(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ラクトバチラス・パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｒａｃａｓｅｉ）に属する菌株、及びラクトバチラス・プランタルム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐｌａｎｔａｒｕｍ）に属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種の乳酸菌を予備培養し、前記乳酸菌をリン酸飢餓状態にする工程と、
リン酸飢餓状態の前記乳酸菌を、予備培養後の培地よりもリン酸イオン濃度の高い高リン酸培地で培養する工程と、を備え、
前記高リン酸培地に含まれるリン酸イオンの初期濃度が、２５〜１０００ｍＭである、ポリリン酸の製造方法。
【請求項２】
前記乳酸菌が、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種である、請求項１に記載の製造方法。
【請求項３】
前記乳酸菌が、ラクトバチラス・パラカゼイ亜種パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｒａｃａｓｅｉ  ｓｕｂｓｕｐ．  ｐａｒａｃａｓｅｉ）に属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種である、請求項２に記載の製造方法。
【請求項４】
前記乳酸菌が、ラクトバチラス・パラカゼイ亜種パラカゼイＪＣＭ１１６３株である、請求項３に記載の製造方法。
【請求項５】
予備培養後の培地にリン酸又はその塩を添加する工程を備える、請求項１〜４のいずれか一項に記載の製造方法。
【請求項６】
リン酸飢餓状態が、予備培養後の培地のリン酸イオン濃度が０．６ｍＭ以下になるまで予備培養することにより引き起こされる状態である、請求項１〜５のいずれか一項に記載の製造方法。
【請求項７】
前記高リン酸培地での培養を２〜２４時間行う、請求項１〜６のいずれか一項に記載の製造方法。
【請求項８】
ラクトバチラス・パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｒａｃａｓｅｉ）に属する菌株、及びラクトバチラス・プランタルム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐｌａｎｔａｒｕｍ）に属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種の乳酸菌を予備培養し、前記乳酸菌をリン酸飢餓状態にする工程と、
リン酸飢餓状態の前記乳酸菌を、予備培養後の培地よりもリン酸イオン濃度の高い高リン酸培地で培養し、ポリリン酸蓄積乳酸菌を得る工程と、
前記ポリリン酸蓄積乳酸菌を飲食品又は飲食品原料に添加する工程と、を備え、
前記高リン酸培地に含まれるリン酸イオンの初期濃度が、２５〜１０００ｍＭである、プロバイオティクス飲食品の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ポリリン酸の製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ポリリン酸は腸管バリア機能の低下を抑制すること、及び腸管バリア機能を回復することが知られている（特許文献１）。ポリリン酸は、大腸菌をはじめとする微生物において、ポリリン酸キナーゼ（Ｐｏｌｙｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｋｉｎａｓｅ；ＰＰＫ）によりＡＴＰから合成されることが知られている（例えば、非特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】国際公開第２０１１／１２５６１９号
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Ａｎｎｕａｌ  Ｒｅｖｉｅｗ  ｏｆ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００９年，第７８巻，ｐ．６０５−６４７．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
ポリリン酸による腸管バリア機能の増強効果を利用する方法として、ポリリン酸を直接経口摂取する方法に加え、ポリリン酸を高濃度で蓄積又は産生するプロバイオティクスを含有する食品を摂取する方法の開発が期待される。しかしながら、乳酸菌に代表されるプロバイオティクスにおいては、ポリリン酸の蓄積メカニズムについて未だ不明な点が多く、効率よくポリリン酸を産生させることのできる製造方法は知られていない。
【０００６】
そこで、本発明は、乳酸菌によりポリリン酸を高効率で製造することのできる、ポリリン酸の製造方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明は、ラクトバチラス・パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｒａｃａｓｅｉ）に属する菌株、及びラクトバチラス・プランタルム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐｌａｎｔａｒｕｍ）に属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種の乳酸菌を予備培養し、上記乳酸菌をリン酸飢餓状態にする工程と、
リン酸飢餓状態の上記乳酸菌を、予備培養後の培地よりもリン酸イオン濃度の高い高リン酸培地で培養する工程と、を備える、ポリリン酸の製造方法を提供する。
【０００８】
上記製造方法は、リン酸飢餓状態にある特定の乳酸菌株を高リン酸培地で培養することにより、乳酸菌によるポリリン酸の産生を顕著に促進（以下、「ポリリン酸産生促進効果」ともいう。）することが可能である。これによりポリリン酸を高収率で製造することができる。なお、このポリリン酸産生促進効果は、必ずしも全ての乳酸菌において奏されるものではなく、上記特定の乳酸菌を用いた場合に顕著に奏されるものである。
【０００９】
上記乳酸菌は、ポリリン酸の産生量がより高いことから、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種であることが好ましく、ラクトバチラス・パラカゼイ亜種パラカゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｐａｒａｃａｓｅｉ  ｓｕｂｓｕｐ．  ｐａｒａｃａｓｅｉ）に属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種であることがより好ましく、ラクトバチラス・パラカゼイ亜種パラカゼイＪＣＭ１１６３株（本明細書において、「ＳＢＣ８２０７株」ともいう。）であることが更に好ましい。
【００１０】
上記製造方法は、予備培養後の培地にリン酸又はその塩を添加する工程を備えることが好ましい。上記製造方法では、予備培養後に高リン酸培地への培地交換を行うことなく、予備培養後の培地にリン酸又はその塩を添加することによって、上記特定の乳酸菌によるポリリン酸の産生を顕著に促進することができる。リン酸又はその塩を添加する工程を備えることにより、予備培養後に培地交換することなく高リン酸培地で培養する工程へと進むこともでき、商業的規模での製造の際の製造コストをより一層低減することができる。
【００１１】
リン酸飢餓状態は、乳酸菌により利用可能なリン酸イオンが欠乏している状態を意味し、例えば、予備培養後の培地のリン酸イオン濃度が０．６ｍＭ以下になるまで予備培養することにより引き起こされる状態である。
【００１２】
高リン酸培地に含まれるリン酸イオンの初期濃度は、２５〜１０００ｍＭとすることが好ましい。リン酸イオンの初期濃度がこの範囲にあれば、ポリリン酸産生促進効果を充分に奏することができる。
【００１３】
また、高リン酸培地での培養は２〜２４時間行うことが好ましい。培養時間がこの範囲にあれば、ポリリン酸産生促進効果を充分に奏することができ、かつ培養時間が長時間に亘ることによるコンタミネーションリスクを充分に低減することができる。
【００１４】
上記製造方法により得られるポリリン酸は、例えば、飲食品、飲食品添加物、医薬品に含有させて利用することができる。
【００１５】
本発明はまた、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株、及びラクトバチラス・プランタルムに属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種の乳酸菌を予備培養し、上記乳酸菌をリン酸飢餓状態にする工程と、
リン酸飢餓状態の上記乳酸菌を、予備培養後の培地よりもリン酸イオン濃度の高い高リン酸培地で培養し、ポリリン酸蓄積乳酸菌を得る工程と、
上記ポリリン酸蓄積乳酸菌を飲食品又は飲食品原料に添加する工程と、を備える、プロバイオティクス飲食品の製造方法、及び該製造方法により得られるプロバイオティクス飲食品を提供する。
【００１６】
本発明のポリリン酸の製造方法では、高リン酸培地で培養する工程で乳酸菌に産生させたポリリン酸は、培地中へと分泌されることに加え、当該乳酸菌中に蓄積される。したがって、このポリリン酸蓄積乳酸菌を飲食品又は飲食品原料に添加することにより、ポリリン酸を高含有するプロバイオティクス飲食品を製造することができる。また、これにより得られるプロバイオティクス飲食品は、ポリリン酸を高含有するため、ポリリン酸による腸管バリア機能の増強効果等が期待できる。
【発明の効果】
【００１７】
本発明によれば、乳酸菌の単位菌体あたりのポリリン酸産生量が高く、高効率でポリリン酸を製造することができるポリリン酸の製造方法が提供される。また、本発明によれば、ポリリン酸を高含有するプロバイオティクスを含むプロバイオティクス飲食品、及びその製造方法が提供される。
【図面の簡単な説明】
【００１８】
【図１】各種乳酸菌によるポリリン酸産生試験の結果を示すグラフである。
【図２】各種乳酸菌によるポリリン酸産生試験の結果を示すグラフである。
【図３】各種培地におけるポリリン酸産生試験の結果を示すグラフである。
【図４】培地交換によるポリリン酸産生試験の結果を示すグラフである。
【図５】リン酸又はその塩の添加によるポリリン酸産生試験の結果を示すグラフである。
【図６】各種培地におけるリン酸又はその塩の添加によるポリリン酸産生試験の結果を示すグラフである。
【図７】各種リン酸イオン濃度におけるポリリン酸産生試験の結果を示すグラフである。
【図８】産生されたポリリン酸の分布解析の結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１９】
以下、本発明を実施するための形態についてより具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００２０】
〔ポリリン酸の製造方法〕
本発明のポリリン酸の製造方法は、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株、及びラクトバチラス・プランタルムに属する菌株からなる群より選択される少なくとも１種の乳酸菌を予備培養し、上記乳酸菌をリン酸飢餓状態にする工程（以下、「予備培養工程」ともいう。）と、リン酸飢餓状態の上記乳酸菌を、予備培養後の培地よりもリン酸イオン濃度の高い高リン酸培地で培養する工程（以下、「本培養工程」ともいう。）と、を少なくとも備える。また、予備培養後の培地にリン酸又はその塩を添加する工程（以下、「リン酸添加工程」ともいう。）を更に備えることが好ましい。
【００２１】
本発明の製造方法において用いられる乳酸菌としては、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株、又はラクトバチラス・プランタルムに属する菌株であればよい。これら菌株は１種を単独で用いてもよく、２種以上を組み合わせて用いてもよい。
【００２２】
ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株としては、例えば、ラクトバチラス・パラカゼイ亜種パラカゼイＪＣＭ１１６３等の菌株が挙げられる。
【００２３】
ラクトバチラス・プランタルムに属する菌株としては、例えば、ラクトバチラス・プランタルム亜種プランタルムＪＣＭ１１４９（以下、「ＳＢＣ８２５９」ともいう。）等の菌株が挙げられる。
【００２４】
乳酸菌としては、本発明の製造方法によってより多量のポリリン酸を産生することができるため、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株が好ましく、ラクトバチラス・パラカゼイ亜種パラカゼイに属する菌株がより好ましく、ラクトバチラス・パラカゼイ亜種パラカゼイＪＣＭ１１６３株が更に好ましい。
【００２５】
上述した菌株は、自然界から容易に分離でき、１６ＳリボゾームＤＮＡの塩基配列を調べることにより同定できる。また、理化学研究所等の細胞バンクから購入できる。
【００２６】
以下、各工程について詳細に説明する。
＜予備培養工程＞
リン酸飢餓状態は、乳酸菌により利用可能なリン酸イオンが欠乏している状態を意味し、例えば、乳酸菌を培養し、培地に含まれるリン酸イオン濃度を低下させることによりリン酸飢餓状態とすることができる。例えば、予備培養後の培地のリン酸イオン濃度が０．６ｍＭ以下になるまで予備培養することによりリン酸飢餓状態を引き起こすことができる。
【００２７】
ポリリン酸産生促進効果をより一層顕著にするとの観点から、上述の予備培養後の培地のリン酸イオン濃度は、０．５ｍＭ以下であることが好ましく、０．４ｍＭ以下であることがより好ましい。
【００２８】
予備培養工程では、リン酸イオンの初期濃度が低い培地を用いることが好ましい。これにより、乳酸菌をより早くリン酸飢餓状態にすることができ、予備培養工程での培養時間を短縮することができる。予備培養工程で用いる培地（以下、「予備培養用培地」ともいう。）のリン酸イオンの初期濃度としては、１０ｍＭ以下であることが好ましく、７．５ｍＭ以下であることがより好ましく、５ｍＭ以下であることが更に好ましい。
【００２９】
なお、本明細書において「リン酸イオン濃度」とは、リン酸二水素イオン（Ｈ２ＰＯ４−）、リン酸水素イオン（ＨＰＯ４２−）及びリン酸イオン（ＰＯ４３−）の合計濃度を意味する。
【００３０】
予備培養用培地としては、上記製造方法に用いる乳酸菌の種類に応じて、当該乳酸菌に適した培地を選択してよい。例えば、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株を用いる場合、公知のＭＲＳ培地、酵母エキスＲＢ２Ｐ培地（ＲＢ２Ｐ培地）、大豆ペプチドＨＫ培地（ＳＰ培地）等を選択することができる。また、ラクトバチラス・プランタルムに属する菌株を用いる場合、公知のＭＲＳ培地、ＲＢ２Ｐ培地、ＳＰ培地等を選択することができる。これらの中でもリン酸イオンの初期濃度が低いことから、ＳＰ培地を用いることが好ましい。また、上記ＭＲＳ培地、ＲＢ２Ｐ培地等からリン酸又はその塩の配合量を減少させた培地を用いてもよい。
【００３１】
予備培養工程における培養温度は、用いる乳酸菌の種類に応じて、当該乳酸菌に適した培養温度を選択すればよい。例えば、ＳＢＣ８２０７株を用いる場合、２０〜５０℃とすることができ、３０〜３７℃とすることが好ましい。
【００３２】
予備培養工程における培養時間は、乳酸菌をリン酸飢餓状態にするのに充分であればよく、予備培養用培地の種類及びリン酸イオンの初期濃度、用いる乳酸菌の種類等に応じて適宜設定することができる。例えば、ＳＢＣ８２０７株及びＳＰ培地を用いる場合、２〜２４時間とすることができ、４〜８時間とすることが好ましい。
【００３３】
＜本培養工程＞
本培養工程で用いる高リン酸培地は、予備培養後の培地よりもリン酸イオン濃度の高い培地であればよい。高リン酸培地に含まれるリン酸イオンの初期濃度は、２５〜１０００ｍＭであることが好ましく、２５〜７５０ｍＭであることがより好ましく、５０〜５００ｍＭであることが更に好ましく、１００〜４００ｍＭであることが更により好ましく、２００〜３００ｍＭであることが特に好ましい。
【００３４】
本培養工程における、高リン酸培地での培養時間は２〜２４時間であることが好ましく、２〜１０時間であることがより好ましく、２〜６時間であることが更に好ましい。
【００３５】
本培養工程における培養温度は、用いる乳酸菌の種類に応じて、当該乳酸菌に適した培養温度を選択すればよく、予備培養工程と同じであってもよい。例えば、ＳＢＣ８２０７株を用いる場合、２０〜５０℃とすることができ、３０〜３７℃とすることが好ましい。
【００３６】
予備培養工程後、例えば、遠心分離、濾過等により、乳酸菌と培地を分離し、分離した乳酸菌を高リン酸培地に再懸濁させてもよく、予備培養後の培地にリン酸又はその塩を添加してもよい（リン酸添加工程の実施）。ポリリン酸産生促進効果がより一層顕著になること、及び培養プロセスがより単純なものとなり、商業的規模での培養により適していることから、リン酸添加工程を実施することが好ましい。
【００３７】
＜リン酸添加工程＞
リン酸又はその塩としては、培地中でリン酸二水素イオン、リン酸水素イオン又はリン酸イオンを生ずるものであればいずれも用いることができる。リン酸塩として、具体的には、リン酸二水素カリウム、リン酸一水素カルシウム、リン酸二水素カルシウム、リン酸一水素ナトリウム等を用いることができる。リン酸又はその塩としては、リン酸二水素カリウムを用いることが好ましい。上述したリン酸又はその塩は、１種を単独で用いてもよく、２種以上を組み合わせて用いてもよい。
【００３８】
リン酸又はその塩は、添加により得られる高リン酸培地中のリン酸イオン濃度が上述の条件を満たすように添加される。リン酸又はその塩の溶液（例えば、水溶液）を添加してもよく、リン酸又はその塩の固形物を直接添加してもよい。
【００３９】
〔ポリリン酸〕
上記製造方法により得られるポリリン酸は、培養後の培地から回収するか、又は培養後の乳酸菌を破砕等して回収することができる。
【００４０】
ポリリン酸を精製する場合、サイズ排除クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、透析、塩析、硫安沈殿、沈殿、結晶化等、本技術分野で汎用されている精製方法を適宜組み合わせて行うことができる。
【００４１】
また、乳酸菌は古くから発酵食品に利用されており、生体への安全性が確立されている。したがって、上記製造方法により得られるポリリン酸を高含有する培養後の乳酸菌（ポリリン酸蓄積乳酸菌）をそのままポリリン酸として使用することができる。ポリリン酸蓄積乳酸菌は、生菌のまま使用してもよく、菌の粉砕物等として使用してもよい。
【００４２】
上記製造方法により得られるポリリン酸は、飲食品、飲食品添加物、医薬品、飼料成分、飼料添加物等に含有させて利用することができる。また、上記製造方法により得られるポリリン酸は、特定保健用食品、特別用途食品、栄養補助食品、健康食品、機能性食品、病者用食品等の成分として使用することもできる。
【００４３】
〔プロバイオティクス飲食品及びその製造方法〕
本発明のプロバイオティクス飲食品の製造方法は、上述のポリリン酸の製造方法により得られるポリリン酸蓄積乳酸菌を飲食品又は飲食品原料に添加する工程を備える。
【００４４】
上記ポリリン酸蓄積乳酸菌は、プロバイオティクスとしても使用することができるため、上記プロバイオティクス飲食品の製造方法により得られるプロバイオティクス飲食品は、蓄積したポリリン酸による作用に加え、フローラ（細菌叢）の健常化作用も有する。
【００４５】
プロバイオティクス飲食品の製造方法に用いる飲食品又は飲食品原料としては特に制限されないが、一般にプロバイオティクス飲食品に用いられているものが好ましい。具体的には、例えば、ヨーグルト、チーズ、味噌、醤油、漬物等を挙げることができる。
【実施例】
【００４６】
以下、本発明を実施例に基づいてより詳細に説明する。
【００４７】
〔試験方法〕
＜ポリリン酸の定量＞
培養液０．２〜１．０ｍＬを１５，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、菌体又は上清を回収した。これに３５０μＬの４Ｍグアニジンイソチオシアン酸（ＧＩＴＣ）（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ・ＨＣｌ（ｐＨ７．４）溶液）を加えて懸濁した。懸濁液を９０℃にて２分間加熱した後、３分間超音波処理することにより菌体を破壊した。５０μＬをタンパク質定量用に別のチューブに取り分けた後、再度９０℃にて２分間加熱した。懸濁液に３０μＬの１０％ＳＤＳ、３００μＬの１００％エタノールを加えボルテックスミキサーでよく混合し、９０℃にて２分間加熱した。３μＬ  のＧｌａｓｓ  ｍｉｌｋを加え懸濁した後、５分間室温で静置し、ポリリン酸をＧｌａｓｓ  ｍｉｌｋへ吸着させた。１５，０００ｒｐｍで１０秒間遠心分離し、上清を除いた後、３００μＬのＮＥＷ  ＷＡＳＨ液にて２回Ｇｌａｓｓ  ｍｉｌｋを洗浄した。Ｇｌａｓｓ  ｍｉｌｋに吸着したＤＮＡ、ＲＮＡを除去するために、Ｇｌａｓｓ  ｍｉｌｋに２０μｇ／ｍＬのＤＮａｓｅ、ＲＮａｓｅを加え、３７℃にて１５分以上静置しＤＮＡ、ＲＮＡを分解した。その後、１５０μＬのＧＩＴＣ及び１５０μＬのエタノールを添加し、ボルテックスミキサーでよく混合した。１５，０００ｒｐｍで１０秒間遠心分離し上清を除いた後、３００μＬのＮＥＷ  ＷＡＳＨ液にて２回Ｇｌａｓｓ  ｍｉｌｋを洗浄した。回収したＧｌａｓｓ  ｍｉｌｋに蒸留水１００μＬを加え、ボルテックスミキサーでよく混合した後、９０℃にて２分間加熱した。その後、１５，０００ｒｐｍにて３分間遠心分離した後、上清のポリリン酸抽出液を回収した。得られた抽出液に含まれるポリリン酸をポリリン酸キナーゼによりＡＤＰと反応させることでＡＴＰへ変換し、生じたＡＴＰを化学発光により定量した。ポリリン酸キナーゼ反応の組成を下記表１及び表２に示す。
【００４８】
【表１】
0005995164.tif 000002
【表２】
0005995164.tif 000003
【００４９】
＜リン酸イオン濃度の測定＞
希釈したサンプル１ｍＬに対して２００μＬのリン酸定量試薬（アスコルビン酸０．２６４ｇ，蒸留水４．５ｍＬ，５Ｎ  Ｈ２ＳＯ４  ７．５ｍＬ，酒石酸アンチモニルカリウム溶液（２．７４ｇ／Ｌ）０．７５ｍＬ，モリブデン酸アンモニウム溶液（４０ｇ／Ｌ）２．２５ｍＬ）を添加し、室温で１０分間以上静置した。８８０ｎｍでの吸光度を測定し、リン酸標準液の測定にて得た検量線から、サンプルのリン酸イオン濃度を測定した。
【００５０】
〔実施例１：各種乳酸菌によるポリリン酸産生試験〕
表３に示す各種乳酸菌株について、リン酸飢餓状態からのリン酸添加によるポリリン酸産生能を評価した。
【表３】
0005995164.tif 000004
【００５１】
表３に示す各種乳酸菌株を、表４に示すリン酸二水素カリウム非添加のＳＰ培地に５×１０７ＣＦＵ／ｍｌとなるように播種し、３７℃にて２４時間予備培養し、リン酸飢餓状態に誘導した。次いで、リン酸イオン濃度が５００ｍＭ増加するように、予備培養後の培地にリン酸二水素カリウム水溶液を添加した（０時間）。３７℃で２４時間本培養し、０時間、６時間及び２４時間後に培養液を一部回収し、菌体中のポリリン酸濃度を測定した。結果を図１及び２に示す。
【００５２】
図１は、ポリリン酸蓄積量（ｎｍｏｌ／ｍｇ）（菌体粉砕物に含まれる総タンパク質１ｍｇあたりのポリリン酸含有量（ｎｍｏｌ／ｍｇ−タンパク質））を示すグラフである。意外なことに、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株（８２０７）及びラクトバチラス・プランタルムに属する乳酸菌（８２５９）でのみポリリン酸蓄積量の顕著な増加が認められた。特に、ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株（８２０７）は、ポリリン酸蓄積量の絶対値も大きかった（図１）。
【００５３】
図２は、６時間及び２４時間でのポリリン酸蓄積量を、０時間でのポリリン酸蓄積量に対する比で表したグラフである。ラクトバチラス・パラカゼイに属する菌株（８２０７）及びラクトバチラス・プランタルムに属する乳酸菌（８２５９）でポリリン酸の蓄積が顕著に促進されていた。特に、ラクトバチラス・プランタルムに属する乳酸菌（８２５９）で、ポリリン酸産生促進効果が高かった（図２）。
【００５４】
〔実施例２：各種培地におけるポリリン酸産生試験〕
ＭＲＳ培地、ＲＢ２Ｐ培地、及びＳＰ培地を用い、ＳＢＣ８２０７株のポリリン酸産生能を試験した。ＭＲＳ培地、ＲＢ２Ｐ培地、及びＳＰ培地の組成を下記表４に示す。なお、ＲＢ２Ｐ培地及びＳＰ培地ではリン酸二水素カリウム非添加培地及び２ｇ／Ｌ添加培地を調製した。それぞれの培地のリン酸含量（リン酸二水素カリウム添加前）はＭＲＳ培地１５．７ｍＭ、ＲＢ２Ｐ培地２６．３ｍＭ、及びＳＰ培地１．２ｍＭであった。
【表４】
0005995164.tif 000005
【００５５】
ＳＢＣ８２０７株を上記各種培地で３７℃にて１２時間培養し、ポリリン酸蓄積量（ｎｍｏｌ／ｍｇ）（菌体粉砕物に含まれる総タンパク質１ｍｇあたりのポリリン酸含有量（ｎｍｏｌ／ｍｇ−タンパク質））を測定した。結果を図３に示す。
【００５６】
培地のリン酸イオン濃度が低い方がポリリン酸蓄積量が高い傾向があった（図３）。特に、リン酸非添加のＳＰ培地において最もポリリン酸蓄積量が高く、ＭＲＳ培地におけるポリリン酸蓄積量と比べて約２倍高かった（図３）。
【００５７】
〔実施例３：培地交換によるポリリン酸産生試験〕
ＳＢＣ８２０７株を、表４に示すリン酸二水素カリウム非添加のＳＰ培地で３７℃にて予備培養し、培地中のリン酸イオン濃度がほぼ０ｍＭに到達した後（約５時間）、遠心分離により菌体と予備培養後の培地を分離し、菌体を表４に示すＭＲＳ培地（予備培養培地と等量）に再懸濁した（０時間）。次いで、３７℃にて本培養した。定期的に菌体を回収し、ポリリン酸蓄積量（ｎｍｏｌ／ｍｇ）（菌体粉砕物に含まれる総タンパク質１ｍｇあたりのポリリン酸含有量（ｎｍｏｌ／ｍｇ−タンパク質））を測定した。また、同じサンプルについて、培地中のリン酸イオン濃度（Ｐｉ  ｃｏｎｃ．（ｍＭ））及び乳酸菌数（ＯＤ６００値）を測定した。結果を図４に示す。
【００５８】
実施例２の結果に示したようにリン酸非添加ＳＰ培地でのポリリン酸産生量は元々高いが、リン酸飢餓状態にあるＳＢＣ８２０７株を高リン酸培地に培地交換することにより（図４中、点線で示した時点）、ポリリン酸蓄積量の増加（オーバー・プラス効果）が認められた（図４）。
【００５９】
〔実施例４：リン酸又はその塩の添加によるポリリン酸産生試験〕
実施例３と同様にしてＳＢＣ８２０７株を予備培養し、リン酸飢餓状態に誘導した。次いで、培地中のリン酸イオン濃度が０ｍＭ、２０ｍＭ、１００ｍＭ及び５００ｍＭ増加するように、予備培養後の培地にリン酸二水素カリウム水溶液を添加し、３７℃にて本培養した。実施例３と同様に、ポリリン酸蓄積量（ｎｍｏｌ／ｍｇ）（菌体粉砕物に含まれる総タンパク質１ｍｇあたりのポリリン酸含有量（ｎｍｏｌ／ｍｇ−タンパク質））、培地中のリン酸イオン濃度、及び乳酸菌数を測定した。結果を図５に示す。
【００６０】
リン酸飢餓状態にあるＳＢＣ８２０７株にリン酸又はその塩を添加することにより（図５中、点線で示した時点）、培地交換した場合と同様、ポリリン酸蓄積量の増加（オーバー・プラス効果）が認められた（図５）。特に、リン酸イオン濃度が１００ｍＭ又は５００ｍＭ増加するように添加した場合に、極めて顕著にポリリン酸蓄積量が増加した（図５）。
【００６１】
〔実施例５：各種培地におけるリン酸又はその塩の添加によるポリリン酸産生試験〕
ＳＢＣ８２０７株を、表４に示すＭＲＳ培地、又は表４に示すリン酸二水素カリウム非添加のＳＰ培地で３７℃にて予備培養した。ＳＰ培地のリン酸イオン濃度がほぼ０ｍＭに到達した時点で、それぞれの培養液にリン酸イオン濃度が０ｍＭ、５０ｍＭ及び５００ｍＭ増加するように、リン酸二水素カリウム水溶液を添加し、３７℃にて本培養した。実施例３と同様に、ポリリン酸蓄積量（ｎｍｏｌ／ｍｇ）（菌体粉砕物に含まれる総タンパク質１ｍｇあたりのポリリン酸含有量（ｎｍｏｌ／ｍｇ−タンパク質））、培地中のリン酸イオン濃度、及び乳酸菌数を測定した。結果を図６に示す。
【００６２】
ＳＰ培地で予備培養したＳＢＣ８２０７株は、リン酸二水素カリウム水溶液の添加により（図６中、点線で示した時点）、ポリリン酸蓄積量の増加（オーバー・プラス効果）が認められた（図６）。一方、ＭＲＳ培地で予備培養したＳＢＣ８２０７株は、リン酸二水素カリウム水溶液の添加によるポリリン酸蓄積量の増加（オーバー・プラス効果）は認められなかった（図６）。１８時間の時点で、ＳＰ培地で予備培養した場合のポリリン酸蓄積量は、ＭＲＳ培地で予備培養した場合の約３．４倍にも達した。ＭＲＳ培地で予備培養したＳＢＣ８２０７株は、リン酸二水素カリウム水溶液を添加する時点で培地中のリン酸イオン濃度が高く、リン酸飢餓状態に到っていなかったためであると考えられる。
【００６３】
〔実施例６：各種リン酸イオン濃度におけるポリリン酸産生試験〕
培地中のリン酸イオン濃度が０ｍＭ、５ｍＭ、５０ｍＭ、１００ｍＭ、２５０ｍＭ及び５００ｍＭ増加するように、予備培養後の培地にリン酸二水素カリウム水溶液を添加したこと以外は、実施例４と同様にして、ポリリン酸蓄積量（ｎｍｏｌ／ｍｇ）（菌体粉砕物に含まれる総タンパク質１ｍｇあたりのポリリン酸含有量（ｎｍｏｌ／ｍｇ−タンパク質））、培地中のリン酸イオン濃度、及び乳酸菌数を測定した。結果を図７に示す。
【００６４】
５ｍＭではほとんどオーバー・プラス効果は認められなかったものの、５０ｍＭを超えるとオーバー・プラス効果が認められた（図７）。特に、２５０ｍＭで顕著なポリリン酸蓄積量の増加が認められた（図７）。
【００６５】
〔実施例７：産生されたポリリン酸の分布解析〕
８２０７株、８８４１株及び８８０３株を、Ｄｉｆｃｏ  Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｉ  ＭＲＳ  Ｂｒｏｔｈ（商品名：Ｂｅｃｔｏｎ，  Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ  ａｎｄ  Ｃｏｍｐａｎｙ社製）で３７℃にて、２４時間培養した。培養開始から１２時間後及び２４時間後に培養液を回収して、培養上清中のポリリン酸蓄積量（ｎＭ）、及び菌体中のポリリン酸蓄積量（ｎｍｏｌ／ｍｇ）（菌体粉砕物に含まれる総タンパク質１ｍｇあたりのポリリン酸含有量（ｎｍｏｌ／ｍｇ−タンパク質））を測定した。結果を図８に示す。
【００６６】
菌体内及び菌体外（培養上清）のポリリン酸蓄積量には、乳酸菌の種類によらず、連動性が認められた（図８（Ａ）及び（Ｂ））。図８（Ｃ）は、菌体内外のポリリン酸総量に対する菌体外ポリリン酸比を計算した結果である。ポリリン酸総量のうち約数％〜２０％弱程度のポリリン酸が菌体外に分泌されていた（図８（Ｃ））。すなわち、ポリリン酸総量のうち約８０％以上のポリリン酸が菌体内に蓄積されており、ポリリン酸蓄積乳酸菌それ自体をポリリン酸源として使用することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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