(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１に記載されたアミノ酸配列からなるペプチドによって構成されるエピトープを認識し、腸炎ビブリオ（Vibrio parahaemolyticus）のＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットと特異的な抗原抗体反応を起こし得るモノクローナル抗体。
【請求項２】
請求項１に記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞。
【請求項３】
受託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２２１５７として寄託されたハイブリドーマ細胞。
【請求項４】
受託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２２１５７として寄託されたハイブリドーマ細胞が産生するモノクローナル抗体。
【請求項５】
試料と請求項１又は４に記載のモノクローナル抗体を接触させる工程を含む腸炎ビブリオの検出方法。
【請求項６】
試料をスポットして担体に吸着させる工程を含む請求項５に記載の腸炎ビブリオの検出方法。
【請求項７】
前記モノクローナル抗体は標識された抗体である請求項５又は６に記載の腸炎ビブリオの検出方法。
【請求項８】
試料と接触させた後の前記標識された抗体と、前記標識と反応して可視化できる試薬を接触させる工程をさらに含む請求項７に記載の腸炎ビブリオの検出方法。
【請求項９】
試料とモノクローナル抗体を接触させる前の工程として、試料に対して前処理を施す工程をさらに含む請求項５〜８の何れか１項に記載の腸炎ビブリオの検出方法。
【請求項１０】
前記前処理は、界面活性剤と接触させる工程である請求項９に記載の腸炎ビブリオの検出方法。
【請求項１１】
食品を培養液に浸漬して培養する培養工程と、当該培養工程から腸炎ビブリオの選択培地上で培養する培養工程とを含み、前記選択培地で培養されたコロニーを試料とする請求項５〜１０の何れか１項に記載の腸炎ビブリオの検出方法。
【請求項１２】
請求項１又は４に記載のモノクローナル抗体を含む腸炎ビブリオの検出用試薬。
【請求項１３】
前記モノクローナル抗体は、標識された抗体である請求項１２に記載の腸炎ビブリオの検出用試薬。
【請求項１４】
前記モノクローナル抗体は、ペルオキシダーゼ標識されたモノクローナル抗体である請求項１３に記載の腸炎ビブリオの検出用試薬。
【請求項１５】
前記モノクローナル抗体が基材に固定された請求項１２〜１４の何れか１項に記載の腸炎ビブリオの検出用試薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、腸炎ビブリオの検出方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
腸炎ビブリオ（Vibrio parahaemolyticus）による食中毒は、腸炎ビブリオに汚染された魚介類を摂食することにより引き起こされる細菌性食中毒の１つである。腸炎ビブリオによる食中毒の発生を未然に防ぐため、生食用鮮魚介類（冷凍鮮魚介類を含む）には腸炎ビブリオの汚染に対する規格基準が食品衛生法により定められている。
【０００３】
腸炎ビブリオによる汚染は培養法（例えば、厚生労働省通達による「腸炎ビブリオの試験方法について」参照））による当該細菌の検出で確認される。培養法は、対象食品中の腸炎ビブリオを増やす増菌工程と、増菌培養液中から腸炎ビブリオと推定される細菌を分離する工程（分離工程）と、分離された細菌が腸炎ビブリオであるかどうかを判別する工程（同定工程）とからなる。
【０００４】
増菌工程は、検査対象となる食品の一部を、アルカリペプトン液などの増菌用培地に接種し、約３６℃で一夜培養する工程である。分離工程は、増菌工程で得られた増菌培養液の一部をＴＣＢＳ寒天培地等の選択分離培地上に広げ、約３６℃で一夜培養する工程である。ＴＣＢＳ寒天培地は、最も一般的に使用される選択分離培地であるが、腸炎ビブリオはショ糖を分解できないので、この培地上では緑色のコロニーを形成する。従って、ＴＣＢＳ寒天培地上で緑色のコロニーが形成されない場合は、被検食品における腸炎ビブリオ汚染は陰性であると結論づけられる。
【０００５】
しかしながら、ビブリオ属細菌の一部、例えば、V. vulnificus、V. mimicus、V. harveyi、V. campbelliiなどのショ糖非分解性のビブリオ属細菌は、腸炎ビブリオと同様にＴＣＢＳ寒天培地上で緑色のコロニーを形成する。このため、分離工程において緑色のコロニーを形成する細菌が検出されると、さらに同定工程を経なければ、検出された細菌が腸炎ビブリオであるかどうかを確定できない。
【０００６】
同定工程は、１％ＮａＣｌを含むＴＳＡ斜面培地やＴＳＩ斜面培地、ＬＩＭ培地に上記緑色のコロニーを接種して約３６℃で一夜培養するスクリーニング工程と、耐塩性試験やＶＰ（Voges-Proskauer）試験、オキシダーゼ試験などの確認検査工程からなる。
【０００７】
従って、分離工程で腸炎ビブリオの存在が疑われた場合には、同定工程だけでも３日、検査開始からだと５日の検査日数を要していた。また、同定工程における検査は、培地の変色、ガスの発生、発育の有無（培養液の濁りの有無）などを指標とするので検査精度も低く、上記V. vulnificus等のショ糖非分解性のビブリオ属細菌を腸炎ビブリオとして誤同定する場合があった。
【０００８】
このような状況下において、検査期間を短縮する方法として、分離工程を経ることなく食品中の腸炎ビブリオを検出する方法がある。例えば、ＰＣＲ法、リアルタイム・ＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法などの遺伝子解析法が提案されている（非特許文献１〜４）が、これらの方法は、いずれも腸炎ビブリオが特異的に有する特定のＤＮＡ塩基配列を増幅させて、腸炎ビブリオを検出する方法である。
【０００９】
しかしながら、これらの遺伝子解析法は、食品や増菌培養液中の成分がインヒビターとしてＰＣＲ反応液に影響を与えることにより、実際に腸炎ビブリオが存在していても検出できない場合がある（偽陰性）。また、腸炎ビブリオは非常に増殖スピードが速く、食品や増菌工程で得られた培養液中には死菌が蓄積される。遺伝子解析法はこうした死菌のＤＮＡも検出してしまい、培養法では陰性になるはずのところ、遺伝子解析法では陽性であると判定されるケースがある（偽陽性）。また、遺伝子解析法には、ＰＣＲ装置や電気泳動装置等の特別の機器が必要とされるという問題もある。
【００１０】
一方、免疫学的な手法として、腸炎ビブリオが産生するレシチン依存性ヘモリシン（ＬＤＨ）と反応しうる抗体を用いた検査法が提案されている（特許文献１）。しかしながら、抗原となるＬＤＨは菌体外に放出されるタンパクであるので、当該方法では、培養液の上清を用いるか、破砕した菌体を用いる必要がある。このため、同定目的で当該方法を使用する場合には、分離工程で形成されたコロニーを再培養した上清を用いるか、必要に応じて分離平板上のコロニーを破砕する工程が必要となる。従って、この工程のための時間が要することになり、簡便な方法であるとは言えない。
【００１１】
また、腸炎ビブリオが有する鞭毛タンパクに対する抗腸炎ビブリオポリクロナール抗体を用いて検出する方法が提案されている（非特許文献５）。この抗体は腸炎ビブリオの血清型に関係なく腸炎ビブリオと反応するが、特異性が低く、例えば、V. harveyi，V. campbellii，V. alginolyticusなどの腸炎ビブリオ類縁菌（遺伝子解析の結果、腸炎ビブリオと同一のクレードに属する細菌）と反応するので、腸炎ビブリオの特異的検出および同定に用いるには不適であった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１２】
【特許文献１】国際公開  ＷＯ２００２／０６５１３１号公報
【非特許文献】
【００１３】
【非特許文献１】Bej, A. K., et al., Detection of total and hemolysin-producing Vibrio parahaemolyticus in shellfish using multiplex PCR amplification of tlh,tdh and trh, J. Microbiol. Methods, 36(1999), 215-225
【非特許文献２】Kim, Y. B., et al., Identification of Vibrio parahaemolyticus strains at the species level by PCR targeted to the toxR gene, J. Clin. Microbiol., 37(1999),1173-1177
【非特許文献３】Lee, C. Y., et al., Sequence of a cloned pR72H fragment and its use for detection of Vibrio parahaemolyticus in shellfish with the PCR, Appl. Environ. Microbiol., 61(1995),1311-1317
【非特許文献４】Venkateswaran, K., et al., Cloning and nucleotide sequence of the gyrB gene of Vibrio parahaemolyticus and its application in detection of this pathogen in shrimp, Appl. Environ. Microbiol., 64(1998), 681-687
【非特許文献５】Datta, S., et al., 2008. Immunomagnetic separation and coagglutination of Vibrio parahaemolyticus with anti-flagellar protein monoclonal antibody. Clin. Vaccine Immunol.15:1541-1546.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１４】
本発明は上記の背景技術に鑑みてなされたものであって、本発明の目的は、より簡便かつ迅速な腸炎ビブリオの検出・同定方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１５】
本発明の腸炎ビブリオの検出方法は、腸炎ビブリオのＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットに対するモノクローナル抗体によって、試料中の腸炎ビブリオを検出する方法である。
【発明の効果】
【００１６】
本発明によると、より簡便かつ短時間に腸炎ビブリオを検出・同定できる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】図１は本発明のモノクローナル抗体と腸炎ビブリオや他の菌種との反応性を確認するためにウェスタンブロッティングを行った結果を示す画像である。レーン１は腸炎ビブリオ（Ｏ３Ｋ６）、レーン２は腸炎ビブリオ（Ｏ４Ｋ８）、レーン３は腸炎ビブリオ（Ｏ１ＫＵＴ）、レーン４はV. mimicus、レーン５はV. vulnificus、レーン６はV. harveyi、レーン７はV. campbellii、レーン８はV. alginolyticus、レーン９はV. choleraeである。
【図２】図２は本発明のモノクローナル抗体と腸炎ビブリオのＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットのリコンビナントタンパク質との反応性を確認するためにウェスタンブロッティングを行った結果を示す画像である。レーン１はｐＥＴ−ＳＵＭＯ/ＡＴＰ ｓｙｎｔｈａｓｅ'ｓ ｄｅｌｔａ ｓｕｂｕｎｉｔにより形質転換されたＢＬ２１（ＤＥ３）、レーン２はｐＥＴ−ＳＵＭＯ／ＣＡＴ（ＣＡＴ；クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ）により形質転換されたＢＬ２１（ＤＥ３）である。
【図３】図３は本発明のモノクローナル抗体を用いたＶＰ−Ｄｏｔ法の特異性を検討した結果を示す画像である。Ａ１からＡ１０は腸炎ビブリオ（魚介由来）、Ｂ１からＢ１０は腸炎ビブリオ（臨床由来）、Ｃ１及びＣ２はV. mimicus、Ｃ３及びＣ４はV. vulnificus、Ｃ５及びＣ６はV. harveyi、Ｃ７はV. campbellii、Ｃ８はV. alginolyticus、Ｃ９はV. cholerae、Ｃ１０はV. fluvialis、Ｄ１−Ｄ９は未同定株（腸炎ビブリオ、V. campbellii、V. harveyi、V. mimicus、V. vulnificusのいずれでもない）を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
本発明の検出方法は、試料と腸炎ビブリオのＦ0Ｆ1 −ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットに対するモノクローナル抗体（以下「抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体」と称する場合がある。）を接触させる工程を有する。
【００１９】
抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体は、腸炎ビブリオのＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニット（以下「デルタサブユニット抗原」と称する場合がある。）に対して、特異的な抗原抗体反応を起こすモノクローナル抗体である。Ｆ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素は細胞膜に埋め込まれたＦ0部分と細胞質側にあるＦ1部分からなる酵素である。この酵素は、膜を介したプロトンの移動によって生じたエネルギーを用いて、ＡＤＰからＡＴＰを合成する機能を有し、プロトンの移動にはＦ0部分が関与し、ＡＴＰ合成にはＦ1部分が関与する。Ｆ0部分はそれぞれ分子量の異なるａ、ｂ、ｃの３つのサブユニットで構成され、Ｆ1部分はそれぞれ分子量の異なるα、β、γ、δ、εの５つのサブユニットで構成されている。本発明で用いられる抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体は、このＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットと特異的な抗原抗体反応を示す抗体であればよい。例えば、下記に示す寄託されたハイブリドーマ細胞によって生産されたモノクローナル抗体が本発明の腸炎ビブリオの検出・同定方法に使用され得る。また、このモノクローナル抗体は、配列番号１で示されたアミノ酸配列からなるペプチドによって構成されるエピトープを認識する。従って、配列番号１で示されたアミノ酸配列からなるペプチドによって構成されるエピトープを認識して、Ｆ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットと特異的な抗原抗体反応を生じるモノクローナル抗体も、発明の腸炎ビブリオの検出・同定方法に使用され得る。
【００２０】
本発明において「検出」とは、試料中における腸炎ビブリオの存在を確認することを意味し、「検出方法」とは試料中における腸炎ビブリオの存在を確認する方法を意味する。また、本発明において「同定」とは、前記「検出」に含まれる概念であって、分離培地上で分離培養された細菌が腸炎ビブリオであるかどうかを確定することを意味し、「同定方法」とは、前記「検出方法」に含まれる概念であって、分離培地上で分離培養された細菌が腸炎ビブリオであるかどうかを確定する方法を意味する。
【００２１】
抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体は、腸炎ビブリオの菌体抽出物を免疫源として作製されたハイブリドーマから産生され得る。また、デルタサブユニット抗原を免疫源として作製されたハイブリドーマや配列番号１で示されたアミノ酸配列を有するペプチドを免疫源として作製されたハイブリドーマによっても産生され得る。免疫源として使用可能なペプチドは、配列番号１で示されたアミノ配列を含み抗原性を提示する１０〜２０程度のアミノ酸からなるペプチドであり、化学合成により作製され得る。本発明のハイブリドーマは公知の方法に従って得られる。ハイブリドーマは、上記の腸炎ビブリオの菌体抽出物やペプチド等を免疫源として動物を免疫した後、抗体産生細胞とミエローマ細胞を細胞融合する工程、選択培地を用いた融合細胞の選択とクローン化を実施する工程、及び複数のクローン化された融合細胞から目的の抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体を産生するクローンを選択する工程で作製され得る。抗体産生細胞は、好ましくは脾臓細胞である。当該ハイブリドーマとして、実施例に記載の方法に従って得られたハイブリドーマ（Mouse-Mouse hybridoma VP-34）が例示される。このハイブリドーマは、２０１１年７月２６日付けで日本国茨城県つくば市東１−１−１  つくばセンター中央第６、独立行政法人  産業技術総合研究所  特許生物寄託センターに、受託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２２１５７で寄託された。
【００２２】
抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、例えば次の工程により選択される。融合した細胞の選択培養とクローン化を行った後、各クローンを培養用プレートの各ウェルで培養する。細胞が増殖した後ウェル中の培養液の上清の一部を採取し、デルタサブユニット抗原やエピトープを含むペプチド又は腸炎ビブリオ、その他の菌種に対する抗体価を酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）で測定し、腸炎ビブリオ特異的な抗体を産生するハイブリドーマを選び出す。
【００２３】
選択されたハイブリドーマはｉｎ  ｖｉｔｒｏ又はｉｎ  ｖｉｖｏで培養され、モノクローナル抗体の産生に用いられる。モノクローナル抗体の産生も公知の方法が用いられ得る。Ｉｎ  ｖｉｔｒｏの場合、ハイブリドーマは、例えばＦＣＳ含有ＭＥＭ培地やＲＰＭＩ−１６４０培地などのハイブリドーマの培養に適した培地で培養される。モノクローナル抗体は、培養後の培養液の上清から分離精製される。ｉｎ  ｖｉｖｏの場合、ハイブリドーマは、任意の動物に移植される。この動物は、細胞融合に用いられた抗体産生細胞を採取した動物と同一種の動物が好ましい。ハイブリドーマが、例えば、動物の腹腔内に移植されると、モノクローナル抗体を高濃度に含む腹水が腹腔内に蓄積する。モノクローナル抗体は、採取された腹水から分離精製される。
【００２４】
分離精製も公知である任意の方法が採用される。例えば、培養液の上清又は腹水を遠心分離した後その上清を分取し、塩析や透析、限外濾過、カラムクロマトグラフィ、アフィニティクロマトグラフィなどの各種分離手段により精製する方法がある。
【００２５】
本発明の腸炎ビブリオ検出方法は、上記抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体と試料を接触させる工程を包含する。本発明において試料とは、腸炎ビブリオの存否を確認したい対象物を示すあらゆる意味で用いられる。具体的には、この試料は、検査対象物そのものであり、検査対象物を浸漬した液体であり、検査対象物を浸漬した培地を培養した液であり、腸炎ビブリオ用の選択寒天培地で培養して得られたコロニーから採取した菌体などであり得る。検査対象物の浸漬に用いられる液体は、精製水であり、生理食塩水などの食塩添加液であり、検査対象物に含まれる細菌のタンパクを抽出可能な界面活性剤を含む溶液であり、腸炎ビブリオ用の非選択培地であり、選択培地であり得る。
【００２６】
検査対象物は特に制約を受けないが、ほとんどの場合は食品である。食品中の腸炎ビブリオが食品衛生上問題となるからである。抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体と接触させる試料はそれぞれ公知の方法により作製される。その一例として、適当量の検査対象物の食品をそのまま試料とする方法が例示される。また、他の例として、サンプリングした適当量の検査対象物を前記各種の液体に浸漬し、試料を作製する方法が例示される。さらに、他の例として、サンプリングした適当量の検査対象物を浸漬した培地で培養して、試料を作製する方法が例示される。この方法は前記増菌工程に相当する方法である。この方法は腸炎ビブリオの検出方法の一部として公知であり、アルカリペプトン液などの培地に接種し、約３６℃で一晩程度培養する方法が例示される。さらに、こうした増菌培養液を、腸炎ビブリオの選択寒天培地で培養して試料とする方法が例示される。この方法は前記分離工程に相当する方法である。この方法も腸炎ビブリオの検出方法の一部として公知であり、ＴＣＢＳ寒天培地やビブリオ寒天培地、クロモアガービブリオ寒天培地などの選択性の強い培地で培養する方法が例示される。また、検査対象物を濾紙やメンブレンなどの吸着媒体と接触させて腸炎ビブリオと疑われる菌体を吸着させる方法や吸着媒体を前記各種の液体、例えば非選択培地で培養した培養液に浸漬する方法なども例示される。
【００２７】
本発明においては、腸炎ビブリオの検出を確実にする上で、分離工程において分離されたコロニー、すなわち、腸炎ビブリオの選択培地上で培養されたコロニーが試料として好適である。なお、上記のコロニーとは、腸炎ビブリオであると疑わしいコロニーを意味し、例えば、腸炎ビブリオの選択培地であるＴＣＢＳ寒天培地上で形成された緑色のコロニーや、同クロモアガービブリオ寒天培地上で形成された紫色のコロニーである。従って、本発明の抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体に陽性を示すV. natriegensなど、明らかに腸炎ビブリオではないと判断されるコロニーは除かれる。V. natriegensは、ＴＣＢＳ寒天培地上では黄色のコロニーを、クロモアガービブリオ寒天培地上では白色のコロニーを形成するので、目視にて腸炎ビブリオでないと判断できるからである。
【００２８】
得られた試料は本発明の抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体と接触させ、抗原抗体反応を起こさせる。抗原抗体反応は、腸炎ビブリオに由来するデルタサブユニット抗原と抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体が接触すれば十分である。そこで、抗原抗体反応を起こさせる方法として、腸炎ビブリオが疑われるコロニーの菌体と抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体を直接接触させる方法、培養した培養液や菌体破砕液、菌体抽出液とモノクローナル抗体と接触させる方法が例示される。
【００２９】
デルタサブユニット抗原は細胞質側に存在する細胞膜表在性タンパク質である。このことより、試料を抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体と接触させる前に、デルタサブユニット抗原を露出ないし可溶化する処理（前処理）をすることが望ましい。この処理を行うことにより、確実に抗原抗体反応を起こさせることができる。また、前処理は、抗原としての性質を失わせない処理方法が好ましい。前処理は、例えば腸炎ビブリオとの接触により、デルタサブユニット抗原を菌体から抽出または露出させることができる薬剤（前処理剤）との接触であり得る。前処理剤は、例えば、界面活性剤であり、有機溶媒であり得る。界面活性剤は、例えば、陰イオン系界面活性剤（脂肪酸塩、アルファスルホ脂肪酸エステルナトリウムなど）、陽イオン系界面活性剤（アルキルトリメチルアンモニウム塩、ジアルキルジメチルアンモニウム塩など）、両性イオン界面活性剤（アルキルアミノ脂肪酸塩、アルキルベタイン、アルキルアミンオキシドなど）、非イオン系界面活性剤（ショ糖脂肪酸エステルソルビタン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミドなど）であり得る。また、界面活性剤を有効成分とするタンパク質抽出剤でもあり得る。多くの種類のタンパク質抽出剤が市販されており、B-PER Bacterial Protein Extraction Reagent（PIERCE, Rockford, IL）、B-PER II Bacterial Protein Extraction Reagent（PIERCE）、BugBuster Protein Extraction Reagent（EMD Chemicals, San Diego, CA）などが例示される。界面活性剤は抗原の可溶化にも寄与するので、好ましい処理剤である。また、有機溶媒は、例えば、ホルマリン（ホルムアルデヒドの水溶液）であり、メタノール,エタノール，イソプロピルアルコールなどの低級アルコールであり得る。前処理剤の濃度や処理時間は前処理剤の種類に応じて適宜決定される。また、前処理剤との接触は、いかなる方法でもよく、例えば、適当な濃度となるように前処理剤を上記の試料に添加する方法が例示される。もちろん、このような前処理剤を用いることなく、超音波照射や凍結融解処理などの物理的方法により試料（菌体）を破壊した破砕物と抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体とを接触させて、抗原抗体反応を起こさせてもよい。
【００３０】
試料と抗体の接触は、試料中に含まれるデルタサブユニット抗原と抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体が反応し得る環境下におくことを意味し、例えば、液体である試料と抗体を含む液体を混合する方法（液液反応）、固体である試料を、抗体を含む液体に投入する方法（固液反応）、液体である試料にビーズ等に固相化した抗体を投入する方法（液固反応）が例示される。
【００３１】
抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体と試料の接触により生じる抗原抗体反応の検出には、公知の方法が利用できる。当該方法として、酵素免疫測定法（ＥＩＡ/ＥＬＩＳＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、電気化学免疫測定法、免疫凝集法、イムノクロマトグラフィ法などが例示される。ＥＩＡ/ＥＬＩＳＡ法には、直接法、間接法、サンドイッチ法、競合法などの測定方法が例示される。
【００３２】
標識は、任意の標識が適宜選択される。例えば、酵素であり、補酵素であり、アポ酵素であり、蛍光物質であり、色素物質であり、発色物質であり、放射性物質であり得る。標識として、ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、ビオチン、フルオロセインイソチオシアネート、金コロイド、放射性ヨウ素（Ｉ125）などが例示される。公知である任意の方法、例えば、チオール基とマレイミド基の反応、アミノ基とアルデヒド基の反応等により抗体が標識される。これらの標識には市販の標識用キットが用いられ得る。
【００３３】
酵素で標識された抗体を用いた場合、標識に用いた酵素の酵素反応により抗原抗体反応を検出する。例えば、ペルオキシダーゼによる標識抗体を用いた場合には、テトラメチルベンジジン（3,3',5,5'-Tetramethylbenzidine）、アミノアンチピリン（4-Aminoantipyrine）、フェニレンジアミン（1,2-Phenylenediamine）などの基質を反応させる。このようにして酵素反応等により生じた反応を検出して判定が下される。例えばテトラメチルベンジジンを基質に用いた場合であれば、青色の発色が観察されると、試料中に腸炎ビブリオの存在が確認されたことになる。
【００３４】
また、標識物の検出に先立ち、必要に応じて、反応系に存在する夾雑成分が検出に対して好ましくない反応（副反応）を引き起こすことを排除する処理を行うのが望ましい。当該処理は、標識物に応じて適宜選択され、処理のための薬剤や反応条件（薬剤濃度や処理時間など）は適宜設定され得る。例えば、標識物がペルオキシダーゼである場合、菌体自身に含まれる内在性ペルオキシダーゼの失活処理であり得る。失活処理も公知の方法であり、例えば、過酸化水素水との接触であり得る。これらの処理を行わない場合には、腸炎ビブリオのデルタサブユニット抗原が存在しないのにも拘わらず陽性を示す場合（偽陽性）があるからである。
【００３５】
抗原抗体反応には、ドットブロッティング法も好ましく用いられる。ドットブロッティング法は、濾紙やニトロセルロースメンブレンなどの担体に試料をスポットして担体に担持させた後に、担持した試料と抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体を接触させる方法である。この方法は操作が非常に簡便でもあるため、より好ましい方法と言える。
【００３６】
ＥＬＩＳＡ法やドットブロッティング法のように抗原ないし抗体の固定化を行う抗原抗体反応の検出系においては、非特異的な反応が起こるのを抑制するためにいわゆるブロッキングを行うのが好ましい。ブロッキングは公知の方法であり、スキムミルク、ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）、界面活性剤など公知のブロッキング剤の１種若しくは２種以上が用いられる。ブロッキング剤の種類や濃度、時間などの処理条件は、適宜定められる。ブロッキングを行う時期や時間は適宜設定され、通常、ブロッキングは抗原抗体反応に先だって行われる。また、抗原抗体反応や当該反応の検出に際して、反応系に含まれる余剰の抗体やブロッキング剤などの夾雑成分を除去するために、界面活性剤を含む液による洗浄が行われる場合がある。洗浄も公知の方法であり、必要に応じて適宜選択される。従って、界面活性剤を含む液による洗浄操作が菌体の前処理を兼ね備える場合もあり得る。
【００３７】
本発明に係る腸炎ビブリオの検出用試薬はハイブリドーマから単離された抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体を含む。当該試薬は抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体であり、抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体を含む組成物でもあり得る。組成物は抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体の他に、水などの担体、ｐＨ調整剤、緩衝剤、界面活性剤、ブロッキング剤などを含み得る。検出用試薬は液状であり固体でもあり得る。また、検査用試薬は、抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体がウェルに固定された測定用のプレートであり、抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体が固定された濾紙やメンブレンの担体であり、抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体が結合されたラテックス粒子や磁気ビーズでもあり得る。
【００３８】
上記のように本発明に係るモノクローナル抗体を用いれば、存在が疑われる試料中の腸炎ビブリオを迅速に検出できる。また、分離培養された細菌が、腸炎ビブリオであることの同定（確定）を速やかに行うことができる。
【００３９】
次に、本発明について下記の実施例に基づいてさらに詳細に述べるが、下記実施例はあくまでも例示であり、本発明は下記実施例に限られるものではない。
【実施例１】
【００４０】
〔腸炎ビブリオ特異的モノクローナル抗体（抗Ｆ0Ｆ1モノクローナル抗体：ＭＡｂ−ＶＰ３４）の作製〕
（１）マウスの免疫
免疫源には、患者糞便から分離された腸炎ビブリオ（Ｖ２４０９,Ｏ３Ｋ６）をＢ−ＰＥＲII  バクテリアタンパク抽出試薬（B-PER II Bacterial Protein Extraction Reagent (Pierce, Rockford社製)を用いて処理したのち、遠心分離（２１,９００×ｇ，１０min）して得られた上清を用いた。この上清のタンパク濃度を測定した後、９０μｇのタンパク量分をフロイントの完全アジュバント（和光純薬（株）製）と２：３の用量比で乳化させ、腹腔内投与してマウスを免疫した。４、７、１０、１３週後にフロイントの不完全アジュバントと上記免疫源を乳化したものをそれぞれ腹腔内に投与し、追加免疫を行った。１４週間後に採血し、前記免疫源を用いたＥＬＩＳＡ法により各マウスの血清中の上記免疫源に対する抗体力価を測定した。最も高い抗体価を有していたマウスの腹腔内に、免疫開始２０週後に上記免疫源のみ３００μｇを投与して最終免疫をおこなった。
【００４１】
（２）ハイブリドーマの作製
最終免疫の３日後にマウスの脾臓細胞を、P3-X63-Ag8.U1 ミエローマ細胞と融合し、得られた融合細胞からハイブリドーマを調製した。ハイブリドーマの作製方法は川津らの方法（Kawatsu, K., et al., 2008. Development and evaluation of immunochromatographic assay for simple and rapid detection of Campylobacter jejuni and Campylobacter coli in human stool specimens. J. Clin. Microbiol. 46:1226-1231）に準じた。すなわち、細胞融合に次いで選択培養とクローン化を行い、各クローンの培養上清について上記免疫源を用いたＥＬＩＳＡ法によるスクリーニングを行い、陽性クローンを選択した。
【００４２】
（３）ＥＬＩＳＡ法によるスクリーニング
前記ハイブリドーマの陽性クローンについて、その培養上清を用いてＥＬＩＳＡ法により、腸炎ビブリオに特異的なモノクローナル抗体を産生する細胞のスクリーニングを行った。スクリーニングには、６株の腸炎ビブリオ（４株の臨床分離株：Ｏ３Ｋ６，Ｏ４Ｋ６８，Ｏ４Ｋ８，Ｏ１ＫＵＴ及び２株の食品（魚介類）分離株：Ｏ１２ＫＵＴ，０１ＫＵＴ）と、５株のその他ビブリオ属細菌（V. mimicus, V. vulnificus, V. alginolyticus, V. campbellii, V. harveyi）の培養液を抗原としてコーティングされたプレートが用いられた。ＥＬＩＳＡ法は次の方法に従った。
【００４３】
〔ＥＬＩＳＡ法〕
上記１１株の腸炎ビブリオ属細菌をそれぞれ２ｍｌの１％の塩化ナトリウムを含むＴＳＢ培地（Becton Dickinson and Company社製）に懸濁し、３６℃又は２８℃で１６時間静置培養した。培養液を５０ｍＭの重炭酸バッファーで１０倍に希釈し、その５０μｌを、９６ウェルのＥＬＩＳＡ用プレート（Greiner Bio-One社製）のウェルに分注し、４℃で一夜放置した。抗原液をプレートから除去した後、２０％ＦＢＳを含むＰＢＳを用いて、室温で１時間ブロッキング反応を行った。ブロッキング液を除去した後、０.０５％の界面活性剤（Ｔｗｅｅｎ２０：商品名）を含むＰＢＳ（ＰＢＳ−Ｔ）で３回洗浄した。次いで、２０％のＦＢＳを含むＰＢＳ−Ｔで１：１０に希釈したハイブリドーマの培養上清の５０μｌを前記ウェルに加え、室温で１時間反応させた。さらにＰＢＳ−Ｔでウェルを４回洗浄した後、５０μｌのペルオキシダーゼで標識された抗マウスＩｇＧ溶液（IgG, Sigma Chemical社製）（２０％のＦＢＳを含むＰＢＳ−Ｔで希釈した０.５μｇ／ｍｌ濃度の溶液）をウェルに加え、室温で１時間反応させた。ＰＢＳ−Ｔで５回洗浄後、酵素基質であるテトラメチルベンジジン(商品名：1-StepTM Ultra TMB-ELISA, Pierce)を加えて１０分間室温で反応させた。２Ｍの硫酸を加えて反応を停止し、吸光度の自動計測装置を用いて４５０ｎｍにおける吸光度を計測した。吸光度が０.２を超えた場合に陽性であるとした。
【００４４】
細胞融合の結果、３５２０株のハイブリドーマが得られた。得られたハイブリドーマをスクリーニングしたところ、腸炎ビブリオに対して特異性を示す抗体を産生する３株のハイブリドーマ（ＶＰ−２２株，ＶＰ−３４株，ＶＰ−３９株）を得た。これら３株のハイブリドーマの培養液上清は、前記腸炎ビブリオ６株全てに対して反応を示す一方で、前記その他ビブリオ属細菌５株に対しては反応を示さなかった。
【００４５】
（４）腸炎ビブリオに対する特異性
次に、スクリーニングにより選択されたハイブリドーマを再クローン化した後、拡大培養によって得られた培養上清から、モノクローナル抗体を精製した。ハイブリドーマからの抗体の取得及び抗体の精製も、前記川津らの方法に従った。また、特異性の検討には、１４０株の腸炎ビブリオ（臨床検体より分離した８９株、魚介類より分離した５１株）と、２８種６２株のその他ビブリオ属細菌と２９種３５株の非ビブリオ属細菌を用いた。用いた腸炎ビブリオ株は、１９８４年から２０１０年に分離され、血清型（Ｏ抗原とＫ抗原の組み合わせ）で72の型に分類された。これらは、ＫｉｍらによるｔｏｘＲ−ＰＣＲ法（Kim, Y. B. et al., 1999. Identification of Vibrio parahaemolyticus strains at the species level by PCR targeted to the toxR gene. J. Clin. Microbiol. 37:1173-1177.）により、腸炎ビブリオであることを確認した。
【００４６】
腸炎ビブリオを除くビブリオ属細菌として、６２株が用いられた。このうち２２株は次に示す株であり、これらの株は分譲機関から分譲を受けた。Vibrio aestuarianus，NBRC15629T,Vibrio alginolyticus NBRC15630T，Vibrio azureus NBRC104587T， NBRC15631T，Vibrio comitans NBRC102076T，Vibrio diazotrophicus NBRC103148T，Vibrio ezurae NBRC102218T，Vibrio fischeri NBRC101058，Vibrio gazogenes NBRC103151T，Vibrio halioticoli NBRC102217T，Vibrio ichthyoenteri NBRC15847T，Vibrio inusitatus NBRC102082T，Vibrio mediterranei NBRC15635T，Vibrio natriegens NBRC15636T，Vibrio nereis NBRC15637T，Vibrio orientalis NBRC15638T，Vibrio penaeicida NBRC15640T，Vibrio proteolyticus NBRC13287T，Vibrio rarus NBRC102084T，Vibrio splendidus NBRC101061，Vibrio tubiashii NBRC15644T（NITE Biological Resource Cente, Chiba, Japan），Vibrio harveyi RIMD2224001T（Research Institute for Microbiol Diseases, Osaka, Japan)。Tが付された株は標準株である（以下同じ）。残る４０株のうち３８株は患者及び食品から分離された株であり、２株は由来が不明である。これらは次のとおりである。１株のVibrio alginolyticus，８株のVibrio cholerae，９株のVibrio fluvialis，３株のVibrio furnissii，４株のVibrio harveyi，１株のVibrio metschinikovii，５株のVibrio mimicus，９株のVibrio vulnificus。
【００４７】
非ビブリオ属細菌として、次に示す３５株が用いられた。２９種を含む３５株のうち、２１株はInternational culture collection から提供された。これらの株は次のとおりである。Raoultella ornithinolytica ATCC31898T，Raoultella planticola ATCC43176，Raoultella terrigena ATCC33628T，Shewanella algae ATCC51192T（American Type Culture Collection, Manassas, VA, USA），Aeromonas hydrophila IAM1646，Aeromonas sobria IAM12333，Alcaligenes faecalis IAM12369T，Enterobacter cloacae IAM12349T，Enterobacter intermedius IAM14238T，Proteus vulgaris IAM12542T，Pseudomonas aeruginosa IAM1514T（Institute of Applied Microbiology Culture Collection, Tokyo, Japan），Enterobacter aerogenes JCM1235T，Klebsiella oxytoca JCM1665T, Klebsiella pneumoniae subsp. ozaenae JCM1663T，Morganella morganii JCM1672T（Japan Collection of Microorganisms, Saitama,Japan)，Citrobacter freundii NBRC 12681T，Cronobacter sakazakii NBRC102416T，Klebsiella pneumoniae subsp. pneumoniae NBRC14940T，Listonella anguillarum NBRC13266T，Listonella pelagia NBRC 13287T，Photbacterium damselae subsp. damselae NBRC15633T。残る１４株は次のとおりである。それぞれ１株のAeromonas caviae， Bacillus cereus，Citrobacter freundii，Citrobacter koseri，３株のEscherichia coli，３株のGrimontia hollisae，１株のListeria monocytogenes，２株のPlesiomonas shigelloides， １株のProvidencia alcalifaciensである。
【００４８】
上記安定した増殖性を示した３株のハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体について、腸炎ビブリオに対する特異性を調べたところ、そのうちの一つであるＶＰ−３４株が産生するモノクローナル抗体（ＭＡｂ−ＶＰ３４）が、表１に示すように１４０株の腸炎ビブリオに対して陽性反応を示し、V. natriegensを除く５６菌種９６株のその他ビブリオ属細菌及び非ビブリオ属細菌に対しては陽性反応を示さなかった。
【００４９】
【表１】
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【００５０】
上記の安定した増殖性及び腸炎ビブリオに対する特異性を備えた上記ＶＰ−３４株（Mouse-Mouse hybridoma VP-34）は、２０１１年７月２６日付けで日本国茨城県つくば市東１−１−１  つくばセンター中央第６、独立行政法人  産業技術総合研究所  特許生物寄託センターに、受託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２２１５７で寄託された。
【００５１】
〔モノクローナル抗体のタイピング、認識抗原の解析〕
ＭＡｂ−ＶＰ３４のサブクラスのタイピングを前記川津らの方法に従って行った。その結果、ＭＡｂ−ＶＰ３４は、Ｇ１（ｋ）のサブクラスに属していた。３株の腸炎ビブリオ（臨床分離株；Ｏ３Ｋ６，Ｏ４Ｋ８，Ｏ１ＫＵＴ）と６株のその他ビブリオ属細菌（V. mimicus, V. vulnificus, V. campbellii, V. harveyi, V. alginolyticus, V. cholerae）を、６００ｎｍにおける吸光度が０.６−０.７となるようにＰＢＳに懸濁した。この懸濁液を遠心分離して沈殿した菌体をＳＤＳ−ＰＡＧＥ用のサンプルバッファーに懸濁した。得られた懸濁液をＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、分離されたタンパク質をＰＶＤＦメンブレン（フッ化ポリビリニデン膜：Bio-Rad Laboratories社製）に電気的にブロッティングした。この膜を１５％の過酸化水素を含むＴＢＳで処理し、Ｔ−ＴＢＳで３回洗浄した後、ペルオキシダーゼ標識したＭＡｂ−ＶＰ３４をCan Get Signal Solution2（登録商標：東洋紡社製）に溶かした溶液（０.０５μｇ／ｍｌ）と反応させ、抗原抗体反応を生じさせた。その後、テトラメチルベンジジン（3,3',5,5'-Tetramethylbenzidine）（商品名：1-StepTM TMB-Blotting, Pierce）を基質に用いて抗原抗体反応を検出した。その結果を図１に示す。
【００５２】
この結果から、ＭＡｂ−ＶＰ３４が認識する腸炎ビブリオの菌体抗原の分子量は約２０ｋＤａであることが明らかになった。一方、その他ビブリオ属細菌ではバンドは検出されなかった。
【００５３】
次に、腸炎ビブリオの抗原をＭＡｂ−ＶＰ３４を捕捉用抗体として用いたイムノアフィニティクロマトグラフィにより精製し、質量分析法によって解析した。抗原の精製において、まず、腸炎ビブリオ（Ｖ２４０９；Ｏ３Ｋ６）の菌体抽出物をＴＢＳに懸濁し、予めＭＡｂ−ＶＰ３４をカップリングしたHiTrap NHS-activated HP Columnsに流した後、ＴＢＳでカラムを洗浄した。次に、１％ＳＤＳを含むＴＢＳで結合タンパク質を溶出した。溶出した液をＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、ウェスタンブロッティングを行い、溶出したタンパクのサイズ、およびＭＡｂ−ＶＰ３４との反応性を確認した。質量分析法による抗原解析では、まず、Coomassie Brilliant Blue染色を行ったＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル（Bio-Safe CBB G-250 stain、Bio-Rad Laboratories社製)より切り出された目的タンパク質のバンドを脱色し、Shevchenkoらの方法（Shevchenko, A.,et al.,2006. In-gel digestion for mass spectrometric characterization of proteins and proteomes. Nat. Protoc. 1:2856-2860）に従って、ゲル内でトリプシン消化を行った。消化された試料についてnanoelectrosprayer（ＧＬサイエンス社製）を備えたイオントラップ型質量分析計（LC−ＥＳＩ-IT-TOF/MS、島津製作所製）を用いて質量分析を行った。この分析結果を基に、サーチエンジン（Mascot MS/MS Ion Search engine：Matrix Science社）を用いてＮＣＢＩデータベースを検索した。
【００５４】
この結果、検出された８つのペプチドは、Ｆ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットのアミノ酸全配列の６１％を占める部分(２番目のＳから５６番目のＫ、１０２番目のＥから１２８番目のＫ、１３９番目のＬから１６５番目のＲ)に帰属した。データベースに記載されているＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットの分子量は１９.６ｋＤａであり、上記抗原の分子量とほぼ同じであった。
【００５５】
〔リコンビナント抗原に対する反応性の確認〕
次に、ＭＡｂ−ＶＰ３４がＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットを認識するかどうか、リコンビナントタンパク質を作製し、ウェスタンブロッティングにより確認した。腸炎ビブリオのＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットの全遺伝子配列は、GenBankデータベースより取得された（accession number：BA0000031）。
【００５６】
当該タンパク質をコードする遺伝子を、腸炎ビブリオ（Ｖ２４０９）のゲノムＤＮＡを鋳型としてＰＣＲにより増幅し（この際、配列番号２で示される塩基配列を有するプライマー（Forward側）及び配列番号３で示される塩基配列を有するプライマー（Reverse側）が用いられた。）、ＴＡクローニングキット（Champion pET-SUMO protein expression system：Invitrogen社製）を用いてベクター（ｐＥＴ−ＳＵＭＯ）に導入した。このベクターによりEscherichia coliＢＬ２１（ＤＥ３）を形質転換し、１ｍＭのＩＰＴＧ（Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside）によりリコンビナントタンパク質の発現を誘導した。このタンパク質はＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび、ＭＡｂ−ＶＰ３４を用いたウェスタンブロッティングに供された。この際、ネガティブコントロールには、ｐＥＴ−ＳＵＭＯ／ＣＡＴベクターにより形質転換されたEscherichia coliＢＬ２１（ＤＥ３）を用いた。その結果を図２に示す。
【００５７】
この結果、リコンビナントタンパクを流したレーンでは、ＳＵＭＯタンパクとリコンビナントＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットの合計分子量である約３３ｋＤａ付近にバンドが検出された。一方、ネガティブコントロールではバンドは検出されず、ＭＡｂ−ＶＰ３４はＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットを抗原として認識することが結論づけられた。
【００５８】
[ＶＰ−Ｄｏｔ法]
次に、ＭＡｂ−ＶＰ３４を用いて、分離平板上のコロニーが腸炎ビブリオであるかどうかを判別するドットブロッティング法（ＶＰ−Ｄｏｔ法）を開発した。ＶＰ−Ｄｏｔ法は以下の方法に従った。ＴＣＢＳ寒天培地上に形成されたショ糖非分解性の１コロニーを、１μｌループを用いてかきとり、２０μｌの５０ｍＭの重炭酸バッファー（ｐＨ９.６）に懸濁した。その１μｌをニトロセルロース膜（Bio-Rad Laboratories社製）上にスポットし、３６℃で５分間乾燥させた。以下の反応はすべて室温で行った。０.３％の過酸化水素水と５分間反応させた後、蒸留水で２０秒間洗浄した。その後、０.５％のＴｗｅｅｎ−２０を含むトリス緩衝液（ＴＢＳＴ）で５分間洗浄した。この膜を、０.５μｇ／ｍｌのペルオキシダーゼ標識されたＭＡｂ−ＶＰ３４抗体を含むＴＢＳ溶液（０.１％のＴｗｅｅｎ−２０と２０％のＦＢＳを含む）中で５分間反応させた。ＴＢＳＴで２分間洗浄する作業を４回行い、基質であるテトラメチルベンジジンと３分間反応させ、大量の水で反応を停止させた。サンプルをスポットした部位に明瞭な青色の呈色が認められた場合を陽性とした。
【００５９】
〔ＶＰ−Ｄｏｔ法の精度の評価〕
表２に示す菌株を用いて、ＶＰ−Ｄｏｔ法の精度をｔｏｘＲ−ＰＣＲ法の同定結果と比較することにより評価した。用いた２０株の腸炎ビブリオと１０株のその他ビブリオ属細菌並びに９種の未同定株は、V. campbelliiを除いて、ＴＣＢＳ寒天培地上で３６℃で１晩培養された。V. campbelliiは一般にＴＣＢＳ寒天培地で成育するが、今回の実験で用いたV. campbellii（NBRC15631）株はＴＣＢＳ寒天培地では成育しなかったので、１％ＮａＣｌを含むＴＳＡ培地で培養した。９株の未同定株は、ＴＣＢＳ寒天培地上でコロニーを形成し、かつショ糖非分解性の菌である。また、ＭＡｂ−ＶＰ３４は、ペルオキシダーゼラベリングキット−ＳＨ（同仁化学研究所社製）を用いて予めペルオキシダーゼを標識した。  ｔｏｘＲ−ＰＣＲ法では、山崎らの方法（Yamazaki, W., et al., 2008. Development of a loop-mediated isothermal amplification assay for sensitive and rapid detection of Vibrio parahaemolyticus. BMC Microbiol. 8:163-169.）に従って平板上のコロニーからＤＮＡテンプレートを作製し、ＰＣＲは前記Ｋｉｍらの方法に従った。
【００６０】
それらの結果を表２及び図３に示す。この結果によると、ＶＰ−Ｄｏｔ法はすべての腸炎ビブリオ株に対して陽性を示した。また、ｔｏｘＲ−ＰＣＲ法による同定結果とＶＰ−Ｄｏｔ法による同定結果はすべての株において一致した。なお、ＭＡｂ−ＶＰ３４は、V.natriegensに対して交差反応を示したが、この菌はショ糖分解性であってＴＣＢＳ寒天培地上では黄色のコロニーを形成する。このため、分離培養においてＴＣＢＳ寒天培地では緑色のコロニーに対してＶＰ−Ｄｏｔ法を適用することにより、腸炎ビブリオのみを確実に検出することができる。
【００６１】
【表２】
0005874122.tif 000003
【００６２】
上記のＶＰ−Ｄｏｔ法によるとコロニーの採取から約４０分程度で腸炎ビブリオであるとの同定を行うことができた。
【００６３】
〔モノクローナル抗体ＭＡｂ−ＶＰ３４のエピトープマッピング〕
モノクローナル抗体ＭＡｂ−ＶＰ３４のエピトープマッピングを行った。まず、GenBankデータベースより取得された腸炎ビブリオのＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットの完全遺伝子配列（１７７個のアミノ酸、停止コドンを含む５３４ｂｐ）を元にして、デルタサブユニットの上流側（１〜８７番目のアミノ酸から構成される）と下流側（８０〜１７７番目のアミノ酸で構成される）に対応するリコンビナントタンパク質を作製し、上記ＶＰ−Ｄｏｔ法に準じて、抗原抗体反応を確認した。前記リコンビナント抗原に対する認識性の確認における方法と同様の方法でリコンビナントタンパク質を作製した。この際、上流側のタンパク発現用として配列番号２で示される塩基配列を有するプライマー（Forward側）及び配列番号４で示される塩基配列を有するプライマー（Reverse側）を、下流側のタンパク発現用として配列番号５で示される塩基配列を有するプライマー（Forward側）及び配列番号３で示される塩基配列を有するプライマー（Reverse側）を用いた。ＶＰ−Ｄｏｔ法には、リコンビナントタンパク質を発現した大腸菌をB-PER II Bacterial Protein Extraction Reagent（PIERCE）を用いてタンパクを可溶化して得た上清液を用いた。この結果、上流側のタンパクとの反応が認められたが、下流側のタンパクとの反応は認められなかった。ネガティブコントロールには、ＩＰＴＧ誘導前の大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）を用いた。
【００６４】
そこで、デルタサブユニットの上流側アミノ酸配列から、オーバーラップするように３つのリコンビナントタンパク質Ａ，Ｂ，Ｃ（タンパクＡ：１〜４６番目のアミノ酸から構
成される、タンパクＢ：４６〜８７番目のアミノ酸から構成される、タンパクＣ：１６〜７３番目のアミノ酸から構成される）を上記方法に準じて作製し、上記ＶＰ−Ｄｏｔ法に
従って抗原抗体反応を確認した。この際、タンパクＡの発現用として配列番号２で示される塩基配列を有するプライマー（Forward側）及び配列番号６で示される塩基配列を有するプライマー（Reverse側）を、タンパクＢの発現用として配列番号９で示される塩基配列を有するプライマー（Forward側）及び配列番号４で示される塩基配列を有するプライマー（Reverse側）を、タンパクＣの発現用として配列番号７で示される塩基配列を有するプライマー（Forward側）及び配列番号８で示される塩基配列を有するプライマー（Reverse側）を用いた。この結果、リコンビナントタンパク質Ｂ及びリコンビナントタンパク質Ｃについて抗原抗体反応がそれぞれ認められ、エピトープは４６〜７３番目のアミノ酸配列に存在すると考えられた。
【００６５】
デルタサブユニットの４６〜７３番目のアミノ酸配列から表３に示す２３種類のペプチド（Ｎｏ.４６〜５９及びＮｏ.４７−１〜４７−９）を合成し、各ペプチドについてＶＰ−Ｄｏｔ法を適用した。その結果を表３に示した。なお、ペプチドの合成は、JPT Peptide Technologies GmbH社に依頼した。
【００６６】
【表３】
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【００６７】
これにより、配列番号１で示されたアミノ酸配列（ペプチドＮｏ.４７−６）が、ＭＡｂ−ＶＰ３４が認識するエピトープであると結論づけられた。したがって、このエピトープを認識し、腸炎ビブリオ（Vibrio parahaemolyticus）のＦ0Ｆ1−ＡＴＰ合成酵素のデルタサブユニットと特異的な抗原抗体反応を生じるモノクローナル抗体を、腸炎ビブリオの検出又は同定に用いることもできる。
【産業上の利用可能性】
【００６８】
本発明によると、従来法である培養法に比して迅速に判定できる腸炎ビブリオの検出・同定方法が提供される。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【配列表】
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