(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス（Ｌ．ブルガリクス）株であって、ＣＮＣＭに番号Ｉ−４４２８で寄託されていることを特徴とする、Ｌ．ブルガリクス株。
【請求項２】
ヘリコバクター・ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能なＬ．ブルガリクス株を得る方法であって、
（ｉ）請求項１に記載のＬ．ブルガリクス株の突然変異誘発又は遺伝子形質転換の工程、及び
（ｉｉ）工程（ｉ）の突然変異誘発又は遺伝子形質転換をした株のうち、ヘリコバクター・ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能な株を選択する工程
を含む、方法。
【請求項３】
Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能な細胞画分を得る方法であって、
ａ）請求項１に記載のＬ．ブルガリクス株を培養する工程と、
ｂ）工程ａ）の培養物から前記細胞画分を得る工程と、
を含む、方法。
【請求項４】
請求項１に記載のＬ．ブルガリクス株の細胞画分であって、Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能であることとを特徴とする、細胞画分。
【請求項５】
請求項１に記載のＬ．ブルガリクス株又は請求項４に記載の細胞画分を含む組成物。
【請求項６】
乾燥重量１グラム当たり少なくとも１０５ｃｆｕの請求項１に記載のＬ．ブルガリクス株を含むことを特徴とする、請求項５に記載の組成物。
【請求項７】
栄養組成物であることを特徴とする、請求項５又は６に記載の組成物。
【請求項８】
酪農製品であることを特徴とする、請求項７に記載の組成物。
【請求項９】
薬剤として使用される、請求項１に記載の株又は請求項５若しくは６に記載の組成物。
【請求項１０】
前記薬剤がＨ．ピロリ感染症を治療又は予防することを特徴とする、請求項９に記載の株又は組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はプロバイオティクス分野に関するものである。特に本発明はヘリコバクター・ピロリ（Helicobacter pylori）感染症の治療又は予防に有用な新規のラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス（Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus）株に関する。
【背景技術】
【０００２】
米国ヨーグルト協会（National Yogurt Association：ＮＹＡ）又は米国にある国際生命科学研究所（International Life Science Institute：ＩＬＳＩ）により近年承認された定義によると、プロバイオティクスは十分量摂取した際に基本栄養分を超える健康上の利点をもたらす生きた微生物である。プロバイオティクス細菌は、乳業において一般的に用いられるラクトバチルス属、ビフィドバクテリウム属、ストレプトコッカス属及びラクトコッカス属に属する種内にあると説明されている。プロバイオティクスは病原微生物の発生を妨げることによって及び／又は免疫系により直接的に作用することによって腸内細菌叢のレベルで介入すると考えられている。
【０００３】
ヘリコバクター・ピロリ（Ｈ．ピロリ（H. pylori））は、世界の人口の５０％を超える人の胃粘液層に定着している螺旋状のグラム陰性菌である。Ｈ．ピロリに感染した個体の大部分は無症候性であるが、その胃上皮には炎症の兆候が見られ、Ｈ．ピロリに感染した個体の１５％〜２０％が疾患を発症する。実際、Ｈ．ピロリは、慢性活動性胃炎、消化性潰瘍疾患、萎縮症、異形成、形成異常、胃がん及び胃粘膜関連リンパ組織（ＭＡＬＴ）リンパ腫の主な原因物質である（非特許文献１及び非特許文献２のレビューを参照されたい）。
【０００４】
感染の際、Ｈ．ピロリは、細菌によって産生される幾つかの付着分子（アドヘシン）、例えばＢａｂＡタンパク質及びＳａｂＡタンパク質を通じて胃上皮の（lining）胃上皮細胞に特異的に結合する。胃上皮細胞への付着によって、細菌が液体流、蠕動運動及び粘液層の脱落から保護される。Ｈ．ピロリの胃粘膜への付着は、胃上皮細胞内のシグナル伝達経路を誘導し、酸化ストレスを介した胃上皮細胞の損傷及び萎縮、アポトーシス及び／又は自食機構を引き起こす。したがって、Ｈ．ピロリの胃上皮細胞への付着は、胃粘膜の感染の確立において重要な工程である。
【０００５】
Ｈ．ピロリに感染した患者における標準的な治療は、プロトンポンプ阻害剤（Proton Pump Inhibitor：ＰＰＩ）を伴う２つの抗生物質、いわゆる三剤療法（triple therapy）である。しかしながら、三剤療法によるＨ．ピロリの除菌率は抗生物質耐性又は低コンプライアンスのために低い。さらに、幾つかが臨床試験中ではあるものの、未だに市販されている有効なワクチンはない。
【０００６】
上述から、Ｈ．ピロリ感染症の治療又は予防のための三剤療法の代替療法又は補完療法が必要とされていると考えられる。
【０００７】
代替療法としては、乳酸、バクテリオシン及び他の抗菌物質を産生するプロバイオティクス乳酸菌（Lactic Acid Bacteria：ＬＡＢ）が提唱されている。非特許文献３において、抗生物質耐性株を含むＨ．ピロリ株の成長をｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて（寒天拡散法（agar-well diffusion method）を用いて）株依存的に阻害する幾つかのラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス（Ｌ．ブルガリクス（L. bulgaricus））が見出されている。しかしながら、研究されたＬ．ブルガリクス株ははっきりとは特定されておらず、公的に入手することはできない。非特許文献４では、バクテリオシンを産生する乳酸菌が幾つかスクリーニングされている。次いで、Simova et al.は、これらの株の無細胞上清（Cell-Free Supernatant：ＣＦＳ）の抗菌活性を２つのｉｎ  ｖｉｔｒｏ法：寒天拡散法並びにBarefoot及びKlaenhammerの臨界希釈アッセイによって分析することで、上記株の抗菌活性を決定している。Simova et al.は、Ｌ．ブルガリクスＢＢ１８株のＣＦＳが、その抗菌活性からＨ．ピロリ株を含む広範な病原微生物（細菌又は酵母）の成長を阻害することを見出している。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Fox and Wang, 2007
【非特許文献２】Polk and Peek, 2010
【非特許文献３】Boyanova et al. (2009)
【非特許文献４】Simova et al. (2009)
【発明の概要】
【０００９】
本発明者らは、新規のラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス株を単離し、この株がＨ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することをｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏにおいて見出している。そのためこのＬ．ブルガリクス株（ＤＮ＿１００＿０６０２又はＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８と称される）は、Ｈ．ピロリ感染の確立における主要工程を標的とすることで、すなわちＨ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することによって、Ｈ．ピロリ感染症の治療又は予防に使用することができる。
【００１０】
したがって本発明の主題は、ブダペスト条約に準拠して、国立微生物寄託機関（Collection Nationale de Cultures de Microorganismes：ＣＮＣＭ、25 rue du Docteur Roux, Paris）において２０１１年２月３日付けでアクセッション番号ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８で寄託されたラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス株である。
【００１１】
このＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株は以下の特徴を有する：
形態：グラム陽性微生物であり、有胞子性（with granulations）、非運動性、棒状の長桿菌、
代謝：ホモ発酵性、カタラーゼ（−）、
糖類の発酵（３７℃で４８時間のＭＲＳ培地中でのＡＰＩ  ５０  ＣＨ試験によって得られた結果）：グルコース、フルクトース、マンノース及びラクトース。
【００１２】
さらにこの株はｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏにおいてＨ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能である。
【００１３】
本明細書で使用される場合、「Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着の阻害」という用語は、Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着の顕著な阻害（すなわち全体的な又は部分的な阻害）を指す。Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着の阻害は、下記の実施例１に示されるようにｉｎ  ｖｉｔｒｏで測定することができる。
【００１４】
本発明は、Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能であることを条件とする、親株ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８から誘導される突然変異株又は遺伝子形質転換株も包含する。これらの突然変異株又は遺伝子形質転換株は、例えば親株の１つ又は複数の内因性遺伝子が突然変異して、その代謝性（例えばその糖発酵能、その酸耐性、その胃腸管での移動に対する生存性、その後酸性化性（post-acidification properties）又はその代謝産物産生）が一部変化した株とすることができる。これらの株は、対象となる１つ又は複数の遺伝子による親株ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８の遺伝子形質転換によって生じる、例えば上記遺伝子形質転換株に更なる生理学的性質を与えるような又は上記株を通じて投与されることが望まれる治療対象若しくはワクチン対象のタンパク質を発現するような株とすることもできる。これらの株は、Gury et al. (2004)若しくはPerea Velez et al., 2007に記載された技法のようなラクトバチルスのランダム若しくは部位特異的な突然変異誘発及び遺伝子形質転換における従来技法を用いて又は「ゲノムシャッフリング」として知られる技法（Patnaik et al., 2002及びWang et al., 2007）を用いてＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株から得ることができる。
【００１５】
さらに本発明の主題は、Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能なラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス株を得る方法であって、ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株の突然変異誘発又は遺伝子形質転換の工程を含む、方法である。
【００１６】
さらに本発明の主題は、Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能であることを条件とする、上に規定されるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株から得ることができる細胞画分である。特に細胞画分は、上記株の培養物から得られるＤＮＡ調製物又は細菌壁調製物である。細胞画分は培養上清又はこれらの上清の画分でもあり得る。例としては、ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株の無細胞上清（ＣＦＳ）を、非特許文献４に開示される別のＬ．ブルガリクス株からＣＦＳを得る方法を用いて得ることができる。
【００１７】
さらに本発明の主題は、Ｈ．ピロリ株の上皮細胞への付着を阻害することが可能な細胞画分を得る方法であって、
ａ）上に規定されるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株を培養する工程と、
ｂ）工程ａ）の培養物から細胞画分を得る工程と、
を含む、方法である。
【００１８】
さらに本発明の主題は、本発明によるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８又は本発明による上記株から得られる細胞画分を含む組成物である。
【００１９】
本発明の組成物では、上記株を全細菌の形態で使用することができる。該全細菌は生死を問わない。代替的には、上記株を細菌溶解物の形態で又は細菌画分の形態で使用することができ、この使用に適した細菌画分は、例えばＨ．ピロリ株の上皮細胞への付着に対する特性を試験することによって選ぶことができる。細菌細胞は生存細胞（living, viable cells）として存在することが好ましい。
【００２０】
本発明の組成物は投与、特に経口投与に適した任意の形態とすることができる。これには例えば固体、半固体、液体及び粉末が含まれる。液体組成物は一般的に、例えば飲料として投与がより容易であることから好ましい。
【００２１】
組成物は、乾燥重量１ｇ当たり少なくとも１０５コロニー形成単位（Colony Forming Units：ｃｆｕ）、好ましくは少なくとも１０６ｃｆｕの上述される少なくとも１つの細菌株を含むことができる。
【００２２】
組成物は、本発明による株以外の細菌株、特にラクトバチルス株、ビフィドバクテリウム株、ストレプトコッカス株又はラクトコッカス株（複数の場合もある）等のプロバイオティクス株（複数の場合もある）を更に含むことができる。
【００２３】
細菌が生存細菌の形態である場合、組成物は典型的に組成物の乾燥重量１ｇ当たり１０５ｃｆｕ〜１０１３ｃｆｕ、好ましくは少なくとも１０６ｃｆｕ、より好ましくは少なくとも１０７ｃｆｕ、更により好ましくは少なくとも１０８ｃｆｕ、最も好ましくは少なくとも１０９ｃｆｕを含み得る。液体組成物の場合、これは概して、１０４ｃｆｕ／ｍｌ〜１０１２ｃｆｕ／ｍｌ、好ましくは少なくとも１０５ｃｆｕ／ｍｌ、より好ましくは少なくとも１０６ｃｆｕ／ｍｌ、更により好ましくは少なくとも１０７ｃｆｕ／ｍｌ、最も好ましくは少なくとも１０９ｃｆｕ／ｍｌに相当する。
【００２４】
組成物は、食品、補助食品及び機能性食品を含む栄養組成物とすることができる。「補助食品」は、通常食料品に使用される化合物から作製されるが、錠剤、粉末剤、カプセル剤、頓服水剤の形態又は通常栄養物（aliments）とは関連のない任意の他の形態であり、健康に有益な効果を有する製品を指す。「機能性食品」も健康に有益な効果を有する栄養物である。特に、補助食品及び機能性食品は、疾患、例えば慢性疾患に対する生理的効果、すなわち保護効果又は治癒効果を有することができる。
【００２５】
本発明による栄養組成物には、離乳食、乳児用調合乳又は乳児用フォローオン調合乳（infant follow-on formula）も含まれる。本組成物は栄養補給食品若しくは医薬品、栄養補助食品又はメディカルフードであるのが好ましい。
【００２６】
組成物は酪農製品、好ましくは発酵酪農製品とすることができる。発酵製品は液体の形態で存在していても又は発酵液を乾燥することによって得られる乾燥粉末の形態で存在していてもよい。酪農製品の例としては、凝固、撹拌又は飲用形態の発酵乳及び／又は発酵ホエー、チーズ、並びにヨーグルトが挙げられる。
【００２７】
発酵製品は、発酵野菜、例えば凝固、撹拌又は飲用形態の発酵大豆、発酵シリアル及び／又は発酵果物とすることもできる。
【００２８】
好ましい実施の形態では、発酵製品は生鮮製品である。厳しい熱処理工程に供されていない生鮮製品には、細菌株が生存形態で存在するという利点がある。
【００２９】
さらに本発明の主題は、薬剤として使用される、上で規定されるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株又は上で規定される組成物である。
【００３０】
さらに本発明の主題は、ヘリコバクター・ピロリ感染症を治療又は予防する薬剤として使用される、上で規定されるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株又は上で規定される組成物である。
【００３１】
さらに本発明の主題は、薬剤、好ましくはＨ．ピロリ感染症を治療又は予防する薬剤としての上で規定されるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株又は上で規定される組成物の使用である。
【００３２】
さらに本発明の主題は、薬剤、好ましくはＨ．ピロリ感染症を治療又は予防する薬剤の製造への上で規定されるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株又は上で規定される組成物の使用である。
【００３３】
さらに本発明の主題は、Ｈ．ピロリ感染症の治療又は予防を必要とする被験体においてＨ．ピロリ感染症を治療又は予防する方法であって、上記被験体に治療的に有効な量の上で規定されるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株又は上で規定される組成物を投与することを含む、方法である。
【００３４】
治療的に有効な量の決定は、特に本明細書で与えられる詳細な開示を鑑みて当業者にとって既知である。
【００３５】
さらに本発明の主題は、薬剤、好ましくはＨ．ピロリ感染症を治療又は予防する薬剤を製造する方法であって、上で規定されるＬ．ブルガリクス株、好ましくはＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株又は上で規定される組成物を、少なくとも１つの薬学的に許容可能な希釈剤、担体又は賦形剤に組み込むことを含む、方法である。
【００３６】
本明細書で使用される場合、治療又は予防は、とりわけ感染症の予防、Ｈ．ピロリの負荷の安定化及び／又はＨ．ピロリの負荷の低減を包含する。治療又は予防は、下記に言及されるＨ．ピロリに関連する症状の少なくとも１つへの対処も包含する。
【００３７】
Ｈ．ピロリ感染症を診断する方法は当該技術分野において既知である。例としては、Ｈ．ピロリ感染症の診断は、血液抗体試験、便中抗原試験又は炭素尿素呼気試験によって為され得る。診断は内視鏡検査での生検後のウレアーゼ試験、組織学的検査又は微生物培養によっても為され得る。
【００３８】
Ｈ．ピロリ感染症に関連する症状又は疾患は、胃痛、胸焼け、酸の逆流、腹痛、吐出し、嘔吐、おくび、鼓腸、吐き気、慢性活動性胃炎等の胃炎、消化性潰瘍疾患、萎縮症、異形成、形成異常、胃がん及び胃粘膜関連リンパ組織（ＭＡＬＴ）リンパ腫である。
【００３９】
本発明は、ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株の抗感染性を説明する実施例に関する下記の更なる説明及び添付の図面からより明確に理解されるであろう。
【図面の簡単な説明】
【００４０】
【図１】処理の直前（第１の棒グラフ）、処理の３週間後（第２の棒グラフ）及び屠殺の直前（第３の棒グラフ）に測定された、Ｈ．ピロリＳＳ１に感染させて対照製品を与えたマウス、又はＨ．ピロリＳＳ１に感染させてＬ．ブルガリクスＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８で処理したマウス、又はＨ．ピロリＳＳ１に感染させてＬ．ブルガリクスＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２（Ｌｂ  １３０）で処理したマウスの体重の漸進的変化（単位グラム）を示す図である。
【図２】（ｉ）Ｈ．ピロリに非感染のマウス、（ｉｉ）Ｈ．ピロリＳＳ１に感染させて対照製品（非発酵乳）を与えたマウス、（ｉｉｉ）Ｈ．ピロリＳＳ１に感染させてＬ．ブルガリクスＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２（Ｌｂ  １３０）で処理したマウス、及び（ｉｖ）Ｈ．ピロリＳＳ１に感染させてＬ．ブルガリクスＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８で処理したマウスにおける抗Ｈ．ピロリ抗体を用いた免疫組織学的検査によって得られた感染スコアを示す図である。スコアの規定：０：腺の感染なし、１：稀な腺の感染、２：２５％の腺の感染、３：２５％〜５０％の腺の感染、４：５０％を超える腺の感染。
【図３】（ｉ）Ｈ．ピロリに非感染のマウス、（ｉｉ）Ｈ．ピロリＳＳ１に感染させたが対照製品（非発酵乳）を与えたマウス、（ｉｉｉ）Ｈ．ピロリＳＳ１に感染させてＬ．ブルガリクスＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８で処理したマウス、及び（ｉｖ）Ｈ．ピロリＳＳ１に感染させてＬ．ブルガリクスＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２（Ｌｂ  １３０）で処理したマウスにおけるリアルタイムＰＣＲによって得られたＨ．ピロリＳＳ１  ＤＮＡの定量結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【実施例】
【００４１】
実施例１：ヘリコバクター・ピロリの胃上皮細胞への付着に対する効果に合わせたＬ．ブルガリクス株の選択
Oleastro et al. (2008)で記載された方法を、Ｈ．ピロリの上皮細胞への付着特性に対する２種のラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス株（ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８及び１９９５年１０月２５日付けでＣＮＣＭにおいて寄託されたＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２）の効果を評価するような修正を加えて使用した。
【００４２】
１．１  材料及び方法
２種のＨ．ピロリ株：Ｊ９９株（ＢａｂＡ２、ＡＴＣＣ番号：７００８２４）及び０９．１９３株（ＢａｂＡ１、日本の大分大学の山岡吉生教授によって単離された）を試験した。これらの株を５０というＭＯＩ（Multiplicity Of Infection：感染多重度）で試験した。ピロリ寒天（Biomerieux, France）中での２４時間の培養後、Ｈ．ピロリ細胞をＰＢＳバッファーに移した。２種のＨ．ピロリ株の細菌懸濁液の濃度をそれぞれ、２×１０８ｃｆｕ／ｍＬ（ＯＤ６００ｎｍ＝１に相当する）で正規化した。
【００４３】
２種のラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス懸濁液を、５０というＭＯＩ（ウェル毎に正規化されたＬ．ブルガリクス懸濁液２５μＬに相当する）で試験した。
【００４４】
１０００００個の上皮ＡＧＳ細胞（ＡＴＣＣ番号：ＣＲＬ−１７３９）を、感染実験の前日に１０％のウシ胎児血清を添加した５００μＬのＤＭＥＭ培地Ｆ１２中に接種した。
【００４５】
Ｈ．ピロリ懸濁液の着色
１ｍＬのＨ．ピロリ懸濁液を１００００ｇで１０分間遠心分離した。ペレットを１ｍＬのＤｉｌｕｅｎｔ  Ａ（ＰＫＨ２  Ｇｒｅｅｎ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ  Ｃｅｌｌ  Ｌｉｎｋｅｒ  Ｋｉｔ、Sigma Aldrich, Saint-Louis）中に再懸濁して、２．５μＬのＰＫＨ２（Sigma Aldrich, Saint-Louis）を添加した。懸濁液を室温で２分３０秒インキュベートした。着色を２ｍＬのウシ胎児血清の添加によって停止した。次いで４ｍＬのＤＭＥＭ／Ｆ１２培地を添加した後、懸濁液を１００００ｇで１０分間遠心分離した。ペレットを４ｍＬの培養培地中に再懸濁して、１００００ｇで１０分間遠心分離した。この洗浄工程を２回繰り返して、余分な蛍光色素を取り除いた。
【００４６】
付着の測定
上皮ＡＧＳ細胞を、ＰＢＳにより３回洗浄して付着していない細菌を捨てた後、標準条件に従ってトリプシンによって剥離させた。蛍光発光をフローサイトメトリーによって分析した。蛍光を、ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒフローサイトメーター（Becton Dickinson）を用いて測定した。各条件は三重反復で行った。
【００４７】
Ｈ．ピロリによる感染は２つの条件で行った
感染前（前）条件：Ｈ．ピロリに感染させる１時間３０分前に、試験対象のＬ．ブルガリクス懸濁液を上皮ＡＧＳ細胞に添加した。細胞を感染の１時間３０分後、フローサイトメトリーによって分析した（総インキュベーション時間３時間）；
同時感染（同時）条件：試験対象のＬ．ブルガリクス懸濁液とＨ．ピロリ株とを上皮ＡＧＳ細胞に同時に添加して、細胞を１時間３０分のインキュベーション時間後にフローサイトメトリーによって分析した。
【００４８】
対照
蛍光強度の対照値を、Ｈ．ピロリ株とともに１時間３０分インキュベートした上皮ＡＧＳ細胞で得る。
【００４９】
付着パーセントの値は、１００％に設定したＬ．ブルガリクスに曝露しないＨ．ピロリの上皮ＡＧＳ細胞への付着に対して与えられる。
【００５０】
結果を三重反復から得られた平均値により分析し、スチューデント検定に従って結果が有意に異なっていた場合にスコアを付けた（Ｐ＜０．０５）。
【００５１】
１．２  結果
結果を下記の表１に示す。
【００５２】
【表１】
0005997769.tif 000002
【００５３】
結果から、ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株の細菌懸濁液は、２種のＨ．ピロリ株（Ｊ９９及び０９．１９３）の上皮ＡＧＳ細胞への付着を２つの異なる条件（前インキュベーション及び同時インキュベーション）下で阻害するが、ＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２株の細菌懸濁液はこの特性を有しないことが示される。
【００５４】
実施例２：マウスモデルにおけるＨ．ピロリの負荷に対するＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株の効果
２．１  材料及び方法
ヘリコバクター・ピロリ
マウス胃粘膜への非常に良好な定着能を有するＨ．ピロリＳＳ１株（Lee et al., 1997）を使用した。株の同一性はｇｌｍ遺伝子及びｈｓｐＡ遺伝子及びｖａｃＡ遺伝子をシークエンシングすることによって確認した。
【００５５】
ラクトバチルス・デルブルッキー亜種ブルガリクス
２種の異なるＬ．ブルガリクス株（ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８又はＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２）で発酵させた乳製品を以下のように準備した：ＭＲＳｎ中で第１の培養物を凍結株から調製して、３７℃で１７時間インキュベートした。第２の培養物を、第１の培養物から１％接種することによって酵母抽出物（２ｇ／Ｌ）を強化した脱脂乳中で調製して、３７℃で１７時間インキュベートした。第３の培養物を、第２の培養物から１％接種することによって酵母抽出物（２ｇ／Ｌ）を強化した乳中で調製して、ｐＨが４．７に達するまで３７℃でインキュベートした。最後に製品を、ｐＨが４．７に達するまで、酵母抽出物（２ｇ／Ｌ）を強化した乳に１％の第３の培養物を接種することによって調製した。製品を−８０℃で保存した。細菌のカウントを４８時間のインキュベーション後、ＭＲＳｎ中で行った。細菌数はＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株及びＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２株でそれぞれ６×１０８ｃｆｕ／ｍＬ及び１．３×１０９ｃｆｕ／ｍＬであった。
【００５６】
マウス
ＳＰＦ（Specific Pathogen Free：特定病原体除去）として試験された５週齢のＢＡＬＢ／ｃＢｙ／Ｊ雌マウス（Charles River, France）５５匹を以下の群に分けた：１５匹の３群のマウスを感染させ、１０匹の１群のマウスを非感染対照として使用した。マウスにビタミン含量の少ない食物を与え、Ｈ．ピロリにより誘導される病変発生を促進した。
【００５７】
感染（８週間）
６週齢のマウスに１日間、含水食餌（hydric diet）を与えた後、翌朝２５０μＬのＨ．ピロリＳＳ１株の濃縮懸濁液（５匹のマウスに対して１〜２皿のペトリ皿）を強制給餌した。マウスを通常の食餌とともにケージに入れた。次いで、再び夕方にマウスに含水食餌を与えた。このプロトコルを３日間繰り返した。
【００５８】
処理（６週間）
感染の８週後、マウスを、Ｌ．ブルガリクス株を含有する乳製品で６週間処理した。水の代わりに１日に付き１ケージ当たり１２０ｇの乳製品を哺乳瓶で与えた。哺乳瓶は毎日交換した。動物１匹当たりの摂取した製品量を評価するために、哺乳瓶を秤量した。さらに、マウスを処理の直前、処理の３週間後、及び屠殺の直前に秤量した（結果を図１に示す）。
【００５９】
マウス対照群に酵母抽出物（２ｇ／Ｌ）を強化した（すなわち全くＬ．ブルガリクス株を含まない）乳を与えた。
【００６０】
屠殺
マウスを頸椎脱臼によって屠殺した。開腹を行った。胃を摘出し、胃粘膜を生理血清で洗浄した。
【００６１】
胃を食道から十二指腸まで中心で切断した。胃の右半分で、噴門を取り除いた後、この胃の半分を生理血清中に入れ、分子研究に使用した。胃の左半分を組織学的検査に使用した。
【００６２】
組織学的検査
胃の左半分を一晩３．７％ホルモールで固定し、７０％エタノールで洗浄した後、パラフィン包埋して、３μｍ厚の切片を作製した。
【００６３】
免疫組織学的検査を、抗Ｈ．ピロリ抗原抗体（antibody anti-H. pylori antigens）：一次抗体：抗Ｈ．ピロリ抗体（Dako、Ｒｅｆ．Ｂ０４７１）；二次抗体及びＤＡＢ：Ｄａｋｏ  ＥｎＶｉｓｉｏｎ＋Ｓｙｓｔｅｍ−ＨＲＰ（ＤＡＢ）（Dako、Ｒｅｆ．Ｋ４０１１）を用いて行った。
【００６４】
分子研究（ｑＲＴ−ＰＣＲ）
右側の胃を、Ｐｏｔｔｅｒ−Ｅｌｖｅｈｊｅｍを用いて０．２ｍｌの生理血清中でホモジナイズした（破壊した）（胃組織を含む管と、胃組織を含まない管とを秤量して、組織重量を調べた）。
【００６５】
総ＤＮＡを、メーカーの推奨に従ってＡｒｒｏｗ  Ｓｔｏｏｌ  ＤＮＡキット（NorDiag, Norvege）を用いて破砕した胃から抽出した。それぞれの破砕した胃で、総ＤＮＡを１８０μＬのＴＲＩＳバッファー（１０ｍＭ）中に再懸濁した。
【００６６】
Ｈ．ピロリのＤＮＡの存在を、リアルタイムＰＣＲによってＤＮＡ抽出物中で定量化した。増幅は、Oleastro et al. (2003)に記載の方法に従ってＨ．ピロリ中に２つのコピーで存在する２３Ｓ  ｒＲＮＡを標的とするプライマーを用いて行った。２０μｌの混合物（ＭｇＣｌ２  ２５ｍＭ、Menard et al., 2002に記載のプライマーＨＰＹ−Ａ及びＨＰＹ−Ｓ  ２０μＭ、ＬＣ−Ｒｅｄ  ６４０で５’標識されているとともに、３’リン酸化されているセンサープローブ及びフルオレセインで３’標識されているアンカープローブ（両プローブともOleastro et al. 2003に記載されている）２０μＭ、酵素を含有するバッファー（１０×、ＦａｓｔＳｔａｒｔ  ＤＮＡ  Ｍａｓｔｅｒ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ  Ｐｒｏｂｅｓキット、Roche Diagnostics））に対して、２００ｎｇ／μｌのＤＮＡ  ５μｌを添加して、以下のプログラムを用いてＬｉｇｈｔ  Ｃｙｃｌｅｒ（ROCHE）で増幅した：
変性：  ９５℃  １０分
増幅：５０サイクル    ２０℃／秒
９５℃  ０秒
６０℃  ２０秒
７２℃  １２秒
融合：９５℃  ０秒
３８℃  ５０秒  ２０℃／秒
【００６７】
２．２  結果
Ｌ．ブルガリクス株ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８及びＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２（Ｌｂ  １３０）に関して免疫組織学的検査によって得られた感染スコアを図２に示す。これらの結果から、ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株で発酵させた乳製品のＨ．ピロリに感染させたマウスへの投与は感染スコアを有意に低減するが、ＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２株で発酵させた乳製品による処理はＨ．ピロリの負荷を低減しないことが示される。
【００６８】
Ｌ．ブルガリクス株ＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８及びＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２（Ｌｂ  １３０）に関するリアルタイムＰＣＲによって得られた結果を図３に示す。これらの結果から、マウスにおいてＣＮＣＭ  Ｉ−４４２８株で発酵させた乳製品による処理はＨ．ピロリの負荷を有意に低減するが、ＣＮＣＭ  Ｉ−１６３２株で発酵させた乳による処理はＨ．ピロリの負荷を低減しないことが示される。
【表２】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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