。結果を図１１ＡおよびＢに示す。
【００８２】
例３：ヒト膵腺ガン由来細胞（Ｐａｎｃ１）の細胞増殖制御
（１）培地の調製
ヒト膵腺ガン由来細胞（Ｐａｎｃ１）培養用培地はそれぞれ下記の配合となるように調製した。
対照培地（グルコース培地）：
ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）、１０容量％ ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
本発明による培地（キシロース培地）：
ＤＭＥＭ中のグルコースをＤ−キシロースに置換した変法ＤＭＥＭ（Ｍ−ＤＭＥＭ，日水製薬株式会社より入手）、糖質を透析膜（透析膜 ３６／３２、エーディア株式会社製）により除去した１０容量％ ＦＢＳ（日水製薬株式会社より入手）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
【００８３】
（２）ヒト膵腺ガン由来細胞（Ｐａｎｃ１）の増殖抑制作用
ヒト膵腺ガン由来細胞（Ｐａｎｃ１）（信州大学より入手）を上記グルコース培地で培養後、０．１重量％ トリプシン／１ｍＭ ＥＤＴＡ溶液を用いて、Ｐａｎｃ１細胞のみを回収し、０．１重量％ゼラチンでコートした９６ウェルプレート（ＡＧＣテクノグラス株式会社より入手）に、１．０×１０４細胞／ウェルとなるように播種し、３７℃、５％ＣＯ２存在下にて、培養した。培地は、上記グルコース培地とキシロース培地とを用いた。
【００８４】
培養後８日目に、キシロース培地で培養したＰａｎｃ１細胞は、培地をグルコース培地に置換して、さらに８日間培養した。培養期間中、培地交換を毎日行った。
【００８５】
培養後０、１、４、８日目およびグルコース培地置換後１、４、８日目（培養後９、１２、１６日目）に、細胞の生存率をＭＴＴアッセイにより測定した。ＭＴＴアッセイは、各回、６ウェルずつ、上記例１（３）と同様の方法で行った。結果を図１２ＡおよびＢに示す。
【００８６】
また、培養後３日目の形態を光学顕微鏡で観察した。結果を図１３に示す。
【００８７】
例４：ヒト膵腺ガン由来細胞（Ｍｉａ−Ｐａ−Ｃａ２）の細胞増殖制御
（１）培地の調製
ヒト膵腺ガン由来細胞（Ｍｉａ−Ｐａ−Ｃａ２）培養用培地はそれぞれ下記の配合となるように調製した。
対照培地（グルコース培地）：
ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）、１０容量％ ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
本発明による培地（キシロース培地）：
ＤＭＥＭ中のグルコースをＤ−キシロースに置換した変法ＤＭＥＭ（Ｍ−ＤＭＥＭ，日水製薬株式会社より入手）、糖質を透析膜（透析膜 ３６／３２、エーディア株式会社製）により除去した１０容量％ ＦＢＳ（日水製薬株式会社より入手）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
【００８８】
（２）ヒト膵腺ガン由来細胞（Ｍｉａ−Ｐａ−Ｃａ２）の増殖抑制作用
ヒト膵腺ガン由来細胞（Ｍｉａ−Ｐａ−Ｃａ２）（信州大学より入手）を上記グルコース培地で培養後、０．１重量％ トリプシン／１ｍＭ ＥＤＴＡ溶液を用いて、Ｍｉａ−Ｐａ−Ｃａ２細胞のみを回収し、０．１重量％ゼラチンでコートした９６ウェルプレート（ＡＧＣテクノグラス株式会社より入手）に、１．０×１０４細胞／ウェルとなるように播種し、３７℃、５％ＣＯ２存在下にて、培養した。培地は、上記グルコース培地とキシロース培地とを用いた。
【００８９】
培養後８日目に、キシロース培地で培養したＭｉａ−Ｐａ−Ｃａ２細胞は、培地をグルコース培地に置換して、さらに８日間培養した。培養期間中、培地交換を毎日行った。
【００９０】
培養後０、１、４、８日目およびグルコース培地置換後１、４、８日目（培養後９、１２、１６日目）に、細胞の生存率をＭＴＴアッセイにより測定した。ＭＴＴアッセイは、各回、６ウェルずつ、上記例１（３）と同様の方法で行った。結果を図１４ＡおよびＢに示す。
【００９１】
例５：ヒト乳腺ガン由来細胞（ＭＣＦ７）の細胞増殖制御
（１）培地の調製
ヒト乳腺ガン由来細胞（ＭＣＦ７）培養用培地はそれぞれ下記の配合となるように調製した。
対照培地（グルコース培地）：
ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）、１０容量％ ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
本発明による培地（キシロース培地）：
ＤＭＥＭ中のグルコースをＤ−キシロースに置換した変法ＤＭＥＭ（Ｍ−ＤＭＥＭ，日水製薬株式会社より入手）、糖質を透析膜（透析膜 ３６／３２、エーディア株式会社製）により除去した１０容量％ ＦＢＳ（日水製薬株式会社より入手）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
【００９２】
（２）ヒト乳腺ガン由来細胞（ＭＣＦ７）の増殖抑制作用
ヒト乳腺ガン由来細胞（ＭＣＦ７細胞）（ＥＣＡＣＣ）を上記グルコース培地で培養後、０．１重量％ トリプシン／１ｍＭ ＥＤＴＡ溶液を用いて、ＭＣＦ７細胞のみを回収し、０．１重量％ゼラチンでコートした９６ウェルプレート（ＡＧＣテクノグラス株式会社より入手）に、１．０×１０４細胞／ウェルとなるように播種し、３７℃、５％ＣＯ２存在下にて、培養した。培地は、上記グルコース培地とキシロース培地とを用いた。
【００９３】
培養後８日目に、キシロース培地で培養したＭＣＦ７細胞は、培地をグルコース培地に置換して、さらに８日間培養した。培養期間中、培地交換を毎日行った。
【００９４】
培養後０、１、４、８日目およびグルコース培地置換後１、４、８日目（培養後９、１２、１６日目）に、細胞の生存率をＭＴＴアッセイにより測定した。ＭＴＴアッセイは、各回、６ウェルずつ、上記例１（３）と同様の方法で行った。結果を図１５ＡおよびＢに示す。
【００９５】
例６：マウス繊維芽細胞（ＳＮＬ）の細胞増殖制御
（１）培地の調製
マウス繊維芽細胞（ＳＮＬ）培養用培地はそれぞれ下記の配合となるように調製した。
対照培地（グルコース培地）：
ＤＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）、１０容量％ ＦＢＳ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
本発明による培地（キシロース培地）：
ＤＭＥＭ中のグルコースをＤ−キシロースに置換した変法ＤＭＥＭ（Ｍ−ＤＭＥＭ，日水製薬株式会社より入手）、糖質を透析膜（透析膜 ３６／３２、エーディア株式会社製）により除去した１０容量％ ＦＢＳ（日水製薬株式会社より入手）、５０Ｕ／ｍＬ ペニシリン、および５０μｇ／ｍＬ ストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ）
【００９６】
（２）マウス繊維芽細胞（ＳＮＬ）の増殖抑制作用
ＳＮＬ細胞（信州大学より入手）を上記グルコース培地で培養後、０．１重量％ トリプシン／１ｍＭ ＥＤＴＡ溶液を用いて、ＳＮＬ細胞のみを回収し、０．１重量％ゼラチンでコートした９６ウェルプレート（ＡＧＣテクノグラス株式会社より入手）に、１．０×１０４細胞／ウェルとなるように播種し、３７℃、５％ＣＯ２存在下にて、培養した。培地は、上記グルコース培地とキシロース培地とを用いた。
【００９７】
培養後８日目に、キシロース培地で培養したＳＮＬ細胞は、培地をグルコース培地に置換して、さらに８日間培養した。培養期間中、培地交換を毎日行った。
【００９８】
培養後０、１、４、８日目およびグルコース培地置換後１、４、８日目（培養後９、１２、１６日目）に、細胞の生存率をＭＴＴアッセイにより測定した。ＭＴＴアッセイは、各回、６ウェルずつ、上記例１（３）と同様の方法で行った。結果を図１６ＡおよびＢに示す。
【図１】
0006042099.tif 000003
【図２】
0006042099.tif 000004
【図３】
0006042099.tif 000005
【図４】
0006042099.tif 000006
【図５】
0006042099.tif 000007
【図６】
0006042099.tif 000008
【図７】
0006042099.tif 000009
【図８】
0006042099.tif 000010
【図９】
0006042099.tif 000011
【図１０】
0006042099.tif 000012
【図１１】
0006042099.tif 000013
【図１２】
0006042099.tif 000014
【図１３】
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【図１４】
0006042099.tif 000016
【図１５】
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【図１６】
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