(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
複数のチャンネルを有する沈降セトラー(2);および
沈降セトラー(2)の下側に設置されかつ沈降セトラー(2)と流体連通している収集容器(3)であって、受け入れチャンバー(4)の底部にあるかまたは該チャンバー底部に隣接する出口(5)を有しかつ出口(5)の上に流入入口開口部(6)を有する受け入れチャンバー(4)を形成する、収集容器(3)
を備える、分離装置(1)であって、
流入入口開口部(6)は、沈降セトラー(2)の下端部(22)と同じ、分離装置(1)の垂直高さレベルに位置するか、または沈降セトラー(2)の下端部(22)よりも下に位置し、
収集容器(3)は、入口開口部(6)を通過した後に受け入れチャンバー(4)内の流体流入の流れ方向が沈降セトラー(2)の該チャンネルの方向と実質的に同一直線上になるように配置され、かつ、
収集容器(3)が流入偏向要素(7)を備える、分離装置(1)。
【請求項２】
収集容器(3)内の流体の滞留時間が短くなるように偏向要素(7)が適合されている、請求項1記載の分離装置。
【請求項３】
流入偏向要素(7)が入口開口部(6)にまたは入口開口部(6)の近くに位置する、請求項1または2記載の分離装置。
【請求項４】
偏向要素(7)が、入口開口部(6)を通過した後の流体の流入を下向きに偏向するように形成および配置されている、請求項1〜3のいずれか一項記載の分離装置。
【請求項５】
受け入れチャンバー(4)の底部に向かって水平断面積が減少するように、受け入れチャンバー(4)の壁(41)が湾曲している、請求項1〜4のいずれか一項記載の分離装置。
【請求項６】
最初に下向きに偏向された流入が沈降セトラー(2)に向かって上方にさらに導かれるように、偏向要素(7)の配置および形状ならびに受け入れチャンバー(4)の湾曲が互いに対して適合されている、請求項5記載の分離装置。
【請求項７】
流入偏向要素(7)がバッフルプレートである、請求項1〜6のいずれか一項記載の分離装置。
【請求項８】
前記バッフルプレートが、前記入口開口部を通る流入方向軸を含む第2の想像上の垂直面(V2)と直角をなす第1の想像上の垂直面(V1)に対して傾斜して配置される、請求項7記載の分離装置。
【請求項９】
前記バッフルプレートが、水平線(H1)に沿った第1の想像上の垂直面(V1)と交差するように傾斜している、請求項8記載の分離装置。
【請求項１０】
前記バッフルプレートの傾斜(α)が沈降セトラー(2)の前記チャンネルの傾斜(α')と同じである、請求項9記載の分離装置。
【請求項１１】
前記バッフルプレートが、前記入口開口部に最も近い沈降セトラー(2)の下端部(22)において沈降セトラー(2)の下端(21)の伸長部として延長している、請求項7〜10のいずれか一項記載の分離装置。
【請求項１２】
前記バッフルプレートが、入口開口部(6)上方の収集容器(3)の内壁と接続されている、請求項7〜10のいずれか一項記載の分離装置。
【請求項１３】
流入入口開口部(6)を通過した後の流体流入の方向が沈降セトラー(2)の方向(α')と平行になるように入口開口部(6)が配置されているか、または、入口開口部(6)を通る流入方向軸を含む想像上の垂直面(V2)において見た場合に、入口開口部(6)を通る流体流入の方向が沈降セトラー(2)の方向(α')から+/-10°それている、請求項1記載の分離装置。
【請求項１４】
前記流入を回転させるために、入口開口部(6)の上流に設けられた旋回要素(600)をさらに備える、請求項1〜13のいずれか一項記載の分離装置。
【請求項１５】
前記旋回要素が、1つまたは複数の羽根(601〜606)を備えるローターである、請求項14記載の分離装置。
【請求項１６】
沈降セトラー(2)が、間に複数の沈降チャンネルを形成する複数のプレート(231、...、23n)を備える、前記請求項1〜15のいずれか一項記載の分離装置。
【請求項１７】
第1の発酵槽、
第1の発酵槽の下流に位置する請求項1〜16のいずれか一項記載の分離装置(1)、および
該分離装置の下流に位置する、少なくとも1つの第2の発酵槽
を備える、システム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
発明の分野
本発明は、分離装置および分離装置の使用、例えば、懸濁液から懸濁細胞を連続分離するプロセス、例えば、シードトレイン発酵における分離装置の使用に関する。従って、本発明は、懸濁細胞または懸濁細胞株の培養に関する。
【背景技術】
【０００２】
発明の背景
当技術分野において、懸濁液中の高い生細胞濃度を実現し、高度にグリコシル化されたポリペプチドおよびタンパク質のような感受性の高い生成物を取り出すために、沈降セパレータが公知である。あるプロセスでは、垂線から傾いており、長くかつ細い複数のチューブまたはチャンネルを備える沈降セトラーが用いられる。大きな細胞は、セトラーの上方を向いている面の上に沈降させることによって懸濁液から取り出される。上方を向いている面の上に大きな細胞は薄い沈降層を形成し、薄い沈降層は滑り落ちて、沈降セトラーの下側に設置された容器の底部に収集される。このような沈降セパレータの一例をWO03/020919（特許文献1）に示した。
【０００３】
このような沈降セパレータを用いた場合、管理されていない条件下で、例えば、外部ループの中にある十分に管理されているバイオリアクターの外で細胞および生成物が維持される時間をできるだけ短くするために、従って、細胞損傷および細胞に対する生成物損傷をできるだけ短くするために、分離装置内での細胞の滞留時間を短くすることが常に望ましい。この観点から、可能な限り小さな収集容器を有することが必要である。他方で大量処理が望ましく、これは流入体積またはフロースルーを増やすことによって得ることができる。他方で、これは、収集容器内での流れの望ましくない乱れを伴うことがあり、細胞の沈降挙動に良くない影響を及ぼすことによって、また、プロセス性能に悪影響を及ぼすことによってドエルタイム(dwell time)の増大につながる可能性があるので不利である。
【０００４】
哺乳動物懸濁細胞を大規模高密度灌流培養するための細胞捕捉法の可能性は、Voisard, D., et al. (Biotechnol. Bioeng. 82 (2003) 751-765（非特許文献1）)によって報告された。2010年に、Chary, S.は、接種トレインにおける細胞培養灌流操作によって高い力価および高い稼働率(run-rate)を実現したことを報告した(BioProduction Conference, 2010, Barcelona, Spain（非特許文献2）)。
【０００５】
DE-A-36 19 926（特許文献2）は、固体粒子の沈澱汚染物質を含有する液体を処理するための装置について述べている。この装置は、液体が流れることができ、かつ液体フィードおよび出口連結部を有する少なくとも1つのチャンバーを備え、液体を分離チャンバーに導くためのガイド面が設けられている。特許文献2の図2は、主に、水および油から固体粒子を除去するように設計された据え置き型セパレータを示す。セパレータは、沈澱チャンバーを収容するハウジングを備える。汚染水は汚染水サプライを通過し、分離前チャンバーの中に入る。沈澱全体を通して、重力の力によって成分が分離するように低流速が調整される。油の一部は、既に上部にある分離前チャンバーの中に集まり、油ドレンを通って排出することができる。固体の一部は分離前チャンバーの底部に沈み、沈澱チャンバーまで落ちる。次いで、前処理された水はディバイダーの包みを通って低流速で上方に流れる。
【０００６】
EP-A-0 003 146（特許文献3）は、中に入っている水溶性および水不溶性の軽い物質、例えば、油を分離するための装置を開示する。この装置は、水および物質の混合物を受け入れるためのリザーバー、ならびにリザーバーの中に配置され、かつチャンネル壁によって束ねられた複数の連続し、並列した傾斜分離チャンネル、入口チャンバー、入口チャンバーの中から外へ出て、図の面に対して直角に混合物を分配する混合物入口開口部、入口チャンバーと連絡している供給チャンバー、物質出口、層限界センサー、オーバーフロー周辺部を有するオーバーフロー、オーバーフローと連絡している水出口、および軽い物質のための収集空間からオーバーフローを分離するスクリーンを備える。分離チャンネルのアセンブリは、リザーバーの供給チャンバーと出口チャンバーとの間に配置される。混合物は投与部材を通り、ミキサーを通って混合物入口に流れる。投与部材の中では凝集促進化学物質が混合物に添加される。望ましい凝集は供給チャンバーの中で生じる。
【０００７】
従って、特許文献2および特許文献3において、混合物が分離プレートに入る前に、混合物の流れ方向は、分離プレートの上端から分離プレートの下端まで分離プレートと平行である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】WO03/020919
【特許文献２】DE-A-36 19 926
【特許文献３】EP-A-0 003 146
【非特許文献】
【０００９】
【非特許文献１】Voisard, D., et al., Biotechnol. Bioeng. 82 (2003) 751-765
【非特許文献２】Chary, S., BioProduction Conference, 2010, Barcelona, Spain
【発明の概要】
【００１０】
本発明の目的は、細胞の滞留時間が短く、同時に分離効率を損なわない沈降装置を提供することである。
【００１１】
この目的は、添付の特許請求の範囲の特徴によって達成される。
【００１２】
第1の局面によれば、本発明は、沈降セトラーおよび収集容器を備える分離装置を提供する。収集容器は沈降セトラーの下側に設置され、また、沈降セトラーと流体連通している。収集容器は、チャンバー底部にある、またはチャンバー底部に隣接する出口を有し、入口開口部を有する受け入れチャンバーを形成する。1つの態様において、収集容器は1つの入口開口部を有する。収集容器は、沈降セトラーの下側の領域における流体の流れ方向が沈降セトラーのチャンネルの方向と実質的に同一直線上になるように配置される。
【００１３】
流入入口開口部は、好ましくは、沈降セトラーの下端部と同じ、分離装置の垂直高さレベルに、またはそれより下に位置する。下記の第1の態様において、流入入口開口部は、好ましくは、沈降セトラーの下端部より低い垂直高さレベルに位置する。他方で、下記の第2の態様において、流入入口開口部は、好ましくは、沈降セトラーの下端部と同じ、分離装置の垂直高さレベルに位置する。このような配置を用いた場合、収集容器への流入は沈降セトラーの下端部の下側において、高くても沈降セトラーと同じ垂直レベルで生じる。
【００１４】
第1の局面の第1の態様によれば、本発明は、沈降セトラーおよび収集容器を備える分離装置を提供する。収集容器は沈降セトラーの下側に設置され、また、沈降セトラーと流体連通している。収集容器は、チャンバー底部にある、またはチャンバー底部に隣接する出口を有し、入口開口部を有する受け入れチャンバーを形成する。1つの態様において、収集容器は1つの入口開口部を有する。入口開口部は、収集容器の直立した側壁に位置してもよい。さらに、収集容器は流入偏向要素を備える。
【００１５】
1つの態様によれば、入口は沈降セトラーの下端部より低い。本発明はまた、沈降セトラーのプレートが収集容器まで達していないことも含む。
【００１６】
本発明の好ましい態様によれば、単一の流入偏向要素が設けられる。
【００１７】
偏向要素は、収集容器中の粒子の滞留時間もしくはドエルタイム、および/または水力学的ドエルタイム(hydraulic dwell time)、例えば、細胞懸濁液の水力学的ドエルタイムが、例えば、偏向要素のない収集容器を有する分離装置と比較して短くなるように適合される。特に、収集容器および偏向要素のサイズは、収集容器中の流体の滞留時間またはドエルタイムが、偏向要素のない収集容器を有する分離装置と比較して短くなるように互いに対して適合される。
【００１８】
一態様によれば、流入偏向要素は入口開口部に、または入口開口部の近くに位置する。さらに、偏向要素は、入口開口部を通る液体または流体の流入の大半を下向きに偏向するように形成および配置されることが含まれる。入口開口部が収集容器の直立した側壁に位置する場合、一般的に、受け入れチャンバーへの液体または流体の流入は、ある程度、重力によって、受け入れチャンバーの底部に向かって流れる。本発明による偏向要素は、細胞に悪影響を及ぼすことなく、例えば、剪断力によって細胞に悪影響を及ぼすことなく、収集チャンバーの底部に向かう方向への流入の制御された偏向を提供する。従って、偏向要素は、液体の流れが、重力によって導かれる自然の経路に沿って流れないようにし、液体の流れの方向を下向きに変えるように促す。これらの措置のそれぞれによって、前記のように、収集容器中の粒子の滞留時間もしくはドエルタイムおよび/または水力学的ドエルタイム、例えば、細胞懸濁液の水力学的ドエルタイムが短くなる。
【００１９】
受け入れチャンバーの底部に向かって水平断面積が減少するように、受け入れチャンバーの壁は湾曲していてもよい。例えば、受け入れチャンバーは逆円錐もしくは切断された円錐の形状を有する、またはカップの形もしくはボウルの形をしている、すなわち、体積の最適化を可能にする湾曲した内壁を有する。
【００２０】
最初に下向きに偏向された流入が沈降セトラーに向かって上方にさらに導かれるように、偏向要素の配置および形状ならびに受け入れチャンバーの湾曲は互いに対して適合されてもよい。従って、流入は、入口開口部に隣接して下向きに偏向され、次いで、受け入れチャンバーの内壁の湾曲または形状によって、さらに下向きに導かれるが、次いで、容器の円錐またはカップのような形状に従い、上向きに、かつ沈降セトラーに向かって導かれる。
【００２１】
流入偏向要素は、好ましくは、バッフルプレートである。バッフルプレートは、第1の想像上の垂直面に対して傾斜して配置され、第1の想像上の垂直面は、入口開口部を通る流入方向軸を含む第2の想像上の垂直面と直角をなす。1つの態様によれば、バッフルプレートは、水平線に沿った第1の想像上の垂直面と交差するように傾斜している。バッフルプレートの傾斜は沈降セトラーの傾斜と同じであることがさらに好ましい。このような配置によって、収集容器中の粒子の滞留時間もしくはドエルタイムおよび/または水力学的ドエルタイムが短くなる。
【００２２】
さらなる態様によれば、バッフルプレートは、入口開口部に最も近い沈降セトラーの下端部において沈降セトラーの下端の伸長部として延長している。または、バッフルプレートは、入口開口部上方の収集容器の内壁と接続される。このような配置によっても、収集容器中の粒子の滞留時間もしくはドエルタイムおよび/または水力学的ドエルタイムが短くなる。
【００２３】
第1の局面の第2の態様によれば、本発明は、沈降セトラーおよび収集容器を備える分離装置を提供する。収集容器は沈降セトラーの下側に設置され、また、沈降セトラーと流体連通している。収集容器は、チャンバー底部にある、またはチャンバー底部に隣接する出口を有し、入口開口部を有する受け入れチャンバーを形成する。さらに、入口開口部を通る流体流入の方向が沈降セトラーの方向と平行になるように、流入入口開口部は配置される。さらに広い意味では、入口開口部を通る流入方向軸を含む想像上の垂直面において見た場合に、入口開口部を通る流体流入の方向は沈降セトラーの方向から+/-10°それている。言い換えると、入口開口部を通る流入チャンネルは沈降セトラーと同じように傾斜している。このような配置によって、収集容器中の粒子の滞留時間もしくはドエルタイムおよび/または水力学的ドエルタイムが短くなる。
【００２４】
本発明はまた、本発明の第1の局面の第1の態様および第2の態様の組み合わせを含む。
【００２５】
さらなる態様によれば、分離装置は、入口開口部の上流において、流入の方向を制御し、流入の速度を小さくするための手段を備える。1つの態様において、この手段は周辺装置手段である。この手段は、例えば、当業者に公知のフローディストリビュータまたは流速の減速装置でもよい。
【００２６】
沈降セトラーは複数のプレートを備え、複数のプレートの間に複数の沈降チャンネルが形成される。好ましくは、沈降セトラーのプレートまたは沈降セトラー全体は上部から収集容器まで届かない。すなわち、分離装置は、1つのモジュールとして収集容器を有し、別個のかつ独立した別のモジュールとして沈降セトラーを有するモジュール方式で提供される。これにより、他のモジュールに関係なく、他のモジュールと独立して、個々のモジュール(例えば、他の寸法を有する)を独立して交換することができる。
【００２７】
第2の局面によれば、本発明は、沈降セトラーおよび収集容器を備える分離装置を提供する。収集容器は沈降セトラーの下側に設置され、また、沈降セトラーと流体連通している。収集容器は、チャンバー底部にある、またはチャンバー底部に隣接する出口を有し、入口開口部を有する受け入れチャンバーを形成する。入口開口部は、好ましくは、収集容器の直立した側壁に位置する。分離装置は、入口開口部の上流において、流入の方向を制御し、流入の速度を小さくするための手段をさらに備える。
【００２８】
本発明によれば、第2の局面による入口開口部の上流において、流入の方向を制御し、流入の速度を小さくするための手段の提供は、第1の局面の第1の態様および/または第2の態様と組み合わされてもよい。
【００２９】
以前に概説された局面の1つの態様において、分離装置の分離面積対分離体積比は50m2/m3〜60m2/m3である。別の態様において、体積フロースルーは5/日未満である。1つの態様において、沈降装置の体積フロースルーは500L/日〜3000L/日である。
【００３０】
収集容器の体積は1〜20m3でもよい。
【００３１】
本発明の第3の局面は、第1の発酵槽、第1の発酵槽の下流に位置する本発明の局面のいずれか1つによる分離装置、および少なくとも、分離装置の下流に位置する第2の発酵槽を備える、システム、特に、シードトレインシステムに関する。1つの態様において、第2の発酵槽には、細胞5*105個/ml〜細胞50*105個/mlの接種細胞密度で接種される。
【００３２】
本発明のさらなる局面は、第1の発酵槽の上流に位置する第1の発酵槽および少なくとも、分離装置の下流に位置する第2の発酵槽を備える、シードトレインシステムにおける本発明による分離装置の使用に関する。1つの態様において、第2の発酵槽には、細胞5*105個/ml〜細胞50*105個/mlの接種細胞密度で接種される。
【００３３】
本発明を用いると、最小限の滞留時間を確保し、同時に、十分に大きな体積流量および分離効率を有する点で、同等に小さな体積の収集容器を有する分離装置を提供することができる。偏向要素によって、装置における滞留時間に不利益にならない、沈降セトラーに向かう懸濁液の制御された流れが得られる。沈降セトラーの下側の領域にある収集容器に入った後の懸濁液の流れ方向が沈降セトラーのチャンネルの方向と実質的に同一直線上になるように、細胞懸濁液の流れは偏向要素によって偏向される。
【００３４】
以下に、本発明の基本的な諸特徴および種々の態様を列挙する。
［１］
複数のチャンネルを有する沈降セトラー(2);および
沈降セトラー(2)の下側に設置されかつ沈降セトラー(2)と流体連通している収集容器(3)であって、受け入れチャンバー(4)の底部にあるかまたは該チャンバー底部に隣接する出口(5)を有しかつ出口(5)の上に流入入口開口部(6)を有する受け入れチャンバー(4)を形成する、収集容器(3)
を備える、分離装置(1)であって、
流入入口開口部(6)は、沈降セトラー(2)の下端部(22)と同じ、分離装置(1)の垂直高さレベルに位置するか、または沈降セトラー(2)の下端部(22)よりも下に位置し、かつ
収集容器(3)は、入口開口部(6)を通過した後に受け入れチャンバー(4)内の流体流入の流れ方向が沈降セトラー(2)の該チャンネルの方向と実質的に同一直線上になるように配置されている、分離装置(1)。
［２］
収集容器(3)が流入偏向要素(7)を備える、［1］記載の分離装置。
［３］
収集容器(3)内の流体の滞留時間が短くなるように偏向要素(7)が適合されている、［2］記載の分離装置。
［４］
流入偏向要素(7)が入口開口部(6)にまたは入口開口部(6)の近くに位置する、［2］または［3］記載の分離装置。
［５］
偏向要素(7)が、入口開口部(6)を通過した後の流体の流入を下向きに偏向するように形成および配置されている、［2］〜［4］のいずれか一項記載の分離装置。
［６］
受け入れチャンバー(4)の底部に向かって水平断面積が減少するように、受け入れチャンバー(4)の壁(41)が湾曲している、［1］〜［5］のいずれか一項記載の分離装置。
［７］
最初に下向きに偏向された流入が沈降セトラー(2)に向かって上方にさらに導かれるように、偏向要素(7)の配置および形状ならびに受け入れチャンバー(4)の湾曲が互いに対して適合されている、［6］記載の分離装置。
［８］
流入偏向要素(7)がバッフルプレートである、［2］〜［7］のいずれか一項記載の分離装置。
［９］
前記バッフルプレートが、前記入口開口部を通る流入方向軸を含む第2の想像上の垂直面(V2)と直角をなす第1の想像上の垂直面(V1)に対して傾斜して配置される、［8］記載の分離装置。
［１０］
前記バッフルプレートが、水平線(H1)に沿った第1の想像上の垂直面(V1)と交差するように傾斜している、［9］記載の分離装置。
［１１］
前記バッフルプレートの傾斜(α)が沈降セトラー(2)の前記チャンネルの傾斜(α')と同じである、［10］記載の分離装置。
［１２］
前記バッフルプレートが、前記入口開口部に最も近い沈降セトラー(2)の下端部(22)において沈降セトラー(2)の下端(21)の伸長部として延長している、［8］〜［11］のいずれか一項記載の分離装置。
［１３］
前記バッフルプレートが、入口開口部(6)上方の収集容器(3)の内壁と接続されている、［8］〜［11］のいずれか一項記載の分離装置。
［１４］
流入入口開口部(6)を通過した後の流体流入の方向が沈降セトラー(2)の方向(α')と平行になるように入口開口部(6)が配置されているか、または、入口開口部(6)を通る流入方向軸を含む想像上の垂直面(V2)において見た場合に、入口開口部(6)を通る流体流入の方向が沈降セトラー(2)の方向(α')から+/-10°それている、［1］記載の分離装置。
［１５］
前記流入を回転させるために、入口開口部(6)の上流に設けられた旋回要素(600)をさらに備える、前記［1］〜［14］のいずれか一項記載の分離装置。
［１６］
前記旋回要素が、1つまたは複数の羽根(601〜606)を備えるローターである、［15］記載の分離装置。
［１７］
沈降セトラー(2)が、間に複数の沈降チャンネルを形成する複数のプレート(231、...、23n)を備える、前記［1］〜［16］のいずれか一項記載の分離装置。
［１８］
第1の発酵槽、
第1の発酵槽の下流に位置する前記［1］〜［17］のいずれか一項記載の分離装置(1)、および
該分離装置の下流に位置する、少なくとも1つの第2の発酵槽
を備える、システム。
他の局面、特徴、および利点は、前記の概要、ならびに図面および添付の特許請求の範囲を含む以下の説明から明らかであろう。
【図面の簡単な説明】
【００３５】
【図１】本発明の第1の態様による分離装置の模式断面図を示す。
【図２】図1の態様の模式断面上面図を示す。
【図３】図1の分離装置を示す。
【図４】分離装置の入口開口部の好ましい形状を示す。
【図５】本発明の第2の態様による分離装置の模式断面図を示す。
【図６】本発明の第3の態様による分離装置の模式断面上面図を示す。
【図７】本発明の第2の局面による分離装置の模式断面図を示す。
【図８】本発明の第3の局面による分離装置の模式断面図を示す。
【図９】標準的なシードトレインおよび主発酵プロセスを示す。
【図１０】(N-1)発酵および異なるスケールでの平行複発酵の平行接種において用いられた分離装置による改良シードトレインの模式的な概略図を示す。
【図１１】灌流試験P1(◆)およびP2(▲)の生細胞密度および生存率プロファイルを示す。
【図１２】2つの灌流試験P1(◆)およびP2(▲)の灌流供給体積/日(灌流速度)および捕捉レベルを示す。
【図１３】10,000Lプロセス(黒色破線として示した)と比較した2つの2L培養(◆/▲)の生細胞密度の経過を示す。
【図１４】10,000Lプロセス(黒色破線として示した)と比較した2つの2L培養(◆/▲)の生存率の経過を示す。
【図１５】333％の接種細胞密度で開始した培養の生細胞密度:10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度)と比較した400Lバイオリアクターおよび2つの2L対照(◆/▲)の生細胞密度の経過を示す。
【図１６】10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度)と比較した、333％の接種細胞密度で開始した培養の生存率:400Lバイオリアクターおよび2つの2L対照(◆/▲)の細胞増殖の生存率の経過を示す。
【図１７】x軸に沿って約+2日シフトした図15の曲線を示す。
【図１８】x軸に沿って約+2日シフトした図16の曲線を示す。
【図１９】10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度)と比較した、666％の接種細胞密度で開始した培養の生細胞密度:2つの2L培養(◆/▲)の細胞増殖の経過を示す。
【図２０】10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度)と比較した、666％の接種細胞密度で開始した培養の生存率:2つの2L培養(◆/▲)の生存率の経過を示す。
【図２１】x軸に沿って約+3日シフトした図19の曲線を示す。
【図２２】x軸に沿って約+3日シフトした図20の曲線を示す。
【図２３】異なる接種細胞密度(ICD)について求められたグルコース濃度の経過を示す。10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度);2L発酵(◆/ICD100％);2Lおよび400L発酵(○/●/ICD333％)、ならびに2L発酵(■/ICD666％)。
【図２４】異なる接種細胞密度(ICD)について求められた乳酸濃度の経過を示す。10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度);2L発酵(◆/ICD100％);2Lおよび400L発酵(○/●/ICD333％)、ならびに2L発酵(■/ICD666％)。
【図２５】異なる接種細胞密度(ICD)について求められたグルタミン濃度の経過を示す。10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度);2L発酵(◆/ICD100％);2Lおよび400L発酵(○/●/ICD333％)、ならびに2L発酵(■/ICD666％)。
【図２６】異なる接種細胞密度(ICD)について求められたアンモニウム濃度の経過を示す。10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度);2L発酵(◆/ICD100％);2Lおよび400L発酵(○/●/ICD333％)、ならびに2L発酵(■/ICD666％)。
【図２７】異なる接種細胞密度(ICD)について求められたLDH活性の経過を示す。10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度);2L発酵(◆/ICD100％);2Lおよび400L発酵(○/●/ICD333％)、ならびに2L培養(■/ICD666％)。
【図２８】100％の接種細胞密度を用いた2つの2L発酵(◆/▲)の抗体産生を示す。
【図２９】10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度)と比較した、333％の接種細胞密度を用いた400Lバイオリアクター(◆)および2つの2L対照(▲/△)の抗体産生を示す。
【図３０】10,000Lプロセス(黒色破線;100％の接種細胞密度)と比較した、666％の接種細胞密度を用いた2つの2L培養(▲/◆)の抗体産生を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３６】
態様の説明
図1は、本発明の第1の態様による分離装置1を示す。分離装置は沈降セトラー2および収集容器3を備える。収集容器3は沈降セトラー2の下側に設置され、また、沈降セトラー2と流体連通している。収集容器3は受け入れチャンバー4を形成し、受け入れチャンバー4の底部には出口5が設けられる。沈降セトラー2のプレートは収集容器3まで及ばない。さらに、受け入れチャンバー4は入口開口部6を有する。図1はまた、液体または流体が収集容器3の中に導かれる入口チューブ61も示す。入口開口部6は収集容器3の直立した側壁41、例えば、収集容器3の上端より下にある特定の距離に位置する。すなわち、流入入口開口部6は沈降セトラー2の下端部22より下にある。本分野における液体または流体は、典型的には、細胞または細胞株を含有する懸濁液である。懸濁液は、例えば、発酵槽(示さず)から生じ、発酵槽から分離装置に供給される。従って、発酵槽から供給された懸濁液は、制御された下向きの方向に、沈降セトラーの下側にある収集容器に導入され、次いで、沈降セトラー2に向かって上方に、かつ沈降セトラー2を通って導かれる。「下向き」という用語は、流れが収集容器の出口に直接向かうのではなく、収集容器の出口の方向に向かうことを意味する。沈降セトラーの上方で懸濁液の透明な相は除去され、沈降した細胞は出口5において取り出される。
【００３７】
図1に示したように、収集容器3は流入偏向要素7を備えてよい。さらに大まかに言うと、偏向要素7は収集容器3の中に位置するように配置される。収集容器3および偏向要素7のサイズは、収集容器3内の流体の滞留時間が、偏向要素のない収集容器を有する分離装置と比較して短くなるように互いに対して適合される。偏向要素は、流入する粒子、細胞、および/または流体の直接的な相互作用を最小限にすると同時に、流体連通および/または粒子、例えば、細胞の沈降を悪く乱すことなく速い流速を可能にする。これは、滞留時間を短くするために必要である。図1によれば、流入偏向要素7は、入口開口部6の近くに、または入口開口部6に隣接して位置する。流入偏向要素7は、入口開口部6を通る液体または流体の流入を下向きに偏向するように形成および配置される。これは、偏向要素7によって引き起こされる流れの曲線を視覚化した矢印によって図1に示される。前述のように、受け入れチャンバー4への液体または流体の流入は、ある程度、重力によって、受け入れチャンバー4の底部に向かって流れる(破線の矢印によって図1に示した)。しかしながら、偏向要素7は、収集容器3の底部に向かう制御された方向に流入を偏向する。言い換えると、偏向要素7は、液体の流れが、重力によって導かれる自然の経路に沿って流れないようにし、液体の流れの方向を下向きに変えるように制御する。
【００３８】
図1の受け入れチャンバー4の壁41はカップまたはボウルのように湾曲している。すなわち、直立した壁は平らでなく、受け入れチャンバーの底部に向かって水平断面積が減少するように湾曲を備える。例えば、受け入れチャンバー4は逆円錐もしくは切断された円錐の形状を有する、またはカップの形もしくはボウルの形をしている、すなわち、湾曲した内壁を有する。
【００３９】
最初に下向きに偏向された流入が沈降セトラー2に向かって上方にさらに導かれるように、偏向要素7の配置および形状ならびに受け入れチャンバー4の湾曲が互いに対して適合される。これは、沈降セトラー2に到達する流体の流れを示した矢印によって図1にも示された。従って、入口開口部6に隣接して、流入は最初に下向きに偏向される。次いで、流入は、受け入れチャンバー4の内壁41によってさらに下向きに導かれ、容器3の概して湾曲した形状に従い、上向きに、かつ沈降セトラー2に向かって導かれる。
【００４０】
流入偏向要素7はバッフルプレートでもよい。バッフルプレート7は、第1の想像上の垂直面V1に対して傾斜して配置され、第1の想像上の垂直面V1は、入口開口部を通る流入方向軸を含む第2の想像上の垂直面V2と直角をなす。これは、示された想像上の平面以外は図1と同一の図3に示された。図3において、第2の想像上の垂直面V2は、この図の平面である。第1の想像上の垂直面V1は、この平面V2と直角をなして示される。示された態様において、バッフルプレート7は、水平線H1に沿った第1の想像上の垂直面V1と交差するような角度αで傾斜している。図3において、水平線H1は第2の面V2とも直角をなす。これは、第2の面V2と直角をなす水平線H1を示し、偏向要素7の上端部も示す図2において見ることができる。図1および図3の態様において、バッフルプレート7の傾斜αは沈降セトラー2の傾斜α'と同じである(図3を参照されたい)。
【００４１】
この態様において、流入入口開口部6も沈降セトラー2の下端部22の下側に位置する。
【００４２】
図6に示した別の態様において、偏向プレート7'もまた第1の想像上の垂直面V1に対して傾斜して配置され、第1の想像上の垂直面V1は、入口開口部を通る流入方向軸を含む第2の想像上の垂直面V2と直角をなす。しかしながら、この態様において、偏向プレートは、水平線H2に沿った第2の想像上の垂直面V2と交差するように傾斜している。
【００４３】
図1の態様において、バッフルプレート7は沈降セトラー2の下端21の伸長部として延長している。特に、バッフルプレート7は、入口開口部6に最も近い沈降セトラー2の下端部22にある受け入れチャンバー4まで及んでいる。従って、偏向要素は、収集容器まで達する沈降セトラーの外面の延長部を形成すると言うことができる。
【００４４】
または、バッフルプレート170は、入口開口部160上方の収集容器130の内壁と接続される。このような態様は図5において示される。図5において、湾曲した偏向プレート170が示されるが、水平線に対して傾斜している限り、まっすぐでもよい。この態様でも、流入入口開口部6は沈降セトラー2の下端部の下側に位置する。
【００４５】
または、バッフルプレート270は、入口開口部260の上方に隣接する収集容器230の内壁と接続される。すなわち、バッフルプレートは入口261の上半分の延長部である。このような態様を図8に示した。図8には、湾曲した偏向プレート270が示されたが、水平線に対して傾斜している限り、まっすぐでもよい。
【００４６】
本発明の任意の態様において、偏向要素は、入口開口部を通る流入方向軸を越えて下向きに伸びる程度まで受け入れチャンバーまで及ぶ。より好ましくは、液体の流入が偏向要素に到達し、実質的に水平に流れることができない、従って、単に偏向要素を通過できないことを確実なものにするために、偏向要素は、入口開口部の下端部22を越えて下向きに伸びる程度まで受け入れチャンバーまで及ぶ。
【００４７】
収集容器3の垂直高さは、好ましくは、400mm〜500mmの範囲、より好ましくは、約450mmである。その最大径または最高径は600mm〜700mmの範囲、好ましくは、約650mmでもよい。入口開口部の水平中心線または流入方向軸は、好ましくは、収集容器の上端部の約80mm〜90mm下側、より好ましくは、約88mm下側に位置する。バッフルプレートの長さは、好ましくは、150mm〜200mmの範囲にあり、より好ましくは、約180mmである。バッフルプレートの水平幅は、少なくとも、バッフルプレートの位置において、入口開口部から離れた投射された流れの幅と同じであるか、またはそれより大きい。
【００４８】
セトラープレートの長さは、600〜900mm、好ましくは、700〜800mmの範囲内でよく、より好ましくは、約720mmである。セトラープレートの幅は400mm〜500mmでもよく、好ましくは、約430mmである。セトラーの傾斜は、15〜60°、好ましくは、30〜45°、より好ましくは、30°でもよい。
【００４９】
偏向プレートは450〜200mmの幅を有してもよく、好ましくは、その下端において約430mm、その上端において約215mmの幅を有する。偏向プレートの高さは130mm〜200mmでもよく、好ましくは、約130mmである。
【００５０】
入口開口部は、直径が、好ましくは、約80〜90mm(好ましくは、約85mm)および12〜20mm(好ましくは、約17mm)の楕円形状を有してもよい。
【００５１】
さらなる態様によれば、分離装置1は、入口開口部6の上流において、または入口チューブ61の中に、流入の方向を制御し、流入の速度を小さくするための手段を備えてもよい。この手段は、例えば、当業者に公知のフローディストリビュータまたは流速のいかなる減速装置でもよい。この手段は、細胞が偏向プレートに衝突した時、負の加速度を小さくし、(図6に示した、下記の態様による流れと同様に)容器壁に沿った細胞懸濁液の流れを助ける。
【００５２】
沈降セトラー2は複数のプレート23を備え、複数のプレート23の間に複数の沈降チャンネルが形成される。沈降セトラーは、好ましくは、60〜70個のチャンネル、好ましくは、65個または66個のチャンネルを有する。
【００５３】
図4は入口開口部6'の一態様を示す。図4において見ることができるように、入口開口部は、円形でない形状、好ましくは、楕円形状を有する。図4は、入口開口部が収集容器の周囲に沿って伸びるような模式上面図である。このような円形でない入口開口部は、流速が低下するように流入の緩和を引き起こす。さらに、このような入口開口部を用いると、液体流入によって、流れを下向きに偏向するためにバッフルプレートの幅全体が用いられる。このような入口開口部によって流れの横断面が広がる。
【００５４】
図7は、本発明の第2の態様による分離装置10の模式断面図を示す。図7では、図1と比較して分離装置の同じ成分が同じ符番で示される。
【００５５】
この態様において、流入入口開口部6は、沈降セトラー2の下端部と同じ、分離装置の垂直高さレベルに位置する。
【００５６】
本発明のこの態様において、流入入口開口部6'、すなわち、流入チューブ61'は、入口開口部6'を通る流体流入の方向が沈降セトラー2の方向または傾斜(α')と平行になるように配置される。
【００５７】
または、流入入口開口部は、沈降セトラー2のチャンネルの方向と厳密に平行でなく、入口開口部6'を通る流入方向軸を含む想像上の垂直面(V2)において見た場合に、沈降セトラーの方向/傾斜から+/-10°それている。
【００５８】
従って、流入チューブ61'のこの配置は、収集容器3の底部に向かう方向に流入を導く。最初に下向きに偏向された流入が沈降セトラー2に向かって上方にさらに導かれるように、流入チューブ61'および入口開口部6'の配置および位置ならびに受け入れチャンバー4の湾曲は互いに対して適合される。これは、沈降セトラー2に到達する流体の流れを示した矢印によって図7にも示された。従って、最初に、流入は下向きに向けられる。次いで、流入は、受け入れチャンバー4の内壁41によってさらに下向きに導かれ、容器3の概して湾曲した形状に従い、次いで、上向きに、かつ沈降セトラー2に向かって導かれる。それにもかかわらず、望ましい方向に沿って流れをさらに導くために、第1の態様による(例えば、図3に示した)偏向要素を第2の態様に加えることができる。
【００５９】
本発明は図面および前述の説明において詳細に例示および説明されたが、このような例示および説明は例示または例証であり、限定をするものではないとみなさなければならない。添付の特許請求の範囲の中で、当業者によって変化および変更が加えられ得ることが理解されるだろう。特に、本発明は、前記および下記の異なる態様からの特徴を任意に組み合わせた、さらなる態様を含む。
【００６０】
さらに、添付の特許請求の範囲の中にある「含む(comprising)」という言葉は他の要素または工程を排除せず、不定冠詞「1つの(a)」または「1つの(an)」は複数を排除しない。単一のユニットが、添付の特許請求の範囲において引用された、いくつかの特徴の機能を果たしてもよい。特に、限定語または値に関連した、「本質的に」、「約(about)」、「約(approximately)」などの用語も、それぞれ、正確に属性を規定する、または正確に値を規定する。添付の特許請求の範囲の中にある、いかなる参照符号も、その範囲を限定するものと解釈してはならない。
【００６１】
以下は、本発明の非限定的な実施例およびその実用的な用途を示す。
【実施例】
【００６２】
実施例1:以下の例示された細胞培養および細胞分離の材料および方法
1.1 細胞株
実施例において使用した細胞株は、ヒトIgGクラスの治療抗体を産生する組換えCHO DG44細胞株であった。
【００６３】
1.2 緩衝液/培地
泡を防ぐために、Antifoam Dow Emulsion; Biesterfeld Spezialchemie GmbHを使用した。pHを調節するために、1mol/L炭酸ナトリウムを使用した。
【００６４】
1.3 培養
1.3.1 実験システム
CHO細胞株(前記を参照されたい)をフェドバッチ培養で培養した。シードトレインは振盪フラスコからの接種から開始し、それぞれの連続培養の培養体積(20Lから3,000L)が漸増する4回連続したシードトレイン培養および10,0000L主発酵からなった(図9を参照されたい)。
【００６５】
温度を、全ての培養においてダブル加熱ジャケットによって自動調節する。PH調節を、蠕動ポンプを用いたアルカリ性溶液(塩基)添加によって、ならびにマスフロー(mass flow)を介した気体CO2の導入によって行う。溶存酸素を、空気および窒素ならびに圧力および攪拌速度によって自動調節する。
【００６６】
1.3.2 接種培養
培養は、振盪フラスコの中で段階的に体積を2Lまで増やして行われる。培養パラメータは、約37℃、相対湿度>70％での空気および5％CO2の供給であった。振盪速度として125rpmを使用した。2Lフラスコ中で望ましい細胞密度に達したら、20Lバイオリアクターに接種した。
【００６７】
1.3.3 400Lまでのシードトレイン
N-4工程(20L)を、選択圧および3％のリアクター体積(RV)供給/日を用いて行った。N-3からN-1の工程において、細胞を選択圧なしで、これも3％RV供給/日で増殖させた。温度を37℃で調節した。pH値を約pH7で調節した。加圧空気を使用することによって、pO2を約30％で調節した。シードトレイン(工程N-4からN-2)の間に試料を毎日採取し、細胞濃度、pH、pCO2、重量オスモル濃度、および生成物濃度を求めた。分析法については、実施例1.4を参照されたい。シードおよび接種トレインを含む小規模で開始する産生プロセスを実施した。n-1スケール(例えば、図10を参照されたい)では、産生用バイオリアクターNの高接種細胞密度を実現するために、日常的に用いられるバッチ操作を、高細胞密度を生じる大規模灌流に置き換えた。産生スケールにおいて低接種細胞密度につながる非灌流形式を使用する確立したプロセスを、高細胞密度につながる灌流要素を用いた改良プロセスと比較した。前記の分離装置を用いたプロセスの結果、操作、および比較の詳細を以下に示した。
【００６８】
1.3.4 3,000Lスケールでの灌流プロセス
灌流培養のないプロセスと比較して5日間の灌流で高細胞密度に到達することを目的とした灌流培養として、N-1工程を実施した(例えば、図10を参照されたい)。
【００６９】
N-2工程まで、確立したプロセスに従ってシードトレインを実施した。N-1培養のみ変更を施した。
【００７０】
全灌流システムは、3,000Lバイオリアクター、バイブレータおよび連結したスパイラル直交流式熱交換器を備える本明細書において報告された分離装置、供給物添加(モデル624Di)、灌流液(perfundate)ドレン(モデル624Di)、および循環(モデル620U)のための3つの蠕動ポンプ(Watson Marlow Inc.)、灌流培地用および廃棄物(灌流液)用の2つの培地タンク(それぞれ体積3,000L)からなった。試料装置は灌流液ラインおよびバイオリアクターに設けられた。
【００７１】
分離装置を用いて、培養上清から細胞を分離し、バイオリアクターに戻して生細胞を再利用した。
【００７２】
それぞれ5日間、2回連続して灌流発酵を行った。1回目の3,000L操作を1回目のバイオリアクターの播種密度の4倍の播種密度で分割し、産生用バイオリアクターに同時接種することによって、2回目の灌流発酵に接種した(図10)。
【００７３】
最初に、細胞をバッチモードで1〜2日間増殖させ、次いで、前記で概説したように、第1の灌流操作のために灌流を開始した。灌流中、始めに3時間ごとにバイオリアクターからの試料および灌流液を採取した。2日目の後に、試料を6時間ごとに採取したが、供給体積流量を3時間ごとに調節した。
【００７４】
産生培養中に試料も毎日採取した。
【００７５】
1.3.5 可変培養体積での培養
N-1シードトレイン培養から以後のバイオリアクターへの接種を、異なるスケール(2Lから400Lまで)のシステムにおいて異なるパラメータ(表1を参照されたい)、例えば、本実験のメインターゲットである異なる細胞密度を用いて行った。他のパラメータを細胞密度の増加に合わせた。1つの条件は、本明細書において報告された灌流モードと比較して細胞密度の低い確立した参照プロセスを表している。細胞は、高細胞密度で接種された後に誘導期も制限も示さない。それによって、全発酵時間(シードトレインおよび主培養)を短くすることができ、それによって、同等の収量をシングルバッチで得ることができる。
【００７６】
灌流培養を用いることによって利用可能になる、利用可能な高い接種細胞密度が細胞の増殖または品質に影響を及ぼすかどうか確かめるために、異なるパラメータを使用した。
【００７７】
培地および供給原料は全ての培養において同じであった。培養中の個々の事象のタイムスケジュール、例えば、供給の開始時間を、培養体積および参照産生プロセスに基づく開始細胞密度に従って調整した。例えば、セトラー/灌流のないプロセス(参照プロセス)と比較して接種細胞密度が増えているのであれば、時点をさらに早い時点に変えた。
【００７８】
増殖期の間に温度を約37℃で調節し、pH値を約pH7に調節し、pO2を、加圧空気を用いて30％に設定した。
【００７９】
（表１）培養の概要
0005995871.tif 000002
【００８０】
1.4 分析方法
1.4.1 細胞密度
細胞密度は、CEDEX HiRes自動細胞カウンター(Roche Innovatis, Bielefeld)を用いて製造業者の説明書に従ってトリパンブルー法によって求めた。細胞密度を標準的な接種密度の16倍超にすることによって、細胞培養液をPBS-pufferで1:5に希釈した。測定された全ての細胞に対する生細胞の比が生存率を示した。
【００８１】
1.4.2 基質濃度
培養物中のグルコース、乳酸、グルタミン、およびアンモニウムの濃度は、BIOPROFILE flex analyzer(Nova Biomedicals, Waltham)を用いて求めた。この測定法はバイオセンサーまたはイオン選択性電極に基づく。
【００８２】
1.4.3 pHおよびpCO2の測定
バイオリアクター中のpH値は、pHメーター(WTW, Inolab)によって毎日、外部より管理した。pCO2値は、AVL Compact 3血液ガス分析器(Roche, Switzerland)に従って毎日チェックした。
【００８３】
1.4.4 重量オスモル濃度
灌流中の浸透圧および供給の変化をチェックするために、重量オスモル濃度を毎日測定した。Osmomat 030(Gonotec, Berlin, Germany)を使用した。測定法は、純水および溶液の凝固点の比較測定に基づく。水の凝固点は0℃であるが、食塩濃度1mOsmol/kgの溶液の凝固点は-1.858℃である。
【００８４】
1.4.5 乳酸デヒドロゲナーゼ活性
乳酸デヒドロゲナーゼ活性(LDH)は発酵中の細胞曝露と関連がある。ダメージを受けた細胞は生細胞より多くのLDHを培地に送り出す。測定法はマイクロタイタープレート上での酵素アッセイに基づく。LDHが存在すると、NADHはNAD+に酸化され、ピルビン酸が乳酸に還元される。NADHの減少速度は340nmでの吸光度によって測定される。
【００８５】
1.5 抗体分析
抗体価を、Poros Aアフィニティカラムを用いた高速液体クロマトグラフィー(HPLC)によって定量した。
【００８６】
実施例2:シードトレイン培養
1.1 400Lまでのシードトレイン
実施例1において概説したように、これを実施した。接種細胞密度に達したら、20L〜400Lのバイオリアクターにおける供給は規定の体積流速から開始した。20Lバイオリアクターを1回分割し、バックアップの目的で80Lバイオリアクターに2回接種した。
【００８７】
1.2 分離装置の設計
分離装置が大規模なために、装置に適用する前に培養物を冷却するのに十分な熱交換器も組み立てなければならなかった。細胞に対するストレスおよび圧力を小さくするために、スパイラル直交流式熱交換器(MCE AG, Germany)を使用した。
【００８８】
内部では、セトラーは65個の着脱可能なステンレス鋼プレートからなった。全沈降面積を、7m2または10m2、例えば、8m2に設定した。セトラーを水平線から60°の角度で傾斜させた。傾斜は必要に応じて回転ホイールによって変えることができる。電磁バイブレータを取り付けた。電磁バイブレータを15分ごとに10〜20秒間、自動的に作動させた。角度の調整および振動の間隔は、細胞が効率的に再利用されることを確実なものにした。
【００８９】
使用前に、機器全体を無菌化または滅菌し(CIPおよびSIP)、微生物が存在しないかどうか試験した。標準的な操作手順および無菌試験に対応する機器の設計資格(DQ)、設置資格(IQ)、以下の操作資格(OQ)、および性能資格(PQ)は異常を示さなかった。
【００９０】
1.3 灌流
1.3.1 手順
培養物の灌流を開始するために、バイオリアクターの細胞培養流体をディップチューブに通して熱交換器にポンプで入れた。熱交換器にポンプは培養物を10〜15℃に冷却した。これは、バイオリアクター外にある間の、すなわち、制御されていない条件下の間の細胞代謝の低下として役立った。
【００９１】
循環ポンプは、約390L/hの体積流速で培養物の流速を一定に制御した。総ループ体積は約200Lであった。灌流供給速度はバイオリアクター内での細胞密度によって調節された。
【００９２】
1.3.2 細胞増殖
2回の連続した灌流(P1およびP2)の間の生細胞密度(VCD)および細胞生存率の比較を図11に示した。どちらの場合も、100％超(約130％)の細胞密度に達した。<85％の生存率のアンダーカット(undercut)は行われなかった。
【００９３】
1.3.3 細胞捕捉(グレード/効率)
本明細書において概説されたように、分離装置は上清からの細胞の分離において良好に機能した。分離効率および灌流体積を図12に示した。分離効率(捕捉レベル)は期間全体にわたって>0.9=90％であった。捕捉が<95％に低下したら、振動時間を延長した。
【００９４】
細胞増殖を支持するには、バイオリアクター体積の0.9倍の最大灌流供給回転率、すなわち2,400L/d(システム全体の3,000L-循環中の200L流体に相当する)で十分であった。どちらの灌流の分離効率も95％超のままであった。これらの結果は、セトラー角度またはポンプを調整することによって灌流を最適化することなく得られた。
【００９５】
図12から分かるように、どちらの灌流試験も、少なくとも95％の同等の細胞捕捉(図12の上の部分)および同等の灌流速度の増加を示す。P1はフェドバッチの2日後に灌流を開始したのに対して、P2はフェドバッチのわずか1日後に灌流を開始したことに留意しなければならない。従って、P2の曲線はP1の曲線より早く開始する。
【００９６】
灌流速度の最適化は、より良い細胞還流のためにはセトラー角度を調整することによって、または高い細胞密度のためには供給の最適化によって実現することができる。
【００９７】
1.4 培養
1.4.1 細胞増殖および生存率
例示的な発酵番号1、3、4、および5(前記の表1を参照されたい)を産生培養と比較した。
【００９８】
発酵に異なる細胞密度で接種した。それに応じて、供給開始時間を調整した。10,000L培養(2L体積と100％の接種細胞密度を用いた試験3)と比較して同等の生成物濃度を短期間で得るために、接種細胞密度を333％(400L体積を用いた試験1および2L体積を用いた試験4)ならびに666％(2L体積を用いた試験5)まで増やした。産生プロセスの対照として、100％の接種細胞密度による2つの発酵も行った。
【００９９】
シードトレインのN-1発酵において用いられる灌流は以後の発酵において細胞の細胞増殖に影響を及ぼさない。すなわち、誘導期を特定できなかった。
【０１００】
図13は、平均10,000L発酵と比較した2L培養の細胞増殖を示す。
【０１０１】
確立した産生プロセスと、セトラー操作から得られた高い接種細胞密度とを比較した(図14を参照されたい)。細胞の生存率、細胞増殖、代謝の違いは観察されなかった。灌流は細胞の増殖および生存率に影響を及ぼさなかった。
【０１０２】
図15/16は、参照産生プロセス(破線)と比較した、333％の接種細胞密度を用いた3つの発酵(1x400Lおよび2x2L)の生細胞密度および生存率を示す。400Lの体積および2Lの体積では約5日目で既に最大細胞密度に達したのに対して、産生プロセスの体積では7日目に最大細胞密度に達したので、高接種細胞密度によって培養時間は約2日短くなった。また、高接種細胞密度は指数細胞増殖の間に誘導期を引き起こさなかった。
【０１０３】
図17および図18において比較した場合、培養の比較性を示すために、生細胞密度および生存率の曲線は約+2日シフトした。これは、本明細書において報告された分離装置の使用が細胞の増殖特性に影響を及ぼさないという事実の証拠を提供する。
【０１０４】
図19/20および図21/22に示したように、666％の接種細胞密度を用いて類似した結果が得られた。この図の中では、666％の接種細胞密度を用いた2つの2L培養の細胞増殖および生存率を示した。図から分かるように、培養の4日後には既に最大細胞密度に達し、これによりプロセス時間は約3日、短くなった(図19/20の曲線が約+3日シフトした図21/22に示した)。従って、666％の接種細胞密度では、分離装置は後の培養において細胞増殖および生存率に対して影響を及ぼさない。
【０１０５】
666％の接種細胞密度を用いた細胞増殖の誘導期は観察されなかった。濃縮した細胞懸濁液を得るためにセトラーを用いて666％の高細胞密度で接種することによって、細胞増殖の制限も阻害も認めることはできなかった。装置およびこの機器の悪影響は観察されなかった。
【０１０６】
1.4.2 抗体の産生
100％の接種細胞密度を用いた2L培養の培養時間にわたる生成物濃度を図28に示した。高接種曲線の比較から、高接種細胞密度で本明細書において報告された分離装置を使用することによって、プロセス時間全体を4〜5日、短縮できることがはっきりと分かる。
【０１０７】
従って、N-1シードトレイン発酵において本明細書において報告された分離装置を用いた前記のセクションにおいて概説したように、主培養に高細胞密度で接種することができる。さらに、細胞はN-1シードトレイン発酵において高細胞密度まで増殖するが、主培養への接種後に誘導期は観察することができない。細胞はすぐに指数増殖し始める。それによって、N-1シードトレイン発酵において分離装置を使用しない参照産生発酵と比較した時に、培養中のさらに早い時点で細胞密度および生成物濃度に関する対応する値に達した。細胞培養の成績および生成物の力価は有意差を示さず、操作時間を全体的に、接種細胞密度に応じて、それぞれ、少なくとも2日または少なくとも4日、短縮することができる。一例として、このプロセスを使用すると、産生時間を25％短縮することができる。
【０１０８】
2. 結果
本発明は、新規の沈降装置、特に、細胞培養および細胞分離における大規模使用量(例えば、2,000L/日〜3,000L/日のレベル)に適した新規の沈降装置に関する。
【０１０９】
N-1工程のシードトレインにおける高細胞密度に関して、参照プロセス(確立した産生プロセス)と比較してシードトレイン発酵における分離装置を使用した主培養の曲線を2〜4日短縮することができるという事実に加えて、シードトレイン発酵において分離装置を使用した主培養とシードトレイン発酵において分離装置を使用していない主培養との間で細胞増殖を良好に比較することができた。
【０１１０】
装置は細胞培養に影響を及ぼさず、これによって高い捕捉率が得られた。
【０１１１】
本発明の要点は、本発明の装置を用いて、高い時間空間収率(time-space yield)のために高接種細胞密度を用いることによって、次に続く産生培養(N工程)において同等の細胞増殖(誘導期なし)および安定した生成物量を提供することである。
【０１１２】
本発明の装置を用いて得られた細胞懸濁液による接種後に、異なる接種細胞密度は全て誘導期または阻害を示さなかった。
【０１１３】
前記をまとめると、本明細書において報告された分離装置を使用することによって、生成物濃度に悪影響を及ぼすことなく、必要とされる主発酵時間を少なくとも約2〜4日、短縮することが可能である。従って、1回の産生作業(campaign)、すなわち、シードトレイン発酵および主発酵に必要な時間を全体的に短縮することによって、同じ時間で、例えば、1年で、さらに多くの作業を行うことができる。すなわち、産生施設の拡大、すなわち、バイオリアクター体積の拡大を避けることができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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