(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞が培養される培養面と、
前記培養面を複数の培養領域に仕切る仕切りと、
前記複数の培養領域の夫々に形成された、径が０．１８μｍ〜２０μｍの複数の突起と、
を有し、
前記複数の突起の少なくとも一部は、前記仕切り側に形成された前記突起の高さよりも、前記培養領域の中央側に形成された前記突起の高さの方が低くなるように形成される、
ことを特徴とする培養基材。
【請求項２】
細胞が培養される培養面と、
前記培養面を複数の培養領域に仕切る仕切りと、
前記複数の培養領域の夫々に形成された、径が０．１８μｍ〜２０μｍの複数の突起と、
を有し、
前記複数の突起における隣り合う前記突起同士のうち、前記培養領域の中央側に形成された突起の方が低くなるように形成される、
ことを特徴とする培養基材。
【請求項３】
前記培養面、前記仕切り、及び前記複数の突起は、一体に形成される、
ことを特徴とする請求項１または２記載の培養基材。
【請求項４】
前記培養面に接合される保持部材をさらに有し、
前記仕切りの高さは、前記複数の突起の高さよりも高く、且つ前記保持部材の側壁の高さ
よりも低い、
ことを特徴とする請求項１乃至３の何れか一項記載の培養基材。
【請求項５】
培養領域を形成する仕切りと、
前記培養領域に形成された、径が０．１８μｍ〜２０μｍの複数の突起と、
を有し、
前記複数の突起の少なくとも一部は、前記培養領域の辺縁側に形成された前記突起の高さよりも、前記培養領域の中央側に形成された前記突起の高さの方が低い、
ことを特徴とする培養基材。
【請求項６】
培養領域を形成する仕切りと、
前記培養領域に形成された、径が０．１８μｍ〜２０μｍの複数の突起と、
を有し、
前記複数の突起における隣り合う前記突起同士のうち、前記培養領域の中央側に形成された突起の方が低くなるように形成される、
ことを特徴とする培養基材。
【請求項７】
前記突起は、前記培養領域と一体に形成される、
ことを特徴とする請求項５または６記載の培養基材。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、培養基材を用いて動植物細胞を培養し、細胞の球状組織（三次元組織）、および単層組織（二次元平面組織）を形成する技術に関する。
【背景技術】
【０００２】
医薬品開発プロセスにおいて、動物実験に代わり、細胞を利用したイン・ビトロ（in vitro）アッセイが求められている。特に、薬剤候補物質のスクリーニング、毒性・代謝試験に応用する動きが活発になっている。
【０００３】
このような背景のもと、従来の動物実験に代わる、細胞を利用した代替法のアプローチは盛んに試みられてきたが、臨床反応を予測するには限界があるものが多い。これは、これらの培養法では、細胞が実際の生体内の構造を模擬した構造を取っていないためであると考えられている（非特許文献１）。したがって、より生体に近い機能を発揮する三次元組織の構築がこれまでに試みられており、さまざまな細胞種で三次元組織を形成することに成功している。
【０００４】
細胞の三次元組織を形成させるための基材として、極微細な均一突起が規則的に配列されたシート表面に形成された培養のためのシート（ナノピラーシート）が開発されているが、形成された三次元組織は、基材からの剥離性が高く（特許文献１）、培地交換の過程で失われるという問題がある。また形成された三次元組織の直径を制御することができないため、大きさが均一ではなく、それぞれの三次元組織の性能がばらつく、といった問題点をはらんでおり、実用的な形成法としては依然未熟である。
【０００５】
そこで、培養基材に微小なキャビティ構造を設けて、そのキャビティあたりにひとつの三次元組織を形成させる技術（細胞組織体マイクロチップ）がこれまでに開発されている（特許文献２、非特許文献２）。本技術ではキャビティ底面の中央付近に対し、接着性を有する物質を所定領域に塗布することにより、細胞接着領域と細胞非接着領域を規定し、キャビティそのものを回転駆動装置等により回転させ、回転培養を実行することで細胞接着領域たるキャビティ底面の中央付近に培養細胞が保持されることを特徴としている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開2005-312343号公報
【特許文献２】特開2006-121991号公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】”The Use of 3-D Cultures for High-Throughput Screening: The Multicellular Spheroid Model”  Leoni A. Kunz-Schughart, James P. Freyer, Ferdinand Hofstaedter, and Reinhard Ebner  J Biomol Screen, 9: 273-285 (2004)
【非特許文献２】”Orderly arrangement of hepatocyte spheroids on a microfabricated chip.” J Fukuda and K Nakazawa Tissue Eng, 11:1254-62 (2005)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
このような特長を持つ細胞組織体マイクロチップであるが、細胞を基材表面の特定部分に強制的に接着させるために、基材表面に化学的に合成された物質を塗布して細胞接着領域と細胞非接着領域を規定しなければならず、これによりいくつかの課題が挙げられる。
【０００９】
まず、塗布されたこれらの化学物質は細胞の成育に悪影響を及ぼす可能性があるばかりでなく、この操作は極微小な領域に化学物質を塗布ないし接着する必要があることから非常に煩雑な作業となり、製造コストもかかる。
また、播種された細胞が非接着領域に落ち込んだ場合、培養時の培地交換の際に培地と共に破棄され失われることが必至であり、効率的な培養方法とは言い難い。さらに接着領域に落ち込んだ細胞が回転培養により強制的に組織を形成させられるため、細胞に対するストレスがかかり活性の低下を招くことが懸念されている。
【００１０】
一方、従来のナノピラーシートにおいても、基材面上で細胞運動を制御することが困難であり、形成される三次元組織の大きさ・直径を制御することができないという問題がある。
【００１１】
本発明の目的は、培養基材の表面に化学物質を塗布することなく、直径の揃った三次元組織を形成させることを可能にする培養基材、培養シート、及びそれを用いた細胞培養方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
上記の目的を達成するため、本発明においては、細胞を培養する培養基材として、培養シートと、この培養シートを保持する培養シート保持部とを備え、培養シートは培養領域を有し、培養領域内に複数の突起が形成され、培養領域の周囲に培養領域を仕切る、突起よりも高い仕切りが形成された構成を提供する。
【００１３】
また、上記の目的を達成するため、本発明においては、細胞を培養する培養シートとして、複数の培養領域と、培養領域各々に形成された複数の突起と、培養領域各々を仕切る、突起より高い高さを有する仕切りを備えた培養シートを提供する。
【００１４】
更にまた、上記の目的を達成するため、本発明においては、培養基材を用いた細胞培養方法として、その内部に複数の突起を有し、その周囲に突起より高い仕切りを有する培養領域を複数備えた培養シートを用い、これら複数の培養領域に培養対象の細胞を播種することにより、培養領域各々で細胞の三次元組織を形成させる細胞培養方法を提供する。
【発明の効果】
【００１５】
本発明を適用することによって、単一素材のみを用い、細胞本来の機能である細胞運動を促して活性を維持したままストレスの少ない環境下での三次元組織形成を実現することができる。また、仕切りという限定領域を同一素材で一体的に設けることにより、その限定領域内に播種された細胞が全て一つの三次元組織形成に関わることになり、非常に効率的な培養方法であるばかりではなく、それぞれの限定領域毎に形成された複数の三次元組織の大きさが均一で、均質であり、細胞アッセイに有効であることが期待される。更に、目的に応じて二次元平面組織を形成させることも可能である。二次元平面組織に対しても同様の効果が期待される。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】第１の実施例に係わる、培養シートと培養シート内のホール構造を示す図である。
【図２】第１の実施例に係わる、ナノピラー構造を示す図である。
【図３】第１の実施例に係わる、培養シートを貼付したチャンバースライドを示す図である。
【図４】第２の実施例に係わる、プレート枠体の構成を示す図である。
【図５】第２の実施例に係わる、プレートと培養シートの超音波溶着フローを説明するための図である。
【図６】第３の実施例に係わる、肝細胞培養のフローチャートを示す図である。
【図７】第３の実施例に係わる、肝細胞培養フローによる培養シートによる肝細胞三次元組織写真を示す図である。
【図８】第４の実施例に係わる、二段階、多段階ナノピラー培養シートを示す図である。
【図９】各実施例のナノピラーの配列パターンの種類を示す図である。
【図１０Ａ】図９に示したピラー径が異なる培養シートを使用した場合の細胞培養結果(細胞の様子)を示す図である。
【図１０Ｂ】図９に示したピラー径が異なる培養シートを使用した場合の細胞培養結果(形成細胞数)を示す図である。
【図１１】培養シートの実施例の変形例である、傾斜ナノピラー培養シートを示す図である。
【図１２】培養シートの実施例の変形例である、表面張力回避パターン培養シートの１ウェルを示す図である。
【図１３（ａ）】本実施例における培養基材の外観斜視図、上面図、上下側面図を示す図である。
【図１３（ｂ）】本実施例における培養基材の部分拡大図であり、Ａ−Ａ，Ｂ−Ｂ部分拡大図と、Ｃ−Ｃ，Ｄ−Ｄ部分拡大図を示す図である。
【図１３（ｃ）】本実施例における培養基材の部分拡大図、及び端面図であり、Ｅ−Ｅ，Ｆ−Ｆ部分拡大図、Ｇ−Ｇ線端面図を示す図である。
【図１４（ａ）】本実施例における培養基材の外観斜視図、底面図を示す図である。
【図１４（ｂ）】本実施例における培養基材の上面図、上下側面図を示す図である。
【図１４（ｃ）】本実施例における培養基材の部分拡大図、部分断面図であり、Ａ−Ａ，Ｂ−Ｂ部分拡大図と、Ｃ−Ｃ，Ｄ−Ｄ部分拡大図と、Ｈ−Ｈ断面図を示す図である。
【図１４（ｄ）】本実施例における培養基材の部分拡大図、及び端面図であり、Ｅ−Ｅ，Ｆ−Ｆ部分拡大図、Ｇ−Ｇ線端面図を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
培養シートを用いて細胞を培養し、細胞塊である三次元組織、あるいは二次元平面組織の形成方法を実現するための最良の形態について、以下詳細に説明する。
【実施例１】
【００１８】
実施例１では、培養シートを培養シート保持部材であるチャンバースライドに適用した例を示す。以降、従来のナノピラーシートに対し、本発明における培養領域を形成する仕切り構造を有し、当該仕切構造の内部に突起物が複数形成されたシートを培養シートと記す。
当該培養シートは細胞に悪影響の無い材質で形成され、本例では、ポリスチレンとしている。ただし、材質はポリスチレンに限らないことは云うまでもない。
【００１９】
図１は本実施例で作成した培養シート１００の走査型電子顕微鏡写真の模式図である。また同時に、培養シート１枚あたりに複数個存在する仕切り構造により構成された孔１０４（以下、ホール）の一つの構造１０１を示す。当該孔１０４の内部が細胞組織形成単位での培養領域を構成する。
孔１０４の底面に保持されている複数の突起物１０２は、複数の微小突起物１０３（以下、突起、ピラー、ナノピラーともいう）からなる。また、この孔１０４の直径をホール径１０５とする。当該培養シート１００において、上記の仕切壁たるホール１０４と、当該ホール１０４の内部に形成されている複数の突起１０２とは同一材料で一体的に形成されている。なお、このホール１０２は、丸型形状に限定されるものでなく、四角形状等他の形状であっても良い。
【００２０】
このように細胞に悪影響の無い単一材料で、仕切であるホール１０４と当該ホール１０４の内部に形成されている複数の突起１０２とが一体的に培養シートとして形成されることにより、培養工程において細胞に異物が接着することなく細胞を成長させることができる。
さらに個々の仕切内において細胞が成長するため、均一な大きさの細胞を形成させることが可能となる。
【００２１】
また、囲み配置された仕切の内部に複数の突起を設けているので、細胞が本来保持している能力である細胞運動を促し、当該運動により成長することで、回転培養等による外乱(ストレス)の影響なく、細胞活性を維持した細胞培養が可能となる。
【００２２】
これらホール１０４と突起集合体１０２とを別体として培養領域を形成しようとすると、それらの接着、溶着による接合が必要となる。
例えばこれらを接着接合した場合には、培養領域の内部に接着剤成分が混入し、生成細胞に悪影響を及ぼす可能性がある。
また溶着接合では、ホール１０４の内径が細胞形成レベルの極微小領域径のため、目的とする細胞領域を形成しつつ、仕切、突起に損傷を与えずに溶着することはかなり困難である。当該仕切や突起に損傷、変形があると、細胞形成過程において細胞に不要なストレスを与えたり、細胞自身の運動に障害となる可能性がある。
【００２３】
従って、培養領域を形成するホール１０４と突起１０３とは一体的に形成されていることが望ましい。このように一体的に形成されることにより、細胞培養に必要な成分以外の不要成分の影響を排除した培養を実行することが可能となり好適である。
【００２４】
次に、突起１０３の拡大図を図２に示す。ピラー径とは突起物先端部の直径を示す（同図（a）の１０６）。ピラーピッチとは、突起物先端部の中心から、隣り合う突起物先端部の中心までの距離を示す（同図（a）の１０７）。ピラー高さとは、ナノピラーの先端部から底部までの高さを示す（図２の（b）の１０８）。
【００２５】
本実施例では、ピラー径、ピラーピッチ、ピラー高さはそれぞれ２．０μｍ、４．０μｍ、１．０μｍのものを使用したが、後述するように、これら以外の培養シートであっても構わない。本実施例では仕切り構造の高さは７０μｍであるが、この値に限らず、好適には形成される細胞が仕切りを乗り越えない程度の高さであれば良い。
【００２６】
本実施例における培養シート１００は以下に述べる方法で作製する。
直径２００μｍ、深さ７０μｍの円形の孔が正方配置され、その底面に直径２．０μｍ、深さ１．０μｍの微細孔が４．０μｍピッチで形成された金型を、４００μｍの厚さのポリスチレンフィルムに１３５℃、圧力２ＭＰａでプレスした。室温に冷却後にプレス装置より取り出し、金型をポリスチレンフィルムから剥離することにより、ホール径が２００μｍのホールを複数保持し、その底面に複数の突起を有した培養シートが作製できる。
【００２７】
ここで型材はシリコンウェハであり、培養シート作製時におけるポリスチレンフィルムとの接着を防止するため、フッ素系の離型剤により離型処理を予め施している。本実施例では型材をシリコンウェハとしたが、その他金属材料等の金型であっても構わない。
【００２８】
図３に示すように、このように単一素材で一体成型により作製された培養シート１００を、本例では２ｃｍ角にカットして、チャンバースライド１０９のガラス底面に手術用接着剤１１０を塗布して接着させることにより、培養シート１００が貼付されたチャンバースライド１０９を作製している。なお、図３において、１０９aは各培養シート１００を区分ける枠を示す。この枠１０９aは例えばプラスチック材などで形成される。なお、この枠１０９a等の枠体の形状は、四角形状に限らず、丸型形状等他の形状であっても良い。
【００２９】
図１３(ａ)〜図１３（ｃ）において、培養シートが貼付されたチャンバースライドの全体構成図及び要部断面図として示す。
図１３(ａ)は本実施例における培養基材の外観斜視図、上面図、上下側面図である。左右側面図は斜視図よりその形態が明らかであるため図示を省略する。
図１３(ｂ)は部分拡大図であり、Ａ−Ａ，Ｂ−Ｂ部分拡大図と、Ｃ−Ｃ，Ｄ−Ｄ部分拡大図を示すものである。
図１３(ｃ)は部分拡大図、及び端面図であり、Ｅ−Ｅ，Ｆ−Ｆ部分拡大図、Ｇ−Ｇ線端面図を示すものである。
【００３０】
図１３(ａ)〜図１３（ｃ）において示される当該物品は、人や動物や植物などの細胞を培養する培養其材（培養容器）で、培養シート１００と培養シート１００を保持する保持部(チャンバースライド)１０９とから構成されており、培養シート１００の表面には複数の仕切り部１０４が形成されており、保持部１０９に形成された筒状の穴部１０９ａの内部底面に設けられている。
【００３１】
更にその仕切り部の内部には複数の微細な突起部１０３を有する培養領域が夫々形成されている。仕切り部１０４内の培養領域を形成するシート面に添加されるように、培養する目的細胞を穴部１０９ａ内に対して添加すると、複数の微細な突起部１０２に保持されて当該目的細胞が培養されることになる。
【実施例２】
【００３２】
次に、第２の実施例を図４、図５に従い説明する。実施例２では培養シート付マルチウェルプレートの構成、及びその作製例を示す。図４の(a)はマルチウェルプレートを構成する枠体１１１の底面図である。培養シート保持部材である枠体１１１は、横幅約１２５ｍｍ、縦約８０ｍｍ、高さ約２０ｍｍの中に縦列に４穴、横列に６穴の計２４穴の筒状の穴部１１１ａが成型されたものである。素材はポリスチレンを用いている。
【００３３】
枠体に形成される穴の数は、通常６穴から１５３６穴まで、用途によって使い分けるため、この枠体も穴の数は２４穴に限定されない。また枠体の素材もポリスチレンに限定されるものではない。
【００３４】
当該培養基材の作製では、枠体１１１と培養シート１００を超音波溶着により接合させる。
【００３５】
枠体１１１には予め、以下の処理を施しておく。まず一つ目は、枠体１１１と培養シート１００を溶着させる際に与える超音波の振動で細胞培養シートとプレートがずれてしまうのを防ぐ目的で、枠体１１１の底面にフィルム固定用突起１１２を加工する。二つ目は、培養シートを超音波で溶着させるためにリブ構造１１３を設けておく。
【００３６】
図４の(b)、(c)は図４の(a)のＢ−Ｂ’、Ａ−Ａ’それぞれの断面図を示す。また、両者を重ねた際の同じ位置に、フィルム用固定突起が嵌るように培養シートに同じ径の穴１１４を設けておく。
続いてこの枠体と培養シート１００を超音波溶着により接着する。
【００３７】
その工程を図５に示す。まず枠体のフィルム固定用突起と培養シートの穴を合わせて、両者を重ねる（図５の５０a）。続いて、超音波発振器から、コンバータ、ブースタ、さらにはホーンを介して培養シート側から超音波を発生させ、両者を溶着する（図５の５０b）。ホーンとは、適切な位置に適切なエネルギーの超音波を当てて溶着させる装置であり、リブ構造の位置に沿って適切に超音波が発生されるように設計した専用装置を作製して使用した。１１５は、このようにして作製されたプレートの上面図を示している。
【００３８】
本実施例では超音波溶着を用いて枠体と培養シートを接合したがこの方法に限定されないことは言うまでもない。超音波溶着では細胞に影響を与える接着剤のような有機物の介在ないしにプレート化が実現できるため、細胞に対する悪影響がなく、新薬開発プロセスにおける毒性・代謝試験のみならず、再生医療向けの組織体形成においても適用可能な有用な培養シートであることは言うまでもない。
【００３９】
尚、実施例１において例示したチャンバースライド形状の培養基材においても、枠１０９ａの底部にリブ構造を複数個設け、当該リブ構造により培養シート１００との溶着を行うことで、本実施例と同様の接合方法による培養基材を作成できることは言うまでもない。
【００４０】
このようにして作成された培養基材において、枠体１１１ａの底面に形成された培養シート１００には、複数のホール１０４が形成され、当該ホール１０４底面に構成されている複数の突起物１０２は、複数の微小突起物１０３（以下、突起、ピラー、ナノピラーともいう）からなる。また、この孔１０４の直径をホール径１０５とする。当該培養シート１００において、上記の仕切壁たるホール１０４と、当該ホール１０４の内部に形成されている複数の突起１０２とは同一材料で一体的に形成されている。なお、このホール１０２は、丸型形状に限定されるものでなく、四角形状等他の形状であっても良い。
【００４１】
このように細胞に悪影響の無い単一材料で、仕切であるホール１０４と当該ホール１０４の内部に形成されている複数の突起１０２とが一体的に培養シートとして形成されることにより、培養工程において細胞に異物の影響を排除した細胞成長させることができる。さらに個々の仕切内において細胞が成長するため、均一な大きさの細胞を形成させることが可能となる。
【００４２】
また、囲み配置された仕切の内部に複数の突起を設けているので、細胞が本来保持している能力である細胞運動を促し、当該運動により成長することで、回転培養等による外乱(ストレス)の影響なく、細胞活性を維持した細胞培養が可能となる。
【００４３】
一方、これらホール１０４と突起集合体１０２とを別体として培養領域を形成しようとすると、それらの接着、溶着による接合が必要となる。
例えば接着で接合した場合には、培養領域の内部に接着剤成分が混入し、生成細胞に悪影響を及ぼす可能性がある。
【００４４】
また、溶着しようとすると、ホール１０４内部の径が細胞形成レベルで極微小領域径のため、目的とする細胞領域を形成しつつ、仕切、突起に損傷を与えずに溶着することはかなり困難である。
当該仕切や突起に損傷、変形があると、細胞形成過程において細胞に不要なストレスを与えたり、細胞自身の運動に障害となる可能性がある。
【００４５】
従って、培養領域を形成するホール１０４と突起１０３とは一体的に形成されていることが望ましい。このように一体的に形成されることにより、細胞培養に必要な成分以外の不要成分の影響を排除した培養を実行することが可能となり好適である。
【００４６】
ここで図１４(ａ)〜図１４（ｄ）において、本実施例の培養シート付マルチウェルプレートの全体構成図及び要部断面図を示す。
図１４(ａ)は本実施例における培養基材の外観斜視図、底面図を示すものである。
図１４(ｂ)は培養基材の上面図、上下側面図を示すものである。ここで、左右側面図は外観斜視図よりその形態が明らかであるため、図示省略する。
図１４(ｃ)は部分拡大図、部分断面図であり、Ａ−Ａ，Ｂ−Ｂ部分拡大図と、Ｃ−Ｃ，Ｄ−Ｄ部分拡大図と、Ｈ−Ｈ断面図を示すものである。
図１４(ｄ)は部分拡大図、及び端面図であり、Ｅ−Ｅ，Ｆ−Ｆ部分拡大図、Ｇ−Ｇ線端面図を示すものである。
【００４７】
図１４(ａ)〜図１４（ｄ）において示される当該物品は、人や動物や植物などの細胞を培養する培養其材（培養容器）で、培養シート１００と培養シート１００を保持する保持部（枠体）１１１とから構成されている。
【００４８】
培養シート１００の表面には複数の仕切り部１０４が形成されており、保持部１０９に形成された筒状の穴部１１１ａの内部底面に設けられている。
【００４９】
更にその仕切り部の内部には複数の微細な突起部１０３を有する培養領域が夫々形成されている。仕切り部１０４内の培養領域を形成するシート面に添加されるように、培養する目的細胞を穴部１１１ａ内に対して添加すると、複数の微細な突起部１０２に保持されて当該目的細胞が培養されることになる。
【００５０】
また、本例の培養基材は、枠体１１１の裏面から培養シートが溶着される例を示しており、保持部である枠体１１１と培養シート１００とは接合部１１１２を介して溶着されている。
当該接合部１１１２は穴部１１１ａの外部に設けられており、培養領域にはその溶着の影響がない。
したがって、本例では溶着を例示したが、当該接合方法に限らず、他の接合方法によっても培養領域自体に接合による影響を及ぼすことはないため、他の接合方法を採用することも可能である。
【００５１】
さらに、本例の基材は、当該枠体１１１が四角状の形態を成しており、その４つの頂点の内、少なくとも１点がカットされている。このカット面１１１３が形成されていることにより、培養を行う作業者が基材穴部の位置を特定しやすくなるという効果がある。
このカット面は必須ではなく、無くても良いことは云うまでもない。当該培養基材にはまた、滑止め１１１１が形成されており、作業中、作業者が不意に当該基材を揺動、落下等を防ぐことが出来る。
【実施例３】
【００５２】
実施例３では実施例１および２で作製した培養基材を利用した細胞の組織培養への適用例を示す。新薬開発において、生体機能を反映する三次元組織の構築は、動物実験に代わる細胞を利用した様々な評価に対して需要がある。
【００５３】
また、人工多能性幹細胞（Induced pluripotent stem cells：iPS細胞）や胚性幹細胞（Embryonic stem cells：ＥＳ細胞）を培養して目的の細胞に分化させる前には、三次元組織を形成しなければならないことから、再生医療分野においても三次元組織を簡便に構築する技術が望まれている。このような背景から、ここでは特にチャンバースライドを用いた三次元組織を形成させる例を示すが、マルチウェルプレートであっても細胞培養の本質的な部分は特に変わるところはない。本実施例ではラット肝細胞を用いた例を示すが、上述のように様々な動植物の細胞種に適用可能であり、特に細胞種は限定されない。
【００５４】
肝細胞の調製は、インサイチュ(in situ)コラゲナーゼかん流法にしたがう。詳しくは以下の通りである。Ｆｉｓｈｅｒ３４４系雄ラット（７〜１０週齢）を、ペントバルビタール麻酔下で開腹し、門脈にカテーテルを挿入して前かん流液（Ｃａ２＋とＭｇ２＋不含，ＥＧＴＡを含むハンクス液）を注入する。
【００５５】
同時に肝臓下部の下大静脈を切開して血液を放出させる。次に胸腔を開き、右心房に入る下大静脈を切開し、肝臓下部の下大静脈をかん止で止めてかん流を行なう。肝臓からの脱血が十分になされたことを確認した後にかん流を止める。かん流液をコラゲナーゼ溶液に換えて、かん流を行う。
【００５６】
本実施例では０．０５％コラゲナーゼを含むハンクス液を用いてかん流を行うが、この限りではない。細胞間組織がコラゲナーゼにより消化されたことを確認した後、かん流を止める。肝臓を切り離し、冷したハンクス液中で細切りし、ピペッティングにより細胞まで分散する。次いでガーゼろ過により未消化の組織を除去する。細胞懸濁液は、５０Ｇ、１分の遠心分離を数回繰り返して非実質細胞を除去する。次いで等張パーコール液を使用して５００Ｇ、５分の遠心分離で傷害のある肝細胞を除去する。得られた肝細胞の生存率はトリパンブルー排除法で計測し、生存率８５％以上の肝細胞を培養に使用する。ここでは、生存率８５％以上の肝細胞を培養に使用するが、必ずしも当該条件に限られるものではないことはいうまでもない。また、肝細胞の調製は必ずしもin situコラゲナーゼかん流法に限られるものではない。
【００５７】
このようにして得られた肝細胞を用いた培養のフローチャートを図６に示す。
【００５８】
図６のフローにおいて、まず、実施例１で作製したチャンバースライドタイプの培養シートに、Ｉ型コラーゲン１１６を塗布する。弱酸性溶液に溶解しているＩ型コラーゲンを所定の濃度まで滅菌水で希釈した希釈液の１−１．５ｍＬを上述のチャンバースライドに添加する（同図(a)）。次に、添加したＩ型コラーゲンをナノピラーシート１００に完全に吸着させるため、減圧操作を施す（同図(b)）。減圧操作は、減圧用容器１１７と減圧ポンプ１１８を用い、０．０４気圧以下で行う。減圧時間は特に限定されるものではないが、本実施例では１０分間行う。減圧に用いる装置構成は特に限定するものではない。ここで希釈液の所定濃度の範囲は１／１０６％（Ｗ／Ｖ）以上１／１０８％（Ｗ／Ｖ）以下である。必ずしも当該範囲に限定されるものではないが、当該は球状の三次元組織が形成されるのに好適な範囲である。最後に、余剰のＩ型コラーゲンを除き、ＰＢＳ（−）１１９を加える（同図(c)）。この操作を３回行い、余剰のＩ型コラーゲンを洗浄する。
【００５９】
上述の通りin situコラゲナーゼかん流法により調製した肝細胞１２０を培地１２１に
懸濁し、同じく上述の通り準備したＩ型コラーゲンを塗布したＮＰシートに播種する（同図(d)）。培地は特に限定されるものではないが、血清（ＦＣＳ）、インシュリン、デキザメタゾンを含んだ培地（以下、培地（１０％ＦＣＳ含む））を含むウィリアムズＥ培地を用いる。本実施例では、特に１０％ＦＣＳ、８．６ｎＭインシュリン、２５５ｎＭデキザメタゾンを含んだウィリアムズＥ培地を用いる。播種後、ＣＯ２インキュベータを用いて５％ＣＯ２、３７℃の条件下で培養を開始し、１８時間以上経過した後に、最初の培地交換を行い、以降２４時間毎に培地交換を行う。播種後１８時間目以降の培養に用いる培地は特に限定されるものではないが、本実施例では、培地（１０％ＦＣＳ含む）からＦＣＳを除いた培地（以下、培地（ＦＣＳ含まず））を用いる。
【００６０】
また、肝細胞の播種密度は、本実施例では１×１０5ｃｅｌｌｓ／ｍｌとしたが、この濃度に限定されない。ここで、培養に用いる培養シート１００は、ピラー高さ、ピラー径、ピラーピッチがそれぞれ１．０μｍ、２．０μｍ、４．０μｍのものを用いたが、この値に限らない。
【００６１】
また、培養シートに添加するＩ型コラーゲンの濃度は、本実施例では１／１０６％（Ｗ／Ｖ）としたがこれ以外の濃度であっても構わない。細胞の条件によってはこの濃度以外の濃度であってもスフェロイドが形成されるものもある。計９６時間培養し、三次元組織１２２が形成される（同図(e)）。ホール径が２００μｍの上述の培養シートを用いて実際に肝細胞を培養した結果の写真を図７に示す。図７から明らかなように、培養シート表面に特別な化学物質の塗布無しで、かつ細胞にとってストレスの少ない静置培養より、このように大きさの揃った球状の三次元組織が形成された。これは、本来保持している細胞の活性を失わせることがないと考えられるため、細胞アッセイ等に有効な培養方法である。
【実施例４】
【００６２】
図８に実施例４として、上述した培養シート１００の実施例の変形例を示す。まず、培養シート１２３は細胞の遊走性、接着性の違いをもたらす突起物の配列パターンを同図(a)のように、第一の配列パターン１２５bの周囲を第二の配列パターン１２５aで囲うように二段階に配置することにより、第一の配列パターン１２５b上（例えばホールの中心近傍）に三次元組織あるいは二次元平面組織を形成させる例を示す。なお、１２４は先の実施例同様、ホールを示す。点線は、パターンの境界を示している。
【００６３】
またホール１２４内の中央部に限らず、同図(b)の培養シート１２６のように配置することにより、例えば４箇所の第一の配列パターン１２７ｂを第二の配列パターン１２７aで囲むことで、第一の配列パターン１２７ｂ上に大きさの揃った組織を形成させることもできる。このように、ピラー径、ピラーピッチ、配置パターンの組み合わせは、目的に応じて最適なパターンを配置し、培養することが可能となる。同様に、同図(c)は、配列パターンを多段階パターン１２９ｃ、１２９b、１２９aのとした培養シート１２８を示す。
【００６４】
続いて、図９を用いて、上述した実施例における突起物の配列パターン(以下、ピラーパターン)の種類を説明する。図９に示すように、１１種の配列パターンを例示した。同図より明らかなように、ピラー径とピラーピッチがそれぞれ０．１８〜２０．０μｍ、０．３６〜４０．０μｍの１１種であるが、これに限定されるものではない。これらのピラーパターンの下で培養した肝細胞の一例を図１０Ａ、１０Ｂに示した。
【００６５】
尚、ピラーパターンの無いフラット平面下での培養では、培養途中における培地交換の際に多数の細胞が培地と共に排出されてしまうため、所望とする培養細胞を効果的に取得することはできない。このため、図１０Ａでは図示をしていない。
【００６６】
図１０Ａはピラー径に対して２倍のピッチの培養シート１００を用いて培養を行ったときの細胞の様子を示す図である。この結果、ピラー径が０．１８μｍ、０．５μｍ、１．０μｍにおいては、球状ではない平坦な組織が基材底面に接着している一方、２．０μｍ、５．０μｍでは基材に対して球状をした三次元組織が形成されていた。
【００６７】
また２．０μｍ、５．０μｍの基材において形成された球状細胞について比較してみると、２．０μｍ基材の方が細胞が基材に接着しており、安定な状態であることが分かった。即ち、細胞接着性に関しては、ピラー径が大きいほど、低接着性を示し、細胞による移動が促進されていることがわかる。
【００６８】
図１０Ｂでは、各ピラー径におけるシートで形成された肝細胞の３次元組織（スフェロイド：spheroid）の数について、その形成される直径毎に纏めた結果を示す図である。シート面積は４平方ｃｍ(２ｃｍ×２ｃｍ)である。
【００６９】
肝細胞の三次元組織においては、創薬分野における動物実験に替わる薬剤スクリーニング，毒性・代謝試験を目的とした細胞アッセイにおいて、５０−１００ミクロン径である細胞が好ましく、本例においてはピラー径が２．０μｍ基材の場合において当該サイズの細胞形成数が最も多く好適であることがわかる。
【００７０】
しかし、上記の検討の下では、５０−１００ミクロン径である細胞を形成するためにピラー径が２．０μｍの場合が好ましいとしたが、これに限るものではなく、本検討において使用した全てのピラー径において、ピラーの形成されていないフラットな状態に比して、形状の安定した細胞が数多く形成されることがわかった。このように、ピラーパターンの違いにより、自在に細胞、あるいは細胞から形成される組織の形態、あるいは基材への接着性を変化させることができる。
【００７１】
上述の結果を応用し、図８の実施例で説明したように、ピラー径(ピラーピッチ)の小さい第一の配列パターンの周囲を、ピラー径(ピラーピッチ)の大きい第二の配列パターンで囲うように二段階で配置したり、あるいは多段階に配置することにより、細胞接着性及び細胞自身の運動特性を利用して、ホール内の目的の位置に、目的の形状の組織を形成させることが可能になる。
【００７２】
また、同一サイズのピラー径をもつナノピラーの高さを、ホールの辺縁部から中心部に向かって下げていくことにより、傾斜するように段階的に高さに差異を設けて、重力により中心部に集めるように細胞の運動を促し、組織を形成させることも可能である。図１１の(a)に段階的にナノピラーの高さに差異を設けた変形例である培養シート１３０を示した。この際、通常のＵ字型の培養容器と異なり、ピラーが存在することにより、細胞が中央に保持される効果がある。さらに、同図（ｂ）の培養シート１３１のように、傾斜の中でもピラー直径に違いを設けて、上述の効果を促進させることも可能となる。
【００７３】
図１１の変形例では、傾斜が滑らかになるように段階的に高さを変化させているが、階段状に順次高さに変化を持たせる構成としてもよい。
【００７４】
また、複数のホールが集合して培養面を形成するが（チャンバースライドの場合は四角形状、プレートの場合は丸型形状）、培養する際には表面張力の影響により、培養面中央部と辺縁部では三次元組織のでき方に違いが生じる。すなわち、培養面中央部では三次元組織が形成されているにもかかわらず、辺縁部では表面張力により当該部分の培地量が増え、酸素供給量が低下し、あるいは高い水圧がかかるといった理由により、三次元組織が形成されない事態が生じる可能性がある。この現象を回避するために、図１２の(a)、(b)に示すような培養面の中央部にのみホール構造を保持した培養シート１３２、１３３を作製するようにしてもよい。
【００７５】
このように培養シートを形成することにより、培養効率が高く、かつ製造負荷の少ない培養基材を達成することが出来る。
【産業上の利用可能性】
【００７６】
本発明は、外的な力を与えることなく、所望の位置に接着させながら三次元組織、あるいは二次元平面組織を、形成させることが可能な培養基材として有用である。この培養基材によって得られた組織は、創薬分野における動物実験に替わる薬剤スクリーニング，毒性・代謝試験を目的とした細胞アッセイ、さらには再生医療向け三次元組織形成基材として適用される。
【符号の説明】
【００７７】
100,123,126,128,130,131,132,133…培養シート
101,124…ホール
102…突起物集合体
103…突起物
104…仕切り
105…ホール径
106…ピラー径
107…ピラーピッチ
108…ピラー高さ
109…チャンバースライド
110…手術用接着剤
111…枠体
111a…枠体に形成された穴部
112…フィルム固定用突起
113…リブ構造
114…培養シート穴
115…細胞培養プレート
116…Ｉ型コラーゲン溶液
117…減圧用容器
118…減圧用ポンプ
119…洗浄用生理食塩水（ＰＢＳ（−））
120…培地
121…肝細胞
122…肝細胞スフェロイド
125a,125b,127a,127b,129a,129b,129c…突起物配列パターン
1111…滑止め部
1112…接合部
1113…カット面。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０Ａ】
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【図１０Ｂ】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３（ａ）】
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【図１３（ｂ）】
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【図１３（ｃ）】
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【図１４（ａ）】
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【図１４（ｂ）】
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【図１４（ｃ）】
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【図１４（ｄ）】
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