(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
抗菌ペプチドの組み換え体を誘導発現可能な組み換え変異体プラスミドが導入された大腸菌を製造するステップ（１）と、
液体培養基によって、前記ステップ（１）で製造された前記大腸菌を大量培養するステップ（２）と、
前記ステップ（２）で得られた菌液から、前記抗菌ペプチドの組み換え体を分離精製するステップ（３）と、を含む組み換えポリペプチドを含む薬の製造方法であって、
前記液体培養基の最終溶液は、０．４から０．７Ｗ／Ｖ％のリン酸水素二ナトリウム、０．１から０．６Ｗ／Ｖ％リン酸二水素カリウム、０．０５から０．２Ｗ／Ｖ％の塩化アンモニア、０．０００５から０．００１Ｗ／Ｖ％の塩化カルシウム、０．５から２．５Ｗ／Ｖ％の硫酸マグネシウム、１から３Ｗ／Ｖ％のペプトン、０．５から１Ｗ／Ｖ％の酵母エキス、０．１から０．５Ｗ／Ｖ％のグルコース、０．２から０．８Ｗ／Ｖ％の塩化ナトリウム、および、水を含むことを特徴とする組み換え型ポリペプチド系新規抗菌薬の製造方法。
【請求項２】
前記液体培養基は、各グループの最終溶液中の質量／体積パーセントに基づいて調製され、各グループの最終溶液中の質量／体積パーセントは下記の通りであり、リン酸水素二ナトリウムは０．６８Ｗ／Ｖ％であり、リン酸二水素カリウムは０．３Ｗ／Ｖ％であり、塩化アンモニアは０．１Ｗ／Ｖ％であり、塩化カルシウムは０．００１Ｗ／Ｖ％であり、硫酸マグネシウムは０．０２Ｗ／Ｖ％であり、ペプトンは２．５Ｗ／Ｖ％であり、酵母エキスは０．７５Ｗ／Ｖ％であり、グルコースは０．２Ｗ／Ｖ％であり、塩化ナトリウムは０．６Ｗ／Ｖ％であり、それ以外の部分は水であることを特徴とする請求項１に記載の製造方法。
【請求項３】
前記ステップ（２）は、攪拌速度が２２０ｒｐｍであり、温度が３７℃であり、培養時間が３から８時間であることを特徴とする請求項１に記載の製造方法。
【請求項４】
前記ステップ（２）は、前記抗菌ペプチドの組み換え体を誘導するステップを含み、
前記抗菌ペプチドの組み換え体を誘導するステップは、細菌培養液に対し、２２０ｒｐｍの速度で撹拌しつつ最大の酸素量を維持しながら、３０℃で２から４時間処理し、４２℃で０．５時間処理し、３７℃で１から２時間処理し、４２℃に達したとき、最終濃度が０．５ｍＭのＩＰＴＧを添加することを特徴とする請求項１に記載の製造方法。
【請求項５】
前記ステップ（２）の前で、前記ステップ（１）で製造された前記大腸菌に対して、
（処理１）最終濃度が５０μｇ／ｍｌのＡＭＰを含むＬＢ液体培養基の中で、２２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌しながら温度３７℃で一晩回復培養し、ＬＢ固体培養基に塗って単集落菌を培養し、
（処理２）単集落菌を取り出して１．５ｍｌのＬＢ液体培養基に入れ、２２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌しながら３７℃で５から８時間培養し、１００ｍｌのＬＢ液体培養基に移し、２２０ｒｐｍの攪拌速度で撹拌しながら３７℃で５から８時間培養し、
前記ＬＢ液体培養基が、１Ｗ／Ｖ％の塩化ナトリウム、１Ｗ／Ｖ％のペプトン、０．５Ｗ／Ｖ％の酵母エキス、０．８から１Ｗ／Ｖ％の寒天、および、水を含むことを特徴とする請求項１に記載の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、抗生物質の製造技術に関し、特に組み換え型ポリペプチド系新規抗菌薬の製造方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
新規抗生物質の開発に全力を傾ける際、細菌細胞膜にイオンチャネルを形成し、細菌を死滅させるメカニズムは期待できる抗生物質開発の手掛かりの一つである。自然界の中の少なくない細菌および毒素は上述したメカニズムによって死滅する。大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ）が毒素たんぱく質、即ちコリシン（ｃｏｌｉｃｉｎ）を分泌することがその代表例である。１９４６年ペニシリンの発見者Ｈ．  Ｆｌｏｒｅｙ  （Ｂｒｉｔｉｓｈ  Ｊ．  ｏｆ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ．１９４６（２７），  ３７８〜３９０．）などの数人は、コリシンの抗菌活性、安全性および毒性病理について詳しく探究した結果、コリシンは抗菌活性が極めて強いだけでなく、抽出した物質が数百万倍まで希釈されても抗菌効果が非常に効果的であることを発見した。
【０００３】
ここに、コリシンは抗菌スペクトルが特定されるため、大腸菌および所属したグラム陰性菌の一部のみに作用を示す。続いて、１９５３年にＪａｃｏｂ氏などはｐＨ６−７におけるコリシンＩａの殺菌力が非常に強いことを発見した。１９７８年にＦｉｎｋｅｌｓｔｅｉｎ氏などは、イオンチャンネルを形成できるコリシンＫによって人工脂質二重膜に電位依存性イオンチャンネルを形成できることを発見し、これをもとにこのグループの細菌毒素の抗菌メカニズム、即ち標的細胞膜に致死性イオンチャンネルを形成することを提示した。
【０００４】
１９９６年にＱｉｕ氏およびＦｉｎｋｅｌｓｔｅｉｎ氏などは、分子に水平に設計する、新規抗生物質製造の基礎理論を確立するために、人工脂質二重層に形成されたイオンチャンネルの開閉時に跨るコリシンＩａの三次構造を提示した。続いて２００１年にＱｉｕ氏は、コリシンおよび黄色ブドウ球菌のフェロモンを融合し、薬剤耐性黄色ブドウ球菌の繁殖を抑制するポリペプチド系抗菌薬（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）を作り上げ、かつ生体内実験および生体外実験によりそのポリペプチドの殺菌活性および選択的な殺菌効果を明確に実証した。かつＱｉｕ氏は同じ方法に基づいてバンコマイシン耐性腸球菌およびペニシリン耐性肺炎球菌に対する抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）を作り上げた。かつこれらのポリペプチドは既存の抗生物質でも対抗しにくい病原菌に示した殺菌作用が特殊かつ迅速であるだけでなく安定し、薬効がバンコマイシン、オキサシリンおよびペニシリンなど既存の抗生物質の数十倍から千倍以上であることは、Ｑｉｕ氏の行った生体内実験および生体外実験により実証された。それに関わる研究結果を記載した論文はＮａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２１（１２）：１４８０−８５，２００３）、Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  Ａｇｅｎｔｓ  ａｎｄ  Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ（４９（３）：１１８４−１１８９，  ２００５）などの国際的な学術雑誌により発表された。
【０００５】
それに対し、本プロジェクトにおいて、我々はコリシンおよび病原体抗原の抗体ミメティックを融合し、抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）の新たな研究アイディアおよび技術ロードマップを作り上げ、かつ抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）、即ち広域スペクトル抗菌フェロモニシンの製造を成功させた。一方、ポリペプチド系抗菌薬の領域においての独特のアイディアおよび革新的な理論を権利化するために特許請求を提出すると同時に人工的小型抗体ミメティックの製造方法を作り上げた。それに関わる研究結果はＮａｔｕｒｅ  ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２５（８）：９２１−９２９，２００７）により発表された。本プロジェクトの研究開発した新規・高性能の広域スペクトル抗菌フェロモニシンは殺菌メカニズムが特殊であり、薬剤耐性菌に対する殺菌作用が良好であるだけでなく、多剤耐性緑膿菌（ＭＤＲＰＡ）、メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ＭＲＳＡ）、バンコマイシン耐性腸球菌（ＶＲＥ）など薬剤耐性菌に対し、既存の抗生物質より強い抗菌力を果たすことができる。この薬物に関わる研究開発および製造は、薬剤耐性菌株が原因で日増しに深刻になってくる一連の治療問題を解決し、人体の健康を守るという重要な役割を担う。
【０００６】
本プロジェクトの研究開発した広域スペクトル抗菌フェロモニシンと国内外に研究開発された小ペプチド系抗生物質（Ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ  Ｐｅｒｆｏｒｉｎ、カイコ由来抗生物質）とは全く異なる物質である。その違いは次の通りである。（１）抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）は原型コリシンと同じに単量体（ｍｏｎｏｍｅｒ）を単位として組織を構成する、即ち一つの分子で一つの機能単位を形成する。それたに対し、小ペプチド系抗生物質は重合体（ｐｏｌｙｍｅｒ）を単位として組織を構成する、即ち一つの機能単位を形成するには数十個の分子が必要である。（２）抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）は原型コリシンと同じに血液循環および体内に作用できるのに対し、小ペプチド系抗生物質はできない。（３）抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）は原型コリシンと同じに標的細胞膜に電位依存性イオンチャンネルを形成するため、標的細胞膜にチャンネルを形成する小ペプチド系抗生物質より殺菌メカニズムおよび効率が遥かに上である。
【０００７】
一方、２０１０年度までのそれに関わる文献を調べたところ、動物体内実験を行う際、上述した小ペプチド系抗生物質は動物体内のプロテアーゼによって分解され、低下するという致命的欠陥を抱えるため、小ペプチド系抗生物質から生み出された薬物が臨床実験を通った例は未だに一つもなかった。それに対し、本プロジェクトの研究開発および製造した抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）は新薬の原型が動物および人体の消化器官に共生した細菌から生み出されたバクテリオシンである。該バクテリオシンは構造およびメカニズムが低分子ポリプペチドと全く異なる。一方、八年にわたった生体内実験および生体外実験に示した殺菌活性が非常に高いことが判明した。大型動物（乳牛、ヤギなど）の病態生理モデル実験において、局所注射および静脈注射にもかかわらず、殺菌効果および治療作用が良好であることが判明した。従って、本プロジェクトによる抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）の新薬は、上述した低分子ポリペプチドが生体内で使用されにくいような問題がない。
【０００８】
一方、文献を調べたところ、国外においてコリシン、細菌分泌シグナルポリペプチド、抗体再構成について別々に研究が進められており、本プロジェクトの研究アイディアおよび技術ロードマップに類似した研究を行う実験室は未だになかった。それに類似した文章は未だに公開されなかった。２０１０年６月にアメリカ国家医学図書館（ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ）に登録された文献を調べたところ、コリシン（Ｃｏｌｉｃｉｎ）  に関わる文献は２６００件あまり、フェロモン（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｅ）に関わる文献は７３００件あまり、抗体再構成  （  Ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ）に関わる文献は２１００件あまり、  免疫毒素（Ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｎ）に関わる文献は３８００件あまり、  抗生物質耐性（ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ  ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ）に関わる文献は９４０００件あまりであった。
【０００９】
上述した情報源において、本プロジェクトの科学的理念、設計理念および実施例に類似した報道は未だになかった。一方、２０１０年６月に教育部査新工作站（Ｎｏ．１）に調査を依頼した結果、国内外において、本プロジェクトの関係者により提示された報告のほかに、コリシンと標的細菌フェロモンまたは人工的な標的細菌抗体ミメティックとを結合することによって標的細菌に対する抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）薬物を作り上げた報告は未だになかった。または本プロジェクトにより標的化された抗菌性ポロペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）の形成方法に基づいて人用抗生物質、動物用抗生物質および農薬を製造した報告は未だになかった。
【００１０】
我々は、実際の需要に応じに、広域スペクトル抗菌フェロモニシンをもとに動物用薬物（乳牛の乳房炎を治療する薬物）および人体用薬物（抗生物質）の開発を進める。生体内外の抗菌実験により、フェロモニシンは抗菌作用が非常に強く、特に生体内の抗菌力が生体外の抗菌力に優れたことが判明した。一方、２０１０年５月に農業部獣薬安全監督検験測試中心に薬品安全性評価を依頼した結果、上述した開発した薬物は無毒で突然変異および異常作用を生じることがないことが判明した。完成した薬物の安全性評価結果は次の通りである。
【００１１】
１）、ラットおよびマウスの急性毒性試験の結果により、該薬物は無毒類に属すると判断された。（報告ＷＴＰＪ２０１００００３号）
２）、ネズミチフス菌復帰突然変異（Ａｍｅｓ）試験の結果により、該薬物は陰性反応、即ち突然変異を引き起こす性質を持たないと判断された。（報告ＷＴＰＪ２０１００００３（２）号）
３）、マウス骨髄小核試験の結果により、該薬物は陰性反応、即ち突然変異を引き起こす作用がないと判断された。（報告ＷＴＰＪ２０１００００３（３）号）
４）、マウス精子異常試験の結果により、該薬物は陰性反応、即ちマウス精子の異常を引き起こす作用がないと判断された。（報告ＷＴＰＪ２０１００００３（４）号）
５）、組み換え型ポリペプチド系抗菌薬によって乳牛の乳房炎の病原菌を分離させ、生体外の抑制試験を行った結果により、下記のことが判明した。
【００１２】
Ａ、組み換え型ポリペプチド系抗菌薬は、広域抗菌スペクトルを持ち、かつ生体外実験において乳牛の乳房炎の病原菌に対する抑制効果が良好である。
Ｂ、組み換え型ポリペプチド系抗菌薬（特許文献１を参照）は、ブドウ球菌（黄色ブドウ球菌、表皮ブドウ球菌、腐性ブドウ球菌、リスブドウ球菌）に対する抑制作用が最も良く、ＭＩＣ５０が０．１２５μｇ／ｍＬ、ＭＢＣ５０が０．２５μｇ／ｍＬに達することができる。かつセファロチン（２ｕｇ／ｍｌ）と、オキサシリン（４ｕｇ／ｍｌ）と、ペニシリン、アンピシリン、リンコマイシン、ゲンタマイシン（いずれも８ｕｇ／ｍｌ以上）とに比べて、差異が極めて著しい。薬物の分子量によって比較を進めた結果により、ポリペプチド（ＭＷ７０，０００）はブドウ球菌に対する抑制作用がセファロチン（ＭＷ５２３）の抑制作用の２１００倍、かつオキサシリン（ＭＷ４２３）の抑制作用の５３００倍であることが判明した。
Ｃ、組み換え型ポリペプチド系抗菌薬は、レンサ球菌と、アルカノバクテリウム・ピオゲネス菌と、大腸菌などの腸内細菌科の細菌とに対する抑制作用を有する。レンサ球菌（Ｓ．ａｇａｌａｃｔｉａｅ、Ｓ．ｄｙｓｇａｌａｃｔｉａｅ、Ｓ．  ｕｂｅｒｉｓ、Ｓ．ｂｏｖｉｓ）に作用する際、ＭＩＣ５０は１．０μｇ／ｍＬであり、ＭＢＣ５０は２．０μｇ／ｍＬである。アルカノバクテリウム・ピオゲネス菌に作用する際、ＭＩＣ５０は０．２５μｇ／ｍＬであり、ＭＢＣ５０は１．０μｇ／ｍＬである。大腸菌などの腸内細菌科の細菌に作用する際、ＭＩＣ５０は１．０μｇ／ｍＬであり、ＭＢＣ５０は１．０μｇ／ｍＬである。
Ｄ、組み換え型ポリペプチド系抗菌薬は、感受性細菌株に対する抑制作用および薬剤耐性菌株に対する抑制作用の違いがあまりなく、薬剤耐性表現型のブドウ球菌、レンサ球菌および大腸菌を高効率に抑制することができる。
【００１３】
前期の大型動物治療試験（乳牛乳房炎の実験・治療試験）において、完治した大型動物は１１２頭であり、完治率は９５％に達する。国家獣薬安全評価中心の試験結果により、本薬物は動物に毒性反応を生ぜしめて不良な影響を与えることがない無毒薬品であり、この種類の薬物はフェロモニシンを分解し、低下させるだけでなく、従来の抗生物質のように家禽類疾患の治療が完了した後、家禽類の体内に残留してしまうという問題点を避けることができる。一方、北京市乳品質量監督検験站の試験結果により、該薬物を受けて治療された乳牛から搾った牛乳には抗生物質が残留しないことが判明した（試験報告Ａ２００９−２４９号）。
【００１４】
組み換え型抗生物質の製造について、発明者は既に特許文献１の“新規抗生物質およびそのヌクレオシド配列、製造方法および応用”を提出した。該明細書の実施例１は抗菌ペプチドの製造技術を公開し、かつ組み換えプラスミドを生じてコンピテントセルの形質転換を行った後、細菌の増殖誘導によって組み換えタンパク質を発現するステップにおいて一般の細菌増殖技術を採用する。実験段階において、生産効率および製造量を特に要求しなかった上で組み換え型抗生物質に臨床試験、動物試験および安全評価を行った結果、抗菌ペプチドの組み換え体の医療上の価値が判明したが、上述の特許請求案により提示された製造技術を採用すればコストが高過ぎるだけでなく、高純度の組み換えタンパク質の大量発現が難しい。従って、上述した薬品の実用化を実現させるには、いかに開発および生産の規模化を効果的に進めるかという問題を解決しなければならない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１５】
【特許文献１】中国特許出願第２００９１０１５７５６４．５号明細書
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
本発明は、上述した問題に対し、組み換え型ポリペプチド系新規抗菌薬の製造方法を提供することを主な目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
上述の目的を達成するために、組み換え型ポリペプチド系新規抗菌薬の製造方法は次のステップ（１）〜（３）を含む。
（１）抗菌ペプチドの組み換え体を誘導発見可能な組み換え変異体プラスミドが導入された大腸菌を製造する。
（２）液体培養基によって、ステップ（１）で製造された大腸菌を大量培養する。
（３）ステップ（２）で得られた菌液から、抗菌ペプチドの組み換え体を精製する。
【００１８】
その特徴は次の通りである。液体培養基は各グループの最終溶液中の質量／体積パーセントに基づいて調製される。各グループの最終溶液中の質量／体積パーセントは下記の通りである。リン酸水素二ナトリウムは０．４から０．７Ｗ／Ｖ％である。リン酸二水素カリウムは０．１から０．６Ｗ／Ｖ％である。塩化アンモニアは０．０５から０．２Ｗ／Ｖ％である。塩化カルシウムは０．０００５から０．００１Ｗ／Ｖ％である。硫酸マグネシウムは０．５から２．５Ｗ／Ｖ％である。ペプトンは１から３Ｗ／Ｖ％である。酵母エキスは０．５から１Ｗ／Ｖ％である。グルコースは０．１から０．５Ｗ／Ｖ％である。塩化ナトリウムは０．２から０．８Ｗ／Ｖ％である。それ以外の部分は水である。
【００１９】
液体培養基は各グループの最終溶液中の質量／体積パーセントに基づいて調製される。各グループの最終溶液中の質量／体積パーセントは下記の通りである。リン酸水素二ナトリウムは０．６８Ｗ／Ｖ％である。リン酸二水素カリウムは０．３Ｗ／Ｖ％である。塩化アンモニアは０．１Ｗ／Ｖ％である。塩化カルシウムは０．００１Ｗ／Ｖ％である。硫酸マグネシウムは０．０２Ｗ／Ｖ％である。ペプトンは２．５Ｗ／Ｖ％である。酵母エキスは０．７５Ｗ／Ｖ％である。グルコースは０．２Ｗ／Ｖ％である。塩化ナトリウムは０．６Ｗ／Ｖ％である。それ以外の部分は水である。
【００２０】
菌株を大量培養する際、三段階に分けて大量培養を進める。各段階の大量培養のパラメーターは下記の通りである。攪拌速度は２２０ｒｐｍ、温度は３７℃、時間は３から８時間である。
【００２１】
菌株を誘導し抗菌ペプチドの組み換え体を発現するステップ（３）は、ステップ（２）によって製作された細菌培養液を下記の条件によって処理する。攪拌速度を２２０ｒｐｍに設定し、酸素量を最大に維持した上で温度が３０℃の時に２から４時間、温度が４２℃の時に０．５時間、温度が３７℃の時に１から２時間処理する。温度が４２℃に達すると最終濃度が０．５ｍＭのＩＰＴＧを添加する。
【００２２】
ステップ（２）を進める前に、菌株は下記の通り処理される。
（処理１）４℃で菌株を解凍し、かつ最終濃度が５０μｇ／ｍｌのＡＭＰを含有したＬＢ液体培養基の中で、菌株を２２０ｒｐｍの撹拌速度で撹拌しながら、温度３７℃で一晩回復培養する。続いて、ＬＢ固体培養基に塗って単集落菌を培養する。
（処理２）単集落菌を取り出して１．５ｍｌのＬＢ液体培養基に入れ、そののち攪拌速度２２０ｒｐｍ、温度３７℃で５から８時間培養する。続いて、それを１００ｍｌのＬＢ液体培養基に移し、そののち攪拌速度２２０ｒｐｍ、温度３７℃で５から８時間培養する。
【００２３】
ＬＢ液体培養基の成分および各グループの質量／体積パーセントは次の通りである。塩化ナトリウムは１Ｗ／Ｖ％である。ペプトンは１Ｗ／Ｖ％である。酵母エキスは０．５Ｗ／Ｖ％である。寒天は０．８から１Ｗ／Ｖ％である。それ以外の部分は水である。
【００２４】
本発明において、大腸菌は、組み換えプラスミドｐＢＨＣ−ＳＡ１、ｐＢＨＣ−ＳＡ２、ｐＢＨＣ−ＳＡ３、ｐＢＨＣ−ＳＡ４、ｐＢＨＣ−ＳＥまたはｐＢＨＣ−ＰＡを含有した遺伝子組み換え菌ＢＬ−２１である。
【００２５】
本発明者は、高純度の抗菌ポリペプチドの組み換え体を大量製造するために、以前に公開した抗菌ポリペプチドの組み換え体に関わる技術をもとに、抗菌ポリペプチドの組み換え体の製造方法を提供する。既存の方法は大規模生産に対応できないため、既存の方法に基づいて大規模生産を進めれば、純度または生産量などがあまり好ましくないという欠点が生じる。この点は、本発明者の以前に公開した抗菌ポリペプチドの組み換え体の臨床応用を進めるときに克服しなければならない難問である。本発明は培養基成分の選択および最適化により、大腸菌によって外来遺伝子を発現する培養基に最適の製剤を提供し、かつ大量培養に最適のパラメーターを選び出すことにより、製造過程の一貫性を保ち、大規模生産を実現させると同時に製造した抗菌ポリペプチドの組み換え体の純度および生産量を維持する。これにより、以前に公開した抗菌ポリペプチドの組み換え体の製造を規模化および工業化する基礎を固める。
【図面の簡単な説明】
【００２６】
【図１】本発明の方法によって製造された抗菌ペプチドとＡＭＰとを比較した結果を示す図である。図中の左から右への順によってＣＯＮは３時間経過後から濁り始めた。ＡＭＰは４時間経過後から濁り始めた。第一実施例によって製作したサンプル、即ち１９４グループのタンパク質および１９８グループのタンパク質は２７時間経過後から濁りがなくなる。
【図２】異なるグループの抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）の純度試験を示す図である。線状部１は比較用目印、線状部２は１２０グループ、線状部３は１２２グループ、線状部４は１２６グループ、線状部５は２４６グループ、線状部６は２４７グループ、線状部７は２４８グループ、線状部８は２５０グループ、線状部９は２５２グループである。１２０グループ、１２２グループおよび１２６グループの生産方法は既存の方法である。２４６グループ、２４７グループ、２４９グループ、２５０グループおよび２５２グループは本発明の提示した新たな方法によって生産された。
【図３】異なる生産規模の差を比較した結果／左のフラスコ、中央の４２Ｌ発酵槽、右の２００Ｌ発酵槽によって１０グループの生産を連続した生産率。
【発明を実施するための形態】
【００２７】
本発明による組み換え型ポリペプチド系新規抗菌薬の製造方法を下記の実施例に基づいて説明する。なお本発明は下記の実施例に限定されない。
【００２８】
実施例１は、大腸菌、黄色ブドウ球菌、表皮ブドウ球菌および緑膿菌の繁殖を抑制する抗菌ペプチドの製造技術である。
本発明の実施例１は下記の培養基を採用する。
（１）ＬＢ液体培養基（１００ｍｌ）：
調製方法は１ｇの塩化ナトリウム、１ｇのペプトンおよび０．５ｇの酵母エキスを２５０ｍｌのフラスコに入れ、続いて１００ｍｌの水を加えてそれらを水に溶解させる。続いてオートクレーブに入れて１２０℃で８分間殺菌する。
（２）ＬＢ固定培養基（１００ｍｌ）：
ＬＢ固定培養基は、回復培養後の菌株をプレーティングすることで単集落菌を培養するのに使用される。調製方法は  ０５から１．５ｇの塩化ナトリウム、０．５から２ｇのペプトン、０．３から１ｇの酵母エキスおよび０．８から３ｇの寒天を２５０ｍｌのフラスコに入れ、続いて１００ｍｌの水を加えてそれらを水に溶解させる。続いてオートクレーブに入れて１２０℃で８分間殺菌する。
（３）生産用培養基（７００ｍｌ、２０ｌ、１００ｌ、２００ｌ）
最終溶液中の成分の質量／体積パーセントは下記の通りである。リン酸水素二ナトリウムは０．４から０．７Ｗ／Ｖ％である。リン酸二水素カリウムは０．１から０．６Ｗ／Ｖ％である。塩化アンモニアは０．０５から０．２Ｗ／Ｖ％である。塩化カルシウムは０．０００５から０．００１Ｗ／Ｖ％である。硫酸マグネシウムは０．５から２．５Ｗ／Ｖ％である。ペプトンは１から３Ｗ／Ｖ％である。酵母エキスは０．５から１Ｗ／Ｖ％である。グルコースは０．１から０．５Ｗ／Ｖ％である。塩化ナトリウムは０．２から０．８Ｗ／Ｖ％である。それ以外の部分は水である。
【００２９】
本発明の好ましい配合量は表１のとおりである。
【表１】
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培養基に水を適切に加え、そののちオートクレーブに入れて１２１℃で８分間殺菌する。
【００３０】
（４）ホウ酸緩衝液：  ホウ酸（０．０４Ｍ）、塩化ナトリウム（０．０１Ｍ）、四ホウ酸ナトリウム（０．０４Ｍ）、ＥＤＴＡ（２ｍＭ）
調製方法：５Ｌのホウ酸緩衝液＝１ＬのＡ液＋４ＬのＢ液
Ａ液（１Ｌ）：ホウ酸１２．３６８ｇ（０．２Ｍ），塩化ナトリウム２．９２５ｇ（０．０５Ｍ）
Ｂ液（４Ｌ）：四ホウ酸ナトリウム７６．２７ｇ（０．０５Ｍ）
１ＬのＡ液と４ＬのＢ液を混合させ、それに２．９２２５ｇのＥＤＴＡを加え、最終濃度を２ｍＭに維持する。
【００３１】
ステップ１は組み換え変異体プラスミドを製造する。
特許出願請求番号が２００９１０１５７５６４．５、発明名が“新規抗生物質およびそのヌクレオシド配列、製造方法および応用”の明細書内の実施例１に基づいて、組み換え変異体プラスミドｐＢＨＣ−ＳＡ１、ｐＢＨＣ−ＳＡ２、ｐＢＨＣ−ＳＡ３、ｐＢＨＣ−ＳＡ４、ｐＢＨＣ−ＳＥ、ｐＢＨＣ−ＰＡを製造する。
【００３２】
ステップ２はコンピテントセルの形質転換を行う。
６種類の１００ｎｇの組み換え変異体プラスミドを別々に遺伝子組み換え菌ＢＬ−２１のコンピテントセル４０ｕｌと５分間冷却させ、４２℃で熱衝撃処理を３０秒行い、そののち、氷に入れて２分間冷却させ、続いて１６０ｕｌのＳＯＣ培養基を加え、攪拌速度２２０ｒｐｍ、温度３７℃で細菌を１時間振り、そののち、プレート（ＬＢ培養基に１％の寒天と５０  ｕｇ／ｍｌのアンピシリンを加え、３７℃で一晩寝かす）に敷き並べ、単集落菌を選び出し、細胞増殖を行って菌株を形成する。続いて、菌株を低温で保存する。
【００３３】
ステップ３は菌株を回復させる。
１、菌株を回復させる
保存された菌株を４℃で解凍し、続いて１０ｍｌのＬＢ培養基（５０μｇ／ｍｌのＡＭＰを含有）に１．５ｍｌの株菌を入れ、攪拌速度２２０ｒｍｐ、温度３７℃で５時間から８時間培養する。
【００３４】
２、単集落菌を接種する。
回復した菌液を１０4または１０5倍まで希釈し、１０ｕｌの希釈された菌液をＬＢ固体培養基（ＡＭＰ５０μｇ／ｍｌ）プレートに塗る。続いてウェットボックスに移し、３７℃のインキュベーターで１０時間から１２時間培養し、培養基の表面に円形の単集落菌を成長させる。
【００３５】
３、細菌を選び出し、細菌を増殖させる。
（１）形が丸くて辺縁が滑らかな単集落菌を殺菌済みの楊枝または接種用ループでプレートから選び出し、１．５ｍｌのＬＢ培養基に入れて攪拌速度２２０ｒｐｍ、温度３７℃で５時間から８時間培養する。
（２）１．５ｍｌのＬＢ培養基の菌液を１００ｍｌのＬＢ培養基に移し、攪拌速度２２０ｒｐｍ、温度３７℃で５時間から８時間培養する。
（３）第一段階の大量培養：上述した１００ｍｌの菌液を７００ｍｌの生産用培養基に加え、攪拌速度２２０ｒｐｍ、温度３７℃で５時間から８時間培養する。
（４）第二段階の大量培養：上述した７００ｍｌの菌液を６＊７００ｍｌの生産用培養基に別々に加え、攪拌速度２２０ｒｐｍ、温度３７℃で５時間から８時間培養する。
（５）第三段階の大量培養：上述した６＊７００ｍｌの菌液を２０Ｌの生産用培養基に加え、続いて攪拌速度が２２０ｒｐｍ、温度が３７℃、酸素量が最大に維持された発酵槽で３時間から５時間培養する。
（６）遺伝子組み換え菌の発酵および誘導によってタンパク質を発現する。上述した２０Ｌの菌液を２００Ｌの生産用培養基に加え、発酵槽で培養および誘導を行うことによってタンパク質を発現する。発酵槽での培養および誘導を行う際、攪拌速度を２２０ｒｐｍに設定し、酸素量を最大に維持した上で温度が３０℃の時に２時間から４時間、温度が４２℃の時に０．５時間、温度が３７℃の時に１時間から２時間処理する。温度が４２℃に達すると最終濃度が０．５ｍＭのＩＰＴＧを添加する。
【００３６】
４、遠心分離によって細菌を収集する。
６０００ｇの培養液を４℃で２０分間遠心分離し、遠心分離後の沈殿物を収集し、５０ｍＭのホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）に入れ、ホウ酸緩衝液に菌体を浮遊させる。ホウ酸緩衝液に加えた２ｍＭのＰＭＳＦはフッ化フェニルメタンスルホニルである。菌体を浮遊させた後の作業は４℃で進めなければならない。
【００３７】
５、菌体を破砕する。
ｐＨ９．０のホウ酸緩衝液に菌体を完全に浮遊させた後、圧力が５００から６００ｂａｒの高圧ホモジェナイザーによって菌体を破砕し、３分から５分ごとに菌体破砕を行い、７回繰り返す。
【００３８】
６、菌体ＤＮＡを沈殿させる。
破砕処理が完了した５５０００ｇの菌液を４℃で４０分間遠心分離する。続いて、上澄み液を取り出し、それに硫酸ストレプトマイシンを加え（２００ｍｌごとに１６本の１００万単位の硫酸ストレプトマイシンを加え）、マグネチックスターラーで１時間攪拌する。
【００３９】
７、透析処理
上述の５５０００ｇの菌液を４℃で２０分間遠心分離し、上澄み液を取り出して透析袋に入れる。続いて透析袋をホウ酸緩衝液の中に入れて８時間から１２時間透析し、その間に４時間ごとに透析液を取り替える。
【００４０】
８、薬剤でタンパク質を精製することによって抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）薬物を生成する。
透析が完了した５５０００ｇの菌液を４℃で２０分間遠心分離し、上澄み液を取り出してフラスコに入れ、続いてイオン交換法によってタンパク質を精製する。続いて上澄み液からＣＭイオン交換カラムを取り出し、充分に水洗いし、続いて０．３  Ｍ  のＮａＣｌを含有した５０ｍＭのホウ酸緩衝液で溶出を行うことによって新規抗菌性ポリペプチドを生成する。
【００４１】
実施例２はポリペプチド系薬物に細菌抑制試験を行う。
１、１００ｍｌのフラスコに１０ｍｌの培養基（未殺菌）を入れ、１２１℃の高圧蒸気滅菌器で８分間殺菌する。
２、作業台を予めアルコールで拭いて洗浄し、そして赤外線ランプで３０分間殺菌する。
３、それぞれの１００ｍｌのフラスコに一晩培養した３μｌの黄色ブドウ球菌を入れる。
４、１０μｌの無菌食塩水と、１μｌ  １ｍｇ／ｍｌのＡＭＰと、本発明の実施例１によって製作したｐＢＨＣ−ＳＡ１が  ０．８ｍｇ／ｍｌ  のポリペプチドサンプル１２５μｌとをそれぞれの１００ｍｌのフラスコに加え、しるしを付ける。
５、振動攪拌培養器に入れて攪拌速度２２０ｒｍｐ、温度３７℃で培養する。
６、３時間経過後、６時間経過後、９時間経過後、１２時間経過後、２４時間経過後の順に懸濁状態を観察する。
【００４２】
図１に示すように、ブランクによって比較した上で３時間経過後、ＡＭＰが濁り、９時間経過後、サンプルがまだ濁っていないことにより、サンプルは黄色ブドウ球菌を効果的に抑制できることが判明した。図１の左から右への順によってＣＯＮは３時間経過後から濁り始めた。ＡＭＰは４時間経過後から濁り始めた。第一実施例によって製作したサンプル、即ち１９４グループのタンパク質および１９８グループのタンパク質は２７時間経過後から濁りがなくなる。
【００４３】
実施例２は、本発明の製造方法によって製造された抗菌ポリペプチドと既存の方法によって製造された抗菌ポリペプチドとを比較する。
同じ生産規模を条件とした上で本発明の実施例１により提示された方法と、特許出願請求番号２００９１０１５７５６４．５号により公開された方法とによって別々に製造された、異なるグループの抗菌ペプチドｐＢＨＣ−ＳＡ１に対し、ポリアクリルアミドゲル電気泳動および染色を行い、生産物の純度を比較した。その結果は次の通りである。抗菌性ポリペプチド（Ｐｈｅｒｏｍｏｎｉｃｉｎ−ＳＡ）の分子量は７５０００前後である。本発明の実施例１の方法により製造されたポリペプチドは電気泳動径路５、６、７、８に位置する。電気泳動径路５、６、７、８は相互に単一線状部を呈する。電気泳動径路２、３、４は比較的小さい分子を大量含有したため、複雑な線状部を呈する。つまり、本発明の方法によって製造されたポリペプチドの純度が高いことは実証された。
【００４４】
実施例３は、製造技術および工程を改善する。
製造技術の改善および最適化を持続的に進め、生産規模を持続的に拡大することにより、実験用フラスコによって（８．４Ｌ）製造することから、４２Ｌの発酵槽で（２５Ｌ）製造する、２００Ｌの発酵槽で（１００Ｌ）製造することを実現させることができる。一方、図３に示すように、生産規模が拡大されても生産量および生産率はあまり影響されないため、本発明は抗菌ポリペプチドの製造を規模化および工業化する基礎を固めることができる。フラスコ、４２Ｌの発酵槽および２００Ｌの発酵槽によって別々に１０グループの生産を連続した生産量および生産率は表２および図３に示したとおりである。
【表２】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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