(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ビタミンＥが共有結合した標的遺伝子の発現を抑制する核酸と、以下の（ｉ）〜（ｖ）のいずれかの混合ミセルとを含有することを特徴とする、経大腸吸収用医薬組成物であって、前記核酸を肝臓細胞へ特異的に送達するための医薬組成物；
（ｉ）ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油及びリノール酸から形成された混合ミセル；
（ii）ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油及びドコサヘキサエン酸から形成された混合ミセル；
（iii）カプリン酸から形成された混合ミセル；
（iv）ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油及びエイコサペンタエン酸から形成された混合ミセル；
（ｖ）ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油及びオレイン酸から形成された混合ミセル；
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、経大腸吸収用医薬組成物、より詳しくは、特定の生理活性物質と特定の上皮透過性亢進化合物を含む経大腸吸収用医薬組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
一般に、ホルモンやサイトカインなどのペプチド性医薬品や、抗体医薬品や、ｓｉＲＮＡ、ＤＮＡプラスミドなどの核酸医薬品のほとんどは水溶性で高分子量の化合物であって、その上皮透過性及び細胞膜透過性は極めて低い。一方、これらの生理活性物質の標的分子（作用部位）は、多くの場合は細胞膜や細胞内に存在しており、医薬品として開発するためには、これら生理活性物質を標的細胞内に送達する技術（システム）の開発が不可欠である。これまでに多様な薬物送達システム（ＤＤＳ）が開発されているにもかかわらず、これらの生理活性物質を注射によらず標的組織、特に標的細胞内に特異的に送達するシステムは報告されていない。これは、非注射的に体内に薬物を送達する機能と、標的部位に特異的に送達する機能の両者を併せ持つ多機能ＤＤＳの開発がきわめて困難であることに起因していると考えられる。特に、経口は簡便な薬物投与経路であるが、薬物送達には多くの障害がある。【０００３】
本発明者らは、これまでに、標的遺伝子の発現を抑制する核酸を、内因性カイロミクロンを利用してデリバリーするシステム等について研究を進めてきた。例えば特許文献１には、カイロミクロン又はカイロミクロンレムナントへの導入物質が結合した、標的遺伝子の発現を抑制する核酸を含有し、かつ、これを内因性カイロミクロンの生産が誘導されている条件下で脊椎動物に投与することを特徴とする、標的遺伝子の発現抑制剤が記載されている。しかし、かかる発現抑制剤が主として想定している投与経路は、静脈内注射等の注射投与であった。【０００４】
医学上重要な薬物の中には、消化管からの吸収が乏しいため、注射投与されるものが多いが、注射療法は患者にとって、精神的肉体的苦痛を伴う上に、アレルギー反応や投与部位の組織障害を起こす可能性が指摘されている。したがって、注射剤に代わり得る新しい投与剤形が要望され、近年、難吸収性薬物の経口又は直腸投与剤の開発が試みられている。【０００５】
例えば、非特許文献１には、難吸収性薬物の腸管透過性を向上させる吸収促進物質として、カプリン酸、オレイン酸、リノール酸及びそれらのモノグリセリド等の脂肪酸；脂肪酸の糖エステル；脂肪酸のグリセリンエステル；ＥＤＴＡ、クエン酸等のキレート剤；ラウリル硫酸ナトリウム等の界面活性剤；を用いうることが記載されている。また、本発明者らによる非特許文献２には、吸収促進作用物質として、長鎖不飽和脂肪酸や中鎖脂肪酸が優れていることや、長鎖不飽和脂肪酸とＨＣＯ−６０（非イオン性界面活性剤）との混合ミセルが特に優れていることが記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】国際公開第２００９／０６９３１３号パンフレット
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】D. D. Breimer and P. Speiser, Editors, “Topics in Pharmaceutical Sciences 1987”, Elsevier Science Publishers B.V., Biomedical Division (1987), pp. 445-455.
【非特許文献２】薬剤学、Ｖｏｌ．５３、Ｎｏ．３、ｐ１７６〜１８４（１９９３）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明の課題は、細胞内に作用部位を有する生理活性物質（特に、水溶性で高分子量の生理活性物質）を、注射投与によらず非侵襲的に、且つ、特定の組織の細胞内へ高い特異性で送達し得る経大腸吸収用医薬組成物を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは、ビタミンＥが結合したｓｉＲＮＡ（ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）を注射投与によらず非侵襲的に投与する方法について鋭意研究を行った。生体内のリポタンパク質の１種である内因性カイロミクロンは小腸で形成され、主に、小腸の粘膜上皮を透過してリンパ管へ入り、リンパ管を上行し、静脈に流出後リポプロテインリパーゼ（ＬＰＬ）によってカイロミクロンレムナント（chylomicron remnant）に代謝され、このカイロミクロンレムナントによって肝臓に輸送されることが従来から知られている。したがって、本発明者らは、ＶＥ−ｓｉＲＮＡが内因性カイロミクロンの構成材料となるように、ＶＥ−ｓｉＲＮＡを小腸に投与することによって、ＶＥ−ｓｉＲＮＡを含む内因性カイロミクロンを形成させ、かかる内因性カイロミクロンを小腸から吸収させて肝臓細胞内へと送達させるべく、腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する様々な化合物を併用しながらＶＥ−ｓｉＲＮＡを小腸に投与したが、ＶＥ−ｓｉＲＮＡは小腸の粘膜上皮をほとんど透過せず、ＶＥ−ｓｉＲＮＡを肝臓細胞内へ効率よく送達することはできなかった。【００１０】
そのため、本発明者らは、ＶＥ−ｓｉＲＮＡの腸管投与は断念することも検討した。というのも、小腸投与以外の腸管投与として大腸投与が一応有り得たものの、大腸ではカイロミクロンは形成されないため、腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する様々な化合物を併用しながらＶＥ−ｓｉＲＮＡを大腸に投与したとしても、ＶＥ−ｓｉＲＮＡが内因性カイロミクロンに取り込まれるとは考えられなかったからである。しかし、本発明者らは、ＶＥ−ｓｉＲＮＡと、腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する様々な化合物との大腸投与を試みた。その結果、意外なことに、本発明者らは、程度の差はあれど、腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する様々な化合物によって、ＶＥ−ｓｉＲＮＡを肝臓細胞内に効率的に送達し得ることを見いだし、本発明を完成するに至った。【００１１】
すなわち、本発明は、
（１）少なくとも以下の（ａ）及び（ｂ）を含有することを特徴とする、経大腸吸収用医薬組成物；
（ａ）細胞内に作用部位を有し、且つ、リポタンパク質導入物質が結合した生理活性物質；
（ｂ）前記生理活性物質の大腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する化合物；や、
（２）大腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する化合物として、界面活性剤を更に含有することを特徴とする上記（１）に記載の医薬組成物や、
（３）リポタンパク質導入物質が、カイロミクロン又はカイロミクロンレムナントへの導入物質であることを特徴とする、上記（１）又は（２）に記載の医薬組成物や、
（４）リポタンパク質導入物質が、脂溶性ビタミン又はコレステロールであることを特徴とする、上記（３）に記載の医薬組成物や、
（５）脂溶性ビタミンがビタミンＥ又はその誘導体であることを特徴とする、上記（４）に記載の医薬組成物や、
（６）生理活性物質を肝臓細胞へ特異的に送達することができることを特徴とする、上記（１）又は（２）に記載の医薬組成物や、
（７）リポタンパク質導入物質と結合させた生理活性物質の分子量が、１０００〜１５００００ダルトンの範囲内であることを特徴とする、上記（１）又は（２）に記載の医薬組成物や、
（８）生理活性物質が、標的遺伝子の発現を抑制する核酸であることを特徴とする、上記（１）又は（２）に記載の医薬組成物や、
（９）核酸が、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、アンチセンスオリゴヌクレオチド、アンタゴｍｉｒ、核酸アプタマー、リボザイム及びデコイからなる群から選択される１種又は２種以上の核酸であることを特徴とする、上記（８）に記載の医薬組成物や、
（１０）大腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する化合物が、以下の（ｃ）又は（ｄ）のいずれか１つ以上を含む、上記（１）又は（２）に記載の医薬組成物；
（ｃ）中鎖脂肪酸又は長鎖不飽和脂肪酸；
（ｄ）前記（ｃ）記載の脂肪酸（多価不飽和脂肪酸の場合は共役型も含まれる）の、塩、エステル体又はエーテル体；や、
（１１）大腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する化合物が、リノール酸、オレイン酸、リノレン酸、ドコサヘキサエン酸、エイコサペンタエン酸、カプリン酸又はラウリン酸、或いは、それらの塩、エステル体又はエーテル体であることを特徴とする、上記（１０）に記載の医薬組成物や、
（１２）界面活性剤が、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリソルベート、ポリエチレングリコール、ポロキサマー、モノアシルグリセリン、モノアシルソルビタン又は脂肪酸ショ糖エステル類であることを特徴とする、上記（２）に記載の医薬組成物や、
（１３）大腸投与剤、経口腸溶剤又は経口薬物送達システムである、上記（１）又は（２）に記載の医薬組成物に関する。
【発明の効果】
【００１２】
本発明によれば、細胞内に作用部位を有する生理活性物質（特に、水溶性で高分子量の生理活性物質）を、注射投与によらず非侵襲的に、且つ、特定の組織の細胞内へ高い特異性で送達し得る経大腸吸収用医薬組成物を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】本発明の経大腸吸収用医薬組成物の想定デリバリー機構の概要を示す図である。
【図２】ＶＥ−ｓｉＲＮＡの化学的構造を示す図である。配列中の小文字は２’Ｏ−メチル修飾を表し、アスタリスクはホスホチオネート骨格を表し、Ｔｏｃはα-tocopherolを表す。
【図３】蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を直腸投与したマウスの肝臓組織の凍結切片を共焦点レーザー顕微鏡で観察した結果を示す図である。
【図４】蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を直腸投与したマウスのリンパ液について、蛍光相関分析法（ＦＣＳ）にて解析した結果を示す図である。
【図５】蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を直腸投与したマウスのリンパ液、又は、かかるリンパ液のリポタンパク分画について、蛍光相関分析法（ＦＣＳ）にて解析した結果を示す図である。
【図６】ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を直腸投与したマウスの肝臓細胞由来のトータルＲＮＡについて、ノザンブロット解析を行った結果を示す図である。
【図７】ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を直腸投与したマウスの肝臓細胞由来のトータルＲＮＡについて、標的内因性遺伝子に関する定量的ＲＴ−ＰＣＲを行った結果を示す図である。
【図８】ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を直腸投与したマウスの血清中のａｐｏＢ１００及びａｐｏＢ４８をウエスタンブロットで解析した結果を示す図である。図８Ａ：ウエスタンブロットの結果を示す図である。図８Ｂ：図８Ａの結果からバンドの濃度を定量し、ａｐｏＢ４８定量値に対するａｐｏＢ１００定量値の比率（ａｐｏＢ１００／４８比）を求めた結果を示す図である。
【図９】ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を直腸投与したマウスの血清中の中性脂肪値、及び、ＬＤＬコレステロール値を示す図である。
【図１０】蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び各種の上皮透過性亢進化合物等を直腸投与したマウスの肝臓組織の凍結切片を共焦点レーザー顕微鏡で観察した結果を示す図である。
【図１１】蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を含有する中空坐剤等を直腸投与したラットの肝臓組織の凍結切片を共焦点レーザー顕微鏡で観察した結果を示す図である。
【図１２】エチルセルロース多孔性マイクロスフェアを走査型電顕像で観察した結果を示す図である。
【図１３】Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ／ｐ−ＭＳ含有坐剤の形状を示す図である。
【図１４】ｐ−ＭＳ坐剤製剤等を直腸投与したラットの肝臓組織の凍結切片を共焦点レーザー顕微鏡で観察した結果を示す図である。
【図１５】ｐ−ＭＳ坐剤製剤等を直腸投与したラットの大腸組織の凍結切片を共焦点レーザー顕微鏡で観察した結果を示す図である。
【図１６】トランスサイレチン遺伝子を標的とするＶＥ−ｓｉＲＮＡ及び上皮透過性亢進化合物等を注腸投与したマウスの、血清中トランスサイレチン濃度を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
本発明の経大腸吸収用医薬組成物（以下、単に「本発明の医薬組成物」とも表示する。）としては、少なくとも以下の（ａ）及び（ｂ）を含有することを特徴とする。
（ａ）細胞内に作用部位を有し、且つ、リポタンパク質導入物質が結合した生理活性物質（以下、単に「本発明における生理活性物質」とも表示する。）；
（ｂ）前記生理活性物質の大腸粘膜上皮透過性亢進作用を有する化合物（以下、単に「本発明における上皮透過性亢進化合物」とも表示する。）；
【００１５】
本発明の医薬組成物は、大腸管を経て吸収されるように、非侵襲的に対象に投与することによって、本発明における生理活性物質を特定の組織の細胞内へ高い特異性で送達することができる。本発明の医薬組成物のデリバリー機構として想定される概要を、本発明の代表的な態様を例として図１に示す。すなわち、図１は、本発明における生理活性物質として「Ｔｏｃ−ｓｉＲＮＡ」（α-トコフェロールが結合したｓｉＲＮＡ）を用い、本発明における上皮透過性亢進化合物として、リノール酸（ＬＡ）と界面活性剤ＨＣＯ−６０との混合ミセル（ＭＭ）を用い、本発明におけるリポタンパク質として内因性のカイロミクロンを利用した場合のデリバリーの概要を示している。
【００１６】
図１に示されているように、本発明の医薬組成物（Ｔｏｃ−ｓｉＲＮＡ／ＭＭ）を坐剤や経口腸溶剤、その他経口薬物送達システム等で投与すると、本発明の医薬組成物に含まれる生理活性物質（ｓｉＲＮＡ）が難吸収性化合物であっても、本発明における上皮透過性亢進化合物（ＭＭ）の働きで、本発明における生理活性物質（Ｔｏｃ−ｓｉＲＮＡ）の大腸（例えば直腸）の粘膜上皮からの吸収が促進される。吸収された本発明における生理活性物質（Ｔｏｃ−ｓｉＲＮＡ）はリンパ管内に移行し、リンパ液の流れに沿って上行する。一方、食事等に由来する外因性脂質は、小腸の粘膜上皮においてカイロミクロン（ＣＭ）等のリポタンパク質に変換され、カイロミクロンは小腸の粘膜上皮から吸収されてその付近のリンパ管内へ移行する。リンパ管内を上行する本発明における生理活性物質（Ｔｏｃ−ｓｉＲＮＡ）は、小腸付近のリンパ管内でカイロミクロンと出会い、本発明における生理活性物質のリポタンパク質導入物質部分（Ｔｏｃ）を介してカイロミクロンと複合体（Ｔｏｃ−ｓｉＲＮＡ／ＣＭ）を形成する。この複合体（Ｔｏｃ−ｓｉＲＮＡ／ＣＭ）は、静脈角で静脈内に流出し、リポプロテインリパーゼ（lipoproptein lipase：ＬＰＬ）によりカイロミクロンレムナントへとレムナント化した後、レムナント受容体（ＬＤＬ受容体やＬＲＰ−１受容体）を持つ肝臓細胞において、かかるレムナント受容体を介したエンドサイトーシスによって、肝臓細胞内に効率的に取り込まれる。本発明の医薬組成物のデリバリー機構として想定される概要は以上のとおりである。
【００１７】
本発明におけるリポタンパク質としては、生体内に存在するリポタンパク質である限り特に制限されないが、肝臓細胞内への高い特異性での送達が可能となることから、カイロミクロン又はカイロミクロンレムナントを好適に例示することができ、中でも、カイロミクロンを特に好適に例示することができる。
【００１８】
前述の本発明における生理活性物質としては、細胞内に作用部位を有し、且つ、リポタンパク質導入物質が結合した生理活性物質であって、生体内でその生理活性を発揮し得る限り、合成物質であっても天然物質であっても特に制限されず、かかる生理活性物質としては、市販のものや適宜調製したものを用いることができる。かかる生理活性物質の中でも好ましいものとして、分子標的化合物、細胞内受容体リガンド化合物、細胞内オルガネラに作用する化合物を好適に例示することができ、中でも、生体に対する有害作用がないか、あっても認容の範囲であるものをより好適に例示することができ、中でも、親水性が比較的高く、腸管上皮から吸収されにくい難吸収性化合物をさらに好適に例示することができ、中でも、ポリヌクレオチド、ポリペプチド（ペプチドを含む）、及びそれらの修飾体又は誘導体をより好適に例示することができ、具体的には、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、アンチセンスオリゴヌクレオチド、アンタゴｍｉｒ、核酸アプタマー、リボザイム及びＤＮＡデコイ、プラスミド等の核酸医薬；ホルモン、サイトカイン等のペプチド性医薬；抗体医薬；などの分子標的薬やバイオ医薬品をさらに好適に例示することができ、中でも、核酸医薬をより好適に例示することができ、中でもｓｉＲＮＡを特に好適に例示することができる。マウスａｐｏＢ遺伝子を標的遺伝子とするｓｉＲＮＡとして具体的には、配列番号１（5’-GUCAUCACACUGAAUACCAAUGCUGGA-3’）からなるセンス鎖（２７ｍｅｒ）と、配列番号２（5’-UCCAGCAUUGGUAUUCAGUGUGAUGACAC-3’）からなるアンチセンス鎖（２９ｍｅｒ）からなるｓｉＲＮＡを例示することができる。またヒトトランスサイレチン遺伝子を標的遺伝子とするｓｉＲＮＡとして具体的には、配列番号３（5’-GUAACCAAGAGUAUUCCAUUUUUACUA-3’）からなるセンス鎖（２７ｍｅｒ）と、配列番号４（5’-UAGUAAAAAUGGAAUACUCUUGGUUACAC-3’）からなるアンチセンス鎖（２９ｍｅｒ）からなるｓｉＲＮＡを例示することができる。
【００１９】
また、上記の核酸医薬における核酸としては、生体内で分解されにくいように修飾した核酸であることが好ましく、特に、核酸がＲＮＡの場合は、細胞内のＲＮａｓｅに対して分解されにくいように、メチル化処理やチオリン酸化処理などの抗ＲＮａｓｅ処理されていることが好ましく、核酸のリボースの２’位のメチル化処理や、核酸の骨格の結合のチオリン酸化処理がさらに好ましい。メチル化やチオリン酸化を行うヌクレオチドの数や位置は、核酸が有する発現抑制活性に若干影響を与える場合があるため、メチル化やチオリン酸化を行うヌクレオチドの数や位置等の態様には、好ましい態様が存在する。この好ましい態様は、修飾対象となる核酸の配列によっても異なるため一概にいうことはできないが、修飾後の核酸の発現抑制活性を確認することによって、好ましい態様を容易に調べることができる。例えば、前述の配列番号１及び２からなるｓｉＲＮＡにおける好ましい抗ＲＮａｓｅ処理の態様としては、センス鎖（配列番号１）のヌクレオチド番号２、５、１１、１５、２１、２４及び２５のヌクレオチド、並びに、アンチセンス鎖（配列番号２）のヌクレオチド番号１、２、５、１２、１４、２１、２４、２５及び２６のヌクレオチドにおけるリボースの２’をメチル化し、また、センス鎖（配列番号１）のヌクレオチド番号２６と２７のヌクレオチド間の結合をチオリン酸化し、さらに、アンチセンス鎖（配列番号２）のヌクレオチド番号３、４、６、２７、２８のヌクレオチドについては、そのリボースの２’をメチル化し、かつ、その骨格の結合をチオリン酸化することを例示することができる。
【００２０】
上記核酸医薬における核酸が、標的遺伝子の発現を抑制する核酸である場合、かかる核酸が有する「標的遺伝子の発現を抑制する活性」とは、上記核酸を細胞内に導入した場合に、導入しない場合に比べて、その標的遺伝子の細胞内の発現を低下させる活性を意味する。標的遺伝子の細胞内の発現の低下は、該標的遺伝子のｍＲＮＡを定量したり、該標的遺伝子にコードされるタンパク質を定量するなどして調べることができる。本発明に用いる核酸が標的遺伝子の発現を抑制する程度としては、この核酸を所定の腸管内に０．１から５０ｍｇ／ｋｇ導入した場合に、導入しない場合と比較して、送達組織細胞内（好ましくは肝臓細胞内）の標的遺伝子のｍＲＮＡレベル又はタンパクレベルでの発現が８０％以下、より好ましくは６０％以下、さらに好ましくは４０％以下、さらにより好ましくは２０％以下を例示することができる。
【００２１】
上記核酸が、ｓｉＲＮＡである場合、センス鎖及び／又はアンチセンス鎖のヌクレオチド数は２１でもよいが、２１より多くすると、細胞内のＤｉｃｅｒによって上記リポタンパク質導入物質及びｓｉＲＮＡの一部と、ｓｉＲＮＡ（ヌクレオチド数２１のもの）との間が切断され、ヌクレオチド数２１のｓｉＲＮＡが効率的に発現抑制効果を発揮しうるため、好ましい。
【００２２】
上記標的遺伝子の発現を抑制する核酸は、標的遺伝子の配列やその転写因子が結合し得る部分の配列などの情報に基づいて公知の方法により設計することができる。例えば、ｓｉＲＮＡであれば、特開２００５−１６８４８５号記載の方法を、核酸アプタマーであれば、Nature, 1990, 346(6287):818-22記載の方法を、リボザイムであれば、FEBS Lett, 1988, 239, 285.；タンパク質核酸酵素, 1990, 35, 2191.；Nucl Acids Res, 1989, 17, 7059.記載の方法などを用いて、標的遺伝子の発現を抑制する核酸を設計することができる。また、アンチセンスオリゴヌクレオチド、アンタゴｍｉｒやＤＮＡデコイは、それぞれ標的遺伝子の配列、及び、その転写因子が結合し得る配列の情報に基づいて容易に設計することができる。
【００２３】
上記核酸は、公知の方法等を用いて調製することができる。例えばアンチセンスオリゴヌクレオチドやリボザイムは標的遺伝子のｃＤＮＡ配列又はゲノミックＤＮＡ配列に基づいてｍＲＮＡもしくは初期転写産物の標的配列を決定し、市販のＤＮＡ／ＲＮＡ自動合成機（アプライド・バイオシステムズ社、ベックマン社等）を用いて、これに相補的な配列を合成することにより調製することができ、また、ＤＮＡデコイやｓｉＲＮＡは、センス鎖及びアンチセンス鎖をＤＮＡ／ＲＮＡ自動合成機でそれぞれ合成し、適当なアニーリング緩衝液中、約９０〜約９５℃で約１分程度変性させた後、約３０〜約７０℃で約１〜約８時間アニーリングさせること等により調製することができる。また、核酸アプタマーは、特開２００７−０１４２９２号記載の方法等により調製することができる。
【００２４】
前述の本発明におけるリポタンパク質導入物質としては、前述のリポタンパク質と親和性を有する疎水性化合物又は疎水性領域を有する化合物であれば特に制限されないが、リポタンパク質と結合する、好ましくは特異的に結合する、天然又は合成脂溶性分子並びにそれらの誘導体を好適に例示することができ、中でも、生体に対する有害作用がないか、あっても認容の範囲であるものをより好適に例示することができ、中でも、グリセリド、コレステロール、糖脂質、脂肪酸等の脂質；ビタミンＡ、ビタミンＥ、ビタミンＤ、ビタミンＫ等の脂溶性ビタミン；アシルカルニチン、アシルＣｏＡ等の中間代謝物；並びにそれらの誘導体；をさらに好適に例示することができ、中でも、安全性がより高い点で、ビタミンＥやコレステロールをより好適に例示することができ、特にビタミンＥを好適に例示することができる。なお、上記リポタンパク質導入物質は、２種類以上を組み合わせて使用してもよい。
【００２５】
上記ビタミンＥとしては、下記一般式（１）で示されるトコフェノール類もしくは一般式（２）で示されるトコトリエノール類
【００２６】
【化１】
0005892658.tif 000002
【００２７】
【化２】
0005892658.tif 000003
【００２８】
（式中、Ｒ１、Ｒ２は水素原子またはメチル基を表し、Ｒ３は水素原子またはカルボン酸残基を表わす。）、またはこれら化合物を２種以上含有する混合物を好適に例示することができる。これらのうちα−トコフェロール（一般式（１）において、Ｒ１＝メチル基、Ｒ２＝メチル基、Ｒ３＝水素原子）、β−トコフェロール（一般式（１）において、Ｒ１＝メチル基、Ｒ２＝水素原子、Ｒ３＝水素原子）、γ−トコフェロール（一般式（１）において、Ｒ１＝水素原子、Ｒ２＝メチル基、Ｒ３＝水素原子）、δ−トコフェロール（一般式（１）において、Ｒ１＝水素原子、Ｒ２＝水素原子、Ｒ３＝水素原子）、α−トコトリエノール（一般式（２）において、Ｒ１＝メチル基、Ｒ２＝メチル基、Ｒ３＝水素原子）、β−トコトリエノール（一般式（２）において、Ｒ１＝メチル基、Ｒ２＝水素原子、Ｒ３＝水素原子）、γ−トコトリエノール（一般式（２）において、Ｒ１＝水素原子、Ｒ２＝メチル基、Ｒ３＝水素原子）、δ−トコトリエール（一般式（２）において、Ｒ１＝水素原子、Ｒ２＝水素原子、Ｒ３＝水素原子）、及び、これらの酢酸エステル、コハク酸エステルが好ましい。特に、α−トコフェロール、γ−トコフェロールが好ましい。また、ビタミンＥとして、ｄ体、ｌ体、ｄｌ体の区別は特に問わない。
【００２９】
上記リポタンパク質導入物質と上記生理活性物質との結合は、直接的な結合であってもよいし、他の物質を間に介した間接的な結合であってもよいが、共有結合、イオン結合、水素結合等の化学結合で直接的に結合していることが好ましく、中でもより安定した結合が得られることから共有結合を特に好ましく例示することができる。
【００３０】
リポタンパク質導入物質と生理活性物質とを結合させる方法としては、特に制限はないが、例えば、生理活性物質が核酸である場合に、リポタンパク質導入物質と共有結合させる場合は、リポタンパク質導入物質と核酸とを、Tetrahedron Letters 33; 2729-2732. 1992.記載の方法にしたがって共有結合させることが好ましく、イオン結合や水素結合を利用する場合は、正電荷を有するアルギニン残基をリポタンパク質導入物質に結合させ、アルギニン残基のこの正電荷と、ｓｉＲＮＡ等の核酸が有する負電荷とのイオン結合や水素結合を利用して結合させることが好ましい。なお、リポタンパク質導入物質に結合させるアルギニン残基の数は、核酸とのより安定的な結合を得る観点から、２以上とすることが好ましく、３以上とすることがより好ましく、４以上とすることがさらに好ましい。
【００３１】
リポタンパク質導入物質と結合させた生理活性物質の分子量としては、本発明の効果が得られる限り特に制限されないが、本発明によるメリットを特に大きく享受し得る観点から、かかる分子量が１０００〜１５００００ダルトンの範囲内であることを好適に例示することができ、中でも、５０００〜１０００００ダルトンの範囲内であることをより好適に例示することができ、中でも、５０００〜５００００ダルトンの範囲内であることをさらに好適に例示することができる。
【００３２】
本発明の医薬組成物に含まれる本発明における上皮透過性亢進化合物としては、本発明における生理活性物質の、大腸粘膜上皮における透過性を亢進する作用を有する化合物である限り特に制限されないが、中でも、本発明における生理活性物質の、大腸粘膜上皮における細胞間隙透過性を亢進する化合物を好適に例示することができ、中でも、本発明におけるリポタンパク質導入物質と親和性が高い化合物をより好適に例示することができ、中でも、本発明における生理活性物質と、本発明におけるリポタンパク質との生体内における複合体形成を妨げない化合物（好ましくは促進する化合物）をさらに好適に例示することができ、中でも、本発明における生理活性物質のリンパ移行性を妨げない化合物（好ましくは促進する化合物）をより好適に例示することができ、中でも、その有効投与量において生体に対して無害であり、且つ、本発明における生理活性物質の生理作用を妨げない化合物（好ましくは生理活性のない物質）をさらに好適に例示することができ、中でも、大腸粘膜への傷害性が低い化合物（好ましくは大腸粘膜への傷害作用のない化合物）をより好適に例示することができ、中でも、本発明における生理活性物質と複合体を形成する化合物をさらに好適に例示することができ、中でも、対象への投与時又は対象における大腸粘膜上皮を透過する時に、本発明における生理活性物質とコロイド分散系（好ましくは混合ミセル、エマルション、より好ましくは混合ミセル）を形成し得る化合物をより好適に例示することができる。本発明における上皮透過性亢進化合物として具体的には、本発明におけるリポタンパク質導入物質と親和性が高く、且つ、本発明における生理活性物質の、大腸粘膜上皮における透過性を亢進する作用を有する化合物（以下、単に「化合物Ａ」とも表示する。）や、上皮細胞間隙のタイト結合若しくは接着に係る分子、又は、該分子を調節する分子に作用する化合物（以下、単に「化合物Ｂ」とも表示する。）を好適に例示することができ、上記化合物Ａとしては、天然又は合成脂質及びその誘導体、界面活性剤、並びに、ペプチド等を好適に例示することができ、中でも、中鎖脂肪酸、長鎖不飽和脂肪酸、モノグリセリド・ジグリセリド及びこれらの誘導体（好ましくは、塩、エステル体又はエーテル体）又はこれらの混合物をより好適に例示することができ、中でも、上皮透過性亢進作用に優れている点で、中鎖脂肪酸、長鎖不飽和脂肪酸及びこれらの誘導体（好ましくは、塩、エステル体又はエーテル体）をさらに好適に例示することができ、中でも、上皮透過性亢進作用に優れているだけでなく、リポタンパク質の形成促進作用やリンパ流速上昇作用をさらに有している点で、長鎖不飽和脂肪酸及びこれらの誘導体（好ましくは、塩、エステル体又はエーテル体）を特に好適に例示することができ、上記化合物Ｂとしては、クローディン−４調節因子、ＥＤＴＡ、クエン酸等のキレート化合物及びその誘導体を好適に例示することができる。
【００３３】
上記の中鎖脂肪酸とは、炭素数８〜１２の脂肪酸を意味し、かかる中鎖脂肪酸としては、カプリル酸（オクタン酸）、ペラルゴン酸（ノナン酸）、カプリン酸（デカン酸）、ラウリン酸（ドデカン酸）が含まれ、中でもカプリン酸、ラウリン酸を好適に例示することができ、中でもカプリン酸をより好適に例示することができる。また、上記の長鎖不飽和脂肪酸とは、炭素数１２以上（好ましくは１２以上３０以下、より好ましくは１２以上２４以下、さらに好ましくは１４以上２０以下）の不飽和脂肪酸を意味し、一価不飽和脂肪酸であっても多価不飽和脂肪酸（好ましくは二価〜八価の不飽和脂肪酸、より好ましくは二価〜六価の不飽和脂肪酸、さらに好ましくは二価〜四価の不飽和脂肪酸）でもよく、かかる長鎖不飽和脂肪酸としては、例えば、ミリストレイン酸（９−テトラデセン酸）、パルミトレイン酸（９−ヘキサデセン酸）、オレイン酸（ｃｉｓ−９−オクタデセン酸）、エライジン酸（ｔｒａｎｓ−９−オクタデセン酸）、バクセン酸（１１−オクタデセン酸）、リノール酸（ｃｉｓ，ｃｉｓ−９，１２−オクタデカジエン酸）、α−リノレン酸（９，１２，１５−オクタデカトリエン酸）、γ−リノレン酸（６，９，１２−オクタデカトリエン酸）、ピノレン酸（５，９，１２−オクタデカトリエン酸）、エレオステアリン酸（９，１１，１３−オクタデカトリエン酸）、ステアリドン酸（６，９，１２，１５−オクタデカテトラエン酸）、ガドレイン酸（９−イコセン酸）、エイコセン酸（１１−イコセン酸）、８，１１−イコサジエン酸、５，８，１１−イコサトリエン酸、アラキドン酸（５，８，１１，１４−イコサテトラエン酸）、エイコサペンタエン酸（５，８，１１，１４，１７−イコサペンタエン酸：ＥＰＡ）、エルカ酸（１３−ドコセン酸）、ドコサジエン酸（１３，１６−ドコサジエン酸）、アドレン酸（７，１０，１３，１６−ドコサテトラエン酸）、オズボンド酸（４，７，１０，１３，１６−ドコサペンタエン酸）、セルボン酸（ドコサヘキサエン酸：ＤＨＡ）、ネルボン酸（ｃｉｓ−１５−テトラドコサン酸）、テトラコサペンタエン酸（９，１２，１５，１８，２１−テトラコサペンタエン酸）を好適に例示することができ、中でも、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、ドコサヘキサエン酸、エイコサペンタエン酸をより好適に例示することができ、中でも、リノール酸を特に好適に例示することができる。
【００３４】
前述の界面活性剤としては、本発明における生理活性物質の、大腸粘膜上皮における透過性を亢進する作用を有している限り特に制限されないが、ＨＣＯ−６０（ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油）、ポリソルベート、ポリエチレングリコール、ポロキサマー、モノアシルグリセリン、モノアシルソルビタン、脂肪酸ショ糖エステル類、ポリオキシエチレンアルキルエーテル等の非イオン性界面活性剤；ラウリル硫酸ナトリウム等の陰イオン性界面活性剤；などを例示することができ、中でも、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリソルベート、ポリエチレングリコール、ポロキサマー、モノアシルグリセリン、モノアシルソルビタン、脂肪酸ショ糖エステル類、ポリオキシエチレンアルキルエーテル等の非イオン性界面活性剤を好適に例示することができ、中でも、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリソルベート、ポリエチレングリコール、ポロキサマー、モノアシルグリセリン、モノアシルソルビタン、脂肪酸ショ糖エステル類をより好適に例示することができ、中でも、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油を特に好適に例示することができる。
【００３５】
なお、本発明における上皮透過性亢進化合物は、２種以上を併用してもよく、例えば、本発明における上皮透過性亢進化合物として長鎖不飽和脂肪酸を用いる場合は、長鎖不飽和脂肪酸と本発明における生理活性物質とで複合体（好ましくはコロイド分散系、より好ましくは混合ミセル、エマルション、さらに好ましくは混合ミセル）を形成させるために、界面活性剤を併用することが好ましい。また、本発明における上皮透過性亢進化合物として中鎖脂肪酸を用いる場合は、界面活性剤を併用しなくても、本発明における生理活性物質と複合体を形成するが、より十分に複合体（好ましくはコロイド分散系、より好ましくは混合ミセル、エマルション、さらに好ましくは混合ミセル）を形成させるために、界面活性剤を併用することが好ましい。
【００３６】
前述の大腸粘膜上皮における大腸としては、結腸（上行結腸、横行結腸、下行結腸、Ｓ状結腸）、直腸を好適に例示することができ、中でも、直腸を特に好適に例示することができる。
【００３７】
本発明の医薬組成物又はその製剤の剤形としては、経大腸吸収用剤である限り特に制限されず、坐剤、注腸剤等の大腸投与剤や、経口腸溶剤、又は、パルシンキャップ（登録商標）（国際公開番号１９９０／００９１６８）、オロス（登録商標）（Ｆ．ティーウェス、「ＯＲＯＳ（Ｒ）浸透圧システムの発展」薬剤開発産業と薬理学、９（７）、１３３１−１３５７（１９８３）、Ｆ．ティーウェス「誘発・脈動・プログラム化薬剤送達」新規な薬剤送達とその治療適用、Ｌ．Ｆ．プレスコットおよびＷ．Ｓ．ニモス編、（ワイリー、ニューヨーク、１９８９）３２３−３４０ページ）、ＧＩ−ＭＡＰＳ（登録商標）（特開２００５ー２７２４１６）等の経口薬物送達システム（経口薬物送達製剤）を好適に例示することができる。なお、ここで経大腸吸収とは、結腸、直腸等を含む大腸での吸収に加え、小腸下部（回腸）での吸収を含む。
【００３８】
本発明の医薬組成物を製剤とする場合には、本発明における生理活性物質及び本発明における上皮透過性亢進化合物に、適宜の薬学的に許容される担体、例えば、賦形剤、結合剤、溶剤、溶解補助剤、懸濁化剤、乳化剤、等張化剤、緩衝剤、安定化剤（好ましくは本発明における生理活性物質の安定化剤）、ｐＨ調節剤、コロイド安定剤、無痛化剤、防腐剤、抗酸化剤、増粘剤、ゲル化剤、着色剤、滑沢剤、崩壊剤、湿潤剤、吸着剤、甘味剤、希釈剤などの任意成分を配合することができる。かかる任意成分の中でも、本発明の医薬組成物の大腸粘膜上皮における透過性をより強く亢進させ得る観点から、本発明における生理活性物質の安定化剤、ｐＨ調節剤、コロイド安定剤、抗酸化剤、増粘剤、ゲル化剤を好適に例示することができる。また、任意成分として、細胞内のエンドゾームからの脱出剤をさらに含有させると、本発明における生理活性物質の細胞内標的分子へのターゲティングを増強し得る点で好ましい。
【００３９】
本発明の医薬組成物又はその製剤の好ましい態様として、本発明における生理活性物質と、本発明における上皮透過性亢進化合物とが、複合体を形成したものを好適に例示することができ、中でも、コロイド分散系を形成したものをより好適に例示することができ、中でも、混合ミセル又はエマルションを形成したものをさらに好適に例示することができ、中でも、混合ミセルを形成したものを特に好適に例示することができる。かかる態様であると、大腸粘膜上皮透過性が特に優れた本発明の医薬組成物が得られるからである。
【００４０】
また、上記の大腸投与剤などの好適な一例として、本発明の医薬組成物が担持された多孔性微粒子を坐剤化した製剤（以下、「多孔性微粒子含有坐剤」と表示する。）を例示することができる。かかる坐剤は、製造が簡便であるという利点や、本発明の医薬組成物に対する保護効果が得られるという利点や、大腸投与の際に本発明の医薬組成物が過度に希釈されることを低減し得るという利点を有している。
【００４１】
本発明における多孔性微粒子含有坐剤は、本発明の医薬組成物が担持された多孔性微粒子である限り特に制限されず、その製法も従来公知のいずれの製法（例えば市販の坐剤用基剤と医薬組成物とを混合する方法など）も用いることができるが、製造がより簡便であり、また、医薬組成物に対するより優れた保護効果が得られ、また、大腸投与の際に医薬組成物が希釈されることをより低減し得る観点から、本発明者が開発した以下の「多孔性微粒子を含有する粘膜適用坐剤の製造方法」における「粘膜適用化合物又は医薬組成物」（以下、「粘膜適用化合物等」とも表示する。）として、「注腸用化合物又は医薬組成物」（以下、「注腸用化合物等」とも表示する。）を利用した製造方法を好適に例示することができる。
【００４２】
上記の多孔性微粒子を含有する粘膜適用坐剤（以下、「多孔性微粒子含有粘膜適用坐剤」とも表示する。）の製造方法としては、疎水基を有する極性化合物である粘膜適用化合物等を溶媒に溶解し、その溶解液に、疎水性高分子化合物からなるスポンジ様の多孔性微粒子を含浸させることによって、粘膜適用化合物等を多孔性微粒子内の空隙中に親和させ、投与後にかかる粘膜適用化合物等を粘膜上に放出可能な程度に担持させる方法である。上記の粘膜適用化合物は、疎水基を有する極性化合物であり、かかる生理活性物質とは、細胞内に作用部位を有し、且つ、リポタンパク質導入物質が結合した生理活性物質を好適に例示することができ、上記の粘膜適用医薬組成物としては、かかる生理活性物質を含む組成物を好適に例示することができる。前述の生理活性物質は、極性化合物に疎水基を付加したものであってもよい。また、上記の疎水性高分子としては、メチルセルロース、エチルセルロース等のアルキルセルロールの他、アミノアルキルメタアクリレートコポリマー、アクリル酸エチル・メタアクリル酸メチル・メタアクリル酸塩化トリメチルアンモニウムエチルのコポリマー、酢酸フタル酸セルロース、メタアクリル酸コポリマー、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート、ヒドロキシプロピルメチルセルロースアセテートサクシネート、及び、カルボキシメチルエチルセルロースなどを好適に例示することができ、中でも、アルキルセルロースをより好適に例示することができ、中でもエチルセルロースをさらに好適に例示することができる。上記の多孔性微粒子の形状や粒子径としては、上記の粘膜適用化合物等を担持させ得る限り特に制限されないが、形状としては、柱状、立方状、球状を好適に例示することができ、粒子径としては、０．５μｍ〜５００μｍの範囲を好適に例示することができ、中でも５μｍ〜５０μｍの範囲をより好適に例示することができる。上記の疎水基としては、前述のリポタンパク質導入物質として例示した化合物（例えばコレステロールや脂溶性ビタミン）を好適に例示することができ、上記の生理活性物質としては、前述の生理活性物質として例示した化合物（例えばポリヌクレオチドやポリペプチド）を好適に例示することができる。また、多孔性微粒子含有粘膜適用坐剤における多孔性微粒子からの粘膜適用化合物等の放出や、放出後の分散や、粘膜への吸収を制御する目的で、界面活性剤や吸収促進剤などを、粘膜適用化合物等と共に多孔性微粒子内の空隙中に担持させることもでき、また、坐剤の保存性を向上させる目的で、適切な保存剤などを、粘膜適用化合物等と共に多孔性微粒子内の空隙中に担持させることもできる。多孔性微粒子含有粘膜適用坐剤の製造方法は、粘膜適用化合物等に代えて、粘膜適用化合物等を担持させた多孔性微粒子を用いること以外は、通常の粘膜適用坐剤の製造方法を用いることができ、例えば、市販の坐剤用基剤を用いることができる。かかる坐剤用基剤としては、例えばGattefosse社製の坐剤用基剤を用途に合わせて適宜使用することができる。また、上記の多孔性微粒子含有粘膜適用坐剤の製造方法の製造対象としては、粘膜適用坐剤である限り特に制限されず、直腸坐剤などの大腸坐剤、膣坐剤、尿道坐剤等を好適に例示することができる。なお、水溶性高分子からなる多孔性微粒子を用いた場合、粘膜適用化合物等には極性化合物を用いることになるが、かかる多孔性微粒子はその粘膜適用化合物等と親和性が高く、坐剤中への分散性は確保できるものの、投与後の坐剤からの多孔性微粒子の放出と、多孔性微粒子からの粘膜適用化合物等の放出とを区別して制御することが困難である。このため、消化管などの粘膜上では不安定な粘膜適用化合物等を多孔性微粒子によって保護する作用は認められないか不十分である上、かかる粘膜適用化合物が投与粘膜上で希釈されることで受動輸送による吸収が低下してしまう。これに対して、疎水性高分子からなる多孔性微粒子と、疎水基を有する極性化合物（粘膜適用化合物等）を用いた場合は、粘膜適用化合物等の疎水基を選択・調整するなどして、多孔性微粒子と粘膜適用化合物等との親和性を調整することによって、投与後の坐剤から多孔性微粒子が放出した後も、粘膜適用化合物等が多孔性微粒子からの保護効果を得、また、投与粘膜上での希釈を低減することができる。
【００４３】
本発明の医薬組成物における、本発明における生理活性物質や、本発明における上皮透過性亢進化合物の含有量としては、製剤に放出量を制御できる機構（例えば、放出制御膜など）を加えることでどのようにでも設定可能であり、本発明の効果が得られる限り特に制限されないが、消化管内での濃度がそれぞれ独立に、好ましくは０．１μＭ〜１０００ｍＭの範囲内、より好ましくは１０μＭ〜５０ｍＭとすることを好適に例示でき、本発明の医薬組成物が液剤である場合、例えば上記を踏まえ、好ましくは０．１μＭ〜１０００ｍＭの範囲内、より好ましくは１０μＭ〜５０ｍＭとすることを好適に例示することができる。
【００４４】
本発明の医薬組成物に含有される、本発明における生理活性物質と、本発明における上皮透過性亢進化合物とのモル比率としては、本発明の効果が得られる限り特に制限されないが、１：１０００〜１０００：１の範囲内を好適に例示することができ、１：１００〜１００：１の範囲内をより好適に例示することができ、１：１０〜１０：１の範囲内をさらに好適に例示することができる。
【００４５】
本発明の医薬組成物は、本発明における生理活性物質の組織細胞内への送達効率を向上させ、本発明における生理活性物質の生理活性をより多く得る観点から、体内において内因性リポタンパク質（好ましくはカイロミクロン）の生産が誘導されている条件下で脊椎動物に投与することが好ましい。内因性リポタンパク質（好ましくはカイロミクロン）の生産が誘導されている条件としては、当該目的を達成できる限り特に制限はないが、脊椎動物に脂質を経口投与してから１２時間以内（例えば、１０時間以内、８時間以内、６時間以内、４時間以内、２時間以内、１時間以内）の条件が好ましい。脂質の経口投与は、脂質そのものの投与でも良いし、脂質を含む食事の形態での投与でも良い。内因性リポタンパク質（好ましくはカイロミクロン）の生産を誘導する前に投与対象を絶食等により飢餓状態にすることがより好ましい。脂質の投与や、さらには、その前に投与対象を飢餓状態することによって、本発明における生理活性物質の細胞内への取り込み効率が向上する詳細な作用機作は明らかではない。しかしながら、リポプロテインの取り込みに関与する肝臓細胞のＬＲＰ−１受容体は脂質の経口摂取やインスリンによって細胞膜での発現量が増加し、かつ、活性化されることが知られている（Mol Pharmacol. 2007 Jul 3；17609417）ことを考慮すると、脂質を摂取させること等によって、リポプロテインの取り込みに関与する受容体の発現量が増加したり活性化され、その結果、肝臓細胞のリポタンパク質（好ましくはカイロミクロン）導入が増加して、その結果、リポタンパク質導入物質が結合した本発明における生理活性物質の肝臓細胞内への取り込み効率が向上するものと考えられる。なお、上記飢餓状態とは、一定期間飲食物（ただし、カロリーのない水等の飲食物を除く）を摂取していない状態をいい、例えば６時間以上、好ましくは８時間以上、より好ましくは１２時間以上、さらに好ましくは２４時間以上、投与対象に食物を与えない状態が含まれる。
【００４６】
また、本発明の医薬組成物は、大腸管での吸収を経る医薬組成物であり、前述の剤型に応じて、経口的又は非経口的に投与することができる。すなわち、経口腸溶剤等の経口ＤＤＳ製剤は内服することができ、坐剤、注腸剤等の大腸投与剤は、肛門から挿入又は注入することができる。
【００４７】
本発明の医薬組成物の投与量は、投与対象の年齢、体重、症状や、投与対象が罹患している疾患の種類、該医薬組成物中に含まれる本発明における生理活性物質の種類等によって異なるが、例えば０．１〜３０ｍｇ/ｋｇを、一日あたり１〜３回に分けて投与することができる。
【００４８】
本発明の医薬組成物の対象疾患としては、なんらかの生理活性の異常（好ましくは、亢進又は低下）に起因する疾患であって、本発明における生理活性物質が改善し得る疾患である限り特に制限されず、生理活性の異常に起因する疾患の例として、変異トランスサイレチン遺伝子の発現に起因する家族性アミロイドニューロパチーを好適に例示することができ、特定の遺伝子の亢進に起因する疾患の例として、肝炎ウイルス遺伝子の発現の亢進に起因するウイルス肝炎や肝臓がんを好適に例示することができる。
【００４９】
本発明における投与対象としては、動物である限り特に制限されないが、脊椎動物を好適に例示することができ、哺乳類又は鳥類に属する動物をより好適に例示することができ、中でも、哺乳類に属する動物をさらに好適に例示することができ、中でも、ヒト、ラット、マウス、ブタ、ウサギ、イヌ、ネコ、サル、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジをより好適に例示することができ、中でも、ヒトを特に好適に例示することができる。
【００５０】
また、本発明の医薬組成物は、大腸投与剤又は経口腸溶剤の有効成分として用いることもできる。
【００５１】
本発明における生理活性物質を特定の組織細胞内へデリバリーする方法（以下、「本発明のデリバリー方法」ともいう。）としては、前述の本発明の医薬組成物を、大腸管での吸収を経るように脊椎動物に投与する工程（Ｘ）を有している限り特に制限されないが、本発明における生理活性物質の組織細胞内への送達効率を向上させ、本発明における生理活性物質の生理活性をより多く得る観点から、かかる投与を、体内において内因性リポタンパク質（好ましくはカイロミクロン）の生産が誘導されている条件下で行うことが好ましい。
【００５２】
上記工程（Ｘ）における投与方法としては、上記本発明の医薬組成物と同様の方法により投与することができる。
【００５３】
本発明のデリバリー方法によって本発明における生理活性物質をデリバリーし得る組織及び細胞としては、本発明におけるリポタンパク質がインビボにおいて移行する組織及び細胞である限り特に制限されないが、リポタンパク質がカイロミクロン又はカイロミクロンレムナントである場合は、肝臓組織細胞内（好ましくは肝実質細胞内）や肝細胞がん細胞内へ、高い特異性でデリバリーすることが可能となる点で、特に好適な態様として例示することができる。
【００５４】
なお、本発明のデリバリー方法は、疾患動物又は疾患患者に適用することによって、本発明における疾患を治療する方法として利用することもできる。
【００５５】
本発明の他の態様として、本発明の経大腸吸収用医薬組成物（又は疾患治療剤）の調製のための、本発明における生理活性物質及び本発明における上皮透過性亢進化合物の使用；や、疾患の治療における、本発明における生理活性物質及び本発明における上皮透過性亢進化合物の使用；も例示することができる。
【００５６】
以下に実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【実施例１】
【００５７】
［ビタミンＥ結合small interfering RNA（ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）の合成］
本発明における生理活性物質の１例として、マウスａｐｏＢ遺伝子を標的遺伝子とするｓｉＲＮＡを作製した。具体的には、配列番号１（GUCAUCACACUGAAUACCAAUGCUGGA）からなるセンス鎖（２７ｍｅｒ）と、配列番号２（UCCAGCAUUGGUAUUCAGUGUGAUGACAC）からなるアンチセンス鎖（２９ｍｅｒ）からなるｓｉＲＮＡを合成し、適当な化学修飾を施した。このｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖５’末端に、リポタンパク質導入物質として、ビタミンＥの天然型アイソマーの一つであるα−トコフェロール（Ｔｏｃ）をリン酸結合で共有結合させて、ＶＥ−ｓｉＲＮＡを得た（図２）。
【実施例２】
【００５８】
［蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡの肝組織への送達試験１］
本発明により、生理活性物質を効率的に肝組織へ送達することが可能かどうかを調べるために、以下のような試験を行った。【００５９】
（１）製剤の調製
透過性亢進剤として、リノール酸（ＬＡ）（和光純薬工業株式会社製）を用意し、界面活性剤として、ＨＣＯ−６０（日光ケミカルズ株式会社製）を用意した。ＬＡの最終投与濃度が１０ｍＭとなるように、ＨＣＯ−６０（３．０ｗ／ｗ％）及びRNAse freeのリン酸緩衝液（ＰＢＳ）を用いて調節後、ソニケーターによりソニケーションを行い、用時混合ミセルとして調製した。なお、この用時混合ミセルは、０．１Ｎ  ＮａＯＨでｐＨを７．４に調節した。用事調製した混合ミセルと、蛍光（Ｃｙ３）標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ（０．３ｍｇ／ｈｅａｄ）とをピペッティングでよく混合し、送達試験用の実施例製剤（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）（製剤Ｅ）を調製した。【００６０】
また、コントロールとして、ＰＢＳ（製剤Ａ）；前述の用時混合ミセルと、ＰＢＳとを混合した製剤（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＰＢＳ）（製剤Ｂ）；前述の用時混合ミセルと、蛍光（Ｃｙ３）標識ｓｉＲＮＡ（０．３ｍｇ／ｈｅａｄ）とを混合した製剤（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ｓｉＲＮＡ）（製剤Ｃ）；ＨＣＯ−６０及びＰＢＳを用いて調製した用時混合ミセルと、蛍光（Ｃｙ３）標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ（０．３ｍｇ／ｈｅａｄ）とを混合した製剤（ＨＣＯ−６０／ＰＢＳ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）（製剤Ｄ）；をそれぞれ調製した。【００６１】
（２）動物の直腸への製剤の投与
前述の実施例２（１）で調製した製剤を投与する対象動物として、マウス（ＩＣＲ、９週齢）を用意した。このマウスを一夜絶食させた後、乳脂肪５％ミルクを０．４ｍｌずつ３０分おきに三回経口投与することにより、カイロミクロン形成を促進させた。最後のミルク投与から３０分後に、ネンブタールでマウスに麻酔をかけ、腸管を洗浄した後、前述のいずれかの製剤（約２００μＬ）を注腸剤として肛門部より投与（直腸投与）し、次いで、肛門部を結紮した。製剤を単回投与してから２時間毎に腸内残留薬剤を除去後、新たに同用量の製剤を追加投与して、合計３回の投与を行った。また、実施例製剤（製剤Ｅ）については、この他にも、絶食後にミルクの前投与を行わずに、同様に製剤Ｅを直腸投与すること（Ｍｉｌｋ（−） ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）や、絶食後にミルクの前投与を同様に行い、製剤Ｅを直腸投与する３０分間前に、生理食塩水で希釈したＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００（Ｓｉｇｍａ社製）の溶液（２０ｍｇ／ｋｇ）を尾静脈より投与すること（Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ  ｐｒｅ  ｉ．Ｖ．  ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）も行った。【００６２】
（３）共焦点顕微鏡によるｓｉＲＮＡの肝分布の観察
前述の実施例２（２）において、最後に製剤を投与してから２時間後に、麻酔下で４℃の生理食塩水にてマウスを還流し、次いで、肝臓を摘出した。摘出した肝臓を４％パラホルムアルデヒド（和光純薬工業株式会社製）で一晩固定後、３０％スクロース（和光純薬工業株式会社製）で一晩固定し、次いで、O.C.T.Compound（Sakura Finetek社製）で包埋し、常法により凍結切片を作製した。凍結切片はＴＯ−ＰＲＯ（登録商標）−３（Molecular Probe社製）、Fluorescein（ＦＩＴＣ）−ファロイジン（Invitrogen社製）を用いて、各々細胞核、細胞線維の染色を行った。これらの凍結切片を共焦点レーザー顕微鏡で観察した結果を図３に示す。図３Ａは製剤Ａを投与した場合の結果を示し、図３Ｂは製剤Ｂを投与した場合の結果を示し、図３Ｃは製剤Ｃを投与した場合の結果を示し、図３Ｄは製剤Ｄを投与した場合の結果を示し、図３Ｅは製剤Ｅを投与した場合の結果を示し、図３Ｆは絶食後にミルクの前投与を行わずに、製剤Ｅを投与した場合の結果を示し、図３ＧはＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００溶液を投与してから製剤Ｅを投与した場合の結果を示す。また、図３Ａ〜Ｇの各パネルはそれぞれ４分割されているが、それぞれ左上はＴＯ−ＰＲＯ（登録商標）−３の青色蛍光の検出結果を示し、右上はＦＩＴＣ−ファロイジンの緑色蛍光の検出結果を示し、左下はＣｙ３の赤色蛍光の検出結果を示し、右下は左上と右上と左下の蛍光の検出結果を重ね合わせた結果を示す。【００６３】
コントロールとして、製剤Ａ（ＰＢＳ）を投与したＡ群や、製剤Ｂ（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＰＢＳ）を投与したＢ群では、Ｃｙ３に基づく蛍光はほとんど観察されなかった（図３Ａ及び図３Ｂ）。これに対して、ＨＣＯ−６０／ＬＡ（上皮透過性亢進化合物）と、蛍光（Ｃｙ３）標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡとの混合ミセルである製剤Ｅ（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）を投与したＥ群では、Ｃｙ３に基づく顕著な蛍光が認められた（図３Ｅ）。このことから、本発明における経腸管吸収用医薬組成物とすることで、生理活性物質であるｓｉＲＮＡを経腸管的に肝実質細胞内に効率良く送達できることが示された。【００６４】
また、実施例製剤である製剤ＥからＬＡを除いた製剤Ｄ（ＨＣＯ−６０／ＰＢＳ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）を投与したＤ群では、Ｃｙ３に基づく蛍光はほとんど検出されなかった（図３Ｄ）。このことから、上皮透過促進剤であるＨＣＯ−６０／ＬＡ中の脂肪酸ＬＡが、ＶＥ−ｓｉＲＮＡの腸管から肝臓細胞内への送達に必須の因子の一つであることが示された。【００６５】
また、実施例製剤である製剤Ｅにおける蛍光（Ｃｙ３）標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡに代えて、蛍光（Ｃｙ３）標識ｓｉＲＮＡを用いた製剤Ｃを投与したＣ群では、Ｃｙ３に基づく蛍光はほとんど検出されなかった（図３Ｃ）。このことから、ｓｉＲＮＡにリポタンパク質導入物質であるＶＥを結合させることは、ｓｉＲＮＡの腸管から肝臓細胞内への送達に必須の因子の一つであることが示された。【００６６】
さらに、絶食後にミルクの前投与を行わずに、実施例製剤Ｅを直腸投与したＦ群（Ｍｉｌｋ（−） ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）でも、Ｃｙ３に基づく蛍光が検出されたが、ミルクの前投与を行ったＥ群ほどの顕著な蛍光ではなかった（図３Ｆ）。ミルクの前投与はカイロミクロンの形成を促進することを考慮すると、カイロミクロンの形成量が増えることにより、ＶＥ−ｓｉＲＮＡの腸管から肝臓細胞内への送達効率が向上することが示された。このことから、生体内におけるカイロミクロンの形成は、ｓｉＲＮＡの腸管から肝臓細胞内への送達に必須の因子の一つであることが示された。【００６７】
また、Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００の前投与処理を行ったＧ群（Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ  ｐｒｅ  ｉ．Ｖ．  ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）では、Ｃｙ３に基づく蛍光がほとんど検出されなかった（図３Ｇ）。すなわち、Ｇ群では、ミルクの前投与を行っているにもかかわらず、Ｅ群と比較して、ＶＥ−ｓｉＲＮＡの腸管から肝臓細胞内への送達が明らかに阻害された。Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００がカイロミクロンからのレムナント形成を抑制する活性を有していることを考慮すると、この結果は、ｓｉＲＮＡの肝移行性と、レムナントとしてのカイロミクロンの肝移行性との間に相関関係があることを示唆している。従って、カイロミクロンからのレムナントの形成は、ｓｉＲＮＡの腸管から肝臓細胞内への送達に必須の因子の一つであることが示された。
【実施例３】
【００６８】
［蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡのマウスのリンパ液への取り込み確認試験１］
本発明における生理活性物質の肝組織への送達機構を調べるために、以下のような試験を行った。【００６９】
マウス（ＩＣＲ、９週齢）を用意した。このマウスを１６時間絶食させた後、乳脂肪５％ミルクを０．４ｍｌずつ３０分おきに三回経口投与することにより、カイロミクロン形成を促進させた。最後のミルク投与から３０分後に、ネンブタールでマウスに麻酔をかけ、腸管を洗浄した後、前述の実施例２における製剤Ｅ（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）を約２００μＬ、注腸剤として肛門部より投与（直腸投与）し、次いで、肛門部を結紮した。前述の製剤を単回投与してから２時間後に、そのマウスの腸管リンパ管からリンパ液を採取した。このリンパ液中のＣｙ３標識された分子の拡散時間を、蛍光相関分析法（ＦＣＳ）を用いて求めた。また、コントロールとして、製剤Ｅ（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）に代えて、蛍光（Ｃｙ３）標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡを用いて、同様にＦＣＳを行った。これらのＦＣＳの結果を図４に示す。【００７０】
図４の結果から分かるように、製剤Ｅを投与した場合は、Ｃｙ３に基づく蛍光の拡散時間が、コントロールを投与した場合と比べて著明に増加して２５００マイクロ秒程度であった。このことは、蛍光（Ｃｙ３）標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡが、ＨＣＯ−６０／ＬＡ（上皮透過性亢進化合物）により、マウスのリンパ液内のカイロミクロン相当の大きさの分子へより多く取り込まれていることを示唆している。
【実施例４】
【００７１】
［蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡのマウスのリンパ液への取り込み確認試験２］
マウス（ＩＣＲ、９週齢）を用意した。このマウスを１６時間絶食させた後、乳脂肪５％ミルクを０．４ｍｌずつ３０分おきに三回経口投与することにより、カイロミクロン形成を促進させた。最後のミルク投与から３０分後に、ネンブタールでマウスに麻酔をかけ、腸管を洗浄した後、腸管の遠位側または肛門を結紮して腸管ループを作りループの肛門部から、前述の実施例２における製剤Ｅ（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）を、１０ｍｇ／ｋｇ投与した。
最終投与の２時間後に、マウスの腸管リンパ管からリンパ液を採取した。Ｃｙ３標識された分子の拡散時間を、蛍光相関分析法（ＦＣＳ）を用いて求めた。また無処置のマウスから採取したリンパ液を高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）でリポタンパク分画に分離したものを、同様に拡散時間を求めてこれと比較した。その結果を図５に示す。【００７２】
図５の結果から、Ｃｙ３が結合している粒子の拡散時間は約３０００μｓであり、ＨＰＬＣによってリンパ液を分離した際のカイロミクロン分画の拡散時間と一致した。これは直腸より投与されたＶＥ−ｓｉＲＮＡが吸収されてリンパ管に入り、リンパ管内でカイロミクロンと結合していることを示している。
【実施例５】
【００７３】
［直腸投与したＶＥ−ｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖を検出するノザンブロット解析］
本発明における生理活性物質の肝組織への送達機構を調べるために、引き続き、以下のようなノザンブロット解析を行った。【００７４】
まず、投与対象となるマウスとして、野生型のマウスに加えて、カイロミクロンに対する主要な受容体に関連するタンパク質をノックアウトした３種類のマウスを用意した。すなわち、野生型マウス（Wildtype）、ＬＤＬ受容体ノックアウトマウス（LDLR KO）、受容体結合タンパク質（Receptor Associated Protein：ＲＡＰ）ノックアウトマウス（RAPKO）、ＡｐｏＥノックアウトマウス（ApoE KO）を用意した。カイロミクロンに対する主要な受容体には、ＬＤＬ受容体とＬＲＰ−１受容体があり、ＲＡＰはＬＲＰ−１受容体に対する拮抗阻害作用を有している。また、ＡｐｏＥは、ＬＲＰ−１受容体の天然リガンドの１つであり、細胞膜ではなく、カイロミクロンに存在している。【００７５】
ＶＥ−ｓｉＲＮＡと混合ミセル（ＨＣＯ−６０／ＬＡ）との混合物（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）を、前述の各マウスに２時間毎に３回直腸投与し、最終投与の２時間後に各マウスから肝臓を摘出した。直腸投与の方法、及び、肝臓摘出の方法は、実施例２記載の方法にしたがった。なお、ＬＤＬ受容体ノックアウトマウスについては、ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡを直腸投与した群に加えて、かかる直腸投与の前にＲＡＰを静注した群も設けた。【００７６】
前述の摘出した肝臓の細胞から、常法にしたがって、トータルＲＮＡを抽出した。そのトータルＲＮＡ（１０μｇ）を、１４％ポリアクリルアミドゲルにて電気泳動を行った後、ナイロンメンブレンに転写した。一方、投与したＶＥ−ｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖とハイブリダイズするプローブとして、ＶＥ−ｓｉＲＮＡのセンス鎖と同一配列のプローブを用意し、かかるプローブをGene Images 3’-Oligolabelling Kit（Amersham Biosciences社製）を用いて、フルオレセインで蛍光標識した。この蛍光標識プローブを、前述のナイロンメンブレンと反応させた後、Gene Images CDP-star detection Kit（Amersham Biosciences社製）を用いて、フルオレセインの蛍光を検出した。この結果を図６に示す。【００７７】
ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡを野生型マウスに直腸投与した場合のレーン（１）（Wildtype）では、２１ヌクレオチド（ｎｔ）優位に、２１ｎｔと２９ｎｔの２本のバンドが明瞭に検出された。投与したＶＥ−ｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖は２９ｍｅｒであり、細胞質内のダイサー（Ｄｉｃｅｒ）で切断されると２１ｍｅｒの成熟したｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖が出現することを考慮すると、この結果は投与したＶＥ−ｓｉＲＮＡが肝臓細胞の細胞質にまで取り込まれていることを示している。【００７８】
一方、カイロミクロンに対する主要な受容体に関連するタンパク質をノックアウトした３種類のマウスに直腸投与した場合のレーン（３）（LDLR KO）、レーン（４）（RAP KO）、レーン（５）（ApoE KO）では、レーン（１）と比較してバンド濃度の低下が認められた。特に、ＬＤＬ受容体やＬＲＰ−１受容体に対する拮抗阻害作用を有しているＲＡＰを静注した、ＬＤＬ受容体ノックアウトマウス（LDLR KO）に直腸投与した場合のレーン（２）では、バンドがほぼ消失した。これらの結果は、直腸投与したＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡが、ＬＤＬ受容体、及び、ＬＲＰ−１受容体を介在して肝臓細胞内に取り込まれていることを示すものと考えられる。【００７９】
この実施例５の結果に加えて、前述の実施例２〜４の結果を併せ考慮すると、以下のようなデリバリー機構が考えられた。ＶＥ−ｓｉＲＮＡは、混合ミセルとして直腸投与された際、ＬＡの上皮透過性亢進作用により腸管上皮を透過する。その後、ＶＥ−ｓｉＲＮＡはリンパ管に移行し、リンパ管内を上行する。その際、ＶＥ−ｓｉＲＮＡは、小腸上皮細胞で産生されリンパ管内に分泌されたカイロミクロンと出会い、リポタンパク質導入物質であるＶＥ修飾部分を介してカイロミクロンと複合体を形成する。このＶＥ−ｓｉＲＮＡ−カイロミクロン複合体は、静脈角で静脈内に流出し、リポプロテインリパーゼ（lipoproptein lipase：ＬＰＬ）によりカイロミクロンレムナントへとレムナント化した後、レムナント受容体（ＬＤＬ受容体やＬＲＰ−１受容体）を持つ肝臓細胞内に取り込まれる。
【実施例６】
【００８０】
［投与したＶＥ−ｓｉＲＮＡの配列特異的な遺伝子発現抑制効果を確認する定量的ＲＴ−ＰＣＲ］
本発明における生理活性物質が肝組織へ送達され、細胞内で実際に機能を発揮しているかどうかを調べるために、以下のような定量的ＲＴ−ＰＣＲを行った。【００８１】
ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡをマウスに２時間おきに３回直腸投与して、最終投与の２４時間後にマウスの肝臓を摘出した。直腸投与の方法、及び、肝臓摘出の方法は、実施例２記載の方法にしたがった。前述の摘出した肝臓の細胞から、常法にしたがって、トータルＲＮＡを抽出した。そのトータルＲＮＡのうち２μｇを用いて、その相補的ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）を合成した。このｃＤＮＡを鋳型とし、前述のＶＥ−ｓｉＲＮＡの標的となる遺伝子（ａｐｏＢ遺伝子）のプライマー・プローブを用いて、常法にしたがって定量的ＲＴ−ＰＣＲを行った。一方、内在性コントロールとして、前述のＶＥ−ｓｉＲＮＡの標的とならない内在性遺伝子についても同様の定量的ＲＴ−ＰＣＲを行った。また、ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡに代えて、混合ミセル（ＨＣＯ−６０／ＬＡ）のみを直腸投与して、同様の方法で定量的ＲＴ−ＰＣＲを行った。これらの定量的ＲＴ−ＰＣＲの結果から、それぞれのマウス個体における内在性遺伝子の発現量に対する標的遺伝子の発現量の比率（相対標的ｍＲＮＡレベル）を求めた。ＶＥ−ｓｉＲＮＡを投与したマウス（混合ミセル＋ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）と、混合ミセルのみを投与したマウス（混合ミセル単独）との間で、相対標的ｍＲＮＡレベルの値を比較した。その結果を図７に示す。【００８２】
図７の結果から分かるように、ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡを投与した群では、混合ミセル（ＨＣＯ−６０／ＬＡ）のみを投与した群と比較すると、標的遺伝子の発現を約４０％抑制することができた（図７）。この結果から、本発明における生理活性物質は、直腸投与された後、肝組織へ送達され、細胞内で実際に機能（生理活性）を発揮することが示された。
【実施例７】
【００８３】
［投与したＶＥ−ｓｉＲＮＡの配列特異的な遺伝子発現抑制効果を確認するウエスタンブロット解析]
本発明における生理活性物質が肝組織へ送達され、細胞内で実際に機能を発揮しているかどうかを調べるために、以下のようなウエスタンブロット解析を行った。【００８４】
ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡをマウスに２時間おきに３回直腸投与した。直腸投与の方法は、実施例３記載の方法にしたがった。最終投与の２４時間後にマウス血清を採取しホモジナイズバッファー（０．１％ＳＤＳ、１％ＴｒｉｔｏｎＸ、１％sodium deoxycholate、１ｍＭ  ＰＭＳＦ）で調整し、サンプルとした。１次抗体にsc11795 goat anti-ApoB（Santacruz社製）を５００倍希釈して用いた。また２次抗体にsc2020 donkey anti-goat（Santacruz社製）を２０００倍希釈して用いた。Supersignal West Femto Maximum Sensitivity Substrate（Thermo社製）で蛍光発色させ、Chemi Doc XRS-J（BIO RAD社製）で撮影した。検出結果からバンドの濃度を定量してａｐｏＢ１００／４８比を求めた。ＶＥ−ｓｉＲＮＡを投与したマウスと、混合ミセルのみを投与したマウスとの間で、ａｐｏＢ１００／４８比を比較した。これらの結果を図８のＡ、Ｂに示す。【００８５】
図８のＡ、Ｂの結果から分かるように、ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡを投与した群では、混合ミセルのみを投与した群と比較すると、標的遺伝子が発現するタンパク質が約７４％減少していた。この結果から、タンパク質のレベルでも、本発明における生理活性物質は、直腸投与された後、肝組織へ送達され、細胞内で実際に機能を発揮することが示された。
【実施例８】
【００８６】
[投与したＶＥ−ｓｉＲＮＡの配列特異的な遺伝子発現抑制効果を確認する血清中の中性脂肪、ＬＤＬコレステロール値の測定]
本発明における生理活性物質が肝組織へ送達され、細胞内で実際に機能を発揮しているかどうかを調べるために、引き続き、以下のような解析を行った。【００８７】
ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡをマウスに２時間おきに３回直腸投与した。直腸投与の方法は、実施例３記載の方法に従った。最終投与の２４時間後にマウス血清を採取し中性脂肪値とＬＤＬコレステロール値を測定した。その結果を図９に示す。【００８８】
図９の結果から分かるように、ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡを投与した群では、混合ミセルのみを投与した群と比較すると、血清中の中性脂肪値とＬＤＬコレステロール値はどちらも約４０％低下していた。この結果から、本発明における生理活性物質は、直腸投与された後、肝組織へ送達され、細胞内で実際に機能を発揮して、血清中脂質を抑制する医薬として有効に働くことが示された。
【実施例９】
【００８９】
［蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡの肝組織への送達試験２］
ＨＣＯ−６０／ＬＡ以外の上皮透過性亢進化合物を用いた場合であっても、生理活性物質を効率的に肝組織へ送達することが可能かどうかを調べるために、以下のような試験を行った。【００９０】
前述の実施例２の（３）において、製剤Ｅ（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）に代えて、製剤Ｅの「ＬＡ」を「ＤＨＡ」（Cayman chemical社製）に変更した製剤（ＤＨＡ／ＨＣＯ−６０／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）（図１０のＡ）や、製剤Ｅの「ＨＣＯ−６０／ＬＡ」に代えて、カプリン酸ナトリウム（Sigma社製、 最終濃度１５ｍＭ）を用いた製剤（Sodium Caprate／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）（図１０のＢ）や、製剤Ｅの「ＨＣＯ−６０／ＬＡ」に代えて、クエン酸ナカライ、最終濃度２０ｍＭ）を用いた製剤（Citric acid／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）（図１０のＣ）や、製剤Ｅの「ＨＣＯ−６０／ＬＡ」に代えて、界面活性剤Labrasol（登録商標）（GATTEFOSSE社製；２ｗ／ｖ％）、すなわち、ＰＥＧ−８カプリル／カプリングリセリドを用いた製剤（Labrasol／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）（図１０のＤ）を用いて、実施例２記載の方法と同様の方法で、肝組織への送達試験を行った。かかる送達試験において、マウスの肝臓組織の凍結切片を共焦点レーザー顕微鏡で観察した結果を図１０Ａ〜Ｄに示す。また、図１０Ａ〜Ｄの各パネルはそれぞれ４分割されているが、それぞれ左上はＴＯ−ＰＲＯ（登録商標）−３の青色蛍光の検出結果を示し、右上はＦＩＴＣ−ファロイジンの緑色蛍光の検出結果を示し、左下はＣｙ３の赤色蛍光の検出結果を示し、右下は左上と右上と左下の蛍光の検出結果を重ね合わせた結果を示す。【００９１】
図１０Ａ〜Ｄの結果から分かるように、ＨＣＯ−６０／ＬＡ以外の上皮透過性亢進化合物を用いた場合であっても、送達効率の程度に違いはあるものの、生理活性物質を肝組織へ送達できることが示された。しかし、界面活性剤Labrasol（登録商標）を用いた場合は、肝組織への移行は認められるものの肝実質細胞内への送達があまり認められず（図１０Ｄ）、キレート剤であるクエン酸を用いた場合は、ＨＣＯ−６０／ＤＨＡ（長鎖不飽和脂肪酸）を用いた場合（図１０Ａ）と同程度に、肝実質細胞への送達を促進する効果が認められ、カプリン酸ナトリウム（中鎖脂肪酸塩）を用いた場合は、肝実質細胞への送達促進効果が最も優れていた。また、図には結果を示していないが、ＨＣＯ−６０／ＬＡに代えて、ＨＣＯ−６０／ＥＰＡ（長鎖不飽和脂肪酸）を用いた場合や、ＨＣＯ−６０／オレイン酸（長鎖不飽和脂肪酸）を用いた場合にも、ＨＣＯ−６０／ＤＨＡを用いた場合と同程度以上の送達促進効果が示された。【００９２】
以上の結果から、本発明の医薬組成物において、ＨＣＯ−６０／ＬＡ以外の上皮透過性亢進化合物を用いた場合であっても、生理活性物質を肝組織へ送達することが可能ではあるが、長鎖不飽和脂肪酸や中鎖脂肪酸をコロイド分散系の形態としたものなど、特定のものが特に有効であることが明らかとなった。
【実施例１０】
【００９３】
[ＶＥ−ｓｉＲＮＡの副作用試験]
ＶＥ−ｓｉＲＮＡのマウスにおける副作用を調べるために以下のような血液試験を行った。【００９４】
ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡをマウスに２時間おきに３回直腸投与した。投与方法は実施例３記載の方法に従った。最終投与の３時間後にマウス血清を採取しＩＦＮ−α値を測定した。また、最終投与２４時間後のマウスから採取した血清でＣｒｅ、ＡＬＴ、Ｎａ、Ｋの値をそれぞれ測定した。ＨＣＯ−６０/ＬＡ/ＶＥ−ｓｉＲＮＡを投与したマウスとＰＢＳのみを投与したマウスとの間でこれらの値を比較した。その結果を表１に示す。【００９５】
【表１】
0005892658.tif 000004
【００９６】
表１の結果から分かるように、ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ投与したマウス群では、ＰＢＳのみを投与したマウス群と比較すると、各値に有意な差は認められなかった。この結果から、ＶＥ−ｓｉＲＮＡを投与しても生体内へ副作用を及ぼさないことが示された。
【実施例１１】
【００９７】
[蛍光標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡの各組織への送達試験]
ＶＥ−ｓｉＲＮＡの送達が、肝細胞特異的なものであるかどうかを確認するために、以下のような、肝細胞以外の臓器への送達試験を行った。【００９８】
実施例２の製剤Ｅ（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）をマウスに単回直腸投与した。投与方法は実施例３記載の方法に従った。最終投与４時間後にマウスから肺と腎臓、脾臓、心臓、骨格筋、脳を摘出した。各臓器摘出の方法は、実施例２記載の方法にしたがった。さらに、実施例２記載の方法と同様の方法で、各組織への送達試験を行った。しかし、肺、腎臓、脾臓、心臓、骨格筋、脳のいずれの組織でも、明らかなＣｙ３シグナルは認められなかった。この結果、及び、先に示した肝での結果より、蛍光（Ｃｙ３）標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡが主に肝臓にデリバリーされていることが示唆された。
【実施例１２】
【００９９】
[ＶＥ−ｓｉＲＮＡの中空坐剤としての投与]
ＶＥ−ｓｉＲＮＡの直腸投与剤形として、液状製剤である注腸剤に変えて、固形製剤又は半固形製剤である坐剤への製剤化を試みた。まずは、液状又は固形製剤を充填することのできる中空坐剤を用いて評価した。【０１００】
（１）中空坐剤の調製
油脂性坐剤基剤（SUPPOCIRE AM PASTILLES，GATTEFOSSE社製）１０ｇを加温融解し、ダイズ油１〜１０ｇを添加・混和し、坐剤用基剤を調製した。なお、ダイズ油１０ｇを添加した基剤の溶融点は約３２℃であった。約５０℃にて融解させた坐剤基剤を、予め−２０℃に冷却した坐剤鋳型に流し込み、基剤と型との接触部分が固化した時点で、中心軸付近の固化していない部分の基剤を抜き取る方法により中空坐剤を調製した。【０１０１】
（２）Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ含有中空坐剤の調製
実施例２の製剤Ｅ（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）で、ＬＡの最終濃度を１００ｍＭとし、これに粘膜保護剤としてタウリン（最終濃度１００ｍＭ）を添加し、冷却下、短時間ソニケーションを行うことにより混合ミセル液を調製した。アニーリング後凍結乾燥したＣｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ（１ｍｇ）を本混合ミセル液で溶解し、上記実施例１２（１）の中空型坐剤に注入した後、同坐剤基剤で密封することで、Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡを含有する中空坐剤を調製した。なお、Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ（１ｍｇ）の混合ミセル液に、ＰＢＳを添加して全量２００μＬとした注腸剤をポジティブの対照製剤とした。【０１０２】
（３）肝送達性のin vivo評価
ラット（Ｗｉｓｔａｒ、オス、７週齢、体重１８０ｇ）を一夜絶食させ、薬剤投与２時間前より、濃縮ミルク（乳脂肪分２０％）を１．２ｍＬずつ３０分おきに３回投与した。最終のミルク投与から３０分後、ネンブタール麻酔し、各製剤を肛門部より投与後、肛門部を結紮した。投与４時間後、実施例２記載の方法に従い、肝臓と大腸を摘出し、共焦点顕微鏡によるｓｉＲＮＡの分布を観察した。図１１に肝臓組織を観察した結果を示す。図１１ａは注腸剤を投与した場合の結果を示し、図１１ｂは中空坐剤を投与した場合の結果を示し、図１１ｃは図１１ｂの枠内の拡大図を示す。また、図１１ａ〜ｃの各パネルは４分割されているが、それぞれ左上はＴＯ−ＰＲＯ（登録商標）−３の青色蛍光の検出結果を示し、右上はＦＩＴＣ−ファロイジンの緑色蛍光の検出結果を示し、左下はＣｙ３の赤色蛍光の検出結果を示し、右下は左上と右上と左下の蛍光の検出結果を重ね合わせた結果を示す。【０１０３】
図１１に示すように、注腸剤投与の場合（図１１ａ）、中空型坐剤投与の場合（図１１ｂ、ｃ）のいずれの場合においても、Ｃｙ３に基づく明らかな蛍光が検出され、ＶＥ−ｓｉＲＮＡの肝臓への移行・分布が確認された。
【実施例１３】
【０１０４】
[多孔性微粒子を用いた坐剤としてのＶＥ−ｓｉＲＮＡの投与]
中空坐剤は製造工程がやや複雑であり、また、中空坐剤内部に液状製剤を充填した場合は、坐剤投与して液状製剤が腸内に放出された後は、注腸剤と同様に、腸管腔内での希釈や酵素分解などが課題となる。一方、中空坐剤内部に固形製剤を充填した通常の坐剤を調製する方法としては、ＶＥ−ｓｉＲＮＡ混合ミセル液を凍結乾燥して坐剤基剤に均質添加する方法が考えられるが、ＶＥ−ｓｉＲＮＡ混合ミセル液の凍結乾燥製剤の品質制御には課題が多い。そこで、発明者らは、多くの中空部を有する多孔性微粒子を用いることで、ＶＥ−ｓｉＲＮＡの混合ミセル液を簡便に粉末固形化し、汎用される油脂性坐剤基剤中に均質に混合分散して坐剤を調製する方法を考案した。この製剤によれば、製造工程が簡便であるという利点や、多孔性微粒子内に保持されたＶＥ−ｓｉＲＮＡが腸管腔内での酵素による分解や希釈から保護されるという利点が得られる。【０１０５】
（１）ポーラスマイクロスフェア（ｐ−ＭＳ）の調製
エチルセルロース（日新化成社製、ＳＴＤ  ７ｃｐｓ）２ｇをアセトン１６ｇに溶解した（Ａ液）。また、グリセリン７ｇと５％ポリビニルアルコール（クラレ社製、クラレポバール２２０Ｃ）水溶液１ｇを混和した（Ｂ液）。Ａ液中にＢ液を、乳化機（ヒスコトロン（登録商標）、マイクロテック・ニチオン社製）を用いて１分間処理し乳化した（油相）。一方、グリセリン４５ｇと５％ポリビニルアルコール（クラレ社製、クラレポバール２２０Ｃ）水溶液５ｇを混和した液を調製し、スリーワンモーターにて６００ｒｐｍで撹拌下、油相を注入し、１分間撹拌した。得られた乳化液を、直ちに５００ｍＬの精製水中に注ぎ、撹拌して、油相を固化させた後、目開き２０μｍのふるいを用いてｐ−ＭＳを減圧濾過した。濾取したｐ−ＭＳは、１００ｍＬの精製水で２回洗浄した後、少量の精製水にて再懸濁させ、凍結乾燥した。得られた多孔性マイクロスフェアを走査型電子顕微鏡で観察した結果を図１２に示す。【０１０６】
（２）Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ含有ｐ−ＭＳ坐剤の調製
Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ（１０ｍｇ／ｍＬ）／５０ｍＭ  ＬＡ／ＨＣＯ−６０の混合ミセル４０μＬをｐ−ＭＳ  ９ｍｇに含浸させた後、JAPOCIRE（登録商標）NA 15 PASTILLES：ダイズ油＝９：１の混合基剤５００μＬ中に均質に混和・分散させて、Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ／ｐ−ＭＳ含有坐剤を作製した（図１３）。また、対照製剤として、上記の高濃度混合ミセル／Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡ含有ｐ−ＭＳを生理食塩水５００μＬに分散した溶液を注腸剤として調製した。なお、上記の「JAPOCIRE（登録商標）NA 15 PASTILLES」とは、Gattefosse社製の坐剤用基剤の１種であり、具体的には、炭素数１２〜１８の飽和脂肪酸の半合成トリグリセリド基剤（水酸基価１０；融点３４．５±１．０）である。日本では、かかる製品を例えばＣＢＣ株式会社から購入することができる。【０１０７】
（３）ｐ−ＭＳ製剤からの肝移行性のin vivo評価
実施例１２に従い、一夜絶食したラット（Ｗｉｓｔａｒ、オス、４週齢、体重８０ｇ）に、濃縮ミルク（乳脂肪分２０％）を０．５ｍｌずつ３０分おきに３回投与した後、最後のミルク投与から３０分後にネンブタール麻酔をかけ、腸管洗浄後、各製剤を肛門部より投与した。投与後肛門部を結紮し、ボールマンケージ内にラットを保持した。投与６時間後、実施例２記載の方法にしたがい、肝臓、大腸、腎臓、心臓、筋肉、小腸を摘出し、共焦点顕微鏡法により、各製剤投与後のｓｉＲＮＡの分布を観察した。図１４は、コントロール用ｐ−ＭＳ注腸剤（図１４ａ）、または、ｐ−ＭＳ坐剤製剤（図１４ｂ）投与後の肝臓の組織像を示す。図１４ａ及びｂの各パネルは縦に４分割されているが、それぞれ一番上はＴＯ−ＰＲＯ（登録商標）−３の青色蛍光の検出結果を示し、上から２番目はＦＩＴＣ−ファロイジンの緑色蛍光の検出結果を示し、上から３番目はＣｙ３の赤色蛍光の検出結果を示し、一番下は上の３つの蛍光の検出結果を重ね合わせた結果を示す。
図１４ａ、ｂのいずれの場合も、一部の領域でＣｙ３の蛍光に基づくＶＥ−ｓｉＲＮＡの移行が観察された。特にｐ−ＭＳ坐剤製剤の投与で、蛍光の強度自体は低いものの、多くの肝細胞内でＣｙ３の蛍光が検出された。【０１０８】
図１５は、同じく投与後６時間後の大腸組織におけるＣｙ３−ＶＥ−ｓｉＲＮＡの分布を調べた結果を示す。図１５ａ及びｂは、大腸上部の粘膜組織を観察した結果を表し、図１５ｃ及びｄは、大腸下部の粘膜組織を観察した結果を表す。また、図１５ａ及びｃは、ｐ−ＭＳ注腸剤を投与した場合の結果を表し、図１５ｂ及びｄは、ｐ−ＭＳ坐剤を投与した場合の結果を表す。【０１０９】
ｐ−ＭＳ坐剤投与では、大腸下部（図１５ｄ）と比較して、大腸上部の粘膜組織内に強いＣｙ３の移行・残存が認められた（図１５ｂ）。一方、ｐ−ＭＳ注腸剤投与の場合は、大腸下部（図１５ｃ）においては、坐剤投与時と同等であるが、大腸上部でのＣｙ３の移行・残存はほとんど認められなかった（図１５ａ）。また、ｐ−ＭＳ注腸剤及びｐ−ＭＳ坐剤投与後の小腸、筋肉、心臓、腎臓にはＣｙ３はほとんど検出されなかった。この結果、Ｃｙ３標識ＶＥ−ｓｉＲＮＡは、ｐ−ＭＳ坐剤として調製することによって、大腸部よりも肝細胞に、より効率的にデリバリーされていることが示唆された。【０１１０】
このように、ＶＥ−ｓｉＲＮＡは注腸剤としてのみならず、中空坐剤を用いることで、坐剤としての製剤化が可能であることが示された。また、さらに多孔性微粒子を用いることで、液剤を容易に油脂性坐剤基剤中に均質に分散させて坐剤を製することが可能であり、より効率的に肝臓組織へデリバリーできることが示された。
【実施例１４】
【０１１１】
[トランスサイレチン遺伝子を標的遺伝子としたＶＥ−ｓｉＲＮＡの遺伝子発現抑制効果]
マウスａｐｏＢ遺伝子を標的遺伝子とするｓｉＲＮＡ以外の、本発明における生理活性物質として、トランスサイレチン（ＴＴＲ）遺伝子を標的遺伝子とするｓｉＲＮＡを用いた試験を試みた。かかるｓｉＲＮＡとして、配列番号３（5’-GUAACCAAGAGUAUUCCAUUUUUACUA-3’）からなるセンス鎖（２７ｍｅｒ）と、配列番号４（5’-UAGUAAAAAUGGAAUACUCUUGGUUACAC-3’）からなるアンチセンス鎖（２９ｍｅｒ）からなるｓｉＲＮＡを合成して用いた。【０１１２】
（１）ＶＥ−ｓｉＲＮＡの合成
ＴＴＲ遺伝子に対する上記ｓｉＲＮＡのアンチセンス鎖５’末端に、リポタンパク質導入物質として、ビタミンＥの天然型アイソマーの一つであるα−トコフェロール（Ｔｏｃ）をリン酸結合で共有結合させて、ＶＥ−ｓｉＲＮＡを作製した。【０１１３】
（２）ＶＥ−ｓｉＲＮＡ含有注腸剤の調製
上記実施例２（１）で用いたＶＥ−ｓｉＲＮＡに代えて、上記実施例１４（１）で得たＶＥ−ｓｉＲＮＡを用いたこと以外は、上記実施例２（１）記載の方法にしたがって、注腸剤（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＶＥ−ｓｉＲＮＡ）を調製した。また、コントロールとして、ＶＥ−ｓｉＲＮＡに代えて、ＰＢＳを混合ミセル液と混合して、コントロール注腸剤（ＨＣＯ−６０／ＬＡ／ＰＢＳ）を調製した。【０１１４】
（３）肝送達性のin vivo評価
ヒトトランスサイレチン（ｈＴＴＲ）遺伝子を持つトランスジェニックマウスである、hTTR V30M Tgマウス（メス、６月齢、体重３０ｇ、一群５匹）をネンブタール麻酔し、肛門部付近に残存する糞を軽微な下腹部マッサージにより排出させた後、上記（２）にて調製した各注腸剤をそれぞれ肛門部より投与した（一回投与量：１０ｍｇ／ｋｇ）。投与後、肛門部をクリップで止めた状態で、２０分間マウスを静置した後、クリップをはずし、マウスを通常の飼育ケージに戻した。この投与方法を４時間毎に、一日３回、連続５日間行った。投与前、また投与開始後６日目、９日目、１２日目の時点で採血を行い、全血を遠心分離して血清を採取した。各血清中のｈＴＴＲの濃度（ｍｇ／ｄＬ）を測定した。投与前の血清、及び、投与開始１２日目の血清中のｈＴＴＲの濃度（ｍｇ／ｄＬ）を図１６に示す。図１６から分かるように、ＴＴＲに対するＶＥ−ｓｉＲＮＡと、本混合ミセルとからなる注腸剤を投与することにより、血清におけるＴＴＲ分泌タンパク質を抑制し得ることが実証された。
【産業上の利用可能性】
【０１１５】
本発明は、疾患の治療に関する分野、より詳しくは、経大腸吸収用医薬組成物に関する分野に好適に利用することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【配列表】
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